WO2014141528A1 - 心臓又は血管組織型スフェロイド - Google Patents
心臓又は血管組織型スフェロイド Download PDFInfo
- Publication number
- WO2014141528A1 WO2014141528A1 PCT/JP2013/079478 JP2013079478W WO2014141528A1 WO 2014141528 A1 WO2014141528 A1 WO 2014141528A1 JP 2013079478 W JP2013079478 W JP 2013079478W WO 2014141528 A1 WO2014141528 A1 WO 2014141528A1
- Authority
- WO
- WIPO (PCT)
- Prior art keywords
- spheroid
- spheroids
- cells
- vascular
- fibroblasts
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Ceased
Links
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
- C12N5/0602—Vertebrate cells
- C12N5/069—Vascular Endothelial cells
- C12N5/0691—Vascular smooth muscle cells; 3D culture thereof, e.g. models of blood vessels
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/36—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
- A61L27/3604—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix characterised by the human or animal origin of the biological material, e.g. hair, fascia, fish scales, silk, shellac, pericardium, pleura, renal tissue, amniotic membrane, parenchymal tissue, fetal tissue, muscle tissue, fat tissue, enamel
- A61L27/3625—Vascular tissue, e.g. heart valves
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K35/00—Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
- A61K35/12—Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
- A61K35/33—Fibroblasts
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K35/00—Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
- A61K35/12—Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
- A61K35/34—Muscles; Smooth muscle cells; Heart; Cardiac stem cells; Myoblasts; Myocytes; Cardiomyocytes
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K35/00—Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
- A61K35/12—Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
- A61K35/44—Vessels; Vascular smooth muscle cells; Endothelial cells; Endothelial progenitor cells
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/36—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
- A61L27/38—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells
- A61L27/3804—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells characterised by specific cells or progenitors thereof, e.g. fibroblasts, connective tissue cells, kidney cells
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/36—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
- A61L27/38—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells
- A61L27/3886—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells comprising two or more cell types
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/50—Materials characterised by their function or physical properties, e.g. injectable or lubricating compositions, shape-memory materials, surface modified materials
- A61L27/507—Materials characterised by their function or physical properties, e.g. injectable or lubricating compositions, shape-memory materials, surface modified materials for artificial blood vessels
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P9/00—Drugs for disorders of the cardiovascular system
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
- C12N5/0697—Artificial constructs associating cells of different lineages, e.g. tissue equivalents
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L2300/00—Biologically active materials used in bandages, wound dressings, absorbent pads or medical devices
- A61L2300/60—Biologically active materials used in bandages, wound dressings, absorbent pads or medical devices characterised by a special physical form
- A61L2300/64—Animal cells
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L2430/00—Materials or treatment for tissue regeneration
- A61L2430/20—Materials or treatment for tissue regeneration for reconstruction of the heart, e.g. heart valves
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2502/00—Coculture with; Conditioned medium produced by
- C12N2502/13—Coculture with; Conditioned medium produced by connective tissue cells; generic mesenchyme cells, e.g. so-called "embryonic fibroblasts"
- C12N2502/1323—Adult fibroblasts
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2502/00—Coculture with; Conditioned medium produced by
- C12N2502/13—Coculture with; Conditioned medium produced by connective tissue cells; generic mesenchyme cells, e.g. so-called "embryonic fibroblasts"
- C12N2502/1329—Cardiomyocytes
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2502/00—Coculture with; Conditioned medium produced by
- C12N2502/28—Vascular endothelial cells
Definitions
- the present invention relates to a heart and vascular tissue spheroid and a method for producing the same.
- Non-patent document 1 As a clinical utilization method of cells obtained by these techniques, cells have been directly injected into organs or by intravenous or arterial injection techniques, but poor engraftment efficiency is regarded as a problem ( Non-patent document 1). Meanwhile, the concept of tissue engineering (TE) has been proposed by Vacanti et al. Since around 1993, and a technique for constructing a tissue using a biosoluble scaffold such as collagen or polylactic acid has been proposed (Non-patent Document 2). ). Since this method uses a foreign substance as a scaffold, there remains a problem of solving problems such as allergies and infectious diseases with respect to biosoluble materials. Therefore, a technique for producing a tissue only with cells without using a scaffold has been proposed.
- TE tissue engineering
- Non-Patent Document 3 a technique for constructing a tissue (for example, myocardium, blood vessel, cartilage, valve, etc.) only with cells so as to have morphological characteristics and mechanical action, and it can be said that regenerative medicine is still under development.
- tissue forming means As one of tissue forming means closer to a living body, a three-dimensional cell formation phenomenon formed by an agglutination reaction, which is a property naturally possessed by adherent cells, is known.
- This phenomenon is a phenomenon in which cells are aggregated to form spherical cell aggregates (referred to as spheroids) when an adhesion inhibitor is coated on a dish or the like when culturing adhesive cells.
- spheroids spherical cell aggregates
- An object of the present invention is to provide a method for constructing a heart tissue, a blood vessel, or the like only with cells.
- the present inventor uses a mixture of cardiomyocytes, endothelial cells and fibroblasts, and also uses a mixture of smooth muscle cells, endothelial cells and fibroblasts.
- the present inventors have succeeded in producing heart tissue and vascular tissue type spheroids approximated to functions in the living body, respectively, and have completed the present invention.
- the present invention is as follows. (1) A cardiac tissue spheroid formed from a mixture of cardiomyocytes and at least one cell selected from vascular endothelial cells and fibroblasts. (2) The cardiac tissue spheroid according to (1), which is formed from a mixture of cardiomyocytes, vascular endothelial cells and fibroblasts. (3) The mixing ratio of cardiomyocytes, vascular endothelial cells and fibroblasts is 10 to 60 for vascular endothelial cells and 10 to 60 for fibroblasts relative to cardiomyocytes 100. Heart tissue type spheroid.
- the abundance ratio of spheroids derived from cardiomyocytes, spheroids derived from vascular endothelial cells, and spheroids derived from fibroblasts is 10 to 60 spheroids derived from vascular endothelial cells relative to spheroids 100 derived from cardiomyocytes.
- vascular tissue spheroid formed from a mixture of smooth muscle cells and at least one cell selected from vascular endothelial cells and fibroblasts.
- the mixing ratio of smooth muscle cells, vascular endothelial cells and fibroblasts is 10 to 60 for vascular endothelial cells and 10 to 300 for fibroblasts relative to smooth muscle cell 100 (11).
- the ratio of smooth muscle cell-derived spheroids, vascular endothelial cell-derived spheroids, and fibroblast-derived spheroids is 10 to 10 times that of spheroids derived from vascular endothelial cells relative to spheroids 100 derived from smooth muscle cells.
- 60. The vascular tissue-type spheroid according to (14), wherein the spheroid derived from fibroblast is 10 to 300.
- a method for producing a vascular tissue type three-dimensional structure comprising blending or laminating the vascular tissue type spheroid according to any one of (10) to (15).
- An artificial vascular tissue comprising the vascular tissue-type spheroid according to any one of (10) to (15) or a three-dimensional structure produced by the method according to (16) or (17).
- the present invention provides a heart and vascular tissue type spheroid and a method for producing the same. Moreover, a cardiac tissue type or vascular tissue type three-dimensional structure can be produced by blending or laminating the spheroids.
- the tissue produced by the method of the present invention has a function similar to that in vivo, and can be used as an artificial heart tissue or an artificial blood vessel tissue. Therefore, the present invention is extremely useful in that it can be used for regenerative medicine.
- the present invention relates to a cardiac tissue spheroid formed from a mixture of cardiomyocytes and at least one cell selected from vascular endothelial cells and fibroblasts.
- the present invention also relates to a vascular tissue spheroid formed from a mixture of smooth muscle cells and at least one cell selected from vascular endothelial cells and fibroblasts.
- the present invention provides a cardiac tissue-type solid characterized by forming spheroids from a mixture of cardiomyocytes and at least one cell selected from vascular endothelial cells and fibroblasts, and blending or laminating the spheroids. It is a manufacturing method of a structure.
- the present invention also provides a vascular tissue type characterized in that a spheroid is formed from a mixture of smooth muscle cells and at least one cell selected from vascular endothelial cells and fibroblasts, and the spheroids are blended or laminated. It is a manufacturing method of a three-dimensional structure.
- the heart tissue type spheroid or three-dimensional structure produced by the method of the present invention, or the blood vessel tissue type spheroid or three-dimensional structure can be used as an artificial heart tissue or an artificial blood vessel tissue, respectively.
- the present inventor has paid attention to the formation of spheroids and has developed a technique for forming a more three-dimensional and highly functional tissue by combining cells specific to a target organ in order to have a function closer to a living body.
- the main cells are cardiomyocytes or smooth muscle cells. This main cell is referred to as “main cell” in this specification.
- spheroids or three-dimensional structures formed using cardiomyocytes as main cells are referred to as “heart tissue-type spheroids” and “heart tissue-type three-dimensional structures”, respectively.
- vascular tissue type spheroids and “vascular tissue type three-dimensional structures”, respectively.
- a heart tissue type or vascular tissue type spheroid is prepared by mixing the main cells (cardiomyocytes or smooth muscle cells) and vascular endothelial cells or fibroblasts or both of them.
- the spheroids are three-dimensionally fused to obtain a heart tissue type three-dimensional structure or a vascular tissue type three-dimensional structure.
- a single spheroid includes a main cell and vascular endothelial cells and / or fibroblasts as its constituent cells.
- the mixing ratio of cells for producing spheroids is as follows.
- a cardiac tissue spheroid is prepared using two types of cells, cardiomyocytes and vascular endothelial cells
- the number of vascular endothelial cells is 10 to 60, preferably 10 to 30 with respect to the cardiomyocytes 100.
- the cardiac tissue spheroid is prepared using two types of cells, cardiomyocytes and fibroblasts
- the number of fibroblasts is 10 to 60, preferably 10 to 30 with respect to the cardiomyocytes 100.
- vascular endothelial cells are 10 to 60, preferably 10 to 20, with respect to cardiomyocytes 100.
- the number of fibroblasts is 10 to 60, preferably 10 to 20.
- the “fibroblast” used in the present invention is a cell that produces components of the dermis such as collagen, elastin, and hyaluronic acid, and skin-derived fibroblasts are used.
- vascular endothelial cells and the fibroblasts in addition to the vascular endothelial cells and the fibroblasts, other vascular endothelial cells, fibroblasts or mesenchymal stem cells can be mixed. Examples of these cells include mesenchymal stem cells, adipocytes, vascular smooth muscle cells, stem cell-derived vascular endothelial cells, stem cell-derived fibroblasts, stem cell-derived vascular endothelial cells, stem cell-derived mesenchymal stem cells, and the like.
- the mixing ratio may be 5 to 50, preferably 10 to 50 with respect to the cardiomyocytes 100, or may be mixed so that the total number of cardiomyocytes is 40% or more.
- the number of vascular endothelial cells is 10 to 60, preferably 10 to 30 with respect to the smooth muscle cells 100.
- the number of fibroblasts is 10 to 300, preferably 100 to 300, relative to smooth muscle cells 100.
- the number of vascular tissue type spheroid is prepared using three types of cells, smooth muscle cells, vascular endothelial cells and fibroblasts, the number of vascular endothelial cells is 10 to 60, preferably 10 to 30 with respect to smooth muscle cells 100.
- the number of fibroblasts is 10 to 300, preferably 100 to 300.
- the mixing ratio is 10 to 300, preferably 100 to 300 with respect to the vascular smooth muscle cells 100, or 10 to 90% of the ratio of the vascular smooth muscle cells to the entire vascular structure as a whole. What is necessary is just to mix so.
- the cells When the cells thus obtained are cultured on a plate subjected to a water-repellent treatment or a cell non-adhesion treatment, for example, a plate treated with Teflon (registered trademark), the cells seek each other for a scaffold. Adhering to each other, spheroids that are cell aggregates are formed. The culture time until spheroids are formed is 6 to 48 hours, preferably 12 to 48 hours.
- a container manufactured by IWAKI (http://atg.usshop.jp/rika/hbin/ez2012.html) can be used, or low adhesive 10 cm or 6 cm manufactured by another company.
- a dish can also be used.
- the culture medium for forming spheroids is a standard culture medium usually used for animal cell culture, such as Dulbecco's MEM medium (DMEM / High glucose), Dulbecco's MEM / Ham F12 medium, RPMI-1640 medium, and the like. Serum can be added to this.
- ECM endothelial cell medium: Sciencecell
- vascular endothelial cell growth factor to the medium.
- heart tissue type or vascular tissue type spheroid (2) it is possible to use a mixture of a plurality of types of cells in one spheroid as described above. However, only one type of cell exists in one spheroid. It is also possible to form different spheroids for the plurality of types of cells. For example, when producing cardiac tissue spheroids, in addition to spheroids derived from cardiomyocytes, spheroids derived from vascular endothelial cells and / or fibroblasts may be produced and these spheroids may be fused. .
- vascular tissue type spheroid in addition to a spheroid derived from a smooth muscle cell, a spheroid derived from a vascular endothelial cell and / or a spheroid derived from a fibroblast may be prepared and fused.
- the spheroid formation method (container, culture conditions, etc.) is the same as described above.
- a heart tissue type or blood vessel tissue type three-dimensional structure can be prepared by blending or laminating the spheroids formed as described above.
- the method of blending or laminating spheroids in three dimensions is not particularly limited. For example, when spheroids are put in a tube or the like and cultured, the spheroids are fused to form a larger spheroid mass.
- a three-dimensional structure can be produced by adopting the method described in WO2008 / 123614.
- a support including a substrate and a filamentous body or needle-like body (hereinafter simply referred to as “needle-like body”) for penetrating a cell mass (spheroid) is described. If a support body is used, a spheroid can be arrange
- the needle-like body is provided substantially perpendicular to the substrate, and the spheroids can be stacked in a skewered shape.
- the spheroids are arranged in an arbitrary three-dimensional space. After the spheroids are fused / bonded to form a structure, the support is removed, whereby a three-dimensional cell construct having an arbitrary shape as a whole can be obtained.
- Spheroids are known to fuse when left in close proximity, but by using the above-mentioned support, the shape of the structure formed by spheroid fusion is controlled, and spheroids are desired in any three-dimensional space. Can be arranged as follows.
- a target tissue can be obtained by culturing for a predetermined time.
- the abundance ratio of each single type of cell-derived spheroid is the ratio of cells when spheroids are formed by mixing multiple types of cells.
- the mixing ratio can be applied.
- the ratio of main single spheroids cardiacocytes or vascular smooth muscle cells
- the ratio of secondary single spheroids may be 10 to 100 in total.
- each cell beats synchronously.
- This pulsating structure expresses the gap bond of the heart in the living body between the myocardial cells and expresses an extracellular potential similar to the electrocardiogram in the living body.
- the actual function of the heart was reproduced because the activity by the calcium ion channel is sequentially transmitted between cells.
- the constructed vascular tissue is formed with a tubular structure having elastic characteristics similar to those of a living body. Since this form can withstand various mechanical stresses (extension and compression), it can be said that the function of an actual blood vessel is reproduced. Therefore, the heart tissue type spheroid or three-dimensional structure of the present invention can be used as an artificial heart tissue, and the blood vessel tissue type spheroid or three-dimensional structure of the present invention can be used as an artificial blood vessel tissue.
- the present invention will be described more specifically with reference to examples. However, the present invention is not limited to these examples.
- This finely cut ventricular fragment was placed in 0.1% trypsin solution (Wako Pure Chemical Industries) in HBSS-/-and allowed to stand at 4 ° C. for 6 hours. Subsequently, 10% FBS (sigma) and P / S solution-containing DMEM (Low Glucose) (Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) were added to stop the trypsin reaction. After removing the liquid as much as possible from the container, add Type 2 collagenase (sigma) -containing HBSS-/-(not containing Mg, Ca) (final concentration 0.8 mg / ml) to the container, and let it react in a 37 ° C. thermostat for 5 minutes. After that, the supernatant was discarded.
- Collagenase was added to the vessel again and allowed to react for 15-20 minutes at 37 degrees. The supernatant was collected through a cell strainer and centrifuged at 1000 rpm for 5 minutes. The resulting pellet was resuspended in 10% DMEM and seeded on a 10 mm Type I collagen coated dish (IWAKI). Only the supernatant was recovered from the dish after 60 minutes. As a result, cardiomyocytes purified to around 90% were obtained with a survival rate of 85.6% to 94.7%.
- EC Human Cardiac Microvascular Endothelial Cells
- HCMEC Human Cardiac Microvascular Endothelial Cells
- the cells were cultured in a dedicated ECM (Endothelial Cell Medium) (using vascular endothelial cells at passages 5-9 (P5-9)).
- ECM Endothelial Cell Medium
- IWAKI Type I Collagen Coated Dish
- vascular smooth muscle cells Human vascular smooth muscle cells (HASMC) were purchased from Cosmo Bio Co., Ltd. as a vascular smooth muscle cell (seller is Scicell). (Http://www.primarycell.com/pdf/6110.pdf) The cells were cultured in 10% FBS (sigma) and P / S solution-containing DMEM (Low Glucose) (Wako Pure Chemical Industries) (use P5-10 cells). Passage was 0.05% trypsin. The culture vessel was cultured in a 10 cm dish, a 15 cm dish (NUNC, manufactured by Corning, etc.), or a 5-layer BD Falcon cell culture multiflask. (Http://www.bdj.co.jp/falcon/products/falcon-multi-flash.html)
- FB Fibroblast
- FBS sigma
- P / S solution-containing DMEM Low Glucose
- the culture vessel used was a 10 cm dish, a 15 cm dish (NUNC, manufactured by Corning, etc.), or a 5-layer BD Falcon cell culture multiflask. (Http://www.bdj.co.jp/falcon/products/falcon-multi-flash.html)
- FIG. 1 is a diagram showing the number of cells and the diameter per spheroid in which only cardiomyocytes are aggregated to form a spheroid (unit of vertical axis: ⁇ m).
- FIG. 2 is a diagram showing the relationship between the diameter of spheroids produced using vascular smooth muscle, vascular endothelial cells and fibroblasts and the number of cells constituting the spheroids.
- “40000 Spheroids” of SMC means that when 40000 SMCs are aggregated, a spheroid having a diameter of 1200 ( ⁇ m) is formed.
- FBS fetal calf serum
- the cells began to beat 24 to 48 hours after the spheroids were constructed. The results of examining the relationship between the pulsation efficiency of myocardial spheroids and the culture solution are shown in FIGS.
- the cell composition of spheroids shown in each panel in FIG. 5 is as follows.
- Rightmost panel cardiomyocyte 80% fibroblast 20%, vascular endothelial cell 0% 2 types of mixed spheroids
- the four panels in the vertical direction are spheroids formed by seeding cells so that the total number of cells is 1200 / spheroid, and observed after 2 hours, 12 hours, 24 hours, and 48 hours, respectively. is there. Spheroids obtained from a mixture of cells were clearly shown to have higher aggregation efficiency than the cardiomyocyte alone group.
- the vascular endothelial cells formed a vascular network three-dimensionally, and the endothelial cells were arranged in a luminal shape (lower left panel in FIG. 6). That is, it was shown that spheroids having a three-dimensional vascular network can be prepared by mixing cardiomyocytes, vascular endothelial cells and fibroblasts at an appropriate blending ratio.
- FIG. 7 is a diagram showing the results of observing the form, size, and state of endothelial cells by mixing cardiomyocytes, vascular endothelial cells and fibroblasts with a predetermined composition and staining with fluorescent dye.
- the mixing ratio of each cell is shown on the left side of each panel in FIG.
- a vascular network could be constructed even when vascular endothelial cells were mixed at about 10% (FIG. 7, the third panel from the top).
- Cardiomyocytes 100% means that the constituent cells of spheroids are only cardiomyocytes, and “Cardiomyocytes 80%” are cardiomyocytes 80%, vascular endothelial cells 10% and fibroblasts 10%. It means that there is. Similarly, “Cardiomyocytes 60%” is cardiomyocyte 60%, vascular endothelial cell 20%, fibroblast 20%, and “Cardiomyocytes 40%” is cardiomyocyte 40%, vascular endothelial cell 30%, fibroblast 30%.
- Cardiomyocytes 20% is cardiomyocyte 20%, vascular endothelial cell 40%, fibroblast 40%, "Cardiomyocytes 0%” is cardiomyocyte 0%, vascular endothelial cell 50%, fibroblast 50% Means that. From FIG. 8, it can be said that the preferred cell combination is 60-90% for cardiomyocytes, 10-50% for vascular endothelial cells, and 10-50% for fibroblasts (FIG. 8). The higher the myocardial ratio, the better the pulsation efficiency, and the highest is 100% cardiomyocytes. However, with cardiomyocytes alone, the engraftment efficiency and survival rate after transplantation declines, and the function does not continue because the ability to build a physiological vascular network declines. Mix fibroblasts and vascular endothelial cells. Is preferable.
- a three-dimensional structure was produced by fusing spheroids.
- Spheroid formation of each cell was performed in the same manner as in Example 1.
- Cardiomyocytes were green, vascular endothelial cells were red, and fibroblasts were stained with a blue fluorescent dye to form heart tissue spheroids.
- Four spheroids were further fused and observed after 3 hours, 12 hours, and 24 hours.
- a vascular network was formed and a beating heart tissue spheroid could be produced by blending the three types of cells (FIG. 9).
- FIG. 9 it can be seen that three types of cells are fused.
- the cells also reorganized to some extent to form new vascular networks. When these spheroids were fused, the spheroids beat in sync.
- a plurality of types of spheroids were formed using one type of cell, and a heart tissue formation test was performed when each spheroid was blended. Spheroid formation of each cell was performed in the same manner as in Example 1. Three types of spheroids (green) formed by cardiomyocytes alone, spheroids formed by vascular endothelial cells alone (red), and spheroids formed by fibroblasts alone (blue) were fused and observed 24 hours later. . The results are shown in FIG. As shown in FIG. 10, three types of spheroids could be fused.
- a cardiovascular tissue was produced by adopting the method described in WO2008 / 123614.
- the patch shape shown in the left figure of FIG. 11 was designed by computer processing. Spheroids composed of about 1000 cells per spheroid were prepared, and about 14000 spheroids were sequence-fused so as to have the patch shape shown in the left diagram of FIG.
- the center panel is a patch formed using a spheroid in which vascular smooth muscle cells: fibroblasts: vascular endothelial cells are mixed at a ratio of 3: 2: 1 (fusion day 2).
- fibroblasts vascular endothelial cells are mixed at a ratio of 3: 2: 1 (fusion day 2).
- spheroids were formed only from fibroblasts, and similar patches were formed (fusion day 2).
- spheroids that are a mixture of three types of cells (smooth muscle cells, vascular endothelial cells, and fibroblasts), and patches (three-dimensional structures) made using spheroids made from fibroblasts alone It was clearly shown that the former is more suitable for the material of the blood vessel wall with a smoother surface.
- vascular tissue Preparation of vascular tissue
- the tube shape shown in the left figure of Fig. 13 was designed and spheroids were laminated to prepare a vascular tissue structure.
- an elastic defect structure could be manufactured.
- Plural types of cells obtained from living stem cells or mesenchymal stem cells, adipose-derived cells, adipose-derived stem cells, embryonic stem cells (ES cells), or induced pluripotent stem cells (iPS cells) obtained by reprogramming differentiated cells Available.
- ES cells embryonic stem cells
- iPS cells induced pluripotent stem cells
- a highly functional three-dimensional cell structure (heart, blood vessel) can be produced by mixing a plurality of types of cells.
- the functions and characteristics of the heart and blood vessels can be provided by fusing spheroids composed of a plurality of types of cells.
- cell suspensions and spheroids having different functions can be fused to achieve higher functionality.
- Spheroids or tissues constructed from spheroids can be transplanted and engrafted in the heart, subcutaneous, blood vessels, muscles, omentum, etc. to obtain a therapeutic effect.
- the three-dimensional structure produced by the method of the present invention can be applied to drug discovery tests and various biological studies.
- the method of the present invention can use differentiated cells derived from iPS cells, ES cells or tissue stem cells, which are expected to be clinically applied in the future.
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Zoology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Public Health (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Vascular Medicine (AREA)
- Dermatology (AREA)
- Oral & Maxillofacial Surgery (AREA)
- Transplantation (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Botany (AREA)
- Developmental Biology & Embryology (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Microbiology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Virology (AREA)
- Immunology (AREA)
- Cardiology (AREA)
- Urology & Nephrology (AREA)
- Heart & Thoracic Surgery (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- Materials For Medical Uses (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Description
2.播種する細胞数を調節することでスフェロイドの大きさを調節できる。
3.マイクロピペットなどでハンドリング出来る
4.スフェロイド同士を融合させる事が出来る。
スフェロイドは、がん研究や創薬研究、組織工学などで主に単一の細胞についての解析を行うツールとして使用されてきた(非特許文献4)。
理想的な臨床応用が可能な臓器再生のためには、細胞のみで高機能を有する(生体と同じように機能する)組織を作製する必要がある。
(1)心筋細胞と、血管内皮細胞及び線維芽細胞から選ばれる少なくとも1種の細胞との混合物から形成された心臓組織型スフェロイド。
(2)心筋細胞と血管内皮細胞と線維芽細胞との混合物から形成された、(1)に記載の心臓組織型スフェロイド。
(3)心筋細胞と血管内皮細胞と線維芽細胞との混合比が、心筋細胞100に対して血管内皮細胞が10~60であり、線維芽細胞が10~60である(2)に記載の心臓組織型スフェロイド。
(4)心筋細胞から形成されたスフェロイドと、血管内皮細胞及び線維芽細胞から選ばれる少なくとも1種の細胞から形成されたスフェロイドとを融合してなる、心臓組織型スフェロイド。
(5)心筋細胞から形成されたスフェロイドと、血管内皮細胞から形成されたスフェロイドと、線維芽細胞から形成されたスフェロイドとを融合してなる、(4)に記載の心臓組織型スフェロイド。
(6)心筋細胞由来のスフェロイドと、血管内皮細胞由来のスフェロイドと、線維芽細胞由来のスフェロイドとの存在比が、心筋細胞由来のスフェロイド100に対して血管内皮細胞由来のスフェロイドが10~60であり、線維芽細胞由来のスフェロイドが10~60である(5)に記載の心臓組織型スフェロイド。
(7)前記(1)~(6)のいずれか1項に記載の心臓組織型スフェロイドを配合又は積層することを特徴とする心臓組織型立体構造体の製造方法。
(8)スフェロイドの積層は、基板と、該基板に略垂直に配置させた糸状体又は針状体とを備える支持体を用いて行なうものである(7)に記載の方法。
(9)前記(1)~(6)のいずれか1項に記載の心臓組織型スフェロイド、又は前記(7)若しくは(8)に記載の方法により製造された立体構造体からなる人工心臓組織。
(10)平滑筋細胞と、血管内皮細胞及び線維芽細胞から選ばれる少なくとも1種の細胞との混合物から形成された血管組織型スフェロイド。
(11)平滑筋細胞と血管内皮細胞と線維芽細胞との混合物から形成された、(10)に記載の血管組織型スフェロイド。
(12)平滑筋細胞と血管内皮細胞と線維芽細胞との混合比が、平滑筋細胞100に対して血管内皮細胞が10~60であり、線維芽細胞が10~300である(11)に記載の血管組織型スフェロイド。
(13)平滑筋細胞から形成されたスフェロイドと、血管内皮細胞及び線維芽細胞から選ばれる少なくとも1種の細胞から形成されたスフェロイドとを融合してなる、血管組織型スフェロイド。
(14)平滑筋細胞から形成されたスフェロイドと、血管内皮細胞から形成されたスフェロイドと、線維芽細胞から形成されたスフェロイドとを融合してなる、(13)に記載の心臓組織型スフェロイド。
(15)平滑筋細胞由来のスフェロイドと、血管内皮細胞由来のスフェロイドと、線維芽細胞由来のスフェロイドとの存在比が、平滑筋細胞由来のスフェロイド100に対して血管内皮細胞由来のスフェロイドが10~60であり、線維芽細胞由来のスフェロイドが10~300である(14)に記載の血管組織型スフェロイド。
(16)前記(10)~(15)のいずれか1項に記載の血管組織型スフェロイドを配合又は積層することを特徴とする血管組織型立体構造体の製造方法。
(17)スフェロイドの積層は、基板と、該基板に略垂直に配置させた糸状体又は針状体とを備える支持体を用いて行なうものである(16)に記載の方法。
(18)前記(10)~(15)のいずれか1項に記載の血管組織型スフェロイド、又は前記(16)若しくは(17)に記載の方法により製造された立体構造体からなる人工血管組織。
本発明は、心筋細胞と、血管内皮細胞及び線維芽細胞から選ばれる少なくとも1種の細胞との混合物から形成された心臓組織型スフェロイドに関する。また、本発明は、平滑筋細胞と、血管内皮細胞及び線維芽細胞から選ばれる少なくとも1種の細胞との混合物から形成された血管組織型スフェロイドに関する。
本発明者は、前記スフェロイド形成に着目し、より生体に近い機能を持たせるため目的とする臓器特有の細胞を組み合わせることにより、より立体的かつ高機能な組織を形成する技術を開発した。
本発明は、上記主体細胞と、血管内皮細胞及び/又は線維芽細胞とを混合して細胞の混合物を作製し、この混合物を用いてスフェロイドを形成させるというものである。従って、1個のスフェロイドの中には、その構成細胞として、主体細胞、並びに血管内皮細胞及び/又は線維芽細胞が含まれる。
心臓組織型スフェロイドを心筋細胞と血管内皮細胞との2種類の細胞を用いて作製する場合は、心筋細胞100に対し、血管内皮細胞は10~60であり、好ましくは10~30である。
心臓組織型スフェロイドを心筋細胞と線維芽細胞との2種類の細胞を用いて作製する場合は、心筋細胞100に対し、線維芽細胞は10~60であり、好ましくは10~30である。
心臓組織型スフェロイドを心筋細胞、血管内皮細胞及び線維芽細胞の3種類の細胞を用いて作製する場合は、心筋細胞100に対し、血管内皮細胞は10~60、好ましくは10~20であり、かつ、線維芽細胞は10~60、好ましくは10~20である。
また、本発明においては、血管内皮細胞及び上記線維芽細胞のほかに、他の血管内皮細胞、線維芽細胞又は間葉系幹細胞等を混合することもできる。これらの細胞としては、例えば間葉系幹細胞、脂肪細胞、血管平滑筋細胞、幹細胞由来血管内皮細胞、幹細胞由来線維芽細胞、幹細胞由来血管内皮細胞、幹細胞由来間葉系幹細胞などが挙げられる。この場合の混合比率は、心筋細胞100に対して5~50、好ましくは10~50とするか、あるいは、全体として、心筋細胞が全体の割合の40%以上となるように混合すればよい。間葉系幹細胞を混合することにより、さらにスフェロイドの高機能化が期待できる。
血管組織型スフェロイドを平滑筋細胞と線維芽細胞との2種類の細胞を用いて作製する場合は、平滑筋細胞100に対し、線維芽細胞は10~300であり、好ましくは100~300である。
血管組織型スフェロイドを平滑筋細胞、血管内皮細胞及び線維芽細胞の3種類の細胞を用いて作製する場合は、平滑筋細胞100に対し、血管内皮細胞は10~60、好ましくは10~30であり、かつ、線維芽細胞は10~300、好ましくは100~300である。
スフェロイドを形成させるための培養液は、動物細胞培養用に通常使用される標準培養液、例えばダルベッコ MEM培地(DMEM/High glucose)、ダルベッコ MEM/ハムF12培地、RPMI−1640培地などを使用し、これに血清を添加することができる。血管内皮細胞と混合してスフェロイドを形成するときは、ECM(endothelial cell medium:Sciencell)を使用するか、培地に血管内皮細胞増殖因子を添加することが好ましい。
本発明においては、上記のように1つのスフェロイド中に複数種類の細胞が混合されたものを使用することもできるが、1つのスフェロイドには単一種類の細胞のみが存在するようにして、これを複数種類の細胞の分だけ別のスフェロイドを形成することもできる。
例えば、心臓組織型スフェロイドを作製する場合は、心筋細胞由来のスフェロイドのほかに、血管内皮細胞由来のスフェロイド及び/又は線維芽細胞由来のスフェロイドを作製して、これらのスフェロイドを融合させればよい。また、血管組織型スフェロイドを作製する場合は、平滑筋細胞由来のスフェロイドのほかに、血管内皮細胞由来のスフェロイド及び/又は線維芽細胞由来のスフェロイドを作製して、これを融合させればよい。
スフェロイドの形成方法(容器や培養条件など)は前記と同様である。
本発明においては、前記のように形成させたスフェロイドを配合又は積層することにより、心臓組織型又は血管組織型立体構造体を作製することができる。
スフェロイドを立体的に配合又は積層する方法は、特に限定されるものではない。例えば、チューブなどにスフェロイドを入れて培養すると、スフェロイド同士が融合してさらに大きなスフェロイドの塊となる。
単一種類の細胞により形成させたスフェロイドを複数種類配合又は積層する場合において、それぞれの単一種類の細胞由来のスフェロイドの存在比は、複数種類の細胞の混合によりスフェロイドを形成させるときの細胞の混合比率に準じることができる。あるいは、主となる単独スフェロイド(心筋細胞もしくは血管平滑筋細胞)の比率を100とすると従となる単独スフェロイドの比率は合計で10−100という比率にしてもよい。
従って、本発明の心臓組織型スフェロイド又は立体構造体は、人工心臓組織として利用することができ、本発明の血管組織型スフェロイド又は立体構造体は、人工血管組織として利用することができる。
以下、実施例により本発明をさらに具体的に説明する。但し、本発明はこれら実施例に限定されるものではない。
(1−1)初代心筋細胞(ラット胎児心室心筋細胞)(CM)の調製(preplating法)
生後1−3日目SD(kud:sd)ラット新生児を断頭後に開胸、心臓を摘出した。
4℃に冷却したHBSS+/+(Hank’s Balanced Salt Solution、Mg,Ca含有:sigma aldrich)で3度洗浄し、その後、HBSS−/−(Mg,Ca不含)にて3回洗浄した。
心房や大血管を除去して心室のみにした後、心室をハサミで細かく切断し1mm以下の大きさの断片にした。この細かく切断した心室断片を0.1%トリプシン液(和光純薬)in HBSS−/−に入れて4℃で6時間静置した。
続いて10%FBS(sigma)及びP/S液含有DMEM(Low Glucose)(和光純薬)を加え、トリプシンの反応を停止させた。
容器から液体を極力除去した後に、容器にType2コラゲナーゼ(sigma)含有HBSS−/−(Mg,Ca不含)(最終濃度 0.8mg/ml)を加え、37度の恒温槽で5分反応させた後に上澄みを破棄した。
容器に再度コラゲナーゼを加え、37度で15−20分反応させた。セルストレイナーを通して上澄みを回収し、5分1000回転で遠沈させた。得られたペレットを10%DMEMで再懸濁して10mmのTypeIコラーゲンコートディッシュ(IWAKI)に播種した。60分後に上澄みのみをディッシュから回収した。
その結果、85.6%~94.7%の生存率で、90%前後に純化した心筋細胞を得た。
血管内皮細胞として、Human Cardiac Microvascular Endothelial Cells(HCMEC)を、コスモバイオ株式会社より購入した(販売元はSciencell)。
(http://www.primarycell.com/pdf/6000.pdf)
この細胞を専用のECM(Endothelial Cell Medium)で培養した(継代数5−9代目(P5−9)の血管内皮細胞を使用)。
目的の細胞数を得るまで10cmディッシュ(Type I Collagen Coated Dish:IWAKI)で培養した。継代は0.05%トリプシンを使用した。
血管平滑筋細胞として、Human Aortic Smooth Muscle Cells(HASMC)をコスモバイオ株式会社より購入した(販売元はSciencell)。
(http://www.primarycell.com/pdf/6110.pdf)
この細胞を10%FBS(sigma)及びP/S液含有DMEM(Low Glucose)(和光純薬)で培養した(P5−10の細胞を使用。)。継代は0.05%トリプシンを使用した。
培養容器は10cmディッシュ、15cmディッシュ(NUNC、Corning社製等)、又は5層のBD Falconセルカルチャー マルチフラスコで培養した。
(http://www.bdj.co.jp/falcon/products/falcon−multi−flask.html)
線維芽細胞として、正常ヒト皮膚線維芽細胞(成人)(NHDF−Ad)をタカラバイオより購入した(販売元CMW(LONZA))。
(http://catalog.takara−bio.co.jp/product/basic_info.asp?unitid=U100002705)
この細胞を10%FBS(sigma)及びP/S液含有DMEM(Low Glucose)(和光純薬)で培養し、P5−10の細胞を使用した(継代は0.05%トリプシンを使用)。培養容器は10cmディッシュ、15cmディッシュ(NUNC、Corning社製等)、又は5層のBD Falconセルカルチャー マルチフラスコを用いた。
(http://www.bdj.co.jp/falcon/products/falcon−multi−flask.html)
上記の細胞を必要量培養し、トリプシン処理して所定の培養液を用いて細胞懸濁液を作製した。この際、2種類又は3種類の細胞を一定の配分で混合して懸濁液を作製した。
心筋細胞は前述の心筋純化法であるpreplating法(前記(1−1)項)で細胞を回収直後にプレートに播種してスフェロイドを形成させた。
プレートは主に住友ベークライト社製96ウェルプレート(prime surface)を使用し、このプレートに一定の細胞数で播種すると12−48時間でスフェロイドを形成した。
(http://www.sumibe.co.jp/product/s−bio/cell−culture/primesurface−96u/spec/index.html)
播種した細胞数と形成されたスフェロイドの大きさとの関係を図1、図2に示す。
図1は、心筋細胞のみを凝集させてスフェロイドを形成したスフェロイドあたりの細胞数と直径を示した図である(縦軸の単位:μm)。
図2は、血管平滑筋、血管内皮細胞及び繊維芽細胞を用いて作製されたスフェロイドの直径と、スフェロイドを構成する細胞数との関係を示す図である。例えば、SMCの「40000 Spheroids」では、SMCを40000個凝集させると、1200(μm)の直径のスフェロイドができることを意味している。
なお、心筋単独スフェロイドの形成方法として、スフェロイド形成時には10%前後のFBS(牛胎児血清)を添加することが好ましい。
スフェロイドを構築してから24から48時間経過すると、細胞が拍動するようになった。心筋スフェロイドの拍動効率と培養液との関係を検討した結果を図3及び図4に示す。
(3−1)Cell蛍光トレーサー
スフェロイド形成過程及び形成後の解析のため、細胞をCell Trackerで染色した。
心筋細胞はCell Tracker Green(タカラバイオ、(http://catalog.takara−bio.co.jp/product/basic_info.asp?unitid=U100004642))を使用した。
細胞をDMEM(FBSなし)に使用説明書に記載の通りの濃度で溶解し、心筋純化法であるpreplating法で37℃5%CO2環境下に60分培養する際に染色した。
血管内皮細胞は、80%コンフルエンスに達した状態で、PBSで洗浄後、DMEM(FBSなし)にCell Tracker Red(タカラバイオ)を溶解し、2時間37℃5%CO2環境下で培養し染色し使用した。
繊維芽細胞はCell Tracker Blue(Invitorgen)を使用して同様に染色した。
(http://www.invitrogen.jp/catalogue/molecular_probes/cell_bio_new/content08/index.html)
細胞又は立体構造体の蛍光及び位相差像は、BZ9000(KEYENCE)を使用して静止画、動画を撮影した。
(3−3)動画解析
VW−9000(KEYENCE)を用いて、拍動する心筋スフェロイドおよび構造体の機能解析を行った。具体的にはスフェロイド内の4点(0時3時6時9時の点)の動きを解析し速度の平均を求めた。
(3−4)組織学的評価
血管構造体を10%ホルマリン固定し、HE染色、MT、EVG染色を行った。心筋構造体はHE染色を行なった。
(4−1)スフェロイドの形成
心筋細胞、血管内皮細胞及び繊維芽細胞を図5に示す割合で混合し心臓組織型スフェロイドを形成した。形成後2時間、12時間、24時間、48時間で形態を観察し球形のスフェロイドを形成する過程を観察した(図5)。スフェロイド形成時に、繊維芽細胞、血管内皮細胞を混合するとスフェロイド形成効率が向上した。
心筋細胞単独で融合するよりも、FB及びECを混合したときのスフェロイドを融合したほうが、形成効率が最もよく、3次元的かつ機能的な血管網を形成することができた(図5)。
(i)最も左のパネル:心筋細胞100%単一細胞スフェロイド
(ii)左から2番目のパネル:心筋細胞 80% 線維芽細胞10%、血管内皮細胞10%の3種混合スフェロイド
(iii)左から3番目のパネル:心筋細胞 80% 線維芽細胞0%、血管内皮細胞20%の2種混合スフェロイド
(iv)最も右側のパネル:心筋細胞 80% 線維芽細胞20%、血管内皮細胞0%の2種混合スフェロイド
心筋細胞を緑色、線維芽細胞を青色、血管内皮細胞を赤色の蛍光色素で染色し、心筋:線維芽:内皮の比を2000:800:200となるように混合させてスフェロイドを形成させ、48時間後に形態を観察した。
その結果、血管壁を想定した高機能血管スフェロイドを作成することが出来た(図6)。また、心筋細胞を、血管内皮細胞及び繊維芽細胞と共培養することで、スフェロイド形成効率が上昇することが示された。
図6において、血管内皮細胞は3次元的に血管網を形成するとともに、管腔状に内皮細胞が配列した(図6左下パネル)。すなわち、心筋細胞、血管内皮細胞及び繊維芽細胞を適切な配合割合で混合すると、3次元的な血管網を持ったスフェロイドを作製できることが示された。
図7は、心筋細胞、血管内皮細胞及び線維芽細胞を所定配合で混合して蛍光色素染色し、形態、大きさ及び内皮細胞の状態を観察した結果を示す図である。各細胞の配合割合を図7の各パネルの左側に示した。
血管内皮細胞が10%程度の配合でも、血管網を構築することができた(図7、上から3段目のパネル)。その際、線維芽細胞の割合が血管内皮より多いほうが、より立体的かつ複雑な血管網を形成した(図7、上から4段目のパネル)。
線維芽細胞は、10%程度の比率でも混合すればスフェロイドの凝集効率が上昇し、その割合を増やすとスフェロイドの形成効率は良くなった(図7、最上段のパネル)。但し、非心筋細胞を40%以上の割合に増やすと拍動効率が低下する。
心筋細胞比率を0から100%まで6段階に分けて配合したスフェロイド、及び非心筋細胞配合では線維芽細胞と血管内皮細胞とを1:1で配合したスフェロイドの拍動を動画で10秒間記録し、スフェロイドの0,3,6,9時方向の表面の点を動態解析した。
結果を図8に示す。図8の縦軸は動点の速度の絶対値を平均したものである。この数字が高いほど、すなわち速度の平均が高いほど、たくさん拍動していたことを示す。
図8において、「Cardiomyocytes 100%」は、スフェロイドの構成細胞が心筋細胞のみであることを意味し、「Cardiomyocytes 80%」は、心筋細胞80%、血管内皮細胞10%、繊維芽細胞10%であることを意味する。同様に、「Cardiomyocytes 60%」は、心筋細胞60%、血管内皮細胞20%、繊維芽細胞20%、「Cardiomyocytes 40%」は、心筋細胞40%、血管内皮細胞30%、繊維芽細胞30%、「Cardiomyocytes 20%」は、心筋細胞20%、血管内皮細胞40%、繊維芽細胞40%、「Cardiomyocytes 0%」は、心筋細胞0%、血管内皮細胞50%、繊維芽細胞50%であることを意味する。
図8より、好ましい細胞配合は心筋細胞が60−90%、血管内皮細胞が10−50%、線維芽細胞が10−50%の範囲であるといえる(図8)。
心筋比率は高いほうが拍動効率がよく、心筋細胞100%が最も高い。しかし、心筋細胞のみでは移植後の生着効率、生存率が低下し、生理的な血管網構築能が低下する点で機能が持続しないことから、線維芽細胞と血管内皮細胞とを混合することが好ましいといえる。
各細胞のスフェロイドの形成は実施例1と同様に行なった。
心筋細胞を緑、血管内皮細胞を赤、繊維芽細胞を青の蛍光色素で染色し、心臓組織型スフェロイドを形成した。さらに4つのスフェロイドを融合させ、3時間後、12時間後、24時間後に観察した。
その結果、3種類の細胞の配合により、血管網が形成されるとともに、拍動する心臓組織型スフェロイドを作製することができた(図9)。図9に示す通り、3種類の細胞が融合していることが分かる。また、細胞はある程度再編成して、新たな血管ネットワークも形成された。
このスフェロイド同士を融合すると、スフェロイドが同期して拍動した。
各細胞のスフェロイドの形成は実施例1と同様に行なった。
心筋細胞単独で形成させたスフェロイド(緑)、血管内皮細胞単独で形成させたスフェロイド(赤)、及び線維芽細胞単独で形成させたスフェロイド(青)の3種類を融合させ、24時間後に観察した。
結果を図10に示す。図10に示す通り、3種類のスフェロイドを融合することができた。
(1)血管パッチの作製
コンピューター処理により図11の左図に示すパッチ形状をデザインした。
1スフェロイド当たり約1000個の細胞からなるスフェロイドを作製し、約14000個のスフェロイドを、図11の左図に示すパッチ形状となるように配列融合させた。
図11において、中央パネルは、血管平滑筋細胞:繊維芽細胞:血管内皮細胞を3:2:1で混合形成させたスフェロイドを用いてパッチ形成したものである(融合2日目)。
右パネルは、繊維芽細胞のみでスフェロイドを形成し、同様のパッチを形成したものである(融合2日目)。
3種類の細胞(平滑筋細胞、血管内皮細胞、繊維芽細胞)を混合したスフェロイドを用いて作製したパッチと、繊維芽細胞単独で形成したスフェロイドを用いて作製したパッチ(立体構造体)とでは、明らかに前者のほうが肉眼的にも表面なめらかで血管壁としての素材に適していることが示された。
上記の通り作製した血管パッチを、虚血を起こさせたF344ヌードラットの心臓に移植した(図12)。
上記と同様にして、図13の左図に示す管形状をデザインしてスフェロイドを積層し、血管組織構造体を作製した。
その結果、図13に示す通り、弾力性のある欠陥構造体を製造することができた。
生体幹細胞又は間葉系幹細胞、脂肪由来細胞、脂肪由来幹細胞、胚性幹細胞(ES細胞)、あるいは分化細胞の初期化により獲られる誘導多能性幹細胞(iPS細胞)から得られる複数種の細胞を利用できる。
(i)複数種類の細胞を混合させることにより、より高機能な3次元細胞構造体(心臓、血管)を作製できる。
(ii)複数種類の細胞で構成されるスフェロイドを融合させることにより、心臓や血管の機能及び特徴を持たせることができる。
(iii)スフェロイドを形成させた後に、別の機能を有する細胞懸濁液やスフェロイドを融合させ、より高機能化できる。
(iv)スフェロイド又はスフェロイドから構築された組織は、心臓、皮下、血管、筋肉、大網内などに移植し生着させ、治療効果を得ることができる。
(iv)本発明の方法により作製された立体構造体は、創薬試験や各種生物学的研究に応用できる。
(v)本発明の方法は、今後臨床応用が期待されるiPS細胞、ES細胞又は組織幹細胞由来の分化した細胞を用いることができる。
Claims (18)
- 心筋細胞と、血管内皮細胞及び線維芽細胞から選ばれる少なくとも1種の細胞との混合物から形成された心臓組織型スフェロイド。
- 心筋細胞と血管内皮細胞と線維芽細胞との混合物から形成された、請求項1に記載の心臓組織型スフェロイド。
- 心筋細胞と血管内皮細胞と線維芽細胞との混合比が、心筋細胞100に対して血管内皮細胞が10~60であり、線維芽細胞が10~60である請求項2に記載の心臓組織型スフェロイド。
- 心筋細胞から形成されたスフェロイドと、血管内皮細胞及び線維芽細胞から選ばれる少なくとも1種の細胞から形成されたスフェロイドとを融合してなる、心臓組織型スフェロイド。
- 心筋細胞から形成されたスフェロイドと、血管内皮細胞から形成されたスフェロイドと、線維芽細胞から形成されたスフェロイドとを融合してなる、請求項4に記載の心臓組織型スフェロイド。
- 心筋細胞由来のスフェロイドと、血管内皮細胞由来のスフェロイドと、線維芽細胞由来のスフェロイドとの存在比が、心筋細胞由来のスフェロイド100に対して血管内皮細胞由来のスフェロイドが10~60であり、線維芽細胞由来のスフェロイドが10~60である請求項5に記載の心臓組織型スフェロイド。
- 請求項1~6のいずれか1項に記載の心臓組織型スフェロイドを配合又は積層することを特徴とする心臓組織型立体構造体の製造方法。
- スフェロイドの積層は、基板と、該基板に略垂直に配置させた糸状体又は針状体とを備える支持体を用いて行なうものである請求項7に記載の方法。
- 請求項1~6のいずれか1項に記載の心臓組織型スフェロイド、又は請求項7若しくは8に記載の方法により製造された立体構造体からなる人工心臓組織。
- 平滑筋細胞と、血管内皮細胞及び線維芽細胞から選ばれる少なくとも1種の細胞との混合物から形成された血管組織型スフェロイド。
- 平滑筋細胞と血管内皮細胞と線維芽細胞との混合物から形成された、請求項10に記載の血管組織型スフェロイド。
- 平滑筋細胞と血管内皮細胞と線維芽細胞との混合比が、平滑筋細胞100に対して血管内皮細胞が10~60であり、線維芽細胞が10~300である請求項11に記載の血管組織型スフェロイド。
- 平滑筋細胞から形成されたスフェロイドと、血管内皮細胞及び線維芽細胞から選ばれる少なくとも1種の細胞から形成されたスフェロイドとを融合してなる、血管組織型スフェロイド。
- 平滑筋細胞から形成されたスフェロイドと、血管内皮細胞から形成されたスフェロイドと、線維芽細胞から形成されたスフェロイドとを融合してなる、請求項13に記載の心臓組織型スフェロイド。
- 平滑筋細胞由来のスフェロイドと、血管内皮細胞由来のスフェロイドと、線維芽細胞由来のスフェロイドとの存在比が、平滑筋細胞由来のスフェロイド100に対して血管内皮細胞由来のスフェロイドが10~60であり、線維芽細胞由来のスフェロイドが10~300である請求項14に記載の血管組織型スフェロイド。
- 請求項10~15のいずれか1項に記載の血管組織型スフェロイドを配合又は積層することを特徴とする血管組織型立体構造体の製造方法。
- スフェロイドの積層は、基板と、該基板に略垂直に配置させた糸状体又は針状体とを備える支持体を用いて行なうものである請求項16に記載の方法。
- 請求項10~15のいずれか1項に記載の血管組織型スフェロイド、又は請求項16若しくは17に記載の方法により製造された立体構造体からなる人工血管組織。
Priority Applications (4)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2015505227A JPWO2014141528A1 (ja) | 2013-03-15 | 2013-10-24 | 心臓又は血管組織型スフェロイド |
| EP13878105.9A EP2974751A4 (en) | 2013-03-15 | 2013-10-24 | HEART OR TISSUE SPHERE |
| US14/776,101 US20160022870A1 (en) | 2013-03-15 | 2013-10-24 | Cardiac or vascular tissue spheroid |
| CN201380074463.6A CN105025939A (zh) | 2013-03-15 | 2013-10-24 | 心脏或血管组织型球体 |
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2013053037 | 2013-03-15 | ||
| JP2013-053037 | 2013-03-15 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| WO2014141528A1 true WO2014141528A1 (ja) | 2014-09-18 |
Family
ID=51536215
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PCT/JP2013/079478 Ceased WO2014141528A1 (ja) | 2013-03-15 | 2013-10-24 | 心臓又は血管組織型スフェロイド |
Country Status (5)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US20160022870A1 (ja) |
| EP (1) | EP2974751A4 (ja) |
| JP (1) | JPWO2014141528A1 (ja) |
| CN (1) | CN105025939A (ja) |
| WO (1) | WO2014141528A1 (ja) |
Cited By (8)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN105505863A (zh) * | 2016-01-05 | 2016-04-20 | 中国人民解放军第二军医大学 | 一种裸鼹鼠心肌细胞的培养方法 |
| CN106039414A (zh) * | 2015-04-07 | 2016-10-26 | 四川蓝光英诺生物科技股份有限公司 | 生物砖的制备方法及由此制备的生物砖 |
| CN106039413A (zh) * | 2015-04-07 | 2016-10-26 | 四川蓝光英诺生物科技股份有限公司 | 制备包含内皮细胞的生物砖的方法以及由此制备的生物砖 |
| WO2017090777A1 (ja) * | 2015-11-25 | 2017-06-01 | 株式会社サイフューズ | ヒト心臓様構造体およびその製造方法 |
| JP2017176025A (ja) * | 2016-03-30 | 2017-10-05 | 国立大学法人 岡山大学 | 三次元細胞培養物の製造方法 |
| WO2019087988A1 (ja) | 2017-10-30 | 2019-05-09 | 公立大学法人横浜市立大学 | 構造体と細胞塊を連結した構築物 |
| JP2020526767A (ja) * | 2017-07-14 | 2020-08-31 | ステモニックス インコーポレイティド | ヒト混合細胞集団スフェロイドの高スループット光学アッセイ |
| CN114144515A (zh) * | 2019-07-12 | 2022-03-04 | 基因组生物制品Ug有限责任公司 | 产生心脏组织模拟物的方法 |
Families Citing this family (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN113677788A (zh) * | 2019-04-01 | 2021-11-19 | 凸版印刷株式会社 | 三维组织体及其制造方法以及含细胞组合物的制造方法 |
| CN115354017B (zh) * | 2022-10-19 | 2023-07-25 | 南开大学 | 一种具有空腔结构的血管化心脏类器官及其制备方法 |
| CN115340977B (zh) * | 2022-10-19 | 2023-03-31 | 南开大学 | 一种血管化胰岛及其制备方法 |
Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2003503021A (ja) * | 1999-06-17 | 2003-01-28 | ユニバーシティ オブ ウェールズ カレッジ オブ メディスン | スフェロイドの調製 |
| WO2008123614A1 (ja) | 2007-03-30 | 2008-10-16 | Kyushu University, National University Corporation | 細胞の立体構造体の製造方法 |
Family Cites Families (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN1665527A (zh) * | 2002-05-02 | 2005-09-07 | 普渡研究基金会 | 血管化增强的移植构造物 |
| EP2578676A1 (en) * | 2003-06-20 | 2013-04-10 | Axiogenesis Ag | Tissue modeling in multi- or pluripotent cell systems |
| ITRM20030376A1 (it) * | 2003-07-31 | 2005-02-01 | Univ Roma | Procedimento per l'isolamento e l'espansione di cellule staminali cardiache da biopsia. |
| JP5624981B2 (ja) * | 2008-06-24 | 2014-11-12 | ザ・キュレーターズ・オブ・ザ・ユニバーシティ・オブ・ミズーリThe Curators Ofthe University Of Missouri | 自己集合性多細胞体、および前記多細胞体を用いて3次元の生物構造体を作製する方法 |
| EP2138571B1 (en) * | 2008-06-26 | 2017-04-12 | SpheroTec GmbH | Process for the preparation of multicellular spheroids |
-
2013
- 2013-10-24 CN CN201380074463.6A patent/CN105025939A/zh active Pending
- 2013-10-24 US US14/776,101 patent/US20160022870A1/en not_active Abandoned
- 2013-10-24 WO PCT/JP2013/079478 patent/WO2014141528A1/ja not_active Ceased
- 2013-10-24 EP EP13878105.9A patent/EP2974751A4/en not_active Withdrawn
- 2013-10-24 JP JP2015505227A patent/JPWO2014141528A1/ja active Pending
Patent Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2003503021A (ja) * | 1999-06-17 | 2003-01-28 | ユニバーシティ オブ ウェールズ カレッジ オブ メディスン | スフェロイドの調製 |
| WO2008123614A1 (ja) | 2007-03-30 | 2008-10-16 | Kyushu University, National University Corporation | 細胞の立体構造体の製造方法 |
Non-Patent Citations (18)
| Title |
|---|
| "Human Cardiac Microvascular Endothelial Cells (HCMEC", COSMO BIO CO., LTD. |
| CHO H J ET AL.: "Generation of human secondary cardiospheres as a potent cell processing strategy for cell -based cardiac repair", BIOMATERIALS, vol. 34, no. 3, 1 January 2013 (2013-01-01), pages 651 - 661, XP055285723, DOI: 10.1016/J.BIOMATERIALS.2012.10.011 * |
| FENG WANG; JIANJUN GUAN: "Cellular cardiomyoplasty and cardiac tissue engineering for myocardial therapy", ADVANCED DRUG DELIVERY REVIEWS, vol. 62, 2010, pages 784 - 797, XP027473660, DOI: doi:10.1016/j.addr.2010.03.001 |
| GARZONI L R ET AL.: "DISSECTING CORONARY ANGIOGENESIS:3D CO-CULTURE OF CARDIOMYOCYTES WITH ENDOTHELIAL OR MESENCHYMAL CELLS", EXP CELL RES, vol. 315, no. 19, 15 November 2009 (2009-11-15), pages 3406 - 3418, XP026734058, DOI: 10.1016/J.YEXCR.2009.09.016 * |
| GROSS W O ET AL.: "FIBROBLAST MYOCYTE INTERACTIONS IN IN VITRO CARDIO MYOGENESIS", EXPERIMENTAL CELL RESEARCH, vol. 142, no. 2, 1 December 1982 (1982-12-01), pages 341 - 356, XP024854671, DOI: 10.1016/0014-4827(82)90376-7 * |
| JOSEPH P; ROBERT LANGER: "Tissue engineering: the design and fabrication of living replacement devices for surgical reconstruction and transplantation", MOLECULAR MEDICINE, vol. 354, 1999, pages 32 - 34 |
| JUN FUJITA; YUJI ITABASHI; TOMOHISA SEKI: "Myocardial cell sheet therapy and cardiac function", AM J PHYSIOL HEART CIRC PHYSIOL, vol. 303, 2012, pages H I 169 - H 1182 |
| KORFF T ET AL.: "Blood vessel maturation in a 3- dimensional spheroidal coculture model: direct contact with smooth muscle cells regulates endothelial cell quiescence and abrogates VEGF responsiveness", THE FASEB JOURNAL, vol. 15, no. 2, 2001, pages 447 - 457, XP002296630, DOI: 10.1096/FJ.00-0139COM * |
| NARMONEVA D A ET ALLNKA - PREV200400459533: "Endothelial cells promote cardiac myocyte survival and spatial reorganization: implications for cardiac regeneration", CIRCULATION, vol. 110, no. 8, 24 August 2004 (2004-08-24), pages 962 - 968, XP055016110, DOI: 10.1161/01.CIR.0000140667.37070.07 * |
| RAGO A P ET AL.: "Controlling cell position in complex heterotypic 3D microtissues by tissue fusion", BIOTECHNOL BIOENG, vol. 102, no. 4, 1 March 2009 (2009-03-01), pages 1231 - 1241, XP055047353, DOI: 10.1002/BIT.22162 * |
| RYO NOGUCHI ET AL.: "Scaffold-free na Kinoteki Shinkin Kozotai Oyobi Ishokuho no Kaihatsu", REGENERATIVE MEDICINE, vol. 12, 28 February 2013 (2013-02-28), pages 177, XP008181335 * |
| See also references of EP2974751A4 |
| TWARDOWSKI, R L ET AL.: "Cardiac fibroblasts as a support cell for endothelial cell sprout formation in engineered cardiac tissue", CIRCULATION RESEARCH, vol. 111, no. 4, 2012, XP008181235 * |
| VLADIMIR MIRONOV; RICHARD P. VISCONTI; VLADIMIR KASYANOV: "Organ printing: Tissue spheroids as building blocks", BIOMATERIALS, vol. 30, 2009, pages 2164 - 2174, XP002694094, DOI: doi:10.1016/J.BIOMATERIALS.2008.12.084 |
| VUKUSIC K ET AL.: "High density sphere culture of adult cardiac cells increases the levels of cardiac and progenitor markers and shows signs of vasculogenesis", BIOMED RESEARCH INTERNATIONAL, vol. 2013, 1 January 2013 (2013-01-01), pages 1 - 11, XP055285713, DOI: 10.1155/2013/696837 * |
| WENZEL V ET AL.: "NAïVE ADULT STEM CELLS FROM PATIENTS WITH HUTCHINSON-GILFORD PROGERIA SYNDROME EXPRESS LOW LEVELS OF PROGERIN IN VIVO", BIOLOGY OPEN, vol. 1, no. 6, 1 January 2012 (2012-01-01), pages 516 - 526, XP055285735 * |
| WIRZ W ET AL.: "Hepatic stellate cells display a functional vascular smooth muscle cell phenotype in a three-dimensional co-culture model with endothelial cells", DIFFERENTIATION, vol. 76, no. 7, 1 September 2008 (2008-09-01), pages 784 - 794, XP026772231, DOI: 10.1111/J.1432-0436.2007.00260.X * |
| ZHANG Y ET AL.: "Dedifferentiation and proliferation of mammalian cardiomyocytes", PLOS ONE, vol. 5, no. 9, 3 September 2010 (2010-09-03), pages 1 - 13, XP055096246, DOI: 10.1371/JOURNAL.PONE.0012559 * |
Cited By (15)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN106039414B (zh) * | 2015-04-07 | 2020-07-07 | 四川蓝光英诺生物科技股份有限公司 | 生物砖的制备方法及由此制备的生物砖 |
| CN106039414A (zh) * | 2015-04-07 | 2016-10-26 | 四川蓝光英诺生物科技股份有限公司 | 生物砖的制备方法及由此制备的生物砖 |
| CN106039413A (zh) * | 2015-04-07 | 2016-10-26 | 四川蓝光英诺生物科技股份有限公司 | 制备包含内皮细胞的生物砖的方法以及由此制备的生物砖 |
| CN106039413B (zh) * | 2015-04-07 | 2021-04-06 | 四川蓝光英诺生物科技股份有限公司 | 制备包含内皮细胞的生物砖的方法以及由此制备的生物砖 |
| WO2017090777A1 (ja) * | 2015-11-25 | 2017-06-01 | 株式会社サイフューズ | ヒト心臓様構造体およびその製造方法 |
| CN105505863B (zh) * | 2016-01-05 | 2019-03-22 | 中国人民解放军第二军医大学 | 一种裸鼹鼠心肌细胞的培养方法 |
| CN105505863A (zh) * | 2016-01-05 | 2016-04-20 | 中国人民解放军第二军医大学 | 一种裸鼹鼠心肌细胞的培养方法 |
| JP2017176025A (ja) * | 2016-03-30 | 2017-10-05 | 国立大学法人 岡山大学 | 三次元細胞培養物の製造方法 |
| JP2020526767A (ja) * | 2017-07-14 | 2020-08-31 | ステモニックス インコーポレイティド | ヒト混合細胞集団スフェロイドの高スループット光学アッセイ |
| US11193159B2 (en) | 2017-07-14 | 2021-12-07 | StemoniX Inc. | High throughput optical assay of human mixed cell population spheroids |
| JP2022065065A (ja) * | 2017-07-14 | 2022-04-26 | ステモニックス インコーポレイティド | ヒト混合細胞集団スフェロイドの高スループット光学アッセイ |
| JP7539426B2 (ja) | 2017-07-14 | 2024-08-23 | アクソシム, インコーポレイテッド | ヒト混合細胞集団スフェロイドの高スループット光学アッセイ |
| JP2024160334A (ja) * | 2017-07-14 | 2024-11-13 | アクソシム, インコーポレイテッド | ヒト混合細胞集団スフェロイドの高スループット光学アッセイ |
| WO2019087988A1 (ja) | 2017-10-30 | 2019-05-09 | 公立大学法人横浜市立大学 | 構造体と細胞塊を連結した構築物 |
| CN114144515A (zh) * | 2019-07-12 | 2022-03-04 | 基因组生物制品Ug有限责任公司 | 产生心脏组织模拟物的方法 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| EP2974751A4 (en) | 2016-11-09 |
| US20160022870A1 (en) | 2016-01-28 |
| EP2974751A1 (en) | 2016-01-20 |
| CN105025939A (zh) | 2015-11-04 |
| JPWO2014141528A1 (ja) | 2017-02-16 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| WO2014141528A1 (ja) | 心臓又は血管組織型スフェロイド | |
| Shadrin et al. | Cardiopatch platform enables maturation and scale-up of human pluripotent stem cell-derived engineered heart tissues | |
| Zhang et al. | Can we engineer a human cardiac patch for therapy? | |
| Noguchi et al. | Development of a three-dimensional pre-vascularized scaffold-free contractile cardiac patch for treating heart disease | |
| Murry et al. | Regeneration gaps: observations on stem cells and cardiac repair | |
| Wang et al. | Standardization and consensus in the development and application of bone organoids | |
| US20240336898A1 (en) | Formation of three-dimensional organ from pluripotent stem cells, method for generating cell condensate for self-organization | |
| EP3124600B1 (en) | Method for generating a cell condensate for self-organisation | |
| Iyer et al. | Biofabrication enables efficient interrogation and optimization of sequential culture of endothelial cells, fibroblasts and cardiomyocytes for formation of vascular cords in cardiac tissue engineering | |
| Yi et al. | Bioreactor synergy with 3D scaffolds: new era for stem cells culture | |
| Zhao et al. | Preparation of an adipose-derived stem cell/fibrin–poly (d, l-lactic-co-glycolic acid) construct based on a rapid prototyping technique | |
| Yang et al. | Engineering human ventricular heart tissue based on macroporous iron oxide scaffolds | |
| WO2014148647A1 (ja) | 肝臓組織型スフェロイド | |
| Li et al. | Cardiomyocytes induced from hiPSCs by well-defined compounds have therapeutic potential in heart failure by secreting PDGF-BB | |
| Summer et al. | Embryonic lung side population cells are hematopoietic and vascular precursors | |
| CN104940997A (zh) | 一种组织工程化人类心肌组织 | |
| Iyer et al. | Spatiotemporal tracking of cells in tissue‐engineered cardiac organoids | |
| JP6766082B2 (ja) | 間葉系幹細胞、そのクローン原性増殖方法、分離方法及び用途 | |
| CN109402175A (zh) | 表达趋化因子受体ccr2b的脂肪干细胞及制备方法与应用 | |
| JP2018530992A6 (ja) | 間葉系幹細胞、そのクローン原性増殖方法、分離方法及び用途 | |
| JP6482036B2 (ja) | 人工組織及びその製造方法 | |
| CN113559273A (zh) | 一种静脉注射用成体干细胞的预处理方法、成体干细胞注射液及应用 | |
| WO2008049281A1 (en) | Construction method of hepatic tissue engineering construct and the hepatic tissue engineering construct | |
| JP2019154331A (ja) | 人工血島 | |
| WO2021167853A1 (en) | Device and methods for engineering 3d complex tissues |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| WWE | Wipo information: entry into national phase |
Ref document number: 201380074463.6 Country of ref document: CN |
|
| 121 | Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application |
Ref document number: 13878105 Country of ref document: EP Kind code of ref document: A1 |
|
| ENP | Entry into the national phase |
Ref document number: 2015505227 Country of ref document: JP Kind code of ref document: A |
|
| WWE | Wipo information: entry into national phase |
Ref document number: 14776101 Country of ref document: US |
|
| NENP | Non-entry into the national phase |
Ref country code: DE |
|
| REEP | Request for entry into the european phase |
Ref document number: 2013878105 Country of ref document: EP |
|
| WWE | Wipo information: entry into national phase |
Ref document number: 2013878105 Country of ref document: EP |