WO2005051799A2 - Peptide augmentant la capacite fusiogene d'une gamete - Google Patents

Peptide augmentant la capacite fusiogene d'une gamete Download PDF

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    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00—Medicinal preparations containing peptides

Definitions

  • the present invention relates to cyclic peptides increasing the fusiogenic capacity of the oocyte and / or of the spermatozoon, to pharmaceutical compositions comprising them and to their uses, in particular for supplementing culture media used for carrying out in vitro fertilization.
  • the peptides of the invention typically comprise a domain originating from the disintegrin loop of fertiline beta.
  • Fertilization is a complex process leading to the fusion of gametes (sperm and oocyte) to form an embryo. This natural process takes place in the tubular bulb and leads to pregnancy after migration of the embryo into the uterine cavity.
  • sperm membrane protein called Fertiline (Evans 2002). This molecule is an alpha beta dimer whose molecules belong to the family of proteins ADAM (A Disintegrin And Metalloprotease) (Evans 2001). The presence of integrins has been demonstrated on the oocyte. Through its putative binding site, sperm fertilin is likely to interact with one or more oocyte integrins.
  • integrins are binding molecules which are involved in the cell-matrix extracellular and cell-cell bonds. Their ligands bind to their extracellular domain via a link site consisting of a tripeptide located at the top of a loop.
  • Sperm have a membrane molecule with a disintegrin site capable of binding to an integrin.
  • This molecule discovered in the guinea pig, but 'present in all the mammals studied including man and mouse is called Fertiline. Human Fertilin has been sequenced, so its putative binding site is known. It is the tripeptide FEE (Phenylalanine, Glutamic acid, Glutamic acid) (Gupta et al. 1995, Vidaeus et al., 1997).
  • FEE Tripeptide
  • a linear octapeptide containing the sequence FEE inhibits the adhesion of spermatozoa to the oocyte and their penetration (Bronson 1999).
  • the inventors synthesized a cyclic peptide, called FEEc, reproducing the binding site of human fertiline beta and tested its action on human oocytes. Contrary to their expectations and surprisingly, the inventors have thus demonstrated that (1) the cyclic peptide FEEc binds to the membrane of the human oocyte, (2) that it induces a relocation of the adhesion proteins to the surface of the oocyte, this relocation being normally induced by spermatozoa, (3) that it increases the fusiogenic capacity of oocytes. These results were corroborated by experiments in mice.
  • the inventors have identified a new class of cyclic peptides capable of increasing the fusiogenic capacity of oocytes and / or spermatozoa. This class of cyclic peptides would also be able to activate the oocyte.
  • the invention relates to the use of a cyclic peptide comprising the binding site of fertilin beta (ADAM 2) to the integrin of the oocyte to increase the fusiogenic capacity and / or to activate an oocyte, typically in in vitro or ex vivo.
  • This binding site is contained in the disintegrin loop of fertiline beta.
  • This cyclic peptide comprises at least the tripeptide essential for this bond.
  • This tripeptide varies according to the species. However, the organization of the disintegrin loop is very well preserved among the species (see Table 1). It will therefore be easy for a person skilled in the art to define the disintegrin loop of fertiline beta and to identify the tripeptide.
  • X 8 is a charged amino acid. More particularly, it is selected from E, R, and Q.
  • X 12 is selected from P, L, E, and G.
  • X 13 is a low-bulk and uncharged amino acid, more particularly selected from S, A, P, and T.
  • X 29 is a low-bulk and uncharged amino acid, more particularly selected from S, A, and V.
  • the cyclic peptide can be cyclized by any means known to those skilled in the art.
  • the peptide can be cyclized via a covalent bond between the main chain and the main chain, between the main chain and a side chain, or between a side chain and another side chain. This bond can be a disulfide, amide or thioether bond.
  • the peptide can be cyclized by a peptide bond between the N-terminal residue and the C-terminal residue, or with amino or carboxylic groups of the side chains of residues.
  • the peptide is cyclized via two cysteine residues, more particularly via a disulfide bridge between these two cysteine residues.
  • the localization of the cysteine residues must allow the cyclization of the peptide.
  • the cysteine residues can be placed so that after cyclization, the peptide has a polypeptide tail. Preferably, these cysteine residues will be placed at the ends of the peptide.
  • the cyclic peptide according to the present invention can therefore be described by the following formula: .— Xm - TriPept - Xn - ⁇
  • X represents an amino acid
  • m and n is between 0 and 14.
  • the groups X are independent of each other and can represent, within the same molecule, different or identical amino acids.
  • the other is at least 1.
  • m + n is less than 10, preferably less than or equal to 5.
  • m + n is equal to 3.
  • the tripeptide has a sequence X- (Q / D / E) -E, preferably X- (D / E) -E.
  • the tripeptide can be selected by the group consisting of (QDE), (FEE), (TDE), (VGE), (FDE), (TDE), (NQE), (LDE).
  • the tripeptide is (FE-E).
  • the cyclic peptide according to the present invention is described by the following formula: C - Xm- TriPept -Xn- C
  • the cysteine residues involved in the cyclization of the peptide can be found naturally in the disintegrin loop or can be introduced into the sequence of the peptide. Disintegrating curls are rich in cysteines. Indeed, cysteine residues are stored in positions 1, 10, 17, 23 and 30 of these loops.
  • the peptides can be cyclized via a disulfide bridge chosen from the following group: C1-C17, C1-C23, C1-C30, C10-C17, C10-C23, and C10-C30.
  • the peptides are cyclized via a disulfide bridge chosen from C10-C17 and
  • cyclic peptides according to the present invention can therefore have one of the following structures:
  • the cyclic peptides according to the present invention have one of the following structures: Cio-RX 12 -Xi 3 -TriPept-C 17 ; or Ci (r R-Xi2-Xi3-TriPept-CD- (I7v> X2o-EY-C2 3 .
  • the cyclic peptides according to the invention are chosen from a group consisting of fragments 1-17, 1-23, 1-30, 10-17, 10-23, and 10-30 of one of the sequences SEQ ID Nos 1-8, preferably of the sequence SEQ ID No 1.
  • the cyclic peptides according to the invention are chosen from a group consisting of fragments 10-17, 10-23 of one of the sequences SEQ ID Nos 1-8 , preferably of the sequence SEQ ID No 1.
  • the cysteine residues can be introduced into the peptide to be cyclized.
  • the peptide according to the invention has the following structure: C-X- TriPept -C where X is an amino acid. A space-saving and uncharged amino acid will be preferred.
  • X is chosen from A, S or T. More particularly, X is A or S.
  • the X is serine and the tripeptide has the sequence (F-EE) (SEQ ID No 9 ).
  • FEEc this cyclic peptide
  • the invention relates very particularly to this cyclic peptide (called FEEc in the examples) and to its use for increasing the fusiogenic capacity and / or activating the oocytes.
  • amino acids of the cyclic peptide according to the present invention can be natural or not.
  • non-natural amino acid is meant an analog or derivative of a natural amino acid.
  • an unnatural amino acid may have an elongated, shorter, or variant side chain having suitable functional groups.
  • the stereoisomers L and D are envisaged.
  • the peptide bonds can be modified to make them resistant to proteolysis.
  • residues of the sequences described above can vary conservatively. Through conservative it is understood that the variant residue will have comparable physicochemical characteristics. Among the physicochemical characteristics taken into account, we find steric hindrance, polarity, hydrophobia, or charge.
  • the present invention also relates to the variants and / or derivatives of these cyclic peptides and their use, in particular for increasing the fusiogenic capacity and / or activating the oocytes.
  • These variants and derivatives preserve the binding capacity to the integrin of the oocyte, more particularly to the integrin ⁇ 1.
  • the invention also relates to a cyclic peptide multimer according to the invention.
  • This polymerization of the cyclic peptide can be carried out by any means available to those skilled in the art.
  • the cyclic peptide is coupled to a carrier molecule allowing the polymerization of the peptide.
  • the bond between the cyclic peptide and the carrier molecule can be covalent or non-covalent.
  • the methods for attaching the cyclic peptides to the carrier molecule are well known to those skilled in the art and include the chemistry of amines, the carbodiimide coupling of carboxyl and amino derivatives, the activation of cyanogen bromide, of N-hydroxysuccinimide, d 'epoxide, sulfhydryl, or hydrazide.
  • the bond between the carrier molecule and the cyclic peptides can be direct or indirect. When it is indirect, it can be done through a link. This link can have the role of a spacer which avoids an interaction of the carrier molecule on the properties of the cyclic peptide, in particular the fibrogenic and / or activating properties. This link can be a peptide.
  • the cyclic peptide must be attached to the carrier molecule so as to maintain accessibility to the tripeptide.
  • the number of cyclic peptides included in the multimer is preferably between 2 and 1000.
  • the multimeric form of the peptide according to the present invention makes it possible to increase the effect of the cyclic peptide on the relocation of the adhesion proteins of the oocyte.
  • the polymerization can be carried out via the biotin / streptavidin couple which makes it possible to prepare a tetramer of the cyclic peptide.
  • each cyclic peptide is linked to one biotin and four biotins can bind to one molecule of streptavidin.
  • several cyclic peptides according to the present invention can be carried by a transporter protein.
  • this protein has no biological effect on the oocyte.
  • proteins used as carrier protein including bovine serum albumin (BSA) and keyhole limpet hemocyanin.
  • cyclic peptides according to the present invention can be immobilized on a solid support.
  • the solid support can be non-exhaustively agarose, glass, cellulose resins, silica resins, polystyrene, polyacrylamide.
  • the solid support can be modified with functional groups allowing the fixation of the cyclic peptides, for example via the carboxyl, amino, sulfhydryl, hydroxyl and / or carbohydrate groups contained in these peptides.
  • the present invention relates to a composition comprising a cyclic peptide according to the present invention or a multimer thereof.
  • This composition can be a medium intended for the culture of gametes.
  • This composition may further comprise a pharmaceutically acceptable carrier.
  • This composition can be a pharmaceutical composition, preferably suitable for local application. Preferably, this local application is made at the level of the female genital tract.
  • the present invention relates to the use of a cyclic peptide according to the present invention, of a multimer thereof or of a composition according to the present invention for increasing the fusiogenic capacity of a gamete, in particular of the oocyte , or to activate an oocyte, as well as a corresponding method.
  • the cyclic peptides according to the present invention can be used for in vitro fertilization, for artificial insemination, and for nuclear transfer (cloning) in mammals, preferably non-humans.
  • these peptides will be used to carry out or improve in vitro fertilization, more particularly in humans.
  • the invention also relates to a gamete culture medium supplemented with a cyclic peptide according to the present invention or a multimer thereof.
  • the oocyte is placed in presence of the cyclic peptide according to the invention before being incubated in the presence of spermatozoa.
  • the oocyte is brought into contact simultaneously with the cyclic peptide according to the present invention and the gamete maie.
  • the peptides of the invention can also be used in a treatment intended to increase fertility.
  • the present invention relates to the use of a peptide according to the present invention for the preparation of a medicament intended to treat fertility problems, as well as a corresponding method.
  • the cyclic peptides according to the present invention can also be used to potentiate the spermatozoa.
  • the various methods and uses of the invention can be implemented in vitro, ex vivo or in vivo. They are advantageously practiced in vitro or ex vivo in order to produce treated cells or biological materials.
  • the cyclic peptides according to the present invention can be used for any species whose reproduction requires gametes.
  • the invention is of particular interest for endangered species, sparse species or high value species. More particularly, the invention considers the use of cyclic peptides in mammals.
  • the present invention can be applied to the reproduction or cloning of sheep, cattle, horses, etc. Of course, the present invention also applies in the aid of human procreation.
  • This peptide added in the culture media of human gametes is likely to potentiate their fusiogenic capacity and to lead to the constitution of embryos while respecting physiological membrane interactions. There are two potential advantages to its use: reducing the use of intracytoplasmic microinjection as a fertilization technique and improving the quality of the embryos obtained.
  • the invention also relates to methods for screening for compounds that enhance the fusiogenic capacities of the oocyte.
  • This method includes the following steps: 1) incubate the oocyte in the presence of the test compound; and 2) estimate the ability of the compound to increase the fusiogenic capacity of the oocyte.
  • the fusiogenic capacity can be estimated by at least one of the following criteria: the binding to the oocyte, the induction of a re-localization of the adhesion proteins on the surface of the oocyte (more particularly the integrin ⁇ l), the fusion of the oocyte with a sperm.
  • the relocation of the adhesion proteins to the surface of the oocyte results in the formation of patches of adhesion proteins (more particularly the integrin ⁇ 6 ⁇ 1). The relocation of adhesion proteins can be measured by labeling the adhesion proteins.
  • the invention relates to compounds which induce the relocation of the adhesion proteins of the patch oocyte as well as their use for increasing the fusiogenic capacities of the oocytes.
  • the human oocytes used for the experiments had two origins: oocytes in fertilization failure after END and oocytes not microinjected because immature at the time of 1TCSI and mature in vitro.
  • the patients had given these oocytes to research and had signed a consent to this end approved by the CCPPRB of the Aulnay sous Bois hospital.
  • the cyclic synthetic peptide FEEc used in this example is the following:
  • the FEEc peptide that the inventors have synthesized comprises the sequence of the tripeptide FEE. It includes the Serine which precedes it and the Cysteine which follows it. The inventors added an additional cysteine upstream of the binding site. The two cysteines located at the ends of the peptide allow the peptide to be cyclized.
  • the alpha 6 integrin subunit is present on the membrane of the human oocyte. It is part of the multimolecular fusion complex. This is the reason why inventors took it as a witness to the membrane reshuffle.
  • the skinned oocytes were incubated in drops of 20 ⁇ l of Ferticult culture medium in oil at room temperature. The medium was supplemented with a human anti-alpha 6 mouse antibody at 20 ⁇ M (Chemicon International, London, UK). The oocytes were then washed and then fixed in 2% PFA for one hour. They were then incubated for 45 minutes with a second mouse anti-immunoglobulin antibody labeled with FITC or Rhodamine raised in donkeys (FITC- conjugated donkey anti-mouse IgG or Rhodamine-conjugated donkey anti-mouse IgG 10 ⁇ g / ml ; Jackson laboratories).
  • the oocytes were finally mounted in immumount antifade (Shandon Laboratories) between slide and coverslip and examined either with a fluorescence microscope (Zeiss Axiophot) or with a confocal microscope (Leica Lasertechnik, GmbH).
  • the functional fusion inhibition tests were carried out under conditions similar to those used for the FIN: that is to say under conditions sufficiently close to the physiological conditions since they make it possible to obtain pregnancies and children.
  • the oocytes were incubated in drops of 20 ⁇ l of Ferticult under oil for 18 hours in an incubator under 5% CO 2 at 37 ° with 4000 mobile spermatozoa.
  • the tests were carried out by supplementing the medium with the Peptide FEEc at a concentration of 200 ⁇ M.
  • the oocytes were washed and incubated for 20 minutes in Hoechst 33342 (Sigma) at 5 ⁇ g / ml.
  • the oocytes were mounted in immumount between slide and coverslip before being examined under UN.
  • the fused sperm were fluorescent.
  • the slides were analyzed on a Zeiss Axiophot microscope equipped with a camera connected to image analysis software Imaging System Package (Applied hnaging, ⁇ ewcastle-upon-Tyne, UK). Immunofluorescence and confocal microscopy results.
  • the oocytes were incubated with 200 ⁇ M biotinylated FEEc Peptide for 45 minutes.
  • the examination in confocal microscopy made it possible to highlight a membrane marking with the Peptide FEEc as that is visible on the equatorial section of the oocyte ( Figure 1A).
  • the computer overlay has also shown that this marking corresponds to membrane patches (Fig. 1B).
  • Peptide FEEc therefore has the property of increasing the fusiogenic capacity of the human oocyte. It reproduces the mechanism by which the sperm present in contact with the oocyte membrane induces the molecular oocyte fusion complexes and therefore allows an easier fusion process.
  • mice 6 week C56bl / CBA mice were superovulated with 5 IU of PMSG and 5 IU of hCG administered 48 hours apart. Thirteen hours after the last injection, the mice were sacrificed and the oviducts were recovered and then dilated in M2 medium. The retrieved oocytes were then either inseminated in their cumulus or decorated by a brief passage in hyaluronidase. The decoronized oocytes were then mechanically skinned using microdissection scissors under a binocular magnifier.
  • the skinned oocytes were preincubated for 30 min. then inseminated in the presence; 1) Ml 6 medium control group; 2) medium supplemented with 10 ⁇ M QDEc; 3) 100 ⁇ M QDEc and 4) 1 mM QDEc.
  • the oocytes were in all cases inseminated for 3 hours with a concentration of 10 6 mobile spermatozoa per ml.
  • the intact oocytes were incubated with cyclic QDE 100. ⁇ M and 105 spermatozoa / ml.
  • the oocytes were carefully washed and then incubated in 10 ⁇ M Hoescht for 30 min, rinsed and then examined in UV on a Zeiss microscope. The data were analyzed using Statview ® software.
  • the number of spermatozoa which merge with a skinned oocyte is around twenty in the human species whereas it does not normally exceed 2 spermatozoa in mice. The increase in this number, less significant than in the human species, under the effect of QDE reaches a threshold of statistical significance quickly.
  • cyclic QDE results in a 75% increase in the rate of normally fertilized oocytes. The pattern of interaction of the sperm with the oocyte membrane therefore seems to be comparable in mice to what is happening in humans.
  • the cyclized version of the peptide reproducing the site of attachment of the disintegrin domain of ⁇ -fertiline does increase the fusiogenic capacities of the gametes.
  • Oocytes were mechanically skinned and then incubated for 45 min with the biotinylated Peptide at 100 ⁇ M.
  • the FEEc peptide was detected by a mouse anti-biotin antibody recognized by a biotinylated anti-mouse immunoglobulin antibody and then by streptavidin-FITC.
  • the oocytes were then mounted in immumount between slide and coverslips and examined under a confocal microscope.
  • A equatorial section of the oocyte
  • B superposition of sections corresponding to a hemi oocyte.
  • FIG. 2A control oocyte showing a diffuse and homogeneous fluorescence on the surface of the oocyte.
  • Fig. 2B after incubation with the Peptide FEEc, there is a redistribution of the ⁇ 6 subunit in the form of membrane aggregates.
  • Fig. 3A control oocyte showing the presence of around twenty fused spermatozoa in the oocyte cytoplasm.
  • Fig. 3B oocyte co-incubated with the Peptide at 100 ⁇ M with around sixty fused spermatozoa.
  • the numbers in parenthesis represent the number of oocytes in each group. Statistical difference with the values of the control group: * (P ⁇ 0.05); ** (P ⁇ 0.04)
  • Swann K Ca (2+) oscillations and sperm factors at fertilization in mammals. Hum Fertil (Camb). 1999; 2 (l): 61-66. Swann K, Parrington J, Jones KT. Potential role of a sperm-derived phospholipase C in triggering the egg-activating Ca2 + signal at fertilization. Reproduction. 2001 Dec; 122 (6): 839-46. Review.

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Abstract

La présente invention se rapporte à un peptide cyclique augmentant la capacité fusiogène de l'ovocyte issu de la boucle disintégrine de la fertiline béta, à une composition pharmaceutique comprenant ce peptide cyclique et à son utilisation, notamment pour supplémenter des milieux de culture utilisés pour la réalisation de la Fécondation in Vitro.

Description

PEPTIDE AUGMENTANT LA CAPACITE FUSIOGENE D'UNE GAMETE
DOMAINE TECHNIQUE
La présente invention se rapporte à des peptides cycliques augmentant la capacité fusiogène de l'ovocyte et/ou du spermatozoïde, à des compositions pharmaceutiques les comprenant et à leurs utilisations, notamment pour supplémenter des milieux de culture utilisés pour la réalisation de la Fécondation in Vitro. Les peptides de l'invention comprennent typiquement un domaine issu de la boucle disintégrine de la fertiline béta.
ETAT DE LA TECHNIQUE
La fécondation est un processus complexe aboutissant à la fusion des gamètes (spermatozoïde et ovocyte) pour former un embryon. Ce processus naturel a lieu dans l'ampoule tubaire et aboutit à une grossesse après migration de l'embryon dans la cavité utérine.
Lorsque le couple est stérile, des techniques d'Assistance Médicale à la Procréation sont mises en jeu pour obtenir in vitro des embryons. Us sont alors transférés par voie basse dans l'utérus où ils s'implantent.
La fécondation in vitro consiste simplement à mettre en présence, dans un milieu de culture adapté et dans des conditions de pH et de température appropriées, ovocytes et spermatozoïdes pour que la fécondation puisse se produire. Les techniques ont été largement développées depuis 25 ans (Bavister 2002).
Quand, pour des raisons parfois non élucidées, des échecs de fécondation ont lieu, les biologistes ont recours aux techniques de fécondation assistée qui consistent à microinjecter un spermatozoïde directement dans le cytoplasme de l'ovocyte. L'évolution des embryons microiηjectés n'est toutefois pas aussi bonne que celle observée après fécondation spontanée. En effet, les taux de grossesse obtenus par transfert de ces embryons sont inférieurs à ceux obtenus après fécondation in vitro simple (25,4 % vs 26,5 %, sur plus de 20 000 tentatives) (FINNAT, 2001). De même, les embryons issus de microinjection supportent moins bien la congélation que ceux issus de FIV (BLEFCO 2001, Simon et al, 1998). Ainsi, une lyse embryonnaire plus importante se produit au moment de la décongélation et un taux d'implantation plus faible est obtenu.
Enfin nous savons que l'activation de l'ovocyte consécutive à la fécondation est médiée par des ondes calciques induites par un facteur spermatique (S an 1999). Ces ondes ont une amplitude et une fréquence réglées dont dépend la qualité embryonnaire (Swanl999). Le court-circuit des étapes membranaires de l'interaction gamétique modifie le régime de ces ondes calciques pour deux raisons. L'interaction physiologique entre les membranes n'a pas lieu, et le traumatisme cellulaire dû au passage de la pipette de microinjection dans le cytoplasme provoque la sortie de calcium des pools de réserve (Tésarik et al ; 2002.). Cette sortie, si elle assure l'activation de l'ovocyte, peut aussi perturber le développement ultérieur de l'embryon.
L'étude du processus de fusion des membranes spermatique et ovocytaire au moment de la fécondation a permis de mettre en évidence en partie le mécanisme membranaire de la fusion.
La formation d'un complexe moléculaire membranaire a lieu à la surface de l'ovocyte. Ce complexe est induit par le spermatozoïde au moment de la fécondation. Sa composition et son mécanisme d'action sont partiellement connus, mais l'on sait que l'inhibition de leur formation entraîne l'inhibition de la fusion gamétique. La fécondation est donc bien liée à la formation de ces patches à la surface de l'ovocyte.
L'hypothèse communément admise est que le spermatozoïde interagit par le biais d'un premier récepteur avec la membrane et qu'après transduction d'un signal transmembranaire un mécanisme cellulaire permet la constitution de ces patches sur lesquels le spermatozoïde vient se fixer.
Des études ont lieu pour déterminer la nature du ligand spermatique et du récepteur ovocytaire impliqués. Il existe une protéine de membrane spermatique du nom de Fertiline (Evans 2002). Cette molécule est un dimère alpha béta dont les molécules appartiennent à la famille des protéines ADAM (A Disintégrine And Metalloprotease) (Evans 2001). La présence d'intégrines a été mise en évidence sur l'ovocyte. Par l'intermédiaire de son site de liaison putatif, la fertiline spermatique est susceptible d'interagir avec une ou des intégrines ovocytaires.
Les molécules de membranes appelées intégrines sont des molécules de liaison qui interviennent dans les liaisons cellule-matrice extra-cellulaire et cellule-cellule. Leurs ligands se lient à leur domaine extracellulaire par l'intermédiaire d'un site le liaison constitué par un tripeptide situé au sommet d'une boucle.
Les spermatozoïdes possèdent une molécule de membrane ayant un site disintégrine capable de se lier à une intégrine. Cette molécule, découverte chez le cobaye, mais' présente chez tous les mammifères étudiés dont l'homme et la souris s'appelle Fertiline. La Fertiline humaine a été séquençée, ce qui fait que son site putatif de liaison est connu. Il s'agit du tripeptide FEE (Phénylalanine, Acide glutamique, Acide glutamique) (Gupta et al. 1995, Vidaeus et al., 1997). Un octapeptide linéaire contenant la séquence FEE inhibe l'adhérence des spermatozoïdes à l'ovocyte et leur pénétration (Bronson 1999). Des effets inhibiteurs comparables ont été observés dans d'autres espèces avec des peptides linéaires et cycliques (Mwethera 1999 ; Gupta 2000 ; Li 2002 ; Myles 1994). Evans (1995) rapporte une absence d'effet inhibiteur des peptides cycliques chez la souris.
EXPOSE DE L'INVENTION
Au cours de recherches d'inhibteurs de la fécondation, les inventeurs ont synthétisé un peptide cyclique, appelé FEEc, reproduisant le site de liaison de la fertiline humaine béta et ont testé son action sur les ovocytes humains. Contrairement à leur attente et de manière surprenante, les inventeurs ont ainsi mis en évidence que (1) le peptide cyclique FEEc se fixe sur la membrane de l'ovocyte humain, (2) qu'il induit une relocalisation des protéines d'adhésion à la surface de l'ovocyte, cette relocalisation étant normalement induite par les spermatozoïdes, (3) qu'il augmente la capacité fusiogène des ovocytes. Ces résultats ont été corroborés par des expériences chez la souris.
Ainsi, les inventeurs ont identifié une nouvelle classe de peptides cycliques capables d'augmenter la capacité fusiogène des ovocytes et/ou des spermatozoïdes. Cette classe de peptides cycliques serait en outre capable d'activer l'ovocyte.
L'invention concerne l'utilisation d'un peptide cyclique comprenant le site de liaison de la fertiline béta (ADAM 2) à l'intégrine de l'ovocyte pour augmenter la capacité fusiogène et/ou pour activer d'un ovocyte, typiquement in vitro ou ex vivo. Ce site de liaison est contenu dans la boucle disintégrine de la fertiline béta. Ce peptide cyclique comprend au minimum le tripeptide indispensable à cette liaison. Ce tripeptide varie suivant les espèces. Cependant, l'organisation de la boucle disintégrine est très bien conservée parmi les espèces ( voir Table 1). Il sera donc facile à l'homme du métier de définir la boucle disintégrine de la fertiline béta et d'identifier le tripeptide.
Table 1 : Boucle disintégrine Homme ( 436) CLFMSKERMC RPSFEECDLP EYCNGSSASC( 465 ) SEQ ID No 1
Souris ( 440)CKLKRKGEVC RLAQDECDVT EYCNGTSEVC(469) SEQ ID No 2 Cobaye (433 )CEFKTKGEVC RESTDECDLP EYCNGSSGAC(462) SEQ ID No 3
Lapin ( 435)CTFKERGQSC RPPVGECDLF EYCNGTSALC(464) SEQ ID No 4
Macaque (436)CLFMSQERCC RPSFDECDLP EYCNGTSASC{465) SEQ ID No 5
Bovin ( 435)CAFIPKGHIC RGSTDECDLH EYCNGSSAAC( 464) SEQ ID No 6
Rat (44i) CNLKAKGELC RPA QECDVT EYCNGTSEVC(470) SEQ ID No 7 Porc f435iCSFMAKGQTC RLTLDECDLL EYCNGSSAAC( 4641 SEQ ID No 8
Les positions indiquées entre parenthèse correspondent aux positions dans les séquences fertilines béta dont les références sont données plus loin. Les résidus en gras soulignés correspondent au tripeptide. Les résidus en gras sont parfaitement conservés parmi les espèces.
Une séquence consensus de la boucle intégrine peut être déduite de la Table 1.
C-X2-(F/L)-(K/M/I)-X5-(K/R/Q)-(G/E)-X8-X9-C-R-X12-X13-TriPept-C-D-(L/V)-X2o-E-
Y-C-N-(G/E)-(T/S)-S-(A/E/G)-X29-C où les groupes X représentent, indépendamment les uns des autres, un acide aminé et « TriPept » le tripeptide indispensable à la liaison de la fertiline à Pintégrine. De préférence, X8 est un acide aminé chargé. Plus particulièrement, il est sélectionné parmi E, R, et Q. De préférence, X12 est sélectionné parmi P, L, E, et G. De préférence, X13 est un acide aminé peu volumineux et non chargé, plus particulièrement sélectionné parmi S, A, P, et T. De préférence, X29 est un acide aminé peu volumineux et non chargé, plus particulièrement sélectionné parmi S, A, et V.
Le peptide cyclique peut être cyclisé par tout moyen connu par l'homme du métier. Le peptide peut être cyclisé par l'intermédiaire d'une liaison covalente entre la chaine principale et la chaîne principale, entre la chaine principale et une chaine latérale, ou entre une chaîne latérale et une autre chaîne latérale. Cette liaison peut être une liaison disulfure, amide ou thioéther.
Par exemple, le peptide peut être cyclisé par une liaison peptidique entre le résidu N- terminal et le résidu C-terminal, ou avec des groupements aminés ou carboxyliques des chaînes latérales de résidus.
De préférence, le peptide est cyclisé par l'intermédiaire de deux résidus cystéine, plus particulièrement par l'intermédiaire d'un pont disulfure entre ces deux résidus cystéines.
La localisation des résidus cystéine doit permettre la cyclisation du peptide. Les résidus cystéine peuvent être placés de telle sorte qu'après cyclisation, le peptide présente une queue polypeptidique. De préférence, ces résidus cystéine seront placés aux extrémités du peptide.
Le peptide cyclique selon la présente invention peut donc être décrit par la formule suivante : .— Xm - TriPept - Xn — ι
où X représente un acide aminé, m et n est compris entre 0 et 14. Comme indiqué précédemment, dans les formules de l'invention, les groupes X sont indépendants les uns des autres et peuvent représenter, au sein d'une même molécule, des acides aminés différents ou identiques. De préférence, lorsque m ou n est égal à 0, l'autre est au moins 1. De préférence, m+n est inférieur à 10, de préférence inférieur ou égal à 5. Dans un mode de réalisation préféré, m+n est égal à 3. De préférence, le tripeptide présente une séquence X-(Q/D/E)-E, de préférence X-(D/E)-E. Par exemple, le tripeptide peut être sélectionné par le groupe constitué de (Q-D-E), (F-E-E), (T-D-E), (V-G-E), (F-D-E), (T-D-E), (N-Q-E), (L-D-E). Dans un mode de réalisation préféré, le tripeptide est (F-E- E).
De préférence, le peptide cyclique selon la présente invention est décrit par la formule suivante : C - Xm- TriPept -Xn- C
1 I
Les résidus cystéine impliqués dans la cyclisation du peptide peuvent se trouver naturellement dans la boucle disintégrine ou peuvent être introduits dans la séquence du peptide. Les boucles disintégrines sont riches en cystéines. En effet, des résidus cystéine sont conservés en positions 1, 10, 17, 23 et 30 de ces boucles. Ainsi, les peptides peuvent être cyclisés par l'intermédiaire d'un pont disulfure choisi parmi le groupe suivant : C1-C17, C1-C23, C1-C30, C10-C17, C10-C23, et C10-C30. De préférence, les peptides sont cyclisés par l'intermédiaire d'un pont disulfure choisi parmi C10-C17 et
C10-C23.
Les peptides cycliques selon la présente invention peuvent donc présenter une des structures suivantes :
C1-X2-(F/L)-(K/M/I)-X5-(K/R/Q)-(G/E)-X8-X9-C-R-X12-X13-TriPept-C17;
C1-X2-(F/L)-(K/M/I)-X5-(K/R/Q)-(G/E)-X8-X9-C-R-X12-X13-TriPept-C-D-(L/N)-X20- E-Y-C23;
Cι-X2-(F/L)-(K/M/I)-X5-(K/R/Q)-(G/E)-X8-X9-C-R-X12-X13-TriPept-C-D-(L/N)-X20-
E-Y-C-Ν-(G/E)-(T/S)-S-(A/E/G)-X29-C30;
C10- R-X12-X13-TriPept-C17;
C10- R-X12-X13-TriPept-C-D-(L/N)-X20-E-Y-C23; C10- R-X12-X13-TriPept-C-D-(L/N)-X20-E-Y-C-N-(G/E)-(T/S)-S-(A/E/G)-X29-C30; où X représentant un acide aminé et les résidus cystéines des extrémités des peptides formant des ponts disul ures. De préférence, les peptides cycliques selon la présente invention présentent une des structures suivantes : Cio- R-X12-Xi3-TriPept-C17; ou Ci(r R-Xi2-Xi3-TriPept-C-D-(I7v>X2o-E-Y-C23.
Plus particulièrement, les peptides cycliques selon l'invention sont choisis parmi un groupe constitué des fragments 1-17, 1-23, 1-30, 10-17, 10-23, et 10-30 d'une des séquences SEQ ID Nos 1-8, de préférence de la séquence SEQ ID No 1. De préférence, les peptides cycliques selon l'invention sont choisis parmi un groupe constitué des fragments 10- 17, 10-23 d'une des séquences SEQ ID Nos 1-8, de préférence de la séquence SEQ ID No 1.
Les résidus cystéine peuvent être introduits dans le peptide à cycliser. Dans un mode de réalisation préféré, le peptide selon l'invention a la structure suivante : C-X- TriPept -C où X est un acide aminé. Un acide aminé peu encombrant et non chargé sera privilégié. De préférence, X est choisi parmi A, S ou T. Plus particulièrement, X est A ou S. Dans un mode de réalisation préféré, le X est la serine et le tripeptide présente la séquence (F- E-E) (SEQ ID No 9). L'invention concerne tout particulièrement ce peptide cyclique (dénommé FEEc dans les exemples) et son utilisation pour augmenter la capacité fusiogène et/ou activer les ovocytes.
Les acides aminés du peptide cyclique selon la présente invention peuvent être naturels ou non. Par acide aminé non-naturel est entendu un analogue ou dérivé d'un acide aminé naturel. Par exemple, un acide aminé non naturel peut présenter une chaine latérale allongée, plus courte, ou variante présentant des groupements fonctionnels appropriés. Bien entendu, les stéréoisomères L et D sont envisagés. De plus, les liaisons peptidiques peuvent être modifiées pour les rendre résistantes à la protéolyse. Par exemple, au moins une liaison peptidique (-CO-NH-) peut être remplacée par une liaison divalente choisie parmi (-CH2-NH-), (-NH-CO-), (-CH2-O-), (-CH2-S-), (-CH2- CH2-), (-CO-CH2-), (-CHOH-CH2-), (-N=N-), et (-CH=CH-).
Les résidus des séquences décrites ci-dessus peuvent varier de façon conservative. Par conservative est entendu que le résidu variant présentera des caractéristiques physico- chimiques comparables. Parmi les caractéristiques physicochimiques prises en compte, on trouve l'encombrement stérique, la polarité l'hydrophobie, ou la charge.
Par conséquent, la présente invention concerne également les variants et/ou les dérivés de ces peptides cycliques et leur utilisation, notamment pour augmenter la capacité fusiogène et/ou activer les ovocytes. Ces variants et dérivés concervent la capacité de liaison à l'intégrine de l'ovocyte, plus particulièrement à l'intégrine αόβl.
L'invention concerne également un multimère de peptide cyclique selon l'invention. Cette polymérisation du peptide cyclique peut être réalisée par tout moyen disponible à l'homme du métier. De préférence, le peptide cyclique est couplé à une molécule porteuse permettant la polymérisation du peptide. La liaison entre le peptide cyclique et la molécule porteuse peut être covalente ou non-covalente. Les méthodes pour fixer les peptides cycliques à la molécule porteuse sont bien connues de l'homme du métier et comprennent la chimie des aminés, le couplage carbodiimide des dérivées carboxyl et amino, l'activation du bromure de cyanogène, de N-hydroxysuccinimide, d'époxide, de sulfhydryl, ou d'hydrazide. La liaison entre la molécule porteuse et les peptides cycliques peut être directe ou indirecte. Lorsqu'elle est indirecte, elle peut se faire à travers un lien. Ce lien peut avoir un rôle d'espaceur qui évite une interaction de la molécule porteuse sur les propriétés du peptide cyclique, notamment les propriétés fïisiogènes et/ou activatrices. Ce lien peut être un peptide. Le peptide cyclique doit être fixé à la molécule porteuse de manière à maintenir l'accessibilité du tripeptide. Le nombre de peptides cycliques compris dans le multimère est de préférence compris entre 2 et 1000. La forme multimérique du peptide selon la présente invention permet d'augmenter l'effet du peptide cyclique sur la relocalisation des protéines d'adhésion de l'ovocyte.
Par exemple, la polymérisation peut être faite par l'intermédiaire du couple biotine/streptavidine qui permet de préparer un tétramère du peptide cyclique. Ainsi, chaque peptide cyclique est lié à une biotine et quatre biotines peuvent se lier à une molécule de streptavidine. Alternativement, plusieurs peptides cycliques selon la présente invention peuvent être portés par une protéine transporteuse. De préférence, cette protéine n'a pas d'effet biologique sur l'ovocyte. L'homme du métier connaît plusieurs protéines utilisées comme protéine porteuse dont l'albumine sérique bovine (SAB) et l'hémocyanine de patelle.
D'autre part, plusieurs peptides cycliques selon la présente invention peuvent être immobilisés sur un support solide. Le support solide peut être de façon non exhaustive de l'agarose, du verre, des résines cellulosiques, des résines de silice, du polystyrène, du polyacrylamide. Le support solide peut être modifié avec des groupements fonctionnels permettant la fixation des peptides cycliques, par exemple par l'intermédiaire des groupements carboxyl, amino, sulfhydryl, hydroxyl et/ou carbohydrate contenus dans ces peptides.
La présente invention concerne une composition comprenant un peptide cyclique selon la présente invention ou un multimère de celui-ci. Cette composition peut être un milieu destiné à la culture de gamètes. Cette composition peut comprendre en outre un support pharmaceutiquement acceptable. Cette composition peut être une composition pharmaceutique, de préférence adaptée à une application locale. De préférence, cette application locale est faite au niveau du tractus génital femelle.
La présente invention concerne l'utilisation d'un peptide cyclique selon la présente invention, d'un multimère de celui-ci ou d'une composition selon la présente invention pour augmenter la capacité fusiogène d'une gamète, en particulier de l'ovocyte, ou pour activer un ovocyte, ainsi qu'une méthode correspondante.
Notamment, les peptides cycliques selon la présente invention peuvent être utilisés pour la fécondation in vitro, pour l'insémination artificielle, et pour le transfert nucléaire (clonage) chez les mammifères, de préférence non-humains. De préférence, ces peptides seront utilisés pour réaliser ou améliorer une fécondation in vitro, plus particulièrement chez les humains. A cet égard, l'invention concerne également un milieu de culture de gamètes supplémenté par un peptide cyclique selon la présente invention ou un multimère de celui-ci. Dans un mode de réalisation particulier, l'ovocyte est mis en présence du peptide cyclique selon l'invention avant d'être incubé en présence des spermatozoïdes. Dans un autre mode de réalisation, l'ovocyte est mis en présence simultanément avec le peptide cyclique selon la présente invention et le gamète maie.
Les peptides de l'invention peuvent être également utilisés dans un traitement destiné à augmenter la fécondité. Ainsi la présente invention concerne l'utilisation d'un peptide selon la présente invention pour la préparation d'un médicament destiné à traiter les problèmes de fécondité, ainsi qu'une méthode correspondante.
Les peptides cycliques selon la présente invention peuvent également être utilisés pour potentialiser les spermatozoïdes.
Les différentes méthodes et utilisations de l'invention peuvent être mises en œuvre in vitro, ex vivo ou in vivo. Elles sont avantageusement pratiquées in vitro ou ex vivo afin de produire des cellules ou matériels biologiques traités.
Les peptides cycliques selon la présente invention peuvent être utilisés pour toute espèce dont la reproduction fait appel à des gamètes. L'invention présente un intérêt tout particulier pour les espèces en voie de disparition, les espèces peu fécondes ou les espèces de grande valeur. Plus particulièrement, l'invention considère l'utilisation des peptides cycliques chez les mammifères. De préférence, la présente invention peut s'appliquer à la reproduction ou au clonage des ovins, des bovins, des équins, etc.. Bien entendu, la présente invention s'applique également dans l'aide à la procréation humaine.
Ce peptide ajouté dans les milieux de culture des gamètes humains est susceptible de potentialiser leur capacité fusiogène et d'amener à la constitution d'embryons tout en respectant les interactions physiologiques membranaires. Il y a deux intérêts potentiels à son utilisation : la réduction de l'utilisation de la microinjection intracytoplasmique comme technique de fécondation et l'amélioration de la qualité des embryons obtenus.
L'invention concerne également des méthodes de criblage de composés augmentant les capacités fusiogènes de l'ovocyte. Cette méthode comprend les étapes suivantes : 1) incuber l'ovocyte en présence du composé testé ; et 2) estimer la capacité du composé à augmenter la capacité fusiogène de l'ovocyte. De préférence, la capacité fusiogène peut être estimée par au moins un des critères suivants : la liaison à l'ovocyte, l'induction d'une re-localisation des protéines d'adhésion à la surface de l'ovocyte (plus particulièrement l'intégrine αόβl), la fusion de l'ovocyte avec un spermatozoïde. De préférence, la relocalisation des protéines d'adhésion à la surface de l'ovocyte aboutit à la formation de patches de protéines d'adhésion (plus particulièrement l'intégrine α6βl). La relocalisation des protéines d'adhésion peut être mesurée par le marquage des protéines d'adhésion.
L'invention concerne les composés induisant la relocalisaton des protéines d'adhésion de l'ovocyte en patche ainsi que leur utilisation pour augmenter les capacités fusiogènes des ovocytes.
D'autres aspects et avantages de l'invention apparaîtront à la lecture des exemples qui suivent, qui doivent être considérés comme illustratifs et non limitatifs.
EXEMPLES
Résultats de l'étude du FEE cyclique sur la fusion gamétique chez l'homme
Matériel et méthodes
Les ovocytes humains
Les ovocytes humains utilisés pour les expérimentations avaient deux origines : les ovocytes en échec de fécondation après FIN et les ovocytes non microinjectés car immatures au moment de 1TCSI et matures in vitro. Les patients avaient donné ces ovocytes à la recherche et avaient signé à cette fin un consentement visé par le CCPPRB de l'hôpital d' Aulnay sous Bois.
Ces ovocytes âgés de 48 heures ou matures in vitro ne sont pas ou plus capables de donner un embryon. Par ailleurs le mécanisme du blocage à la polyspermie qui assure la qualité diploïde de l'embryon est situé au niveau de la zone pellucide de l'ovocyte. En dépellucidant ces ovocytes, on enlève ce mécanisme protecteur ce qui aboutit en cas de fusion gamétique à des zygotes polyspermiques non viables. Enfin, le développement embryonnaire se faisant à l'intérieur de la zone pellucide pendant les 6 premiers jours, son absence empêche un tel développement d'avoir lieu.
Pour garder la membrane ovocytaire aussi proche que possible de son état naturel, la dépellucidation que les inventeurs ont faite a été réalisée de façon mécanique à l'aide de ciseaux de microchirurgie.
Les spermatozoïdes
Le sperme de donneurs féconds a été collecté après 3 jours d'abstinence et préparé comme pour les FIN. Brièvement, l'éjaculat a été gardé à 37° jusqu'à liquéfaction puis sélectionné sur un gradient de Puresperm 2 couches (90 et 45 %). Le sperme a été alors gardé dans des conditions capacitantes jusqu'à l'insémination des ovocytes.
Le peptide synthétique cyclique FEEc
La séquence complète du domaine disintégrine de la Fertiline humaine constituant la boucle est représentée ci-dessous :
CLFMSKERMCRPSFEECDLPEYCΝGSSASC SEQ ID Νo 1
Le peptide synthétique cyclique FEEc utilisé dans cet exemple est le suivant :
CSFEEC SEQ ID Νo 9
Le peptide FEEc que les inventeurs ont synthétisé comprend la séquence du tripeptide FEE. Il comprend la Serine qui le précède et la Cystéine qui le suit. Les inventeurs ont ajouté une Cystéine supplémentaire en amont du site de liaison. Les deux cystéines situées aux extrémités du peptide permettent de cycliser le peptide.
Immunofluorescence
La sous-unité intégrine alpha 6 est présente sur la membrane de l'ovocyte humain. Elle fait partie du complexe multimoléculaire de fusion. C'est la raison pour laquelle les inventeurs l'ont prise comme témoin du remaniement membranaire.
Les ovocytes dépellucidés ont été incubés dans des gouttes de 20 μl de milieu de culture Ferticult sous huile à température de la pièce. Le milieu a été supplémenté avec un anticorps de souris anti alpha 6 humain à 20 μM (Chemicon International, Londres, GB). Les ovocytes ont alors été lavés puis fixés dans de la PFA 2% pendant une heure. Ils ont ensuite été incubés pendant 45 minutes avec un second anticorps anti- immunoglobuline de souris marqué au FITC ou à la Rhodamine élevé chez l'âne (FITC- conjugated donkey anti-mouse IgG ou Rhodamine-conjugated donkey anti-mouse IgG lOμg/ml ; Jackson laboratories). Après lavage, les ovocytes ont enfin été montés dans de l'immumount antifade (Shandon Laboratories) entre lame et lamelle et examinés soit au microscope à fluorescence (Zeiss Axiophot) soit au microscope confocal (Leica Lasertechnik, GmbH).
Tests fonctionnels de fusion
Les test fonctionnels d'inhibition de la fusion ont été réalisés dans des conditions similaires à celles employées pour la FIN : c'est-à-dire dans des conditions suffisamment proches des conditions physiologiques puisqu'elles permettent l'obtention de grossesses et d'enfants. Brièvement, les ovocytes ont été incubés dans des gouttes de 20 μl de Ferticult sous huile pendant 18 heures dans un incubateur sous 5 % de CO2 à 37° avec 4000 spermatozoïdes mobiles. Les tests ont été menés en supplémentant le milieu avec le Peptide FEEc à la concentration de 200 μM. A la fin de l'incubation, les ovocytes ont été lavés et incubés 20 minutes dans du Hoechst 33342 (Sigma) à 5 μg/ml. Après fixation dans du PFA 4% PBS-BSA 1% pendant 30 minutes à température ambiante, les ovocytes ont été montés dans de l'immumount entre lame et lamelle avant d'être examinés sous UN. Les spermatozoïdes fusionnés étaient fluorescents. Les lames ont été analysées sur un microscope Zeiss Axiophot équipé d'une caméra connectée à un logiciel d'analyse d'images Imaging System Package (Applied hnaging, Νewcastle- upon-Tyne, UK). Résultats hnmunofluorescence et microscopie confocale.
Les ovocytes ont été incubés avec du Peptide FEEc biotinylé 200 μM pendant 45 minutes. L'examen en microscopie confocale a permis de mettre en évidence un marquage membranaire avec le Peptide FEEc comme cela est visible sur la coupe équatoriale de l'ovocyte (Figure 1A). La superposition informatique a montré en outre que ce marquage correspond à des patches membranaires (Fig. 1B).
Induction de patches de fusion par le Peptide FEEc sur l'ovocyte humain Le spermatozoïde induit des patches multimoléculaires. En incubant des ovocytes matures in vitro avec une suspension de Peptide FEEc 200 μM pendant 18 heures, les inventeurs ont mis en évidence une redistribution de la sous-unité intégrine α6. En effet, alors que sur l'ovocyte intact la distribution de la sous-unité α6 est homogène sur la surface de l'ovocyte (Fig. 2A), le Peptide FEEc induit sa redistribution sous forme de petites agrégats membranaires. Chez la souris, le spermatozoïde induit effectivement de tels patches lors de la fécondation. Il peut en être conclu que le peptide FEEc induit une redistribution membranaire de protéines d'adhésion comparable à celle qui est induite par le spermatozoïde lui-même au cours de la fécondation.
Test fonctionnel de fusion avec des gamètes humains
Dans des conditions semblables, des ovocytes dépellucidés ont été incubés en présence de 200 μM de Peptide FEEc et de spermatozoïdes. Dans les ovocytes témoins, une vingtaine de spermatozoïdes fusionnés au sein du cytoplasme ovocytaire ont été observés (Fig. 3A). En présence de 200 μM de Peptide FEEc, le nombre des spermatozoïdes cytoplasmiques a été bien plus important (Fig 3B). L'expérience reproduite sur un plus grand nombre d'ovocytes a fait apparaître une augmentation moyenne de 60% environ du nombre de spermatozoïdes qui ont fusionné avec l'ovocyte (26,1+8,3 vs 16,4+5,2 ; P<0,001). L'augmentation du nombre de spermatozoïdes est donc statistiquement significative. Cet effet est spécifique car l'incubation avec le même peptide brouillé est sans effet. L'action du Peptide FEEc est réversible car les ovocytes préincubés avec le Peptide FEEc puis lavés et inséminés ne montrent pas de variation de leur capacité fusiogène. Il n'y a donc pas non plus d'effet toxique sur les ovocytes mais la co-incubation est nécessaire pour que l'effet du Peptide apparaisse. Discussion
Le Peptide FEEc présente donc la propriété d'augmenter la capacité fusiogène de l'ovocyte humain. Il reproduit le mécanisme par lequel le spermatozoïde présent au contact de la membrane ovocytaire induit les complexes moléculaires de fusion ovocytaires et permet donc un processus de fusion plus facile.
Il peut servir à supplémenter les milieux de culture utilisés pour la réalisation de la Fécondation in Vitro. Il devrait alors pouvoir améliorer les taux de fécondation des FF/ réalisées pour stérilité idiopathique ou pour déficience spermatique. Il y aurait alors une diminution du recours aux techniques de microinjection et amélioration de la qualité des embryons obtenus.
Résultats de l'étude du QDE cyclique sur la fusion gamétique chez la souris
De façon semblable à ce que nous avions vu dans l'espèce humaine, nous avons étudié l'effet d'un tripeptide cyclique dans le modèle souris. Par analogie, le motif du tripeptide reproduisait cette fois le site de fixation de la disintégrine de la fertiline β de la souris, c'est à dire le tripeptide QDE. Ce peptide a été appelé QDEc.
Matériel et méthode.
Des souris C56bl/CBA de 6 semaines ont été superovulées par 5 UI de PMSG et 5 UI d'hCG administrées à 48 heures d'intervalle. Treize heures après la dernière injection les souris ont été sacrifiées et les oviductes ont été récupérés puis dilacérés dans du milieu de M2. Les ovocytes récupérés ont alors été soit inséminés dans leur cumulus soit décoronisés par un bref passage dans de la hyaluronidase. Les ovocytes décoronisés ont ensuite été dépellucidés mécaniquement à l'aide de ciseaux de microdissection sous une loupe binoculaire.
Les ovocytes dépellucidés ont été préincubés 30 min. puis inséminés en présence ; 1) groupe témoin de milieu Ml 6; 2) de milieu supplémenté de 10 μM de QDEc ; 3) 100 μM de QDEc et 4) 1 mM de QDEc. Les ovocytes ont été dans tous les cas inséminés pendant 3 heures avec une concentration de 106 spermatozoïdes mobiles par ml. Les ovocytes intacts ont été incubés avec QDE cyclique 100 . μM et 105 spermatozoïdes/ml.
Après l'incubation, les ovocytes ont été soigneusement lavés puis incubés dans du Hoescht 10 μM pendant 30 min, rincés puis examinés en UV sur un microscope Zeiss. Les données ont été analysées à l'aide du logiciel Statview ®.
Résultats 1 - ovocyte dépellucidés
Au cours de 5 expériences, 170 oocytes ont été étudiés en 4 groupes. Alors que la moyenne du nombre de spermatozoïdes fusionnés par ovocyte est de 2,2+0,1 (moy±ES) dans le groupe contrôle, il augmente de façon dose dépendante avec la présence du QDE dans le milieu d'incubation (Figure 5). H atteint des différences statistiques pour des concentrations de 100 μM (P<0,05) et de façon significative pour 1 mM (P<0,004) avec une augmentation de 32% du nombre des spermatozoïdes fusionnés.
2 - ovocytes intacts
En FIN classique : Les trois expérimentations ont donné des résultats cohérents avec une moyenne de fécondation de 32,1+7,6 % pour le témoin et 56,3+16,0 % pour le groupe testé (P<0,001) (Figure 6).
Discussion
Le nombre de spermatozoïdes qui fusionnent avec un ovocyte dépellucidé est d'une vingtaine dans l'espèce humaine alors qu'il ne dépasse en règle pas 2 spermatozoïdes chez la souris. L'augmentation de ce nombre, moins importante que dans l'espèce humaine, sous l'effet du QDE atteint un seuil de signification statistique rapidement. De plus, en fécondation in vitro d'ovocytes intacts, le QDE cyclique entraîne une augmentation de 75 % du taux des ovocytes normalement fécondés. Le schéma d'interaction du spermatozoïde avec la membrane ovocytaire semble donc être comparable chez la souris à ce qui se passe dans l'espèce humaine. La version cyclisé du peptide reproduisant le site de fixation du domaine disintégrine de la fertiline β augmente bien les capacités fusiogènes des gamètes. Légende des Figures
Figure 1. Détection du Peptide FEEc biotinylé à la surface de l'ovocyte humain.
Des ovocytes ont été dépellucidés mécaniquement puis incubés pendant 45 min avec le Peptide biotinylé à 100 μM. Le peptide FEEc a été détecté par un anticorps de souris anti-biotine reconnu par un anticorps biotinylé anti-immunoglobuline de souris puis par la streptavidine-FITC. Les ovocytes ont alors été montés dans de l'immumount entre lame et lamelles et examinés au microscope confocal. A : section équatoriale de l'ovocyte, B : superposition des coupes correspondant à un hémi ovocyte.
Figure 2. Induction de patches de fusion par le Peptide FEEc sur l'ovocyte humain. Des ovocytes intacts ont été incubés avec du Peptide FEEc 200 μM pendant 45 minutes. Après lavage, ils ont été incubés avec un anticorps anti sous unité intégrine α6 20 μM pendant 45 minutes puis fixés (PFA 4 % pendant 30 minutes). Après lavage, ils ont été incubés avec un second anticorps anti-immunoglobuline de souris marqué à la rhodamine. Ils ont ensuite été examinés en immunofluorescence. Fig.2A : ovocyte témoin montrant une fluorescence diffuse et homogène sur la surface de l'ovocyte. Fig.2B : après incubation avec le Peptide FEEc, il y a une redistribution de la sous-unité α6 sous forme d'agrégats membranaires.
Figure 3. Test fonctionnel de fusion avec des gamètes humains.
Les ovocytes dépellucidés ont été incubés dans des gouttes de 20 μl sous huile dans du milieu de culture avec 4000 spermatozoïdes mobiles pendant 18 heures. Ils ont ensuite été lavés puis incubés dans une solution de Hoechst 33342 10 μM pendant 30 minutes avant d'être relavés, montés dans de Pimmunount entre lame et lamelle et examinés sous UV. Fig.3A : ovocyte témoin montrant la présence d'une vingtaine de spermatozoïdes fusionnés dans le cytoplasme ovocytaire. Fig.3B : ovocyte co-incubés avec le Peptide à 100 μM présentant une soixantaine de spermatozoïdes fusionnés. Figure 4. Effets du Peptide FEEc sur la fécondance de l'ovocyte humain.
Comparaison des index de fécondation obtenus en absence et en présence du Peptide
FEEc 100 μM dans le milieu d'incubation.
Figure 5. Effets du Peptide QDEc sur la fusion gamétique chez la souris.
Les nombres entre parenthèse représentent le nombre d' ovocytes dans chaque groupe. Différence statistique avec les valeurs du groupe témoin : * (P<0,05) ; ** (P<0,04)
Figure 6. Effet de ODE cyclique sur la fécondation in vitro d'ovocytes intacts de souris.
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Claims

REVENDICATIONS
1- Utilisation d'un peptide cyclique comprenant le tripeptide formant un site de liaison de la fertiline béta à l'intégrine de l'ovocyte pour augmenter les capacités fusiogènes d'une gamète.
2- Utilisation selon la revendication 1, dans laquelle le tripeptide est X-(Q/D/E)-E, X étant un acide aminé.
3- Utilisation selon la revendication 1 ou 2, dans laquelle le tripeptide est FEE.
4- Utilisation selon l'une des revendications précédentes, dans laquelle ledit peptide présente la formule suivante : I— Xm - TriPept - Xn — ,
où X représente un acide aminé, m et n sont compris entre 0 et 14 et « TriPept » désigne ledit tripeptide.
5- Utilisation selon la revendication 4, dans laquelle m+n est inférieur à 10, de préférence inférieur ou égal à 5.
6- Utilisation selon la revendication 5, dans laquelle ledit peptide présente la formule suivante :
C-X- TriPept -C où X est un acide aminé.
7- Utilisation selon la revendication 6, dans laquelle X est un acide aminé peu encombrant et non chargé, de préférence choisi parmi A, S ou T.
8- Utilisation selon l'une des revendications précédentes, dans laquelle le peptide cyclique est sous forme de multimère.
9- Utilisation selon l'une des revendications précédentes, dans laquelle la gamète est un ovocyte.
10- Utilisation selon l'une des revendications précédentes destinée à améliorer la fécondation in vitro.
11- Utilisation selon l'une des revendications précédentes destinée à améliorer l'insémination artificielle, et/ou le transfert nucléaire chez des animaux non-humains.
12- Peptide cyclique présentant la formule suivante : Xm- F-E-E - Xn-
où X représente un acide aminé, m et n sont compris entre 0 et 14, un variant ou un dérivé de celui-ci.
13- Peptide cyclique selon la revendication 12, dans lequel m+n est inférieur à 10, de préférence inférieur ou égal à 5.
14- Peptide cyclique selon la revendication 13, ledit peptide présentant la formule suivante : C-X- F-E-E -C où X est un acide aminé, de préférence X étant choisi parmi A, S ou T.
15- Peptide cyclique selon la revendication 14, dans lequel X est S.
16- Multimère de peptides cycliques, lesdit peptides présentant la formule suivante : r-Xm - TriPept - Xn — ι
où X représente un acide aminé, m et n sont compris entre 0 et 14 et « TriPept » désigne le tripeptide X-(Q/D/E)-E formant un site de liaison de la fertiline béta à l'intégrine de l'ovocyte.
17- Multimère selon la revendication 16, dans lequel le tripeptide est FEE. 18- Multimère selon la revendication 16 ou 17, ledit peptide présentant la formule suivante :
C-X- TriPept -C où X est un acide aminé, de préférence X étant choisi parmi A, S ou T.
19- Composition destinée à la culture de gamètes comprenant un peptide selon l'une des revendications 12 à 15 ou un multimère selon l'une des revendications 16 à 18.
20- Utilisation d'un peptide selon l'une des revendications 12 à 15 ou un multimère selon l'une des revendications 16 à 18 pour la préparation d'un médicament destiné à traiter les problèmes de fécondité.
21- Méthode de criblage de composés augmentant la capacité fusiogène des ovocytes comprenant 1) incuber l'ovocyte en présence du composé testé ; et 2) estimer la capacité du composé à augmenter la capacité fusiogène de l'ovocyte.
22- Méthode de criblage selon la revendication 21, caractérisé en ce que la capacité du composé à augmenter la capacité fusiogène de l'ovocyte est estimé par au moins un des critères suivants : la liaison à l'ovocyte, l'induction d'une relocalisation des protéines d'adhésion à la surface de l'ovocyte (plus particulièrement l'intégrine α6βl), la fusion de l'ovocyte avec un spermatozoïde.
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