FR2598621A1 - Nouvelle fraction antigenique obtenue par liberation dans un milieu de culture de vibrions choleriques, procede de preparation d'une telle fraction et son application a la preparation d'un vaccin cholerique oral - Google Patents
Nouvelle fraction antigenique obtenue par liberation dans un milieu de culture de vibrions choleriques, procede de preparation d'une telle fraction et son application a la preparation d'un vaccin cholerique oral Download PDFInfo
- Publication number
- FR2598621A1 FR2598621A1 FR8606836A FR8606836A FR2598621A1 FR 2598621 A1 FR2598621 A1 FR 2598621A1 FR 8606836 A FR8606836 A FR 8606836A FR 8606836 A FR8606836 A FR 8606836A FR 2598621 A1 FR2598621 A1 FR 2598621A1
- Authority
- FR
- France
- Prior art keywords
- culture
- cholerae
- complex
- vaccine
- fraction
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
- 230000000890 antigenic effect Effects 0.000 title claims abstract description 22
- 229960005486 vaccine Drugs 0.000 title claims abstract description 22
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 title claims description 16
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 title description 4
- 239000002158 endotoxin Substances 0.000 claims abstract description 18
- 229920006008 lipopolysaccharide Polymers 0.000 claims abstract description 18
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 claims abstract description 14
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 claims abstract description 14
- 239000012528 membrane Substances 0.000 claims abstract description 10
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 claims abstract description 7
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 claims abstract description 5
- 238000000926 separation method Methods 0.000 claims abstract description 5
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 claims abstract description 5
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 claims abstract description 3
- 230000008030 elimination Effects 0.000 claims abstract description 3
- 238000003379 elimination reaction Methods 0.000 claims abstract description 3
- 241000607626 Vibrio cholerae Species 0.000 claims description 23
- 238000000034 method Methods 0.000 claims description 19
- KRKNYBCHXYNGOX-UHFFFAOYSA-N citric acid group Chemical group C(CC(O)(C(=O)O)CC(=O)O)(=O)O KRKNYBCHXYNGOX-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 15
- 239000002609 medium Substances 0.000 claims description 15
- 206010008631 Cholera Diseases 0.000 claims description 12
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 claims description 11
- 230000002850 vibriocidal effect Effects 0.000 claims description 11
- 229960005004 cholera vaccine Drugs 0.000 claims description 10
- 241000607598 Vibrio Species 0.000 claims description 9
- XEEYBQQBJWHFJM-UHFFFAOYSA-N Iron Chemical compound [Fe] XEEYBQQBJWHFJM-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 8
- 206010047400 Vibrio infections Diseases 0.000 claims description 8
- 230000000968 intestinal effect Effects 0.000 claims description 7
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 claims description 6
- 210000000936 intestine Anatomy 0.000 claims description 6
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 claims description 5
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 claims description 5
- FBPFZTCFMRRESA-KVTDHHQDSA-N D-Mannitol Chemical compound OC[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O)CO FBPFZTCFMRRESA-KVTDHHQDSA-N 0.000 claims description 4
- 229930195725 Mannitol Natural products 0.000 claims description 4
- 239000002775 capsule Substances 0.000 claims description 4
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 claims description 4
- 229910052742 iron Inorganic materials 0.000 claims description 4
- 239000000594 mannitol Substances 0.000 claims description 4
- 235000010355 mannitol Nutrition 0.000 claims description 4
- 239000000463 material Substances 0.000 claims description 4
- 230000000050 nutritive effect Effects 0.000 claims description 4
- 230000001717 pathogenic effect Effects 0.000 claims description 4
- 238000003756 stirring Methods 0.000 claims description 4
- 238000012360 testing method Methods 0.000 claims description 4
- 238000000108 ultra-filtration Methods 0.000 claims description 4
- 238000011026 diafiltration Methods 0.000 claims description 3
- 238000001962 electrophoresis Methods 0.000 claims description 3
- 238000004108 freeze drying Methods 0.000 claims description 3
- 229920002401 polyacrylamide Polymers 0.000 claims description 3
- 239000002671 adjuvant Substances 0.000 claims description 2
- 239000000427 antigen Substances 0.000 claims description 2
- 102000036639 antigens Human genes 0.000 claims description 2
- 108091007433 antigens Proteins 0.000 claims description 2
- 210000002011 intestinal secretion Anatomy 0.000 claims description 2
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 claims description 2
- 229920001184 polypeptide Polymers 0.000 claims description 2
- 102000004196 processed proteins & peptides Human genes 0.000 claims description 2
- 108090000765 processed proteins & peptides Proteins 0.000 claims description 2
- 229940043517 specific immunoglobulins Drugs 0.000 claims description 2
- 239000002054 inoculum Substances 0.000 claims 2
- 108010052285 Membrane Proteins Proteins 0.000 claims 1
- 239000012228 culture supernatant Substances 0.000 claims 1
- 241000283973 Oryctolagus cuniculus Species 0.000 description 13
- 235000018102 proteins Nutrition 0.000 description 9
- 230000004071 biological effect Effects 0.000 description 6
- 210000004379 membrane Anatomy 0.000 description 6
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 6
- 102000009016 Cholera Toxin Human genes 0.000 description 5
- 108010049048 Cholera Toxin Proteins 0.000 description 5
- 239000004480 active ingredient Substances 0.000 description 5
- 244000052616 bacterial pathogen Species 0.000 description 5
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 5
- 210000004347 intestinal mucosa Anatomy 0.000 description 5
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M sodium chloride Inorganic materials [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 5
- 238000011161 development Methods 0.000 description 4
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 4
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 4
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 4
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 4
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M Sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 3
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 3
- 239000000470 constituent Substances 0.000 description 3
- 230000028993 immune response Effects 0.000 description 3
- 229910052943 magnesium sulfate Inorganic materials 0.000 description 3
- 230000008569 process Effects 0.000 description 3
- 239000003053 toxin Substances 0.000 description 3
- 231100000765 toxin Toxicity 0.000 description 3
- 101710146739 Enterotoxin Proteins 0.000 description 2
- WHUUTDBJXJRKMK-UHFFFAOYSA-N Glutamic acid Natural products OC(=O)C(N)CCC(O)=O WHUUTDBJXJRKMK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000699666 Mus <mouse, genus> Species 0.000 description 2
- 101710116435 Outer membrane protein Proteins 0.000 description 2
- ONIBWKKTOPOVIA-UHFFFAOYSA-N Proline Natural products OC(=O)C1CCCN1 ONIBWKKTOPOVIA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229930006000 Sucrose Natural products 0.000 description 2
- CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N Sucrose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@]1(CO)O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O1 CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N 0.000 description 2
- 238000005273 aeration Methods 0.000 description 2
- 239000005018 casein Substances 0.000 description 2
- BECPQYXYKAMYBN-UHFFFAOYSA-N casein, tech. Chemical compound NCCCCC(C(O)=O)N=C(O)C(CC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CC(C)C)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(CC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(C(C)O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(COP(O)(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(N)CC1=CC=CC=C1 BECPQYXYKAMYBN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 235000021240 caseins Nutrition 0.000 description 2
- 238000001816 cooling Methods 0.000 description 2
- 239000000147 enterotoxin Substances 0.000 description 2
- 231100000655 enterotoxin Toxicity 0.000 description 2
- 239000000284 extract Substances 0.000 description 2
- 235000013922 glutamic acid Nutrition 0.000 description 2
- 239000004220 glutamic acid Substances 0.000 description 2
- 238000001727 in vivo Methods 0.000 description 2
- 230000005764 inhibitory process Effects 0.000 description 2
- 238000002347 injection Methods 0.000 description 2
- 239000007924 injection Substances 0.000 description 2
- 210000001630 jejunum Anatomy 0.000 description 2
- 230000007774 longterm Effects 0.000 description 2
- 229910000402 monopotassium phosphate Inorganic materials 0.000 description 2
- 229940126578 oral vaccine Drugs 0.000 description 2
- 230000004044 response Effects 0.000 description 2
- 238000004062 sedimentation Methods 0.000 description 2
- SQGYOTSLMSWVJD-UHFFFAOYSA-N silver(1+) nitrate Chemical compound [Ag+].[O-]N(=O)=O SQGYOTSLMSWVJD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 210000000813 small intestine Anatomy 0.000 description 2
- 239000007790 solid phase Substances 0.000 description 2
- 238000010186 staining Methods 0.000 description 2
- 239000005720 sucrose Substances 0.000 description 2
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 2
- 238000005199 ultracentrifugation Methods 0.000 description 2
- 238000002255 vaccination Methods 0.000 description 2
- 241000283707 Capra Species 0.000 description 1
- 206010012742 Diarrhoea infectious Diseases 0.000 description 1
- KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N EDTA Chemical compound OC(=O)CN(CC(O)=O)CCN(CC(O)=O)CC(O)=O KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000002965 ELISA Methods 0.000 description 1
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 1
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 description 1
- 108060003951 Immunoglobulin Proteins 0.000 description 1
- 241000699670 Mus sp. Species 0.000 description 1
- 102000003992 Peroxidases Human genes 0.000 description 1
- 241000662740 Sabatia campestris Species 0.000 description 1
- 229920002472 Starch Polymers 0.000 description 1
- 206010043376 Tetanus Diseases 0.000 description 1
- 238000010521 absorption reaction Methods 0.000 description 1
- 230000009471 action Effects 0.000 description 1
- 230000001154 acute effect Effects 0.000 description 1
- 230000005875 antibody response Effects 0.000 description 1
- QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N atomic oxygen Chemical compound [O] QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000005587 bubbling Effects 0.000 description 1
- 229940041514 candida albicans extract Drugs 0.000 description 1
- 210000004534 cecum Anatomy 0.000 description 1
- 239000001913 cellulose Substances 0.000 description 1
- 229920002678 cellulose Polymers 0.000 description 1
- 238000012512 characterization method Methods 0.000 description 1
- 238000010367 cloning Methods 0.000 description 1
- 230000006835 compression Effects 0.000 description 1
- 238000007906 compression Methods 0.000 description 1
- 230000009089 cytolysis Effects 0.000 description 1
- 230000018044 dehydration Effects 0.000 description 1
- 238000006297 dehydration reaction Methods 0.000 description 1
- 238000004925 denaturation Methods 0.000 description 1
- 230000036425 denaturation Effects 0.000 description 1
- 238000001514 detection method Methods 0.000 description 1
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 1
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 1
- 206010013023 diphtheria Diseases 0.000 description 1
- 229910000396 dipotassium phosphate Inorganic materials 0.000 description 1
- 210000001198 duodenum Anatomy 0.000 description 1
- 208000001848 dysentery Diseases 0.000 description 1
- 229960001484 edetic acid Drugs 0.000 description 1
- 239000002702 enteric coating Substances 0.000 description 1
- 238000009505 enteric coating Methods 0.000 description 1
- 238000006911 enzymatic reaction Methods 0.000 description 1
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 1
- 239000000706 filtrate Substances 0.000 description 1
- 238000001914 filtration Methods 0.000 description 1
- 210000003495 flagella Anatomy 0.000 description 1
- 238000005188 flotation Methods 0.000 description 1
- 239000012530 fluid Substances 0.000 description 1
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 1
- 239000008103 glucose Substances 0.000 description 1
- 230000036541 health Effects 0.000 description 1
- 210000003405 ileum Anatomy 0.000 description 1
- 210000000987 immune system Anatomy 0.000 description 1
- 230000036039 immunity Effects 0.000 description 1
- 238000002649 immunization Methods 0.000 description 1
- 230000003053 immunization Effects 0.000 description 1
- 238000003119 immunoblot Methods 0.000 description 1
- 102000018358 immunoglobulin Human genes 0.000 description 1
- 229940072221 immunoglobulins Drugs 0.000 description 1
- 230000001939 inductive effect Effects 0.000 description 1
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 1
- 238000003760 magnetic stirring Methods 0.000 description 1
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 1
- 210000004877 mucosa Anatomy 0.000 description 1
- 230000035772 mutation Effects 0.000 description 1
- 230000007935 neutral effect Effects 0.000 description 1
- 208000015380 nutritional deficiency disease Diseases 0.000 description 1
- 230000003647 oxidation Effects 0.000 description 1
- 238000007254 oxidation reaction Methods 0.000 description 1
- 229910052760 oxygen Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000001301 oxygen Substances 0.000 description 1
- 239000005022 packaging material Substances 0.000 description 1
- 230000001575 pathological effect Effects 0.000 description 1
- 239000008188 pellet Substances 0.000 description 1
- KHIWWQKSHDUIBK-UHFFFAOYSA-N periodic acid Chemical compound OI(=O)(=O)=O KHIWWQKSHDUIBK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 108040007629 peroxidase activity proteins Proteins 0.000 description 1
- 239000000546 pharmaceutical excipient Substances 0.000 description 1
- 238000002264 polyacrylamide gel electrophoresis Methods 0.000 description 1
- 238000004321 preservation Methods 0.000 description 1
- 230000006798 recombination Effects 0.000 description 1
- 238000011160 research Methods 0.000 description 1
- 230000000717 retained effect Effects 0.000 description 1
- 239000012465 retentate Substances 0.000 description 1
- 230000028327 secretion Effects 0.000 description 1
- 230000000405 serological effect Effects 0.000 description 1
- 229910001961 silver nitrate Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000008107 starch Substances 0.000 description 1
- 235000019698 starch Nutrition 0.000 description 1
- 238000010408 sweeping Methods 0.000 description 1
- 230000032258 transport Effects 0.000 description 1
- 239000012137 tryptone Substances 0.000 description 1
- 239000012138 yeast extract Substances 0.000 description 1
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K39/02—Bacterial antigens
- A61K39/107—Vibrio
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
- Y02A50/00—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
- Y02A50/30—Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Immunology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Mycology (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Public Health (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
ON CULTIVE DES VIBRIONS CHOLERIQUES DANS DES CONDITIONS QUI FAVORISENT LA BIOSYNTHESE DES ANTIGENES DE SURFACE ET LA LIBERATION DANS LE MILIEU DE CULTURE D'UN COMPLEXE ANTIGENIQUE PARTICULAIRE DE LIPOPOLYSACCHARIDE DE CARACTERE LISSE ET DE PROTEINES DE MEMBRANE EXTERNE, ET ON SOUMET LE SURNAGEANT, APRES ELIMINATION DES CORPS BACTERIENS, A UNE SEPARATION DANS LAQUELLE ON RECUPERE LES ELEMENTS POSSEDANT UN POIDS MOLECULAIRE SUPERIEUR A UNE VALEUR D'AU MOINS ENVIRON 100000. APPLICATION A UN VACCIN CHOLERIQUE ORAL.
Description
Nouvelle fraction antigénique obtenue par libération dans un milieu de culture de vibrions cholériques, procédé de préparation d'une telle fraction et son application à la préparation d'un vaccin cholérique oral.
La présente invention a trait à une nouvelle fraction antigénique obtenue par libération dans un milieu de culture de vibrions cholériques pathogènes, et destinée à être utilisée dans la préparation d'un vaccin cholérique oral
Elle concerne également le procédé de préparation d'une telle fraction et le vaccin correspondant.
Elle concerne également le procédé de préparation d'une telle fraction et le vaccin correspondant.
Le choléra est une maladie qui se caractérise par une diarrhée infectieuse aiguë due à l'entérotoxine du vibrion cholérique et par une déshydratation extrêmement rapide Cette naladie, qui sévit principalement dans les pays pauvres et plus particulièrement en Asie du Sud-Est, au
Bengladesh et dans toute l'Afrique, est souvent mortelle lorsqu'elle atteint des organismes mal nourris et affaiblis.
Bengladesh et dans toute l'Afrique, est souvent mortelle lorsqu'elle atteint des organismes mal nourris et affaiblis.
Le développement des transports et des échanges interhumains ont facilité ces dernières années la diffusion des vibrions cholériques, créant des foyers secondaires et constituant une menace pour la santé de nombreux pays.
On a cherché, depuis, à mettre au point un vaccin qui puisse efficacement protéger contre le choléra et qui soit facile à administrer.
Pendant très longtemps, on a administré par voie parentérale des vaccins constitués de V. cholerae tués, sans avoir toutefois de certitude sur l'immunité que de tels vaccins pouvaient apporter.
Des résultats d'études menés au Bengladesh, à
Calcutta et aux Philippines et ayant porté sur plusieurs centaines de milliers de sujets ont clairement montré que ce type de vaccin, bien que provoquant une réponse sérologique importante, n'apportait pas une protection suffisante pour pouvoir modifier l'endémicité et l'épidémicité du choléra.
Calcutta et aux Philippines et ayant porté sur plusieurs centaines de milliers de sujets ont clairement montré que ce type de vaccin, bien que provoquant une réponse sérologique importante, n'apportait pas une protection suffisante pour pouvoir modifier l'endémicité et l'épidémicité du choléra.
Plus tard, la toxine cholérique ayant été reconnue comme la seule responsable de la maladie, on a espéré pouvoir se protéger contre le choléra, de la même manière que contre la diphtérie ou le tétanos, en vaccinant au moyen d'une anatoxine administrée par voie parentérale.
Ce type de vaccination, bien qu'apportant une certaine protection contre le choléra, a été abandonné par suite d'une mauvaise tolérance et d'une durée de protection trop courte.
C'est à la lumière d'études épidémiologiques, mais surtout au vu des résultats obtenus sur volontaires recevant une dose d'épreuve de vibrions cholériques, qu'il est apparu que la maladie elle-même apportait une protection efficace et de longue durée.
Les recherches se sont alors orientées vers la mise au point de vaccins oraux tendant à reproduire la réponse immunitaire obtenue par la maladie, mais en évitant ses effets pathologiques. Ces effets étant strictement limités à la muqueuse de l'intestin grêle, c'est à ce niveau que l'on a cherché à provoquer une réponse immunitaire capable de s'opposer, soit au développement des vibrions1 soit à l'action de l'entérotoxine libérée.
Les vaccins destinés à assurer une neutralisation de la toxine cholérique sont constitués de sousunités B de cette même toxine (choléragénoide) ou encore de procholéragénoide obtenu par chauffage contrôlé de la toxine.
Ceux destinés à empêcher la colonisation de la muqueuse intestinale par le V. cholerae sont constitués de composants antigéniques de vibrions1 isolés ou en mélange, tels que flagelle, enzymes extracellulaires, adhésines, lipopolysaccharide, protéines de la membrane externe.
Le brevet français n' 73 03734 décrit un vaccin de ce type constitué d'une fraction antigénique obtenue après lyse d'un culot bactérien dans le but dlen libérer le matériel endocellulaire.
Il a été également proposé des vaccins oraux visant à empêcher la colonisation de la muqueuse intestinale par le V. cholerae, qui sont constitués par des germes tués ou par des germes vivants préparés à partir de mutants, soit hypotoxigéniques (M13), soit produisant une toxine exempte de fragment A et obtenue par clonage après mutation (Texas
Star SR) ou par des techniques.de recombinaison génétique.
Star SR) ou par des techniques.de recombinaison génétique.
Aucun de ces vaccins, toutefois, n' a réussi jusqu'ici à s'imposer, soit en raison de leur mauvaise tolérance, soit parce qu'ils ne confèrent pas une durée de protection suffisamment longue.
Enfin, des vaccins combinant des dérivés de la toxine cholérique avec des constituants membranaires ou des germes entiers tués sont actuellement en développement.
te demandeur s'est attaché à mettre au point un vaccin cholérique qui soit administrable par voie orale, donc facile à mettre en oeuvre, et qui puisse conférer une protection de longue durée.
Un objectif de l'invention est de proposer une nouvelle fraction antigénique obtenue par libération dans un milieu de culture de vibrions cholériques pathogènes et qui, lorsqu'elle est administrée par voie orale, est capable d'induire au niveau de l'intestin une réponse immunitaire locale s'opposant à la colonisation ultérieure par les V. cholerae vivants.
Un autre objectif de l'invention est de proposer un procédé de préparation d'une telle fraction vaccinante.
Un autre objectif encore de l'invention est de fournir un vaccin cholérique contenant comme principe actif ladite fraction.
Le procédé de préparation de la fraction antigénique conforme à l'invention est caractérisé en ce qu'il consiste
- à cultiver des vibrions cholériques, de préférence dans un milieu pauvre en éléments nutritifs et exempt de fer, dans des conditions qui favorisent la biosynthèse des antigènes de surface et la libération dans le milieu de culture d'un complexe antigénique particulaire de lipopolysaccharide de caractère lisse et de protéines de membrane externe ; et
- à soumettre le surnageant, après élimination des corps bactériens, par exemple par centrifugation, à une séparation dans laquelle on récupère les éléments possédant un poids moléculaire supérieur à une valeur d'au moins 100.000 environ.
- à cultiver des vibrions cholériques, de préférence dans un milieu pauvre en éléments nutritifs et exempt de fer, dans des conditions qui favorisent la biosynthèse des antigènes de surface et la libération dans le milieu de culture d'un complexe antigénique particulaire de lipopolysaccharide de caractère lisse et de protéines de membrane externe ; et
- à soumettre le surnageant, après élimination des corps bactériens, par exemple par centrifugation, à une séparation dans laquelle on récupère les éléments possédant un poids moléculaire supérieur à une valeur d'au moins 100.000 environ.
La séparation peut, de préférence, comporter une ultrafiltration à un seuil de coupure d'environ 10 000, suivie d'une diafiltration qui élimine tout le matériel provenant de lt culture et dont le poids moléculaire est inférieur à environ 100.000.
De préférence, on complète la libération du complexe antigénique par un traitement à la chaleur en présence d'un agent dissociant, tel que l'acide citrique.
Selon un mode de mise en oeuvre préféré, dans une étape préliminaire, on prépare des inoculums en culture agitée et en milieu nutritif riche, à partir de souches de V. cholerae, de préférence de sérotypes Ogawa et
Inaba, choisies parmi les souches pathogènes de caractère lisse.
Inaba, choisies parmi les souches pathogènes de caractère lisse.
On ensemence, ensuite, à l'aide de ces inoculums, un milieu pauvre en éléments nutritifs et exempt de fer. Un tel milieu peut être, par exemple, le milieu MSA qui présente, par litre, la composition suivante - Acide glutamique : 1,5 g
- Caséine lactique : 0,8 g
- Proline : 0,18 g
- NaCl 10 g
- KH2P04 : 0,45 g
- MgS04 : 0,1 g.
- Caséine lactique : 0,8 g
- Proline : 0,18 g
- NaCl 10 g
- KH2P04 : 0,45 g
- MgS04 : 0,1 g.
La culture est effectuée sous agitation pendant une durée comprise entre 6 et 24 heures et à une température comprise entre 30 et 35-C, le pH étant maintenu au-dessus de 7. En fin de culture, on ajoute un agent dissociant, tel qu'une solution d'acide citrique ou d'acide éthylène-diamine-tétraacétique. On abaisse le pH à environ 6, et on chauffe à une température comprise entre environ 40 et environ 60'C, la culture étant maintenue à cette température pendant environ 15 à 60 minutes.
Après refroidissement, on effectue une centrifugation ou une filtration de manière à éliminer les corps bactériens. Le surnageant est ensuite recueilli et filtré sur une membrane de porosité Or 45
Le filtrat est soumis à une ultrafiltration dans laquelle on ne retient que la fraction possédant un poids moléculaire supérieur à 100 000, qui est ensuite soumise à une diafiltration éliminant le matériel de poids moléculaire inférieur à 100 000.
Le filtrat est soumis à une ultrafiltration dans laquelle on ne retient que la fraction possédant un poids moléculaire supérieur à 100 000, qui est ensuite soumise à une diafiltration éliminant le matériel de poids moléculaire inférieur à 100 000.
La fraction recueillie est ensuite lyophilisée. Cette opération s'effectue, en général, en présence d'un adjuvant de lyophilisation tel que le mannitol.
La fraction lyophilisée constitue le principe actif du vaccin cholérique conforme à l'invention.
Cette fraction antigénique est constituée par un complexe composé de lipopolysaccharide de caractère smooth et de protéines de membrane externe, se présentant sous forme particulaire.
La fraction antigénique lyophilisée constituant le principe actif du vaccin conforme à l'invention se caractérise par des propriétés biologiques tout à fait remarquables.
Administrée à l'animal par voie orale, elle provoque
- l'apparition d'anticorps vibriocides dans le sérum,
- une protection contre l'infection expérimentale in vivo dans les anses intestinales ligaturées,
- une inhibition de l'adhérence des V. cholerae sur la muqueuse intestinale,
- une inhibition de la colonisation de l'intestin par le V. cholerae,
- une production intestinale d'immunoglobulines spécifiques.
- l'apparition d'anticorps vibriocides dans le sérum,
- une protection contre l'infection expérimentale in vivo dans les anses intestinales ligaturées,
- une inhibition de l'adhérence des V. cholerae sur la muqueuse intestinale,
- une inhibition de la colonisation de l'intestin par le V. cholerae,
- une production intestinale d'immunoglobulines spécifiques.
Administrée à la souris par voie parentérale, elle la protège contre l'infection mortelle par le V.
cholerae.
Le vaccin cholérique conforme à l'invention se présente, soit sous la forme de comprimés, soit encore sous la forme de microgranules.
Les comprimés sont obtenus en mélangeant le lyophilisat avec un excipient de compression, et sont ensuite enrobés d'une pellicule gastrorésistante.
Dans le cas d'une présentation sous forme de microgranules, le lyophilisat est fixé sur la surface des microgranules par des techniques bien connues de l'homme de l'art. Ces microgranules sont ensuite recouverts d'une pellicule qui leur confère la gastrorésistance et distribués en gélules.
Cette dernière forme de présentation permet, d'une part, la ïnservation de toutes les propriétés biolo iquc du principe actif et, d'autre part, l'administration du vaccin sous forme protégée aux très jeunes enfants.
D'autres avantages et particularités de l'invention apparaîtront à la lecture des exemples qui suivent, donnés à titre purement illustratif, et non limita- tif.
Préparation du complexe lipopolysaccharide-protéines.
On reprend une ampoule contenant sous forme congelée le V. cholerae, sérotype Ogawa, biotype eltor, par 2 à 3 ml de milieu VCM constitué, par litre, de
- Baeto-tryptone (Difco) : 10 g
- Extrait de levure : 1 g
- Glucose - 1 g
- NaCl : 5 g
- K2HP04 : 2 g - MgS04 0,1
le pH étant ajusté à 8,5 avec NaOH,
On ensemence au moyen de cette suspension un flacon de 5 litres contenant 3 litres de milieu VCM et on cultive pendant une nuit -sous agitation magnétique, à 20 22-C, à l'abri de la lumière et sous aération constituée par un bullage lent d air
Cette culture sert à inoculer un fermenteur de 50 litres contenant 32 litres de milieu VCM.La culture est menée pendant 6 heures à 33-34-C sous agitation suffisante pour obtenir un vortex important.
- Baeto-tryptone (Difco) : 10 g
- Extrait de levure : 1 g
- Glucose - 1 g
- NaCl : 5 g
- K2HP04 : 2 g - MgS04 0,1
le pH étant ajusté à 8,5 avec NaOH,
On ensemence au moyen de cette suspension un flacon de 5 litres contenant 3 litres de milieu VCM et on cultive pendant une nuit -sous agitation magnétique, à 20 22-C, à l'abri de la lumière et sous aération constituée par un bullage lent d air
Cette culture sert à inoculer un fermenteur de 50 litres contenant 32 litres de milieu VCM.La culture est menée pendant 6 heures à 33-34-C sous agitation suffisante pour obtenir un vortex important.
L'aération est apportée à raison de 35 l/h par balayage en surface. Le pH de la culture est maintenu au-dessus de 7,2 par apport de KOH 1 N.
La culture obtenue sert à inoculer un fermenteur de 1500 litres contenant 900 litres de milieu MSA constitué, par litre, de
- Acide glutamique : 1,5 g
- Caséine lactique : 0,8 g
- Proline : 0,18 g
- NaCl : 10 g
- KH2P04 : 0,45 g
- MgS04 : 0,1 g
- le pH.étant ajusté à 8,4 par KOH, et 100 litres de milieu VCM.
- Acide glutamique : 1,5 g
- Caséine lactique : 0,8 g
- Proline : 0,18 g
- NaCl : 10 g
- KH2P04 : 0,45 g
- MgS04 : 0,1 g
- le pH.étant ajusté à 8,4 par KOH, et 100 litres de milieu VCM.
On cultive pendant IR. heures à une température de l'ordre de 33-34'C, le pH étant maintenu audessus de 7,2 par addition de KOH 1 N. L'oxygène dissous est maintenu à- 50 's de la saturation par apport d'air en profondeur, et agitation à 750 t/mn. Après ce laps de temps, on ajoute une solution d'acide citrique à 125 g/l jusqu'à ce que le pH de la culture soit abaissé à 6,0 et on élève la température de la culture à 55-C. On maintient cette température pendant 45 mn puy5 on refroidit la culture à environ 10'C.
On effectue ensuite immédiatement la centrifugation en continu et sous refroidissement. On recueille le surnageant et on filtre à + 4-C sur membrane de porosité 0,45r.
L'ultrafiltration-concentration est effectuée sur membrane possédant un point de coupure PM 100 000. On élimine l'ultrafiltrat jusqu a ce que le volume de la préparation. atteigne 10 litres. On y ajoute un même volume de solution de NaCI à 8,5 g/l stérile et on poursuit l'ultrafiltration pour ramener le volume du rétentat à 10 litres.
On répète 5 fois cette dernière opération et on ajuste le volume de préparation à 20 litres au moyen d'une solution de mannitol stérile et de concentration telle que la concentration finale en mannitol soit égale à 20 g/l.
La préparation est ensuite soumise à une lyophilisation en vrac de 48 heures comportant une dessiccation secondaire de 24 heures à 30'C.
On procède, de la même façon, avec le V.
cholerae, sérotype Inaba, biotype eltor, et on mélange les lyophilisats obtenus à partir des deux souches.
La présentation du vaccin sous forme de microgranules gastrorésistants se fait par fixation du mélange de lyophilisats à la surface de microgranules neutres de 1 mm de diamètre et essentiellement constitués d'amidon, en utilisant les techniques connues de l'homme de l'art.
Ces microgranules sont ensuite recouverts d'une enveloppe constituée d'acétophtalate de cellulose.
Ils contiennent 50 mg de mélange de lyophilisats par gramme de microgranules termines
Caractérisation du complexe lipopolysaccharideprotéines.
Caractérisation du complexe lipopolysaccharideprotéines.
Le complexe lipopolysaccharide-protéines libéré dans le milieu de culture se présente sous forme particulaire.
Le caractère particulaire du complexe est mis en évidence par l'examen au microscope électronique.
La préparation se présente sous forme de vésicules de diamètre compris entre 20 et 100 nm après coloration négative au phosphotungstate.
Association lipopolysaccharide-protéines.
Cette association de composants peut être mise en évidence par le fait que ce complexe présente une vitesse de sédimentation et une densité différentes de celles de ses composants isolés.
Une ultracentrifugation de 65 heures à 39.000 t/mn sur un gradient de saccharose 40-60 , effectuée sur la préparation obtenue comme il a été indiqué plus haut, montre que le complexe possède une densité de flottation de 1,21 alors que le lipopolysaccharide isolé à partir de la même préparation montre une densité de 1,19.
Les vitesses de sédimentation déterminées par ultracentrifugation en gradient de saccharose 5-15 % sont respectivement de 30 S pour le complexe de lipopolysaccharide-protéines conforme à l'invention et de 20 S pour le lipopolysaccharide extrait de ce complexe.
Cette association lipopolysaccharide-protéines peut être encore mise en évidence par le fait que la dose nécessaire à l'apparition d'un pouvoir vibriocide dans le sérum de lapins ayant reçu la préparation par voie orale est au moins 40 fois inférieure à celle du lipopolysaccharide extrait du V. cholerae.
Nature des constituants
lipopolysaccharide (LPS) du V. cholerae de ~caractère lisse.
lipopolysaccharide (LPS) du V. cholerae de ~caractère lisse.
On extrait du complexe lipopolysaccharideprotéines obtenu comme on l'a indiqué plus haut, le lipopolysaccharide par la technique de Westphal et on soumet celui-ci à une électrophorèse en gel de polyacrylamide en milieu dissociant selon la méthode de Laemmli. Après oxydation par le periodate, les constituants sont révélés par une coloration au nitrate d'argent. Le profil électrophorétique obtenu est caractéristique du LPS de V. cholerae de caractère lisse.
On note que les préparations vaccinales contenant du LPS ne présentant pas le profil du caractère smooth ne possèdent pas les activités biologiques recherchées
protéines de membrane externe du V. cholerae.
protéines de membrane externe du V. cholerae.
Ces protéines participent à la réponse immunitaire induite par le complexe lipopolysaccharideprotéines.
Ce rôle des proteines est mis en évidence par les faits suivants
- la dénaturation des protéines par chauffage, par exemple à une températule de l'ordre de 100-C pendant 30 minutes, détruit totalement les propriétés vaccinantes,
- administré par voie orale au lapin , le complexe lipopolysaccharide-protéines provoque la sécrétion intestinale d'immunoglobulines spécifiques des protéines entrant dans la composition du complexe.
- la dénaturation des protéines par chauffage, par exemple à une températule de l'ordre de 100-C pendant 30 minutes, détruit totalement les propriétés vaccinantes,
- administré par voie orale au lapin , le complexe lipopolysaccharide-protéines provoque la sécrétion intestinale d'immunoglobulines spécifiques des protéines entrant dans la composition du complexe.
La mise en evidence de ces immunoglogulines est effectuée par la technique d'"immunoblot" sur les protéines du complexe, après que celles-ci ont été séparées par électrophorèse en gel polyacrylamide mono- ou bidimensionnelle.
On observe, enfin, que le pouvoir vibriocide des sérums de lapins vaccinés par voie orale n'est inhibé qu'en partie seulement lorsque ces sérums sont additionnés de r.ps extrait de V. cholerae, alors que ce pouvoir vibriocide est totalement inhibé par la présence du complexe.
L'électrophorèse en gel de polyacrylamide en milieu dissociant des protéines du complexe vaccinant permet de mettre en évidence une série de polypeptides de poids moléculaires compris entre 28 000 et 70 000 daltons.
Propriétés biologiques.
Les propriétés biologiques du principe actif ont été mises en évidence par une série d'expérimentations effectuées sur l'animal auquel a été administré soit le principe actif lui-même, soit le vaccin correspondant, et dont les résultats sont rapportés ci-dessous.
A - Pour mettre en évidence les propriétés biologiques du principe actif, on a effectué ces essais
a) Administré par voie parentérale aux souris, il i e protège contre l'infection mortelle par le V.
a) Administré par voie parentérale aux souris, il i e protège contre l'infection mortelle par le V.
chol erae.
En appliquant les conditions recommandées par i 'OMS pour 1 < test de protection de la souris, on constate que le principe actif lyophilisé possede (par mg de PyQ- philisat) une activité supérieure de 2 à 10 fois celle de la référence.
/ b) Administré par voie sous-cutanee à des lapins, le principe actif induit une forte réponse en anticorps vibriocides.
On observe qu'après injection d'une quantité de principe actif équivalente au 1/20 de la dose humaine, les titres en anticorps vibriocides sont supérieurs à 50 000. Ces titres sont semblables à ceux obtenus par l'injection d'une dose humaine de vaccin composé de germes tués.
c) Administré par voie orale à des lapins, le principe actif sous forme de suspension (c'est-à-dire présenté sous forme non gastrorésistante) induit une apparition d'anticorps vibriocides dans le sérum de ces animaux.
On administre par voie orale à des lapins des doses croissantes en deux prises espacées de 7 jours. Les titres en anticorps vibriocides des sérums recueillis 14 jours après la dernière administration montrent un effet dose linéaire. A titre de comparaison, l'administration de doses croissantes de LPS extrait de V. cholerae induit des anticorps vibriocides, mais à des doses 40 fois supérieures.
B - Administré par voie orale à l'animal, le vaccin provoque
a) l'apparition d'anticorps vibriocides dans le sérum à des taux élevés.
a) l'apparition d'anticorps vibriocides dans le sérum à des taux élevés.
Des lapins reçoivent 200 mg de microgranules a .J O et J 7. On a procédé au titrage des anticorps à J 21.
On obtient les titres suivants :
Ogawa Inaba
titre des sérums titre des sérums
lapin n0 avant apres avant après
immunisation inunisation
5316 < 40 30780 < 40 40960
6317 < 40 15360 (40 20480
6318 < z0 20480 < 40 20480
6319 < 40 20480 < 40 20480
6320 (40 20480 < 40 5180'
6321 < 40 81920 (40 20480
b) une protection contre l'infection expérimentale in vivo dans les anses intestinales ligaturées.
Ogawa Inaba
titre des sérums titre des sérums
lapin n0 avant apres avant après
immunisation inunisation
5316 < 40 30780 < 40 40960
6317 < 40 15360 (40 20480
6318 < z0 20480 < 40 20480
6319 < 40 20480 < 40 20480
6320 (40 20480 < 40 5180'
6321 < 40 81920 (40 20480
b) une protection contre l'infection expérimentale in vivo dans les anses intestinales ligaturées.
On immunise des lapins par une dose humaine de vaccin à J O et J 7. Environ 25 jours après, on ligature des anses intestinales dans lesquelles on injecte des doses croissantes de V. cholerae. 16 à 18 heures après, les volumes sécrétés sont mesurés. On observe une forte diminu tion des volumes sécrétés chez les animaux immunisés les les nombres de germes injectés nécessaires pour obtenir la sécrétion de 1 ml de liquide par cm d'intestin sont respectivement
animaux témoins 10
9
animaux immunisés 10
c) un effet anti-adhérence et un effet anticolonisation de l'intestin par le V. cholerae.
animaux témoins 10
9
animaux immunisés 10
c) un effet anti-adhérence et un effet anticolonisation de l'intestin par le V. cholerae.
On administre par voie orale à des lapins 200 mg de microgranules à J O et J 7 ; 5 jours après la dernière administration, on opère les animaux et on introduit 109 V.
cholerae vivants dans leur duodénum après avoir ligaturé l'intestin grêle au niveau du caecum. Après 2 à 3 heures de contact, on retire la ligature. 16 à 18 heures après, on dénombre les V. Cholerae dans l'iléon et le jéjunum. On obtient des résultats significativement différents chez les animaux immunisés et chez les animaux témoins.
lapins aanbre de germes/g d'intestin
Ogawa Inaba
iléon jéjunum iléon jéjunum
témoins lo8 107 108 107
immunisés 103 102 105 103
d) production intestinale d'IgA spécifiques.
Ogawa Inaba
iléon jéjunum iléon jéjunum
témoins lo8 107 108 107
immunisés 103 102 105 103
d) production intestinale d'IgA spécifiques.
On administre à des lapins 200 mg de microgranu]es aux jours J 0, J 7 et J 14. On procède ensuite au titrage des IgA spécifiques présentes dans le liquide intestinal et la muqueuse intestinale, par méthode ELISA.
On utilise le complexe antigénique comme phase solide. Seules les IgA spécifiques présentes dans l'échantillon prélevé se fixent sur cette phase solide et sont révélées au moyen d'anticorps de chèvre anti-IgA de lapin conjugués à la peroxydase.
Après révélation de la réaction enzymatique, on obtient les résultats suivants
lapins Extrait de muqueuse intestinale
dilution 1/20-D.O. mesurée b 425 nm
immunisés 1,80
témoins 0,1.
lapins Extrait de muqueuse intestinale
dilution 1/20-D.O. mesurée b 425 nm
immunisés 1,80
témoins 0,1.
Dosage
Les microgranule, contenant par exemple 50 mg ou plus de mélange de lyophilisats par g de microgranules, sont conditionnés en gélules gastrorésistantes contenant 200 mg de microgranules.
Les microgranule, contenant par exemple 50 mg ou plus de mélange de lyophilisats par g de microgranules, sont conditionnés en gélules gastrorésistantes contenant 200 mg de microgranules.
A titre d'exesmple, la vaccination petit se faire par absorption d'une gélule à J 0, J 7 et J 14, avec un rappel par exemple entre six mois et un an.
Claims (18)
1. Procédé de préparation d'une fraction antigénique destinée à être utilisée comme principe actif dans un vaccin cholérique oral, caractérisé en ce qu'il consiste
- à cultiver des vibrions cholériques dans des conditions qui favorisent la biosynthèse des antigènes de surface et la libération dans le milieu de culture d'un complexe antigénique particulaire de lipopolysaccharide de caractère lisse et de protéines de membrane externe, et
- à soumettre le surnageant, après élimination des corps bactériens, à une séparation dans laquelle on récupère les éléments possédant un poids moléculaire supérieur à une valeur d'au moins environ 100.000.
2. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'on complète la libération du complexe antigénique par un traitement à la chaleur en présence d'un agent dissociant.
3. Procédé selon la revendication 2, caractérisé en que l'agent dissociant est de l'acide citrique.
4. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 et 2, caractérisé en ce que 1 étape de séparation comporte une ultrafiltration à un seuil de coupure d'environ 100 00, suivie d'une diafiltration qui élimine tout le matériel provenant de la culture et dont le poids moléculaire est inférieur à environ 100.000.
5. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisé en ce que l'on cultive les vibrions dans un milieu pauvre en éléments nutritifs et exempt de fer.
6. Procédé selon la revendication 5, caractérisé en ce que, dans une étape préliminaire, on prépare des inoculums en culture agitee et en milieu nutritif riche, à partir de souches de V. cholerae de sérotypes
Ogawa et Inaba choisies parmi les souches pathogènes de caractère lisse et en ce que l'on ensemence ensuite, à l'aide de ces inoculums, un milieu pauvre en éléments nutritifs et exempt de fer.
7. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, caractérisé en ce que la culture est effectuée sous agitation pendant une durée comprise entre 6 et 24 heures et à une température comprise entre 30 et 35'C, le pH étant maintenu au-dessus de 7.
8. Procédé selon l'une des revendications 3 et 4, caractérisé en ce qu'en fin de culture, on ajoute un agent dissociant, tel qu'une solution d'acide citrique jusqu'à abaissement du pH à environ 6, en ce que l'on chauffe la culture à une température comprise entre 40 et 60iC et en ce que l'on maintient cette température pendant 15 à 60 minutes.
9. Fraction antigénique obtenue par le procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes.
10. Fraction antigénique, caractérisée en ce qu'elle est constituée par un complexe particulaire de lipopolysaccharide de V. cholerae de caractère smooth et de protéines de membrane externe.
11. Fraction antigénique selon l'une des revendications 9 et 10, caractérisée en ce qu'elle comporte un complexe de lipopolysaccharide de V. cholerae de caractère lisse et de protéines de membrane externe qui se présente sous la forme de vésicules de diamètre compris entre 20 et 100 nm.
12. Fraction antigénique selon l'une quelconque des revendications 9 à 1t, caractérisée en ce que,
- lorsque le complexe est soumis à une électrophorèse en gel de polyacrylamide en milieu dissociant les protéines du complexe, celle-ci permet de mettre en évidence une série de polypeptides de poids moléculaire compris entre 25000 et 75000 daltons,
- lorsqu'elle est administrée par voie orale à l'animal, elle provoque l'apparition dans le sérum d'un titre élevé en anticorps vibriocides, elle protège contre l'infection expérimentale dans le test de l'anse ligaturée, elle inhibe l'adhérence des V. cholerae sur la paroi intis tinale, elle inhibe la colonisation de l'intestin par les V.
- lorsqu'elle est chauffée à une température de l'ordre de 100-C pendant une durée de l'ordre de 30 minutes, elle perd ses propriétés vaccinantes.
- lorsqu'elle est administrée à la souris par voie parentérale, elle protège celle-ci contre l'infection mortelle par le V. cholerae,
cholerae, elle provoque la sécrétion intestinale d'immunoglobulines spécifiques,
13. Fraction antigénique selon l'une quelconque des revendications 9 à 12, caractérisée en ce qu'elle est lyophilisée en présence d'adjuvant de lyophilisation, tel que le mannitol.
14. Application de la fraction antigénique définie dans l'une des revendications 9 à 13 à la préparation d'un vaccin cholérique oral.
15. Vaccin cholérique oral, caractérisé en ce qu'il contient, comme principe actif, un complexe de lipopolysaccharide de V. cholerae de caractère lisse et de protéines de membrane.
16. Vaccin cholérique oral selon la revendication 15, caractérisé en ce qu'il est constitué de la fraction de surnageant de culture possédant un poids moléculaire supérieur à 100 000.
17. Vaccin selon l'une quelconque des revendications 15 et 16, caractérisé en ce qu'il se présente sous la forme d'un comprimé.
18. Vaccin selon l'une quelconque des revendications 15 et 16, caractérisé en ce qu'il se présente sous la forme de microgranules, recouverts d'une pellicule gastro-résistante et qui peuvent être distribués en gélules.
Priority Applications (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| FR8606836A FR2598621B1 (fr) | 1986-05-13 | 1986-05-13 | Nouvelle fraction antigenique obtenue par liberation dans un milieu de culture de vibrions choleriques, procede de preparation d'une telle fraction et son application a la preparation d'un vaccin cholerique oral |
| PCT/FR1987/000152 WO1987006839A1 (fr) | 1986-05-13 | 1987-05-07 | Fraction antigenique de milieu de culture de vibrions choleriques et vaccin |
| IN423/CAL/87A IN165945B (fr) | 1986-05-13 | 1987-05-27 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| FR8606836A FR2598621B1 (fr) | 1986-05-13 | 1986-05-13 | Nouvelle fraction antigenique obtenue par liberation dans un milieu de culture de vibrions choleriques, procede de preparation d'une telle fraction et son application a la preparation d'un vaccin cholerique oral |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| FR2598621A1 true FR2598621A1 (fr) | 1987-11-20 |
| FR2598621B1 FR2598621B1 (fr) | 1988-09-16 |
Family
ID=9335161
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| FR8606836A Expired FR2598621B1 (fr) | 1986-05-13 | 1986-05-13 | Nouvelle fraction antigenique obtenue par liberation dans un milieu de culture de vibrions choleriques, procede de preparation d'une telle fraction et son application a la preparation d'un vaccin cholerique oral |
Country Status (3)
| Country | Link |
|---|---|
| FR (1) | FR2598621B1 (fr) |
| IN (1) | IN165945B (fr) |
| WO (1) | WO1987006839A1 (fr) |
Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| FR2388049A2 (fr) * | 1977-04-22 | 1978-11-17 | Anvar | Procede de preparation de fractions antigeniques vaccinantes |
Family Cites Families (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| FR2527445A1 (fr) * | 1982-05-26 | 1983-12-02 | Centre Nat Rech Scient | Medicaments contenant au moins une sequence de la sous-unite b1 de la toxine cholerique |
-
1986
- 1986-05-13 FR FR8606836A patent/FR2598621B1/fr not_active Expired
-
1987
- 1987-05-07 WO PCT/FR1987/000152 patent/WO1987006839A1/fr not_active Ceased
- 1987-05-27 IN IN423/CAL/87A patent/IN165945B/en unknown
Patent Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| FR2388049A2 (fr) * | 1977-04-22 | 1978-11-17 | Anvar | Procede de preparation de fractions antigeniques vaccinantes |
Non-Patent Citations (6)
| Title |
|---|
| CHEMICAL ABSTRACTS, vol. 100, no. 1, 2e janvier 1984, page 391, no. 4487v, Columbus, Ohio, US; Y.KOMAGATA et al.: "Isolation of protective substances from Vibrio cholerae" & TOKYO JOSHI IKA DAIGAKU ZASSHI 1983, 53(8), 770-7 * |
| CHEMICAL ABSTRACTS, vol. 103, no. 7, 19 août 1985, page 440, no. 52465v, Columbus, Ohio, US; C.V.SCIORTINO et al.: "Monoclonal antibodies to outer membrane antigens of Vibrio cholerae" & INFECT. IMMUN. 1985, 49(1), 122-31 * |
| CHEMICAL ABSTRACTS, vol. 75, no. 5, 2e août 1971, page 293, no. 33342q, Columbus, Ohio, US; J.HOLMGREN et al.: "Immunochemcial studies of two cholera toxin-containing standard culture filtrate preparations of Vibrio cholerae" & INFEC. IMMUNITY 1971, 3(6), 747-55 * |
| INFECTION AND IMMUNITY, vol. 13, no. 3, mars 1976, pages 735-740, American Society for Microbiology; A.-M.SVENNERHOLM et al.: "Synergistic protective effect in rabbits of immunization with Vibrio cholerae lipopolysaccharide and toxin/toxoid" * |
| LANCET, no. 8440, juin 1985, pages 1276-1277, Londres, GB; H.CHAMPSAUR et al.: "Induction of Vibrio cholerae specific billiary antibodies after oral immunisation with a cholera cell-wall fraction" * |
| NATURE, vol. 292, no. 5822, 30 juillet-août 1981, pages 413-417, Macmillan Journals Ltd., Chesham, Bucks, GB; J.HOLMGREN: "Actions of cholera toxin and the prevention and treatment of cholera" * |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| IN165945B (fr) | 1990-02-17 |
| FR2598621B1 (fr) | 1988-09-16 |
| WO1987006839A1 (fr) | 1987-11-19 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| JP3860208B2 (ja) | 非毒性口内アジュバントとして有効な突然変異エンテロトキシン | |
| EP0088303B1 (fr) | Procédé de préparation de complexes polysaccharide-protéine de capsules bactériennes, produits obtenus et compositions immunogènes les contenant | |
| FI112032B (fi) | Menetelmä ureaasipohjaisen rokotteen valmistamiseksi Helicobacter-infektiota vastaan | |
| FI111336B (fi) | Menetelmä Staphylococcus epidermidis tyyppi I:n polysakkaridiantigeenin sisältävän rokotteen ja antigeeninvastaisen hyperimmunoglobuliinin valmistamiseksi | |
| JP2911603B2 (ja) | 新規な弱毒化シュードモナス・エルギノーザ株 | |
| EP0560968B1 (fr) | Vaccin contre les infections a neisseria meningitidis | |
| EA015833B1 (ru) | Иммуногенная композиция | |
| BE1024284B1 (fr) | Compositions immunogenes | |
| US5455032A (en) | Use of phosphocholine hapten conjugates in vaccines | |
| CN102238960B (zh) | 制造疫苗的方法 | |
| JPH0467953B2 (fr) | ||
| JP3169608B2 (ja) | ヒトにおいてエンテロトキシン産生大腸菌により起こる腸感染症/下痢に対して接種するためのホルマリン殺菌したコロニー形成因子抗原(cfa)−発現性大腸菌の調製および使用 | |
| FR2798291A1 (fr) | Compositions acellulaires immunogenes et compositions acellulaires vaccinales contre bacillus anthracis | |
| FR2590172A1 (fr) | Nouvel antigene commun (psc-a) de pseudomonas aeruginosa protegeant contre l'infection provoquee par cet organisme | |
| KR20100040847A (ko) | 장독소생산 Escherichia Coli 세균의 콜로니화 인자(CF) 항원의 발현을 위한 혼성 오페론 | |
| FR2466251A1 (fr) | Vaccin animal anticolibacillaire, obtention et application | |
| US20090081166A1 (en) | Colonization factor (CF) antigens of enterotoxigenic escherichia coli in recombinant bacteria | |
| BE1000743A3 (fr) | Anticorps monoclonaux contre les flagelles de pseudomonas aeruginosa. | |
| EP0787796B1 (fr) | Epitopes protecteurs de l'adényl cyclase-hémolysine (AC-Hly). leur application au traitement ou à la prévention des infections par Bordetella | |
| WO1992019720A1 (fr) | Souches recombinantes immunogenes de b. anthracis - compositions immunogenes les contenant | |
| FR2728170A1 (fr) | Vaccin de type acellulaire anti-bordetella | |
| FR2598621A1 (fr) | Nouvelle fraction antigenique obtenue par liberation dans un milieu de culture de vibrions choleriques, procede de preparation d'une telle fraction et son application a la preparation d'un vaccin cholerique oral | |
| RU2185191C1 (ru) | Способ получения антигенного препарата haemophilus influenzae типа b (hib) | |
| BE1001844A4 (fr) | Anticorps monoclonal humain contre pseudomonas aeruginosa, sa production et son application. | |
| EP1158993B1 (fr) | Fractions membranaires bacteriennes a effet adjuvant |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| ST | Notification of lapse |