ES2567411T3 - Ácido nucleico antisentido - Google Patents
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Abstract
Un oligómero antisentido que causa salto del 53º exón en el gen de la distrofina humana, que consiste en una secuencia de nucleótidos complementaria a una cualquiera de las secuencias que consisten en el 32º al 56º o el 36º al 56º nucleótidos desde el extremo 5' del 53º exón en el gen de la distrofina humana.
Description
de una sonda basada en la totalidad o parte de la secuencia de nucleótidos complementaria a la secuencia de nucleótidos de la SEQ ID NO: 1, puede detectarse hibridación con un Kit de Detección de Ácido Nucleico DIG (Roche Diagnostics) cuando la sonda está marcada con digoxigenina (DIG) usando un reactivo disponible en el mercado (por ejemplo, una Mezcla de Marcaje de PCR (Roche Diagnostics), etc.). 5 Además de los polinucleótidos descritos anteriormente, otros polinucleótidos que pueden hibridarse incluyen polinucleótidos que tienen un 90 % o más, 91 % o más, 92 % o más, 93 % o más, 94 % o más, 95 % o más, 96 % o más, 97 % o más, 98 % o más, 99 % o más, 99,1 o más, 99,2 o más, 99,3 o más, 99,4 o más, 99,5 o más, 99,6 o más, 99,7 o más, 99,8 o más, 99,9 o más de identidad con el polinucleótido de la SEQ ID NO: 1, calculada por el 10 software de búsqueda de homología BLAST usando los parámetros por defecto.
La identidad entre secuencias de nucleótidos puede determinarse usando el algoritmo BLAST (Herramienta de Búsqueda de Alineación Local Básica) de Karlin y Altschul (Proc. Natl. Acad. Sci. USA 872264-2268, 1990; Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90: 5873, 1993). Se han desarrollado programas llamados BLASTN y BLASTX basados en el 15 algoritmo BLAST (Altschul SF, et al: J. Mol. Biol. 215: 403, 1990). Cuando se secuencia una secuencia de nucleótidos usando BLASTN, los parámetros son, por ejemplo, valor = 100 y longitud de palabra = 12. Cuando se usan los programas BLAST y Gapped BLAST, se emplean los parámetros por defecto para cada programa.
Ejemplos de las secuencias de nucleótidos complementarias a las secuencias que consisten en el 31º al 53º, el 31º 20 al 54º, el 31º al 55º, el 31º al 56º, el 31º al 57º, el 31º al 58º, el 32º al 53º, el 32º al 54º, el 32º al 55º, el 32º al 56º, el 32º al 57º, el 32º al 58º, el 33º al 53º, el 33º al 54º, el 33º al 55º, el 33º al 56º, el 33º al 57º, el 33º al 58º, el 34º al 53º, el 34º al 54º, el 34º al 55º, el 34º al 56º, el 34º al 57º, el 34º al 58º, el 35º al 53º, el 35º al 54º, el 35º al 55º, el 35º al 56º, el 35º al 57º, el 35º al 58º, el 36º al 53º, el 36º al 54º, el 36º al 55º, el 36º al 56º, el 36º al 57º, y el 36º al 58º nucleótidos, desde el extremo 5' del exón 53. 25 Tabla 1
- Secuencia diana en el exón 53
- Secuencia de nucleótidos complementaria SEQ ID NO:
- 31 -53
- 5'-CCGGTTCTGAAGGTGTTCTTGTA-3' SEQ ID NO: 2
- 31 -54
- 5'-TCCGGTTCTGAAGGTGTTCTTGTA-3' SEQ ID NO: 3
- 31 -55
- 5'-CTCCGGTTCTGAAGGTGTTCTTGTA-3' SEQ ID NO: 4
- 31 -56
- 5'-CCTCCGGTTCTGAAGGTGTTCTTGTA-3' SEQ ID NO: 5
- 31 -57
- 5'-GCCTCCGGTTCTGAAGGTGTTCTTGTA-3' SEQ ID NO: 6
- 31 -58
- 5'-TGCCTCCGGTTCTGAAGGTGTTCTTGTA-3' SEQ ID NO: 7
- 32 -53
- 5'-CCGGTTCTGAAGGTGTTCTTGT-3' SEQ ID NO: 8
- 32 -54
- 5'-TCCGGTTCTGAAGGTGTTCTTGT-3' SEQ ID NO: 9
- 32 -55
- 5'-CTCCGGTTCTGAAGGTGTTCTTGT-3' SEQ ID NO: 10
- 32 -56
- 5'-CCTCCGGTTCTGAAGGTGTTCTTGT-3' SEQ ID NO: 11
- 32 -57
- 5'-GCCTCCGGTTCTGAAGGTGTTCTTGT-3' SEQ ID NO: 12
- 32 -58
- 5'-TGCCTCCGGTTCTGAAGGTGTTCTTGT-3' SEQ ID NO: 13
- 33 -53
- 5'-CCGGTTCTGAAGGTGTTCTTG-3' SEQ ID NO: 14
- 33 -54
- 5'-TCCGGTTCTGAAGGTGTTCTTG-3' SEQ ID NO: 15
- 33 -55
- 5'-CTCCGGTTCTGAAGGTGTTCTTG-3' SEQ ID NO: 16
- 33 -56
- 5'-CCTCCGGTTCTGAAGGTGTTCTTG-3' SEQ ID NO: 17
- 33 -57
- 5'-GCCTCCGGTTCTGAAGGTGTTCTTG-3' SEQ ID NO: 18
- 33 -58
- 5'-TGCCTCCGGTTCTGAAGGTGTTCTTG-3' SEQ ID NO: 19
- 34 -53
- 5'-CCGGTTCTGAAGGTGTTCTT-3' SEQ ID NO: 20
- 34 -54
- 5'-TCCGGTTCTGAAGGTGTTCTT-3' SEQ ID NO: 21
- 34 -55
- 5'-CTCCGGTTCTGAAGGTGTTCTT-3' SEQ ID NO: 22
- 34 -56
- 5'-CCTCCGGTTCTGAAGGTGTTCTT-3' SEQ ID NO: 23
- 34 -57
- 5'-GCCTCCGGTTCTGAAGGTGTTCTT-3' SEQ ID NO: 24
- 34 -58
- 5'-TGCCTCCGGTTCTGAAGGTGTTCTT-3' SEQ ID NO: 25
- 35 -53
- 5'-CCGGTTCTGAAGGTGTTCT-3' SEQ ID NO: 26
- 35 -54
- 5'-TCCGGTTCTGAAGGTGTTCT-3' SEQ ID NO: 27
- 35 -55
- 5'-CTCCGGTTCTGAAGGTGTTCT-3' SEQ ID NO: 28
- 35 -56
- 5'-CCTCCGGTTCTGAAGGTGTTCT-3' SEQ ID NO: 29
- 35 -57
- 5'-GCCTCCGGTTCTGAAGGTGTTCT-3' SEQ ID NO: 30
5
10
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
La "nucleobase" para BP incluye la misma "nucleobase" que en Base, con la condición de que el grupo amino o hidroxi en la nucleobase mostrado por BP pueda protegerse.
Dicho grupo protector para amino no está particularmente limitado siempre que se use como grupo protector para ácidos nucleicos. Ejemplos específicos incluyen benzoil, 4-metoxibenzoílo, acetilo, propionilo, butirilo, isobutirilo, fenilacetilo, fenoxiacetilo, 4-terc-butilfenoxiacetilo, 4-isopropilfenoxiacetilo y (dimetilamino)metileno. Ejemplos específicos del grupo protector para el grupo hidroxi incluyen 2-cianoetilo, 4-nitrofenetilo, fenilsulfoniletilo, metilsulfoniletilo y trimetilsililetilo, y fenilo, que puede estar sustituido por 1 a 5 grupos de extracción de electrones en posiciones sustituibles opcionales, difenilcarbamoílo, dimetilcarbamoílo, dietilcarbamoílo, metilfenilcarbamoílo, 1pirrolidinilcarbamoílo, morfolinocarbamoílo, 4-(terc-butilcarboxi)bencilo, 4-[(dimetilamino)carboxi]bencilo y 4(fenylcarboxi)bencilo, (cf., por ejemplo, documento WO 2009/064471).
El "vehículo sólido" no está particularmente limitado siempre que sea un vehículo útil para la reacción en fase sólida de ácidos nucleicos. Se desea que el vehículo sólido tenga las siguientes propiedades: por ejemplo, (i) sea apenas soluble en reactivos que pueden usarse para la síntesis de derivados de ácido morfolinonucleico (por ejemplo, diclorometano, acetonitrilo, tetrazol, N-metilimidazol, piridina, anhídrido acético, lutidina, ácido trifluoroacético); (ii) sea químicamente estable a los reactivos que se pueden usar para la síntesis de derivados de ácido morfolinonucleico; (iii) pueda modificarse químicamente; (iv) pueda cargarse con derivados deseados de ácido morfolinonucleico; (v) tenga una fuerza suficiente para resistir alta presión a través de los tratamientos; y (vi) tenga un intervalo y distribución uniformes de diámetro de partículas. Específicamente, poliestireno hinchable (por ejemplo, resina de aminometilpoliestireno reticulado con dibencilbenceno al 1 % (malla 200-400) (2,4-3,0 mmol/g) (fabricado por Tokyo Chemical Industry), Resina de Poliestireno Aminometilado·HCl [dibencilbenceno 1 %, malla 100-200] (fabricado por Peptide Institute, Inc.)), poliestireno no hinchable (por ejemplo, Primer Support (fabricado por GE Healthcare)), poliestireno unido a cadena de PEG (por ejemplo, resina de NH2-PEG (fabricado por Watanabe Chemical Co.), resina TentaGel), vidrio de poro controlado (vidrio de poro controlado; CPG) (fabricado por, por ejemplo, CPG), vidrio de poro controlado con oxalilo (cf, por ejemplo, Alul et al., Nucleic Acids Research, Vol. 19, 1527 (1991)), TentaGel support-soporte derivatizado con aminopolietilenglicol (por ejemplo, Wright et al., cf., Tetrahedron Letters, Vol. 34, 3373 (1993)), y un copolímero de Poros-poliestireno/divinilbenceno.
Un "enlazador" que puede usarse es un enlazador conocido generalmente usado para conectar ácidos nucleicos o derivados de ácido morfolinonucleico. Ejemplos incluyen 3-aminopropilo, succinilo, 2,2'-dietanolsulfonilo y un alquilamino de cadena larga (LCAA).
Esta etapa puede realizase haciendo reaccionar el Compuesto (II) con un ácido.
El "ácido" que puede usarse en esta etapa incluye, por ejemplo, ácido trifluoroacético, ácido dicloroacético y ácido tricloroacético. El ácido usado está apropiadamente en un intervalo de, por ejemplo, 0,1 equivalentes molares a 1000 equivalentes molares basado en 1 mol de Compuesto (II), preferiblemente en un intervalo de 1 equivalente molar a 100 equivalentes molares basado en 1 mol de Compuesto (II).
Puede usarse una amina orgánica en combinación con el ácido descrito anteriormente. La amina orgánica no está particularmente limitada e incluye, por ejemplo, trietilamina. La cantidad de la amina orgánica usada está apropiadamente en un intervalo de, por ejemplo, 0,01 equivalentes molares a 10 equivalentes molares, y preferiblemente en un intervalo de 0,1 equivalentes molares a 2 equivalentes molares, basado en 1 mol del ácido.
Cuando se usa una sal o mezcla del ácido y la amina orgánica en esta etapa, la sal o mezcla incluye, por ejemplo, una sal o mezcla de ácido trifluoroacético y trietilamina, y más específicamente, una mezcla de un equivalente de trietilamina y 2 equivalentes de ácido trifluoroacético.
El ácido que puede usarse en esta etapa también puede usarse en forma de una dilución con un disolvente apropiado en una concentración del 0,1 % al 30 %. El disolvente no está particularmente limitado en la medida en que sea inerte a la reacción, e incluye, por ejemplo, diclorometano, acetonitrilo, un alcohol (etanol, isopropanol, trifluoroetanol, etc.), agua, o una mezcla de los mismos.
La temperatura de reacción en la reacción descrita anteriormente está preferiblemente en un intervalo de, por ejemplo, 10 ºC a 50 ºC, más preferiblemente en un intervalo de 20 ºC a 40 ºC, y mucho más preferiblemente, en un intervalo de 25 ºC a 35 ºC.
El tiempo de reacción puede variar dependiendo del tipo del ácido usado y la temperatura de reacción, y está apropiadamente en un intervalo de 0,1 minutos a 24 horas en general, y preferiblemente en un intervalo de 1 minuto a 5 horas.
apropiadamente en un intervalo de, por ejemplo, 1 equivalente molar a 100000 equivalentes molares, y preferiblemente en un intervalo de 10 equivalentes molares a 1000 equivalentes molares, en base 1 mol de compuesto (VII).
5 La temperatura de reacción está apropiadamente en un intervalo de 15 ºC a 75 ºC, preferiblemente, en un intervalo de 40 ºC a 70 ºC, y más preferiblemente, en un intervalo de 50 ºC a 60 ºC. El tiempo de reacción para la desprotección puede variar dependiendo del tipo de Compuesto (VII), temperatura de reacción, etc., y está apropiadamente en un intervalo de 10 minutos a 30 horas, preferiblemente de 30 minutos a 24 horas, y más preferiblemente en un intervalo de 5 horas a 20 horas.
10
(4) Etapa D:
PMO (I) se produce haciendo reaccionar el Compuesto (IX), producido en la etapa C con un ácido:
en la que Base, n, R2, R3 y T tienen el mismo significado que el definido anteriormente.
Esta etapa puede realizarse añadiendo un ácido al Compuesto (IX).
20 El "ácido" que puede usarse en esta etapa incluye, por ejemplo, ácido tricloroacético, ácido dicloroacético, ácido acético, ácido fosfórico, ácido clorhídrico, etc. El ácido usado se usa apropiadamente para permitir que la solución tengo un intervalo de pH de 0,1 a 4,0, y más preferiblemente, en un intervalo de pH de 1,0 a 3,0. El disolvente no está particularmente limitado en la medida en que sea inerte a la reacción, e incluye, por ejemplo, acetonitrilo, agua,
25 o una mezcla de estos disolventes de los mismos.
La temperatura de reacción está apropiadamente en un intervalo de 10 ºC a 52 ºC, preferiblemente, en un intervalo de 20 ºC a 40 ºC, y más preferiblemente, en un intervalo de 25 ºC a 35 ºC. El tiempo de reacción para la desprotección puede variar dependiendo del tipo de Compuesto (IX), la temperatura de reacción, etc., y está
30 apropiadamente en un intervalo de 0,1 minutos a 5 horas, preferiblemente de 1 minuto a 1 hora, y más preferiblemente en un intervalo de 1 minuto a 30 minutos.
PMO (I) puede obtenerse sometiendo la mezcla de reacción obtenida en esta etapa a medios convencionales de separación y purificación tales como extracción, concentración, neutralización, filtración, separación por
35 centrifugación, recristalización, cromatografía en comuna de fase inversa C8 a C18, cromatografía en columna de intercambio catiónico, cromatografía en columna de intercambio aniónico, cromatografía en columna de filtración en gel, cromatografía líquida de alto rendimiento, diálisis, ultrafiltración, etc., en solitario o en combinación de los mismos. Po tanto, el PMO (I) deseado puede aislarse y purificarse (cf., por ejemplo, documento WO 1991/09033).
40 En la purificación de PMO (I) usando cromatografía en fase inversa, por ejemplo, puede usarse una mezcla en solución de trietilamina 20 mM/tampón acetato y acetonitrilo como disolvente de elución.
En la purificación de PMO (I) usando cromatografía de intercambio iónico, por ejemplo, puede usarse una mezcla en solución de solución salina 1 M y solución acuosa de hidróxido sódico 10 mM como disolvente de elución.
45 Un ácido peptidonucleico es el oligómero de la presente invención que tiene un grupo representado por la siguiente fórmula general como unidad constituyente:
con metanol frío y se secó para dar 1,84 g del compuesto objetivo (rendimiento: 82,2 %).
Etapa 4: Producción de
5 Ácido 4-oxo-4-{[(2S,6R)-6-(6-oxo-2-[2-fenoxiacetamido]-1H-purin-9-il)-4-tritilmorfolin-2-il]metoxi}butanoico cargado en resina de aminometilpoliestireno
El compuesto del título se produjo de un modo similar al Ejemplo de referencia 1, excepto que se usó N-{9-[(2R,6S)6-(hidroximetil)-4-tritilmorfolin-2-il]-6-oxo-6,9-dihidro-1H-purin-2-il}-2-fenoxiacetamida en esta etapa, en lugar de N-{110 [(2R,6S)-6-(hidroximetil)-4-tritilmorfolin-2-il]-2-oxo-1,2-dihidropirimidin-4-il}benzamida en la Etapa 1 del Ejemplo de referencia 1.
[Ejemplo de referencia 3]
15 Ácido 4-{[(2S,6R)-6-(5-metil-2,4-dioxo-3,4-dihidropirimidin-1-il)-4-tritilmorfolin-2-il]metoxi}-4-oxobutanoico cargado en resina de aminometilpoliestireno
El compuesto del título se produjo de un modo similar al Ejemplo de referencia 1, excepto que se usó 1-[(2R,6S)-6(hidroximetil)-4-tritilmorfolin-2-il]-5-metilpirimidina-2,4(1H,3H)-diona en esta etapa, en lugar de N-{1-[(2R,6S)-620 (hidroximetil)-4-tritilmorfolin-2-il]-2-oxo-1,2-dihidropirimidin-4-il}benzamida en la Etapa 1 del Ejemplo de referencia 1.
[Ejemplo de referencia 4]
Ácido 1,12-dioxo-1-(4-tritilpiperazin-1-il)-2,5,8,11-tetraoxa-15-pentadecanoico cargado en resina de 25 aminometilpoliestireno
El compuesto del título se produjo de un modo similar al Ejemplo de referencia 1, excepto que se usó ácido 2-[2-(2hidroxietoxi)etoxi]etil 4-tritilpiperazin-1-carboxílico (el compuesto describo en el documento WO 2009/064471) en esta etapa, en lugar de N-{1-[(2R,6S)-6-(hidroximetil)-4-tritilmorfolin-2-il]-2-oxo-1,2-dihidropirimidin-4-il}benzamida.
30 De acuerdo con las descripciones de los Ejemplos 1 a 12 y los Ejemplos de referencia 1 a 3 a continuación, se sintetizaron diversos tipos de PMO mostrados por los PMO n.º 1-11 y 13-16 en la Tabla 2. El PMO sintetizado se disolvió en agua inyectable (fabricada por Otsuka Pharmaceutical Factory, Inc.). PMO n.º. 12 se adquirió de Gene Tools, LLC.
35 TABLA 2
- PMO n.º
- Secuencia diana en el exón 53 Nota SEQ ID NO:
- 1
- 31 -55 extremo 5': grupo (3) SEQ ID NO: 4
- 2
- 32 -53 extremo 5': grupo (3) SEQ ID NO: 8
- 3
- 32 -56 extremo 5': grupo (3) SEQ ID NO: 11
- 4
- 33 -54 extremo 5': grupo (3) SEQ ID NO: 15
- 5
- 34 -58 extremo 5': grupo (3) SEQ ID NO: 25
- 6
- 36 -53 extremo 5': grupo (3) SEQ ID NO: 32
- 7
- 36 -55 extremo 5': grupo (3) SEQ ID NO: 34
- 8
- 36 -56 extremo 5': grupo (3) SEQ ID NO: 35
- 9
- 36 -57 extremo 5': grupo (3) SEQ ID NO: 36
- 10
- 33 -57 extremo 5': grupo (3) SEQ ID NO: 18
- 11
- 39 -69 Secuencia correspondiente a H53A(+39+69) (cf. Tabla 1) en el documento no de patente 3, extremo 5': grupo (3) SEQ ID NO: 38
- 12
- 30 -59 Secuencia correspondiente a h53A30/1 (cf. Tabla 1) en el documento no de patente 5, extremo 5': grupo (2) SEQ ID NO: 39
- 13
- 32 -56 extremo 5': grupo (1) SEQ ID NO: 11
- 14
- 36 -56 extremo 5': grupo (1) SEQ ID NO: 35
- 15
- 30 -59 Secuencia correspondiente a h53A30/1 (cf. Tabla 1) en el documento no de patente 5, extremo 5': grupo (3) SEQ ID NO: 39
- 16
- 23 -47 Secuencia correspondiente a SEQ ID NO: 429 descrita en el documento de patente 4, extremo 5': grupo (3) SEQ ID NO: 47
[Ejemplo 1]
PMO n.º 8
5 Se transfirió ácido 4-{[(2S,6R)-6-(4-Benzamido-2-oxopirimidin-1(2H)-il)-4-tritilmorfolin-2-il]metoxi}-4-oxobutanoico, cargado en resina de aminometilpoliestireno (Ejemplo de referencia 1), 2 g (800 mmol) a un vaso de reacción, y se añadieron 30 ml de diclorometano al mismo. La mezcla se dejó reposar durante 30 minutos. Después de que la mezcla se lavara adicionalmente dos veces con 30 ml de diclorometano, se inició el siguiente ciclo de síntesis. Se añadió el compuesto de monómero morfolino deseado en cada ciclo para dar la secuencia de nucleótidos del
10 compuesto del título.
TABLA 3
- Etapa
- Reactivo Volumen (ml) Tiempo (min)
- 1
- solución de desbloqueo 30 2,0
- 2
- solución de desbloqueo 30 2,0
- 3
- solución de desbloqueo 30 2,0
- 4
- solución de desbloqueo 30 2,0
- 5
- solución de desbloqueo 30 2,0
- 6
- solución de desbloqueo 30 2,0
- 7
- solución neutralizante 30 1,5
- 8
- solución neutralizante 30 1,5
- 9
- solución neutralizante 30 1,5
- 10
- solución neutralizante 30 1,5
- 11
- solución neutralizante 30 1,5
- 12
- solución neutralizante 30 1,5
- 13
- diclorometano 30 0,5
- 14
- diclorometano 30 0,5
- 15
- diclorometano 30 0,5
- 16
- solución de acoplamiento B 20 0,5
- 17
- solución de acoplamiento A 6-11 90,0
- 18
- diclorometano 30 0,5
- 19
- diclorometano 30 0,5
- 20
- diclorometano 30 0,5
- 21
- solución de sellado 30 3,0
- 22
- solución de sellado 30 3,0
- 23
- diclorometano 30 0,5
- 24
- diclorometano 30 0,5
- 25
- diclorometano 30 0,5
La solución de desbloqueo usada fue una solución obtenida disolviendo una mezcla de ácido trifluoroacético (2
15 equivalentes) y trietilamina (1 equivalente) en una solución de diclorometano que contenía etanol al 1% (v/v) y 2,2,2trifluoroetanol al 10 % (v/v) para que estuviera al 3 % (p/v). La solución neutralizante usada fue una solución obtenida disolviendo N,N-diisopropiletilamina en una solución de diclorometano que contenía 2-propanol al 25 % (v/v) para que estuviera al 5 % (v/v). La solución de acoplamiento A usada fue una solución obtenida disolviendo el compuesto de monómero morfolino en 1,3-dimetil-2-imidazolidinona que contenía N,N-diisopropiletilamina al 10 %
20 (v/v) para que estuviera a 0,15 M. La solución de acoplamiento B usada fue una solución obtenida disolviendo N,Ndiisopropiletilamina en 1,3-dimetil-2-imidazolidinona para que estuviera al 10 % (v/v). La solución de sellado usada fue una solución obtenida disolviendo anhídrido acético 20 % (v/v) y 2,6-lutidina al 30 % (v/v) en diclorometano.
La resina de aminometilpoliestireno cargada con el PMO sintetizado anteriormente se recuperó del vaso de reacción
25 y se secó a temperatura ambiente durante al menos 2 horas a presión reducida. El PMO secado cargado en resina de aminometilpoliestireno se cargó en un vaso de reacción, y se añadieron 200 ml de agua con amoniaco al 28 %etanol (1/4) al mismo. La mezcla se agitó a 55 ºC durante 15 horas. La resina de aminometilpoliestireno se separó por filtración y se lavó con 50 ml de agua-etanol (1/4). El filtrado resultante se concentró a presión reducida. El residuo resultante se disolvió en 100 ml de una mezcla de disolvente de ácido acético 20 mM-tampón trietilamina
30 (tampón TEAA) y acetonitrilo (4/1) y se filtró a través de un filtro de membrana. El filtrado obtenido se purificó por HPLC en fase inversa. Las condiciones usadas son las siguientes.
TABLA 4
- Columna
- XTerra EM (Waters, φ50 x 100 mm, 1 CV = 200 ml)
- Caudal
- 60 ml/min
- Temperatura de la columna
- temperatura ambiente
- Solución A
- tampón TEAA 20 mM
- Solución B
- CH3CN
- Gradiente
- (B) conc. 20→50 %/9 CV
Cada fracción se analizó y se recuperó el producto en 100 ml de acetonitrilo-agua (1/1), al cual se añadieron 200 ml
5 de etanol. La mezcla se concentró a presión reducida. El secado adicional a presión reducida dio un sólido blanco. Al sólido resultante se añadieron 300 ml de solución acuosa de ácido fosfórico 10 mM para suspender el sólido. A la suspensión se añadieron 10 ml de solución acuosa de ácido fosfórico 2 M y la mezcla se agitó durante 15 minutos. Además, se añadieron 15 ml de solución acuosa de hidrato sódico 2 M para neutralización. Después, se añadieron 15 ml de solución acuosa de hidróxido sódico 2 M para hacer la mezcla alcalina, seguido por filtración a través de un
10 filtro de membrana (0,45 µm). La mezcla se lavó minuciosamente con 10 ml de solución acuosa de hidróxido sódico 10 mM para dar el producto en forma de una solución acuosa.
La solución acuosa resultante que contenía el producto se purificó por columna de resina de intercambio aniónico. Las condiciones usadas son las siguientes. 15 Tabla 5
- Columna
- Source 30Q (GE Healtcare, φ40 x 150 mm, 1 CV = 200 ml)
- Caudal
- 80 ml/min
- Temperatura de columna
- temperatura ambiente
- Solución A
- solución acuosa de hidróxido sódico 10 mM
- Solución B
- solución acuosa de hidróxido sódico 10 mM, solución acuosa de cloruro sódico 1 M
- Gradiante
- (B) conc. 5→35 %/15 CV
Cada fracción se analizó (en HPLC) y se obtuvo el producto en forma de una solución acuosa. A la solución acuosa resultante se añadieron 225 ml de tampón fosfato 0,1 M (pH 6,0) para neutralización. La mezcla se filtró a través de 20 un filtro de membrana (0,45 µm). A continuación, se realizó ultrafiltración en las condiciones descritas a continuación.
Tabla 6
- Filtro
- PELLICON2MINI FILTER PLBC 3K Celulosa Regenerada, Tamiz Tipo C
- Tamaño
- 0,1 m2
25 El filtrado se concentró para dar aproximadamente 250 ml de una solución acuosa. La solución acuosa resultante se filtró a través de un filtro de membrana (0,45 µm). La solución acuosa obtenida se secó por congelación para dar 1,5 g del compuesto objetivo en forma de un sólido tipo algodón blanco.
EM-IEN-TOF Calculado: 6924,82 30 Encontrado: 6923,54
[Ejemplo 2]
PMO. N.º 1 35 El compuesto del título se produjo de acuerdo con el procedimiento del Ejemplo 1.
antisentido PMO n.º 11. En particular, los oligómeros PMO n.º 3 y 8 y de la presente invención mostraron eficacia de salto de exón cuatro veces mayor que la del oligómero antisentido PMO n.º 11.
[Ejemplo de ensayo 2] 5 Ensayo in vitro usando fibroblastos humanos
Se introdujo el gen myoD humano (SEQ ID NO: 44) en células TIG-119 (fibroblastos derivados de tejido normal humano, National Institute of Biomedical Innovation) o células 5017 (fibroblastos derivados de pacientes con DMD 10 humana, Coriell Institute for Medical Research) usando un vector retrovírico de coexpresión ZsGreen1.
Después de incubación durante 4 a 5 días, los fibroblastos transformados con MyoD ZsGreen positivos se recogieron por FACS y se sembraron a 5 x 104/cm2 en una placa de 12 pocillos. Como medio de cultivo, se usó un 1 ml de medio de Eagle modificado por Dulbecco: mezcla nutriente F-12 (DMEM.F-12) (Invitrogen Corp.) que contenía
15 FCS al 10 % y Penicilina al 1 %/Estreptomicina (P/S) (Sigma-Aldrich, Inc.).
El medio se remplazó 24 horas después por medio de diferenciación (DMEN/F-12 que contenía suero equino al 2 % (Invitrogen Corp.), P/S al 1 % y suplemento de medio líquido ITS (Sigma Inc.)). El medio se intercambió cada 2 a 3 días y se continuó la incubación durante 12 a 14 días para diferenciar en miotubos.
20 Posteriormente, se remplazó el medio de diferenciación por un medio de diferenciación que contenía EndoPorter 6 µM (Gene Tools), y se añadió el oligómero morfolino al mismo en una concentración final de 10 µM. después de incubación durante 48 horas, se extrajo el ARN total de las células usando TRIzol (fabricado por (Invitrogen Corp.). Se realizó RT-PCR con 50 ng de ARN total extraído usando un kit de RT-PCR QIAGEN One Step. Se preparó una
25 solución de reacción de acuerdo con el protocolo adjunto al kit. Se usó un iCycler (fabricado por Bio-Rad) como termociclador. El programa de RT-PCR usado es el siguiente.
50 °C, 30 min: transcripción inversa 95 °C, 15 min: desnaturalización térmica 30 [94 °C, 1 min; 60 °C, 1 min; 72 °C, 1 min] x 35 ciclos: amplificación por PCR 72 °C, 7 min: extensión final
Los cebadores usados fueron hEX51F y hEX55R.
35 hEX51F: 5'-CGGGCTTGGACAGAACTTAC-3' (SEQ ID NO: 45) hEx55R: 5'-TCCTTACGGGTAGCATCCTG-3' (SEQ ID NO: 46)
El producto de reacción de RT-PCR anterior se separó por electroforesis en gel de agarosa al 2 % y se capturaron imágenes del gel con un GeneFlash (Syngene). Se midieron el nivel de polinucleótido "A" de la banda con salto del
40 exón 53 y el nivel de polinucleótido "B" de la banda sin salto del exón 53 usando un Image J (fabricado por National Institutes of Health). Basándose en estos valores de medición de "A" y "B", se determinó la eficacia de salto por la siguiente ecuación.
45 Resultados experimentales
Los resultados se muestran en las FIG. 2 y 3. Este experimento reveló que en células TIG-119, los oligómeros PMO n.º 3, 8 y 9 de la presente descripción (FIG. 2) causaban todos salto del exón 53 con eficacia mayor que el oligómero 50 antisentido PMO n.º 12 (FIG. 2). En particular, los oligómeros PMO n.º 3 y 8 de la presente descripción mostraron eficacia de salto de exón más de dos veces mayor que la del oligómero antisentido PMO n.º 12 (FIG. 2)
Además, este experimento reveló que los oligómeros PMO n.º 3 y 8 a 10 de la presente descripción (FIG. 3) causaban todos salto del exón 53 con una eficacia mayor que el oligómero antisentido PMO n.º 12 (FIG. 3). En 55 particular, los oligómeros PMO n.º 3 y 8 de la presente descripción mostraron eficacia de salto del exón más de siete veces mayor que la del oligómero antisentido PMO n.º 12 (FIG. 3).
[Ejemplo de ensayo 3]
60 Ensayo in vitro usando fibroblastos humanos
Se estableció la línea celular de fibroblastos cutáneos (fibroblastos de pacientes con DMD humana (exones 45-52 o exones 48-52) por biopsia del antebrazo izquierdo medio de pacientes con DMD con deleción de los exones 45-52 o pacientes con DMD con deleción de los exones 48-52. Se introdujo el gen myoD humano (SEQ ID NO: 44) en las
65 células fibroblásticas usando un vector retrovírico de coexpresión ZsGreen1.
5
15
25
35
45
55
65
Después de incubación durante 4 o 5 días, se recogieron fibroblastos transformados con MyoD ZsGreen-positivos por FACS y se sembraron a 5 x 104/cm2 en una placa de 12 pocillos. Como medio de cultivo, se usó 1 ml de medio de Eagle modificado por Dulbecco: mezcla nutriente F-12 (DMEN/F-12) (Invitrogen Corp.) que contenía FCS al 10 % y Penicilina al 1 %/Estreptomicina (P/S) (Sigma-Aldrich, Inc.).
El medio se remplazó 24 horas después por un medio de diferenciación (DMEM/F-12 que contenía suero equino al 2 % (Invitrogen Corp.), P/S al 1 % y suplemento de medio líquido ITS (Sigma, Inc.)). El medio se intercambió cada 2 a 3 días y se continuó la incubación durante 12, 14 o 20 días para diferenciar en myotubos.
Posteriormente, se remplazó el medio de diferenciación por un medio de diferenciación que contenía EndoPorter 6 µM (Gene Tools), y se añadió un oligómero morfolino al mismo a una concentración final de 10 µM. después de incubación durante 48 horas, se extrajo el ARN total de las células usando un TRIzol (fabricado por Invitrogen Corp.). Se realizó RT-PCR con 50 ng del ARN total extraído usando un kit de RT-PCR QIAGEN OneStep. Se preparó una solución de reacción de acuerdo con el protocolo adjunto al kit. Se usó un iCycler (fabricado por Bio-Rad) como termociclador. El programa de RT-PCR usado es el siguiente.
50 °C, 30 min: transcripción inversa
95 °C, 15 min: desnaturalización térmica
[94 °C, 1 min; 60 °C, 1 min; 72 °C, 1 min] x 35 ciclos: amplificación por PCR
72 °C, 7 min: extensión final
Los cebadores usados fueron hEx44F y h55R.
hEx44F: 5'-TGTTGAGAAATGGCGGCGT-3' (SEQ ID NO: 48)
hEx55R: 5'-TCCTTACGGGTAGCATCCTG-3' (SEQ ID NO: 46)
El producto de reacción de RT-PCR anterior se separó por electroforesis en gel de agarosa al 2 % y se capturaron imágenes del gel con un GeneFlash (Syngene). Se midieron el nivel de polinucleótido "A "de la banda con salto del exón 53 y el nivel de polinucleótido "B" de la banda sin salto del exón 53 usando un Image J (fabricado por National Institutes of Health). Basándose en estos valores de medición de "A" y "B", se determinó la eficacia de salto por la siguiente ecuación.
Resultados experimentales
Los resultados se muestran en las FIG. 4 y 5. Este experimento reveló que los oligómeros PMO n.º 3 y 8 de la presente descripción causaban salto del exón 53 con una eficacia tan alta como más del 80 % en las células de pacientes con DMD con deleción de los exones 45-42 (FIG. 4) o deleción de los exones 48-52 (FIG. 5). Además, los oligómeros PMO n.º 3 y 8 de la presente descripción se descubrió que causaban salto del exón 53 con una eficacia mayor que la del oligómero antisentido PMO n.º 15 en las células de pacientes con DMD con deleción de los exones 45-52 (FIG. 4).
[Ejemplo de ensayo 4]
Transferencia de Western
Se añadió el oligómero PMO n.º 8 de la presente descripción a las células a una concentración de 10 µM, y se extrajeron las proteínas de las células después de 72 horas usando un tampón RIPA (fabricado por Thermo Fisher Scientific) que contenía Complete Mini (fabricado por Roche Applied Science) y se cuantificaron usando un kit de ensayo de proteína BCA (fabricado por Thermo Fisher Scientific). Las proteínas se sometieron a electroforesis en Gel de Tris-Acetato al 3-8 % NuPAGE Novex (fabricado por Invitrogen) a 150 V durante 75 minutos y se transfirieron a una membrana de PVDF (fabricada por Millipore) usando un secante semiseco. La membrana de PVDF se bloqueó con un agente de bloqueo ECL al 5 % (fabricado por GE Healthcare) y la membrana después se incubó en una solución de anticuerpo antidistrofina (fabricado por NCL-Dys1, Novocastra). Después de incubación adicional en una solución de anticuerpo de cabra anti-IgG de ratón conjugado con peroxidasa (Modelo n.º 170-6516, Bio-Rad), se tiñó la membrana con sistema de transferencia de Western ECL plus (fabricado por GE Healthcare).
Inmunotinción
El oligómero PMO n.º 3 u 8 de la presente descripción se añadió a las células. Las células, después de 72 horas se fijaron en paraformaldeído al 30 % durante 10 minutos, seguido por incubación en Triton-X al 10 % durante 10 minutos. Después de bloquear en PBS que contiene suero de cabra al 10 %, la membrana se incubó en una solución de anticuerpo antidistrofina (NCL-Dys1, Novocastra). La membrana se incubó adicionalmente en una solución de anticuerpo anti-IgG de ratón (fabricado por Invitrogen). La membrana se montó con reactivo Pro Long Gold Antifade (fabricado por Invitrogen) y se observó con un microscopio de fluorescencia.
Resultados experimentales
Los resultados se muestran en las FIG. 6 y 7. En este experimento se confirmó por transferencia de Western (FIG. 6) e inmunotinción (FIG. 7) que los oligómeros PMO n.º 3 y 8 de la represente descripción inducían expresión de la 5 proteína distrofina.
[Ejemplo de ensayo 5]
Ensayo in vitro usando fibroblastos humanos 10 El experimento se realizó como en el Ejemplo de ensayo 3.
Resultados experimentales
15 Los resultados se muestran en la FIG. 8. Este experimento reveló que en las células de pacientes con DMD con deleción de los exones 45-52, los oligómeros PMO n.º 3 a 8 de la presente descripción causaban salto del exón 53 con una eficacia mayor que los oligómeros n.º 13 y 14 de la presente descripción (FIG. 8).
[Ejemplo de ensayo 6] 20 Ensayo in vitro
Se realizaron experimentos usando los oligómeros antisentido de 2'-O-metoxi-fosforotioatos (2'-OMe-S-ARN) mostrados por las SEQ ID NO: 49 y SEQ ID NO: 123. Se adquirieron diversos oligómeros antisentido usados para el 25 ensayo de Japan Bio Services. Las secuencias de diversos oligómeros antisentido se dan a continuación.
TABLA 7
- Oligómero antisentido
- Secuencia de nucleótido SEQ ID NO:
- H53_39-69
- CAUUCAACUGUUGCCUCCGGUUCUGAAGGUG 49
- H53_1-25
- UCCCACUGAUUCUGAAUUCUUUCAA 50
- H53_6-30
- CUUCAUCCCACUGAUUCUGAAUUCU 51
- H53_11-35
- UUGUACUUCAUCCCACUGAUUCUGA 52
- H53_16-40
- UGUUCUUGUACUUCAUCCCACUGAU 53
- H53_21-45
- GAAGGUGUUCUUGUACUUCAUCCCA 54
- H53_26-50
- GUUCUGAAGGUGUUCUUGUACUUCA 55
- H53_31-55
- CUCCGGUUCUGAAGGUGUUCUUGUA 56
- H53_36-60
- GUUGCCUCCGGUUCUGAAGGUGUUC 57
- H53_41-65
- CAACUGUUGCCUCCGGUUCUGAAGG 58
- H53_46-70
- UCAUUCAACUGUUGCCUCCGGUUCU 59
- H53_51-75
- ACAUUUCAUUCAACUGUUGCCUCCG 60
- H53_56-80
- CUUUAACAUUUCAUUCAACUGUUGC 61
- H53_61-85
- GAAUCCUUUAACAUUUCAUUCAACU 62
- H53_66-90
- GUGUUGAAUCCUUUAACAUUUCAUU 63
- H53_71-95
- CCAUUGUGUUGAAUCCUUUAACAUU 64
- H53_76-100
- UCCAGCCAUUGUGUUGAAUCCUUUA 65
- H53_81-105
- UAGCUUCCAGCCAUUGUGUUGAAUC 66
- H53_86-110
- UUCCUUAGCUUCCAGCCAUUGUGUU 67
- H53_91-115
- GCUUCUUCCUUAGCUUCCAGCCAUU 68
- H53_96-120
- GCUCAGCUUCUUCCUUAGCUUCCAG 69
- H53_101-125
- GACCUGCUCAGCUUCUUCCUUAGCU 70
- H53_106-130
- CCUAAGACCUGCUCAGCUUCUUCCU 71
- H53_111-135
- CCUGUCCUAAGACCUGCUCAGCUUC 72
- H53_116-140
- UCUGGCCUGUCCUAAGACCUGCUCA 73
- H53_121-145
- UUGGCUCUGGCCUGUCCUAAGACCU 74
- H53_126-150
- CAAGCUUGGCUCUGGCCUGUCCUAA 75
- H53_131-155
- UGACUCAAGCUUGGCUCUGGCCUGU 76
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5
15
25
35
45
55
65
030.
Después de la transfección, las células se cultivaron durante una noche en 2 ml de medio esencial mínimo de Eagle (EMEM) (fabricado por Sigma, Inc., a partir de ahora en este documento igual) que contenía suero fetal de ternero (FCS) al 10 % (fabricado por Invitrogen Corp.) en condiciones de 37 ºC y CO2 al 5 %. Las células se lavaron dos veces con PBS (fabricado por Nissui, a partir de ahora en este documento igual) y después se añadieron 500 µl de ISOGEN (fabricador por Nippon Gene) a las células. Después de dejar que reposaran las células a temperatura ambiente durante unos pocos minutos para alisar las células, el lisado se recogió en un tubo Eppendorf. Se extrajo el ARN total de acuerdo con el protocolo adjunto a ISOGEN. Se determinó la concentración del ARN total extraído usando un NanoDrop ND-1000 (fabricado por LMS).
Se realizó RT-PCR de una etapa con 400 ng del ARN total extraído usando un kit de RT-PCR QIAGEN OneStep (fabricado por Qiagen, Inc.). Se preparó una solución de reacción de acuerdo con el protocolo adjunto al kit. El termociclador usado fue un PTC-100 (fabricado por MJ Research). El programa de RT-PCR usado es el siguiente.
50 °C, 30 min: transcripción inversa
95 °C, 15 min: desnaturalización térmica
[94 °C, 30 s; 60 °C, 30 s; 72 °C, 1 min] x 35 ciclos: amplificación por PCR
72 °C, 10 min: extensión final
Las secuencias de nucleótidos del cebador directo y cebador inverso usados para RT-PCR se dan a continuación.
Cebador directo: 5'-CATCAAGCAGAAGGCAACAA-3' (SEQ ID NO: 42)
Cebador inverso: 5'-GAAGTTTCAGGGCCAAGTCA-3' (SEQ ID NO: 43)
El producto de reacción, 1 µl, de la PCR anterior se analizó usando un Bioanalyzer (fabricado por Agilent Technologies, Inc.).
Se midieron el nivel de polinucleótido "A" de la banda con salto del exón 53 y el nivel de polinucleótido "B" de la banda sin salto del exón 53. Basándose en estos valores de medición de "A" y "B", se determinó la eficacia de salto por la siguiente ecuación:
Resultados experimentales
Los resultados se muestran en las FIG. 18 y 19. Estos experimentos revelaron que el oligómero PMO n.º 8 de a presente descripción causaba salto del exón 53 con una eficacia marcadamente elevada en comparación con los oligómeros antisentido PMO n.º 15 y 16 (FIG. 18). También se reveló que los oligómeros PMO n.º 13 y 17 de la presente descripción causaban salto del exón 53 con una eficacia marcadamente elevada en comparación con los oligómeros PMO n.º 13 y 14 de la presente descripción (FIG: 19). Estos resultados mostraron que las secuencias con grupo-OH en el extremo 5' proporcionan una eficacia de salto mayor incluso en las mismas secuencias.
Los resultados experimentales en los Ejemplos de ensayo demuestran que los oligómeros de la presente invención (PMO n.º 1 a 10) causaban todos salto del exón 53 con una eficacia marcadamente elevada en todos los entornos celulares, en comparación con los oligómeros (PMO n.º 11, 12, 15 y 16) de acuerdo con la técnica anterior. Las células 5017 usadas en el Ejemplo de ensayo 2 son las células aisladas de pacientes con DMD y los fibroblastos usados en los Ejemplos de ensayo 3 y 5 son células diana de salto del exón 53 de pacientes con DMD. Particularmente, en los Ejemplos de ensayo 3 y 5, los oligómeros de la presente invención muestran eficacia de salto del exón 53 del 90 % o mayor en las células de pacientes con DMD que son la diana para el salto del exón 53. Por consiguiente, los oligómeros de la presente invención pueden inducir salto del exón 53 con una alta eficacia, cuando se administran a pacientes con DMD.
Por lo tanto, los oligómeros de la presente invención son extremadamente útiles para el tratamiento de DMD.
Texto libre de lista de secuencias
SEQ ID NO: 2: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 3: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 4: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 5: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 6: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 7: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 8: ácido nucleico sintético
SEQ ID NO: 9: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: : ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 11: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 12: ácido nucleico sintético
5 SEQ ID NO: 13: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 14: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 15: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 16: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 17: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 18: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 19: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: : ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 21: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 22: ácido nucleico sintético
15 SEQ ID NO: 23: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 24: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 25: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 26: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 27: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 28: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 29: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: : ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 31: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 32: ácido nucleico sintético
25 SEQ ID NO: 33: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 34: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 35: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 36: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 37: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 38: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 39: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: : ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 41: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 42: ácido nucleico sintético
35 SEQ ID NO: 43: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 44: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 45: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 46: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 47: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 48: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 49: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: : ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 51: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 52: ácido nucleico sintético
45 SEQ ID NO: 53: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 54: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 55: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 56: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 57: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 58: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 59: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: : ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 61: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 62: ácido nucleico sintético
55 SEQ ID NO: 63: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 64: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 65: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 66: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 67: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 68: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 69: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: : ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 71: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 72: ácido nucleico sintético
65 SEQ ID NO: 73: ácido nucleico sintético SEQ ID NO: 74: ácido nucleico sintético
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