ES2277831T3 - Utilizacion de pirenoxina para la proteccion de tejidos corneales en fotoqueratectomia. - Google Patents
Utilizacion de pirenoxina para la proteccion de tejidos corneales en fotoqueratectomia. Download PDFInfo
- Publication number
- ES2277831T3 ES2277831T3 ES00911259T ES00911259T ES2277831T3 ES 2277831 T3 ES2277831 T3 ES 2277831T3 ES 00911259 T ES00911259 T ES 00911259T ES 00911259 T ES00911259 T ES 00911259T ES 2277831 T3 ES2277831 T3 ES 2277831T3
- Authority
- ES
- Spain
- Prior art keywords
- corneal
- pyrenoxine
- drug
- ros
- eye
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Lifetime
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
- A61K31/33—Heterocyclic compounds
- A61K31/395—Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins
- A61K31/495—Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins having six-membered rings with two or more nitrogen atoms as the only ring heteroatoms, e.g. piperazine or tetrazines
- A61K31/496—Non-condensed piperazines containing further heterocyclic rings, e.g. rifampin, thiothixene or sparfloxacin
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P27/00—Drugs for disorders of the senses
- A61P27/02—Ophthalmic agents
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P41/00—Drugs used in surgical methods, e.g. surgery adjuvants for preventing adhesion or for vitreum substitution
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Public Health (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Ophthalmology & Optometry (AREA)
- Surgery (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
- Nitrogen And Oxygen Or Sulfur-Condensed Heterocyclic Ring Systems (AREA)
- Heterocyclic Carbon Compounds Containing A Hetero Ring Having Oxygen Or Sulfur (AREA)
Abstract
Utilización de ácido 1-hidroxi-5-oxo-5H- pirido-[3, 2-a]-fenoxazin-3-carboxílico (pirenoxina) o una sal farmacéuticamente aceptable del mismo para la producción de un fármaco oftálmico tópico para la protección de tejido corneal en intervenciones de fotoqueratectomía.
Description
Utilización de pirenoxina para la protección de
tejidos corneales en fotoqueratectomía.
La presente invención se refiere a la
utilización de pirenoxina para la protección de los tejidos
corneales en intervenciones de fotoqueratectomía. Más
particularmente, la presente invención se refiere a la utilización
de pirenoxina y sales de la misma como agentes capaces de inhibir en
el interior de la córnea el fenómeno oxidativo determinado por las
especies reactivas de oxígeno (o ROS, especies reactivas de oxígeno)
que se producen en los tejidos después de la irradiación con
láser.
Tal como se conoce, la cirugía oftálmica, y
particularmente la refractiva, que se dirige a modificar el poder
refractivo del ojo a efectos de corregir defectos visuales no
negligibles, utiliza diversas técnicas, más o menos consolidadas o
en desarrollo, algunos ejemplos de las cuales son la queratectomía
radial, epiqueratofaquia y queratomileusis. Además de éstas,
también en el sector de la oftalmología ha aumentado notablemente el
uso del láser, particularmente del láser de estado sólido, (tal
como láser
neodimio:itrio-aluminio-granate,
conocido como Nd:YAG), y, sobretodo, láser excímer.
El láser excímer es un láser de pulsos que,
debido a la descomposición de dímeros de gases nobles excitados
(excímeros obtenidos de mezclas de gases de halógeno y gases
nobles), es capaz de emitir grandes cantidades de energía en forma
de radiación en el rango del ultravioleta lejano
(UV-C), en forma de trenes de pulsos que tienen una
duración, frecuencia y fluencia predeterminadas. Cualquier fotón
emitido durante la irradiación tiene suficiente energía para romper
los enlaces intramoleculares del material expuesto, de manera que
las moléculas irradiadas se "rompen" en fragmentos volátiles
pequeños que son expulsados a una velocidad supersónica
representando un proceso conocido como
"fotodescomposición".
En las aplicaciones que utilizan el láser
excímer en intervenciones de cirugía corneal, se utiliza
habitualmente un láser de argón-flúor, que emite
radiación con una longitud de onda de 193 nm, que es adecuada para
llevar a cabo intervenciones altamente precisas con un control
óptimo de la profundidad de penetración y un efecto mínimo del daño
térmico o mecánico en las proximidades de los tejidos expuestos. Al
contrario de otros láser utilizados en el sector clínico, el láser
excímer no emite energía concentrada en un punto focal sino que
tiene un radio con una sección transversal amplia que, pasando por
rendijas adecuadas, se dirige a alcanzar zonas de la córnea con una
superficie amplia con un control preciso de la forma y los tamaños
de las zonas expuestas. La energía emitida es adsorbida casi
totalmente por una capa superficial de un grosor de unas micras y
da lugar, mediante evaporación, a la ablación en cada pulso de capas
de la córnea con un grosor algo mayor que el molecular, con una
reproducibilidad que no se consigue mediante otras técnicas.
El láser excímer se utiliza ampliamente para la
remodelación refractiva corneal en técnicas conocidas como
queratectomía fotorefractiva o PRK y LASIK (queratomileusis
intraestromal con láser), para la corrección de varias ametropías
entre las cuales la más difundida es la miopía. Tal como se conoce,
esta última es un defecto determinado por una curvatura en la
córnea mayor que la requerida por la longitud del globo ocular, de
manera que los rayos de luz del exterior de refractan de una manera
que, antes de que alcance la retina, convergen en un punto focal.
En este caso, la utilización de láser excímer proporciona que las
capas de tejido corneal, cuyo grosor aumenta hacia el centro, se
corten reduciendo por lo tanto la curvatura de la córnea. Cuando la
técnica se utiliza para la corrección de la hipermetropía, en la
que, por el contrario, la modificación a obtener es un aumento de
la curvatura de la córnea, la cantidad de tejido cortado en la
periferia de la zona expuesta es más importante que en el centro.
Finalmente, para la corrección del astigmatismo que, como se sabe,
es una ametropía provocada por la diferencia de curvatura en varios
meridianos de la superficie ocular, la profundidad de la ablación
puede ser asimétrica, dependiendo del meridiano a "alisar".
Más recientemente, se ha sugerido que la
utilización del láser excímer para la eliminación terapéutica de
tejidos corneales superficiales, para el tratamiento de
irregularidades y opacidades corneales: tales como de tipo
distrófico, degenerativo, cicatricial o infectivo. Se ha utilizado
dicha operación, denominada queratectomía fototerapéutica o PTK,
por ejemplo, para el tratamiento de erosiones corneales recurrentes,
queratitis después de la operación, distrofias corneales como
distrofias de Reis-Buckler, opacidades o cicatrices
corneales causadas por Herpes simples, irregularidades en la
superficie tras las intervenciones quirúrgicas, por ejemplo como
resultados de una queratoplastia o intervenciones corneales
refractivas. Al contrario de la fotoqueratectomía refractiva, PTK
se dirige a eliminar irregularidades en la superficie corneal a
efectos de alisar el perfil de la misma y, por lo tanto, implica la
ablación de las capas de tejido con diferente grosor en las diversas
zonas de la superficie corneal tratada.
Aunque las intervenciones de fotoqueratectomía
descritas anteriormente parecen ser una alternativa menos traumática
que las técnicas oftálmicas quirúrgicas, el proceso de
reconstitución después de la fotoablación tiene desventajas que son
más o menos transitorias y penetrantes o impertinentes para el
paciente, entre las cuales, por ejemplo, existen problemas de
cicatrización corneal, generación de opacidades bajo el epitelio
denominadas "neblina", que determinan una reducción de la
eficacia visual resultante del fenómeno de la "dispersión de la
luz" (difusión de la luz) y, en algunos casos, una reducción de
los valores de refracción como resultado de la operación. Parece
ser indiscutible por los técnicos en el sector que, como mínimo,
parcialmente dichos efectos resultan de la formación de radicales
libres y, generalmente, especies reactivas de oxígeno, que se
detectaron como efecto secundario de la irradiación UV, y del
aumento de la temperatura que tiene lugar en los tejidos
implicados.
Tal como se conoce el término "especies (o
sustancias) reactivas de oxígeno", o ROS, significa en la
actualidad colectivamente los radicales libres y especies químicas
no radicales que actualmente participan en procesos biológicos
oxidativos y cuyo exceso con respecto a las condiciones de
equilibrio natural se considera que es la base de un número
creciente de fenómenos degenerativos y patológicos. Específicamente,
el término ROS comprende el radical aniónico superóxido
O_{2}^{-}\cdot, el radical hidroxilo OH^{-}, oxígeno
singulete ^{1}O_{2} y el peróxido de hidrógeno, H_{2}O_{2},
así como los radicales alcóxido RO\cdot y peróxido ROO\cdot que
se generan a partir de moléculas orgánicas durante los procesos
oxidativos. La actividad de estas especies ejerce, dentro del
organismo, en varios componentes celulares, entre los cuales existen
un gran número de proteínas estructurales y enzimas, ADN, ARN y,
sobretodo, lípidos de membrana.
De hecho, la peroxidación lipídica es el
mecanismo más conocido mediante el cual las ROS ejercen su actividad
degenerativa en las estructuras celulares que dañan los ácidos
grasos poliinsaturados (PUFA) contenidos en las membranas
citoplasmáticas, frecuentemente como ésteres fosfolípidos. En la
etapa inicial de este proceso, la acción de un radical libre
abstrae un átomo de hidrógeno H\cdot de la cadena lipídica,
formando un radical libre R* que experimenta una redistribución
molecular de los dobles enlaces dando lugar a un radical dieno
conjugado. Este último reacciona rápidamente con oxígeno molecular
formando de esta manera un radical de peróxido lipídico ROO\cdot,
que, al ser un oxidante tan fuerte para atacar otro PUFA, inicia la
etapa de propagación de la reacción. De esta manera, un radical de
hidroperóxido lipídico, ROOH; y, correspondientemente, se forma
otro radical de peróxido lipídico ROO\cdot. Por lo tanto, la
principal derivación de la reacción descrita anteriormente tiene
lugar mediante ataques de cadenas de radicales a los lípidos de
membrana que, de esta manera, se transforman paso a paso en los
hidroperóxidos correspondientes hasta la terminación de la cadena
mediante un radical libre.
Diversos agentes naturales de los tejidos
celulares pueden llevar a cabo de la acción descrita anteriormente,
actuando en la práctica como secuestradores o antioxidantes. Entre
éstos los más conocidos son las vitaminas C (ácido ascórbico) y E
(alfa tocoferol), enzimas antioxidantes, tales como superóxido
dismutasa (SOD), catalasa, glutatión peroxidasa y varios compuestos
de peso molecular bajo, entre ellos glutatión (GSH), tirosina, ácido
úrico. La protección natural del estrés oxidativo realizado por
estas sustancias, sin embargo, no puede ser suficientemente fuerte
para antagonizar el efecto de degradación de ROS, en cuyo caso la
peroxidación lipídica puede dar lugar a un daño irreversible a las
membranas celulares.
También se ha demostrado que las formas oxidadas
de los iones de metales de transición, tales como Fe^{3+} y
Cu^{2+}, en presencia de H_{2}O_{2}, pueden acelerar el
mecanismo oxidativo mediante una reacción no enzimática conocida
como reacción de Fenton. En presencia de un agente reductor, tal
como ascorbato, parte de los iones oxidados se reducen al estado de
oxidación más bajo (por ejemplo, Fe^{2+}) y la reacción, cuya
velocidad depende de la proporción Fe^{3+}:Fe^{2+}, continúa
dando lugar a la conversión de peróxido de hidrógeno en ión
hidroxilo, OH^{-}, más un radical hidroxilo, OH\cdot. Éste
último representa la ROS más reactiva.
Aunque es difícil detectar las ROS debido a su
reactividad y, por lo tanto, a sus tiempos de vida cortos, la
formación de radicales libres en tejidos sometidos a fotoablación
utilizando láser excímer ha sido ampliamente demostrada. Por
ejemplo, se ha observado la presencia de radicales libres en córneas
bovinas expuestas a irradiación utilizando láser de ArF mediante
espectroscopia EPR (resonancia paramagnética electrónica) (R.J.
Landry y otros, "Laser and Light in Ophthalmol.", 6:
87-90, 1994), mientras que las mediciones del
aumento de temperatura a nivel del endotelio corneal y las
determinaciones analíticas de la reducción de la actividad de SOD a
nivel de humor acuoso confirmaron la formación de ROS en la córnea
de conejos tratados por PRK (K. Bigihan y otros, "Jpn. J.
Ophthalmol.", 40, 154-157, 1996). La peroxidación
lipídica se detectó, de nuevo en la córnea de conejos, tras el
tratamiento por PTK realizado utilizando láser excímer, ambos
mediante pruebas histoquímicas y la detección analítica de la
presencia de productos de degradación en extractos lipídicos de
córnea, particularmente dienos y cetodienos conjugados (S. Hayashi
y otros, "British J. Ophthalmol." 81, 141-144,
1997).
Además, se ha observado mediante espectroscopia
EPR la generación de radicales libres también cuando los tejidos
corneales son irradiados utilizando un láser de estado sólido
Nd:Yag, a una longitud de onda de 213 nm en lugar de 193 nm, cuya
longitud de onda es habitual de un láser excímer de
argón-flúor. Sin embargo, en este caso, además de
un daño oxidativo comparable con el obtenido utilizando el láser
excímer, también se ha detectado un efecto citotóxico más
destacado, de alguna manera dependiente de la mayor longitud de onda
de la radiación (E. Ediger y otros, "Lasers Surg. Med.", 21:
88-93, 1997).
Además del efecto de la radiación UV en la
producción primaria de ROS, también se ha observado que la actividad
de quimiotaxis de los hidroperóxidos lipídicos formados de esta
manera extrae células polimorfonucleadas in situ y
macrófagos que, a su vez, mediante la producción de ROS adicional,
potencian la acción dañina de la radiación que induce un conjunto
de efectos citotóxicos (H. Goto y otros, "Curr. Eye Res.",
10:1009-1014, 1991).
Aunque la literatura descrita anteriormente
demuestra la formación de radicales libres y especies reactivas de
oxígeno en el tratamiento de fotoablación y relaciona este fenómeno
con otras posibles complicaciones después de la operación, no se
considera que sea particularmente importante la protección de los
tejidos corneales mediante la administración de agentes exógenos
que tienen una actividad antagonizante de ROS, tanto antes como
después de la operación. En realidad, la terapia farmacológica
utilizada actualmente para los tratamientos por fotoqueratectomía
consiste en la aplicación tópica ocular, tras la operación, de
antibióticos, con el objetivo claro de mantener en condiciones
asépticas la superficie ocular durante el proceso de cicatrización,
y fármacos antiinflamatorios (esteroidales o, según las tendencias
más recientes, no esteroidales) a efectos
\hbox{de actuar
contra las condiciones de flogosis tras la operación.}
Por lo tanto, el objetivo de la presente
invención es proporcionar a los tejidos corneales implicados en una
radiación UV, tanto antes como poco después del tratamiento, un
agente adecuado para realizar una actividad protectora contra el
daño celular desencadenado por las especies reactivas de oxígeno y
para secuestrar la acción de las mismas. Particularmente, el agente
sugerido debe ser eficaz para contrarrestar la peroxidación
lipídica en los tejidos celulares corneales.
En los estudios sobre los efectos de ROS y la
inhibición de la peroxidación lipídica por diversas moléculas
exógenas que tienen actividad secuestradora o antioxidante, se ha
observado que la pirenoxina, un principio activo ya conocido y
utilizado terapéuticamente en otra zona ocular, el cristalino,
muestra una actividad destacable en la inhibición de la
peroxidación lipídica en los tejidos corneales y es, por lo tanto,
capaz de realizar una acción protectora contra las modificaciones
celulares resultantes de la radiación con láser.
La pirenoxina o ácido
1-hidroxi-5-oxo-5H-pirido-[3,2a]-fenoxazin-3-carboxílico
(también denominado pirfenossona) es un compuesto conocido que
tiene la siguiente fórmula:
utilizado en oftalmología,
habitualmente en forma de una sal sódica del mismo, para el
tratamiento de las cataratas. Esta última es una condición
progresiva anormal del cristalino del ojo, caracterizada por una
pérdida creciente de transparencia. Tal como se sabe, las cataratas
resultan más frecuentemente de modificaciones degenerativas, que
frecuentemente aparecen después de los 50 años de edad, mientras que
más raramente puede ser resultante de traumas o exposición a
venenos. Inicialmente, la visión es borrosa, a continuación, las
luces brillantes deslumbran de manera difusa y se puede desarrollar
una distorsión y doble visión. Al final, si no se tratan las
cataratas, aparece la anopia. Además del tratamiento quirúrgico, que
se hace necesario para estados degenerativos más avanzados e
implica la ablación del cristalino (con o sin implantación
quirúrgica de una lente intraocular), las cataratas se pueden
tratar mediante la administración tópica oftálmica de pirenoxina en
forma de
colirio.
Se ha postulado que la capacidad de la
pirenoxina para inhibir la formación de opacidades lenticulares
resulta de, como mínimo, tres mecanismos de acción diferentes: (a)
inhibición de la actividad de oxidación de las moléculas quinona en
las proteínas lenticulares, mediante la unión de sus grupos -SH; (b)
activación y normalización de la actividad de bombeo de cationes
realizada por la cápsula del cristalino; (c) inhibición de la
síntesis de sorbitol y la reducción del daño osmótico resultante de
la acumulación de esta sustancia (S. Iwata, "J. Pharmac. Soc.
Jap.", 1964; 844: 435-440; F. Ikemoto y otros,
en: "Proc. 50^{th} Congr. Pharmacol. Soc. Jap.", Región
Kanto, 1974: I. Korte y otros, "Ophthalmic Res.", 1979; 11:
123-125).
Dentro de los estudios más recientes sobre la
actividad biológica de la pirenoxina, también se ha observado, y es
el objeto de la solicitud de patente europea No. EP 0885612,
asignada al presente Solicitante, que esta molécula, además de la
actividad en el tratamiento de las cataratas, tiene también
propiedades antiinflamatorias. Estas propiedades, que se han
verificado en modelos animales, se expresan a través de un mecanismo
de acción no elucidado en la solicitud de patente mencionada,
aunque en la descripción de la patente mencionada se postula una
actividad inhibidora del catabolismo oxidativo de ácido
araquidónico, que da lugar a la producción de prostaglandinas.
Según la presente invención, se ha observado,
tal como ya se ha descrito, que la pirenoxina se puede utilizar
ventajosamente para la protección de los tejidos corneales durante
los tratamientos con láser excímer, ya que es activa en la
inhibición de la peroxidación lipídica en los tejidos celulares
corneales.
Por lo tanto, un objeto de la presente invención
es la utilización de ácido
1-hidroxi-5-oxo-5H-pirido-[3,2a]-fenoxazin-3-carboxílico
(pirenoxina) o una sal farmacéuticamente aceptable del mismo para
la producción de un fármaco oftálmico tópico adecuado para la
protección de los tejidos corneales en las intervenciones de
fotoqueratectomía. Tal como se ha indicado, el fármaco sugerido se
diseña como inhibidor de la actividad de ROS (especies reactivas de
oxígeno) a nivel de los tejidos corneales y, particularmente,
\hbox{como inhibidor de la peroxidación lipídica a nivel de
dichos tejidos.}
La utilización de pirenoxina como agente
protector antes y después de la operación tiene aplicación en
cualquier tratamiento con fotoqueratectomía, suponiéndose un uso
más amplio en aquellos tratamientos que actualmente están más
difundidos, es decir, fotoablación corneal mediante láser excímer,
tanto refractivo como terapéutico y, en el primer caso, mediante
las técnicas PRK y LASIK.
Las preparaciones oftálmicas de la presente
invención contienen preferentemente el principio activo, es decir,
pirenoxina o una sal farmacéuticamente aceptable de la misma, en una
cantidad de un 0,0001% a un 0,01% en peso, expresado como ácido
libre. Más convenientemente, dichos medicamentos contienen de un
0,001% a un 0,005% en peso de pirenoxina, expresado como ácido
libre, siendo la concentración óptima la misma que la utilizada
actualmente para la terapia de las cataratas, es decir, un 0,005% en
peso. Más convenientemente, dicha pirenoxina está en forma de sal
sódica. Cuando se utiliza en forma de colirio que contiene un 0,005%
en peso del principio activo, la preparación según la presente
invención se puede administrar, con el fin de obtener el efecto
deseado de inhibición de ROS, a una dosis de
una-dos gotas dos o tres veces por día,
preferentemente dos gotas tres veces por día, empezando, como
mínimo, uno o dos días antes de la operación y continuando, después
de la operación, durante, como mínimo, uno o dos días.
Generalmente, la dosis y la posología pueden ser ampliamente
variables sin perjudicar el efecto protector global contra las ROS,
ejercido por el producto.
El fármaco tópico oftálmico que contiene
pirenoxina o una sal de la misma puede estar, generalmente, en la
misma forma preparada o propuesta para la utilización del mismo
principio activo para la terapia de las cataratas o inflamación
oftálmica, tal como se describe en la publicación de patente europea
mencionada anteriormente
EP-A-0885612. Particularmente, el
producto puede estar en forma de solución acuosa o dispersión para
colirio o en forma de emulsión, ungüento, gel o crema.
Preferentemente, el producto se administra como una solución
oftálmica acuosa. Debido a la inestabilidad del principio activo, la
pirenoxina se formula normalmente, en los medicamentos ya
utilizados para el tratamiento de las cataratas, como una
preparación de dos componentes en la que un primer componente
comprende pirenoxina liofilizada y el segundo componente comprende
un portador o diluyente acuoso aceptable para el ojo. Los dos
componentes se reconstituyen antes de la utilización y la solución
obtenida de esta manera se puede guardar generalmente a temperatura
ambiente durante, aproximadamente, dos semanas sin degradación.
Generalmente, las composiciones que contienen
pirenoxina o una sal de la misma según la presente invención se
pueden formular según la técnica conocida, por ejemplo, según las
indicaciones de "Remington’s Pharmaceutical Sciences
Handbook", Hack Publ. Co., USA. Habitualmente, deberían añadirse
uno o más agentes para la regulación de la tonicidad a través de
los cuales la solución tiene un valor de osmolaridad adecuado. Se
puede utilizar cualquiera de los productos utilizados habitualmente
en la técnica, como, por ejemplo, cloruro sódico, cloruro potásico,
manitol, dextrosa, ácido bórico, propilenglicol. La preparación
también puede comprender ácidos o bases como agentes para la
regulación de pH y/o soluciones tampón, tales como, por ejemplo, los
sistemas fosfato monosódico - fosfato disódico, borato sódico -
ácido bórico o succinato sódico - ácido succínico. Para una buena
tolerabilidad en el ojo, el pH debería estar entre 4,5 y 8,5.
Además, la composición debería comprender también conservantes y
agentes antimicrobianos, tales como cloruro de benzalconio,
mertiolato sódico o timerosal, metil-, etil- y
propil-paraben, clorobutanol, así como agentes
quelantes o secuestrantes, tales como edetatos o EDTA. Si el
producto se envasa en recipiente de una sola dosis, se puede evitar
la presencia de conservantes, pero cuando se utilizan recipientes
de dosis múltiples, por ejemplo, viales para colirios que contienen
de 5 a 15 ml, la presencia de los conservantes es necesaria.
Además, la preparación oftálmica puede
comprender ingredientes opcionales adicionales, tales como agentes
espesantes, antioxidantes, estabilizantes, agentes activos de
superficie, etc. Sólo a modo de ejemplo, a continuación se describe
la composición de un producto ya disponible comercialmente diseñado
para el tratamiento de las cataratas. La formulación también puede
ser adecuada para la utilización del producto como agente protector
de la córnea contra radicales libres o ROS.
Algunos resultados experimentales obtenidos
dentro del alcance de la presente invención se describen a
continuación a modo de ejemplo junto con los dibujos que se
acompañan, en los que:
la figura 1 muestra el efecto de 10^{-5}M de
pirenoxina en la formación de fluorescencia de sustancias lipídicas
solubles en córneas de conejos tras la incubación con macrófagos
autólogos estimulados por f-MLP. Cada barra \pm
S.E.M. representa el valor promedio (entre paréntesis el número de
córneas procesadas). *: p<0,01 vs control. Los valores de
control son significativamente más elevados que los valores basales
(p<0,0002);
la figura 2 muestra la formación de
fluorescencia in vitro de sustancias lipídicas solubles en
células corneales epiteliales irradiadas (80 mJ/cm^{2}) con
UV_{312} tras la incubación en presencia y en ausencia de
10^{-5}M de pirenoxina. Los resultados son la media de 3
experimentos;
la figura 3 muestra los efectos ex vivo
de instilaciones de pirenoxina (60 \mul cada hora durante 8 horas
durante 2 días) en los ojos de conejo sobre la formación de dienos
conjugados en las córneas in vitro sometidas a peroxidación
lipídica inducida con hierro. Cada barra \pm S.E.M. representa el
valor promedio (entre paréntesis el número de córneas procesadas).
(a): expresada por la diferencia entre la muestra y el valor basal
(sin inducción con hierro: 1,3 \pm 0,21 nmoles/hemicórnea; n 0
8). *: p<0,02 vs control.
El componente en polvo seco del producto tiene
la siguiente composición, en la que las cantidades se dan para la
reconstitución en una solución de 7 ml:
\newpage
| Pirenoxina sódica | 0,376 mg | |
| Taurina (equivalente a 0,350 mg de pirenoxina) | 34,34 mg |
En la preparación, la taurina y la pirenoxina
sódica se disuelven separadamente en agua desionizada, las dos
soluciones se esterilizan mediante filtración y, a continuación, se
mezclan conjuntamente y se someten al proceso de liofilización.
El disolvente acuoso tiene la siguiente
composición:
| polivinil alcohol | 98 mg | |
| ácido succínico | 2,31 mg | |
| succinato sódico \cdot 6 H_{2}O | 89,215 mg | |
| cloruro sódico | 34,3 mg | |
| cloruro de benzalconio | 0,175 mg | |
| edetato sódico | 0,89 mg | |
| agua desionizada | c.s. hasta 7 ml |
Además de los ingredientes mencionados en la
descripción anterior, dicha formulación contiene PVA como agente
espesante. El pH del componente disolvente es 6. La formulación se
prepara mediante, en primer lugar, la mezcla y la disolución en
agua de todos los ingredientes a excepción del cloruro de
benzalconio. Tras la completa disolución de todos los productos, se
añade el cloruro de benzalconio con agitación continua y la mezcla
se esteriliza mediante filtración. El pH del producto reconstituido
es 6-6,3.
A efectos de evaluar el rendimiento de la
pirenoxina como agente protector contra la acción de ROS en los
tejidos corneales y, particularmente, contra la peroxidación
lipídica, se evaluó la actividad in vitro de la pirenoxina
tanto en homogenatos corneales en presencia del sistema de oxidación
Fe(III)-ácido ascórbico como en toda la córnea sometida a la
acción de ROS generadas a partir de macrófagos autólogos.
Además, se inspeccionaron cuidadosamente los
efectos de la luz UV en la córnea ya que el tejido corneal está
expuesto continuamente al medio externo y, por lo tanto, a la acción
combinada de oxígeno y radiación.
Los primeros experimentos llevados a cabo
mediante la radiación de UV_{312} de células epiteliales corneales
sugieren que también, en este caso, la pirenoxina proporciona una
protección de antioxidación.
Se ensayó la misma molécula para su acción ex
vivo en la protección de la córnea contra los ataques oxidativos
in vivo catalizados por la presencia de hierro, así como
contra la acción de un complejo fisiológico de hierro, ferritina,
previamente radiado con UV y, a continuación, se inyectó en el
estroma de la córnea. En ambos casos la pirenoxina dio resultados
satisfactorios.
A partir de los experimentos llevados a cabo
hasta ahora, la pirenoxina resulta ser un medio eficaz para proteger
la córnea afectada de patologías generadas por especies reactivas
de oxígeno.
El procedimiento experimental para la evaluación
de la acción inhibidora contra la peroxidación lipídica ejercida
por la pirenoxina en células epiteliales y endoteliales de córnea
utilizó el sistema Fe(III)-ácido ascórbico para inducir el
fenómeno peroxidativo. El ataque oxidativo en los lípidos de
membranas se confirmó mediante determinaciones espectrofotométricas
tanto de dienos conjugados como de sustancias solubles en lípidos
fluorescentes que, como se sabe, se generan por la degradación
oxidativa de moléculas lipídicas.
El procedimiento experimental utilizado incluía
las siguientes etapas: a) abstracción de la córnea del ojo de
conejos pigmentados machos seleccionados de forma adecuada y
preparados para el estudio; b) incubación de estos últimos en 100
\mum de tampón fosfato, pH 7,5, en presencia de 1000 U de
colagenasa y 5 \muM de CaCl_{2} durante 20 horas a 37ºC; c)
centrifugación a 35000 rpm a 0ºC durante 10 minutos y lavados del
sedimento con tampón fosfato; d) homogenización del sedimento
celular en 1 ml de tampón, pH 7,4 (10% p/v); e) incubación de una
parte alícuota de homogenato adecuado con 10 \mum de FeCl_{3} y
ácido ascórbico en tampón fosfato, pH 7,4, a 27ºC durante 30
minutos en presencia y en ausencia de 10^{-5}M de pirenoxina; f)
extracción de las sustancias solubles en lípidos utilizando una
mezcla de cloroformo/metanol (2:1 v/v). La determinación de los
dienos conjugados contenidos en el extracto lipídico se llevó a cabo
según Buege y otros ("Methods Enzymol." 52:
302-310, 1974), mientras que las sustancias solubles
en lípidos fluorescentes se determinaron según Fletcher y otros
("Anal. Biochem." 52: 1-2, 1973). Los
resultados de las pruebas se describen en la siguiente tabla.
A partir de los datos indicados en la tabla
anterior, está claro que la pirenoxina ejerce una clara actividad
inhibidora contra la acción peroxidante lipídica de ROS, inducida
por el sistema Fe(III)-ácido ascórbico, tal como se puede
deducir a partir del descenso notable de los dienos conjugados y el
descenso significativo de las sustancias solubles en lípidos
fluorescentes cuando dicha molécula anterior estaba presente.
A efectos de evaluar la inhibición ejercida por
la pirenoxina contra la actividad oxidante de ROS producidas de
macrófagos a nivel de la córnea, se llevó a cabo el siguiente
procedimiento: (a) lavado bronco-alveolar del
conejo para obtener los macrófagos; (b) abstracción de la córnea del
ojo del conejo; (c) incubación de las córneas con macrófagos
(800000 células/pocillo) estimulados o no estimulados con 10^{-7}M
de f-MLP durante dos horas a 37ºC, 5% de CO_{2}
en presencia y en ausencia de 10^{-5}M de pirenoxina; (d)
separación y homogenización de las células corneales epiteliales o
endoteliales y la posterior determinación de la fluorescencia, tal
como se describe en las etapas b, c, d y f de la metodología
anterior.
Los resultados indicados en la figura 1 muestran
que, mediante la incubación de todas las córneas junto con
macrófagos autólogos en presencia de pirenoxina, los niveles de la
fluorescencia inducida resultan notablemente inferiores que los
controles y son comparables con los de las córneas normales (valores
basales).
El efecto protector de la pirenoxina en células
corneales epiteliales (SIRC) radiadas para 36’’ utilizando luz
UV_{312} (80 mJ/cm^{2}), según el siguiente procedimiento: (a)
las células corneales se pusieron en placas en pocillos de 35 mm de
diámetro; (b) a un 80% de confluencia las células se pusieron en
contacto con un medio con un contenido bajo de suero (0,2%) para
inhibir la proliferación de las mismas durante el experimento; (c)
las células se irradiaron con luz UV en presencia y en ausencia de
10^{-5} de pirenoxina, se incubaron a 37ºC durante 17 horas y se
homogenizaron en tampón fosfato 10 mM, pH 7,4; (d) se determinaron
las sustancias solubles en lípidos fluorescentes y las proteínas
contenidas en partes alícuotas de homogenato adecuado.
Los resultados indicados en la figura 2 y en la
tabla 2 muestran que la pirenoxina ejerce un efecto protector. De
hecho, las sustancias solubles en lípidos fluorescentes producidas a
partir de células corneales epiteliales, después de la radiación
con UV_{312} y en presencia de dicha molécula, eran notablemente
inferiores (aproximadamente dos veces y media) que las producidas a
partir de células radiadas de la misma manera pero no protegidas por
pirenoxina y muestran valores de fluorescencia iguales a los de
células no irradiadas.
Utilizando el mismo sistema Fe(III)-ácido
ascórbico para inducir la peroxidación lipídica que en la primera
prueba descrita, se ha evaluado ex vivo la acción protectora
de la pirenoxina según el siguiente procedimiento experimental: a)
el ojo derecho de conejos del mismo tipo que en la prueba anterior
se trató tópicamente cada hora durante 8 horas y durante 2 días con
2 gotas de pirenoxina al 0,005% en NaCl 0,145 M (1 gota = 30 \mul,
correspondiente a aproximadamente 1,5 \mug), mientras que el ojo
izquierdo se trató solamente con gotas salinas (60 \mul); b) al
tercer día, el conejo se sacrificó mediante inyección pentobarbital
(100 mg/kg de peso corporal); c) las córneas, abstraídas
(115-120 mg), se extrajeron y se incubaron en tampón
fosfato 100 \muM, pH 7,5, en presencia de 1000 U de colagenasa y
CaCl_{2} 5 \muM durante 20 horas a 37ºC; a continuación: (d)
centrifugación a 3500 rpm a 0ºC durante 10 minutos y lavado del
sedimento con tampón fosfato; (e) homogenización de sedimento
celular en 1 ml de tampón de pH 7,5, (f) extracción con una mezcla
de cloroformo/metanol y determinación espectrofotométrica de los
dienos conjugados. Los resultados experimentales se indican en la
figura 3 y en la tabla 3 siguiente:
| (dienos conjugados (mmol/hemicórnea)) | |
| Ojos con instilación salina | 1,85 \pm 0,31 |
| Ojos con instilación de pirenoxina | 1,34* \pm 0,2 |
| Cada valor \pm SEM representa el promedio de, como mínimo, 3 (x2) determinaciones | |
| *: p<0,05 |
Los valores indicados en la tabla 3 indican que
la pirenoxina, administrada tópicamente en los ojos de conejos,
alcanza en la córnea tal concentración para contrastar in
vitro la acción de peroxidación lipídica de ROS, en realidad la
formación de dienos conjugados en córneas de ojos (derechos)
sometidos a una instilación de pirenoxina al 0,005% era inferior a
los presentes en los ojos (izquierdos) tratados sólo con solución
salina.
El efecto in vivo de la pirenoxina se
evaluó según lo siguiente:
(a) Los conejos se anestesiaron mediante dosis
bajas de pentobarbital (20 mg/kg); (b) se inyectaron 25 \mul de
ferritina 50 \muM en NaCl 0,15 M en el estroma de la córnea
mediante una jeringa de insulina de 0,33 x 13 mm/29G, mientras que
los controles se trataron con 25 \mul de solución fisiológica; (c)
se instilaron en los ojos cada hora dos gotas (1 gota = 30 \mul)
de pirenoxina al 0,005% en NaCl 0,145 M 8 veces por día durante 4
días, mientras que los controles se trataron sólo con disolvente, en
la misma cantidad y frecuencia; (d) en el quinto día, los animales
se sacrificaron utilizando una sobredosis de pentobarbital (100
mg/kg); (e) las córneas se extrajeron y se separaron las células de
tejido y se recogieron según el procedimiento descrito en el
experimento ex vivo; (f) se determinaron los dienos
conjugados y los lípidos solubles fluorescentes contenidos en
partes alícuotas de homogenato adecuado.
Los datos obtenidos, indicados en la tabla 4,
señalan una reducción de la peroxidación lipídica en las córneas de
ojos tratadas con pirenoxina, tal como se indica mediante la
disminución de los dienos conjugados y las sustancias solubles en
lípidos fluorescentes.
Formación de dienos conjugados y sustancias
solubles en lípidos fluorescentes in vivo en córneas 5 días
después de someter los ojos de los conejos a una inyección
intraestromal de ferritina radiada con UV y la instilación tópica
de una solución de pirenoxina (2 gotas cada hora durante 4
días).
Claims (9)
1. Utilización de ácido
1-hidroxi-5-oxo-5H-pirido-[3,2-a]-fenoxazin-3-carboxílico
(pirenoxina) o una sal farmacéuticamente aceptable del mismo para
la producción de un fármaco oftálmico tópico para la protección de
tejido corneal en intervenciones de fotoqueratectomía.
2. Utilización, según la reivindicación 1, en la
que dicho fármaco es adecuado como inhibidor de la acción de las
ROS (especies reactivas de oxígeno) a nivel de los tejidos
corneales.
3. Utilización, según la reivindicación 2, en la
que dicho fármaco es adecuado como inhibidor de la peroxidación
lipídica a nivel de los tejidos corneales.
4. Utilización, según cualquiera de las
reivindicaciones 1-3, en la que dichas
intervenciones de fotoqueratectomía son intervenciones de
fotoablación corneal que utilizan láser excímer.
5. Utilización, según cualquiera de las
reivindicaciones 1-4, en la que dicho fármaco
contiene de un 0,0001% a un 0,01% en peso de pirenoxina, expresada
como ácido libre.
6. Utilización, según la reivindicación 5, en la
que dicho fármaco contiene de un 0,001% a un 0,005% en peso de
pirenoxina, expresada como ácido libre.
7. Utilización, según cualquiera de las
reivindicaciones 1-6, en la que dicha pirenoxina
está en forma de la sal sódica correspondiente.
8. Utilización, según cualquiera de las
reivindicaciones 1-7, en la que dicho fármaco
oftálmico tópico está en forma de solución acuosa o suspensión para
colirio o en forma de emulsión, ungüento, gel o crema.
9. Utilización, según la reivindicación 8, en la
que dicha solución acuosa se obtiene mediante la reconstitución de
una preparación de dos componentes en la que el primer componente
comprende pirenoxina liofilizada, en forma de sal sódica, junto con
un portador aceptable para el ojo y el segundo componente comprende
un portador o diluyente acuoso aceptable para el ojo.
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| ITRM99A0166 | 1999-03-17 | ||
| IT1999RM000166A IT1305306B1 (it) | 1999-03-17 | 1999-03-17 | Uso della pirenoxina per la protezione dei tessuti corneali ininterventi di fotocheratectomia. |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| ES2277831T3 true ES2277831T3 (es) | 2007-08-01 |
Family
ID=11406570
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| ES00911259T Expired - Lifetime ES2277831T3 (es) | 1999-03-17 | 2000-03-13 | Utilizacion de pirenoxina para la proteccion de tejidos corneales en fotoqueratectomia. |
Country Status (10)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US6610686B1 (es) |
| EP (1) | EP1173255B1 (es) |
| JP (1) | JP5167499B2 (es) |
| AT (1) | ATE349244T1 (es) |
| AU (1) | AU3324100A (es) |
| DE (1) | DE60032594T2 (es) |
| ES (1) | ES2277831T3 (es) |
| IT (1) | IT1305306B1 (es) |
| PT (1) | PT1173255E (es) |
| WO (1) | WO2000054757A2 (es) |
Families Citing this family (18)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US7655002B2 (en) * | 1996-03-21 | 2010-02-02 | Second Sight Laser Technologies, Inc. | Lenticular refractive surgery of presbyopia, other refractive errors, and cataract retardation |
| US9545338B2 (en) | 2006-01-20 | 2017-01-17 | Lensar, Llc. | System and method for improving the accommodative amplitude and increasing the refractive power of the human lens with a laser |
| US10842675B2 (en) | 2006-01-20 | 2020-11-24 | Lensar, Inc. | System and method for treating the structure of the human lens with a laser |
| US9889043B2 (en) | 2006-01-20 | 2018-02-13 | Lensar, Inc. | System and apparatus for delivering a laser beam to the lens of an eye |
| US8500723B2 (en) | 2008-07-25 | 2013-08-06 | Lensar, Inc. | Liquid filled index matching device for ophthalmic laser procedures |
| US8480659B2 (en) | 2008-07-25 | 2013-07-09 | Lensar, Inc. | Method and system for removal and replacement of lens material from the lens of an eye |
| US8382745B2 (en) | 2009-07-24 | 2013-02-26 | Lensar, Inc. | Laser system and method for astigmatic corrections in association with cataract treatment |
| CA2769090A1 (en) | 2009-07-24 | 2011-01-27 | Lensar, Inc. | System and method for providing laser shot patterns to the lens of an eye |
| US8758332B2 (en) | 2009-07-24 | 2014-06-24 | Lensar, Inc. | Laser system and method for performing and sealing corneal incisions in the eye |
| US8617146B2 (en) | 2009-07-24 | 2013-12-31 | Lensar, Inc. | Laser system and method for correction of induced astigmatism |
| WO2011011788A1 (en) | 2009-07-24 | 2011-01-27 | Lensar, Inc. | System and method for performing ladar assisted procedures on the lens of an eye |
| CN102843955A (zh) | 2010-02-01 | 2012-12-26 | 雷萨公司 | 眼科应用中吸环基于浦肯野图像的对准 |
| USD694890S1 (en) | 2010-10-15 | 2013-12-03 | Lensar, Inc. | Laser system for treatment of the eye |
| USD695408S1 (en) | 2010-10-15 | 2013-12-10 | Lensar, Inc. | Laser system for treatment of the eye |
| ES3064580T3 (en) | 2010-10-15 | 2026-04-27 | Lensar Inc | Scan-controlled illumination of structures within an eye |
| US10463541B2 (en) | 2011-03-25 | 2019-11-05 | Lensar, Inc. | System and method for correcting astigmatism using multiple paired arcuate laser generated corneal incisions |
| EP2800812A1 (en) * | 2012-01-04 | 2014-11-12 | Quark Pharmaceuticals, Inc. | Double-stranded rna compounds to casp2 and uses thereof |
| CN103211754A (zh) * | 2012-01-19 | 2013-07-24 | 武汉诺安药业有限公司 | 无菌稳定的吡诺克辛钠滴眼液的生产方法 |
Family Cites Families (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CA2181788A1 (en) * | 1994-01-21 | 1995-07-27 | Jonathan Javitt | Cis-hydroxyproline analogs for eye treatment |
| WO1998053806A1 (en) * | 1997-05-26 | 1998-12-03 | New Vision Co., Ltd. | Medicinal compositions for topical administration containing vitamin d and vitamin k |
| IT1292103B1 (it) * | 1997-06-06 | 1999-01-25 | Pharmaconsult S A S | Composizioni farmaceutiche topiche contenenti pirfenossone e uso dello stesso nel trattamento di condizioni infiammatorie |
| CN1291898A (zh) * | 1998-02-25 | 2001-04-18 | 若素制药株式会社 | 用于角膜上皮疾病的药物 |
-
1999
- 1999-03-17 IT IT1999RM000166A patent/IT1305306B1/it active
-
2000
- 2000-03-13 WO PCT/IT2000/000081 patent/WO2000054757A2/en not_active Ceased
- 2000-03-13 ES ES00911259T patent/ES2277831T3/es not_active Expired - Lifetime
- 2000-03-13 US US09/936,597 patent/US6610686B1/en not_active Expired - Lifetime
- 2000-03-13 EP EP00911259A patent/EP1173255B1/en not_active Expired - Lifetime
- 2000-03-13 AT AT00911259T patent/ATE349244T1/de active
- 2000-03-13 JP JP2000604833A patent/JP5167499B2/ja not_active Expired - Fee Related
- 2000-03-13 PT PT00911259T patent/PT1173255E/pt unknown
- 2000-03-13 AU AU33241/00A patent/AU3324100A/en not_active Abandoned
- 2000-03-13 DE DE60032594T patent/DE60032594T2/de not_active Expired - Lifetime
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| ATE349244T1 (de) | 2007-01-15 |
| EP1173255B1 (en) | 2006-12-27 |
| US6610686B1 (en) | 2003-08-26 |
| WO2000054757A3 (en) | 2001-03-29 |
| IT1305306B1 (it) | 2001-05-04 |
| WO2000054757A2 (en) | 2000-09-21 |
| DE60032594D1 (de) | 2007-02-08 |
| DE60032594T2 (de) | 2007-10-11 |
| EP1173255A2 (en) | 2002-01-23 |
| PT1173255E (pt) | 2007-03-30 |
| ITRM990166A1 (it) | 2000-09-17 |
| AU3324100A (en) | 2000-10-04 |
| JP5167499B2 (ja) | 2013-03-21 |
| JP2002539153A (ja) | 2002-11-19 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| ES2277831T3 (es) | Utilizacion de pirenoxina para la proteccion de tejidos corneales en fotoqueratectomia. | |
| Mencucci et al. | CoQ10-containing eye drops prevent UVB-induced cornea cell damage and increase cornea wound healing by preserving mitochondrial function | |
| CZ76893A3 (en) | Use of plasminogen activator inhibitors for the preparation of medicaments | |
| JP2007512352A (ja) | 黄斑変性およびその他の眼科疾患の改善 | |
| Zhang et al. | Laser-triggered intraocular implant to induce photodynamic therapy for posterior capsule opacification prevention | |
| JP3362501B2 (ja) | 角膜障害治療剤 | |
| RU2414218C1 (ru) | Глазные капли для лечения дистрофических заболеваний и травм глаз | |
| EP0764018A1 (en) | Non-steroidal anti-inflammatory ophthalmic suspensions | |
| Keyal et al. | Post-vitrectomy cataract acceleration in phakic eyes: a review | |
| KR20070040326A (ko) | 백내장, 황반 변성 및 다른 안과 질환의 개선 | |
| Brancato et al. | Concomitant effect of topical ubiquinone Q10 and vitamin E to prevent keratocyte apoptosis after excimer laser photoablation in rabbits | |
| Jiang et al. | Cyclic cell-penetrating peptide-engineered ceria nanoparticles for non-invasive alleviation of ultraviolet radiation-induced cataract | |
| KR20150126021A (ko) | 다이피리다몰을 이용하여 눈 장애를 치료하는데 사용하기 위한 조성물 | |
| Mansour et al. | Cataractogenesis after repeat laser in situ keratomileusis | |
| RU2508123C1 (ru) | Фармацевтическая композиция для местного применения при лечении воспалительных заболеваний глаз и способ ее использования | |
| CN116139083A (zh) | 一种低浓度阿托品纳米乳剂及其制备方法和应用 | |
| Tung et al. | Lens hexokinase deactivation by near-UV irradiation | |
| ES2208434T3 (es) | Uso de la ubiquinona q10 para un tratamiento local y para la prevencion de las patologias oftamologicas posquirurgicas. | |
| CA2055434A1 (en) | Paracetamol-based pharmaceutical composition | |
| RU2434633C2 (ru) | Фармацевтические препаративные формы латрункулина | |
| ES2886723A1 (es) | Composicion basada en la actividad antioxidante de la enzima superoxido dismutasa y su aplicacion en enfermedades oculares | |
| EP1173207B1 (en) | Miotic agents and hypertonic agents containing ophthalmic compositions | |
| ES2253201T3 (es) | Preparaciones de liquido de perfusion para operaciones oftalmicas. | |
| Bodaghi et al. | Comparison of the efficacy and safety of two formulations of diclofenac sodium 0.1% eyedrops in controlling postoperative inflammation after cataract surgery | |
| RU2577236C1 (ru) | Способ лечения заболеваний глаз, сопровождающихся окислительным стрессом |