WO2006131555A1 - Hydrophobin als beschichtungsmittel für expandierbare oder expandierte, thermoplastische polymerpartikel - Google Patents

Hydrophobin als beschichtungsmittel für expandierbare oder expandierte, thermoplastische polymerpartikel Download PDF

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WO2006131555A1
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thermoplastic polymer
polymer particles
expandable
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Claus Bollschweiler
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Marvin Karos
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    • Y10T428/2991—Coated
    • Y10T428/2998—Coated including synthetic resin or polymer

Definitions

  • Hydrophobin as a coating agent for expandable or expanded thermoplastic polymer particles
  • the invention relates to expandable or expanded, thermoplastic polymer particles having a coating containing hydrophobin, and to processes for their preparation.
  • a coating of the EPS-Parttkei is used with an antistatic agent in the rule. Abrasion or washing off of the coating agent from the surface of the particles often leads to unsatisfactory antistatic properties. Furthermore, the coating with the antistatic agent for bonding the particles and bad giant! conduct behavior.
  • EP-A 470 455 describes peribular antistatic expandable styrene polymers having a coating of a quaternary ammonium salt and finely divided silica, which are characterized by a good trickling behavior.
  • Hydrophobins are small proteins of about 100 to 150 amino acids, which are characteristic of filamentous fungi, for example Schizophyllum commune. They all have 8 cysteine units.
  • Hydrophobins have a marked affinity for interfaces and are therefore suitable for coating surfaces.
  • Teflon can be coated by means of hydrophobins to obtain a hydrophilic surface.
  • Hydrophobins can be isolated from natural sources.
  • Our earlier application DE 102005007480.4 discloses a production process for hydrophobins.
  • WO 96/41882 proposes the use of hydrophobins as emulsifiers, thickeners, surface-active substances, for hydrophilicizing hydrophobic surfaces, for improving the water resistance of hydrophilic substrates, for producing oil-in-water emulsions or for water-in-oil emulsions. Furthermore, pharmaceutical applications such as the production of ointments or creams as well as cosmetic applications such as skin protection or the production of hair shampoos or hair rinses are proposed.
  • WO 01/57528 discloses the coating of windows, contact lenses, biosensors, medical devices, vessels for performing tests or for storage, ship hulls, solid particles or the chassis or bodywork of cars with a hydrophobin-containing solution at a temperature of 30 to 8O 0 C. ,
  • WO 03/53383 discloses the use of hydrophobin for treating keratinous materials in cosmetic applications.
  • WO 03/10331 discloses a hydrophobin-coated sensor, for example a measuring electrode, to which non-covalently further substances, e.g. electroactive substances, antibodies or enzymes are bound.
  • the coating preferably contains 1 to 5000 ppm, in particular 10 to 1000 ppm of hydrophobin, based on the thermoplastic polymer.
  • the coating may contain further antistatics and / or coating additives or may be applied to further coatings with other coating agents.
  • Particularly preferred is a coating which consists only of hydrophobin or mixtures of hydrophobin and forms a monomolecular layer on the expandable or expanded thermoplastic polymer particles.
  • styrene polymers such as polystyrene (EPS) or polyolefins, such as polysethytene (EPE) or polypropylene (EPP).
  • EPS polystyrene
  • EPE polysethytene
  • EPP polypropylene
  • Expandable thermoplastic polymer particles are those which are replaced by z. B, with hot air or water vapor to expandable thermoplastic polymer particles are foamable. They usually contain chemical or physical blowing agents in amounts of 2 to 10 wt .-%, preferably 3 to 7 wt .-% based on the thermoplastic polymer. Preferred physical blowing agents are gases such as nitrogen or carbon dioxide or aliphatic hydrocarbons having 2 to 7 carbon atoms, alcohols, ketones, ethers or halogenated hydrocarbons. Particular preference is given to using isobutane, n-butane, isopentane, n-pentane, neopentane, hexane or mixtures thereof
  • the expandable and expanded thermoplastic polymer particles can contain common hu- mids such as dyes, pigments, fillers, IR absorbers such as carbon black, aluminum or graphite, stabilizers, flame retardants such as hexabromo- dodecane (HBCD), flame retardant synergists such as dicumyl or dicumyl peroxide, germicides or lubricants in effective amounts.
  • common hu- mids such as dyes, pigments, fillers, IR absorbers such as carbon black, aluminum or graphite, stabilizers, flame retardants such as hexabromo- dodecane (HBCD), flame retardant synergists such as dicumyl or dicumyl peroxide, germicides or lubricants in effective amounts.
  • HBCD hexabromo- dodecane
  • the expandable thermoplastic polymer particles according to the invention can be spherical or pear-shaped or cylindrical depending on the H procedure and generally have a mean particle diameter in the range from 0.05 to 5 mm, in particular from 0.3 to 2.5 mm, which may optionally be divided into individual fractions by sieving.
  • the expanded thermoplastic polymer particles have according to the degree of expansion average particle diameter in the range of 1 to 10 mm, in particular 2 to 6 mm and a density in the range of 10 to 200 kg / m 3 .
  • the expandable thermoplastic polymer particles can be obtained, for example, by pressure impregnation of thermoplastic polymer particles with blowing agents in a vessel, by suspension polymerization in the presence of blowing agents, or by melt impregnation in an extruder or static mixer followed by pressurized underwater granulation.
  • Expanded thermoplastic polymer particles can be produced by foaming expandable thermoplastic polymer particles, for example with hot air or steam in pressure pre-expanders, by pressure impregnation of thermoplastic polymer particles with blowing agents in a vessel! and subsequent expansion or by melt extrusion of a blowing agent-containing melt with foaming and subsequent granulation.
  • hydrophobins in the sense of this invention is intended below to refer to proteins of the general structural formula (!)
  • X is for each of the 20 naturally occurring amino acids (Phe, Leu, Ser, Tyr, Cys, Trp, Pro, His, GIn, Arg, He Met, Thr, Asn, Lys, VaI, Ala, Asp, GIu, GIy) can stand.
  • X may be the same or different.
  • the indices standing at X each represent the number of amino acids
  • C stands for cysteine
  • the indices n and m independently of one another represent natural numbers of 0 and 50O 1, preferably from 15 to 300.
  • the polypetides according to formula (I) are further characterized by the property that at room temperature after coating a glass surface they increase the contact angle of a water droplet of at least 20 °, preferably at least 25 ° and particularly preferably 30 °, in each case compared with the contact Angle of a water droplet of the same size with the uncoated glass surface.
  • the cysteines named C 1 to C 8 may either be present in reduced form or form disulfide bridges with one another. Particularly preferred is the intramolecular formation of CC bridges, in particular those having at least one, preferably 2, more preferably 3 and most preferably 4 intramolecular disulfide bridges.
  • X 1 C and the indices standing at X and C have the above meaning, however, the subscripts n and m are numbers between 0 and 300, and the proteins are further characterized by the above-mentioned contact angle change.
  • X, C and the indices standing at X and C have the above meaning
  • the indices n and m are numbers between 0 and 200
  • the proteins are further characterized by the contact angle change mentioned above.
  • radicals X n and X m may it be peptide sequences, growing naturally to a hydrophobin are linked. However, one or both residues may also be peptide sequences that are not naturally linked to a hydrophobin. Including such radicals X N and / or X are m to understand, in which a naturally occurring in a hydrophobin peptide sequence is extended tidsequenz by a non-naturally occurring in a hydrophobin. If X n and / or X m are naturally non-hydrophobin-linked peptide sequences, such sequences are generally at least 20, preferably at least 35, more preferably at least 50, and most preferably at least 100 amino acids in length.
  • Such a residue, which is not naturally linked to a hydrophobin, will also be referred to below as a fusion partner. So sot! It can be stated that the proteins may consist of at least one hydrophobin component and one fusion partner, which in nature do not occur together in this form.
  • the fusion partner can be selected from a variety of proteins.
  • Several fusion partners can also be linked to a hydrophobin part, for example at the amino terminus (X n ) and at the carboxy terminus (X n ,) of the hydrophobin part. It is also possible for example, two Fusionspartnerteiie (n X or X m) with a position to be linked of the inventive protein.
  • fusion partner parts are proteins which occur naturally in microorganisms, in particular in E. coli or Bacillus subtilis.
  • fusion partner parts are the sequences yaad (SEQ ID NO: 15 and 16), ya ae (SEQ ID NO: 17 and 18), and thioredoxin.
  • fragments or derivatives of said sequences which comprise only one part, preferably 70-99%, particularly preferably 80-98% of said sequences, or in which individual amino acids or nucleotides are altered relative to said sequence, wherein the percentages in each case refers to the number of amino acids.
  • proteins used according to the invention may also be modified in their polypeptide sequence, for example by glycosylation, acetylation or else by chemical crosslinking, for example with glutardatedehyde.
  • One property of the proteins used in the invention is the change in surface properties when the surfaces are coated with the proteins.
  • the change in the surface properties can be determined experimentally by measuring the contact angle of a water drop before and after the coating of the surface with the protein and determining the difference between the two measurements.
  • contact angle measurements is known in principle to the person skilled in the art.
  • the measurements refer to room temperature and water drops of 5 ⁇ l.
  • the exact experimental conditions for an exemplary method for measuring the contact angle are shown in the experimental part.
  • the proteins used according to the invention have the property of increasing the contact angle by at least 20 °, preferably at least 25 °, in particular ⁇ ders preferably at least 30 ° to increase, each compared with the contact angle of an equal drop of water with the uncoated glass surface.
  • Hydrophobicity plot expresses. Differences in biophysical properties and in hydrophobicity led to the classification of previously known hydrophobins into two classes, i and II (Wessels et al., 1994, Ann. Rev. Phytopathof., 32, 413-437).
  • the assembled membranes of class I hydrophobins are highly insoluble (even against 1% Na dodecyl sulfate (SDS) at elevated temperature) and can only be redissociated by concentrated trifluoroacetic acid (TFA) or formic acid, in contrast to the assembled forms of Class Ii hydrophobics less stable. They can already be redissolved by 60% ethanol or 1% SDS (at room temperature).
  • a comparison of the amino acid sequences shows that the length of the region between cysteine C 3 and C 4 in class II hydrophobins is significantly shorter than in class I hydrophobins. Class II hydrophobins furthermore have more charged amino acids than class I.
  • hydrophobins for practicing the present invention are the dewA, rodA, hypA, hypB, sc3, basfi, basf2 hydrophobins which are structurally characterized in the Sequence Listing below. It may also be just parts or derivatives thereof. It is also possible to combine a plurality of hydrophobin moieties, preferably 2 or 3, of the same or different structure and to link them with a corresponding suitable polypeptide sequence which is not naturally associated with a hydrophobin.
  • proteins having the polypeptide sequences shown in SEQ ID NO: 20, 22, 24 and the nucleic acid sequences coding therefor, in particular the sequences according to SEQ ID NO: 19, 21, 23.
  • proteins which are starting from the sequences shown in SEQ ID NO. 22, 22 or 24 represented by exchange, insertion or deietion of at least one, up to 10, preferably 5, more preferably 5% of all amino acids, and still have at least 50% of the biological property of the starting proteins are particularly preferred embodiments.
  • the biological property of the proteins is hereby understood to be the already described enlargement of the contact angle by at least 20 °.
  • the proteins used according to the invention can be prepared chemically by known methods of peptide synthesis, for example by solid-phase synthesis according to Merri- field.
  • Naturally occurring hydrophobins can be isolated from natural sources by suitable methods. As an example, let Wösten et. aL, Eur. J Cell Bio. 63, 122-129 (1994) or WO 96/41882.
  • the preparation of fusion proteins can preferably be carried out by genetic engineering methods in which a nucleic acid sequence coding for the fusion partner and a hydrophobin part, in particular DNA sequence, are combined such that the desired protein is produced in a host organism by gene expression of the combined nucleic acid sequence , Such a manufacturing method is disclosed in our earlier application DE 102005007480.4.
  • Suitable host organisms (production organisms) for said production process may be prokaryotes (including archaea) or eukaryotes, especially bacteria including halobacteria and methanococci, fungi, insect cells, plant cells and mammalian cells, more preferably Escherichia coli, Baciilus subtilis, Bacillus. megaterium, Aspergillus oryzea, Aspergillus nidulans, Aspergillus niger, Pichia pastoris, Pseudomonas spec, Lactobacbookn, Hansenula polymorpha, Trichoderma reesei, SF9 (or related cells) and the like.
  • the invention furthermore relates to the use of expression constructs containing, under the genetic control of regulatory nucleic acid sequences, a nucleic acid sequence coding for a polypeptide used according to the invention, as well as vectors comprising at least one of these expression constructs.
  • constructs employed include a promoter 5'-upstream of the respective coding sequence and a terminator sequence 3'-downstream, and optionally other common regulatory elements, each operably linked to the coding sequence.
  • “Operational linkage” is understood to mean the sequential arrangement of promoter, coding sequence, terminator and optionally further regulatory elements in such a way that each of the regulatory elements can fulfill its function as intended in the expression of the coding sequence.
  • operably linked sequences are targeting sequences as well as enhancers, polyadenylation signals and the like.
  • Other regulatory elements include selectable markers, amplification signals, origins of replication, and the like. chen. Suitable regulatory sequences are for. As described in Goeddet, Gene Expression Technolgy: Method in Enzymology 185, Academic Press, San Diego, CA (1990).
  • a preferred nucleic acid construct advantageously also contains one or more of the "enhancer" sequences already mentioned, functionally linked to the promoter, which allow increased expression of the nucleic acid sequence. Additional advantageous sequences can also be inserted at the 3 'end of the DNA sequences, such as further regulatory elements or terminators.
  • the nucleic acids may be contained in one or more cops in the construct.
  • the construct may also contain further markers, such as antibiotic resistances or genes that complement xanthropy, optionally for selection on the construct.
  • Advantageous regulatory sequences for the method are, for example, in promoters such as cos, tac, trp, tet, trp, tet, Ipp, [ac, lpp-lac, laciq-T7, T5, T3 , gal, trc, ara, rhaP (rhaPBAD) SP6, lambda PR, or imiambda P promoter, which find utility in gram-negative bacteria.
  • Further advantageous regulatory sequences are contained, for example, in the gram-positive promoters amy and SP02, in the yeast or fungal promoters ADCI.MFalpha, AC, P-60, CYC 1, GAPDH, TEF, rp28, ADH.
  • the nucleic acid construct is advantageously inserted into a host organism for expression in a vector, such as a plasmid or a phage, which allows for optimal expression of the genes in the host.
  • a vector such as a plasmid or a phage
  • all other vectors known to the person skilled in the art ie, z.
  • viruses such as SV40, CMV, baculovirus and adenovirus, Transposons.lS elements, phasmids, cosmids, and linear or circular DNA, as well as the Agrobacterium system to understand.
  • vectors can be replicated autonomously in the host organism or replicated chromosomally. These vectors represent a further embodiment of the invention.
  • Suitable plasmids are described, for example, in E. coli pLG338, pACYC184, pBR322, pUC18, pUC19, pKC30, pRep4, pHS1, pKK223-3, pDHE19.2 f pHS2, pPLc236, pMBL24, pLG200, pUR290, PLN-III "3-B1, tgt11 or pBdCI, in StreptomycesplJI Ot, plJ364, pIJ702 oderplJ361, in Bacillus pUB110, pC194 or pBD214, in Corynebacterium pSA77 or pAJ667, in fungi pALS1, pIL2 or pBB116, in yeasts 2afpha, pAG-1
  • nucleic acid construct for expression of the further genes contained additionally 3'- and / or 5'-terminal regulatory sequences to increase the expression, which are selected depending on the selected host organism and gene or genes for optimal expression.
  • this may mean, for example, depending on the host organism, that the gene is expressed or overexpressed only after induction, or that it is immediately expressed and / or overexpressed.
  • the regulatory sequences or factors can thereby preferably influence the gene expression of the introduced genes positively and thereby increase.
  • enhancement of the regulatory elements can advantageously be done at the transcriptional level by using strong transcription signals such as promoters and / or enhancers.
  • an enhancement of the translation is possible by, for example, the stability of the mRNA is improved.
  • the vector containing the nucleic acid construct or the nucleic acid can also advantageously be introduced into the microorganisms in the form of a linear DNA and integrated into the genome of the host organism via heterologous or homologous recombination.
  • This linear DNA may consist of an ionized vector such as a plasmid or only of the nucleic acid construct or of the nucleic acid.
  • An expression cassette is produced by fusion of a suitable promoter with a suitable coding nucleotide sequence and a terminator. or polyadenylation signal.
  • Common recombinant and cloning techniques are used, such as those described, for example, in T, Maniatis, EFFritsch and J. Sambrook, Molecular Ctoning: A Laboratory Manual, ColD Spring Harbor Laboratory, ColD Spring Harbor, NY (1989) and TJ Silhavy, ML Berman and LW Enquist, Experiments with Gene Fusions, Colard Spring Harbor Laboratory, ColD Spring Harbor, NY (1984) and Ausubel, FM etaf., Current Protocols in Molecular Biology, Greene Publishing Assoc. and Wiley interscience (1987).
  • the recombinant nucleic acid construct or gene construct is inserted for expression in a suitable host organism, preferably into a host-specific vector which enables optimal expression of the genes in the host.
  • Vectors are well known to those skilled in the art and may be taken, for example, from "Cioning Vectors" (Pouwels P.H. et al., Eds., Elsevier, Amsterdam-New York-Oxford, 1985).
  • recombinant microorganisms can be produced, which are transformed, for example, with at least one vector and can be used to produce the proteins used according to the invention.
  • the above-described recombinant constructs are introduced into a suitable host system and expressed.
  • familiar cloning and transfection methods known to the person skilled in the art are preferably used, such as, for example,
  • Homologously recombined microorganisms can also be produced.
  • a vector is produced which contains at least a portion of a gene or a coding sequence to be used according to the invention, in which optionally at least one amino acid deletion, addition or substitution has been introduced in order to modify the sequence, e.g. B. functionally disrupted ("knockout" - vector).
  • the introduced sequence can, for.
  • it may also be a homologue from a related microorganism or derived from a mammalian, yeast or insect source.
  • the vector used for homologous recombination may be such that the endogenous gene is mutated or otherwise altered upon homologous recombination, but still encodes the functional protein (eg, the upstream regulatory region may be altered such that thereby the expressions - modification of the endogenous protein).
  • the altered portion of the gene used according to the invention is in the homoSogenic recombination vector.
  • the con- Construction of suitable vectors for homoSogen recombination is z. As described in Thomas, KR and Capecchi, MR (1987) Cef! 51: 503.
  • prokaryotic or eukaryotic organisms are suitable as recombinant host organisms for the nucleic acid or nucleic acid construct used according to the invention.
  • microorganisms such as bacteria, fungi or yeasts are used as host organisms.
  • Gram-positive or Gram-negative bacteria preferably bacteria of the families E ⁇ terobacteriaceae, Pseudomonadaceae, Rhizobiaceae, Streptomycetaceae or Nocardiaceae, more preferably bacteria of the genera Escherichia, Pseudomonas, Streptomyces, Nocardia, Burkholderia, Salmonella, Agrobacterium or Rhodococcus are used.
  • the organisms used in the production process for fusion proteins are grown or grown in a manner known to the person skilled in the art.
  • Microorganisms are generally obtained in a liquid medium, the carbon source usually in the form of sugars, a nitrogen source mostly in the form of organic nitrogen sources as yeast extract or salts such as ammonium sulfate, trace elements such as iron, manganese and magnesium salts and optionally contains vitamins, at temperatures between 0 and 100 0 C, preferably between 10 to 60 0 C attracted with oxygen fumigation.
  • the pH of the nutrient fluid can be kept at a fixed value, that is, regulated during the cultivation or not.
  • the cultivation can be done batchwise, semi-batchwise or continuously. Nutrients can be presented at the beginning of the fermentation or fed in semi-continuously or continuously.
  • the enzymes can be isolated from the organisms by the method described in the Examples or used as crude extract for the reaction.
  • Proteins or functional, biologically active fragments thereof used according to the invention can be produced by means of a recombinant process in which a protein-producing microorganism is cultivated, optionally the
  • the proteins can thus also be produced on an industrial scale, if desired.
  • the recombinant microorganism can be cultured and fermented by known methods. Bacteria can be propagated, for example, in TB or LB medium and at a temperature of 20 to 40 0 C and a pH of 6 to 9. Specifically, suitable culturing conditions are described, for example, in T. Maniatis, EF Fritsch and J. Sambrook, Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Colard Spring Harbor Laboratory, ColD Spring Harbor, NY (1989).
  • the cells are disrupted and the product is known Proteinisoileitersvon won from the lysate.
  • the cells can optionally by high-frequency ultrasound, by high pressure, such as. B. in a French pressure cell »by osmolysis, by the action of detergents, lytic enzymes or organic solvents, by homogenizers or by combining several of the listed methods are digested.
  • Purification of the proteins used according to the invention can be achieved by known chromatographic methods, such as molecular sieve chromatography (gel filtration), such as Q-Sepharose chromatography, ion exchange chromatography and hydrophobic chromatography, and by other conventional methods, such as ultrafiltration, crystallization Salting out, dialysis and native gel electrophoresis. Suitable methods are described, for example, in Cooper, F.G., Biochemische Harvey Méen, Verlag Water de Gruyter, Berlin, New York or in Scopes, R., Protein Purificatae, Springer Verlag, New York, Heidelberg, Berlin.
  • vector systems or oligonucleotides for the isolation of the recombinant protein, which extend the cDNA by certain nucleotide sequences and thus code for altered proteins or fusion proteins, which serve for example a simpler purification.
  • suitable modifications include so-called "tags" as anchors, such as the modification known as hexa-histidine anchors, or epitopes that can be recognized as antigens of antibodies (described, for example, in Harlow, E. and Lane, D., 1988 , Antibodies: A Laboratory Manual, CoId Spring Harbor (NY) Press).
  • tags are e.g.
  • HA Calrnodulin BD, GST, MBD; Chitin-BD, Steptavidin-BD-Avi-Tag, Fiag-Tag, T7 etc.
  • anchors can be used to attach the proteins to a solid support, such as.
  • a polymer matrix serve, which may be filled for example in a chromatography column, or may be used on a microtiter plate or other carrier.
  • the corresponding purification protocols are available from the commercial affinity tag providers.
  • the proteins prepared as described can be used both directly as fusion proteins and after cleavage and separation of the fusion partner as "pure" hydrophobins.
  • cleavage site specifically recognition sites for proteases
  • cleavage parts are those peptide sequences which are otherwise found neither in the hydrophobin part nor in the fusion partner, which can easily be determined with bioinformatic tools.
  • BrCN cleavage is particularly suitable Methionine, or protease-mediated cleavage with factor Xa, enteroctnase, thrombin, TEV cleavage (Tobacca etch virus protease).
  • the coating of the expandable or expanded thermoplastic polymer particles before or after foaming for example by tumbling of hydrophobin in a paddle mixer (Fa. L ⁇ dige) or by contacting the surface of the polymer particles with a hydrophobin-haitigen solution, for example by Dipping or spraying, done.
  • the hydrophobin can also be added to the water circulation of the underwater granulator.
  • an aqueous solution having a concentration of 1 to 100 g / l of hydrophobin and a pH in the range of 5 to 9 is used to coat the expandable or expanded thermoplastic polymer particles r.
  • the application of the hyrophobin-containing solution is usually carried out at a temperature in the range of 0 to 14O 0 C, preferably in the range of 30 to 8O 0 C.
  • the expandable and expanded thermoplastic polymer particles according to the invention have an antistatic finish, show a low tendency to be reduced during pre-foaming, but exhibit good welding during foaming to give moldings.
  • Example 1 Preliminary work for the cloning of yaad-Hise / yaaE-Hiss
  • Half of the oligonucleotides Hal570 and Hal571 were subjected to a polymerase chain reaction.
  • the PCR fragment obtained contained the coding sequence of the gene yaaD / yaaE from Baciltus subtilis, and at the ends in each case an NcoI or BglII restriction cleavage sections.
  • the PCR fragment was purified and cut with the restriction endonucleases Ncol and Bgill.
  • This DNA fragment was used as an insert and cloned into the vector pQE60 from Qiagen, which had been previously restricted with the restriction endonucleases Ncol and Bgill.
  • the vectors pQE60YAAD # 2 / # 5 can pQE60YaaE consisting for expressing proteins of YAAD :: HIS 6 or YAAE:; HIS be used. 6
  • Hal570 gcgcgcccatggctcaaacaggtactga
  • Hal571 gcagatctccagccgcgttcttgcatac
  • Hal572 ggccatgggattaacaataggtgtactagg Hai573: gcagatcttacaagtgccttttgcttatattcc
  • Example 2 gcagatcttacaagtgcctttttgcttatattcc Example 2
  • the resulting vector # 508 can be used to express a fusion protein consisting of, YAAD :: Xa :: dewA :: H! S6.
  • KaM416 GCAGCCCATCAGGGATCCCTCAGCCTTGGTACCAGCGC
  • KaM417 CCCGTAGCTAGTGGATCCATTGAAGGCCGCATGAAGTTCTCCGTCTCCGC
  • plasmid # 513 The cloning of plasmid # 513 was carried out analogously to plasmid # 508 using the oligonucleotides KaM 434 and KaM 435.
  • KaM434 GCTAAGCGGATCCATTGAAGGCCGCATGAAGTTCTCCATTGCTGC KaM435: CCAATGGGGATCCGAGGATGGAGCCAAGGG
  • the plasmid # 507 was cloned analogously to plasmid # 508 using the oligonucleotides KaM 417 and KaM 418.
  • the template DNA used was an artificially synthesized DNA sequence-hydrophobin BASF1 (see Appendix).
  • KaM417 CCCGTAGCTAGTGGATCCATTGAAGGCCGCATGAAGTTCTCCGTCTCCGC
  • KaM418 CTGCCATTCAGGGGATCCCATATGGAGGAGGGAGACAG
  • the plasmid # 506 was cloned analogously to plasmid # 508 using the oligonucleotides KaM 417 and KaM 418.
  • KaM417 CCCGTAGCTAGTGGATCCATTGAAGGCCGCATGAAGTTCTCCGTCTCCGC
  • plasmid # 526 The cloning of plasmid # 526 was carried out analogously to plasmid # 508 using the oligonucleotides KaM464 and KaM465.
  • the template DNA used was Schyzophyllum commune cDNA (see Appendix).
  • KaM464 CGTTAAGGATCCGAGGATGTTGATGGGGGTGC
  • KaM465 GCTAACAGATCTATGTTCGCCCGTCTCCCCGTCGT
  • the column is washed with 50 mM Träs-Cl pH 8.0 buffer and the hydrophobin is subsequently eluted with 50 mM Tris-Cl pH 8.0 buffer containing 200 mM imidazof. To remove the iridazole, the solution is dialyzed against 50 mM Tris-Cl pH 8.0 buffer.
  • Figure 1 shows the purification of the prepared hydrophobin
  • Lane 1 Order nickel-Sepharose column (1, 10 dilution)
  • Lane 2 Run - Eluate Wash Step
  • Lanes 3 - 5 OD 280 Maxima of elution fractions
  • the hydrophobin of Figure 1 has a molecular weight of about 53 kD.
  • the smaller bands partially represent degradation products of hydrophobin.
  • the samples are air-dried and the contact angle (in degrees) of a drop of 5 ⁇ S water at room temperature is determined.
  • the contact angle measurement was performed on a device Dataphysics Contact Angle System OCA 15+, Software SCA 20.2.0. (November 2002). The measurement was carried out according to the manufacturer's instructions.
  • Coating agent Aqueous solution of hydrophobin pQE60 + YaaD + Xa + dewA + HIS6 (SEQ ID NO: 19), which was pretreated according to Example 8. (50 mM NaH 2 PO 4, pH 7.5, Hydrophobin 6.08 g / [.
  • EPS expandable polystyrene
  • EPS beads 50 g were weighed in a 500 ml screw-cap jar, admixed with 10 ml or 20 ml of the hydrophobin solution and placed on a "wheelchair" for 24 hours at room temperature, then the hydrophobin-coated EPS beads were placed on a filter paper and dried at room temperature for 5 hours.
  • the coated EPS beads of Examples 10 and 11 and the comparative experiment were each prefoamed for 2 minutes at 100 0 C in the noise box to polystyrene foam beads and welded after 3 days storage to form parts. To assess the quality of the weld, the moldings were broken after 2 days of storage in the middle.

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Abstract

Expandierbare oder expandierte, thermoplastische Poiymer-Partikel mit einer Beschichtung enthaltend Hydrophobin, insbesondere Proteine der allgemeinen Strukturformel (I): X<SUB>n</SUB>-C<SUP>1</SUP>-X<SUB>1-50</SUB>-C<SUP>2</SUP>-X<SUB>0-5</SUB>-C<SUP>3</SUP>-X<SUB>1-100</SUB>-C<SUP>4</SUP>-X<SUB>1-100</SUB>-C<SUP>5</SUP>-X<SUB>1-50</SUB>-C<SUP>6</SUP>-X<SUB>0-5</SUB>-C<SUP>7</SUP>-X<SUB>1-50</SUB>-C<SUP>8</SUP>-X<SUB>m</SUB> enthält, wobei X für jede der 20 natürlich vorkommenden Aminosäuren steht, n und m für Zahlen zwischen 0 und 500 stehen, C für Cystein steht, und deren Verwendung als Antistatikum.

Description

Hydrophobin als Beschichtungsmittel für expaπdierbare oder expandierte, thermoplastische Polymerpartikel
Beschreibung
Die Erfindung betrifft expandierbare oder expandierte, thermoplastische Polymer- Partikel mit einer Beschichtung enthaltend Hydrophobin, sowie Verfahren zu deren Herstellung.
Um die störungsfrei Förderung von expandierbarem Polystyrol zu ermöglichen und die elektrostatische Aufladung der vorgeschäumten Polystyrolschaumpartikel zu vermindern, wird in der Regei eine Beschichtung der EPS-Parttkei mit einem Antistatikum verwendet. Abrieb oder Abwaschung des Beschichtungsmittels von der Oberfläche der Partikel führt häufig zu nicht zufriedenstellenden antistatischen Eigenschaften. Des weiteren kann die Beschichtung mit dem Antistatikum zur Verklebung der Partikel und schlechtem Riese! verhalten führen.
Die EP-A 470 455 beschreibt periförmige antistatische expandierbare Styrolpolymeri- sate mit einer Beschichtung aus einem quartämären Ammoπiumsalz und feinteiliger Kieselsäure, die sich durch ein gutes Rieselverhalten auszeichnen.
Hydrophobine sind kleine Proteine von etwa 100 bis 150 Aminosäuren, die charakteristisch für filamentöse Pilze, beispielsweise Schizophyllum commune, sind. Sie weisen in aller Reget 8 Cystein-Einheiten auf.
Hydrophobine weisen eine ausgeprägte Affinität zu Grenzflächen auf und eignen sich daher zur Beschichtung von Oberflächen. So lässt sich beispielsweise Teflon mittels Hydrophobinen unter Erhalt einer hydrophilen Oberfläche beschichten.
Hydrophobine können aus natürlichen Quellen isoliert werden. Unsere ältere Anmeldung DE 102005007480.4 offenbart ein Herstellverfahren für Hydrophobine.
Im Stand der Technik ist die Verwendung von Hydrophobinen für verschiedene Anwendungen vorgeschlagen worden.
WO 96/41882 schlägt die Verwendung von Hydrophobinen als Emulgatoren, Verdicker, oberflächenaktive Substanzen, zum Hydrophilieren hydrophober Oberflächen, zur Verbesserung der Wasserbeständigkeit hydrophiler Substrate, zur Herstellung von Öl-inWasser-Emulsionen oder von Wasser-in-Öi-Emulsionen vor. Weiterhin werden phar- mazeutische Anwendungen wie die Herstellung von Salben oder Cremes sowie kosmetische Anwendungen wie Hautschutz oder die Herstellung von Haarshampoos oder Haarspülungen vorgeschlagen. WO 01/57528 offenbart die Beschichtung von Fenstern, Kontaktlinsen, Biosensoren, medizinischen Vorrichtungen, Behältern zur Durchführung von Versuchen oder zur Lagerung, Schiffrümpfen, festen Teilchen oder Rahmen oder Karosserie von Personenkraftwagen mit einer Hydrophobine enthaltenden Lösung bei einer Temperatur von 30 bis 8O0C.
WO 03/53383 offenbart die Verwendung von Hydrophobin zum Behandeln von Keratin- Materiatien in kosmetischen Anwendungen.
WO 03/10331 offenbart einen mit Hydrophobin beschichteten Sensor, beispielsweise eine Messelektrode, an den nicht kovalent weitere Substanzen, z.B. elektroaktive Substanzen, Antikörper oder Enzyme gebunden sind.
Aufgabe der vorliegenden Erfindung war es daher den genannten Nachteilen abzuhel- fen und ein antistatisches Beschichtungsmitte! für expandierbare oder expandierte thermoplastische Polymerpartikel zu finden, das beim Vorschäumen oder beim Ver- schäumen zu niedrigeren Dichten eine verringerte Neigung zum Verkleben der Partikel zeigt.
Demgemäß wurden die oben genannten expandierbaren oder expandierten, thermoplastische Polymer-Partikel gefunden.
Bevorzugt enthält die Beschichtung 1 bis 5000 ppm, insbesondere 10 bis 1000 ppm Hydrophobin, bezogen auf das thermoplastische Polymer. Die Beschichtung kann wei- tere Antistatika und/oder Beschichtungshiifstoffe enthalten oder auf weiteren Beschich- tungen mit anderen Beschichtungsmitteln aufgebracht werden. Besonders bevorzugt wird eine Beschichtung, die nur aus Hydrophobin oder Mischungen von Hydrophobin besteht und eine mono-molekulare Schicht auf den expandierbaren oder expandierten thermoplastischen Polymer-Partikel ausbildet.
Für die expandierbaren oder expandierten, thermoplastischen Polymer-Partikel werden bevorzugt Styrolpolymere, wie Polystyrol (EPS) oder Polyolefine, wie PoSyethyten (EPE) oder Polypropylen (EPP) verwendet.
Expandierbare thermoplastische Polymer- Partikel sind solche, die durch z. B, mit Heißluft oder Wasserdampf zu expandierten, thermoplastischen Polymer-Partikel ver- schäumbar sind. Sie enthalten in der Regel chemische oder physikalische Treibmittel in Mengen von 2 bis 10 Gew.-%, bevorzugt 3 bis 7 Gew.-% bezogen auf das thermoplastische Polymer. Bevorzugte physikalische Treibmittel sind Gase, wie Stickstoff oder Kohlendioxid oder aliphatische Kohlenwasserstoffe mit 2 bis 7 Kohienstoffatomen, Aikohole, Ketone, Ether oder haiogenierte Kohlenwasserstoffe. Besonders bevorzugt werden iso-Butan, n-Butan, iso-Pentan, n-Pentan, neo-Pentan, Hexan oder Gemische davon eingesetzt
Des weiteren können die expandierbaren und expandierten thermoplastischen PoIy- mer-Partiket übltsche Hüfstoffe, wie Farbstoffe, Pigmente, Füllstoffe, IR-Absorber, wie Ruß, Aluminium oder Graphit, Stabilisatoren, FlammschutzmSttel, wie Hexabromcylo- dodecan (HBCD), Flammschutzsynergisten, wie Dicumyl oder Dicumylperoxid, Keim- biidner oder Gleitmittel in wirksamen Mengen enthalten.
Die erfindungsgemäßen, expandierbaren thermoplastische Polymer-Partikel können je nach H erstell verfahren kugel- bzw. periförmig oder zylinderförmig sein und weisen in der Regel einen mittleren Tetichendurchrnesser im Bereich von 0,05 bis 5 mm, insbe- sondere 0,3 bis 2,5 mm auf, die gegebenenfalls durch Siebung in einzelne Fraktionen aufgeteilt werden können.
Die expandierten thermoplastischen Polymer-Partikel haben entsprechend dem Expansionsgrad mittlere Teilchendurchmesser im Bereich von 1 bis 10 mm, insbesondere 2 bis 6 mm und eine Dichte im Bereich von 10 bis 200 kg/m3.
Die expandierbaren thermoplastischen Polymer-Partikel können beispielsweise durch Druckimprägnierung von thermoplastischen Polymer-Partikeln mit Treibmitteln in einem Kessel, durch Suspensionspolymerisation in Gegenwart von Treibmitteln oder durch Schmelzeimprägnierung in einem Extruder oder statischen Mischer und anschließende Druckunterwassergranulierung erhalten werden.
Expandierte thermoplastische Polymerpartikel können durch Verschäumen von expandierbaren thermoplastischen Polymer-Partikeln, z B. mit Heißluft oder Wasserdampf in Druckvorschäumern, durch Druckimprägnierung von thermoplastischen Poiymer- partikeln mit Treibmitteln in einem Kesse! und anschließendem Entspannen oder durch Schmefzeextruston einer treibmittelhaltigen Schmelze unter Aufschäumen und anschließender Granuüerυng.
Unter dem Begriff „Hydrophobine" im Sinne dieser Erfindung sollen im Folgenden Proteine der allgemeinen Strukturformel (!)
Xn-C1-Xi.so-C2-Xo.5-C3-Xi.ioo-C4-Xi-ioo-C5-Xi-5o-Cβ-X(M-C7-Xi.so-Cβ-Xm (I)
verstanden werden, wobei X für jede der 20 natürlich vorkommenden Aminosäuren (Phe, Leu, Ser, Tyr, Cys, Trp, Pro, His, GIn, Arg, He Met, Thr, Asn, Lys, VaI, AIa, Asp, GIu, GIy) stehen kann. Dabei können X jeweils gleich oder verschieden sein. Hierbei stellen die bei X stehenden Indizes jeweils die Anzahl der Aminosäuren dar, C steht für Cystein, und die Indizes n und m stehen unabhängig voneinander für natürliche Zahlen von 0 und 50O1 bevorzugt von15 bis 300.
Die Polypetide gemäß Formel (I) sind weiterhin durch die Eigenschaft charakterisiert, dass sie bei Raumtemperatur nach Beschichten einer Glasoberfläche eine Vergrößerung des Kontaktwinkels eines Wassertropfens von mindestens 20°, bevorzugt mindestens 25° und besonders bevorzugt 30° bewirken, jeweils verglichen mit dem Kontakt- Winkel eines gleich großen Wassertropfens mit der unbeschichteten Glasoberfläche.
Die mit C1 bis C8 benannten Cysteine können entweder reduziert vorliegen oder miteinander Disulfidbrücken ausbilden. Besonders bevorzugt ist die intramolekulare Ausbildung von C-C Brücken, insbesondere die mit mindestens einer, bevorzugt 2, beson- ders bevorzugt 3 und ganz besonders bevorzugt 4 intramolekularen Disulfidbrücken.
Bevorzugt werden Hydrophobine der allgemeinen Formel (II)
Xn-C1-X3-25-C2-Xθ-2-C3-X5^O-C4-X2-35-C5-X2-15-C6-Xθ-2-C7-X3-35-C8-Xm (II)
zur Ausführung der vorliegenden Erfindung eingesetzt, wobei X1 C und die bei X und C stehenden Indizes die obige Bedeutung haben, jedoch stehen die Indizes n und m für Zahlen zwischen 0 und 300, und sich die Proteine weiterhin durch die oben erwähnte Kontaktwinkeländerung auszeichnen.
Besonders bevorzugt werden Hydrophobine der allgemeinen Formel (III)
Xn-C1-X5-9-C2-C3-Xi i-ao-C^-Xa^-CS-Xs^-Cβ-C'-Xβ-iβ-Cβ-Xm (Il I)
eingesetzt, wobei X, C und die bei X und C stehenden Indizes die obige Bedeutung haben, die Indizes n und m für Zahlen zwischen 0 und 200 stehen, und sich die Proteine weiterhin durch die oben erwähnte Kontaktwinkeländerung auszeichnen.
Bei den Resten Xn und Xm kann es sich um Peptidsequenzen handeln, die natürlicher- weise mit einem Hydrophobin verknüpft sind. Es kann sich aber auch bei einem oder beiden Resten um Peptidsequenzen handeln, die natürlicherweise nicht mit einem Hydrophobin verknüpft sind. Darunter sind auch solche Reste Xn und/oder Xm zu verstehen, bei denen eine natürlicherweise in einem Hydrophobin vorkommende Peptid- sequenz durch eine nicht natürlicherweise in einem Hydrophobin vorkommende Pep- tidsequenz verlängert ist. Falls es sich bei Xn und/oder Xm um natürlicherweise nicht mit Hydrophobinen verknüpfte Peptidsequenzen handelt, sind derartige Sequenzen in der Regel mindestens 20, bevorzugt mindestens 35, besonders bevorzugt mindestens 50 und ganz besonders bevorzugt mindestens 100 Aminosäuren lang. Ein derartiger, natürlicherweise nicht mit einem Hydrophobin verknüpfter Rest soll im Folgenden auch als Fusionspartner bezeichnet werden. Damit sot! ausgedrückt werden, dass die Proteine aus mindestens einem Hydrophobinteii und einem Fusionspartner bestehen können, die in der Natur nicht zusammen in dieser Form vorkommen.
Der Fusionspartner kann aus einer Vielzahl von Proteinen ausgewählt werden. Es können auch mehrere Fusionspartner mit einem Hydrophobinteii verknüpft werden, beispielsweise am Aminoterminus (Xn) und am Carboxyterminus (Xn,) des Hydropho- binteils. Es können aber auch beispielsweise zwei Fusionspartnerteiie mit einer Position (Xn oder Xm) des erfindungsgemäßen Proteins verknüpft werden.
Besonders geeignete Fusionspartnerteile sind Proteine, die natürlicherweise in Mikroorganismen, insbesondere in E. coli oder Bacillus subtilis vorkommen. Beispiele für solche Fusionspartnerteile sind die Sequenzen yaad (SEQ SD NO: 15 und 16) , ya- ae(SEQ ID NO:17 und 18), und Thioredoxin. Gut geeignet sind auch Fragmente oder Derivate dieser genannten Sequenzen, die nur einen Teii, bevorzugt 70-99%, besonders bevorzugt 80-98% der genannten Sequenzen umfassen, oder bei denen einzelne Aminosäuren, bzw. Nukleotide gegenüber der genannten Sequenz verändert sind, wobei sich die Prozentangaben jeweils auf die Anzahl der Aminosäuren bezieht.
Die erfindungsgemäß verwendeten Proteine können auch noch in ihrer Polypeptidse- quenz modifiziert sein, beispielsweise durch Glycosilierung, Acetylierung oder auch durch chemische Quervernetzung beispielsweise mit Glutardiatdehyd.
Eine Eigenschaft der erfindungsgemäß verwendeten Proteine ist die Änderung von Oberflächeneigenschaften, wenn die Oberflächen mit den Proteinen beschichtet werden. Die Änderung der Oberflächeneigenschaften lässt sich experimentell dadurch bestimmen, dass der Kontaktwinkel eines Wassertropfens vor und nach der Beschich- tung der Oberfläche mit dem Protein gemessen wird und die Differenz der beiden Messungen ermittelt wird.
Die Durchführung von Kontaktwinkelmessungen ist dem Fachmann prinzipiell bekannt. Die Messungen beziehen sich auf Raumtemperatur sowie Wassertropfen von 5 Ül. Die genauen experimentellen Bedingungen für eine beispielhaft geeignete Methode zur Messung des Kontaktwinkels sind im experimenteilen Teil dargestellt. Unter den dort genannten Bedingungen besitzen die erfindungsgemäß verwendeten Proteine die Eigenschaft, den Kontaktwinkel um mindestens 20°, bevorzugt mindestens 25°, beson- δ ders bevorzugt mindestens 30° zu vergrößern, jeweils verglichen mit dem Kontaktwinkel eines gleich großen Wassertropfens mit der unbeschichteten Glasoberfläche.
im Hydrophobinteil der bisher bekannten Hydrophobine sind die Positionen der polaren und unpolaren Aminosäuren konserviert, was sich in einem charakteristischen
Hydrophobtzitätsplot äußert. Unterschiede in den biophysikalischen Eigenschaften und in der Hydrophobizität führten zur Einteilung der bisher bekannten Hydrophobine in zwei Klassen, i und II (Wessels et al. 1994, Ann. Rev. Phytopathof., 32, 413-437).
Die assemblierten Membranen aus Klasse i Hydrophobinen sind hochgradig unlöslich (selbst gegenüber 1 % Na-Dodecylsulfat (SDS) bei erhöhter Temperatur) und können nur durch konzentrierte Trifluoressigsäure (TFA), bzw. Ameisensäure wieder dissoziiert werden, im Gegensatz dazu sind die assemblierten Formen von Klasse Ii Hydrophobä- nen weniger stabil. Sie können bereits durch 60%iges Ethanol, bzw. 1 % SDS (bei Raumtemperatur) wieder aufgelöst werden.
Ein Vergleich der Aminosäuresequenzen zeigt, dass die Länge des Bereichs zwischen Cystein C3 und C4 bei Klasse Il Hydrophobinen deutlich kürzer ist, als bei Hydrophobinen der Klasse I. Klasse Il Hydrophobine weisen weiterhin mehr geladene Aminosäu- ren als Klasse I auf.
Besonders bevorzugte Hydrophobine zur Ausführung der vorliegenden Erfindung sind die Hydrophobine des Typs dewA, rodA, hypA, hypB, sc3, basfi , basf2, die im nachfolgenden Sequenzprotokoll strukturell charakterisiert sind. Es kann sich auch nur um Teile oder Derivate davon handeln. Es können auch mehrere Hydrophobinteile, bevorzugt 2 oder 3, gleicher oder unterschiedlicher Struktur miteinander verknüpft und mit einer entsprechenden geeigneten Poiypeptidsequenz, die natürlicherweise nicht mit einem Hydrophobin verbunden ist, verknüpft werden.
Besonders geeignet zur Durchführung der vorliegenden Erfindung sind weiterhin die Fusionsproteine mit den in SEQ ID NO: 20, 22, 24 dargestellten Polypeptidsequenzen sowie den dafür codierenden Nukleinsäuresequenzen, insbesondere den Sequenzen gemäss SEQ iD NO: 19, 21 , 23. Auch Proteine, die sich ausgehend von den in SEQ ID NO. 22, 22 oder 24 dargestellten Polypeptidsequenzen durch Austausch, Insertion oder Deietion von mindestens einer, bis hin zu 10. bevorzugt 5 , besonders bevorzugt 5% aller Aminosäuren ergeben, und die die biologische Eigenschaft der Ausgangsproteine noch zu mindestens 50% besitzen, sind besonders bevorzugte Ausführungsformen. Unter biologischer Eigenschaft der Proteine wird hierbei die bereits beschriebene Vergrößerung des Kontaktwinkels um mindestens 20° verstanden. Die erfindungsgemäß verwendeten Proteine lassen sich chemisch durch bekannte Verfahren der Peptidsynthese, beispielsweise durch Festphasensynthese nach Merri- field herstellen.
Natürfich vorkommende Hydrophobine lassen sich aus natürlichen Quellen mittels geeigneter Methoden isolieren. Beispielhaft sei auf Wösten et. aL, Eur. J Cell Bio. 63, 122-129 (1994) oder WO 96/41882 verwiesen.
Die Herstellung von Fusionsproteiπen kann bevorzugt durch gentechnische Verfahren erfolgen, bei denen eine für den Fusionspartner und eine für den Hydrophobinteii codierende Nukleinsäuresequenz, insbesondere DNA-Sequenz, so kombiniert werden, dass in einem Wirtsorganismus durch Genexpression der kombinierten Nukleinsäure- sequenz das gewünschte Protein erzeugt wird. Ein derartiges Herstellverfahren ist in unserer älteren Anmeldung DE 102005007480.4 offenbart.
Geeignete Wirtsorganismen (Produktionsorganismen) für das genannte Herstellverfahren können dabei Prokaryonten (einschließlich der Archaea) oder Eukaryonten sein, besonders Bakterien einschliesslich Halobacterien und Methanococcen, Pilze, Insek- tenzefien, Pflanzenzellen und Säugerzellen, besonders bevorzugt Escherichia coli, Baciilus subtilis, Bacillus. megaterium, Aspergillus oryzea, Aspergillus nidulans, Aspergillus niger, Pichia pastoris, Pseudomonas spec, Lactobaciilen, Hansenula poly- morpha, Trichoderma reesei, SF9 (bzw. verwandte Zellen) u.a.
Gegenstand der Erfindung ist außerdem die Verwendung von Expressionskonstrukten, enthaltend unter der genetischen Kontrolle regulativer Nukleinsäuresequenzen, eine für ein erfindungsgemäß verwendetes Polypeptid kodierende Nukleinsäuresequenz, sowie Vektoren, umfassend wenigstens eines dieser Expressionskonstrukte.
Vorzugsweise umfassen eingesetzte Konstrukte 5'-stromaufwärts von der jeweiligen kodierenden Sequenz einen Promotor und 3'-stromabwärts eine Terminatorsequenz sowie gegebenenfalls weitere übliche regulative Elemente, und zwar jeweils operativ verknüpft mit der kodierenden Sequenz.
Unter einer "operativen Verknüpfung" versteht man die sequentielle Anordnung von Promotor, kodierender Sequenz, Terminator und gegebenenfalls weiterer regulativer Elemente derart, dass jedes der regulativen Elemente seine Funktion bei der Expression der kodierenden Sequenz bestimmungsgemäß erfüllen kann.
Beispiele für operativ verknüpfbare Sequenzen sind Targeting-Sequenzen sowie En- hancer, Polyadenylierungssignale und dergleichen. Weitere regulative Elemente umfassen selektierbare Marker, Amplifikationssignale, Replikationsursprünge und derglei- chen. Geeignete regulatorische Sequenzen sind z. B. beschrieben in Goeddet, Gene Expression Techno- logy : Methode in Enzymology 185, Academic Press, San Diego, CA (1990).
Zusätzlich zu diesen Regulationssequenzen kann die natürliche Regufation dieser Sequenzen vor den eigentlichen Strukturgenen noch vorhanden sein und gegebenenfalls genetisch verändert worden sein, so dass die natürliche Regulation ausgeschaltet und die Expression der Gene erhöht wurde.
Ein bevorzugtes Nukleinsäurekonstrukt enthält vorteilhaft auch eine oder mehrere der schon erwähnten "Enhancer"-Sequenzen, funktionell verknüpft mit dem Promotor, die eine erhöhte Expression der Nukleinsäuresequenz ermöglichen. Auch am 3'-Ende der DNA-Sequenzen können zusätzliche vorteilhafte Sequenzen inseriert werden, wie weitere regulatorische Elemente oder Terminatoren.
Die Nukleinsäuren können in einer oder mehreren Kopsen im Konstrukt enthalten sein. Im Konstrukt können noch weitere Marker, wie Antibiotikaresistenzen oder Au- xotrophien komplementierende Gene, gegebenenfalls zur Selektion auf das Konstrukt enthalten sein.
Vorteilhafte Regulationssequenzen für das Verfahren sind beispielsweise in Promotoren wie cos-, tac-, trp-, tet-, trp-, tet-, Ipp-, [ac-,lpp-lac-,laciq-T7- , T5-, T3-, gal-, trc-, ara-, rhaP(rhaPBAD) SP6-, lambda-PR-oder imiambda-P-Promotor enthalten, die vorteilhaft in gram-negativen Bakterien Anwendung finden. Weitere vorteilhafte Regulato onssequenzen sind beispielsweise in den gram-positiven Promotoren amy und SP02, in den Hefe-oder Pilzpromotoren ADCI.MFalpha, AC, P-60, CYC 1 , GAPDH, TEF, rp28, ADH enthalten.
Es können auch künstliche Promotoren für die Regulation verwendet werden.
Das Nukleinsäurekonstrukt wird zur Expression in einem Wirtsorganismus vorteiihaft- erweise in einen Vektor, wie beispielsweise einem Plasmid oder einem Phagen inseriert, der eine optimale Expression der Gene im Wirt ermöglicht. Unter Vektoren sind außer Plasmiden und Phagen auch alle anderen dem Fachmann bekannten Vektoren, also z. B. Viren, wie SV40, CMV, Baculovirus und Adenovirus, Transposons.lS- Elemente, Phasmide, Cosmide, und lineare oder zirkuläre DNA, sowie das Agrobacterium- System zu verstehen.
Diese Vektoren können autonom im Wirtsorganismus repliziert oder chromosomal rep- liziert werden. Diese Vektoren stellen eine weitere Ausgestaltung der Erfindung dar. Geeignete Plasmide sind beispielsweise in E. coli pLG338, pACYC184, pBR322, pUC18,pUC19, pKC30, pRep4, pHS1 , pKK223-3, pDHE19.2f pHS2, pPLc236, pMBL24, pLG200, pUR290,plN-III"3-B1 , tgt11 oder pBdCI, in StreptomycesplJI Ot, plJ364,plJ702 oderplJ361, in Bacillus pUB110, pC194 oder pBD214, in Corynebacteri- um pSA77 oder pAJ667, in Pilzen pALS1 , plL2 oder pBB116, in Hefen 2afpha, pAG-1, YEp6, YEp13 oder pEMBLYe23 oder in Pflanzen pLGV23,pGHfac+, pBIN19, pAK2004 oder pDH51. Die genannten Plasmide stellen eine kleine Auswahl der möglichen Plasmide dar. Weitere Plasmide sind dem Fachmann bekannt und können beispielsweise aus dem Buch Cioning Vectors (Eds. Pouwels P. H. et a!. Elsevier, Ams- terdam- New York-Oxford, 1985, ISBN 0 444 904018) entnommen werden.
Vorteilhaft enthält das Nukieinsäurekonstrukt zur Expression der weiteren enthaltenen Gene zusätzlich noch 3'-und/oder 5'-terminale regulatorische Sequenzen zur Steigerung der Expression, die je nach ausgewähltem Wirtorganismus und Gen oder Gene für eine optimale Expression ausgewählt werden.
Diese reguiatorischen Sequenzen soffen die gezielte Expression der Gene und der Proteinexpression ermögSichen, Dies kann beispielsweise je nach Wirtsorganismus bedeuten, dass das Gen erst nach Induktion exprimiert oder überexprimiert wird, oder dass es sofort exprimiert und/oder überexprimiert wird.
Die regulatorischen Sequenzen bzw. Faktoren können dabei vorzugsweise die Genexpression der eingeführten Gene positiv beeinflussen und dadurch erhöhen. So kann eine Verstärkung der reguiatorischen Elemente vorteilhafterweise auf der Transkriptionsebene erfolgen, indem starke Transkriptionssignale wie Promotoren und/oder "Enhancer" verwendet werden. Daneben ist aber auch eine Verstärkung der Translation möglich, indem beispielsweise die Stabilität der mRNA verbessert wird.
in einer weiteren Ausgestaltungsform des Vektors kann der das Nukieinsäurekonstrukt oder die Nukleinsäure enthaltende Vektor auch vorteilhaft in Form einer linearen DNA in die Mikroorganismen eingeführt werden und über heterologe oder homologe Rekombination in das Genom des Wirtsorganismus integriert werden. Diese lineare DNA kann aus einem iinearisierten Vektor wie einem Plasmid oder nur aus dem Nukieinsäurekonstrukt oder der Nukleinsäure bestehen.
Für eine optimale Expression heterologer Gene in Organismen ist es vorteilhaft die Nukieinsäuresequenzen entsprechend des im Organismus verwendeten spezifischen "codon usage"zu verändern. Der "codon usage" lässt sich anhand von Computerauswertungen anderer, bekannter Gene des betreffenden Organismus leicht ermittein.
Die Herstellung einer Expressionskassette erfolgt durch Fusion eines geeigneten Promotors mit einer geeigneten kodierenden Nukleotidsequenz sowie einem Terminator- oder Polyadenylierungssignal. Dazu verwendet man gängige Rekombinations- und Klonierungstechniken, wie sie beispielsweise in T, Maniatis, E. F.Fritsch und J. Sambrook, Molecular Ctoning : A Laboratory Manual, CoId Spring Harbor Laboratory, CoId Spring Harbor, NY (1989) sowie in T. J. Silhavy, M. L. Berman und L. W. Enquist, Experiments with Gene Fusions, CoId Spring Harbor Laboratory, CoId Spring Harbor, NY (1984) und in Ausubel, F. M. etaf., Current Protocols in Molecuiar Biology, Greene Publishing Assoc. andWiley interscience (1987) beschrieben sind.
Das rekombinante Nukleinsäurekonstrukt bzw. Genkonstrukt wird zur Expression in einem geeigneten Wirtsorganismus, vorteiihaft in einen wirtsspezifischen Vektor inser- tiert, der eine optimale Expression der Gene im Wirt ermöglicht. Vektoren sind dem Fachmann wohl bekannt und können beispielsweise aus "Cioning Vectors" (Pouwels P. H. et al., Hrsg, Elsevier, Amsterdam-New York-Oxford, 1985) entnommen wer- den.
Mit Hilfe der Vektoren sind rekombinante Mikroorganismen herstellbar, weiche beispielsweise mit wenigstens einem Vektor transformiert sind und zur Produktion der erfindungsgemäß verwendeten Proteine eingesetzt werden können. Vorteilhafterweise werden die oben beschriebenen rekombinanten Konstrukte in ein geeignetes Wirtssystem eingebracht und exprimiert Dabei werden vorzugsweise dem Fachmann bekannte geläufige Klonierungs- und Transfektionsmethoden, wie beispielsweise Co-
Präzipitation, Protoplastenfusion, Elektroporation, retrovirale Transfektion und dergleichen, verwendet, um die genannten Nukleinsäuren im jeweiligen Expressionssystem zur Expression zu bringen. Geeignete Systeme werden beispielsweise in Current Protocols in Molecular Biology, F.Ausubel etal., Hrsg., Wiiey Interscience, New York 1997, oder Sambrook et al. Molecular Cioning : A Laboratory Manual. 2. Aufl., Coid Spring Harbor Laboratory, CoId Spring Harbor Laboratory Press, CoId Spring Harbor, NY, 1989 beschrieben.
Es sind auch homolog rekombinierte Mikroorganismen herstellbar. Dazu wird ein Vek- tor hergestellt, der zumindest einen Abschnitt eines erfindungsgemäß zu verwendenden Gens oder einer kodierenden Sequenz enthält, worin gegebenenfalls wenigstens eine Aminosäure-Deletion, -Addition oder -Substitution eingebracht worden ist, um die Sequenz zu verändern, z. B. funktionell zu disruptieren ("Knockout"- Vektor). Die eingebrachte Sequenz kann z. B. auch ein Homologes aus einem verwandten Mikroorga- nismus sein oder aus einer Säugetier-, Hefe- oder Insektenquelle abgeleitet sein. Der zur homologen Rekombination verwendete Vektor kann alternativ derart ausgestaltet sein, dass das endogene Gen bei homologer Rekombination mutiert oder anderweitig verändert ist, jedoch noch das funktionelle Protein kodiert (z. B. kann der stromaufwärts gelegene regulatorische Bereich derart verändert sein, dass dadurch die Expres- sion des endogenen Proteins verändert wird). Der veränderte Abschnitt des erfin- dungsgemäfi verwendeten Gens ist im homoSogen Rekombinationsvektor. Die Kon- struktion geeigneter Vektoren zur homoSogen Rekombination ist z. B. beschrieben in Thomas, K. R. und Capecchi, M. R. (1987) Cef! 51 : 503.
Ais rekombinante Wirtsorganismen für die erfindungsgemäß verwendete Nukleinsäure oder dem Nukleinsäurekonstrukt kommen prinzipiell alle prokaryontischen oder euka- ryontischen Organismen in Frage, Vorteilhafterweise werden als Wirtsorganismen Mikroorganismen wie Bakterien, Pilze oder Hefen verwendet. Vorteilhaft werden grampositive oder gram-negative Bakterien, bevorzugt Bakterien der Familien Eπterobacte- riaceae, Pseudomonadaceae, Rhizobiaceae, Streptomycetaceae oder Nocardiaceae, besonders bevorzugt Bakterien der Gattungen Escherichia, Pseudomonas, Streptomy- ces, Nocardia, Burkholderia, Salmonella, Agrobacterium oder Rhodococcus verwendet.
Die im Herstellverfahren für Fusionsproteine verwendeten Organismen werden je nach Wirtsorganismus in dem Fachmann bekannter Weise angezogen bzw. gezüchtet, Mik- roorganismen werden in der Regel in einem flüssigen Medium, das eine Kohlenstoffquelle meist in Form von Zuckern, eine Stickstoffqueile meist in Form von organischen Stickstoffquellen wie Hefeextrakt oder Salzen wie Ammoniumsulfat, Spurenelemente wie Eisen-, Mangan- und Magnesiumsalze sowie gegebenenfalls Vitamine enthält, bei Temperaturen zwischen 0 und100 0C, bevorzugt zwischen 10 bis 60 0C unter Sauer- stoffbegasung angezogen. Dabei kann der pH-Wert der Nährflüssigkeit auf einem festen Wert gehalten werden, das heißt während der Anzucht reguliert werden oder nicht. Die Anzucht kann "batch"-weise, "semi-batch"-weise oder kontinuierlich erfolgen. Nährstoffe können zu Beginn der Fermentation vorgelegt oder semikontinuierlich oder kontinuierlich nachgefüttert werden. Die Enzyme können nach dem in den Beispielen be- schriebenen Verfahren aus den Organismen isoliert werden oder als Rohextrakt für die Reaktion verwendet werden.
Erfindungsgemäß verwendete Proteine oder funktionelle, biologisch aktive Fragmente davon, können mittels eines rekombinanten Verfahrens hergestellt werden, bei dem man einen Proteine-produzierenden Mikroorganismus kultiviert, gegebenenfalls die
Expression der Proteine induziert und diese aus der Kultur isoliert. Die Proteine können so auch in großtechnischem Maßstab produziert werden, falls dies erwünscht ist. Der rekombinante Mikroorganismus kann nach bekannten Verfahren kultiviert und fermentiert werden. Bakterien können beispielsweise in TB-oder LB-Medium und bei einer Temperatur von 20 bis 400C und einem pH-Wert von 6 bis 9 vermehrt werden. Im Einzelnen werden geeignete Kultivierungsbedingungen beispielsweise in T. Maniatis, E. F. Fritsch and J. Sambrook, Molecular Cloning : A Laboratory Manual, CoId Spring Harbor Laboratory, CoId Spring Harbor, NY (1989) beschrieben.
Die Zellen werden dann, falls die erfindunsgemäß verwerdeten Proteine nicht in das Kulturmedium sezerniert werden, aufgeschlossen und das Produkt nach bekannten Proteinisoiierungsverfahren aus dem Lysat gewonnen. Die Zellen können wahlweise durch hochfrequenten Ultraschall, durch hohen Druck, wie z. B. in einer French- Druckzelle» durch Osmolyse, durch Einwirkung von Detergenzien, lytischen Enzymen oder organischen Lösungsmitteln, durch Homogenisatoren oder durch Kombination mehrerer der aufgeführten Verfahren aufgeschlossen werden.
Eine Aufreinigung der erfindunsgemäß verwendeten Proteine kann mit bekannten, chromatographischen Verfah- ren erzielt werden, wie Molekularsieb-Chromatographie (Gelfiltration), wie Q- Sepharose-Chromatographie, lonenaustausch-Chromatographie und hydrophobe Chromatographie, sowie mit anderen üblichen Verfahren wie Ultrafiltration, Kristaliisatä- on, Aussalzen, Dialyse und nativerGelelektrophorese. Geeignete Verfahren werden beispielsweise in Cooper, F. G., Biochemische Arbeitsmethoden, Verlag Water de Gruyter, Berlin, New York oder in Scopes, R., Protein Purificatäon, Springer Verlag, New York, Heidelberg, Berlin beschrieben.
Vorteilhaft kann es sein, zur Isolierung des rekombinanten Proteins Vektorsysteme oder Oligonukleotide zu verwenden, die die cDNA um bestimmte Nukleotidsequenzen verlängern und damit für veränderte Proteine oder Fusionsproteine kodieren, die beispielsweise einer einfacheren Reinigung dienen. Derartige geeignete Modifikationen umfassen als Anker fungierende sogenannte "Tags", wie beispielsweise die als Hexa- Histidin-Anker bekannte Modifikation oder Epitope, die als Antigene von Antikörpern erkannt werden können (beschrieben zum Beispiel in Harlow, E. and Lane, D., 1988, Antibodies : A Laboratory Manual. CoId Spring Harbor (N. Y. ) Press). Weitere geeignete Tags sind z.B. HA, Calrnodulin-BD, GST, MBD; Chitin-BD, Steptavidin-BD-Avi- Tag, Fiag-Tag, T7 etc. Diese Anker können zur Anheftung der Proteine an einen festen Träger, wie z. B. einer Polymermatrix, dienen, die beispielsweise in einer Chromatographiesäule eingefüllt sein kann, oder an einer Mikrotiterplatte oder an einem sonstigen Träger verwendet werden kann. Die entsprechenden Reinigungsprotokolle sind von den kommerziellen Affinitäts-Tag-Anbietern erhältlich.
Die wie beschrieben hergestellten Proteine können sowohl direkt als Fusionsproteine als auch nach Abspaltung und Abtrennung des Fusionspartners als „reine" Hydrophobine verwendet werden.
Wenn eine Abtrennung des Fusionspartners vorgesehen ist, empfiehlt es sich eine potentielle Spaltstelle (spezifische Erkennungsstelte für Proteasen) in das Fusionsprotein zwischen Hydrophobinteit und Fusionspartnerteil einzubauen. Als Spaltsteile geeignet sind insbesondere solche Peptidsequenzen geeignet, die ansonsten weder im Hydrophobinteil noch im Fusionspartnerteii vorkommen, was sich mit bioinformatischen Tools leicht ermittein lässt. Besonders geeignet sind beispielsweise BrCN-Spaltung an Methionin, oder durch Protease vermittelte Spaltiung mit Faktor Xa-, Enteroktnase-, Thrombin, TEV-Spaltung (Tobacca etch virus Protease).
Die Beschichtung der expandierbaren oder expandierten, thermoplastischen Polymer- Partikel kann vor oder nach dem Verschäumen, beispielsweise durch Auftrommeln von Hydrophobin in einem Schaufelmischer (Fa. LÖdige) oder durch in Kontaktbringen der Oberfläche der Polymer-Partikel mit einer Hydrophobin-haitigen Lösung, beispielsweise durch Tauchen oder Sprühen, erfolgen. Bei der Herstellung durch Extrusion einer treibmittelhaitigen Schmelze kann das Hydrophobin auch dem Wasserkreislauf des Unterwassergranulators zugegeben werden.
Bevorzugt wird zur Beschichtung der expandierbaren oder expandierten, thermoplastischen Polymer-Partikel r eine wässrige Lösung mit einer Konzentration von 1 bis 100 g/l Hydrophobin und einem pH-Wert im Bereich von 5 bis 9 verwendet. Das Aufbringen der Hyrophobin-haltige Lösung erfolgt in der Regel bei einer Temperatur im Bereich von 0 bis 14O0C, bevorzugt im Bereich von 30 bis 8O0C.
Die erfindungsgemäßen expandierbaren und expandierten, thermoplastische Polymerpartikel sind antistatisch ausgerüstet, zeigen eine geringe Neigung zur Verkiebung beim Vorschäumen, jedoch eine gute Verschweißung beim Verschäumen zu Formtei- ien.
Beispieie: Beispiel 1 Vorarbeiten für die Klonierung von yaad-Hise/ yaaE-Hiss
Mit Hälfe der Oligonukleotide Hal570 und Hal571 (HaI 572/ Hai 573) wurde eine Polymerase Kettenreaktion durchgeführt. Als Template DNA wurde genomische DNA des Bakteriums Baciilus subtilis verwendet. Das erhaltene PCR Fragment enthielt die co- dierende Sequenz des Gens yaaD / yaaE aus Baciltus subtilis, und an den Enden je eine Ncol bzw. BgIII Restriktionsschnittsteile. Das PCR Fragment wurde gereinigt und mit den Restriktionsendonukleasen Ncol und Bgill geschnitten. Dieses DNA Fragment wurde ais insert verwendet, und in den zuvor mit den Restriktionsendonukleasen Ncol und Bgill ünearisierten Vektor pQE60 der Firma Qiagen kloniert. Die so enstandenen Vektoren pQE60YAAD#2 / pQE60YaaE#5 können zur Expression von Proteinen bestehend aus, YAAD::HIS6 bzw. YAAE:;HlS6 verwendet werden.
Hal570: gcgcgcccatggctcaaacaggtactga Hal571 : gcagatctccagccgcgttcttgcatac Hal572: ggccatgggattaacaataggtgtactagg Hai573: gcagatcttacaagtgccttttgcttatattcc Beispiel 2
Klonierung von yaad-Hydrophobin DewA-HiS6
Mit Hilfe der Oiigonukieotide KaM 416 und KaM 417 wurde eine Polymerase Kettenreaktion durchgeführt. Ais Template DMA wurde genomische DNA des Schimmelpilzes Aspergillus nidulans verwendet. Das erhaltene PCR Fragment enthielt die codierende Sequenz des Hydrophobin Gens dewA und einer N-Terminalen FaktorXa Proteinase Schnittstelle. Das PCR Fragment wurde gereinigt und mit der Restriktionsendonukiea- se BarnHI geschnitten. Dieses DNA Fragment wurde als Insert verwendet, und in den zuvor mit der Restriktionsendonukiease BgIlI Sinearisierten Vektor pQE60YAAD#2 klo- niert.
Der so enstandene Vektor #508 kann zur Expressions eines Fusionsproteins beste- hend aus, YAAD::Xa::dewA::H!S6 verwendet werden.
KaM416: GCAGCCCATCAGGGATCCCTCAGCCTTGGTACCAGCGC KaM417: CCCGTAGCTAGTGGATCCATTGAAGGCCGCAT- GAAGTTCTCCGTCTCCGC
Beispiel 3
Klonierung von yaad-Hydrophobin RodA-His6
Die Klonierung des Plasmids #513 erfolgte analog zu Plasmid #508 unter Verwendung der Oiigonukieotide KaM 434 und KaM 435.
KaM434: GCTAAGCGGATCCATTGAAGGCCGCATGAAGTTCTCCATTGCTGC KaM435: CCAATGGGGATCCGAGGATGGAGCCAAGGG
Beispie! 4
Klonierung von yaad-Hydrophobin BASFI-HJs6
Die Kionierung des Plasmids #507 erfolgte analog zu Plasmid #508 unter Verwendung der Oiigonukieotide KaM 417 und KaM 418. Als Template DNA wurde ein künstlich synthetisierte DNA Sequenz - Hydrophobin BASF1 -eingesetzt (siehe Anhang).
KaM417:CCCGTAGCTAGTGGATCCATTGAAGGCCGCAT- GAAGTTCTCCGTCTCCGC KaM418: CTGCCATTCAGGGGATCCCATATGGAGGAGGGAGACAG Beispiel 5
Kionieruπg von yaad-Hydrophobin BASF2-Hise
Die Kionieruπg des Plasmids #506 erfolgte analog zu Plasmid #508 unter Verwendung der Oiigonukleotide KaM 417 und KaM 418.
Als Template DNA wurde ein künstlich synthetisierte DNA Sequenz - Hydrophobin BASF2 -eingesetzt (siehe Anhang).
KaM417:CCCGTAGCTAGTGGATCCATTGAAGGCCGCAT- GAAGTTCTCCGTCTCCGC
KaM418: CTGCCATTCAGGGGATCCCATATGGAGGAGGGAGACAG
Beispie! 6
Klonierung von yaad-Hydrophobin SC3-His9
Die Klonierung des Plasmids #526 erfolgte analog zu Plasmid #508 unter Verwendung der Oiigonukleotide KaM464 und KaM465.
Als Template DNA wurde cDNA von Schyzophyllum commune eingesetzt (siehe Anhang).
KaM464: CGTTAAGGATCCGAGGATGTTGATGGGGGTGC KaM465: GCTAACAGATCTATGTTCGCCCGTCTCCCCGTCGT
Beispie! 7 Fermentation des rekorobinanten E.coli Stammes yaad-Hydrophobin DewA-His6
Inokulation von 3ml LB Flüssigmedium mit einem yaad-Hydrophobin DewA-His6 expri- mierenden E.coli Stamm in 15ml Greiner Röhrchen. Inkubation für 8h bei 37°C auf einem Schüttler mit 200 UpM. Je 2 11 Erleπmeyer Kolben mit Schikanen und 250ml LB Medium (+ 100μg/ml Ampicillin) werden mit jeweils 1 ml der Vorkultur angeimpft und 9h bei 370C auf einem Schüttler mit 180 UpM inkubiert.
13.51 LB-Medium (+100μg/mi Ampicillin) in einem 201 Fermenter mit 0,51 Vorkultur (ODeoonm 1:10 gegen H2O gemessen) animpfen. Bei einer ODβonm von -3.5 Zugabe von 140ml 10OmM IPTG. Nach 3h Fermenter auf 100C abkühlen und Fermentationsbrühe abzentrifugieren. Zellpellet zur weiteren Aufreinigung verwenden.
Beispiel 8
Reinigung des rekombinanten Hydrohobin-Fusionsproteins (Reinigung von Hydrophobin-Fusionsproteinen, die ein C-terminales His6-tag besitzen) 100 g Zeilpellet (100 - 500 mg Hydrophobin) werden mit 50 mM Natriumphosphatpuffer, pH 7,5 auf 200 mf Gesamtvolumen aufgefüllt und resuspendiert. Die Suspension wird mit einem Ultraturrax Typ T25 (Janke und Kunkel; IKA-Labortechnik) für 10 Minuten behandelt und anschliessend für 1 Stunde bei Raumtemperatur mit 500 Einheiten Benzonase (Merck, Darmstadt; Best.-Nr. 1,01697.0001) zum Abbau der Nukleinsäuren inkubiert. Vor dem Zellaufschluss wird mit einer Giaskartusche (P1) filtriert. Zum Zellaufschluß und für das Scheren der restlichen genomischen DNA werden zwei Homogenisatorläufe bei 1.500 bar durchgeführt (Microfluidizer M-110EH; Microfluidics Corp.). Das Homogenisat wird zentrifugiert (Sorvall RC-5B, GSA-Rotor, 250 ml Zentri- fugenbecher, 60 Minuten, 4°C, 12.000 Upm, 23.000 g), der Überstand auf Eis gestellt und das Pellet in 100 ml Natriumphosphatpuffer, pH 7,5 resuspendiert. Zentrifugation und Resuspendieren werden dreimal wiederholt, wobei der Natriumphosphatpuffer bei der dritten Wiederholung 1 % SDS enthält. Nach der Resuspension wird für eine Stunde gerührt und eine abschliessende Zentrifugation durchgeführt (Sorvali RC-5B, GSA- Rotor, 250 m! Zentrifugen becher, 60 Minuten, 4°C, 12.000 Upm, 23.000 g), Gemäß SDS-PAGE Analyse ist das Hydrophobin nach der abschliessenden Zentrifugation im Überstand enthalten (Abbildung 1). Die Versuche zeigen, dass das Hydrophobin wahrscheinlich in Form von Einschlusskörpern in den entsprechenden E.coli Zellen enthalten ist. 50 ml des Hydrophobin-enthaitenden Überstandes werden auf eine 50 ml Ni- ckel-Sepharose High Performance 17-5268-02 Säule aufgetragen (Amersham), die mit 50 mM Tris-Cl pH 8,0 Puffer äquilibriert wurde. Die Säule wird mit 50 mM Träs-Cl pH 8,0 Puffer gewaschen und das Hydrophobin anschliessend mit 50 mM Tris-Cl pH 8,0 Puffer, der 200 mM Imidazof enthält, eluiert. Zur Entfernung des Irnidazols wird die Lösung gegen 50 mM Tris-Cl pH 8,0 Puffer dialysiert.
Abbildung 1 zeigt die Reinigung des hergestellten Hydrophobins:
Spur 1 : Auftrag Nickel-Sepharose Säule (1 ; 10 Verdünnung)
Spur 2: Durchlauf - Eluat Waschschritt Spuren 3 - 5: OD 280 Maxima der Elutionsfraktionen
Das Hydrophobin der Abbildung 1 besitzt ein Molekulargewicht von ca. 53 kD. Die kleineren Banden repräsentieren zum Teil Abbauprodukte des Hydrophobins.
Beispiel 9
Anwendungstechnische Prüfung; Charakterisierung des Hydrophobins durch Kontakt- winkeländerung eines Wassertropfens auf Glas
Substrat: Gias (Fensterglas, Süddeutsche Glas, Mannheim): Konzentration Hydrophobin: 100 μg/mL
Inkubation von Giaspiättchen über Nacht (Temperatur 800C) in 5OmM Na-Acetat pH 4 + 0,1 % Poiyoxyethy!en(20)sorbitanmonoiaureat (Tween® 20) - danach Beschichtung waschen in destilliertem Wasser danach Inkubation 10min / 80°C / 1% Natrium-Dodecyisulfat (SDS) -Lösung in dest. Wasser
Waschen in dest. Wasser
Die Proben werden an der Luft getrocknet und der Kontaktwinkel (in Grad) eines Tropfens von 5 μS Wasser bei Raumtemperatur bestimmt.
Die Kontaktwinkelmessung wurde auf einem Gerät Dataphysics Contact Angle System OCA 15+, Software SCA 20.2.0. (November 2002) bestimmt. Die Messung erfolgte gemäss den Herstellerangaben.
Unbehandeltes Glas ergab einen Kontaktwinkel von 30 ± 5°; eine Beschichtung mit dem funktionellen Hydrophobin gemäss Beispiel 8 (yaad-dewA-hisβ) ergab Kontaktwinkel von 75 ± 5°.
Beispiel 10 und 11
Beschichtung von EPS-Perlen mit Hydrophobin pQE60+YaaD+Xa+dewA+HIS6
Beschichtungsmittel: Wässrige Lösung von Hydrophobin pQE60+YaaD+Xa+dewA+HIS6 (SEQ ID NO: 19), welches gemäß Beispiel 8 vorbehandelt wurde. (50 mM NaH2PO4, pH 7.5, Konzentration Hydrophobin 6.08 g/[)
Durch Suspensionspolymerisation hergestellte, unbeschichtete, expandierbare Polysty- rol (EPS)-Perlen mit einem Perlgrößenbereich von 0,7 bis 1 ,0 mm (Styropor ® F 315/N) wurde getrocknet und wie folgt beschichtet:
50 g EPS-Perlen wurden in einem 500 ml Schraubdeckelglas eingewogen, mit 10 ml bzw. 20 ml der Hydrophobin-Lösung versetzt und 24 Stunden bei Raumtemperatur auf einem „Rollstuhl" bewegt. Anschließend wurdne die mit Hydrophobin beschichteten EPS-Perlen auf einem Filterpapier ausgelegt und 5 Stunden bei Raumtemperatur getrocknet.
Vergleichsversuch V1 Beispiel 10 wurde wiederholt mit dem Unterschied, dass anstelle der Hydrophobin- Lösung 10 ml destilliertes Wasser verwendet wurde.
Die beschichteten EPS-Perlen der Beispiele 10 und 11 und des Vergleichsversuches wurden jeweils für 2 Minuten bei 1000C im Rauscherkasten zu Polystyrol- Schaumperlen vorgeschäumt und nach 3 Tagen Lagerung zu Formteilen verschweißt. Zur Beurteilung der Güte der Verschweißung wurden die Formteile nach 2 Tagen Lagerung in der Mitte durchgebrochen.
Zur Beurteilung der antistatischen Eigenschaften wurde der Oberfiächenwiderstand der vorgeschäumten und getrockneten Polystyrolschaumperlen gemessen.
Tabelle 1
Figure imgf000020_0001
Zuordnung der Sequenznamen zu DNA- und Polypeptidsequenzen im Sequenzprotokoll
Figure imgf000021_0001

Claims

Patentansprüche
1. Expandierbare oder expandierte, thermoplastische Polymer-Partikel mit einer Beschichtung enthaltend Hydrophobin.
2. Expandierbare oder expandierte, thermoplastische Polymer-Partikel nach Anspruch 1 , dadurch gekennzeichnet, dass die Beschichtung 1 bis 5000 ppm Hydrophobin, bezogen auf das thermoplastische Polymer, enthält.
3. Expandierbare oder expandierte, thermoplastische Polymer-Partikel nach Anspruch 1 , dadurch gekennzeichnet, dass das thermoplastische Polymer aus Polystyrol oder Polyolefin besteht.
4. Expandierbare oder expandierte, thermoplastische Polymer-Partikel nach einem der Ansprüche 1 bis 3, dadurch gekennzeichnet, das sie einen mittleren Teilchendurchmesser im Bereich von 0,05 bis 5 mm aufweisen.
5. Expandierbare oder expandierte, thermoplastische Polymer-Partikel nach einem der Ansprüche 1 bis 4, dadurch gekennzeichnet, dass die Beschichtung ein Hy- dophobin der allgemeinen Formel (II)
Xn-C1-X3-25-C2-X0-2-C3-X5-50-C4-X2-35-CS-X2-15-Cs-X0-2-C7-X3.35-C8-Xm (I!)
enthält, wobei X für jede der 20 natürlich vorkommenden Aminosäuren steht, n und m für Zahlen zwischen 0 und 500 stehen,
C für Cystein steht.
6. Expandierbare oder expandierte, thermoplastische Polymer-Partikel nach Anspruch 4, dadurch gekennzeichnet, dass die Beschichtung ein Hydophobin der allgemeinen Formel (IM)
Xn-o-x5.9-c2-&-x^-c4-x2-2Z'C$-x5.s-σ-σ-x6-is-ca-xm (in)
enthält.
7. Expandierbare oder expandierte, thermoplastische Polymer-Partikel nach einem der Ansprüche 1 bis 4, dadurch gekennzeichnet, dass die Beschichtung ein Hydrophobin des Typs dewA, rodA, hjypA, hypB, sc3, basfi oder basf2 enthält.
8. Verfahren zur Beschichtung von expandierbaren oder expandierten, thermoplastischen Polymer-Partikel, dadurch gekennzeichnet, dass man die Oberfläche der Polymer-Partikel mit einer Hydrophobin-haltigen Lösung in Kontakt bringt.
9. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 4, dadurch gekennzeichnet, dass ais Hydrophobin-haitige Lösung eine wässrige Lösung mit einer Konzentration von 1 bis 100 g/l Hydrophobin und einem pH-Wert im Bereich von 5 bis 9 verwendet wird.
10. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 5, dadurch gekennzeichnet, dass man die Oberfläche mit der Hyrophobin-haltige Lösung bei einer Temperatur im Bereich von 0 bis 1400C in Kontakt bringt.
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