WO1995014041A1 - Reconstituted human antibody against human medulloblastomatous cell - Google Patents

Reconstituted human antibody against human medulloblastomatous cell Download PDF

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WO1995014041A1
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Koh Sato
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    • C07K—PEPTIDES
    • C07K2319/00—Fusion polypeptide

Definitions

  • the present invention relates to a human / mouse chimeric antibody comprising a variable region (V region) of mouse monoclonal antibody 0 NS-M21 against human medulloblastoma cells and a constant region (C region) of human antibody.
  • V region variable region
  • C region constant region
  • the complementarity determining regions (CDRs) of the human light chain (L chain) V region and the human heavy chain (H chain) V region show that the mouse monoclonal antibody ONS—M21 against human medulloblastoma cells It relates to reshaped human antibodies that have been replaced by CDRs and the L chains or H chains that constitute those antibodies.
  • the present invention further provides a DNA encoding the above antibody, particularly the V region thereof.
  • the present invention further relates to a vector comprising said DNA, especially an expression vector, and a host transformed with said vector.
  • the present invention further provides a method for producing chimeric antibodies against hepatic medulloblastoma cells and a method for producing reshaped human antibodies against human medulloblastoma cells.
  • the present invention also relates to a single-chain FV region formed by linking the H chain V region of a reshaped human antibody to human medulloblastoma cells and the L chain V region of the antibody.
  • the present invention also provides a DNA encoding the single-chain FV region, a recombinant vector comprising the DNA, a host transformed with the recombinant vector, and the host using the host.
  • the present invention relates to a method for producing a main chain FV region.
  • Medulloblastoma together with glioma accounts for 40% of brain tumors It is one of the ectodermal tumors, and it is a malignant brain tumor that frequently occurs in children under the age of 10, especially in the age of 5 to 10.
  • This tumor is a typical undifferentiated tumor that mimics the morphology and sequence pattern of undifferentiated cells that make up the medullary epithelium and stroma layer during embryonic development, and may differentiate into both neurons and glial cells (Tamura, K, et al., Cancer Res., 49: 53800-5384 (19989)). Because these malignant brain tumors are sensitive to radiation and chemotherapeutic agents, radiation therapy and chemotherapy, as well as surgery, are used as treatment.
  • Mouse monoclonal antibodies are highly immunogenic (sometimes referred to as "antigenic") in humans, and for this reason their therapeutic value in humans is limited. In addition, mouse antibodies cannot be administered as frequently without eliciting an immune response that not only interferes with the intended effect, but also poses a risk of adverse allergic response in the patient.
  • Mouse antibodies can be humanized in two ways. A simpler method is to make a chimeric antibody in which the variable regions are derived from the original mouse monoclonal antibody and the constant regions are derived from a suitable human antibody. The resulting chimeric antibody contains the complete variable region of the original mouse antibody and can be expected to bind to the antigen with the same specificity as the original mouse antibody 0
  • chimeric antibodies have a lower proportion of protein sequences derived from sources other than human. It is expected to be substantially reduced and therefore less immunogenic than the original mouse antibody. Chimeric antibodies bind well to antigens and are less immunogenic, but may still produce an immune response to the mouse variable region (Lo Buglio, AF et al., Proc. Nat. 1 .A cad .S ci .USA, 8 8, 4 2 2 0-4 2 2 4, 1 9 8 9) o
  • the second method for humanizing mouse antibodies is more complex-but it further reduces the potential immunogenicity of the mouse antibodies much more.
  • a complementarity-determining region (cmplememntaritindydetermineinggreegion; CDR) from the variable region of a mouse antibody is transplanted into a human antibody variable region to prepare a "reconstituted" (resshaped) human antibody variable region.
  • CDR complementarity-determining region
  • these reshaped human variable regions are linked to a human antibody constant region.
  • Only the CDR and a very small portion of the framework (FR) are derived from the protein sequence other than human in the finally reconstructed human antibody.
  • CDR is composed of a hypervariable protein sequence. They do not show species-specific sequences. For these reasons, a reshaped human antibody bearing mouse CDR should no longer be more immunogenic than a native human antibody containing human CDR.
  • reshaped human antibodies are expected to be useful for therapeutic purposes, but no reshaped human antibodies against human medulloblastoma cells are known. Furthermore, there is no method for producing reshaped human antibodies that is universally applicable to any particular antibody. Therefore, various measures are required to prepare a reshaped human antibody having sufficient activity against a specific antigen (for example, Sato, K. et al. Cancer Res. ⁇ 3, 1— 6 (1993).
  • the present inventors have developed a medulloblastoma cell line (ONS-7) from the cerebellum of medulloblastoma patients.
  • the present invention relates to a human monoclonal antibody ONS-M21 reshaped human antibody against human medulloblastoma cells.
  • the present invention also provides a human mouse chimeric antibody useful in the process of producing the reshaped human antibody.
  • the present invention further relates to a genetic engineering method for the production of a reshaped human antibody of mouse monoclonal antibody 0NS-M21 and a quinula antibody.
  • a human antibody a light chain comprising an L chain C region; and an L chain V region of a mouse monoclonal antibody ON S-M21 against the human medulloblastoma cell;
  • Human medulloblastoma comprising a human antibody H chain C region and a mouse monoclonal antibody against human medulloblastoma cells 0 NS—an H chain comprising the H chain V region of M21 Chimeric antibodies against cells, and
  • a reconstituted human light chain V region comprising:
  • the present invention also relates to L-chain or H-chain polypeptides constituting the various antibodies, and DNAs encoding them.
  • the present invention relates to an expression vector comprising the above-mentioned DNA and a host transformed with the expression vector.
  • the present invention further relates to a method for producing chimeric antibodies against human medulloblastoma cells and a method for producing reshaped human antibodies against human medulloblastoma cells.
  • the present invention also relates to a single-chain Fv region formed by linking the H chain V region of a reshaped human antibody to human medulloblastoma cells and the L chain V region of the monoclonal antibody.
  • the present invention further relates to a DNA encoding the single-stranded FV region, a recombinant vector comprising the DNA, and a host transformed by the recombinant vector.
  • the present invention still further relates to a method for producing a single-chain FV region, which comprises culturing the above-mentioned host and collecting a single-chain Fv region from the culture.
  • FIG. 1 shows the expression plasmids HE F—V L—g and HE F—VH—1 that comprise the human E F 1- ⁇ promoter Z enhancer, respectively, useful for the expression of L and H chains.
  • FIG. 2 is a graph showing the binding ability of the chimera ONS-M21 antibody (ChM21) to the human medulloblastoma cell line ONS-76.
  • FIG. 3 is a diagram showing the preparation of the first version (version “a”) of the reshaped human ONS—M21 antibody L chain V region.
  • Figure 4 shows a diagram of the production of the reshaped human ONS—M21 antibody V region.
  • FIG. 5 is a graph showing the binding ability of an antibody comprising a reconstituted human H chain and a chimeric L chain to the human medulloblastoma cell line ONS-76.
  • FIG. 3 is a graph showing the binding ability of the human medulloblastoma cell line ONS-76 to a chimeric antibody (ChM21).
  • FIG. 7 shows one of the versions “i”, “j”, “1”, “m”, “o” and “p” of the reshaped human H chain and the reshaped human L chain of the present invention.
  • the ability of the six reconstituted human 0N S-M21 antibodies to bind to the human medulloblastoma cell line ONS_76 was determined by using the chimeric antibody (ChM21) and the reconstituted L chain version.
  • FIG. 4 shows a comparison with an antibody having “k” and “n”.
  • FIG. 8 is a diagram schematically showing a process for preparing a single-stranded FV region of the present invention.
  • FIG. 9 shows the structure of an example of an expression plasmid used to express DNA encoding the single-chain FV region of the present invention.
  • FIG. 10 shows that the antigen binding activity of the single-chain FV region (scFV-hM21) of the present invention was determined by the reconstituted human 0NS-M21 antibody and the antigen binding of the Fab fragment of the antibody.
  • FIG. 3 is a graph showing, as an index, inhibition of antigen binding of mouse monoclonal antibody 0NS-M21 as compared to activity.
  • mRNA To clone DNA encoding the V region of a mouse monoclonal antibody against human medulloblastoma cells, mRNA must be prepared from mouse monoclonal antibody-producing cells, and then double-stranded by a known method. It is obtained by converting to cDNA and amplifying the target DNA using the polymerase chain reaction (PCR) method. As a source of this mRNA, it is necessary to produce a hybridoma that produces a monoclonal antibody against human medulloblastoma cells.
  • PCR polymerase chain reaction
  • the hybridoma cells were disrupted, treated with guanidine thiosinate, and then subjected to cesium chloride density gradient centrifugation (Chir gwin, JM et al., Biochemistry, 1 8, 5 2 9 4-5 2 9 9, 1 9 7 9)
  • Chir gwin, JM et al., Biochemistry, 1 8, 5 2 9 4-5 2 9 9, 1 9 7 A powerful method already used for cloning genes of other proteins, for example, the presence of ribonuclease inhibitors such as vanadium complex
  • Use a surfactant treatment and a phenol treatment below Boerger, S.L. et al., Biochemistry, 18, 51 143-51 149, 197 9). Can be.
  • the total RNA is made into type III, and the oligo (d) complementary to the p01yA chain at its 3 'end is obtained.
  • T) is treated with reverse transcriptase as a primer to synthesize single-stranded DNA (cDNA) complementary to all RNAs (Larrik, JW et al., Bio / Technology, ⁇ , 934). -9 3 8, 1 9 8 9).
  • a random primer may be used.
  • the cDNA was analyzed using the polymerase chain reaction (PCR) method. Perform specific amplification of the mouse antibody V region.
  • PCR polymerase chain reaction
  • primers described in Jones, ST. Et al., BioZ Technology, 9, 88-89, 1991 can be used.
  • H and L chains were typed to determine the primers used for cloning. It is necessary to decide the type.
  • the ON S—M 21 antibody was typed using a mouse monoclonal antibody isotyping kit (Amersham International p1c). The antibody was found to have a C-type light chain and a 7-1 C-type heavy chain. ⁇ Typing of NS—M21 is described later in Reference Example 2.
  • oligonucleotide primer Mae Kapa Variable; MKV
  • MKC oligonucleotide primer
  • the MKV primer hybridizes with a DNA sequence encoding a mouse kappa L chain leader sequence
  • the MK C primer hybridizes with a DNA sequence encoding a mouse kappa L chain C region.
  • oligonucleotide primers for amplification of the H chain V region of the mouse monoclonal antibody, 12 kinds of oligonucleotide primers (Mouse Heavy Variable; MHV) shown in SEQ ID NOS: 13 to 24 and SEQ ID NO: 25 Oligonucleotide primers (Mouse Heavylo Constant; MHC) is used as the 5'-end primer and 3 'one-end primer, respectively.
  • the 5'-terminal primer contains the sequence GTCGAC providing a restriction enzyme S a1I cleavage site near the 5'-terminal
  • the 3'-terminal primer is the 5'-terminal primer.
  • the one containing the nucleotide sequence CCCGGG that provides a restriction enzyme XmaI cleavage site near the end was used.
  • These restriction enzyme cleavage sites may be other restriction enzyme cleavage sites as long as they are used for subcloning the DNA fragment encoding the variable region into the cloning vector.
  • the amplified product was digested with restriction enzymes Sa1I and XmaI, and then subjected to low melting point agarose or column. Separate and purify using a kit for PCR product purification (such as .QIAGEN) and a kit for DNA purification (such as GENECLAN II).
  • a kit for PCR product purification such as .QIAGEN
  • a kit for DNA purification such as GENECLAN II.
  • an appropriate cloning vector such as a plasmid pUC19 is digested with the same restriction enzymes SaII and XmaI, and the DNA fragment is ligated to the pUC19 to obtain a mouse monoclonal antibody.
  • CDR Complementarity determining region
  • variable regions on the L and H chains form an antigen binding site.
  • the variable regions on the L and H chains are linked by four common, relatively conserved frameworks and three hypervariable or complementarity determining regions (CDRs). (Kabat, EA, et al., "Sequences of Proteinsof Immunological Internest," USD ept. Healthand Human Services 1983).
  • Most of the four framework regions (F R) have a —sheet structure, so that the three CDRs form a loop.
  • CDR may, in some cases, form part of a sheet structure.
  • the three CDRs are held sterically very close to each other by the FRs, and together with the three CDRs of the paired region contribute to the formation of the antigen binding site.
  • these CDR regions can be identified by Kabat, E.A., "Sequencesof This can be found from the empirical rule of "Proteins of Imm unological Interest", and is specifically described in Example 3.
  • Monoclonal antibody ONS Once the DNA fragments encoding the mouse L chain and H chain V regions of M21 have been cloned, these mouse V regions are combined with the DNA encoding the human antibody constant region. Linked and expressed Thus, a chimeric anti-human medulloblastoma cell antibody is obtained.
  • the basic method for producing chimeric antibodies is to combine the mouse leader sequence and V region sequence present in the cloned cDNA with the human antibody C already present in mammalian cell expression vectors. Linking the region to the coding sequence.
  • the human antibody C region can be any human L chain C region and human H chain C region, and examples thereof include human L chain C or H chain 11C and 7-4C, respectively. be able to.
  • DNA encoding a mouse L chain V region and a human L chain C region under the control of an expression control region such as an enhancer promoter system is used.
  • an expression vector comprising a DNA encoding a mouse H chain V region and a human H chain C region under an expression control region such as the Enhancer Z promoter system. I do.
  • host cells such as mammalian cells are co-transformed with these expression vectors, and the transformed cells are cultured in vitro or in vivo to produce quinula antibodies (eg, WO91).
  • the vector is transformed into a host cell using the vector, and the transformed host is cultured in vivo or in vitro to produce the desired chimeric antibody.
  • Mouse ONS DNA that encodes the M21 / c-type L chain Ligu region and V region is subcloned using PCR, and DNA that encodes the human genome L chain C c chain region is obtained.
  • the mouse ONS-M21 antibody y1 type H chain leader and V region linked to the expression vector The cDNA to be encoded is subcloned using the PCR method and ligated to an expression vector containing the genomic DNA encoding the human 7-1C region.
  • cDNAs encoding the V region of mouse ONS-M21 were introduced with appropriate nucleotide sequences at their 5'- and 3'-ends, They are designed to be easily inserted into an expression vector and to function properly in the expression vector (for example, the present invention is designed to increase the transcription efficiency by introducing a Kozak sequence).
  • the V region of mouse ONS-M21 obtained by PCR amplification using these primers was inserted into a HEF expression vector (Fig. 1) already containing the desired human C region. .
  • HEF expression vector Fig. 1
  • These vectors are suitable for transient (transient) or stable expression of engineered antibodies in various mammalian cell lines.
  • the chimera ONS—M21 antibody showed activity to bind to human medulloblastoma cells. Thus, it was shown that the correct mouse V region was cloned and sequenced.
  • the CDRs of the mouse monoclonal antibody have been transplanted into the human antibody.To produce reshaped human antibodies, there is high homology between the mouse monoclonal antibody FR and the human antibody FR. It is desirable. Therefore, the V regions of the L and H chains of the mouse ONS-M21 antibody were compared with the V regions of all known antibodies whose structures were elucidated using .ProteinDatBannk.
  • Mouse 0 NS—M21 L chain V region is most similar to the consensus sequence of human L chain V region subgroup IV (HSG IV), with 61, 9% homology .
  • Mouse L chain V region of S-M21 antibody is compared with known human antibody L chain V region, and human L chain V region is a member of subgroup I of human L chain V region.
  • the REI showed a 60.4% similarity. Therefore, REI FR was used as a starting material for the construction of the reshaped human ONS-M21 antibody L chain V region.
  • Tables 1 and 2 show the amino acid sequence of the L chain V region of mouse ON S-M21 antibody, FR and 16 versions of REI 0 NS-M21 antibody L chain V region. Show.
  • RVLp The underlined amino acid in REI FR is the amino acid sequence of human REI (Palm, W. et al., Hoppe — Seyler's, Z. Physiol. Chem. , 3556, 1667 — Indicates the position of amino acid different from 191, 1975).
  • the H-chain V region of mouse ONS-M21 is most similar to the consensus sequence of subgroup I (HSGI) of the human H-chain V region, with 57.9% homology.
  • the H-chain V region of the mouse ONS-M21 antibody was compared with known human antibody H-chain V regions, and FR1 through FR3 were members of the human H-chain V region subgroup I.
  • a certain human anti It was very similar to the H chain V region of the body Eu (Cunningham, B. J., et al., Biochemistry_9_, 3161, 1970).
  • the size of the CDRs was very similar between the mouse ON S-M21 antibody and the human antibody Eu.
  • the FR of the human antibody Eu was used as a starting material for the production of the V region of the H chain of the reshaped human 0NS-M21 antibody.
  • amino acid sequence of FR4 of human antibody Eu differs from the subgroup I consensus sequence of human antibody.
  • Human antibody ND in which the H chain V region belongs to subgroup I Keren, JH et al. Proc. Nat 1. Acad. Sci. USA, 79, 66, 61-66) It was decided to use the amino acid sequence of FR 4 of No. 5 (1982)).
  • the H chain V region of the reconstituted human 0 NS—M 21 antibody was designed. Amino acids at positions 27, 28, 29, 30 in human FR 1 and 94 in FR 3 were identical to those in mouse ONS-M21 .
  • an L chain comprising: a human L chain FR; and a mouse monoclonal antibody against human medulloblastoma 0 NS—an L chain V region of M 21 L chain V region comprising CDR; (B) (1) human H chain C region, and
  • H chain comprising a human H chain FR and an H chain V region comprising a mouse monoclonal antibody ONS-M 21 H chain V region CDR against human medulloblastoma;
  • the amino acid at position 46 of FR 2 in the L chain V region is proline, or the amino acid at position 42, 43, 46 is Those having an amino acid derived from mouse FR such as glutamine, serine, and proline are preferred, and more preferably, RVL i, RVL j, RVL 1, and RVL 1 in Tables 1 and 2 are preferable. It has the amino acid sequence of RVLm, RVLo, RVLp.
  • the human light chain C region can be any human light chain C region, eg, a human ⁇ C region; and the human heavy chain C region is any human heavy chain C region.
  • a toxin or radioisotope may be bound instead of the human L chain C region and / or the human H chain C region.
  • reshaped antibodies For the production of reshaped antibodies, two types of expression vectors, including DNA encoding the reshaped human light chain as defined above under the control of an expression control region, such as the Enhancer Z promoter system, are included. The resulting expression vector and another expression vector comprising DNA encoding a reshaped human H chain as defined above under an expression control region such as the Enhancer Z promoter system are prepared. Next, co-transformation of host cells, such as mammalian cells, using these expression vectors The transformed cells are then cultured in vivo or in vitro to produce the reshaped human antibody (eg, W091—16992).
  • an expression control region such as the Enhancer Z promoter system
  • the DNA encoding the reconstituted light chain and the DNA encoding the reconstituted human heavy chain are introduced into a single expression vector, and the vector is used to transform a host.
  • the transformed host cells are cultured in vivo or in vivo to produce the desired reshaped human antibody.
  • Fab or Fv, or single-chain FV linked to Fv can be produced in an appropriate host and used for the aforementioned purposes (for example, Bird et al., TIBTECH, 9_). , 1 3 2 — 1 3 7, (1 9 9 1)).
  • the transformant transformed with the gene encoding the desired chimeric antibody or humanized antibody is cultured, and the produced chimeric antibody or humanized antibody is intracellularly or intracellularly produced. It can be separated from outside the cell and purified to homogeneity.
  • the chimeric antibody or humanized antibody as the target protein of the present invention can be separated and purified using a protein A agarose column.
  • other separation / purification methods used for ordinary proteins may be used, and there is no limitation.
  • chimeric antibodies or humanized antibodies can be separated and purified by appropriately selecting and combining various types of chromatography, ultrafiltration, salting, dialysis and the like.
  • any expression system such as eukaryotic cells, such as animal cells, such as established mammalian cell lines, filamentous fungal cells , And yeast cells, as well as prokaryotic cells, such as bacterial cells, for example, E. coli cells.
  • eukaryotic cells such as animal cells, such as established mammalian cell lines, filamentous fungal cells , And yeast cells, as well as prokaryotic cells, such as bacterial cells, for example, E. coli cells.
  • the chimeric or reshaped antibodies of the invention are expressed in mammalian cells, such as COS cells or CH0 cells.
  • HCMV human cytomegalovirus promoter
  • promoters for gene expression in mammalian cells include retrovirus, polyoma virus, adenovirus, and simian virus 40 (SV).
  • a promoter derived from a mammalian cell such as a viral promoter such as 40
  • a polypeptide * such as a polypeptide, a chain, a fermentation factor, or a factor 1 (HEF-1) may be used.
  • the SV40 promoter when used, the method of Mulligan, RC et al. (Nature 2771 08-114 (19779)) or HEF-1
  • a promoter it can be easily carried out by following the method of Mizushima, S. et al. (Nucleic Acids Research, 18, 532, (1990)).
  • the origin of replication those derived from SV40, poliovirus, adenovirus, bovine papillomavirus (BPV) and the like can be used.
  • gene copy in a host cell system can be used. Because of the number amplification, the expression vector was selected as a selection marker for the phosphotransferase AP H (3 ') II or I (neo) gene, thymidine kinase (T K) gene, Escherichia coli xanthine-guanine phosphorolibosyltransferase (Ecogpt) gene, dihydrofolate reductase (DHFR) gene, and the like.
  • the present invention also provides a single-chain FV region formed by linking the H-chain V region and the L-chain V region of a reshaped human antibody to human medulloblastoma cells.
  • the H chain V region and the L chain V region are preferably linked via a linker, preferably via a peptide linker.
  • the H chain V region in the single chain F V region may be any of those described above as the H chain V region of the reshaped human antibody.
  • This H chain V region has an amino acid sequence defined below:
  • CDR2 Arglie Asp Pro Ala Asp Gly Asn Thr Lys Tyr Asp Pro Lys Phe Gin Gly
  • the L chain V region has an amino acid sequence defined as follows:
  • an H chain V region consisting of amino acid sequences of amino acid numbers 1 to 116 in the amino acid sequence described in SEQ ID NO: 80, and SEQ ID NO: 4 0, 43, 46, 47, 50, 51, 54, 55, 58, 61, 62, 63, 66, 69, 70 or 73
  • a single-chain FV region comprising an L-chain V region consisting of an amino acid sequence of amino acids 1 to 106 in the amino acid sequence described in Crab.
  • amino acid sequence of SEQ ID NO: 80 is described.
  • H-chain V region consisting of amino acid sequences from 1 to 1 16 in the amino acid sequence and amino acid sequences 1 to 1 in the amino acid sequence described in SEQ ID NO: 73
  • a single-chain FV region comprising an L-chain V region consisting of up to 06 amino acid sequences.
  • V regions are preferably connected by a peptide linker.
  • Peptide linkers include, for example, any single-chain FV region consisting of 12 to 19 amino acids. Specific examples include Gly Gly Gly Gly Ser Gly Gly Gly Gly Ser Gly Gly Gly Gly A peptide fragment consisting of Gly Gly Ser (SEQ ID NO: 90) is used.
  • SEQ ID NO: 89 An amino acid sequence as an example of the single-chain FV region is shown in SEQ ID NO: 89.
  • the single-chain FV region having this amino acid sequence is referred to as sc FV-hM21 in the present invention. This will be described in detail in Example 6.
  • DNA encoding the main chain FV region comprises DNA encoding the H chain or H chain V region of the reshaped human ONS—M21 antibody, which has already been described in detail.
  • Reshaped human ONS The DNA encoding the L chain or L chain V region of the M21 antibody is used as the chain type, and the DNA portion encoding the desired amino acid sequence in those sequences. Is obtained by PCR using a primer pair defining both ends thereof (in Example 6, a single strand comprising an H chain V region and an L chain V region version p).
  • the method for preparing DNA encoding the FV region is specifically described.
  • the method for preparing the amino acid sequence of purge ions a to o of the L chain V region and the DNA encoding the same are described in detail.
  • DNA can be the to produce that.
  • DNAs encoding single-chain FV regions are produced, an expression vector containing them and transformation by the expression vector are performed.
  • the transformed host can be obtained according to a conventional method, and a single-chain FV region can be obtained using the host according to a conventional method.
  • sc FV Humanized antigen-binding activity of hM21 ON S-M21 antibody and Fab fragment
  • scFv—hM21 showed the same binding inhibition ability as the Fab fragment.
  • the single-chain FV region has better translocation to tissues and tumors than wh01eIgG, and the scFV-hM21 constructed this time will be used for imaging by RI labeling in the future, and By combining with toxins and RI, it is expected to be used as a therapeutic agent.
  • the DNA encoding the variable region of mouse monoclonal antibody ONS-M21 against human medulloblastoma cells was cloned as follows. 1. Messenger RNA (mRNA) preparation
  • MRNA from Neubrydorma ONS—M21 was adjusted using FastTraccmRAIsolattiotKitVers 3.2 (manufactured by Invitrogen).
  • THECOPYKIT (Invit Rogen) was used to synthesize double-stranded cDNA.
  • the PCR method was performed using ThermalCycler (PerkInElmerCeTs).
  • the primers used in the PCR method are as follows: SEQ ID NOS: 1 to 11 that hybridize with the mouse kappa-type L chain leader sequence: ⁇ ⁇ (Mouse K appa Variable) primer (Jones, ST. B io T echnology, _9_, 8 8 — 8 9,
  • PCR solution 100 0 1 is 10 mM Tris — HC 1 (H 8.3), 50 mM KC 1, 0.1 mM d NTP s (d ATP, d GTP, d CTP, d TTP) , l. 5 mM M g C 1 2, 5 units of D NA poly main hydrolase Am pli T aq (P erkin E lmer C etus Co.), MK V primer shown in SEQ ID NO: 1 to 1 1 0. 1 M
  • One and 0.4 M of the MK C primer shown in SEQ ID NO: 12 and the double-stranded cDNAO.1 / g were amplified separately for each of the MK C 1-22 primers.
  • MHV Mae Heavy Variable primers 1 to 12 shown in SEQ ID NOS: 13 to 24 and MH C—Gl (Mouse H eavy Constant) Primer (J ones, ST The authors used Bio / Technology, _9_, 88-89, (1991)).
  • Amplification of cDNA was performed as described in 3. (1) above, except that amplification was performed using a mixture of 0.25 / M of each MHV primer and 2.5 / M of MHC-G1 primer.
  • the DNA fragment amplified by the PCR method as described above was purified by low-melting point agarose (manufactured by Sigma), and 10 mM Tris containing 10 mM MgCl 2 and 1 mM disthreitol was used.
  • Digestion was carried out in HC1 (H7.9) at 37 ° C for 3 hours using 5 units of restriction enzyme XmaI (New England Bio Labs).
  • the DNA fragment was digested with 40 units of the restriction enzyme Sa1I (Takara Shuzo) at 37 ° C. for 2 hours, and the resulting DNA fragment was digested with 1.5% low melting point agarose (Sigm a) (agarose gel electrophoresis).
  • a piece of agarose containing a DNA fragment of about 450 bp length was cut out, melted at 65 ° C for 5 minutes, and the same volume of 2 mM EDTA and 200 mM NaCl was added.
  • the contained 20 mM Tris-HCl (pH 7.5) was added.
  • the mixture was extracted with phenol and black hole form, and the DNA fragment was recovered by ethanol precipitation and dissolved in 10 mM Tris-HCl (pH 7.5) containing ImM EDTA.
  • DNA fragment containing a gene encoding a mouse brim-type L chain variable region and a DNA fragment containing a gene encoding a mouse H chain variable region were obtained. All of the above DNA fragments have a S a 1 I cohesive end at their 5'-end and an Xma I end at their 3'-end. Has cohesive ends.
  • the transformant was cultured overnight at 37 ° C. in 10 ml of 2 ⁇ YT medium containing 50 / g of ampicillin, and the culture was subjected to an anorecalization method (Molecular C 1). oning: AL aboratory Manual, Sambrook et al., Old Spring Harbor L aboratory Press, Plasmid DNA was prepared according to (1989).
  • a plasmid containing a gene encoding the mouse H chain V region derived from the hybridoma ONS—M21 was generated from the Sa1I-XmaI DNA fragment, and UC—M 2
  • the nucleotide sequence of the cDNA coding region in the plasmid was determined by using an automatic DNA sequencer (Appl ied B i os sy s t e m I n c) and T aq D y e D e x y T e r m i n a t o r
  • the nucleotide sequence was determined using CyclESecncingKit (manufactured by ApIiedBiosystemInc) according to the protocol specified by the manufacturer.
  • SEQ ID NO: 26 shows the nucleotide sequence of the gene encoding the L chain V region of the mouse ONS-M21 antibody contained in the plasmid pUC-M21-VL. Moreover, mice 0 NS contained in the positive Mi de p UC M 2 1-V H - shown in M 2 1 antibody H chain V region co one de the nucleotide sequence SEQ ID NO: 2 7 genes.
  • the overall structures of the V regions of the L and H chains are similar to each other, with each of the four framework parts being linked by three hypervariable regions, the complementarity determining regions (CDRs). ing.
  • the amino acid sequence of the framework is relatively well conserved, while the amino acid sequence in the CDR region is extremely variable (Kabat, EA, et al., “S'e quencesof P roteinsof I mmu no 1 ogica 1 Internest ”USD ept. Healthand Human Services, 1983).
  • the amino acid sequence of the variable region of the mouse monoclonal antibody against human medulloblastoma cells was applied to the amino acid sequence database of the antibody created by Kabat et al.
  • the CDR regions were determined as shown in Table 4 by examining the homology.
  • Back primer for L chain V region 0 NS—L722 S (SEQ ID NO: 28) and back primer for H chain V region ON S—H3.2S (SEQ ID NO: 29) are hybridized to the DNA encoding the beginning of the leader sequence of each V region and have a Kozak consensus sequence (Kozak, M. et al., J. Mo 1. Biol. 196.99.47- 950, 198 7) and a HindIII restriction site.
  • Forward primer for NS V region 0 NS—L722A (SEQ ID NO: 30) and forward primer for NS V region 0 NS -H3.2A (SEQ ID NO: 31) was designed to hybridize to the DNA sequence encoding the end of the J region and have a splice donor sequence and a BamHI restriction site.
  • the PCR product was purified using a 1.5% low melting point agarose gel, digested with Hind III and BamHI, and the L chain V region was converted to the HEF expression vector HEF—VL—g / c and the H chain The V region was cloned into the HEF expression vector HEF- VH -g, respectively.
  • the plasmids containing the DNA fragments having the correct DNA sequence were named HEF-M21L-g and HEF-M21H-gr1, respectively.
  • the expression vectors were tested in C0S cells to observe the transient expression of the Chimera ONS-M21 antibody.
  • ⁇ Cells were co-transformed by electroporation using HEF-M21L-g ⁇ and HEF-M21H-gylGene Pulser device (BioRad). Each D NA (1 0 g), was added to ⁇ Li Coat of 0. 8 ml of 1 X 1 0 7 cells Zml in PBS, and subjected to pulses of 1, 9 0 0 V, 2 5 F capacity .
  • Electroporation after a 10 minute recovery period at room temperature The cells thus obtained were added to a DMEM culture solution (manufactured by GIBCO) containing 10% ⁇ -globulin free fetal serum. 72 After incubation for 2 hours, the culture supernatant was collected, cell debris was removed by centrifugation, and a protein A agarose column (Affi-Gel) equilibrated with 5 volumes of binding buffer. Protein A MAPS II kit, BioRad). The column was washed with 15 volumes of binding buffer and then eluted with 5 volumes of elution buffer. The eluate was concentrated, and the buffer was changed to PBS using a microconcentrator (Centricon 100, manufactured by Amicon).
  • the Ce11-ELISA plate for antigen binding measurement was prepared as follows. 9 6-well plates in 1 0% ⁇ shea you containing calf serum R PM I culture by 1 X 1 0 6 human medulloblastoma cell lines ON S- 7 were adjusted to cells / ml 6 (T amu raeta 1., C ancer
  • Reconstituted human 0NS-M21 antibody L chain was prepared by CDR-grafting by the PCR method. This method is schematically shown in FIG. Eight PCR primers were used to generate a reshaped human antibody 0NS-M21 (version "a") having a FR from human antibody REI. External primers A (SEQ ID NO: 32) and H (SEQ ID NO: 33) were designed to hybridize with the DNA sequence of the HEF expression vector HEF—VL—gk.
  • CDR—Grafting primers B (SEQ ID NO: 34), C (SEQ ID NO: 35) and D (SEQ ID NO: 36) have a sense DNA sequence
  • CDR—Grafting primer E (SEQ ID NO: 37), F (SEQ ID NO: 38) and G (SEQ ID NO: 39) have antisense DNA sequences and correspond to the 5'-end DNA sequences of primers B, C and D, respectively. It has a complementary DNA sequence (23-35 bp).
  • PCR products A-E (2 18 bp), B-F (101 bp), C_G (13 1 bp) and D-H (147 bp) were converted to 1.5% low melting point agarose. It was purified using a gel and assembled in a second PCR. In the second PCR, 1 ⁇ g of the product of each first PCR and 98 ⁇ l of the PCR mixture containing 5 u of AmpIi Taq were added at 94 ° C for 2 minutes. Two cycles of incubation at 55 ° C for 2 minutes and at 72 ° C for 2 minutes were performed, and then 100 pmole of each external primer (A and H) was added. The PCR tube was covered with 50 nl of mineral oil and 30 cycles of PCR were performed under the same conditions as above.
  • the 5 16 bp DNA fragment generated by the second PCR was purified on a 1.5% low-melting point agarose gel, digested with BamHI and HindIII, and the resulting DNA fragment was subjected to HEF expression vector HEF. — V L — Cloned to gk. After DNA sequencing, reconstituted human ONS—M21 antibody Plasmid containing a DNA fragment encoding the correct amino acid sequence of the L chain V region of the HEF—RV L—M21a — Named gc. The amino acid sequence and base sequence of the L chain V region contained in this plasmid HEF-RVL-M21a-g are shown in SEQ ID NO: 40.
  • the version “b” of the reshaped human ONS—M21 antibody L chain V region was prepared by a mutagenesis method using PCR.
  • the mutagenic primers FTY-1 (SEQ ID NO: 41) and FTY-2 (SEQ ID NO: 42) were designed to mutate phenylalanine at position 71 to tyrosine.
  • Plasmid HEF—RV L—M21a_gc was type III, amplified using the above primers, purified, and digested with BamHI and Hindll. The obtained DNA fragment was cloned into a HEF expression vector HEF-VL-gc to obtain plasmid HEF-RVL-M21b-g / c.
  • SEQ ID NO: 43 shows the amino acid sequence and base sequence of the L chain V region contained in this plasmid HEF—RVL—M21b-gc.
  • Version “c” was designed to be a mutagenic primer, in which the tyrosine at position 87 was designed to mutate to phenylalanine; M21M2S (SEQ ID NO: 44) and M21M Using 2A (SEQ ID NO: 45), the plasmid HEF—RVL—M21a-g «was used as type I DNA and amplified by PCR, and plasmid HEF—RVL—M 2 1 c—g was obtained.
  • the amino acid sequence and base sequence of the L chain V region contained in this plasmid HE F—R V L—M 21 c-1 g c are shown in SEQ ID NO: 46.
  • Version "d” uses FTY-1 and FTY-2 and M21M2S and M21M2A as mutagenic primers, and plasmid HE F-RVL-M2 1a- gc Was used as type I DNA to obtain plasmid HEF-RVL-M2 1d-gc.
  • SEQ ID NO: 47 shows the amino acid sequence and the base sequence of the L chain V region contained in this plasmid HEF—RV L-M 21 d—g c.
  • Version “f” is plus HEF—RVL—M 21 c-g / c for Bam HI and H inf I, plus plus HEF—RVL—M 21 e—gc for Hindll And H inf I to obtain DNA fragments of 152 bp and 250 bp, respectively. These DNA fragments were separated and purified using a 15% low-melting point agarose gel, ligated, inserted into the HEF expression vector HEF-RVL-g /, and added to the plasmid HEF-RVL-M21f-. g / c was obtained. The amino acid sequence and the base sequence of the L chain V region contained in this plasmid HEF—RVL-M21f-1 g / c are shown in SEQ ID NO: 51.
  • Version “g” is M21M4S (SEQ ID NO: 52) and M21M4 designed as mutagenic primers so that the phenylalanine at position 73 is mutated to oral.
  • A SEQ ID NO: 53
  • SEQ ID NO: 54 was used to amplify the plasmid HEF — RVL—M21f1 g / c as type I DNA.
  • SEQ ID NO: 54 shows the amino acid sequence and base sequence of the L chain V region contained in this plasmid HEF-RVL-M21g-g.
  • Version “h” uses M21M4S and M21M4A as mutagenic primers and converts plasmid HEF—RVL—M21a-g ⁇ to type D Amplification was performed to obtain plasmid HEF-RVL-M21h-g / c.
  • This plasmid HEF — RVL— M 21 h — g / c contains the amino acid sequence and nucleotide sequence of the L chain V region in SEQ ID NO: 55 Shown in
  • Version "i” is a mutagenic primer in which lysine at position 42 is glutamine, alanine at position 43 is serine, and leucine at position 46 is proline.
  • plasmid M21M5S SEQ ID NO: 56
  • M21M5A SEQ ID NO: 57
  • SEQ ID NO: 58 shows the amino acid sequence and base sequence of the L chain V region contained in this plasmid HEF—RVL—M21i—g / c.
  • Version “k” uses M21M6S and M21M6A as mutagenic primers and converts plasmid HEF—RV L—M21-g ⁇ to type D Amplified as ⁇ to obtain plasmid HEF-RVL-M2 1k-1 g / c.
  • the amino acid sequence and base sequence of the L chain V region contained in this plasmid HE F—R V L—M 2 lk—g c are shown in SEQ ID NO: 62.
  • Version “1” is for plasmid HEF—RVL—M 21 a-g / c for BamHI and Sfa NI, and for plasmid HEF—RV L—M21 i—gc for Hind. After digestion with Ill and SfaNI, DNA fragments of 227 bp and 1669 bp were separated and purified. D obtained The NA fragment was ligated and inserted into the expression vector HEF-RVL_g / c to obtain plasmid HEF-RVL-M21_g / c. The amino acid sequence and the base sequence of the V region of the L chain contained in this plasmid HEF-RV L-M211 — g are shown in SEQ ID NO: 63.
  • Version “m” means that M21M5S, M21M5A and proline at position 8 are glutamic acid and serine at position 9 as mutagen primers.
  • M21M7S SEQ ID NO: 64
  • M21M7A SEQ ID NO: 65
  • Plasmid HEF-RVL-M21a-g was amplified as type I DNA to obtain plasmid HEF-RVL-M21m-g.
  • the amino acid sequence and base sequence of the L chain V region contained in this plasmid HEF—RVL—M2lm—gc are shown in SEQ ID NO: 66.
  • Version “n” was designed as a mutagenic primer so that lysine at position 42 is mutated to glutamic acid, and alanine at position 43 is mutated to serine. : 67) and M21M8A (sequence number: 68), and plasmid HEF—RVL—M21a—g was used as type II DNA to obtain plasmid HEF—RVL—M2. I n— gc was obtained. The amino acid sequence and base sequence of the L chain V region contained in this plasmid HEF—RVL—M2In—g / c are shown in SEQ ID NO: 69.
  • Version “oJ is for plasmid HEF—RVL—M2 lb—g for BamHI and BsrI, and for plasmid HEF—RVL—M21a—g / c for Hindlll and Bsr.
  • Each DNA fragment was separated and purified from each of the plasmids, and the resulting DNA fragments were ligated together and inserted into the expression vector HEF-VL-gc.
  • the plasmid HEF—RVL—M2lo—gc was obtained, and the L chain V region contained in this plasmid HEF—RVL—M21 o—g / c
  • the amino acid sequence and base sequence of the region are shown in SEQ ID NO: 70.
  • Plasmid HEF-RVL-M21a-g ⁇ was used as type I DNA using M9A (SEQ ID NO: 72), and plasmid HEF-RVL-M21p-gc was used. Obtained.
  • the amino acid sequence and the nucleotide sequence of the L chain V region contained in this plasmid HEF—RVL-M21p—g / c are shown in SEQ ID NO: 73.
  • the DNA encoding the reshaped human ONS-M21 antibody H chain V region was designed as follows. DNA sequences encoding FRs 1-3 of human antibody Eu and FR4 of human antibody ND were converted to V regions (Kabat, EA, et al., US Dept. Health and Human Services). , U S. G overnment P rinting • Employees, designed based on “codonusage” in 1991, and connecting to the mouse ONS-M21 antibody H chain V region CDR coding DNA sequence. As a result, a full-length DNA encoding the reshaped human 0 NS—M 21 antibody H chain V region was designed.
  • the DNA sequence designed in this way is divided into four oligonucleotides. Then, in the oligonucleotides that may interfere with the assembly of these oligonucleotides. A secondary analysis of the secondary structure was performed.
  • oligonucleotide sequences are shown in SEQ ID NOs: 74-77. These oligonucleotides have a length of 11 to 13 bases and an overlap region of 23 to 26 bp.
  • VH2 SEQ ID NO: 74
  • RVH4 SEQ ID NO: 75
  • R R
  • VH3 (SEQ ID NO: 77) has an antisense DNA sequence.
  • Figure 4 shows a method for assembling these four oligonucleotides by the PCR method. (See Fig. 4)
  • a 98 81 PCR mixture containing 10 ng of each of the four oligonucleotides and 5 u of AmpIiTaq was subjected to an initial denaturation at 94 ° C for 2 minutes. Thereafter, two cycles of incubation at 94 ° C for 2 minutes, 55 ° C for 2 minutes and 72 ° C for 2 minutes were performed ⁇ 100 pmole RH P After adding 1 (SEQ ID NO: 78) and RHP2 (SEQ ID NO: 79) as external primers, cover the PCR tubes with 50 a1 mineral oil and at 94 ° C. After an initial denaturation of 1 minute, perform 38 cycles of 1 minute at 94, 1 minute at 55 ° C and 1 minute at 72 ° C, and then at 72 ° C. Incubated for 10 minutes.
  • HEF- V H - cloned g ⁇ 1 did.
  • HEF-RVH-M21-r1 The amino acid sequence and base sequence of the H chain V region contained in M21-gr1 are shown in SEQ ID NO: 80.
  • VH-M2 1-gr1 and chimera ONS—M2 1 antibody light chain The COS cells were trans-transfected as described above with the current HEF-M21L-gr1 and the antibody product was recovered as described above. And subjected to antigen binding assay.
  • Fig. 5 shows the results. As shown in Fig. 5, antigen binding between the chimeric antibody (ChM21) as a positive control and the antibody (ChL / RVH) consisting of the reconstituted H chain and chimeric L chain It was confirmed that there was no difference in gender.
  • the antibodies with iJ, j, 1J, m, o, and PJ L chain versions are the chimera ONS—M21 antibodies that are positive controls.
  • (ChM21) showed a good antigen-binding property comparable to that of (ChM21), suggesting that this combination forms a functional antigen-binding site in the human antibody. No antigen-binding activity was found for the antibodies having "" and "n” (see Figure 7).
  • Example 6_ Creation of single-chain FV (scFv) region of reconstituted human ONS-M21 antibody
  • DNA encoding a linker region consisting of Gly Gly Gly Gly Ser was designed as follows. DNA sequence encoding the linker region (Huston, J.S. et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 85, 587-9-5 883, (19) 8 8)) A 5 bp DNA sequence encoding the 5 amino acid residue at the C-terminus of FR 4 of the H chain V region on the 5'- A 15 bp DNA sequence encoding the 5 amino acid residues at the N-terminus of the FR1 region was added to the 5'-side and 3 ' 'A HindIII recognition site and an EcoRI recognition site were added to one side.
  • the two oligonucleotide sequences are shown in SEQ ID NOs: 81 and 82, respectively. These oligonucleotides are 84 bases in length and have an 81 bp overlap region.
  • the samples were incubated at 7 ° C overnight, and annealing was performed.
  • the DNA annealed as described above was ligated to a PUC19 vector prepared by digesting with HindHI and EcoRI. After DNA sequencing, the plasmid containing the DNA fragment with the correct DNA sequence was named pUC-scFv-5.
  • a single-chain FV region of the reconstituted human ONS—M21 antibody was prepared as follows. Reconstituted human 0 NS—M21 antibody H chain V region and linker region, and reconstituted human ONS—M21 antibody L chain V region are amplified by PCR and ligated. As a result, a single-chain FV region of reconstituted ONS—M21 antibody was prepared. This method is schematically shown in FIG. Six PCR primers (AE) were used to generate the single chain Fv region of the reconstituted human 0NS-M21 antibody. Primers A, C and E have a sense sequence and primers B, D and F have an antisense sequence.
  • the backward primer for the heavy chain V region, SCP1, hybridizes to DNA encoding the N-terminus of the heavy chain V region and has an Ncol recognition site. Designed to.
  • the forward primer SCP 2 (primer B, SEQ ID NO: 84) for the H chain V region hybridizes to the DNA encoding the C-terminus of the H chain V region and overlaps with the linker Designed to be.
  • the backward primer for the linker, SCP 3, hybridizes to the DNA encoding the N-terminus of the linker and binds to the C-terminus of the H chain V region. Designed to overlap with the DNA to be loaded.
  • the forward primer SCP4 (primer D, SEQ ID NO: 86) for the linker hybridizes to the DNA encoding the C-terminus of the linker and encodes the N-terminus of the V region of the light chain. Over DN A It was designed to wrap.
  • the posterior primer SCP 4 (primer E, SEQ ID NO: 87) for the L chain V region hybridizes to the DNA encoding the C-terminus of the linker and binds the N-terminus of the L chain V region. It was designed to overlap the coding DNA.
  • the forward primer WS4-2 (primer F, SEQ ID NO: 88) for the L chain V region hybridizes to the DNA encoding the C terminal of the L chain V region and encodes the FLAG peptide. (Hopp, T.P. et al., Bio / Technology, 6, 1204-122, 198 88), with two transcription stop codons and an Ec0RI recognition site. It was designed as follows.
  • the first PCR stage three reactions, AB, CD, and EF, were performed, and each PCR product was purified.
  • the three PCR products obtained from the first PCR were assembled by their own complementarity.
  • primers A and F were added to amplify the full-length DNA encoding the single-chain FV region of the reconstituted human ONS-M • 21 antibody (second PCR.).
  • plasmid HEF—RVH—M21-g71 (see Example 5) encoding the reshaped human ONS—M21 antibody H chain V region was used.
  • the PCR products A—B (382 bp), C—D (92 bp), and E_F (366 bp) were purified using a 1.5% low melting point agarose gel and subjected to a second PCR. Assembled. In the second PCR, 1 ⁇ g of each of the products of the first PCR as a ⁇ type, and a 98 z1 PCR mixture containing 5 u of Amp1i Taq were added at 94 ° C. Two cycles of incubation for 2 minutes, 2 minutes at 55 ° C and 2 minutes at 72 ° C, then 10Opmole of primers A and F, respectively, were added.
  • the PCR tube was covered with 50 a1 of mineral oil, and 30 cycles of PCR were performed at 94 ° C for 1 minute, 55 ° C for 1 minute, and 72 ° C for 2 minutes ( No. 1).
  • the 7667 bp DNA fragment generated by PCR was purified on a 1.5% low melting point agarose gel, digested with NcoI and Ec0RI, and the obtained DNA fragment was cloned into the expression vector PSCFVT7.
  • the expression vector pSCFVT7 is a pe 1B signal sequence (Lei, SP et al., J. B acterio 1 ogy, 1669, 4379, 4379-43) suitable for the E. coli periplasmic secretion expression system.
  • the reconstituted human ONS-M21 antibody contains a DNA fragment that encodes the correct amino acid sequence of the single-chain FV region.
  • the plasmid was named p SCFVT 7 — h M 21. (See Figure 9.) Reconstituted human 0 NS—M 21 antibody single chain contained in this plasmid PSCFVT 7 — h M 21 Amino acid sequence of FV region And the base sequence is shown in SEQ ID NO: 89.
  • This transformant was transformed into an LB medium containing 1% glucose and 50 ng / ml of ampicillin (Molecular Cloning: AL aboratory Manual, Sambrook, Old Spring Harbor Laboratory). The cells were cultured overnight at 37 ° C. in 30 ml of ress, (1 899). Next, it was diluted 100-fold with LB medium containing 50 g / ml of ampicillin, and cultured at 37 ° C. 6 When the absorbance at 50 nm reaches about 0.3, add is 0 pr 0 py 1 thio 1-thio-yS-D-ga 1 actoside. (IP TG) so that the final concentration becomes 0.5 mM. And induced expression of the T7 promoter.
  • Reconstituted human ONS-M21 antibody single-chain FV region using mouse monoclonal monoclonal 0N S—M21 antibody to inhibit antigen binding The original binding activity was measured. After blocking the Ce11-ELISA plate prepared as described above, reconstituted human NS with serial dilutions with mouse monoclonal ONS-M21 antibody at a concentration of 500 ngZml. Single-chain FV region of M21 antibody, reconstituted human ONS- M21 antibody and Fab fragment prepared from reconstituted human ONS-M21 antibody are added to each well, and incubated and washed at room temperature. After that, alkaline phosphatase-conjugated goat anti-mouse IgG antibody (ZYMED) was added. After incubation and washing, the substrate solution was added, and then the absorbance at 405 nm was measured.
  • ZYMED alkaline phosphatase-conjugated goat anti-mouse IgG antibody
  • the single-chain FV region of reconstituted human ONS-M21 antibody was inhibited by about 1Z10 compared to the reconstituted human ONS-M21 antibody (hM21). Although the activity was reduced, it showed the same level of inhibitory activity as the Fab fragment (hM21-Fab) prepared from the reconstituted human ONS-M21 antibody (see Fig. 10). .
  • Escherichia coli having the plasmid HEF—RVL—M21p—g is Escherichiacoli DH5a (HEF—RVL—M21p—gc) and plasmid HEF—RVH—M21—.
  • E. coli containing gr1 was submitted to Escherichiacoli DH5a (HEF-RVH-M21-g ⁇ l) at the Institute of Biotechnology and Industrial Technology (1-3-1-3 Higashi, Tsukuba-shi, Ibaraki Prefecture). On January 18, 2013, they were deposited under the Budapest Treaty as FE RM BP-44472 and FE RM BP-44471, respectively.
  • Hypridoma which produces anti-human medulloblastoma cell monoclonal antibodies, was obtained from spleen cells of mouse and myeloma cells P3U1 which were immunized with human medulloblastoma cells ONS-76. was prepared by fusing with a conventional method using polyethylene glycol. Screening was performed using the activity of binding to the medulloblastoma cell line ONS-76 as an index to establish Hypridoma 0 NS-M21 (Moriuchi, S. et al., Br. J, Cancer , 6 8, 8 3 1-8 3 7 (1 9 9 3))).
  • Sequence type nucleic acid
  • Sequence type nucleic acid
  • Sequence type nucleic acid
  • Sequence type nucleic acid
  • Sequence type nucleic acid
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  • Sequence type nucleic acid
  • Sequence type nucleic acid
  • Sequence type nucleic acid
  • Sequence type nucleic acid
  • Sequence type nucleic acid
  • Sequence type nucleic acid
  • Sequence type nucleic acid Number of chains: single strand
  • Sequence type nucleic acid
  • Sequence type nucleic acid
  • Sequence type nucleic acid
  • Sequence type nucleic acid
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Description

明 細 書 ヒ ト髄芽腫細胞に対する再構成ヒ ト抗体 技術分野
本発明は、 ヒ ト髄芽腫細胞に対するマウスモノ クローナル抗体 0 N S -M 2 1の可変領域 （V領域） と ヒ ト抗体の定常領域 （C領域） とから成る ヒ ト /マウスキメ ラ抗体、 ヒ ト軽鎖 （L鎖） V領域及び ヒ ト重鎖 （H鎖） V領域の相補性決定領域 （C DR) がヒ ト髄芽腫 細胞に対するマウスモノ クロ一ナル抗体 ON S— M 2 1の CDRに より置き換えられている再構成 （ r e s h a p e d) ヒ ト抗体およ びそれらの抗体を構成する L鎖または H鎖に関する。
本発明はさ らに、 上記の抗体特にその V領域をコ一 ドする DNA を提供する。 本発明はさ らに、 前記 DN Aを含んで成るベクター、 特に発現ベクター、 並びに該ベクターにより形質転換された宿主に 関する。 本発明はさ らに、 七 ト髄芽腫細胞に対するキメ ラ抗体の製 造方法、 及びヒ ト髄芽腫細胞に対する再構成ヒ ト抗体の製造方法を 提供する。
本発明はまた、 ヒ ト髄芽腫細胞に対する再構成ヒ ト抗体の H鎖 V 領域と該抗体の L鎖 V領域とを連結して成る一本鎖 F V領域に関す る。 本発明はまた、 該一本鎖 F V領域をコー ドする DN A、 該 DN Aを含んで成る組換えべクター、 該組換えべクターにより形質転換 された宿主、 及び該宿主を用いる、 前記一本鎖 F V領域の製造方法 に関する。 背景技術
髄芽腫は、 グリォーマと共に脳腫瘍の 4 0 %を占める、 原始神経 外胚葉性腫瘍の一つであり、 1 0才未満の小児、 特に、 5〜 1 0才 の間で好発する悪性脳腫瘍である。 この腫瘍は胎生期の髄質上皮お よび基質層を構成する未分化な細胞の形態と配列のパターンを模倣 する代表的な未分化腫瘍であり、 神経細胞とグリァ細胞の両方に分 化する可能性を持つ未成熟な腫瘍であるとされている （T a m u r a , Kら、 C a n c e r R e s . , 4 9 : 5 3 8 0 - 5 3 8 4 ( 1 9 8 9 ) ) 。 このような悪性脳腫瘍は、 放射線、 化学療法剤に 感受性を示すことから、 放射線療法および化学療法、 さ らには外科 的療法が治療と して行われる。
しかしながら、 これらの治療法では、 一時的な症状の緩解はみら れるものの、 数年以内に再発死亡するものが多く、 平均生存日数は 1 5 力月である。 この原因は再発ガンが化学療法剤、 放射線に耐性 を持つようになるためであると考えられている。
一方、 脳腫瘍の正確な判断は、 組織学的手法に負う ところが大き く、 非常に高度な専門的知識と補助的診断技術が必要である。
従って、 早期に診断し、 根本的な治療をするための診断薬、 治療 薬の開発が急務とされている。
従来においても、 いくつかの髄芽腫を認識するモノ クローナル抗 体による治療の試みがされている （K e m s h e a d , J . T. ら I n t . J . C a n c e r , 3 1 , 1 8 7 - 1 9 5 ( 1 9 8 3 ) 、 A l l a n, P. M. ら、 I n t . J . C a n c e r , 3 1， 5 9 1 - 5 9 8 ( 1 9 8 3 ) 、 J o n e s , D. ら、 B r . J . H e m a t o 1. , 5 7 , 6 2 1 - 6 3 1 ( 1 9 8 4 ) 、 G r o s s , N ら、 C a n c e r R e s . , 4 6 , 2 9 9 8 - 2 9 9 4 ( 1 9 8 6 ) 、 W i k s t r a n d， C. D. ら、 C a n c e r R e s . 4 6 , 5 9 3 3 - 5 9 4 0 ( 1 9 8 6 ) , G i b s o n , F . M. ら、 I n J . C a n c e r , 3 9， 5 5 4 - 5 5 9 ( 1 9 8 7 ) F e i c k e r t , H . J . ら、 C a n c e r R e s . ， 4 9， 4 3 3 8 - 4 3 4 3 ( 1 9 8 9 ) 、 J e n n i n s , M. T. ら- J . N e u r o l . S c i . ， 8 9 , 6 3 - 7 8 ( 1 9 8 9 ) 、 T a k a h a s h i , H . ら N e u r o s u r g. ， 2 7，' 9 7 — 1 0 2 ( 1 9 9 0 ) を参照） 。
しかしながら、 これらの抗体のほとんどは、 正常組織や他の腫瘍 をも認識するために、 髄芽腫の診断 · 治療薬と しては不適である等 の問題がある。
最近、 ヒ トグリオ一マに反応し、 A D C C活性を示すヒ ト由来の モノ ク ローナル抗体を用いた脳腫瘍の免疫療法 （特開昭 5 8 — 2 0 1 9 9 4、 特開昭 5 9 — 1 3 7 4 9 7、 特開平 4 — 3 4 6 7 9 2を 参照） が報告されている。
マウスのモノ グローナル抗体はヒ トにおいて高度に免疫原性 ( 「抗原性」 という場合もある） があり、 そしてこの理由のため、 ヒ トにおけるそれらの療法的価値は制限される。 さ らに、 マウス抗 体は、 予定された効果を妨害するのみならず、 患者における不都合 なァレルギ一応答の危険をもたらす免疫応答を惹起することなく し て頻回投与することはできない。
これらの問題を解決するため、 ヒ ト型化 （h um a n i z e d) 抗体の製造方法が開発された。 マウス抗体は 2つの方法でヒ ト型化 することができる。 より簡単な方法は、 可変領域がもとのマウスモ ノ ク ローナル抗体に由来しそして定常領域が適当なヒ ト抗体に由来 するキメ ラ抗体を作製する方法である。 得られるキメ ラ抗体はもと のマウス抗体の完全な可変領域を含有し、 そしてもとのマウス抗体 と同一の特異性をもって抗原に結合することを期待することができ る 0
さ らに、 キメ ラ抗体ではヒ ト以外に由来する蛋白質配列の比率が 実質的に減少しており、 そしてそれ故にもとのマウス抗体に比べて 免疫原性が低いと予想される。 キメラ抗体は抗原によ く結合しそし て免疫原性が低いが、 マウス可変領域に対する免疫応答がなお生ず る可能性がある （ L o B u g l i o , A. F . ら、 P r o c . N a t 1 . A c a d . S c i . U S A, 8 8 , 4 2 2 0 - 4 2 2 4 , 1 9 8 9 ) o
マウス抗体をヒ ト型化するための第二の方法は一層複雑であるが- しかしマウス抗体の潜在的な免疫原性をさらに大幅に低下させるも のである。 この方法においては、 マウス抗体の可変領域からの相補 性決定領域 ( c o m p l e m e n t a r i t y d e t e r m i n i n g r e g i o n ; C D R) をヒ ト抗体可変領域に移植して 「再構成」 （ r e s h a p e d ) ヒ ト抗体可変領域を作製する。 次に、 これらの再構成ヒ ト可変領域をヒ ト抗体定常領域に連結す る。 最終的に再構成されたヒ ト型抗体のヒ ト以外の蛋白質配列に由 来する部分は C D Rと極く一部のフ レームワーク （F R) のみであ る。 C D Rは超可変蛋白質配列により構成されている。 これらは種 特異的配列を示さない。 これらの理由のため、 マウス C D Rを担持 する再構成ヒ ト抗体はもはやヒ ト C D Rを含有する天然ヒ ト抗体よ り強い免疫原性を有しないはずである。
再構成ヒ ト抗体についてはさらに、 R i e c hm a n n, L . ら N a t u r e , 3 3 2 , 3 2 3 - 3 2 7 , 1 9 8 8 ; V e r h o e y e n, . ら、 S c i e n c e , 2 3 9 , 1 5 3 4 - 1 5 3 6 , 1 9 8 8 ; K e t t l e b o r o u g h, C . A. ら、 P r o t e i n E n g n g . 4 , 7 7 3 - 7 8 3 , 1 9 9 1 ； M a e d a . H ら、 H u m a n A n t i b o d i e s a n d H y b r i d o m a , 2 , 1 2 4 - 1 3 4 , 1 9 9 1 ； G o r m a n , S . D . ら P r o c . N a t l . A c a d . S c i . U S A, 8 8 , 4 1 8 1
訂正された用紙 (M 91) — 4 1 8 5， 1 9 9 1 ； T e m p e s t , P. R . ら、 B i o /T e c h n o l o g y , _9_, 2 6 6 - 2 7 1 , 1 9 9 1 ； C o , M.
5. ら、 P r o c . N a t l . A c a d . S c i . U S A, 8 8 , 2 8 6 9 — 2 8 7 3， 1 9 9 1 ； C a r t e r , P. ら、 P r o c . N a t l . A c a d. S c i . U S A, 8 9 , 4 2 8 5 - 4 2 8 9 , 1 9 9 2 ; C o . M. S. ら、 J . I mm u n o l . 1 4 8 , 1 1
4 9 - 1 1 5 4 , 1 9 9 2 ; 及び S a t o , K. ら、 C a n c e r R e s . 5 3， 8 5 1 — 8 5 6， 1 9 9 3を参照のこと。
前記のごと く 、 再構成ヒ ト抗体は治療目的のために有用であると 予想されるが、 ヒ ト髄芽腫細胞に対する再構成ヒ ト抗体は知られて いない。 さ らに、 再構成ヒ ト抗体の製造方法であって任意の特定の 抗体に普遍的に適用 し得る方法は存在しない。 従って、 特定の抗原 に対して十分に活性がある再構成ヒ 卜抗体を作製するためには種々 の工夫が必要である （例えば、 S a t o , K. ら C a n c e r R e s . ^ 3 , 1 — 6 ( 1 9 9 3 ) ) 。
• 本発明者等は、 髄芽腫患者の小脳より髄芽腫細胞株 （O N S— 7
6 ) を分離 · 確立した （T a m u r a， K. ら、 C a n c e r R e s . ， 4 9， 5 3 8 0 — 5 3 8 4 ( 1 9 8 9 ) ) 。 そして、 該髄 芽腫細胞株 0 N S - 7 6をマウスに免疫することにより ヒ ト髄芽腫 を特異的に認識するが、 正常な脳組織と末梢血球細胞とは交差反応 しないマウスモノ ク ローナル抗体 （ON S— M 2 1 ) を見い出した (M o r i u c h i , S . ら B r . J . C a n c e r , 6 8， 8 3 1 - 8 3 7 ( 1 9 9 3 ) ) 。 本抗体が認識する抗原は髄芽腫をはじ め一部のグリォーマ等の脳腫瘍に強く発現していることより、 本抗 体の診断薬と しての利用、 さ らには A D C C, C D Cの誘導あるい は トキシ ン、 ラ ジオァイ ソ トープ結合体による癌細胞の直接の破壊 が期待される。 発明の開示
従って、 本発明はヒ ト髄芽腫細胞に対するマウスモノ ク ローナル 抗体 ON S— M 2 1の再構成ヒ ト抗体に関する。 本発明はまた、 該 再構成ヒ ト抗体の作製の過程で有用なヒ ト マウスキメ ラ抗体を提 供する。 本発明はさ らに、 マウスモノ ク ローナル抗体 0 N S— M 2 1の再構成ヒ ト抗体並びにキヌ ラ抗体の製造のための遺伝子工学的 方法に関する。
具体的には、 本発明は、
( 1 ) ヒ ト髄芽腫細胞に対するマウスモノ ク ローナル抗体 ON S -M 2 1の L鎖 V領域 ； 並びに
( 2 ) ヒ ト髄芽腫細胞に対するマウスモノ ク ローナル抗体 0 N S -M 2 1の H鎖 V領域、 または
( 1 ) ヒ ト抗体. L鎖 C領域、 及び前記ヒ ト髄芽腫細胞に対するマ ウスモノ ク ローナル抗体 ON S—M 2 1の L鎖 V領域を含んで成る 丄鎖 ； 並びに
( 2 ) ヒ ト抗体 H鎖 C領域、 及びヒ ト髄芽腫細胞に対するマウス モノ クローナル抗体 0 N S— M 2 1の H鎖 V領域を含んで成る H鎖 を含んで成る、 ヒ ト髄芽腫細胞に対するキメ ラ抗体、 さ らには、
( 1 ) ヒ ト抗体 L鎖 V領域のフ レームワーク領域 （F R) 、 及び
(2 ) ヒ ト髄芽腫細胞に対するマウスモノ ク ローナル抗体 ON S -M 2 1の L鎖 V領域の CDR、
を含んで成る、 再構成ヒ ト L鎖 V領域 ； 並びに
( 1 ) ヒ ト抗体 H鎖 V領域の F R、 及び
(2 ) ヒ ト髄芽腫細胞に対するマウスモノ クローナル抗体 0 N S — M 2 1の H鎖 V領域の C D R、
を含んで成る、 再構成ヒ ト H鎖 V領域から構成されるヒ ト髄芽腫細 胞に対するマウスモノ ク ローナル抗体 ON S - M 2 1の再構成ヒ ト 抗体に関する。
本発明はまた、 前記種々の抗体を構成する L鎖または H鎖のポ リ ペプチ ド、 およびそれらをコー ドする DNAに関する。
さ らに、 本発明は、 上記 DN Aを含んで成る発現べクタ一および それら発現ベクターにより形質転換された宿主に関する。
本発明はさ らにまた、 ヒ ト髄芽腫細胞に対するキメ ラ抗体の製造 方法、 及びヒ ト髄芽腫細胞に対する再構成ヒ ト抗体の製造方法に関 する。
本発明はまた、 ヒ ト髄芽腫細胞に対する再構成ヒ ト抗体の H鎖 V 領域と該モノ クローナル抗体の L鎖 V領域とを連結して成る一本鎖 F v領域に関する。
本発明はさ らに、 上記一本鎖 F V領域をコー ドする DNA、 該 D N Aを含んで成る組換えべクタ一、 及び該組換えべクターにより形 質転換された宿主に関する。
本発明はさ らに、 上記の宿主を培養し、 該培養物から一本鎖 F v 領域を採取することを特徴とする、 一本鎖 F V領域の製造方法に関 する。 図面の簡単な説明
図 1は、 それぞれ L鎖および H鎖の発現のために有用な、 ヒ ト E F 1 一 αプロモーター Zェンハンサーを含んでなる発現プラスミ ド HE F— V L— g および HE F— VH— 1を示す。
図 2は、 キメ ラ ON S— M2 1抗体 （ C h M 2 1 ) のヒ ト髄芽腫 細胞株 ON S— 7 6に対する結合能を示すグラフである。
図 3は、 再構成ヒ ト ON S— M 2 1抗体 L鎖 V領域の第 1バ一ジ ヨ ン （バージョ ン 「 a」 ） の作製ダイヤグラムである。
図 4は、 再構成ヒ ト ON S— M 2 1抗体 V領域の作製のダイャグ ラ ムである。
図 5は、 再構成ヒ ト H鎖とキメ ラ L鎖からなる抗体のヒ ト髄芽腫 細胞株 ON S— 7 6に対する結合能を示すグラフである。
図 6は、 再構成ヒ ト H鎖と再構成ヒ ト L鎖のバージ ョ ン 「 a」 か ら 「h」 の内一つとからなる 8種類の再構成ヒ ト ON S— M 2 1抗 体のヒ ト髄芽腫細胞株 ON S— 7 6に対する結合能を、 キメ ラ抗体 ( C h M 2 1 ) と比較して示す図である。
図 7は、 本発明の再構成ヒ ト H鎖と再構成ヒ ト L鎖のバージョ ン 「 i」 ， 「 j」 ， 「 1」 ， 「m」 ， 「o」 および 「p」 の内一つと からなる 6種類の再構成ヒ ト 0N S— M 2 1抗体のヒ ト髄芽腫細胞 株 ON S _ 7 6に対する結合能を、 キメ ラ抗体 （C hM 2 1 ) と再 構成 L鎖バージ ョ ン 「k」 および 「n」 を有する抗体と比較して示 - す図である。
図 8は、 本発明の一本鎖 F V領域をコー ドする. D N Aの作製過程 を模式的に示す図である。
図 9は、 本発明の一本鎖 F V領域をコー ドする DN Aを発現させ るために使用する発現プラス ミ ドの一例の構造を示す。
図 1 0は、 本発明の一本鎖 F V領域 （ s c F V - h M 2 1 ) の抗 原結合活性を、 再構成ヒ ト 0 N S— M 2 1抗体及び該抗体の F a b 断片の抗原結合活性と比較して、 マウスモノ クローナル抗体 0NS 一 M 2 1の抗原結合に対する阻害を指標と して示すグラフである。 具体的な説明
マゥス抗体 V領域をコ一ドする DNAのクロ一二ング
ヒ ト髄芽腫細胞に対するマウスモノ クローナル抗体の V領域をコ 一ドする D N Aをクローン化するためには、 マウスモノ ク ローナル 抗体産生細胞から mR N Aを調製した後、 既知の方法により二本鎖 c DNAに変換し、 ポ リ メ ラーゼ連鎖反応 （P C R) 法を用いて、 目的とする DNAを増幅するこ とで得られる。 この mRNAの供給 源と して、 ヒ ト髄芽腫細胞に対するモノ ク 口一ナル抗体を生産する ハイプリ ドーマを作製することが必要である。 この様なハイプリ ド 一マと して、 0 N S— M 2 1を挙げることができる。 ハイプリ ドー マ ON S— M 2 1の作製方法を参考例 1 に後記する。
( 1 ) 全 R N Aの採取
本発明において、 全 RN Aを採取するため、 ハイプリ ドーマ細胞 を破壊し、 グァニジンチオシァネー ト処理後、 塩化セシウム密度勾 酉己遠心を行った (C h i r gw i n, J. M. ら、 B i o c h e m i s t r y , 1 8 , 5 2 9 4 - 5 2 9 9 , 1 9 7 9 ) 力く、 すでに他 の蛋白質の遺伝子をクローニングする際に用いられた方法、 例えば バナジウム複合体等のリボヌ ク レアーゼイ ンヒ ビタ一存在下に界面 活性剤処理、 フ ヱ ノ ール処理を行う （B e r g e r, S . L. ら、 B i o c h e m i s t r y, 1 8 , 5 1 4 3— 5 1 4 9， 1 9 7 9 ) 方法を用いることができる。
( 2 ) 二本鎖 c D N Aの採取
上記の如く して得た全 RN Aから一本鎖 DN Aを得るには、 全 R N Aを铸型にして、 その 3 ' 末端にある p 0 1 y A鎖に相補的なォ リ ゴ （d T) をプライマーと して逆転写酵素で処理して全 RN Aに 相補的な一本鎖 DNA (c DNA) を合成する （L a r r i k, J. W. ら、 B i o/T e c h n o l o g y, 丄， 9 3 4 - 9 3 8 , 1 9 8 9 ) ことができる。 また、 その時に、 ラ ンダムプライマーを用 いてもよい。
( 3) ポリ メ ラーゼ連鎖反応 （P C R) 法によるマウス抗体 V領 域の増幅
次にポリ メ ラーゼ連鎖反応 （P CR) 法を用いて前記 c DNAか らマウス抗体 V領域の特異的増幅を行う。 マウス抗体 V領域の増幅 には、 J o n e s , S . T. ら B i oZT e c h n o l o g y, 9， 8 8— 8 9， 1 9 9 1 に記載されているプライマ一を用いることが できる。 ハイプリ ドーマ ON S— M 2 1が産生するマウスモノ ク ロ —ナル抗体 ON S— M 2 1のク ローニングに用いるプライマーを決 定するにあたり、 H鎖および L鎖のタイ ビングをして両鎖の型を決 める必要がある。
マウスモノ ク ローナル抗体ァイ ソ タイ ピングキッ ト （アマシャム イ ンタ一ナシ ョ ナル p 1 c社製） を用いて、 ON S— M 2 1抗体の タイ ピングを行った結果、 ON S— M 2 1抗体は C 型 L鎖および 7 - 1 C型の H鎖を有することが明らかになった。 〇 N S— M 2 1 のタイ ピングについて参考例 2に後記する。
次に、 ポリ メ ラーゼ連鎖反応 （ P C R) 法を用いてマウスモノ ク 口一ナル抗体のカ ッパ （ Λ ) 型 L鎖 V領域を増幅するため、 配列番 号 ： 1〜 1 1 に示す 1 1種のオリ ゴヌ ク レオチ ドプライマー （Mo u s e K a p a V a r i a b l e ; MKV) 及び配列番号 ： 1 2に示すオリ ゴヌ ク レオチ ドプライマー （Mo u s e K a p p a C o n s t a n t ； MKC) をそれぞれ 5 ' —末端プライマー 及び 3 ' —末端プライマーと して使用する。
前記 MKVプライマーはマウスカ ッパ型 L鎖リーダー配列をコー ドする D N A配列とハイブリ ダィズし、 そして前記 MK Cプライマ 一はマウスカ ッパ型 L鎖 C領域をコー ドする D N A配列とハイプリ ダイズする。
マウスモノ クローナル抗体の H鎖 V領域の増幅のため、 配列番号 1 3〜 2 4に示す 1 2種のオリ ゴヌ ク レオチ ドプライマー （Mo u s e H e a v y V a r i a b l e ; MHV) 及び配列番号 ： 2 5に示すオリ ゴヌ ク レオチ ドプライマー （Mo u s e H e a v y l o C o n s t a n t ； M H C ) をそれぞれ 5 ' —末端プライマー及び 3 ' 一末端プライマ一と して使用する。
なお、 本実施例では 5 ' —末端プライマ一はその 5 ' —末端近傍 に制限酵素 S a 1 I切断部位を提供する配列 G T C GA Cを含有し、 そして 3 ' —末端プライマーはその 5 ' —末端近傍に制限酵素 Xm a I切断部位を提供するヌ ク レオチ ド配列 C C C GG Gを含有する ものを使用している。 これらの制限酵素切断部位は可変領域をコー ドする目的の D N A断片をク ローニングべクターにサブクロ一ニン グするために用いられる限り、 他の制限酵素切断部位でもよい。 次に、 マウスモノ ク ローナル抗体の目的とする可変領域をコ一ド する DNA断片を得るために、 増幅生成物を制限酵素 S a 1 I及び Xm a Iで切断した後、 低融点ァガロースまたはカラム 〔P C R産 物精製用キッ ト （.Q I A G E N等） 、 D N A精製用キッ ト （G E N E C L E AN II等） など〕 により、 分離 · 精製を行う。 他方、 ブラ ス ミ ド p U C l 9のごとき適当なクローニングベクターを同じ制限 酵素 S a I I及び Xm a Iにより切断させ、 この p UC l 9に前記 DNA断片を連結することにより、 マウスモノ クローナル抗体の目 的とする可変領域をコー ドする DN A断片を含むプラスミ ドを得る t クローン化された DNAの配列決定は任意の常法例えば、 自動 D NAシークェンサ一 (A p p l i e d B i o s y s t e m s I n c . 製） を用いて行う ことができる。
目的とする DNAのクローン化及びその配列決定を実施例 1及び 2に具体的に記載する。
相補性決定領域 （C DR)
L鎖及び H鎖の各対の V領域は抗原結合部位を形成する。 L鎖及 び H鎖上の可変領域は共通性のある比較的保存された 4個のフ レー ムワークと 3個の超可変又は相補性決定領域 （ C D R) により連結 されている （K a b a t , E . A. ら、 「 S e q u e n c e s o f P r o t e i n s o f I mm u n o l o g i c a l I n t e r e s t」 ， U S D e p t . H e a l t h a n d H u m a n S e r v i c e s 1 9 8 3 ) 。
前記 4個のフ レームワーク領域 （F R) の多く の部分は —シー ト構造をとり、 その結果 3個の C D Rはループを形成する。 C D R はある場合には —シー ト構造の一部分を形成することもある。 3 個の C D Rは F Rによって相互に立体的に非常に近い位置に保持さ れ、 そして対をなす領域の 3個の C D Rと共に抗原結合部位の形成 に寄与する。
これらの C D R領域は、 得られた抗体の V領域のァ ミ ノ酸配列と 既知抗体の V領域の既知ア ミ ノ酸配列とを照合することによって、 K a b a t , E . A. 、 「 S e q u e n c e s o f P r o t e i n s o f I mm u n o l o g i c a l I n t e r e s t」 の経験則から見出すことができ、 実施例 3において具体的に説明す る。
キメ ラ抗体の作製
ヒ ト髄芽腫細胞に対する抗体の再構成ヒ ト V領域を設計するに先 立って、 使用する C D Rが実際に抗原結合領域を形成することを確 かめる必要がある。 この目的のため、 キメ ラ抗体を作製した。 さ ら に実施例 1 に記載されるモノ クローナル抗体 O N S -M 2 1のクロ ーン化された D NAのヌ ク レオチ ド配列から推定されるマウス抗ヒ ト髄芽腫細胞抗体のァ ミ ノ酸配列を既知のマウス及びヒ トの抗体の V領域と比較した。
モノ ク ローナル抗体 ON S— M 2 1のマウス L鎖及び H鎖 V領域 をコー ドする D N A断片がクロ一ニングされれば、 これらのマウス V領域をヒ ト抗体定常領域をコー ドする D N Aと連結して発現させ ることによってキメ ラ抗ヒ ト髄芽腫細胞抗体が得られる。
キメ ラ抗体を作製するための基本的な方法は、 ク ローン化された c D NAに存在するマウスリ一ダ一配列及び V領域配列を、 哺乳類 細胞発現ベク ター中にすでに存在するヒ ト抗体 C領域をコ一 ドする 配列に連結することを含んで成る。
前記ヒ ト抗体 C領域は任意のヒ ト L鎖 C領域およびヒ ト H鎖 C領 域であることができ、 例えばヒ ト L鎖 C あるいは H鎖ァ 一 1 Cや 7 - 4 Cを各々挙げることができる。
キメ ラ抗体の製造のためには 2種類の発現べクター、 すなわちェ ンハンサー プロモーター系のごとき発現制御領域による制御のも とでマウス L鎖 V領域及びヒ ト L鎖 C領域をコー ドする D NAを含 んで成る発現べクタ一、 並びにェンハンサー Zプロモーター系のご とき発現制御領域のもとでマウス H鎖 V領域及びヒ ト H鎖 C領域を コー ドする D NAを含んで成る発現ベクターを作製する。 次に、 こ れらの発現ベクターにより哺乳類細胞のごとき宿主細胞を同時形質 転換レ、 そして形質転換された細胞をイ ンービ トロ又はイ ンービボ で培養してキヌ ラ抗体を製造する （例えば WO 9 1 - 1 6 9 2 8 ) £ あるいは、 マウス L鎖 V領域及びヒ ト L鎖 C領域をコー ドする D N A並びにマウス H鎖 V領域及びヒ ト H鎖 C領域をコー ドする D N Aを単一の発現べクターに導入し、 そして該ベクターを用いて宿主 細胞を形質転換し、 次にこの形質転換された宿主をィ ン—ビボ又は イ ンービ トロで培養して目的とするキメ ラ抗体を生産させる。
キメ ラ抗体の作製を実施例 4に記載する。
マウス O N S— M 2 1 /c型 L鎖リ一グー領域及び V領域をコー ド する c D NAを P C R法を用いてサブクローンし、 ヒ トゲノム L鎖 C c鎖領域をコー ドする D NAを含有する発現べクターに連結する, マウス O N S— M 2 1抗体の y 1型 H鎖リーダー及び V領域をコー ドする c DNAを、 P C R法を用いてサブク ロー ン化し、 ヒ ト 7 — 1 C領域をコー ドするゲノ ム DN Aを含有する発現べクターに連結 する。
特に設計された P C Rプライマ一を用いて、 マウス ON S— M 2 1の V領域をコー ドする c D N Aをそれらの 5 ' —及び 3 ' —末端 において適当な塩基配列を導入して、 それらが発現ベクターに容易 に挿入されるように、 且つそれらが該発現べクター中で適切に機能 するようにした （例えば、 本発明では K o z a k配列の導入により 転写効率を上げるように工夫されている） 。 次に、 これらのプライ マーを用いて P CRにより増幅して得たマウス ON S— M 2 1の V 領域を、 所望のヒ ト C領域をすでに含有する H E F発現ベクター (図 1 ) に挿入した。 これらのベクターは、 種々の哺乳類細胞系に おける遺伝子操作された抗体の一過性 （ t r a n s i e n t ) 発現 又は安定な発現のために適当である。
キメ ラ ON S— M 2 1抗体はヒ ト髄芽腫細胞に結合する活性を示 した。 従って正しいマウス V領域がクローン化されそして配列が決 定されていたことが示された。
再構成ヒ ト ON S— M 2 1抗体 V領域の設計
マウスモノ クローナル抗体の CD Rがヒ ト抗体に移植されている 再構成ヒ ト抗体を作製するためには、 マウスモノ クローナル抗体の F Rとヒ ト抗体の F Rとの間に高い相同性が存在することが望ま し い。 従って、 マウス ONS— M 2 1抗体の L鎖及び H鎖の V領域を. P r o t e i n D a t a B a n kを用いて構造が解明されてい るすべての既知抗体の V領域と比較した。
マウス 0 N S— M 2 1の L鎖 V領域はヒ ト L鎖 V領域のサブグル ープ IV (H S G IV) のコ ンセンサス配列に最も類似しており、 6 1 , 9 %の相同性が存在する。 マウス ON S— M 2 1抗体の L鎖 V領域は既知ヒ ト抗体 L鎖 V領 域との比較において、 ヒ ト L鎖 V領域のサブグループ Iの 1構成員 である ヒ ト L鎖 V領域 R E I に 6 0. 4 %の類似性を示した。 従つ て、 再構成ヒ ト ON S— M 2 1抗体 L鎖 V領域の作製のための出発 材料と して R E Iの F Rを使用 した。
再構成ヒ ト ON S— M 2 1抗体 L鎖 V領域の 1 6のバージ ョ ン 「 a」 〜 「 p」 を設計した。 第一のパージ ョ ン （バ一ジ ヨ ン 「 a」 ） においては、 ヒ ト F Rは再構成ヒ ト CAMPATH— 1 H抗体中に 存在する R E Iに基く F R (R i e c h m a n n， L . ら、 N a t u r e 3 3 2 , 3 2 3 - 3 2 7 , ( 1 9 8 8 ) ) (WO 9 2 - 1 9 7 ) 9に記載の再構成ヒ 卜 P M— 1の L鎖 V領域のバージョ ン 「 a」 と同一であり、 そしてマウス C DRはマウス ON S—M 2 1 抗体の L鎮 V領域中の CD Rと同一と した。
表 1， 2は、 マウス ON S— M 2 1抗体の L鎖 V領域、 R E Iの F R及び 1 6バージョ ンの再構成 0 N S— M 2 1抗体の L鎖 V領域 のァ ミ ノ酸配列を示す。
表 1 再構成ヒト O N S— M 2 1 L鎖 V領域の設計
FR1 CDR1 FR2 CDR2
1 2 3 4 5
12345678901234567890123 45678901234 567890123456789 0123456
0NS-M21VL DI VMTQSQKFMSTSVGDRVSVTC KASQNVGTNVA WYQQKPGQSPKPLIY SASYRYS
RE1 DIQMTQSPSSLSASVGDRVTITC WYQQKPGKAPKLLIY
RVLa DIQMTQSPSSLSASVGDRVTITC KASQNVGTNVA WYQQKPGKAPKLLIY SASYRYS
RVLb
RVLc
s s s
RVLd トトト
RVLe SV
RVLf SV
RVLg -SV—
RVLh
RVLi -QS-P
RVLj -QS-P
RVLk
RVLI SV— QS-P
RVLm QS-P
RVLn QKF ^QS—
RVLo :—— QS-P
RVLp P
表 2 再構成ヒト ONS— M2 1 L鎖 V領域の設計 （続き）
FR3 CDR3 FR4
1
6 7 8 9 0
78901234567890123456789012345678 901234567 8901234567
0NS-M21VL GVPDRFTGSGSGTDFTLTITNVQSEDLADYFC QQYNSYPRA FGGGTKLEIK
RE1 GVPSRFSGSGSGTDFTFT I SSLQPED I ATYYC FGQGTKVE I K
RVLa GVPSRFSGSGSGTDFTFレレレT I SSLQPED I ATYYC QQYNSYPRA FGQGTKVE IK
RVLb Y
RVLc ： F-
RVLd γ F-
RVLe
RVLf -— F-
RVLg — F-
RVLh
RVLi — F-
RVLj -D-F-
RVLk -D-F-
RVLI
RVLm
RVLn
RVLo
RVLp 注 ： R E I の F R中の下線を付したア ミ ノ酸はヒ ト R E I のア ミ ノ酸配列 （P a l m， W. ら、 H o p p e — S e y l e r ' s， Z . P h y s i o l . C h e m. , 3 5 6 , 1 6 7 — 1 9 1， 1 9 7 5 ) とは異なるア ミ ノ酸の位置を示す。
マウス O N S— M 2 1 の H鎖 V領域はヒ ト H鎖 V領域のサブグル ープ I (H S G I ) のコンセンサス配列に最も類似しており、 5 7. 9 %の相同性が存在する。 マウス O N S— M 2 1抗体の H鎖 V領域 は既知のヒ ト抗体 H鎖 V領域との比較において、 F R 1 から F R 3 までは、 ヒ ト H鎖 V領域のサブグループ I の 1構成員であるヒ ト抗 体 E uの H鎖 V領域 （C u n n i n g h am, B . J. ら、 B i o c h e m i s t r y _9_, 3 1 6 1， 1 9 7 0 ) に非常に類似して いた。 さ らには、 C DRのサイズもマウス ON S— M 2 1抗体と ヒ ト抗体 E uとの間で非常に類似していた。
このため、 ヒ ト抗体 E uの F Rを、 再構成ヒ ト 0 N S— M 2 1抗 体の H鎖 V領域の作製のための出発材料と して用いた。
しかしながら、 ヒ ト抗体 E uの FR 4のァ ミ ノ酸配列は、 ヒ ト抗 体のサブグループ I コ ンセ ンサス配列と異つた配列を有しているた めに、 今回 F R 4に関してはヒ ト H鎖 V領域がサブグループ I に属 するヒ ト抗体 ND (K e n t e n, J. H. らヽ P r o c. N a t 1. A c a d. S c i . U. S. A. ， 7 9 , 6 6 6 1 — 6 6 6 5 ( 1 9 8 2 ) ) の FR 4のァ ミ ノ酸配列を用いることと した。
再構成ヒ ト 0 N S— M 2 1抗体の H鎖 V領域を設計した。 ヒ ト F R 1中の 2 7位、 2 8位、 2 9位、 3 0位および F R 3中の 9 4位 のア ミ ノ酸をマウス ONS— M 2 1のア ミ ノ酸と同一と した。
表 3 再構成ヒ ト ON S— M 2 1 H鎖 V領域の設計 FR1 CDR1 FR2
1 2 3 4
123456789012345678901234567890 12345 67890123456789
0NS-M21VH EVQLQQSGAELVKPGASVKLSCTASGFNIK DTYIH WAKQRPEQGLEWIG
EU QVQLVQSGAEVKKPGSSVKVSCKASGGTFS WVRQAPGQGLEW G
RVHa QVQLVQSGAEVKKPGSSVKVSCKASGFNIK DTYIH WVRQAPGQGLEWMG
CDR2 FR3
5 6 7 8 9
01223456789012345 67890123456789012222345678901234
A ABC
0NS-M21VH RIDPADGNTKYDPKFQG KATITADTSSNTAYLQLSSLTSEDTAVYYCAS EU RVTITADESTNTAYMELSSLRSEDTAFYFCAG
RVHa RIDPADGNTKYDPKFQG RVTITADESTNTAYMELSSLRSEDTAFYFCAS
CDR3 FR4
1 1
0 1
56789012 34567890123.
0NS-M21VH AYYVNQDY WGQGTSVTVSS
EU
ND WGQGTTVTVSS
RVHa AYYVNQDY WGQGTTVTVSS
再構成ヒ ト O N S— M 2 1抗体の作製
再構成ヒ ト ON S— M 2 1抗体 V領域の作製を実施例 5 に具体的 に BC載する。
本発明の再構成ヒ ト O N S— M 2 1抗体は、
(A) ( 1 ) ヒ ト L鎖 C領域、 及び
( 2 ) ヒ ト L鎖 F R、 及びヒ ト髄芽腫に対するマウスモノ クローナル抗体 0 N S— M 2 1 の L鎖 V領域 C D Rを含んで成る L 鎖 V領域、 を含んで成る L鎖 ； 並びに ( B ) ( 1 ) ヒ ト H鎖 C領域、 及び
( 2 ) ヒ ト H鎖 F R、 及びヒ ト髄芽腫に対するマウスモノ ク ロ一ナル抗体 O N S— M 2 1 の H鎖 V領域 C D Rを含んで成る H 鎖 V領域、 を含んで成る H鎖 ；
から構成される。
特定の抗原に対して十分に活性がある再構成ヒ ト型化抗体を作成 するために、 前記ヒ ト F Rのァ ミ ノ酸配列の一部を置換することが 望ま しい。
好ま しい態様においては、 前記 L鎖 V領域の F R 2の 4 6位のァ ミ ノ酸がプロ リ ンであること、 または、 4 2， 4 3， 4 6位のア ミ ノ酸が各々、 グルタ ミ ン、 セリ ン、 プロ リ ンの如きマウス F R由来 のア ミ ノ酸を有するものがよく、 さ らに好ま しく は、 表 1 、 表 2 に 於ける R V L i , R V L j , R V L 1， R V L m, R V L o , R V L pのァ ミ ノ酸配列を有するものである。
前記ヒ ト L鎖 C領域は任意のヒ ト L鎖 C領域であることができ、 例えばヒ ト κ C領域であり ； そして前記ヒ ト H鎖 C領域は任意のヒ ト H鎖 C領域であることができ、 例えばヒ ト ァ— 1 C領域、 ヒ ト ァ - 4 C領域等である。 あるいは、 前記ヒ ト L鎖 C領域および/また は前記ヒ ト H鎖 C領域のかわりに トキシン、 ラジオアイ ソ トープを 結合させてもよい。
再構成抗体の製造のためには、 2種類の発現ベクター、 すなわち ェンハンサー Zプロモーター系のごとき発現制御領域による制御の もとに前に定義した再構成ヒ ト L鎖をコー ドする D N Aを含んで成 る発現ベクター、 及びェンハンサー Zプロモーター系のごとき発現 制御領域のもとに前に定義した再構成ヒ ト H鎖をコー ドする D N A を含んで成るもう一つの発現ベクターを作製する。 次に、 これらの 発現べクターを用いて哺乳類細胞のごとき宿主細胞を同時形質転換 し、 そ してこの形質転換された細胞をイ ン一 ビボ又はイ ン一 ビ ト ロ で培養して再構成ヒ ト抗体を生産せしめる （例えば、 W0 9 1 — 1 6 9 2 7 ) o
あるいは、 再構成 L鎖をコ一 ドする D N A及び再構成ヒ ト H鎖を コー ドする D N Aを単一の発現ベクターに導入し、 そしてこのべク ターを用いて宿主を形質転換し、 次にこの形質転換された宿主細胞 をイ ン一ビボ又はイ ン一ビ ト口で培養して目的とする再構成ヒ ト抗 体を生産せしめる。
さ らには、 F a bあるいは F vを、 または F vを連結させたシ ン グルチェイ ン F Vを適当な宿主で産生させ、 前述の目的に使用する ことができる （例えば B i r d等、 T I B T E C H, 9_, 1 3 2 — 1 3 7 , ( 1 9 9 1 ) を参照） 。
以上のようにして目的とするキメ ラ抗体あるいはヒ ト型化抗体を コー ドする遺伝子で形質転換した形質転換体を培養し、 産生したキ メ ラ抗体あるいはヒ ト型化抗体は、 細胞内または細胞外から分離し 均一にまで精製することができる。
なお、 本発明の目的蛋白質であるキメ ラ抗体あるいはヒ ト型化抗 体の分離 ' 精製を、 プロテイ ン Aァガロースカラムを用いて行う こ とができる。 また、 その他に、 通常の蛋白質で用いられる分離 · 精 製方法を使用すればよく、 何ら限定されるものではない。 例えば各 種クロマ トグラフィ ー、 限外濾過、 塩折、 透析等を適宜選択、 組合 せれば、 キメ ラ抗体あるいはヒ ト型化抗体は分離 · 精製することが できる。
ヒ ト髄芽腫細胞に対する本発明のキメ ラ抗体又は再構成ヒ ト抗体 の製造のために任意の発現系、 例えば真核細胞、 例えば動物細胞、 例えば樹立された哺乳類細胞系、 真糸状菌細胞、 及び酵母細胞、 並 びに原核細胞、 例えば細菌細胞、 例えば大腸菌細胞等を使用するこ とができる。 好ま し く は、 本発明のキメ ラ抗体又は再構成抗体は哺 乳類細胞、 例えば C O S細胞又は C H 0細胞中で発現される。
これらの場合、 哺乳類細胞での発現のために有用な常用のプロモ 一夕一を用いることができる。 例えば、 ヒ ト · サイ トメガロウィル ス刖期 (h u m a n c y t om e g a l o v i r u s i m m e d i a t e e a r l y ; H CMV) プロモーターを使用するのが 好ま しい。 H CMVプロモータ一を含有する発現ベクターの例には- H C M V - V H - H C r 1 , H C M V - V L _HCK 等であって、 p S V 2 n e oに由来するもの （国際公開出願 W09 2— 1 9 7 5 9参照） が含まれる。
また、 その他に、 本発明のために用いることのできる哺乳動物細 胞における遺伝子発現のプロモータ一と してはレ トロウイルス、 ポ リ オ一マウィルス、 アデノ ウイルス、 シ ミ ア ンウィルス 4 0 ( S V 4 0 ) などのウィルスプロモーターゃヒ ト * ポリペプチ ド . チェ一 ン . ェロ ンゲーシ ヨ ン . フ ァ ク ター 1 な （HE F— 1 な ） などの哺 乳動物細胞由来のプロモーターを用いればよい。 例えば S V 4 0の プロモーターを使用する場合は、 Mu l l i g a n， R. C . らの 方法 （N a t u r e 2 7 7 1 0 8 - 1 1 4 ( 1 9 7 9 ) ) 、 ま た、 HE F— 1 プロモーターを使用する場合は、 M i z u s h i m a , S . らの方法 （N u c l e i c A c i d s R e s e a r c h， 1 8 , 5 3 2 2， ( 1 9 9 0 ) ) に従えば容易に実施するこ とができる。
複製起原と しては、 S V 4 0、 ポリオ一マウィルス、 アデノ ウィ ルス、 牛パピローマウィルス （B PV) 等の由来のものを用いるこ とができ、 さ らに宿主細胞系中での遺伝子コピー数増幅のため、 発 現べクタ一は選択マ一カーと して、 ホスホ トラ ンスフェラーゼ AP H ( 3 ' ) IIあるいは I (n e o) 遣伝子、 チミ ジンキナーゼ （T K ) 遺伝子、 大腸菌キサンチンーグァニンホスホリ ボシル トラ ンス フ ェラ一ゼ （ E c o g p t ) 遺伝子、 ジヒ ドロ葉酸還元酵素 （D H F R) 遺伝子等を含むことができる。
本発明はまた、 ヒ ト髄芽腫細胞に対する再構成ヒ ト抗体の H鎖 V 領域と L鎖 V領域とを連結して成る一本鎖 F V領域を提供する。 こ の F Vポリべプチ ドにおいて H鎖 V領域と L鎖 V領域は好ま しく は リ ンカ一、 好ま しく はペプチ ドリ ンカ一を介して連結されている。 一本鎖 F V領域における H鎖 V領域は、 再構成ヒ ト抗体の H鎖 V 領域と して前記記載したもののいずれであってもよい。 この H鎖 V 領域は、 下記に定義されるァ ミ ノ酸配列 ：
CDR1 ： Asp Thr Tyr He His
CDR2： Arg lie Asp Pro Ala Asp Gly Asn Thr Lys Tyr Asp Pro Lys Phe Gin Gly
CDR3： Ala Tyr Tyr Val Asn Gin Asp Tyr
またはその一部から成る 3個の C D R、 および 4個の F Rを含む。 また、 L鎖 V領域は、 下記に定義されるア ミ ノ酸配列 ：
CDR1 ： Lys Ala Ser Gin Asn Val Gly Thr Asn Val Ala
CDR2： Ser Ala Ser Tyr Arg Tyr Ser
CDR3： Gin Gin Tyr Asn Ser Tyr Pro Arg Ala
またはその一部から成る 3個の C D R、 および 4個の F Rを含む。 具体例と して、 配列番号 ： 8 0 に記載のァ ミ ノ酸配列中のァ ミ ノ 酸番号 1 から 1 1 6 までのアミ ノ酸配列から成る H鎖 V領域と、 配 列番号 ： 4 0， 4 3 , 4 6 , 4 7， 5 0， 5 1 , 5 4 , 5 5 , 5 8 , 6 1， 6 2， 6 3， 6 6 , 6 9， 7 0又は 7 3の内のいずれかに記 載のァ ミ ノ酸配列中のァ ミ ノ酸番号 1 から 1 0 6 までのァ ミ ノ酸配 列から成る L鎖 V領域を含んで成る一本鎖 F V領域が挙げられる。
また、 好ま しい 1 例と して配列番号 ： 8 0 に記載のァ ミ ノ酸配列 中のア ミ ノ酸番号 1から 1 1 6までのア ミ ノ酸配列から成る H鎖 V 領域と配列番号 ： 7 3に記載のァ ミ ノ酸配列中のァ ミ ノ酸番号 1か ら 1 0 6までのア ミ ノ酸配列から成る L鎖 V領域とを含んで成る一 本鎖 F V領域が挙げられる。
これらの V領域は好ま しく はペプチ ドリ ンカ一により連結されて いる。 ペプチ ドリ ンカ一と しては、 例えばア ミ ノ酸 1 2〜 1 9個か ら成る任意の一本鎖 F V領域が挙げられるが、 具体的な一例と して Gly Gly Gly Gly Ser Gly Gly Gly Gly Ser Gly Gly Gly Gly Ser (配列番号 ： 9 0 ) から成るペプチ ド断片が用いられる。
一本鎖 F V領域の一例のァ ミ ノ酸配列を配列番号 ： 8 9に示し、 このア ミ ノ酸配列を有する一本鎖 F V領域を、 本発明において s c F V - h M 2 1 と称し、 実施例 6において詳細に説明する。
本発明 ©—本鎖 F V領域をコー ドする DN Aは、 すでに詳細に説 明した再構成ヒ ト ON S— M 2 1抗体の H鎖、 又は H鎖 V領域をコ — ドする D N A、 及び再構成ヒ ト ONS— M 2 1抗体の L鎖、 又は L鎖 V領域をコー ドする DNAを鎖型と し、 それらの配列の内の所 望のア ミ ノ酸配列をコー ドする DNA部分を、 その両端を規定する プライマー対を用いて P CR法により増幅することにより得られる ( 実施例 6において、 H鎖 V領域と、 L鎖 V領域バージ ョ ン pとを含 んで成る一本鎖 F V領域をコー ドする DN Aの作製方法を具体的に 記載するが、 L鎖 V領域のパージヨ ン a〜oのァ ミ ノ酸配列及びそ れをコ一ドする DNAの作製方法が詳細に記載されているから、 そ れらにバージョ ン pにおいて用いた方法を適用することにより、 本 発明の種々の一本鎖 F V領域をコー ドする D N Aを作製することが できる。
また、 一旦一本鎖 F V領域をコー ドする DN Aが作製されれば、 それらを含有する発現べクタ一、 及び該発現べクターにより形質転 換された宿主は常法に従って得ることができ、 また、 その宿主を用 いて常法に従って、 一本鎖 F V領域を得ることができる。 これらの 具体例を実施例 6に詳細に記載する。
0 N S - 7 6細胞に対するマウス ON S— M 2 1抗体の結合阻害 能を指標にして s c F V — hM 2 1の抗原結合活性をヒ ト型化 ON S -M 2 1抗体、 および F a b断片と比較した結果、 s c F v— h M 2 1 は F a b断片と同等の結合阻害能を示した。 以上より、 オリ ジナルの抗体と同程度のァフィ二ティ ーを持つ一本鎖 F V領域の構 築に成功した。
一般に、 一本鎖 F V領域は wh 0 1 e I g Gに比べ組織、 腫瘍 への移行性が優れており、 今回構築した s c F V - h M 2 1 は今後 R I標識によるィメージングへの利用、 および トキシン、 R I と結 合させる事により治療薬と しての利用が期待される。 実施例
次に、 本発明を下記の実施例により具体的に説明するが、 これに より本発明の範囲が限定されるものではない。
実施例 1. ヒ ト髄芽腫細胞に対するマウスモノ ク ローナル抗体の V領域をコー ドする DNAのクローン化
ヒ ト髄芽腫細胞に対するマウスモノ クローナル抗体 ON S— M 2 1の可変領域をコー ドする DNAを次の様にしてク ローン化した。 1. メ ッセンジャー RNA (mR N A) 整
ノヽイブリ ドーマ ON S— M 2 1からの mRNAを、 F a s t T r a c k mR A I s o l a t i o n K i t V e r s i o n 3. 2 ( I n v i t r o g e n社製） を用いて調整した。
2. 二本鎖 c D N Aの合成
約 4 gの m R N Aよ り T H E C O P Y K I T ( I n v i t r o g e n社製） を用いて二本鎖 c D N Aを合成した。
3. 抗体可変領域をコー ドする遺伝子の P C R法による増幅
T h e r m a l C y c l e r (P e r k i n E l m e r C e t u s社） を用いて P C R法を行なった。
( 1 ) マウス L鎖 V領域をコー ドする遺伝子の増幅
P C R法に使用するプライマーは、 マウスカ ッパ型 L鎖リーダー 配列とハイブリ ダィズする配列番号 ： 1〜 1 1 に示す^ ¥ (M o u s e K a p p a V a r i a b l e ) プライマー (J o n e s , S . T. ら、 B i o T e c h n o l o g y, _9_, 8 8 — 8 9，
( 1 9 9 1 ) ) を用いた。
P C R溶液 1 0 0 〃 1 は、 1 0 mM T r i s — H C 1 ( H 8. 3 )， 5 0 mM K C 1 , 0. 1 mM d N T P s ( d A T P , d G T P, d C T P， d T T P) 、 l . 5 mM M g C 1 2 , 5ユニッ トの D NA ポリ メ ラーゼ Am p l i T a q (P e r k i n E l m e r C e t u s社） 、 0. 1 Mの配列番号 1〜 1 1 に示す MK Vプライマ 一と 0.. 4 Mの配列番号 1 2に示す MK Cプライマー及び二本鎖 c D NA O . 1 / gを含有し、 各々の MK C 1〜 1 2プライマーに ついて別々に増幅した。 これを 5 0 / 1 の鉱油で覆った後、 9 4 °C の初期温度にて 3分間そして次に 9 4 °Cにて 1分間、 5 0 °Cにて 1 分間及び 7 2 °Cにて 1分間、 この順序で加熱した。 この温度サイク ルを 3 0回反復した後、 反応混合物をさ らに 7 2 °Cにて 1 0分間ィ ンキュペー ト した。
( 2 ) マウス H鎖 V領域をコー ドする c D N Aの増幅
P C Rのためのプライマーと して配列番号 ： 1 3〜 2 4 に示す M H V (M o u s e H e a v y V a r i a b l e ) プライマー 1 〜 1 2、 及び配列番号 ： 2 5に示す MH C— G l (M o u s e H e a v y C o n s t a n t ) プライマー （J o n e s , S. T. ら、 B i o/T e c h n o l o g y， _9_, 8 8— 8 9， ( 1 9 9 1 )) を使用した。
c DNAの増幅は、 0. 2 5 / Mのそれぞれの MH Vプライマ一 と 2. 5 / Mの MH C— G 1プライマーの混合物を用いて増幅した 点を除いて、 前記 3. ( 1 ) において L鎖 V領域遺伝子の増幅につ いて記載したのと同じ方法により増幅を行なった。
4 , P C R生成物の精製および断片化
前記のようにして P C R法により増幅した D N A断片を低融点ァ ガロース （S i g m a社製） にて精製し、 そして 1 0 mM M g C 1 2 及び 1 mMジスレイ トールを含有する 1 0 mM T r i s— H C 1 ( H 7. 9 ) 中で 5ユニッ トの制限酵素 Xm a I (N e w E n g l a n d B i o L a b s社製） を用いて 3 7 °Cにて 3時間消化した。 次に、 4 0ュニッ 卜の制限酵素 S a 1 I (宝酒造社製） により 3 7 °Cにて 2時間消化し、 そして生ずる DN A断片を、 1. 5 %低融 点ァガロース （S i gm a社製） を用いるァガロースゲル電気泳動 により分離した。
約 4 5 0 bp長の D N A断片を含有するァガロース片を切り取りそ して 6 5 °Cにて 5分間溶融せしめ、 そしてこれと同容積の 2 mM E DTA及び 2 0 0 mM N a C 1を含有する 2 0 mM T r i s— H C 1 (pH7. 5 ) を加えた。 この混合物をフヱノール及びクロ口ホル ムにより抽出し、 そして DNA断片をエタノール沈澱により回収し、 そして I mM E D T Aを含有する 1 0 mM T r i s— H C 1 (pH 7. 5 ) に溶解した。
こう して、 マウス力ツバ型 L鎖可変領域をコー ドする遺伝子を含 んで成る DNA断片、 及びマウス H鎖可変領域をコー ドする遺伝子 を含んで成る DNA断片を得た。 上記 DN A断片はいずれもその 5 ' —末端に S a 1 I接着末端を有しそしてその 3 ' —末端に Xm a I 接着末端を有する。
5. 連結及び形質転換
上記のようにして調製したマウスカ ツパ型 L鎖 V領域をコー ドす る遺伝子を含んで成る S a 1 I _ Xm a I D NA断片約 0. 3 〃 gを、 S a l I及び Xm a Iで消化することにより調製した p U C 1 9ベクタ一約 0. l 〃 gと、 5 0 mM T r i s — H C 1 (pH 7. 6 ) ， 1 0 mM M g C 1 2 , 1 0 mMジチオス レイ ト一ル、 1 mM A T P, 5 0 mgZmlのポリエチレングリ コール （ 8 0 0 0 ) 及び 1 ュ ニッ ト T 4 D N Aリガ一ゼ （G I B C 0 B R L製） を含有する 反応混合物中で、 1 6 °Cにて 4時間反応させ連結した。
次に、 1 0 1 の上記連結混合物を大腸菌 D H 5 のコ ンビテン ト細胞 5 0 〃 1 に加え、 そしてこの細胞を氷上で 3 0分間、 4 2 °C にて 1分間そして再び氷上で 1分間静置した。 次いで 4 0 0 n 1 の 2 X Y T培地 （M o l e c u l a r C l o n i n g : A L a b o r a t o r y M a n u a l , S a m b r o o k ら、 C o l d S p r i n H a r b o r L a b o r a t o r y P r e s s , ( 1 9 8 9 ) ) を加え、 3 7 °Cにて 1時間イ ンキュベー ト した後、 2 X YT寒天培地 （M o l e c u l a r C 1 o n i n g ： A L a b o r a t o r y M a n u a 1 , S a m b r o o k ら、 C o l d S p r i n g H a r b o r L a b o r a t o r y P r e s s， （ 1 9 8 9 ) ) 上にこの大腸菌をまき、 3 7 °Cにて一夜イ ン キュベー ト して大腸菌形質転換体を得た。
この形質転換体を、 5 0 / gノ mlのァンピシリ ンを含有する 2 X YT培地 1 0 ml中で 3 7 °Cにて一夜培養し、 そしてこの培養物から ァノレカ リ法 （M o l e c u l a r C 1 o n i n g ： A L a b o r a t o r y M a n u a l , S a m b r o o k ら、 C o l d S p r i n g H a r b o r L a b o r a t o r y P r e s s , ( 1 9 8 9 ) ) に従ってプラス ミ ド DNAを調製した。
こう して得られた、 ハイプリ ドーマ ON S— M 2 1 に由来するマ ウスカ ツバ型 L鎖 V領域をコ一 ドする遺伝子を含有するプラス ミ ド を p U C— M 2 1 — VL と命名した。
上記の同じ方法に従って、 ハイプリ ドーマ ON S— M 2 1に由来 するマウス H鎖 V領域をコー ドする遺伝子を含有するプラス ミ ドを S a 1 I - Xm a I DNA断片から作成し、 そして p UC— M 2
1 - V H と命名した。
実施例 J_. D N Aの塩基配列の決定
前記のプラス ミ ド中の c DNAコー ド領域の塩基配列を、 自動 D NAシークェンサ一 (A p p l i e d B i o s y s t e m I n c製） および T a q D y e D e o x y T e r m i n a t o r
C y c l e S e q u e n c i n g K i t (A p 1 i e d B i o s y s t e m I n c製） を用いて、 メーカー指定のプロ ト コールに従って塩基配列を決定した。
プラス ミ ド p U C— M 2 1 - V L に含まれるマウス ON S— M 2 1抗体の L鎖 V領域をコー ドする遺伝子の塩基配列を配列番号 2 6 に示す。 また、 プラス ミ ド p UC— M 2 1— VH に含まれるマウス 0 N S - M 2 1抗体の H鎖 V領域をコ一ドする遺伝子の塩基配列を 配列番号 2 7に示す。
実施例 3. C D Rの決定
L鎖及び H鎖の V領域の全般的構造は、 互いに類似性を有してお り、 それぞれ 4つのフ レームワーク部分が 3つの超可変領域、 即ち 相補性決定領域 （C DR) により連結されている。 フ レームワーク のア ミ ノ酸配列は、 比較的良く保存されているが、 一方、 CDR領 域のア ミ ノ酸配列の変異性は極めて高い （K a b a t， E . A. ら 「S'e q u e n c e s o f P r o t e i n s o f I mmu n o 1 o g i c a 1 I n t e r e s t 」 U S D e p t . H e a l t h a n d H u m a n S e r v i c e s , 1 9 8 3 ) 。 この様な事実に基づき、 ヒ ト髄芽腫細胞に対するマウスモノ ク ロ —ナル抗体の可変領域のア ミ ノ酸配列を K a b a t らにより作成さ れた抗体のア ミ ノ酸配列のデータベースにあてはめて、 相同性を調 ベることにより C D R領域を表 4 に示す如く決定した。
表 4 プラス ミ F 配列番号 C D R (1) C D R (2) C D R (3)
PUC-M21- VL 26 24-34 50-56 89-97
PUC-M21- -VH 27 31-35 50-66 99一 106 実施例 4. ク ローン化 c D N Aの発現の確認 （キメ ラ O N S— M 2 1 抗体の作製）
発現べクターの作製
キメ ラ O N S— M 2 1抗体を発現するベクターを作製するため、 それぞれマウス O N S— M 2 1 κ L鎖及び H鎖 V領域をコー ドする c D N Aクローン p U C— M 2 1一 V L 及び p U C— M 2 1 - VH を P C R法により修飾した。 そして H E F発現ベクター （前記、 W 0 9 2 — 1 9 7 5 9参照） （図 1 を参照のこと） に導入した。
L鎖 V領域のための後方プライマー 0 N S— L 7 2 2 S (配列番 号 ： 2 8 ) 及び H鎖 V領域のための後方プライマー ON S— H 3. 2 S (配列番号 ： 2 9 ) は、 各々の V領域のリーダー配列の最初を コー ドする D N Aにハイブリダィズし且つ K o z a kコ ンセンサス 配列 （K o z a k , M. ら、 J . M o 1. B i o l . 1 9 6. 9 4 7 - 9 5 0 , 1 9 8 7 ) 及び H i n d III 制限部位を有するように 設計した。 L鎖 V領域のための前方プライマー 0 N S— L 7 2 2 A (配列番号 ： 3 0 ) 及び H鎖 V領域のための前方プライマー 0 N S - H 3. 2 A (配列番号 ： 3 1 ) は、 J領域の末端をコー ドする D N A配列にハイブリ ダイズし且つスプラィス ドナー配列及び B a m H I 制限部 を有するように設計した。
1 0 mM T r i s - H C 1 ( H 8. 3 ) , 5 0 mM K C 1 , 1 0 0 Μ d N T P s , 1 . 5 mM M g C l 2 、 l O O pmole ずつの 各プライマー、 1 0 0 ngの铸型 D N A ( p U C— M 2 1 - V L 又は ！！じー^！？ 丄 ー ^！ ：！ ヽ 及び ！！の八！!！ ！ T a q酵素を含 有する 1 0 0 1 の P C R反応混合物を 5 0 1 の鉱油で覆い、 9 4 °Cにて最初の変性の後、 9 4でにて 1 分間、 5 5 ¾にて 1分間、 7 2 °Cにて 1 分間のサイ クルを 3 0 回行い、 最後に 7 2 °Cにて 1 0 分間イ ンキュベー ト した。
P C R生成物を 1 . 5 %低融点ァガロースゲルを用いて精製し、 H i n d III 及び B a m H I で消化し、 そして L鎖 V領域について は、 H E F発現ベクター H E F— V L — g /cに、 H鎖 V領域につい ては H E F発現ベクター H E F— VH - g ァにそれぞれクローニン グした。 D N A配列決定の後、 正しい D NA配列を有する D N A断 片を含むブラスミ ドをそれぞれ H E F -M 2 1 L - g , H E F— M 2 1 H - g r 1 と命名した。
C O S細胞への トラ ンスフエクショ ン
キメ ラ O N S— M 2 1抗体の一過性発現を観察するため、 前記発 現べクターを C 0 S細胞において試験した。 H E F— M 2 1 L— g Λ と、 H E F— M 2 1 H— g y l G e n e P u l s e r装置 ( B i o R a d社製） を用いてエレク トロポレーシヨ ンにより ^ 細胞に同時形質転換した。 各 D NA ( 1 0 g) を、 P B S中 1 X 1 0 7 細胞 Zmlの 0. 8 mlのァリ コー トに加え、 1， 9 0 0 V、 2 5 Fの容量にてパルスを与えた。
室温にて 1 0分間の回復期間の後、 エレク トロポレーショ ン処理 された細胞を、 1 0 %のァ —グロブリ ンフ リ ーゥ シ胎児血清を含有 する DMEM培養液 （G I B C O社製） に加えた。 7 2時間のイ ン キュベ一ショ ンの後、 培養上清を集め、 遠心分離により細胞破片を 除去し、 5倍量の結合緩衝液で平衡化したプロテイ ン Aァガロース カラム （A f f i — G e l P r o t e i n A MA P S IIキッ ト、 B i o R a d) に適用 した。 カラムを 1 5倍量の結合緩衝液で 洗浄し、 次に 5倍量の溶出緩衝液で溶出した。 溶出液を濃縮し、 そ してマイ クロコ ンセン ト レーター （C e n t r i c o n 1 0 0， Am i c o n社製） を用いて緩衝液を P B Sに変えた。
C e 1 1 - E L I S A
抗原結合測定のための C e 1 1 -E L I S Aプレー トを次のよう にして調整した。 9 6穴プレー トに 1 0 %のゥシ胎児血清を含有す る R PM I培養液により 1 X 1 0 6 細胞/ mlに調整したヒ ト髄芽腫 細胞株 ON S— 7 6 (T amu r a e t a 1. , C a n c e r
R e s. , 4 9 , 5 3 8 0— 5 3 8 4， （ 1 9 8 9 ) ) を加え、 一晩培養した後、 0. 1 %グルタルアルデヒ ド （半井化学薬品社製） にて固定した。 ブロ ッキングの後、 キメ ラ ON S— M 2 1抗体を順 次希釈して、 各穴に加え、 室温にてィ ンキュベーショ ン及び洗浄の 後、 アルカ リ ホスフ ァターゼ結合ャギ抗—ヒ ト I g G抗体 （S i g ma社製） を加えた。 イ ンキュベーショ ン及び洗浄の後、 基質溶液 を加え、 次に 4 0 5 nmでの吸光度を測定した。
その結果、 キメ ラ抗体 ON S— M2 1は、 髄芽腫細胞株 ON S一 7 6と特異的に結合したことにより、 このキメ ラ抗体がマウスモノ クローナル抗体 0 N S -M 2 1 の V領域の正しい構造を有すること が示唆された （図 2を参照のこと） 。 実施例 5. 再構成七 ト 0 N S— M 2 1抗体の作製 再構成ヒ ト O N S— M 2 1抗体 L鎖 V領域の作製
再構成ヒ ト 0 N S— M 2 1抗体 L鎖を、 P C R法による C D R— グラフティ ングにより作製した。 この方法を図 3 に模式的に示す。 ヒ ト抗体 R E I 由来の F Rを有する再構成ヒ ト抗体 0 N S -M 2 1 (バージョ ン 「 a」 ） の作製のために 8個の P C Rプライマーを使 用 した。 外部プライマー A (配列番号 ： 3 2 ) 及び H (配列番号 ： 3 3 ) は、 H E F発現ベクター H E F— V L — g kのD NA配列と ハイブリ ダィズするように設計された。
C D R—グラフティ ングプライマー B (配列番号 ： 3 4 ) 、 C (配列番号 ： 3 5 ) 及び D (配列番号 ： 3 6 ) はセンス D N A配列 を有し、 そして C D R—グラフティ ングプライマー E (配列番号 ： 3 7 ) 、 F (配列番号 ： 3 8 ) 及び G (配列番号 ： 3 9 ) はア ンチ —センス D N A配列を有しそしてそれぞれプライ.マー B， C及び D の 5 ' —末端の D N A配列に対する相補的 D N A配列 （ 2 3〜 3 5 bp) を有する。
第一 P C R段階において 4つの反応 A— E， B— F， C— G、 及 び D— Hを行い、 そして各 P C R生成物を精製した。 第一 P C Rか らの 4つの P C R生成物をそれら自体の相補性によりア ッセンプリ させた （W0 9 2 — 1 9 7 5 9参照） 。 次に、 外部プライマー A及 び Hを加えて、 再構成ヒ ト ON S— M 2 1抗体 L鎖 V領域をコー ド する全長 D N Aを増幅した （第 2 P C R) 。 前記 P C Rにおいては ヒ ト抗体 R E I からの F Rに基く再構成ヒ ト S K 2抗体 L鎖 V領域 バージョ ン 「 a」 をコー ドするプラスミ ド H E F— R VL — S K 2 a (特願平 5 — 1 2 9 7 8 7を参照） を铸型と して用いた。
第一 P C R段階においては、 1 0 mM T r i s— H C l (pH8. 3 ) ， 5 0 mM K C 1 , 1 0 0 ^ M d N T P s , 1. 5 mM M g C 1 2 、 1 0 O ngの铸型 D NA、 1 0 0 pmole の各プライマ一及び 5 uの Am p 1 i T a qを含有する 1 0 の P C R混合物を 用いた。 各 P C Rチューブは 5 0 1 の鉱油で覆膜した。 最初に 9 4 °Cで変性した後、 9 4でにて 1分間、 5 5 °Cにて 1分間及び 7 2 °Cにて 1分間の反応サイ クルを行い、 次に 7 2 °Cにて 1 0分間イ ン キュペー ト した。
P C R生成物 A— E ( 2 1 8 bp) ， B - F ( 1 0 1 bp) , C _ G ( 1 3 1 bp) 及び D— H ( 1 4 7 bp) を 1. 5 %低融点ァガロース ゲルを用いて精製し、 第二 P C Rでアッセンプリ した。 第二 P C R においては、 1 〃 gの各第一 P C Rの生成物、 及び 5 uの Am p 1 i T a qを含有する 9 8 〃 1 の P C R混合物を、 9 4 °Cにて 2分 間、 5 5 °Cにて 2分間及び 7 2 °Cにて 2分間で 2サイクルイ ンキュ ベ一 ト し、.そして.次に 1 0 0 pmole の各外部プライマー （A及び H) を加えた。 P C Rチューブを 5 0 n 1の鉱油で覆い、 そして前記と 同一の条件で 3 0サイ クルの P C Rを行った。
第二 P C Rにより生じた 5 1 6 bpの D NA断片を 1. 5 %低融点 ァガロースゲルで精製し、 B a mH I及び H i n d III で消化し、 得られた D NA断片を H E F発現べクター H E F— VL — g kにク ローニングした。 D N A配列決定の後、 再構成ヒ ト ON S— M 2 1 抗体 L鎖 V領域の正しいア ミ ノ酸配列をコー ドする D NA断片を含 むプラスミ ドを H E F— RV L— M 2 1 a— g cと命名した。 本プ ラスミ ド H E F— RV L— M 2 1 a— g に含まれる L鎖 V領域の ァ ミ ノ酸配列および塩基配列を配列番号 ： 4 0に示す。
再構成ヒ ト ON S— M 2 1抗体 L鎖 V領域のバージヨ ン 「 b」 を、 P C Rを用いる変異誘発法によって作製した。 変異原プライマー F T Y - 1 (配列番号 ： 4 1 ) および F T Y— 2 (配列番号 ： 4 2 ) は、 7 1位のフエ二ルァラニンがチロシンに変異するように設計し た。
プラス ミ ド HE F— RV L— M 2 1 a _ g cを铸型と し、 上記プ ライマーを用いて増幅した後、 最終生成物を精製し、 B amH Iお よび H i n d lll で消化し、 得られた DNA断片を HE F発現べク ター HE F— VL— g cにク ローニングし、 プラス ミ ド HE F— R V L -M 2 1 b— g /cを得た。 本プラス ミ ド H E F— RVL— M 2 1 b - g cに含まれる L鎖 V領域のァ ミ ノ酸配列および塩基配列を 配列番号 4 3に示す。
再構成ヒ ト ON S— M 2 1抗体 L鎖 V領域の各バージ ョ ン 「 c」 ， 「 d」 ， 「 e」 ， 「 f J , 「 g」 ， 「hj , 「 i」 ， 「 j」 ， 「k」 「 1」 ， 「m」 ， 「n」 ， 「 o」 ， 「 p」 を以下のようにして作製 した。
バージ ョ ン 「 c」 は、 変異原ブライマ一と して 8 7位のチロシン がフヱ二ルァラニンに変異するように設計した M 2 1 M 2 S (配列 番号 ： 4 4 ) および M 2 1 M 2 A (配列番号 ： 4 5 ) を用い、 ブラ ス ミ ド HE F— RVL— M 2 1 a - g «を铸型 D N Aと して、 P C R法により増幅し、 プラスミ ド HE F— RVL— M 2 1 c— g を 得た。 本プラスミ ド H E F— R V L— M 2 1 c一 g cに含まれる L 鎖 V領域のァ ミ ノ酸配列および塩基配列を配列番号 4 6に示す。
バージョ ン 「d」 は、 変異原プライマーと して FT Y— 1および F T Y— 2と M 2 1 M 2 Sおよび M 2 1 M 2 Aを用い、 プラスミ ド HE F-RVL-M2 1 a— g cを铸型 D N Aと してプラスミ ド H E F-RVL-M2 1 d— g cを得た。 本プラスミ ド HE F— RV L一 M 2 1 d— g cに含まれる L鎖 V領域のァ ミ ノ酸配列および塩 基配列を配列番号 4 7に示す。
パージョ ン Γ e」 は、 変異原プライマーと して 2 0位のスレオニ ンがセリ ンに、 2 1位のィソロイ シンがバリ ンに変異するように設 計した M 2 1 M 3 S (配列番号 ： 4 8 ) および M 2 1 M 3 A (配列 番号 ： 4 9 ) を用い、 プラ ス ミ ド H E F — R V L — M 2 1 aを铸型 D N Aと して増幅し、 プラス ミ ド H E F— R V L — M 2 1 e - g κ を得た。 本プラス ミ ド H E F — R V L — Μ 2 1 e — g に含まれる L鎖 V領域に含まれるァ ミ ノ酸配列および塩基配列を配列番号 5 0 に示す。
バージョ ン 「 f 」 は、 プラス ミ ド H E F— R V L — M 2 1 c - g /cを B a m H I および H i n f I で、 プラス ミ ド H E F — R V L — M 2 1 e — g cを H i n d ll l および H i n f I で各々消化し、 1 5 2 bpおよび 2 5 0 bpの D N A断片を得た。 これら D N A断片を 1 5 %低融点ァガロースゲルを用いて分離、 精製した後、 連結し、 H E F発現べクタ一 H E F — R V L— g / に挿入して、 プラス ミ ド H E F - R V L - M 2 1 f — g /cを得た。 本プラス ミ ド H E F — R V L一 M 2 1 f 一 g /cに含まれる L鎖 V領域のァ ミノ酸配列および塩 基配列を配列番号 5 1 に示す。
バージ ョ ン 「 g」 は、 変異原プライマーと して 7 3位のフヱニル ァラニンが口イ シンに変異するように設計した M 2 1 M 4 S (配列 番号 ： 5 2 ) および M 2 1 M 4 A (配列番号 ： 5 3 ) を用い、 ブラ ス ミ ド H E F — R V L— M 2 1 f 一 g /cを铸型 D N Aと して増幅し. プラスミ ド H E F— R V L— M 2 1 g— g cを得た。 本プラス ミ ド H E F - R V L - M 2 1 g— g に含まれる L鎖 V領域のァ ミ ノ酸 配列および塩基配列を配列番号 5 4 に示す。
バージ ョ ン 「 h」 は、 変異原プライマーと して M 2 1 M 4 Sおよ び M 2 1 M 4 Aを用い、 プラスミ ド H E F— R V L— M 2 1 a - g κを铸型 D Ν Αと して増幅し、 プラスミ ド H E F— R V L— M 2 1 h— g /cを得た。 本プラス ミ ド H E F — R V L— M 2 1 h — g /c に 含まれる L鎖 V領域のァ ミ ノ酸配列および塩基配列を配列番号 5 5 に示す。
バージ ョ ン 「 i 」 は、 変異原プライマ一と して 4 2位のリ ジンが グルタ ミ ンに、 4 3位のァラニンがセ リ ンに、 4 6位のロイ シン力く プロ リ ンに変異するように設計した M 2 1 M 5 S (配列番号 ： 5 6 ) および M 2 1 M 5 A (配列番号 ： 5 7 ) を用い、 プラス ミ ド H E F - R V L -M 2 1 g— g cを铸型 D N Aと して増幅し、 プラス ミ ド H E F - R V L -M 2 1 i — g /cを得た。 本プラス ミ ド H E F— R V L— M 2 1 i — g /cに含まれる L鎖 V領域のァ ミ ノ酸配列および 塩基配列を配列番号 5 8 に示す。
バージ ョ ン 「 j 」 は、 変異原プライマーと して M 2 1 M 5 S， M 2 1 M 5 Aおよび 8 5位のスレオニンがァスパラギン酸に変異する ように設計した M 2 1 M 6 S (配列番号 ： 5 9 ) と M 2 1 M 6 A (配列番号 ： 6 0 ) を用い、 プラスミ ド H E F— R V L— M 2 1 i — g を铸型 D NAと して増幅し、 プラスミ ド H E F— R V L— M 2 1 j _ g を得た。 本プラス ミ ド H E F— R V L—M 2 1 j - g κに含まれる L鎖 V領域のァ ミ ノ酸配列および塩基配列を配列番号 6 1 に示す。
バージ ョ ン 「 k」 は、 変異原プライマーと して M 2 1 M 6 Sおよ び M 2 1 M 6 Aを用い、 プラスミ ド H E F— RV L— M 2 1 - g κを铸型 D Ν Αと して増幅し、 プラスミ ド H E F— R V L— M 2 1 k一 g /cを得た。 本プラスミ ド H E F— R V L— M 2 l k— g cに 含まれる L鎖 V領域のァ ミ ノ酸配列および塩基配列を配列番号 6 2 に示す。
バージ ョ ン 「 1 」 は、 プラス ミ ド H E F— R V L— M 2 1 a - g /cを B a mH I および S f a N I で、 プラスミ ド H E F— RV L— M 2 1 i — g cを H i n d lll および S f a N I で各々消化し、 2 2 7 bpおよび 1 6 9 bpの D N A断片を分離、 精製した。 得られた D NA断片を連結し、 発現ベクター H E F— R V L _ g /cに挿入し、 プラス ミ ド H E F— RVL—M 2 1 l _ g /cを得た。 本プラス ミ ド HE F -RV L -M 2 1 1 — g に含まれる L鎖 V領域のア ミ ノ酸 配列および塩基配列を配列番号 6 3に示す。
バージョ ン 「m」 は、 変異原プライマ一と して M 2 1 M 5 S, M 2 1 M 5 Aおよび 8位のプロ リ ンがグルタ ミ ン酸に、 9位のセリ ン 力くリ ジンに、 1 0位のセリ ンがフ エ二ルァラニンに変異するように 設計した M 2 1 M 7 S (配列番号 ： 6 4 ) と M 2 1 M 7 A (配列番 号 ： 6 5 ) を用い、 プラス ミ ド HE F— RV L— M 2 1 a— g を 铸型 D N Aと して増幅し、 プラス ミ ド H E F— RV L— M 2 1 m- g を得た。 本プラス ミ ド HE F— RVL— M 2 l m— g cに含ま れる L鎖 V領域のァ ミ ノ酸配列および塩基配列を配列番号 6 6に示 す。 ■
バージョ ン 「 n」 は、 変異原プライマーと して 4 2位のリ ジンが グルタ ミ ン酸に、 4 3位のァラニンがセリ ンに変異するように設計 した M 2 1 M 8 S (配列番号 ： 6 7 ) および M 2 1 M 8 A (配列番 号 ： 6 8 ) を用い、 プラスミ ド HE F— RVL—M2 1 a— g を 铸型 D N Aと してプラスミ ド HE F— RVL— M 2 I n— g cを得 た。 本プラス ミ ド H E F— RVL— M 2 I n— g /cに含まれる L鎖 V領域のァ ミ ノ酸配列および塩基配列を配列番号 6 9に示す。
バージョ ン 「oJ は、 プラスミ ド HE F— RVL— M 2 l b— g を B amH Iおよび B s r Iで、 プラスミ ド HE F— RVL— M 2 1 a— g /cを H i n d lll および B s r Iで各々消化し、 各ブラ スミ ドから 2 5 1 bpおよび 1 4 2 bpの D N A断片を分離、 精製した, 得られた各々の DNA断片を連結し、 発現ベクター H E F— V L— g cに挿入し、 プラスミ ド HE F— RV L—M 2 l o— g cを得た, 本プラスミ ド H E F— RVL— M 2 1 o— g /cに含まれる L鎖 V領 域のア ミ ノ酸配列および塩基配列を配列番号 7 0 に示す。
ノくージ ョ ン 「 p」 は、 4 6位のロイ シ ンをプロ リ ンに変更するよ うに設計した変異原プライマ一 M 2 1 M 9 S (配列番号 ： 7 1 ) お よび M 2 1 M 9 A (配列番号 ： 7 2 ) を用い、 プラス ミ ド H E F— R V L - M 2 1 a - g κを铸型 D N Aと して用い、 プラスミ ド H E F - R V L -M 2 1 p— g cを得た。 本プラス ミ ド H E F— R V L -M 2 1 p — g /cに含まれる L鎖 V領域のア ミ ノ酸配列および塩基 配列を配列番号 7 3 に示す。
再構成ヒ ト 0 N S— M 2 1 抗体 H鎖 V領域の作製
再構成ヒ ト O N S— M 2 1抗体 H鎖 V領域をコー ドする D N Aを 次の様にして設計した。 ヒ ト抗体 E uの F R 1 〜 3およびヒ ト抗体 N Dの F R 4 をコー ドする D N A配列を V領域 （K a b a t , E . A. ら、 U S. D e p t H e a l t h' a n d H u m a n S e r v i c e s , U S. G o v e r n m e n t P r i n t i n g • O f f i c e s , 1 9 9 1 ) の 「 c o d o n u s a g e」 に基い て設計し、 そしてマウス O N S— M 2 1 抗体 H鎖 V領域の C D Rを コー ドする D N A配列とつなげることにより、 再構成ヒ ト 0 N S— M 2 1 抗体 H鎖 V領域をコー ドする全長 D N Aを設計した。
次に、 この D N A配列のそれぞれ 5 ' —側及び 3 ' —側に H i n d III 認識部位 ZK 0 Z A Κコ ンセンサス配列及び B a mH I認識 部位 Zスプライス ドナー配列を付加して、 H E F発現ベクターに揷 入できるようにした。
こう して設計した D NA配列を 4個のオリ ゴヌ ク レオチ ドに分け. そして次に、 これらのオリ ゴヌ ク レオチ ドのアセンブリーを妨害す る可能性のあるオリ ゴヌ ク レオチ ド中の二次構造についてコ ンビュ —ター解析した。
4個のオリ ゴヌ ク レオチ ド配列を配列番号 ： 7 4〜 7 7 に示す。 これらのオリ ゴヌ ク レオチ ドは 1 1 1 〜 1 3 7塩基の長さを有し、 2 3〜 2 6 bpのオーバラ ップ領域を有する。 オリ ゴヌ ク レオチ ドの 内の V H 2 (配列番号 ： 7 4 ) 、 R V H 4 (配列番号 ： 7 5 ) はセ ンス D N A配列を有し、 そして他の VH 1 (配列番号 ： 7 6 ) 、 R
V H 3 (配列番号 ： 7 7 ) はアンチセンス D NA配列を有する。 こ れら 4個のォリ ゴヌ ク レオチ ドの P C R法によるアセンブリ一の方 法を図に示す。 （図 4参照）
1 0 O ngずつの 4種のオリ ゴヌ ク レオチ ド及び 5 uの Am p 1 i T a qを含有する 9 8 〃 1 の P C R混合物を、 9 4 °Cにて 2分間 の最初の変性の後、 9 4 °Cにて 2分間、 5 5 °Cにて 2分間及び 7 2 °Cにて 2分間のから成る 2サイ クルのィ ンキュベーショ ンを行った < 1 0 0 pmoleずつの RH P 1 (配列番号 ： 7 8 ) 及び RH P 2 (配 列番号 ： 7 9 ) を外部プライマーと して添加した後、 P C Rチュー ブを 5 0 a 1 の鉱油で覆い、 そして 9 4 °Cにて 1分間の最初の変性 の後、 9 4 にて 1分間、 5 5 °Cにて 1分間及び 7 2 °Cにて 1分間 の 3 8サイ クルを行い、 そして次に 7 2 °Cにて 1 0分間イ ンキュべ ー ト した。
4 3 81^の0 八断片を 1. 5 %低融点ァガロースゲルを用いて 精製し、 H i n d lll 及び B a mH I により消化し、 そして次に H E F発現ベクター H E F— VH — g ァ 1 にクローニングした。 D N A配列決定の後、 正しい H鎖 V領域のア ミ ノ酸配列をコー ドする D NA断片を含むプラスミ ドを H E F— RVH— M 2 1 - r 1 と命 名した。 本プラスミ ド H E F— RVH— M 2 1 - g r 1 に含まれる H鎖 V領域のァ ミ ノ酸配列および塩基配列を配列番号 ： 8 0 に示す, 再構成ヒ ト 0 N S— M 2 1抗体の各鎖を評価するため、 まず、 再 構成ヒ ト 0 N S— M 2 1抗体 H鎖のための発現べクター H E F— R
V H -M 2 1 - g r 1 とキメ ラ O N S— M 2 1抗体 L鎖のための発 現べクタ一 H E F—M 2 1 L - g r 1 とにより C O S細胞を前記の ようにして同時 トラ ンスフ ヱク ショ ンし、 前記のようにして抗体生 成物を回収した後、 前記のようにして抗原結合測定にかけた。
この結果を図 5に示す。 図 5に示すように陽性対照と してのキメ ラ抗体 （C hM 2 1 ) および再構成 H鎖とキメ ラ L鎖とからなる抗 体 （C h L/RVH) との間には抗原結合性に差がないことが確認 された。
次に、 再構成ヒ ト化 ON S— M 2 1抗体 L鎖の 「 a」 から 「p」 の各バージョ ンと再構成ヒ ト化 ON S— M 2 1抗体 H鎖との組み合 せを評価するため、 L鎖の各バージ ョ ンの発現プラス ミ ド HE F— RV L—M 2 1 a— g «から HE F— RVL— M 2 1 p— g cの内 のいずれか一つと H鎖発現プラスミ ド HE F— RVHとを C O S細 胞に同時 ト ラ ンスフヱク シヨ ンし、 .前記実施例 4の C e 1 1 E L I S Aに記載のとおりの方法を用いて、 得られた抗体について抗原 結合測定を行った。 その結果 L鎖のバージ ョ ン 「 a」 から 「h」 を 有する抗体には抗原結合活性が見られなかった （図 6を参照のこと）
—方、 「 i J ， 「 j」 ， 「 1 J , 「m」 ， 「 o」 ， 「PJ の各 L 鎖バージ ョ ンを有する抗体は、 陽性対照であるキメ ラ ON S— M 2 1抗体 （C hM 2 1 ) に匹敵する程度の良好な抗原結合性を示し、 この組み合せがヒ ト抗体における機能的抗原結合部位を形成するこ とが示唆された。 なお、 L鎖バージ ョ ン 「k」 および 「n」 を有す る抗体には抗原結合活性が見られなかった （図 7を参照のこと） 。
このことから、 L鎖 FR 2の 4 6位にプロ リ ンを有する抗体ば、 良好な抗原結合性を示す機能的抗原結合部位を再形成することが示 唆された （表 1， 2を参照） 。 実施例 6_. 再構成ヒ ト O N S—M 2 1抗体一本鎖 F V ( s c F v ) 領域の作成
リ ンカ一領域の構築
Gly Gly Gly Gly Ser Gly Gly Gly Gly Ser Gly Gly Gly Gly Ser (配列番号 ： 9 0 ) からなる リ ンカー領域をコー ドする D N Aを次 のようにして設計した。 リ ンカ一領域をコー ドする D N A配列 （H u s t o n, J . S . ら、 P r o c . N a t l . A c a d. S c i . U S A 8 5， 5 8 7 9 - 5 8 8 3 , ( 1 9 8 8 ) ) の 5 ' —側に H鎖 V領域の F R 4の C末端の 5ア ミ ノ酸残基をコー ドする 1 5 bp の D NA配列を、 3 ' —側に L鎖 V領域の F R 1領域の N末端の 5 ア ミ ノ酸残基をコー ドする 1 5 bpの D N A配列を付加し、 さ らに p U C 1 9ベクターに挿入できるように、 それぞれ 5 ' —側及び 3 ' 一側に H i n d III 認識部位及び E c o R I認識部位を付加した。
こう して設計した D N A配列を基にセンス及びァンチセンス方向 の 2個のオリ ゴヌ ク レオチ ド s c F v— Sおよび s c F v— Aを合 成した。
2個のオリ ゴヌ ク レオチ ド配列を各々配列番号 ： 8 1及び 8 2に 示す。 これらのオリ ゴヌ ク レオチ ドは 8 4塩基の長さを有し、 8 1 bpのオーバーラ ップ領域を有する。
1 0 0 pmole ずつの 2種のオリ ゴヌ ク レオチ ドを、 5 0 mM T r i s— H C 1 (pH7. 6 ) 、 1 0 mM M g C l 2 、 1 0 mM ジチォ スレイ トール、 I mM A T P、 5 0 mgZmlのポリエチレングリ コー ル （ 8 0 0 0 ) を含有する反応混合物 2 0 1 中で、 9 6 °Cにて 5 分、 6 5 °Cまで 2 0分かけ温度を下げた後、 6 5 °Cにて 1 0分、 3 7 °Cまで 2 0分かけ温度を下げた後、 3 7 °Cにて 1 0分、 さ らに 7 °Cまで 2 0分かけ温度を下げた後、 7 °Cにて 1夜イ ンキュベー ト し てァニーリ ングを行つた。 上記のようにアニーリ ングした DNAを、 H i n d HI 及び E c o R Iで消化することにより調製した P U C 1 9ベクタ一と連結し た。 DNA配列決定の後、 正しい DN A配列を有する DN A断片を 含むプラス ミ ドを p U C— s c F v— 5 と命名した。
再構成ヒ ト 0 N S— M 2 1抗体一本鎖 F V領域の作製
再構成ヒ ト ON S— M 2 1抗体一本鎖 F V領域を次の様にして作 製した。 再構成ヒ ト 0 N S— M 2 1抗体 H鎖 V領域、 及びリ ンカ一 領域、 及び再構成ヒ ト ON S— M 2 1抗体 L鎖 V領域をそれぞれ P C R法を用いて増幅し、 連結することにより、 再構成ヒ ON S— M 2 1抗体一本鎖 F V領域を作製した。 この方法を図 8に模式的に 示す。 再構成ヒ ト 0N S— M 2 1抗体一本鎖 F v領域の作製のため に 6個の P CRプライマー （A— E) を使用 した。 プライマー A， Cおよび Eはセンス配列を有し、 プライマー B， Dおよび Fはア ン チセンス配列を有する。
H鎖 V領域のための後方プライマー S C P 1 (プライマー A、 配 列番号 ： 8 3 ) は、 H鎖 V領域の N末端をコー ドする DN Aにハイ ブリ ダィズし且つ N c o l認識部位を有するように設計した。 H鎖 V領域のための前方プライマー S C P 2 (プライマー B、 配列番号 ： 8 4 ) は、 H鎖 V領域の C末端をコー ドする D N Aにハイブリ ダィ ズし且つリ ンカーにオーバーラ ップするように設計した。 リ ンカ一 のための後方プライマー S C P 3 (プライマー C、 配列番号 ： 8 5 ) は、 リ ンカ一の N末端をコー ドする DNAにハイブリ ダィズし、 力、 つ H鎖 V領域の C末端をコー ドする D N Aにオーバーラ ップするよ うに設計した。
リ ンカ一のための前方プライマー S C P 4 (プライマ一 D、 配列 番号 ： 8 6 ) は、 リ ンカ一の C末端をコー ドする DNAにハイプリ ダイズし、 かつ L鎖 V領域の N末端をコー ドする DN Aにオーバー ラ ップするように設計した。 L鎖 V領域のための後方ブライマ一 S C P 4 (プライマ一 E、 配列番号 ： 8 7 ) は、 リ ンカ一の C末端を コー ドする D N Aにハイブリ ダィズし、 かつ L鎖 V領域の N末端を コ一 ドする D N Aにオーバ一ラ ップするように設計した。 L鎖 V領 域のための前方プライマー WS 4— 2 (プライマー F、 配列番号 ： 8 8 ) は、 L鎖 V領域 C末端をコー ドする D N Aにハイブリ ダィズ し且つ F L A Gペプチ ドをコー ドする配列 （H o p p， T. P . ら. B i o/T e c h n o l o g y, 6， 1 2 0 4 - 1 2 1 0 , 1 9 8 8 ) 、 2個の転写停止コ ドン及び E c 0 R I認識部位を有するよう に設計した。
第一 P C R段階において 3つの反応 A— B， C— D、 及び E— F を行い、 そして各 P C R生成物を精製した。 第一 P CRから得られ た 3つの P C R生成物をそれら自体の相補性によりア ッ センブルさ せた。 次に、 プライマー A及び Fを加えて、 再構成ヒ ト ONS— M •2 1抗体一本鎖 F V領域をコー ドする全長 DN Aを増幅した （第 2 P C R.) 。 なお、 第一 P C Rにおいては、 再構成ヒ ト ON S— M 2 1抗体 H鎖 V領域をコー ドするプラスミ ド HE F— RVH— M 2 1 - g 7 1 (実施例 5を参照） 、 リ ンカ一領域をコー ドするプラスミ ド P U C— s c F v— 5、 及び再構成ヒ ト 0 N S— M 2 1抗体 L鎖 V領域バージ ョ ン 「p」 をコー ドするプラスミ ド HE F— RVL— M 2 1 p - g /c (実施例 5を参照） をそれぞれ铸型と して用いた。 第一 P C R段階においては、 1 0 mM T r i s— H C 1 (pH8. 3 ) 、 5 0 mM KC 1、 1 0 0 M d NTP s、 1. 5 mM M g C l 2 、 1 0 0 ngの各铸型 D N A、 1 0 0 pmol e の各 P C Rプライ マー及び 5ュニッ トの DNAポリ メ ラーゼ Amp 1 i T a q ( P e r k i n E 1 m e r C e t u s社） を含有する 1 0 0 〃 1の P CR混合物を用いた。 各 P CRチューブは 5 0 H 1の鉱油で覆つ た後、 9 4 °Cにて 1分間、 5 5 °Cにて 1分間及び 7 2 °Cにて 1分間、 この順序で加熱した。 この温度サイクルを 3 0回反復した後、 反応 混合物をさ らに 7 2 °Cにて 1 0分間イ ンキュベー ト した。
P C R生成物 A— B ( 3 8 2 bp) 、 C— D ( 9 2 bp) 、 及び E _ F ( 3 6 3 bp) を 1 . 5 %低融点ァガロースゲルを用いて精製し、 第 2 P C Rでアッセンブルした。 第 2 P C Rにおいては、 铸型とし て 1 〃 gの各第一 P C Rの生成物、 及び 5 uの Am p 1 i T a q を含有する 9 8 z 1 の P C R混合物を、 9 4 °Cにて 2分、 5 5 °Cに て 2分及び 7 2 °Cにて 2分間で 2サイクルインキュベー ト し、 そし て次にそれぞれ 1 0 O pmole のプライマー A及び Fを加えた。 P C Rチューブを 5 0 a 1 の鉱油で覆い、 そして 9 4 °Cにて 1分、 5 5 °Cにて 1分及び 7 2 °Cにて 2分間で 3 0サイクルの P C Rを行った ( 第二 P C Rにより生じた 7 6 7 bpの D N A断片を 1 . 5 %低融点 ァガロースゲルで精製し、 N c o I及び E c 0 R Iで消化し、 得ら れた D N A断片を発現ベクター P S C F V T 7 にクローニングした, なお、 本発現ベクター p S C F V T 7は、 大腸菌ペリブラズム分泌 発現系に適する p e 1 Bシグナル配列 （L e i , S. P. ら、 J . B a c t e r i o 1 o g y , 1 6 9 , 4 3 7 9 - 4 3 8 3 , 1 9 8 7 ) を含んでいる。 D N A配列決定の後、 再構成ヒ ト O N S— M 2 1抗体一本鎖 F V領域の正しいァミ ノ酸配列をコー ドする D N A断 片を含むブラス ミ ドを p S C F V T 7 — h M 2 1 と命名した （図 9 を参照のこと） 。 本プラスミ ド P S C F V T 7 — h M 2 1 に含まれ る再構成ヒ ト 0 N S— M 2 1抗体一本鎖 F V領域のァミ ノ酸配列及 び塩基配列を配列番号 ： 8 9に示す。
大腸菌株 B L 2 1 (D E 3 ) の形質転換
1 0 ngの上記プラスミ ド P S C F V T 7 — h M 2 1 を大腸菌 B L 2 1 (D E 3 ) のコンビテン 卜細胞 5 0 1 に加え、 そしてこの細 胞を氷上で 3 0分間、 4 2 °Cにて 9 0秒間そして再び氷上で 1分間 静置した。 次いで 4 0 0 1の 2 X YT培地を加え、 3 7 °Cにて 1 時間イ ンキュベー ト した後、 2 X Y T寒天培地上にこの大腸菌をま き、 3 7 °Cにて一夜イ ンキュベー ト して大腸菌形質転換体を得た。
再構成ヒ ト ON S— M 2 1抗体一本鎖 F V領域の発現誘導
この形質転換体を、 1 %グルコース及び 5 0 n g/mlのァンピシ リ ンを含有する L B培地 （Mo l e c u l a r C l o n i n g : A L a b o r a t o r y Ma n u a l , S a mb r o o kり、 C o l d S p r i n g H a r b o r L a b o r a t o r y P r e s s , ( 1 9 8 9 ) ) 3 0 ml中で 3 7 °Cにて一夜培養した。 次に、 5 0 g/mlのァンピシリ ンを含有する L B培地で 1 0 0倍 に希釈し、 3 7 °Cにて培養した。 6 5 0 nmでの吸光度が 0. 3程度 に達したところで、 最終濃度が 0. 5mMになる様に i s 0 p r 0 p y 1 t h i o - yS-D- g a 1 a c t o s i d e .( I P TG) を添 加し、 T 7プロモーターの発現を誘導した。
■ 3 7 °Cにてさ らに一夜培養した後、 培地を回収し、 遠心分離によ り細胞破片を除去し、 等量の P B Sを加え、 1 5mlの 0. 1 M G l y c i n e— HC 1 (pH3. 0 ) で平銜化した後、 等量の P B S にて中和した抗 F LAGァフ ィ 二ティ ーカラム （A n t i— F LA GM 2 A f f i n i t y G e l , I B I ) に適用した。 カラム を 3倍量の P B Sで洗浄し、 次に 6 mlの 0. 1 M G l y c i n e 一 HC 1 (pH3. 0 ) で溶出した。 溶出液を濃縮し、 マイクロコン セン ト レーター （C e n t r i c o n l 0， Am i c o n社製） を 用いて緩衝液を P B Sに変えた。
C e 1 1 - E L I S A
マウスモノ ク ローナル 0N S— M 2 1抗体の抗原結合に対する阻 害活性を指標に再構成ヒ ト ON S— M 2 1抗体一本鎖 F V領域の抗 原結合活性を測定した.。 前記のようにして調整した C e 1 1 - E L I S Aプレー トをブロ ッキングの後、 5 0 0 ngZmlの濃度のマウス モノ クローナル ONS—M 2 1抗体と一緒に順次希釈した再構成ヒ ト 0 N S— M 2 1抗体一本鎖 F V領域、 再構成ヒ ト ONS— M 2 1 抗体及び再構成ヒ ト ONS— M 2 1抗体より調整した F a b断片を 各穴に加え、 室温にてインキュベーショ ン及び洗浄の後、 アルカ リ ホスファターゼ結合ャギ抗—マウス I g G抗体 （Z YME D社製） を加えた。 イ ンキュベーショ ン及び洗浄の後、 基質溶液を加え、 次 に 4 0 5 nmでの吸光度を測定した。
その結果、 再構成ヒ ト ONS— M 2 1抗体一本鎖 F V領域 （ s c F V - hM 2 1 ) は再構成ヒ ト ONS— M2 1抗体 （hM2 1 ) に 比べ約 1 Z 1 0程度に阻害活性が減少していたものの、 再構成ヒ ト ONS -M 2 1抗体より調整した F a b断片 （ hM 2 1 — F a b ) と同程度の阻害活性を示した （図 1 0を参照のこと） 。
このことから、 再構成ヒ ト ONS—M 2 1抗体一本鎖 F V領域は, ォリ ジナルの再構成ヒ ト ONS— M 2 1抗体と同程度のァフィニテ ィ一を示すことが示唆された。
なお、 前記プラスミ ド HE F— RVL— M2 1 p— g を有する 大腸菌は E s c h e r i c h i a c o l i DH 5 a (HE F - R V L - M 2 1 p— g c) 、 およびプラスミ ド HE F— RVH— M 2 1 - g r 1を含有する大腸菌は E s c h e r i c h i a c o l i DH 5 a (HEF— RVH— M2 1— g < l ) として工業技術 院生命工学工業技術研究所 （茨城県つく ば市東 1丁目 1番 3号） に. 平成 5年 1 1月 1 8 日に、 各々 F E RM B P— 4 4 7 2および、 F E RM B P— 4 4 7 1 としてブタぺスト条約に基づき国際寄託 された。
4 7 盯正された用紙 ¾ 91) 参考例 1. ハイプリ ドーマ 0 N S— M 2 1の作製
抗ヒ ト髄芽腫細胞モノ ク ローナル抗体を産生するハイプリ ドーマ は、 ヒ ト髄芽腫細胞 ON S— 7 6で免役した8八し 8 じマゥスの 脾臓細胞とマウス骨髄腫細胞 P 3 U 1をポリエチレングリ コールを 用いた常法により融合して作製した。 髄芽腫細胞株 ON S— 7 6 と 結合する活性を指標と したスク リ ーニングを行い、 ハイプリ ドーマ 0 N S - M 2 1を樹立した （Mo r i u c h i , S . ら、 B r. J , C a n c e r, 6 8 , 8 3 1 - 8 3 7 ( 1 9 9 3 ) ) 。
参考例 Ϊ . マウスモノ ク ローナル抗体 ON S -M 2 1のタイ ピング ハイプリ ドーマ ON S— M 2 1をマウス腹腔に移植し、 得られた 腹水をプロティ ン Aァガロースカラムにかけ、 精製マウスモノ ク 口 ーナル抗体を得た。 得られたマウスモノ クローナル抗体 0 N S - M 2 1の L鎖および H鎖のタイプを調べるために、 マウスモノ クロ一 ナル抗体アイ ソタイ ピングキッ ト （アマシャムイ ンターナシ ョ ナル P 1 c社製） を用いてタイ ピングを行った。 その結果、 ON S— M 2 1抗体は /C型 L鎖およびァ 1型 H鎖を有することが明らかになつ た。
ブダペス ト条約第 1 3規則の 2に基く寄託された微生物への言及 寄託機関 ： 工業技術院生命工学工業技術研究所
あて名 ： 茨城県つぐば市東 1丁目 1番 3号
寄託番号及び寄託日
1. E s c h e r i c h i a c o l i D Η 5 α (H E F - R V L-M 2 1 p - g c)
寄託番号 ： F ERM B P— 4 4 7 2
寄託日 ： 1 9 9 3年 1 1月 1 8 日 E s c h e r i c h i a c o l i D H 5 ひ （HE F— R
VH-M 2 1 - g r l )
寄託番号 ： F ERM B P - 4 4 7 1
寄託日 ： 1 9 9 3年 1 1月 1 8 日
4 9 訂正された用紙 (ま M91) 配列表
配列番号 ： 1
配列の長さ ： 4 0
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 DN A
配列
ACTAGTCGAC ATGAAGTTGC CTGTTAGGCT GTTGGTGCTG 40 配列番号 ： 2
配列の長さ ： 3 9
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 DN A
配列
ACTAGTCGAC ATGGAGWCAG ACACACTCCT GYTATGGGT 39 配列番号 ： 3
配列の長さ ： 4 0
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 DN A
配列
ACTAGTCGAC ATGAGTGTGC TCACTCAGGT CCTGGSGTTG 40 配列番号 ： 4
配列の長さ ： 4 3 配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
ACTAGTCGAC ATGAGGRCCC CTGCTCAGWT TYTTGGMWTC TTG 43 配列番号 ： 5
配列の長さ ： 4 0
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
• 配列
ACTAGTCGAC ATGGATTTWC AGGTGCAGAT T TCAGCTTC 40 配列番号 ： 6
配列の長さ ： 3 7
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
ACTAGTCGAC ATGAGGTKCY YTGYTSAGYT YCTGRGG 37 配列番号 ： 7
配列の長さ ： 4 1
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状 配列の種類 ： 合成 D N A
配列
ACTAGTCGAC ATGGGCWTCA AGATGGAGTC ACAKWYYCWG G 41 配列番号 ： 8
配列の長さ ： 4 1
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
ACTAGTCGAC ATGTGGGGAY CTKTTTYCMM TTTTTCAATT G 41 配列番号 ： 9
配列の長き ： 3 5.
配列の型 ： 核酸
.鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
ACTAGTCGAC ATGGTRTCCW CASCTCAGTT CCTTG 35 配列番号 ： 1 0
配列の長さ ： 3 7
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
ACTAGTCGAC ATGTATATAT GTTTGTTGTC TATTTCT 37 配列番号 ： 1 1
配列の長さ ： 3 8
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
ACTAGTCGAC ATGGAAGCCC CAGCTCAGCT TCTCTTCC 38 配列番号 ： 1 2
配列の長さ ： 2 7
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
GGATCCCGGG TGGATGGTGG GAAGATG 27 配列番号 ： 1 3
配列の長さ ： 3 7
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
ACTAGTCGAC ATGAAATGCA GCTGGGTCAT STTCTTC 37 配列番号 ： 1 4
配列の長さ ： 3 6
配列の型 ： 核酸 鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 DN A
配列
ACTAGTCGAC ATGGGATGGA GCTRTATCAT SYTCTT 36 配列番号 ： 1 5
配列の長さ ： 3 7
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 DN A
配列
ACTAGTCGAC ATGAAGWTGT GGTTAAACTG GGTTTTT 37 配列番号 ： 1 6
配列の長さ ： 3 5
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 DNA
配列
ACTAGTCGAC ATGRACTTTG GGYTCAGCTT GRTTT 35 配列番号 ： 1 7
配列の長さ ： 4 0
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A 配列
ACTAGTCGAC ATGGACTCCA GGCTCAATTT AGTTTTCCTT 40 配列番号 ： 1 8
配列の長さ ： 3 7
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 DN A
配列
ACTAGTCGAC ATGGCTGTCY TRGSGCTRCT CTTCTGC 37 配列番号 ： 1 9
配列の長さ ： 3 6
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 DN A
配列
ACTAGTCGAC ATGGRATGGA GCKGGRTCTT TMTCTT 36 配列番号 ： 2 0
配列の長さ ： 3 3
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
ACTAGTCGAC ATGAGAGTGC TGATTCTTTT GTG 33 配列番号 ： 2 1
配列の長さ ： 4 0
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
ACTAGTCGAC ATGGMTTGGG TGTGGAMCTT GCTATTCCTG 40 配列番号 ： 2 2
配列の長さ ： 3 7
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
ACTAGTCGAC ATGGGCAGAC TTACATTCTC ATTCCTG 37 配列番号 ： 2 3
配列の長さ ： 3 8
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
ACTAGTCGAC ATGGATTTTG GGCTGATTTT TTTTATTG 38 配列番号 ： 2 4
配列の長さ ： 3 7
配列の型 ： 核酸 鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
ACTAGTCGAC ATGATGGTGT TAAGTCTTCT GTACCTG 37 配列番号 ： 2 5
配列の長さ ： 2 8
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
GGATCCCGGG CCAGTGGATA GACAGATG 28 配列番号 ： 2 6 .
配列の長さ ： 3 8 2
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ：二本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： c D N A
起源
生物名 ： マウス
直接の起源
クローン ： p U C— M 2 1 - VL
特徴 ： 1. . 7 2 s i g p e p t i d e
7 3. . 3 8 2 m a t p e p t i d e 8 S
ζ ^. 呦^
M
V N α 3 ： 籙 S 0^31 篛軍 ：一 α 4 驟本： ： 凝 0篛 m ： ourn
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L Z ： - -SMSS s
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Aq an nio naq sAq jqi 288 0 VVV 01V WO 010 VVV OOV 009 ozT gn on
Αϊθ ίιο 3qd ¾iv 3JV OJd jAi J9S usy J^i UIQ UJQ SAQ aiy αλχ 098 VOO 100 OIX 000 000 100 XVI OOV OVV IVl WO OVO XOI Oil丄 V丄
901 OOT S6
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SIS OVO VOO Oil OVO WO 131 OVO 013 IVV OOV 31V OOV 010 I3V Oil
06 98 08
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Si 01 CQ
j 3JV J J3S BIV J3S J 9Π nai OJd sAq OJd J3S UIQ A19 S22 OVI 090 1VI 301 VOO OOX OVX 11V 010 V30 VVV XOO 131 VV3 000
09 99 OS
OJd sAq uio ui9 J 丄 ¾1V ΐ¾Λ usv J 1 ^19 \ \ usv uio J3S 081 VOO VVV 9V0 VV3 XVI 901 000 VIO IVV 10V 190 010 IVV OVO 丄 3V
¾IV sAi sAo JM1 Ϊ¾Λ J3S 1¾Λ 3JV dsy AIQ ι¾Λ J3S jqi J3S 19W 981 300 OVV 001 03V DIO OOV 310 OOV OVO VOO V19 VOX VOV 301 01V
08 92 02
3Md sAq uio J3S ujo jq w Ι¾Λ 911 dsy AiO dsv ΐ¾Λ ^10 06 Oil VVV WO IOX 9V0 03V OIV 010 11V OVO V09 1V9 110100 IOX
gi oi 9
n91 djx naq n9q }3W JAx t¾A 8Md ΐ¾Λ uio 3Π S!H J9S "1013W Oil 001 010 Oil OIV OVI VIO 111 010 OVO 丄丄 V IVO V31 OVO oxv
2I 直接の起源
ク ローン p U C - M 2 1 - V H
特徴 ： 1 . 5 7 s i g p e p t i d e
5 8 . 4 0 9 m a t p e p t i d e
配列
ATG AAA TGC AGC TGG GTC ATG TTC TTC CTG ATG GCA GTG GTT ACA 45 Met Lys Cys Ser Trp Val Met Phe Phe Leu Met Ala Val Val Thr
5 10 15
GGG GTC AAT TCA GAG GTT CAG CTG CAG CAG TCT GGG GCA GAG CTT 90 Gly Val Asn Ser Glu Val Gin Leu Gin Gin Ser Gly Ala Glu Leu
20 25 30
GTG AAG CCA GGG GCC TCA GTC AAG TTG TCC TGC ACA GCT TCT GGC 135 Val Lys Pro Gl y Ala Ser Val Lys Leu Ser Cys Thr Ala Ser Gly
35 40 45
TTC AAC ATT AAA GAC ACC TAT ATA CAC TGG GCG AAG CAG AGG CCT 180 Phe Asn l ie Lys Asp Thr Tyr He Hi s Trp Ala Lys Gin Arg Pro
50 55 60
GAA CAG GGC CTG GAG TGG ATT GGA AGG ATT GAT CCT GCG GAT GGT 225 Glu Gin Gly Leu Glu Trp l ie Gly Arg l ie Asp Pro Ala Asp Gly
65 70 - 75
AAT ACT AAA TAT GAC CCG AAG TTC CAG GGC AAG GCC ACT ATA ACA 270 Asn Thr Lys Tyr Asp Pro Lys Phe Gin Gly Lys Ala Thr l ie Thr
80 85 90
GCA GAC ACA TCC TCC AAC ACA GCC TAC CTG CAG CTC AGC AGC CTG 315 Ala Asp Thr Ser Ser Asn Thr Ala Tyr Leu Gin Leu Ser Ser Leu
95 100 105
ACA TCT GAG GAC ACT GCC GTC TAT TAC TGT GCT TCG GCC TAC TAT 360 Thr Ser Glu Asp Thr Ala Val Tyr Tyr Cys Ala Ser Ala Tyr Tyr
110 115 120
GTT AAC CAG GAC TAC TGG GGT CAA GGA ACC TCA GTC ACC GTC TCC 405 Val Asn Gin Asp Tyr Trp Gly Gin Gly Thr Ser Val Thr Val Ser
125 130 135
TCA G 409 Ser 配列番号 ： 2 8
配列の長さ ： 3 4
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
GATAAGCTTC CACCATGGGC TTCAAGATGG AGTC 34 配列番号 ： 2 9
配列の長さ ： 3 4
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N.A
配列
GGCGGATCCA CTCACGTTTG ATTTCCAGTT TGGT 34 配列番号 ： 3 0
配列の長さ ： 4 3
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
GATAAGCTTC CACCATGAAA TGCAGCTGGG TCATGTTCTT CCT 43 配列番号 ： 3
配列の長さ ： 3 4
配列の型 ： 核酸 鎖の数 ： 一本鎖
トポロ ジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
GGCGGATCCA CTCACCTGAG GAGACGGTGA CTGA 34 配列番号 ： 3 2
配列の長さ ： 1 8
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 DN A
配列
CAGACAGTGG TTCAAAGT 18 配列番号 ： 3 3 .
配列の長さ ： 2 6
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 DN A
配列
GAATTCGGAT CCACTCACGT TTGATT 26 配列番号 ： 3 4
配列の長さ ： 4 4
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A 配列
AGTCAGAATG TGGGTACTAA TGTAGCCTGG TACCAGCAGA AGCC 44 配列番号 ： 3 5
配列の長さ ： 3 8
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
TCCTATCGGT ACAGTGGTGT GCCAAGCAGA TTCAGCGG 38 配列番号 ： 3 6
配列の長さ ： 4 7
配列の型 ； 核酸 .
鎖の数 ： 一本鎖
-トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
GCTACCTACT ACTGCCAGCA ATATAACAGC TATCCTCGGG CGTTCGG 47 配列番号 ： 3 7
配列の長さ ： 4 4
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
ACATTAGTAC CCACATTCTG ACTGGCCTTA CAGGTGATGG TCAC 44 配列番号 ： 3 8
配列の長さ ： 4 7
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 DN A
配列
GGCACACCAC TGTACCGATA GGATGCCGAG TAGATCAGCA GCTTTGG 47 配列番号 ： 3 9
配列の長さ ： 4 4
• 配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 DN A
配列
GGATAGCTGT TATATTGCTG GCAGTAGTAG GTAGCGATGT CCTC 44 配列番号 ： 4 0
配列の長さ ： 3 7 9
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ：二本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成
起源
生物名 ： マウス及びヒ ト
直接の起源
クロ一ン ： H E F - R V L -M 2 1 a - g κ
アミ ノ酸 一 1 9 一一 1 ： 1 e a d e r 9
SOT
sAq 911 nio \n sAq Jqi 0 VVV OIV WO 010 OVV 03V
001 96 06
AIO uio 9Md OJd J J9S usv J uio UI9 s/iQ JAi
098 000 WO 000 Oil 030 903 100 IVl OOV OVV IVl WO OVO 091 OVl
98 08 gi
J jqi ¾iv an dsy niO OJd ui naq J9S J8S ai l jqi 9¾d J¾
SIS OVl OOV 300 OIV OVO OVO VOO OVO DID OOV OOV OIV OOV Oil 03V
01 S9 09
3Md dsy jqi ^10 J3S ^10 J3S aqd 3JV OJd m ^io
OLZ Oil OVO 30V丄 33 30V 100 OOV 100 OOV Oil VOV 30V VOO 010 100
99 09
J9S J 3JV J J3S J an nai naq sAq OJd ¾iv sAq ZZ 10V OVl 000 IVl 001 VOO 001 OVX OIV 010 013 OVV VOO 130 OVV
0 OS
AlO OJd sAi uio UIO J dJl BTV Ι¾Λ usv JM1 ^IO Ι¾Λ usv uiO
081 VOO VOO OVV OVO OVO 3VI 001 300 VIO XVV 13V 100 010 IVV DVO
S2 9T
J9S BIV sAq sAo ai l •im Ι¾Λ 3JV dsv Aio ί¾Λ •I9S ¾IV J3S
SSI 10V 300 OVV丄 OL 33V OIV 03V 019 VOV OVO 100 010 09V 030 30V
01 s ΐ ΐ - n9q J3S J9S OJJ jqi uio 9Π dsv s s !H
06 010 30V DOV V33 OOV OVO DDV OIV OVO OIV OVO 001 OVO 310 190
S- Οΐ - 61- jq丄 ¾iv jqi B IV J9S naq d \ \ d \ \ SAQ Jas dJ丄 A i9 } dV{
V3V 109 VOV VOO VIO Oil 301 ；)丄; 3 31V OIV XOl OOV 901 V09 OIV
H Λ ■ 0 I 8 6 , ：、
H a 3 L 6 6 8 翘广
8 8 丄 S
H a o 9 9 0 9 翊 , ^
6 f s ε 翘
H a o f z 翊
Ϊ H Λ ε z l 翊
£9LlOIP6d£l∑Dd 配列番号 ： 4 1
配列の長さ ： 3 1
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
GGTACCGACT ACACCTTCAC CATCAGCAGC C 31 配列番号 ： 4 2
配列の長さ ： 3 1
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
GGTGAAGGTG TAGTCGGTAC CGCTACCGCT A 31 配列番号 ： 4 3
配列の長さ ： 3 7 9
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 二本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成
起源
生物名 ： マゥス及びヒ 卜
直接の起源
クローン ： H E F— R V L— M 2 1 b - g κ
ア ミ ノ酸 一 1 9 —一 1 : l e a d e r ア ミ ノ酸 1 2 3 F R 1
ア ミ ノ酸 2 4 3 4 C D R
ア ミ ノ酸 3 5 4 9 F R 2
ア ミ ノ酸 5 0 5 6 C D R
ア ミ ノ酸 5 7 8 8 F R 3
ア ミ ノ酸 8 9 9 7 C D R
ア ミ ノ酸 9 8 1 0 ： F R
配列
ATG GGA TGG AGC TGT ATC ATC CTC TCC TTG GTA GCA ACA GCT ACA 45 Met Gly Trp Ser Cys l ie l ie Leu Ser Leu Val Ala Thr Ala Thr
-19 - 15 -10 -5
GGT GTC CAC TCC GAC ATC CAG ATG ACC CAG AGC CCA AGC AGC CTG 90 Gly Val Hi s Ser Asp l ie Gin Met Thr Gin Ser Pro Ser Ser Leu
- 1 1 5 10
AGC GCC AGC GTG GGT GAC AGA GTG ACC ATC ACC TGT AAG GCC AGT 135 Ser Ala Ser Val Gly Asp Arg Val Thr l ie Thr Cys Lys Ala Ser
15 20 25
CAG AAT GTG GGT ACT AAT GTA GCC TGG TAC CAG CAG AAG CCA GGA 180 Gin Asn Val Gly Thr Asn Val Ala Trp Tyr Gin Gin Lys Pro Gly
30 35 40
AAG GCT CCA AAG CTG CTG ATC TAC TCG GCA TCC TAT CGG TAC AGT 225 Lys Ala Pro Lys Leu Leu l ie Tyr Ser Ala Ser Tyr Arg Tyr Ser
45 50 55
GGT GTG CCA AGC AGA TTC AGC GGT AGC GGT AGT GGT ACC GAC TAC 270 Gly Val Pro Ser Ar Phe Ser Gly Ser Gly Ser Gly Thr Asp Tyr
60 65 70
ACC TTC ACC ATC AGC AGC CTC CAG CCA GAG GAC ATC GCC ACC TAC 315 Thr Phe Thr He Ser Ser Leu Gin Pro Glu Asp l ie Ala Thr Tyr
75 80 85
TAC TGC CAG CAA TAT AAC AGC TAT CCT CGG GCG TTC GGC CAA GGG 360 Tyr Cys Gin Gin Tyr Asn Ser Tyr Pro Arg Ala Phe Gly Gin Gly
90 95 100
ACC AAG GTG GAA ATC AAA C 379 Thr Lys Val Glu l ie Lys
105 配列番号 ： 4 4
配列の長さ ： 2 9
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
GCTACCTACT TCTGCCAGCA ATATAACAG 29 配列番号 ： 4 5
配列の長さ ： 2 9
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ：直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
-配列
TGCTGGCAGA AGTAGGTAGC GATGTCCTC 29 配列番号 ： 4 6
配列の長さ ： 3 7 9
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ：二本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成
起源
生物名 ： マウス及びヒ ト
直接の起源
クロー ン ： H E F— R V L— M 2 1 - g κ
アミ ノ酸 一 1 9 1 ： l e a d e r ア ミ ノ酸 1 2 3 F R 1
ア ミ ノ酸 2 4 3 4 C D R 1
ア ミ ノ酸 3 5 4 9 F R 2
ア ミ ノ酸 5 0 5 6 C D R 2
ア ミ ノ酸 5 7 8 8 F R 3
ア ミ ノ酸 8 9 9 7 C D R 3
ア ミ ノ酸 9 8 1 0 ： F R 4
配列
ATG GGA TGG AGC TGT ATC ATC CTC TCC TTG GTA GCA ACA GCT ACA 45 Met Gly Trp Ser Cys l ie l ie Leu Ser Leu Val Ala Thr Ala Thr
-19 -15 - 10 - 5
GGT GTC CAC TCC GAC ATC CAG ATG ACC CAG AGC CCA AGC AGC CTG 90 Gly Val Hi s Ser Asp l ie Gin Met Thr Gin Ser Pro Ser Ser し eu
- 1 1 5 10
AGC GCC AGC GTG GGT GAC AGA GTG ACC ATC ACC TGT AAG GCC AGT 135 Ser Ala Ser Val Gly Asp Arg Val Thr l ie Thr Cys Lys Ala Ser
15 20 25
CAG AAT GTG GGT ACT AAT GTA GCC TGG TAC CAG CAG AAG CCA GGA 180 Gin Asn Val Gly Thr Asn Val Ala Trp Tyr Gin Gin Lys Pro Gly
30 35 40
AAG GCT CCA AAG CTG CTG ATC TAC TCG GCA TCC TAT CGG TAC AGT 225 Lys Ala Pro Lys Leu Leu l ie Tyr Ser Ala Ser Tyr Arg Tyr Ser
45 50 55
GGT GTG CCA AGC AGA TTC AGC GGT AGC GGT AGC GGT ACC GAC TTC 270 Gly Val Pro Ser Arg Phe Ser Gly Ser Gly Ser Gly Thr Asp Phe
60 65 70
ACC TTC ACC ATC AGC AGC CTC CAG CCA GAG GAC ATC GCC ACC TAC 315 Thr Phe Thr l ie Ser Ser Leu Gin Pro Glu Asp l ie Ala Thr Tyr
75 80 85
TTC TGC CAG CAA TAT AAC AGC TAT CCT CGG GCG TTC GGC CAA GGG 360 Phe Cys Gin Gin Tyr Asn Ser Tyr Pro Arg Ala Phe Gly Gin Gly
90 95 100
ACC AAG GTG GAA ATC AAA C 379 Thr Lys Val Glu l ie Lys
105 配列番号 ： 4 7
配列の長さ ： 3 7 9
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 二本鎖
トポロジー ： 直 H一鎖状
配列の種類 ： 合成 E 2381559 起源
生物名 ： マウス及びヒ ト
直接の起源
ク ローン - R V L - M 2 1 d - g c
ア ミ ノ酸 - 1 1 e a d e
ア ミ ノ酸 2 3 F R 1
ア ミ ノ酸 3 4 C D R
ア ミ ノ酸 4 9 F R 2
ア ミ ノ酸 5 6 C D R
ア ミ ノ酸 8 8 F R 3
ア ミ ノ酸 9 7 C D R
ア ミ ノ酸
Figure imgf000071_0001
1 0 7 ： F R
配列
ATG GGA TGG AGC TGT ATC ATC CTC TCC TTG GTA GCA ACA GCT ACA 45 Met Gly Trp Ser Cys l i e l ie Leu Ser Leu Val Ala Thr Ala Thr
-19 -15 -10 - 5
GGT GTC CAC TCC GAC ATC CAG ATG ACC CAG AGC CCA AGC AGC CTG 90 Gly Val Hi s Ser Asp l ie Gin Met Thr Gin Ser Pro Ser Ser Leu
-1 1 5 10
AGC GCC AGC GTG GGT GAC AGA GTG ACC ATC ACC TGT AAG GCC ACT 135 Ser Ala Ser Val Gly Asp Arg Val Thr l i e Thr Cys Lys Ala Ser
15 20 25
CAG AAT GTG GGT ACT AAT GTA GCC TGG TAC CAG CAG AAG CCA GGA 180 Gin Asn Val Gl y Thr Asn Val Ala Trp Tyr Gin Gin Lys Pro Gl y
30 35 40 AAG GCT CCA AAG CTG CTG ATC TAC TCG GCA TCC TAT CGG TAC AGT 225 Lys Ala Pro Lys Leu Leu l ie Tyr Ser Ala Ser Tyr Arg Tyr Ser
45 50 55
GGT GTG CCA AGC AGA TTC AGC GGT AGC GGT AGC GGT ACC GAC TAC 270 Gly Val Pro Ser Arg Phe Ser Gly Ser Gly Ser Gly Thr Asp Tyr
60 65 70
ACC TTC ACC ATC AGC AGC CTC CAG CCA GAG GAC ATC GCC ACC TAC 315 Thr Phe Thr l i e Ser Ser Leu Gin Pro Glu Asp l ie Ala Thr Tyr
75 80 85
TTC TGC CAG CAA TAT AAC AGC TAT CCT CGG GCG TTC GGC CAA GGG 360 Phe Cys Gin Gin Tyr Asn Ser Tyr Pro Arg Ala Phe Gly Gin Gly
90 95 100
ACC AAG GTG GAA ATC AAA C 379 Thr Lys Val Glu l ie Lys
105 配列番号 ： 4 8
配列の長さ ： 2 9
配列の型 ： 核酸 .
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
TGACAGAGTG TCCGTCACCT GTAAGGCCA 29 配列番号 ： 4 9
配列の長さ ： 2 9
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
TTACAGGTGA CGGACACTCT GTCACCCAC 29 ΐ L
0 οε
^10 OJd sXq uio UTO J dJ丄 Βϊν Ι¾Λ usv Jm ^io usv uio8ΐ VOO VOO OVV OVD OVO OVI 001 030 VIO IVV 13V 100 010 XVV OVO
SZ 02 ST
sxq sA jqi I¾A J3S m 3JV dsv ^IO ΪΒΛ J3S BIV J3S
10V 009 9VV 101 OOV 310 031 3丄3 VOV OVO 100 010 OOV 030 09V 01 9 ト
J9S OJd J9S uio jq丄 law uio 3Π dsv J3S sin U Ji\06 010 OOV OOV VOO OOV OVO DOV OIV OVO OXV OVO 001 OVO 010 100
9- 01 - ST- 61- 丄 BIV "31 J3S naq d\\ d\\ SAQ J3s dJi λιο 13W^ VOV丄;) 3 VOV VOO VIO Oil 3：)丄 3丄3 OIV OXV 101 OOV 901 VOO OIV
½3i
L 0 ΐ 一 8 6 i X ε H a o ： L 6 一 6 8 r
ε Ή j ■ 8 8 一 L 9 r \ L
2 H a o ： 9 9 一 0 9 m r \ 丄
： 6 -. S ε M
ΐ Ή a o ： ε 一 ζ r ί ΐ H d - 2 Ζ - Ϊ m r i
J 9 P B 9 I ' ΐ 6 ΐ 一 r ί
— 9 T z - Τ Λ Η - j a H ■ベ一
4 Ά ίΧ^ ： 呦^
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0 S ： - -S½2S
£9LWP6d£llDd AAG GCT CCA AAG CTG CTG ATC TAC TCG GCA TCC TAT CGG TAC AGT 225 Lys Ala Pro Lys Leu Leu lie Tyr Ser Ala Ser Tyr Arg Tyr Ser
45 50 55
GGT GTG CCA AGC AGA TTC AGC GGT AGC GGT AGC GGT ACC GAC TTC 270 Gly Val Pro Ser Arg Phe Ser Gly Ser Gly Ser Gly Thr Asp Phe
60 65 70
ACC TTC ACC ATC AGC AGC CTC CAG CCA GAG GAC ATC GCC ACC TAC 315 Thr Phe Thr He Ser Ser Leu Gin Pro Glu Asp lie Ala Thr Tyr
75 80 85
TAC TGC CAG CAA TAT AAC AGC TAT CCT CGG GCG TTC GGC CAA GGG 360 Tyr Cys Gin Gin Tyr Asn Ser Tyr Pro Arg Ala Phe Gly Gin Gly
90 95 100
ACC AAG GTG GAA ATC AAA C 379 Thr Lys Val Glu lie Lys
105
配列番号 ： 5 1
配列の長さ ： 3 7 9
配列の型 ： 核酸 '
鎖の数 ： 二本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成
起源
生物名 ： マウス及びヒ ト
直接の起源
クローン H E F - R V L -M 2 1 ΐ - g κ
アミ ノ酸 1 9 一 1 1 e a d e r
ア ミ ノ酸 1 2 3 F R 1
ア ミ ノ酸 2 4 3 4 C D R
ア ミ ノ酸 3 5 4 9 F R 2
ア ミ ノ酸 5 0 5 6 C D R
ア ミ ノ酸 5 7 8 8 F R 3
ア ミ ノ酸 8 9 9 7 C D R ア ミ ノ酸 9 8 _ 1 0 7 : F R 4
配列
ATG GGA TGG AGC TGT ATC ATC CTC TCC TTG GTA GCA ACA GCT ACA 45
Met Gl y Trp Ser Cys l i e l i e Leu Ser Leu Val Ala Thr Ala Thr
- 19 -15 -10 -5
GGT GTC CAC TCC GAC ATC CAG ATG ACC CAG AGC CCA AGC AGC CTG 90 Gly Val Hi s Ser Asp l ie Gin Met Thr Gin Ser Pro Ser Ser Leu
- 1 1 5 10
AGC GCC AGC GTG GGT GAC AGA GTG TCC GTC ACC TGT AAG GCC AGT 135 Ser Ala Ser Val Gly Asp Arg Val Ser Val Thr Cys Lys Ala Ser
15 20 25
CAG AAT GTG GGT ACT AAT GTA GCC TGG TAC CAG CAG AAG CCA GGA 180 Gin Asn Val Gly Thr Asn Val Ala Trp Tyr Gin Gin Lys Pro Gly
30 35 40
AAG GCT CCA AAG CTG CTG ATC TAC TCG GCA TCC TAT CGG TAC AGT 225 Lys Ala Pro Lys Leu Leu l ie Tyr Ser Ala Ser Tyr Arg Tyr Ser
45 50 55
GGT GTG CCA AGC AGA TTC AGC GGT AGC GGT AGC GGT ACC GAC TTC 270 Gly Val Pro Ser Arg Phe Ser Gly Ser Gly Ser Gly Thr Asp Phe
60 65 70
ACC TTC ACC ATC AGC AGC CTC CAG CCA GAG GAC ATC GCC ACC TAC 315 Thr Phe Thr l ie Ser Ser Leu Gin Pro Glu Asp l ie Ala Thr Tyr
75 80 85
TTC TGC CAG CAA TAT AAC AGC TAT CCT CGG GCG TTC GGC CAA GGG 360 Phe Cys Gin Gin Tyr Asn Ser Tyr Pro Arg Ala Phe Gly Gin Gly
90 95 100
ACC AAG GTG GAA ATC AAA C 379 Thr Lys Val Glu l ie Lys
105 配列番号 ： 5 2
配列の長さ ： 2 6
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A 配列
GACTTCACCT TGACCATCAG CAGCCT 26 配列番号 ： 5 3
配列の長さ ： 2 6
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
CTGCTGATGG TCAAGGTGAA GTCGGT 26 配列番号 ： 5 4
配列の長さ ： 3 7 9
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 二本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成
起源
生物名 ： マウス及びヒ ト
直接の起源
クローン ： H E F— R V L — M 2 1 g - g κ
ア ミ ノ酸 一 1 9 一一 1 : l e a d e r
アミ ノ酸 1 — 2 3 : F R 1
ア ミ ノ酸 2 4 — 3 4 : C D R 1
アミ ノ酸 3 5 — 4 9 : F R 2
ア ミ ノ酸 5 0 — 5 6 : C D R 2
アミ ノ酸 5 7 — 8 8 : F R 3
ア ミ ノ酸 8 9 — 9 7 : C D R 3 ア ミ ノ酸 9 8 — 1 0 7 : F R 4
配列
ATG GGA TGG AGC TGT ATC ATC CTC TCC TTG GTA GCA ACA GCT ACA 45 Met Gly Trp Ser Cys lie lie Leu Ser Leu Val Ala Thr Ala Thr
-19 -15 -10 -5
GGT GTC CAC TCC GAC ATC CAG ATG ACC CAG AGC CCA AGC AGC CTG 90 Gly Val His Ser Asp lie Gin Met Thr Gin Ser Pro Ser Ser Leu
- 1 1 5 10
AGC GCC AGC GTG GGT GAC AGA GTG TCC GTC ACC TGT AAG GCC AGT 135 Ser Ala Ser Val Gly Asp Arg Val Ser Val Thr Cys Lys Ala Ser
15 20 25
CAG AAT GTG GGT ACT AAT GTA GCC TGG TAC CAG CAG AAG CCA GGA 180 Gin Asn Val Gly Thr Asn Val Ala Trp Tyr Gin Gin Lys Pro Gly
30 35 40
AAG GCT CCA AAG CTG CTG ATC TAC TCG GCA TCC TAT CGG TAC AGT 225 Lys Ala Pro Lys Leu Leu lie Tyr Ser Ala Ser Tyr Arg Tyr Ser
45 50 55
GGT GTG CCA AGC AGA TTC AGC GGT AGC GGT AGC GGT ACC GAC TTC 270 Gly Val Pro Ser Arg Phe Ser Gly Ser Gly Ser Gly Thr Asp Phe
60 65 70
ACC TTG ACC ATC AGC AGC CTC CAG CCA GAG GAC ATC GCC ACC TAC 315. Thr Leu Thr lie Ser Ser Leu Gin Pro Glu Asp lie Ala Thr Tyr
75 80 85
TTC TGC CAG CAA TAT AAC AGC TAT CCT CGG GCG TTC GGC CAA GGG 360 Phe Cys Gin Gin Tyr Asn Ser Tyr Pro Arg Ala Phe Gly Gin Gly
90 95 100
ACC AAG GTG GAA ATC AAA C 379 Thr Lys Val Glu lie Lys
105
配列番号 ： 5 5
配列の長さ ： 3 7 9
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 二本鎖
トポロジ一 : 直鎖状
配列の種類 ： 合成 起源
生物名 ： マウス及びヒ ト
直接の起源
ク ローン H E F R V L - M 2 1 h - g C
ア ミ ノ酸 一 1 9 一 1 l e a d e r
ア ミ ノ酸 1 2 3 F R 1
ア ミ ノ酸 2 4 3 4 C D R
ア ミ ノ酸 3 5 4 9 F R 2
ア ミ ノ酸 5 0 5 6 C D R
ア ミ ノ酸 5 7 8 8 F R 3
ア ミ ノ酸 8 9 9 7 C D R
ア ミ ノ酸 9 8 1 0 7 ： F R
配列
ATG GGA TGG AGC TGT ATC ATC CTC TCC TTG GTA GCA ACA GCT ACA 45 Met Gly Trp Ser Cys l ie l ie Leu Ser Leu Val Ala Thr Ala Thr
-19 -15 -10 -5
GGT GTC CAC TCC GAC ATC CAG ATG ACC CAG AGC CCA AGC AGC CTG 90 Gly Val Hi s Ser Asp l ie Gin Met Thr Gin Ser Pro Ser Ser Leu
-1 1 5 10
AGC GCC AGC GTG GGT GAC AGA GTG ACC ATC ACC TGT AAG GCC AGT 135 Ser Ala Ser Val Gly Asp Arg Val Thr l ie Thr Cys Lys Ala Ser
15 20 25
CAG AAT GTG GGT ACT AAT GTA GCC TGG TAC CAG CAG AAG CCA GGA 180 Gin Asn Val Gly Thr Asn Val Ala Trp Tyr Gin Gin Lys Pro Gly
30 35 40
AAG GCT CCA AAG CTG CTG ATC TAC TCG GCA TCC TAT CGG TAC AGT 225 Lys Ala Pro Lys Leu Leu l ie Tyr Ser Ala Ser Tyr Arg Tyr Ser
45 50 55
GGT GTG CCA AGC AGA TTC AGC GGT AGC GGT AGC GGT ACC GAC TTC 270 Gly Val Pro Ser Arg Phe Ser Gly Ser Gly Ser Gly Thr Asp Phe
60 65 70
ACC TTG ACC ATC AGC AGC CTC CAG CCA GAG GAC ATC GCC ACC TAC 315 Thr Leu Thr l ie Ser Ser Leu Gin Pro Glu Asp l ie Ala Thr Tyr
75 80 85 TAC TGC CAG CAA TAT AAC AGC TAT CCT CGG GCG TTC GGC CAA GGG 360 Tyr Cys Gin Gin Tyr Asn Ser Tyr Pro Arg Ala Phe Gly Gin Gly
90 95 100
ACC AAG GTG GAA ATC AAA C 379 Thr Lys Val Glu l ie Lys
105
配列番号 ： 5 6
配列の長さ ： 2 9
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
GGACAGAGTC CAAAGCCGCT GATCTACTC 29 配列番号 ： 5 .7 .
配列の長さ ： 2 9
-配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
ATCAGCGGCT TTGGACTCTG TCCTGGCTT 29 配列番号 ： 5 8
配列の長さ ： 3 7 9
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 二本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 8 L
S8 08 SI
¾1V 311 dsv nio OJd uio na J9S J8S 9Π J Π9ΐ jqx
OVl OOV 00031V OVO OVO VOO OVO 010 OOV OOV 31V 33V Oil OOV L S9 09
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99 09
J3S J 3JV J J3S BIV J3S J 811 nai OJJ sAq OJd J9S uio
922 19V OVl 003 IVl 031 VOO 001 OVl 31V 013 003 OVV VOO 10V OVO
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J3S OJd J9S uio jqi ¾9W uiO ail dsv J3S s!H 1¾Λ io
06 010 39V OOV VOO OOV OVO OOV OIV OVO OIV 0V9301 OVO 0X0 XOO
S- 01- SI- 61-
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90 95 100
ACC AAG GTG GAA ATC AAA C 379 Thr Lys Val Glu lie Lys
105
配列番号 ： 5 9
配列の長さ ： 2 6
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
GAGGACATCG CTGACTACTT CTGCCA 26 配列番号 ： 6 0
配列の長さ ： 2 6
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 DN A
配列
AAGTAGTCAG CGATGTCCTC TGGCTG 26 配列番号 ： 6 1
配列の長さ ： 3 7 9
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 二本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 起源
生物名 ： マウ ス及びヒ ト
直接の起源
ク ローン H E F - RV L -M 2 1 j - g /c
ア ミ ノ酸 - 1 9 一一 1 1 e a d e r
ア ミ ノ酸 1 - 2 3 F R 1
ア ミ ノ酸 2 4 3 4 C D R
ア ミ ノ酸 3 5 4 9 F R 2
ア ミ ノ酸 5 0 5 6 C D R
ア ミ ノ酸 5 7 8 8 F R 3
ア ミ ノ酸 8 9 - 9 7 C D R
ア ミ ノ酸 9 8 - 1 0 7 ： F R
配列
ATG GGA TGG AGC TGT ATC ATC CTC TCC TTG GTA GCA ACA GCT ACA 45 Met Gly Trp Ser Cys lie 〖le Leu Ser Leu Val Ala Thr Ala Thr
-19 -15 -10 - 5
GGT GTC CAC TCC GAC ATC CAG ATG ACC CAG AGC CCA AGC AGC CTG 90 Gly Val His Ser Asp He Gin Met Thr Gin Ser Pro Ser Ser Leu
-1 1 5 10
AGC GCC AGC GTG GGT GAC AGA GTG TCC GTC ACC TGT AAG GCC AGT 135 Ser Ala Ser Val Gly Asp Arg Val Ser Val Thr Cys Lys Ala Ser
15 20 25
CAG AAT GTG GGT ACT AAT GTA GCC TGG TAC CAG CAG AAG CCA GGA 180 Gin Asn Val Gly Thr Asn Val Ala Trp Tyr Gin Gin Lys Pro Gly
30 35 40
CAG AGT CCA AAG CCG CTG ATC TAC TCG GCA TCC TAT CGG TAC AGT 225 Gin Ser Pro Lys Pro Leu lie Tyr Ser Ala Ser Tyr Arg Tyr Ser
45 50 55
GGT GTG CCA AGC AGA TTC AGC GGT AGC GGT AGC GGT ACC GAC TTC 270 Gly Val Pro Ser Arg Phe Ser Gly Ser Gly Ser Gly Thr Asp Phe
60 65 70
ACC TTG ACC ATC AGC AGC CTC CAG CCA GAG GAC ATC GCC GAC TAC 315 Thr Leu Thr He Ser Ser Leu Gin Pro Glu Asp He Ala Asp Tyr
75 80 85 TTC TGC CAG CAA TAT AAC AGC TAT CCT CGG GCG TTC GGC CAA GGG 360 Phe Cys Gin Gin Tyr Asn Ser Tyr Pro Arg Ala Phe Gly Gin Gly
90 95 100
ACC AAG GTG GAA ATC AAA C 379 Thr Lys Val Glu lie Lys
105
配列番号 ： 6 2
配列の長さ ： 3 7 9
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 二本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成
起源
生物名 ： マウス及びヒ ト
直接の起源
ク ロー ン H E F - RV L -M 2 1 k - g /c
ア ミ ノ酸 1 9 一 1 1 e a d e r
ア ミ ノ酸 1 2 3 F R 1
ア ミ ノ酸 2 4 3 4 C D R 1
ア ミ ノ酸 3 5 4 9 F R 2
ア ミ ノ酸 5 0 5 6 C D R 2
ア ミ ノ酸 5 7 8 8 F R 3
ア ミ ノ酸 8 θ 9 7 C D R 3
ア ミ ノ酸 9 8 1 0 7 ： F R 4
配列
ATG GGA TGG AGC TGT ATC ATC CTC TCC TTG GTA GCA ACA GCT ACA 45
Met Gly Trp Ser Cys lie He Leu Ser Leu Val Ala Thr Ala Thr
-19 -15 -10 - 5
GGT GTC CAC TCC GAC ATC CAG ATG ACC CAG AGC CCA AGC AGC CTG 90
Gly Val His Ser Asp lie Gin Met Thr Gin Ser Pro Ser Ser Leu
- 1 1 5 10
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£9 驗 6dfAI «I ア ミ ノ酸 2 4 - 3 4 C D R 1
ア ミ ノ酸 3 5 - 4 9 F R 2
ア ミ ノ酸 5 0 一 5 6 C D R 2
ア ミ ノ酸 5 7 一 8 8 F R 3
ア ミ ノ酸 8 9 ― 9 7 C D R 3
ア ミ ノ酸 9 8 - 1 0 7 ： F R 4
配列
ATG GGA TGG AGC TGT ATC ATC CTC TCC TTG GTA GCA ACA GCT ACA 45
Met Gly Trp Ser Cys l ie l ie Leu Ser Leu Val Ala Thr Ala Thr
-19 -15 -10 -5
GGT GTC CAC TCC GAC ATC CAG ATG ACC CAG AGC CCA AGC AGC CTG 90 Gly Val Hi s Ser Asp l ie Gin Met Thr Gin Ser Pro Ser Ser Leu
- 1 1 5 10
AGC GCC AGC GTG GGT GAC AGA GTG TCC GTC ACC TGT AAG GCC AGT 135 Ser Ala Ser Val Gly Asp Arg Val Ser Val Thr Cys Lys Ala Ser
15 20 25
CAG AAT GTG GGT ACT AAT GTA GCC TGG TAC CAG CAG AAG CCA GGA 180 Gin Asn Val Gly Thr Asn Val Ala Trp Tyr Gin Gin Lys Pro Gly
30 35 40
CAG AGT CCA AAG CCG CTG ATC TAC TCG GCA TCC TAT CGG TAC AGT 225 Gin Ser Pro Lys Pro Leu l ie Tyr Ser Ala Ser Tyr Arg Tyr Ser
45 50 55
GGT GTG CCA AGC AGA TTC AGC GGT AGC GGT AGC GGT ACC GAC TTC 270 Gly Val Pro Ser Arg Phe Ser Gly Ser Gly Ser Gly Thr Asp Phe
60 65 70
ACC TTC ACC ATC AGC AGC CTC CAG CCA GAG GAC ATC GCC ACC TAC 315 Thr Phe Thr l ie Ser Ser Leu Gin Pro Glu Asp l ie Ala Thr Tyr
75 80 85
TAC TGC CAG CAA TAT AAC AGC TAT CCT CGG GCG TTC GGC CAA GGG 360 Tyr Cys Gin Gin Tyr Asn Ser Tyr Pro Arg Ala Phe Gly Gin Gly
90 95 100
ACC AAG GTG GAA ATC AAA C 379 Thr Lys Val Glu l ie Lys
105
配列番号 ： 6 4
配列の長さ ： 2 6 配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
CAGAGCCAAA AGTTCCTGAG CGCCAG 26 配列番号 ： 6 5
配列の長さ ： 2 6
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
CTCAGGAACT TTTGGCTCTG GGTCAT 26 配列番号 ： 6 6
配列の長さ ： 3 7 9
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 二本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成
起源
生物名 ： マウス及びヒ ト
直接の起源
クローン H E F - R V L - M 2 1 m - g c
ア ミ ノ酸 1 9 一一 1 l e a d e r
ア ミ ノ酸 1 - 2 3 F R 1
ア ミ ノ酸 2 4 - 3 4 C D R 1 ア ミ ノ酸 3 5 4 9 F R 2
ア ミ ノ酸 5 0 5 6 C D R 2
ア ミ ノ酸 5 7 8 8 F R 3
ア ミ ノ酸 8 9 9 7 C D R 3
ア ミ ノ酸 9 8 1 0 7 ： F R 4
配列
ATG GGA TGG AGC TGT ATC ATC CTC TCC TTG GTA GCA ACA GCT ACA 45
Met Gly Trp Ser Cys l ie l ie Leu Ser Leu Val Ala Thr Ala Thr
-19 -15 -10 - 5
GGT GTC CAC TCC GAC ATC CAG ATG ACC CAG AGC CAA AAG TTC CTG 90 Gly Val Hi s Ser Asp l ie Gin Met Thr Gin Ser Gin Lys Phe Leu
- 1 1 5 10
AGC GCC AGC GTG GGT GAC AGA GTG ACC ATC ACC TGT AAG GCC AGT 135 Ser Ala Ser Val Gly Asp Arg Val Thr l ie Thr Cys Lys Ala Ser
15 20 25
CAG AAT GTG GGT ACT AAT GTA GCC TGG TAC CAG CAG AAG CCA GGA 180 Gin Asn Val Gly Thr Asn Val Ala Trp Tyr Gin Gin Lys Pro Gly
30 35 40
CAG AGT CCA AAG CCG CTG ATC TAC TCG GCA TCC TAT CGG TAC AGT 225 Gin Ser Pro Lys Pro Leu l ie Tyr Ser Ala Ser Tyr Arg Tyr Ser
45 50 55
GGT GTG CCA AGC AGA TTC AGC GGT AGC GGT AGC GGT ACC GAC TTC 270 Gly Val Pro Ser Arg Phe Ser Gly Ser Gly Ser Gly Thr Asp Phe
60 65 70
ACC TTC ACC ATC AGC AGC CTC CAG CCA GAG GAC ATC GCC ACC TAC 315 Thr Phe Thr l ie Ser Ser Leu Gin Pro Glu Asp l ie Ala Thr Tyr
75 80 85
TAC TGC CAG CAA TAT AAC AGC TAT CCT CGG GCG TTC GGC CAA GGG 360 Tyr Cys Gin Gin Tyr Asn Ser Tyr Pro Arg Ala Phe Gly Gin Gly
90 95 100
ACC AAG GTG GAA ATC AAA C 379 Thr Lys Val Glu l ie Lys
105
配列番号 ： 6 7
配列の長さ ： 2 9
配列の型 ： 核酸 鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
GGACAGAGTC CAAAGCTGCT GATCTACTC 29 配列番号 ： 6 8 9451
配列の長さ ： 2 9
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
ATCAGCAGCTT TGGACTCTG TCCTGGCTT 29 配列番号 ： 6 9
配列の長さ ： 3 7 9
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 二本鎖
トポロジ一：直鎖状
配列の種類 ： 合成
起源
生物名 ： マウス及びヒ ト
直接の起源
クローン ： H E F - R V L - M 2 1 n g κ
アミ ノ酸 一 1 1 e a d e r
ア ミ ノ酸 2 3 F R 1
ア ミ ノ酸 3 4 C D R 1
ア ミ ノ酸
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4 9 F R 2 ァ ミ ノ酸 5 0 - 5 6 ： C D R
ァ ミ ノ酸 5 7 一 8 8 ： F R 3
ァ ミ ノ酸 8 9 一 9 7 ： C D R
ァ ミ ノ酸 9 8 一 1 0 7 ： F R
配列
ATG GGA TGG AGC TGT ATC ATC CTC TCC TTG GTA GCA ACA GCT ACA 45 Met Gl y Trp Ser Cys l i e l i e Leu Ser Leu Val Ala Thr Ala Thr
-19 -15 -10 -5
GGT GTC CAC TCC GAC ATC CAG ATG ACC CAG AGC CCA AGC AGC CTG 90 Gly Val Hi s Ser Asp l i e Gin Me t Thr Gin Ser Pro Ser Ser Leu
- 1 1 5 10
AGC GCC AGC GTG GGT GAC AGA GTG ACC ATC ACC TGT AAG GCC AGT 135 Ser Ala Ser Val Gly Asp Arg Val Thr l i e Thr Cys Lys Ala Ser
15 20 25
CAG AAT GTG GGT ACT AAT GTA GCC TGG TAC CAG CAG AAG CCA GGA 180 Gin Asn Val Gl y Thr Asn Val Ala Trp Tyr Gin Gin Lys Pro Gly
30 35 40
CAG AGT CCA AAG CTG CTG ATC TAC TCG GCA TCC TAT CGG TAC AGT 225 Gin Ser Pro Lys Leu Leu l i e Tyr Ser Ala Ser Tyr Arg Tyr Ser
45 50 55
GGT GTG CCA AGC AGA TTC AGC GGT AGC GGT AGC GGT ACC GAC TTC 270 Gly Val Pro Ser Arg Phe Ser Gly Ser Gly Ser Gl y Thr Asp Phe
60 65 70
ACC TTC ACC ATC AGC AGC CTC CAG CCA GAG GAC ATC GCC ACC TAC 315 Thr Phe Thr l i e Ser Ser Leu Gin Pro Glu Asp l ie Ala Thr Tyr
75 80 85
TAC TGC CAG CAA TAT AAC AGC TAT CCT CGG GCG TTC GGC CAA GGG 360 Tyr Cys Gin Gin Tyr Asn Ser Tyr Pro Arg Ala Phe Gly Gin Gly
90 95 100
ACC AAG GTG GAA ATC AAA 379 Thr Lys Val Glu l ie Lys
105
配列番号 ： 7 0
配列の長さ ： 3 7 9
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 二本鎖 トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成
起源
生物名 ： マウス及びヒ ト
直接の起源
クロー ン H E F - R V L - M 2 1 o - g
ア ミ ノ酸 1 9 一 1 1 e a d e r
ア ミ ノ酸 1 2 3 F R 1
ア ミ ノ酸 2 4 3 4 C D R
ア ミ ノ酸 3 5 4 9 F R 2
ア ミ ノ酸 5 0 5 6 C D R
ア ミ ノ酸 5 7 8 8 F R 3
ア ミ ノ酸 8 9 9 7 C D R
ア ミ ノ酸 9 8 1 0 7 ： F R
配列
ATG GGA TGG AGC TGT ATC ATC CTC TCC TTG GTA GCA ACA GCT ACA 45 Met Gly Trp Ser Cys l ie He Leu Ser Leu Val Ala Thr Ala Thr
-19 -15 -10 -5
GGT GTC CAC TCC GAC ATC CAG ATG ACC CAG AGC CCA AGC AGC CTG 90 Gly Val Hi s Ser Asp l ie Gin Met Thr Gin Ser Pro Ser Ser Leu
- 1 1 5 10
AGC GCC AGC GTG GGT GAC AGA GTG ACC ATC ACC TGT AAG GCC AGT 135 Ser Ala Ser Val Gly Asp Arg Val Thr He Thr Cys Lys Ala Ser
15 20 25
CAG AAT GTG GGT ACT AAT GTA GCC TGG TAC CAG CAG AAG CCA GGA 180 Gin Asn Val Gly Thr Asn Val Ala Trp Tyr Gin Gin Lys Pro Gly
30 35 40
CAG AGT CCA AAG CCG CTG ATC TAC TCG GCA TCC TAT CGG TAC AGT 225 Gin Ser Pro Lys Pro Leu l ie Tyr Ser Ala Ser Tyr Arg Tyr Ser
45 50 55
GGT GTG CCA AGC AGA TTC AGC GGT AGC GGT AGC GGT ACC GAC TTC 270 Gly Val Pro Ser Arg Phe Ser Gly Ser Gly Ser Gly Thr Asp Phe
60 65 70 ACC TTC ACC ATC AGC AGC CTC CAG CCA GAG GAC ATC GCC ACC TAC 315 Thr Phe Thr H e Ser Ser Leu Gin Pro Glu Asp l i e Ala Thr Tyr
75 80 85
TAC TGC CAG CAA TAT AAC AGC TAT CCT CGG GCG TTC GGC CAA GGG 360 Tyr Cys Gin Gin Tyr Asn Ser Tyr Pro Arg Ala Phe Gly Gin Gly
90 95 100
ACC AAG GTG GAA ATC AAA C 379 Thr Lys Val Glu He Lys
105
配列番号 ： 7 1
配列の長さ ： 2 3
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
GCTCCAAAGC CGCTGATCTA CTC 23 配列番号 ： 7 2
配列の長さ ： 2 3
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
TAGATCAGCG GCTTTGGAGC CTT 23 配列番号 ： 7 3
配列の長さ ： 3 7 9
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 二本鎖
トポロジー ： 直鎖状
8 Θ 配列の種類 ： 合成
起源
生物名 ： マウス及びヒ
直接の起源
ク ロー ン H E F R V L - M 2 1 P - g
ア ミ ノ酸 一 1 9 1 1 e a d e r
ア ミ ノ酸 1 2 3 F R 1
ア ミ ノ酸 2 4 3 4 C D R
ア ミ ノ酸 3 5 4 9 F R 2
ア ミ ノ酸 5 0 5 6 C D R
ア ミ ノ酸 5 7 8 8 F R 3
ア ミ ノ酸 8 9 9 7 C D R
ア ミ ノ酸 9 8 1 0 7 ： F R
配列
ATG GGA TGG AGC TGT ATC ATC CTC TCC TTG GTA GCA ACA GCT ACA 45 Met Gly Trp Ser Cys l ie l ie Leu Ser Leu Val Ala Thr Ala Thr
-19 -15 -10 -5
GGT GTC CAC TCC GAC ATC CAG ATG ACC CAG AGC CCA AGC AGC CTG 90 Gly Val His Ser Asp He Gin Met Thr Gin Ser Pro Ser Ser し eu
-1 1 5 10
AGC GCC AGC GTG GGT GAC AGA GTG ACC ATC ACC TGT AAG GCC AGT 135 Ser Ala Ser Val Gly Asp Arg Val Thr l ie Thr Cys Lys Ala Ser
15 20 25
CAG AAT GTG GGT ACT AAT GTA GCC TGG TAC CAG CAG AAG CCA GGA 180 Gin Asn Val Gly Thr Asn Val Ala Trp Tyr Gin Gin Lys Pro Gly
30 35 40
AAG GCT CCA AAG CCG CTG ATC TAC TCG GCA TCC TAT CGG TAC AGT 225 Lys Ala Pro Lys Pro Leu l ie Tyr Ser Ala Ser Tyr Arg Tyr Ser
45 50 55
GGT GTG CCA AGC AGA TTC AGC GGT AGC GGT AGC GGT ACC GAC TTC 270 Gly Val Pro Ser Arg Phe Ser Gly Ser Gly Ser Gl y Thr Asp Phe
60 65 70
g o ACC TTC ACC ATC AGC AGC CTC CAG CCA GAG GAC ATC GCC ACC TAC 315 Thr Phe Thr l i e Ser Ser Leu Gin Pro Glu Asp l ie Ala Thr Tyr
75 80 85
TAC TGC CAG CAA TAT AAC AGC TAT CCT CGG GCG TTC GGC CAA GGG 360 Tyr Cys Gin Gin Tyr Asn Ser Tyr Pro Arg Ala Phe Gly Gin Gly
90 95 100
ACC AAG GTG GAA ATC AAA C 379 Thr Lys Val Glu l ie Lys
105
配列番号 ： 7 4
配列の長さ ： 1 3 7
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
AAGAAGCCTG GGTCCTCAGT GAAGGTCTCC TGCAAGGCTT CTGGCTTCAA 50 CATTAAAGAC ACCTATATAC ACTGGGTGCG CCAGGCTCCA GGACAGGGCC 100 TGGAGTGGAT GGGAAGGATT GATCCTGAGG ATGGTAA 137 配列番号 ： 7 5
配列の長さ ： 1 1 1
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
TGAGATCTGA GGACACAGCC TTTTATTTCT GTGCAAGTGC CTACTATGTT 50 AACCAGGACT ACTGGGGCCA AGGGACCACT GTCACCGTCT CCTCAGGTGA 100 GTGGATCCGA C 111
g l 配列番号 ： Ί 6
配列の長さ ： 1 3 0
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
ACCTTCACTG AGGACCCAGG CTTCTTCACC TCAGCTCCAG ACTGCACCAG 50 CTGCACCTGG GAGTGAGCAC CTGGAGCTAC AGCCAGCAAG AAGAAGACCC 100 TCCAGGTCCA GTCCATGGTG GAAGCTTATC 130 配列番号 ： 7 7
配列の長さ ： 1 3 2
• 配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
AAAGGCTGTG TCCTCAGATC TCAGGCTGCT GAGCTCCATG TAGGCTGTGT 50 TCGTGGATTC GTCTGCAGTG ATTGTGACTC GGCCCTGGAA CTTCGGGTCA 100 TATTTAGTAT TACCATCCGC AGGATCAATC CT 132 配列番号 ： 7 8
配列の長さ ： 2 5
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A 配列
GATAAGCTTC CACCATGGAC TGGAC 25 配列番号 ： 7 9
配列の長さ ： 2 5
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
GTCGGATCCA CTCACCTGAG GAGAC 25 配列番号 ： 8 0
配列の長さ ： 4 0 9
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 二本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成
起源
生物名 ： マウス及びヒ ト
直接の起源
クローン ： H E F— R V H— M 2 1 - g r 1
アミ ノ酸 一 1 9 —一 1 : l e a d e r
ア ミ ノ酸 1 — 3 0 : F R 1
ア ミ ノ酸 3 1 — 3 5 : C D R 1
ア ミ ノ酸 3 6 — 4 9 : F R 2
ア ミ ノ酸 5 0 — 6 6 : C D R 2
ア ミ ノ酸 6 7 — 9 8 : F R 3
ア ミ ノ酸 9 9 — 1 0 6 : C D R 3 6
篛本ー ： 凝 篛
ΐ 8 ： - - S ½ 3i
J8S
60 0 VOX
9Π ΟΠ 90ΐ
J3s Λ jqi m jqi uio ^io dsv uio usv
SO 001 010 30V 010 10V 33V 000 WO 000 091 OVl OVO 0V0 OVV 110
001 S6 06
丄 j {丄 Biv J9S ¾IV s dm JAj, d\ d ¾IV JM1 dsv niO 3JV
098 IVI OVl 030 10V VOO I0X Oil IVI 111 300 VOV OVO OVO 131 vov
98 08 91
naq J3S J9S "31 niO J ¾IV JM1 usv -"11 J3S n\0 dsv ¾IV ΐε 010 OOV OOV 010 OVO 01V OVl 309 VOV OVV 90V 001 WO OVO VOO
01 99 09
jqi 81 1 丄 \U 3JV ^IO UO 9qa sAq OJJ dsv J sAq jqi usy
012 13V 01V VOV 310 VOO 300 OVO Oil OVV 030 3V0 XVI VVV 13V IVV
S9 OS S
Αϊ9 dsv BIV OJd dsv ai l 3jy AlO ^Vi dJI niO "31 ^IO uio ^10
922 130 IVO 930 133 IVO 丄丄 V OOV V90 OIV 001 OVO 010 009 OVO VOO o ss οε
OJd ¾IV uiO 3JV Ι¾Λ dJi S !H ai l J dsv sAq 9 Π usy ^^d
081 VOO 10D OVO 303 010 001 3V3 VIV IVI 03V OVO VVV 丄丄 V OVV Oil
S2 02 ST
Aio J3S BIV sAq sAo J9S ΐ¾Λ sAq ι¾Λ J3S J3S ^ IO OJd sAq sAq
SSI 000 101 130 OVV 391 031 310 OVV 010 VOX 031 300 133 OVV 9VV
01 9 ΐ ΐ - niO Biv Aio J3S UIO \U uio \ UIO J3S S !H B1V ^19
06 010 OVO 130 VOO 131 OVO 010 OID OVO 010 OVO 301 3V0 100 丄 33
S- 01- SI- 6ΐ-
0Jd BIV ΙΒΛ ¾ IV nai nai aqd aqj 3JV dJi jqi dJ丄 dsy }3W S VOO 100 VIO 130 013 Oil 311 311 310 OOV 001 30V 001 OVO OIV
M 2S Λ ■ L i i - L o i m r ^ J-
£9LlOIP6d£llOd 配列の種類 ： 合成 D N A
配列
AGCTTGTCAC CGTCTCCTCA GGTGGTGGTG GTTCGGGTGG TGGTGGTTCG 50 GGTGGTGGCG GATCGGACAT CCAGATGACC CAGG 84 配列番号 ： 8 2
配列の長さ ： 8 4
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
AATTCCTGGG CCATCTGGAT GTCCGATCCG CCACCACCCG AACCACCACC 50 ACCCGAACCA CCACCACCTG AGGAGACGGT GACA 84 配列番号 ： 8 3
配列の長さ ： 3 4
配列の型：核酸
鎖の数：一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
CAGCCATGGC GCAGTGTGCA GCTGGTGCAG TCTG 34 配列番号 ： 8 4
配列の長さ ： 4 1
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
Θ 5 配列
CCACCCGAAC CACCACCACC TGAGGAGACG GTGACAGTGG T 41 配列番号 ： 8 5
配列の長さ ： 4 1
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
GGGACCACTG TCACCGTCTC CTCAGGTGGT GGTGGTTCGG G 41 配列番号 ： 8 6
配列の長さ ： 4 1
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
GGGCTCTGGG TCATCTGGAT GTCCGATCCG CCACCACCCG A 41 配列番号 ： 8 7
配列の長さ ： 4 4
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成 D N A
配列
TCGGACATCC AGATGACCCA GAGCCCAAGC AGCCTGAGCG CCAG 44 配列番号 ： 8 8
配列の長さ ： 5 7
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 一本鎖
トポロジー ： 直敏状
配列の種類 ： 合成 DN A
配列
CAAGAATTCT TATTATTTAT CGTCATCGTC TTTGTAGTCT TTGATTTCGA 50
CCTTGGT 57 配列番号 ： 8 9
配列の長さ ： 8 2 2
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 二本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成
起源 .
生物名 ： マウス及びヒ ト
直接の起源
クローン P S C F VT 7 — hM 2 1
配列の特徴
ア ミ ノ酸 1 - 2 2 : l e a d e r
ア ミ ノ酸 2 3 1 3 9 H鎖 V領域
ア ミ ノ酸 1 0 1 5 4 リ ンカ一
ア ミ ノ酸 1 5 5 2 6 1 L鎖 V領域
ア ミ ノ酸 2 6 2 2 6 9 F L A G
F vポリペプチ ド s c F V - h 2 1 のア ミ ノ酸配列及びそれを コー ドするヌ ク レオチ ド配列。，
9 7 訂正された ¾紙 (ί¾Μ91) 配列
ATG AAA TAC CTA TTG CCT ACG GCA GCC GCT GGA TTG TTA TTA CTC 45 Met Lys Tyr Leu Leu Pro Thr Ala Ala Ala Gl y Leu Leu Leu Leu
5 10 15
GCT GCC CAA CCA GCC ATG GCG CAG GTG CAG CTG GTG CAG TCT GGA 90 Ala Ala Gin Pro Ala Met Ala Gin Val Gi n Leu Val Gin Ser Gl y
20 25 30
GCT GAG GTG AAG AAG CCT GGG TCC TCA GTG AAG GTC TCC TGC AAG 135 Ala Gl u Val Lys Lys Pro Gl y Ser Ser Val Lys Val Ser Cys Lys
35 40 45
GCT TCT GGC TTC AAC ATT AAA GAC ACC TAT ATA CAC TGG GTG CGC 180 Ala Ser Gl y Phe Asn l i e Lys Asp Thr Tyr l i e Hi s Trp Val Arg
50 55 60
CAG GCT CCA GGA CAG GGC CTG GAG TGG ATG GGA AGG ATT GAT CCT 225 Gin Ala Pro Gl y Gin Gl y Leu Gl u Trp Met Gly Arg 〖l e Asp Pro
65 70 75
GCG GAT GGT AAT ACT AAA TAT GAC CCG AAG TTC CAG GGC CGA GTC 270 Ala Asp Gl y Asn Thr Lys Tyr Asp Pro Lys Phe Gin Gly Arg Val
80 85 90
ACA ATC ACT GCA GAC GAA TCC ACG AAC ACA GCC TAC ATG GAG CTC 315 Thr l i e Thr Ala Asp Giu Ser Thr Asn Thr Ala Tyr Met Gl u Leu
95 100 105
AGC AGC CTG AGA TCT GAG GAC ACA GCC TTT TAT TTC TGT GCA AGT 360 Ser Ser Leu Arg Ser Glu Asp Thr Ala Phe Tyr Phe Cys Ala Ser
110 115 120
GCC TAC TAT GTT AAC CAG GAC TAC TGG GGC CAA GGG ACC ACT GTC 405 Ala Tyr Tyr Val Asn Gin Asp Tyr Trp Gly Gin Gly Thr Thr Val
125 130 135
ACC GTC TCC TCA GGT GGT GGT GGT TCG GGT GGT GGT GGT TCG GGT 450 Thr Val Ser Ser Gly Gly Gly Gl y Ser Gly Gl y Gly Gly Ser Gly
140 145 150
GGT GGC GGA TCG GAC ATC CAG ATG ACC CAG AGC CCA AGC AGC CTG 495 Gly Gly Gly Ser Asp l i e Gin Met Thr Gin Ser Pro Ser Ser Leu
155 160 165
AGC GCC AGC GTG GGT GAC AGA GTG ACC ATC ACC TGT AAG GCC AGT 540 Ser Ala Ser Val Gly Asp Arg Val Thr He Thr Cys Lys Ala Ser
170 175 180
CAG AAT GTG GGT ACT AAT GTA GCC TGG TAC CAG CAG AAG CCA GGA 585 Gin Asn Val Gl y Thr Asn Val Ala Trp Tyr Gin Gin Lys Pro Gly
185 190 195 AAG GCT CCA AAG CCG CTG ATC TAC TCG GCA TCC TAT CGG TAC ACT 630
Lys Ala Pro Lys Pro Leu H e Tyr Ser Ala Ser Tyr Arg Tyr Ser
200 205 210
GGT GTG CCA AGC AGA TTC AGC GGT AGC GGT AGC GGT ACC GAC TTC 675
Gly Val Pro Ser Arg Phe Ser Gly Ser Gly Ser Gl y Thr Asp Phe
215 220 225
ACC TTC ACC ATC AGC AGC CTC CAG CCA GAG GAC ATC GCT ACC TAC 720
Thr Phe Thr l ie Ser Ser Leu Gin Pro Glu Asp l ie Ala Thr Tyr
230 235 240
TAC TGC CAG CAA TAT AAC AGC TAT CCT CGG GCG TTC GGC CAA GGG 765
Tyr Cys Gin Gin Tyr Asn Ser Tyr Pro Arg Ala Phe Gly Gin Gly
245 250 255
ACC AAG GTC GAA ATC AAA GAC TAC AAA GAC GAT GAC GAT AAA 807
Thr Lys Val Glu l ie Lys Asp Tyr Lys Asp Asp Asp Asp Lys
260 265
TAATAAGAAT TCTTG 822 配列番号 ： 9 0
配列の長さ ： 4 5
配列の型 ： 核酸
鎖の数 ： 二本鎖
トポロジー ： 直鎖状
配列の種類 ： 合成
特徴 ： F vポリべプチ ドのリ ンカ一部分のア ミ ノ酸配列及びそれを コー ドするヌ ク レオチ ド配列
配列
GGT GGT GGT GGT TCG GGT GGT GGT GGT TCG GGT GGT GGC GGA TCG 45 Gly Gly Gly Gly Ser Gly Gly Gly Gly Ser Gly Gly Gly Gly Ser
5 10 15

Claims

請 求 の 範 囲
1. 下記に定義されるァ ミ ノ酸配列 ：
CDR1 ： Lys Ala Ser Gin Asn Val Gly Thr Asn Val Ala
CDR2： Ser Ala Ser Tyr Arg Tyr Ser
CDR3： Gin Gin Tyr Asn Ser Tyr Pro Arg Ala
またはその一部から成る 3個の相補性決定領域 （ C D R) および 4 個のフ レームワーク領域 （F R) を含むヒ ト髄芽腫細胞に対する抗 体の L鎖可変領域 （V領域） 。
2. 請求項 1 の L鎖可変領域 （V領域） 、 並びにヒ ト L鎖定常領 域 （ C領域） から構成されるヒ ト髄芽腫細胞に対する抗体の L鎖。
3. 前記 L鎖 V領域の F Rがマウス抗体由来であることを特徵と する請求項 2 に記載の L鎖。
4. 前記 L鎖 V領域が配列番号 ： 2 6 に示されるア ミ ノ酸配列を 有することを特徴とする請求項 2 に記載の L鎖。
5. 前記 L鎖 V領域の F Rがヒ ト抗体由来であることを特徴とす る請求項 2 に記載の L鎖。
6. 前記 L鎖 V領域の F Rがヒ ト抗体 R E I 由来であることを特 徵とする請求項 2又は 5 に記載の L鎖。
7. 前記 L鎖 V領域の 2番目の F Rにおいて 4 6位のア ミ ノ酸が プロ リ ンであることを特徴とする請求項 5 または 6 に記載の L鎖。
8. 前記 L鎖 V領域の 2番目の F Rにおいて 4 2位、 4 3位およ び 4 6位のァ ミ ノ酸が各々、 グルタ ミ ン、 セリ ン、 プロ リ ンである ことを特徴とする請求項 5 または 6 に記載の L鎖。
9. 前記 L鎖 V領域が下記ァ ミ ノ酸配列から成る 4個の F Rのい ずれか一組を含むことを特徴とする請求項 2 に記載の L鎖。
( 1 ) FR 1 ： Asp lie Gin Met Thr Gin Ser Pro Ser Ser Leu Ser l o o Ala Ser Val Gly Asp Arg Val Thr lie Thr Cys
FR 2 ： Trp Tyr Gin Gin Lys Pro Gly Lys Ala Pro Lys Pro
Leu lie Tyr
FR 3 ： Gly Val Pro Ser Arg Phe Ser Gly Ser Gly Ser Gly
Thr Asp Phe Thr Phe Thr lie Ser Ser Leu Gin Pro
Glu Asp lie Ala Thr Tyr Tyr Cys
FR 4 ： Phe Gly Gin Gly Thr Lys Val Glu lie Lys
( 2 ) FR 1 ： Asp lie Gin Met Thr Gin Ser Pro Ser Ser Leu Ser
Ala Ser Val Gly Asp Arg Val Thr lie Thr Cys FR 2 ： Trp Tyr Gin Gin Lys Pro Gly Gin Ser Pro Lys Pro Leu lie Tyr
FR 3 ： Gly Val Pro Ser Arg Phe Ser Gly Ser Gly Ser Gly Thr Asp Phe Thr Phe Thr He Ser Ser Leu Gin Pro Glu Asp lie Ala Thr Tyr Tyr Cys
FR 4 ： Phe Gly Gin Gly Thr Lys Val Glu lie Lys
10. 前記ヒ ト L鎖 C領域が/ c C領域であることを特徴とする請求 項 2に記載の L鎖。
11. 下記に定義されるア ミ ノ酸配列 ：
CDR1： Asp Thr Tyr lie His
CDR2： Arg He Asp Pro Ala Asp Gly Asn Thr Lys Tyr Asp Pro Lys Phe Gin Gly
CDR3： Ala Tyr Tyr Val Asn Gin Asp Tyr
またはその一部から成る 3個の C D Rおよび 4個の F Rを含むヒ ト 髄芽腫細胞に対する抗体の H鎖 V領域。
12. 請求項 1 1 の H鎖 V領域、 並びにヒ ト H鎖 C領域から構成さ れるヒ ト髄芽腫細胞に対する抗体の H鎖。
13. 前記 H鎖 V領域の F Rがマウス抗体由来であるこ とを特徴と する請求項 1 2 に記載の H鎖。
14. 前記 H鎖 V領域が配列番号 ： 2 7 に示されるア ミ ノ酸配列を 有することを特徴とする請求項 1 2 に記載の H鎖。
15. 前記 H鎖 V領域の F Rがヒ ト抗体由来であることを特徴とす る請求項 1 2 に記載の H鎖。
16. 前記 H鎖 V領域の F Rがサブグループ Iのヒ ト抗体由来であ ることを特徴とする請求項 1 2または 1 5記載の H鎖。
17. 前記 H鎖 V領域の F Rがヒ ト抗体 E u由来であることを特徴 とする請求項 1 2または 1 5 に記載の H鎖。
18. 前記 H鎖 V領域が下記のア ミ ノ酸配列から成る 4個の F Rを. 含むことを特徴とする請求項 1 5 に記載の H鎖。
FR 1 ： Gin Val Gin Leu Val Gin Ser Gly Ala Glu Val Lys Lys Pro Gly Ser Ser Val Lys Val Ser Cys Lys Ala Ser Gly Phe Asn lie Lys
FR 2 ： Trp Val Arg Gin Ala Pro Gly Gin Gly Leu Glu Trp Met Gly
FR 3 ： Arg Val Thr lie Thr Ala Asp Glu Ser Thr Asn Thr Ala Tyr Met Glu Leu Ser Ser Leu Arg Ser Glu Asp Thr Ala Phe Tyr Phe Cys Ala Ser
FR4 ： Trp Gly Gin Gly Thr Thr Val Thr Val Ser Ser
19. 前記ヒ ト C領域が y— 1 C領域または 7— 4 C領域であるこ とを特徴とする請求項 1 5に記載の H鎖。
20. 請求項 2に記載の L鎖および請求項 1 2に記載の H鎖からな るヒ ト髄芽腫細胞に対する抗体。
21. 前記 V領域の F Rがマウス抗体由来であることを特徵とする 請求項 2 0 に記載の抗体。
22. 前記 V領域の F Rがヒ ト抗体由来であることを特徴とする請 求項 2 0 に記載の抗体。
23. 請求項 1 に記載のァ ミ ノ酸配列またはその一部からなる 3個 の C D Rおよび 4個の F Rを含む L鎖 V領域ならびにヒ ト L鎖 C領 域からなる ヒ ト髄芽腫細胞に対する抗体の L鎖をコー ドする D NA。
24. 前記 L鎖 V領域が配列番号 5 8， 6 1， 6 3， 6 6 , 7 0 あ るいは 7 3で示されるヌ ク レオチ ド配列であることを特徴とする特 許請求の範囲第 2 3項記載の D N A。
25. 請求項 1 1 に記載のア ミ ノ酸配列またはその一部からなる 3 個の C D Rおよび 4個の F Rを含む H鎖 V領域ならびにヒ ト H鎖 C 領域からなるヒ ト髄芽腫細胞に対する抗体の H鎖をコ一 ドする D N
26. 前記 H鎖 V領域が配列番号 8 0で示されるヌ ク レオチ ド配列 であることを特徴とする請求項 2 5 に記載の D N A。
27. 請求項 2 3 または 2 4 に記載の D NAまたはその一部を含む · 組換えべクタ一。
28. 請求項 2 5 または 2 6 に記載の D N Aまたはその一部を含む 組換えベクター。
29. 請求項 2 7 に記載の組換えベクターおよび請求項 2 8 に記載 の組換えベクターにより同時形質転換された形質転換体。
30. 請求項 2 9 に記載の形質転換体を培養し、 次いで、 産生され た目的とする抗体を分離することを特徴とする遺伝子組換え技術を 使用 した、 ヒ ト髄芽腫細胞に対する抗体の製造方法。
31. 請求項 1 1 に記載の H鎖 V領域と請求項 1 に記載の L鎖 V領 域をペプチ ドリ ンカーを介して連結して成る一本鎖 F V領域。
32. 前記リ ンカ一ペプチ ドが次のア ミ ノ酸配列 ：
Gly Gly Gly Gly Ser Gly Gly Gly Gly Ser Gly Gly Gly Gly Ser を有する請求項 3 1 に記載の一本鎖 F V領域。
33. 配列番号 ： 8 0 に記載のァ ミ ノ酸配列中ァ ミ ノ酸番号 1 から
1 1 6 までのア ミ ノ酸配列から成る H鎖 V領域と、 配列番号 ： 4 0 , 4 3， 4 6， 4 7， 5 0， 5 1， 5 4， 5 5， 5 8， 6 1， 6 2， 6 3， 6 6， 6 9 , 7 0又は 7 3の内のいずれかに記載のア ミ ノ酸 配列中ァ ミ ノ酸番号 1 から 1 0 6 までのァ ミ ノ酸配列から成る L鎖 V領域を含んで成る請求項 3 1 又は 3 2 に記載の一本鎖 F V領域。
34. 配列番号 ： 8 0 に記載のァ ミ ノ酸配列中ァ ミ ノ酸番号 1 から 1 1 6 までのア ミ ノ酸配列から成る H鎖 V領域と、 配列番号 ： 7 3 に記載のァ ミ ノ酸配列中ァ ミ ノ酸番号 1 から 1 0 6 までのァ ミ ノ酸 配列から成る L鎖 V領域とを含んで成る、 請求項 3 1 又は 3 2 に記 載の一本鎖 F v領域。
35. 配列番号 ： 8 9 に記載のァ ミ ノ酸配列から成る請求項 3 1 に 記載の一本鎖 F V領域。
36. 請求項 3 1〜 3 5のいずれか 1項に記載の一本鎖 F V領域を コー ドする D NA0
.
37. 請求項 3 6 に記載の D N Aを含んで成る組換えベクター。
38. 請求項 3 7 に記載の組換えベクターにより形質転換された宿 主。
39. 請求項 3 8 に記載の形質転換体を培養し、 該培養物から一本 鎖 F V領域を採取することを特徴とする、 一本鎖 F V領域の製造方 法。
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