WO2011148981A1 - バイオ燃料製造方法 - Google Patents

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山下　孝
福島　幸生
研 天野
金子　タカシ
巌 上田
信雄 青木
鈴木　健吾
亮 嵐田
良平 中野
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Euglena Co Ltd
Eneos Corp
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Hitachi Plant Technologies Ltd
Euglena Co Ltd
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Definitions

  • the present invention relates to a biofuel production method for producing biofuel.
  • Biofuel is fuel produced from biomass-derived raw materials.
  • biomass has a photosynthetic ability, such as a plant
  • oils and carbohydrates produced from light energy and carbon dioxide serve as raw materials for biofuels, so that fuel with a low environmental load can be produced.
  • Biofuels include bioethanol produced by saccharification of carbohydrates and alcohol fermentation, and biodiesel and biojet fuel produced from neutral lipids such as triglycerides and wax esters, which are the main components of vegetable oils.
  • photosynthetic microorganisms and protozoa that live widely in ponds and swamps have the same photosynthetic ability as plants, biosynthesize fats and oils from water and carbon dioxide, and accumulate tens of mass% in the cells.
  • the production amount is higher than that of plants, and it is known that the production amount per unit area is 10 times or more that of palm, which is said to have a high production amount.
  • Patent Document 1 describes that an artificial light whose irradiation light wavelength and intensity are controlled is irradiated to culture algae that are photosynthetic microorganisms to immobilize carbon dioxide. Further, Patent Document 1 describes means, a method and a culture apparatus for producing a target substance by immobilizing carbon dioxide, separating and purifying it. And this patent document 1 proposes immobilizing carbon dioxide using a photosynthetic microorganism and using it as a raw fuel for biofuel as an example of the utilization form of the immobilized carbon dioxide.
  • Patent Document 1 does not disclose how to make biofuel from immobilized carbon dioxide.
  • the biomass weight increases in proportion to the amount of carbon dioxide fixed by photosynthesis, but industrial utilization is difficult if these cannot be used effectively.
  • an object of the present invention is to provide a series of biofuel production methods including a technique for producing biofuel after converting carbon dioxide, which is a carbon source, into biomass by photosynthesis of a photosynthetic microorganism.
  • a biofuel production method includes a culturing step of culturing a photosynthetic microorganism that accumulates fats and fats and carbohydrates in cells in a culture solution, and the photosynthetic microorganisms cultured in the culture solution. It comprises an oil fatification step for fattening the accumulated carbohydrates, an extraction step for extracting fats and oils from the cells of the photosynthetic microorganism, and a reforming step for modifying the extracted fats and oils.
  • photosynthetic microorganisms are cultured in the culturing process, and carbon dioxide, which is a carbon source, is converted into biomass such as fats and carbohydrates by photosynthesis of the photosynthetic microorganisms and accumulated in the cells. Then, more oils and fats are obtained by making the carbohydrates accumulated in the cells of the photosynthetic microorganisms in the oils and fats step. And in the biofuel manufacturing method which concerns on this invention, after extracting fats and oils by the extraction process performed next, biofuel is manufactured by reforming fats and oils by a modification
  • ADVANTAGE OF THE INVENTION after converting the carbon dioxide which is a carbon source into biomass by photosynthesis of a photosynthetic microorganism, a series of biofuel manufacturing methods including the technique of manufacturing a biofuel can be provided. Further, according to the present invention, since the production process includes an oil-fatification process, more biofuel can be produced as compared with the conventional biofuel production method.
  • the biofuel manufacturing method according to the present invention includes a culturing step S1, an oil making step S2, an extracting step S3, and a reforming step S4.
  • cultivation process S1 performed initially is a process of culture
  • An example of a photosynthetic microorganism that can be used in the present invention is Euglena.
  • Euglena is a group of flagellates, including Euglena, which is famous as a motile algae. Most Euglena has chloroplasts and carries out autotrophic life by photosynthesis, but there are also predatory and absorption nutrients.
  • Euglena is a genus classified into both zoology and botany.
  • Euglenoidina includes Euglena, Trachelemonas, Strombonas, Phacus, Lepocinelis, Astasia and Colacium as genera.
  • Euglenophyta has Euglenophyta, followed by Euglenophyceae and Euglenales, and the genus included in this eye is similar to that of Euglena and animal taxonomy. is there.
  • one or two species from cyanobacteria, green algae and treboxya, plasino algae (green algae), primordial red algae, diatoms, round stone algae, dinoflagellates, true-eye algae, golden algae, etc. can be selected and used.
  • cyanobacteria examples include Chroococcacae, Stigonematacae, Mastigocladacae, and Oscillatroriacae.
  • Synechococcus such as Synechococcus lividus and Synechococcus elongatus
  • Synechocystis such as Synechocystis minervae
  • Mastigocladus such as Mastigocladus laminosus
  • Phormidium such as Phormidium laminosus
  • Fisherella and the like.
  • Green algae and treboxia include, for example, aerial algae such as chlorella (including phylogenetically separated parachlorella), Chlamydomonas, Donariella, Senedesmus, Botryococcus, Sticococcus, Nannochloris, and Desmodemus Can do.
  • aerial algae such as chlorella (including phylogenetically separated parachlorella), Chlamydomonas, Donariella, Senedesmus, Botryococcus, Sticococcus, Nannochloris, and Desmodemus Can do.
  • the basic properties such as Chlorella vulgaris and Chlorella saccharophila (Chlorella), Dunaliella salina, Dunaliella tertiolecta, and photosynthesis are the same, but are classified as treboxya algae by molecular phylogenetic analysis.
  • Parachlorella kessleri Chlorella kessleri
  • Chlamydomonas reinhardtii Chlamydomonas moewusii, Chlamydomonas eugametos, Chlamydomonas eugametos, Chlamydomonas doms ⁇ Obricks (Senedesmus obliquus), Stichococcus ampliformis belonging to the genus Stichococcus, Nannochloris bacillaris belonging to the genus Nannochloris, and desmodes mus Desmodesmus subspicatus belonging to the genus can be mentioned.
  • examples of the plasino algae include tetracermis
  • examples of the primitive red algae include cyanidiozone, cyanidium, gardi area, and porphyridium.
  • the photosynthetic microorganisms that can be used in the present invention can produce fats and carbohydrates by photosynthesis and accumulate them in the cells, and the fats accumulated in the cells in the oil-fat step S2 to be described later can be fatified. Any material that can be used can be used, and the present invention is not limited to the above.
  • the cultivation of the photosynthetic microorganisms in the culturing step S1 can also be performed in the atmosphere, but in order to increase the amount of oil and fat and carbohydrate produced by photosynthesis, carbon dioxide gas is actively supplied into the culture solution. It is preferable to carry out at a dissolved carbon dioxide concentration higher than the air aeration.
  • the positive supply of carbon dioxide gas can be performed by using, for example, combustion exhaust gas discharged from a factory or combustion facility. At this time, it is preferable to remove dust, NOx and SOx in the combustion exhaust gas by a dust collector, a denitration facility, a desulfurization facility or the like.
  • the depth of the culture solution in this culturing step S1 is preferably 50 cm or less, and more preferably 30 cm or less. In this way, even if the cultivation proceeds and the photosynthetic microorganism grows, the culture solution is stirred up and down by stirring (upper and lower), so that photosynthesis can be performed efficiently.
  • a culture solution to which nutrients such as a nitrogen source, a phosphorus source, and a mineral are added for example, a modified Cramer-Myers medium ((NH 4 ) 2 HPO 4 1.0 g / L, KH 2 PO 4 1.0 g / L, MgSO 4 ⁇ 7H 2 O 0.2 g / L, CaCl 2 ⁇ 2H 2 O 0.02 g / L, Fe 2 (SO 2 ) 3 ⁇ 7H 2 O 3 mg / L, MnCl 2 ⁇ 4H 2 O 1.8 mg / L, CoSO 4 ⁇ 7H 2 O 1.5 mg / L, ZnSO 4 ⁇ 7H 2 O 0.4 mg / L, Na 2 MoO 4 ⁇ 2H 2 O 0.2 mg / L, CuSO 4 ⁇ 5H 2 O 0.02 g / L, thiamine hydrochloride (vitamin B 1 ) 0.1 mg / L, cyan
  • the pH of the culture solution in the culturing step S1 is preferably 2 to 6, and more preferably 2 to 4.5. In this way, if the pH is acidified, the photosynthetic microorganisms can grow more predominately than other microorganisms, so that contamination can be suppressed. As a result, in addition to the batch culture method, a continuous culture method can be applied.
  • the pH of the culture solution can be adjusted appropriately using a powder reagent or a reagent aqueous solution.
  • the powder reagent include sodium bicarbonate
  • examples of the reagent aqueous solution include acidic solutions such as sulfuric acid and acetic acid and basic solutions such as an aqueous sodium hydroxide solution.
  • the subsequent oil-fat step S2 is a step to fat-fat the carbohydrates accumulated in the cells of the photosynthetic microorganisms cultured in the culture solution.
  • photosynthetic microorganisms become anaerobic, they accumulate fats and oils in the cells as a defense reaction. Therefore, as a method for making oils and fats, for example, a culture solution in which photosynthetic microorganisms are cultured can be maintained under anaerobic conditions.
  • the anaerobic state in the present invention means a state where oxygen is not present (small).
  • the photosynthetic microorganisms densified in the concentration step S12 (sedimentation concentration, centrifugation) are used in a sealed container or pipe in which the inflow of light and air is blocked so that oxygen cannot be produced by photosynthesis.
  • concentration step S12 sedimentation concentration, centrifugation
  • oxygen is consumed by the respiration of photosynthetic microorganisms, thereby making it possible to create an anaerobic state.
  • the method of making an anaerobic state is not limited to what was mentioned above. Anaerobic conditions can also be created by driving out oxygen with an inert gas such as nitrogen or argon.
  • the concentration process S12 which concentrates the culture solution which culture
  • the photosynthetic microorganisms in which fats and oils and carbohydrates are accumulated in the cells are concentrated in the concentration step S12, and not only the subsequent operation becomes easy by removing unnecessary culture solution, but also, for example, the culture solution concentrated in the concentration step S12 is anaerobic. Since the oxygen dissolved in the concentrated culture medium is consumed earlier by the respiration (photosynthesis) of the photosynthetic microorganisms, the anaerobic state should be made sooner because there is no dissolved oxygen in the removed culture medium. Is possible. Therefore, oiling can be performed at an early stage.
  • the concentration in the concentration step S12 can be performed by sedimentation concentration, but it is more preferable to perform centrifugation following this.
  • sedimentation concentration means concentrating photosynthetic microorganisms using natural sedimentation.
  • the sedimentation concentration may be allowed to stand for about 6 to 36 hours, for example.
  • Concentration by centrifugation means concentrating photosynthetic microorganisms by centrifugal force of a centrifuge. When centrifugation is performed, a liquid having a high specific gravity (heavy liquid) containing photosynthetic microorganisms and a liquid having a low specific gravity (supernatant liquid (light liquid)) not containing photosynthetic microorganisms can be obtained.
  • the photosynthetic microorganisms contained in the heavy liquid can be suitably concentrated.
  • the light liquid is preferably removed as much as possible. Centrifugation can be performed under conditions of, for example, 5,000 to 20,000 ⁇ g.
  • the supernatant obtained by precipitation concentration and the light solution obtained by centrifugation may be returned to the culture tank used in the culture step S1 and mixed with the culture solution. In this way, the culture solution can be used effectively. Moreover, the photosynthetic microorganisms that have not been concentrated contained in the supernatant or light liquid can be cultured again.
  • the oleaginization step S2 is preferably performed at a temperature of 25 to 40 ° C. under light-shielded conditions.
  • the culture solution containing the photosynthetic microorganism is held under such conditions, the carbohydrate accumulated in the cells can be oiled.
  • the subsequent extraction step S3 is a step of extracting fats and oils from the cells of the photosynthetic microorganism. Extraction of fats and oils from cells can be performed by, for example, a solvent extraction method using an organic solvent or a supercritical CO 2 extraction method. Examples of the organic solvent used in the solvent extraction method include hexane. The hexane after extracting the fats and oils has great merit in terms of environment and cost because it can be used again for solvent extraction by distillation.
  • oils and fats extracted in this manner examples include triglycerides, ester compounds (wax esters) of higher fatty acids and monovalent or divalent higher alcohols, and the like.
  • drying process S22 which dries the culture solution containing the cultured photosynthetic microorganism before the extraction process S3, that is, between the oil-fatting process S2 and the extraction process S3.
  • the drying process S22 which dries the culture solution containing the cultured photosynthetic microorganism before the extraction process S3, that is, between the oil-fatting process S2 and the extraction process S3.
  • Drying in the drying step S22 may be performed by sun drying, hot air drying, freeze drying, or the like, but it is preferable to use waste heat of exhaust gas or exhaust steam discharged from a factory or an incineration facility. This is because the drying can be suitably performed quickly, reliably, and without requiring additional energy.
  • a recovery step S32 for recovering the photosynthetic microorganisms extracted by extracting the fats and oils in the extraction step S3 is included.
  • proteins and pigment components which are cell components, remain, so that organic substances are solubilized or dried biologically and / or chemically. It can be used as a raw material for biomass such as feed, fertilizer, solid fuel, and raw materials for chemical products.
  • the modifying step S4 to be performed is a step of modifying the extracted fats and oils.
  • the reforming of fats and oils include reduction treatment such as hydrogenation reaction.
  • biofuel such as light oil and jet fuel can be produced by removing oxygen in the wax ester by hydrogenation reaction.
  • the biofuel production apparatus A shown in FIG. 2 embodies an example of a preferred embodiment of the biofuel production method according to the present invention.
  • the biofuel production apparatus A includes a culture means 1, a concentration means 12 that concentrates the culture solution by sedimentation concentration and centrifugation, an oil-fatification means 2, a drying means 22, and an extraction means 3.
  • the reforming means 4 is provided.
  • Examples of the culture means 1 include a culture tank. A culture solution prepared for culturing photosynthetic microorganisms is placed in the culture tank.
  • carbon dioxide gas supply means (not shown) that actively supplies carbon dioxide gas as a carbon source, and the pH of the culture solution in the culture tank are maintained at an acidity of about 2 to 6.
  • PH maintaining means 14 and nutrient salt supply means (not shown) for supplying nutrient salts to the culture solution.
  • the culture tank may be cultured under open air conditions in which a lid or the like is not provided on the culture tank body, but when a lid or the like is provided on the culture tank body, at least a part of the culture tank or the lid body
  • a light transmission means (not shown) for transmitting sunlight or illumination light.
  • an illumination device By providing the light transmitting means and / or the illumination device, the photosynthetic microorganisms can be photosynthesized.
  • the culture tank includes a thermometer that measures the temperature of the culture solution and the culture tank, a photometer, a gas concentration meter that measures the concentration of oxygen and carbon dioxide, a thermostat that maintains the culture solution at a constant temperature, You may provide the stirring apparatus etc. which stir a liquid (all are not shown in figure).
  • the sedimentation concentration in the concentration means 12 can be performed using, for example, a sedimentation tank.
  • the supernatant liquid can be returned to the culture tank using the water head difference. Since the returned supernatant liquid contains a nutrient component, it can be used without wasting it by returning it to the culture tank.
  • Centrifugation in the concentration means 12 can be performed using, for example, a separation plate centrifuge.
  • the light liquid obtained by centrifugation can be reduced in water consumption by returning it to the culture tank.
  • the heavy liquid obtained by concentrating by centrifugation is supplied to the oil making means 2 described later.
  • Examples of the oleaginizing means 2 include an airtight container capable of shielding light.
  • a constant temperature apparatus that keeps the temperature of the concentrated culture solution constant
  • a gas concentration meter that measures the concentration of oxygen and carbon dioxide
  • an inert gas such as nitrogen and argon expel oxygen from the airtight container.
  • a gas introduction unit and a gas extraction unit both not shown formed using a check valve or the like may be provided.
  • drying means 22 examples include a dryer that uses waste heat of exhaust gas and exhaust steam discharged from factories and incineration facilities.
  • a dryer is not limited to this, A commercially available hot air dryer, a freeze dryer, etc. can also be used.
  • drying process S22 it can dry also by sun drying.
  • the drying means 22 the water in the culture solution is evaporated as water vapor and removed from the culture solution.
  • the extraction means 3 for example, a supercritical CO 2 extraction device solvent extraction apparatus and CO 2 for extracting to extract in the supercritical state with an organic solvent.
  • hexane or the like can be used as the organic solvent.
  • the photosynthetic microorganisms extracted by extracting the fats and oils are recovered, and the organic matter is solubilized or dried biologically and / or chemically as it is. It can be used as a raw material for biomass such as feed, fertilizer, solid fuel, and raw materials for chemical products.
  • Examples of the reforming means 4 include hydrodesulfurization apparatuses that perform a hydrogenation reaction such as kerosene hydrodesulfurization apparatus, vacuum gas oil hydrodesulfurization apparatus, naphtha hydrorefining apparatus, and heavy oil hydrodesulfurization apparatus. it can.
  • hydrodesulfurization apparatuses that perform a hydrogenation reaction
  • kerosene hydrodesulfurization apparatus vacuum gas oil hydrodesulfurization apparatus, naphtha hydrorefining apparatus, and heavy oil hydrodesulfurization apparatus.
  • biofuels such as light oil and jet fuel can be preferably produced.
  • Euglena was used as the photosynthetic microorganism.
  • a modified Cramer-Myers medium ((NH 4 ) 2 HPO 4 1.0 g / L, KH 2 PO 4 1, in which water is stored in a culture tank, and nutrient salts such as a nitrogen source, a phosphorus source, and a mineral are added.
  • Euglena was inoculated into the prepared culture and cultured for 7 days using sunlight.
  • the water temperature of the culture solution during the culture period was 29 ° C. ⁇ 3 ° C.
  • Carbon dioxide gas was supplied to the culture tank as a carbon source.
  • the pH of the culture broth became acidic by supplying carbon dioxide gas, but was maintained at about 2 to 6 using a pH maintaining device.
  • the pH was 2 to 4.5, it was difficult for other microorganisms to grow and contamination could be prevented.
  • the depth of the culture solution was 50 cm or less. However, when the culture solution was maintained at 30 cm or less, the culture solution was changed up and down by stirring in the culture solution, and photosynthesis could be performed more efficiently.
  • a certain amount of the culture solution containing Euglena grown in the culture tank was drawn out and sent to the sedimentation tank. Euglena has a higher specific gravity than water, so it naturally settled in the settling tank and settled at the bottom.
  • a certain amount of the precipitated photosynthetic microorganism was sent to a centrifuge, and the supernatant was returned to the culture tank and again used for culture.
  • the concentrated culture solution containing Euglena fed to the centrifuge was centrifuged. A concentrated heavy liquid having a higher Euglena concentration was obtained. The concentrated heavy liquid was then sent to the oiling process. The light liquid containing Euglena that could not be separated by the centrifuge was returned to the culture tank and used again for culture.
  • oleaginization metabolism was promoted by maintaining the heavy liquid under anaerobic conditions, and the fat content was improved.
  • the anaerobic treatment temperature was in the range of 25 to 40 ° C., and the conditions were such that the light was not shielded from photosynthesis.
  • the treatment amount increases, oxygen dissolved in Euglena photosynthesis increases the amount of dissolved oxygen in the culture solution, and the concentration of euglena is low. It took a lot of time and inert gas to reduce the dissolved oxygen concentration to suppress the oxygen.
  • concentration treatment after culturing, the amount of oil to be oiled is reduced, the amount of dissolved oxygen in the culture solution is reduced, and the concentration of Euglena in the culture solution is increased. The amount of active gas could be reduced.
  • Euglena whose fat content was improved by anaerobic treatment was dried at 110 ° C. for 120 minutes using waste heat.
  • Oils and fats were extracted from the dried euglena dry matter by a solvent extraction method using hexane, and the fats and defatted euglena dry matter were separated.
  • Oils and fats were refined with kerosene hydrodesulfurization equipment to produce petroleum substitute fuel (biofuel). Since this petroleum alternative fuel had an oil composition centered on carbon length 14, it was suggested that it could be used as light oil or jet fuel.
  • degreased Euglena was recovered and used as feedstock, fertilizer, and chemical raw material as biomass raw material.

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Abstract

炭素源である二酸化炭素を光合成微生物の光合成によってバイオマスへ変換した後、さらにバイオ燃料の製造を行う技術を含む一連のバイオ燃料製造方法を提供する。本発明に係るバイオ燃料製造方法は、細胞内に油脂および炭水化物を蓄積する光合成微生物を培養液で培養する培養工程（Ｓ１）と、前記培養液で培養した光合成微生物の細胞内に蓄積された炭水化物を油脂化させる油脂化工程（Ｓ２）と、前記光合成微生物の細胞内から油脂を抽出する抽出工程（Ｓ３）と、前記抽出した油脂を改質する改質工程（Ｓ４）と、を含むことを特徴とする。

Description

バイオ燃料製造方法
　本発明は、バイオ燃料を製造するバイオ燃料製造方法に関する。
　バイオ燃料は、バイオマス由来の原料から生産された燃料である。バイオマスが、例えば植物のように光合成能を持つ場合、光エネルギーと二酸化炭素から生産される油脂や炭水化物がバイオ燃料の原料となるため環境負荷の低い燃料を生産することができる。バイオ燃料には、炭水化物を糖化しアルコール発酵を経て生産されるバイオエタノールや、植物油の主成分であるトリグリセリドやワックスエステルなどの中性脂質から生産されるバイオディーゼルやバイオジェット燃料などがある。
　バイオ燃料の原料植物としては、大豆、トウモロコシ、パームなどが知られているが、可食性作物を原料とする場合、食糧不足への懸念から問題になっている。一方、ジャトロファ、カメリナなどの非食性植物からの生産も進められているが、単位面積当りの生産量が低いことが問題となっている。
　一方、池や沼に広く生息する光合成微生物や原生動物は、植物と同様の光合成能を持ち、水と二酸化炭素から油脂や炭水化物を生合成し、細胞内に数十質量％蓄積する。その生産量は、植物に比べて高く、単位面積当たりで、これらの生産量が高いと言われるパームの１０倍以上あることが知られている。
　特許文献１には、照射光波長や強度を制御した人工光を照射して光合成微生物である藻類を培養し、二酸化炭素を固定化することが記載されている。さらに、この特許文献１には、二酸化炭素を固定化することによって目的物質を生産させ、分離、精製する手段、方法および培養装置が記載されている。そして、この特許文献１には、光合成微生物を用いた二酸化炭素の固定化と、固定化した二酸化炭素の利用形態の一例としてバイオ燃料の原燃料とすることが提案されている。
特開２０１０－５７４８５号公報
　しかしながら、特許文献１には、固定化した二酸化炭素から如何にしてバイオ燃料にするかということについては開示していない。光合成微生物が持つ光合成能力を利用した二酸化炭素ガスの削減では、光合成によって固定した二酸化炭素量に比例してバイオマス重量が増えるが、これらを有効利用することができなければ工業利用は難しい。
　そこで本発明は、炭素源である二酸化炭素を光合成微生物の光合成によってバイオマスへ変換した後、さらにバイオ燃料の製造を行う技術を含む一連のバイオ燃料製造方法を提供することを課題とする。
　前記課題を解決するため、本発明に係るバイオ燃料製造方法は、細胞内に油脂および炭水化物を蓄積する光合成微生物を培養液で培養する培養工程と、前記培養液で培養した光合成微生物の細胞内に蓄積された炭水化物を油脂化させる油脂化工程と、前記光合成微生物の細胞内から油脂を抽出する抽出工程と、前記抽出した油脂を改質する改質工程とを含むことを特徴としている。
　このように、本発明に係るバイオ燃料製造方法は、培養工程で光合成微生物を培養し、炭素源である二酸化炭素を光合成微生物の光合成によって油脂および炭水化物といったバイオマスへ変換させて細胞内に蓄積させた後、油脂化工程で光合成微生物の細胞内に蓄積した炭水化物を油脂化させることにより、より多くの油脂を得るようにしている。そして、本発明に係るバイオ燃料製造方法では、次いで行う抽出工程で油脂を抽出した後、改質工程で油脂を改質することにより、バイオ燃料を製造する。
　本発明によれば、炭素源である二酸化炭素を光合成微生物の光合成によってバイオマスへ変換した後、さらにバイオ燃料の製造を行う技術を含む一連のバイオ燃料製造方法を提供することができる。
　また、本発明によれば、製造工程に油脂化工程を含んでいるので従来のバイオ燃料の製造方法と比較してより多くのバイオ燃料を製造することが可能である。
本発明に係るバイオ燃料製造方法の一実施形態を説明するフローチャートである。 バイオ燃料製造装置の一実施形態について説明するブロック図である。
　以下、図１のフローチャートを参照して本発明に係るバイオ燃料製造方法の一実施形態について説明する。
　図１に示すように、本発明に係るバイオ燃料製造方法は、培養工程Ｓ１と、油脂化工程Ｓ２と、抽出工程Ｓ３と、改質工程Ｓ４とを含んでいる。
　はじめに行う培養工程Ｓ１は、細胞内に油脂および炭水化物を蓄積する光合成微生物を培養液で培養する工程である。
　本発明で用いることのできる光合成微生物としては、ユーグレナ（Euglena）を挙げることができる。ユーグレナは鞭毛虫の一群で、運動性のある藻類として有名なミドリムシを含む。大部分のユーグレナは、葉緑体を持っており、光合成を行って独立栄養生活を行うが、捕食性のものや吸収栄養性のものもある。
　ユーグレナは、動物学と植物学の双方に分類される属である。
　動物学では、原生動物門（Protozoa）の鞭毛虫綱（Mastigophorea）、植物鞭毛虫亜綱（Phytomastigophorea）に属する目の中にミドリムシ目（Euglenida）があり、これは三つの亜目、Euglenoidina、Peranemoidina、Petalomonadoidinaよりなる。
　Euglenoidinaには、属としてEuglena、Trachelemonas、Strombonas、Phacus、Lepocinelis、Astasia、Colaciumが含まれる。
　植物学では、ミドリムシ植物門（Euglenophyta）があり、その下にミドリムシ藻類綱（Euglenophyceae）、ミドリムシ目（Euglenales）があって、この目に含まれる属としてはEuglenaの他、動物分類表と同様である。
　これ以外にも、シアノバクテリア、緑藻およびトレボキシア、プラシノ藻（緑色藻類）、原始紅藻類、珪藻、円石藻、渦べん毛藻、真眼点藻、黄金色藻などから１種または２種以上を選択して用いることができる。
　なお、シアノバクテリアとしては、例えば、Chroococcacae、Stigonematacae、MastigocladacaeおよびOscillatroriacaeを挙げることができる。また、その他にも、Synechococcus lividusおよびSynechococcus elongatusなどのSynechococcusや、Synechocystis minervaeなどのSynechocystisや、Mastigocladus laminosusなどのMastigocladusや、Phormidium laminosusなどのPhormidiumや、Symploca thermalisなどのSymplocaや、Aphanocapsa thermalisなどのAphanocapsaや、Fisherellaなどを挙げることができる。
　さらには、アナべナ（Anabaena）属に属するアナべナ・バリアビリス（Anabanena variabilis）ＡＴＣＣ ２９４１３、シアノテセ（Cyanothece）属のCyanothece sp. ＡＴＣＣ ５１１４２、シネココッカス（Synechococcus）属に属するSynechococcus sp. ＰＣＣ ７９４２およびアナシスティス（Anacystis）属に属するアナシスティス・ニデュランス（Anacystis nidulans）および好熱性シアノバクテリアなどを用いることができる。
　緑藻およびトレボキシアとしては、例えば、クロレラ（系統学的に分けられたパラクロレラを含む）、クラミドモナス、ドナリエラ、セネデスムス、ボトリオコッカス、スティココッカス、ナンノクロリス、およびデスモデスムスなどの気生藻を挙げることができる。具体的には、Chlorella vulgarisおよびChlorella saccharophilaなどのクロレラ（Chlorella）、Dunaliella salina、Dunaliella tertiolectaなどのDunaliella、並びに光合成などの基本的な性質は同じであるが、分子系統解析によりトレボキシア藻網として分類されるParachlorella kessleri（Chlorella kessleri）を挙げることができる。また、クラミドモナス（Chlamydomonas）属に属するクラミドモナス・ラインハルディ（Chlamydomonas reinhardtii）、クラミドモナス・モエブシィ（Chlamydomonas moewusii）、クラミドモナス・ユーガメタス（Chlamydomonas eugametos）、クラミドモナス・セグニス（Chlamydomonas segnis）、セネデスムス（Senedesmus）属に属するセネデスムス・オブリクス（Senedesmus obliquus）、スティココッカス（Stichococcus）属に属するスティココッカス・アンプリフォルミス（Stichococcus ampliformis）、ナンノクロリス（Nannochloris）属に属するナンノクロリス・バシラリス（Nannochloris bacillaris）、およびデスモデスムス（Desmodesmus）属に属するデスモデスムス・スブスピカツス（Desmodesmus subspicatus）などを挙げることができる。
　また、プラシノ藻（緑色藻類）としては、例えば、テトラセルミスなどを挙げることができ、原始紅藻類としては、例えば、シアニディオシゾン、シアニディウム、ガルディエリア、ポルフィリディウムなどを挙げることができる。
　なお、本発明で用いることのできる光合成微生物は、光合成により油脂および炭水化物を生成し、細胞内に蓄積することができ、後記する油脂化工程Ｓ２で細胞内に蓄積した炭水化物を油脂化することのできるものであれば用いることができ、前記したものに限定されるものではない。
　培養工程Ｓ１での光合成微生物の培養は、大気雰囲気下で行うこともできるが、光合成による油脂と炭水化物の生成量をより多くするために、二酸化炭素ガスを積極的に供給し、培養液中への空気ばっ気よりも高い溶存二酸化炭素濃度で行うようにするのが好ましい。二酸化炭素ガスの積極的な供給は、例えば、工場や燃焼施設などから排出される燃焼排ガスを利用することにより行うことができる。このとき、集塵機、脱硝設備、脱硫設備などにより燃焼排ガス中の塵埃、ＮＯｘおよびＳＯｘを取り除いておくのが好ましい。
　この培養工程Ｓ１における培養液の液深さは５０ｃｍ以下とするのが好ましく、３０ｃｍ以下とするのがより好ましい。このようにすれば、培養がすすんで光合成微生物が増殖しても、撹拌により培養液が上下撹拌される（上下入れ替えられる）ので、効率的に光合成を行わせることができる。
　光合成微生物としてユーグレナを用いる場合、窒素源、リン源、ミネラルなどの栄養塩類を添加した培養液、例えば、改変Cramer-Myers培地（（ＮＨ4）2ＨＰＯ4　１．０ｇ／Ｌ、ＫＨ2ＰＯ4　１．０ｇ／Ｌ、ＭｇＳＯ4・７Ｈ2Ｏ　０．２ｇ／Ｌ、ＣａＣｌ2・２Ｈ2Ｏ　０．０２ｇ／Ｌ、Ｆｅ2（ＳＯ2）3・７Ｈ2Ｏ　３ｍｇ／Ｌ、ＭｎＣｌ2・４Ｈ2Ｏ　１．８ｍｇ／Ｌ、ＣｏＳＯ4・７Ｈ2Ｏ　１．５ｍｇ／Ｌ、ＺｎＳＯ4・７Ｈ2Ｏ　０．４ｍｇ／Ｌ、Ｎａ2ＭｏＯ4・２Ｈ2Ｏ　０．２ｍｇ／Ｌ、ＣｕＳＯ4・５Ｈ2Ｏ　０．０２ｇ／Ｌ、チアミン塩酸塩（ビタミンＢ1）　０．１ｍｇ／Ｌ、シアノコバラミン（ビタミンＢ12）、（ｐＨ３．５））を用いることができる。なお、（ＮＨ4）2ＨＰＯ4は、（ＮＨ4）2ＳＯ4やＮＨ3ａｑに変換することも可能である。
　培養液は、用いる光合成微生物に適した培地を用いればよく、これに限定されるものでないことはいうまでもない。
　また、培養工程Ｓ１における培養液のｐＨは２～６とするのが好ましく、２～４．５とするのがより好ましい。このように、ｐＨを酸性にすれば、光合成微生物は他の微生物よりも優勢に生育することができるため、コンタミネーションを抑制することができる。その結果、回分培養法の他、連続培養法を適用することが可能となる。
　培養液のｐＨの調整は、粉末試薬や試薬水溶液を適宜に用いて行うことができる。粉末試薬としては、重曹などを挙げることができ、試薬水溶液としては、硫酸、酢酸などの酸性液や水酸化ナトリウム水溶液などの塩基性溶液を挙げることができる。
　次いで行う油脂化工程Ｓ２は、培養液で培養した光合成微生物の細胞内に蓄積された炭水化物を油脂化させる工程である。
　光合成微生物は、嫌気状態になると防衛反応として細胞内に油脂を蓄積する。そのため、油脂化のための手法として、例えば、光合成微生物を培養した培養液を嫌気状態下で保持することを挙げることができる。なお、本発明における嫌気状態とは、酸素が存在しない（少ない）状態を意味する。嫌気状態を作る方法としては、濃縮工程Ｓ１２（沈降濃縮、遠心分離）で高密度化した光合成微生物を、光合成で酸素を生産できないように光と空気の流入を遮断した密閉容器内や配管内で保持すると、光合成微生物の呼吸で酸素が消費され、これにより嫌気状態を作ることが可能である。なお、嫌気状態を作る方法は前記したものに限定されるものではない。嫌気状態は、窒素やアルゴンなどの不活性ガスで酸素を追い出すことなどによっても作り出すこともできる。
　なお、油脂化工程Ｓ２の前、つまり、培養工程Ｓ１と油脂化工程Ｓ２との間に、培養した培養液を濃縮する濃縮工程Ｓ１２を含んでいるのが好ましい。細胞内に油脂と炭水化物を蓄積した光合成微生物を濃縮工程Ｓ１２によって濃縮し、不要な培養液を取り除くことでその後の操作が容易となるだけでなく、例えば、濃縮工程Ｓ１２で濃縮した培養液を嫌気状態下においたときに、取り除いた培養液中の溶存酸素がない分、濃縮した培養液に溶存する酸素が光合成微生物の呼吸（光合成）によって早期に消費されるため、より早く嫌気状態とすることが可能である。したがって、油脂化も早期に行うことができるようになる。
　濃縮工程Ｓ１２における濃縮は、沈降濃縮によって行うことができるが、これに続けて遠心分離を行うのがより好ましい。
　なお、沈降濃縮とは、自然沈降を利用して光合成微生物を濃縮することをいう。沈降濃縮は、例えば、６～３６時間程度静置すればよい。
　また、遠心分離による濃縮とは、遠心分離機の遠心力によって光合成微生物を濃縮することをいう。遠心分離を行うと、光合成微生物を含む、比重の重い液体（重液）と、光合成微生物を含まない、比重が軽い液体（上澄み液（軽液））とを得ることができる。軽液を取り除くことにより、重液に含まれる光合成微生物を好適に濃縮することができる。なお、軽液は可能な限り取り除くのが好ましい。なお、遠心分離は、例えば５，０００～２０，０００×ｇの条件で行うことができる。
　なお、沈殿濃縮によって得られた上澄み液および遠心分離によって得られた軽液は、前記した培養工程Ｓ１で用いる培養槽に返送し、培養液に混合するとよい。このようにすれば、培養液を有効に利用することができる。また、上澄み液や軽液に含まれている濃縮しなかった光合成微生物を再び培養することができる。
　油脂化工程Ｓ２は、遮光した条件下、２５～４０℃の温度で行うのが好ましい。このような条件で光合成微生物を含む培養液を保持すると、細胞内に蓄積した炭水化物を油脂化させることができる。
　次いで行う抽出工程Ｓ３は、光合成微生物の細胞内から油脂を抽出する工程である。
　細胞内からの油脂の抽出は、例えば、有機溶媒を用いた溶媒抽出法や超臨界ＣＯ2抽出法などにより行うことができる。溶媒抽出法に用いる有機溶媒としては、例えば、ヘキサンを挙げることができる。油脂を抽出した後のヘキサンは、蒸留することで再度溶媒抽出に使用することができるため環境およびコストの面でメリットが大きい。
　このようにして抽出される油脂としては、例えば、トリグリセリド、高級脂肪酸と一価または二価の高級アルコールとのエステル化合物（ワックスエステル）などを挙げることができる。
　なお、抽出工程Ｓ３の前、つまり、油脂化工程Ｓ２と抽出工程Ｓ３との間に、培養した光合成微生物を含む培養液を乾燥する乾燥工程Ｓ２２を含むのが好ましい。このようにすれば、溶媒抽出法や超臨界ＣＯ2抽出法を行う際に、抽出の妨げとなる水分が除去されているので、より好適に油脂の抽出を行うことができるようになる。
　乾燥工程Ｓ２２における乾燥は、天日干しや熱風乾燥、凍結乾燥などによって行うこともできるが、工場や焼却施設などから排出される排ガスや排蒸気が持つ廃熱を利用するとよい。迅速、確実かつ別途のエネルギーを必要とすることなく、好適に乾燥を行うことができるからである。
　抽出工程Ｓ３後に、抽出工程Ｓ３で油脂を抽出して脱脂された光合成微生物を回収する回収工程Ｓ３２を含んでいるのが好ましい。油脂を抽出して脱脂された光合成微生物には、細胞構成成分であるタンパク質や色素成分が残存しており、そのまま、もしくは、生物的および／または化学的に有機物を可溶化したり、乾燥等したりすることで飼料、肥料、固形燃料、化学製品の原料など、バイオマス原料として利用することができる。
　次いで行う改質工程Ｓ４は、抽出した油脂を改質する工程である。
　油脂の改質は、例えば、水素添加反応のような還元処理などを挙げることができる。例えば、ワックスエステル中の酸素を水素添加反応によって取り除くことにより、軽油やジェット燃料といったバイオ燃料を製造することができる。
　次に、図２を参照して本発明に係るバイオ燃料製造方法を実施するバイオ燃料製造装置の一実施形態について説明する。なお、図２に示すバイオ燃料製造装置Ａは、本発明に係るバイオ燃料製造方法の好ましい実施形態の一例を具現したものである。
　図２に示すように、バイオ燃料製造装置Ａは、培養手段１と、培養液を沈降濃縮および遠心分離によって濃縮する濃縮手段１２と、油脂化手段２と、乾燥手段２２と、抽出手段３と、改質手段４とを備えている。
　なお、これらの手段は、前記した同様の名称を有する各工程と対応するものである。よって、これらの手段についての意義や作用、効果などについての説明は、対応する各工程の項目において既に説明しているので省略する。
　培養手段１としては、例えば、培養槽を挙げることができる。培養槽には、光合成微生物を培養するために調製された培養液が入れられている。この実施形態においては、炭素源である二酸化炭素ガスを積極的に供給する二酸化炭素ガス供給手段（図示せず）と、培養槽内の培養液のｐＨを約２～６の酸性に維持するためのｐＨ維持手段１４と、培養液に栄養塩を供給する栄養塩供給手段（図示せず）とを備えている。
　また、培養槽は、培養槽本体上に蓋体などを設けないオープンエア条件で培養するものでもよいが、培養槽本体上に蓋体などを設ける場合は、培養槽または蓋体の少なくとも一部に、太陽光や照明光を透過させるための光透過手段（図示せず）を備えるのがよい。なお、照明装置を備えることにより光合成させることも可能である。光透過手段および／または照明装置を備えることにより、光合成微生物の光合成が可能となる。
　なお、二酸化炭素ガス供給手段（図示せず）を備える場合は、二酸化炭素ガスが漏れ出さないよう、気密性のある培養槽を用いるのが好ましい。
　さらに、培養槽には、培養液や培養槽内の温度を計測する温度計、光度計、酸素濃度や二酸化炭素の濃度を測定するガス濃度計、培養液を一定の温度に保つ恒温装置、培養液を撹拌する撹拌装置などを備えてもよい（いずれも図示せず）。
　濃縮手段１２における沈降濃縮は、例えば、沈降槽を用いて行うことができる。沈降槽の上部液面を培養液の液面より高い位置に設置すると、水頭差を利用して上澄み液を培養槽へ返送することができる。返送したこの上澄み液には栄養成分が含まれているため、培養槽へ返送することで栄養成分を無駄にすることなく利用することができる。
　濃縮手段１２における遠心分離は、例えば、分離板型遠心分離機を用いて行うことができる。遠心分離で得られた軽液は、培養槽に戻すことで水の消費量を減らすことができる。一方、遠心分離で濃縮されて得られた重液は、後記する油脂化手段２に供される。
　油脂化手段２としては、例えば、遮光できる気密容器を挙げることができる。かかる気密容器には、濃縮した培養液の温度を一定に保つ恒温装置、酸素濃度や二酸化炭素の濃度を測定するガス濃度計、窒素やアルゴンなどの不活性ガスで気密容器内から酸素を追い出して嫌気状態とする場合は、逆止弁などを用いて形成されたガス導入手段およびガス導出手段（いずれも図示せず）などを備えてもよい。
　乾燥手段２２としては、例えば、工場や焼却施設から排出される排ガスや排蒸気が持つ廃熱を利用した乾燥機を挙げることができる。なお、乾燥機はこれに限定されるものではなく、市販されている熱風乾燥機、凍結乾燥機などを用いることもできる。なお、乾燥工程Ｓ２２で説明したとおり、天日干しによっても乾燥することができる。乾燥手段２２によって培養液の水分は水蒸気となって蒸発し、培養液から除去される。
　抽出手段３としては、例えば、有機溶媒を用いて抽出を行う溶媒抽出装置やＣＯ2を超臨界状態にして抽出を行う超臨界ＣＯ2抽出装置などを挙げることができる。有機溶媒としては、前記したように、ヘキサンなどを利用することができる。
　抽出工程Ｓ３で説明したように、油脂を抽出して脱脂された光合成微生物は回収された後、そのまま、もしくは、生物的および／または化学的に有機物を可溶化したり、乾燥等したりすることで飼料、肥料、固形燃料、化学製品の原料など、バイオマス原料として利用することができる。
　改質手段４としては、例えば、灯軽油水素化脱硫装置、減圧軽油水素化脱硫装置、ナフサ水素化精製装置、重油水素化脱硫装置などの、水素添加反応を行う水素化脱硫装置を挙げることができる。なかでも、灯軽油水素化脱硫装置を用いると、軽油やジェット燃料などのバイオ燃料を好適に製造することができる。
　以下に、本発明に係るバイオ燃料製造方法について、一実施例を示して具体的に説明する。
　この実施例では、光合成微生物としてユーグレナを用いた。
　まず、培養槽内に水を貯留し、窒素源、リン源、ミネラルなどの栄養塩類を添加した改変Cramer-Myers培地（（ＮＨ4）2ＨＰＯ4　１．０ｇ／Ｌ、ＫＨ2ＰＯ4　１．０ｇ／Ｌ、ＭｇＳＯ4・７Ｈ2Ｏ　０．２ｇ／Ｌ、ＣａＣｌ2・２Ｈ2Ｏ　０．０２ｇ／Ｌ、Ｆｅ2（ＳＯ2）3・７Ｈ2Ｏ　３ｍｇ／Ｌ、ＭｎＣｌ2・４Ｈ2Ｏ　１．８ｍｇ／Ｌ、ＣｏＳＯ4・７Ｈ2Ｏ　１．５ｍｇ／Ｌ、ＺｎＳＯ4・７Ｈ2Ｏ　０．４ｍｇ／Ｌ、Ｎａ2ＭｏＯ4・２Ｈ2Ｏ　０．２ｍｇ／Ｌ、ＣｕＳＯ4・５Ｈ2Ｏ　０．０２ｇ／Ｌ、チアミン塩酸塩（ビタミンＢ1）　０．１ｍｇ／Ｌ、シアノコバラミン（ビタミンＢ12）、（ｐＨ３．５））を調製した。
　調製した培養液にユーグレナを接種し、太陽光を利用して７日間培養した。培養期間中の培養液の水温は、２９℃±３℃であった。培養槽には、炭素源として二酸化炭素ガスを供給した。二酸化炭素ガスを供給することで培養液のｐＨは酸性になるが、ｐＨ維持装置を用いて約２～６の酸性に維持した。ユーグレナの場合、ｐＨは２～４．５とすることで他の微生物が増殖しにくくなり、コンタミネーションを防止することができた。
　培養液の液深さは５０ｃｍ以下としたが、３０ｃｍ以下に維持した方が培養液中の攪拌により培養液の上下の入れ替えが起こり、より効率的に光合成を行うことができた。培養槽で増殖したユーグレナを含む培養液を一定量引き抜き、沈降槽へ送液した。ユーグレナは水よりも比重が重いため、沈降槽において自然沈降し、底部に沈殿した。沈殿した光合成微生物を一定量遠心分離機に送液するとともに、上澄み液を培養槽へ返送し、再び培養に利用した。
　遠心分離機に送液したユーグレナを含む濃縮培養液を遠心分離した。よりユーグレナの濃度の高い、濃縮した重液を得た。次いで、濃縮した重液は、油脂化のプロセスへ送った。遠心分離機で分離できなかったユーグレナを含む軽液は、培養槽へ戻し、再び培養に利用した。
　油脂化では、重液を嫌気条件下で保持することにより代謝を促し、油脂含有率を向上させた。この場合、嫌気処理温度は２５～４０℃の範囲で行い、光合成しないよう遮光した条件化で行った。油脂化では、培養後に油脂化を行った場合、処理量が多くなるとともに、ユーグレナの光合成で排出される酸素により培養液中の溶存酸素量が多く、しかも、ユーグレナの濃度が低いことから、呼吸を抑えるための溶存酸素濃度を低下させるまでに時間、および不活性ガスを多分に要した。これに対し、培養後に濃縮処理を加えることで油脂化する処理量を減らし、培養液中の溶存酸素量を減らすとともに、培養液中のユーグレナの濃度を高めたため、嫌気処理にかかる時間、および不活性ガス量を低減することができた。
　次いで、嫌気処理によって油脂含有率が向上したユーグレナを、廃熱を利用して１１０℃、１２０分間乾燥した。
　ヘキサンを用いた溶媒抽出法によって、乾燥したユーグレナの乾燥物から油脂を抽出し、油脂と脱脂したユーグレナの乾燥物とを分けた。
　油脂は、灯軽油水素化脱硫装置にて精製し、石油代替燃料（バイオ燃料）を製造した。かかる石油代替燃料は、炭素長１４を中心とする油脂組成であったことから、軽油やジェット燃料として利用可能なことが示唆された。
　一方、脱脂したユーグレナを回収し、バイオマス原料として、飼料や肥料や化学原料として利用することができた。
　Ｓ１　　培養工程
　Ｓ１２　濃縮工程
　Ｓ２　　油脂化工程
　Ｓ２２　乾燥工程
　Ｓ３　　抽出工程
　Ｓ３２　回収工程
　Ｓ４　　改質工程
　Ａ　　　バイオ燃料製造装置
　１　　　培養手段
　１２　　濃縮手段
　１４　　ｐＨ維持手段
　２　　　油脂化手段
　２２　　乾燥手段
　３　　　抽出手段
　４　　　改質手段

Claims (12)

  1. 　細胞内に油脂および炭水化物を蓄積する光合成微生物を培養液で培養する培養工程と、
    　前記培養液で培養した光合成微生物の細胞内に蓄積された炭水化物を油脂化させる油脂化工程と、
    　前記光合成微生物の細胞内から油脂を抽出する抽出工程と、
    　前記抽出した油脂を改質する改質工程と、
    　を含むことを特徴とするバイオ燃料製造方法。
  2. 　請求の範囲第１項に記載のバイオ燃料製造方法において、
    　前記培養工程と前記油脂化工程との間に、
    　培養した前記培養液を濃縮する濃縮工程を含んでいる
    　ことを特徴とするバイオ燃料製造方法。
  3. 　請求の範囲第２項に記載のバイオ燃料製造方法において、
    　前記濃縮工程における濃縮が、沈降濃縮である
    　ことを特徴とするバイオ燃料製造方法。
  4. 　請求の範囲第２項に記載のバイオ燃料製造方法において、
    　前記濃縮工程における濃縮が、沈降濃縮とこれに続けて行われる遠心分離による濃縮である
    　ことを特徴とするバイオ燃料製造方法。
  5. 　請求の範囲第１項に記載のバイオ燃料製造方法において、
    　前記油脂化工程と前記抽出工程との間に、
    　培養した前記光合成微生物を含む前記培養液を乾燥する乾燥工程を含んでいる
    　ことを特徴とするバイオ燃料製造方法。
  6. 　請求の範囲第１項に記載のバイオ燃料製造方法において、
    　前記抽出工程後、
    　油脂を抽出して脱脂された前記光合成微生物を回収する回収工程を含んでいる
    　ことを特徴とするバイオ燃料製造方法。
  7. 　請求の範囲第３項に記載のバイオ燃料製造方法において、
    　前記沈殿濃縮にて得られた上澄み液を前記培養工程で用いる培養槽に返送する
    　ことを特徴とするバイオ燃料製造方法。
  8. 　請求の範囲第４項に記載のバイオ燃料製造方法において、
    　前記遠心分離にて得られた軽液を前記培養工程で用いる培養槽に返送する
    　ことを特徴とするバイオ燃料製造方法。
  9. 　請求の範囲第１項に記載のバイオ燃料製造方法において、
    　前記培養工程は、培養液中への空気ばっ気よりも高い溶存二酸化炭素濃度で前記光合成微生物の培養を行うことを特徴とするバイオ燃料製造方法。
  10. 　請求の範囲第１項に記載のバイオ燃料製造方法において、
    　前記培養工程における前記培養液の液深さを５０ｃｍ以下とした
    　ことを特徴とするバイオ燃料製造方法。
  11. 　請求の範囲第１項に記載のバイオ燃料製造方法において、
    　前記培養工程における前記培養液のｐＨを２～６とした
    　ことを特徴とするバイオ燃料製造方法。
  12. 　請求の範囲第１項に記載のバイオ燃料製造方法において、
    　前記油脂化工程を、遮光した条件下、２５～４０℃の温度で行う
    　ことを特徴とするバイオ燃料製造方法。
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Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2013115137A1 (ja) * 2012-01-31 2013-08-08 Ｊｘ日鉱日石エネルギー株式会社 燃料油基材の製造方法
JP2014168409A (ja) * 2013-03-04 2014-09-18 Univ Of Tokyo 微細藻類培養液の濃縮方法および装置
WO2015190116A1 (ja) * 2014-06-13 2015-12-17 株式会社デンソー 微細藻類の培養方法、微細藻類、及び油脂の製造方法
JP6031158B1 (ja) * 2015-06-10 2016-11-24 株式会社ユーグレナ ユーグレナの培養方法
JP2017079602A (ja) * 2015-10-23 2017-05-18 株式会社デンソー 光合成微生物の培養装置及び培養方法
JPWO2025239424A1 (ja) * 2024-05-17 2025-11-20

Families Citing this family (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
HRP20170273T1 (hr) * 2010-06-23 2017-04-21 Bernard A. J. Stroïazzo-Mougin Postupak dobivanja sirove bionafte iz mikroalgi
JP5807947B2 (ja) * 2011-03-07 2015-11-10 Ｊｘ日鉱日石エネルギー株式会社 炭化水素燃料の製造方法
CA2847894A1 (en) * 2011-10-28 2013-05-02 Sapphire Energy, Inc. Processes for upgrading algae oils and products thereof
JP6060441B2 (ja) * 2012-07-06 2017-01-18 株式会社ユーグレナ 藻類含有組成物製造システム
US9024096B2 (en) * 2012-12-11 2015-05-05 Lummus Technology Inc. Conversion of triacylglycerides-containing oils
JP6063362B2 (ja) * 2013-09-10 2017-01-18 株式会社日立製作所 光合成微生物の分離システム及びその分離方法
CN104630065B (zh) * 2013-11-14 2018-08-28 中国石油化工股份有限公司 一种微藻养殖和废气脱硝的联合方法
JP6290639B2 (ja) * 2014-01-31 2018-03-07 株式会社ユーグレナ ユーグレナの培養方法及びその培養液
CN104445800B (zh) * 2014-10-21 2016-06-01 南通大学 利用微藻耦合光生物反应器处理污水与生产柴油的方法
JP2016182063A (ja) * 2015-03-26 2016-10-20 国立大学法人 東京大学 培地及び強光阻害抑制方法
US9901606B2 (en) 2016-06-09 2018-02-27 Algaeon, Inc. Euglena lysate composition
CA3034122A1 (en) 2016-08-19 2018-02-22 Noblegen Inc. Methods and uses of dissolved organic material fractions for binding metal ions
JP2020516768A (ja) 2017-04-07 2020-06-11 ノーブルジェン・インコーポレーテッド 金属を結合するための方法並びにカプセル化された滲出物及び乾燥ユーグレナ（ｅｕｇｌｅｎａ）バイオマスの使用
KR102612831B1 (ko) * 2021-06-07 2023-12-13 한국지역난방공사 유출 이산화탄소 농도를 제어하기 위한 도심발전소 적용 이산화탄소 컴팩트 분리막 및 탄소 자원화 하이브리드 시스템
JP2023112609A (ja) * 2022-02-01 2023-08-14 住友重機械工業株式会社 燃料化システム、燃料化方法、バイオフィルム型リアクター

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS63119409A (ja) * 1986-11-08 1988-05-24 Harima Chem Inc 皮膚化粧料
WO2009076559A1 (en) * 2007-12-11 2009-06-18 Synthetic Genomics, Inc. Secretion of fatty aicds by photosynthetic microorganisms
JP2010514446A (ja) * 2006-12-28 2010-05-06 ソリックス バイオフューエルズ， インコーポレイテッド 優れた拡散光大表面積水支持式フォトバイオリアクタ

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS59118090A (ja) * 1982-12-22 1984-07-07 Shozaburo Kitaoka ロウ・エステル、高級脂肪アルコ−ルおよび高級脂肪酸の製造法
JPS61254193A (ja) * 1985-05-07 1986-11-11 Harima Chem Inc 不飽和ワツクスエステルの製造方法
JP3004509B2 (ja) * 1993-09-27 2000-01-31 三菱重工業株式会社 微細藻からのエタノール製造方法及び装置
JP3468955B2 (ja) * 1995-12-01 2003-11-25 三菱重工業株式会社 微細藻による乳酸の製造方法
JP3549444B2 (ja) * 1998-07-28 2004-08-04 喜温 三浦 微生物による水素の生産方法
JP2010057485A (ja) * 2008-08-08 2010-03-18 Mitsubishi Chemicals Corp Ｃｏ２固定化方法及びｃｏ２固定化用藻類培養装置

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS63119409A (ja) * 1986-11-08 1988-05-24 Harima Chem Inc 皮膚化粧料
JP2010514446A (ja) * 2006-12-28 2010-05-06 ソリックス バイオフューエルズ， インコーポレイテッド 優れた拡散光大表面積水支持式フォトバイオリアクタ
WO2009076559A1 (en) * 2007-12-11 2009-06-18 Synthetic Genomics, Inc. Secretion of fatty aicds by photosynthetic microorganisms

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
KENGO SUZUKI ET AL.: "Bisai Morui o Mochiita Nisanka Tanso Kotei Gijutsu no Shokai -Jigyo Kaisha to Shite no Torikumi", BIOPHILLA, vol. 3, no. 2, 2007, pages 56 - 58, XP008170824 *
KENGO SUZUKI: "Bisai Morui Euglenids ni yoru Yuyo Busshitsu ni Tsuite", CSJ: THE CHEMICAL SOCIETY OF JAPAN KOEN YOKOSHU, vol. 91ST, no. 1, March 2011 (2011-03-01), pages 26, XP008167797 *
NEENAN, B. F. ET AL.: "Fuels from Microalgae: an Assessment of Technology Requirements", SYMP. PAP. ENERGY BIOMASS WASTES, vol. 10TH, 1987, pages 1293 - 1308, XP008167798 *

Cited By (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2013115137A1 (ja) * 2012-01-31 2013-08-08 Ｊｘ日鉱日石エネルギー株式会社 燃料油基材の製造方法
JPWO2013115137A1 (ja) * 2012-01-31 2015-05-11 Ｊｘ日鉱日石エネルギー株式会社 燃料油基材の製造方法
JP2014168409A (ja) * 2013-03-04 2014-09-18 Univ Of Tokyo 微細藻類培養液の濃縮方法および装置
WO2015190116A1 (ja) * 2014-06-13 2015-12-17 株式会社デンソー 微細藻類の培養方法、微細藻類、及び油脂の製造方法
JP6031158B1 (ja) * 2015-06-10 2016-11-24 株式会社ユーグレナ ユーグレナの培養方法
JP2017079602A (ja) * 2015-10-23 2017-05-18 株式会社デンソー 光合成微生物の培養装置及び培養方法
JPWO2025239424A1 (ja) * 2024-05-17 2025-11-20
WO2025239424A1 (ja) * 2024-05-17 2025-11-20 三菱化工機株式会社 バイオマス原料からの有価物の抽出システム及び方法

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