WO2007097341A1 - 光合成サンプルの評価方法、光合成サンプルの評価システム及び光合成サンプルの評価プログラム - Google Patents
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- G01N2021/635—Photosynthetic material analysis, e.g. chrorophyll
Definitions
- Photosynthesis sample evaluation method photosynthesis sample evaluation system, and photosynthesis sample evaluation program
- the present invention relates to a photosynthesis sample evaluation method, a photosynthesis sample evaluation system, and a photosynthesis sample evaluation program.
- a method for evaluating a photosynthetic sample contained in an evaluation sample a method for evaluating the degree of the influence of environmental factors (for example, chemical substances) that affect the growth of living organisms, etc.
- plants and algae are used.
- There is a chemical ecological risk assessment method that uses plant cell growth such as The most common assessment method is the alga growth inhibition test, which is a noisy for chemical ecological risk assessment.
- the algae growth inhibition test is being conducted in accordance with the guidelines of the Organization for Economic Cooperation and Development (OECD).
- OECD Organization for Economic Cooperation and Development
- Non-Patent Documents 1 and 2 show that delayed luminescence is emitted from the photosystem II, the plastoquinone pool, and the photosystem I, which are the main reactions of the photosynthetic electron transport system. Describes to derive a luminescence model equation from the reaction equation of the photosynthetic electron transport system. This model formula also consists of multiple exponential forces. These non-patent documents disclose that the model formula shows a shape that is close to the experimental result! Speak. [0005] Further, Non-Patent Document 3 below also describes a light emission model equation composed of a plurality of exponential functions. It is described that the change similar to the experimental result can be seen by substituting an appropriate coefficient into the model formula.
- Patent Document 1 International Publication No. 2005Z062027 Pamphlet
- Non-Patent Literature 1 Von G. KRETSCH and V. GERHARDT, "Numerical analysis of delaye dfluorescence Kinetics of algae,” E. Schweizerbart 'sche Verlagsbuchmaschine, 1987, 29, p.47-54
- Non-Patent Document 2 Hans KRAUSE, Gerd KRETSCH, and Volkmar GERHARDT, "DIFFE RENTIALEQUATIONS FOR DELAYED FLUORESCENCE KINETICS IN LIVING P LANTb, Journal of Luminescence, Elsevier Science Publishers B.V., 1984, 31 & 32 (1984), p.885-887
- Non-Patent Document 3 Werner Schmidt and Horst Senger, "Long-term delayed luminescence in Scenedesmus obliquus II Influenceof exogeneous factors, Biochimica etBiophysic a Acta, Elsevier Science Publishers, 1987, 891 (1987), p.22-27
- the present invention provides a photosynthesis sample evaluation method capable of appropriately and easily evaluating the photosynthesis function of a photosynthesis sample included in an evaluation sample.
- An object is to provide a photosynthetic sample evaluation system and a photosynthetic sample evaluation program.
- the method for evaluating a photosynthetic sample of the present invention is based on the time-lapse data of the amount of delayed luminescence generated from a photosynthetic sample having a photosynthetic function!
- the photosynthesis sample evaluation system of the present invention is a photosynthesis sample evaluation system that evaluates the state of a photosynthesis sample based on time-dependent data of the amount of delayed luminescence generated by a photosynthesis sampler having a photosynthesis function.
- a feature value calculating means for calculating feature values indicating characteristics for a plurality of time zones in the time-lapse data, an evaluation value calculating means for calculating an evaluation value by weighting the feature values, and an evaluation And an evaluation means for evaluating the state of the photosynthesis sample based on the value.
- the photosynthesis sample evaluation program causes a computer to evaluate the state of the photosynthesis sample based on the time-dependent data of the amount of delayed luminescence generated from the photosynthesis sample having the photosynthesis function.
- a sample evaluation program a feature value calculation process for calculating feature values indicating characteristics for a plurality of time zones in time-lapse data, and an evaluation value calculation process for calculating evaluation values by weighting the feature values And an evaluation process for evaluating the state of the photosynthetic sample based on the evaluation value.
- the photosynthetic sample evaluation method the photosynthetic sample evaluation system, and the photosynthesis sample evaluation program, it is characterized for a plurality of time zones in the temporal data of the amount of delayed luminescence generated from the photosynthetic sample. Is calculated, and the calculated feature value is weighted. Then, the state of the photosynthetic sample is evaluated based on the calculated evaluation value. This makes it possible to adopt only feature values that are effective for evaluation. And it can be evaluated easily.
- the feature value calculation step determines the coefficient values of the plurality of functions as feature values so that the time-lapse data is fitted as a sum of a plurality of preset functions.
- the evaluation value calculating step it is preferable that the evaluation value is calculated based on the coefficient value determined in the fitting step.
- the feature value calculation means sets the coefficient values of the plurality of functions so that the temporal data fits as a sum of a plurality of preset functions. It is preferable that a fitting means for determining the characteristic value is included, and the evaluation value calculating means calculates the evaluation value based on the coefficient value determined by the fitting means.
- the feature value calculation processing is performed by using the coefficient values of the plurality of functions as feature values so that the temporal data is fitted as a sum of a plurality of preset functions. It is preferable that the evaluation value calculation process calculates an evaluation value based on the coefficient value determined by the fitting process.
- the evaluation is performed based on the coefficient value of the function determined so that the sum of a plurality of preset functions is fitted to the time-dependent data of the light emission amount of delayed light emission. Therefore, objective and mechanical evaluation according to the above function is possible.
- evaluation since the time-lapse data of the amount of delayed luminescence is fitted to the sum of a plurality of functions, evaluation based on the mechanism of delayed luminescence is possible. That is, according to the method for evaluating a photosynthetic sample according to the present invention, the photosynthetic function of the photosynthetic sample included in the evaluation sample can be evaluated appropriately and easily.
- the evaluation value calculated in the evaluation value calculation step is an area value calculated based on a coefficient value of at least one function among a plurality of functions. Is preferred. According to this configuration, the evaluation can be performed more easily.
- the function is preferably a mountain-shaped function. According to this configuration, a fitting closer to the mechanism of delayed light emission becomes possible. Therefore, more appropriate evaluation can be performed.
- the function is preferably a Lorentz function. According to this configuration, the specific evaluation criteria can be used for reliable evaluation.
- the evaluation value calculated in the evaluation value calculation step is calculated based on an arithmetic expression including a coefficient of at least two functions among a plurality of functions. According to this configuration, it is possible to perform evaluation in consideration of the mechanism of delayed light emission.
- the coefficient value of the function, t is a variable indicating the elapsed time from the reference time, and b ⁇ b ⁇ b
- Evaluation value ⁇ Xm 9 -Cj) is preferably calculated. According to this configuration, the specific evaluation criteria can be used for reliable evaluation. [0022]
- the method for evaluating a photosynthetic sample of the present invention further includes a measurement step of measuring the amount of light emission with time of delayed emission generated from the photosynthetic sample and using the measured data as time-lapse data.
- the photosynthesis sample evaluation system of the present invention preferably further includes measurement means for measuring the amount of light emission with time of delayed luminescence generated from the photosynthesis sample and using the measurement data as time-dependent data.
- the photosynthesis sample evaluation program of the present invention further includes a measurement process in which the amount of delayed luminescence generated from the photosynthesis sample with time is measured and the measured data is used as time-lapse data. ,.
- the measured data force can be evaluated, and more appropriate evaluation can be performed.
- the photosynthetic sample evaluation system of the present invention further includes light source control means for controlling the light source so that the photosynthesis sample is irradiated with excitation light by changing the irradiation conditions.
- the irradiation conditions can be changed more easily by controlling the light source in the system.
- the measurement step includes a first excitation step of irradiating the photosynthetic sample with first excitation light under a predetermined first irradiation condition, and after the first excitation step.
- the measurement process includes a first excitation process for irradiating the photosynthesis sample with the first excitation light under a predetermined first irradiation condition, and a first excitation process.
- the second excitation process is performed by irradiating the photosynthetic sample with the second excitation light under the second irradiation condition where the integrated light energy is small compared to the first irradiation condition. It is preferable to calculate the feature value based on the time-lapse data obtained after the second excitation process.
- the evaluation sample is first irradiated with the first excitation light. Then this The evaluation sample is irradiated with the second excitation light under the irradiation conditions set so that the energy integrated value is smaller than that of the first excitation light.
- the amount of delayed luminescence emitted from the evaluation sample is measured. This makes it possible to make the measurement conditions for the amount of delayed luminescence constant, and as a result, the amount of delayed luminescence can be measured with higher accuracy.
- the integrated energy value is the integrated optical energy value for the photosynthetic sample!
- the measurement step it is preferable to acquire a plurality of time-lapse data by changing the second irradiation condition and repeatedly measuring the light emission amount a plurality of times.
- the photosynthesis sample evaluation program of the present invention in the measurement process, it is preferable to obtain a plurality of time-lapse data by changing the second irradiation condition and repeatedly measuring the light emission amount a plurality of times. .
- the processing from the irradiation of the first excitation light to the measurement of the light emission amount of delayed light emission is repeated a plurality of times while changing the second irradiation condition. Then, an evaluation value corresponding to each measured light emission amount is derived, and the evaluation sample is evaluated based on the evaluation value.
- the photosynthetic sample contained in the evaluation sample that is not affected by external factors It is possible to appropriately evaluate the photosynthetic function.
- the second irradiation condition is a waiting time until the first excitation light irradiation end time and the second excitation light irradiation start time.
- the process from the irradiation of the first excitation light to the measurement of the amount of delayed emission is performed by changing the irradiation start time of the second excitation light.
- the power to start irradiation of the second excitation light (the power to set the waiting time is closely related to the change in the oxidation-reduction state of the photosynthetic sample.
- the photosynthetic function of the photosynthesis sample contained in the evaluation sample can be appropriately evaluated. In order to change the conditions, it is sufficient if the waiting time is changed, and it is not necessary to change the excitation light itself.
- the second irradiation condition is preferably at least one of the light amount, wavelength, pulse width, and irradiation time of the second excitation light.
- the evaluation step preferably includes a comparison step of comparing the evaluation value calculated in the evaluation value calculation step with reference data of the evaluation value. According to this configuration, it is possible to perform evaluation more clearly by setting an evaluation value suitable for evaluation and comparing it with reference data.
- reference data for measuring the amount of delayed luminescence generated from the second photosynthetic sample with time and deriving reference data in the measurement data force comparison step is measured.
- the method further includes a generation step. According to this configuration, it is possible to evaluate both the reference data and the measured data power, and it is possible to perform more appropriate evaluation.
- the feature value is preferably an integrated value integrated for each time zone.
- an integrated value of the amount of delayed light emission in a certain measurement time zone is calculated, and an evaluation value is derived based on the integrated value.
- an integrated value it becomes possible to easily and appropriately extract the acid reduction state of the photosynthetic sample in a certain measurement time period, which appears in the temporal change in the amount of delayed luminescence.
- the photosynthetic function of the photosynthetic sample included in the evaluation sample can be more appropriately evaluated.
- a plurality of measurement time zones are provided and the integrated value for each measurement time zone is calculated, it is possible to appropriately grasp the temporal change in the amount of delayed light emission.
- the evaluation means evaluate an environmental factor provided to the photosynthetic sample.
- the evaluation process evaluates environmental factors provided to the photosynthesis sample.
- the environmental factor is preferably a plant cell growth inhibitor. According to this configuration, it is possible to evaluate the degree of harmfulness such as the degree of inhibition of growth of a plant cell growth inhibitor.
- the photosynthetic function of the photosynthetic sample contained in the evaluation sample can be evaluated appropriately and simply.
- the present invention evaluates the environmental impact of environmental factors based on time-lapse data of the amount of delayed luminescence generated from plant samples having a photosynthetic function exposed to the environmental factors to be evaluated.
- environmental factors substances that can affect the growth of organisms are mainly evaluated.
- substances that can affect the growth of organisms are mainly evaluated.
- river water, well water, and factory effluent estimated to contain the substances to be evaluated.
- Delayed light emission occurs as follows. In other words, the light energy absorbed by the anabolic dye (photosynthetic dye) is converted into chemical energy by the electron transfer pathway in the reaction when the organism having photosynthesis function is irradiated with light. It is transmitted during biological reactions.
- delayed fluorescence emission is sometimes referred to as delayed fluorescence, and is hereinafter collectively referred to as delayed light emission.
- delayed luminescence is caused by duplication of photons derived from different energies at different timings. The result that it is doing. Furthermore, it has been found that the relationship between these different energy sources changes due to the influence of chemical reactions on the metabolism of algae. It is speculated that the different energy source is the center of the chemical reaction in the algal metabolism (photochemical system, electron storage such as plastoquinone pool).
- FIG. 1 shows the mechanism of delayed light emission.
- Algae grow light by receiving photosynthetic metabolism.
- the photosynthetic reaction the light energy absorbed by the photosynthetic pigment is transmitted by multiple chemical reactions and converted into the energy required for cell growth.
- reactions such as enzyme generation, photochemical energy conversion, C02 absorption, and other delayed light emission energy sources occur sequentially.
- the luminescence of photon due to these occurs at different timings, and the sum of these luminescence is measured as delayed luminescence of the whole algae.
- each luminescence of these photons can be expressed as a function, and the time variation of the luminescence amount of delayed luminescence (overall) can be fitted as a sum of these functions.
- the fitting is performed by setting a function having a coefficient value as a variable in advance and determining the coefficient value as will be described later. This makes it possible to simply express the seemingly complicated delayed luminescence measurement result as the coefficient value of the fitted function. For fitting, use the sum of multiple functions. As the number of functions is increased, the fitting can be performed more accurately.
- a chevron function is a function that has a chevron shape.
- the maximum value is a function that is monotonically non-decreasing at variable values below the predetermined variable value, and monotonically non-increasing at variable values above the predetermined variable value.
- it can be constituted by a Lorentz function (Cauchy distribution), a quadratic function, a normal distribution function, or the like.
- the temporal change in the amount of delayed light emission corresponding to each energy source has a mountain shape, and correspondingly, more accurate fitting becomes possible. A more accurate fitting allows a more accurate evaluation.
- the apex force time axis of the mountain-shaped function is less than 0 !, it may be replaced with a monotonically non-increasing function such as an exponential function or logarithmic function. In the present embodiment, such a function is also included in the mountain-shaped function (can be interpreted as a mountain-shaped function having a maximum variable value of ⁇ ).
- a plurality of functions necessary for fitting the temporal change in the light emission amount of delayed light emission can be identified as the first, second, etc. from the left in the order in which the maximum values appear. As shown in Fig. 1, as the order in which the maximum values appear slows down (the value on the time axis increases), the photon component indicates that the timing at which the cell force is released is slowing down. It is thought to come from a more advanced metabolic reaction.
- FIG. 1 shows the change in the amount of delayed luminescence when no harmful environmental factors are exposed to plant samples.
- Figures 2 (a) and 2 (b) are graphs showing the time variation of delayed luminescence when inorganic mercury and herbicide are used as environmental factors. As shown in these figures, environmental factors affect delayed luminescence, and the impact on delayed luminescence differs for each environmental factor.
- Photons contained in delayed luminescence have interactions at their sources as shown in Fig. 1. Therefore, the state of metabolism can be known more accurately by evaluating the relationship between different functions. . For this reason, using calculated values obtained by calculating the coefficient values of different functions is useful for evaluating information in cells. Details will be described later.
- FIG. 3 shows the configuration of the evaluation system 1 according to the present embodiment.
- the environmental factor evaluation system 1 includes a measuring device 10, an evaluation device 12, and a control device 14.
- the measuring device 10 and the evaluation device 12 are connected by a cable and can transmit / receive information to / from each other.
- the evaluation device 12 and the control device 14 are connected by a cable and can exchange information with each other.
- the measuring device 10 and the control device 14 can exchange information with each other via the evaluation device 12.
- the measuring device 10 is a device that measures the amount of light emitted over time of delayed luminescence that also generates plant sample power having a photosynthetic function. Here, plant samples include those exposed to the environmental factors to be evaluated.
- the measuring device 10 inputs the time data of the measured amount of delayed luminescence to the evaluation device 12.
- a measuring device 10 shown in FIG. 3 shows a cross section of the measuring device 10. A specific configuration of the measuring device 10 will be described later.
- the evaluation device 12 receives the time-lapse data of the light emission amount of delayed light emission from the measurement device 10.
- the environmental impact of environmental factors is evaluated based on the time-lapse data.
- the influence on the environment is specifically the influence of inhibition on the growth of algae, for example.
- the evaluation device 12 is a PC (Personal
- the evaluation device 12 is composed of hardware such as CPU (Central Processing Unit) and memory.
- the evaluation device 12 exhibits the functions described below by operating these hardware components by a program or the like. Note that the evaluation device 12 shown in FIG. 3 shows the functions of the evaluation device 12.
- the control device 14 includes hardware such as a CPU (Central Processing Unit) and a memory, and controls the operation of the measurement device 10 by transmitting a control signal to the measurement device 10. Subsequently, the measuring device 10 and the evaluation device 12 will be described in more detail.
- a CPU Central Processing Unit
- the measuring apparatus 10 includes an installation unit 16, a light source 18, a photodetector 20, a filter 22, a condensing optical system 24, and a shirter 26.
- the measuring device 10 has a casing 28, and the above-described components are arranged in the casing 28.
- the casing 28 is formed of a member coated with a coating material or the like that blocks the light that is formed by a light blocking member that blocks light so that light does not enter inside.
- the casing 28 includes a main body portion 32 having an introduction port 30 formed at one end thereof, and a lid portion 34 capable of closing the introduction port 30. The opening and closing of the lid part 34 is monitored and controlled by the control device 14, and when the shirt 26 is opened, the lid part 34 prevents the light from the outside of the housing 28 from entering the optical sensor 20. Can't be opened or closed!
- the installation unit 16 is for installing a container containing an environmental factor to be measured and a plant sample (for example, a solution containing a chemical substance and a plant sample).
- the installation unit 16 is provided at a position where the container can be installed from the introduction port 30 described above.
- the installation unit 16 has, for example, a fixing claw for fixing the container, and fixes the container with the fixing claw.
- the light source 18 irradiates the plant sample in the container installed in the installation unit 16 with light of a predetermined wavelength in order to generate delayed luminescence, and is a position where the plant sample can be irradiated with light. And in the direction.
- the wavelength of light emitted from the light source 18 is 280 ⁇ ! ⁇ 8 OOnm.
- the light source may be a monochromatic light source or a combination of a plurality of light sources.
- the light irradiation from the light source 18 may be continued for an arbitrary predetermined time, Pulse lighting may be performed in an arbitrary pattern.
- a plurality of light sources having the same or different wavelength characteristics may be caused to emit light sequentially, or a plurality of light sources may be caused to emit light simultaneously.
- Light irradiation from the light source 18 is controlled by the control device 14.
- the light detector 20 measures the light emission amount of delayed luminescence that also generates plant sample force when irradiated with light from the light source 18.
- the photodetector 20 includes an optical sensor 20a that detects delayed emission, and a delayed emission amount calculation unit 20b that calculates and outputs the emission amount of delayed emission based on a signal detected and output by the optical sensor 20a. Have.
- the photodetector 20 is provided at a position and a direction where delayed light emission can be detected.
- the photodetector 20 includes a photomultiplier tube, a photon counter, or the like. Information on the light emission amount sequentially output from the delayed light emission amount calculation unit 20b is input to the evaluation device 12 as time-lapse data.
- the filter 22, the condensing optical system 24, and the shirter 26 are sequentially provided between the installation unit 16 and the photodetector 20, starting from the installation unit 16 side.
- the filter 22 is provided so as to be in contact with the inner wall surface of the housing 28 and transmits delayed light emission.
- the condensing optical system 24 condenses, reflects and transmits weak delayed light emission and inputs it to the photodetector 20.
- the shirt 26 is openable and closable, and when it is closed, the delayed light emission is cut off. This is so that delayed light emission can be detected by the photodetector 20 only when necessary.
- the opening and closing of the shirt 26 is controlled by the control device 14. The above is the configuration of the measuring device 10.
- the evaluation device 12 includes a reception unit 36, a fitting unit 38, an evaluation unit 40, and an output unit 42.
- the accepting unit 36 is an accepting unit that accepts input of time-lapse data of the amount of delayed luminescence that also generates plant sample power.
- the input is a force input of the measuring device 10 (the delayed light emission amount calculation unit 20b).
- the time-dependent data of the amount of luminescence is obtained when the plant property sample is exposed to the environmental factors to be evaluated (the chemical substance to be evaluated is contained in the solution) and when it is exposed to the small sample (of the evaluation target). Data with no chemicals in the solution).
- the accepted data is transmitted to the fitting unit 38.
- the fitting unit 38 is a fitting unit that determines coefficient values of the plurality of functions so that the time-dependent data force received by the receiving unit 36 is fitted as a sum of a plurality of preset functions.
- the fitting unit 38 is preloaded with function information.
- it is preferable to use a mountain-shaped function as described above. Specifically, for example, ai, bi, ci (i l, 2, 3) are the multiple function coefficients, and t is a variable that indicates the elapsed time from the reference time (post-excitation time).
- the reference time of t for example, the time when the irradiation of light from the light source 18 ends is also the time at which a predetermined time has elapsed.
- ai spreads in the time direction
- bi has the maximum emission value t (time after excitation)
- ci has the maximum maximum value.
- the first, second, and third terms on the right side are expressed as the first function, the second function, and the third function in the order in which the maximum values appear on the time axis.
- the relationship of bl ⁇ b2 and b3 is established in the coefficients of a plurality of functions.
- a plurality of functions used for fitting may be mountain functions such as quadratic functions and normal distribution functions.
- the function may be used as long as the function fits well without using the mountain function.
- you can use the function represented by the following formula, which is obtained by adding the coefficient di (i l, 2, 3) to the function of formula (1)!
- the fitting unit 38 also stores an algorithm for performing fitting in advance.
- Specific fitting algorithms include the simplex method, which is a type of nonlinear analysis, the Gauss-Newton method, and Davidon
- the fitting conditions can be set according to the type of plant sample and the measurement conditions.
- the coefficient value determined by the fitting unit 38 is transmitted to the evaluation unit 40.
- the evaluation unit 40 is an evaluation unit that evaluates the influence of environmental factors on the environment based on the coefficient value determined by the fitting unit 38. Specifically, the evaluation here is to enter a numerical value for the degree of impact (harmfulness) or to determine whether it is harmful or harmless using the numerical value.
- the evaluation unit 40 includes an evaluation value calculation unit 44 and a comparison unit 46 in order to perform the above evaluation.
- the evaluation value calculation unit 44 is an evaluation value calculation unit that calculates an evaluation value for evaluating the influence from the coefficient value determined by the fitting unit 38.
- the evaluation value is calculated based on, for example, an expression for calculating an evaluation value stored in advance by the evaluation value calculation unit 44.
- the calculated evaluation value is the value among several functions. It is preferably calculated based on an arithmetic expression including a coefficient of a function of at least 2. An evaluation taking into account the interaction of the photon energy source represented by the function. This is because it becomes possible. Note that the evaluation value may not necessarily be calculated based on an arithmetic expression, but the coefficient value itself may be used as the evaluation value.
- the comparison unit 46 is a comparison unit that compares the evaluation value calculated by the evaluation value calculation unit 44 with reference data of the evaluation value.
- the reference data is, for example, data derived by each of the above-described processes based on delayed luminescence from a plant sample that has been exposed to an environmental factor to be evaluated.
- the evaluation unit 40 performs evaluation based on the comparison result by the comparison unit 46. Details will be described later. Information on the evaluation result is transmitted to the output unit 42.
- the output unit 42 is an output unit that outputs information on evaluation performed by the evaluation unit 40. Specifically, for example, output to a display provided in the evaluation device 12 is performed. With the output from the output unit 42, the user can check the evaluation contents.
- the output by the output unit 42 is not limited to the screen output as described above, and may be output to another device, for example.
- the environmental factor evaluation method according to this embodiment (the processing executed in the environmental factor evaluation system 1) is performed as one of the environmental factors.
- a certain chemical substance will be described as an example.
- a sample (hereinafter referred to as an exposed sample) that is a solution containing a chemical substance to be evaluated and a plant sample for generating delayed luminescence is prepared (SO1, sample preparation step). Specifically, the preparation is performed as follows.
- a plant sample is prepared (SOla).
- plant samples include the blue-green algae Spirul ina platensis- green algae Psudokircneneriella
- the plant sample should be a suspension with a predetermined absorbance, such as 1 for the absorbance of light at a wavelength of 685 nm (OD685).
- a chemical substance to be evaluated is prepared (S01b).
- plant cell growth inhibitors such as the herbicide simazine (CAT) and inorganic mercury are used. These chemical substances are contained in the algae culture liquid medium (C medium) so that the sample can be easily prepared.
- C medium algae culture liquid medium
- the sample preparation is not necessarily limited to the chemistry according to this embodiment.
- the evaluation system 1 may be provided with a mechanism for performing the above processing and automatically performed.
- the adjusted exposure sample is allowed to stand for a certain time in an environment in which the light conditions and the temperature are controlled to the predetermined conditions in or outside the measuring apparatus 10 (S02a).
- This waiting is for the chemical substance to act on the plant sample, and to adapt the plant sample to changes in conditions such as changes in light environment and cell density by mixing the plant sample and the chemical substance.
- the waiting condition is, for example, 15 minutes under a white fluorescent lamp with a light intensity of 5 / ⁇ ⁇ 1 ⁇ ⁇ —2 • s—1, etc.
- the exposed exposure sample is placed on the installation unit 16 in the measurement apparatus 10, and light is emitted from the light source 18 (S02b).
- the light irradiation is light for causing the plant sample to perform photosynthesis, and the plant sample needs to include a spectrum capable of photosynthesis. Specifically, for example, about 300 / z mol'm-2's-1 red light (wavelength: 660 nm) is irradiated for 10 seconds. Note that the light irradiation time is set in advance. Also, during the irradiation of light, the lid 34 and shirt 26 of the measuring device 10 are closed so that light of external force does not enter.
- the shirt 26 is closed (S02f), and the optical test is performed.
- the measurement by the dispenser 20 is completed.
- the measurement data of delayed luminescence is input to the evaluation device 12 from the measurement device 10 (the delayed luminescence amount calculation unit 20b of the photodetector 20 provided in the measurement device 10) (S02g).
- the input evaluation data is information in which, for example, post-excitation time information and light emission amount information are associated with each other. For example, as shown in FIG.
- the receiving unit 36 receives the input (S03 (S03a), receiving step).
- the input time-lapse data of the amount of delayed light emission is transmitted to the fitting unit 38.
- the fitting unit 38 determines the coefficient values of the plurality of functions such that the time-dependent data of the input amount of delayed light emission is fitted as the sum of the plurality of functions. (S04, fitting step). Specifically, the fitting is performed as follows.
- the fitting unit 38 sets fitting conditions (S04a). Specifically, the fitting conditions are set, for example, by determining the type of function used for fitting, and by setting a part of the coefficient value of the function to a preset fixed value (an unfixed coefficient value is (Determined in the fitting step), and setting an allowable range of error used in the fitting end condition described later. This setting is preferably done according to the type of plant sample used for measurement and the measurement conditions.
- the conditions may be set based on information input in advance by the user, or may be set based on rules held in advance by the fitting unit 38! /.
- the fitting unit 38 performs fitting (S04b).
- the fitting is performed so that the variable value of the function corresponds to the time after excitation, and the function value corresponds to the light emission amount.
- the fitting is performed based on an algorithm stored in advance by the fitting unit 38.
- the fitting unit 38 determines whether or not the fitting result satisfies a fitting end condition (S04c).
- a fitting end condition for example, the error between the fitting result and the measurement result is within a predetermined allowable range, the coefficient value, and the like. And the relationship between the coefficient values is within a predetermined allowable range. If the fitting termination condition is satisfied, the fitting is terminated and information on the fitting including the determined function value is transmitted to the evaluation unit 40. Satisfy the fitting end condition! In the case of /, the fitting condition is set again (S04a) and the fitting is executed again (S04b).
- the evaluation value calculation unit 44 included in the evaluation unit 40 evaluates the evaluation value for evaluating the environmental impact of the chemical substance from the coefficient value determined by the fitting unit 38.
- S05 evaluation value calculation step, evaluation step.
- the evaluation value is calculated based on the coefficient value that uses part or all of the coefficient value as the evaluation value, the value that can be obtained by calculating the coefficient value based on a predetermined arithmetic expression, and the coefficient value. , And at least one of those using the area value of the function as an evaluation value.
- the area value of the function is an area (variable range) surrounded by the function value and a reference axis such as a variable axis (in this embodiment, a time axis) in the function graph. Is the area value of).
- the function value is the light emission amount
- the variable axis is the time axis. Note that what value is used as the evaluation value is set in advance.
- the coefficient value is recorded as the evaluation value (S05a).
- the evaluation value calculation unit 44 first sets the calculation condition (S05b).
- the calculation condition is, for example, an arithmetic expression used for the calculation.
- the calculation conditions are preferably set based on the type of plant sample used for measurement and the measurement conditions.
- the evaluation value calculation unit 44 performs an operation based on the set operation condition to calculate an operation value (S05c).
- the calculated value is recorded as an evaluation value by the evaluation value calculation unit 44 (S05d).
- a function for calculating the area value and a range of time (t) for calculating the area value are set (S05b ').
- the area value may be calculated for all the functions used for fitting, or may be calculated by selecting at least one function.
- the function is preferably selected based on the type of plant sample used for measurement and the measurement conditions. More specifically, the function for calculating the area value may be selected based on the order in which the maximum values appear on the time axis, and based on the light emission amount. And a function may be selected. For example, when selecting a function based on the order in which the maximum values appear on the time axis, the function with the slowest order is preferable.
- a function having the largest change amount such as a coefficient value or an evaluation value may be selected as compared with the reference data described below.
- the range of time (t) for calculating the area is preferably set based on the type of plant sample used for measurement and the measurement conditions. More specifically, the range of time (t) is preferably the entire range of measurement time of delayed luminescence. In addition, when selecting a part of the time range from the entire range of the measurement time, it is possible to select a time range corresponding to the maximum power of the function and its full width at half maximum.
- the evaluation value calculation unit 44 calculates the area value of the selected function based on the coefficient value associated with the function and the range of the selected time (t), for example, by a divisional calculation ( S05c '). Specifically, the values of coefficient values a3, b3, and c3 are substituted into the third function in Equation (1), and a piecewise quadrature is performed for the selected range of time (t).
- the area value is recorded as an evaluation value by the evaluation value calculation unit 44 (S05d ′). Since the evaluation based on the area value simply calculates the area value related to the function, a simpler evaluation is possible.
- the comparison unit 46 included in the evaluation unit 40 evaluates the evaluation value calculated in the evaluation value calculation unit 44 and the evaluation value in order to evaluate the influence of the chemical substance on the environment.
- Reference data is data that can be compared with the evaluation values calculated as described above in order to evaluate chemical substances into the environment. Specifically, for example, it is data derived from the measurement data by measuring the amount of light emitted over time of delayed luminescence generated in the photosynthetic sample force mixed in a solution containing no chemical substance.
- reference data is separately derived in advance (S10, reference data generation step).
- the generation of the reference data is performed in the same manner as the above steps S01 to S05.
- the chemical substance to be evaluated is not included in the sample.
- the conditions set in each step include the chemical substances to be evaluated. Use the same ones that were derived.
- Comparison of evaluation values is performed as follows.
- the comparison unit 46 sets the calculation condition for the comparison value (S06a).
- the comparison value is a value calculated as a comparison result, and is used to evaluate the impact of chemical substances on the environment.
- the comparison value calculation condition is, for example, an arithmetic expression used for the calculation.
- As the calculation formula for example, a measurement data force of the exposed sample with respect to the evaluation value of the reference data can be used to obtain a ratio or difference of the calculated evaluation value.
- the comparison value calculation conditions are preferably set based on the type of plant sample used for measurement and the measurement conditions! /.
- the comparison unit 46 reads each evaluation value recorded by the evaluation value calculation unit 44 and calculates a comparison value according to the set condition (S06b). The calculated comparison value is recorded by the comparison unit 46 (S06c).
- the evaluation unit 40 evaluates the influence of the chemical substance on the environment based on the comparison value (S07, evaluation step). Specifically, the evaluation is performed as follows.
- the evaluation unit 40 sets evaluation conditions (S07a).
- the evaluation condition is specifically a rule or the like used for evaluation, and is preferably performed based on the type of plant sample used for measurement and the measurement condition. Rules used for evaluation are stored in advance by the evaluation unit 40.
- the evaluation unit 40 reads the comparison value recorded by the comparison unit 46 and performs evaluation according to the set condition (S07b). Specifically, for example, the comparison value prepared in advance is compared with an evaluation table in which the comparison value is associated with the environmental impact, and the environmental impact is evaluated by, for example, a numerical value such as the degree of growth inhibition. Or the like. In addition, a threshold value may be set in advance, and a binary evaluation may be made as to whether the harmfulness of the chemical substance is harmful or not, depending on whether or not the comparison value exceeds the threshold value. Information obtained by the evaluation is transmitted to the output unit 42.
- the output unit 42 outputs the evaluation information in the evaluation unit 40 (S08 (S08a), output step).
- the output is performed by displaying the screen on a display or the like as described above.
- the numerical value related to the evaluation may be output as a table, or it may be displayed as ⁇ (mal) if it is harmful and X (b) if it is harmless. Also, the number It is good also as displaying the thing which became full.
- the output evaluation information is appropriately referred to by the user.
- the environmental factor evaluation method it is possible to appropriately and easily evaluate the influence of environmental factors on the environment.
- the evaluation can be performed based on the actual measurement data, so that a more appropriate evaluation can be performed.
- actual measurement data is prepared in advance, it is possible to input the time-lapse data of the amount of delayed light emission, which does not necessarily require measurement of delayed light emission.
- evaluation values can be set more clearly by setting evaluation values suitable for evaluation. It can be carried out.
- the chemical substance in the solution is exemplified as the measurement target, but it may be river water, well water, or factory waste (sewage, soil, gas, etc.).
- Other environmental factors that can be evaluated in the present invention include various environmental factors such as a light factor, a temperature factor, an oxygen factor, a carbon dioxide factor, and a salinity factor.
- a temperature control device may be provided in the space in which the plant samples are stored.
- the environmental factor evaluation program 52 includes a main module 52a for comprehensively controlling the environmental factor evaluation process, and a time-dependent emission amount of delayed luminescence generated from a plant sample having a photosynthetic function exposed to the environmental factor.
- the functions realized by executing the receiving module 52b, the fitting module 52c, the evaluation module 52d, and the output module 52e are the functions of the receiving unit 36, fitting unit 38, evaluation unit 40, and output unit 42 of the evaluation device 12 described above. And the same for each.
- part or all of the environmental factor evaluation program 52 is transmitted via a transmission medium such as a communication line and received and recorded (including installation) by another device. Good.
- the ability to use algae as a plant sample is not limited to this, and any other photosynthesis function can be used as long as it can emit delayed luminescence, for example, phytoplankton and cyano.
- Bacteria, photosynthetic bacteria, plant cells, leaves or fragments thereof, plant cultured cells such as callus, photosynthetic organelles and thylakoid membranes extracted from plants, and artificially synthesized photosynthetic membranes Examples include protein complexes.
- Spirulina which is a cyanobacteria
- Selenastrum which is a green algae
- Isochrysis which is a yellow algae
- a thylakoid membrane from which a force such as spinach is extracted can be suitably used.
- Example 1 the herbicide simazine (CAT) was used as an environmental factor to be evaluated.
- Algae Spirulina platensis (Cyanobacteria) was used as a plant sample that generates delayed luminescence.
- Figure 9 shows how simazine is used at different concentrations. It shows the change in the area under the growth curve of S. platensis when exposed.
- the horizontal axis indicates the concentration of simazine
- the vertical axis indicates the area under the growth curve.
- the area under the growth curve indicates cell growth, which is a conventional index for evaluating the effects of chemical substances on algae, and is calculated according to the method for evaluating the effects of chemical substances on general algae (OECD Test Guideline 201). Is done. That is, the area under the growth curve was adjusted so that the absorbance at 750 nm was 0.03.
- the measurement of delayed light emission in this example was performed as follows. The absorbance at 660 nm was adjusted to 0.05 in a typical 10 x 10 mm spectroscopic cell.
- Figure 10 shows the results of measuring the 50-second change in the amount of delayed luminescence emitted from S. platensis 15 minutes after exposure to simazine.
- the horizontal axis represents the time since the start of measurement (time after excitation), and the vertical axis represents the amount of luminescence (number of counted photons).
- “No exposure” indicates the change in delayed luminescence obtained from algae in the state exposed to simazine
- “With exposure” indicates the change in delayed luminescence obtained from algae in the state exposed to simazine.
- the “no exposure” measurement result is for generating the reference data in the above-described embodiment.
- the only difference between “exposed” and “no exposed” is the effect of simazine. Due to the effect of simazine, the amount of luminescence increased in the early hours after excitation (near 0 seconds) and decreased in the late hours (after 5 seconds). The [0114] The amount of delayed luminescence of S. platensis decreases to around 15 seconds after excitation, then increases again around 20 seconds, and then further decreases. This increase in the amount of light emitted in the vicinity of 20 seconds is S.
- S. platensis shows that a lot of energy is stored in the later stage of photosynthesis that affects delayed luminescence in the time zone after the time passage after excitation.
- Fig. 11 (a) shows the measurement results for "No exposure”
- Fig. 11 (b) shows the results of fitting the measurement data.
- fl (t), f2 (t), and f3 (t) are the first, second, and third functions in equation (1), respectively. From Fig. 11, it can be seen that the measured data of delayed luminescence can be obtained by fitting with multiple crest-shaped functions.
- c3 which is one of the coefficients of the third function f 3 (t), is used among the coefficients shown in the table above.
- the third function is the function that takes the longest time for the maximum amount of light emission in Equation (1), and is the longest of the first to third functions in this embodiment, and is stored in the intercellular. It is thought that it reflects the energy that is generated.
- the coefficient value c3 is a value related to the height of the mountain function, and is shown in the table of the third function. This is the depth and value most related to the amount of luminescence of the sootone component.
- Figure 12 shows the change in c3 value depending on the exposure concentration of simazine.
- the horizontal axis shows the exposure concentration of simazine
- the vertical axis shows the value of c3.
- the evaluation value of the delayed light emission of platensis with respect to time-lapse data decreases with the exposure concentration of simazine, and the decrease is correlated with the cell growth after 72 hours shown in FIG. Therefore, this comparison result can be used as the evaluation result.
- the influence of environmental factors on the environment can be evaluated by using the coefficient value obtained as a result of fitting.
- the environmental impact of environmental factors is the inhibition of algae growth caused by simazine.
- Example 2 the herbicide simazine (CAT) was used as an environmental factor to be evaluated.
- Plant samples that produce delayed luminescence include the algae Pseudokirchneriella
- Simazine is an environmental factor that is a harmful substance to P. subcapitata.
- Fig. 13 shows P. simazine when exposed to varying concentrations.
- the change of the area under the growth curve of subcapitata is shown.
- the horizontal axis indicates the concentration of shimadin, and the vertical axis indicates the area under the growth curve.
- the area under the growth curve is as follows. For 6 mL of P. s ubcapitata cell suspension prepared with an absorbance at 750 nm of 0.01, a white fluorescent lamp (5 O ⁇ mol) was used for 72 hours after chemical exposure. -m- 2-s-l)! The area under the growth curve obtained by measuring the cell density as 750 nm absorbance every 24 hours. As shown in Figure 13, P. 72 hours after exposure, depending on the exposure concentration of simazine.
- the measurement of delayed light emission in this example was performed as follows. The absorbance at 660 nm was adjusted to 0.2 in a general 10 x 10 mm spectroscopic cell.
- Subcapitata cell suspension Expose 5 ml of simazine at different concentrations and leave it under a white fluorescent lamp with a light intensity of 5 mol'm-2's-1 for 15 minutes. After that, inside the measuring device 10 As a pumping light for generating delayed light emission, the light source 18 emits about 300 / z mol'm—2′s—1 of red light (660 nm) for 10 seconds. Recording was performed at 1 second intervals for 50 seconds.
- Figure 14 shows the results of measuring the 50-second change in the amount of delayed luminescence generated from P. subcapitata 15 minutes after exposure to simazine.
- the horizontal axis represents the time since the start of measurement (time after excitation), and the vertical axis represents the amount of luminescence (number of counted photons). Due to the influence of simazine, the amount of luminescence increased in the early period after the excitation (near 0 seconds) and decreased in the late period (after 5 seconds). Power.
- Fig. 15 (a) shows the measurement result of "No exposure”
- Fig. 15 (b) shows the graph of the result of fitting the measurement data.
- fl (t), f2 (t), and f3 (t) are the first, second, and third functions in equation (1), respectively. From Fig. 15, it can be seen that the measured data of delayed luminescence is obtained by fitting with multiple mountain functions.
- Example 1 100 0.1 -0.5 5.6 0.005 One 0.5 4.1 0.005 3 2.7
- the coefficient value and the calculated value calculated from the coefficient value are used as evaluation values.
- c3 which is one of the coefficients of the third function f 3 (t), is used among the coefficients shown in the table above.
- the third function is the function that takes the longest time for the maximum amount of light emission in Equation (1), and is the longest of the first to third functions in this embodiment, and is stored in the intercellular. Is considered to reflect the energy
- the coefficient value c3 is a value related to the height of the mountain-shaped function, and is the depth and value most related to the light emission amount of the photon component represented by the third function.
- Figure 16 shows the change in c3 value due to the exposure concentration of simazine.
- the horizontal axis shows the exposure concentration of simazine
- the vertical axis shows the value of c3.
- the influence of environmental factors on the environment can be evaluated by using the coefficient value obtained as a result of fitting.
- the environmental impact of environmental factors is the inhibition of algal growth caused by the effects of simazine.
- the horizontal axis shows the exposure concentration of simazine
- the vertical axis shows the value of the calculated value E.
- the evaluation value of the amount of delayed luminescence of P. subcapitata against time-lapse data decreases according to the exposure concentration of simazine, and the decrease correlates with the cell growth after 72 hours shown in Fig. 12. I understand that. Therefore, this comparison result can be used as the evaluation result.
- the area value is an area value of a region surrounded by a function value line and a time axis line located below the function value line in the function graph.
- the area value of the function is a value closely related to the light emission amount of the photon component represented by each function. In this example, P.
- the horizontal axis represents the exposure concentration of simazine
- the vertical axis represents the area value.
- the area value of P. subcapitata with respect to the time-lapse data of delayed luminescence decreased with the exposure concentration of simazine, and the decrease correlated with the cell growth after 72 hours shown in Fig. 12. I understand that Therefore, this comparison result can be used as the evaluation result.
- the coefficient value of the first function fl (t) in equation (1) is Weighting the coefficient values of each function in Equation (1) so that the coefficient values of the second function f 2 (t) and the coefficient value of the third function f 3 (t) in the equation are greatly reflected by the evaluation value. May be.
- the coefficient value of each function can be weighted so that the evaluation value is calculated only from the coefficient value of the second function f 2 (t) and the coefficient value of the third function f3 (t).
- the evaluation sample may be evaluated by weighting so that each feature value corresponding to a time zone other than the time zone is greatly reflected in the evaluation value.
- the feature value means a value indicating a feature for each of a plurality of time zones in the time-lapse data. Further, when fitting the time-lapse data of delayed light emission as the sum of a plurality of functions, the coefficient value of each function represents the time zone characteristics of the time-lapse data.
- the influence of the first function f 1 (t) on the time-dependent data is large in the time zone immediately after excitation (near 0 to 1 second).
- the effect of the function f2 (t) on the time-lapse data is large.
- the effect of the third function f3 (t) on the time-lapse data becomes large around 15 to 50 seconds after excitation.
- the coefficient value of each function can be used as the feature value of each time zone. Note that the feature value calculation method by fitting is not limited to this, and various methods are conceivable depending on the shape of the time-lapse data and the type of function used for the fitting.
- the inventors of the present invention weighted each characteristic value corresponding to a time zone other than the time zone including the time immediately after the excitation among a plurality of characteristic values with respect to the time-dependent data so as to be largely reflected by the evaluation value.
- the difference between the evaluation value for evaluating the evaluation sample and the reference data appears more clearly.
- the inventors have also obtained knowledge that, for example, the influence of chemical substances on the environment can be grasped more clearly. In other words, by performing weighting in this way, it is possible to evaluate photosynthetic samples more appropriately. Na Note that this weighting method is an example, and it is arbitrary which characteristic value in which time zone is largely reflected in the evaluation value depending on the state of the photosynthetic sample.
- FIG. 19 is a schematic diagram showing photosynthetic electron transfer.
- the acid-reduced state of the photosynthetic sample becomes different from the normal state.
- the light conditions are, for example, the amount of light applied to the photosynthetic sample, the wavelength, the pulse width, and the irradiation time.
- the V ⁇ state in which photosynthetic electron transfer proceeds smoothly (the redox state of the photosynthetic sample is different from the normal state) is referred to as “saturation” of the photosynthetic electron transfer system.
- the state in which photosynthetic electron transfer proceeds smoothly (the acid-reduced state of the photosynthetic sample is normal) is called “no saturation”.
- the photosynthetic reaction of the photosynthetic sample mainly consists of photosystem II complex (PSII), cytochrome b6f complex (cytb6f), photosystem I complex ( PSI) and a reducing substance (N ADPH) produced by ATP synthase (ATP synthase) and a diacid-carbon fixing reaction (Calvin- Benson cycle) using ATP synthase.
- PSII and PSI absorb light and perform an electron transfer reaction. Specifically, when irradiated with light, water molecules (H20) are decomposed in PSII, and electrons (e-) are extracted. This electron is also transferred to the acid plastoquinone (PQOX), which is bound to the QB electron acceptor (QB) site, via the PSII reaction center (P680) force via the QA electron acceptor (QA). This produces reduced plastoquinone (pQred).
- PQOX acid plastoquinone
- QB QB electron acceptor
- P680 PSII reaction center
- QA QA electron acceptor
- Reduced plastoquinone is released from the QB site and transferred to the plastoquinone pool (pQpool). After being moved, it is reacidified by cytb6f and returned to acid plastoquinone. At this time, hydrogen ions (H +) flow into the thylakoid membrane via cytb6f, forming a proton gradient. Hydrogen ions that form a proton gradient are used for ATP synthesis by ATP synthase. On the other hand, electrons extracted during reoxidation of reduced plastoquinone are transferred to the PSI reaction center (P700).
- This electron is transferred from P700 to ferredoxin (Fd) in PSI and contributes to the production of NA DPH.
- Excess electrons after PSI (reducing power) are transferred to cytb6f via Fd by circulating electron transfer, reducing oxidized plastoquinone. This results in reduced plastoquinone (cyclic electron transfer).
- Delayed luminescence is caused by the reverse reaction of the above-mentioned photosynthetic electron transfer reaction, and the force psi, which is mainly caused by chemical re-excitation of the reaction center chlorophyll of PSII, also emits light.
- the force psi which is mainly caused by chemical re-excitation of the reaction center chlorophyll of PSII, also emits light.
- electrons distributed inside PSII, pQpool, and PSI and beyond are the main components contributing to chlorophyll reexcitation. Therefore, when the photosynthetic electron transfer reaction changes due to the influence of environmental factors (for example, harmful substances), a change appears in delayed luminescence.
- FIG. 20 is a diagram schematically showing the delayed luminescence measuring apparatus 1 according to the embodiment.
- FIG. 21 is a block diagram partially showing the delayed luminescence measuring apparatus 1 shown in FIG.
- the delayed luminescence measuring device 1 includes a measuring unit 10, an analyzing unit 20, and a control unit 30.
- the measurement unit 10 and the analysis unit 20 are connected by a first cable 41, and the analysis unit 20 and the control unit 30 are connected by a second cable 42.
- the measurement unit 10 includes a sample installation unit 11, a light source 12, a filter 13, a condensing optical system 14, a shirter 15, and a detection unit 16, and these components are housed in a casing 17.
- the casing 17 has a main body portion 17a and a lid portion 17b.
- the sample placement unit 11 is a portion for placing a sample to be measured.
- the sample installation unit 11 is configured so that a container containing a sample can be installed, and the sample can be exchanged by opening the lid 17b.
- the sample placement unit 11 may be configured such that the sample can be introduced also by an external force of the housing 17 by a liquid feed pump or the like.
- the light source 12 irradiates light (excitation light) to the sample installed in the sample installation unit 11.
- the light source 12 may be a light emitting diode, a semiconductor laser element, or a light bulb as long as it can emit light wavelengths (280 to 800 nm) effective for plant photosynthesis.
- the light source 12 may be a monochromatic light source or a light source combining a plurality of light sources.
- the light emission method of the light source 12 is not limited, for example, a method of continuously emitting light for a predetermined time, a method of pulse-lighting in an arbitrary pattern, a method of sequentially emitting a plurality of light sources having the same or different wavelength characteristics, A method of simultaneously emitting a plurality of light sources can be considered.
- the filter 13 transmits delayed light emission, and is provided in contact with the inner wall surface of the casing 17.
- the condensing optical system 14 condenses the weak delayed emission that has passed through the filter 13. Condensed light The academic system 14 is provided so that the delayed light emission collected thereby proceeds to the detection unit 16.
- the shirt 15 is provided so as to be freely opened and closed. When the shirter 15 is closed, delayed light emission from the condensing optical system 14 to the detection unit 16 is blocked.
- the shirt 15 may be provided at a position closer to the light source 12 than the filter 13 and the condensing optical system 14. In this case, it is possible to prevent light emission (afterglow) of components such as the condensing optical system due to the light from the light source 12 directly entering the filter 13 and the condensing optical system 14.
- the detection unit 16 measures the amount of delayed luminescence generated from the photosynthesis sample in the sample by the light emitted from the light source 12, and transmits the measurement result to the analysis unit 20.
- the detection unit 16 includes an optical sensor 16a that detects delayed emission, and a light amount calculation unit 16b that calculates the amount of delayed emission based on a signal detected by the optical sensor 16a.
- the detection unit 16 includes, for example, a photon counter using an electron multiplier, or a weak light measurement device using an avalanche photodiode.
- the analysis unit 20 includes a recording unit 21, a calculation unit 22, a display unit 23, and an input unit 24.
- the recording unit 21 records the measurement results transmitted from the detection unit 16 and data necessary for analysis or evaluation.
- the calculation unit 22 performs calculation analysis and evaluation based on the measurement results and data recorded in the recording unit 21.
- the display unit 23 displays the results analyzed and evaluated by the calculation unit 22.
- the input unit 24 is an interface through which data necessary for analysis can be input.
- the control unit 30 can control the operations of the measurement unit 10 and the analysis unit 20, and is configured by combining, for example, a computer, a timer, and a relay.
- the control unit 30 includes a light source control unit 31 and a detection control unit 32.
- the light source control unit 31 can control the light conditions (for example, irradiation timing, light amount, wavelength, pulse width, and irradiation time) of the excitation light irradiated from the light source 12.
- the detection control unit 32 can control the detection (measurement) of the amount of delayed light emission in a predetermined time, and controls, for example, the detection time and the detection time.
- the configurations of the analysis unit 20 and the control unit 30 are not limited to this.
- one computer may have the functions of the analysis unit 20 and the control unit 30 together. Yes.
- FIG. 22 is a flowchart showing the procedure of the photosynthesis sample evaluation method.
- Step S11 b Two types of samples including photosynthetic samples are prepared.
- One of these is a standard sample in which the amount of photosynthetic sample, the amount or wavelength of light irradiated on the photosynthetic sample, temperature, buffer composition, environment such as chemical exposure, etc. are set to predetermined conditions (Step S11 b).
- the other is an evaluation sample that differs in at least one of the environmental conditions (addition of harmful substances, temperature, etc.) or the conditions of the photosynthetic sample itself (growth conditions, etc.) with respect to the standard sample (step S11a).
- the prepared standard sample and evaluation sample are stored in a container such as a cuvette and left under controlled conditions of temperature, light, etc. as necessary until the influence of the comparison conditions on the photosynthetic sample is fully manifested. Incubate.
- the first excitation light is irradiated under the predetermined first irradiation condition to the evaluation sample that has sufficiently affected the comparison conditions on the photosynthetic sample (step S12a, first excitation step).
- the light source control unit 31 outputs a control signal to the light source 12 so that the excitation light emitted from the light source 12 satisfies the first irradiation condition.
- the first irradiation condition is to irradiate light of a predetermined light amount and a predetermined wavelength for a predetermined time so that photosynthetic electron transfer performed by the photosynthesis sample is saturated.
- Excitation light emitted from the light source 12 reaches a container installed in the sample installation unit 11. Such irradiation of the first excitation light is similarly performed on the standard sample (step S12b, first excitation step).
- the evaluation sample irradiated with the first excitation light is allowed to stand by for a predetermined time (0 seconds or more) under predetermined light conditions (step S13a, second excitation step).
- the evaluation sample is put on standby in an environment where the light energy of the light irradiated to the evaluation sample is smaller than that of the second excitation light described later. For example, light is prevented from leaking from the outside of the measurement unit 10 into the inside thereof, and the evaluation sample placed in the sample placement unit 11 is made to stand by in the dark. Such standby is similarly performed for the standard sample (step S13b, second excitation step).
- a second light source is used for the evaluation sample that is placed on standby in a predetermined light condition.
- the excitation light is irradiated under the second irradiation condition (step S14a, second excitation step).
- the second irradiation condition includes a condition such that the integrated light energy value is smaller than that of the first irradiation condition.
- the light source control unit 31 outputs a control signal to the light source 12 so that the excitation light emitted from the light source 12 satisfies the second irradiation condition.
- the integrated energy value is the integrated optical energy value for the photosynthetic sample,,, photon flux density (mol ⁇ m ⁇ 2 ⁇ s-1) and photosynthetic effective radiation absorption rate (%) of the photosynthetic sample. And the irradiation time (seconds). Such irradiation of the second excitation light is similarly performed on the standard sample (step S 14b, second excitation step).
- step S15a the light emission amount of delayed luminescence generated by the evaluation sample force irradiated with the second excitation light is measured (step S15a, measurement step).
- Delayed light emission generated from the evaluation sample passes through the filter 13 and is collected by the condensing optical system 14.
- the condensed delayed light emission is sent to the detection unit 16, and the light emission amount of the delayed light emission is measured by the detection unit 16.
- Such measurement is performed at predetermined time intervals (for example, every 0.1 second) based on a control signal output from the detection control unit 32 to the light amount calculation unit 16b.
- the measured amount of delayed light emission is correlated with the measurement time or measurement time, output from the detection unit 16 to the analysis unit 20, and recorded in the recording unit 21.
- Such measurement is performed on the standard sample in the same way (step S15b, measurement step).
- the second irradiation condition is, for example, the second excitation light irradiation start time, in other words, the time at which the first excitation light irradiation ends The time until the second excitation light irradiation start time ( (Hereinafter referred to as “waiting time”).
- the second irradiation condition is set by the light source control unit 31.
- the acid reduction state is changed.
- the number of times of repeating the processing from the irradiation of the first excitation light to the measurement of the light emission amount of delayed light emission is not limited, and an arbitrary number of times can be set.
- the time-dependent data of the amount of delayed luminescence measured by changing the second irradiation condition, or the evaluation value based on it may be stored in advance in the storage unit. In this case, the delayed luminescence measurement need not be repeated.
- step S16a After repeating the process from the first excitation light irradiation to the measurement of the amount of delayed luminescence multiple times (step S16a; NO, step S16b; NO), the photosynthesis of the photosynthetic sample was obtained from the obtained measurement results.
- Analytical values that reflect electron transfer and other metabolism are calculated (step S 17a and step S17b, evaluation step). This calculation is performed for each of the evaluation sample and the standard sample. Specifically, the calculation value is calculated by the calculation unit 22 applying the measurement result read from the recording unit 21 to a predetermined calculation program.
- Analysis values include, for example, the integrated value of delayed luminescence accumulated every measurement time period of 1 or more, the measurement time (measurement time) at which a specific change appears during the process of decaying the delayed luminescence, and A coefficient obtained by fitting the time-dependent change in the light emission amount of delayed light emission as the sum of functions can be mentioned.
- the integrated value obtained by integrating the measured amount of delayed luminescence for each measurement time period of 1 or more is used as the analysis value.
- the analysis value it is possible to easily and appropriately extract the acid reduction state of the photosynthetic sample in a certain measurement time period, which appears in the time-dependent change in the amount of delayed luminescence.
- by providing multiple measurement time zones and calculating the integrated value for each measurement time zone it is possible to properly grasp the changes over time in the amount of delayed luminescence, so that the redox state of the photosynthetic sample can be better understood. Can be evaluated appropriately.
- processing up to the analysis of the preparations described above may be performed simultaneously for the evaluation sample and the standard sample, or may be performed at different times.
- the standard data to be described later is obtained / read, it is not always necessary to measure the standard sample.
- an evaluation value is calculated (derived) based on the analysis value of the evaluation sample and the analysis value of the standard sample (step S18, evaluation step).
- the calculation of the evaluation value is executed by the calculation unit 22 in the same manner as the calculation of the analysis value.
- the method for calculating the evaluation value is not limited to one.
- the evaluation value for each of the evaluation sample and the standard sample can be evaluated by comparing the analysis values under different oxidation-reduction conditions, or by comparing the analysis value of the evaluation sample with the analysis value of the standard sample. Calculation and the like. Further, the evaluation values may be calculated by comparing the evaluation values calculated as described above.
- a method that uses the analysis value as the evaluation value as it is, a method that uses the result obtained by adding, subtracting, and dividing the analysis value as the evaluation value, or a method that uses the result obtained by assigning the analysis value to a predetermined function and using the result as the evaluation value Good.
- the type and number of evaluation values calculated are not limited.
- the state of the photosynthetic sample is evaluated based on the calculated evaluation value (step S19, evaluation step). Specifically, the evaluation is performed by comparing the evaluation value obtained by calculation with the standard data. Examples of the standard data include evaluation values obtained based on measurement data of standard samples. Further, the evaluation sample may be evaluated by calculating a reference value from the evaluation value of the standard sample. Reference values include thresholds and ranges.
- the evaluation result regarding the state of the photosynthetic sample obtained here is presented to the evaluator by being displayed on the display unit 23 or the like. Note that the method of presentation to the evaluator is not limited to this. For example, the evaluation value may be presented to the evaluator when the evaluation value is calculated.
- Non-Patent Document 3 (Schmidt et al.) changed the emission pattern of delayed emission between the sample left for 2 hours in the dark before the delayed emission measurement and the sample not left unattended, and changed the wavelength of the light emitted before the delayed emission measurement. In this case, it is disclosed that the light emission pattern of delayed light emission changes.
- Patent Document 1 discloses a method for evaluating harmful substances using delayed fluorescence. This method for evaluating harmful substances first measures the amount of delayed fluorescence (delayed luminescence) from an aqueous solution sample containing the toxic substance and the amount of delayed fluorescence of the comparative sample power. Based on the measured amount of delayed fluorescence, the elapsed time at the characteristic point of the temporal change in the amount of delayed fluorescence is calculated, and a comparison value of the elapsed time is obtained to obtain a harmful substance present in the aqueous solution sample. To evaluate. Also in the said patent document, when the light intensity or light wavelength of the light irradiated to a target object is changed, it is disclosed that the pattern of delayed light emission changes.
- the present invention has been made to solve the above-described problems, and is a method for evaluating a photosynthetic sample capable of appropriately evaluating the photosynthetic function of a photosynthetic sample included in an evaluation sample, and a photosynthesis sample.
- the purpose is to provide an evaluation program.
- the amount of delayed luminescence can be measured at different standby times, so that a more detailed evaluation value can be derived.
- the redox state of the photosynthetic sample included in the evaluation sample can be appropriately evaluated.
- green algae Pseudokirchneriella subcapitata
- photosynthesis sample green algae
- Green algae are swirled using standard C (75) medium (ph7.5.5) and irradiated with white light of 50 mol ⁇ m—2 ⁇ s—1 in an environment of 25 ° C ⁇ 1 ° C. (120 rpm)
- Delayed luminescence is measured by detecting the delayed luminescence, which also causes the measurement sample force after irradiation of the excitation light from the light source 12, by the detection unit 16, and integrating the detected signals every 0.1 second to emit the delayed luminescence. This is done using a method that outputs a value that correlates to the quantity (count). This measurement is performed continuously for 50 seconds after the excitation light is extinguished. In general, the amount of delayed emission after excitation light extinguishes attenuates as the elapsed time (time after excitation) elapses from the end of excitation light irradiation.
- FIG. 23 is a graph showing the relationship between the standby time and the change over time in delayed light emission.
- the horizontal axis of this graph represents the time after excitation (the elapsed time of the second excitation light irradiation end point force) (seconds), and the vertical axis represents the delayed emission intensity (counts). Since the intensity of delayed luminescence correlates with the amount of delayed luminescence, the following evaluation based on the intensity of delayed luminescence is equivalent to the evaluation based on the amount of delayed luminescence. is there.
- the graph of the relationship between the time after excitation and the intensity of delayed emission is referred to as an attenuation curve.
- the graph shown in FIG. 23 represents the relationship between the standby time and the change over time in delayed light emission in each of these cases.
- a state in which the acid-reduced state of the photosynthetic sample is different is created step by step. It is possible to measure delayed luminescence that reflects the reduced state. In the case of “no saturation” when the first excitation light is not irradiated, photosynthetic electron transfer proceeds most smoothly.
- the photosynthetic electron transfer is closest to saturation. And as the waiting time becomes longer, the saturation of photosynthetic electron transfer is resolved (the photosynthetic electron transfer system of the photosynthetic sample is recovered!
- the emission amount near 0.1 second force 0.5 seconds after excitation is higher than that without saturation, and tl.
- the amount of light emission decreases from about 0.5 seconds to about 10 seconds after excitation, compared to the case without saturation.
- the amount of light emission increases slightly from the case of no saturation until around 10 seconds after excitation until 50 seconds.
- the decrease in the amount of light emitted until 10 seconds after the excitation is reduced slightly when the standby time is 2 seconds.
- the redox state of the photosynthetic sample is determined by the light conditions of the excitation light to be irradiated, more specifically, the amount of light energy of the excitation light.
- the factors that determine the amount of light energy include, for example, the amount of irradiation light and the irradiation time. Therefore, for the sake of explanation, first, the relationship between the irradiation light amount and irradiation time and the temporal change of delayed light emission is shown.
- FIG. 24 is a graph showing the relationship between the irradiation light amount of excitation light and the change over time of delayed light emission.
- the horizontal axis and vertical axis of this graph represent the same as in FIG.
- the first excitation light irradiation amount was changed to 50, 100, 200, and 500 11101'111-2'5-1. The measurement was repeated (the waiting time was set to 0 seconds). Note that when the irradiation amount of the first excitation light is 50 mol'm 2 's 1, saturation of the photosynthetic electron transport system does not occur.
- the attenuation curve is not saturated (when the amount of excitation light irradiation is 50 / z mol'm—2's—1). Get closer.
- FIG. 25 is a graph showing the relationship between the irradiation time of excitation light and the change over time of delayed luminescence.
- the change in the attenuation curve depends on the irradiation amount of the first excitation light and the irradiation time. That is, as shown in Figure 23, the increase or decrease in the amount of light emission in a specific measurement time zone caused by the length of the standby time directly or indirectly reflects the saturation and recovery of the photosynthetic electron transport system due to light irradiation. Conceivable.
- FIG. 26 is a schematic diagram showing the comparison between the acid-reduced state and the delayed luminescence in the state without saturation.
- FIG. 27 is a schematic diagram showing a comparison between the acid reduction state and delayed light emission when the standby time is not provided after the first excitation light irradiation (standby time 0 second).
- FIG. 28 is a schematic diagram showing a comparison between an acid-reduced state and delayed emission when a waiting time of 2 seconds is provided after the first excitation light irradiation.
- the measurement sample is irradiated with excitation light having the same light intensity as when the photosynthetic sample (green algae) is cultured.
- saturation does not occur in the process of transferring electrons from PSII to PSI via pQpool, and pQpool has acid plastoquinone and reduced plastoquino.
- pQpool has acid plastoquinone and reduced plastoquino.
- Delayed luminescence occurs because the electrons in the three major electron storage parts (PSII, pQpool, PSI) that affect delayed luminescence eventually re-excited P680 due to reverse reactions.
- the measured delayed luminescence is the sum of the delayed luminescence generated by each of these three electron storage parts.
- Reference 2 Biochemica et Biophysica Acta, 1987, 890, p.15-22
- the decrease in delayed luminescence reflecting the decrease in acid ⁇ plastoquinone is from 0.5 to 10 seconds after excitation. It is thought that it appears as a decrease.
- the increase in the amount of luminescence accompanying the increase in reduced plastoquinone appears to be manifested as an increase in the amount of luminescence from around 10 seconds to 50 seconds after excitation.
- the decrease in the amount of luminescence that reflects the reduced plastoquinone appears earlier in time than the increase in the amount of luminescence that reflects the reduced plastoquinone, with the acid plastoquinone bound to the QB site inside PSII.
- the path for the electrons accumulated after PSI to flow back to P680 includes a path that reflects the reverse reaction of the equilibrium state through the oxidation reaction of reduced plastoquinone from P700 to cy tb6f, It can be considered that the pathway is based on cyclic electron transfer, in which electrons are transferred to oxidized plastoquinone in cytb6f via ferredoxin (Fd) to produce reduced plastoquinone. In this case, in either route, PSI electrons flow back to P680 via reduced plastoquinone. As shown in the decay curve for the waiting time of 0 seconds in Fig.
- the increase in the amount of light emission from around 10 seconds to 50 seconds after excitation reflects the reduction of pQpool accompanying light irradiation and the equilibrium state between the cyclic electron transfer from PSI and P700. Reflects the reduced plastoquinone by both reductions.
- the delayed luminescence measured from 10 to 50 seconds after excitation is mainly treated as reflecting the equilibrium state between the cyclic electron transfer from PSI and P700.
- the standby time is 2 seconds
- the standby time is set for 2 seconds. Delayed luminescence is measured by irradiating the second excitation light. Therefore, it can be said that this measurement result is the time when the saturation of the photosynthetic electron transport system is slightly recovered compared to the case where the waiting time is set to 0 seconds.
- the waiting time is set to 0 seconds.
- FIG. 28 since oxidized plastoquinone is generated during the waiting time, electrons can be extracted from PSII, and the force of 0.1 second after excitation observed at the waiting time of 0 second is also obtained. 0 No increase in the amount of light emitted in the vicinity of 5 seconds.
- the oxidized blast quinone can move to the QB site, the degree of decrease in light emission from about 0.5 seconds to about 10 seconds after excitation is somewhat reduced.
- the degree of increase in delayed luminescence from about 10 seconds to 50 seconds after excitation reflecting the reduced plastoquinone should be reduced as well.
- the force around 10 seconds after the excitation also increases the delayed light emission up to 50 seconds than when the waiting time is 0 seconds. This is thought to be due to the backflow of electrons after PSI. That is, it can be said that the delayed light emission up to 50 seconds and the force near 10 seconds after excitation, which increases by increasing the waiting time, mainly reflects the electrons after PSI.
- PSII associated with saturation and recovery of photosynthetic electron transfer , PQpool
- PSI can be evaluated for electron accumulation.
- the time zones during which the increase or decrease in the amount of light emission is characteristically observed are 0.1 to 0.5 seconds after excitation, 0.6 to 10 seconds after excitation, and 10.1 to after excitation. Focusing on the change in the amount of light emitted in each time zone of 50 seconds, the powerful accumulation of electrons can be clearly evaluated.
- the evaluation sample is derived based on the light emission amount of each delayed luminescence obtained while changing the irradiation start timing of the second excitation light. It is possible to appropriately evaluate the redox state of the photosynthetic sample contained in the sample.
- the amount of delayed emission is measured after the second excitation light is irradiated so that the integrated energy value is lower than that of the first excitation light. Therefore, the change in the redox state due to the irradiation of the first excitation light is not hindered by the irradiation of the second excitation light, and attenuation of the delayed light emission can be prevented. As a result, the amount of delayed light emission can be measured with higher accuracy.
- Evaluating electron accumulation in PSII, pQpool, and PSI in this way is a photosynthetic sample.
- This is useful in evaluating samples containing Specifically, it is useful for evaluating environmental factors present in an evaluation sample including a photosynthetic sample. More specifically, for the evaluation of photosynthetic electron transfer efficiency of photosynthetic samples, evaluation of chemical substances that inhibit the photosynthetic reaction, diagnosis of plant growth, effects of harmful substances on plants, functional analysis of agricultural chemicals, and research on photosynthesis Useful for this.
- a method for evaluating a sample based on the integrated value of the amount of delayed luminescence (intensity of delayed luminescence) measured will be described.
- the integration range (measurement time zone) between 0.1 and 0.5 seconds after excitation, the integration range between 0.6 and 10 seconds after excitation, and the integration range between 10.1 and 50 seconds after excitation
- the setting of the integration range is not limited to this.
- the number of integration ranges is not limited as long as it is 1 or more.
- the integration ranges may be provided so as to contact each other by simply separating the integration ranges from each other for a predetermined time (for example, the integration range of 0.1 to 0.5 seconds after excitation). And an integration range of 0.5 to 10 seconds after excitation), and the integration ranges may overlap each other in a predetermined time zone (for example, an excitation time of 0.1 to 0.5 seconds). Integration range and post-excitation time range 0.4 to 10 seconds).
- FIG. 29 is a graph showing the results of calculating integrated values for the above three integrated ranges for the delayed emission intensity attenuation curve shown in FIG.
- the horizontal axis represents the measurement conditions
- the vertical axis represents the integrated value (counts) of delayed emission intensity.
- the integrated value in the integrated range of 0.1 to 0.5 seconds after excitation the integrated value in the integrated range of 0.6 to 10 seconds after excitation
- the integrated range of 10.1 to 50 seconds after excitation The integrated values at are referred to as integrated value 1, integrated value 2 and integrated value 3, respectively.
- FIG. 29 (a), FIG. 29 (b) and FIG. 29 (c) are graphs for integrated value 1, integrated value 2 and integrated value 3, respectively.
- integrated value 1 reflects the accumulation of electrons inside PSII. If accumulated value 1 is high, a lot of electrons are accumulated in PSII.
- the process of decreasing the increment under conditions where saturation is restored (for example, waiting for a predetermined time) reflects the extraction of electrons from PSII by acid plastoquinone. Therefore, the effects of environmental factors (for example, harmful substances) on the accumulation of electrons in PSII and the extraction of electrons are evaluated by paying attention to the difference between integrated values 1 with different redox states of photosynthetic samples. be able to.
- the integrated value 2 is the smallest value when the standby time is 0 seconds compared to the value without saturation. The difference decreases as the standby time increases, and when the standby time is 60 seconds, the integrated value 2 is restored to the same level as when there is no saturation. That is, the integrated value 2 reflects acid plastoquinone that can accept electrons by binding to the QB site of PSII.
- the waiting time is 0 second, reduced plastoquinone is formed excessively by irradiation with the first excitation light, and it binds to the QB site in PSII and can accept electrons from inside PSII. Is lacking. This reduces delayed luminescence reflecting the accumulation of plastoquinone electrons bound to the QB site.
- the waiting time increases, the production of acid plastoquinone proceeds, and the amount of delayed luminescence via the QB site is restored.
- the waiting time is 0 seconds compared to the accumulated value 2 without saturation (closest to saturation !
- the difference of the integrated value 2 of (state) represents the reduction of pQpool by strong light irradiation.
- the process of decreasing the difference under the condition that saturation is restored represents the process of reoxidation by reduced plastoquinone ytb6f. Therefore, by paying attention to the difference between integrated values 2 with different redox states, it is possible to evaluate the effect of environmental factors on the reduction state of pQpool and the process of reoxidation.
- the examination is based on the integrated value 3.
- the accumulated value 3 increases most compared to the value without saturation when the standby time is 2 seconds, and is not saturated when the standby time is 60 seconds. Decrease to the same extent.
- the integrated value 3 can be said to correspond to reduced plastoquinone mainly reflecting the accumulation of electrons after PSI.
- the incremental force of accumulated value 3 under each condition of standby time 0 to 60 seconds PSI force after PSI reaches PSII by cyclic electron transfer or reverse reaction via P700 Represents the flow of electrons. Therefore, it is possible to evaluate the effects of environmental factors on electron accumulation and cyclic electron transfer after PSI by paying attention to the difference between integrated values 3 with different acid reduction states.
- a standard sample (Cont) and an evaluation sample are prepared.
- the green algae similar to those described above are used as the photosynthetic sample contained in each sample.
- Cell suspension cultured for 1 hour with white light irradiation 2.5 mL is used as a standard sample.
- the evaluation sample was prepared in the same procedure as the standard sample, and then incubated for 1 hour while irradiating white light of 50 ⁇ mol'm—2 ′ s—1 in an environment of 25 ° C ⁇ 1 ° C.
- white light 50 ⁇ mol'm—2 ′ s—1
- an environment 25 ° C ⁇ 1 ° C.
- the amount of delayed luminescence is measured by leaving the standard sample and the evaluation sample in the dark for 60 seconds in advance to remove the influence of the environment before measurement on the photosynthetic electron transport system. It was done after unifying the reduced state.
- FIG. 30 is a graph showing the relationship between the standby time and the time-dependent change in the amount of delayed luminescence in the standard sample.
- FIG. 31 is a graph showing the relationship between the standby time and the time-dependent change in delayed luminescence in the evaluation sample. Each graph shows changes over time in the amount of delayed light emission in each case of no saturation, standby time 0 seconds, standby time 10 seconds, and standby time 60 seconds. Comparing Fig. 30 and Fig. 31, it is clear that the shape of the attenuation curve is characteristically changed by UV irradiation.
- FIG. 32 is a graph showing the integrated values 1, 2, and 3 for each sample, calculated based on the amount of delayed luminescence shown in FIGS. 30 and 31, and FIGS. 32 (a) and 32 (b). And Fig. 32 (c) is for integrated value 1, integrated value 2 and integrated value 3, respectively.
- the integrated value 1 reflecting the electrons inside PSII shows the maximum value when the standby time is 0 seconds, and there is no saturation when the standby time is 10 seconds and 60 seconds. It shows the same value as the case. As described above, this is immediately after irradiation with the first excitation light (when the waiting time is 0 second), and there is a large amount of reduced plastoquinone in pQpool, which can extract electrons from PSII. This is because the accumulation of electrons inside PSII increases as the amount of type plastoquinone decreases. On the other hand, when the waiting time is 10 seconds and 60 seconds, acid-type plastoquinone is generated during the waiting time. It recovers to the same level as in the case of no saturation where the transfer reaction proceeds smoothly.
- the integrated value 2 reflecting the electrons of pQpool shows a minimum value at a waiting time of 0 seconds, and gradually increases as the waiting time becomes longer and approaches a value without saturation.
- the waiting time is 0 second
- the standby time is provided for a predetermined time, acid plastoquinone is generated during the standby time, so that the photosynthetic electron transmission system recovers to the same level as when there is no saturation.
- the integrated value 3 that reflects the electrons after the PSI takes almost the same value when there is no saturation, the standby time is 0 seconds, and the standby time is 60 seconds, and the value increases only when the standby time is 10 seconds. .
- This is due to the delayed luminescence caused by the cyclic electron transfer reaction in which the electrons stored in ferredoxin after PSI and NADPH are transferred to oxidized plastoquinone via ferredoxin to produce reduced plastoquinone, and the reverse reaction via P700. It reflects.
- Delayed luminescence reflected in integrated value 3 goes through more reaction paths compared to delayed luminescence reflected in integrated value 1 or integrated value 2, so the standby time is 10 seconds compared with the standby time of 0 seconds. In the case of, a higher value is obtained. This accumulated value 3 recovers to the same level as when there is no saturation when the standby time is 60 seconds.
- the integrated value 1 that reflects the electrons inside PSII does not increase when the standby time is 0 seconds, and when the standby time is 10 seconds and 60 seconds. But no major changes are seen. This suggests that some changes have occurred in PSII due to UV irradiation.
- the integrated value 2 that reflects the electrons in pQpool is slightly smaller than that of the standard sample, but shows a minimum value at a waiting time of 0 seconds and gradually increases as the waiting time increases. The tendency to get close to the value without saturation does not change. This suggests that UV irradiation does not significantly affect the action of pQpool.
- the integrated value 3 that reflects the electrons after PSI is the same value for the case of no saturation and the standby time of 60 seconds, in addition to the standby time of 10 seconds, the standby time. The value increases even at 0 seconds. This is because of the UV irradiation, the acid plaste via PSI This suggests an increase in the cyclic electron transfer reaction that is transmitted to quinone to produce reduced plastoquinone and the reverse reaction via P700.
- the second irradiation condition is the above-mentioned standby time (standby time 0 seconds, standby time 10 seconds and standby time 60 seconds), and the evaluation value is based on the integrated values 1, 2 and 3 above. Is assumed. Furthermore, it is also assumed that the above integrated values 1, 2 and 3 are calculated in the same way even when there is no saturation.
- an evaluation value for evaluating the PSII electron accumulation state of the photosynthetic sample is a change (ell) in PSII electron accumulation, which indicates how the PSII electron accumulation has changed.
- This value ell can be obtained by (integrated value 1 of evaluation sample) Z (integrated value 1 of standard sample) X 100.
- the change (ell) in PSII electron accumulation can be calculated for the following conditions: no saturation, 0 seconds standby time, 10 seconds standby time, and 60 seconds standby time.
- the change (ell) in PSII electron accumulation exceeds 100, indicating that PSII electron accumulation is increasing. For example, if this ell is calculated under no saturation conditions, it is possible to evaluate changes in the PSII electron accumulation under standard conditions that are not affected by strong light (for example, without saturation).
- the transient increase in the accumulated value 1 at the standby time of 0 seconds reflects the increase in the PSII electron accumulation due to the rate-determining of the electron extraction from the PSII.
- This transient increase in integrated value 1 can be recovered to the same level as when there is no saturation by providing a waiting time during which no light is irradiated.
- the ability to extract electrons from PSII in a certain waiting time can be evaluated by how much the temporary increase in accumulated value 1 at a waiting time of 0 seconds has been reduced by providing that waiting time. Therefore, the PSII's ability to extract electrons (tn) up to a certain condition with a waiting time of 0 seconds is calculated as the evaluation value.
- This value tn is ((Integrated value when waiting time is 0 seconds) ⁇ (Integrated value without saturation 1) One (Integrated value at certain waiting time ⁇ ) ⁇ (Integrated value when there is no saturation 1) )) Can be determined by X100.
- Standby time 0 seconds force If the PSII's electronic take-out ability (til) until a certain standby time is large, The waiting time indicates that many transient electron accumulations of PSII have been eliminated by the waiting time of 0 seconds. Conversely, if this value tn is negative, it indicates that the PSII electron accumulation has increased for some reason up to a waiting time of 0 seconds.
- the acid-reduced state of the pQpool of the photosynthetic sample can be evaluated.
- the evaluation value can be derived using the integrated value 2 that reflects the redox state of pQpool.
- the photosynthetic sample is previously left in the dark for 60 seconds. Therefore, in the case of no saturation, the reduced plastoquinone generated by light irradiation is reoxidized, and pQpool is substantially reduced. Becomes oxidized. In addition, at a waiting time of 0 seconds immediately after irradiation with the first excitation light, almost all of pQpool is reduced and there is almost no acid-sodium plastoquinone. That is, the difference between the integrated value 2 when there is no saturation and the integrated value 2 when the standby time is 0 seconds represents the size of the acid-reduction reaction caused by light irradiation.
- the magnitude (sQ) of the oxidation-reduction reaction is calculated as an evaluation value as a value indicating this magnitude.
- This value sQ can be obtained by (integrated value 2 when there is no saturation)-(integrated value 2 when the standby time is 0 seconds).
- the amount of oxidized plastoquinone produced decreases when the reoxidation reaction by cytb6f is inhibited, and increases when cytb6f inhibits the cyclic electron transfer that reduces the acid plastoquinone. Therefore, the amount of acid plastoquinone production (oQ) in a certain waiting time is calculated as an evaluation value.
- This value oQ can be calculated by (integrated value 2 at a certain waiting time 2)-(integrated value 2 at a waiting time 0 second).
- the ratio (% oQ) of acid-type plastoquinone at a certain waiting time to the size of the acid-reduction reaction of pQpool is determined by (OQ at a certain waiting time) ZsQ X 100 Is possible.
- the PSI electron accumulation state of the photosynthetic sample can be evaluated. For example, it is possible to derive an evaluation value using the integrated value 3 that reflects the state of PSI electron accumulation calculated from the delayed emission measurement result.
- the change (el) in the PSI electron accumulation is calculated as the evaluation value.
- the change (el) in the PSI electron accumulation can be obtained by (integrated value of evaluation sample 3) Z (integrated value of standard sample 3) X 100.
- This value el can be calculated under the following conditions: no saturation, waiting time 0 seconds, waiting time 10 seconds and waiting time 60 seconds. The fact that this value el exceeds 100 indicates that the electron accumulation of PSI is increasing.
- the change in the PSI electron accumulation under the standard condition without the influence of strong light can be evaluated.
- Irradiation with the first excitation light as described above increases the electron accumulation of PSI.
- Some of PSI's electrons reduce pQpool through a cyclic electron transfer pathway to produce reduced plastoquinone.
- Many of the electrons transferred to the reduced plastoquinone cause delayed emission from the pQpool through the QB and QA sites at the PSII reaction center (P680).
- the accumulated value 3 when the standby time is 10 seconds increases excessively compared to the accumulated value 3 when there is no saturation.
- the difference obtained by subtracting the accumulated value 3 when there is no saturation from the accumulated value 3 when there is a certain waiting time represents the cyclic electron transfer from the PSI at that waiting time. Therefore, the cyclic electron transfer (cl) from this PSI is calculated as the evaluation value.
- This value can be obtained by (integrated value 3 at a certain waiting time) Z (integrated value 3 without saturation) X 100.
- changes in the redox state can be evaluated according to this embodiment. For example, if an environmental factor (for example, ultraviolet rays or chemical substances) is given to the evaluation sample as described above, the environmental factor is harmful to the photosynthetic sample. You can evaluate what you have. Furthermore, if river water or soil extract water is used when preparing the evaluation sample, environmental factors (harmful or beneficial chemical substances) contained in these waters can be evaluated.
- an environmental factor for example, ultraviolet rays or chemical substances
- the usefulness of the evaluation of the change in the redox state shown in the present embodiment is not limited to the above.
- it can be used for plant growth diagnosis, effects of chemical substances on plants, functional analysis and development of agricultural chemicals, and research on photosynthesis.
- FIG. 33 is a diagram showing the configuration of the evaluation program 50 according to the embodiment together with the recording medium 60.
- FIG. 34 is a diagram showing a hardware configuration of a computer 70 on which the evaluation program 50 shown in FIG. 33 operates.
- the evaluation program 50 cooperates with the computer 70, whereby the computer 70 can operate as the delayed luminescence measuring apparatus 1. As a result, the above-described evaluation of the photosynthetic sample can be realized on the computer 70.
- the evaluation program 50 includes a light source control module 51 and a detection control module.
- a module 52 and a calculation module 53 are provided.
- the light source control module 51 corresponds to the light source control unit 31
- the detection control module 52 corresponds to the detection control unit 32
- the calculation module 53 corresponds to the calculation unit 22. That is, the computer 70 functions as the first excitation means and the second excitation means by the light source control module 51, the computer 70 functions as the measurement means by the detection control module 52, and the computer 70 functions as the evaluation means by the calculation module 53. To do.
- the computer 70 includes a CPU 71 that executes an operating system, an application program, and the like, a main storage device 72 that includes ROM and RAM, an auxiliary storage device 73 that includes hard disks, and a network. It consists of communication control devices 74 such as cards, output devices 76 such as monitors and printers, and input devices 75 such as keyboards and mice.
- communication control devices 74 such as cards
- output devices 76 such as monitors and printers
- input devices 75 such as keyboards and mice.
- Each module described with reference to FIG. 33 loads predetermined software on the CPU 71 and the main storage device 72 shown in FIG. 34, operates the communication control device 74 under the control of the CPU 71, and operates the main storage device 72. And by reading and writing data in the auxiliary storage device 73.
- the amount of delayed light emission can be measured for each different second irradiation condition, so that a more detailed evaluation value can be derived.
- the redox state of the photosynthetic sample contained in the evaluation sample can be evaluated appropriately and simply.
- DCMU 2- (3,4-dichlorophenyl) -1,1-dimethyHirea
- DCMU-exposed sample DBMIB-exposed sample
- Ant-A-exposed sample DBMIB-exposed sample
- Ant-A-exposed sample Those exposed to DCMU, DBMIB, and Ant-A were referred to as DCMU-exposed sample, DBMIB-exposed sample, and Ant-A-exposed sample, respectively.
- the evaluation method described above was carried out under the following conditions: no saturation, waiting time 0 seconds, waiting time 10 seconds, and waiting time 60 seconds. The redox state of the photosynthetic sample differs under each of these conditions.
- Figures 35 to 38 show the time-dependent changes (attenuation curves) of the amount of delayed luminescence for the standard sample, DCMU-exposed sample, DBMIB-exposed sample, and Ant-A-exposed sample in the examples. It is a graph. As shown in Figures 35-38, exposure to chemicals changed the shape of the decay curve for each exposed sample.
- FIGS. 39 to 41 are used.
- Fig. 39 is a graph comparing the integrated value of the standard sample and the integrated value of the DC MU-exposed sample in the examples.
- Fig. 39 (a), Fig. 39 (b) and Fig. 39 (c) show the integrated values, respectively.
- 1 is a graph for integrated value 2 and integrated value 3.
- Fig. 40 is a graph comparing the integrated value of the standard sample and the integrated value of the DBMIB-exposed sample in the examples.
- Fig. 40 (a), Fig. 40 (b) and Fig. 40 (c) show the integrated values, respectively.
- Fig. 41 is a graph comparing the integrated value of the standard sample and the integrated value of the Ant-A exposed sample in the examples.
- Fig. 41 (a), Fig. 41 (b) and Fig. 41 (c) show the integrated values, respectively. It is a graph for value 1, integrated value 2 and integrated value 3.
- the integrated value 1 that reflects the electronic power inside PSII showed the maximum value when the standby time was 0 seconds, whereas when the standby time was 10 seconds and the standby time was 60 seconds, it was about the same as no saturation. The value was fixed. As described above, there is a large amount of reduced plastoquinone in pQpool immediately after irradiation with the first excitation light, and there is less oxidized plastoquinone that can extract electrons from PSII, so that electrons inside PSII This is because accumulation increases. In the case of waiting times of 10 seconds and 60 seconds, the generation of oxidized plastoquinone during the waiting time indicates that the PSII electron transfer reaction has recovered to the same level as the unsaturated state that smoothly slides. Understandable.
- the accumulated value 2 that reflects the electrons in pQpool shows the minimum value when the waiting time is 0 seconds, and gradually approaches the value when there is no saturation as the waiting time becomes longer. This is the above As shown above, there is a large amount of reduced plastoquinone in pQpool immediately after the first excitation light irradiation, and there is a shortage of acid plastoquinone that can bind to the QB site, which is the plastoquinone binding site in PSII. Because it is. Since the acid-type plastoquinone is produced during the waiting time, when the waiting time was 60 seconds, it recovered to the same level as without saturation.
- DCMU inhibits the transfer of electrons from inside PSII to pQpool by inhibiting the binding of oxidized plastoquinone to the QB site in PSII. Therefore, the production of reduced plastoquinone is inhibited, and the amount of acid-type plastoquinone in the plastoquinone pool increases. Decreasing electron accumulation in the plastoquinone pool results in the formation of a proton gradient by cytb6f, a decrease in electron supply to photosystem I (PSI), and a decrease in NA DPH synthesis.
- PSI photosystem I
- the integrated value 1 of the DCMU-exposed sample shows a value almost twice as large as the value of the standard sample in each case of no saturation, a standby time of 10 seconds, and a standby time of 60 seconds. The value was higher than when the standby time was 0 seconds, which was close to the sum.
- the accumulated value 1 was larger for the waiting time of 0 seconds (saturated state) than in the case of no saturation, whereas the DCMU-exposed sample gave the opposite result.
- the DCMU-exposed sample did not decrease even when saturation was restored (when the waiting time was 10 seconds and 60 seconds).
- the cumulative value 3 for DCMU-exposed samples was lower than that of the standard sample under all conditions.
- the cumulative value 3 of the DCMU-exposed sample was higher in the waiting times of 0 and 10 seconds than in the case of no saturation.
- the tendency was basically the same as that in the standard sample. This indicates that the electron inflow into PSII due to the reverse reaction after PSI was reduced. The backflow of electrons after PSI was not inhibited. This is consistent with DCMU reducing electron transport to PSII and beyond, but not inhibiting other reactions.
- DBMIB binds to the plastoquinone binding site of the cytb6f complex and inhibits the acid oxidase of reduced plastoquinone. Therefore, in pQpool, the amount of reduced plastoquinone increases and the amount of oxidized plastoquinone decreases.
- Ant-A is a chemical that inhibits the cyclic electron transfer that produces reduced plastquinone by transferring electrons to the oxidized plastoquinone of cytb6f via PSI ferredoxin (Fd). That is, Ant-A inhibits the reaction of circulating electrons from PSI to pQpool.
- Integrated value 2 of the Ant-A exposed sample showed lower luminescence than the standard sample under all conditions. However, the minimum value was shown when the waiting time was 0 seconds, and the tendency to gradually approach the value without saturation as the waiting time increased was the same as that of the standard sample. This indicates that acid-type plastoquinone is reduced compared to the standard sample (pQpool is in a reduced state), but the production of acid-type plastoquinone in 1S cytb6f is not inhibited. ing. This is consistent with the fact that it does not inhibit the production of oxidized plastoquinone in Ant-A force cytb6f.
- the integrated value of the Ant-A-exposed sample 3 had lower luminescence than the standard sample under all conditions.
- the increase in accumulated value 3 observed in the standard sample with a waiting time of 10 seconds was also not observed.
- the increase in accumulated value 3 during the waiting time of 10 seconds is thought to involve cyclic electron transfer, so this result shows that the accumulation of electrons after PSI decreases and that PSI leads to pQpool. It can be said that the flow of electrons is obstructed.
- the blockage of electron flow from PSI to pQpool is consistent with Ant-A inhibiting circulating electron transfer.
- the decrease in PSII electron accumulation is also thought to be due to the decrease in electrons flowing from pQpool to PSI again due to the inhibition of cyclic electron transfer. Electrons that have lost their place due to the inhibition of cyclic electron transfer may be transferred to PSII by some mechanism, and as a result, the accumulated value 1 may increase in the waiting time of 10 seconds.
- FIG. 42 is a table showing values ell and vll of each sample without saturation.
- FIG. 43 is a table showing the values vQ and% oQ for each sample.
- FIG. 44 is a table showing the values el and cl of each sample without saturation.
- the value ell of DCMU-exposed sample without saturation was 188, which indicates that the electron accumulation in PSII increased compared to the standard sample.
- the vll of the DCMU-exposed sample was negative, it was found that electrons were flowing into PSII instead of taking out electrons from PSII. This is the electronic removal from PSII It is consistent with the action of DCMU to inhibit and increase PSII electron accumulation.
- the DBMIB exposed sample had a value vQ of 30. This indicates that the acid reduction reaction by light irradiation was reduced compared to the standard sample. For the value% 0 ⁇ 3, the standard sample was 36 at the standby time of 10 seconds and 107 at the standby time of 60 seconds, whereas the DBMIB-exposed sample was 4 at the standby time of 10 seconds. It decreased compared to the standard sample, such as 22 at 60 seconds. This indicates that the DBMIB-exposed sample had a lower pQpool acid-reduction reaction and a lower plastoquinone re-oxidation at cytb6f than the standard sample. This is consistent with the action of DBMIB, which inhibits plastoquinone reoxidation at cytb6f!
- the value el of the Ant-A-exposed sample without saturation is 89, and the electron accumulation of PSI is not so reduced as compared with the standard sample.
- the value cl at the waiting time of 10 seconds for the standard sample is 38, whereas the value cl at the waiting time of 10 seconds for the Ant-A exposed sample is -12. This indicates that in the Ant-A-exposed sample, the inflow of electrons due to cyclic electron transfer from PSI to pQpool, etc., with a force that did not significantly change the electron accumulation of PSI. This is consistent with Ant-A's ability to inhibit cyclic electron transport.
- the evaluation value is derived based on the integrated value obtained by integrating the measured amount of delayed light emission for each measurement time period, but the method of deriving the evaluation value is not limited to this.
- the time-lapse data (decay curve) of the amount of delayed luminescence can be calculated for multiple functions.
- the coefficient values of the functions may be determined so as to fit as a sum, and the evaluation value may be derived based on the coefficient values.
- a method of fitting the time-lapse data of the delayed light emission amount to the time-dependent data function (hereinafter referred to as "fitting method") will be described in detail.
- fitting method information on a plurality of functions is stored in advance in the recording unit 21 of the delayed luminescence measuring apparatus 1. It is preferable to use a mountain function as the function.
- a chevron-shaped function is a function whose shape is a chevron, and the function value has the maximum value at a given variable value, and is monotonously non-decreasing at a variable value less than the given variable value, greater than the given variable value Is a monotonically non-increasing function.
- the reference time of the time t after excitation is, for example, the time at which a predetermined time has elapsed from the time when the irradiation of the light from the light source 12 is completed, and in the above equation (4), the right side
- the first, second, and third terms are expressed as the first function, the second function, and the third function in the order in which the maximum values appear on the time axis, respectively. Then, the relationship bl ⁇ b2 ⁇ b3 holds.
- the function used in the fitting method is not limited to this, and other mountain functions such as a quadratic function and a normal distribution function may be used.
- other mountain functions such as a quadratic function and a normal distribution function may be used.
- the algorithm for performing the fitting is also stored in the recording unit 21 in advance.
- simplex method Gauss-Newton method, Davidon
- the Fletcher Powell method, Brent method, Monte Carlo method and simulated 'annealing method can be used as an algorithm for fitting.
- an evaluation value is derived based on the coefficient value calculated by the fitting method.
- the evaluation value is calculated based on an expression for calculating an evaluation value stored in advance in the recording unit 21.
- an evaluation value can be derived objectively.
- the time-dependent change in the amount of delayed luminescence is fitted to, for example, the equation shown in (4) above or the equation shown in (5) above, so the delayed luminescence described with reference to FIG. Evaluation based on the mechanism becomes possible. Therefore, the redox state of the photosynthetic sample included in the evaluation sample can be appropriately evaluated.
- the standby time is adopted as the second irradiation condition to be changed when the measurement of the light emission amount of delayed light emission is repeated a plurality of times, but the second irradiation condition to be changed is not limited to this. . Since the redox state of the photosynthetic sample depends on the energy of the light applied to the photosynthetic sample and the efficiency of electron transfer of the photosynthetic sample, for example, the amount of light, wavelength, pulse width, and irradiation time of the second excitation light At least one of them may be changed. These conditions regarding the second excitation light are closely related to the change in the oxidation-reduction state of the photosynthetic sample described with reference to FIG.
- the first excitation light irradiation and the second excitation light irradiation are repeated a plurality of times while changing at least one of these factors, and an evaluation value based on each measured light emission amount is derived.
- the redox state of the photosynthetic sample contained in the evaluation sample can be appropriately evaluated.
- environmental conditions that change the electron transfer efficiency of photosynthetic samples such as temperature and electric field, etc.
- the factor may be adopted as a load condition.
- the load conditions include light irradiation conditions, dark conditions, temperature conditions, electric field conditions, magnetic field conditions, pH conditions, and the like. Even if these load conditions are used, a plurality of acid-reduced states can be generated. Therefore, the redox state of the photosynthetic sample contained in the evaluation sample can be appropriately evaluated.
- a temperature condition may be employed instead of the first irradiation condition and the standby time in the above-described embodiment. Since temperature affects the transmission speed of the electron transfer system, the higher the temperature, the more electron transfer in the photosynthetic sample is promoted. Therefore, by controlling the temperature condition applied to the evaluation sample, it is possible to create in stages the different oxidation reduction states of the photosynthetic samples contained in the evaluation sample.
- a dark condition may be employed. Under dark conditions, the photosynthetic function becomes inactive and the photosynthetic electron transfer efficiency of the photosynthetic sample decreases. The amount of decrease increases as the dark condition increases, but it does not change after a certain period. Although it varies depending on the measurement conditions, for example, when the delayed luminescence is measured in the dark when the photosynthetic sample is placed in the dark, the delayed luminescence after about 10 seconds decreases after excitation. Furthermore, when the length of the dark condition reaches a certain period, the light emission amount stops decreasing and becomes constant.
- UV rays instead of the first irradiation condition and the standby time in the above-described embodiment, it is also possible to adopt ultraviolet rays as the light irradiation condition.
- Ultraviolet rays impair the photosynthetic function, but the magnitude of the effect varies depending on the wavelength and dose (irradiation intensity X irradiation time). The shorter the wavelength and the greater the amount of irradiation, the greater the load (stress) on the photosynthetic sample and the lower the electron transfer efficiency of the photosynthetic sample.
- a pH condition may be employed.
- the pH mainly affects the formation of a proton gradient that increases the hydrogen ion concentration in the inner mitochondrial membrane involved in the intracellular respiratory chain and in the thylakoid membrane of the chloroplast involved in the electron transport system of photosynthesis.
- the magnitude of the effect on algae is that the load (stress) on the photosynthetic sample increases as the difference between the pH of the algal cell suspension (culture solution) and the pH inside the thylakoid membrane of the photosynthetic sample (algae used) decreases. Appear in In addition, extremely high or low pH causes physical stress on the photosynthetic sample.
- These load conditions may be used in combination. By applying a load under a plurality of load conditions to the photosynthetic sample, it is possible to create in stages the states in which the acid-reduced state of the photosynthetic sample is different.
- the feature value is a value indicating a feature for a plurality of time zones in the temporal data of the amount of delayed luminescence generated by the photosynthetic sample force.
- One or more feature values may be calculated for each time zone.
- the characteristic value include an integrated value of the amount of delayed luminescence accumulated for each measurement time period of 1 or more, and a coefficient value obtained by fitting the temporal change of the amount of delayed luminescence as a function sum.
- the evaluation value is a value for evaluating the state of the photosynthetic sample, and the evaluation value is calculated by weighting the feature value.
- the weighting referred to here is to increase the influence of a highly important feature value on the evaluation value with respect to the evaluation condition. If a feature value with low importance is strong for the condition to be evaluated, the feature value may be weighted so that it is not used for calculating the evaluation value. On the other hand, if the feature value is particularly high and the feature value is powerful with respect to the condition to be evaluated, other feature values may be weighted together with those used for calculating the evaluation value.
- Reference data refers to standard data or standard data in the above-described embodiment.
- the second photosynthetic sample is a photosynthetic sample for obtaining reference data, and the environmental conditions (addition of harmful substances, temperature, etc.) At least one of the growth conditions is different.
- the second photosynthetic sample is preferably a photosynthetic sample that has not been exposed to environmental factors, but is not limited thereto.
- FIG. 1 A diagram showing a mechanism of delayed light emission.
- FIG. 2 is a graph showing the influence of environmental factors on the amount of delayed luminescence.
- FIG. 3 is a diagram showing a configuration of an environmental factor evaluation system according to an embodiment.
- FIG. 4 A graph of a function for performing fitting and an effect of a coefficient value of the function.
- FIG. 5 is a diagram showing a relationship between an evaluation formula for obtaining an evaluation value and a delayed light emission process. 6) A flowchart showing a method for evaluating environmental factors according to an embodiment of the present invention. 7) A flowchart showing an environmental factor evaluation method according to an embodiment of the present invention. [8] FIG. 8 is a diagram showing a configuration of an environmental factor evaluation program according to the present invention.
- FIG. 9 A graph showing the area under the growth curve of S. platensis when simazine was exposed at different concentrations.
- FIG. 10 is a graph of the amount of delayed luminescence emitted from S. platensis (plant sample) in Example 1.
- FIG. 11 is a graph showing an example of fitting results in Example 1.
- FIG. 12 is a graph showing the relationship between the exposure concentration of simazine and the value of c3, which is a coefficient value determined by fitting, in Example 1.
- FIG. 13 is a graph showing the area under the growth curve of P. subcapitata when simazine was exposed at different concentrations.
- FIG. 14 is a graph showing the amount of delayed luminescence emitted from P. subcapitata (plant sample) in Example 2.
- FIG. 15 is a graph showing an example of fitting results in Example 2.
- FIG. 16 is a graph showing the relationship between the exposure concentration of simazine and the value of c3, which is a coefficient value determined by fitting, in Example 2.
- FIG. 17 is a graph showing the relationship between the exposure concentration of simazine and the value of evaluation value E in Example 2.
- FIG. 18 is a graph showing the relationship between the exposure concentration of simazine and the area value in Example 2.
- ⁇ 19 Schematic diagram showing photosynthetic electron transfer.
- FIG. 20 is a diagram schematically showing a delayed luminescence measuring apparatus according to an embodiment.
- FIG. 21 is a block diagram partially showing the delayed light emission measuring device shown in FIG.
- FIG. 22 is a flowchart showing a procedure of a photosynthesis sample evaluation method.
- ⁇ 23 It is a graph showing the relationship between the standby time and the change over time in delayed luminescence.
- FIG. 26 is a schematic diagram showing a comparison between an acid-reduced state and delayed luminescence in a state without saturation.
- FIG. 27 is a schematic diagram showing a comparison between an acid-reduced state and delayed light emission when a standby time is not provided after the first excitation light irradiation.
- FIG. 28 is a schematic diagram showing a comparison between an acid-reduced state and delayed light emission when a standby time of 2 seconds is provided after the first excitation light irradiation.
- FIG. 29 is a graph showing integrated values for the attenuation curve shown in FIG. 23, (a) is a graph for integrated value 1, (b) is a graph for integrated value 2, and (c) is a graph for integrated value 3. .
- ⁇ 32] is a graph showing the integrated value based on the amount of delayed emission shown in FIGS. 30 and 31, wherein (a) is for integrated value 1, (b) is for integrated value 2, and (c) is for integrated value 3. It is a graph.
- FIG. 33 is a diagram showing a configuration of an evaluation program according to an embodiment together with a recording medium.
- FIG. 34 is a diagram showing a hardware configuration of a computer on which the evaluation program shown in FIG. 33 operates.
- FIG. 35 is a graph showing the change over time in the amount of delayed luminescence for the standard sample in the example.
- FIG. 36 is a graph showing the change over time of the amount of delayed luminescence for the DCMU-exposed sample in the example.
- FIG. 37 is a graph showing the change over time in the amount of delayed luminescence for the DBMIB-exposed sample in the example.
- FIG. 38 is a graph showing the change over time in the amount of delayed luminescence for the Ant-A exposed sample in the example.
- FIG. 40 is a graph comparing the integrated value of the standard sample with the integrated value of the DBMIB-exposed sample in the example, (a) for integrated value 1, (b) for integrated value 2, and (c) integrated value. This is a graph for 3.
- FIG. 41 A graph comparing the integrated value of the standard sample and the integrated value of the Ant-A-exposed sample in Example, (a) for integrated value 1, (b) for integrated value 2, (c) This is a graph for integrated value 3.
- FIG. 42 is a table showing values ell and vll without saturation of the standard sample and each exposed sample in Examples.
- FIG. 43 is a table showing values vQ and% oQ of the standard sample and each exposed sample in Examples.
- FIG. 44 is a table showing values el and cl without saturation of the standard sample and each exposed sample in Examples.
- 1 ... delayed luminescence measuring device 10 ... measurement unit, 11 ... sample placement unit, 12 ... light source, 13 ... filter, 14 ... condensing optical system, 15 ... Shutter, 16 ... detection unit, 16a ... light sensor, 16b ... light quantity calculation unit, 17 ... casing, 17a ... main body, 17b ... lid part, 20 ... analysis unit, 21 ... Recording unit, 22 ⁇ Calculation unit, 23 ⁇ Display unit, 24 ⁇ Input unit, 30 ⁇ ... 1st cable, 42 ... 2nd cable, 50 ... Evaluation program, 51 ... Light source control module, 52 ... Detection control module, 53 ... Arithmetic module, 60 ... Recording medium, 70 "Computer.
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Abstract
評価試料に含まれる光合成サンプルの光合成機能を適切かつ簡易に評価すること。 光合成機能を有する光合成サンプルから発生する遅延発光の発光量の経時データに基づいて、前記光合成サンプルの状態を評価する光合成サンプルの評価方法であって、まず、経時データにおける複数の時間帯に対して特徴を示す特徴値を算出する。次に、特徴値を重み付けすることにより評価値を算出する。そして、評価値に基づいて光合成サンプルの状態を評価する
Description
明 細 書
光合成サンプルの評価方法、光合成サンプルの評価システム及び光合 成サンプルの評価プログラム
技術分野
[0001] 本発明は、光合成サンプルの評価方法、光合成サンプルの評価システム及び光合 成サンプルの評価プログラムに関するものである。
背景技術
[0002] 従来から、評価試料に含まれる光合成サンプルを評価する方法 (生物の生長等に 影響を及ぼす環境要因 (例えば、化学物質)の影響の程度を評価する方法など)とし て、植物や藻類等の植物性の細胞の生長を用いて評価する化学物質生態リスク評 価手法がある。この評価方法としては、化学物質生態リスク評価のためのノィォアツ セィである藻類生長阻害試験が最も一般的である。藻類生長阻害試験は、経済協力 開発機構 (OECD)のガイドラインに沿って進められている。藻類生長阻害試験は、 化学物質を曝露した状態で藻類を 72時間培養し、生長阻害を測定することによりィ匕 学物質の有害性を評価するものである。
[0003] 上記の藻類生長阻害試験は、生物の増殖能を試験対象とするため操作が煩雑に なるとともに試験結果を得るまで 72時間という長時間を要する。これに対して、例え ば特許文献 1に記載されて!ヽるように、藻類から発せられる遅延発光を計測すること により、化学物質の環境への影響を評価する方法がある。遅延発光とは、光合成機 能を有する生物に対して光を照射した際に、当該光によるエネルギーにより光合成 色素から蛍光発光が生じる現象である。この方法によれば、短時間で化学物質の環 境への評価を行うことができる。
[0004] また、下記非特許文献 1及び 2には、遅延発光が、光合成電子伝達系の主要な反 応である、光化学系 II、プラストキノンプール及び光化学系 Iから発光することを示す ために、光合成電子伝達系の反応方程式から発光モデル式を導出することが記載さ れている。このモデル式は、複数の指数関数力も成る。これら非特許文献には、その モデル式が実験結果に近!ヽ形状を示すことが開示されて!ヽる。
[0005] 更に、下記非特許文献 3にも、複数の指数関数から成る発光モデル式が記載され ている。カロえて、そのモデル式に適当な係数を代入することで、実験結果と類似の変 化が見られることが記載されて 、る。
特許文献 1:国際公開第 2005Z062027号パンフレット
非特許文献 1 : Von G. KRETSCH and V. GERHARDT, "Numerical analysis of delaye dfluorescence Kinetics of algae," E. Schweizerbart ' sche Verlagsbuchhandlung,1987, 29, p.47-54
非特許文献 2 : Hans KRAUSE, Gerd KRETSCH, and Volkmar GERHARDT, "DIFFE RENTIALEQUATIONS FOR DELAYED FLUORESCENCE KINETICS IN LIVING P LANTb, Journal ofLuminescence, Elsevier Science Publishers B.V., 1984, 31 & 32( 1984),p.885-887
非特許文献 3 : Werner Schmidt and Horst Senger, "Long-term delayed luminescence in Scenedesmus obliquus II Influenceof exogeneous factors, Biochimica etBiophysic a Acta, Elsevier Science Publishers, 1987, 891(1987), p.22-27
発明の開示
発明が解決しょうとする課題
[0006] 特許文献 1に記載された方法では、藻類等の光合成機能を有する植物性サンプル をィ匕学物質に曝露して、当該植物性サンプル力も発生する遅延発光の発光量の時 間変化を計測する。その減衰曲線の形状及び特徴点に注目し、化学物質の曝露に よる変化を評価することで化学物質の環境への評価を行う。この評価方法の場合、 ( 検査者による)減衰曲線の変化の特徴点の設定が重要であるが、特徴点の設定は 任意のため無限の可能性がある。特徴点の設定が十分でな 、場合や適切でな!、場 合には、その変化を検出することができな力 た。また、特徴点を増やせば評価要素 が多くなり、解析が煩雑になっていた。そこで、より適切かつ簡易に化学物質の環境 への影響を評価できる方法が求められていたが、上記日特許文献 1〜3に記載の手 法を用いても、その要求に応えることはできない。
[0007] 本発明は、以上の問題点を解決するために、評価試料に含まれる光合成サンプル の光合成機能を適切かつ簡易に評価することができる光合成サンプルの評価方法、
光合成サンプルの評価システム及び光合成サンプルの評価プログラムを提供するこ とを目的とする。
課題を解決するための手段
[0008] 本発明の光合成サンプルの評価方法は、光合成機能を有する光合成サンプルか ら発生する遅延発光の発光量の経時データに基づ!/、て、光合成サンプルの状態を 評価する光合成サンプルの評価方法であって、経時データにおける複数の時間帯 に対して特徴を示す特徴値を算出する特徴値算出ステップと、特徴値を重み付けす ることにより評価値を算出する評価値算出ステップと、評価値に基づいて光合成サン プルの状態を評価する評価ステップとを備えることを特徴とする。
[0009] また、本発明の光合成サンプルの評価システムは、光合成機能を有する光合成サ ンプルカ 発生する遅延発光の発光量の経時データに基づ 、て、光合成サンプル の状態を評価する光合成サンプルの評価システムであって、経時データにおける複 数の時間帯に対して特徴を示す特徴値を算出する特徴値算出手段と、特徴値を重 み付けすることにより評価値を算出する評価値算出手段と、評価値に基づいて光合 成サンプルの状態を評価する評価手段とを備えることを特徴とする。
[0010] また、光合成サンプルの評価プログラムは、コンピュータに、光合成機能を有する光 合成サンプルから発生する遅延発光の発光量の経時データに基づ 、て、光合成サ ンプルの状態を評価させるための光合成サンプルの評価プログラムであって、経時 データにおける複数の時間帯に対して特徴を示す特徴値を算出する特徴値算出処 理と、特徴値を重み付けすることにより評価値を算出する評価値算出処理と、評価値 に基づいて光合成サンプルの状態を評価する評価処理とを実行させることを特徴と する。
[0011] このような光合成サンプルの評価方法、光合成サンプルの評価システム及び光合 成サンプルの評価プログラムによれば、光合成サンプルから発生する遅延発光の発 光量の経時データにおける複数の時間帯に対して特徴を示す特徴値が算出され、 算出された特徴値が重み付けされる。そして、算出された評価値に基づいて光合成 サンプルの状態が評価される。これにより、評価に有効な特徴値のみを採用すること が可能になり、その結果、評価試料に含まれる光合成サンプルの光合成機能を適切
かつ簡易に評価することができる。
[0012] 本発明の光合成サンプルの評価方法では、特徴値算出ステップは、経時データが 、予め設定された複数の関数の和としてフィッティングするように、当該複数の関数の 係数値を特徴値として決定するフィッティングステップを含み、評価値算出ステップで は、フィッティングステップにお 、て決定された係数値に基づ 、て評価値を算出する 、ことが好ましい。
[0013] また、本発明の光合成サンプルの評価システムでは、特徴値算出手段は、経時デ ータが、予め設定された複数の関数の和としてフィッティングするように、当該複数の 関数の係数値を特徴値として決定するフィッティング手段を含み、評価値算出手段 は、フィッティング手段により決定された係数値に基づいて評価値を算出する、ことが 好ましい。
[0014] また、本発明の光合成サンプルの評価プログラムでは、特徴値算出処理は、経時 データが、予め設定された複数の関数の和としてフィッティングするように、当該複数 の関数の係数値を特徴値として決定するフィッティング処理を含み、評価値算出処 理は、フィッティング処理により決定された係数値に基づいて評価値を算出する、こと が好ましい。
[0015] これらの場合、予め設定された複数の関数の和が遅延発光の発光量の経時データ にフィッティングするように決定された、当該関数の係数値に基づ 、て評価が行われ る。従って、上記の関数に従った客観的かつ機械的な評価が可能となる。また、遅延 発光の発光量の経時データを、複数の関数の和にフィッティングさせているので、遅 延発光のメカニズムに基づいた評価が可能である。即ち、本発明に係る光合成サン プルの評価方法によれば、評価試料に含まれる光合成サンプルの光合成機能を適 切かつ簡易に評価することができる。
[0016] 本発明の光合成サンプルの評価方法では、評価値算出ステップにおいて算出され る評価値が、複数の関数のうち少なくとも 1つの関数の係数値に基づ 、て算出される 面積値であることが好ましい。この構成によれば、より簡易に評価を行うことができる。
[0017] 本発明の光合成サンプルの評価方法では、関数が、山型の関数であることが好ま しい。この構成によれば、更に遅延発光のメカニズムに近いフィッティングが可能とな
るので、更に適切な評価を行うことができる。
[0018] 本発明の光合成サンプルの評価方法では、関数が、ローレンツ関数であることが好 ましい。この構成〖こよれば、当該具体的な評価基準で確実に評価を行うことができる
[0019] 本発明の光合成サンプルの評価方法では、 a , b , c (i= l, 2, 3)を複数の関数の 係数値、 tを基準時刻からの経過時間を示す変数としたときに、複数の関数が、それ ぞれ、
であることが好ましい。この構成によれば、当該具体的な評価基準で確実に評価を 行うことができる。
[0020] 本発明の光合成サンプルの評価方法では、評価値算出ステップおいて算出される 評価値が、複数の関数うち少なくとも 2以上の関数の係数を含む演算式に基づいて 算出されることが好ましい。この構成によれば、遅延発光のメカニズムを考慮した評価 を行うことができる。
[0021] 本発明の光合成サンプルの評価方法では、 a , b , c (i= l, 2, 3)を複数
の関数の係数値、 tを基準時刻からの経過時間を示す変数とし、 b < b < bとしたと
1 2 3 きに、複数の関数が、それぞれ、
[数 2]
10 I ) lQ +a2 hl ) 1 (J l + a3 3 ) であり、
m (j = l 9)を定数としたとき、評価値が、演算式
[数 3] 評価値 =
· x m9 - Cj ) により算出されることが好ましい。この構成によれば、当該具体的な評価基準で確実 に評価を行うことができる。
[0022] 本発明の光合成サンプルの評価方法では、光合成サンプルから発生する遅延発 光の経時的な発光量を計測して、当該計測データを経時データとする計測ステップ を更に含むことが好ましい。
[0023] また、本発明の光合成サンプルの評価システムでは、光合成サンプルから発生す る遅延発光の経時的な発光量を計測して、当該計測データを経時データとする計測 手段を更に含むことが好まし 、。
[0024] また、本発明の光合成サンプルの評価プログラムでは、光合成サンプルから発生 する遅延発光の経時的な発光量を計測して、計測されたデータを経時データとする 計測処理を更に含むことが好ま 、。
[0025] これらの構成によれば、実測データ力も評価を行うことができ、より適切な評価を行 うことができる。
[0026] 本発明の光合成サンプルの評価システムでは、光合成サンプルに対して、照射条 件を変更して励起光を照射するよう光源を制御する光源制御手段を更に含むことが 好ましい。この場合、システム内で光源を制御することで、照射条件をより簡易に変更 することができる。
[0027] 本発明の光合成サンプルの評価方法では、計測ステップは、光合成サンプルに第 1の励起光を所定の第 1の照射条件で照射する第 1励起ステップと、第 1励起ステツ プの後、光合成サンプルに第 2の励起光を第 1の照射条件と比較して光エネルギー 積算値が小さい第 2の照射条件で照射する第 2励起ステップと、を備え、特徴値算出 ステップでは、第 2励起ステップの後に得られた経時データに基づ!/、て特徴値が算 出される、ことが好ましい。
[0028] また、本発明の光合成サンプルの評価プログラムでは、計測処理は、光合成サンプ ルに第 1の励起光を所定の第 1の照射条件で照射する第 1励起処理と、第 1励起処 理の後、光合成サンプルに第 2の励起光を第 1の照射条件と比較して光エネルギー 積算値が小さい第 2の照射条件で照射する第 2励起処理と、を実行し、特徴値算出 処理は、第 2励起処理の後に得られた経時データに基づいて特徴値を算出する、こ とが好ましい。
[0029] これらの場合、評価試料に対して、まず、第 1の励起光が照射される。その後、この
評価試料に、第 1の励起光よりもエネルギー積算値が小さくなるように設定された照 射条件で第 2の励起光が照射される。そして、第 2の励起光の照射が終了すると、評 価試料からの遅延発光の発光量が測定される。そのため、遅延発光の発光量の測 定条件を一定にすることが可能となり、その結果、遅延発光の発光量をより精度高く 測定することができる。なお、エネルギー積算値とは、光合成サンプルにとっての光 エネルギー積算値のことを!、う。
[0030] 本発明の光合成サンプルの評価方法では、測定ステップでは、第 2の照射条件を 変更して、発光量を複数回繰り返し測定することにより、複数の経時データを取得す ることが好ましい。
[0031] また、本発明の光合成サンプルの評価プログラムでは、計測処理では、第 2の照射 条件を変更して、発光量を複数回繰り返し測定することにより、複数の経時データを 取得することが好ましい。
[0032] これらの場合、第 1の励起光の照射から遅延発光の発光量の測定までの処理は、 第 2の照射条件を変更しながら複数回繰り返される。そして、測定された各発光量に 対応した評価値が導出され、この評価値に基づいて評価試料が評価される。このよう に、比較的短い時間内で第 2の照射条件を変更しながら遅延発光の発光量の測定 を複数回行うことで、外的要因に影響されることなぐ評価試料に含まれる光合成サ ンプルの光合成機能を適切に評価することが可能となる。
[0033] 本発明の光合成サンプルの評価方法では、第 2の照射条件は、第 1の励起光の照 射終了時力も第 2の励起光の照射開始時までの待機時間であることが好ましい。
[0034] この場合、第 2の励起光の照射開始時期を変更して、第 1の励起光の照射から遅 延発光の発光量の測定までの処理が行われる。第 2の励起光の照射をいつ開始す る力 (待機時間をどのくらい設ける力 ということは、光合成サンプルの酸化還元状態 の変化と密接に関係する。そのため、第 2の励起光の照射開始時期を変更して得た 遅延発光の発光量に基づ!、て評価値を導出することで、評価試料に含まれる光合 成サンプルの光合成機能を適切に評価することができる。また、第 2の照射条件を変 更するためには、待機時間を変更すれば足り励起光自体を変える必要がな 、ので、 光合成サンプルの酸化還元状態が異なる状況を容易に設定することができる。
[0035] 本発明の光合成サンプルの評価方法では、第 2の照射条件は、第 2の励起光の光 量、波長、パルス幅及び照射時間のうち少なくとも一つであることが好ましい。
[0036] この場合、第 2の励起光の光量、波長、パルス幅及び照射時間のうち少なくとも一 つを変更して、第 1の励起光の照射力 遅延発光の発光量の測定までの処理が行わ れる。変更されるこれらの条件は、光合成サンプルの酸ィ匕還元状態の変化と密接に 関係するものである。そのため、これらの要素のうち少なくとも一つを変更して得た遅 延発光の発光量に基づ 、て評価値を導出することで、評価試料に含まれる光合成 サンプルの光合成機能を適切に評価することができる。
[0037] 本発明の光合成サンプルの評価方法では、評価ステップは、評価値算出ステップ において算出された評価値と当該評価値の参照データとを比較する比較ステップを 含むことが好ましい。この構成によれば、評価に適した評価値を設定して、それを参 照データと比較することにより、より明確に評価を行うことができる。
[0038] 本発明の光合成サンプルの評価方法では、第 2の光合成サンプルから発生する遅 延発光の経時的な発光量を計測して、当該計測データ力 比較ステップにおける参 照データを導出する参照データ生成ステップを更に含むことが好ましい。この構成に よれば、参照データに関しても実測データ力も評価を行うことができ、更に適切な評 価を行うことができる。
[0039] 本発明の光合成サンプルの評価方法では、特徴値は、時間帯毎に積算した積算 値であることが好ましい。
[0040] この場合、ある測定時間帯における遅延発光の発光量の積算値が算出され、その 積算値に基づいて評価値が導出される。このような積算値を用いることで、遅延発光 の発光量の経時変化に現れる、ある測定時間帯における光合成サンプルの酸ィ匕還 元状態を簡易かつ適切に抽出することが可能となる。その結果、評価試料に含まれ る光合成サンプルの光合成機能をより適切に評価することができる。また、測定時間 帯を複数設け各測定時間帯の積算値を算出した場合には、遅延発光の発光量の経 時変化を適切に把握することが可能となる。そのため、この複数の測定時間帯にわた る経時変化を利用して、評価試料に含まれる光合成サンプルの光合成機能を適切 に評価することができる。
[0041] 本発明の光合成サンプルの評価方法では、評価ステップでは、光合成サンプルに 供された環境要因を評価することが好ま U、。
[0042] また、本発明の光合成サンプルの評価システムでは、評価手段は、光合成サンプ ルに供された環境要因を評価することが好ま 、。
[0043] また、本発明の光合成サンプルの評価プログラムでは、評価処理は、光合成サンプ ルに供された環境要因を評価することが好ま 、。
[0044] これらの場合、環境要因が評価試料中の光合成サンプルに与える影響を適切に評 価することができる。
[0045] 本発明の光合成サンプルの評価方法では、環境要因が、植物性細胞の生長阻害 物質であることが好ましい。この構成によれば、植物性細胞の生長阻害物質に対して 、生長の阻害度合等の有害度を評価することができる。
発明の効果
[0046] 本発明によれば、評価試料に含まれる光合成サンプルの光合成機能を適切かつ 簡易に評価することができる。
発明を実施するための最良の形態
[0047] (第 1実施形態)
以下、図面とともに、本発明の第 1実施形態を詳細に説明する。本実施形態では、 本発明に係る光合成サンプルの評価方法、評価システム及び評価プログラムの一実 施態様として、環境要因の評価方法、評価システム及び評価プログラムについて説 明する。なお、図面の説明においては同一要素には同一符号を付し、重複する説明 を省略する。
[0048] 本発明は、評価対象の環境要因に曝露された光合成機能を有する植物性サンプ ルから発生する遅延発光の発光量の経時データに基づ 、て、環境要因の環境への 影響を評価するものである。環境要因としては、主に、生物の生育に対して影響を与 え得る物質を評価対象とする。例えば、評価対象物質を含むと推定される河川水、 井戸水、工場排出物などが挙げられる。遅延発光は以下のようにして生じる。つまり、 光合成機能を有する生物に対して光を照射した際の反応において、同化色素 (光合 成色素)に吸収された光エネルギーが電子伝達経路により化学的エネルギーとして
生物反応中に伝達される。その伝達過程で、化学エネルギーの一部が逆反応を起こ し、光合成色素がその化学エネルギーにより再励起される。このようにして再励起さ れた光合成色素から蛍光発光が生じる。この蛍光発光が遅延発光とされる。なお、遅 延発光は、遅延蛍光と呼ばれることもあり以下総称して遅延発光とする。
[0049] まず、本発明に係る環境要因の評価方法の理論的背景について説明する。なお、 以下に示す理論的背景は、本願発明者の鋭意研究により得られたものであり、本願 にお!/、て初めて開示されるものである。
[0050] 環境要因の 1つである化学物質を曝露した藻類の遅延発光の発光量の時間変化 を解析した結果、遅延発光は、異なるエネルギーに由来するフオトンが、異なるタイミ ングで重複して発光しているという結果が得られた。更に、これらの異なるエネルギー 源は、藻類の代謝における化学反応の影響によりその関係が変化することが判った 。異なるエネルギー源は、藻類の代謝における化学反応の中心 (光化学系、プラスト キノンプール等の電子貯蔵部)であると推測される。
[0051] このことを、遅延発光のメカニズムを示す図 1を用いて説明する。藻類は、光を受け て光合成代謝を行い、細胞を生長させる。光合成反応では、光合成色素により吸収 された光エネルギーが、複数の化学反応により伝達され細胞生長に必要なエネルギ 一に変換される。その過程で、図 1に示すように酵素発生、光一化学エネルギー変換 、及び C02吸収等の遅延発光のエネルギー源となる反応が順次発生する。これらに よるフオトンの発光が異なるタイミングで発生し、それらの発光の和が藻類全体の遅 延発光として、計測される。
[0052] これらのフオトンの発光各々を関数として表し、遅延発光 (全体)の発光量の時間変 化をそれらの関数の和としてフィッティングできることが判った。フィッティングは、後述 するように係数値を変数とした関数を予め設定しておき、係数値を決定することにより 行う。このことにより、一見複雑な遅延発光の計測結果を、フィッティングした関数の 係数値として簡略ィ匕して表現することが可能になる。フィッティングには複数の関数の 和となるものを用いる。関数の数を増やすほど正確にフィッティングすることができる。
[0053] また、フィッティングするための関数としては、山型の関数を用いることが好ましい。
山型の関数とは、形状が山型になる関数のことで、所定の変数値において関数値が
最大値となり、当該所定の変数値以下の変数値では単調非減少、当該所定の変数 値以上の変数値では単調非増加な関数である。具体的には、ローレンツ関数 (コー シー分布)、二次関数、正規分布関数等により構成することができる。図 1に示すよう に、各々のエネルギー源に対応した遅延発光の発光量の時間変化が山型になって おり、それに対応し、より正確なフィッティングが可能になるからである。より正確なフィ ッティングは、より正確な評価を可能にする。なお、山型の関数の頂点力 時間軸に お!、て 0以下になる場合、指数関数や対数関数等の単調非増加な関数で代替する こととしてもよい。本実施形態では、このような関数も山型の関数に含まれる(最大値 をとる変数値が—∞の山型の関数と解釈できる)。
[0054] 遅延発光の発光量の時間変化をフィッティングするために必要な複数の関数は、 最大値の現れる順に左から 1番目、 2番目…と識別することができる。図 1にもあるよう に、最大値の現れる順が遅くなる(時間軸上の値が大きくなる)につれ、そのフオトン 成分は細胞力 放出されるタイミングが遅くなつていることを表し、細胞中でより進ん だ代謝反応に由来すると考えられる。
[0055] 有害な環境要因が藻類に作用すると細胞内の代謝が変化し、遅延発光の発光量 の時間変化が、環境要因が作用しない場合と比較して異なるものとなる。植物性サン プルに有害な環境要因を曝露しない場合とした場合の遅延発光の発光量の変化を 、図 2に示す。図 2 (a)、(b)は、それぞれ環境要因として無機水銀及び除草剤を用い た場合の遅延発光の時間変化を示したグラフである。これらに示すように、環境要因 は遅延発光に影響を及ぼし、また、環境要因ごとに遅延発光に対する影響は異なる
[0056] 図 2 (a)及び (b)にそれぞれ対応する、模式的なグラフを図 2 (c)及び (d)に示す。
図 2 (c)及び (d)に示すグラフでは、発光量をエネルギー源ごとに表して 、る(グラフ における一つの山が一つのエネルギー源に対応している)。これらに示すように、環 境要因の影響は、エネルギー源それぞれに異なって及ぼされる。その発光量の変化 としてフィッティングした各関数の係数値が変化する。このうち、環境要因により藻類 の生長が阻害される場合は、主として 2番目以降の関数の係数値に変化が現れる。 このことから、細胞生長は代謝の中でもより進んだ反応に関連するため、最大値の現
れる順が遅い関数に注目することにより、評価することができると考えられる。
[0057] 遅延発光に含まれるフオトンは、図 1に示すようにその発生源に相互作用があるた め、異なる関数の関係を評価することにより、より正確に代謝の状態を知ることができ る。この為、異なる関数の係数値を演算した演算値を用いると、細胞内の情報を評価 する上で役に立つ。詳細には後述する。
[0058] なお、遅延発光の発光量を関数にフィッティングする方法は、例えば、 Journal of Ph otocnemistry ana Photobiology B:
Biology 78 (2005)235-244 Further analysis of delayed luminescence of plantsに 載されている。し力しながら、この文献に記載された方法は、本発明のように複数の 関数にフィッティングさせるものではなぐ一つの関数にフィッティングさせるものであ る。一つの関数では、図 1に示すような複数のエネルギー源が存在するような、遅延 発光の発光量の時間変化を正確にフィッティングすることができない。即ち、上記の 従来技術の方法では、正確な評価を行うことが難しい。以上が、本発明の理論的背 景である。
[0059] 引き続き、本実施形態に係る環境要因の評価方法及び評価システムを説明する。
図 3に、本実施形態に係る当該評価システム 1の構成を示す。図 3に示すように、本 実施形態に係る環境要因の評価システム 1は、計測装置 10と、評価装置 12と、制御 装置 14とを備えて構成される。計測装置 10と評価装置 12とは、ケーブルにより接続 されており互いに情報の送受信を行うことが可能になっている。評価装置 12と制御 装置 14とは、ケーブルにより接続されており互いに情報の送受信を行うことが可能に なっている。また、計測装置 10と制御装置 14とは、評価装置 12を介して、互いに情 報の送受信を行うことが可能になっている。
[0060] 計測装置 10は、光合成機能を有する植物性サンプル力も発生する遅延発光の経 時的な発光量を計測する装置である。ここで、植物性サンプルには、評価対象の環 境要因に曝露されたものを含む。計測装置 10は、計測した遅延発光の発光量の経 時データを評価装置 12に入力する。なお、図 3に示す計測装置 10は、計測装置 10 の断面を示したものである。計測装置 10の具体的な構成については後述する。
[0061] 評価装置 12は、計測装置 10からの遅延発光の発光量の経時データの入力を受け
付けて、当該経時データに基づ 、て環境要因の環境への影響を評価するものである 。ここで、環境への影響は、具体的には例えば、藻類の生長に対する阻害の影響等 である。評価装置 12は、具体的には PC (Personal
Computer)等が相当し、 CPU (Central Processing Unit)やメモリ等のハードウェアに より構成されている。評価装置 12は、これらのハードウェアの構成要素がプログラム 等により動作することにより、後述する各機能が発揮される。なお、図 3に示す評価装 置 12は、評価装置 12の機能を示したものである。
[0062] 制御装置 14は、 CPU (Central Processing Unit)やメモリ等のハードウェアを備えて おり、計測装置 10に対して制御信号を送信して計測装置 10の動作の制御を行う。 続いて、計測装置 10と評価装置 12とをより詳細に説明する。
[0063] 図 3に示すように、計測装置 10は、設置部 16と、光源 18と、光検出器 20と、フィル タ 22と、集光光学系 24と、シャツタ 26とを備えている。また、計測装置 10は、筐体 28 を有しており、当該筐体 28内に上記の各構成要素が配置されている。筐体 28は、内 部に光が入り込まな ヽように、それ自体が光を遮断する遮光部材で形成されて ヽる 力 光を遮断する塗料等を塗布した部材で形成される。筐体 28は、その一端に導入 口 30が形成された本体部 32と、当該導入口 30を閉塞することが可能な蓋部 34とか らなる。蓋部 34の開閉は、制御装置 14により監視 '制御されており、シャツタ 26が開 いた状況にあっては、光センサ 20に筐体 28の外部からの光が入射しないように、蓋 部 34は開閉できな!/、ようにロックされる。
[0064] 設置部 16は、計測対象の環境要因及び植物性サンプル (例えば、化学物質及び 植物性サンプルが含まれる溶液)を入れた容器を設置するためのものである。設置 部 16は、上記の導入口 30から容器を設置することができる位置に設けられる。設置 部 16は、例えば、容器固定用の固定爪を有し、この固定爪で容器を固定する。
[0065] 光源 18は、遅延発光を発生させるために、設置部 16に設置された容器中の植物 性サンプルに所定波長の光を照射するものであり、植物性サンプルに対し光が照射 できる位置及び方向に設けられる。光源 18から照射される光の波長は、 280ηπ!〜 8 OOnmである。ここで、光源は、単色光源であっても、複数の光源を組み合わせたも のであってもよい。光源 18からの光の照射は、任意の所定時間連続させてもよいし、
任意のパターンでパルス点灯させてもよい。また、同一又は異なる波長特性を有する 複数の光源を順番に発光させたり、複数の光源を同時に発光させたりしてもよい。光 源 18による光の照射は、制御装置 14により制御される。
[0066] 光検出器 20は、光源 18から光が照射されたことにより、植物性サンプル力も発生 する遅延発光の発光量を計測するものである。光検出器 20は、遅延発光を検知する 光センサ 20aと、光センサ 20aが検知して出力する信号に基づ 、て遅延発光の発光 量を算出して出力する遅延発光量算出部 20bとを有している。光検出器 20は、遅延 発光が検出することができる位置及び方向に設けられる。光検出器 20は、具体的に は、光電子増倍管ゃフオトンカウンタ等により構成される。遅延発光量算出部 20bか ら逐次、出力される発光量の情報は経時データとして、評価装置 12に入力される。
[0067] フィルタ 22と、集光光学系 24と、シャツタ 26とは、設置部 16と光検出器 20との間に 、設置部 16側カゝら順番に設けられている。フィルタ 22は、筐体 28の内壁面に接する ように設けられ遅延発光を透過するものである。集光光学系 24は、微弱な遅延発光 を集光、反射及び透過して、光検出器 20に入力させるものである。シャツタ 26は、開 閉自在にされており、閉じているときには遅延発光を遮断するようになっている。必要 なときのみ、光検出器 20により遅延発光が検出されるようにするためである。シャツタ 26の開閉は、制御装置 14により制御される。以上が、計測装置 10の構成である。
[0068] 図 3に示すように、評価装置 12は、受付部 36と、フィッティング部 38と、評価部 40と 、出力部 42とを備えている。受付部 36は、植物性サンプル力も発生する遅延発光の 発光量の経時データの入力を受け付ける受付手段である。当該入力は、計測装置 1 0 (の遅延発光量算出部 20b)力もの入力である。ここで、発光量の経時データは、植 物性サンプルが評価対象の環境要因に曝露されたもの (評価対象の化学物質が溶 液に含まれるもの)と曝露されて ヽな ヽもの (評価対象の化学物質が溶液に含まれて いないもの)との両方のデータが入力される。受け付けられたデータは、フイツティン グ部 38に送信される。
[0069] フィッティング部 38は、受付部 36により入力が受け付けられた経時データ力 予め 設定された複数の関数の和としてフィッティングするように、当該複数の関数の係数 値を決定するフィッティング手段である。フィッティング部 38には、関数の情報を予め
記憶させておく。関数としては、上述したように山型の関数を用いることが好ましい。 複数の関数としては、具体的には例えば、 ai, bi, ci (i= l, 2, 3)を複数の関数の係 数値、 tを基準時刻からの経過時間 (励起後時間)を示す変数としたときに、それぞれ 画
A
1 (J 1 、 Q - 10 のようなローレンツ関数 (コーシ一分布)を用いることが好まし 、。フィッティングに用い る複数の関数の和としては、
[数 5] ( )= io1+。'")2 + ιο1+ (' + 10ι+α"'— ' ...(1)
となる。ここで、 tの基準時刻としては例えば、光源 18からの光の照射が終了した時刻 力も予め設定した所定の時間が経過した時刻とする。図 4に示したように、上記の各 関数における、 aiは時間方向への広がり、 biは発光量が最大値を取る t (励起後時間 )、 ciは最大値の極大値に影響する。なお、式(1)において右辺の第 1項、第 2項、第 3項を、それぞれ時間軸上で最大値の現れる順番で、第 1関数、第 2関数、第 3関数 というように表す。即ち、複数の関数の係数において、 bl < b2く b3の関係が成立す る。上記のように 3つの関数の和とするのは、図 1等に示すように、異なる 3つのフォト ンのエネルギー源となる反応が存在すると考えられる力もである。なお、フオトンのェ ネルギ一源となる反応が 3つ以外になるような場合は、それに合わせた数にするのが よい。また、フィッティングに用いる複数の関数は、上記の関数以外でも、二次関数、 正規分布関数等の山型の関数を用いてもょ 、。
但し、山型の関数を用いなくても、よくフィッティングする関数であれば、その関数を 用いることとしてもよい。例えば式(1)の関数に更に係数 di (i= l, 2, 3)を加えた、以 下の式で表される関数を用いてもよ!ヽ。
このように係数を増加させることにより、フィッティングの自由度を広げることができる。
[0071] また、フィッティング部 38には、フィッティングを行うためのアルゴリズムについても予 め記憶させておく。フィッティングのアルゴリズムとしては、具体的には、非線形解析 法の一種であるシンプレックス法や、 Gauss- Newton法、 Davidon
Fletcher Powell法、 Brent法等、モンテカルロ法及びシミュレ一テッド 'アニーリング法 等を用いることができる。なお、フィッティングの条件は、植物性サンプルの種類や計 測条件に合わせて設定することもできる。フィッティング部 38で決定された係数値は 、評価部 40に送信される。
[0072] 評価部 40は、フィッティング部 38により決定された係数値に基づいて、環境要因の 環境への影響を評価する評価手段である。ここでの評価は、具体的には影響の度合 (有害性)を数値ィ匕したり、当該数値化された値を用いて有害か無害力の判定を行つ たりすることである。
[0073] 図 3に示すように、評価部 40は、上記の評価を行うために評価値算出部 44と、比 較部 46とを含む。評価値算出部 44は、フィッティング部 38により決定された係数値 から影響を評価するための評価値を算出する評価値算出手段である。評価値の算 出は、例えば、評価値算出部 44が予め記憶している評価値を算出するための式に 基づいて行われる。
[0074] 上述したように、遅延発光の原因となるフォトンは、その発生源が複数でありそれら の間に相互作用があるため、異なる関数の関係を評価することにより、より正確に代 謝の状態を知ることができる。このため、異なる関数の係数値力 算出した評価値を 用いると、細胞内の情報を評価する上で役に立つ。評価値は、具体的には、演算式 [数 7] ィ面ィ ϊ££" = (i m · a3 x mつ · b3 m^ - c^ )/(mA - a2 x m= ' b2 x m c2 ))/ (?w, · x m^■ x m9 · c ) - - - iz) に基づいて導出されることが好ましい。ここで mj (j = l〜9)は、予めあるいは評価処 理において適宜、設定される定数である。図 5に示すように、フオトンのエネルギー源 の相互作用を表現したものであるからである。このように、算出される評価値は、複数 の関数うち少なくとも 2以上の関数の係数を含む演算式に基づいて算出されることが 好ましい。関数により表される、フオトンのエネルギー源の相互作用を考慮した評価
が可能となるからである。なお、評価値は必ずしも演算式に基づいて演算されたもの でなくてもよぐ係数値そのものを評価値とすることとしてもよい。
[0075] 比較部 46は、評価値算出部 44により算出された評価値と当該評価値の基準デー タとを比較する比較手段である。ここで、基準データとは、例えば、評価対象の環境 要因に曝露されて 、な 、植物性サンプルからの遅延発光に基づ!/、て、上記の各処 理により導出されたデータである。評価部 40は、比較部 46による比較結果に基づい て、評価を行う。具体的には後述する。評価結果の情報は出力部 42に送信される。
[0076] 出力部 42は、評価部 40による評価の情報を出力する出力手段である。具体的に は、例えば、評価装置 12が備えるディスプレイへの出力を行う。出力部 42による出 力により、ユーザは評価内容を確認することができる。出力部 42による出力は、上記 のような画面出力に限られず、例えば別の装置への出力であってもよい。
[0077] 引き続いて、図 6及び 7のフローチャートを用いて、本実施形態に係る環境要因の 評価方法 (環境要因の評価システム 1にお 、て実行される処理)を、環境要因の 1つ である化学物質を例示しながら説明する。
[0078] まず、評価対象の化学物質と、遅延発光を発生させるための植物性サンプルとを 含む溶液である試料 (以下、曝露試料と呼ぶ)を調製する(SO 1、試料調製ステップ) 。調製は具体的には、以下のように行われる。
[0079] 植物性サンプルを用意する(SOla)。植物性サンプルとしては、例えば、藍藻 Spirul ina platensis- 緑藻 Psudokircneneriella
subcapitata等の藻類を用いることが好ましい。吸光度を調整するため、植物性サンプ ルは、 685nmの波長の光の吸光度(OD685)を 1にしておく等、予め定めた吸光度 にした懸濁液にしておく。また、評価対象の化学物質を用意する(S01b)。評価対象 となる化学物質としては、例えば、除草剤シマジン (CAT)や無機水銀等の植物性細 胞の生長阻害物質を用いる。これらの化学物質は、試料を調製しやすいように、藻類 培養液体培地 (C培地)に含ませておく。これら用意した植物性サンプルと化学物質 とを混合させ、試料を調製する(SOlc)。例えば、上記の懸濁液 0. 5mlに対して、化 学物質が含まれる藻類培養液体培地 2mlを混合することにより、 OD685 = 0. 2の曝 露試料を得ることができる。なお、試料の調製には、必ずしも本実施形態に係る化学
物質の評価システム 1を用いる必要はな 、が、上記の処理を行う機構を評価システム 1に備えさせておき自動的に行わせてもよ 、。
[0080] 続 、て、調整された曝露試料に遅延発光を発生させ、化学物質の評価システム 1 の計測装置 10を用いて当該遅延発光の経時的な発光量を計測する(S02、計測ス テツプ)。計測は具体的には、以下のように行われる。
[0081] 調整された曝露試料を、計測装置 10の中又は外において、光条件及び温度が所 定の条件に管理された環境で一定時間待機させる(S02a)。この待機は、化学物質 を植物性サンプルに作用させるため、また、植物性サンプルと化学物質とを混合する ことによる条件の変化、例えば光環境や細胞密度の変化などに植物性サンプルを適 応させるためである。待機の条件としては、具体的には例えば、光量 5 /ζ πιο1·πι—2 • s— 1の白色蛍光灯下で 15分間等であることが好ま 、。
[0082] 続いて、待機させた曝露試料を、計測装置 10の中の設置部 16に配置して、光源 1 8からの光の照射を行う(S02b)。上述したように当該光の照射は、植物性サンプル に光合成を行わせるための光であり、植物性サンプルが光合成可能なスペクトルを 含む必要がある。具体的には、例えば、約 300 /z mol'm— 2' s— 1の赤色光(波長: 660nm)を 10秒照射する。なお、光を照射する時間は、予め設定しておく。また、光 の照射を行っている間は、計測装置 10の蓋部 34及びシャツタ 26を閉じた状態にし て、外部力もの光が入り込まないようにしておく。
[0083] 予め設定された照射する時間が経過したら、光源 18による発光を停止させ (S02c) 、シャツタ 26を開く(S02d)。光が照射された曝露試料からは遅延発光が発生する。 集光光学系 24は、曝露試料力 様々な方向に放出される遅延発光を、集光、反射 及び透過により光検出器 20に入射するように導く。光検出器 20は、集光光学系 24 により入射された遅延発光の発光量を計測する(S02e)。計測は、予め設定された 時間の間連続的に行われ、経時的な発光量が計測される。具体的には、例えば、 0 . 1秒間隔で 50秒間、発光量が計測される。なお、光検出器 20は、光源 18から光が 照射されて 、る間は、シャツタ 26及び筐体 28により外部力も光が入射しな 、ように保 護されている。
[0084] 予め設定された計測する時間が経過したら、シャツタ 26が閉じられ (S02f)、光検
出器 20による計測が終了する。計測装置 10 (に備えられる光検出器 20の遅延発光 量算出部 20b)から、遅延発光の計測データを評価装置 12に入力する(S02g)。入 力される評価データは、例えば、励起後時間の情報と発光量の情報とが対応付けら れたものである。グラフに表すと、例えば、図 10に示すようなものとなる。
[0085] 遅延発光の発光量の経時データである計測データが入力された評価装置 12では 、受付部 36が当該入力を受け付ける(S03 (S03a)、受付ステップ)。入力された遅 延発光の発光量の経時データは、フィッティング部 38に送信される。
[0086] 続いて、評価装置 12では、フィッティング部 38が、入力された遅延発光の発光量の 経時データが、複数の関数の和としてフィッティングするように、当該複数の関数の係 数値を決定する(S04、フィッティングステップ)。フィッティングは具体的には、以下の ように行われる。
[0087] まず、フィッティング部 38は、フィッティングの条件を設定する(S04a)。フイツティン グの条件の設定とは具体的には、例えば、フィッティングに用いる関数の種類を決定 すること、関数の係数値の一部を予め設定した固定値に設定(固定されていない係 数値は、フィッティングステップにおいて決定される)すること、後述するフィッティング 終了条件で用いる誤差の許容範囲を設定すること等である。この設定は、計測に用 Vヽた植物性サンプルの種類や計測条件に合わせて行われることが好ま ヽ。条件の 設定は、ユーザにより予め入力された情報に基づいて行われてもよいし、予めフイツ ティング部 38が保持して!/、るルールに基づ 、て行われてもよ!/、。
[0088] 続!、て、フィッティング部 38は、フィッティングを行う(S04b)。フィッティングは、関 数の変数値が励起後時間に、関数値が発光量にそれぞれ対応するように行われる。 また、フィッティングは、フィッティング部 38が予め記憶しているアルゴリズムに基づい て行われる。このフィッティングにより、各関数の係数値が決定される。例えば、上記 の式(1)で表される関数を用いた場合は、 ai, bi, ci(i= l, 2, 3)のそれぞれの値が 決定される。
[0089] 続いて、フィッティング部 38は、フィッティング結果がフィッティング終了条件を満た している力否かの判定を行う(S04c)。フィッティング終了条件としては、例えば、フィ ッティング結果と計測結果との間の誤差が所定の許容範囲内にあること、係数値及
び係数値同士の関係が所定の許容範囲内にあること等である。フィッティング終了条 件を満たしていた場合、フィッティングを終了し、決定した関数値を含むフィッティング に関する情報が評価部 40に送信される。フィッティング終了条件を満たして 、な!/、場 合は、改めてフィッティングの条件を設定して(S04a)、再度フィッティングを実行する (S04b)。
[0090] 続いて、評価装置 12では、評価部 40に含まれる評価値算出部 44が、フイツティン グ部 38により決定された係数値から、化学物質の環境への影響を評価するための評 価値を算出する(S05、評価値算出ステップ、評価ステップ)。評価値には、係数値の 一部又は全部を評価値として使用するものと、係数値を所定の演算式に基づいて演 算すること〖こより得られるものと、係数値に基づいて算出された、関数の面積値を評 価値として使用するものとの少なくとも 1つを含む。ここで、関数の面積値とは、関数 のグラフにお 、て、関数値と例えば変数の軸 (本実施形態にぉ 、ては時間軸)等の 基準軸とにより囲まれる領域 (変数の範囲が設定されて 、てもよ 、)の面積値である。 本実施形態においては、関数値は発光量であり、変数の軸は時間軸である。なお、 どのような値を評価値として用いるかは、予め設定されて 、る。
[0091] 係数値を評価値として使用する場合は、係数値が評価値として記録される (S05a) 。一方、演算値を評価値として使用する場合は、評価値算出部 44は、まず、演算条 件の設定を行う(S05b)。演算条件は、例えば、演算に用いる演算式等である。演算 条件の設定は、計測に用いた植物性サンプルの種類や計測条件に基づいて行われ ることが好ましい。続いて、評価値算出部 44は、設定された演算条件に基づいて演 算を行い、演算値を算出する (S05c)。演算値は評価値として、評価値算出部 44に より記録される(S05d)。
[0092] また、面積値を評価値して使用する場合は、まず面積値を算出する関数及び面積 値を算出する時間(t)の範囲を設定する(S05b' )。ここで、面積値はフィッティングに 用 、る関数の全ての関数にっ 、て算出しても良 、し、少なくとも 1つの関数を選択し て算出しても良い。関数の選択は、計測に用いた植物性サンプルの種類や計測条 件に基づいて行われることが好ましい。より具体的には、面積値を算出する関数は、 時間軸上で最大値の現れる順番に基づ 、て選択されても良 、し、また発光量に基づ
いて関数を選択するようにしても良い。例えば、時間軸上で最大値の現れる順番に 基づいて関数を選択する場合、順番が最も遅いものが好ましい。また、別の選択方 法として、下記する基準データと比較して、係数値、評価値等の変化量が最も大きく なる関数を選択しても良い。面積を算出する時間 (t)の範囲の設定については、計 測に用いた植物性サンプルの種類や計測条件に基づ 、て行われることが好まし 、。 より具体的には、時間 (t)の範囲は、遅延発光の計測時間の全範囲であることが好ま しい。また、計測時間の全範囲から一部の時間範囲を選択する場合には、その関数 の最大値力 その半値幅に相当する時間範囲を選択することができる。さらに、計測 時間の範囲内にその関数の最大値からの半値幅に相当する時間範囲が含まれてい ない場合、つまり、計測時間を超える範囲を選択する場合には、例えば、フイツティン グした関数力 半値幅に相当する時間範囲を推定し、その時間範囲を選択すること ができる。続いて、評価値算出部 44は、選択された関数について、その関数に関連 付けられる係数値及び選択された時間 (t)の範囲に基づいて、その面積値を区分求 積等により算出する(S05c' )。具体的には、式(1)における第 3関数に係数値 a3, b 3, c3の値を代入して、選択された時間 (t)の範囲について区分求積を行う。面積値 は評価値として、評価値算出部 44により記録される(S05d' )。面積値による評価は 、単に関数に係る面積値を算出するだけであるので、より簡易な評価を可能にする。
[0093] 続いて、評価装置 12では、評価部 40に含まれる比較部 46が、化学物質の環境へ の影響を評価するために、評価値算出部 44において算出された評価値と当該評価 値の基準データとを比較する(S06、比較ステップ、評価ステップ)。基準データとは、 化学物質の環境への評価を行うために上述のように算出された評価値の比較対象と なりうるデータである。具体的には例えば、化学物質を含まない溶液に混入された光 合成サンプル力 発生する遅延発光の経時的な発光量を計測して、当該計測デー タカ 導出されるデータである。
[0094] このステップまでに、別途、予め基準データを導出しておく(S10、基準データ生成 ステップ)。基準データの生成は、上述した S01〜S05までのステップと同様に行わ れる。但し、 S01における試料の生成においては、評価対象の化学物質を試料に含 まずに行う。なお、各ステップで設定される条件等は、評価対象の化学物質を含む場
合に導出したものと同じものを用いる。
[0095] 評価値の比較は、以下のように行われる。比較部 46が、比較値の算出条件を設定 する(S06a)。比較値とは、比較結果として算出される値のことであり、化学物質の環 境への影響の評価に用いられる。比較値の算出条件は、例えば、算出に用いる演算 式等である。算出式としては、例えば、基準データの評価値に対する曝露試料の計 測データ力 算出された評価値の比率や差分を求めるもの等を用いることができる。 比較値の算出条件の設定は、計測に用いた植物性サンプルの種類や計測条件に 基づ 、て行われることが好まし!/、。
[0096] 続いて、比較部 46は、評価値算出部 44により記録された各評価値を読み出して、 設定した条件に従い比較値を算出する(S06b)。算出された比較値は、比較部 46に より記録される(S06c)。
[0097] 続いて、評価装置 12では、評価部 40が、上記の比較値に基づいて化学物質の環 境への影響を評価する(S07、評価ステップ)。評価は具体的には、以下のように行 われる。評価部 40は、評価条件を設定する(S07a)。評価条件は、具体的には評価 に用いるルール等であり、計測に用いた植物性サンプルの種類や計測条件に基づ いて行われることが好ましい。評価に用いるルールは、予め評価部 40が記憶してい る。
[0098] 続いて、評価部 40が、比較部 46により記録された比較値を読み出して、設定した 条件に従い評価を行う(S07b)。評価は、具体的には例えば、予め用意された比較 値を環境への影響に対応させた評価用のテーブルに比較値を照らし合わせて、環 境への影響を、例えば生長阻害度等の数値として算出する等により行われる。また、 予め閾値を設けておき、比較値が閾値を超えている力否かにより、化学物質の有害 性を有害か無害かという二値的な評価をしてもよい。評価により得られた情報は出力 部 42に送信される。
[0099] 出力部 42は、評価部 40における評価の情報を出力する(S08 (S08a)、出力ステ ップ)。出力は、上述したようにディスプレイ等により画面表示をすること等により行わ れる。出力は、例えば評価に係る数値を表にして出力してもよいし、有害の場合は〇 (マル)を表示し無害の場合は X (バッ)を表示することとしてもよい。また、数値をダラ
フ化したものを表示することとしてもよい。出力された評価の情報は、ユーザに適宜、 参照される。
[0100] 上述したように本実施形態によれば、上記の関数に従った客観的かつ機械的な評 価が可能となる。また、遅延発光の発光量の経時データを、複数の関数の和にフイツ ティングさせているので、遅延発光のメカニズムに基づいた評価が可能である。即ち
、本実施形態に係る環境要因の評価方法によれば、適切かつ簡易に環境要因の環 境への影響の評価を行うことができる。
[0101] また、本実施形態のように、遅延発光を計測することとすれば、実測データに基づ いて評価を行うことができるので、より適切な評価を行うことができる。但し、実測デー タが予め用意できている場合等は、必ずしも遅延発光を計測する必要はなぐ遅延 発光の発光量の経時データの入力力 行うこととしてもよい。
[0102] また、本実施形態のように、評価値を設定してそれらを基準データと比較して評価 することとすれば、評価に適した評価値を設定することにより、より明確に評価を行う ことができる。
[0103] また、本実施形態では触れては!、な 、が、特許文献 1に記載されたように溶液の吸 光度を測定して、吸光度を考慮した評価を行ってもよい。
[0104] 本実施形態においては、測定対象物として溶液中の化学物質を例示したが、河川 水や井戸水、工場排出物 (汚水、土壌、ガスなど)であっても良い。本発明で評価可 能なその他の環境要因としては、光要因、温度要因、酸素要因、炭酸ガス要因、塩 分要因など種々の環境要因が挙げられる。例えば、工場排出ガスの環境に及ぼす 影響を評価する場合には、植物性サンプルが収容される空間内にパイプ等によりェ 場排出ガスを導入すれば良い。また、植物性サンプルに及ぼす温度要因の影響を 評価する場合には、植物性サンプルが収容される空間内に温調装置を設ければ良 い。
[0105] 引き続いて、上述した一連の環境要因の評価を行う処理をコンピュータに実行させ るための環境要因の評価プログラムを説明する。図 8に示すように、環境要因の評価 プログラム 52は、コンピュータが備える記録媒体 50に形成されたプログラム格納領域 50a内に格納されている。
[0106] 環境要因の評価プログラム 52は、環境要因の評価処理を統括的に制御するメイン モジュール 52aと、環境要因に曝露された光合成機能を有する植物性サンプルから 発生する遅延発光の発光量の経時データの入力を受け付ける受付モジュール 52b と、入力が受け付けられた経時データが、予め設定された複数の関数の和としてフィ ッティングするように、当該複数の関数の係数値を決定するフィッティングモジュール 52cと、決定された係数値に基づいて、環境要因の環境への影響を評価する評価モ ジュール 52dと、評価の情報を出力する出力モジュール 52eとを備えて構成される。 受付モジュール 52b、フィッティングモジュール 52c、評価モジュール 52d及び出力 モジュール 52eを実行させることにより実現される機能は、上述した評価装置 12の受 付部 36、フィッティング部 38、評価部 40及び出力部 42の機能とそれぞれ同様であ る。
[0107] なお、環境要因の評価プログラム 52は、その一部若しくは全部が、通信回線等の 伝送媒体を介して伝送され、他の機器により受信されて記録 (インストールを含む)さ れる構成としてちよい。
[0108] 上述した実施形態の実施例を以下に説明する。但し、本発明は以下の実施例に限 定されるものではない。
[0109] 下記実施例では植物性サンプルとして藻類を用いている力 これに限定されるもの ではなぐ光合成機能を有し、遅延発光を放射可能なものであればよぐ例えば植物 性プランクトン、シァノバクテリア、光合成細菌、植物体や葉や又はその細片、カルス などの植物性培養細胞、植物から抽出された光合成小器官やチラコイド膜、さらには 人工的に合成された光合成様機能を持つ膜'タンパク複合体などが挙げられる。好 適には、例えば、藍藻類である Spirulina、緑藻類である Selenastrumや、黄色藻類で ある Isochrysis、また、ホウレンソゥなど力も抽出されたチラコイド膜などが利用できる。
[0110] (実施例 1)
実施例 1では、評価対象の環境要因として除草剤シマジン (CAT)を用いた。遅延 発光を発生する植物性サンプルとしては、藻類 Spirulina platensis (藍藻)を用いた。 シマジンは、 S.
platensisに対して有害物質となる環境要因である。図 9に、シマジンを、濃度を変えて
曝露した場合の S. platensisの生長曲線下面積の変化を示す。図 9のグラフにおいて 横軸はシマジンの濃度、縦軸は生長曲線下面積を示して 、る。
[0111] 生長曲線下面積は、従来の藻類に対する化学物質影響の評価指標である細胞生 長を示すもので、一般的な藻類に対する化学物質の影響評価法 (OECDテストガイ ドライン 201)に準じて算出される。即ち、生長曲線下面積は、 750nm吸光度を 0. 0 3に調製した S.
platensis細胞懸濁液 6mLに対し、化学物質曝露後 72時間にわたり白色蛍光灯(50 μ mol'm— 2' s— 1)で培養を行い、 24時間毎に細胞密度を 750nm吸光度として 計測することにより得られる生長曲線の下面積である。図 9に示すように、シマジンの 曝露濃度に応じて曝露から 72時間後の S.
platensisの細胞生長が阻害されているのがわ力る。
[0112] 本実施例における遅延発光の計測は、以下のように行った。一般的な 10 X 10mm の分光計測用のセル内で、 660nm吸光度を 0. 05に調製した S.
platensis細胞懸濁液 2. 5mLに対し、シマジンを、濃度を変えて曝露し、光量 5 mo I'm— 2' s— 1の白色蛍光灯下で 15分放置する。その後、計測装置 10の内部で、遅 延発光を発生させるための励起光として光源 18から約 300 /z mol'm— 2' s— 1の赤 色光 (660nm)を 10秒照射し、励起光消灯後に発光する遅延発光を 0. 1秒間隔で 5 0秒間記録した。
[0113] 図 10に、シマジン曝露 15分後の S. platensisから発生した遅延発光の発光量の 50 秒間の変化を計測した結果を示す。図 10のグラフにおいて横軸は計測を開始してか らの時間(励起後時間)、縦軸は発光量 (カウントされたフオトンの数)を示している。 図中の「曝露なし」はシマジンを曝露して 、な 、状態で藻類から得られる遅延発光の 変化を、「曝露あり」はシマジンを曝露した状態の藻類から得られる遅延発光の変化 をそれぞれ示している。「曝露なし」の計測結果は、上述した実施形態における基準 データを生成するためのものである。「曝露あり」「曝露なし」の違いは、シマジンによ る影響の有無だけである。シマジンの影響により「曝露あり」では、励起後時間の早い 時間帯 (0秒付近)では発光量が増加し、遅 、時間帯 (5秒以降)では発光量が減少 していることがわ力る。
[0114] S. platensisの遅延発光の発光量は、励起後 15秒付近まで減少した後に、再び 20 秒付近で再増加し、その後更に減少する。この 20秒付近の発光量の増加は、本実 施例の計測条件における、 S.
platensisの細胞内での化学反応によるエネルギーの貯蓄及び再放出によるものであ る。このように、本実施例の計測条件では、 S. platensisは、励起後の時間経過の遅い 時間帯の遅延発光に影響する光合成の後期の段階に多くのエネルギーを貯蓄して 、ることを示して 、る。
[0115] 本実施例においては、フィッティングには上述した式(1)を用いた。フィッティング結 果の説明の一例として、「曝露なし」の計測結果を図 11 (a)に、及び当該計測データ に対してフィッティングした結果のグラフを図 11 (b)にそれぞれ示す。図 11 (b)にお いて、 fl (t)、 f2 (t)、 f3 (t)は、それぞれ式(1)における第 1関数、第 2関数、第 3関 数である。図 11から、遅延発光の計測データは、複数の山型の関数により、フイツテ イングでさることがわかる。
[0116] フィッティングにより、関数の係数である ai, bi, ci (i= l, 2, 3)が決定される。その 結果を以下の表に示す。
[表 1] シマジン曝露濃度 フィッティング式の値
( U g/L) 3ι b, C1 32 b2 C2 33 b3 c3 曝露なし 0 0.1 -0.5 3.6 0.009 - 0.5 3.45 0.0038 24 2.5
5 0.2 -0.5 4.5 0.01 - 0.5 3.5 0.006 22 2.2
25 0.2 -0.5 4.8 0.018 - 0.5 3.8 0.005 22 1 .6 曝露あり
50 0.3 -0.5 5 0.02 -0.5 3.8 0.01 21 1 .2
100 0.4 -0.5 5.5 0.024 一 0.5 3.8 0.02 20 0.7 実施例 1では、係数値を評価値として用いる。
[0117] 評価ステップの一例として、上記の表に示した係数のうち、第 3関数 f 3 (t)の係数の 一つである c3を用いた場合について説明する。第 3関数は、式(1)において、発光 量の最大値をとる時間が最も大きくなる関数であり、本実施例における第 1〜第 3関 数の中では、最も長 、間細胞内に蓄えられて 、るエネルギーを反映すると考えられ る。その中でも、係数値 c3は、山型の関数の高さに関係する値であり、第 3関数の表
すフオトン成分の発光量と最も関連の深 、値である。
[0118] シマジンの曝露濃度による c3の値の変化を図 12に示す。図 12のグラフにおいて、 横軸はシマジンの曝露濃度を、縦軸は c3の値をそれぞれ示している。図 12に示すよ うに、 S.
platensisの遅延発光の発光量の経時データに対する評価値は、シマジンの曝露濃 度に従い減少し、その減少は図 9に示した 72時間後の細胞生長と相関することがわ かる。従って、この比較結果を評価結果とすることができる。
[0119] このように、 S. platensisを植物性サンプルとして用いた場合、フィッティングの結果 得られる係数値を用いることにより、環境要因の環境への影響を評価することができ る。この実施例において、環境要因の環境への影響とは、シマジンの影響により引き 起こされる藻類の生長の阻害である。
[0120] (実施例 2)
実施例 2でも、評価対象の環境要因として除草剤シマジン (CAT)を用いた。遅延 発光を発生する植物性サンプルとしては、藻類 Pseudokirchneriella
subcapitata (緑藻)を用いた。シマジンは、 P. subcapitataに対して有害物質となる環 境要因である。図 13に、シマジンを、濃度を変えて曝露した場合の P.
subcapitataの生長曲線下面積の変化を示す。図 13のグラフにお!/、て横軸はシマジ ンの濃度、縦軸は生長曲線下面積を示している。
[0121] 本実施形態において、生長曲線下面積は、 750nm吸光度を 0. 01に調製した P. s ubcapitata細胞懸濁液 6mLに対し、化学物質曝露後 72時間にわたり白色蛍光灯(5 O ^ mol-m- 2 - s - l)で培養を行!、、 24時間毎に細胞密度を 750nm吸光度として 計測することにより得られる生長曲線の下面積である。図 13に示すように、シマジン の曝露濃度に応じて曝露から 72時間後の P.
subcapitataの細胞生長が阻害されているのがわかる。
[0122] 本実施例における遅延発光の計測は、以下のように行った。一般的な 10 X 10mm の分光計測用のセル内で、 660nm吸光度を 0. 2に調製した P.
subcapitata細胞懸濁液 2. 5mLに対し、シマジンを、濃度を変えて曝露し、光量 5 mol'm—2 ' s— lの白色蛍光灯下で 15分放置する。その後、計測装置 10の内部で
、遅延発光を発生させるための励起光として光源 18から約 300 /z mol'm— 2 ' s— 1 の赤色光(660nm)を 10秒照射し、励起光消灯後に発光する遅延発光を 0. 1秒間 隔で 50秒間記録した。
[0123] 図 14に、シマジン曝露 15分後の P. subcapitataから発生した遅延発光の発光量の 50秒間の変化を計測した結果を示す。図 14のグラフにおいて横軸は計測を開始し てからの時間 (励起後時間)、縦軸は発光量 (カウントされたフオトンの数)を示してい る。シマジンの影響により「曝露あり」では、励起後時間の早い時間帯 (0秒付近)では 発光量が増加し、遅 、時間帯(5秒以降)では発光量が減少して 、ることがわ力る。
[0124] 本実施例においては、フィッティングには上述した式(1)を用いた。フィッティング結 果の説明の一例として、「曝露なし」の計測結果を図 15 (a)に、及び当該計測データ に対してフィッティングした結果のグラフを図 15 (b)にそれぞれ示す。図 15 (b)にお いて、 fl (t)、 f2 (t)、 f3 (t)は、それぞれ式(1)における第 1関数、第 2関数、第 3関 数である。図 15から、遅延発光の計測データは、複数の山型の関数により、フイツテ イングでさることがわかる。
[0125] フィッティングにより、関数の係数である ai, bi, ci (i= l, 2, 3)が決定される。その 結果を以下の表に示す。
[表 2] シマジン曝露濃度 フィッティング式の値
( U g/L) 3ι b, C1 32 b2 c2 33 b3 c3 曝露なし 0 0.045 -0.5 5.1 0.003 - 0.5 4.1 0.0005 8 3.1
5 0.05 -0.5 5.2 0.0037 -0.5 4.1 5 0.0005 6 3
25 0.05 -0.5 5.2 0.0035 - 0.5 4.1 0.0004 5 2.9 曝露あり
50 0.08 -0.5 5.4 0.0044 -0.5 4.1 0.0005 3 2.9
100 0.1 -0.5 5.6 0.005 一 0.5 4.1 0.005 3 2.7 実施例 1では、係数値及び係数値カゝら算出される演算値を評価値として用いる。
[0126] 評価ステップの一例として、上記の表に示した係数のうち、第 3関数 f 3 (t)の係数の 一つである c3を用いた場合について説明する。第 3関数は、式(1)において、発光 量の最大値をとる時間が最も大きくなる関数であり、本実施例における第 1〜第 3関 数の中では、最も長 、間細胞内に蓄えられて 、るエネルギーを反映すると考えられ
る。その中でも、係数値 c3は、山型の関数の高さに関係する値であり、第 3関数の表 すフオトン成分の発光量と最も関連の深 、値である。
[0127] シマジンの曝露濃度による c3の値の変化を図 16に示す。図 16のグラフにおいて、 横軸はシマジンの曝露濃度を、縦軸は c3の値をそれぞれ示している。図 16に示すよ うに、 P.
subcapitataの遅延発光の発光量の経時データに対する評価値は、シマジンの曝露 濃度に従い減少し、その減少は図 13に示した 72時間後の細胞生長と相関すること がわかる。従って、この比較結果を評価結果とすることができる。
[0128] このように、 P. subcapitataを植物性サンプルとして用いた場合でも、フィッティングの 結果得られる係数値を用いることにより、環境要因の環境への影響を評価することが できる。この実施例において、環境要因の環境への影響とは、シマジンの影響により 引き起こされる藻類の生長の阻害である。
[0129] 続いて、評価ステップの別の例として、演算式に基づいて算出された評価値により 評価をする場合について説明する。評価値を、決定された係数値である ai, bi, ci (i = 1, 2, 3)から、上述した式 (2)に基づいて評価値 Eを算出する。ここで、設定される 定数 mj (j = l〜9)は、例えば、 ml = lZa3, m2= l, m3 = l, m4= l/a2, m5 = l/b2, m6 = l/c2, m7= l, m8 = l/al, m9 = lZclとする。なお、定数 mjは、 計測条件や藻類種により適切なものを設定することができる。上記のようにすベての 係数値を使用せずに、その一部のみを使用する場合には、無視する係数値につい ては対応する mj (j = 1〜9)に l/a3など係数値の逆数を設定する。
[0130] この演算式により求められた評価値を以下の表及び図 17に示す。
[表 3] シマジン曝露濃度
( g/L) 演算値 E
曝露なし 0 551.1 1
5 360
25 290
曝露あり
50
108.75
100 81
図 17のグラフにおいて、横軸はシマジンの曝露濃度を、縦軸は演算値 Eの値をそれ ぞれ示している。図 17に示すように、 P. subcapitataの遅延発光の発光量の経時デー タに対する評価値は、シマジンの曝露濃度に従い減少し、その減少は図 12に示した 72時間後の細胞生長と相関することがわかる。従って、この比較結果を評価結果と することができる。
[0131] 続、て、評価ステップの別の例として、関数の係数値に基づ 、て算出された面積値 により評価をする場合について説明する。面積値は、上述したように、関数のグラフ にお ヽて、関数値を示す線と当該関数値を示す線の下側に位置する時間軸の線と により囲まれる領域の面積値である。関数の面積値は、それぞれの関数が表すフォト ン成分の発光量と関連の深い値である。本実施例では、表 2に示した P.
subcapitataに対するシマジン曝露結果力 得られる係数値をもとに、式(1)における 第 3関数 f 3 (t)について、 t = 0〜90の範囲で、 tの間隔 A t=0. 1として区分求積を 行い、面積値を求めた。
[0132] このようにして求めた面積値を以下の表及び図 18に示す。
[表 4] シマジン曝露濃度
( U g/L) 面積値(区分求積)
曝露なし 0 29226.4
5 241 12.1
25 19665.7
曝露あり
50 16520.1
100 4435.7 図 18のグラフにおいて、横軸はシマジンの曝露濃度を、縦軸は面積値をそれぞれ示 している。図 18に示すように P. subcapitataの遅延発光の発光量の経時データに対 する面積値は、シマジンの曝露濃度に従い減少し、その減少は図 12に示した 72時 間後の細胞生長と相関することがわかる。従って、この比較結果を評価結果とするこ とがでさる。
また、このような算出方法とは別に、式(1)における第 1関数 fl (t)の係数値よりも、
同式の第 2関数 f 2 (t)の係数値及び第 3関数 f 3 (t)の係数値が評価値により大きく反 映されるように、式(1)の各関数の係数値を重み付けしてもよい。例えば、第 2関数 f 2 (t)の係数値及び第 3関数 f3 (t)の係数値のみによって評価値が算出されるように、 各関数の係数値を重み付けすることが可能である。すなわち、経時データにおける 複数の時間帯のそれぞれに対応する特徴値のうち、励起直後の時間(例えば、 t=0 〜0. 5の範囲)を含む時間帯に対応する特徴値よりも、当該時間帯以外の時間帯に 対応する各特徴値が評価値により大きく反映されるように重み付けすることで評価試 料を評価してもよい。
[0134] ここで、特徴値とは、経時データにおける複数の時間帯の各々についての特徴を 示す値のことをいう。また、遅延発光の経時データを複数の関数の和としてフイツティ ングする場合、それぞれの関数の係数値は、経時データの時間帯の特徴を表す。
[0135] 遅延発光の経時データを複数の関数の和としてフィッティングすると、特定の関数 が経時データに及ぼす影響の大きい時間帯が現れる。そこで、このような時間帯では 、経時データに及ぼす影響の大きい関数の係数値がその時間帯の特徴を表して ヽ ると考えられる。一例として、図 15に示した P.
subcapitataのフィッティング例にぉ 、ては、励起直後の時間帯 (0〜1秒付近)では第 1関数 f 1 (t)が経時データに及ぼす影響が大きぐ励起後 1〜15秒付近では第 2関 数 f2 (t)が経時データに及ぼす影響が大きぐ励起後 15〜50秒付近では第 3関数 f 3 (t)が経時データに及ぼす影響が大きくなつている。このため、それぞれの関数の 係数値を各時間帯の特徴値とすることができる。なお、フィッティングによる特徴値の 算出方法はこれに限定されず、経時データの形状及びフィッティングに用いる関数 の種類によって様々な方法が考えられる。
[0136] 本発明の発明者らは、経時データに対する複数の特徴値のうち、励起直後の時間 を含む時間帯以外の時間帯に対応する各特徴値が評価値により大きく反映されるよ うに重み付けすることで、評価試料を評価するための評価値と基準データとの差がよ り明確に現れるという知見を得た。そして、当該発明者らは、これにより、例えば、化 学物質の環境への影響をより明確に把握できるという知見も得た。すなわち、このよう に重み付けを行うことで、より適切に光合成サンプルを評価することが可能となる。な
お、この重み付けの方法は一例であり、光合成サンプルの状態によってどの時間帯 の特徴値を評価値に大きく反映させるかは任意である。
[0137] (第 2実施形態)
以下、添付図面を参照しながら本発明の第 2実施形態について説明する。
[0138] (理論的背景)
まず、図 19を用いて、本発明に係る光合成サンプルの評価方法の理論的背景で ある光合成電子伝達について説明する。図 19は、光合成電子伝達を示す模式図で ある。
[0139] 一般に、光合成機能を有する光合成サンプルは、光エネルギーを多く吸収すると、 光合成電子伝達系の個々の反応で律速が生じるため、光合成電子伝達が円滑に進 まなくなる。言い換えれば、光合成サンプルの酸ィ匕還元状態が通常とは異なる状態 になる。このような状態は、光合成サンプルに与える光条件を変更することで得ること が可能である。ここで、光条件とは、例えば、光合成サンプルに与える光の光量、波 長、パルス幅及び照射時間である。本明細書では、光合成電子伝達が円滑に進まな Vヽ状態 (光合成サンプルの酸化還元状態が通常と異なる状態)を光合成電子伝達系 の「飽和」という。これに対し、光合成電子伝達が円滑に進む状態 (光合成サンプル の酸ィ匕還元状態が通常の状態)を「飽和なし」という。
[0140] 図 19に示すように、光合成サンプルの光合成反応は、主として、葉緑体チラコイド 膜に存在する光化学系 II複合体 (PSII)、シトクロム b6f複合体 (cytb6f)、光化学系 I 複合体 (PSI)、及び ATP合成酵素 (ATPsynthase)により生産させる還元物質 (N ADPH)と、 ATP合成酵素を利用した二酸ィ匕炭素固定反応 (Calvin— Benson cy cle)により行われる。
[0141] まず、 PSII及び PSIが光を吸収し電子伝達反応を行う。具体的には、光が照射され ると PSIIにおいて水分子 (H20)が分解され、電子 (e-)が取り出される。この電子 は、 PSII反応中心(P680)力も QA電子受容体 (QA)を経て、 QB電子受容体 (QB) 部位に結合している酸ィ匕型プラストキノン (PQOX)に伝達される。そして、これにより 還元型プラストキノン (pQred)が生じる。
[0142] 還元型プラストキノンは、 QB部位から遊離してプラストキノンプール (pQpool)に移
動した後、 cytb6fにより再酸ィ匕され、酸ィ匕型プラストキノンに戻る。この際、 cytb6fを 介して水素イオン (H + )がチラコイド膜内に流入し、プロトン勾配を形成する。プロト ン勾配を形成した水素イオンは、 ATP合成酵素による ATP合成に利用される。一方 、還元型プラストキノンの再酸ィ匕の際に抜き取られた電子は、 PSI反応中心 (P700) へ伝達される。この電子は、 PSI内で P700からフェレドキシン(Fd)に伝達され、 NA DPHの生産に寄与する。 PSI以降の過剰な電子 (還元力)は、循環型電子伝達によ り Fdを介して cytb6fに伝えられ、酸化型プラストキノンを還元する。この結果、還元 型プラストキノンが生じる (循環的電子伝達)。
[0143] 遅延発光は、上記の光合成電子伝達反応の逆反応の結果、主に PSIIの反応中心 クロロフィルが化学的に再励起されることで起こる発光であるとされている力 psiも 同様に発光に関与しているとする報告もある。また、 PSII内部、 pQpool、 PSI以降の それぞれに分布する電子がクロロフィルの再励起に寄与する主要な成分であると理 解されている。従って、上記の光合成電子伝達反応が環境要因(例えば有害物質) の影響により変化すると、遅延発光に変化が現れる。
[0144] 一般的に、 pQpool、 cytb6f、 PSIの電子伝達能力は、 PSIIの電子伝達能力に比 ベて低い。そのため、光照射により PSIIが過剰に還元されると、 PSIIからの電子伝達 により pQpoolが過剰に還元されるので、 PSIIから電子を受け取る酸ィ匕型プラストキノ ンが減少し、 PSIIからの光合成電子伝達の効率が低下することが知られている。この ような現象は、光合成電子伝達の飽和の一つである。より具体的には、 PSIIが過剰 に光吸収を行った場合、まず始めに cytb6fによる還元型プラストキノンの再酸化が 律速となり、 PSIIから電子を受け取ることができる酸ィ匕型プラストキノンが不足する。 そのため、 PSIIから cytb6fへの電子伝達が停滞する。その結果、 PSII内に過剰に 電子が蓄積し、 PSIIの反応中心が破壊されるなど、光合成反応に種々の影響を及 ぼす。なお、このような影響を光阻害という。
[0145] このような光阻害を回避するために、本来 PSIIに電子を供給するための集光性色 素タンパク複合体 (LHC2)が PSIに移動する (ステート遷移)など、種々の代謝変化 を引き起こすことが知られている。このような光阻害により引き起こされる代謝変化は、 過剰な光照射を停止することで徐々に回復する。
[0146] 本発明は、上記のような光合成電子伝達の酸化還元状態の変化に注目し、励起光 の照射を制御して遅延発光を計測することにより、光合成サンプルに与えた環境要 因を評価するものである。
[0147] (遅延発光計測装置)
まず、図 20及び 21を用いて、本発明による光合成サンプルの評価方法を実施する ための遅延発光計測装置について説明する。図 20は、実施形態に係る遅延発光計 測装置 1を模式的に示す図である。図 21は、図 20に示す遅延発光計測装置 1を部 分的に示すブロック図である。
[0148] 遅延発光計測装置 1は、計測ユニット 10、解析ユニット 20及び制御ユニット 30を備 えている。計測ユニット 10と解析ユニット 20とは、第 1ケーブル 41で接続されており、 解析ユニット 20と制御ユニット 30とは、第 2ケーブル 42で接続されている。
[0149] 計測ユニット 10は、試料設置部 11、光源 12、フィルタ 13、集光光学系 14、シャツタ 15及び検出部 16を備え、これらの構成要素は筐体 17に収容されている。筐体 17は 、本体部 17aと蓋部 17bとを有している。
[0150] 試料設置部 11は、測定対象である試料を設置するための部分である。試料設置部 11は、試料を入れた容器を設置可能なように構成され、蓋部 17bを開くことで試料の 交換を行うことができる。なお、試料設置部 11は、筐体 17外力も送液ポンプ等により 試料を導入することができるように構成されてもよ 、。
[0151] 光源 12は、試料設置部 11に設置された試料に光 (励起光)を照射する。光源 12は 、植物の光合成に有効な光波長(280〜800nm)を放射可能であればよぐ例えば 、発光ダイオード、半導体レーザー素子又は電球が用いられる。光源 12は、単色光 源であっても、複数の光源を組み合せた光源であってもよい。光源 12の発光方法は 限定されず、例えば、所定時間連続して発光し続ける方法、任意のパターンでパル ス点灯させる方法、同一又は異なる波長特性を有する複数の光源を順番に発光させ る方法、複数の光源を同時に発光させる方法などが考えられる。
[0152] フィルタ 13は、遅延発光を透過するものであり、筐体 17の内壁面に接するように設 けられている。
[0153] 集光光学系 14は、フィルタ 13を透過してきた微弱な遅延発光を集光する。集光光
学系 14は、これにより集光された遅延発光が検出部 16に進むように設けられて 、る
[0154] シャツタ 15は、開閉自在なように設けられている。シャツタ 15が閉じている場合には 、集光光学系 14から検出部 16に進む遅延発光が遮断される。なお、シャツタ 15はフ ィルタ 13及び集光光学系 14よりも光源 12に近い位置に設けてもよい。この場合、光 源 12からの光がフィルタ 13及び集光光学系 14に直接入射することによる、集光光 学系等の構成部品の発光 (残光)を防ぐことができる。
[0155] 検出部 16は、光源 12から照射された光によって試料内の光合成サンプルから生じ る遅延発光の光量を測定し、測定結果を解析ユニット 20に送信する。検出部 16は、 遅延発光を検知する光センサ 16aと、光センサ 16aが検知した信号に基づいて遅延 発光の光量を算出する光量算出部 16bとを有する。検出部 16は、例えば、電子増倍 管を用いたフオトンカウンタや、アバランシェフオトダイオードを用いた微弱光計測装 置などにより構成される。
[0156] 解析ユニット 20は、記録部 21、演算部 22、表示部 23及び入力部 24を備える。記 録部 21は、検出部 16から送信されてきた測定結果と解析又は評価に必要なデータ とを記録する。演算部 22は、記録部 21に記録されている測定結果及びデータに基 づいて演算解析と評価を行う。表示部 23は、演算部 22により解析,評価された結果 の表示を行う。入力部 24は、解析に必要なデータを入力することが可能なインタフエ ースである。
[0157] 制御ユニット 30は、計測ユニット 10及び解析ユニット 20の動作を制御可能であり、 例えば、コンピュータ、タイマ及びリレーなどを組み合わせて構成される。特に、制御 ユニット 30は、光源制御部 31と検出制御部 32とを有している。光源制御部 31は、光 源 12から照射される励起光の光条件 (例えば、照射時期、光量、波長、パルス幅及 び照射時間)を制御することが可能である。検出制御部 32は、所定時間における遅 延発光の発光量の検出(測定)を制御することが可能であり、例えば、検出時期、検 出時間などを制御する。
[0158] なお、解析ユニット 20及び制御ユニット 30の構成はこれに限定されず、例えば、 1 台のコンピュータが解析ユニット 20及び制御ユニット 30の機能を併せ持つていてもよ
い。
[0159] (光合成サンプルの評価方法)
次に、図 22を用いて、上記遅延発光計測装置 1による光合成サンプルの評価方法 の手順について説明する。図 22は、光合成サンプルの評価方法の手順を示すフロ 一チャートである。
[0160] まず、光合成サンプルを含む試料を 2種類調製する。このうちの一方は、光合成サ ンプルの量、光合成サンプルに照射する光の光量又は波長、温度、緩衝液の組成、 化学物質の曝露などの環境を所定の条件に設定した標準試料である (ステップ S11 b)。もう一方は、その標準試料に対して環境条件 (有害物質の付加や温度など)又は 光合成サンプルそのものの条件(生育条件など)のうち少なくとも一つが異なる評価 試料である (ステップ S 11a)。調製された標準試料及び評価試料は、キュベット等の 容器内に格納され、光合成サンプルに対する比較条件の影響が十分に現れるまで、 必要に応じて、温度や光などが管理された条件下で放置又は培養される。
[0161] 続いて、光合成サンプルに対する比較条件の影響が十分に現れるに至った評価 試料に対して第 1の励起光を所定の第 1の照射条件で照射する (ステップ S12a、第 1 励起ステップ)。光源制御部 31は、光源 12から照射される励起光が第 1の照射条件 を満たすように、光源 12に制御信号を出力する。第 1の照射条件とは、光合成サンプ ルで行われる光合成電子伝達が飽和するような所定光量及び所定波長の光を所定 時間だけ照射させることである。光源 12から照射された励起光は、試料設置部 11に 設置してある容器に至る。このような第 1の励起光の照射は、標準試料に対しても同 様に行われる (ステップ S12b、第 1励起ステップ)。
[0162] 続 、て、第 1の励起光を照射した評価試料を所定の光条件の中で所定時間 (0秒 以上)だけ待機させる (ステップ S13a、第 2励起ステップ)。具体的には、評価試料に 照射される光の光エネルギーが後述する第 2の励起光のそれよりも小さいような環境 下で評価試料を待機させる。例えば、計測ユニット 10の外部からその内部に光が漏 洩しないようにし、試料設置部 11に設置した評価試料を暗中で待機させる。このよう な待機は、標準試料に対しても同様に行われる (ステップ S13b、第 2励起ステップ)。
[0163] 続いて、光源 12を用いて、所定の光条件の中で待機させた評価試料に対して第 2
の励起光を第 2の照射条件で照射する (ステップ S14a、第 2励起ステップ)。第 2の照 射条件とは、第 1の照射条件と比較して光エネルギー積算値が小さくなるような条件 を含む。光源制御部 31は、光源 12から照射される励起光が第 2の照射条件を満た すように、光源 12に制御信号を出力する。ここで、エネルギー積算値とは、光合成サ ンプルにとっての光エネルギー積算値のことを 、 、、光量子束密度( mol · m— 2 · s - 1)と光合成サンプルの光合成有効放射吸収率 (%)と照射時間 (秒)との積で表さ れる。このような第 2の励起光の照射は、標準試料に対しても同様に行われる (ステツ プ S 14b、第 2励起ステップ)。
[0164] 続 、て、第 2の励起光を照射した評価試料力 発生する遅延発光の発光量を測定 する (ステップ S15a、測定ステップ)。評価試料から発生する遅延発光は、フィルタ 1 3を透過し、集光光学系 14で集光される。そして、集光された遅延発光が検出部 16 に送られ、この検出部 16で遅延発光の発光量が測定される。かかる測定は、検出制 御部 32から光量算出部 16bに出力される制御信号に基づいて、所定時間毎 (例え ば 0. 1秒毎)に行われる。測定された遅延発光の発光量は測定時刻又は測定時間 と対応付けられた上で、検出部 16から解析ユニット 20に出力され、記録部 21に記録 される。このような測定は、標準試料に対しても同様に行われる (ステップ S15b、測 定ステップ)。
[0165] 上述した第 1の励起光の照射から遅延発光の発光量の測定までの処理は、第 2の 照射条件を変更しながら複数回繰り返される (ステップ S16a ;YES、ステップ S16b ; YES)。ここで、第 2の照射条件とは、例えば、第 2の励起光の照射開始時期、言い 換えれば、第 1の励起光の照射終了時力 第 2の励起光の照射開始時までの時間( 以下「待機時間」という)を含む。このような第 2の照射条件は、光源制御部 31で設定 される。第 2の照射条件を変更すると酸ィ匕還元状態が変わるので、このような測定方 法を採用することで、酸化還元状態が異なる条件における遅延発光の発光量を測定 することができる。
[0166] なお、第 1の励起光の照射から遅延発光の発光量の測定までの処理を繰り返す回 数は限定されず、任意の回数を設定することができる。また、同一条件の比較試料を 複数用意しておき、それぞれに対して第 2の照射条件を変更して遅延発光を測定す
ることもできる。この場合、試料に前回の測定の影響が出ず、より精確な測定を行うこ とができる。更に、第 2の照射条件を変えて測定された遅延発光の発光量の経時デ ータ、又はそれに基づく評価値を予め記憶部に格納していてもよい。この場合、遅延 発光の測定は必ずしも繰り返し行わなくてもよ 、。
[0167] 第 1の励起光の照射から遅延発光の発光量の測定までの処理を複数回繰り返した 後(ステップ S16a ;NO、ステップ S16b ;NO)、得られた測定結果から光合成サンプ ルの光合成電子伝達やその他の代謝を反映する解析値を算出する (ステップ S 17a 及びステップ S17b、評価ステップ)。この算出は、評価試料及び標準試料のそれぞ れについて行われる。具体的には、演算部 22が所定の算出プログラムに記録部 21 カゝら読み出された測定結果を当てはめることで解析値を算出する。解析値としては、 例えば、 1以上の測定時間帯毎に積算した遅延発光の発光量の積算値、遅延発光 の発光量が減衰する過程で特定の変化が現れる測定時間(測定時刻)、及び、遅延 発光の発光量の経時変化を関数の和としてフィッティングして得られる係数が挙げら れる。
[0168] なお、試料に第 2の励起光のみを照射して遅延発光の発光量を計測し、その発光 量を解析値を算出する際に用いることが好ましい。この場合、試料が飽和していない 場合の遅延発光の発光量が解析値に反映されるため、評価試料に含まれる光合成 サンプルの光合成機能をより適切に評価することができる。解析値を算出する際には 、測定結果をすベて用いてもよいし、測定結果の一部のみを用いてもよい。
[0169] 特に、測定された遅延発光の発光量を 1以上の測定時間帯毎に積算した積算値を 解析値とすることが好ましい。これにより、遅延発光の発光量の経時変化に現れる、 ある測定時間帯における光合成サンプルの酸ィヒ還元状態を簡易かつ適切に抽出す ることが可能となる。また、測定時間帯を複数設け各測定時間帯の積算値を算出す ることで遅延発光の発光量の経時変化を適切に把握することが可能となるので、光 合成サンプルの酸化還元状態をより適切に評価することができる。
[0170] また、測定された遅延発光の発光量の経時変化が予め設定された複数の関数の 和としてフィッティングするように導出した複数の関数の係数値を解析値とすることも 好ましい。このような数学的手法を用いることで、客観的に評価値を導出することが可
能となる。また、遅延発光の発光量の経時変化を複数の関数の和にフィッティングさ せて 、るので、遅延発光のメカニズムに基づ 、た評価が可能となる。
[0171] なお、上述した調製カゝら解析までの処理は、評価試料及び標準試料にっ ヽて同時 に行ってもよいし、それぞれ別の時期に行ってもよい。また、後述する標準データが 得られて!/ヽる場合には、標準試料の測定を必ずしも行わなくてもよ 、。
[0172] 続いて、評価試料の解析値と標準試料の解析値とに基づいて評価値を算出 (導出 )する (ステップ S18、評価ステップ)。評価値の算出は、解析値の算出と同様、演算 部 22において実行される。評価値の算出方法は一つに限定されない。例えば、評価 試料及び標準試料のそれぞれにつ ヽて、酸化還元状態が異なる条件における解析 値を比較したり、評価試料の解析値と標準試料の解析値とを比較したりすることで評 価値を算出することなどが挙げられる。また、これらのように算出された評価値同士を 比較して更に評価値を算出してもよい。更に、解析値をそのまま評価値とする手法、 解析値を加減乗除した結果を評価値とする手法、解析値を所定の関数に代入して 演算した結果を評価値とする手法を採用してもよい。算出される評価値の種類及び 個数は限定されない。
[0173] 最後に、算出して得られた評価値に基づいて光合成サンプルの状態を評価する( ステップ S19、評価ステップ)。具体的には、算出して得られた評価値と標準データと を照らし合わせることにより評価する。標準データとしては、例えば、標準試料の測定 データに基づいて得られた評価値が挙げられる。また、標準試料の評価値から基準 値を算出し評価試料を評価してもよい。基準値としては、閾値及び範囲などが挙げら れる。ここで得られた光合成サンプルの状態についての評価結果は、表示部 23に表 示されるなどして評価者に提示される。なお、評価者への提示方法はこれに限られ ず、例えば、評価値を算出した時点でその評価値を評価者に提示してもよい。
[0174] (本実施形態の背景)
従来から、環境中に存在する未知化学物質の生物に対する影響を評価する方法と して、細菌、藻類等の生物個体に対する生育阻害を検査する生物学的な毒性検査「 バイオアツセィ」が用いられている。このバイオアツセィの一つとして、遅延蛍光を用 いる手法が知られている。例えば、上記非特許文献 3 (Schmidt
et al.)には、遅延発光計測前に暗中で 2時間放置した試料と放置しない試料とで遅 延発光の発光パターンが変化すること、及び、遅延発光計測前に照射する光の波長 を変更した場合に遅延発光の発光パターンが変化することが開示されている。
[0175] また、上記特許文献 1 (国際公開第 2005Z062027号パンフレット)には、遅延蛍 光を用いた有害物質の評価方法が開示されている。この有害物質の評価方法は、ま ず、有害物質を含む水溶液サンプルからの遅延蛍光 (遅延発光)の光量と比較サン プル力 の遅延蛍光の光量とをそれぞれ計測する。そして、計測した各遅延蛍光の 光量に基づいて、遅延蛍光の光量の時間的変化の特徴点における経過時間を算出 し、当該経過時間の比較値を求めることにより、水溶液サンプル中に存在する有害 物質を評価する。上記特許文献においても、対象物に照射する光の光強度又は光 波長を変更した場合に遅延発光のパターンが変化することが開示されている。
[0176] し力しながら、上述した従来の評価方法においては、光合成サンプルの光合成機 能の反応過程における影響が適切に評価されていない。すなわち、光合成サンプル の光合成機能全体への影響は分力つても、その各反応過程への影響を評価するの は困難である。
[0177] 本発明は、上記課題を解決する為になされたものであり、評価試料に含まれる光合 成サンプルの光合成機能を適切に評価することが可能な光合成サンプルの評価方 法及び光合成サンプルの評価プログラムを提供することを目的とする。
[0178] そして、このような光合成サンプルの評価方法によれば、異なった待機時間毎に遅 延発光の発光量を測定することができるので、より詳細な評価値を導出することがで き、その結果、評価試料に含まれる光合成サンプルの酸化還元状態を適切に評価 することができる。
[0179] (遅延発光の測定例)
次に、測定例を示しつつ、酸化還元状態を変えながら行う遅延発光の測定につい て説明する。
[0180] ここでは、光合成サンプルとして緑藻(Pseudokirchneriella subcapitata)を用いる。
緑藻は、標準的な C (75)培地 (ph7. 5)を用い、気温 25°C ± 1°Cの環境下で 50 mol · m— 2 · s— 1の白色光を照射しつつ旋回培養 ( 120rpm)で生育させたものであ
る。計測試料は、 C (75)培地を希釈液として 685nm吸光度 OD685 = 0. 05に調製 した後に、気温 25°C± 1°Cの環境下で 50 /z mol'm— 2' s— 1の白色光を照射しつ つ 1時間培養した細胞懸濁液 2. 5mLである。そして、この計測試料を、励起光を照 射して遅延発光を測定する前に予め 60秒間暗中に静置する。これは、光合成サン プル内の光合成電子伝達を円滑に進む状態にさせるため(光合成サンプルの酸ィ匕 還元状態を一定の状態に保っため)である。通常、計測を 60秒間暗中に静置するこ とにより、 PSII、 pQpool、 PSIが十分酸化された状態になる。
[0181] 遅延発光の計測は、光源 12による励起光照射後に計測試料力も発せられる遅延 発光を検出部 16により検出し、検出された信号を 0. 1秒毎に積算して、遅延発光の 発光量と相関する値 (count)として出力する手法により行う。この計測は、励起光消 灯後、例えば 50秒間継続して行う。一般的に、励起光消灯後の遅延発光の発光量 は、励起光の照射終了時点からの経過時間(励起後時間)が経過するとともに減衰し ていく。
[0182] まず、図 23を用いて、待機時間と遅延発光の経時変化との関係について説明する 。図 23は、待機時間と遅延発光の経時変化との関係を示すグラフである。このグラフ の横軸は、励起後時間 (第 2の励起光の照射終了時点力 の経過時間)(秒)を表し 、縦軸は、遅延発光の強度 (counts)を表す。なお、遅延発光の強度は、遅延発光 の発光量と相関するものであるから、以下において遅延発光の強度に基づいて評価 するということは、遅延発光の発光量に基づいて評価することと同等である。また、以 下では、励起後時間と遅延発光の強度との関係をグラフ化したものを減衰曲線という
[0183] 待機時間と遅延発光の経時変化との関係を求めるにあたり、まず、計測試料に、光 合成電子伝達を飽和させる第 1の励起光として、 500 11101'111—2' 3— 1の白色光 を 10秒間照射した (第 1の照射条件)。その後、計測試料に光を照射しないステップ ( 以下「待機」と 、う)を設け、更にその後、第 2の励起光として、 50 mol · m— 2 · s— 1 の赤色光を 2秒間照射した。この第 2の励起光は、光合成サンプルの酸化還元状態 をほとんど変化させずに遅延発光を発生させることができるものである。このような処 理は、待機時間を 0、 2、 10、 30及び 60秒と変更しながら繰り返し行われる。また、こ
れらに加えて、第 1の励起光の照射及び待機を実施せずに第 2の励起光の照射のみ を実施した場合、すなわち、光合成電子伝達が飽和しない場合についても測定する
[0184] 図 23に示すグラフは、これらの各場合における待機時間と遅延発光の経時変化と の関係を表している。このグラフに示されるように、第 1の励起光の照射、待機及び第 2の励起光の照射を組み合わせることにより、光合成サンプルの酸ィ匕還元状態が異 なる状態を段階的に作り出し、その酸ィ匕還元状態を反映する遅延発光を測定するこ とができる。第 1の励起光を照射していない「飽和なし」の場合には、光合成電子伝 達が最も円滑に進む。これに対し、第 1の励起光を照射した直後に第 2の励起光を照 射した場合 (待機時間が 0秒の場合)には、光合成電子伝達が飽和に最も近くなる。 そして、待機時間が長くなるにつれて、光合成電子伝達の飽和が解消されていく(光 合成サンプルの光合成電子伝達系が回復して!/ヽく)。
[0185] 図 23に示す、待機時間が 0秒の場合の減衰曲線を見ると、励起後 0. 1秒力 0. 5 秒付近の発光量が飽和なしの場合よりも増力 tlしており、逆に励起後 0. 5秒付近から 1 0秒付近では、飽和なしの場合よりも発光量が減少している。また、励起後 10秒付近 力 50秒までは、飽和なしの場合よりも発光量がやや増加している。飽和なしの場合 と比較した励起後 10秒付近力も 50秒までの発光量の減少は、待機時間を 2秒とした 場合にやや低減している。このような減衰曲線の変化は、待機時間が長くなるにつれ て飽和なしの場合に近づき、待機時間を 60秒とした場合の減衰曲線と飽和なしの場 合の減衰曲線との相違は、ほとんど認められない。このことから、第 1の励起光による 光合成電子伝達系の飽和は、 60秒の待機時間の間に解消されていると考えられる。
[0186] 上述の測定結果が光合成サンプルの酸ィ匕還元状態の変化を表して 、ると考えられ る根拠について説明する。上述のように、光合成サンプルの酸化還元状態は、照射 される励起光の光条件、より具体的には、励起光の光エネルギー量により決まる。そ して、この光エネルギー量を決める要素として、例えば照射光量及び照射時間がある 。そこで、説明のため、まず、照射光量及び照射時間と遅延発光の経時変化との関 係を示す。
[0187] 図 24は、励起光の照射光量と遅延発光の経時変化との関係を示すグラフである。
このグラフの横軸及び縦軸が表すものは、図 23の場合と同様である。励起光の照射 光量と遅延発光の経時変化との関係を求めるにあたっては、第 1の励起光の照射光 量を 50、 100、 200及び500 11101'111—2 ' 5— 1と変更しながら上記の測定(待機時 間は 0秒とした。)を繰り返し行った。なお、第 1の励起光の照射光量が 50 mol'm 2 ' s 1の場合、光合成電子伝達系の飽和は発生しない。図 24を見ると、第 1の励 起光の照射光量が少なくなるにつれて、減衰曲線が飽和なしの場合 (励起光の照射 光量が 50 /z mol'm— 2 ' s— 1の場合)に近づく。
[0188] 図 25は、励起光の照射時間と遅延発光の経時変化との関係を示すグラフである。
このグラフの横軸及び縦軸が表すものは、図 23の場合と同様である。励起光の照射 時間と遅延発光の経時変化との関係を求めるにあたっては、第 1の励起光の照射時 間を 5、 10及び 30秒と変更しながら上記の測定 (待機時間は 0秒とした。)を繰り返し 行った。図 25を見ると、第 1の励起光の照射時間が少なくなるにつれて、減衰曲線が 飽和なしの場合 (励起光を照射しない場合)に近づく。
[0189] 図 24及び 25で示したように、減衰曲線の変化は、第 1の励起光の照射光量及び照 射時間に依存する。すなわち、図 23に示すような、待機時間の長さにより生じる特定 の測定時間帯の発光量の増減は、光照射による光合成電子伝達系の飽和及び回復 を直接又は間接的に反映していると考えられる。
[0190] この点につき、図 26〜28を用いて、酸化還元状態と遅延発光の発生とを対比しつ つ光合成電子伝達に関わる分子の動きも踏まえて詳細に説明する。図 26は、飽和 なしの状態における酸ィ匕還元状態と遅延発光との対比を示す模式図である。図 27 は、第 1の励起光照射後に待機時間を設けな力 た (待機時間 0秒)場合の、酸ィ匕還 元状態と遅延発光との対比を示す模式図である。図 28は、第 1の励起光照射後に待 機時間を 2秒設けた場合の、酸ィ匕還元状態と遅延発光との対比を示す模式図である
[0191] 飽和なしのときには、計測試料に対して光合成サンプル (緑藻)の培養時と同じ光 強度の励起光が照射されているため、光合成電子伝達にはほとんど影響がないと考 えられる。この場合、図 26〖こ示すよう〖こ、 PSIIから pQpoolを経て PSIに電子が伝達 される過程で飽和は生じず、 pQpoolには酸ィ匕型プラストキノンと還元型プラストキノ
ンとがバランス良く存在する。遅延発光に影響する 3つの主要な電子蓄積部分 (PSII 、 pQpool、 PSI)の電子が逆反応により最終的に P680をィ匕学的に再励起するため、 遅延発光が生じる。なお、測定される遅延発光は、これら 3つの電子蓄積部分のそれ ぞれ力 発生する遅延発光の総和である。
[0192] 待機時間 0秒の場合には、第 1の励起光を照射した後直ちに第 2の励起光を照射 した上で遅延発光を計測している。そのため、光合成電子伝達系が最も飽和した状 態であるといえる。この場合、図 27に示すように、 pQpoolでは、強光を照射したこと により生成された還元型プラストキノンが多くなる一方で、酸ィ匕型プラストキノンが少な くなる。このような状況では、 cytb6fによる還元型プラストキノンの再酸ィ匕が律速となり 、 PSIIから電子を受け取ることができる酸ィ匕型プラストキノンが不足する。このため、 P SII内部力 の電子伝達の取り出しが低下し、 PSII内部の電子の蓄積が多くなる。そ の結果、 PSII内部の電子蓄積を反映する遅延発光が増加する。このような PSII内部 の電子蓄積を反映した遅延発光の増加は、図 23に示すように、待機時間が 0秒の場 合の減衰曲線における励起後 0. 1秒力 0. 5秒付近の発光量の増加として現れる。
[0193] なお、励起後それほど時間が経過していない場合における遅延発光が PSIIの電 子を反映することは、 Kretsch, G. and Gerhardt, V.ゝ "Numerical
analysis of delayed fluorescence kinetics or algae 、 Archiv
furHydrobiologie— Beiheft Ergebnisse der Limnologie、 1987、 29、 p.47— 54. (以下「参 考文献 1」とする)、及び、 Schmidt,W.
and ¾enger, H.ゝ Long-term delayed luminescence in Scenedesmus obliquus I. ¾pect ral and
kinetics properties 、 Biochemica et BiophysicaActa、 1987、 890、 p.15-22. (以下「参 考文献 2」とする)に記載されて 、る。
[0194] また、 pQpoolから PSIIの P680に電子が逆流する経路としては、 PSIIの QB部位 に結合した酸ィ匕型プラストキノンを介する経路と、 QB部位力も解離し pQpoolに移動 した還元型プラストキノンの平衡状態を反映した経路との二つが考えられる。これら予 想される二つの経路は、 PSII内部にある QB部位を介した反応ではある力 pQpool の酸化還元状態を反映した遅延発光であるため、 pQpoolの電子蓄積を反映する遅
延発光として扱う。光合成電子伝達が飽和し還元型プラストキノンが多く存在する状 況では、酸ィヒ型プラストキノンを反映する遅延発光が減少する一方で、還元型プラス トキノンを反映する遅延発光が増加する。
[0195] 図 23の待機時間 0秒の減衰曲線が示すように、酸ィ匕型プラストキノンの減少を反映 した遅延発光の減少は、励起後 0. 5秒付近から 10秒付近における発光量の減少と して現れていると考えられる。また、還元型プラストキノンの増加に伴う発光量の増加 は、励起後 10秒付近から 50秒までの発光量の増加として現れていると考えられる。 還元型プラストキノンを反映する発光量の減少が還元型プラストキノンを反映する発 光量の増加よりも時間的に早く現れるのは、 PSII内部の QB部位に結合した酸ィ匕型 プラストキノンの方が、 PSIIとチラコイド膜内を移動して平衡状態を作っている還元型 プラストキノンよりも短時間で反応が進行するためであると考えられる。 pQpoolを反 映する遅延発光が PSIIを反映する遅延発光よりも遅れて発光することは、参考文献 1に記載されている。
[0196] さらに、 PSI以降に蓄積された電子が P680へ逆流する経路としては、 P700から cy tb6fにおける還元型プラストキノンの酸化反応を介した平衡状態の逆反応を反映す る経路と、 PSIのフェレドキシン(Fd)を経由して cytb6f内の酸化型プラストキノンへ 電子が伝達され還元型プラストキノンを生じる循環的電子伝達による経路とが考えら れる。この場合、どちらの経路においても、 PSIの電子が還元型プラストキノンを介し て P680に逆流することになる。図 23の待機時間 0秒の減衰曲線が示すように、 PSI 力も還元型プラストキノンを介した遅延発光の増加は、励起後 10秒付近から 50秒ま での発光量の増加として現れて!/ヽると考えられる。 PSIを反映する遅延発光が励起 後数十秒の範囲で発光することは、参考文献 1及び参考文献 2に記載されている。
[0197] すなわち、励起後 10秒付近から 50秒までの発光量の増加は、光照射に伴う pQpo olの還元、及び、 PSIからの循環的電子伝達と P700との平衡状態を反映した pQpo olの還元の双方による還元型プラストキノンを反映する。本明細書では、主として、励 起後 10秒から 50秒までの間に測定される遅延発光を、 PSIからの循環的電子伝達 と P700との平衡状態を反映したものとして扱う。
[0198] 待機時間 2秒の場合には、第 1の励起光を照射後、待機時間を 2秒間設けた上で
第 2の励起光を照射し遅延発光を測定している。そのため、この測定結果は、待機時 間を 0秒とした場合と比較して、光合成電子伝達系の飽和がやや回復した時点のも のであるといえる。この場合、図 28に示すように、待機時間の間に酸化型プラストキノ ンが生成されるために PSIIからの電子取出しが可能となり、待機時間 0秒で観察され た励起後 0. 1秒力も 0. 5秒付近の発光量の増加は認められない。また、酸化型ブラ ストキノンの QB部位への移動も可能となるため、励起後 0. 5秒付近から 10秒付近ま での発光量の減少の度合!、もやや低減する。
[0199] このことからすれば、還元型プラストキノンを反映する励起後 10秒付近から 50秒ま での遅延発光の増加の程度も同様に低減するはずである。しかし、待機時間を 2秒 間設けた場合には、励起後 10秒付近力も 50秒までの遅延発光が待機時間を 0秒と した場合よりも増加している。これは、 PSI以降の電子の逆流によるものであると考え られる。すなわち、待機時間を長くすることで増加する励起後 10秒付近力も 50秒ま での遅延発光は、主として PSI以降の電子を反映して 、ると 、える。
[0200] 以上のように、図 23に示すような、互いに酸ィ匕還元状態が異なる各計測試料から 得られる遅延発光の減衰曲線に基づいて、光合成電子伝達の飽和とその回復に伴 う PSII、 pQpool, PSIにおける電子蓄積を評価することができる。例えば、励起後時 間のうち、特徴的に発光量の増減が観察される時間帯として、励起後 0. 1〜0. 5秒 、励起後 0. 6〜10秒及び励起後 10. 1〜50秒のそれぞれの時間帯の発光量の変 化に注目すれば、力かる電子蓄積を明確に評価することができる。
[0201] このように、評価試料にっ 、て、第 2の励起光の照射開始時期を変更しながら得た 各遅延発光の発光量に基づ 、て評価値を導出することで、評価試料に含まれる光 合成サンプルの酸化還元状態を適切に評価することができる。また、第 1の励起光よ りもエネルギー積算値が低くなるように第 2の励起光を照射した上で遅延発光の発光 量が測定される。そのため、第 1の励起光の照射による酸化還元状態の変化を第 2の 励起光の照射により妨げることなぐ且つ、遅延発光の減衰を防止することができる。 その結果、遅延発光の発光量をより精度高く測定することが可能となる。
[0202] (積算値による試料の評価)
このように PSII、 pQpool、 PSIにおける電子蓄積を評価することは、光合成サンプ
ルを含む試料を評価する上で有用である。具体的には、光合成サンプルを含む評価 試料中に存在する環境要因を評価する上で有用である。より具体的には、光合成サ ンプルの光合成電子伝達の効率の評価、光合成反応を阻害する化学物質の評価、 植物の生育診断、植物に対する有害物質の影響、農薬の機能解析及び光合成の研 究に対して有用である。そこで測定された遅延発光の発光量 (遅延発光の強度)の 積算値に基づ!、て試料を評価する手法につ!、て説明する。
[0203] 以下では、励起後時間 0. 1〜0. 5秒の積算範囲 (測定時間帯)、励起後 0. 6〜10 秒の積算範囲及び励起後 10. 1秒〜 50秒の積算範囲についてそれぞれ積算値を 算出する場合について説明する。なお、積算範囲の設定はこれに限定されない。積 算範囲の個数は、 1以上であれば何個でも構わない。また、積算範囲を複数設けた 場合に、各積算範囲の時間幅を等しくする力しないかは任意である。更に、本実施 形態のように積算範囲同士を互いに所定の時間だけ離すだけでなぐ積算範囲同士 を接するように設けてもよいし (例えば、励起後時間 0. 1〜0. 5秒の積算範囲と励起 後時間 0. 5秒〜 10秒の積算範囲を設ける)、積算範囲同士が所定の時間帯におい て重なり合うように設けてもよい (例えば、励起後時間 0. 1〜0. 5秒の積算範囲と励 起後時間 0. 4秒〜 10秒の積算範囲を設ける)。
[0204] 図 29は、図 23に示した遅延発光の強度の減衰曲線について、上記 3つの積算範 囲毎に積算値を算出した結果を示すグラフである。図 29の各グラフにおいて、横軸 は測定条件を表し、縦軸は遅延発光の強度の積算値 (counts)を表す。なお、以下 では、励起後時間 0. 1〜0. 5秒の積算範囲における積算値、励起後 0. 6〜10秒の 積算範囲における積算値及び励起後 10. 1秒〜 50秒の積算範囲における積算値を 、それぞれ積算値 1、積算値 2及び積算値 3という。図 29 (a)、図 29 (b)及び図 29 (c )は、それぞれ積算値 1、積算値 2及び積算値 3についてのグラフである。
[0205] まず、積算値 1に基づいて検討する。図 29 (a)に示すように、待機時間 0秒の場合 の積算値 1は、飽和なしの場合のそれと比較して高い値となっている。これに対し、待 機時間 2秒の場合の積算値 1と飽和なしの場合のそれとの差は大きくない。待機時間 0秒の場合の変化は、第 1の励起光の照射により、還元型プラストキノンが過剰に形 成され、 PSII内の QB部位に結合し PSII内部から電子を受容可能な酸ィ匕型プラスト
キノンが不足することで、 PSII内の電子蓄積が増加した結果である。これに対し、待 機時間を 2秒以上に設定した場合は、その待機時間中に酸ィ匕型プラストキノンが生 成され、 PSII内の電子が取り出されたためである。すなわち、積算値 1は、 PSII内部 の電子蓄積を反映する。積算値 1が高い場合は、 PSII内部に蓄積される電子が多く
、還元状態にあることを示している。
[0206] これを光合成サンプルの酸化還元状態の違!、による変化と!/、う観点力も検討する。
光合成電子伝達が通常の状態では、電子伝達を飽和させるような励起光の照射 (例 えば第 1の励起光の照射)直後に pQpoolが還元状態になり、 QB部位に結合可能な 酸化型プラストキノンが不足する。そのため、一過的に積算値 1が増加するが、飽和 状態が回復する条件 (例えば、所定時間の待機)により解消する。したがって、飽和 なしの場合の積算値 1と比較した、待機時間 0秒 (最も飽和に近い状態)の積算値 1 の増分が、電子伝達の飽和によって PSII内に蓄積された電子を表しているといえる 。すなわち、飽和が回復する条件 (例えば、所定時間の待機)においてその増分が減 少する過程が酸ィ匕型プラストキノンによる PSIIからの電子取出しを反映して 、る。し たがって、互いに光合成サンプルの酸化還元状態が異なる積算値 1同士の違いに 注目することで、 PSII内部の電子蓄積、及び、電子の取り出しに対する環境要因(例 えば有害物質)の作用を評価することができる。
[0207] 次に、積算値 2に基づいて検討する。図 29 (b)に示すように、積算値 2は、待機時 間 0秒の場合に、飽和なしの場合の値と比較して最も値が減少している。待機時間が 長くなるに従いその差は減少し、待機時間 60秒の場合では、積算値 2が飽和なしの 場合と同等になる程度まで回復している。すなわち、積算値 2は、 PSIIの QB部位に 結合して電子を受け取ることのできる酸ィ匕型プラストキノンを反映して 、る。待機時間 0秒の場合には、第 1の励起光の照射により還元型プラストキノンが過剰に形成され、 PSII内の QB部位に結合して PSII内部から電子を受容可能な酸ィ匕型プラストキノン が不足する。このため、 QB部位に結合したプラストキノンの電子蓄積を反映した遅延 発光が減少する。しかし、待機時間が長くなるに従って酸ィ匕型プラストキノンの生成 が進み、 QB部位を介した遅延発光の量が回復する。
[0208] すなわち、飽和なしの場合の積算値 2と比較した、待機時間 0秒 (最も飽和に近!、
状態)の積算値 2の差分が、強光照射による pQpoolの還元を表している。また、飽和 が回復する条件下 (例えば、所定時間の待機)でその差分が減少する過程が、還元 型プラストキノンカ^ ytb6fなどにより再酸ィ匕される過程を表している。したがって、互 Vヽに酸化還元状態の異なる積算値 2同士の違 、に注目することで、 pQpoolの還元 状態、及び、再酸化の過程に対する環境要因の作用を評価することができる。
[0209] 次に、積算値 3に基づいて検討する。図 29 (c)に示すように、積算値 3は、待機時 間 2秒の場合に、飽和なしの場合の値と比較して最も値が増加し、待機時間 60秒の 場合では飽和なしと同等になる程度まで減少して 、る。待機時間を 2秒以上設けた 場合の積算値 3は、主として PSI以降の電子蓄積を反映した還元型プラストキノンに 相当するものといえる。すなわち、飽和なしの場合の積算値 3と比較した、待機時間 0 〜60秒のそれぞれの条件における積算値 3の増分力 PSI以降力 循環的電子伝 達や P700を介した逆反応により PSIIに到達する電子の流れを表して 、る。したがつ て、互いに酸ィ匕還元状態の異なる積算値 3同士の違いに注目することで、 PSI以降 の電子蓄積、及び、循環的電子伝達に対する環境要因の作用を評価することができ る。
[0210] このような積算値を用いることで、遅延発光の発光量の経時変化に現れる、光合成 サンプルの酸ィ匕還元状態をより適切に抽出することが可能となる。その結果、評価試 料に含まれる光合成サンプルの酸化還元状態を適切に評価することができる。また、 上記のように、複数の積算値を算出した場合には、遅延発光の発光量の経時変化を 把握することができるので、この経時変化を利用することにより酸化還元状態を適切 に評価することができる。
[0211] 以上より、光合成電子伝達系の飽和とその回復を評価する方法として、互いに酸化 還元状態が異なる状態を複数作り、これら各状態について遅延発光を測定し、 PSII 内部、プラストキノンプール及び PSI以降の電子蓄積を反映する遅延発光を表す指 標(例えば、上記積算値 1、 2及び 3)を用いることが有効であることがわかる。
[0212] (環境要因の評価)
次に、光合成電子伝達系の飽和と回復を評価することにより光合成サンプルに対 する環境要因の影響を評価する方法について説明する。その際、評価方法として、
上記積算値 1、 2、 3を用いた評価手法を用いる。
[0213] ここでは、標準試料 (Cont)及び評価試料を用意する。各試料に含まれる光合成サ ンプルとして、上述したものと同様の緑藻を用いる。具体的には、 C (75)培地を希釈 液として 685nm吸光度 OD685 = 0. 05〖こ調製し、気温 25°C± 1°Cの環境下で 50 μ mol'm— 2' s— 1の白色光を照射しながら 1時間培養した細胞懸濁液 2. 5mLを 標準試料として用いる。一方、評価試料は、標準試料と同様の手順で調製した後、 気温 25°C± 1°Cの環境下で 50 μ mol'm— 2' s— 1の白色光を照射しながら 1時間 培養する際に、環境要因として 365nmの紫外線を 100 μ WZcm2の強度で添カロ( UV照射)することにより得る。なお、遅延発光の発光量の測定は、標準試料及び評 価試料を予め 60秒間暗中に静置して測定前の環境が光合成電子伝達系に与える 影響を取り除き、光合成電子伝達系を一定の酸ィ匕還元状態に統一した後に行った。
[0214] 図 30は、標準試料における待機時間と遅延発光の発光量の経時変化との関係を 示すグラフである。また、図 31は、評価試料における待機時間と遅延発光の経時変 化との関係を示すグラフである。各グラフには、飽和なし、待機時間 0秒、待機時間 1 0秒及び待機時間 60秒の各場合の遅延発光の発光量の経時変化が示されている。 図 30と図 31とを比較すると、 UV照射により減衰曲線の形状が特徴的に変化してい ることがゎカゝる。
[0215] 以下、 UV照射が与える影響について詳細に説明する。図 32は、図 30及び 31に 示した遅延発光の発光量に基づいて算出した、各試料についての積算値 1、 2及び 3を示すグラフであり、図 32 (a)、図 32 (b)及び図 32 (c)は、それぞれ積算値 1、積算 値 2及び積算値 3についてのものである。
[0216] まず、標準試料について見ると、 PSII内部の電子を反映する積算値 1は、待機時 間 0秒の場合に最大値を示し、待機時間が 10秒及び 60秒の場合に飽和なしの場合 と同程度の値を示している。これは、上述したように、第 1の励起光照射直後 (待機時 間 0秒の場合)だと、 pQpoolに還元型プラストキノンが多く存在し PSIIから電子を取 り出すことのできる酸ィ匕型プラストキノンが少なくなることで、 PSII内部の電子蓄積が 増加するためである。これに対し、待機時間 10秒及び 60秒の場合には、その待機時 間の間に酸ィ匕型プラストキノンが生成されるので、光合成電子伝達系が PSIIの電子
伝達反応が円滑に進んでいる飽和なしの場合と同等な程度まで回復する。
[0217] これに対し、 pQpoolの電子を反映する積算値 2は、待機時間 0秒で最小値を示し、 待機時間が長くなるにつれ徐々に増加して飽和なしの値に近づく。これは、上述した ように、第 1の励起光照射直後 (待機時間 0秒の場合)だと、 pQpoolに還元型プラスト キノンが多く存在し、 PSII内のプラストキノン結合部位である QB部位に結合可能な 酸ィ匕型プラストキノンが不足しているためである。一方、待機時間が所定の時間だけ 設けられるとその待機時間の間に酸ィ匕型プラストキノンが生成されるので、光合成電 子伝達系が飽和なしの場合と同等な程度まで回復する。
[0218] 更に、 PSI以降の電子を反映する積算値 3は、飽和なし、待機時間 0秒及び待機時 間 60秒の場合でほぼ同じ値をとり、待機時間 10秒の場合のみ値が増加する。これは 、 PSI以降のフェレドキシンや NADPHに蓄えられた電子がフェレドキシンを介して 酸化型プラストキノンに伝達され還元型プラストキノンを生じる循環的電子伝達反応 や、 P700を介した逆反応などによる遅延発光を反映するものである。積算値 3に反 映される遅延発光は、積算値 1又は積算値 2に反映される遅延発光と比較して多くの 反応経路を経由するので、待機時間 0秒の場合よりも待機時間 10秒の場合の方が 高い値をとる。この積算値 3は、待機時間 60秒の場合には飽和なしの場合と同等ま で回復する。
[0219] 次に、 UV照射を行った評価試料について見ると、 PSII内部の電子を反映する積 算値 1は、待機時間 0秒の場合で増加せず、待機時間 10秒及び 60秒の場合でも大 きな変化はみられない。これは、紫外線照射により PSIIに何らかの変化が生じている ことを示唆する。
[0220] これに対して、 pQpoolの電子を反映する積算値 2は、標準試料のそれと比べてや や減少しているものの、待機時間 0秒で最小値を示し、待機時間が長くなるにつれ徐 々に飽和なしの値に近くなつていく傾向は変わらない。これは、紫外線照射が pQpo olの作用にそれほど影響を及ぼさな 、ことを示唆する。
[0221] 更に、 PSI以降の電子を反映する積算値 3は、飽和なしの場合と待機時間 60秒の 場合とでほぼ同じ値になっている力、待機時間 10秒の場合に加え、待機時間 0秒の 場合でも値が増カロしている。これは、紫外線照射により、 PSIを介して酸ィ匕型プラスト
キノンに伝達され還元型プラストキノンを生じる循環的電子伝達反応や、 P700を介 した逆反応が増加したことを示唆する。
[0222] (評価値算出方法)
次に、上記の評価ステップにおける評価値の算出(導出)方法について説明する。 この説明は、第 2の照射条件が上述の待機時間 (待機時間 0秒、待機時間 10秒及び 待機時間 60秒)であり、評価値が上記積算値 1、 2及び 3に基づくものであることを前 提とする。更に、飽和なしの場合についても同様に上記積算値 1、 2及び 3が算出さ れていることも前提とする。
[0223] まず、光合成サンプルの PSIIの電子蓄積状態を評価するための評価値を算出す る方法について説明する。このような評価値の一つとして、例えば、 PSIIの電子蓄積 がどのように変化したかを示す PSIIの電子蓄積の変化(ell)がある。この値 ellは、( 評価試料の積算値 1)Z (標準試料の積算値 1) X 100によって求めることができる。
PSIIの電子蓄積の変化 (ell)は、飽和なし、待機時間 0秒、待機時間 10秒及び待機 時間 60秒の各条件について算出することができる。
[0224] PSIIの電子蓄積の変化(ell)が 100を超えているということは、 PSIIの電子蓄積が 増加していることを示す。例えば、飽和なしの条件においてこの ellを算出すれば、強 光の影響のない標準的な条件下 (例えば、飽和なしの場合)における PSIIの電子蓄 積の変化を評価することができる。
[0225] 上述したように、待機時間 0秒における一過的な積算値 1の増加は、 PSIIからの電 子取出しが律速となったことによる PSIIの電子蓄積の増加を反映して 、る。この積算 値 1の一過的増加は、光を照射しない待機時間を設けることにより飽和なしと同等ま で回復する。例えば、ある待機時間での PSIIからの電子取出し能力は、待機時間 0 秒での積算値 1の一過的増加が、その待機時間を設けることでどの程度減少したか により評価できる。そこで、待機時間 0秒力 ある条件までの PSIIの電子取出し能力( tn)を評価値として算出する。この値 tnは、((待機時間 0秒の場合の積算値 ι)Ζ (飽 和なしの場合の積算値 1)一 (ある待機時間における積算値 ι)Ζ (飽和なしの場合の 積算値 1) ) X 100によって求めることができる。
[0226] 待機時間 0秒力 ある待機時間までの PSIIの電子取出し能力(til)が大きければ、
待機時間 0秒力もある待機時間までに PSIIの一過的な電子蓄積が多く解消されたこ とを示す。逆に、この値 tnが負の値となった場合には、待機時間 0秒カゝらある待機時 間まで PSIIの電子蓄積が何らかの要因により増加したことを示す。
[0227] さらに、環境要因を与えていない標準試料についての、待機時間 0秒力もある条件 までの PSIIの電子取出し能力(til)と、ある環境要因を与えた評価試料についての それと比較することにより、 PSIIからの電子取出しがどのように変化したかを知ること ができる。そこで、この変化を示す値として、待機時間 0秒力もある条件までの PSIIの 電子取出しの変化 (vll)を評価値として算出する。この値 vllは、(評価試料の tn) Z ( 標準試料の til) X 100によって求めることができる。この値 vllが 100であれば、 PSII 力 の電子取出し能力が環境要因により変化していないことを示す。これに対し、こ の値 vllが小さい場合には PSIIからの電子取出し能力が低下していることを示し、負 の値になった場合は PSIIに電子が流入していることを示す。
[0228] また、本実施形態に係る光合成サンプルの評価方法によれば、光合成サンプルの pQpoolの酸ィ匕還元状態を評価することができる。例えば、 pQpoolの酸化還元状態 を反映する積算値 2を用いて評価値を導出することが可能である。
[0229] 本実施形態では、予め光合成サンプルを 60秒間暗中に静置して 、るため、飽和な しの場合には、光照射により生成される還元型プラストキノンが再酸化され、 pQpool がほぼ酸化された状態になる。また、第 1の励起光を照射した直後である待機時間 0 秒では、 pQpoolがほぼ全て還元され、酸ィ匕型プラストキノンがほとんど存在しない状 態である。すなわち、飽和なしの場合の積算値 2と待機時間 0秒の場合の積算値 2と の差分は、光照射による酸ィ匕還元反応の大きさを表している。そこで、この大きさを示 す値として、酸化還元反応の大きさ(sQ)を評価値として算出する。この値 sQは、(飽 和なしの場合の積算値 2)—(待機時間 0秒の場合の積算値 2)によって求めることが できる。
[0230] この値 sQを標準試料及び評価試料の双方について算出し、これらを比較すること により、環境要因によって光合成サンプルの酸ィ匕還元反応の大きさがどのように変化 したかを知ることができる。そこで、標準試料についての酸ィ匕還元反応の大きさ(sQ) に対する評価試料についての酸化還元反応の大きさ(sQ)の割合を、 sQの環境要
因による変化 (vQ)という評価値として算出する。この値 vQは、(評価試料の SQ)Z( 標準試料の SQ) X 100によって求めることができる。
[0231] 上述したように、待機時間 0秒にぉ 、てほぼ還元状態にある pQpoolは、待機時間 を設けることで cytb6fによる再酸ィ匕反応が進み酸ィ匕型プラストキノンが生成されるた め、飽和なしの状態に回復していく。つまり、 pQpoolの酸化還元状態を反映する積 算値 2について、ある待機時間における積算値 2と待機時間 0秒における積算値 2と を比較することにより、その待機時間での酸ィ匕型プラストキノンの生成量を知ることが できる。この酸化型プラストキノンの生成量は、 cytb6fによる再酸化反応が阻害され ると減少し、 cytb6fにお 、て酸ィ匕型プラストキノンを還元する循環的電子伝達が阻 害されると増加する。そこで、ある待機時間での酸ィ匕型プラストキノンの生成量 (oQ) を評価値として算出する。この値 oQは、(ある待機時間での積算値 2) - (待機時間 0 秒での積算値 2)によって求めることができる。
[0232] 更に、 pQpoolの酸ィ匕還元反応の大きさに対する、ある待機時間での酸ィ匕型プラス トキノンの割合(%oQ)は、(ある待機時間での oQ) ZsQ X 100によって求めることが できる。
[0233] また、本実施形態に係る光合成サンプルの評価方法によれば、光合成サンプルの PSIの電子蓄積の状態を評価することができる。例えば、遅延発光の計測結果から 算出した PSIの電子蓄積の状態を反映する積算値 3を用いて評価値を導出すること が可能である。
[0234] 具体的には、ある待機時間における標準試料の積算値 3と評価試料の積算値 3と を比較することにより、 PSIの電子蓄積がどのように変化したかを知ることができる。そ こで、 PSIの電子蓄積の変化 (el)を評価値として算出する。 PSIの電子蓄積の変化( el)は、(評価試料の積算値 3) Z (標準試料の積算値 3) X 100によって求めることが できる。この値 elは、飽和なし、待機時間 0秒、待機時間 10秒及び待機時間 60秒の 各条件において算出することができる。この値 elが 100を超えているということは、 PS Iの電子蓄積が増加していることを示す。例えば、飽和なしの条件において PSIの電 子蓄積の変化 (el)を算出すれば、強光の影響のない標準的な条件下での PSIの電 子蓄積の変化を評価することができる。
[0235] 上述したような第 1の励起光を照射すると PSIの電子蓄積が増加する。 PSIの電子 の一部は、循環的電子伝達経路により pQpoolを還元し、還元型プラストキノンを生じ る。還元型プラストキノンに伝えられた電子の多くは、 pQpoolから QB部位及び QA 部位を介して PSII反応中心 (P680)で遅延発光を生じる。飽和なしの場合の積算値 3に対して、待機時間 10秒の場合の積算値 3がー過的に上昇する。すなわち、ある 待機時間を設けた場合の積算値 3から飽和なしの場合の積算値 3を減算した差分が その待機時間での PSIからの循環的電子伝達を表している。そこで、この PSIからの 循環的電子伝達 (cl)を評価値として算出する。この値 は、(ある待機時間での積算 値 3) Z (飽和なしでの積算値 3) X 100によって求めることができる。
[0236] 以上のように、本実施形態により酸化還元状態の変化を評価することができる。例 えば、上述のように評価試料に環境要因 (例えば、紫外線や化学物質など)を与えれ ば、その環境要因が光合成サンプルに対して有害力否力 また、その環境要因がど のような作用を持っているのかを評価することができる。更に、評価試料を調整する 際に河川水や土壌抽出水を用いれば、これらの水に含まれている環境要因(有害も しくは有益な化学物質)を評価することができる。
[0237] 本実施形態で示す酸化還元状態の変化の評価の有用性は上述したものに限定さ れない。例えば、植物の生育診断、植物に対する化学物質の影響、農薬の機能解 析-開発及び光合成の研究に利用することも可能であると考えられる。
[0238] (光合成サンプルの評価プログラム)
次に、図 33及び 34を用いて、実施形態に係る光合成サンプルの評価プログラム( 以下、単に「評価プログラム」という) 50について説明する。図 33は、実施形態に係る 評価プログラム 50の構成を記録媒体 60と共に示す図である。また、図 34は、図 33に 示す評価プログラム 50が動作するコンピュータ 70のハードウェア構成を示す図であ る。
[0239] この評価プログラム 50がコンピュータ 70と協働することで、そのコンピュータ 70が遅 延発光計測装置 1として動作することが可能となる。これにより、上述した光合成サン プルの評価をそのコンピュータ 70上で実現することができる。
[0240] 図 33に示すように、評価プログラム 50は、光源制御モジュール 51と、検出制御モ
ジュール 52と、演算モジュール 53を備えている。光源制御モジュール 51は光源制 御部 31に対応し、検出制御モジュール 52は検出制御部 32に対応し、演算モジユー ル 53は演算部 22に対応する。すなわち、光源制御モジュール 51によりコンピュータ 70が第 1励起手段及び第 2励起手段として機能し、検出制御モジュール 52によりコ ンピュータ 70が測定手段として機能し、演算モジュール 53によりコンピュータ 70が評 価手段として機能する。
[0241] 図 34に示すように、コンピュータ 70は、オペレーティングシステムやアプリケーショ ンプログラムなどを実行する CPU71、 ROM及び RAMで構成される主記憶装置 72 、ハードディスクなどで構成される補助記憶装置 73、ネットワークカードなどの通信制 御装置 74、モニタやプリンタなどの出力装置 76、キーボードやマウスなどの入力装 置 75で構成される。図 33を示して説明した各モジュールは、図 34に示す CPU71や 主記憶装置 72の上に所定のソフトウェアを読み込ませ、 CPU71の制御の下で通信 制御装置 74を動作させるとともに、主記憶装置 72や補助記憶装置 73におけるデー タの読み出し及び書き込みを行うことで実現される。
[0242] この評価プログラム 50によれば、異なった第 2の照射条件毎に遅延発光の発光量 を測定することができるので、より詳細な評価値を導出することができる。その結果、 評価試料に含まれる光合成サンプルの酸化還元状態を適切に且つ簡便に評価する ことができる。
実施例 1
[0243] 以下、実施例に基づいて本発明をより具体的に説明する。しかし、本発明は以下の 実施例に限定されるものではな 、。
[0244] 光合成サンプルとして緑藻を用いた。そして、 C (75)培地を希釈液として 685nm 吸光度 OD685 = 0. 05に調製した後に気温 25°C士 1°Cの環境下で 50 mol · m— 2' s— 1の白色光を照射しつつ 1時間培養した細胞懸濁液 2. 5mLを標準試料とした 。一方、評価試料は、 3- (3,4- dichlorophenyl)- 1,1- dimethyHirea (DCMU)を 12ug ZLの 度で 露した ¾の、 2,5- dibromo- 6- isopropyl- «3- methyト 1,4- benzoquinone ( DBMIB)を 322ugZLの濃度で曝露したもの及び AntimycinA (Ant -A)を 0. 55m gZLの濃度で曝露したものを用意した。これらの化学物質は、いずれも光合成電子
伝達の阻害剤である。以下、 DCMU、 DBMIB及び Ant— Aを曝露した試料をそれ ぞれ DCMU曝露試料、 DBMIB曝露試料及び Ant— A曝露試料という。そして、標 準試料及び 3種類の曝露試料のそれぞれについて、飽和なし、待機時間 0秒、待機 時間 10秒、待機時間 60秒の各条件で上述の評価方法を実施した。光合成サンプル の酸化還元状態は、これらの各条件で異なる。
[0245] 図 35〜38は、それぞれ、実施例における標準試料、 DCMU曝露試料、 DBMIB 曝露試料及び Ant— A曝露試料につ ヽての遅延発光の発光量の経時変化 (減衰曲 線)を示したグラフである。図 35〜38に示すように、化学物質を曝露したことにより、 各曝露試料についての減衰曲線の形状が変化した。
[0246] 以下、積算値を用いてこれら減衰曲線の形状の変化を詳細に説明する。この説明 のために、図 39〜図 41を用いる。図 39は、実施例における標準試料の積算値と DC MU曝露試料の積算値とを比較したグラフであり、図 39 (a)、図 39 (b)及び図 39 (c) は、それぞれ積算値 1、積算値 2及び積算値 3についてのグラフである。図 40は、実 施例における標準試料の積算値と DBMIB曝露試料の積算値とを比較したグラフで あり、図 40 (a)、図 40 (b)及び図 40 (c)は、それぞれ積算値 1、積算値 2及び積算値 3についてのグラフである。図 41は、実施例における標準試料の積算値と Ant— A 曝露試料の積算値とを比較したグラフであり、図 41 (a)、図 41 (b)及び図 41 (c)は、 それぞれ積算値 1、積算値 2及び積算値 3についてのグラフである。
[0247] まず、各曝露試料に共通する標準試料の結果について説明する。 PSII内部の電 子を反映する積算値 1は、待機時間 0秒の場合に最大値を示したのに対し、待機時 間 10秒及び待機時間 60秒の場合には、飽和なしと同程度の値をとつた。これは、上 述したように、第 1の励起光照射直後には pQpoolに還元型プラストキノンが多く存在 し、 PSIIから電子を取り出すことのできる酸化型プラストキノンが少なくなつて PSII内 部の電子蓄積が増加するためである。待機時間 10秒及び 60秒の場合には、その待 機時間の間に酸化型プラストキノンが生成されたことで、 PSIIの電子伝達反応が円 滑に進む飽和なしの状態と同等まで回復したと理解できる。
[0248] pQpoolの電子を反映する積算値 2は、待機時間 0秒の場合に最小値を示し、待機 時間が長くなるにつれ徐々に飽和なしの場合の値に近づいていった。これは、上述
したように、第 1の励起光照射直後では pQpoolに還元型プラストキノンが多く存在し ており、 PSII内のプラストキノン結合部位である QB部位に結合可能な酸ィ匕型プラスト キノンが不足しているためである。酸ィ匕型プラストキノンは待機時間の間に生成される ので、待機時間 60秒の場合には、飽和なしの場合と同等まで回復した。
[0249] PSI以降の電子を反映する積算値 3は、飽和なし、待機時間 0秒及び待機時間 60 秒の場合でほぼ同じ値となり、待機時間 10秒の場合のみ値が増加した。これは、 PS I以降のフェレドキシンや NADPHに蓄えられた電子がフェレドキシンを介して酸化型 プラストキノンに伝達され、還元型プラストキノンを生じる循環的電子伝達反応や、 P7 00を介した逆反応などが生じたためである。積算値 3で示される反応は、積算値 1又 は積算値 2で示される反応と比較して多くの反応経路を経由するため、待機時間 0秒 の場合よりも待機時間 10秒の場合の方が発光量が多くなる。積算値 3は、待機時間 60秒の場合には飽和なしの場合と同等まで回復した。
[0250] 次に、各曝露試料固有の結果について説明する。まず、 DCMU曝露試料の結果 について説明する。 DCMUは、 PSIIの中にある QB部位への酸化型プラストキノン の結合を阻害することにより、 PSII内部から pQpoolへの電子の移動を阻害する。し たがって、還元型プラストキノンの生成が阻害され、プラストキノンプールでは酸ィ匕型 プラストキノンの存在量が多くなる。プラストキノンプールの電子蓄積が減少した結果 、 cytb6fによるプロトン勾配の形成、光化学系 I (PSI)への電子供給の低下及び NA DPH合成の減少が発生する。
[0251] DCMU曝露試料の積算値 1は、飽和なし、待機時間 10秒及び待機時間 60秒の 各場合で標準試料の値の 2倍近 、値を示し、標準試料に関するデータの中で最も飽 和に近い状態にある待機時間 0秒の場合よりも高い値となった。標準試料では、飽和 なしの場合よりも待機時間 0秒 (飽和状態)の方が積算値 1が大きくなつたのに対し、 DCMU曝露試料では逆の結果となった。また、 DCMU曝露試料では、飽和が回復 する場合 (待機時間 10秒及び 60秒の場合)においても値が減少しなカゝつた。これに より、 PSII内部からの電子取出しが強光照射による電子伝達の飽和とは無関係に阻 害されていることがわかった。これは、 DCMUが PSIIの電子伝達を阻害する事と一 致している。
[0252] なお、標準試料と DCMU曝露試料とで待機時間 0秒の場合に顕著な差は見られ な力つたのは、第 1の励起光照射直後では PSII内での循環的電子伝達などの電子 消散機構が働 、て 、るためであると考えられる。
[0253] DCMU曝露試料の積算値 2は、全ての条件において標準試料のそれよりも低くな つた。しかし、待機時間 0秒の場合に最小値を示し、待機時間が長くなるにつれ徐々 に飽和なしの場合の値に近づいていく傾向は、標準試料の結果と同じであった。こ れは、 pQpoolにおける電子蓄積は低下したが、還元型プラストキノンを再酸化する 過程は阻害されなかったことを示している。これは、 DCMUが PSII以降への電子伝 達を低下させるが、それ以外の反応を阻害しな 、ことと一致して 、る。
[0254] DCMU曝露試料の積算値 3は、全ての条件において標準試料のそれよりも低くな つた。更に、 DCMU曝露試料の積算値 3は、待機時間 0秒及び 10秒の場合に飽和 なしの場合より高 、値となった。標準試料では認められな 、待機時間 0秒での値の 増加の違いがあるものの、基本的には標準試料と同じ傾向であった。これは、 PSI以 降からの逆反応による PSIIへの電子流入は減少した力 PSI以降からの電子の逆流 は阻害されなかったことを示している。これは、 DCMUが PSII以降への電子伝達を 低下させるが、それ以外の反応を阻害しな 、ことと一致して 、る。
[0255] 次に、 DBMIB曝露試料の結果について説明する。 DBMIBは、 cytb6f複合体の プラストキノン結合部位に結合し還元型プラストキノンの酸ィ匕を阻害する。したがって 、 pQpoolでは還元型プラストキノンの存在量が増加し酸化型プラストキノンの存在量 が減少する。
[0256] DBMIB曝露試料の積算値 1は、全ての条件で標準試料のそれよりも高くなつた。
しかし、飽和なしの場合と比較して待機時間 0秒で値が増加し、待機時間 10秒及び 60秒の場合に飽和なしの場合と同程度にまで回復したことは、標準試料の場合と同 じであった。このことは、 PSII内部の電子蓄積は増加した力 PSIIからの電子の取り 出しそのものは阻害されな力つたことを示している。これは、 DBMIBが酸化型プラス トキノンの生成を阻害し、 PSIIからの電子の取り出しが低下することと一致する。
[0257] DBMIB曝露試料の積算値 2と標準試料の積算値 2とを比較したところ、最も飽和 に近い状態にある待機時間 0秒の場合では大きな差は認められな力つた。しかし、そ
れ以外の条件 (飽和なし、待機時間 10秒及び待機時間 60秒)では、 DBMIB曝露試 料の積算値 2の方が標準試料のそれよりも低くなつた。すなわち、 DBMIB曝露試料 では、最も飽和に近 、状態 (待機時間 0秒)での積算値 2と飽和なしの状態での積算 値 2との差が少なくなつた。これは、飽和なしの条件で、強光照射が無いにもかかわら ず pQpoolが還元状態になり、 pQpoolの酸ィ匕型プラストキノンの存在量が増加したた めである。このことは、 DBMIBが還元型プラストキノンの酸ィ匕を阻害する力 それ以 外の電子伝達を阻害しな 、ことと一致する。
[0258] DBMIB曝露試料の積算値 3と標準試料の積算値 3とを比較したところ、飽和なし、 待機時間 0秒及び待機時間 60秒の各場合では、両者の間に大きな差は認められな かった。しかし、待機時間 10秒の場合について比較したところ、標準試料では値が 比較的大きく増加したのに対し、 DBMIB曝露試料での増分は標準試料の場合より も低いものであった。これは、 PSI以降から pQpoolへの電子の流れが低下したことを 示している。このことは、 DBMIBが PSIからプラストキノンへの電子の流れの一つで ある循環的電子伝達の電子受容体となる酸ィヒ型プラストキノンの存在量を低下させる ことと一致する。
[0259] 次に、 Ant— A曝露試料の結果について説明する。 Ant— Aは、 PSIのフェレドキ シン (Fd)を介して cytb6fの酸化型プラストキノンへ電子を伝達し、還元型プラストキ ノンを生じる循環的電子伝達を阻害する化学物質である。すなわち、 Ant— Aは、 P SIから pQpoolへ電子を循環させる反応を阻害する。
[0260] Ant— A曝露試料の積算値 1と標準試料の積算値 1とを比較したところ、飽和なし、 待機時間 0秒及び待機時間 60秒の各場合では大きな差は認められなカゝつた。また、 待機時間 0秒の場合には飽和なしの場合よりも積算値 1が増力!]した点も同様であった 。しかし、待機時間 10秒の場合に注目すると、標準試料では積算値 1が飽和なしと 同じ程度まで減少したのに対して、 Ant— A曝露試料では待機時間 0秒の場合と同 様に増加しており、待機時間 60秒の場合に飽和なしと同等まで減少した。本来 PSII 内部の電子蓄積が解消されているはずの待機時間 10秒においても PSII内部の電 子蓄積が多い状態にあったことについては、 PSIIからの電子取出しが阻害されたの ではなぐ飽和の回復が遅力つた力、又は、異なる経路力も PSIIに電子が流入した
可能性が考えられる。
[0261] Ant— A曝露試料の積算値 2は、全ての条件において標準試料の場合よりも発光 量が低くなつた。しかし、待機時間 0秒の場合に最小値を示し、待機時間が長くなる につれ徐々に飽和なしの値に近づく傾向は、標準試料の場合と同じであった。このこ とは、標準試料に比べて酸ィ匕型プラストキノンが減少しているが(pQpoolが還元状態 である) 1S cytb6fにおける酸ィ匕型プラストキノンの生成は阻害されていないことを表 している。このことは、 Ant— A力cytb6fにおける酸化型プラストキノンの生成を阻害 しないことと一致する。
[0262] Ant— A曝露試料の積算値 3は、全ての条件において標準試料よりも発光量が低く なった。また、標準試料において観察された、待機時間 10秒における積算値 3の増 カロも観察されな力つた。上記のように、待機時間 10秒における積算値 3の増加には 循環的電子伝達が関与していると考えられるので、この結果は、 PSI以降の電子蓄 積が減少し且つ PSIから pQpoolへ至る電子の流れが阻害されたことを表していると いえる。 PSIから pQpoolへの電子の流れが阻害されたことは、 Ant— Aが循環的電 子伝達を阻害することと一致する。 PSIIの電子蓄積の減少についても、循環的電子 伝達の阻害により pQpoolから再度 PSIに流入する電子が減少したためと考えられる 。循環的電子伝達の阻害により行き場を失った電子は何らかの機構により PSIIに移 動し、その結果、上述した待機時間 10秒における積算値 1の増加を引き起こしたとい う可能性も考えられる。
[0263] 次に、図 42〜44を用いて、実施例における標準試料および各曝露試料の測定値 に基づいて上述の評価値算出方法を実施して得た値 ell、 vll、 vQ、%oQ、 el及び cl について説明する。図 42は、各試料の飽和なしにおける値 ell及び vllを示す表であ る。図 43は、各試料の値 vQ及び%oQを示す表である。図 44は、各試料の飽和なし における値 el及び clを示す表である。
[0264] 図 42に示すように、 DCMU曝露試料の飽和なしにおける値 ellは 188であったの で、標準試料の場合よりも PSIIでの電子蓄積が増加したことがわかる。また、 DCMU 曝露試料の vllが負の値となったことから、 PSIIからの電子取出しはなぐ逆に PSII に電子が流入している状態であったことがわかる。これは、 PSIIからの電子取出しを
阻害し、 PSIIの電子蓄積を増加させる DCMUの作用と合致する。
[0265] また、図 43に示すように、 DBMIB曝露試料は値 vQが 30となった。これは、標準試 料に比べ光照射による酸ィ匕還元反応が減少したことを示している。また、値%0<3に ついて見ると、標準試料では、待機時間 10秒で 36、待機時間 60秒で 107であった のに対して、 DBMIB曝露試料では、待機時間 10秒で 4、待機時間 60秒で 22という ように、標準試料の場合と比較して減少した。これは、 DBMIB曝露試料では、標準 試料と比べて pQpoolの酸ィ匕還元反応が低下し cytb6fでのプラストキノンの再酸ィ匕 が低下したことを示す。このことは、 cytb6fでのプラストキノンの再酸化反応を阻害す る DBMIBの作用と合致して!/、る。
[0266] また、図 44に示すように、 Ant— A曝露試料の飽和なしにおける値 elは 89であり、 PSIの電子蓄積は標準試料の場合比較してそれほど減少していない。しかし、標準 試料の待機時間 10秒における値 clが 38であるのに対して、 Ant— A曝露試料の待 機時間 10秒における値 clは— 12となっている。これは、 Ant— A曝露試料では、 PS Iの電子蓄積がそれほど変化しな力つた力 PSIから pQpoolへの循環的電子伝達な どによる電子の流入が低下したことを示す。このことは、循環的電子伝達を阻害する Ant— Aの機能と合致して 、る。
[0267] 以上、 DCMU、 DBMIB及び Ant— Aを用いた計測結果から、有害物質を曝露し な 、標準試料と有害物質を曝露した曝露試料とにつ 、て、異なる酸化還元状態の光 合成サンプルの遅延発光を計測して計測結果を比較することで、有害物質の有無及 びその光合成電子伝達反応への作用の違いを評価することができることがわ力つた 。このような特徴は、化学物質生態リスク評価に代表される、藻類などの光合成サン プルに対する有害物質の影響の評価に対して有用である。
[0268] 以上、本発明をその実施形態に基づいて詳細に説明した。しかし、本発明は上記 実施形態に限定されるものではない。本発明は、その要旨を逸脱しない範囲で以下 のような様々な変形が可能である。
[0269] 上記実施形態では、測定された遅延発光の発光量を測定時間帯毎に積算した積 算値に基づいて評価値を導出したが、評価値の導出方法はこれに限定されない。例 えば、遅延発光の発光量の経時データ (減衰曲線)が予め設定された複数の関数の
和としてフィッティングするように当該複数の関数の係数値を決定し、この係数値に基 づ 、て評価値を導出してもよ 、。
[0270] 遅延発光の発光量の経時データを経時データ関数にフィッティングする手法 (以下 「フィッティング手法」という)について詳細に説明する。フィッティング手法を利用する ために、複数の関数の情報を予め遅延発光計測装置 1の記録部 21に記憶させてお く。関数としては、山型の関数を用いることが好ましい。山型の関数とは、形状が山型 になる関数のことで、所定の変数値において関数値が最大値となり、当該所定の変 数値以下の変数値では単調非減少、当該所定の変数値以上の変数値では単調非 増加な関数である。
[0271] 複数の関数としては、例えば、 ai, bi, ci (i= l, 2, 3)を複数の関数の係数値、 tを 基準時刻からの経過時間 (励起後時間)を示す変数としたときに、それぞれ
[数 8] . .ノ )
で示されるローレンツ関数 (コーシ一分布)を用いることが考えられる。係数値 aiは時 間方向への広がり、係数値 biは発光量が最大値を取る励起後時間 t、係数値 ciは最 大値の極大値に、それぞれ影響する。
[0272] この場合、フィッティングに用いる複数の関数の和は、
[数 9] fm (t) = 101+a>(^)2 + 10'+ (' - ¾·)2 + 10 ι+",(Ά)2 ... (4) となる。ここで、励起後時間 tの基準時刻は、例えば、光源 12からの光の照射が終了 した時刻から予め設定した所定の時間が経過した時刻とする。また、上記 (4)の式に おいて、右辺の第 1項、第 2項、第 3項を、それぞれ時間軸上で最大値の現れる順番 で、第 1関数、第 2関数、第 3関数というように表す。すなわち、複数の関数の係数に おいて、 bl < b2< b3の関係が成立する。
[0273] なお、フィッティング手法で用いる関数はこれに限定されず、二次関数、正規分布 関数等の他の山型の関数を用いてもよい。また、よくフィッティングする関数であれば 、山型の関数でなくてもよい。例えば、上記 (4)で示される式に更に係数 di (i= l, 2,
3)を加えた、以下の式で表される関数を用いてもよい。
[数 10] fm i) = 10 ]+α' '-^"' + 10 1+。 — ) ' + 101+。3 - . . . ( 5 )
[0274] フィッティング手法を実施するためには、フィッティングを行うためのアルゴリズムに ついても予め記録部 21に記憶させておく。例えば、シンプレックス法、 Gauss- Newton 法、 Davidon
Fletcher Powell法、 Brent法、モンテカルロ法及びシミュレ一テッド 'アニーリング法を フィッティングを行うためのアルゴリズムとして用いることができる。
[0275] そして、上記フィッティング手法で算出された係数値に基づいて評価値を導出する 。例えば、記録部 21が予め記憶している、評価値を算出するための式に基づいて評 価値を算出する。
[0276] このようなフィッティング手法を用いることで、客観的に評価値を導出することが可能 となる。また、遅延発光の発光量の経時変化を、例えば上記 (4)で示される式又は上 記(5)で示される式にフィッティングさせて 、るので、図 19などを用いて説明した遅延 発光のメカニズムに基づいた評価が可能になる。したがって、評価試料に含まれる光 合成サンプルの酸化還元状態を適切に評価することができる。
[0277] 上記実施形態では、遅延発光の発光量の測定を複数回繰り返す際に変更する第 2の照射条件として待機時間を採用したが、変更する第 2の照射条件はこれに限定さ れない。光合成サンプルの酸化還元状態は、光合成サンプルに照射する光のエネ ルギ一と光合成サンプルの電子伝達の効率とに依存するので、例えば、第 2の励起 光の光量、波長、パルス幅及び照射時間のうち少なくとも一つを変更してもよい。第 2 の励起光に関するこれらの条件は、図 19などを用いて説明した光合成サンプルの酸 化還元状態の変化と密接に関係する。そのため、これらの要素のうち少なくとも一つ を変更しながら第 1の励起光の照射及び第 2の励起光の照射を複数回繰り返し、測 定された各発光量に基づく評価値を導出することで、評価試料に含まれる光合成サ ンプルの酸化還元状態を適切に評価することができる。
[0278] また、温度や電場など、光合成サンプルの電子伝達効率が変化するような環境要
因を負荷条件として採用してもよい。負荷条件としては光照射条件、暗黒条件、温度 条件、電場条件、磁場条件、 pH条件などが挙げられ、これらの負荷条件を用いても 、複数の酸ィ匕還元状態を発生させることができる。そのため、評価試料に含まれる光 合成サンプルの酸化還元状態を適切に評価することができる。
[0279] 例えば、上記実施形態における第 1の照射条件及び待機時間に代えて、温度条件 を採用することも可能である。温度は電子伝達系の伝達速度に影響するため、温度 が高いほど光合成サンプルの電子伝達が促進される。したがって、評価試料に負荷 する温度条件を制御することにより、評価試料に含まれる光合成サンプルの酸化還 元状態が異なる状態を段階的に作り出すことができる。
[0280] 上記実施形態における第 1の照射条件及び待機時間に代えて、暗黒条件を採用 することも可能である。暗黒条件下では、光合成機能が休止状態になり、光合成サン プルの光合成電子伝達効率が低下する。暗黒条件が長くなるにつれて低下量は大 きくなるが、ある一定の期間に達すると変化しなくなる。測定条件により異なるが、一 例として光合成サンプルを暗中にぉ 、て遅延発光を測定すると、励起後約 10秒以 降の遅延発光量に低下がみられる。更に、この暗黒条件の長さが一定期間に達する と発光量の低下は止まり、一定となる。
[0281] 上記実施形態における第 1の照射条件及び待機時間に代えて、光照射条件として 紫外線を採用することも可能である。紫外線は光合成機能に障害を与えるが、その 影響の大きさは、波長および照射量 (照射強度 X照射時間)により変化する。波長が 短く照射量が多いほど光合成サンプルに対する負荷 (ストレス)は大きくなり、光合成 サンプルの電子伝達効率が低下する。
[0282] 上記実施形態における第 1の照射条件及び待機時間に代えて、 pH条件を採用す ることも可能である。 pHは、主に細胞内の呼吸鎖に関わるミトコンドリア内膜、および 、光合成の電子伝達系に関わる葉緑体のチラコイド膜内の水素イオン濃度が高くな るプロトン勾配の形成に影響する。藻類におけるその影響の大きさは、藻類細胞懸 濁液 (培養液)の pHと光合成サンプル (使用藻類)のチラコイド膜内部の pHとの差が 少なくなると光合成サンプルに対する負荷 (ストレス)が大きくなる点に表れる。また、 極端に高 、または低 、pHは光合成サンプルに対して物理的なストレスとなる。
[0283] これらの負荷条件は組み合わせて用いることも可能である。光合成サンプルに複数 の負荷条件による負荷をかけることにより、光合成サンプルの酸ィ匕還元状態が異なる 状態を段階的に作り出すことができる。
[0284] 本発明にお 、て、特徴値とは、光合成サンプル力 発生する遅延発光の発光量の 経時データにおける複数の時間帯に対して特徴を示す値のことを ヽぅ。特徴値は各 時間帯に一つずつ算出してもよいし、複数算出してもよい。特徴値としては、 1以上 の測定時間帯毎に積算した遅延発光の発光量の積算値、遅延発光の発光量の経 時変化を関数の和としてフィッティングして得られる係数値などが挙げられる。
[0285] 評価値とは光合成サンプルの状態を評価するための値であり、評価値は特徴値を 重み付けすることにより算出される。ここでいう重み付けとは、評価する条件に対して 、重要度の高い特徴値が評価値へ与える影響を高くするというものである。評価する 条件に対して重要度の低い特徴値がわ力つていれば、その特徴値を評価値の算出 に用いないという重み付けをしてもよい。逆に、評価する条件に対して特に重要度の 高 、特徴値がわ力つて 、れば、その他の特徴値を評価値の算出に用いな ヽと 、う重 み付けをしてもよい。
[0286] 参照データとは、上記実施例における基準データ又は標準データのことである。
[0287] 第 2の光合成サンプルとは、参照データを取得するための光合成サンプルであり、 評価対象の光合成サンプルに対して、環境条件 (有害物質の付加や温度など)又は 光合成サンプルそのものの条件 (生育条件など)のうち少なくとも一つが異なる。第 2 の光合成サンプルとしては、環境要因によって曝露されていない光合成サンプルを 用いることが好ましいが、これに限定されない。
図面の簡単な説明
[0288] [図 1]遅延発光のメカニズムを示す図である。
[図 2]遅延発光の発光量に対する環境要因の影響を示すグラフである。
[図 3]実施形態に係る環境要因の評価システムの構成を示す図である。
[図 4]フィッティングを行う関数のグラフと当該関数の係数値の影響とを示した図であ る。
[図 5]評価値を求めるための評価式と遅延発光のプロセスとの関連を示した図である
圆 6]本発明の実施形態に係る環境要因の評価方法を示すフローチャートである。 圆 7]本発明の実施形態に係る環境要因の評価方法を示すフローチャートである。 圆 8]本発明に係る環境要因の評価プログラムの構成を示す図である。
[図 9]シマジンを、濃度を変えて曝露した場合の S. platensisの生長曲線下面積を示 すグラフである。
[図 10]実施例 1における、 S. platensis (植物性サンプル)から発生する遅延発光の発 光量のグラフである。
[図 11]実施例 1における、フィッティング結果の一例を示すグラフである。
[図 12]実施例 1における、シマジンの曝露濃度とフィッティングにより決定した係数値 である c3の値との関係を示すグラフである。
[図 13]シマジンを、濃度を変えて曝露した場合の P. subcapitataの生長曲線下面積を 示すグラフである。
[図 14]実施例 2における、 P. subcapitata (植物性サンプル)から発生する遅延発光の 発光量のグラフである。
[図 15]実施例 2における、フィッティング結果の一例を示すグラフである。
[図 16]実施例 2における、シマジンの曝露濃度とフィッティングにより決定した係数値 である c3の値との関係を示すグラフである。
[図 17]実施例 2における、シマジンの曝露濃度と評価値 Eの値との関係を示すグラフ である。
[図 18]実施例 2における、シマジンの曝露濃度と面積値との関係を示すグラフである 圆 19]光合成電子伝達を示す模式図である。
圆 20]実施形態に係る遅延発光計測装置を模式的に示す図である。
圆 21]図 20に示す遅延発光計測装置を部分的に示すブロック図である。
[図 22]光合成サンプルの評価方法の手順を示すフローチャートである。
圆 23]待機時間と遅延発光の経時変化との関係を示すグラフである。
圆 24]励起光の照射光量と遅延発光の経時変化との関係を示すグラフである。
圆 25]励起光の照射時間と遅延発光の経時変化との関係を示すグラフである。
圆 26]飽和なしの状態における酸ィ匕還元状態と遅延発光との対比を示す模式図で ある。
圆 27]第 1の励起光照射後に待機時間を設けな力つた場合の、酸ィ匕還元状態と遅延 発光との対比を示す模式図である。
圆 28]第 1の励起光照射後に待機時間を 2秒設けた場合の、酸ィ匕還元状態と遅延発 光との対比を示す模式図である。
[図 29]図 23に示した減衰曲線についての積算値を示すグラフであり、 (a)は積算値 1 について、(b)は積算値 2について、(c)積算値 3についてのグラフである。
圆 30]標準試料における待機時間と遅延発光の発光量の経時変化との関係を示す グラフである。
圆 31]評価試料における待機時間と遅延発光の経時変化との関係を示すグラフであ る。
圆 32]図 30及び 31に示した遅延発光の発光量に基づく積算値を示すグラフであり、 (a)は積算値 1について、(b)は積算値 2について、(c)積算値 3についてのグラフで ある。
圆 33]実施形態に係る評価プログラムの構成を記録媒体と共に示す図である。
[図 34]図 33に示す評価プログラムが動作するコンピュータのハードウェア構成を示す 図である。
[図 35]実施例における標準試料についての遅延発光の発光量の経時変化を示した グラフである。
[図 36]実施例における DCMU曝露試料についての遅延発光の発光量の経時変化 を示したグラフである。
[図 37]実施例における DBMIB曝露試料についての遅延発光の発光量の経時変化 を示したグラフである。
[図 38]実施例における Ant— A曝露試料についての遅延発光の発光量の経時変化 を示したグラフである。
圆 39]実施例における標準試料の積算値と DCMU曝露試料の積算値とを比較した
グラフであり、(a)は積算値 1について、(b)は積算値 2について、(c)積算値 3につい てのグラフである。
[図 40]実施例における標準試料の積算値と DBMIB曝露試料の積算値とを比較した グラフであり、(a)は積算値 1について、(b)は積算値 2について、(c)積算値 3につい てのグラフである。
[図 41]実施例における標準試料の積算値と Ant— A曝露試料の積算値とを比較した グラフであり、(a)は積算値 1について、(b)は積算値 2について、(c)積算値 3につい てのグラフである。
[図 42]実施例における標準試料及び各曝露試料の飽和なしにおける値 ell及び vll を示す表である。
[図 43]実施例における標準試料及び各曝露試料の値 vQ及び%oQを示す表である
[図 44]実施例における標準試料及び各曝露試料の飽和なしにおける値 el及び clを 示す表である。
符号の説明
[0289] 図 1〜18において、 1…環境要因の評価システム、 10···計測装置、 12···評価装置 、 14…制御装置、 16…設置部、 18···光源、 20…光検出器、 20a…光センサ、 20b …遅延発光量算出部、 22···フィルタ、 24…集光光学系、 26···シャツタ、 28···筐体、 30···導入口、 32···本体部、 34…蓋部、 36…受付部、 38···フィッティング部、 40··· 評価部、 42···出力部、 44···評価値算出部、 46…比較部、 50···記録媒体、 50&··· プログラム格納領域、 52···評価プログラム、 52a…メインモジュール、 52b…受付モ ジュール、 52c…フィッティングモジュール、 52d…評価モジュール、 52e…出力モジ ユーノレ o
[0290] 図 19〜図 44において、 1…遅延発光計測装置、 10···計測ユニット、 11…試料設 置部、 12···光源、 13···フィルタ、 14…集光光学系、 15···シャツタ、 16…検出部、 16 a…光センサ、 16b…光量算出部、 17…筐体、 17a…本体部、 17b…蓋部、 20···解 析ユニット、 21···記録部、 22···演算部、 23···表示部、 24…入力部、 30···制御ュ- ット、 31···光源制御部、 32···検出制御部、 41···第 1ケーブル、 42…第 2ケーブル、
50···評価プログラム、 51···光源制御モジュール、 52···検出制御モジュール、 53··· 演算モジュール、 60···記録媒体、 70· "コンピュータ。
Claims
[1] 光合成機能を有する光合成サンプルから発生する遅延発光の発光量の経時デー タに基づ ヽて、前記光合成サンプルの状態を評価する光合成サンプルの評価方法 であって、
前記経時データにおける複数の時間帯に対して特徴を示す特徴値を算出する特 徴値算出ステップと、
前記特徴値を重み付けすることにより評価値を算出する評価値算出ステップと、 前記評価値に基づいて前記光合成サンプルの状態を評価する評価ステップとを備 えることを特徴とする光合成サンプルの評価方法。
[2] 前記特徴値算出ステップは、前記経時データが、予め設定された複数の関数の和 としてフィッティングするように、当該複数の関数の係数値を前記特徴値として決定す るフィッティングステップを含み、
前記評価値算出ステップでは、前記フィッティングステップにお 、て決定された係 数値に基づいて前記評価値を算出する、ことを特徴とする請求項 1に記載の光合成 サンプルの評価方法。
[3] 前記評価値算出ステップにおいて算出される評価値が、前記複数の関数のうち少 なくとも 1つの関数の係数値に基づいて算出される面積値である、ことを特徴とする請 求項 2に記載の光合成サンプルの評価方法。
[4] 前記関数が、山型の関数である、ことを特徴とする請求項 2又は 3のいずれか一項 に記載の光合成サンプルの評価方法。
[5] 前記関数が、ローレンツ関数である、ことを特徴とする請求項 4に記載の光合成サ ンプルの評価方法。
[6] a , b , c (i= l, 2, 3)を前記複数の関数の係数値、 tを基準時刻からの経過時間を 示す変数としたときに、前記複数の関数が、それぞれ、
[数 1]
] 0 1+fli i )2 101+。3('— 6' )2 ι ο 1+。' ('一63 )2
である、ことを特徴とする請求項 5に記載の光合成サンプルの評価方法。
[7] 前記評価値算出ステップおいて算出される評価値が、前記複数の関数うち少なくと も 2以上の関数の係数を含む演算式に基づいて算出される、ことを特徴とする請求項 2に記載の光合成サンプルの評価方法。
[8] a , b., c (i= l, 2, 3)を前記複数の関数の係数値、 tを基準時刻からの経過時間を 示す変数とし、 b < b < bとしたときに、前記複数の関数が、それぞれ、
1 2 3
[数 2] j Ql+a, (i-i, ) ^ Ι+α, ίί-δ, ) ) Q】+。'('— ¾ f であり、
m (j = l〜9)を定数としたとき、前記評価値が、演算式
[9] 前記光合成サンプルから発生する遅延発光の経時的な発光量を計測して、当該計 測データを前記経時データとする計測ステップを更に含むことを特徴とする請求項 1 に記載の光合成サンプルの評価方法。
[10] 前記計測ステップは、前記光合成サンプルに第 1の励起光を所定の第 1の照射条 件で照射する第 1励起ステップと、前記第 1励起ステップの後、前記光合成サンプル に第 2の励起光を前記第 1の照射条件と比較して光エネルギー積算値が小さい第 2 の照射条件で照射する第 2励起ステップと、を備え、
前記特徴値算出ステップでは、前記第 2励起ステップの後に得られた経時データに 基づいて前記特徴値が算出される、ことを特徴とする請求項 9に記載の光合成サン プルの評価方法。
[11] 前記測定ステップでは、前記第 2の照射条件を変更して、前記発光量を複数回繰り 返し測定することにより、複数の経時データを取得する、ことを特徴とする請求項 10 に記載の光合成サンプルの評価方法。
[12] 前記第 2の照射条件は、前記第 1の励起光の照射終了時から前記第 2の励起光の 照射開始時までの待機時間である、ことを特徴とする請求項 11に記載の光合成サン
プルの評価方法。
[13] 前記第 2の照射条件は、前記第 2の励起光の光量、波長、パルス幅及び照射時間 のうち少なくとも一つであること、を特徴とする請求項 11に記載の光合成サンプルの 評価方法。
[14] 前記評価ステップは、
前記評価値算出ステップにおいて算出された評価値と当該評価値の参照データ とを比較する比較ステップを含む、ことを特徴とする請求項 1〜13のいずれか一項に 記載の光合成サンプルの評価方法。
[15] 第 2の光合成サンプル力 発生する遅延発光の経時的な発光量を計測して、当該 計測データ力 前記比較ステップにおける参照データを導出する参照データ生成ス テツプを更に含む請求項 14に記載の光合成サンプルの評価方法。
[16] 前記特徴値は、前記時間帯毎に積算した積算値である、を特徴とする請求項 1に 記載の光合成サンプルの評価方法。
[17] 前記評価ステップでは、前記光合成サンプルに供された環境要因を評価する、こと を特徴とする請求項 1〜16のいずれか一項に記載の光合成サンプルの評価方法。
[18] 前記環境要因が、植物性細胞の生長阻害物質である、ことを特徴とする請求項 17 に記載の光合成サンプルの評価方法。
[19] 光合成機能を有する光合成サンプルから発生する遅延発光の発光量の経時デー タに基づ ヽて、前記光合成サンプルの状態を評価する光合成サンプルの評価システ ムであって、
前記経時データにおける複数の時間帯に対して特徴を示す特徴値を算出する特 徴値算出手段と、
前記特徴値を重み付けすることにより評価値を算出する評価値算出手段と、 前記評価値に基づいて前記光合成サンプルの状態を評価する評価手段とを備え ることを特徴とする光合成サンプルの評価システム。
[20] 前記特徴値算出手段は、前記経時データが、予め設定された複数の関数の和とし てフィッティングするように、当該複数の関数の係数値を前記特徴値として決定する フィッティング手段を含み、
前記評価値算出手段は、前記フィッティング手段により決定された係数値に基づい て前記評価値を算出する、ことを特徴とする請求項 19に記載の光合成サンプルの評 価システム。
[21] 前記光合成サンプルから発生する遅延発光の経時的な発光量を計測して、当該計 測データを前記経時データとする計測手段を更に含む請求項 20に記載の光合成サ ンプルの評価システム。
[22] 前記光合成サンプルに対して、照射条件を変更して励起光を照射するよう光源を 制御する光源制御手段を更に含む請求項 21に記載の光合成サンプルの評価シス テム。
[23] 前記評価手段は、前記光合成サンプルに供された環境要因を評価する、ことを特 徴とする請求項 19〜21のいずれか一項に記載の光合成サンプルの評価システム。
[24] コンピュータに、光合成機能を有する光合成サンプルから発生する遅延発光の発 光量の経時データに基づ 、て、前記光合成サンプルの状態を評価させるための光 合成サンプルの評価プログラムであって、
前記経時データにおける複数の時間帯に対して特徴を示す特徴値を算出する特 徴値算出処理と、
前記特徴値を重み付けすることにより評価値を算出する評価値算出処理と、 前記評価値に基づいて前記光合成サンプルの状態を評価する評価処理とを実行 させることを特徴とする光合成サンプルの評価プログラム。
[25] 前記特徴値算出処理は、前記経時データが、予め設定された複数の関数の和とし てフィッティングするように、当該複数の関数の係数値を前記特徴値として決定する フィッティング処理を含み、
前記評価値算出処理は、前記フィッティング処理により決定された係数値に基づ ヽ て前記評価値を算出する、ことを特徴とする請求項 24に記載の光合成サンプルの評 価プログラム。
[26] 前記光合成サンプルから発生する遅延発光の経時的な発光量を計測して、計測さ れたデータを前記経時データとする計測処理を更に含むことを特徴とする請求項 24 に記載の光合成サンプルの評価プログラム。
[27] 前記計測処理は、
前記光合成サンプルに第 1の励起光を所定の第 1の照射条件で照射する第 1励起 処理と、
前記第 1励起処理の後、前記光合成サンプルに第 2の励起光を前記第 1の照射条 件と比較して光エネルギー積算値が小さい第 2の照射条件で照射する第 2励起処理 と、
を実行し、
前記特徴値算出処理は、前記第 2励起処理の後に得られた経時データに基づい て前記特徴値を算出する、
ことを特徴とする、請求項 26に記載の光合成サンプルの評価プログラム。
[28] 前記計測処理では、前記第 2の照射条件を変更して、前記発光量を複数回繰り返 し測定することにより、複数の経時データを取得する、ことを特徴とする請求項 27に 記載の光合成サンプルの評価プログラム。
[29] 前記評価処理は、前記光合成サンプルに供された環境要因を評価する、ことを特 徴とする請求項 24〜27のいずれか一項に記載の光合成サンプルの評価プログラム
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Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2012032853A1 (ja) * | 2010-09-08 | 2012-03-15 | 浜松ホトニクス株式会社 | 藻類細胞の調製方法及び化学物質の毒性評価用キット |
| JP2014240831A (ja) * | 2013-05-17 | 2014-12-25 | 国立大学法人京都大学 | 植物の活力診断方法、並びにこれに用いられる計測システム及び診断システム |
| JP2017044531A (ja) * | 2015-08-25 | 2017-03-02 | 浜松ホトニクス株式会社 | 光合成サンプルの評価システム、光合成サンプルの評価方法、および光合成サンプルの評価プログラム |
Families Citing this family (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN102435589B (zh) * | 2003-12-19 | 2015-01-14 | 浜松光子学株式会社 | 有害物质的评价方法以及有害物质的评价用工具箱 |
| CA2732086C (en) * | 2008-07-25 | 2015-09-01 | (Lec) Light Emitting Computers Ltd. | Apparatus and method for plant metabolism manipulation using spectral output |
| DE102009036562B4 (de) * | 2009-08-10 | 2014-06-18 | Christian Moldaenke | Verfahren zur Bestimmung der Wasserqualität eines Gewässers |
| FR3010521B1 (fr) * | 2013-09-12 | 2015-10-09 | Luxor | Procede fluorimetrique simplifie pour evaluer l'influence d'une condition sur un echantillon biologique et ses applications |
| JP7362502B2 (ja) * | 2020-02-10 | 2023-10-17 | 浜松ホトニクス株式会社 | 光合成サンプルの評価システム、方法およびプログラム |
| CN111398284B (zh) * | 2020-05-14 | 2024-07-23 | 上海乾菲诺农业科技有限公司 | 一种可还原自然照光的光合仪 |
| CN112949039B (zh) * | 2021-02-01 | 2023-05-26 | 南京信息工程大学 | 估算近海水体浮游植物诊断色素浓度的海洋水色遥感方法 |
Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2003501615A (ja) * | 1998-11-04 | 2003-01-14 | ザ リサーチ ファウンデーション オブ ステイト ユニヴァーシティ オブ ニューヨーク | 連続的な量子タイミングコードを有するサンプル分析 |
| JP2004309458A (ja) * | 2003-03-27 | 2004-11-04 | Institute Of Physical & Chemical Research | 時間分解蛍光顕微鏡 |
Family Cites Families (8)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DD248433A1 (de) * | 1984-11-16 | 1987-08-05 | Univ Berlin Humboldt | Optisches verfahren zum nachweis von schaedigungen des photosyntheseapparates |
| US4650336A (en) * | 1985-09-20 | 1987-03-17 | Advanced Genetic Sciences, Inc. | Measurement of variable fluorescence of plants |
| US4942303A (en) * | 1989-01-31 | 1990-07-17 | Associated Universities, Inc. | Computer controlled fluorometer device and method of operating same |
| US5854063A (en) * | 1996-01-16 | 1998-12-29 | The State Of Oregon Acting By And Through The State Board Of Higher Education On Behalf Of Oregon State University | Method and apparatus for spectrophotometric observation of plants |
| DE19910436A1 (de) | 1999-03-10 | 2000-10-12 | Ulrich Schreiber | Zweikanal-Chlorophyllfluorometer für Toxizität - Biotests |
| US7112806B2 (en) * | 2001-09-27 | 2006-09-26 | Robert Lussier | Bio-imaging and information system for scanning, detecting, diagnosing and optimizing plant health |
| JP4084135B2 (ja) | 2002-09-04 | 2008-04-30 | 浜松ホトニクス株式会社 | 植物性細胞の育成状態測定装置および育成状態測定方法 |
| CN102435589B (zh) | 2003-12-19 | 2015-01-14 | 浜松光子学株式会社 | 有害物质的评价方法以及有害物质的评价用工具箱 |
-
2007
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Patent Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2003501615A (ja) * | 1998-11-04 | 2003-01-14 | ザ リサーチ ファウンデーション オブ ステイト ユニヴァーシティ オブ ニューヨーク | 連続的な量子タイミングコードを有するサンプル分析 |
| JP2004309458A (ja) * | 2003-03-27 | 2004-11-04 | Institute Of Physical & Chemical Research | 時間分解蛍光顕微鏡 |
Non-Patent Citations (9)
Cited By (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2012032853A1 (ja) * | 2010-09-08 | 2012-03-15 | 浜松ホトニクス株式会社 | 藻類細胞の調製方法及び化学物質の毒性評価用キット |
| CN103097544A (zh) * | 2010-09-08 | 2013-05-08 | 浜松光子学株式会社 | 藻类细胞的制备方法以及化学物质的毒性评价用试剂盒 |
| US9759639B2 (en) | 2010-09-08 | 2017-09-12 | Hamamatsu Photonics K.K. | Method for preparation of algal cells, and kit for evaluation of toxicity of chemical substance |
| JP2014240831A (ja) * | 2013-05-17 | 2014-12-25 | 国立大学法人京都大学 | 植物の活力診断方法、並びにこれに用いられる計測システム及び診断システム |
| US10024832B2 (en) | 2013-05-17 | 2018-07-17 | Kyoto University | Method for evaluating vitality of plant, and measurement system and evaluation system |
| JP2017044531A (ja) * | 2015-08-25 | 2017-03-02 | 浜松ホトニクス株式会社 | 光合成サンプルの評価システム、光合成サンプルの評価方法、および光合成サンプルの評価プログラム |
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