WO2016111344A1 - Ｔｒａｉｌｒ２とｐｓｍａに結合するバイスペシフィック抗体 - Google Patents

Ｔｒａｉｌｒ２とｐｓｍａに結合するバイスペシフィック抗体 Download PDF

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    • G01N2333/948—Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)

Definitions

  • the present invention relates to an antigen-binding domain that binds to Tumor necrosis factor-related apoptosis inclusion ligand receptor 2 (TRAILR2) and a prosthetic-specific membrane antigen (PSMA), or an antigen-binding domain that binds to the antigen-binding domain that binds to the antigen-binding domain.
  • TRAILR2 Tumor necrosis factor-related apoptosis inclusion ligand receptor 2
  • PSMA prosthetic-specific membrane antigen
  • the present invention also relates to a detection or measurement reagent, a diagnostic agent and a therapeutic agent containing the bispecific antibody or the antibody fragment.
  • Antibody is a glycoprotein present in the serum and tissue fluid of all mammals and recognizes foreign antigens in vivo (Non-patent Document 1). Through activation of the complement system and binding to a receptor (FcR) present on the cell surface, the antibody is capable of phagocytosis, antibody-dependent cytotoxicity, mediator release ability, and antigen presentation ability of FcR-expressing cells. Activates effector functions and participates in biological defense.
  • FcR receptor
  • One molecule of antibody consists of two homologous light chains (L chain) and two homologous heavy chains (H chain), and has two antigen-binding sites. The class and subclass of an antibody is determined by the heavy chain, and each class and subclass has a different unique function.
  • IgG There are five different classes of human antibodies, IgG, IgA, IgM, IgD and IgE.
  • IgG is further classified into IgG1, IgG2, IgG3 and IgG4 subclasses, and IgA is classified into IgA1 and IgA2 subclasses, respectively.
  • a multivalent antibody is an antibody having a plurality of antigen-binding sites in one molecule.
  • a multivalent antibody it was first reported that a multivalent antibody having an H chain and an L chain was produced as a plurality of different polypeptide chains that bind to different antigens using a hybrid hybridoma (non-native). Patent Document 3).
  • Patent Document 3 since two types of different H chains and L chains are expressed in one cell, about 10 combinations of antibody H chains and L chains are generated. Therefore, the production amount of multivalent antibodies having a desired combination of H and L chains is low, and it is difficult to selectively isolate and purify such multivalent antibodies, so the yield of the desired antibodies is reduced. To do.
  • Non-Patent Document 5 Patent Document 1
  • Patent Document 2 Patent Document 3
  • Patent Document 3 a multivalent antibody having a plurality of antigen binding sites in a single heavy chain polypeptide and having antigen binding sites not close to each other has high stability and good productivity.
  • Non-patent Document 6 Physiological cell death that occurs due to generational change of normal cells in vivo is called necrosis (necrosis), which is pathological cell death.
  • necrosis necrosis
  • Non-patent Document 7 Physiological cell death that occurs due to generational change of normal cells in vivo is called necrosis (necrosis), which is pathological cell death.
  • necrosis necrosis
  • Non-patent Document 7 Non-patent Document 7
  • TNF family tumor necrosis factor family
  • TNF- ⁇ tumor necrosis factor- ⁇
  • TNF- ⁇ tumor necrosis factor- ⁇
  • Fas ligand CD40 ligand
  • CD40 ligand CD40 ligand
  • TNF receptor family molecules are defined by the presence of cysteine rich repeats in the extracellular domain.
  • Fas and TNFR1 which are receptors for Fas ligand and TNF- ⁇ , each have a region essential for apoptosis signal transduction called a death domain.
  • Fas activation promotes the association of the adapter molecule FADD / MORT1 containing the death domain and causes activation of caspase-8 bound to FADD / MORT1.
  • Activated Caspase-8 sequentially activates downstream caspase molecule groups, and finally leads cells to apoptosis (Non-patent Document 12). Since signals are also transmitted into cells by cross-linking antibodies specific to TNF receptor family molecules, it is considered that association of TNF receptor family molecules is necessary for signal transmission. (Non-Patent Documents 13 and 14).
  • TRAIL is a TNF family molecule that induces apoptosis discovered by Wiley et al., And is an abbreviation for TNF-related apoptosis-inducing ligand (Non-patent Document 15). This molecule is also called Apo-2 ligand or Apo-2L (Non-patent Document 16). TRAIL, unlike Fas ligand, is detected at significant levels in many human tissues such as spleen, lung, prostate, thymus, ovary, small intestine, large intestine, peripheral blood lymphocytes, placenta, kidney, and some cells It is constantly expressed in the strain. TRAIL binds to the TRAIL receptor and induces apoptosis much more rapidly than TNF in a time frame similar to death signaling by Fas (Non-patent Document 17).
  • TRAIL receptors Two of these receptors, TRAILR1 (also referred to as death receptor 4; also referred to as DR4) and TRAILR2 (also referred to as death receptor 5; also referred to as DR5), each have a death domain in the intracellular region.
  • TRAILR1 transcript is found in many human tissues including spleen, peripheral blood leukocytes, small intestine and thymus, and TRAILR2 transcript is found in many tissues such as spleen, peripheral blood lymphocytes and ovary (Non-patent Document) 18-20).
  • TRAILR2 is a type I membrane protein that takes two forms by alternative splicing, and it has been reported that the amount of expression of a form consisting of 440 amino acid residues is large in cancer cells (Non-patent Document 21). 22). TRAILR2 also trimers upon binding of TRAIL, induces cell death signals through its death domain, and causes apoptosis of cancer cells (Non-patent Document 23).
  • Non-patent Document 22 Recombinant human TRAIL containing the extracellular region of TRAIL induces apoptosis in various cancer cells (Non-patent Document 22), and has a remarkable anti-tumor effect in a tumor-bearing mouse model using human colon cancer cells and breast cancer cells. The tumor effect is shown (nonpatent literature 25).
  • TRAIL belongs to the same TNF family and does not damage normal tissues of mice and cynomolgus monkeys, unlike TNF- ⁇ and Fas ligand, which have apoptosis-inducing activity (Non-patent Document 26).
  • recombinant human TRAIL induces apoptosis in human normal hepatocytes and human brain cells (Non-patent Documents 28 and 32).
  • Non-patent Documents 24 and 27, Patent Document 4 Monoclonal antibodies against TRAILR1 and TRAILR2 have been reported to induce apoptosis in cancer cells, similar to the aforementioned recombinant human TRAIL (Non-patent Documents 24 and 27, Patent Document 4). These antibodies also show an antitumor effect in a tumor-bearing mouse model using human colon cancer cells (Non-patent Document 24, Patent Document 4). In general, it has been reported that conventional antibodies against TRAILR require cross-linking between antibodies when exerting antitumor activity by inducing cell death in in vitro experiments (Non-patent Documents 24 and 27).
  • Non-patent Document 24 Furthermore, it has been reported that the anti-tumor activity of an anti-CD20 antibody is enhanced when the antibodies are cross-linked, resulting in a cancer cell growth inhibitory effect (Non-patent Document 24).
  • PSMA is composed of three domains consisting of three domains: an intracellular domain consisting of 19 amino acid residues, a transmembrane domain consisting of 24 amino acid residues, and an extracellular domain consisting of 707 amino acid residues. Is a type II membrane glycoprotein of about 110 kDa.
  • PSMA functions as glutamate carboxypeptidase, N-acetyl ⁇ -linked acid dipeptidase and folate hydrolase (Non-patent Document 29).
  • PSMA is expressed in prostate epithelial cells in vivo, and its expression level is increased in prostate cancer, but is markedly increased particularly in poorly differentiated, metastatic, and hormone-resistant adenocarcinoma (Non-patent Document 30, 31).
  • PSMA is expressed in small amounts in the small intestine, salivary glands, duodenal mucosa, proximal tubules and brain (Non-patent Document 31). Furthermore, PSMA is involved in tumor angiogenesis (Non-patent Document 31) and is also expressed in the epithelium of neovasculature associated with colon cancer, breast cancer, bladder cancer, pancreatic cancer, kidney cancer and melanoma tumors. (Non-Patent Document 32).
  • J591 As an antibody against PSMA, J591 (ATCC deposit number HB-12126) is known (patent document 5), and radiolabeled substances such as 177 Lu (ruthenium) and 89 Zr (zirconium) are used as cancer therapeutics and diagnostic agents. Has been developed.
  • the problem to be solved by the present invention is a bispecific antibody comprising an antigen-binding domain that binds to TRAILR2 and an antigen-binding domain that binds to PSMA, or a nucleic acid having a base sequence encoding the antibody or the antibody fragment , A recombinant vector containing the nucleic acid, a transformed strain containing the recombinant vector, a method for producing the bispecific antibody or the antibody fragment using the transformed strain, and a detection or detection comprising the bispecific antibody or the antibody fragment
  • the object is to provide measuring reagents, diagnostic agents and therapeutic agents.
  • the present invention provides a bispecific antibody or an antibody fragment thereof comprising an antigen binding domain that binds to TRAILR2 and an antigen binding domain that binds to PSMA.
  • the present invention relates to the following (1) to (30).
  • a bispecific antibody or an antibody fragment thereof comprising an antigen-binding domain that binds to TRAILR2 and an antigen-binding domain that binds to PSMA.
  • the bispecific antibody or the antibody fragment thereof according to (1) which activates TRAILR2 only when it binds to TRAILR2 and PSMA.
  • the bispecific antibody or the antibody fragment thereof according to (1) or (2) which binds to TRAILR2 and PSMA bivalently.
  • the antigen-binding domain that binds to TRAILR2 is a variable region (V region) of an antibody that binds to TRAILR2, and the antigen-binding domain that binds to PSMA is the V region of an antibody that binds to PSMA.
  • V region variable region
  • the amino acid sequence of the complementarity determining region (CDR) 1 to 3 of the heavy chain variable region (hereinafter referred to as VH) of the monoclonal antibody that binds to TRAILR2 is SEQ ID NO: 70, respectively.
  • the amino acid sequences of CDRs 1 to 3 of the light chain variable region (hereinafter referred to as VL) are represented by SEQ ID NOs: 74 to 76, respectively.
  • the bispecific antibody or the antibody fragment thereof according to (5).
  • the VH amino acid sequence of the antibody that binds to TRAILR2 comprises the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 118
  • the VL amino acid sequence comprises the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 119, (5) or The bispecific antibody or the antibody fragment thereof according to (6).
  • the amino acid sequences of CDRs 1 to 3 of VL of an antibody that binds to PSMA include the amino acid sequences represented by SEQ ID NOs: 74 to 76, respectively
  • the amino acid sequences of CDRs 1 to 3 of VH are the following (a) The bispecific antibody or the antibody fragment thereof according to any one of (5) to (7), which comprises any one amino acid sequence selected from the group consisting of: (d) to (d).
  • amino acid sequences represented by SEQ ID NOs: 78, 82 and 84 (B) the amino acid sequences represented by SEQ ID NOs: 78, 79 and 80, respectively (C) amino acid sequences represented by SEQ ID NOs: 78, 82 and 80, respectively; and (d) amino acid sequences represented by SEQ ID NOs: 96 to 98, respectively.
  • the amino acid sequence of the VL of the antibody that binds to PSMA includes the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 119, and the amino acid sequence of VH is selected from the group consisting of the following (e) to (o) The bispecific antibody or the antibody fragment thereof according to any one of (5) to (8), which comprises any one amino acid sequence.
  • (10) a heavy chain containing a polypeptide in which a VH of an antibody that binds to TRAILR2 and a VH of an antibody that binds to PSMA are linked via an immunoglobulin domain or a linker containing the domain fragment,
  • the bispecific antibody or the antibody fragment thereof according to any one of (9) to (9).
  • (11) The bispecific antibody or the antibody fragment thereof according to (10), wherein the linker is a linker derived from IgG4 or IgM subclass.
  • the amino acid sequence of the polypeptide consisting of the VH of the antibody that binds to TRAILR2 and the linker and the VH of the antibody that binds to PSMA is any one amino acid sequence selected from the group consisting of the following (A) to ( ⁇ ) The bispecific antibody or the antibody fragment thereof according to (10) or (11).
  • A the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 131
  • B the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 132
  • C the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 133
  • D the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 134
  • E the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 135
  • F the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 136
  • G the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 137
  • H the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 138
  • I the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 139
  • J the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 140
  • K the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 141
  • L the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 142
  • M the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 143.
  • a transformed strain comprising the recombinant vector according to (14).
  • a diagnostic agent for a disease involving TAILR2 and PSMA-expressing cells comprising the bispecific antibody or the antibody fragment thereof according to any one of (1) to (12).
  • (19) The diagnostic agent according to (18), wherein the disease involving TAILR2 and PSMA-expressing cells is a malignant tumor or cancer.
  • the therapeutic agent according to (20), wherein the disease involving TAILR2 and PSMA-expressing cells is a malignant tumor or cancer.
  • a TRAILR2 and PSMA-expressing cell comprising detecting or measuring at least one of TRAILR2 and PSMA using the bispecific antibody or the antibody fragment thereof according to any one of (1) to (12) A diagnostic method for the disease involved.
  • the diagnostic method according to (23), wherein the disease involving TAILR2 and PSMA-expressing cells is a malignant tumor or a cancer.
  • the bispecific antibody or the antibody fragment of the present invention induces various reactions associated with activation of TRAILR2 only when it binds to TRAILR2 and PSMA. Therefore, the bispecific antibody or the antibody fragment of the present invention can be used as a therapeutic or diagnostic agent for a disease involving TRAILR2 and PSMA-expressing cells.
  • FIG. 1 shows the structure of the bispecific antibody of the present invention.
  • the bold line represents a linker connecting two VHs.
  • FIG. 2 shows the results of analyzing the binding of an anti-hPSMA monoclonal antibody or hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody to hPSMA / L929 cells using a flow cytometer.
  • the vertical axis represents the number of cells, and the horizontal axis represents the fluorescence intensity.
  • As the anti-hPSMA monoclonal antibody 2A10 antibody or PI134 antibody was used.
  • an E11-GL-PI134VH antibody As the hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody, an E11-GL-PI134VH antibody, an E11-CH1-PI134VH antibody, an E11-CH1-PI101VH antibody, an E11-CH1-PN7VH antibody or an E11-CH1-PN170VH antibody was used.
  • the solid line shows the binding of each of the above-mentioned antibodies, and the dotted line shows the binding of a known anti-DNP monoclonal antibody used as a negative control.
  • FIG. 3 shows the results of analyzing the binding of anti-hTRAILR2 monoclonal antibody, anti-hPSMA monoclonal antibody or hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody to hTRAILR2 / L929 cells using a flow cytometer.
  • the vertical axis represents the number of cells, and the horizontal axis represents the fluorescence intensity.
  • an anti-hTRAILR2 monoclonal antibody E11 antibody was used.
  • PI134 antibody was used as the anti-hPSMA monoclonal antibody.
  • the hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody an E11-CH1-PI101VH, E11-CH1-PN7VH antibody or E11-CH1-PN170VH antibody was used.
  • the solid line shows the binding property of each of the above-mentioned antibodies, and the dotted line shows the binding property of the anti-DNP monoclonal antibody used as a negative control.
  • 4 (A) and 4 (B) show the expression levels of hTRAILR2 or hPSMA in PC3 cells [FIG. 4 (A)] and hPSMA / PC3 cells [FIG. 4 (B)].
  • the vertical axis represents the number of cells, and the horizontal axis represents the fluorescence intensity.
  • FIG. 5 shows the expression level of hTRAILR2 or hPSMA in LNCaP clone FGC cells. The vertical axis represents the number of cells, and the horizontal axis represents the fluorescence intensity. Cells were stained with anti-hTRAILR2 monoclonal antibody E11 antibody, anti-hPSMA monoclonal antibody 2A10 antibody, or anti-DNP monoclonal antibody as a negative control.
  • FIG. 5 shows the expression level of hTRAILR2 or hPSMA in LNCaP clone FGC cells. The vertical axis represents the number of cells, and the horizontal axis represents the fluorescence intensity. Cells were stained with anti-hTRAILR2 monoclonal antibody E11 antibody, anti-hPSMA monoclonal antibody 2A10 antibody, or anti-DNP monoclonal antibody as a negative control.
  • FIG. 6 is a graph showing the results of a cell proliferation test using anti-hTRAILR2 agonist monoclonal antibody KMDA2 antibody or hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody E11-CH1-PI134VH antibody or E11-CH1-PI101VH antibody against PC3 cells. is there.
  • the vertical axis represents cell viability (%), and the horizontal axis represents antibody concentration (ng / mL).
  • Anti-DNP monoclonal antibody was used as a negative control.
  • FIG. 7 shows anti-hTRAILR2 agonist monoclonal antibody KMDA2 antibody, anti-hTRAILR2 monoclonal antibody E11 antibody or hTRALR2-hPSMA bispecific antibody E11-CH1-PI101VH antibody, E11-CH1-PN7VH antibody or E11-CH1-PN170VH antibody against PC3 cells It is the figure which showed the result of the cell growth test using this.
  • the vertical axis represents cell viability (%), and the horizontal axis represents antibody concentration (ng / mL).
  • Anti-DNP monoclonal antibody was used as a negative control.
  • FIG. 8 shows the results of a cell proliferation test using the anti-hTRAIL2 agonist monoclonal antibody KMDA2 antibody or the hTRAIL2-hPSMA bispecific antibody E11-GL-PI134VH antibody or E11-CH1-PI134VH antibody against hPSMA / PC3 cells.
  • FIG. The vertical axis represents cell viability (%), and the horizontal axis represents antibody concentration (ng / mL).
  • Anti-DNP monoclonal antibody was used as a negative control.
  • FIG. 9 shows anti-hTRAIL2 agonist monoclonal antibody KMDA2 antibody, anti-hTRAILR2 monoclonal antibody E11 antibody or hTRAIL2-hPSMA bispecific antibody E11-CH1-PI101VH antibody, E11-CH1-PN7VH antibody or E11-CH1-antibody against hPSMA / PC3 cells. It is the figure which showed the result of the cell growth test using the PN170VH antibody. The vertical axis represents cell viability (%), and the horizontal axis represents antibody concentration (ng / mL). Anti-DNP monoclonal antibody was used as a negative control.
  • FIG. 9 shows anti-hTRAIL2 agonist monoclonal antibody KMDA2 antibody, anti-hTRAILR2 monoclonal antibody E11 antibody or hTRAIL2-hPSMA bispecific antibody E11-CH1-PI101VH antibody, E11-CH1-PN7VH antibody or E11-CH1-antibody against hPSMA / PC
  • FIG. 10 shows the results of a cell proliferation test using an anti-hTRAILR2 agonist monoclonal antibody KMDA2 antibody or hTRAIL2-hPSMA bispecific antibody against hPSMA / PC3 cells.
  • the vertical axis represents cell viability (%), and the horizontal axis represents antibody concentration (ng / mL).
  • hTRAILR2-hPSMA bispecific antibodies include E11-CH1-PI101VH antibody, E11-CH1-PI105VH antibody, E11-CH1-PI108VH antibody, E11-CH1-PI115VH antibody, E11-CH1-PI118VH antibody, E11-CH1-PI127VH antibody, E11-CH1-PI143VH antibody or E11-CH1-PL223VH antibody was used.
  • Anti-DNP monoclonal antibody was used as a negative control.
  • FIG. 11 shows anti-hTRAIL2 agonist monoclonal antibody KMDA2 antibody, anti-hTRAILR2 monoclonal antibody E11 antibody or hTRAIL2-hPSMA bispecific antibody E11-CH1-PI101VH antibody, E11-CH1-PN7VH antibody or E11-CH1-V1 against LNCaP clone FGC cells. It is the figure which showed the result of the cell growth test using the PN170VH antibody. The vertical axis represents cell viability (%), and the horizontal axis represents antibody concentration (ng / mL). Anti-DNP monoclonal antibody was used as a negative control.
  • FIG. 12 (B) show flow cytometry detection of activated caspases when hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody E11-CH1-PI101VH antibody or TRAILR2 ligand TRAIL / Apo2 is added to cells. The results are shown. The vertical axis represents the number of cells, and the horizontal axis represents the fluorescence intensity.
  • FIG. 12 (A) shows the results when using PC3 cells
  • FIG. 12 (B) shows the results when using PSMA / PC3 cells.
  • Anti-DNP monoclonal antibody was used as a negative control.
  • FIG. 13 shows cell proliferation using anti-hTRAILR2 agonist monoclonal antibody KMDA2 antibody, anti-hTRAILR2 monoclonal antibody E11 antibody, hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody E11-CH1-PI101VH antibody, or TRAILR2 ligand TRAIL / Apo2 against normal human hepatocytes. It is the figure which showed the result of the sex test. The vertical axis represents cell viability (%), and the horizontal axis represents protein concentration (ng / mL). Anti-DNP monoclonal antibody was used as a negative control.
  • FIG. 14 shows cell growth using human anti-hTRAILR2 agonist monoclonal antibody KMDA2 antibody, anti-hTRAILR2 monoclonal antibody E11 antibody, hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody E11-CH1-PN7VH antibody, or TRAILR2 ligand TRAIL / Apo2 against normal human hepatocytes. It is the figure which showed the result of the sex test. The vertical axis represents cell viability (%), and the horizontal axis represents protein concentration (ng / mL). Anti-DNP monoclonal antibody was used as a negative control.
  • FIGS. 15A to 15C show hTRAIL2-hPSMA bispecific antibody E11-CH1-PN7VH antibody [FIG. 15 (A)], hTRAIL2-hPSMA bispecific antibody fragment E11-CH1-PN7VH F (ab ′) 2 [FIG. 15 (B)] and E11-CH1-PN7VH Fab [FIG. 15 (C)], and hTRAILR2-hPSMA heterobispecific antibody E11_PN7 Hetero antibody [FIG. 15 (D)].
  • the thick lines in the structures of FIGS. 15A to 15C represent linkers.
  • FIG. 16 shows the results of a cell proliferation test using each antibody or antibody fragment against PC3 cells.
  • the vertical axis represents absorbance, and the horizontal axis represents antibody concentration (nM).
  • antibodies or antibody fragments include anti-hTRAILR2 agonist monoclonal antibody KMDA2 antibody, hTRAILR2-hPSMA heterobispecific antibody E11_PN7 Hetero antibody, hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody E11-CH1-PN7VH antibody, hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody fragment E11-CH PN7VH F (ab ′) 2 or E11-CH1-PN7VH Fab or anti-DNP monoclonal antibody was used as a negative control.
  • FIG. 17 shows the results of a cell proliferation test using each antibody or antibody fragment against hPSMA / PC3 cells.
  • the vertical axis represents absorbance, and the horizontal axis represents antibody concentration (nM).
  • antibodies or antibody fragments include anti-hTRAILR2 agonist monoclonal antibody KMDA2 antibody, hTRAILR2-hPSMA heterobispecific antibody E11_PN7 Hetero antibody, hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody E11-CH1-PN7VH antibody, hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody fragment E11-CH PN7VH F (ab ′) 2 or E11-CH1-PN7VH Fab or anti-DNP monoclonal antibody was used as a negative control.
  • the present invention relates to a bispecific antibody comprising the antigen-binding domain that binds to TRAILR2 and the antigen-binding domain that binds to PSMA or the antibody fragment (hereinafter referred to as the bispecific antibody of the present invention or the antibody fragment).
  • the antigen-binding domain that binds to TRAILR2 or PSMA may be any one that specifically recognizes and binds to TRAILR2 or PSMA.
  • polypeptides, protein molecules and fragments thereof that can be produced by genetic recombination techniques such as antibodies, ligands, receptors, and naturally occurring interacting molecules, and conjugates of the protein molecules with small molecules or natural products Any form may be sufficient.
  • the antigen-binding domain may be a binding protein recombined using a binding domain of a known binding molecule such as an antibody, a ligand, or a receptor.
  • a recombination including the CDR of an antibody that binds to each antigen examples thereof include a protein, an antibody variable region including CDR, an antibody variable region, and a recombinant protein including a binding domain of a ligand that binds to each antigen.
  • the antigen-binding domain is preferably an antibody variable region.
  • the bispecific antibody or the antibody fragment of the present invention includes a bispecific antibody or the antibody fragment that activates the TRAILR2 only when bound to TRAILR2 and PSMA.
  • the bispecific antibody or the antibody fragment of the present invention binds to TRAILR2 and PSMA on a cell to trimerize and activate the TRAILR2, and the adapter molecule FADD / MORT1 via the death domain in TRAILR2 expressing cells.
  • cause various cellular reactions such as caspase-8 activation and caspase-8 activation.
  • cell proliferation is suppressed and cell death such as apoptosis is induced for the cells.
  • bispecific antibody or the antibody fragment of the present invention specifically, when it binds to TRAILR2 and PSMA, FADD / MORT1 association and caspase-8 activation in TRAILR2 expressing cells, and TRAILR2
  • bispecific antibody that produces at least one reaction selected from the group consisting of suppression of the growth of expressed cells and induction of cell death, or the antibody fragment thereof.
  • the bispecific antibody or the antibody fragment of the present invention may bind to TRAILR2 and PSMA expressed on the same cell, or may bind to TRAILR2 and PSMA expressed on different cells.
  • cell death includes both apoptosis and necrosis, but is preferably apoptosis.
  • TRAILR2 in the present invention is used synonymously with death receptor 5 (DR5), killer / dr5, and TRICK2.
  • TRAILR2 for example, NCBI accession No. in NCBI (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/) is used.
  • NCBI accession No. NP_003833 or NCBI accession No. Examples thereof include a polypeptide having an amino acid sequence in which one or more amino acids are deleted, substituted or added in the amino acid sequence shown in NP_064671, and having the function of TRAILR2.
  • a polypeptide having an amino acid sequence in which one or more amino acid residues are deleted, substituted, or added in the amino acid sequence shown in NP_066471, is obtained by site-directed mutagenesis [Molecular Cloning, A Laboratory Manual, Second Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989), Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons (1987-1997), Nucleic Acids Research, 10, 6487 (1982), Proc. Natl. Acad. Sci.
  • the number of amino acids to be deleted, substituted or added is not particularly limited, but is preferably 1 to several tens, for example 1 to 20, more preferably 1 to several, for example 1 to 5 amino acids. It is.
  • NCBI accession No. The base sequence of human TRAILR2 shown in the 294th to 1616th positions of NM_003842, and NCBI accession No. Examples include the base sequence of mouse TRAILR2 shown in NM_020275. Also, for example, NCBI accession No. NCBI accession No. NM_003842, a gene comprising a DNA encoding a polypeptide having a TRAILR2 function, comprising a base sequence in which one or more bases are deleted, substituted or added in the 294th to 1616th base sequences.
  • a gene comprising a DNA that hybridizes with the 294th to 1616th DNAs of NM_003842 under stringent conditions and that contains a DNA encoding a polypeptide having the function of TRAILR2 is also a gene encoding TAILR2 of the present invention. Is included. *
  • DNA that hybridizes under stringent conditions examples include NCBI accession No. Hybridization obtained by a colony hybridization method, a plaque hybridization method, a Southern blot hybridization method, a DNA microarray method, or the like using a DNA having the nucleotide sequence shown in positions 294 to 1616 of NM_003842 as a probe It means possible DNA. Specifically, 0.7 to 1.0 mol / L of sodium chloride is present using a DNA or DNA derived from a hybridized colony or plaque, or a filter or slide glass on which a PCR product or oligo DNA having the sequence is immobilized.
  • a polymorphism of the gene is often observed.
  • a gene in which a small-scale mutation has occurred in the nucleotide sequence due to such a polymorphism is also included in the gene encoding TRAILR2 of the present invention.
  • the numerical value of homology in the present invention may be a numerical value calculated using a homology search program known to those skilled in the art, but for the base sequence, BLAST [J. Mol. Biol ., 215, 403 (1990)] for amino acid sequences such as numerical values calculated using default parameters, BLAST2 [Nucleic Acids Research, 25, 3389 (1997), Genome Research, 7, 649 (1997), [http://www.ncbi.nlm.nih.gov/Education/BLASTinfo/information3.html] and numerical values calculated using default parameters. *
  • the default parameters are 5 if G (Cost to open gap) is a base sequence, 11 if it is an amino acid sequence, 2 if -E (Cost to extend gap) is a base sequence, and 1 if it is an amino acid sequence.
  • -Q (Penalty for nucleotide mismatch) is -3
  • -r (reward for nucleotide match) is 1
  • -e (expect value) is 10
  • 11 residues when -W (wordsize) is a base sequence
  • -y [Dropoff (X) for blast extensions in bits] is 20 if blastn, 7 for programs other than blastn
  • -X X dropoff value f
  • a polypeptide consisting of a partial sequence of the amino acid sequence of TRAILR2 can be prepared by methods known to those skilled in the art, for example, NCBI accession no. It can be produced by deleting a part of DNA encoding the amino acid sequence shown in NP_003833 and culturing a transformant into which an expression vector containing the DNA is introduced. Further, based on the polypeptide or DNA prepared by the above method, for example, NCBI accession No. A polypeptide having an amino acid sequence in which one or more amino acids are deleted, substituted or added in the partial sequence of the amino acid sequence shown in NP_003833 can be obtained.
  • a polypeptide comprising a partial sequence of the amino acid sequence of TRAILR2, or a polypeptide having an amino acid sequence in which one or more amino acids have been deleted, substituted or added in the partial sequence of the amino acid sequence of TRAILR2, is fluorenylmethyloxycarbonyl. It can also be produced by chemical synthesis methods such as the (Fmoc) method and the t-butyloxycarbonyl (tBoc) method.
  • NCBI accession No. The amino acid sequence of human TRAILR2 shown in NP_003833 is obtained from the known transmembrane region prediction program SOSUI (http://sosui.proteome.bio.tuat.ac.jp/sosuiframe0.html), TMHMM ver. 2 (http://www.cbs.dtu.dk/services/TMHMM-2.0/) or an area predicted using ExPASy Proteomics Server (http://Ca.expasy.org/) or the like.
  • SOSUI http://sosui.proteome.bio.tuat.ac.jp/sosuiframe0.html
  • TMHMM ver. 2 http://www.cbs.dtu.dk/services/TMHMM-2.0/
  • ExPASy Proteomics Server http://Ca.expasy.org/
  • TRAILR2 As a function of TRAILR2, when TRAIL (Apo-2L) ligand binds to TRAILR2, TRAILR2 trimerization is formed, and the association of the adapter molecule FADD / MORT1 is promoted through the intracellular death domain, and FADD / MORT1 As a result of the activation of caspase-8 bound to the cell, it has a function of inducing cell growth inhibition and apoptosis.
  • PSMA is used as flate hydrolase (FOLH), glutamate carboxypeptidase II (GCP2), prostate-specific membrane antigen (PSM or PSMA), and N-acetylated alpha1.
  • FOLH flate hydrolase
  • GCP2 glutamate carboxypeptidase II
  • PSM prostate-specific membrane antigen
  • N-acetylated alpha1 N-acetylated alpha1.
  • PSMA for example, NCBI accession No. NP_004467 or human PSMA containing the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 112 or NCBI accession No. Examples thereof include mouse PSMA containing the amino acid sequence shown in NP_058050. Also, for example, NCBI accession No. NP_004467, SEQ ID NO: 112 or NCBI accession No. A polypeptide having an amino acid sequence in which one or more amino acids are deleted, substituted or added in the amino acid sequence shown in NP_058050 and having the function of PSMA is mentioned.
  • a polypeptide having an amino acid sequence in which one or more amino acid residues are deleted, substituted, or added in the amino acid sequence shown in NP_058050 can be obtained by using, for example, NCBI accession No. NP_004467, SEQ ID NO: 112 or NCBI accession No. It can be obtained by introducing a site-specific mutation into DNA encoding the amino acid sequence shown in NP_058050.
  • the number of amino acids to be deleted, substituted or added is not particularly limited, but is preferably 1 to several tens, for example 1 to 20, more preferably 1 to several, for example 1 to 5 amino acids. It is.
  • NCBI accession No. NM_004476 or human PSMA gene comprising the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 64 or NCBI accession No.
  • a mouse PSMA gene containing the base sequence shown in NM016770 is exemplified.
  • NCBI accession No. NM_004476, SEQ ID NO: 64 or NCBI accession No. NCBI accession No. a gene comprising DNA encoding a polypeptide having a base sequence in which one or more bases are deleted, substituted or added in the base sequence shown in NM016770 and having a PSMA function.
  • a gene comprising a DNA that hybridizes with the DNA shown in NM016770 under stringent conditions and containing a DNA encoding a polypeptide having a PSMA function is also a gene encoding the PSMA of the present invention.
  • PSMA functions include glutamate carboxypeptidase, N-acetyl ⁇ -linked acid dipeptidase and folate hydrolase.
  • binding to TRAILR2 refers to recognizing and binding to the extracellular region of TRAILR2.
  • binding to PSMA refers to recognizing and binding to the extracellular region of PSMA.
  • the antibody or the antibody fragment binds to at least one of TRAILR2 and PSMA, for example, using at least one of TRAILR2 and PSMA using a known immunological detection method, preferably fluorescent cell staining. It can be confirmed by a method for confirming the binding between the expressed cell and the antibody.
  • known immunological detection methods [Monoclonal Antibodies-Principles and Practice, Third Edition, Academic Press (1996), Antibodies-A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory (1988), Monoclonal Antibody Experiment Manual, Kodansha Scientific (1987)] can also be used in combination.
  • an antibody has apoptotic activity means that cell death is induced by binding of the antibody to TRAILR2 on the cell.
  • Whether the bispecific antibody of the present invention has apoptotic activity can be confirmed by the following method. For example, cells expressing TRAILR2 and PSMA are seeded in a 96-well plate, and after adding an antibody and culturing for a certain period, WST-8 reagent (manufactured by Dojindo) is reacted, and the absorbance at 450 nm is measured with a plate reader. To measure cell viability.
  • the antibody refers to a gene (referred to as “antibody gene”) that encodes all or part of the variable region of the heavy chain and the constant region of the heavy chain, and the variable region of the light chain and the constant region of the light chain.
  • antibody gene a gene that encodes all or part of the variable region of the heavy chain and the constant region of the heavy chain, and the variable region of the light chain and the constant region of the light chain.
  • the H chain refers to a polypeptide having a larger molecular weight among the two types of polypeptides constituting the immunoglobulin molecule.
  • the heavy chain determines the class and subclass of the antibody. IgA, IgD, IgE, IgG, and IgM each have an ⁇ chain, ⁇ chain, ⁇ chain, ⁇ chain, and ⁇ chain as heavy chains, and the heavy chain constant regions are characterized by different amino acid sequences.
  • the light chain (L chain) refers to a polypeptide having a smaller molecular weight among the two types of polypeptides constituting the immunoglobulin molecule. In the case of a human antibody, there are two types of light chain: a kappa chain and a lambda chain.
  • the V region usually refers to a region rich in diversity present in the amino acid sequence on the N-terminal side of immunoglobulin. Since the part other than the variable region has a structure with little diversity, it is called a constant region (C region).
  • the variable regions of the heavy and light chains associate to form an antigen binding site and determine the binding properties of the antibody to the antigen.
  • variable region corresponds to the first to 117th amino acid sequences in the EU index of Kabat et al. (Kabat et. Al., Sequences of proteins of immunological interest, 1991 Fifth edition). Corresponds to the amino acid sequence after the 118th.
  • first to 107th amino acid sequences in Kabat numbering correspond to variable regions
  • the 108th and subsequent amino acid sequences correspond to constant regions.
  • the heavy chain variable region or the light chain variable region is abbreviated as VH or VL.
  • An antigen-binding site is a site that recognizes and binds to an antigen in an antibody and refers to a site that forms a three-dimensional structure complementary to an antigenic determinant (epitope).
  • the antigen binding site causes a strong intermolecular interaction with the antigenic determinant.
  • the antigen binding site is composed of VH and VL containing at least three CDRs. For human antibodies, VH and VL each have three CDRs. These CDRs are referred to as CDR1, CDR2, and CDR3 in order from the N-terminal side.
  • CH the heavy chain constant region or the light chain constant region
  • CH is classified by ⁇ chain, ⁇ chain, ⁇ chain, ⁇ chain and ⁇ chain which are subclasses of heavy chain.
  • CH is composed of a CH1 domain, a hinge domain, a CH2 domain, and a CH3 domain arranged in order from the N-terminal side.
  • the CH2 domain and the CH3 domain are collectively referred to as an Fc region.
  • CL is classified into two subclasses called C ⁇ chain and C ⁇ chain.
  • an antibody that binds to TRAILR2 refers to a monoclonal antibody that recognizes and binds to the extracellular region of TRAILR2.
  • the antibody that binds to PSMA refers to a monoclonal antibody that recognizes and binds to the extracellular region of PMSA.
  • the antibody includes a polyclonal antibody and an oligoclonal antibody.
  • Monoclonal antibodies are antibodies that are secreted by antibody-producing cells that retain singleness, and recognize a single epitope (also referred to as an antigenic determinant). Monoclonal antibody molecules have the same amino acid sequence (primary structure) and have a single structure. Polyclonal antibody refers to a population of antibody molecules secreted by antibody-producing cells of different clones. An oligoclonal antibody refers to a population of antibody molecules in which a plurality of different monoclonal antibodies are mixed.
  • Epitope refers to the structural site of an antigen that is recognized and bound by an antibody.
  • epitopes include a single amino acid sequence that is recognized and bound by a monoclonal antibody, a three-dimensional structure consisting of amino acid sequences, a three-dimensional structure consisting of amino acid sequences to which sugar chains are bound, and amino acid sequences to which sugar chains are bound. .
  • Examples of the monoclonal antibody in the present invention include an antibody produced by a hybridoma and a recombinant antibody produced by a transformant transformed with an expression vector containing an antibody gene.
  • a hybridoma can be prepared, for example, by preparing an antigen, obtaining antibody-producing cells having antigen specificity from an animal immunized with the antigen, and further fusing the antibody-producing cells and myeloma cells. It can.
  • the desired monoclonal antibody can be obtained by culturing the hybridoma or administering the hybridoma to an animal to cause the hybridoma to undergo ascites tumor, and separating and purifying the culture medium or ascites. Any animal can be used as the animal to be immunized with the antigen as long as it can produce a hybridoma, but mice, rats, hamsters, rabbits and the like are preferably used.
  • a hybridoma can be prepared by obtaining a cell having antibody-producing ability from such an immunized animal, immunizing the cell in vitro, and then fusing it with a myeloma cell.
  • recombinant antibody in the present invention examples include, for example, a recombinant mouse antibody, a recombinant rat antibody, a recombinant hamster antibody, a recombinant rabbit antibody, a human type chimeric antibody (also referred to as a chimeric antibody), a humanized antibody (CDR grafted antibody).
  • antibodies produced by genetic recombination techniques such as human antibodies.
  • a genetically modified antibody it is possible to determine which animal species-derived heavy chain and light chain variable regions and constant regions are to be applied according to the target animal species and purpose.
  • the variable region can be derived from a non-human animal such as human or mouse, and the constant region and the linker can be derived from human.
  • the chimeric antibody refers to an antibody composed of VH and VL of an antibody other than a human (non-human animal) and CH and CL of a human antibody.
  • the non-human animal any mouse, rat, hamster, rabbit, etc. can be used as long as it can produce a hybridoma.
  • a chimeric antibody is obtained by obtaining cDNAs encoding VH and VL from a hybridoma derived from a non-human animal producing a monoclonal antibody and inserting them into expression vectors for animal cells having DNA encoding CH and CL of the human antibody, respectively. It can be produced by constructing a chimeric antibody expression vector, introducing it into an animal cell and expressing it.
  • the humanized antibody refers to an antibody obtained by grafting CDRs of VH and VL of a non-human animal antibody into CDRs corresponding to VH and VL of a human antibody.
  • An area other than the CDRs of VH and VL is referred to as a framework area (hereinafter referred to as FR).
  • the humanized antibody is composed of a cDNA encoding a VH amino acid sequence consisting of a VH CDR amino acid sequence of a non-human animal antibody and a VH FR amino acid sequence of any human antibody, and a VL CDR amino acid of a non-human animal antibody.
  • a cDNA encoding the amino acid sequence of VL consisting of the sequence and the amino acid sequence of FR of VL of any human antibody is constructed, and inserted into an expression vector for animal cells having DNA encoding CH and CL of human antibody, respectively.
  • An antibody expression vector can be constructed, introduced into an animal cell and expressed.
  • a human antibody originally refers to an antibody that naturally exists in the human body, but a human antibody phage library and a human antibody-producing transgene prepared by recent advances in genetic engineering, cell engineering, and developmental engineering techniques. Also included are antibodies obtained from transgenic animals.
  • the antibody naturally present in the human body is, for example, immortalized by infecting human peripheral blood lymphocytes with an EB virus or the like, and cloning to culture the lymphocytes that produce the antibody. It can be obtained by purifying the antibody.
  • the human antibody phage library is a library in which antibody fragments such as Fab and scFv are expressed on the phage surface by inserting antibody genes prepared from human B cells into the phage genes. From this library, phages expressing an antibody fragment having the desired antigen-binding activity on the surface can be recovered using the binding activity to the substrate on which the antigen is immobilized as an index. The antibody fragment can be further converted into a human antibody molecule consisting of two complete heavy chains and two complete light chains by genetic engineering techniques.
  • a human antibody-producing transgenic animal means an animal in which a human antibody gene is incorporated into cells.
  • human antibody-producing transgenic mice can be produced by introducing human antibody genes into mouse ES cells, transplanting the ES cells into mouse early embryos, and then generating individuals.
  • Human antibodies derived from human antibody-producing transgenic animals can produce and accumulate antibodies in the culture supernatant by obtaining and culturing hybridomas using conventional hybridoma production methods for non-human animals. Can be prepared.
  • the CH of the recombinant antibody may be any as long as it belongs to human immunoglobulin, but is preferably human immunoglobulin G (hIgG) class. Furthermore, any of subclasses such as hIgG1, hIgG2, hIgG3, and hIgG4 belonging to the hIgG class can be used.
  • the CL of the recombinant antibody may be any CL as long as it belongs to human immunoglobulin, and those of ⁇ class or ⁇ class can be used.
  • a bispecific antibody refers to an antibody having two types of antigen-binding domains having different specificities. Each antigen binding domain of a bispecific antibody may bind to different epitopes of a single antigen or may bind to different antigens.
  • a single-molecule bispecific antibody has one or more antigen-binding domains bound to different epitopes of a single antigen, or different antigens, that is, each of them binds with a monovalence or more.
  • a bispecific antibody when one molecule of a bispecific antibody has two antigen-binding domains that bind to TRAILR2 and two antigen-binding domains that bind to PSMA, such bispecific antibodies are divalent to TRAILR2 and PSMA, respectively. Join with.
  • the bispecific antibody per molecule may bind to TRAILR2 or PSMA at any valence, but preferably binds to TRAILR2 and PSMA at least each bivalently.
  • the bispecific antibody of the present invention also includes an antibody containing a plurality of antigen-binding domains bound via an appropriate linker, such as a linker containing an immunoglobulin domain or a fragment thereof.
  • an appropriate linker such as a linker containing an immunoglobulin domain or a fragment thereof.
  • the bispecific antibody of the present invention can be produced by using an existing production technique ([Nature Protocols, 9,2450-2463 (2014)], International Publication No. 1998/050431, International Publication No. 2001/7734, International Publication No. 2002/002773. And International Publication No. 2009/131239).
  • the antigen binding domain that binds to TRAILR2 may be located on the N-terminal side or the C-terminal side of the antigen-binding domain that binds to PSMA, It is preferably located on the N-terminal side.
  • the V region of an antibody can be used as an antigen-binding domain.
  • an antibody containing a heavy chain containing a plurality of VHs in one heavy chain, and a heavy chain containing one VH examples include antibodies containing two.
  • bispecific antibody comprising a heavy chain comprising a plurality of VHs in one heavy chain, more specifically, a heavy chain comprising two or more VHs linked together using a linker comprising an immunoglobulin domain or a fragment thereof
  • the antibody containing is mentioned.
  • different immunoglobulin domains or fragments thereof may be used, or the same immunoglobulin domain or fragments thereof may be used.
  • the length and type of the immunoglobulin domain or a fragment thereof can be changed so that each VH can specifically bind to an antigen.
  • the bispecific antibody of the present invention has at least one feature shown in the following (a) to (e).
  • one heavy chain polypeptide includes a plurality (eg, 2-5) of different VHs, and the VHs are not in close proximity to each other;
  • VH is linked in tandem (tandem) via a polypeptide linker of 10 amino acids or more, more specifically, VH comprises a linker comprising, for example, all or part of the amino acid sequence of an immunoglobulin domain Connected using,
  • C the light chain and the heavy chain are associated to form an antigen binding site;
  • D As shown in FIG.
  • the constant region of the heavy chain is, for example, all or part of the constant region of the natural antibody heavy chain.
  • the position of the VH of the antibody that binds to TRAILR2 contained in the bispecific antibody and the VH of the antibody that binds to PSMA can be appropriately selected.
  • the VH of the antibody that binds to TRAILR2 may be located on the N-terminal side or the C-terminal side of the VH of the antibody that binds to PSMA. However, it is preferably located on the N-terminal side.
  • the VL contained in the bispecific antibody may be the same VL or a different VL.
  • a bispecific antibody having the same VL and capable of binding to two different antigens or to two different epitopes on the same antigen has a variable antigen, each variable region having its own specific antigen.
  • any VH that has been optimized or modified so that it can bind to an epitope may be used.
  • an appropriate VH can be selected by using a method such as screening by amino acid modification or phage display.
  • the linker refers to a chemical structure that binds a plurality of antigen-binding domains, and is preferably a polypeptide.
  • the linker used in the bispecific antibody of the present invention include, for example, a linker containing all or part of an amino acid sequence of an immunoglobulin domain, and all or part of an amino acid sequence of a linker comprising a plurality of immunoglobulin domains. A linker etc. are mentioned.
  • amino acid sequence selected from immunoglobulins as a linker containing a partial amino acid sequence of an immunoglobulin domain may be intermittent or continuous, but a continuous amino acid sequence is preferred.
  • the immunoglobulin domain is a peptide consisting of about 100 amino acid residues having an amino acid sequence similar to immunoglobulin and having at least two cysteine residues.
  • the immunoglobulin domain includes a polypeptide containing a plurality of immunoglobulin domains of the above-mentioned minimum unit.
  • Immunoglobulin domains include immunoglobulin heavy chain VH, CH1, CH2 and CH3, and immunoglobulin light chain VL and CL.
  • the animal species of immunoglobulin is not particularly limited, but is preferably human.
  • the subclass of the constant region of the immunoglobulin heavy chain may be any of IgD, IgM, IgG1, IgG2, IgG3, IgG4, IgA1, IgA2, and IgE, preferably IgG-derived and IgM-derived.
  • the constant region subclass of the immunoglobulin light chain may be either ⁇ or ⁇ .
  • Immunoglobulin domains also exist in non-immunoglobulin proteins.
  • immunoglobulin domains included in proteins belonging to the immunoglobulin superfamily such as major histocompatibility antigen (MHC), CD1, B7 and T cell receptor (TCR). Is mentioned.
  • MHC major histocompatibility antigen
  • CD1, B7 CD1, B7 and T cell receptor (TCR). Is mentioned.
  • TCR T cell receptor
  • CH1 indicates a region having the 118th to 215th amino acid sequence indicated by the EU index.
  • the hinge region is a region having the 216th to 230th amino acid sequence indicated by the EU index of Kabat et al.
  • CH2 is the region having the 231st to 340th amino acid sequence indicated by the EU index of Kabat et al.
  • CH3 refers to the region having the amino acid sequence from the 341th to the 446th amino acid sequence indicated by the EU index of Kabat et al.
  • a hinge region there is a highly flexible amino acid region.
  • CL is a region having the 108th to 214th amino acid sequence indicated by Kabat numbering in the case of a human antibody ⁇ chain, and a region having the 108th to 215th amino acid sequence in the case of a ⁇ chain. Respectively.
  • linker used in the bispecific antibody of the present invention examples include an immunoglobulin domain consisting of CH1-hinge-CH2-CH3, an immunoglobulin domain consisting of CH1-hinge-CH2, arranged in order from the N-terminus to the C-terminus, Immunoglobulin domain consisting of CH1-hinge, immunoglobulin domain consisting of CH1, fragment on the N-terminal side of CH1, CH1 fragment consisting of 14 amino acid residues whose 14th amino acid residue is Cys, and 1 to 2 from the N-terminus of CH1 Examples include, but are not limited to, a CH1 fragment consisting of the 14th amino acid residue, and amino acid sequences of these immunoglobulin domain fragments in which one or more amino acid residues are modified.
  • linker all or a part of the amino acid sequence consisting of CH1, hinge, CH2 and CH3 of the antibody can be used in appropriate combination. Moreover, those amino acid sequences can be partially deleted or used in a different order.
  • the subclass of the antibody used for the linker is not particularly limited, but is preferably IgM or IgG4, and more preferably IgG4.
  • linker examples include a linker consisting of 14 amino acid residues at the 1st to 14th amino acids at the N-terminal of IgG1 CH1 represented by SEQ ID NO: 11, and an N of IgM CH1 represented by SEQ ID NO: 12.
  • linker consisting of amino acid residues 1 to 14 from the end examples include a linker consisting of IgG4 CH1 represented by SEQ ID NO: 93, and more preferably a linker consisting of IgG4 CH1 represented by SEQ ID NO: 93.
  • One or more amino acid residues are deleted, added, substituted or inserted in the amino acid sequence constituting the bispecific antibody of the present invention or the antibody fragment, and have the same activity as the above-described antibody or antibody fragment thereof.
  • An antibody or an antibody fragment thereof is also encompassed in the bispecific antibody or antibody fragment thereof of the present invention.
  • the number of amino acids to be deleted, substituted, inserted and / or added is one or more, and the number is not particularly limited. However, Molecular ⁇ Cloning, The Second Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989), Current Protocols , John Willy & Sons (1987-1997), Nucleic Acids Research, 10, 6487 (1982), Proc. Natl. Acad. Sci., USA, 79, 6409 (1982), Gene, 34, 315 (1985), Nucleic Deletions, substitutions, insertions or additions using well-known techniques such as site-directed mutagenesis described in Acids Research, 13, 4431 (1985), Proc. Natl. Acad. Sci USA, 82, 488 (1985) It is a number that can be. For example, the number is 1 to several tens, preferably 1 to 20, more preferably 1 to 10, and still more preferably 1 to 5.
  • deletion, substitution, insertion or addition of one or more amino acid residues in the amino acid sequence of the above-mentioned bispecific antibody of the present invention indicates the following. It means that there is a deletion, substitution, insertion or addition of one or more amino acid residues in any and one or more amino acid sequences in the same sequence. In addition, deletion, substitution, insertion or addition may occur simultaneously, and the amino acid residue to be substituted, inserted or added may be either a natural type or a non-natural type.
  • natural amino acid residues include L-alanine, L-asparagine, L-aspartic acid, L-glutamine, L-glutamic acid, glycine, L-histidine, L-isoleucine, L-leucine, L-lysine, L -Arginine, L-methionine, L-phenylalanine, L-proline, L-serine, L-threonine, L-tryptophan, L-tyrosine, L-valine and L-cysteine.
  • amino acid residues that can be substituted with each other are shown below. Amino acid residues contained in the same group can be substituted for each other.
  • Group A leucine, isoleucine, norleucine, valine, norvaline, alanine, 2-aminobutanoic acid, methionine, O-methylserine, t-butylglycine, t-butylalanine, cyclohexylalanine
  • Group B aspartic acid, glutamic acid, isoaspartic acid, Isoglutamic acid, 2-aminoadipic acid, 2-aminosuberic acid
  • Group C asparagine, glutamine
  • D lysine, arginine, ornithine, 2,4-diaminobutanoic acid, 2,3-diaminopropionic acid
  • Group E proline, 3 -Hydroxyproline, 4-hydroxyproline
  • Group F serine, threonine, homoserine
  • Group G phenylalanine, tyrosine
  • the bispecific antibody or the antibody fragment of the present invention encompasses an antibody containing any amino acid residue modified after translation.
  • Post-translational modifications include, for example, deletion of lysine residues at the C-terminus of the H chain [lysine clipping] and conversion of glutamine residues at the N-terminus of polypeptides to pyroglutin (puroGlu). [Beck et al, Analytical Chemistry, 85, 715-736 (2013)].
  • bispecific antibody of the present invention include any one of the bispecific antibodies selected from the group consisting of the following (1) to (3).
  • a bispecific antibody comprising a V region of an antibody that binds to TRAILR2 and a V region of an antibody that binds to PSMA
  • a bispecific antibody comprising CDR1-3 and VL CDR1-3 of VL of an antibody that binds to TRAILR2, and CDR1-3 of VH and VL CDR1-3 of an antibody that binds PSMA
  • TRAILR2 Bispecific antibodies comprising VH and VL of an antibody that binds to and VH and VL of an antibody that binds to PSMA.
  • the CDR1 to VL3 of the antibody that binds to TRAILR2 and the CDR1 to 3 of the VL of the antibody that binds to PSMA may be the same or different. Good, but preferably the same.
  • the VL of the antibody that binds to TRAILR2 may be the same as or different from the VL of the antibody that binds to PSMA. Is preferred.
  • the amino acid sequence of VH CDR1 to 3 of an antibody that binds to TRAILR2 comprises the amino acid sequence represented by SEQ ID NOs: 70 to 72, respectively, and CDRs 1 to 3 of VL Bispecific antibodies, each of which comprises the amino acid sequences represented by SEQ ID NOs: 74 to 76, respectively.
  • the amino acid sequences of CDRs 1 to 3 of VH include the amino acid sequences represented by SEQ ID NOs: 70 to 72, respectively, and the amino acid sequences of CDRs 1 to 3 of VL include the amino acid sequences represented by SEQ ID NOs: 74 to 76, respectively.
  • An example of an antibody that binds to TRAILR2 includes an anti-human TRAILR2 monoclonal antibody E11 antibody.
  • the amino acid sequence of CDR1 to V3 of VH and the amino acid sequence of CDR1 to 3 of VL of an antibody that binds to TRAILR2 are represented by SEQ ID NOs: 70 to 72, respectively, and SEQ ID NOs: An amino acid sequence represented by 74-76 and at least 35%, at least 40%, at least 45%, at least 50%, at least 55%, at least 60%, at least 65%, at least 70%, at least 75%, at least 80% Also included are bispecific antibodies that are at least 85%, at least 90%, at least 95%, at least 99% homologous.
  • the amino acid sequence of VH of the antibody that binds to TRAILR2 includes the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 118, and the amino acid sequence of VL is represented by SEQ ID NO: 119
  • bispecific antibodies comprising sequences.
  • an antibody that binds to TRAILR2 in which the amino acid sequence of VH includes the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 118 and the amino acid sequence of VL includes the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 119 is an anti-human TRAILR2 monoclonal antibody E11 An antibody etc. are mentioned.
  • the VH and VL amino acid sequences of the antibody that binds to TRAILR2 are at least 35% of the amino acid sequence of VH represented by SEQ ID NO: 118 and the amino acid sequence of VL represented by 119, At least 40%, at least 45%, at least 50%, at least 55%, at least 60%, at least 65%, at least 70%, at least 75%, at least 80%, at least 85%, at least 90%, at least 95%, at least 99 Also included are bispecific antibodies that are% homologous.
  • antibodies that bind to TRAILR2 include the antibodies described in any one of (1) to (3) below.
  • the TRAILR2 antibody alone does not show at least one of cell growth inhibitory activity and cell death inducing activity, it is a bispecific antibody that binds a binding domain to other antigens, and for the first time has cell growth inhibitory activity and cell death inducing activity. An antibody exhibiting at least one.
  • the amino acid sequence of CDR1 to V3 of VH of an antibody that binds to PSMA is any one amino acid sequence selected from the group consisting of the following (A) to (D): And a bispecific antibody in which the amino acid sequences of CDRs 1 to 3 of VL include the amino acid sequences represented by SEQ ID NOs: 74 to 76, respectively.
  • (A) the amino acid sequences of CDRs 1-3 of VH are represented by SEQ ID NOs: 78, 82 and 84
  • (B) the amino acid sequences of VH CDRs 1 to 3 are represented by SEQ ID NOs: 78, 79, and 80, respectively
  • (C) The amino acid sequences of CDR1 to V3 of VH are represented by SEQ ID NOs: 78, 82 and 80, respectively.
  • the amino acid sequences of CDR1 to 3 of (D) VH are represented by SEQ ID NOs: 96 to 98, respectively. Amino acid sequence.
  • variable region of the antibody that binds to PSMA provided in the bispecific antibody of the present invention specifically includes any one VH selected from the group consisting of the following (a) to (d), and And VL including the amino acid sequences represented by SEQ ID NOs: 74 to 76, respectively.
  • VH comprising the amino acid sequences represented by SEQ ID NOs: 78, 82 and 84 as CDR1 to 3, respectively.
  • B VH comprising the amino acid sequences represented by SEQ ID NOs: 78, 79 and 80 as CDR1 to 3, respectively.
  • VH including the amino acid sequences represented by SEQ ID NOs: 78, 82 and 80 as CDR1 to 3, respectively
  • VH including the amino acid sequences represented by SEQ ID NOs: 96 to 98 as CDR1 to 3, respectively.
  • An antibody that binds to PSMA comprising VH, wherein CDR1-3 comprise the amino acid sequences represented by SEQ ID NOs: 78, 82, and 84, respectively, and VL comprising CDR1-3, each comprising the amino acid sequence represented by SEQ ID NOs: 74-76
  • anti-human PSMA monoclonal antibody PN7 antibody and the like can be mentioned.
  • an antibody that binds to PSMA comprising VH, wherein CDR1-3 comprise the amino acid sequences represented by SEQ ID NOs: 78, 79, and 80, respectively, and VL comprising CDR1-3, each comprising the amino acid sequence represented by SEQ ID NOs: 74-76
  • anti-human PSMA monoclonal antibody PI134 antibody, PI143 antibody, PI105 antibody, PI127 antibody, PI108 antibody, PI115 antibody, PL223 antibody and the like can be mentioned.
  • An antibody that binds to PSMA including VH in which CDR1 to 3 include amino acid sequences represented by SEQ ID NOs: 78, 82, and 80, respectively, and VL that includes amino acid sequences in which CDR1 to 3 are represented to SEQ ID NOs: 74 to 76, respectively.
  • anti-human PSMA monoclonal antibody PI101 antibody, PI118 antibody and the like can be mentioned.
  • One of the antibodies that bind to PSMA including VH in which CDR1 to 3 each include an amino acid sequence represented by SEQ ID NOs: 96 to 98, and VL that includes CDR1 to 3 each representing an amino acid sequence represented in SEQ ID NOs: 74 to 76
  • anti-human PSMA monoclonal antibody PN170 antibody and the like can be mentioned.
  • any one VH selected from the group consisting of the above (a) to (d), which is a VH of an antibody that binds to PSMA, and CDRs 1 to 3 are SEQ ID NOs: 74 to 76, respectively. And at least 35%, at least 40%, at least 45%, at least 50%, at least 55%, at least 60%, at least 65%, at least 70%, at least 75%, respectively. Also included are bispecific antibodies comprising VH and VL comprising amino acid sequences that are at least 80%, at least 85%, at least 90%, at least 95%, at least 99% homologous.
  • variable region of the antibody that binds to PSMA provided in the bispecific antibody of the present invention specifically includes any one of VH selected from the group consisting of the following (e) to (o), and VL including the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 119 can be mentioned.
  • an antibody that binds to human PSMA containing VH including the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 122 and VL including the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 119 includes an anti-human PSMA monoclonal antibody PN7 antibody and the like. It is done.
  • an antibody that binds to human PSMA containing VH including the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 120 and VL including the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 119 includes an anti-human PSMA monoclonal antibody PI134 antibody and the like. It is done.
  • an anti-human PSMA monoclonal antibody PI143 antibody and the like can be mentioned. It is done.
  • an anti-human PSMA monoclonal antibody PI105 antibody and the like can be mentioned. It is done.
  • an anti-human PSMA monoclonal antibody PI127 antibody and the like can be mentioned. It is done.
  • anti-human PSMA monoclonal antibody PI108 antibody As one embodiment of an antibody that binds to human PSMA including VH including the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 124 and VL including the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 119, anti-human PSMA monoclonal antibody PI108 antibody and the like can be mentioned. It is done.
  • an anti-human PSMA monoclonal antibody PI115 antibody and the like can be mentioned. It is done.
  • an anti-human PSMA monoclonal antibody PL223 antibody and the like can be mentioned. It is done.
  • an anti-human PSMA monoclonal antibody PI101 antibody and the like can be mentioned. It is done.
  • anti-human PSMA monoclonal antibody PI118 antibody As one embodiment of an antibody that binds to human PSMA including VH including the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 126 and VL including the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 119, anti-human PSMA monoclonal antibody PI118 antibody and the like can be mentioned. It is done.
  • an antibody that binds to human PSMA containing VH including the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 130 and VL including the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 119 includes an anti-human PSMA monoclonal antibody PN170 antibody and the like. It is done.
  • the bispecific antibody of the present invention comprises any one VH selected from the group consisting of (e) to (o) above, which is a VH of an antibody that binds to PSMA, and the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 119.
  • bispecific antibodies comprising VH and VL comprising amino acid sequences that are at least 90%, at least 95%, at least 99% homologous.
  • the anti-PSMA antibody used for the bispecific antibody of the present invention also includes the antibody described in (1) or (2) below.
  • the amino acid sequences of CDRs 1 to 3 of VH are represented by SEQ ID NOs: 78, 82 and 84, respectively, and the amino acid sequences of CDRs 1 to 3 of VL are respectively represented by SEQ ID NOs: 74 to 76.
  • the amino acid sequence of CDR1 to 3 of VH, the amino acid sequence represented by SEQ ID NOs: 78, 89 and 80, respectively, and the amino acid sequence of CDR1 to 3 of VL represent the amino acid sequences represented by SEQ ID NOs: 74 to 76, respectively.
  • amino acid sequences of CDRs 1-3 of VH are represented by SEQ ID NOs: 74-76
  • amino acid sequence of the antibody or VH CDR1 to 3 of the VH Antibodies wherein the amino acid sequence represented by issue 96-98, and amino acid sequences of CDRl ⁇ 3 of VL binds to PSMA by competing antibody, and comprising the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 74-76.
  • the amino acid sequences of CDR 1 to 3 of VH are represented by SEQ ID NOs: 78, 82 and 84, respectively, and the amino acid sequences of CDR 1 to 3 of VL are respectively represented by SEQ ID NOs: 74 to 76.
  • the amino acid sequence of CDR1 to 3 of VH, the amino acid sequence represented by SEQ ID NOs: 78, 89 and 80, respectively, and the amino acid sequence of CDR1 to 3 of VL represent the amino acid sequences represented by SEQ ID NOs: 74 to 76, respectively.
  • amino acid sequences of CDRs 1-3 of VH are represented by SEQ ID NOs: 74-76
  • amino acid sequence of the antibody or VH CDR1 to 3 of the VH Amino acid sequence represented by issue 96-98, and amino acid sequence of VL of CDRl ⁇ 3 is an antibody comprising the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 74-76, an antibody that binds to the same epitope.
  • variable region of the antibody that binds to TRAILR2 may be located on the N-terminal side or the C-terminal side of the variable region of the antibody that binds to PSMA via a linker. However, it is preferably located on the N-terminal side via a linker.
  • a bispecific antibody in which the variable region of an antibody that binds to TRAILR2 is located N-terminal to the variable region of an antibody that binds to PSMA consists of an antibody VH that binds to TRAILR2, a linker, and a VH that binds to PSMA
  • Examples thereof include a bispecific antibody in which the amino acid sequence of the polypeptide is any one amino acid sequence selected from the group consisting of the following (A) to (M).
  • A the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 131
  • B the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 132
  • C the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 133
  • D the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 134
  • E the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 135
  • F the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 136
  • G the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 137
  • H the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 138
  • I the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 139
  • J the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 140
  • K the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 141
  • L the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 142
  • M the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 143.
  • bispecific antibody that binds to TRAILR2 and PSMA, in which the amino acid sequence of the polypeptide consisting of the VH of the antibody that binds to TRAILR2 and the VH of the antibody that binds to PSMA is the amino acid sequence described in (A) to (M) above
  • bispecific antibody E11-CH1-PI134 antibody, E11-CH1-PI101VH antibody, E11-CH1-PI105VH antibody, E11-CH1-PI108VH antibody, E11-CH1 antibody, which bind to human TRAILR2 and human PSMA, respectively -PI115VH antibody, E11-CH1-PI118VH antibody, E11-CH1-PI127VH antibody, E11-CH1-PI143VH antibody, E11-CH1-PL223VH antibody, E11-CH1-PN7VH antibody, E 1-CH1-PN170VH antibody, and the like E11-GL-PI134VH antibodies, and E11-ML-
  • the bispecific antibody or the antibody fragment of the present invention includes an antibody having effector activity or the antibody fragment.
  • the effector activity refers to antibody-dependent cytotoxic activity caused through the Fc region of the antibody.
  • antibody-dependent cytotoxic activity (ADCC activity), complement-dependent cytotoxicity Activity (Complement-Dependent Cytotoxicity activity; CDC activity), antibody-dependent phagocytic activity (Antibody-dependent cellular phagocytosis activity; ADCP activity) and opson effects such as macrophages and dendritic cells.
  • ADCC activity antibody-dependent cytotoxic activity
  • CDC activity complement-dependent cytotoxicity Activity
  • ADCP activity antibody-dependent phagocytic activity
  • opson effects such as macrophages and dendritic cells.
  • ADCC activity and CDC activity can be measured using a known measurement method [Cancer Immunol. Immunol., 36, 373 (1993)].
  • ADCC activity means that an antibody bound to an antigen on a target cell binds to an Fc receptor of an immune cell through the Fc region of the antibody, thereby activating an immune cell (natural killer cell, etc.) and damaging the target cell. Activity.
  • the Fc receptor is a receptor that binds to the Fc region of an antibody, and induces various effector activities by the binding of the antibody.
  • Each FcR corresponds to an antibody subclass, and IgG, IgE, IgA, and IgM specifically bind to Fc ⁇ R, Fc ⁇ R, Fc ⁇ R, and Fc ⁇ R, respectively.
  • Fc ⁇ RI CD64
  • Fc ⁇ RII CD32
  • Fc ⁇ RIII CD16 subtypes in Fc ⁇ R
  • each subtype includes Fc ⁇ RIA, Fc ⁇ RIB, Fc ⁇ RIIC, Fc ⁇ RIIA, Fc ⁇ RIIC, Fc ⁇ RIIC, Fc ⁇ RIIIA and Fc ⁇ RIIIB isoforms.
  • Fc ⁇ Rs are present on different cells [Annu. Rev. Immunol. 9: 457-492 (1991)].
  • Fc ⁇ RIIIB is specifically expressed on neutrophils
  • Fc ⁇ RIIIA is expressed on monocytes, natural killer cells (NK cells), macrophages and some T cells.
  • NK cell-dependent ADCC activity is induced through the binding of the antibody to Fc ⁇ RIIIA.
  • CDC activity refers to an activity in which an antibody bound to an antigen on a target cell activates a series of cascades (complement activation pathways) composed of complement-related proteins in the blood and damages the target cell.
  • cascades complement activation pathways
  • protein fragments generated by complement activation induce immune cell migration and activation.
  • the cascade of CDC activity is initiated by first binding C1q to the Fc region and then the two serine proteases C1r and C1s to form the C1 complex.
  • the CDC activity or ADCC activity of the bispecific antibody or the antibody fragment of the present invention against antigen-expressing cells can be evaluated by a known measurement method [Cancer Immunol. Immunol., 36, 373 (1993)].
  • an N-linked complex sugar chain that binds to the 297th asparagine (Asn) of the Fc region (constant region consisting of CH2 and CH3 domains) of the antibody is used.
  • Methods for controlling the amount of fucose (also referred to as core fucose) that binds ⁇ -1,6 to N-acetylglucosamine (GlcNAc) present at the reducing end WO 2005/035586, WO 2002/31140 and International (Publication No. 00/61739) and a method of controlling by modification of amino acid residues in the Fc region of an antibody (International Publication No. 00/42072) are known.
  • the ADCC activity of the antibody can be increased or decreased.
  • a bispecific antibody is used using a host cell deficient in the ⁇ 1,6-fucose transferase gene. By expressing it, a bispecific antibody having high ADCC can be obtained.
  • an antibody is produced using a host cell into which an ⁇ 1,6-fucose transferase gene has been introduced. By expressing it, a bispecific antibody having low ADCC activity can be obtained.
  • ADCC activity and CDC activity can be increased or decreased by modifying amino acid residues in the Fc region of the bispecific antibody. For example, by using the amino acid sequence of the Fc region described in US Patent Application Publication No. 2007/0148165, the CDC activity of a bispecific antibody can be increased.
  • ADCC activity can be achieved by performing amino acid modification described in US Pat. No. 6,737,056, US Pat. No. 7,297,775, US Pat. No. 7,317,091, and the like.
  • CDC activity can be increased or decreased.
  • the stability of the bispecific antibody of the present invention can be evaluated by measuring the amount of aggregate (oligomer) formed in a sample stored in a purification process or under certain conditions. That is, when the aggregate amount is reduced under the same conditions, it is evaluated that the antibody stability is improved.
  • the amount of the aggregate can be measured by separating the aggregated antibody and the non-aggregated antibody using an appropriate chromatography including gel filtration chromatography.
  • the productivity of the bispecific antibody of the present invention can be evaluated by measuring the amount of antibody produced in the culture solution from antibody-producing cells. More specifically, it can be evaluated by measuring the amount of antibody contained in the culture supernatant obtained by removing the production cells from the culture solution by an appropriate method such as HPLC method or ELISA method.
  • the antibody fragment is an antibody fragment that includes an antigen-binding domain that binds to TRAILR2 and an antigen-binding domain that binds to PSMA and has antigen-binding activity.
  • the antibody fragment in the present invention include Fab, Fab ′, F (ab ′) 2 , scFv, diabody, dsFv, or a peptide containing CDR.
  • Fab is a disulfide of the N-terminal side of the H chain and the entire L chain of fragments obtained by treating an IgG antibody with the proteolytic enzyme papain (cleaved at the 224th amino acid residue of the H chain). It is an antibody fragment having an antigen binding activity having a molecular weight of about 50,000, bound by binding (SS bond).
  • F (ab ′) 2 is a fragment obtained by treating IgG with proteolytic enzyme pepsin (which is cleaved at the 234th amino acid residue of the H chain), and Fab is linked via an SS bond in the hinge region.
  • Antibody fragment having an antigen-binding activity with a molecular weight of about 100,000, which is slightly larger than those bound together.
  • Fab ′ is an antibody fragment having an antigen-binding activity with a molecular weight of about 50,000, which is obtained by cleaving the SS bond in the hinge region of F (ab ′) 2 .
  • An scFv is a VH-P-VL or VL-P-VH polypeptide in which one VH and one VL are linked using an appropriate peptide linker (P) having 12 or more residues, and binds to an antigen. It is an antibody fragment having activity.
  • Diabody is an antibody fragment in which scFv having the same or different antigen-binding specificity forms a dimer, and has a bivalent antigen-binding activity for the same antigen, or an antibody fragment having a specific antigen-binding activity for each different antigen It is.
  • DsFv refers to a polypeptide in which one amino acid residue in each of VH and VL is replaced with a cysteine residue, which are bound via an SS bond between the cysteine residues.
  • the peptide containing CDR is configured to contain at least one region of CDR of VH or VL.
  • a peptide containing a plurality of CDRs can be prepared by bonding CDRs directly or via an appropriate peptide linker.
  • the peptide containing CDR constructs DNA encoding the VH and VL CDRs of the bispecific antibody of the present invention, inserts the DNA into a prokaryotic expression vector or eukaryotic expression vector, and the expression vector is inserted into a prokaryotic expression vector. It can be expressed and produced by introduction into an organism or eukaryote.
  • the peptide containing CDR can also be manufactured by chemical synthesis methods, such as Fmoc method or tBoc method.
  • a fusion protein in which the Fc of the bispecific antibody of the present invention is bound to an antibody fragment, an Fc fusion protein in which the Fc is bound to a naturally occurring ligand or receptor (also referred to as an immunoadhesin), and a plurality of Fc regions A fused Fc fusion protein and the like are also encompassed by the present invention.
  • Fc regions containing amino acid residue modifications aimed at enhancing or deleting effector activity of antibodies, stabilizing antibodies, and controlling blood half-life can also be used for the bispecific antibody of the present invention.
  • a radioisotope As the bispecific antibody or antibody fragment of the present invention, a radioisotope, a low molecular weight drug, a high molecular weight drug, a protein or an antibody drug, etc. are chemically or genetically engineered to the bispecific antibody or the antibody fragment of the present invention. Including derivatives of antibodies conjugated to.
  • the derivative of the antibody in the present invention includes the N-terminal side or C-terminal side of the H chain or L chain of the bispecific antibody of the present invention or an antibody fragment thereof, an appropriate substituent or side chain in the antibody or antibody fragment thereof, Is a chemical method [Introduction to Antibody Engineering, Jinjinshokan (Guide to antibody engineering, etc.), such as a radioisotope, a low molecular drug, a high molecular drug, an immunostimulant, a protein or an antibody drug. 1994)].
  • the derivative of the antibody in the present invention comprises a DNA encoding the bispecific antibody or antibody fragment of the present invention and a DNA encoding a desired protein or antibody drug, inserted into an expression vector, and the expression vector Can be produced by genetic engineering techniques in which is introduced into a suitable host cell and expressed.
  • radioisotope examples include 111 In, 131 I, 125 I, 90 Y, 64 Cu, 99 Tc, 77 Lu, and 211 At.
  • the radioisotope can be directly bound to the antibody by the chloramine T method or the like. Further, a substance that chelates a radioisotope may be bound to the antibody.
  • the chelating agent include 1-isothiocyanate benzyl-3-methyldiethylenetriaminepentaacetic acid (MX-DTPA).
  • low molecular weight drugs examples include alkylating agents, nitrosourea agents, antimetabolites, antibiotics, plant alkaloids, topoisomerase inhibitors, hormone therapy agents, hormone antagonists, aromatase inhibitors, P glycoprotein inhibitors, platinum Anticancer agents such as complex derivatives, M-phase inhibitors or kinase inhibitors [Clinical Oncology, Cancer and Chemotherapy (1996)], steroidal agents such as hydrocortisone or prednisone, non-steroidal agents such as aspirin or indomethacin, gold thiomalate or Anti-inflammatory agents such as immunomodulators such as penicillamine, immunosuppressive agents such as cyclophosphamide or azathioprine, or antihistamines such as chlorpheniramine maleate or clemacytin [Inflammation and anti-inflammatory therapy, Ishiyaku Shuppan Co., Ltd. (1982) ]] Etc., and the like.
  • anticancer agents include amifostine (ethiol), cisplatin, dacarbazine (DTIC), dactinomycin, mechlorethamine (nitrogen mustard), streptozocin, cyclophosphamide, ifosfamide, carmustine (BCNU), lomustine (CCNU), doxorubicin (Adriamycin), epirubicin, gemcitabine (gemzar), daunorubicin, procarbazine, mitomycin, cytarabine, etoposide, 5-fluorouracil, fluorouracil, vinblastine, vincristine, bleomycin, daunomycin, pepromycin, estramustine, paclitaxel (taxol) , Aldesleukin, Asparaginase, Busulfan, Carbo Latin, oxaliplatin, nedaplatin, cladribine, camptothecin, 10-hydroxy-7-ethyl-camp
  • Examples of a method for binding a low molecular weight drug to the bispecific antibody of the present invention include, for example, a method of binding between a drug and the amino group of the antibody via glutaraldehyde, or a drug amino acid via a water-soluble carbodiimide. And a method of binding a group to a carboxyl group of the antibody.
  • polymer drug examples include polyethylene glycol (PEG), albumin, dextran, polyoxyethylene, styrene maleic acid copolymer, polyvinyl pyrrolidone, pyran copolymer, and hydroxypropyl methacrylamide.
  • PEGylation modifying reagent examples include a modifier for the ⁇ -amino group of lysine (Japanese Patent Laid-Open No. 61-178926), a modifier for the carboxyl group of aspartic acid and glutamic acid (Japanese Patent Laid-Open No. 56-23587). And a modifier for guanidino group of arginine (Japanese Patent Laid-Open No. 2-117920).
  • an immunostimulant a natural product known as an immunoadjuvant may be used.
  • a drug that enhances immunity is ⁇ (1 ⁇ 3) glucan (for example, lentinan or schizophyllan), or ⁇ -galactosylceramide ( KRN7000).
  • proteins include cytokines, growth factors or toxin proteins that activate immunocompetent cells such as NK cells, macrophages or neutrophils.
  • cytokines or growth factors examples include interferon (hereinafter referred to as IFN) - ⁇ , IFN- ⁇ , IFN- ⁇ , interleukin (hereinafter referred to as IL) -2, IL-12, IL-15, IL- 18, IL-21, IL-23, granulocyte colony stimulating factor (G-CSF), granulocyte / macrophage colony stimulating factor (GM-CSF) or macrophage colony stimulating factor (M-CSF).
  • toxin protein examples include ricin, diphtheria toxin, ONTAK, and the like, and also include protein toxins in which mutations are introduced into the protein to control toxicity.
  • a fusion antibody with a protein or antibody drug comprises linking a cDNA encoding a protein to a cDNA encoding the bispecific antibody or antibody fragment of the present invention, constructing a DNA encoding the fusion antibody, and It can be produced by inserting into an eukaryotic expression vector and introducing the expression vector into a prokaryotic or eukaryotic organism.
  • the agent that binds to the bispecific antibody of the present invention or an antibody fragment thereof may be a conventional immunological agent.
  • labels used in detection or measurement methods include an enzyme such as alkaline phosphatase, peroxidase or luciferase, a luminescent substance such as acridinium ester or lophine, or fluorescein isothiocyanate (FITC) or tetramethylrhodamine isothiocyanate (RITC), Alexa (registered trademark).
  • fluorescent substances such as Fluor 488 and R-phycoerythrin (R-PE).
  • the present invention includes bispecific antibodies having cytotoxic activity such as CDC activity or ADCC activity and antibody fragments thereof.
  • cytotoxic activity such as CDC activity or ADCC activity
  • the CDC activity or ADCC activity of the bispecific antibody of the present invention or the antibody fragment thereof against antigen-expressing cells can be evaluated by a known measurement method [Cancer Immunol. Immunother., 36, 373 (1993)].
  • the present invention also relates to a composition comprising a bispecific antibody or an antibody fragment thereof that specifically recognizes and binds TRAILR2 and PSMA, or a composition of TRAILR2 and PSMA containing the bispecific antibody or the antibody fragment as an active ingredient.
  • the present invention relates to a therapeutic agent for diseases involving expressed cells.
  • the disease involving TRAILR2 and PSMA-expressing cells may be any disease involving TRAILR2 and PSMA-expressing cells, and examples thereof include malignant tumors and cancer.
  • malignant tumors and cancers include, for example, colorectal cancer, colorectal cancer, lung cancer, breast cancer, glioma, melanoma, thyroid cancer, renal cell cancer, leukemia, lymphoma, T Cell lymphoma, gastric cancer, pancreatic cancer, cervical cancer, endometrial cancer, ovarian cancer, esophageal cancer, liver cancer, squamous cell carcinoma of the head and neck, skin cancer, urinary tract cancer, bladder Cancer, prostate cancer, choriocarcinoma, pharyngeal cancer, laryngeal cancer, mesothelioma, pleuromas, male embryonal tumor, endometrial hyperplasia, endometriosis, embryonal tumor, fibrosarcoma, Kaposi sarcoma, blood vessel Tumor, cavernous hemangioma, hemangioblastoma, retinoblastoma, astrocytoma, neurofibroma
  • the therapeutic agent containing the bispecific antibody or the antibody fragment or derivative thereof of the present invention may contain only the antibody or the antibody fragment or derivative thereof as an active ingredient. Is preferably mixed with one or more pharmaceutically acceptable carriers and provided as a pharmaceutical preparation produced by any method known in the art of pharmaceutical sciences.
  • administration route that is most effective for treatment, and examples thereof include oral administration and parenteral administration such as buccal, intratracheal, rectal, subcutaneous, intramuscular or intravenous. Of these, intravenous administration is preferred.
  • administration forms include sprays, capsules, tablets, powders, granules, syrups, emulsions, suppositories, injections, ointments, tapes, and the like.
  • the dose or frequency of administration varies depending on the intended therapeutic effect, administration method, treatment period, age and weight, but is usually 10 ⁇ g / kg to 10 mg / kg per day for an adult.
  • the present invention relates to a reagent for immunological detection or measurement of at least one of TRAILR2 and PSMA, or a disease involving cells expressing TRAILR2 and PSMA, which contains the bispecific antibody of the present invention or an antibody fragment thereof.
  • the present invention also provides a method for immunological detection or measurement of at least one of TRAILR2 and PSMA using the bispecific antibody of the present invention or an antibody fragment thereof, or diagnosis of a disease involving cells expressing TRAILR2 and PSMA Regarding the method.
  • any known method may be used as a method for detecting or measuring at least one of TRAILR2 and PSMA.
  • Examples include immunological detection or measurement methods.
  • the immunological detection or measurement method is a method of detecting or measuring the amount of antibody or the amount of antigen using a labeled antigen or antibody.
  • Examples of the immunological detection or measurement method include radioimmunoassay (RIA), enzyme immunoassay (EIA or ELISA), fluorescent immunoassay (FIA), luminescence immunoassay (luminescent immunoassay), and Western blotting. Or a physicochemical method etc. are mentioned.
  • Detecting or measuring cells in which at least one of TRAILR2 and PSMA is expressed using the bispecific antibody or the antibody fragment of the present invention can diagnose a disease associated with TRAILR2 and PSMA-expressing cells.
  • TRAILR2 and PSMA polypeptides can be used to detect cells expressing at least one of TRAILR2 and PSMA polypeptides.
  • immunoprecipitation, immunocytostaining, immunohistochemical staining, or fluorescence Examples include antibody staining.
  • a fluorescent antibody staining method such as FMAT8100HTS system (Applied Biosystems) may be used.
  • the biological sample to be detected or measured for at least one of TRAILR2 and PSMA includes, for example, tissue cells, blood, plasma, serum, pancreatic juice, urine, stool, tissue fluid or culture fluid, and at least TRAILR2 and PSMA.
  • tissue cells for example, tissue cells, blood, plasma, serum, pancreatic juice, urine, stool, tissue fluid or culture fluid, and at least TRAILR2 and PSMA.
  • the cells may contain the expressed cell.
  • the diagnostic agent containing the bispecific antibody of the present invention or an antibody fragment thereof, or a derivative thereof may contain a reagent for performing an antigen-antibody reaction and a reagent for detecting the reaction, depending on the intended diagnostic method. Good.
  • the reagent for performing the antigen-antibody reaction include a buffer and a salt.
  • the detection reagent examples include conventional immunological detection or measurement methods such as a labeled secondary antibody that binds to the bispecific antibody or an antibody fragment thereof, or a derivative thereof, or a substrate corresponding to the label.
  • the reagent used is mentioned.
  • a method for producing the bispecific antibody of the present invention a method for measuring at least one of TRAILR2 and PSMA using the antibody, a method for diagnosing and treating a disease involving TRAILR2 and PSMA-expressing cells will be specifically described.
  • the method for producing a monoclonal antibody in the present invention includes the following working steps. That is, (1) at least one of purification of an antigen used as an immunogen and production of cells overexpressing the antigen on the cell surface; (2) after immunizing the animal with the antigen, blood is collected and the antibody titer is assayed.
  • a method for producing a monoclonal antibody that binds to TRAILR2 and a monoclonal antibody that binds to PSMA which is used to produce a bispecific antibody that binds to TRAILR2 and PSMA in the present invention, will be described in detail along the above steps.
  • the method for producing the antibody is not limited thereto, and for example, antibody-producing cells other than spleen cells and myeloma can be used.
  • a cell expressing at least one of TRAILR2 and PSMA is obtained by introducing an expression vector containing cDNA encoding the full length of at least one of TRAILR2 and PSMA or a partial length thereof into E. coli, yeast, insect cells, animal cells, or the like. ,Obtainable.
  • at least one of TRAILR2 and PSMA can be purified from various human tumor cultured cells or human tissues that express a large amount of at least one of TRAILR2 and PSMA and used as an antigen. Further, the tumor cultured cells or the tissue can be used as an antigen as it is.
  • a synthetic peptide having at least one partial sequence of TRAILR2 and PSMA can be prepared by a chemical synthesis method such as the Fmoc method or the tBoc method, and used as an antigen.
  • TRAILR2 and PSMA used in the present invention are described in MolecularMCloning, A Laboratory Manual, Second Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989), Current Protocols In Molecular Biology, John Wiley & Sons (1987-1997) Can be produced by expressing DNA encoding at least one of TRAILR2 and PSMA in a host cell using, for example, the following method. *
  • a full-length cDNA containing a portion encoding at least one of TRAILR2 and PSMA is inserted downstream of the promoter of an appropriate expression vector to prepare a recombinant vector.
  • a DNA fragment of an appropriate length containing a polypeptide-encoding portion prepared based on the full-length cDNA may be used.
  • a transformant producing at least one of TRAILR2 and PSMA can be obtained by introducing the obtained recombinant vector into a host cell suitable for the expression vector.
  • Any expression vector can be used as long as it can autonomously replicate in the host cell to be used or can be integrated into the chromosome, and contains an appropriate promoter at a position where DNA encoding at least one of TRAILR2 and PSMA can be transcribed. Any of them can be used.
  • any microorganisms belonging to the genus Escherichia such as Escherichia coli, yeast, insect cells or animal cells can be used so long as they can express the target gene.
  • the recombinant vector When a prokaryote such as E. coli is used as a host cell, the recombinant vector is capable of autonomous replication in the prokaryote and contains a promoter, a ribosome binding sequence, a portion encoding at least one of TRAILR2 and PSMA, and A vector containing a transcription termination sequence is preferred.
  • the recombinant vector does not necessarily require a transcription termination sequence, but it is preferable to place the transcription termination sequence immediately below the structural gene.
  • the recombinant vector may contain a gene that controls the promoter.
  • a plasmid in which the distance between the Shine-Dalgarno sequence, which is a ribosome binding sequence, and the start codon is adjusted to an appropriate distance is preferably used.
  • the base sequence of the DNA encoding at least one of TRAILR2 and PSMA can be substituted with a base so as to be an optimal codon for expression in the host, whereby at least the desired TRAILR2 and PSMA can be substituted.
  • One production rate can be improved.
  • Any expression vector can be used as long as it can function in the host cell to be used.
  • pBTrp2, pBTac1, pBTac2 above, Roche Diagnostics
  • pKK233-2 Pharmacia
  • pSE280 manufactured by Invitrogen
  • pGEMEX-1 manufactured by Promega
  • pQE-8 manufactured by Qiagen
  • pKYP10 Japanese Patent Laid-Open Publication No. 58-110600
  • pKYP200 Agricultural Biobiological Chemistry, 48, 669 (1984)]
  • pLSA1 Agric. Biol. Chem., 53, 277 (1989)
  • pGEL1 Proc.
  • Any promoter can be used as long as it functions in the host cell to be used.
  • promoters derived from Escherichia coli or phage such as trp promoter (Ptrp), lac promoter, PL promoter, PR promoter or T7 promoter.
  • Terp trp promoter
  • lac promoter lac promoter
  • PL promoter PL promoter
  • PR promoter PR promoter
  • T7 promoter trp promoter
  • artificially designed and modified promoters such as a tandem promoter, tac promoter, lacT7 promoter, or let I promoter in which two Ptrps are connected in series are also included.
  • Examples of host cells include E. coli XL1-Blue, E. coli XL2-Blue, E. coli DH1, E. coli MC1000, E. coli KY3276, E. coli W1485, E. coli JM109, E. coli HB101, E. coli No. 49, E. coli W3110, E. coli NY49, or E. coli DH5 ⁇ .
  • any method for introducing DNA into a host cell to be used can be used.
  • a method using calcium ion [Proc. Natl. Acad. Sci. USA] 69, 2110 (1972), Gene, 17, 107 (1982), Molecular & General Genetics, 168, 111 (1979)].
  • any expression vector can be used as long as it functions in animal cells.
  • pcDNAI manufactured by Invitrogen
  • pcDM8 manufactured by Funakoshi
  • pAGE107 Japan JP-A-3-22979; Cytotechnology, 3, 133 (1990)]
  • pAS3-3 Japanese Unexamined Patent Publication No. 2-227075
  • pCDM8 [Nature, 329, 840 (1987)]
  • pcDNAI / Amp (Invitrogen) PcDNA3.1 (manufactured by Invitrogen), pREP4 (manufactured by Invitrogen), pAGE103 [J. Biochemistry, 101, 1307 (1987)], pAGE210, pME18SFL3 or pKANTEX93 (International Publication No. 97/10354)
  • PcDNA3.1 manufactured by Invitrogen
  • pREP4 manufactured by Invitrogen
  • pAGE103 J. Biochemistry, 101, 1307 (1987)
  • Any promoter can be used as long as it can function in animal cells.
  • a cytomegalovirus (CMV) immediate early (IE) gene promoter for example, a cytomegalovirus (CMV) immediate early (IE) gene promoter, an SV40 early promoter, a retroviral promoter. , Metallothionein promoter, heat shock promoter, SR ⁇ promoter or Moloney murine leukemia virus promoter or enhancer.
  • CMV cytomegalovirus
  • IE immediate early
  • IE SV40 early promoter
  • a retroviral promoter e.g., a promoter for example, a cytomegalovirus (CMV) immediate early (IE) gene promoter, an SV40 early promoter, a retroviral promoter.
  • Metallothionein promoter e.g., Metallothionein promoter, heat shock promoter, SR ⁇ promoter or Moloney murine leukemia virus promoter or enhancer.
  • host cells include human Burkitt lymphoma cell Namalwa, African green monkey kidney-derived cell COS, Chinese hamster ovary-derived cell CHO, or human leukemia cell HBT5637 (Japanese Patent Laid-Open No. 63-000299).
  • any method for introducing a recombinant vector into a host cell any method can be used as long as it introduces DNA into animal cells.
  • electroporation [Cytotechnology, 3, 133 (1990)]
  • calcium phosphate method Japanese Patent Laid-Open No. 2-227075
  • lipofection method Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 84, 7413 (1987)].
  • Transformants derived from microorganisms or animal cells carrying a recombinant vector incorporating DNA encoding at least one of TRAILR2 and PSMA obtained as described above are cultured in a medium, and the transformant is cultured in the culture.
  • At least one of TRAILR2 and PSMA can be produced by producing and accumulating at least one of TRAILR2 and PSMA and collecting from the culture.
  • the method of culturing the transformant in a medium can be carried out according to a usual method used for culturing a host.
  • TRAILR2 and PSMA When expressed in cells derived from eukaryotes, at least one of TRAILR2 and PSMA to which sugars or sugar chains have been added can be obtained.
  • an inducer may be added to the medium as necessary.
  • cultivating a microorganism transformed with a recombinant vector using the lac promoter cultivate a microorganism transformed with isopropyl- ⁇ -D-thiogalactopyranoside or the like using a recombinant vector using the trp promoter.
  • indole acrylic acid or the like may be added to the medium.
  • Examples of a medium for culturing a transformant obtained using an animal cell as a host include, for example, a commonly used RPMI 1640 medium [The Journal of the American Medical Association, 199, 519 (1967)], Eagle's MEM medium [Science , 122, 501 (1952)], Dulbecco's modified MEM medium [Virology, 8, 396 (1959)], 199 medium [Proc. Soc. Exp. Biol. Med., 73, 1 (1950)], Iscove's Modified Examples thereof include Dulbecco's Medium (IMDM) medium, or a medium obtained by adding fetal bovine serum (FBS) or the like to these mediums.
  • IMDM Dulbecco's Medium
  • FBS fetal bovine serum
  • the culture is usually carried out for 1 to 7 days under conditions such as pH 6 to 8, 30 to 40 ° C., and 5% CO 2 .
  • TRAILR2 and PSMA As a method for expressing a gene encoding at least one of TRAILR2 and PSMA, in addition to direct expression, methods such as secretory production or fusion protein expression [Molecular Cloning, A Laboratory Manual, Second Edition, Cold Harbor Laboratory Press (1989)] Can be used.
  • Examples of the production method of at least one of TRAILR2 and PSMA include a method of producing in a host cell, a method of secreting it outside the host cell, or a method of producing it on the host cell outer membrane.
  • An appropriate method can be selected by changing the structure of at least one of TRAILR2 and / or PSMA to be produced.
  • DNA encoding the amino acid sequence of the extracellular region DNA encoding the Fc region of an antibody, DNA encoding glutathione S-transferase (GST), DNA encoding a FLAG tag, or DNA encoding a Histidene tag, etc.
  • An antigen-fusion protein can be prepared by preparing a DNA linked to and expressing and purifying the DNA. Specifically, for example, an Fc fusion protein in which at least one extracellular region of TRAILR2 and PSMA is bound to the Fc region of human IgG, at least one extracellular region of TRAILR2 and PSMA, glutathione S-transferase (GST), These fusion proteins are mentioned.
  • the production amount of at least one of TRAILR2 and PSMA can be increased using a gene amplification system using a dihydrofolate reductase gene or the like (Japanese Patent Application Laid-Open No. 2-227075).
  • At least one of the produced TRAILR2 and PSMA can be isolated and purified as follows, for example.
  • the cells are collected by centrifugation after culturing, suspended in an aqueous buffer solution, an ultrasonic crusher, a French press, a Manton Gaurin homogenizer, Alternatively, the cells are disrupted using dynomill or the like to obtain a cell-free extract.
  • an ordinary protein isolation and purification method that is, a solvent extraction method, a salting-out method using ammonium sulfate, a desalting method, a precipitation method using an organic solvent, diethylaminoethyl ( DEAE) -Sepharose, anion exchange chromatography using a resin such as DIAION HPA-75 (Mitsubishi Chemical), cation exchange chromatography using a resin such as S-Sepharose FF (Pharmacia), Methods such as hydrophobic chromatography using resins such as butyl sepharose and phenyl sepharose, gel filtration using molecular sieve, affinity chromatography, chromatofocusing, or electrophoresis such as isoelectric focusing, Used alone or in combination, It is possible to obtain a click quality.
  • a solvent extraction method a salting-out method using ammonium sulfate, a desalting method, a precipitation method using an organic solvent, diethylaminoeth
  • TRAILR2 and PSMA When at least one of TRAILR2 and PSMA is expressed in an insoluble form in the cell, the cells are collected and disrupted in the same manner as described above, and centrifuged to obtain at least one of TRAILR2 and PSMA as a precipitate fraction. The insoluble material is recovered. The recovered insoluble form of at least one of TRAILR2 and PSMA is solubilized with a protein denaturant. By diluting or dialyzing the solubilized solution, after returning at least one of the TRAILR2 and PSMA to a normal three-dimensional structure, a purified protein of the polypeptide can be obtained by the same isolation and purification method as described above.
  • At least one of TRAILR2 and PSMA or a derivative such as a sugar modification thereof is secreted extracellularly
  • at least one of TRAILR2 and PSMA or a derivative such as a sugar modification thereof may be recovered from the culture supernatant. It can.
  • the culture supernatant is treated using a method such as centrifugation as described above to obtain a soluble fraction, and a purified protein is obtained from the soluble fraction by using the same isolation and purification method as described above. be able to.
  • At least one of TRAILR2 and PSMA used in the present invention can be produced by a chemical synthesis method such as the Fmoc method or the tBoc method.
  • a chemical synthesis method such as the Fmoc method or the tBoc method.
  • peptide synthesizers manufactured by Advanced Chemtech, Perkin Elmer, Pharmacia, Protein Technology Instrument, Synthecel-Vega, Perceptive, or Shimadzu Corporation can be used for chemical synthesis.
  • Step of preparing antibody-producing cells 3 to 20-week-old animals such as mice, rats or hamsters are immunized with the antigen obtained in (1), and antibodies in the spleen, lymph nodes or peripheral blood of the animals Producing cells are collected.
  • animals include transgenic mice that produce human-derived antibodies described in documents by Tomituka et al. [Tomizuka. Et al., Proc Natl Acad Sci USA., 97, 722, (2000)]
  • TRAILR2 or PSMA conditional knockout mice and the like can be mentioned as immunized animals.
  • Immunization is performed by administering the antigen together with Freund's complete adjuvant or an appropriate adjuvant such as aluminum hydroxide gel and pertussis vaccine.
  • the immunogen administration method for mouse immunization may be subcutaneous injection, intraperitoneal injection, intravenous injection, intradermal injection, intramuscular injection or footpad injection, but intraperitoneal injection, footpad injection or intravenous injection. Is preferred.
  • a conjugate with a carrier protein such as BSA (bovine serum albumin) or KLH (Keyhole limpet hemocyanin) is prepared and used as an immunogen.
  • the antigen is administered 5 to 10 times every 1 to 2 weeks after the first administration. Three to seven days after each administration, blood is collected from the fundus venous plexus, and the antibody titer of the serum is measured using an enzyme immunoassay [Antibodies-A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory (1988)].
  • the effect of the subsequent operation can be enhanced by using an animal in which the above-mentioned serum shows a sufficient antibody titer against the antigen used for immunization as the source of the antibody producing cells for fusion.
  • tissue containing antibody-producing cells such as the spleen are removed from the immunized animal, and antibody-producing cells are collected.
  • Antibody-producing cells are plasma cells and their precursor cells, lymphocytes, which may be obtained from any part of the individual, generally spleen, lymph nodes, bone marrow, tonsils, peripheral blood, or any combination thereof.
  • lymphocytes which may be obtained from any part of the individual, generally spleen, lymph nodes, bone marrow, tonsils, peripheral blood, or any combination thereof.
  • Spleen cells are most commonly used, although they can be obtained from When spleen cells are used, the spleen is chopped and loosened, and then centrifuged, and the erythrocytes are removed to obtain antibody producing cells for fusion.
  • Myeloma preparation process As the myeloma, cells having no autoantibody-producing ability derived from mammals such as mice, rats, guinea pigs, hamsters, rabbits or humans can be used. Cell lines obtained, for example, 8-azaguanine resistant mice (BALB / c-derived) myeloma cell line P3-X63Ag8-U1 (P3-U1) [Current Topics in Microbiology and Immunology, 18, 1 (1978)], P3- NS1 / 1-Ag41 (NS-1) [European J.
  • the cell line can be prepared using a suitable medium such as 8-azaguanine medium [RPMI-1640 medium supplemented with glutamine, 2-mercaptoethanol, gentamicin, FCS and 8-azaguanine], Iskov's Modified Dulbecco's medium (Iscove's Modified Dulbecco's medium).
  • a suitable medium such as 8-azaguanine medium [RPMI-1640 medium supplemented with glutamine, 2-mercaptoethanol, gentamicin, FCS and 8-azaguanine], Iskov's Modified Dulbecco's medium (Iscove's Modified Dulbecco's medium).
  • IMDM IMDM
  • DMEM Dulbecco's Modified Eagle Medium
  • MEM Minimum Essential Medium
  • HAT medium normal medium supplemented with hypoxanthine, thymidine and aminopterin. This suspension is cultured for 7-14 days at 37 ° C. in a 5% CO 2 incubator.
  • cell fusion can be performed by the following method. Spleen cells and myeloma cells are thoroughly washed with a serum-free medium (for example, DMEM) or phosphate buffered saline (hereinafter referred to as “phosphate buffer solution”), and the ratio of the number of spleen cells to myeloma cells is 5: Mix to about 1-10: 1 and centrifuge. After removing the supernatant and loosening the precipitated cell clumps, a serum-free medium containing 1 mL of 50% (w / v) polyethylene glycol (molecular weight 1000 to 4000) is added dropwise with stirring. Thereafter, 10 mL of serum-free medium is slowly added and then centrifuged.
  • a serum-free medium for example, DMEM
  • phosphate buffer solution phosphate buffered saline
  • HAT medium hypoxanthine / aminopterin / thymidine
  • IL-2 human interleukin-2
  • the myeloma cell used for the fusion is an 8-azaguanine resistant strain, that is, a hypoxanthine / guanine / phosphoribosyltransferase (HGPRT) deficient strain
  • HGPRT hypoxanthine / guanine / phosphoribosyltransferase
  • the fused myeloma cells and myeloma cells A cell-cell fused cell cannot survive in a HAT medium.
  • fusion cells between antibody-producing cells and hybridomas between antibody-producing cells and myeloma cells can survive in HAT medium, but fusion cells between antibody-producing cells eventually reach the end of their lives. Therefore, by continuing the culture in the HAT medium, only the hybridoma of the antibody producing cell and the myeloma cell survive, and as a result, the hybridoma can be obtained.
  • the medium is replaced with a medium obtained by removing aminopterin from the HAT medium (hereinafter referred to as HT medium). Thereafter, a part of the culture supernatant is collected, and a hybridoma producing the antibody can be selected using an antibody titer measurement method described later.
  • the antibody titer measurement method include various known techniques such as radioisotope immunoassay (RIA method), solid-phase enzyme immunoassay (ELISA method), fluorescent antibody method and passive hemagglutination method. From the viewpoints of detection sensitivity, rapidity, accuracy and possibility of automation of operation, RIA method or ELISA method is preferable.
  • the hybridoma that has been found to produce the desired antibody by measuring the antibody titer is transferred to another plate for cloning.
  • this cloning method include, but are not limited to, a limiting dilution method of diluting and culturing so that one cell is contained in one well of the plate, a soft agar method of culturing in a soft agar medium and collecting colonies, and a micromanipulator. Examples thereof include a method for isolating individual cells, a method for isolating one cell using a cell sorter, and the like.
  • cloning by limiting dilution method is repeated 2 to 4 times, and those with stable antibody titer are selected as a hybridoma strain producing a monoclonal antibody against human TRAILR2 or PSMA.
  • a large amount of monoclonal antibody that binds to TRAILR2 or PSMA can be obtained by growing the hybridoma in the abdominal cavity of the same strain of mouse (for example, BALB / c) or Nu / Nu mouse, rat, guinea pig, hamster or rabbit. Ascites containing can be obtained.
  • the monoclonal antibody-producing hybridoma obtained in (5) is cultured in an RPMI1640 medium or the like to which 10% FBS is added, and then the supernatant is removed by centrifugation, and then the GIT medium or the Hybridoma SFM medium to which 5% Digo GF21 is added. Suspend in 3 to 7 days by flask culture, spinner culture or back culture. The obtained cell suspension is centrifuged, and purified using a protein A column or protein G column from the obtained supernatant, and the IgG fraction is collected to obtain a purified monoclonal antibody.
  • a commercially available monoclonal antibody purification kit for example, MAbTrap GII kit; manufactured by Amersham Pharmacia Biotech
  • the like can be used as a simple purification method.
  • the subclass of the antibody is determined by an enzyme immunoassay using a subcluster epiting kit.
  • Binding Assay of Monoclonal Antibody to TRAILR2 or PSMA The binding activity of the monoclonal antibody to TRAILR2 or PSMA is determined according to the Ochterlony method, ELISA method, RIA method, flow cytometry method (FCM) or surface plasmon resonance method (SPR). It can be measured by a binding assay system such as
  • Octelrony method is simple, but concentration is necessary when the antibody concentration is low.
  • the culture supernatant is directly reacted with the antigen-adsorbing solid phase, and further, by using antibodies corresponding to various immunoglobulin isotypes and subclasses as secondary antibodies, It is possible to identify the subclass and measure the binding activity of the antibody.
  • purified or partially purified recombinant TRAILR2 and PSMA are adsorbed on a solid phase surface such as a 96-well plate for ELISA, and a solid phase surface on which no antigen is adsorbed is unrelated to the antigen.
  • Blocking is performed with a protein such as bovine serum albumin (BSA).
  • BSA bovine serum albumin
  • the serially diluted first antibody eg mouse serum, culture supernatant, etc.
  • the antibody is bound to the immobilized antigen.
  • anti-immunoglobulin antibody labeled with biotin, an enzyme (horse radish peroxidase; HRP, alkalin phosphatase; ALP, etc.), a chemiluminescent substance, or a radiation compound is dispensed as the second antibody, and the first antibody bound to the plate.
  • a second antibody is reacted with the antibody.
  • a reaction according to the labeling substance of the second antibody is performed to select a monoclonal antibody that reacts specifically with the target antigen.
  • the FCM method can measure the binding activity of an antibody to an antigen-expressing cell [Cancer Immunol. Immunol., 36, 373 (1993)]. Binding of an antibody to a membrane protein antigen expressed on a cell membrane means that the antibody recognizes and binds to the three-dimensional structure of a naturally occurring antigen.
  • SPR method includes kinetic analysis by Biacore.
  • Biacore T100 the kinetics in the binding between the antigen and the test object is measured, and the result is analyzed with the analysis software attached to the device.
  • a test substance such as a hybridoma culture supernatant or a purified monoclonal antibody is allowed to flow to bind an appropriate amount, and the concentration is known. Multiple concentrations of antigen are run to measure binding and dissociation.
  • the obtained data is subjected to kinetic analysis using a 1: 1 binding model using software attached to the device, and various parameters are acquired.
  • TRAILR2 and PSMA is immobilized on a sensor chip by, for example, an amine coupling method, and then purified monoclonal antibodies having a plurality of known concentrations are flowed to measure binding and dissociation.
  • the obtained data is subjected to a kinetic analysis using a passive binding model using software attached to the device, and various parameters are acquired.
  • an antibody that binds to TRAILR2 or PSMA by competing with an antibody against TRAILR2 or PSMA can be selected by allowing the test antibody to coexist in the above-described binding assay system. That is, by screening for an antibody that inhibits binding to an antigen when a test antibody is added, an antibody that competes with the antibody obtained above for binding to TRAILR2 or PSMA can be obtained.
  • identification of epitope of monoclonal antibody against TRAILR2 or PSMA can be performed as follows.
  • antigen partial deletions and mutants may be obtained as secreted proteins using appropriate host cells such as E. coli, yeast, plant cells, or mammalian cells, or on the cell membrane of the host cells. It may be expressed and prepared as an antigen-expressing cell. In the case of a membrane-type antigen, it is preferably expressed on the membrane of the host cell in order to express it while retaining the three-dimensional structure of the antigen.
  • Synthetic peptides include methods for preparing various partial peptides of the molecule using known peptide synthesis techniques.
  • a chimeric protein in which the domains constituting each region are appropriately combined is prepared, and the antibody epitope is identified by confirming the reactivity of the antibody against the protein. be able to.
  • the oligopeptide of the corresponding part, or a variant of the peptide, etc. is synthesized in detail using oligopeptide synthesis techniques well known to those skilled in the art, and the reactivity of the antibody against the peptide is confirmed to confirm the epitope. Can be specified.
  • kits eg, SPOTs kit (Genosis Biotechnology), a series of multipin peptide synthesis kits using multipin synthesis method, etc.
  • An antibody that binds to the same epitope as that to which an antibody that binds to TRAILR2 or PSMA binds is identified by identifying the epitope of the antibody obtained by the above-described binding assay system, a partially synthetic peptide of the epitope, and the three-dimensional structure of the epitope Can be obtained by preparing and immunizing a synthetic peptide that mimics the above or a recombinant of the epitope.
  • the epitope is a membrane protein
  • a recombinant fusion protein in which the whole extracellular region or a part of the extracellular domain is linked to an appropriate tag, for example, a FLAG tag, a Histidine tag, a GST protein or an antibody Fc region.
  • an appropriate tag for example, a FLAG tag, a Histidine tag, a GST protein or an antibody Fc region.
  • Acquisition of cDNA encoding V region of monoclonal antibody from hybridoma Acquisition of cDNA encoding VH and VL of monoclonal antibody can be performed, for example, as follows.
  • mRNA is extracted from a hybridoma producing a monoclonal antibody to synthesize cDNA.
  • the synthesized cDNA is cloned into a vector such as a phage or a plasmid to prepare a cDNA library.
  • a recombinant phage or recombinant plasmid having a cDNA encoding VH or VL is isolated from the library using DNA encoding the C region portion or V region portion of the antibody as a probe.
  • the entire base sequence of VH or VL in the isolated recombinant phage or recombinant plasmid is determined, and the entire amino acid sequence of VH or VL is deduced from the base sequence.
  • non-human animal used for producing a hybridoma mouse, rat, hamster, rabbit or the like is used, but any animal can be used as long as it can produce a hybridoma.
  • RNA easy kit manufactured by Qiagen
  • oligo (dT) immobilized cellulose column method [MolecularMCloning, A Laboratory Manual, Second Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989)]
  • Oligo-dT30 ⁇ Super> mRNA Purification Kit
  • kit such as (Takara Bio).
  • mRNA can be prepared using a kit such as Fast Track mRNA Isolation Kit (manufactured by Invitrogen) or QuickPrep mRNA Purification Kit (manufactured by Pharmacia).
  • Any vector that can incorporate the cDNA can be used as a vector into which cDNA synthesized using mRNA extracted from the hybridoma as a template when preparing a cDNA library.
  • Any Escherichia coli into which a cDNA library constructed by a phage or plasmid vector is introduced can be used as long as the cDNA library can be introduced, expressed and maintained.
  • XL1-Blue MRF ′ [Strategies, 5, 81 (1992)], C600 [Genetics, 39, 440 (1954)], Y1088, Y1090 [Science, 222, 778 (1983)], NM522 [J. Mol. Biol., 166, 1 (1983)], K802 [J. Mol. Biol., 16, 118 (1966)], JM105 [Gene, 38, 275 (1985)] or the like is used.
  • a primer is prepared and a cDNA or cDNA library synthesized from mRNA is used as a template, Polymerase Chain Reaction method [hereinafter referred to as PCR method, Molecular® Cloning, A Laboratory Manual, Second Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989 ), Current Protocols in Molecular Molecular Biology, Supplements 1, John Wiley & Sons (1987-1997)], a cDNA encoding VH or VL can also be prepared.
  • PCR method Polymerase Chain Reaction method
  • the selected cDNA is cleaved with an appropriate restriction enzyme and then cloned into a plasmid such as pBluescript SK (-) (Stratagene), and the nucleotide sequence of the cDNA is determined by a commonly used nucleotide sequence analysis method.
  • a plasmid such as pBluescript SK (-) (Stratagene)
  • L. F. Analysis is performed using an automatic base sequence analyzer such as a DNA sequencer (Pharmacia).
  • the entire amino acid sequence of known antibodies VH and VL [Sequencesenceof Proteins of Immunological Interest, US Dept. Health and Human Services (1991)]
  • the length of the secretory signal sequence and the N-terminal amino acid sequence can be estimated, and further the subgroup to which they belong can be identified.
  • amino acid sequence of each VH and VL CDR should be estimated by comparing with the VH and VL amino acid sequences of known antibodies [Sequences of Proteins of Immunological Interest, US Dept. Health and Human Services (1991)]. Can do.
  • the complete amino acid sequences of VH and VL obtained are obtained by using the BLAST method [J. Mol. Biol., Pro 215, 403 (1990)] using an arbitrary database such as SWISS-PROT or PIR-Protein. It is possible to confirm whether or not the complete amino acid sequences of the VH and VL are novel by performing the homology search by.
  • a recombinant antibody expression vector can be constructed by cloning DNA encoding at least one of CH and CL of a human antibody into an animal cell expression vector. .
  • CH and CL of any human antibody can be used.
  • ⁇ 1 subclass CH of human antibody and CL of ⁇ class can be used.
  • cDNA is used as DNA encoding CH and CL of human antibodies, chromosomal DNA consisting of exons and introns can also be used.
  • Any expression vector for animal cells can be used as long as it can be expressed by incorporating a gene encoding the C region of a human antibody.
  • pAGE107 [Cytotechnol., 3, 133 (1990)]
  • pAGE103 [J. Biochem., 101, 1307 (1987)]
  • pHSG274 [Gene, 27, 223 (1984)]
  • pKCR Proc. Natl. Acad. Sci.
  • promoters and enhancers for animal cell expression vectors include SV40 early promoter [J. Biochem., 101, 1307 (1987)], Moloney murine leukemia virus LTR [Biochem. Biophys. Res. Commun., 149, 960 (1987). ], CMV promoter (US Pat. No. 5,168,062) or immunoglobulin heavy chain promoter [Cell, 41, 479 (1985)] and enhancer [Cell, 33, 717 (1983)] be able to.
  • the expression of the recombinant antibody includes antibody H chain and L chain from the viewpoint of easy construction of vector, ease of introduction into animal cells, balance of expression amount of antibody H chain and L chain in the cell, and the like.
  • a vector tandem type vector [J. Immunol. Methods, 167, 271 (1994)] carrying both genes of the chain is used, but a plurality of vectors (separately) each carrying the antibody H chain and L chain genes separately. Type vectors) can also be used in combination.
  • tandem recombinant antibody expression vectors include pKANTEX93 (International Publication No. 97/10354), pEE18 [Hybridoma, 17, 559 (1998)], N5KG1val (US Pat. No. 6,001,358) Tol2 transposon vector (International Publication No. 2010/143698) is used.
  • a chimeric antibody expression vector The upstream of each gene encoding CH or CL of the human antibody in the recombinant antibody expression vector obtained in (2), the non-human antibody obtained in (1)
  • a chimeric antibody expression vector can be constructed by cloning cDNAs encoding VH or VL, respectively.
  • the base sequence of the linking portion encodes an appropriate amino acid.
  • VH and VL cDNAs designed to be appropriate restriction enzyme recognition sequences are prepared.
  • the produced VH and VL cDNAs are expressed in an appropriate form upstream of each gene encoding the human antibody CH or CL in the recombinant antibody expression vector obtained in (2).
  • a chimeric antibody expression vector is constructed.
  • the cDNA encoding the non-human antibody VH or VL is amplified by a PCR method using a synthetic DNA having an appropriate restriction enzyme recognition sequence at both ends, and the recombinant antibody obtained in (2) is expressed.
  • a chimeric antibody expression vector can also be constructed by cloning into a vector.
  • cDNA encoding VH or VL of humanized antibody can be prepared as follows. First, the amino acid sequence of the VH or VL framework region (hereinafter referred to as FR) of the human antibody into which the VH or VL CDR amino acid sequence of the non-human antibody obtained in (1) is transplanted is selected.
  • FR VH or VL framework region
  • Any amino acid sequence derived from a human antibody can be used for the selected FR amino acid sequence.
  • human antibody FR amino acid sequences registered in databases such as Protein Data Bank, or the common amino acid sequences of each subgroup of human antibody FRs [Sequences of Proteins of Immunological Interest, US Dept. Health and Human Services ( 1991)].
  • an amino acid sequence of human FR having as high a homology as possible (60% or more) with the VH or VL FR amino acid sequence of the original non-human antibody is selected.
  • the CDR amino acid sequence of the original non-human antibody is transplanted to the VH or VL FR amino acid sequence of the selected human antibody, and the VH or VL amino acid sequence of the humanized antibody is designed respectively.
  • the designed amino acid sequence into a DNA sequence in consideration of the codon usage [Sequences of Proteins of Immunological Interest, US Dept. Health and Human Services (1991)] found in the base sequence of the antibody gene,
  • the VH or VL cDNA sequences of the conjugated antibodies are designed respectively.
  • synthetic DNAs having a length of about 100 to 150 bases are synthesized, and PCR reaction is performed using them.
  • 4 to 6 synthetic DNAs are preferably designed for each of the H chain and the L chain.
  • a synthetic DNA having the full length of the variable region can be synthesized and used.
  • the VH or VL of the humanized antibody can be easily added to the recombinant antibody expression vector obtained in (2).
  • CDNA encoding can be cloned.
  • the amplified product is cloned into a plasmid such as pBluescript SK (-) (Stratagene), the nucleotide sequence is determined by the same method as described in (1), and the desired humanized antibody A plasmid having a DNA sequence encoding the amino acid sequence of VH or VL is obtained.
  • a humanized antibody can only have its antigen-binding activity by transplanting only the VH and VL CDRs of a non-human antibody into the VH and VL FRs of a human antibody. [BIO / TECHNOLOGY, 9, 266 (1991)]. Therefore, among amino acid sequences of human antibody VH and VL FRs, amino acid residues directly involved in antigen binding, amino acid residues that interact with CDR amino acid residues, and the three-dimensional structure of the antibody are maintained. However, by identifying amino acid residues indirectly involved in antigen binding and substituting those amino acid residues with the amino acid residues of the original non-human antibody, reduced antigen binding activity of the humanized antibody Can be raised.
  • the amino acid residues of human antibody VH and VL FRs can be modified by performing the PCR reaction described in (4) using the synthetic DNA for modification.
  • the base sequence is determined by the method described in (1) and it is confirmed that the target modification has been performed.
  • an appropriate restriction enzyme recognition sequence is introduced at the 5 ′ end of the synthetic DNA located at both ends.
  • the gene is cloned so as to be expressed in an appropriate form upstream of each gene encoding CH or CL of the human antibody in the recombinant antibody expression vector obtained in (2).
  • Any host cell capable of expressing a recombinant antibody can be used as a host cell into which an expression vector is introduced.
  • COS-7 cells [American Type Culture Collection (ATCC) number: CRL1651] are used. Use.
  • the expression vector is introduced into COS-7 cells by DEAE-dextran method [Methods in Nucleic Acids Res., CRC press (1991)] or lipofection method [Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 84, 7413 ( 1987)].
  • the expression level and antigen binding activity of the recombinant antibody in the culture supernatant can be determined by enzyme-linked immunosorbent assay (Monoclonal Antibodies-Principles and practice, Third edition, Academic Press (1996), Antibodiesbo- A Laboratory , Cold Spring Harbor Laboratory (1988), monoclonal antibody experiment manual, Kodansha Scientific (1987)] and the like. *
  • Examples of introduction of an expression vector into a host cell include electroporation method [Japanese Patent Laid-Open No. 2-257891; Cytotechnology, 3, 133 (1990)], calcium ion method, electroporation method, spheroplast. Method, lithium acetate method, calcium phosphate method, lipofection method and the like.
  • Examples of a method for introducing a gene into an animal described below include a microinjection method, a method for introducing a gene into ES cells using electroporation or a lipofection method, and a nuclear transfer method.
  • Any host cell capable of expressing a recombinant antibody can be used as the host cell into which the recombinant antibody expression vector is introduced.
  • mouse SP2 / 0-Ag14 cells ATCC CRL1581
  • mouse P3X63-Ag8.653 cells ATCC CRL1580
  • Chinese hamster CHO-K1 cells ATCC CCL-61
  • DUKXB11 ATCC CCL-9096
  • Pro-5 Cells ATCC CCL-1781
  • CHO-S cells Life Technologies, Cat No. 11619
  • CHO cells deficient in the dihydrofolate reductase gene (dhfr) (CHO / DG44 cells) [Proc. Natl. Acad. Sci.
  • a protein such as an enzyme involved in the synthesis of intracellular sugar nucleotide GDP-fucose, or a sugar chain modification in which the 1-position of fucose is ⁇ -linked to the 6-position of N-acetylglucosamine at the reducing end of the N-glycoside-linked complex sugar chain
  • a host cell having a decreased or deleted activity such as a protein involved in the transport of an intracellular sugar nucleotide GDP-fucose to the Golgi apparatus, such as an ⁇ 1,6-fucose transferase gene CHO cells (International Publication No. 2005/035586, International Publication No. 02/31140) and the like can also be used.
  • a transformant that stably expresses the recombinant antibody is selected by culturing in an animal cell culture medium containing a drug such as G418 sulfate (hereinafter referred to as G418) ( Japanese Patent Laid-Open No. 2-257891).
  • Examples of the medium for animal cell culture include RPMI1640 medium (manufactured by Invitrogen), GIT medium (manufactured by Nippon Pharmaceutical), EX-CELL301 medium (manufactured by JRH), EX-CELL302 medium (manufactured by JRH), EX -CELL325 medium (manufactured by JRH), IMDM medium (manufactured by Invitrogen) or Hybridoma-SFM medium (manufactured by Invitrogen), or a medium obtained by adding various additives such as FBS to these mediums.
  • RPMI1640 medium manufactured by Invitrogen
  • GIT medium manufactured by Nippon Pharmaceutical
  • EX-CELL301 medium manufactured by JRH
  • EX-CELL302 medium manufactured by JRH
  • EX -CELL325 medium manufactured by JRH
  • IMDM medium manufactured by Invitrogen
  • Hybridoma-SFM medium manufactured by Invitrogen
  • the expression level and antigen-binding activity of the recombinant antibody in the culture supernatant can be measured by an ELISA method or the like.
  • the expression level of the recombinant antibody produced by the transformed strain can be increased using a DHFR amplification system (Japanese Patent Laid-Open No. 2-257891).
  • the recombinant antibody can be purified from the culture supernatant of the transformant using a protein A column [Monoclonal Antibodies-Principles and practice, Third edition, Academic Press (1996), Antibodies-A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory (1988)]. Moreover, it can also refine
  • the molecular weight of the purified recombinant antibody H chain, L chain, or whole antibody molecule is determined by polyacrylamide gel electrophoresis [Nature, 227, 680 (1970)] or Western blotting [Monoclonal Antibodies-Principles and practice, Third edition, Academic Press (1996), Antibodies-A Laboratory, Manual, Spring Spring Laboratory (1988)].
  • bispecific antibody of the present invention can be prepared by, for example, combining a plurality of monoclonal antibodies that bind to different epitopes as described in 1. above. Next, the VH and VL cDNA sequences of each antibody are obtained as described in 2. above. The antibody can be prepared by designing an antibody in which the antigen-binding sites of each antibody are linked.
  • a DNA in which the antigen binding site of each antibody and a linker are appropriately combined is synthesized, and 2. It can be prepared by incorporating the recombinant antibody expression vector described in (2) and expressing the bispecific antibody. More specifically, DNA encoding a polypeptide in which the VH of each antibody is linked via a linker is synthesized, and DNA encoding the VL of each antibody is synthesized. It can be prepared by incorporating the recombinant antibody expression vector described in (2) and expressing the bispecific antibody.
  • the antigen binding site is as described in 1. above. In addition to the method using the hybridoma described in 1), it can be isolated and obtained by techniques such as the Page Display method and the Yeast display method [attyle Laffy et. Al., Human Antibodies 14, 33-55, (2005)] .
  • the linker is a peptide that links between one antigen-binding domain and another antigen-binding domain, and is usually composed of a polypeptide having 10 or more amino acid residues.
  • a linker all or a part of the amino acid sequence consisting of CH1, hinge, CH2 and CH3 of an antibody can be used in appropriate combination.
  • those amino acid sequences can be partially deleted or used in a different order.
  • the animal species of the antibody used for the linker is not particularly limited, but is preferably human.
  • the subclass of the antibody used for the linker is not particularly limited, but is preferably IgM or IgG4, and more preferably IgG4.
  • linker examples include a linker consisting of 14 amino acid residues from the N-terminus of IgG4 CH1 represented by SEQ ID NO: 11 to the 14th amino acid, and the N-terminus of IgM CH1 represented by SEQ ID NO: 12.
  • a linker consisting of IgG4 CH1 represented by SEQ ID NO: 93 and a linker consisting of IgG4 CH1 represented by SEQ ID NO: 93 is preferred.
  • a phage display method or the like is used so that each antigen-binding site contained in the bispecific antibody reacts with each specific antigen. Is used to select each VH most suitable for a single VL.
  • an animal is immunized with a first antigen to produce a hybridoma from its spleen, and a DNA sequence encoding the first antigen binding site is cloned.
  • the animal is immunized with the second antigen, a cDNA library is prepared from the spleen, and DNA encoding the amino acid sequence of VH is obtained from the library by PCR.
  • a phage library expressing scFv in which VH obtained by immunization with the second antigen and VL of the first antigen-binding site were linked was prepared, and the second library was obtained by panning using the phage library.
  • a phage displaying an scFv that specifically binds to the antigen of is selected. From the selected phage, a DNA sequence encoding the amino acid sequence of VH of the second antigen binding site is cloned.
  • a DNA sequence encoding the amino acid sequence of a polypeptide in which the VH of the first antigen binding site and the VH of the second antigen binding site are linked via the linker described above is designed,
  • the DNA sequence encoding the amino acid sequence of VL is, for example, 2.
  • the binding activity of the bispecific antibody of the present invention to a cell line expressing at least one of TRAILR2 and PSMA is as described in 1. above. (7) It can be measured using the binding assay system described.
  • CDC activity or ADCC activity against cells expressing at least one of TRAILR2 and PSMA can be measured by a known measurement method [Cancer Immunol. Immunol., 36, 373 (1993)].
  • the cell death-inducing activity of the bispecific antibody of the present invention can be measured by the following method. For example, after seeding cells in a 96-well plate, adding an antibody and culturing for a certain period of time, reacting with WST-8 reagent (manufactured by Dojindo) and measuring the absorbance at 450 nm with a plate reader, the cell survival. Measure the rate.
  • bispecific antibody or antibody fragment thereof of the present invention can be used for the treatment of diseases involving TRAILR2 and PSMA-expressing cells.
  • diseases involving TAILR2 and PSMA include malignant tumors and cancer.
  • malignant tumors and cancers include colorectal cancer, colorectal cancer, lung cancer, breast cancer, glioma, melanoma, thyroid cancer, renal cell cancer, leukemia, lymphoma, T cell lymphoma, gastric cancer.
  • the therapeutic agent containing the bispecific antibody of the present invention or an antibody fragment thereof, or a derivative thereof may contain only the antibody or the antibody fragment, or a derivative thereof as an active ingredient.
  • Examples of the administration route include oral administration and parenteral administration such as intraoral, intratracheal, rectal, subcutaneous, intramuscular or intravenous.
  • Examples of the dosage form include sprays, capsules, tablets, powders, granules, syrups, emulsions, suppositories, injections, ointments or tapes.
  • Various preparations are usually used excipients, extenders, binders, wetting agents, disintegrants, surfactants, lubricants, dispersants, buffers, preservatives, solubilizers, preservatives, coloring. It can be produced by a conventional method using a material, a flavoring agent, a stabilizer and the like.
  • excipients include lactose, fructose, glucose, corn starch, sorbit, crystalline cellulose, sterilized water, ethanol, glycerol, physiological saline, and buffer solution.
  • disintegrant include starch, sodium alginate, gelatin, calcium carbonate, calcium citrate, dextrin, magnesium carbonate, and synthetic magnesium silicate.
  • binder examples include methyl cellulose or a salt thereof, ethyl cellulose, gum arabic, gelatin, hydroxypropyl cellulose, and polyvinyl pyrrolidone.
  • lubricant examples include talc, magnesium stearate, polyethylene glycol and hydrogenated vegetable oil.
  • the stabilizer examples include amino acids such as arginine, histidine, lysine, and methionine, human serum albumin, gelatin, dextran 40, methylcellulose, sodium sulfite, and sodium metasulfite.
  • additives examples include syrup, petrolatum, glycerin, ethanol, propylene glycol, citric acid, sodium chloride, sodium nitrite, and sodium phosphate.
  • preparations suitable for oral administration include emulsions, syrups, capsules, tablets, powders or granules.
  • Liquid preparations such as emulsions or syrups include water, sugars such as sucrose, sorbitol or fructose, glycols such as polyethylene glycol or propylene glycol, oils such as sesame oil, olive oil or soybean oil, p-hydroxybenzoic acid It is produced using an antiseptic such as an ester or a flavor such as strawberry flavor or peppermint as an additive.
  • sugars such as sucrose, sorbitol or fructose
  • glycols such as polyethylene glycol or propylene glycol
  • oils such as sesame oil, olive oil or soybean oil
  • p-hydroxybenzoic acid It is produced using an antiseptic such as an ester or a flavor such as strawberry flavor or peppermint as an additive.
  • Capsules, tablets, powders or granules include excipients such as lactose, glucose, sucrose or mannitol, disintegrants such as starch or sodium alginate, lubricants such as magnesium stearate or talc, polyvinyl alcohol, hydroxy It is manufactured using a binder such as propylcellulose or gelatin, a surfactant such as a fatty acid ester, or a plasticizer such as glycerin as an additive.
  • preparations suitable for parenteral administration include injections, suppositories, and sprays.
  • An injection is produced using a carrier comprising a salt solution, a glucose solution, or a mixture of both.
  • Suppositories are manufactured using a carrier such as cacao butter, hydrogenated fat or carboxylic acid.
  • the propellant is produced using a carrier that does not irritate the recipient's oral cavity and airway mucosa, and in which the monoclonal antibody of the present invention or an antibody fragment thereof is dispersed as fine particles to facilitate absorption.
  • the carrier include lactose or glycerin. It can also be produced as an aerosol or dry powder.
  • the components exemplified as additives in preparations suitable for oral administration can also be added.
  • the effective amount administered as a combination of an effective amount of the bispecific antibody of the present invention and an appropriate diluent and a pharmacologically usable carrier is 0.0001 mg to 100 mg per kg body weight at a time. It is administered at intervals of 8 weeks from the day.
  • Method of diagnosing disease using bispecific antibody or antibody fragment thereof of the present invention By detecting or measuring cells expressing at least one of TRAILR2 and PSMA using the bispecific antibody or the antibody fragment of the present invention Diseases associated with TRAILR2 and PSMA-expressing cells can be diagnosed.
  • Diagnosis of a malignant tumor or cancer that is a disease associated with TRAILR2 and PSMA-expressing cells can be performed, for example, by detecting or measuring at least one of TRAILR2 and PSMA as follows.
  • the bispecific antibody of the present invention using the bispecific antibody of the present invention, the antibody fragment, or a derivative thereof, at least one of TRAILR2 and PSMA using the following immunological technique: Is detected or measured, and the abundance of at least one of TRAILR2 and PSMA in a biological sample of a healthy person is examined.
  • the abundance of at least one of TRAILR2 and PSMA is similarly examined in the biological sample of the subject, and the abundance thereof is compared with the abundance of healthy subjects.
  • a subject is diagnosed with cancer if the abundance of at least one of TRAILR2 and PSMA in the subject is increased compared to a healthy subject. Diagnosis of other diseases involving TAILR2 and PSMA-expressing cells can also be made by the same method.
  • An immunological technique is a method for detecting or measuring the amount of antibody or the amount of antigen using a labeled antigen or antibody.
  • a radioactive substance-labeled immunoantibody method an enzyme immunoassay method, a fluorescence immunoassay method, a luminescence immunoassay method, a Western blot method, a physicochemical method, or the like can be given.
  • radiolabeled immunoantibody method examples include reacting the bispecific antibody of the present invention or the antibody fragment thereof with an antigen or a cell expressing the antigen, and further reacting with an anti-immunoglobulin antibody or binding fragment to which a radiolabel has been applied. After the treatment, a method of measuring with a scintillation counter or the like can be mentioned.
  • an enzyme immunoassay for example, an antigen or a cell expressing the antigen is reacted with the bispecific antibody of the present invention or the antibody fragment, and a labeled anti-immunoglobulin antibody or binding fragment is further reacted.
  • a method of measuring the coloring dye with an absorptiometer for example, a sandwich ELISA method can be used.
  • a known enzyme label [enzyme immunoassay, Medical Shoin (1987)] can be used.
  • enzyme immunoassay Medical Shoin (1987)
  • alkaline phosphatase label, peroxidase label, luciferase label, biotin label or the like is used.
  • Sandwich ELISA is a method in which an antibody to be bound to a solid phase, an antigen to be detected or measured is trapped, and a second antibody is reacted with the trapped antigen.
  • two types of antibodies or antibody fragments that bind to an antigen to be detected or measured and that have different antigen binding sites are prepared, and the first antibody or antibody fragment is pre-plated on a plate (for example, 96 Then, the second antibody or antibody fragment is labeled with a fluorescent substance such as FITC, an enzyme such as peroxidase, or biotin.
  • the above-mentioned antibody-adsorbed plate was labeled after reacting cells or its lysate separated from the living body, tissue or its lysate, cell culture supernatant, serum, pleural effusion, ascites or ocular fluid.
  • the antibody or antibody fragment is reacted, and a detection reaction corresponding to the labeling substance is performed.
  • the antigen concentration in the test sample is calculated from a calibration curve prepared by diluting antigens with known concentrations stepwise.
  • an antibody used in the sandwich ELISA method either a polyclonal antibody or a monoclonal antibody may be used, and an antibody fragment such as Fab, Fab ′, or F (ab) 2 may be used.
  • the combination of the two types of antibodies used in the sandwich ELISA method may be a monoclonal antibody or a combination of the antibody fragments that bind to different epitopes, or a combination of a polyclonal antibody and a monoclonal antibody or an antibody fragment thereof.
  • fluorescence immunoassay for example, measurement is performed by a method described in literature [Monoclonal-Antibodies-Principles-and-practice, Third-edition, Academic-Press (1996), monoclonal antibody experiment manual, Kodansha Scientific (1987)].
  • a label used in the fluorescence immunoassay a known fluorescent label [fluorescent antibody method, Soft Science (1983)] can be used. For example, FITC or RITC is used.
  • the measurement is performed by the method described in the literature [Bioluminescence and chemiluminescence, clinical examination 42, Yodogawa Shoten (1998)].
  • Examples of the label used in the luminescence immunoassay include known luminescent labels, such as acridinium ester or lophine.
  • antigen or antigen-expressing cells are fractionated by SDS (sodium dodecyl sulfate) -PAGE [Antibodies-A Laboratory Manual Cold Spring Harbor Laboratory (1988)], and then the gel is polyvinylidene fluoride (1988).
  • PVDF polyvinylidene fluoride
  • the antibody or antibody fragment that binds to the antigen is reacted with the membrane, and further an anti-IgG antibody or a fluorescent substance such as FITC, an enzyme label such as peroxidase, or a biotin label
  • the measurement is performed by visualizing the label. An example is shown below.
  • cells or tissues expressing a polypeptide having a desired amino acid sequence are lysed, and 0.1 to 30 ⁇ g of protein per lane is electrophoresed by SDS-PAGE under reducing conditions.
  • the migrated protein is transferred to a PVDF membrane and reacted with PBS containing 1 to 10% BSA (hereinafter referred to as BSA-PBS) for 30 minutes at room temperature to perform a blocking operation.
  • BSA-PBS PBS containing 1 to 10% BSA
  • the bispecific antibody of the present invention is reacted, washed with PBS containing 0.05 to 0.1% Tween-20 (Tween-PBS), and reacted with peroxidase-labeled goat anti-mouse IgG at room temperature for 2 hours. .
  • the antigen is detected by washing with Tween-PBS and detecting the band to which the antibody is bound using ECL Western Blotting Detection Reagents (manufactured by Amersham) or the like.
  • ECL Western Blotting Detection Reagents manufactured by Amersham
  • an antibody used for detection by Western blotting an antibody capable of binding to a polypeptide that does not have a natural three-dimensional structure is used.
  • an aggregate is formed by binding at least one of the antigens TRAILR2 and PSMA to the bispecific antibody of the present invention or an antibody fragment thereof, and the aggregate is detected.
  • a physicochemical method for example, a capillary method, a one-dimensional immunodiffusion method, an immunoturbidimetric method, or a latex immunoturbidimetric method [Presentation of clinical test method, Kanbara Publishing (1998)] can be used.
  • an antibody or antigen-sensitized carrier such as polystyrene latex having a particle size of about 0.1 to 1 ⁇ m is used, and when an antigen-antibody reaction is caused by the corresponding antigen or antibody, Scattered light increases and transmitted light decreases. By detecting this change as absorbance or integrating sphere turbidity, the antigen concentration or the like in the test sample is measured.
  • a known immunological detection method for detection or measurement of cells expressing at least one of TRAILR2 and PSMA, a known immunological detection method can be used.
  • immunoprecipitation method immune cell staining method, immunohistochemical staining method are used.
  • fluorescent antibody staining is used.
  • a carrier having a specific binding ability to an immunoglobulin such as protein G sepharose after reacting cells expressing at least one of TRAILR2 and PSMA with the bispecific antibody of the present invention or an antibody fragment thereof Is added to precipitate the antigen-antibody complex.
  • the bispecific antibody of the present invention or an antibody fragment thereof is immobilized on a 96-well plate for ELISA, and then blocked with BSA-PBS.
  • BSA-PBS blocked with BSA-PBS.
  • a lysate of cells or tissues expressing at least one of TRAILR2 and PSMA is reacted.
  • the immunoprecipitate is extracted from the well-washed plate with a sample buffer for SDS-PAGE and detected by the above Western blotting.
  • the immune cell staining method or the immunohistochemical staining method is a method in which the antigen-expressing cell or tissue is treated with a surfactant or methanol to improve the permeability of the antibody in some cases, and then the vicepipe of the present invention. After reacting with a sific antibody and further reacting with an anti-immunoglobulin antibody or a binding fragment thereof to which a fluorescent label such as FITC, an enzyme label such as peroxidase or a biotin label is applied, the label is visualized and microscopically viewed with a microscope It is a method to do.
  • the bispecific antibody or antibody fragment thereof of the present invention can detect at least one of TRAILR2 and PSMA expressed on the cell membrane by fluorescent antibody staining.
  • the formed antibody-antigen complex and the free that is not involved in the formation of the antibody-antigen complex can be measured without separating the antibody or antigen.
  • Example 1 Construction of expression plasmid vector of anti-hTRAILR2 agonist monoclonal antibody KMDA2 antibody
  • anti-hTRAILR2 agonist monoclonal antibody KMDA2 antibody is described in International Publication No. 2002/094880. It was prepared based on the amino acid sequences of heavy chain variable region (VH) and light chain variable region (VL) of 0304 clone.
  • VH heavy chain variable region
  • VL light chain variable region
  • the entire nucleotide sequence of the VH of the KMDA2 antibody is shown in SEQ ID NO: 1, the entire amino acid sequence of VH including the signal sequence deduced from the sequence is shown in SEQ ID NO: 7, and the signal sequence is removed from the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 7.
  • the amino acid sequence is shown in SEQ ID NO: 114, respectively.
  • the entire nucleotide sequence of the VL of the KMDA2 antibody is SEQ ID NO: 2
  • the entire amino acid sequence of the VL including the signal sequence deduced from the sequence is SEQ ID NO: 8
  • the signal sequence is removed from the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 8.
  • the amino acid sequence is shown in SEQ ID NO: 115, respectively.
  • An expression plasmid vector for the KMDA2 antibody was constructed by the method described below.
  • the L chain leader sequence and variable region was amplified by PCR.
  • the PCR fragment was recovered by ethanol precipitation and then digested with restriction enzymes BglII and BsiWI to obtain a DNA fragment of about 400 bp.
  • plasmid vector N5KG4PE (described in WO2002 / 088186) was digested with restriction enzymes BglII and BsiWI, and then dephosphorylated with alkaline phosphatase (E. coli C75) (Takara Shuzo), about 9 kb. A weak DNA fragment was obtained. These two DNA fragments were ligated with T4 DNA ligase to obtain plasmid N5KG4PE-KMDA2L.
  • N5KG4PE-KMDA2L was digested with restriction enzymes NheI and SalI and dephosphorylated to obtain a DNA fragment of about 9.3 kb.
  • the leader sequence and variable region of KMDA2 H chain were amplified by PCR using the KMDA2 antibody H chain cDNA as a template and the primers represented by SEQ ID NO: 5 and SEQ ID NO: 6.
  • the PCR fragment was digested with restriction enzymes NheI and SalI to obtain a DNA fragment of about 450 bp. These two DNA fragments were linked to prepare an expression plasmid vector N5KG4PE_KMDA2 for the anti-hTRAIL2 agonist monoclonal antibody KMDA2 antibody.
  • the H chain PCR fragment amplified by the above method consists of a 5 'untranslated region of the H chain, a signal sequence, a variable region (VH), and a part of the constant region.
  • a light chain PCR amplified fragment consists of a light chain 5 'untranslated region, a leader sequence, a variable region (VL) and a portion of a constant region.
  • a leader sequence is a secretory signal sequence of an antibody, and is an amino acid sequence that is separated from a mature antibody protein.
  • Example 2 Construction of expression plasmid vector of anti-hTRAILR2 monoclonal antibody E11 antibody An anti-hTRAILR2 monoclonal antibody E11 antibody was prepared for use in the production of a bispecific antibody that binds to hTRAILR2 and hPSMA described later. The E11 antibody was prepared based on the amino acid sequences of VH and VL of the E-11-13 clone described in International Publication No. 2002/094880. Table 1 shows the sequence information of the E11 antibody.
  • Table 1 shows the entire base sequence encoding the antibody VH or VL amino acid sequence, the base sequence encoding VH or VL (including the signal sequence), the amino acid sequence deduced from the base sequence, VH or VL.
  • the amino acid sequence (including the signal sequence) and the amino acid sequence obtained by removing the signal sequence from the amino acid sequence are referred to as the amino acid sequence of VH or VL (excluding the signal sequence).
  • amino acid sequences of CDR1 to CDR3 of the heavy chain or light chain of the antibody are described as the amino acid sequences of HCDR1 to 3 or LCDR1 to 3, respectively.
  • the nucleotide sequences encoding the amino acid sequences of VH and VL of the E11 antibody are described in the plasmid vector N5KG1 (described in US Pat. No. 6,001,358) or N5KG4PE [R409K] (described in International Publication No. 2002/088186).
  • E11 antibody expression plasmid vector N5KG1_E11 which is a human IgG1 type anti-hTRAILR2 monoclonal antibody and a mutant human IgG4 (human IgG4 whose amino acid modifications are S228P, L235E and R409K in the constant region) type anti-hTRAILR2 monoclonal antibody
  • An expression plasmid vector N5KG4PE [R409K] _E11 for an E11 antibody was obtained.
  • Example 3 Obtaining an anti-hPSMA monoclonal antibody (1) Obtaining an anti-hPSMA monoclonal antibody having the same VL amino acid sequence as the anti-hTRAILR2 monoclonal antibody E11 antibody and preparing an expression plasmid vector for the antibody In the method described below, An anti-hPSMA monoclonal antibody having the same VL amino acid sequence as the anti-hTRAILR2 monoclonal antibody E11 antibody was obtained.
  • the spleen is surgically removed from the immunized mouse, the spleen is placed on a cell strainer (manufactured by Falcon), the cells are lightly crushed with a silicon rod, the cells are transferred to a tube, and centrifuged to precipitate the cells, followed by red blood cells The removal reagent was allowed to react in ice for 3 minutes and further centrifuged.
  • a cell strainer manufactured by Falcon
  • the cells are lightly crushed with a silicon rod
  • the cells are transferred to a tube, and centrifuged to precipitate the cells, followed by red blood cells
  • the removal reagent was allowed to react in ice for 3 minutes and further centrifuged.
  • the VH gene fragment and the E11 VL gene listed in Table 1 were inserted into phagemid pCANTAB 5E (Amersham Pharmacia), respectively, and E. coli TG1 (Lucigen) was transformed to obtain a plasmid.
  • the obtained plasmid was infected with M13KO7 Helper Page (manufactured by Invitrogen) to obtain a human antibody M13 phage library in which the VH gene was made into a library.
  • an anti-hPSMA monoclonal antibody having the same VL amino acid sequence as the anti-hTRAIL2 monoclonal antibody E11 antibody was obtained.
  • MAXISORP STARTUBE manufactured by NUNC
  • human antibody M13 phage in which FLAG-PSMA of Example 5 to be described later is solid-phased and a site where FLAG-PSMA is not bound is blocked using SuperBlock Blockig Buffer (manufactured by Thermo).
  • the library was reacted at room temperature for 1 hour, washed 5 times with PBS, and then eluted with 0.1 M Gly-HCl (pH 2.2).
  • the eluted phages were infected with TG1 competent cells to amplify the phages. Thereafter, FLAG-PSMA immobilized on MAXISORP STARTUBE was reacted again to perform washing and elution. This operation was repeated twice or three times to concentrate the phages displaying scFv that specifically bind to FLAG-PSMA.
  • the enriched phage was single-cloned, and a clone having binding ability to FLAG-PSMA was selected by ELISA.
  • FLAG-PSMA of Example 5 to be described later was solid-phased, and MAXISORP (manufactured by NUNC) in which a portion where FLAG-PSMA was not bound was blocked using SuperBlock Blockig Buffer (manufactured by Thermo) was used. .
  • PBS-T PBS containing 0.1% Tween 20
  • a solution obtained by diluting an anti-M13 antibody labeled with horseradish peroxidase (manufactured by GE Healthcare) 5000 times with PBS-T containing 10% Block Ace (manufactured by Dainippon Pharmaceutical Co., Ltd.) was added to each well at 50 ⁇ L. In addition, it was incubated at room temperature for 30 minutes.
  • TMB coloring substrate solution manufactured by DAKO
  • 50 ⁇ L of TMB coloring substrate solution manufactured by DAKO
  • 50 ⁇ L of sulfuric acid 50 ⁇ L / well
  • the absorbance at a wavelength of 450 nm was measured using a microplate reader (1420 ARVO multilabel counter: manufactured by WALLAC).
  • the clones bound to FLAG-PSMA were subjected to sequence analysis and anti-hPSMA monoclonal antibodies PI134 antibody, PI101 antibody, PN7 antibody, PI105 antibody, PI108 antibody having the same VL amino acid sequence as the anti-hTRAILR2 monoclonal antibody E11 antibody shown in Table 1 , PI115 antibody, PI118 antibody, PI127 antibody, PI143 antibody, PL223 antibody and PN170 antibody were obtained.
  • Table 2 shows the sequence information of the heavy chain of each hPSMA monoclonal antibody in the same display method as in Table 1.
  • Base sequences encoding the amino acid sequences of VH and VL of PI134 antibody, PI101 antibody, PI105 antibody, PI108 antibody, PI115 antibody, PI118 antibody, PI127 antibody, PI143 antibody, PL223 antibody, and PN170 antibody were synthesized.
  • nucleotide sequence encoding the amino acid sequence of VH and VL of the PN7 antibody was synthesized and inserted into a plasmid vector N5KG4PE [R409K] (described in WO2002 / 088186) in the same manner as in Example 1.
  • N5KG4PE [R409K] (described in WO2002 / 088186) in the same manner as in Example 1.
  • a vector was constructed and named N5KG4PE [R409K] _E11VL_PN7.
  • the entire base sequence of the VL of the 2A10 antibody is SEQ ID NO: 25
  • the entire amino acid sequence of the VL including the signal sequence deduced from the sequence is represented by SEQ ID NO: 26
  • the signal sequence is derived from the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 26.
  • the excluded amino acid sequence is shown in SEQ ID NO: 117, respectively.
  • a gene encoding the VL amino acid sequence of the 2A10 antibody was synthesized and subcloned into the BglII-BsiWI site of the plasmid vector N5KG1 to obtain N5KG1_2A10VL.
  • a gene encoding VH of 2A10 was synthesized and used as a template.
  • the primers represented by SEQ ID NO: 27 and SEQ ID NO: 28 and KOD plus DNA Polymerase manufactured by Toyobo Co., Ltd.
  • the VH region gene was obtained by PCR.
  • the fragment was amplified. PCR was carried out for 25 cycles of 94 ° C for 30 seconds, 58 ° C for 30 seconds, and 68 ° C for 45 seconds.
  • the gene fragment in which the signal sequence was linked to the VH region was amplified by PCR using the primers represented by SEQ ID NO: 29 and SEQ ID NO: 28 and KOD polymerase. PCR was performed by 25 cycles of 94 ° C for 30 seconds, 58 ° C for 30 seconds, and 68 ° C for 90 seconds.
  • the obtained gene fragment was inserted into the SalI-NheI site of the N5KG1_2A10VL vector to obtain an expression plasmid vector N5KG1_2A10 for the anti-hPSMA monoclonal antibody 2A10 antibody.
  • hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody that binds to hTRAIL2 and hPSMA having the structure shown in FIG. 1 (hereinafter referred to as hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody or simply bispecific antibody) (Referred to as a specific antibody) was prepared by the following method.
  • the heavy chain of the bispecific antibody includes the VH of the anti-hTRAILR2 monoclonal antibody E11 antibody, the linker, and the amino acid sequence of the VH of the anti-hPSMA monoclonal antibody in order from the N-terminal side of FIG. These include the VL amino acid sequence of the E11 antibody.
  • An antibody having two different antigen-binding site VLs in common, such as the bispecific antibody is referred to as a light chain common type bispecific antibody.
  • Table 3 shows the name of the hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody, the clone name of the anti-TRAILR2 monoclonal antibody used to produce the antibody, the structure of the linker, the clone name of the anti-hPSMA monoclonal antibody, and the name of the expression plasmid vector of the bispecific antibody. Show. Further, regarding the bispecific antibody, the amino acid sequence of a polypeptide comprising the VH of the E11 antibody, the linker and the VH of the anti-hPSMA monoclonal antibody (hereinafter also simply referred to as VH-linker-VH) and the base sequence encoding the amino acid sequence Is shown in Table 4.
  • VH-linker-VH the amino acid sequence of a polypeptide comprising the VH of the E11 antibody, the linker and the VH of the anti-hPSMA monoclonal antibody
  • the linker fragment gene fragment was amplified by PCR using the primers represented by SEQ ID NO: 30 and SEQ ID NO: 31, and KOD plus DNA Polymerase (manufactured by Toyobo).
  • the VH amplification template vector VH amplification primer and KOD polymerase shown in Table 5
  • the VH region gene fragment of each anti-hPSMA monoclonal antibody was amplified by PCR. In each PCR, 25 cycles of a reaction comprising 94 ° C. for 30 seconds, 58 ° C. for 30 seconds, and 68 ° C. for 45 seconds were performed.
  • linker moiety and each anti-hPSMA monoclonal antibody were used as a template and the VH-linker binding primer shown in Table 5 and KOD polymerase were used as a template.
  • the gene fragment to which the VH region of the monoclonal antibody was linked was amplified.
  • PCR was performed by 25 cycles of 94 ° C. for 30 seconds, 58 ° C. for 30 seconds, and 68 ° C. for 90 seconds.
  • the amplified gene fragment was ligated to N5KG1_E11 or N5KG4PE [R409K] _E11 cleaved with NheI to obtain the expression plasmid vectors for each hTRAIL2-hPSMA bispecific antibody shown in Table 5.
  • the VH region gene fragment of the anti-hPSMA monoclonal antibody PI134 antibody was amplified by PCR using the primers represented by SEQ ID NO: 57 and SEQ ID NO: 33 and KOD polymerase.
  • PCR was performed by 25 cycles of reaction at 94 ° C. for 30 seconds, 58 ° C. for 30 seconds, and 68 ° C. for 45 seconds.
  • the gene fragment was ligated to N5KG1_E11 cleaved with the restriction enzyme NheI to prepare an expression plasmid vector N5KG1_E11VL_E11-GL-PI134VH for the hTRAIL2-hPSMA bispecific antibody E11-GL-PI1134VH antibody.
  • hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody expression plasmid vectors having the amino acid sequence from N-terminal to 14th of CH1 of human IgM as a linker (ML linker) hTRAILR2-hPSMA bispecific antibodies shown in Table 3 and Table 4
  • An expression plasmid vector for the E11-ML-PI101VH antibody was prepared by the method described below.
  • the linker of the bispecific antibody is the amino acid sequence from the N-terminal to the 14th position of CH1 of human IgM represented by SEQ ID NO: 12.
  • the gene fragment of the VH region of the anti-hTRAILR2 monoclonal antibody E11 antibody was amplified by PCR using N5KG1_E11 as a template, the primers represented by SEQ ID NO: 59 and SEQ ID NO: 60, and KOD polymerase.
  • PCR was performed for 25 cycles of 94 ° C for 30 seconds, 58 ° C for 30 seconds, and 68 ° C for 45 seconds.
  • the gene fragment of the VH region of the anti-hPSMA monoclonal antibody PI101 antibody was amplified by PCR using N5KG1_E11VL_PI101 as a template, the primers represented by SEQ ID NO: 61 and SEQ ID NO: 62, and KOD polymerase.
  • PCR was performed by 25 cycles of 94 ° C. for 30 seconds, 58 ° C. for 30 seconds, and 68 ° C. for 45 seconds.
  • Example 5 Preparation of soluble hPSMA antigen As a soluble antigen of human prosthetic membrane antigen (hPSMA), an extracellular domain protein of hPSMA with FLAG-tag added to the N-terminus was prepared by the method described below.
  • the base sequence encoding the amino acid sequence of hPSMA is shown in SEQ ID NO: 64, and the amino acid sequence deduced from the base sequence is shown in SEQ ID NO: 112.
  • the gene sequence of the extracellular domain of hPSMA was synthesized and inserted into the SpeI-BamHI site of the N5 (IDEC) vector into which the FLAG-tag was inserted, whereby hPSMA with FLAG-tag added to the N-terminal side.
  • a plasmid vector N5 / FLAG-hPSMA expressing the extracellular domain was constructed.
  • the base sequence of FLAG-hPSMA is shown in SEQ ID NO: 92, and the amino acid sequence deduced from the base sequence is shown in SEQ ID NO: 113.
  • N5 / FLAG-hPSMA was introduced and cultured in free-floating 293 cells using FreeStyle (trademark) 293 Expression System (manufactured by Invitrogen), and the protein was expressed in a transient expression system. Seven days after the introduction of the vector, the culture supernatant was collected and filtered through a membrane filter (manufactured by MILLIPORE) having a pore size of 0.22 ⁇ m.
  • This culture supernatant was charged to ANTI-FLAG M2 Affinity Gel (column volume 2 mL) (manufactured by SIGMA Aldrich) for purification of FLAG fusion protein, washed with PBS ( ⁇ ), and then eluted with 20 mM citric acid, 50 mM NaCl ( elution by pH 3.4)] and collected in a tube containing 1M sodium phosphate buffer (pH 7.0).
  • the solvent of the eluate was replaced with PBS by ultrafiltration using VIVASPIN (manufactured by Sartrius stealin), and then sterilized by filtration with a membrane filter (Millex-GV, manufactured by MILLIPORE) having a pore size of 0.22 ⁇ m.
  • a FLAG fusion protein solution was obtained.
  • the concentration of the purified FLAG-hPSMA fusion protein was measured by absorbance at 280 nm.
  • PCR amplification was performed by carrying out the cycle.
  • the amplified product was subjected to TOPO cloning using pEF6 / V5-His TOPO TA Expression Kit (manufactured by Invitrogen), and a clone in which the hPSMA gene was correctly inserted was selected, whereby an expression plasmid vector pEF6- Obtained hPSMA full.
  • Example 7 Preparation of anti-hTRAILR2 monoclonal antibody, anti-hPSMA monoclonal antibody and hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody
  • Expression plasmid vectors of various antibodies prepared in Examples 1 to 4 were used as FreeStyle (TM) 293 Expression System (Invitrogen). The product was introduced into suspension 293 cells and the antibody was expressed in a transient expression system. Seven days after the introduction of the vector, the culture supernatant was collected and filtered through a membrane filter (MILLIPORE) having a pore size of 0.22 ⁇ m, and then the antibody was purified using protein A resin (MabSelect, manufactured by GE Healthcare Biosciences). Affinity purified. A phosphate buffer was used as a washing solution.
  • MILLIPORE membrane filter having a pore size of 0.22 ⁇ m
  • the antibody adsorbed on protein A was eluted with an eluent [20 mM sodium citrate, 50 mM NaCl buffer (pH 3.4)] and collected in a tube containing 1 M sodium phosphate buffer (pH 7.0). Next, the solvent of the eluate was replaced with PBS by ultrafiltration using VIVASPIN (manufactured by Sartrius Steelin).
  • the monomer fraction was fractionated from the antibody solution using Superdex High-performance Columns (manufactured by GE Healthcare), and a membrane filter having a pore size of 0.22 ⁇ m. Filtration sterilization was performed with Millex-GV (MILLIPORE).
  • the target purified antibody solution was obtained by sterilizing by filtration through an AKTA system membrane filter (Millex-GV, manufactured by MILLIPORE) having a pore diameter of 0.22 ⁇ m.
  • the absorbance of the antibody solution was measured at 280 nm, and the concentration of the purified antibody was calculated by converting the concentration of 1 mg / mL to 1.40 Optimal density.
  • Example 8 Preparation of L929 and PC3 expressing hPSMA
  • the expression plasmid vector of membrane-type hPSMA obtained in Example 6 was used as a mouse connective tissue-derived fibroblast L929 [American Type] using HilyMax (manufactured by Dojindo). Culture Collection (ATCC) number: CCL-1] and human prostate cancer cell PC3 [ATCC number: CRL-1435] cells.
  • the cells after gene introduction were selected by the antibiotic Blasticidin (manufactured by Invitrogen), then cloned by limiting dilution, and L929 cells (hereinafter abbreviated as hPSMA / L929) and PC3 cells expressing hPSMA on the cell surface (hereinafter abbreviated as hPSMA / L929).
  • hPSMA / PC3 L929 cells
  • Example 9 Evaluation of binding of hTRAIL2-hPSMA bispecific antibody to hTRAILR2 and hPSMA by flow cytometer The binding of various hTRAILR2-hPSMA bispecific antibodies obtained in Example 7 to hTRAILR2 and hPSMA was determined by the following procedure. And evaluated by flow cytometry.
  • anti-hPSMA monoclonal antibodies or anti-hTRAILR2 monoclonal antibodies obtained in Example 7 hTRAIL2 / L929 cells (described in WO 2002/094880) and hPSMA obtained in Example 8 Binding to / L929 cells was analyzed by FACS.
  • the cells were suspended in staining buffer [PBS containing 0.1% NaN 3 , 1% FBS] at a concentration of 1 ⁇ 10 6 cells / mL, and 100 ⁇ L / well of 96-well round bottom plate (manufactured by Becton Dickinson) Dispensed into After centrifugation (2000 rpm, 4 ° C., 2 minutes), each antibody obtained in Example 7 was added to the pellet obtained by removing the supernatant, suspended, and allowed to stand at ice temperature for 30 minutes. .
  • staining buffer PBS containing 0.1% NaN 3 , 1% FBS
  • hTRAILR2 / L929 cells are anti-hPSMA monoclonal antibody 2A10 antibody or PI134 antibody, or hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody E11-GL-PI134VH antibody, E11-CH1-PI134VH antibody, E11-CH1-PI101VH antibody, E11-CH1-PN7VH antibody Alternatively, it was stained with E11-CH1-PN170VH antibody. The obtained results are shown in FIG.
  • hPSMA / L929 cells were stained with anti-TRAILR2 monoclonal antibody E11 antibody, anti-hPSMA monoclonal antibody PI134 antibody, or hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody E11-CH1-PI101VH antibody, E11-CH1-PN7VH antibody or E11-CH1-PN170VH antibody . The obtained results are shown in FIG.
  • anti-hTRAILR2 monoclonal antibody E11 antibody, and hTRIALR2-hPSMA bispecific antibody E11-CH1-PI101VH antibody, E11-CH1-PN7VH antibody and E11-CH1-PN170VH antibody against hTRAILR2 / L929 cells was bound while anti-hPSMA monoclonal antibody PI134 antibody was not bound.
  • hTRAILR2 / L929 cells express hTRAILR2 and do not express hPSMA. It was also shown that the E11-CH1-PI101VH antibody, the E11-CH1-PN7VH antibody, and the E11-CH1-PN170VH antibody, which are hTRIAL2-hPSMA bispecific antibodies, have binding properties to hTRAILR2.
  • hPSMA / L929 cells express hPSMA, and hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody E11-CH1-PI134VH antibody, E11-GL-PI134VH antibody, E11-CH1-PI101VH antibody, E11-CH1-PN7VH antibody and The E11-CH1-PN170VH antibody was shown to have binding properties to hPSMA.
  • hTRAILR2-hPSMA bispecific antibodies shown in Table 3 bind to both PC3 cells (TRAILR2 expression) and hPSMA / PC3 cells (both hPSMA and TRAILR2 expression) prepared in Example 8 in the same manner as described above. Confirmed (no data disclosed). The expression level of PSMA was higher in hPSMA / PC3 cells than in TRAILR2, and for all antibodies, the fluorescence intensity in hPSMA / PC3 cells was higher than that in PC3 cells.
  • hTRAIL2-hPSMA bispecific antibody of the present invention binds to both hTRAILR2 and hPSMA.
  • Example 10 Analysis of antigen expression of PC3 cells, hPSMA / PC3 cells and LNCaP clone FGC cells by flow cytometer PC3 cells, hPSMA / PC3 cells prepared in Example 8 and human prostate cancer cell line LNCaP clone FGC (CRL- 1740), the presence or absence of expression of hTRAILR2 or hPSMA was evaluated by the FACS method according to the following procedure.
  • PC3 cells, hPSMA / PC3 cells or LNCaP clone FGC cells were suspended in staining buffer (PBS containing 0.1% NaN 3 and 1% FBS) at a concentration of 1 ⁇ 10 6 cells / mL and 96 ⁇ L / well. It dispensed to the hole round bottom plate (made by Becton Dickinson). After centrifugation (2000 rpm, 4 ° C., 2 minutes), each antibody obtained in Example 7 was added to and suspended in the pellet obtained by removing the supernatant, and then allowed to stand at ice temperature for 30 minutes. did.
  • staining buffer PBS containing 0.1% NaN 3 and 1% FBS
  • the pellet obtained by centrifugation 2000 rpm, 4 ° C., 2 minutes
  • the supernatant was washed twice with 200 ⁇ L / well staining buffer, and then 1 ⁇ g / mL RPE fluorescently labeled mouse anti-human antibody.
  • (Hinge region) Clone 4E3 manufactured by Southern Bioblot was added at 50 ⁇ L / well and incubated at ice temperature for 30 minutes. After washing twice with the staining buffer, the suspension was suspended in 200 ⁇ L / well staining buffer, and the fluorescence intensity of each cell was measured with a flow cytometer FACSCANTO II (Becton Dickinson).
  • Anti-hTRAILR2 monoclonal antibody E11 antibody, anti-hPSMA monoclonal antibody 2A10 antibody or PI134 antibody, hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody E11-CH1-PI101VH antibody, or a known anti-DNP monoclonal antibody was used as a negative control. The obtained results are shown in FIG. 4 (A), FIG. 4 (B), and FIG.
  • E11 antibody, E11-CH1-PI101VH antibody, and PI134 antibody bound to hPSMA / PC3 cells. Furthermore, it was shown that PI134 antibody and E11-CH1-PI101VH antibody have stronger binding activity than E11 antibody.
  • PC3 cells did not express hPSMA, only hTRAILR2, and hPSMA / PC3 cells expressed both antigens of hTRAILR2 and hPSMA.
  • anti-hTRAILR2 monoclonal antibody E11 antibody and anti-hPSMA monoclonal antibody 2A10 antibody were bound to LNCaP clone FGC. From this result, it was shown that LNCaP clone FGC expresses both antigens of hTRAILR2 and hPSMA.
  • Example 11 Proliferation test of PC3 cells and hPSMA / PC3 cells using hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody PC3 cells and hPSMA / PC3 cells obtained in Example 8 using various antibodies obtained in Example 7 was evaluated as follows. Thereby, it can be confirmed whether the antibody obtained in Example 7 suppresses cell proliferation and / or induces cell death with respect to the cells.
  • PC3 cells express hTRAILR2 and do not express hPSMA, and that hPSMA / PC3 cells express hTRAILR2 and hPSMA.
  • Anti-hTRAILR2 monoclonal antibody E11 antibody, anti-hTRAILR2 agonist monoclonal antibody KMDA2 antibody, hTRAIL2-hPSMA bispecific antibody E11-CH1-PI134VH antibody, E11-CH1-PI101VH antibody, E11-CH1-PN7VH antibody, E11-CH1-PN170VH Antibody, E11-GL-PI134VH, E11-CH1-PI105VH antibody, E11-CH1-PI108VH antibody, E11-CH1-PI115VH antibody, E11-CH1-PI118VH antibody, E11-CH1-PI127VH antibody, E11-CH1-PI143VH antibody or Use an E11-CH1-PL223VH antibody or a known anti-DNP monoclonal antibody as a negative control antibody. It was.
  • FIGS. 6 and 7 The obtained results are shown in FIGS.
  • FIGS. 6 and 7 the results for hPSMA / PC3 cells are shown in FIGS.
  • the anti-hTRAIL2 monoclonal antibody E11 antibody did not decrease the cell viability as well as the anti-DNP monoclonal antibody for any cell.
  • the anti-TRAILR2 agonist monoclonal antibody KMDA2 antibody decreased the cell viability of all cells more than the anti-DNP monoclonal antibody.
  • the hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody E11-CH1-PI134VH antibody, E11-CH1-PI101VH antibody, E11-CH1-PN7VH antibody and E11-CH1-PN170VH antibody are against PC3 cells. Did not reduce cell viability as well as anti-DNP monoclonal antibodies.
  • anti-hPSMA monoclonal antibody 2A10 antibody, PI134 antibody, and PN7 antibody alone did not reduce the cell viability of any cell as well as anti-DNP monoclonal antibody (data not disclosed).
  • the hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody of the present invention expresses hTRAILR2 and does not reduce cell viability for cells that do not express hPSMA, and does not reduce cell viability, and it expresses both hTRAILR2 and hPSMA. Reduced cell viability.
  • the hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody of the present invention does not suppress cell proliferation and / or induce cell death only by binding to hTRAILR2, but induces the above reaction when bound to hTRAILR2 and hPSMA. It was done.
  • the anti-hTRAILR2 monoclonal antibody E11 antibody which is the parent antibody of the hTRAIL2-hPSMA bispecific antibody of the present invention, is a cell that expresses both hTRAIL2 cells that do not express hPSMA and cells that express hTRAILR2 and hPSMA. It was shown not to reduce the survival rate.
  • the anti-TRAILR2 monoclonal antibody used in the present invention inhibits cell proliferation and / or induces cell death for the first time when it is a bispecific antibody bound to a binding domain for PSMA.
  • Example 12 Proliferation test of cancer cells using hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody Using the various antibodies obtained in Example 7, the proliferation of LNCaP clone FGC cells (ATCC, CRL — 1740) was as follows. Evaluated. Anti-hTRAILR2 agonist monoclonal antibody KMDA2 antibody, anti-hTRAILR2 monoclonal antibody E11 antibody, hTRAIL2-hPSMA bispecific antibody E11-CH1-PI101VH antibody, E11-CH1-PN7VH antibody, or E11-CH1-PN170VH antibody, or negative control antibody Anti-DNP monoclonal antibody known in the art was used. LNCaP clone FGC cells were confirmed to express both hTRAILR2 and hPSMA in Example 10.
  • the anti-hTRAIL2 monoclonal antibody E11 antibody did not reduce the cell viability as much as the anti-DNP monoclonal antibody against LNCaP clone FGC cells.
  • anti-hTRAILR2 agonist monoclonal antibody KMDA2 antibody and hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody E11-CH1-PI101VH antibody, E11-CH1-PN7VH antibody and E11-CH1-PN170VH antibody are more of LNCaP clone FGC cells than anti-DNP monoclonal antibody. Reduced survival rate.
  • the hTRAIL2-hPSMA bispecific antibody of the present invention suppresses cell proliferation and / or suppresses cell proliferation in a normal cell line that is not a forced expression line as long as it is a cell that expresses hTRAIL2 and hPSMA. Or was shown to induce cell death.
  • Example 13 Detection of caspase by flow cytometer Whether or not the hTRAIL2-hPSMA bispecific antibody E11-CH1-PI101VH antibody obtained in Example 7 induces apoptosis in PC3 cells and hPSMA / PC3 cells. As described below, this was confirmed by detecting activated caspase using a flow cytometer and a FAM-FLICA Caspase Detection Kit (manufactured by Immunochemistry). In Example 10, it has been confirmed that PC3 cells express hTRAILR2 and do not express hPSMA, and hPSMA / PC3 cells do not express hTRAILR2 and hPSMA.
  • PC3 cells or hPSMA / PC3 cells were dispensed at 5 ⁇ 10 4 cells / well into a 96-well round bottom plate (Becton Dickinson). After centrifugation (2000 rpm, 4 ° C., 2 minutes), the supernatant obtained by removing the supernatant was added to the negative control antibody (anti-DNP monoclonal antibody), E11-CH1-PI101VH antibody or TRAILR2 ligand TRAIL / Apo2 (R & D systems). was diluted with a medium to a final concentration of 1 ⁇ g / mL and incubated at 37 ° C. for 6 hours.
  • the negative control antibody anti-DNP monoclonal antibody
  • E11-CH1-PI101VH antibody or TRAILR2 ligand TRAIL / Apo2 R & D systems
  • activated caspase was not detected when the E11-CH1-PI101VH antibody was added, but was detected only when TRAIL was added.
  • activated caspase was detected in the hPSMA / PC3 cells when any of the E11-CH1-PI101VH antibody and TRAIL was added.
  • the E11-CH1-PI101VH antibody expresses hTRAILR2 and does not induce apoptosis in cells that do not express hPSMA, but specifically induces apoptosis in cells that express both hTRAILR2 and hPSMA. It became clear to do.
  • the hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody of the present invention does not induce apoptosis only by binding to hTRAILR2, but induces apoptosis when bound to hTRAILR2 and hPSMA. Moreover, it was shown that the said apoptosis is via TRAILR2.
  • Example 14 Safety evaluation of hTRAIL2-hPSMA bispecific antibody by proliferation test of normal hepatocytes Normal hepatocytes (Celsis IVT, IVT-M00995-P) using various antibodies obtained in Example 7 was evaluated as follows. Thereby, it can be confirmed whether the various antibodies obtained in Example 7 induce at least one of suppression of cell proliferation and cell death with respect to normal hepatocytes.
  • the TRAILR2 ligand TRAIL / Apo2 was also used instead of the antibody.
  • the anti-hTRAILR2 agonist monoclonal antibody KMDA2 antibody and the TRILR2 ligand TRAIL / Apo2 decreased the survival rate of normal hepatocytes compared to the anti-DNP monoclonal antibody, whereas the anti-hTRAILR2 monoclonal antibody E11
  • the antibodies and hTRAIL2-hPSMA bispecific antibodies E11-CH1-PI101VH and E11-CH1-PN7VH antibodies did not reduce normal hepatocyte viability as well as anti-DNP monoclonal antibodies.
  • hTRAIL2-hPSMA bispecific antibody of the present invention does not suppress cell proliferation and / or induce cell death relative to normal hepatocytes.
  • the hTRAIL2-hPSMA bispecific antibody of the present invention was shown to greatly reduce the toxicity to normal hepatocytes caused by anti-TRAILR2 agonist monoclonal antibodies or TRAIL / Apo2.
  • Example 15 Construction of expression plasmid vector of hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody or antibody fragment thereof At least one of the cell growth-inhibiting activity and cell death-inducing activity of hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody measured in Example 11, In order to investigate the relationship with the structure of the bispecific antibody, hTRAIL2-hPSMA bispecific antibody fragments E11-CH1-PN7VHF (ab ′) 2 and E11-CH1- shown in FIGS. 15 (B) to 15 (D), respectively. PN7VH Fab and hTRAILR2-hPSMA heterobispecific antibody E11_PN7 Hetero antibody were prepared, and at least one of its cell growth inhibitory activity and cell death inducing activity was evaluated.
  • E11-CH1-PN7VH F (ab ′) 2 is the hTRAILR2- produced in Examples 4 and 7. This is a bispecific antibody fragment in which CH2 and CH3 of hPSMA bispecific antibody E11-CH1-PN7 VH has been deleted [FIG. 15 (B)].
  • An expression plasmid vector of hTRAIL2-hPSMA bispecific antibody fragment E11-CH1-PN7VH F (ab ′) 2 was prepared by the following method.
  • the heavy chain of the bispecific antibody fragment contains, in order from the N-terminal side, the VH of the anti-hTRAIL2 monoclonal antibody E11 antibody, the linker (CH1 region of human IgG4), and the VH amino acid sequence of the anti-hPSMA monoclonal antibody PN7 antibody, and the C-terminal Includes FLAG-tag and His-tag as tags for purification.
  • the light chain of the bispecific antibody fragment includes the VL amino acid sequence of the E11 antibody.
  • E11-CH1-PN7VH F (ab ′) 2 forms a dimer with cysteine in the hinge region, and binds to hTRAILR2 and hPSMA bivalently [FIG. 15 (B)].
  • primer 33 SEQ ID NO: 144
  • primer 34 SEQ ID NO: 145
  • KOD plus DNA Polymerase manufactured by Toyobo Co., Ltd.
  • PCR was performed using the N5KG4PE [R409K] _E11VL_PN7 vector described in Example 3 as a template, primer 35 (SEQ ID NO: 146) and primer 36 (SEQ ID NO: 147), and KOD plus DNA Polymerase (manufactured by Toyobo).
  • the gene fragment of VH region of PN7 antibody was amplified.
  • primers 37 SEQ ID NO: 148
  • primer 38 SEQ ID NO: 149
  • KOD polymerase KOD polymerase
  • the gene fragment amplified by the PCR reaction was ligated to the N5KG1_E11 vector described in Example 2 cleaved with the restriction enzymes NheI and BamHI, whereby the hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody fragment E11-CH1-PN7VH F (ab ′ 2 )
  • the expression plasmid vector N5KG_E11VL_E11-CH1-PN7VH F (ab ′) 2 was prepared.
  • the base sequence excluding the heavy chain signal sequence of E11-CH1-PN7VH F (ab ′) 2 is shown in SEQ ID NO: 150, and the amino acid sequence deduced from the base sequence is shown in SEQ ID NO: 151.
  • E11-CH1-PN7VH Fab (2) Construction of expression plasmid vector of hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody fragment E11-CH1-PN7VH Fab
  • An expression plasmid vector of hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody fragment E11-CH1-PN7VH Fab was prepared by the following method.
  • E11-CH1-PN7VH Fab has a structure in which the hinge region is deleted from E11-CH1-PN7VH F (ab ′) 2 described in (1), and binds monovalently to hTRAILR2 and hPSMA, respectively. [FIG. 15C].
  • primer 33 SEQ ID NO: 144
  • primer 34 SEQ ID NO: 145
  • KOD plus DNA Polymerase manufactured by Toyobo Co., Ltd.
  • PCR was performed using the N5KG4PE [R409K] _E11VL_PN7 vector described in Example 3 as a template, primer 35 (SEQ ID NO: 146) and primer 36 (SEQ ID NO: 147), and KOD plus DNA Polymerase (manufactured by Toyobo Co., Ltd.).
  • the gene fragment of the VH region of the anti-hPSMA monoclonal antibody PN7 antibody was amplified. Furthermore, using the base sequence of the constant region of human IgG4 as a template, the gene fragment of the CH1 portion was amplified by PCR using primer 37 (SEQ ID NO: 148), primer 39 (SEQ ID NO: 152), and KOD polymerase.
  • the gene fragment amplified by the PCR reaction was ligated to the N5KG1_E11 vector cleaved with restriction enzymes NheI and BamHI, thereby expressing the hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody fragment E11-CH1-PN7VH Fab expression plasmid vector N5KG_E11VL_E11-CH1-PN7VH Fab was prepared.
  • the base sequence excluding the heavy chain signal sequence of E11-CH1-PN7 VH Fab is shown in SEQ ID NO: 153, and the amino acid sequence deduced from the base sequence is shown in SEQ ID NO: 154.
  • One heavy chain of the bispecific antibody is a heavy chain consisting of the VH amino acid sequence of the E11 antibody and the amino acid sequence of the constant region of human IgG1 introduced with the amino acid mutation of K409R (hereinafter referred to as E11 K409R).
  • the other heavy chain is a heavy chain consisting of the amino acid sequence of VH of the PN7 antibody and the amino acid sequence of the constant region of human IgG1 into which an amino acid mutation of F405L has been introduced (hereinafter referred to as PN7 F405L).
  • E11_PN7 Hetero antibody The production method of the E11_PN7 Hetero antibody will be described in detail in Example 16.
  • the anti-hTRAILR2 monoclonal antibody containing the VL amino acid sequence of the heavy chain is E11 K409R and the light chain is E11 antibody, and the heavy chain is PN7 F405L and light.
  • An anti-hPSMA monoclonal antibody whose chain contains the VL amino acid sequence of the E11 antibody is prepared.
  • E11_PN7 Hetero antibody in which the heavy chains E11 K409R and PN7 F405L of each antibody form a heterodimer can be prepared by mixing these two types of antibodies and performing a reduction reaction.
  • An anti-hTRAILR2 antibody expression plasmid vector N5KG1_E11VL_E11VH K409R containing a VL amino acid sequence with a heavy chain of E11 K409R and a light chain of E11 is a human IgG1 heavy chain constant region gene fragment into which an amino acid mutation of K409R has been introduced.
  • the human IgG1-type anti-hTRAILR2 monoclonal antibody E11 antibody cleaved in was ligated to the expression plasmid vector N5KG1_E11.
  • An anti-hPSMA monoclonal antibody expression plasmid vector N5KG1_E11VL_PN7VH F405L containing a VL amino acid sequence with a heavy chain of PN7 F405L and a light chain of E11 antibody is a human IgG1 heavy chain constant region gene fragment into which an amino acid mutation of F405L has been introduced.
  • mutated human IgG4-type anti-hPSMA monoclonal antibody PN7 antibody cleaved with BamHI, and prepared by ligating to expression plasmid vector N5KG4PE [R409K] _E11VL_PN7.
  • the base sequence excluding the signal sequence of E11 K409R is shown in SEQ ID NO: 155, and the amino acid sequence deduced from the base sequence is shown in SEQ ID NO: 156.
  • the base sequence excluding the signal sequence of PN7 F405L is shown in SEQ ID NO: 157, and the amino acid sequence deduced from the base sequence is shown in SEQ ID NO: 158.
  • Example 16 Preparation of hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody or antibody fragment thereof
  • Example 15 Expression plasmid vector N5KG_E11VL_E11-CH1-PN7VH F (ab ') 2 or N5KG_E11VL_E11-CH1-PN7VH Fab manufactured by ExpiSimFistentSymfic Chemical System Expi293F gene was introduced into (R) cells, E11-CH1-PN7VH F ( ab ') Or E11-CH1-PN7VH Fab were transiently expressed.
  • the culture supernatant was collected and filtered through a membrane filter (Thermo Scientific) having a pore size of 0.22 ⁇ m.
  • This culture supernatant was charged to ANTI-FLAG M2 Affinity Gel (column volume 2 mL) (manufactured by SIGMA Aldrich) for purification of FLAG fusion protein, washed with PBS ( ⁇ ), and then eluted with an elution buffer [20 mM citric acid, 50 mM NaCl ( pH 3.4)] and recovered in a tube containing 200 mM sodium phosphate buffer (pH 7.0).
  • E11-CH1-PN7VHF (ab ′) 2 or E11-CH1 from the eluate -Fraction corresponding to the molecular weight of PN7VH Fab was collected and sterilized by filtration with a membrane filter (Millex-GV, manufactured by MILLIPORE) having a pore size of 0.22 ⁇ m to thereby obtain hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody fragment E11-CH1-PN7VH An antibody solution containing F (ab ′) 2 or E11-CH1-PN7VH Fab was obtained.
  • E11-CH1-PN7VH F (ab ′) 2 or E11-CH1-PN7VH Fab in the obtained antibody solution was 95% or more pure. It was confirmed by flow cytometry that all the bispecific antibody fragments have binding activity to hTRAILR2 and hPSMA.
  • the expression plasmid vector N5KG1_E11VL_PN7VH F405L prepared in Example 15 was also introduced into floating Expi293F (registered trademark) cells in the same manner, and the anti-hPSMA monoclonal containing the VL amino acid sequence of the PN7 F405L heavy chain and the E11 antibody light chain. The antibody was expressed transiently.
  • the culture supernatant was collected 4 days after gene transfer, filtered through a 0.22 ⁇ m membrane filter (Thermo Scientific), and protein A resin (MabSelect, manufactured by GE Healthcare Biosciences). ) was affinity purified. A phosphate buffer was used as a washing solution.
  • the antibody adsorbed on protein A was eluted with an elution buffer [20 mM sodium citrate, 50 mM NaCl buffer (pH 3.4)] and collected in a tube containing 200 M sodium phosphate buffer (pH 7.0).
  • the eluate was concentrated by VIVASPIN (manufactured by Sartrius stealin), and the solvent was replaced with PBS by a NAP (trademark) column (manufactured by GE Healthcare Bioscience).
  • An antibody solution was obtained.
  • the above-mentioned anti-hTRAIL2 monoclonal antibody solution and anti-hPSMA monoclonal antibody solution were mixed and subjected to a reduction reaction with 75 mM 2-MEA and PBS for 90 minutes.
  • the solvent of the obtained reaction solution was replaced with PBS with a NAP (registered trademark) column (manufactured by GE Healthcare Bioscience) and incubated at 4 ° C. for 16 hours.
  • NAP registered trademark
  • the fraction corresponding to E11_PN7 Hetero was fractionated from the reaction solution, and the pore size was 0.22 ⁇ m.
  • the antibody solution containing hTRAIL2-hPSMA heterobispecific antibody E11_PN7 Hetero antibody was obtained by sterilizing by filtration using a membrane filter (Millex-GV, manufactured by MILLIPORE).
  • the E11_PN7 Hetero antibody in the obtained antibody solution had a purity of 95% or more. Moreover, it was confirmed by flow cytometry that the E11_PN7 Hetero antibody has binding activity to hTRAILR2 and hPSMA.
  • Example 17 Proliferation test of PC3 cells and hPSMA / PC3 cells using hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody hTRAILR2-hPSMA bispecific antibody E11-CH1-PN7VH antibody prepared in Example 7 and prepared in Example 16 HTRAILR2-hPSMA bispecific antibody fragments E11-CH1-PN7VH F (ab ′) 2 and E11-CH1-PN7VH Fab, and hTRAILR2-hPSMA heterobispecific antibody E11_PN7 Hetero antibody, obtained in PC3 cells and Example 8
  • the proliferative properties of hPSMA / PC3 cells were evaluated as follows.
  • Example 10 it is confirmed that hTRAILR2 is expressed in PC3 cells and hPSMA is not expressed, and hTRAILR2 and hPSMA are expressed in hPSMA / PC3 cells.
  • PC3 cells The results for PC3 cells are shown in FIG. 16, and the results for hPSMA / PC3 cells are shown in FIG.
  • the number of cells slightly decreased in the wells added with 10 nM anti-hTRAIL2 agonist monoclonal antibody KMDA2 antibody compared to the wells added with anti-DNP monoclonal antibody. .
  • all of the PC3 cells showed the same number of cells as the wells to which the anti-DNP monoclonal antibody was added.
  • the number of cells in the wells to which E11-CH1-PN7VH antibody or E11-CH1-PN7VH F (ab ′) 2 was added was lower than the well to which KMDA2 antibody was added.
  • the number of cells in the wells to which the E11-CH1-PN7VH Fab and the E11_PN7 Hetero antibody were added was equal to that of the well to which the anti-DNP monoclonal antibody was added.
  • the E11-CH1-PN7VH antibody and the E11-CH1-PN7VH F (ab ′) 2 can suppress cell proliferation and / or induce cell death for cells that express hTRAILR2 and do not express hPSMA.
  • cell proliferation was suppressed and / or cell death was induced.
  • E11-CH1-PN7VH Fab and E11_PN7 Hetero antibody did not induce the above reaction even in cells expressing hTRAILR2 and hPSMA.
  • E11-CH1-PN7VH antibody, E11-CH1-PN7VH F (ab ′) 2 , E11-CH1-PN7VH Fab and E11_PN7 Hetero antibody are all the same anti-hTRAIL2 monoclonal antibody E11 antibody and anti-hPSMA monoclonal antibody PN7 variable region
  • the E11-CH1-PN7VH antibody and the E11-CH1-PN7VH F (ab ′) 2 bind to hTRAILR2 and hPSMA bivalently, respectively.
  • -CH1-PN7VH Fab and E11_PN7 Hetero antibodies bind monovalently to hTRAILR2 and hPSMA, respectively.
  • the hTRAIL2-hPSMA bispecific antibody or the antibody fragment of the present invention inhibits cell growth and / or induces cell death when bound to hTRAILR2 and hPSMA, respectively, and monovalent to each antigen. It was shown that the above reaction did not occur when bound with.
  • a bispecific antibody comprising an antigen-binding domain that binds to TRAILR2 and an antigen-binding domain that binds to PSMA, the antibody fragment, a nucleic acid having a base sequence encoding the antibody or the antibody fragment, and a set comprising the nucleic acid A recombinant vector, a transformed strain containing the recombinant vector, a method for producing the bispecific antibody or the antibody fragment using the transformed cell, a detection or measurement reagent containing the bispecific antibody or the antibody fragment, a diagnostic agent, and A therapeutic agent can be provided.
  • 77-description of artificial sequence amino acid sequence of VH of PI134 SEQ ID NO: 78-description of artificial sequence: amino acid sequence of HCDR1 of PI134, PI143, PI105, PI127, PI108, PI115, PL223, PN7, PI101, PI118 SEQ ID NO: 79 -Description of artificial array HCDR2 amino acid sequence of PI134, PI143, PI105, PI127, PI108, PI115, PL223 SEQ ID NO: 80-description of artificial sequence: HCDR3 amino acid sequence of PI134, PI143, PI105, PI127, PI108, PI115, PL223, PI101, PI118 No.

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Abstract

　本発明は、ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗原結合ドメインとＰＳＭＡに結合する抗原結合ドメインとを含むバイスペシフィック抗体または該抗体断片、該抗体または該抗体断片をコードする塩基配列を有する核酸、該核酸を含む組換えベクター、該組換えベクターを含む形質転換株、該形質転換株を用いる該バイスペシフィック抗体または該抗体断片の製造方法、並びに該バイスペシフィック抗体または該抗体断片を含む検出または測定試薬、診断薬および治療薬に関する。

Description

ＴＲＡＩＬＲ２とＰＳＭＡに結合するバイスペシフィック抗体
　本発明は、Ｔｕｍｏｒ　ｎｅｃｒｏｓｉｓ　ｆａｃｔｏｒ－ｒｅｌａｔｅｄ　ａｐｏｐｔｏｓｉｓ　ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ　ｌｉｇａｎｄ　ｒｅｃｅｐｔｏｒ　２（ＴＲＡＩＬＲ２）に結合する抗原結合ドメインとｐｒｏｓｔａｔｅ－ｓｐｅｃｉｆｉｃ　ｍｅｍｂｒａｎｅ　ａｎｔｉｇｅｎ（ＰＳＭＡ）に結合する抗原結合ドメインとを含むバイスペシフィック抗体または該抗体断片、該抗体または該抗体断片をコードする塩基配列を有する核酸、該核酸を含む組換えベクター、該組換えベクターを含む形質転換株、該形質転換株を用いる該バイスペシフィック抗体または該抗体断片の製造方法、並びに該バイスペシフィック抗体または該抗体断片を含む検出または測定試薬、診断薬および治療薬に関する。
　抗体は、あらゆる哺乳動物の血清や組織体液中に存在する糖タンパク質であり、生体内において外来抗原を認識する（非特許文献１）。抗体は、補体系の活性化や、細胞表面に存在するレセプター（ＦｃＲ）への結合を介して、ＦｃＲ発現細胞の貪食能、抗体依存性細胞傷害能、メディエーターの遊離能、および抗原提示能といったエフェクター機能を活性化し、生体防御に関与する。１分子の抗体は、２本の相同な軽鎖（Ｌ鎖）と２本の相同な重鎖（Ｈ鎖）とから成り、２つの抗原結合部位を備える。抗体のクラスおよびサブクラスはＨ鎖によって決定され、各クラスおよびサブクラスは異なる固有の機能を有する。ヒトの抗体には、５つの異なるクラス、ＩｇＧ、ＩｇＡ、ＩｇＭ、ＩｇＤおよびＩｇＥが存在する。ＩｇＧはさらにＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３およびＩｇＧ４のサブクラスに、ＩｇＡは、ＩｇＡ１およびＩｇＡ２のサブクラスに各々分類される。
　多価抗体は、１分子内に複数の抗原結合部位を備えた抗体である。多価抗体の例としては、まず、ハイブリッドハイブリドーマを用いて、異なる抗原に結合する複数の異なるポリペプチド鎖として、Ｈ鎖とＬ鎖とを有する多価抗体を作製したことが報告された（非特許文献３）。しかしながら、本法では、二種類の異なるＨ鎖およびＬ鎖を１つの細胞で発現することから、抗体のＨ鎖とＬ鎖との組み合わせが１０通り程度生じる。そのため、所望のＨ鎖とＬ鎖との組み合わせを有する多価抗体の生成量は低く、またそのような多価抗体を選択的に単離精製することも難しいため、所望の抗体の収量は減少する。
　この問題点を克服するため、複数の抗原結合部位を連結して単一のポリペプチド鎖として発現することにより、サブユニット間の組み合わせのバリエーションを減らし、所望の組み合わせを有する抗体を生産する試みが報告されている。一例として、Ｈ鎖とＬ鎖の抗原結合部位を１つのポリペプチドとして連結したｓｉｎｇｌｅ　ｃｈａｉｎ　Ｆｖ（ｓｃＦｖ）を含む抗体（非特許文献４）が知られている。さらに、ＩｇＧ１のＨ鎖定常領域のＣＨ１ドメインまたは該ドメインの部分断片、およびＬ鎖定常領域またはフレキシブルリンカー（Ｇｌｙ－Ｇｌｙ－Ｇｌｙ－Ｇｌｙ－Ｓｅｒ）を用いて、二つの抗原結合部位を連結させた抗体などが報告されている（非特許文献５、特許文献１、特許文献２）。これらの従来の多価抗体は、凝集し易く、安定性や生産性が低いという欠点を有していた。しかし一方で、単一のＨ鎖ポリペプチド中に複数の抗原結合部位を有し、抗原結合部位が互いに近接していない多価抗体は、安定性が高く、生産性も良いことが見出されていた（特許文献３）。
　生体内において、正常な細胞の世代交代のために起こる生理的な細胞死はアポトーシスと呼ばれ、病理的な細胞死である壊死（ネクローシス）とは区別される（非特許文献６）。アポトーシスは、胚発生やリンパ球（Ｔ細胞およびＢ細胞）の選択などの過程において一般に見られる現象である（非特許文献７）。
　アポトーシスに関与する分子としては、腫瘍壊死因子－α（ＴＮＦ－α）、腫瘍壊死因子－β（ＴＮＦ－β）、Ｆａｓリガンド、ＣＤ４０リガンド（ＣＤ１５４）などの腫瘍壊死因子ファミリー（ＴＮＦファミリー）に属する分子が同定されている。ＴＮＦファミリー分子は、細胞表面上の対応する特異的受容体（ＴＮＦ受容体ファミリー分子）に結合し、該受容体の三量体化を導くことにより細胞内にシグナルを伝達し、様々な細胞にアポトーシスを引き起こす（非特許文献８－１１）。
　ＴＮＦ受容体ファミリー分子は、細胞外ドメインのシステインリッチリピートの存在により定義される。中でも、ＦａｓリガンドおよびＴＮＦ－αの各々の受容体であるＦａｓおよびＴＮＦＲ１は、デスドメインとよばれる、アポトーシスのシグナル伝達に必須の領域を細胞内に備える。Ｆａｓの活性化は、デスドメインを含むアダプター分子ＦＡＤＤ／ＭＯＲＴ１の会合を促し、ＦＡＤＤ／ＭＯＲＴ１に結合しているカスパーゼ－８（Ｃａｓｐａｓｅ－８）の活性化を引き起こす。活性化したＣａｓｐａｓｅ－８は、下流のカスパーゼ分子群を順次活性化し、最後には細胞をアポトーシスへと導く（非特許文献１２）。ＴＮＦ受容体ファミリー分子に特異的な抗体同士を架橋（クロスリンク）することによっても、細胞内にシグナルが伝達されることから、シグナル伝達にはＴＮＦ受容体ファミリー分子の会合が必要であると考えられている（非特許文献１３、１４）。
　ＴＲＡＩＬは、Ｗｉｌｅｙらによって発見されたアポトーシスを誘導するＴＮＦファミリー分子であり、ＴＮＦ関連アポトーシス誘導リガンドの略称である（非特許文献１５）。本分子はＡｐｏ－２リガンドまたはＡｐｏ－２Ｌともよばれる（非特許文献１６）。ＴＲＡＩＬは、Ｆａｓリガンドとは異なり、脾臓、肺、前立腺、胸腺、卵巣、小腸、大腸、末梢血リンパ球、胎盤、腎臓などの多くのヒトの組織において有意なレベルで検出され、いくつかの細胞株において恒常的に発現している。ＴＲＡＩＬは、ＴＲＡＩＬ受容体に結合し、Ｆａｓによる死のシグナル伝達に類似した時間枠で、ＴＮＦよりも非常に速やかにアポトーシスを誘導する（非特許文献１７）。
　ＴＲＡＩＬ受容体（ＴＲＡＩＬＲ）としては、現在までに５つのタンパク質が同定されている。そのうち２つの受容体ＴＲＡＩＬＲ１（ｄｅａｔｈ　ｒｅｃｅｐｔｏｒ　４；ＤＲ４ともいう）およびＴＲＡＩＬＲ２（ｄｅａｔｈ　ｒｅｃｅｐｔｏｒ　５；ＤＲ５ともいう）は、いずれも細胞内領域にデスドメインを有する。ＴＲＡＩＬＲ１の転写産物は脾臓、末梢血白血球、小腸、胸腺を含むヒトの多くの組織中で、ＴＲＡＩＬＲ２の転写産物は脾臓、末梢血リンパ球、卵巣などの多くの組織中で認められる（非特許文献１８－２０）。ＴＲＡＩＬＲ２は、選択的スプライシング（ａｌｔｅｒｎａｔｉｖｅ　ｓｐｌｉｃｉｎｇ）により２つのフォームをとるＩ型膜タンパク質であり、癌細胞においては４４０アミノ酸残基から成るフォームの発現量が多いことが報告されている（非特許文献２１、２２）。ＴＲＡＩＬＲ２もまた、ＴＲＡＩＬの結合により三量体化し、自らのデスドメインを介して細胞死シグナルを誘導し、癌細胞のアポトーシスを引き起こす（非特許文献２３）。
　ＴＲＡＩＬの細胞外領域を含む組換えヒトＴＲＡＩＬは、種々の癌細胞にアポトーシスを誘導すると共に（非特許文献２２）、ヒトの大腸癌細胞および乳癌細胞を用いた担癌マウスモデルにおいて、顕著な抗腫瘍効果を示す（非特許文献２５）。また、ＴＲＡＩＬは、同じＴＮＦファミリーに属し、かつアポトーシス誘導活性を持つＴＮＦ－αやＦａｓリガンドとは異なり、マウスおよびカニクイザルの正常組織に対して傷害を与えない（非特許文献２６）。しかし一方では、組換えヒトＴＲＡＩＬがヒト正常肝実質細胞やヒト脳細胞にもアポトーシスを誘導することが知られている（非特許文献２８、３２）。
　ＴＲＡＩＬＲ１およびＴＲＡＩＬＲ２に対するモノクローナル抗体は、前述の組換えヒトＴＲＡＩＬと同様に、がん細胞にアポトーシスを誘導することが報告されている（非特許文献２４、２７、特許文献４）。これらの抗体は、ヒトの大腸がん細胞などを用いた担癌マウスモデルにおいても抗腫瘍効果を示す（非特許文献２４、特許文献４）。概して、従来のＴＲＡＩＬＲに対する抗体は、ｉｎ　ｖｉｔｒｏ実験において、細胞死誘導による抗腫瘍活性の発揮に際し抗体間のクロスリンクを要することが報告されている（非特許文献２４、２７）。
　抗体による抗腫瘍活性の主なメカニズムとしては、補体依存性細胞傷害（ＣＤＣ）や抗体依存性細胞傷害（ＡＤＣＣ）等の宿主免疫システムによる排除、および癌細胞上の標的分子を介した直接的な増殖抑制または細胞死誘導の惹起、の２つの機構が挙げられる。例えば、抗ＣＤ２０抗体および抗Ｈｅｒ２／ｎｅｕ抗体については、マウスモデルを用いた実験により、免疫担当細胞上に発現しているＦｃ受容体を介したＡＤＣＣが抗体の抗腫瘍活性を担うことが示唆されている（非特許文献２４）。さらに、抗ＣＤ２０抗体の抗腫瘍活性は、抗体をクロスリンクした場合に増強され、癌細胞の増殖抑制効果をもたらすことも報告されている（非特許文献２４）。
　一方、ＰＳＭＡは、１９アミノ酸残基から成る細胞内ドメイン、２４アミノ酸残基から成る膜貫通ドメイン、および７０７アミノ酸残基から成る細胞外ドメインの３つのドメインから構成される、計７５０アミノ酸残基から成る約１１０ｋＤａのＩＩ型膜糖タンパク質である。ＰＳＭＡは、グルタミン酸カルボキシペプチダーゼ、Ｎ－アセチルα結合酸性ジペプチダーゼおよび葉酸加水分解酵素として機能する（非特許文献２９）。ＰＳＭＡは生体内において前立腺上皮細胞に発現し、その発現量は前立腺がんでは上昇するが、特に低分化型、転移性、およびホルモン抵抗性の腺がんでは著しく上昇する（非特許文献３０、３１）。また、ＰＳＭＡは、小腸、唾液腺、十二指腸粘膜、近位尿細管および脳に少量発現する（非特許文献３１）。さらに、ＰＳＭＡは、腫瘍の血管新生に関与し（非特許文献３１）、大腸がん、乳がん、膀胱がん、膵臓がん、腎臓がんおよびメラノーマの腫瘍に関連する新生血管の上皮にも発現する（非特許文献３２）。
　ＰＳＭＡに対する抗体としてはＪ５９１（ＡＴＣＣ寄託番号ＨＢ－１２１２６）が知られており（特許文献５）、１７７Ｌｕ（ルテニウム）や８９Ｚｒ（ジルコニウム）などによる放射性標識体ががん治療薬および診断薬として開発されている。
米国特許出願公開第２００７／００７１６７５号明細書 国際公開第２００１／０７７３４２号 国際公開第２００９／１３１２３９号 国際公開第２００２／０９４８８０号 米国特許第５，７７３，２９２号明細書
Charles A. J. et. al., Immunobiology, 1997, Current Biology Ltd/Garland Publishing Inc. Emmanuelle Laffy et. al., Human Antibodies 14, 33-55, 2005 Suresh et. al., Methods Enzymol. 121, 210-228, 1986 Kranz et. al., J. Hematother Immunol. 5, 403-408, 1995 Wu et. al., Nat. Biothech. 25, 1290-1297, 2007 Kerr, et al., Br. J. Cancer 26, 239, 1972 Itoh, S., et al., Cell 66, 233-243, 1991 Schmid, et al., Proc.Natl.Acad.Sci., 83, 1881, 1986 Dealtry et al., Eur.J.Immunol. 17, 689, 1987 Krammer, et al., Curr.Op.Immunol. 6, 279-289, 1994 Nagata, et al., Science 267, 1449-1456, 1995 Nagata et al., Cell, 88, 355-365, 1997 Chuntharapai A et. al., J. Immunol. 166(8), 4891, 2001 Ashkenazi A et. al., Nat Rev Cancer 2, 420, 2002 Wiley et al., Immunity, 3, 673-682, 1995 Pitt, R. M., et al., J.Biol.Chem. 271, 12687-12690, 1996 Marsters, S. A., et al., Curr. Biol. 6, 750-752, 1996 Pan, G., et al., Science 276, 111-113, 1997 Pan, G., et al., Science 277, 815-818, 1997 Walczak, H., et al., EMBO J ., 16 , 5386-5397, 1997 Screaton, G. R., et al., Curr Biol., 7, 693-696, 1997 Arai, T., et al., Cancer Letters, 133, 197-204, 1998 Hymowitz S. G. et al., Mol Cell., 4, 563-71, 1999 Griffith, T. S., et al., Curr.Opin.Immunol., 10, 559-563, 1998 Walczak, H., et al., Nature Medicine 5, 2, 157-163, 1999 Ashkenazi, A., et al., J.Clin.Invest. 104, 155-162, 1999 Mori, E., et al, Cell Death and Differentiation, 11, 203-207, 2004 Jo, M., et al., Nature Medicine, 6, 564-567, 2000 Elsasser-Beile U. et al., Curr. Drug Targets, 10, 118-125, 2009 Gregorakis, A.K. et al., Semin. Urol. Oncol., 16, 2-12, 1998 Silver, D.A., Clin. Cancer Reseach, 3, 81-85, 1997 Chang, S.S., Curr. Opin. Invest. Drugs, 5, 611-615, 2004
　本発明が解決しようとする課題は、ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗原結合ドメインとＰＳＭＡに結合する抗原結合ドメインとを含むバイスペシフィック抗体または該抗体断片、該抗体または該抗体断片をコードする塩基配列を有する核酸、該核酸を含む組換えベクター、該組換えベクターを含む形質転換株、該形質転換株を用いる該バイスペシフィック抗体または該抗体断片の製造方法、並びに該バイスペシフィック抗体または該抗体断片を含む検出または測定試薬、診断薬および治療薬を提供することにある。
　上記課題を解決するための手段として、本発明はＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗原結合ドメインとＰＳＭＡに結合する抗原結合ドメインとを含むバイスペシフィック抗体または該抗体断片を提供する。
　すなわち、本発明は、以下（１）～（３０）に関する。
（１）ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗原結合ドメインとＰＳＭＡに結合する抗原結合ドメインとを含むバイスぺシフィック抗体または該抗体断片。
（２）ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡに結合したときにのみ、該ＴＲＡＩＬＲ２を活性化する（１）に記載のバイスペシフィック抗体または該抗体断片。
（３）ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡにそれぞれ二価で結合する、（１）または（２）に記載のバイスペシフィック抗体または該抗体断片。
（４）ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗原結合ドメインが、ＰＳＭＡに結合する抗原結合ドメインよりもＮ末端側に位置する、（１）～（３）のいずれか１つに記載のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片。
（５）ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗原結合ドメインがＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗体の可変領域（Ｖ領域）であって、かつＰＳＭＡに結合する抗原結合ドメインがＰＳＭＡに結合する抗体のＶ領域である、（１）～（４）のいずれか１つに記載のバイスペシフィック抗体または該抗体断片。
（６）ＴＲＡＩＬＲ２に結合するモノクローナル抗体の重鎖可変領域（ｈｅａｖｙ　ｃｈａｉｎ　ｖａｒｉａｂｌｅ　ｒｅｇｉｏｎ、以下ＶＨと記載する）の相補性決定領域（ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔａｒｉｔｙ　ｄｅｔｅｒｍｉｎｉｎｇ　ｒｅｇｉｏｎ；ＣＤＲ）１～３のアミノ酸配列が、それぞれ配列番号７０～７２で表されるアミノ酸配列を含み、かつ軽鎖可変領域（ｌｉｇｈｔ　ｃｈａｉｎ　ｖａｒｉａｂｌｅ　ｒｅｇｉｏｎ、以下ＶＬと記載する）のＣＤＲ１～３のアミノ酸配列が、それぞれ配列番号７４～７６で表されるアミノ酸配列を含む、（５）に記載のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片。
（７）ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗体のＶＨのアミノ酸配列が、配列番号１１８で表されるアミノ酸配列を含み、かつＶＬのアミノ酸配列が、配列番号１１９で表されるアミノ酸配列を含む、（５）または（６）に記載のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片。
（８）ＰＳＭＡに結合する抗体のＶＬのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列が、それぞれ配列番号７４～７６で表されるアミノ酸配列を含み、かつＶＨのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列が、以下の（ａ）～（ｄ）からなる群より選ばれるいずれか一つのアミノ酸配列を含む、（５）～（７）のいずれか１つに記載のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片。
　（ａ）それぞれ配列番号７８、８２および８４で表されるアミノ酸配列、
　（ｂ）それぞれ配列番号７８、７９および８０で表されるアミノ酸配列、
　（ｃ）それぞれ配列番号７８、８２および８０で表されるアミノ酸配列、および
　（ｄ）それぞれ配列番号９６～９８で表されるアミノ酸配列。
（９）ＰＳＭＡに結合する抗体のＶＬのアミノ酸配列が、配列番号１１９で表されるアミノ酸配列を含み、かつＶＨのアミノ酸配列が、以下の（ｅ）～（ｏ）からなる群より選ばれるいずれか一つのアミノ酸配列を含む、（５）～（８）のいずれか１つに記載のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片。
　（ｅ）配列番号１２２で表されるアミノ酸配列、
　（ｆ）配列番号１２０で表されるアミノ酸配列、
　（ｇ）配列番号１２８で表されるアミノ酸配列、
　（ｈ）配列番号１２３で表されるアミノ酸配列、
　（ｉ）配列番号１２７で表されるアミノ酸配列、
　（ｊ）配列番号１２４で表されるアミノ酸配列、
　（ｋ）配列番号１２５で表されるアミノ酸配列、
　（ｌ）配列番号１２９で表されるアミノ酸配列、
　（ｍ）配列番号１２１で表されるアミノ酸配列、
　（ｎ）配列番号１２６で表されるアミノ酸配列、および
　（ｏ）配列番号１３０で表されるアミノ酸配列。
（１０）ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗体のＶＨと、ＰＳＭＡに結合する抗体のＶＨとが、イムノグロブリンドメインまたは該ドメイン断片を含むリンカーを介して連結されたポリペプチドを含む重鎖を含む、（５）～（９）のいずれか１つに記載のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片。
（１１）リンカーが、ＩｇＧ４またはＩｇＭサブクラス由来のリンカーである、（１０）に記載のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片。
（１２）ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗体のＶＨ、リンカーおよびＰＳＭＡに結合する抗体のＶＨからなるポリペプチドのアミノ酸配列が以下の（Ａ）～（М）からなる群より選ばれるいずれか一つのアミノ酸配列である、（１０）または（１１）に記載のバイスペシフィック抗体または該抗体断片。
　（Ａ）配列番号１３１で表されるアミノ酸配列、
　（Ｂ）配列番号１３２で表されるアミノ酸配列、
　（Ｃ）配列番号１３３で表されるアミノ酸配列、
　（Ｄ）配列番号１３４で表されるアミノ酸配列、
　（Ｅ）配列番号１３５で表されるアミノ酸配列、
　（Ｆ）配列番号１３６で表されるアミノ酸配列、
　（Ｇ）配列番号１３７で表されるアミノ酸配列、
　（Ｈ）配列番号１３８で表されるアミノ酸配列、
　（Ｉ）配列番号１３９で表されるアミノ酸配列、
　（Ｊ）配列番号１４０で表されるアミノ酸配列、
　（Ｋ）配列番号１４１で表されるアミノ酸配列、
　（Ｌ）配列番号１４２で表されるアミノ酸配列、および
　（Ｍ）配列番号１４３で表されるアミノ酸配列。
（１３）（１）～（１２）のいずれか１つに記載のバイスペシフィック抗体または該抗体断片をコードする塩基配列を有する核酸。
（１４）（１３）に記載の核酸を含有する組換えベクター。
（１５）（１４）に記載の組換えベクターを含む形質転換株。
（１６）（１５）に記載の形質転換株を培地中で培養し、培養上清からバイスぺシフィック抗体または該抗体断片を採取することを含む、（１）～（１２）のいずれか１つに記載のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片の製造方法。
（１７）（１）～（１２）のいずれか１つに記載のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片を含む、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方を検出または測定するための試薬。
（１８）（１）～（１２）のいずれか１つに記載のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片を含有する、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡ発現細胞が関与する疾患の診断薬。
（１９）ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡ発現細胞が関与する疾患が悪性腫瘍およびがんである、（１８）に記載の診断薬。
（２０）（１）～（１２）のいずれか１つに記載のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片を有効成分として含有する、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡ発現細胞が関与する疾患の治療薬。
（２１）ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡ発現細胞が関与する疾患が悪性腫瘍およびがんである、（２０）に記載の治療薬。
（２２）（１）～（１２）のいずれか１つに記載のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片を用いて、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方を検出または測定する方法。
（２３）（１）～（１２）のいずれか１つに記載のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片を用いてＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方を検出または測定することを含む、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡ発現細胞が関与する疾患の診断方法。
（２４）ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡ発現細胞が関与する疾患が悪性腫瘍およびがんである、（２３）に記載の診断方法。
（２５）（１）～（１２）のいずれか１つに記載のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片を用いる、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡ発現細胞が関与する疾患の治療方法。
（２６）ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡ発現細胞が関与する疾患が悪性腫瘍およびがんである、（２５）に記載の治療方法。
（２７）ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡ発現細胞が関与する疾患の診断薬を製造するための、（１）～（１２）のいずれか１つに記載のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片の使用。
（２８）ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡ発現細胞が関与する疾患が悪性腫瘍およびがんである、（２７）に記載の使用。
（２９）ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡ発現細胞が関与する疾患の治療薬を製造するための、（１）～（１２）のいずれか１つに記載のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片の使用。
（３０）ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡ発現細胞が関与する疾患が悪性腫瘍およびがんである、（２９）に記載の使用。
　本発明のバイスペシフィック抗体または該抗体断片は、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡに結合した時にのみ、ＴＲＡＩＬＲ２の活性化に伴う種々の反応を誘導する。それゆえ、本発明のバイスペシフィック抗体または該抗体断片は、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡ発現細胞が関与する疾患の治療薬および診断薬として利用できる。
図１は、本発明のバイスぺシフィック抗体の構造を示した図である。太線は、２つのＶＨを連結するリンカーを表す。 図２は、ｈＰＳＭＡ／Ｌ９２９細胞に対する、抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体またはｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体の結合性をフローサイトメーターにより解析した結果である。縦軸に細胞数を、横軸に蛍光強度を表す。抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体は、２Ａ１０抗体またはＰＩ１３４抗体を使用した。ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体は、Ｅ１１－ＧＬ－ＰＩ１３４ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１３４ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０１ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ抗体またはＥ１１－ＣＨ１－ＰＮ１７０ＶＨ抗体を使用した。実線は上記の各抗体の結合性を、点線は陰性コントロールとして用いた公知の抗ＤＮＰモノクローナル抗体の結合性を示す。 図３は、ｈＴＲＡＩＬＲ２／Ｌ９２９細胞に対する、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体、抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体またはｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体の結合性を、フローサイトメーターにより解析した結果である。縦軸に細胞数を、横軸に蛍光強度を表す。抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体はＥ１１抗体を使用した。抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体はＰＩ１３４抗体を使用した。ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体は、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０１ＶＨ、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ抗体またはＥ１１－ＣＨ１－ＰＮ１７０ＶＨ抗体を使用した。実線は上記の各抗体の結合性を、点線は陰性コントロールとして用いた抗ＤＮＰモノクローナル抗体の結合性を示す。 図４（Ａ）および図４（Ｂ）は、ＰＣ３細胞［図４（Ａ）］およびｈＰＳＭＡ／ＰＣ３細胞［図４（Ｂ）］におけるｈＴＲＡＩＬＲ２またはｈＰＳＭＡの発現量を示した図である。縦軸に細胞数を、横軸に蛍光強度を表す。各細胞は、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体Ｅ１１抗体、抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体ＰＩ１３４抗体、ＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０１ＶＨ抗体、または陰性コントロールとして抗ＤＮＰモノクローナル抗体で染色した。 図５は、ＬＮＣａＰ　ｃｌｏｎｅ　ＦＧＣ細胞におけるｈＴＲＡＩＬＲ２またはｈＰＳＭＡの発現量を示した図である。縦軸に細胞数を、横軸に蛍光強度を表す。細胞は、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体Ｅ１１抗体、抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体２Ａ１０抗体、または陰性コントロールとして抗ＤＮＰモノクローナル抗体で染色した。 図６は、ＰＣ３細胞に対する、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２アゴニストモノクローナル抗体ＫＭＤＡ２抗体またはｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスぺシフィック抗体Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１３４ＶＨ抗体若しくはＥ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０１ＶＨ抗体を用いた細胞増殖性試験の結果を示した図である。縦軸に細胞の生存率（％）を、横軸に抗体濃度（ｎｇ／ｍＬ）を表す。陰性コントロールとして抗ＤＮＰモノクローナル抗体を使用した。 図７は、ＰＣ３細胞に対する、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２アゴニストモノクローナル抗体ＫＭＤＡ２抗体、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体Ｅ１１抗体またはｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスぺシフィック抗体Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０１ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ抗体若しくはＥ１１－ＣＨ１－ＰＮ１７０ＶＨ抗体を用いた細胞増殖性試験の結果を示した図である。縦軸に細胞の生存率（％）を、横軸に抗体濃度（ｎｇ／ｍＬ）を表す。陰性コントロールとして抗ＤＮＰモノクローナル抗体を使用した。 図８は、ｈＰＳＭＡ／ＰＣ３細胞に対する、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２アゴニストモノクローナル抗体ＫＭＤＡ２抗体またはｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスぺシフィック抗体Ｅ１１－ＧＬ－ＰＩ１３４ＶＨ抗体若しくはＥ１１－ＣＨ１－ＰＩ１３４ＶＨ抗体を用いた細胞増殖性試験の結果を示した図である。縦軸に細胞の生存率（％）を、横軸に抗体濃度（ｎｇ／ｍＬ）を表す。陰性コントロールとして抗ＤＮＰモノクローナル抗体を使用した。 図９は、ｈＰＳＭＡ／ＰＣ３細胞に対する、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２アゴニストモノクローナル抗体ＫＭＤＡ２抗体、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体Ｅ１１抗体またはｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスぺシフィック抗体Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０１ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ抗体若しくはＥ１１－ＣＨ１－ＰＮ１７０ＶＨ抗体を用いた細胞増殖性試験の結果を示した図である。縦軸に細胞の生存率（％）を、横軸に抗体濃度（ｎｇ／ｍＬ）を表す。陰性コントロールとして抗ＤＮＰモノクローナル抗体を使用した。 図１０は、ｈＰＳＭＡ／ＰＣ３細胞に対する、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２アゴニストモノクローナル抗体ＫＭＤＡ２抗体またはｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスぺシフィック抗体を用いた細胞増殖性試験の結果を示した図である。縦軸に細胞の生存率（％）を、横軸に抗体濃度（ｎｇ／ｍＬ）を表す。ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体は、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０１ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０５ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０８ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１１５ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１１８ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１２７ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１４３ＶＨ抗体またはＥ１１－ＣＨ１－ＰＬ２２３ＶＨ抗体を使用した。陰性コントロールとして抗ＤＮＰモノクローナル抗体を使用した。 図１１は、ＬＮＣａＰ　ｃｌｏｎｅ　ＦＧＣ細胞に対する、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２アゴニストモノクローナル抗体ＫＭＤＡ２抗体、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体Ｅ１１抗体またはｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスぺシフィック抗体Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０１ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ抗体若しくはＥ１１－ＣＨ１－ＰＮ１７０ＶＨ抗体を用いた細胞増殖性試験の結果を示した図である。縦軸に細胞の生存率（％）を、横軸に抗体濃度（ｎｇ／ｍＬ）を表す。陰性コントロールとして抗ＤＮＰモノクローナル抗体を使用した。 図１２（Ａ）および図１２（Ｂ）は、ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスぺシフィック抗体Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０１ＶＨ抗体、またはＴＲＡＩＬＲ２リガンドＴＲＡＩＬ／Ａｐｏ２を細胞に添加したときの活性化カスパーゼを、フローサイトメトリーにより検出した結果を示す。縦軸に細胞数を、横軸に蛍光強度を表す。図１２（Ａ）はＰＣ３細胞を用いたときの結果を示し、図１２（Ｂ）はＰＳＭＡ／ＰＣ３細胞を用いたときの結果を示す。陰性コントロールとして抗ＤＮＰモノクローナル抗体を使用した。 図１３は、ヒト正常肝細胞に対する、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２アゴニストモノクローナル抗体ＫＭＤＡ２抗体、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体Ｅ１１抗体、ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスぺシフィック抗体Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０１ＶＨ抗体、またはＴＲＡＩＬＲ２リガンドＴＲＡＩＬ／Ａｐｏ２を用いた細胞増殖性試験の結果を示した図である。縦軸に細胞の生存率（％）を、横軸にタンパク質濃度（ｎｇ／ｍＬ）を表す。陰性コントロールとして抗ＤＮＰモノクローナル抗体を使用した。 図１４は、ヒト正常肝細胞に対する、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２アゴニストモノクローナル抗体ＫＭＤＡ２抗体、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体Ｅ１１抗体、ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスぺシフィック抗体Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ抗体、またはＴＲＡＩＬＲ２リガンドＴＲＡＩＬ／Ａｐｏ２を用いた細胞増殖性試験の結果を示した図である。縦軸に細胞の生存率（％）を、横軸にタンパク質濃度（ｎｇ／ｍＬ）を表す。陰性コントロールとして抗ＤＮＰモノクローナル抗体を使用した。 図１５（Ａ）～図１５（Ｄ）は、ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ抗体［図１５（Ａ）］、ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体断片Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆ（ａｂ’）２［図１５（Ｂ）］およびＥ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆａｂ［図１５（Ｃ）］、並びにｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡヘテロバイスペシフィック抗体Ｅ１１＿ＰＮ７　Ｈｅｔｅｒｏ抗体［図１５（Ｄ）］の構造を示す。図１５（Ａ）～図１５（Ｃ）の構造中の太線は、リンカーを表す。 図１６は、ＰＣ３細胞に対する、各抗体または抗体断片を用いた細胞増殖性試験の結果を示す。縦軸に吸光度を、横軸に抗体濃度（ｎＭ）を表す。抗体または抗体断片としては、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２アゴニストモノクローナル抗体ＫＭＤＡ２抗体、ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡヘテロバイスペシフィック抗体Ｅ１１＿ＰＮ７　Ｈｅｔｅｒｏ抗体、ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡ　バイスペシフィック抗体Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ抗体、ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体断片Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆ（ａｂ’）２若しくはＥ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆａｂまたは陰性コントロールとして抗ＤＮＰモノクローナル抗体を使用した。 図１７は、ｈＰＳＭＡ／ＰＣ３細胞に対する、各抗体または抗体断片を用いた細胞増殖性試験の結果を示す。縦軸に吸光度を、横軸に抗体濃度（ｎＭ）を表す。抗体または抗体断片としては、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２アゴニストモノクローナル抗体ＫＭＤＡ２抗体、ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡヘテロバイスペシフィック抗体Ｅ１１＿ＰＮ７　Ｈｅｔｅｒｏ抗体、ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡ　バイスペシフィック抗体Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ抗体、ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体断片Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆ（ａｂ’）２若しくはＥ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆａｂまたは陰性コントロールとして抗ＤＮＰモノクローナル抗体を使用した。
　本発明は、ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗原結合ドメインとＰＳＭＡに結合する抗原結合ドメインとを含むバイスペシフィック抗体または該抗体断片（以下、本発明のバイスペシフィック抗体または該抗体断片と記載する）に関する。
　本発明において、ＴＲＡＩＬＲ２またはＰＳＭＡに結合する抗原結合ドメインは、ＴＲＡＩＬＲ２またはＰＳＭＡを特異的に認識し、結合するものであればいかなるものでもよい。例えば、抗体、リガンド、受容体、および天然に存在する相互作用分子など遺伝子組換え技術によって作製可能なポリペプチド、タンパク質分子およびその断片、並びに該タンパク質分子の低分子または天然物とのコンジュゲート体などいずれの形態であってもよい。
　また、抗原結合ドメインとしては、抗体、リガンドおよび受容体など既知の結合分子の結合ドメインを利用して組換えた結合タンパク質でもよく、具体的には各抗原に結合する抗体のＣＤＲを含む組換えタンパク質、ＣＤＲを含む抗体可変領域、抗体可変領領域および各抗原に結合するリガンドの結合ドメインを含む組換えタンパク質などが挙げられる。なかでも、本発明においては、抗原結合ドメインは抗体可変領域であることが好ましい。
　本発明のバイスペシフィック抗体または該抗体断片としては、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡに結合したときにのみ、該ＴＲＡＩＬＲ２を活性化するバイスペシフィック抗体または該抗体断片が挙げられる。
　本発明のバイスペシフィック抗体または該抗体断片は、細胞上のＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡに結合することにより、該ＴＲＡＩＬＲ２を三量体化して活性化し、ＴＲＡＩＬＲ２発現細胞内でデスドメインを介したアダプター分子ＦＡＤＤ／ＭＯＲＴ１の会合、およびカスパーゼ８の活性化などの種々の細胞反応を起こす。その結果、該細胞について、細胞増殖の抑制、およびアポトーシス等の細胞死等が誘導される。
　すなわち、本発明のバイスペシフィック抗体または該抗体断片として、具体的には、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡに結合したときにのみ、ＴＲＡＩＬＲ２発現細胞内でのＦＡＤＤ／ＭＯＲＴ１の会合、およびカスパーゼ８の活性化、並びにＴＲＡＩＬＲ２発現細胞の増殖抑制および細胞死の誘導からなる群より選ばれる少なくとも一つの反応を生じるバイスペシフィック抗体または該抗体断片などが挙げられる。
　本発明のバイスペシフィック抗体または該抗体断片は、同一細胞上に発現しているＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡに結合してもよいし、異なる細胞上に発現しているＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡに結合してもよい。
　また、本発明において、細胞死とはアポトーシスとネクローシスのいずれをも包含するが、アポトーシスであることが好ましい。
　本発明におけるＴＲＡＩＬＲ２は、ｄｅａｔｈ　ｒｅｃｅｐｔｏｒ　５（ＤＲ５）、ｋｉｌｌｅｒ／ｄｒ５、およびＴＲＩＣＫ２と、同義として使用される。ＴＲＡＩＬＲ２としては例えば、ＮＣＢＩ（http://www.ncbi.nlm.nih.gov/）においてＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＰ＿００３８３３に示されるアミノ酸配列を含むヒトＴＲＡＩＬＲ２、およびＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＰ＿０６４６７１に示されるアミノ酸配列を含むマウスＴＲＡＩＬＲ２などが挙げられる。また、例えばＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＰ＿００３８３３またはＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＰ＿０６４６７１に示されるアミノ酸配列において１つ以上のアミノ酸が欠失、置換または付加されたアミノ酸配列からなり、かつＴＲＡＩＬＲ２の機能を有するポリペプチドが挙げられる。
　ＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＰ＿００３８３３またはＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＰ＿０６４６７１に示されるアミノ酸配列と７０％以上、好ましくは８０％以上、さらに好ましくは９０％以上の相同性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチド、最も好ましくは９５％、９６％、９７％、９８％および９９％以上の相同性を有するアミノ酸配列からなり、かつＴＲＡＩＬＲ２の機能を有するポリペプチドも本発明のＴＲＡＩＬＲ２に包含される。
　ＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＰ＿００３８３３またはＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＰ＿０６４６７１に示されるアミノ酸配列において１以上のアミノ酸残基が欠失、置換、または付加されたアミノ酸配列を有するポリペプチドは、部位特異的変異導入法［Molecular Cloning,A Laboratory Manual,Second Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press （1989）、Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons （1987-1997）、Nucleic Acids Research, 10, 6487 （1982）、Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 79, 6409 （1982）、Gene, 34, 315 （1985）、Nucleic Acids Research, 13, 4431（1985）、Proceeding of the National Academy of Sciences in USA, 82, 488 （1985）］などを用いて、例えばＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＰ＿００３８３３またはＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＰ＿０６４６７１に示されるアミノ酸配列をコードするＤＮＡに、部位特異的変異を導入することにより得ることができる。欠失、置換または付加されるアミノ酸の数は特に限定されないが、好ましくは１個～数十個、例えば、１～２０個、より好ましくは１個～数個、例えば、１～５個のアミノ酸である。
　ＴＲＡＩＬＲ２をコードする遺伝子としては、例えば、ＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＭ＿００３８４２の２９４番目～１６１６番目に示されるヒトＴＲＡＩＬＲ２の塩基配列、およびＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＭ＿０２０２７５に示されるマウスＴＲＡＩＬＲ２の塩基配列などが挙げられる。また、例えばＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＭ＿００３８４２の２９４番目～１６１６番目の塩基配列において１以上の塩基が欠失、置換または付加された塩基配列からなり、かつＴＲＡＩＬＲ２の機能を有するポリペプチドをコードするＤＮＡを含む遺伝子、ＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＭ＿００３８４２の２９４番目～１６１６番目の塩基配列と好ましくは６０％以上の相同性を有する塩基配列、より好ましくは８０％以上の相同性を有する塩基配列、さらに好ましくは９５％以上の相同性を有する塩基配列からなり、かつＴＲＡＩＬＲ２の機能を有するポリペプチドをコードするＤＮＡを含む遺伝子、並びにＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＭ＿００３８４２の２９４番目～１６１６番目のＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするＤＮＡからなり、かつＴＲＡＩＬＲ２の機能を有するポリペプチドをコードするＤＮＡを含む遺伝子なども、本発明のＴＡＩＬＲ２をコードする遺伝子に包含される。　
　ストリンジェントな条件下でハイブリダイズするＤＮＡとしては、例えばＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＭ＿００３８４２の２９４番目～１６１６番目に示される塩基配列を有するＤＮＡをプローブに用いた、コロニー・ハイブリダイゼーション法、プラーク・ハイブリダイゼーション法、サザンブロット・ハイブリダイゼーション法、またはＤＮＡマイクロアレイ法などにより得られるハイブリダイズ可能なＤＮＡを意味する。具体的には、ハイブリダイズしたコロニー若しくはプラーク由来のＤＮＡ、または該配列を有するＰＣＲ産物若しくはオリゴＤＮＡを固定化したフィルターまたはスライドガラスを用いて、０．７～１．０ｍｏｌ／Ｌの塩化ナトリウム存在下、６５℃でハイブリダイゼーション［Molecular Cloning, A Laboratory Manual, Second Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press （1989）、Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons （1987-1997）、DNA Cloning 1: Core Techniques, A Practical Approach, Second Edition, Oxford University （1995）］を行った後、０．１～２倍濃度のＳＳＣ溶液（１倍濃度のＳＳＣ溶液の組成は、１５０ｍｍｏｌ／Ｌ塩化ナトリウム、１５ｍｍｏｌ／Ｌクエン酸ナトリウムよりなる）を用い、６５℃条件下でフィルターまたはスライドグラスを洗浄することにより同定できるＤＮＡを挙げることができる。ハイブリダイズ可能なＤＮＡとしては、例えば、ＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＭ＿００３８４２の２９４番目～１６１６番目に示される塩基配列と好ましくは６０％以上の相同性を有するＤＮＡ、より好ましくは８０％以上の相同性を有するＤＮＡ、さらに好ましくは９５％以上の相同性を有するＤＮＡを挙げることができる。
　真核生物のタンパク質をコードする遺伝子の塩基配列には、しばしば遺伝子の多型が認められる。本発明において用いられる遺伝子内に、このような多型によって塩基配列に小規模な変異を生じた遺伝子も、本発明のＴＲＡＩＬＲ２をコードする遺伝子に包含される。
　本発明における相同性の数値は、特に明示した場合を除き、当業者に公知の相同性検索プログラムを用いて算出される数値であってよいが、塩基配列については、ＢＬＡＳＴ［J. Mol. Biol., 215, 403 (1990)］においてデフォルトのパラメータを用いて算出される数値など、アミノ酸配列については、ＢＬＡＳＴ２［Nucleic Acids Research, 25, 3389 （1997）、Genome Research, 7, 649 （1997）、http://www.ncbi.nlm.nih.gov/Education/BLASTinfo/information3.html］においてデフォルトのパラメータを用いて算出される数値などが挙げられる。　
　デフォルトのパラメータとしては、Ｇ（Ｃｏｓｔ　ｔｏ　ｏｐｅｎ　ｇａｐ）が塩基配列の場合は５、アミノ酸配列の場合は１１、－Ｅ（Ｃｏｓｔ　ｔｏ　ｅｘｔｅｎｄ　ｇａｐ）が塩基配列の場合は２、アミノ酸配列の場合は１、－ｑ（Ｐｅｎａｌｔｙ　ｆｏｒ　ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ　ｍｉｓｍａｔｃｈ）が－３、－ｒ（ｒｅｗａｒｄ　ｆｏｒ　ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ　ｍａｔｃｈ）が１、－ｅ（ｅｘｐｅｃｔ　ｖａｌｕｅ）が１０、－Ｗ（ｗｏｒｄｓｉｚｅ）が塩基配列の場合は１１残基、アミノ酸配列の場合は３残基、－ｙ［Ｄｒｏｐｏｆｆ（Ｘ）ｆｏｒ　ｂｌａｓｔ　ｅｘｔｅｎｓｉｏｎｓ　ｉｎ　ｂｉｔｓ］がｂｌａｓｔｎ　の場合は２０、ｂｌａｓｔｎ以外のプログラムでは７、－Ｘ（Ｘ　ｄｒｏｐｏｆｆ　ｖａｌｕｅ　ｆｏｒ　ｇａｐｐｅｄ　ａｌｉｇｎｍｅｎｔ　ｉｎ　ｂｉｔｓ）が１５および－Ｚ（ｆｉｎａｌ　Ｘ　ｄｒｏｐｏｆｆ　ｖａｌｕｅ　ｆｏｒ　ｇａｐｐｅｄ　ａｌｉｇｎｍｅｎｔ　ｉｎ　ｂｉｔｓ）がｂｌａｓｔｎの場合は５０、ｂｌａｓｔｎ以外のプログラムでは２５である（http://www.ncbi.nlm.nih.gov/blast/html/blastcgihelp.html）。　
　ＴＲＡＩＬＲ２のアミノ酸配列の部分配列からなるポリペプチドは、当業者に公知の方法によって作製することができ、例えば、ＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＰ＿００３８３３に示されるアミノ酸配列をコードするＤＮＡの一部を欠失させ、これを含む発現ベクターを導入した形質転換体を培養することにより作製することができる。また、上記の方法で作製されるポリペプチドまたはＤＮＡに基づいて、上記と同様の方法により、例えば、ＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＰ＿００３８３３に示されるアミノ酸配列の部分配列において１以上のアミノ酸が欠失、置換または付加されたアミノ酸配列を有するポリペプチドを得ることができる。さらに、ＴＲＡＩＬＲ２のアミノ酸配列の部分配列からなるポリペプチド、またはＴＲＡＩＬＲ２のアミノ酸配列の部分配列において１以上のアミノ酸が欠失、置換または付加されたアミノ酸配列を有するポリペプチドは、フルオレニルメチルオキシカルボニル（Ｆｍｏｃ）法、ｔ－ブチルオキシカルボニル（ｔＢｏｃ）法などの化学合成法によって製造することもできる。
　本発明におけるＴＲＡＩＬＲ２の細胞外領域としては、例えば、ＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＰ＿００３８３３に示されるヒトＴＲＡＩＬＲ２のアミノ酸配列を公知の膜貫通領域予測プログラムＳＯＳＵＩ（http://sosui.proteome.bio.tuat.ac.jp/sosuiframe0.html）、ＴＭＨＭＭ　ｖｅｒ．２（http://www.cbs.dtu.dk/services/TMHMM-2.0/）またはＥｘＰＡＳｙ　Ｐｒｏｔｅｏｍｉｃｓ　Ｓｅｒｖｅｒ（http://Ca.expasy.org/）などを用いて予測された領域などが挙げられる。具体的には、ＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＰ＿００３８３３に示されるアミノ酸配列のうち、５４番目から２１２番目のアミノ酸配列が挙げられる。
　ＴＲＡＩＬＲ２の機能としては、ＴＲＡＩＬＲ２にＴＲＡＩＬ（Ａｐｏ－２Ｌ）リガンドが結合すると、ＴＲＡＩＬＲ２の三量体化が形成され、細胞内のデスドメインを介してアダプター分子ＦＡＤＤ／ＭＯＲＴ１の会合を促し、ＦＡＤＤ／ＭＯＲＴ１に結合しているカスパーゼ－８（Ｃａｓｐａｓｅ－８）の活性化を引き起した結果、細胞に増殖抑制やアポトーシスを誘導する機能が挙げられる。
　本発明におけるＰＳＭＡは、ｆｏｌａｔｅ　ｈｙｄｒｏｌａｓｅ（ＦＯＬＨ）、ｇｌｕｔａｍａｔｅ　ｃａｒｂｏｘｙｐｅｐｔｉｄａｓｅ　ＩＩ（ＧＣＰ２）、ｐｒｏｓｔａｔｅ－ｓｐｅｃｉｆｉｃ　ｍｅｍｂｒａｎｅ　ａｎｔｉｇｅｎ（ＰＳＭまたはＰＳＭＡ）、Ｎ－ａｃｅｔｙｌａｔｅｄ　ａｌｐｈａ－ｌｉｎｋｅｄ　ａｃｉｄｉｃ　ｄｉｐｅｐｔｉｄａｓｅ　１（ＮＡＡＬＡＤ１）およびＮＡＡＬＡＤａｓｅ　Ｉと同義として用いられる。
　ＰＳＭＡとしては、例えば、ＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＰ＿００４４６７若しくは配列番号１１２に示されるアミノ酸配列を含むヒトＰＳＭＡまたはＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＰ＿０５８０５０に示されるアミノ酸配列を含むマウスＰＳＭＡなどが挙げられる。また、例えばＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＰ＿００４４６７、配列番号１１２またはＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＰ＿０５８０５０に示されるアミノ酸配列において１つ以上のアミノ酸が欠失、置換または付加されたアミノ酸配列からなり、かつＰＳＭＡの機能を有するポリペプチドが挙げられる。
　ＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＰ＿００４４６７、配列番号１１２またはＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＰ＿０５８０５０に示されるアミノ酸配列と好ましくは７０％以上、より好ましくは８０％以上、さらに好ましくは９０％以上の相同性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチド、最も好ましくは９５％、９６％、９７％、９８％および９９％以上の相同性を有するアミノ酸配列からなり、かつＰＳＭＡの機能を有するポリペプチドも本発明のＰＳＭＡに包含される。
　ＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＰ＿００４４６７、配列番号１１２またはＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＰ＿０５８０５０に示されるアミノ酸配列において１以上のアミノ酸残基が欠失、置換、または付加されたアミノ酸配列を有するポリペプチドは、前述の部位特異的変異導入法などを用いて、例えばＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＰ＿００４４６７、配列番号１１２またはＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＰ＿０５８０５０に示されるアミノ酸配列をコードするＤＮＡに、部位特異的変異を導入することにより得ることができる。欠失、置換または付加されるアミノ酸の数は特に限定されないが、好ましくは１個～数十個、例えば、１～２０個、より好ましくは１個～数個、例えば、１～５個のアミノ酸である。
　本発明におけるＰＳＭＡをコードする遺伝子としては、例えば、ＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＭ＿００４４７６若しくは配列番号６４に示される塩基配列を含むヒトＰＳＭＡの遺伝子またはＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＭ０１６７７０に示される塩基配列を含むマウスＰＳＭＡの遺伝子が挙げられる。また、例えばＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＭ＿００４４７６、配列番号６４またはＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＭ０１６７７０に示される塩基配列において１以上の塩基が欠失、置換または付加された塩基配列からなり、かつＰＳＭＡの機能を有するポリペプチドをコードするＤＮＡを含む遺伝子、ＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＭ＿００４４７６、配列番号６４またはＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＭ０１６７７０に示される塩基配列と６０％以上の相同性を有する塩基配列、好ましくは８０％以上の相同性を有する塩基配列、さらに好ましくは９５％以上の相同性を有する塩基配列からなり、かつＰＳＭＡの機能を有するポリペプチドをコードするＤＮＡを含む遺伝子、並びにＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＭ＿００４４７６、配列番号６４またはＮＣＢＩ　ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＮＭ０１６７７０に示されるＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするＤＮＡからなり、かつＰＳＭＡの機能を有するポリペプチドをコードするＤＮＡを含む遺伝子なども、本発明のＰＳＭＡをコードする遺伝子にされる。
　ＰＳＭＡの機能としては、グルタミン酸カルボキシペプチダーゼ、Ｎ－アセチルα結合酸性ジペプチダーゼおよび葉酸加水分解酵素として機能することが挙げられる。
　本発明において、ＴＲＡＩＬＲ２に結合するとは、ＴＲＡＩＬＲ２の細胞外領域を認識し、かつ結合することをいう。また、本発明において、ＰＳＭＡに結合するとは、ＰＳＭＡの細胞外領域を認識し、かつ結合することをいう。
　本発明において、抗体または該抗体断片がＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方に結合することは、例えば、公知の免疫学的検出法、好ましくは蛍光細胞染色法等を用いて、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方を発現した細胞と抗体との結合性を確認する方法により確認することができる。また、公知の免疫学的検出法［Monoclonal Antibodies - Principles and Practice, Third Edition, Academic Press（1996）、Antibodies - A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory（1988）、単クローン抗体実験マニュアル、講談社サイエンティフィック（1987）］などを組み合わせて用いることもできる。
　本発明において、抗体がアポトーシス活性を有するとは、細胞上のＴＲＡＩＬＲ２に抗体が結合することによって細胞死が誘導されることをいう。本発明のバイスペシフィック抗体がアポトーシス活性を有していることは、以下の方法により確認することができる。例えば、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡを発現した細胞を９６穴プレートに播種し、抗体を添加して一定期間培養した後に、ＷＳＴ－８試薬（Ｄｏｊｉｎｄｏ社製）を反応させ、プレートリーダーにより４５０ｎｍの吸光度を測定することにより、細胞の生存率を測定する。
　抗体とは、イムノグロブリンを構成する重鎖の可変領域および重鎖の定常領域、並びに軽鎖の可変領域および軽鎖の定常領域の全部または一部をコードする遺伝子（「抗体遺伝子」と称する）に由来するタンパク質である。本発明の抗体は、いずれのイムノグロブリンクラスおよびサブクラスを有する抗体または抗体断片をも包含する。
　Ｈ鎖とは、イムノグロブリン分子を構成する２種類のポリペプチドのうち、分子量が大きい方のポリペプチドを指す。重鎖は抗体のクラスとサブクラスを決定する。ＩｇＡ、ＩｇＤ、ＩｇＥ、ＩｇＧおよびＩｇＭは、それぞれα鎖、δ鎖、ε鎖、γ鎖およびμ鎖を重鎖として有し、重鎖の定常領域は異なるアミノ酸配列で特徴付けられる。軽鎖（Ｌ鎖）とは、イムノグロブリン分子を構成する２種類のポリペプチドのうち、分子量が小さい方のポリペプチドを指す。ヒトの抗体の場合、軽鎖にはκ鎖とλ鎖の２種類が存在する。
　Ｖ領域とは、通常は、イムノグロブリンのＮ末端側のアミノ酸配列内に存在する多様性に富んだ領域を指す。可変領域以外の部分は多様性の少ない構造をとることから、定常領域（ｃｏｎｓｔａｎｔ　ｒｅｇｉｏｎ：Ｃ領域）と呼ばれる。重鎖と軽鎖の各可変領域は会合して抗原結合部位を形成し、抗原への抗体の結合特性を決定する。
　ヒトの抗体の重鎖では、可変領域はＫａｂａｔらのＥＵインデックス（Kabat et. al., Sequences of proteins of immunological interest, 1991 Fifth edition）における１番目から１１７番目までのアミノ酸配列に該当し、定常領域は１１８番目以降のアミノ酸配列に該当する。ヒトの抗体の軽鎖ではＫａｂａｔらによる番号付け（Ｋａｂａｔ　ｎｕｍｂｅｒｉｎｇ）における１番目から１０７番目までのアミノ酸配列が可変領域に該当し、１０８番目以降のアミノ酸配列が定常領域に該当する。以下、重鎖可変領域または軽鎖可変領域を、ＶＨまたはＶＬと略記する。
　抗原結合部位は、抗体において抗原を認識し結合する部位であり、抗原決定基（エピトープ）と相補的な立体構造を形成する部位を指す。抗原結合部位は、抗原決定基との間に強い分子間相互作用を生じる。抗原結合部位は、少なくとも３つのＣＤＲを含むＶＨおよびＶＬにより構成される。ヒトの抗体の場合、ＶＨおよびＶＬはそれぞれ３つのＣＤＲを有する。これらのＣＤＲを、それぞれＮ末端側から順番にＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３と称する。
　定常領域のうち、重鎖定常領域または軽鎖定常領域は、それぞれＣＨまたはＣＬと表記される。ＣＨは、重鎖のサブクラスであるα鎖、δ鎖、ε鎖、γ鎖およびμ鎖によって分類される。ＣＨは、Ｎ末端側より順に整列したＣＨ１ドメイン、ヒンジドメイン、ＣＨ２ドメイン、ＣＨ３ドメインから構成され、ＣＨ２ドメインとＣＨ３ドメインとを併せてＦｃ領域という。一方、ＣＬは、Ｃλ鎖およびＣκ鎖とよばれる２つのサブクラスに分類される。
　本発明において、ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗体とは、ＴＲＡＩＬＲ２の細胞外領域を認識し、かつ結合するモノクローナル抗体をいう。また、本発明において、ＰＳＭＡに結合する抗体とは、ＰＭＳＡの細胞外領域を認識し、かつ結合するモノクローナル抗体をいう。また、本発明において抗体とは、ポリクローナル抗体およびオリゴクローナル抗体をも包含する。
　モノクローナル抗体は、単一性（ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌｉｔｙ）を保持した抗体産生細胞が分泌する抗体であり、単一のエピトープ（抗原決定基ともいう）を認識する。モノクローナル抗体分子同士は同一のアミノ酸配列（１次構造）を有し、単一の構造をとる。ポリクローナル抗体とは、異なるクローンの抗体産生細胞が分泌する抗体分子の集団をいう。オリゴクローナル抗体とは、複数の異なるモノクローナル抗体を混合した抗体分子の集団をいう。
　エピトープは、抗体が認識し、結合する抗原の構造部位をいう。エピトープとしては、例えば、モノクローナル抗体が認識し、結合する単一のアミノ酸配列、アミノ酸配列からなる立体構造、糖鎖が結合したアミノ酸配列および糖鎖が結合したアミノ酸配列からなる立体構造などが挙げられる。
　本発明におけるモノクローナル抗体としては、ハイブリドーマにより産生される抗体、および抗体遺伝子を含む発現ベクターで形質転換した形質転換体により産生される遺伝子組換え抗体を挙げることができる。
　ハイブリドーマは、例えば、抗原を調製し、該抗原を免疫した動物より抗原特異性を有する抗体産生細胞を取得し、さらに、該抗体産生細胞と骨髄腫細胞とを融合させることによって、調製することができる。該ハイブリドーマを培養するか、または該ハイブリドーマを動物に投与して該ハイブリドーマを腹水癌化させ、該培養液または腹水を分離、精製することにより、所望のモノクローナル抗体を取得することができる。抗原を免疫する動物としては、ハイブリドーマを作製することが可能であれば、いかなるものも用いることができるが、マウス、ラット、ハムスターおよびラビットなどが好適に用いられる。また、このような被免疫動物から抗体産生能を有する細胞を取得し、該細胞にｉｎ　ｖｉｔｒｏで免疫を施した後に、骨髄腫細胞と融合して、ハイブリドーマを作製することもできる。
　本発明における遺伝子組換え抗体としては、例えば、組換えマウス抗体、組換えラット抗体、組換えハムスター抗体、組換えラビット抗体、ヒト型キメラ抗体（キメラ抗体ともいう）、ヒト化抗体（ＣＤＲ移植抗体ともいう）およびヒト抗体などの、遺伝子組換え技術により製造される抗体が挙げられる。遺伝子組換え抗体においては、対象とする動物種や目的に応じて、どの動物種由来の重鎖および軽鎖の可変領域並びに定常領域を適用するかを決定することができる。例えば、対象とする動物種がヒトの場合には、可変領域をヒトまたはマウスなどの非ヒト動物由来とし、定常領域およびリンカーをヒト由来とすることができる。
　キメラ抗体とは、ヒト以外の動物（非ヒト動物）の抗体のＶＨおよびＶＬと、ヒト抗体のＣＨおよびＣＬとからなる抗体を指す。非ヒト動物としては、マウス、ラット、ハムスターおよびラビットなど、ハイブリドーマを作製することが可能であれば、いかなるものも用いることができる。キメラ抗体は、モノクローナル抗体を生産する非ヒト動物由来のハイブリドーマより、ＶＨおよびＶＬをコードするｃＤＮＡを取得し、ヒト抗体のＣＨおよびＣＬをコードするＤＮＡを有する動物細胞用発現ベクターにそれぞれ挿入してキメラ抗体発現ベクターを構築し、動物細胞へ導入して発現させることによって、製造することができる。
　ヒト化抗体とは、非ヒト動物抗体のＶＨおよびＶＬのＣＤＲをヒト抗体のＶＨおよびＶＬの対応するＣＤＲに移植した抗体を指す。ＶＨおよびＶＬのＣＤＲ以外の領域はフレームワーク領域（以下、ＦＲと表記する）と称される。ヒト化抗体は、非ヒト動物抗体のＶＨのＣＤＲのアミノ酸配列と任意のヒト抗体のＶＨのＦＲのアミノ酸配列からなるＶＨのアミノ酸配列をコードするｃＤＮＡと、非ヒト動物抗体のＶＬのＣＤＲのアミノ酸配列と任意のヒト抗体のＶＬのＦＲのアミノ酸配列からなるＶＬのアミノ酸配列をコードするｃＤＮＡを構築し、ヒト抗体のＣＨおよびＣＬをコードするＤＮＡを有する動物細胞用発現ベクターにそれぞれ挿入してヒト化抗体発現ベクターを構築し、動物細胞へ導入して発現させることによって、製造することができる。
　ヒト抗体は、元来、ヒト体内に天然に存在する抗体をいうが、最近の遺伝子工学的、細胞工学的、発生工学的な技術の進歩により作製されたヒト抗体ファージライブラリーおよびヒト抗体産生トランスジェニック動物から得られる抗体なども含まれる。
　ヒト体内に天然に存在する抗体は、例えば、ヒト末梢血リンパ球にＥＢウイルスなどを感染させて不死化し、クローニングすることにより、該抗体を産生するリンパ球を培養し、該培養上清より該抗体を精製することにより取得することができる。
　ヒト抗体ファージライブラリーは、ヒトＢ細胞から調製した抗体遺伝子をファージ遺伝子に挿入することにより、Ｆａｂ、ｓｃＦｖなど抗体断片をファージ表面に発現させたライブラリーである。該ライブラリーより、抗原を固定化した基質に対する結合活性を指標として、所望の抗原結合活性を有する抗体断片を表面に発現しているファージを回収することができる。該抗体断片は、さらに、遺伝子工学的手法により２本の完全なＨ鎖および２本の完全なＬ鎖からなるヒト抗体分子へ変換することができる。
　ヒト抗体産生トランスジェニック動物は、ヒト抗体遺伝子が細胞内に組み込まれた動物を意味する。具体的には、例えば、マウスＥＳ細胞へヒト抗体遺伝子を導入し、該ＥＳ細胞をマウスの初期胚へ移植後、個体を発生させることにより、ヒト抗体産生トランスジェニックマウスを作製することができる。ヒト抗体産生トランスジェニック動物由来のヒト抗体は、通常の非ヒト動物で行われているハイブリドーマ作製法を用いてハイブリドーマを取得し、培養することで、培養上清中に抗体を産生、蓄積させることにより調製できる。
　遺伝子組換え抗体のＣＨとしては、ヒトイムノグロブリンに属すればいかなるものでもよいが、ｈｕｍａｎ　ｉｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎ　Ｇ（ｈＩｇＧ）クラスのものが好ましい。さらにｈＩｇＧクラスに属するｈＩｇＧ１、ｈＩｇＧ２、ｈＩｇＧ３およびｈＩｇＧ４といったサブクラスのいずれも用いることができる。また、遺伝子組換え抗体のＣＬとしては、ヒトイムノグロブリンに属すればいずれのものでもよく、κクラスまたはλクラスのものを用いることができる。
　本発明において、バイスぺシフィック抗体とは、特異性が異なる２種類の抗原結合ドメインを有する抗体をいう。バイスぺシフィック抗体のそれぞれの抗原結合ドメインは、単一の抗原の異なるエピトープに結合してもよいし、異なる抗原に結合してもよい。
　一分子のバイスペシフィック抗体は、単一の抗原の異なるエピトープ、または異なる抗原それぞれに一つ以上の抗原結合ドメインが結合する、すなわちそれぞれ一価以上で結合する。例えば、本発明において、一分子のバイスペシフィック抗体が、ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗原結合ドメインおよびＰＳＭＡに結合する抗原結合ドメインを二つずつ有する場合、かかるバイスペシフィック抗体は、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡに、それぞれ二価で結合する。
　本発明において、一分子あたりのバイスペシフィック抗体が、ＴＲＡＩＬＲ２またはＰＳＭＡに何価で結合してもよいが、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡに、少なくともそれぞれ二価で結合することが好ましい。
　また、イムノグロブリンドメインまたはその断片を含むリンカーなど、適切なリンカーを介して結合させた複数の抗原結合ドメインを含む抗体も本発明のバイスぺシフィック抗体に含まれる。
　本発明のバイスペシフィック抗体において、ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗原結合ドメインとＰＳＭＡに結合する抗原結合ドメインの位置は適宜選択することができる。
　本発明のバイスぺシフィック抗体は、既存の作製技術（［Nature Protocols, 9,2450-2463 (2014)］、国際公開第１９９８／０５０４３１号、国際公開第２００１／７７３４号、国際公開第２００２／００２７７３号および国際公開第２００９／１３１２３９号）などにより作製することができる。
　本発明のバイスペシフィック抗体において、ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗原結合ドメインは、ＰＳＭＡに結合する抗原結合ドメインよりもＮ末端側に位置していてもよいし、Ｃ末端側に位置していてもよいが、Ｎ末端側に位置していることが好ましい。
　本発明のバイスペシフィック抗体としては、抗原結合ドメインとして抗体のＶ領域を用いることができ、例えば、一つの重鎖に複数のＶＨを含む重鎖を含む抗体、および一つのＶＨを含む重鎖を二つ含む抗体などが挙げられる。
　一つの重鎖に複数のＶＨを含む重鎖を含むバイスぺシフィック抗体として、より具体的には、イムノグロブリンドメインまたはその断片を含むリンカーを用いて結合させた２つ以上のＶＨを含む重鎖を含む抗体が挙げられる。
　３つ以上のＶＨを結合させる場合には、異なるイムノグロブリンドメインまたはその断片を用いてもよいし、同じイムノグロブリンドメインまたはその断片を用いてもよい。また、２つ以上のＶＨを連結させる場合には、各ＶＨが特異的に抗原に結合できるようにイムノグロブリンドメインまたはその断片の長さや種類を変えることができる。
　本発明のバイスぺシフィック抗体は、具体的には、下記（ａ）～（ｅ）に示される少なくとも１の特徴を有する。
（ａ）１つの重鎖ポリペプチドに複数（例えば２～５個）の異なるＶＨを含み、ＶＨは互いに離隔して近接していないこと、
（ｂ）ＶＨが１０アミノ酸以上のポリペプチドリンカーを介してタンデム（縦列）に連結されていること、より具体的には、ＶＨが、例えばイムノグロブリンドメインの全部または一部のアミノ酸配列を含むリンカーを用いて連結されていること、
（ｃ）軽鎖と重鎖とが会合し、抗原結合部位を形成していること、
（ｄ）図１に示されるように２本の重鎖ポリペプチドと少なくとも４本の軽鎖ポリペプチドとからなる構造を有し、かつ２本の重鎖ポリペプチド間はヒンジ領域でジスルフィド結合により連結され、軽鎖ポリペプチドと重鎖ポリペプチドとの間もジスルフィド結合で連結されていること、および
（ｅ）重鎖の定常領域は、例えば天然型抗体重鎖の定常領域の全部または一部（例えば、ＣＨ１断片、ＣＨ１、ＣＨ２、ＣＨ３、ＣＨ１－ヒンジ、ＣＨ１－ヒンジ－ＣＨ２およびＣＨ１－ヒンジ－ＣＨ２－ＣＨ３など）からなること。
　本発明において、バイスペシフィック抗体に含まれるＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗体のＶＨとＰＳＭＡに結合する抗体のＶＨの位置は、適宜選択することができる。例えば、図１に示される構造のバイスペシフィック抗体については、ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗体のＶＨは、ＰＳＭＡに結合する抗体のＶＨよりもＮ末端側に位置していてもよいし、Ｃ末端側に位置していてもよいが、Ｎ末端側に位置していることが好ましい。
　本発明において、バイスぺシフィック抗体に含まれるＶＬは、同一のＶＬであっても、異なるＶＬであってもいずれでもよい。同一のＶＬを有するバイスペシフィック抗体であって、かつ二つの異なる抗原または同一抗原上の異なる二つのエピトープに結合することができるバイスぺシフィック抗体のＶＨは、各可変領域がそれぞれの特異的な抗原またはエピトープに結合できるように、最適化または改変されたＶＨであればよく、例えば、アミノ酸改変によるスクリーニング、またはファージディプレイなどの方法を用いて適切なＶＨを選択することができる。
　本発明において、リンカーとは、複数の抗原結合ドメインを結合させる化学構造を指し、好ましくはポリペプチドである。本発明のバイスぺシフィック抗体に用いられるリンカーとしては、例えば、イムノグロブリンドメインの全部または一部のアミノ酸配列を含むリンカー、および複数のイムノグロブリンドメインからなるリンカーの全部または一部のアミノ酸配列を含むリンカーなどが挙げられる。
　イムノグロブリンドメインの一部のアミノ酸配列を含むリンカーとして、イムノグロブリンから選ばれるアミノ酸配列は、断続的でも連続的でもよいが、連続するアミノ酸配列が好ましい。
　本発明において、イムノグロブリンドメインとは、イムノグロブリンに類似したアミノ酸配列を持ち、少なくとも２個のシステイン残基が存在する約１００個のアミノ酸残基からなるペプチドを最小単位とする。本発明において、イムノグロブリンドメインは、上記の最小単位のイムノグロブリンドメインを複数含むポリペプチドをも包含する。イムノグロブリンドメインとしては、イムノグロブリン重鎖のＶＨ、ＣＨ１、ＣＨ２およびＣＨ３や、イムノグロブリン軽鎖のＶＬおよびＣＬなどが挙げられる。
　イムノグロブリンの動物種は特に限定されないが、ヒトであることが好ましい。また、イムノグロブリン重鎖の定常領域のサブクラスは、ＩｇＤ、ＩｇＭ、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４、ＩｇＡ１、ＩｇＡ２およびＩｇＥのいずれでもよく、好ましくは、ＩｇＧ由来およびＩｇＭ由来が挙げられる。また、イムノグロブリン軽鎖の定常領域のサブクラスは、κおよびλのいずれでもよい。
　また、イムノグロブリンドメインはイムノグロブリン以外のタンパク質にも存在し、例えば主要組織適合抗原（ＭＨＣ）、ＣＤ１、Ｂ７およびＴ細胞受容体（ＴＣＲ）などのイムノグロブリンスーパーファミリーに属するタンパク質が含むイムノグロブリンドメインが挙げられる。本発明のバイスぺシフィック抗体に用いるイムノグロブリンドメインとしては、いずれのイムノグロブリンドメインも適用することができる。
　ヒトの抗体の場合、ＣＨ１は、ＥＵインデックスで示される１１８番目から２１５番目のアミノ酸配列を有する領域を指す。同様に、ヒンジ領域は、ＫａｂａｔらのＥＵインデックスで示される２１６番目から２３０番目のアミノ酸配列を有する領域を、ＣＨ２はＫａｂａｔらのＥＵインデックスで示される２３１番目から３４０番目のアミノ酸配列を有する領域を、ＣＨ３はＫａｂａｔらのＥＵインデックスで示される３４１番目から４４６番目のアミノ酸配列を有する領域を各々指す。ＣＨ１とＣＨ２の間には、ヒンジ（蝶番）領域と呼ばれる柔軟性に富んだアミノ酸領域が存在する。
　ＣＬは、ヒトの抗体のκ鎖の場合には、Ｋａｂａｔ　ｎｕｍｂｅｒｉｎｇで示される１０８番目から２１４番目のアミノ酸配列を有する領域を、λ鎖の場合には、１０８番目から２１５番目のアミノ酸配列を有する領域を各々指す。
　本発明のバイスぺシフィック抗体に用いられるリンカーとしては、Ｎ末端からＣ末端への方向に順に整列したＣＨ１－ヒンジ－ＣＨ２－ＣＨ３からなるイムノグロブリンドメイン、ＣＨ１－ヒンジ－ＣＨ２からなるイムノグロブリンドメイン、ＣＨ１－ヒンジからなるイムノグロブリンドメイン、ＣＨ１からなるイムノグロブリンドメイン、ＣＨ１のＮ末端側の断片、１４番目のアミノ酸残基がＣｙｓである１４アミノ酸残基からなるＣＨ１断片およびＣＨ１のＮ末端から１～１４番目のアミノ酸残基からなるＣＨ１断片、並びにこれらイムノグロブリンドメイン断片のアミノ酸配列において、１つ以上のアミノ酸残基が改変されたものを挙げることができるが、これらに限定されない。
　また、本発明において、リンカーの一例として、抗体のＣＨ１、ヒンジ、ＣＨ２およびＣＨ３からなるアミノ酸配列の、全部または一部の断片を適宜組み合わせて用いることができる。また、それらのアミノ酸配列を部分的に欠損、または順番を入れ替えて使用することもできる。また、リンカーに使用する抗体のサブクラスは特に限定されないが、ＩｇＭまたはＩｇＧ４であることが好ましく、ＩｇＧ４であることがより好ましい。
本発明において、具体的なリンカーの例としては、配列番号１１で表わされるＩｇＧ４のＣＨ１のＮ末端の１～１４番目の１４アミノ酸残基からなるリンカー、配列番号１２で表わされるＩｇＭのＣＨ１のＮ末端から１～１４番目のアミノ酸残基からなるリンカー、および配列番号９３で表わされるＩｇＧ４のＣＨ１からなるリンカーなどが挙げられ、配列番号９３で表わされるＩｇＧ４のＣＨ１からなるリンカーであることがより好ましい。
　本発明のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片を構成するアミノ酸配列において、１つ以上のアミノ酸残基が欠失、付加、置換または挿入され、かつ上述の抗体またはその抗体断片と同様な活性を有する抗体またはその抗体断片も、本発明のバイスぺシフィック抗体またはその抗体断片に包含される。
　欠失、置換、挿入および／または付加されるアミノ酸の数は１個以上でありその数は特に限定されないが、Molecular Cloning, The Second Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press （1989）、Current Protocols in Molecular Biology, John Willy & Sons（1987-1997）、Nucleic Acids Research, 10, 6487（1982）、Proc. Natl. Acad. Sci., USA, 79, 6409（1982）、Gene, 34, 315 （1985）、Nucleic Acids Research, 13, 4431（1985）、Proc. Natl. Acad. Sci  USA, 82, 488（1985）などに記載の部位特異的変異導入法等の周知の技術により、欠失、置換、挿入若しくは付加できる程度の数である。例えば、１～数十個、好ましくは１～２０個、より好ましくは１～１０個、さらに好ましくは１～５個である。
　上記の本発明のバイスペシフィック抗体のアミノ酸配列において１つ以上のアミノ酸残基が欠失、置換、挿入または付加されたとは、次のことを示す。同一配列中の任意、かつ１若しくは複数のアミノ酸配列中において、１または複数のアミノ酸残基の欠失、置換、挿入または付加があることを意味する。また、欠失、置換、挿入または付加が同時に生じる場合もあり、置換、挿入または付加されるアミノ酸残基は天然型と非天然型いずれの場合もある。
　天然型アミノ酸残基としては、例えば、Ｌ－アラニン、Ｌ－アスパラギン、Ｌ－アスパラギン酸、Ｌ－グルタミン、Ｌ－グルタミン酸、グリシン、Ｌ－ヒスチジン、Ｌ－イソロイシン、Ｌ－ロイシン、Ｌ－リジン、Ｌ－アルギニン、Ｌ－メチオニン、Ｌ－フェニルアラニン、Ｌ－プロリン、Ｌ－セリン、Ｌ－スレオニン、Ｌ－トリプトファン、Ｌ－チロシン、Ｌ－バリンおよびＬ－システインなどが挙げられる。
　以下に、相互に置換可能なアミノ酸残基の好ましい例を示す。同一群に含まれるアミノ酸残基は相互に置換可能である。
　Ａ群：ロイシン、イソロイシン、ノルロイシン、バリン、ノルバリン、アラニン、２－アミノブタン酸、メチオニン、Ｏ－メチルセリン、ｔ－ブチルグリシン、ｔ－ブチルアラニン、シクロヘキシルアラニン
　Ｂ群：アスパラギン酸、グルタミン酸、イソアスパラギン酸、イソグルタミン酸、２－アミノアジピン酸、２－アミノスベリン酸
　Ｃ群：アスパラギン、グルタミン
　Ｄ群：リジン、アルギニン、オルニチン、２，４－ジアミノブタン酸、２，３－ジアミノプロピオン酸
　Ｅ群：プロリン、３－ヒドロキシプロリン、４－ヒドロキシプロリン
　Ｆ群：セリン、スレオニン、ホモセリン
　Ｇ群：フェニルアラニン、チロシン
　本発明のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片は、翻訳後修飾されたいかなるアミノ酸残基を含む抗体をも包含する。翻訳後修飾としては、例えば、Ｈ鎖のＣ末端におけるリジン残基の欠失［リジン・クリッピング（ｌｙｓｉｎｅ　ｃｌｉｐｐｉｎｇ）］およびポリペプチドのＮ末端におけるグルタミン残基のピログルタミン（ｐｕｒｏＧｌｕ）への変換などが挙げられる［Beck et al, Analytical Chemistry, 85, 715-736(2013)］。
　本発明のバイスぺシフィック抗体として具体的には、下記（１）～（３）からなる群より選ばれる、いずれか一つのバイスペシフィック抗体などが挙げられる。
（１）ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗体のＶ領域とＰＳＭＡに結合する抗体のＶ領域とを含むバイスペシフィック抗体、
（２）ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗体のＶＨのＣＤＲ１～３およびＶＬのＣＤＲ１～３、並びにＰＳＭＡに結合する抗体のＶＨのＣＤＲ１～３およびＶＬのＣＤＲ１～３を含むバイスペシフィック抗体、および
（３）ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗体のＶＨおよびＶＬ、並びにＰＳＭＡに結合する抗体のＶＨおよびＶＬを含むバイスペシフィック抗体。
　上記（２）に記載のバイスペシフィック抗体は、ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗体のＶＬのＣＤＲ１～３とＰＳＭＡに結合する抗体のＶＬのＣＤＲ１～３とがそれぞれ同一であってもよいし、異なっていてもよいが、同一であることが好ましい。
　また、上記（３）に記載のバイスペシフィック抗体は、ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗体のＶＬとＰＳＭＡに結合する抗体のＶＬとが同一であってもよいし、異なっていてもよいが、同一であることが好ましい。
　本発明のバイスペシフィック抗体としてより具体的には、ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗体のＶＨのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列が、それぞれ配列番号７０～７２で表されるアミノ酸配列を含み、かつＶＬのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列が、それぞれ配列番号７４～７６で表されるアミノ酸配列を含む、バイスペシフィック抗体が挙げられる。
　ＶＨのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列が、それぞれ配列番号７０～７２で表されるアミノ酸配列を含み、かつＶＬのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列が、それぞれ配列番号７４～７６で表されるアミノ酸配列を含むＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗体の一態様としては、抗ヒトＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体Ｅ１１抗体などが挙げられる。
　本発明のバイスぺシフィック抗体は、ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗体のＶＨのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列およびＶＬのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列が、それぞれ配列番号７０～７２で表されるアミノ酸配列およびそれぞれ配列番号７４～７６で表されるアミノ酸配列と、少なくとも３５％、少なくとも４０％、少なくとも４５％、少なくとも５０％、少なくとも５５％、少なくとも６０％、少なくとも６５％、少なくとも７０％、少なくとも７５％、少なくとも８０％、少なくとも８５％、少なくとも９０％、少なくとも９５％、少なくとも９９％相同である、バイスぺシフィック抗体をも包含する。
　また、本発明のバイスぺシフィック抗体の具体例として、ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗体のＶＨのアミノ酸配列が配列番号１１８で表わされるアミノ酸配列を含み、かつＶＬのアミノ酸配列が配列番号１１９で表されるアミノ酸配列を含む、バイスペシフィック抗体も挙げられる。
　ＶＨのアミノ酸配列が配列番号１１８で表わされるアミノ酸配列を含み、かつＶＬのアミノ酸配列が配列番号１１９で表されるアミノ酸配列を含むＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗体の一態様としては、抗ヒトＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体Ｅ１１抗体などが挙げられる。
　本発明のバイスぺシフィック抗体は、ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗体のＶＨおよびＶＬのアミノ酸配列が、配列番号１１８で表されるＶＨのアミノ酸配列および１１９で表されるＶＬのアミノ酸配列と、少なくとも３５％、少なくとも４０％、少なくとも４５％、少なくとも５０％、少なくとも５５％、少なくとも６０％、少なくとも６５％、少なくとも７０％、少なくとも７５％、少なくとも８０％、少なくとも８５％、少なくとも９０％、少なくとも９５％、少なくとも９９％相同であるバイスぺシフィック抗体をも包含する。
　本発明において、ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗体としては、下記（１）～（３）のいずれか一つに記載される抗体をも包含する。
（１）ＴＲＡＩＬＲ２抗体単体では、細胞増殖抑制活性および細胞死誘導活性の少なくとも一方は示さないが、他の抗原に対する結合ドメインを結合したバイスペシフィック抗体で、初めて細胞増殖抑制活性および細胞死誘導活性の少なくとも一方を示す抗体。
（２）それぞれ配列番号７０～７２で表されるＶＨのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列を含み、かつそれぞれ配列番号７４～７６で表されるＶＬのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列を含む抗体、と競合してＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗体。
（３）それぞれ配列番号７０～７２で表されるＶＨのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列を含み、かつそれぞれ配列番号７４～７６で表されるＶＬのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列を含む抗体と同じエピトープに結合する抗体。
　また、本発明のバイスぺシフィック抗体としては、ＰＳＭＡに結合する抗体のＶＨのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列が、以下の（Ａ）～（Ｄ）からなる群より選ばれるいずれか一つのアミノ酸配列を含み、かつＶＬのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列が、それぞれ配列番号７４～７６で表されるアミノ酸配列を含む、バイスペシフィック抗体が挙げられる。
（Ａ）ＶＨのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列が、それぞれ配列番号７８、８２および８４で表されるアミノ酸配列、
（Ｂ）ＶＨのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列が、それぞれ配列番号７８、７９および８０で表されるアミノ酸配列、
（Ｃ）ＶＨのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列が、それぞれ配列番号７８、８２および８０で表されるアミノ酸配列、および
（Ｄ）ＶＨのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列が、それぞれ配列番号９６～９８で表されるアミノ酸配列。
　従って、本発明のバイスぺシフィック抗体が備える、ＰＳＭＡに結合する抗体の可変領域としては、具体的には、以下の（ａ）～（ｄ）からなる群より選ばれるいずれか一つのＶＨ、およびＣＤＲ１～３がそれぞれ配列番号７４～７６で表されるアミノ酸配列を含むＶＬが挙げられる。
（ａ）配列番号７８、８２および８４で表されるアミノ酸配列をそれぞれＣＤＲ１～３として含むＶＨ、
（ｂ）配列番号７８、７９および８０で表されるアミノ酸配列をそれぞれＣＤＲ１～３として含むＶＨ、
（ｃ）配列番号７８、８２および８０で表されるアミノ酸配列をそれぞれＣＤＲ１～３として含むＶＨ、および
（ｄ）配列番号９６～９８で表されるアミノ酸配列をそれぞれＣＤＲ１～３として含むＶＨ。
　ＣＤＲ１～３が、それぞれ配列番号７８、８２および８４で表されるアミノ酸配列を含むＶＨ、およびＣＤＲ１～３がそれぞれ配列番号７４～７６で表されるアミノ酸配列を含むＶＬを含むＰＳＭＡに結合する抗体の一態様としては、抗ヒトＰＳＭＡモノクローナル抗体ＰＮ７抗体などが挙げられる。
　ＣＤＲ１～３が、それぞれ配列番号７８、７９および８０で表されるアミノ酸配列を含むＶＨ、およびＣＤＲ１～３がそれぞれ配列番号７４～７６で表されるアミノ酸配列を含むＶＬを含むＰＳＭＡに結合する抗体の一態様としては、抗ヒトＰＳＭＡモノクローナル抗体ＰＩ１３４抗体、ＰＩ１４３抗体、ＰＩ１０５抗体、ＰＩ１２７抗体、ＰＩ１０８抗体、ＰＩ１１５抗体およびＰＬ２２３抗体などが挙げられる。
　ＣＤＲ１～３が、それぞれ配列番号７８、８２および８０で表されるアミノ酸配列を含むＶＨ、およびＣＤＲ１～３がそれぞれ配列番号７４～７６で表されるアミノ酸配列を含むＶＬを含むＰＳＭＡに結合する抗体の一態様としては、抗ヒトＰＳＭＡモノクローナル抗体ＰＩ１０１抗体およびＰＩ１１８抗体などが挙げられる。
　ＣＤＲ１～３が、それぞれ配列番号９６～９８で表されるアミノ酸配列を含むＶＨ、およびＣＤＲ１～３がそれぞれ配列番号７４～７６で表されるアミノ酸配列を含むＶＬを含むＰＳＭＡに結合する抗体の一態様としては、抗ヒトＰＳＭＡモノクローナル抗体ＰＮ１７０抗体などが挙げられる。
　本発明のバイスぺシフィック抗体は、ＰＳＭＡに結合する抗体のＶＨである、上記（ａ）～（ｄ）からなる群より選ばれるいずれか一つのＶＨ、およびＣＤＲ１～３がそれぞれ配列番号７４～７６で表されるアミノ酸配列を含むＶＬのアミノ酸配列と、それぞれ少なくとも３５％、少なくとも４０％、少なくとも４５％、少なくとも５０％、少なくとも５５％、少なくとも６０％、少なくとも６５％、少なくとも７０％、少なくとも７５％、少なくとも８０％、少なくとも８５％、少なくとも９０％、少なくとも９５％、少なくとも９９％相同であるアミノ酸配列を含むＶＨおよびＶＬを含むバイスぺシフィック抗体をも包含する。
　また、本発明のバイスぺシフィック抗体が備える、ＰＳＭＡに結合する抗体の可変領域としては、具体的には、以下の（ｅ）～（ｏ）からなる群より選ばれるいずれか一つのＶＨ、および配列番号１１９で表されるアミノ酸配列を含むＶＬが挙げられる。
（ｅ）配列番号１２２で表されるアミノ酸配列を含むＶＨ、
（ｆ）配列番号１２０で表されるアミノ酸配列を含むＶＨ、
（ｇ）配列番号１２８で表されるアミノ酸配列を含むＶＨ、
（ｈ）配列番号１２３で表されるアミノ酸配列を含むＶＨ、
（ｉ）配列番号１２７で表されるアミノ酸配列を含むＶＨ、
（ｊ）配列番号１２４で表されるアミノ酸配列を含むＶＨ、
（ｋ）配列番号１２５で表されるアミノ酸配列を含むＶＨ、
（ｌ）配列番号１２９で表されるアミノ酸配列を含むＶＨ、
（ｍ）配列番号１２１で表されるアミノ酸配列を含むＶＨ、
（ｎ）配列番号１２６で表されるアミノ酸配列を含むＶＨ、および
（ｏ）配列番号１３０で表されるアミノ酸配列を含むＶＨ。
　配列番号１２２で表されるアミノ酸配列を含むＶＨ、および配列番号１１９で表されるアミノ酸配列を含むＶＬを含むヒトＰＳＭＡに結合する抗体の一態様としては、抗ヒトＰＳＭＡモノクローナル抗体ＰＮ７抗体などが挙げられる。
　配列番号１２０で表されるアミノ酸配列を含むＶＨ、および配列番号１１９で表されるアミノ酸配列を含むＶＬを含むヒトＰＳＭＡに結合する抗体の一態様としては、抗ヒトＰＳＭＡモノクローナル抗体ＰＩ１３４抗体などが挙げられる。
　配列番号１２８で表されるアミノ酸配列を含むＶＨ、および配列番号１１９で表されるアミノ酸配列を含むＶＬを含むヒトＰＳＭＡに結合する抗体の一態様としては、抗ヒトＰＳＭＡモノクローナル抗体ＰＩ１４３抗体などが挙げられる。
　配列番号１２３で表されるアミノ酸配列を含むＶＨ、および配列番号１１９で表されるアミノ酸配列を含むＶＬを含むヒトＰＳＭＡに結合する抗体の一態様としては、抗ヒトＰＳＭＡモノクローナル抗体ＰＩ１０５抗体などが挙げられる。
　配列番号１２７で表されるアミノ酸配列を含むＶＨ、および配列番号１１９で表されるアミノ酸配列を含むＶＬを含むヒトＰＳＭＡに結合する抗体の一態様としては、抗ヒトＰＳＭＡモノクローナル抗体ＰＩ１２７抗体などが挙げられる。
　配列番号１２４で表されるアミノ酸配列を含むＶＨ、および配列番号１１９で表されるアミノ酸配列を含むＶＬを含むヒトＰＳＭＡに結合する抗体の一態様としては、抗ヒトＰＳＭＡモノクローナル抗体ＰＩ１０８抗体などが挙げられる。
　配列番号１２５で表されるアミノ酸配列を含むＶＨ、および配列番号１１９で表されるアミノ酸配列を含むＶＬを含むヒトＰＳＭＡに結合する抗体の一態様としては、抗ヒトＰＳＭＡモノクローナル抗体ＰＩ１１５抗体などが挙げられる。
　配列番号１２９で表されるアミノ酸配列を含むＶＨ、および配列番号１１９で表されるアミノ酸配列を含むＶＬを含むヒトＰＳＭＡに結合する抗体の一態様としては、抗ヒトＰＳＭＡモノクローナル抗体ＰＬ２２３抗体などが挙げられる。
　配列番号１２１で表されるアミノ酸配列を含むＶＨ、および配列番号１１９で表されるアミノ酸配列を含むＶＬを含むヒトＰＳＭＡに結合する抗体の一態様としては、抗ヒトＰＳＭＡモノクローナル抗体ＰＩ１０１抗体などが挙げられる。
　配列番号１２６で表されるアミノ酸配列を含むＶＨ、および配列番号１１９で表されるアミノ酸配列を含むＶＬを含むヒトＰＳＭＡに結合する抗体の一態様としては、抗ヒトＰＳＭＡモノクローナル抗体ＰＩ１１８抗体などが挙げられる。
　配列番号１３０で表されるアミノ酸配列を含むＶＨ、および配列番号１１９で表されるアミノ酸配列を含むＶＬを含むヒトＰＳＭＡに結合する抗体の一態様としては、抗ヒトＰＳＭＡモノクローナル抗体ＰＮ１７０抗体などが挙げられる。
　本発明のバイスぺシフィック抗体は、ＰＳＭＡに結合する抗体のＶＨである、上記（ｅ）～（ｏ）からなる群より選ばれるいずれか一つのＶＨ、および配列番号１１９で表わされるアミノ酸配列を含むＶＬのアミノ酸配列と、それぞれ少なくとも３５％、少なくとも４０％、少なくとも４５％、少なくとも５０％、少なくとも５５％、少なくとも６０％、少なくとも６５％、少なくとも７０％、少なくとも７５％、少なくとも８０％、少なくとも８５％、少なくとも９０％、少なくとも９５％、少なくとも９９％相同であるアミノ酸配列を含むＶＨおよびＶＬを含むバイスぺシフィック抗体をも包含する。
　また、本発明のバイスペシフィック抗体に用いられる抗ＰＳＭＡ抗体としては、下記（１）または（２）に記載の抗体などをも包含する。
（１）ＶＨのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列が、それぞれ配列番号７８、８２および８４で表わされるアミノ酸配列、およびＶＬのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列が、それぞれ配列番号７４～７６で表わされるアミノ酸配列を含む抗体、ＶＨのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列が、それぞれ配列番号７８、８９および８０で表わされるアミノ酸配列、およびＶＬのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列が、それぞれ配列番号７４～７６で表わされるアミノ酸配列を含む抗体、ＶＨのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列が、それぞれ配列番号７８、８２および８０で表わされるアミノ酸配列、およびＶＬのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列が、それぞれ配列番号７４～７６で表わされるアミノ酸配列を含む抗体、またはＶＨのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列が、それぞれ配列番号９６～９８で表わされるアミノ酸配列、およびＶＬのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列が、それぞれ配列番号７４～７６で表わされるアミノ酸配列を含む抗体、と競合してＰＳＭＡに結合する抗体。
（２）ＶＨのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列が、それぞれ配列番号７８、８２および８４で表わされるアミノ酸配列、およびＶＬのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列が、それぞれ配列番号７４～７６で表わされるアミノ酸配列を含む抗体、ＶＨのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列が、それぞれ配列番号７８、８９および８０で表わされるアミノ酸配列、およびＶＬのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列が、それぞれ配列番号７４～７６で表わされるアミノ酸配列を含む抗体、ＶＨのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列が、それぞれ配列番号７８、８２および８０で表わされるアミノ酸配列、およびＶＬのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列が、それぞれ配列番号７４～７６で表わされるアミノ酸配列を含む抗体、またはＶＨのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列が、それぞれ配列番号９６～９８で表わされるアミノ酸配列、およびＶＬのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列が、それぞれ配列番号７４～７６で表わされるアミノ酸配列を含む抗体、と同じエピトープに結合する抗体。
　本発明のバイスぺシフィック抗体において、ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗体の可変領域は、ＰＳＭＡに結合する抗体の可変領域に対し、リンカーを介してＮ末端側に位置してもよいしＣ末端側に位置してもよいが、リンカーを介してＮ末端側に位置していることが好ましい。ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗体の可変領域がＰＳＭＡに結合する抗体の可変領域よりもＮ末端側に位置するバイスペシフィック抗体としては、ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗体のＶＨ、リンカーおよびＰＳＭＡに結合する抗体のＶＨからなるポリペプチドのアミノ酸配列が、以下の（Ａ）～（Ｍ）からなる群より選ばれるいずれか一つのアミノ酸配列であるバイスペシフィック抗体が挙げられる。
　（Ａ）配列番号１３１で表わされるアミノ酸配列、
　（Ｂ）配列番号１３２で表わされるアミノ酸配列、
　（Ｃ）配列番号１３３で表わされるアミノ酸配列、
　（Ｄ）配列番号１３４で表わされるアミノ酸配列、
　（Ｅ）配列番号１３５で表わされるアミノ酸配列、
　（Ｆ）配列番号１３６で表わされるアミノ酸配列、
　（Ｇ）配列番号１３７で表わされるアミノ酸配列、
　（Ｈ）配列番号１３８で表わされるアミノ酸配列、
　（Ｉ）配列番号１３９で表わされるアミノ酸配列、
　（Ｊ）配列番号１４０で表わされるアミノ酸配列、
　（Ｋ）配列番号１４１で表わされるアミノ酸配列、
　（Ｌ）配列番号１４２で表わされるアミノ酸配列、および
　（Ｍ）配列番号１４３で表わされるアミノ酸配列。
　ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗体のＶＨ、リンカーおよびＰＳＭＡに結合する抗体のＶＨからなるポリペプチドのアミノ酸配列が、上記（Ａ）～（Ｍ）に記載されるアミノ酸配列であるＴＲＡＩＬＲ２とＰＳＭＡに結合するバイスペシフィック抗体の一態様としては、それぞれヒトＴＲＡＩＬＲ２とヒトＰＳＭＡに結合するバイスペシフィック抗体Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１３４抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０１ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０５ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０８ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１１５ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１１８ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１２７ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１４３ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＬ２２３ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ１７０ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＧＬ－ＰＩ１３４ＶＨ抗体、およびＥ１１－ＭＬ－ＰＩ１０１ＶＨ抗体などが挙げられる
　本発明のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片には、エフェクター活性を有する抗体または該抗体断片も包含される。
　エフェクター活性とは、抗体のＦｃ領域を介して引き起こされる抗体依存性の細胞傷害活性を指し、例えば、抗体依存性細胞傷害活性（Ａｎｔｉｂｏｄｙ－Ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ　Ｃｅｌｌｕｌａｒ　Ｃｙｔｏｔｏｘｉｃｉｔｙ　ａｃｔｉｖｉｔｙ；ＡＤＣＣ活性）、補体依存性細胞傷害活性（Ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔ－Ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ　Ｃｙｔｏｔｏｘｉｃｉｔｙ　ａｃｔｉｖｉｔｙ；ＣＤＣ活性）、マクロファージや樹状細胞などの食細胞による抗体依存性貪食活性（Ａｎｔｉｂｏｄｙ－ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ　ｃｅｌｌｕｌａｒ　ｐｈａｇｏｃｙｔｏｓｉｓ　ａｃｔｉｖｉｔｙ；ＡＤＣＰ活性）およびオプソニン効果などが挙げられる。
　本発明においてＡＤＣＣ活性およびＣＤＣ活性は、公知の測定方法［Cancer Immunol. Immunother., 36, 373（1993）］を用いて測定することができる。
　ＡＤＣＣ活性とは、標的細胞上の抗原に結合した抗体が、抗体のＦｃ領域を介して免疫細胞のＦｃ受容体と結合することで免疫細胞（ナチュラルキラー細胞など）を活性化し、標的細胞を傷害する活性をいう。
　Ｆｃ受容体（ＦｃＲ）は、抗体のＦｃ領域に結合する受容体であり、抗体の結合によりさまざまなエフェクター活性を誘発する。各ＦｃＲは抗体のサブクラスに対応し、ＩｇＧ、ＩｇＥ、ＩｇＡ、ＩｇＭはそれぞれＦｃγＲ、ＦｃεＲ、ＦｃαＲ、ＦｃμＲに特異的に結合する。さらにＦｃγＲには、ＦｃγＲＩ（ＣＤ６４）、ＦｃγＲＩＩ（ＣＤ３２）およびＦｃγＲＩＩＩ（ＣＤ１６）のサブタイプが存在し、それぞれのサブタイプにはＦｃγＲＩＡ、ＦｃγＲＩＢ、ＦｃγＲＩＣ、ＦｃγＲＩＩＡ、ＦｃγＲＩＩＢ、ＦｃγＲＩＩＣ、ＦｃγＲＩＩＩＡおよびＦｃγＲＩＩＩＢのアイソフォームが存在する。これらの異なるＦｃγＲは異なる細胞上に存在する［Annu. Rev. Immunol. 9:457-492（1991）］。ヒトにおいては、ＦｃγＲＩＩＩＢは好中球に特異的に発現しており、ＦｃγＲＩＩＩＡは単球、ナチュラルキラー細胞（ＮＫ細胞）、マクロファージおよび一部のＴ細胞に発現する。ＦｃγＲＩＩＩＡへの抗体の結合を介して、ＮＫ細胞依存的なＡＤＣＣ活性が誘発される。
　ＣＤＣ活性とは、標的細胞上の抗原に結合した抗体が血液中の補体関連タンパク質群からなる一連のカスケード（補体活性化経路）を活性化し、標的細胞を傷害する活性をいう。また、補体の活性化により生じるタンパク質断片により、免疫細胞の遊走および活性化が誘導される。ＣＤＣ活性のカスケードは、まずＣ１ｑがＦｃ領域に結合し、次に２つのセリンプロテアーゼであるＣ１ｒおよびＣ１ｓと結合することで、Ｃ１複合体を形成し開始される。
　本発明のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片の抗原発現細胞に対するＣＤＣ活性、またはＡＤＣＣ活性は、公知の測定方法［Cancer Immunol. Immunother., 36, 373（1993）］により評価することができる。
　本発明のバイスぺシフィック抗体のエフェクター活性を制御する方法としては、抗体のＦｃ領域（ＣＨ２およびＣＨ３ドメインからなる定常領域）の２９７番目のアスパラギン（Ａｓｎ）に結合するＮ－結合複合型糖鎖の還元末端に存在するＮ－アセチルグルコサミン（ＧｌｃＮＡｃ）にα－１，６結合するフコース（コアフコースともいう）の量を制御する方法（国際公開第２００５／０３５５８６号、国際公開第２００２／３１１４０号および国際公開第００／６１７３９号）や、抗体のＦｃ領域のアミノ酸残基の改変により制御する方法（国際公開第００／４２０７２号）などが知られている。
　バイスぺシフィック抗体に付加するフコースの量を制御することで、抗体のＡＤＣＣ活性を増加または低下させることができる。例えば、抗体のＦｃに結合しているＮ－結合複合型糖鎖に結合するフコースの含量を低下させる方法として、α１，６－フコース転移酵素遺伝子が欠損した宿主細胞を用いてバイスぺシフィック抗体を発現することで、高いＡＤＣＣを有するバイスぺシフィック抗体を取得することができる。一方、バイスぺシフィック抗体のＦｃに結合しているＮ－結合複合型糖鎖に結合するフコースの含量を増加させる方法として、α１，６－フコース転移酵素遺伝子を導入した宿主細胞を用いて抗体を発現させることで、低いＡＤＣＣ活性を有するバイスぺシフィック抗体を取得することができる。
　また、バイスぺシフィック抗体のＦｃ領域のアミノ酸残基を改変することでＡＤＣＣ活性やＣＤＣ活性を増加または低下させることができる。例えば、米国特許出願公開第２００７／０１４８１６５号明細書に記載のＦｃ領域のアミノ酸配列を用いることで、バイスぺシフィック抗体のＣＤＣ活性を増加させることができる。また、米国特許第６，７３７，０５６号明細書、米国特許第７，２９７，７７５号明細書または米国特許第７，３１７，０９１号明細書などに記載のアミノ酸改変を行うことで、ＡＤＣＣ活性またはＣＤＣ活性を、増加させることも低下させることもできる。
　さらに、上述の方法を組み合わせることにより、エフェクター活性が制御されたバイスぺシフィック抗体を取得してもよい。
　本発明のバイスぺシフィック抗体の安定性は、精製過程や一定条件下で保存されたサンプルにおいて形成される凝集体（オリゴマー）量を測定することによって評価することができる。すなわち、同一条件下で凝集体量が低減する場合を、抗体の安定性が向上したものと評価する。凝集体量は、ゲルろ過クロマトグラフィーを含む適当なクロマトグラフィーを用いて凝集した抗体と凝集していない抗体とを分離することによって測定することができる。
　本発明のバイスぺシフィック抗体の生産性は、抗体産生細胞から培養液中に産生される抗体量を測定することによって評価することができる。より具体的には、培養液から産生細胞を除いた培養上清に含まれる抗体の量をＨＰＬＣ法やＥＬＩＳＡ法などの適当な方法で測定することによって評価することができる。
　本発明において、抗体断片とは、ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗原結合ドメインとＰＳＭＡに結合する抗原結合ドメインとを含み、抗原結合活性を有する抗体断片である。本発明において抗体断片としては、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２、ｓｃＦｖ、ｄｉａｂｏｄｙ、ｄｓＦｖまたはＣＤＲを含むペプチドなどが挙げられる。
　Ｆａｂは、ＩｇＧ抗体をタンパク質分解酵素パパインで処理して得られる断片のうち（Ｈ鎖の２２４番目のアミノ酸残基で切断される）、Ｈ鎖のＮ末端側約半分とＬ鎖全体とがジスルフィド結合（Ｓ－Ｓ結合）で結合した、分子量約５万の抗原結合活性を有する抗体断片である。
　Ｆ（ａｂ’）２は、ＩｇＧをタンパク質分解酵素ペプシンで処理して得られる断片のうち（Ｈ鎖の２３４番目のアミノ酸残基で切断される）、Ｆａｂがヒンジ領域のＳ－Ｓ結合を介して結合されたものよりやや大きい、分子量約１０万の抗原結合活性を有する抗体断片である。
　Ｆａｂ’は、上記Ｆ（ａｂ’）２のヒンジ領域のＳ－Ｓ結合を切断した、分子量約５万の抗原結合活性を有する抗体断片である。
　ｓｃＦｖは、１本のＶＨと１本のＶＬとを１２残基以上の適当なペプチドリンカー（Ｐ）を用いて連結した、ＶＨ－Ｐ－ＶＬまたはＶＬ－Ｐ－ＶＨポリペプチドであり、抗原結合活性を有する抗体断片である。
　Ｄｉａｂｏｄｙは、抗原結合特異性の同じまたは異なるｓｃＦｖが２量体を形成した抗体断片であり、同じ抗原に対する２価の抗原結合活性、または異なる抗原に対し各々特異的な抗原結合活性を有する抗体断片である。
　ｄｓＦｖは、ＶＨおよびＶＬ中の各１アミノ酸残基をシステイン残基に置換したポリペプチドを、該システイン残基間のＳ－Ｓ結合を介して結合させたものをいう。
　ＣＤＲを含むペプチドは、ＶＨまたはＶＬのＣＤＲの少なくとも１領域を含んで構成される。複数のＣＤＲを含むペプチドは、ＣＤＲ同士を直接または適当なペプチドリンカーを介して結合させることで作製することができる。ＣＤＲを含むペプチドは、本発明のバイスペシフィック抗体のＶＨおよびＶＬのＣＤＲをコードするＤＮＡを構築し、該ＤＮＡを原核生物用発現ベクターまたは真核生物用発現ベクターに挿入し、該発現ベクターを原核生物または真核生物へ導入することにより発現させ、製造することができる。また、ＣＤＲを含むペプチドは、Ｆｍｏｃ法またはｔＢｏｃ法などの化学合成法によって製造することもできる。
　本発明のバイスペシフィック抗体のＦｃと抗体断片とが結合した融合タンパク質、該Ｆｃと天然に存在するリガンドまたは受容体とが結合したＦｃ融合タンパク質（イムノアドヘシンともいう）、および複数のＦｃ領域を融合させたＦｃ融合タンパク質等も本発明に包含される。また、抗体のエフェクター活性の増強または欠損、抗体の安定化、および血中半減期の制御を目的としたアミノ酸残基改変を含むＦｃ領域も、本発明のバイスペシフィック抗体に用いることができる。
　本発明のバイスぺシフィック抗体または抗体断片としては、本発明のバイスペシフィック抗体またはその抗体断片に放射性同位元素、低分子の薬剤、高分子の薬剤、タンパク質または抗体医薬などを化学的または遺伝子工学的に結合させた抗体の誘導体を包含する。
　本発明における抗体の誘導体は、本発明のバイスペシフィック抗体またはその抗体断片のＨ鎖またはＬ鎖のＮ末端側或いはＣ末端側、該抗体またはその抗体断片中の適当な置換基或いは側鎖、さらには該抗体またはその抗体断片中の糖鎖などに、放射性同位元素、低分子の薬剤、高分子の薬剤、免疫賦活剤、タンパク質または抗体医薬などを化学的手法［抗体工学入門、地人書館（１９９４）］により結合させることで製造することができる。
　また、本発明における抗体の誘導体は、本発明のバイスペシフィック抗体または抗体断片をコードするＤＮＡと、所望のタンパク質または抗体医薬をコードするＤＮＡとを連結させて、発現ベクターに挿入し、該発現ベクターを適当な宿主細胞へ導入し発現させる、遺伝子工学的手法により製造することができる。
　放射性同位元素としては、例えば、１１１Ｉｎ、１３１Ｉ、１２５Ｉ、９０Ｙ、６４Ｃｕ、９９Ｔｃ、７７Ｌｕまたは２１１Ａｔなどが挙げられる。放射性同位元素は、クロラミンＴ法などによって抗体に直接結合させることができる。また、放射性同位元素をキレートする物質を抗体に結合させてもよい。キレート剤としては、例えば、１－イソチオシアネートベンジル－３－メチルジエチレントリアミンペンタ酢酸（ＭＸ－ＤＴＰＡ）などが挙げられる。
　低分子の薬剤としては、例えば、アルキル化剤、ニトロソウレア剤、代謝拮抗剤、抗生物質、植物アルカロイド、トポイソメラーゼ阻害剤、ホルモン療法剤、ホルモン拮抗剤、アロマターゼ阻害剤、Ｐ糖蛋白阻害剤、白金錯体誘導体、Ｍ期阻害剤若しくはキナーゼ阻害剤などの抗癌剤［臨床腫瘍学、癌と化学療法社（１９９６）］、ハイドロコーチゾン若しくはプレドニゾンなどのステロイド剤、アスピリン若しくはインドメタシンなどの非ステロイド剤、金チオマレート若しくはペニシラミンなどの免疫調節剤、サイクロフォスファミド若しくはアザチオプリンなどの免疫抑制剤またはマレイン酸クロルフェニラミン若しくはクレマシチンのような抗ヒスタミン剤などの抗炎症剤［炎症と抗炎症療法、医歯薬出版株式会社（１９８２）］などが挙げられる。
　抗癌剤としては、例えば、アミフォスチン（エチオール）、シスプラチン、ダカルバジン（ＤＴＩＣ）、ダクチノマイシン、メクロレタミン（ナイトロジェンマスタード）、ストレプトゾシン、シクロフォスファミド、イホスファミド、カルムスチン（ＢＣＮＵ）、ロムスチン（ＣＣＮＵ）、ドキソルビシン（アドリアマイシン）、エピルビシン、ゲムシタビン（ゲムザール）、ダウノルビシン、プロカルバジン、マイトマイシン、シタラビン、エトポシド、５－フルオロウラシル、フルオロウラシル、ビンブラスチン、ビンクリスチン、ブレオマイシン、ダウノマイシン、ペプロマイシン、エストラムスチン、パクリタキセル（タキソール）、ドセタキセル（タキソテア）、アルデスロイキン、アスパラギナーゼ、ブスルファン、カルボプラチン、オキサリプラチン、ネダプラチン、クラドリビン、カンプトテシン、１０－ヒドロキシ－７－エチル－カンプトテシン（ＳＮ３８）、フロクスウリジン、フルダラビン、ヒドロキシウレア、イダルビシン、メスナ、イリノテカン（ＣＰＴ－１１）、ノギテカン、ミトキサントロン、トポテカン、ロイプロリド、メゲストロール、メルファラン、メルカプトプリン、ヒドロキシカルバミド、プリカマイシン、ミトタン、ペガスパラガーゼ、ペントスタチン、ピポブロマン、ストレプトゾシン、タモキシフェン、ゴセレリン、リュープロレニン、フルタミド、テニポシド、テストラクトン、チオグアニン、チオテパ、ウラシルマスタード、ビノレルビン、クロラムブシル、ハイドロコーチゾン、プレドニゾロン、メチルプレドニゾロン、ビンデシン、ニムスチン、セムスチン、カペシタビン、トムデックス、アザシチジン、ＵＦＴ、オキザロプラチン、ゲフィチニブ（イレッサ）、イマチニブ（ＳＴＩ５７１）、エルロチニブ、ＦＭＳ－ｌｉｋｅ　ｔｙｒｏｓｉｎｅ　ｋｉｎａｓｅ　３（Ｆｌｔ３）阻害剤、ｖａｓｃｕｌａｒ　ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ　ｇｒｏｗｔｈ　ｆａｃｏｔｒ　ｒｅｃｅｐｔｏｒ（ＶＥＧＦＲ）阻害剤、ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ　ｇｒｏｗｔｈ　ｆａｃｔｏｒ　ｒｅｃｅｐｔｏｒ（ＦＧＦＲ）阻害剤、タルセバなどのｅｐｉｄｅｒｍａｌ　ｇｒｏｗｔｈ　ｆａｃｔｏｒ　ｒｅｃｅｐｔｏｒ（ＥＧＦＲ）阻害剤、ラディシコール、１７－アリルアミノ－１７－デメトキシゲルダナマイシン、ラパマイシン、アムサクリン、オール－トランスレチノイン酸、サリドマイド、レナリドマイド、アナストロゾール、ファドロゾール、レトロゾール、エキセメスタン、金チオマレート、Ｄ－ペニシラミン、ブシラミン、アザチオプリン、ミゾリビン、シクロスポリン、ラパマイシン、ヒドロコルチゾン、ベキサロテン（ターグレチン）、タモキシフェン、デキサメタゾン、プロゲスチン類、エストロゲン類、アナストロゾール（アリミデックス）、ロイプリン、アスピリン、インドメタシン、セレコキシブ、アザチオプリン、ペニシラミン、金チオマレート、マレイン酸クロルフェニラミン、クロロフェニラミン、クレマシチン、トレチノイン、ベキサロテン、砒素、ボルテゾミブ、アロプリノール、カリケアマイシン、イブリツモマブチウキセタン、タルグレチン、オゾガミン、クラリスロマシン、ロイコボリン、ケトコナゾール、アミノグルテチミド、スラミン、メトトレキセート若しくはメイタンシノイドまたはその誘導体などが挙げられる。
　低分子の薬剤と本発明のバイスペシフィック抗体とを結合させる方法としては、例えば、グルタールアルデヒドを介して薬剤と該抗体のアミノ基間を結合させる方法、または水溶性カルボジイミドを介して薬剤のアミノ基と該抗体のカルボキシル基とを結合させる方法などが挙げられる。
　高分子の薬剤としては、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、アルブミン、デキストラン、ポリオキシエチレン、スチレンマレイン酸コポリマー、ポリビニルピロリドン、ピランコポリマー、またはヒドロキシプロピルメタクリルアミドなどが挙げられる。これらの高分子化合物を本発明のバイスペシフィック抗体または抗体断片に結合させることにより、（１）化学的、物理的若しくは生物的な種々の因子に対する安定性の向上、（２）血中半減期の顕著な延長、または（３）免疫原性の消失若しくは抗体産生の抑制、などの効果が期待される［バイオコンジュゲート医薬品、廣川書店（１９９３）］。
　例えば、ＰＥＧと本発明のバイスペシフィック抗体を結合させる方法としては、ＰＥＧ化修飾試薬と反応させる方法などが挙げられる［バイオコンジュゲート医薬品、廣川書店（１９９３）］。ＰＥＧ化修飾試薬としては、リジンのε－アミノ基への修飾剤（日本国特開昭６１－１７８９２６号公報）、アスパラギン酸およびグルタミン酸のカルボキシル基への修飾剤（日本国特開昭５６－２３５８７号公報）、またはアルギニンのグアニジノ基への修飾剤（日本国特開平２－１１７９２０号公報）などが挙げられる。
　免疫賦活剤としては、イムノアジュバントとして知られている天然物でもよく、具体例としては、免疫を亢進する薬剤が、β（１→３）グルカン（例えば、レンチナンまたはシゾフィラン）、またはαガラクトシルセラミド（ＫＲＮ７０００）などが挙げられる。
　タンパク質としては、例えば、ＮＫ細胞、マクロファージまたは好中球などの免疫担当細胞を活性化するサイトカイン若しくは増殖因子または毒素タンパク質などが挙げられる。
　サイトカインまたは増殖因子としては、例えば、インターフェロン（以下、ＩＦＮと記す）－α、ＩＦＮ－β、ＩＦＮ－γ、インターロイキン（以下、ＩＬと記す）－２、ＩＬ－１２、ＩＬ－１５、ＩＬ－１８、ＩＬ－２１、ＩＬ－２３、顆粒球コロニー刺激因子（Ｇ－ＣＳＦ）、顆粒球／マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭ－ＣＳＦ）またはマクロファージコロニー刺激因子（Ｍ－ＣＳＦ）などが挙げられる。
　毒素タンパク質としては、例えば、リシン、ジフテリアトキシンまたはＯＮＴＡＫなどが挙げられ、毒性を調節するためにタンパク質に変異を導入したタンパク毒素も含まれる。
　タンパク質または抗体医薬との融合抗体は、本発明のバイスぺシフィック抗体または抗体断片をコードするｃＤＮＡにタンパク質をコードするｃＤＮＡを連結させ、融合抗体をコードするＤＮＡを構築し、該ＤＮＡを原核生物または真核生物用発現ベクターに挿入し、該発現ベクターを原核生物または真核生物へ導入することにより発現させ、製造することができる。　
　上記抗体の誘導体を検出方法、定量方法、検出用試薬、定量用試薬または診断薬として使用する場合に、本発明のバイスぺシフィック抗体またはその抗体断片に結合する薬剤としては、通常の免疫学的検出または測定法で用いられる標識体が挙げられる。標識体としては、例えば、アルカリフォスファターゼ、ペルオキシダーゼ若しくはルシフェラーゼなどの酵素、アクリジニウムエステル若しくはロフィンなどの発光物質、またはフルオレセインイソチオシアネート（ＦＩＴＣ）若しくはテトラメチルローダミンイソチオシアネート（ＲＩＴＣ）、Ａｌｅｘａ（登録商標）　Ｆｌｕｏｒ　４８８、Ｒ－ｐｈｙｃｏｅｒｙｔｈｒｉｎ（Ｒ－ＰＥ）などの蛍光物質などが挙げられる。
　本発明には、ＣＤＣ活性またはＡＤＣＣ活性などの細胞傷害活性を有するバイスぺシフィック抗体およびその抗体断片が包含される。本発明のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片の抗原発現細胞に対するＣＤＣ活性またはＡＤＣＣ活性は公知の測定方法［Cancer Immunol. Immunother., 36, 373 （1993）］により評価することができる。
　また、本発明は、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡを特異的に認識し結合するバイスぺシフィック抗体若しくはその抗体断片を含む組成物、または該バイスペシフィック抗体若しくは該抗体断片を有効成分として含有する、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの発現細胞が関与する疾患の治療薬に関する。
　ＴＲＡＩＬＲ２かつＰＳＭＡの発現細胞が関与する疾患としては、例えば、ＴＲＡＩＬＲ２かつＰＳＭＡが発現している細胞が関与している疾患であればいかなるものでもよく、例えば悪性腫瘍およびがんなどが挙げられる。
　本発明において、悪性腫瘍およびがんとしては、例えば、大腸がん、結腸直腸がん、肺がん、乳がん、グリオーマ、悪性黒色腫（メラノーマ）、甲状腺がん、腎細胞がん、白血病、リンパ腫、Ｔ細胞リンパ腫、胃がん、膵臓がん、子宮頚がん、子宮内膜がん、卵巣がん、食道がん、肝臓がん、頭頚部扁平上皮がん、皮膚がん、尿路がん、膀胱がん、前立腺がん、絨毛がん、咽頭がん、喉頭がん、中皮腫、胸膜腫、男性胚腫、子宮内膜過形成、子宮内膜症、胚芽腫、線維肉腫、カポジ肉腫、血管腫、海綿状血管腫、血管芽腫、網膜芽腫、星状細胞腫、神経線維腫、稀突起謬腫、髄芽腫、神経芽腫、神経膠腫、横紋筋肉腫、膠芽腫、骨原性肉腫、平滑筋肉腫、甲状肉腫およびウィルムス腫瘍などが挙げられる。
　本発明のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片、またはこれらの誘導体を含有する治療薬は、有効成分としての該抗体若しくは該抗体断片、またはこれらの誘導体のみを含むものであってもよいが、通常は薬理学的に許容される１以上の担体と一緒に混合し、製剤学の技術分野において公知の任意の方法により製造した医薬製剤として提供するのが好ましい。
　投与経路は、治療に際して最も効果的なものを使用するのが好ましく、例えば、経口投与、または口腔内、気道内、直腸内、皮下、筋肉内または静脈内などの非経口投与が挙げられる。中でも、静脈内投与が好ましい。
　投与形態としては、例えば、噴霧剤、カプセル剤、錠剤、散剤、顆粒剤、シロップ剤、乳剤、座剤、注射剤、軟膏またはテープ剤などが挙げられる。
　投与量または投与回数は、目的とする治療効果、投与方法、治療期間、年齢および体重などにより異なるが、通常成人１日当たり１０μｇ／ｋｇ～１０ｍｇ／ｋｇである。
　さらに、本発明は、本発明のバイスぺシフィック抗体またはその抗体断片を含有する、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方の免疫学的検出用若しくは測定用試薬、またはＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの発現細胞が関与する疾患の診断薬に関する。また、本発明は、本発明のバイスペシフィック抗体またはその抗体断片を用いた、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方の免疫学的検出用若しくは測定用方法、またはＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの発現細胞が関与する疾患の診断方法に関する。
　本発明においてＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方の量を検出または測定する方法としては、任意の公知の方法が挙げられる。例えば、免疫学的検出または測定方法などが挙げられる。
　免疫学的検出または測定方法とは、標識を施した抗原または抗体を用いて、抗体量または抗原量を検出または測定する方法である。免疫学的検出または測定方法としては、例えば、放射免疫測定法（ＲＩＡ）、酵素免疫測定法（ＥＩＡまたはＥＬＩＳＡ）、蛍光免疫測定法（ＦＩＡ）、発光免疫測定法（ｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｔ　ｉｍｍｕｎｏａｓｓａｙ）、ウェスタンブロット法または物理化学的手法などが挙げられる。
　本発明のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片を用いてＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方が発現した細胞を検出または測定することにより、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡ発現細胞が関連する疾患を診断することができる。
　ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方ポリペプチドが発現している細胞の検出には、公知の免疫学的検出法を用いることができるが、例えば、免疫沈降法、免疫細胞染色法、免疫組織染色法または蛍光抗体染色法などが挙げられる。また、例えば、ＦＭＡＴ８１００ＨＴＳシステム（アプライドバイオシステム社製）などの蛍光抗体染色法なども挙げられる。
　本発明においてＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方を検出または測定する対象となる生体試料としては、例えば、組織細胞、血液、血漿、血清、膵液、尿、糞便、組織液または培養液など、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方が発現した細胞を含む可能性のあるものであれば特に限定されない。
　本発明のバイスぺシフィック抗体若しくはその抗体断片、またはこれらの誘導体を含有する診断薬は、目的とする診断法に応じて、抗原抗体反応を行なうための試薬、該反応の検出用試薬を含んでもよい。抗原抗体反応を行なうための試薬としては、例えば、緩衝剤、塩などが挙げられる。
　検出用試薬としては、例えば、前記バイスぺシフィック抗体若しくはその抗体断片、またはこれらの誘導体に結合する標識された二次抗体、または標識に対応した基質などの通常の免疫学的検出または測定法に用いられる試薬が挙げられる。
　以下、本発明のバイスぺシフィック抗体の作製方法、該抗体を用いたＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方の測定方法、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡ発現細胞が関与する疾患の診断方法および治療方法について具体的に記載する。
１．モノクローナル抗体の作製方法
　本発明におけるモノクローナル抗体の製造方法は、下記の作業工程を包含する。すなわち、（１）免疫原として使用する抗原の精製および細胞表面に抗原が過剰発現した細胞の作製の少なくとも一方、（２）抗原を動物に免疫した後、血液を採取しその抗体価を検定して脾臓などを摘出する時期を決定し、抗体産生細胞を調製する工程、（３）骨髄腫細胞（ミエローマ）の調製、（４）抗体産生細胞とミエローマとの細胞融合、（５）目的とする抗体を産生するハイブリドーマ群の選別、（６）ハイブリドーマ群からの単クローン（ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ）細胞の分離（クローニング）、（７）場合によっては、モノクローナル抗体を大量に製造するためのハイブリドーマの培養、またはハイブリドーマを移植した動物の飼育、（８）このようにして製造されたモノクローナル抗体の生理活性およびその抗原結合特異性の検討、または標識試薬としての特性の検定、などである。
　以下、本発明におけるＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡに結合するバイスペシフィック抗体を作製するために使用する、ＴＲＡＩＬＲ２に結合するモノクローナル抗体およびＰＳＭＡに結合するモノクローナル抗体の作製方法を上記の工程に沿って詳述する。該抗体の作製方法はこれに制限されず、例えば脾臓細胞以外の抗体産生細胞およびミエローマを使用することもできる。
（１）抗原の精製　
　ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方を発現させた細胞は、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方の全長またはその部分長をコードするｃＤＮＡを含む発現ベクターを、大腸菌、酵母、昆虫細胞または動物細胞などに導入することにより、得ることができる。また、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方を多量に発現している各種ヒト腫瘍培養細胞またはヒト組織などからＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方を精製し、抗原として使用することができる。また、該腫瘍培養細胞または該組織などをそのまま抗原として用いることもできる。さらに、Ｆｍｏｃ法またはｔＢｏｃ法などの化学合成法によりＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方の部分配列を有する合成ペプチドを調製し、抗原に用いることもできる。
　本発明で用いられるＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方は、Molecular Cloning,A Laboratory Manual, Second Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989)やCurrent Protocols In Molecular Biology, John Wiley & Sons(1987-1997)などに記載された方法などを用い、例えば以下の方法により、該ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方をコードするＤＮＡを宿主細胞中で発現させることで製造することができる。　
　ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方をコードする部分を含む完全長ｃＤＮＡを適当な発現ベクターのプロモーターの下流に挿入することにより、組換えベクターを作製する。上記完全長ｃＤＮＡの代わりに、完全長ｃＤＮＡをもとにして調製された、ポリペプチドをコードする部分を含む適当な長さのＤＮＡ断片を用いてもよい。次に、得られた該組換えベクターを、該発現ベクターに適合した宿主細胞に導入することにより、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方を生産する形質転換体を得ることができる。　
　発現ベクターとしては、使用する宿主細胞における自律複製または染色体中への組込みが可能で、かつＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方をコードするＤＮＡを転写できる位置に適当なプロモーターを含有しているものであれば、いずれも用いることができる。
　宿主細胞としては、例えば、大腸菌などのエシェリヒア属などに属する微生物、酵母、昆虫細胞または動物細胞など、目的とする遺伝子を発現できるものであればいずれも用いることができる。
　大腸菌などの原核生物を宿主細胞として用いる場合、組換えベクターは、原核生物中で自律複製が可能であるとともに、プロモーター、リボソーム結合配列、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方をコードする部分を含むＤＮＡ、並びに転写終結配列を含むベクターであることが好ましい。また、該組換えベクターには、転写終結配列は必ずしも必要ではないが、構造遺伝子の直下に転写終結配列を配置することが好ましい。さらに、該組換えベクターは、プロモーターを制御する遺伝子を含んでもよい。
　該組換えベクターとしては、リボソーム結合配列であるシャイン・ダルガルノ配列と開始コドンとの間を適当な距離（例えば、６～１８塩基）に調節したプラスミドを用いることが好ましい。
　また、該ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方をコードするＤＮＡの塩基配列としては、宿主内での発現に最適なコドンとなるように塩基を置換することができ、これにより目的とするＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方の生産率を向上させることができる。
　発現ベクターとしては、使用する宿主細胞中で機能を発揮できるものであればいずれも用いることができ、例えば、ｐＢＴｒｐ２、ｐＢＴａｃ１、ｐＢＴａｃ２（以上、ロシュ・ダイアグノスティックス社製）、ｐＫＫ２３３－２（ファルマシア社製）、ｐＳＥ２８０（インビトロジェン社製）、ｐＧＥＭＥＸ－１（プロメガ社製）、ｐＱＥ－８（キアゲン社製）、ｐＫＹＰ１０（日本国特開昭５８－１１０６００号公報）、ｐＫＹＰ２００［Agricultural Biological Chemistry, 48, 669（1984）］、ｐＬＳＡ１［Agric. Biol. Chem., 53, 277（1989）］、ｐＧＥＬ１［Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 82, 4306（1985）］、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ　ＩＩ　ＳＫ（－）（ストラタジーン社製）、ｐＴｒｓ３０［大腸菌ＪＭ１０９／ｐＴｒＳ３０（ＦＥＲＭ　ＢＰ－５４０７）より調製］、ｐＴｒｓ３２［大腸菌ＪＭ１０９／ｐＴｒＳ３２（ＦＥＲＭ　ＢＰ－５４０８）より調製］、ｐＧＨＡ２［大腸菌ＩＧＨＡ２（ＦＥＲＭ　ＢＰ－４００）より調製、日本国特開昭６０－２２１０９１号公報］、ｐＧＫＡ２［大腸菌ＩＧＫＡ２（ＦＥＲＭ　ＢＰ－６７９８）より調製、日本国特開昭６０－２２１０９１号公報］、ｐＴｅｒｍ２（米国特許第４，６８６，１９１号明細書、米国特許第４，９３９，０９４号明細書、米国特許第５，１６０，７３５号明細書）、ｐＳｕｐｅｘ、ｐＵＢ１１０、ｐＴＰ５、ｐＣ１９４、ｐＥＧ４００［J. Bacteriol., 172, 2392 （1990）］、ｐＧＥＸ（ファルマシア社製）、ｐＥＴシステム（ノバジェン社製）またはｐＭＥ１８ＳＦＬ３（東洋紡社製）などが挙げられる。
　プロモーターとしては、使用する宿主細胞中で機能するものであればいかなるものでもよい。例えば、ｔｒｐプロモーター（Ｐｔｒｐ）、ｌａｃプロモーター、ＰＬプロモーター、ＰＲプロモーターまたはＴ７プロモーターなどの、大腸菌またはファージなどに由来するプロモーターが挙げられる。また、例えば、Ｐｔｒｐを２つ直列させたタンデムプロモーター、ｔａｃプロモーター、ｌａｃＴ７プロモーター、またはｌｅｔ　Ｉプロモーターなどの人為的に設計改変されたプロモーターなども挙げられる。
　宿主細胞としては、例えば、大腸菌ＸＬ１－Ｂｌｕｅ、大腸菌ＸＬ２－Ｂｌｕｅ、大腸菌ＤＨ１、大腸菌ＭＣ１０００、大腸菌ＫＹ３２７６、大腸菌Ｗ１４８５、大腸菌ＪＭ１０９、大腸菌ＨＢ１０１、大腸菌Ｎｏ．４９、大腸菌Ｗ３１１０、大腸菌ＮＹ４９、または大腸菌ＤＨ５αなどが挙げられる。
　宿主細胞への組換えベクターの導入方法としては、使用する宿主細胞へＤＮＡを導入する方法であればいずれも用いることができ、例えば、カルシウムイオンを用いる方法［Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 69, 2110（1972）、Gene, 17, 107（1982）、Molecular & General Genetics, 168, 111（1979）］が挙げられる。　
　動物細胞を宿主として用いる場合、発現ベクターとしては、動物細胞中で機能するものであればいずれも用いることができ、例えば、ｐｃＤＮＡＩ（インビトロジェン社製）、ｐｃＤＭ８（フナコシ社製）、ｐＡＧＥ１０７［日本国特開平３－２２９７９号公報；Cytotechnology, 3, 133 （1990）］、ｐＡＳ３－３（日本国特開平２－２２７０７５号公報）、ｐＣＤＭ８［Nature, 329, 840 （1987）］、ｐｃＤＮＡＩ／Ａｍｐ（インビトロジェン社製）、ｐｃＤＮＡ３．１（インビトロジェン社製）、ｐＲＥＰ４（インビトロジェン社製）、ｐＡＧＥ１０３［J. Biochemistry, 101, 1307 （1987）］、ｐＡＧＥ２１０、ｐＭＥ１８ＳＦＬ３またはｐＫＡＮＴＥＸ９３（国際公開第９７／１０３５４号）などが挙げられる。
　プロモーターとしては、動物細胞中で機能を発揮できるものであればいずれも用いることができ、例えば、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）のｉｍｍｅｄｉａｔｅ　ｅａｒｌｙ（ＩＥ）遺伝子のプロモーター、ＳＶ４０の初期プロモーター、レトロウイルスのプロモーター、メタロチオネインプロモーター、ヒートショックプロモーター、ＳＲαプロモーターまたはモロニーマウス白血病ウイルスのプロモーター若しくはエンハンサーが挙げられる。また、ヒトＣＭＶのＩＥ遺伝子のエンハンサーをプロモーターと共に用いてもよい。
　宿主細胞としては、例えば、ヒトバーキットリンパ腫細胞Ｎａｍａｌｗａ、アフリカミドリザル腎臓由来細胞ＣＯＳ、チャイニーズハムスター卵巣由来細胞ＣＨＯ、またはヒト白血病細胞ＨＢＴ５６３７（日本国特開昭６３－０００２９９号公報）などが挙げられる。
　宿主細胞への組換えベクターの導入方法としては、動物細胞にＤＮＡを導入する方法であればいずれも用いることができ、例えば、エレクトロポレーション法［Cytotechnology, 3, 133 (1990）］、リン酸カルシウム法（日本国特開平２－２２７０７５号公報）、またはリポフェクション法［Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 84, 7413（1987）］などが挙げられる。　
　以上のようにして得られるＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方をコードするＤＮＡを組み込んだ組換えベクターを保有する微生物、または動物細胞などに由来する形質転換体を培地中で培養し、培養物中に該ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方を生成蓄積させ、該培養物から採取することにより、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方を製造することができる。該形質転換体を培地中で培養する方法は、宿主の培養に用いられる通常の方法に従って行うことができる。
　真核生物由来の細胞で発現させた場合には、糖または糖鎖が付加されたＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方を得ることができる。
　誘導性のプロモーターを用いた組換えベクターで形質転換した微生物を培養する際には、必要に応じてインデューサーを培地に添加してもよい。例えば、ｌａｃプロモーターを用いた組換えベクターで形質転換した微生物を培養する場合にはイソプロピル－β－Ｄ－チオガラクトピラノシドなどを、ｔｒｐプロモーターを用いた組換えベクターで形質転換した微生物を培養する場合にはインドールアクリル酸などを、各々培地に添加してもよい。
　動物細胞を宿主として得られた形質転換体を培養する培地としては、例えば、一般に使用されているＲＰＭＩ１６４０培地［The Journal of the American Medical Association, 199, 519（1967）］、ＥａｇｌｅのＭＥＭ培地［Science, 122, 501 （1952）］、ダルベッコ改変ＭＥＭ培地［Virology, 8, 396（1959）］、199培地［Proc. Soc. Exp. Biol. Med., 73, 1 (1950）］、Ｉｓｃｏｖｅ’ｓ　Ｍｏｄｉｆｉｅｄ　Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ　Ｍｅｄｉｕｍ（ＩＭＤＭ）培地、またはこれら培地に牛胎児血清（ＦＢＳ）などを添加した培地などが挙げられる。培養は、通常ｐＨ６～８、３０～４０℃、５％ＣＯ２存在下などの条件下で１～７日間行う。また、培養中に、必要に応じて、カナマイシン、ペニシリンなどの抗生物質を培地に添加してもよい。
　ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方をコードする遺伝子の発現方法としては、直接発現以外に、分泌生産または融合タンパク質発現などの方法［Molecular Cloning, A Laboratory Manual,Second Edition,Cold Spring Harbor Laboratory Press （1989）］を用いることができる。ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方の生産方法としては、例えば、宿主細胞内に生産させる方法、宿主細胞外に分泌させる方法、または宿主細胞外膜上に生産させる方法が挙げられ、使用する宿主細胞や、生産させるＴＲＡＩＬＲ２および／ＰＳＭＡの少なくとも一方の構造を変えることにより、適切な方法を選択することができる。
　例えば、細胞外領域のアミノ酸配列をコードするＤＮＡに、抗体のＦｃ領域をコードするＤＮＡ、グルタチオンＳ－トランスフェラーゼ（ＧＳＴ）をコードするＤＮＡ、またはＦＬＡＧタグをコードするＤＮＡまたはＨｉｓｔｉｄｉｎｅタグをコードするＤＮＡなどを連結したＤＮＡを作製して、発現し精製することで抗原融合タンパク質を作製することができる。具体的には、例えば、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方の細胞外領域をヒトＩｇＧのＦｃ領域に結合させたＦｃ融合タンパク質、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方の細胞外領域とグルタチオンＳ－トランスフェラーゼ（ＧＳＴ）との融合タンパク質が挙げられる。
　ＴＲＡＩＬＲおよびＰＳＭＡの少なくとも一方が宿主細胞内または宿主細胞外膜上に生産される場合、ポールソンらの方法［J. Biol. Chem., 264, 17619 (1989）］、ロウらの方法［Proc. Natl. Acad. Sci., USA, 86, 8227 （1989）、Genes Develop., 4, 1288（1990）］、日本国特開平０５－３３６９６３号公報、または国際公開第９４／２３０２１号などに記載の方法を用いることにより、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方を宿主細胞外に積極的に分泌させることができる。また、ジヒドロ葉酸還元酵素遺伝子などを用いた遺伝子増幅系（日本国特開平２－２２７０７５号公報）を利用してＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方の生産量を上昇させることもできる。
　生産したＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方は、例えば、以下のようにして単離、精製することができる。
　ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方が細胞内に溶解状態で発現した場合には、培養終了後に細胞を遠心分離により回収し、水系緩衝液に懸濁後、超音波破砕機、フレンチプレス、マントンガウリンホモゲナイザー、またはダイノミルなどを用いて細胞を破砕し、無細胞抽出液を得る。該無細胞抽出液を遠心分離して得られる上清から、通常のタンパク質の単離精製法、すなわち溶媒抽出法、硫安などによる塩析法、脱塩法、有機溶媒による沈殿法、ジエチルアミノエチル（ＤＥＡＥ）－セファロース、ＤＩＡＩＯＮ　ＨＰＡ－７５（三菱化学社製）などのレジンを用いた陰イオン交換クロマトグラフィー法、Ｓ－Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ　ＦＦ（ファルマシア社製）などのレジンを用いた陽イオン交換クロマトグラフィー法、ブチルセファロース、フェニルセファロースなどのレジンを用いた疎水性クロマトグラフィー法、分子篩を用いたゲルろ過法、アフィニティークロマトグラフィー法、クロマトフォーカシング法、または等電点電気泳動などの電気泳動法などの手法を、単独でまたは組み合わせて用いることで、精製タンパク質を得ることができる。　
　ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方が細胞内に不溶体を形成して発現した場合は、上記と同様に細胞を回収後破砕し、遠心分離を行うことにより、沈殿画分として該ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方の不溶体を回収する。回収した該ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方の不溶体をタンパク質変性剤で可溶化する。該可溶化液を希釈または透析することにより、該ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方を正常な立体構造に戻した後、上記と同様の単離精製法によりポリペプチドの精製タンパク質を得ることができる。
　ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方またはその糖修飾体などの誘導体が細胞外に分泌された場合には、培養上清において該ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方、またはその糖修飾体などの誘導体を回収することができる。該培養上清を上記と同様に遠心分離などの手法を用いて処理することにより、可溶性画分を取得し、該可溶性画分から上記と同様の単離精製法を用いることにより、精製タンパク質を得ることができる。
　また、本発明において用いられるＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方は、Ｆｍｏｃ法またはｔＢｏｃ法などの化学合成法によっても製造することができる。具体的には、例えば、アドバンストケムテック社製、パーキン・エルマー社製、ファルマシア社製、プロテインテクノロジインストルメント社製、シンセセル－ベガ社製、パーセプチブ社製、または島津製作所社製などのペプチド合成機を利用して化学合成することができる。
（２）抗体産生細胞の調製工程
　３～２０週令のマウス、ラットまたはハムスターなどの動物に、（１）で得られる抗原を免疫して、その動物の脾臓、リンパ節または末梢血中の抗体産生細胞を採取する。また、動物としては、例えば、富塚らの文献［Tomizuka. et al., Proc Natl Acad Sci USA., 97、722,（2000）］に記載されているヒト由来抗体を産生するトランスジェニックマウス、免疫原性を高めるためにＴＲＡＩＬＲ２またはＰＳＭＡのコンディショナルノックアウトマウスなどが被免疫動物として挙げられる。　
　免疫は、フロイントの完全アジュバント、または水酸化アルミニウムゲルと百日咳菌ワクチンなどの適当なアジュバントとともに抗原を投与することにより行う。マウス免疫の際の免疫原投与法は、皮下注射、腹腔内注射、静脈内注射、皮内注射、筋肉内注射または足蹠注射などいずれでもよいが、腹腔内注射、足蹠注射または静脈内注射が好ましい。抗原が部分ペプチドである場合には、ＢＳＡ（ウシ血清アルブミン）、またはＫＬＨ（Ｋｅｙｈｏｌｅ　Ｌｉｍｐｅｔ　ｈｅｍｏｃｙａｎｉｎ）などのキャリアタンパク質とのコンジュゲートを作製し、これを免疫原として用いる。
　抗原の投与は、１回目の投与の後、１～２週間おきに５～１０回行う。各投与後３～７日目に眼底静脈叢より採血し、その血清の抗体価を酵素免疫測定法［Antibodies - A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory（1988）］などを用いて測定する。免疫に用いた抗原に対し上記の血清が十分な抗体価を示した動物を、融合用抗体の産生細胞の供給源として用いれば、以後の操作の効果を高めることができる。
　抗原の最終投与後３～７日目に、免疫した動物より脾臓などの抗体産生細胞を含む組織を摘出し、抗体産生細胞を採取する。抗体産生細胞は、形質細胞およびその前駆細胞であるリンパ球であり、これは個体のいずれの部位から得てもよく、一般には脾臓、リンパ節、骨髄、扁桃、末梢血、またはこれらを適宜組み合わせたもの等から得ることができるが、脾臓細胞が最も一般的に用いられる。脾臓細胞を用いる場合には、脾臓を細断してほぐした後、遠心分離し、さらに赤血球を除去することにより、融合用抗体産生細胞を取得する。
（３）ミエローマの調製工程
　ミエローマとしては、マウス、ラット、モルモット、ハムスター、ウサギまたはヒト等の哺乳動物に由来する自己抗体産生能のない細胞を用いることが出来るが、一般的にはマウスから得られた株化細胞、例えば、８－アザグアニン耐性マウス（ＢＡＬＢ／ｃ由来）ミエローマ細胞株Ｐ３－Ｘ６３Ａｇ８－Ｕ１（Ｐ３－Ｕ１）［Current Topics in Microbiology and Immunology, 18, 1（1978）］、Ｐ３－ＮＳ１／１－Ａｇ４１（ＮＳ－１）［European J. Immunology, 6, 511 （1976）］、ＳＰ２／０－Ａｇ１４（ＳＰ－２）［Nature, 276, 269（1978）］、Ｐ３－Ｘ６３－Ａｇ８６５３（６５３）［J. Immunology, 123, 1548 （1979）］、またはＰ３－Ｘ６３－Ａｇ８（Ｘ６３）［Nature, 256, 495（1975）］などが用いられる。該細胞株は、適当な培地、例えば８－アザグアニン培地［グルタミン、２－メルカプトエタノール、ゲンタマイシン、ＦＣＳおよび８－アザグアニンを加えたＲＰＭＩ－１６４０培地］、イスコフ改変ダルベッコ培地（Ｉｓｃｏｖｅ’ｓ　Ｍｏｄｉｆｉｅｄ　Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ　Ｍｅｄｉｕｍ；以下「ＩＭＤＭ」という）、またはダルベッコ改変イーグル培地（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ　Ｍｏｄｉｆｉｅｄ　Ｅａｇｌｅ　Ｍｅｄｉｕｍ；以下「ＤＭＥＭ」という）などの培地で継代培養する。細胞融合の３～４日前に上記の細胞株を正常培地（例えば、１０％　ＦＣＳを含むＤＭＥＭ培地）で継代培養し、融合を行う当日に２×１０７個以上の細胞数を確保する。
（４）細胞融合
　（２）で得られる融合用抗体産生細胞と（３）で得られるミエローマ細胞を、Ｍｉｎｉｍｕｍ　Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ　Ｍｅｄｉｕｍ（ＭＥＭ）培地またはＰＢＳ（リン酸二ナトリウム１．８３ｇ、リン酸一カリウム０．２１ｇ、食塩７．６５ｇ、蒸留水１リットル、ｐＨ７．２）でよく洗浄し、融合用抗体産生細胞：ミエローマ細胞＝５：１～１０：１になるように混合し、遠心分離した後、上清を除く。沈澱した細胞集塊をよくほぐした後、ポリエチレングリコール－１０００（ＰＥＧ－１０００）、ＭＥＭ培地およびジメチルスルホキシドの混合液を、３７℃で攪拌しながら加える。さらに１～２分間毎にＭＥＭ培地１～２ｍＬを数回加えた後、ＭＥＭ培地を加えて全量が５０ｍＬになるようにする。遠心分離後、上清を除き、沈澱した細胞集塊を緩やかにほぐした後、ＨＡＴ培地［ヒポキサンチン、チミジンおよびアミノプテリンを加えた正常培地］中に緩やかに細胞を懸濁する。この懸濁液を５％ＣＯ２インキュベーター中、３７℃で７～１４日間培養する。　
　また、以下の方法でも細胞融合を行うことができる。脾臓細胞とミエローマ細胞とを無血清培地（例えばＤＭＥＭ）、またはリン酸緩衝生理食塩液（以下「リン酸緩衝液」という）でよく洗浄し、脾臓細胞とミエローマ細胞の細胞数の比が５：１～１０：１程度になるように混合し、遠心分離する。上清を除去し、沈澱した細胞集塊をよくほぐした後、撹拌しながら１ｍＬの５０％（ｗ／ｖ）ポリエチレングリコール（分子量１０００～４０００）を含む無血清培地を滴下する。その後、１０ｍＬの無血清培地をゆっくりと加えた後、遠心分離する。再び上清を捨て、沈澱した細胞を適量のヒポキサンチン・アミノプテリン・チミジン（ＨＡＴ）液およびヒトインターロイキン－２（ＩＬ－２）を含む正常培地（以下、ＨＡＴ培地という）中に懸濁して培養用プレート（以下、プレートという）の各ウェルに分注し、５％炭酸ガス存在下、３７℃で２週間程度培養する。途中適宜ＨＡＴ培地を補う。
（５）ハイブリドーマ群の選択
　融合に用いたミエローマ細胞が８－アザグアニン耐性株である場合、すなわちヒポキサンチン・グアニン・ホスホリボシルトランスフェラーゼ（ＨＧＰＲＴ）欠損株である場合は、融合しなかったミエローマ細胞およびミエローマ細胞同士の融合細胞は、ＨＡＴ培地中では生存することができない。一方、抗体産生細胞同士の融合細胞および抗体産生細胞とミエローマ細胞とのハイブリドーマは、ＨＡＴ培地中で生存することができるが、抗体産生細胞同士の融合細胞はやがて寿命に達する。したがって、ＨＡＴ培地中での培養を続けることによって、抗体産生細胞とミエローマ細胞とのハイブリドーマのみが生き残り、結果的にハイブリドーマを取得することができる。
　コロニー状に生育してきたハイブリドーマについて、ＨＡＴ培地からアミノプテリンを除いた培地（以下、ＨＴ培地という）への培地交換を行う。その後、培養上清の一部を採取し、後述する抗体価測定法を用いて、抗体を産生するハイブリドーマを選択することができる。抗体価の測定方法としては、例えば、放射性同位元素免疫定量法（ＲＩＡ法）、固相酵素免疫定量法（ＥＬＩＳＡ法）、蛍光抗体法および受身血球凝集反応法など種々の公知技術が挙げられるが、検出感度、迅速性、正確性および操作の自動化の可能性などの観点から、ＲＩＡ法またはＥＬＩＳＡ法が好ましい。
　抗体価を測定することにより、所望の抗体を産生することが判明したハイブリドーマを、別のプレートに移しクローニングを行う。このクローニング法としては、例えば、プレートの１ウェルに１個の細胞が含まれるように希釈して培養する限界希釈法、軟寒天培地中で培養しコロニーを回収する軟寒天法、マイクロマニュピレーターによって１個の細胞を単離する方法、セルソーターによって１個の細胞を単離する方法などが挙げられる。
　抗体価の認められたウェルについて、例えば限界希釈法によるクローニングを２～４回繰り返し、安定して抗体価の認められたものを、ヒトＴＲＡＩＬＲ２またはＰＳＭＡに対するモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ株として選択する。　
（６）モノクローナル抗体の調製
　プリスタン処理［２，６，１０，１４－テトラメチルペンタデカン（Ｐｒｉｓｔａｎｅ）０．５ｍＬを腹腔内投与し、２週間飼育する］した８～１０週令のマウスまたはヌードマウスに、（５）で得られるモノクローナル抗体産生ハイブリドーマを腹腔内に注射する。１０～２１日でハイブリドーマは腹水癌化する。このマウスから腹水を採取し、遠心分離して固形分を除去後、４０～５０％硫酸アンモニウムで塩析し、カプリル酸沈殿法、ＤＥＡＥ－セファロースカラム、プロテインＡカラムまたはゲル濾過カラムによる精製を行い、ＩｇＧまたはＩｇＭ画分を集め、精製モノクローナル抗体とする。また、同系統のマウス（例えば、ＢＡＬＢ／ｃ）若しくはＮｕ／Ｎｕマウス、ラット、モルモット、ハムスターまたはウサギ等の腹腔内で該ハイブリドーマを増殖させることにより、ＴＲＡＩＬＲ２またはＰＳＭＡに結合するモノクローナル抗体を大量に含む腹水を得ることができる。
　（５）で得られたモノクローナル抗体産生ハイブリドーマを、１０％ＦＢＳ添加を添加したＲＰＭＩ１６４０培地などで培養した後、遠心分離により上清を除き、ＧＩＴ培地、または５％ダイゴＧＦ２１を添加したＨｙｂｒｉｄｏｍａ　ＳＦＭ培地等に懸濁し、フラスコ培養、スピナー培養またはバック培養などにより３～７日間培養する。得られた細胞懸濁液を遠心分離し、得られた上清よりプロテインＡカラムまたはプロテインＧカラムによる精製を行ない、ＩｇＧ画分を集め、精製モノクローナル抗体を得ることもできる。精製の簡便な方法としては、市販のモノクローナル抗体精製キット（例えば、ＭＡｂＴｒａｐ　ＧＩＩキット；アマシャムファルマシアバイオテク社製）等を利用することもできる。
　抗体のサブクラスの決定は、サブクラスタイピングキットを用いて酵素免疫測定法により行う。蛋白量の定量は、ローリー法および２８０ｎｍにおける吸光度［１．４（ＯＤ２８０）＝イムノグロブリン１ｍｇ／ｍＬ］より算出する方法により行うことができる。
（７）ＴＲＡＩＬＲ２またはＰＳＭＡに対するモノクローナル抗体の結合アッセイ
　ＴＲＡＩＬＲ２またはＰＳＭＡに対するモノクローナル抗体の結合活性は、オクテルロニー（Ｏｕｃｈｔｅｒｌｏｎｙ）法、ＥＬＩＳＡ法、ＲＩＡ法、フローサイトメトリー法（ＦＣＭ）または表面プラズモン共鳴法（ＳＰＲ）などのバインディングアッセイ系により測定することができる。
　オクテルロニー法は簡便ではあるが、抗体の濃度が低い場合には濃縮操作が必要である。一方、ＥＬＩＳＡ法またはＲＩＡ法を用いた場合は、培養上清をそのまま抗原吸着固相と反応させ、さらに二次抗体として各種イムノグロブリンアイソタイプ、サブクラスに対応する抗体を用いることにより、抗体のアイソタイプ、サブクラスを同定すると共に、抗体の結合活性を測定することが可能である。
　手順の具体例としては、精製または部分精製した組換えＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方をＥＬＩＳＡ用９６穴プレート等の固相表面に吸着させ、さらに抗原が吸着していない固相表面を抗原と無関係なタンパク質、例えばウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）によりブロッキングを行う。ＥＬＩＳＡプレートをｐｈｏｓｐｈａｔｅ　ｂｕｆｆｅｒ　ｓａｌｉｎｅ（ＰＢＳ）および０．０５％　Ｔｗｅｅｎ２０を含むＰＢＳ（Ｔｗｅｅｎ－ＰＢＳ）などで洗浄後、段階希釈した第１抗体（例えばマウス血清、培養上清など）を反応させ、プレートに固定化された抗原へ抗体を結合させる。次に、第２抗体としてビオチン、酵素（ｈｏｒｓｅ　ｒａｄｉｓｈ　ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ；ＨＲＰ、ａｌｋａｌｉｎｅ　ｐｈｏｓｐｈａｔａｓｅ；ＡＬＰなど）、化学発光物質または放射線化合物などで標識した抗イムノグロブリン抗体を分注して、プレートに結合した第１抗体に第２抗体を反応させる。Ｔｗｅｅｎ－ＰＢＳでよく洗浄した後、第２抗体の標識物質に応じた反応を行い、標的抗原に対し特異的に反応するモノクローナル抗体を選択する。
　ＦＣＭ法では、抗体の抗原発現細胞に対する結合活性を測定することができる［Cancer Immunol. Immunother., 36, 373(1993)］。抗体が細胞膜上に発現している膜タンパク質抗原に結合することは、当該抗体が天然に存在する抗原の立体構造を認識し、結合することを意味する。
　ＳＰＲ法としては、Ｂｉａｃｏｒｅによるｋｉｎｅｔｉｃｓ解析が挙げられる。例えば、Ｂｉａｃｏｒｅ　Ｔ１００を用い、抗原と被験物との間の結合におけるｋｉｎｅｔｉｃｓを測定し、その結果を機器付属の解析ソフトウエアで解析をする。手順の具体例としては、抗マウスＩｇＧ抗体をセンサーチップＣＭ５にアミンカップリング法により固定した後、ハイブリドーマ培養上清または精製モノクローナル抗体などの被験物質を流して適当量を結合させ、さらに濃度既知の複数濃度の抗原を流して、結合および解離を測定する。次に、得られたデータについて、機器付属のソフトウエアを用いて１：１バインディングモデルによるｋｉｎｅｔｉｃｓ解析を行い、各種パラメータを取得する。または、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方をセンサーチップ上に、例えばアミンカップリング法により固定した後、濃度既知の複数濃度の精製モノクローナル抗体を流して、結合および解離を測定する。得られたデータについて、機器付属のソフトウエアを用いてバイバレントバインディングモデルによるｋｉｎｅｔｉｃｓ解析を行い、各種パラメータを取得する。
　また、本発明において、ＴＲＡＩＬＲ２またはＰＳＭＡに対する抗体と競合してＴＲＡＩＬＲ２またはＰＳＭＡに結合する抗体は、上述のバインティングアッセイ系に被検抗体を共存させて反応させることにより、選択することができる。すなわち、被検抗体を加えた時に抗原との結合が阻害される抗体をスクリーニングすることにより、ＴＲＡＩＬＲ２またはＰＳＭＡへの結合について、前記で取得した抗体と競合する抗体を得ることができる。
（８）ＴＲＡＩＬＲ２またはＰＳＭＡに対するモノクローナル抗体のエピトープの同定
　本発明において、抗体が認識し結合するエピトープの同定は以下のようにして行うことができる。
　例えば、抗原の部分欠損体、種間で異なるアミノ酸残基を改変した変異体、または特定のドメインを改変した変異体を作製し、該欠損体または変異体に対する抗体の反応性が低下すれば、欠損部位またはアミノ酸改変部位が該抗体のエピトープであることが明らかになる。このような抗原の部分欠損体および変異体は、適当な宿主細胞、例えば大腸菌、酵母、植物細胞または哺乳動物細胞などを用いて、分泌タンパク質として取得してもよいし、宿主細胞の細胞膜上に発現させて抗原発現細胞として調製してもよい。膜型抗原の場合は、抗原の立体構造を保持したまま発現させるために、宿主細胞の膜上に発現させることが好ましい。また、抗原の１次構造または立体構造を模倣した合成ペプチドを作製し、抗体の反応性を確認することもできる。合成ペプチドは、公知のペプチド合成技術を用いて、その分子の様々な部分ペプチドを作製する方法等が挙げられる。
　例えば、ヒトおよびマウスのＴＲＡＩＬＲ２またはＰＳＭＡの細胞外領域について、各領域を構成するドメインを適宜組み合わせたキメラタンパク質を作製し、該タンパク質に対する抗体の反応性を確認することで、抗体のエピトープを同定することができる。その後、さらに細かく、その対応部分のオリゴペプチド、または該ペプチドの変異体等を、当業者に周知のオリゴペプチド合成技術を用いて種々合成し、該ペプチドに対する抗体の反応性を確認することでエピトープを特定することができる。多種類のオリゴペプチドを得るための簡便な方法として、市販のキット［例えば、ＳＰＯＴｓキット（ジェノシス・バイオテクノロジーズ社製）、マルチピン合成法を用いた一連のマルチピン・ペプチド合成キット（カイロン社製）等］を利用することもできる。
　ＴＲＡＩＬＲ２またはＰＳＭＡに結合する抗体が結合するエピトープと同じエピトープに結合する抗体は、上述のバインティングアッセイ系で得た抗体のエピトープを同定し、該エピトープの部分的な合成ペプチド、該エピトープの立体構造を模した合成ペプチド、または該エピトープの組換え体等を作製し、免疫することで取得することができる。
　例えば、エピトープが膜タンパク質であれば、全細胞外領域または一部の細胞外ドメインを、適当なタグ、例えば、ＦＬＡＧタグ、Ｈｉｓｔｉｄｉｎｅタグ、ＧＳＴタンパク質または抗体Ｆｃ領域などに連結した組換え融合タンパク質を作製し、該組換えタンパク質を免疫することで、より効率的に該エピトープ特異的な抗体を作製することができる。
２．遺伝子組換え抗体の作製
　遺伝子組換え抗体の作製例として、P. J. Delves., ANTIBODY PRODUCTION ESSENTIAL TECHNIQUES., 1997 WILEY、P. Shepherd and C. Dean. Monoclonal Antibodies., 2000 OXFORD UNIVERSITY PRESSおよびJ. W. Goding., Monoclonal Antibodies:principles and practice., 1993 ACADEMIC PRESSなどに概説されているが、以下にキメラ抗体、ヒト化抗体およびヒト抗体の作製方法を示す。また、遺伝子組換えマウス、ラット、ハムスターおよびラビット抗体についても、同様の方法で作製することができる。
（１）ハイブリドーマからのモノクローナル抗体のＶ領域をコードするｃＤＮＡの取得
　モノクローナル抗体のＶＨおよびＶＬをコードするｃＤＮＡの取得は、例えば以下のようにして行うことができる。
　まず、モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマよりｍＲＮＡを抽出し、ｃＤＮＡを合成する。次に、合成したｃＤＮＡをファージまたはプラスミドなどのベクターにクローニングしてｃＤＮＡライブラリーを作製する。該ライブラリーより、抗体のＣ領域部分またはＶ領域部分をコードするＤＮＡをプローブとして用いて、ＶＨまたはＶＬをコードするｃＤＮＡを有する組換えファージまたは組換えプラスミドをそれぞれ単離する。単離した組換えファージまたは組換えプラスミド内のＶＨまたはＶＬの全塩基配列を決定し、当該塩基配列よりＶＨまたはＶＬの全アミノ酸配列を推定する。
　ハイブリドーマの作製に用いる非ヒト動物としては、マウス、ラット、ハムスターまたはウサギなどを用いるが、ハイブリドーマを作製することが可能であれば、いかなる動物も用いることができる。
　ハイブリドーマからの全ＲＮＡの調製には、チオシアン酸グアニジン－トリフルオロ酢酸セシウム法［Methods in Enzymol., 154, 3 （1987）］、またはＲＮＡ　ｅａｓｙ　ｋｉｔ（キアゲン社製）などのキットなどを用いる。　
　全ＲＮＡからのｍＲＮＡの調製には、オリゴ（ｄＴ）固定化セルロースカラム法［Molecular Cloning, A Laboratory Manual, Second Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press（1989）］、またはＯｌｉｇｏ－ｄＴ３０＜Ｓｕｐｅｒ＞ｍＲＮＡ　Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ　Ｋｉｔ（タカラバイオ社製）などのキットなどを用いる。また、Ｆａｓｔ　Ｔｒａｃｋ　ｍＲＮＡ　Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ　Ｋｉｔ（インビトロジェン社製）またはＱｕｉｃｋＰｒｅｐ　ｍＲＮＡ　Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ　Ｋｉｔ（ファルマシア社製）などのキットを用いて、ｍＲＮＡを調製することもできる。
　ｃＤＮＡの合成およびｃＤＮＡライブラリーの作製には、公知の方法［Molecular Cloning, A Laboratory Manual, Second Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press（1989）、Current Protocols in Molecular Biology, Supplement 1, John Wiley & Sons（1987-1997）］またはＳｕｐｅｒＳｃｒｉｐｔ　Ｐｌａｓｍｉｄ　Ｓｙｓｔｅｍ　ｆｏｒ　ｃＤＮＡ　Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ　ａｎｄ　Ｐｌａｓｍｉｄ　Ｃｌｏｎｉｎｇ（インビトロジェン社製）若しくはＺＡＰ－ｃＤＮＡ　Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ　Ｋｉｔ（ストラタジーン社製）などのキットなどを用いる。
　ｃＤＮＡライブラリーの作製の際に、ハイブリドーマから抽出したｍＲＮＡを鋳型として合成したｃＤＮＡを組み込むベクターとしては、該ｃＤＮＡを組み込めるベクターであればいかなるものでも用いることができる。
　例えば、ＺＡＰ　Ｅｘｐｒｅｓｓ［Strategies, 5, 58（1992）］、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ　ＩＩＳＫ（＋）［Nucleic Acids Research, 17, 9494（1989）］、λＺＡＰＩＩ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ社製）、λｇｔ１０、λｇｔ１１［DNA Cloning: A Practical Approach, I, 49（1985）］、Ｌａｍｂｄａ　ＢｌｕｅＭｉｄ（クローンテック社製）、λＥｘＣｅｌｌ、ｐＴ７Ｔ３－１８Ｕ（ファルマシア社製）、ｐｃＤ２［Mol. Cell. Biol., 3, 280（1983）］またはｐＵＣ１８［Gene, 33, 103（1985）］などを用いる。
　ファージまたはプラスミドベクターにより構築されるｃＤＮＡライブラリーを導入する大腸菌には、該ｃＤＮＡライブラリーを導入、発現および維持できるものであればいかなるものでも用いることができる。例えば、ＸＬ１－Ｂｌｕｅ　ＭＲＦ’［Strategies, 5, 81（1992）］、Ｃ６００［Genetics, 39, 440（1954）］、Ｙ１０８８、Ｙ１０９０［Science, 222, 778（1983）］、ＮＭ５２２［J. Mol. Biol., 166, 1（1983）］、Ｋ８０２［J. Mol. Biol., 16, 118（1966）］、またはＪＭ１０５［Gene, 38, 275（1985）］などを用いる。
　ｃＤＮＡライブラリーからの非ヒト抗体のＶＨまたはＶＬをコードするｃＤＮＡクローンの選択には、アイソトープ若しくは蛍光標識したプローブを用いたコロニー・ハイブリダイゼーション法、またはプラーク・ハイブリダイゼーション法［Molecular Cloning, A Laboratory Manual, Second Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press（1989）］などを用いる。
　また、プライマーを調製し、ｍＲＮＡから合成したｃＤＮＡまたはｃＤＮＡライブラリーを鋳型として、Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ　Ｃｈａｉｎ　Ｒｅａｃｔｉｏｎ法［以下、ＰＣＲ法と表記する、Molecular Cloning, A Laboratory Manual, Second Edition , Cold Spring Harbor Laboratory Press（1989）、Current Protocols in Molecular Biology, Supplement 1, John Wiley & Sons（1987-1997）］を行うことにより、ＶＨまたはＶＬをコードするｃＤＮＡを調製することもできる。
　選択されたｃＤＮＡを、適当な制限酵素などで切断した後、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ　ＳＫ（－）（ストラタジーン社製）などのプラスミドにクローニングし、通常用いられる塩基配列解析方法などにより該ｃＤＮＡの塩基配列を決定する。例えば、ジデオキシ法［Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 74, 5463（1977）］などの反応を行った後、Ａ．Ｌ．Ｆ．ＤＮＡシークエンサー（ファルマシア社製）などの塩基配列自動分析装置などを用いて解析する。
　決定した全塩基配列からＶＨおよびＶＬの全アミノ酸配列をそれぞれ推定し、既知の抗体のＶＨおよびＶＬの全アミノ酸配列［Sequences of Proteins of Immunological Interest, US Dept. Health and Human Services（1991）］と比較することにより、取得したｃＤＮＡが、分泌シグナル配列を含めて抗体のＶＨおよびＶＬ各々の完全なアミノ酸配列をコードしているか否かを確認する。
　分泌シグナル配列を含む抗体のＶＨおよびＶＬ各々の完全なアミノ酸配列に関しては、既知の抗体のＶＨおよびＶＬの全アミノ酸配列［Sequences of Proteins of Immunological Interest, US Dept. Health and Human Services（1991）］と比較することにより、分泌シグナル配列の長さおよびＮ末端アミノ酸配列を推定することができ、さらにそれらが属するサブグループを同定することができる。
　また、ＶＨおよびＶＬの各ＣＤＲのアミノ酸配列は、既知の抗体のＶＨおよびＶＬのアミノ酸配列［Sequences of Proteins of Immunological Interest, US Dept. Health and Human Services（1991）］と比較することによって推定することができる。
　また、得られたＶＨおよびＶＬの完全なアミノ酸配列について、例えば、ＳＷＩＳＳ－ＰＲＯＴまたはＰＩＲ－Ｐｒｏｔｅｉｎなどの任意のデータベースを用いてＢＬＡＳＴ法［J. Mol. Biol., 215, 403（1990）］などによる相同性検索を行うことで、当該ＶＨおよびＶＬの完全なアミノ酸配列が新規なものであるか否かを確認することができる。
（２）遺伝子組換え抗体発現用ベクターの構築
　遺伝子組換え抗体発現用ベクターは、動物細胞用発現ベクターにヒト抗体のＣＨおよびＣＬの少なくとも一方をコードするＤＮＡをクローニングすることにより構築することができる。
　ヒト抗体のＣ領域としては、任意のヒト抗体のＣＨおよびＣＬを用いることができ、例えば、ヒト抗体のγ１サブクラスのＣＨおよびκクラスのＣＬなどを用いることができる。ヒト抗体のＣＨおよびＣＬをコードするＤＮＡとしてはｃＤＮＡを用いるが、エキソンとイントロンからなる染色体ＤＮＡを用いることもできる。
　動物細胞用発現ベクターとしては、ヒト抗体のＣ領域をコードする遺伝子を組み込んで発現できるものであれば、いかなるものでも用いることができ、例えば、ｐＡＧＥ１０７［Cytotechnol., 3, 133 （1990）］、ｐＡＧＥ１０３［J. Biochem., 101, 1307（1987）］、ｐＨＳＧ２７４［Gene, 27, 223 （1984）］、ｐＫＣＲ［Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 78, 1527 （1981）］、pSG1bd2-4［Cytotechnol., 4, 173 （1990）］、またはｐＳＥ１ＵＫ１Ｓｅｄ１－３［Cytotechnol., 13, 79 （1993）］、ＩＮＰＥＰ４（Ｂｉｏｇｅｎ－ＩＤＥＣ社製）、Ｎ５ＫＧ１ｖａｌ（米国特許第６，００１，３５８号明細書）、トランスポゾンベクター（国際公開第２０１０／１４３６９８号）などを用いることができる。
　動物細胞用発現ベクターのプロモーターとエンハンサーとしては、ＳＶ４０の初期プロモーター［J. Biochem., 101, 1307 （1987）］、モロニーマウス白血病ウイルスＬＴＲ［Biochem. Biophys. Res. Commun., 149, 960 (1987）］、ＣＭＶプロモーター（米国特許第５，１６８，０６２号明細書）または免疫グロブリンH鎖のプロモーター［Cell, 41, 479 （1985）］とエンハンサー［Cell, 33, 717（1983）］などを用いることができる。 
　遺伝子組換え抗体の発現には、ベクターの構築の容易さ、動物細胞への導入の容易さ、細胞内における抗体Ｈ鎖およびＬ鎖の発現量の均衡性などの観点から、抗体Ｈ鎖およびＬ鎖の両遺伝子を搭載したベクター（タンデム型ベクター）［J. Immunol. Methods, 167, 271 （1994）］を用いるが、抗体Ｈ鎖とＬ鎖の各遺伝子を別々に搭載した複数のベクター（セパレート型ベクター）を組み合わせて用いることもできる。
　タンデム型の遺伝子組換え抗体発現用ベクターとしては、ｐＫＡＮＴＥＸ９３（国際公開第９７／１０３５４号）、ｐＥＥ１８［Hybridoma, 17, 559（1998）］、Ｎ５ＫＧ１ｖａｌ（米国特許第６，００１，３５８号明細書）、Ｔｏｌ２トランスポゾンベクター（国際公開第２０１０／１４３６９８号）などを用いる。
（３）キメラ抗体発現ベクターの構築
　（２）で得られる遺伝子組換え抗体発現用ベクター内のヒト抗体のＣＨまたはＣＬをコードする遺伝子の各々の上流に、（１）で得られる非ヒト抗体のＶＨまたはＶＬをコードするｃＤＮＡを各々クローニングすることで、キメラ抗体発現ベクターを構築することができる。
　まず、非ヒト抗体のＶＨまたはＶＬをコードするｃＤＮＡの３’末端側と、ヒト抗体のＣＨまたはＣＬの５’末端側とを連結するために、連結部分の塩基配列が適切なアミノ酸をコードし、かつ適当な制限酵素認識配列になるように設計したＶＨおよびＶＬのｃＤＮＡを作製する。次に、作製したＶＨおよびＶＬのｃＤＮＡを、（２）で得られる遺伝子組換え抗体発現用ベクター内のヒト抗体のＣＨまたはＣＬをコードする遺伝子の各々の上流に、それらが適切な形で発現する様にそれぞれクローニングし、キメラ抗体発現ベクターを構築する。
　また、非ヒト抗体のＶＨまたはＶＬをコードするｃＤＮＡを、適当な制限酵素の認識配列を両端に有する合成ＤＮＡを用いてＰＣＲ法によりそれぞれ増幅し、（２）で得られる遺伝子組換え抗体発現用ベクターにクローニングすることで、キメラ抗体発現ベクターを構築することもできる。
（４）ヒト化抗体のＶ領域をコードするｃＤＮＡの作製
　ヒト化抗体のＶＨまたはＶＬをコードするｃＤＮＡは、以下のようにして作製することができる。まず、（１）で得られる非ヒト抗体のＶＨまたはＶＬのＣＤＲのアミノ酸配列を移植するヒト抗体のＶＨまたはＶＬのフレームワーク領域（以下、ＦＲと表記する）のアミノ酸配列をそれぞれ選択する。
　選択するＦＲのアミノ酸配列には、ヒト抗体由来のものであればいずれのものでも用いることができる。例えば、Ｐｒｏｔｅｉｎ　Ｄａｔａ　Ｂａｎｋなどのデータベースに登録されているヒト抗体のＦＲのアミノ酸配列、またはヒト抗体のＦＲの各サブグループの共通アミノ酸配列［Sequences of Proteins of Immunological Interest, US Dept. Health and Human Services（1991）］などを用いる。抗体の結合活性の低下を抑えるために、元の非ヒト抗体のＶＨまたはＶＬのＦＲのアミノ酸配列とできるだけ高い相同性（６０％以上）を有するヒトＦＲのアミノ酸配列を選択する。
　次に、選択したヒト抗体のＶＨまたはＶＬのＦＲのアミノ酸配列に、元の非ヒト抗体のＣＤＲのアミノ酸配列をそれぞれ移植し、ヒト化抗体のＶＨまたはＶＬのアミノ酸配列をそれぞれ設計する。設計したアミノ酸配列を、抗体遺伝子の塩基配列に見られるコドンの使用頻度［Sequences of Proteins of Immunological Interest, US Dept. Health and Human Services（1991）］を考慮してＤＮＡ配列に変換することで、ヒト化抗体のＶＨまたはＶＬのｃＤＮＡ配列をそれぞれ設計する。
　設計したｃＤＮＡ配列に基づき、１００～１５０塩基前後の長さからなる数本の合成ＤＮＡを合成し、それらを用いてＰＣＲ反応を行う。この場合、ＰＣＲ反応における反応効率および合成可能なＤＮＡ長の観点から、好ましくはＨ鎖およびＬ鎖に対し各々４～６本の合成ＤＮＡを設計する。また、可変領域全長の合成ＤＮＡを合成して用いることもできる。
　さらに、両端に位置する合成ＤＮＡの５’末端に適当な制限酵素の認識配列を導入することで、（２）で得られる遺伝子組換え抗体発現用ベクターに、容易にヒト化抗体のＶＨまたはＶＬをコードするｃＤＮＡをクローニングすることができる。ＰＣＲ反応後、増幅産物をｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ　ＳＫ（－）（ストラタジーン社製）などのプラスミドにそれぞれクローニングし、（１）に記載の方法と同様の方法により塩基配列を決定し、所望のヒト化抗体のＶＨまたはＶＬのアミノ酸配列をコードするＤＮＡ配列を有するプラスミドを取得する。
（５）ヒト化抗体のＶ領域のアミノ酸配列の改変
　ヒト化抗体は、非ヒト抗体のＶＨおよびＶＬのＣＤＲのみをヒト抗体のＶＨおよびＶＬのＦＲに移植しただけでは、その抗原結合活性は元の非ヒト抗体に比べて低下する［BIO/TECHNOLOGY, 9, 266（1991）］。そのため、ヒト抗体のＶＨおよびＶＬのＦＲのアミノ酸配列のうち、直接抗原との結合に関与しているアミノ酸残基、ＣＤＲのアミノ酸残基と相互作用するアミノ酸残基、および抗体の立体構造を維持し間接的に抗原との結合に関与しているアミノ酸残基を同定し、それらのアミノ酸残基を元の非ヒト抗体のアミノ酸残基に置換することにより、低下したヒト化抗体の抗原結合活性を上昇させることができる。　
　抗原結合活性に関わるＦＲのアミノ酸残基を同定するために、Ｘ線結晶解析［J. Mol. Biol., 112, 535（1977）］またはコンピューターモデリング［Protein Engineering, 7, 1501（1994）］などを用いることにより、抗体の立体構造の構築および解析を行うことができる。また、それぞれの抗体について数種の改変体を作製し、それぞれの抗原結合活性との相関を検討することを繰り返し、試行錯誤することで、必要な抗原結合活性を有する改変ヒト化抗体を取得できる。
　ヒト抗体のＶＨおよびＶＬのＦＲのアミノ酸残基は、改変用合成ＤＮＡを用いて（４）に記載のＰＣＲ反応を行うことにより、改変することができる。ＰＣＲ反応後の増幅産物について、（１）に記載の方法により、塩基配列を決定し、目的とする改変が施されたことを確認する。
（６）ヒト化抗体発現ベクターの構築
　（２）で得られる遺伝子組換え抗体発現用ベクターのヒト抗体のＣＨまたはＣＬをコードするそれぞれの遺伝子の上流に、構築したヒト化抗体のＶＨまたはＶＬをコードするｃＤＮＡをそれぞれクローニングし、ヒト化抗体発現ベクターを構築することができる。
　例えば、（４）および（５）で得られるヒト化抗体のＶＨまたはＶＬを構築する際に用いる合成ＤＮＡのうち、両端に位置する合成ＤＮＡの５’末端に適当な制限酵素の認識配列を導入することで、（２）で得られる遺伝子組換え抗体発現用ベクター内のヒト抗体のＣＨまたはＣＬをコードする各遺伝子の上流に、それらが適切な形で発現するようにそれぞれクローニングする。
（７）ヒト抗体発現ベクターの構築
　ヒト抗体を産生する動物を被免疫動物として用いて、モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを樹立した場合には、（１）において、ヒト抗体のＶＨおよびＶＬのアミノ酸配列およびｃＤＮＡ配列を得ることができる。そこで、（２）で得られる遺伝子組換え抗体発現用ベクターのヒト抗体のＣＨまたはＣＬをコードするそれぞれの遺伝子の上流に、（１）で得たヒト抗体のＶＨまたはＶＬをコードする遺伝子をそれぞれクローニングすることで、ヒト抗体発現ベクターを構築することができる。
（８）遺伝子組換え抗体の一過性発現
　（３）、（６）および（７）で得られる遺伝子組換え抗体発現ベクター、またはそれらを改変した発現ベクターを用いて遺伝子組換え抗体を一過性に発現させ、得られた多種類の遺伝子組換え抗体の抗原結合活性を効率的に評価することができる。
　発現ベクターを導入する宿主細胞には、遺伝子組換え抗体を発現できる宿主細胞であれば、いかなる細胞でも用いることができるが、例えばＣＯＳ－７細胞［American Type Culture Collection（ATCC）番号：CRL1651］を用いる。ＣＯＳ－７細胞への発現ベクターの導入には、ＤＥＡＥ－デキストラン法［Methods in Nucleic Acids Res., CRC press（1991）］、またはリポフェクション法［Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 84, 7413（1987）］などを用いる。
　発現ベクターの導入後、培養上清中の遺伝子組換え抗体の発現量および抗原結合活性を、酵素免疫抗体法［Monoclonal Antibodies-Principles and practice, Third edition, Academic Press（1996）、Antibodies - A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory（1988）、単クローン抗体実験マニュアル、講談社サイエンティフィック（１９８７）］などを用いて測定する。　
（９）遺伝子組換え抗体の安定的発現株の取得と遺伝子組換え抗体の調製
　（３）、（６）および（７）で得られた遺伝子組換え抗体発現ベクターを適当な宿主細胞に導入することにより遺伝子組換え抗体を安定的に発現する形質転換株を得ることができる。
　宿主細胞への発現ベクターの導入としては、例えば、エレクトロポレーション法［日本国特開平２－２５７８９１号公報、Cytotechnology, 3, 133（1990）］、カルシウムイオン方法、エレクトロポレーション法、スフェロプラスト法、酢酸リチウム法、リン酸カルシウム法、リポフェクション法などが挙げられる。また、後述の動物に遺伝子を導入する方法としては、例えば、マイクロインジェクション法、ES細胞にエレクトロポレーションやリポフェクション法を用いて遺伝子を導入する方法、および核移植法などが挙げられる。
　遺伝子組換え抗体発現ベクターを導入する宿主細胞としては、遺伝子組換え抗体を発現させることができる宿主細胞であれば、いかなる細胞でも用いることができる。例えば、マウスＳＰ２／０－Ａｇ１４細胞（ＡＴＣＣ　ＣＲＬ１５８１）、マウスＰ３Ｘ６３－Ａｇ８．６５３細胞（ＡＴＣＣ　ＣＲＬ１５８０）、チャイニーズハムスターＣＨＯ－Ｋ１細胞（ＡＴＣＣ　ＣＣＬ－６１）、ＤＵＫＸＢ１１（ＡＴＣＣ　ＣＣＬ－９０９６）、Ｐｒｏ－５細胞（ＡＴＣＣ　ＣＣＬ－１７８１）、ＣＨＯ－Ｓ細胞（Ｌｉｆｅ　Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ、Ｃａｔ　Ｎｏ．１１６１９）、ジヒドロ葉酸還元酵素遺伝子（ｄｈｆｒ）が欠損したＣＨＯ細胞（ＣＨＯ／ＤＧ４４細胞）［Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 77, 4216（1980）］、レクチン耐性を獲得したＬｅｃ１３細胞［Somatic Cell and Molecular genetics, 12, 55（1986）］、α１，６－フコース転移酵素遺伝子が欠損したＣＨＯ細胞（国際公開第２００５／０３５５８６号、国際公開第０２／３１１４０号）、ラットＹＢ２／３ＨＬ．Ｐ２．Ｇ１１．１６Ａｇ．２０細胞（ＡＴＣＣ番号：ＣＲＬ１６６２）などを用いる。
　また、細胞内糖ヌクレオチドＧＤＰ－フコースの合成に関与する酵素などのタンパク質、Ｎ－グリコシド結合複合型糖鎖の還元末端のＮ－アセチルグルコサミンの６位にフコースの１位がα結合する糖鎖修飾に関与する酵素などのタンパク質、または細胞内糖ヌクレオチドＧＤＰ－フコースのゴルジ体への輸送に関与するタンパク質などの活性が低下または欠失した宿主細胞、例えばα１，６－フコース転移酵素遺伝子が欠損したＣＨＯ細胞（国際公開第２００５／０３５５８６号、国際公開第０２／３１１４０号）などを用いることもできる。
　発現ベクターの導入後、遺伝子組換え抗体を安定的に発現する形質転換株を、Ｇ４１８硫酸塩（以下、Ｇ４１８と表記する）などの薬剤を含む動物細胞培養用培地で培養することにより選択する（日本国特開平２－２５７８９１号公報）。
　動物細胞培養用培地には、ＲＰＭＩ１６４０培地（インビトロジェン社製）、ＧＩＴ培地（日本製薬社製）、ＥＸ－ＣＥＬＬ３０１培地（ジェイアールエイチ社製）、ＥＸ－ＣＥＬＬ３０２培地（ジェイアールエイチ社製）、ＥＸ－ＣＥＬＬ３２５培地（ジェイアールエイチ社製）、ＩＭＤＭ培地（インビトロジェン社製）若しくはＨｙｂｒｉｄｏｍａ－ＳＦＭ培地（インビトロジェン社製）、またはこれらの培地にＦＢＳなどの各種添加物を添加した培地などを用いる。得られた形質転換株を培地中で培養することで、培養上清中に遺伝子組換え抗体を発現、蓄積させる。培養上清中の遺伝子組換え抗体の発現量および抗原結合活性はＥＬＩＳＡ法などにより測定することができる。また、ＤＨＦＲ増幅系（日本国特開平２－２５７８９１号公報）などを利用して、形質転換株の産生する遺伝子組換え抗体の発現量を上昇させることができる。
　遺伝子組換え抗体は、形質転換株の培養上清よりプロテインＡカラムを用いて精製することができる［Monoclonal Antibodies - Principles and practice, Third edition, Academic Press（1996）、Antibodies - A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory（1988）］。また、ゲル濾過、イオン交換クロマトグラフィーおよび限外濾過など、タンパク質の精製で用いられる方法を組み合わせて精製することもできる。
　精製した遺伝子組換え抗体のＨ鎖、Ｌ鎖または抗体分子全体の分子量は、ポリアクリルアミドゲル電気泳動法［Nature, 227, 680（1970）］、またはウェスタンブロッティング法［Monoclonal Antibodies - Principles and practice, Third edition, Academic Press（1996）、Antibodies - A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory（1988）］など用いて測定することができる。 
３.バイスぺシフィック抗体の作製
　本発明のバイスぺシフィック抗体は、例えば、まず、異なるエピトープに結合する複数のモノクローナル抗体を上記１．に記載の方法を用いて取得し、次に、各抗体のＶＨおよびＶＬのｃＤＮＡ配列を上記２．に記載の方法を用いて決定し、各抗体の抗原結合部位を連結した抗体を設計することによって作製することができる。
　具体的には、各抗体の抗原結合部位とリンカーとを適宜組み合わせたＤＮＡを合成し、上記２．（２）に記載の遺伝子組換え抗体発現ベクターに組み込み、当該バイスペシフィック抗体を発現させることで、作製することができる。より具体的には、リンカーを介して各抗体のＶＨを連結したポリペプチドをコードするＤＮＡを合成すると共に、各抗体のＶＬをコードするＤＮＡを合成し、これらのＤＮＡを上記２．（２）に記載の遺伝子組換え抗体発現ベクターに組み込み、当該バイスペシフィック抗体を発現させることで、作製することができる。
　抗原結合部位は、上記１．に記載のハイブリドーマを用いた方法の他、Ｐｈａｇｅ　Ｄｉｓｐｌａｙ法、Ｙｅａｓｔ　ｄｉｓｐｌａｙ法などの技術により単離し、取得することが出来る［Emmanuelle Laffy et. al., Human Antibodies 14, 33-55, （2005）］。
　リンカーは、ある抗原結合ドメインと別の抗原結合ドメインとの間を連結するペプチドであり、通常、１０アミノ酸残基以上のポリペプチドからなる。本発明において、リンカーの一例として、抗体のＣＨ１、ヒンジ、ＣＨ２およびＣＨ３からなるアミノ酸配列の全部または一部の断片を適宜組み合わせて用いることができる。また、それらのアミノ酸配列を部分的に欠損、または順番を入れ替えて使用することもできる。
　リンカーに使用する抗体の動物種は特に限定されないが、ヒトであることが好ましい。また、リンカーに使用する抗体のサブクラスは特に限定されないが、ＩｇＭまたはＩｇＧ４であることが好ましく、ＩｇＧ４であることがより好ましい。
　本発明において、具体的なリンカーの例としては、配列番号１１で表わされるＩｇＧ４のＣＨ１のＮ末端から１４番目までの１４アミノ酸残基からなるリンカー、配列番号１２で表わされるＩｇＭのＣＨ１のＮ末端から１４番目までのアミノ酸残基からなるリンカー、および配列番号９３で表わされるＩｇＧ４のＣＨ１からなるリンカーなどが挙げられ、配列番号９３で表わされるＩｇＧ４のＣＨ１からなるリンカーであることが好ましい。
　また、複数のＶＨと単一のＶＬから成るバイスぺシフィック抗体を作製する場合には、バイスぺシフィック抗体に含まれる各抗原結合部位が各々の特異的抗原に反応するように、ファージディスプレイ法等を用いたスクリーニングを行い、単一のＶＬに最も適した各々のＶＨを選択する。
　具体的には、まず、上記１．に記載の方法を用いて、第１の抗原で動物を免疫してその脾臓からハイブリドーマを作製し、第１の抗原結合部位をコードするＤＮＡ配列をクローニングする。次に、第２の抗原で動物を免疫して、その脾臓からｃＤＮＡライブラリーを調製し、該ライブラリーからＰＣＲによりＶＨのアミノ酸配列をコードするＤＮＡを取得する。
　続いて、第２の抗原の免疫で得られたＶＨと第１の抗原結合部位のＶＬとを連結したｓｃＦｖを発現するファージライブラリーを作製し、該ファージライブラリーを用いたパニングにより、第２の抗原に特異的に結合するｓｃＦｖを提示したファージを選択する。選択したファージから、第２の抗原結合部位のＶＨのアミノ酸配列をコードするＤＮＡ配列をクローニングする。
　さらに、第１の抗原結合部位のＶＨと第２の抗原結合部位のＶＨとを上述のリンカーを介して連結したポリペプチドのアミノ酸配列をコードするＤＮＡ配列を設計し、該ＤＮＡ配列と単一のＶＬのアミノ酸配列をコードするＤＮＡ配列とを、例えば上記２．（２）に記載の遺伝子組換え抗体発現ベクターに挿入することにより、本発明のバイスペシフィック抗体の発現ベクターを構築することができる。
４．本発明のバイスペシフィック抗体またはその抗体断片の活性評価
　精製した抗体またはその抗体断片の活性評価は、以下のように行うことができる。
　ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方を発現した細胞株に対する本発明のバイスペシフィック抗体の結合活性は、前述の１．（７）記載のバインディングアッセイ系を用いて測定することができる。
　ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方を発現した細胞に対するＣＤＣ活性、またはＡＤＣＣ活性は公知の測定方法［Cancer Immunol. Immunother., 36, 373（1993）］により測定することができる。
　本発明のバイスペシフィック抗体の細胞死誘導活性は次の方法で測定することができる。例えば、細胞を９６穴プレートに播種し、抗体を添加して一定期間培養した後に、ＷＳＴ－８試薬（Ｄｏｊｉｎｄｏ社製）を反応させ、プレートリーダーにより４５０ｎｍの吸光度を測定することにより、細胞の生存率を測定する。
５．本発明のバイスぺシフィック抗体またはその抗体断片を用いた疾患の治療方法
　本発明のバイスぺシフィック抗体またはその抗体断片は、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡ発現細胞が関与する疾患の治療に用いることができる。ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡが関与する疾患としては、例えば、悪性腫瘍およびがんなどが挙げられる。
　悪性腫瘍およびがんとしては、例えば、大腸がん、結腸直腸がん、肺がん、乳がん、グリオーマ、悪性黒色腫（メラノーマ）、甲状腺がん、腎細胞がん、白血病、リンパ腫、Ｔ細胞リンパ腫、胃がん、膵臓がん、子宮頚がん、子宮内膜がん、卵巣がん、食道がん、肝臓がん、頭頚部扁平上皮がん、皮膚がん、尿路がん、膀胱がん、前立腺がん、絨毛がん、咽頭がん、喉頭がん、胸膜腫、男性胚腫、子宮内膜過形成、子宮内膜症、胚芽腫、線維肉腫、カポジ肉腫、血管腫、海綿状血管腫、血管芽腫、網膜芽腫、星状細胞腫、神経線維腫、稀突起謬腫、髄芽腫、神経芽腫、神経膠腫、横紋筋肉腫、膠芽腫、骨原性肉腫、平滑筋肉腫、甲状肉腫およびウィルムス腫瘍などが挙げられる。
　本発明のバイスぺシフィック抗体またはその抗体断片、またはこれらの誘導体を含有する治療薬は、有効成分としての該抗体若しくは該抗体断片、またはこれらの誘導体のみを含むものであってもよいが、通常は薬理学的に許容される１以上の担体と一緒に混合し、製剤学の技術分野において公知の方法により製造した医薬製剤として提供される。
　投与経路としては、例えば、経口投与、または口腔内、気道内、直腸内、皮下、筋肉内若しくは静脈内などの非経口投与が挙げられる。投与形態としては、例えば、噴霧剤、カプセル剤、錠剤、散剤、顆粒剤、シロップ剤、乳剤、座剤、注射剤、軟膏またはテープ剤などが挙げられる。各種製剤は、通常用いられている賦形剤、増量剤、結合剤、浸潤剤、崩壊剤、表面活性剤、滑沢剤、分散剤、緩衝剤、保存剤、溶解補助剤、防腐剤、着色料、香味剤、および安定化剤などを用いて常法により製造することができる。
　賦形剤としては、例えば、乳糖、果糖、ブドウ糖、コーンスターチ、ソルビット、結晶セルロース、滅菌水、エタノール、グリセロール、生理食塩水および緩衝液などが挙げられる。崩壊剤としては、例えば、澱粉、アルギン酸ナトリウム、ゼラチン、炭酸カルシウム、クエン酸カルシウム、デキストリン、炭酸マグネシウムおよび合成ケイ酸マグネシウムなどが挙げられる。
　結合剤としては、例えば、メチルセルロースまたはその塩、エチルセルロース、アラビアゴム、ゼラチン、ヒドロキシプロピルセルロースおよびポリビニルピロリドンなどが挙げられる。滑沢剤としては、例えば、タルク、ステアリン酸マグネシウム、ポリエチレングリコールおよび硬化植物油などが挙げられる。
　安定化剤としては、例えば、アルギニン、ヒスチジン、リジン、メチオニンなどのアミノ酸、ヒト血清アルブミン、ゼラチン、デキストラン４０、メチルセルロース、亜硫酸ナトリウム、メタ亜硫酸ナトリウムなどが挙げられる。
　その他の添加剤としては、例えば、シロップ、ワセリン、グリセリン、エタノール、プロピレングリコール、クエン酸、塩化ナトリウム、亜硝酸ソーダおよびリン酸ナトリウムなどが挙げられる。
　経口投与に適当な製剤としては、例えば、乳剤、シロップ剤、カプセル剤、錠剤、散剤または顆粒剤などが挙げられる。
　乳剤またはシロップ剤のような液体調製物は、水、ショ糖、ソルビトール若しくは果糖などの糖類、ポリエチレングリコール若しくはプロピレングリコールなどのグリコール類、ごま油、オリーブ油若しくは大豆油などの油類、ｐ－ヒドロキシ安息香酸エステル類などの防腐剤、またはストロベリーフレーバー若しくはペパーミントなどのフレーバー類などを添加剤として用いて製造される。　
　カプセル剤、錠剤、散剤または顆粒剤などは、乳糖、ブドウ糖、ショ糖若しくはマンニトールなどの賦形剤、デンプン若しくはアルギン酸ナトリウムなどの崩壊剤、ステアリン酸マグネシウム若しくはタルクなどの滑沢剤、ポリビニルアルコール、ヒドロキシプロピルセルロース若しくはゼラチンなどの結合剤、脂肪酸エステルなどの界面活性剤、またはグリセリンなどの可塑剤などを添加剤として用いて製造される。
　非経口投与に適当な製剤としては、例えば、注射剤、座剤または噴霧剤などが挙げられる。注射剤は、塩溶液、ブドウ糖溶液、またはその両者の混合物からなる担体などを用いて製造される。
　座剤はカカオ脂、水素化脂肪またはカルボン酸などの担体を用いて製造される。噴霧剤は、受容者の口腔および気道粘膜を刺激せず、かつ本発明のモノクローナル抗体またはその抗体断片を微細な粒子として分散させ、吸収を容易にさせる担体などを用いて製造される。担体としては、例えば、乳糖またはグリセリンなどが挙げられる。また、エアロゾルまたはドライパウダーとして製造することもできる。さらに、上記非経口剤においても、経口投与に適当な製剤で添加剤として例示した成分を添加することもできる。
　本発明のバイスぺシフィック抗体の有効量と適切な希釈剤および薬理学的に使用し得るキャリアとの組合せとして投与される有効量は、１回につき体重１ｋｇあたり０．０００１ｍｇ～１００ｍｇであり、２日から８週間間隔で投与される。
６．本発明のバイスぺシフィック抗体またはその抗体断片を用いた疾患の診断方法
　本発明のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片を用いて、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方が発現した細胞を検出または測定することにより、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡ発現細胞が関連する疾患を診断することができる。
　ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡ発現細胞が関連する疾患である悪性腫瘍またはがんの診断は、例えば、以下のようにＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方を検出または測定して行うことができる。
　まず、複数の健常者の生体から採取した生体試料について、本発明のバイスぺシフィック抗体若しくは該抗体断片、またはこれらの誘導体を用い、下記の免疫学的手法を用いて、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方の検出または測定を行い、健常者の生体試料中のＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方の存在量を調べる。
　次に、被験者の生体試料中についても同様にＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方の存在量を調べ、その存在量を健常者の存在量と比較する。被験者のＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方の存在量が健常者と比較して増加している場合には、該被験者はがんであると診断される。その他のＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡ発現細胞が関与する疾患の診断についても、同様の方法で診断できる。
　免疫学的手法とは、標識を施した抗原または抗体を用いて、抗体量または抗原量を検出または測定する方法である。例えば、放射性物質標識免疫抗体法、酵素免疫測定法、蛍光免疫測定法、発光免疫測定法、ウェスタンブロット法または物理化学的手法などが挙げられる。
　放射性物質標識免疫抗体法としては、例えば、抗原または抗原を発現した細胞などに、本発明のバイスペシフィック抗体または該抗体断片を反応させ、さらに放射線標識を施した抗イムノグロブリン抗体または結合断片を反応させた後、シンチレーションカウンターなどで測定する方法が挙げられる。
　酵素免疫測定法としては、例えば、抗原または抗原を発現した細胞などに、本発明のバイスペシフィック抗体または該抗体断片を反応させ、さらに標識を施した抗イムノグロブリン抗体または結合断片を反応させた後、発色色素を吸光光度計で測定する方法が挙げられる。例えば、サンドイッチＥＬＩＳＡ法などが挙げられる。
　酵素免疫測定法で用いる標識体としては、公知の酵素標識［酵素免疫測定法、医学書院（１９８７）］を用いることができる。例えば、アルカリフォスファターゼ標識、ペルオキシダーゼ標識、ルシフェラーゼ標識、またはビオチン標識などを用いる。
　サンドイッチＥＬＩＳＡ法は、固相に抗体を結合させた後、検出または測定対象である抗原をトラップさせ、トラップされた抗原に第２の抗体を反応させる方法である。該ＥＬＩＳＡ法では、検出または測定したい抗原に結合する抗体または抗体断片であって、抗原結合部位の異なる２種類の抗体を準備し、そのうち、第１の抗体または抗体断片をあらかじめプレート（例えば、９６穴プレート）に吸着させ、次に第２の抗体または抗体断片をＦＩＴＣなどの蛍光物質、ペルオキシダーゼなどの酵素、またはビオチンなどで標識しておく。上記の抗体が吸着したプレートに、生体内から分離された細胞若しくはその破砕液、組織若しくはその破砕液、細胞培養上清、血清、胸水、腹水、または眼液などを反応させた後、標識した抗体または抗体断片を反応させ、標識物質に応じた検出反応を行う。濃度既知の抗原を段階的に希釈して作製した検量線より、被験サンプル中の抗原濃度を算出する。
　サンドイッチＥＬＩＳＡ法に用いる抗体としては、ポリクローナル抗体またはモノクローナル抗体のいずれを用いてもよく、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、またはＦ（ａｂ）２などの抗体断片を用いてもよい。サンドイッチＥＬＩＳＡ法で用いる２種類の抗体の組み合わせとしては、異なるエピトープに結合するモノクローナル抗体または該抗体断片の組み合わせでもよいし、ポリクローナル抗体とモノクローナル抗体またはその抗体断片との組み合わせでもよい。
　蛍光免疫測定法としては、例えば、文献［Monoclonal Antibodies-Principles and practice, Third edition,Academic Press（1996）、単クローン抗体実験マニュアル、講談社サイエンティフィック（１９８７）］などに記載された方法で測定する。蛍光免疫測定法で用いる標識体としては、公知の蛍光標識［蛍光抗体法、ソフトサイエンス社（１９８３）］を用いることができる。例えば、ＦＩＴＣまたはＲＩＴＣなどを用いる。
　発光免疫測定法としては、例えば、文献［生物発光と化学発光　臨床検査４２、廣川書店（１９９８）］などに記載された方法で測定する。発光免疫測定法で用いる標識体としては、公知の発光体標識が挙げられ、例えば、アクリジニウムエステルまたはロフィンなどを用いる。
　ウェスタンブロット法としては、抗原または抗原を発現した細胞などをＳＤＳ（ドデシル硫酸ナトリウム）－ＰＡＧＥ［Antibodies - A Laboratory Manual Cold Spring Harbor Laboratory（1988）］で分画した後、該ゲルをポリフッ化ビニリデン（ＰＶＤＦ）膜またはニトロセルロース膜にブロッティングし、該膜に抗原に結合する抗体または抗体断片を反応させ、さらにＦＩＴＣなどの蛍光物質、ペルオキシダーゼなどの酵素標識、またはビオチン標識などを施した抗ＩｇＧ抗体またはその抗体断片を反応させた後、該標識を可視化することによって測定する。一例を以下に示す。
　まず、所望のアミノ酸配列を有するポリペプチドを発現している細胞や組織を溶解し、還元条件下でレーンあたりのタンパク量として０．１～３０μｇをＳＤＳ－ＰＡＧＥ法により泳動する。次に、泳動されたタンパク質をＰＶＤＦ膜にトランスファーし１～１０％ＢＳＡを含むＰＢＳ（以下、ＢＳＡ－ＰＢＳと表記する）に室温で３０分間反応させブロッキング操作を行う。ここで本発明のバイスペシフィック抗体を反応させ、０．０５～０．１％のＴｗｅｅｎ－２０を含むＰＢＳ（Ｔｗｅｅｎ－ＰＢＳ）で洗浄し、ペルオキシダーゼ標識したヤギ抗マウスＩｇＧを室温で２時間反応させる。Ｔｗｅｅｎ－ＰＢＳで洗浄し、ＥＣＬ　Ｗｅｓｔｅｒｎ　Ｂｌｏｔｔｉｎｇ　Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ　Ｒｅａｇｅｎｔｓ（アマシャム社製）などを用いて該抗体が結合したバンドを検出することにより、抗原を検出する。ウェスタンブロッティングでの検出に用いられる抗体としては、天然型の立体構造を保持していないポリペプチドに結合できる抗体が用いられる。
　物理化学的手法としては、例えば、抗原であるＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方と本発明のバイスぺシフィック抗体またはその抗体断片とを結合させることにより、凝集体を形成させて、該凝集体を検出する。この他に物理化学的手法として、毛細管法、一次元免疫拡散法、免疫比濁法またはラテックス免疫比濁法［臨床検査法提要、金原出版（１９９８）］などを用いることもできる。
　ラテックス免疫比濁法では、抗体または抗原を感作させた粒径０．１～１μｍ程度のポリスチレンラテックスなどの担体を用い、対応する抗原または抗体により抗原抗体反応を起こさせると、反応液中の散乱光は増加し、透過光は減少する。この変化を吸光度または積分球濁度として検出することにより、被験サンプル中の抗原濃度などを測定する。
　一方、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方が発現している細胞の検出または測定には、公知の免疫学的検出法を用いることができるが、好ましくは免疫沈降法、免疫細胞染色法、免疫組織染色法または蛍光抗体染色法などを用いる。
　免疫沈降法としては、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方を発現した細胞などを本発明のバイスペシフィック抗体またはその抗体断片と反応させた後、プロテインＧセファロースなどのイムノグロブリンに特異的な結合能を有する担体を加えて、抗原抗体複合体を沈降させる。
　または、以下のような方法によっても行なうことができる。まず、ＥＬＩＳＡ用９６穴プレートに本発明のバイスぺシフィック抗体またはその抗体断片を固相化した後、ＢＳＡ－ＰＢＳによりブロッキングする。次に、ＢＳＡ－ＰＢＳを捨てＰＢＳでよく洗浄した後、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方を発現している細胞や組織の溶解液を反応させる。よく洗浄した後のプレートより、免疫沈降物をＳＤＳ－ＰＡＧＥ用サンプルバッファーで抽出し、上記のウェスタンブロッティングにより検出する。
　免疫細胞染色法または免疫組織染色法とは、抗原を発現した細胞または組織などを、場合によっては抗体の透過性を良くするために界面活性剤やメタノールなどで処理した後、本発明のバイスぺシフィック抗体と反応させ、さらにＦＩＴＣなどの蛍光標識、ペルオキシダーゼなどの酵素標識またはビオチン標識などを施した抗イムノグロブリン抗体またはその結合断片と反応させた後、該標識を可視化し、顕微鏡にて顕鏡する方法である。また、蛍光標識の抗体と細胞を反応させ、フロ―サイトメーターにて解析する蛍光抗体染色法［Monoclonal Antibodies - Principles and practice, Third edition,Academic Press (1996)、単クローン抗体実験マニュアル、講談社サイエンティフィック（１９８７）］により検出を行うことができる。特に、本発明のバイスぺシフィック抗体またはその抗体断片は、蛍光抗体染色法により、細胞膜上に発現しているＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方を検出することができる。
　また、蛍光抗体染色法のうち、ＦＭＡＴ８１００ＨＴＳシステム（アプライドバイオシステム社製）などを用いた場合には、形成された抗体－抗原複合体と、抗体－抗原複合体の形成に関与していない遊離の抗体または抗原とを分離することなく、抗原量または抗体量を測定することができる。
　以下、本発明を実施例により具体的に説明するが、本発明は下記実施例に限定されるものではない。
［実施例１］抗ｈＴＲＡＩＬＲ２アゴニストモノクローナル抗体ＫＭＤＡ２抗体の発現プラスミドベクターの構築
　抗ヒトＴＲＡＩＬＲ２（ｈＴＲＡＩＬＲ２）抗体の陽性コントロール抗体として、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２アゴニストモノクローナル抗体ＫＭＤＡ２抗体を、国際公開第２００２／０９４８８０号に記載の０３０４クローンの重鎖可変領域（ＶＨ）、軽鎖可変領域（ＶＬ）のアミノ酸配列をもとに作製した。
　ＫＭＤＡ２抗体のＶＨの全塩基配列を配列番号１に、該配列から推定されたシグナル配列を含んだＶＨの全アミノ酸配列を配列番号７に、配列番号７に示したアミノ酸配列からシグナル配列を除いたアミノ酸配列を配列番号１１４にそれぞれ示す。また、ＫＭＤＡ２抗体のＶＬの全塩基配列を配列番号２、該配列から推定されたシグナル配列を含んだＶＬの全アミノ酸配列を配列番号８に、配列番号８に示したアミノ酸配列からシグナル配列を除いたアミノ酸配列を配列番号１１５にそれぞれ示す。ＫＭＤＡ２抗体の発現プラスミドベクターを、以下に記載する方法で構築した。
　ＫＭＤＡ２抗体のＬ鎖ｃＤＮＡを鋳型とし、ＶＬの末端に制限酵素認識部位を付加するようにデザインした配列番号３および配列番号４で表されるプライマーを用いて、該Ｌ鎖のリーダー配列および可変領域をＰＣＲで増幅した。該ＰＣＲ断片をエタノール沈殿により回収した後、制限酵素ＢｇｌＩＩおよびＢｓｉＷＩで消化して約４００ｂｐのＤＮＡ断片を得た。
　一方、プラスミドベクターＮ５ＫＧ４ＰＥ（国際公開第２００２／０８８１８６号に記載）を制限酵素ＢｇｌＩＩおよびＢｓｉＷＩで消化した後、ａｌｋａｌｉｎｅ　ｐｈｏｓｐｈａｔａｓｅ（Ｅ．　ｃｏｌｉ　Ｃ７５）（宝酒造社製）にて脱リン酸化処理し、約９ｋｂ弱のＤＮＡ断片を得た。これら２つのＤＮＡ断片をＴ４　ＤＮＡ　ｌｉｇａｓｅにより連結し、プラスミドＮ５ＫＧ４ＰＥ－ＫＭＤＡ２Ｌを得た。
　次に、Ｎ５ＫＧ４ＰＥ－ＫＭＤＡ２Ｌを制限酵素ＮｈｅＩおよびＳａｌＩで消化して脱リン酸化を行い、約９．３ｋｂのＤＮＡ断片を得た。一方、ＫＭＤＡ２抗体のＨ鎖ｃＤＮＡを鋳型として、配列番号５および配列番号６で表されるプライマーを用いて、ＫＭＤＡ２のＨ鎖のリーダー配列および可変領域をＰＣＲで増幅した。該ＰＣＲ断片を制限酵素ＮｈｅＩおよびＳａｌＩで消化し、約４５０ｂｐのＤＮＡ断片を得た。これら２つのＤＮＡ断片を連結し、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２アゴニストモノクローナル抗体ＫＭＤＡ２抗体の発現プラスミドベクターＮ５ＫＧ４ＰＥ＿ＫＭＤＡ２を作製した。
　上記の方法で増幅したＨ鎖ＰＣＲ断片は、Ｈ鎖の５’非翻訳領域、シグナル配列、可変領域（ＶＨ）および定常領域の一部より成る。同様に、Ｌ鎖のＰＣＲ増幅断片は、Ｌ鎖の５’非翻訳領域、リーダー配列、可変領域（ＶＬ）および定常領域の一部より成る。リーダー配列とは抗体の分泌シグナル配列であり、成熟抗体タンパク質からは切り離されるアミノ酸配列である。
［実施例２］抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体Ｅ１１抗体の発現プラスミドベクターの構築
　後述するｈＴＲＡＩＬＲ２とｈＰＳＭＡに結合するバイスぺシフィック抗体の作製に使用するために、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体Ｅ１１抗体を作製した。Ｅ１１抗体は、国際公開第２００２／０９４８８０号に記載されているＥ－１１－１３クローンのＶＨおよびＶＬのアミノ酸配列をもとに作製した。Ｅ１１抗体の配列情報を表１に示す。
　表１には、抗体のＶＨまたはＶＬのアミノ酸配列をコードする全塩基配列を、ＶＨまたはＶＬ（シグナル配列を含む）をコードする塩基配列、当該塩基配列から推定されるアミノ酸配列を、ＶＨまたはＶＬ（シグナル配列を含む）のアミノ酸配列、および当該アミノ酸配列からシグナル配列を除いたアミノ酸配列を、ＶＨまたはＶＬ（シグナル配列を除く）のアミノ酸配列と記載する。
　また抗体の重鎖または軽鎖のＣＤＲ１～３のアミノ酸配列を、それぞれＨＣＤＲ１～３またはＬＣＤＲ１～３のアミノ酸配列と記載する。Ｅ１１抗体のＶＨおよびＶＬのアミノ酸配列をコードする塩基配列を、プラスミドベクターＮ５ＫＧ１（米国特許第６，００１，３５８号明細書に記載）、またはＮ５ＫＧ４ＰＥ［Ｒ４０９Ｋ］（国際公開第２００２／０８８１８６号に記載）に挿入し、ヒトＩｇＧ１型の抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体であるＥ１１抗体の発現プラスミドベクターＮ５ＫＧ１＿Ｅ１１および変異ヒトＩｇＧ４（定常領域にＳ２２８Ｐ、Ｌ２３５ＥおよびＲ４０９Ｋのアミノ酸改変を含むヒトＩｇＧ４）型の抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体であるＥ１１抗体の発現プラスミドベクターＮ５ＫＧ４ＰＥ［Ｒ４０９Ｋ］＿Ｅ１１を得た。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
［実施例３］抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体の取得
（１）抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体Ｅ１１抗体と同じＶＬのアミノ酸配列を有する抗ｈＰＳＭＡ　モノクローナル抗体の取得および該抗体の発現プラスミドベクターの作製
　以下に記載する方法で、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体Ｅ１１抗体と同じＶＬのアミノ酸配列を有する抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体を取得した。
　ヒト抗体産生マウス［Ishida＆Lonberg, IBC's 11th Antibody Engineering, Abstract 2000； Ishida, I. et al., Cloning & Stem Cells 4, 85-96 (2002)および石田　功（２００２）実験医学２０、６、８４６－８５１］に、免疫原として、後述する実施例５のＦＬＡＧ－ＰＳＭＡとＳｉｇｍａ　Ａｄｊｕｖａｎｔ　Ｓｙｓｔｅｍ（Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ社製）との混合物を、腹腔内投与して免疫を行った。
　免疫されたマウスから脾臓を外科的に摘出し、脾臓をセルストレイナー（ファルコン社製）上に乗せてシリコン棒で軽く潰しながら細胞をチューブへ移し、遠心分離して細胞を沈殿させた後、赤血球除去試薬と氷中で３分間反応させ、更に遠心分離を行った。
　得られた脾臓細胞からＩＳＯＧＥＮ（ニッポンジーン社製）を用いてＲＮＡを抽出し、ＳＭＡＲＴｅｒ　ＲＡＣＥ　ｃＤＮＡ増幅キット（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社製）にてｃＤＮＡを増幅し、さらにＰＣＲにてＶＨ遺伝子断片を増幅させた。ＶＨ遺伝子断片と表１に記載するＥ１１のＶＬ遺伝子をファージミドｐＣＡＮＴＡＢ　５Ｅ（Ａｍｅｒｓｈａｍ　Ｐｈａｒｍａｃｉａ社製）にそれぞれ挿入し、大腸菌ＴＧ１（Ｌｕｃｉｇｅｎ社製）を形質転換してプラスミドを得た。得られたプラスミドをＭ１３ＫＯ７　Ｈｅｌｐｅｒ　Ｐｈａｇｅ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）に感染させることで、ＶＨ遺伝子がライブラリー化されたヒト抗体Ｍ１３ファージライブラリーを得た。
　このヒト抗体Ｍ１３ファージライブラリーおよび下記のファージディスプレイ法を用いて、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体Ｅ１１抗体と同じＶＬのアミノ酸配列を有する抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体を取得した。後述する実施例５のＦＬＡＧ－ＰＳＭＡを固相化し、ＳｕｐｅｒＢｌｏｃｋ　Ｂｌｏｃｋｉｇ　Ｂｕｆｆｅｒ（Ｔｈｅｒｍｏ社製）を用いてＦＬＡＧ－ＰＳＭＡが結合していない部位をブロックしたＭＡＸＩＳＯＲＰ　ＳＴＡＲＴＵＢＥ（ＮＵＮＣ社製）と、ヒト抗体Ｍ１３ファージライブラリーを室温下で１時間反応させ、ＰＢＳで５回洗浄後に０．１ＭのＧｌｙ－ＨＣｌ（ｐＨ２．２）でファージを溶出した。
　溶出したファージは、ＴＧ１コンピテントセルに感染させ、ファージを増幅した。その後、再度ＭＡＸＩＳＯＲＰ　ＳＴＡＲＴＵＢＥに固相化したＦＬＡＧ－ＰＳＭＡを反応させて、洗浄および溶出を実施した。この操作を２回または３回繰り返し、ＦＬＡＧ－ＰＳＭＡに特異的に結合するｓｃＦｖを提示したファージを濃縮した。
　濃縮されたファージを単クローン化し、ＥＬＩＳＡにてＦＬＡＧ－ＰＳＭＡへの結合性を有するクローンを選択した。ＥＬＩＳＡには、後述する実施例５のＦＬＡＧ－ＰＳＭＡを固相化し、ＳｕｐｅｒＢｌｏｃｋ　Ｂｌｏｃｋｉｇ　Ｂｕｆｆｅｒ（Ｔｈｅｒｍｏ社製）を用いてＦＬＡＧ－ＰＳＭＡ　が結合していない部位をブロックしたＭＡＸＩＳＯＲＰ（ＮＵＮＣ社製）を用いた。
　各ウェルに各々のファージクローンを加え、室温下で３０分間反応させた後、各ウェルを０．１％　Ｔｗｅｅｎ２０含有ＰＢＳ（以下ＰＢＳ－Ｔと記載する）で３回洗浄した。次いで、西洋ワサビペルオキシダーゼで標識された抗Ｍ１３抗体（ＧＥヘルスケア社製）を１０％ブロックエース（大日本製薬株式会社製）含有ＰＢＳ－Ｔで５０００倍に希釈した溶液を、各ウェルに５０μＬずつ加え、室温下で３０分間インキュベートした。
　マイクロプレートをＰＢＳ－Ｔで３回洗浄後、ＴＭＢ発色基質液（ＤＡＫＯ社製）を各ウェルに５０μＬずつ加え、室温下で１０分間インキュベートした。最後に、各ウェルに０．５Ｍ硫酸（５０μＬ／ウェル）を加えて発色反応を止め、波長４５０ｎｍ（参照波長５７０ｎｍ）での吸光度をマイクロプレートリ－ダ－（１４２０　ＡＲＶＯ　マルチラベルカウンター：ＷＡＬＬＡＣ社製）で測定した。
　ＦＬＡＧ－ＰＳＭＡに結合したクローンについて、配列解析を行い、表１に示す抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体Ｅ１１抗体と同じＶＬのアミノ酸配列を有する抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体ＰＩ１３４抗体、ＰＩ１０１抗体、ＰＮ７抗体、ＰＩ１０５抗体、ＰＩ１０８抗体、ＰＩ１１５抗体、ＰＩ１１８抗体、ＰＩ１２７抗体、ＰＩ１４３抗体、ＰＬ２２３抗体およびＰＮ１７０抗体を取得した。表１と同様の表示方法で、各ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体の重鎖の配列情報を表２に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
　ＰＩ１３４抗体、ＰＩ１０１抗体、ＰＩ１０５抗体、ＰＩ１０８抗体、ＰＩ１１５抗体、ＰＩ１１８抗体、ＰＩ１２７抗体、ＰＩ１４３抗体、ＰＬ２２３抗体およびＰＮ１７０抗体の各ＶＨおよびＶＬのアミノ酸配列をコードする塩基配列を合成し、実施例１と同様の方法でプラスミドベクターＮ５ＫＧ１に挿入した発現プラスミドベクターを作製し、それぞれＮ５ＫＧ１＿Ｅ１１ＶＬ＿ＰＩ１３４、Ｎ５ＫＧ１＿Ｅ１１ＶＬ＿ＰＩ１０１、Ｎ５ＫＧ１＿Ｅ１１ＶＬ＿ＰＩ１０５、Ｎ５ＫＧ１＿Ｅ１１ＶＬ＿ＰＩ１０８、Ｎ５ＫＧ１＿Ｅ１１ＶＬ＿ＰＩ１１５、Ｎ５ＫＧ１＿Ｅ１１ＶＬ＿ＰＩ１１８、Ｎ５ＫＧ１＿Ｅ１１ＶＬ＿ＰＩ１２７、Ｎ５ＫＧ１＿Ｅ１１ＶＬ＿ＰＩ１４３、Ｎ５ＫＧ１＿Ｅ１１ＶＬ＿ＰＬ２２３、およびＮ５ＫＧ１＿Ｅ１１ＶＬ＿ＰＮ１７０と命名した。
　また、ＰＮ７抗体のＶＨおよびＶＬのアミノ酸配列をコードする塩基配列を合成し、実施例１と同様の方法でプラスミドベクターＮ５ＫＧ４ＰＥ［Ｒ４０９Ｋ］（国際公開第２００２／０８８１８６号に記載）に挿入した発現プラスミドベクターを作製し、Ｎ５ＫＧ４ＰＥ［Ｒ４０９Ｋ］＿Ｅ１１ＶＬ＿ＰＮ７と命名した。
（２）抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体２Ａ１０抗体の発現プラスミドベクターの作製
　抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体の陽性コントロール抗体として、国際公開第２００６／０８９２３０号に記載された抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体２Ａ１０抗体を作製した。２Ａ１０抗体のＶＨの全塩基配列を配列番号２３に、該配列から推定された、シグナル配列を含んだＶＨの全アミノ酸配列を配列番号２４に、配列番号２４に示したアミノ酸配列からシグナル配列を除いたアミノ酸配列を配列番号１１６にそれぞれ示す。
　また、２Ａ１０抗体のＶＬの全塩基配列を配列番号２５、該配列から推定された、シグナル配列を含んだＶＬの全アミノ酸配列を配列番号２６に、配列番号２６に示したアミノ酸配列からシグナル配列を除いたアミノ酸配列を配列番号１１７にそれぞれ示す。以下に記載する方法で２Ａ１０抗体の発現プラスミドベクターを作製した。
　２Ａ１０抗体のＶＬのアミノ酸配列をコードする遺伝子を合成し、プラスミドベクターＮ５ＫＧ１のＢｇｌＩＩ－ＢｓｉＷＩサイトにサブクローニングして、Ｎ５ＫＧ１＿２Ａ１０ＶＬを得た。次に、２Ａ１０のＶＨをコードする遺伝子を合成して鋳型とし、配列番号２７および配列番号２８で表されるプライマー、並びにＫＯＤ　ｐｌｕｓ　ＤＮＡ　Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ（東洋紡社製）を用いて、ＰＣＲによりＶＨ領域の遺伝子断片を増幅した。ＰＣＲは、９４℃で３０秒間、５８℃で３０秒間、６８℃で４５秒間からなる反応を２５サイクル実施した。
　得られたＶＨ領域の遺伝子断片を鋳型とし、配列番号２９および配列番号２８で表されるプライマー、並びにＫＯＤポリメラーゼを用いて、ＰＣＲによりシグナル配列がＶＨ領域に連結された遺伝子断片を増幅した。ＰＣＲは、９４℃で３０秒間、５８℃で３０秒間、６８℃で９０秒間からなる反応を２５サイクル実施した。得られた遺伝子断片をＮ５ＫＧ１＿２Ａ１０ＶＬベクターのＳａｌＩ－ＮｈｅＩサイトに挿入し、抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体２Ａ１０抗体の発現プラスミドベクターＮ５ＫＧ１＿２Ａ１０を得た。
［実施例４］ｈＴＲＡＩＬＲ２とｈＰＳＭＡに結合するバイスぺシフィック抗体の発現ベクターの構築
　図１に記載する構造を有する、ｈＴＲＡＩＬＲ２とｈＰＳＭＡに結合するバイスペシフィック抗体（以下、ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体または単にバイスペシフィック抗体と記載する）を以下の方法で作製した。当該バイスペシフィック抗体の重鎖は、図１のＮ末端側から順に、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体Ｅ１１抗体のＶＨ、リンカー、および抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体のＶＨのアミノ酸配列を含み、当該抗体の４つの軽鎖は、いずれもＥ１１抗体のＶＬのアミノ酸配列を含む。当該バイスペシフィック抗体のように、異なる二つの抗原結合部位のＶＬが共通している抗体を、軽鎖共通型のバイスペシフィック抗体と称する。
　ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体の名称、当該抗体の作製に使用した抗ＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体のクローン名、リンカーの構造、抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体のクローン名および該バイスペシフィック抗体の発現プラスミドベクターの名称を表３に示す。また、当該バイスペシフィック抗体について、Ｅ１１抗体のＶＨ、リンカーおよび抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体のＶＨ（以下、単にＶＨ－リンカー－ＶＨとも記載する）からなるポリペプチドのアミノ酸配列および該アミノ酸配列をコードする塩基配列を表４に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
（１）ヒトＩｇＧ４のＣＨ１をリンカーとして有するｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体の発現プラスミドベクターの作製
　表３および表４に記載されたバイスペシフィック抗体のうち、ヒトＩｇＧ４のＣＨ１をリンカーとして有するバイスペシフィック抗体について、発現プラスミドベクターを以下に記載する方法で作製した。当該リンカーのアミノ酸配列を、配列番号９３に示す。
　ヒトＩｇＧ４の定常領域の塩基配列を鋳型とし、配列番号３０および配列番号３１で表されるプライマー、並びにＫＯＤ　ｐｌｕｓ　ＤＮＡ　Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ（東洋紡社製）を用いて、ＰＣＲによりリンカー部分の遺伝子断片を増幅させた。一方、表５に示すＶＨ増幅用鋳型ベクター、ＶＨ増幅用プライマーおよびＫＯＤポリメラーゼを用いて、ＰＣＲにより各抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体のＶＨ領域の遺伝子断片を増幅させた。ＰＣＲは、いずれも９４℃で３０秒間、５８℃で３０秒間、６８℃で４５秒間からなる反応を２５サイクル実施した。
　次に、上記のリンカー部分および各抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体のＶＨ領域の各遺伝子断片を鋳型とし、表５に示すＶＨ－リンカー結合用プライマー、およびＫＯＤポリメラーゼを用いて、ＰＣＲによりリンカー部分と各抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体のＶＨ領域が連結された遺伝子断片を増幅させた。
　ＰＣＲは、９４℃で３０秒間、５８℃で３０秒間、６８℃で９０秒からなる反応を２５サイクル実施した。増幅させた遺伝子断片を、ＮｈｅＩで開裂させたＮ５ＫＧ１＿Ｅ１１、またはＮ５ＫＧ４ＰＥ［Ｒ４０９Ｋ］＿Ｅ１１に連結することにより、表５に示す各ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体の発現プラスミドベクターを得た。
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（２）ヒトＩｇＧ４のＣＨ１のＮ末から１４番目までのアミノ酸配列をリンカー（ＧＬリンカー）として有するｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体の発現プラスミドベクターの作製
　表３および表４に示すｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体Ｅ１１－ＧＬ－ＰＩ１１３４ＶＨ抗体の発現プラスミドベクターを、以下に記載する方法で作製した。当該バイスペシフィック抗体のリンカーは、配列番号１１で表わされるヒトＩｇＧ４のＣＨ１のＮ末から１４番目までのアミノ酸配列である。プラスミドベクターＮ５ＫＧ１＿Ｅ１１ＶＬ＿ＰＩ１３４を鋳型とし、配列番号５７および配列番号３３で表されるプライマー、並びにＫＯＤポリメラーゼを用いて、ＰＣＲにより抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体ＰＩ１３４抗体のＶＨ領域の遺伝子断片を増幅させた。
　ＰＣＲは、９４℃で３０秒間、５８℃で３０秒間、６８℃で４５秒間の反応を２５サイクル実施した。該遺伝子断片を、制限酵素ＮｈｅＩで開裂させたＮ５ＫＧ１＿Ｅ１１に連結することにより、ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体Ｅ１１－ＧＬ－ＰＩ１１３４ＶＨ抗体の発現プラスミドベクターＮ５ＫＧ１＿Ｅ１１ＶＬ＿Ｅ１１－ＧＬ－ＰＩ１３４ＶＨを作製した。
（３）ヒトＩｇＭのＣＨ１のＮ末から１４番目までのアミノ酸配列をリンカー（ＭＬリンカー）として有するｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体の発現プラスミドベクターの作製
　表３および表４に示すｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体Ｅ１１－ＭＬ－ＰＩ１０１ＶＨ抗体の発現プラスミドベクターを、以下に記載する方法で作製した。当該バイスペシフィック抗体のリンカーは、配列番号１２で表わされるヒトＩｇＭのＣＨ１のＮ末から１４番目までのアミノ酸配列である。Ｎ５ＫＧ１＿Ｅ１１を鋳型とし、配列番号５９および配列番号６０で表されるプライマー、並びにＫＯＤポリメラーゼを用いて、ＰＣＲにより抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体Ｅ１１抗体のＶＨ領域の遺伝子断片を増幅させた。
　ＰＣＲは９４℃で３０秒間、５８℃で３０秒間、６８℃で４５秒間の反応を２５サイクル実施した。一方、Ｎ５ＫＧ１＿Ｅ１１ＶＬ＿ＰＩ１０１を鋳型とし、配列番号６１および配列番号６２で表されるプライマー、並びにＫＯＤポリメラーゼを用いて、ＰＣＲにより抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体ＰＩ１０１抗体のＶＨ領域の遺伝子断片を増幅させた。ＰＣＲは９４℃で３０秒間、５８℃で３０秒間、６８℃で４５秒間の反応を２５サイクル実施した。
　次に、上記のＥ１１抗体のＶＨ領域およびＰＩ１０１抗体のＶＨ領域の遺伝子断片を、制限酵素ＳａｌＩおよびＮｈｅＩで開裂させたＮ５ＫＧ１に挿入することにより、ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体Ｅ１１－ＭＬ－ＰＩ１０１ＶＨ抗体の発現プラスミドベクターＮ５ＫＧ１＿Ｅ１１ＶＬ＿Ｅ１１－ＭＬ－ＰＩ１０１ＶＨを作製した。
［実施例５］可溶性ｈＰＳＭＡ抗原の調製
　ヒトｐｒｏｓｔａｔｅ　ｓｐｅｃｉｆｉｃ　ｍｅｍｂｒａｎｅ　ａｎｔｉｇｅｎ（ｈＰＳＭＡ）の可溶性抗原として、Ｎ末端にＦＬＡＧ－ｔａｇが付加されたｈＰＳＭＡの細胞外ドメインタンパク質を以下に記載する方法で作製した。ｈＰＳＭＡのアミノ酸配列をコードする塩基配列を配列番号６４に、当該塩基配列から推定されるアミノ酸配列を配列番号１１２に示す。
　ｈＰＳＭＡの細胞外ドメインの遺伝子配列を合成し、ＦＬＡＧ－ｔａｇが挿入されたＮ５（ＩＤＥＣ社製）ベクターのＳｐｅＩ－ＢａｍＨＩサイトに挿入することにより、Ｎ末側にＦＬＡＧ－ｔａｇが付加されたｈＰＳＭＡの細胞外ドメインを発現するプラスミドベクターＮ５／ＦＬＡＧ－ｈＰＳＭＡを作製した。ＦＬＡＧ－ｈＰＳＭＡの塩基配列を配列番号９２に、当該塩基配列から推定されるアミノ酸配列を配列番号１１３に示す。
　Ｎ５／ＦＬＡＧ－ｈＰＳＭＡを、ＦｒｅｅＳｔｙｌｅ（商標）　２９３　Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　Ｓｙｓｔｅｍ　（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）を用いて浮遊性２９３細胞に導入して培養し、一過性発現系でタンパク質を発現させた。ベクター導入７日後に培養上清を回収し、孔径０．２２μｍのメンブランフィルター（ＭＩＬＬＩＰＯＲＥ社製）で濾過した。
　この培養上清をＦＬＡＧ融合タンパク質精製用のＡＮＴＩ－ＦＬＡＧ　Ｍ２　Ａｆｆｉｎｉｔｙ　Ｇｅｌ（カラム体積２ｍＬ）（ＳＩＧＭＡ　Ａｌｄｒｉｃｈ社製）にチャージし、ＰＢＳ（－）で洗浄後、溶出液［２０ｍＭ　クエン酸、５０ｍＭ　ＮａＣｌ（ｐＨ３．４）］により溶出し、１Ｍ　リン酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ７．０）を含むチューブに回収した。
　次に、ＶＩＶＡＳＰＩＮ（Ｓａｒｔｒｉｕｓ　ｓｔｅａｌｉｎ社製）を用いた限外ろ過により、溶出液の溶媒をＰＢＳに置換した後、孔径０．２２μｍのメンブランフィルター（Ｍｉｌｌｅｘ－ＧＶ、ＭＩＬＬＩＰＯＲＥ社製）でろ過滅菌し、ＦＬＡＧ融合タンパク質溶液を得た。精製ＦＬＡＧ－ｈＰＳＭＡ融合タンパク質の濃度は２８０ｎｍの吸光度により測定した。
［実施例６］膜型ｈＰＳＭＡの発現プラスミドベクターの作製
　以下に記載する方法で、エクステンションＰＣＲを用いて、ｈＰＳＭＡのＮ末端側にシグナル配列と膜結合部位を付加した膜型ｈＰＳＭＡ発現プラスミドベクターを作製した。
　ｈＰＳＭＡ遺伝子（配列番号６４）の合成ＤＮＡを鋳型として、配列番号６５および配列番号６６で表されるプライマー、並びにＫＯＤポリメラーゼを用いて、９４℃で３０秒間、５８℃で３０秒間、６８℃で３分間の反応を２５サイクル実施することでＰＣＲ増幅を行った。
　該ＰＣＲ産物を鋳型として、配列番号６７および配列番号６６で表されるプライマー、並びにＫＯＤポリメラーゼを用いて、９４℃で３０秒間、５８℃で３０秒間、６８℃で３分間の反応を２５サイクル実施することでＰＣＲ増幅を行った。
　さらに、該ＰＣＲ産物を鋳型として、配列番号６８および配列番号６６で表されるプライマー、並びにＫＯＤポリメラーゼを用いて、９４℃で３０秒間、５８℃で３０秒間、６８℃で３分間の反応を２５サイクル実施することでＰＣＲ増幅を行った。
　該増幅産物をｐＥＦ６／Ｖ５－Ｈｉｓ　ＴＯＰＯ　ＴＡ　Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　Ｋｉｔ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）を用いてＴＯＰＯクローニングを行い、ｈＰＳＭＡ遺伝子が正しく挿入されているクローンを選択することにより、膜型ｈＰＳＭＡの発現プラスミドベクターｐＥＦ６－ｈＰＳＭＡ　ｆｕｌｌを得た。
［実施例７］抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体、抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体およびｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体の調製
　実施例１から実施例４で作製した各種抗体の発現プラスミドベクターをＦｒｅｅＳｔｙｌｅ（商標）　２９３　Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　Ｓｙｓｔｅｍ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）により浮遊性２９３細胞に遺伝子導入し、一過性発現系で抗体を発現させた。ベクターの導入から７日後に培養上清を回収し、孔径０．２２μｍのメンブランフィルター（ＭＩＬＬＩＰＯＲＥ社製）で濾過した後、プロテインＡ樹脂（ＭａｂＳｅｌｅｃｔ、ＧＥヘルスケアバイオサイエンス社製）を用いて抗体をアフィニティー精製した。洗浄液としてリン酸緩衝液を用いた。
　プロテインＡに吸着させた抗体を、溶出液［２０ｍＭ　クエン酸ナトリウム、５０ｍＭ　ＮａＣｌ緩衝液（ｐＨ３．４）］により溶出し、１Ｍ　リン酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ７．０）を含むチューブに回収した。次に、ＶＩＶＡＳＰＩＮ（Ｓａｒｔｒｉｕｓ　ｓｔｅａｌｉｎ社製）を用いた限外ろ過により、溶出液の溶媒をＰＢＳに置換した。
　さらに、ＡＫＴＡ　ＦＰＬＣ（ＧＥヘルスケア社製）で、Ｓｕｐｅｒｄｅｘ　Ｈｉｇｈ－ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ　Ｃｏｌｕｍｎｓ（ＧＥヘルスケア社製）を用いて、該抗体溶液より単量体画分を分取し、孔径０．２２μｍのメンブランフィルター（Ｍｉｌｌｅｘ－ＧＶ、ＭＩＬＬＩＰＯＲＥ社製）でろ過滅菌を行った。ＡＫＴＡシステム孔径０．２２μｍのメンブランフィルター（Ｍｉｌｌｅｘ－ＧＶ、ＭＩＬＬＩＰＯＲＥ社製）でろ過滅菌することにより目的の精製抗体溶液を得た。抗体溶液の２８０ｎｍの吸光度を測定し、濃度１ｍｇ／ｍＬを１．４０　Ｏｐｔｉｍａｌ　ｄｅｎｓｉｔｙと換算することで、精製抗体の濃度を算出した。
［実施例８］ｈＰＳＭＡを発現したＬ９２９およびＰＣ３の調製
　実施例６で得た膜型ｈＰＳＭＡの発現プラスミドベクターを、ＨｉｌｙＭａｘ（同仁化学社製）を用いてマウス結合組織由来線維芽細胞Ｌ９２９［Ａｍｅｒｉｃａｎ　Ｔｙｐｅ　Ｃｕｌｔｕｒｅ　Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ）番号：ＣＣＬ－１］およびヒト前立腺癌細胞ＰＣ３［ＡＴＣＣ番号：ＣＲＬ－１４３５］細胞に導入した。
　遺伝子導入後の細胞を抗生物質Ｂｌａｓｔｉｃｉｄｉｎ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）により選抜した後、限界希釈法によりクローニングを行い、ｈＰＳＭＡを細胞表面に発現したＬ９２９細胞（以下、ｈＰＳＭＡ／Ｌ９２９と略記する）およびＰＣ３細胞（以下、ｈＰＳＭＡ／ＰＣ３と略記する）を得た。
［実施例９］フローサイトメーターによるｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体のｈＴＲＡＩＬＲ２およびｈＰＳＭＡに対する結合性の評価
　実施例７で得た各種ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体のｈＴＲＡＩＬＲ２およびｈＰＳＭＡへの結合性を、以下の手順に従いフローサイトメトリーにより評価した。
　実施例７で得た各種ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体、抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体または抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体を用いて、ｈＴＲＡＩＬＲ２／Ｌ９２９細胞（国際公開第２００２／０９４８８０号に記載）および実施例８で得たｈＰＳＭＡ／Ｌ９２９細胞に対する結合性をＦＡＣＳにより解析した。
　細胞を、１×１０６細胞／ｍＬの濃度で染色バッファー［０．１％ＮａＮ３、１％ＦＢＳを含有するＰＢＳ］に懸濁し、１００μＬ／ウェルずつ９６穴丸底プレート（ベクトンディッキンソン社製）に分注した。遠心分離（２０００ｒｐｍ、４℃、２分間）の後、上清を除去して得られたペレットに実施例７で得た各抗体を加えて懸濁した後、氷温下で３０分間静置した。
　さらに遠心分離（２０００ｒｐｍ、４℃、２分間）し、上清を除去して得られたペレットを２００μＬ／ウェルの染色バッファーで２回洗浄した後に、１μｇ／ｍＬのＲＰＥ蛍光標識マウス抗ヒト抗体（ヒンジ領域）クローン４Ｅ３抗体（Ｓｏｕｔｈｅｒｎ　Ｂｉｏｂｌｏｔ社製）を５０μＬ／ウェルで加え、氷温下で３０分間インキュベートした。染色バッファーで２回洗浄した後、２００μＬ／ウェルの染色バッファーに懸濁し、フローサイトメーターＦＡＣＳＣＡＮＴＯ　ＩＩ（ベクトンディッキンソン社製）で各細胞の蛍光強度を測定した。得られた結果を図２および図３に示した。
　細胞は、ｈＴＲＡＩＬＲ２／Ｌ９２９細胞（国際公開第２００２／０９４８８０号に記載）および実施例８で得たｈＰＳＭＡ／Ｌ９２９細胞を使用した。ｈＴＲＡＩＬＲ２／Ｌ９２９細胞は、抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体２Ａ１０抗体若しくはＰＩ１３４抗体、またはｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体Ｅ１１－ＧＬ－ＰＩ１３４ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１３４ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０１ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ抗体若しくはＥ１１－ＣＨ１－ＰＮ１７０ＶＨ抗体で染色した。得られた結果を図３に示す。
　ｈＰＳＭＡ／Ｌ９２９細胞は、抗ＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体Ｅ１１抗体、抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体ＰＩ１３４抗体、またはｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０１ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ抗体若しくはＥ１１－ＣＨ１－ＰＮ１７０ＶＨ抗体で染色した。得られた結果を図２に示す。
　図３に示すように、ｈＴＲＡＩＬＲ２／Ｌ９２９細胞に対しては、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体Ｅ１１抗体、並びにｈＴＲＩＡＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０１ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ抗体およびＥ１１－ＣＨ１－ＰＮ１７０ＶＨ抗体が結合した一方で、抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体ＰＩ１３４抗体は結合しなかった。
　これにより、ｈＴＲＡＩＬＲ２／Ｌ９２９細胞は、ｈＴＲＡＩＬＲ２を発現し、ｈＰＳＭＡを発現していないことが明らかになった。また、ｈＴＲＩＡＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体であるＥ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０１ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ抗体およびＥ１１－ＣＨ１－ＰＮ１７０ＶＨ抗体が、ｈＴＲＡＩＬＲ２への結合性を有していることが示された。
　図２に示すように、ｈＰＳＭＡ／Ｌ９２９細胞に対しては、抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体である２Ａ１０抗体およびＰＩ１３４抗体、並びにｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスぺシフィック抗体Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１３４ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＧＬ－ＰＩ１３４ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０１ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ抗体およびＥ１１－ＣＨ１－ＰＮ１７０ＶＨ抗体すべてが結合した。
　これにより、ｈＰＳＭＡ／Ｌ９２９細胞は、ｈＰＳＭＡを発現しており、ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１３４ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＧＬ－ＰＩ１３４ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０１ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ抗体およびＥ１１－ＣＨ１－ＰＮ１７０ＶＨ抗体がｈＰＳＭＡへの結合性を有していることが示された。
　表３に示す他のｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体については、上記と同様の方法で、ＰＣ３細胞（ＴＲＡＩＬＲ２発現）および実施例８で作製したｈＰＳＭＡ／ＰＣ３細胞（ｈＰＳＭＡ、ＴＲＡＩＬＲ２両発現）の両方に結合することを確認した（データ開示なし）。ｈＰＳＭＡ／ＰＣ３細胞は、ＴＲＡＩＬＲ２よりもＰＳＭＡの発現量が高く、いずれの抗体についても、ＰＣ３細胞における蛍光強度よりも、ｈＰＳＭＡ／ＰＣ３細胞における蛍光強度の方が高かった。
　以上より、本発明のｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体は、ｈＴＲＡＩＬＲ２およびｈＰＳＭＡのいずれにも結合することが示された。
［実施例１０］フローサイトメーターによるＰＣ３細胞、ｈＰＳＭＡ／ＰＣ３細胞およびＬＮＣａＰ　ｃｌｏｎｅ　ＦＧＣ細胞の抗原発現解析
　ＰＣ３細胞、実施例８で作製したｈＰＳＭＡ／ＰＣ３細胞およびヒト前立腺癌細胞株ＬＮＣａＰ　ｃｌｏｎｅ　ＦＧＣ（ＣＲＬ－１７４０）でのｈＴＲＡＩＬＲ２またはｈＰＳＭＡの発現の有無を、以下の手順に従いＦＡＣＳ法により評価した。
　ＰＣ３細胞、ｈＰＳＭＡ／ＰＣ３細胞またはＬＮＣａＰ　ｃｌｏｎｅ　ＦＧＣ細胞を、１×１０６細胞／ｍＬの濃度で染色バッファー（０．１％ＮａＮ３および１％ＦＢＳを含むＰＢＳ）に懸濁し、１００μＬ／ウェルで９６穴丸底プレート（ベクトンディッキンソン社製）に分注した。遠心分離（２０００ｒｐｍ、４℃、２分間）の後、上清を除去して得られたペレットに、実施例７で得た各抗体を加えて懸濁した後、氷温下で３０分間静置した。
　さらに遠心分離（２０００ｒｐｍ、４℃、２分間）し、上清を除去して得られたペレットに、２００μＬ／ウェルの染色バッファーで２回洗浄した後に、１μｇ／ｍＬのＲＰＥ蛍光標識マウス抗ヒト抗体（ヒンジ領域）クローン４Ｅ３（Ｓｏｕｔｈｅｒｎ　Ｂｉｏｂｌｏｔ社製）を５０μＬ／ウェルで加え、氷温下で３０分間インキュベートした。染色バッファーで２回洗浄した後、２００μＬ／ウェルの染色バッファーに懸濁し、フローサイトメーターＦＡＣＳＣＡＮＴＯ　ＩＩ（ベクトンディッキンソン社製）で各細胞の蛍光強度を測定した。
　抗体は、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体Ｅ１１抗体、抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体２Ａ１０抗体若しくはＰＩ１３４抗体、ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０１ＶＨ抗体または陰性コントロールとして公知の抗ＤＮＰモノクローナル抗体を使用した。得られた結果を図４（Ａ）および図４（Ｂ）、並びに図５に示す。
　図４（Ａ）に示すように、ＰＣ３細胞に対しては、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体Ｅ１１抗体およびバイスペシフィック抗体Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０１ＶＨ抗体が結合し、抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体ＰＩ１３４抗体は結合しなかった。
　図４（Ｂ）に示すように、ｈＰＳＭＡ／ＰＣ３細胞に対しては、Ｅ１１抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０１ＶＨ抗体およびＰＩ１３４抗体が結合した。さらに、Ｅ１１抗体よりも、ＰＩ１３４抗体およびＥ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０１ＶＨ抗体の方が、強い結合活性を有することが示された。
　この結果より、ＰＣ３細胞はｈＰＳＭＡを発現しておらず、ｈＴＲＡＩＬＲ２のみを発現していること、およびｈＰＳＭＡ／ＰＣ３細胞はｈＴＲＡＩＬＲ２およびｈＰＳＭＡの両抗原を発現していることが示された。
　図５に示すように、ＬＮＣａＰ　ｃｌｏｎｅ　ＦＧＣに対しては、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体Ｅ１１抗体および抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体２Ａ１０抗体が結合した。この結果より、ＬＮＣａＰ　ｃｌｏｎｅ　ＦＧＣはｈＴＲＡＩＬＲ２およびｈＰＳＭＡの両抗原を発現していることが示された。
［実施例１１］ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体を用いたＰＣ３細胞およびｈＰＳＭＡ／ＰＣ３細胞の増殖性試験
　実施例７で得た各種抗体を用いて、ＰＣ３細胞および実施例８で得たｈＰＳＭＡ／ＰＣ３細胞の増殖性を以下のように評価した。これにより、実施例７で得た抗体が上記細胞に対して細胞増殖を抑制するおよび／または細胞死を誘導するか否かが確認できる。
　ＰＣ３細胞は、ｈＴＲＡＩＬＲ２を発現し、ｈＰＳＭＡを発現しない細胞であり、ｈＰＳＭＡ／ＰＣ３細胞は、ｈＴＲＡＩＬＲ２およびｈＰＳＭＡを発現する細胞であることは、実施例１０にて確認された。
　抗体は、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体Ｅ１１抗体、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２アゴニストモノクローナル抗体ＫＭＤＡ２抗体、ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１３４ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０１ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ１７０ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＧＬ－ＰＩ１３４ＶＨ、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０５ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０８ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１１５ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１１８ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１２７ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１４３ＶＨ抗体若しくはＥ１１－ＣＨ１－ＰＬ２２３ＶＨ抗体、または陰性コントロール抗体として公知の抗ＤＮＰモノクローナル抗体を使用した。
　２～１０×１０４細胞／ｍＬの細胞を５０μＬ／ウェルで平底９６ウェルプレートに播種し、３７℃、５．０％炭酸ガス下で１６時間培養した。さまざまな濃度に調整した上記の抗体を加えて総量１００μｌ／ウェルとし、３７℃、５．０％炭酸ガス下で７２時間培養した後、Ｃｅｌｌ　Ｃｏｕｎｔｉｎｇ　Ｋｉｔ－８（ＷＳＴ－８）（同仁化学社製）を各ウェルに１０μＬずつ添加した。各条件において、４つの独立したウェルを用いて評価した。
　さらに３７℃、５．０％炭酸ガス下で４時間培養した後、０．１Ｍ　ＨＣｌを添加して反応を停止し、波長４５０ｎｍ（参照波長６３０ｎｍ）での吸光度をマイクロプレートリ－ダ－（１４２０　ＡＲＶＯ　マルチラベルカウンター：ＷＡＬＬＡＣ社製）で測定した。
　各ウェルの細胞の生存率を、下記式により算出した：
生存率（％）＝１００×（ａ－ｂ）／（ｃ－ｂ）
（式中、ａは被検ウェルの吸光度を、ｂは無細胞ウェルの吸光度を、ｃは抗体無添加ウェルの吸光度をそれぞれ表す）。
　得られた結果を図６～１０に示した。ＰＣ３細胞に対する結果を図６および図７に、ｈＰＳＭＡ／ＰＣ３細胞に対する結果を図８～１０に示す。図７および図９に示すように、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体Ｅ１１抗体は、いずれの細胞に対しても抗ＤＮＰモノクローナル抗体と同等に、細胞の生存率を低下させなかった。一方、図６～図１０に示すように、抗ＴＲＡＩＬＲ２アゴニストモノクローナル抗体ＫＭＤＡ２抗体は、いずれの細胞に対しても抗ＤＮＰモノクローナル抗体よりも細胞の生存率を低下させた。
　図６および図７に示すように、ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１３４ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０１ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ抗体およびＥ１１－ＣＨ１－ＰＮ１７０ＶＨ抗体は、ＰＣ３細胞に対しては、抗ＤＮＰモノクローナル抗体と同等に細胞の生存率を低下させなかった。
　一方で、図８～図１０に示すように、ｈＰＳＭＡ／ＰＣ３細胞に対して、ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体Ｅ１１－ＧＬ－ＰＩ１３４ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１３４ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０１ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ１７０ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０５ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０８ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１１５ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１１８ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１２７ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１４３ＶＨ抗体およびＥ１１－ＣＨ１－ＰＬ２２３ＶＨ抗体は、いずれも抗ＤＮＰモノクローナル抗体よりも細胞の生存率を低下させた。
　また、抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体２Ａ１０抗体、ＰＩ１３４抗体、ＰＮ７抗体単独は、いずれの細胞に対しても抗ＤＮＰモノクローナル抗体と同等に細胞の生存率を低下させなかった（データ未開示）。
　すなわち、本発明のｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体は、ｈＴＲＡＩＬＲ２を発現し、ｈＰＳＭＡを発現しない細胞に対しては、細胞の生存率を低下させず、ｈＴＲＡＩＬＲ２とｈＰＳＭＡとの両方を発現する細胞に対しては、細胞の生存率を低下させた。
　したがって、本発明のｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体は、ｈＴＲＡＩＬＲ２に結合しただけでは細胞増殖を抑制および／または細胞死を誘導せず、ｈＴＲＡＩＬＲ２およびｈＰＳＭＡに結合した時に、上記の反応を誘導することが示された。
　また、本発明のｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体の親抗体である抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体Ｅ１１抗体は、ｈＴＲＡＩＬ２を発現し、ｈＰＳＭＡを発現しない細胞、およびｈＴＲＡＩＬＲ２およびｈＰＳＭＡを発現する細胞のいずれに対しても細胞の生存率を低下させないことが示された。
　したがって、本発明で用いる抗ＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体は、ＰＳＭＡに対する結合ドメインと結合したバイスペシフィック抗体にすることで、初めて細胞増殖を抑制および／または細胞死を誘導することが明らかになった。
［実施例１２］ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスぺシフィック抗体を用いたがん細胞の増殖性試験
　実施例７で得た各種抗体を用いて、ＬＮＣａＰ　ｃｌｏｎｅ　ＦＧＣ細胞（ＡＴＣＣ、ＣＲＬ＿１７４０）の増殖性を以下のように評価した。抗体は、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２アゴニストモノクローナル抗体ＫＭＤＡ２抗体、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体Ｅ１１抗体、ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０１ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ抗体、若しくはＥ１１－ＣＨ１－ＰＮ１７０ＶＨ抗体、または陰性コントロール抗体として公知の抗ＤＮＰモノクローナル抗体を使用した。ＬＮＣａＰ　ｃｌｏｎｅ　ＦＧＣ細胞は、実施例１０にてｈＴＲＡＩＬＲ２とｈＰＳＭＡの両方を発現していることを確認した。
　４×１０４細胞／ｍＬのＬＮＣａＰ　ｃｌｏｎｅ　ＦＧＣ細胞を、５０μＬ／ウェルで平底９６ウェルプレートに播種し、３７℃、５．０％炭酸ガス下で１６時間培養した。さまざまな濃度に調整した上記の抗体を加えて総量１００μｌ／ウェルとし、３７℃、５．０％炭酸ガス下で７２時間培養した後、Ｃｅｌｌ　Ｃｏｕｎｔｉｎｇ　Ｋｉｔ－８（ＷＳＴ－８）（同仁化学社製）を各ウェルに１０μＬずつ添加した。
　各条件において、４つの独立したウェルを用いて評価した。さらに３７℃、５．０％炭酸ガス下で４時間培養した後、０．１Ｍ　ＨＣｌを添加して反応を停止し、波長４５０ｎｍ（参照波長６３０ｎｍ）での吸光度をマイクロプレートリ－ダ－（１４２０ＡＲＶＯ　マルチラベルカウンター：ＷＡＬＬＡＣ社製）で測定した。
　各ウェルの細胞の生存率を、下記式により算出した：
生存率（％）＝１００×（ａ－ｂ）／（ｃ－ｂ）
（式中、ａは被検ウェルの吸光度を、ｂは無細胞ウェルの吸光度を、ｃは抗体無添加のウェルの吸光度をそれぞれ表す）。
　得られた結果を図１１に示す。図１１に示すように、ＬＮＣａＰ　ｃｌｏｎｅ　ＦＧＣ細胞に対して、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体Ｅ１１抗体は、抗ＤＮＰモノクローナル抗体と同等に細胞の生存率を低下させなかった。一方で、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２アゴニストモノクローナル抗体ＫＭＤＡ２抗体並びにｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０１ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ抗体およびＥ１１－ＣＨ１－ＰＮ１７０ＶＨ抗体は、抗ＤＮＰモノクローナル抗体よりもＬＮＣａＰ　ｃｌｏｎｅ　ＦＧＣ細胞の生存率を低下させた。
　この結果により、本発明のｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体は、強制発現株ではない通常の細胞株でも、ｈＴＲＡＩＬＲ２とｈＰＳＭＡを発現している細胞であれば、該細胞に対して細胞増殖を抑制および／または細胞死を誘導することが示された。
［実施例１３］フローサイトメーターによるカスパーゼの検出
　実施例７で得たｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０１ＶＨ抗体が、ＰＣ３細胞およびｈＰＳＭＡ／ＰＣ３細胞に対してアポトーシスを誘導するか否かを、以下に記載するように、フローサイトメーターおよびＦＡＭ－ＦＬＩＣＡ　Ｃａｓｐａｓｅ　Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ　Ｋｉｔ（ＩｍｍｕｎｏＣｈｅｍｉｓｔｒｙ社製）を用いて活性化カスパーゼを検出することにより確認した。実施例１０にて、ＰＣ３細胞はｈＴＲＡＩＬＲ２を発現し、ｈＰＳＭＡを発現しない細胞であること、ｈＰＳＭＡ／ＰＣ３細胞はｈＴＲＡＩＬＲ２およびｈＰＳＭＡを発現しない細胞であることが確認されている。
　ＰＣ３細胞またはｈＰＳＭＡ／ＰＣ３細胞を、５×１０４細胞／ウェルで９６穴丸底プレート（ベクトンディッキンソン社製）に分注した。遠心分離（２０００ｒｐｍ、４℃、２分間）の後、上清を除去して得られたペレットに陰性コントロール抗体（抗ＤＮＰモノクローナル抗体）、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０１ＶＨ抗体またはＴＲＡＩＬＲ２リガンドＴＲＡＩＬ／Ａｐｏ２（Ｒ＆Ｄ　ｓｙｓｔｅｍｓ社製）を培地で終濃度１μｇ／ｍＬに希釈して添加し、３７℃で６時間インキュベートした。遠心分離（２０００ｒｐｍ、４℃、２分間）して上清を除去した後、培地で希釈したキット付属のＦＬＩＣＡを５０μＬ／ｍＬずつ加え、３７℃で３０分間インキュベートした。
　その後、キット付属のＡｐｏｐｔｏｓｉｓ　ｗａｓｈ　ｂｕｆｆｅｒで４回洗浄後、１００μＬ／ウェルのＡｐｏｐｔｏｓｉｓ　ｗａｓｈ　ｂｕｆｆｅｒで懸濁して、フローサイトメーターＦＡＣＳＣＡＮＴＯ　ＩＩ（ベクトンディッキンソン社製）で各細胞の蛍光強度を測定した。得られた結果を図１２（Ａ）および図１２（Ｂ）に示す。
　図１２（Ａ）に示すように、ＰＣ３細胞において、活性化カスパーゼはＥ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０１ＶＨ抗体を添加したときには検出されず、ＴＲＡＩＬを添加したときにのみ検出された。一方、図１２（Ｂ）に示すように、ｈＰＳＭＡ／ＰＣ３細胞において、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０１ＶＨ抗体およびＴＲＡＩＬのいずれを添加したときにも細胞内で活性化カスパーゼが検出された。
　この結果より、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０１ＶＨ抗体は、ｈＴＲＡＩＬＲ２を発現し、ｈＰＳＭＡを発現しない細胞に対してアポトーシスを誘導せず、ｈＴＲＡＩＬＲ２およびｈＰＳＭＡの両方を発現する細胞に対して、特異的にアポトーシスを誘導することが明らかになった。
　また、ｈＰＳＭＡ／ＰＣ３細胞にＥ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０１ＶＨ抗体を添加したときには、ＴＲＡＩＬＲ２リガンドＴＲＡＩＬを添加したときと同様に、活性化カスパーゼが検出された。
　したがって、本発明のｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体は、ｈＴＲＡＩＬＲ２に結合しただけではアポトーシスを誘導せず、ｈＴＲＡＩＬＲ２およびｈＰＳＭＡに結合した時に、アポトーシスを誘導することが示された。また、当該アポトーシスは、ＴＲＡＩＬＲ２を介するものであることが示された。
［実施例１４］正常肝細胞の増殖性試験によるｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスぺシフィック抗体の安全性評価
　実施例７で得た各種抗体を用いて、正常肝細胞（Ｃｅｌｓｉｓ　ＩＶＴ社、ＩＶＴ－Ｍ００９９５－Ｐ）の増殖性を以下のように評価した。これにより、実施例７で得た各種抗体が、正常肝細胞に対して、細胞増殖の抑制および細胞死の少なくとも一方を誘導するか否かが確認できる。
　抗体は、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２アゴニストモノクローナル抗体ＫＭＤＡ２抗体、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体Ｅ１１抗体、ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０１ＶＨ抗体若しくはＥ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ抗体、または陰性コントロール抗体として公知の抗ＤＮＰモノクローナル抗体を使用した。また、陽性コントロールとして、抗体の代わりにＴＲＡＩＬＲ２リガンドＴＲＡＩＬ／Ａｐｏ２も使用した。
　２×１０４細胞／ｍＬの正常肝細胞細胞を５０μＬ／ウェルで平底９６ウェルプレートに播種し、３７℃、５．０％炭酸ガス下で１６時間培養した。さまざまな濃度に調整した上記の抗体を加えて総量１００μｌ／ウェルとし、３７℃、５．０％炭酸ガス下で７２時間培養した後、Ｃｅｌｌ　Ｃｏｕｎｔｉｎｇ　Ｋｉｔ－８（ＷＳＴ－８）（同仁化学社製）を各ウェルに１０μＬずつ添加した。各条件において、４つの独立したウェルを用いて評価した。
　さらに３７℃、５．０％炭酸ガス下で４時間培養した後、０．１Ｍ　ＨＣｌを添加して反応を停止し、波長４５０ｎｍ（参照波長６３０ｎｍ）での吸光度をマイクロプレートリ－ダ－（１４２０ＡＲＶＯ　マルチラベルカウンター：ＷＡＬＬＡＣ社製）で測定した。
　各ウェルの細胞の生存率を、下記式により算出した：
生存率（％）＝１００×（ａ－ｂ）／（ｃ－ｂ）
（式中、ａは被検ウェルの吸光度を、ｂは無細胞ウェルの吸光度を、ｃは抗体無添加のウェルの吸光度をそれぞれ表す）。
　得られた結果を図１３および図１４に示す。図１３および図１４に示すように、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２アゴニストモノクローナル抗体ＫＭＤＡ２抗体およびＴＲＩＬＲ２リガンドＴＲＡＩＬ／Ａｐｏ２は、抗ＤＮＰモノクローナル抗体よりも正常肝細胞の生存率を低下させたのに対し、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体Ｅ１１抗体並びにｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＩ１０１ＶＨ抗体およびＥ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ抗体は、抗ＤＮＰモノクローナル抗体と同等に正常肝細胞の生存率を低下させなかった。
　この結果により、本発明のｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体は、正常肝細胞に対して、細胞増殖を抑制および／または細胞死を誘導しないことが示された。
　従って、本発明のｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体は、抗ＴＲＡＩＬＲ２アゴニストモノクローナル抗体またはＴＲＡＩＬ／Ａｐｏ２により引き起こされる正常肝細胞に対する毒性を大きく低減させることが示された。
［実施例１５］ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体または該抗体断片の発現プラスミドベクターの構築
　実施例１１で測定されたｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体が有する細胞増殖抑制活性および細胞死誘導活性の少なくとも一方について、バイスペシフィック抗体の構造との関係を調べるために、図１５（Ｂ）～図１５（Ｄ）にそれぞれ示すｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体断片Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆ（ａｂ’）２およびＥ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　ＦａｂならびにｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡヘテロバイスペシフィック抗体Ｅ１１＿ＰＮ７　Ｈｅｔｅｒｏ抗体を作製し、その細胞増殖抑制活性および細胞死誘導活性の少なくとも一方を評価した。
（１）ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体断片Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆ（ａｂ’）２の発現プラスミドベクターの構築
　Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆ（ａｂ’）２は、実施例４および７で作製したｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７　ＶＨのＣＨ２およびＣＨ３を欠失させたバイスペシフィック抗体断片である［図１５（Ｂ）］。
　ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体断片Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆ（ａｂ’）２の発現プラスミドベクターを下記の方法で作製した。当該バイスペシフィック抗体断片の重鎖はＮ末側から順に、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体Ｅ１１抗体のＶＨ、リンカー（ヒトＩｇＧ４のＣＨ１領域）、および抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体ＰＮ７抗体のＶＨのアミノ酸配列を含み、Ｃ末端に精製用のタグとしてＦＬＡＧ－ｔａｇおよびＨｉｓ－ｔａｇを含む。さらに、当該バイスペシフィック抗体断片の軽鎖は、いずれもＥ１１抗体のＶＬのアミノ酸配列を含む。Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆ（ａｂ’）２は、ヒンジ領域内のシステインにより２量体を形成し、ｈＴＲＡＩＬＲ２およびｈＰＳＭＡに対してそれぞれ２価で結合する［図１５（Ｂ）］。
　ヒトＩｇＧ４の定常領域の塩基配列を鋳型とし、プライマー３３（配列番号１４４）およびプライマー３４（配列番号１４５）、ならびにＫＯＤ　ｐｌｕｓ　ＤＮＡ　Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ（東洋紡社製）を用いて、ＰＣＲによりリンカー部分の遺伝子断片を増幅させた。また、実施例３に記載のＮ５ＫＧ４ＰＥ［Ｒ４０９Ｋ］＿Ｅ１１ＶＬ＿ＰＮ７ベクターを鋳型とし、プライマー３５（配列番号１４６）およびプライマー３６（配列番号１４７）、ならびにＫＯＤ　ｐｌｕｓ　ＤＮＡ　Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ（東洋紡社製）を用いて、ＰＣＲによりＰＮ７抗体のＶＨ領域の遺伝子断片を増幅させた。さらに、ヒトＩｇＧ４の定常領域の塩基配列を鋳型とし、プライマー３７（配列番号１４８）およびプライマー３８（配列番号１４９）、ならびにＫＯＤポリメラーゼを用いて、ＰＣＲによりＣＨ１およびヒンジ領域部分の遺伝子断片を増幅させた。
　ＰＣＲ反応により増幅させた該遺伝子断片を、制限酵素ＮｈｅＩおよびＢａｍＨＩで開裂させた実施例２に記載のＮ５ＫＧ１＿Ｅ１１ベクターに連結することにより、ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体断片Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆ（ａｂ’）２の発現プラスミドベクターＮ５ＫＧ＿Ｅ１１ＶＬ＿Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆ（ａｂ’）２を作製した。
　Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆ（ａｂ’）２の重鎖のシグナル配列を除いた塩基配列を配列番号１５０に、当該塩基配列から推定されるアミノ酸配列を配列番号１５１に示す。
（２）ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体断片Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆａｂの発現プラスミドベクターの構築
　ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体断片Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆａｂの発現プラスミドベクターを下記の方法で作製した。Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆａｂは、（１）に記載されるＥ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆ（ａｂ’）２よりヒンジ領域を欠失させた構造であり、ｈＴＲＡＩＬＲ２およびｈＰＳＭＡに対してそれぞれ１価で結合する［図１５（Ｃ）］。
　ヒトＩｇＧ４の定常領域の塩基配列を鋳型とし、プライマー３３（配列番号１４４）およびプライマー３４（配列番号１４５）、ならびにＫＯＤ　ｐｌｕｓ　ＤＮＡ　Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ（東洋紡社製）を用いて、ＰＣＲによりリンカー部分の遺伝子断片を増幅させた。また、実施例３に記載のＮ５ＫＧ４ＰＥ［Ｒ４０９Ｋ］＿Ｅ１１ＶＬ＿ＰＮ７ベクターを鋳型とし、プライマー３５（配列番号１４６）およびプライマー３６（配列番号１４７）、ならびにＫＯＤ　ｐｌｕｓ　ＤＮＡ　Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ（東洋紡社製）を用いて、ＰＣＲにより抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体ＰＮ７抗体のＶＨ領域の遺伝子断片を増幅させた。さらに、ヒトＩｇＧ４の定常領域の塩基配列を鋳型とし、プライマー３７（配列番号１４８）およびプライマー３９（配列番号１５２）、ならびにＫＯＤポリメラーゼを用いて、ＰＣＲによりＣＨ１部分の遺伝子断片を増幅させた。
　ＰＣＲ反応により増幅させた該遺伝子断片を、制限酵素ＮｈｅＩおよびＢａｍＨＩで開裂させたＮ５ＫＧ１＿Ｅ１１ベクターに連結することにより、ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体断片Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆａｂの発現プラスミドベクターＮ５ＫＧ＿Ｅ１１ＶＬ＿Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆａｂを作製した。
　Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７　ＶＨ　Ｆａｂの重鎖のシグナル配列を除いた塩基配列を配列番号１５３に、当該塩基配列から推定されるアミノ酸配列を配列番号１５４に示す。
（３）ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡヘテロバイスペシフィック抗体Ｅ１１＿ＰＮ７　Ｈｅｔｅｒｏ抗体の発現プラスミドベクターの構築
　ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡヘテロバイスペシフィック抗体Ｅ１１＿ＰＮ７　Ｈｅｔｅｒｏ抗体の発現プラスミドベクターを以下の方法で作製した。当該バイスペシフィック抗体は、抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体Ｅ１１抗体のＶＨを含む重鎖と、抗体ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体ＰＮ７抗体のＶＨを含む重鎖とがヘテロダイマーを形成し、ｈＴＲＡＩＬＲ２およびｈＰＳＭＡ対してそれぞれ１価で結合する抗体である。
　当該バイスペシフィック抗体の一つの重鎖は、Ｅ１１抗体のＶＨのアミノ酸配列およびＫ４０９Ｒのアミノ酸変異を導入したヒトＩｇＧ１の定常領域のアミノ酸配列からなる重鎖であり（以下、Ｅ１１　Ｋ４０９Ｒと記載する）、もう一方の重鎖は、ＰＮ７抗体のＶＨのアミノ酸配列およびＦ４０５Ｌのアミノ酸変異を導入したヒトＩｇＧ１の定常領域のアミノ酸配列からなる重鎖である（以下、ＰＮ７　Ｆ４０５Ｌと記載する）。
　Ｅ１１　Ｋ４０９ＲおよびＰＮ７　Ｆ４０５ＬがそれぞれＫ４０９ＲおよびＦ４０５Ｌのアミノ酸変異を含むことにより、これら重鎖間でのヘテロダイマーの形成が促進される［Nature Protocols, 9, 2450-2463 (2014)］［図１５（Ｄ）］。また、当該抗体のＶＬ［図１５（Ｄ）のＥ１１　ＶＬおよびＰＮ７　ＶＬ］は、いずれも同一であり、配列番号１１９で表わされるアミノ酸配列を含む。
　Ｅ１１＿ＰＮ７　Ｈｅｔｅｒｏ抗体の作製方法は実施例１６にて詳述するが、まず、重鎖がＥ１１　Ｋ４０９Ｒで軽鎖がＥ１１抗体のＶＬのアミノ酸配列を含む抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体、および重鎖がＰＮ７　Ｆ４０５Ｌで軽鎖がＥ１１抗体のＶＬのアミノ酸配列を含む抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体をそれぞれ作製する。次に、これら二種類の抗体を混合し、還元反応を行うことにより、各抗体の重鎖Ｅ１１　Ｋ４０９ＲおよびＰＮ７　Ｆ４０５Ｌがヘテロダイマーを形成しているＥ１１＿ＰＮ７　Ｈｅｔｅｒｏ抗体を作製することができる。
　重鎖がＥ１１　Ｋ４０９Ｒで軽鎖がＥ１１のＶＬのアミノ酸配列を含む抗ｈＴＲＡＩＬＲ２抗体の発現プラスミドベクターＮ５ＫＧ１＿Ｅ１１ＶＬ＿Ｅ１１ＶＨ　Ｋ４０９Ｒは、Ｋ４０９Ｒのアミノ酸変異を導入したヒトＩｇＧ１重鎖定常領域遺伝子断片を、制限酵素ＮｈｅＩおよびＢａｍＨＩで開裂させたヒトＩｇＧ１型抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体Ｅ１１抗体の発現プラスミドベクターＮ５ＫＧ１＿Ｅ１１に連結することにより作製した。
　重鎖がＰＮ７　Ｆ４０５Ｌで軽鎖がＥ１１抗体のＶＬのアミノ酸配列を含む抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体の発現プラスミドベクターＮ５ＫＧ１＿Ｅ１１ＶＬ＿ＰＮ７ＶＨ　Ｆ４０５Ｌは、Ｆ４０５Ｌのアミノ酸変異を導入したヒトＩｇＧ１重鎖定常領域遺伝子断片を、制限酵素ＮｈｅＩおよびＢａｍＨＩで開裂させた変異ヒトＩｇＧ４型抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体ＰＮ７抗体の発現プラスミドベクターＮ５ＫＧ４ＰＥ［Ｒ４０９Ｋ］＿Ｅ１１ＶＬ＿ＰＮ７に連結することにより作製した。
　Ｅ１１　Ｋ４０９Ｒのシグナル配列を除いた塩基配列を配列番号１５５に、当該塩基配列から推定されるアミノ酸配列を配列番号１５６に示した。ＰＮ７　Ｆ４０５Ｌのシグナル配列を除いた塩基配列を配列番号１５７に、当該塩基配列から推定されるアミノ酸配列を配列番号１５８に示した。
［実施例１６］ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体または該抗体断片の調製
（１）ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体断片Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆ（ａｂ’）２および　Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆａｂの調製
　実施例１５で作製したｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体断片の発現プラスミドベクターＮ５ＫＧ＿Ｅ１１ＶＬ＿Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆ（ａｂ’）２またはＮ５ＫＧ＿Ｅ１１ＶＬ＿Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　ＦａｂをＥｘｐｉ２９３（登録商標）　Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　Ｓｙｓｔｅｍ（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製）により浮遊性Ｅｘｐｉ２９３Ｆ（登録商標）細胞に遺伝子導入し、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆ（ａｂ’）２または　Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆａｂを一過性発現させた。
　遺伝子導入から４日後に培養上清を回収し、孔径０．２２μｍのメンブランフィルター（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製）で濾過した。この培養上清をＦＬＡＧ融合タンパク質精製用のＡＮＴＩ－ＦＬＡＧ　Ｍ２　Ａｆｆｉｎｉｔｙ　Ｇｅｌ（カラム体積２ｍＬ）（ＳＩＧＭＡ　Ａｌｄｒｉｃｈ社製）にチャージし、ＰＢＳ（－）で洗浄後、溶出バッファー［２０ｍＭ　クエン酸、５０ｍＭ　ＮａＣｌ（ｐＨ３．４）］により溶出し、２００ｍＭ　リン酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ７．０）を含むチューブに回収した。
　次に、該溶出液をＶＩＶＡＳＰＩＮ（Ｓａｒｔｒｉｕｓ　ｓｔｅａｌｉｎ社製）により濃縮し、ＮＡＰ（登録商標）カラム（ＧＥヘルスケアバイオサイエンス社製）により、溶媒をＰＢＳに置換した。さらに、ＡＫＴＡ　Ｅｘｐｌｏｒｅ（ＧＥヘルスケア社製）で、Ｓｕｐｅｒｄｅｘ　Ｈｉｇｈ－ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ　Ｃｏｌｕｍｎｓ（ＧＥヘルスケアバイオサイエンス社製）を用いて、該溶出液よりＥ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆ（ａｂ’）２またはＥ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆａｂの分子量に該当する画分を分取し、孔径０．２２μｍのメンブランフィルター（Ｍｉｌｌｅｘ－ＧＶ、ＭＩＬＬＩＰＯＲＥ社製）でろ過滅菌をすることによりｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体断片Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆ（ａｂ’）２またはＥ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆａｂを含む抗体溶液を得た。
　得られた抗体溶液中のＥ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆ（ａｂ’）２またはＥ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆａｂは、いずれも９５％以上の純度であることをＳＤＳ－ＰＡＧＥ法により確認した。該バイスペシフィック抗体断片は、いずれもｈＴＲＡＩＬＲ２およびｈＰＳＭＡへの結合活性を有していることをフローサイトメトリーにより確認した。
（２）ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡヘテロバイスペシフィック抗体Ｅ１１＿ＰＮ７　Ｈｅｔｅｒｏ抗体の調製
　実施例１５で作製した発現プラスミドベクターＮ５ＫＧ１＿Ｅ１１ＶＬ＿Ｅ１１ＶＨ　Ｋ４０９ＲをＥｘｐｉ２９３（登録商標）　Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　Ｓｙｓｔｅｍ（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製）により浮遊性Ｅｘｐｉ２９３Ｆ（登録商標）細胞に遺伝子導入し、重鎖がＥ１１　Ｋ４０９Ｒで軽鎖がＥ１１抗体のＶＬのアミノ酸配列を含む抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体を一過性発現させた。
　実施例１５で作製した発現プラスミドベクターＮ５ＫＧ１＿Ｅ１１ＶＬ＿ＰＮ７ＶＨ　Ｆ４０５Ｌも同様の方法で浮遊性Ｅｘｐｉ２９３Ｆ（登録商標）細胞に遺伝子導入し、重鎖がＰＮ７　Ｆ４０５Ｌで軽鎖がＥ１１抗体のＶＬのアミノ酸配列を含む抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体を一過性発現させた。
　各遺伝子導入細胞について、遺伝子導入から４日後に培養上清を回収し、孔径０．２２μｍのメンブランフィルター（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製）で濾過して、プロテインＡ樹脂（ＭａｂＳｅｌｅｃｔ、ＧＥヘルスケアバイオサイエンス社製）を用いて抗体をアフィニティー精製した。洗浄液としてリン酸緩衝液を用いた。
　プロテインＡに吸着させた抗体を、溶出バッファー［２０ｍＭ　クエン酸ナトリウム、５０ｍＭ　ＮａＣｌ緩衝液（ｐＨ３．４）］により溶出し、２００Ｍ　リン酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ　７．０）を含むチューブに回収した。次に、溶出液をＶＩＶＡＳＰＩＮ（Ｓａｒｔｒｉｕｓ　ｓｔｅａｌｉｎ社製）により濃縮し、ＮＡＰ（商標）カラム（ＧＥヘルスケアバイオサイエンス社製）により、溶媒をＰＢＳに置換した。
　これにより、重鎖がＥ１１　Ｋ４０９Ｒで軽鎖がＥ１１抗体のＶＬのアミノ酸配列を含む抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体または重鎖がＰＮ７　Ｆ４０５Ｌで軽鎖がＥ１１抗体のＶＬのアミノ酸配列を含む抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体を含む抗体溶液が得られた。
　次に、上記二種類の抗体溶液を用いて、Nature Protocols, 9, 2450-2463 (2014)に準じた以下の反応を行い、ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡヘテロバイスペシフィック抗体ｈＥ１１＿ＰＮ７　Ｈｅｔｅｒｏ抗体を作製した。
　上記の抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体溶液および抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体溶液を混合して、７５ｍＭ　２－ＭＥＡ、ＰＢＳで９０分間還元反応を行った。得られた反応溶液の溶媒をＮＡＰ（登録商標）カラム（ＧＥヘルスケアバイオサイエンス社製）でＰＢＳに置換して、４℃で１６時間インキュベートした。これにより、各抗体の重鎖Ｅ１１　Ｋ４０９ＲおよびＰＮ７　Ｆ４０５Ｌがテロダイマーを形成する。
　さらに、ＡＫＴＡ　Ｅｘｐｌｏｒｅ（ＧＥヘルスケア社製）で、Ｓｕｐｅｒｄｅｘ　Ｈｉｇｈ－ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ　Ｃｏｌｕｍｎｓ（ＧＥヘルスケアバイオサイエンス社製）を用いて、反応溶液よりＥ１１＿ＰＮ７　Ｈｅｔｅｒｏに該当する画分を分取し、孔径０．２２μｍのメンブランフィルター（Ｍｉｌｌｅｘ－ＧＶ、ＭＩＬＬＩＰＯＲＥ社製）でろ過滅菌をすることにより、ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡヘテロバイスペシフィック抗体Ｅ１１＿ＰＮ７　Ｈｅｔｅｒｏ抗体を含む抗体溶液を得た。
　得られた抗体溶液中のＥ１１＿ＰＮ７　Ｈｅｔｅｒｏ抗体は、９５％以上の純度であることをＳＤＳ－ＰＡＧＥ法により確認した。またＥ１１＿ＰＮ７　Ｈｅｔｅｒｏ抗体は、ｈＴＲＡＩＬＲ２およびｈＰＳＭＡへの結合活性を有していることをフローサイトメトリーにより確認した。
［実施例１７］ｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体を用いたＰＣ３細胞およびｈＰＳＭＡ／ＰＣ３細胞の増殖性試験
　実施例７で作製したｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ抗体、および実施例１６で作製したｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体断片Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆ（ａｂ’）２およびＥ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆａｂ、並びにｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡヘテロバイスペシフィック抗体Ｅ１１＿ＰＮ７　Ｈｅｔｅｒｏ抗体を用いて、ＰＣ３細胞および実施例８で得たｈＰＳＭＡ／ＰＣ３細胞の増殖性を以下のように評価した。
　これにより、上記抗体がＰＣ３細胞およびｈＰＳＭＡ／ＰＣ３細胞に対して、細胞増殖を抑制および／または細胞死を誘導するか否かが確認できる。また、陰性コントロールとして公知の抗ＤＮＰモノクローナル抗体を使用した。
　実施例１０にて、ＰＣ３細胞にはｈＴＲＡＩＬＲ２が発現し、ｈＰＳＭＡが発現していないこと、ｈＰＳＭＡ／ＰＣ３細胞には、ｈＴＲＡＩＬＲ２およびｈＰＳＭＡが発現していることを確認されている。
　２～１０×１０４細胞／ｍＬの細胞を５０μＬ／ウェルで平底９６ウェルプレートに播種し、３７℃、５．０％炭酸ガス下で１６時間培養した。さまざまな濃度に調整した抗体を加えて総量１００μＬ／ウェルとし、３７℃、５．０％炭酸ガス下で７２時間培養した後、Ｃｅｌｌ　Ｃｏｕｎｔｉｎｇ　Ｋｉｔ－８（ＷＳＴ－８）（同仁化学社製）を各ウェルに１０μＬずつ添加した。各条件において、４つの独立したウェルを用いて評価した。
　さらに３７℃、５．０％炭酸ガス下で４時間培養した後、０．１Ｍ　ＨＣｌを添加して反応を停止し、波長４５０ｎｍ（参照波長６３０ｎｍ）での吸光度をマイクロプレートリ－ダ－（１４２０　ＡＲＶＯ　マルチラベルカウンター：ＷＡＬＬＡＣ社製）で測定した。得られた結果を図１６および１７に示した。抗体濃度はモル濃度で揃えた。得られた吸光度の値は、各ウェルでの細胞数を反映している。
　ＰＣ３細胞に対する結果を図１６に、ｈＰＳＭＡ／ＰＣ３細胞に対する結果を図１７に示す。図１６および図１７に示すように、１０ｎＭの抗ｈＴＲＡＩＬＲ２アゴニストモノクローナル抗体ＫＭＤＡ２抗体を添加したウェルでは、いずれの細胞に対しても、抗ＤＮＰモノクローナル抗体を添加したウェルよりも細胞数がわずかに低下した。その他の抗体または抗体断片を添加したウェルでは、いずれもＰＣ３細胞について抗ＤＮＰモノクローナル抗体を添加したウェルと同等の細胞数を示した。
　ｈＰＳＭＡ／ＰＣ３細胞については、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ抗体またはＥ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆ（ａｂ’）２を添加したウェルでは、ＫＭＤＡ２抗体を添加したウェルよりも細胞数が低下した。一方、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　ＦａｂおよびＥ１１＿ＰＮ７　Ｈｅｔｅｒｏ抗体を添加したウェルでは、抗ＤＮＰモノクローナル抗体を添加したウェルと同等の細胞数を示した。
　これにより、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ抗体およびＥ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆ（ａｂ’）２は、ｈＴＲＡＩＬＲ２を発現し、ｈＰＳＭＡを発現しない細胞に対しては、細胞増殖を抑制および／または細胞死を誘導せず、ｈＴＲＡＩＬＲ２およびｈＰＳＭＡを発現している細胞に対しては、細胞増殖を抑制および／または細胞死を誘導することが明らかになった。一方、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　ＦａｂおよびＥ１１＿ＰＮ７　Ｈｅｔｅｒｏ抗体は、ｈＴＲＡＩＬＲ２およびｈＰＳＭＡを発現している細胞であっても上記の反応を誘導しないことが明らかになった。
　Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ抗体、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆ（ａｂ’）２、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　ＦａｂおよびＥ１１＿ＰＮ７　Ｈｅｔｅｒｏ抗体は、いずれも同じ抗ｈＴＲＡＩＬＲ２モノクローナル抗体Ｅ１１抗体と抗ｈＰＳＭＡモノクローナル抗体ＰＮ７抗体の可変領域を用いて作製されているが、各抗体または抗体断片の構造上、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　抗体およびＥ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆ（ａｂ’）２は、ｈＴＲＡＩＬＲ２およびｈＰＳＭＡにそれぞれ２価で結合し、Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　ＦａｂおよびＥ１１＿ＰＮ７　Ｈｅｔｅｒｏ抗体は、ｈＴＲＡＩＬＲ２およびｈＰＳＭＡにそれぞれ１価で結合する。
　以上より、本発明のｈＴＲＡＩＬＲ２－ｈＰＳＭＡバイスペシフィック抗体または該抗体断片は、ｈＴＲＡＩＬＲ２およびｈＰＳＭＡにそれぞれ２価で結合したときに、細胞増殖を抑制および／または細胞死を誘導し、各抗原にそれぞれ１価で結合したときには、上記の反応が生じないことが示された。
　本発明により、ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗原結合ドメインとＰＳＭＡに結合する抗原結合ドメインとを含むバイスペシフィック抗体または該抗体断片、該抗体または該抗体断片をコードする塩基配列を有する核酸、該核酸を含む組換えベクター、該組換えベクターを含む形質転換株、該形質転換細胞を用いる該バイスペシフィック抗体または該抗体断片の製造方法、並びに該バイスペシフィック抗体または該抗体断片を含む検出または測定試薬、診断薬および治療薬を提供することができる。
　本発明を特定の態様を用いて詳細に説明したが、本発明の意図と範囲を離れることなく様々な変更および変形が可能であることは、当業者にとって明らかである。なお、本出願は、２０１５年１月８日付けで出願された米国仮出願（６２／１０１０４２号）に基づいており、その全体が引用により援用される。
配列番号１－人工配列の説明：ＫＭＤＡ２のＶＨの塩基配列
配列番号２－人工配列の説明：ＫＭＤＡ２のＶＬの塩基配列
配列番号３－人工配列の説明：プライマー１の塩基配列
配列番号４－人工配列の説明：プライマー２の塩基配列
配列番号５－人工配列の説明：プライマー３の塩基配列
配列番号６－人工配列の説明：プライマー４の塩基配列
配列番号７－人工配列の説明：ＫＭＤＡ２のＶＨのアミノ酸配列
配列番号８－人工配列の説明：ＫＭＤＡ２のＶＬのアミノ酸配列
配列番号９－人工配列の説明：Ｅ１１のＶＨの塩基配列
配列番号１０－人工配列の説明：Ｅ１１のＶＬの塩基配列
配列番号１１－人工配列の説明：ＧＬリンカーのアミノ酸配列
配列番号１２－人工配列の説明：ＭＬリンカーのアミノ酸配列
配列番号１３－人工配列の説明：ＰＩ１３４のＶＨの塩基配列
配列番号１４－人工配列の説明：ＰＩ１０１のＶＨの塩基配列
配列番号１５－人工配列の説明：ＰＮ７のＶＨの塩基配列
配列番号１６－人工配列の説明：ＰＩ１０５のＶＨの塩基配列
配列番号１７－人工配列の説明：ＰＩ１０８のＶＨの塩基配列
配列番号１８－人工配列の説明：ＰＩ１１５のＶＨの塩基配列
配列番号１９－人工配列の説明：ＰＩ１１８のＶＨの塩基配列
配列番号２０－人工配列の説明：ＰＩ１２７のＶＨの塩基配列
配列番号２１－人工配列の説明：ＰＩ１４３のＶＨの塩基配列
配列番号２２－人工配列の説明：ＰＬ２２３のＶＨの塩基配列
配列番号２３－人工配列の説明：２Ａ１０のＶＨの塩基配列
配列番号２４－人工配列の説明：２Ａ１０のＶＨのアミノ酸配列
配列番号２５－人工配列の説明：２Ａ１０のＶＬの塩基配列
配列番号２６－人工配列の説明：２Ａ１０のＶＬのアミノ酸配列
配列番号２７－人工配列の説明：プライマー５の塩基配列
配列番号２８－人工配列の説明：プライマー６の塩基配列
配列番号２９－人工配列の説明：プライマー７の塩基配列
配列番号３０－人工配列の説明：プライマー８の塩基配列
配列番号３１－人工配列の説明：プライマー９の塩基配列
配列番号３２－人工配列の説明：プライマー１０の塩基配列
配列番号３３－人工配列の説明：プライマー１１の塩基配列
配列番号３４－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＣＨ１－ＰＩ１３４＿ＶＨの塩基配列
配列番号３５－人工配列の説明：プライマー１２の塩基配列
配列番号３６－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＣＨ１－ＰＩ１０１＿ＶＨの塩基配列
配列番号３７－人工配列の説明：プライマー１３の塩基配列
配列番号３８－人工配列の説明：プライマー１４の塩基配列
配列番号３９－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＣＨ１－ＰＩ１０５＿ＶＨの塩基配列
配列番号４０－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＣＨ１－ＰＩ１０８＿ＶＨの塩基配列
配列番号４１－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＣＨ１－ＰＩ１１５＿ＶＨの塩基配列
配列番号４２－人工配列の説明：プライマー１５の塩基配列
配列番号４３－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＣＨ１－ＰＩ１１８＿ＶＨの塩基配列
配列番号４４－人工配列の説明：プライマー１６の塩基配列
配列番号４５－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＣＨ１－ＰＩ１２７＿ＶＨの塩基配列
配列番号４６－人工配列の説明：プライマー１７の塩基配列
配列番号４７－人工配列の説明：プライマー１８の塩基配列
配列番号４８－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＣＨ１－ＰＩ１４３＿ＶＨの塩基配列
配列番号４９－人工配列の説明：プライマー１９の塩基配列
配列番号５０－人工配列の説明：プライマー２０の塩基配列
配列番号５１－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＣＨ１－ＰＬ２２３＿ＶＨの塩基配列
配列番号５２－人工配列の説明：プライマー２１の塩基配列
配列番号５３－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＣＨ１－ＰＮ７＿ＶＨの塩基配列
配列番号５４－人工配列の説明：プライマー２２の塩基配列
配列番号５５－人工配列の説明：プライマー２３の塩基配列
配列番号５６－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＣＨ１－ＰＮ１７０＿ＶＨの塩基配列
配列番号５７－人工配列の説明：プライマー２４の塩基配列
配列番号５８－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＧＬ-ＰＩ１３４＿ＶＨの塩基配列
配列番号５９－人工配列の説明：プライマー２５の塩基配列
配列番号６０－人工配列の説明：プライマー２６の塩基配列
配列番号６１－人工配列の説明：プライマー２７の塩基配列
配列番号６２－人工配列の説明：プライマー２８の塩基配列
配列番号６３－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＭＬ-ＰＩ１０１＿ＶＨの塩基配列
配列番号６５－人工配列の説明：プライマー２９の塩基配列
配列番号６６－人工配列の説明：プライマー３０の塩基配列
配列番号６７－人工配列の説明：プライマー３１の塩基配列
配列番号６８－人工配列の説明：プライマー３２の塩基配列
配列番号６９－人工配列の説明：Ｅ１１のＶＨのアミノ酸配列
配列番号７０－人工配列の説明：Ｅ１１のＨＣＤＲ１のアミノ酸配列
配列番号７１－人工配列の説明：Ｅ１１のＨＣＤＲ２のアミノ酸配列
配列番号７２－人工配列の説明：Ｅ１１のＨＣＤＲ３のアミノ酸配列
配列番号７３－人工配列の説明：Ｅ１１のＶＬのアミノ酸配列
配列番号７４－人工配列の説明：Ｅ１１のＬＣＤＲ１のアミノ酸配列
配列番号７５－人工配列の説明：Ｅ１１のＬＣＤＲ２のアミノ酸配列
配列番号７６－人工配列の説明：Ｅ１１のＬＣＤＲ３のアミノ酸配列
配列番号７７－人工配列の説明：ＰＩ１３４のＶＨのアミノ酸配列
配列番号７８－人工配列の説明：ＰＩ１３４、ＰＩ１４３、ＰＩ１０５、ＰＩ１２７、ＰＩ１０８、ＰＩ１１５、ＰＬ２２３、ＰＮ７、ＰＩ１０１、ＰＩ１１８のＨＣＤＲ１のアミノ酸配列
配列番号７９－人工配列の説明：ＰＩ１３４、ＰＩ１４３、ＰＩ１０５、ＰＩ１２７、ＰＩ１０８、ＰＩ１１５、ＰＬ２２３のＨＣＤＲ２のアミノ酸配列
配列番号８０－人工配列の説明：ＰＩ１３４、ＰＩ１４３、ＰＩ１０５、ＰＩ１２７、ＰＩ１０８、ＰＩ１１５、ＰＬ２２３、ＰＩ１０１、ＰＩ１１８のＨＣＤＲ３のアミノ酸配列
配列番号８１－人工配列の説明：ＰＩ１０１のＶＨのアミノ酸配列
配列番号８２－人工配列の説明：ＰＩ１０１、ＰＮ７、ＰＩ１１８のＨＣＤＲ２のアミノ酸配列
配列番号８３－人工配列の説明：ＰＮ７のＶＨのアミノ酸配列
配列番号８４－人工配列の説明：ＰＮ７のＨＣＤＲ３のアミノ酸配列
配列番号８５－人工配列の説明：ＰＩ１０５のＶＨのアミノ酸配列
配列番号８６－人工配列の説明：ＰＩ１０８のＶＨのアミノ酸配列
配列番号８７－人工配列の説明：ＰＩ１１５のＶＨのアミノ酸配列
配列番号８８－人工配列の説明：ＰＩ１１８のＶＨのアミノ酸配列
配列番号８９－人工配列の説明：ＰＩ１２７のＶＨのアミノ酸配列
配列番号９０－人工配列の説明：ＰＩ１４３のＶＨのアミノ酸配列
配列番号９１－人工配列の説明：ＰＬ２２３のＶＨのアミノ酸配列
配列番号９２－人工配列の説明：Ｎ末ＦＬＡＧ融合ＰＳＭＡ細胞外ドメインの塩基配列
配列番号９３－人工配列の説明：ＩｇＧ４　ＣＨ１リンカーのアミノ酸配列
配列番号９４－人工配列の説明：ＰＮ１７０のＶＨの塩基配列
配列番号９５－人工配列の説明：ＰＮ１７０のＶＨのアミノ酸配列
配列番号９６－人工配列の説明：ＰＮ１７０のＨＣＤＲ１のアミノ酸配列
配列番号９７－人工配列の説明：ＰＮ１７０のＨＣＤＲ２のアミノ酸配列
配列番号９８－人工配列の説明：ＰＮ１７０のＨＣＤＲ３のアミノ酸配列
配列番号９９－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＣＨ１－ＰＩ１３４＿ＶＨのアミノ酸配列
配列番号１００－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＣＨ１－ＰＩ１０１＿ＶＨのアミノ酸配列
配列番号１０１－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＣＨ１－ＰＩ１０５＿ＶＨのアミノ酸配列
配列番号１０２－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＣＨ１－ＰＩ１０８＿ＶＨのアミノ酸配列
配列番号１０３－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＣＨ１－ＰＩ１１５＿ＶＨのアミノ酸配列
配列番号１０４－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＣＨ１－ＰＩ１１８＿ＶＨのアミノ酸配列
配列番号１０５－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＣＨ１－ＰＩ１２７＿ＶＨのアミノ酸配列
配列番号１０６－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＣＨ１－ＰＩ１４３＿ＶＨのアミノ酸配列
配列番号１０７－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＣＨ１－ＰＬ２２３＿ＶＨのアミノ酸配列
配列番号１０８－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＣＨ１－ＰＮ７＿ＶＨのアミノ酸配列
配列番号１０９－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＣＨ１－ＰＮ１７０＿ＶＨのアミノ酸配列
配列番号１１０－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＧＬ－ＰＩ１３４＿ＶＨのアミノ酸配列
配列番号１１１－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＭＬ－ＰＩ１０１＿ＶＨのアミノ酸配列
配列番号１１３－人工配列の説明：Ｎ末ＦＬＡＧ融合ＰＳＭＡ細胞外ドメインのアミノ酸配列
配列番号１１４－人工配列の説明：ＫＭＤＡ２のＶＨのシグナル配列を除いたアミノ酸配列
配列番号１１５－人工配列の説明：ＫＭＤＡ２のＶＬのシグナル配列を除いたアミノ酸配列
配列番号１１６－人工配列の説明：２Ａ１０のＶＨのシグナル配列を除いたアミノ酸配列
配列番号１１７－人工配列の説明：２Ａ１０のＶＬのシグナル配列を除いたアミノ酸配列
配列番号１１８－人工配列の説明：Ｅ１１のＶＨのシグナル配列を除いたアミノ酸配列
配列番号１１９－人工配列の説明：Ｅ１１のＶＬのシグナル配列を除いたアミノ酸配列
配列番号１２０－人工配列の説明：ＰＩ１３４のＶＨのシグナル配列を除いたアミノ酸配列
配列番号１２１－人工配列の説明：ＰＩ１０１のＶＨのシグナル配列を除いたアミノ酸配列
配列番号１２２－人工配列の説明：ＰＮ７のＶＨのシグナル配列を除いたアミノ酸配列
配列番号１２３－人工配列の説明：ＰＩ１０５のＶＨのシグナル配列を除いたアミノ酸配列
配列番号１２４－人工配列の説明：ＰＩ１０８のＶＨのシグナル配列を除いたアミノ酸配列
配列番号１２５－人工配列の説明：ＰＩ１１５のＶＨのシグナル配列を除いたアミノ酸配列
配列番号１２６－人工配列の説明：ＰＩ１１８のＶＨのシグナル配列を除いたアミノ酸配列
配列番号１２７－人工配列の説明：ＰＩ１２７のＶＨのシグナル配列を除いたアミノ酸配列
配列番号１２８－人工配列の説明：ＰＩ１４３のＶＨのシグナル配列を除いたアミノ酸配列
配列番号１２９－人工配列の説明：ＰＬ２２３のＶＨのシグナル配列を除いたアミノ酸配列
配列番号１３０－人工配列の説明：ＰＮ１７０のＶＨのシグナル配列を除いたアミノ酸配列
配列番号１３１－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＣＨ１－ＰＩ１３４＿ＶＨのシグナル配列を除いたアミノ酸配列
配列番号１３２－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＣＨ１－ＰＩ１０１＿ＶＨのシグナル配列を除いたアミノ酸配列
配列番号１３３－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＣＨ１－ＰＩ１０５＿ＶＨのシグナル配列を除いたアミノ酸配列
配列番号１３４－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＣＨ１－ＰＩ１０８＿ＶＨのシグナル配列を除いたアミノ酸配列
配列番号１３５－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＣＨ１－ＰＩ１１５＿ＶＨのシグナル配列を除いたアミノ酸配列
配列番号１３６－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＣＨ１－ＰＩ１１８＿ＶＨのシグナル配列を除いたアミノ酸配列
配列番号１３７－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＣＨ１－ＰＩ１２７＿ＶＨのシグナル配列を除いたアミノ酸配列
配列番号１３８－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＣＨ１－ＰＩ１４３＿ＶＨのシグナル配列を除いたアミノ酸配列
配列番号１３９－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＣＨ１－ＰＬ２２３＿ＶＨのシグナル配列を除いたアミノ酸配列
配列番号１４０－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＣＨ１－ＰＮ７＿ＶＨのシグナル配列を除いたアミノ酸配列
配列番号１４１－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＣＨ１－ＰＮ１７０＿ＶＨのシグナル配列を除いたアミノ酸配列
配列番号１４２－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＧＬ－ＰＩ１３４＿ＶＨのシグナル配列を除いたアミノ酸配列
配列番号１４３－人工配列の説明：Ｅ１１＿ＶＨ－ＭＬ－ＰＩ１０１＿ＶＨのシグナル配列を除いたアミノ酸配列配列番号１４４－人工配列の説明：プライマー３３
配列番号１４５－人工配列の説明：プライマー３４の塩基配列
配列番号１４６－人工配列の説明：プライマー３５の塩基配列
配列番号１４７－人工配列の説明：プライマー３６の塩基配列
配列番号１４８－人工配列の説明：プライマー３７の塩基配列
配列番号１４９－人工配列の説明：プライマー３８の塩基配列
配列番号１５０－人工配列の説明：Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆ（ａｂ’）２の塩基配列
配列番号１５１－人工配列の説明：合成コンストラクトのアミノ酸配列
配列番号１５２－人工配列の説明：プライマー３９の塩基配列
配列番号１５３－人工配列の説明：Ｅ１１－ＣＨ１－ＰＮ７ＶＨ　Ｆａｂの塩基配列
配列番号１５４－人工配列の説明：合成コンストラクトのアミノ酸配列
配列番号１５５－人工配列の説明：Ｅ１１　Ｋ４０９Ｒの塩基配列
配列番号１５６－人工配列の説明：合成コンストラクトのアミノ酸配列
配列番号１５７－人工配列の説明：ＰＮ７　Ｆ４０５Ｌの塩基配列
配列番号１５８－人工配列の説明：合成コンストラクトのアミノ酸配列

Claims (30)

  1. 　Ｔｕｍｏｒ　ｎｅｃｒｏｓｉｓ　ｆａｃｔｏｒ（ＴＮＦ）－ｒｅｌａｔｅｄ　ａｐｏｐｔｏｓｉｓ　ｉｎｄｕｃｉｎｇ　ｌｉｇａｎｄ　ｒｅｃｅｐｔｏｒ　２（ＴＲＡＩＬＲ２）に結合する抗原結合ドメインとｐｒｏｓｔａｔｅ－ｓｐｅｃｉｆｉｃ　ｍｅｍｂｒａｎｅ　ａｎｔｉｇｅｎ（ＰＳＭＡ）に結合する抗原結合ドメインとを含むバイスぺシフィック抗体または該抗体断片。
  2. 　ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡに結合したときにのみ、該ＴＲＡＩＬＲ２を活性化する請求項１に記載のバイスペシフィック抗体または該抗体断片。
  3. 　ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡにそれぞれ二価で結合する、請求項１または２に記載のバイスペシフィック抗体または該抗体断片。
  4. 　ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗原結合ドメインが、ＰＳＭＡに結合する抗原結合ドメインよりもＮ末端側に位置する、請求項１～３のいずれか１項に記載のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片。
  5. 　ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗原結合ドメインが、ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗体の可変領域（Ｖ領域）であり、かつＰＳＭＡに結合する抗原結合ドメインが、ＰＳＭＡに結合する抗体のＶ領域である、請求項１～４のいずれか１項に記載のバイスペシフィック抗体または該抗体断片。
  6. 　ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗体の重鎖可変領域（ｈｅａｖｙ　ｃｈａｉｎ　ｖａｒｉａｂｌｅ　ｒｅｇｉｏｎ、以下ＶＨと記載する）の相補性決定領域（ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔａｒｉｔｙ　ｄｅｔｅｒｍｉｎｉｎｇ　ｒｅｇｉｏｎ；ＣＤＲ）１～３のアミノ酸配列が、それぞれ配列番号７０～７２で表されるアミノ酸配列を含み、かつ軽鎖可変領域（ｌｉｇｈｔ　ｃｈａｉｎ　ｖａｒｉａｂｌｅ　ｒｅｇｉｏｎ、以下ＶＬと記載する）のＣＤＲ１～３のアミノ酸配列が、それぞれ配列番号７４～７６で表されるアミノ酸配列を含む、請求項５に記載のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片。
  7. 　ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗体のＶＨのアミノ酸配列が、配列番号１１８で表されるアミノ酸配列を含み、かつＶＬのアミノ酸配列が、配列番号１１９で表されるアミノ酸配列を含む、請求項５または６に記載のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片。
  8. 　ＰＳＭＡに結合する抗体のＶＬのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列が、それぞれ配列番号７４～７６で表されるアミノ酸配列を含み、かつＶＨのＣＤＲ１～３のアミノ酸配列が、以下の（ａ）～（ｄ）からなる群より選ばれるいずれか一つのアミノ酸配列を含む、請求項５～７のいずれか１項に記載のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片。
    　（ａ）それぞれ配列番号７８、８２および８４で表されるアミノ酸配列、
    　（ｂ）それぞれ配列番号７８、７９および８０で表されるアミノ酸配列、
    　（ｃ）それぞれ配列番号７８、８２および８０で表されるアミノ酸配列、および
    　（ｄ）それぞれ配列番号９６～９８で表されるアミノ酸配列。
  9. 　ＰＳＭＡに結合する抗体のＶＬのアミノ酸配列が、配列番号１１９で表されるアミノ酸配列を含み、かつＶＨのアミノ酸配列が、以下の（ｅ）～（ｏ）からなる群より選ばれるいずれか一つのアミノ酸配列を含む、請求項５～８のいずれか１項に記載のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片。
    　（ｅ）配列番号１２２で表されるアミノ酸配列、
    　（ｆ）配列番号１２０で表されるアミノ酸配列、
    　（ｇ）配列番号１２８で表されるアミノ酸配列、
    　（ｈ）配列番号１２３で表されるアミノ酸配列、
    　（ｉ）配列番号１２７で表されるアミノ酸配列、
    　（ｊ）配列番号１２４で表されるアミノ酸配列、
    　（ｋ）配列番号１２５で表されるアミノ酸配列、
    　（ｌ）配列番号１２９で表されるアミノ酸配列、
    　（ｍ）配列番号１２１で表されるアミノ酸配列、
    　（ｎ）配列番号１２６で表されるアミノ酸配列、および
    　（ｏ）配列番号１３０で表されるアミノ酸配列。
  10. 　ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗体のＶＨと、ＰＳＭＡに結合する抗体のＶＨとが、イムノグロブリンドメインまたは該ドメイン断片を含むリンカーを介して連結されたポリペプチドを含む重鎖を含む、請求項５～９のいずれか１項に記載のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片。
  11. 　リンカーが、ＩｇＧ４またはＩｇＭサブクラス由来のリンカーである、請求項１０に記載のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片。
  12. 　ＴＲＡＩＬＲ２に結合する抗体のＶＨ、リンカーおよびＰＳＭＡに結合する抗体のＶＨからなるポリペプチドのアミノ酸配列が以下の（Ａ）～（М）からなる群より選ばれるいずれか一つのアミノ酸配列である、請求項１０または１１に記載のバイスペシフィック抗体または該抗体断片。
    　（Ａ）配列番号１３１で表されるアミノ酸配列、
    　（Ｂ）配列番号１３２で表されるアミノ酸配列、
    　（Ｃ）配列番号１３３で表されるアミノ酸配列、
    　（Ｄ）配列番号１３４で表されるアミノ酸配列、
    　（Ｅ）配列番号１３５で表されるアミノ酸配列、
    　（Ｆ）配列番号１３６で表されるアミノ酸配列、
    　（Ｇ）配列番号１３７で表されるアミノ酸配列、
    　（Ｈ）配列番号１３８で表されるアミノ酸配列、
    　（Ｉ）配列番号１３９で表されるアミノ酸配列、
    　（Ｊ）配列番号１４０で表されるアミノ酸配列、
    　（Ｋ）配列番号１４１で表されるアミノ酸配列、
    　（Ｌ）配列番号１４２で表されるアミノ酸配列、および
    　（Ｍ）配列番号１４３で表されるアミノ酸配列。
  13. 　請求項１～１２のいずれか１項に記載のバイスペシフィック抗体または該抗体断片をコードする塩基配列を有する核酸。
  14. 　請求項１３に記載の核酸を含有する組換えベクター。
  15. 　請求項１４に記載の組換えベクターを含む形質転換株。
  16. 　請求項１５に記載の形質転換株を培地中で培養し、培養上清からバイスぺシフィック抗体または該抗体断片を採取することを含む、請求項１～１２のいずれか１項に記載のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片の製造方法。
  17. 　請求項１～１２のいずれか１項に記載のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片を含む、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方を検出または測定するための試薬。
  18. 　請求項１～１２のいずれか１項に記載のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片を含有する、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡ発現細胞が関与する疾患の診断薬。
  19. 　ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡ発現細胞が関与する疾患が悪性腫瘍およびがんである、請求項１８に記載の診断薬。
  20. 　請求項１～１２のいずれか１項に記載のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片を有効成分として含有する、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡ発現細胞が関与する疾患の治療薬。
  21. 　ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡ発現細胞が関与する疾患が悪性腫瘍およびがんである、請求項２０に記載の治療薬。
  22. 　請求項１～１２のいずれか１項に記載のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片を用いて、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方を検出または測定する方法。
  23. 　請求項１～１２のいずれか１項に記載のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片を用いてＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡの少なくとも一方を検出または測定することを含む、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡ発現細胞が関与する疾患の診断方法。
  24. 　ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡ発現細胞が関与する疾患が悪性腫瘍およびがんである、請求項２３に記載の診断方法。
  25. 　請求項１～１２のいずれか１項に記載のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片を用いる、ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡ発現細胞が関与する疾患の治療方法。
  26. 　ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡ発現細胞が関与する疾患が悪性腫瘍およびがんである、請求項２５に記載の治療方法。
  27. 　ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡ発現細胞が関与する疾患の診断薬を製造するための、請求項１～１２のいずれか１項に記載のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片の使用。
  28. 　ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡ発現細胞が関与する疾患が悪性腫瘍およびがんである、請求項２７に記載の使用。
  29. 　ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡ発現細胞が関与する疾患の治療薬を製造するための、請求項１～１２のいずれか１項に記載のバイスぺシフィック抗体または該抗体断片の使用。
  30. 　ＴＲＡＩＬＲ２およびＰＳＭＡ発現細胞が関与する疾患が悪性腫瘍およびがんである、請求項２９に記載の使用。
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Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2020507577A (ja) * 2017-02-10 2020-03-12 ドラゴンフライ セラピューティクス， インコーポレイテッド Ｐｓｍａ、ｎｋｇ２ｄおよびｃｄ１６に結合するタンパク質
WO2020138487A1 (ja) * 2018-12-28 2020-07-02 協和キリン株式会社 ＴｆＲに結合するバイスペシフィック抗体
JP2023507740A (ja) * 2019-12-20 2023-02-27 オートラス リミテッド Ｐｓｍａに結合する抗原結合ドメイン

Families Citing this family (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
TWI888487B (zh) * 2020-02-14 2025-07-01 日商協和麒麟股份有限公司 與ｃｄ３結合之雙特異性抗體
KR20240051277A (ko) * 2021-09-03 2024-04-19 노바록 바이오테라퓨틱스 리미티드 PD-L1, CD137, 및/또는 TGFβ에 대한 이중특이체 및 삼중특이체 결합 단백질 및 이의 용도
AU2024350163A1 (en) * 2023-09-25 2026-04-02 Trio Pharmaceuticals, Inc. Targeted activation of endogenous cell death
CN118027203A (zh) * 2023-12-11 2024-05-14 合肥天港免疫药物有限公司 Psma抗体及其应用
CN120904336B (zh) * 2025-10-10 2025-12-30 西北农林科技大学深圳研究院 一种特异性结合猪IgM Fc受体FcμR的纳米抗体或其抗原结合片段及应用

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2005014618A2 (en) * 2003-08-08 2005-02-17 Immunomedics, Inc. Bispecific antibodies for inducing apoptosis of tumor and diseased cells
WO2006083971A2 (en) * 2005-02-02 2006-08-10 Genentech, Inc. Dr5 antibodies and uses thereof
WO2012145714A2 (en) * 2011-04-22 2012-10-26 Emergent Product Development Seattle, Llc Prostate-specific membrane antigen binding proteins and related compositions and methods

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7115717B2 (en) * 2001-05-18 2006-10-03 Kirin Beer Kabushiki Kaisha Anti-TRAIL-R antibodies

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2005014618A2 (en) * 2003-08-08 2005-02-17 Immunomedics, Inc. Bispecific antibodies for inducing apoptosis of tumor and diseased cells
WO2006083971A2 (en) * 2005-02-02 2006-08-10 Genentech, Inc. Dr5 antibodies and uses thereof
WO2012145714A2 (en) * 2011-04-22 2012-10-26 Emergent Product Development Seattle, Llc Prostate-specific membrane antigen binding proteins and related compositions and methods

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
See also references of EP3243837A4 *

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2020507577A (ja) * 2017-02-10 2020-03-12 ドラゴンフライ セラピューティクス， インコーポレイテッド Ｐｓｍａ、ｎｋｇ２ｄおよびｃｄ１６に結合するタンパク質
WO2020138487A1 (ja) * 2018-12-28 2020-07-02 協和キリン株式会社 ＴｆＲに結合するバイスペシフィック抗体
JP2023507740A (ja) * 2019-12-20 2023-02-27 オートラス リミテッド Ｐｓｍａに結合する抗原結合ドメイン
JP7600240B2 (ja) 2019-12-20 2024-12-16 オートラス リミテッド Ｐｓｍａに結合する抗原結合ドメイン
US12496314B2 (en) 2019-12-20 2025-12-16 Autolus Limited Antigen-binding domain

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