WO2001038500A2 - Tetrahydropyrimidin-dioxygenase-gen, dadurch kodierte polypeptide und verfahren zur deren herstellung - Google Patents

Tetrahydropyrimidin-dioxygenase-gen, dadurch kodierte polypeptide und verfahren zur deren herstellung Download PDF

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    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/0004—Oxidoreductases (1.)
    • C12N9/0069—Oxidoreductases (1.) acting on single donors with incorporation of molecular oxygen, i.e. oxygenases (1.13)

Definitions

  • Tetrah ⁇ dropyrimidine-Diox ⁇ crenase gene thereby encoded polypeptides and methods for their production
  • the present invention relates to enzymes with tetrahydropyrimidine dioxygenase activity, the genes coding therefor, the homologous and heterologous expression of these genes, processes for the production of enzymes with tetrahydropyrimidine dioxygenase activity and the use of these enzymes for the in vivo and in vitro production of hydroxylated tetrahydropyrimidine.
  • the genes coding therefor the homologous and heterologous expression of these genes
  • processes for the production of enzymes with tetrahydropyrimidine dioxygenase activity processes for the production of enzymes with tetrahydropyrimidine dioxygenase activity and the use of these enzymes for the in vivo and in vitro production of hydroxylated tetrahydropyrimidine.
  • the genes coding therefor the homologous and heterologous expression of these genes
  • microorganisms form low-molecular intracellular compounds, which are referred to as osmolytes and which also include tetrahydropyrimidines.
  • the tetrahydropyrimidines, THP (B) (2-methyl-4-carboxy-3, 4, 5, 6-tetrahydropyrimidine) and THP (A) (2-methyl-4-carboxy-5-hydroxy-3, 4,5, 6-tetrahydropyrimidine) are formed by various microorganisms as intracellular components of the cytoplasm [Ventosa, A. et al. (1998). Biology of moderately halophilic aerobic bacteria. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 62, 504-544.] (Fig.l). These microorganisms include the halophilic eubacteria,
  • THPs Actinomycetes, Bacillus species and Brevibacteria.
  • the THPs can be isolated from these organisms in pure form and used in a variety of ways in biotechnology, e.g. in the stabilization of proteins both in solution and in their freeze-drying [Lippert, K. and Galinski, E.A. (1992). Enzyme stabilization by ectoine-type compatible solutes: protection against heating, freezing and drying. Appl. Microbiol. Biotechnol. 37, 61-65.], At
  • THP (A) or THP (B) to culture media from different prokaryotes, e.g. E. coli an increased
  • the L-2,4-diaminobutyric acid transaminase catalyzes the formation of L-2,4-
  • Diaminobutyric acid (DABA).
  • the subsequent N-acetylation of DABA is carried out by the L-2,4-diaminobutyric acid acetyltransferase using acetyl-coenzyme A.
  • the intramolecular condensation reaction catalyzed by the N-acetyl- (-L, 2,4-diaminobutyric acid cyclase) B) [Peters, P. et al. (1990) The biosynthesis of ectoine. FEMS Microbiol.
  • THPs by the methods known in the prior art is based on the complex extraction of these Compounds from the cells or culture filtrates of THP (A) and / or THP (B) producing bacteria are restricted. Due to the high salt concentrations in the culture medium, these processes are particularly cost-intensive.
  • THP A chemical synthesis of THPs is possible, but this synthesis comprises a large number of synthesis steps and the use of a complex protective group technique, so that this complex process, particularly on a large scale, cannot be carried out economically.
  • the object of the invention is therefore to provide an improved process for the preparation of hydroxylated THPs, in particular THP (A).
  • the object of the invention is achieved by providing a method using a polypeptide with a tetrahydropyrimidine dioxygenase activity.
  • nucleic acid sequences which code for polypeptides which have tetrahydropyrimidine dioxygenase activity.
  • These nucleic acid sequences comprise both DNA and RNA nucleic acid sequences and are selected from the following group of nucleic acid sequences: (a) DNA nucleic acid sequence with the one in SEQ. ID. NO. : 1 nucleotide sequence shown;
  • RNA nucleic acid sequence which is derived from the DNA nucleic acid sequence according to (a) to (d);
  • the DNA nucleic acid sequences coding for polypeptides with tetrahydropyrimidine dioxygenase activity mean both genomic DNA nucleic acid sequences and cDNA nucleic acid sequences.
  • the degree of homology of the nucleic acid sequence according to f) to one of the sequences according to (a) to (e) is at least 60%, preferably 80% and particularly preferably more than 90%.
  • polypeptides which have a tetrahydropyrimidine dioxygenase activity and which are preferably encoded by one of the nucleic acid sequences according to (a), (b), (c), (d) (e) or (f).
  • a polypeptide (SEQ. ID. NO .: 6) is particularly preferred which is characterized by the DNA nucleic acid sequence according to SEQ. ID. NO .: 1 is coded.
  • nucleic acid sequences according to (a), (b), (c), (d), (e) or (f), which were isolated from an archaebacterium, a prokaryote or a eukaryote, are the subject of the present invention. Such nucleic acid sequences are particularly preferred if they consist of a halophile
  • Eubacterium an actinomycete, a bacillus or a brevi bacterium were isolated.
  • nucleic acid constructs that comprise an operative unit, which consists of a promoter sequence and a nucleic acid sequence according to (a), (b), (c), (d), (e) or (f). Also preferred are nucleic acid constructs which comprise an operative unit which consists of a promoter sequence and a nucleic acid sequence according to (a), (b), (c), (d), (e) or (f) and additionally comprise a nucleic acid sequence which encoded for one or more secretion signals.
  • the present invention relates to replicative, recombinant vectors which comprise a nucleic acid sequence according to (a), (b), (c), (d), (e) or (f).
  • the invention further relates to cells which contain a vector which replicates autonomously in this cell and which has a nucleic acid sequence according to (a), (b), (c), (d), (e) or
  • (f) includes. Bacterial cells, yeast cells or plant cells are particularly preferred.
  • Cells which have a nucleic acid sequence according to (a), (b), (c), (d), (e) or (f) integrated into the genome by non-natural recombination are preferred.
  • Cells in which the non-natural recombination into the genome of a bacterial cell, a yeast cell or a plant cell have occurred are particularly preferred.
  • the present invention relates to the use of an oligonucleotide as
  • Nucleic acid probes for identifying genes the nucleotide sequence of the oligonucleotide being derived from that of the nucleic acid sequences according to (a), (b), (c), (d), (e) or (f) and the oligonucleotides for identifying are used in chromosomal or extrachromosomal genes found in archaebacteria, prokaryotes or eukaryotes which code for a polypeptide which has tetrahydropyrimidine dioxygenase activity.
  • the invention also relates to a plant which contains a recombinant DNA which has a DNA sequence according to one of the Claims 1 to 4, has been transformed.
  • a plant is characterized by an increased osmotic tolerance.
  • the invention further relates to a method for producing a polypeptide with tetrahydropyrimidine dioxygenase activity, for which purpose cells which have a nucleic acid section with a nucleic acid sequence according to (a), (b), (c), (d), (e) or (f) or contain a nucleic acid construct of the type explained above, are cultured and the polypeptide with tetrahydropyrimidine dioxygenase activity is isolated.
  • the method used for isolating the polypeptide will depend in a manner known to the person skilled in the art whether the cells used for the production have a nucleic acid section with a nucleic acid sequence according to (a), (b), (c), (d), (e) or (f) or contain a nucleic acid construct of the type explained above.
  • the polypeptide produced can only be isolated after the cells have been disrupted, whereas in the second possibility, in which the cells contain a nucleic acid construct comprising a secretion signal, the polypeptide produced could be isolated directly from the culture medium.
  • Another aspect of the invention relates to the use of a polypeptide with tetrahydropyrimidine dioxygenase activity for the preparation of hydroxylated tetrahydropyrimidine.
  • Production is preferably carried out by means of a polypeptide with tetrahydropyrimidine dioxygenase activity in a living cell, the living cell being a bacterial cell, a yeast cell or a plant cell.
  • the living cell containing the polypeptide with tetrahydropyrimidine dioxygenase activity can be in a culture medium containing tetrahydropyrimidine.
  • the living cell is preferably closed prior to manufacture permeabilize to favor contact of the polypeptide with tetrahydropyrimidine dioxygenase activity with the tetrahydropyrimidine.
  • the open reading frame called thpD codes for
  • Enzyme that has THP (B) dioxygenase activity and has a molecular weight of 32.7 kDa This enzyme is a ketoglutarate-dependent dioxygenase, which catalyzes the irreversible hydroxylation of THP (B) to THP (A).
  • the thpD gene was expressed in E. coli and Streptomyces and the corresponding protein (THP (D)) was purified by methods known in the art.
  • THP (D) protein enables the in vitro production of THP (A).
  • THP (D) protein Incubation of the THP (D) protein in the presence of THP (B), ⁇ -ketoglutarate, ascorbic acid, iron (II) sulfate and catalase shows complete hydroxylation of THP (B) to THP (A).
  • the gene which codes for the tetrahydropyrimidine dioxygenase is located on an 8.7 kb BamHI / EcoRI fragment.
  • the synthesis of hydroxylated tetrahydropyrimidine can be achieved by expressing the genes from Streptomyces chrysomallus contained in this DNA fragment in microorganisms.
  • THP tetrahydropyrimidine
  • This method is applicable to a variety of microorganisms, e.g. Actinomycetes, bacilli or halophilic bacteria can be used if they have nucleic acid sequences which code for polypeptides with THP dioxygenase activity. Under this condition, the expression can also be carried out in any other prokaryotic or eukaryotic expression system.
  • Example 1 Detection of L-2,4-diaminobutyric acid acetyltransferase from Streptomyces chrysomallus From an internal peptide sequence derived from Streptomyces chrysomallus previously purified L-2,4-diaminobutyric acid
  • Acetyltransferase a nucleotide sequence was derived (Fig. 3). This nucleotide sequence was radiolabelled and used as a probe to screen a cosmid bank. Parts of the corresponding cosmid were subcloned and sequenced. Among other things, four open reading frames were found, with thpA for the L-diaminobutyric acid acetyltransferase, thpB for the L-aspartate-ß-semialdehyde transaminase, thpC for the N-
  • Example 2 Expression of thpD in Streptomyces lividans
  • the gene thpD was cloned as an Sphl / Hindlll fragment into the expression vector pSPIJ002 (FIG. 5).
  • the resulting expression plasmid was named pSPIJthpD.
  • the restriction sites SphI and Hindi II were introduced by PCR mutagenesis (35 cycles; 1 min 95 ° C; 90 sec 55 'C; 65 sec
  • the plasmid pQE30thpD served as the template for the PCR.
  • This plasmid is a pQE30 derivative which uses the thpD gene as BamHI / HindIII PCR
  • Fragment contains (35 cycles; 1 min 95'C; 90 sec 55'C; 65 sec 12'C; primer see Tab. 1).
  • the primers used are in Table 1 as SEQ. ID. NO .: 2-5 shown.
  • the ligation and transformation was carried out according to standard methods.
  • YEME medium (340 g / l sucrose, 10 g / 1 glucose, 3 g / l yeast extract, 3 g / 1 malt extract, 5 g / l bacto-peptone and 0.2% MgCl 2 ) inoculated to an OD 600 of 0.05 and incubated in a shaker at 28 ° C.
  • the THP (B) -dioxygenase activity is determined using the following reaction mixture: potassium phosphate buffer, pH 8 10 mM THP (B) 5 mM ⁇ -ketoglutarate 5 mM ascorbic acid 5 mM iron (II) sulfate 1 mM hexa-His-THPD variable in a total volume of 100 ⁇ l.
  • Fig. 1 Biosynthesis of THP (B) starting from L-aspartate-ß-semialdehyde.
  • C N-acetyl-diaminobutyric acid cyclase.
  • Fig. 2 Restriction map of the sequenced area and the location of the THP biosynthesis genes found. The corresponding base position is given under the restriction enzymes.
  • Fig. 3 Internal tryptic peptide sequence of the DABA acetyltransferase from Streptomyces chrysomallus and oligonucleotide sequences derived therefrom (170498A and 170498B).
  • Fig. 4 HPLC of THP (A) and THP (B) on an NH 2 nucleosil column.
  • reaction mixture which contained 5 mM THP (B), 5 mM ⁇ -ketoglutarate, 5 mM ascorbic acid, 1 mM FeS0 4 and 2 mg / ml THPD fusion protein (A) or buffer D (B) applied.
  • Elution was carried out with 70% acetonitrile at a flow rate of 1 ml / min.
  • pSPIJ002 shuttle vector generated by ligation of pSP72 (Bglll) and plJ702 (Bglll) was created. This expression vector can be found both in E. coli and in
  • Streptomyces can be used.
  • Tab. 1 PCR primers used for the construction of plasmid pQE30thpD and pSPIJthpD.
  • FTHPD 5'-GCC TGA GGA TCC ATG ACC ACC GAA GTA CGC-3 •

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Abstract

Die vorliegende Erfindung betrifft Enzyme mit Tetrahydropyrimidin-Dioxygenase-Aktivität, die dafür kodierenden Gene, die homologe und heterologe Expression dieser Gene, Verfahren zur Herstellung von Enzymen mit Tetrahydropyrimidin-Dioxygenase-Aktivität und deren Verwendung dieser Enzyme zur in vivo und in vitro Produktion von hydroxyliertem Tetrahydropyrimidin. Zudem betrifft die Erfindung die biotechnologische Verwendung des nach einem der erfindungsgemässen Verfahren hergestellten hydroxylierten Tetrahydropyrimidins.

Description

Tetrahγdropyrimidin-Dioxγcrenase-Gen, dadurch kodierte Polypeptide und Verfahren zur deren Herstellung
Die vorliegende Erfindung betrifft Enzyme mit Tetrahydropyrimidin-Dioxygenase-Aktivität , die dafür kodierenden Gene, die homologe und heterologe Expression dieser Gene, Verfahren zur Herstellung von Enzymen mit Tetrahydropyrimidin-Dioxygenase-Aktivität und deren Verwendung dieser Enzyme zur in vivo und in vitro Produktion von hydroxyliertem Tetrahydropyrimidin. Zudem betrifft die
Erfindung die biotechnologische Verwendung des nach einem der erfindungsgemässen Verfahren hergestellten hydroxylierten Tetrahydropyrimidins .
In Folge von osmotischem Stress werden von Mikroorganismen niedermolekulare intrazelluläre Verbindungen gebildet, die als Osmolyte bezeichnet werden und zu denen auch die Tetrahydropyrimidine zählen. Die Tetrahydropyrimidine, THP(B) (2-Methyl-4-carboxy-3 , 4 , 5 , 6-tetrahydropyrimidin) und THP (A) (2-Methyl-4-carboxy-5-hydroxy-3 ,4,5, 6-tetrahydropyrimidin) werden von verschiedenen Mikroorganismen als intrazelluläre Komponenten des Cytoplasmas gebildet [Ventosa, A. et al . (1998). Biology of moderately halophilic aerobic bacteria. Microbiol . Mol . Biol . Rev. 62, 504-544.] (Abb.l). Zu diesen Mikroorganismen gehören die halophilen Eubakterien,
Actinomyceten, Bacillusarten und Brevibakterien. Die THPs können aus diesen Organismen in reiner Form isoliert werden und in vielfältiger Form in der Biotechnologie eingesetzt werden, wie z.B. bei der Stabilisierung von Proteinen sowohl in Lösung als auch bei deren Gefriertrocknung [Lippert, K. und Galinski, E.A. (1992) . Enzyme stabilisation by ectoine-type compatible solutes : protection against heating, freezing and drying. Appl . Microbiol . Biotechnol . 37, 61-65.], bei der
Beeinflussung der Wechselwirkung von Proteinen und Nukleinsäuren [Lapidot, A. et al . (1995) . Tetrahydropyrimidine derivatives inhibit binding of a Tat-like, arginine-containing peptide, to HIV TAR RNA in vitro. FEBS Lett . 367, 33-38.;
ffiÄTZBLATT(REGELE) Malin, G. und Lapidot, A. (1996) . Induction of synthesis of tetrahydropyrimidine derivatives in Streptomyces strains and their effect on Escherichia coli in response to osmotic and heat stress. J". Bacteriol . 178, 385-395.; Malin, G. et al . (1999) . Effect of tetrahydropyrimidine derivatives on protein- nucleic acids interaction. Type 11 restriction endonucleases as a model system. J. Biol . Chem . 214 , 6920-6929.] und bei der
Rückfaltung von denaturierten Proteinen. Darüberhinaus kann durch Zugabe von THP (A) bzw. THP(B) zu Kulturmedien von verschiedenen Prokaryonten, wie z.B. E. coli eine erhöhte
Salz- und Hitzetoleranz festgestellt werden [Malin, G. und Lapidot, A. (1996) . Induction of synthesis of tetrahydropyrimidine derivatives in Streptomyces strains and their effect on Escherichia. coli in response to osmotic and heat stress. J. Bacteriol . 178, 385-395.].
Der charakterisierte Biosyntheseweg von THP (A) , gezeigt in Abb. 1, startet von dem L-Aspartat-ß-semialdehyd. In der nachfolgenden Transaminierungsreaktion katalysiert die L-2,4- Diaminobuttersäure-Transaminase die Bildung von L-2,4-
Diaminobuttersäure (DABA) . Die nachfolgende N-Acetylierung von DABA erfolgt durch die L-2 , 4-Diaminobuttersäure- Acetyltransferase unter Verwendung von Acetyl-Coenzym A. Durch die N-Acetyl- (-L, 2 , 4-Diaminobuttersäure-Cyclase katalysierte intramolekulare Kondensationsreaktion entsteht THP(B) [Peters, P. et al. (1990). The biosynthesis of ectoine. FEMS Microbiol .
Lett . 71, 157-162. ;, Ono, H. et al . (1999). Characterization of biosynthetic enzymes for ectoine as a compatible solute in a moderately halophilic eubacterium, Halomonas elongata . J. Bacteriol . 181, 91-99.]. Demgegenüber verblieben die Schritte zur Biosynthese des 5-Hydroxyderivates von THP(B), dem (THP(A)) weiterhin ungeklärt.
Die Herstellung von THPs nach den im Stand der Technik bekannten Verfahren ist auf die aufwendige Extraktion dieser Verbindungen aus den Zellen oder Kulturfiltraten von THP (A) und/oder THP(B) produzierenden Bakterien beschränkt. Bedingt durch die hohen Salzkonzentrationen im Kulturmedium sind diese Verfahren besonders kostenintensiv.
Eine chemische Synthese von THPs ist zwar möglich, jedoch umfasst diese Synthese eine Vielzahl von Syntheseschritten und den Einsatz einer aufwendigen Schutzgruppentechnik, so dass dieses komplexe Verfahren, insbesondere im großen Maßstab, nicht wirtschaftlich durchzuführen ist. Dies betrifft im besonderen die Synthese von THP (A) , da die jeweiligen Vorstufen auf chemischen Wege nicht erhältlich sind und folglich die chemische Synthese von THP (A) zusätzlich erschwert ist.
Die Aufgabe der Erfindung besteht daher darin, ein verbessertes Verfahren zur Herstellung von hydroxilierteTHPs, insbesondere THP (A) bereitzustellen.
Die Aufgabe der Erfindung wird gelöst durch Bereitstellung eines Verfahrens unter Verwendung eines Polypeptides mit einer Tetrahydropyrimidin-Dioxygenase-Aktivität .
Ein Aspekt der Erfindung betrifft daher Nukleinsäuresequenzen, die für Polypeptide kodieren, die eine Tetrahydropyrimidin- Dioxygenase-Aktivität aufweisen. Diese Nukleinsäuresequenzen umfassen sowohl DNA- als auch RNA-Nukleinsäuresequenzen und sind aus der folgenden Gruppe von Nukleinsäuresequenzen ausgewählt : (a) DNA-Nukleinsäuresequenz mit der in SEQ. ID. NO. : 1 dargestellten Nukleotidsequenz ;
(b) DNA-Nukleinsäuresequenz, die sich als Ergebnis des degenerierten genetischen Codes von der in SEQ. ID. NO. : 1 dargestellten Nukleotidsequenz ableitet; (c) DNA-Nukleinsäuresequenz, die mit mindestens einer DNA- Nukleinsäuresequenz, die eine DNA-Nukleinsäuresequenz gemäß (a) oder (b) aufweist, hybridisiert; (d) DNA-Nukleinsäuresequenz, die Fragmente, allelische oder andere Variationen der DNA-Nukleinsäuresequenz mit der in SEQ. ID. NO.: 1 dargestellten Nukleotidsequenz, ist;
(e) RNA-Nukleinsäuresequenz , die von den DNA- Nukleinsäuresequenz gemäß (a) bis (d) abgeleitet ist; und
(f) Nukleinsäuresequenz mit einem Grad der Homologie zu einer der Sequenzen gemäß (a) bis (e) von mehr als 60%.
Mit den für Polypeptide mit Tetrahydropyrimidin-Dioxygenase- Aktivität kodierenden DNA-Nukleinsäuresequenzen sind sowohl genomische DNA-Nukleinsäuresequenzen als auch cDNA- Nukleinsäuresequenzen gemeint. Der Grad der Homologie der Nukleinsäuresequenz gemäß f) zu einer der Sequenzen gemäß (a) bis (e) beträgt mindestens 60%, bevorzugt 80% und besonders bevorzugt mehr als 90%.
Ein weiterer Aspekt der vorliegenden Erfindung betrifft Polypeptide, die eine Tetrahydropyrimidin-Dioxygenase- Aktivität aufweisen und die bevorzugt durch eine der Nukleinsäuresequenzen gemäss (a) , (b) , (c) , (d) (e) oder (f ) kodiert sind. Besonders bevorzugt ist ein Polypeptid (SEQ. ID. NO.: 6), das durch die DNA-Nukleinsäuresequenz gemäß SEQ. ID. NO.: 1 kodiert ist.
In einem anderen Aspekt sind DNA- oder RNA-
Nukleinsäuresequenzen gemäss (a) , (b) , (c) , (d) , (e) oder (f) , die aus einem Archaebakterium, einem Prokaryonten oder einem Eukaryonten isoliert wurden, Gegenstand der vorliegenden Erfindung. Besonders bevorzugt sind derartige Nukleinsäuresequenzen, wenn sie aus einem halophilen
Eubakterium, einem Actinomyceten, einem Bazillus oder einem Brevibakterium isoliert wurden.
Bevorzugt sind ebenfalls Nukleinsäurekonstrukte, die eine operative Einheit umfassen, welche aus einer Promotersequenz und einer Nukleinsäuresequenz gemäss (a) , (b) , (c) , (d) , (e) oder (f) besteht. Ebenfalls bevorzugt sind Nukleinsäurekonstrukte, die eine operative Einheit umfassen, welche aus einer Promotersequenz und einer Nukleinsäuresequenz gemäss (a) , (b) , (c) , (d) , (e) oder (f) besteht und zusätzlich eine Nukleinsäuresequenz umfassen, die für ein oder mehrere Sekretionssignale kodiert.
In einem weiteren Aspekt betrifft die vorliegende Erfindung replikative, rekombinante Vektoren, die eine Nukleinsäuresequenz gemäss (a) , (b) , (c) , (d) , (e) oder (f) umfassen.
Gegenstand der Erfindung sind des weiteren Zellen, die einen in dieser Zelle autonom replizierenden Vektor enthalten, der eine Nukleinsäuresequenz gemäss (a) , (b) , (c) , (d) , (e) oder
(f) umfasst. Besonders bevorzugt sind dabei Bakterienzellen, Hefezellen oder Pflanzenzellen.
Bevorzugt sind Zellen, die eine durch nicht-natürliche Rekombination in das Genom integrierte Nukleinsäuresequenz gemäss (a) , (b) , (c) , (d) , (e) oder (f) aufweisen. Besonders bevorzugt sind dabei Zellen, bei denen die nicht-natürliche Rekombination in das Genom einer Bakterienzelle, einer Hefezelle oder einer Pflanzenzelle erfolgt ist.
In einem alternativen Aspekt betrifft die vorliegende Erfindung die Verwendung von einem Oligonukleotid als
Nukleinsäure-Sonden zur Identifikation von Genen, wobei die Nukleotidsequenz des Oligonukleotids von jener der Nukleinsäuresequenzen gemäss (a) , (b) , (c) , (d) , (e) oder (f) abgeleitet worden sind und die Oligonukleotide zur Identifizierung von sich in in Archaebakterien, Prokaryonten oder Eukaryonten befindlichen, chromosomalen oder extrachromosomalen Genen, die für ein Polypeptid kodieren, welches Tetrahydropyrimidin-Dioxygenase-Aktivität besitzt, verwendet werden .
Gegenstand der Erfindung ist auch eine Pflanze, die mit einer rekombinanten DNA, die eine DNA-Sequenz gemäß einem der Ansprüche 1 bis 4 umfasst, transformiert wurde. Eine solche Pflanze zeichnet sich durch eine gesteigerte osmotische Toleranz aus .
Gegenstand der Erfindung ist des weiteren ein Verfahren zur Herstellung eines Polypeptids mit Tetrahydropyrimidin- Dioxygenase-Aktivität , wobei hierzu Zellen, die einen Nukleinsäureabschnitt mit einer Nukleinsäuresequenz gemäss (a) , (b) , (c) , (d) , (e) oder (f) oder ein Nukleinsäurenkonstrukt der oben erläuterten Art enthalten, kultiviert werden und das Polypeptid mit Tetrahydropyrimidin- Dioxygenase-Aktivität isoliert wird.
Die für das Isolieren des Polypeptids verwendete Methode wird in einer dem Fachmann bekannten Weise davon abhängen, ob die zur Herstellung verwendeten Zellen einen Nukleinsäureabschnitt mit einer Nukleinsäuresequenz gemäss (a) , (b) , (c) , (d) , (e) oder (f) oder ein Nukleinsäurekonstrukt der oben erläuterten Art enthalten. Bei der ersten Möglichkeit kann ein Isolieren des hergestellten Polypeptids erst nach vorgeschaltetem Aufschluß der Zellen erfolgen, wobei bei der zweiten Möglichkeit, bei der die Zellen ein ein Sekretionssignal umfassendes Nukleinsäurenkonstrukt enthalten, das hergestellte Polypeptid direkt aus dem Kulturmedium isolierbar wäre.
Ein anderer Aspekt der Erfindung betrifft die Verwendung eines Polypeptids mit Tetrahydropyrimidin-Dioxygenase-Aktivität zur Herstellung von hydroxyliertem Tetrahydropyrimidin.
Bevorzugt erfolgt die Herstellung mittels eines Polypeptids mit Tetrahydropyrimidin-Dioxygenase-Aktivität in einer lebenden Zelle, wobei die lebende Zelle eine Bakterienzelle, eine Hefezelle oder eine Pflanzenzelle ist. Die das Polypeptid mit Tetrahydropyrimidin-Dioxygenase-Aktivität enthaltende, lebende Zelle kann sich in einem Kulturmedium befinden, das Tetrahydropyrimidin enthält . In einem solchen Fall ist die lebende Zelle bevorzugt vor der Herstellung zu permeabilisieren, um ein Inkontaktkommen des Polypeptids mit Tetrahydropyrimidin-Dioxygenase-Aktivität mit dem Tetrahydropyrimidin zu begünstigen.
Im folgenden wird eine bevorzugte Ausführungsform der
Erfindung beschrieben, wobei diese jedoch nicht in der Weise verstanden werden soll, dass daraus eine Einschränkung des vom Erfinder begehrten Schutzumfangs abgeleitet werden kann.
Zur Auffindung der THP-Biosynthesegene in Streptomyces chrysomallus wurde die L-2 , 4-Diaminobuttersäure- Acetyltransferase, ein Enzym der THP-Biosynthese aus Streptomyces chrysomallus gereinigt. Von tryptischen Peptidsequenzen der L-2 , 4-Diaminobuttersäure-Acetyltransferase wurden Oligonukleotidsequenzen abgeleitet und für ein
Screening einer Cosmidbank eingesetzt. Das Gen der L-2 ,4- Diaminobuttersäure-Acetyltransferase sowie flankierende Bereiche wurden sequenziert. Auf dem 8,7 kb großen BamHI/EcoRI Fragment wurden u.a. vier offene Leserahmen gefunden. Diese Gene, die für THP-Biosyntheseenzyme kodieren, werden im folgenden als thpA, thpB, thpC und thpD bezeichnet (Abb. 2) .
Der als thpD bezeichnete offene Leserahmen kodiert für ein
Enzym, das eine THP (B) -Dioxygenase-Aktivität aufweist und ein Molekulargewicht von 32,7 kDa besitzt. Es handelt sich bei diesem Enzym um eine -Ketoglutarat-abhängige Dioxygenase, die die irreversible Hydroxylierung von THP(B) zu THP (A) katalysiert. Das Gen thpD wurde in E. coli und Streptomyces exprimiert und das entsprechende Protein (THP(D)) nach im Stand der Technik bekannten Methoden gereinigt.
Die Verwendung des homolog oder heterolog exprimierten THP(D)- Proteins ermöglicht die in vi tro Produktion von THP (A) . Durch
Inkubation des THP (D) -Proteins in Gegenwart von THP(B), α- Ketoglutarat , Ascorbinsäure, Eisen (II) sulfat und Katalase wird eine vollständige Hydroxylierung von THP(B) zu THP (A) beobachtet . Das Gen, das für die Tetrahydropyrimidin-Dioxygenase kodiert, liegt auf einem 8,7 kb großen BamHI/EcoRI Fragment. Durch die Expression der auf diesem DNA-Fragment enthaltenen Gene aus Streptomyces chrysomallus in Mikroorganismen, kann die Synthese von hydroxyliertem Tetrahydropyrimidin erreicht werden.
Durch Expression des Gens thpD in Mikroorganismen, die THP(B) produzieren, wird die in vivo Produktion des 5- Hydroxyderivates von Tetrahydropyrimidin (THP(A)) ermöglicht.
Dieses Verfahren ist bei einer Vielzahl von Mikroorganismen, wie z.B. Actinomyceten, Bazillen oder halophilen Bakterien anwendbar, sofern diese Nukleinsäuresequenzen besitzen, die für Polypeptide mit THP-Dioxygenase-Aktivität kodieren. Unter dieser Voraussetzung kann die Expression zudem in jedem anderen prokaryontisehen oder eukaryontischen Expressionssystem durchgeführt werden.
Im folgenden wird die Erfindung anhand von Beispielen näher beschrieben.
Beispiel 1: Detektion der L-2 , 4-Diaminobuttersäure- Acetyltransferase aus Streptomyces chrysomallus Von einer internalen Peptidsequenz, der aus Streptomyces chrysomallus zuvor gereinigten L-2 , 4-Diaminobuttersäure-
Acetyltransferase, wurde eine Nukleotidsequenz abgeleitet (Abb. 3) . Diese Nukleotidsequenz wurde radioaktiv markiert und als Sonde zum Screenen einer Cosmidbank eingesetzt. Teile des entsprechenden Cosmids wurden subkloniert und sequenziert. Hierbei wurden u.a. vier offene Leserahmen gefunden, wobei thpA für die L-Diaminobuttersäure-Acetyltransferase, thpB für die L-Aspartat-ßsemialdehyd-Transaminase, thpC für die N-
Acetyl-γ-L-2, 4-Diaminobuttersäure-Cyclase und thpD für die THP (B) -Dioxygenase kodiert (Abb. 2). Die Expression in andere Mikroorganismen ist möglich und als Beispielorganismus dient Streptomyces lividans (siehe Beispiel 2) .
Beispiel 2 : Expression von thpD in Streptomyces lividans Zur Expression von thpD in Streptomyces lividans wurde das Gen thpD als Sphl/Hindlll Fragment in den Expressionsvektor pSPIJ002 (Abb. 5) kloniert . Das resultierende Expressionsplasmid wurde als pSPIJthpD bezeichnet. Durch PCR Mutagenese wurden die Restriktionsschnittstellen SphI und Hindi II eingeführt (35 Zyklen; 1 min 95 "C; 90 sec 55 'C; 65 sec
72' C; Primer siehe Tabelle 1) . Als Matrize für die PCR diente das Plasmid pQE30thpD. Bei diesem Plasmid handelt es sich um ein pQE30 Derivat, welches das thpD Gen als BamHI/Hindlll PCR-
Fragment enthält (35 Zyklen; 1 min 95'C; 90 sec 55'C; 65 sec 12 ' C; Primer siehe Tab.l) . Die verwendeten Primer sind in Tabelle 1 als SEQ. ID. NO.: 2-5 gezeigt. Die Ligation und Transformation erfolgte nach Standardmethoden.
Beispiel 3: Reinigung von Hexa-His-THPD aus Streptomyces lividans
Von einer Vorkultur des Streptomyces lividans Stammes
(transformiert mit pSPIJthpD, siehe Beispiel 2) wurde YEME- Medium (340 g/l Sucrose, 10 g/1 Glucose, 3 g/l Hefeextrakt, 3 g/1 Malzextrakt, 5 g/l Bacto-Pepton und 0,2 % MgCl2) auf eine OD600 von 0.05 angeimpft und im Schüttler bei 28 'C inkubiert.
Nach 72 Stunden wurden die Zellen geerntet. Die Zellen wurden in Aufschlußpuffer (100 mM Phosphatpuffer pH 8.0, 10% Glycerol, 1 mM Benzamidin, 1 mM PMSF, 10 mM Imidazol und 300 mM NaCl) resuspendiert und durch zweimalige Passage durch eine French-Press-Cell (16.000 psi; entspricht l,105xl08Pa) aufgeschlossen. Der zellfreie Rohextrakt wurde im SS34 -Rotor 30 min bei 12000 upm zentrifugiert . Der zellfreie Überstand wurde an einer Ni-NTA-Matrix chromatographiert . Das Hexa-His- THPD Protein eluiert im Bereich von 30-100 mM Imidazol. Beispiel 4: In vitro Synthese von 2-Methγl-4-carboxγ-5- hγdroxy-3 ,4,5, 6-tetrahydropyrimidin (THP (A) )
Die Bestimmung der THP (B) -Dioxygenase-Aktivitat erfolgt unter Verwendung des folgenden Reaktionsansatzes: Kaliumphosphatpuffer, pH 8 10 mM THP(B) 5 mM α-Ketoglutarat 5 mM Ascorbinsäure 5 mM Eisen (II) sulfat 1 mM Hexa-His-THPD variabel in einem Gesamtvolumen von 100 μl .
Die Inkubation erfolgt bei 30 'C für eine Stunde. Die Produktanalyse erfolgt durch Chromatographie an einer NH2- Nucleosil-HPLC-Säule. Die Elution erfolgte mit 70% Acetonitril/H20. Das Elutionsprofil ist in Abb. 4 dargestellt. Unter Verwendung von Katalase (Rinderleber, Fa. Sigma) kann eine vollständige Hydroxylierung von THP(B) zu THP (A) erreicht werden.
Abb. 1: Biosynthese von THP(B) ausgehend von L-Aspartat-ß- Semialdehyd. A: L-2 , 4-Diaminobuttersäure Transaminase, B: L- 2 , 4-Diaminobuttersäure-Acetyltransferase, C: N-Acetyl- Diaminobuttersäure-Cyclase .
Abb. 2: Restriktionskarte des sequenzierten Bereichs sowie die Lage der aufgefundenen THP-Biosynthesegene . Unter den Restriktionsenzymen ist die entsprechende Basenposition angegeben.
Abb. 3: Interne tryptische Peptidsequenz der DABA- Acetyltransferase aus Streptomyces chrysomallus und davon abgeleitete Oligonukleotidsequenzen (170498A und 170498B) .
Abb. 4: HPLC von THP (A) und THP(B) an einer NH2-Nucleosil- Säule. Jeweils 1/10 des Reaktionsansatzes, der 5 mM THP(B), 5 mM α-Ketoglutarat, 5 mM Ascorbinsäure, 1 mM FeS04 und 2 mg/ml THPD-Fusionsprotein (A) bzw. Puffer D (B) enthielt, wurde aufgetragen. Die Elution erfolgte mit 70% Acetonitril bei einer Flußrate von 1 ml/min.
Abb. 5: pSPIJ002 : Shuttle-Vektor, der durch Ligation von pSP72 (Bglll) und plJ702 (Bglll) entstanden ist. Dieser Expressionsvektor kann sowohl in E. coli als auch in
Streptomyces verwendet werden.
Tab. 1: Für die Konstruktion von Plasmid pQE30thpD und pSPIJthpD verwendete PCR Primer.
POE30thpD
FTHPD (30-mer) : 5'-GCC TGA GGA TCC ATG ACC ACC GAA GTA CGC-3 •
(SEQ. ID. NO. : 2)
RTHPD (27-mer) :
5'-CCC GCC CGT GAA GCT TGC TAC TTC ACC-3 '
(SEQ. ID. NO. : 3)
PSPIJthpD
FSPIJthp (30-mer) :
5' -GAG GAG GAA TTC AGC ATG CGA GGA TCG CAT-3 ' (SEQ. ID. NO. : 4) RSPIJthp (25-mer) :
5'-AGT CCA AGC TCA GCT AAT TAA GCT T-3 ' (SEQ. ID. NO. : 5)

Claims

Patentansprüche
1. Nukleinsäuresequenz, wobei die Nukleinsäuresequenz für ein Polypeptid mit Tetrahydropyrimidin-Dioxygenase-Aktivität kodiert und aus der folgenden Gruppe von Nukleinsäuresequenzen ausgewählt ist:
(a) DNA-Nukleinsäuresequenz mit der in SEQ. ID. NO.: 1 dargestellten Nukleotidsequenz;
(b) DNA-Nukleinsäuresequenz, die sich als Ergebnis des degenerierten genetischen Codes von der in SEQ. ID. NO.: 1 dargestellten Nukleotidsequenz ableitet;
(c) DNA-Nukleinsäuresequenz, die mit mindestens einer DNA- Nukleinsäuresequenz, die eine DNA-Nukleinsäuresequenz gemäß
(a) oder (b) aufweist, hybridisiert; (d) DNA-Nukleinsäuresequenz, die Fragmente, allelische oder andere Variationen der DNA-Nukleinsäuresequenz mit der in SEQ. ID. NO.: 1 dargestellten Nukleotidsequenz, ist;
(e) RNA-Nukleinsäuresequenz, die von einer DNA- Nukleinsäuresequenz gemäß (a) bis (d) abgeleitet ist; und (f) Nukleinsäuresequenz mit einem Grad der Homologie zu einer der Sequenzen gemäß (a) bis (e) von mehr als 60%.
2. Nukleinsäuresequenz gemäß Anspruch 1, wobei die
Nukleinsäuresequenz eine genomische DNA-Nukleinsäuresequenz oder eine cDNA-Nukleinsäuresequenz ist.
3. Nukleinsäuresequenz gemäß einem der Ansprüche 1 oder 2, wobei die Nukleinsäuresequenz aus einem Archaebakterium, einem
Prokaryonten oder einem Eukaryonten isoliert wurde.
4. Nukleinsäuresequenz gemäß Anspruch 3, wobei die
Nukleinsäuresequenz aus einem halophilen Eubakterium, einem Actinomyceten, einem Bazillus oder einem Brevibakterium isoliert wurde.
5. Nukleinsäurekonstrukt, wobei das Nukleinsäurekonstrukt in einer operativen Einheit eine Promotersequenz und eine Nukleinsäuresequenz gemäß einem der Ansprüche 1 oder 2 umfasst .
6. Nukleinsäurekonstrukt gemäß Anspruch 5, wobei das
Nukleinsäurekonstrukt zusätzlich eine Nukleinsäuresequenz umfasst, die für ein oder mehrere Sekretionssignale kodiert.
7. Polypeptid, wobei das Polypeptid durch eine Nukleinsäuresequenz gemäß einem der Ansprüche 1 oder 2 kodiert oder davon abgeleitet ist.
8. Polypeptid nach Anspruch 7, wobei das Polypeptid die Aminosäuresequenz SEQ. ID. NO.: 6 hat.
9. Replikativer, rekombinanter Vektor, wobei der Vektor eine Nukleinsäuresequenz gemäß einem der Ansprüche 1 oder 2 oder ein Nukleinsäurekonstrukt gemäß einem der Ansprüche 5 oder 6 umfasst .
10. Zelle, wobei die Zelle einen Vektor gemäß Anspruch 9enthält.
11. Zelle, wobei die Zelle eine durch nicht-natürliche Rekombination in das Genom integrierte Nukleinsäuresequenz gemäß einem der Ansprüche 1 oder 2 aufweist.
12. Zelle gemäß Anspruch 10 oder 11, wobei die Zelle eine
Bakterienzelle, eine Hefezelle oder eine Pflanzenzelle ist.
13. Pflanze, die mit einer rekombinanten DNA, die eine DNA- Sequenz gemäß einem der Ansprüche 1 bis 4 umfasst, transformiert wurde .
14. Verwendung von einem Oligonukleotid, das von einer Nukleinsäuresequenz gemäß einem der Ansprüche 1 oder 2 abgeleitet ist, als Nukleinsäure-Sonde zur Identifizierung von chromosomalen oder extrachromosomalen, sich in Archaebakterien, Prokaryonten oder Eukaryonten befindlichen Genen, die für ein Polypeptid kodieren, welches Tetrahydropyrimidin-Dioxygenase-Aktivität besitzt .
15. Verwendung von einem Polypeptid mit Tetrahydropyrimidin-Dioxygenase-Aktivität zur Herstellung von hydroxyliertem Tetrahydropyrimidin.
16. Verwendung nach Anspruch 15, wobei das Polypeptid die Aminosäuresequenz SEQ. ID. NO.: 6 hat.
17. Verwendung von einer Zelle nach einem der Ansprüche 10 - 12 zur Herstellung von hydroxyliertem Tetrahydropyrimidin.
18. Verfahren zur Herstellung eines Polypeptids mit Tetrahydropyrimidin-Dioxygenase-Aktivität , wobei
Zellen gemäß einem der Ansprüche 10 bis 12, wobei die Zellen das Polypeptid mit Tetrahydropyrimidin-Dioxygenase- Aktivität exprimieren, in einem Kulturmedium kultiviert werden; und das Polypeptid mit Tetrahydropyrimidin-Dioxygenase- Aktivität anschließend isoliert wird.
19. Verfahren gemäß Anspruch 18, wobei die lebende Zelle permeabilisiert worden ist und Tetrahydropyrimidin im Kulturmedium enthalten ist .
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