WO2005090551A1 - Concentrat liquide de bacteries adaptees et viables pour un usage alimentaire - Google Patents

Concentrat liquide de bacteries adaptees et viables pour un usage alimentaire Download PDF

Info

Publication number
WO2005090551A1
WO2005090551A1 PCT/FR2005/000478 FR2005000478W WO2005090551A1 WO 2005090551 A1 WO2005090551 A1 WO 2005090551A1 FR 2005000478 W FR2005000478 W FR 2005000478W WO 2005090551 A1 WO2005090551 A1 WO 2005090551A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
bacteria
concentrate
food product
concentrate according
temperature
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Ceased
Application number
PCT/FR2005/000478
Other languages
English (en)
Inventor
Luc Terragno
Guillaume Catonnet
Pascal Regulier
Christophe Daval
Philippe Teissier
Jean-Yves Barbeau
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Gervais Danone SA
Original Assignee
Gervais Danone SA
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Gervais Danone SA filed Critical Gervais Danone SA
Priority to JP2007500264A priority Critical patent/JP2007524416A/ja
Priority to DE602005018454T priority patent/DE602005018454D1/de
Priority to EP05732472A priority patent/EP1718730B1/fr
Priority to AU2005224416A priority patent/AU2005224416B9/en
Priority to DK05732472.5T priority patent/DK1718730T3/da
Priority to US10/590,507 priority patent/US20080026102A1/en
Priority to CA002557300A priority patent/CA2557300A1/fr
Priority to AT05732472T priority patent/ATE452963T1/de
Priority to PL05732472T priority patent/PL1718730T3/pl
Publication of WO2005090551A1 publication Critical patent/WO2005090551A1/fr
Anticipated expiration legal-status Critical
Ceased legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23L—FOODS, FOODSTUFFS OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; PREPARATION OR TREATMENT THEREOF
    • A23L2/00—Non-alcoholic beverages; Dry compositions or concentrates therefor; Preparation or treatment thereof
    • A23L2/52—Adding ingredients
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23L—FOODS, FOODSTUFFS OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; PREPARATION OR TREATMENT THEREOF
    • A23L33/00—Modifying nutritive qualities of foods; Dietetic products; Preparation or treatment thereof
    • A23L33/10—Modifying nutritive qualities of foods; Dietetic products; Preparation or treatment thereof using additives
    • A23L33/135—Bacteria or derivatives thereof, e.g. probiotics
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20—Bacteria; Culture media therefor

Definitions

  • centrifugation is a traumatizing process for bacteria that can lead to high cell mortality especially due to high shear and moreover, this method is not well suited for centrifugation of small volumes such as those required in the production of bacteria intended to be added as a probiotic to food products. As regards a conventional filtration stage, this also raises problems of bacterial mortality and clogging of the filters by the bacteria. It would therefore be desirable to produce a desired volume of liquid concentrate of bacteria that exhibits maximum activity and viability after the concentration step and after introduction into the final product.
  • the inventors have shown that a step of adaptation of the bacteria made it possible to significantly increase the activity and viability of the bacteria after introduction into the final product.
  • a tangential filtration stage under certain particular conditions (pressure, concentration, membrane porosity, etc.), made it possible to concentrate large volumes of bacteria culture, while preserving their viability and without clogging. filters. Tangential filtration produces two streams depending on the nature and structure of the membrane: the permeate (the culture medium substantially free of bacteria) and the retentate (containing the bacteria, also called concentrate).
  • An object of the present invention is therefore a bacterial concentrate characterized in that the concentrate is liquid and in that the bacteria are suitable, viable and at a concentration between 5.10 10 and 5.10 11 cfu / ml.
  • Bacteria are preferably denoted according to the present invention lactic acid bacteria, of the genus Lactobacillus spp., Bifidobacterium spp., Streptococcus spp, Lactococcus spp.
  • suitable bacteria is meant, according to the present invention, bacteria more resistant to different stress, particularly related to different physicochemical stress.
  • suitable and viable bacteria are understood to mean, according to the present invention, bacteria whose survival rate after 28 days in a food product, in particular a dairy product or a beverage, is greater than 60% and advantageously greater than 80%. .
  • the viability of the bacteria is measured by counting techniques known to those skilled in the art, such as, for example, mass counting, surface counting, Malassez cells, direct counting, turbidity, nephelometry, electronic counting, flow cytometry, fluorescence, impedimetry, image analysis.
  • the concentrate is characterized in that the adapted bacteria have at least one of the following characteristics when added to a food product: i) a survival rate greater than 80% after 14 days in a food product at a temperature of between 4 ° C.
  • the concentrate is characterized in that it is capable of being obtained by the process comprising the successive steps of propagation of the bacteria in a culture medium, of adaptation of the bacteria, washing of the culture medium containing bacteria adapted by tangential microfiltration, and bacteria concentration of tangentially microfiltered washed medium.
  • the culture medium of the propagation step is a synthetic medium.
  • synthetic medium is meant to designate according to the present invention a medium in which are introduced components subjected to rigorous quantitative and qualitative control.
  • the solution used in the washing step is adapted to the food use of the bacterial concentrate and has an osmotic pressure compatible with the viability of the bacteria.
  • the step of adaptation of the bacteria makes it possible to reduce the mortality thereof, caused by the change in the medium of the bacteria between their culture medium and the final food product to be added.
  • the adaptation of the bacteria is demonstrated by the measurement of parameters of the culture medium of the bacteria and / or parameters of the bacteria.
  • the parameters of the culture medium are preferably the pH, the osmotic pressure and / or the temperature.
  • Other parameters of the culture medium of the bacteria for demonstrating the adaptation of the bacteria are possible, such as, for example, the sugar concentration of the bacterial medium.
  • the adaptation step is carried out by decreasing the pH by natural acidification.
  • the pH is no longer regulated and adaptation to the environment becomes very easy.
  • the sugar concentration of the fermentation medium of Lactobacillus casei is 9 g / L
  • the pH is no longer regulated and is approximately equal to 5. It then becomes easier for the adapted strain to be added to a new medium and this allows greater viability of the bacteria in the final medium.
  • tangential filtration may be used for the adaptation step of the bacteria.
  • the tangential filtration membrane have a porosity of between 0.01 and 0.5 ⁇ m and preferably between 0.1 and 0.3 ⁇ m. These membranes are used for the washing and concentration steps of the process and possibly the bacteria adaptation step.
  • the filtration membranes are characterized by: the porosity and the thickness of the filtering layer on which the permeate flow rate depends. the diameter of the pores and their distribution on which the separation efficiency depends. - the material used on which depends the mechanical resistance, chemical, thermal and ease of cleaning. Filtration membrane is understood to mean organic or inorganic membranes.
  • the organic membranes may be composed inter alia of cellulose acetate, aromatic polyamides, polysulfone, cellulose esters, cellulose, cellulose nitrate, PNC, or polypropylene.
  • the mineral membranes can be composed inter alia of sintered ceramic, sintered metal, carbon, or glass.
  • the parameter of the bacteria is the size of the bacteria.
  • the length distribution of each bacterium of said concentrate is mainly between 0.1 and 10 microns, preferably between 0.5 and 5 microns.
  • the measurement of the size of the bacteria is done by a suitable means.
  • a suitable means may be for example a regular sampling of bacteria followed by a measurement of the size of the bacteria by flow cytometry.
  • the pH of the concentrate is between 3 and 6.
  • the temperature of use of the concentrate is between 25 and 45 ° C and preferably between 35 and 39 ° C.
  • use temperature is meant according to the present invention the temperature of the concentrate when it is added to a food product.
  • the concentrate is packaged in flexible, airtight and sterile pouches.
  • flexible and airtight bags is meant, according to the present invention and preferably, plastic food pouches.
  • the concentrate, packaged in airtight flexible bags can be stored at a temperature between -50 ° C and 4 ° C after conditioning.
  • suitable and viable bacteria packaged in flexible and sealed bags and kept at low temperatures, cryoprotective molecules such as sucrose for example.
  • the concentrate, packaged in flexible and airtight bags, stored at a temperature between -50 ° C and 4 ° C is heated to a temperature between 25 ° C and 45 ° C, preferably between 35 ° C and 45 ° C. and 39 ° C by suitable means before being used.
  • the food product is a dairy product and / or a beverage.
  • dairy product in addition to milk, products derived from milk, such as cream, ice cream, butter, cheese, yoghurt; secondary products, such as whey, casein and various prepared foods containing milk or milk constituents as the main ingredient.
  • the term "drink” is intended to denote, according to the present invention, beverages such as, for example, fruit juices, mixtures of milk and fruit juice, vegetable juices such as, for example, soya juice, oat juice or fruit juice. rice, alcoholic beverages such as kefir, soft drinks, and spring or mineral waters with or without added sugar or flavorings, for example.
  • An object of the present invention is also a method of manufacturing an additive food product according to the present invention, characterized in that the liquid concentrate of suitable and viable bacteria is added to the food product at the end of the production line and preferably before the packaging of the food product.
  • the method of manufacturing an additive food product is characterized in that the liquid concentrate of suitable and viable bacteria is added to the food product in line by pumping.
  • Figure 1 Monitoring the viability of adapted and unsuitable lactobacillus casei strains in a yogurt-type food product over a period of 28 days.
  • Figure 2a Histogram of size distribution of adapted and unsuitable Lactobacillus casei strains before being subjected to acid stress.
  • Figure 3 Curves showing the adaptation of Lactobacillus casei with respect to the temperature of the culture medium (37 ° C and 39 ° C).
  • the relative permittivity S R (adimensional quantity equal to the permittivity ⁇ , expressed in pF / cm, divided by the permittivity of the vacuum ⁇ 0 ) is expressed as a function of the age of the bacteria (in hours)
  • Lactobacillus casei strains It is desired to evaluate the consequences of an adaptation step of Lactobacillus casei strains in terms of their viability.
  • a batch of control bacteria of Lactobacillus casei are prepared which are cultured in an MRS medium (special medium for the growth of lactobacilli, developed by Man, Rogosa and Sharpe).
  • MRS medium special medium for the growth of lactobacilli, developed by Man, Rogosa and Sharpe.
  • a batch of Lactobacillus casei bacteria is prepared, which after culturing in an MRS medium are adapted by a natural acidification step. For this, after 17 hours of culture, a pH reduction is achieved by natural acidification over one hour to go from pH 6.5 to pH 5. Then, the two batches of bacteria are washed and concentrated in bacteria by tangential microfiltration.
  • a sample of bacteria is then taken and their size is measured by flow cytometry.
  • a histogram of size distribution of the adapted and unsuitable bacteria is thus established (control group) (FIG. 2a). It is observed that the size distribution of the bacteria of the two lots is very similar.
  • the two batches of bacteria are subjected to acid stress by adding the bacteria to a medium having a pH of 3.
  • a sample of bacteria is then taken and their size is measured by flow cytometry.
  • a histogram of size distribution of the adapted and non-adapted bacteria is thus established after acid stress (FIG. 2b). It is observed that the size distribution of the bacteria of the two lots is very different.
  • the largest frequency size is 3.2 ⁇ m (frequency 0.016).
  • the largest frequency size is 5.45 ⁇ m (frequency 0.012).
  • the adaptation step of the bacteria induces a decrease in the size of bacteria of the order of 60% when they are subjected to acid stress, compared to non-adapted bacteria. It is therefore possible to highlight the adaptation of bacteria by measuring their size.
  • relative permittivity is measured over time, the relative permittivity will be a function of the number of living cells and the size of these cells.
  • the two strictly identical culture media with the same amount of bacteria are grown at 37 ° C and the other at 39 ° C. The amount of strains increases over time, which is normal. The inventors were able to verify that the total number of cells was not different in the two culture media.
  • Example 4 Demonstration of the adaptation of bacteria by measuring the influence of the parameters "temperature” and "pH” of the culture medium. It is desired to demonstrate the adaptation of the bacteria by measuring the influence of two parameters of the culture medium taken together that are the temperature and the pH.
  • three batches of Lactobacillus casei bacteria are prepared from the same inoculum. The three culture media will be cultured at three different temperatures (35, 37 and 39 ° C) while each time subjecting the bacteria to acid stress by lowering the pH of the medium to a pH of 3.
  • the change in size of the cells translate their adaptation to the conditions of the environment. This size will be measured by microscopy.
  • Table 1 the results obtained show that the bacteria adapt according to the environmental parameters of temperature and pH since these bacteria change size.
  • Lactobacillus casei bacteria are prepared from the same inoculum. These batches are cultured in an MRS medium (a special medium for the growth of Lactobacilli, developed by Man, Rogosa and Sharpe).
  • MRS medium a special medium for the growth of Lactobacilli, developed by Man, Rogosa and Sharpe.
  • the three culture media containing the same amount of bacteria will contain respectively 20, 40 and 80 g of glucose per liter of culture medium. The higher the glucose concentration of the medium, the higher the osmotic pressure of this medium.
  • a probe for measuring relative pennittivity is used. The probes that can be used for this purpose are known to those skilled in the art (FR2835921). The evolution of this relative permittivity over time is measured.
  • optical of the absorbance spectrometer type
  • Wedgewood optical probe system measuring in the near infra-red the optical density of microbial suspensions
  • Optical Density (OD) obtained will be a function of the total number of cells in the medium.
  • the resulting curve (FIG. 4) makes it possible to demonstrate the evolution of the viability (expressed by the measurement of the permittivity) and of the size of the cells as a function of the osmotic pressure of the middle.

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Nutrition Science (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Dairy Products (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Coloring Foods And Improving Nutritive Qualities (AREA)
  • Food Preservation Except Freezing, Refrigeration, And Drying (AREA)

Abstract

La présente invention concerne un concentrât liquide de bactéries adaptées et viables pour un usage alimentaire. De manière préférentielle mais non limitative, les bactéries produites sont des bactéries lactiques.

Description

CONCENTRAT LIQUIDE DE BACTERIES ADAPTEES ET NIABLES POUR UN USAGE ALIMENTAIRE.
La présente invention concerne un concentrât liquide de bactéries adaptées et viables pour un usage alimentaire. De manière préférentielle mais non limitative, les bactéries produites sont des bactéries lactiques. L'ingestion de certaines souches de bactéries, en particulier celles qui appartiennent aux genres Lactobacillus et Bifidobacterium sont particulièrement bénéfiques au niveau de la santé, notamment en favorisant un bon fonctionnement de la flore intestinale. En effet, ces bactéries produisent des bactériocines et de l'acide lactique qui augmentent la digestibilité des aliments, favorisent le péristaltisme intestinal, et accélèrent l'évacuation des selles. De plus, ces bactéries produisent certaines vitamines du complexe B, et favorisent en général l'absorption des vitamines et minéraux, diminuent le cholestérol sanguin, renforcent le système immunitaire et tapissent les muqueuses intestinales afin de protéger contre l'invasion et les activités des microorganismes nuisibles. De ce fait, depuis plusieurs années, les industries agroalimentaires tentent d'incorporer de telles bactéries dans leurs produits finaux, le plus généralement des yaourts. Actuellement, ces bactéries sont utilisées sous une forme congelée ou lyophilisée. Cependant, ces processus de production sont traumatisants pour les bactéries qui perdent une partie de leur activité et parfois leur viabilité. Cela est préjudiciable pour les industriels producteurs et pour les consommateurs de ces produits car les bactéries doivent satisfaire aux exigences de qualité et de performances technologiques, si possible pendant plusieurs mois. Il serait donc souhaitable d'utiliser des bactéries produites par un procédé leur assurant une viabilité et une activité maximale. A cet effet, une méthode consiste à produire les bactéries sous une forme liquide. Cependant il a été mis en évidence que cette méthode génère également une mortalité importante des bactéries, après l'introduction des bactéries dans le produit final. En outre, pour diminuer les coûts de stockage des bactéries et faciliter l'adjonction des bactéries dans le produit final, il serait souhaitable de concentrer les bactéries sous forme liquide. Pour cela, l'homme du métier utilise de manière habituelle une étape de centrifugation ou de filtration. Cependant, la centrifugation est un processus traumatisant pour les bactéries qui peut entraîner une forte mortalité cellulaire notamment due à un fort cisaillement et de plus, ce procédé n'est pas bien adapté pour la centrifugation de faibles volumes tels que ceux requis dans la production de bactéries destinées à être additionnées en tant que probiotique à des produits alimentaires. Concernant une étape de filtration classique, celle-ci pose également des problèmes de mortalité des bactéries et de colmatage des filtres par les bactéries. Il serait donc souhaitable de produire un volume souhaité de concentrât liquide de bactéries qui présentent une activité et une viabilité maximale après l'étape de concentration et après l'introduction dans le produit final. De manière surprenante et inattendue, les inventeurs ont montré qu'une étape d'adaptation des bactéries permettait d'augmenter de manière significative l'activité et la viabilité des bactéries après l'introduction dans le produit final. De plus, les inventeurs ont montré qu'une étape de filtration tangentielle, sous certaines conditions particulières (pression, concentration, porosité de membrane, etc), permettait de concentrer de gros volumes de culture de bactéries, tout en préservant leur viabilité et sans colmatage des filtres. La filtration tangentielle permet de produire deux courants en fonction de la nature et de la structure de la membrane : le perméat (le milieu de culture sensiblement exempt de bactéries) et le rétentât (contenant les bactéries, appelé aussi concentrât). Dans une filtration tangentielle, le fluide circule non pas perpendiculairement mais parallèlement à la surface de la membrane et assure ainsi par sa vitesse d'écoulement un auto nettoyage qui prévient l'accumulation de dépôts qui obturent la surface de filtration (appelé communément colmatage des filtres). Un objet de la présente invention est donc un concentrât de bactéries caractérisé en ce que le concentrât est liquide et en ce que les bactéries sont adaptées, viables et à une concentration comprise entre 5.1010 et 5.1011 ufc/ml. Par bactéries, on entend désigner préférentiellement selon la présente invention des bactéries lactiques, du genre Lactobacillus spp., Bifidobacterium spp., Streptococcus spp, Lactococcus spp. et en particulier Lactobacillus casei, Lactobacillus plantarum, Lactobacillus bulgaricus, Lactobacillus helveticus, Lactobacillus acidophilus, Bifidobacterium animalis, Bifidobacterium brève, Streptococcus thermophilus, Lactococcus lactis. Par bactéries adaptées, on entend désigner, selon la présente invention, des bactéries plus résistantes à différents stress, en particulier liés à différents stress physicochimiques. Par bactéries adaptées et viables, on entend désigner, selon la présente invention, des bactéries dont le taux de survie après 28 jours dans un produit alimentaire, en particulier un produit laitier ou une boisson, est supérieur à 60% et avantageusement supérieur à 80%. La viabilité des bactéries est mesurée par des techniques de numération connue de l'homme du métier comme par exemple la numération en masse, la numération en surface, les cellules de Malassez, le comptage direct, la turbidité, la néphélométrie, le comptage électronique, la cytométrie en flux, la fluorescence, Pimpédimétrie, l'analyse d'images. Selon la présente invention, le concentrât est caractérisé en ce que les bactéries adaptées présentent au moins l'une des caractéristiques suivantes quand elles sont ajoutées à un produit alimentaire : i) un taux de survie supérieur à 80% après 14 jours dans un produit alimentaire à une température comprise entre 4°C et 45°C, ledit produit alimentaire ayant un pH compris entre 3 et 7 ou ii) un taux de survie supérieur à 60% et avantageusement supérieur à 80% après 28 jours dans un produit alimentaire à une température comprise entre 4°C et 45°C, ledit produit alimentaire ayant un pH compris entre 3 et 7. Selon la présente invention, le concentrât est caractérisé en ce que les bactéries présentent les deux caractéristiques i) et ii). Selon la présente invention, le concentrât est caractérisé en ce que le produit alimentaire est un produit laitier et/ou une boisson. Selon la présente invention, les bactéries du concentrât sont viables pendant une période comprise entre 4 et 6 semaines. Selon la présente invention, le concentrât est caractérisé en ce qu'il est susceptible d'être obtenu par le procédé comprenant les étapes successives de propagation des bactéries dans un milieu de culture, d'adaptation des bactéries, de lavage du milieu de culture contenant les bactéries adaptées par microfiltration tangentielle, et de concentration en bactéries du milieu lavé par microfiltration tangentielle. Selon la présente invention, le milieu de culture de l'étape de propagation est un milieu synthétique. Par milieu synthétique, on entend désigner selon la présente invention un milieu dans lequel sont introduits des composants soumis à un contrôle quantitatif et qualitatif rigoureux. Selon la présente invention, la solution utilisée à l'étape de lavage est adaptée à l'utilisation alimentaire du concentrât de bactéries et présente une pression osmotique compatible avec la viabilité des bactéries. Les inventeurs ont montré que l'étape d'adaptation des bactéries permet de réduire la mortalité de celles-ci, provoquée par le changement de milieu des bactéries entre leur milieu de culture et le produit alimentaire final à additiver. Selon la présente invention l'adaptation des bactéries est mise en évidence par la mesure de paramètres du milieu de culture des bactéries et/ou de paramètres des bactéries. Selon la présente invention, les paramètres du milieu de culture sont préférentiellement le pH, la pression osmotique et/ou la température. D'autres paramètres du milieu de culture des bactéries pour la mise en évidence de l'adaptation des bactéries sont possibles, comme par exemple la concentration en sucre du milieu bactérien. Préférentiellement, dans le cas où le paramètre du milieu de culture est le pH, l'étape d'adaptation est réalisée par diminution du pH par acidification naturelle. Afin d'effectuer l'étape d'adaptation des bactéries au pH par acidification naturelle, on peut par exemple mesurer la concentration en sucre du milieu de fermentation et au-delà d'une concentration seuil pour chaque espèce de bactéries, on sait que le pH n'est plus régulé et l'adaptation au milieu devient très aisée. Ainsi, par exemple, si la concentration en sucre du milieu de fermentation de Lactobacillus casei est de 9 g/L, le pH n'est plus régulé et est environ égal à 5. Il devient alors plus aisé pour la souche adaptée d'être ajoutée à un nouveau milieu et ceci permet une viabilité plus importante des bactéries dans le milieu final. En outre, selon la présente invention, la filtration tangentielle peut être utilisée pour l'étape d'adaptation des bactéries. Selon la présente invention la ou les membranes de filtration tangentielle sont d'une porosité comprise entre 0.01 et 0,5μm et de manière préférentielle, entre 0.1 et 0.3 μm. Ces membranes sont utilisées pour les étapes de lavage et de concentration du procédé et éventuellement l'étape d'adaptation des bactéries. Les membranes de filtration sont caractérisées par: - la porosité et l'épaisseur de la couche filtrante dont dépend le débit de perméat. - le diamètre des pores et leur répartition dont dépend l'efficacité de séparation. - le matériau employé dont dépend la résistance mécanique, chimique, thermique et la facilité de nettoyage. Par membrane de filtration, on entend désigner des membranes organiques ou minérales. Les membranes organiques peuvent être composées entre autre d'acétate de cellulose, de polyamides aromatiques, de polysulfone, d'esters de cellulose, de cellulose, de nitrate de cellulose, de PNC, ou de Polypropylène. Les membranes minérales peuvent être composées entre autre de céramique frittée, de métal fritte, de carbone, ou de verre. Selon la présente invention, le paramètre des bactéries est la taille des bactéries. Préférentiellement, dans le cas où l'adaptation est mise en évidence par la taille des bactéries, la distribution des longueurs de chaque bactérie dudit concentrât se situe majoritairement entre 0,1 et 10 micromètres, avantageusement entre 0,5 et 5 micromètres.
La mesure de la taille des bactéries se fait par un moyen adapté. Un moyen adapté peut être par exemple un prélèvement régulier de bactéries suivi d'une mesure de la taille des bactéries par cytométrie de flux. Selon la présente invention, le pH du concentrât est compris entre 3 et 6. Selon la présente invention, la température d'utilisation du concentrât est comprise entre 25 et 45°C et préférentiellement entre 35 et 39°C. Par température d'utilisation, on entend désigner selon la présente invention la température du concentrât quand il est ajouté à un produit alimentaire. Selon la présente invention, le concentrât est conditionné dans des poches souples, hermétiques et stériles. Par poches souples et hermétiques, on entend désigner, selon la présente invention et de manière préférentielle, des poches en plastique alimentaire. Selon la présente invention, le concentrât, conditionné en poches souples hermétiques, peut être conservé à une température comprise entre -50°C et 4°C après conditionnement. De manière optionnelle, il est possible de rajouter au concentrât liquide de bactéries adaptées et viables conditionné en poches souples et hermétiques, et conservé à des températures basses, des molécules cryoprotectrices telles que le saccharose par exemple. Selon la présente invention, le concentrât, conditionné en poches souples et hermétiques, conservé à une température comprise entre -50°C et 4°C, est réchauffé jusqu'à une température comprise entre 25°C et 45°C, avantageusement entre 35 et 39°C par un moyen adapté avant d'être utilisé. Par moyen adapté, on entend désigner selon la présente invention par exemple l'utilisation d'un bain marie à une température non létale pour les bactéries, par exemple 37°C. Un objet de la présente invention est également l'utilisation du concentrât liquide de bactéries adaptées et viables, selon la présente invention en tant qu'additif alimentaire. Par additif alimentaire, on entend désigner selon la présente invention toute substance chimique ajoutée aux aliments durant leur préparation ou en vue de leur entreposage pour obtenir un effet technique désiré. De plus, selon la présente invention, le concentrât liquide de bactéries possède une numération stable, les bactéries étant viables et n'effectuant pas de fermentation dans le produit final additivé. Un objet de la présente invention est également un produit alimentaire additivé, caractérisé en ce que l'additif alimentaire utilisé est le concentrât liquide de bactéries adaptées et viables selon la présente invention. Selon la présente invention, le produit alimentaire est un produit laitier et/ou une boisson. Par produit laitier on entend désigner selon la présente invention, en plus du lait, les produits dérivés du lait, tels la crème, la crème glacée, le beurre, le fromage, le yaourt; les produits secondaires, comme le lactosérum, la caséine ainsi que divers aliments préparés contenant comme ingrédient principal du lait ou des constituants du lait. Par boisson on entend désigner selon la présente invention des boissons comme par exemple les jus de fruits, les mélanges de lait et de jus de fruits, les jus végétaux tels que par exemple le jus de soja, le jus d'avoine ou le jus de riz, les boissons alcoolisées comme par exemple le kéfir, les sodas, et les eaux de source ou minérales additionnées ou non de sucre ou d'arômes par exemple. Un objet de la présente invention est également un procédé de fabrication d'un produit alimentaire additivé selon la présente invention, caractérisé en ce que le concentrât liquide de bactéries adaptées et viables est additionné au produit alimentaire en fin de ligne de production et préférentiellement avant le conditionnement du produit alimentaire. Selon la présente invention, le procédé de fabrication d'un produit alimentaire additivé est caractérisé en ce que le concentrât liquide de bactéries adaptées et viables est additionné au produit alimentaire en ligne par pompage. La présente invention sera mieux comprise à l'aide du complément de description qui va suivre, qui se réfère à des exemples de mesure de la viabilité et de l'adaptation des bactéries du concentrât liquide selon la présente invention. Il va de soi, toutefois que ces exemples ne sont donnés qu'à titre d'illustration de l'objet de l'invention, dont ils ne sauraient constituer en aucune manière une limitation.
Légende des figures : Figure 1 : Suivi de la viabilité de souches de lactobacillus casei adaptées et non adaptées dans un produit alimentaire de type yaourt sur une période de 28 jours.
Figure 2 a : Histogramme de distribution de taille de souches de Lactobacillus casei adaptées et non adaptées avant d'être soumises à un stress acide.
Figure 2b : Histogramme de distribution de taille de souches de Lactobacillus casei adaptées et non adaptées après être soumises à un stress acide
Figure 3 : Courbes montrant l'adaptation de Lactobacillus casei par rapport à la température du milieu de culture (37°C et 39°C). La permittivité relative SR (quantité adimensionnelle égale à la permittivité ε, exprimée en pF/cm, divisée par la permittivité du vide ε0) est exprimée en fonction de l'âge des bactéries (en heures)
Figure 4 : Courbes montrant l'adaptation de Lactobacillus casei en fonction de la pression osmotique (concentration en glucose de 20, 40 et 80 g/L, respectivement en gris clair, gris foncé et noir). La permittivité s, exprimée en pF/cm, est exprimée en fonction de la Densité Optique (DO).
EXEMPLES
* Exemple 1 : Conséquences de l'adaptation de souches de L. casei sur leur viabilité.
On souhaite évaluer les conséquences d'une étape d'adaptation de souches de Lactobacillus casei au niveau de leur viabilité. Poxir cela, on prépare un lot de bactéries témoin de Lactobacillus casei qui sont mises en culture dans un milieu MRS (milieu spécial permettant la croissance des lactobacilles, mis au point par Man, de Rogosa et Sharpe). En parallèle à ce lot témoin, on prépare un lot de bactéries Lactobacillus casei, qui après la mise en culture dans un milieu MRS sont adaptées par une étape d'acidification naturelle. Pour cela, après 17 heures de culture, une diminution du pH est réalisée par acidification naturelle sur une heure pour passer de pH 6,5 à pH 5. Ensuite, les deux lots de bactéries sont lavés et concentrés en bactéries par microfiltration tangentielle.
Ces deux concentrâts de bactéries sont introduits séparément dans une masse de yaourt à pH 5.5 et à une température de 10°C. On mesure la quantité de bactéries vivantes à J+ 1 dans les deux lots de yaourt. On prélève ensuite tous les jours un échantillon des deux lots de yaourt additionné respectivement du concentrât bactérien témoin et du concentrât de bactéries adaptées, et on quantifie le nombre de souches survivantes par rapport au nombre de souches vivantes à J+l. Pour cela, on effectue une numération en masse. Pour chacune des mesures de viabilité durant la période de conservation du produit fini, ce dernier est bien homogénéisé avant le prélèvement. Un prélèvement stérile de 1 ml de produit est réalisé. Une dilution sériée de 10 en 10 est effectuée. Les différentes dilutions du produit sont placées dans une boite de Pétri et un milieu gélose liquide (puisque préalablement chauffé à 50°C) est coulé sur ces fractions du produit. On choisira le milieu à couler en fonction de la nature des bactéries que l'on souhaite compter. Le milieu gélose durcit. Les boites de Pétri sont alors placées en incubation pendant quelques jours (2-5j) à 37°C. Les résultats sont illustrés par la figure 1.
On observe qu'au bout de 7 jours, le nombre de bactéries survivantes dans le lot des bactéries témoin est de 80% et dans le lot de bactéries adaptées de 105% (il y a eu une légère croissance bactérienne). Au bout de 14 jours, le nombre de bactéries survivantes dans le lot des bactéries témoin est de 58% et dans le lot de bactéries adaptées de 110% (il y a eu une légère croissance bactérienne). Au bout de 28 jours, le nombre de bactéries survivantes dans le lot des bactéries témoin est de 42% et dans le lot de bactéries adaptées de 110% (il y a eu une légère croissance bactérienne). En conclusion, l'étape d'adaptation des bactéries induit une diminution de la mortalité des bactéries de l'ordre de 60 % par rapport à un lot témoin de bactéries non adaptées, après 28 jours dans un yaourt.
* Exemple 2 : Evolution de la taille de bactéries adaptées et de bactéries non adaptées soumises à un stress acide.
On souhaite suivre l'évolution de la taille de bactéries adaptées et de bactéries non adaptées soumises à un stress acide. Pour cela, on prépare un lot de bactéries témoin de Lactobacillus casei qui sont mises en culture dans un milieu MRS (milieu spécial permettant la croissance des lactobacilles, mis au point par Man, de Rogosa et Sharpe). En parallèle à ce lot témoin, on prépare un lot de bactéries Lactobacillus casei, qui après la mise en culture dans un milieu MRS sont adaptées par une étape d'acidification naturelle. Pour cela, après 17 heures de culture, une descente du pH est réalisée par acidification naturelle sur une heure pour passer de pH 6,5 à pH 5. Ensuite, les deux lots de bactéries sont lavés et concentrés en bactéries par microfiltration tangentielle. On effectue ensuite un prélèvement de bactéries et l'on mesure leur taille par cytométrie de flux. On établit ainsi un histogramme de distribution de taille des bactéries adaptées et non adaptées (lot témoin) (figure 2a). On observe que la distribution de taille des bactéries des deux lots est très similaire. Ensuite, les deux lots de bactéries sont soumis à un stress acide par ajout des bactéries à un milieu ayant un pH de 3. On effectue ensuite un prélèvement de bactéries et l'on mesure leur taille par cytométrie de flux. On établit ainsi un histogramme de distribution de taille des bactéries adaptées et non adaptées après un stress acide (figure 2b). On observe que la distribution de taille des bactéries des deux lots est très différente. Dans le lot de bactéries adaptées, la taille de fréquence la plus importante est de 3,2 μm (fréquence de 0.016). Dans le lot de bactéries non adaptées, la taille de fréquence la plus importante est de 5.45 μm (fréquence de 0.012). En conclusion, l'étape d'adaptation des bactéries induit une diminution de la taille des bactéries de l'ordre de 60% lorsque celles-ci sont soumises à un stress acide, par rapport à des bactéries non adaptées. Il est donc possible de mettre en évidence l'adaptation des bactéries par la mesure de leur taille.
* Exemple 3 : Mise en évidence de l'adaptation des bactéries par la mesure de l'influence du paramètre « température » du milieu de culture
On souhaite mettre en évidence l'adaptation des bactéries en mesurant l'influence du paramètre du milieu de culture qu'est la température. Pour cela, on prépare deux lots de bactéries de Lactobacillus casei à partir d'un même inoculum. Ces deux lots sont mis en culture dans deux milieux MRS (milieu spécial permettant la croissance des Lactobacilles, mis au point par Man, de Rogosa et Sharpe). Une sonde de biomasse permettant de mesurer la permittivité relative SR est utilisée. Les sondes utilisables à cette fin sont connues de l'homme du métier (voir notamment FR2835921). La permittivité relative SR est une quantité adimensionnelle égale à la permittivité ε (exprimée en pF/cm) divisée par la permittivité du vide ε0 (ε0 = 8,854187. 10"2 pF/cm). L'évolution de la permittivité relative est mesurée au cours du temps. La permittivité relative sera fonction du nombre de cellules vivantes et de la taille de ces cellules. Les deux milieux de culture rigoureusement identiques et comportant la même quantité de bactéries sont cultivés l'un à 37°C et l'autre à 39°C. La quantité de souches augmente au cours du temps, ce qui est normal. Les inventeurs ont pu vérifier que le nombre de cellules total n'était pas différent dans les deux milieux de culture. Une technique classique de mesure de densité optique (du type spectromètre d'absorbance) peut être utilisée à cette fin ou bien une sonde optique Wedgewood (système mesurant dans le proche infrarouge la densité optique de suspensions microbiennes). L'absorbance du milieu mesurée par un spectromètre sera fonction de la quantité de cellules totale dans le milieu. Des techniques de dénombrement sur boite peuvent aussi être utilisées. Grâce à la sonde de biomasse utilisée, il a pu être mis en évidence que les bactéries changeaient de forme et de taille, donc s'adaptaient en fonction de la température du milieu de culture. La Figure 3 illustre cette observation.
* Exemple 4 : Mise en évidence de l'adaptation des bactéries par la mesure de l'influence des paramètres « température » et « pH » du milieu de culture. On souhaite mettre en évidence l'adaptation des bactéries en mesurant l'influence de deux paramètres du milieu de culture pris conjointement que sont la température et le pH. Pour cela, on prépare trois lots de bactéries de Lactobacillus casei à partir d'un même inoculum. On cultivera les trois milieux de culture à trois températures différentes (35, 37 et 39°C) tout en soumettant à chaque fois les bactéries à un stress acide en abaissant le pH du milieu à un pH de 3. Le changement de taille des cellules traduira leur adaptation aux conditions du milieu. Cette taille sera mesurée par microscopie. Dans le Tableau 1, les résultats obtenus montrent bien que les bactéries s'adaptent en fonction des paramètres du milieu que sont la température et le pH puisque ces bactéries changent de taille.
Tableau 1 : Influence de la température et du pH sur la taille des bactéries (exprimés en μm)
Figure imgf000013_0001
* Exemple 5 : Mise en évidence de l'adaptation des bactéries par la mesure de l'influence du paramètre « pression osmotique » du milieu de culture.
On souhaite mettre en évidence l'adaptation des bactéries en mesurant l'influence du paramètre du milieu de culture qu'est la pression osmotique. Pour cela, on prépare trois lots de bactéries de Lactobacillus casei à partir d'un même inoculum. Ces lots sont mis en culture dans un milieu MRS (milieu spécial permettant la croissance des Lactobacilles, mis au point par Man, de Rogosa et Sharpe). Les trois milieux de culture comportant la même quantité de bactéries contiendront respectivement des quantités de 20, 40 et 80 g de glucose par litre de milieu de culture. Plus la concentration en glucose du milieu est élevée, plus la pression osmotique de ce milieu est élevée. Une sonde permettant de mesurer la pennittivité relative est utilisée. Les sondes utilisables à cette fin sont connues de l'homme du métier (FR2835921). L'évolution de cette permittivité relative au cours du temps est mesurée. La permittivité ε (exprimée en pF/cm) est calculée en multipliant la permittivité relative 8R mesurée par la permittivité du vide ε0 (ε0= 8,854187. 10"2 pF/cm). Une technique classique de mesure de densité optique (du type spectromètre d'absorbance), ou bien une sonde optique Wedgewood (système mesurant dans le proche infra-rouge la densité optique de suspensions microbiennes), est utilisée pour mesurer l'évolution de la densité optique du milieu au cours du temps. La valeur de
Densité Optique (DO) obtenue sera fonction du nombre de cellules total dans le milieu. En exprimant la permittivité en fonction de la DO, la courbe résultante (Figure 4) permet de mettre en évidence l'évolution de la viabilité (exprimée par la mesure de la permittivité) et de la taille des cellules en fonction de la pression osmotique du milieu.
Les résultats montrent que les bactéries changent de taille. En effet, dans le cas où il n'y aurait pas ce changement de taille des cellules, les résultats observés sur la Figure
4 seraient des droites rectilignes. Dans le cas présent, on peut observer des courbes (corrélation non linéaire). Les bactéries s'adaptent donc en fonction de la pression osmotique du milieu de culture.

Claims

Revendications
1. Concentrât de bactéries caractérisé en ce que le concentrât est liquide et en ce que les bactéries sont adaptées, viables et à une concentration comprise entre 5.1010 et 5.1011 ufc/ml, lesdites bactéries adaptées étant plus résistantes à différents stress, en particulier liés à différents stress physicochimiques
2. Concentrât selon la revendication 1 caractérisé en ce que les bactéries sont des bactéries lactiques, en particulier des bactéries du genre Lactobacillus spp., Bifidobacterium spp. Streptococcus spp. et Lactococcus spp.
3. Concentrât selon l'une quelconque des revendications précédentes caractérisé en ce que les bactéries adaptées présentent au moins l'une des caractéristiques suivantes quand elles sont ajoutées à un produit alimentaire : i) un taux de survie supérieur à 80% après 14 jours dans un produit alimentaire à une température comprise entre 4°C et 45°C, ledit produit alimentaire ayant un pH compris entre 3 et 7 ou ii) un taux de survie supérieur à 60% et avantageusement supérieur à 80% après 28 jours dans un produit alimentaire à une température comprise entre 4°C et 45 °C, ledit produit alimentaire ayant un pH compris entre 3 et 7.
4. Concentrât selon la revendication 3 caractérisé en ce que les bactéries présentent les deux caractéristiques i) et ii).
5. Concentrât selon l'une quelconque des revendications 3 à 4 caractérisé en ce que le produit alimentaire est un produit laitier et/ou une boisson.
6. Concentrât selon l'une quelconque des revendications précédentes caractérisé en ce que les bactéries sont viables pendant une période comprise entre 4 et 6 semaines.
7. Concentrât selon l'une quelconque des revendications précédentes caractérisé en ce qu'il est susceptible d'être obtenu par le procédé comprenant les étapes successives de propagation des bactéries dans un milieu de culture, d'adaptation des bactéries, de lavage du milieu de culture contenant les bactéries adaptées par microfiltration tangentielle, et de concentration en bactéries du milieu lavé par microfiltration tangentielle.
8. Concentrât selon l'une quelconque des revendications précédentes caractérisé en ce que l'adaptation des bactéries est mise en évidence par la mesure de paramètres du milieu de culture des bactéries et/ou de paramètres des bactéries.
9. Concentrât selon la revendication 8, caractérisé en ce que les paramètres du milieu de culture sont le pH, la pression osmotique, et/ou la température.
10. Concentrât selon la revendication 9 caractérisé en ce que le paramètre du milieu de culture est le pH et que l'étape d'adaptation est réalisée par diminution du pH par acidification naturelle.
11. Concentrât selon les revendications 1 à 10 caractérisé en ce que les bactéries sont adaptées par un procédé de microfiltration tangentielle.
12. Concentrât selon l'une quelconque des revendications 8 à 11, caractérisé en ce que le paramètre des bactéries est la taille des bactéries.
13. Concentrât selon la revendication 12 caractérisé en ce que la distribution des longueurs de chaque bactérie dudit concentrât se situe majoritairement entre 0,1 et 10 micromètres, avantageusement entre 0,5 et 5 micromètres.
14. Concentrât selon l'une quelconque des revendications précédentes caractérisé en ce que son pH est compris entre 3 et 6.
15. Concentrât selon l'une quelconque des revendications 1 à 14 caractérisé en ce qu'il est conservé à une température comprise entre -50°C à +4°C après conditionnement.
16. Concentrât selon la revendication 15 caractérisé en ce qu'il est réchauffé jusqu'à une température comprise entre 25 et 45°C, avantageusement entre 35 et 39°C par un moyen adapté avant d'être utilisé.
17. Utilisation du concentrât selon l'une quelconque des revendications 1 à 16 en tant qu' additif alimentaire.
18. Utilisation du concentrât selon l'une quelconque des revendications 1 à 16, à une température comprise entre 25 et 45°C, avantageusement entre 35 et 39°C.
19. Récipient sous la forme de poches souples, hermétiques et stériles comprenant le concentrât selon l'une quelconque des revendications 1 à 16.
20. Produit alimentaire additivé, caractérisé en ce que l'additif alimentaire utilisé est un concentrât liquide de bactéries adaptées et viables selon l'une quelconque des revendications 1 à 16.
21. Produit alimentaire additivé selon la revendication 20, caractérisé en ce qu'il s'agit d'un produit laitier et/ou d'une boisson.
22. Procédé de fabrication d'un produit alimentaire additivé selon l'une quelconque des revendications 20 à 21, caractérisé en ce que le concentrât liquide de bactéries adaptées et viables est additionné au produit alimentaire en fin de ligne de production et avantageusement avant le conditionnement du produit alimentaire.
23. Procédé de fabrication d'un produit alimentaire additivé selon la revendication 22, caractérisé en ce que le concentrât liquide de bactéries adaptées et viables est additionné au produit alimentaire en ligne par pompage.
PCT/FR2005/000478 2004-02-27 2005-02-28 Concentrat liquide de bacteries adaptees et viables pour un usage alimentaire Ceased WO2005090551A1 (fr)

Priority Applications (9)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2007500264A JP2007524416A (ja) 2004-02-27 2005-02-28 栄養補給用途のために適合されかつ合致している細菌の液体濃縮物
DE602005018454T DE602005018454D1 (de) 2004-02-27 2005-02-28 Flüssigkonzentrat von bakterien, die für den verzehr adaptiert und geeignet sind
EP05732472A EP1718730B1 (fr) 2004-02-27 2005-02-28 Concentrat liquide de bacteries adaptees et viables pour un usage alimentaire
AU2005224416A AU2005224416B9 (en) 2004-02-27 2005-02-28 Liquid concentrate of bacteria that are adapted and fit for alimentary use
DK05732472.5T DK1718730T3 (da) 2004-02-27 2005-02-28 Flydende koncentrat af tilpassede og levedygtige bakterier til levnedsmiddelbrug
US10/590,507 US20080026102A1 (en) 2004-02-27 2005-02-28 Liquid Concentrate Of Bacteria That Are Adapted And Fit For Alimentary Use
CA002557300A CA2557300A1 (fr) 2004-02-27 2005-02-28 Concentrat liquide de bacteries adaptees et viables pour un usage alimentaire
AT05732472T ATE452963T1 (de) 2004-02-27 2005-02-28 Flüssigkonzentrat von bakterien, die für den verzehr adaptiert und geeignet sind
PL05732472T PL1718730T3 (pl) 2004-02-27 2005-02-28 Ciekły koncentrat bakterii adaptowanych i żywotnych do zastosowania żywnościowego

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
FR0401997A FR2866898B1 (fr) 2004-02-27 2004-02-27 Concentrat liquide de bacteries adaptees et viables pour un usage alimentaire
FR0401997 2004-02-27

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2005090551A1 true WO2005090551A1 (fr) 2005-09-29

Family

ID=34834099

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/FR2005/000478 Ceased WO2005090551A1 (fr) 2004-02-27 2005-02-28 Concentrat liquide de bacteries adaptees et viables pour un usage alimentaire

Country Status (12)

Country Link
US (1) US20080026102A1 (fr)
EP (2) EP2149600A1 (fr)
JP (1) JP2007524416A (fr)
AT (1) ATE452963T1 (fr)
AU (1) AU2005224416B9 (fr)
CA (1) CA2557300A1 (fr)
DE (1) DE602005018454D1 (fr)
DK (1) DK1718730T3 (fr)
ES (1) ES2334801T3 (fr)
FR (1) FR2866898B1 (fr)
PL (1) PL1718730T3 (fr)
WO (1) WO2005090551A1 (fr)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP2228436A1 (fr) 2009-03-06 2010-09-15 Danisco A/S Procédés de centrifugation et de filtration pour concentrer des micro-organismes
CN102802427A (zh) * 2009-06-18 2012-11-28 利乐拉瓦尔集团及财务有限公司 生产基于酸奶的产品的方法

Families Citing this family (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2866899B1 (fr) * 2004-02-27 2006-06-09 Gervais Danone Sa Procede de production d'un concentrat liquide de bacteries adaptees et viables a usage alimentaire
ES2284330B1 (es) * 2005-06-21 2008-07-16 Danone, S.A. Base acuosa no lactea, base acuosa fermentada obtenida a partir de la misma, refresco que contiene alguna de dichas bases y procedimiento para su obtencion.
AR084912A1 (es) 2011-01-21 2013-07-10 Chr Hansen As Probioticos en bebidas frutales
MX2015017994A (es) 2013-06-27 2016-03-16 Starbucks Corp Dba Starbucks Coffee Co Metodos de conservacion biologica para bebidas y otros alimentos.
US20250092354A1 (en) 2022-01-11 2025-03-20 Chr. Hansen A/S Method for producing bacteria

Family Cites Families (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US2364049A (en) * 1941-04-07 1944-12-05 Bensel Brice Corp Process for preserving food and product
US3228838A (en) * 1959-04-23 1966-01-11 Union Carbide Corp Preservation of biological substances
US3790553A (en) * 1972-09-25 1974-02-05 Far Mar Co Extraction process for preparation of vital wheat gluten from whole wheat kernels
US4208440A (en) * 1978-05-22 1980-06-17 Schmidt Edward D Electrically separating a food paste
US4876096A (en) * 1986-04-28 1989-10-24 California Natural Products Rice syrup sweetener
GB9407104D0 (en) * 1994-04-11 1994-06-01 Dalgety Plc Process for the preparation of food ingredients
US6306638B1 (en) * 1996-10-22 2001-10-23 Food Industry Research And Development Institute Mutant bifidobacteria strains with acid, bile salt and oxygen tolerance
JP3462140B2 (ja) * 2000-03-06 2003-11-05 株式会社ノリタケカンパニーリミテド 乳酸菌の濃縮方法及び発酵乳の製造方法
PT1408760E (pt) * 2001-02-19 2009-06-18 Nestle Sa Produto de consumo contendo probióticos
FR2835921B1 (fr) 2002-02-11 2005-06-24 Gervais Danone Sa Utilisation d'une sonde capacitive pour determiner la biomasse de bacteries lactiques
US20040109853A1 (en) * 2002-09-09 2004-06-10 Reactive Surfaces, Ltd. Biological active coating components, coatings, and coated surfaces
FR2866899B1 (fr) * 2004-02-27 2006-06-09 Gervais Danone Sa Procede de production d'un concentrat liquide de bacteries adaptees et viables a usage alimentaire

Non-Patent Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
CARIDIS K A ET AL: "Pressure effects in cross-flow microfiltration of suspensions of whole bacterial cells", BIOPROCESS ENGINEERING, vol. 16, no. 4, 1997, pages 199 - 208, XP002299126, ISSN: 0178-515X *
CRESPO J P S G ET AL: "TANGENTIAL FLOW FILTRATION FOR CONTINUOUS CELL RECYCLE CULTURE OF ACIDOGENIC BACTERIA", CHEMICAL ENGINEERING SCIENCE, OXFORD, GB, vol. 47, no. 1, 1992, pages 205 - 214, XP009034901, ISSN: 0009-2509 *
KIM W S ET AL: "Assessment of stress response of the probiotic Lactobacillus acidophilus.", CURRENT MICROBIOLOGY. NOV 2001, vol. 43, no. 5, November 2001 (2001-11-01), pages 346 - 350, XP002299125, ISSN: 0343-8651 *
MARGOLLES ABELARDO ET AL: "Characterisation of a Bifidobacterium strain with acquired resistance to cholate--a preliminary study.", INTERNATIONAL JOURNAL OF FOOD MICROBIOLOGY. 25 APR 2003, vol. 82, no. 2, 25 April 2003 (2003-04-25), pages 191 - 198, XP002299124, ISSN: 0168-1605 *
REID D E ET AL: "LARGE-SCALE HARVESTING AND CONCENTRATION OF BACTERIA BY TANGENTIAL FLOW FILTRATION", JOURNAL OF APPLIED BACTERIOLOGY, vol. 41, no. 2, 1976, pages 321 - 324, XP009037592, ISSN: 0021-8847 *
SHAH N P: "Probiotic bacteria: selective enumeration and survival in dairy foods.", JOURNAL OF DAIRY SCIENCE. APR 2000, vol. 83, no. 4, April 2000 (2000-04-01), pages 894 - 907, XP002299123, ISSN: 0022-0302 *
TANNY G B ET AL: "IMPROVED FILTRATION TECHNIQUE FOR CONCENTRATING AND HARVESTING BACTERIA", APPLIED AND ENVIRONMENTAL MICROBIOLOGY, vol. 40, no. 2, 1980, pages 269 - 273, XP009037575, ISSN: 0099-2240 *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP2228436A1 (fr) 2009-03-06 2010-09-15 Danisco A/S Procédés de centrifugation et de filtration pour concentrer des micro-organismes
CN102802427A (zh) * 2009-06-18 2012-11-28 利乐拉瓦尔集团及财务有限公司 生产基于酸奶的产品的方法

Also Published As

Publication number Publication date
ES2334801T3 (es) 2010-03-16
EP1718730B1 (fr) 2009-12-23
AU2005224416A1 (en) 2005-09-29
ATE452963T1 (de) 2010-01-15
EP2149600A1 (fr) 2010-02-03
DE602005018454D1 (de) 2010-02-04
JP2007524416A (ja) 2007-08-30
CA2557300A1 (fr) 2005-09-29
DK1718730T3 (da) 2010-01-25
FR2866898A1 (fr) 2005-09-02
US20080026102A1 (en) 2008-01-31
AU2005224416B2 (en) 2009-10-08
AU2005224416B9 (en) 2010-02-04
FR2866898B1 (fr) 2006-06-09
EP1718730A1 (fr) 2006-11-08
PL1718730T3 (pl) 2010-06-30

Similar Documents

Publication Publication Date Title
FR2930264A1 (fr) Nouvelle souche de lactobacillus paracasei subsp. paracasei dotee de proprietes antimicrobiennes et immunomodulatrices.
CN103857297A (zh) 水果饮料中的益生菌
TWI396509B (zh) 發酵飲食品及其製造方法
JPWO2008099543A1 (ja) 新規乳酸菌を用いた発酵乳の製造方法
EP1718730B1 (fr) Concentrat liquide de bacteries adaptees et viables pour un usage alimentaire
Basavanna et al. Evaluation of functional aspects of Lactobacillus fermentum CFR 2195 isolated from breast fed healthy infants’ fecal matter
CN118792214A (zh) 一株高产胞外多糖的保加利亚乳杆菌cb-01及其应用
WO2006042862A1 (fr) Souches de streptococcus thermophilus ami deficientes a post-acidification reduite
FR2953686A1 (fr) Procede pour reduire la teneur bacterienne d'un milieu alimentaire et/ou biologique d'interet, contenant des gouttelettes lipidiques
JP5128183B2 (ja) 新規乳酸菌株、発酵飲食品および発酵飲食品の製造方法
EP1720975A2 (fr) Procede de production d'un concentrat liquide de bacteries adaptees et viables a usage alimentaire
Shree et al. Studies on exploration of psyllium husk as prebiotic for the preparation of traditional fermented food “Buttermilk”
Buruleanu et al. Survival of probiotic bacteria during lactic acid fermentation of vegetable juices
FR2489098A1 (fr) Lait fermente contenant des bacteries du genre bifidobacterium et son procede de preparation
WO2021028475A1 (fr) Procede d'isolation de souches de bacterie lactique surproductrices d'exopolysaccharides
Shilpakar et al. Isolation, Identification and Characterization of Lactic Acid Bacteria Found in “Juju Dhau” from Bhaktapur, Nepal
RU2567148C1 (ru) ШТАММ Streptococcus salivarius ВКПМ В-11177, ИСПОЛЬЗУЕМЫЙ ДЛЯ ПРОИЗВОДСТВА КИСЛОМОЛОЧНЫХ ПРОДУКТОВ И ПРОБИОТИЧЕСКИХ ПРЕПАРАТОВ
RU2567814C1 (ru) ШТАММ Streptococcus salivarius ВКПМ В-11174, ПОЛУЧЕННЫЙ НА ДОСТУПНЫХ ПИТАТЕЛЬНЫХ СРЕДАХ
Kuti et al. Isolation of Lactobacillus species from fermented Parkia biglobosa seed and screening for their probiotic activity.
JP2007524417A5 (fr)
FR2815822A1 (fr) Additif carbone pour fermentations alimentaires et compositions alimentaires le contenant
RU2287573C1 (ru) Штамм бактерий lactococcus lactis subsp. lactis № тк-обл-л3-зф, используемый для выявления бактериофагов лактококков
CHINNADURAI EFFECT OF GALTO OLIGO SACCHARIDES ON ENCAPSULATED LAB AND ITS PROBIOTIC EFFICACY
Adam Effect of Manufacturing Methods on the Quality of yogurt
EP4463536A1 (fr) Procédé de production de bactéries

Legal Events

Date Code Title Description
AK Designated states

Kind code of ref document: A1

Designated state(s): AE AG AL AM AT AU AZ BA BB BG BR BW BY BZ CA CH CN CO CR CU CZ DE DK DM DZ EC EE EG ES FI GB GD GE GH GM HR HU ID IL IN IS JP KE KG KP KR KZ LC LK LR LS LT LU LV MA MD MG MK MN MW MX MZ NA NI NO NZ OM PG PH PL PT RO RU SC SD SE SG SK SL SM SY TJ TM TN TR TT TZ UA UG US UZ VC VN YU ZA ZM ZW

AL Designated countries for regional patents

Kind code of ref document: A1

Designated state(s): BW GH GM KE LS MW MZ NA SD SL SZ TZ UG ZM ZW AM AZ BY KG KZ MD RU TJ TM AT BE BG CH CY CZ DE DK EE ES FI FR GB GR HU IE IS IT LT LU MC NL PL PT RO SE SI SK TR BF BJ CF CG CI CM GA GN GQ GW ML MR NE SN TD TG

121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application
WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2005732472

Country of ref document: EP

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2557300

Country of ref document: CA

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2007500264

Country of ref document: JP

Ref document number: 2005224416

Country of ref document: AU

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2005224416

Country of ref document: AU

Date of ref document: 20050228

Kind code of ref document: A

WWP Wipo information: published in national office

Ref document number: 2005224416

Country of ref document: AU

WWP Wipo information: published in national office

Ref document number: 2005732472

Country of ref document: EP

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 10590507

Country of ref document: US

WWP Wipo information: published in national office

Ref document number: 10590507

Country of ref document: US