JPS6115897A - ヒト肝癌細胞を特異的に認識するモノクロ−ナル抗体 - Google Patents
ヒト肝癌細胞を特異的に認識するモノクロ−ナル抗体Info
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- JPS6115897A JPS6115897A JP59134556A JP13455684A JPS6115897A JP S6115897 A JPS6115897 A JP S6115897A JP 59134556 A JP59134556 A JP 59134556A JP 13455684 A JP13455684 A JP 13455684A JP S6115897 A JPS6115897 A JP S6115897A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
(産業−にの利用分野)
明細■−の浄書(内容に変更なし)
本発明はヒト肝癌細胞を認識するモノクローナル抗体(
以下MoAhと略記することがある)、および該モノク
ローナル抗体を産生するバイブリド9−マ、並びに該バ
イブリド9−マを用いたモノクローナル抗体の製造法、
さらには該モノクローナル抗体の利用に関する。特に、
本発明はヒト肝癌細胞を正常細胞と区別して特異的に認
識するとともに、生体内で肝癌細胞のみを傷害する作用
を持つモノクローナル抗体に関する。
以下MoAhと略記することがある)、および該モノク
ローナル抗体を産生するバイブリド9−マ、並びに該バ
イブリド9−マを用いたモノクローナル抗体の製造法、
さらには該モノクローナル抗体の利用に関する。特に、
本発明はヒト肝癌細胞を正常細胞と区別して特異的に認
識するとともに、生体内で肝癌細胞のみを傷害する作用
を持つモノクローナル抗体に関する。
(従来技術)
1975年、K’tihlerとMilsteinは、
マウスミエローマP3にの誘導変異株であろP3X63
−Ag8(HGPRT欠損株)と、抗ヒツジ赤血球マウ
ス抗体産生細胞よりハイノリド−マを作製し、このハイ
プリド−マが自律増殖性と抗ヒツジ赤血球抗体産生能を
共に有していることを報告した。この研究で示された、
単一抗原決定基のみを認識する均一な抗体、即ちモノク
ローナル抗体の概念は、免疫学、医学、薬学、生物学の
分野で太いに注目を集めた。1977年Wistar研
究所のH、K oprOwskiらは、明細書の浄書(
内容に変更なし) ウィルス又は悪性腫瘍に対するMothを産生ずるハイ
フリド−マを作製し、Mokbの試薬としての有用性、
有効性を示すと共に治療薬としての可能性を示唆した。
マウスミエローマP3にの誘導変異株であろP3X63
−Ag8(HGPRT欠損株)と、抗ヒツジ赤血球マウ
ス抗体産生細胞よりハイノリド−マを作製し、このハイ
プリド−マが自律増殖性と抗ヒツジ赤血球抗体産生能を
共に有していることを報告した。この研究で示された、
単一抗原決定基のみを認識する均一な抗体、即ちモノク
ローナル抗体の概念は、免疫学、医学、薬学、生物学の
分野で太いに注目を集めた。1977年Wistar研
究所のH、K oprOwskiらは、明細書の浄書(
内容に変更なし) ウィルス又は悪性腫瘍に対するMothを産生ずるハイ
フリド−マを作製し、Mokbの試薬としての有用性、
有効性を示すと共に治療薬としての可能性を示唆した。
殊に抗悪性腫瘍抗体の作製の報告は、癌特異抗原を特異
的に認識している可能性から、それまで正常細胞へのダ
メージを免れなかった癌の治療という臨床分野に大いに
注目された。
的に認識している可能性から、それまで正常細胞へのダ
メージを免れなかった癌の治療という臨床分野に大いに
注目された。
即ち、癌特異抗原を特異的に認識する抗体によれば、た
とえ同一個体から発生した細胞であっても、正常細胞に
対する反応性は無く、癌細胞のみを特異的に識別するこ
とができる。この抗体自身が細胞傷害性をもつか又は、
この抗体に制ガン剤を結ひつければ、癌細胞のみを標的
とした治療ができると期待された。
とえ同一個体から発生した細胞であっても、正常細胞に
対する反応性は無く、癌細胞のみを特異的に識別するこ
とができる。この抗体自身が細胞傷害性をもつか又は、
この抗体に制ガン剤を結ひつければ、癌細胞のみを標的
とした治療ができると期待された。
この期待を実現−rべく、種々の癌細胞に対するMok
bの作成が試みられて米た( Proc、 Natl。
bの作成が試みられて米た( Proc、 Natl。
kcad、 Sci、 753405 (1978)
; Proc、 Natt、 Acad。
; Proc、 Natt、 Acad。
Set、 761438 (1979) ; Proc
、Natl、kcad、Sci。
、Natl、kcad、Sci。
77 6841 (1980) ; Br、
J、Gancer 43 696 (1981))。
J、Gancer 43 696 (1981))。
しかし、得られたMOAbは正常細胞との交叉反応性を
示すなど、必ずしも癌特異抗原のみを認識しているとは
限らないこと、また、癌特異的である場合でも、この抗
体でin vivo系における癌の治療を試みたところ
、一部の白血病などには効果を納めたが、肝癌を代表と
する固型癌には治療効果が認められないことが判明した
( GancerRes、 403147(1980)
; Blood 58141 (1981) )。
示すなど、必ずしも癌特異抗原のみを認識しているとは
限らないこと、また、癌特異的である場合でも、この抗
体でin vivo系における癌の治療を試みたところ
、一部の白血病などには効果を納めたが、肝癌を代表と
する固型癌には治療効果が認められないことが判明した
( GancerRes、 403147(1980)
; Blood 58141 (1981) )。
したがって、癌の治療に使用しうる抗体の条件として、
第一に癌細胞に特異的であり、正常細胞との反応性を持
たぬこと、および第二にin viv。
第一に癌細胞に特異的であり、正常細胞との反応性を持
たぬこと、および第二にin viv。
において実際に癌細胞に対する傷害性を有することか要
求されるが、このような要求を同時に満足し、癌の治療
薬として有効なMoAbは未だ報告されていない。なか
でも、本発明が提供1〜だ肝癌細胞の治療に有用なMO
Ahについての報告はない。
求されるが、このような要求を同時に満足し、癌の治療
薬として有効なMoAbは未だ報告されていない。なか
でも、本発明が提供1〜だ肝癌細胞の治療に有用なMO
Ahについての報告はない。
今日、肝癌の治療は切除術の適用が多くを占めているが
、切除術による治療には限界がある。すなわち、肝の7
()〜80%は切除可能と言われるが、肝硬変合併例の
場合、切除後に肝再生の期待できない症例もあり、この
ような場合、切除が肝硬変をさらに進行させる。化学療
法剤等の薬剤を用いた肝癌の治療法においても、投与の
時期、方法、部位を工夫するなど種々の方法が試みられ
ているが、未だに確立した方法や満足できる治療効果を
示す例は得られていない。このため肝癌細胞のみを特異
的に認識し、死滅させることのできるMOAhの開発が
特に望まれている。
、切除術による治療には限界がある。すなわち、肝の7
()〜80%は切除可能と言われるが、肝硬変合併例の
場合、切除後に肝再生の期待できない症例もあり、この
ような場合、切除が肝硬変をさらに進行させる。化学療
法剤等の薬剤を用いた肝癌の治療法においても、投与の
時期、方法、部位を工夫するなど種々の方法が試みられ
ているが、未だに確立した方法や満足できる治療効果を
示す例は得られていない。このため肝癌細胞のみを特異
的に認識し、死滅させることのできるMOAhの開発が
特に望まれている。
(発明が解決しようとする問題点)
本発明者らは、掘υtυO系においても肝癌細胞を特異
的に認識し、および死滅させうるM〇八すの作製とその
診断・治療薬への利用を目的として研究を行った結果、
ヒト肝癌細胞に対する特異的な細胞傷害性を有し、1n
vivoでも顕著な抗腫瘍活性を示すMoAAの開発に
成功し、本発明を完成した。
的に認識し、および死滅させうるM〇八すの作製とその
診断・治療薬への利用を目的として研究を行った結果、
ヒト肝癌細胞に対する特異的な細胞傷害性を有し、1n
vivoでも顕著な抗腫瘍活性を示すMoAAの開発に
成功し、本発明を完成した。
(発明の構成)
本発明の抗体は、ヒト肝癌細胞を特異的に認識するモノ
クローナル抗体である。
クローナル抗体である。
本発明の抗体は、ヒト肝癌細胞で免疫された哺乳動物か
ら取り出した抗体産生細胞と、適当な動物由来の腫瘍細
胞とを融合させ、目的抗体を生産する融合細胞をクロー
ン化して得られる、本発明のバイブリド゛−マを培養し
て製造されろ。
ら取り出した抗体産生細胞と、適当な動物由来の腫瘍細
胞とを融合させ、目的抗体を生産する融合細胞をクロー
ン化して得られる、本発明のバイブリド゛−マを培養し
て製造されろ。
ては、マウス、ラット、ウサギ、モルモット等一般に用
いられている動物が使用できる。例えばマウスに抗原と
するヒト肝癌細胞を腹腔内又は皮下等に接種することに
より免疫する。接種は1回当り106〜I Q 7ce
LLs/m、olLseで1〜2週毎に数回くり返す。
いられている動物が使用できる。例えばマウスに抗原と
するヒト肝癌細胞を腹腔内又は皮下等に接種することに
より免疫する。接種は1回当り106〜I Q 7ce
LLs/m、olLseで1〜2週毎に数回くり返す。
最終免疫後1〜5日目日日臓を摘出し、抗体産生細胞と
して使用する。次に、この抗体産生細胞と融合させてハ
イプリドーマを得るための親細胞として、ヒポキサンチ
ン−グアニン−ホスホリボシルトランスフェラーゼ欠損
(H(、PRT −)あるいはチミジンキナーゼ欠損(
TK−)の様な、適切な選択マーカーを持ったミエロー
マ等の腫瘍細胞株を用意し、これと抗体産生細胞とを融
合させてハイプリド−マを作製する。
して使用する。次に、この抗体産生細胞と融合させてハ
イプリドーマを得るための親細胞として、ヒポキサンチ
ン−グアニン−ホスホリボシルトランスフェラーゼ欠損
(H(、PRT −)あるいはチミジンキナーゼ欠損(
TK−)の様な、適切な選択マーカーを持ったミエロー
マ等の腫瘍細胞株を用意し、これと抗体産生細胞とを融
合させてハイプリド−マを作製する。
ハイブリドーマ作製は、培地として、イーグルのMEM
、グル〈ツコの改良MEM、RPM11.640などの
通常よく使用されているものに10%03(calf
serrtm、)又は5%F OS (fetal c
alf gerum )」−5%O8、あるいは10%
FO8を加える。親細胞の通常の維持は、上記のいずれ
でも良いが、ハイブリドーマ作製には10%FO8が望
ましい。
、グル〈ツコの改良MEM、RPM11.640などの
通常よく使用されているものに10%03(calf
serrtm、)又は5%F OS (fetal c
alf gerum )」−5%O8、あるいは10%
FO8を加える。親細胞の通常の維持は、上記のいずれ
でも良いが、ハイブリドーマ作製には10%FO8が望
ましい。
まず、親細胞であるミエローマ等の腫瘍細胞と牌細胞と
を]:5の比率で用意する。融合剤としては、HV J
(Hemagglatin、ating virus
of Japan 。
を]:5の比率で用意する。融合剤としては、HV J
(Hemagglatin、ating virus
of Japan 。
別名5entlai virus ) 、ポリエチレン
グリコール(PEG)などを使用する。特にPEG10
0Oの30%〜50%程度が良い。融合株のHAT セ
レクションの方法は、既に一般化されているので省略す
る。生じるハイブリド−マのスクリーニング法は、主に
培養−ヒ清を用い、間接ロゼツト法(SPA −bin
cl−3RBC法とも呼ばれる。S P A : S
taphyloco −ccu、s a7LreILs
proteink 、 5IRBC: 5heep
RedBloodGetに免疫実験操作法■P 237
5 、1979 、日本免疫学金線)’+ ELIS
A法(Enzyme 1inked immuno−s
orhent assay ) (DynatecA法
)など、公知の方法な用いて目的の免疫グロブリンを分
泌しているハイブリドーマのクローンをひろいあげる。
グリコール(PEG)などを使用する。特にPEG10
0Oの30%〜50%程度が良い。融合株のHAT セ
レクションの方法は、既に一般化されているので省略す
る。生じるハイブリド−マのスクリーニング法は、主に
培養−ヒ清を用い、間接ロゼツト法(SPA −bin
cl−3RBC法とも呼ばれる。S P A : S
taphyloco −ccu、s a7LreILs
proteink 、 5IRBC: 5heep
RedBloodGetに免疫実験操作法■P 237
5 、1979 、日本免疫学金線)’+ ELIS
A法(Enzyme 1inked immuno−s
orhent assay ) (DynatecA法
)など、公知の方法な用いて目的の免疫グロブリンを分
泌しているハイブリドーマのクローンをひろいあげる。
クローンは徐々にふやし、l O” calls/7B
eに達した時点でサブクローニングを行なう。バイブリ
ド−々の単一性を吟味するため、96穴のマイクロウェ
ルにフィーダーレイア−(feed、er 1ayer
)としてIE常な牌細胞をおよそ] (1” cel
ls/wellまいた」−にハイブリドーマを一穴に1
個より多くならないように(−穴平均確率として01個
)まき、約1週間培養後生育してくるクローンについて
再びスクリーニングを行なう。このサブクローニングを
くり返−tことにより、単一性の本発明ハイブリド−マ
を得ろ。
eに達した時点でサブクローニングを行なう。バイブリ
ド−々の単一性を吟味するため、96穴のマイクロウェ
ルにフィーダーレイア−(feed、er 1ayer
)としてIE常な牌細胞をおよそ] (1” cel
ls/wellまいた」−にハイブリドーマを一穴に1
個より多くならないように(−穴平均確率として01個
)まき、約1週間培養後生育してくるクローンについて
再びスクリーニングを行なう。このサブクローニングを
くり返−tことにより、単一性の本発明ハイブリド−マ
を得ろ。
尚、融合の親細胞としての腫瘍細胞は、マウスミエロー
マ細胞に限られることな(、例えば特願昭58−774
4号に本出願人が開示したハイプリドーマ作製用ヒトメ
ラノーマ細胞ラインを用し・でもよい。
マ細胞に限られることな(、例えば特願昭58−774
4号に本出願人が開示したハイプリドーマ作製用ヒトメ
ラノーマ細胞ラインを用し・でもよい。
次に、本発明の肝癌に特異的なモノクローナル抗体を製
造するために、上記で得られたハイブリドーマを培養容
器中(掘υ1tro)又は動物体内(inviυO)で
培養する。iB vitrθ系で培養する場合、培地は
先に述べた通常培地にO8又はFe2を添加したもので
よ(、この培地で3〜5日培養の後、培養上澄よりMo
Ahを得る。in vivo系による培養では、・・イ
ブリドーマを哺乳動物の腹腔に接種し、7〜14日後に
腹水を採取し、これよりM o A hを得る。in
vivo系での培養の場合、■vitro系での培養に
比べて遥かに多量の抗体を効率的に取得l−うろので好
ましい。
造するために、上記で得られたハイブリドーマを培養容
器中(掘υ1tro)又は動物体内(inviυO)で
培養する。iB vitrθ系で培養する場合、培地は
先に述べた通常培地にO8又はFe2を添加したもので
よ(、この培地で3〜5日培養の後、培養上澄よりMo
Ahを得る。in vivo系による培養では、・・イ
ブリドーマを哺乳動物の腹腔に接種し、7〜14日後に
腹水を採取し、これよりM o A hを得る。in
vivo系での培養の場合、■vitro系での培養に
比べて遥かに多量の抗体を効率的に取得l−うろので好
ましい。
こう[〜て得られた培養」二澄又は腹水からのMoAb
の精製は、硫安分画、proteinAセファロースカ
ラム等の公知の方法を適宜組合せて、例えば後記実施例
2に記載した様にして行なうことができる。
の精製は、硫安分画、proteinAセファロースカ
ラム等の公知の方法を適宜組合せて、例えば後記実施例
2に記載した様にして行なうことができる。
以下、実施例を示すが、これらは特に示さない限り、下
記の条件で行なった。
記の条件で行なった。
培養条目二二5%GO2,95%air、湿度約100
%。
%。
温度37°C
培 地: RPMI]640 +IO%FC8(Cj
・6社オーストラリア製) 動 物: BALB/C系マウス(雌 4週令)明細
書の浄7)(内容に変更なし) 又はBALBloA−rLu/JGR系ヌード9マウス
(雌 6週令) (いずれも日本フレアより購入) 細胞系 :ヒト肝癌細胞 HG c−4−qウスミニo
−マP3X63−’A!18.653(いずれも、大学
、研究機関等でよく 用いられており、容易に人手1〜うるものである) 実施例1 ハイプリドーマの作成 りALB/し系マウスに、ヒト肝癌培養細胞(HCC−
4)107個/マウスを1週1回、4週間に亘り腹腔内
接種し、最終接種後3日目に牌臓を摘出し、膵臓細胞浮
遊液を調製した。すなわち、ステンレスメツシュで圧迫
、沖過し、培地に浮遊させた。融合の親細胞として、B
ALB/6系マウス由来ミx o −−r P3X63
−Ag3.653ヲ107細胞培養して準備した。
・6社オーストラリア製) 動 物: BALB/C系マウス(雌 4週令)明細
書の浄7)(内容に変更なし) 又はBALBloA−rLu/JGR系ヌード9マウス
(雌 6週令) (いずれも日本フレアより購入) 細胞系 :ヒト肝癌細胞 HG c−4−qウスミニo
−マP3X63−’A!18.653(いずれも、大学
、研究機関等でよく 用いられており、容易に人手1〜うるものである) 実施例1 ハイプリドーマの作成 りALB/し系マウスに、ヒト肝癌培養細胞(HCC−
4)107個/マウスを1週1回、4週間に亘り腹腔内
接種し、最終接種後3日目に牌臓を摘出し、膵臓細胞浮
遊液を調製した。すなわち、ステンレスメツシュで圧迫
、沖過し、培地に浮遊させた。融合の親細胞として、B
ALB/6系マウス由来ミx o −−r P3X63
−Ag3.653ヲ107細胞培養して準備した。
融合は、既存法(Nature 256495 (19
75))に準じて以下の様に行なった。
75))に準じて以下の様に行なった。
上記で調製したマウス肺臓細胞5×lO7個とミエロー
マ細胞l×107個とを遠心分離チューブに混合し、遠
心したのち」−清をすて、RPM1164f)で40%
(で調製したs91Jエチレングリコール(PE(10
00、和光紬薬)をパックになった細胞の」−に約0.
5 ml加え、3分静置したのち、5 +) 07′p
mで3分間遠心分離し、そののち培地をゆつ(す5m6
程度加え、再度遠心分離し、上清をすてた。次に、’]
:’ −75(FalconA63024 )に、ゆる
やかにすべての細胞をうつしとり、約40m1になるよ
うに培地を加え、−晩培養する。次の日にこの培養液を
細胞も含めてすべて遠心チューブに移し取り、遠心分離
を行ない上清をすてた。次にHAT培地(RPM116
40培地、10%FGSに終濃度でヒポキサンチイ10
−4M、アミノプテリン4X10−7M、チミジン1.
6 X 10−5Mを加える)を40m1加え、よく攪
拌した後、96穴マイクロプレート(Gostar、
/163596)に約100 til/ well宛加
えた。コノ状態で1週間培養すると30〜50%程度の
穴にコロニーが認められた。1週間以後より、適宜HT
培地(HAT培地よりアミノプテリンを除いた組成をも
つ)を1滴(約25〜30μl)各穴に加えた。
マ細胞l×107個とを遠心分離チューブに混合し、遠
心したのち」−清をすて、RPM1164f)で40%
(で調製したs91Jエチレングリコール(PE(10
00、和光紬薬)をパックになった細胞の」−に約0.
5 ml加え、3分静置したのち、5 +) 07′p
mで3分間遠心分離し、そののち培地をゆつ(す5m6
程度加え、再度遠心分離し、上清をすてた。次に、’]
:’ −75(FalconA63024 )に、ゆる
やかにすべての細胞をうつしとり、約40m1になるよ
うに培地を加え、−晩培養する。次の日にこの培養液を
細胞も含めてすべて遠心チューブに移し取り、遠心分離
を行ない上清をすてた。次にHAT培地(RPM116
40培地、10%FGSに終濃度でヒポキサンチイ10
−4M、アミノプテリン4X10−7M、チミジン1.
6 X 10−5Mを加える)を40m1加え、よく攪
拌した後、96穴マイクロプレート(Gostar、
/163596)に約100 til/ well宛加
えた。コノ状態で1週間培養すると30〜50%程度の
穴にコロニーが認められた。1週間以後より、適宜HT
培地(HAT培地よりアミノプテリンを除いた組成をも
つ)を1滴(約25〜30μl)各穴に加えた。
ある程度コロニーが生育した後に(10〜14日後)培
養上澄を用い、間接ロゼツト法でスクリーニングを行な
い、目的のヒト肝癌(HCc−4)に対し、抗体を分泌
しているかどうか検討1−だ。この結果、4つのコロニ
ーがHe c−4に対する抗体を分あしていた。次に、
この4つのコロニーについてサブクローニングを行なっ
た。即ち、96穴マイクロプレートにフィーダ一層(f
eeder 1ayer )として未処理のBALB/
・、−系マウス牌細胞105cells/wellをま
いた上に、上記で得られたコロニーの細胞を0.1 c
ell、Anellとなる様に加え、1週間培養した。
養上澄を用い、間接ロゼツト法でスクリーニングを行な
い、目的のヒト肝癌(HCc−4)に対し、抗体を分泌
しているかどうか検討1−だ。この結果、4つのコロニ
ーがHe c−4に対する抗体を分あしていた。次に、
この4つのコロニーについてサブクローニングを行なっ
た。即ち、96穴マイクロプレートにフィーダ一層(f
eeder 1ayer )として未処理のBALB/
・、−系マウス牌細胞105cells/wellをま
いた上に、上記で得られたコロニーの細胞を0.1 c
ell、Anellとなる様に加え、1週間培養した。
得られたクローンについてスクリーニング及びサブクロ
ーニングを行ない、最終的にHCG−4に対するモノク
ローナル抗体を産生ずる4つのバイブリド9−マを得た
。このうちの1つのハイノリドーマをHY−2014と
命名し、これから得られるモノクローナル抗体をHC−
2014と命名した。次に、HC−2014の精製法に
ついて述べる。
ーニングを行ない、最終的にHCG−4に対するモノク
ローナル抗体を産生ずる4つのバイブリド9−マを得た
。このうちの1つのハイノリドーマをHY−2014と
命名し、これから得られるモノクローナル抗体をHC−
2014と命名した。次に、HC−2014の精製法に
ついて述べる。
明細d)の浄書(内容に変更なし)
実施例2 ’kAokbの精製および特異性の検討α
)BALB/C系マウスの腹腔にQ、5 mlのブリス
テン(ミネラルオイル)を投与し、7日後にHC−20
14産生ハイノリド一マ5×106個を腹腔に接種し、
腹水化を行った。接種の2週間後に腹水を採取し、以下
の方法でMothの精製を行なった。
)BALB/C系マウスの腹腔にQ、5 mlのブリス
テン(ミネラルオイル)を投与し、7日後にHC−20
14産生ハイノリド一マ5×106個を腹腔に接種し、
腹水化を行った。接種の2週間後に腹水を採取し、以下
の方法でMothの精製を行なった。
まず、得られた腹水30m1を10,011 +) 7
戸、 15m1n遠心後上清に、硫酸アンモニウムを3
33%の濃度となるように加え、4℃61J m1rL
塩析した。
戸、 15m1n遠心後上清に、硫酸アンモニウムを3
33%の濃度となるように加え、4℃61J m1rL
塩析した。
10.000771m 15 min遠心後、沈殿物を
PBS(Phosphate Bu、ffer −5a
line ; 3,1mM−NaH2PO41,577
LMKH2PO4、2,7mMKCl、 137mMN
αCl。
PBS(Phosphate Bu、ffer −5a
line ; 3,1mM−NaH2PO41,577
LMKH2PO4、2,7mMKCl、 137mMN
αCl。
PH7,2) 5mlに溶解し、同液3ノに対して一晩
透析を行なった。透析後Protein Aセファロー
スカラムにかけ、0.1M酢酸−PBS 溶液で溶出し
、浴出液を0.1 N NaOHで中和した。
透析を行なった。透析後Protein Aセファロー
スカラムにかけ、0.1M酢酸−PBS 溶液で溶出し
、浴出液を0.1 N NaOHで中和した。
精製されたMOAhは一80℃フリーザーで凍結保存ヒ
た。
た。
b)次に、上記σ)で作製したMOAhのHCG−4お
よび他の種々の腫瘍細胞に対する反応性について、EL
ISA法および間接ロゼツト法により検討した。
よび他の種々の腫瘍細胞に対する反応性について、EL
ISA法および間接ロゼツト法により検討した。
抗原として次の細胞を用いた。
HCc−4抗体産生に用いたヒト肝癌細胞A349
ヒト肺癌細胞 KATOl[ヒト胃癌細胞 AZ521 // 8M314 ヒト結腸癌細胞 これらの抗原を、5倍〜3125倍の5倍希釈列のMo
Ab HC−2014と反応させて、ELISA法にお
ける反応性を調べた。ELISA法には、ザイメド社β
−qalacto、9idaseキット(丸首より購入
)を使用した。その結果、第4図に示したように、HC
−2014は抗原であるHCC−4ヒト肝癌細胞にのみ
反応した。
ヒト肺癌細胞 KATOl[ヒト胃癌細胞 AZ521 // 8M314 ヒト結腸癌細胞 これらの抗原を、5倍〜3125倍の5倍希釈列のMo
Ab HC−2014と反応させて、ELISA法にお
ける反応性を調べた。ELISA法には、ザイメド社β
−qalacto、9idaseキット(丸首より購入
)を使用した。その結果、第4図に示したように、HC
−2014は抗原であるHCC−4ヒト肝癌細胞にのみ
反応した。
マタ、)((、−2014は間接ロゼツト法においても
、表1に示すように、抗原であるHCC−4ヒト肝癌細
胞とのみロゼツトを形成し、他の腫瘍細胞に対しては反
応しなかった。
、表1に示すように、抗原であるHCC−4ヒト肝癌細
胞とのみロゼツトを形成し、他の腫瘍細胞に対しては反
応しなかった。
明細書の浄書(内容に変更なし)
表1 間接ロゼツト法の結果
肺癌(Lttn、q Carcinorna) A
549 −結腸癌(Colon Garcina
ma) 8M314 −胃癌(Cra、9t、r
zcCarcinoma) KATOII−〃
〃 八z521 −
肝癌(Hepattrrna) HG c−
4+実施例3 オクタロニー法によるMokhのクラス
。
549 −結腸癌(Colon Garcina
ma) 8M314 −胃癌(Cra、9t、r
zcCarcinoma) KATOII−〃
〃 八z521 −
肝癌(Hepattrrna) HG c−
4+実施例3 オクタロニー法によるMokhのクラス
。
サブクラスの検討
実流側2で得られたMo八すについてオクタロニー法(
OachtatorLy法)により免疫プロズリンのク
ラス、サブクラスを決定した。即ち、1.5%アガロー
ス溶液(0,i月%N a N 3を含む)をベトリ皿
(内径52龍)に5.ml宛加え、約30分間凝固する
まで待った。次に第5図に示すように凝固アガr−スに
穴をあけ、各穴1〜6に下記表2の各抗グロブリン抗体
を5μβづつ加え、中央の穴7には実施例2で精製され
たモノクローナル抗体を明細書の浄書(内容に変更なし
) ■5μe加えた。この状態で24時間放置し、生じた阻
止線をもってモノクローナル抗体のクラスを決定した。
OachtatorLy法)により免疫プロズリンのク
ラス、サブクラスを決定した。即ち、1.5%アガロー
ス溶液(0,i月%N a N 3を含む)をベトリ皿
(内径52龍)に5.ml宛加え、約30分間凝固する
まで待った。次に第5図に示すように凝固アガr−スに
穴をあけ、各穴1〜6に下記表2の各抗グロブリン抗体
を5μβづつ加え、中央の穴7には実施例2で精製され
たモノクローナル抗体を明細書の浄書(内容に変更なし
) ■5μe加えた。この状態で24時間放置し、生じた阻
止線をもってモノクローナル抗体のクラスを決定した。
表2 使用した抗体
1 anti −human I gM うさ
ぎ(ヘキスト社製)2 anti−human
IgG うさぎ(〃)3 anti −mow、
?e jqG うさぎ(力はル社製)4 ant
i −mottst I gM ヤ ギ(ヘキス
ト社製)5 anti−human Ig(Cr
モA+M)ヤギ(〃)6 anti −hu、man
I yA うさぎ(〃)この結果、得られたモノ
クローナル抗体は3と7の間にのみ、阻止線が生じたこ
とより、マウスTgGであることが中1明した。
ぎ(ヘキスト社製)2 anti−human
IgG うさぎ(〃)3 anti −mow、
?e jqG うさぎ(力はル社製)4 ant
i −mottst I gM ヤ ギ(ヘキス
ト社製)5 anti−human Ig(Cr
モA+M)ヤギ(〃)6 anti −hu、man
I yA うさぎ(〃)この結果、得られたモノ
クローナル抗体は3と7の間にのみ、阻止線が生じたこ
とより、マウスTgGであることが中1明した。
次に工gGのサブクラスを検討するために、上記と同様
の実験を行なった。即ち、アガロース上に第6図の如く
穴をあけ】から4までに各サブクラスの抗体(表3)を
5μβ宛入れ、中央の5に得明細書の浄書(内容に変更
なし) られたモノクローナル抗体(He−2014)を15μ
l加え、24時間室温で放置した。
の実験を行なった。即ち、アガロース上に第6図の如く
穴をあけ】から4までに各サブクラスの抗体(表3)を
5μβ宛入れ、中央の5に得明細書の浄書(内容に変更
なし) られたモノクローナル抗体(He−2014)を15μ
l加え、24時間室温で放置した。
表3 使用した抗体
1 anti−mou、、?g IyGl
うさぎ(マイルス社製)2 anti −mou、、
?e IgG2a うさぎ(〃)3 σnti−
moLLse IgG2A うさぎ(〃)4
anti −motbst IgG3 うさぎ
(〃)これらの結果より、得られたモノクローナル抗体
()((3−2014)は2と5の間に阻止線が生じた
ことから工gG2αであることが判った。
うさぎ(マイルス社製)2 anti −mou、、
?e IgG2a うさぎ(〃)3 σnti−
moLLse IgG2A うさぎ(〃)4
anti −motbst IgG3 うさぎ
(〃)これらの結果より、得られたモノクローナル抗体
()((3−2014)は2と5の間に阻止線が生じた
ことから工gG2αであることが判った。
さらに、ハイプリド−マが分泌する抗体の単一性は、S
DS ポリアクリルアミド9ゲル電気泳動法により確認
した。
DS ポリアクリルアミド9ゲル電気泳動法により確認
した。
実施例4 tn uttroにおけるHq−2014
のADCC−外焦−−−−−−−−−−−−−−一本発
明のモノクローナル抗体が、エフェクター細胞の存在下
にヒト肝癌細胞を攻撃して死滅させうることをin v
itroで調べるため、HC−2014のヒト肝癌細胞
(HCc−4)に対する細胞傷害性を、ヒト胃癌に対す
るモノクローナル抗体(YKO24)を対照として、A
DCC活性(Antibody −d、ependen
tCell−mediated Cytotoxici
ty )により検討した。
のADCC−外焦−−−−−−−−−−−−−−一本発
明のモノクローナル抗体が、エフェクター細胞の存在下
にヒト肝癌細胞を攻撃して死滅させうることをin v
itroで調べるため、HC−2014のヒト肝癌細胞
(HCc−4)に対する細胞傷害性を、ヒト胃癌に対す
るモノクローナル抗体(YKO24)を対照として、A
DCC活性(Antibody −d、ependen
tCell−mediated Cytotoxici
ty )により検討した。
HCc−4を96穴マイクロプレートに105cell
s/wellの割合でまき、−晩培養した。これに、実
施例2で得たHC−2014又は、YKO24を0゜0
.1 、0.5 、2.5 Wry/rrtljとなる
様に加え、30分間C○2インキュベータに放置した後
、PBSを用いて3回洗浄した。次にエフェクター細胞
としてB A L B/ c系マウスの牌臓細胞を10
6 cells1well宛加え、−晩培養した後PB
Sで3回洗浄し、各wellのHG C−4の生存の有
無を判定した。判定はトリパンブルーで染色後、生細胞
を算定することにより行なった。
s/wellの割合でまき、−晩培養した。これに、実
施例2で得たHC−2014又は、YKO24を0゜0
.1 、0.5 、2.5 Wry/rrtljとなる
様に加え、30分間C○2インキュベータに放置した後
、PBSを用いて3回洗浄した。次にエフェクター細胞
としてB A L B/ c系マウスの牌臓細胞を10
6 cells1well宛加え、−晩培養した後PB
Sで3回洗浄し、各wellのHG C−4の生存の有
無を判定した。判定はトリパンブルーで染色後、生細胞
を算定することにより行なった。
結果を表4に示した。表中、生存率が10%以下のもの
をADCC活性陽活性陽性上て示す。
をADCC活性陽活性陽性上て示す。
明細書の浄書(内容に変更なし)
表4
抗体の濃度 モノクローナル抗体2.5
− 十−−−0,5−十−− 0,1−十−−− o −−−一 実施例5 腹水癌モデルに対するHC−2014の本発
明のモノクローナル抗体が、講υivo においてもヒ
ト肝癌細胞傷害性であることを確認するため、ヌードマ
ウスによるモデル試験を行なった。
− 十−−−0,5−十−− 0,1−十−−− o −−−一 実施例5 腹水癌モデルに対するHC−2014の本発
明のモノクローナル抗体が、講υivo においてもヒ
ト肝癌細胞傷害性であることを確認するため、ヌードマ
ウスによるモデル試験を行なった。
ヌードマウスを1群6匹に分け、腹腔にHCG−4細胞
を2X107個接種し、接種口を0日目として1.3.
5日目に実施例2で得たMOAhHe−2014を1.
51R9又は3.0■腹腔内投与し、未投与群を対照と
して生存日数から延命率(ILS%)を求めたと明細書
の浄書(内容に変更なし) ころ、200%以上という高い値を示した。又、H(3
−2014投与直後及び投与中には、体重の減少並びに
毒性症状は認められなかった。なお、延命率(ILS%
)は次の式で求めた。
を2X107個接種し、接種口を0日目として1.3.
5日目に実施例2で得たMOAhHe−2014を1.
51R9又は3.0■腹腔内投与し、未投与群を対照と
して生存日数から延命率(ILS%)を求めたと明細書
の浄書(内容に変更なし) ころ、200%以上という高い値を示した。又、H(3
−2014投与直後及び投与中には、体重の減少並びに
毒性症状は認められなかった。なお、延命率(ILS%
)は次の式で求めた。
各群のマウスの生存日数を第2図に示した。
一方、HCC−4のかわりに、8M314 (ヒト結腸
癌培養細胞系)を用いて同様に実験したところ、対照群
との間に差は認められなかった。結果を第3図に示した
。
癌培養細胞系)を用いて同様に実験したところ、対照群
との間に差は認められなかった。結果を第3図に示した
。
実施例6 固型癌モデルに対するHC−2014の抗腫
瘍効果 ヌードマウスを1群6匹に分け、背部皮下にH(30−
4細胞を1x107個接種しく0日目)、実をはかり、
He−2014未投与群を対照としてT/C%を次の式
で求めた。
瘍効果 ヌードマウスを1群6匹に分け、背部皮下にH(30−
4細胞を1x107個接種しく0日目)、実をはかり、
He−2014未投与群を対照としてT/C%を次の式
で求めた。
明細書の61店(内容に変更なし)
結果を第1図に示した。図から明らかなとおり、対照群
の一匹が死亡した時点(80日目)でT/(3%は10
%以下であった。このことは、本発明のモノクローナル
抗体の投与により、背部の固型隔意味する。
の一匹が死亡した時点(80日目)でT/(3%は10
%以下であった。このことは、本発明のモノクローナル
抗体の投与により、背部の固型隔意味する。
(発明の効果)
本発明により得られるモノクローナル抗体は、免疫原で
あるヒト肝癌細胞とのみ特異的に結合し、in vit
roにおいてADCC活性を、1rLvivo におい
て顕著な抗腫瘍活性を示すことより、EIA法、RIA
法等による、試薬、診断薬として、さらに肝癌の治療薬
としての可能性が期待できる。
あるヒト肝癌細胞とのみ特異的に結合し、in vit
roにおいてADCC活性を、1rLvivo におい
て顕著な抗腫瘍活性を示すことより、EIA法、RIA
法等による、試薬、診断薬として、さらに肝癌の治療薬
としての可能性が期待できる。
第1図はHG C−4固型癌モデルに対する本発明のモ
ノクローナル抗体の抗腫瘍効果を示すグラフであり、 第2図はHCC−4腹水癌モデルに対する本発明のモノ
クローナル抗体の抗腫瘍効果を示すグラフであり、 第3図は第2図におけるHCC−4細胞の代りに8M3
]4細胞を用いて行った試験の結果を示すグラフであり
、 第4図は本発明のモノクローナル抗体の特異性をELI
SA法で検討した結果を示すグラフであり、第5図およ
び第6図は夫々、実施例2のモノクローナル抗体のクラ
ス及びサブクラスを同定するためのオクタロニー法を説
明する図である。 特許出願人 サントリー株式会社 (外5名) 第4図 抗イソドJイi岸尺イ千デ牧 第6図
ノクローナル抗体の抗腫瘍効果を示すグラフであり、 第2図はHCC−4腹水癌モデルに対する本発明のモノ
クローナル抗体の抗腫瘍効果を示すグラフであり、 第3図は第2図におけるHCC−4細胞の代りに8M3
]4細胞を用いて行った試験の結果を示すグラフであり
、 第4図は本発明のモノクローナル抗体の特異性をELI
SA法で検討した結果を示すグラフであり、第5図およ
び第6図は夫々、実施例2のモノクローナル抗体のクラ
ス及びサブクラスを同定するためのオクタロニー法を説
明する図である。 特許出願人 サントリー株式会社 (外5名) 第4図 抗イソドJイi岸尺イ千デ牧 第6図
Claims (17)
- (1)ヒト肝癌細胞で感作された哺乳動物の抗体産生細
胞と腫瘍細胞との融合細胞から作られる、ヒト肝癌細胞
を特異的に認識するモノクローナル抗体。 - (2)ヒト肝癌細胞がライン化されたものである特許請
求の範囲第1項記載のモノクローナル抗体。 - (3)in vivoおよびin vitroにおいて
、ヒト肝癌細胞に対する細胞傷害性を有する特許請求の
範囲第1項又は第2項に記載のモノクローナル抗体。 - (4)オクタロニー法による検定により、IgG_2_
aサブクラスに属する特許請求の範囲第1項ないし第3
項のいずれかに記載のモノクローナル抗体。 - (5)腫瘍細胞がマウスミエローマである特許請求の範
囲第1項ないし第4項のいずれかに記載のモノクローナ
ル抗体。 - (6)ヒト肝癌細胞がHC C−4である特許請求の範
囲第1項ないし第4項のいずれかに記載のモノクローナ
ル抗体。 - (7)哺乳動物がマウスである特許請求の範囲第1項な
いし第4項のいずれかに記載のモノクローナル抗体。 - (8)HC−2014と命名された特許請求の範囲第7
項記載のモノクローナル抗体。 - (9)ヒト肝癌細胞で感作された哺乳動物の抗体産生細
胞と、前記哺乳動物と同種又は異種の動物の腫瘍細胞と
の融合細胞からクローン化して得られる、ヒト肝癌細胞
を特異的に認識するモノクローナル抗体を産生するハイ
ブリドーマ。 - (10)哺乳動物がマウスである特許請求の範囲第9項
記載のハイブリドーマ。 - (11)ヒト肝癌細胞がHC C−4培養細胞系である
特許請求の範囲第9項記載のハイブリドーマ。 - (12)腫瘍細胞がミエローマである特許請求の範囲第
9項記載のハイブリドーマ。 - (13)産生されるモノクローナル抗体がIgG_2_
aサブクラスに属する免疫グロブリンである特許請求の
範囲第12項記載のハイブリドーマ。 - (14)HY−2014と命名された特許請求の範囲第
13項記載のハイブリドーマ。 - (15)ヒト肝癌細胞で感作された哺乳動物の抗体産生
細胞と、前記哺乳動物と同種又は異種の動物の腫瘍細胞
との融合細胞からクローン化された、ヒト肝癌細胞を特
異的に認識するモノクローナル抗体を産生するハイブリ
ドーマを、培養容器中又は哺乳動物体内で増殖させ、モ
ノクローナル抗体を生成蓄積させ、これを採取すること
よりなる、ヒト肝癌細胞を特異的に認識するモノクロー
ナル抗体の製造法。 - (16)ヒト肝癌細胞を特異的に認識するモノクローナ
ル抗体を有効成分として含む肝癌治療用組成物。 - (17)ヒト肝癌細胞を特異的に認識するモノクローナ
ル抗体を含む肝癌診断用組成物。
Priority Applications (5)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP59134556A JPS6115897A (ja) | 1984-06-29 | 1984-06-29 | ヒト肝癌細胞を特異的に認識するモノクロ−ナル抗体 |
| US06/749,564 US4820641A (en) | 1984-06-29 | 1985-06-27 | Monoclonal antibody capable of specifically distinguishing human hepato-carcinoma cells |
| DE8585108073T DE3580524D1 (de) | 1984-06-29 | 1985-06-28 | Monoklonaler antikoerper geeignet zur spezifischen unterscheidung von humanen hepatokarzinomzellen. |
| EP85108073A EP0166458B1 (en) | 1984-06-29 | 1985-06-28 | Monoclonal antibody capable of specifically distinguishing human hepato-carcinoma cells |
| AT85108073T ATE58397T1 (de) | 1984-06-29 | 1985-06-28 | Monoklonaler antikoerper geeignet zur spezifischen unterscheidung von humanen hepatokarzinomzellen. |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP59134556A JPS6115897A (ja) | 1984-06-29 | 1984-06-29 | ヒト肝癌細胞を特異的に認識するモノクロ−ナル抗体 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6115897A true JPS6115897A (ja) | 1986-01-23 |
| JPH0431674B2 JPH0431674B2 (ja) | 1992-05-27 |
Family
ID=15131083
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP59134556A Granted JPS6115897A (ja) | 1984-06-29 | 1984-06-29 | ヒト肝癌細胞を特異的に認識するモノクロ−ナル抗体 |
Country Status (5)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US4820641A (ja) |
| EP (1) | EP0166458B1 (ja) |
| JP (1) | JPS6115897A (ja) |
| AT (1) | ATE58397T1 (ja) |
| DE (1) | DE3580524D1 (ja) |
Cited By (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS6357596A (ja) * | 1986-08-29 | 1988-03-12 | Nisshin Flour Milling Co Ltd | モノクロ−ナル抗体、その製法およびそれからなる肝疾患診断剤 |
| JPS63290898A (ja) * | 1987-05-23 | 1988-11-28 | Hagiwara Yoshihide | ガン関連抗原特異的ヒト免疫グロブリン生産性ヒト/ヒトハイブリド−マ及びその生産する抗体 |
| JPH05207876A (ja) * | 1991-11-25 | 1993-08-20 | Hagiwara Yoshihide | ガン関連抗原特異的ヒト免疫グロブリン生産性ヒト/ヒトハイブリドーマ |
| JPH05268988A (ja) * | 1992-03-05 | 1993-10-19 | Hagiwara Yoshihide | ガン関連抗原特異的ヒト免疫グロブリン |
| JP2004529849A (ja) * | 2000-09-01 | 2004-09-30 | インターナショナル バイオイムン システムズ,インコーポレーテッド | 扁平上皮癌に対する特異的モノクローナル抗体の同定と開発 |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5760000A (en) * | 1994-05-13 | 1998-06-02 | University Technologies International,Inc. | Inhibition of liver cancer by the use of GnRH and GnRH analogs |
Family Cites Families (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US4579827A (en) * | 1983-03-11 | 1986-04-01 | Sloan-Kettering Institute For Cancer Research | Monoclonal antibodies to human gastrointestinal cancers and hybridoma method of production of the monoclonal antibodies |
-
1984
- 1984-06-29 JP JP59134556A patent/JPS6115897A/ja active Granted
-
1985
- 1985-06-27 US US06/749,564 patent/US4820641A/en not_active Expired - Fee Related
- 1985-06-28 DE DE8585108073T patent/DE3580524D1/de not_active Expired - Lifetime
- 1985-06-28 AT AT85108073T patent/ATE58397T1/de active
- 1985-06-28 EP EP85108073A patent/EP0166458B1/en not_active Expired - Lifetime
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| HEPATOLOGY=1982 * |
Cited By (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS6357596A (ja) * | 1986-08-29 | 1988-03-12 | Nisshin Flour Milling Co Ltd | モノクロ−ナル抗体、その製法およびそれからなる肝疾患診断剤 |
| JPS63290898A (ja) * | 1987-05-23 | 1988-11-28 | Hagiwara Yoshihide | ガン関連抗原特異的ヒト免疫グロブリン生産性ヒト/ヒトハイブリド−マ及びその生産する抗体 |
| JPH05207876A (ja) * | 1991-11-25 | 1993-08-20 | Hagiwara Yoshihide | ガン関連抗原特異的ヒト免疫グロブリン生産性ヒト/ヒトハイブリドーマ |
| JPH05268988A (ja) * | 1992-03-05 | 1993-10-19 | Hagiwara Yoshihide | ガン関連抗原特異的ヒト免疫グロブリン |
| JP2004529849A (ja) * | 2000-09-01 | 2004-09-30 | インターナショナル バイオイムン システムズ,インコーポレーテッド | 扁平上皮癌に対する特異的モノクローナル抗体の同定と開発 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| EP0166458A3 (en) | 1988-05-18 |
| EP0166458B1 (en) | 1990-11-14 |
| DE3580524D1 (de) | 1990-12-20 |
| JPH0431674B2 (ja) | 1992-05-27 |
| US4820641A (en) | 1989-04-11 |
| EP0166458A2 (en) | 1986-01-02 |
| ATE58397T1 (de) | 1990-11-15 |
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