WO1998056246A1 - Perfectionnement aux procedes de preparation d'embryons d'equides en vu de leur cryoconservation - Google Patents

Perfectionnement aux procedes de preparation d'embryons d'equides en vu de leur cryoconservation Download PDF

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Richard Legrand
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    • A01N1/00—Preservation of bodies of humans or animals, or parts thereof
    • A01N1/10—Preservation of living parts
    • A01N1/16—Physical preservation processes

Definitions

  • the present invention relates to the field of cold storage of embryos; it relates more particularly to an improvement to the processes for preparing equine embryos for their cryopreservation (freezing or vitrification), in particular with a view to subsequent transplantation.
  • Embryo freezing during embryo transfers has many advantages. It allows, among other things, to remove the obligation to synchronize the oestrus cycles between the donor and the recipient; it facilitates the transport of embryos over long distances and it also makes it possible to create embryo banks, in particular for exceptional or endangered animals. After the first successes in the 1970s, freezing embryos has now become a routine technique in domestic ruminants, especially cattle.
  • fertilization of the equine embryo occurs in the oviduct, at the junction between the bulb and the isthmus, generally 12 hours after ovulation.
  • the embryo then develops in the oviduct; it goes from the unicellular zygote stage, from 100 to 160 ⁇ m in size, to the “morula” stage from 16 to 32 cells (150 to 200 ⁇ m). Mitotic divisions are first performed simultaneously in the different blastomers, then increasingly asynchronously.
  • the development phase of the equine embryo in the oviduct lasts approximately 5 days.
  • the “blastocyst” stage follows the “morula” stage approximately when the embryo passes into the uterus.
  • the differentiation takes place between two cell populations: the trophoblast and the internal cell mass (MCI) which will give the fetus.
  • the embryo consists of a liquid cavity (the blastocoele), surrounded by a cell layer (the trophoblast), near which the internal cell mass (MCI) is located.
  • the pellucid zone the pellucid zone and the capsule.
  • the pellucid zone has a thickness of the order of 15 to 30 ⁇ m; it consists of a dense inner layer with a small number of fine channels, and an outer layer with large gaps.
  • the zona pellucida is present on the oocyte and it disappears towards the 7 th or 8 th day.
  • the capsule is characteristic of equine embryos. It forms approximately within 8 hours after the embryo enters the uterus, between the trophoblast and the pellucid area. This capsule is glycoprotein in nature; its thickness increases steadily to a peak around the 18 th day; it then declines until disappearance around the 22 nd day, around the time when the embryo settles in the uterus.
  • Harvesting of embryos for freezing should be done before they settle in the uterus.
  • the appropriate time is evaluated, after the covering or insemination, by transrectal palpation and according to the data of an echotomography examination.
  • This probe allows the introduction of a collection medium into the uterus (for example Dubelcco's phosphate buffered saline (PBS) medium + 2 g / l of bovine serum albumin, available from IMV (Instrument of Veterinary Medicine) BP 81, 61 L'AIGLE (France)), then its recovery with the possible embryo (s).
  • PBS Dubelcco's phosphate buffered saline
  • bovine serum albumin available from IMV (Instrument of Veterinary Medicine)
  • the harvesting medium is observed with a binocular microscope and, in the event of the discovery of an embryo (s), this or these are isolated in a well containing the same medium (PBS + albumin).
  • the embryo is then "prepared" to support the subsequent freezing operation.
  • This preparation consists in subjecting it to the action of cryoprotective agents intended in particular to avoid the formation of intracellular crystals during the descent in temperature.
  • the cryoprotective agents used can be chosen from glycerol, dimethyl sulfoxide (DMSO), ethylene glycol, or alternatively 1,2 propanediol; they are used at concentrations of the order of 1 to 2M, for times of the order of 10 min to 30 min (these times and concentrations are adapted according to the desired protection efficacy while taking into account the possible toxicity some products).
  • the embryo is subjected to different baths of cryoprotectants in increasing concentration.
  • the embryo is then packaged in a plastic straw with a small amount of the medium corresponding to the last bath of cryoprotective agent and this straw is deposited in the tank of a programmable freezer at a temperature of the order of -7 ° C.
  • the crystallization of the content is induced by contact with a metal rod previously cooled in liquid nitrogen (-196 ° C).
  • the freezer programmer brings it down to a temperature of the order of -30 ° C / -35 ° C, at a rate of -0.1 to 1 ° C per minute; at this temperature, the straw is immersed in liquid nitrogen, then stored in a tank.
  • Defrosting before transfer, is obtained by immersing the straw for 1 min in a water bath at 37 ° C; the embryo is removed and the operation of removing the cryoprotective agent is carried out by a succession of dilutions in baths of decreasing concentration. The embryo is then ready for transfer to the recipient mare.
  • two techniques can be used: the first, surgical, consists in implanting the embryo in the oviduct; the second, non-surgical and better suited to the transfer objectives commercial, involves depositing the embryo in the uterus by passing the cervix using a probe.
  • the technique which has just been described is derived from those used for many years in cattle, and which allow, in them, the obtaining of pregnancy rate from frozen embryos, greater than 50%.
  • the pregnancy rates obtained are very low, only of the order of 20 to 30%.
  • the objective of the present invention is to propose an improved technique for preparing embryos for their cryopreservation, which makes it possible to reduce the rates of necrosis linked to these operations and which consequently makes it possible to promote subsequent gestation, during the transfer of the embryo.
  • the process according to the present invention is based on the presence of the capsule which surrounds the embryo during most of the time when the latter is in the uterus of the donor, and on the assumption that the presence of this capsule interferes with operations to prepare the embryo before freezing.
  • the embryos will be harvested quite late; they will usually be at the blastocyst stage and surrounded by a capsule.
  • the method according to the invention provides, before subjecting said embryo to the action of cryoprotective agents, to subject it to an appropriate treatment. to remove the embryonic capsule or to increase the permeability of this capsule, with a view to reinforcing the subsequent action of said cryoprotective agent (s).
  • the capsule is destroyed or simply made more permeable by an appropriate chemical or enzymatic treatment, for example based on collagenase or trypsin.
  • concentrations of the products used and the contact times (bath treatments) will be adapted to at least partially lyse the capsule while taking into account the possible toxicity of the products so as not to damage the embryo.
  • the capsule is mechanically treated: it is removed partially or completely, or else it undergoes a simple drilling operation.
  • This mechanical treatment is advantageously preceded by a chemical or enzymatic treatment suitable for weakening said capsule.
  • the embryo is harvested 5 to 8 days after ovulation. After isolation, it is placed in a waiting bath (PBS medium + 2 g / l of bovine serum albumin ultrafiltered on a 0.2 ⁇ m filter to avoid bacterial contamination). The embryo is then placed in a 2 ml cup containing 1 to
  • the embryo is placed in the first bath of cryoprotective agent (0.5 M glycerol for 15 min), then in the second bath (1 M glycerol for 15 min) and finally in the third bath (1.5 M glycerol for 15 min).
  • the embryo is then mounted in straw, then it undergoes the usual operations to obtain its freezing, in the manner described above.
  • Thawing is obtained by immersing the straw for 1 min in a water bath at 37 ° C and then the operations of removing the cryoprotective agent are carried out: the embryo is placed in a first bath of 1 M glycerol + sucrose 0 25 M for 15 min, then in a second bath of 0.5 M glycerol + 0.25 M sucrose for 15 min, then in a third bath (0.25 M sucrose for 15 min) and finally in PBS + medium albumin (15 minutes). The embryo is then ready for transfer.
  • Cellular necrosis refers to the structural changes that follow the death of a cell; it results from the progressive degradation of the cell by its own enzymes contained in the lysosomes.
  • the percentage of necrotic cells is representative of the cellular damage caused by the manipulations and it reflects the viability of the embryo. This histological examination is carried out according to the technique described by
  • necrotic cells were as follows: a) embryos treated with trypsin (in accordance with example 1): 11% (one embryo analyzed) b) embryos treated with collagenase (in accordance with example 2): 10.3% (one embryo analyzed)
  • the sizes of the embryos harvested are as follows.
  • Embryos 1 and 2 underwent mechanical decapsulation after the enzymatic treatment and the capsule of embryos 6 and 7 was completely lysed during the enzymation bath.
  • n ° 2 with embryos comprising a capsule only partially lysed (embryos n ° 3, n ° 4, n ° 5 and n ° 8).
  • the gestation rates according to the size are as follows
  • the treatment of the embryonic capsule makes it possible not to worry about the time of harvest of the embryo.
  • the harvest can be carried out quite late; we thus benefit from a high collection rate and the freezing operation is carried out on embryos at the “blastocyst” stage which allows them to better resist the aggressions of the different treatments.

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Abstract

Le procédé de préparation d'embryon d'équidé en vue de sa cryoconservation consiste: avant de soumettre ledit embryon à l'action d'agent(s) cryoprotecteur(s), à lui faire subir un traitement approprié pour supprimer la capsule embryonnaire ou pour augmenter la perméabilité de cette capsule, en vue de renforcer l'action ultérieure dudit ou desdits agents cryoprotecteurs. De préférence, la capsule embryonnaire est détruite ou simplement rendue plus perméable par un traitement enzymatique à base de collagénase ou de tryspine.

Description

PERFECTIONNEMENT AUX PROCEDES DE PREPARATION D'EMBRYONS DΕQUIDES EN VUE DE LEUR CRYOCONSERVATION
La présente invention concerne le domaine de la conservation des embryons par le froid ; elle concerne plus particulièrement un perfectionnement aux procédés de préparation des embryons d'équidés pour leur cryoconservation (congélation ou vitrification), notamment en vue d'une transplantation ultérieure.
La congélation embryonnaire lors des transferts d'embryons présente de nombreux avantages. Elle permet, entre autre, de supprimer l'obligation de synchroniser les cycles oestraux entre la donneuse et la receveuse ; elle facilite le transport des embryons sur de longues distances et elle rend également possible la création de banques d'embryons, en particulier pour des animaux d'exception ou en voie de disparition. Après les premiers succès dans les années 1970, la congélation des embryons est maintenant devenue une technique de routine chez les ruminants domestiques, notamment les bovins.
Des travaux parallèles réalisés dans le domaine équin ont permis d'aboutir aux premières naissances de poulains issus du transfert d'embryons congelés dans le début des années 1980.
D'un point de vue biologique, la fécondation de l'embryon équin se produit dans l'oviducte, à la jonction entre l'ampoule et l'isthme, généralement 12 heures après l'ovulation. L'embryon se développe alors dans l'oviducte ; il passe du stade zygote unicellulaire, d'une taille de 100 à 160 μm, au stade «morula» à partir de 16 à 32 cellules (150 à 200 μm). Les divisions mitotiques se font d'abord simultanément dans les différents blastomères, puis de façon de plus en plus asynchrones. La phase de développement de l'embryon équin dans l'oviducte dure 5 jours environ. Le stade «blastocyste» succède au stade «morula» environ au moment où l'embryon passe dans l'utérus. C'est à ce stade qu'a lieu la différenciation entre deux populations cellulaires : le trophoblaste et la masse cellulaire interne (MCI) qui donnera le foetus. A ce stade, l'embryon se compose d'une cavité liquidienne (le blastocoele), entouré d'une couche cellulaire (le trophoblaste), auprès de laquelle se situe la masse cellulaire interne (MCI). A la périphérie de l'embryon, deux structures acellulaires peuvent s'observer : la zone pellucide et la capsule.
La zone pellucide a une épaisseur de l'ordre de 15 à 30 μm ; elle est constituée d'une couche interne, dense, avec un petit nombre de fins canaux, et d'une couche externe comportant de larges lacunes. Cette zone pellucide est présente sur l'ovocyte et elle disparaît vers le 7ème ou le 8ème jour.
La capsule est caractéristique des embryons d'équidés. Elle se forme environ dans les 8 heures après l'entrée de l'embryon dans l'utérus, entre le trophoblaste et la zone pellucide. Cette capsule est de nature glycoproteique ; son épaisseur augmente régulièrement jusqu'à un pic vers le 18eme jour ; elle décline ensuite jusqu'à disparition vers le 22ème jour, à peu près au moment où l'embryon se fixe dans l'utérus.
La récolte des embryons en vue de leur congélation doit être réalisée avant qu'ils ne se fixent dans l'utérus. Le moment adéquat est évalué, après la saillie ou l'insémination, par palpation transrectale et selon les données d'un examen par échotomographie.
Cette récolte peut se faire très tôt après la fécondation, au niveau de l'oviducte, mais cela nécessite alors une opération chirurgicale traumatisante pour l'animal. L'autre solution consiste à attendre que l'embryon ait atteint l'utérus (au-delà du 6eme jour après la fécondation) et à travailler par la voie vaginale, au moyen d'une sonde de récolte adaptée, conformément à la technique de LAGNEAUX D. et al. (1988 «la transplantation embryonnaire chez la jument, CEREOPA, 14ème journée 163-181). Cette sonde permet l'introduction d'un milieu de collecte dans l'utérus (par exemple milieu Dubelcco's phosphate buffered saline (PBS) + 2 g/l d'albumine sérique bovine, disponible chez I.M.V. (Instrument de Médecine Vétérinaire) B.P. 81 , 61 L'AIGLE (France)), puis sa récupération avec le ou les possibles embryons. Le milieu de récolte est observé à la loupe binoculaire et, en cas de découverte d'embryon(s), celui-ci ou ceux-ci sont isolés dans une cupule contenant le même milieu (PBS + albumine).
L'embryon est ensuite «préparé» pour supporter l'opération ultérieure de congélation. Cette préparation consiste à le soumettre à l'action d'agents cryoprotecteurs destinés notamment à éviter la formation de cristaux intracellulaires lors de la descente en température. Les agents cryoprotecteurs utilisés peuvent être choisis parmi le glycérol, le diméthyl- sulfoxyde (DMSO), l'éthylène glycol, ou encore le 1 ,2 propanediol ; ils sont utilisés à des concentrations de l'ordre de 1 à 2M, pendant des temps de l'ordre de 10 mn à 30 mn (ces temps et concentrations sont adaptés selon l'efficacité de protection désirée tout en prenant en compte la possible toxicité des produits). De préférence, l'embryon est soumis à différents bains de cryoprotecteurs en concentration croissante.
L'embryon est ensuite conditionné dans une paillette plastique avec une petite quantité du milieu correspondant au dernier bain d'agent cryoprotecteur et cette paillette est déposée dans la cuve d'un congélateur programmable à une température de l'ordre de -7°C. Après un temps d'équilibration de l'ordre de 5 à 10 mn, la cristallisation du contenu est induite par contact avec une tige métallique préalablement refroidie dans de l'azote liquide (-196°C). Après un nouveau temps d'équilibration thermique, le programmateur du congélateur fait descendre celui-ci jusqu'à une température de l'ordre de -30°C/-35°C, à raison de -0,1 à 1°C par minute ; à cette température, la paillette est immergée dans l'azote liquide, puis stockée dans une cuve. La décongélation, avant transfert, est obtenue en plongeant la paillette pendant 1 mn dans un bain-marie à 37°C ; on sort l'embryon et l'opération de retrait de l'agent cryoprotecteur est réalisée par une succession de dilutions dans des bains de concentration décroissante. L'embryon est alors prêt pour le transfert vers la jument receveuse. De façon classique, deux techniques peuvent être utilisées : la première, chirurgicale, consiste à implanter l'embryon dans l'oviducte ; la seconde, non chirurgicale et correspondant mieux aux objectifs de transferts commerciaux, consiste à déposer l'embryon dans l'utérus en passant le col à l'aide d'une sonde.
La technique qui vient d'être décrite est dérivée de celles utilisées depuis de nombreuses années chez les bovins, et qui permettent, chez ceux-ci, l'obtention de taux de gestation à partir d'embryons congelés, supérieurs à 50 %.
Cependant, dans le domaine équin, les taux de gestation obtenus sont très faibles, seulement de l'ordre de 20 à 30 %.
Sans que l'on ait pu l'expliquer jusqu'à maintenant, l'utilisation de cette technique de congélation chez les équidés entraîne bien souvent des nécroses importantes dans la Masse Cellulaire Interne et le trophoblaste de l'embryon, qui apparaissent à l'origine d'un nombre élevé d'avortements précoces.
L'objectif de la présente invention est de proposer une technique perfectionnée de préparation des embryons en vue de leur cryoconservation, qui permet de diminuer les taux de nécrose liés à ces opérations et qui permet en conséquence de favoriser la gestation ultérieure, lors du transfert de l'embryon.
Le procédé conforme à la présente invention est basé sur la présence de la capsule qui entoure l'embryon pendant la majeure partie du temps où ce dernier se trouve dans l'utérus de la donneuse, et sur l'hypothèse que la présence de cette capsule nuit aux opérations de préparation de l'embryon avant congélation.
Pour obtenir un taux de collecte intéressant, les embryons seront récoltés assez tardivement ; ils seront en règle générale au stade blastocyste et entourés d'une capsule.
Dans la suite d'opérations classiques de préparation d'embryons d'équidés en vue de leur cryoconservation, le procédé selon l'invention prévoit, avant de soumettre ledit embryon à l'action d'agents cryoprotecteurs, à lui faire subir un traitement approprié pour supprimer la capsule embryonnaire ou pour augmenter la perméabilité de cette capsule, en vue de renforcer l'action ultérieure dudit ou desdits agents cryoprotecteurs. Selon une première façon d'opérer, la capsule est détruite ou simplement rendue plus perméable par un traitement chimique ou enzymatique approprié, par exemple à base de collagenase ou de trypsine. Les concentrations des produits utilisés et les temps de contact (traitements en bain) seront adaptés pour lyser au moins partiellement la capsule tout en tenant compte de la toxicité éventuelle des produits pour ne pas altérer l'embryon. Les sites d'action de la trypsine et de la collagenase étant différents, on peut aussi envisager l'utilisation d'un mélange de ces deux enzymes. Selon une autre technique, la capsule est traitée mécaniquement : elle est enlevée partiellement ou totalement, ou bien elle subit une simple opération de perçage. Ce traitement mécanique est avantageusement précédé d'un traitement chimique ou enzymatique approprié pour fragiliser ladite capsule.
Exemple 1
L'embryon est récolté 5 à 8 jours après l'ovulation. Après isolement, il est placé dans un bain d'attente (milieu PBS + 2 g/l d'albumine sérique bovine ultrafiltré sur filtre de 0,2 μm pour éviter les contaminations bactériennes). L'embryon est ensuite placé dans une cupule de 2 ml contenant 1 à
2 ml d'une solution de trypsine à la concentration de 0,2 % (dilution dans un milieu PBS sans calcium ni magnésium), pendant 15 minutes et à température ambiante (de l'ordre de 23°C). On obtient une destruction ou une fragilisation plus ou moins poussée de la capsule en fonction de la taille d'origine de celle-ci. Un «reste» affiné ou aminci de capsule peut persister autour de l'embryon ; il arrive que cette capsule se déchire intégralement par la simple action enzymatique ou bien on peut compléter ladite action enzymatique par une décapsulation mécanique réalisée au moyen d'une technique de micromanipulation. Pour diluer l'enzyme et stopper son action, l'embryon est déposé dans trois ou quatre bains successifs de milieu ultrafiltré PBS + albumine, pendant une durée totale de 10 mn. Au bout de ces 10 mn, l'embryon est placé dans le premier bain d'agent cryoprotecteur (glycérol 0,5 M pendant 15 mn), puis dans le second bain (glycérol 1 M pendant 15 mn) et enfin dans le troisième bain (glycérol 1,5 M pendant 15 mn). L'embryon est alors monté en paillette, puis il subit les opérations habituelles pour obtenir sa congélation, de la façon décrite précédemment.
La décongélation est obtenue en plongeant la paillette pendant 1 mn dans un bain-marie à 37°C et on effectue ensuite les opérations de retrait de l'agent cryoprotecteur : l'embryon est placé dans un premier bain de glycérol 1 M + saccharose 0,25 M pendant 15 mn, puis dans un second bain de glycérol 0,5 M + saccharose 0,25 M pendant 15 mn, puis dans un troisième bain (saccharose 0,25 M pendant 15 mn) et enfin dans le milieu PBS + albumine (15 minutes). L'embryon est alors prêt pour le transfert.
Exemple 2
On reproduit le protocole de traitement précédent mais on remplace la trypsine à 0,2 % par de la collagenase de type II à la concentration de 2,5 %, pendant 15 mn (dilution également dans un milieu PBS sans calcium et sans magnésium).
Résultats a) Nécrose çejlujaire
La nécrose cellulaire désigne les modifications structurales qui suivent la mort d'une cellule ; elle résulte de la dégradation progressive de la cellule par ses propres enzymes contenues dans les lysosomes.
Le pourcentage de cellules nécrotiques est représentatif des dégâts cellulaires causés par les manipulations et il reflète la viabilité de l'embryon. Cet examen histologique est mené selon la technique décrite par
J.F. BRUYAS - 1994 - «Contribution à l'étude de la congélation des embryons équins : une approche métabolique et cellulaire» - Mémoire de recherche Agrégation de pathologie de la reproduction - Ecole Nationale Vétérinaire de NANTES, FRANCE. Il est réalisé avant l'opération de congélation pour déterminer les dégâts cellulaires liés au traitement préparatoire.
Le pourcentage observé de cellules nécrotiques a été le suivant : a) embryons traités par la trypsine (conformément à l'exemple 1) : 11 % (un embryon analysé) b) embryons traités par la collagenase (conformément à l'exemple 2) : 10,3 % (un embryon analysé)
Ces résultats sont à comparer avec les taux de nécrose d'embryons ayant suivi le même protocole de préparation, sans le traitement enzymatique : c) embryons sans capsule : 13,9 % (moyenne sur 6 embryons) d) embryons avec capsule : 30,6 % (moyenne sur 8 embryons)
On remarque donc que les embryons dont la capsule a été traitée par une enzyme subissent moins de dommages que les embryons qui ont conservé leur capsule intacte.
Ces embryons traités se comportent comme des embryons sans capsule, b) Tests in-vi o
8 embryons ont été récoltés entre le 5èfne et le 8ème jour après l'ovulation selon la méthode de LAGNEAUX et al. décrite ci-avant. La répartition des embryons récoltés suivant leur âge est la suivante :
Figure imgf000009_0001
Les tailles des embryons récoltés sont les suivantes
Figure imgf000009_0002
Ces embryons ont été traités conformément à l'exemple 1 ci-dessus. Les embryons n° 1 et n° 2 ont subi une décapsulation mécanique après le traitement enzymatique et la capsule des embryons n° 6 et n° 7 a été complètement lysée lors du bain d'enzymation.
Nous disposons donc de deux lots d'embryons :
- un lot n° 1 avec des embryons sans capsule (embryons n° 1, n°2, n° 6 et n° 7), et
- un lot n° 2 avec des embryons comportant une capsule seulement partiellement lysée (embryons n° 3, n°4, n° 5 et n° 8).
Après décongélation, la technique de transfert utilisée a été celle reportée dans TAINTURIER D., BRUYAS J.F., DUMONT P., FIENI F., ESCOUFLAIRE P. (1989, « La transplantation embryonnaire chez la jument, Revue Med. Vet. 140. 1109-1115), qui consiste à déposer l'embryon derrière le col à l'aide d'une seringue de transplantation. Le contrôle de la gestation a été réalisé par un échotomographe (scanner 100 de Pie Médical, Hospimédi 60790 POUILLY, FRANCE), à 14, 21 et 28 jours. Les résultats des transferts figurent dans le tableau ci-dessous :
Figure imgf000010_0001
DG = diagnostic de gestation (à 14, 21 et 28 jours respectivement)
(a) : la jument receveuse a été accidentée après le diagnostic de gestation à J14. Les examens ont alors été stoppés. 9 5
Les taux de gestation à 14, 21 et 28 jours sont les suivants
Figure imgf000011_0001
D'une manière globale, ces taux sont supérieurs à ceux obtenus avec les protocoles que l'on connaissait jusqu'à maintenant ; ils sont similaires aux taux obtenus après transfert d'embryons frais (58 % en moyenne sur les 10 dernières années (CLEMENT F., HOFFERER S., VINCENT P., 1995 « La transplantation embryonnaire chez la jument », Equ'idée mars-avril 17, 56-62).
Lot n° 1 (embryons sans capsule)
Figure imgf000011_0002
Lot n" 2 (embryons avec capsule partiellement lysée)
Figure imgf000011_0003
Ces résultats indiquent qu'il est possible d'obtenir des gestations avec des embryons n'ayant plus leur capsule, et qu'il n'y a pas de différence significative entre les résultats des embryons transplantés sans capsule et les embryons transplantés avec une capsule. Les taux de gestation en fonction de l'âge sont les suivants
Figure imgf000012_0001
Ces résultats montrent qu'il est possible d'obtenir une gestation à partir d'embryons congelés âgés de 7,5 jours et plus, en utilisant le procédé conforme à l'invention, alors que cela n'avait pratiquement pas été obtenu jusqu'à maintenant par les procédés connus.
Les taux de gestation en fonction de la taille sont les suivants
Figure imgf000012_0002
Ces résultats montrent qu'il est possible d'obtenir une gestation à partir d'embryons congelés ayant une taille supérieure à 500 μm en utilisant le procédé conforme à l'invention, alors que cela n'avait pas été obtenu jusqu'à maintenant par les procédés connus.
L'ensemble des résultats obtenus montre bien l'importance de la capsule embryonnaire dans le processus de cryoconservation des embryons d'équidés. Le procédé conforme à l'invention améliore les taux de gestation à partir d'embryons congelés et il permet d'envisager le développement commercial de cette technologie.
Le traitement de la capsule embryonnaire permet de ne pas se préoccuper du moment de la récolte de l'embryon. En particulier, la récolte peut être réalisée assez tard ; on bénéficie ainsi d'un taux de collecte élevé et l'opération de congélation est réalisée sur des embryons au stade «blastocyste» ce qui leur permet de mieux résister aux agressions des différents traitements.

Claims

- REVENDICATIONS -
1.- Procédé de préparation d'embryon d'équidé en vue de sa cryoconservation, lequel procédé consiste à préparer l'embryon, après récolte, en le soumettant à l'action d'agent(s) cryoprotecteur(s), puis à le conditionner en paillette avant de lui faire subir l'opération de cryoconservation proprement dite, caractérisé en ce qu'il consiste, avant de soumettre ledit embryon à l'action d'agent(s) cryoprotecteur(s), à lui faire subir un traitement approprié pour supprimer la capsule embryonnaire, ou pour augmenter la perméabilité de cette capsule, en vue de renforcer l'action ultérieure dudit ou desdits agents cryoprotecteurs.
2.- Procédé selon la revendication 1 , caractérisé en ce qu'il consiste, après la récolte, à traiter la capsule embryonnaire par une action enzymatique avant de soumettre l'embryon à l'action du ou des agents cryoprotecteurs.
3.- Procédé selon la revendication 2, caractérisé en ce qu'il consiste, après la récolte, à traiter la capsule embryonnaire en plongeant l'embryon dans un bain de collagenase.
4.- Procédé selon la revendication 3, caractérisé en ce qu'il consiste, après la récolte, à traiter la capsule embryonnaire par de la collagenase 2,5 %, pendant 15 mn à la température ambiante.
5.- Procédé selon la revendication 2, caractérisé en ce qu'il consiste, après la récolte, à traiter la capsule embryonnaire en plongeant l'embryon dans un bain de trypsine.
6.- Procédé selon la revendication 5, caractérisé en ce qu'il consiste, après la récolte, à traiter la capsule embryonnaire par de la trypsine 0,2 %, pendant 15 mn à la température ambiante.
7.- Procédé selon l'une quelconque des revendications 2 à 6, caractérisé en ce qu'il consiste, après la récolte, à traiter la capsule embryonnaire par un mélange de collagenase et de trypsine.
8.- Procédé selon la revendication 1 , caractérisé en ce qu'il consiste, après la récolte, à enlever mécaniquement la capsule embryonnaire avant de soumettre ledit embryon à l'action du ou des agents cryoprotecteurs.
9.- Procédé selon la revendication 8, caractérisé en ce qu'il consiste à enlever mécaniquement la capsule embryonnaire après avoir soumis l'embryon à un traitement chimique apte à fragiliser ladite capsule.
10.- Procédé selon la revendication 9, caractérisé en ce qu'il consiste à soumettre ledit embryon à un traitement enzymatique adapté pour fragiliser la capsule en vue de faciliter son enlèvement mécanique.
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