WO2000059932A1 - Peptides se liant a l'hemagglutinine du virus de la grippe - Google Patents

Peptides se liant a l'hemagglutinine du virus de la grippe Download PDF

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hemagglutinin
influenza
influenza virus
binding
binding peptide
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Toshinori Sato
Dai Ishikawa
Michinori Tanaka
Koichi Ogino
Takao Taki
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Otsuka Pharmaceutical Co Ltd
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    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K7/00Peptides having 5 to 20 amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K7/04Linear peptides containing only normal peptide links
    • C07K7/08Linear peptides containing only normal peptide links having 12 to 20 amino acids
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/12Antivirals
    • A61P31/14Antivirals for RNA viruses
    • A61P31/16Antivirals for RNA viruses for influenza or rhinoviruses
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides

Definitions

  • the present invention relates to a peptide having specific binding to fluenza virus. More specifically, the present invention relates to a peptide that specifically binds to hemagglutinin present on an influenza innores membrane.
  • the peptide of the present invention can prevent influenza virus infection by binding to hemagglutinin and thereby preventing the binding of influenza virus to a host receptor. It contributes significantly.
  • the present invention relates to the use of the above-mentioned peptide as an inhibitor of the binding of influenza virus to a host receptor via hemagglutinin, and as an anti-influenza agent. It is also about uses.
  • hemagglutinin hemagglutinin
  • NA neuraminidase
  • the latter neuraminidase is a receptor-destroying enzyme, and the sialic acid residue on its own or on the host cell membrane when the virus particles germinate or release from the host cell. It is responsible for cleaving the group.
  • Influenza enzyme is classified into type A, type B, and type C according to its antigenicity, such as the nucleoprotein nuclear protein and the matrix protein present inside the virus membrane.
  • type A influenza virus has been repeatedly epidemic on a global scale due to changes between subtypes associated with changes in antigenicity due to genetic crosses and point mutations.
  • hemagglutinin which is involved in the first step of influenza virus infection, has a highly mutated antigenic determinant (A to E) amino acid sequence diversity. On the basis of which there are different subtypes. Amino acid sequence differences between hemagglutinin subtypes range from 25 to 75%, but the so-called receptor-binding pocket region that binds to the host cell receptor is relatively unmutated. Its three-dimensional structure is well preserved (Y. Suzuki, Prog. Lipid. Res., 33, 429 (1994)).
  • the antigenicity of the antigen-binding site of the monoclonal antibody against the hemagglutinin receptor sugar chain (idio)
  • idio There is also a method to create antibodies (anti-idiotype antibodies) against the (type) antibodies.
  • it replaces the three-dimensional structure of sialic acid and sialyl glycans, which are the receptors for hemagglutinin, and the amino acid in the hypervariable region of anti-idiotypic antibodies whose steric structure is similar
  • the sequence is created to mimic the maglutinin receptor of the host cell (Yasuo Suzuki, "Virus Infection and Sugar Chains," Nikkei Science, "Sugar Chains and Cells,” 8 Pp. 9-1101, October 1994).
  • a substance capable of specifically recognizing and binding to hemagglutinin of influenza virus that is, a substance capable of becoming a receptor for hemagglutinin instead of a host cell receptor, could be provided.
  • the substance also specifically recognizes and recognizes hemagglutinin “receptor binding pockets” well conserved among subtypes of Influenza virus. Is expected to prevent infection across all influenza viruses as well as subtypes
  • An object of the present invention is to provide an influenza virus hemagglutinin-binding peptide that can exhibit such effects.
  • FIG. 1 is a schematic diagram showing the process of immobilizing influenza enamel and hemagglutinin on microplates.
  • FIG. 9 is a view showing the result of examining the binding property to the cation H 1.
  • FIG. 3 shows the phage clones obtained in Example 1 and Example 3 (“A-1 on” “B_1 on” “B-2 ⁇ ” “C-1”, “C_2” in Example 4).
  • Figure 2 shows the results of an investigation on the binding of “H1-1” and “IU-2”) to influenza, hemagnoretinin H1 and H3, and wheat germ agglutinin (WGA) It is a figure.
  • FIG. 4 shows the phage clones obtained in Example 1 and Example 3 ("A-1", “B-2 ⁇ ” C-1 "and” B-1 on B-1 ") in Example 5. And “C-2” (these are shown in Figure 4 (a)), “_1” and “111-2”
  • FIG. 4 shows the results of examining the binding properties of the above (shown in FIG. 4 (b)) to anti-GM3 antibodies.
  • random 1 ibrary (indicated by the numeral 1 in the figure) means a set of phages expressing random peptides before burning.
  • FIG. 5 shows the binding of phage clones (“A-1 on“ B-1 ”,“ B-2 ⁇ ”“ C-1 ”and“ C-2 ”) to hemagglutinin in Example 7.
  • FIG. 3 shows the results of examining the inhibitory effect of ganglioside GM3.
  • a) shows the results of using the H1 subtype (A / PR / 8/34 (H1N1)) as hemagglutinin
  • b) shows the results of using the H3 subtype (A / PR / 8/34 (H1N1)) as hemagglutinin.
  • Wuhan / 359/95 (H3N2) is shown.
  • FIG. 6 shows the results of the conversion of ferro-glyclone (“A-1 ⁇ “ B-1 ”,“ B-2 ⁇ “C-1” and “C-2”) to hemagglutinin in Example 7.
  • FIG. 4 shows the results of examining the inhibitory effect of ganglioside GM1 on binding.
  • a) shows the results when the H1 subtype (A / PR / 8/34 (H1N1)) was used as hemagglutinin
  • b) shows the H3 subtype (A / PR / A) as hemagglutinin.
  • the results are shown in the case of using Mousou / 359/95 (H3N2)).
  • FIG. 7 shows that in Example 11, a phageclone (“A-1”) expression peptide (synthetic protein) was observed for the binding of hemagglutinin to ganglioside GM3 (GM3 cast membrane).
  • FIG. 4 is a graph showing the results of investigating the inhibitory effect of Indicated by — ⁇ —. ).
  • a) shows the results when the H1 subtype (A / PR / 8/34 (H1N1)) was used as hemagglutinin
  • b) shows the results when the H3 subtype was used as hemagglutinin.
  • a / Wuhan 7359/95 (H3N2)) is shown.
  • 1 ⁇ — indicates the peptide (control) at the N-terminal 15 residue of the ⁇ ⁇ protein into which the peptide is inserted
  • 1 — indicates the phenolic protein (star). The results are shown below.
  • Figure 8 is a diagram showing in Example 12, using the re port peptide prepared in Example 9 (C 18 A- 1 Li Popepuchi de), the results of examining the Rui Nfurue Nzawirusu infection inhibitory activity against the cell It is. a) shows the results when H1 subtype (A / PR / 8/34 (H1N1)) was used as the influenza virus, and b) shows the H3 subtype (A / Wuhan / 359 / 95 (H3N2)). In the figure, — ⁇ — indicates the result of C 18 A-1 lipopeptide, and —mouth— indicates the result of the stearate derivative of the N-terminal 15 residue peptide of pIII protein.
  • FIG. 9 is a diagram showing the result of the examination. a) shows the results when the HI subtype (A / PR / 8/34 (H1N1)) was used as the influenza virus, and b) shows the H3 subtype (A / Wuhan / 359/95). (H3N 2) The result when) is used.
  • ellipses indicate the results of the Cis A-1 lipopeptide
  • - ⁇ indicate the results of the stearic acid derivative of the N-terminal 15 peptide of the pill protein. Disclosure of the invention
  • the present inventors have intensively studied to solve the above-mentioned problems, and by using the phage display method, hemagglutinin of Inforeenzainores can be specifically used. It was confirmed that peptides to be recognized and combined could be obtained selectively.
  • the present invention has been developed based on such knowledge.
  • the present invention is an influenza virus hemagglutinin-binding peptide listed in the following 1 to 6: ⁇ . Any of the following (a) or (b): Hemagglutinin-binding peptide to influenza virus:
  • influenza virus hemagglutinin-binding peptide having any of the amino acid sequences shown in SEQ ID NOs: 7 to 11.
  • influenza virus hemagglutinin-binding peptide according to any one of 1 to 3, wherein the influenza virus is a type I virus.
  • the immunoglobulin-hemagglutinin-binding peptide according to any one of 1 to 3, which is a subtype of the immunoglobulin H1 subtype.
  • _6_ The peptide of claim 1 or 3, wherein the influenza virus is H3 subtype.
  • peptides can also be prepared as lipobeptides by alkylation or lipidation (phospholipids). Accordingly, the peptides of the present invention include lipopeptides.
  • the present invention is a liposome containing the lipopeptide.
  • influenza enzyme described above. It is an influenza virus hemagglutinin binding inhibitor containing at least one kind of ruth hemagglutinin-binding peptide as an active ingredient. It should be noted that the peptide may be in the form of a liposome.
  • the present invention is a pharmaceutical composition which is useful as an anti-influenza agent, specifically, a prophylactic or therapeutic agent for influenza, as described below.
  • composition comprising the active ingredient influenza virus hemagglutinin-binding peptide in the form of lipobeptide.
  • composition comprising the active ingredient influenza winoreth 'hemagglutinin-binding peptide in the form of a modified liposome.
  • influenza virus of interest is an H1 subtype of a type A virus.
  • the target influenza virus is an A-type virus
  • the above pharmaceutical composition which is a H3 subtype of the drug.
  • the above pharmaceutical composition used as a prophylactic or therapeutic agent for influenza provides a method for preventing infection with influenza or influenza, which comprises administering the pharmaceutical composition according to any one of the above (A) to (G) to a subject.
  • the subjects were those who might be infected with influenza virus (humans or other animals (including mammals, birds, reptiles, fish, amphibians, etc.) and Preferably, the influenza virus associated with the infection belongs to type A, more preferably the type A H1 subtype.
  • the present invention relates to the aforementioned influenza virus hemagglutinin-binding peptide and the above-mentioned modified ribosome.
  • the present invention relates to the use as the above-mentioned anti-influenza agent (influenza preventive or therapeutic agent), and further to the above-mentioned influenza virus hemagglutinin-binding peptide and the above-mentioned influenza anti-influenza agent.
  • Petit de modified liposome, anti Lee Nfurue stanza agent (rather then Lee down trembling stanza preventing young treatment Agent) for use in the manufacture of a pharmaceutical composition for use as a pharmaceutical composition.
  • the abbreviations of amino acids, peptides, nucleotide sequences, nucleic acids, etc. in the present specification are referred to by the rules of IUPAC and IUB, ⁇ Specification including nucleotide sequence or amino acid sequence, etc. Guideline for preparation ”(Japan Patent Office) and conventional symbols in the relevant field.
  • the amino acids represented by SEQ ID NOS: 1 to 11 obtained by the method described in Examples described later. Those having a phosphoric acid sequence can be exemplified.
  • the hemagglutinin-binding peptide of the present invention (hereinafter referred to as “the hemagglutinin-binding peptide”)
  • a molecular library screening method can be adopted.
  • the phage display library can be used to advantage.
  • Random Peptide Dody in the Library According to the spray phage, a peptide that binds to a specific target molecule or target cell can be screened in vitro using the molecule or cell, and the peptide can be screened in vitro. Since the peptides selected by the protein can be expressed, they are useful for selecting and identifying peptides that specifically bind to a target molecule or cell. Screening using the phage display library is referred to as the phage display method, and has conventionally been a ligand that specifically binds to various cell surface receptors. It has been used to select and identify various antibodies.
  • the HA-binding peptide of the present invention is obtained by screening in vitro a peptide binding to hemagglutinin using the phage display method. Can be obtained. Specifically, it can be performed by the following method.
  • a known fuzzy library A random DNA display phage constructed so that a random DNA sequence can be inserted to express a peptide having a random amino acid sequence on the outer surface of the phage. This is reacted with hemagglutinin of infrenolenzvirus, which has been previously immobilized on a solid phase surface such as microplate, and a phage that specifically binds to the hemagglutinin is obtained. Collect (bioburning).
  • influenza innores hemagglutinin immobilized on the microplate is a conservative “receptor binding pocket” that binds at least to the host cell receptor. It is not particularly limited as long as it has the above-mentioned properties, and may be, for example, hemagglutinin or influenza virus, or may be obtained by extracting influenza virus with various organic solvents such as ether. It may be an Influenza virus extract or the like. Also, the type of influenza virus is not particularly limited, and other types such as A-type, B-type or C-type, or human-separation-type, pig-type, etc. may be used. It can be either a mammal-separable type or a bird-separable type. Preferably, it is a type A virus, or a human-isolated type of innole.
  • the tertiary structure of the hemagglutinin “receptor binding pocket” is related to the subtype of influenza virus. Since it is well preserved, the hemagglutinin of influenza immunoresin to be immobilized on the microplate does not matter what the subtype.
  • the H1 subtype and the H3 subtype which are subtypes of A type that have been preferably isolated from humans for about 10 years, can be exemplified.
  • Recovery of the phage that specifically binds to hemagglutinin can be achieved by using an HA receptor substance that has the ability to bind to hemagglutinin in competition with the receptor of the host cell, or to recover the host cell of hemagglutinin.
  • An HA inhibitor having the ability to inhibit binding to the receptor can be produced by acting on immobilized hemagglutinin. That is, the phage that specifically binds to hemagglutinin immobilized on microplates is subjected to a competitive reaction with the above-mentioned HA receptor substance or HA inhibitor. It desorbs and elutes and can be recovered.
  • the HA receptor substance is not particularly limited as long as it has an ability to specifically bind to hemagglutinin. To recover the phage specifically bound to the hemagglutinin receptor-binding pocket, it is necessary to specifically recover the hemagglutinin receptor-binding pocket as the HA receptor substance. It is preferable to use one having the ability to bind.
  • Such HA receptor substances are not limited, but may be gangs. Examples are Rioside GM3, a (2 ⁇ 6) GM3, and Carinole Lewis X.
  • the HA inhibitor is not particularly limited as long as it has an ability to inhibit the binding of hemagglutinin to a host cell receptor.
  • sialic acid derivatives 7-F- Neu5Ac2en, 2, and 7-Dideoxy-7-fluoro-2, 3-didehydrosialic acid, sialic acid dendrimers, sialic acid-containing polymers, and the like are examples of sialic acid derivatives 7-F- Neu5Ac2en, 2, and 7-Dideoxy-7-fluoro-2, 3-didehydrosialic acid, sialic acid dendrimers, sialic acid-containing polymers, and the like.
  • the phage thus obtained is infected with Escherichia coli, cultured in large amounts, separated and purified, and the peptide expression phage which binds specifically to hemagglutinin, preferably hemagglutinin To obtain a peptide expression phage that specifically binds to the receptor binding pocket of the protein.
  • the phage thus obtained is again subjected to the reaction with immobilized hemagglutinin to screen the phage that specifically binds to hemagglutinin of influenza immunores. Used for leaning, 0 ning (panning) operations.
  • a peptide which specifically binds to hemagglutinin preferably a receptor binding blur of hemagglutinin Phage that can express a peptide that specifically binds to a kit
  • DNA is extracted from the selected phage and its sequence is determined, whereby the phage in which the phage is expressed, that is, hemagglutinin of influenza is specific. It is possible to identify a peptide that binds to a protein (an HA-binding peptide), preferably a peptide that specifically binds to a hemagglutinin receptor-binding pocket.
  • the above DNA can be easily sequenced by a method known in the art, for example, the dideoxy method (Proc. Natl. Acad. Sci. USA., 74, 5463-5467 (1977)) or the like.
  • the method of maximal ginolenot [Method in Enzymology, 65, 499 (1980)] and the like can be mentioned.
  • Such a nucleotide sequence can be easily determined using a commercially available sequence kit or the like.
  • any known fuzzy library usually used in this method can be used as the fuzzy library.
  • random DNA is inserted into the coat protein pIII gene of the phage, and a random DNA is inserted into the phage outer surface.
  • a preferred example is a random peptide display phage (fibrous phage) constructed so as to express a peptide having an amino acid sequence consisting of five amino acids.
  • the affinity (binding) of the HA-binding peptide thus identified to hemagglutinin can be determined by the above-described method for selecting a phage capable of expressing the HA-binding peptide (Bani). ), The same procedure is performed using the identified HA binding peptide, which is the peptide to be measured, in place of the random peptide display phase. can do .
  • an immobilized influenza virus (hemagglutinin) is A / PR / 8/34, which is an A-type (HI subtype) infectious enzyme.
  • A-type infectious enzyme a virus that expresses the HA-binding peptide. The method for identifying the expression peptide is described in Example 1 below.
  • the peptide identified according to one embodiment of the present invention has any of the amino acid sequences shown in SEQ ID NOs: 1 to 6, and all of these peptides are influenzae Inores hemagglutinin, especially hemagglutinin receptor It is characterized by having connectivity to the binding pocket. These peptides can also be characterized in influenza viruses as having binding to hemagglutinin of type A virus or human virus. It can be. These peptides were selected with the hemagglutinin HI subtype as the target and had specific binding properties to this subtype. Characterized. Among them, peptides having the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NO: 5 are preferably exemplified as peptides specifically binding to the HI subtype.
  • the immobilized influenza enzyme includes A / PR / 8/34 (H1N1) and H3 subtypes, which are HI subtypes of type A.
  • a / Wuhan / 359/95 (H3N2) ether extract was used, and various HA receptor substances (Sialyl LewisX, a (2 ⁇ 6) GM3) were used as elution substances. Then, a method for selecting a phage that expresses a peptide that recognizes and binds to both of these hemagglutinins and a method for identifying the expressed peptide is described in Example 3 described later.
  • the peptide identified according to such an embodiment of the present invention has any of the amino acid sequences shown in SEQ ID NOs: 7 to 11. These HA-binding peptides are directed against both hemagglutinin subtypes, H1 and H3. It is characterized by having connectivity. The HI and H3 subtypes of hemagglutinin are known to differ in amino acid sequence by 75% from each other. It is considered that a site having high homology between the H1 subtype and the H3 subtype is recognized and binds to this portion.
  • the peptide shown in SEQ ID NO: 7 is eluted with two different eluting substances (Lewis X, a (2 ⁇ 6) GM 3). Therefore, the binding site to hemagglutinin is the same as that of Siryl Lewis X and ⁇ (2 ⁇ 6) GM3 to hemagglutinin. It is considered that they have the same binding mode.
  • the peptide of the present invention includes a peptide having any one of the amino acid sequences shown in SEQ ID NOS: 1 to 6, and any one of the amino acid sequences shown in SEQ ID NOs: 7 to 11
  • one or more amino acids in these amino acid sequences are modified by substitution, deletion or addition.
  • a peptide and a protein having a binding sequence to a hemagglutinin of influenza dinores, particularly a hemagglutinin of type I influenza divirus is particularly a hemagglutinin of type I influenza divirus.
  • the peptide or protein may be a hemagglutinin, particularly a hemagglutinin of an immunoresin enzyme as well as a peptide consisting of any of the amino acid sequences shown in SEQ ID NOs: 1 to 6.
  • a hemagglutinin particularly a hemagglutinin of an immunoresin enzyme as well as a peptide consisting of any of the amino acid sequences shown in SEQ ID NOs: 1 to 6.
  • Preferred features include specific binding to the H1 subtype of hemagglutinin.
  • the modified peptide or protein may be an influenza virus hemagglutinin as well as a peptide comprising any of the amino acid sequences shown in SEQ ID NOs: 7 to 11.
  • the H3 subtype and the H3 subtype are examples of the amino acid sequences shown in SEQ ID NOs: 7 to 11.
  • Such alteration (mutation) of the amino acid sequence is, for example, abrupt. Naturally, it can be caused by mutation or post-translational modification, but can also be done artificially.
  • the present invention encompasses all modified peptides having the above characteristics regardless of the cause and means of such modification • mutation.
  • the HA-binding peptide of the present invention can be produced by a general chemical synthesis method according to its amino acid sequence.
  • the method includes a general liquid phase method and a solid phase method for peptide synthesis.
  • such a peptide synthesis method is based on the amino acid sequence information provided by the present invention, in which each amino acid is successively linked one by one to extend the chain.
  • Fragment / condensation method in which a fragment consisting of several amino acids is pre-synthesized, and then each fragment is subjected to a coupling reaction. And the Seision Act.
  • the peptide of the present invention can be synthesized by any of these methods.
  • the condensation method adopted for the above-mentioned peptide synthesis can also follow various known methods. Specific examples thereof include azide method, mixed acid anhydride method, DCC method, active ester method, redox method, DPPA (diphenyl phosphoryl azide) method, DCC + additive (1- Doxybenzotriazole, N—hydroxysuccinamide, N—hydroxy-l 5—nonolebornene—2,3—dicarboximidide, etc.) Can be exemplified.
  • the solvent that can be used in each of these methods can also be appropriately selected from general solvents that are well known to be used in this type of peptide condensation reaction.
  • Examples include dimethylformamide (DMF), dimethylsulfoxide (DMS0), hexaphosphoroamide, dioxane, tetrahydrofuran (THF), ethyl acetate and the like. And a mixed solvent thereof.
  • the carboxyl group in the amino acid and the peptide which does not participate in the reaction is generally formed by esterification such as methyl ester, ethyl ester, and tertiary ester.
  • Esterification such as methyl ester, ethyl ester, and tertiary ester.
  • Lower alkylesters such as tert-butyl ester, for example, benzene norester, p-methoxybenzene norester, p—two-hole benzenenoresterol be able to .
  • an amino acid having a functional group in a side chain for example, a hydroxyl group of Tyr may be protected with an acetyl group, a benzyl group, a benzyloxycarbonyl group, a tertiary butyl group, and the like.
  • the guanidino group of Arg includes a nitro group, a tosyl group, a 2-methoxyethoxysulfoninole group, a methylene-12-sulfonyl group, a benzyloxycarbonyl group, and an isobornyloxycarbonyl group.
  • Adamantille It can be protected by a suitable protecting group such as a carbonyl group.
  • the deprotection reaction of these protecting groups in the amino acid and peptide having the above protecting group and the finally obtained peptide of the present invention can also be performed by a commonly used method, for example, a catalytic reduction method, It can be carried out according to a method using liquid ammonia triton, hydrogen fluoride, hydrogen bromide, hydrogen chloride, trifluoroacetic acid, acetic acid, formic acid, methansulphonic acid and the like.
  • HA-binding polypeptide of the present invention can be produced by a conventional method, for example, ion-exchange resin, partition chromatography, genochromatography. , Affinity chromatography, high-performance liquid chromatography (HPLC), countercurrent distribution method, and other methods commonly used in the field of peptide chemistry.
  • the purification can be performed.
  • the HA-binding peptide of the present invention can be chemically modified as appropriate.
  • the HA-binding peptide can be chemically modified by alkylation or lipidation (phospholipidation). It is intended to increase the cell affinity and tissue affinity of the peptide, or to enhance the pharmacological effect by extending the blood half-life.
  • Alkylation of HA-binding peptides is carried out according to standard methods. can do. For example, it can be easily carried out by an amide bond formation reaction between the fatty acid and the N-terminal amino group of the HA-binding peptide (performed in the same manner as in the peptide synthesis described above).
  • the fatty acid is not particularly limited to whether it is linear or branched, and whether it is saturated or unsaturated, and any fatty acid can be exemplified widely.
  • fatty acids present in the living body can be suitably used, and specifically, rauric acid, myristic acid, phenol, luminic acid, stearic acid, and arachiic acid.
  • Saturated fatty acids such as oleic acid; unsaturated fatty acids such as oleic acid, ellagic acid, linolenic acid, linolenic acid, and arachidonic acid; Degrees of fatty acids are exemplified.
  • Alkylation can also be obtained by an amide bond formation reaction between the alkylamine and the C-terminal carboxyl group of the HA-binding peptide (performed in the same manner as in the above peptide synthesis).
  • the alkyl include various alkylamines similar to the above fatty acids, and generally, a fatty chain (having about 12 to 20 carbon atoms) present in a living body is preferably employed. Can be done.
  • the lipidation of an HA-binding peptide can also be carried out according to a conventional method (New Current, 11 (3), 15-20 (2000); Biochemica et Biophysica Acta., 1128, 44-49 (1992); FEBS Lette rs, 413, 177-180 (1997); J. Biol. Chem., 257, 286-28. 8 (1982)).
  • a hydroxyl group at position 2 or a phosphate group at position 3 of various phospholipids to prepare a lipid-modified HA-binding peptide via an arbitrary spacer. I can do it.
  • Various condensation methods can be used for the reaction. If necessary, an amino acid sequence containing a cysteine of any length (usually several) is added to the N-terminal or C-terminal of the HA-binding peptide. Alternatively, a reactive SH group used for the condensation can be introduced.
  • phosphatidic acid phosphatidinorecoline (lecithin), phosphatidyl ethlyate, which are composed of the various fatty acids described above.
  • O Noreamine, phosphatidylglycerin, phosphatidinoleinositol, phosphatidylglycerol, etc. can be used favorably o
  • alkylated or lipidated HA-binding peptides (lipopeptides) of the present invention also act as lipid components in the preparation of ribosomes, and Is presented on a liposome, so that it is very suitably used for a liposome preparation described later.
  • the HA-binding peptide of the present invention has an amino acid sequence that specifically recognizes and binds to hemagglutinin of influenza virus involved in the first step of influenza infection. And in itself, in vi vo It can be used as a hemagglutinin-binding inhibitor as a substance capable of competitively preventing the binding of influenza virus produced through hemagglutinin to a host cell receptor. It can be.
  • the hemagglutinin-binding inhibitor should be used as a tool for elucidating infection with influenza virus caused by hemagglutinin, and various cell functions and life phenomena associated therewith.
  • influenza virus targeted by the present invention does not particularly limit the type or origin as described above, and may be A type, B type, C type or human isolated type, and pig type. ⁇ It can be any of the mammals such as horses or the birds. Preferably, it is type A influenza virus. It is also preferably human-isolated or human-infected peniles.
  • the HA-binding peptide of the present invention When used as an active ingredient of a prophylactic or therapeutic agent for influenza virus infection, the HA-binding peptide of the present invention (a modified or modified HA-binding peptide thereof). Is included. same as below. ) Is prepared as it is or as a pharmaceutical composition containing a pharmaceutically acceptable carrier and administered to a subject.
  • the pharmaceutically acceptable carrier used here can be appropriately selected from carriers commonly used in the art according to the form of the pharmaceutical composition to be prepared. It is done.
  • the pharmaceutical composition when the pharmaceutical composition is prepared in the form of an aqueous solution, purified water (sterile water) or a physiological buffer can be used as the carrier.
  • the carrier include injectable organic compounds such as glyconole, glycerone and olive oil. Esters can be used.
  • these compositions can contain stabilizers, excipients, and the like conventionally used in the field, particularly in the field of peptide preparations or protein preparations.
  • HA-binding peptide of the present invention can be prepared as a liposome preparation.
  • the liposome preparation contains the HA-binding peptide of the present invention in a liposome containing acidic phospholipid as a membrane component or a neutral phospholipid and an acidic phospholipid as membrane components.
  • acidic phospholipids as membrane constituents are defined in a narrower sense than ordinary acidic phospholipids, and more specifically, dilauro-inolesphospha.
  • DLPG dimyristoinolephos phosphatidinodinoreguricellol
  • DPPG dipalmitoinolephosfatidium dinoreguricellol
  • DSPG distearo Inolephos phosphatidyl glycerose mouth
  • D0PG egg yolk phosphatidyl jelly glycerol
  • yolk PG Natural or synthetic phosphatidylglycerols (PG), such as hydrogenated egg yolk phosphatidylglycerol, and dilauroinolephosphatidylinylinosi Tall (DLPI); Jimly Listil Host Girino's Site (DMPI), Gino's.
  • Nore-mito-no-re-fos-ji-no-re-no-no-re DPPI
  • DPI Distearo-ino-re-hos-pho-ji-ji-i-no-no-no-re-no-to
  • DOPI soybean phosphatidylinositol
  • SA soybean phosphatidylinositol
  • hydrogenated soybean phosphatidylinositol etc. Class (PI).
  • the neutral phospholipids include soybean phosphatid zircoline, egg yolk phosphatid zirconine, and hydrogenated soybean phosphatid.
  • Jilcorin hydrogenated egg yolk phosphatidylcholine, jimiristoinolefosfatinidolinecolin (DMPC), gino.
  • DMPC jimiristoinolefosfatinidolinecolin
  • DPPC Luminous phosphatidolincoline
  • DLPC Girauro innoferous fountaincorrin
  • DPPC Distearoin fountainincoline
  • DSPC Myrist Innoreno.
  • PC Nore-mi-to-no-re-fosin-no-re-korin
  • PMPC Palmito-il-ste-re-i-no-re-hos-fa-i-no-re-ko-rin
  • PC Natural or synthetic phosphatidylcholines
  • DOPC chizinorecolin
  • soybean phosphatidyl olenoethanol egg yolk phospha Titanium ethanol
  • hydrogenated soybean phosphatidylethanolamine hydrogenated egg yolk phosphatidylethanolamine
  • DMPE Jimiristoinolamine Achi-zinoleta Nonoreamine
  • DPPE Noremi to Norephos Fatigue Noreta Noreamine
  • DLPE Girauloi Norefos Fatigue Ginoreorenoreoremin
  • DSPE Distearoinorefos Chidylethanolamine
  • MPPE Innolephos phagetinolenoethanolamine
  • PSPE thidinolethanoreamine
  • DOPE dioleoinolephosphatidylethanolamine
  • the liposome membrane is formed according to a conventional method using the acidic phospholipid alone as a component or using the neutral phospholipid in combination with the acidic phospholipid.
  • the combined ratio of acidic phospholipids is about 0.1 to 100 mol%, preferably about 1 to 90 mol%, more preferably, in the ribosome membrane component.
  • cholesterol By adding cholesterol, the fluidity of phospholipids can be adjusted to make liposome preparation easier.
  • the cholesterol is usually isotonic to the phospholipid, and is preferably added and blended in an amount of 0.5 to 1 equivalent.
  • the combination ratio of the active ingredient and the acidic phospholipid in the liposome dispersion is about 0.5 to 100 equivalents, preferably about 1 to about 100 equivalents of the acidic phospholipid to the active ingredient. It is preferably about 60 equivalents, more preferably about 1.5 to 20 equivalents.
  • the ratio of the HA-binding peptide of the present invention contained in ribosome is from several mol% to several tens mol%, preferably about 5 to 10 mol%, of the total lipid. It can be, but usually can be as high as 5 mol%.
  • Various known methods can be used for producing a liposome using the HA-binding peptide of the present invention as a drug, and the lipopeptide of the present invention is a lipopeptide of the present invention.
  • the desired liposome can also be obtained by using it as a lipid component in the method.
  • a multilayer liposome is prepared as follows. First, lipids are dissolved in an organic solvent (such as black-mouthed form, ether, etc.), put into a round bottom flask, and the organic solvent is removed under a stream of nitrogen or under reduced pressure. A lipid film is formed on the bottom. In this case, the organic solvent can be completely removed by leaving the mixture in a desiccator under reduced pressure. Next, a drug solution is added to the lipid thin film to hydrate the lipid, whereby an emulsion-like liposome suspension is obtained.
  • organic solvent such as black-mouthed form, ether, etc.
  • ribosomes having a small particle size can be prepared by the french press method (FEBS lett. 99, 210-214, 1979). Also, the freeze-drying method (Chem. Pharm. Bull. 32, 2442-2445, 1984) and the freeze-thaw method (Chem. Pharm. Bull. 3 ⁇ , 2916 -2923, 1985) can also be used.
  • the ribosome prepared in this manner is subjected to a dialysis method (J. Pharm. Sci. 71 »806-812, 1982) or a filtration method using a polycarbonate membrane (Biochim. Biophys. Acta. 557, 9-23, 1979; Biochim. Biophys. Acta 601, 559-571, 1980) can make the particle size constant. Also prepared To remove drugs not retained in the ribosome from the ribosome solution, dialysis, gel filtration, and centrifugation can be used. Som. "Chemistry of lipids" [edited by the Biochemical Society of Japan, Biochemistry Experiment Course 3], Tokyo Kagaku Dojin, 197 4). Furthermore, it is also possible to concentrate ribosome using a dialysis membrane.
  • the ribosome dispersion prepared in this manner contains preservatives, isotonic agents, buffers, stabilizers, and solubilizers as additives necessary for formulation design.
  • Various known substances such as an absorption promoter and the like can be appropriately compounded, and if necessary, can be diluted with a liquid containing these additives or water.
  • Specific examples of the above-mentioned additives include benzoconiconium chloride, benzenetonium chloride, black hexidine, parabens (methylparaben, ethylparaben, etc.), and preservatives such as methylparaben and methylparaben.
  • Preservatives that are effective against fungi and bacteria such as merosal are used as tonicity agents: D-mannitol, D-sonolebitol, D-xylitol, and glycerol.
  • polyhydric alcohols such as glucose, maltose, maltose, sucrose, propylene glycol and electrolytes such as sodium chloride, as stabilizers. Examples include tocopherolone, butylhydroxyanisone, butylhydroxytoluene, ethylenediaminetetraacetate (EDTA), and cysteine.
  • the liposome comprising the HA-binding peptide of the present invention can further contain another drug such as an antiviral agent inside the liposome. It can be.
  • ribosome preparations are specifically performed, for example, in Long Circulating Liposomes: Old drugs, New the rapeutics., MC oodle, G. Storm, Eds: Springer-Ver lag Berlin (1998)) Prepared according to the method described in the literature of Liposomal applications to cancer therapy, Y. Namba, N. Oku, J. Bioact. Compat. Polymers, 8, 158-177 (1993). can do. Further, specific examples of the ribosome preparation according to the present invention are shown in, for example, Example 9 below.
  • the amount of the HA-binding peptide in the pharmaceutical composition of the present invention containing the above liposome preparation is not particularly limited and may be appropriately selected in a wide range. It is good to be about 0.02 to 02 (w / v%), preferably about 0.001 to 0.1 (w / V%).
  • influenza virus hemagglutinin binding inhibitor and the pharmaceutical composition of the present invention comprise a HA-binding peptide as an active ingredient and a pharmaceutically acceptable carrier. Influenza virus Is administered to pre-infected subjects.
  • the administration method of the above-mentioned inhibitor and the pharmaceutical composition is not particularly limited, and is appropriately determined depending on various preparation forms, age and sex of the patient, other conditions, severity of the disease, and the like.
  • parenteral administration forms such as injections, infusions, nasal drops, and inhalants can be suitably mentioned, and are particularly necessary when prepared as injections or infusions.
  • it may be administered intravenously after being mixed with normal replacement fluid such as glucose amino acid, or intramuscularly, intradermally, subcutaneously or intraperitoneally.
  • the daily dose of the inhibitor of the present invention or the pharmaceutical composition of the present invention varies depending on the condition, weight, age, sex, etc. of the subject. Although it cannot be determined unconditionally, it can usually be selected from the range of about 0.001 to 100 mg per adult day in terms of the amount of HA-binding peptide.
  • the formulation can be administered not only once a day but also several times.
  • the phage display library includes NNK (N is any one of adenine (A), cytosine (C), guanine (G), and thymine (T). Represents a nucleobase, and K represents guanine (G) or thymine (T).)
  • NNK any one of adenine (A), cytosine (C), guanine (G), and thymine (T).
  • K represents guanine (G) or thymine (T).
  • a fibrous phage into which DNA containing a sequence obtained by repeating 15 times is genetically engineered.
  • DNA encoding a peptide consisting of a random amino acid sequence of 15 residues is inserted into the N-terminal portion of the outer protein pIII gene. It is constructed so that a peptide having a random amino acid sequence of 15 residues on the outer surface of the phage can be expressed.
  • Innore Enzyme Inores Hemagglutinin biono. In order to use it as a ning target, it was immobilized as follows.
  • H1N1 As the hemagglutinin (HA) to be immobilized, A / PR / 8/34 (H1N1), which is the H1 subtype of type A (hereinafter, simply referred to as HI or H1N1) ), And ether extraction of A / Wuhan / 359 / 95CH3N2, which is the H3 subtype of Form A (hereinafter also simply referred to as H3 or H3N2). The product was used.
  • EDC l-ethyl-3- (3-dimethylaminopropyl) carbo diimide
  • N-hydroxysuccinimide was added to each well of a 96-well carboplate (SUMIL0N).
  • EDC l-ethyl-3- (3-dimethylaminopropyl) carbo diimide
  • N-hydroxysuccinimide was added to activate carboxyl groups bound to the plate.
  • the wells of the plate were washed six times with 50m MTBS buffer (pH 7.6), and the H1N1 solution (70 1 / ml) or the H3N2 solution (70; il / ml) was used. ) was added in ⁇ .
  • the plate was washed six times with a 50 mM MTBS buffer (pH 7.6), and an aqueous solution of ImM ethanolamine was added at 100 // 1. After leaving for 10 minutes, wash again with 50m MTBS buffer (pH 7.6) 6 times, and inflate the plate The HA was immobilized (see Fig. 1).
  • the HA (H1N1) immobilized plate prepared in Reference Example 2 was used as the HA immobilized plate, and the phage display library solution prepared in Reference Example 1 (6.2x l0 1 D TU, the TBS buffer) 100 ⁇ 1 i emissions di E click and Bok and left at room temperature for 4 hours. After that, washing was performed 5 times with 200 1 elution buffer (50 mM Tris-HCl, 150 mM NaCl) while well pipetting to remove unbound non-specific phage. .
  • the sialic acid derivative 7-F- Neu5Ac2en is an HA inhibitor having an ability to inhibit the binding of sialic acid-containing sugar chains to hemagglutinin, particularly HIN1, and ganglioside.
  • GM3 is a specific HA receptor substance with specific binding to hemagglutinin receptor-binding pocket
  • the present inventors have to'll Tsu and has been confirmed (T. Saito, et al., Chem. Lett., 145 (1999)) 0 Because of this, play that was bound to off ⁇ over di
  • an HA inhibitor or an HA receptor substance to the wells as described above, it specifically binds to the hemagglutinin receptor binding pocket of influenza virus. Can be eluted.
  • the HA-binding phage was eluted, and the solution containing the phage was recovered.
  • TC NZY medium containing 0.2 / ml tetracycline (manufactured by Sigma) (hereinafter referred to as TC), which was previously kept at 37 ° C.
  • the infection solution was added and the cells were cultured with shaking at 37 ° C for 40 minutes.
  • a stock solution of TC (20 mg / ml) (201) was caloried (final concentration: 20 zg / ml), and cultured at 37 ° C for 1 hour with shaking.
  • the resulting culture was centrifuged at 3, OOOrpm for 10 minutes to remove E. coli.
  • the supernatant was centrifuged again at 12, OOOrpm for 10 minutes to further remove E. coli.
  • 3 ml (0.15 v / v) of a PEG / NaCl solution was added, and the mixture was gently stirred 100 times, and then allowed to stand at 4 ° C for 4 hours or more. 12.
  • HA H1N1
  • 1001 injects of the amplified phage display library solution were allowed to stand at room temperature for 4 hours. After that, wash well 10 times with 200 1 elution buffer (50m Tris-HC1-150mM NaCl) while removing the unbound nonspecific phage. did. Next, add 100 ⁇ l of 10 mM sialic acid derivative 7-F- Neu5Ac2en solution or 10 mM MGM 3 solution to each well, and leave at room temperature for 1 hour to identify specific binding pockets for influenza HA. Tied together The phage was eluted and the solution was recovered.
  • 1 elution buffer 50m Tris-HC1-150mM NaCl
  • Washing was performed 10 times with (50 mM Tris-HC1, 300 raM NaCl) while puncturing well to remove unbound non-specific phage.
  • the specifically bound phage were eluted and the solution was recovered.
  • HA (H1N1) -immobilized plate 1001 of the amplified phage display library solution was injected, and left at room temperature for 1 hour. After that, washing was performed 10 times using 200 1 elution buffer (50 mM Tris-HCK 300 mM NaCl) while puncturing well to remove unbound non-specific phage. . Next, 100 1 of a 10 M sialic acid derivative 7-F_Neu5Ac2en solution or GM3 solution is added to each well and left at room temperature for 30 minutes to bind weakly to the influenza HA binding pocket. Eluted phage.
  • Table 1 shows the results (recovery rate of phage) obtained by the above-mentioned bunning operation (first to seventh rounds) for each type of the eluting substance (7-F- Neu5Ac 2en, GM3). And 2.
  • Elution material Sialic acid derivative 7-F-Neu5Ac2en
  • the first and fourth rounds of panning did not show a high increase in the recovery rate due to the stricter bunning conditions for each cycle. No, under the same conditions. From the 4th to the 6th repetition of ning, the number of phages increased. As a result, it was confirmed that a phage expressing a peptide that specifically binds to influenza virus hemagglutinin (H1N1) was recovered.
  • H1N1 hemagglutinin
  • the amino acid sequence of the expressed peptide was determined using the phage obtained by the sixth bunning operation. Specifically, a phage that binds to immobilized hemagglutinin H1N1 and is eluted with 7-F- Neu5Ac2en (hereinafter referred to as H1 / 7 phage: 19 clones) Phage that binds to the immobilized hemagglutinin H1N1 and is eluted with ganglioside GM3 (hereinafter referred to as H1Z3 phage: 20 clones). For each type of phage, the amino acid sequence of the expressed peptide was determined by sequencing.
  • the colonies on the plate obtained in the titer measurement after the sixth burn were picked randomly at 50 colonies each and re-inoculated to a new NZY plate.
  • the cells were cultured overnight at 37 ° C, and stored at 4 ° C as a master plate.
  • the colonies of the master plate were each suspended in a 50 ml centrifugal tube containing 20 ml of NZ.Y medium (containing 20 g / ml TC), and cultured at 37 ° C with shaking at 200 rpm. After centrifugation at 3,000 rpm for 10 minutes, the supernatant was transferred to an Oak Ridge centrifuge tube, and centrifuged at 12, OOO rpm for 10 minutes to eliminate E. coli.
  • Extraction of DNA from the phage clone obtained above was performed by adding 1.5 ml of Eq tube to TBS 1001 and TE-saturated phenol with respect to phage clone 100 1.
  • One hundred (200 Nl) of Nippon Gene was added, and the mixture was vigorously stirred for 10 minutes, followed by centrifugation at 15,000 rpm for 10 minutes.
  • 200 l of TE-saturated phenol and 200 l of clofenol-honolem were added to 200/1 of the supernatant (aqueous phase), and the mixture was stirred vigorously for 10 minutes as described above. Centrifuged at Orpm for 10 minutes.
  • the supernatant (aqueous phase) 150 1 ⁇ ⁇ 250 ⁇ 1, 3 ⁇ sodium acetate 401, 20 mg / ml Glycogen (Behringer 'Minnodium Co., Ltd.) 1 1 and 1 ml of ethanol were added, and the mixture was left to stand at ⁇ 20 ° C. for 1 hour in a 1.5 ml Eq tube, followed by centrifugation at 15, OOO rpm for 10 minutes.
  • the supernatant was removed, 1 ml of 80% ethanol (-20 ° C) was slowly added, and the mixture was centrifuged at 15, OOO rpm for 10 minutes to remove residual salts.
  • the water in the tube was evaporated, and the precipitated DNA was dissolved in 101 sterilized distilled water and stored at 4 ° C.
  • the individual phage DNA thus obtained was used for peptide sequencing.
  • the sequence of the peptide encoded by the phage DNA was determined by the dideoxy method (Proc. Natl. Acad. Sci., USA., 74, 5463-5467 (1977)). The measurement was performed using a THERMO sequence kit (Amersham Life Sciene, Code; US79765, Lot No .: 201503) from Sham in accordance with the instruction manual for the instrument. The DNA extension reaction was carried out for 30 cycles at 96 ° C, 30 seconds, 45 ° C, 15 seconds, 60 ° C, and 4 minutes as one cycle, and DNA sequencing was performed by ABI. This was performed using a DNA sequencer (ABI PRISMTM377).
  • hemagglutinin receptivity was determined from the clones of the two types of phage (H1 / 7 phage and H1Z3 phage).
  • the amino acid sequence of the peptide that binds to the body-binding pocket is shown in Table 3 as a single letter c
  • Each amino acid sequence described in the following table is shown in the following sequence listing as SEQ ID NO: 1 (No. 1 and 5), 2 (No. 2), 3 (No. 3), 4
  • HA-binding peptide binds to influenza hemagglutinin
  • Example 2 The phage obtained in Example 1 was cloned, and the obtained expression peptides were evaluated using the binding property to hemagglutinin ELISA.
  • H1N1 hemagglutinin
  • TBS fetal bovine serum
  • BSA Lubumine Bovine, Fatty Acid Free: manufactured by Sigma
  • the solution of the phage amplified here H1Z7 phage: glow No. 1 to 4, H1 / 3 phage: clone No. 5 to 7 ) was added and left at room temperature for 1 hour.
  • TBST TBS / 5% Tween20
  • HI phage (HI7 phage and H1 / 3 phage) burned using hemagglutinin (H1N1) as a target, against hemagglutinin H1 Fig. 2 shows the results of examining the binding properties.
  • H1-1 the clone No. 1 of the H1Z7 phage
  • H1Z3 phage Clone No. 6 of the image indicated by 8 in FIG. 2, hereinafter referred to as “ ⁇ 1-2”
  • ⁇ 1-2 the H1Z3 phage Clone No. 6 of the image
  • Example 1 two types of influenza hemagglutinin HI (H1N1, A / PR / 8/34) and H3 (H3N2, A / Wuhan / 359/95) were targeted.
  • the biopanning was performed as a unit. Specifically, the H1 immobilized plate and the H3 immobilized plate prepared according to Reference Example 2 were used as the HA immobilized plate, and HA was used as the elution material.
  • Bioleaning was performed in the same manner as in Example 1 using the receptor substances sialyl LewisX and ⁇ (2 ⁇ 6) GM3, and a phage expressing a ⁇ -binding peptide was obtained.
  • Table 4 shows the results of sequencing the amino acid sequences of the expression peptides of the clones of representative phages obtained by such bioburning selection. .
  • the clone “ ⁇ — 2” was recognized in one of the 10 clones selected in the “ ⁇ 3 ⁇ X” bunning system.
  • Clone “C-1” is one of the nine clones selected in the banning system “ ⁇ 1 ZG ⁇ ” and one selected in the banning system “H3ZGM”. Recognized in 1 of 0 clones.
  • Clone “C — 2” is selected from 1 out of 9 clones selected for the bunning system “H1 / GM” and “H3 / X” for the bunning system. 4 out of 10 clones It was immediately recognized.
  • clone "A-1" was selected from the evening get and all the bunning systems with different eluting materials. Since the clone expressing the peptide having the same sequence was obtained by the bunching using different eluting substances, the expression peptide of the clone "A-1" was obtained. Is the same binding site as the binding site for hemagglutinin (site in which NeuAc is involved) possessed by the HA receptor substances sialyl LewisX and ⁇ (2 ⁇ 6) GM3. It is thought that it is an peptide that has it and has the same binding mode as these receptor substances.
  • the expression peptides of the clones “B-1” and “B-2” have GRxP (X means V or P) as a common motif.
  • the expression peptides of clones “C—1” and “C-12” are common motifs of IAFSX yA (x is S or R, and y is L or A). ).
  • Example 4 HA-binding peptide binding to influenza hemagglutinin
  • Example 2 The phage clones “H1-1”, “H1-2”, “A-1”, and “B-1” obtained in Example 1 and Example 3 were obtained. "B-2”, “C-1” and “C-2” were evaluated for binding to hemagglutinin (H1, H3) using ELISA according to Example 2.
  • hemagglutinin H1 H1N1
  • H3N2 H3N2
  • WGA wheat germ agglutinin
  • Hemagglutinin H1 and H3 are known to differ by 75% in the amino acid sequence. From this, the expression peptides of the clones “A-1”, “B-1”, “B-2”, “C-1” and “C-12” are hemagglutinin. Recognition of a highly homologous site between H1 and H3 It is thought to specifically bind to.
  • Example 5 Binding property of HA-binding peptide to anti-GM3 antibody
  • the binding to anti-GM3 antibody was evaluated using ELISA according to Example 4.
  • an anti-GM3 antibody (M2590, Biotest Laboratories, Japan) was immobilized on a 96-well carboplate (SUMIL0N), and each of these solutions was added to the solution. This was done by adding 5 ⁇ 10 virions / ml.
  • FIGS. 4 (a) and (b) show the results.
  • the clones “H1-1” and “H1-2” obtained in Example 1 hardly bind to the anti-GM3 antibody.
  • the clones “A—1”, “B—1”, “B—2”, “C—1” and “C-12” obtained in Example 3 were all anti-GM3. Specific binding to the antibody was observed 7
  • a 10; 1 GM3 solution (8.5 g / ml methanol solution) was added to a 96-well microtiter plate, and then a 50% 0.08% polyisolyte was added.
  • the ptinoremethacrylate solution was added.
  • the solvent was evaporated with a drier, 501 of 1% BSAZTBS was added, and the mixture was allowed to stand at 4 ° C for ⁇ .
  • Example 7 Inhibition of Phage Binding to Hemagglutinin by Lipids
  • the phage clones obtained in Example 3 (“A—1”, “B—1”, “B—2”, “C—1”, and “C-2”) were In order to confirm that phageclone actually recognizes the hemagglutinin (HA) host receptor recognition site, ELISA was performed according to Example 6 using ELISA.
  • results of the inhibition experiment with GM3 are shown in FIG. 5, and the results of the inhibition experiment with GM1 are shown in FIG.
  • a) shows the results using H1N1 as hemagglutinin
  • b) shows the results using H3N2.
  • the peptides expressed on the phageclones obtained in Examples 1 and 3 were synthesized as follows.
  • the peptide was synthesized using a fully-automated peptide synthesizer (ACT357, manufactured by Advanced Chemtech) and following the Fmoc / NMP, HOBt method [Fmoc: 9-Fnole] according to the company's program. Oleenylmethoxycanoleponyl, NMP: N-methynolepyrrolidone, HOBt: 1-hydroxyl benzotriazolone].
  • Fmoc-amino acid-Alko resin corresponding to the C-terminal amino acid and the second from the C-terminal
  • the Fmoc-amino acids corresponding to the respective amino acids from the eyes onward were subjected to an extension reaction sequentially according to the synthesis program.
  • the peptide of the C-terminal amide was subjected to a condensation reaction of Fmoc-NH-FAI with 0.25 mmol of Fmoc-NH-FAI sealing oil and an Fmoc-amino acid corresponding to the C-terminal amino acid according to the composition program.
  • each resin rie di We down preparative K (Reagent K, 82.5% TFA , 5% off error Roh Lumpur, 5% H 2 0, 5 % Chioaniso one Honoré (Thioanisole), 2.5% eth down Jichionore) 2 ml was added and reacted in a mini column for 60 minutes.
  • the reaction solution was dropped into 8 ml of cold getyl ether to stop the reaction, and at the same time, the peptide was precipitated.
  • the methanol was washed with 2 ml of TFA, added with 5 ml of cold getyl ether, centrifuged, and the precipitate was washed four times with 10 ml of getyl ether.
  • the peptide was solubilized with cetonitrile and lyophilized. Further, the solubilization and freeze-drying operations were repeated twice to obtain a desired crude freeze-dried product.
  • a synthetic peptide having a cysteine residue can be cyclized as desired. Specifically, taking the expression peptide of clone "H1-1" as an example, the peptide was cyclized as follows.
  • Example 9 Lipoveptide and peptide-modified liposome using the same By binding stearic acid to the N-terminus of the peptide, the HA-binding peptide of the present invention can be introduced onto ribosomes. As an example, the expression peptide of clone "A-1" obtained in Example 3 will be described.
  • Example 8 the expression peptide sequence of clone "A-1" (SEQ ID NO: 7) was sequentially extended. Next, stearic acid was extended to the N-terminus of this peptide according to the same synthesis program, then cut out from the resin, and deprotected.
  • Example 8 to give the desired scan tare re phosphorylated peptide ( "C i 8 A- 1 Li Popepuchi de”) o
  • the lipopeptide (Mw: 1840.73), egg yolk lecithin (Mw: 773, Nippon Oil & Fat NC-10S) and cholesterol (Mw: 386.66, Nakarai Chemicals, lot M8A9926) were added to 0.75: 2. : 1 (20% lipopeptide), 0.3: 2: 1 (10% lipopeptide) or 0.16: 2: 1 (5% lipopeptide), 30ml in eggplant type flask Then, the solution was dissolved in 2 ml of a chloroform solution of chloroform / methanol (3Z1). The solvent was removed under reduced pressure using a rotary evaporator, and the product was vacuum dried.
  • the liposome thus obtained was assayed for the content of the peptide present therein using a commercial kit (Bio-Rad Protein Assay Kit), and the lipopeptide prepared above was analyzed. It was confirmed that it was incorporated into the liposome.
  • a commercial kit Bio-Rad Protein Assay Kit
  • DDPE dipalmi toy 1 L-a-phosphatidylethanol a mine: Sigma
  • NHS PEG — Mai
  • poly ethylene glycol-a-N- ⁇ -maleimide hydroxysuccinim idyl propionate: oil ribosome
  • a 1N NaOH aqueous solution is added to this ribosome solution to adjust the pH to about 8, and the present invention is obtained by adding H-Gly-Cys-0H to the C-terminal of the "A-1" peptide.
  • the light peptide was mixed to a predetermined concentration, gently stirred at room temperature for 6 hours, and subjected to ultracentrifugal filtration as in Example 9 to obtain a ribosome solution.
  • the content of the peptide introduced onto the obtained ribosome was measured in the same manner as in Example 9.
  • ganglioside GM3 to immobilized HA (H1N1, H3N2) was tested using ELISA to determine whether the above-mentioned synthetic peptide inhibited the binding.
  • a coat coat of phage, an N-terminal 15-residue peptide of the protein p111, and a sialyl lactide were used. The same experiment was performed using a source.
  • influenza virus was measured as follows.
  • a) indicates inhibition of infection with A-type influenza virus HI (A / PR / 8/34 (H1N1)), and b) indicates inhibition of H3 (A / Victoria / 359 (H3N2)). This is the result of inhibition of infection.
  • Figures 8 and 9 force, feeling of the jar by Rawakaru, "CL 8 A- 1 Li Po peptidase do" is to effectively Lee down trembling Nzaui Luz cell Inhibition of staining, and this effect was enhanced by converting the peptide to a peptide-modified liposome.
  • the HA-binding peptide of the present invention is useful as a prophylactic or therapeutic agent for influenza infection.
  • INDUSTRIAL APPLICABILITY According to the present invention, there is provided an peptide having specific binding properties to hemagglutinin of Innole enzyme enzyme.
  • the peptides of the present invention prevent virus binding to host receptors by specifically binding to hemagglutinin, which is involved in the first step of influenza virus infection. Therefore, it can be applied as a prophylactic agent for influenza virus infection and as a therapeutic agent for influenza.
  • preferred peptides of the invention have the property of binding specifically to hemagglutinin receptor binding pockets, whose tertiary structure is well conserved between subtypes, and are relatively
  • the peptides of the present invention are stable irrespective of the subtype, regardless of the subtype, because they are stable because of their short peptides and, because of their side chain diversity, interact with the binding site of hemagglutinin.
  • a broad-spectrum prophylactic and / or therapeutic agent effective for all influenza viruses, especially for type A, across subtypes of It is expected to be applied as such.
  • the present invention is a peptide, but it is easy to mass-produce and modify. It is also useful in drug production and drug development

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Description

明 細 書
ィ ンフルェ ンザウ イ ノレス · へマグルチニ ン 結合性ペプチ ド
技術分野
本発明は、 ィ ン フルェ ンザウィ ルスに特異的結合性を 有するペプチ ドに関する 。 よ り 詳細には、 本発明はイ ン フルェ ンザゥイ ノレス膜に存在するへマ グルチニ ンに特異 的に結合する べプチ ドに関する。
イ ンフルエ ンザゥ イ ノレスの宿主への感染は、 ウイ ノレス がその表面膜に埋め込ま れたへマ グルチニ ンを介 して宿 主受容体に結合する こ と によ っ て成立する 。 本発明のぺ プチ ドは、 へマグルチニ ン と結合する こ と に よ り 、 イ ン フルェ ンザウ ィ ルスの宿主受容体への結合を妨げる こ と によ っ て、 イ ン フノレェ ンザウィルス感染の防止に有意に 寄与する ものであ る 。
ゆえに、 本発明は、 上記ペプチ ドについて、 イ ン フル ェ ンザウィ ルスのへマグルチニ ンを介 した宿主受容体へ の結合の阻害剤 と しての用途、 並びに抗イ ン フルエ ンザ 剤と しての用途に関する も のでも あ る 。
背景技術 イ ンフルエ ンザウ イ ノレス膜にはへマ グルチニ ン ( H A ) 及びノ ィ ラ ミ ニダ一ゼ ( N A、 シァ リ ダーゼ) とい つ た 2 種類のスパイ ク 糖蛋白質が存在 し、 それぞれウイ ルスの感染成立及びウ ィ ルスの宿主細胞か らの出芽に重 要な役割を果た している。 前者のへマ グルチニンは、 ヒ トやその他の動物 (ほ乳類、 鳥類、 は虫類、 魚類、 両生 類等) とい っ た宿主の細胞膜上に普遍的に存在する シァ ル酸含有糖鎖を受容体と して認識 してそれに特異的に結 合 し、 イ ン フ ルエ ンザウ イ ルスの細胞内へのエ ン ドサイ ト ー シスを導 く 。 一方、 後者のノ ィ ラ ミ ニダーゼは、 受 容体破壊酵素であ り 、 宿主細胞か ら ウ ィルス粒子が出芽 ま たは遊離する際に、 自 らのま たは宿主細胞膜上の シァ ル酸残基を切断する役割を担っ ている 。
イ ン フルエ ンザウ イ ノレス は、 ウ イ ノレス核蛋白質や ウ イ ルス膜の内側に存在する マ ト リ ッ ク ス蛋白質な どの抗原 性によ り 、 A型、 B型及び C型に分類される。 特に A型 イ ン フルエ ンザウ イ ルスは、 遺伝子交雑や点変異等によ る抗原性の変化に伴う 亜型間の変化によ り 、 世界的規模 での流行を繰 り 返 している 。
前述する よ う にイ ンフルエンザウ イ ルス感染の第 1 ス テ ツ プに関与するへマグルチニ ン には、 極めて変異 しや すい抗原決定領域 ( A 〜 E ) のア ミ ノ 酸配列の多様性に 基づいて、 種々 の亜型が存在する。 へマグルチニ ンの亜 型間のア ミ ノ 酸配列の相違は 2 5 〜 7 5 %にわたるが、 宿主細胞の受容体と結合する いわゆ る受容体結合ポケ ッ ト領域は、 比較的変異がな く 、 その三次元構造はよ く 保 存さ れている ( Y. Suzuki, Prog. Lipid. Res. , 33, 429 (1994))
従来か ら、 イ ン フルエ ンザウ イ ルスの感染を防止する ために、 感染成立に寄与する へマグルチニ ンに特異的に 結合する こ とによ つ てその働きを阻害する作用を有する ワ ク チ ンの開発が検討されている。
その一例と して、 へマグルチニ ンが宿主受容体の シァ ル酸含有糖鎖を認識 して結合する こ と に基づいて、 種々 の糖アナ口 グを用いてへマグノレチニ ンのその結合部位に 特異的に結合する糖をス ク リ ーニ ングする という 手法に よ り 、 現在ま でに種々 のへマグルチニ ン結合性糖アナ口 グカ 取得されている (R. Roy, et al. , J. Chem. Soc. , Ch era. Coramun. , 1869 ( 1993 ) ; M. ammeii, et al. , J . Med. Chem. , 38, 4179 (1995) ; T. Sato, et al. , Chem. Let t. , 145 ( 1999 ) ; M. ltzstein, et al. , Nature, 3jB3, 418 (1993)) 。
そのほか、 へマグルチニ ンの受容体糖鎖に対する モノ ク ローナル抗体の抗原結合部位の もつ抗原性 (イ ディ ォ タ イ プ) に対する抗体 (抗イ ディ ォタ イ プ抗体) を作成 する手法も あ る。 すなわち、 これはへマグルチニ ンの受 容体とな る シアル酸およびシァ ロ糖鎖の三次元構造に'代 えて、 それと立体構造が類似する抗イ ディ ォタイ プ抗体 の超可変部のア ミ ノ 酸配列を作成 し、 宿主細胞のへマグ ルチニン受容体に模擬させる とい う も のであ る (鈴木康 夫 「ウ ィ ルス感染と糖鎖」 、 別冊 日 経サイ エ ンス 「糖鎖 と細胞」 , 8 9 - 1 0 1頁, 1 9 9 4年 1 0月 ) 。
しか し、 これ らのいずれ もへマグノレチニ ンの種々 の亜 型に特異的であ り 、 ま た結合定数も高 く ない。
こ のため、 亜型の別に関わ らずィ ン フノレェ ンザウイ ノレ ス全般に働 く 広域ワ ク チ ンの開発が待たれているのが現 状でめ る。
イ ン フ ルエ ンザウ イ ルスのへマ グルチニ ンを特異的に 認識 し結合する物質、 すなわち宿主細胞の受容体に代え てへマグルチニ ンの受容体とな り 得る物質が提供できれ ば、 イ ン フ ルエ ンザがへマグルチニ ンを介 して宿主受容 体に結合する こ とを競合的に抑制ない し阻害する こ とが でき、 イ ン フ ルエ ンザウ イ ルス の感染を予防する こ とが 可能にな る もの と期待さ れる 。 ま た上記物質が、 イ ン フ ルェ ンザウィ ルスの亜型間でよ く 保存されたへマグルチ ニ ンの 「受容体結合ポケ ッ ト 」 を特異的に認識 してそれ と結合する も のであれば、 亜型の別な く イ ン フルエ ンザ ウィ ルス全般にわた っ てその感染を予防でき る もの と期 待される
本発明は、 かかる効果を奏 し得る、 イ ン フルエ ンザゥ ィ ルス · へマグルチニ ン結合性べプチ ドを提供する こ と を 目 的とする ものであ る 。 図面の簡単な説明
図 1 は、 マイ ク ロ プ レー ト へのイ ン フルエ ンザウ イ ノレ ス · へマグルチニ ンの固定化工程を示す概略図であ る。
図 2 は、 へマグルチニ ン H 1 をタ ーゲ ッ ト と してパニ ングされた H 1 フ ァ ー ジ ( H 1 7 フ ァ ー ジ及び H 1 Z 3 フ ァ ー ジ) について、 へマグルチニ ン H 1 に対する結 合性を調べた結果を示す図であ る。
図 3 は、 実施例 4 において、 実施例 1 及び実施例 3 で 得 られたフ ァ ー ジ ク ロ ー ン (「A- 1上「B_1上「B- 2丄「C- 1」, 「C_2丄「H1- 1」及び「IU- 2」) の、 イ ン フ ルエ ンザ , へマ グ ノレチニ ン H 1 及び H 3 、 並びに小麦胚ァグルチニ ン ( WG A) に対する結合性を調べた結果を示す図であ る。
図 4 は、 実施例 5 において、 実施例 1 及び実施例 3 で 得られたフ ァ ー ジ ク ロー ン (「A- 1」,「B- 1上「B- 2丄「C- 1」及 び「C- 2」 (以上、 図 4 (a)に示す) 、 「 _1」及び「111-2」 (以上、 図 4 (b)に示す) ) の、 抗 G M 3抗体に対する結 合性を調べた結果を示す図である。 尚、 図中、 random 1 ibrary (図中一△一で示す) とは、 バニング前のラ ンダ ムなぺプチ ドを発現している フ ァージの集合を意味する。
図 5 は、 実施例 7 において、 へマグルチニンへのフ ァ ージク ロー ン (「A- 1上「B- 1」,「B- 2丄「C- 1」及び「C- 2」) の 結合に対するガングリ オシ ド G M 3 の阻害作用を調べた 結果を示す図である。 図 5 の a ) はへマグルチニ ン と し て H 1 亜型 (A/PR/8/34 ( H1N1) ) を使用 した場合の結果 を、 b ) はへマグルチニンと して H 3 亜型 (A/武漢 /359 /95 (H3N2) ) を使用 した場合の結果を示す。
図 6 は、 実施例 7 において、 へマグルチニ ンへのフ ァ —ジク ロー ン (「A- 1丄「B- 1」,「B- 2丄「C- 1」及び「C- 2」) の 結合に対するガングリ オシ ド G M 1 の阻害作用を調べた 結果を示す図である。 図 6 の a ) はへマグルチニンと し て H 1 亜型 ( A/PR/8/34 ( H1N1) ) を使用 した場合の結果 を、 b ) はへマグルチニンと して H 3 亜型 (A/武漠 /359 /95 (H3N2) ) を使用 した場合の結果を示す。
図 7 は、 実施例 11において、 ガング リ オシ ド G M 3 ( G M 3 キャス ト膜) へのへマグルチニンの結合に対す る、 フ ァ ージク ロー ン (「A- 1」) 発現ペプチ ド (合成ぺプ チ ド) の阻害作用を調べた結果を示す図である (図中、 —〇—で示す。 ) 。 図 7 の a ) はへマグルチニ ン と して H 1 亜型 ( A/PR/8/34 ( H1N1) ) を使用 した場合の結果を、 b ) はへマグルチニ ン と して H 3 亜型 ( A/武漢 7359/95 ( H3N2) ) を使用 した場合の結果を示す。 尚、 図中、 一 □— はペプチ ドを挿入 している ρ Π蛋白の N端 1 5 残基 ペプチ ド (コ ン ト ロ ール) 、 一 ◊ — はシァ リ ノレラ ク ト ー ス (スタ ンダー ド) によ る結果を示す。
図 8 は、 実施例 12において、 実施例 9 で調製 した リ ポ ペプチ ド ( C18 A- 1 リ ポペプチ ド) を用いて、 細胞に対す るィ ンフルェ ンザウィルス感染阻害活性を調べた結果を 示す図であ る。 a ) はイ ン フルエ ンザウイルス と して H 1 亜型 ( A/PR/8/34 (H1N1) ) を使用 した と きの結果を、 b ) は H 3 亜型 ( A/武漢 /359/95 ( H3N2) ) を使用 したと き結果であ る 。 尚、 図中、 —〇— は C18 A- 1 リ ポペプチ ド の結果、 —口 - は p III蛋白 N端 15残基ペプチ ドのステア リ ン酸誘導体の結果を示す。
図 9 は、 実施例 12において、 実施例 9 で調製 した リ ポ ペプチ ド ( C18 A- 1 リ ポペプチ ド) 修飾 リ ボ ソ ームを用い て、 細胞に対する イ ンフルエ ンザウ イ ルス感染阻害活性 を調べた結果を示す図であ る 。 a ) はイ ンフルエンザゥ ィ ルス と して H I 亜型 ( A/PR/8/34 ( H1N1) ) を使用 した と きの結果を、 b ) は H 3 亜型 ( A/武漢 /359/95 ( H3N 2) ) を使用 した と き結果である。 尚、 図中、 一〇 一 は C is A-1 リ ポペプチ ドの結果、 —□ 一 は p ill蛋白 N端 15残 基ペプチ ドのステア リ ン酸誘導体の結果を示す。 発明の開示
本発明者 ら は、 上記課題を解決すべ く 鋭意研究を重ね ていた と こ ろ、 フ ァ ー ジディ スプレイ 法を用いる こ とに よ り 、 イ ンフ ノレエ ンザゥイ ノレスのへマ グルチニ ンを特異 的に認識 して結合するべプチ ドが選択的に取得でき る こ とを確認 した。
本発明は、 かかる知見に基づいて開発された ものであ
O o
すなわち、 本発明は下記 1 ~ 6 に掲げる イ ン フ ルェ ン ザウィ ルス · へマグルチニ ン結合性ぺプチ ドであ る : 丄. 下記(a)ま たは(b)のいずれかであ る 、 イ ンフルェ ン ザウィ ルスへ へマグルチニ ン結合性ぺプチ ド :
(a) 配列番号 1 〜 1 1 で示される ア ミ ノ 酸配列のいずれ かか ら選ばれる ァ ミ ノ 酸配列を有する ぺプチ ド、
( b) 上記 (a) に示される ア ミ ノ 酸配列において 1 若 し く は複数のア ミ ノ 酸が置換、 欠失若 し く は付加によ り 改 変さ れたア ミ ノ 酸配列か らな り 、 且つイ ン フルエ ンザゥ ィ ルス · へマ グルチニ ンに結合性を有するぺプチ ド。 _2_ · 配列番号 1 ま たは 6 で示される ア ミ ノ 酸配列を有す るイ ンフルエ ンザウ イ ノレス · へマグルチニ ン結合性ぺプ チ ド。
3_ . 配列番号 7〜 1 1 で示される いずれかのア ミ ノ 酸配 列を有する ィ ンフルェ ンザウィ ルス · へマグルチニ ン結 合性べプチ ド。
. イ ンフルエ ンザウ イ ルスが Α型ウ ィ ルスであ る、 1 乃至 3 のいずれかに記載のィ ンフルェ ンザウィ ルス · へ マグルチニ ン結合性べプチ ド。
5_ . イ ンフノレエ ンザゥ イ ノレス力 H 1 亜型である、 1 乃至 3 のいずれかに記載のィ ン フノレェ ンザウィルス · へマグ ルチニ ン結合性べプチ ド。
_6_ . イ ンフルエ ンザウイ ルスが H 3 亜型である、 1 又は 3 に記載のィ ンフノレェ ンザウィ ルス · へマグルチニ ン結 合性ペプチ ド。
これ らのぺプヂ ドはアルキル化又は脂質 ( リ ン脂質) 化する こ とによ っ て リ ポベプチ ドと して調製する こ と も でき る。 従っ て本発明のペプチ ドには リ ポペプチ ドが包 含さ れる。
ま た本発明は、 当該 リ ポペプチ ドを含有する リ ポ ソ一 ムであ る。
さ らに本発明は、 上に記載さ れる イ ンフルエ ンザウイ ルス · へマグルチニ ン結合性べプチ ド の少な く と も 1 種 を有効成分と して含有する ィ ンフルェ ンザウィ ルス · へ マグルチニ ン結合阻害剤であ る。 尚、 当該ペプチ ドは リ ポソ ームの形態であ る こ と もでき る。
ま た本発明は下記に掲げる、 抗イ ン フルエ ンザ剤、 具 体的にはィ ンフルェ ンザ予防若 し く は治療剤と して有用 な薬学的組成物であ る。
( A ) 有効成分と して上記のいずれかに記載のイ ン フル ェ ンザウィルス · へマグルチニ ン結合性ぺプチ ドの少な く と も 1 種、 及び薬学的に許容される担体を含有する薬 学的組成物。
( B ) 有効成分であ る ィ ン フルェ ンザウィ ルス · へマグ ルチニン結合性ぺプチ ドを リ ポベプチ ドの形態で含有す る上記薬学的組成物。
( C ) 有効成分であ る イ ン フルエ ンザウイ ノレス ' へマグ ルチニ ン結合性べプチ ドを リ ポ ソーム修飾体の形態で含 有する上記薬学的組成物。
( D ) 対象とする イ ンフルエ ンザウ イ ルスが A型ウィ ル スであ る上記薬学的組成物。
( E ) 対象とする イ ンフルエ ンザウ イ ルスが A型ウ ィ ル スの H 1 亜型であ る上記薬学的組成物。
( F ) 対象とする イ ンフルエ ンザウ イ ルスが A型ウ ィ ル スの H 3 亜型であ る上記薬学的組成物。
( G ) イ ン フルエ ンザの予防又は治療剤と して用い られ る上記薬学的組成物。 ま た本発明は、 上記 ( A ) 〜 ( G ) のいずれかに記載 の薬学的組成物を被験者に投与する こ とからな る ィ ンフ ルェ ンザの感染予防方法若 し く はィ ン フルェ ンザの治療 方法であ る 。 なお、 こ こ で被験者と しては、 イ ンフルェ ンザウィルスの感染を受ける可能性のある者 ( ヒ ト若 し く はその他の動物 (ほ乳類、 鳥類、 は虫類、 魚類、 両生 類等を含む) 並びにイ ン フルエ ンザウイルスに感染 した 者を挙げる こ とができ る 。 好ま し く は感染に係る イ ンフ ルェ ンザゥイ ノレスが A型に属する ものであ り 、 よ り 好ま し く は A型 H 1 亜型又は H 3 亜型に属する ものであ る。 さ ら に本発明は前記に記載するィ ン フルェンザウ ィル ス · へマグルチニ ン結合性ぺプチ ド並びに該ぺプチ ド修 飾 リ ボ ソ ームの、 上記抗イ ン フルエンザ剤 (イ ンフルェ ンザ予防若 し く は治療剤) と しての使用に関 し、 さ らに は前記記載のィ ンフルェ ンザウィ ルス · へマグルチニ ン 結合性べプチ ド並びに該ぺプチ ド修飾 リ ポソームの、 抗 イ ンフルエ ンザ剤 (イ ン フルエ ンザ予防若 し く は治療 剤) と して用い られる薬学的組成物の製造のための使用 に関する。 なお、 以下、 本明細書における ア ミ ノ 酸、 ペプチ ド、 塩基配列、 核酸等の略号によ る表示は、 I U P A C、 I U B の規定、 「塩基配列又はア ミ ノ 酸配列を含む明細書 等の作成のためのガイ ドライ ン」 (特許庁編) 及び当該 分野における慣用記号に従う もの とする。
本発明のィ ンフノレェ ンザゥ イ ノレスのへマグルチニ ン結 合性ペプチ ドの具体例 と しては、 後述する実施例に示さ れる方法によ り 得 られる配列番号 1 か ら 1 1 に示さ れる ァ ミ ノ 酸配列を有する ものを例示する こ とができ る。
以下、 本発明のへマグルチニ ン結合性ペプチ ド (以下
H A結合性ペプチ ドと も い う ) の選別方法及びこれによ り 得 られたぺプチ ドの同定、 並びに該ぺプチ ドのへマグ ルチニンへの結合性について説明する 。
本発明の H A結合性べプチ ドの選別及び同定には、 分 子ライ ブラ リ ーのス ク リ ーニ ング手法を採用する こ とが でき、 上記ラ イ ブラ リ 一 と しては、 例えばフ ァ ー ジディ スプレイ ライ ブラ リ ーを好ま し く 用い る こ とができ る 。
かかる ライ ブラ リ 一 と しては、 市販の ものを用いる こ とができ る。 該ラ イ ブラ リ 一 中のラ ンダムペプチ ドディ スプレイ フ ァ ー ジによれば、 特定の標的分子又は 目 的の 細胞に結合するペプチ ドを、 該分子又は細胞を用いてィ ン ビ ト ロでス ク リ ーニングでき、 しか も該ス ク リ ーニン グによ り 選別 さ れたペプチ ドが発現でき る ので、 標的と する分子又は細胞と特異的に結合するべプチ ドの選別及 び同定に有用であ る。 該フ ァ 一 ジディ スプレイ ライ ブラ リ ーを用いる ス ク リ ーニ ングは、 フ ァ ー ジディ スプ レイ 法と呼ばれ、 従来か ら種々 の細胞表面 レセプタ ー と特異 的に結合する リ ガン ドゃ種々 の抗体の選別及び同定に使 用 されている。 なお、 こ れ ら フ ァ ー ジディ スプレイ ライ ブラ リ ーの作成方法及びイ ン ビ ト ロ ス ク リ ーニング法に ついては、 ス コ ッ ト及びス ミ ス らの方法が参照される (S cott, J. . and Smith, G. P., Science, 249, 386 - 39 0 ( 1990 ); Smith, G. P. and Scott, J. K. , Method s i n Enzymology, 217, 228 -257 ( 1993 ))。 なお、 これ らの 文献は、 本発明の一部と して こ こ に引用 される。
本発明の H A結合性ペプチ ドは、 上記フ ァ ー ジデイ ス プレイ法を用いてへマグルチニ ンに結合するべプチ ドを イ ン ビ ト ロでス ク リ ーニ ン グする こ と によ っ て取得する こ とができ る 。 具体的には以下の方法によ っ て行う こ と ができ る。
すなわち、 まず、 公知の フ ァ ー ジラ イ ブラ リ ーにラ ン ダムな D N A配列を挿入 して、 フ ァ ー ジの外殻表面にラ ンダムなァ ミ ノ 酸配列を有するぺプチ ドを発現 し得る よ う に構築 したラ ンダムべプチ ドディ スプレイ フ ァ ー ジを 用いて、 これを予めマイ ク ロ プレー ト 等の固相表面上に 固定化 したィ ンフノレェ ンザウ ィ ルスのへマグルチニ ン と 反応させて、 該へマグルチニ ン と特異的に結合する フ ァ ー ジを回収する (バイ オバニ ング) 。
なお、 マイ ク ロ プ レー ト に固定ィ匕さ せるイ ンフルェ ン ザゥイノレスのへマグルチニ ン と しては、 少な く と も宿主 細胞の受容体と結合する 「受容体結合ポケ ッ ト 」 を保存 的に有する も のであれば特に制限さ れず、 例えばへマグ ルチニ ンま たはイ ンフルエ ンザウイ ノレスその ものであ つ て も よい し、 ま たイ ンフルエ ンザウイ ルスをエーテル等 の各種有機溶媒で抽出処理 したィ ン フ ルェ ンザウ ィ ルス 抽出物等であ っ て も よい。 ま た、 イ ン フルエ ンザウ ィ ル スの種類も特に制限されず、 目 的に応 じて A型、 B 型ま たは C型、 乃至は ヒ ト分離型、 ブタゃゥマ等の他の哺乳 動物分離型ま たは鳥類分離型等のいずれであ る こ とがで き る。 好ま し く は A型ウィ ルス、 ま たは ヒ ト分離型のゥ イ ノレスであ る 。
前述する よ う にへマグルチニ ンの 「受容体結合ポケ ッ ト」 の三次構造はイ ンフルエ ンザウ イ ルスの亜型にかか わ らずよ く 保存されている ので、 上記マイ ク ロ プレー ト に固定化させる イ ン フルエ ンザゥ イ ノレスのへマグルチ二 ン と しては、 亜型の別を何 ら問 う ものではないが、 好適 には最近約 1 0 年の間 ヒ トか ら分離さ れている A型の亜 型であ る H 1 亜型や H 3 亜型を例示する こ とができ る。
へマグルチニ ン と特異的に結合する フ ァ ー ジの回収は、 宿主細胞の受容体と競合 してへマグルチニ ン と結合する 能力を有する H A受容体物質、 ま たはへマグルチニ ンの 宿主細胞の受容体への結合を阻害する能力を有する H A 阻害剤を、 固定化 したへマグルチニ ンに対 して作用 させ る こ とによ っ て行う こ とができ る。 すなわち、 マイ ク ロ プレー ト上に固定化されたへマグルチニンに特異的に結 合 している フ ァ ー ジは、 上記 H A受容体物質ま たは H A 阻害剤を競合反応させる こ と によ り 脱離溶出 し、 それに よ り 回収する こ とができ る。
こ こで、 H A受容体物質 と しては、 へマグルチニ ンに 特異的に結合する能力を有する ものであれば特に制限さ れない。 へマグルチニ ンの受容体結合ポケ ッ ト に特異的 に結合 している フ ァ ー ジを回収する には、 H A受容体物 質と してへマグルチニ ンの受容体結合ポケ ッ ト に特異的 に結合する能力を有する も のを用い る こ とが好ま しい。 かかる H A受容体物質と しては、 制限はないが、 ガ ング リ オ シ ド G M 3 、 a ( 2 → 6 ) G M 3 、 シァ リ ノレ Lewis X 等を例示する こ とができ る。
ま た、 H A阻害剤 と しては、 へマグルチニ ンの宿主細 胞受容体への結合を阻害する能力を有する ものであれば 特に制限されず、 例えばシアル酸誘導体 7-F- Neu5Ac2en、 2, 7-Dideoxy-7-fluoro-2, 3-didehydro sialic acid、 シ アル酸デン ド リ マー、 シアル酸含有ポ リ マー等を挙げる こ とができ る 。
か く して得 られる フ ァ ー ジを大腸菌に感染させて大量 培養 し、 分離、 精製 して、 へマグルチニン と特異的に結 合するペプチ ド発現フ ァ ー ジ、 好ま し く はへマグルチ二 ンの受容体結合ポケ ッ 卜 に特異的に結合するペプチ ド発 現フ ァ ー ジを得る。 か く して得 られる フ ァ ー ジは、 再び 上記と同様に、 固定化へマグルチニン と反応させてイ ン フルェ ンザゥ イ ノレスのへマグルチニ ン と特異的に結合す る フ ァ ー ジをス ク リ ーニ ングするノ、0ニ ング ( panning) 操 作に供される 。
かかるバニ ング操作を数回、 好ま し く は 4 〜 6 回程度 繰 り 返すこ と によ り へマ グルチニ ン と特異的に結合する ペプチ ド、 好ま し く はへマグルチニ ンの受容体結合ボケ ッ ト に特異的に結合する ペプチ ドを発現 し得る フ ァ ー ジ が選別でき る。 次いで、 選択さ れたフ ァ ー ジか ら D N Aを抽出 しその 配列を決定する こ と によ り 、 フ ァ ー ジが発現するべプチ ド、 すなわちイ ン フルエ ンザのへマグルチニ ン と特異的 に結合するペプチ ド ( H A結合性ペプチ ド) 、 好ま し く はへマグルチニ ンの受容体結合ポケ ッ 卜 に特異的に結合 するぺプチ ドを同定する こ とができ る 。
上記 D N Aの配列決定は、 当業界で公知の方法に よ り 容易に行う こ とができ、 例えばジデォキシ法 〔 Proc. Na tl. Acad. Sci. USA. , 74, 5463-5467 ( 1977)〕 やマキサ ム 一ギノレノ ー 卜法 [Method in Enzymology, 65, 499 (1 980 )] 等を挙げる こ とができ る。 かかる塩基配列の決定 は、 市販の シー ク ェ ンスキ ッ ト等を用いて も容易に行う こ とができ る。
上記フ ァ ー ジディ スプレイ 法においてフ ァ ー ジラ イ ブ ラ リ ー と しては、 通常こ の方法で用い られる公知の フ ァ ー ジライ ブラ リ 一がいずれ も使用でき る。 特に制限さ れ ないが、 具体的にはフ ァ ー ジの コー ト タ ンパク質 p III遺 伝子にラ ンダムな D N Aが挿入さ れて、 フ ァ ー ジ外殻表 面にラ ンダムな 1 5個のア ミ ノ 酸か らなる ア ミ ノ 酸配列 を有するペプチ ドを発現 し得る よ う に構築されたラ ンダ ムペプチ ドディ スプレイ フ ァ ー ジ (繊維状フ ァ ー ジ) を 好適に例示する こ とができ る (演題 : 2C103 「フ ァ ー ジデ ィ スプレイ 法によ る糖脂質に結合する べプチ ドのセ レ ク シ ヨ ン」 、 第 3 回 日本化学会バイ オテク ノ ロ ジー部会 シ ンポ ジ ウ ム (1998) ; 日 本国特願平 1 1 ー 0 0 0 7 6 9 号 ; ) 。
こ のよ う に して同定さ れた H A結合性ペプチ ドのへマ グルチニ ンに対する親和性 (結合性) は、 前述する H A 結合性ペプチ ドを発現 し得る フ ァ ー ジの選別方法 (バニ ング) において、 ラ ンダムペプチ ドデ ィ スプレイ フ ァ ー ジに代えて、 測定対象ペプチ ドであ る 同定された H A結 合性ペプチ ドを用いて同様に行う こ と によ っ て確認、 評 価する こ とができ る 。
本発明の一例 と して、 固定化イ ン フ ルエ ンザウ イ ルス (へマグルチニ ン) と して、 A型 ( H I 亜型) のイ ンフ ノレェ ンザゥ イ ノレスであ る A/PR/8/34 ( H1N1) のエーテル抽 出物を、 ま た溶出用物質と して H A受容体物質ま たは H A阻害剤のいずれかを用いて、 H A結合性ペプチ ドを発 現する フ ァ ー ジを選択 し、 その発現ペプチ ドを同定する 方法を後記実施例 1 に記載する。
かかる本発明の一態様によ っ て同定されたべプチ ドは、 配列番号 1 か ら 6 に示さ れる いずれかのア ミ ノ 酸配列を 有する ものであ り 、 これ ら はいずれ も ィ ン フルェ ンザゥ イ ノレスのへマグルチニ ン、 特にへマグルチニ ンの受容体 結合ポケ ッ ト に対 して結合性を有する こ とによ り 特徴づ け られる。 ま た これ らのペプチ ドは、 イ ンフルエ ンザゥ ィ ルスの中で も A型ウィ ルス ま たは ヒ ト型ウィ ルスのへ マグルチニ ンに対 して結合性を有する もの と して特徴づ ける こ とができ る。 なお、 こ れ らのペプチ ドは、 へマグ ルチニ ン H I 亜型をタ ーゲ ッ ト と して選択さ れた も ので あ り 、 こ の亜型に特異的結合性を有する もの と して特徴 づけ られる。 中で も配列番号 1 及び配列番号 5 に示され るア ミ ノ 酸配列を有するペプチ ドが、 H I 亜型に特異的 に結合する ペプチ ドと して好適に例示される。
ま た本発明の一例 と して、 固定化イ ンフルエ ンザウイ ノレス (へマグルチニ ン) と して、 A型の H I 亜型であ る A/PR/8/34 ( H1N1) 及び H 3 亜型であ る A/武漢 /359 /95 ( H3N2) のエーテル抽出物を、 ま た溶出用物質と して各 種の H A受容体物質 ( シァ リ ル LewisX、 a ( 2 → 6 ) G M 3 ) を用いて、 こ れ らのへマグルチニ ンの両方を認識 し結合するペプチ ドを発現する フ ァ ー ジを選択 し、 該発 現べプチ ドを同定する方法を後記実施例 3 に記載する。
かかる本発明の態様によ っ て同定さ れたペプチ ドは、 配列番号 7 か ら 1 1 に示さ れる いずれかのア ミ ノ 酸配列 を有する ものであ る 。 こ れ らの H A結合性ペプチ ドは、 へマグルチニ ンの亜型であ る H 1 及び H 3 の両方に対 し て結合性を有する こ とによ り 特徴づけ られる。 へマ グル チニ ンの H I 亜型及び H 3 亜型は、 互いにア ミ ノ 酸配列 が 7 5 %相違する こ とが知 られている こ とかち、 上記 H A結合性べプチ ドはへマグルチニ ンの H 1 亜型と H 3 亜 型の相同性の高い部位を認識 して、 該部分に結合する も の と考え られる。
ま た上記 H A結合性ペプチ ドの う ち、 特に配列番号 7 で示されるペプチ ドは、 異な る 2 つの溶出用物質 ( シァ リ ノレ Lew i s X、 a ( 2 → 6 ) G M 3 ) で共に溶出 さ れ取得 される こ とか ら、 そのへマグルチニ ンへの結合部位はシ 了 リ ル Lew i s Xや α ( 2 → 6 ) G M 3 のへマグルチニ ンへ の結合部位と同一であ っ て、 ま た同 じ結合様式を有する もの と考え られる。
本発明のペプチ ドには、 上記配列番号 1 か ら 6 に示さ れる いずれかのア ミ ノ 酸配列を有する ペプチ ド、 並びに 配列番号 7 か ら 1 1 に示さ れる いずれかのア ミ ノ 酸配列 を有するペプチ ドの他に、 こ れ らのア ミ ノ 酸配列におい て、 1 若 し く は複数個のア ミ ノ 酸が置換、 欠失若 し く は 付加によ り 改変されたア ミ ノ 酸配列か らな り 、 且つイ ン フ ルェ ンザゥイ ノレス のへマ グルチニ ン 、 特に Α型ィ ン フ ルェンザウィ ルスのへマグルチニンに結合性を有す るぺ プチ ド並びに蛋白質が包含さ れる。 こ こで配列番号 1 か ら 6 に示される ぺプチ ドに関 して、 ア ミ ノ 酸の 「置換、 欠失若 し く は付加」 の程度及びそれ らの位置な どは、 改変されたべプチ ド若 し く は蛋白質が、 配列番号 1 か ら 6 で示される ア ミ ノ 酸配列のいずれかか らなるぺプチ ドと 同様にィ ンフノレエ ンザゥイ ノレスのへマ グルチニ ン、 特にへマグルチニ ンの受容体結合ポケ ッ ト に対 して結合性を有する とい っ た上記特徴を備えた同効 物であれば特に制限されない。 好ま しい特徴と しては、 へマグルチニ ンの H 1 亜型に特異的に結合性を有する こ とを挙げる こ とができ る。
ま た、 こ こ で配列番号 7 か ら 1 1 に示されるペプチ ド に関 して、 ア ミ ノ 酸の 「置換、 欠失若 し く は付加」 の程 度及びそれ らの位置な どは、 改変されたペプチ ド若 し く は蛋白質が、 配列番号 7 か ら 1 1 で示される ア ミ ノ 酸配 列のいずれかか らな るペプチ ドと同様にイ ン フルエ ンザ ウィルスのへマグルチニ ン、 特にへマ グルチニ ンの受容 体結合ポケ ッ ト に対 して結合性を有する とい っ た特徴を 備えた同効物であれば特に制限されないが、 好ま し く は へマグルチニ ンの H 1 亜型及び H 3 亜型の双方に対 して 結合性を有する とい っ た特徴を備えた同効物を挙げる こ とができ る 。
こ のよ う なア ミ ノ 酸配列の改変 (変異) は、 例えば突 然変異や翻訳後の修飾な どによ り 生 じ る こ と もあ るが、 人為的に行う こ と もでき る 。 本発明は、 こ の よ う な改変 • 変異の原因及び手段な どを問わず、 上記特性を有する 全ての改変べプチ ドを包含する ものであ る。
本発明の H A結合性ペプチ ドは、 そのア ミ ノ 酸配列に 従っ て、 一般的な化学合成法によ り 製造する こ とができ る。 該方法には、 通常の液相法及び固相法によ るべプチ ド合成法が包含さ れる。 かかるペプチ ド合成法は、 よ り 詳 し く は、 本発明で提供する ア ミ ノ 酸配列情報に基づい て、 各ア ミ ノ 酸を 1 個ずつ逐次結合させ鎖を延長させて い く ステ ッ プワイ ズエロゲー シ ヨ ン法と、 ア ミ ノ 酸数個 か らなる フ ラ グメ ン ト を予め合成 し、 次いで各フ ラ グメ ン トをカ ッ プ リ ング反応させる フ ラ グメ ン ト · コ ンデン セー シ ヨ ン法とを包含する 。 本発明のペプチ ドの合成は、 そのいずれによ る こ と もでき る。
上記べプチ ド合成に採用 される縮合法も、 公知の各種 方法に従う こ とができ る。 その具体例 と しては、 例えば アジ ド法、 混合酸無水物法、 D C C 法、 活性エステル法、 酸化還元法、 D P P A (ジ フ ヱニルホスホ リ ルア ジ ド)法、 D C C +添加物( 1— ヒ ド ロ キシベ ンゾ ト リ ァゾール、 N — ヒ ドロキシサク シ ンア ミ ド、 N— ヒ ドロキシ 一 5 — ノ ノレ ボルネ ン — 2, 3 — ジカルボキシイ ミ ド等)、 ゥ ッ ド ヮ ー ド法等を例示でき る。 こ れ ら各方法に利用でき る溶媒も こ の種のぺプチ ド縮合反応に使用 される こ とがよ く 知 ら れている一般的な ものか ら適宜選択する こ とができ る。 その例 と しては、 例えば ジメ チルホルムア ミ ド( D M F )、 ジメ チルスルホキシ ド( D M S 0 )、 へキサホスホ ロ ア ミ ド、 ジォキサ ン、 テ ト ラ ヒ ドロ フ ラ ン(T H F )、 酢 酸ェチル等及びこれ らの混合溶媒等を挙げる こ とができ る。
尚、 上記ペプチ ド合成反応に際 して、 反応に関与 しな いア ミ ノ 酸及至ペプチ ドにおける カルボキシル基は、 一 般にはエステル化によ り 、 例えばメ チルエステル、 ェチ ルエステル、 第三級ブチルエステル等の低級アルキルェ ステル、 例えばべン ジ ノレエ ス テル、 p — メ ト キ シ ベ ン ジ ノレエ ス テノレ、 p — 二 ト 口 べ ン ジ ノレエ ス テノレァ ラ ノレキノレエ ステル等と して保護する こ とができ る 。 ま た、 側鎖に官 能基を有する ア ミ ノ 酸、 例えば Tyrの水酸基は、 ァセチル 基、 ベ ン ジル基、 ベ ン ジルォキシカルボニル基、 第三級 ブチル基等で保護されて も よいが、 必ずし もかかる保護 を行う 必要はない。 更に例えば Argのグァニジノ 基は、 二 ト ロ基、 ト シル基、 2 — メ ト キシベンゼンスルホ二ノレ基、 メ チ レ ン 一 2 — スルホニル基、 ベ ン ジルォキシカルボ二 ル基、 イ ソ ボルニルォキシ カルボニル基、 ァダマ ンチル ォキシカルボニル基等の適当な保護基によ り 保護する こ とができ る。 上記保護基を有する ア ミ ノ 酸、 ペプチ ド及 び最終的に得 られる本発明のぺプチ ドにおける これ ら保 護基の脱保護反応 も ま た、 慣用 される方法、 例えば接触 還元法や、 液体ア ンモニアノナ ト リ ウ ム、 フ ッ 化水素、 臭化水素、 塩化水素、 ト リ フルォロ酢酸、 酢酸、 蟻酸、 メ タ ンスルホ ン酸等を用い る方法等に従って、 実施する こ とができ る。
か く して得 られる本発明の H A結合性ポ リ ペプチ ドは、 通常の方法に従っ て、 例えばイ オ ン交換樹脂、 分配ク ロ マ ト グラ フ ィ 一、 ゲノレク ロ マ ト グラ フ ィ ー、 ァフ ィ ニテ ィ ー ク ロマ ト グラ フ ィ ー、 高速液体ク ロマ ト グラ フ ィ ー ( H P L C )、 向流分配法等のペプチ ド化学の分野で汎用 されている方法に従っ て、 適宜その精製を行う こ とがで き る。
ま た、 上記本発明の H A結合性ペプチ ドは、 適宜に化 学修飾する こ とができ、 例えばアルキル化や脂質化 ( リ ン脂質化) 等によ る化学修飾によ り 、 H A結合性べプチ ドの細胞親和性や組織親和性を増大させ、 或いは血中半 減期の延長等によ る薬理効果の増強を意図する こ とがで る
H A結合性べプチ ドのアルキル化は常法に従っ て実施 する こ とができ る。 例えば、 脂肪酸と H A結合性べプチ ドの N末端ア ミ ノ 基とのア ミ ド結合形成反応 (前記のぺ プチ ド合成と 同様に して実施) によ り 容易に実施さ れる。
脂肪酸と しては、 直鎖や分枝鎖の別及び飽和や不飽和 の別に特に制限される こ とな く 、 任意の脂肪酸を広 く 例 示でき る。 一般的には、 生体内に存在する脂肪酸が好適 に採用でき、 具体的にはラ ウ リ ン酸、 ミ リ スチ ン酸、 ノ、 ° ル ミ チ ン酸、 ステア リ ン酸、 ァラ キ ン酸等の飽和脂肪酸 ; ォ レイ ン酸、 エラ イ ジ ン酸、 リ ノ 一ノレ酸、 リ ノ レ ン酸、 ァラキ ド ン酸等の不飽和脂肪酸な ど、 炭素数が 1 2 〜 2 0程度の脂肪酸が例示さ れる。
ま たアルキル化は、 アルキルァ ミ ン と H A結合性ぺプ チ ドの C末端カルボキシル基とのア ミ ド結合形成反応 (前記ペプチ ド合成と同様に して実施) によ っ て も収得 でき る。 アルキルと しては、 上記脂肪酸と同様に各種の アルキルア ミ ンが例示でき、 一般的には生体内に存在す る脂肪鎖 (炭素数が 1 2 ~ 2 0 程度) を好適に採用する こ とができ る。
H A結合性べプチ ドの脂質化も常法に従っ て実施でき る (New Current, 11 ( 3 ), 15 -20 ( 2000 ); Biochemica e t Biophysica Acta. , 1128, 44-49 ( 1992); FEBS Lette rs, 413, 177- 180 ( 1997 ) ; J. Biol. Chem. , 257, 286-28 8 ( 1982 )等) 。 例えば、 各種 リ ン脂質の 2 位水酸基或い は 3 位の リ ン酸基を利用 して、 任意のスぺ一サーを介 し て H A結合性べプチ ドの脂質修飾体を調製する こ とがで き る。 反応には各種の縮合法が採用でき、 必要によ り H A結合性ペプチ ドの N端或いは C端に任意の長さ (通常 数個) の システィ ンを含むア ミ ノ 酸配列を付加 して、 縮 合に利用 される反応性 S H基を導入する こ と もでき る。
こ こで リ ン脂質と して も、 特に制限はな く 、 上記 した 各種の脂肪酸からな る、 ホスフ ァ チジ ン酸、 ホス フ ァ チ ジノレコ リ ン ( レ シチ ン) 、 ホス フ ァ チ ジルエタ ノ ーノレア ミ ン、 ホス フ ァ チ ジルセ リ ン、 ホ ス フ ァ チ ジノレイ ノ シ ト ール、 ホス フ ァ チジルグ リ セ ロール等が良好に使用でき る o
なお、 これ らのアルキル化や脂質化された本発明の H A結合性ペプチ ド ( リ ポペプチ ド) は、 リ ボ ソ ーム調製 の際の脂質成分と して も作用 し、 ま た当該ペプチ ドが リ ポ ソ一ム上に提示さ れる こ とによ り 、 後述する リ ポ ソ一 ム製剤に極めて好適に用い られる。
本発明の H A結合性ペプチ ドは、 イ ン フルエ ンザ感染 の第 1 ステ ッ プに関与する イ ン フルエ ンザウ イ ルスのへ マグルチニンを特異的に認識 してそれに結合する ァ ミ ノ 酸配列を有する ものであ り 、 それ 自身、 in v i voにおいて へマグルチニ ンを介 して生 じ る ィ ン フルェ ンザウィ ルス と宿主細胞受容体との結合を競合的に妨げる こ とのでき る もの と して、 すなわちへマグルチニ ン結合阻害剤 と し て用いる こ とができ る。 当該へマグルチニ ン結合阻害剤 は、 へマグルチニ ンを介 して生 じる ィ ンフルェ ンザウイ ルスの感染、 並びにそれに伴う 種々 の細胞機能や生命現 象を解明する のためのツールと して用いる こ とができ、 ま た宿主細胞受容体へのへマグルチニ ンの結合を介 して 生 じるイ ンフルエ ンザウイ ルスの感染を予防 した り 、 ィ ンフルェ ンザを治療する のに用い られる抗ィ ンフノレェ ン ザ剤、 具体的にはィ ンフルェ ンザの感染予防薬又は治療 薬の有効成分と して有用であ る と期待される。
なお、 本発明が対象とする イ ン フルエ ンザウイ ルスは 前述する よ う にその型や由来を特に制限する ものでな く A型、 B 型ま たは C型乃至は ヒ ト分離型、 ブタゃゥ マ等 の他の哺乳動物分離型ま たは鳥類分離型等のいずれであ る こ とができ る。 好ま し く は A型イ ンフルエ ンザウ ィ ル スであ る。 ま た好適には ヒ ト分離型若 し く は ヒ ト感染型 のゥイ ノレスであ る。
イ ンフルエ ンザウイ ルス感染の予防又は治療薬の有効 成分と して用い られる場合、 本発明の H A結合性べプチ ド ( H A結合性を有する その改変若 し く は修飾ペプチ ド を包含する。 以下同 じ。 ) は、 そのま まか、 若 し く は薬 学的に許容さ れる担体を含む薬学的組成物と して調製さ れ、 被験者に投与さ れる 。
こ こで用い られる薬学的に許容される担体は、 調製さ れる薬学的組成物の形態に応 じて、 当該分野において慣 用 さ れている担体の中か ら適宜選択 して用いる こ とがで さ る 。
例えば、 薬学的組成物が水溶液形態と して調製さ れる 場合、 上記の担体と しては、 精製水 (滅菌水) ま たは生 理学的緩衝液を利用する こ とができ る 。 ま た、 該組成物 が適当な溶液形態に調製さ れる場合、 上記担体と しては 例えば、 グ リ コーノレ 、 グ リ セ ロ ー ノレ 、 オ リ ーブ油の よ う な注射投与可能な有機エステルな どを使用する こ とがで き る。 ま た、 これ らの組成物には、 当該分野、 特にぺプ チ ド製剤ない しは蛋白製剤の分野で慣用的に用い られる 安定剤、 賦形剤な どを含むこ とができ る。
ま た本発明の H A結合性べプチ ドは リ ポ ソ ーム製剤と して調製する こ とができ る 。
リ ボ ソーム製剤は、 酸性 リ ン脂質を膜構成成分とする か或いは中性 リ ン脂質と酸性 リ ン脂質とを膜構成成分と する リ ボ ソームに、 本発明の H A結合性ペプチ ドを保持 させる こ と によ っ て調製でき る。 こ こ で、 膜構成成分と しての酸性 リ ン脂質と しては、 通常の酸性 リ ン脂質よ り 狭義-に定義さ れ、 よ り 具体的に は ジ ラ ウ ロ イ ノレホ ス フ ァ チ ジルグ リ セ ロ ーノレ ( D L P G ) 、 ジ ミ リ ス ト イ ノレホス フ ァ チ ジノレグ リ セ ロ ール ( D M P G ) 、 ジパル ミ ト イ ノレホス フ ァ チ ジノレグ リ セ ロ ール ( D P P G ) 、 ジステア ロ イ ノレホス フ ァ チ ジルグ リ セ 口 一ノレ ( D S P G ) 、 ジォ レオイ ノレホス フ ァチ ジノレグ リ セ 口 一ノレ ( D 0 P G ) 、 卵黄ホス フ ァ チ ジルグ リ セ ロ ール (卵黄 P G ) 、 水添卵黄ホス フ ァ チ ジルグ リ セ ロ ール等 の天然ま た は合成ホス フ ァ チ ジルグ リ セ ロ ール類 ( P G ) およ び ジ ラ ウ ロ イ ノレホ ス フ ァ チ ジルイ ノ シ ト ール ( D L P I ) ; ジ ミ リ ス ト イ ルホス フ ァ チ ジルイ ノ シ ト 一ノレ ( D M P I ) 、 ジ ノ、。ノレ ミ ト イ ノレホ ス フ ァ チ ジルイ ノ シ ト ーノレ ( D P P I ) 、 ジ ステア ロ イ ノレホス フ ァ チ ジル イ ノ シ ト ーノレ ( D S P I ) 、 ジォ レオイ ノレホス フ ァ チ ジ ノレイ ノ シ ト ーノレ ( D O P I ) 、 大豆ホ ス フ ァ チ ジルイ ノ シ ト ール (大豆 P I ) 、 水添大豆ホ ス フ ァ チ ジルイ ノ シ ト ール等の天然ま た は合成ホス フ ァ チ ジルイ ノ シ ト ール 類 ( P I ) を示す。 これ ら は一種単独でま たは二種以上 混合 して使用でき る 。
ま た、 中性 リ ン脂質と しては、 大豆ホ ス フ ァ チ ジルコ リ ン、 卵黄ホ ス フ ァ チ ジルコ リ ン、 水添大豆ホ ス フ ァ チ ジ ル コ リ ン、 水添卵黄ホ ス フ ァ チ ジ ル コ リ ン 、 ジ ミ リ ス ト イ ノレホ ス フ ァ チ ジ ノレ コ リ ン ( D M P C ) 、 ジ ノ、。ル ミ ト ィ ルホ ス フ ァ チ ジ ノレ コ リ ン ( D P P C ) 、 ジ ラ ウ ロ イ ノレ ホ ス フ ァ チ ジノレ コ リ ン ( D L P C ) 、 ジ ス テ ア ロ イ ノレホ ス フ ァ チ ジノレ コ リ ン ( D S P C ) 、 ミ リ ス ト イ ノレノ、。ノレ ミ ト イ ノレホ ス フ ァ チ ジ ノレ コ リ ン ( M P P C ) 、 パル ミ ト イ ルス テ ア リ イ ノレホ ス フ ァ チ ジ ノレ コ リ ン ( P S P C ) 、 ジ ォ レ オ イ ノレホ ス フ ァ チ ジ ノレ コ リ ン ( D O P C ) 等の 天然 ま た は合成ホ ス フ ァ チ ジ ル コ リ ン類 ( P C ) 、 大豆ホ ス フ ァ チ ジノレエ タ ノ ー ノレア ミ ン 、 卵黄ホ ス フ ァ チ ジノレエ タ ノ ー ルア ミ ン 、 水添大豆ホ ス フ ァ チ ジ ルエ タ ノ ールア ミ ン 、 水添卵黄ホ ス フ ァ チ ジルエ タ ノ ー ルァ ミ ン 、 ジ ミ リ ス ト イ ノレホ ス フ ァ チ ジノレエ タ ノ ー ノレア ミ ン ( D M P E ) ジノ、。ノレ ミ ト イ ノレホ ス フ ァ チ ジ ノレエ タ ノ ー ノレア ミ ン ( D P P E ) 、 ジ ラ ウ ロ イ ノレホ ス フ ァ チ ジノレエ タ ノ ーノレア ミ ン ( D L P E ) 、 ジス テ ア ロ イ ノレホ ス フ ァ チ ジルエ タ ノ ー ルァ ミ ン ( D S P E ) 、 ミ リ ス ト イ ノレパノレ ミ ト イ ノレホ ス フ ァ チ ジノレエ タ ノ ー ルァ ミ ン ( M P P E ) 、 パル ミ ト イ ノレス テ ア ロ イ ノレホ ス フ ァ チ ジノレエ タ ノ ー ノレア ミ ン ( P S P E ) 、 ジ ォ レオ イ ノレホ ス フ ァ チ ジルエ タ ノ ー ルァ ミ ン ( D O P E ) 等の天然ま た は合成ホ ス フ ァ チ ジルェ タ ノ ールァ ミ ン類 ( P E ) 等を例示でき る 。 これ らは一種単 独でま たは二種以上混合 して使用する こ とができ る 。
上記 リ ボ ソ ーム膜は、 上記酸性 リ ン脂質を単独で構成 成分と して用いるかま たは上記中性 リ ン脂質と酸性 リ ン 脂質とを併用 して常法に従い形成さ れる。 こ こ で酸性 リ ン脂質の併用割合は、 リ ボ ソ ーム膜構成成分中に約 0 . 1 〜 1 0 0 モル%程度、 好ま し く は約 1 〜 9 0 モル%、 よ り 好ま し く は約 1 0 〜 5 0 モル%程度とする のがよい , 上記 リ ボ ソ ームの調製.に当た っ ては、 更に例えばコ レ ステロ ールな どを添加する こ とができ る。 こ の コ レステ ロールの添加によれば リ ン脂質の流動性を調整 して、 リ ポソームの調製をよ り 簡便な もの とする こ とができ る。 該コ レステロ ールは通常 リ ン脂質に対 して等暈ま で、 好 ま し く は 0 . 5 〜 1 倍等量の量で添加配合さ れる のが好 ま しい。
リ ボ ソーム分散液中の有効成分と酸性 リ ン脂質との配 合割合は、 有効成分に対 して酸性 リ ン脂質が約 0 . 5 〜 1 0 0 当量程度、 好ま し く は約 1 〜 6 0 当量程度、 よ り 好ま し く は約 1 . 5 〜 2 0 当量程度と される のがよ い。
ま た、 リ ボ ソ ームに含ま れる本発明 H A結合性べプチ ドの割合は、 全脂質中、 数モル%か ら数十モル%程度、 好ま し く は 5 〜 1 0 モル%程度であ る こ とができ る が、 通常は 5 モル%程度でも あ っ て も よい。 本発明の H A結合性べプチ ドを薬物とする リ ポ ソ ーム の製造には種々 の公知の方法を用いる こ とができ、 ま た、 リ ポペプチ ドであ る本発明ペプチ ドは、 当該方法におけ る脂質成分と して利用する こ と によ つ て も所望の リ ポ ソ —ム とする こ とができ る。
例えば多重層 リ ボ ソーム ( M L V ) は次のよ う に して 調製さ れる。 まず、 脂質を有機溶媒 ( ク ロ 口 ホルム、 ェ 一テル等) に溶解 した後、 丸底フ ラ ス コ に入れ、 窒素気 流下ま たは減圧下で有機溶媒を除去 し、 フ ラ ス コ底部に 脂質の薄膜をつ く る。 こ の場合、 さ ら に減圧下でデシケ 一タ ー中に放置する こ とによ っ て有機溶媒を完全に除去 する こ と もでき る。 次いで、 薬物溶液を脂質薄膜上に加 えて脂質を水和させる こ とによ つ て乳濁色の リ ポ ソ ーム 懸濁液が得 られる。
ま た大きな一枚膜 リ ボ ソ ーム ( L U V ) は、 ホス フ ァ チジルセ リ ンの小さ な一枚膜 リ ボ ソ ームに Ca 2 +を添加 し、 融合させてシ リ ンダー状の シー ト と した後、 キ レー ト剤 であ る E D T Aを添加 し Ca2 +を除去する方法 (Biochim. Biophys. Acta 394, 483-491, 1975 ) やエーテルに溶解 した脂質を約 60°Cの水溶液中に注入 し、 エーテルを蒸発 させる方法 ( Biochim. Biophys. Acta 443, 629 -634, 1 976) によ り 作る こ とができ る。 ま た、 Szokaらの考案 した逆相法によ る リ ポソ一ムの調 製法 ( Proc. Natl. Acad. Sci. U. S丄 75, 4194 - 4198, 1978) を用い る こ と もでき る。 こ の方法によ る と、 リ ン 脂質のエーテル溶液に薬物溶液を加え、 超音波処理する と WZ O型エマルシ ヨ ンが作成される 。 この WZ O型ェ マルシ ヨ ンを減圧下、 エバポ レータ ー によ り エーテルを 除去 し、 次いで緩衝液を加えボルテ ッ ク ス ミ キサーで撹 拌する と、 WZ O型エマルシ ヨ ンか ら 0 /W型エマルシ ヨ ンに転相 し、 更に残留する有機溶媒を除 く こ とによ つ て リ ボ ソームが作成でき る。
これ らの調製法のほかに、 フ レ ンチプレス法によ り 粒 子径の小さ な リ ボ ソ ームを調製する こ と もでき る ( FEBS lett. 99, 210-214, 1979 ) 。 ま た大沢 らによ っ て報告 されている リ ポ ソ ームへの保持効率の高い凍結乾燥法 ( Chem. Pharm. Bull. 32, 2442-2445, 1984) と凍結融 解法 ( Chem. Pharm. Bull. 3^, 2916 -2923, 1985 ) を使 用する こ と もでき る 。
このよ う に調製さ れた リ ボ ソ ームは、 透析法 ( J . Pha rm. Sci. 71» 806-812, 1982 ) やポ リ カーボネー ト膜を 用いたろ過法 ( Biochim. Biophys. Acta 557, 9 - 23, 19 79 ; Biochim. Biophys. Acta 601, 559 - 571, 1980 ) によ り 、 粒子径を一定にする こ とができ る 。 ま た調製さ れた リ ボ ソ ーム溶液か ら、 リ ボ ソ ーム内に保持さ れなかっ た 薬物を除 く ためには、 透析法、 ゲルろ過法、 遠心分離法 を利用する こ とができ る ( リ ボ ソ ーム . "脂質の化学" [日 本生化学会編、 生化学実験講座 3 ]、 東京化学同人、 1 97 4 ) 。 更にま た透析膜を用いて リ ボ ソ ームを濃縮する こ と も可能であ る 。
こ のよ う に して調製さ れる リ ボ ソ ーム分散液には、 製 剤設計上必要な添加剤と して、 防腐剤、 等張化剤、 緩衝 剤、 安定化剤、 可溶化剤、 吸収促進剤等の各種の公知物 質を適宜配合する こ とができ、 ま た必要に応 じてこ れ ら の添加物を含む液ま たは水で希釈する こ と もでき る 。 上 記添加剤の具体例と しては、 防腐剤と しては塩化ベ ンザ ルコニゥム、 塩化べ ンゼ トニゥ ム、 ク ロ 口へキシ ジ ン、 パラベ ン類 (メ チルパラ ベン、 ェチルパラベン等) 、 チ メ ロサール等の真菌および細菌に有効な防腐剤を、 等張 化剤と しては D —マ ンニ ト ール、 D — ソ ノレビ ト ール、 D - キシ リ ト ール、 グ リ セ リ ン、 ブ ドウ糖、 マル ト ース、 庶糖、 プロ ピ レ ング リ コ ール等の多価アルコール類や塩 化ナ ト リ ウ ム等の電解質類を、 ま た安定化剤と しては ト コ フ ェ ローノレ、 ブチルヒ ドロキシァニソ一ノレ、 ブチルヒ ドロキシ トルエ ン、 エチ レ ン ジァ ミ ン四酢酸塩 ( E D T A ) 、 システィ ン等をそれぞれ例示でき る。 ま た、 本発明の H A結合性ペプチ ドからな る上記 リ ポ ソ ームの内部には、 例えば抗ウィ ルス剤等の他の薬剤を 更に封入させる こ とができ、 同様に リ ボ ソーム製剤 とす る こ とができ る。
リ ボ ソ ーム製剤の製造は、 具体的には例えばゥ ッ ド レ Long Circulating Liposomes: old drugs, New the rapeutics. , M. C. oodle, G. Storm, Eds : Springer- Ver lag Berlin (1998)) ま たはナ ンノ ら ( Liposomal appli cations to cancer therapy, Y. Namba, N. Oku, J . Bioac t. Compat. Polymers, 8, 158 - 177 ( 1993 )) の文献に記載 される方法に従っ て調製する こ とができ る。 ま た本発明 に関する リ ボ ソーム製剤の具体例は、 例えば後記実施例 9 に示されている。
上記 リ ポ ソ一ム製剤を含む本発明の薬学的組成物中の H A結合性ペプチ ドの量と しては、 特に限定されず広範 囲に適宜選択されるが、 通常組成物中 0 . 0 0 0 2 〜 0 2 ( w/ v % ) 程度、 好ま し く は 0 . 0 0 1 〜 0 . 1 ( w / V % ) 程度とする のがよい。
本発明のィ ンフルェ ンザウ ィ ルス · へマグルチニ ン結 合阻害剤並びに薬学的組成物は、 有効成分と しての H A 結合性べプチ ドと薬学的に許容される担体を含有する製 剤組成物と して、 イ ンフルエ ンザウイ ルスに感染若 し く は感染前の被験者に投与される。
上記阻害剤並びに薬学的組成物の投与方法は特に制限 はな く 、 各種製剤形態、 患者の年齢、 性別、 その他の条 件、 疾病の重篤度等に応じて適宜決定される。 製剤形態 と しては注射剤、 点滴剤、 点鼻剤及び吸入剤等の非経口 投与形態を好適に挙げる こ とができ、 特に注射剤や点滴 剤と して調製される場合は、 必要に応じてブ ドウ糖ゃァ ミ ノ酸等の通常の補液と混合して静脈内投与されるか、 また筋肉内投与、 皮内投与、 皮下投与も し く は腹腔内投 与される。
本発明のィ ン フ ノレエ ンザゥ イ ノレス · へマグルチニ ン結 合阻害剤乃至は薬学的組成物の 1 日 当 りの投与量は、 被 験者の症状、 体重、 年齢、 性別等によ って異な り一概に 決定できないが、 H A結合性ペプチ ドの量に換算して通 常成人 1 日 当 り約 0 . 0 0 1 〜 1 0 0 m g程度の範囲か ら選ぶこ とができ る。 当該製剤は 1 日 1 回投与に限らず 数回に分けて投与する こ とができる。 発明を実施するための最良の形態 以下、 本発明の説明のために実施例を記載するが、 当 該実施例はなんら本発明の技術的範囲を制限する も ので はない。 当業者は本明細書の記載に基づいて容易に本発 明に修飾、 変更を加え る こ とができ、 それ ら はいずれも 本発明の技術的範囲に含まれる 。 参考例 1 フ ァ ー ジディ スプレイ ラ イ ブラ リ 一の調製 西、 佐谷 らの報告 ( Nishi T. , Saya H. , et al. , FEB S Lett, 319, 237-240 ( 1996 )) に従っ てフ ァ ー ジデイ ス プレイ ライ ブラ リ ーを作成 した ( 2.5 X 108ク ロ ー ン) 。 該フ ァ ージディ スプレイ ラ イ ブラ リ 一 は、 具体的には N N K ( Nはアデニ ン ( A ) 、 シ ト シ ン ( C ) 、 グァニ ン ( G ) 、 チ ミ ン ( T ) のいずれかの核酸塩基を示 し、 K はグァニ ン ( G ) 又はチ ミ ン ( T ) を示す。 ) が 15回繰 り 返された配列を含む D N Aが遺伝子工学的に挿入され た繊維状フ ァ ー ジ f dであ っ て、 更に外殻タ ンパク 質 p III遺伝子の N末端部分に 15残基のラ ンダムなア ミ ノ 酸配 列か らな るぺプチ ドをコ 一 ドする D N Aが挿入さ れて フ ァ 一 ジ外殻表面にラ ンダムな 15残基のァ ミ ノ 酸配列を有 するぺプチ ドが発現でき る よ う に構築さ れている 。
上記のフ ァ ー ジディ スプレイ ラ イ ブラ リ 一は、 ス コ ッ 卜 ら(Scott, J. K. and Smith, G. P. , Science, 249, 386 - 390 (1990))によ り 報告さ れてい る特徴を有 している。 参考例 2 ィ ンフノレエ ンザゥイ ノレス · へマグルチニ ンの 固定化
イ ンフノレエ ンザゥ イ ノレス · へマグルチニ ンをバイ オノ、。 ニ ングのタ ーゲ ッ ト と して用いる ために、 次の よ う に し て固定化 した。
なお、 固定化するへマグルチニ ン ( H A ) と して、 A 型の H 1 亜型であ る A/PR/8/34(HlNl) (以下、 単に H I 若 し く は H 1 N 1 と も称する。 ) のエーテル抽出物、 及 び A型の H 3 亜型であ る A/武漢 /359/95CH3N2) (以下、 単に H 3若 し く は H 3 N 2 と も称する 。 ) のエーテル抽 出物を用いた。
まず、 96穴カルボプレー ト (SUMIL0N社製) の各ゥエル に、 E D C ( l-ethyl-3-(3-dimethylaminopropyl)carbo diimide) および N — ヒ ド ロキシス ク シイ ミ ドの等量混合 液 60 1を添加 して、 プレー ト に結合 したカルボキシル基 を活性化させた。 10分後に該プレー ト のゥエルを 50m M T B S緩衝液 (pH7.6) で 6 回洗浄 し、 H 1 N 1 の溶液 (70 1/ml) ま たは H 3 N 2 溶液 (70;i l/ml) を ΙΟΟμ Ι 添加 した。 2 時間放置 した後、 50 m M T B S緩衝液 (pH7.6) で 6 回洗浄 し、 I m Mエタ ノ ールァ ミ ン水溶液 を 100// 1添加 した。 10分放置 した後、 再度 50m M T B S 緩衝液 ( pH7.6) で 6 回洗浄 し、 プレー ト にイ ン フ ルェ ン ザ H Aを固定化 した (図 1 参照) 。
実施例 1 イ ンフルエ ンザ H A ( H I ) 結合性ペプチ ド の選別及びその同定
( 1 ) H A結合性ペプチ ドディ スプ レイ フ ァ ー ジの選別 ( i ) ノ ィ ォバニ ング一第 1 回 目 一
H A固定化プレー ト と して参考例 2 で調製 した H A (H1N1) 固定化プレー ト を使用 し、 該プレー ト に参考例 1 で調製 したフ ァ ー ジディ スプレイ ラ イ ブラ リ ー溶液 (6.2x l01 D T U、 T B S緩衝液中) を 100^ 1 イ ン ジ ェ ク 卜 し、 室温で 4 時間放置 した。 その後、 200 1の溶出 用緩衝液 (50mM Tris-HCl、 150mM NaCl) を用いて、 よ く ピベ ッ テ ィ ングしながら 5 回洗浄 し、 結合 していない非 特異フ ァ ー ジを除去 した。 次いで、 各ゥエルに 10m Mの シァノレ酸誘導体 7- F- Neu5Ac2en溶液ま たは 10m Mのガング リ オ シ ド G M 3 溶液を 100 1添加 し、 室温で 1 時間放置 した。
なお、 シアル酸誘導体 7- F- Neu5Ac2enは、 へマグルチ二 ン、 特に H I N 1 への シアル酸含有糖鎖の結合を阻害す る能力を有する H A阻害剤であ り 、 ま たガング リ オ シ ド G M 3 は、 へマグルチニ ンの受容体結合ポケ ッ 卜 に対 し て特異的結合性を有する特異的な H A受容体物質であ る こ とが、 本発明者 ら によ っ て確認さ れている (T. Saito, et al. , Chem. Lett. , 145 ( 1999 ) ) 0 こ のため、 フ ァ ー ジを結合させたプレー ト のゥエルに、 上記のよ う に H A阻害剤ま たは H A受容体物質を添加する こ と によ り 、 ィ ンフルェ ンザウィ ルスのへマグルチニ ン受容体結合ポ ケ ッ ト に特異的に結合 している フ ァ ー ジを溶出する こ と ができ る。
か く して、 H A結合性フ ァ ー ジを溶出 し、 該フ ァ ー ジ を含む溶液を回収 した。
得 られたフ ァ ー ジ溶液に調製済み大腸菌 K91 -Kan溶液 1 ΟΟ z lを加え、 15分間室温で感染させた。 15分後、 あ らか じめ 37°Cで保温 しておいた、 0.2 /ml テ ト ラサイ ク リ ン ( シグマ社製) (以下、 T C とい う ) を含む N Z Y培 地 20m lに こ の感染溶液を加えて、 37 °Cで 40分間振盪培養 した。
40分後、 T Cのス ト ッ ク溶液 (20mg/ml) 20 1をカロえ (終濃度 20 z g/ml) 、 37°Cで一晚振盪培養 した。 得 られ た培養液を 3, OOOrpmで 10分間遠心 して大腸菌を除去 した。 上清を再度 12, OOOrpmで 10分間遠心 して更に大腸菌を除去 した。 上清に P E G / N a C 1 溶液 3 m l ( 0.15 v/v) を 加え、 100回穏やかに攪拌 した後、 4 °Cで 4 時間以上静置 した。 12, OOOrpmで 10分間遠心 して上清を除去 し、 沈殿 し たフ ァ ー ジペ レ ッ ト に l m l T B S を加えて完全に溶解 した。 得 られたフ ァ ー ジ溶液を 1 · 5ml容 エ ツ ペ ン ドルフ チュ ーブ ( E p チュ ーブ) に移 し、 15, OOOrpmで 10分間遠 心 して不溶物を除去 した。 こ の中に再び P E G Z N a C 1 溶液を 150 1加え、 数回穏やかに攪拌 した後、 4 °Cで 1 時間以上静置 した。 15, OOOrpmで 10分間遠心 してペ レ ツ ト を回収 し、 0.02% N a N 3/ T B S ( 200 1) に溶解 した。 15, OOOrpmで 10分間遠心 して、 不溶物を除去 し、 上 清のフ ァ ー ジ溶液 (200// 1) を 0.6m 1 容 Epチュ ーブに移 した。 こ う して得 られたフ ァ ー ジ溶液の半分を 2 回以降 のバニ ングに、 ま た 2 1 を titeringに使用 し、 残 り を 保存 した。
(ii) バイ ォバニ ング一第 2 回 目 一
参考例 2 で作成 した H A ( H1N1) 固定化プレー ト に、 増幅 したフ ァ ー ジディ スプ レイ ラ イ ブラ リ ー溶液を 100 1 イ ン ジ ェ ク ト し、 室温で 4 時間放置 した。 その後 200 1の溶出用緩衝液 ( 50m Tris - HC1ヽ 150mM NaCl) を用い て、 よ く ピベ ッ テ ィ ング しなが ら 10回洗浄 し、 結合 して いない非特異フ ァ ー ジを除去 した。 次いで、 各ゥエルに 10m Mシァル酸誘導体 7- F- Neu5Ac2en溶液ま たは 10 m M G M 3 溶液を 100〃 1添加 し、 室温で 1 時間放置 し、 イ ン フルェ ンザ H Aの結合ポケ ッ ト に特異的に結合 している フ ァ ー ジを溶出 し、 その溶液を回収 した。
(iii) バイ オバニ ング—第 3 回 目 一
H A ( H1N1) 固定化プ レー ト に、 増幅 したフ ァ ー ジデ イ スプレイ ラ イ ブラ リ ー溶液を 100 1 イ ン ジ ェ ク ト し、 室温で 1 時間放置 した。 その後 200 1の溶出用緩衝液
( 50mM Tris - HC1、 300raM NaCl) を用いて、 よ く ピぺ ッ テ イ ングしなが ら 10回洗浄 し、 結合 していない非特異フ ァ ー ジを除去 した。 次いで、 各ゥエルに 10m M シアル酸誘 導体 7- F- Neu5Ac2en溶液ま たは 10m M G M 3溶液を 100^ 1添加 し、 室温で 1 時間放置 し、 イ ン フルエ ンザ H Aの結 合ポケ ッ ト に特異的に結合 している フ ァ ー ジを溶出 し、 その溶液を回収 した。
(iv) バイ オバニング一第 4 回 目 一
H A ( H1N1) 固定化プ レー ト に、 増幅 したフ ァ ー ジデ イ スプレイ ラ イ ブラ リ ー溶液を 100 1イ ン ジ ェ ク ト し、 室温で 1 時間放置 した。 その後 200 1の溶出用緩衝液 ( 50mM Tris-HCK 300mM NaCl) を用いて、 よ く ピぺ ッ テ イ ング しなが ら 10回洗浄 し、 結合 していない非特異フ ァ ー ジを除去 した。 次いで、 各ゥエルに 10 Mシアル酸誘 導体 7- F_Neu5Ac2en溶液ま たは G M 3溶液を 100 1添加 し、 室温で 30分間放置 し、 イ ン フルエンザ H Aの結 合ポケ ッ ト に弱 く 結合 している フ ァ ー ジを溶出 した。 次 いで、 各ゥエルに 10m Mシァル酸誘導体 7- F_Neu5Ac2en溶 液ま たは 10 m M G M 3 溶液を 100 1添加 し、 室温で 1 時 間放置 し、 H Aの結合ポケ ッ ト に特異的に結合している フ ァ ー ジを溶出 し、 その溶液を回収 した。 (V) ノくィ ォバニ ング一第 5 〜 7 回 目 一
( iv) に記載の操作を繰 り 返 して、 第 5 回 目、 第 6 回 目及び第 7 回 目のバイ オバニ ングを行っ た。 上記バニ ング操作 (第 1 〜 7 回 目 ) によ っ て得 られた 結果 ( フ ァ ー ジの回収率) を、 溶出用物質 (7-F- Neu5Ac 2en、 G M 3 ) の種類別に表 1 及び 2 に示す。
【表 1 】
<H1-7F> 固定化ウィルス : A/PR/8/34(HlNl)
溶出用物質 : シアル酸誘導体 7- F-Neu5Ac2en
ハ。ニンク"回数 使用 7了-シ"量 回収ファ -シ"量 7ァ-シ '、回収率
(TU) (TU) (%)
1回目 6.2X10" 7.7X107 .0.12
2回目 2.6X1012 1. lxlO7 0.0044
3回目 2.6X1013 2.9X108 0.0011
4回目 8.7X1013 8.7X108 0.0010
5回目 1.7X1013 2.5X109 0.015
6回目 5. lxlO11 2.8X109 0.55
7回目 1.5X1012 8.2 x10s 0.055 【表 2 】
<H1-GM3> 固定化ウィルス: A/PR/8/34CH1N1)
溶出用物質 :カ"ン Γリオシ GM3
Figure imgf000046_0001
いずれの場合 も、 1 回 目力、 ら 4 回 目 にかけてのパニ ン グは、 サイ ク ル毎にバニ ングの条件を厳 し く している た め高い回収率の増加は認め られなかっ たが、 同一条件で ノ、。ニ ングを繰 り 返 した 4 回 目か ら 6 回 目 にかけて、 フ ァ ー ジの増加がみ られた。 こ れによ り 、 イ ンフルエ ンザゥ ィ ルス · へマグルチニ ン ( H1N1) に特異的に結合するぺ プチ ドを発現 している フ ァ ー ジが回収されている こ とが 確認された。
( 2 ) H A結合性ペプチ ドのア ミ ノ 酸配列の決定 上記各バニ ングにおいて第 6 回 目 のバニ ング操作で得 られたフ ァ ー ジを用いて、 発現 しているペプチ ドのア ミ ノ 酸配列を決定 した。 具体的には、 固定化へマグルチ二 ン H 1 N 1 に結合 し 7- F- Neu5Ac2enで溶出されたフ ァ ー ジ (以下、 H 1 / 7 フ ァ ー ジ とい う : 19ク ロー ン) 、 及び 固定化へマグルチニ ン H 1 N 1 に結合 しガング リ オ シ ド G M 3 で溶出 されたフ ァ ー ジ (以下、 H 1 Z 3 フ ァ ー ジ とい う : 20ク ロー ン) の 2 種類の フ ァ ー ジについて、 発 現ぺプチ ドのア ミ ノ 酸配列をシー ク ェ ンスによ っ て決定 した。
まず、 6 回 目のバニ ングの後のタ イ タ ー測定で得 られ たプレー ト上の コ ロニーをそれぞれ 50コ ロニーずつ、 無 作為に拾い上げ、 新 しい N Z Yプレー ト に、 植菌 し直 し、 一晩 37°Cにて培養 し、 これをマスタ ープレー ト と して 4 °Cで保存した。 マスタ 一プレー ト の コ ロニーを各々 20ml の N Z .Y培地 (20 g/ml T C含有) の入っ た 50ml遠心チ ユ ーブに懸濁 し、 37°Cで一晚 200rpmで振盪培養 した。 つ いで 3, 000rpm、 10分間遠心分離を行っ た後、 上清をォー ク · リ ッ ジ遠心チュ ーブに移 し、 12, OOOrpmで 10分間遠心 分離 し、 大腸菌を除菌 した。 更に上清をオー ク · リ ッ ジ 遠心チュ ーブに移 し、 3 m 1のポ リ エチ レ ング リ コ ール ( P E G 6000 : ナカ ラ イ テス ク 社製) /NaClを加え、 よ く 撹拌 した後、 4 °Cに 4 時間静置 した。 12, OOOrpmで 10分 間遠心分離 し、 フ ァ ー ジを沈殿させた。 ついで上清を除 去 し、 沈殿 したフ ァ ー ジを 1 mlの T B S ( ト リ ス'緩衝塩 溶液) に懸濁させた。 1.5mlの Eqチユ ーブに移 し、 15, 00 Orpmで 10分間遠心分離 し、 不溶性物質を除去後、 上清を 別の Eqチュ ーブに移 し、 150 1のポ リ エチ レ ング リ コー ル Z NaClを加え、 よ く 撹拌 した後、 4 °Cで 1 時間静置 し た。 次いで 15, OOOrpmで 10分間遠心分離 し、 フ ァ ー ジを再 沈殿させた。 ついで上清を除去 し、 沈殿 した フ ァ ー ジを 1の T B Sで再度懸濁 した。 15, OOOrpmで 10分間遠心 分離 し、 不溶性物質を沈殿させた後、 該沈澱物を 0.5mlの Eqチユ ーブに移 し、 フ ァ ー ジ ク ロー ンを 4 °Cで保存 した。
上記で得 られたフ ァ ー ジク ロー ンか らの D N Aの抽出 は、 1.5m lの Eqチ ュ ーブにフ ァ 一ジ ク ロー ン 100 1に対 して T B S 100 1及び T E飽和フ ヱ ノ 一ノレ (ニ ッ ポ ジ一 ン社製) 200 z lを加えて、 10分間激 し く 撹拌後、 15, 000 rpmで 10分間遠心分離 した。 次いで、 上清 (水相) 200 / 1に対 して T E飽和フ エ ノ 一ル 200 l及びク 口 ロ ホノレム 2 00 1を加えて、 前記と同様 10分間激 し く 撹拌後、 15, 00 Orpmで 10分間遠心分離 した。 更に、 上清 (水相) 150 1 に対 して Τ Ε 250μ 1、 3 Μ酢酸ナ ト リ ウ ム 40 1、 20mg/ ml グ リ コーゲ ン (ベ一 リ ンガー ' マイ ン ノヽィ ム社製) 1 1及びエタ ) ール 1 m 1を加えて、 1.5 m 1の Eqチュ ーブ にて— 20°Cで、 一時間放置 した後、 15, OOOrpmで 10分間遠 心分離 した。 上清を取 り 除き 、 1 mlの 80%エタ ノ ール ( - 20°C ) を緩やかに加えて、 15, OOOrpmで 10分間遠心分 離し残存する塩を除いた。 上清を除去後、 チュ ーブ内の 水分を蒸発させ、 沈殿 している D N Aを 10 1 の滅菌蒸 留水に溶解 し、 4 °Cにて保存 した。 か く して得 られた個 々 の フ ァ 一 ジ D N Aをぺプチ ドの配列決定のために使用 し " o
フ ァ ー ジ D N Aによ り コ ー ドされる ペプチ ドの配列決 定は、 ジデォキシ法 ( Proc. Natl. Acad. Sci. , USA., 74, 5463-5467( 1977 )) によ り 、 アマ シ ャ ム社の THERMO配列 キ ッ 卜 (Amersham Life Sciene, Code; US79765, Lot番 号; 201503) を用いて機器の使用説明書に従い実施 した。 D N Aの伸長反応は、 96°C、 30秒、 45°C、 15秒、 60°C、 4分を 1 サイ クルと して これを 30サイ ク ル行い、 D N A の配列決定は、 A B I 社製の D N A シーケ ンサー (ABI PRISMTM377) を用いて行っ た。
こ のよ う に して 2 種類の フ ァ ー ジ ( H 1 / 7 フ ァ ー ジ、 及び H 1 Z 3 フ ァ ー ジ) の各ク ロー ンか ら決定された、 へマグルチニ ンの受容体結合ポケ ッ ト に結合性を有する ぺプチ ドのァ ミ ノ 酸配列を 1 文字表記と して表 3 に示す c なお、 下記表記載の各ア ミ ノ 酸配列を後記配列表に、 配 列番号 1 (No.1及び 5) 、 2 (No.2) 、 3 (No.3) 、 4
(No.4) 、 5 (No.6) 及び 6 (No.7) と してそれぞれ記 載する。
【表 3 】
Figure imgf000050_0001
なお、 各フ ァ ー ジにおいて表に記載 しなかっ た残 り の ク ロー ンは、 いずれ も ラ ンダムに配列が欠損 してい るか も し く は配列解読が不能な ものであ っ た。
表からわかる よ う に、 フ ァ ー ジ H 1 7並びにフ ァ ー ジ H 1 / 3 はいずれも、 複数のク ロ ー ン間で共通のア ミ ノ 酸配列が見 られた。 さ ら に、 各フ ァ ー ジ間で比べる と フ ァ ー ジ H 1 ノ 7 と フ ァ ー ジ H 1 / 3 間で共通の配列 (No. 1 と No. 5 ) が見 られた。
なお、 H A受容体物質であ る ガング リ オシ ド G M 3 は へマグルチニ ン H 1 に対 して高い親和性を有 し、 ま た H A阻害剤であ る 7F-Neu5Ac2enはへマグルチニ ン H 1 に対 して高い阻害能を有する こ とが知 られている。 実施例 2 H A結合性べプチ ドのィ ン フ ルェ ンザ · へマ グルチニ ンへの結合性
実施例 1 で得 られたフ ァ ー ジをク ロ ーニ ン グ し、 得 ら れた発現ペプチ ドについて、 へマグルチニ ンに対する結 合性 E L I S Aを用いて評価 した。
具体的には、 まずへマグルチニ ン (H1N1) を 96穴カル ボプレー ト ( SUMIL0N社製) に、 参考例 2 に記載する方法 に従っ て固定化 した。 固定化後、 プレー ト の各ゥエルに 1 % B S A ( Alubumine Bovine, Fatty Acid Free: Sig ma製) を含有する T B S を 100 1添加 し、 室温で 1 時間 放置 した。 こ こ に増幅さ せたフ ァ ー ジの溶液 ( H 1 Z 7 フ ァ ー ジ : グロ ー ン No. 1 〜 4 、 H 1 / 3 フ ァ ー ジ : ク ロ ー ン No. 5 〜 7 ) を 50 1添加 し、 室温で 1 時間放置 した。 各ゥエルを T B S T ( T B S / 5 % Tween20) で 5 回洗浄 後、 T B S / 5 % B S Aを 150 1添加 し、 室温で 1 晚放 置 した。
次 ヽで、 各ウ エノレに抗 id Bacteriophage抗体/ T B S 溶液 ( 1 / 1000希釈) を 150 z l添加 し、 室温で 1 晚放置 し た後、 T B S Tで 5 回洗浄 した。 次いで、 各ゥエルに、 抗 - Rabbit IgG Peroxidase Conjugate抗体/ T B S溶液 ( 1/ 1000希釈) を ΙΟΟμ Ι添加 し、 室温で 1 晚放置 した後、 T B S Tで 5 回洗浄 した。
各ウ エノレにヽ 基質溶液 ( 0.4mg/ml o-pheny lendiamine substrate in citrate-phosphate buffer ( pH 5.0)) ¾: IOO I添加 し、 10分間反応させた後、 3 N H 2 S 0 4を 10 0 1ずつ加えて反応を停止さ せ、 マイ ク ロプ レー ト · リ ーダ一で 492nmの吸収を測定 した。
へマグルチニ ン ( H1N1) をタ ーゲ ッ ト と してバニ ング された H I フ ァ ー ジ ( H I ノ 7 フ ァ ー ジ及び H 1 / 3 フ ァ 一 ジ) について、 へマグルチニ ン H 1 に対する結合性 を調べた結果を図 2 に示す。
図 2 か らわかる よ う に、 H 1 Z 7 フ ァ ー ジのク ロ ー ン No.1 (図 2 において〇で表示、 以下 「H1- 1」 と称す る。 ) 及び H 1 Z 3 フ ァ ー ジの ク ロ ー ン No.6 (図 2 にお いて八で表示、 以下 「Η1-2」 と称する 。 ) が、 へマグル チニ ン H 1 に対 して高い結合性を示 した。
これは、 本発明においてへマグルチニ ンの認識部位 (受容体結合ポケ ッ ト ) に対 して特異的に結合するぺプ チ ドを発現する フ ァ ー ジが選択さ れた こ とを示す。 実施例 3 2 種の亜型を認識する H A結合性べプチ ドの 選択
実施例 1 に従っ て、 イ ンフルエ ンザウイ ルス · へマグ ルチニ ン H I (H1N1、 A/PR/8/34) 及び H 3 (H3N2、 A/武 漢 /359/95) の 2種類をタ ーゲ ッ ト と して、 バイオパニン グを行っ た。 具体的には、 H A固定化プレー ト と して参 考例 2 に従っ て調製 した H 1 固定化プ レー ト及び H 3 固 定化プレー ト を用いて、 ま た溶出用物質と して H A受容 体物質であ る シァ リ ル LewisX及び α ( 2→ 6 ) G M 3 を 用いて、 実施例 1 と同様に してバイ オバニ ングを行い、 Η Α結合性ペプチ ドを発現する フ ァ ー ジを選択 した。 か かるバイ オバニ ング選択によ っ て得 られた代表的な フ ァ 一ジの ク ロ ー ンについて、 その発現べプチ ドのァ ミ ノ 酸 配列をシー ク ェ ンス した結果を表 4 に示す。
【表 4 】 フアーシ、、クローン 発現べプチドのァミノ酸配列 対応する
配列番号
「Α- 1」 ARL S PTMVHPNGAQP 7
「Β - 1」 GRVPVFGLSPLFKVE 8
「Β- 2」 GRPPD SVFRSRGWL S 9
「C- 1」 I D I AF S S L AL AD I SR 10
「C- 2」 EPYGF I AFSRAAHSP 11 ク ロ ー ン 「 A — 1 」 は、 下記の表 5 に示す全てのパ ング系で選択された フ ァ ー ジ ク ロー ンに認め られた。 【表 5 】
Figure imgf000054_0001
ク ロー ン 「 Β — 1 」 は、 バニ ング系 「 Η 1 G Μ」 で 選択された 9 ク ロー ンの う ち 2 ク ロー ンに認め られた。
ク ロ ー ン 「 Β — 2 」 は、 バニ ング系 「 Η 3 Ζ X」 で選 択された 1 0 ク ロ ー ンの う ち 1 ク ロ ー ンに認め られた。
ク ロー ン 「 C — 1 」 は、 バニ ング系 「 Η 1 Z G Μ」 で 選択された 9 ク ロ ー ンの う ち 1 ク ロー ン、 及びバニ ング 系 「 H 3 Z G M」 で選択された 1 0 ク ロー ンの う ち 1 ク ロ ー ンに認め られた。
ク ロ ー ン 「 C — 2 」 は、 バニ ング系 「 H 1 / G M」 で 選択された 9 ク ロ ー ンの う ち 1 ク ロー ン、 及びバニ ング 系 「 H 3 / X」 で選択された 1 0 ク ロ ー ンの う ち 4 ク ロ 一ンに認め られた。
上記で示すよ う に、 ク ロー ン 「 A — 1 」 は、 夕 一ゲ ッ ト及び溶出用物質を種々 異に した全てのバニ ング系か ら 選択された。 溶出用物質を異に したバニ ングでこの よ う に同一の配列を有するぺプチ ドを発現する ク ロー ンが得 られた こ とか ら、 当該ク ロ ー ン 「 A — 1 」 の発現べプチ ドは、 H A受容体物質であ る シァ リ ル LewisX及び α ( 2 → 6 ) G M 3 が有するへマグルチニ ンに対する結合サイ ト ( N e u A c が関与 してい るサイ ト ) と同一の結合サ イ ト を有 し、 これ らの受容体物質と 同 じ結合様式を も つ たぺプチ ドであ る と考え られる。
ま た、 ク ロ ー ン 「 B — 1 」 及び 「 B — 2 」 の発現ぺプ チ ドは共通のモチーフ と して G R x P ( X は、 V又は P を意味する ) を有 してお り 、 ま たク ロ ー ン 「 C — 1 」 及 び 「 C 一 2 」 の発現ペプチ ドは共通のモチーフ と して I A F S X y A ( x は S又は Rを、 ま た y は L又は Aをそ れぞれ意味する ) を有 していた。 実施例 4 H A結合性べプチ ドのィ ン フルェ ンザ · へマ グルチニ ンへの結合性
実施例 1 及び実施例 3 で得 られたフ ァ ー ジク ロー ン 「 H 1 — 1 」 、 「 H 1 — 2 」 、 「 A— 1 」 、 「 B — 1 」 . 「 B — 2 」 、 「 C — 1 」 及び 「 C — 2 」 について、 へマ グルチニ ン ( H 1 、 H 3 ) に対する結合性を、 実施例 2 に準 じて E L I S Aを用いて評価 した。
具体的には、 へマグルチニ ン H 1 ( H1N1) 及び H 3 ( H3N2) 、 並びに レ ク チ ンの 1 種であ る小麦胚ァグルチ ニ ン ( WGA: Wheat Germ Agglutinin) をそれぞれ 96穴力 ルポプ レー ト (SUMIL0N社製) に固定 し、 これ らに各フ ァ — ジ ク ロ ー ン溶液 S x lO virions/mlを添加する こ と によ つ て、 E L I S Aを行っ た。
結果を図 3 に示す。 図 3 力、 らわかる よ う に、 実施例 1 で得 られたク ロー ン 「 H 1 — 1 」 及び 「 H 1 — 2 」 はへ マグルチニ ン H 3 に殆ど結合せず、 へマグルチニ ン H 1 に対 して特異的な結合性を示すのに対 して、 実施例 3 で 得 られた ク ロ ー ン 「 A— 1 」 、 「 B — 1 」 、 「 B — 2 」 、 「 C — 1 」 及び 「 C — 2 」 はいずれ もへマグルチニ ン H 1 及び H 3 の両方に共通 して結合する とい う 結果が得 ら れ o
へマグルチニ ン H 1 と H 3 はア ミ ノ 酸配列において 7 5 %相違する こ とが知 られている。 こ の こ とか ら、 ク ロ ー ン 「 A - 1 」 、 「 B - 1 」 、 「 B — 2.」 、 「 C 一 1 」 及び 「 C 一 2 」 の各発現ペプチ ドは、 へマグルチニ ン H 1 と H 3 の両者間で相同性の高い部位を認識 して、 そ こ に特異的に結合する もの と考え られる 。 実施例 5 HA結合性べプチ ドの抗 GM3抗体への結合性
実施例 1 及び実施例 3 で得 られた フ ァ ー ジク ロー ン 「 H 1 — 1 」 、 「 H 1 — 2 」 、 「 A— 1 」 、 「 B - 1 」 、 「 B — 2 」 、 「 C — 1 」 及び 「 C 一 2 」 について、 抗 G M 3抗体に対する結合性を実施例 4 に準 じて E L I S A を用いて評価 した。 具体的には、 E L I S Aは、 抗 G M 3抗体 (M2590、 日本バイ オテス ト研究所) を 96穴カルボ プレー ト (SUMIL0N社製) に固定 し、 これ ら に各フ ァ ー ジ ク 口一ン溶液 5x lO virions/mlを添加する こ とによ つ て 行つ た。
結果を図 4 に示す。 図 4 ( a ) 及び ( b ) か らわかる よ う に、 実施例 1 で得 られた ク ロー ン 「 H 1 — 1 」 及び 「 H 1 — 2」 は抗 G M 3 抗体に殆ど結合 しないのに対 し て、 実施例 3 で得 られた ク ロ ー ン 「 A — 1 」 、 「 B — 1 」 、 「 B — 2 」 、 「 C — 1 」 及び 「 C 一 2 」 はいずれ も抗 G M 3抗体に対 して特異的に結合する こ とが認め ら れ 7こ
こ の こ とか ら、 ク ロ ー ン 「 A — 1 」 、 「 B — 1 」 、
「 B — 2 」 、 「 C — 1 」 及び 「 C — 2 」 の各発現べプチ ドは、 G M 3 の シアル酸を含む構造を模倣する配列を有 する こ とが示唆された。 実施例 6 フ ァ ー ジ ク ロ ー ンによ る 、 ガング リ オ シ ド G M 3 に対する へマグルチニ ンの結合阻害
実施例 1 及び実施例 3 で得 られたフ ァ ー ジ ク ロ ー ン
( 「 H 1 — 1 」 、 「 H 1 — 2 」 、 「 A — 1 」 、 「 B — 1 」 、 「 B — 2 」 、 「 C 一 1 」 、 「 C — 2 」 ) によ っ て、 ガング リ オ シ ド G M 3 に対するへマグルチニ ンの結合が 阻害されるかどう かを常法に従っ て実験する こ と によ つ て調べた ( 「ガング リ オ シ ド研究法 I 」 鈴木康夫 · 安藤 進、 編著、 学会出版セ ンタ ー、 1995年) 。 なお、 へマグ ルチニ ン と して H I ( H1N1) 及び H 3 ( H3N2) を用いた。
具体的には、 96穴マイ ク ロ タ イ タ ープレー ト上に 10 ; 1 の G M 3溶液 ( 8.5 g/ml メ タ ノ ール溶液) を加えた 後、 50 1の 0.08% ポ リ イ ソ プチノレメ タ ク リ レー ト溶液 を加えた。 溶媒を ドラ イ ヤーで蒸散させ、 50 1の 1 % B S A Z T B S を添加 して 4 °Cでー晚放置 した。 T B Sで プレー ト を 3 回洗浄 した後、 所定濃度の フ ァ ー ジ ク ロ 一 ン (表 6参照) とへマグルチニ ン (系内のへマグルチ二 ン濃度が 30 n Mとな る濃度) 溶液 50 ^ 1を添加 して、 20°C で 2 時間放置 した。 T B S でプレー ト を 5 回洗浄 した後、 プレー ト に結合 しているへマグルチニ ン量を抗体で検出 してその減少量よ り 阻害活性を求めた。 結果 ( I C 5 0 値) を表 6 に示す。 なお、 表中の "nd" は not detect ed" を意味する。
【表 6 】
Figure imgf000059_0001
表 6 か らゎカヽる よ う に、 フ ァ 一 ジ ク ロー ン 「 A— 1 」 「 C — 1 」 及び 「 B — 2 」 について、 その発現ペプチ ド がへマグルチニ ン H 1 及び H 3 の両方の結合を阻害する こ とを示す結果が得 られた。 こ の結果はこれ ら フ ァ ー ジ ク ロー ンが有するへマグルチニ ンに対する結合特異性と 相関 していた。 実施例 7 脂質によ る フ ァ 一 ジのへマ グルチニ ンに対す る結合阻害 実施例 3 で得 られたフ ァ ー ジ ク ロ ー ン ( 「 A— 1 」 、 「 B — 1 」 、 「 B — 2 」 、 「 C — 1 」 、 「 C - 2 」 ) に ついて、 該フ ァ 一 ジ ク ロ ー ンがへマ グルチニ ン ( H A ) の宿主受容体認識部位を.実際に認識 している こ とを確認 する ために、 実施例 6 に準 じて E L I S Aを用いて、 H A受容体物質であ る G M 3 によ つ て固定化 H Aに対する 上記フ ァ ー ジ ク ロー ンの結合が阻害さ れるかどう かを調 ベた。 なお、 へマグルチニ ン と して H 1 N 1 及び H 3 N 2 をそれぞれ用いた。 ま た比較実験と して G M 3 に代え て G M 1 及び GlcCerを用いて同様に実験を行っ た。
G M 3 によ る 阻害実験の結果を図 5 に、 G M 1 によ る 阻害実験の結果を図 6 に示す。 なお、 各図と も、 a)はへ マグルチニ ン と して H 1 N 1 を、 b)は H 3 N 2 を用いた 結果を示す。
図 5 か らわかる よ う に、 試験 したいずれのフ ァ ー ジ ク ロー ン も、 へマグルチニ ンに対する特異的な リ ガン ド ( H A受容体物質) であ る G M 3 を添加 した時にその結 合が阻害される とい う 挙動が観察さ れた。 これに対 して へマグルチニ ンに特異結合性を も たない G M 1 (図 6 ) 及び GlcCer (結果省略) を添加 して も、 フ ァ ー ジ ク ロ ー ンのへマグルチニ ンへの結合は阻害さ れなかっ た。
これ らの こ とから、 上記フ ァ ー ジ ク ロー ンの発現ぺプ チ ドは、 ィ ン フルェ ンザウィ ルス · へマグルチニ ンの受 容体認識部位に対 して特異的に相互作用する こ と によ つ て、 イ ン フルエ ンザウイ ルスの宿主受容体への結合 (感 染) を特異的に阻害する よ う に働 く こ とが示唆された。 実施例 8 フ ァ ー ジ上に発現 してい る べプチ ドの合成
実施例 1 及び 3 でそれぞれ得 られた フ ァ ー ジ ク ロ ー ン 上に発現 しているべプチ ドを下記のよ う に して合成 した。
なお、 ペプチ ドの合成は、 全自動ペプチ ド合成機 ( AC T357、 ア ドバンス ト ケムテ ッ ク 社製) を使用 し、 同社の プロ グラ ムに従い、 Fmoc/NMP, HOBt法 〔 Fmoc : 9 - フノレ ォ レニルメ ト キ シ カノレポニル、 NMP : N — メ チノレ ピ ロ リ ド ン、 HOBt : 1 — ヒ ド ロ キ シペ ン ゾ ト リ ア ゾ一ノレ〕 に よ る 固相合成によ り 実施 した。
具体的には、 合成を所望するべプチ ドのア ミ ノ 酸配列 に従っ て、 C 末端ア ミ ノ 酸に相当する Fmoc - ア ミ ノ 酸一 Alko樹脂 0.25mmolに、 C末端よ り 2 番 目以降の各ァ ミ ノ 酸に相当する Fmoc - 了 ミ ノ 酸を順次、 合成プロ グラ ムに 従い伸長反応させた。 尚、 C末端ア ミ ドのペプチ ドは、 Fmoc - NH-FAI 封脂 0.25mmolに C 末端ア ミ ノ 酸に相当する Fmoc - 了 ミ ノ 酸を含成プロ グラ ムに従い縮合反応させ、 その後、 C 末端よ り 2 番目以降の各ァ ミ ノ 酸に相当する Fmoc - 了 ミ ノ 酸を順次縮合反応させて鎖伸長を行った。 各反応終了後、 プロ グラ ムに従っ て、 N末端 Fmoc基の 脱保護反応を行っ た。 か く して得 られた各ペプチ ド樹脂 をポ リ プロ ピ レ ン製の ミ ニカ ラ ム (ア シス ト社製) に回 収 し、 メ タ ノ ール洗浄後、 真空で乾燥 し、 以下の操作に 付 してぺプチ ドを樹脂か ら切 り 出 し、 側鎖の脱保護反応 を行っ た。 即ち、 各樹脂に リ ー ジ ヱ ン ト K ( Reagent K, 82.5% TFA, 5 %フ エ ノ ール, 5 % H20, 5 %チオアニソ 一ノレ (Thioanisole) , 2.5%エタ ン ジチォーノレ) 2 m l を加え、 ミ ニカ ラ ム中で 60分間反応させた。 次いで、 反 応液を冷ジェチルエーテル 8 m 1 中に滴下 して反応を停 止させ、 同時にペプチ ドを沈殿させた。 更に、 ミ ニカ ラ ムを T F A 2 m l にて洗浄 し、 冷ジェチルエーテル 5 m 1 を追加 し、 遠心 し、 沈殿をジェチルエーテル 10 m 1 で 4 回洗浄後、 約 5 m l の 50%ァセ トニ ト リ ルでペプチ ド を可溶化 し、 凍結乾燥 した。 更に可溶化と凍結乾燥操作 を 2 回繰 り 返 して、 所望の粗凍結乾燥品を得た。
これをォク タ デシルカ ラ ム (直径 20 X 250 m m, W C社 製) を用いた逆相高速液体ク ロマ ト グラ フ ィ ー (HPLC) によ り 分画 し、 所望のペプチ ドを単離 した。 尚、 上記に おいて用いた樹脂およびア ミ ノ 酸誘導体は、 いずれ も渡 辺化学工業社製の も のであ る。 か く して単離された各ペプチ ドの同定を、 ア ミ ノ 酸配 列分析およびマススぺク ト ロ メ ト リ 一 によ る分子量測定 によ り 行っ た。
尚、 システィ ン残基を有する合成ペプチ ドは所望によ り 環化する こ とができ る 。 具体的には、 ク ロー ン 「 H 1 - 1 」 の発現べプチ ドを例示する と、 当該べプチ ドは次 のよ う に して環化された。
まず、 ペプチ ド 5.0m g ( 3.2 1 ) を 200m M Tris-H CI緩衝液 (pH8.5) ノ T F E (4/1) 5 m 1 に溶解 した (0. 64m M ) 。 反応系を水酸化ナ ト リ ウ ム水溶液を用いて pH 8.5に調整 した後、 酸素雰囲気下、 室温で激 し く 撹拌 し、 S H基を酸化 して分子内 ジスルフ ィ ド結合を形成させた c 反応は H P L C によ り 追跡 し、 約 30時間後、 10%水酸化 ナ ト リ ゥム水溶液を加えて p Hを 7 以上と して反応を停 止させた。 生成物は シ ングル ピー ク と して検出 さ れる。 反応溶液を電気透析装置 (マイ ク ロ ア シラ イザ一 G 1 , 旭化成工業 (株) 製) を用いて脱塩処理を行っ た後、 凍 結乾燥 し、 環状ペプチ ドの白色粉末を得た (収量 : 401m g ( 2.6 mol) 、 収率 : 82% ) 。 実施例 9 リ ポベプチ ド及びこれを用 いたぺプチ ド修飾 リ ポ ソ ーム ぺプチ ドの N末端にステア リ ン酸を結合する こ と によ つ て、 本発明の H A結合性ペプチ ドを リ ボソーム上に導 入する こ とができ る。 一例 と して、 実施例 3 で得 られた ク ロ ー ン 「 A— 1 」 の発現ペプチ ドについて説明する。
まず、 上記実施例 8 に従っ て、 ク ロ ー ン 「 A— 1 」 の 発現ペプチ ド配列 (配列番号 7 ) を順次伸長反応させた。 次いでこ のペプチ ドの N末端に、 同合成プロ グラ ムに従 つ て、 ステア リ ン酸を伸長さ せた後、 樹脂か ら切 り 出 し、 脱保護反応を行っ た。 以下、 実施例 8 に従っ て所望のス テア リ ン酸化ペプチ ド ( 「 C i 8 A- 1リ ポペプチ ド」 ) を得 o
こ の リ ポペプチ ド ( M w : 1840.73) 、 卵黄レ シチ ン ( M w : 773、 日本油脂 NC- 10S) 及びコ レステロール ( M w : 386.66、 Nakarai Chemicals, lot M8A9926 ) をヽ 0. 75 : 2 : 1 ( 20% リ ポペプチ ド) 、 0.3 : 2 : 1 ( 10% リ ポペプチ ド) 又は 0.16: 2 : 1 ( 5 % リ ポペプチ ド) の モノレ比にて、 30m l ナス型フ ラ ス コ 中に、 ク ロ ロ ホノレム /メ タ ノ ール ( 3 Z 1 ) ¾液 2 m l に溶解した。 溶媒を ロ ータ リ 一エバポ レータ ーで減圧条件下に除去 してー晚 真空乾燥 した。 これにダルべ ッ コ ( Dulbecco) の リ ン酸 緩衝塩溶液 (Ca,Mg不含) (pH7.4) を 5 ml加え、 バス型 ソニケ一夕 一で 30分処理 して リ ボ ソ ー ム ( small unilam ellar liposome) を得た。 べシク ルを形成 していない脂 質は、 遠心型限外濾過 ( l, 500 x g、 15分 : 分画分子量 30, 000ヽ Amicon centriprep-50 ) にて除去 した 0
か く して得 られた リ ボ ソ ームについて、 内部に存在す るぺプチ ド含量を市販キ ッ ト ( Bio - Rad Protein Assay Kit) によ り 測定 し、 上記で調製 した リ ポペプチ ドが リ ポ ソームに組み込まれてい る こ とを確認 した。 実施例 10 ペプチ ド修飾 リ ボ ソ ーム
D D P E ( dipalmi toy 1 L- a -phosphatidylethanol a mine:シグマ社) 6.7mg、 N H S — P E G — M a i ( poly (ethylene glycol - a -N- β -maleimide hydroxysuccinim idyl propionate : 曰 、油 リ ボ ソーム社) 45mgヽ 卜 リ エチノレ ァ ミ ン 980 1をク ロ 口 ホルム 10mlに溶解 し、 室温で撹拌 した、 反応を T L C で追跡 し、 ニ ン ヒ ド リ ン反応が陰性 であ る こ とを確認 した後、 溶媒を留去 した。 得られた白 色粘稠体に蒸留水 2 mlを加え、 バス型超音波で処理 し、 ミ セルを形成 した。 こ の溶液を 2 倍体積のセ ロ フ ア ンチ ユ ーブ (分画分子量 12, 000、 サイ ズ : 20/30、 三光純薬 製) に入れ、 透析膜の外の蒸留水 1 L を適宜交換 して、 3 日 間透析を行い、 ミ セルを形成 していない副反応物を 除去 した。 さ ら にゲノレろ過 ( Sephadex G50 Fine, Amers ham Pharmacia Biotech AB) によ り 、 ボイ ド近傍の フ ラ ク シ ヨ ンを回収 し、 凍結乾燥 して、 T L C上で単一バン ドを示す白色粉末と して 目 的の D P P E — P E G — M a
1 を得た。
実施例 9 と 同様に して.調製 した リ ボ ソーム (卵黄 レ シ チ ン /コ レステ ロ一ノレ = 2 / 1 ) と こ の D P P E — P E G - M a I を混合 し、 5 10 20及び 100% D P P E — P E G - M a 1 含有 リ ボ ソームを調製 した。 こ の リ ボ ソ ーム 溶液に 1 N NaOH水溶液を加えて p Hを約 8 と し、 「 A— 1 」 ペプチ ドの C端に H- Gly- Cys- 0Hを付加 してな る本発 明のペプチ ドを所定濃度とな る よ う に混合 して、 室温で 6 時間穏やかに撹拌 し、 実施例 9 と同様に遠心型限外濾 過 して リ ボ ソ ーム溶液と した。 得 られた リ ボソーム上に 導入さ れたべプチ ド含量は実施例 9 と 同様に して測定 し ο
以上のよ う に して、 D P P E — P E G— M a 1 のマ レ イ ミ ドを介 して H A結合性ペプチ ドがシスティ ンの S H 基で結合 してな るぺプチ ド修飾体を リ ポソーム上に導入 し、 ペプチ ド修飾 リ ボ ソ ーム と した。 実施例 11 へマグルチニ ンの G M 3 キ ャ ス ト膜への結合 の阻害評価 実施例 8 に記載する方法によ っ て、 ク ロー ン 「 A— 1 」 の発現ペプチ ドを合成 し、 該合成ペプチ ドについて、 その、 ガング リ オ シ ド G M 3 に対する へマグルチニ ンの 結合の阻害活性を調べた。 具体的には、 固定化 H A ( H 1 N 1 、 H 3 N 2 ) に対する ガング リ オシ ド G M 3 の結 合を、 上記合成ペプチ ドが阻害するかどう かを E L I S Aを用いて実験 した。 なお、 比較対照実験と して、 上記 合成ペプチ ドに代えて、 フ ァ ー ジの コ ー ト タ ンノ、 °ク 質 p 1 1 1の N端 1 5 残基ペプチ ド、 及びシァ リ ルラ ク ト ースを 用いて同様に実験を行っ た。
結果を図 7 に示す。
この結果か ら、 A— 1 ペプチ ドはへマグルチニ ン と G M 3 との結合を用量依存的に阻害する こ とが明 らかとな つ た。 これに対 して p I I I蛋白由来のペプチ ドは阻害を示 さなかっ た。 こ の こ とか ら、 A — 1 ペプチ ドが配列特異 的にへマグルチニ ン と結合する こ と によ り 、 G M 3 との 結合を阻害する こ とが示さ れた。 なお、 シァ リ ルラ ク ト ースは G M 3 の シアル酸部分と競合する こ とによ り 、 へ マグルチニ ン と G M 3 との結合を阻害する こ とが示唆さ れた。 実施例 1 2 イ ン フルエ ンザウ イ ルス感染阻害活性の評価 本発明の H A結合性ペプチ ドについて、 イ ンフルェ ン ザウ ィ ルス感染阻害活性を評価 した。
イ ンフルエ ンザウイ ルス感染細胞と して、 M D C K細 胞 ( Mardin-Darby canine kidney) を用いた 0 当該細胞 へのィ ン フルェ ンザウィ ルス感染の評価は、 市販キ ッ ト ( LDH— Cytotoxic Test, Wako) を用 ヽて し D H ( lactat e dehydrogenase) 活性を検出する こ とによ り 行っ た ( J. Virol. eth. , 51, 185- 192 ( 1995 )) 。 ま たイ ンフルェン ザウィ ルス と して、 Α型の H I (A/PR/ 8/ 34 (H1N1) ) 及 び H 3 ( A/Victoria/395 (H3N2) ) を用いた。
具体的には、 イ ンフルエ ンザウイ ルスの感染力価は次 のよ う に して測定 した。
即ち、 M E MZ10% F B Sの培地で培養 した 3 x 105c ell /mlの M D C K細胞を 96穴マイ ク ロ タ イ タ ープレー ト に 100m lずつ蒔き、 5 % C 0 2雰囲気下、 37°Cでー晚イ ン キュベー ト した。 全ての ゥエルの細胞が単層飽和にな つ ている こ とを確認 した後、 血清を含ま ない M E M ( M E M (― ) ) で 2 回洗浄 し、 これに系列希釈 したウィ ルス 溶液 ( M E M (― ) ) を 100 1ずつイ ン ジ ェ ク ト した。 これを 5 % C O 2雰囲気下 37°Cで 2 時間イ ンキュベー ト し た後、 ウィルス溶液を除き、 培地で 2 回洗浄後、 同培地 で 20時間イ ンキュベー ト した。 ゥエル内の上清 15 1をと り 、 これを P B Sで 4倍希釈 して 50 z lと し、 これを新 し いプレー ト に移 し、 各ウエノレに発色液 ( nitrobluetetra zolium, diaphorase and NDA+ in litiumlactate PBS) を 50ml添加 した。 室温で 20分放置 した後、 反応停止液 (0.5M HC1 in PBS) を 100m l添加 し、 発色反応を停止 させ、 マイ ク 口プレー ト リ 一ダーを用いて 550 nmの吸光度 を測定 した。 得 られた結果か ら I D 5。値を求めた。
H A結合性ぺプチ ドによ る ィ ンフルェ ンザウ ィ ルス感 染阻害実験は、 上記で得 られた I D 5。値の 50倍濃度 ( 50 LDH IDso) のウィ ルス量を用いて試験 した。 H A結合性 ペプチ ドと して実施例 9 で得 られた 「 C i 8 A- 1リ ポぺプチ ド」 及びこれを 10 %含む リ ボ ソームを用いて行っ たイ ン フルェ ンザウ ィ ルスの感染阻害試験の結果を図 8 及び図 9 に示す。 図 8 は 「 C i 8 A- 1リ ポペプチ ド」 を用いた結果 を、 ま た図 9 は 「 C i 8 A- 1リ ポペプチ ド」 によ り 修飾され た リ ボ ソ ーム ( 10 %ペプチ ド) を用いた結果を示す。 尚、 いずれの図 も、 a ) は A型イ ンフルエ ンザウイ ルス H I (A/PR/ 8/ 34 ( H1N1) ) に対する感染阻害を、 b ) は H 3 ( A/Victoria/359 (H3N2) ) に対する感染阻害をみた結 果であ る。
図 8及び図 9 力、 らわかる よ う に、 「 C L 8 A- 1リ ポぺプチ ド」 は、 効果的にイ ン フルエ ンザウイ ルスの細胞への感 染を阻害 し、 こ の効果は該ペプチ ドをペプチ ド修飾 リ ポ ソ 一ムにする こ とによ り 増強さ れた。 これ らの こ とから 本発明の H A結合性べプチ ドがィ ン フルェンザ感染の予 防若 し く は治療剤と して有用であ る こ とが示唆された。 産業上の利用可能性 本発明によれば、 ィ ン フ ノレエ ンザゥ イ ノレスのへマグル チニ ンに特異的結合性を有するぺプチ ドが提供される。
本発明のペプチ ドは、 イ ン フルエ ンザウ イ ルス感染の 第 1 ステ ッ プに関与するへマグルチニ ンに特異的に結合 する こ とによ り 、 宿主受容体へのウ ィ ルスの結合を妨げ る こ とができ 、 こ れによ り イ ン フルエ ンザウ イ ノレス感染 予防剤 と して、 ま たイ ン フルエンザ治療剤と しての応用 が可能であ る 。 特に、 本発明の好適なペプチ ドは、 亜型 間で三次構造がよ く 保存さ れているへマグルチニ ンの受 容体結合ポケ ッ ト に特異的に結合する性質を有 している また比較的短いペプチ ドゆえに安定であ り 、 その側鎖の 多様性か ら、 へマグルチニ ンの結合部位と相互作用する こ の こ とか ら、 本発明のペプチ ドは亜型の種類に関わ ら ず、 多種の亜型間にま たがっ てイ ン フルエ ンザウイ ルス 全般、 特に A型全般に有効な広域感染予防剤及び治療剤 と しての応用が期待される。
さ ら に従来抗ィ ン フルェ ンザ剤 と して開発検討さ れて いる糖鎖アナ ロ グに比べ、 本発明はペプチ ドであ る がゆ えに、 大量合成並びに修飾が容易であ り 、 薬剤の生産な らびにさ らな る薬剤の開発とい う 面において も有用であ る

Claims

請求の範囲
1 . 下記(a )ま たは(b )のいずれかであ る、 イ ンフルェン ザウィ ルス · へマグルチニ ン結合性ぺプチ ド :
( a ) 配列番号 1 〜 1 1 で示される ア ミ ノ 酸配列のいずれ かを有するぺプチ ド、
( b ) 上記 ( a ) に示される ア ミ ノ 酸配列において 1 若 し く は複数のア ミ ノ 酸が置換、 欠失若 し く は付加によ り 改 変されたア ミ ノ 酸配列か らな り 、 且つイ ン フルエ ンザゥ ィ ルス · へマグルチニ ン に結合性を有するぺプチ ド。
2 . 配列番号 1 ま たは 6 で示されるア ミ ノ 酸配列を有す る ィ ン フ ルェ ンザウ ィ ルス · へマ グルチニ ン結合性ぺプ チ ド。
3 . 配列番号 7 〜 1 1 で示される ア ミ ノ 酸配列のいずれ かを有するィ ン フルェンザウィルス · へマグルチニ ン結 合性べプチ ド。
4 . イ ンフルエ ンザウイ ノレスが A型ゥ イ ノレスであ る 、 請 求項 1 乃至 3 のいずれかに記載のィ ン フルェンザウ ィ ル ス · へマグルチニ ン結合性べプチ ド。
5 . イ ンフルエ ンザウ イ ルスが H I 亜型であ る 、 請求項 1 乃至 3 のいずれかに記載のィ ンフルェンザウィ ルス · へマグルチニ ン結合性べプチ ド。
6 . イ ンフルエ ンザウ イ ルスが H 3 亜型であ る、 請求項 1 又は 3 に記載のィ ン フノレエ ンザゥイ ノレス ' へマグルチ ニ ン結合性べプチ ド。
7 . アルキル化又は脂質化さ れてな る請求項 1 に記載の ィ ンフルェ ンザウィ ルス · へマグルチニ ン結合性ぺプチ ド、。
8 . 請求項 7 記載のイ ン フルエ ンザウ ィ ルス ' へマグル チニ ン結合性ペプチ ドを含有する リ ボ ソーム。
9 . 請求項 1 に記載のイ ン フルエ ンザウイルス · へマグ ルチニ ン結合性べプチ ドを有効成分と して含有する ィ ン フルェ ンザウィ ルス · へマグルチニ ン結合阻害剤。
10 . 請求項 7 に記載のィ ンフルェンザウィ ルス · へマグ ルチニ ン結合性べプチ ドを有効成分と して含有する ィ ン フルェ ンザウ ィ ルス · へマグルチニ ン結合阻害剤。
1 1 . 請求項 8 に記載の リ ボ ソ ームを有効成分と して含有 する ィ ン フルェ ンザウィ ルス · へマグルチニ ン結合阻害 剤。
12. 配列番号 1 ま たは 6 で示さ れる ア ミ ノ 酸配列を有す る ィ ン フルェ ンザウ イ ノレス · へマ グルチニ ン結合性ぺプ チ ドを有効成分と して含有する ィ ンフルェ ザウィ ルス • へマグルチニ ン結合阻害剤。
13. 配列番号 7 ~ 1 1 で示される ア ミ ノ 酸配列のいずれ かを有する ィ ンフルェ ンザウイ ノレス · へマグルチニ ン結 合性べプチ ドを有効成分と して含有する ィ ンフルェ ンザ ウィ ルス · へマグルチニ ン結合阻害剤。
14. 請求項 1 に記載のイ ン フルエ ンザウィルス ' へマグ ルチニ ン結合性ペプチ ドを有効成分と して、 薬学的に許 容さ れる担体と と も に含有する薬学的組成物。
15. 請求項 7 に記載のィ ン フルェ ンザウィ ルス · へマグ ルチニ ン結合性ペプチ ドを有効成分と して、 薬学的に許 容さ れる担体 と と も に含有する薬学的組成物。
16. 請求項 8 に記載の リ ボ ソ ームを有効成分と して、 薬 学的に許容さ れる担体と と も に含有する薬学的組成物。
17. 配列番号 1 ま たは 6 で示さ れる ア ミ ノ 酸配列を有す るィ ンフルェ ンザウィ ルス · へマグルチニン結合性ぺプ チ ドを有効成分と して、 薬学的に許容さ れる担体と と も に含有する薬学的組成物。
18. 配列番号 7 〜 1 1 で示さ れる ア ミ ノ 酸配列のいずれ かを有するィ ン フルェ ンザウ ィ ルス · へマグルチニ ン結 合性ペプチ ドを有効成分と して、 薬学的に許容される担 体と と も に含有する薬学的組成物。
19. 対象とする イ ン フルエ ンザウイ ルスが A型ウィ ルス であ る請求項 14記載の薬学的組成物。
20. 抗イ ン フ ルエ ンザ剤 と して用い られる請求項 14〜: 16 のいずれかに記載の薬学的組成物。
21 . 請求項 1 に記載のイ ンフルエ ンザウィ ルス ' へマグ ルチニ ン結合性ペプチ ドを有効量、 被験者に投与する こ とか らな る ィ ンフルェンザの感染予防方法若 し く はィ ン フルェ ンザの治療方法。
22. 請求項 7 に記載のイ ン フルエンザウィルス ' へマグ ルチニン結合性ペプチ ドを有効量、 被験者に投与する こ とか らな る ィ ンフルェ ンザの感染予防方法若 し く はィ ン フルェ ンザの治療方法。
23. 請求項 8 に記載の リ ボ ソ ームを有効量、 被験者に投 与する こ とか らな るィ ンフルェ ンザの感染予防方法若 し く はィ ンフルェンザの治療方法。
24. 請求項 14乃至 16のいずれかに記載の薬学的組成物を 被験者に投与する こ とか らな る イ ン フルエンザの感染予 防方法若 し く はィ ンフルェ ンザの治療方法。
25. 請求項 1 記載のィ ン フルェ ンザウ ィ ルス · へマグル チニ ン結合性ペプチ ドの、 抗イ ンフルエンザ剤と しての 使用。
26. 請求項 7 記載のィ ン フ ノレエ ンザゥ イ ノレス · へマグル チニ ン結合性ペプチ ドの、 抗イ ンフルエンザ剤と しての 使用。
27. 請求項 8 に記載の リ ボ ソ ームの抗イ ン フルエ ンザ剤 と しての使用。
28. 請求項 1 記載のイ ン フルエ ンザウ ィルス ' へマ グル チニ ン結合性ペプチ ドの、 抗イ ンフルエンザ剤 と して用 い られる薬学的組成物の製造のための使用。
29. 請求項 7 記載のィ ンフルェ ンザウィ ルス · へマグル チニ ン結合性ペプチ ドの、 抗イ ン フルエ ンザ剤と して用 い られる薬学的組成物の製造のための使用。
30. 請求項 8 記載の リ ボ ソ ームの、 抗イ ン フルエ ンザ剤 と して用い られる薬学的組成物の製造のための使用。
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