JP2014196346A - 感染を処置するためのゲルソリンの使用 - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、感染および敗血症を処置するためのゲルソリンの使用、ならびに感染の処置をモニタリングし、そして評価するためのゲルソリンの使用に関する。本発明はまた、インターロイキンの発現を上方制御する方法および炎症誘発性サイトカインの発現を下方制御するための方法を提供する。
診断および治療の顕著な進歩にもかかわらず、感染および敗血症は、世界中で、罹患率および死亡率の主要な原因であり続ける。積極的な管理と同じくして、重篤な感染を有する多くの患者は、合併症を発症し、そして一部の患者は死亡する。敗血症は、米国において毎年200,000人超の命を奪う(非特許文献1)。激しい炎症応答は、他の生化学的な異常に加えて、炎症誘発性サイトカインの著しく増加した血漿レベルを伴う敗血症の初期段階に付随して起こる(非特許文献2)。多くの協調した研究は、敗血症に対する薬学的処置の開発を期待して、特定の炎症性メディエーターの阻害における試みを行った。それにもかかわらず、活性化プロテインC(APC)は、重篤な敗血症の死亡率を減少させることが証明された唯一の薬物であり、これは、死亡を絶対的に6%減少させる(非特許文献3)。
感染および敗血症の、健康に対する負の影響は、新規の処置ならびに感染および敗血症の治療を評価する改良された検査およびアプローチを同定する強い動機を提供する。
本発明は、ゲルソリンが感染を処置し、そして感染の毒性の発現に対して保護するという驚くべき知見に基づく。本発明者らは、感染性の因子に対する曝露後にゲルソリンを注射したマウスが、生理食塩水を与えたマウスより、予想外に、良好に生存したことを見出した。したがって、本発明は、1つの局面において、感染を処置するための、被験体に対するゲルソリンの投与に関連する。本発明はまた、感染の生物学的影響を処置するためにゲルソリンを使用する方法に関する。
の発現は、コントロールに対して少なくとも約2倍増加する。一般に、コントロールにおけるILの発現レベルは、ゲルソリンと接触させないが、それ以外はゲルソリンと接触させた細胞と同様に処理された細胞における発現のレベルである。いくつかの実施形態において、このILの発現は、コントロールに対して、少なくとも約3倍、5倍、10倍、50倍、100倍、200倍、500倍、または1000倍増加する。ILのレベルを測定する方法は、当業者に公知である。
例えば、本発明は以下の項目を提供する。
(項目1)
感染を有するかまたは感染を発症するリスクがある被験体を処置するための方法であって、
このような処置を必要とする被験体に、該感染を処置するのに有効な量でゲルソリンを投与する工程であって、該感染が、グラム陽性菌、抗酸菌、グラム陽性菌、抗酸菌、スピロヘータ、放線菌、ウイルス、真菌、寄生生物、Ureoplasma種、Mycoplasma種、Chlamydia種、およびPneumocystis種によって引き起こされる、工程
を包含する、方法。
(項目2)
前記被験体が、他にゲルソリンによる処置を必要とする徴候を有さない、項目1に記載の方法。
(項目3)
前記ゲルソリンが、血漿ゲルソリン(pGSN)である、項目1に記載の方法。
(項目4)
前記グラム陽性菌が、Pasteurella種、Staphylococcus種、Streptococcus種、Bacillus anthracis、Corynebacterium種、Diphtheroids種、Listeria種、Erysipelothrix種、およびClostridium種からなる群より選択される、項目1に記載の方法。
(項目5)
前記抗酸菌が、Mycobaterium種である、項目1に記載の方法。
(項目6)
前記スピロヘータが、Treponema種、Borrelia種、およびLeptospira種からなる群より選択される、項目1に記載の方法。
(項目7)
前記ウイルスが、レトロウイルス、ヒト免疫不全ウイルス、サイトメガロウイルス、ピコルナウイルス、ポリオウイルス、A型肝炎ウイルス、エンテロウイルス、コサッキーウイルス、ライノウイルス、エコーウイルス、カリシウイルス、トガウイルス、馬脳炎ウイルス、風疹ウイルス、フラビウイルス、デング熱ウイルス、脳炎ウイルス、黄熱ウイルス、コロナウイルス、ラブドウイルス、水疱性口内炎ウイルス、狂犬病ウイルス、フィロウイルス、エボラウイルス、パラミクソウイルス、パラインフルエンザウイルス、流行性耳下腺炎ウイルス、麻疹ウイルス、RSウイルス、オルトミクソウイルス、インフルエンザウイルス、ハンターンウイルス、ブニヤウイルス、フレボウイルス、ナイロウイルス、アレナウイルス、出血熱ウイルス、レオウイルス、オルビウイルス、ロタウイルス、ビルナウイルス、ヘパドナウイルス、B型肝炎ウイルス、パルボウイルス、パポバウイルス、パピローマウイルス、ポリオーマウイルス、アデノウイルス、ヘルペスウイルス、水痘−帯状疱疹ウイルス、ポックスウイルス、痘瘡ウイルス、ワクシニアウイルス、イリドウイルス、アフリカ豚コレラウイルス、D型肝炎ウイルス、非A非B型肝炎ウイルス、C型肝炎ウイルス、ノーウォークウイルス、アストロウイルス、および分類されていないウイルスからなる群より選択される、項目1に記載の方法。
(項目8)
前記真菌が、Cryptococcus種、Histoplasma種、Coccidioides種、Paracoccidioides種、Blastomyces種、Chlamydia種、Candida種、Sporothrix種、Aspergillus種、およびムコール症の真菌、からなる群より選択される、項目1に記載の方法。
(項目9)
前記寄生生物が、Plasmodium種、Toxoplasma種、Babesia種、Leishmania種、およびTrypanosoma種からなる群より選択される、項目1に記載の方法。
(項目10)
前記ゲルソリンが、経口投与、舌下投与、口腔投与、鼻腔内投与、静脈内投与、筋肉内投与、鞘内投与、腹腔内投与、皮下投与、皮内投与、局所投与、直腸投与、経膣投与、滑液包内投与または硝子体内投与される、項目1に記載の方法。
(項目11)
前記ゲルソリンが、前記感染に対する前記被験体の曝露後に投与される、項目1に記載の方法。
(項目12)
前記ゲルソリンが、前記感染に対する前記被験体の曝露前に投与される、項目1に記載の方法。
(項目13)
グラム陰性菌の感染を有するか、またはグラム陰性菌の感染を発症するリスクがある被験体を処置するための方法であって、
このような処置を必要とする被験体に、該グラム陰性菌の感染を処置するのに有効な量のゲルソリンを、該感染に対する曝露後に一度に投与する工程
を包含する、方法。
(項目14)
前記グラム陰性菌の感染が、Neisseria種、Branhamella種、Escherichia種、Enterobacter種、Proteus種、Pseudomonas種、Klebsiella種、Salmonella種、Shigella種、Serratia種、Acinetobacter種、Haemophilus種、Brucella種、Yersinia種、Francisella種、Pasturella種、Vibrio cholera種、Flavobacterium種、Pseudomonas種、Campylobacter種、Bacteroides種、Fusobacterium種、Calymmatobacterium種、Streptobacillus種、およびLegionella種によって引き起こされる、項目13に記載の方法。
(項目15)
前記被験体が、他にゲルソリンによる処置を必要とする徴候を有さない、項目13に記載の方法。
(項目16)
前記ゲルソリンが、血漿ゲルソリン(pGSN)である、項目13に記載の方法。
(項目17)
前記ゲルソリンが、経口投与、舌下投与、口腔投与、鼻腔内投与、静脈内投与、筋肉内投与、鞘内投与、腹腔内投与、皮下投与、皮内投与、局所投与、直腸投与、経膣投与、滑液包内投与または硝子体内投与される、項目13に記載の方法。
(項目18)
被験体においてリポ多糖エンドトキシン(LPS)の影響を処置するか、または防止する方法であって、
有効量のゲルソリンを、LPS曝露後に一度に該被験体に投与して、該被験体をLPSの影響に対して保護する工程
を包含する、方法。
(項目19)
前記被験体が、他にゲルソリンによる処置を必要とする徴候を有さない、項目18に記載の方法。
(項目20)
リポ多糖エンドトキシン(LPS)に曝された被験体においてグラム陰性菌の敗血症性ショックを処置するか、または防止する方法であって、
該被験体において該グラム陰性菌の敗血症性ショックを処置するのに有効な量で、ゲルソリンを該被験体に投与する工程
を包含する、方法。
(項目21)
前記被験体が、他にゲルソリンによる処置を必要とする徴候を有さない、項目20に記載の方法。
(項目22)
前記ゲルソリンが、血漿ゲルソリン(pGSN)である、項目20に記載の方法。
(項目23)
被験体においてインターロイキン(IL)の発現を上方制御するための方法であって、
インターロイキン(IL)の発現を上方制御するのに有効な量で、ゲルソリンを該被験体に投与する工程
を包含する、方法。
(項目24)
前記ILがIL−10である、項目23に記載の方法。
(項目25)
前記被験体が、他にゲルソリンによる処置を必要とする徴候を有さない、項目23に記載の方法。
(項目26)
前記ゲルソリンが、血漿ゲルソリン(pGSN)である、項目23に記載の方法。
(項目27)
インビトロでインターロイキン(IL)の発現を上方制御するための方法であって、
ILを発現し得る細胞と、該細胞中でインターロイキン(IL)の発現を上方制御するのに有効な量のゲルソリンとを接触させる工程
を包含する、方法。
(項目28)
前記ILが、IL−10である、項目27に記載の方法。
(項目29)
被験体が、他にゲルソリンによる処置を必要とする徴候を有さない、項目27に記載の方法。
(項目30)
前記ゲルソリンが、血漿ゲルソリン(pGSN)である、項目27に記載の方法。
(項目31)
被験体において炎症誘発性サイトカインの発現を下方制御するための方法であって、
該被験体において炎症誘発性サイトカインの発現を下方制御するのに有効な量で、該被験体にゲルソリンを投与する工程
を包含する、方法。
(項目32)
前記被験体が、他にゲルソリンによる処置を必要とする徴候を有さない、項目31に記載の方法。
(項目33)
前記ゲルソリンが、血漿ゲルソリン(pGSN)である、項目31に記載の方法。
(項目34)
前記炎症誘発性サイトカインが、IL−1βである、項目31に記載の方法。
(項目35)
前記炎症誘発性サイトカインが、IFN−αである、項目31に記載の方法。
(項目36)
インビトロで炎症誘発性サイトカインの発現を下方制御するための方法であって、以下
炎症誘発性サイトカインを発現し得る細胞と、該細胞において炎症誘発性サイトカインの発現を下方制御するのに有効な量のゲルソリンとを接触させる工程、
を包含する、方法。
(項目37)
前記炎症誘発性サイトカインが、IL−1βである、項目36に記載の方法。
(項目38)
前記炎症誘発性サイトカインが、IFN−αである、項目36に記載の方法。
(項目39)
被験体が、他にゲルソリンによる処置を必要とする徴候を有さない、項目36に記載の方法。
(項目40)
前記ゲルソリンが、血漿ゲルソリン(pGSN)である、項目36に記載の方法。
(項目41)
被験体を処置して、感染のリスクを減少させるための方法であって、
被験体を、該被験体が正常より低いゲルソリンのレベルを有すると分かっていることに基づいて選択する工程;および
該被験体の感染を発症するリスクを減少させるのに有効な量で、該被験体および/または抗感染因子にゲルソリンを施す工程
を包含する、方法。
(項目42)
前記被験体が、他にゲルソリンによる処置を必要とする徴候を有さない、項目41に記載の方法。
(項目43)
前記ゲルソリンが、血漿ゲルソリン(pGSN)である、項目41に記載の方法。
(項目44)
前記被験体が、見かけ上健康である、項目41に記載の方法。
(項目45)
前記感染が、細菌、ウイルス、真菌、または寄生生物によって引き起こされる、項目41に記載の方法。
(項目46)
前記抗感染因子が、抗細菌因子、抗ウイルス因子、抗真菌因子、または抗寄生生物因子である、項目41に記載の方法。
(項目47)
被験体において感染のリスクを処置するか、または減少させるための治療の有効性を評価するための方法であって、
(i)感染のリスクを処置するか、または減少させる因子を用いる治療を受ける被験体において、ゲルソリンのレベルを得る工程;
(ii)工程(i)において得られたゲルソリンの該レベルと、見かけ上健康なコントロール集団におけるゲルソリンのレベルに対応する所定の値とを比較する工程;および
(iii)工程(i)におけるゲルソリンの該レベルが所定のレベルを上回るか否かを決定する工程であって、該決定は、該治療が有効であるか否かを示す、工程
を包含する、方法。
(項目48)
工程(i)および工程(ii)が、前記被験体のゲルソリンのレベルを長期間にわたってモニタリングするために繰り返される、項目47に記載の方法。
(項目49)
前記所定の値が、血漿1Lあたり約2.4μM以下である、項目47に記載の方法。
(項目50)
前記感染が、細菌、ウイルス、真菌、または寄生生物によって引き起こされる、項目47に記載の方法。
(項目51)
前記抗感染因子が、抗細菌因子、抗ウイルス因子、抗真菌因子、または抗寄生生物因子である、項目47に記載の方法。
(項目52)
被験体において治療の経過を判定するための方法であって、
(i)感染のリスクを処置するか、または減少させる因子を用いる治療を受ける被験体において、ゲルソリンのレベルを得る工程;
(ii)工程(i)において得られたゲルソリンの該レベルと、見かけ上健康なコントロール集団におけるゲルソリンのレベルに対応する所定の値とを比較する工程;
(iii)工程(i)において得られたゲルソリンの該レベルが該所定のレベルを下回るか否かを決定する工程;および
(iv)このような決定に基づいて該治療の経過を判定する工程
を包含する、方法。
(項目53)
工程(i)が、前記被験体のゲルソリンのレベルを長期間にわたってモニタリングするために繰り返される、項目52に記載の方法。
(項目54)
前記所定の値が、血漿1Lあたり約2.4μM以下である、項目52に記載の方法。
(項目55)
減少したレベルのゲルソリンによって被験体を処置するための方法であって、
(i)感染のリスクを処置するか、または減少させるための第1の治療によって該被験体を処置する工程;
(ii)該被験体においてゲルソリンのレベルを得る工程;
(iii)工程(ii)において得られたゲルソリンの該レベルと、見かけ上健康なコントロール集団におけるゲルソリンの所定のレベルに対応する所定の値とを比較する工程、
を包含し、そしてゲルソリンの該所定のレベルが、達成されない場合、
(iv)感染のリスクを処置するか、または減少させるための第2の治療によって該被験体を処置し、そしてゲルソリンの該所定のレベルが達成されるまで工程(ii)および工程(iii)を繰り返す工程
を包含する、方法。
(項目56)
前記所定の値が、血漿1Lあたり約2.4μM以上である、項目55に記載の方法。
(項目57)
さらなる感染を発症する被験体のリスクプロフィールを特徴付けるための方法であって、
該被験体においてゲルソリンのレベルを得る工程;
ゲルソリンの該レベルと所定の値とを比較する工程;および
該所定の値と比較したゲルソリンの該レベルに基づいて、感染を発症する該被験体のリスクプロフィールを特徴付ける工程であって、ここで該所定のレベルを下回るゲルソリンのレベルは、該被験体が感染を発症する高いリスクにあることを示し、そして該所定のレベルを上回るゲルソリンのレベルは、該被験体が感染を発症する高いリスクにないこと示す、工程
を包含する、方法。
(項目58)
前記所定の値が、血漿1Lあたり約2.4μM以下である、項目57に記載の方法。
(項目59)
前記被験体が、見かけ上健康な被験体である、項目57に記載の方法。
本発明は、部分的に、ゲルソリンの投与が感染から被験体を保護するという知見に基づく。したがって、本発明は、いくつかの局面において、被験体における感染の処置のために、その被験体にゲルソリンを投与する工程を包含する。本発明者らは、リポ多糖エンドトキシン(LPS)(グラム陰性菌の感染の発現の多くを担うことが公知である、グラム陰性菌の細胞壁成分)の毒性効果と拮抗することを見出した。
ducreyiを含むHaemophilus種、Brucella種、Yersinia pestisおよびYersinia enterocoliticaを含むYersinia種、Francisella tularensisを含むFrancisella種、Pasteurella multocidaを含むPasturella種、Vibrio cholerae、Flavobacterium種(Flavobacterium meningosepticum)、Campylobacter jejuniを含むCampylobacter種、Bacteroides fragilisを含むBacteroides種(口、咽頭)、Fusobacterium nucleatumを含むFusobacterium種、Calymmatobacterium granulomatis、Streptobacillus moniliformisを含むStreptobacillus種、Legionella pneumophilaを含むLegionella種。
brasiliensisを含むParacoccidioides種、Blastomyces dermatitidisを含むBlastomyces種、Chlamydia trachomatisを含むChlamydia種、Candida albicansを含むCandida種、Sporothrix schenckiiを含むSporothrix種、Aspergillus種、およびムコール症の真菌。
divergensを含むBabesia種、Leishmania tropicaを含むLeishmania種、Leishmania種(Leishmania braziliensis、Leishmania donovani)、Trypanosoma gambiense、Trypanosoma rhodesiense(アフリカ睡眠病)、およびTrypanosoma cruzi(シャーガス病)を含むTrypanosoma種が挙げられる。
Hydrochloride)、モネンシン、モネンシンナトリウム、塩酸モキシフロキサシン、ナフシリンナトリウム、ナリジクス酸ナトリウム、ナリジクス酸、ナタマイシン、ネブラマイシン、パルミチン酸ネオマイシン、硫酸ネオマイシン、ウンデシレン酸ネオマイシン、硫酸ネチルマイシン、ネチルマイシン、ニフラデン、ニフラルデゾン、ニフラテル、ニフラトロン、ニフルダジル、ニフリミド、ニフルピリノール、ニフルキナゾール、ニフルチアゾール、ニトロサイクリン(Nitrocycline)、ニトロフラントイン、ニトロミド、ノルフロキサシン、ノボビオシンナトリウム、オフロキサシン、オルメトプリム、オキサシリンナトリウム、オキシモナム、オキシモナムナトリウム、オキソリン酸、オキシテトラサイクリン、オキシテトラサイクリンカルシウム、塩酸オキシテトラサイク、Paldimycin、パラクロロフェノール、パウロマイシン(Paulomycin)、ペフロキサシン、メシル酸ペフロキサシン、ペナメシリン(Penamecillin)、ベンザチンペニシリンG、ペニシリンGカリウム、プロカインペニシリンG、ペニシリンGナトリウム、ペニシリンV、ベンザチンペニシリンV、ヒドラバミンペニシリンV、ペニシリンVカリウム、ペンチジドンナトリウム、アミノサリチル酸フェニル、ピペラシリン、ピペラシリンナトリウム、ピルベニシリン(Pirbenicillin)ナトリウム、ピリジシリン(Piridicillin)ナトリウム、塩酸ピルリマイシン、塩酸ピバンピシリン、パモ酸ピバンピシリン、ピバンピシリンプロベネート(Pivampicillin Probenate)、硫酸ポリミキシンB、ポルフィロマイシン、プロピカシン(Propikacin)、ピラジンアミド、ピリチオン亜鉛、酢酸キンデカミン、キヌプリスチン、ラセフェニコール(Racephenicol)、ラモプラニン、ラニマイシン(Ranimycin)、レロマイシン、レプロマイシン(Repromicin)、リファブチン、リファメタン(Rifametane)、リファメキシル(Rifamexil)、リファミド(Rifamide)、リファンピン、リファペンチン、リファミキシン、ロリテトラサイクリン、硝酸ロリテトラサイクリン、ロサラマイシン(Rosaramicin)、酪酸ロサラマイシン、プロピオン酸ロサラマイシン、リン酸ロサラマイシンナトリウム、ステアリン酸ロサラマイシン、ロソキサシン、ロキサルソン、ロキシスロマイシン、サンサイクリン(Sancycline)、サンフェトリネムナトリウム(Sanfetrinem Sodium)、サルモキシシリン(Sarmoxicillin)、サルピシリン(Sarpicillin)、スコパフンギン(Scopafungin)、シソマイシン、硫酸シソマイシン、スパフロキサシン、塩酸スペクチノマイシン、スピラマイシン、塩酸スタルリマイシン(Stallimycin Hydrochloride)、ステフィマイシン(Steffimycin)、滅菌チカルシリン二ナトリウム、硫酸ストレプトマシン、ストレプトニコジド(Streptonicozid)、スルバクタムナトリウム、スルファベンズ、スルファベンザミド、スルファセタミド、スルファセタミドナトリウム、スルファシチン、スルファジアジン、スルファジアジンナトリウム、スルファドキシン、スルファレン、スルファメラジン、スルファメータ、スルファメタジン、スルファメチゾール、スルファメトキサゾール、スルファモノメトキシン、スルファモキソール、スルファニル酸亜鉛(Sulfanilate Zinc)、スルファニトラン、スルファサラジン、スルファソミゾール、スルファチアゾール、スルファザメット(Sulfazamet)、スルフイソキサゾール、スルフイソキサゾールアセチル、スルフイソキサゾールジオラミン、スルホミキシン、スロペネム、スルタミシリン、サンシリンナトリウム(Suncillin Sodium)、塩酸タランピシリン、タゾバクタム、テイコプラニン、塩酸テマフロキサシン、テモシリン、テトラサイクリン、塩酸テトラサイクリン、リン酸テトラサイクリン錯体、テトロキソプリム、チアンフェニコール、チフェンシリンカリウム、チカルシリンクレジルナトリウム、チカルシリン二ナトリウム、チカルシリン一ナトリウム、チクラトン、塩化チオドニウム、トブラマイシン、硫酸トブラマイシン、トスフロキサシン、トリメトプリム、硫酸トリメトプリム、トリスルファピリミジン(Trisulfapyrimidine)、トロレアンドマイシン、硫酸トロレアンドマイシン、トロバフロキサシン、チロスリシン、バンコマイシン、塩酸バンコマイシン、バージニアマイシン、ゾルバマイシン(Zorbamycin)。
ザルシタビン;ジドブジン;およびジンビロキシム。
(動物)
野生型C57BL/6雄マウスを、Charles River Laboratories(Wilmington、MA)から購入した。toll様レセプター4(TLR4)変異C3H/HeJ雄マウスを、Jackson Laboratory(Bar Harbor、ME)から購入した。マウスを、標準的な食餌および水を自由に得られるようにし、そして本明細書に記載される全ての手順および研究は、The Guide for the Care and Use of Laboratory Animalsに示されるような基準に従い、Harvard Medical Area Standing Committee on Animalsによって承認された。
18〜20gの体重である6〜8週齢の雄C57BL/6マウスに、100μlのリン酸緩衝生理食塩水(PBS)中のLPS(Pseudomonas aeruginosa血清型10、Sigma(St.Louis、MO)製)を、0mg/kg、10mg/kg、20mg/kg、および40mg/kgの用量で腹腔内(i.p.)に注射した。3〜4を各群において使用した。LPS投与の24時間後、動物を、0.015〜0.017mg/gのAvertin(Fluka Chemie、Buchs、Switzerland)のi.p.によって麻酔した。次いで、血液を、後眼窩の出血によって、0.1容量のAster−Jandl抗凝血溶液(Gamulescu,M.A.、Seifert,K.、Tingart,M.、Falet,H.およびHoffmeister,K.M.、(2003)、Platelets 14、211−7)中に回収し、そして1000×gで10分間遠心分離して、血漿を生成した。血漿を、液体窒素で凍結し、そして−80℃に保存した。
8〜10週齢の雄C57BL/6マウスを、最初にi.p.の0.015〜0.017mg/gのAvertinによって麻酔した。それぞれの麻酔した動物の盲腸を、前腹部の下部における小切開によって曝し、そして19ゲージの針で穿刺した。少量の腸の内容物を押し出し、そして盲腸を、6−0絹縫合糸によって腸管を塞がずに結紮した。これらの腸の内容物の置換の後、腹部を、4−0絹縫合糸で閉じた。pGSNレベルの研究のために、5匹の動物は、外科手術後に、1mlのPBSを皮下に即座に受容した。CLPを受けなかった5匹の動物は、コントロールとして機能した。動物を、食餌および水を自由に得られるようにして回復させた。CLPの24時間後、次いで動物を麻酔し、そして血漿を、これまでに記載したように回収した。さらに、心臓、肺、肝臓、腎臓および後肢からの骨格筋を、各動物から収集し、そして−80℃に凍結した。肺を、最初に右心室を穿刺し、そして左心室に1mlのPBSを注射することによる灌流後に収集した。死亡率の研究のために、20匹の動物をCLPに供し、そして10匹の動物は、1)150mMのNaCl(生理食塩水)または2)生理食塩水中の0.4mMのCaを伴う8mg/mlの組換えヒトpGSN(Biogen、Boston、MA)による1mlの皮下(s.c.)注射を、即時、およびCLPの24時間後に受容した。
18〜20gの体重である6〜8週齢の雄C57BL/6マウスに、25mg/kgのLPS(Escherichia coli 055:B5、St.Louis、Sigma)をi.p.に注射し、そしてこれらのマウスを分割して、1)pGSN:生理食塩水中の1mMのCaを伴う20mg/mlの組換えヒトpGSN(8匹の動物)、2)BSA:生理食塩水中の1mMのCaを伴う20mg/mlのウシ血清アルブミン(Serologicals、Norcross、GA)(9匹の動物)、または3)生理食塩水:滅菌生理食塩水のみ(9匹の動物)の、400μlの背部皮下注射を、即座ならびにLPS注射の24時間後、48時間後、および72時間後に受容させた。これらの動物を、頻繁にモニタリングし、そして死亡率を7日間記録した。生き残ったマウスを、安楽死させた。別の実験において、マウスは、同じLPSチャレンジを受容し、そしてこれらのマウスを分割して、pGSNまたは生理食塩水の処置を受容させ、そしてLPSチャレンジの6時間後(1つの処置群あたり5匹のマウス)および24時間後(1つの処置群あたり4匹のマウス)に、血漿および器官の回収に供した。さらに、LPSチャレンジを伴わないコントロールのマウスに、血液および器官の収集に供する24時間前にs.c.で生理食塩水(5匹のマウス)またはpGSN(3匹のマウス)のみを与えた。血漿および器官を、記載されるように各マウスから回収した。
19〜20gの体重である6〜8週齢の雄C3H/Hejマウスに、25mg/kgのE.coliのLPS(4匹のマウス)をi.p.に注射し、そしてチャレンジしなかったマウスは、コントロール(4匹のマウス)として機能した。LPSチャレンジの24時間後、血漿サンプルを上に記載されるように麻酔したマウスから回収した。ゲルソリンレベルを、各血漿サンプルにおいて測定した。
血漿のサイトカイン(GM−CSF、INF−γ、IL−1β、IL−6、IL−10、およびTNF−α)を、ELISAアッセイ(LINCO Research、St.Charles、MO)を使用して測定した。このアッセイのより低い範囲は、各サイトカインについて3.2pg/ml以下であり、そして3.2pg/ml以下のレベルに、0の値を割り当てた。
血漿ゲルソリンを、そのアクチン核形成を刺激する能力(Janmey,P.A.、Chaponnier,C.、Lind,S.E.、Zaner,K.S.、Stossel,T.P.およびYin,H.L.、(1985)、Biochemistry 24、3714−23)によって二つ組で測定した。マウスの血漿を、0.1MのKCl、0.2mMのMgC12、1mMのEGTA、0.5mMのATP、0.5mMのβ−メルカプトエタノール、10mMのTris−HCl緩衝液(pH7.4)(緩衝液B)中に1:5で希釈した。この希釈した血漿サンプルの5μlを、6×50mmのホウケイ酸培養チューブ中の、1.5mMのCaCl4および0.4μMのPhallacidinを補充した280μlの緩衝液Bに添加した。このアクチン重合反応を、0.5mMのATP、5mMのβ−メルカプトエタノール、0.2mMのCaCl2、0.2mMのTris−HCl緩衝液(pH7.4)(緩衝液A)中の15μlの20μMのピレン標識アクチン(pyrene actin)に添加することによって開始した。重合を、それぞれ366nmおよび386nmの励起波長および放出波長にて、分光蛍光光度計で200秒間モニタリングした。ゲルソリン濃度を、組換えヒトpGSNを使用した検量線から推定した。これらのアッセイのために、KouyamaおよびMihashiの方法(Kouyama,T.およびMihashi,K.、(1981)、Eur J Biochem 114、33−8)によって調製したストックのピレン標識アクチンを、解凍され、そして緩衝液Aで10倍に希釈され、一晩静置した後に250,000×gで30分間遠心分離されるロットで−80℃に保存した。
E.coliのLPS、またはCLPを25mg/kgでi.p.にチャレンジした6時間後に回収した器官を、分析した。チャレンジしなかったマウスから得た器官は、コントロールとして機能した。各器官を、1:100の濃度でタンパク質インヒビターのカクテル(Calbiochem、La Jolla、CA)を補充し、そしてバナジン酸ナトリウムを補充したRIPA緩衝液(Boston Bioproducts、Ashland、MA)中でホモジナイズし、そして4℃にて2,000×gで30分間遠心分離する前に氷上で30分間インキュベートした。この上清を、取り出し、そして再び4℃にて10,000×gで30分間遠心分離した。この上清を、取り出し、そして分析まで−80℃に保った。
タンパク質濃度を、製造業者の説明書に従ってDC Protein Assay(Bio−Rad、Hercules、CA)を使用して、各サンプルについて決定した。10μgの各サンプルを、SDS−サンプル緩衝液(Boston Bioproducts)中で85℃にて3分間加熱し、次いで12% Tris−Glycine Gel(Invitrogen、Carlsbad、CA)を使用したSDS−PAGEによって分析し、そしてPVDF膜(Millipore、Bedford、MA)に転写した。この膜を、0.05%のTween 20を含むTris緩衝生理食塩水(TBS)中の5%の脱脂粉乳において一晩ブロックした後、マウスpGSN抗血清を、1:1000で添加し、次いで1:2000のHRP結合型の抗ウサギIgG(Cell Signaling、Beverly、MA)でプローブした。化学発光を、LumiGLO(Cell Signaling、Beverly、MA)によって発生させ、そしてフォトフィルム(photofilm)を曝露し、そして現像した。抗マウスpGSN血清を、市販のサービス(Invitrogen、Carlsbad、CA)を使用してマウスpGSNの血漿の拡大(plasma extension)に由来するペプチドに対してウサギを免疫化することによって産生した。この抗血清の特異性および感受性を、ELISAおよびウエスタンブロッティングを使用して試験し、そしてこのELISAおよびウエスタンブロッティングは、マウスpGSNのみに対して特異的であり、細胞質のゲルソリン(cGSN)に対して特異的でないことを示した(データは示さない)。
全ての研究を二つ組で行った。Microlite 2(白色96ウェル平底プレート)(Dynex Technologies、Chantilly、VA)の各ウェルを、種々の量の組換えヒトpGSNまたはBSAでコーティングし、そして4℃で一晩インキュベートした。PB緩衝液(145mMのNaCl、5mMのKCl、2mMのMgCl2,3.5mMのNaH2P04、10mMのグルコース、10mMのHepes、3mg/mlのBSA、1mMのCaCl2、pH7.4)で4回洗浄した後に、2μgのAlexa488標識LPS(Escherichia coli血清型055:B5、Molecular Probes、Eugene、OR)を、100μlのPB緩衝液を有する各ウェルに添加し、そして室温で1時間インキュベートした。PB緩衝液で4回洗浄した後に、各ウェルの蛍光を、それぞれ488nmおよび520nmの励起波長および放出波長にて分光蛍光光度計で分析した。Alexa488−LPS結合した量を、PB緩衝液中に種々の量のAlexa488−LPSをシードすることによって作成される検量線からの外挿に基づいて推定した。
ヒト単球細胞株THP−1を、American Type Culture Collection、Manassas、VAから購入した。細胞を、10%のウシ胎仔血清および2%のペニシリン−ストレプトマイシン(GIBCO)を補充したRPMI(GIBCO、Grand Island、NY)中に37℃にて維持した。50,000個の細胞を、24ウェルプレート中の各ウェルに播種し、そして100ngのE.coliのLPSで刺激するか、または刺激せず、そして200μg/mlのヒト組換えpGSNまたはBSAによって処理した。LPSの2時間後、200μlの培地を回収し、そして細胞を、1000×gで10分間の遠心分離によって除去した。細胞を含まない培地のTNF−αレベルを、ELISA(R&D Systems、Minneapolis、MN)によって決定した。
値を、平均±SDとして示す。ノンパラメトリック検定(スペルマン順位相関)を使用して、この用量反応研究における相関を分析した。動物の死亡率を、Kaplan−Meier曲線として示し、そして対数順位検定を使用して、動物の死亡率に対する処置の影響を分析した。Mann−Whiney U検定を使用して、サイトカインレベルとpGSNレベルとの間の違いを評価した。0.05未満のP値を、有意と見なした。
(LPSまたはCLPに供されたマウスにおけるpGSNレベルの減少)
図1Aは、増加する非致死用量のPseudomonasのLPSの注射が、20mg/kgの用量において最大である、マウスにおけるpGSNレベルの進行性の減少をもたらしたことを示す(P<0.05)。血漿アルブミンレベルは、LPS処置によって変化しなかった。同様に、アルブミンレベルがCLPの後にマウスにおいて増加した(P=0.02)一方で、pGSNレベルは、下降した(P<0.001)。これらのデータは、敗血症に起因する全身的な炎症がpGSNに対して特定の影響を有することを示唆する。
25mg/kgの用量(i.p.)でのE.coliのLPSは、注射の7日以内に、マウスにおいて90%を超える死亡率を誘導し、そして生存したマウスは、完全に回復したようであり、かつ苦痛の徴候を示さない。図2Aに示されるように、LPSのチャレンジと同時での外因性pGSNの投与は、内毒血症のマウスにおいて、生理食塩水によって処置したマウス(P<0.001)、またはBSAによって処置したマウス(P<0.001)と比較して、生存率をかなり向上させた。図2Bは、pGSNを受容したマウスがまた、CLPの後に生理食塩水を受容したマウスより、かなり良好な生存率を有した(P=0.001)ことを示す。
図3は、E.coliのLPSの致死用量によってチャレンジしたマウスにおけるpGSNのレベルを示す。pGSNを14%下落させるのみの非致死的なPseudomonasのLPSと対照的に、致死用量のE.coliのLPSは、LPSチャレンジの6時間以内にpGSNレベルの50%の下落を誘導する。8mgの組換えpGSNの皮下注射は、内毒血症のマウスにおいてpGSNを、正常範囲にか、または正常範囲をこえて首尾よく維持する。
本発明者らは、pGSNの投与が内毒血症のマウスのサイトカインプロフィールを変化させるか否かを調べた。図4Aは、LPSの6時間後に、pGSN処置した内毒血症のマウスと生理食塩水処置した内毒血症のマウスとの間で、血漿サイトカインプロフィールにおいて違いを示さなかった(示される全てのサイトカインについてP>0.05)。TNF−αレベルは、ほぼベースラインであり、TNF−αがピークに達し、そしてマウスにおけるLPSチャレンジの2〜3時間以内に下降し始めることを示す公表された報告(Villa,P.、Sartor,G.、Angelini,M.、Sironi,M.、Conni,M.、Gnocchi,P.、Isetta,A.M.、Grau,G.、Buurman,W.、van Tits,L.J.ら、(1995)、Clin Diagn Lab Immunol 2、549−53)と合致した。
マウスpGSN抗血清を使用し、25mg/kgのE.coliのLPSによってか、またはこれによらずに処置した6時間後に、マウスから収集した骨格筋、心臓、腎臓、肝臓、および肺の代表的なウエスタンブロット分析を、図6に示す。本発明者らは、肺が、正常な状態および内毒血症の状態の両方において最も高いpGSNの濃度を有することを見出した。肺をPBSで灌流して、収集する前に血管内の血液を除去したので、血液濃度は、本発明者らの結果を説明し得ない。本発明者らは、CLPに供したマウスにおいて、同様なpGSNの組織分布を見出した(データは示さない)。
pGSNは、生物活性脂質(例えば、リゾホスファチジン酸)に結合し得る(Goetzl,E.J.、Lee,H.、Azuma,T.、Stossel,T.P.、Turck,C.W.およびKarliner,J.S.、(2000)、J Biol Chem 275、14573−8)ことに起因して、本発明者らは、pGSNがLPSにも結合し得る可能性を調査した。図7は、pGSNが、LPSに対してほとんど親和性を示さないコントロールのタンパク質(BSA)に結合する一方で、蛍光LPSに特異的に結合することを示す。しかし、pGSNは、ヒト単球からTNF−αの分泌を誘発するLPSの能力を妨害しないようである。なぜなら、LPSで刺激し、pGSNまたはBSAで処置したTHP−1細胞は、培地中に同様の量のTNF−αを分泌したからである(図8)。
LPSがpGSNの枯渇を直接引き起こすか否かを調べるために、本発明者らは、C3H/HeJマウス(マウスにLPS誘導性の炎症に対する抵抗性を与える変異したTLR4を発現する株(Beutler,B.およびPoltorak,A.、(2001)、Crit Care Med 29、S2−6;考察S6−7))において、pGSNレベルを研究した。図5は、pGSNレベルがE.coliのLPSをチャレンジしたC3H/HeJマウスとE.coliのLPSをチャレンジしなかったC3H/HeJマウスとの間で著しく違わなかったことを示す。LPSに対するそれらの抵抗性と合致して、C3H/HeJマウスはまた、LPSチャレンジ後に完全に正常であるようであった。
ここで、本発明者らは、著しいpGSNの枯渇がエンドトキシンまたは腹膜炎による敗血症の侵襲後におこり、そして外因性pGSNが敗血症のマウスの生存を劇的に改善することを実証した。これらのデータは、pGSNが、敗血症において、重要な生存を促進する機能を担うことを示す。
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