WO2015160218A1 - 가교된 폴리포스포릴콜린으로 코팅된 체내 삽입용 보형물 - Google Patents

가교된 폴리포스포릴콜린으로 코팅된 체내 삽입용 보형물 Download PDF

Info

Publication number
WO2015160218A1
WO2015160218A1 PCT/KR2015/003879 KR2015003879W WO2015160218A1 WO 2015160218 A1 WO2015160218 A1 WO 2015160218A1 KR 2015003879 W KR2015003879 W KR 2015003879W WO 2015160218 A1 WO2015160218 A1 WO 2015160218A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
implant
coating
coating composition
implantation
coated
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Ceased
Application number
PCT/KR2015/003879
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
최태현
이연
박지웅
함지연
김희진
김석화
민혜정
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
SNU R&DB Foundation
Original Assignee
SNU R&DB Foundation
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by SNU R&DB Foundation filed Critical SNU R&DB Foundation
Priority to EP15779986.7A priority Critical patent/EP3132810B1/en
Priority to US15/304,780 priority patent/US11129706B2/en
Priority to BR112016024206-8A priority patent/BR112016024206B1/pt
Priority to JP2017506238A priority patent/JP6702939B2/ja
Priority to CN201580030567.6A priority patent/CN106456834B/zh
Publication of WO2015160218A1 publication Critical patent/WO2015160218A1/ko
Anticipated expiration legal-status Critical
Priority to US17/412,124 priority patent/US11925547B2/en
Ceased legal-status Critical Current

Links

Images

Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/28—Materials for coating prostheses
    • A61L27/34—Macromolecular materials
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61F—FILTERS IMPLANTABLE INTO BLOOD VESSELS; PROSTHESES; DEVICES PROVIDING PATENCY TO, OR PREVENTING COLLAPSING OF, TUBULAR STRUCTURES OF THE BODY, e.g. STENTS; ORTHOPAEDIC, NURSING OR CONTRACEPTIVE DEVICES; FOMENTATION; TREATMENT OR PROTECTION OF EYES OR EARS; BANDAGES, DRESSINGS OR ABSORBENT PADS; FIRST-AID KITS
    • A61F2/00—Filters implantable into blood vessels; Prostheses, i.e. artificial substitutes or replacements for parts of the body; Appliances for connecting them with the body; Devices providing patency to, or preventing collapsing of, tubular structures of the body, e.g. stents
    • A61F2/0059—Cosmetic or alloplastic implants
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61F—FILTERS IMPLANTABLE INTO BLOOD VESSELS; PROSTHESES; DEVICES PROVIDING PATENCY TO, OR PREVENTING COLLAPSING OF, TUBULAR STRUCTURES OF THE BODY, e.g. STENTS; ORTHOPAEDIC, NURSING OR CONTRACEPTIVE DEVICES; FOMENTATION; TREATMENT OR PROTECTION OF EYES OR EARS; BANDAGES, DRESSINGS OR ABSORBENT PADS; FIRST-AID KITS
    • A61F2/00—Filters implantable into blood vessels; Prostheses, i.e. artificial substitutes or replacements for parts of the body; Appliances for connecting them with the body; Devices providing patency to, or preventing collapsing of, tubular structures of the body, e.g. stents
    • A61F2/0063—Implantable repair or support meshes, e.g. hernia meshes
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61F—FILTERS IMPLANTABLE INTO BLOOD VESSELS; PROSTHESES; DEVICES PROVIDING PATENCY TO, OR PREVENTING COLLAPSING OF, TUBULAR STRUCTURES OF THE BODY, e.g. STENTS; ORTHOPAEDIC, NURSING OR CONTRACEPTIVE DEVICES; FOMENTATION; TREATMENT OR PROTECTION OF EYES OR EARS; BANDAGES, DRESSINGS OR ABSORBENT PADS; FIRST-AID KITS
    • A61F2/00—Filters implantable into blood vessels; Prostheses, i.e. artificial substitutes or replacements for parts of the body; Appliances for connecting them with the body; Devices providing patency to, or preventing collapsing of, tubular structures of the body, e.g. stents
    • A61F2/02—Prostheses implantable into the body
    • A61F2/12—Mammary prostheses
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/28—Materials for coating prostheses
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/28—Materials for coating prostheses
    • A61L27/30—Inorganic materials
    • A61L27/32—Phosphorus-containing materials, e.g. apatite
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/50—Materials characterised by their function or physical properties, e.g. injectable or lubricating compositions, shape-memory materials, surface modified materials
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B05—SPRAYING OR ATOMISING IN GENERAL; APPLYING FLUENT MATERIALS TO SURFACES, IN GENERAL
    • B05D—PROCESSES FOR APPLYING FLUENT MATERIALS TO SURFACES, IN GENERAL
    • B05D1/00—Processes for applying liquids or other fluent materials
    • B05D1/02—Processes for applying liquids or other fluent materials performed by spraying
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61F—FILTERS IMPLANTABLE INTO BLOOD VESSELS; PROSTHESES; DEVICES PROVIDING PATENCY TO, OR PREVENTING COLLAPSING OF, TUBULAR STRUCTURES OF THE BODY, e.g. STENTS; ORTHOPAEDIC, NURSING OR CONTRACEPTIVE DEVICES; FOMENTATION; TREATMENT OR PROTECTION OF EYES OR EARS; BANDAGES, DRESSINGS OR ABSORBENT PADS; FIRST-AID KITS
    • A61F2/00—Filters implantable into blood vessels; Prostheses, i.e. artificial substitutes or replacements for parts of the body; Appliances for connecting them with the body; Devices providing patency to, or preventing collapsing of, tubular structures of the body, e.g. stents
    • A61F2/0077—Special surfaces of prostheses, e.g. for improving ingrowth
    • A61F2002/0086—Special surfaces of prostheses, e.g. for improving ingrowth for preferentially controlling or promoting the growth of specific types of cells or tissues
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61F—FILTERS IMPLANTABLE INTO BLOOD VESSELS; PROSTHESES; DEVICES PROVIDING PATENCY TO, OR PREVENTING COLLAPSING OF, TUBULAR STRUCTURES OF THE BODY, e.g. STENTS; ORTHOPAEDIC, NURSING OR CONTRACEPTIVE DEVICES; FOMENTATION; TREATMENT OR PROTECTION OF EYES OR EARS; BANDAGES, DRESSINGS OR ABSORBENT PADS; FIRST-AID KITS
    • A61F2/00—Filters implantable into blood vessels; Prostheses, i.e. artificial substitutes or replacements for parts of the body; Appliances for connecting them with the body; Devices providing patency to, or preventing collapsing of, tubular structures of the body, e.g. stents
    • A61F2/0077—Special surfaces of prostheses, e.g. for improving ingrowth
    • A61F2002/009—Special surfaces of prostheses, e.g. for improving ingrowth for hindering or preventing attachment of biological tissue
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L2300/00—Biologically active materials used in bandages, wound dressings, absorbent pads or medical devices
    • A61L2300/20—Biologically active materials used in bandages, wound dressings, absorbent pads or medical devices containing or releasing organic materials
    • A61L2300/216—Biologically active materials used in bandages, wound dressings, absorbent pads or medical devices containing or releasing organic materials with other specific functional groups, e.g. aldehydes, ketones, phenols, quaternary phosphonium groups
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L2300/00—Biologically active materials used in bandages, wound dressings, absorbent pads or medical devices
    • A61L2300/20—Biologically active materials used in bandages, wound dressings, absorbent pads or medical devices containing or releasing organic materials
    • A61L2300/22—Lipids, fatty acids, e.g. prostaglandins, oils, fats, waxes
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L2400/00—Materials characterised by their function or physical properties
    • A61L2400/18—Modification of implant surfaces in order to improve biocompatibility, cell growth, fixation of biomolecules, e.g. plasma treatment
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L2420/00—Materials or methods for coatings medical devices
    • A61L2420/02—Methods for coating medical devices
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L2430/00—Materials or treatment for tissue regeneration
    • A61L2430/04—Materials or treatment for tissue regeneration for mammary reconstruction
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C08—ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08F—MACROMOLECULAR COMPOUNDS OBTAINED BY REACTIONS ONLY INVOLVING CARBON-TO-CARBON UNSATURATED BONDS
    • C08F2/00—Processes of polymerisation
    • C08F2/46—Polymerisation initiated by wave energy or particle radiation
    • C08F2/48—Polymerisation initiated by wave energy or particle radiation by ultraviolet or visible light

Definitions

  • the present invention provides a implant coating composition for implantation including a photoinitiator, a crosslinking agent and a phosphorylcholine (PC) monomer having an acrylate group, a method for coating an implant for implantation using the coating composition, and a crosslinked polyphosphorylcholine It relates to a coated molding prosthesis.
  • a implant coating composition for implantation including a photoinitiator, a crosslinking agent and a phosphorylcholine (PC) monomer having an acrylate group
  • PC phosphorylcholine
  • Breast augmentation accounts for about 20% of the world's plastic surgeries, and their share increases even more when reconstructive surgery is performed, such as in breast cancer patients.
  • the surface of breast implant implants which are widely used, is made of polydimethylsiloxane (PDMS) material, and about 17.5% of patients undergoing breast augmentation / reconstruction are abnormal fibers around the implant because of chemical properties different from the actual breast tissue.
  • PDMS polydimethylsiloxane
  • any implant when any implant is inserted into the living body, it forms a capsule due to the defense mechanism that separates the foreign body of the living body from the tissue, and excessive film formation is caused by the body reaction.
  • the collagen-fiber capsule thickens causing pain and deformation of the implant.
  • Many externally implanted artificial implants are recognized as foreign substances in vivo, whereby various proteins in body fluids are adsorbed, followed by thrombus formation, immune response, tissue modification, necrosis and / or degeneration through various biochemical processes. Therefore, coating the surface of the implant with a biocompatible material to prevent it from being recognized as an external material can be said to be the most important factor in completing a biocompatible implant for implants including a reduction in film construction.
  • Polydimethylsiloxane (PDMS) -based materials which are used as representative surface materials of implants for implantation, have high oxygen permeability, excellent mechanical properties, optical clarity, self-sealing, convenient processability and chemical stability. According to ophthalmic biomaterials. It is applied to various medical devices such as microfluidic devices, artificial lungs and artificial finger joints. On the other hand, the inherent hydrophobicity and bioadhesion tendency of PDMS are the biggest limitations in utilizing the PDMS as a biomaterial. For example, nonspecific protein adsorption to such substances is recognized as the first event that causes subsequent events including thrombus formation, foreign body reactions, bacterial infections and other undesirable reactions.
  • biocompatibility hemocompatibility such as prevention of thrombus formation, and the effects of protein or cell adsorption, etc., and thus has been studied as a surface material of drug delivery, tissue engineering and various other biological materials. Therefore, polymethaacryloyloxyethyl phosphorylcholine (PMPC) has already been used as a coating for bioimplants such as drug-eluting stents, and has shown excellent biocompatibility.
  • PMPC polymethaacryloyloxyethyl phosphorylcholine
  • the present inventors have diligently researched to produce silicone implants in which foreign body reactions caused by artificial implants inserted in vivo are suppressed by using a polymer that mimics a biological membrane, and thus, phosphatidyl choline (PC), which is a main component of the biological membrane phospholipid, is obtained.
  • PC phosphatidyl choline
  • the biocompatibility can be suppressed by insertion in the body, and the crosslinking can be suppressed. It was confirmed that the coating is not easily peeled off even by a strong stimulus to improve the strength and completed the present invention.
  • One object of the present invention is to provide an implant coating composition for incorporation comprising a photoinitiator, a crosslinking agent and a phosphorylcholine (PC) monomer having an acrylate group.
  • a photoinitiator e.g., a photoinitiator, a crosslinking agent and a phosphorylcholine (PC) monomer having an acrylate group.
  • PC phosphorylcholine
  • Another object of the present invention is to add the coating composition to the implant for implantation; And irradiating UV rays to the implant for implantation into the body to which the coating composition is applied.
  • Another object of the present invention is to provide an implant for implantation that is coated with crosslinked polyphosphorylcholine.
  • Intrabody implants coated with polyphosphorylcholine crosslinked by a simple method of adding a coating composition comprising a photoinitiator, a crosslinking agent, and a phosphorylcholine (PC) monomer having an acrylate group and irradiating with ultraviolet rays were prepared.
  • the crosslinked polyphosphorylcholine coatings can be prepared and not only impart hydrophilicity to the surface, but also significantly reduce the adhesion of fibroblasts, which can cause side effects such as protein and encapsulation.
  • it has a coating strength that does not peel off due to the stimulus, so it does not peel off even after violent movement after insertion into the body, and thus, it can be usefully used in the preparation of implants for implants having reduced side effects, such as breast implant implants.
  • FIG. 1 is a view schematically showing a coating method (crosslinked) and a conventional coating method (Normal) using crosslinking according to the present invention.
  • Figure 2 is a view showing the water contact angle of the surface and non-coated surface (Noncoated) prepared by the coating method and the conventional coating method using the crosslinking according to the present invention.
  • FIG 3 is a view showing the surface element analysis results by XPS of the surface and the uncoated surface prepared by the coating method and the conventional coating method using the crosslinking according to the present invention.
  • FIG. 4 is a view showing a coating method using crosslinking according to the present invention for BSA adsorption on an uncoated surface and a decrease in BSA adsorption rate on surfaces prepared by conventional coating methods.
  • FIG. 5 is a diagram showing a coating method using crosslinking according to the present invention for BPF adsorption on an uncoated surface and a decrease in BPF adsorption rate on surfaces prepared by conventional coating methods.
  • Figure 6 is a diagram showing the cell adsorption rate on the surface prepared by the coating method and the conventional coating method using a crosslinking method according to the present invention for the adsorption of cells (NIH-3T3) on the uncoated surface.
  • FIG. 7 is a view showing the thickness of the coating formed on the implant inserted into the rat observed under a microscope by H & E staining.
  • FIG. 8 is a diagram showing the results of measuring cellularity and vascularity after 4 and 12 weeks in the insert inserting the implant.
  • FIG. 9 is a diagram showing the expression levels of TGF- ⁇ , ⁇ -SMA (smooth muscle actin), myeloperoxidase and CD34 measured by immunohistochemistry analysis in the rat insert.
  • the present invention provides a implant coating composition for incorporation comprising a phosphorylcholine (PC) monomer having a photoinitiator, a crosslinking agent and an acrylate group.
  • PC phosphorylcholine
  • the present invention focuses on the formation of a linear phosphorylcholine polymer by the polymerization of phosphorylcholine having an acrylate group by radicals formed by irradiating ultraviolet rays to a photoinitiator, and further adding a crosslinking agent to the linear phosphorylcholine polymer.
  • a crosslinking agent to the linear phosphorylcholine polymer.
  • it is characterized by forming a polymer film of the cross-linked with each other.
  • the mesh-like polymer film crosslinked by the crosslinking agent is characterized in that the coating strength is improved and is not damaged even by a strong stimulus such as ultrasonication.
  • prosthesis for implantation is also referred to simply as “prosthesis” and is a structure inserted into the body for reconstruction or replacement of damaged or defective biological tissue, for use in cosmetic surgery, or for treatment. It may be in the form of a solid form or a closed bag form with fluidity.
  • It may be a material containing a functional group capable of providing a radical capable of forming a bond with a terminal including a C ⁇ C bond of the acrylate by a photoinitiator so as to be covalently bonded.
  • any material used in the implant for implants known in the art can be used without limitation.
  • the outer surface material of the implant for implantation may be polydimethylsiloxane (PDMS), hydroxyapatite (HA), polylactic acid (PLA), polyglycolic acid (PGA) , Polytetrafluoroethylene (PTFE), polyethylene terephthalate (PET), polypropylene, polyamides, polyacetal, polyester ) Or polymethyl methacrylate (polymethyl methacrylate) material, but is not limited thereto.
  • PDMS polydimethylsiloxane
  • HA hydroxyapatite
  • PLA polylactic acid
  • PGA polyglycolic acid
  • PTFE polytetrafluoroethylene
  • PET polyethylene terephthalate
  • polypropylene polyamides
  • polyacetal polyacetal
  • polyester polymethyl methacrylate
  • polymethyl methacrylate polymethyl methacrylate
  • the phosphorylcholine having an acrylate group may be methacryloyloxyethylphosphorylcholine (MPC) or acryloyloxyethylphosphorylcholine (APC), but is not limited thereto. It is not limited to the specific chemical formula, and includes, without limitation, any monomer of acrylate series including phosphorylcholine or methacrylate including amphoteric ions including phosphorus and nitrogen.
  • photoinitiator of the present invention is a material capable of receiving light to form radicals. Therefore, by irradiating light to the photoinitiator to form a radical may cause a radical polymerization reaction (radical polymerization), wherein the light may preferably be ultraviolet light.
  • the radical polymerization reaction is a polymerization method for forming a polymer by continuous addition of free radicals, and the radicals may be generally formed through various mechanisms by separate initiator molecules.
  • the radicals formed form a stable single bond using one pi bond electron from the polymer monomer including the double bond, and the double bond is converted into a single bond and is added to another carbon which does not form a bond with the radical.
  • the radicals formed may be grown while repeating the above-described process.
  • the photoinitiator benzophenone, benzoyl peroxide, azobisisobutyronitrile (IBN) or 2,2-dimethoxy-2-phenylacetophenone (2,2-dimethoxy-2- phenylacetophenone (DMPA), but is not limited thereto.
  • the crosslinking agent is dipentaerythritol pentaacrylate, dipentaerythritol hexaacrylate, ethylene glycol diacrylate, ethylene glycol dimethacrylate, allyl methacrylate, acetoacetoxyethyl methacrylate, isocyanate It may be selected from the group consisting of nattoethyl methacrylate, isobutyl methacrylate, normal butyl methacrylate and combinations thereof, but is not limited thereto.
  • the coating composition according to the present invention may include, but is not limited to, the photoinitiator in an amount of 0.01 to 0.2 mol% based on the phosphorylcholine monomer.
  • the coating composition according to the present invention may include, but is not limited to, the crosslinking agent in an amount of 0.01 to 2.0 mol% based on the phosphorylcholine monomer.
  • the amount of the photoinitiator and / or crosslinking agent is lower than the lower limit of the above range, that is, less than 0.01 mol%, the amount of polymer generated on the surface, for example, the number of polymer strands and / or the length (molecular weight) of each polymer strand is remarkable.
  • the MPC may not be able to cover the surface of the implant evenly enough or crosslinking may not be carried out enough to exhibit the desired physical properties or may not be obtained at the desired coating strength and may be peeled off during the cleaning process.
  • the amount of the photoinitiator and / or crosslinking agent is higher than the upper limit of the above range, that is, the content of the photoinitiator exceeds 0.2 mol% or the crosslinker content exceeds 2.0 mol%, the elasticity of the implant by the excessive crosslinking It may not be hardened and may be excessively hardened, resulting in unnecessary waste of the sample.
  • the present invention provides a method for preparing an implant for implantation, comprising the steps of: applying a coating composition according to the invention to an implant for implantation; And it provides a method of coating the implant for implantation, including the step of irradiating ultraviolet rays to the implant for implantation to which the coating composition is added.
  • the coating composition may be irradiated with ultraviolet rays after applying the coating composition so as to evenly contact the surface of the implant so that the surface of the implant for implantation may be evenly coated.
  • the present invention provides for implantation implants coated with crosslinked polyphosphorylcholine.
  • the definition and characteristics of the implant for implantation are as described above.
  • the crosslinking reaction can be carried out using any method known in the art without limitation.
  • the crosslinking reaction may be performed by irradiation with ultraviolet rays.
  • the implant for implantation may be used for reconstruction or replacement of damaged or defective biological tissue, for cosmetic use, or for treatment, for example for breast enlargement or reconstruction, but is not limited thereto. Do not.
  • breast implant prostheses coated with the crosslinked polyphosphorylcholine according to the present invention can significantly reduce the adsorption of proteins and fibroblasts, thereby lowering the possibility of side effects such as spherical contraction, and have a strong coating strength. Since the coating does not peel off even on the magnetic poles, it is stable even in violent movement and there is no concern about deterioration due to peeling of the coating over time.
  • EGDMA ethylene glycol dimethacrylate
  • the coated implant was then washed twice with ultrasound for 10 minutes prior to use in the assay to remove excess reactants.
  • the washing method using the ultrasonic wave is a slightly more radical method than the washing method used in general, and used this rather powerful washing method to mimic the peeling of the coating due to movement after implantation in vivo.
  • the silicone implant is coated in the same manner as in Example 1 except that the initiator solution and the polymer unit solution do not include an initiator. It was.
  • the composition of each solution is shown in Table 1 below. Conditions for the radical reaction and washing method are also shown in Table 1.
  • the forward angle is a hydrophobicity of the surface
  • the backward angle is a numerical value representing the surface hydrophilicity relatively well, in the present invention, since the amount of change of the backward angle is larger than the forward angle, information about the hydrophilicity of the surface through the change of the backward angle Obtained.
  • the acquired image and the water contact angle determined therefrom are shown in FIG. 2.
  • the uncoated PDMS used as the negative control group had a high hydrophobicity, and thus exhibited a high water contact angle at both the forward and backward angles, but was significantly decreased at the surface coated with PMPC and coated with crosslinked PMPC. On one surface it was further reduced. That is, it is confirmed that the hydrophilicity is obtained by PMPC coating, and more crosslinked.
  • a BCA assay was performed to quantify the amount of protein adsorbed on the surface.
  • a Thermo Scientific BCA kit was used, and an assay solution was prepared by mixing Sample A, Sample B, and Sample C included in the kit in a volume ratio of 25: 24: 1.
  • Each of the washed PDMS was immersed in fresh DPBS buffer, incubated at 60 ° C. for 1 hour by adding the same amount of assay solution as the buffer, and then absorbance at 570 nm was measured to determine the relative amount of protein adsorbed on the surface. The results are shown in FIGS. 4 and 5, respectively.
  • the adsorption of BSA to the PDMS surface showed a 24% reduction in PMPC coated surfaces and a 33% reduction in crosslinked PMPC surfaces compared to uncoated surfaces.
  • Adsorption of BPF on PDMS surfaces showed a 45% reduction in PMPC coated surfaces and a 62% reduction in crosslinked PMPC surfaces compared to uncoated surfaces. That is, the adsorption was reduced at the surface coated with PMPC compared to the surface uncoated for both BSA and BPF, and in particular, a more significant decrease in protein adsorption was observed at the surface coated with crosslinked PMPC.
  • the crosslinked or non-crosslinked prepared through Example 1 (Crosslinked) and Comparative Example 1 (Normal)
  • the degree of cell adsorption was confirmed by culturing fibroblast NIH 3T3 cells in PDMS coated with PMPC.
  • the NIH-3T3 cells were cultured in DMEM medium containing 10% FBS at 37 ° C. containing 5% carbon dioxide.
  • 30,000 cells per 1.5 cm diameter PDMS were dispensed and incubated for 45 hours at 37 ° C. containing 5% carbon dioxide, followed by a light wash with fresh DMEM medium (containing 10% FBS) followed by a CCK assay.
  • CCK solution was made from Dojindo Inc., each washed PDMS in fresh DMEM medium (containing 10% FBS) and added 5% carbon dioxide solution in the amount corresponding to 10% of the volume of the medium, containing 5% carbon dioxide. Incubated at 37 ° C. for 4 hours and absorbance at 450 nm to determine the relative amount of cells adsorbed on the surface. The results are shown in FIG. 6.
  • the PDMS coated with the crosslinked PMPC according to the present invention can not only significantly reduce side effects such as film formation due to overproliferation of fibroblasts after molding, but also as described in Example 1 above. Since the coating state can be maintained, it can be expected that the side effects due to peeling of the coating can be reduced by maintaining the coating state even after intense movement or time flow after molding.
  • the surface of the PMMS coated PDMS block and the untreated surface PDMS block were inserted into the left and right sides of Sprague-Dawley rats, respectively, and grown for 1 month and 3 months, and then observed in vivo.
  • the thickness of the film formed surrounding the surface of the implant was measured.
  • the thickness of the film was observed under a microscope by H & E staining, and the results are shown in FIG. 7. As shown in FIG. 7, the thickness of the film formed on the surface of the implant inserted in the body was thinner at 1 month and 3 months when the PDMS-coated PDMS block was inserted.
  • the reduction of the film formation on the implant coated with PMPC indicates that the foreign body reaction was reduced by the coating.
  • FIG. 8 cellularity and vascularity were measured and shown in FIG. 8, and TGF- ⁇ , ⁇ -SMA (smooth muscle actin), and myeloperoxidase through immunohistochemistry analysis. ) And CD34 expression levels are measured and shown in FIG. 9.

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Oral & Maxillofacial Surgery (AREA)
  • Transplantation (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Dermatology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Vascular Medicine (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Cardiology (AREA)
  • Heart & Thoracic Surgery (AREA)
  • Inorganic Chemistry (AREA)
  • Materials For Medical Uses (AREA)
  • Paints Or Removers (AREA)
  • Prostheses (AREA)
  • Polymerisation Methods In General (AREA)
  • Addition Polymer Or Copolymer, Post-Treatments, Or Chemical Modifications (AREA)

Abstract

본 발명은 광개시제, 가교제 및 아크릴레이트기를 갖는 포스포릴콜린(phosphorylcholine; PC) 단량체를 포함하는 체내 삽입용 보형물 코팅 조성물, 상기 코팅 조성물을 이용하는 체내 삽입용 보형물의 코팅방법 및 가교된 폴리포스포릴콜린으로 코팅된 성형용 보형물에 관한 것이다. 본 발명에 따른 광개시제, 가교제 및 아크릴레이트기를 갖는 포스포릴콜린(phosphorylcholine; PC) 단량체를 포함하는 코팅 조성물을 첨가하고 자외선을 조사하는 간단한 방법으로 가교된 폴리포스포릴콜린으로 코팅된 체내 삽입용 보형물을 제조할 수 있으며, 상기 가교된 폴리포스포릴콜린 코팅은 표면에 친수성을 부여할 뿐만 아니라 단백질 및 피막구축과 같은 부작용을 유발할 수 있는 섬유아세포의 접착을 현저히 감소시킬 수 있다. 또한 자극에도 벗겨지지 않는 코팅강도를 가져 체내 삽입 후 격렬한 움직임 등에도 벗겨지지 않으므로, 유방성형용 보형물과 같은, 부작용이 감소된 체내 삽입용 보형물의 제조에 유용하게 사용될 수 있다.

Description

가교된 폴리포스포릴콜린으로 코팅된 체내 삽입용 보형물
본 발명은 광개시제, 가교제 및 아크릴레이트기를 갖는 포스포릴콜린(phosphorylcholine; PC) 단량체를 포함하는 체내 삽입용 보형물 코팅 조성물, 상기 코팅 조성물을 이용하는 체내 삽입용 보형물의 코팅방법 및 가교된 폴리포스포릴콜린으로 코팅된 성형용 보형물에 관한 것이다.
의술의 발달과 함께 조직이나 장기의 이식이 가능해졌으나, 여전히 공급은 부족하여 이를 대체할 수 있는 인공 조직이나 장기를 개발하는 것이 그 대안으로 대두되고 있다. 따라서, 생체 내 이식 가능한 인공 조직 및 장기를 제공하기 위한 다양한 생체 재료들이 개발 및 이용되고 있다. 이러한 생체 재료들은 실제 생체 조직 또는 장기와 유사한 물리적 특성(강도, 점도, 탄성도 등)을 가져야 함은 물론 가격 또한 안정화되어 많은 환자들이 이용할 수 있는 것이 바람직하다. 이러한 생체 재료를 탐색하기 위한 다각적인 노력에도 불구하고 활용 가능한 생체적합성(biocompatibility) 재료는 여전히 부족한 현실이며 현재 상용화되고 있는 재료들도 많은 경우 부작용을 수반하기도 한다. 유방 확대/재건술에 사용되는 성형보형물이 체내에 삽입되었을 때 발생하는 구형구축이 대표적인 예이다. 유방 확대술은 전 세계 성형수술의 약 20%를 차지하며 유방암 환자에서와 같이 조직제거 후 실시하는 재건술을 포함할 경우 그 점유율은 더욱 증가한다. 널리 사용되고 있는 유방 성형용 보형물의 표면은 폴리디메틸실록산(polydimethylsiloxane; PDMS)이라는 재료로 이루어진 것으로, 실제 유방 조직과는 다른 화학적 성질 때문에 유방 확대/재건술을 받은 환자의 약 17.5%는 보형물 주변을 비정상적인 섬유 조직이 둘러싸는 구형 구축(또는 피막 구축; capsular contracture)이라는 부작용을 경험한다. 이는 환자들에게 통증을 야기시킬 뿐만 아니라 심한 경우 수술로 제거해야 하는 정신적/경제적 손실을 안겨준다. 따라서, 이를 막기 위한 다양한 방법이 개발되고 있지만, 성공적인 가능성을 보여준 사례는 극히 드물다. 이와 같은 부작용은 유방 성형시 뿐만 아니라 이외의 대부분의 체내에 보형물을 삽입하는 수술 후 가장 흔하게 발생할 수 있는 심각한 합병증이다. 전술한 바와 같이 이와 같은 부작용 발생시에는 외과적 수술에 의해 제거하는 이외에는 특별한 치료법이 없는 실정이다. 또한, 수술로서 제거하는 방법을 선택한다 하더라도 조직세포가 보형물의 표면에 심하게 흡착된 경우에는 완전한 제거 또한 용이하지 않다. 따라서, 수술로 제거한다 하더라도 심각한 후유증을 수반할 수 있어 환자의 삶의 질(quality of life)을 저하시키고 치료 및 관리 비용의 증가로 막대한 의료비를 지출하게 되어 사회 경제적 손실(socioeconomic loss)을 가져올 수 있다.
상기한 바와 같이 어떠한 보형물이라도 생체 내부에 삽입되게 되면, 생체의 외부 물질(foreign body)을 조직으로부터 분리하려는 방어기전으로 인해 피막(capsule)을 형성하게 되며, 과도한 피막구축은 신체 반응에 의해 콜라겐-섬유 피막(collagen-fiber capsule)이 비후되어 통증을 유발하고 보형물의 변형을 초래한다. 외부에서 삽입된 많은 인공 보형물은 생체 내에서 외부 물질로 인식되어 체액 내의 각종 단백질이 흡착되고, 이어지는 각종 생화학적 과정을 통해 혈전 형성, 면역 반응, 조직 변형, 괴사 및/또는 퇴행을 수반한다. 따라서 보형물의 표면을 생체적합성 물질로 코팅하여 외부 물질으로 인식되는 것을 예방하는 것이 피막 구축 감소를 포함한 생체적합성 체내 삽입용 보형물을 완성하는 데 가장 중요한 요소라고 할 수 있다. 현재로서 성형용 보형물의 생체 내 과도한 이물반응으로 인해 발생하는 피막 구축을 줄이기 위하여 삽입위치를 변화시키거나, 항생제로 세척하거나, 스테로이드를 사용거나, 보형물 표면을 질감(textured) 가공하는 등의 다양한 시도가 이루어지고 있으나, 아직까지 보형물을 이물로 인식하는 기전을 근본적으로 막을 수 있는 방법은 없는 실정이다.
체내 삽입용 보형물의 대표적인 표면 재질로 사용되고 있는 폴리디메틸실록산(polydimethylsiloxane; PDMS)-기반 물질은 높은 산소투과도, 우수한 기계적 물성, 광학적 투명도, 자기-봉합능(self-sealing), 편리한 가공성 및 화학적 안정성에 따라 안과 생물재료. 미세유체 기기, 인공 폐 및 인공 손가락 관절과 같은 다양한 의료기기에 적용되고 있다. 한편 PDMS의 내재적 소수성 및 생체부착 경향은 상기 PDMS를 생물재료로 활용하는데 있어서 가장 큰 제약이 된다. 예컨대, 상기 물질에 대한 비특이적 단백질 흡착은 혈전형성, 이물반응, 박테리아 감염 및 이외의 바람직하지 않은 반응을 포함하는 후속 이벤트를 유발하는 첫번째 사건으로 인식되고 있다. 미세유체 시스템의 초민감성 분석에 있어서 PDMS 상의 생물분자의 흡착은 검출과정 동안 신호 대 잡음 비를 현저히 감소시킨다. 인공 폐에 있어서는 넓은 혈액 접촉면적 상에서 혈액 활성화가 중요한 문제이다. 따라서, 빠르고 쉽게 PDMS의 표면 특성을 개질할 수 있는 방법이 요구된다.
현재 고분자 코팅 기술 자체는 빠르게 발전하고 있으나 아직까지 생체 보형물에 적용된 예는 매우 드물다. 약물 용출형 스텐트(stent) 등에서 금속-고분자 코팅을 시도한 예가 보고되었으나, 아직까지는 스프레이 코팅 등의 수준에 머물러 있다. 생체 모방형 합성 인지질 중합체(biomimetic synthetic phospholipid polymer)는 최근 다양한 분야에서 연구되고 있다. 특히 MPC(2-methaacryloyloxyethyl phosphorylcholine)의 중합체인 PMPC(poly(methacryloyloxyethyl phosphorylcholine))은 인체의 생체막을 구성하는 인지질 중 하나인 포스파티딜콜린(phosphatidyl choline)의 머리(head) 부분과 유사한 구조를 가지고 있어, 생체적합성(biocompatibility), 혈전형성 방지 등의 혈액학적 적합성(hemocompatibility) 및 단백질 또는 세포 흡착 방지 등의 효과를 나타내며, 이로 인해 약물전달, 조직공학 및 그 외 다양한 생체물질의 표면 물질로서 연구되고 있다. 따라서, PMPC(polymethaacryloyloxyethyl phosphorylcholine)는 약물용출형 스텐트(stent)와 같은 생물이식체(bioimplant)에 이미 코팅제로 사용되고 있으며, 뛰어난 생체적합성을 보여주었다.
본 발명자들은 생체막을 모방한 고분자를 이용하여 생체 내 삽입되는 인공 보형물에 의해 유발되는 이물반응이 억제된 실리콘 보형물을 제조하기 위하여 예의 연구노력한 결과, 생체막 인지질의 주성분인 포스파티딜콜린(phosphatidyl choline; PC)을 모방한 고분자로 코팅하되 가교제를 추가로 포함하여 코팅되는 포스파티딜콜린 고분자 사슬을 서로 가교결합시켜 실리콘 보형물 표면을 코팅하였을 때 체내 삽입시 생체 적합성을 나타내어 이물반응을 억제할 수 있을 뿐만 아니라 상기 가교결합은 코팅강도를 향상시켜 강한 자극에도 코팅이 쉽게 벗겨지지 않음을 확인하고 본 발명을 완성하였다.
본 발명의 하나의 목적은 광개시제, 가교제 및 아크릴레이트기를 갖는 포스포릴콜린(phosphorylcholine; PC) 단량체를 포함하는 체내 삽입용 보형물 코팅 조성물을 제공하는 것이다.
본 발명의 다른 목적은 체내 삽입용 보형물에 상기 코팅 조성물을 가하는 단계; 및 상기 코팅 조성물을 가한 체내 삽입용 보형물에 자외선을 조사하는 단계를 포함하는, 체내 삽입용 보형물의 코팅방법을 제공하는 것이다.
본 발명의 또 다른 목적은 가교된 폴리포스포릴콜린으로 코팅된 체내 삽입용 보형물을 제공하는 것이다.
본 발명에 따른 광개시제, 가교제 및 아크릴레이트기를 갖는 포스포릴콜린(phosphorylcholine; PC) 단량체를 포함하는 코팅 조성물을 첨가하고 자외선을 조사하는 간단한 방법으로 가교된 폴리포스포릴콜린으로 코팅된 체내 삽입용 보형물을 제조할 수 있으며, 상기 가교된 폴리포스포릴콜린 코팅은 표면에 친수성을 부여할 뿐만 아니라 단백질 및 피막구축과 같은 부작용을 유발할 수 있는 섬유아세포의 접착을 현저히 감소시킬 수 있다. 또한 자극에도 벗겨지지 않는 코팅강도를 가져 체내 삽입 후 격렬한 움직임 등에도 벗겨지지 않으므로, 유방성형용 보형물과 같은, 부작용이 감소된 체내 삽입용 보형물의 제조에 유용하게 사용될 수 있다.
도 1은 본 발명에 따른 가교를 이용한 코팅방법(Crosslinked) 및 기존의 코팅방법(Normal) 을 개략적으로 나타낸 도이다.
도 2는 본 발명에 따른 가교를 이용한 코팅방법 및 기존의 코팅방법에 의해 제조된 표면 및 코팅되지 않은 표면(Noncoated)의 물 접촉각을 나타낸 도이다.
도 3은 본 발명에 따른 가교를 이용한 코팅방법 및 기존의 코팅방법에 의해 제조된 표면 및 코팅되지 않은 표면의 XPS에 의한 표면원소분석 결과를 나타낸 도이다.
도 4는 코팅되지 않은 표면 상에서의 BSA 흡착에 대한 본 발명에 따른 가교를 이용한 코팅방법 및 기존의 코팅방법에 의해 제조된 표면 상에서의 BSA 흡착률 감소를 나타낸 도이다.
도 5는 코팅되지 않은 표면 상에서의 BPF 흡착에 대한 본 발명에 따른 가교를 이용한 코팅방법 및 기존의 코팅방법에 의해 제조된 표면 상에서의 BPF 흡착률 감소를 나타낸 도이다.
도 6은 코팅되지 않은 표면 상에서의 세포(NIH-3T3) 흡착에 대한 본 발명에 따른 가교를 이용한 코팅방법 및 기존의 코팅방법에 의해 제조된 표면 상에서의 세포 흡착률 감소를 나타낸 도이다.
도 7은 H&E 염색하여 현미경으로 관찰한 랫트에 삽입된 보형물 상에 형성된 피막의 두께를 나타낸 도이다.
도 8은 보형물을 삽입한 렛트에서 4주 및 12주 후 세포질(cellularity) 및 혈관질(vascularity)을 측정한 결과를 나타낸 도이다.
도 9는 보형물을 삽입한 렛트에서 면역조직화학(immunohistochemistry) 분석을 통해 측정한 TGF-β, α-SMA(smooth muscle actin), 미엘로페록시다제(myeloperoxidase) 및 CD34 발현정도를 나타낸 도이다.
상기 목적을 달성하기 위한 하나의 양태로서, 본 발명은 광개시제, 가교제 및 아크릴레이트기를 갖는 포스포릴콜린(phosphorylcholine; PC) 단량체를 포함하는 체내 삽입용 보형물 코팅 조성물을 제공한다.
본 발명은 종래 광개시제에 자외선을 조사하여 형성되는 라디칼에 의한 아크릴레이트기를 갖는 포스포릴콜린의 중합 반응이 선형 포스포릴콜린 고분자를 형성하는 것이 착안하여 이에 가교제를 추가로 첨가하여 상기 선형 포스포릴콜린 고분자를 형성하는 대신에 서로 교차결합된 그물형의 고분자막을 형성하는 것이 특징이다. 상기 가교제에 의해 교차결합된 그물형 고분자막은 코팅강도가 향상되어 초음파 처리와 같은 강한 자극에도 손상되지 않는 것이 특징이다. 상기 선형 포스포릴콜린 고분자로 코팅한 보형물에서도 단백질 및/또는 세포의 부착성이 감소되어 유방성형 환자에서 발생할 수 있는 부작용인 구형구축을 감소시킬 수 있음이 보고된 바 있으나, 시간이 지남에 따라 신체의 움직임 및/또는 생체 내에서 물리적 자극(압력이나 뒤틀림)을 지속적으로 받게 되므로 코팅이 벗겨질 수 있고 이러한 경우 상기 코팅한 보형물에 의한 부작용 감소 효과는 보장할 수 없다. 따라서, 다소 강한 자극에도 손상되지 않는 강도를 갖는 코팅을 필요로 한다. 따라서, 이를 해결하기 위하여 가교제를 추가로 포함하는 조성물을 이용하여 그물형 고분자를 형성하도록하여 체내 삽입용 보형물을 코팅함으로써 종래 선형 고분자에 비해 강도가 증가된 코팅을 제공하는 것이 본 발명의 특징이다.
본 발명의 용어, "체내 삽입용 보형물"은 간략히 "보형물"이라고도 하며, 손상 또는 결손된 생체 조직의 재건이나 대체, 미용을 위한 성형의 용도, 또는 치료를 위해 신체 내에 삽입하는 구조물로서, 일례로 고체 형태의 구조물 또는 유동성을 가진 밀폐된 주머니 형태의 구조물 등의 형태일 수 있다.
본 발명의 코팅 조성물을 이용하여 코팅될 수 있는 체내 삽입용 보형물은 코팅 조성물의 일 성분인 아크릴레이트기를 갖는 포스포릴콜린이 아크릴레이트기의 C=C 결합을 포함하는 말단을 통해 보형물의 외부 표면에 공유결합할 수 있도록, 광개시제에 의해 상기 아크릴레이트의 C=C 결합을 포함하는 말단과 결합을 형성할 수 있는 라디칼을 제공할 수 있는 작용기를 포함하는 물질일 수 있다. 금속이나 친수성인 에틸렌계 재료를 제외한 당업계에 공지된 체내 삽입용 보형물에 사용되는 재료를 제한없이 사용할 수 있다. 예컨대, 상기 체내 삽입용 보형물의 외부 표면 재질은 폴리디메틸실록산계(polydimethylsiloxane; PDMS), 하이드록시아파타이트(hydroxyapatite; HA), 폴리락트산계(polylactic acid; PLA), 폴리글리콜산계(polyglycolic acid; PGA), 폴리테트라플루오로에틸렌계(polytetrafluoroethylene; PTFE), 폴리에틸렌테레프탈레이트계(polyethylene terephthalate; PET), 폴리프로필렌계(polypropylene), 폴리아미드계(polyamides), 폴리아세탈계(polyacetal), 폴리에스테르계(polyester) 또는 폴리메틸메타크릴레이트계(polymethyl metacrylate) 소재를 포함할 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
바람직하게, 상기 아크릴레이트기를 갖는 포스포릴콜린은 메타크릴로일옥시에틸포스포릴콜린(MPC) 또는 아크릴로일옥시에틸포스포릴콜린(APC)일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다. 이는 구체적인 화학식에 한정되는 것은 아니며, 어떠한 형태로 연결되던 포스포릴콜린 또는 인과 질소를 포함하는 양쪽성 이온을 포함하는 메타크릴레이트를 포함한 아크릴레이트 계열의 단량체를 제한없이 포함한다.
본 발명의 용어 "광개시제(photoinitiator)"는 빛을 받아 라디칼을 형성할 수 있는 물질이다. 따라서, 상기 광개시제에 빛을 조사하여 라디칼을 형성함으로써 라디칼 중합화 반응(radical polymerization)을 유발할 수 있으며, 이때, 빛은 바람직하게 자외선일 수 있다. 상기 라디칼 중합화 반응은 자유 라디칼의 연속적인 첨가로 고분자를 형성하는 중합방법으로, 상기 라디칼은 일반적으로 별도의 개시제 분자에 의해 다양한 기전을 통해 형성될 수 있다.
일단 반응이 개시되면, 형성된 라디칼은 이중결합을 포함하는 고분자 단량체로부터 파이결합 전자 하나를 이용하여 안정한 단일결합을 형성하여 상기 이중결합은 단일결합으로 전환되면서 라디칼과 결합을 형성하지 않은 다른 탄소에 여분의 전자를 포함하는 새로운 라디칼을 형성한다. 상기 형성된 새로운 라디칼을 통해 전술한 과정을 반복하면서 고분자 사슬을 성장시킬 수 있다.
바람직하게, 상기 광개시제는 벤조페논, 벤조일퍼옥사이드(benzoyl peroxide), 아조비스이소부티로니트릴(azobisisobutyronitrile; AIBN) 또는 2,2-디메톡시-2-페닐아세토페논(2,2-dimethoxy-2-phenylacetophenone; DMPA)일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
바람직하게, 상기 가교제는 디펜타에리트리톨 펜타아크릴레이트, 디펜타에리트리톨 헥사아크릴레이트, 에틸렌글리콜 디아크릴레이트, 에틸렌글리콜 디메타크릴레이트, 알릴 메타크릴레이트, 아세토아세톡시에틸 메타크릴레이트, 이소시아나토에틸 메타크릴레이트, 이소부틸메타크릴레이트, 노르말부틸메타크릴레이트 및 이들의 조합으로 구성된 군으로부터 선택되는 것일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
바람직하게, 본 발명에 따른 코팅 조성물은 상기 광개시제를 포스포릴콜린 단량체에 대해 0.01 내지 0.2 몰%로 포함할 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
바람직하게, 본 발명에 따른 코팅 조성물은 상기 가교제를 포스포릴콜린 단량체에 대해 0.01 내지 2.0 몰%로 포함할 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
상기 광개시제 및/또는 가교제의 사용량이 상기 범위의 하한보다 낮은 경우 즉, 0.01 몰% 미만인 경우, 표면에서 생성되는 고분자의 양 예컨대, 고분자 가닥의 수 및/또는 각 고분자 가닥의 길이(분자량)이 현저히 감소하여 MPC가 보형물의 표면을 골고루 충분히 커버하지 못하거나 가교결합이 충분히 수행되지 못하여 원하는 물성을 나타내지 못하거나 원하는 코팅강도를 얻지 못하고 세척과정에서 벗겨질 수 있다. 한편, 상기 광개시제 및/또는 가교제의 사용량이 상기 범위의 상한보다 높은 경우 즉, 광개시제의 함량이 0.2 몰%를 초과하거나 가교제의 함량이 2.0 몰%를 초과하는 경우, 과다한 교차결합으로 보형물이 원하는 탄성을 갖지 못하고 지나치게 경화될 수 있으며, 불필요한 시료의 낭비를 초래할 수 있다.
다른 하나의 양태로서, 본 발명은 체내 삽입용 보형물에 본 발명에 따른 코팅 조성물을 가하는 단계; 및 상기 코팅 조성물을 가한 체내 삽입용 보형물에 자외선을 조사하는 단계를 포함하는, 체내 삽입용 보형물의 코팅방법을 제공한다.
바람직하게, 체내 삽입용 보형물의 표면이 고루 코팅될 수 있도록 상기 코팅 조성물이 보형물 표면에 고루 접촉할 수 있도록 가한 후 자외선을 조사할 수 있다.
또 다른 양태로서, 본 발명은 가교된 폴리포스포릴콜린으로 코팅된 체내 삽입용 보형물을 제공한다.
상기 체내 삽입용 보형물의 정의 및 특성은 전술한 바와 같다.
바람직하게, 보형물의 표면에 본 발명에 따른 코팅 조성물을 가한 후 가교반응시켜 제조할 수 있으나, 이에 제한되지 않는다. 상기 가교반응은 당업계에 공지된 방법을 제한없이 사용하여 수행할 수 있다. 예컨대, 상기 가교반응은 자외선을 조사하여 수행할 수 있다.
바람직하게, 상기 체내 삽입용 보형물은 손상 또는 결손된 생체 조직의 재건이나 대체 용도, 미용을 위한 성형의 용도, 또는 치료를 위해 용도로 사용될 수 있으며, 예컨대 유방 확대 또는 재건용일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
예컨대, 본 발명에 따른 가교된 폴리포스포릴콜린으로 코팅된 유방성형용 보형물은 단백질 및 섬유아세포의 흡착이 현저히 감소되어 구형구축 등의 부작용 유발 가능성을 낮출 수 있으며, 증가된 코팅강도를 가지므로 강한 자극에도 코팅이 벗겨지지 않으므로 격렬한 움직임에도 안정하여 시간이 지나도 코팅의 벗겨짐 등에 의한 기능저하에 대한 우려가 없다.
이하, 실시예를 통하여 본 발명을 보다 상세히 설명하고자 한다. 이들 실시예는 본 발명을 보다 구체적으로 설명하기 위한 것으로, 본 발명의 범위가 이들 실시예에 한정되는 것은 아니다.
실시예 1: 가교된 PMPC로 코팅된 PDMS의 제조
광개시제로서 벤조페논 10 g/L 및 가교제로서 디펜타에리스리톨 펜타(또는 헥사)아크릴레이트(dipentaerythritol penta(or hexa)acrylate)를 포함하는 개시제 용액 및 고분자 단위체로서 0.50 M 메타크릴로일옥시에틸포스포릴콜린(methacryloyloxyethyl phosphorylcholine; MPC) 및 가교제로서 에틸렌글리콜 디메타크릴레이트(ethylene glycol dimethacrylate; EGDMA)를 포함하는 고분자 단위체 용액을 코팅하고자하는 실리콘(폴리디메틸실록산, polydimethylsiloxane; PDMS) 재질의 보형물에 가하고 라디칼 중합 반응을 통해 코팅될 수 있도록 15 cm 거리에서 자외선을 15분간 조사하였다. 모든 광개시제 용액은 가교제의 종류 및 존재여부에 무관하게 아세톤을 용매로 사용하여 제조하였으며, 모든 MPC 용액은 가교제의 종류 및 존재여부에 무관하게 탈이온수를 용매로 사용하여 제조하였다. 필요에 따라 단량체 용액 내의 산소를 제거하였다. 상기 용액의 조성을 대조군으로 사용한 가교시키지 않는 코팅방법에 사용되는 용액의 조성과 함께 하기 표 1에 나타내었다. 구체적으로, 상기 가교제 디펜타에리스리톨 펜타(또는 헥사)아크릴레이트 및 에틸렌글리콜 디메타크릴레이트는 각각 사용한 고분자 단위체 MPC에 대해 0.5 몰% 및 1 몰% 비율로 사용하였다. 상기 코팅된 보형물은 이후 분석에 사용하기 전 초음파로 10분동안 2회 처리하여 세척하여 여분의 반응물을 제거하였다. 상기 초음파를 이용한 세척방법은 일반적으로 사용하는 세척방법에 비해 다소 과격한 방법으로, 생체 내 이식 후 움직임 등에 의한 코팅의 벗겨짐 등을 모방하기 위하여 이와 같은 다소 강력한 세척방법을 사용하였다.
비교예 1: PMPC로 코팅된 PDMS의 제조
상기 본 발명에 따른 개시제를 이용하여 제조한 가교된 PMPC 코팅에 의한 효과를 확인하기 위하여, 개시제 용액 및 고분자 단위체 용액에 개시제를 포함하지 않는 것을 제외하고는 실시예 1과 동일한 방법으로 실리콘 보형물을 코팅하였다. 각 용액의 조성은 하기 표 1에 나타내었다. 라디칼 반응을 위한 조건 및 세척방법도 표 1에 함께 나타내었다.
표 1
Figure PCTKR2015003879-appb-T000001
실험예 1: 물 접촉각 측정
상기 실시예 1(Crosslinked) 및 비교예 1(Normal)을 통해 제조한 가교된 또는 비가교된 PMPC로 코팅된 PDMS 보형물 표면의 친수성 변화를 물 접촉각 측정을 통해 확인하였다. 음성대조군으로는 코팅하지 않은 PDMS(Noncoated)를 사용하였다. 구체적으로, 동적 물 접촉각 측정 방법(dynamic water contact angle measurement) 중 captive drop method를 이용하여 전진각(advancing contact angle) 및 후진각(receding contact angle)을 측정하였다. 전진각은 바늘을 이용하여 표면 위에 탈이온수의 양을 0 μl에서 6 μl로 증가시켰을 때 표면과 물방울이 이루는 각을 측정하여 얻었으며, 후진각은 표면 위의 탈이온수의 양을 6 μl에서 3 μl로 감소시켰을 때 표면과 물방울이 이루는 각을 측정하여 얻었다. 상기 전진각은 표면의 소수성을, 후진각은 표면의 친수성을 비교적 잘 나타내는 수치이며, 본 발명에 있어서 전진각에 비해 후진각의 변화량이 크므로 후진각의 변화를 통해 표면의 친수성에 대한 정보를 획득하였다. 획득한 영상과 이로부터 결정된 물 접촉각을 도 2에 나타내었다.
도 2에 나타난 바와 같이, 음성대조군으로 사용한 코팅되지 않은 PDMS는 높은 강한 소수성을 띠므로 전진각과 후진각 모두에서 높은 물 접촉각을 나타내었으나, PMPC로 코팅한 표면에서 현저히 감소하였으며, 가교된 PMPC로 코팅한 표면에서는 보다 더 감소하였다. 즉, PMPC 코팅에 의해 친수성을 띠게 되며, 이를 가교시킨 경우 보다 더 친수성을 띠게 됨을 확인하였다.
실험예 2: XPS를 이용한 표면 원소 분석
상기 실험예 1을 통해 확인한 물 접촉각 변화 즉, 친수성 정도의 변화가 포스포릴콜린기의 도입에 의한 것임을 확인하기 위하여 XPS를 이용한 표면 원소 분석을 실시하였으며, 그 결과를 도 3에 나타내었다.
도 3에 나타난 바와 같이, 가교된 PMPC로 코팅한 표면은 코팅되지 않은 PDMS에 비해 산소함량은 동일 수준으로 유지하는 한편, 탄소 및/또는 규소의 비율은 현저히 감소되었다. 구체적으로 탄소피크에 있어서, 메틸렌 및/또는 메틸에 대한 피크가 크게 감소하는 한편, -C-O- 및 -C=O 결합에 대한 피크가 형성되기 시작하였다. 나아가 코팅되지 않은 PDMS에서는 검출되지 않았던 질소 및 인의 함량은 크게 증가하였다. 이를 가교된 PMPC로 코팅한 표면에서 측정값의 현저한 감소를 나타낸 상기 물 접촉각에 대한 결과와 비교하였을 때, 상기 물 접촉각의 감소 즉, 친수성의 증가는 표면에서 상대적으로 전기음성도가 높은 산소, 질소 및/또는 인의 함량 증가를 나타내는 것과 일치하였다. 이는 또한 이들 원소를 포함하는 포스포릴콜린기의 함량 증가를 나타내는 것이다.
한편, 가교되지 않은 PMPC로 코팅한 표면의 경우 질소 및/또는 인 피크가 현저하게 나타나지 않는 것으로부터 이는 초음파를 이용한 강한 세척에 의해 상당부분 코팅이 손상되었거나 가교제에 의해 표면에 코팅되는 고분자의 양이 증가하는 효과를 고려하지 않기 때문인 것으로 유추되었다. 이는 본 발명에 따른 가교된 PMPC는 가교에 의해 강한 자극에도 코팅이 손상되지 않음을 나타내는 것이다.
실험예 3: 단백질의 흡착 정도 측정
상기 실시예 1(Crosslinked) 및 비교예 1(Normal)을 통해 제조한 가교된 또는 비가교된 PMPC로 코팅된 PDMS 보형물 표면에 대한 단백질의 흡착을 BCA 에세이를 통해 확인하였다. 음성대조군으로는 코팅하지 않은 PDMS(Noncoated)를 사용하였다. 상기 단백질로는 BSA(bovine serum albumin)와 BPF(bovine plasma fibrinogen)를 사용하였다. 코팅되지 않은 PDMS, PMPC로 코팅된 PDMS 및 가교된 PMPC로 코팅된 PDMS를 각각 4.5 mg/㎖ 농도의 BSA 또는 0.3 mg/㎖ 농도의 BPF와 37℃에서 1시간 동안 인큐베이션한 후 각 조건에서 PDMS를 깨끗한 DPBS 완충액으로 37℃에서 200 rpm으로 1분씩 2회 처리하여 부드럽게 세척하였다. 다음으로 표면에 흡착된 단백질의 양을 정량하기 위하여 BCA 에세이를 수행하였다. 구체적으로 Thermo Scientific 사의 BCA 키트를 사용하였으며, 키트에 포함되어 있는 시료 A, 시료 B 및 시료 C를 각각 25:24:1의 부피비로 혼합하여 에세이 용액을 제조하였다. 상기 세척한 각각의 PDMS를 신선한 DPBS 완충액에 담그고 완충액과 동일한 양의 에세이 용액을 첨가하여 60℃에서 1시간 동안 인큐베이션한 후 570 nm에서 흡광도를 측정하여 표면에 흡착된 단백질의 상대적인 양을 측정하였다. 그 결과를 각각 도 4 및 5에 나타내었다.
도 4 및 5에 나타난 바와 같이, PDMS 표면에 대한 BSA의 흡착은 코팅되지 않은 표면에 비해 PMPC로 코팅된 표면에서 24%의 감소 및 가교된 PMPC로 코팅된 표면에서 33%의 감소를 나타내었으며, PDMS 표면에 대한 BPF의 흡착은 코팅되지 않은 표면에 비해 PMPC로 코팅된 표면에서 45%의 감소 및 가교된 PMPC로 코팅된 표면에서 62%의 감소를 나타내었다. 즉, BSA 및 BPF 모두에 대해 코팅되지 않은 표면에 비해서는 PMPC가 코팅된 표면에서 흡착이 감소하였으며, 특히 가교된 PMPC로 코팅된 표면에서는 보다 현저한 단백질 흡착 감소가 확인되었다.
실험예 4: 세포의 흡착 정도 측정
피막구축(capsular contracture)이 섬유아세포의 과다증식 및 이에 따른 콜라겐 형성 등과 밀접하게 연관되어 있음에 착안하여, 상기 실시예 1(Crosslinked) 및 비교예 1(Normal)을 통해 제조한 가교된 또는 비가교된 PMPC로 코팅된 PDMS에 섬유아세포 NIH 3T3 세포를 배양하여 세포 흡착정도를 확인하였다. 상기 NIH-3T3 세포는 5% 이산화탄소를 함유한 37℃에서 10% FBS를 포함하는 DMEM 배지에 배양하였다. 각각의 1.5 cm 지름의 PDMS 당 30,000개의 세포를 분주하여 5% 이산화탄소를 함유한 37℃에서 45시간 동안 배양한 후 신선한 DMEM 배지(10% FBS 함유)로 가볍게 세척한 후 CCK 에세이를 수행하였다. CCK 용액은 도진도사의 제품을 사용하였으며, 세척한 각각의 PDMS를 신선한 DMEM 배지(10% FBS 함유)에 담그고 배지 부피의 10%에 해당하는 양의 CCK 용액을 첨가한 후 5% 이산화탄소를 함유한 37℃에서 4시간 동안 인큐베이션하고 450 nm에서 흡광도를 측정하여 표면에 흡착된 세포의 상대적인 양을 측정하여, 그 결과를 도 6에 나타내었다.
도 6에 나타난 바와 같이, 코팅되지 않은 PDMS에 비해 PMPC 코팅된 표면에서 섬유아세포의 표면 흡착이 현저히 감소(39% 감소)되는 것을 확인하였다. 나아가, 가교된 PMPC로 코팅된 PDMS 상에서는 보다 현저한 세포 흡착 감소(69% 감소)가 확인되었다. 따라서, 성형 후 섬유아세포의 과다증식 등에 의한 피막구축과 같은 부작용을 현저히 감소시킬 수 있을 뿐만 아니라, 상기 실시예 1에 개시한 바와 같이, 본 발명에 따른 가교된 PMPC로 코팅한 PDMS는 강한 자극에도 코팅상태를 유지할 수 있으므로, 성형 후 격렬한 운동이나 시간의 흐름에도 코팅상태를 유지함으로써 코팅의 벗겨짐으로 인한 부작용을 감소시킬 수 있을 것으로 기대할 수 있다.
실험예 5: 생체 내 피막생성 정도 측정
표면을 PMPC로 코팅한 PDMS 블록과 대조군으로서 표면처리하지 않은 PDMS 블록을 각각 Sprague-Dawley 랫트 등 좌측 및 우측에 삽입하여 1개월 및 3개월 동안 키운 후 생체 내에서의 반응을 관찰하였다. 먼저, 보형물 표면을 둘러싸며 형성된 피막의 두께를 측정하였다. H&E 염색하여 현미경으로 피막의 두께를 관찰하고 그 결과를 도 7에 나타내었다. 도 7에 나타난 바와 같이, 체내 삽입된 보형물의 표면에 형성된 피막의 두께는 PMPC로 코팅한 PDMS 블록을 삽입한 경우 대조군에 비해 1개월 및 3개월에서 모두 보다 얇은 것을 확인하였다. 이와 같은 PMPC로 코팅한 보형물 상에서 피막 형성의 감소는 상기 코팅에 의해 이물반응이 감소하였음을 나타내는 것이다. 나아가, 세포질(cellularity) 및 혈관질(vascularity)을 측정하여 도 8에 나타내었으며, 면역조직화학(immunohistochemistry) 분석을 통해 TGF-β, α-SMA(smooth muscle actin), 미엘로페록시다제(myeloperoxidase) 및 CD34 발현정도를 측정하여 도 9에 나타내었다.
그 결과, PMPC로 코팅한 PDMS를 삽입한 경우, 대조군에 비해 염증세포수가 현저히 낮았으며, 염증수치의 표지 값인 미엘로페록시다제 수준 역시 1개월 및 3개월 경과한 경우 모두에서 현저히 낮은 값을 나타내었다. 또한 염증반응 및 섬유조직 형성의 척도인 TGF-β와 α-SMA는 각각 1개월 및 3개월 경과하였을 때 대조군에 비해 현저히 감소된 수치를 나타내었으며, 이는 피막생성의 시간 배열 상 조직의 염증반응이 감소함으로써 섬유조직의 생성이 감소하는 순서와 부합하는 결과이다. 반면, 혈관신생 지표인 CD34의 발현 수준에 대해서는 유의적인 차이를 나타내지 않았다. 이는 이물반응과 혈관신생 간의 관련성이 적음을 나타내는 것이다.

Claims (12)

  1. 광개시제, 가교제 및 아크릴레이트기를 갖는 포스포릴콜린(phosphorylcholine; PC) 단량체를 포함하는 체내 삽입용 보형물 코팅 조성물.
  2. 제1항에 있어서,
    상기 아크릴레이트기를 갖는 포스포릴콜린은 메타크릴로일옥시에틸포스포릴콜린(MPC) 또는 아크릴로일옥시에틸포스포릴콜린(APC)인 것인 코팅 조성물.
  3. 제1항에 있어서,
    상기 광개시제는 벤조페논, 벤조일퍼옥사이드(benzoyl peroxide), 아조비스이소부티로니트릴(azobisisobutyronitrile; AIBN) 및 2,2-디메톡시-2-페닐아세토페논(2,2-dimethoxy-2-phenylacetophenone; DMPA)로 구성된 군으로부터 선택되는 것인 코팅 조성물.
  4. 제1항에 있어서,
    상기 가교제는 디펜타에리트리톨 펜타아크릴레이트, 디펜타에리트리톨 헥사아크릴레이트, 에틸렌글리콜 디아크릴레이트, 에틸렌글리콜 디메타크릴레이트, 알릴 메타크릴레이트, 아세토아세톡시에틸 메타크릴레이트, 이소시아나토에틸 메타크릴레이트, 이소부틸메타크릴레이트, 노르말부틸메타크릴레이트 및 이들의 조합으로 구성된 군으로부터 선택되는 것인 코팅 조성물.
  5. 제1항에 있어서,
    상기 광개시제는 포스포릴콜린 단량체에 대해 0.01 내지 0.2 몰%로 포함하는 것인 코팅 조성물.
  6. 제1항에 있어서,
    상기 가교제는 포스포릴콜린 단량체에 대해 0.01 내지 2.0 몰%로 포함하는 것인 코팅 조성물.
  7. 체내 삽입용 보형물에 제1항 내지 제6항 중 어느 한 항에 기재된 코팅 조성물을 가하는 단계; 및
    상기 코팅 조성물을 가한 체내 삽입용 보형물에 자외선을 조사하는 단계를 포함하는,
    체내 삽입용 보형물의 코팅방법.
  8. 가교된 폴리포스포릴콜린으로 코팅된 체내 삽입용 보형물.
  9. 제8항에 있어서,
    상기 체내 삽입용 보형물의 외부 표면 재질은 폴리디메틸실록산계(polydimethylsiloxane; PDMS), 하이드록시아파타이트(hydroxyapatite; HA), 폴리락트산계(polylactic acid; PLA), 폴리글리콜산계(polyglycolic acid; PGA), 폴리테트라플루오로에틸렌계(polytetrafluoroethylene; PTFE), 폴리에틸렌테레프탈레이트계(polyethylene terephthalate; PET), 폴리프로필렌계(polypropylene), 폴리아미드계(polyamides), 폴리아세탈계(polyacetal), 폴리에스테르계(polyester) 및 폴리메틸메타크릴레이트계(polymethyl metacrylate) 소재로 구성된 군으로부터 선택되는 것인 체내 삽입용 보형물.
  10. 제8항에 있어서,
    보형물의 표면에 제1항 내지 제6항 중 어느 한 항에 기재된 코팅 조성물을 가한 후 가교반응시켜 제조한 것이 특징인 체내 삽입용 보형물.
  11. 제8항에 있어서,
    생체조직 재건 또는 대체를 위한 치료용 또는 미용을 위한 성형용인 것인 체내 삽입용 보형물.
  12. 제11항에 있어서,
    유방 확대 또는 재건용인 것인 체내 삽입용 보형물.
PCT/KR2015/003879 2014-04-17 2015-04-17 가교된 폴리포스포릴콜린으로 코팅된 체내 삽입용 보형물 Ceased WO2015160218A1 (ko)

Priority Applications (6)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP15779986.7A EP3132810B1 (en) 2014-04-17 2015-04-17 Prosthesis for in vivo insertion, coated with cross-linked polyphosphorylcholine
US15/304,780 US11129706B2 (en) 2014-04-17 2015-04-17 Prosthesis for in vivo insertion, coated with cross-linked polyphosphorylcholine
BR112016024206-8A BR112016024206B1 (pt) 2014-04-17 2015-04-17 prótese para inserção in vivo revestida com polifosforilcolina reticulada
JP2017506238A JP6702939B2 (ja) 2014-04-17 2015-04-17 架橋されたポリホスホリルコリンでコーティングされた体内挿入用補形物および同体内挿入用補形物をコーティングする方法
CN201580030567.6A CN106456834B (zh) 2014-04-17 2015-04-17 涂覆有交联的聚磷酸胆碱的体内植入式假体
US17/412,124 US11925547B2 (en) 2014-04-17 2021-08-25 Prosthesis for in vivo insertion, coated with cross-linked polyphosphorylcholine

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
KR1020140045713A KR101644686B1 (ko) 2014-04-17 2014-04-17 가교된 폴리포스포릴콜린으로 코팅된 체내 삽입용 보형물
KR10-2014-0045713 2014-04-17

Related Child Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
US15/304,780 A-371-Of-International US11129706B2 (en) 2014-04-17 2015-04-17 Prosthesis for in vivo insertion, coated with cross-linked polyphosphorylcholine
US17/412,124 Division US11925547B2 (en) 2014-04-17 2021-08-25 Prosthesis for in vivo insertion, coated with cross-linked polyphosphorylcholine

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2015160218A1 true WO2015160218A1 (ko) 2015-10-22

Family

ID=54324329

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/KR2015/003879 Ceased WO2015160218A1 (ko) 2014-04-17 2015-04-17 가교된 폴리포스포릴콜린으로 코팅된 체내 삽입용 보형물

Country Status (7)

Country Link
US (2) US11129706B2 (ko)
EP (1) EP3132810B1 (ko)
JP (2) JP6702939B2 (ko)
KR (1) KR101644686B1 (ko)
CN (1) CN106456834B (ko)
BR (1) BR112016024206B1 (ko)
WO (1) WO2015160218A1 (ko)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN112295022A (zh) * 2020-10-11 2021-02-02 北京科技大学 一种多巴胺-两性离子抗菌涂层及其制备方法

Families Citing this family (17)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR101881587B1 (ko) * 2017-09-27 2018-07-24 주식회사 극동중앙연구소 3d 프린팅용 실크피브로인 구조체의 제조방법
CN108210993A (zh) * 2018-04-09 2018-06-29 王建东 一种高相容性镁基生物复合材料的制备方法
CN108744040B (zh) * 2018-06-28 2021-03-16 西南交通大学 一种在体内环境中具有磨损自修复功能的高分子生物材料制备方法
KR102279313B1 (ko) 2019-02-01 2021-07-22 서울대학교산학협력단 섬유화 반응 억제를 위한 약물이 코팅된 체내 삽입용 보형물
KR102414314B1 (ko) * 2019-02-27 2022-06-30 사회복지법인 삼성생명공익재단 코팅층을 포함하는 안질환용 임플란트
KR102259292B1 (ko) * 2019-05-10 2021-06-03 서울대학교 산학협력단 열을 이용한 보형물의 코팅방법
JP2022540707A (ja) * 2019-07-19 2022-09-16 アカテコール・インコーポレイテッド 分子的に十分に規定された生物付着防止ポリイオンコーティング
KR102238313B1 (ko) * 2019-09-19 2021-04-08 연세대학교 산학협력단 치과용 조성물 및 이를 포함하는 구강 내 장치 제조 방법
CN111154372A (zh) * 2020-01-14 2020-05-15 东南大学 仿生超润滑自修复薄膜的制备方法
KR102912190B1 (ko) * 2022-10-07 2026-01-14 서한이노빌리티(주) 시험용 지그
CN116271231A (zh) * 2022-12-30 2023-06-23 乐普（北京）医疗器械股份有限公司 一种仿生聚合物水凝胶涂层及其制备方法与应用
KR102907056B1 (ko) * 2023-09-11 2026-01-07 주식회사 그래피 생체 적합성이 우수한 투명 치아 교정장치의 제조 방법
KR102912711B1 (ko) * 2023-09-11 2026-01-13 주식회사 그래피 양쪽성 이온을 포함하는 코팅 조성물로 표면 코팅된 투명 치아 교정장치의 제조 방법
KR20250114990A (ko) * 2024-01-23 2025-07-30 주식회사 그래피 양쪽성 이온을 포함하는 코팅 조성물 및 이를 이용하여 표면 코팅된 투명 치아 교정장치
KR20250114989A (ko) * 2024-01-23 2025-07-30 주식회사 그래피 양쪽성 이온을 포함하는 코팅 조성물 및 이를 이용하여 표면 코팅된 투명 치아 교정장치
CN121041525B (zh) * 2025-11-06 2026-02-06 四川大学 一种基于pmpc纳米微球的抗凝抗菌透析导管涂层及其制备方法
CN121471578A (zh) * 2026-01-08 2026-02-06 湖南宝升塑业科技开发有限公司 一种食品包装用防水防油透气阀的制备方法

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2003030940A1 (en) * 2001-10-09 2003-04-17 University Of Florida Method for the surface modification of silicone surfaces
US20050266038A1 (en) * 2004-05-27 2005-12-01 Thierry Glauser Antifouling heparin coatings
KR20060015624A (ko) * 2003-05-28 2006-02-17 블루 멤브레인스 게엠베하 기능화된 탄소 표면을 포함하는 이식물
WO2011086537A2 (en) * 2010-01-18 2011-07-21 G & G Biotechnology Ltd Lightweight breast implant material

Family Cites Families (16)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6090901A (en) * 1991-07-05 2000-07-18 Biocompatibles Limited Polymeric surface coatings
GB9118597D0 (en) * 1991-08-30 1991-10-16 Biocompatibles Ltd Polymer treatments
AU9627298A (en) * 1997-09-23 1999-04-12 Novartis Ag Method for hydrogel surface treatment and article formed therefrom
US6893595B1 (en) * 1998-07-17 2005-05-17 Biocompatibles Uk Limited Method for providing coated moulded polymeric articles
JP4156945B2 (ja) * 2002-02-19 2008-09-24 株式会社神戸製鋼所 高分子材料製人工関節部材
EP1572029B1 (en) * 2002-11-07 2010-03-24 Abbott Laboratories Method of loading beneficial agent to a prosthesis by fluid-jet application
IES20030294A2 (en) * 2003-04-17 2004-10-20 Medtronic Vascular Connaught Coating for biomedical devices
US8025637B2 (en) * 2003-07-18 2011-09-27 Boston Scientific Scimed, Inc. Medical balloons and processes for preparing same
JP2005143414A (ja) * 2003-11-17 2005-06-09 Olympus Corp 観察用窓部材、および観察窓を有する実験動物
EP1796693A2 (en) * 2004-08-26 2007-06-20 Chandrashekhar P. Pathak Implantable tissue compositions and method
EP2226075A1 (en) * 2007-11-22 2010-09-08 The University of Tokyo Material for preventing tissue adhesion and material for preventing joint contracture
WO2010058848A1 (ja) 2008-11-21 2010-05-27 日本メディカルマテリアル株式会社 グラフト重合方法およびその生成物
CN102091355A (zh) * 2011-01-11 2011-06-15 南京大学 一种复合涂层冠脉药物洗脱支架及其制备方法
JP2013070796A (ja) * 2011-09-27 2013-04-22 Fujifilm Corp 生体適合性部材及び生体適合性部材の形成方法
CN103130958A (zh) 2011-11-23 2013-06-05 西北大学 一种光反应型仿细胞膜结构共聚物及其制备方法和应用
JP5816222B2 (ja) * 2013-04-25 2015-11-18 住友ゴム工業株式会社 表面改質方法及び表面改質弾性体

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2003030940A1 (en) * 2001-10-09 2003-04-17 University Of Florida Method for the surface modification of silicone surfaces
KR20060015624A (ko) * 2003-05-28 2006-02-17 블루 멤브레인스 게엠베하 기능화된 탄소 표면을 포함하는 이식물
US20050266038A1 (en) * 2004-05-27 2005-12-01 Thierry Glauser Antifouling heparin coatings
WO2011086537A2 (en) * 2010-01-18 2011-07-21 G & G Biotechnology Ltd Lightweight breast implant material

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
GODA, T. ET AL.: "Biomimetic phosphorylcholine polymer grafting from polydimethylsiloxane surface using photo-induced polymerization", BIOMATERIALS, vol. 27, 2006, pages 5151 - 5160, XP027951171 *
See also references of EP3132810A4 *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN112295022A (zh) * 2020-10-11 2021-02-02 北京科技大学 一种多巴胺-两性离子抗菌涂层及其制备方法

Also Published As

Publication number Publication date
KR20150121270A (ko) 2015-10-29
US11925547B2 (en) 2024-03-12
BR112016024206A2 (pt) 2017-08-15
US20210378814A1 (en) 2021-12-09
BR112016024206B1 (pt) 2021-02-09
JP6702939B2 (ja) 2020-06-03
US20170035555A1 (en) 2017-02-09
EP3132810A1 (en) 2017-02-22
JP2017516906A (ja) 2017-06-22
EP3132810B1 (en) 2025-10-29
JP2019205836A (ja) 2019-12-05
CN106456834B (zh) 2019-12-17
EP3132810C0 (en) 2025-10-29
US11129706B2 (en) 2021-09-28
KR101644686B1 (ko) 2016-08-02
CN106456834A (zh) 2017-02-22
EP3132810A4 (en) 2017-12-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
WO2015160218A1 (ko) 가교된 폴리포스포릴콜린으로 코팅된 체내 삽입용 보형물
US20240084163A1 (en) Durable photopolymerizable cross-linked anti-fouling coatings
Abraham et al. Molecularly engineered p (HEMA)-based hydrogels for implant biochip biocompatibility
Qiao et al. Dopamine-mediated zwitterionic polyelectrolyte-coated polypropylene hernia mesh with synergistic anti-inflammation effects
Jin et al. Anti-inflammatory and antibacterial effects of covalently attached biomembrane-mimic polymer grafts on gore-tex implants
US20110151564A1 (en) Method for proliferation of cells on polyelectrolyte multilayer films and use thereof, particularly for the preparation of cellular biomaterials
Griffin et al. Enhancing tissue integration and angiogenesis of a novel nanocomposite polymer using plasma surface polymerisation, an in vitro and in vivo study
WO2003035278A1 (en) Method of depositing polyelectrolyte multilayers and articles coated thereby
Kim et al. Effect of poly (ethylene glycol) graft polymerization of poly (methyl methacrylate) on cell adhesion: In vitro and in vivo study
Zhou et al. A facile preparation of poly (ethylene oxide)-modified medical polyurethane to improve hemocompatibility
WO2017064667A2 (en) Automated fabrication of layer-by-layer tissue engineered complex tubes
Wei et al. Osteo-immunomodulatory role of interleukin-4-immobilized plasma immersion ion implantation membranes for bone regeneration
JP2017213218A (ja) 医療機器の製造方法
WO2020231073A1 (ko) 열을 이용한 보형물의 코팅방법
Zhang et al. MPC polymer regulates fibrous tissue formation by modulating cell adhesion to the biomaterial surface
Ishihara et al. Bioinspired functionalization of metal surfaces with polymers
Nistorescu et al. Mitigation of Cellular and Bacterial Adhesion on Laser Modified Poly (2-Methacryloyloxyethyl Phosphorylcholine)/Polydimethylsiloxane Surface., 2023, 13, 64
Du et al. The effect of POSS-COOH/silicone rubber (SR) on the adipogenesis differentiation of mesenchymal stem cells
Ding et al. Nanocolloidal Hydrogel Coatings With Multiple Functions for Antithrombogenic Biointerfaces
BR112021021620B1 (pt) Método para revestir implante com o uso de calor
Zaatreh et al. Track A. Biomaterials and Biocompatibility
CA3028732C (en) Durable photopolymerizable cross-linked anti-fouling coatings
Meagher et al. Biomedical Materials and Surface Coatings
Chauvel-Lebret et al. Elastomers: Biocompatibility
Qui Interaction between Vascular Endothelial Cells and Surface Textured Biomaterials

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 15779986

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2017506238

Country of ref document: JP

Kind code of ref document: A

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 15304780

Country of ref document: US

REEP Request for entry into the european phase

Ref document number: 2015779986

Country of ref document: EP

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2015779986

Country of ref document: EP

REG Reference to national code

Ref country code: BR

Ref legal event code: B01A

Ref document number: 112016024206

Country of ref document: BR

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 112016024206

Country of ref document: BR

Kind code of ref document: A2

Effective date: 20161017

WWG Wipo information: grant in national office

Ref document number: 2015779986

Country of ref document: EP