WO2015105174A1 - ５－ヒドロキシ－１ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドの有効投与量または感受性の予測方法および予測装置、キサントシン一リン酸の量の測定方法ならびに骨髄異形成症候群の処置剤および処置方法 - Google Patents

５－ヒドロキシ－１ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドの有効投与量または感受性の予測方法および予測装置、キサントシン一リン酸の量の測定方法ならびに骨髄異形成症候群の処置剤および処置方法 Download PDF

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祐輔 桑田
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亮 山下
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Definitions

  • the present invention relates to a method for predicting an effective dose of 5-hydroxy-1H-imidazole-4-carboxamide or a salt thereof or a hydrate thereof for a patient with myelodysplastic syndrome.
  • the invention further relates to a method for predicting whether a patient with myelodysplastic syndrome is susceptible to treatment with 5-hydroxy-1H-imidazole-4-carboxamide or a salt or hydrate thereof.
  • the present invention further relates to a method for measuring the amount of xanthosine monophosphate contained in blood.
  • the present invention further provides a device for predicting an effective dosage of 5-hydroxy-1H-imidazole-4-carboxamide for a patient with myelodysplastic syndrome, and a patient with myelodysplastic syndrome, wherein 5-hydroxy-1H-imidazole It relates to a device for predicting whether it is sensitive to treatment with 4-carboxamide or a salt thereof or a hydrate thereof.
  • the present invention further provides a therapeutic agent for use in the treatment of patients with myelodysplastic syndrome predicted to be sensitive to treatment with 5-hydroxy-1H-imidazole-4-carboxamide or a salt thereof or a hydrate thereof. And a treatment method.
  • Compound A 5-Hydroxy-1H-imidazole-4-carboxamide
  • MDS myelodysplastic syndrome
  • Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof is converted in vivo by adenine phosphoribosyltransferase (APRT) to ribosyl monophosphate (RMP) and inhibits inosine-5'-monophosphate dehydrogenase (IMPDH).
  • APRT adenine phosphoribosyltransferase
  • RMP ribosyl monophosphate
  • IMPDH inosine-5'-monophosphate dehydrogenase
  • IMPDH is an enzyme that produces xanthosine monophosphate (XMP) from inosine monophosphate (IMP).
  • IMPDH inhibitors As IMPDH inhibitors, immunosuppressive agents such as mycophenolic acid and mycophenolic acid mofetil are known. About these immunosuppressive agents, IMP is added in vitro to cell lysates of peripheral blood mononuclear cells (PBMC), which is a fraction containing lymphocytes obtained from blood, and the enzyme reaction by IMPDH is performed. A method for evaluating the degree of inhibition by the IMPDH inhibitor by measuring the amount of XMP was reported (Non-patent Document 2).
  • PBMC peripheral blood mononuclear cells
  • Non-patent Document 3 For analysis of nucleotides, methods using hydrophilic interaction chromatography-mass spectrometry (HILIC-MS) and aqueous normal phase chromatography-mass spectrometry have been reported (Non-patent Document 3). For XMP analysis, methods using reverse phase chromatography and ion exchange chromatography using an ion pair reagent have been reported.
  • XMP produced by IMPDH is further converted into guanosine monophosphate (GMP), guanosine diphosphate (GDP), and guanosine triphosphate (GTP) by an in vivo enzyme reaction, and becomes a material for nucleic acid synthesis (non-patented) Reference 4).
  • GMP guanosine monophosphate
  • GDP guanosine diphosphate
  • GTP guanosine triphosphate
  • MDS is a disease in which dysplasia of blood cell morphology and cytopenia are observed, and the therapeutic effect of therapeutic agents is mainly evaluated by hematological remission and improvement.
  • the method described in Non-Patent Document 2 requires complicated operation and time for fractionation of PBMC.
  • this method is a method for evaluating by adding non-endogenous IMP, and does not accurately reflect the degree of IMPDH inhibition in vivo.
  • nucleotides are hydrophilic small molecules, they are difficult to retain in reversed-phase chromatography usually used for analysis. Moreover, since it has a phosphate group, an adsorption phenomenon and / or tailing is likely to occur during separation analysis. For this reason, quantification of endogenous nucleotides is difficult. Numerous nucleotide metabolites are similar in mass and structure. Since these often approximate the behavior and retention time on liquid chromatography (LC), it is difficult to distinguish and quantify them by liquid chromatography-mass spectrometry (LC-MS).
  • LC-MS liquid chromatography-mass spectrometry
  • This invention made it the subject which should be solved to provide the method of estimating the effective dose of the compound A or its salt, or its hydrate with respect to a patient with MDS in a short time by simple operation.
  • the present invention further provides a method for predicting whether or not a patient with MDS is susceptible to treatment with Compound A or a salt or hydrate thereof in a short time with a simple operation. It was a problem to be solved.
  • Another object of the present invention is to provide a method for accurately measuring a trace amount of XMP contained in blood.
  • the present invention further provides a device for predicting an effective dose of Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof to a patient with MDS and a patient with MDS in a short time in a simple operation. It was a problem to be solved to provide a device for predicting whether or not it is sensitive to treatment using the hydrate.
  • the present invention further solves the problem of providing a therapeutic agent and method for use in the treatment of patients with MDS predicted to be sensitive to treatment with Compound A or a salt or hydrate thereof. It was a problem to be solved.
  • the present inventors have found that an effective dose of Compound A or a salt or hydrate thereof and a treatment using Compound A or a salt or hydrate thereof for patients with MDS It was found that the susceptibility of patients with MDS to can be predicted by measuring variations in the amount of XMP in the blood. Furthermore, the present inventors have found that the amount of trace XMP contained in blood can be accurately measured by setting measurement conditions in the MS method. The present invention has been completed based on these findings.
  • a method for predicting an effective dose of Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof for patients with MDS (A) (i) the amount of XMP contained in blood collected from a patient prior to administration of Compound A or a salt or hydrate thereof, and (ii) administration of Compound A or a salt or hydrate thereof
  • the amount of XMP contained in blood collected from a later patient, or blood collected from a patient before administration of Compound A or a salt or hydrate thereof is contacted with Compound A or a salt or hydrate thereof Measuring the amount of XMP contained in the obtained blood;
  • [2] The method according to [1], wherein the blood is peripheral blood.
  • [3] The method according to [1] or [2], wherein the step of measuring the amount of XMP is a step carried out under a condition in which contaminants contained in blood and XMP can be distinguished and measured.
  • [4] The method according to any one of [1] to [3], wherein the step of measuring the amount of XMP is a step of measuring by a mass spectrometry (MS) method.
  • MS mass spectrometry
  • the step of measuring the amount of XMP comprises (A1) measuring XMP contained in blood under two different measurement conditions by MS method; (A2) A step of obtaining an ionic strength ratio of XMP contained in blood under two different measurement conditions obtained in the step (a1); (A3) The method according to [4], including a step of confirming that an ionic strength ratio of XMP contained in blood obtained in the step (a2) is within a predetermined range.
  • the method according to [5], wherein the step (a1) is a step of measuring XMP contained in blood under two different measurement conditions by an LC-MS method.
  • the method according to [6] wherein the mobile phase used for liquid chromatography (LC) has a pH value of 7 to 11.
  • Step (c) (C1) expressing the relationship between the time after administration or contact time of Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof and the variation rate of XMP obtained in step (b) as a function; (C2) A step of predicting an effective dose of compound A or a salt thereof or a hydrate thereof from the function obtained in step (c1), wherein any one of [1] to [11] The method described.
  • Step (c2) predicts that the dose of Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof such that the variation rate of XMP is not less than the predetermined variation rate during the predetermined treatment period is an effective dose.
  • the dose of Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof is such that the variation rate of XMP is not less than a predetermined variation rate in a period not less than a predetermined ratio during a predetermined treatment period.
  • the method according to [12] which comprises a step of predicting an effective dose.
  • a method for predicting whether a patient with MDS is sensitive to treatment with Compound A or a salt or hydrate thereof comprising: (A) (i) the amount of XMP contained in blood collected from a patient prior to administration of Compound A or a salt or hydrate thereof, and (ii) administration of Compound A or a salt or hydrate thereof The amount of XMP contained in blood collected from a later patient, or blood collected from a patient before administration of Compound A or a salt or hydrate thereof is contacted with Compound A or a salt or hydrate thereof Measuring the amount of XMP contained in the obtained blood; (B) a step of obtaining a variation rate of XMP from the amount of XMP obtained in step (a); (C) predicting whether the patient is sensitive to treatment with Compound A or a salt or hydrate thereof from the variation rate of XMP obtained in step (b). .
  • the step of measuring the amount of XMP comprises (A1) measuring XMP contained in blood under two different measurement conditions by MS method; (A2) A step of obtaining an ionic strength ratio of XMP contained in blood under two different measurement conditions obtained in the step (a1); (A3) The method according to [18], comprising a step of confirming that the ionic strength ratio of XMP contained in blood obtained in the step (a2) is within a predetermined range.
  • the method according to [19], wherein the step (a1) is a step of measuring XMP contained in blood under two different measurement conditions by an LC-MS method.
  • the method according to [20] wherein the mobile phase used for LC has a pH value of 7 to 11.
  • Step is (C1) expressing the relationship between the time after administration or contact time of Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof and the variation rate of XMP obtained in step (b) as a function; (C2) predicting whether or not the patient is sensitive to treatment with Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof from the function obtained in Step (c1). [15] The method according to any one of [25].
  • step (c2) when the variation rate of XMP is not less than the predetermined variation rate in the predetermined treatment period, the patient is sensitive to the treatment using Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof.
  • step (c2) when the variation rate of XMP is not less than a predetermined variation rate in a period that is not less than a predetermined rate during a predetermined treatment period, the patient has a compound A or a salt thereof or a hydrate thereof.
  • the method comprises a step of predicting that the treatment is sensitive to the treatment using the method.
  • a method for measuring the amount of XMP contained in blood (A1) measuring XMP contained in blood under two different measurement conditions by MS method; (A2) A step of obtaining an ionic strength ratio of XMP contained in blood under two different measurement conditions obtained in the step (a1); (A3) a step of confirming that the ionic strength ratio of XMP contained in the blood obtained in the step (a2) is within a predetermined range.
  • the step (a1) is a step of measuring XMP contained in blood under two different measurement conditions by an LC-MS method.
  • a device for predicting an effective dose of Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof for a patient with MDS (A) (i) the amount of XMP contained in blood collected from a patient before administration of Compound A or a salt or hydrate thereof, and (ii) administration of Compound A or a salt or hydrate thereof The amount of XMP contained in blood collected from a later patient, or blood collected from a patient before administration of Compound A or a salt or hydrate thereof is contacted with Compound A or a salt or hydrate thereof Means for measuring the amount of XMP contained in the obtained blood; (B) a means for determining the variation rate of XMP from the amount of XMP obtained by the means described in (A); (C) A device comprising: a means for predicting an effective dose of Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof from the variation rate of XMP obtained by the means described in (B). [37] The device according to [36], wherein the means for measuring the amount of
  • a device for predicting whether a patient with MDS is sensitive to treatment with Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof (A) (i) the amount of XMP contained in blood collected from a patient before administration of Compound A or a salt or hydrate thereof, and (ii) administration of Compound A or a salt or hydrate thereof The amount of XMP contained in blood collected from a later patient, or blood collected from a patient before administration of Compound A or a salt or hydrate thereof is contacted with Compound A or a salt or hydrate thereof Means for measuring the amount of XMP contained in the obtained blood; (B) a means for determining the variation rate of XMP from the amount of XMP obtained by the means described in (A); (C) a means for predicting whether or not a patient is sensitive to a treatment using Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof from the variation rate of XMP obtained by the means described in (B); Including the device. [40] The device according to [39
  • An active ingredient for use in the treatment of a patient with MDS comprising the step of predicting whether the patient with MDS is sensitive to treatment with Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof.
  • a therapeutic agent that is Compound A wherein the predicting step comprises: (A) (i) the amount of XMP contained in blood collected from a patient prior to administration of Compound A or a salt or hydrate thereof, and (ii) administration of Compound A or a salt or hydrate thereof The amount of XMP contained in blood collected from a later patient, or blood collected from a patient before administration of Compound A or a salt or hydrate thereof is contacted with Compound A or a salt or hydrate thereof Measuring the amount of XMP contained in the obtained blood; (B) a step of obtaining a variation rate of XMP from the amount of XMP obtained in step (a); (C) predicting whether the patient is sensitive to treatment with Compound A or a salt or hydrate thereof from the variation rate of XMP obtained in Step
  • An active ingredient for use in the treatment of a patient with MDS comprising predicting whether the patient with MDS is sensitive to treatment with Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof.
  • a method of treating MDS, which is Compound A wherein the predicting step comprises: (A) (i) the amount of XMP contained in blood collected from a patient prior to administration of Compound A or a salt or hydrate thereof, and (ii) administration of Compound A or a salt or hydrate thereof The amount of XMP contained in blood collected from a later patient, or blood collected from a patient before administration of Compound A or a salt or hydrate thereof is contacted with Compound A or a salt or hydrate thereof Measuring the amount of XMP contained in the obtained blood; (B) a step of obtaining a variation rate of XMP from the amount of XMP obtained in step (a); (C) predicting whether the patient is sensitive to treatment with Compound A or a salt or hydrate thereof from the variation rate of XMP obtained
  • the prediction method of the present invention is a method using blood as a sample, whereby the effective dose of Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof can be predicted in a short time by a simple operation. In addition, it can be predicted in a short time by a simple operation whether or not a patient with MDS is sensitive to a treatment using Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof.
  • the measurement method of the present invention can accurately measure the amount of trace XMP contained in blood.
  • the prediction device of the present invention is a device that uses blood as a sample, and is used for predicting the effective dose of Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof to a patient with MDS in a short time with a simple operation. Can do. Moreover, it can be used for predicting in a short time by a simple operation whether or not a patient with MDS is sensitive to a treatment using Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof.
  • the treatment agent and the treatment method of the present invention are used for the treatment of patients with MDS predicted to be sensitive to treatment with Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof, Compound A or a salt thereof or a salt thereof Unwanted administration to patients who are not sensitive to hydrates can be avoided.
  • the method and treatment agent of the present invention can be applied to a kit for treatment of MDS patients according to a conventional method.
  • FIG. 1 shows the antitumor effect of Compound A.
  • FIG. 2 shows the result of PK / PD analysis (PK parameter: C max ).
  • FIG. 3 shows the results of PK / PD analysis (PK parameter: Time above IC 50 ).
  • FIG. 4 shows the result of PK / PD analysis (PK parameter: AUC 0-48 ).
  • FIG. 5 shows the measurement results of XMP contained in the XMP standard substance and human blood (sample) (measurement conditions: A and B).
  • FIG. 6 shows the measurement results of XMP contained in the XMP standard substance and human blood (sample) (measurement conditions: C, D).
  • FIG. 7 shows the measurement results of XMP contained in the XMP standard substance and human blood (sample) (measurement conditions: A ′, B ′).
  • FIG. 8 shows the measurement results of XMP contained in human blood (LC conditions: a, b).
  • Treatment means prevention or treatment for diseases.
  • a therapeutic agent means a substance that is provided for the purpose of prevention or treatment of a disease.
  • the treatment period means a period during which treatment is performed.
  • the ion intensity includes, for example, the intensity of the corresponding ion on the peak area or MS spectrum obtained from the chromatogram in the LC-MS method.
  • the XMP standard substance means a standard used when measuring XMP contained in blood. XMP standard substances include commercially available sodium salts of xanthosine monophosphate.
  • a method for predicting an effective dose of Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof to a patient with MDS, and whether a patient with MDS is sensitive to treatment with Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof in the method according to the present invention, as the step (a), as the step (a), (i) the amount of XMP contained in blood collected from a patient before administering Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof, (Ii) The amount of XMP contained in blood collected from a patient after administration of Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof, or collected from a patient before administration of Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof The amount of XMP contained in blood obtained by contacting blood with compound A or a salt thereof or a hydrate thereof is measured.
  • Examples of the salt of compound A include salts of a commonly known basic group or acidic group.
  • Examples of basic group salts include salts with mineral acids such as hydrochloric acid, hydrogen bromide, phosphoric acid and sulfuric acid; tartaric acid, formic acid, acetic acid, fumaric acid, maleic acid, citric acid, trichloroacetic acid and trifluoroacetic acid.
  • salts with organic carboxylic acids and salts with sulfonic acids such as methanesulfonic acid, benzenesulfonic acid, p-toluenesulfonic acid, mesitylenesulfonic acid and naphthalenesulfonic acid.
  • salts with alkali metals such as sodium and potassium
  • salts with alkaline earth metals such as calcium and magnesium
  • Preferred salts include pharmacologically acceptable salts.
  • Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof is, for example, JP-A-53-32124, JP-A-58-24569, International Publication No. 2009/035168, International Publication No. 2013/047758, or the like. It can be produced by the method described in 1.
  • One of the features of the present invention is that the amount of XMP contained in blood is used as an index.
  • the frequency is limited due to the great mental load. Therefore, the bone marrow cells necessary for evaluation of the IMPDH inhibitory effect are not usually available.
  • the IMPDH inhibitory effect of compound A or a salt thereof or a hydrate thereof is equivalent between bone marrow cells and peripheral blood cells.
  • the blood used in the present invention is not particularly limited, and may be, for example, peripheral blood, blood pooled in bone marrow, spleen, or liver, lymph fluid, tissue fluid, or umbilical cord blood, preferably peripheral blood. Collection of blood from a patient can be performed by conventional methods well known to those skilled in the art.
  • the blood used in the present invention is preferably whole blood from the viewpoint of performing prediction in a short time with a simple operation.
  • the step (a) in the present invention can be performed in either of the following two modes.
  • the amount of XMP contained in blood collected from a patient before administration of Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof and from a patient after administration of Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof In this embodiment, the amount of XMP contained in the collected blood is measured.
  • the amount of XMP contained in blood collected from a patient before administration of Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof and the patient before administration of Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof are used.
  • the amount of XMP contained in blood obtained by contacting compound A or a salt or hydrate thereof with the collected blood is measured.
  • Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof administered to a patient exerts its action by contacting blood cells in the patient.
  • compound A or a salt thereof or a hydrate thereof is contacted in vitro with blood collected from a patient prior to administration of compound A or a salt thereof or a hydrate thereof. Or its salt or its hydrate exerts an action on blood cells.
  • the amount of XMP can be measured, for example, by the MS method.
  • a blood sample Prior to measurement by the MS method, a blood sample may be subjected to rough separation of the sample such as protein removal, or separation of components in the sample by LC or the like.
  • proteins, peptides and lipids contained in blood are typical interfering components of MS measurement
  • these interfering components can be removed in advance by rough separation of the sample.
  • fractionation cell fractionation by centrifugation, removal of liquid components and / or erythrocytes by hemolysis
  • filtration protein removal treatment
  • liquid phase extraction and / or solid phase extraction, etc. It can be performed.
  • the rough separation of the sample can be performed on-line by pre-column or column switching together with the separation and detection operation of components described later.
  • LC liquid crystal display
  • MS reverse phase chromatography
  • chromatography using an ion pair reagent ion exchange chromatography, or the like
  • the mode and measurement conditions are not particularly limited as long as necessary separation and performance can be obtained and elution can be performed with a mobile phase composition that can be introduced into MS.
  • a separation method such as capillary electrophoresis or gas chromatography can also be used.
  • Contaminants that can be detected in XMP measurement include compounds that approximate mass with XMP, compounds that generate a compound that approximates mass with XMP by decomposition, and / or compounds that approximate the elution time of XMP and LC, etc. Is mentioned.
  • Examples of the compound whose mass approximates that of XMP include an isotope of GMP.
  • Examples of the compound that generates a compound having a mass approximate to that of XMP by decomposition or the like include an isotope of GDP and an isotope of GTP.
  • Examples of the compounds having similar XMP and LC elution times include reduced nicotinamide adenine dinucleotide phosphate (NADPH).
  • the step of measuring the amount of XMP by the MS method is preferably performed under conditions that allow measurement by distinguishing contaminants contained in blood and XMP.
  • impurities that can be detected in the measurement of XMP include GMP (mass 363.06) isotopes (mass 364.06 and mass 364.06), GDP, It was found that the isotopes of GTP in-source decomposition products (decomposed at the ionization part to produce GMP) and divalent ions derived from NADPH were included.
  • the step of measuring the amount of XMP comprises (A1) measuring XMP contained in blood under two different measurement conditions by MS method; (A2) A step of obtaining an ionic strength ratio of XMP contained in blood under two different measurement conditions obtained in the step (a1); (A3) a step of confirming that the ionic strength ratio of XMP contained in blood obtained in the step (a2) is within a predetermined range; It is a process including.
  • Quantification of XMP can be performed by a known quantitative method such as a calibration curve method (external standard method, standard addition method or internal standard method) or isotope dilution method, and is not particularly limited.
  • step (b) a step of obtaining the variation rate of XMP from the amount of XMP obtained in the step (a) is performed.
  • the method for obtaining the variation rate is not particularly limited, but can be obtained by the following equation, for example.
  • Fluctuation rate (%) (1- (Amount of XMP after administration of Compound A or its salt or hydrate thereof / Amount of XMP before administration of Compound A or its salt or its hydrate)) ⁇ 100
  • Fluctuation (%) (1- (Amount of XMP after contacting Compound A or a salt thereof or hydrate thereof / Amount of XMP before contact with Compound A or a salt or hydrate thereof)) ⁇ 100
  • the value per unit blood volume can also be used for the quantity of XMP, it is preferable to use the value per unit blood cell number.
  • step (c) the effective dose of compound A or a salt thereof or a hydrate thereof is predicted from the variation rate of XMP obtained in step (b), Alternatively, it is predicted from the rate of variation of XMP obtained in step (b) whether the patient is sensitive to treatment with Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof.
  • step (c1) a step of expressing the relationship between the time after administration of the compound A or a salt thereof or a hydrate thereof and the variation rate of XMP obtained in the step (b) as a function; ) (C1) The step of predicting the effective dose of compound A or a salt thereof or a hydrate thereof from the function obtained in step (c1).
  • the step (c) includes (c1) a step of expressing the relationship between the time after administration of the compound A or a salt thereof or a hydrate thereof and the variation rate of XMP obtained in the step (b) as a function; ) (C1) can be performed by predicting whether the patient is sensitive to treatment with Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof from the function obtained in Step (c1).
  • the step (c) includes (c1) a step of expressing the relationship between the contact time of the compound A or a salt thereof or a hydrate thereof and the variation rate of XMP obtained in the step (b) as a function; (C1) The step of predicting the effective dose of Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof from the function obtained in the step can be performed.
  • the step (c) includes (c1) a step of expressing the relationship between the contact time of the compound A or a salt thereof or a hydrate thereof and the variation rate of XMP obtained in the step (b) as a function; (C1) It can be performed by predicting whether or not the patient is sensitive to a treatment using Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof from the function obtained in Step (c1).
  • the effective dose is the dose of Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof such that the variation rate of XMP is not less than the predetermined variation rate (decrease rate) during the predetermined treatment period. Predict that there is. Further, in the step (c2), when the XMP fluctuation rate is equal to or higher than the predetermined fluctuation rate (decrease rate) in the predetermined treatment period, the patient uses Compound A, a salt thereof or a hydrate thereof. Predicting sensitivity to treatment.
  • the predetermined treatment period can be appropriately selected according to the species, but may be, for example, one day to two months, or a period of a predetermined ratio or more during the predetermined treatment period. Good.
  • the period equal to or higher than the predetermined ratio in the predetermined treatment period can be appropriately selected according to the species, and can be, for example, a period of 40% or more in the predetermined treatment period.
  • the predetermined variation rate can be appropriately selected according to the species, and can be, for example, 45% or more (preferably 50% or more, more preferably 55% or more).
  • the variation rate (reduction rate) of XMP is 45% or more (preferably 50% or more, more preferably 55% or more).
  • Such a dose can be predicted as an effective dose.
  • the effective dose of Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof obtained here may be administered to a patient with MDS.
  • the variation rate (decrease rate) of XMP is 45% or more (preferably 50% or more, more preferably 55% If this is the case, it can be predicted that the patient is sensitive to treatment with Compound A or a salt or hydrate thereof.
  • Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof may be administered to a patient who is predicted to be susceptible.
  • the method for measuring the amount of XMP contained in blood comprises: (A1) measuring XMP contained in blood under two different measurement conditions by MS method; (A2) A step of obtaining an ionic strength ratio of XMP contained in blood under two different measurement conditions obtained in the step (a1); (A3) a step of confirming that the ionic strength ratio of XMP contained in blood obtained in the step (a2) is within a predetermined range; It is a method including.
  • step (a1) XMP is detected by the MS method.
  • A1 The measurement is performed under two different measurement conditions in the step, (a2) the ionic strength ratio of XMP contained in blood under the two different measurement conditions is obtained in the step (a3), By confirming that it is within the range, XMP can be measured separately from impurities.
  • step (a1) it is preferable to separate a sample by LC and detect XMP by MS method (LC-MS method).
  • the method for measuring the amount of XMP contained in the blood of the present invention comprises: (A11) a step of measuring XMP standard substance and XMP contained in blood under two different measurement conditions by MS method; (A12) a step of obtaining an ionic strength ratio of the XMP standard substance and an ionic strength ratio of XMP contained in blood under two different measurement conditions obtained in the steps (a11); (A13) comparing the ionic strength ratio of the XMP standard substance obtained in the step (a12) with the ionic strength ratio of XMP contained in blood; Can be used.
  • the ionic strength ratio of the XMP standard substance and the ionic strength ratio of XMP contained in the blood under two different measurement conditions obtained in the step (a11) are obtained.
  • the ionic strength ratio of the XMP standard substance obtained in the step is compared with the ionic strength ratio of XMP contained in blood.
  • the ionic strength ratio of the blood sample and the ionic strength ratio of the XMP standard substance are within a predetermined range, it can be determined that XMP in blood can be detected with high specificity.
  • LC HILIC
  • RP chromatography using an ion pair reagent, ion exchange chromatography or the like
  • HILIC is preferable.
  • a mobile phase A in an aqueous solution which is preferably basic, and a mobile phase B containing an organic solvent can be used.
  • the pH value of the mobile phase A is preferably 7 to 11, more preferably 8 to 11, further preferably 8.4 to 10.4, and particularly preferably 9.0 to 9.8. . What is necessary is just to set the pH value of the mobile phase A according to the kind of column to be used.
  • the salt concentration of the mobile phase used for LC is preferably 5 to 300 mmol / L, more preferably 20 to 200 mmol / L.
  • the salt concentration is usually low (for example, 10 mmol / L, etc.) in order to obtain high sensitivity, but in the present invention, by adopting a salt concentration higher than usual, XMP and impurities It became possible to isolate.
  • the mobile phase A used for LC preferably contains an aqueous ammonium bicarbonate solution.
  • organic solvent used for the mobile phase B examples include acetonitrile, methanol, 2-propanol and ethanol, preferably acetonitrile or methanol, more preferably acetonitrile.
  • a HILIC column for example, SeQuant ZIC-pHILIC, Merck
  • 50 mmol / L ammonium bicarbonate aqueous solution (adjusted to pH 9.4 with 25% by mass ammonia aqueous solution) and acetonitrile as mobile phases.
  • a gradient method in which the ratio of mobile phase A and mobile phase B is changed over time or an isocratic method in which the ratio of mobile phase A and mobile phase B is fixed.
  • the concentration of acetonitrile in the mobile phase is preferably 20 to 90% by volume, more preferably 35 to 70% by volume, and further preferably 65% by volume.
  • the elution may be performed by gradient elution in which the ratio of mobile phase A and mobile phase B is changed over time. However, the elution can be carried out in that the separation from impurities is improved and the analysis can be performed under the condition where the injection amount is increased. An isocratic method in which the ratio of the phase A and the mobile phase B is not changed is preferable.
  • XMP contained in blood is measured under two different measurement conditions by the MS method.
  • the MS method components in a sample are ionized by an MS apparatus, and ions derived from XMP are selected and detected.
  • ions derived from XMP are selected and detected.
  • the method of the present invention is characterized in that separation conditions and MS conditions (detection ions and / or ionization conditions) are set so that high selectivity can be achieved.
  • Whether the selectivity is sufficient can be evaluated by the methods shown in the steps (a1), (a2) and (a3).
  • the amount of XMP contained in blood can be accurately measured even when a low-resolution MS apparatus commonly used in pharmacokinetics is used. .
  • MS / MS measurement such as MRM (Multiple Reaction Monitoring) mode while ensuring specificity. It is preferable to measure under a plurality of conditions, such as detecting a plurality of MS / MS product ions generated from the measurement target. Conditions with good specificity can be selected at the time of analysis, and specificity can be verified as described later.
  • MS / MS measurement or MS measurement using a high-resolution apparatus such as an Orbitrap type MS (for example, Q-Exactive, Thermo) or a TOF type MS (for example, 6550i Funnel Q-TOF, Agilent, SYNAPT, Waters) It can be measured with higher specificity. It is preferable that the resolution of the apparatus is high, but it is preferable to use an apparatus that can obtain the sensitivity and dynamic range necessary for the quantitative analysis of XMP.
  • XMP contained in blood is measured under two different measurement conditions by the MS method. That is, XMP-derived ions are measured under two different MS conditions.
  • the two different measurement conditions are preferably two measurement conditions having different detection ions and / or ionization conditions in the MS method. Specifically, measurement of multiple MS / MS product ions generated in MS / MS measurement, measurement under different ionization conditions (such as ion source temperature (turbo heater gas temperature) or ion introduction part (orifice plate) voltage)) And measurements in the posi mode and the negative mode.
  • a product ion of 97.0 (m / z) when 365.0 (m / z) is used as a precursor ion and 365.0 (m / z) Combination with 153.0 (m / z) product ion when the precursor ion is a precursor ion, and 97.0 (m / z) product ion when the precursor ion is 365.0 (m / z)
  • a combination of product ions of 213.0 (m / z) when 365.0 (m / z) is used as a precursor ion can be used.
  • the product ion of 97.0 (m / z) when 365.0 (m / z) is used as the precursor ion and the precursor of 365.0 (m / z) are used. It is preferable to use a combination with a product ion of 213.0 (m / z) as an ion.
  • 97.0 (m / z) product ion when 365.0 (m / z) is used as a precursor ion, and 365.0 (m / z) as precursor ion It is preferable to use a combination with a product ion of 153.0 (m / z).
  • step (a2) of the present invention the ionic strength ratio of XMP contained in blood under two different measurement conditions obtained in step (a1) is obtained, and in step (a3), in step (a2) It is confirmed that the ionic strength ratio of XMP contained in the obtained blood is within a predetermined range.
  • the ionic strength ratio can be obtained by the following equation, for example.
  • Ion intensity ratio (Ion intensity under other measurement conditions) / (Intensity of 97.0 (m / z) product ion when 365.0 (m / z) is used as a precursor ion)
  • the ion intensity under other conditions for example, the intensity of the product ion of 153.0 (m / z) when 365.0 (m / z) is used as the precursor ion or 365.0 (m / z)
  • the ionic strength ratio of the blood sample when the ionic strength ratio of the blood sample is within a predetermined range, it can be determined that XMP in the blood can be detected with high specificity. On the other hand, if the ionic strength ratio of the blood sample is outside the predetermined range, it is determined that the selectivity is insufficient under either or both of the conditions where the ratio is taken. “Within a predetermined range” refers to the case where the ionic strength ratio is less than 1 when the ionic strength ratio is determined by the above formula. When the ion intensity under other conditions is the intensity of a product ion of 213.0 (m / z) when 365.0 (m / z) is used as a precursor ion, the ion intensity ratio is 0.1 to 0.00.
  • the inventors have found that the detection of contaminants can be suppressed by changing the MS / MS product ion to be detected or decreasing the ion source temperature (turbo heater gas temperature) and the voltage of the ion introduction part (orifice plate). Found by examination.
  • the predetermined range when comparing the ionic strength ratio of the XMP standard substance and the ionic strength ratio of the XMP contained in the blood means that the ionic strength ratio of the XMP contained in the blood is the ionic strength ratio of the XMP standard substance. Of 0.5 to 1.5.
  • XMP can be quantified from ions detected by MS measurement with sufficient specificity.
  • a device for predicting an effective dose of compound A or a salt thereof or a hydrate thereof and a device for predicting sensitivity to compound A or a salt thereof or a hydrate thereof
  • the present invention further includes MDS Apparatus for predicting the effective dose of Compound A or a salt or hydrate thereof for patients with MDS and whether the patient with MDS is sensitive to treatment with Compound A or a salt or hydrate thereof An apparatus for predicting this is provided.
  • the device of the present invention (A) (i) the amount of XMP contained in blood collected from a patient before administration of Compound A or a salt or hydrate thereof, and (ii) administration of Compound A or a salt or hydrate thereof
  • the amount of XMP contained in blood collected from a later patient, or blood collected from a patient before administration of Compound A or a salt or hydrate thereof is contacted with Compound A or a salt or hydrate thereof
  • Means for measuring the amount of XMP contained in the obtained blood (B) a means for determining the variation rate of XMP from the amount of XMP obtained by the means described in (A);
  • the means described in (A) is not particularly limited as long as it is a means capable of measuring the amount of XMP contained in blood.
  • an MS apparatus or the like can be used, and an apparatus that combines a separation apparatus and an MS apparatus can be used. It can also be used.
  • the separation device a high performance liquid chromatography device, capillary electrophoresis, gas chromatography device or the like can be used.
  • An LC-MS device is preferable.
  • the MS apparatus usually has a sample introduction unit, an ion source, an analysis unit, an ion detection unit, and a data processing unit.
  • the sample introduction part is a part for introducing a sample into the MS apparatus.
  • the MS apparatus can be connected to a high performance liquid chromatography apparatus, capillary electrophoresis or gas chromatography apparatus, and a sample can be introduced from these apparatuses into the MS apparatus.
  • the ion source is a part that charges the sample. Electron ionization method (EI method), chemical ionization method (CI method), field desorption method (FD method), fast atom bombardment method (FAB method), matrix support Laser desorption ionization (MALDI), atmospheric pressure photoionization (APPI), atmospheric pressure chemical ionization (APCI) and electrospray ionization (ESI) are known.
  • EI method Electron ionization method
  • CI method chemical ionization method
  • FD method field desorption method
  • FAB method fast atom bombardment method
  • MALDI matrix support Laser desorption ionization
  • APPI atmospheric pressure photoionization
  • APCI atmospheric pressure chemical ionization
  • ESI electrospray ionization
  • an ion source used as the LC-MS method an APPI method, an APCI method, or an ESI method can be used, and the ESI method is preferable.
  • the analysis unit is a part that separates the ionized sample.
  • a magnetic field deflection type, a quadrupole type, an ion trap type, a time-of-flight type, a Fourier transform ion cyclotron resonance type, a tandem type, and the like are known.
  • the detection unit is a site that detects and sensitizes ions selected by the analysis unit with an electron multiplier or a microchannel plate.
  • the data processing unit is a part for creating a mass spectrum from the obtained data.
  • any means can be used as long as it can obtain the fluctuation rate from the amount of XMP obtained and the above formula.
  • an electronic computer having calculation software or a program can be used.
  • the means for predicting whether or not it is sensitive to the treatment using hydrate is not particularly limited as long as it is a means capable of predicting an effective dose or sensitivity based on a predetermined standard from the variation rate of XMP. For example, it can be performed using general-purpose calculation software.
  • means for expressing the relationship between the time after administration or contact time of Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof and the variation rate of XMP as a function, and from the obtained function, Compound A or a salt thereof or water thereof An electronic computer (computer) having a program that includes means for predicting the effective dose of the sum or the sensitivity to treatment with Compound A or a salt or hydrate thereof can be used.
  • a patient with MDS further uses Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof.
  • a therapeutic agent for MDS in which the active ingredient is Compound A and a method for treating MDS in which the active ingredient is Compound A, comprising the step of predicting whether or not the treatment is sensitive.
  • the process of predicting whether a patient with MDS of the present invention is sensitive to treatment with Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof is as described above.
  • a therapeutic agent for MDS whose active ingredient is Compound A is used to treat the patient.
  • formulation adjuvants such as excipients, carriers and diluents usually used for formulation may be appropriately mixed.
  • excipients such as excipients, carriers and diluents usually used for formulation
  • formulation adjuvants such as excipients, carriers and diluents usually used for formulation may be appropriately mixed.
  • excipients such as excipients, carriers and diluents usually used for formulation
  • these are tablets, capsules, powders, syrups, granules, pills, suspensions, emulsions, solutions, powder formulations, suppositories, eye drops, nasal drops, ear drops, patches in accordance with conventional methods. It can be administered orally or parenterally in the form of an agent, ointment or injection.
  • the administration method, the dose, and the number of administrations can be appropriately selected according to the age, weight and symptoms of the patient, but the variation rate (decrease rate) of XMP is 45 in a period of 40% or more of the treatment period. It is preferable to select a dose such that it is at least% (preferably at least 50%, more preferably at least 55%).
  • UltrafreeMC-PLHCC 250 / pk for Metabolome Analysis (Human Metabolome Technologies) was used as the ultrafiltration tube.
  • miVac Duo HV (Genevac) was used as a centrifugal evaporator.
  • PBS, pH 7.4 (Thermo Fisher Scientific) was used as the PBS solution.
  • Example 1 Cell Growth Inhibitory Action of Compound A 3/4 hydrate of Compound A was used as a test compound.
  • SKM-1 Independent Administrative Institution JCRB Cell Bank
  • SKM-1 Independent Administrative Institution JCRB Cell Bank
  • the human myeloid leukemia cell line SKM-1 was seeded in a 96-well plate at 90 ⁇ L (5000 cells). 10 ⁇ L of a test compound in PBS (0, 1, 3, 10, 30, 100, 300, 1000, 3000 or 10000 ⁇ mol / L as compound A) was added to the plate and incubated at 37 ° C., 5% CO 2 for 72 hours. . CellTiter-Glo (Promega) was added in an amount of 100 ⁇ L to prepare a cell disruption solution. The relative value of the chemiluminescence intensity was determined with a plate reader.
  • the IC 50 value of Compound A was 21.5 ⁇ mol / L (Compound A: 2.73 ⁇ g / mL). Compound A exhibited excellent growth inhibitory activity.
  • Example 2 Prediction of drug concentration by PK / PD analysis (Pharmacokinetics / Pharmacodynamics analysis) (1) Antitumor effect of Compound A 3/4 hydrate of Compound A was used as a test compound. .
  • SKM-1 cells were used as human myeloid leukemia cells. Human myeloid leukemia cells 5.0 ⁇ 10 6 cells were transplanted subcutaneously into the right flank of female nude mice (BALB / cAJcl-nu / nu) to form subcutaneous tumors. On the 9th day after transplantation, the groups were divided into 7 groups of 10 animals per group. Table 1 shows the group structure.
  • Inhibition rate (%) (1 ⁇ (tumor volume 39 days after transplantation) / (tumor volume 39 days after transplantation in group 1)) ⁇ 100
  • the tumor volume 39 days after transplantation is shown in FIG. Group 4, Group 5, Group 6 and Group 7 showed excellent antitumor effects.
  • test compound A (10, 40, 80 and 160 mg / kg as Compound A) was orally administered to a non-fasting female mouse (BALB / cAJcl). After heparin blood was collected after 5 minutes, 15 minutes, 30 minutes, 1 hour, 2 hours, 5 hours, 10 hours or 24 hours, the concentration of compound A in plasma was measured using LC / MS / MS, and PK parameters ( tmax , Cmax , t1 / 2 and AUC 0-24 ) were calculated.
  • tumor volume was statistically significantly suppressed in the group with Time above IC 50 of 40% or more. From this, it was predicted that it is important to maintain the drug concentration in human plasma at 2.73 ⁇ g / mL or more as Compound A in a period of 40% or more in the treatment period.
  • Example 3 Quantification of XMP (1-1) 450 ⁇ L of blood collected from a healthy person by heparinized blood collection and 50 ⁇ L of PBS solution were added to a tube and stirred for 8 hours in a 37 ° C. incubator.
  • 400 ⁇ L of methanol was added to 100 ⁇ L of the sample obtained in (1-1).
  • 400 ⁇ L of chloroform was added, and after stirring with a vortex mixer, 120 ⁇ L of ultrapure water was added.
  • the mixture was centrifuged at 4 ° C. and 10,000 ⁇ g for 15 minutes.
  • the peak area ratio (B / A) of the sample was 1.2. Since the peak area ratio of the sample was 1 or more, it was determined that either one or both of the measurement conditions A and B had insufficient specificity (contamination was detected by overlapping).
  • the peak area ratio (D / C) of the sample was 0.4. Since the peak area ratio of the sample was less than 1, the specificity was determined to be good. From this result, it was determined that the amount of XMP could be measured under measurement conditions C and D.
  • the peak area ratio (B ′ / A ′) of the sample was 0.2. Since the peak area ratio of the sample was in the range of 0.1 to 0.3, the specificity was judged to be very good. From this result, it was determined that the amount of XMP could be measured under the measurement conditions A ′ and B ′.
  • Example 4 XMP in human myeloid leukemia cells and XMP in blood cells of healthy humans
  • a test compound 3/4 hydrate of Compound A was used.
  • K562 RIKEN BiResource Center
  • (1) 2 ⁇ 10 7 human myeloid leukemia cells were suspended in a culture flask containing 18 mL of RPMI1640 medium (Life Technologies).
  • 2 mL of a test compound in PBS (0, 10, 100, or 1000 ⁇ g / mL as Compound A) was added to the flask and incubated at 37 ° C., 5% CO 2 for 24 hours. After centrifuging at 20 ° C.
  • the supernatant was removed and suspended in 10 mL of PBS solution. Then, after centrifuging at 4 ° C. and 300 ⁇ g for 5 minutes, the supernatant was removed. After adding 1000 ⁇ L of methanol and stirring, 500 ⁇ L of ultrapure water was added and further stirred. Each was divided into two tubes of 600 ⁇ L, and 400 ⁇ L of chloroform was added to each tube and stirred, followed by centrifugation at 4 ° C. and 10,000 ⁇ g for 15 minutes. 400 ⁇ L of the aqueous phase was recovered, added to an ultrafiltration tube, and centrifuged at 9200 ⁇ g for 2 hours at 12 ° C. The filtrates were combined and dried under reduced pressure at 40 ° C. for 2 hours using a centrifugal evaporator. After drying, it was stored in a -80 ° C freezer.
  • Example A and sample B Blood (sample A and sample B) collected from 2 healthy individuals by heparinized blood collection is added to each 1.5 mL tube at 450 ⁇ L, and the test compound in PBS (compound A, 0, 10, 30, 100, 300 or 1000 ⁇ g / 50 mL of each concentration was added to the tube. The mixture was stirred at 37 ° C. in an incubator for 8 hours. Thereafter, BD Pharm Lyse (555899, Becton, Dickinson and Company) was added to the blood (2 mL of BD Pharm Lyse was added to 0.2 mL of blood). After stirring with a vortex mixer, it was shielded from light and allowed to stand at room temperature for 15 minutes. After centrifuging at 20 ° C.
  • the supernatant was removed and suspended in 10 mL of PBS solution. After centrifuging at 4 ° C. and 1000 ⁇ g for 5 minutes, the supernatant was removed, 1000 ⁇ L of methanol was added to each and stirred, and then 500 ⁇ L of ultrapure water was added and further stirred. Each was divided into two tubes of 600 ⁇ L, 400 ⁇ L of chloroform was added to each tube, stirred, and then centrifuged at 4 ° C. and 10,000 ⁇ g for 15 minutes. 400 ⁇ L of the aqueous phase was recovered, added to an ultrafiltration tube, and centrifuged at 9200 ⁇ g for 2 hours at 12 ° C. The filtrates were combined and dried under reduced pressure at 40 ° C. for 2 hours using a centrifugal evaporator. After drying, it was stored in a -80 ° C freezer.
  • Example 5 XMP in blood cells after hemolysis and XMP in whole blood As a test compound, 3/4 hydrate of Compound A was used.
  • Blood serum (sample A and sample B) collected from two healthy individuals by heparinized blood collection is added to each tube by 450 ⁇ L, and the test compound in PBS (compound A, 0, 10, 30, 100, 300, or 1000 ⁇ g / mL) was added to each tube at a concentration of 50 ⁇ L. The mixture was stirred at 37 ° C. in an incubator for 8 hours.
  • BD Pharm Lyse (555899, Becton, Dickinson and Company) was added to the blood sample obtained in (1) (2 mL of BD Pharm Lyse was added to 0.2 mL of blood). After stirring with a vortex mixer, it was shielded from light and allowed to stand at room temperature for 15 minutes. After centrifugation at 1000 ° C. for 5 minutes at 20 ° C., the supernatant was removed and suspended in 10 mL of PBS. After centrifugation at 1000 ° C. for 5 minutes at 20 ° C., the supernatant was removed and suspended in 10 mL of PBS. After centrifuging at 4 ° C.
  • the amount of XMP in the blood cells after hemolysis was almost equal to the amount of XMP in whole blood.
  • the amount of XMP in whole blood reflected the amount of XMP in blood cells.
  • Example 6 XMP in blood cells and XMP in bone marrow cells As a test compound, 3/4 hydrate of Compound A was used.
  • Female mice (BALB / cAJcl) were orally administered 0.5% MC or 0.5% MC of the test compound (100 mg / kg as Compound A).
  • Example 4 From the results of Example 4, Example 5 and Example 6, it was shown that the change in XMP in peripheral blood whole blood reflects the change in XMP in blasts of bone marrow of MDS patients.
  • Example 7 XMP in human myeloid leukemia cells As a test compound, 3/4 hydrate of Compound A was used. SKM-1 was used as human myeloid leukemia cells.
  • XMP amount (%) ((XMP peak area) / ((2′-fluoro-2′-deoxycytidine monophosphate peak area) ⁇ (cell count))) / ((XMP of untreated group) Peak area) / ((peak area of 2′-fluoro-2′-deoxycytidine monophosphate in the untreated group) ⁇ (number of cells in the untreated group))) ⁇ 100
  • the XMP reduction rate (%) was calculated using the following formula.
  • XMP reduction rate (%) 100-XMP amount (%) The results are shown in Table 14.
  • the IC 50 value of Compound A in SKM-1 cells is 2.73 ⁇ g / mL (Example 1). Therefore, the XMP decrease rate around the IC 50 value was 43 to 55%.
  • Example 7 From the results of Example 2 and Example 7, it can be predicted that the dose is effective when the XMP reduction rate is 45% or more in a period of 40% or more of the treatment period.
  • Example 8 XMP, GMP and GTP in whole blood As a test compound, 3/4 hydrate of Compound A was used. (1) 450 ⁇ L of blood collected from a healthy person by heparinized blood collection was added to each tube, and a PBS solution of the test compound (0, 1, 10 or 100 ⁇ g / mL as compound A) was added to each tube at a concentration of 50 ⁇ L. The mixture was stirred at 37 ° C. in an incubator for 8 hours.
  • the amount of XMP in whole blood decreased as the concentration of Compound A increased.
  • the amount of GMP and GTP in the whole blood did not change much even when the concentration of Compound A was increased. From these results, it was shown that the therapeutic effect of Compound A could not be evaluated with metabolites downstream of XMP such as GMP or GTP, and the therapeutic effect of Compound A could be evaluated with XMP.
  • Example 9 LC Gradient Conditions Samples were prepared in the same manner as described in Example 3 (1-1) and (1-2). The sample was dissolved in water and centrifuged, and then the supernatant was recovered and used as a measurement sample. The measurement sample and XMP standard were subjected to LC-MS / MS. The apparatus configuration and measurement conditions are shown below.
  • the prediction method of the present invention can predict the effective dose of Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof to a patient with MDS in a short time with a simple operation. In addition, it can be predicted in a short time by a simple operation whether or not a patient with MDS is sensitive to a treatment using Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof.
  • the measurement method of the present invention can accurately measure the amount of trace XMP contained in blood.
  • the prediction apparatus of the present invention can be used for predicting the effective dose of Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof to a patient with MDS in a short time with a simple operation. Moreover, it can be used for predicting in a short time by a simple operation whether or not a patient with MDS is sensitive to a treatment using Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof.
  • the treatment agent and the treatment method of the present invention are used for the treatment of patients with MDS predicted to be sensitive to treatment with Compound A or a salt thereof or a hydrate thereof, Compound A or a salt thereof or a salt thereof Unwanted administration to patients who are not sensitive to hydrates can be avoided.

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Abstract

　本発明の課題は、簡便な操作で、短時間で測定を行うことができる５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドの有効投与量または感受性の予測方法および予測装置、キサントシン一リン酸量の測定方法、ならびに骨髄異形成症候群の処置剤および処置方法を提供することである。本発明によれば、血液中のキサントシン一リン酸の量を測定することを含む５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドの有効投与量または感受性の予測方法および予測装置、マススペクトロメトリー法により、異なる２つの測定条件で血液に含まれるキサントシン一リン酸を測定する工程を含むキサントシン一リン酸量の測定方法、ならびに骨髄異形成症候群の処置剤および処置方法が提供される。

Description

５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドの有効投与量または感受性の予測方法および予測装置、キサントシン一リン酸の量の測定方法ならびに骨髄異形成症候群の処置剤および処置方法
　本発明は、骨髄異形成症候群の患者に対する５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物の有効投与量の予測方法に関する。本発明はさらに、骨髄異形成症候群の患者が、５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であるか否かを予測する方法に関する。本発明はさらに、血液に含まれるキサントシン一リン酸の量の測定方法に関する。本発明はさらに、骨髄異形成症候群の患者に対する５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドの有効投与量を予測するための装置、および骨髄異形成症候群の患者が、５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であるか否かを予測するための装置に関する。本発明はさらに、５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し感受性であると予測された骨髄異形成症候群の患者の処置に用いるための処置剤および処置方法に関する。
　５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミド（以下、「化合物Ａ」とも称する。）もしくはその塩またはその水和物は、骨髄異形成症候群（ＭＤＳ）に有用であることが知られている（非特許文献１）。化合物Ａもしくはその塩またはその水和物は、生体内でアデニンホスホリボシルトランスフェラーゼ（ＡＰＲＴ）によって変換されてリボシルモノホスフェート（ＲＭＰ）になり、イノシン－５’－モノホスフェートデヒドロゲナーゼ（ＩＭＰＤＨ）を阻害する。ＩＭＰＤＨは、イノシンモノホスフェート（ＩＭＰ）からキサントシン一リン酸（ＸＭＰ）を生成する酵素である。
　ＩＭＰＤＨ阻害剤としては、ミコフェノール酸およびミコフェノール酸モフェチルなどの免疫抑制剤が知られている。これらの免疫抑制剤については、血液から得たリンパ球などを含む画分である末梢血単核球（ＰＢＭＣ）の細胞破砕液に生体外（ｉｎ　ｖｉｔｒｏ）でＩＭＰを加えてＩＭＰＤＨによる酵素反応を行わせ、ＸＭＰの量を測定することで、ＩＭＰＤＨ阻害剤による阻害の程度を評価する方法が報告されている（非特許文献２）。
　ヌクレオチドの分析については、親水性相互作用クロマトグラフィー－マススペクトロメトリー（ＨＩＬＩＣ－ＭＳ）および水性順相クロマトグラフィー－マススペクトロメトリーを用いる方法が報告されている（非特許文献３）。また、ＸＭＰの分析については、イオンペア試薬を用いた逆相クロマトグラフィーおよびイオン交換クロマトグラフィーによる方法が報告されている。
　ＩＭＰＤＨによって生成されたＸＭＰはさらに生体内の酵素反応によって、グアノシン一リン酸（ＧＭＰ）、グアノシン二リン酸（ＧＤＰ）、グアノシン三リン酸（ＧＴＰ）へ変換され核酸合成の材料となる（非特許文献４）。
癌と化学療法、１９８９年、第１６巻、第１号、第１２３～１３０頁 Analytical Chemistry、２０１２年、第８４巻、第２１６～２２３頁 Analytical Chemistry、２０１２年、第８４巻、第１９９４～２００１頁 ストライヤー生化学（第７版）、２０１３年、第６８９～６９３頁
　ＭＤＳは、血球形態の異形成と血球減少を認める疾患であり、治療薬による治療効果は主に血液学的寛解・改善により評価される。しかし、治療薬の効果が発現するまでに時間を要するため、短時間で治療薬の作用をモニターすることは難しい。非特許文献２に記載の方法は、ＰＢＭＣの分画に煩雑な操作と時間を要する。また、この方法は、非内在性のＩＭＰを添加して評価する方法であり、生体内でのＩＭＰＤＨ阻害の程度を正確に反映しているものではない。
　ヌクレオチドの分析については、幾つかの試みがなされている。しかし、ヌクレオチドは親水性低分子であるため、分析に通常用いられる逆相クロマトグラフィーでの保持が難しい。また、リン酸基を有するため、分離分析時に吸着現象および／またはテーリングが起こりやすい。このため内在性ヌクレオチドの定量は難しい。また、ヌクレオチドの代謝物には質量および構造が近似するものが多数存在する。これらは、液体クロマトグラフィー（ＬＣ）上での挙動および保持時間が近似する場合が多いため、液体クロマトグラフィー－マススペクトロメトリー（ＬＣ－ＭＳ）で区別して定量することは難しい。ＸＭＰの分析については、非特許文献２の報告があるが、この方法は、ＸＭＰが豊富な試料を対象にしており、微量な内在性のＸＭＰを分析したものではない。
　本発明は、簡便な操作で、短時間に、ＭＤＳの患者に対する化合物Ａもしくはその塩またはその水和物の有効投与量を予測する方法を提供することを解決すべき課題とした。
　本発明はさらに、簡便な操作で、短時間に、ＭＤＳの患者が、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であるか否かを予測する方法を提供することを解決すべき課題とした。
　本発明はさらに、血液に含まれる微量のＸＭＰの量を正確に測定する方法を提供することを解決すべき課題とした。
　本発明はさらに、簡便な操作で、短時間に、ＭＤＳの患者に対する化合物Ａもしくはその塩またはその水和物の有効投与量を予測するための装置およびＭＤＳの患者が、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であるか否かを予測するための装置を提供することを解決すべき課題とした。
　本発明はさらに、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であると予測されたＭＤＳの患者の処置に用いるための、処置剤および処置方法を提供することを解決すべき課題とした。
　本発明者らは、上記課題を解決すべく鋭意検討した結果、ＭＤＳの患者に対する化合物Ａもしくはその塩またはその水和物の有効投与量、および化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対するＭＤＳの患者の感受性を、血液に含まれるＸＭＰの量の変動を測定することによって予測できることを見出した。さらに本発明者らは、ＭＳ法における測定条件を設定することによって、血液に含まれる微量のＸＭＰの量を正確に測定できることを見出した。本発明は、これらの知見に基づいて完成したものである。
　即ち、本発明によれば、以下の発明が提供される。
［１］　ＭＤＳの患者に対する化合物Ａもしくはその塩またはその水和物の有効投与量を予測する方法であって、
（ａ）（ｉ）化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を投与する前の患者から採取した血液に含まれるＸＭＰの量と、（ｉｉ）化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を投与した後の患者から採取した血液に含まれるＸＭＰの量、または化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を投与する前の患者から採取した血液に化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を接触させて得られた血液に含まれるＸＭＰの量とを測定する工程と、
（ｂ）（ａ）工程で得られるＸＭＰの量からＸＭＰの変動率を求める工程と、
（ｃ）（ｂ）工程で得られるＸＭＰの変動率から化合物Ａもしくはその塩またはその水和物の有効投与量を予測する工程と、を含む方法。
［２］　血液が、末梢血である、［１］に記載の方法。
［３］　ＸＭＰの量を測定する工程が、血液中に含まれる夾雑物とＸＭＰとを区別して測定できる条件下で行う工程である、［１］または［２］に記載の方法。
［４］　ＸＭＰの量を測定する工程が、マススペクトロメトリー（ＭＳ）法により測定する工程である、［１］から［３］のいずれか一に記載の方法。
［５］　ＸＭＰの量を測定する工程が、
（ａ１）ＭＳ法により、異なる２つの測定条件で血液に含まれるＸＭＰを測定する工程と、
（ａ２）（ａ１）工程で得られる異なる２つの測定条件での血液に含まれるＸＭＰのイオン強度比を求める工程と、
（ａ３）（ａ２）工程で得られる血液に含まれるＸＭＰのイオン強度比が所定の範囲内にあることを確認する工程と、を含む工程である、［４］に記載の方法。
［６］　（ａ１）工程が、ＬＣ－ＭＳ法により、異なる２つの測定条件で血液に含まれるＸＭＰを測定する工程である、［５］に記載の方法。
［７］　液体クロマトグラフィー（ＬＣ）に用いる移動相のｐＨ値が、７～１１である、［６］に記載の方法。
［８］　ＬＣに用いる移動相の塩濃度が、５～３００ｍｍｏｌ／Ｌである、［６］または［７］に記載の方法。
［９］　ＬＣに用いる移動相が、重炭酸アンモニウム水溶液を含む移動相である、［６］から［８］のいずれか一に記載の方法。
［１０］　ＬＣが、親水性相互作用クロマトグラフィー（ＨＩＬＩＣ）である、［６］から［９］のいずれか一に記載の方法。
［１１］　異なる２つの測定条件が、ＭＳ法における検出イオンおよび／またはイオン化条件が異なる２つの測定条件である、［５］から［１０］のいずれか一に記載の方法。
［１２］　（ｃ）工程が、
（ｃ１）化合物Ａもしくはその塩またはその水和物の投与後の時間または接触の時間と（ｂ）工程で得られるＸＭＰの変動率との関係を関数で表す工程と、
（ｃ２）（ｃ１）工程で得られる関数から化合物Ａもしくはその塩またはその水和物の有効投与量を予測する工程と、を含む工程である、［１］から［１１］のいずれか一に記載の方法。
［１３］　（ｃ２）工程が、ＸＭＰの変動率が所定の処置期間において所定の変動率以上となるような化合物Ａもしくはその塩またはその水和物の投与量が、有効投与量であると予測する工程を含む工程である、［１２］に記載の方法。
［１４］　（ｃ２）工程が、ＸＭＰの変動率が所定の処置期間中の所定の割合以上の期間において所定の変動率以上となるような化合物Ａもしくはその塩またはその水和物の投与量が、有効投与量であると予測する工程を含む工程である、［１２］に記載の方法。
［１５］　ＭＤＳの患者が、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であるか否かを予測する方法であって、
（ａ）（ｉ）化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を投与する前の患者から採取した血液に含まれるＸＭＰの量と、（ｉｉ）化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を投与した後の患者から採取した血液に含まれるＸＭＰの量、または化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を投与する前の患者から採取した血液に化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を接触させて得られた血液に含まれるＸＭＰの量とを測定する工程と、
（ｂ）（ａ）工程で得られるＸＭＰの量からＸＭＰの変動率を求める工程と、
（ｃ）（ｂ）工程で得られるＸＭＰの変動率から、患者が、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であるか否かを予測する工程と、を含む方法。
［１６］　血液が、末梢血である、［１５］に記載の方法。
［１７］　ＸＭＰの量を測定する工程が、血液中に含まれる夾雑物とＸＭＰとを区別して測定できる条件下で行う工程である、［１５］または［１６］に記載の方法。
［１８］　ＸＭＰの量を測定する工程が、ＭＳ法により測定する工程である、［１５］から［１７］のいずれか一に記載の方法。
［１９］　ＸＭＰの量を測定する工程が、
（ａ１）ＭＳ法により、異なる２つの測定条件で血液に含まれるＸＭＰを測定する工程と、
（ａ２）（ａ１）工程で得られる異なる２つの測定条件での血液に含まれるＸＭＰのイオン強度比を求める工程と、
（ａ３）（ａ２）工程で得られる血液に含まれるＸＭＰのイオン強度比が所定の範囲内にあることを確認する工程と、を含む工程である、［１８］に記載の方法。
［２０］　（ａ１）工程が、ＬＣ－ＭＳ法により、異なる２つの測定条件で血液に含まれるＸＭＰを測定する工程である、［１９］に記載の方法。
［２１］　ＬＣに用いる移動相のｐＨ値が、７～１１である、［２０］に記載の方法。
［２２］　ＬＣに用いる移動相の塩濃度が、５～３００ｍｍｏｌ／Ｌである、［２０］または［２１］に記載の方法。
［２３］　ＬＣに用いる移動相が、重炭酸アンモニウム水溶液を含む移動相である、［２０］から［２２］のいずれか一に記載の方法。
［２４］　ＬＣが、ＨＩＬＩＣである、［２０］から［２３］のいずれか一に記載の方法。
［２５］　異なる２つの測定条件が、ＭＳ法における検出イオンおよび／またはイオン化条件が異なる２つの測定条件である、［１９］から［２４］のいずれか一に記載の方法。
［２６］　（ｃ）工程が、
（ｃ１）化合物Ａもしくはその塩またはその水和物の投与後の時間または接触の時間と（ｂ）工程で得られるＸＭＰの変動率との関係を関数で表す工程と、
（ｃ２）（ｃ１）工程で得られる関数から、患者が、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であるか否かを予測する工程と、を含む工程である、［１５］から［２５］のいずれか一に記載の方法。
［２７］　（ｃ２）工程が、ＸＭＰの変動率が所定の処置期間において所定の変動率以上である場合に、患者が、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であると予測する工程を含む工程である、［２６］に記載の方法。
［２８］　（ｃ２）工程が、ＸＭＰの変動率が所定の処置期間中の所定の割合以上の期間において所定の変動率以上である場合に、患者が、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であると予測する工程を含む工程である、［２６］に記載の方法。
［２９］　血液に含まれるＸＭＰの量を測定する方法であって、
（ａ１）ＭＳ法により、異なる２つの測定条件で血液に含まれるＸＭＰを測定する工程と、
（ａ２）（ａ１）工程で得られる異なる２つの測定条件での血液に含まれるＸＭＰのイオン強度比を求める工程と、
（ａ３）（ａ２）工程で得られる血液に含まれるＸＭＰのイオン強度比が所定の範囲内にあることを確認する工程と、を含む方法。
［３０］　（ａ１）工程が、ＬＣ－ＭＳ法により、異なる２つの測定条件で血液に含まれるＸＭＰを測定する工程である、［２９］に記載の方法。
［３１］　ＬＣに用いる移動相のｐＨ値が、７～１１である、［３０］に記載の方法。
［３２］　ＬＣに用いる移動相の塩濃度が、５～３００ｍｍｏｌ／Ｌである、［３０］または［３１］に記載の方法。
［３３］　ＬＣに用いる移動相が、重炭酸アンモニウム水溶液を含む移動相である、［３０］から［３２］のいずれか一に記載の方法。
［３４］　ＬＣが、ＨＩＬＩＣである、［３０］から［３３］のいずれか一に記載の方法。
［３５］　異なる２つの測定条件が、ＭＳ法における検出イオンおよび／またはイオン化条件が異なる２つの測定条件である、［２９］から［３４］のいずれか一に記載の方法。
［３６］　ＭＤＳの患者に対する化合物Ａもしくはその塩またはその水和物の有効投与量を予測するための装置であって、
（Ａ）（ｉ）化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を投与する前の患者から採取した血液に含まれるＸＭＰの量と、（ｉｉ）化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を投与した後の患者から採取した血液に含まれるＸＭＰの量、または化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を投与する前の患者から採取した血液に化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を接触させて得られた血液に含まれるＸＭＰの量とを測定する手段と、
（Ｂ）（Ａ）に記載の手段により得られるＸＭＰの量からＸＭＰの変動率を求める手段と、
（Ｃ）（Ｂ）に記載の手段により得られるＸＭＰの変動率から化合物Ａもしくはその塩またはその水和物の有効投与量を予測する手段と、を含む装置。
［３７］　ＸＭＰの量を測定する手段が、ＭＳ装置を用いる手段である、［３６］に記載の装置。
［３８］　ＭＳ装置が、ＬＣ装置と連結されたＭＳ装置（ＬＣ－ＭＳ装置）である、［３７］に記載の装置。
［３９］　ＭＤＳの患者が、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であるか否かを予測するための装置であって、
（Ａ）（ｉ）化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を投与する前の患者から採取した血液に含まれるＸＭＰの量と、（ｉｉ）化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を投与した後の患者から採取した血液に含まれるＸＭＰの量、または化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を投与する前の患者から採取した血液に化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を接触させて得られた血液に含まれるＸＭＰの量とを測定する手段と、
（Ｂ）（Ａ）に記載の手段により得られるＸＭＰの量からＸＭＰの変動率を求める手段と、
（Ｃ）（Ｂ）に記載の手段により得られるＸＭＰの変動率から、患者が、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であるか否かを予測する手段と、を含む装置。
［４０］　（Ａ）に記載の手段が、ＭＳ装置を用いる手段である、［３９］に記載の装置。
［４１］　ＭＳ装置が、ＬＣ装置と連結されたＭＳ装置（ＬＣ－ＭＳ装置）である、［４０］に記載の装置。
［４２］　ＭＤＳの患者が、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であるか否かを予測する工程を含む、ＭＤＳの患者の処置に用いるための、有効成分が化合物Ａである処置剤であって、予測する工程が、
（ａ）（ｉ）化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を投与する前の患者から採取した血液に含まれるＸＭＰの量と、（ｉｉ）化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を投与した後の患者から採取した血液に含まれるＸＭＰの量、または化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を投与する前の患者から採取した血液に化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を接触させて得られた血液に含まれるＸＭＰの量とを測定する工程と、
（ｂ）（ａ）工程で得られるＸＭＰの量からＸＭＰの変動率を求める工程と、
（ｃ）（ｂ）工程で得られるＸＭＰの変動率から、患者が、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であるか否かを予測する工程と、を含む工程であって、患者が、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し感受性であると予測された患者である、処置剤。
［４３］　ＭＤＳの患者が、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であるか否かを予測する工程を含む、ＭＤＳの患者の処置に用いるための、有効成分が化合物ＡであるＭＤＳの処置方法であって、予測する工程が、
（ａ）（ｉ）化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を投与する前の患者から採取した血液に含まれるＸＭＰの量と、（ｉｉ）化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を投与した後の患者から採取した血液に含まれるＸＭＰの量、または化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を投与する前の患者から採取した血液に化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を接触させて得られた血液に含まれるＸＭＰの量とを測定する工程と、
（ｂ）（ａ）工程で得られるＸＭＰの量からＸＭＰの変動率を求める工程と、
（ｃ）（ｂ）工程で得られるＸＭＰの変動率から、患者が、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であるか否かを予測する工程と、を含む工程であって、患者が、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し感受性であると予測された患者である、処置方法。
　本発明の予測方法は、試料として血液を用いる方法であり、これによりＭＤＳの患者に対する化合物Ａもしくはその塩またはその水和物の有効投与量を簡便な操作で短時間に予測することができる。また、ＭＤＳの患者が、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であるか否かを簡便な操作で短時間に予測することができる。
　有効投与量を予測することにより、薬効の発揮に必要な投与量を適切に設定することができる。必要量以上の投与を避けることができ、副作用を低減することが可能になる。また、感受性であるか否かを予測することにより、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物に対して感受性のない患者への不要な投与を回避することができる。
　本発明の測定方法は、血液に含まれる微量のＸＭＰの量を正確に測定することができる。
　本発明の予測装置は、試料として血液を用いる装置であり、これによりＭＤＳの患者に対する化合物Ａもしくはその塩またはその水和物の有効投与量を簡便な操作で短時間に予測するために用いることができる。また、ＭＤＳの患者が、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であるか否かを簡便な操作で短時間に予測するために用いることができる。
　本発明の処置剤および処置方法は、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であると予測されたＭＤＳの患者の処置に用いられるため、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物に対して感受性のない患者への不要な投与を回避することができる。
　本発明の方法および処置剤は、常法に従って、ＭＤＳの患者の処置用のキットに応用することができる。
図１は、化合物Ａの抗腫瘍効果を示す。 図２は、ＰＫ／ＰＤ解析の結果を示す（ＰＫパラメータ：Ｃmax）。 図３は、ＰＫ／ＰＤ解析の結果を示す（ＰＫパラメータ：Ｔｉｍｅ　ａｂｏｖｅ　ＩＣ50）。 図４は、ＰＫ／ＰＤ解析の結果を示す（ＰＫパラメータ：ＡＵＣ0-48）。 図５は、ＸＭＰ標準物質およびヒト血液（試料）に含まれるＸＭＰの測定結果を示す（測定条件：Ａ、Ｂ）。 図６は、ＸＭＰ標準物質およびヒト血液（試料）に含まれるＸＭＰの測定結果を示す（測定条件：Ｃ、Ｄ）。 図７は、ＸＭＰ標準物質およびヒト血液（試料）に含まれるＸＭＰの測定結果を示す（測定条件：Ａ’、Ｂ’）。 図８は、ヒト血液に含まれるＸＭＰの測定結果を示す（ＬＣ条件：ａ、ｂ）。
　以下、本発明について詳細に説明する。なお、本明細書において「～」とはその前後に記載される数値を下限値および上限値として含む意味で使用される。
　処置とは、疾患に対する予防または治療などを意味する。
　処置剤とは、疾患に対して予防または治療などの目的で供せられる物質を意味する。
　処置期間とは、処置を施す期間を意味する。
　イオン強度には、例えば、ＬＣ－ＭＳ法におけるクロマトグラムから得られるピークエリアまたはＭＳスペクトル上の該当するイオンの強度が含まれる。
　ＸＭＰ標準物質とは、血液に含まれるＸＭＰを測定するときに用いられる標品を意味する。ＸＭＰ標準物質としては、市販のキサントシン一リン酸のナトリウム塩などが挙げられる。
（１）ＭＤＳの患者に対する化合物Ａもしくはその塩またはその水和物の有効投与量を予測する方法、およびＭＤＳの患者が化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し感受性であるか否かを予測する方法
　本発明による方法においては、（ａ）工程として、（ｉ）化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を投与する前の患者から採取した血液に含まれるＸＭＰの量と、（ｉｉ）化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を投与した後の患者から採取した血液に含まれるＸＭＰの量、または化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を投与する前の患者から採取した血液に化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を接触させて得られる血液に含まれるＸＭＰの量とを測定する。
　化合物Ａの塩としては、通常知られている塩基性基または酸性基における塩が挙げられる。塩基性基の塩としては、例えば、塩酸、臭化水素、リン酸および硫酸などの鉱酸との塩；酒石酸、ギ酸、酢酸、フマル酸、マレイン酸、クエン酸、トリクロロ酢酸およびトリフルオロ酢酸などの有機カルボン酸との塩ならびにメタンスルホン酸、ベンゼンスルホン酸、ｐ－トルエンスルホン酸、メシチレンスルホン酸およびナフタレンスルホン酸などのスルホン酸との塩などが挙げられる。酸性基の塩としては、例えば、ナトリウムおよびカリウムなどのアルカリ金属との塩；カルシウムおよびマグネシウムなどのアルカリ土類金属との塩；アンモニウム塩ならびにトリメチルアミン、トリエチルアミン、トリブチルアミン、トロメタモール、ピリジン、Ｎ，Ｎ－ジメチルアニリン、Ｎ－メチルピペリジン、Ｎ－メチルモルホリン、ジエチルアミン、ジシクロヘキシルアミン、プロカイン、ジベンジルアミン、Ｎ－ベンジル－β－フェネチルアミンおよびＮ，Ｎ'－ジベンジルエチレンジアミンなどの含窒素有機塩基との塩などを挙げることができる。好ましい塩としては、薬理学的に許容される塩が挙げられる。
　化合物Ａもしくはその塩またはその水和物は、例えば、特開昭５３－３２１２４号公報、特開昭５８－２４５６９号公報、国際公開第２００９／０３５１６８号パンフレットまたは国際公開第２０１３／０４７７５８号パンフレットなどに記載されている方法により製造することができる。
　本発明の特徴の一つは、血液に含まれるＸＭＰの量を指標とすることである。ＭＤＳに対する薬物の有効投与量および薬物に対する感受性を正確に予測するためには病巣である骨髄の骨髄細胞を用いてＩＭＰＤＨ阻害効果を評価することが望ましいが、骨髄細胞の採取は患者に与える身体的、精神的負荷が大きいために、頻度が限定される。そのため通常ではＩＭＰＤＨ阻害効果の評価に必要な骨髄細胞を入手できない。本発明においては、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物のＩＭＰＤＨ阻害効果が、骨髄細胞と末梢血の血液細胞で同等であることが初めて見出された。これにより、血液細胞におけるＩＭＰＤＨ阻害効果から骨髄細胞におけるＩＭＰＤＨ阻害効果を予測し、ＭＤＳに対する薬物の有効投与量および薬物に対する感受性を予測することが可能になった。本発明で用いる血液は、特に限定されず、例えば、末梢血、骨髄、脾臓もしくは肝臓にプールされている血液、リンパ液、組織液または臍帯血でもよいが、好ましくは末梢血である。患者からの血液の採取は、当業者に周知の常法により行うことができる。また、本発明で用いる血液は、予測を簡便な操作で短時間に行う観点から、全血が好ましい。
　本発明における（ａ）工程は、以下の２つの態様の何れかで行うことができる。第一の態様は、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を投与する前の患者から採取した血液に含まれるＸＭＰの量および化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を投与した後の患者から採取した血液に含まれるＸＭＰの量を測定する態様である。
　第二の態様は、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を投与する前の患者から採取した血液に含まれるＸＭＰの量および化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を投与する前の患者から採取した血液に化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を接触させて得られた血液に含まれるＸＭＰの量を測定する態様である。
　第一の態様においては、患者に投与された化合物Ａもしくはその塩またはその水和物は患者体内で血液細胞に接触してその作用を発揮する。第二の態様においては、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を投与する前の患者から採取した血液に、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を生体外で接触させることによって、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物は血液細胞に作用を発揮する。
　本発明において、ＸＭＰの量は、例えば、ＭＳ法により測定することができる。血液試料はＭＳ法による測定に先立って、タンパク質除去などの試料の粗分離を行ってもよいし、ＬＣなどによって試料中の成分の分離を行ってもよい。
　血液に含まれるタンパク質、ペプチドおよび脂質は、ＭＳ測定の代表的な妨害成分であるので、これらの妨害成分は試料の粗分離によって予め除去することができる。例えば、分画処理（遠心分離による細胞成分の分画、溶血操作による液性成分および／または赤血球の除去など）、ろ過、除タンパク質処理、液相抽出および／または固相抽出などにより、粗分離を行うことができる。また、試料の粗分離は、後記する成分の分離および検出操作と共に、プレカラムまたはカラムスイッチングなどによりオンラインで行うこともできる。
　さらに本発明においては、ＬＣにより、試料中の成分を分離してから、試料をＭＳ装置に供給することが好ましい。
　試料中の成分の分離方法としては、ＨＩＬＩＣ、逆相クロマトグラフィー（ＲＰ）、イオンペア試薬を用いたクロマトグラフィーまたはイオン交換クロマトグラフィーなどを使用することができる。必要な分離と性能が得られ、ＭＳへの導入が可能な移動相組成で溶出できる限り、モードおよび測定条件は特に限定されない。また、キャピラリー電気泳動またはガスクロマトグラフィーなどの分離法を用いることもできる。
　ＸＭＰの測定において検出されうる夾雑物としては、ＸＭＰと質量が近似する化合物、分解などによりＸＭＰと質量が近似する化合物を生成する化合物および／またはＸＭＰとＬＣの溶離時間が近似している化合物などが挙げられる。ＸＭＰと質量が近似する化合物としては、例えば、ＧＭＰの同位体などが挙げられる。分解などによりＸＭＰと質量が近似する化合物を生成する化合物としては、例えば、ＧＤＰの同位体およびＧＴＰの同位体などが挙げられる。ＸＭＰとＬＣの溶離時間が近似している化合物としては、例えば、還元型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸（ＮＡＤＰＨ）などが挙げられる。
　ＸＭＰの量をＭＳ法にて測定する工程は、血液に含まれる夾雑物と、ＸＭＰとを区別して測定できる条件下で行うことが好ましい。本発明者らの検証により、ＸＭＰ(質量364.04)の測定において検出されうる夾雑物には、構造が類似し質量が１小さいＧＭＰ(質量363.06)の同位体(質量364.06および質量364.06)、ＧＤＰおよびＧＴＰのインソース分解物（イオン化部で分解してＧＭＰを生じる。）の同位体ならびにＮＡＤＰＨに由来する２価イオンが含まれることが判明した。
　ＬＣ－ＭＳ測定の際には、夾雑物の影響を回避して、選択的にＸＭＰを検出することが望まれる。本発明においては、ＸＭＰを十分な特異性で検出できているか否かを検証する手法を確立することにより、多種かつ多量の夾雑物が存在する条件下でもＸＭＰを選択的に高感度かつ簡便に定量することが可能になった。
　好ましくは、ＸＭＰの量を測定する工程は、
（ａ１）ＭＳ法により、異なる２つの測定条件で血液に含まれるＸＭＰを測定する工程と、
（ａ２）（ａ１）工程で得られる異なる２つの測定条件での血液に含まれるＸＭＰのイオン強度比を求める工程と、
（ａ３）（ａ２）工程で得られる血液に含まれるＸＭＰのイオン強度比が所定の範囲内にあることを確認する工程と、
を含む工程である。
　（ａ１）～（ａ３）を含むＸＭＰの測定方法の詳細について、本明細書中において後記する。
　ＸＭＰの定量は、検量線法（外部標準法、標準添加法または内部標準法）または同位体希釈法などの公知の定量法によって行うことができ、特に限定されない。
　本発明においては、（ａ）工程に続いて、（ｂ）工程として、（ａ）工程で得られるＸＭＰの量からＸＭＰの変動率を求める工程を行う。
　変動率を求める方法は、特に限定されないが、例えば、下記式で求めることができる。
変動率（％）＝（１－（化合物Ａもしくはその塩またはその水和物の投与後のＸＭＰの量／化合物Ａもしくはその塩またはその水和物の投与前のＸＭＰの量））×１００
または
変動率（％）＝（１－（化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を接触させた後のＸＭＰの量／化合物Ａもしくはその塩またはその水和物の接触前のＸＭＰの量））×１００
　なお、ＸＭＰの量は、単位血液量あたりの値を用いることもできるが、単位血液細胞数あたりの値を用いることが好ましい。
　本発明においては、（ｂ）工程に続いて、（ｃ）工程として、（ｂ）工程で得られるＸＭＰの変動率から化合物Ａもしくはその塩またはその水和物の有効投与量を予測するか、または（ｂ）工程で得られるＸＭＰの変動率から、患者が、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であるか否かを予測する。
　例えば、（ｃ）工程は、（ｃ１）化合物Ａもしくはその塩またはその水和物の投与後の時間と（ｂ）工程で得られるＸＭＰの変動率との関係を関数で表す工程と、（ｃ２）（ｃ１）工程で得られる関数から化合物Ａもしくはその塩またはその水和物の有効投与量を予測する工程とによって行うことができる。また、（ｃ）工程は、（ｃ１）化合物Ａもしくはその塩またはその水和物の投与後の時間と（ｂ）工程で得られるＸＭＰの変動率との関係を関数で表す工程と、（ｃ２）（ｃ１）工程で得られる関数から、患者が、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であるか否かを予測する工程とによって行うことができる。
　また、（ｃ）工程は、（ｃ１）化合物Ａもしくはその塩またはその水和物の接触の時間と（ｂ）工程で得られるＸＭＰの変動率との関係を関数で表す工程と、（ｃ２）（ｃ１）工程で得られる関数から化合物Ａもしくはその塩またはその水和物の有効投与量を予測する工程とによって行うことができる。また、（ｃ）工程は、（ｃ１）化合物Ａもしくはその塩またはその水和物の接触の時間と（ｂ）工程で得られるＸＭＰの変動率との関係を関数で表す工程と、（ｃ２）（ｃ１）工程で得られる関数から、患者が、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であるか否かを予測する工程とによって行うことができる。
　（ｃ２）工程において、ＸＭＰの変動率が所定の処置期間において、ＸＭＰが所定の変動率（減少率）以上となるような化合物Ａもしくはその塩またはその水和物の投与量が有効投与量であると予測する。
　また、（ｃ２）工程において、ＸＭＰの変動率が所定の処置期間において、ＸＭＰが所定の変動率（減少率）以上となる場合に、患者が、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であると予測する。
　所定の処置期間とは、生物種に応じて適宜選択することができるが、例えば、１日から２ヶ月であってもよいし、所定の処置期間中の所定の割合以上の期間であってもよい。
　所定の処置期間中の所定の割合以上の期間とは、生物種に応じて適宜選択することができるが、例えば、所定の処置期間中の４０％以上の期間とすることができる。
　所定の変動率とは、生物種に応じて適宜選択することができるが、例えば、４５％以上（好ましくは５０％以上、より好ましくは５５％以上）とすることができる。
　例えば、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置期間の４０％以上の期間において、ＸＭＰの変動率（減少率）が４５％以上（好ましくは５０％以上、より好ましくは５５％以上）となるような投与量を、有効投与量と予測することができる。ここで得られた有効投与量の化合物Ａもしくはその塩またはその水和物をＭＤＳの患者に投与すればよい。
　また、例えば、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置期間の４０％以上の期間において、ＸＭＰの変動率（減少率）が４５％以上（好ましくは５０％以上、より好ましくは５５％以上）となる場合に、患者が、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であると予測することができる。感受性であると予測された患者に対して、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を投与すればよい。
（２）血液に含まれるＸＭＰの量の測定方法
　本発明による血液に含まれるＸＭＰの量を測定する方法は、
（ａ１）ＭＳ法により、異なる２つの測定条件で血液に含まれるＸＭＰを測定する工程と、
（ａ２）（ａ１）工程で得られる異なる２つの測定条件での血液に含まれるＸＭＰのイオン強度比を求める工程と、
（ａ３）（ａ２）工程で得られる血液に含まれるＸＭＰのイオン強度比が所定の範囲内にあることを確認する工程と、
を含む方法である。
　（ａ１）工程においては、ＭＳ法によりＸＭＰを検出する。（ａ１）工程において異なる２つの測定条件で測定を行い、（ａ２）工程において異なる２つの測定条件での血液に含まれるＸＭＰのイオン強度比を求め、（ａ３）工程においてイオン強度比が所定の範囲内にあることを確認することによって、ＸＭＰを夾雑物と区別して測定することが可能になった。
　（ａ１）工程においては、ＬＣにより試料の分離を行い、ＭＳ法によりＸＭＰを検出すること（ＬＣ－ＭＳ法）が好ましい。
　また、別の態様において、本発明の血液に含まれるＸＭＰの量を測定する方法は、
（ａ１１）ＭＳ法により、異なる２つの測定条件でＸＭＰ標準物質および血液に含まれるＸＭＰを測定する工程と、
（ａ１２）（ａ１１）工程で得られる異なる２つの測定条件でのＸＭＰ標準物質のイオン強度比および血液に含まれるＸＭＰのイオン強度比を求める工程と、
（ａ１３）（ａ１２）工程で得られるＸＭＰ標準物質のイオン強度比と血液に含まれるＸＭＰのイオン強度比とを比較する工程と、
を含む方法を用いることができる。
　（ａ１２）工程においては、（ａ１１）工程で得られる異なる２つの測定条件でのＸＭＰ標準物質のイオン強度比および血液に含まれるＸＭＰのイオン強度比を求め、（ａ１３）工程においては、（ａ１２）工程で得られるＸＭＰ標準物質のイオン強度比と血液に含まれるＸＭＰのイオン強度比とを比較する。
　ここで、血液試料のイオン強度比とＸＭＰ標準物質のイオン強度比とが、所定の範囲内である場合には、血液中のＸＭＰを高い特異性で検出できていると判断することができる。反対に、血液試料のイオン強度比とＸＭＰ標準物質のイオン強度比とが所定の範囲外である場合には、比を取った条件のどちらかまたは両方で選択性が不十分であったと判断する。
　ＬＣとしては、ＨＩＬＩＣ、ＲＰ、イオンペア試薬を用いたクロマトグラフィーまたはイオン交換クロマトグラフィーなどを使用することができ、好ましくは、ＨＩＬＩＣである。
　ＬＣに用いる移動相としては、好ましくは塩基性である水溶液の移動相Ａおよび有機溶媒を含む移動相Ｂとを使用することができる。
　移動相ＡのｐＨ値は、好ましくは７～１１であり、より好ましくは８～１１であり、さらに好ましくは８．４～１０．４であり、特に好ましくは９．０～９．８である。
　移動相ＡのｐＨ値は、使用するカラムの種類に応じて設定すればよい。
　ＬＣに用いる移動相の塩濃度は、好ましくは５～３００ｍｍｏｌ／Ｌであり、より好ましくは２０～２００ｍｍｏｌ／Ｌである。
　ＬＣ－ＭＳ測定では、通常、高い感度を出すために塩濃度を低く（例えば、１０ｍｍｏｌ／Ｌなど）するが、本発明においては、通常より高い塩濃度を採用することによって、ＸＭＰと夾雑物とを分離することが可能になった。
　ＬＣに用いる移動相Ａとしては、重炭酸アンモニウム水溶液を含むことが好ましい。
　移動相Ｂに用いられる有機溶媒としては、アセトニトリル、メタノール、２－プロパノールまたはエタノールなどが挙げられ、好ましくはアセトニトリルまたはメタノールであり、より好ましくはアセトニトリルである。
　本発明の一例においては、ＨＩＬＩＣカラム(例えば、ＳｅＱｕａｎｔ　ＺＩＣ－ｐＨＩＬＩＣ、メルク社)などを用い、５０ｍｍｏｌ／Ｌ重炭酸アンモニウム水溶液（２５質量％アンモニア水溶液でｐＨ９．４に調整）およびアセトニトリルを移動相として用い、移動相Ａと移動相Ｂの比率を経時的に変化させるグラジェント法または移動相Ａと移動相Ｂの比率を固定するアイソクラティック法にて溶出することにより、ＸＭＰを夾雑物と分離することができる。
　移動相Ｂとして、アセトニトリルを使用する場合、移動相中のアセトニトリルの濃度は、好ましくは２０～９０容量％であり、より好ましくは３５～７０容量％であり、さらに好ましくは６５容量％である。溶出は、移動相Ａと移動相Ｂの比率を経時的に変化させるグラジエント溶出により行ってもよいが、夾雑物との分離が向上する点および注入量を増やした条件で分析できる点で、移動相Ａと移動相Ｂの比率を変化させないアイソクラティック法が好ましい。
　本発明においては、ＭＳ法により、異なる２つの測定条件で血液に含まれるＸＭＰを測定する。
　ＭＳ法においては、ＭＳ装置により、試料中の成分をイオン化し、ＸＭＰ由来のイオンを選択して検出する。多量かつ多種の質量および構造が類似する夾雑物中から選択的にＸＭＰを検出するためには、（１）ＭＳ／ＭＳモードによる測定、（２）高分解能型ＭＳ装置の使用、（３）（１）および（２）の両方の使用、により、高いマスフィルター効果を確保することが好ましい。さらに、本発明の方法は、高い選択性を達成できるように、分離条件とＭＳ条件（検出イオンおよび／またはイオン化条件）を設定することを特徴とする。本発明の方法においては、分離とＭＳ検出との組み合わせにより、ＸＭＰと夾雑物とを区別できる条件を採用することができる。選択性が十分であるか否かについては、（ａ１）工程、（ａ２）工程および（ａ３）工程に示す手法により評価することができる。本発明においては、ＬＣでの分離が十分であれば、薬物動態で通常用いられる低分解能のＭＳ装置を用いた場合であっても、血液に含まれるＸＭＰの量を正確に測定することができる。
　トリプル四重極などの低分解能のＭＳ装置を用いる場合、ＭＲＭ（Ｍｕｌｔｉｐｌｅ　Ｒｅａｃｔｉｏｎ　Ｍｏｎｉｔｏｒｉｎｇ）モードなどのＭＳ／ＭＳ測定により特異性を確保して測定することができる。測定対象から生じる複数のＭＳ／ＭＳプロダクトイオンを検出するなど、複数の条件で測定することが好ましい。解析時に特異性の良い条件を選ぶことができ、また後記する特異性の検証を行うことができる。
　Ｏｒｂｉｔｒａｐ型ＭＳ（例えば、Ｑ－Ｅｘａｃｔｉｖｅ、Ｔｈｅｒｍｏ社）やＴＯＦ型ＭＳ（例えば、６５５０ｉＦｕｎｎｅｌＱ－ＴＯＦ、Ａｇｉｌｅｎｔ社、ＳＹＮＡＰＴ、Ｗａｔｅｒｓ社）などの高分解能の装置を用いたＭＳ／ＭＳ測定またはＭＳ測定は、より高い特異性で測定することができる。装置の分解能は高い方が好ましいが、ＸＭＰの定量解析に必要な感度・ダイナミックレンジが得られる装置を使用することが好ましい。
　本発明の（ａ１）工程においては、ＭＳ法により、異なる２つの測定条件で血液に含まれるＸＭＰを測定する。即ち、異なる２つのＭＳ条件でＸＭＰ由来のイオンを測定する。異なる２つの測定条件は、ＭＳ法における検出イオンおよび／またはイオン化条件が異なる２つの測定条件であることが好ましい。具体的には、ＭＳ／ＭＳ測定において生じる複数のＭＳ／ＭＳプロダクトイオンの測定、異なるイオン化条件（イオン源温度（ターボヒーターのガス温度）またはイオン導入部（オリフィスプレート）の電圧など）での測定およびｐｏｓｉモードとｎｅｇａモードでの測定などが挙げられる。例えば、複数のＭＳ／ＭＳプロダクトイオンを測定する場合、３６５．０（ｍ／ｚ）をプリカーサーイオンとした際の９７．０（ｍ／ｚ）のプロダクトイオンと、３６５．０（ｍ／ｚ）をプリカーサーイオンとした際の１５３．０（ｍ／ｚ）のプロダクトイオンとの組み合わせ、および、３６５．０（ｍ／ｚ）をプリカーサーイオンとした際の９７．０（ｍ／ｚ）のプロダクトイオンと、３６５．０（ｍ／ｚ）をプリカーサーイオンとした際の２１３．０（ｍ／ｚ）のプロダクトイオンとの組み合わせを使用することができる。全血中のＸＭＰの量を測定する場合、３６５．０（ｍ／ｚ）をプリカーサーイオンとした際の９７．０（ｍ／ｚ）のプロダクトイオンと、３６５．０（ｍ／ｚ）をプリカーサーイオンとした際の２１３．０（ｍ／ｚ）のプロダクトイオンとの組み合わせを使用することが好ましい。溶血中のＸＭＰの量を測定する場合、３６５．０（ｍ／ｚ）をプリカーサーイオンとした際の９７．０（ｍ／ｚ）のプロダクトイオンと、３６５．０（ｍ／ｚ）をプリカーサーイオンとした際の１５３．０（ｍ／ｚ）のプロダクトイオンとの組み合わせを使用することが好ましい。
　各条件において、ＸＭＰを特異的に検出できるか否か（夾雑物を検出していないか）を評価するために、任意に選んだ２つの測定条件におけるイオン強度比を算出し、イオン強度比が所定の範囲内にあることを確認する。即ち、本発明の（ａ２）工程においては、（ａ１）工程で得られる異なる２つの測定条件での血液に含まれるＸＭＰのイオン強度比を求め、（ａ３）工程においては、（ａ２）工程で得られる血液に含まれるＸＭＰのイオン強度比が所定の範囲内にあることを確認する。
　イオン強度比は、例えば、下記式で求めることができる。
　イオン強度比＝（他の測定条件のイオンの強度）／（３６５．０（ｍ／ｚ）をプリカーサーイオンとした際の９７．０（ｍ／ｚ）のプロダクトイオンの強度）
　ここで、他の条件のイオンの強度として、例えば、３６５．０（ｍ／ｚ）をプリカーサーイオンとした際の１５３．０（ｍ／ｚ）のプロダクトイオンの強度または３６５．０（ｍ／ｚ）をプリカーサーイオンとした際の２１３．０（ｍ／ｚ）のプロダクトイオンの強度を用いることができる。
　ここで、血液試料のイオン強度比が、所定の範囲内にある場合には、血液中のＸＭＰを高い特異性で検出できていると判断することができる。反対に、血液試料のイオン強度比が所定の範囲外である場合は、比を取った条件のどちらかまたは両方で選択性が不十分であったと判断する。所定の範囲内とは、上記した式でイオン強度比を求めた場合のイオン強度比が１未満である場合である。他の条件のイオンの強度が３６５．０（ｍ／ｚ）をプリカーサーイオンとした際の２１３．０（ｍ／ｚ）のプロダクトイオンの強度であるとき、イオン強度比が０．１～０．３であることが好ましい。測定の精度を向上させるためには、ある条件に対し、比を取る相手を変えて、複数の組み合わせで検証することもできる。ＸＭＰの測定時に検出されうるＧＭＰなどの夾雑物については、この方法で重なりの有無を評価できる。特異性の検証は、クロマトグラムにおけるピークエリア比またはスペクトルにおけるイオン強度比に限らず、特異性を十分に評価可能な検証方法であれば特に限定されない。ある測定条件で特異性が十分であれば、この測定条件における結果を採用することができる。ある測定条件での特異性が不十分である場合は、分離・検出条件を再検討すればよい。例えば、検出するＭＳ／ＭＳプロダクトイオンの変更またはイオン源の温度（ターボヒーターのガス温度）およびイオン導入部（オリフィスプレート）の電圧を低下させることによって夾雑物の検出を抑制できることが発明者らの検討により見出された。
　また、ＸＭＰ標準物質のイオン強度比と血液に含まれるＸＭＰのイオン強度比とを比較する場合の所定の範囲内とは、血液に含まれるＸＭＰのイオン強度比が、ＸＭＰ標準物質のイオン強度比の０．５～１．５である場合である。
　上記の通り、特異性が十分と判断されたＭＳ測定により検出されたイオンから、ＸＭＰを定量することができる。
（３）化合物Ａもしくはその塩またはその水和物の有効投与量を予測するための装置、および化合物Ａもしくはその塩またはその水和物に対する感受性を予測するための装置
　本発明は、さらに、ＭＤＳの患者に対する化合物Ａもしくはその塩またはその水和物の有効投与量を予測するための装置およびＭＤＳの患者が、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であるか否かを予測するための装置を提供する。本発明の装置は、
（Ａ）（ｉ）化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を投与する前の患者から採取した血液に含まれるＸＭＰの量と、（ｉｉ）化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を投与した後の患者から採取した血液に含まれるＸＭＰの量、または化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を投与する前の患者から採取した血液に化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を接触させて得られた血液に含まれるＸＭＰの量とを測定する手段と、
（Ｂ）（Ａ）に記載の手段により得られるＸＭＰの量からＸＭＰの変動率を求める手段と、
（Ｃ）（Ｂ）に記載の手段により得られるＸＭＰの変動率から化合物Ａもしくはその塩またはその水和物の有効投与量を予測する手段または患者が化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し感受性であるか否かを予測する手段と、
を含む装置である。
　（Ａ）に記載の手段は、血液に含まれるＸＭＰの量を測定できる手段であれば特に限定されず、例えば、ＭＳ装置などを用いることができ、さらに分離装置とＭＳ装置を組み合わせた装置を用いることもできる。分離装置としては、高速液体クロマトグラフィー装置、キャピラリー電気泳動またはガスクロマトグラフィー装置などを使用することができる。好ましくは、ＬＣ－ＭＳ装置である。
　ＭＳ装置は、通常、試料導入部、イオン源、分析部、イオン検出部およびデータ処理部を有している。
　試料導入部は、試料をＭＳ装置内に導入する部位である。例えば、ＭＳ装置を、高速液体クロマトグラフィー装置、キャピラリー電気泳動またはガスクロマトグラフィー装置に連結し、これらの装置から試料をＭＳ装置に導入することもできる。
　イオン源は、試料に電荷を持たせる部位であり、電子イオン化法（ＥＩ法）、化学イオン化法（ＣＩ法）、電界脱離法（ＦＤ法）、高速原子衝撃法（ＦＡＢ法）、マトリックス支援レーザー脱離イオン化法（ＭＡＬＤＩ法）、大気圧光イオン化法（ＡＰＰＩ法）、大気圧化学イオン化法（ＡＰＣＩ法）およびエレクトロスプレーイオン化法（ＥＳＩ法）などが知られている。ＬＣ－ＭＳ法として用いられるイオン源としては、ＡＰＰＩ法、ＡＰＣＩ法またはＥＳＩ法を用いることができ、ＥＳＩ法が好ましい。
　分析部は、イオン化された試料を分離する部位である。磁場偏向型、四重極型、イオントラップ型、飛行時間型、フーリエ変換イオンサイクロトロン共鳴型およびタンデム型などが知られている。
　検出部は、分析部で選別されたイオンを電子増倍管またはマイクロチャンネルプレートで増感して検出する部位である。
　データ処理部では、得られたデータからマススペクトルを作製する部位である。
　（Ｂ）に記載の、ＸＭＰの変動率を求める手段としては、得られるＸＭＰの量および上記の式から変動率を求めることができる手段であればよく、例えば、計算ソフトまたはプログラムを有する電子計算機（コンピューター）を使用することができる。
　（Ｃ）に記載の、（Ｂ）に記載の手段により得られるＸＭＰの変動率から化合物Ａもしくはその塩またはその水和物の有効投与量を予測する手段または患者が化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し感受性であるか否かを予測する手段としては、ＸＭＰの変動率から所定の基準に基づいて有効投与量または感受性を予測できる手段であれば特に限定されない。例えば、汎用の計算ソフトなどを用いて行うことができる。例えば、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物の投与後の時間または接触の時間と、ＸＭＰの変動率との関係を関数で表す手段と、得られた関数から化合物Ａもしくはその塩またはその水和物の有効投与量または化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対する感受性の有無を予測する手段を含むプログラムを有する電子計算機（コンピューター）を使用することができる。
（４）有効成分が化合物ＡであるＭＤＳの処置剤、および有効成分が化合物ＡであるＭＤＳの処置方法
　本発明は、さらに、ＭＤＳの患者が、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であるか否かを予測する工程を含む、有効成分が化合物ＡであるＭＤＳの処置剤、および有効成分が化合物ＡであるＭＤＳの処置方法を提供する。
　本発明のＭＤＳの患者が、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であるか否かを予測する工程は、上記のとおりである。
　ＭＤＳの患者が、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であると予測された場合、有効成分が化合物ＡであるＭＤＳの処置剤が患者の処置に用いられる。
　化合物Ａもしくはその塩またはその水和物をＭＤＳの処置剤として用いる場合、通常、製剤化に使用される賦形剤、担体および希釈剤などの製剤補助剤を適宜混合してもよい。これらは、常法に従って、錠剤、カプセル剤、散剤、シロップ剤、顆粒剤、丸剤、懸濁剤、乳剤、液剤、粉体製剤、坐剤、点眼剤、点鼻剤、点耳剤、貼付剤、軟膏剤または注射剤などの形態で、経口または非経口で投与することができる。また、投与方法、投与量および投与回数は、患者の年齢、体重および症状に応じて適宜選択することができるが、処置期間の４０％以上の期間において、ＸＭＰの変動率（減少率）が４５％以上（好ましくは５０％以上、より好ましくは５５％以上）となるような投与量を選択することが好ましい。
　以下の実施例により本発明をさらに具体的に説明するが、本発明はこれらにより限定されることはない。
　限外ろ過チューブは、UltrafreeMC-PLHCC 250/pk for Metabolome Analysis（Human Metabolome Technologies社）を用いた。
　遠心エバポレーターは、miVac Duo HV（Genevac社）を用いた。
　PBS溶液は、PBS，pH7.4（サーモフィッシャーサイエンティフィック社）を用いた。
実施例１　化合物Ａの細胞増殖抑制作用
　試験化合物として、化合物Ａの３／４水和物を用いた。
　ヒト骨髄性白血病細胞株として、SKM-1（独立行政法人医薬基盤研究所JCRB細胞バンク）を用いた。
　ヒト骨髄性白血病細胞株SKM-1を96ウェルプレートに90μL（5000個）播種した。試験化合物のPBS溶液（化合物Ａとして、0、1、3、10、30、100、300、1000、3000または10000μmol/L）10μLをプレートに加え、37℃、5%CO2で72時間インキュベートした。CellTiter-Glo（Promega社）を100μLずつ添加し、細胞破砕液を作製した。
　プレートリーダーにより化学発光強度の相対値を求めた。
　化合物ＡのIC50値は21.5μmol/L（化合物Ａとして、2.73μg/mL）であった。化合物Ａは、優れた増殖抑制活性を示した。
実施例２　PK/PD解析（薬物動態(Pharmacokinetics)/薬力学(Pharmacodynamics)解析）による薬物濃度予測
（１）化合物Ａの抗腫瘍効果
　試験化合物として、化合物Ａの３／４水和物を用いた。
　ヒト骨髄性白血病細胞として、SKM-1細胞を用いた。
　ヒト骨髄性白血病細胞5.0×106個を雌性ヌードマウス（BALB/cAJcl-nu/nu）の右側腹部皮下に移植し、皮下腫瘍を形成した。移植後9日目に群分けを行い、1群10匹として7群を作成した。群構成を表１に示す。移植後10日目から対照溶媒（0.5w/v％メチルセルロース400水溶液、以下、「0.5％MC」とも称する。）または試験化合物を間欠経口投与(2日間投与した後4日間休薬を1クールとして、合計5クール)し、移植後39日目の腫瘍体積を測定し、抗腫瘍効果を評価した。抑制率は以下の式で算出した。
抑制率（％）＝（１－（移植後39日目の腫瘍体積）/（群１の移植後39日目の腫瘍体積））×100
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　移植後39日目の腫瘍体積を図１に示す。
　群４、群５、群６および群７は、優れた抗腫瘍効果を示した。
（２）化合物ＡのPK試験
　非絶食下の雌性マウス(BALB/cAJcl)に試験化合物（化合物Ａとして、10、40、80および160mg/kg）を単回経口投与した。5分間、15分間、30分間、1時間、2時間、5時間、10時間または24時間後にヘパリン採血後、血漿中の化合物Ａの濃度をLC/MS/MSを用いて測定し、PKパラメータ（tmax、Cmax、t1/2およびAUC0-24）を算出した。
（３）PK/PD解析
　化合物Ａを単回経口投与したときの血漿中濃度推移より、two-compartment modelの薬物動態パラメータであるV1/F、K01、K10、K12およびK21を算出した。これらのパラメータを用いて、様々な用法用量における反復投与時の化合物Ａの血漿中濃度推移を予測した。なお、10mg/kgから80mg/kgまでは線形性が認められたため、10mg/kg投与のパラメータを用いて20、40および80mg/kgの反復投与時の予測を行った。120および240mg/kgについては160mg/kgのパラメータを用いて予測を行った。得られた化合物Ａの血漿中濃度推移から、Cmax(ng/mL)、AUC0-48 (ng・時間/mL)およびTime above IC50（%、IC50値：21.5μmol/L（化合物Ａとして、2.73μg/mL））を算出した。PKパラメータ（Cmax、Time above IC50およびAUC0-48）をX軸にプロットし、腫瘍体積の抑制率をY軸にプロットした。結果を図２、３および４に示す。
　Cmaxと抑制率との相関係数は－0.5447、Time above IC50と抑制率との相関係数は0.9814、AUC0-48と抑制率との相関係数は0.4684であることからTime above IC50が最も抑制率と相関するパラメータであった。
　また、Time above IC50が40%以上の群で統計学的に有意に腫瘍体積が抑制された。このことから、ヒト血漿中の薬物濃度が、処置期間の中の40%以上の期間において、化合物Ａとして2.73μg/mL以上を維持することが重要であると予測された。
実施例３　XMPの定量
（１－１）ヘパリン添加採血により健常人から採取した血液450μLおよびPBS溶液50μLをチューブに加え、37℃のインキュベーターで８時間攪拌した。
（１－２）（１－１）で得られた試料100μLにメタノール400μLを添加した。ボルテックスミキサーで攪拌後、クロロホルム400μLを添加し、ボルテックスミキサーで攪拌後、超純水120μLを添加した。ボルテックスミキサーで攪拌した後、4℃、10000×gで15分間遠心分離した。水相400μLを回収し、限外ろ過チューブに添加し、12℃、9200×gで2時間遠心分離した。ろ液を併せ、遠心エバポレーターを用いて40℃で2時間減圧乾燥した。乾燥後、-80℃のフリーザで保存した。
（１－３）試料を水に溶解し、遠心分離した後、上清を回収して測定試料とした。測定試料およびXMP標準物質をLC-MS/MSに供した。XMP標準物質は、XMP（Xanthosine-5'-monophosphate, Sodium salt）（ジェナバイオサイエンス社）を用いた。装置構成および測定条件を以下に示す。
（LC-MS/MS）
LC:UFLC(島津製作所)
MS:QTRAP 5500(エービー・サイエックス社)
（LC）
カラム:SeQuant ZIC-pHILIC 5μm, polymeric PEEK 150×2.1 mm metal-free HPLC column (メルク社)
カラムオーブン温度:40℃
移動相A:50mmol／L 重炭酸アンモニウム(25質量%アンモニア水溶液でpH9.4に調整) 
移動相B:アセトニトリル
送液条件：0.3mL/分
グラジエントサイクルを表２に示す。表２中の％は体積％を示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
（MS/MS）
イオン化:ESI positive（Electrospray ionization positive）
スキャンモード:MRM （Multiple Reaction Monitoring）
　測定条件を表３に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
 　（１－３）で得られた測定結果を図５に示す。
（１－４）解析１
　試料のクロマトグラムでは複数の近接ピークが見られた。XMP標準物質のピークから試料のXMPのピークを推定し、面積を算出した。特異性を検証するため、測定条件Aにおけるピークエリアおよび測定条件Bにおけるピークエリアの比（B/A）を算出した。結果を表４に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
　試料のピークエリア比(B/A)は1.2であった。試料のピークエリア比が1以上であることから、測定条件AおよびBのどちらか一方または両者において、特異性が不十分である（夾雑物が重なって検出されている。）と判定した。
（１－５）解析２
　測定条件ＣおよびＤで、XMP標準物質および(３)で得られた試料を測定した。測定条件ＣおよびＤを表５に示す。XMP標準物質および試料の測定結果を図６および表６に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
　試料のピークエリア比（D/C）は0.4であった。試料のピークエリア比が1未満であることから、特異性は良いと判定した。
　この結果から、測定条件CおよびDにより、XMPの量を測定できると判定した。
（２－１）表７に示す測定条件で測定する以外は（１－１）～（１－３）に記載の方法と同様にして試料を作製し、試料のXMPを測定した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
　（２－１）で得られた測定結果を図７に示す。
（２－２）解析
　特異性を検証するため、測定条件A’におけるピークエリアおよび測定条件B’におけるピークエリアの比（B’/A’）を算出した。結果を表８に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000008
　試料のピークエリア比（B'/A'）は0.2であった。試料のピークエリア比が0.1～0.3の範囲内であることから、特異性は極めて良いと判定した。
　この結果から、測定条件A’およびB’により、XMPの量を測定できると判定した。
実施例４　ヒト骨髄性白血病細胞中のXMPとヒト健常人の血液細胞中のXMP
　試験化合物として、化合物Ａの３／４水和物を用いた。
　ヒト骨髄性白血病細胞として、K562（独立行政法人理化学研究所バイリソースセンター）を用いた。
（１）
　ヒト骨髄性白血病細胞2×107個をRPMI1640培地（Life Technologies社）18mLが入った培養フラスコに懸濁した。試験化合物のPBS溶液（化合物Ａとして、0、10、100または1000μg/mL）2mLをフラスコに加え、37℃、5%CO2条件下で24時間インキュベートした。20℃、300×gで3分間遠心分離した後、上清を除去し、PBS溶液10mLに懸濁した。その後、4℃、300×gで5分間遠心分離した後、上清を除去した。メタノール1000μLを添加して攪拌した後、超純水500μLを添加し、さらに攪拌した。600μLずつ2つのチューブに分割し、それぞれにクロロホルム400μLを添加して攪拌した後、4℃、10000×gで15分間遠心分離した。水相400μLを回収し、限外ろ過チューブに添加し、12℃、9200×gで2時間遠心分離した。ろ液を併せ、遠心エバポレーターを用いて、40℃で2時間減圧乾燥した。乾燥後、-80℃のフリーザで保存した。
（２）
　ヘパリン添加採血により健常人２人から採取した血液（検体Ａおよび検体Ｂ）を450μLずつ1.5mLチューブに加え、試験化合物のPBS溶液（化合物Ａとして、0、10、30、100、300または1000μg/mL）を各濃度それぞれ50μLずつチューブに加えた。37℃でインキュベーターで8時間攪拌した。その後、血液にBD Pharm Lyse（555899、Becton, Dickinson and Company社）を加えた（血液0.2mLに対し、BD Pharm Lyse2mLを添加した）。ボルテックスミキサーで攪拌後、遮光し、室温で15分静置した。20℃、1000×gで5分間遠心分離した後、上清を除去し、PBS溶液10mLに懸濁した。4℃、1000×gで5分間遠心分離した後、上清を除去し、それぞれにメタノール1000μLを添加し、攪拌した後、超純水500μLを添加し、さらに攪拌した。600μLずつ2つのチューブに分割し、それぞれにクロロホルム400μLを添加し、攪拌した後、4℃、10000×gで15分間遠心分離した。水相400μLを回収し、限外ろ過チューブに添加し、12℃、9200×gで2時間遠心分離した。ろ液を併せ、遠心エバポレーターを用いて、40℃で2時間減圧乾燥した。乾燥後、-80℃のフリーザで保存した。
（３）
　（１）および（２）で保存した試料を室温に戻し、それぞれに超純水40μLを加えて攪拌し、4℃、21500×gで5分間遠心分離した。上清35μLをバイアルに移し、4℃で保存後、実施例３（３）に記載したLC-MS/MS測定装置、LC条件およびMS/MS条件で、試料中のXMPを測定した。
（４）
　化合物Ａ無処理群のXMPの値(ピークエリア値)を100%とし、XMPの量(%)を算出した。
　結果を表９に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000009
　健常人の血液細胞およびヒト骨髄性白血病細胞におけるXMPの量の変動は同等であった。MDS患者の骨髄中の芽球における化合物Ａに対するXMPの量の変動は、末梢血中の血液細胞における変動を測定することで予測可能であることが示唆された。
実施例５　溶血後の血液細胞中のXMPと全血中のXMP 
　試験化合物として、化合物Ａの３／４水和物を用いた。
（１）
　ヘパリン添加採血により健常人２人から採取した血液（検体Ａおよび検体Ｂ）を450μLずつチューブに加え、試験化合物のPBS溶液（化合物Ａとして、0、10、30、100、300または1000μg/mL）を各濃度それぞれ50μLずつチューブに加えた。37℃でインキュベーターで8時間攪拌した。
（２－１）
　（１）で得られた血液サンプルにBD Pharm Lyse（555899、Becton, Dickinson and Company社）を加えた（血液0.2mLに対し、BD Pharm Lyse2mLを添加した。）。ボルテックスミキサーで攪拌後、遮光し、室温で15分静置した。20℃、1000×gで5分間遠心分離した後、上清を除去し、PBS10mLに懸濁した。20℃、1000×gで5分間遠心分離した後、上清を除去し、PBS10mLに懸濁した。4℃、1000×gで5分間遠心分離した後、上清を除去し、それぞれにメタノール1000μLを添加し、攪拌した後、超純水500μLを添加し、さらに攪拌した。600μLずつ2つのチューブに分割し、それぞれにクロロホルム400μLを添加し、攪拌した後、4℃、10000×gで15分間遠心分離した。水相400μLを回収し、限外ろ過チューブ（UltrafreeMC-PLHCC 250/pk for Metabolome Analysis（Human Metabolome Technologies社）））に添加し、12℃、9200×gで2時間遠心分離した。ろ液を併せ、遠心エバポレーターを用いて、40℃で2時間減圧乾燥した。乾燥後、-80℃のフリーザで保存した。
（２－２）
　（１）で得られた血液サンプル100μLに400μLのメタノールを添加し、攪拌した後、400μLのクロロホルムを添加し、さらに攪拌した。120μLの超純水を添加し、攪拌した後、4℃、10000×gで15分間遠心分離した。水相400μLを回収し、限外ろ過チューブに添加し、12℃、9200×gで2時間遠心分離した。ろ液を遠心エバポレーターを用いて、40℃で2時間減圧乾燥した。乾燥後、-80℃のフリーザで保存した。
（３）
　（２－１）および（２－２）で得られた試料を室温に戻し、それぞれに超純水40μL加えて攪拌し、4℃、21500×gで5分間遠心分離した。上清35μLをバイアルに移し、4℃で保存後、実施例３（３）に記載したLC-MS/MS測定装置、LC条件およびMS/MS条件で、試料中のXMPを測定した。
（４）
　化合物Ａ無処理群でのXMPの量を100%とし、XMPの量(%)を算出した。
　結果を表１０に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000010
　溶血後の血液細胞中のXMPの量と全血中のXMPの量は、ほぼ同等であった。全血中のXMP量は、血液細胞におけるXMPの量を反映していた。
実施例６　血液細胞中のXMPと骨髄細胞中のXMP 
　試験化合物として、化合物Ａの３／４水和物を用いた。
（１）
　雌性マウス（BALB/cAJcl）に0.5%MCまたは試験化合物の0.5%MC（化合物Ａとして100mg/kg）を経口投与した。
（２－１）
　投与後から1、4、8または24時間後にイソフルラン吸入による麻酔下で後大静脈からエチレンジアミン四酢酸ジナトリウム塩で処理したポリプロピレン製注射筒および25ゲージの注射針を用いて全採血した。血液にBD Pharm Lyse（555899、Becton, Dickinson and Company社）を加えた（0.2mLの血液に対し、2mLのBD Pharm Lyseを添加した。）。ボルテックスミキサーで攪拌後、遮光し、室温で15分静置した。20℃、1000×gで5分間遠心後、上清を除去し、PBS溶液10mLに懸濁した。4℃、1000×gで5分間遠心分離した後、上清を除去し、それぞれに1000μLのメタノールを添加して攪拌した後、500μLの超純水を添加し、さらに攪拌した。600μLずつ2チューブに分割し、それぞれに400μLのクロロホルムを添加して攪拌した後、4℃、10000×gで15分間遠心分離した。水相400μLを回収し、限外ろ過チューブに添加し、12℃、9200×gで2時間遠心した。ろ液を併せ、遠心エバポレーターを用いて、40℃で2時間減圧乾燥した。乾燥後、-80℃のフリーザで保存した。
（２－２）
　投与後から1、4、8または24時間後にイソフルラン吸入による麻酔下で左右大腿骨を採取、骨端を切断し、4℃、3000rpmで1分間遠心分離し、骨髄細胞を回収した。1mLのPBSに懸濁し、細胞数を計数した。4℃、1000×gで5分間遠心分離した後、上清を除去し、それぞれに1000μLのメタノールを添加して攪拌した後、500μLの超純水を添加し、さらに攪拌した。600μLずつ2つのチューブに分割しそれぞれに400μLのクロロホルムを添加して攪拌した後、4℃、10000×gで15分間遠心分離した。水相400μLを回収し、限外ろ過チューブに添加し、12℃、9200×gで2時間遠心した。ろ液を併せ、遠心エバポレーターを用いて、40℃で2時間減圧乾燥した。乾燥後、-80℃のフリーザで保存した。
（３）
　（２－１）および（２－２）で得られた試料を室温に戻し、超純水を溶血サンプルに40μL、骨髄サンプルに150μL加えた。攪拌後、4℃、21500×gで5分間遠心した。溶血サンプルは上清35μLを、骨髄サンプルは上清140μLをバイアルに移し、4℃で保存後、実施例３（３）に記載したLC-MS/MS測定装置、LC条件およびMS/MS条件で、試料中のXMPを測定した。
（４）
　化合物Ａ無処理群でのXMPの量を100%とし、XMPの量(%)を算出した。
　結果を表１１に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000011
　血液細胞および骨髄細胞中のXMPの変動は同等であった。血液細胞における化合物Ａに対するXMPの変動は骨髄細胞における変動を反映していることが示唆された。
　実施例４、実施例５および実施例６の結果から、末梢血全血のXMPの変動はMDS患者の骨髄の芽球中のXMPの変動を反映していることが示された。
実施例７　ヒト骨髄性白血病細胞中のXMP
　試験化合物として、化合物Ａの３／４水和物を用いた。
　ヒト骨髄性白血病細胞として、SKM-1を用いた。
（１）
　ヒト骨髄性白血病細胞2×107個をRPMI1640培地（Life Technologies社）18mLが入った培養フラスコに懸濁した。試験化合物のPBS溶液（化合物Ａとして、0、10、30、100、300または1000μg/mL）2mLをフラスコに加え、37℃、5%CO2条件下で24時間インキュベートした。20℃、300×gで3分間遠心分離した後、上清を除去し、PBS溶液10mLに懸濁した。10 μLを分取し、細胞数をTC10（BioRad社）を用いて計測した。300×gで5分間遠心分離した後、上清を除去した。メタノール1000μLを添加して攪拌した後、超純水500μLを添加し、さらに攪拌した。600μLずつ2つのチューブに分割し、それぞれに400μLのクロロホルムを添加して攪拌した後、4℃、10000×gで15分間遠心分離した。水相400μLを回収し、限外ろ過チューブに添加し、12℃、9200×gで2時間遠心分離した。ろ液を1つのチューブにまとめ、遠心エバポレーターを用いて、40℃で約2時間減圧乾燥した。乾燥後、-80℃のフリーザで保存した。
（２）
　（１）で得られた試料を室温に戻し、それぞれに、4ng/μL2'-フルオロ-2'-デオキシシチジン１リン酸を含有した5mmol/Lギ酸アンモニウム50μLを加えて攪拌した。上清12.5μLをバイアルに移し、以下の測定条件で試料中のXMPを測定した。
（LC-MS/MS）
LC:UFLC(島津製作所)
MS:QTRAP3200(エービー・サイエックス社)
（LC）
カラム:SeQuant ZIC-pHILIC 5μm, polymeric PEEK 150×2.1mm metal-free HPLC column (メルク社)
カラムオーブン温度:40℃
移動相A:10mmol／L重炭酸アンモニウム(25質量%アンモニア水溶液でpH9.4に調整)
移動相B:アセトニトリル
送液条件：0.5mL/分
グラジエントサイクルを表１２に示す。表１２中の％は体積％を示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000012
（MS/MS）
イオン化:ESI positive
スキャンモード:MRM
　測定条件を表１３に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000013
（３）
　化合物Ａ無処理群のXMPの値を100%とし、XMP量(％)を以下の式で算出した。
XMPの量(％)=（（XMPのピークエリア）/（（2’-フルオロ-2’-デオキシシチジン１リン酸のピーク面積）×（細胞数）））/（（無処理群のXMPのピークエリア）/（（無処理群の2’-フルオロ-2’-デオキシシチジン１リン酸のピークエリア）×（無処理群の細胞数）））×100
　以下の式でXMPの減少率(％)を算出した。
XMPの減少率(％)=100－XMPの量(％)
　結果を表１４に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000014
　化合物ＡのSKM-1細胞におけるIC50値は2.73μg/mLである（実施例１）。従って、IC50値付近でのXMP減少率は43～55%であった。
　実施例２および実施例７の結果から、処置期間の中の40%以上の期間において、XMP減少率が45%以上であるとき、その投与量は有効であると予測できる。
実施例８　全血中のXMP、GMPおよびGTP
　試験化合物として、化合物Ａの３／４水和物を用いた。
（１）
　ヘパリン添加採血により健常人から採取した血液を450μLずつチューブに加え、試験化合物のPBS溶液（化合物Ａとして、0、1、10または100μg/mL）を各濃度それぞれ50μLずつチューブに加えた。37℃でインキュベーターで8時間攪拌した。
（２）
　（１）で得られた血液サンプル100μLに400μLのメタノールを添加し、攪拌した後、400μLのクロロホルムを添加し、さらに攪拌した。120μLの超純水を添加し、攪拌した後、4℃、10000×gで15分間遠心分離した。水相400μLを回収し、限外ろ過チューブに添加し、12℃、9200×gで2時間遠心分離した。ろ液を遠心エバポレーターを用いて、40℃で2時間減圧乾燥した。乾燥後、-80℃のフリーザで保存した。
（３）
　（２）で得られた試料を室温に戻し、それぞれに超純水40μL加えて攪拌し、4℃、21500×gで5分間遠心分離した。上清35μLをバイアルに移し、4℃で保存後、実施例３（３）に記載したLC-MS/MS測定装置およびLC条件ならびに表１５に示すMS/MS条件で、試料中のXMP、GMPおよびGTPを測定した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000015
（４）
　化合物Ａ無処理群のXMP、GMPおよびGTPの値(Peak Area値)を100%とし、XMP、GMPおよびGTPの量(%)を算出した。結果を表１６に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000016
　全血中のXMPの量は、化合物Ａの濃度が高くなるにつれて、減少した。一方、全血中のGMPおよびGTPの量は、化合物Ａの濃度が高くなっても、あまり変動がみられなかった。この結果から、GMPまたはGTPなどのXMPの下流の代謝物では化合物Ａの治療効果を評価できず、XMPでは化合物Ａの治療効果を評価できることが示された。
実施例９　LCのグラジエント条件
　実施例３（１－１）および（１－２）に記載の方法と同様にして試料を作製した。試料を水に溶解し、遠心分離した後、上清を回収して測定試料とした。測定試料およびXMP標準物質をLC-MS/MSに供した。装置構成および測定条件を以下に示す。
（LC-MS/MS）
LC:UFLC(島津製作所)
MS:QTRAP 5500(エービー・サイエックス社)
（LC）
カラム:SeQuant ZIC-pHILIC 5μm, polymeric PEEK 150×2.1 mm metal-free HPLC column (メルク社)
カラムオーブン温度:40℃
移動相A:50mmol／L 重炭酸アンモニウム(25質量%アンモニア水溶液でpH9.4に調整) 
移動相B:アセトニトリル
送液条件：0.3mL/分
注入量：2μL(条件a)、5μL(条件b)
条件ａおよびｂのグラジエントサイクルを表１７および１８に示す。表１７及び表１８中の％は体積％を示す。
条件ａ
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000017
条件ｂ
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000018
（MS/MS）
イオン化:ESI positive
スキャンモード:MRM
　測定条件を表１９に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000019
　得られた測定結果を図８に示す。
　LC条件bのXMP溶出でアイソクラッティック法を用いた場合には、LC条件aのグラジエント法を用いた場合に比べ、試料中のXMPと夾雑物との分離度が向上し、試料中のXMPをより高い特異性で検出できることが確認された。さらに、LC条件bでは、サンプル注入量をLC条件aの2.5倍まで増加させることができた。
　本発明の予測方法は、ＭＤＳの患者に対する化合物Ａもしくはその塩またはその水和物の有効投与量を簡便な操作で短時間に予測することができる。また、ＭＤＳの患者が、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であるか否かを簡便な操作で短時間に予測することができる。
　本発明の測定方法は、血液に含まれる微量のＸＭＰの量を正確に測定することができる。
　本発明の予測装置は、ＭＤＳの患者に対する化合物Ａもしくはその塩またはその水和物の有効投与量を簡便な操作で短時間に予測するために用いることができる。また、ＭＤＳの患者が、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であるか否かを簡便な操作で短時間に予測するために用いることができる。
　本発明の処置剤および処置方法は、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であると予測されたＭＤＳの患者の処置に用いられるため、化合物Ａもしくはその塩またはその水和物に対して感受性のない患者への不要な投与を回避することができる。

Claims (43)

  1. 骨髄異形成症候群の患者に対する５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物の有効投与量を予測する方法であって、
    （ａ）（ｉ）５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を投与する前の患者から採取した血液に含まれるキサントシン一リン酸の量と、（ｉｉ）５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を投与した後の患者から採取した血液に含まれるキサントシン一リン酸の量、または５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を投与する前の患者から採取した血液に５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を接触させて得られた血液に含まれるキサントシン一リン酸の量とを測定する工程と、
    （ｂ）（ａ）工程で得られるキサントシン一リン酸の量からキサントシン一リン酸の変動率を求める工程と、
    （ｃ）（ｂ）工程で得られるキサントシン一リン酸の変動率から５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物の有効投与量を予測する工程と、を含む方法。
  2. 血液が、末梢血である、請求項１に記載の方法。
  3. キサントシン一リン酸の量を測定する工程が、血液に含まれる夾雑物とキサントシン一リン酸とを区別して測定できる条件下で行う工程である、請求項１または２に記載の方法。
  4. キサントシン一リン酸の量を測定する工程が、マススペクトロメトリー法により測定する工程である、請求項１から３のいずれか一項に記載の方法。
  5. キサントシン一リン酸の量を測定する工程が、
    （ａ１）マススペクトロメトリー法により、異なる２つの測定条件で血液に含まれるキサントシン一リン酸を測定する工程と、
    （ａ２）（ａ１）工程で得られる異なる２つの測定条件での血液に含まれるキサントシン一リン酸のイオン強度比を求める工程と、
    （ａ３）（ａ２）工程で得られる血液に含まれるキサントシン一リン酸のイオン強度比が所定の範囲内にあることを確認する工程と、を含む工程である、請求項４に記載の方法。
  6. （ａ１）工程が、液体クロマトグラフィー－マススペクトロメトリー法により、異なる２つの測定条件で血液に含まれるキサントシン一リン酸を測定する工程である、請求項５に記載の方法。
  7. 液体クロマトグラフィーに用いる移動相のｐＨ値が、７～１１である、請求項６に記載の方法。
  8. 液体クロマトグラフィーに用いる移動相の塩濃度が、５～３００ｍｍｏｌ／Ｌである、請求項６または７に記載の方法。
  9. 液体クロマトグラフィーに用いる移動相が、重炭酸アンモニウム水溶液を含む移動相である、請求項６から８のいずれか一項に記載の方法。
  10. 液体クロマトグラフィーが、親水性相互作用クロマトグラフィーである、請求項６から９のいずれか一項に記載の方法。
  11. 異なる２つの測定条件が、マススペクトロメトリー法における検出イオンおよび／またはイオン化条件が異なる２つの測定条件である、請求項５から１０のいずれか一項に記載の方法。
  12. （ｃ）工程が、
    （ｃ１）５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物の投与後の時間または接触の時間と（ｂ）工程で得られるキサントシン一リン酸の変動率との関係を関数で表す工程と、
    （ｃ２）（ｃ１）工程で得られる関数から５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物の有効投与量を予測する工程と、を含む工程である、請求項１から１１のいずれか一項に記載の方法。
  13. （ｃ２）工程が、キサントシン一リン酸の変動率が所定の処置期間において所定の変動率以上となるような５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物の投与量が、有効投与量であると予測する工程を含む工程である、請求項１２に記載の方法。
  14. （ｃ２）工程が、キサントシン一リン酸の変動率が所定の処置期間中の所定の割合以上の期間において所定の変動率以上となるような５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物の投与量が、有効投与量であると予測する工程を含む工程である、請求項１２に記載の方法。
  15. 骨髄異形成症候群の患者が、５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であるか否かを予測する方法であって、
    （ａ）（ｉ）５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を投与する前の患者から採取した血液に含まれるキサントシン一リン酸の量と、（ｉｉ）５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を投与した後の患者から採取した血液に含まれるキサントシン一リン酸の量、または５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を投与する前の患者から採取した血液に５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を接触させて得られた血液に含まれるキサントシン一リン酸の量とを測定する工程と、
    （ｂ）（ａ）工程で得られるキサントシン一リン酸の量からキサントシン一リン酸の変動率を求める工程と、
    （ｃ）（ｂ）工程で得られるキサントシン一リン酸の変動率から、患者が、５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であるか否かを予測する工程と、を含む方法。
  16. 血液が、末梢血である、請求項１５に記載の方法。
  17. キサントシン一リン酸の量を測定する工程が、血液中に含まれる夾雑物とキサントシン一リン酸とを区別して測定できる条件下で行う工程である、請求項１５または１６に記載の方法。
  18. キサントシン一リン酸の量を測定する工程が、マススペクトロメトリー法により測定する工程である、請求項１５から１７のいずれか一項に記載の方法。
  19. キサントシン一リン酸の量を測定する工程が、
    （ａ１）マススペクトロメトリー法により、異なる２つの測定条件で血液に含まれるキサントシン一リン酸を測定する工程と、
    （ａ２）（ａ１）工程で得られる異なる２つの測定条件での血液に含まれるキサントシン一リン酸のイオン強度比を求める工程と、
    （ａ３）（ａ２）工程で得られる血液に含まれるキサントシン一リン酸のイオン強度比が所定の範囲内にあることを確認する工程と、を含む工程である、請求項１８に記載の方法。
  20. （ａ１）工程が、液体クロマトグラフィー－マススペクトロメトリー法により、異なる２つの測定条件で血液に含まれるキサントシン一リン酸を測定する工程である、請求項１９に記載の方法。
  21. 液体クロマトグラフィーに用いる移動相のｐＨ値が、７～１１である、請求項２０に記載の方法。
  22. 液体クロマトグラフィーに用いる移動相の塩濃度が、５～３００ｍｍｏｌ／Ｌである、請求項２０または２１に記載の方法。
  23. 液体クロマトグラフィーに用いる移動相が、重炭酸アンモニウム水溶液を含む移動相である、請求項２０から２２のいずれか一項に記載の方法。
  24. 液体クロマトグラフィーが、親水性相互作用クロマトグラフィーである、請求項２０から２３のいずれか一項に記載の方法。
  25. 異なる２つの測定条件が、マススペクトロメトリー法における検出イオンおよび／またはイオン化条件が異なる２つの測定条件である、請求項１９から２４のいずれか一項に記載の方法。
  26. （ｃ）工程が、
    （ｃ１）５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物の投与後の時間または接触の時間と（ｂ）工程で得られるキサントシン一リン酸の変動率との関係を関数で表す工程と、
    （ｃ２）（ｃ１）工程で得られる関数から、患者が、５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であるか否かを予測する工程と、を含む工程である、請求項１５から２５のいずれか一項に記載の方法。
  27. （ｃ２）工程が、キサントシン一リン酸の変動率が所定の処置期間において所定の変動率以上である場合に、患者が、５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であると予測する工程を含む工程である、請求項２６に記載の方法。
  28. （ｃ２）工程が、キサントシン一リン酸の変動率が所定の処置期間中の所定の割合以上の期間において所定の変動率以上である場合に、患者が、５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であると予測する工程を含む工程である、請求項２６に記載の方法。
  29. 血液に含まれるキサントシン一リン酸の量を測定する方法であって、
    （ａ１）マススペクトロメトリー法により、異なる２つの測定条件で血液に含まれるキサントシン一リン酸を測定する工程と、
    （ａ２）（ａ１）工程で得られる異なる２つの測定条件での血液に含まれるキサントシン一リン酸のイオン強度比を求める工程と、
    （ａ３）（ａ２）工程で得られる血液に含まれるキサントシン一リン酸のイオン強度比が所定の範囲内にあることを確認する工程と、を含む方法。
  30. （ａ１）工程が、液体クロマトグラフィー－マススペクトロメトリー法により、異なる２つの測定条件で血液に含まれるキサントシン一リン酸を測定する工程である、請求項２９に記載の方法。
  31. 液体クロマトグラフィーに用いる移動相のｐＨ値が、７～１１である、請求項３０に記載の方法。
  32. 液体クロマトグラフィーに用いる移動相の塩濃度が、５～３００ｍｍｏｌ／Ｌである、請求項３０または３１に記載の方法。
  33. 液体クロマトグラフィーに用いる移動相が、重炭酸アンモニウム水溶液を含む移動相である、請求項３０から３２のいずれか一項に記載の方法。
  34. 液体クロマトグラフィーが、親水性相互作用クロマトグラフィーである、請求項３０から３３のいずれか一項に記載の方法。
  35. 異なる２つの測定条件が、マススペクトロメトリー法における検出イオンおよび／またはイオン化条件が異なる２つの測定条件である、請求項２９から３４のいずれか一項に記載の方法。
  36. 骨髄異形成症候群の患者に対する５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物の有効投与量を予測するための装置であって、
    （Ａ）（ｉ）５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を投与する前の患者から採取した血液に含まれるキサントシン一リン酸の量と、（ｉｉ）５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を投与した後の患者から採取した血液に含まれるキサントシン一リン酸の量、または５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を投与する前の患者から採取した血液に５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を接触させて得られた血液に含まれるキサントシン一リン酸の量とを測定する手段と、
    （Ｂ）（Ａ）に記載の手段により得られるキサントシン一リン酸の量からキサントシン一リン酸の変動率を求める手段と、
    （Ｃ）（Ｂ）に記載の手段により得られるキサントシン一リン酸の変動率から５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物の有効投与量を予測する手段と、を含む装置。
  37. （Ａ）に記載の手段が、マススペクトロメトリー装置を用いる手段である、請求項３６に記載の装置。
  38. マススペクトロメトリー装置が、液体クロマトグラフィー装置と連結されたマススペクトロメトリー装置である、請求項３７に記載の装置。
  39. 骨髄異形成症候群の患者が、５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であるか否かを予測するための装置であって、
    （Ａ）（ｉ）５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を投与する前の患者から採取した血液に含まれるキサントシン一リン酸の量と、（ｉｉ）５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を投与した後の患者から採取した血液に含まれるキサントシン一リン酸の量、または５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を投与する前の患者から採取した血液に５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を接触させて得られた血液に含まれるキサントシン一リン酸の量とを測定する手段と、
    （Ｂ）（Ａ）に記載の手段により得られるキサントシン一リン酸の量からキサントシン一リン酸の変動率を求める手段と、
    （Ｃ）（Ｂ）に記載の手段により得られるキサントシン一リン酸の変動率から、患者が、５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であるか否かを予測する手段と、を含む装置。
  40. （Ａ）に記載の手段が、マススペクトロメトリー装置を用いる手段である、請求項３９に記載の装置。
  41. マススペクトロメトリー装置が、液体クロマトグラフィー装置と連結されたマススペクトロメトリー装置である、請求項４０に記載の装置。
  42. 　骨髄異形成症候群の患者が、５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であるか否かを予測する工程を含む、
    骨髄異形成症候群の患者の処置に用いるための、有効成分が５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドである骨髄異形成症候群の処置剤であって、
    予測する工程が、
    （ａ）（ｉ）５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を投与する前の患者から採取した血液に含まれるキサントシン一リン酸の量と、（ｉｉ）５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を投与した後の患者から採取した血液に含まれるキサントシン一リン酸の量、または５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を投与する前の患者から採取した血液に５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を接触させて得られた血液に含まれるキサントシン一リン酸の量とを測定する工程と、
    （ｂ）（ａ）工程で得られるキサントシン一リン酸の量からキサントシン一リン酸の変動率を求める工程と、
    （ｃ）（ｂ）工程で得られるキサントシン一リン酸の変動率から、患者が、５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であるか否かを予測する工程と、を含む工程であって、
    患者が、５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し感受性であると予測された患者である、処置剤。
  43. 　骨髄異形成症候群の患者が、５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であるか否かを予測する工程を含む、
    骨髄異形成症候群の患者の処置に用いるための、有効成分が５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドである骨髄異形成症候群の処置方法であって、
    予測する工程が、
    （ａ）（ｉ）５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を投与する前の患者から採取した血液に含まれるキサントシン一リン酸の量と、（ｉｉ）５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を投与した後の患者から採取した血液に含まれるキサントシン一リン酸の量、または５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を投与する前の患者から採取した血液に５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を接触させて得られた血液に含まれるキサントシン一リン酸の量とを測定する工程と、
    （ｂ）（ａ）工程で得られるキサントシン一リン酸の量からキサントシン一リン酸の変動率を求める工程と、
    （ｃ）（ｂ）工程で得られるキサントシン一リン酸の変動率から、患者が、５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し、感受性であるか否かを予測する工程と、を含む工程であって、
    患者が、５－ヒドロキシ－１Ｈ－イミダゾール－４－カルボキサミドもしくはその塩またはその水和物を用いる処置に対し感受性であると予測された患者である、処置方法。
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