WO2015104413A1 - Modele de peau de mammelon reconstitue - Google Patents

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epidermal
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Stéphanie BREDIF
Caroline Baudouin
Philippe Msika
Marisa MELONI
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Laboratoires Expanscience SA
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    • G01N2333/904—Oxidoreductases (1.) acting on CHOH groups as donors, e.g. glucose oxidase, lactate dehydrogenase (1.1)

Definitions

  • the present invention relates to a skin model that can advantageously be used to study skins rich in filaggrin and keratin, such as, for example, nipple skin or skin on the lips.
  • the present invention also includes a method for evaluating the effect of cosmetic, pharmaceutical or dermatological topical products on nipple skin, in particular on nipple skin healing and on the modulation of nipple skin inflammation, preferably using said skin model, as well as kits for carrying out the method.
  • the skin of the nipple may be prone to special dermatological lesions, called crevices.
  • the cleft can be defined from a medical point of view as a deep linear ulceration. It is most often associated with inflammation.
  • Nipple cracks are lesions that appear as small gaps in the skin and are located at the nipples of the woman. They appear mainly during the first days of breastfeeding. Most often, cracks result from a poor positioning of the baby during feedings, or incorrect breastfeeding.
  • Restoring the integrity of the nipple skin remains the most effective measure to prevent such discomfort. So many are those who seek to develop effective cosmetic or therapeutic products that can quickly relieve irritation, facilitate the resorption of these cracks and, in this way, prevent any complications.
  • the nipple is a specialized epidermis that has certain characteristics: hyperkeratinized and thick with suprabasal, granular and extensive cornified layers. In comparison with the "normal" skin, for example the skin at the level of the belly, the skin of the nipple is hyperkeratinized with overexpression and a specific distribution of certain markers such as filaggrin and keratin 14 (Mahler B, Cells Tissues Organs, 176 (4): 169-77, 2004).
  • keratin 14 which is found in the basal part of the keratinocytes at the level of the belly skin, is present in the apical part of the keratinocytes in the skin of the nipple (Panchal et al. ., BMC Developmental Biology, 7: 105, 2007).
  • the increase in the level of keratin 14, and its particular distribution reveal a tissue whose cells proliferate and therefore which is rapidly renewed.
  • filaggrin is a well known marker that confers resistance and protection to the skin and thus plays a determining role in the barrier function. Increasing the level of filaggrin in the nipple skin is thus likely to play a role in its ability to heal.
  • the inventors have developed a specialized in vitro skin model that makes it possible to reproduce the biological characteristics of the nipple skin, and that can in particular be used for screening actives or else cosmetic or pharmacological formulations of interest.
  • the model of the invention has the particularity of approaching the true composition of the skin of the nipple in that it comprises a significant amount of the biological markers filaggrin and keratin 14.
  • the model of the invention in fact comprises keratinocytes overexpressing Filaggrin, and advantageously, keratin 14.
  • the skin model of the invention comprises particular keratinocytes, which have the particularity of expressing filaggrin at a level higher than that usually observed in keratinocyte cultures. .
  • the production of the model of the invention involves growth factors known to stimulate the expression of keratin 14.
  • the skin model of the invention is therefore particularly simple to implement. In addition, it does not require the use of a particular commercial cell line, and is versatile and adaptable, provided that the keratinocytes used have the required functional characteristics.
  • the particular characteristics of the model of the invention make it possible to study in vitro the peculiarities of the nipple skin.
  • the invention firstly relates to a skin model characterized / specialized in that it comprises keratinocytes overexpressing filaggrin.
  • the skin model can be any tissue model comprising keratinocytes and wherein the keratinocytes overexpress filaggrin.
  • the skin model of the invention can be any tissue model comprising keratinocytes.
  • the skin model of the invention is therefore not strictly limited to a particular type of tissue model, and can be adapted to the needs of those skilled in the art.
  • tissue model comprising keratinocytes means any in vitro culture of cutaneous cells comprising at least keratinocytes.
  • tissue model comprising keratinocytes includes monolayer keratinocyte cultures, bilayer skin cell cultures comprising keratinocytes, as well as tissue models such as reconstructed skin cultures comprising keratinocytes.
  • the skin model comprises reconstructed skin cultures comprising keratinocytes.
  • the cutaneous cells comprise at least one type of cells usually present in the hypoderm, the dermis and / or the epidermis. These cells thus comprise, inter alia, keratinocytes, melanocytes, fibroblasts, adipocytes, endothelial cells, mast cells, Langerhans cells and / or Merkel cells.
  • the cutaneous cells according to the invention comprise at least keratinocytes and / or fibroblasts.
  • the monolayer or bilayer skin cell cultures have been known and used for a very long time, and do not require detailed description.
  • the reconstructed skin model is selected from the group consisting of epidermal models consisting primarily of keratinocytes, skin models comprising a dermis and epidermis, and skin models comprising a hypodermis, a dermis, and an epidermis.
  • Models comprising at least one epidermis form stratified epithelia comprising the characteristic layers of the tissue in question. For example, a basal layer (basal stratum), a spiny layer (stratum spinosum), a granular layer (stratum granulosum), and a stratum corneum (stratum corneum) can be identified in epidermal models.
  • the skin model of the invention is an epidermal model comprising a matrix support preferably chosen from: an inert support selected from the group consisting of a semi-permeable synthetic membrane, in particular a semi-nitrocellulose membrane; permeable, a semi-permeable nylon membrane, a teflon membrane or sponge, a polycarbonate or polyethylene membrane, polypropylene, semi-permeable polyethylene terephthalate (PET), an inorganic Anopore semi-permeable membrane, acetate or of ester cellulose (HATF), a semipermeable Biopore-CM membrane, a semi-permeable polyester membrane.
  • a matrix support preferably chosen from: an inert support selected from the group consisting of a semi-permeable synthetic membrane, in particular a semi-nitrocellulose membrane; permeable, a semi-permeable nylon membrane, a teflon membrane or sponge, a polycarbonate or polyethylene membrane, polypropylene, semi-permeable polyethylene ter
  • Laserskin® Fidia Advanced Biopolymers
  • Episkin® L'Oreal
  • These models may also be seeded or not with fibroblasts in the dermal part.
  • pigment cells, immunocompetent cells, nerve cells, preferably immunocompetent cells are Langerhans cells.
  • the matrix support is produced and then inoculated by the keratinocytes of the invention to reconstruct the epidermis and finally obtain a reconstructed skin comprising keratinocytes capable of to overexpress filaggrin.
  • keratinocytes denotes both primary keratinocytes and immortalized keratinocytes, such as, for example, keratinocytes originating from cell lines. Keratinocyte cell lines are well known to those skilled in the art and include, for example, the human keratinocyte HaCaT line.
  • the keratinocytes are of human origin.
  • keratinocytes come from biological samples from a human subject.
  • the keratinocytes used in the skin model are obtained from healthy subjects, regardless of their origin.
  • the term “healthy subject” means a subject free of cutaneous pathologies.
  • “healthy subject” is intended to mean subjects who do not have a cutaneous lesion, in particular without atrophy, bubble, dyschromia, erythema (and exanthem), keratosis, macula, nodule. , papule, purpura, pustule, squama, sclerosis, tumor, ulceration, condyloma, vesicle.
  • the keratinocytes used in the skin model are obtained from healthy biological samples from a human subject.
  • “healthy biological samples” means biological samples that do not show a skin lesion, in particular that do not show atrophy, bubble, dyschromia, erythema (and exanthem), keratosis, macula, nodule, papule, purpura, pustule, squama, sclerosis, tumor, ulceration, condyloma, vesicle.
  • human keratinocytes can be isolated from skin samples by cell culture techniques well known to those skilled in the art.
  • the keratinocytes may be keratinocytes obtained from dermal tissue explant, in particular samples of keratinized squamous epithelium. Human keratinocytes can then easily be cultured in vitro according to well-known techniques. Those skilled in the art may in particular refer to Leigh et al. (Arch Dermatol Res., 286 (1): 53-61 .1994).
  • explant or skin explant is meant here a sample of cells or skin tissue, which may be performed for therapeutic purposes or for performing analyzes.
  • an explant can be obtained during a surgical excision.
  • resection is meant here a surgical procedure of cutting (excise) a more or less wide or deep part of the skin to treat an abnormality or growth.
  • an excision is performed either to remove a cancerous tumor or suspicious of being, or to treat a benign abnormality of the skin which is troublesome, whether for functional or aesthetic reasons.
  • An excision within the meaning of the invention includes for example the skin samples obtained after plastic surgery (mammary plasty, abdominal, facelift, preputial sampling, otoplasty, that is to say, ear gluing, syndactyly or supernumerary finger, etc. .).
  • biopsy is meant here a sample of cells or skin tissue made for analysis.
  • biopsy procedures include (1) incisional biopsy, in which only a sample of the tissue is removed; (2) excisional biopsy (or surgical biopsy), which consists of the total removal of a tumor mass, thus making a therapeutic and diagnostic gesture, and (3) the needle biopsy, in which a tissue sample is taken with a needle, which can be wide or fine.
  • Other types of biopsies exist, such as smear or curettage, and are also encompassed by the present invention.
  • the term "immortalized keratinocytes” means keratinocytes which divide beyond the Hayflick limit. These cells have thus acquired the capacity to multiply indefinitely, either following a random mutation or a deliberate modification.
  • the Hayflick limit is the number of divisions that can be performed by a normal cell, that is, a cell that can divide only a specified number of times, before ceasing to divide.
  • the Hayflick limit corresponds to the number of divisions that can be performed by a normal keratinocyte before ceasing to divide.
  • Keratinocytes can be immortalized following particular abnormalities, as is the case for example cancer cells, or following the implementation of an immortalization technique.
  • Immortalization techniques are well known to those skilled in the art who can easily choose among them the technique best suited to his purpose.
  • an immortalization technique the transformation with an oncogene, in particular by the SV40 T antigen, the Ras protein, the myc protein, the Abl protein.
  • Other techniques that may be mentioned include, for example, the overexpression of a telomerase reverse transcriptase, for example hTERT, or the culture of keratinocytes at the confluence of several passages. All of these techniques are conventional cell biology techniques that do not need to be detailed here.
  • the filaggrin biological marker comprises the human FLG gene (reference NCBI: Gene ID: 2312) and the products of this gene.
  • the filaggrin biological marker consists of the human FLG gene (reference NCBI: Gene ID: 2312).
  • the filaggrin biological marker consists of one of the products of the human FLG gene.
  • the products of the human FLG gene comprise the transcript of the human FLG gene and the human filaggrin protein.
  • the term "transcript of the human FLG gene" is intended to mean the polynucleotide whose sequence is referenced NCBI NM_002016.1.
  • human filaggrin protein is meant within the meaning of the invention the protein whose peptide sequence is the reference sequence NCBI NP_002007.1.
  • keratinocytes overexpressing filaggrin is meant in the sense of the present invention, keratinocytes constitutively having a level of expression of the biological marker filaggrin higher than a reference level of expression.
  • the level of expression of the reference filaggrin biological marker corresponds to a level of expression of reference keratinocytes, such as, for example, primary keratinocytes derived from the same species as the keratinocytes analyzed.
  • the level of expression of the filaggrin biological marker in keratinocytes corresponds to the amount of transcripts of the human FLG gene, in particular the polynucleotide whose sequence is referenced NCBI NM_002016.1, in said keratinocytes.
  • the level of expression of the biological marker filaggrin corresponds to the level of expression of the polynucleotide whose sequence is referenced NCBI NM_002016.1.
  • any technology usually used by those skilled in the art can be implemented to measure the level of expression of the biological marker filaggrin in the keratinocytes of the invention.
  • those skilled in the art may in particular use methods for analyzing the level of gene expression at the nucleotide level, such as, for example, transcriptome analysis. These methods include well-known methods such as RT-PCR or quantitative RT-PCR or nucleic acid chips, and are detailed below.
  • the keratinocytes overexpressing filaggrin can easily be obtained by those skilled in the art by conventional screening techniques usually used in cell culture. In general, at each of the passages of cells usually made according to conventional cell culture techniques, those skilled in the art will isolate keratinocytes in which the level of filaggrin is particularly important.
  • the culture medium of the skin model of the invention comprises at least less than 5% fetal calf serum, in volume relative to the total volume of the culture medium. In this way, the keratinocytes of the resulting skin model overexpress keratin 14.
  • the skin model of the invention comprises keratinocytes overexpressing keratin 14.
  • keratinocyte overexpressing keratin 14 is meant within the meaning of the present invention, keratinocytes having a level of expression constituting the biological marker keratin 14 greater than a reference level of expression.
  • the level of expression of the reference keratin 14 biological marker corresponds to an average level of expression for keratinocytes.
  • the level of expression of the keratinocyte 14 biological marker in keratinocytes corresponds to the amount of transcripts of the human KRT14 gene whose sequence is referenced NCBI 3861, in particular the polynucleotide whose sequence is referred to by NCBI. NM_000526, in said keratinocytes.
  • the level of expression of the keratin 14 biological marker corresponds to the level of expression of the polynucleotide whose sequence is referred to as NCBI NM_002016.1.
  • the skin model of the invention therefore comprises particular keratinocytes, which overexpress key markers, filaggrin and keratin 14, which are found in the skin of the nipple.
  • the model of the invention thus makes it possible to reproduce tissues very rich in filaggrin, such as the skin of the nipple or the skin of the lips in humans.
  • This model can therefore be used to study this type of tissue, or the effect of certain formulations or certain active agents on this type of tissue.
  • the model of the invention is used to study the skin of the nipple.
  • an object of the invention is the use of a skin model according to the invention for studying the skin of the nipple.
  • model of the invention may be modified to have a lesion.
  • This type of modified model can thus be used, for example, to study the lesions or scarring phenomena in tissues such as the skin of the lips or the skin of the nipple.
  • the skin model has a lesion.
  • the lesion is a lesion mimicking a crevice.
  • crevices can be defined from a medical point of view as a deep linear ulceration, possibly associated with inflammation. The crevices appear in the form of small gaps in the skin.
  • a lesion mimicking a crevice is a lesion reproducing linear ulceration, preferably a deep linear ulceration.
  • a lesion mimicking a crevice in the sense of the invention is in the form of one or more gaps of the skin model.
  • a person skilled in the art may choose to cause a lesion on a skin model of the invention, for example mechanically.
  • a cutting object such as a scalpel
  • a superficial lesion using any other non-cutting object but making it possible to achieve mechanical surface abrasion.
  • This type of tool makes it possible to reproduce at best the crevices observed in vivo.
  • Nipple skin lesions scarcely heal during breastfeeding, and are also very inflamed, and therefore very painful. Thus, it may be of interest to seek to evaluate the effectiveness of formulations or else active agents on the healing of the damaged epidermis, or on the reduction of the inflammation associated with the lesions.
  • the model of the invention can thus advantageously be used in processes for evaluating the in vitro activity of a formulation or of an active agent, in particular carried out in order to test the activity of said formulation on cicatrization.
  • the model of the invention may further be used in methods of identifying a formulation or active agent adapted to the skin of the injured nipple, and more particularly for treating nipple crevices.
  • the inventors have in particular identified markers involved in different aspects of healing as well as markers involved in skin inflammation.
  • the markers selected by the inventors make it possible to evaluate the effect of formulations on different but complementary problems associated with cutaneous lesions.
  • the use of all these markers thus makes it possible to obtain an evaluation more complete and exhaustive of the activity of the formulation or of the asset of interest on the repair of the lesions, but also on the decrease of the inflammation of the skin of the nipple during this process.
  • the skin model of the invention makes it possible to observe a variation in the production of these markers, in particular lactate dehydrogenase (LDH), TNF ⁇ , filaggrin, integrin 61 and TGF 61.
  • LDH lactate dehydrogenase
  • TNF ⁇ TNF ⁇
  • filaggrin integrin 61
  • TGF 61 TGF 61
  • the methods of the invention by using the measurement of the level of production of at least one of these markers, thus make it possible to follow the effect of a formulation on the healing of the skin of the nipple.
  • the evaluation method of the invention not only makes it possible to determine whether the formulation stimulates healing, but also whether it contributes to reducing the inflammation present in the lesions, in particular in crevices.
  • the cosmetic and pharmaceutical formulations and compositions comprise a large number of compounds, some of which are used to obtain a particular texture and / or viscosity. These compounds may nevertheless have an undesired effect on the lesions, for example a pro-inflammatory effect. In contrast to other assets may have interesting properties and have a beneficial effect on healing processes or on inflammation.
  • the methods of the invention are also suitable for evaluating the activity of isolated active ingredients.
  • the invention thus makes it possible to precisely determine which active agents have an advantageous effect on the healing of the skin of the nipple.
  • the second subject of the invention is therefore a method for evaluating the in vitro activity of an active ingredient or a formulation on the healing of the skin of the nipple and / or on the reduction of inflammation of the skin of the nipple, characterized in that said method comprises at least the following steps: a) contacting said active or said formulation with a skin model comprising keratinocytes overexpressing filaggrin and further comprising a lesion, as described above; b) measuring the level of production of at least one biological marker in the skin model of step a), characterized in that said biological marker is selected from the group consisting of: the markers of epidermal integrity, said marker of epidermal integrity preferably being lactate dehydrogenase (LDH); and
  • the markers of the epidermal barrier being preferably filaggrin;
  • markers of epidermal inflammation said marker of epidermal inflammation being preferably chosen from cytokines, in particular TNF ⁇ ; and
  • said cicatrization marker being preferably chosen from integrins, in particular integrin 61, and TGF 61; c) comparing the level of production of at least one biological marker obtained in step b) with a reference level of production; d) evaluating the effectiveness of said asset or said formulation on nipple skin healing and / or on decreasing inflammation of the nipple skin based on the comparison of step c).
  • the healing of the skin corresponds to a natural biological phenomenon of repair of localized lesions of the tissues. This phenomenon allows the skin to regain its physical integrity after an injury.
  • the active agent of interest in a first step, is brought into contact with a skin model comprising keratinocytes overexpressing filaggrin and further comprising a lesion according to the invention.
  • a skin model comprising keratinocytes overexpressing filaggrin and further comprising a lesion according to the invention.
  • Contacting the asset of interest with the injured nipple skin model can be done directly, if the formulation of the asset allows it.
  • it may be advantageous to formulate the asset of interest for example so as to obtain a liquid composition, to facilitate its contact with the injured nipple skin model.
  • the method further comprises a step of formulation of the active agent, in particular in the form of a liquid solution, in particular an aqueous solution, prior to the step of contacting said active ingredient. with an injured nipple skin model.
  • the formulation of interest in a first step, is brought into contact with a skin model comprising keratinocytes overexpressing filaggrin and further comprising a lesion according to the invention.
  • the contacting of the formulation of interest with the skin model of the invention can be done directly.
  • a person skilled in the art can proceed to measure the level of production of the biological markers of the invention in the skin model. thus treated.
  • biological marker is intended to mean a characteristic that is objectively measured and evaluated as an indicator of normal biological processes, pathogenic processes, or pharmacological responses to a therapeutic intervention.
  • a biological marker therefore refers to a variety of different substances and parameters.
  • a biological marker may be a substance whose detection indicates a particular disease state (for example the presence of activated protein C as a marker of infection), or on the contrary a substance whose detection indicates a physiological state specific.
  • the biological marker according to the invention is preferably a gene, the products of a gene such as its transcripts and the peptides derived from its transcripts, a lipid, a sugar or a metabolite.
  • the biological marker is a gene, the products of a gene such as transcripts or peptides, a lipid, a sugar or a metabolite whose production changes, in particular the level of production, correlate with a physiological state of the nipple skin.
  • the biological marker is chosen from markers of epidermal integrity, markers of the epidermal barrier and markers of epidermal inflammation.
  • the epidermal integrity marker is lactate dehydrogenase (LDH).
  • the marker of the epidermal barrier is selected from filaggrin, keratin, in particular keratin 1 and keratin 10, involucrine, loricrin, transglutaminases, ceramides, cholesterol and fatty acids.
  • the marker of the epidermal barrier is filaggrin.
  • the epidermal inflammation marker is selected from cytokines, in particular TNF ⁇ and interleukins 1, 6 and 8; leukotrienes and prostaglandins.
  • the marker of epidermal inflammation is selected from cytokines, in particular TNF ⁇ .
  • the cicatrization marker is chosen from integrins, in particular integrin 61, integrin 64, integrin A1, integrin a3, integrin a6, laminin 5, metalloproteinases, in particular metalloproteinases MMP1, MMP2 and MMP9, growth factors, in particular TGF 61 (Transforming Growth Factor 81), KGF (Keratinocyte Growth Factor), EGF (Epidermal Growth Factor), interferon gamma.
  • integrins in particular integrin 61, integrin 64, integrin A1, integrin a3, integrin a6, laminin 5, metalloproteinases, in particular metalloproteinases MMP1, MMP2 and MMP9
  • growth factors in particular TGF 61 (Transforming Growth Factor 81), KGF (Keratinocyte Growth Factor), EGF (Epidermal Growth Factor), interferon gamma.
  • the cicatrization marker is preferably chosen from integrins, in particular integrin 61, and TGF 61.
  • TNF ⁇ is released into the lesion and promotes the migration and activation of neutrophils and macrophages, which are necessary for tissue repair.
  • this biological marker is a growth factor well known for its inflammatory effect.
  • the inflammatory signal contributes to the pain felt in the case of nipple skin cracking.
  • a decrease in the level of TNFa production at the nipple skin crevices may be correlated with a decrease in inflammation, and thus a reduction of the tugging due to crevices.
  • the TNF ⁇ biological marker comprises the human TNF ⁇ gene (reference NCBI: Gene ID: 7124), as well as the products of this gene.
  • the TNF ⁇ biological marker consists of the human TNF ⁇ gene (reference NCBI: Gene ID: 7124).
  • the TNF ⁇ biological marker consists of one of the products of the human TNF ⁇ gene.
  • the products of the human TNF ⁇ gene include the transcript of the human TNF ⁇ gene and the human TNF ⁇ protein.
  • the transcript of the human TNF ⁇ gene is the polynucleotide whose sequence is referred to as NCBI: NM_000594.
  • the term "human TNF ⁇ protein” refers to the protein whose peptide sequence is the reference sequence NCBI: NP_000585.
  • “TNF ⁇ in its peptide form” means according to the invention a peptide whose peptide sequence comprises the peptide sequence of the human TNF ⁇ protein (reference NCBI: NP_000585).
  • TNF ⁇ in its nucleotide form is meant according to the invention at least one polynucleotide whose sequence comprises the transcript sequence of the human TNF ⁇ gene (reference NCBI: Gene ID: 7124).
  • the transcript of the human TNF ⁇ gene is the polypeptide whose sequence is referred to as NCBI: NM_000594.
  • LDH is an enzyme that is normally present in the cytosol of cells. Its presence in the middle of cells in culture testifies to cell damage.
  • the increase in the release of this marker is correlated with an increase in cellular damage, that is lesions.
  • the decrease in the release of this marker shows a decrease in cell damage, and therefore lesions.
  • the decrease in the level of production of this marker is therefore correlated with a positive evolution of the healing process.
  • the variations in the level of production of this marker thus make it possible to evaluate the effect of the asset of interest on the healing process, and its protective and repairing effect.
  • the M subunit is encoded by the LDHA gene (NCBI reference: Gene ID: 3939), while the H subunit is encoded by the LDHB gene (NCBI reference: Gene ID: 3945).
  • the predominant form in the skin is the LDH-2 form, which comprises three H subunits and one M subunit.
  • the biological marker lactate dehydrogenase (LDH) is preferably the LDH-2 marker, which includes three H subunits, and one M subunit.
  • Filaggrin is a marker found importantly in the skin cells of the nipple, it is also a marker of the epidermal barrier. During the healing process, tissue repair is accompanied by proliferation and differentiation of the cells, filling the lesion to restore the epidermis, and thus increasing the production rate of filaggrin. The increase in the level of production of this marker is therefore correlated with a positive evolution of the healing process, and thus the repair of damaged tissue with restoration of an intact epidermis. The variations in the level of production of this marker thus make it possible to evaluate the effect of the asset of interest on the healing process, and its repairing effect.
  • Filaggrin in its peptide form means, according to the invention, a peptide whose peptide sequence comprises the peptide sequence of the human filaggrin protein (reference NCBI: NP_002007.1).
  • filamentaggrin in its nucleotide form is preferably meant according to the invention at least one polynucleotide whose sequence comprises the human FLG gene transcript sequence (reference NCBI: Gene ID: 2312).
  • the transcript of the human FLG gene is the polynucleotide whose sequence is for reference NCBI NM_002016.1.
  • Integrin 61 is a growth factor that controls many cellular functions involved in the regulation of wound healing.
  • the integrin biological marker 61 comprises the human ITGB1 gene (reference NCBI: Gene ID: 3688), as well as the products of this gene.
  • the integrin biological marker 61 consists of the human ITGB1 gene (reference NCBI: Gene ID: 3688).
  • the integrin biological marker 61 consists of one of the products of the human ITGB1 gene.
  • the products of the human ITGB1 gene include transcripts of the human ITGB1 gene and human integrin 61 proteins.
  • the transcripts of the human ITGB1 gene comprise the polynucleotides whose sequence is chosen from the reference sequences NCBI NM_00221 1 .3, NM_133376.2 and NM_033668.2.
  • the term "human integrin protein 61" refers to the protein whose peptide sequence is chosen from the reference sequences NCBI: NP_002202.2, NP_596867.1 and NP_391988.1.
  • “Integrin 61 in its peptide form” preferably means, according to the invention, a peptide whose peptide sequence is chosen from the reference sequences NCBI: NP_002202.2, NP_596867.1 and NP_391988.1.
  • integratedin 61 in its nucleotide form is preferably meant according to the invention at least one polynucleotide whose sequence comprises the sequence of the human ITGB1 gene transcript (reference NCBI: Gene ID: 3688).
  • the transcripts of the human ITGB1 gene comprise the polynucleotides whose sequence is chosen from the reference sequences NCBI NM_00221 1 .3, NM_133376.2 and NM_033668.2.
  • TGF 61 Transforming Growth factor beta 1
  • TGF 61 Transforming Growth factor beta 1
  • TGF 61 Transforming Growth factor beta 1
  • This peptide is particularly involved in the control of growth and cell proliferation.
  • epidermal repair At the level of the skin, and as part of the healing process, an increase in TGF 61 production level is correlated with epidermal repair.
  • the increase in the level of production of this marker indicates an amplification of the process of healing and the repair of the damaged tissue. The variations in the level of production of this marker thus make it possible to evaluate the effect of the asset of interest on the healing process, and its repairing effect.
  • the TGF 61 biological marker comprises the human TGFB1 gene (reference NCBI: Gene ID: 7040), as well as the products of this gene.
  • the TGF 61 biological marker consists of the human TGFB1 gene (reference NCBI: Gene ID: 7040).
  • the TGF 61 biological marker consists of one of the products of the human TGFB1 gene.
  • the products of the human TGFB1 gene include the transcript of the human FLG gene and the human TGF 61 polypeptide.
  • the transcript of the human TGFB1 gene is the polynucleotide whose sequence is referenced NCBI NM_000660.
  • the term "human TGF-61 polypeptide" is preferably used to refer to the polypeptide whose peptide sequence is the reference sequence NCBI: NP_000651.
  • TGF 61 in its peptide form is preferably meant according to the invention a peptide whose peptide sequence is the reference sequence NCBI: NP_000651.
  • TGF 61 in its nucleotide form is preferably meant according to the invention at least one polynucleotide whose sequence comprises the transcript sequence of the human TGFB1 gene (reference NCBI: Gene ID: 7040).
  • the transcript of the human TGFB1 gene is the polynucleotide whose sequence is the NCBI reference sequence NM_000660.
  • markers of a particular type By using a single type of marker, one skilled in the art can obtain a precise answer on the efficacy of the formulation or the active ingredient, such as, for example, a particular evaluation of the effectiveness on epidermal inflammation or evaluation in particular of the effectiveness on cicatrization.
  • the person skilled in the art could thus use, for example, combinations of markers consisting of markers of epidermal integrity, combinations of markers consisting of markers of the epidermal barrier, marker combinations consisting of markers of epidermal inflammation. combinations of markers consisting of markers of healing.
  • the method of the invention will allow an evaluation of the effectiveness of the formulation or the more complete asset that a large number of markers of different types will be used. .
  • the skilled person may for example evaluate both the effectiveness of the formulation or the active ingredient on epidermal inflammation and healing.
  • markers consisting of markers of epidermal integrity and markers of the epidermal barrier, in particular the combination of markers consisting of lactate dehydrogenase (LDH) and filaggrin;
  • combinations of markers consisting of markers of epidermal integrity and markers of epidermal inflammation in particular the combination of markers consisting of lactate dehydrogenase (LDH) and TNF ⁇
  • combinations of markers consisting of markers of epidermal integrity and markers of healing in particular the combination of markers consisting of lactate dehydrogenase (LDH) and integrin 61 or the combination of markers consisting of lactate dehydrogenase (LDH) and TGF 61;
  • markers consisting of markers of the epidermal barrier and markers of epidermal inflammation in particular the combination of markers consisting of filaggrin and TNF ⁇ ;
  • markers consisting of markers of the epidermal barrier and markers of healing in particular the combination of markers consisting of filaggrin and integrin 61 or the combination of markers consisting of filaggrin and TGF 61; or
  • markers consisting of markers of epidermal inflammation and markers of healing in particular the combination of markers consisting of TNF ⁇ and integrin 61 or the combination of markers consisting of TNF ⁇ and TGF 61.
  • markers consisting of markers of epidermal integrity, markers of the epidermal barrier and markers of epidermal inflammation, in particular the combination of markers consisting of lactate dehydrogenase (LDH), filaggrin and TNFa;
  • markers consisting of markers of epidermal integrity markers of the epidermal barrier and markers of healing, in particular the combination of markers consisting of lactate dehydrogenase (LDH), filaggrin and TGF 61, or the combination of markers consisting of lactate dehydrogenase (LDH), filaggrin and integrin 61;
  • markers consisting of markers of epidermal integrity, markers of epidermal inflammation and markers of healing in particular the combination of markers consisting of lactate dehydrogenase (LDH), TNF ⁇ and TGF 61 or the combination of markers consisting of lactate dehydrogenase (LDH), TNF ⁇ and integrin 61;
  • markers consisting of markers of the epidermal barrier markers of epidermal inflammation and markers of healing, in particular the combination of markers consisting of filaggrin, TNF ⁇ and TGF 61, or the combination of markers consisting of filaggrin, TNFa and integrin 61.
  • step b) comprises measuring the level of production of a combination of biological markers consisting of lactate dehydrogenase (LDH), TNF ⁇ , filaggrin, integrin 61 and TGF 61.
  • LDH lactate dehydrogenase
  • the biological marker according to the invention may be a gene, or the product of a gene having a particular activity, such as an enzymatic activity, for example.
  • level of production may refer to different variables, which depend on the nature of the marker being examined.
  • the term “level of production of the biological marker” generally refers to the level of synthesis of at least one of the products of that gene. More specifically, when the biological marker is a gene, the level of production of said biological marker corresponds to the quantity or the concentration of at least one of the transcripts of said gene or at least one of the different isoforms of the proteins derived from said transcripts. When the marker is the product of a gene having enzymatic activity, the term “level of production of the biological marker” refers preferably to the level of enzymatic activity of said marker.
  • the enzymatic activity of said marker corresponds to the amount of substrate of said label catalyzed per unit time thanks to a defined quantum of said marker.
  • the unit of enzymatic activity U is conventionally expressed in ⁇ -iol / min or in kat (mol / s).
  • the unit of enzymatic activity U can also be expressed in mg / min when the substrate of the enzyme exists in the body in the form of a polymer, as is the case for example when the substrate is chosen from sugars or glycosaminoglucans.
  • the LDH biological marker is the product of a gene having an enzymatic activity.
  • the enzymatic activity of the LDH enzyme can be measured by an enzymatic test: the salted LDH reduces the NAD + to NADH + H + by oxidation of the lactate to pyruvate, in a second step, a catalyst (diaphorase) transfers 2 H of NADH + H + to tetrazolium salt INT which is then reduced to formazan. Formazan formation is revealed by the induction of colorimetrically measured staining. The amount of formazan formed is directly correlated with the enzymatic activity of LDH in the supernatant.
  • the enzymatic activity of the LDH enzyme can be measured using a colorimetric assay based on the detection of formazan salts using a commercial kit (eg cytotoxicity detection kit-LDH , Rock).
  • measuring the level of production of a combination of biological markers is meant within the meaning of the present application the measurement of the production level of each of the markers of the combination.
  • the production of a gene can be measured for example at the nucleotide level, by measuring the amount of transcripts of said gene and their variants, and can also be measured for example at the peptide level, for example by measuring the amount of one or more isoforms. proteins derived from said transcripts, and variants thereof.
  • measuring the level of production of said gene is meant within the meaning of the invention the measuring the amount of product of the gene in its peptide form or in its nucleotide form.
  • the method of the invention may comprise one or more steps prior to measuring the production of the biological marker, said steps corresponding to the extraction from the nipple skin model of step a ), a sample of mRNA (or the corresponding cDNA) or a protein sample. This can then be directly used to measure the production of the marker. Preparation or extraction of mRNA (as well as retrotranscription thereof into cDNA) or proteins from a tissue such as a skin or cell model are only routine procedures well known in the art. the skilled person.
  • the level of production of the marker chosen from LDH, TNF ⁇ , TGF61 and filaggrin corresponds to the level of production of said marker in its nucleotide form.
  • the level of production of the integrin marker 61 corresponds to the level of production of said marker in its peptide form.
  • nucleic acid chips is meant herein several different nucleic acid probes that are attached to a substrate, which may be a microchip, a glass slide, or a microsphere sized ball.
  • the microchip may consist of polymers, plastics, resins, polysaccharides, silica or a material based on silica, carbon, metals, inorganic glass, or nitrocellulose.
  • the probes can be nucleic acids such as cDNAs ("cDNA chips"), mRNAs ("mRNA chips”) or oligonucleotides (“oligonucleotide chips”), said oligonucleotides typically having a length of between about 25 and 60 nucleotides.
  • a nucleic acid corresponding to all or part of said gene is labeled and then brought into contact with the chip in hybridization conditions, leading to the formation of complexes between said labeled target nucleic acid and the probes attached to the surface of the chip which are complementary to this nucleic acid.
  • the presence of labeled hybridized complexes is then detected.
  • the invention is implemented using any current or future method for determining gene production based on the amount of mRNA in the sample.
  • tissue chips also known as TMAs: "tissue microarrays”
  • TMAs tissue microarrays
  • RNA-Seq or "Whole Transcriptome Shotgun Sequencing”
  • mass sequencing in parallel. Such methods are described in, for example, US 4,882,127, US 4,849,077; US 7,556,922; US 6,723,513; WO 03/066896; WO 2007/1 1 1924; US 2008/0020392; WO 2006/084132; US 2009/0186349; US 2009/0181860; US 2009/0181385; US 2006/0275782; EP-B1-1141399; Shendure & Ji, Nat Biotechnology, 26 (10): 1,135-45.
  • any method for determining the level of production of a polypeptide known to those skilled in the art can be used.
  • Methods for determining the level of production of a polypeptide include, for example, mass spectrometry, biochemical tests, including immunoassays such as, for example, standard detection immunoassays (ELISA assays and ELISPOTS assays), or for example, immunoassays using supported protein transfer techniques, such as the slot blot (also called dot blot) or the western blot.
  • ELISA assays and ELISPOTS assays standard detection immunoassays
  • ELISA assays and ELISPOTS assays immunoassays using supported protein transfer techniques, such as the slot blot (also called dot blot) or the western blot.
  • slot blot also called dot blot
  • western blot it is possible to use protein chips, antibody chips, or tissue chips coupled to immunohistochemistry.
  • FRET or BRET techniques microscopy or histochemistry methods, including confocal microscopy and electron microscopy, methods based on the use of one or more excitation wavelengths and a suitable optical method, such as an electrochemical method (voltammetry and amperometry techniques), the atomic force microscope, and methods radiofrequency, such as multipolar, confocal and non-confocal resonance spectroscopy, fluorescence detection, luminescence, chemiluminescence, absorbance, reflectance, transmittance, birefringence or refractive index (eg, by surface plasmon resonance, or 'surface plasmon resonance In English, by ellipsometry, resonant mirror method, tec), flow cytometry, radioisotopic or magnetic resonance imaging, polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE) analysis; by HPLC-Mass spectrophotometry, by liquid chromatography / mass spectrophotometry / mass spectrometry (LC-MS / MS
  • a level of reference production of a biological marker is meant within the meaning of the present application any level of production of said marker used for reference.
  • a baseline level of production can be achieved by measuring the level of production of the marker of interest in a nipple skin model under particular conditions. Those skilled in the art will know how to choose these particular conditions so as to serve their purpose in the implementation of the invention.
  • the reference level of production of a biological marker is the level of production of said marker obtained in an untreated injured nipple skin model with the formulation of interest.
  • the reference level of production of a biological marker is the level of production of said marker obtained in a model of nipple skin contacted with a reference formulation.
  • the reference formulation is chosen from the list consisting of formulations conventionally used in dermatology or cosmetics, in particular formulations comprising principles such as anti-inflammatory / anti-irritant agents or the healing and restructuring agents of the cutaneous barrier.
  • anti-inflammatory / anti-irritant agents used in dermatology and in cosmetics are well known to those skilled in the art. In general, they limit the inflammatory reaction conducted via cytokines or mediators of arachidonic acid metabolism and have soothing and anti-irritant properties.
  • the anti-inflammatory / anti-irritant agents that can be included in a reference formulation within the meaning of the invention are the acid Glycyrrhetinic (licorice derivatives) with its salts and esters, lipoic acid, beta-carotene, vitamin B3 (niacinamide, nicotinamide), vitamin E, vitamin C, vitamin B12, flavonoids (green tea, quercetin ...), lycopene or lutein, avocado sugars, avocado oleodistillate, arabinogalactan, Lupine peptides, a total extract of Lupine, a peptide extract of Quinoa, Cycloceramide (derived from oxazoline), isoflavones such as genistein / genistin, daidzein / daidzine, spring or thermal waters (Avène water, Roche Posay water, Saint Gervais water, Uriage water, Gamarde water ), Goji extracts (Lycium barbarum),
  • the healing and restructuring agents of the cutaneous barrier used in dermatology and in cosmetics are well known to those skilled in the art. In general, they stimulate the synthesis of key lipids in the epidermis.
  • the cicatrizing and restructuring agents of the cutaneous barrier that can be included in a reference formulation within the meaning of the invention are vitamin A, panthenol (vitamin B5), avocado sugars, sunflower oilodistillate, lupeol, peptide extract of Maca, a peptide extract of Quinoa, arabinogalactan, zinc oxide, magnesium, silicon, madecassic or Asian acid, dextran sulfate, coenzyme Q10, glucosamine and its derivatives , chondroitin sulfate and globally glucosaminoglycans or GAG, dextran sulfate, ceramides, cholesterol, squalane, phospholipids, soybean peptides fermented or not, plant peptides, marine polysacc
  • micronutrients that may be used are advantageously chosen from the group consisting of copper, magnesium, manganese, chromium, selenium, silicon, zinc and their mixtures.
  • Sunflower concentrates more advantageously linoleic sunflower concentrates, such as the active ingredient marketed by Laboratoires Expanscience, Soline, unsaponifiables of vegetable oil, such as Avocadofurane®, or PPAR agonists (rosiglitazone) can also be used. , pioglitazone), RXR, LXR.
  • compositions may furthermore use as reference formulation any formulation known from the prior art, and in particular any formulation known for its healing and / or anti-inflammatory properties.
  • reference formulation any formulation known from the prior art, and in particular any formulation known for its healing and / or anti-inflammatory properties.
  • avocado sugars as described in the application WO 2005/1 15421. This composition is particularly suitable for the treatment of skin barrier repair and inflammation;
  • avocado oil as described in applications WO2004 / 012496, WO2004 / 012752, WO2004 / 016106 and WO2007 / 057439);
  • avocado furans as obtainable by the process described in patent application WO 01/21605.
  • This composition also marketed under the trademark Avocadofurane® is particularly suitable for the treatment of inflammation, and to promote healing;
  • Lupeol (FR 2 822 821, FR 2 857 596). This composition is particularly suitable for promoting healing;
  • composition is particularly suitable for the treatment of irritations; - Lupine oil, preferably a sweet white Lupine oil, such as that described in international application WO 98/47479;
  • the Quinoa extract in particular the peptide extract described in the application WO2008 / 080974.
  • This composition is particularly suitable for the treatment of inflammatory conditions and repair of the cutaneous barrier.
  • step c) is preferably performed between production level measurements obtained for nipple skin models of similar or even identical histological compositions.
  • similar histological compositions is meant within the meaning of the present application that the relative proportions of the cell types included in the nipple skin models compared are similar.
  • the relative proportions of the cell types included in the nipple skin model of step a) do not differ by more than 5% from the relative proportions of the cell types included in the model of nipple skin used for obtaining the reference production level of step c).
  • relative proportion of a cell type is meant in the sense of the present application the ratio of the number of cells corresponding to this cell type on the number of total cells included in the skin model.
  • proportion of keratinocytes on the total cell number in the nipple skin model of step a) does not differ by more than 5% from the proportion of keratinocytes on the number of total cells in the nipple skin model used to obtain the baseline production level of step c).
  • identical histological compositions is meant within the meaning of the present application that the relative proportions of the cell types included in the models of nipple skin compared are identical.
  • the relative proportions of the cell types included in the nipple skin model of step a) are identical to the relative proportions of the cell types included in the model of nipple skin used for obtaining the level reference production in step c) where they do not differ by more than 0.1%.
  • the proportion of keratinocytes on the number of total cells in the nipple skin model of step a) does not differ by more than 0.1% from the proportion of keratinocytes on the total cell number in the model of nipple skin used to obtain the reference level of production of step c).
  • step c) is preferably performed between production level measurements obtained for nipple skin models that are of similar size, volume or weight, or even identical.
  • the size, volume, or weight of the nipple skin model of step a) does not differ by more than 5% from the size, and / or volume and / or weight of the nipple skin model used to obtain the reference level of production of step c).
  • the size, volume, or weight of the nipple skin model of step a) does not differ by more than 5% from the size, volume, or weight of the skin model.
  • the size, and the volume and weight of the skin model of step a) does not differ by more than 5% from the size, volume and weight of the nipple skin model used to obtain the reference production level of step c). Even more preferably, the size, and the volume and weight of the skin model of step a) does not differ by more than 0.1% from the size, volume and weight of the nipple skin model used for the treatment. obtaining the reference production level of step c).
  • step b) can normalize the level obtained in step b) and the reference level of step c ) using a normalization factor.
  • This normalization factor may for example be a directly accessible physical marker such as the mass of cells of the sample, or the mass of a cellular constituent, such as the mass of cellular DNA or the mass of cellular proteins. It may also be advantageous to use as a normalization factor the level of production of a gene that is expressed at the same level in all or almost all cells of the body. In other words, according to a particular embodiment of the present invention, the level of production of a household gene is used as normalization factor. According to another embodiment, the level obtained in step b) and the reference level of step c are normalized using the production level, not housekeeping genes, but proteins encoded by them .
  • a household gene is a gene expressed in all cell types, which encodes a protein having a basic function necessary for the survival of all cell types.
  • a list of human housekeeping genes can be found in Eisenberg et al. (Trends in Genetics 19: 362-365, 2003).
  • the household genes according to the invention include, for example, the genes B2M, TFRC, YWHAZ, RPLO, 18S, GUSB, UBC, TBP, GAPDH, PPIA, POLR2A, ACTB, PGK1, HPRT1, IP08 and HMBS.
  • step c Those skilled in the art can thus easily evaluate the effectiveness of the formulation of interest as a function of the comparison of step c). For example, when the level of LDH production measured in step b) is less than or equal to the level of production of these markers obtained in an injured nipple skin model not treated with the formulation of interest, then the formulation is effective on healing the skin of the nipple.
  • the formulation is effective on the inflammation of the skin of the nipple.
  • the formulation is effective on scarring and / or inflammation of the nipple skin.
  • the formulation is effective on scarring and / or inflammation of the nipple skin.
  • the formulation is effective on scarring and / or inflammation of the nipple skin.
  • the Formulation of interest is more effective on healing nipple skin than the reference formulation.
  • the Formulation of interest is more effective on healing nipple skin than the reference formulation.
  • the formulation of interest is more effective on healing the skin of the nipple than the reference formulation.
  • the formulation of interest is more effective on healing the nipple skin than the reference formulation.
  • TGF 61 production level measured in step b
  • the formulation of interest is more effective on healing the nipple skin than the reference formulation.
  • the invention makes it possible to isolate actives or formulations having an effect on the nipple skin and, more particularly, when the latter is injured.
  • the invention thus makes it possible to identify active agents or formulations for treating nipple skin lesions, in particular crevices.
  • the invention therefore also relates to a method of identifying an active ingredient or a formulation for treating nipple skin lesions, in particular crevices, said method comprising the following steps: a) contacting a candidate active or a candidate formulation with a skin model comprising keratinocytes overexpressing filaggrin and further comprising a lesion as described above; b) measuring the level of production of at least one biological marker in the nipple skin model of step a), characterized in that said biological marker is selected from the group consisting of:
  • markers of epidermal integrity preferably being lactate dehydrogenase (LDH);
  • the markers of the epidermal barrier being preferably filaggrin;
  • markers of epidermal inflammation said marker of epidermal inflammation being preferably chosen from cytokines, in particular TNF ⁇ ; and
  • said cicatrization marker being preferably chosen from integrins, in particular integrin 61, and TGF 61; c) comparing the level of production of at least one biological marker obtained in step b) with a reference level of production; d) determining whether said candidate active or said candidate formulation is a formulation for treating nipple skin lesions, particularly crevices, based on the comparison of step c).
  • the candidate active or candidate formulation is an active or a formulation for treating nipple skin lesions, in particular crevices, if said active or said candidate formulation makes it possible to modulate the production of at least one biological marker of the nipple skin. 'invention.
  • This modulation may correspond, depending on the case, and in particular according to the nature of the biological marker, to an increase or decrease in the production of said marker.
  • it may be advantageous to isolate active agents or formulations that stimulate the production of markers correlated with an improvement in healing or formulations that reduce inflammation.
  • the invention thus makes it possible to identify raw materials that improve cicatrization and reduce inflammation.
  • the identification of biological markers according to the invention therefore makes it possible to identify the raw materials that modulate or not the production of these markers.
  • the invention enables the isolation of raw material that can be used in the development of formulations adapted to the injured nipple skin.
  • the subject of the invention is therefore also a process for identifying a raw material that can be used for the preparation of a formulation for treating nipple skin lesions, in particular crevices, said process comprising the following steps: a) contacting a candidate raw material with a skin model comprising keratinocytes overexpressing filaggrin and further comprising a lesion as described above; b) measuring the level of production of at least one biological marker in the nipple skin model of step a), characterized in that said biological marker is selected from the group consisting of:
  • markers of epidermal integrity preferably being lactate dehydrogenase (LDH);
  • the markers of the epidermal barrier being preferably filaggrin;
  • markers of epidermal inflammation said marker of epidermal inflammation being preferably chosen from cytokines, in particular TNF ⁇ ; and
  • step b) comprises measuring the level of production of a combination of biological markers consisting of lactate dehydrogenase (LDH), TNF ⁇ , filaggrin, and integrin 61 and / or the TGF 61.
  • LDH lactate dehydrogenase
  • step b) comprises measuring the level of production of each of the biological markers of a combination of biological markers consisting of lactate dehydrogenase (LDH), TNF ⁇ , filaggrin, and Integrin 61 and / or TGF 61.
  • LDH lactate dehydrogenase
  • TNF ⁇ TNF ⁇
  • filaggrin filaggrin
  • Integrin 61 Integrin 61 and / or TGF 61.
  • the invention also makes it possible to evaluate the safety of certain active ingredients or certain formulations, or to identify among these active ingredients or formulations those or those with optimal safety qualities for damaged nipple skin. Assets or formulations are considered to be safe if they do not adversely affect human health when applied under normal or reasonably foreseeable conditions of use. Those skilled in the art will readily understand that it is sufficient to measure the production of one or more biological markers according to the invention to determine if a formulation can be used on the damaged nipple skin.
  • kits for implementing a method according to the invention comprising the means necessary for measuring the level of production of at least one biological marker chosen from the group consisting of:
  • markers of epidermal integrity preferably being lactate dehydrogenase (LDH);
  • the markers of the epidermal barrier being preferably filaggrin;
  • markers of epidermal inflammation said marker of epidermal inflammation being preferably chosen from cytokines, in particular TNF ⁇ ; and
  • the kit according to the invention comprises the means necessary for measuring the level of production of each of the biological markers of the combination consisting of LDH, TNF ⁇ , filaggrin, integrin 61 and / or TGF 61.
  • the means necessary for measuring the level of production of integrin 61 are antibodies specific for said markers.
  • the means necessary for measuring the level of production of TNF ⁇ , filaggrin, and TGF 61 comprise nucleic probes and / or amplification primers capable of binding at least one of these biological markers. its nucleotide form.
  • Figure 1 Histology of a reconstructed epidermis (at J17) obtained from the batch of keratinocytes chosen for the implementation of the nipple model
  • Figure 2 Gene expression of filaggrin in reconstructed skin after 24 hours of incubation
  • Figure 4 Gene expression of TNFa in reconstructed "nipple” skin 4 hours after injury
  • Figure 5 Gene expression of filaggrin in reconstructed "nipple” skin 24 hours after injury
  • Figure 6 Analysis of the production of integrin 61 in Western Blot in reconstructed skin "nipple" 24 hours after injury
  • FIG. 8 Gene expression of TNF ⁇ in reconstructed epidermis "nipple" 24 hours after injury
  • FIG 9 Gene expression of TGF 61 in reconstructed nipple epidermis 24 hours after injury
  • Figure 11 Visualization in Scanning Electron Microscopy of the surface of reconstructed "nipple” epidermis 4 hours after injury (G x1000)
  • Example 1 Development of a tissue model of nipple for the evaluation of a breastfeeding balm Objectives: Development of a model mimicking the characteristics and morphology of the nipple epithelium to set up an experimental model mimicking cracks and crevices in order to evaluate the effectiveness of cosmetic products as a soothing treatment (anti-inflammatory) and repairer.
  • the nipple is a specialized epidermis that has certain characteristics: hyperkeratinized and thick with suprabasal, granular and extensive cornified layers.
  • filaggrin barrier marker -> different tissue response to external stimuli
  • keratin 14 mitotic marker, indicative of a hyperproliferative state of the tissue
  • the nipple model was obtained by reconstructing an epidermis or total skin (reconstructed epidermis on a collagen matrix) from a lot of keratinocytes overexpressing filaggrin.
  • the batch chosen to produce the nipple model is a lot of keratinocytes overexpressing filaggrin and, after reconstruction of an epidermis, having a large number of granular layers with numerous keratohyaline granules and a large marking of filaggrin.
  • This lot of keratinocytes was used in the following steps to produce tissue models mimicking the nipple.
  • FIG. B A section of a reconstructed epidermis (at J17) obtained from the batch of keratinocytes chosen for the implementation of the nipple model is illustrated in FIG. B. Characterization of a nipple model
  • the nipple model was obtained by reconstruction of a skin (from the batch of keratinocytes defined above) on a collagen matrix containing fibroblasts.
  • a "standard” skin was reconstructed under the same conditions, on a collagen matrix containing fibroblasts, from a batch of standard keratinocytes (not overexpressing filaggrin).
  • This standard fabric is used as a reference to the nipple tissue model.
  • the reconstructed tissues were incubated for 4 hours and 24 hours and then the gene expression of filaggrin was studied by quantitative PCR (qPCR) in real time.
  • nipple skin model expresses much more filaggrin than a standard skin model (+ 260%). These results are illustrated in Figure 2. They confirm that the model put in place is closer to the nipple physiology in terms of filaggrin production.
  • the nipple model was obtained by reconstruction of a skin from a lot of keratinocytes overexpressing filaggrin (as previously described) on a collagen matrix containing fibroblasts.
  • balm A lesion (mechanical injury) on the surface of the reconstructed skin was made to mimic a crack or fissure of the nipple.
  • the product under test (breastfeeding balm) was applied topically immediately after the lesion was made.
  • Any balm formulation can be tested by the method of the invention, such as, for example, formulations 1 to 3 below.
  • the reconstructed skin was then incubated for 4 hours and 24 hours and then the following parameters were analyzed:
  • Integrin 61 production (Western Blot). at. Quantification of the released LDH: The LDH released in the culture medium of the reconstructed skin was quantified by means of a colorimetric test based on the detection of formazan salts whose formation is related to the enzymatic activity of the enzyme. The amount of LDH was determined using a standard curve and is expressed in mU / ml. b. qPCR in real time: The reconstructed skin was lysed and the total RNA extracted and then retro-transcribed in cDNA. The expression of the genes of interest (TNF ⁇ , filaggrin) was analyzed by qPCR in real time and compared to the expression of the GAPDH household gene. vs. Analysis of integrin 61 production by Western blot:
  • the reconstructed skin was lysed in the presence of protease inhibitors.
  • the proteins from the samples were quantified, separated by polyacrylamide gel electrophoresis and then transferred to a nitrocellulose membrane.
  • the membranes were then incubated in the presence of a primary antibody anti-Integrin 61 (Santa Cruz), then in the presence of a labeled secondary antibody (Invitrogen).
  • the chemiluminescence signal was then visualized and quantified, its intensity is proportional to the amount of integrin 61 produced.
  • Cell membranes form a functional membrane around cells. When the cells are damaged, the membranes are altered and become porous, permeable to certain components.
  • the integrity of the membranes was evaluated by measuring the LDH (lactate dehydrogenase) in the extracellular medium.
  • LDH lactate dehydrogenase
  • This enzyme is normally present in the cytosol and is undetectable in the extracellular space in the absence of cellular damage.
  • the lesion of the reconstructed skin induced a significant release of LDH in the extracellular space, testifying to the alteration of the integrity of the cell membranes.
  • Topical application of breastfeeding balm has greatly reduced the release of LDH.
  • the breastfeeding balm protects the integrity of the tissues and accelerates their recovery after the injury.
  • Tumor Necrosis Factor-alpha is an important mediator of inflammation; the inflammatory signal contributes to the amplification of the pain felt.
  • the lesion of the reconstructed skin induced a strong increase (+ 145%) of TNF ⁇ gene expression, representative of the induction of an inflammatory signal.
  • Topical application of breastfeeding balm modulated the overexpression of TNFa induced by the lesion (-28%).
  • Filaggrin has a key role in the barrier function: on the one hand, it aggregates with the keratin fibers of the cytoskeleton, thus reducing the corneocytes in flattened disks, this intracellular network confers resistance and protection to the stratum corneum.
  • filaggrin is the precursor of NMF (Natural Moisturizing Factor or Natural Factor Hydration). NMF is highly hygroscopic and is essential for water retention in corneocytes, it also plays a major role in maintaining skin pH, thus regulating key biochemical events such as protease activity, permeability of the barrier and antimicrobial defenses, functions that are fundamentally linked and co-regulated. The lesion of the reconstructed skin resulted in a sharp decrease (-76%) in the gene expression of filaggrin, showing a significant alteration of the barrier function.
  • Integrins are important factors in the regulation of wound healing. Indeed, on the one hand, integrins allow the migration of keratinocytes, an early stage of the healing process; and on the other hand, they bind to macromolecules of the dermal matrix, thus ensuring contact of the epidermis with the newly synthesized extracellular dermal matrix to allow cohesion and communication between the two compartments (dermis and epidermis) .
  • the integrin 61 subunit is a 130 kDa transmembrane protein that forms non-covalent complexes with different ⁇ -subunits to form functional and active receptors.
  • FIG. 6 Western blot analysis of the integrin 61 production (FIG. 6) shows that: in the control and lesion tissues, a single band of 130 kDa is observed, this band corresponds to the subunit 61 alone of the integrin;
  • subunit 61 in the presence of breastfeeding balm, subunit 61 alone (130 kDa band) decreases and higher molecular weight aggregates (220 kDa) are formed; these aggregates correspond to the formation of complexes (subunit 61 linked to a subunit a) or functional heterodimeric receptors representative of the activation of integrin 61.
  • the breastfeeding balm makes the integrin 61 functional, and thus makes it possible to initiate the healing process.
  • a nipple model obtained by reconstructing a skin from a lot of keratinocytes overexpressing filaggrin was used to evaluate the restorative and anti-inflammatory efficacy of a breastfeeding balm after nipple injury mimicking a crevice.
  • breastfeeding balm has a protective effect (protection of the integrity of cell membranes / LDH), restorative (induction of healing / integrin 61, restoration of the barrier / filaggrin) and soothing (anti-inflammatory / TNFa).
  • breast milk Two cosmetic products designed to treat breast-related cracks were studied: a breastfeeding balm (corresponding to the formula "breastfeeding balm 3") and a lanolin-based ointment (product 2).
  • breast milk described for its restorative properties has also been evaluated.
  • a lesion (mechanical injury) on the surface of the nipple epidermis was performed in order to mimic a crack or fissure of the nipple.
  • test products were then topically applied immediately after completion of the lesion.
  • Reconstructed epidermis was fixed, paraffin embedded and cut.
  • the sections were incubated in the presence of a primary antibody directed against the extracellular domain of Integrin 61 (Santa Cruz), and then in the presence of a secondary antibody conjugated to fluorochrome Alexa Fluor 555 (Invitrogen).
  • the nuclei were counter-stained with DAPI. The markings were visualized by confocal microscopy (Leica).
  • Damaged tissue + product 1 12.45 ⁇ 6.98 -90%
  • Table 5 The lesion of the reconstructed epidemics induced a strong increase in TNF ⁇ gene expression, representative of the induction of an inflammatory signal.
  • Product 1 very clearly inhibited lesion-induced TNF ⁇ overexpression (-76%); product 2 induced a slight decrease (-17%) and breast milk induced a decrease of an intermediate level (-54%).
  • TGF 61 is a growth factor that controls many cellular functions, it is particularly involved in the regulation of healing by stimulating re-epithelization, early phase of the epidermal healing process.
  • Product 1 induced a significant (+ 105%) increase in TGF 61 expression in the injured tissues, product 2 resulted in a small increase (+ 18%) and breast milk induced an increase at an intermediate level (+ 59%).
  • Tissue injury leads to a sharp decrease in the labeling of integrin 61, which has virtually disappeared, which shows an alteration of the receptor.
  • the breastfeeding balm restores the production of integrin 61, thereby restoring intercellular contacts to initiate the repair process.
  • a nipple model obtained by reconstructing an epidermis from a lot of keratinocytes overexpressing filaggrin was used to comparatively evaluate the restorative and anti-inflammatory efficacy of cosmetic products for nipple care in comparison with breastmilk.
  • the reconstructed "nipple" epidermis was injured on the surface to mimic a lesion.
  • E. Study 3 Using a reconstructed nipple epidermis model to visualize the protective and restorative effect of a breastfeeding balm The preceding steps have shown the interest of the nipple epidermis model set up for the evaluation of the activity or the identification of a formulation for treating nipple skin lesions based on the measurement of markers of a repairing, protective or anti-inflammatory effect.
  • a lesion (mechanical injury) on the surface of the nipple epidermis was performed in order to mimic a crack or fissure of the nipple.
  • a breastfeeding balm corresponding to the formulation "breastfeeding balm 3" was then applied topically.
  • the epidermis was fixed, dehydrated and covered with a gold layer before being observed under a scanning electron microscope (Zeiss).
  • Epidermal keratinocytes form a horny envelope during the last stages of their differentiation. This horny envelope ensures the cohesion and strength of the stratum corneum and plays a key role in the barrier function of the epidermis.
  • the Scanning Electron Microscopy observation of the surface of the reconstructed tissues shows in the control tissues an intact, homogeneous and smooth cutaneous surface (which corresponds to the horny envelope) where the cell contour is distinguished (corneocytes, blue arrow). ).
  • the lesion causes a deep wound with destruction of the horny envelope.
  • the application of breastfeeding balm after the injury visibly accelerates the repair of this wound: the surface is more even and smoother, showing the restoration of the horny envelope.

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Abstract

L'invention a pour premier objet un modèle de peau caractérisé en ce qu'il comprend des kératinocytes capables de surexprimer la filaggrine. L'invention a pour deuxième objet un procédé d'évaluation de l'activité in vitro d"une formulation ou d'au moins un actif sur la cicatrisation de la peau du mamelon et/ou sur la diminution de l'inflammation de la peau du mamelon, caractérisé en ce que ledit procédé comprend au moins les étapes suivantes: a) mettre en contact dudit actif ou de ladite formulation un modèle de peau comprenant des kératinocytes surexprimant la filaggrine et comprenant en outre une lésion; b) mesurer le niveau de production d'au moins un marqueur biologique dans le modèle de peau de mamelon de l'étape a), caractérisé en ce que ledit marqueur biologique peut être choisi parmi la lactate déshydrogénase (LDH), le TNFα, la filaggrine, le TGFß1 et l'intégrine ß1; c) comparaison du niveau de production d'au moins un marqueur biologique obtenu à l'étape b) avec un niveau de production de référence; dévaluation de l'efficacité dudit actif ou de ladite formulation en fonction de la comparaison de l'étape c).

Description

MODELE DE PEAU DE MAMMELON RECONSTITUE
La présente invention concerne un modèle de peau pouvant avantageusement être utilisé pour étudier les peaux riches en filaggrine et en kératine, telles que par exemple la peau de mamelon ou la peau au niveau des lèvres. La présente invention comprend aussi un procédé pour évaluer l'effet de produits topiques cosmétiques, pharmaceutiques ou dermatologiques sur la peau du mamelon, en particulier sur la cicatrisation de la peau du mamelon et sur la modulation de l'inflammation de la peau du mamelon, de préférence utilisant ledit modèle de peau, ainsi que des kits pour la mise en œuvre du procédé.
La peau du mamelon peut être sujette à des lésions dermatologiques particulières, appelées crevasses. La crevasse peut être définie d'un point de vue médical comme une ulcération linéaire profonde. Elle est le plus souvent associée à une inflammation.
Ce type de lésions est par exemple retrouvé dans le cas d'eczéma ou de maladie de Paget du sein. Le plus souvent cependant, les crevasses sont observées chez les femmes dans les périodes d'allaitement. Les crevasses du mamelon sont des lésions apparaissant sous la forme de petites brèches de la peau et situées au niveau des mamelons de la femme. Elles apparaissent essentiellement lors des premiers jours de l'allaitement. Le plus souvent, les crevasses résultent d'un mauvais positionnement du bébé lors des tétées, ou d'une prise de sein incorrecte.
Tandis que les crevasses liées à l'eczéma ou à la maladie de Paget du sein nécessitent un traitement thérapeutique particulier, les crevasses liées à l'allaitement sont bénignes et disparaîtront d'elles-mêmes avec l'arrêt de l'allaitement. Il n'en reste pas moins que ces crevasses peuvent s'accompagner de désagréments tels que des mamelons sensibles, voire irrités, du fait de l'inflammation présente. Des complications sont aussi possibles, telles qu'un léger écoulement de sang lors de l'allaitement, ainsi que, dans des cas plus rares, une surinfection bactérienne.
Restaurer l'intégrité de la peau du mamelon reste la mesure la plus efficace pour prévenir ces désagréments. Nombreux sont donc ceux qui cherchent à développer des produits cosmétiques ou thérapeutiques efficaces qui permettent de soulager rapidement les irritations, faciliter la résorption de ces crevasses et, de cette façon, prévenir toute complication éventuelle.
Cependant, une des étapes limitantes à l'identification et à la caractérisation de ces nouveaux produits est l'évaluation de leur efficacité pour l'utilisation recherchée. Pour permettre le développement rapide de produits cosmétiques ou thérapeutiques sûrs et efficaces, des modèles in vitro adaptés et prédictifs sont nécessaires.
De nombreux modèles de peau humaine ont été développés et sont utilisés dans des tests prédictifs de l'activité cosmétique ou thérapeutique d'agents ou de compositions topiques. Néanmoins, ces modèles ne sont pas adaptés à l'étude de la physiologie et des pathologies de la peau du mamelon. Celle-ci en effet présente des spécificités moléculaires et histologiques qui impactent son fonctionnement.
Le mamelon est un épiderme spécialisé qui possède certaines caractéristiques : hyperkératinisé et épais avec des couches suprabasales, granuleuses et cornifiées étendues. En comparaison avec la peau « normale », par exemple la peau au niveau du ventre, la peau du mamelon est hyperkératinisée avec une surexpression et une distribution spécifique de certains marqueurs tels que la filaggrine et la kératine 14 (Mahler B, Cells Tissues Organs, 176(4): 169-77, 2004).
Il a en effet été remarqué chez la souris que la kératine 14, qui est retrouvée dans la partie basale des kératinocytes au niveau de la peau du ventre, est présente dans la partie apicale des kératinocytes au niveau de la peau du mamelon (Panchal et al. , BMC Developmental Biology, 7: 105, 2007). L'augmentation du niveau de kératine 14, et sa distribution particulière révèlent un tissu dont les cellules prolifèrent et donc qui se renouvèle rapidement. En outre, la filaggrine est un marqueur bien connu qui confère résistance et protection à la peau et ainsi joue un rôle déterminant dans la fonction barrière. L'augmentation du niveau de filaggrine dans la peau du mamelon est ainsi susceptible de jouer un rôle dans sa capacité de cicatrisation.
Malheureusement, aucun modèle se rapprochant de la peau de mamelon n'a été proposé à ce jour. II existe toujours un besoin pour un modèle qui reproduise les caractéristiques de la peau du mamelon. Il existe donc un besoin pour des modèles in vitro de peau de mamelon, ainsi que des procédés in vitro permettant de tester l'activité cosmétique ou thérapeutique d'agents ou de compositions topiques sur cet épiderme particulier.
Les inventeurs ont mis au point un modèle de peau in vitro spécialisé permettant de reproduire les caractéristiques biologiques de la peau du mamelon, et pouvant notamment être utilisé pour cribler des actifs ou encore des formulations cosmétiques ou pharmacologiques d'intérêts. Le modèle de l'invention a pour particularité de se rapprocher de la véritable composition de la peau du mamelon en ce qu'il comprend une quantité importante des marqueurs biologiques filaggrine et kératine 14. Le modèle de l'invention comprend en effet des kératinocytes surexprimant de la filaggrine, et avantageusement, de la kératine 14. Ainsi, le modèle de peau de l'invention comprend des kératinocytes particuliers, qui présentent la particularité d'exprimer de la filaggrine à un niveau supérieur à celui habituellement observé dans des cultures de kératinocytes. Par ailleurs, la production du modèle de l'invention fait intervenir des facteurs de croissance connus pour stimuler l'expression de kératine 14.
Le modèle de peau de l'invention est donc particulièrement simple à mettre en œuvre. En outre, il ne nécessite pas d'utiliser une lignée cellulaire commerciale particulière, et s'avère versatile et adaptable, pourvu que les kératinocytes utilisés présentent les caractéristiques fonctionnelles requises.
Les caractéristiques particulières du modèle de l'invention permettent d'étudier in vitro les particularités de la peau de mamelon. En particulier, il est possible d'étudier les processus de cicatrisation et d'inflammation de la peau de mamelon à partir du modèle in vitro de l'invention, par exemple après avoir induit une lésion sur le modèle.
L'invention a pour premier objet un modèle de peau caractérisé/ spécialisé en ce qu'il comprend des kératinocytes surexprimant la filaggrine.
Ainsi, le modèle de peau peut être tout modèle tissulaire comprenant des kératinocytes et dans lequel les kératinocytes surexpriment la filaggrine. Ainsi, le modèle de peau de l'invention peut être tout modèle tissulaire comprenant des kératinocytes. Le modèle de peau de l'invention n'est donc pas strictement limité à un type de modèle tissulaire particulier, et peut être adapté aux besoins de l'homme du métier.
Par « modèle tissulaire comprenant des kératinocytes», on entend au sens de l'invention toute culture in vitro de cellules cutanées comprenant au moins des kératinocytes. Ainsi, les termes « modèle tissulaire comprenant des kératinocytes» comprennent les cultures de kératinocytes en monocouche, les cultures de cellules cutanées en bicouche comprenant des kératinocytes, ainsi que les modèles tissulaires tels que les cultures de peaux reconstruites comprenant des kératinocytes. Avantageusement, le modèle de peau comprend les cultures de peau reconstruite comprenant des kératinocytes.
Selon l'invention, les cellules cutanées comprennent au moins un type de cellules habituellement présentes dans l'hypoderme, le derme et/ou l'épiderme. Ces cellules comprennent ainsi, entre autres, des kératinocytes, des mélanocytes, des fibroblastes, des adipocytes, des cellules endothéliales, des mastocytes, des cellules de Langerhans et/ou des cellules de Merkel. De façon préférentielle, les cellules cutanées selon l'invention comprennent au moins des kératinocytes et/ou des fibroblastes.
Les cultures de cellules cutanées en monocouche ou en bicouche sont connues et utilisées depuis très longtemps, et ne nécessitent pas de description détaillée.
Par ailleurs, de nombreux modèles de peaux reconstruites sont à la disposition de l'homme du métier (qui pourra se référer en particulier à Rosdy et al., In Vitro Toxicol., 10(1 ) : 39-47, 1997 ; Ponec et al., J Invest Dermatol., 109(3) : 348-355, 1997 ; Ponec et al., Int J Pharm., 203(1 -2) : 211 -225, 2000; Schmalz et al. , Eur J Oral Sci. , 108(5) : 442-448, 2000 ; Black et al. , Tissue Eng, 11 (5-6) : 723-733, 2005 ; Dongari-Batgtzoglou et Kashleva, Nat Protoc, 1 (4) : 2012-2018, 2006 ; Bechtoille et al., Tissue Eng, 13(1 1 ) : 2667-2679, 2007 ; Vrana et al., Invest Ophthalmol Vis Sci, 49(12) : 5325-5331 , 2008 ; Kinicoglu et al., Biomaterials, 30(32) : 6418- 6425, 2009 ; Auxenfans et al., Eur J Dermatol, 19(2) : 107-113, 2009 ; Kinicoglu et al., Biomaterials, 32(25) : 5756-5764, 2011 ; Costin et al., Altern Lab Anim, 39(4) : 317-337, 2011 ; Auxenfans et al., J Tissue Eng Regen Med, 6(7) : 512-518, 2012 ; Lequeux et al., Skin Pharmacol Physiol, 25(1 ) : 47-55, 2012; EP 29 678 ; EP 285 471 ; EP 789 074 ; EP 1 451 302 B1 ; EP 1 878 790 B1 ; EP 1 974 718 ; US 2007/0148,771 ; US 2010/0,099,576 ; WO 02/070729 ; WO 2006/063864 ; WO 2006/063865 ; WO 2007/064305).
Préférablement, le modèle de peau reconstruite est sélectionné dans le groupe comprenant les modèles d'épiderme constitués principalement de kératinocytes, les modèles de peau comprenant un derme et un épiderme, et les modèles de peau comprenant un hypoderme, un derme, et un épiderme. Les modèles comprenant au moins un épiderme forment des épithélia stratifiés comprenant les couches caractéristiques du tissu considéré. Par exemple, on peut identifier dans les modèles d'épiderme une couche basale (stratum basale), une couche épineuse (stratum spinosum), une couche granuleuse (stratum granulosum), et une couche cornée (stratum corneum).
Avantageusement, le modèle de peau de l'invention est un modèle d'épiderme comprenant un support matriciel de préférence choisi parmi : un support inerte choisi parmi le groupe consistant d'une membrane synthétique semi- perméable, en particulier une membrane de nitrocellulose semi-perméable, une membrane de nylon semi- perméable, une membrane ou une éponge de téflon, une membrane de polycarbonate ou de polyéthylène, polypropylène, de polyéthylène téréphtalate (PET) semi- perméable, une membrane inorganique Anopore semi-perméable, d'acétate ou d'ester de cellulose (HATF), une membrane Biopore-CM semi-perméable, une membrane de polyester semi-perméable.
Dans ce groupe on trouve les modèles Epiderme reconstruit (Skinethic®) ainsi que le modèle EpiDerm®, (Mattek Corporation) ; - un film, une membrane ou une matrice à base d'acide hyaluronique et/ou de collagène et/ou de fibronectine et/ou de fibrine.
Dans ce groupe on peut citer particulièrement les modèles : Laserskin® (Fidia Advanced Biopolymers), Episkin® (L'Oréal).
Ces modèles peuvent en outre être ensemencés ou non par des fibroblastes dans la partie dermique.
Avantageusement, sont introduites dans le modèle de peau de l'invention, des cellules pigmentaires, des cellules immunocompétentes, des cellules nerveuses, de préférence les cellules immunocompétentes sont des cellules de Langerhans. De façon générale, lorsque le modèle de peau de l'invention est un modèle d'épiderme, le support matriciel est produit et ensuite ensemencé par les kératinocytes de l'invention pour reconstruire l'épiderme et obtenir finalement une peau reconstruite comprenant des kératinocytes capables de surexprimer la filaggrine.
Dans le contexte de l'invention, le terme « kératinocytes » désigne à la fois des kératinocytes primaires et des kératinocytes immortalisés, comme par exemple des kératinocytes provenant de lignées cellulaires. Des lignées de cellules de kératinocytes sont bien connues de l'homme de l'art et comprennent par exemple la lignée de kératinocytes humains HaCaT.
De préférence, les kératinocytes sont d'origine humaine. Par exemple, les kératinocytes proviennent d'échantillons biologiques provenant d'un sujet humain.
De préférence, les kératinocytes utilisés dans le modèle de peau sont obtenus de sujets sains, quelle que soit leur origine.
Au sens de la demande, on entend par « sujet sain » un sujet exempt de pathologies cutanées. De préférence, on entend par « sujet sains » des sujets ne présentant pas de lésion cutanée, en particulier ne présentant pas d'atrophie, de bulle, de dyschromie, d'érythème (et exanthème), de kératose, de macule, de nodule, de papule, de purpura, de pustule, de squame, de sclérose, de tumeur, d'ulcération, de condylome, de vésicule. Dans un mode de réalisation préféré, les kératinocytes utilisés dans le modèle de peau sont obtenus d'échantillons biologiques sains provenant d'un sujet humain.
Au sens de la demande, on entend par « échantillons biologiques sains » des échantillons biologiques ne présentant pas de lésion cutanée, en particulier ne présentant pas d'atrophie, de bulle, de dyschromie, d'érythème (et exanthème), de kératose, de macule, de nodule, de papule, de purpura, de pustule, de squame, de sclérose, de tumeur, d'ulcération, de condylome, de vésicule.
Les kératinocytes humains peuvent en particulier être isolés à partir d'échantillons de peau, par des techniques de culture cellulaire bien connues de l'homme du métier. Par exemple, les kératinocytes peuvent être des kératinocytes obtenus à partir d'expiant de tissu cutané, en particulier des échantillons d'épithélium malpighien kératinisé. Les kératinocytes humains peuvent ensuite facilement être cultivés in vitro selon des techniques bien connues. L'homme du métier pourra en particulier se référer à Leigh et al. (Arch Dermatol Res. ;286(1 ): 53-61 .1994). Par « explant » ou « explant de peau », on entend ici un prélèvement de cellules ou de tissu cutané, lequel peut être réalisé dans un but thérapeutique ou pour effectuer des analyses.
En particulier, un explant peut être obtenu lors d'une exérèse chirurgicale. Par « exérèse », on entend ici une intervention chirurgicale consistant à découper (exciser) une partie plus ou moins large ou profonde de la peau pour en traiter une anomalie ou une excroissance. On procède par exemple à une exérèse soit pour retirer une tumeur cancéreuse ou suspecte de l'être, soit pour traiter une anomalie bénigne de la peau qui est gênante, que ce soit pour des raisons fonctionnelles ou esthétiques. Une exérèse au sens de l'invention inclut par exemple les échantillons de peau obtenus après chirurgie plastique (plastie mammaire, abdominale, lifting, prélèvement préputial, otoplastie, c'est-à-dire recollement d'oreille, syndactylie ou doigt surnuméraire, etc. ).
Un explant peut aussi être obtenu par biopsie. Par « biopsie », on entend ici un prélèvement de cellules ou tissu cutané réalisé à des fins d'analyse. Plusieurs types de procédures de biopsies sont connus et pratiqués dans le domaine. Les types les plus communs comprennent (1 ) la biopsie incisionnelle, dans laquelle seul un échantillon du tissu est prélevé; (2) la biopsie excisionnelle (ou biopsie chirurgicale) qui consiste en l'ablation totale d'une masse tumorale, réalisant ainsi un geste thérapeutique et diagnostique, et (3) la biopsie à l'aiguille, dans laquelle un échantillon de tissu est prélevé avec une aiguille, celle-ci pouvant être large ou fine. D'autres types de biopsie existent, comme par exemple le frottis ou le curettage, et sont aussi englobés dans la présente invention.
Par « kératinocytes immortalisés » on entend au sens de la présente demande des kératinocytes qui se divisent au-delà de la limite de Hayflick. Ces cellules ont ainsi acquis la capacité de se multiplier indéfiniment, soit suite à une mutation aléatoire ou à une modification délibérée.
Il est bien connu que les cellules normales ne peuvent se diviser qu'un nombre déterminé de fois. Une fois cette limite atteinte, les cellules deviennent sénescentes puis meurent. La limite de Hayflick correspond au nombre de divisions qui peuvent être effectuées par une cellule normale, c'est-à-dire une cellule ne pouvant se diviser qu'un nombre déterminé de fois, avant de cesser de se diviser. Au sens de la présente demande, la limite de Hayflick correspond au nombre de divisions qui peuvent être effectuées par un kératinocyte normal avant de cesser de se diviser.
Les kératinocytes peuvent être immortalisés suite à des anomalies particulières, comme c'est le cas par exemple des cellules cancéreuses, ou suite à la mise en œuvre d'une technique d'immortalisation. Les techniques d'immortalisation sont bien connues de l'homme de l'art qui peut facilement choisir parmi celles-ci la technique la mieux adaptée à son objectif. Par exemple, et sans limiter l'invention à ces exemples, on peut citer comme technique d'immortalisation la transformation par un oncogène, en particulier par l'antigène T de SV40, la protéine Ras, la protéine myc, la protéine Abl. Comme autres techniques on peut citer par exemple la surexpression d'une transcriptase inverse de la télomérase, par exemple hTERT, ou la culture des kératinocytes à confluence de plusieurs passages. Toutes ces techniques sont des techniques de biologie cellulaire classiques qui n'ont pas besoin d'être détaillées ici.
Au sens de la présente invention, le marqueur biologique filaggrine comprend le gène FLG humain (référence NCBI : Gene ID: 2312) et les produits de ce gène. Dans un mode de réalisation particulier, le marqueur biologique filaggrine consiste en le gène FLG humain (référence NCBI : Gene ID: 2312). Selon un autre mode de réalisation, le marqueur biologique filaggrine consiste en l'un des produits du gène FLG humain. Au sens de la présente invention, les produits du gène FLG humain comprennent le transcrit du gène FLG humain et la protéine filaggrine humaine. Par « transcrit du gène FLG humain » on entend au sens de l'invention le polynucléotide dont la séquence a pour référence NCBI NM_002016.1. Par « protéine filaggrine humaine », on entend au sens de l'invention la protéine dont la séquence peptidique est la séquence de référence NCBI NP_002007.1. Par « kératinocytes surexprimant la filaggrine », on entend au sens de la présente invention, des kératinocytes présentant de façon constitutive un niveau d'expression du marqueur biologique filaggrine supérieur à un niveau d'expression de référence.
Au sens de l'invention, le niveau d'expression du marqueur biologique filaggrine de référence correspond à un niveau d'expression de kératinocytes de référence, tels que par exemple des kératinocytes primaires issus de la même espèce que les kératinocytes analysés.
Au sens de l'invention, le niveau d'expression du marqueur biologique filaggrine dans les kératinocytes correspond à la quantité des transcrits du gène FLG humain, en particulier du polynucléotide dont la séquence a pour référence NCBI NM_002016.1 , dans lesdits kératinocytes. Préférentiellement, le niveau d'expression du marqueur biologique filaggrine correspond au niveau d'expression du polynucléotide dont la séquence a pour référence NCBI NM_002016.1 .
N'importe quelle technologie habituellement utilisée par l'homme du métier peut être mise en œuvre pour mesurer le niveau d'expression du marqueur biologique filaggrine dans les kératinocytes de l'invention. Comme expliqué plus loin, l'homme du métier pourra en particulier utiliser les procédés d'analyse du niveau d'expression des gènes au niveau nucléotidique, comme par exemple l'analyse du transcriptome. Ces méthodes incluent des méthodes bien connues telles que la RT-PCR ou la RT-PCR quantitative ou encore les puces d'acides nucléiques, et sont détaillés ci-après. Les kératinocytes surexprimant la filaggrine peuvent aisément être obtenus par l'homme du métier par des techniques classiques de sélection habituellement utilisées en culture cellulaire. De façon générale, à chacun des passages de cellules habituellement réalisés selon les techniques classiques de culture cellulaire, l'homme du métier isolera les kératinocytes dans lesquels le niveau de filaggrine est particulièrement important. Après plusieurs passages, l'homme du métier obtiendra ainsi des kératinocytes surexprimant la filaggrine. Pour plus de détails concernant les méthodes permettant de sélectionner des kératinocytes possédant des caractéristiques particulières, l'homme du métier pourra en particulier se référer à Martin et al. (Eur J Dermatol. Suppl 2: 12-20. 201 1 ).
Lors de la production du modèle de peau, il est possible d'utiliser dans le milieu de culture des cellules, des facteurs de croissances capables d'induire la surexpression de la kératine 14. Ce type de facteur de croissance est bien connu de l'homme du métier, et comprend par exemple le sérum fœtal de veau (SVF) et le facteur de croissance des fibroblastes b (bFGF). Préférentiellement, le milieu de culture du modèle de peau de l'invention comprend au moins 5% de sérum fœtal de veau, en volume par rapport au volume total du milieu de culture. De cette manière, les kératinocytes du modèle de peau résultant surexpriment la kératine 14.
Préférentiellement, le modèle de peau de l'invention comprend des kératinocytes surexprimant la kératine 14.
Par « kératinocytes surexprimant la kératine 14», on entend au sens de la présente invention, des kératinocytes présentant un niveau d'expression constitutif du marqueur biologique kératine 14 supérieur à un niveau d'expression de référence.
Au sens de l'invention, le niveau d'expression du marqueur biologique kératine 14 de référence correspond à un niveau d'expression moyen pour des kératinocytes.
Au sens de l'invention, le niveau d'expression du marqueur biologique kératine 14 dans les kératinocytes correspond à la quantité des transcrits du gène KRT14 humain dont la séquence a pour référence NCBI 3861 , en particulier du polynucléotide dont la séquence a pour référence NCBI NM_000526, dans lesdits kératinocytes. Préférentiellement, le niveau d'expression du marqueur biologique kératine 14 correspond au niveau d'expression du polynucléotide dont la séquence a pour référence NCBI NM_002016.1.
Là encore, n'importe quelle technologie habituellement utilisée par l'homme du métier peut être mise en œuvre pour mesurer le niveau d'expression du marqueur biologique kératine 14 dans le modèle de peau comprenant des kératinocytes de l'invention. Le modèle de peau de l'invention comprend donc des kératinocytes particuliers, qui surexpriment des marqueurs clés, la filaggrine et la kératine 14, qui sont retrouvés dans la peau du mamelon.
Le modèle de l'invention permet ainsi de reproduire les tissus très riches en filaggrine, tels que la peau du mamelon ou la peau des lèvres chez l'Homme. Ce modèle peut donc être utilisé pour étudier ce type de tissus, ou l'effet de certaines formulations ou de certains actifs sur ce type de tissus. Selon un mode de réalisation de l'invention, le modèle de l'invention est utilisé pour étudier la peau du mamelon. Ainsi, un objet de l'invention est l'utilisation d'un modèle de peau selon l'invention, pour étudier la peau du mamelon.
En outre, l'homme de l'art peut aussi adapter le modèle de l'invention pour des usages spécifiques. Par exemple, le modèle de l'invention peut être modifié de façon à présenter une lésion. Ce type de modèle modifié peut ainsi par exemple être utilisé pour étudier les lésions ou les phénomènes de cicatrisation dans des tissus comme la peau des lèvres ou la peau du mamelon.
Ainsi, dans un mode de réalisation de l'invention, le modèle de peau présente une lésion. De préférence, la lésion est une lésion mimant une crevasse. Comme cela est bien connu de l'homme du métier, les crevasses peuvent être définies d'un point de vue médical comme une ulcération linéaire profonde, possiblement associée à une inflammation. Les crevasses apparaissent sous la forme de petites brèches de la peau.
Ainsi, au sens de la demande, une lésion mimant une crevasse est une lésion reproduisant une ulcération linéaire, de préférence une ulcération linéaire profonde. De préférence, une lésion mimant une crevasse au sens de l'invention se présente sous la forme d 'une ou de plusieurs brèches du modèle de peau.
Afin d 'obtenir un tel modèle, l'homme du métier pourra choisir de provoquer une lésion sur un modèle de peau de l'invention, par exemple de façon mécanique. Par exemple, l'homme du métier pourra provoquer une lésion mécanique profonde simplement en utilisant un objet coupant, tel qu'un scalpel ; ou une lésion superficielle en utilisant tout autre objet non tranchant mais permettant de réaliser une abrasion mécanique de surface. Ce type d 'outil permet en effet de reproduire au mieux les crevasses observées in vivo.
Les lésions de la peau du mamelon cicatrisent difficilement lors de l'allaitement, et sont en outre très inflammées, et donc très douloureuses. Ainsi, il peut être intéressant de chercher à évaluer l'efficacité de formulations ou encore d 'actifs sur la cicatrisation de l'épiderme lésé, ou encore sur la diminution de l'inflammation associée aux lésions. Le modèle de l'invention peut ainsi avantageusement être utilisé dans des procédés d'évaluation de l'activité in vitro d 'une formulation ou bien d 'un actif, en particulier réalisés en vue de tester l'activité de ladite formulation sur la cicatrisation de la peau du mamelon ou sur la diminution de l'inflammation de la peau du mamelon. Le modèle de l'invention peut en outre être utilisé dans des procédés d 'identification d'une formulation ou d'un actif adapté à la peau du mamelon lésée, et plus particulièrement permettant de traiter les crevasses du mamelon.
Les inventeurs ont en particulier identifié des marqueurs impliqués dans différents aspects de la cicatrisation ainsi que des marqueurs impliqués dans l'inflammation cutanée. Ainsi, les marqueurs sélectionnés par les inventeurs permettent d 'évaluer l'effet de formulations sur des problématiques différentes mais complémentaires associées aux lésions cutanées. L'utilisation de l'ensemble de ces marqueurs permet donc d'obtenir une évaluation plus complète et exhaustive de l'activité de la formulation ou de l'actif d'intérêt sur la réparation des lésions, mais aussi sur la diminution de l'inflammation de la peau du mamelon pendant ce processus.
Le modèle de peau de l'invention permet d'observer une variation de la production de ces marqueurs, notamment la lactate déshydrogénase (LDH), le TNFa, la filaggrine, l'intégrine 61 et le TGF 61.
Les procédés de l'invention, en utilisant la mesure du niveau de production d'au moins un de ces marqueurs, permettent donc de suivre l'effet d'une formulation sur la cicatrisation de la peau du mamelon. En fonction des marqueurs biologiques observés, le procédé d'évaluation de l'invention permet non seulement de déterminer si la formulation stimule la cicatrisation, mais aussi s'il contribue à diminuer l'inflammation présente dans les lésions, en particulier dans les crevasses.
Les formulations et compositions cosmétiques et pharmaceutiques, comprennent un grand nombre de composés, dont certains sont utilisés afin d'obtenir une texture et/ou une viscosité particulière. Ces composés peuvent néanmoins avoir un effet non désiré sur les lésions, par exemple un effet pro-inflammatoire. Au contraire d'autres actifs peuvent présenter des propriétés intéressantes et avoir un effet bénéfique sur les processus de cicatrisation ou sur l'inflammation.
Les méthodes de l'invention sont aussi adaptées à l'évaluation de l'activité de principes actifs isolés. L'invention permet ainsi de déterminer de façon précise quels actifs ont un effet avantageux sur la cicatrisation de la peau du mamelon.
L'invention a ainsi pour deuxième objet un procédé d'évaluation de l'activité in vitro d'un actif ou une formulation sur la cicatrisation de la peau du mamelon et/ou sur la diminution de l'inflammation de la peau du mamelon, caractérisé en ce que ledit procédé comprend au moins les étapes suivantes: a) mettre en contact ledit actif ou ladite formulation avec un modèle de peau comprenant des kératinocytes surexprimant la filaggrine et comprenant en outre une lésion, tel que décrit plus haut; b) mesurer le niveau de production d'au moins un marqueur biologique dans le modèle de peau de l'étape a), caractérisé en ce que ledit marqueur biologique est choisi parmi le groupe consistant en: - les marqueurs de l'intégrité épidermique, ledit marqueur de l'intégrité épidermique étant de préférence la lactate déshydrogénase (LDH); et
- les marqueurs de la barrière épidermique, ledit marqueur de la barrière épidermique étant de préférence la filaggrine; et
- les marqueurs de l'inflammation épidermique, ledit marqueur de l'inflammation épidermique étant de préférence choisi parmi les cytokines, en particulier le TNFa; et
- les marqueurs de la cicatrisation, ledit marqueur de la cicatrisation étant de préférence choisi parmi les intégrines, en particulier l'intégrine 61 , et le TGF 61 ; c) comparer le niveau de production d'au moins un marqueur biologique obtenu à l'étape b) avec un niveau de production de référence ; d) évaluer l'efficacité dudit actif ou de ladite formulation sur la cicatrisation de la peau du mamelon et/ou sur la diminution de l'inflammation de la peau du mamelon en fonction de la comparaison de l'étape c).
Comme cela est bien connu de l'homme du métier, la cicatrisation de la peau correspond à un phénomène biologique naturel de réparation de lésions localisées des tissus. Ce phénomène permet à la peau de recouvrer son intégrité physique après une lésion.
Selon un mode de réalisation, dans un premier temps, l'actif d'intérêt est mis en contact avec un modèle de peau comprenant des kératinocytes surexprimant la filaggrine et comprenant en outre une lésion selon l'invention. La mise en contact de l'actif d'intérêt avec le modèle de peau de mamelon lésé peut être faite directement, si la formulation de l'actif le permet. Dans certains cas, il pourra être avantageux de formuler l'actif d'intérêt, par exemple de façon à obtenir une composition liquide, afin de faciliter sa mise en contact avec le modèle de peau de mamelon lésé.
Ainsi, selon un mode de réalisation de l'invention, le procédé comprend en outre une étape de formulation de l'actif, notamment sous forme d'une solution liquide, en particulier aqueuse, préalablement à l'étape de mise en contact dudit actif avec un modèle de peau de mamelon lésé.
Selon un autre mode de réalisation, dans un premier temps, la formulation d'intérêt est mise en contact avec un modèle de peau comprenant des kératinocytes surexprimant la filaggrine et comprenant en outre une lésion selon l'invention. La mise en contact de la formulation d'intérêt avec le modèle de peau de l'invention peut être faite directement. Après avoir mis en contact l'actif ou la formulation d'intérêt et le modèle de peau de l'invention, l'homme du métier pourra procéder à la mesure du niveau de production des marqueurs biologiques de l'invention dans le modèle de peau ainsi traité.
Par « marqueur biologique », on entend au sens de la présente demande une caractéristique qui est objectivement mesurée et évaluée comme indicateur de processus biologiques normaux, de processus pathogéniques, ou de réponses pharmacologiques à une intervention thérapeutique. Un marqueur biologique désigne donc toute une gamme de substances et de paramètre divers. Par exemple, un marqueur biologique peut être une substance dont la détection indique un état pathologique particulier (par exemple la présence de la protéine C activée en tant que marqueur d'une infection), ou au contraire une substance dont la détection indique un état physiologique spécifique. Le marqueur biologique selon l'invention est préférentiellement un gène, les produits d ' un gène tels que ses transcrits et les peptides issus de ses transcrits, un lipide, un sucre ou un métabolite.
Au sens de la présente invention, le marqueur biologique est un gène, les produits d'un gène tels que des transcrits ou des peptides, un lipide, un sucre ou un métabolite dont les changements de production, en particulier de niveau de production, corrèlent avec un état physiologique de la peau de de mamelon.
Selon l'invention, le marqueur biologique est choisi parmi les marqueurs de l'intégrité épidermique, les marqueurs de la barrière épidermique, les marqueurs de l'inflammation épidermique.
Selon un mode de réalisation préféré, le marqueur de l'intégrité épidermique est la lactate déshydrogénase (LDH).
Selon l'invention, le marqueur de la barrière épidermique est choisi parmi la filaggrine, les kératines, en particulier la kératine 1 et la kératine 10, l'involucrine, la loricrine, les transglutaminases, les céramides, le cholestérol et les acides gras.
Selon un mode de réalisation préféré, le marqueur de la barrière épidermique est la filaggrine.
Selon l'invention, le marqueur de l'inflammation épidermique est choisi parmi les cytokines, en particulier le TNF a et les interleukines 1 , 6 et 8 ; les leukotriènes et les prostaglandines. Selon un mode de réalisation préféré, le marqueur de l'inflammation épidermique est choisi parmi les cytokines, en particulier le TNFa. Selon l'invention, le marqueur de la cicatrisation est choisi parmi les intégrines, en particulier l'intégrine 61 , l'intégrine 64, l'intégrine al, l'intégrine a3, l'intégrine a6, la laminine 5, les métalloprotéinases, en particulier les métalloprotéinases MMP1 , MMP2 et MMP9, les facteurs de croissance, en particulier le TGF 61 (Transforming Growth Factor 81), le KGF (Keratinocyte Growth Factor), l'EGF (Epidermal Growth Factor), l'interféron gamma.
Selon un mode de réalisation préféré, le marqueur de la cicatrisation est de préférence choisi parmi les intégrines, en particulier l'intégrine 61 , et le TGF 61 .
Ces marqueurs ont été sélectionnés par les inventeurs car ils sont spécifiquement associés à l'intégrité de la peau du mamelon. Dans le processus de cicatrisation, le TNFa est libéré dans la lésion et favorise la migration et l'activation des polynucléaires neutrophiles et des macrophages, qui sont nécessaires à la réparation tissulaire. Cependant, ce marqueur biologique est un facteur de croissance bien connu pour son effet inflammatoire. Or, le signal inflammatoire contribue à la douleur ressentie dans le cas de crevasse au niveau de la peau du mamelon. Ainsi, une baisse du niveau de production du TNFa au niveau des crevasses de la peau de mamelon peut être corrélée à une baisse de l'inflammation, et par conséquent un apaisement des tiraillements dus aux crevasses. Les variations de niveau de production de ce marqueur permettent ainsi d'évaluer l'effet anti-inflammatoire de l'actif d'intérêt au cours du processus de cicatrisation, et donc l'effet apaisant de l'actif sur les crevasses. Au sens de la présente invention, le marqueur biologique TNFa comprend le gène TNFa humain (référence NCBI : Gene ID: 7124), ainsi que les produits de ce gène. Dans un mode de réalisation particulier, le marqueur biologique TNFa consiste en le gène TNFa humain (référence NCBI : Gene ID: 7124). Selon un autre mode de réalisation, le marqueur biologique TNFa consiste en l'un des produits du gène TNFa humain. Les produits du gène TNFa humain comprennent le transcrit du gène TNFa humain et la protéine TNFa humaine. Au sens de la présente invention, le transcrit du gène TNFa humain est le polynucléotide dont la séquence a pour référence NCBI : NM_000594. Par protéine TNFa humaine, on entend au sens de l'invention la protéine dont la séquence peptidique est la séquence de référence NCBI : NP_000585. Par « TNFa sous sa forme peptidique », on entend selon l'invention un peptide dont la séquence peptidique comprend la séquence peptidique de la protéine TNFa humaine (référence NCBI : NP_000585). Par « TNFa sous sa forme nucléotidique », on entend selon l'invention au moins un polynucléotide dont la séquence comprend la séquence du transcrit du gène TNFa humain (référence NCBI : Gene ID: 7124). Au sens de la présente invention, le transcrit du gène TNFa humain est le polypeptide dont la séquence a pour référence NCBI : NM_000594. La LDH est une enzyme qui est normalement présente dans le cytosol des cellules. Sa présence dans le milieu de cellules en culture témoigne d'un dommage cellulaire. Ainsi, l'augmentation du relargage de ce marqueur est corrélée à une augmentation des dommages cellulaires, c'est-à-dire des lésions. Au contraire, la diminution du relargage de ce marqueur témoigne d'une diminution des dommages cellulaires, et donc des lésions. La diminution du niveau de production de ce marqueur est donc corrélée à une évolution positive du processus de cicatrisation. Les variations de niveau de production de ce marqueur permettent ainsi d'évaluer l'effet de l'actif d'intérêt sur le processus de cicatrisation, et son effet protecteur et réparateur. La lactate déshydrogénase (LDH) est une enzyme tétramérique. Chez les mammifères, chaque sous-unité peut être soit de type H (anglais heart = cœur) ou M (muscle). Il existe plusieurs isotypes de LDH qui diffèrent suivant le type d'assemblage formé par ces sous-unités. La sous-unité M est codée par le gène LDHA (référence NCBI : Gene ID: 3939), tandis que la sous-unité H est codée par le gène LDHB (référence NCBI : Gene ID: 3945). La forme prédominante dans la peau est la forme LDH-2, qui comprend trois sous- unité H et une sous unité M. Au sens de la présente invention, le marqueur biologique lactate déshydrogénase (LDH) est préférablement le marqueur LDH-2, qui comprend trois sous-unité H, et une sous unité M.
La filaggrine est un marqueur retrouvé de façon importante dans les cellules de la peau du mamelon, c'est d'autre part un marqueur de la barrière épidermique. Lors du processus de cicatrisation, la réparation des tissus s'accompagne d'une prolifération et d'une différenciation des cellules, venant combler la lésion afin de restaurer l'épiderme, et donc d'une augmentation du taux de production de la filaggrine. L'augmentation du niveau de production de ce marqueur est donc corrélée à une évolution positive du processus de cicatrisation, et donc à la réparation du tissu lésé avec restauration d'un épiderme intègre. Les variations de niveau de production de ce marqueur permettent ainsi d'évaluer l'effet de l'actif d'intérêt sur le processus de cicatrisation, et son effet réparateur.
Par « filaggrine sous sa forme peptidique », on entend selon l'invention un peptide dont la séquence peptidique comprend la séquence peptidique de la protéine filaggrine humaine (référence NCBI : NP_002007.1 ). Par « filaggrine sous sa forme nucléotidique », on entend préférablement selon l'invention au moins un polynucleotide dont la séquence comprend la séquence du transcrit du gène FLG humain (référence NCBI : Gene ID: 2312). Au sens de la présente invention, le transcrit du gène FLG humain est le polynucléotide dont la séquence a pour référence NCBI NM_002016.1 . L'intégrine 61 est un facteur de croissance qui contrôle de nombreuses fonctions cellulaires, impliqué dans la régulation de la cicatrisation. L'augmentation du niveau de production de ce marqueur indique une amplification du processus de cicatrisation et de la réparation du tissu lésé. Les variations de niveau de production de ce marqueur permettent ainsi d'évaluer l'effet de l'actif d'intérêt sur le processus de cicatrisation, et son effet réparateur. Au sens de la présente invention, le marqueur biologique intégrine 61 comprend le gène ITGB1 humain (référence NCBI : Gene ID: 3688), ainsi que les produits de ce gène. Dans un mode de réalisation particulier, le marqueur biologique intégrine 61 consiste en le gène ITGB1 humain (référence NCBI : Gene ID: 3688). Selon un autre mode de réalisation, le marqueur biologique intégrine 61 consiste en l'un des produits du gène ITGB1 humain. Les produits du gène ITGB1 humain comprennent les transcrits du gène ITGB1 humain et les protéines intégrine 61 humaine. Au sens de la présente invention, les transcrit du gène ITGB1 humain comprennent les polynucléotides dont la séquence est choisie parmi les séquences de référence NCBI NM_00221 1 .3, NM_133376.2 and NM_033668.2. Par protéine intégrine 61 humaine, on entend au sens de l'invention la protéine dont la séquence peptidique est choisie parmi les séquences de référence NCBI: NP_002202.2, NP_596867.1 et NP_391988.1 .
Par « intégrine 61 sous sa forme peptidique », on entend préférablement selon l'invention un peptide dont la séquence peptidique est choisie parmi les séquences de référence NCBI : NP_002202.2, NP_596867.1 et NP_391988.1 . Par « intégrine 61 sous sa forme nucléotidique », on entend préférablement selon l'invention au moins un polynucléotide dont la séquence comprend la séquence du transcrit du gène ITGB1 humain (référence NCBI : Gene ID: 3688). Au sens de la présente invention, les transcrits du gène ITGB1 humain comprennent les polynucléotides dont la séquence est choisie parmi les séquences de référence NCBI NM_00221 1 .3, NM_133376.2 et NM_033668.2. Le TGF 61 (pour « Transforming Growth factor beta 1 », ou Facteur de croissance transformant bêta 1 ) est un polypeptide membre de la famille des facteurs de croissance transformant bêta, qui appartient elle-même à la superfamille des cytokines. Ce peptide est en particulier impliqué dans le contrôle de la croissance et de la prolifération cellulaire. Au niveau de la peau, et dans le cadre du phénomène de cicatrisation, une augmentation du niveau de production de TGF 61 est corrélée à la réparation de l'épiderme. L'augmentation du niveau de production de ce marqueur indique une amplification du processus de cicatrisation et de la réparation du tissu lésé. Les variations de niveau de production de ce marqueur permettent ainsi d'évaluer l'effet de l'actif d'intérêt sur le processus de cicatrisation, et son effet réparateur.
Au sens de la présente invention, le marqueur biologique TGF 61 comprend le gène TGFB1 humain (référence NCBI : Gene ID: 7040), ainsi que les produits de ce gène. Dans un mode de réalisation particulier, le marqueur biologique TGF 61 consiste en le gène TGFB1 humain (référence NCBI : Gene ID: 7040). Selon un autre mode de réalisation, le marqueur biologique TGF 61 consiste en l'un des produits du gène TGFB1 humain. Les produits du gène TGFB1 humain comprennent le transcrit du gène FLG humain et le polypeptide TGF 61 humain. Au sens de la présente invention, le transcrit du gène TGFB1 humain est le polynucléotide dont la séquence a pour référence NCBI NM_000660. Par polypeptide TGF 61 humain, on entend préférablement au sens de l'invention le polypeptide dont la séquence peptidique est la séquence de référence NCBI : NP_000651.
Par « TGF 61 sous sa forme peptidique », on entend préférablement selon l'invention un peptide dont la séquence peptidique est la séquence de référence NCBI : NP_000651.
Par « TGF 61 sous sa forme nucléotidique », on entend préférablement selon l'invention au moins un polynucléotide dont la séquence comprend la séquence du transcrit du gène TGFB1 humain (référence NCBI : Gene ID: 7040). Au sens de la présente invention, le transcrit du gène TGFB1 humain est le polynucléotide dont la séquence est la séquence de référence NCBI NM_000660.
L'homme de l'art comprendra que, dans le contexte de l'invention, il est possible de sélectionner par exemple des combinaisons de marqueurs d'un type particulier. En utilisant un seul type de marqueur, l'homme du métier peut obtenir une réponse précise sur l'efficacité de la formulation ou de l'actif, telle que par exemple une évaluation en particulier de l'efficacité sur l'inflammation épidermique ou une évaluation en particulier de l'efficacité sur la cicatrisation. L'homme du métier pourrait ainsi utiliser par exemple des combinaisons de marqueurs consistant en des marqueurs de l'intégrité épidermique, des combinaisons de marqueurs consistant en des marqueurs de la barrière épidermique, des combinaisons de marqueurs consistant en des marqueurs de l'inflammation épidermique, des combinaisons de marqueurs consistant en des marqueurs de la cicatrisation. Il sera par ailleurs évident à l'homme du métier que la méthode de l'invention permettra une évaluation de l'efficacité de la formulation ou de l'actif d'autant plus complète qu'un grand nombre de marqueurs de types différents seront utilisés. L'homme du métier pourra par exemple évaluer à la fois l'efficacité de la formulation ou de l'actif sur l'inflammation épidermique et sur la cicatrisation.
D'autre type de combinaisons de marqueurs sont aussi envisageables, comme par exemple des combinaisons de deux types de marqueurs, telles que :
- des combinaisons de marqueurs consistant en des marqueurs de l'intégrité épidermique et des marqueurs de la barrière épidermique, en particulier la combinaison de marqueurs consistant en la lactate déshydrogénase (LDH) et la filaggrine ;
- des combinaisons de marqueurs consistant en des marqueurs de l'intégrité épidermique et des marqueurs de l'inflammation épidermique, en particulier la combinaison de marqueurs consistant en la lactate déshydrogénase (LDH) et le TNFa ; - des combinaisons de marqueurs consistant en des marqueurs de l'intégrité épidermique et des marqueurs de la cicatrisation, en particulier la combinaison de marqueurs consistant en la lactate déshydrogénase (LDH) et l'intégrine 61 ou la combinaison de marqueurs consistant en la lactate déshydrogénase (LDH) et le TGF 61 ;
- des combinaisons de marqueurs consistant en des marqueurs de la barrière épidermique et des marqueurs de l'inflammation épidermique, en particulier la combinaison de marqueurs consistant en la filaggrine et le TNFa;
- des combinaisons de marqueurs consistant en des marqueurs de la barrière épidermique et des marqueurs de la cicatrisation, en particulier la combinaison de marqueurs consistant en la filaggrine et l'intégrine 61 ou la combinaison de marqueurs consistant en la filaggrine et le TGF 61 ; ou
- des combinaisons de marqueurs consistant en des marqueurs de l'inflammation épidermique et des marqueurs de la cicatrisation, en particulier la combinaison de marqueurs consistant en le TNFa et l'intégrine 61 ou la combinaison de marqueurs consistant en le TNFa et le TGF 61 .
Avantageusement, l'homme du métier pourra utiliser des combinaisons de trois types de marqueurs, telles que :
- des combinaisons de marqueurs consistant en des marqueurs de l'intégrité épidermique, des marqueurs de la barrière épidermique et des marqueurs de l'inflammation épidermique, en en particulier la combinaison de marqueurs consistant en la lactate déshydrogénase (LDH), la filaggrine et le TNFa ;
- des combinaisons de marqueurs consistant en des marqueurs de l'intégrité épidermique, des marqueurs de la barrière épidermique et des marqueurs de la cicatrisation, en particulier la combinaison de marqueurs consistant en la lactate déshydrogénase (LDH), la filaggrine et le TGF 61 , ou la combinaison de marqueurs consistant en la lactate déshydrogénase (LDH), la filaggrine et l'intégrine 61 ;
- des combinaisons de marqueurs consistant en des marqueurs de l'intégrité épidermique, des marqueurs de l'inflammation épidermique et des marqueurs de la cicatrisation, en particulier la combinaison de marqueurs consistant en la lactate déshydrogénase (LDH), le TNFa et le TGF 61 , ou la combinaison de marqueurs consistant en la lactate déshydrogénase (LDH), le TNFa et l'intégrine 61 ;
- des combinaisons de marqueurs consistant en des marqueurs de la barrière épidermique, des marqueurs de l'inflammation épidermique et des marqueurs de la cicatrisation, en particulier la combinaison de marqueurs consistant en la filaggrine, le TNFa et le TGF 61 , ou la combinaison de marqueurs consistant en la filaggrine, le TNFa et l'intégrine 61.
Selon un mode de réalisation préféré, l'étape b) comprend la mesure du niveau de production d'une combinaison de marqueurs biologiques consistant en la lactate déshydrogénase (LDH), le TNFa, la filaggrine, l'intégrine 61 et le TGF 61.
Ainsi, le marqueur biologique selon l'invention peut être un gène, ou le produit d'un gène présentant une activité particulière, telle qu'une activité enzymatique par exemple.
Pour chacun de ces types de marqueurs, de nombreuses méthodes sont à la disposition de l'homme du métier pour mesurer le niveau de production dudit marqueur biologique. Selon le type de marqueur utilisé, les termes « niveau de production « peuvent se référer à des variables différentes, qui dépendent de la nature du marqueur examiné.
Par exemple, lorsque le marqueur biologique est un gène, les termes « niveau de production du marqueur biologique » se réfèrent généralement au niveau de synthèse d'au moins un des produits de ce gène. Plus précisément, lorsque le marqueur biologique est un gène, le niveau de production dudit marqueur biologique correspond à la quantité ou à la concentration d'au moins un des transcrits dudit gène ou d'au moins un des différents isoformes des protéines issus desdits transcrits. Lorsque le marqueur est le produit d'un gène présentant une activité enzymatique, les termes « niveau de production du marqueur biologique » se réfèrent préférentiellement au niveau d'activité enzymatique dudit marqueur. Au sens de la présente invention, l'activité enzymatique dudit marqueur correspond à la quantité de substrat dudit marqueur catalysée par unité de temps grâce à un quantum défini dudit marqueur. L'unité d'activité enzymatique U est classiquement exprimée en μη-iol/min ou en kat (mol/s). L'unité d'activité enzymatique U peut aussi être exprimée en mg/min lorsque le substrat de l'enzyme existe dans le corps sous forme de polymère, tel que c'est le cas par exemple lorsque le substrat est choisi parmi les sucres ou les glycosaminoglucanes. L'homme du métier cherchant à déterminer si un des produits du gène d'intérêt présente une activité enzymatique, pourra facilement consulter la littérature scientifique pertinente ou se rapporter à des bases de données publiques telles que, par exemple, celles regroupées sur le site internet ExPASy, qui répertorie notamment les enzymes (http: //enzyme.expasy.org).
Selon un mode de réalisation préférée de l'invention, le marqueur biologique LDH est le produit d'un gène présentant une activité enzymatique.
Pour mesurer le niveau d'activité enzymatique d'un marqueur, l'homme du métier pourra utiliser toute technique bien connue dans l'art. En particulier, la mesure de l'activité enzymatique de l'enzyme LDH peut être réalisée par un test enzymatique: la LDH relarguée réduit le NAD+ en NADH+H+ par oxydation du lactate en pyruvate, dans une seconde étape, un catalyste (diaphorase) transfère 2 H du NADH+H+ au sel de tetrazolium INT qui est alors réduit en formazan. La formation de formazan est révélée par l'induction d'une coloration mesurée en colorimétrie. La quantité de formazan formée est directement corrélée à l'activité enzymatique de la LDH dans le surnageant. Par exemple, la mesure de l'activité enzymatique de l'enzyme LDH peut être réalisée au moyen d'un test colorimétrique basé sur la détection de sels de formazan à l'aide d'un kit commercial (par exemple cytotoxicity détection kit-LDH, Roche).
Par la « mesure du niveau de production d'une combinaison de marqueurs biologiques », on entend au sens de la présente demande la mesure du niveau de production de chacun des marqueurs de la combinaison. La production d'un gène peut être mesurée par exemple au niveau nucléotidique, en mesurant la quantité de transcrits dudit gène et leurs variants, et peut aussi être mesurée par exemple au niveau peptidique, en mesurant par exemple la quantité d'un ou plusieurs isoformes des protéines issus desdits transcrits, et leurs variants. Ainsi, par « mesure du niveau de production dudit gène » on entend au sens de l'invention la mesure de la quantité de produit du gène sous sa forme peptidique ou sous sa forme nucléotidique.
Dans ce cas, le procédé de l'invention peut comprendre une ou plusieurs étapes préalable(s) à la mesure de la production du marqueur biologique, lesdites étapes correspondant à l'extraction à partir du modèle de peau de mamelon de l'étape a), d 'un échantillon d 'ARNm (ou de l'ADNc correspondant) ou d'un échantillon de protéine. Celui-ci peut ensuite être directement utilisé pour mesurer la production du marqueur. La préparation ou l'extraction d 'ARNm (ainsi que la rétrotranscription de celui-ci en ADNc) ou de protéines à partir d 'un tissu tel qu'un modèle de peau ou de cellules ne sont que des procédures de routine bien connues de l'homme du métier.
Selon un mode de réalisation préféré de l'invention, le niveau de production du marqueur choisi parmi la LDH, le TNFa, le TGF61 et la filaggrine, correspond au niveau de production dudit marqueur sous sa forme nucléotidique. Selon un mode de réalisation préféré de l'invention, le niveau de production du marqueur intégrine 61 correspond au niveau de production dudit marqueur sous sa forme peptidique.
Pour chacun des types de marqueurs biologiques de l'invention, de nombreux procédés sont à la disposition de l'homme du métier pour mesurer le niveau de production dudit marqueur biologique.
Quand le marqueur biologique est un gène, et que le niveau de production du marqueur est mesuré au niveau nucléotidique, c'est-à-dire en mesurant la quantité de produit du gène sous sa forme nucléotidique, n'importe quelle technologie habituellement utilisée par l'homme du métier peut être mise en œuvre. Les procédés d 'analyse du niveau de production des gènes au niveau nucléotidique, comme par exemple l'analyse du transcriptome, incluent des procédés bien connus tels que la RT-PCR ou la RT-PCR quantitative ou encore les puces d 'acides nucléiques. Par « puces d 'acides nucléiques », on entend ici plusieurs sondes d 'acides nucléiques différentes qui sont attachées à un substrat, lequel peut être une micropuce, une lame de verre, ou une bille de la taille d 'une microsphère. La micropuce peut être constituée de polymères, de plastiques, de résines, de polysaccharides, de silice ou d'un matériau à base de silice, de carbone, de métaux, de verre inorganique, ou de nitrocellulose. Les sondes peuvent être des acides nucléiques tels que les ADNc (« puce à ADNc »), les ARNm (« puce à ARNm ») ou des oligonucléotides (« puce à oligonucléotides »), lesdits oligonucléotides pouvant typiquement avoir une longueur comprise entre environ 25 et 60 nucléotides. Pour déterminer le profil de production d 'un gène particulier, un acide nucléique correspondant à tout ou partie dudit gène est marqué, puis mis en contact avec la puce dans des conditions d'hybridation, conduisant à la formation de complexes entre ledit acide nucléique cible marqué et les sondes attachées à la surface de la puce qui sont complémentaires de cet acide nucléique. La présence de complexes hybridés marqués est ensuite détectée. Préférentiellement, Γ 'invention est mise en œuvre en utilisant toute méthode actuelle ou future permettant de déterminer la production des gènes sur la base de la quantité d'ARNm dans l'échantillon. Par exemple, l'homme du métier peut mesurer la production d'un gène par hybridation avec une sonde d'acide nucléique marquée, comme par exemple par Northern blot (pour l'ARNm) ou par Southern blot (pour l'ADNc), mais aussi par des techniques telles que la méthode d'analyse sérielle de la production des gènes (SAGE) et ses dérivés, tels que LongSAGE, SuperSAGE, DeepSAGE, etc. Il est aussi possible d'utiliser des puces à tissu (aussi connues en tant que TMAs : « tissue microarrays »). Les tests habituellement employés avec les puces à tissu comprennent l'immunohistochimie et l'hybridation fluorescente in situ. Pour l'analyse au niveau de l'ARNm, les puces à tissu peuvent être couplées avec l'hybridation fluorescente in situ. Enfin, il est possible d'utiliser le séquençage massif en parallèle pour déterminer la quantité d'ARNm dans l'échantillon (RNA-Seq ou « Whole Transcriptome Shotgun Sequencing »). À cet effet, plusieurs méthodes de séquençage massif en parallèle sont disponibles. De telles méthodes sont décrites dans, par exemple, US 4,882,127, U.S. 4,849,077; U.S. 7,556,922; U.S. 6,723,513; WO 03/066896; WO 2007/1 1 1924; US 2008/0020392; WO 2006/084132; US 2009/0186349; US 2009/0181860; US 2009/0181385; US 2006/0275782; EP-B1 -1 141399; Shendure & Ji, Nat BiotechnoL , 26(10): 1 135-45. 2008; Pihlak et al. , Nat BiotechnoL , 26(6) : 676- 684, 2008 ; Fuller et al. , Nature BiotechnoL , 27(1 1 ): 1013-1023, 2009; Mardis, Génome Med. , 1 (4): 40, 2009; Metzker, Nature Rev. Genêt. , 1 1 (1 ): 31 -46, 2010.
En outre, toute méthode pour déterminer le niveau de production d'un polypeptide connue de l'homme du métier peut être utilisée. Les méthodes pour déterminer le niveau de production d'un polypeptide incluent par exemple la spectrométrie de masse, les tests biochimiques, y compris les tests immunologiques tels que par exemple les tests immunologiques de détection classiques (les tests ELISA et les tests ELISPOTS), ou encore par exemple des tests immunologiques employant des techniques de transfert des protéines sur support, tels que le slot blot (aussi appelé dot blot) ou le western blot. Il est par exemple possible d'employer les puces à protéines, les puces à anticorps, ou les puces à tissu couplées à l'immunohistochimie. Parmi les autres techniques qui peuvent être utilisées sont comprises les techniques de FRET ou de BRET, les méthodes de microscopie ou d'histochimie, dont notamment les méthodes de microscopie confocale et de microscopie électronique, les méthodes basées sur l'utilisation d'une ou plusieurs longueurs d'onde d'excitation et d'une méthode optique adaptée, comme une méthode électrochimique (les techniques de voltammétrie et d'ampérometrie), le microscope à force atomique, et les méthodes de radiofréquence, comme la spectroscopie résonance multipolaire, confocale et non-confocale, détection de fluorescence, luminescence, chemiluminescence, absorbance, réflectance, transmittance, biréfringence ou index de réfraction (par exemple, par résonance des plasmons de surface, ou « surface plasmon résonance » en anglais, par ellipsometry, par méthode de miroir résonnant, tec ), cytométrie de flux, imagerie par résonance radioisotopique ou magnétique, analyse par électrophorèse en gel de polyacrylamide (SDS- PAGE); par spectrophotométrie HPLC-Mass, par chromatographie liquide/spectrophotométrie de masse/spectrométrie de masse (LC-MS/MS). Toutes ces techniques sont bien connues de l'homme du métier et il n'est pas nécessaire de les détailler ici.
Par «un niveau de production de référence d'un marqueur biologique », on entend au sens de la présente demande tout niveau de production dudit marqueur utilisé à titre de référence. Par exemple, un niveau de production de référence peut être obtenu en mesurant le niveau de production du marqueur d'intérêt dans un modèle de peau de mamelon dans des conditions particulières. L'homme du métier saura choisir ces conditions particulières de façon à servir son objectif dans la mise en œuvre de l'invention.
Ainsi, selon un mode de réalisation préféré, le niveau de production de référence d'un marqueur biologique est le niveau de production dudit marqueur obtenu dans un modèle de peau de mamelon lésé non traité avec la formulation d'intérêt.
Selon un autre mode de réalisation, le niveau de production de référence d'un marqueur biologique est le niveau de production dudit marqueur obtenu dans un modèle de peau de mamelon mis en contact avec une formulation de référence. Préférentiellement, la formulation de référence est choisie parmi la liste constituée des formulations classiquement utilisés en dermatologie ou cosmétique, en particulier des formulations comprenant des principes tels que les agents anti-inflammatoires/anti-irritants ou les agents cicatrisants et restructurants de la barrière cutanée.
Les agents anti-inflammatoires/anti-irritants utilisés en dermatologie et en cosmétique sont bien connus de l'homme du métier. De façon générale, ils limitent la réaction inflammatoire conduite via les cytokines ou médiateurs du métabolisme de l'acide arachidonique et ont des propriétés apaisantes et anti-irritantes. Les agents anti-inflammatoires/anti-irritants pouvant être compris dans une formulation de référence au sens de l'invention sont l'acide glycyrrhétinique (les dérivés de réglisse) avec ses sels et esters, l'acide lipoïque, le beta- carotène, la vitamine B3 (niacinamide, nicotinamide), la vitamine E, la vitamine C, la vitamine B12, les flavonoïdes (thé vert, quercétine...), le lycopène ou la lutéine, les sucres d'Avocat, l'oléodistillat d'Avocat, l'arabinogalactane, les peptides de Lupin, un extrait total de Lupin, un extrait peptidique de Quinoa, le Cyclocéramide (dérivé d'oxazoline), les isoflavones comme par exemple la génistéine/génistine, daidzéine/daidzine, les eaux de source ou thermales (eau d'Avène, eau de la Roche Posay, eau de Saint Gervais, eau d'Uriage, eau de Gamarde), les extraits de Goji (Lycium barbarum), les peptides ou complexes d'acides aminés végétaux ou encore la disulone topique, ou les médicaments anti- inflammatoires stéroïdiens (AIS), tels que les corticoïdes, ou non-stéroïdiens (AINS).
Les agents cicatrisants et restructurants de la barrière cutanée utilisés en dermatologie et en cosmétique sont bien connus de l'homme du métier. De façon générale, ils stimulent la synthèse des lipides clés de l'épiderme. Les agents cicatrisants et restructurants de la barrière cutanée pouvant être compris dans une formulation de référence au sens de l'invention sont la vitamine A, le panthénol (vitamine B5), les sucres d'Avocat, l'oléodistillat de Tournesol, le Lupéol, l'extrait peptidique de Maca, un extrait peptidique de Quinoa, l'arabinogalactane, l'oxyde de zinc, le magnésium, le silicium, l'acide madécassique ou asiatique, le sulfate de dextran, le coenzyme Q10, la glucosamine et ses dérivés, la chondroïtine sulfate et globalement les glucosaminoglycanes ou GAG, le sulfate de dextran, les céramides, le cholestérol, le squalane, les phospholipides, les peptides de soja fermenté ou non, les peptides végétaux, les polysaccharides marins, végétaux ou biotechnologiques comme les extraits d'algues ou l'extrait de fougère, les oligo-éléments, les extraits de plantes à tanin comme les tanins dérivant de l'acide gallique appelés tanins galliques ou encore hydrolysables, initialement trouvés dans la noix de galle, et les tanins catéchiques résultant de la polymérisation d'unités flavaniques dont le modèle est fourni par le Cachou (Acacia catechu). Les oligo-éléments pouvant être utilisés sont avantageusement choisis dans le groupe constitué par le cuivre, le magnésium, le manganèse, le chrome, le sélénium, le silicium, le zinc et leurs mélanges. Peuvent également être utilisés des concentrats de Tournesol, plus avantageusement des concentrats de Tournesol linoléiques, tels que l'actif commercialisé par les Laboratoires Expanscience, Soline, des insaponifiables d'huile végétale, tel que l'Avocadofurane®, ou des agonistes PPARs (rosiglitazone, pioglitazone), RXR, LXR.
L'homme du métier pourra en outre utiliser comme formulation de référence toute formulation connue de l'art antérieure, et notamment toute formulation connue pour ses propriétés cicatrisantes et/ou anti-inflammatoires. A titre d'exemple, on peut citer les compositions suivantes :
- les sucres d'Avocat tels que décrits dans la demande WO 2005/1 15421 . Cette composition est particulièrement adaptée pour le traitement de la réparation de la barrière cutanée et de l'inflammation ;
- les peptides d'Avocat tels que décrits dans la demande WO2005/105123. Cette composition est en effet particulièrement adaptée pour le traitement de l'irritation et de l'inflammation ;
- l'huile d'Avocat telle que décrite dans les demandes WO2004/012496, WO2004/012752, WO2004/016106, WO2007/057439) ;
- les furanes d'avocat, tels que pouvant être obtenus par le procédé décrit dans la demande WO 01 /21605. Cette composition, aussi commercialisée sous la marque Avocadofurane® est particulièrement adaptée pour le traitement de l'inflammation, et pour favoriser la cicatrisation;
- le 5 alpha Avocuta® (butyl avocadate);
- les insaponifiables d'Avocat et de Soja. Les insaponifiables d'Avocat et de Soja pouvant être utilisés en association sont avantageusement un mélange d 'insaponifiables d'Avocat furaniques et d 'insaponifiables de Soja, dans un rapport respectif d'environ 1 /3-2/3. Les insaponifiables d'Avocat et de Soja sont encore plus avantageusement le produit Piasclédine®, commercialisé par les Laboratoires Expanscience;
- l'oléodistillat de Tournesol, encore plus avantageusement avec des concentrais de Tournesol linoléiques, tels que l'actif commercialisé par les Laboratoires Expanscience, Soline® (décrit en particulier dans la demande WO 01 /21 150). Cette composition est particulièrement adaptée pour le traitement de l'inflammation et pour la réparation de la barrière cutanée.
- l'insaponifiable de Soja, tel qu'obtenu selon le procédé décrit dans la demande internationale WO01 /51596;
- le Lupéol (FR 2 822 821 , FR 2 857 596). Cette composition est particulièrement adaptée pour favoriser la cicatrisation;
- les peptides de Lupin tels qu'obtenus selon le procédé décrit dans la demande WO2005/ 102259. Cette composition est particulièrement adaptée pour le traitement de l'inflammation;
- l'extrait total de Lupin (tel que décrit dans la demande WO2005/102259). Cette composition est particulièrement adaptée pour le traitement des irritations; - l'huile de Lupin, avantageusement une huile de Lupin blanc doux, telle que celle décrite dans la demande internationale WO 98/47479;
- l'extrait peptidique de Maca (en particulier tel que décrit dans la demande WO2004/112742). Cette composition est particulièrement appréciée pour ses propriétés cicatrisantes;
- les peptides de Riz (voir demande WO 2008/009709);
- le Cyclocéramide® (dérivé d'oxazoline) tel que décrit dans les demandes WO2004050052, WO2004050079, et WO2004112741. Cette composition est particulièrement adaptée pour le traitement des réactions inflammatoires ;
- l'extrait de Quinoa, en particulier l'extrait peptidique décrit dans la demande WO2008/080974. Cette composition est particulièrement adaptée pour le traitement des conditions inflammatoires et de la réparation de la barrière cutanée.
- Le beurre de Cupuaçu. Cette composition est particulièrement appréciée pour ses propriétés hydratantes. Enfin, l'homme du métier pourra utiliser comme formulation de référence toute formulation connue de l'art antérieur pour son effet sur la peau du mamelon, tel que par exemple un baume dont la composition peut être telle que décrite plus spécifiquement dans la partie expérimentale de la présente demande. D'autres formulations de référence bien connues dans le domaine des crevasses de la peau du mamelon sont le lait maternel, dont l'application sur les crevasses est recommandée pour faciliter leur cicatrisation, la glycérine et la lanoline.
L'homme du métier comprendra en outre aisément que la comparaison de l'étape c) est de préférence effectuée entre des mesures de niveaux de production obtenus pour des modèles de peau de mamelon de compositions histologiques similaires, voire identiques. Par « compositions histologiques similaires », on entend au sens de la présente demande que les proportions relatives des types cellulaires compris dans les modèles de peau de mamelon comparés sont similaires. Ainsi, il est préférable que les proportions relatives des types cellulaires compris dans le modèle de peau de mamelon de l'étape a) ne diffèrent pas de plus de 5% des proportions relatives des types cellulaires compris dans le modèle de peau de mamelon utilisé pour l'obtention du niveau de production de référence de l'étape c). Par « proportion relative d'un type cellulaire » on entend au sens de la présente demande le rapport du nombre de cellules correspondant à ce type cellulaire sur le nombre de cellules totales comprises dans le modèle de peau. Ainsi, il est par exemple préférable que la proportion de kératinocytes sur le nombre de cellules totales dans le modèle de peau de mamelon de l'étape a) ne diffère pas de plus de 5% de la proportion de kératinocytes sur le nombre de cellules totales dans le modèle de peau de mamelon utilisé pour l'obtention du niveau de production de référence de l'étape c). Par « compositions histologiques identiques », on entend au sens de la présente demande que les proportions relatives des types cellulaires compris dans les modèles de peau de mamelon comparés sont identiques. Au sens de la présente invention, les proportions relatives des types cellulaires compris dans le modèle de peau de mamelon de l'étape a) sont identiques aux proportions relatives des types cellulaires compris dans le modèle de peau de mamelon utilisé pour l'obtention du niveau de production de référence de l'étape c) lorsqu'elles ne diffèrent pas de plus de 0,1%. Avantageusement, la proportion de kératinocytes sur le nombre de cellules totales dans le modèle de peau de mamelon de l'étape a) ne diffère pas de plus de 0,1 % de la proportion de kératinocytes sur le nombre de cellules totales dans le modèle de peau de mamelon utilisé pour l'obtention du niveau de production de référence de l'étape c).
L'homme du métier comprendra tout aussi aisément que la comparaison de l'étape c) est de préférence effectuée entre des mesures de niveaux de production obtenus pour des modèles de peau de mamelon qui sont de taille, de volume ou de poids similaires, voire identiques. Au sens de la présente invention, Ainsi, il est préférable que la taille, le volume, ou le poids du modèle de peau de mamelon de l'étape a) ne diffère pas de plus de 5% de la taille, et/ou du volume et/ou du poids du modèle de peau de mamelon utilisé pour l'obtention du niveau de production de référence de l'étape c). Ainsi, il est préférable que la taille, le volume, ou le poids du modèle de peau de mamelon de l'étape a) ne diffère pas de plus de 5% de la taille, du volume, ou du poids du modèle de peau de mamelon utilisé pour l'obtention du niveau de production de référence de l'étape c). Plus préférentiellement, la taille, et le volume et le poids du modèle de peau de l'étape a) ne diffère pas de plus de 5% de la taille, du volume et du poids du modèle de peau de mamelon utilisé pour l'obtention du niveau de production de référence de l'étape c). Encore plus préférentiellement, la taille, et le volume et le poids du modèle de peau de l'étape a) ne diffère pas de plus de 0.1% de la taille, du volume et du poids du modèle de peau de mamelon utilisé pour l'obtention du niveau de production de référence de l'étape c).
Alternativement, si les modèles de peau diffèrent de plus de 5 % de par la taille, le volume et le poids, l'homme du métier pourra normaliser le niveau obtenu à l'étape b) et le niveau de référence de l'étape c) à l'aide d'un facteur de normalisation.
Ce facteur de normalisation pourra par exemple être un marqueur physique directement accessible tel que la masse de cellules de l'échantillon, ou la masse d'un constituant cellulaire, comme la masse d'ADN cellulaire ou la masse de protéines cellulaires. Il peut aussi être avantageux d'utiliser comme facteur de normalisation le niveau de production d'un gène qui est exprimé au même niveau dans toutes les cellules, ou presque, de l'organisme. En d'autres termes, selon un mode de réalisation particulier de la présente invention, on utilise comme facteur de normalisation le niveau de production d'un gène de ménage. Selon un autre mode de réalisation, le niveau obtenu à l'étape b) et le niveau de référence de l'étape c sont normalisés en utilisant le niveau de production, non pas des gènes de ménage, mais des protéines codées par ceux-ci. Un gène de ménage est un gène exprimé dans tous les types cellulaires, qui code une protéine ayant une fonction de base nécessaire pour la survie de tous les types cellulaires. Une liste de gènes de ménage humains peut être trouvée dans Eisenberg et al. (Trends in Genetics 19: 362-365, 2003). Les gènes de ménage selon l'invention incluent par exemple les gènes B2M, TFRC, YWHAZ, RPLO, 18S, GUSB, UBC, TBP, GAPDH, PPIA, POLR2A, ACTB, PGK1 , HPRT1 , IP08 et HMBS.
L'homme du métier pourra ainsi aisément évaluer l'efficacité de la formulation d'intérêt en fonction de la comparaison de l'étape c). Par exemple, lorsque le niveau de production de LDH mesuré à l'étape b), est inférieur ou égal au niveau de production de ces marqueurs obtenu dans un modèle de peau de mamelon lésé non traité avec la formulation d'intérêt, alors la formulation est efficace sur la cicatrisation de la peau du mamelon.
Par exemple, lorsque le niveau de production de TNFa mesuré à l'étape b), est inférieur ou égal au niveau de production de ces marqueurs obtenu dans un modèle de peau de mamelon lésé non traité avec la formulation d'intérêt, alors la formulation est efficace sur l'inflammation de la peau du mamelon.
Selon un autre exemple, lorsque le niveau de production d'intégrine 61 , mesuré à l'étape b), est supérieur ou égal au niveau de production de ces marqueurs obtenu dans un modèle de peau de mamelon lésé non traité avec la formulation d'intérêt, alors la formulation est efficace sur la cicatrisation et/ ou sur l'inflammation de la peau du mamelon.
Selon un autre exemple, lorsque le niveau de production de filaggrine, mesuré à l'étape b), est supérieur ou égal au niveau de production de ces marqueurs obtenu dans un modèle de peau de mamelon lésé non traité avec la formulation d'intérêt, alors la formulation est efficace sur la cicatrisation et/ ou sur l'inflammation de la peau du mamelon.
Selon un autre exemple, lorsque le niveau de production de TGF 61 , mesuré à l'étape b), est supérieur ou égal au niveau de production de ces marqueurs obtenu dans un modèle de peau de mamelon lésé non traité avec la formulation d 'intérêt, alors la formulation est efficace sur la cicatrisation et/ ou sur l'inflammation de la peau du mamelon.
Selon un autre exemple, lorsque le niveau de production de LDH mesuré à l'étape b), est inférieur ou égal au niveau de production de ces marqueurs obtenu dans un modèle de peau de mamelon mis en contact avec une formulation de référence, alors la formulation d 'intérêt est plus efficace sur la cicatrisation de la peau du mamelon que la formulation de référence.
Selon un autre exemple, lorsque le niveau de production de TNFa mesuré à l'étape b), est inférieur ou égal au niveau de production de ces marqueurs obtenu dans un modèle de peau de mamelon mis en contact avec une formulation de référence, alors la formulation d 'intérêt est plus efficace sur la cicatrisation de la peau du mamelon que la formulation de référence.
Selon un autre exemple, lorsque le niveau de production d 'intégrine 61 , mesuré à l'étape b), est supérieur ou égal au niveau de production de ces marqueurs obtenu dans un modèle de peau de mamelon mis en contact avec la une formulation de référence, alors la formulation d 'intérêt est plus efficace sur la cicatrisation de la peau du mamelon que la formulation de référence.
Selon un autre exemple, lorsque le niveau de production de filaggrine, mesuré à l'étape b), est supérieur ou égal au niveau de production de ces marqueurs obtenu dans un modèle de peau de mamelon mis en contact avec la une formulation de référence, alors la formulation d 'intérêt est plus efficace sur la cicatrisation de la peau du mamelon que la formulation de référence.
Selon un autre exemple, lorsque le niveau de production de TGF 61 , mesuré à l'étape b), est supérieur ou égal au niveau de production de ces marqueurs obtenu dans un modèle de peau de mamelon mis en contact avec la une formulation de référence, alors la formulation d 'intérêt est plus efficace sur la cicatrisation de la peau du mamelon que la formulation de référence.
Dans un autre aspect, l'invention permet d 'isoler des actifs ou des formulations ayant un effet sur la peau de mamelon et, plus particulièrement, lorsque celle-ci est lésée. L'invention permet donc d'identifier des actifs ou des formulations pour traiter les lésions de la peau du mamelon, en particulier les crevasses. L'invention a donc également pour objet un procédé d 'identification d 'un actif ou d'une formulation pour traiter les lésions de la peau du mamelon, en particulier les crevasses, ledit procédé comprenant les étapes suivantes : a) mettre en contact d'un actif candidat ou d'une formulation candidate avec un modèle de peau comprenant des kératinocytes surexprimant la filaggrine et comprenant en outre une lésion tel que décrit plus haut; b) mesurer le niveau de production d'au moins un marqueur biologique dans le modèle de peau de mamelon de l'étape a), caractérisé en ce que ledit marqueur biologique est choisi parmi le groupe consistant en :
- les marqueurs de l'intégrité épidermique, ledit marqueur de l'intégrité épidermique étant de préférence la lactate déshydrogénase (LDH); et
- les marqueurs de la barrière épidermique, ledit marqueur de la barrière épidermique étant de préférence la filaggrine; et
- les marqueurs de l'inflammation épidermique, ledit marqueur de l'inflammation épidermique étant de préférence choisi parmi les cytokines, en particulier le TNFa; et
- les marqueurs de la cicatrisation, ledit marqueur de la cicatrisation étant de préférence choisi parmi les intégrines, en particulier l'intégrine 61 , et le TGF 61 ; c) comparer le niveau de production d'au moins un marqueur biologique obtenu à l'étape b) avec un niveau de production de référence ; d) déterminer si ledit actif candidat ou ladite formulation candidate est une formulation pour traiter les lésions de la peau du mamelon, en particulier les crevasses, en fonction de la comparaison de l'étape c). L'actif candidat ou la formulation candidate est un actif ou une formulation pour traiter les lésions de la peau du mamelon, en particulier les crevasses, si ledit actif ou ladite formulation candidate permet de moduler la production d'au moins un marqueur biologique de l'invention. Cette modulation peut correspondre, selon les cas, et en particulier selon la nature du marqueur biologique, à une augmentation ou à une diminution de la production dudit marqueur. En particulier, il peut être intéressant d'isoler des actifs ou des formulations stimulant la production des marqueurs corrélés à une amélioration de la cicatrisation ou encore des formulations diminuant l'inflammation.
L'invention permet ainsi d'identifier des matières premières améliorant la cicatrisation et diminuant l'inflammation. L'identification de marqueurs biologiques selon l'invention permet par conséquent d'identifier les matières premières modulant ou non la production de ces marqueurs. Dans un autre aspect, l'invention permet l'isolement de matière première pouvant être utilisée dans la mise au point de formulations adaptées à la peau de mamelon lésé.
L'invention a donc également pour objet un procédé d'identification d'une matière première pouvant être utilisée pour la préparation d'une formulation pour traiter les lésions de la peau du mamelon, en particulier les crevasses, ledit procédé comprenant les étapes suivantes : a) mettre en contact une matière première candidate avec un modèle de peau comprenant des kératinocytes surexprimant la filaggrine et comprenant en outre une lésion tel que décrit plus haut; b) mesurer le niveau de production d'au moins un marqueur biologique dans le modèle de peau de mamelon de l'étape a), caractérisé en ce que ledit marqueur biologique est choisi parmi le groupe consistant en :
- les marqueurs de l'intégrité épidermique, ledit marqueur de l'intégrité épidermique étant de préférence la lactate déshydrogénase (LDH); et
- les marqueurs de la barrière épidermique, ledit marqueur de la barrière épidermique étant de préférence la filaggrine; et
- les marqueurs de l'inflammation épidermique, ledit marqueur de l'inflammation épidermique étant de préférence choisi parmi les cytokines, en particulier le TNFa; et
- les marqueurs de la cicatrisation, ledit marqueur de la cicatrisation étant de préférence choisi parmi les intégrines, en particulier l'intégrine 61 , et le TGF 61 ; c) comparer le niveau de production d'au moins un marqueur biologique obtenu à l'étape b) avec un niveau de production de référence ; d) déterminer si ladite matière première candidate est une matière première pour la préparation d'une formulation pour traiter les lésions de la peau du mamelon, en particulier les crevasses, en fonction de la comparaison de l'étape c). Selon un mode de réalisation préféré, l'étape b) comprend la mesure du niveau de production d'une combinaison de marqueurs biologiques consistant en la lactate déshydrogénase (LDH), le TNFa, la filaggrine, et l'intégrine 61 et/ou le TGF 61. En d'autre termes, l'étape b) comprend la mesure du niveau de production de chacun des marqueurs biologiques d'une combinaison de marqueurs biologiques consistant en la lactate déshydrogénase (LDH), le TNFa, la filaggrine, et l'intégrine 61 et/ou le TGF 61.
Il est clair que l'invention permet en outre d'évaluer l'innocuité de certains actifs ou de certaines formulations, ou bien d'identifier parmi ces actifs ou ces formulations ceux ou celles qui présentent des qualités d 'innocuité optimales vis-à-vis de la peau de mamelon lésée. On considère que des actifs ou des formulations présentent des qualités d 'innocuité si elles ne nuisent pas à la santé humaine lorsqu'elles sont appliquées dans les conditions normales ou raisonnablement prévisibles d'utilisation. L'homme du métier comprendra en effet aisément qu'il ne suffit que de mesurer la production d 'un ou plusieurs marqueurs biologiques selon l'invention pour déterminer si une formulation peut être utilisée sur la peau de mamelon lésée.
L'invention a pour autre objet un kit pour la mise en œuvre d'une méthode selon l'invention, comprenant les moyens nécessaires à la mesure du niveau de production d'au moins un marqueur biologique choisi parmi le groupe consistant en:
- les marqueurs de l'intégrité épidermique, ledit marqueur de l'intégrité épidermique étant de préférence la lactate déshydrogénase (LDH); et
- les marqueurs de la barrière épidermique, ledit marqueur de la barrière épidermique étant de préférence la filaggrine; et
- les marqueurs de l'inflammation épidermique, ledit marqueur de l'inflammation épidermique étant de préférence choisi parmi les cytokines, en particulier le TNFa; et
- les marqueurs de la cicatrisation, ledit marqueur de la cicatrisation étant de préférence choisi parmi les intégrines, en particulier l'intégrine 61 , et le TGF 61 . Selon un mode de réalisation particulier, le kit selon l'invention comprend les moyens nécessaires à la mesure du niveau de production de chacun des marqueurs biologiques de la combinaison consistant en la LDH, le TNFa, la filaggrine, l'intégrine 61 et /ou le TGF 61 .
Préférentiellement, les moyens nécessaires à la mesure du niveau de production de l'intégrine 61 sont des anticorps spécifiques desdits marqueurs. Préférentiellement, les moyens nécessaires à la mesure du niveau de production du TNFa, de la filaggrine, et du TGF 61 comprennent des sondes nucléiques et/ou des amorces d'amplification capables de se lier à au moins l'un de ces marqueurs biologiques sous sa forme nucléotidique.
Les exemples suivants sont fournis ici à titre d'illustration et ne sont pas, sauf indication contraire, destinés à être limitatifs. Légendes des figures
Figure 1 : Histologie d'un épiderme reconstruit (à J17) obtenu à partir du lot de kératinocytes choisi pour la mise en place du modèle de mamelon
Figure 2 : Expression génique de la filaggrine dans des peaux reconstruites après 24 heures d'incubation
Figure 3 : Relargage de LDH dans le milieu de culture 4 heures et 24 heures après lésion des peaux reconstruites « mamelon »
Figure 4 : Expression génique du TNFa dans des peaux reconstruites « mamelon » 4 heures après lésion Figure 5 : Expression génique de filaggrine dans des peaux reconstruites « mamelon » 24 heures après lésion
Figure 6 : Analyse de la production de l'intégrine 61 en Western Blot dans des peaux reconstruites « mamelon » 24 heures après lésion
Figure 7 : Relargage de LDH dans le milieu de culture 4 heures après lésion des épidermes reconstruits « mamelon »
Figure 8 : Expression génique du TNFa dans des épidermes reconstruits « mamelon » 24 heures après lésion
Figure 9 : Expression génique du TGF 61 dans des épidermes reconstruits « mamelon » 24 heures après lésion Figure 10 : Marquage de l'intégrine 61 dans des épidermes reconstruits « mamelon » 4 heures après lésion (bleu = noyaux, dapi ; rouge = intégrine)
Figure 11 : Visualisation en Microscopie Electronique à Balayage de la surface des épidermes reconstruits « de mamelon » 4 heures après lésion (G x1000)
Exemples
Exemple 1 : Développement d'un modèle tissulaire de mamelon pour l'évaluation d'un baume allaitement Objectifs : Développement d'un modèle mimant les caractéristiques et la morphologie de l'épithélium du mamelon pour mettre en place un modèle expérimental mimant des fissures et crevasses afin d'évaluer l'efficacité de produits cosmétiques comme traitement apaisant (anti-inflammatoire) et réparateur. Le mamelon est un épiderme spécialisé qui possède certaines caractéristiques : hyperkératinisé et épais avec des couches suprabasales, granuleuses et cornifiées étendues.
Au niveau moléculaire, on note une production accrue et une distribution spécifique de certains marqueurs (fort niveau de production dans de multiples couches de l'épiderme) : filaggrine (marqueur de la barrière -> réponse tissulaire différente à des stimuli externes) et kératine 14 (marqueur mitotique, indicatif d'un état hyperprolifératif du tissu).
Le modèle de mamelon a été obtenu par reconstruction d'un épiderme ou d'une peau totale (épiderme reconstruit sur une matrice de collagène) à partir d'un lot de kératinocytes surexprimant la filaggrine.
A. Sélection du lot de kératinocytes à utiliser pour produire le modèle de mamelon Des épidermes reconstruits ont été produits à partir de différents lots de kératinocytes et analysés comparativement en histochimie et immunohistochimie.
Le lot choisi pour produire le modèle de mamelon est un lot de kératinocytes surexprimant la filaggrine et, après reconstruction d'un épiderme, présentant un nombre important de couches granuleuses avec de nombreux granules de kératohyaline et un marquage important de filaggrine.
Ce lot de kératinocytes a été utilisé dans les étapes suivantes pour produire des modèles tissulaires mimant le mamelon.
Une coupe d'un épiderme reconstruit (à J17) obtenu à partir du lot de kératinocytes choisi pour la mise en place du modèle de mamelon est illustré figure 1 . B. Caractérisation d'un modèle de mamelon
1 . Matériel et Méthodes
Le modèle de mamelon a été obtenu par reconstruction d'une peau (à partir du lot de kératinocytes défini précédemment), sur une matrice de collagène contenant des fibroblastes. En parallèle, une peau « standard » a été reconstruite dans les mêmes conditions, sur une matrice de collagène contenant des fibroblastes, à partir d'un lot de kératinocytes standard (ne surexprimant pas la filaggrine). Ce tissu standard sert de référence au modèle de tissu de mamelon. Les tissus reconstruits ont été incubés pendant 4 heures et 24 heures puis l'expression génique de la filaggrine a été étudiée par PCR quantitative (qPCR) en temps réel.
Les peaux reconstruites ont été lysées et les ARN totaux extraits puis rétro-transcrits en cDNA. L'expression du gène d'intérêt (Filaggrine) a été analysée par qPCR en temps réel et comparée à l'expression du gène de ménage GAPDH. 2. Résultats
Le modèle de peau de mamelon exprime beaucoup plus de filaggrine qu'un modèle de peau standard (+260%). Ces résultats sont illustrés par la figure 2. Ils confirment que le modèle mis en place se rapproche de la physiologie du mamelon en termes de production de filaggrine.
C. Etude 1 : Utilisation d'un modèle de peau reconstruite de mamelon pour évaluer l'efficacité réparatrice et anti-inflammatoire d'un baume allaitement
1. Matériel et Méthodes
Le modèle de mamelon a été obtenu par reconstruction d'une peau à partir d'un lot de kératinocytes surexprimant la filaggrine (comme décrit précédemment), sur une matrice de collagène contenant des fibroblastes.
Une lésion (blessure mécanique) en surface de la peau reconstruite a été réalisée, afin de mimer une crevasse ou fissure du mamelon. Le produit à l'essai (baume allaitement) a été appliqué topiquement immédiatement après réalisation de la lésion. N'importe quelle formulation de baume peut être testé par la méthode de l'invention, telles que par exemples les formulations 1 à 3 ci-dessous.
Les résultats présentés ci-après correspondent à ceux obtenus pour le baume dont la composition correspond à la formulation n° 3 (« baume allaitement 3 »).
BAUME ALLAITEMENT 1
Matière première / Nom commercial % EAU PURIFIEE De 5 à 20%
AMIDON 1
GLYCEROL QSP 100%
BAUME ALLAITEMENT 2
S Matière première / Nom commercial | %
BEURRE ou HUILE De 5 à 20%
LANOLINE j QSP 100%
BAUME ALLAITEMENT 3
Matière première / Nom commercial | %
IEAU PURIFIEE j QSP 100%
BEURRE DE KARITE | De 5 à 20%
GLYCEROL j De 5 à 20%
DECYL PENTANOATE j De 5 à 20%
GELIFIANT DE PHASSE GRASSE 1 De 1 à 5%
METHYLGLUCOSEDIOLATE De 1 à 5%
SYSTEME CONSERVATEUR De 1 à 5%
CIRE VEGETALE De 1 à 5%
ACTIFS 1 De 1 à 5%
(EMULSIONNANT De 1 à 5%
GOMME XANTHANE j De O à 1 %
AJUSTEUR pH De O à 1 % ANTIOXYDANT De O à 1%
Les peaux reconstruites ont alors été incubées pendant 4 heures et 24 heures puis les paramètres suivant ont été analysés :
Relargage de LDH,
Expression génique (qPCR en temps réel) du TNFa et de la filaggrine,
Production d'intégrine 61 (Western Blot). a. Quantification de la LDH relarguée : La LDH relarguée dans le milieu de culture des peaux reconstruites a été quantifiée au moyen d'un test colorimétrique basé sur la détection de sels de formazan dont la formation est liée à l'activité enzymatique de l'enzyme. La quantité de LDH a été déterminée au moyen d'une courbe standard et est exprimée en mU/ml. b. qPCR en temps réel : Les peaux reconstruites ont été lysées et les ARN totaux extraits puis rétro-transcrits en cDNA. L'expression des gènes d'intérêt (TNFa, filaggrine) a été analysée par qPCR en temps réel et comparée à l'expression du gène de ménage GAPDH. c. Analyse de la production d'intégrine 61 par Western blot :
Les peaux reconstruites ont été lysées, en présence d'inhibiteurs de protéases. Les protéines issues des échantillons ont été quantifiées, séparées par électrophorèse sur gel de polyacrylamide puis transférées sur membrane de nitrocellulose. Les membranes ont alors été incubées en présence d'un anticorps primaire anti-lntégrine 61 (Santa Cruz), puis en présence d'un anticorps secondaire marqué (Invitrogen). Le signal de chemiluminescence a alors été visualisé et quantifié, son intensité est proportionnelle à la quantité d'intégrine 61 produite.
2. Résultats a. Evaluation de l'intégrité des membranes cellulaires : dosage de LDH Les résultats du dosage de la LDH sont indiqués dans le tableau 1 et illustrés par la figure 3.
LDH (mU/ml)
4 heures 24 heures
Tissu contrôle 64 ± 2,99 86,5 ± 24,74
Tissu lésé 407 ± 9 +536% 470,5 ± 191 ,62 +444%
Tissu lésé + baume 35 ± 0,86 -91% 14,5 ± 7,78 -97%
Tableau 1
Les membranes cellulaires forment une membrane fonctionnelle autour des cellules. Lorsque les cellules sont endommagées, les membranes sont altérées et deviennent poreuses, perméables à certains composants.
L'intégrité des membranes a été évaluée par mesure de la LDH (lactate deshydrogénase) dans le milieu extracellulaire. Cette enzyme est normalement présente dans le cytosol et est indétectable dans l'espace extracellulaire en l'absence de dommages cellulaires. La lésion des peaux reconstruites a induit un relargage important de LDH dans l'espace extracellulaire, témoignant de l'altération de l'intégrité des membranes cellulaires. L'application topique du baume allaitement a réduit très fortement le relargage de LDH. Le baume allaitement protège l'intégrité des tissus et accélère leur récupération après la lésion.
b. Evaluation de la réponse inflammatoire : expression de TNFa
Les résultats de la mesure de l'expression de TNFa sont indiqués dans le tableau 2 et illustrés par la figure 4.
TNFa
(Expression génique en
quantité relative) Tissu contrôle 1 ,00
Tissu lésé 2,45 +145%
Tissu lésé + baume 1 ,76 -28%
Tableau 2
Le (Tumor Necrosis Factor-alpha) est un médiateur important de l'inflammation ; le signal inflammatoire contribue à l'amplification de la douleur ressentie. La lésion des peaux reconstruites a induit une forte augmentation (+145%) de l'expression génique du TNFa, représentative de l'induction d'un signal inflammatoire.
L'application topique du baume allaitement a modulé la surexpression du TNFa induite par la lésion (-28%).
Le baume allaitement module l'inflammation et contribue donc à minimiser la douleur. c. Evaluation de la réparation de la barrière : expression de la filaggrine
Les résultats de la mesure de la production de la filaggrine sont indiqués dans le tableau 3 et illustrés par la figure 5.
Filaggrine
(Expression génique en
quantité relative)
Tissu contrôle 1 ,00
Tissu lésé 0,24 -76%
Tissu lésé + baume 0,56 +133%
Tableau 3
La filaggrine a un double rôle essentiel à la fonction barrière : d'une part, elle s'agrège aux fibres de kératine du cytosquelette, réduisant ainsi les cornéocytes en disques aplatis, ce réseau intracellulaire confère résistance et protection au stratum corneum. D'autre part, la filaggrine est le précurseur du NMF (Natural Moisturizing Factor ou Facteur Naturel d'Hydratation). Le NMF est hautement hygroscopique et est essentiel à la rétention d'eau dans les cornéocytes, il joue de plus un rôle majeur dans le maintien du pH de la peau, régulant ainsi des événements biochimiques clés comme l'activité des protéases, la perméabilité de la barrière et les défenses antimicrobiennes, fonctions qui sont fondamentalement liées et co-régulées. La lésion des peaux reconstruites a entraîné une forte diminution (-76%) de l'expression génique de la filaggrine, montrant une altération importante de la fonction barrière.
L'application du baume allaitement a modulé la répression de la filaggrine (+133%). Le baume allaitement tend à contrer l'effet délétère de la lésion sur la barrière et contribue ainsi à accélérer la réparation de la barrière. d. Evaluation de l'initiation de la cicatrisation : expression de l'intégrine-61
Les résultats de la mesure de la production de l'intégrine-61 sont illustrés par la figure 6.
Les intégrines, un groupe de protéines membranaires, sont des facteurs importants dans la régulation de la cicatrisation. En effet, d'une part, les intégrines permettent la migration des kératinocytes, étape précoce du processus de cicatrisation ; et d'autre part, elles se lient à des macromolécules de la matrice dermique, assurant ainsi le contact de l'épiderme avec la matrice extra-cellulaire dermique nouvellement synthétisée pour permettre la cohésion et la communication entre les deux compartiments (derme et épiderme).
La sous-unité d'intégrine 61 est une protéine transmembranaire de 130 kDa qui forme des complexes non covalents avec différentes sous-unités a pour former des récepteurs fonctionnels et actifs.
Ces récepteurs coordonnent l'activation de voies de signalisation intracellulaire impliquées notamment dans la cicatrisation.
L'analyse en western blot de la production de l'intégrine 61 (figure 6) montre que : - dans les tissus contrôles et lésés, une seule bande de 130 kDa est observée, cette bande correspond à la sous-unité 61 seule de l'intégrine ;
- en présence du baume allaitement, la sous-unité 61 seule (bande de 130 kDa) diminue et des aggrégats de plus haut poids moléculaire (220 kDa) se sont formés ; ces aggrégats correspondent à la formation de complexes (sous-unité 61 liée à une sous-unité a) ou récepteurs hétérodimériques fonctionnels représentatifs de l'activation de l'intégrine 61. Le baume allaitement rend fonctionnel l'intégrine 61 , et permet ainsi d'initier le processus de cicatrisation.
3. Conclusion
Un modèle de mamelon obtenu par reconstruction d'une peau à partir d'un lot de kératinocytes surexprimant la filaggrine a été utilisé afin d'évaluer l'efficacité réparatrice et anti-inflammatoire d'un baume allaitement après lésion du mamelon mimant une crevasse.
Sur ce modèle de mamelon lésé, le baume allaitement à un effet protecteur (protection de l'intégrité des membranes cellulaires / LDH), réparateur (induction de la cicatrisation / intégrine 61 ; restauration de la barrière / filaggrine) et apaisant (anti-inflammatoire / TNFa).
Ces résultats confirment l'intérêt du modèle mis en place comme un modèle mimant la peau de mamelon et permettant d'évaluer l'efficacité réparatrice et apaisante d'une formulation dédiée au soin du mamelon, en particulier dans le cas de l'apparition de crevasses ou fissures. D. Etude 2 : Utilisation d'un modèle d'épiderme reconstruit de mamelon pour évaluer comparativement l'efficacité réparatrice et anti-inflammatoire de produits cosmétiques pour l'allaitement en comparaison avec le lait maternel
1. Matériel et Méthodes
Pour mimer le mamelon, un épiderme reconstruit, obtenu à partir d'un lot de kératinocytes surexprimant la filaggrine (comme décrit précédemment), a été utilisé.
Deux produits cosmétiques destinés à soigner les crevasses liées à l'allaitement ont été étudiés : un baume allaitement (correspondant à la formulation « baume allaitement 3 ») et une pommade à base de lanoline (produit 2). En parallèle, du lait maternel, décrit pour ses propriétés réparatrices a également été évalué. Une lésion (blessure mécanique) en surface de l'épiderme de mamelon a été réalisée, afin de mimer une crevasse ou fissure du mamelon.
Les produits à l'essai ont ensuite été appliqués topiquement immédiatement après réalisation de la lésion.
Les épidermes ont alors été incubés pendant 4 heures et 24 heures puis les paramètres suivant ont été analysés : Relargage de LDH ;
Expression génique (qPCR en temps réel) du TGF 61 et du TNFa;
Marquage en immunofluorescence de l'intégrine 61 (uniquement produit 1 ). a. Quantification de la LDH relarguée : La LDH relarguée dans le milieu de culture des épidermes reconstruits a été quantifiée au moyen d'un test colorimétrique basé sur la détection de sels de formazan dont la formation est liée à l'activité enzymatique de l'enzyme. La quantité de LDH a été déterminée au moyen d'une courbe standard et est exprimée en mU/ml.
b. qPCR en temps réel :
Les épidermes reconstruits ont été lysés et les ARN totaux extraits puis rétro-transcrits en cDNA. L'expression des gènes d'intérêt (TNFa, TGF 61 ) a été analysée par qPCR en temps réel et comparée à l'expression du gène de ménage GAPDH. c. Marquage en immunofluorescence de l'intégrine 61 (évalué uniquement pour le produit 1 ) :
Les épidermes reconstruits ont été fixés, enrobés en paraffine et coupés. Les sections ont été incubées en présence d'un anticorps primaire dirigé contre le domaine extracellulaire de l'intégrine 61 (Santa Cruz), puis en présence d'un anticorps secondaire conjugué au fluorochrome Alexa Fluor 555 (Invitrogen). Les noyaux ont été contre-colorés au DAPI. Les marquages ont été visualisés en microscopie confocale (Leica).
2. Résultats
a. Evaluation de l'intégrité des membranes cellulaires : dosage de LDH Les résultats sont représentés dans le tableau 4 et illustrés dans la figure 7.
LDH (mU/ml) Tissu contrôle 7,8 ± 0
Tissu lésé 123, 1 1 ± 0,86
Tissu lésé + produit 1 12,45 ± 6,98 -90%
Tissu lésé + produit 2 106,85 ± 6,06 -13%
Tissu lésé + lait maternel 63, 15 ± 21 ,94 -49%
Tableau 4
La lésion des épidermes reconstruits « de mamelon » a induit un relargage important de LDH dans l'espace extracellulaire, représentatif de l'altération de l'intégrité des membranes cellulaires. L'application topique du produit 1 a réduit très fortement le relargage de LDH (90% d 'inhibition). Le produit 2 testé a faiblement diminué le relargage de LDH (-1 3%), et le lait maternel a entraîné une diminution intermédiaire du relargage de LDH (-49%).
Le produit 1 et le lait maternel, dans une moindre mesure, protègent l'intégrité des tissus et accélèrent leur récupération après la lésion. b. Evaluation de la réponse inflammatoire : expression du TNFa
Les résultats sont représentés dans le tableau 5 et illustrés dans la figure 8.
TNFa
(Expression génique en
quantité relative)
Tissu contrôle 1 ,00
Tissu lésé 35,21
Tissu lésé + produit 1 8,38 -76%
Tissu lésé + produit 2 29,03 -17%
Tissu lésé + lait maternel 16,28 -54%
Tableau 5 La lésion des épidémies reconstruits a induit une forte augmentation de l'expression génique du TNFa, représentative de l'induction d'un signal inflammatoire.
Le produit 1 a très nettement inhibé la surexpression du TNFa induite par la lésion (-76%) ; le produit 2 a induit une faible diminution (-17%) et le lait maternel a induit une diminution d'un niveau intermédiaire (-54%).
Le produit 1 et, dans une moindre mesure, le lait maternel modulent l'inflammation et contribuent donc à apaiser la douleur.
c. Evaluation de l'initiation de la cicatrisation : expression du TGF 61 Les résultats sont représentés dans le tableau 6 et illustrés dans la figure 9.
TGF 61
(Expression génique en quantité
relative)
Tissu lésé 1 ,00
Tissu lésé + produit 1 2,05 +105%
Tissu lésé + produit 2 1 , 18 +18%
Tissu lésé + lait maternel 1 ,59 +59%
Tableau 6
Le TGF 61 est un facteur de croissance qui contrôle de nombreuses fonctions cellulaires, il est notamment impliqué dans la régulation de la cicatrisation en stimulant la ré-épithélisation, phase précoce du processus de cicatrisation épidermique.
Le produit 1 a induit une augmentation importante (+105%) de l'expression du TGF 61 dans les tissus lésés, le produit 2 a entraîné une augmentation faible (+18%) et le lait maternel a induit une augmentation à un niveau intermédiaire (+59%).
Le produit 1 et, dans une moindre mesure, le lait maternel contribuent à initier le processus de cicatrisation pour un effet réparateur. d. Evaluation de l'initiation de la cicatrisation : expression de l'intégrine 61 Les résultats sont illustrés dans la figure 10.
Dans les tissus contrôles, les résultats montrent un marquage intense de l'intégrine 61 associé à la membrane plasmique des kératinocytes (flèches jaunes). Cette localisation membranaire de l'intégrine 61 montre la disponibilité/fonctionnalité du récepteur.
La lésion des tissus entraine une forte diminution du marquage de l'intégrine 61 , celui ci a pratiquement disparu, ce qui montre une altération du récepteur.
En présence du baume allaitement (produit 1 ), un marquage membranaire de l'intégrine 61 est récupéré (flèches jaunes), témoin de la restauration de la fonctionnalité du récepteur.
Le baume allaitement (produit 1 ) restaure la production de l'intégrine 61 , permettant ainsi de restaurer les contacts intercellulaires pour initier le processus de réparation.
3. Conclusion
Un modèle de mamelon obtenu par reconstruction d'un épiderme à partir d'un lot de kératinocytes surexprimant la filaggrine a été utilisé afin d'évaluer comparativement l'efficacité réparatrice et anti-inflammatoire de produits cosmétiques destinés au soin du mamelon en comparaison avec le lait maternel. L'épiderme reconstruit de « mamelon » a été lésé en surface afin de mimer une lésion.
Sur ce modèle d 'épiderme de mamelon lésé, des différences d'efficacité ont été mises en évidence entre les deux produits testés et le lait maternel (connu pour ses propriétés réparatrices) en termes d'action de protection (protection de l'intégrité des membranes cellulaires / LDH), de réparation (initiation de la cicatrisation / TGF 61 ; intégrine 61 ) et d'apaisement (anti-inflammatoire /TNFa).
Ces résultats confirment l'intérêt du modèle mis en place comme un modèle mimant l'épiderme de mamelon, permettant d'évaluer comparativement différentes formules et permettant l'identification de formules efficaces pour le soin des crevasses/fissures du mamelon.
E. Etude 3 : Utilisation d'un modèle d'épiderme reconstruit de mamelon pour visualiser l'effet protecteur et réparateur d'un baume allaitement Les étapes précédentes ont montré l'intérêt du modèle d'épiderme de mamelon mis en place pour l'évaluation de l'activité ou l'identification d'une formulation pour traiter les lésions de la peau du mamelon en se basant sur la mesure de marqueurs d'un effet réparateur, protecteur ou anti-inflammatoire.
Afin de valider les conclusions obtenues par l'analyse du niveau de production des marqueurs, nous avons cherché à visualiser l'effet d'une lésion du modèle d'épiderme de mamelon et l'effet réparateur d'un produit en utilisant la technique de microscopie électronique.
1. Matériel et Méthodes Un épiderme reconstruit, obtenu à partir d'un lot de kératinocytes surexprimant la filaggrine (comme décrit précédemment), a été utilisé comme modèle de mamelon.
Une lésion (blessure mécanique) en surface de l'épiderme de mamelon a été réalisée, afin de mimer une crevasse ou fissure du mamelon.
Un baume allaitement correspondant à la formulation « baume allaitement 3 » a ensuite été appliqué topiquement.
Après incubation pendant 4 heures, les épidermes ont été fixés, déshydratés et recouverts d'une couche d'or avant d'être observés au microscope électronique à balayage (Zeiss).
2. Résultats Les résultats sont illustrés dans la figure 11.
Les kératinocytes épidermiques forment une enveloppe cornée au cours des dernières étapes de leur différenciation. Cette enveloppe cornée assure la cohésion et solidité du stratum corneum et joue un rôle primordial dans la fonction barrière de l'épiderme.
L'observation en Microscopie Electronique à Balayage de la surface des tissus reconstruits montre dans les tissus contrôles une surface cutanée intacte, homogène et lisse (qui correspond à l'enveloppe cornée) où l'on distingue le contour des cellules (cornéocytes ; flèche bleue).
La lésion entraine une blessure profonde avec destruction de l'enveloppe cornée. L'application du baume allaitement après la lésion accélère visiblement la réparation de cette blessure : la surface est plus régulière et plus lisse, montrant la restauration de l'enveloppe cornée.
3. Conclusion
Ces observations en Microscopie Electronique à Balayage confirment de façon directe l'effet réparateur et protecteur du baume allaitement mis en évidence par le biais de la production de différents marqueurs lors des étapes précédentes.
Ainsi ces résultats confirment : l'intérêt du modèle mis en place comme un modèle mimant la peau ou l'épiderme de mamelon fissuré et permettant d'évaluer ou d'identifier l'effet réparateur ou protecteur d'une formulation, le choix des marqueurs (dans les étapes précédentes) et leur validité
marqueurs représentatifs d'un effet réparateur et protecteur.

Claims

REVENDICATIONS
1 . Modèle de peau in vitro caractérisé en ce qu'il comprend des kératinocytes d'origine humaine surexprimant la filaggrine.
2. Modèle selon la revendication 1 caractérisé en ce que ledit modèle est un modèle d'épiderme comprenant un support matriciel.
3. Modèle selon la revendication 2 caractérisé en ce que ledit modèle est un modèle d'épiderme comprenant un support matriciel ensemencé par des fibroblastes dans la partie dermique.
4. Modèle selon l'une des revendications 1 à 3, caractérisé en ce qu'il comprend une lésion, de préférence une lésion mimant une crevasse.
5. Procédé d'évaluation de l'activité in vitro d'un actif ou d'une formulation sur la cicatrisation de la peau du mamelon et/ou sur la diminution de l'inflammation de la peau du mamelon, caractérisé en ce que ledit procédé comprend au moins les étapes suivantes:
) mettre en contact ledit actif ou ladite formulation avec un modèle de peau selon la revendication 4;
) mesurer le niveau de production d'au moins un marqueur biologique dans le modèle de peau de mamelon de l'étape a), caractérisé en ce que ledit marqueur biologique est choisi parmi le groupe consistant en:
les marqueurs de l'intégrité épidermique, ledit marqueur de l'intégrité épidermique étant de préférence la lactate déshydrogénase (LDH); et
les marqueurs de la barrière épidermique, ledit marqueur de la barrière épidermique étant de préférence la filaggrine; et
les marqueurs de l'inflammation épidermique, ledit marqueur de l'inflammation épidermique étant de préférence choisi parmi les cytokines, en particulier le TNFa; et les marqueurs de la cicatrisation, ledit marqueur de la cicatrisation étant de préférence choisi parmi les intégrines, en particulier l'intégrine 61 , et le TGF 61 ;
) comparer le niveau de production d'au moins un marqueur biologique obtenu à l'étape b) avec un niveau de production de référence ; d) évaluer l'efficacité dudit actif ou de ladite formulation sur la cicatrisation de la peau du mamelon et/ou sur la diminution de l'inflammation de la peau du mamelon en fonction de la comparaison de l'étape c).
6. Procédé d 'identification d 'un actif ou d 'une formulation pour traiter les lésions de la peau du mamelon, en particulier les crevasses, ledit procédé comprenant les étapes suivantes :
a) mettre en contact un actif candidat ou une formulation candidate avec un modèle de peau selon la revendication 4;
b) mesurer le niveau de production d'au moins un marqueur biologique dans le modèle de peau de mamelon de l'étape a), caractérisé en ce que ledit marqueur biologique est choisi parmi le groupe consistant en:
- les marqueurs de l'intégrité épidermique, ledit marqueur de l'intégrité épidermique étant de préférence la lactate déshydrogénase (LDH); et
- les marqueurs de la barrière épidermique, ledit marqueur de la barrière épidermique étant de préférence la filaggrine; et
- les marqueurs de l'inflammation épidermique, ledit marqueur de l'inflammation épidermique étant de préférence choisi parmi les cytokines, en particulier le TNFa; et
- les marqueurs de la cicatrisation, ledit marqueur de la cicatrisation étant de préférence choisi parmi les intégrines, en particulier l'intégrine 61 , et le TGF 61 ; c) comparer le niveau de production d 'au moins un marqueur biologique obtenu à l'étape b) avec un niveau de production de référence ;
d) déterminer si ledit actif ou ladite formulation candidate est une formulation pour traiter les lésions de la peau du mamelon, en particulier les crevasses, en fonction de la comparaison de l'étape c).
7. Procédé selon l'une des revendications 5 ou 6, caractérisé en ce que l'étape b) comprend la mesure du niveau de production d 'une combinaison de marqueurs biologiques comprenant ou consistant en
- au moins un marqueur de l'intégrité épidermique, ledit marqueur de l'intégrité épidermique étant de préférence la lactate déshydrogénase (LDH); et
- au moins un marqueur de la barrière épidermique, ledit marqueur de la barrière épidermique étant de préférence la filaggrine; et au moins un marqueur de l'inflammation épidermique, ledit marqueur de l'inflammation épidermique étant de préférence choisi parmi les cytokines, en particulier le TNFa; et
au moins un marqueur de la cicatrisation, ledit marqueur de la cicatrisation étant de préférence choisi parmi les intégrines, en particulier l'intégrine 61 , et le TGF 61.
Utilisation d'un modèle de peau selon les revendications 1 à 4, pour étudier la peau du mamelon.
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WO (1) WO2015104413A1 (fr)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2017103195A1 (fr) * 2015-12-16 2017-06-22 Laboratoires Expanscience Procedes d'evaluation des effets de la deshydratation sur la peau d'enfant
WO2018234430A1 (fr) * 2017-06-22 2018-12-27 Laboratoires Expanscience Modeles de peau sensible reconstituee

Citations (36)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0029678A1 (fr) 1979-11-09 1981-06-03 Air Products And Chemicals, Inc. Récupération d'hydrocarbures en C2 à partir d'un courant de tête d'un déméthaniseur
EP0285471A1 (fr) 1987-03-26 1988-10-05 CENTRE INTERNATIONAL DE RECHERCHES DERMATOLOGIQUES GALDERMA - CIRD GALDERMA Groupement d'Intérêt Economique dit: Procédé d'obtention d'un équivalent de peau et équivalent de peau correspondant
US4849077A (en) 1984-08-06 1989-07-18 Akademie Der Wissenschaften Der Ddr Process for solid phase-sequencing of nucleic acid fragments
EP0789074A1 (fr) 1996-01-23 1997-08-13 L'oreal Equivalent de peau comprenant des cellules de Langerhans
WO1998047479A1 (fr) 1997-04-24 1998-10-29 Laboratoires Pharmascience Composition anti-oxydante et/ou anti-elastase a base d'huile de lupin
WO2001021605A2 (fr) 1999-09-22 2001-03-29 Laboratoires Pharmascience Procede d'extraction des composes lipides furaniques et alcools gras polyhydroxyles de l'avocat, composition a base de ces composes et leur utilisation en therapeutique, cosmetique et alimentaire
WO2001021150A1 (fr) 1999-09-22 2001-03-29 Laboratoires Pharmascience Utilisation d'un produit d'huile vegetale en tant qu'agent pour augmenter la synthese des lipides cutanes
WO2001051596A2 (fr) 2000-01-12 2001-07-19 Laboratoires Pharmascience Procede d'extraction des insaponifiables des huiles vegetales au moyen de chloro-1-butane
WO2002070729A2 (fr) 2001-03-02 2002-09-12 Stratatech Corporation Substituts de peau ameliores et utilisations correspondantes
FR2822821A1 (fr) 2001-04-03 2002-10-04 Pharmascience Lab Extrait de coques de graines de lupin contenant du lupeol, en particulier extrait riche en lupeol et son procede de preparation
WO2003066896A2 (fr) 2002-02-09 2003-08-14 Nanotype Gmbh Procede de detection de mutations
WO2004012752A2 (fr) 2002-07-30 2004-02-12 Laboratoires Expanscience Procede d'obtention d'un extrait de feuilles d'avocatier riche en lipides furaniques
WO2004012496A2 (fr) 2002-07-29 2004-02-12 Laboratoires Expanscience Procede d'obtention d'un insaponifiable d'avocat riche en lipides furaniques
US6723513B2 (en) 1998-12-23 2004-04-20 Lingvitae As Sequencing method using magnifying tags
WO2004050079A1 (fr) 2002-11-25 2004-06-17 Laboratoires Expanscience Composition comprenant un derive d'acide carbamique, son utilisation cosmetique et comme medicament
WO2004050052A1 (fr) 2002-11-25 2004-06-17 Laboratoires Expanscience Oxazolidinones pour une utilisation cosmetique et pharmaceutique dans les pathologies cutanees
WO2004112742A2 (fr) 2003-06-19 2004-12-29 Laboratoires Expanscience Extrait de maca et composition cosmetique comprenant un tel extrait
WO2004112741A1 (fr) 2003-06-18 2004-12-29 Laboratoires Expanscience Utilisation cosmetique d’une composition comprenant au moins une oxazoline, a titre de principe actif, comme amincissant et/ou pour prevenir et/ou traiter la cellulite.
FR2857596A1 (fr) 2003-07-18 2005-01-21 Expanscience Lab Utilisation d'une composition cosmetique ou pharmaceutique comprenant un extrait riche en lupeol, a titre de principe actif, pour stimuler la synthese des proteines de stress
WO2005102259A1 (fr) 2004-04-08 2005-11-03 Laboratoires Expanscience Extrait total de lupin, constitue d’un extrait de sucres de lupin et d’un extrait peptidique de lupin, procede d’obtention et utilisation
WO2005105123A1 (fr) 2004-04-30 2005-11-10 Laboratoires Expanscience Medicament comprenant un extrait peptidique d'avocat destine au traitement et a la prevention des maladies liees a une deficience du systeme immunitaire
WO2005115421A1 (fr) 2004-04-30 2005-12-08 Laboratoires Expanscience Utilisation d’une composition comprenant du d-mannoheptulose et/ou du perseitol dans le traitement et la prevention des maladies liees a une modification de l’immunite innee
WO2006063865A2 (fr) 2004-12-15 2006-06-22 Universite D'angers Compositions d'amelioration de la migration de keratinocytes et pour la reparation epidermique au moyen d'un recepteur contenant osmrbêta comme sous-unite et leurs applications
WO2006084132A2 (fr) 2005-02-01 2006-08-10 Agencourt Bioscience Corp. Reactifs, methodes et bibliotheques pour sequençage fonde sur des billes
US20060275782A1 (en) 1999-04-20 2006-12-07 Illumina, Inc. Detection of nucleic acid reactions on bead arrays
WO2007057439A1 (fr) 2005-11-18 2007-05-24 Laboratoires Expanscience Procédé d'obtention d'une huile d'avocat raffinée riche en triglycérides et huile susceptible d'être obtenue par un tel procédé
WO2007064305A1 (fr) 2005-12-01 2007-06-07 Agency For Science, Technology And Research Matrices extracellulaires reconstituees en trois dimensions servant d'echafaudage pour le genie tissulaire
US20070148771A1 (en) 2003-01-30 2007-06-28 L'oreal Reconstructed epidermis/skin equivalent comprising a ceramide 7 and/or 5.5 and lipid lamellar vesicular compositions comprising ceramide 7 and/or 5.5 compounds
WO2007111924A2 (fr) 2006-03-23 2007-10-04 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Séquençage moléculaire résolu par le déplacement d'une enzyme
EP1878790A1 (fr) 2006-07-13 2008-01-16 L'Oréal Equivalent d`épiderme capable de se pigmenter obtenu à partir de cellules de la matrice, procédé de préparation et utilisation
WO2008009709A1 (fr) 2006-07-18 2008-01-24 Laboratoires Expanscience Utilisation d'un hydrolysat de proteines de riz en tant que principe actif pigmentant
EP1451302B1 (fr) 2001-08-03 2008-05-28 Idi Farmaceutici S.P.A. Feuillets de l'epithelium corneen humain reconstitues in vitro et methode de production de ces derniers
WO2008080974A1 (fr) 2006-12-28 2008-07-10 Laboratoires Expanscience Composition comprenant un extrait de graines de quinoa, utilisation dermatologique
EP1974718A1 (fr) 2007-02-26 2008-10-01 L'Oreal Composition cosmétique ou dermatologique comprenant un milieu de culture cellulaire
US20100099576A1 (en) 2001-03-02 2010-04-22 Allen Comer Skin substitutes with improved barrier function
WO2013014435A1 (fr) * 2011-07-27 2013-01-31 University Of Durham Microorgane comprenant des cellules mésenchymateuses et épithéliales

Patent Citations (45)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0029678A1 (fr) 1979-11-09 1981-06-03 Air Products And Chemicals, Inc. Récupération d'hydrocarbures en C2 à partir d'un courant de tête d'un déméthaniseur
US4849077A (en) 1984-08-06 1989-07-18 Akademie Der Wissenschaften Der Ddr Process for solid phase-sequencing of nucleic acid fragments
US4882127A (en) 1984-08-06 1989-11-21 Akademie Der Wissenschaften Der Ddr Device for solid phase sequencing of nucleic acid fragments
EP0285471A1 (fr) 1987-03-26 1988-10-05 CENTRE INTERNATIONAL DE RECHERCHES DERMATOLOGIQUES GALDERMA - CIRD GALDERMA Groupement d'Intérêt Economique dit: Procédé d'obtention d'un équivalent de peau et équivalent de peau correspondant
EP0789074A1 (fr) 1996-01-23 1997-08-13 L'oreal Equivalent de peau comprenant des cellules de Langerhans
WO1998047479A1 (fr) 1997-04-24 1998-10-29 Laboratoires Pharmascience Composition anti-oxydante et/ou anti-elastase a base d'huile de lupin
US6723513B2 (en) 1998-12-23 2004-04-20 Lingvitae As Sequencing method using magnifying tags
EP1141399B1 (fr) 1998-12-23 2005-08-17 Preben Lexow Methode de sequen age utilisant des marques grossissantes
US20060275782A1 (en) 1999-04-20 2006-12-07 Illumina, Inc. Detection of nucleic acid reactions on bead arrays
US20090186349A1 (en) 1999-04-20 2009-07-23 Illumina, Inc. Detection of nucleic acid reactions on bead arrays
WO2001021150A1 (fr) 1999-09-22 2001-03-29 Laboratoires Pharmascience Utilisation d'un produit d'huile vegetale en tant qu'agent pour augmenter la synthese des lipides cutanes
WO2001021605A2 (fr) 1999-09-22 2001-03-29 Laboratoires Pharmascience Procede d'extraction des composes lipides furaniques et alcools gras polyhydroxyles de l'avocat, composition a base de ces composes et leur utilisation en therapeutique, cosmetique et alimentaire
WO2001051596A2 (fr) 2000-01-12 2001-07-19 Laboratoires Pharmascience Procede d'extraction des insaponifiables des huiles vegetales au moyen de chloro-1-butane
WO2002070729A2 (fr) 2001-03-02 2002-09-12 Stratatech Corporation Substituts de peau ameliores et utilisations correspondantes
US20100099576A1 (en) 2001-03-02 2010-04-22 Allen Comer Skin substitutes with improved barrier function
FR2822821A1 (fr) 2001-04-03 2002-10-04 Pharmascience Lab Extrait de coques de graines de lupin contenant du lupeol, en particulier extrait riche en lupeol et son procede de preparation
EP1451302B1 (fr) 2001-08-03 2008-05-28 Idi Farmaceutici S.P.A. Feuillets de l'epithelium corneen humain reconstitues in vitro et methode de production de ces derniers
WO2003066896A2 (fr) 2002-02-09 2003-08-14 Nanotype Gmbh Procede de detection de mutations
WO2004016106A1 (fr) 2002-07-29 2004-02-26 Laboratoires Expanscience Procede d'obtention d'un insaponifiable d'avocat riche en lipides furaniques
WO2004012496A2 (fr) 2002-07-29 2004-02-12 Laboratoires Expanscience Procede d'obtention d'un insaponifiable d'avocat riche en lipides furaniques
WO2004012752A2 (fr) 2002-07-30 2004-02-12 Laboratoires Expanscience Procede d'obtention d'un extrait de feuilles d'avocatier riche en lipides furaniques
WO2004050052A1 (fr) 2002-11-25 2004-06-17 Laboratoires Expanscience Oxazolidinones pour une utilisation cosmetique et pharmaceutique dans les pathologies cutanees
WO2004050079A1 (fr) 2002-11-25 2004-06-17 Laboratoires Expanscience Composition comprenant un derive d'acide carbamique, son utilisation cosmetique et comme medicament
US20070148771A1 (en) 2003-01-30 2007-06-28 L'oreal Reconstructed epidermis/skin equivalent comprising a ceramide 7 and/or 5.5 and lipid lamellar vesicular compositions comprising ceramide 7 and/or 5.5 compounds
WO2004112741A1 (fr) 2003-06-18 2004-12-29 Laboratoires Expanscience Utilisation cosmetique d’une composition comprenant au moins une oxazoline, a titre de principe actif, comme amincissant et/ou pour prevenir et/ou traiter la cellulite.
WO2004112742A2 (fr) 2003-06-19 2004-12-29 Laboratoires Expanscience Extrait de maca et composition cosmetique comprenant un tel extrait
FR2857596A1 (fr) 2003-07-18 2005-01-21 Expanscience Lab Utilisation d'une composition cosmetique ou pharmaceutique comprenant un extrait riche en lupeol, a titre de principe actif, pour stimuler la synthese des proteines de stress
WO2005102259A1 (fr) 2004-04-08 2005-11-03 Laboratoires Expanscience Extrait total de lupin, constitue d’un extrait de sucres de lupin et d’un extrait peptidique de lupin, procede d’obtention et utilisation
WO2005105123A1 (fr) 2004-04-30 2005-11-10 Laboratoires Expanscience Medicament comprenant un extrait peptidique d'avocat destine au traitement et a la prevention des maladies liees a une deficience du systeme immunitaire
WO2005115421A1 (fr) 2004-04-30 2005-12-08 Laboratoires Expanscience Utilisation d’une composition comprenant du d-mannoheptulose et/ou du perseitol dans le traitement et la prevention des maladies liees a une modification de l’immunite innee
WO2006063865A2 (fr) 2004-12-15 2006-06-22 Universite D'angers Compositions d'amelioration de la migration de keratinocytes et pour la reparation epidermique au moyen d'un recepteur contenant osmrbêta comme sous-unite et leurs applications
WO2006063864A2 (fr) 2004-12-15 2006-06-22 Universite D'angers Compositions de prevention, de reduction ou de traitement d'une inflammation induite par keratinocytes
US20090181860A1 (en) 2005-02-01 2009-07-16 Applied Biosystems Inc. Reagents, methods, and libraries for bead-based sequencing
WO2006084132A2 (fr) 2005-02-01 2006-08-10 Agencourt Bioscience Corp. Reactifs, methodes et bibliotheques pour sequençage fonde sur des billes
US20090181385A1 (en) 2005-02-01 2009-07-16 Applied Biosystems Inc. Reagents, methods, and libraries for bead-based sequencing
WO2007057439A1 (fr) 2005-11-18 2007-05-24 Laboratoires Expanscience Procédé d'obtention d'une huile d'avocat raffinée riche en triglycérides et huile susceptible d'être obtenue par un tel procédé
WO2007064305A1 (fr) 2005-12-01 2007-06-07 Agency For Science, Technology And Research Matrices extracellulaires reconstituees en trois dimensions servant d'echafaudage pour le genie tissulaire
US20080020392A1 (en) 2006-03-23 2008-01-24 Block Steven M Motion resolved molecular sequencing
WO2007111924A2 (fr) 2006-03-23 2007-10-04 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Séquençage moléculaire résolu par le déplacement d'une enzyme
US7556922B2 (en) 2006-03-23 2009-07-07 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Motion resolved molecular sequencing
EP1878790A1 (fr) 2006-07-13 2008-01-16 L'Oréal Equivalent d`épiderme capable de se pigmenter obtenu à partir de cellules de la matrice, procédé de préparation et utilisation
WO2008009709A1 (fr) 2006-07-18 2008-01-24 Laboratoires Expanscience Utilisation d'un hydrolysat de proteines de riz en tant que principe actif pigmentant
WO2008080974A1 (fr) 2006-12-28 2008-07-10 Laboratoires Expanscience Composition comprenant un extrait de graines de quinoa, utilisation dermatologique
EP1974718A1 (fr) 2007-02-26 2008-10-01 L'Oreal Composition cosmétique ou dermatologique comprenant un milieu de culture cellulaire
WO2013014435A1 (fr) * 2011-07-27 2013-01-31 University Of Durham Microorgane comprenant des cellules mésenchymateuses et épithéliales

Non-Patent Citations (27)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
AUXENFANS ET AL., EUR J DERMATOL, vol. 19, no. 2, 2009, pages 107 - 113
AUXENFANS ET AL., J TISSUE ENG REGEN MED, vol. 6, no. 7, 2012, pages 512 - 518
BECHTOILLE ET AL., TISSUE ENG, vol. 13, no. 11, 2007, pages 2667 - 2679
BLACK ET AL., TISSUE ENG, vol. 11, no. 5-6, 2005, pages 723 - 733
C. R. HARDING ET AL: "Filaggrin - revisited", INTERNATIONAL JOURNAL OF COSMETIC SCIENCE, vol. 35, no. 5, 18 October 2013 (2013-10-18), pages 412 - 423, XP055131210, ISSN: 0142-5463, DOI: 10.1111/ics.12049 *
COSTIN ET AL., ALTERN LAB ANIM, vol. 39, no. 4, 2011, pages 317 - 337
DONGARI-BATGTZOGLOU; KASHLEVA, NAT PROTOC, vol. 1, no. 4, 2006, pages 2012 - 2018
EISENBERG ET AL., TRENDS IN GENETICS, vol. 19, 2003, pages 362 - 365
FULLER ET AL., NATURE BIOTECHNOL., vol. 27, no. 11, 2009, pages 1013 - 1023
JOKE A BOUWSTRA ET AL: "Water Distribution and Natural Moisturizer Factor Content in Human Skin Equivalents Are Regulated by Environmental Relative Humidity", JOURNAL OF INVESTIGATIVE DERMATOLOGY, 2 August 2007 (2007-08-02), XP055131657, ISSN: 0022-202X, DOI: 10.1038/sj.jid.5700994 *
KINICOGLU ET AL., BIOMATERIALS, vol. 30, no. 32, 2009, pages 6418 - 6425
KINICOGLU ET AL., BIOMATERIALS, vol. 32, no. 25, 2011, pages 5756 - 5764
LEIGH ET AL., ARCH DERMATOL RES., vol. 286, no. 1, 1994, pages 53 - 61
LEQUEUX ET AL., SKIN PHARMACOL PHYSIOL, vol. 25, no. 1, 2012, pages 47 - 55
MAHLER B, CELLS TISSUES ORGANS, vol. 176, no. 4, 2004, pages 169 - 77
MAHLER BRYON ET AL: "Keratin 2e: a marker for murine nipple epidermis", CELLS TISSUES ORGANS, KARGER, BASEL, CH, vol. 176, no. 4, 1 January 2004 (2004-01-01), pages 169 - 177, XP009179291, ISSN: 1422-6405 *
MARDIS, GENOME MED., vol. 1, no. 4, 2009, pages 40
MARTIN ET AL., EUR J DERMATOL., vol. 21, no. 2, 2011, pages 12 - 20
METZKER, NATURE REV. GENET., vol. 11, no. 1, 2010, pages 31 - 46
PANCHAL ET AL., BMC DEVELOPMENTAL BIOLOGY, vol. 7, 2007, pages 105
PIHLAK ET AL., NAT BIOTECHNOL., vol. 26, no. 6, 2008, pages 676 - 684
PONEC ET AL., INT J PHARM., vol. 203, no. 1-2, 2000, pages 211 - 225
PONEC ET AL., J INVEST DERMATOL., vol. 109, no. 3, 1997, pages 348 - 355
ROSDY ET AL., IN VITRO TOXICOL., vol. 10, no. 1, 1997, pages 39 - 47
SCHMALZ ET AL., EUR J ORAL SCI., vol. 108, no. 5, 2000, pages 442 - 448
SHENDURE; JI, NAT BIOTECHNOL., vol. 26, no. 10, 2008, pages 1135 - 45
VRANA ET AL., INVEST OPHTHALMOL VIS SCI, vol. 49, no. 12, 2008, pages 5325 - 5331

Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2017103195A1 (fr) * 2015-12-16 2017-06-22 Laboratoires Expanscience Procedes d'evaluation des effets de la deshydratation sur la peau d'enfant
FR3045669A1 (fr) * 2015-12-16 2017-06-23 Expanscience Lab Procedes d'evaluation des effets de la deshydratation sur la peau d'enfant
US11892447B2 (en) 2015-12-16 2024-02-06 Laboratoires Expanscience Method for evaluating the effects of dehydration on children's skin
WO2018234430A1 (fr) * 2017-06-22 2018-12-27 Laboratoires Expanscience Modeles de peau sensible reconstituee
FR3068045A1 (fr) * 2017-06-22 2018-12-28 Laboratoires Expanscience Modeles de peau sensible reconstituee
US12061189B2 (en) 2017-06-22 2024-08-13 Laboratoires Expanscience Models of reconstructed sensitive skin

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