WO2002022853A2 - VERFAHREN ZUR MESSUNG DER AKTIVITÄT VON GERINNUNGSFAKTOR XIIIa - Google Patents

VERFAHREN ZUR MESSUNG DER AKTIVITÄT VON GERINNUNGSFAKTOR XIIIa Download PDF

Info

Publication number
WO2002022853A2
WO2002022853A2 PCT/EP2001/010285 EP0110285W WO0222853A2 WO 2002022853 A2 WO2002022853 A2 WO 2002022853A2 EP 0110285 W EP0110285 W EP 0110285W WO 0222853 A2 WO0222853 A2 WO 0222853A2
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
fxiiia
fibrinogen
activity
measuring
inhibitors
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Ceased
Application number
PCT/EP2001/010285
Other languages
English (en)
French (fr)
Other versions
WO2002022853A9 (de
WO2002022853A3 (de
Inventor
Dagmar Prasa
Jörg STÜRZEBECHER
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Friedrich Schiller Universtaet Jena FSU
Original Assignee
Friedrich Schiller Universtaet Jena FSU
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Friedrich Schiller Universtaet Jena FSU filed Critical Friedrich Schiller Universtaet Jena FSU
Priority to DE50105719T priority Critical patent/DE50105719D1/de
Priority to EP01974230A priority patent/EP1317672B1/de
Priority to CA002422523A priority patent/CA2422523A1/en
Priority to JP2002527295A priority patent/JP2004508832A/ja
Priority to AT01974230T priority patent/ATE291739T1/de
Priority to AU2001293797A priority patent/AU2001293797A1/en
Publication of WO2002022853A2 publication Critical patent/WO2002022853A2/de
Publication of WO2002022853A9 publication Critical patent/WO2002022853A9/de
Publication of WO2002022853A3 publication Critical patent/WO2002022853A3/de
Anticipated expiration legal-status Critical
Ceased legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/56—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving blood clotting factors, e.g. involving thrombin, thromboplastin, fibrinogen

Definitions

  • the invention relates to a method for measuring the activity of coagulation factor XLTIa, in particular for the use of test systems with high throughput.
  • the coagulation factor XILIa (FXIIIa) as transglutaminase is the only non-proteolytic enzyme in the plasma coagulation system.
  • the inactive proenzyme factor XLII (FXIII) circulating in the plasma is activated by thrombin in the course of blood coagulation and catalyzes the intermolecular crosslinking of fibrin monomers with one another and with other plasma proteins (e.g. 0. 2 -antiplasmin) by forming s - (- 7 glutamyl) -lysine bonds. This increases the mechanical strength and the resistance of the fibrin clot to fibrinolytic degradation. Outside the coagulation process, FXIIIa plays a role in wound healing.
  • FXIII was also detected in various cells (platelets, macrophages) and tissues (placenta). Little is known about the function (s) of cellular FXIIIa (L. Muszbek et al: Thromb. Res. 94, 1999, 271-305). However, effective, specific inhibitors are lacking for the further elucidation of the physiological role of FXIIIa. A therapeutic application for thrombosis prophylaxis is discussed for such inhibitors; the combination with plasminogen activators promotes the lysis of thrombotic occlusions (EM Leidy et al .: Thromb. Res. 59, 1990, 15-26; RJ Shebuski et al .: Blood 75, 2000 , 1455-1459).
  • Irnidazole derivatives, triazole and tetrazolium compounds which irreversibly block the sulfhydryl group in the active center of the enzyme have been described as direct inhibitors of FXIIIa (US 5,077,285; US 5,177,092; US 5,047,416).
  • the FXUIA inhibitor L722151, a TMazolo-thiadiazolium derivative developed by Merck Sharp & Dohme, is able to achieve an improvement in thrombolysis in animal models with a plasminogen activator (EM Leidy et al: Thromb. Res. 59, 1990 , 15-26).
  • FXIIIa inhibitors are also known.
  • the highly effective tridegin was isolated from the leech Haementeria ghilianii, other inhibitors from various microorganisms (US 6,025,330; US 5,710,174; K. Ikura et al .: Biosci. Biotechnol. Biochern. 64, 2000, 116-124).
  • the clot solubility test uses the different solubility of cross-linked and non-cross-linked fibrin clots in urea, but only allows a semi-quantitative determination of FXHIa activity (P. Sigg: Thromb. Diath. Haemorrh. 15, 1966, 238-251 ; AA Tymiak et al .: J. Antibiotics 46, 1993, 204-206).
  • the catalytic property of FXIIIa is used to bind labeled or biotinylated amine substrates (dansylcadaverine, biotmpentylamine) to commonly immobilized peptides (e.g. casein or fibrin).
  • the determination of the bound substrate is carried out directly (changes in fluorescence or Chenrilurninescence) or via antibody- or streptavidin-coupled enzymes (US 5,015,588; US 4,601,977). All of these methods require multiple incubation steps, are therefore time and labor intensive and are not suitable for the search for new, effective and specific inhibitors of FXIIIa, since they do not allow the use of automated test systems with high throughput.
  • the invention is based on the object of describing an easily implementable method for measuring the activity of FXIIIa, the in particular for screening for FXIIIa inhibitors using test systems with high throughput.
  • Fibrinogen is coagulated with an enzyme that cleaves fibrinogen.
  • the snake venom enzyme batroxobin is preferably used, a thrombin-like enzyme from the poison of Bothrops atrox which, in contrast to thrombin, only cleaves fibrinopeptide A from the fibrinogen molecule. Thrombin can also be used.
  • the use of purified human or other mammalian fibrinogen has proven to be particularly favorable.
  • Anticoagulated plasma e.g. from citrate or hirudin
  • the method according to the invention is preferably carried out in a buffer solution. Tris-HCl buffer with a pH of 7.4 is preferred.
  • a substance - usually a polymer - is added to the measurement batch, which is able to change the structure of the fibrin fibers that are produced in such a way that the translucency of the clot is reduced.
  • Polyethylene glycol 6000 is preferably used in a concentration of 0.2%.
  • the increase in extraction (turbidity) caused by fibrinogen coagulation is recorded photometrically continuously over a certain period of time. A final point measurement is also possible. The measurement is preferably carried out at 37 ° C. and a wavelength of 405 ⁇ m. If activated FXIII is added to the measurement batch, the increase in extinction during the reaction is smaller, ie the translucency of the clot formed is greater. The difference between the change in absorbance or the area under the absorbance-time curve of an approach without FXIIIa and an approach with FXIIIa serves as a measure of the activity of FXIIIa. With the test approach described, inhibitors of FXIIIa can be found, since an inhibitor lowers the translucency of the clot according to the strength of the inhibitory effect.
  • the activity of factor XIHa with and ol e test substance is compared.
  • the difference in activity serves as a measure of the inhibitory effect of the test substance examined.
  • thrornbin inhibitors can be searched in parallel. If the substances to be investigated have an inhibitory effect on thrombin, fibiinogen coagulation is prevented and the absorbance of the sample does not change.
  • the method according to the invention can be used to measure the activity of both plasma and cellular FXLUa.
  • the proenzyme FXIII is activated in a separate batch before the measurement. Activation is carried out by tlirombin in the presence of Ca ions.
  • a sufficient concentration of natural or synthetic inhibitor of thrombin is added to the activation approach after the activation of the FXIII.
  • Recombinant liirudiii is preferably used. This step is omitted when thrombin is used as the fibrinogen-cleaving enzyme.
  • Fig. 1 Coagulation of citrate-anticoagulated plasma with
  • FIG. 4 inhibition of FXIIIa by iodoacetic acid
  • Fig. 4A measurement curve
  • Fig. 4B FXIIIa activity depending on the
  • Tris buffer 0.05 M; 0.154 MNaCl; pH 7.4
  • CaCl 2 25 ⁇ l CaCl 2 (0.2 M)
  • 100 ⁇ l thrombin from bovine plasma, 100 U / ml
  • 10 ⁇ l cellular recombinant FXIII ( Aventis-Behring, Marburg, Germany; 8.6 mg / ml or 1155 U / ml) are mixed and incubated for 10 min at 37 ° C.
  • 25 ⁇ l of recombinant Hirudm HBV 023, 0., Frankfurt, Germany; 1000 U / ml
  • the added polymers result in a reduced translucency of the clot, visible in an increased increase in extinction.
  • the influence of hydroxyethyl starch, dextran and polyethylene glycol 1500 is relatively small.
  • Polyethylene glycol 6000 and 20000 increase the extinction by about 15 times compared to samples with little polymer additive.
  • FXIII is activated according to example 1.
  • FXIIIa increases the translucency of the clot depending on the concentration.
  • the calibration curve is linear at FXIIIa concentrations between 1 and 12 ⁇ g / ml.
  • Embodiment 4 is a diagrammatic representation of Embodiment 4:
  • FXIIIa Inhibition of FXIIIa by iodoacetic acid
  • the activation of FXIII takes place according to embodiment example 1. 100 ⁇ l fibrinogen (0.6%), 25 ⁇ l PEG 6000 (2%), 80 ⁇ l iodoacetic acid in buffer (0.2-0.8 rnM) and 20 ⁇ l activation batch are mixed and heated to 37 ° C. After adding 25 ⁇ l of Batroxobin (5 U / ml), the absorbance is measured as described above.
  • FIG. 4A shows the measurement curves as a function of the inhibitor concentration.
  • FIG. 4B shows the FXHIA activity as a function of the inhibitor concentration.
  • iodoacetic acid inhibits the activity of FXIIIa, recognizable by a reduced translucency of the clot.
  • the inhibitor concentration IC 50
  • the IC 5 o-iodoacetic acid value is 147 uM.

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Neurosurgery (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)

Abstract

Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Messung der Aktivität von Gerinnungsfaktor XIIIa. Es ist Aufgabe der Erfindung, eine leicht durchführbare Methode zur Messung der Aktivität von FXIIIa zu beschreiben, die auch für den Einsatz von Testsystemen mit hohem Durchsatz geeignet ist. Es wurde überraschend gefunden, dass aktivierter FXIII die Lichtdurchlässigkeit von Fibringerinnseln beeinflusst. Fibrinogen wird mit einem fibrinogenspaltenden Enzym zur Gerinnung gebracht. Die Änderung der Lichtdurchlässigkeit der Proben in Abhängigkeit von der Konzentration des vorhandenen FXIIIa wird registriert und dient als Maß für die Aktivität von FXIIIa. Das erfindungsgemäße Verfahren findet insbesondere Anwendung für das Screening nach FXIIIa-Hemmstoffen.

Description

Verfahren zur Messung der Aktivität von Gerinnungsfaktor Xllla
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Messung der Aktivität von Gerinnungsfaktor XLTIa, insbesondere zum Einsatz von Testsystemen mit hohem Durchsatz.
Der Gerinnungsfaktor XILIa (FXIIIa) ist als Transglutaminase das einzige nicht proteolytisch wirkende Enzym im plasmatischen Gerinnungssystem. Das im Plasma zirkulierende inaktive Proenzym Faktor XLII (FXIII) wird im Verlauf der Blutgerinnung durch Thrombin aktiviert und katalysiert die intermolekulare Vernetzung von Fibrinmonomeren untereinander und mit anderen Plasmaproteinen (z. B. 0.2-Antiplasmin) durch Bildung von s-(-7-Glutamyl)-Lysin-Bindungen. Dadurch werden die mechanische Festigkeit und die Widerstandsfähigkeit des Fibringerinnsels gegenüber fibrinolytischem Abbau verstärkt. Außerhalb des Gerinnungsgeschehens spielt FXIIIa eine Rolle bei der Wundheilung. FXIII wurde auch in verschiedenen Zellen (Thrombozyten, Makrophagen) und Geweben (Plazenta) nachgewiesen. Über die Funktion(en) des zellulären FXIIIa ist bisher wenig bekannt (L. Muszbek et al: Thromb. Res. 94, 1999, 271-305). Für die weitere Aufklärung der physiologischen Rolle von FXIIIa fehlen allerdings wirksame, spezifische Lihibitoren. Für derartige Hemmstoffe wird eine therapeutische Anwendung zur Thromboseprophylaxe diskutiert, die Kombination mit Plasminogenaktivatoren fördert die Lyse von thrombotischen Verschlüssen (E. M. Leidy et al.: Thromb. Res. 59, 1990, 15-26; R. J. Shebuski et al.: Blood 75, 2000, 1455-1459).
Bisher wurden nur wenige FXffla-Hemmstoffe beschrieben. In der Mehrzahl handelt es sich um Substrate vom Typ substituierter Alkylamine, die mit den Glutamin-Resten im Fibrin verknüpft werden und damit eine Quervernetzung des Fibrins verhindern. Um eine ausreichende Wirkung zu erzielen, sind allerdings hohe Konzentrationen dieser Pseudosubstrate erforderlich (S.-Y. Kim et al.: Biochem. Biophys. Res. Commun. 233, 1997, 39-44).
Als direkte Hemmstoffe von FXIIIa wurden u. a. Irnidazolderivate, Triazol- und Tetrazoliumverbindungen beschrieben, welche die Sulfhydrylgruppe im aktiven Zentrum des Enzyms irreversibel blockieren (US 5,077,285; US 5,177,092; US 5,047,416). Der von der Firma Merck Sharp & Dohme entwickelte FXUIa- Hemmstoff L722151, ein TMazolo-thiadiazolium-Derivat, ist in der Lage, im Tiermodell eine Verbesserung der Thrombolyse mit einem Plasminogenaktivator zu erreichen (E. M. Leidy et al: Thromb. Res. 59, 1990, 15-26).
Neben den synthetischen Hemmstoffen sind auch natürliche Hemmstoffe von FXIIIa bekannt. Das hochwirksame Tridegin wurde aus dem Egel Haementeria ghilianii, andere Hemmstoffe aus verschiedenen Mikroorganismen isoliert (US 6,025,330; US 5,710,174; K. Ikura et al.: Biosci. Biotechnol. Biochern. 64, 2000, 116-124).
Den bekannten Methoden zur Aktivitätsbestimmung von FXIIIa Hegen zwei Prinzipien zu Grunde:
(1) der Clot-Solubility-Test nutzt die unterschiedliche Löslichkeit von vernetzten und nicht vernetzten Fibringerinnseln in Harnstoff, erlaubt aber nur eine halbquantitative Bestimmung der FXHIa-Aktivität (P. Sigg: Thromb. Diath. Haemorrh. 15, 1966, 238-251; A. A. Tymiak et al.: J. Antibiotics 46, 1993, 204-206).
(2) wird die katalytische Eigenschaft von FXIIIa genutzt, um markierte oder biotinylierte Aminsubstrate (Dansylcadaverin, Biotmpentylamin) an gewöhnlich immobilisierte Peptide (z. B. Casein oder Fibrin) zu binden. Die Bestimmung des gebundenen Substrates erfolgt direkt (Änderungen der Fluoreszenz bzw. Chenrilurnineszenz) oder über Antikörper- bzw. Streptavidin-gekoppelte Enzyme (US 5,015,588; US 4,601,977). Alle diese Verfahren erfordern mehrfache Inkubationsschritte, sind daher zeit- und arbeitsaufwendig und für die Suche nach neuen, wirksamen und spezifischen Hemmstoffen von FXIIIa nicht geeignet, da sie die Anwendung von automatisierten Testsystemen mit hohem Durchsatz nicht ermöglichen. Auch die Methode, bei der Glycinethylester mit einem glutaπύnhaltigen Peptidsubstrat verknüpft wird und der dabei f eigesetzte Ammoniak in einer enzymatischen Reaktion gemessen wird, eignet sich nicht für ein Screening mit hohem Durchsatz (K. Fickenscher et al.: Thromb. Haemost. 65, 1991, 535-540).
Der Erfindung liegt die Aufgabe zu Grunde, eine leicht durchführbare Methode zur Messung der Aktivität von FXIIIa zu beschreiben, die insbesondere für das Screening nach FXIIIa-Hemmstoffen unter Einsatz von Testsystemen mit hohem Durchsatz angewendet werden kann.
Überraschend wurde gefunden, dass FXIIIa in Abhängigkeit von der eingesetzten Konzentration die Lichtdurchlässigkeit von Fibringerinnseln - entstanden durch die Wirkung eines Fibrinogen-spaltenden Enzyms wie z. B. Thrombin oder Batroxobin - verändert.
Auf der Grundlage dieser Ergebnisse wurde eine Methode zur Messung der Aktivität von FXIIIa entwickelt, die im Folgenden näher beschrieben wird.
Fibrinogen wird mit einem Fibrinogen-spaltenden Enzym zur Gerinnung gebracht. Vorzugsweise wird das Schlangengiftenzym Batroxobin eingesetzt, ein thrombinartiges Enzym aus dem Gift von Bothrops atrox, das im Gegensatz zu Thrombin nur Fibrinopeptid A aus dem Fibrinogenmolekül abspaltet. Der Einsatz von Thrombin ist ebenfalls möglich. Als besonders günstig erweist sich die Verwendung von gereinigtem Fibrinogen vom Menschen oder einem anderen Säuger. Als Fibrinogenquelle kann aber auch antikoaguliertes Plasma (z. B. durch Citrat oder Hirudin) vom Menschen oder von einem anderen Säuger genutzt werden. Vorzugsweise wird das erfindungsgemäße Verfahren in einer Pufferlösung durchgeführt. Bevorzugt wird Tris-HCl-Puffer mit einem pH-Wert von 7,4. Um die Sensitivität des Testverfahrens zu erhöhen, wird dem Messansatz eine Substanz - gewöhnlich ein Polymer - zugesetzt, die in der Lage ist, die Struktur der entstehenden Fibrinfasern derart zu verändern, dass die Lichtdurchlässigkeit des Gerinnsels vermindert wird. Vorzugsweise wird Polyethylenglykol 6000 in einer Konzentration von 0,2 % eingesetzt.
Die durch die Fibrinogengerinnung auftretende Extirj-ktionszunahme (Trübung) wird kontinuierlich über einen bestimmten Zeitraum photometrisch erfasst. Eine Endpunldmessung ist ebenfalls möglich. Die Messung wird bevorzugt bei 37 °C und einer Wellenlänge von 405 um durchgeführt. Wird dem Messansatz aktivierter FXIII zugesetzt, ist die Extinktionszunahme während der Reaktion geringer, d. h. die Lichtdurchlässigkeit des entstandenen Gerinnsels ist größer. Die Differenz zwischen der Extinktionsänderung bzw. der Fläche unter der Extinktions-Zeit-Kurve von einem Ansatz ohne FXIIIa und einem Ansatz mit FXIIIa dient als Maß für die Aktivität von FXIIIa. Mit dem beschriebenen Testansatz können Hemmstoffe von FXIIIa aufgefunden werden, da ein Hemmstoff die Lichtdurchlässigkeit des Gerinnsels entsprechend der Stärke der Hemmwirkung erniedrigt. Die Aktivität von Faktor XIHa mit und ol e Testsubstanz wird verglichen. Die Differenz der Aktivität dient als Maß für die Hemmwirkung der untersuchten Testsubstanz. Bei der Verwendung von Thrornbin als fibrinogenspaltendes Enzym kann parallel nach Thrombinhemmstoffen gesucht werden. Besitzen die zu mitersuchenden Substanzen eine Hemmwirkimg gegenüber Thrombin, wird die Fibiinogengerinnung verhindert, die Extinktion der Probe verändert sich nicht. Das erfindungsgemäße Verfahren kann sowohl zur Messung der Aktivität von plasmatischem als auch zellulärem FXLUa eingesetzt werden. Das Proenzym FXIII wird vor der Messung in einem gesonderten Ansatz aktiviert. Die Aktivierung erfolgt durch Tlirombin in Gegenwart von Ca-Ionen. Um bei der Verwendung anderer fibrinogenspaltender Enzyme wie Batroxobin den störenden Einfluss des Thrombins auf die Messmig zu verhindern, wird nach der vollständigen Aktivierung des FXIII dem Aktivierungsansatz ein natürlicher oder synthetischer Hemmstoff des Thrombins in ausreichender Konzentration zugesetzt. Vorzugsweise wird rekombinantes liirudiii verwendet. Beim Einsatz von Thrombin als fibrinogenspaltendes Enzym entfällt dieser Schritt.
Die Erfindung soll nachstehend anhand von vier in der Zeichnung dargestellten Ausfimrungsbeispielen näher erläutert werden. Es zeigen:
Fig. 1: Gerinnung von Citrat-antikoaguhertem Plasma mit
Batroxobin in Gegenwart von aktiviertem FXIII Fig. 2: Einfluss verschiedener Polymere auf die Gerinnung von Fibrinogen mit Batroxobin
Fig. 3: Gerinnung von Fibrinogen durch Batroxobin in Gegenwart verschiedener FXIIIa-Konzentrationen Fig. 4: Hemmung von FXIIIa durch Jodessigsäure Fig. 4A: Messkurve
Fig. 4B: FXIIIa- Aktivität in Abhängigkeit von der
Hemmstoffkonzentration
Ausfuhrungsbeispiel 1:
Gerinnung von Citrat-antikoaguhertem Plasma mit Batroxobin in Gegenwart von aktiviertem FXIII
Aktivierung von FXIII:
865 μl Tris-Puffer (0,05 M; 0,154 MNaCl; pH 7,4), 25 μl CaCl2 (0,2 M), 100 μl Thrombin (aus Rinderplasma, 100 E/ml) und 10 μl zellulärer rekombinanter FXIII (Aventis-Behring, Marburg, Deutschland; 8,6 mg/ml bzw. 1155 E/ml) werden gemischt und 10 min bei 37 °C inkubiert. Anschließend werden 25 μl rekombinantes Hirudm (HBW 023, Höchst, Frankfurt, Deutschland; 1000 E/ml) zugegeben.
Messansatz:
Auf einer Mikrotite latte werden 100 μl Citrat-Plasma, 60 μl Tris-Puffer (pH 7,4) und 40 μl des oben aufgeführten Aktivierungsansatzes gemischt und auf 37 °C temperiert. Die Reaktion wird durch Zugabe von 50 μl Batroxobin (Pentapharm Ltd., Basel, Schweiz; 2,5 E/ml) gestartet. Die Extinktionszunahme wird über 15 min bei 37 °C und einer Wellenlänge von 405 nm in einem Mikrotiterplattenphotometer (iEMS, Labsystems, Helsinki, Finnland) verfolgt. Ein Messansatz ohne Faktor Xllla dient als Kontrolle. Die Messkurven sind in Fig. 1 dargestellt.
Ergebnis: Nach einer kurzen Lagphase nimmt mit dem Einsetzen der Gerinnung die Extinktion zu und nähert sich im hinteren Teil der Messkurve einem Plateauwert, hi Gegenwart von aktiviertem FXIII ist die Extinktionszuiiahme deutlich geringer als in Proben ohne FXIIIa. Nichtaktivierter FXffl hat keinen Einfluss auf die Lichtduchlässigkeit des Gerinnsels. Ausfuhrungsbeispiel 2:
Einfluss verschiedener Polymere auf die Gerinnung von Fibrinogen mit Batroxobin
100 μl Fibrinogen (Sigma, Deisenhofen, Deutschland; 0,6%); 25 μl eines Polymers (25 mg/ml); 75 μl Tris-Puffer werden auf einer Mikrotiterplatte gemischt und auf 37 °C temperiert. Nach Zugabe von 50 μl Batroxobin (2,5 E/ml) wird die Extinktionszunahme über 20 min unter den in Ausführungsbeispiel 1 aufgeführten Bedingungen gemessen.
Der Einfluss von Hydroxyethylstärke, Dextransulfat und Polyethylenglykol auf die Lichtdurchlässigkeit von Fibrinogengerinnseln wird in Fig. 2 gezeigt.
Ergebnis:
Die zugesetzten Polymere bewirken eine verminderte Lichtdurchlässigkeit der Gerinnsel, sichtbar in einer verstärkten Zunahme der Extinktion. Der Einfluss von Hydroxyethylstärke, Dextran und Polyethylenglykol 1500 ist relativ gering. Polyethylenglykol 6000 und 20000 dagegen erhöhen die Extinktion um ca. das 15-fache im Vergleich zu Proben olme Polymerzusatz.
Ausführungsbeispiel 3:
Gerinnung von Fibrinogen durch Batroxobin in Gegenwart verschiedener FXIIIa-Konzentrationen
Die Aktivierung von FXIII erfolgt gemäß Ausfi-mrungsbeispiel 1.
Auf einer Mikrotiterplatte werden 100 μl Fibrinogen (0,6%), 25 μl PEG 6000 (2 %), 100 μl Aktivierungsansatz (mit verschiedenen Konzentrationen von FXIIIa) gemischt und nach dem Temperieren auf 37 °C mit 25 μl Batroxobin (5 E/ml) versetzt. Die Extinktion wird wie in Ausführungsbeispiel 2 gemessen. Die Extinktionszunahme der Proben wird in % bezogen auf die Extüiktionszunahme in einer Probe ohne FXIIIa (Kontrolle = 100%) angegeben. Fig. 3 zeigt die Eiclikurve für FXIIIa. Dargestellt sind die Mittelwerte (n = 6) ± Standardabweichung.
Ergebnis: FXIIIa erhöht konzentrationsabhängig die Lichtdurchlässigkeit der Gerinnsel. Die Eichkurve verläuft linear bei FXIIIa-Konzentrationen zwischen 1 und 12 μg/ml.
Ausftihrungsbeispiel 4:
Hemmung von FXIIIa durch Jodessigsäure Die Aktivierung von FXIII erfolgt gemäß Ausführungsbeispiel 1. 100 μl Fibrinogen (0,6 %), 25 μl PEG 6000 (2 %), 80 μl Jodessigsäure in Puffer (0,2 - 0,8 rnM) und 20 μl Aktivierungsansatz werden gemischt und auf 37 °C temperiert. Nach Zugabe von 25 μl Batroxobin (5 E/ml) wird die Extinktion wie oben beschrieben gemessen.
Die Messkurven sind in Fig. 4A dargestellt. Figur 4B zeigt die FXHIa- Aktivität in Abhängigkeit von !der Hemmstofϊkonzentration.
Ergebnis:
Jodessigsäure hemmt konzentrationsabhängig die Aktivität von FXIIIa, erkennbar an einer verminderten Lichtdurchlässigkeit des Gerinnsels. Als Maß für die Hemmwirkung wird die Hemmstoffkoi zentration (IC50) ermittelt, die eine Reduzierung der FXIII-Aktivität um 50% bewirkt. Der IC5o-Wert für Jodessigsäure beträgt 147 μM.

Claims

Patentansprüche
1. Verfahren zur Messung der Aktivität von Gerinnungsfaktor Xllla in einer Probenlösung, welche Faktor XILta enthält oder in welcher FXIIIa entsteht dadurch gekennzeichnet, dass der genannten
Probenlösung Fibrinogen zugesetzt wird, welches mit einem fibrinogenspaltenden Enzym zur Gerinnung gebracht wird, und die dabei auftretende Extinktionsänderung gemessen und ausgewertet wird.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet dass als fibrinogenspaltendes Enzym Batroxobin verwendet wird.
3. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, dass als fibrinogenspaltendes Enzym Thrombin verwendet wird.
4. Verfahren nach Ansprüchen 1 und 2, dadurch gekennzeichnet, dass als Fibrinogenquelle antikoaguhertes Plasma benutzt wird.
5. Verfahren nach Ansprüchen 1 bis 3, dadurch gekennzeichnet, dass dem Ansatz zur Extinktionsmessung eine Substanz, insbesondere ein Polymer, zugesetzt wird, welche die Lichtdurchlässigkeit des Gerinnsels vermindert.
6. Verfahren nach Anspruch 5, dadurch gekennzeichnet, dass als Polymer Polyethylenglykol 6000 eingesetzt wird.
7. Verwendung des Verfahrens gemäß Ansprüchen 1 bis 6 zum Screening nach Hemmstoffen von FXIIIa.
8. Verwendung des Verfahrens gemäß Anspruch 3 zum gleichzeitigen Screening sowohl nach Hemmstoffen von FXIIIa als auch von Thrombin.
PCT/EP2001/010285 2000-09-13 2001-09-06 VERFAHREN ZUR MESSUNG DER AKTIVITÄT VON GERINNUNGSFAKTOR XIIIa Ceased WO2002022853A2 (de)

Priority Applications (6)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE50105719T DE50105719D1 (de) 2000-09-13 2001-09-06 VERFAHREN ZUR MESSUNG DER AKTIVITÄT VON GERINNUNGSFAKTOR XIIIa
EP01974230A EP1317672B1 (de) 2000-09-13 2001-09-06 VERFAHREN ZUR MESSUNG DER AKTIVITÄT VON GERINNUNGSFAKTOR XIIIa
CA002422523A CA2422523A1 (en) 2000-09-13 2001-09-06 Method for measuring the activity of the blood clotting factor xiiia
JP2002527295A JP2004508832A (ja) 2000-09-13 2001-09-06 血液凝固第ＸＩＩＩａ因子の活性化の測定方法
AT01974230T ATE291739T1 (de) 2000-09-13 2001-09-06 Verfahren zur messung der aktivität von gerinnungsfaktor xiiia
AU2001293797A AU2001293797A1 (en) 2000-09-13 2001-09-06 Method for measuring the activity of the blood clotting factor xiiia

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE10046187.5 2000-09-13
DE10046187A DE10046187A1 (de) 2000-09-13 2000-09-13 Verfahren zur Messung der Aktivität von Gerinnungsfaktor XIIIa

Publications (3)

Publication Number Publication Date
WO2002022853A2 true WO2002022853A2 (de) 2002-03-21
WO2002022853A9 WO2002022853A9 (de) 2002-09-19
WO2002022853A3 WO2002022853A3 (de) 2002-12-12

Family

ID=7656684

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/EP2001/010285 Ceased WO2002022853A2 (de) 2000-09-13 2001-09-06 VERFAHREN ZUR MESSUNG DER AKTIVITÄT VON GERINNUNGSFAKTOR XIIIa

Country Status (8)

Country Link
US (1) US20030190692A1 (de)
EP (1) EP1317672B1 (de)
JP (1) JP2004508832A (de)
AT (1) ATE291739T1 (de)
AU (1) AU2001293797A1 (de)
CA (1) CA2422523A1 (de)
DE (2) DE10046187A1 (de)
WO (1) WO2002022853A2 (de)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP6257418B2 (ja) * 2014-04-01 2018-01-10 株式会社日立ハイテクノロジーズ 自動分析装置

Family Cites Families (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS6035119B2 (ja) * 1982-06-11 1985-08-13 株式会社 ヤトロン 血漿中のｘ３因子を測定する方法
DE3330699A1 (de) * 1983-08-25 1985-03-07 Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim Verfahren zur gleichzeitigen bestimmung von fibrinogen und fibrinogen-spaltprodukten im plasma
US5015588A (en) * 1987-10-29 1991-05-14 The Samuel Roberts Noble Foundation, Inc. Method for the detection of factor XIII in plasma
US5077285A (en) * 1989-07-31 1991-12-31 Merck & Co., Inc. Imidazole compounds and their use as transglutaminase inhibitors
US5047416A (en) * 1989-07-31 1991-09-10 Merck & Co., Inc. Triazole compounds and their use as transglutaminase inhibitors
US5177092A (en) * 1989-07-31 1993-01-05 Merck & Co., Inc. Medicinal use of certain tetrazolium salts
JPH06505496A (ja) * 1991-03-11 1994-06-23 ザ・ジェネラル・ホスピタル・コーポレーション 活性因子ｘ１１１の活性化を阻害するための組成物と方法
GB9509271D0 (en) * 1995-05-05 1995-06-28 Biopharm Res & Dev Ltd Blood clot stabilisation inhibitors
US5710174A (en) * 1995-06-07 1998-01-20 Zymo Genetics, Inc. Factor XIIIA inhibitor
KR100222292B1 (ko) * 1997-06-18 1999-10-01 허일섭 피브린 단량체를 이용한 혈액 응고 제 13인자의활성 측정방법
WO1998057678A2 (en) * 1997-06-18 1998-12-23 Cohesion Technologies, Inc. Compositions containing thrombin and microfibrillar collagen

Also Published As

Publication number Publication date
WO2002022853A9 (de) 2002-09-19
ATE291739T1 (de) 2005-04-15
CA2422523A1 (en) 2003-03-12
EP1317672B1 (de) 2005-03-23
WO2002022853A3 (de) 2002-12-12
DE50105719D1 (de) 2005-04-28
US20030190692A1 (en) 2003-10-09
JP2004508832A (ja) 2004-03-25
EP1317672A2 (de) 2003-06-11
DE10046187A1 (de) 2002-03-21
AU2001293797A1 (en) 2002-03-26

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Ouyang et al. Fibrinogenolytic enzymes of Trimeresurus mucrosquamatus venom
DE69022425T2 (de) Verfahren zur Bestimmung der funktionellen Wirkung von freiem Protein S oder Protein C in einer Plasmaprobe.
EP0236985B1 (de) Verfahren zur photometrischen Bestimmung der Protein C- und/oder Protein S-Aktivität
IE58862B1 (en) Blood coagulation inhibiting proteins, processes for preparing them and their uses
Tamada et al. Anticoagulant mechanism of sulfonated polyisoprenes
EP0711838B2 (de) Verfahren zum spezifischen Nachweis eines aktivierten Gerinnungsfaktors V mit einer erhöhten Stabilität gegenüber aktiviertem Protein C
EP0537490A2 (de) Funktioneller Test und Reagenz zur Bestimmung von Fibrinogen
Aoki et al. Differences of frequency distributions of plasminogen phenotypes between Japanese and American populations: new methods for the detection of plasminogen variants
EP0297597B1 (de) Verfahren zur Bestimmung der Aktivität von Serinproteasen oder Serinproteaseninhibitoren
DE2734427B2 (de) Verfahren zur Gewinnung von thrombinartigen Enzymen aus Schlangengiften
Ouyang et al. Properties of fibrinogen degradation products produced by α-and β-fibrinogenases of Trimeresurus mucrosquamatus snake venom
EP0565511B1 (de) Verfahren zur Spaltung von Proenzymen
EP1317672B1 (de) VERFAHREN ZUR MESSUNG DER AKTIVITÄT VON GERINNUNGSFAKTOR XIIIa
EP0972203B1 (de) REAGENS ZUR BESTIMMUNG DER aPTT
EP0570354B1 (de) Verfahren zur Bestimmung von Fibrinogen
EP0570355B1 (de) Verwendung von Prothrombinfragmenten
EP0975975A1 (de) Verfahren zur bestimmung von aktivierten blutgerinnungsfaktoren in plasma und plasmaderivaten
EP0182929A1 (de) Koaktivator zur Aktivierung von Protein C
EP0977995B1 (de) Verfahren zum funktionellen nachweis von störungen im protein c-system
Kojima et al. Visible fibrinolysis by endothelial cells: effect of vitamins and sterols
DE69128557T2 (de) Verfahren zur Bestimmung eines Plasminogenaktivators und sein Inhibitor
Maxwell et al. Some complexities of multiple inhibitor interactions in fibrinolytic systems
EP1684071B1 (de) Stabiles, chromogenes Testreagenz und dessen Verwendung in gerinnungsdiagnostischen Tests
Alexandre et al. Recurring thrombo-embolic accidents caused by family-related deficiency of the fibrinolysis system
EP1096951B1 (de) Verwendung von bromelainproteasen zur hemmung der blutgerinnung

Legal Events

Date Code Title Description
AK Designated states

Kind code of ref document: A2

Designated state(s): AE AG AL AM AU AZ BA BB BG BR BY CA CN CR CU CZ DM DZ EE GD GE GH GM HR HU ID IL IN IS JP KE KG KP KR KZ LC LK LR LS LT LV MA MD MG MK MN MW MX NO NZ PL RO RU SD SG SI SK SL TJ TM TR TT TZ UA UG US UZ VN YU ZA ZW

AL Designated countries for regional patents

Kind code of ref document: A2

Designated state(s): GH GM KE LS MW MZ SD SL SZ TZ UG ZW AM AZ BY KG KZ MD RU TJ TM AT BE CH CY DE DK ES FI FR GB GR IE IT LU MC NL PT SE TR BF BJ CF CG CI CM GA GN GQ GW ML MR NE SN TD TG

DFPE Request for preliminary examination filed prior to expiration of 19th month from priority date (pct application filed before 20040101)
AK Designated states

Kind code of ref document: C2

Designated state(s): AE AG AL AM AU AZ BA BB BG BR BY CA CN CR CU CZ DM DZ EE GD GE GH GM HR HU ID IL IN IS JP KE KG KP KR KZ LC LK LR LS LT LV MA MD MG MK MN MW MX NO NZ PL RO RU SD SG SI SK SL TJ TM TR TT TZ UA UG US UZ VN YU ZA ZW

AL Designated countries for regional patents

Kind code of ref document: C2

Designated state(s): GH GM KE LS MW MZ SD SL SZ TZ UG ZW AM AZ BY KG KZ MD RU TJ TM AT BE CH CY DE DK ES FI FR GB GR IE IT LU MC NL PT SE TR BF BJ CF CG CI CM GA GN GQ GW ML MR NE SN TD TG

COP Corrected version of pamphlet

Free format text: PAGES 1/3-3/3, DRAWINGS, REPLACED BY NEW PAGES 1/5-5/5; DUE TO LATE TRANSMITTAL BY THE RECEIVING OFFICE

121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application
AK Designated states

Kind code of ref document: A3

Designated state(s): AE AG AL AM AU AZ BA BB BG BR BY CA CN CR CU CZ DM DZ EE GD GE GH GM HR HU ID IL IN IS JP KE KG KP KR KZ LC LK LR LS LT LV MA MD MG MK MN MW MX NO NZ PL RO RU SD SG SI SK SL TJ TM TR TT TZ UA UG US UZ VN YU ZA ZW

AL Designated countries for regional patents

Kind code of ref document: A3

Designated state(s): GH GM KE LS MW MZ SD SL SZ TZ UG ZW AM AZ BY KG KZ MD RU TJ TM AT BE CH CY DE DK ES FI FR GB GR IE IT LU MC NL PT SE TR BF BJ CF CG CI CM GA GN GQ GW ML MR NE SN TD TG

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2002527295

Country of ref document: JP

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2422523

Country of ref document: CA

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 10380366

Country of ref document: US

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2001974230

Country of ref document: EP

WWP Wipo information: published in national office

Ref document number: 2001974230

Country of ref document: EP

WWG Wipo information: grant in national office

Ref document number: 2001974230

Country of ref document: EP