WO2009136570A1 - 血液分析装置、血液分析方法および溶血剤 - Google Patents

血液分析装置、血液分析方法および溶血剤 Download PDF

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Definitions

  • the present invention relates to a blood analyzer, a blood analysis method, and a hemolytic agent.
  • blood analyzers that perform white blood cell classification are known. Such blood analyzers are disclosed in, for example, Japanese Patent Application Laid-Open Nos. 2003-83960 and 2005-257450.
  • the blood analyzer described in JP-A-2003-83960 includes an electrical resistance detection unit that detects white blood cells in a measurement sample prepared from a blood sample and a reagent. Based on this, the white blood cells in the measurement sample are classified into three.
  • the blood analyzer described in JP-A-2005-257450 includes a sample preparation unit for preparing a measurement sample from a blood sample and a reagent, an optical system detection unit for detecting forward scattered light, side scattered light, and fluorescence.
  • the white blood cells in the measurement sample are classified into four based on the detection result by the optical system detection unit. Further, this optical system detection unit detects the fluorescence of the fluorescently labeled white blood cells.
  • the blood analyzer disclosed in Japanese Patent Application Laid-Open No. 2003-83960 has a problem that the white blood cells in the measurement sample cannot be classified into four or more.
  • white blood cells in a blood sample can be classified into four, while it is necessary to perform fluorescent labeling on white blood cells in a measurement sample. Inconveniently, it is necessary to use an expensive reagent containing a labeling substance. Therefore, a blood analyzer that can classify white blood cells into four or more and does not need to use a reagent containing a labeling substance is desired.
  • the blood analyzer described in the above Japanese Patent Application Laid-Open No. 2006-292738 measures forward scattered light, side scattered light and fluorescence using a measurement sample containing a blood sample and a leukocyte classification reagent, and detects leukocytes in the measurement sample. Are classified into four.
  • This blood analyzer detects the transmitted light and obtains the hemoglobin concentration in the measurement sample using a blood sample and a measurement sample containing a dedicated hemoglobin measurement reagent that has a composition different from that of the leukocyte classification reagent. Is configured to do.
  • a blood analyzer includes a sample preparation unit that prepares a measurement sample that does not include a labeling substance from a blood sample and a hemolytic agent that does not include the labeling substance, and a measurement sample prepared by the sample preparation part. Based on the fluorescence information and the two types of scattered light information, the white blood cells in the measurement sample are converted into at least a monocyte and a favorable information based on the fluorescence information and the two types of scattered light information.
  • a control unit that performs first classification into four types of neutrophils, eosinophils, and other groups is provided.
  • the optical information generation unit is preferably configured to generate fluorescence information based on autofluorescence of eosinophils in the measurement sample.
  • the sample preparation unit prepares a second measurement sample including a blood sample and a predetermined hemolytic agent, and the blood analysis device extracts the sample from the second measurement sample.
  • An electrical information generation unit that generates electrical information is further provided, and the control unit converts the white blood cells in the second measurement sample into at least lymphocytes and a group other than lymphocytes based on the electrical information generated by the electrical information generation unit.
  • the leukocytes in the measurement sample are at least lymphocytes, basophils, monocytes, neutrophils, and eosinophils. It is comprised so that it may classify
  • the optical information generation unit receives fluorescence generated by irradiating the measurement sample with light from the light source, and generates fluorescence information according to the received light intensity.
  • a scattered light receiving unit that receives scattered light generated by irradiating the measurement sample with light from the light source and generates scattered light information according to the received light intensity.
  • the scattered light receiving unit receives forward scattered light generated along the traveling direction of the light irradiated from the light source when the measurement sample is irradiated with light, and forward scattered light corresponding to the received light intensity.
  • a first light receiving unit that generates information as first information of scattered light information, and a side that is generated along a direction perpendicular to the traveling direction of the light emitted from the light source by irradiating the measurement sample with light.
  • a second light receiving unit that receives the scattered light and generates side scattered light information corresponding to the received light intensity as the second information of the scattered light information.
  • the control unit converts at least eosinic acid in the white blood cell in the measurement sample based on the forward scattered light information and the fluorescence information. It is configured to classify into spheres and groups other than eosinophils.
  • the optical information generation unit includes a light source
  • the light source is preferably configured to irradiate light having a wavelength of 350 nm to 500 nm.
  • the light source preferably has a blue-violet semiconductor laser element.
  • the blood analysis method includes a step of preparing a measurement sample that does not include a labeling substance from a blood sample and a hemolytic agent that does not include a labeling substance, fluorescence information from the prepared measurement sample, Based on the step of generating at least two types of scattered light information, the fluorescence information and the two types of scattered light information, the white blood cells in the measurement sample are at least monocytes, neutrophils, and eosinophils. And a step of classifying into four groups with other groups.
  • the fluorescence information is generated based on autofluorescence of eosinophils in the measurement sample.
  • the hemolytic agent according to the third aspect of the present invention includes a step of preparing a measurement sample that does not include a labeling substance from a blood sample and a hemolytic agent that does not include a labeling substance, fluorescence information from the prepared measurement sample, and at least Based on the step of generating the two types of scattered light information, the fluorescence information and the two types of scattered light information, the white blood cells in the measurement sample are at least monocytes, neutrophils, eosinophils, And a blood analysis method comprising a step of classifying into four groups with other populations.
  • the fluorescence information is generated based on autofluorescence of eosinophils in the measurement sample.
  • the hemolytic agent according to the fourth aspect of the present invention includes a cationic surfactant, does not include a labeling substance, and uses at least two types of scattered light information and fluorescence information to convert at least leukocytes, monocytes, It is used to classify into four categories: neutrophils, eosinophils, and other populations.
  • the concentration of the cationic surfactant in the measurement sample containing the blood sample, the hemolytic agent and the diluent is 0.62 mM or more and 2.15 mM or less.
  • the concentration of the cationic surfactant in the hemolytic agent is 15.5 mM or more and 53.75 mM or less.
  • a blood analyzer is a sample preparation unit for preparing a first measurement sample including a blood sample and a hemolytic agent, and a second measurement sample including the blood sample and the same hemolytic agent as the hemolytic agent;
  • the first optical information generation unit that generates fluorescence information and at least two types of scattered light information from the first measurement sample, and the first optical information generation unit that generates at least one of transmitted light information or scattered light information from the second measurement sample.
  • the white blood cells in the first measurement sample are at least monocytes, neutrophils, , Eosinophils and other groups, which are first classified into four groups, and hemoglobin in the second measurement sample based on at least one of transmitted light information and scattered light information generated by the second light information generating unit And a control unit for acquiring the density.
  • the blood analyzer preferably further includes an electrical information generation unit that generates electrical information of the sample from the second measurement sample, and the control unit applies the electrical information generated by the electrical information generation unit.
  • the leukocytes in the measurement sample are at least , Lymphocytes, basophils, monocytes, neutrophils, and eosinophils.
  • the sample preparation unit further prepares a third measurement sample from the blood sample
  • the electrical information generation unit generates electrical information of the sample from the third measurement sample
  • the control unit generates electrical information. Based on the electrical information generated from the third measurement sample by the unit, the red blood cell count and the platelet count in the third measurement sample are calculated.
  • the dilution factor of the hemolytic agent in the second measurement sample is different from the dilution factor of the hemolytic agent in the first measurement sample.
  • the dilution factor of the hemolytic agent in the second measurement sample is smaller than the dilution factor of the hemolytic agent in the first measurement sample.
  • the sample preparation unit mixes the blood sample, the hemolytic agent contained in a predetermined reagent container, and a predetermined amount of the diluted solution to prepare the first measurement sample.
  • the second measurement sample is prepared by mixing and mixing the blood sample, the hemolytic agent accommodated in the predetermined reagent container, and an amount of diluent smaller than the predetermined amount.
  • the sample preparation unit is configured to prepare the second measurement sample by mixing the hemolytic agent in a state where the diluent and the blood sample are mixed.
  • the sample preparation unit is in a second reagent container different from the first reagent container in which at least a blood sample and a hemolytic agent used for the first measurement sample are accommodated.
  • a second measurement sample is prepared by mixing the stored hemolytic agent.
  • the hemolytic agent accommodated in the second reagent container is preferably diluted approximately three times.
  • the hemolytic agent includes a cationic surfactant.
  • the hemolytic agent preferably does not contain a labeling substance.
  • the first optical information generation unit generates fluorescence information based on autofluorescence of eosinophils in the measurement sample.
  • the blood analysis method comprises a step of preparing a first measurement sample including a blood sample and a hemolytic agent, and a second measurement sample including the blood sample and the same hemolytic agent as the hemolytic agent; Generating fluorescence information and at least two types of scattered light information from one measurement sample; generating at least one of transmitted light information and scattered light information from the second measurement sample; and from the first measurement sample Based on the generated fluorescence information and two types of scattered light information, the white blood cells in the first measurement sample are divided into at least four of monocytes, neutrophils, eosinophils, and other populations.
  • the hemolytic agent according to the seventh aspect of the present invention comprises a step of preparing a blood sample and a first measurement sample containing the same hemolytic agent as the hemolytic agent, and a second measurement sample containing the blood sample and the hemolytic agent; Generating fluorescence information and at least two types of scattered light information from the measurement sample; generating at least one of transmitted light information and scattered light information from the second measurement sample; and generating from the first measurement sample
  • the white blood cells in the first measurement sample are classified into at least four types of monocytes, neutrophils, eosinophils, and other populations based on the fluorescence information and the two types of scattered light information.
  • a step of acquiring a hemoglobin concentration in the second measurement sample based on at least one of transmitted light information and scattered light information generated from the second measurement sample.
  • the hemolytic agent according to the eighth aspect of the present invention includes a cationic surfactant and is used for measuring the hemoglobin concentration, and at least leukocytes, lymphocytes, basophils, monocytes, and neutrophils. Used to classify into spheres and eosinophils.
  • FIG. 1 It is a front view which shows schematic structure of the blood analyzer by one Embodiment of this invention. It is a block diagram which shows the structure of the blood analyzer by one Embodiment shown in FIG. It is a perspective view which shows the measurement unit of the blood analyzer by one Embodiment shown in FIG. It is a perspective view which shows the internal structure of the measurement unit of the blood analyzer by one Embodiment shown in FIG. It is a side view which shows the internal structure of the measurement unit of the blood analyzer by one Embodiment shown in FIG. It is a perspective view which shows typically the structure of the flow cell provided in the measurement unit of the blood analyzer by one Embodiment shown in FIG.
  • FIG. 2 is a particle size distribution diagram of white blood cells created in the blood analyzer according to the embodiment shown in FIG. 1.
  • 2 is a scattergram for white blood cell classification created in the blood analyzer according to the embodiment shown in FIG. 1.
  • 2 is a scattergram for white blood cell classification created in the blood analyzer according to the embodiment shown in FIG. 1.
  • 2 is a scattergram for classifying malaria created in the blood analyzer according to the embodiment shown in FIG. 1.
  • FIG. 4 is a diagram showing experimental results when a hemolytic agent having a concentration of 2.15 mM in a WBC (for classification) measurement sample of a cationic surfactant is used in the blood analyzer according to the embodiment shown in FIG. 1. .
  • FIG. 4 is a diagram showing experimental results when a hemolytic agent having a concentration of 2.15 mM in a WBC (for classification) measurement sample of a cationic surfactant is used in the blood analyzer according to the embodiment shown in FIG. 1.
  • FIG. 3 is a diagram showing experimental results when a hemolytic agent having a concentration of 0.62 mM in a WBC (for classification) measurement sample of a cationic surfactant is used in the blood analyzer according to the embodiment shown in FIG. 1. .
  • FIG. 4 is a diagram showing experimental results when a hemolytic agent having a concentration of 0.62 mM in a WBC (for classification) measurement sample of a cationic surfactant is used in the blood analyzer according to the embodiment shown
  • FIG. 3 is a diagram showing experimental results when a hemolytic agent having a concentration of 0.62 mM in a WBC (for classification) measurement sample of a cationic surfactant is used in the blood analyzer according to the embodiment shown in FIG. 1. .
  • FIG. 11 is a diagram showing an experimental result when the hemolytic agent shown in FIG. 10 is used in the blood analyzer according to the embodiment shown in FIG. 1.
  • FIG. 11 is a diagram showing an experimental result when the hemolytic agent shown in FIG. 10 is used in the blood analyzer according to the embodiment shown in FIG. 1.
  • FIG. 5 is a correlation diagram for a group of lymphocytes and basophils showing a correlation with measurement results obtained by an analyzer XE-2100 (Sysmex Corporation).
  • FIG. 6 is a correlation diagram for monocytes showing a correlation with measurement results obtained by an analyzer XE-2100 (Sysmex Corporation).
  • a multi-item automatic blood for the same specimen as the measurement result obtained by the method described in the embodiment described later (the reagent used is the same as the reagent described in the embodiment described later).
  • FIG. 4 is a correlation diagram of neutrophils showing a correlation with measurement results obtained by an analyzer XE-2100 (Sysmex Corporation).
  • FIG. 5 is a correlation diagram for eosinophils showing a correlation with measurement results obtained by an analyzer XE-2100 (Sysmex Corporation).
  • the blood analyzer 1 is an apparatus used for blood tests, and is mainly composed of a measurement unit 2 and a data processing unit 3.
  • the blood analyzer 1 is installed in a medical institution such as a hospital or a pathological examination facility, for example.
  • the measurement unit 2 performs a predetermined measurement on the components contained in the blood sample
  • the data processing unit 3 receives the measurement data to perform analysis processing.
  • the measurement unit 2 and the data processing unit 3 are connected by a data transmission cable 3a so that data communication can be performed.
  • the measurement unit 2 and the data processing unit 3 may be directly connected by a data transmission cable 3a.
  • the measurement unit 2 and the data processing unit 3 may be connected via a dedicated line using a telephone line, a communication network such as a LAN or the Internet. It may be connected.
  • the measurement unit 2 includes a sample supply unit 4, a WBC classification measurement unit 5, a DC measurement unit 6, an HGB measurement unit 7, a control unit 8, and a communication unit 9. .
  • a blood collection tube setting portion 2 a configured to set a blood collection tube 20 containing a blood sample is provided in the lower right part of the front of the measurement unit 2.
  • the blood collection tube setting unit 2a is configured to be pushed forward by the user pressing a button switch 2b provided in the vicinity thereof. The user can set the blood collection tube 20 in a state in which the blood collection tube setting unit 2a protrudes. Then, after setting the blood collection tube 20, the blood collection tube setting unit 2 a is configured to be returned to the inside of the measurement unit 2 when the user presses the button switch 2 b again.
  • the measurement unit 2 includes a pipette 21 for aspirating the measurement sample, and chambers 22 and 23 (see FIG. 5) for mixing and preparing the blood sample and the reagent.
  • the pipette 21 is formed in a tubular shape extending in the vertical direction, and its tip is sharply pointed.
  • the pipette 21 is connected to a syringe pump (not shown), and is configured to suck and discharge a predetermined amount of liquid by the operation of the syringe pump.
  • the pipette 21 is connected to a moving mechanism, and is configured to be movable in the vertical direction and the front-back direction.
  • the pipette 21 is configured to suck a blood sample contained in the blood collection tube 20 by puncturing a sharp tip into a rubber cap 20 a that seals the blood collection tube 20.
  • the pipette 21 is configured to suck the blood sample and then move to a predetermined position by the moving mechanism to supply the blood sample into the chambers 22 and 23.
  • the sample supply unit 4 is a fluid unit having chambers 22 and 23, a plurality of solenoid valves, a diaphragm pump, and the like.
  • the chamber 22 is provided for preparing a measurement sample used for measurement of red blood cells, platelets, and hemoglobin concentration.
  • the chamber 23 is provided for preparing a measurement sample used for white blood cell measurement.
  • a reagent container is connected to the fluid unit constituted by the sample supply unit 4. Specifically, the diluent container 24 for containing the diluent, the hemolyzer container 25 for containing the hemolyzing agent 100, and the staining liquid container 26 for containing the staining liquid used for the measurement sample for malaria detection. Is connected to the fluid unit. Accordingly, the diluent and hemolytic agent 100 can be supplied to the chamber 22, and the diluent, hemolytic agent 100 and staining solution can be supplied to the chamber 23.
  • the WBC classification measurement unit 5 is an optical flow cytometer, and is provided for performing white blood cell classification detection and malaria detection by a flow cytometry method using semiconductor laser light.
  • the WBC classification measurement unit 5 includes a flow cell 51 (see FIG. 6) that forms a liquid flow of the measurement sample.
  • the flow cell 51 is formed in a tubular shape by a material such as translucent quartz, glass, and synthetic resin, and the inside thereof is a flow path through which a measurement sample and a sheath liquid (diluent) flow.
  • the flow cell 51 is provided with an orifice 51a whose inner space is narrowed narrower than other portions.
  • the vicinity of the inlet of the orifice 51a has a double tube structure, and the inner tube portion is a sample nozzle 51b.
  • the space outside the sample nozzle 51b is a flow path 51c through which the sheath liquid (diluent) flows, and the sheath liquid (diluent) flows through the flow path 51c and is introduced into the orifice 51a.
  • the sheath liquid (dilution liquid) supplied to the flow cell 51 flows so as to surround the measurement sample discharged from the sample nozzle 51b.
  • the flow of the measurement sample is narrowed down by the orifice 51a, and the white blood cells and red blood cells contained in the measurement sample are surrounded by the sheath liquid (diluent) and pass through the orifice 51a one by one.
  • a semiconductor laser light source 52 is arranged so as to emit laser light toward the orifice 51a of the flow cell 51.
  • the semiconductor laser light source 52 has a blue-violet semiconductor laser element 52a and is configured to emit blue-violet laser light having a wavelength of about 405 nm.
  • An irradiation lens system 53 including a plurality of lenses is disposed between the semiconductor laser light source 52 and the flow cell 51.
  • a beam stopper 54a is provided on the optical axis linearly extending from the semiconductor laser light source 52 so as to face the irradiation lens system 53 with the flow cell 51 interposed therebetween.
  • the beam stopper 54a is a semiconductor laser light source. The direct light from 52 is shielded.
  • a photodiode 54 is disposed further downstream of the beam stopper 54a on the optical axis.
  • the photodiode 54 is configured to receive the scattered light of the laser light generated by the measurement sample flowing through the flow cell 51. Specifically, among the light traveling along the optical axis extending linearly from the semiconductor laser light source 52, the direct light of the semiconductor laser light source 52 is blocked by the beam stopper 54a. Only scattered light (hereinafter referred to as forward scattered light) traveling along the axial direction is received.
  • the photodiode 54 is configured to photoelectrically convert forward scattered light emitted from the flow cell 51 and transmit an electric signal (hereinafter referred to as forward scattered light signal) generated thereby to the amplifier 54b.
  • the amplifier 54 b is configured to amplify the transmitted forward scattered light signal and output it to the control unit 8.
  • a side condenser lens 55 is disposed on the side of the flow cell 51 and in a direction orthogonal to the optical axis extending linearly from the semiconductor laser light source 52 to the photodiode 54. Is configured to collect side light (light emitted in a direction intersecting the optical axis) generated when a blood cell passing through the flow cell 51 is irradiated with laser light.
  • a dichroic mirror 56 is provided on the downstream side of the side condenser lens 55, and the dichroic mirror 56 is configured to divide the signal light transmitted from the side condenser lens 55 into a scattered light component and a fluorescent component.
  • a photodiode 57 for receiving side scattered light is provided, and light from the dichroic mirror 56 is provided.
  • An optical filter 58a and an avalanche photodiode 58 are provided on the downstream side of the shaft.
  • the photodiode 57 is configured to photoelectrically convert the side scattered light component divided by the dichroic mirror 56 and transmit an electric signal (hereinafter referred to as a side scattered light signal) generated thereby to the amplifier 57a.
  • the amplifier 57 a is configured to amplify the transmitted side scattered light signal and output the amplified side scattered light signal to the control unit 8.
  • the avalanche photodiode 58 is configured to photoelectrically convert the side fluorescent component after wavelength selection by the optical filter 58a, and to transmit an electric signal (side fluorescent signal) generated thereby to the amplifier 58b. Yes.
  • the amplifier 58b is configured to amplify the transmitted side fluorescent signal and output it to the control unit 8.
  • the DC measurement unit 6 is configured to be able to measure the red blood cell count (RBC) and the platelet count (PLT) by the sheath flow DC detection method. Further, the DC measurement unit 6 is configured to be able to obtain measurement data for calculating a hematocrit value (HCT) by the red blood cell pulse peak value detection method. Furthermore, the DC measurement unit 6 is also used for white blood cell count (WBC) detection for calculating the lymphocyte ratio. In this way, the DC measuring unit 6 is used to measure the number of red blood cells and platelets, to acquire measurement data for calculating the hematocrit value (HCT), and to detect the number of white blood cells (WBC) for calculating the lymphocyte ratio.
  • RBC red blood cell count
  • PHT platelet count
  • WBC white blood cell count
  • the DC measurement unit 6 has a flow cell, and a measurement sample is transferred from the chamber 22 to the flow cell.
  • a measurement sample prepared by mixing a blood sample and a diluent in the chamber 22 together with a sheath solution (diluent) 4 to the flow cell.
  • a liquid flow is formed in a state where the measurement sample is surrounded by the sheath liquid (diluent).
  • the HGB measuring unit 7 is configured to measure the amount of hemoglobin (HGB) by the methemoglobin method. As shown in FIG. 9, the HGB measurement unit 7 has a cell for storing a diluted sample, and the measurement sample is transferred from the chamber 22 to this cell. And the HGB measurement part 7 has a light emitting diode which irradiates the light whose wavelength is about 555 nm, and measures the light absorbency by irradiating the light from a light emitting diode to the measurement sample in the said cell. It is configured.
  • a measurement sample is prepared by mixing the blood sample, the diluent, and the hemolytic agent 100 in the chamber 22.
  • the control unit 8 includes a CPU, a ROM, a RAM, and the like, and is configured to perform operation control of each unit of the measurement unit 2.
  • the communication unit 9 is, for example, an RS-232C interface, a USB interface, or an Ethernet (registered trademark) interface, and is configured to be able to transmit / receive data to / from the data processing unit 3.
  • the data processing unit 3 includes a CPU 31, a ROM 32, a RAM 33, a hard disk 34, a communication interface 35, an input unit 36 such as a keyboard and a mouse, and a display device 37.
  • the hard disk 34 of the data processing unit 3 is installed with an operating system and an application program for analyzing the measurement data received from the measurement unit 2.
  • the CPU 31 of the data processing unit 3 executes the application program to analyze the measurement data, and the white blood cell count (WBC), red blood cell count (RBC), hemoglobin amount (HGB), Hematocrit value (HCT), average erythrocyte volume (MCV), average erythrocyte hemoglobin amount (MCH), average erythrocyte hemoglobin concentration (MCHC), and platelet count (PLT) are calculated. Further, the CPU 31 creates a scattergram using the forward scattered light signal, the side scattered light signal, and the side fluorescent signal, and converts the white blood cells into neutrophils (Neut), lymphocytes, monocytes (Mono), and eosinophils. It is configured to be classified into five types: sphere (EO) and basophil (BASO).
  • EO sphere
  • BASO basophil
  • the communication interface 35 is, for example, an RS-232C interface, a USB interface, or an Ethernet (registered trademark) interface, and is configured to be able to transmit and receive data to and from the measurement unit 2.
  • the hemolytic agent 100 in this embodiment includes a cationic surfactant (lauryltrimethylammonium chloride; 34.1 mM, stearyltrimethylammonium chloride; 1.7 mM), and a labeling substance.
  • the labeling substance is a substance that is selectively given to a cell to be measured and becomes a label for measurement, and corresponds to, for example, a fluorescent dye that stains the nucleic acid of the cell to be measured.
  • the hemolytic agent 100 has a property of converting hemoglobin in blood into methemoglobin.
  • each measurement sample used for each measurement has a different dilution ratio of the hemolytic agent 100 and a dilution ratio of the blood sample.
  • a cationic surfactant in this way, the white blood cells in the measurement sample are classified into four by changing the dilution factor without using two or more hemolytic agents having different compositions, and in the measurement sample. It is possible to obtain the hemoglobin concentration.
  • the staining solution contains a fluorescent dye having a chemical formula structure shown in FIG. 11 (for example, Invitrogen's Hoechst 34580) and one of the nonionic surfactant groups shown in FIG. This fluorescent dye can be excited by blue-violet laser light (having a wavelength of about 405 nm) emitted from the semiconductor laser light source 52a.
  • step S1 when the blood analyzer 1 is activated, after initialization of an application program and the like, it is determined in step S1 whether or not there is a measurement start instruction from the user by the CPU 31 of the data processing unit 3, This determination is repeated until instructed. If there is a measurement start instruction, a measurement start instruction signal is transmitted from the data processing unit 3 to the measurement unit 2 in step S2.
  • step S21 the control unit 8 of the measurement unit 2 determines whether a measurement start instruction signal is received, and this determination is repeated until it is received.
  • step S22 a blood sample is aspirated from the blood collection tube 20 set in the blood collection tube setting section 2a by the pipette 21.
  • step S23 the sample supply unit 4 prepares an RBC / PLT measurement sample (hereinafter referred to as a third measurement sample). Specifically, as shown in FIG. 13, a predetermined amount (for example, 2.0 mL) of diluent from the diluent container 24 and a predetermined amount (for example, 6 ⁇ L) sucked from the blood collection tube 20 by the pipette 21. A blood sample is supplied to the chamber 22 and agitated. Thereby, a predetermined amount (for example, 2.0 mL) of the third measurement sample is prepared.
  • a predetermined amount for example, 2.0 mL
  • step S24 a part of the third measurement sample (for example, 1 mL) in the chamber 22 is transferred to the DC measurement unit 6 together with the sheath liquid (diluent), and the third measurement is performed by the DC measurement unit 6. RBC and PLT detection of the sample is performed.
  • the sample supply unit 4 prepares a WBC (for DC detection) / HGB measurement sample (hereinafter referred to as a second measurement sample). Specifically, as shown in FIG. 13, a predetermined amount (for example, 0.5 mL) of the hemolytic agent 100 is supplied from the hemolytic agent container 25 to the chamber 22 in which a predetermined amount (for example, 1 mL) of the third measurement sample remains. Supplied and stirred. That is, after the blood sample and the diluent are mixed in the chamber 22, the hemolytic agent 100 is mixed to prepare the second measurement sample.
  • a predetermined amount for example, 0.5 mL
  • a predetermined amount for example, 1 mL
  • the hemolytic agent is mixed with the blood sample in a state diluted with a diluent, it is possible to prevent the blood sample from being mixed with a hemolytic agent having a concentration higher than a desired concentration.
  • red blood cells are hemolyzed and hemoglobin is converted into methemoglobin.
  • the red blood cell in the measurement sample is reliably obtained by making the dilution rate (3 times) of the hemolytic agent 100 in the second measurement sample smaller than the dilution rate (25 times) of the hemolysis agent 100 in the first measurement sample described later. Therefore, hemoglobin concentration can be obtained with high accuracy.
  • step S26 the second measurement sample in the chamber 22 is transferred to the DC measurement unit 6, and the WBC measurement of the second measurement sample is performed.
  • step S27 the second measurement sample is transferred to the HGB measurement unit 7, and HGB detection of the second measurement sample is performed.
  • a predetermined amount for example, 1 mL
  • a predetermined amount for example, 10 ⁇ L
  • a predetermined amount for example, 10 ⁇ L
  • staining solution from the staining solution container 26 are supplied to the chamber 23 and stirred.
  • step S31 the fourth measurement sample in the chamber 23 is transferred to the WBC classification measurement unit 5 together with the sheath liquid (diluent), and the WBC classification measurement unit 5 detects malaria of the fourth measurement sample. Is called.
  • step S ⁇ b> 32 the measurement data measured in each detection unit is transmitted from the measurement unit 2 to the data processing unit 3.
  • step S3 it is determined whether or not the measurement data transmitted by the measurement unit 2 has been received, and this determination is repeated until it is received.
  • the CPU 31 calculates the white blood cell count (WBC) based on the measurement data obtained by WBC detection measured in step S26.
  • step S5 the CPU 31 creates a leukocyte particle size distribution map based on the measurement data obtained by WBC detection, and calculates the lymphocyte ratio relative to the white blood cell count (WBC), as shown in FIG.
  • the lymphocytes appear as the first mountain (group) from the left in the particle size distribution diagram.
  • the leukocytes are a group of lymphocytes and basophils, monocytes and granulocytes (neutrophils and eosinophils). (Group with sphere).
  • the CPU 31 creates a scattergram as shown in FIG. 15 using the forward scattered light signal and the side scattered light signal, and from this scattergram, a group of lymphocytes and basophils, The ratio of monocytes and granulocytes (neutrophil and eosinophil population) to each white blood cell count (WBC) is calculated.
  • WBC white blood cell count
  • leukocytes are classified into 3 groups of lymphocytes and basophils, monocytes and granulocytes (a group of neutrophils and eosinophils) on the scattergram. It can be seen that it can be classified into two types.
  • step S7 the CPU 31 classifies the leukocytes into two groups, eosinophils and a group other than eosinophils, based on the measurement data obtained by WBC classification detection. Specifically, the CPU 31 creates a scattergram using the forward scattered light signal and the side fluorescence signal, as shown in FIG. 16, and from this scattergram, the eosinophil ratio to the white blood cell count (WBC) is determined. calculate.
  • This side fluorescent signal is based on autofluorescence of leukocytes excited by blue-violet laser light (wavelength of about 405 nm) emitted from the semiconductor laser light source 52. Eosinophils are other than leukocyte eosinophils.
  • the CPU 31 can also calculate the ratio of eosinophils to the white blood cell count (WBC) from the scattergram based on the side scattered light signal and the side fluorescence signal.
  • WBC white blood cell count
  • FIG. 23 a blood sample actually collected from a subject is measured using the hemolytic agent 100 (see FIG. 10) in the present embodiment, and the forward scattered light signal and the side fluorescence signal obtained as a result are measured. Shows the scattergram by. As shown in FIG. 23, it can be seen that the actual measurement results can be classified into eosinophils and groups other than eosinophils on the scattergram.
  • step S8 the CPU 31 subtracts the eosinophil ratio calculated in step S7 from the granulocyte (the group of neutrophils and eosinophils) ratio calculated in step S6, thereby obtaining the white blood cell count ( The neutrophil ratio relative to (WBC) is calculated.
  • leukocytes are classified into four groups: lymphocytes and basophils, monocytes, neutrophils, and eosinophils.
  • step S9 the CPU 31 calculates the basophil ratio relative to the white blood cell count (WBC) by subtracting the lymphocyte ratio calculated in step S5 from the ratio of the population of lymphocytes and basophils. .
  • leukocytes are classified into five types: lymphocytes, basophils, monocytes, neutrophils and eosinophils.
  • step S10 the CPU 31 classifies plasmodium-infected erythrocytes from a group other than the plasmodium-infected erythrocytes based on the measurement data obtained by malaria detection measured in step S31. Specifically, the CPU 31 creates a scattergram using the forward scattered light signal and the side fluorescence signal, as shown in FIG. 17, and from this scattergram, malaria parasite-infected erythrocytes other than malaria parasite-infected erythrocytes are produced. Classify from the population. This makes it possible to determine the presence or absence of malaria infection.
  • step S11 the CPU 31 calculates the red blood cell count (RBC), platelet count (PLT), and hematocrit value (HCT) based on the measurement data by RBC / PLT detection measured in step S24.
  • RBC red blood cell count
  • PLT platelet count
  • HCT hematocrit value
  • step S12 the CPU 31 calculates the amount of hemoglobin (HGB) based on the measurement data obtained by the HGB detection measured in step S27. That is, the hemoglobin concentration is calculated based on the absorbance obtained by the HGB detection using the SLS hemoglobin method.
  • HGB hemoglobin
  • step S13 from the red blood cell count (RBC), hematocrit value (HCT) and hemoglobin amount (HGB) calculated as described above, the CPU 31 causes the average red blood cell volume (MCV), average red blood cell hemoglobin amount (MCH) and Average erythrocyte hemoglobin concentration (MCHC) is calculated.
  • MCV average red blood cell volume
  • MCH average red blood cell hemoglobin amount
  • MCHC Average erythrocyte hemoglobin concentration
  • MCV (HCT / RBC) ⁇ 1000 (1)
  • MCV represents the mean red blood cell volume (fL)
  • HCT represents the hematocrit value (%)
  • RBC represents the number of red blood cells ( ⁇ 10 4 / ⁇ L).
  • MCH (HGB / RBC) ⁇ 1000 (2)
  • MCH represents the average amount of red blood cell pigment (pg)
  • HGB represents the amount of hemoglobin (g / dL)
  • RBC represents the number of red blood cells ( ⁇ 10 4 / ⁇ L).
  • MCHC (HGB / HCT) ⁇ 100 (3)
  • MCHC represents the average erythrocyte hemoglobin concentration (g / dL)
  • HGB represents the hemoglobin amount (g / dL)
  • HCT represents the hematocrit value (%).
  • step S14 the white blood cell count (WBC), red blood cell count (RBC), hemoglobin amount (HGB), hematocrit value (HCT), average red blood cell volume (MCV), average red blood cell hemoglobin amount (calculated as described above) MCH), average erythrocyte hemoglobin concentration (MCHC), and platelet count (PLT) are output to the display device 37. Further, the neutrophil ratio, lymphocyte ratio, monocyte ratio, eosinophil ratio, and basophil ratio relative to the white blood cell count (WBC) are output to the display device 37, and the result of malaria detection is also output.
  • the neutrophil count, lymphocyte count, monocyte count, eosinophil count and basophil count calculated based on the white blood cell count (WBC) and each blood cell ratio The number of balls is output.
  • step S15 it is determined whether or not there is a shutdown instruction from the user. If there is no instruction, the process proceeds to step S1. When there is a shutdown instruction, the operation of the data processing unit 3 for the sample analysis process in the blood analyzer 1 is terminated. On the measurement unit 2 side, after transmitting the measurement data to the data processing unit 3 in step S32, it is determined in step S33 whether or not there has been a shutdown instruction from the user. If there is no instruction, the process proceeds to step S21. To be migrated. If there is a shutdown instruction, the operation of the measurement unit 2 of the sample analysis process in the blood analyzer 1 is ended.
  • the WBC classification that generates the side fluorescence signal, the forward scattered light signal, and the side scattered light signal from the measurement sample prepared from the blood sample and the hemolytic agent 100 that does not include the labeling substance By providing the measurement unit 5, the side fluorescence signal, the forward scattered light signal, and the side scattered light signal are obtained using the autofluorescence of eosinophils in the measurement sample without labeling the measurement sample. Obtainable. Further, based on the side fluorescence signal, the forward scattered light signal, and the side scattered light signal, the leukocytes in the measurement sample are converted into monocytes, neutrophils, eosinophils, and a group of lymphocytes and basophils.
  • the hemolytic agent 100 Since the white blood cells can be classified into four without using a labeling substance by providing the CPU 31 for classifying into four, the hemolytic agent 100 does not need to include the labeling substance. Thereby, the leukocytes in the measurement sample can be classified into four using the hemolytic agent 100 having a simple composition not containing the labeling substance.
  • a DC measurement unit 6 that performs blood cell measurement by the sheath flow DC detection method is provided, and the CPU 31 determines that the white blood cells in the measurement sample other than lymphocytes and lymphocytes based on the measurement data obtained by the DC measurement unit 6
  • White blood cells are classified into lymphocytes, basophils, monocytes, and neutrophils based on the classification results and the classification results based on the side fluorescence signal, the forward scattered light signal, and the side scattered light signal.
  • the step of generating the side fluorescence signal, the forward scattered light signal, and the side scattered light signal from the measurement sample not containing the labeling substance is provided.
  • a side fluorescence signal, a forward scattered light signal, and a side scattered light signal can be obtained using autofluorescence of eosinophils in a measurement sample without labeling the sample. Further, based on the side fluorescence signal, the forward scattered light signal, and the side scattered light signal, the leukocytes in the measurement sample are converted into monocytes, neutrophils, eosinophils, and a group of lymphocytes and basophils.
  • the white blood cells can be classified into four without using a labeling substance, so that it is not necessary to include the labeling substance in the hemolytic agent 100.
  • the leukocytes in the measurement sample can be classified into four using the hemolytic agent 100 having a simple composition not containing the labeling substance.
  • the blood analysis method using the hemolytic agent 100 is provided with a step of generating a side fluorescence signal, a forward scattered light signal, and a side scattered light signal from a measurement sample that does not include a labeling substance.
  • a side fluorescence signal, a forward scattered light signal, and a side scattered light signal can be obtained using autofluorescence of eosinophils in a measurement sample without labeling the sample.
  • leukocytes in the measurement sample are converted into monocytes, neutrophils, eosinophils, based on the side fluorescence signal, the forward scattered light signal, and the side scattered light signal.
  • the leukocytes in the measurement sample can be classified into four using the hemolytic agent 100 having a simple composition that does not contain the labeling substance.
  • the hemolytic agent 100 containing no labeling substance is used to convert white blood cells into monocytes, neutrophils, and acid acids using side fluorescent signals, forward scattered light signals, and side scattered light signals. Since it is possible to classify leukocytes into four without using a labeling substance by using it to classify into four groups of spheres and lymphocytes and basophils, the labeling substance is added to the hemolytic agent 100. There is no need to include it. That is, the leukocytes in the measurement sample can be classified into four using the hemolytic agent 100 having a simple composition that does not contain the labeling substance.
  • the WBC classification measurement unit 5 converts the side fluorescence signal, the forward scattered light signal, and the side scattered light signal generated from the first measurement sample including the blood sample and the hemolytic agent 100. Based on this, the white blood cells in the first measurement sample are classified into at least four types of monocytes, neutrophils, eosinophils, and other groups, and the blood sample and the hemolytic agent are analyzed by the HGB measurement unit 7.
  • a hemolytic agent for classifying white blood cells into four by providing a CPU 31 that acquires the hemoglobin concentration in the second measurement sample based on the absorbance measured from the second measurement sample containing the same hemolytic agent 100 as 100
  • hemolytic agent for obtaining hemoglobin concentration can be used in common, so two or more hemolytic agents (reagents) with different compositions are developed to obtain leukocyte classification and hemoglobin concentration acquisition. There is no need. Thereby, while reducing the burden on the user due to the development of the reagent, the white blood cells in the measurement sample can be classified into four, and the hemoglobin concentration in the measurement sample can be acquired.
  • the white blood cells in the second measurement sample are classified into lymphocytes and a group other than lymphocytes based on the measurement data obtained by the DC measurement unit 6, and the classification result and the above-described white blood cells are classified.
  • the white blood cells in the measurement sample are classified into at least five of lymphocytes, basophils, monocytes, neutrophils, and eosinophils.
  • the DC measurement unit 6 can classify white blood cells into lymphocytes and a group other than lymphocytes using the same second measurement sample as the measurement sample used for acquiring the hemoglobin concentration. Therefore, white blood cells can be classified into five without separately preparing measurement samples having different compositions.
  • the side fluorescent signal, the forward scattered light signal, and the side light generated from the first measurement sample including the blood sample and the hemolytic agent 100 by the WBC classification measurement unit 5 are used.
  • the step of classifying the white blood cells in the first measurement sample into at least four of monocytes, neutrophils, eosinophils, and other populations, and the HGB measurement unit 7 Obtaining a hemoglobin concentration in the second measurement sample based on the absorbance measured from the blood sample and the second measurement sample containing the same hemolytic agent 100 as the hemolytic agent 100, thereby providing four leukocytes.
  • the hemolytic agent for classification and the hemolytic agent for obtaining hemoglobin concentration can be shared, two types having different compositions for performing white blood cell classification and hemoglobin concentration acquisition There is no need to be developed on the hemolytic agent (reagent). Thereby, while reducing the burden on the user due to the development of the reagent, the white blood cells in the measurement sample can be classified into four, and the hemoglobin concentration in the measurement sample can be acquired.
  • the hemolytic agent according to the present embodiment is converted from the side fluorescence signal, the forward scattered light signal, and the side scattering generated from the WBC classification measurement unit 5 from the first measurement sample including the blood sample and the hemolytic agent 100.
  • the step of classifying the white blood cells in the first measurement sample into at least four of monocytes, neutrophils, eosinophils, and other populations, and blood by the HGB measurement unit 7 Obtaining a hemoglobin concentration in the second measurement sample based on the absorbance measured from the sample and the second measurement sample containing the same hemolyzing agent 100 as the hemolytic agent 100, thereby obtaining leukocytes Can be used in common with the hemolytic agent for classifying the blood cells into four and the hemolytic agent for obtaining the hemoglobin concentration.
  • the white blood cells in the measurement sample can be classified into four, and the hemoglobin concentration in the measurement sample can be acquired.
  • the hemolytic agent according to the present embodiment contains a cationic surfactant and is used for measuring hemoglobin concentration, and at least leukocytes, basophils, monocytes, By using it to classify into neutrophils and eosinophils, it is possible to share a hemolytic agent for classifying leukocytes into four and a hemolytic agent for obtaining hemoglobin concentration. There is no need to develop two or more hemolytic agents (reagents) with different compositions in order to perform classification and hemoglobin concentration acquisition. Thereby, while reducing the burden on the user due to the development of the reagent, the white blood cells in the measurement sample can be classified into four, and the hemoglobin concentration in the measurement sample can be acquired.
  • FIG. 24 to FIG. 28 show correlation diagrams of measurement results of hemoglobin, a population of lymphocytes and basophils, monocytes, neutrophils, and eosinophils, respectively.
  • the measurement results obtained by the method described in the above embodiment are shown on the vertical axis, and the measurement results obtained by the multi-item automatic blood cell analyzer XE-2100 are shown on the horizontal axis.
  • the correlation coefficient r is 0.992 for hemoglobin, 0.968 for the population of lymphocytes and basophils, 0.796 for monocytes, and 0 for neutrophils. .946 and 0.892 for eosinophils, both showing high correlation.
  • the hemolytic agent used for WBC detection, HGB detection, WBC classification detection, and malaria detection is accommodated in one hemolytic agent container, but the invention according to the first to fourth aspects
  • the present invention is not limited to this, and a separate hemolytic agent may be prepared for each detection, and each hemolytic agent may be accommodated in a separate hemolytic agent container.
  • the hemolytic agent used for each detection may be a different type of hemolytic agent.
  • the hemolytic agent accommodated in each hemolytic agent container may be diluted in advance at a predetermined dilution rate.
  • the semiconductor laser light source which has a blue-violet semiconductor laser element was shown as an example of a light source, this invention is not restricted to this, Blue-violet semiconductor laser elements, such as a blue semiconductor laser element or an argon laser element, A light source having a laser element other than the above may be used.
  • a semiconductor laser light source that emits blue-violet laser light having a wavelength of about 405 nm is shown as an example of the light source.
  • the invention according to the first to fourth aspects is not limited to this, and is 350 nm to 500 nm. Any light source other than the semiconductor laser light source may be used as long as it emits light having the following wavelengths. If comprised in this way, the light of a short wavelength range which can acquire the fluorescence information based on the autofluorescence of an eosinophil can be irradiated to a measurement sample.
  • each detection process is performed in the order of RBC / PLT detection, WBC detection, HGB detection, WBC classification detection, and malaria detection from the earliest in the sample analysis process.
  • each detection process may be performed in a sequence other than the above.
  • the order of the white blood cell classification process, the malaria classification process, the red blood cell count / platelet count calculation process, and the hemoglobin amount calculation process in the sample analysis process can be appropriately changed.
  • category detection, and malaria detection to the sample supply part was shown.
  • the invention according to the fifth to eighth aspects is not limited to this, and four hemolytic agent containers may be connected to the sample supply unit so as to accommodate the hemolytic agents used for each detection separately.
  • the hemolytic agent used for any of the two detections may be accommodated in a common hemolytic agent container, and two or three hemolytic agent containers may be connected to the sample supply unit. Further, five or more hemolytic agent containers may be connected to the sample supply unit.
  • the hemolytic agent accommodated in each hemolytic agent container is previously diluted to a predetermined dilution rate, the hemolytic agent is diluted to a desired dilution rate when preparing a measurement sample used for each detection. There is no need to provide a separate process.
  • a hemolytic agent that does not contain a labeling substance is shown as an example of a hemolytic agent.
  • the invention according to the fifth to eighth aspects is not limited to this, and the hemolytic agent may contain a labeling substance. Good.
  • the HGB measurement part which measures the light absorbency as transmitted light information was shown as an example of a 2nd light information generation part, this invention is not limited to this, HGB measurement which produces
  • the CPU of the data processing unit acquires the hemoglobin concentration based on the scattered light information generated by the HGB measurement unit.
  • a hemolytic agent it is an alkyl trimethyl ammonium salt
  • Cationic surfactant (lauryl trimethyl ammonium chloride; 34.1 mM, stearyl trimethyl whose alkyl group has 12 to 18 carbon atoms)
  • a hemolytic agent containing ammonium chloride (1.7 mM) was shown, but the present invention is not limited to this, and a WBC (a total of lauryltrimethylammonium chloride and stearyltrimethylammonium chloride in the above embodiment) is not limited thereto.
  • the concentration in the measurement sample is 0.62 mM or more and 2.15 mM or less, it may be a hemolytic agent containing a cationic surfactant having a concentration other than the above.
  • the concentration of the active agent in the hemolytic agent is 15.5 mM, and the concentration of the cationic surfactant in the hemolytic agent when the concentration of the cationic surfactant in the WBC (classification) measurement sample is 2.15 mM. 75 mM.
  • the concentration of the cationic surfactant in the WBC (for classification) measurement sample is 2.15 mM. Even above, it can be measured.
  • the concentration of the cationic surfactant in the hemolytic agent is varied in the blood analyzer according to one embodiment of the present invention.
  • a plurality of experimental results were obtained in which the concentration of the cationic surfactant in the hemolytic agent varies by a small amount.
  • the concentration of the cationic surfactant in the WBC (for classification) measurement sample is 2
  • Two experimental results in the case of using a hemolytic agent having a concentration of 15 mM and in the case of using a hemolytic agent having a concentration of 0.62 mM in the WBC (for classification) measurement sample of the cationic surfactant will be described.
  • leukocytes are classified into three groups: a lymphocyte and basophil group, a monocyte, and a granulocyte (neutrophil and eosinophil group). It is possible. Further, as shown in FIGS. 19 and 21, it is possible to classify into eosinophils and groups other than eosinophils on the scattergram. From these classification results, it is possible to classify leukocytes into four groups: a group of lymphocytes and basophils, monocytes, neutrophils and eosinophils. Therefore, it is considered that leukocytes can be classified into four categories when the concentration of the cationic surfactant in the WBC (for classification) measurement sample is in the range of 0.62 mM to 2.15 mM.

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Abstract

　この血液分析装置は、血液試料と標識物質を含まない溶血剤とから、標識物質を含まない測定試料を調製する試料調製部と、測定試料から蛍光情報と少なくとも２種類の散乱光情報とを生成する光情報生成部と、蛍光情報と２種類の散乱光情報とに基づいて、測定試料中の白血球を、少なくとも、単球と、好中球と、好酸球と、他の集団との４つに第１分類する制御部とを備える。

Description

血液分析装置、血液分析方法および溶血剤
　本発明は、血液分析装置、血液分析方法および溶血剤に関する。
　従来、白血球分類を行う血液分析装置が知られている。このような血液分析装置は、たとえば、特開２００３－８３９６０号公報および特開２００５－２５７４５０号公報に開示されている。
　上記特開２００３－８３９６０号公報に記載の血液分析装置は、血液試料と試薬とから調製された測定試料中の白血球を検出する電気抵抗式検出部を備え、電気抵抗式検出部による検出結果に基づいて測定試料中の白血球を３つに分類するように構成されている。
　上記特開２００５－２５７４５０号公報に記載の血液分析装置は、血液試料と試薬とから測定試料を調製する試料調製部と、前方散乱光、側方散乱光および蛍光を検出する光学系検出部とを備え、光学系検出部による検出結果に基づいて測定試料中の白血球を４つに分類するように構成されている。また、この光学系検出部では、蛍光標識された白血球の蛍光を検出している。
　しかしながら、上記特開２００３－８３９６０号公報の血液分析装置では、測定試料中の白血球を４つ以上に分類することができないという問題点がある。
　また、上記特開２００５－２５７４５０号公報の血液分析装置では、血液試料中の白血球を４つに分類することが可能である一方、測定試料中の白血球に対して蛍光標識を行う必要があるので、標識物質を含む高価な試薬を用いる必要があるという不都合がある。このため、白血球を４つ以上に分類可能で、かつ、標識物質を含む試薬を用いる必要がない血液分析装置が望まれる。
　また、従来、白血球を分類し、ヘモグロビン濃度を取得する血液分析装置が知られている。このような血液分析装置は、たとえば、特開２００６－２９２７３８号公報に開示されている。
　上記特開２００６－２９２７３８号公報に記載の血液分析装置は、血液試料および白血球分類用試薬を含む測定試料を用いて、前方散乱光、側方散乱光および蛍光を測定し、測定試料中の白血球を４つに分類するように構成されている。また、この血液分析装置は、血液試料、および、白血球分類用試薬とは組成が異なる専用のヘモグロビン測定用試薬を含む測定試料を用いて、透過光を検出し、測定試料中のヘモグロビン濃度を取得するように構成されている。
　しかしながら、上記特開２００６－２９２７３８号公報の血液分析装置では、白血球分類用試薬を用いて白血球を分類し、白血球分類用試薬とは組成が異なる専用のヘモグロビン測定用試薬を用いてヘモグロビン濃度を取得するので、白血球の分類およびヘモグロビン濃度の取得を行うために組成の異なる２種類の試薬を別々に開発する必要があり、その結果、試薬の価格が高騰し、ユーザに負担がかかるという問題点がある。
　この発明の第１の局面による血液分析装置は、血液試料と標識物質を含まない溶血剤とから標識物質を含まない測定試料を調製する試料調製部と、試料調製部により調製された測定試料から、蛍光情報と、少なくとも２種類の散乱光情報とを生成する光情報生成部と、蛍光情報と２種類の散乱光情報とに基づいて、測定試料中の白血球を、少なくとも、単球と、好中球と、好酸球と、他の集団との４つに第１分類する制御部とを備える。
　上記第１の局面による血液分析装置において、好ましくは、光情報生成部は、測定試料中の好酸球の自家蛍光に基づいて蛍光情報を生成するように構成されている。
　上記第１の局面による血液分析装置において、好ましくは、試料調製部は、血液試料と所定の溶血剤とを含む第２測定試料を調製し、血液分析装置は、第２測定試料から、試料の電気情報を生成する電気情報生成部をさらに備え、制御部は、電気情報生成部により生成された電気情報に基づいて、第２測定試料中の白血球を少なくともリンパ球とリンパ球以外の集団とに第２分類するとともに、第１分類および第２分類の分類結果に基づいて、測定試料中の白血球を、少なくとも、リンパ球と、好塩基球と、単球と、好中球と、好酸球との５つに分類するように構成されている。
　上記第１の局面による血液分析装置において、好ましくは、光情報生成部は、光源と、光源から測定試料に光が照射されることにより生じる蛍光を受光し、受光強度に応じた蛍光情報を生成する蛍光受光部と、光源から測定試料に光が照射されることにより生じる散乱光を受光し、受光強度に応じた散乱光情報を生成する散乱光受光部とを含む。
　この場合、好ましくは、散乱光受光部は、測定試料に光が照射されることにより光源から照射された光の進行方向に沿って生じる前方散乱光を受光し、受光強度に応じた前方散乱光情報を、散乱光情報のうちの第１情報として生成する第１受光部と、測定試料に光が照射されることにより光源から照射された光の進行方向に垂直な方向に沿って生じる側方散乱光を受光し、受光強度に応じた側方散乱光情報を、散乱光情報のうちの第２情報として生成する第２受光部とを有する。
　上記散乱光受光部が第１受光部と第２受光部とを有する構成において、好ましくは、制御部は、前方散乱光情報と蛍光情報とに基づいて、測定試料中の白血球を、少なくとも好酸球と好酸球以外の集団とに分類するように構成されている。
　上記光情報生成部が光源を含む構成において、好ましくは、光源は、３５０ｎｍ以上５００ｎｍ以下の波長を有する光を照射するように構成されている。
　上記光源が所定範囲内の波長を有する光を照射する構成において、好ましくは、光源は、青紫色半導体レーザ素子を有する。
　この発明の第２の局面による血液分析方法は、血液試料と標識物質を含まない溶血剤とから、標識物質を含まない測定試料を調製するステップと、調製された測定試料から、蛍光情報と、少なくとも２種類の散乱光情報とを生成するステップと、蛍光情報と２種類の散乱光情報とに基づいて、測定試料中の白血球を、少なくとも、単球と、好中球と、好酸球と、他の集団との４つに分類するステップとを備える。ここで、蛍光情報は、測定試料中の好酸球の自家蛍光に基づいて生成される。
　この発明の第３の局面による溶血剤は、血液試料と標識物質を含まない溶血剤とから、標識物質を含まない測定試料を調製するステップと、調製された測定試料から、蛍光情報と、少なくとも２種類の散乱光情報とを生成するステップと、蛍光情報と２種類の散乱光情報とに基づいて、測定試料中の白血球を、少なくとも、単球と、好中球と、好酸球と、他の集団との４つに分類するステップとを備える血液分析方法に用いられる。ここで、蛍光情報は、測定試料中の好酸球の自家蛍光に基づいて生成される。
　この発明の第４の局面による溶血剤は、カチオン性界面活性剤を含み、標識物質を含まないとともに、少なくとも２種類の散乱光情報と蛍光情報とを用いて白血球を少なくとも、単球と、好中球と、好酸球と、他の集団との４つに分類するために用いられる。
　この場合、好ましくは、血液試料と溶血剤と希釈液とを含む測定試料におけるカチオン性界面活性剤の濃度は、０．６２ｍＭ以上２．１５ｍＭ以下である。
　上記第４の局面による溶血剤において、好ましくは、カチオン性界面活性剤の溶血剤における濃度は、１５．５ｍＭ以上５３．７５ｍＭ以下である。
　この発明の第５の局面による血液分析装置は、血液試料および溶血剤を含む第１測定試料と、血液試料および前記溶血剤と同じ溶血剤を含む第２測定試料とを調製する試料調製部と、第１測定試料から、蛍光情報と、少なくとも２種類の散乱光情報とを生成する第１光情報生成部と、第２測定試料から、透過光情報または散乱光情報の少なくとも一方を生成する第２光情報生成部と、第１光情報生成部により生成された蛍光情報と２種類の散乱光情報とに基づいて、第１測定試料中の白血球を、少なくとも、単球と、好中球と、好酸球と、他の集団との４つに第１分類し、第２光情報生成部により生成された透過光情報または散乱光情報の少なくとも一方に基づいて、第２測定試料中のヘモグロビン濃度を取得する制御部とを備える。
　上記第５の局面による血液分析装置において、好ましくは、第２測定試料から、試料の電気情報を生成する電気情報生成部をさらに備え、制御部は、電気情報生成部により生成された電気情報に基づいて、第２測定試料中の白血球を少なくともリンパ球とリンパ球以外の集団とに第２分類するとともに、第１分類および第２分類の分類結果に基づいて、測定試料中の白血球を、少なくとも、リンパ球と、好塩基球と、単球と、好中球と、好酸球との５つに分類するように構成されている。
　この場合、好ましくは、試料調製部は、血液試料から第３測定試料をさらに調製し、電気情報生成部は、第３測定試料から、試料の電気情報を生成し、制御部は、電気情報生成部により第３測定試料から生成された電気情報に基づいて、第３測定試料中の赤血球数および血小板数を算出するように構成されている。
　上記第５の局面による血液分析装置において、好ましくは、第２測定試料における溶血剤の希釈倍率は、第１測定試料における溶血剤の希釈倍率と異なる。
　この場合、好ましくは、第２測定試料における溶血剤の希釈倍率は、第１測定試料における溶血剤の希釈倍率よりも小さい。
　上記第５の局面による血液分析装置において、好ましくは、試料調製部は、血液試料、所定の試薬容器に収容された溶血剤、および、所定量の希釈液を混合することにより第１測定試料を調製し、血液試料、前記所定の試薬容器に収容された溶血剤、および、所定量よりも少ない量の希釈液とを混合することにより第２測定試料を調製するように構成されている。
　この場合、好ましくは、試料調製部は、希釈液と血液試料とを混合した状態で、溶血剤を混合することにより第２測定試料を調製するように構成されている。
　上記第５の局面による血液分析装置において、好ましくは、試料調製部は、少なくとも血液試料、および、第１測定試料に用いられる溶血剤が収容された第１試薬容器とは異なる第２試薬容器に収容された溶血剤を混合することにより第２測定試料を調製するように構成されている。
　この場合、好ましくは、第２試薬容器に収容された溶血剤は、略３倍に希釈されている。
　上記第５の局面による血液分析装置において、好ましくは、溶血剤は、カチオン性界面活性剤を含む。
　上記第５の局面による血液分析装置において、好ましくは、溶血剤は、標識物質を含まない。ここで、第１光情報生成部は、測定試料中の好酸球の自家蛍光に基づいて蛍光情報を生成する。
　この発明の第６の局面による血液分析方法は、血液試料および溶血剤を含む第１測定試料と、血液試料および前記溶血剤と同じ溶血剤を含む第２測定試料とを調製するステップと、第１測定試料から、蛍光情報と、少なくとも２種類の散乱光情報とを生成するステップと、第２測定試料から、透過光情報または散乱光情報の少なくとも一方を生成するステップと、第１測定試料から生成された蛍光情報と２種類の散乱光情報とに基づいて、第１測定試料中の白血球を、少なくとも、単球と、好中球と、好酸球と、他の集団との４つに分類するステップと、第２測定試料から生成された透過光情報または散乱光情報の少なくとも一方に基づいて、第２測定試料中のヘモグロビン濃度を取得するステップとを備える。
　この発明の第７の局面による溶血剤は、血液試料および前記溶血剤と同じ溶血剤を含む第１測定試料と、血液試料および溶血剤を含む第２測定試料とを調製するステップと、第１測定試料から、蛍光情報と、少なくとも２種類の散乱光情報とを生成するステップと、第２測定試料から、透過光情報または散乱光情報の少なくとも一方を生成するステップと、第１測定試料から生成された蛍光情報と２種類の散乱光情報とに基づいて、第１測定試料中の白血球を、少なくとも、単球と、好中球と、好酸球と、他の集団との４つに分類するステップと、第２測定試料から生成された透過光情報または散乱光情報の少なくとも一方に基づいて、第２測定試料中のヘモグロビン濃度を取得するステップとを備える血液分析方法に用いられる。
　この発明の第８の局面による溶血剤は、カチオン性界面活性剤を含み、ヘモグロビン濃度を測定するために用いられるとともに、白血球を少なくとも、リンパ球と、好塩基球と、単球と、好中球と、好酸球とに分類するために用いられる。
本発明の一実施形態による血液分析装置の概略構成を示す正面図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置の構成を示すブロック図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置の測定ユニットを示す斜視図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置の測定ユニットの内部構造を示す斜視図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置の測定ユニットの内部構造を示す側面図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置の測定ユニットに設けられたフローセルの構成を模式的に示す斜視図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置の測定ユニットに設けられたＷＢＣ分類測定部の構成を示す概略図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置の測定ユニットに設けられたＤＣ測定部の構成を模式的に示す斜視図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置の測定ユニットに設けられたＨＧＢ測定部の構成を模式的に示す斜視図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置に用いられる溶血剤の組成を示す図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置に用いられるマラリア検出用の染色液の組成を示す図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置における試料分析処理を示すフローチャートである。 図１に示した一実施形態による血液分析装置に用いられる第３測定試料および第２測定試料の作成工程を説明するための図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置において作成される白血球の粒度分布図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置において作成される白血球分類用のスキャッタグラムである。 図１に示した一実施形態による血液分析装置において作成される白血球分類用のスキャッタグラムである。 図１に示した一実施形態による血液分析装置において作成されるマラリア分類用のスキャッタグラムである。 図１に示した一実施形態による血液分析装置において、カチオン性界面活性剤のＷＢＣ（分類用）測定試料における濃度が２．１５ｍＭである溶血剤を用いた場合の実験結果を示した図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置において、カチオン性界面活性剤のＷＢＣ（分類用）測定試料における濃度が２．１５ｍＭである溶血剤を用いた場合の実験結果を示した図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置において、カチオン性界面活性剤のＷＢＣ（分類用）測定試料における濃度が０．６２ｍＭである溶血剤を用いた場合の実験結果を示した図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置において、カチオン性界面活性剤のＷＢＣ（分類用）測定試料における濃度が０．６２ｍＭである溶血剤を用いた場合の実験結果を示した図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置において、図１０に示した溶血剤を用いた場合の実験結果を示した図である。 図１に示した一実施形態による血液分析装置において、図１０に示した溶血剤を用いた場合の実験結果を示した図である。 複数の血液試料について、後述の実施形態に記載の方法（試薬は、後述の実施形態に記載の試薬と同様のものを使用した）により得られた測定結果と、同じ検体について、多項目自動血液分析装置ＸＥ－２１００（シスメックス株式会社）により得られた測定結果との相関を示すヘモグロビンについての相関図である。 複数の血液試料について、後述の実施形態に記載の方法（試薬は、後述の実施形態に記載の試薬と同様のものを使用した）により得られた測定結果と、同じ検体について、多項目自動血液分析装置ＸＥ－２１００（シスメックス株式会社）により得られた測定結果との相関を示すリンパ球と好塩基球との集団についての相関図である。 複数の血液試料について、後述の実施形態に記載の方法（試薬は、後述の実施形態に記載の試薬と同様のものを使用した）により得られた測定結果と、同じ検体について、多項目自動血液分析装置ＸＥ－２１００（シスメックス株式会社）により得られた測定結果との相関を示す単球についての相関図である。 複数の血液試料について、後述の実施形態に記載の方法（試薬は、後述の実施形態に記載の試薬と同様のものを使用した）により得られた測定結果と、同じ検体について、多項目自動血液分析装置ＸＥ－２１００（シスメックス株式会社）により得られた測定結果との相関を示す好中球についての相関図である。 複数の血液試料について、後述の実施形態に記載の方法（試薬は、後述の実施形態に記載の試薬と同様のものを使用した）により得られた測定結果と、同じ検体について、多項目自動血液分析装置ＸＥ－２１００（シスメックス株式会社）により得られた測定結果との相関を示す好酸球についての相関図である。
　以下、本発明の実施形態を図面に基づいて説明する。
　まず、図１～図１１を参照して、本発明の一実施形態による血液分析装置１の構成について説明する。
　本実施形態による血液分析装置１は、図１に示すように、血液検査に使用される装置であり、測定ユニット２と、データ処理ユニット３とによって主として構成されている。また、血液分析装置１は、たとえば、病院または病理検査施設などの医療機関の施設内に設置されている。また、血液分析装置１では、測定ユニット２により血液試料中に含まれる成分について所定の測定を行い、この測定データをデータ処理ユニット３で受信して分析処理を行っている。そして、測定ユニット２とデータ処理ユニット３とは、互いにデータ通信可能なように、データ伝送ケーブル３ａにより接続されている。なお、測定ユニット２とデータ処理ユニット３とは、データ伝送ケーブル３ａにより直接接続される構成であってもよいし、たとえば、電話回線を使用した専用回線、ＬＡＮまたはインターネットなどの通信ネットワークを介して接続されていてもよい。
　測定ユニット２は、図２に示すように、試料供給部４と、ＷＢＣ分類測定部５と、ＤＣ測定部６と、ＨＧＢ測定部７と、制御部８と、通信部９とを含んでいる。また、図３に示すように、測定ユニット２の正面右下部分には、血液試料を収容した採血管２０をセット可能に構成された採血管セット部２ａが設けられている。この採血管セット部２ａは、その近傍に設けられたボタンスイッチ２ｂをユーザが押下することにより、手前方向に迫り出すように構成されている。ユーザは、採血管セット部２ａが迫り出した状態で採血管２０をセットすることが可能である。そして、採血管２０をセットした後、ユーザが再度ボタンスイッチ２ｂを押下することにより、採血管セット部２ａは測定ユニット２の内部に戻されるように構成されている。
　測定ユニット２の内部には、図４および図５に示すように、測定試料を吸引するピペット２１、および、血液試料と試薬とを混合調製するためのチャンバ２２、２３（図５参照）などが設けられている。ピペット２１は、上下方向に延びた管状に形成されており、その先端は鋭く尖っている。また、ピペット２１は、図示しないシリンジポンプに連結されており、このシリンジポンプの動作によって液体を所定量だけ吸引するとともに、吐出することが可能なように構成されている。また、ピペット２１は、移動機構に接続されており、上下方向および前後方向にそれぞれ移動可能に構成されている。また、ピペット２１は、採血管２０を密閉するゴム製のキャップ２０ａに、鋭利な先端を穿刺することにより、採血管２０に収容された血液試料を吸引するように構成されている。また、ピペット２１は、血液試料を吸引した後、移動機構により所定の位置まで移動され、チャンバ２２および２３内に血液試料を供給するように構成されている。
　試料供給部４は、チャンバ２２および２３、複数の電磁弁、ダイヤフラムポンプなどを有する流体ユニットである。チャンバ２２は、赤血球、血小板の測定、およびヘモグロビン濃度の測定に用いられる測定試料を調製するために設けられている。また、チャンバ２３は、白血球の測定に用いられる測定試料を調製するために設けられている。また、試料供給部４により構成される流体ユニットには、試薬容器が接続されている。具体的には、希釈液を収容するための希釈液容器２４、溶血剤１００を収容するための溶血剤容器２５およびマラリア検出用の測定試料に用いられる染色液を収容するための染色液容器２６が流体ユニットに接続されている。これにより、希釈液および溶血剤１００をチャンバ２２に供給することが可能であるとともに、希釈液、溶血剤１００および染色液をチャンバ２３に供給することが可能である。
　ＷＢＣ分類測定部５は、光学式のフローサイトメータであり、半導体レーザ光を用いたフローサイトメトリー法により、白血球分類検出およびマラリア検出を行うために設けられている。また、ＷＢＣ分類測定部５は、測定試料の液流を形成するフローセル５１（図６参照）を有している。フローセル５１は、透光性を有する石英、ガラス、合成樹脂などの材料によって管状に構成されており、その内部が測定試料およびシース液（希釈液）が通流する流路となっている。このフローセル５１には、内部空間が他の部分よりも細く絞り込まれたオリフィス５１ａが設けられている。また、オリフィス５１ａの入口付近は二重管構造となっており、その内側管部分は試料ノズル５１ｂとなっている。また、試料ノズル５１ｂの外側の空間はシース液（希釈液）が通流する流路５１ｃであり、シース液（希釈液）は、流路５１ｃを通流し、オリフィス５１ａに導入される。このようにフローセル５１に供給されたシース液（希釈液）は、試料ノズル５１ｂから吐出された測定試料を取り囲むように流れる。そして、オリフィス５１ａによって測定試料の流れが細く絞り込まれ、測定試料に含まれる白血球、赤血球などの粒子がシース液（希釈液）に取り囲まれて１つずつオリフィス５１ａを通過する。
　また、ＷＢＣ分類測定部５には、半導体レーザ光源５２が、フローセル５１のオリフィス５１ａへ向けてレーザ光を出射するように配置されている。この半導体レーザ光源５２は、青紫色半導体レーザ素子５２ａを有し、波長が約４０５ｎｍの青紫色レーザ光を出射することが可能なように構成されている。半導体レーザ光源５２に青紫色半導体レーザ素子５２ａを設けることによって、容易に、短波長（約４０５ｎｍ）の光を測定試料に照射することが可能となる。また、半導体レーザ光源５２とフローセル５１との間には、複数のレンズからなる照射レンズ系５３が配置されている。この照射レンズ系５３によって、半導体レーザ光源５２から出射された平行ビームがビームスポットに集束されるようになっている。また、半導体レーザ光源５２から直線的に延びた光軸上には、フローセル５１を挟んで照射レンズ系５３に対向するように、ビームストッパ５４ａが設けられており、ビームストッパ５４ａは、半導体レーザ光源５２からの直接光を遮光するように構成されている。
　また、ビームストッパ５４ａのさらに光軸下流側には、フォトダイオード５４が配置されている。フォトダイオード５４は、フローセル５１を流れる測定試料により生じるレーザ光の散乱光を受光するように構成されている。具体的には、半導体レーザ光源５２から直線的に延びた光軸に沿って進行する光のうち、半導体レーザ光源５２の直接光はビームストッパ５４ａによって遮断されるので、フォトダイオード５４は、概ね光軸方向に沿って進行する散乱光（以下、前方散乱光という）のみを受光するように構成されている。また、フォトダイオード５４は、フローセル５１から発せられた前方散乱光を光電変換し、これによって生じた電気信号（以下、前方散乱光信号という）をアンプ５４ｂに伝達するように構成されている。そして、アンプ５４ｂは、伝達された前方散乱光信号を増幅し、制御部８に出力するように構成されている。
　また、フローセル５１の側方であって、半導体レーザ光源５２からフォトダイオード５４へ直線的に延びる光軸に対して直交する方向には、側方集光レンズ５５が配置されており、この側方集光レンズ５５は、フローセル５１内を通過する血球にレーザ光を照射したときに発生する側方光（前記光軸に対して交差する方向へ出射される光）を集光するように構成されている。側方集光レンズ５５の下流側にはダイクロイックミラー５６が設けられており、ダイクロイックミラー５６は、側方集光レンズ５５から送られる信号光を散乱光成分と蛍光成分とに分けるように構成されている。ダイクロイックミラー５６の側方（側方集光レンズ５５とダイクロイックミラー５６とを結ぶ光軸方向に交差する方向）には、側方散乱光受光用のフォトダイオード５７が設けられており、ダイクロイックミラー５６の光軸下流側には、光学フィルタ５８ａおよびアバランシェフォトダイオード５８が設けられている。また、フォトダイオード５７は、ダイクロイックミラー５６で分けられた側方散乱光成分を光電変換し、これによって生じた電気信号（以下、側方散乱光信号という）をアンプ５７ａに伝達するように構成されている。そして、アンプ５７ａは、伝達された側方散乱光信号を増幅し、制御部８に出力するように構成されている。
　また、アバランシェフォトダイオード５８は、光学フィルタ５８ａにより波長選択された後の側方蛍光成分を光電変換し、これによって生じた電気信号（側方蛍光信号）をアンプ５８ｂに伝達するように構成されている。そして、アンプ５８ｂは、伝達された側方蛍光信号を増幅し、制御部８に出力するように構成されている。
　ＤＣ測定部６は、シースフローＤＣ検出法により、赤血球数（ＲＢＣ）および血小板数（ＰＬＴ）を測定することが可能なように構成されている。また、ＤＣ測定部６は、赤血球パルス波高値検出法により、ヘマトクリット値（ＨＣＴ）を算出するための測定データも得ることが可能に構成されている。さらに、ＤＣ測定部６は、リンパ球比率を算出するための白血球数（ＷＢＣ）検出にも用いられる。このようにＤＣ測定部６を、赤血球数および血小板数の測定と、ヘマトクリット値（ＨＣＴ）を算出するための測定データの取得と、リンパ球比率を算出するための白血球数（ＷＢＣ）検出とに共通に用いることによって、これらの項目を測定するために別々の測定部を設ける必要がない。また、ＤＣ測定部６は、フローセルを有しており、このフローセルにチャンバ２２から測定試料が移送されるようになっている。たとえば、赤血球数および血小板数の測定を行う場合には、図８に示すように、チャンバ２２において血液試料と希釈液とが混合調製された測定試料が、シース液（希釈液）とともに試料供給部４からフローセルに移送される。そして、フローセル内では、測定試料がシース液（希釈液）によって取り囲まれた状態の液流が形成される。
　ＨＧＢ測定部７は、メトヘモグロビン法により、血色素量（ＨＧＢ）を測定するように構成されている。ＨＧＢ測定部７は、図９に示すように、希釈試料を収容するセルを有しており、このセルにチャンバ２２から測定試料が移送されるようになっている。そして、ＨＧＢ測定部７は、波長が約５５５ｎｍの光を照射する発光ダイオードを有しており、上記セル中の測定試料に発光ダイオードからの光を照射することによって、その吸光度を測定するように構成されている。なお、ヘモグロビンの測定を行う場合には、チャンバ２２において、血液試料、希釈液および溶血剤１００が混合され測定試料が調製される。
　制御部８は、ＣＰＵ、ＲＯＭ、ＲＡＭなどから構成されており、測定ユニット２の各部の動作制御を行うように構成されている。
　通信部９は、たとえば、ＲＳ－２３２Ｃインタフェース、ＵＳＢインタフェース、Ｅｔｈｅｒｎｅｔ（登録商標）インタフェースであり、データ処理ユニット３との間でデータの送受信を行うことが可能なように構成されている。
　データ処理ユニット３は、図２に示すように、ＣＰＵ３１、ＲＯＭ３２、ＲＡＭ３３、ハードディスク３４、通信インタフェース３５、キーボードおよびマウスなどの入力部３６、およびディスプレイ装置３７を備えるコンピュータによって構成されている。データ処理ユニット３のハードディスク３４には、オペレーティングシステムと、測定ユニット２から受信した測定データを分析処理するためのアプリケーションプログラムがインストールされている。
　ここで、本実施形態では、データ処理ユニット３のＣＰＵ３１は、このアプリケーションプログラムを実行することにより、測定データを分析処理し、白血球数（ＷＢＣ）、赤血球数（ＲＢＣ）、血色素量（ＨＧＢ）、ヘマトクリット値（ＨＣＴ）、平均赤血球容積（ＭＣＶ）、平均赤血球血色素量（ＭＣＨ）、平均赤血球血色素濃度（ＭＣＨＣ）、血小板数（ＰＬＴ）を算出するように構成されている。さらに、ＣＰＵ３１は、前方散乱光信号、側方散乱光信号、側方蛍光信号を用いてスキャッタグラムを作成して、白血球を好中球（Ｎｅｕｔ）、リンパ球、単球（Ｍｏｎｏ）、好酸球（ＥＯ）、好塩基球（ＢＡＳＯ）の５つに分類するように構成されている。
　通信インタフェース３５は、たとえば、ＲＳ－２３２Ｃインタフェース、ＵＳＢインタフェース、Ｅｔｈｅｒｎｅｔ（登録商標）インタフェースであり、測定ユニット２との間でデータの送受信を行うことが可能に構成されている。
　また、本実施形態における溶血剤１００は、図１０に示すように、カチオン性界面活性剤（ラウリルトリメチルアンモニウムクロライド；３４．１ｍＭ、ステアリルトリメチルアンモニウムクロライド；１．７ｍＭ）を含み、かつ、標識物質を含んでいない。標識物質とは、測定対象となる細胞に選択的に付与され、測定のための標識となる物質であり、たとえば、測定対象の細胞の核酸を染色する蛍光色素が該当する。また、この溶血剤１００は、血液中のヘモグロビンをメトヘモグロビンへと転化する性質を有している。また、後述するように、各測定に用いられる各測定試料は、それぞれ、溶血剤１００の希釈倍率、および、血液試料の希釈倍率が異なっている。このようにカチオン性界面活性剤を用いることによって、組成が異なる２種類以上の溶血剤を用いることなく希釈倍率を変えるだけで、測定試料中の白血球を４つに分類し、かつ、測定試料中のヘモグロビン濃度を取得することが可能である。また、染色液は、図１１に示す化学式の構造を有する蛍光色素（たとえば、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社のヘキスト３４５８０）と、図１１に示すノニオン界面活性剤群のうちの１つとを含有している。この蛍光色素は、半導体レーザ光源５２ａから出射される青紫色レーザ光（波長が約４０５ｎｍ）により励起可能である。
　次に、図１２～図１７を参照して、本発明の一実施形態による血液分析装置１における試料分析処理について説明する。
　まず、血液分析装置１が起動されると、アプリケーションプログラムなどの初期化が行われた後、ステップＳ１において、データ処理ユニット３のＣＰＵ３１により、ユーザからの測定開始指示があったか否かが判断され、指示があるまでこの判断が繰り返される。そして、測定開始指示があった場合には、ステップＳ２において、データ処理ユニット３から測定ユニット２に測定開始指示信号が送信される。
　そして、ステップＳ２１において、測定ユニット２の制御部８により、測定開始指示信号が受信されたか否かが判断され、受信するまでこの判断が繰り返される。測定ユニット２が測定開始指示信号を受信すると、ステップＳ２２において、ピペット２１により、採血管セット部２ａにセットされた採血管２０から血液試料が吸引される。
　そして、ステップＳ２３において、試料供給部４により、ＲＢＣ／ＰＬＴ測定試料（以下、第３測定試料という）が調製される。具体的には、図１３に示すように、希釈液容器２４から所定量（たとえば、２．０ｍＬ）の希釈液、および、ピペット２１により採血管２０から吸引された所定量（たとえば、６μＬ）の血液試料がチャンバ２２に供給され、攪拌される。これにより、所定量（たとえば、２．０ｍＬ）の第３測定試料が調製される。その後、ステップＳ２４において、チャンバ２２内の第３測定試料の一部（たとえば、１ｍＬ）が、シース液（希釈液）とともにＤＣ測定部６に移送されるとともに、ＤＣ測定部６により、第３測定試料のＲＢＣおよびＰＬＴ検出が行われる。
　次に、ステップＳ２５において、試料供給部４により、ＷＢＣ（ＤＣ検出用）・ＨＧＢ測定試料（以下、第２測定試料という）が調製される。具体的には、図１３に示すように、所定量（たとえば、１ｍＬ）の第３測定試料が残存するチャンバ２２に、溶血剤容器２５から所定量（たとえば、０．５ｍＬ）の溶血剤１００が供給され、攪拌される。すなわち、チャンバ２２において血液試料と希釈液とが混合された後、溶血剤１００が混合されて第２測定試料が調製される。これにより、溶血剤は希釈液により希釈された状態で血液試料に混合されるので、血液試料が所望の濃度よりも高い濃度の溶血剤と混合されるのを抑制することが可能である。このように溶血剤１００が３倍に希釈（溶血剤／希釈液＝１／２）され、血液試料が５００倍に希釈された第２測定試料が調製される。また、これにより、赤血球が溶血されるとともに、ヘモグロビンがメトヘモグロビンへと転化される。また、第２測定試料における溶血剤１００の希釈倍率（３倍）を、後述する第１測定試料における溶血剤１００の希釈倍率（２５倍）よりも小さくすることによって、測定試料中の赤血球を確実に溶血することができるので、精度よくヘモグロビン濃度を取得することが可能となる。その後、ステップＳ２６において、チャンバ２２内の第２測定試料がＤＣ測定部６に移送されて、第２測定試料のＷＢＣ測定が行われる。また、ステップＳ２７において、第２測定試料がＨＧＢ測定部７に移送されて、第２測定試料のＨＧＢ検出が行われる。
　そして、ステップＳ２８において、試料供給部４により、ＷＢＣ（分類用）測定試料（以下、第１測定試料という）が調製される。具体的には、上記した第２測定試料に含まれるのと同じ溶血剤１００が２５倍に希釈（溶血剤／希釈液＝１／２４）された所定量（たとえば、１ｍＬ）の希釈溶血剤、および、採血管２０から吸引された所定量（たとえば、１０μＬ）の血液試料がチャンバ２３に供給され、攪拌される。これにより、血液試料が１００倍に希釈された第１測定試料が調製される。また、これにより、溶血剤容器２５に収容された共通の溶血剤１００を用いて、第１測定試料および第２測定試料を調製することが可能となる。その後、ステップＳ２９において、チャンバ２３内の第１測定試料が、シース液（希釈液）とともにＷＢＣ分類測定部５に移送されるとともに、ＷＢＣ分類測定部５により、第１測定試料のＷＢＣ検出が行われる。
　次に、ステップＳ３０において、試料供給部４により、マラリア測定試料（以下、第４測定試料という）が調製される。具体的には、溶血剤１００が９倍希釈（溶血剤／希釈液＝１／８）された所定量（たとえば、１ｍＬ）の希釈溶血剤、採血管２０から吸引された所定量（たとえば、１０μＬ）の血液試料、および、染色液容器２６から所定量（たとえば、１０μＬ）の染色液がチャンバ２３に供給され、攪拌される。これにより、血液試料が１００倍に希釈された第４測定試料が調製される。その後、ステップＳ３１において、チャンバ２３内の第４測定試料が、シース液（希釈液）とともにＷＢＣ分類測定部５に移送されるとともに、ＷＢＣ分類測定部５により、第４測定試料のマラリア検出が行われる。そして、ステップＳ３２において、各検出部において測定された測定データが、測定ユニット２からデータ処理ユニット３に送信される。
　データ処理ユニット３では、ステップＳ３において、測定ユニット２が送信した測定データが受信されたか否かが判断され、受信するまでこの判断が繰り返される。そして、測定データを受信すると、ステップＳ４において、ＣＰＵ３１により、ステップＳ２６で測定されたＷＢＣ検出による測定データに基づいて、白血球数（ＷＢＣ）が算出される。また、ステップＳ５において、ＣＰＵ３１により、ＷＢＣ検出による測定データに基づいて、図１４に示すように、白血球の粒度分布図が作成され、白血球数（ＷＢＣ）に対するリンパ球比率が算出される。なお、リンパ球は、粒度分布図において、左から１つ目の山（集団）として現れる。
　次に、ステップＳ６において、ＣＰＵ３１により、ステップＳ２９で測定されたＷＢＣ分類検出による測定データに基づいて、白血球がリンパ球と好塩基球との集団、単球および顆粒球（好中球と好酸球との集団）の３つに分類される。具体的には、ＣＰＵ３１は、前方散乱光信号および側方散乱光信号を用いて、図１５に示すように、スキャッタグラムを作成し、このスキャッタグラムから、リンパ球と好塩基球との集団、単球および顆粒球（好中球と好酸球との集団）のそれぞれの白血球数（ＷＢＣ）に対する比率を算出する。ここで、図２２には、実際に被験者から採取した血液試料を、本実施形態における溶血剤１００（図１０参照）を用いて測定し、その結果得られた前方散乱光信号および側方散乱光信号によるスキャッタグラムを示す。図２２に示すように、実際の測定結果においても、スキャッタグラム上で、白血球をリンパ球と好塩基球との集団、単球および顆粒球（好中球と好酸球との集団）の３つに分類することが可能であることが分かる。
　そして、ステップＳ７において、ＣＰＵ３１により、ＷＢＣ分類検出による測定データに基づいて、白血球が好酸球および好酸球以外の集団の２つに分類される。具体的には、ＣＰＵ３１は、前方散乱光信号および側方蛍光信号を用いて、図１６に示すように、スキャッタグラムを作成し、このスキャッタグラムから、白血球数（ＷＢＣ）に対する好酸球比率を算出する。この側方蛍光信号は、半導体レーザ光源５２から出射された青紫色レーザ光（波長が約４０５ｎｍ）により励起された白血球の自家蛍光に基づくものであり、好酸球は、白血球の好酸球以外の集団よりも強い蛍光強度を有している。このように本実施形態では、標識物質を用いることなく、白血球を好酸球と好酸球以外の集団とに分類することが可能である。なお、ＣＰＵ３１は、側方散乱光信号および側方蛍光信号によるスキャッタグラムから、白血球数（ＷＢＣ）に対する好酸球比率を算出することも可能である。ここで、図２３には、実際に被験者から採取した血液試料を、本実施形態における溶血剤１００（図１０参照）を用いて測定し、その結果得られた前方散乱光信号および側方蛍光信号によるスキャッタグラムを示す。図２３に示すように、実際の測定結果においても、スキャッタグラム上で、好酸球と好酸球以外の集団とに分類することが可能であることが分かる。
　その後、ステップＳ８において、ＣＰＵ３１により、ステップＳ６で算出された顆粒球（好中球と好酸球との集団）比率から、ステップＳ７で算出された好酸球比率を差し引くことによって、白血球数（ＷＢＣ）に対する好中球比率が算出される。これにより、白血球がリンパ球と好塩基球との集団、単球、好中球および好酸球の４つに分類される。そして、ステップＳ９において、ＣＰＵ３１により、リンパ球と好塩基球との集団の比率から、ステップＳ５で算出されたリンパ球比率を差し引くことによって、白血球数（ＷＢＣ）に対する好塩基球比率が算出される。これにより、白血球がリンパ球、好塩基球、単球、好中球および好酸球の５つに分類される。
　そして、ステップＳ１０において、ＣＰＵ３１により、ステップＳ３１で測定されたマラリア検出による測定データに基づいて、マラリア原虫感染赤血球がマラリア原虫感染赤血球以外の集団から分類される。具体的には、ＣＰＵ３１は、前方散乱光信号および側方蛍光信号を用いて、図１７に示すように、スキャッタグラムを作成し、このスキャッタグラムから、マラリア原虫感染赤血球をマラリア原虫感染赤血球以外の集団から分類する。これにより、マラリア感染の有無を判断することが可能となる。
　次に、ステップＳ１１において、ＣＰＵ３１により、ステップＳ２４で測定されたＲＢＣ／ＰＬＴ検出による測定データに基づいて、赤血球数（ＲＢＣ）、血小板数（ＰＬＴ）およびヘマトクリット値（ＨＣＴ）が算出される。
　ここで、本実施形態では、ステップＳ１２において、ＣＰＵ３１により、ステップＳ２７で測定されたＨＧＢ検出による測定データに基づいて、血色素量（ＨＧＢ）が算出される。すなわち、ＳＬＳヘモグロビン法を用いたＨＧＢ検出により得られた吸光度に基づいて、ヘモグロビン濃度が算出される。
　その後、ステップＳ１３において、上記のように算出された赤血球数（ＲＢＣ）、ヘマトクリット値（ＨＣＴ）および血色素量（ＨＧＢ）から、ＣＰＵ３１により、平均赤血球容積（ＭＣＶ）、平均赤血球血色素量（ＭＣＨ）および平均赤血球血色素濃度（ＭＣＨＣ）が算出される。各値の算出式をそれぞれ以下の式（１）～（３）に示す。
　ＭＣＶ＝（ＨＣＴ／ＲＢＣ）×１０００・・・・・（１）
　上記式（１）において、ＭＣＶは平均赤血球容積（ｆＬ）、ＨＣＴはヘマトクリット値（％）、ＲＢＣは赤血球数（×１０４／μＬ）をそれぞれ表す。
　ＭＣＨ＝（ＨＧＢ／ＲＢＣ）×１０００・・・・・（２）
　上記式（２）において、ＭＣＨは平均赤血球血色素量（ｐｇ）、ＨＧＢは血色素量（ｇ／ｄＬ）、ＲＢＣは赤血球数（×１０４／μＬ）をそれぞれ表す。
　ＭＣＨＣ＝（ＨＧＢ／ＨＣＴ）×１００・・・・・（３）
　上記式（３）において、ＭＣＨＣは平均赤血球血色素濃度（ｇ／ｄＬ）、ＨＧＢは血色素量（ｇ／ｄＬ）、ＨＣＴはヘマトクリット値（％）をそれぞれ表す。
　そして、ステップＳ１４において、上記のように算出された、白血球数（ＷＢＣ）、赤血球数（ＲＢＣ）、血色素量（ＨＧＢ）、ヘマトクリット値（ＨＣＴ）、平均赤血球容積（ＭＣＶ）、平均赤血球血色素量（ＭＣＨ）、平均赤血球血色素濃度（ＭＣＨＣ）、血小板数（ＰＬＴ）の算出結果がディスプレイ装置３７に出力される。さらに、白血球数（ＷＢＣ）に対する好中球比率、リンパ球比率、単球比率、好酸球比率および好塩基球比率がディスプレイ装置３７に出力されるとともに、マラリア検出の結果も出力される。なお、白血球数（ＷＢＣ）に対する各血球比率に加えて、白血球数（ＷＢＣ）および各血球比率に基づいて算出された好中球数、リンパ球数、単球数、好酸球数および好塩基球数が出力される。
　その後、ステップＳ１５において、ユーザからのシャットダウン指示の有無が判断され、指示がない場合には、ステップＳ１に移行される。シャットダウン指示があった場合には、血液分析装置１における試料分析処理のデータ処理ユニット３の動作が終了される。また、測定ユニット２側では、ステップＳ３２で測定データをデータ処理ユニット３に送信した後、ステップＳ３３において、ユーザからのシャットダウン指示があったか否かが判断され、指示がない場合には、ステップＳ２１に移行される。シャットダウン指示があった場合には、血液分析装置１における試料分析処理の測定ユニット２の動作が終了される。
　本実施形態では、上記のように、血液試料と標識物質を含まない溶血剤１００とから調製された測定試料から、側方蛍光信号、前方散乱光信号および側方散乱光信号を生成するＷＢＣ分類測定部５を設けることによって、測定試料に対して標識を行うことなく、測定試料中の好酸球の自家蛍光を利用して、側方蛍光信号、前方散乱光信号および側方散乱光信号を得ることができる。また、側方蛍光信号、前方散乱光信号および側方散乱光信号に基づいて、測定試料中の白血球を、単球、好中球、好酸球、および、リンパ球と好塩基球との集団の４つに分類するＣＰＵ３１を設けることによって、標識物質を用いることなく白血球を４つに分類することができるので、溶血剤１００に標識物質を含める必要がない。これにより、標識物質を含まない簡易な組成の溶血剤１００を用いて測定試料中の白血球を４つに分類することができる。
　また、本実施形態では、シースフローＤＣ検出法により血球測定を行うＤＣ測定部６を設け、ＣＰＵ３１を、ＤＣ測定部６による測定データに基づいて、測定試料中の白血球をリンパ球とリンパ球以外の集団とに分類するとともに、この分類結果と側方蛍光信号、前方散乱光信号および側方散乱光信号とに基づく分類結果とから、白血球をリンパ球、好塩基球、単球、好中球および好酸球の５つに分類するように構成することによって、標識物質を含まない簡易な組成の溶血剤１００を用いながら、測定試料中の白血球を５つに分類することができる。
　また、本実施形態による血液分析方法では、上記のように、標識物質を含まない測定試料から、側方蛍光信号、前方散乱光信号および側方散乱光信号を生成するステップを設けることによって、測定試料に対して標識を行うことなく、測定試料中の好酸球の自家蛍光を利用して、側方蛍光信号、前方散乱光信号および側方散乱光信号を得ることができる。また、側方蛍光信号、前方散乱光信号および側方散乱光信号に基づいて、測定試料中の白血球を、単球、好中球、好酸球、および、リンパ球と好塩基球との集団の４つに分類するステップを設けることによって、標識物質を用いることなく白血球を４つに分類することができるので、溶血剤１００に標識物質を含める必要がない。これにより、標識物質を含まない簡易な組成の溶血剤１００を用いて測定試料中の白血球を４つに分類することができる。
　また、本実施形態による溶血剤１００を用いる血液分析方法に、標識物質を含まない測定試料から、側方蛍光信号、前方散乱光信号および側方散乱光信号を生成するステップを設けることによって、測定試料に対して標識を行うことなく、測定試料中の好酸球の自家蛍光を利用して、側方蛍光信号、前方散乱光信号および側方散乱光信号を得ることができる。また、当該溶血剤１００を用いる血液分析方法に、側方蛍光信号、前方散乱光信号および側方散乱光信号に基づいて、測定試料中の白血球を、単球、好中球、好酸球、および、リンパ球と好塩基球との集団の４つに分類するステップを設けることによって、標識物質を用いることなく白血球を４つに分類することができるので、溶血剤１００に標識物質を含める必要がない。このように、標識物質を含まない簡易な組成の溶血剤１００を用いて、測定試料中の白血球を４つに分類することができる。
　また、本実施形態による標識物質を含まない溶血剤１００を、上記のように、側方蛍光信号、前方散乱光信号および側方散乱光信号を用いて白血球を単球、好中球、好酸球、および、リンパ球と好塩基球との集団の４つに分類するために用いることによって、標識物質を用いることなく白血球を４つに分類することができるので、溶血剤１００に標識物質を含める必要がない。すなわち、標識物質を含まない簡易な組成の溶血剤１００を用いて、測定試料中の白血球を４つに分類することができる。
　また、本実施形態では、上記のように、ＷＢＣ分類測定部５により血液試料および溶血剤１００を含む第１測定試料から生成された側方蛍光信号、前方散乱光信号および側方散乱光信号に基づいて、第１測定試料中の白血球を、少なくとも、単球と、好中球と、好酸球と、他の集団との４つに分類し、ＨＧＢ測定部７により血液試料および前記溶血剤１００と同じ溶血剤１００を含む第２測定試料から測定された吸光度に基づいて、第２測定試料中のヘモグロビン濃度を取得するＣＰＵ３１とを設けることによって、白血球を４つに分類するための溶血剤とヘモグロビン濃度を取得するための溶血剤とを共通化することができるので、白血球分類およびヘモグロビン濃度取得を行うために組成の異なる２種類以上の溶血剤（試薬）を開発する必要がない。これにより、試薬の開発に起因するユーザへの負担を軽減しながら、測定試料中の白血球を４つに分類し、かつ、測定試料中のヘモグロビン濃度を取得することができる。
　また、本実施形態では、ＤＣ測定部６により得られた測定データに基づいて、第２測定試料中の白血球をリンパ球とリンパ球以外の集団とに分類するとともに、この分類結果と上記した白血球の４分類の分類結果とに基づいて、測定試料中の白血球を、少なくとも、リンパ球と、好塩基球と、単球と、好中球と、好酸球との５つに分類するようにＣＰＵ３１を構成することによって、ＤＣ測定部６により、ヘモグロビン濃度を取得するために用いる測定試料と同じ第２測定試料を用いて、白血球をリンパ球とリンパ球以外の集団とに分類することができるので、組成の異なる測定試料を別途調製することなく、白血球を５つに分類することができる。
　また、本実施形態による血液分析方法では、上記のように、ＷＢＣ分類測定部５により血液試料および溶血剤１００を含む第１測定試料から生成された側方蛍光信号、前方散乱光信号および側方散乱光信号に基づいて、第１測定試料中の白血球を、少なくとも、単球と、好中球と、好酸球と、他の集団との４つに分類するステップと、ＨＧＢ測定部７により血液試料および前記溶血剤１００と同じ溶血剤１００を含む第２測定試料から測定された吸光度に基づいて、第２測定試料中のヘモグロビン濃度を取得するステップとを設けることによって、白血球を４つに分類するための溶血剤とヘモグロビン濃度を取得するための溶血剤とを共通化することができるので、白血球分類およびヘモグロビン濃度取得を行うために組成の異なる２種類以上の溶血剤（試薬）を開発する必要がない。これにより、試薬の開発に起因するユーザへの負担を軽減しながら、測定試料中の白血球を４つに分類し、かつ、測定試料中のヘモグロビン濃度を取得することができる。
　また、本実施形態による溶血剤を、上記のように、ＷＢＣ分類測定部５により血液試料および溶血剤１００を含む第１測定試料から生成された側方蛍光信号、前方散乱光信号および側方散乱光信号に基づいて、第１測定試料中の白血球を、少なくとも、単球と、好中球と、好酸球と、他の集団との４つに分類するステップと、ＨＧＢ測定部７により血液試料および前記溶血剤１００と同じ溶血剤１００を含む第２測定試料から測定された吸光度に基づいて、第２測定試料中のヘモグロビン濃度を取得するステップとを備える血液分析方法に用いることによって、白血球を４つに分類するための溶血剤とヘモグロビン濃度を取得するための溶血剤とを共通化することができるので、白血球分類およびヘモグロビン濃度取得を行うために組成の異なる２種類以上の溶血剤（試薬）を開発する必要がない。これにより、試薬の開発に起因するユーザへの負担を軽減しながら、測定試料中の白血球を４つに分類し、かつ、測定試料中のヘモグロビン濃度を取得することができる。
　また、本実施形態による溶血剤を、上記のように、カチオン性界面活性剤を含み、ヘモグロビン濃度を測定するために用いるとともに、白血球を少なくとも、リンパ球と、好塩基球と、単球と、好中球と、好酸球とに分類するために用いることによって、白血球を４つに分類するための溶血剤とヘモグロビン濃度を取得するための溶血剤とを共通化することができるので、白血球分類およびヘモグロビン濃度取得を行うために組成の異なる２種類以上の溶血剤（試薬）を開発する必要がない。これにより、試薬の開発に起因するユーザへの負担を軽減しながら、測定試料中の白血球を４つに分類し、かつ、測定試料中のヘモグロビン濃度を取得することができる。
　（実施例）
　次に、図２４～図２８を参照して、上記実施形態に記載の方法により得られた測定結果と、多項目自動血液分析装置ＸＥ－２１００（シスメックス株式会社）により得られた測定結果との相関についての検証結果について説明する。上記実施形態に記載の方法による測定と多項目自動血液分析装置ＸＥ－２１００による測定とは、複数の血液試料について、同じ検体について行った。なお、図２４～図２８は、それぞれ、ヘモグロビン、リンパ球と好塩基球との集団、単球、好中球、および好酸球の測定結果の相関図を示している。また、図２４～図２８では、それぞれ、縦軸に上記実施形態に記載の方法により得られた測定結果を、横軸に多項目自動血球分析装置ＸＥ－２１００により得られた測定結果を示している。これらの図に示すように、相関係数ｒは、ヘモグロビンについては０．９９２、リンパ球と好塩基球との集団については０．９６８、単球については０．７９６、好中球については０．９４６、および、好酸球については０．８９２であり、いずれも高い相関を示す結果となった。
　なお、今回開示された実施形態は、全ての点で例示であって制限的なものではないと考えられるべきである。本発明の範囲は、上記した実施形態の説明ではなく特許請求の範囲によって示され、さらに特許請求の範囲と均等の意味および範囲内での全ての変更が含まれる。
　たとえば、上記実施形態では、ＷＢＣ検出、ＨＧＢ検出、ＷＢＣ分類検出およびマラリア検出のために用いられる溶血剤を１つの溶血剤容器に収容する例を示したが、第１～第４の局面による発明はこれに限らず、各検出用にそれぞれ別々の溶血剤を用意し、各溶血剤をそれぞれ別々の溶血剤容器に収容するようにしてもよい。この際、各検出に用いられる溶血剤は異なる種類の溶血剤であってもよい。また、各溶血剤容器に収容する溶血剤を、それぞれ予め所定の希釈倍率に希釈していてもよい。
　また、上記実施形態では、光源の一例として、青紫色半導体レーザ素子を有する半導体レーザ光源を示したが、本発明はこれに限らず、青色半導体レーザ素子またはアルゴンレーザ素子など、青紫色半導体レーザ素子以外のレーザ素子を有する光源であってもよい。
　また、上記実施形態では、光源の一例として、波長が約４０５ｎｍの青紫色レーザ光を出射する半導体レーザ光源を示したが、第１～第４の局面による発明はこれに限らず、３５０ｎｍ以上５００ｎｍ以下の波長を有する光を出射する光源であれば、半導体レーザ光源以外の他の光源であってもよい。このように構成すれば、好酸球の自家蛍光に基づく蛍光情報を取得可能な短波長域の光を測定試料に照射することができる。
　また、上記実施形態では、試料分析処理において、早いものからＲＢＣ／ＰＬＴ検出、ＷＢＣ検出、ＨＧＢ検出、ＷＢＣ分類検出およびマラリア検出の順序で各検出処理を行う例を示したが、本発明はこれに限らず、試料分析処理において、上記以外の順序で各検出処理を行ってもよい。また、試料分析処理における、白血球分類処理、マラリア分類処理、赤血球数・血小板数算出処理、および、血色素量算出処理の順序も適宜変更可能である。
　また、上記実施形態では、ＷＢＣ検出、ＨＧＢ検出、ＷＢＣ分類検出およびマラリア検出に共通に用いられる溶血剤を収容する１つの、試薬容器としての溶血剤容器を試料供給部に接続する例を示したが、第５～第８の局面による発明はこれに限らず、各検出に用いる溶血剤をそれぞれ別々に収容するように４つの溶血剤容器を試料供給部に接続してもよいし、上記４つの検出のうち、いずれかに用いる溶血剤を共通の溶血剤容器に収容し、２つまたは３つの溶血剤容器を試料供給部に接続してもよい。また、５つ以上の溶血剤容器を試料供給部に接続してもよい。この際、各溶血剤容器に収容する溶血剤を、それぞれ予め所定の希釈倍率に希釈しておけば、各検出に用いる測定試料を調製する際に、溶血剤を所望の希釈倍率に希釈するための工程を別途設ける必要がない。
　また、上記実施形態では、溶血剤の一例として、標識物質を含まない溶血剤を示したが、第５～第８の局面による発明はこれに限らず、溶血剤が標識物質を含んでいてもよい。
　また、上記実施形態では、第２光情報生成部の一例として、透過光情報としての吸光度を測定するＨＧＢ測定部を示したが、本発明はこれに限らず、散乱光情報を生成するＨＧＢ測定部であってもよい。この場合、データ処理ユニットのＣＰＵは、ＨＧＢ測定部により生成された散乱光情報に基づいてヘモグロビン濃度を取得する。
　また、上記実施形態では、溶血剤の一例として、アルキルトリメチルアンモニウム塩であって、アルキル基の炭素数が１２以上１８以下であるカチオン性界面活性剤（ラウリルトリメチルアンモニウムクロライド；３４．１ｍＭ、ステアリルトリメチルアンモニウムクロライド；１．７ｍＭ）を含む溶血剤を示したが、本発明はこれに限らず、カチオン性界面活性剤（上記実施形態では、ラウリルトリメチルアンモニウムクロライドとステアリルトリメチルアンモニウムクロライドの合計）のＷＢＣ（分類用）測定試料における濃度が、０．６２ｍＭ以上２．１５ｍＭ以下であれば、上記以外の濃度のカチオン性界面活性剤を含む溶血剤であってもよい。なお、上記実施形態では、溶血剤を２５倍希釈して測定試料を調製しているので、カチオン性界面活性剤のＷＢＣ（分類用）測定試料における濃度が０．６２ｍＭになるときのカチオン性界面活性剤の溶血剤における濃度は１５．５ｍＭであり、カチオン性界面活性剤のＷＢＣ（分類用）測定試料における濃度が２．１５ｍＭになるときのカチオン性界面活性剤の溶血剤における濃度は５３．７５ｍＭである。また、上記の溶血剤に代えて、アルキル基の炭素数が８以上１０以下であるカチオン性界面活性剤を用いれば、カチオン性界面活性剤のＷＢＣ（分類用）測定試料における濃度が２．１５ｍＭ以上であっても測定可能である。
　ここで、本発明の一実施形態による血液分析装置において、溶血剤におけるカチオン性界面活性剤の濃度を変動させた場合の実験結果について説明する。実験では、溶血剤におけるカチオン性界面活性剤の濃度が微量ずつ異なる複数の実験結果を得たが、ここでは、代表して、カチオン性界面活性剤のＷＢＣ（分類用）測定試料における濃度が２．１５ｍＭである溶血剤を用いた場合、および、カチオン性界面活性剤のＷＢＣ（分類用）測定試料における濃度が０．６２ｍＭである溶血剤を用いた場合の２つの実験結果について説明する。
　図１８および図２０に示すように、スキャッタグラム上で、白血球をリンパ球と好塩基球との集団、単球および顆粒球（好中球と好酸球との集団）の３つに分類することが可能である。また、図１９および図２１に示すように、スキャッタグラム上で、好酸球と好酸球以外の集団とに分類することが可能である。また、これらの分類結果から白血球を、リンパ球と好塩基球との集団、単球、好中球および好酸球の４つに分類することが可能である。したがって、カチオン性界面活性剤のＷＢＣ（分類用）測定試料における濃度が０．６２ｍＭ以上２．１５ｍＭ以下の範囲においては、白血球を４分類することが可能であると考えられる。

Claims (27)

  1. 　血液試料と標識物質を含まない溶血剤とから、標識物質を含まない測定試料を調製する試料調製部と、
    　前記試料調製部により調製された前記測定試料から、蛍光情報と、少なくとも２種類の散乱光情報とを生成する光情報生成部と、
    　前記蛍光情報と前記２種類の散乱光情報とに基づいて、前記測定試料中の白血球を、少なくとも、単球と、好中球と、好酸球と、他の集団との４つに第１分類する制御部とを備える、血液分析装置。
  2. 　前記光情報生成部は、前記測定試料中の好酸球の自家蛍光に基づいて、前記蛍光情報を生成するように構成されている、請求項１に記載の血液分析装置。
  3. 　前記試料調製部は、前記血液試料と所定の溶血剤とを含む第２測定試料を調製し、
    　前記血液分析装置は、前記第２測定試料から、試料の電気情報を生成する電気情報生成部をさらに備え、
    　前記制御部は、前記電気情報生成部により生成された電気情報に基づいて、前記第２測定試料中の白血球を少なくともリンパ球とリンパ球以外の集団とに第２分類するとともに、前記第１分類および前記第２分類の分類結果に基づいて、前記測定試料中の白血球を、少なくとも、リンパ球と、好塩基球と、単球と、好中球と、好酸球との５つに分類するように構成されている、請求項１または２に記載の血液分析装置。
  4. 　前記光情報生成部は、光源と、前記光源から前記測定試料に光が照射されることにより生じる蛍光を受光し、受光強度に応じた前記蛍光情報を生成する蛍光受光部と、前記光源から前記測定試料に光が照射されることにより生じる散乱光を受光し、受光強度に応じた前記散乱光情報を生成する散乱光受光部とを含む、請求項１に記載の血液分析装置。
  5. 　前記散乱光受光部は、前記測定試料に光が照射されることにより前記光源から照射された光の進行方向に沿って生じる前方散乱光を受光し、受光強度に応じた前方散乱光情報を、前記散乱光情報のうちの第１情報として生成する第１受光部と、前記測定試料に光が照射されることにより前記光源から照射された光の進行方向に略垂直な方向に沿って生じる側方散乱光を受光し、受光強度に応じた側方散乱光情報を、前記散乱光情報のうちの第２情報として生成する第２受光部とを有する、請求項４に記載の血液分析装置。
  6. 　前記制御部は、前記前方散乱光情報と前記蛍光情報とに基づいて、前記測定試料中の白血球を、少なくとも好酸球と好酸球以外の集団とに分類するように構成されている、請求項５に記載の血液分析装置。
  7. 　前記光源は、３５０ｎｍ以上５００ｎｍ以下の波長を有する光を照射するように構成されている、請求項４～６のいずれか１項に記載の血液分析装置。
  8. 　前記光源は、青紫色半導体レーザ素子を有する、請求項７に記載の血液分析装置。
  9. 　血液試料と標識物質を含まない溶血剤とから、標識物質を含まない測定試料を調製するステップと、
    　調製された前記測定試料から、蛍光情報と、少なくとも２種類の散乱光情報とを生成するステップと、
    　前記蛍光情報と前記２種類の散乱光情報とに基づいて、前記測定試料中の白血球を、少なくとも、単球と、好中球と、好酸球と、他の集団との４つに分類するステップとを備える、血液分析方法。
  10. 　血液試料と標識物質を含まない溶血剤とから、標識物質を含まない測定試料を調製するステップと、調製された前記測定試料から、蛍光情報と、少なくとも２種類の散乱光情報とを生成するステップと、前記蛍光情報と前記２種類の散乱光情報とに基づいて、前記測定試料中の白血球を、少なくとも、単球と、好中球と、好酸球と、他の集団との４つに分類するステップとを備える血液分析方法に用いられる前記溶血剤。
  11. 　カチオン性界面活性剤を含み、標識物質を含まないとともに、少なくとも２種類の散乱光情報と蛍光情報とを用いて白血球を少なくとも、単球と、好中球と、好酸球と、他の集団との４つに分類するために用いられる溶血剤。
  12. 　血液試料と前記溶血剤と希釈液とを含む測定試料における前記カチオン性界面活性剤の濃度は、０．６２ｍＭ以上２．１５ｍＭ以下である、請求項１１に記載の溶血剤。
  13. 　前記カチオン性界面活性剤の前記溶血剤における濃度は、１５．５ｍＭ以上５３．７５ｍＭ以下である、請求項１１に記載の溶血剤。
  14. 　血液試料および溶血剤を含む第１測定試料と、前記血液試料および前記溶血剤と同じ溶血剤を含む第２測定試料とを調製する試料調製部と、
    　前記第１測定試料から、蛍光情報と、少なくとも２種類の散乱光情報とを生成する第１光情報生成部と、
    　前記第２測定試料から、透過光情報または散乱光情報の少なくとも一方を生成する第２光情報生成部と、
    　前記第１光情報生成部により生成された前記蛍光情報と前記２種類の散乱光情報とに基づいて、前記第１測定試料中の白血球を、少なくとも、単球と、好中球と、好酸球と、他の集団との４つに第１分類し、前記第２光情報生成部により生成された前記透過光情報または前記散乱光情報の少なくとも一方に基づいて、前記第２測定試料中のヘモグロビン濃度を取得する制御部とを備える、血液分析装置。
  15. 　前記第２測定試料から、試料の電気情報を生成する電気情報生成部をさらに備え、
    　前記制御部は、前記電気情報生成部により生成された電気情報に基づいて、前記第２測定試料中の白血球を少なくともリンパ球とリンパ球以外の集団とに第２分類するとともに、前記第１分類および前記第２分類の分類結果に基づいて、測定試料中の白血球を、少なくとも、リンパ球と、好塩基球と、単球と、好中球と、好酸球との５つに分類するように構成されている、請求項１４に記載の血液分析装置。
  16. 　前記試料調製部は、前記血液試料から第３測定試料をさらに調製し、
    　前記電気情報生成部は、前記第３測定試料から、試料の電気情報を生成し、
    　前記制御部は、前記電気情報生成部により前記第３測定試料から生成された電気情報に基づいて、前記第３測定試料中の赤血球数および血小板数を算出するように構成されている、請求項１５に記載の血液分析装置。
  17. 　前記第２測定試料における前記溶血剤の希釈倍率は、前記第１測定試料における前記溶血剤の希釈倍率と異なる、請求項１４～１６のいずれか１項に記載の血液分析装置。
  18. 　前記第２測定試料における前記溶血剤の希釈倍率は、前記第１測定試料における前記溶血剤の希釈倍率よりも小さい、請求項１７に記載の血液分析装置。
  19. 　前記試料調製部は、前記血液試料、所定の試薬容器に収容された前記溶血剤、および、所定量の希釈液を混合することにより前記第１測定試料を調製し、前記血液試料、前記所定の試薬容器に収容された前記溶血剤、および、前記所定量よりも少ない量の前記希釈液とを混合することにより前記第２測定試料を調製するように構成されている、請求項１４に記載の血液分析装置。
  20. 　前記試料調製部は、前記希釈液と前記血液試料とを混合した状態で、前記溶血剤を混合することにより前記第２測定試料を調製するように構成されている、請求項１９に記載の血液分析装置。
  21. 　前記試料調製部は、少なくとも前記血液試料、および、前記第１測定試料に用いられる前記溶血剤が収容された第１試薬容器とは異なる第２試薬容器に収容された前記溶血剤を混合することにより前記第２測定試料を調製するように構成されている、請求項１４に記載の血液分析装置。
  22. 　前記第２試薬容器に収容された前記溶血剤は、略３倍に希釈されている、請求項２１に記載の血液分析装置。
  23. 　前記溶血剤は、カチオン性界面活性剤を含む、請求項１４に記載の血液分析装置。
  24. 　前記溶血剤は、標識物質を含まない、請求項１４に記載の血液分析装置。
  25. 　血液試料および溶血剤を含む第１測定試料と、前記血液試料および前記溶血剤と同じ溶血剤を含む第２測定試料とを調製するステップと、
    　前記第１測定試料から、蛍光情報と、少なくとも２種類の散乱光情報とを生成するステップと、
    　前記第２測定試料から、透過光情報または散乱光情報の少なくとも一方を生成するステップと、
    　前記第１測定試料から生成された前記蛍光情報と前記２種類の散乱光情報とに基づいて、前記第１測定試料中の白血球を、少なくとも、単球と、好中球と、好酸球と、他の集団との４つに分類するステップと、
    　前記第２測定試料から生成された前記透過光情報または前記散乱光情報の少なくとも一方に基づいて、前記第２測定試料中のヘモグロビン濃度を取得するステップとを備える、血液分析方法。
  26. 　血液試料および溶血剤を含む第１測定試料と、前記血液試料および前記溶血剤と同じ溶血剤を含む第２測定試料とを調製するステップと、前記第１測定試料から、蛍光情報と、少なくとも２種類の散乱光情報とを生成するステップと、前記第２測定試料から、透過光情報または散乱光情報の少なくとも一方を生成するステップと、前記第１測定試料から生成された前記蛍光情報と前記２種類の散乱光情報とに基づいて、前記第１測定試料中の白血球を、少なくとも、単球と、好中球と、好酸球と、他の集団との４つに分類するステップと、前記第２測定試料から生成された前記透過光情報または前記散乱光情報の少なくとも一方に基づいて、前記第２測定試料中のヘモグロビン濃度を取得するステップとを備える血液分析方法に用いられる前記溶血剤。
  27. 　カチオン性界面活性剤を含み、ヘモグロビン濃度を取得するために用いられるとともに、白血球を少なくとも、リンパ球と、好塩基球と、単球と、好中球と、好酸球とに分類するために用いられる溶血剤。
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