WO2000002908A2 - Hemmung von alopezie - Google Patents

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WO2000002908A2 PCT/DE1999/002185 DE9902185W WO0002908A2 WO 2000002908 A2 WO2000002908 A2 WO 2000002908A2 DE 9902185 W DE9902185 W DE 9902185W WO 0002908 A2 WO0002908 A2 WO 0002908A2
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hair
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Thomas Schlake
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Deutsches Krebsforschungszentrum DKFZ
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    • A61K48/00—Medicinal preparations containing genetic material which is inserted into cells of the living body to treat genetic diseases; Gene therapy

Definitions

  • the present invention relates to a method for inhibiting alopecia and a system for identifying substances which inhibit alopecia.
  • Alopecia is a common hair disorder that can result in complete hair loss.
  • the causes of alopecia are unknown. In this respect, it is also not possible to intervene specifically in this disease.
  • the present invention is therefore based on the object of providing a means by which this can be achieved.
  • the present invention is based on the knowledge of the applicant that certain forms of alopecia are based on an impaired keratinization of the hair. He also recognized that in alopecia the mRNA of various genes is not present, for example the Ha3 gene, or is underrepresented, for example the Hai, Ha2 and Ha4 genes (cf. FIGS. 1 and 2). The gene products of the shark, Ha2, Ha3 and Ha4 genes are hair keratins. The applicant has found that the expression of the Ha3 gene is regulated by a gene product of the whn gene. In particular, he found that expression of the Ha3 gene can be induced by expression of the whn gene (cf. FIG. 3).
  • the applicant's knowledge is used for a method for inhibiting alopecia, which comprises increasing the cellular amount of hair keratins.
  • the expression "increasing the cellular amount of hair keratins” indicates that the amount of one or more hair keratins, in particular shark, Ha2, Ha3 and Ha4, which may be low or not present, is increased in cells.
  • This can be achieved using conventional methods or substances.
  • one or more hair keratins, in particular shark, Ha2, Ha3 and Ha4 can be added to the cells as such or in the form of DNA encoding them.
  • the DNA can be present in conventional expression vectors.
  • Substances can also be added which activate the expression of one or more hair keratins, in particular shark, Ha2, Ha3 and Ha4.
  • Such substances are e.g. the gene product of the whn gene or a DNA coding therefor. This can be in the usual expression vectors.
  • Subsets can also be added which activate the expression of the whn gene. These can also be present as such or in the form of DNA encoding them, the latter also being able to be present in conventional expression vectors.
  • the term "cells” encompasses cells of any kind and lineage. It also includes tissues and organisms, especially animals and humans.
  • the administration of substances that inhibit alopecia can be carried out in a customary manner, preferably locally.
  • the substances can also be present in customary formulations.
  • creams, ointments, shampoos and hair lotions are suitable.
  • the substances in There are particles that are easily absorbed. Examples of such particles are liposomes. The person skilled in the art knows processes in order to find the suitable formulations or administration forms for the individual substances.
  • Another object of the present invention is a system for identifying substances which are suitable for inhibiting alopecia.
  • a system involves increasing the cellular amount of hair keratins and / or substances activating their gene expression.
  • the system comprises animals or cells, cells being preferred in which one or more expressible hair keratin genes and / or one or more expressible genes, the gene products of which activate the gene expression of hair keratins, are each fused to a reporter gene.
  • the hair keratin genes can in particular be those of shark, Ha2, Ha3 and Ha4. It is also advantageous if the substance which activates the gene expression of hair keratins is a gene product of the whn gene.
  • the above genes can have a wild-type or an altered sequence, the latter being able to differ from the wild-type sequence by one or more base pairs. The differences can be in the form of additions, deletions, substitutions and / or inversions of base pairs.
  • the above reporter gene can be any one, in particular it can be for an enzyme, e.g. alkaline phosphatase, or a fluorescent protein, e.g. GFP, encode.
  • the fusion genes can be present extrachromosomally or in the cell genome, in particular instead of one or both alleles of the hair keratin and / or the genes whose gene products activate the expression of hair keratins.
  • the system can contain substances which are suitable for the detection of the expressed hair keratins and / or substances activating their gene expression or the fusion genes. Such substances can be suitable for detection at the nucleic acid or protein level.
  • alopecia inhibit it is possible to get alopecia inhibit. It is also possible to diagnose alopecia by, for example, determining the gene expression of hair keratins and / or substances that activate them. It is also possible to find substances that are suitable for inhibiting alopecia. For this purpose, a system is provided that is suitable for the quick and reliable screening of various substances. The present invention thus provides means for diagnosing and treating a widespread hair disease.
  • Fig. 1 shows an in situ RNA hybridization with a probe for mHa3 in normal (whn + / +) and mutants
  • mice (whn - / -) mice.
  • the transcripts for mHa3 (visible as brown silver grains) are not detectable in the hair follicles of the nude mouse.
  • the line corresponds to 100 ⁇ m.
  • Fig. Figure 3 shows the regulation of keratin gene expression.
  • Heia cells were transiently transfected with a whn expression construct (+) and the The presence of Ha3-specific RNA was detected using an RT-PCR. T he molecular weight markers are given in bp.
  • the method comprises the isolation of mRNA from skin cells of (whn + / +) mice or (whn - / -) - mice (mice exhibiting alopecia which have no expression of the whn gene), the transcription of the mRNA into cDNA and the
  • R-Bgl-12 5 '-GATCTGCGGTGA-3'
  • R-Bgl-24 5 '-AGCACTCTCCAGCCTCTCACCGCA-3'
  • R-Bgl-12 5 '-GATCTGTTCATG-3'
  • R-Bgl-24 5 '-ACCGACGTCGACTATCCATGAACA-3'
  • N-Bgl-12 5 '-GATCTTCCCTCG-3'
  • N-Bgl-24 5 '-AGGCAACTGTGCTATCCGAGGGAA-3 B
  • RNA was removed from the skin of (whn + / +) - 5 or (whn - / -) mice according to the "single step
  • RNA extraction "method (Chomczynski and Sacchi, 1987). The poly A-mRNA fractions from the two RNA populations were then analyzed using Dynabeads 10 oligo (dT) according to the corresponding protocol
  • Thermocycler (Peltier Thermocycler PTC-200, MJ Research) heated to 50 ° C, held at this temperature for 1 min and then back to 10 ° C within an hour
  • Precipitation Add 70 ⁇ l 3 M Na acetate (pH 5.3), 700 ⁇ l 2-propanol to each vessel, 20 min ice; Centrifugation: 14 min, 14000 rpm, 4 ° C. 35 washing the DNA pellet with ethanol 70% and resuspension in so much water that a concentration of 0.5 ⁇ g / ⁇ l resulted.
  • the DNA extracts were pooled to give a total of 60 ul solution.
  • the concentration of this solution was estimated by electrophoresis of 5 ul in a 1% agarose gel.
  • DNA with the J-oligonucleotide pair 2 ⁇ g tester DNA eluate 6 ⁇ l 10 x ligase buffer 4 ⁇ l J-Bgl-24 (2 ⁇ g / ⁇ l) 4 ⁇ l J-Bgl-12 (1 ⁇ g / ⁇ l) x ⁇ l water 5 57 ⁇ l final volume
  • Step 5 were combined in a reaction vessel and extracted twice with phenol / chloroform (1: 1) and once with 100% chloroform.
  • the reaction was stopped by adding 160 ⁇ l of 50 mM Tris-HCl (pH 8.9) and incubating for 5 minutes at 98 ° C. The jar was then placed on ice until the next step.
  • the ligation mixture from step 8e) was made by adding 100 ⁇ l of water to a
  • Oligonucleotide adapters (step 8) this time the J-Bgl oligonucleotides were ligated to the newly formed difference product 2.
  • the concentration of the differential product 2 ligated with the J-Bgl oligos was increased to
  • the third difference product was first subjected to a restriction digest with DpnII, whereby the oligonucleotide adapters were removed. The reaction product was then turned on
  • RNAs were identified the examined tissues (whn + / +) skin cDNA and (whn - / -) skin cDNA) blotted and hybridized with the radioactively labeled cloning products. This confirmed the differential expression of these sequences in the tissues examined.
  • An analysis of the sequences showed that the Ha3 gene is not expressed in nu / nu mice (mice exhibiting alopecia) (cf. FIG. 1).
  • Example 2 Expression of hair eratin and whn genes in normal and alopecia mice.
  • the probes used were as follows:
  • M27734 mHa3 nucleotides 1007-1204; Genebank "Accession” -
  • hair keratin and whn genes are not or only weakly expressed in mice having alopecia.
  • Example 3 Detection of the expression induction of the Ha3 gene by the gene product of the whn gene.
  • a whn gene "tagged" at the N-terminal epitope was inserted into the expression vector pTRE (Clontech).
  • the DNA construct obtained was used for transient transfection of the Heia Tet-On Zeil line (Clontech) using the calcium phosphate
  • Coprecipitation method used. The cells were immediately treated with 5 ⁇ g / ml docycline. 24 hours later, 1 mM sodium butyrate was added. 48 hours after transfection, the cells were harvested and subjected to an RT-PCR method.
  • the primers used in the PCR method were as follows:
  • the PCR process comprised 35-40 cycles of 30 seconds each at 95 ° C, 30 seconds at 58 ° C and 1 minute at 72 ° C.
  • BAC-whn A BAC clone designated BAC-whn was isolated from a BAC library from Genome Systems (St. Louis, Missouri, USA;) and contains the entire whn-
  • a shuttle vector designated pMB096-whn-GFP was also used, which contained the mouse whn gene, the reporter gene GFP being present in exon3 (cf. Nehls, M. et al., Science 272, ( 1996), 886-889).
  • BAC-whn was used to transform the recA + E. coli strain CBTS. The transformation was done by electroporation. Clones were isolated and transformed with pMB 096-whn-GF P using electroporation. There was a homogeneous recombination between the BAC clone and the shuttle vector in the region of the whn gene, whereby a vector designated BAC-whn-GFP was obtained. This had the reporter gene GFP in the whn gene.
  • BAC-whn-GFP was used to transfect COS cells. The transfection was carried out using the calcium phosphate coprecipitation method. COS cells were obtained which code for a fusion gene composed of whn and GFP.

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Abstract

Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Hemmung von Alopezie, umfassend die Erhöhung der zellulären Mengen von Haarkeratinen und ein System zur Identifizierung von Alopezie hemmenden Substanzen.

Description

Hemmung von Alopezie
Die vorliegende Erfindung betrifft ein Verfahren zur Hemmung von Alopezie und ein System zur Identifizierung von Alopezie hemmenden Substanzen.
Alopezie ist eine weit verbreitete Erkrankung des Haares, bei der vollständiger Haarverlust eintreten kann. Die Ursachen von Alopezie sind nicht bekannt. Insofern ist es auch nicht möglich, gezielt in diese Erkrankung einzugreifen.
Der vorliegenden Erfindung liegt somit die Aufgabe zugrunde ein Mittel bereitzustellen, mit dem dieses erreicht werden kann.
Erfindungsgemäß wird dies durch die Gegenstände der Patentansprüche erreicht.
Die vorliegende Erfindung beruht auf den Erkenntnissen des Anmelders, daß bestimmte Formen der Alopezie auf einer gestörten Keratinisierung des Haares beruhen. Ferner hat er erkannt, daß bei Alopezie die mRNA verschiedener Gene, nicht vorhanden, z.B. des Ha3-Gens, oder unterrepräsentiert, z.B. der Hai-, Ha2- und Ha4-Gene, ist (vgl. Figuren 1 und 2). Die Genprodukte der Hai-, Ha2-, Ha3- und Ha4-Gene sind Haarkeratine. Der Anmelder hat gefunden, daß die Expression des Ha3-Gens durch ein Genprodukt des whn-Gens reguliert wird. Insbesondere hat er gefunden, daß durch Expression des whn- Gens die Expression des Ha3-Gens induziert werden kann (vgl. Fig. 3). Auch hat er gefunden, daß die Expression anderer Haarkeratin-Gene durch das Genprodukt des whn-Gens wesentlich beeinflußt wird. Der Anmelder hat weiterhin gefunden, daß die Expression des whn-Gens im Verlauf des Haarzyklus schwankt. Insbesondere hat er gefunden, daß die whn-Expression in der Telogenphase des Haarzyklus auf nicht mehr detektierbare Spiegel absinkt. Ferner hat er gefunden, daß das whn-Gen von zwei Promotoren transkribiert werden kann. Der Anmelder hat seine Erkenntnisse mit Hilfe von Nacktmäusen und Heia-Zellen gewonnen.
Erfindungsgemäß werden die Erkenntnisse des Anmelders für ein Verfahren zur Hemmung von Alopezie genutzt, das die Erhöhung der zellulären Menge von Haarkeratinen umfaßt.
Der Ausdruck "Erhöhung der zellulären Menge von Haarkeratinen" weist darauf hin, daß in Zellen die Menge von ein oder mehreren Haarkeratinen, insbesondere von Hai, Ha2 , Ha3 und Ha4, die gering oder gar nicht vorhanden sein kann, erhöht wird. Dies kann durch übliche Verfahren bzw. Substanzen erreicht werden. Beispielsweise können den Zellen ein oder mehrere Haarkeratine, insbesondere Hai, Ha2 , Ha3 und Ha4, als solche oder in Form von sie kodierender DNA zugegeben werden. Die DNA kann in üblichen Expressionsvektoren vorliegen. Auch können Substanzen zugegeben werden, welche die Expression von ein oder mehreren Haarkeratinen, insbesondere von Hai, Ha2 , Ha3 und Ha4, aktivieren. Solche Substanzen sind z.B. das Genprodukt des whn-Gens oder eine hierfür kodierende DNA. Diese kann in üblichen Expressionsvektoren vorliegen. Ferner können Subs anzen zugegeben werden, welche die Expression des whn-Gens aktivieren. Diese können ebenfalls als solche oder in Form von sie kodierender DNA vorliegen, wobei letztere auch in üblichen Expressionsvektoren vorliegen kann. Der Ausdruck "Zellen" umfaßt Zellen jeglicher Art und Abstammung. Ferner umfaßt er Gewebe und Organismen, insbesondere Tiere und den Menschen.
Die Verabreichung von Substanzen, die Alopezie hemmen, kann in üblicher Weise, vorzugsweise lokal erfolgen. Auch können die Substanzen in üblichen Formulierungen vorliegen. Bei lokaler Verabreichung der Substanzen eignen sich z.B. Cremes, Salben, Shampoos und Haarwasser. Auch können die Substanzen in Partikeln vorliegen, die leicht aufgenommen werden. Beispiele solcher Partikel sind Liposome. Der Fachmann kennt Verfahren, um für die einzelnen Substanzen die geeigneten Formulierungen bzw. Verabreichungsformen zu finden.
Ein weiterer Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist ein System zur Identifizierung von Substanzen, die sich zur Hemmung von Alopezie eignen. Ein solches System umfaßt die Erhöhung der zellulären Menge von Haarkeratinen und/oder von ihre Genexpression aktivierenden Substanzen. Insbesondere umfaßt das System Tiere oder Zellen, wobei Zellen bevorzugt sind, in denen ein oder mehrere exprimierbare Haarkeratin-Gene und/oder ein oder mehrere exprimierbare Gene, deren Genprodukte die Genexpression von Haarkeratinen aktivieren, jeweils fusioniert mit einem Reporter-Gen vorliegen. Die Haarkeratin-Gene können insbesondere jene von Hai, Ha2 , Ha3 und Ha4 sein. Ferner ist es günstig, wenn die die Genexpression von Haarkeratinen aktivierende Substanz ein Genprodukt des whn-Gens ist. Desweiteren können die vorstehenden Gene eine Wildtyp- oder eine veränderte Sequenz aufweisen, wobei sich letztere von der Wildtyp-Sequenz durch ein oder mehrere Basenpaare unterscheiden kann. Die Unterschiede können in Form von Additionen, Deletionen, Substitutionen und/oder Inversionen von Basenpaaren vorliegen. Ferner kann ein vorstehendes Reporter-Gen jegliches sein, insbesondere kann es für ein Enzym, z.B. alkalische Phosphatase, oder ein fluoreszierendes Protein, z.B. GFP, kodieren. Desweiteren können die Fusionsgene extrachromosomal vorliegen oder im Zeil-Genom, insbesondere anstelle eines oder beider Allele der Haarkeratine und/oder der Gene, deren Genprodukte die Expression von Haarkeratinen aktivieren. Ferner kann das System Stoffe enthalten, die sich zum Nachweis der exprimierten Haarkeratine und/oder von ihre Genexpression aktivierenden Substanzen bzw. der Fusionsgene, eignen. Solche Stoffe können sich zum Nachweis auf dem Nukleinsäure- bzw. Protein-Level eignen.
Mit der vorliegenden Erfindung ist es möglich Alopezie zu hemmen. Ferner ist es möglich Alopezie zu diagnostizieren, in dem z.B. die Genexpression von Haarkeratinen und/oder von Substanzen bestimmt wird, welche diese aktivieren. Des weiteren ist es möglich Substanzen zu finden, die sich zur Hemmung von Alopezie eignen. Hierfür wird ein System bereitgestellt, das sich zum schnellen und zuverlässigen Screenen von verschiedensten Substanzen eignet. Damit stellt die vorliegende Erfindung Mittel bereit eine weit verbreitete Erkrankung des Haares zu diagnostizieren und zu therapieren.
Kurze Beschreibung der Zeichnungen:
Fig. 1 zeigt eine in situ RNA-Hybridisierung mit einer Sonde für mHa3 in normalen (whn +/+) und mutanten
(whn -/-) Mäusen. Die Transkripte für mHa3 (sichtbar als braune Silberkörner) sind in Haarfollikeln der Nacktmaus nicht nachweisbar. Die Linie entspricht 100 μm .
Fig. 2 zeigt die Expression von whn und Haarkeratinen im Haarfollikel der Maus.
A. Northern Filter-Hybridisierung mit RNA aus Gesamthaut von normalen Mäusen (whn +/+) und
Nacktmäusen (whn -/-) mittels Sonden für hprt- und whn-Gene sowie Hai-, Ha3-, Ha4-Gene zu drei Zeitpunkten nach der Geburt dP7 , 7 Tage nach Geburt etc. ) .
B . In situ RNA-Hybridisierung in Haut aus normalen (whn +/ + ) und Nacktmäusen (whn - / - ) mit Sonden für Hai- , Ha3 - und Ha4-Gene . Ein Autoradiogramm von Hautschnitten am Tag 7 nach der Geburt ist gezeigt .
Fig . 3 zeigt die Regulation der Keratin-Gen-Expression .
Heia- Zel len wurden mit einem whn-Express ions- Kons trukt trans ient trans f i z iert ( + ) und die Anwesenheit von Ha3 -spezifischer RNA wurde über e i n e R T - P C R n a c h g e w i e s e n . D i e Kolekulargewichtsmarker sind in bp angegeben.
Die vorliegende Erfindung wird durch die nachstehenden Beispiele erläutert.
Beispiel 1: Nachweis des Verlustes der Expression des
Ha3-Gens in Mäusen mit Alopezie.
Es wurde das "Representational Difference Analysis" (RDA) -Verfahren durchgeführt. Dieses
Verfahren umfaßt die Isolierung von mRNA aus Hautzellen von (whn +/+ ) -Mäusen bzw. (whn -/-)- Mäusen (Alopezie aufweisende Mäuse, die keine Expression des whn-Gens aufweisen) , die Umschreibung der mRNA in cDNA und die
Differenzierung der cDNA, wodurch solche identifiziert wird, die in (whn -/-) -Mäusen unter- bzw. überexprimiert wird.
A) Sequenz der Oli onukleotidadaptoren
Folgende Oligonukleotidadaptorenpaare wurden für die RDA benötigt:
R-Bgl-12: 5 ' -GATCTGCGGTGA-3 '
R-Bgl-24 : 5 ' -AGCACTCTCCAGCCTCTCACCGCA-3 '
R-Bgl-12: 5 ' -GATCTGTTCATG-3 '
R-Bgl-24 : 5 ' -ACCGACGTCGACTATCCATGAACA-3 '
N-Bgl-12 : 5 ' -GATCTTCCCTCG-3 '
N-Bgl-24 : 5 ' -AGGCAACTGTGCTATCCGAGGGAA-3 B) Herstellung von poly A-mRNA aus den miteinander zu vergleichenden Geweben
Zunächst wurde RNA aus der Haut von (whn +/+)- 5 bzw. (whn -/-) -Mäusen nach der "Single-Step
RNA-Extraction" -Methode (Chomczynski and Sacchi, 1987) gewonnen. Die poly A-mRNA- Fraktionen aus den beiden RNA-Populationen wurden anschließend mit Hilfe von Dynabeads 10 Oligo(dT) nach dem entsprechenden Protokoll der
Firma Dynal isoliert.
C) Synthese doppelsträngiger cDNA
15 Zur Synthese von doppelsträngiger (whn +/+)- bzw. (whn
-/-)-cDNA wurde das "Ribo Clone cDNA Synthesis Kit" der Firma Promega verwendet. Jeweils 4 μg poly A-mRNA wurden eingesetzt, um ungefähr 2 μg
20 cDNA zu erhalten.
D) Differenzanalyse
1. Restriktionsverdau der doppelsträngigen 25 cDNAs
a) Ungefähr 2 μg jeder cDNA wurden in einem 100 μl - Reak t i ons ans a t z mit der Restriktionsendonuklease Dpnll 2 h bei
30 37°C verdaut.
b) Die Reaktionslösungen wurden anschließend zweimal mit einem Phenol/Chloroform- Gemisch (1:1) und einmal mit 100%igem
35 Chloroform extrahiert.
c) Die in den wäßrigen Phasen der beiden Reaktionsansätze enthaltene DNA wurde jeweils mit 2 μg Glykogen, 50 μl 10 M Ammoniumacetat und 650 μl 100% Ethanol versetzt und 20 min auf Eis gefällt.
5 Nach 14-minütiger Zentrifugation bei 4°C und 14000 upm wurde der Überstand verworfen und das DNA-Pellet mit 70% Ethanol gewaschen. Nach erneuter Zentrifugation und Entfernung der 10 alkoholischen Phase wurde die getrocknete
DNA in 20 μl TE-Puffer resuspendiert.
2. Ligation der cDNAs an das R-Bgl-
Oligonukleotidadaptorenpaar 15 a) In einem Reaktionsgefäß wurden vereinigt:
20 μl geschnittene cDNA (gesamter
Reaktionsansatz aus Punkt D)lc)
8 μg R-Bgl-24 20 4 μg R-Bgl-12
6 μl 10 x Ligase Puffer x μl Wasser
57 μl Endvolumen
25 b) Der Reaktionsansatz wurde in einem
Thermocycler (Peltier Thermocycler PTC- 200, MJ Research) auf 50°C erhitzt, 1 min auf dieser Temperatur gehalten und dann im Laufe einer Stunde wieder auf 10°C
30 abgekühlt (ramp rate: 0,l°C/9 sec) .
c) Nach Hinzufügen von 3 μl T4 DNA Ligase (1 U/μl) wurde das Gemisch über Nacht bei 16°C inkubiert.
35
3. Synthese von "Repräsentationen" der miteinander zu vergleichenden cDNA- Populationen
a) Zur Generierung sog. "Repräsentationen" der ligierten cDNAs wurde zunächst das
5 Volumen der Ligationsansätze aus Punkt 2c) durch Zugabe von jeweils 140 μl Wasser auf 200 μl ergänzt.
Aus dieser verdünnten Lösung wurden dann 10 pro cDNA-Population (whn +/+ )- bzw. (whn -
/-)-Haut 30 Reaktionen zu jeweils 200 μl angesetzt .
Einem solchen Ansatz wurden der Reihe nach 15 folgende Reaktanden zugegeben:
143 μl Wasser 20 μl lOx PCR-Puffer
20 μl 2 mM dNTPs
10 μl 25 mM Mg-Chlorid 20 2 μl R-Bgl-24 (1 μg/μl)
4 μl verdünnter Ligationsansatz
b) PCR:
3 min: 72°C
25 Hinzufügen von 1 μl Taq-DNA-Polymerase (5
U/μl)
20 x: 5 min: 95°C 3 min: 72°C zuletzt: Abkühlen auf 4°C . 30 c) Zur Aufbereitung der Reaktionslösungen wurden jeweils 4 Reaktionsansätze in einem Gefäß vereinigt.
Extraktion: 2 x mit jeweils 700 μl
35 Phenol /Chloroform (1:1), 1 x mit Chloroform 100%; Fällung: Zugabe von 75 μl 3 M Na- Acetatlösung (pH 5,3) und 800 μl 2-Propanol zu j edem Reaktionsgefäß, 20 min Eis. Zentrifugation: 14 min, 14000 rpm, 4°C. Waschen des DNA-Pellets mit Ethanol 70% und Resuspension in soviel Wasser, daß eine Konzentration von 0, 5 μg/μl resultierte.
10
Restriktionsverdau der "Repräsentationen"
a) Z u r E n t f e r nu n g d e r R - B g l - Oligonukleotidadaptoren wurden 300 μg
15 jeder Repräsentation (whn +/+)-Haut bzw.
(whn -/-)-Haut einem Restriktionsverdau unterzogen. Es wurde nach Zugabe der folgenden Reaktanden 4 h bei 37°C inkubiert :
20 600 μl cDNA-Repräsentation (0,5 μg/μl)
140 μl 10 x Dpnll-Puffer 100 μl Dpnll (10 U/μl) 560 μl Wasser.
25 b) Der Restriktionsverdau-Ansatz wurde vor dessen Aufbereitung auf 2 Gefäße aufgeteilt.
Extraktion: 2 x Pheno 1 / Chloro f orm
(1:1) , 1 x Chloroform 30 100%;
Fällung: Zugabe von 70 μl 3 M Na-Acetat (pH 5,3) , 700 μl 2-Propanol zu jedem Gefäß, 20 min Eis; Zentrifugation: 14 min, 14000 rpm, 4°C. 35 Waschen des DNA-Pellets mit Ethanol 70% und Resuspension in soviel Wasser, daß eine Konzentration von 0, 5 μg/μl resultierte.
Die so erhaltene, Dpnll-verdaute (whn
+/+) -Haut-cDNA-Repräsentation stellte die
5 in der subtraktiven Hybridisierung einzusetzende Driver-DNA-Population dar.
5. Synthese der Tester-DNA-Population
10 a) 20 μg der mit Dpnll verdauten (whn -/-)-
Haut-cDNA-Repräsentation (= Tester-DNA) wurden in einem TAE-Gel elektrophoretisch aufgetrennt: 40 μl Tester-DNA (0,5 μg/μl)
15 50 μl Te-Puffer
10 μl 10 x Loading Buffer wurden auf ein 1,2% Agarose-TAE-Gel aufgetragen. Es wurde solange Spannung an das Gel gelegt, bis die Bromphenolblau-
20 Komponente des Loading Buffers ungefähr 2 cm weit gewandert war.
b) Anschließend wurden die Repräsentations-
DNA enthaltenden Banden aus dem Gel
25 ausgeschnitten und mit Hilfe des "Agarose
Gel DNA Extraction Kits" der Firma Boehringer Mannheim eluiert .
Die DNA-Extrakte wurden vereinigt, so daß 30 insgesamt 60 μl Lösung erhalten wurden.
Die Konzentration dieser Lösung wurde durch Elektrophorese von 5 μl in einem 1% Agarose-Gel abgeschätzt.
35 c) Zuletzt erfolgte eine Ligation der Tester-
DNA mit dem J-Oligonukleotid-Paar: 2 μg Tester-DNA-Eluat 6 μl 10 x Ligase Puffer 4 μl J-Bgl-24 (2 μg/μl) 4 μl J-Bgl-12 (1 μg/μl) x μl Wasser 5 57 μl Endvolumen
d) Überführung des Reaktionsansatzes in Thermocycler :
1 min: 50°C 10 Abkühlen auf 10°C in 1 h (ramp rate:
0,l°C/9 sec) .
e) Nach Hinzufügen von 3 μl T4 DNA Ligase (1 U/μl) Inkubation bei 16°C über Nacht.
15
Einstellung der Konzentration der Tester- DNA auf ungefähr 10 ng/μl durch Zugabe von 120 μl Wasser.
20
6. Subtraktive Hybridisierung
a) 80 μl Driver-DNA (40 μg) aus Schritt 4. und 40 μl (0,4 μg) verdünnte, mit J-
25 Oligonukleotiden ligierte Tester-DNA aus
Schritt 5. wurden in einem Reaktionsgefäß vereinigt und 2 x mit Phenol/Chloroform (1:1) und einmal mit Chloroform 100% extrahiert .
30 b) Fällung durch Zugabe von 30 μl 10 M Ammoniumacetat, 380 μl Ethanol 100%; 10 min -70°C.
Zentrifugation: 14 min, 14000 rpm, 35 4°C .
Anschließend: 2 x Waschen des Pellets mit Ethanol 70%, kurze Zentrifugation nach jedem Waschschritt; Trocknen des DNA-Pellets. 5 c) Die Resuspension der DNA erfolgte in 4 μl EE x3 -Puffer (30 mM EPPS, pH 8 , 0 bei 20°C (Firma Sigma) , 3 mM EDTA) - hierbei wurde ungefähr 2 min auf- und abpipettiert, dann 10 5 min auf 37°C erwärmt, kurz "gevortext" und zuletzt die Lösung durch Zentrifu- gieren wieder am Gefäßboden vereinigt.
Zuletzt wurde die Lösung mit 35 μl
Mineralöl überschichtet. 15 d) Überführen des Reaktionsansatzes in Thermocycler :
5 min: 98°C,
Abkühlen auf 67°C und sofortige Zugabe von 20 1 μl 5 M NaCl zur DNA,
20 h Inkubation bei 67°C.
7. Synthese des ersten Differenzprodukts
25 a) Nachdem das Mineralöl möglichst vollständig entfernt worden war, wurde die DNA schrittweise verdünnt: 1. Zugabe von 8 μl TE (+ 5 μg/μl Hefe- RNA) ,
30 2. Zugabe von 25 μl TE - danach gründliches Mischen, 3. Zugabe von 362 μl TE - Vortex.
b) Für jede subtraktive Hybridisierung wurden 35 4 PCRs angesetzt. Pro Reaktion:
127 μl Wasser 20 μl 10 x Puffer 20 μl 2 mM dNTPs
5 μl 25 mM Mg-Chlorid
20 μl verdünnte Hybridisierungslösung (aus Schritt 7a) )
5 c ) PCR-Programm :
3 min : 72°C
Zugabe von 1 μl Taq DNA Polymerase (5
U/μl) 10 5 min: 72°C
Zugabe von 2 μl Primer J-Bgl-24 ( 1 μg/μl )
10 x : 1 min : 95°C 3 min : 70°C zuletzt: 10 min: 72°C; dann Abkühlen auf 15 Raumtemperatur.
d) Die 4 Reaktionsansätze wurden in einem 1,5 ml-Gefäß vereinigt.
Extraktion: 2 x Phenol/Chloroform (1:1), 1 20 x Chloroform 100%.
Nach Zugabe von 2 μg Glykogen Carrier:
Fällung mit 75 μl 3 M Na-Acetat (pH 5,3),
800 μl 2-Propanol, 20 min Eis.
Zentrifugation: 14 min, 14000 rpm, 4°C . 25 Waschen des DNA-Pellets mit Ethanol 70%.
Nach Trocknen der DNA Resuspension in 40 μl Wasser.
e) 20 μl der resuspendierten DNA aus d) 30 wurden einem "Mung Bean Nuclease-Verdau"
(=MBN) unterzogen: 20 μl DNA
4 μl 10 x Mung Bean Nuclease Buffer (Fa. NEB)
35 14 μl Wasser
2 μl Mung Bean Nuclease (10 U/μl; Fa. NEB) 35 min , 30°C .
Die Reaktion wurde durch Zugabe von 160 μl 50 mM Tris-HCl (pH 8,9) und 5-minütige 5 Inkubation bei 98°C abgebrochen. Anschließend wurde das Gefäß bis zum nächsten Schritt auf Eis gesetzt.
f) Während der MBN-Inkubation wurden 4 10 weitere PCRs angesetzt (auf Eis) :
127 μl Wasser 20 μl 2 mM dNTPs 10 μl 25 mM Mg-Chlorid 2 μl J-Bgl-24 (1 μg/μl) 15 20 μl MBN-verdaute DNA.
g) PCR-Programm: 1 min: 95°C
Abkühlenlassen auf 80°C, Zugabe von 1 μl 20 Taq DNA Polymerase (5 U/μl),
18 x: 1 min: 95°C 3 min: 70°C, zuletzt: 10 min: 72°C; Abkühlenlassen auf 4°C. 25 h) Die 4 PCR-Ansätze wurden in einem Gefäß vereinigt.
Extraktion: 2 x Phenol / Chloroform
(1:1) , 1 x Chloroform 30 100%.
Fällung: 75 μl 3 M Na-Acetat (pH 5,3),
800 μl 2-Propanol, 20 min Eis. Zentrifugation: 14 min, 14000 rpm, 4°C. Waschen des DNA-Pellets mit Ethanol 70%. 35 Resuspension der DNA in 100 μl Wasser
(resultierende Konzentration: 0,5 μg/μl); die auf diese Weise erhaltene Lösung stellte das erste Differenzprodukt dar.
8. Austausch der Oligonukleotidadaptoren des 5 Differenzprodukts
a) Entfernung der Oligonukleotidadaptoren durch Restriktionsverdau mit Dpnll: 40 μl Differenzprodukt 1 (0,5 μg/μl) 10 30 μl 10 x Dpnll Puffer
15 μl Dpnll (10 U/μl) 215 μl Wasser 2 h 37°C.
15 b) Aufarbeitung des Reaktionsansatzes:
Extraktion: 2 x Phenol / Chloro form
(1:1), 1 x Chloroform 100%. Fällung: 33 μl 3 M Na-Acetat (pH 5,3), 20 800 μl Ethanol 100%, 20 min -
20°C. Zentrifugation: 14 min, 14000 rpm, 4°C. Waschen des Pellets in Ethanol 70% und Resuspension in 40 μl Wasser. 25 c) Ligation des Differenzprodukts an N-Bgl- Oligonukleotidadaptorenpaar
1 μl der aufgearbeiteten DNA-Lösung aus Schritt b) wurde mit 9 μl Wasser zu einer
30 Konzentration von 50 ng/μl verdünnt; 4 μl dieser Lösung wurden in folgender Reaktion eingesetzt:
4 μl Dpnll verdautes Differenzprodukt 1
(200 ng) 35 6 μl 10 x Ligase Puffer
2,5 μl N-Bgl-24 (3,5 μg/μl)
2 μl N-Bgl-12 (2 μg/μl) 42 , 5 μl Wasser .
d) Nach Überführen des Reaktionsansatzes in Thermocycler :
5 1 min : 50°C ,
Abkühlenlassen innerhalb einer Stunde auf 10°C (ramp rate: 0,l°C/9 sec) .
e) Nach Hinzugeben von 3 μl T4 DNA Ligase (1 10 μ/μl) , Inkubation bei 16°C über Nacht.
9. Synthese des 2. Differenzprodukts
Der Ligationsansatz aus Schritt 8e) wurde 15 durch Zugabe von 100 μl Wasser auf eine
Konzentration von 1,25 ng/μl verdünnt. 40 μl dieser Verdünnung (50 ng) wurden mit 80 μl Driver-DNA (siehe Punkt 4.) gemischt und erneut gemäß den Schritten 6. bis 8. 20 behandelt. Beim Wechsel der
Oligonukleotidadaptoren (Schritt 8.) wurden dieses Mal die J-Bgl-Oligo- nukleotide an das neu entstandene Differenzprodukt 2 ligiert.
25
10. Synthese des 3. Differenzprodukts
Die Konzentration des mit den J-Bgl-Oligos ligierten Differenzprodukts 2 wurde auf
30 eine Konzentration von 1 ng/μl reduziert.
10 μl dieser Lösung wurden wiederum mit 990 μl Wasser (+ 30 μg Hefe-RNA) verdünnt, so daß die Konzentration nunmehr 10 pg/μl betrug. Die subtraktive Hybridisierung
35 wurde mit 100 pg (10 μl) J-ligiertem
Differenzprodukt 2 und 40 μg (80 μl) Driver-DNA aus Schritt 4.) durchgeführt. Ansonsten wurde wie beim 1. und 2. Differenzprodukt nach den Schritten 6. bis 8. vorgegangen. Eine Ausnahme bildete die PCR nach der MBN-Reaktion (Punkt 7.g) - 5 hier wurden nur 18 statt 22 Cyclen durchgeführt .
11. Klonierung des 3. Differenzprodukts
10 Das 3. Differenzprodukt wurde zunächst einem Restriktionsverdau mit Dpnll unterzogen, wodurch die Oligonukleotidadaptoren entfernt wurden. Das Reaktionsprodukt wurde anschließend auf ein
15 TAE-Gel aufgetragen und elektrophoretisch getrennt. Die getrennten DNA-Banden wurden aus dem Gel ausgeschnitten, die DNA eluiert und in einen mit BamHI geschnittenen Vektor (pBS Not) kloniert.
20
12. Charakterisierung der Differenzprodukte
Um zu bestätigen, daß es sich bei den klonierten DNA-Fragmenten nicht um
25 Methodenartefakte handelte, sondern um
Sequenzen, die tatsächlich in den untersuchten DNA-Repräsentationen enthalten waren, wurden Southern Analysen durchgeführt, bei denen die untersuchten
30 cDNA-Repräsentationen mit den radioaktiv markierten Klonierungsprodukten hybridisiert wurden.
Anschließend wurden diejenigen DNA- 35 Fragmente, die sich in der Southern
Analyse als "echte" Differenzprodukte erwiesen hatten, mittels Northern Hybridisierungen untersucht: es wurden RNAs aus den untersuchten Geweben (whn +/+ ) -Haut- cDNA und (whn -/- ) -Haut-cDNA) geblottet und mi t den radi oakt iv marki erten Klonierungsprodukten hybridisiert . Hier- durch wurde die dif f erentielle Expression dieser Sequenzen in den untersuchten Geweben bestätigt . Eine Analyse der Sequenzen ergab, daß in nu/nu-Mäusen (Alopezie aufweisende Mäuse) das Ha3-Gen nicht exprimiert wird (vgl . Fig . 1 ) .
Beispiel 2 : Expression von Haar eratin- und whn -Genen in normalen und Alopezie aufweisenden Mäusen.
Aus der Haut von unterschiedlich alten normalen (whn
+ / + ) und nackten (whn - /- ) Mäusen wurde RNA i sol iert , in Agarose-Gelen elektrophoretisch aufgetrennt , auf Filter transferiert und mit genspezifischen Sonden hybridisiert .
Die verwendeten Sonden waren wie folgt:
mHal: Nukleotide 1331 - 1551; Genbank "Accession" -
Nr. M27734 mHa3: Nukleotide 1007 - 1204; Genbank "Accession"-
Nr. X75650 mHa4: Nukleotide 1303 - 1542, vgl. Bertolino, A.P. et al., J. Invest. Dermatol . 94, (1990) 297 - 303 whn: Nukleotide 1141 - 1374; Genbank "Accession" -Nr. X81593
Es zeigte sich, daß Haarkeratin- und whn-Gene in Alopezie aufweisenden Mäusen nicht bzw. nur schwach exprimiert werden.
Beispiel 3: Nachweis der Expressions-Induktion des Ha3-Gens durch das Genprodukt des whn-Gens. Ein am N-terminalen Epitop "getaggtes" whn-Gen wurde in den Expressionsvektor pTRE (Clontech) inseriert. Das erhaltene DNA-Konstrukt wurde für eine transiente Transfektion der Heia Tet-On Zeil-Linie (Clontech) mittels des Calciumphosphat-
Copräzipitations-Verfahrens verwendet. Die Zellen wurden unmittelbar danach mit 5 μg/ml Docyclin behandelt. 24 h später wurde 1 mM Natriumbutyrat zugegeben. 48 h nach Transfektion wurden die Zellen geerntet und einem RT-PCR-Verfahren unterzogen. Die im PCR-Verfahren verwendeten Primer waren wie folgt:
hHa3:
5 ' -CTGATCACCAACGTGGAGTC-3 ' , 5 ' -TACCCAAAGGTGTTGCAAGG-3 ' .
Das PCR-Verfahren umfaßte 35-40 Zyklen mit jeweils 30 sec bei 95°C, 30 sec bei 58°C und 1 min bei 72°C.
Es zeigte sich, daß durch die Expression des whn- Gens eine Expression des Ha3-Gens induziert wurde.
Parallele Kontrollen, in denen keine Transfektion mit dem whn-Gen erfolgte, führten zu keiner Induktion der Ha3-Gen-Expression.
Beispiel 4: Herstellung eines erfindungsgemäßen Systems
Aus einer BAC-Bibliothek der Firma Genome Systems (St. Louis, Missouri, USA;) wurde ein mit BAC-whn bezeichneter BAC-Klon isoliert, der das gesamte whn-
Gen der Maus umfaßt (vgl. Schorpp, M. et al . , Immunogenetics 46, (1997), 509-515).
Ferner wurde ein mit pMB096-whn-GFP bezeichneter Shuttle-Vektor verwendet, der das whn-Gen der Maus enthielt, wobei bei diesem in Exon3 das Reporter-Gen GFP vorlag (vgl. Nehls, M. et al . , Science 272, (1996), 886-889). BAC-whn wurde zur Transformation des recA+ E.coli- Stammes CBTS verwendet. Die Transformation erfolgte durch Elektroporation. Klone wurden isoliert und mit pMB 096 - whn - GF P mittels Elektroporation transformiert. Es erfolgte eine homolge Rekombination zwischen dem BAC-Klon und dem Shuttle- Vektor im Bereich des whn-Gens, wodurch ein mit BAC- whn-GFP bezeichneter Vektor erhalten wurde. Dieser wies im whn-Gen das Reporter-Gen GFP auf .
BAC-whn-GFP wurde zur Transfektion von COS-Zellen verwendet. Die Tranfektion erfolgte mittels des Calciumphosphat-Copräzipitations-Verf ahrens . Es wurden COS-Zellen erhalten, die für ein Fusionsgen aus whn und GFP kodierten.
Es zeigte sich, daß diese Zellen geeignet waren, Substanzen zu identifizieren, welche die Genexpression von whn induzieren konnten. Solche Substanzen eigneten sich zur Hemmung von Alopezie.

Claims

Patentansprüche
1. Verfahren zur Hemmung von Alopezie, umfassend die Erhöhung der zellulären Menge von Haarkeratinen.
2. Verfahren nach Anspruch 1, wobei den Zellen Haarkeratine zugegeben werden.
3. Verfahren nach Anspruch 2, wobei die Haarkeratine in Form von sie exprimierender DNA vorliegen.
4. Verfahren nach einem der Ansprüche 1-3, wobei den Zellen die Genexpression von Haarkeratinen aktivierende Substanzen zugegeben werden.
5. Verfahren nach Anspruch 4, wobei die Substanzen in Form von sie exprimierender DNA vorliegen.
6. Verfahren nach einem der Ansprüche 1-5, wobei die Haarkeratine Hai, Ha2 , Ha3 und Ha4 umfassen.
7. Verfahren nach Anspruch 4 oder 5, wobei die Substanzen das Genprodukt des whn-Gens und/oder die Expression des whn-Gens aktivierende Substanzen umfassen.
8. System zur Identifizierung von Alopezie hemmenden Stoffen, umfassend die Erhöhung der zellulären Menge von
Haarkeratinen und/oder von ihre Genexpression aktivierenden Substanzen.
9. System nach Anspruch 8, wobei das System Zellen umfaßt, in denen ein oder mehrere exprimierende Haarkeratin-Gene fusioniert mit einem Reporter-Gen vorliegen.
10. System nach Anspruch 8 oder 9, wobei die Haarkeratine, Hai, Ha2 , Ha3 und Ha4 umfassen.
11. System nach einem der Ansprüche 8 - 10, wobei das System Zellen umfaßt, in denen ein oder mehrere exprimierbare die Genexpression von Haarkeratinen aktivierende Substanzen fusioniert mit einem Reporter-Gen vorliegen.
12. System nach einem der Anspruch 8 - 11, wobei die Substanzen ein Genprodukt des whn-Gens umfassen.
13. System nach einem der Ansprüche 9 - 12, wobei das Reporter-Gen für ein Enzym kodiert.
14. System nach einem der Ansprüche 9-12, wobei das Reporter- Gen für ein fluoreszierendes Protein kodiert.
15. System nach einem der Ansprüche 9-14, wobei die Fusionsgene extrachromosomal vorliegen.
16. System nach einem der Ansprüche 9-14, wobei die Fusionsgene im Zeil-Genom integriert sind.
17. System nach einem der Ansprüche 9-16, wobei ferner Stoffe zum Nachweis der exprimierten Haarkeratine und/oder von ihre Genexpression aktivierende Substanzen bzw. der Fusionsgene vorliegen.
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