WO2021137645A1 - 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주의 직접 검출 방법 - Google Patents

카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주의 직접 검출 방법 Download PDF

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Definitions

  • the present invention provides an in vivo active protein for KPC, OXA, NDM, IMP, VIM and/or GES, which are enzymes that decompose carbapenem antibiotics, without pretreatment of the specimen sample through top-down mass spectrometry. It relates to a method for direct detection.
  • Mass spectrometry including MALDI-TOF, is a low-cost and high-efficiency identification system compared to sequencing methods such as PCR, and can be an important means for rapid identification of microorganisms. It is possible to quickly identify a strain with a matching mass value by comparing it with mass data in a database constructed through mass spectrometry data for an unknown strain.
  • the present inventors selected proteins directly involved in resistance to beta-lactam antibiotics, specifically carbapenem antibiotics, and measured the exact mass values of their in vivo active types to determine whether carbapenem-resistant strains exist. It was intended to provide a rapid and accurate diagnostic method for carbapenem-resistant strain infection by establishing accurate reference data.
  • the present inventors have made intensive research efforts to develop an efficient diagnostic method that can quickly determine whether or not an antibiotic-resistant strain is infected by detecting the antibiotic-degrading enzyme involved in beta-lactam-based antibiotic resistance in a sample with simple and high reliability. did.
  • the beta-lactam-based antibiotic an enzyme degrading carbapenem, specifically KPC, OXA, NDM, IMP, VIM and GES proteins, is an active type in which an N-terminal residue of a certain length is cleaved in vivo.
  • a pathogenic strain having resistance to carbapenem antibiotics in a biological sample specifically, a pathogenic strain expressing KPC, OXA, NDM, IMP, VIM and/or GES is to do
  • a method for detecting a pathogenic strain having resistance to carbapenem antibiotics in a biological sample comprising the steps of:
  • a protein of the same mass as that of Klebsiella pneumoniae carbapenemase (KPC) or OXA carbapenemase from which 21 or 22 amino acid residues at the N-terminus have been removed, or 18, 19, 20, A group consisting of NDM (New Delhi Metallo-beta-lactamase), IMP (imipenemase), VIM (Verona integron-borne metallo- ⁇ -lactamase) and GES (Guiana extended spectrum ⁇ -lactamase) from which 21 or 26 amino acid residues have been removed
  • KPC Klebsiella pneumoniae carbapenemasemase
  • OXA carbapenemase from which 21 or 22 amino acid residues at the N-terminus have been removed, or 18, 19, 20,
  • the present inventors have made intensive research efforts to develop an efficient diagnostic method that can quickly determine whether or not an antibiotic-resistant strain is infected by detecting the antibiotic-degrading enzyme involved in beta-lactam-based antibiotic resistance in a sample with simple and high reliability. did.
  • the beta-lactam-based antibiotic an enzyme degrading carbapenem, specifically KPC, OXA, NDM, IMP, VIM and GES proteins, is an active type in which an N-terminal residue of a certain length is cleaved in vivo.
  • pathogenic strain refers to, for example, Staphylococcus aureus, Streptococcus, Escherichia coli, Pneumococcus pneumoniae, Pseudomonas aeruginosa, Pseudomonas aeruginosa, Pseudomonas otitidis, Micrococcus luteus, Citrobacter cocceri, Protus mummy. Bilis and Mycobacterium ulserans, including, but not limited to, any bacteria that act as the cause of an infection or disease.
  • “having resistance to antibiotics” means a case in which the microorganism can grow even in an environment in which an antibiotic for a specific pathogenic microorganism is present in a high concentration or in an effective amount.
  • Antibiotic resistance can be determined by detecting the presence of a degrading enzyme that decomposes the antibiotic as a protein secreted by a pathogenic microorganism and removes or reduces its activity.
  • a degrading enzyme that decomposes the antibiotic as a protein secreted by a pathogenic microorganism and removes or reduces its activity.
  • beta-lactam antibiotics that inhibit bacterial cell wall synthesis such as penicillin, cephalosporin, monobactam, and carbapenem, are incapacitated by beta-lactamase and do not inhibit pathogens expressing them. can not do it.
  • the term “resistance” is used interchangeably with “resistance”, “low therapeutic responsiveness” and “low prophylactic responsiveness”.
  • treatment refers to (a) inhibiting the development of a disease, disorder or condition; (b) alleviation of the disease, condition or condition; or (c) eliminating the disease, condition or symptom.
  • therapeutic responsiveness refers to the degree to which beta-lactam antibiotics, including carbapenem, have the above action in vivo when administered in a therapeutically effective amount to a patient infected with a pathogenic strain.
  • prevention refers to inhibiting the occurrence of a disease or disease in a subject who has never been diagnosed with a disease or disease, but is likely to have the disease or disease. Therefore, “prophylactic reactivity” refers to the degree to which beta-lactam antibiotics, including carbapenem, act to inhibit infection in vivo when administered in a prophylactically effective amount to a normal person whose infection has not yet been confirmed.
  • biological sample refers to any sample obtained from mammals, including humans, containing or likely to contain pathogenic strains to be inhibited with beta-lactam antibiotics such as carbapenem, and includes blood, tissue, and organs. , cells or cell cultures.
  • the term “subject” refers to a sample for examining the presence of a pathogenic strain to be inhibited with a beta-lactam-based antibiotic such as carbapenem or whether the strain is antibiotic resistant, and ultimately to the pathogenic strain having antibiotic resistance. It refers to the subject to be analyzed whether or not infected by Subjects include, but are not limited to, humans, mice, rats, guinea pigs, dogs, cats, horses, cattle, pigs, monkeys, chimpanzees, baboons or rhesus monkeys, specifically humans.
  • composition of the present invention provides information for predicting the prophylactic as well as the therapeutic reactivity of beta-lactam antibiotics such as carbapenem
  • the subject of the present invention may be a patient infected with the strain or the infection has not yet been confirmed. It may also be a healthy subject.
  • top-down mass spectrometry refers to an analysis that directly measures the mass value of a full-length protein without going through a process of fragmentation of the protein into peptide fragments, specifically It refers to an analysis in which fragmentation of the target protein is not performed before the protein sample is injected into the mass spectrometer.
  • Another feature of the present invention is that the procedure is simplified by performing direct mass spectrometry on the full-length protein without random degradation of the protein using a proteolytic enzyme such as trypsin, and the digested fragment is The point is that it is possible to determine the existence of a target protein with remarkably high reliability in a much shorter time than the conventional method of indirectly identifying a protein by collecting mass information about the protein and collecting vast amounts of information on the fragmentation tendency of various proteins. .
  • the same mass of proteins means that the mass value measured through the mass spectrometry method of the present invention and the reference mass value, for example, the amino acid sequence and molecular weight of each carbapenem-degrading enzyme are known. 18, 19, 20, 21, 22 or 26 amino acid residues at the terminal are substantially equal to the value corresponding to the mass value removed. “Substantially the same” means, for example, if the measured Da value or m/z ⁇ z value lies within ⁇ 10, more specifically within ⁇ 7, or even more specifically ⁇ 7 of the reference mass value. When it exists within the range of 5, it most specifically means within the range of ⁇ 3.
  • the mass value of the carbapenem-degrading enzyme which is a criterion for determining whether substantially identical, exists in an oxidized state of one to three methionine residues (i.e., an increase of 16, 32 or 48 from a known mass value), or two Includes the mass value of a state in which a disulfide bond is formed between Cys residues (ie, reduced by 2 from a known mass value).
  • the method further comprises the step of performing ion exchange chromatography on the protein isolated in step (a).
  • the term “ion-exchange chromatography” refers to a target substance that is charged from a heterogeneous mixture by using a phenomenon in which ions or charged compounds bind to an ion exchange resin by electrostatic force. It refers to a separation and purification method that separates Ion exchange chromatography has an ion exchange resin to which various functional groups are bound.
  • An anion exchange resin has a positively charged functional group and binds to a negatively charged target material in the mixture by electrostatic attraction, and the cation exchange resin binds specifically to a positively charged target substance.
  • the ion exchange chromatography is any one selected from the group consisting of anion exchange chromatography, cation exchange chromatography, and sequential combinations thereof.
  • the anion exchange resin used in the present invention may have, for example, a diethylaminoethyl (DEAE) or quaternary ammonium functional group, but is not limited thereto, and a conventional cationic functional group that provides a positive charge to the support.
  • DAE diethylaminoethyl
  • Ramen can be used without restrictions.
  • Strongly basic anion exchange groups include, for example, Q Sepharose Fast Flow, Q Sepharose High Performance, Resource Q, Source 15Q, Source 30Q, Mono Q, Mini Q, Capto Q, Capto Q ImpRes, Q HyperCel, Q Cermic HyperD F, Nuvia Q, UNOsphere Q, Macro-Prep High Q, Macro-Prep 25 Q, Fractogel EMD TMAE(S), Fractogel EMD TMAE Hicap (M), Fractogel EMD TMAE (M), Eshmono Q, Toyopearl QAE-550C, Toyopearl SuperQ- 650C, Toyopearl GigaCap Q-650M, Toyopearl Q-600C AR, Toyopearl SuperQ-650M, Toyopearl SuperQ-650S, TSKgel SuperQ-5PW (30), TSKgel SuperQ-5PW (20) and TSKgel SuperQ-5PW. All anion exchange resins known in the art may
  • the cation exchange resin used in the present invention may have, for example, a sulfone group or a carboxy group, but is not limited thereto, and any conventional cationic functional group that provides a negative charge to the support may be used without limitation.
  • Exemplary of the cation exchange resins are Fractogel, CM (carboxymethyl), SE (sulfoethyl), SP (sulfopropyl), P (phosphate), S (sulfonate), PROPAC WCX-10TM (Dionex) ), Capto S, S-Sepharose FF, Fractogel EMD SO3M, Toyopearl Megacap II SP 550C (Toyopearl Megacap II SP 550C), Poros 50 HS (Poros 50 HS) , Poros XS and SP-sepharose matrix (SP-sepharose matrix) may be selected from the group consisting of, but is not limited thereto.
  • SP (sulfopropyl) resin may be used.
  • an equilibration buffer, a wash buffer, and an elution buffer known in the art, such as sodium phosphate buffer, citrate buffer, and acetic acid buffer, may be used.
  • Such ion exchange chromatography can be appropriately separated according to the charge of the protein to be separated/purified and the order to be separated, for example, cation exchange chromatography to sequentially separate positively charged proteins and negatively charged proteins. After performing the graph, anion exchange chromatography may be sequentially performed after the completion.
  • the step (a) is made by adding a surfactant to the biological sample.
  • the present invention direct mass spectrometry of a full-length protein in a top-down method is possible without a fragmentation process using a protease.
  • the present inventors add a surfactant to the biological sample to be analyzed, the intact full-length protein present in the cell membrane or cytoplasm is encapsulated, so that the target protein can be identified quickly and accurately without random protein degradation by enzymes. found
  • any ionic, nonionic or zwitterionic surfactant may be used without limitation as long as it is a general surfactant capable of forming micelles sufficient to trap full-length proteins.
  • the surfactant used in the present invention is an ionic surfactant or a nonionic surfactant.
  • the ionic surfactant that can be used in the present invention is, for example, DOC (Sodium Deoxycholate), Medialan A (Medialan A), Quaternium-60, cetylpyridinium chloride (cetylpyridinium chloride), cetylpyridinium bromide (cetylpyridinium bromide) ), cetyltrimethylammonium chloride (cetyltrimetylammoniumchloride), cetyltrimethylammonium bromide (cetyltrimetylammonium bromide) and gardenol (Gardinol), but are not limited thereto.
  • DOC Sodium Deoxycholate
  • Medialan A Medialan A
  • Quaternium-60 cetylpyridinium chloride
  • cetylpyridinium bromide cetylpyridinium bromide
  • cetyltrimethylammonium chloride cetyltrimetylammoniumchloride
  • cetyltrimethylammonium bromide cetyltrimet
  • Nonionic surfactants that can be used in the present invention include, for example, OG ( n- octyl- ⁇ -D-glucopyranoside), OTG ( n- octyl- ⁇ -D-thioglucopyranoside), OGNG (Octyl Glucose Neopentyl Glycol) and DDM.
  • OG n- octyl- ⁇ -D-glucopyranoside
  • OTG n- octyl- ⁇ -D-thioglucopyranoside
  • OGNG Octyl Glucose Neopentyl Glycol
  • DDM n -Dodecyl- ⁇ -D-maltopyranoside
  • DDTM n -Dodecyl- ⁇ -D-thiomaltopyranoside
  • step (a) is performed by additionally adding a lysis buffer to the biological sample. That is, the surfactant of the present invention may be used together with a lysis buffer in the step of lysing the cells in order to isolate the protein expressed by the pathogenic strain.
  • the lysis buffer may be a volatile buffer.
  • the volatile buffer that can be used in the present invention includes, for example, ammonium bicarbonate, acetic acid, formic acid, ammonia, ammonium carbonate and pyridine/triethanolamine, but is not limited thereto, and the concentration of hydrogen ions in the sample is within a certain range. Any buffer that has a low boiling point while remaining within the range and evaporates easily into the atmosphere can be used.
  • the method of the present invention further comprises a sonication step between the step (a) and the step (b).
  • the step (b) is MALDI-TOF (Matrix-Assisted Laser Desorption/Ionization Time of Flight) mass spectrometry, SELDI-TOF (Sulface Enhanced Laser Desorption/Ionization Time of Flight) mass spectrometry, Consisting of ESI-TOF (Electrospray ionisation time-of-flight) mass spectrometry, liquid chromatography-Mass Spectrometry (LC-MS) and LC-MS/MS (liquid chromatography-Mass Spectrometry/Mass Spectrometry) A mass spectrometry method selected from the group is used, and more specifically, MALDI-TOF (Matrix Desorption/Ionization Time of Flight) mass spectrometry is used.
  • MALDI-TOF Microx-Assisted Laser Desorption/Ionization Time of Flight
  • MALDI-TOF mass spectrometry measures the time-of-flight for the generated ions to reach the detector after desorption and ionization by irradiating a laser to a sample supported by a matrix.
  • the carbapenem degrading enzyme is a KPC protein, and when a protein of the same mass as the KPC protein from which 21 amino acid residues at the N-terminus have been removed is detected as a result of the mass spectrometry, in the biological sample determines that a pathogenic strain with resistance to carbapenem antibiotics exists.
  • the carbapenem degrading enzyme is an OXA protein, and when a protein having the same mass as the OXA protein from which 22 amino acid residues at the N-terminus have been removed is detected as a result of the mass spectrometry, in the biological sample determines that a pathogenic strain with resistance to carbapenem antibiotics exists.
  • the carbapenem degrading enzyme is an NDM protein, and when a protein having the same mass as the NDM protein from which 19 or 20 amino acid residues at the N-terminus have been removed is detected as a result of the mass spectrometry, the It is determined that a pathogenic strain having resistance to the carbapenem antibiotic exists in the biological sample.
  • the carbapenem degrading enzyme is an IMP protein, and when a protein having the same mass as the IMP protein from which 18 to 20 amino acid residues at the N-terminus have been removed is detected as a result of the mass spectrometry, the biological It is determined that a pathogenic strain having resistance to the carbapenem antibiotic exists in the sample.
  • the carbapenem degrading enzyme is a VIM protein, and when a protein having the same mass as the VIM protein from which 25 or 26 amino acid residues at the N-terminus have been removed is detected as a result of the mass spectrometry, the biological It is determined that a pathogenic strain having resistance to the carbapenem antibiotic exists in the sample.
  • the carbapenem degrading enzyme is a GES protein, and when a protein having the same mass as the GES protein from which 18 amino acid residues at the N-terminus have been removed is detected as a result of the mass spectrometry, in the biological sample determines that a pathogenic strain with resistance to carbapenem antibiotics exists.
  • the N-terminal residue of a certain length must be removed (active form), and in order to maintain the activity, the present inventors It was confirmed that the length of the N-terminal residue to be removed was different depending on the type of enzyme.
  • the present invention provides significantly improved accuracy and diagnostic reliability compared to the prior art for mechanically detecting the full-length amino acid mass values of these known carbapenem degrading enzymes.
  • the pathogenic strain present in the sample is a KPC protein-producing strain.
  • the mass values listed above are mass values in which the N-terminal 21 amino acid residues have been removed from the KPC subtype protein.
  • KPC carbapenem degrading enzyme
  • the present inventors have found that all subtype proteins of the carbapenem degrading enzyme, KPC, maintain carbapenem-degrading activity only when the 21 amino acid residues at the N-terminus are removed in vivo. Accordingly, when any one or more mass values corresponding thereto are detected as a result of mass spectrometry, it may be determined that the virus is infected with a strain expressing at least one of the KPC subtype proteins, that is, a pathogenic strain having resistance to the carbapenem antibiotic.
  • the mass value (m/z ⁇ z) further includes a mass value increased by 16 or 32 in each mass value.
  • the mass value (m/z x z) additionally includes a mass value reduced by 2 from each mass value.
  • the present inventors found that one of the three methionine residues (Met49, Met116, Met151) of the KPC protein may exist in an oxidized state, thereby providing one oxygen atom at the mass values listed above. Even when the increased molecular weight (+16) is measured, it can also be determined that a strain expressing the KPC protein is present in the sample. In addition, the present inventors also found that the KPC protein can exist in a disulfide bond between Cys68 and Cys237, so the molecular weight (-2) corresponding to the release of two hydrogen atoms according to the disulfide bond at the mass values listed above is measured. Even in the case of a strain, the presence of an antibiotic-resistant strain can be more tightly detected by determining that a strain expressing the KPC protein is present in the sample.
  • the mass spectrometry results 28147, 28098, 28117, 27679, 28172, 28158, 28282, 28032, 28048, 28252, 27673, 28190, 28260, 27718, 28126, 27900, 27653, 28002, 28175 , 28149, 27877, 28161, 27955, 28151, 28131, 28215, 28191, 27978 and at least one mass value (m/z ⁇ z) selected from the group consisting of values within ⁇ 5 of these values, It is determined that a pathogenic strain having resistance to the carbapenem antibiotic exists in the biological sample. More specifically, in this case, the pathogenic strain present in the sample is a strain producing OXA protein.
  • the mass values listed above are mass values in which 22 amino acid residues at the N-terminus have been removed from the OXA subtype protein.
  • the present inventors found that in the case of OXA subtype protein, carbapenem-degrading activity was maintained only in a state in which the 22 amino acid residues at the N-terminus were removed in vivo, and as a result of mass spectrometry, any one or more corresponding mass values When this is detected, it can be determined that the virus is infected with a strain expressing one or more of the OXA subtype proteins, that is, a pathogenic strain resistant to the carbapenem antibiotic.
  • the mass value (m/z x z) further comprises a mass value increased by 16, 32 or 48 at each mass value.
  • a pathogenic strain having resistance to the carbapenem antibiotic exists in the biological sample. More specifically, in this case, the pathogenic strain present in the sample is a strain producing
  • the mass values listed above are mass values from which 19 amino acid residues at the N-terminus have been removed from the NDM subtype protein. It can be determined to be infected with a strain expressing one or more, that is, a pathogenic strain having resistance to the carbapenem antibiotic.
  • mass value refers to the average molecular weight of a protein to be detected or a Dalton value representing it, but other reference mass values (eg, single isotope mass) value) is used to detect the same protein, it is determined to have the same configuration as in the present invention.
  • the NDM-expressing strain when determining whether the NDM-expressing strain is infected based on the single isotope mass of NDM-1, 26493.16, it is an average molecular weight that can be easily inferred by those skilled in the art through the single isotope mass value of 26510 m/ It has the same configuration as determining whether or not the NDM-expressing strain is infected with z ⁇ z as a reference value.
  • the mass value (m/z x z) further comprises a mass value increased by 16 or 32 at each mass value.
  • the present inventors have found that one or two methionine residues among the seven methionine residues (39, 67, 126, 129, 245, 248, 265) of the NDM protein may exist in an oxidized state. found Accordingly, even when the molecular weight increased by one (+16) or two (+32) oxygen atoms is measured from the mass values listed above, by determining that a strain expressing the NDM protein is also present in the sample, antibiotic-resistant strains The presence of can be detected more thoroughly.
  • the mass values listed above are mass values from which 18, 19, 20 or 21 amino acid residues at the N-terminus have been removed from the IMP subtype protein, and as a result of mass spectrometry, any one or more of these mass values is If detected, it can be determined that the strain is infected with one or more of the IMP subtype proteins.
  • the mass value (m/z x z) further comprises a mass value increased by 16 or 32 at each mass value. More specifically, the mass value (m/z x z) additionally includes a mass value reduced by 2 at each mass value.
  • the present inventors have discovered that one or two methionine residues of the six methionine residues (62, 95, 112, 143, 164, 181) of the GES protein can exist in an oxidized state. Even when a molecular weight increased by one (+16) or two (+32) oxygen atoms from the listed mass values is measured, it can also be determined that a strain expressing the GES protein is present in the sample. In addition, the present inventors also found that the GES protein can exist in a disulfide bond between Cys63 and Cys233.
  • the present invention provides a method for detecting a pathogenic strain having resistance to carbapenem antibiotics in a biological sample.
  • the present invention directly confirms the carbapenem antibiotic degrading enzyme, specifically KPC, OXA, NDM, IMP, VIM, and/or GES protein through mass spectrometry, to determine whether the pathogenic strain is resistant to antibiotics as well as resistance-related proteins types can be quickly identified.
  • carbapenem antibiotic degrading enzyme specifically KPC, OXA, NDM, IMP, VIM, and/or GES protein
  • the present invention discovers the physical and chemical properties of each enzyme in vivo, such as the unique N-terminal cleavage length, methionine residue oxidation and disulfide bond formation according to the type of carbapenem-degrading enzyme, and determines the reference mass By reflecting the value, the presence of antibiotic-resistant strains can be detected with high reliability and more tightly, which can be usefully used to establish an appropriate antibiotic administration strategy in the early stage of infection.
  • FIG. 1 is an antibiotic-resistant strain-derived KPC and OXA protein (FIG. 1a), three types of MBL (Metallo- ⁇ -Lactamase, hereinafter MBL) family proteins NDM, IMP and VIM, and Class A carbapenem degrading enzyme GES protein
  • MBL Metallo- ⁇ -Lactamase family proteins
  • NDM Metallo- ⁇ -Lactamase
  • IMP Metallo- ⁇ -Lactamase
  • VIM Class A carbapenem degrading enzyme
  • GES protein It is a figure showing the results of SDS-PAGE analysis (Fig. 1b) for expression and size.
  • the SDS-PAGE analysis results for the expression and size of the subtype proteins of KPC, OXA, NDM, IMP, VIM, and GES are diagrams showing the respective results from FIGS. 1C to 1H.
  • FIG. 2 is a clinical strain-derived KPC and OXA protein (FIG. 2A), MBL protein NDM (FIG. 2B), IMP (FIG. 2C), VIM (FIG. 2D) and GES-5 protein (FIG. 2e) for the expression and size of The figure shows the results of SDS-PAGE analysis.
  • FIG. 4 is a result of comparing the protein difference between the crude extract and the crude enzyme solution after sample pretreatment.
  • a nonionic surfactant Fig. 4a
  • an ionic surfactant Fig. 4b
  • a volatile buffer solution Fig. 4c
  • the expression and solubility of each protein Solubility was confirmed by SDS-PAGE gel.
  • the expression and solubility of the MBL protein Fig. 4d
  • the GES protein Fig. 4e
  • FIG. 5 is a diagram showing the results of separation and purification of a target protein using ion chromatography.
  • KPC (FIG. 5A), OXA (FIG. 5B), NDM (FIG. 5C), IMP (FIG. 5D), VIM (FIG. 5E) and GES-5 (FIG. 5F) were separated and purified.
  • FIG. 6 is an alignment result (FIGS. 6a to 6f) by comparing the representative identification ranges (grey) and oxidized methionine residues (bold underlined) of KPC protein and OXA protein, three types of MBL proteins and GES protein, respectively. show
  • FIG. 7 shows the results of the tandem spectrum of the peptides identified as the N-terminus of each protein.
  • Figure 7a shows the separation chromatogram of KPC peptide
  • Figure 7b shows the N-terminal peptide identification result of KPC.
  • Figure 7c shows the separation chromatogram of the OXA peptide
  • Figure 7d shows the identification result of the N-terminal peptide of OXA.
  • Figure 7e shows an example of the separation chromatogram of the NDM peptide
  • Figure 7f shows the N-terminal peptide identification result of the NDM.
  • Figure 7g shows an example of the separation chromatogram of the IMP peptide
  • Figure 7h shows the N-terminal peptide identification result of IMP.
  • FIG. 8 shows the results of multiple alignment analysis of amino acid sequences of KPC ( FIG. 8a ), OXA ( FIG. 8b ), MBL ( FIGS. 8c-8e ) and GES ( FIG. 8f ) protein amino acid sequences using the ClustalW program and conservative amino acids It is a figure showing an example of the sequence identification result. Black boxes indicate N-terminal sequence regions.
  • FIG. 9 is a diagram showing the results of phylogenetic analysis for KPC (FIG. 9A), OXA (FIG. 9B), NDM (FIG. 9C), IMP (FIG. 9D), VIM (FIG. 9e) and GES (FIG. 9f) proteins.
  • 10 is a diagram showing the results of identification of KPC, OXA, NDM, IMP, VIM and GES proteins using high-resolution mass spectrometry.
  • 10A shows the mass spectrum of a multi-charged KPC protein (single isotope mass: 28,700.69 m/z ⁇ z, average molecular weight: 28,718.13 m/z ⁇ z), and
  • 10e shows the mass spectrum of the multi-charged NDM protein
  • FIG. 10f shows the tandem spectrum for the +25-valent NDM protein ion and the identification results for the 20-270 sequence, respectively.
  • 10g shows the mass spectrum of the multi-charged IMP protein
  • Fig. 10i shows the mass spectrum of the multi-charged VIM protein
  • 10K shows the mass spectrum of the multi-charged IMP protein
  • 11 shows the modified mass values of NDM proteins obtained by top-down mass spectrometry through high-resolution mass spectrometry.
  • 11a shows the palmitated protein type
  • FIG. 11b shows the results for the methylated protein of the NDM protein and the elution time difference accordingly.
  • FIG. 12 shows KPC (FIG. 12A), OXA (FIG. 12B), NDM (FIG. 12C), IMP (FIG. 12D), VIM (FIG. 12E) and GES (FIG. 12F) obtained by top-down mass spectrometry through a high-resolution mass spectrometer. It indicates the sequence identification range for the protein.
  • FIG. 13 shows KPC protein (FIG. 13A), OXA protein (FIG. 13B), MBL protein NDM (FIG. 13C), IMP (FIG. 13D), VIM (FIG. 13e) and GES using low-resolution mass spectrometry (MALDI-TOF). It is a figure showing an example of a mass spectral spectrum for a protein (FIG. 13f).
  • Example 1 Cloning of ⁇ -lactam-based antichromic agent resistance gene and construction of antibiotic resistance strain
  • Primer 1 5 ⁇ - AACTGCAGGATGTCACTGTATCGCCGTCTA-3 ⁇ (30mer)
  • Primer 1 5 ⁇ - AACTGCAGGATGCGTGTATTAGCCTTATCGG-3 ⁇ (31mer)
  • Primer 2 5'-GGAATTCCTAGGGAATAATTTTTTCCTGTTTGA-3' (33mer)
  • Primer 1 5' - AAC TGC AGG ATG GAA TTG CCC AAT ATT ATG CA - 3' (32mer)
  • Primer 2 5' - GGA ATT CTC AGC GCA GCT TGT CGG - 3' (24mer)
  • Primer 1 5' - AAC TGC AGG ATG AGC AAG TTA TCT GTA TTC TTT ATA T - 3' (37mer)
  • Primer 2 5' - GGA ATT CTT AGT TGC TTG GTT TTG ATG GTT TTT - 3' (33mer)
  • Primer 1 5' - AAC TGC AGG ATG TTC AAA CTT TTG AGT AAG TTA TTG - 3' (36mer)
  • Primer 2 5' - GGA ATT CCT ACT CAA CGA CTG AGC GAT T - 3' (28mer)
  • Primer 1 5' - AAC TGC AGG ATG CGC TTC ATT CAC GCA CTA T - 3' (31mer)
  • Primer 2 5' - CGG AAT TCC TAT TTG TCC GTG CTC AGG AT - 3' (29mer)
  • a target gene was amplified by PCR from three types of template DNA.
  • the reaction solution is made into a total of 50 ⁇ l PCR reaction solution using 3 ⁇ l of template DNA, 1.25 ⁇ l of 5' primer, 1.25 ⁇ l of 3' primer, 1 ⁇ l of dNTPs, 10 ⁇ l of 5X buffer, and 5X GC enhance buffer. It was carried out under the same conditions: 1) Denaturation -98 °C 10 seconds; 2) Annealing - 30 seconds at 57°C; 3) Extension - 30 seconds at 72°C.
  • Cloning for constructing a recombinant expression vector including the target gene was performed as follows; 1) For the inserted gene and vector, both ends of the DNA were cut into sticky ends using restriction enzymes, and 2) the inserted gene was ligated to the vector using a DNA ligase enzyme. 3) Then, E. coli ( E. coli Top10) was transformed, and 4) recombinant E. coli was selected by the White/Blue screen method. 5) A recombinant plasmid was extracted from the selected strain, and 6) the extracted plasmid was treated with a restriction enzyme to confirm the DNA size. 7) Finally, the inserted gene was confirmed through DNA sequencing.
  • E. coli transformed with the plasmid containing the target gene was inoculated in Luria-bertani liquid medium containing 50 mg/L of ampicillin antibiotic, and cultured at 37° C. for more than 16 hours.
  • the culture medium was centrifuged at 4,000 rpm for 15 minutes, and the supernatant was removed to harvest the cells.
  • the harvested cells were added to SDS-sample buffer and heated at 95° C. for 5 minutes, followed by centrifugation at 15,000 rpm for 5 minutes.
  • the expression and size of the target protein were confirmed through SDS-PAGE gel analysis (FIG. 1).
  • strains confirmed to be ESBL Extended Spectrum ⁇ -Lactamase positive were collected.
  • the collected strains were subjected to colony PCR using primers used for KPC and OXA gene amplification.
  • the PCR product amplified through this was confirmed by the size of the target gene through agar gel electrophoresis.
  • the correct genotypes of KPC and OXA genes were confirmed through DNA sequencing.
  • the strain whose genotype was confirmed was cultured in LB broth, and the presence or absence of KPC and OXA protein expression was confirmed through SDS-PAGE gel analysis.
  • a recombinant strain containing KPC and OXA genes derived from clinical strains was prepared in the same manner as the recombinant strains including vectors into which KPC and OXA genes were inserted, and the recombinant strains were also expressed through SDS-PAGE gel analysis in the same way as the clinical strains. The sizes of the KPC and OXA proteins were confirmed (FIG. 2).
  • KPC and OXA proteins derived from clinical strains were each identified through Q-TOF MS method.
  • the sequence range for the identified peptide was 62.46% (183/293) in the total protein sequence, and 67.28% (183/272) in the active form excluding the N-terminus.
  • OXA when the total protein amino acid sequence was applied through the identified peptide, it was confirmed to be 16.98% (45/265) and 18.52% (45/243) based on the sequence of the active protein, respectively.
  • E. coli transformed with the plasmid containing the target MBL gene was inoculated in Luria-bertani liquid medium containing 50 mg/L of ampicillin antibiotic and zinc sulfate (0.01 mM ⁇ 1 mM ZnSO 4 ), and incubated at 37° C. for more than 16 hours. .
  • the culture medium was centrifuged at 4,000 rpm for 15 minutes, and the supernatant was removed to harvest the cells. The harvested cells were added to SDS-sample buffer, heated at 95° C. for 5 minutes, and centrifuged at 15,000 rpm for 5 minutes. Using the prepared sample, the expression and size of the target protein were confirmed through SDS-PAGE gel analysis (FIG. 3).
  • Example 3 Sample pretreatment method and identification of target protein from crude enzyme solution
  • the culture medium was centrifuged at 4,000 rpm for 15 minutes, and the supernatant was removed to harvest the cells.
  • a buffer solution (0.25 mM Tris-HCl, 2% OG) was treated and reacted at room temperature for 10 minutes.
  • the prepared crude extract was centrifuged at 15,000 rpm at 4° C. for 10 minutes to separate the supernatant (hereinafter, crude enzyme solution) and precipitate.
  • the expression and size of the target protein were confirmed by SDS-PAGE analysis from the crude enzyme solution (FIG. 4).
  • Sample pretreatment was performed in the following steps: 1) 100 ⁇ l of the expressed cell culture medium was centrifuged to recover cells, 2) the supernatant was removed, and a buffer solution containing 2% of nonionic surfactant DOC (Sodium Deoxycholate) ( 0.25 mM Tris-HCl, pH 8.0 and 2% DOC) was added. 3) The turbid solution was incubated at room temperature for 10 minutes and 4) centrifuged at 15,000 rpm at 4° C. for 10 minutes to obtain a crude enzyme solution.
  • DOC Sodium Deoxycholate
  • the sample pretreatment method was as follows: 1) 50 mM ammonium bicarbonate (hereinafter, ABC) solution was added to the harvested cells, 2) resuspension with a pipette, 3) 12,000 rpm, 4°C , and centrifuged for 10 minutes to recover the supernatant.
  • the treated crude extract and crude enzyme solution were confirmed for protein expression and size through SDS-PAGE gel analysis ( FIGS. 4c and 4e ).
  • the turbid solution treated by the methods (1) to (3) above was disrupted by ultrasonic waves at 40 Hz and 200 W for 5 to 10 minutes using a Sonic bath (JAC 2010, Hansol Tech, Korea), and 15,000 rmp for 10 minutes. During centrifugation, the supernatant was recovered.
  • Ion exchange chromatography was used for separation/purification of the target protein.
  • a column containing Q-resin was used for anions and a column containing SP-resin was used for cations.
  • the eluted solution was collected. Wash using 1 ml of 20 mM Tris-HCl, pH 8.0 buffer, and sequentially 250 ⁇ l of an elution solution containing 100 mM NaCl, 200 mM NaCl, 300 mM NaCl, 400 mM NaCl, and 500 mM NaCl 1M in the buffer. Each was loaded and the eluate was collected for each compartment.
  • the target protein was separated and purified by the same method as (1) anion exchange resin chromatography.
  • Proteins whose expression and size were confirmed on the SDS-PAGE gel were identified using the in-gel digestion method and the nano-LC-MS/MS method, thereby confirming the type of antibiotic resistance protein actually expressed in the strain (FIG. 7).
  • nano liquid chromatography and high-resolution mass spectrometry were performed (Q-Exactive HF-X mass spectrometer system). After dissolving the desalted peptide sample with 0.1% formic acid solution, the sample was injected into the column. Peptide samples were separated using a C18 column (75 ⁇ m x 70 cm) and nanoflow liquid chromatography. Examples of gradient conditions for sample loading and separation used here are as follows:
  • Buffer A 0.1% formic acid in water / Buffer B: 0.1% formic acid in acetonitrile
  • Thermo's 'Proteome Discoverer (v2.4)' software was used, and protein/peptide identification was selected based on a false discovery rate (FDR) of 1%.
  • FDR false discovery rate
  • KPC, OXA, MBL protein or GES protein was identified, 200 peptides (Table 2) in KPC protein, 177 peptides in OXA (Table 3), and 109 peptides in NDM protein (Table 2). 4), 146 peptides (Table 5) for IMP, 159 peptides (Table 6) for VIM protein, and 111 peptides (Table 7) for GES were identified.
  • the N-terminal sequence peptide of residues 1-18 and 1-26, respectively was not detected, and in the case of GES, the N-terminal sequence peptide of residues 1-18 was not detected, respectively.
  • the identified sequence identification range is 97.2 (243/250) for NDM, 97.8% (223/228) for IMP, 100% (240/240) for VIM, and 100% (240/240) for GES. 98.5% (265/269).
  • FIG. 8A Based on the MS2 results of Example 5, a total of 43 KPC subtype proteins (FIG. 8A), 660 OXA subtype proteins (FIG. 8B), 27 NDMs known from the National Center for Biotechnology Information (NCBI) database to date Multiple alignment analysis was performed on subtype proteins ( FIG. 8c ), 79 IMP subtype proteins ( FIG. 8d ), 66 VIM subtype proteins ( FIG. 8e ) and 43 GES subtype proteins ( FIG. 8f ).
  • NCBI National Center for Biotechnology Information
  • KPC proteins contained the same N-terminal peptide (1-21 aa) for all 43 subtype proteins, and 35 subgroup proteins including KPC-2 were composed of 293 amino acid sequences. there was.
  • OXA In the case of OXA, 30 OXA proteins containing the same N-terminal peptide (1-22 aa) were identified, and 23 types of OXA proteins showed the same sequence characteristics as OXA-48, which consisted of 265 identical amino acid sequences. .
  • Example 7 Identification of a target protein using mass spectrometry (Top-down method)
  • Top-down mass spectrometry was performed to confirm the mass value of the active protein expressed in the strain.
  • a sample obtained through partial purification from the crude protein extract derived from the strain was used, and an LC-MS/MS system capable of top-down analysis (Nano-LC and Q-Exactive HF-X mass spectrometer system) was used. ) was used.
  • the mass values of intact proteins and tandem spectra of proteins were obtained and identified using the Protein Mode Analysis method of the Q-Exactive HF-X mass spectrometer.
  • the parameters used in this case are as follows.
  • MS2 1 ⁇ 2 microscan used, 1,000 msec, NCE 30, 1 ⁇ 8 ionized substances are excluded from MS2.
  • Mass spectrometry spectra of each protein were obtained using low-resolution mass spectrometry (1, SciEX 4800; 2, Bruker Biotyper MALDI-TOF MS).
  • SA Sesinapinic acid, present at 10 mg/mL in 0.1% TFA/50% acetonitrile
  • mass spectrometry was performed.
  • colonies cultured in solid culture, cells harvested in liquid culture, crude extract and crude enzyme solution after cell disruption, and purified protein obtained after purification can be used.
  • Example 8 Genotyping and protein identification of MBL proteins and GES derived from clinical strains
  • the strain whose genotype was confirmed was cultured using LB broth, and the presence or absence of expression of MBL protein (NDM, IMP, VIM) and GES protein was confirmed through SDS-PAGE gel analysis (FIG. 2).
  • MBL proteins and GES proteins derived from clinical strains were digested through in-gel digestion and identified by bottom-up method using Q-Exactive HF-X plus equipment.
  • NDM the sequence range for the identified peptide was 61.11% (165/270) in the total protein sequence, and 65.74% (165/251) in the active form excluding the N-terminus.
  • IMP and VIM the sequence ranges for the identified peptides were 22.76% (56/246) and 44.74% (119/266) of the total protein sequence, respectively, and 24.56% (each with the active form excluding the N-terminus) ( 56/228) and 49.58% (119/240).
  • GES when the total protein amino acid sequence was applied through the identified peptide, 67.25% (193/287) was confirmed, and when the sequence of the active protein was applied, 71.75% (193/269) was confirmed, respectively.

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Abstract

본 발명은 생물학적 시료 내 카바페넴 항생제(Carbapenem antibiotics)에 대한 내성을 가지는 병원성 균주의 검출 방법에 관한 것이다. 본 발명은 질량분석법을 통해 카바페넴 항생제 분해효소, 구체적으로는 KPC, OXA, NDM, IMP, VIM 및/또는 GES 단백질을 직접적으로 확인함으로써 병원성 균주의 항생제 내성 여부는 물론 내성관련 단백질의 종류까지 신속하게 판별할 수 있다. 본 발명은 카바페넴 분해 효소의 종류에 따른 고유한 N-말단의 절단 길이, 메티오닌 잔기의 산화 및 이황화 결합 형성 등 각의 효소가 생체 내에서 가지는 물리적, 화학적 특성을 발굴하고 이를 기준 질량값에 반영함으로써 항생제 내성 균주의 존재를 높은 신뢰도로 보다 빈틈없이 검출할 수 있으며, 이를 통해 감염 초기에 적절한 항생제 투여전략을 수립하는 데에 유용하게 이용될 수 있다.

Description

카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주의 직접 검출 방법
본 발명은 탑-다운(top-down) 질량 분석을 통해 검체 시료에 대한 전처리 없이 카바페넴 항생제를 분해하는 효소인 KPC, OXA, NDM, IMP, VIM 및/또는 GES에 대한 생체 내 활성형 단백질을 직접 검출하는 방법에 관한 것이다.
항생제 내성균의 지속적 증가로 인해 상용화된 항생제의 치료 효율이 급감하는 상황에서 병원균에 감염된 환자에 대한 적절한 항생제 투여 및 항생제 내성균의 저감화를 동시에 유도함으로써 치료효율을 향상시키기 위한 전략이 활발하게 연구되고 있다. 현재 항생제 내성 여부를 판별하기 위해 최소억제농도(Minimum Inhibition Concentration, MIC) 검사가 시행되고 있으나 필수적 단계인 미생물 배양에 18시간 이상의 시간이 소요되고 정확성도 떨어져 신속한 판별 및 감염 초기의 최적 항생제 선정이 불가능하다. 실시간 PCR 등을 이용한 유전자 진단기술 역시 유전자 추출 및 증폭 과정 등에서 복잡하고 고비용의 시료 전처리를 거쳐야 하고 타켓 유전자의 염기서열에 대한 사전정보가 필수적이라는 점, 이미 항생제 분해 활성을 잃은 효소의 유전자 검출 등으로 인해 내성 여부에 대한 부정확한 정보가 포함되는 점 등 신속, 정확한 대량 진단에 적용하기에는 한계를 가지고 있다.
MALDI-TOF를 비롯한 질량분석법은 PCR 등에 의한 서열분석 방법에 비하여 저비용 고효율의 동정 시스템으로서 미생물의 신속한 동정에 필요한 중요한 수단이 될 수 있는데, 균주 배양 후 시료 처리에서 동정까지 10분 이내에 가능할 뿐 아니라, 미지의 균주에 질량분석 데이터를 통해 구축한 데이터베이스내의 질량 데이터와 비교하여 질량값이 일치되는 균주를 신속하게 동정할 수 있다.
그러나, 종래의 질량 분석법은 정확한 항생제 내성 단백질의 종류를 판별하지 못할 뿐 아니라, 타겟 내성 단백질을 가수분해 효소를 이용하여 펩타이드 단위로 분해한 뒤 이들 절편들의 질량 값을 통해 간접적으로 내성 단백질의 종류를 유추하는 것으로 절차의 번거로움은 물론 신뢰성에서 적지 않은 문제가 있었다.
이에, 본 발명자들은 베타-락탐계 항생제, 구체적으로는 카바페넴 항생제 내성에 직접적으로 관여하는 단백질을 선별하고, 이들의 생체 내 활성형의 정확한 질량값을 측정함으로써 카바페넴 내성 균주의 존재 여부에 대한 정확한 기준 데이터를 구축함으로써 카바페넴 내성 균주 감염에 대한 신속하고 정확한 진단 방법을 제공하고자 하였다.
본 명세서 전체에 걸쳐 다수의 논문 및 특허문헌이 참조되고 그 인용이 표시되어 있다. 인용된 논문 및 특허문헌의 개시 내용은 그 전체로서 본 명세서에 참조로 삽입되어 본 발명이 속하는 기술 분야의 수준 및 본 발명의 내용이 보다 명확하게 설명된다.
본 발명자들은 베타-락탐계 항생제 내성에 관여하는 항생제 분해 효소를 시료 내에서 간단하면서도 높은 신뢰도로 검출함으로써 항생제 내성 균주에 의한 감염 여부를 신속하게 판정할 수 있는 효율적 진단방법을 개발하기 위해 예의 연구 노력하였다. 그 결과, 베타-락탐계 항생제인 카바페넴(Carbapenem)을 분해하는 효소, 구체적으로는 KPC, OXA, NDM, IMP, VIM 및 GES 단백질이 생체 내에서 일정 길이의 N-말단 잔기가 절단된 활성형(active form)으로 존재한다는 사실을 새로이 발견하고, 내성 균주가 분비하는 카바페넴 분해 효소의 다수를 차지하는 이들 단백질의 활성형을 질량분석법을 통해 직접적으로 확인함으로써 병원성 균주의 항생제 내성 여부는 물론 내성관련 단백질의 종류까지 신속하고 정확하게 판별하여, 감염 초기에 적절한 항생제 투여전략을 수립할 수 있음을 발견함으로써, 본 발명을 완성하게 되었다.
따라서 본 발명의 목적은 생물학적 시료 내 카바페넴 항생제(Carbapenem antibiotics)에 대한 내성을 가지는 병원성 균주, 구체적으로는 KPC, OXA, NDM, IMP, VIM 및/또는 GES를 발현하는 병원성 균주의 검출 방법을 제공하는 데 있다.
본 발명의 다른 목적 및 이점은 하기의 발명의 상세한 설명, 청구범위 및 도면에 의해 보다 명확하게 된다.
본 발명의 일 양태에 따르면, 본 발명은 다음의 단계를 포함하는 생물학적 시료 내 카바페넴 항생제(Carbapenem antibiotics)에 대한 내성을 가지는 병원성 균주의 검출 방법을 제공한다:
(a) 대상체로부터 분리된 생물학적 시료 내에서 병원성 균주가 발현하는 단백질을 분리하는 단계; 및
(b) 상기 분리된 단백질에 대해 탑-다운(top-down) 질량 분석을 수행하는 단계,
상기 질량 분석 결과 N-말단의 21개 또는 22개 아미노산 잔기가 제거된 KPC(Klebsiella pneumoniae carbapenemase) 또는 OXA 카바페넴 분해 효소와 동일한 질량의 단백질이 검출되거나, 또는 N-말단의 18, 19, 20, 21 또는 26개 아미노산 잔기가 제거된 NDM(New Delhi Metallo-beta-lactamase), IMP(imipenemase), VIM(Verona integron-borne metallo-β-lactamase) 및 GES(Guiana extended spectrum β-lactamase)로 구성된 군으로부터 선택되는 하나 이상의 카바페넴 분해 효소와 동일한 질량의 단백질이 검출된 경우, 상기 생물학적 시료 내에는 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주가 존재하는 것으로 판정한다.
본 발명자들은 베타-락탐계 항생제 내성에 관여하는 항생제 분해 효소를 시료 내에서 간단하면서도 높은 신뢰도로 검출함으로써 항생제 내성 균주에 의한 감염 여부를 신속하게 판정할 수 있는 효율적 진단방법을 개발하기 위해 예의 연구 노력하였다. 그 결과, 베타-락탐계 항생제인 카바페넴(Carbapenem)을 분해하는 효소, 구체적으로는 KPC, OXA, NDM, IMP, VIM 및 GES 단백질이 생체 내에서 일정 길이의 N-말단 잔기가 절단된 활성형(active form)으로 존재한다는 사실을 새로이 발견하고, 내성 균주가 분비하는 카바페넴 분해 효소의 다수를 차지하는 이들 단백질의 활성형을 질량분석법을 통해 직접적으로 확인함으로써 병원성 균주의 항생제 내성 여부는 물론 내성관련 단백질의 종류까지 신속하고 정확하게 판별하여, 감염 초기에 적절한 항생제 투여전략을 수립할 수 있음을 발견하였다.
본 명세서에서“병원성 균주”는 예를 들어 포도상구균, 연쇄상구균, 대장균, 폐렴간균, 녹농균, 수도모나스 애루기노사, 수도모나스 오티티디스, 마이크로코커스 루테우스, 시트로박터 코세리, 프로튜스 미라빌리스 및 미코박테리움 울서란스를 포함하나, 이에 제한되지 않고 감염 또는 질환의 원인으로 작용하는 모든 세균을 포함한다.
본 명세서에서“항생세에 대한 내성을 가진다”고 함은 특정 병원성 미생물에 대한 항생제가 고농도로, 또는 유효량으로 존재하는 환경 내에서도 해당 미생물이 생육 가능한 경우를 의미한다. 항생제 내성 여부는 병원성 미생물이 분비하는단백질로서 해당 항생제를 분해하여 그 활성을 제거하거나 저하시키는 분해 효소의 존재를 검출함으로써 판별할 수 있다. 예를 들어, 세균의 세포벽 합성을 억제하는 베타-락탐계 항생제인 페니실린, 세팔로스포린, 모노박탐, 카바페넴 등은 베타-락타마제(β-lactamase)에 의해 무력화되어 이를 발현하는 병원균을 억제하지 못한다. 따라서, 용어“내성”은“저항성”,“낮은 치료적 반응성”및“낮은 예방적 반응성”과 동일한 의미로 사용된다.
본 명세서에서 용어“치료”는 (a) 질환, 질병 또는 증상의 발전의 억제; (b) 질환, 질병 또는 증상의 경감; 또는 (c) 질환, 질병 또는 증상을 제거하는 것을 의미한다. 따라서“치료적 반응성”은 카바페넴을 비롯한 베타-락탐계 항생제가 병원성 균주에 감염된 환자에게 치료적 유효량으로 투여되었을 때 생체 내에서 위와 같은 작용을 하는 정도를 의미한다.
본 명세서에서, 용어“예방”은 질환 또는 질병을 보유하고 있다고 진단된 적은 없으나, 이러한 질환 또는 질병에 걸릴 가능성이 있는 대상체에서 질환 또는 질병의 발생을 억제하는 것을 의미한다. 따라서 “예방적 반응성”은 카바페넴을 비롯한 베타-락탐계 항생제가 아직 감염이 확진되지 않은 정상인에게 예방적 유효량으로 투여되었을 때 생체 내에서 감염을 억제하는 작용을 하는 정도를 의미한다.
본 발명에서 용어“생물학적 시료”는 인간을 포함한 포유동물로부터 얻어지는, 카바페넴 등의 베타-락탐계 항생제로 억제하고자 하는 병원성 균주를 포함하고 있거나 포함할 가능성이 있는 모든 시료로서, 혈액, 조직, 기관, 세포 또는 세포 배양액을 포함하나, 이에 제한되지 않는다.
본 명세서에서 용어“대상체”는 카바페넴 등의 베타-락탐계 항생제로 억제하고자 하는 병원성 균주의 존재 또는 상기 균주의 항생제 내성 여부를 조사하기 위한 시료를 제공하고, 궁극적으로 항생제 내성을 가지는 병원성 균주에 의해 감염되었는지 여부의 분석 대상이 되는 개체를 의미한다. 개체는 제한없이 인간, 마우스, 래트, 기니아 피그, 개, 고양이, 말, 소, 돼지, 원숭이, 침팬지, 비비 또는 붉은털 원숭이를 포함하며, 구체적으로는 인간이다. 본 발명의 조성물은 카바페넴 등의 베타-락탐계 항생제의 치료적 반응성 뿐 아니라 예방적 반응성을 예측하기 위한 정보도 제공하기 때문에, 본 발명의 개체는 균주에 감염된 환자일 수도 있고 아직 감염이 확진되지 않은 정상 개체(healthy subject)일 수도 있다.
본 명세서에서 용어“탑-다운(top-down) 질량 분석”은 단백질을 펩타이드 조각으로 절편화(fragmentation)하는 과정을 거치지 않고도 전장 단백질에 대한 질량값을 직접 측정하는 분석을 의미하며, 구체적으로는 단백질 시료가 질량 분석기에 주입되기 전에 타겟 단백질의 절편화가 이루어지지 않는 분석을 의미한다. 본 발명의 또 다른 특징 중 하나는, 트립신 등의 단백질 분해효소를 이용한 단백질의 무작위적인 분해 없이 전장(full length) 단백질에 대한 직접적인 질량 분석을 수행함으로써 절차가 보다 단순화될 뿐 아니라, 분해된 절편에 대한 질량정보를 수집하고 다양한 단백질들의 절편화 경향에 대한 방대한 정보를 취합하여 간접적으로 단백질을 동정하는 종래 방법에 비해 훨씬 짧은 시간 동안 현저하게 높은 신뢰도로 타겟 단백질의 존재 여부를 판단할 수 있다는 점이다.
본 명세서에서“단백질의 질량이 동일”하다 함은 본 발명의 질량분석 방법을 통해 측정된 질량 값과 참조(reference) 질량 값, 예를 들어 아미노산 서열 및 분자량이 알려진 각 카바페넴 분해 효소에서 N-말단의 18, 19, 20, 21, 22 또는 26개 아미노산 잔기가 제거된 질량 값에 해당하는 수치와 실질적으로 동일한 경우를 의미한다. “실질적인 동일”이란 예를 들어 측정된 Da 값 또는 m/z × z 값이 참조 질량 값의 ±10 범위 내에 존재하는 경우, 보다 구체적으로는 ±7 범위 내에 존재하는 경우, 보다 더 구체적으로는 ±5 범위 내에 존재하는 경우, 가장 구체적으로는 ±3 범위 내에 존재하는 경우를 의미한다. 실질적인 동일 여부를 판단하기 위한 기준이 되는 카바페넴 분해 효소의 질량값은 1개 내지 3개의 메티오닌 잔기가 산화된 상태로 존재하거나(즉, 알려진 질량값에서 16, 32 또는 48 만큼 증가), 두 개의 Cys 잔기 사이에 이황화결합(disulfide bond)이 형성된 상태(즉, 알려진 질량값에서 2만큼 감소)의 질량값을 포함한다.
본 발명의 구체적인 구현예에 따르면, 상기 방법은 상기 단계 (a)에서 분리된 단백질에 대해 이온교환 크로마토그래피를 수행하는 단계를 추가적으로 포함한다.
본 명세서에서 용어 “이온교환 크로마토그래피(ion-exchange chromatography)”는 이온 또는 하전된 화합물이 정전기적인 힘(electrostatic force)에 의해 이온교환수지에 결합하는 현상을 이용하여 비균질성 혼합물로부터 전하를 띄는 목적 물질을 분리해내는 분리 및 정제방법을 의미한다. 이온교환 크로마토그래피는 다양한 작용기가 결합된 이온교환수지(ion exchange resin)를 가지는데, 음이온 교환수지는 양전하를 띄는 작용기를 가져 혼합물 내 음전하를 띄는 목적물질과 정전기적 인력으로 결합하고, 양이온 교환수지는 양전하를 띄는 목적물질과 특이적으로 결합한다.
본 발명의 구체적인 구현예에 따르면, 상기 이온교환 크로마토그래피는 음이온교환 크로마토그래피, 양이온교환 크로마토그래피 및 이들의 순차적 조합으로 구성된 군으로부터 선택되는 어느 하나이다.
본 발명에서 이용되는 음이온교환수지는 예를 들어 디에틸아미노에틸(DEAE) 또는 사차 암모니움(Quaternary ammonium) 작용기를 가질 수 있으나, 이에 제한되지 않고 지지체에 양의 전하를 제공하는 통상적인 양이온성 작용기라면 제한없이 사용될 수 있다. 강염기성의 음이온교환 그룹에는 예를 들어 Q Sepharose Fast Flow, Q Sepharose High Performance, Resource Q, Source 15Q, Source 30Q, Mono Q, Mini Q, Capto Q, Capto Q ImpRes, Q HyperCel, Q Cermic HyperD F, Nuvia Q, UNOsphere Q, Macro-Prep High Q, Macro-Prep 25 Q, Fractogel EMD TMAE(S), Fractogel EMD TMAE Hicap (M), Fractogel EMD TMAE (M), Eshmono Q, Toyopearl QAE-550C, Toyopearl SuperQ-650C, Toyopearl GigaCap Q-650M, Toyopearl Q-600C AR, Toyopearl SuperQ-650M, Toyopearl SuperQ-650S, TSKgel SuperQ-5PW (30), TSKgel SuperQ-5PW (20) 및 TSKgel SuperQ-5PW를 포함하나, 이에 제한되지 않고 당업계에 공지된 모든 음이온교환수지를 사용할 수 있다.
본 발명에서 이용되는 양이온교환수지는 예를 들어 술폰기나 카복시기를 가질 수 있으나, 이에 제한되지 않고 지지체에 음의 전하를 제공하는 통상적인 양이온성 작용기라면 제한없이 사용될 수 있다. 예시적인 상기 양이온교환 수지는 프락토겔(Fractogel), CM(카르복시메틸), SE(술포에틸), SP(술포프로필), P(포스페이트), S(술포네이트), PROPAC WCX-10™ (Dionex), 캅토 S(Capto S), S-세파로스 FF(S-Sepharose FF), 프락토겔 EMD SO3M, 토요펄 메가캡 II SP 550C(Toyopearl Megacap II SP 550C), 포로스 50 HS(Poros 50 HS), 포로스 XS 및 SP-세파로스 매트릭스(SP-sepharose matrix)로 구성된 군에서 선택될 수 있으나, 이에 한정되지 않는다. 구체적으로는 SP(술포프로필) 레진이 사용될 수 있다. 컬럼 완충액으로는 인산나트륨 완충액, 구연산 완충액, 아세트산 완충액 등 당업계에 공지된 이퀄리브레이션 버퍼(equilibration buffer), 세척버퍼(wash buffer) 및 용출버퍼(elution buffer)를 사용할 수 있다.
이와 같은 이온교환 크로마토그래피는 분리/정제하고자 하는 단백질의 전하 및 분리하고자 하는 순서에 따라 적정하게 분리할 수 있으며, 예를 들어 양전하를 띄는 단백질과 음전하를 띄는 단백질을 순차적으로 분리하기 위해 양이온교환 크로마토그래피를 수행한 뒤 이의 완료 후 음이온교환 크로마토그래피를 순차적으로 수행할 수 있다.
본 발명의 구체적인 구현예에 따르면, 상기 단계 (a)는 상기 생물학적 시료에 계면활성제를 첨가함으로써 이루어진다.
본 발명은 단백질 분해효소를 이용한 절편화(fragmentation) 과정 없이도 전장 단백질에 대한 탑-다운(top-down) 방식의 직접 질량 분석이 가능함은 전술한 바와 같다. 본 발명자들은 분석하고자 하는 생물학적 시료에 계면활성제를 첨가할 경우 세포막 또는 세포질 내에 존재하는 온전한 상태의 전장 단백질이 포집(encapsulation)됨으로써 효소에 의한 무작위적인 단백질 분해 없이도 신속하고 정확하게 타겟 단백질을 동정할 수 있음을 발견하였다.
본 발명에서는 전장 단백질을 포집할 정도의 미포(micelle)를 형성할 수 있는 일반적인 계면활성제라면 이온성, 비이온성 또는 양쪽이온성(zwitterionic) 계면활성제 모두 제한 없이 사용될 수 있다. 구체적으로는, 본 발명에서 사용되는 계면활성제는 이온성 계면활성제 또는 비이온성 계면활성제이다.
본 발명에서 이용될 수 있는 이온성 계면활성제는 예를 들어 DOC(Sodium Deoxycholate), 메디알란 A(Medialan A), 쿼터늄-60, 세틸피리디늄 클로라이드(cetylpyridinium chloride), 세틸피리디늄 브로마이드(cetylpyridinium bromide), 세틸트리메틸암모늄 클로라이드(cetyltrimetylammoniumchloride), 세틸트리메틸암모늄 브로마이드(cetyltrimetylammonium bromide) 및 가디놀(Gardinol)을 포함하나 이에 제한되는 것은 아니다.
본 발명에서 이용될 수 있는 비이온성 계면활성제는 예를 들어 OG(n-octyl-β-D-glucopyranoside), OTG(n-octyl-β-D-thioglucopyranoside), OGNG(Octyl Glucose Neopentyl Glycol) 및 DDM(n-Dodecyl-β-D-maltopyranoside), DDTM (n-Dodecyl-β-D-thiomaltopyranoside)을 포함하나, 이에 제한되는 것은 아니다.
보다 구체적으로는, 상기 단계 (a)는 상기 생물학적 시료에 라이시스 완충액을 추가적으로 첨가함으로써 이루어진다. 즉, 본 발명의 계면활성제는 병원성 균주가 발현하는 단백질을 분리하기 위해 세포를 용해하는 단계에서 라이시스 완충액과 함께 사용될 수 있다. 구체적으로는, 상기 라이시스 완충액은 휘발성 완충액일 수 있다.
본 발명에서 이용될 수 있는 휘발성 완충액(volatile buffer)은 예를 들어 탄산수소암모늄, 아세트산, 포름산, 암모니아, 탄산암모늄 및 피리딘/트리에탄올아민을 포함하나, 이에 제한되지 않고 시료 내 수소이온 농도를 일정 범위 내로 유지하면서 낮은 끊는 점을 가져 대기 중으로 쉽게 증발되는 모든 완충액이 사용될 수 있다.
본 발명의 구체적인 구현예에 따르면, 본 발명의 방법은 상기 단계 (a)와 상기 단계 (b) 사이에 초음파 처리(sonication) 단계를 추가적으로 포함한다.
본 발명의 구체적인 구현예에 따르면, 상기 단계 (b)는 MALDI-TOF(Matrix-Assisted Laser Desorption/ Ionization Time of Flight) 질량분석, SELDI-TOF(Sulface Enhanced Laser Desorption/Ionization Time of Flight) 질량분석, ESI-TOF(Electrospray ionisation time-of-flight) 질량분석, 액상 크로마토그래피-질량분석(liquid chromatography-Mass Spectrometry, LC-MS) 및 LC-MS/MS(liquid chromatography-Mass Spectrometry/ Mass Spectrometry)로 구성된 군으로부터 선택되는 질량분석 방법을 이용하여 이루어지며, 보다 구체적으로는 MALDI-TOF(Matrix Desorption/ Ionization Time of Flight) 질량분석을 이용하여 이루어진다.
MALDI-TOF 질량분석은 매트릭스(matrix)로 지지되어 있는 시료에 레이져를 조사하여 탈착 및 이온화시킨 후, 생성된 이온들이 검출기에 도달하는데 소요되는 시간(Time-of-Flight)을 측정하여 이온들의 분자량을 분석하는 방법으로, 타겟 물질의 절편화(fragmentation)가 일어나지 않기 때문에 단백질과 같은 거대 생체분자의 질량을 신속하고 정확하게 측정할 수 있다. 이온화된 분자가 전기장에 의해 가속되고 비행시간이 측정되면 질량 대 전하 비율(mass-to-charge ratio)(m/z)이 생성되는데, 이러한 m/z 값을 통해 타겟 물질의 분자량을 측정할 수 있다. 예를 들어 m/z=30000 (z=+1) 또는 15000(z=+2)일 경우 분자량은 m/z × z = 30000이 된다.
본 발명의 구체적인 구현예에 따르면, 상기 카바페넴 분해 효소는 KPC 단백질이고, 상기 질량 분석 결과 N-말단의 21개 아미노산 잔기가 제거된 KPC 단백질과 동일한 질량의 단백질이 검출된 경우, 상기 생물학적 시료 내에는 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주가 존재하는 것으로 판정한다.
본 발명의 구체적인 구현예에 따르면, 상기 카바페넴 분해 효소는 OXA 단백질이고, 상기 질량 분석 결과 N-말단의 22개 아미노산 잔기가 제거된 OXA 단백질과 동일한 질량의 단백질이 검출된 경우, 상기 생물학적 시료 내에는 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주가 존재하는 것으로 판정한다.
본 발명의 구체적인 구현예에 따르면, 상기 카바페넴 분해 효소는 NDM 단백질이고, 상기 질량 분석 결과 N-말단의 19개 또는 20개 아미노산 잔기가 제거된 NDM 단백질과 동일한 질량의 단백질이 검출된 경우, 상기 생물학적 시료 내에는 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주가 존재하는 것으로 판정한다.
본 발명의 구체적인 구현예에 따르면, 상기 카바페넴 분해 효소는 IMP 단백질이고, 상기 질량 분석 결과 N-말단의 18 내지 20개 아미노산 잔기가 제거된 IMP 단백질과 동일한 질량의 단백질이 검출된 경우, 상기 생물학적 시료 내에는 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주가 존재하는 것으로 판정한다.
본 발명의 구체적인 구현예에 따르면, 상기 카바페넴 분해 효소는 VIM 단백질이고, 상기 질량 분석 결과 N-말단의 25 또는 26개 아미노산 잔기가 제거된 VIM 단백질과 동일한 질량의 단백질이 검출된 경우, 상기 생물학적 시료 내에는 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주가 존재하는 것으로 판정한다.
본 발명의 구체적인 구현예에 따르면, 상기 카바페넴 분해 효소는 GES 단백질이고, 상기 질량 분석 결과 N-말단의 18개 아미노산 잔기가 제거된 GES 단백질과 동일한 질량의 단백질이 검출된 경우, 상기 생물학적 시료 내에는 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주가 존재하는 것으로 판정한다.
본 발명에 따르면, 본 발명자들은 카바페넴 분해 효소가 생체 내에서 카바페넴에 대한 분해 활성을 가지기 위해서는 일정 길이의 N-말단 잔기가 제거된 채(active form) 존재하여야 할 뿐 아니라, 활성 유지를 위해 제거되어야 하는 N-말단 잔기의 길이가 효소의 종류에 따라 각각 상이하다는 사실을 확인하였다. 따라서, 대상체에 감염된 균주가 실제로 카바페넴 내성을 가지는지 여부를 정확하게 판단하기 위해서는 N-말단의 21개 아미노산 잔기가 제거된 KPC 단백질 및/또는 N-말단의 22개 아미노산 잔기가 제거된 OXA 단백질과 동일한 질량값이 검출되는지; 그리고 후술하는 바와 같이 N-말단의 19개 또는 20개 아미노산 잔기가 제거된 NDM 단백질; N-말단의 18 내지 21개 아미노산 잔기가 제거된 IMP 단백질; N-말단의 25 또는 26개 아미노산 잔기가 제거된 VIM 단백질; 및/또는 N-말단의 18개 아미노산 잔기가 제거된 GES 단백질과 동일한 질량값이 검출되는지 여부를 기준으로 판단하여야 한다. 본 발명은 이들 공지된 카바페넴 분해효소들의 전장 아미노산 질량값을 기계적으로 검출하던 종래기술에 비해 현저히 향상된 정확도와 진단 신뢰도를 제공한다.
본 발명의 구체적인 구현예에 따르면, 상기 질량 분석 결과 28720, 28746, 28737, 28780, 28678, 28728, 28704, 28806, 28736, 28738, 28688, 28562, 28877, 28676, 28686, 28733, 28690, 28557, 28718, 28963, 28716, 28588, 29105, 28795, 28825, 28769, 29631, 28760, 28656, 28776, 28975, 29086, 28748, 30433, 28730 및 이들 값의 ±5 범위 내의 값으로 구성된 군으로부터 선택되는 하나 이상의 질량 값(m/z × z)이 검출된 경우, 상기 생물학적 시료 내에는 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주가 존재하는 것으로 판정한다. 보다 구체적으로는, 이 경우 시료 내에 존재하는 병원성 균주는 KPC 단백질을 생산하는 균주이다.
본 발명에 따르면, 상기 나열된 질량값들은 KPC 서브타입 단백질에서 N-말단의 21개 아미노산 잔기가 제거된 질량값들이다. 상술한 바와 같이 본 발명자들은 카바페넴 분해효소인 KPC의 서브타입 단백질들이 모두 생체 내에서 N-말단의 21개 아미노산 잔기가 제거된 상태에서만 카바페넴 분해 활성을 유지한다는 사실을 발견하였다. 따라서, 질량분석 결과 이에 해당하는 어느 하나 이상의 질량값이 검출될 경우, KPC 서브타입 단백질 중 하나 이상을 발현하는 균주, 즉 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주에 감염된 것으로 판정할 수 있다.
본 발명의 구체적인 구현예에 따르면, 상기 질량값(m/z × z)은 각 질량값에서 16 또는 32만큼 증가된 질량값을 추가적으로 포함한다.
보다 구체적으로는, 상기 질량 값(m/z × z)은 각 질량값에서 2만큼 감소된 질량값을 추가적으로 포함한다.
하기 실시예에서 보는 바와 같이, 본 발명자들은 KPC 단백질 3개의 메티오닌 잔기(Met49, Met116, Met151) 중 1개의 메티오닌 잔기가 산화된 상태로 존재할 수 있음을 발견함으로써, 상기 나열된 질량값에서 산소 원자 1개 만큼 증가된 분자량(+16)이 측정된 경우에도 역시 시료 내에 KPC 단백질을 발현하는 균주가 존재하는 것으로 판정할 수 있다. 아울러, 본 발명자들은 또한 KPC 단백질이 Cys68과 Cys237 사이에 이황화결합된 상태로 존재할 수 있음을 발견함으로써, 상기 나열된 질량값에서 이황화결합에 따른 2개의 수소원자 이탈에 해당하는 분자량(-2)이 측정된 경우에도 역시 시료 내에 KPC 단백질을 발현하는 균주가 존재하는 것으로 판정함으로써, 항생제 내성 균주의 존재를 보다 빈틈없이 검출할 수 있다.
본 발명의 구체적인 구현예에 따르면, 상기 질량 분석 결과 28147, 28098, 28117, 27679, 28172, 28158, 28282, 28032, 28048, 28252, 27673, 28190, 28260, 27718, 28126, 27900, 27653, 28002, 28175, 28149, 27877, 28161, 27955, 28151, 28131, 28215, 28191, 27978 및 이들 값의 ±5 범위 내의 값으로 구성된 군으로부터 선택되는 하나 이상의 질량값(m/z × z)이 검출된 경우, 상기 생물학적 시료 내에는 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주가 존재하는 것으로 판정한다. 보다 구체적으로는, 이 경우 시료 내에 존재하는 병원성 균주는 OXA 단백질을 생산하는 균주이다.
본 발명에 따르면, 상기 나열된 질량값들은 OXA 서브타입 단백질에서 N-말단의 22개 아미노산 잔기가 제거된 질량 값들이다. 본 발명자들은 OXA의 서브타입 단백질의 경우 생체 내에서 N-말단의 22개 아미노산 잔기가 제거된 상태에서만 카바페넴 분해 활성을 유지한다는 사실을 발견함에 따라, 질량 분석 결과 이에 해당하는 어느 하나 이상의 질량 값이 검출될 경우, OXA 서브타입 단백질 중 하나 이상을 발현하는 균주, 즉 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주에 감염된 것으로 판정할 수 있다.
본 발명의 구체적인 구현예에 따르면, 상기 질량 값(m/z × z)은 각 질량 값에서 16, 32 또는 48만큼 증가된 질량 값을 추가적으로 포함한다.
하기 실시예에서 보는 바와 같이, 본 발명자들은 OXA 단백질 내 6개의 메티오닌 잔기(Met115, Met138, Met195, Met237, Met239, Met241) 중 1개 내지 3개의 메티오닌 잔기가 산화된 상태로 존재할 수 있음을 발견함으로써, 상기 나열된 질량값에서 산소 원자 1개(+16), 2개(+32) 또는 3개(+48)만큼 증가된 분자량이 측정된 경우에도 시료 내에 OXA 단백질을 발현하는 균주가 존재하는 것으로 판정함으로써, 역시 항생제 내성 균주 감염 여부를 보다 면밀하게 진단할 수 있다.
본 발명의 구체적인 구현예에 따르면, 상기 질량 분석 결과 26439, 26413, 26438, 26421, 26435, 26467, 26420, 26363, 26587, 26407, 26479, 26381, 26449, 26434, 27043, 26448, 26416, 26465, 26453, 26455, 26466, 26510, 26484, 26509, 26492, 26506, 26538, 26491, 26434, 26658, 26478, 26550, 26452, 26520, 26505, 27114, 26519, 26487, 26536, 26524, 26526, 26537 및 이들 값의 ±5 범위 내의 값으로 구성된 군으로부터 선택되는 하나 이상의 질량 값(m/z × z)이 검출된 경우, 상기 생물학적 시료 내에는 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주가 존재하는 것으로 판정한다. 보다 구체적으로는, 이 경우 시료 내에 존재하는 병원성 균주는 NDM 단백질을 생산하는 균주이다.
본 발명에 따르면, 상기 나열된 질량값들은 NDM 서브타입 단백질에서 N-말단의 19개 아미노산 잔기가 제거된 질량값들로서, 질량분석 결과 이들 중 어느 하나 이상의 질량값이 검출될 경우, NDM 서브타입 단백질 중 하나 이상을 발현하는 균주, 즉 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주에 감염된 것으로 판정할 수 있다.
본 명세서에서 용어“질량 값(m/z × z)”은 검출 대상 단백질의 평균 분자량 또는 이를 대표하는 Dalton 값을 의미하나, 이를 통해 유추할 수 있는 다른 기준 질량값(예를 들어 단일 동위원소 질량값)을 이용하여 동일한 단백질을 검출하는 경우 본 발명과 동일한 구성으로 판단된다. 예를 들어 NDM-1의 단일동위원소 질량인 26493.16을 기준으로 NDM 발현 균주의 감염 여부를 판정하는 경우, 이는 상기 단일 동위원소 질량값을 통해서 당업자가 용이하게 유츄할 수 있는 평균 분자량인 26510 m/z × z을 기준값으로 NDM 발현 균주의 감염 여부를 판정하는 것과 동일한 구성이 된다.
본 발명의 구체적인 구현예에 따르면, 상기 질량 값(m/z × z)은 각 질량 값에서 16 또는 32만큼 증가된 질량 값을 추가적으로 포함한다.
하기 실시예에서 보는 바와 같이, 본 발명자들은 NDM 단백질의 7개의 메티오닌 잔기(39, 67, 126, 129, 245, 248, 265) 중 1개 또는 2개의 메티오닌 잔기가 산화된 상태로 존재할 수 있음을 발견하였다. 이에, 상기 나열된 질량값에서 산소 원자 1개(+16) 또는 2개(+32) 만큼 증가된 분자량이 측정된 경우에도 역시 시료 내에 NDM 단백질을 발현하는 균주가 존재하는 것으로 판정함으로써, 항생제 내성 균주의 존재를 보다 빈틈없이 검출할 수 있다.
보다 구체적으로는, 상기 질량 값(m/z × z)은 각 질량 값에서 14, 28 또는 42 만큼 증가된 질량 값을 추가적으로 포함한다
후술하는 바와 같이, 본 발명자들은 NDM 단백질에 1개, 2개 또는 3개의 메틸화(methylation)가 일어난 상태로 존재할 수 있음을 발견함으로서, 상기 나열된 질량값에서 1개 메틸화(+14), 2개 메틸화(+28) 또는 3개 메틸화(+42)로 인한 증가된 분자량이 측정된 경우에도 역시 시료 내에 NDM 단백질을 발현하는 균주가 존재하는 것으로 판정할 수 있다.
보다 구체적으로는, 상기 질량 값(m/z × z)은 각 질량 값에서 238 만큼 증가된 질량 값을 추가적으로 포함한다.
하기 실시예에서 보는 바와 같이, NDM 단백질에서는 팔미트화(Palmitoylation)된 단백질형에 해당하는 피크들이 관찰됨으로써, 팔미트화에 따른 질량값(+238) 만큼 증가된 분자량이 측정된 경우에도 역시 시료 내에 NDM 단백질 발현 균주가 존재하는 것으로 판정함으로써, 항생제 내성 균주 감염 여부에 대한 보다 면밀한 진단이 가능하다.
본 발명의 구체적인 구현예에 따르면, 상기 질량 분석 결과 25113, 25151, 25011, 25080, 25020, 25083, 25025, 24952, 25192, 25161, 24973, 24988, 25078, 25365, 25268, 25006, 25186, 24994, 25043, 24945, 25208, 25000, 24980, 25128, 25216, 24983, 25115, 25112, 25116, 25414, 25205, 25041, 25139, 25254, 25050, 24910, 25101, 25021, 25212, 25073, 24961, 25105, 24831, 25353, 25234, 24995, 25071, 25094, 25351, 25174, 25156, 25199, 25129, 24981, 25018, 25335, 25232, 24872, 24982, 25204, 24796, 25259, 25214, 25085, 25135, 25131, 25141, 25145, 25172, 25126, 24990 및 이들 값의 ±5 범위 내의 값으로 구성된 군으로부터 선택되는 하나 이상의 질량 값(m/z × z)이 검출된 경우, 상기 생물학적 시료 내에는 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주가 존재하는 것으로 판정한다. 보다 구체적으로는, 이 경우 시료 내에 존재하는 병원성 균주는 IMP 단백질을 생산하는 균주이다.
본 발명에 따르면, 상기 나열된 질량값들은 IMP 서브타입 단백질에서 N-말단의 18개, 19개, 20개 또는 21개 아미노산 잔기가 제거된 질량값들로서, 질량분석 결과 이들 중 어느 하나 이상의 질량값이 검출될 경우, IMP 서브타입 단백질 중 하나 이상을 발현하는 균주에 감염된 것으로 판정할 수 있다.
본 발명의 구체적인 구현예에 따르면, 상기 질량 분석 결과 25322, 25515, 25488, 25391, 25339, 25516, 25464, 25485, 25527, 25531, 25414, 25455, 25421, 25499, 25542, 25129, 25405, 25534, 25446, 25472, 25444, 25298, 25338, 25367, 25355, 25508, 25264, 25306, 25336, 25352, 25543, 25407, 25268, 25419, 25514, 25501, 25487, 25445, 25341, 25364, 25424, 25458, 25491, 25513, 25348, 25518, 25350 및 이들 값의 ±5 범위 내의 값으로 구성된 군으로부터 선택되는 하나 이상의 질량 값(m/z × z)이 검출된 경우, 상기 생물학적 시료 내에는 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주가 존재하는 것으로 판정한다. 보다 구체적으로는, 이 경우 시료 내에 존재하는 병원성 균주는 VIM 단백질을 생산하는 균주이다.
본 발명에 따르면, 상기 나열된 질량값들은 VIM 서브타입 단백질에서 N-말단의 25개 또는 26개 아미노산 잔기가 제거된 질량값들로서, 질량분석 결과 이들 중 어느 하나 이상의 질량값이 검출될 경우, VIM 서브타입 단백질 중 하나 이상을 발현하는 균주에 감염된 것으로 판정할 수 있다.
본 발명의 구체적인 구현예에 따르면, 상기 질량 분석 결과 29217, 29274, 29186, 29216, 29247, 29246, 29259, 29203, 29231, 29201, 29273, 29261, 29237, 29248, 29230, 29213, 29275, 29278, 29221, 29194, 29338, 29232, 29227, 29251, 29202, 29175, 29369, 29661 및 이들 값의 ±5 범위 내의 값으로 구성된 군으로부터 선택되는 하나 이상의 질량 값(m/z × z)이 검출된 경우, 상기 생물학적 시료 내에는 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주가 존재하는 것으로 판정한다. 보다 구체적으로는, 이 경우 시료 내에 존재하는 병원성 균주는 GES 단백질을 생산하는 균주이다.
본 발명에 따르면, 상기 나열된 질량값들은 GES 서브타입 단백질에서 N-말단의 18개 아미노산 잔기가 제거된 질량값들로서, 질량분석 결과 이들 중 어느 하나 이상의 질량값이 검출될 경우, GES 서브타입 단백질 중 하나 이상을 발현하는 균주에 감염된 것으로 판정할 수 있다.
본 발명의 구체적인 구현예에 따르면, 상기 질량 값(m/z × z)은 각 질량 값에서 16 또는 32만큼 증가된 질량 값을 추가적으로 포함한다. 보다 구체적으로는, 상기 질량 값(m/z × z)은 각 질량 값에서 2만큼 감소된 질량 값을 추가적으로 포함한다.
후술하는 바와 같이, 본 발명자들은 GES 단백질의 6개의 메티오닌 잔기(62, 95, 112, 143, 164, 181) 중 1개 또는 동시에 2개의 메티오닌 잔기가 산화된 상태로 존재할 수 있음을 발견함으로서, 상기 나열된 질량값에서 산소 원자 1개(+16) 또는 2개(+32) 만큼 증가된 분자량이 측정된 경우에도 역시 시료 내에 GES 단백질을 발현하는 균주가 존재하는 것으로 판정할 수 있다. 아울러, 본 발명자들은 또한 GES 단백질이 Cys63과 Cys233 사이에 이황화결합된 상태로 존재할 수 있음을 발견함하였다. 이에, 상기 나열된 질량값에서 이황화결합에 따른 2개의 수소원자 이탈에 해당하는 분자량(-2)이 측정된 경우에도 역시 시료 내에 GES 단백질을 발현하는 균주가 존재하는 것으로 판정함으로써, 항생제 내성 균주 감염 여부를 보다 면밀하게 진단할 수 있다.
본 발명의 특징 및 이점을 요약하면 다음과 같다:
(a) 본 발명은 생물학적 시료 내 카바페넴 항생제(Carbapenem antibiotics)에 대한 내성을 가지는 병원성 균주의 검출 방법을 제공한다.
(b) 본 발명은 질량분석법을 통해 카바페넴 항생제 분해효소, 구체적으로는 KPC, OXA, NDM, IMP, VIM 및/또는 GES 단백질을 직접적으로 확인함으로써 병원성 균주의 항생제 내성 여부는 물론 내성관련 단백질의 종류까지 신속하게 판별할 수 있다.
(c) 본 발명은 카바페넴 분해 효소의 종류에 따른 고유한 N-말단의 절단 길이, 메티오닌 잔기의 산화 및 이황화 결합 형성 등 각의 효소가 생체 내에서 가지는 물리적, 화학적 특성을 발굴하고 이를 기준 질량값에 반영함으로써 항생제 내성 균주의 존재를 높은 신뢰도로 보다 빈틈없이 검출할 수 있으며, 이를 통해 감염 초기에 적절한 항생제 투여전략을 수립하는 데에 유용하게 이용될 수 있다.
도 1은 항생제 내성 균주 유래 KPC와 OXA 단백질(도 1a), 3종류의 MBL(Metallo-β-Lactamase, 이하 MBL) 패밀리 단백질인 NDM, IMP 및 VIM, 그리고 Class A 카바페넴 분해효소인 GES 단백질의 발현 및 크기에 대한 SDS-PAGE 분석 결과(도 1b)를 보여주는 그림이다. KPC, OXA, NDM, IMP, VIM, GES의 서브타입 단백질의 발현 및 크기에 대한 SDS-PAGE 분석결과는 도 1c부터 도 1h까지 각각의 결과를 보여주는 그림이다.
도 2는 임상균주 유래 KPC와 OXA 단백질(도 2a), MBL 단백질인 NDM(도 2b), IMP(도 2c), VIM(도 2d)과 GES-5 단백질(도 2e)의 발현 및 크기에 대한 SDS-PAGE 분석 결과를 보여주는 그림이다.
도 3은 황산아연(ZnSO4) 농도에 따른 MBL 단백질들의 발현 정도와 크기를 SDS-PAGE로 확인한 결과이다.
도 4는 시료 전처리 후, 조추출액과 조효소액의 단백질 차이를 비교한 결과이다. KPC와 OXA 단백질에 대하여 비이온성 계면활성제(도 4a), 이온성 계면활성제(도 4b) 및 휘발성(Volatile) 완충용액(도 4c)를 각각 사용하여 세포를 파쇄한 후 각 단백질의 발현 및 용해도(Solubility)를 SDS-PAGE 겔로 확인하였다. 또한 비이온성 계면활성제를 사용하여 세포를 파쇄한 MBL 단백질(도 4d)과 휘발성(Volatile) 완충용액으로 세포를 파쇄시킨 GES 단백질(도 4e)의 발현 및 용해도도 SDS-PAGE 겔로 확인하였다.
도 5는 이온 크로마토그래피를 사용한 타겟 단백질의 분리 및 정제 결과를 보여주는 그림이다. 음이온 교환수지 컬럼을 이용하여 KPC(도 5a), OXA(도 5b), NDM(도 5c), IMP(도 5d), VIM(도 5e) 그리고 GES-5(도 5f)를 분리 정제하였다.
도 6은 KPC 단백질 및 OXA 단백질, 3종류의 MBL 단백질들 및 GES 단백질의 대표적 동정범위(회색)와 산화되는 메티오닌 잔기들(굵은글씨 밑줄)을 비교하여 나타낸 정렬 결과(도 6a 내지 6f)를 각각 보여준다.
도 7은 각 단백질의 N-말단으로 동정된 펩타이드의 텐덤 스펙트럼 결과를 나타낸다. 도 7a는 KPC 펩타이드의 분리 크로마토그램을, 도 7b는 KPC의 N-말단 펩타이드 동정 결과를 나타낸다. 도 7c는 OXA 펩타이드의 분리 크로마토그램을, 도 7d는 OXA의 N-말단 펩타이드 동정 결과를 나타낸다. 도 7e는 NDM 펩타이드의 분리 크로마토그램의 예를, 도 7f는 NDM의 N-말단 펩타이드 동정 결과를 나타낸다. 도 7g은 IMP 펩타이드의 분리 크로마토그램의 예를, 도 7h는 IMP의 N-말단 펩타이드 동정 결과를 나타낸다. 도 7i은 VIM 펩타이드의 분리 크로마토그램의 예를, 도 7j는 VIM의 N-말단 펩타이드 동정 결과를 나타낸다. 도 7k는 GES 펩타이드의 분리 크로마토그램의 예를, 도 7l는 GES의 N-말단 펩타이드 동정 결과를 나타낸다. 도 7m 내지 7t는 각 펩타이드의 대표적 아형에 대한 예시적 N-말단 동정결과로서, 각각 KPC-3(도 7m), KPC-17(도 7n), OXA-181(도 7o), IMP-1(도 7p), IMP-4(도 7q), VIM-1(도 7r), VIM-4(도 7s), GES-1(도 7t)의 N-말단 동정결과를 각각 나타낸다.
도 8은 ClustalW 프로그램을 사용한 KPC(도 8a), OXA(도 8b), MBL(도 8c-8e) 단백질들과 GES(도 8f) 단백질 아미노산 서열의 다중 정렬(multiple alignment) 분석결과와 보존적 아미노산 서열의 동정 결과의 예시를 보여주는 그림이다. 검정색 박스는 N-말단 서열 부위를 나타낸다.
도 9는 KPC(도 9a), OXA(도 9b), NDM(도 9c), IMP(도 9d), VIM(도 9e)과 GES(도 9f) 단백질에 대한 계통수 분석 결과 그림이다.
도 10은 고분해능 질량분석기를 이용한 KPC, OXA, NDM, IMP, VIM 및 GES 단백질 동정 결과를 보여주는 그림이다. 도 10a는 다중 전하된 KPC 단백질의 질량 스펙트럼(단일 동위원소 질량: 28,700.69 m/z × z, 평균분자량: 28,718.13 m/z × z)을 나타내고, 도 10b는 +17가의 KPC 단백질 이온에 대한 텐덤 스펙트럼과 22-293 서열에 대한 동정 결과(E = 1.8E-9)를 각각 나타낸다. 도 10c는 다중 전하된 OXA 단백질의 질량 스펙트럼(단일 동위원소 질량: 28,129.28 m/z × z, 균분자량: 28,146.69 m/z × z)을 나타내고, 도 10d는 +27가의 OXA 단백질 이온에 대한 텐덤 스펙트럼과 23-265 서열에 대한 동정 결과 (E = 3.47E-42)를 각각 나타낸다. 도 10e는 다중 전하된 NDM 단백질의 질량 스펙트럼을 나타내고, 도 10f는 +25가의 NDM 단백질 이온에 대한 텐덤 스펙트럼과 20-270 서열에 대한 동정 결과를 각각 나타낸다. 도 10g는 다중 전하된 IMP 단백질의 질량 스펙트럼을 나타내고, 도 10h는 +30가의 IMP 단백질 이온에 대한 텐덤 스펙트럼과 19-246 서열에 대한 동정 결과 (E = 2.99E-76)를 각각 나타낸다. 도 10i는 다중 전하된 VIM 단백질의 질량 스펙트럼을 나타내고, 도 10j는 +20가의 VIM 단백질 이온에 대한 텐덤 스펙트럼과 27-266 서열에 대한 동정 결과 (E = 4.76E-49)를 각각 나타낸다. 도 10k는 다중 전하된 IMP 단백질의 질량 스펙트럼을 나타내고, 도 10l은 +20가의 GES 단백질 이온에 대한 텐덤 스펙트럼과 19-287 서열에 대한 동정 결과(E = 7.12E-8)를 각각 나타낸다.
도 11은 고분해능 질량분석기를 통한 탑다운 질량분석법에 의해 얻어진 NDM 단백질의 변형된 질량값을 나타낸다. 도 11a는 팔미트화된 단백질형을 나타내고, 도 11b는 NDM 단백질의 메틸화된 단백질에 대한 결과와 그에 따른 용출시간차이를 나타낸다
도 12은 고분해능 질량분석기를 통한 탑다운 질량분석법에 의해 얻어진 KPC(도 12a), OXA(도 12b), NDM(도 12c), IMP(도 12d), VIM(도 12e)과 GES(도 12f) 단백질에 대한 서열동정범위를 나타낸다.
도 13는 저분해능 질량분석기(MALDI-TOF)를 이용한 KPC 단백질(도 13a), OXA 단백질(도 13b), MBL 단백질인 NDM(도 13c), IMP(도 13d), VIM(도 13e) 및 GES 단백질(도 13f)에 대한 질량분석 스펙트럼의 일 예를 보여주는 그림이다.
이하, 실시예를 통하여 본 발명을 더욱 상세히 설명하고자 한다. 이들 실시예는 오로지 본 발명을 보다 구체적으로 설명하기 위한 것으로, 본 발명의 요지에 따라 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되지 않는다는 것은 당업계에서 통상의 지식을 가진 자에 있어서 자명할 것이다.
실시예
실험방법
실시예 1: β-락탐계 항색제 내성 유전자의 클로닝 및 항생제 내성 균주의 제작
카바페넴 분해효소에 대한 유전자로부터 얻어진 유전자 서열(유럽분자생물학연구소(EMBL), 데이터베이스 식별번호: KPC = CP026395.1, 882nt, OXA = AY236073.2, 798nt, NDM = CAZ39946.1, 813nt, VIM = AY884050.1, 801nt, IMP = AB616660.2, 741nt, GES = DQ236171.1, 864nt)의 정보를 기반으로 원하는 유전자 서열을 합성 제작하였다(표 1). 합성유전자를 사용하여, 다음과 같은 프라이머를 제작하였다.
1) KPC
프라이머 1: 5`- AACTGCAGGATGTCACTGTATCGCCGTCTA-3`(30mer)
프라이머 2: 5`- GGAATTCTTACTGCCCGTTGACGCC-3`(25mer)
2) OXA
프라이머 1: 5`- AACTGCAGGATGCGTGTATTAGCCTTATCGG-3`(31mer)
프라이머 2: 5`- GGAATTCCTAGGGAATAATTTTTTCCTGTTTGA-3`(33mer)
3) NDM
프라이머 1: 5` - AAC TGC AGG ATG GAA TTG CCC AAT ATT ATG CA - 3` (32mer)
프라이머 2: 5` - GGA ATT CTC AGC GCA GCT TGT CGG - 3` (24mer)
4) IMP
프라이머 1: 5` - AAC TGC AGG ATG AGC AAG TTA TCT GTA TTC TTT ATA T - 3` (37mer)
프라이머 2: 5` - GGA ATT CTT AGT TGC TTG GTT TTG ATG GTT TTT - 3` (33mer)
5) VIM
프라이머 1: 5` - AAC TGC AGG ATG TTC AAA CTT TTG AGT AAG TTA TTG - 3` (36mer)
프라이머 2: 5` - GGA ATT CCT ACT CAA CGA CTG AGC GAT T - 3` (28mer)
6) GES
프라이머 1: 5` - AAC TGC AGG ATG CGC TTC ATT CAC GCA CTA T - 3` (31mer)
프라이머 2: 5` - CGG AAT TCC TAT TTG TCC GTG CTC AGG AT - 3` (29mer)
프라이머는 클로닝을 위해 제한효소 사이트를 추가하였고, 클로닝 백터에서 직접적인 발현을 유도하기 위해서 ORF(Open Reading Frame)를 맞추어 제작하였다.
3종류의 주형 DNA로부터 PCR을 통해 타겟 유전자를 증폭하였다. PCR 수행시, 반응액은 주형 DNA 3μl, 5’프라이머 1.25 ul, 3’프라이머 1.25μl, dNTPs 1μl, 5X 버퍼 10μl, 5X GC enhance 버퍼를 사용하여 총 50μl PCR 반응액으로 만든 후, PCR을 다음과 같은 조건에서 수행하였다: 1)변성(Denaturation)-98℃에서 10초; 2)어닐링(Annealing)- 57℃에서 30초; 3)확장(Extension)- 72℃에서 30초. 타겟 유전자를 포함한 재조합 발현 벡터 제작을 위한 클로닝은 다음과 같이 시행하였다; 1)삽입유전자와 벡터는 제한효소를 사용하여 DNA의 양쪽 끝을 점착성 말단(Sticky end)으로 절단하고, 2)DNA 라이게이즈 효소를 사용하여 삽입유전자를 벡터에 접합하였다. 3)이후, 대장균(E. coli Top10)에 형질전환하고, 4) White/Blue 스크린 방법으로 재조합 대장균을 선별하였다. 5)선별된 균주로부터 재조합 플라스미드를 추출하였고, 6)추출된 플라스미드는 제한효소를 처리하여 DNA 크기를 확인하였다. 7)최종적으로 DNA염기서열분석을 통해 삽입유전자를 확인하였다.
카바페넴 분해효소
KPC ATGTCACTGTATCGCCGTCTAGTTCTGCTGTCTTGTCTCTCATGGCCGCTGGCTGGCTTTTCTGCCACCGCGCTGACCAACCTCGTCGCGGAACCATTCGCTAAACTCGAACAGGACTTTGGCGGCTCCATCGGTGTGTACGCGATGGATACCGGCTCAGGCGCAACTGTAAGTTACCGCGCTGAGGAGCGCTTCCCACTGTGCAGCTCATTCAAGGGCTTTCTTGCTGCCGCTGTGCTGGCTCGCAGCCAGCAGCAGGCCGGCTTGCTGGACACACCCATCCGTTACGGCAAAAATGCGCTGGTTCCGTGGTCACCCATCTCGGAAAAATATCTGACAACAGGCATGACGGTGGCGGAGCTGTCCGCGGCCGCCGTGCAATACAGTGATAACGCCGCCGCCAATTTGTTGCTGAAGGAGTTGGGCGGCCCGGCCGGGCTGACGGCCTTCATGCGCTCTATCGGCGATACCACGTTCCGTCTGGACCGCTGGGAGCTGGAGCTGAACTCCGCCATCCCAGGCGATGCGCGCGATACCTCATCGCCGCGCGCCGTGACGGAAAGCTTACAAAAACTGACACTGGGCTCTGCACTGGCTGCGCCGCAGCGGCAGCAGTTTGTTGATTGGCTAAAGGGAAACACGACCGGCAACCACCGCATCCGCGCGGCGGTGCCGGCAGACTGGGCAGTCGGAGACAAAACCGGAACCTGCGGAGTGTATGGCACGGCAAATGACTATGCCGTCGTCTGGCCCACTGGGCGCGCACCTATTGTGTTGGCCGTCTACACCCGGGCGCCTAACAAGGATGACAAGCACAGCGAGGCCGTCATCGCCGCTGCGGCTAGACTCGCGCTCGAGGGATTGGGCGTCAACGGGCAGTAA
OXA ATGCGTGTATTAGCCTTATCGGCTGTGTTTTTGGTGGCATCGATTATCGGAATGCCTGCGGTAGCAAAGGAATGGCAAGAAAACAAAAGTTGGAATGCTCACTTTACTGAACATAAATCACAGGGCGTAGTTGTGCTCTGGAATGAGAATAAGCAGCAAGGATTTACCAATAATCTTAAACGGGCGAACCAAGCATTTTTACCCGCATCTACCTTTAAAATTCCCAATAGCTTGATCGCCCTCGATTTGGGCGTGGTTAAGGATGAACACCAAGTCTTTAAGTGGGATGGACAGACGCGCGATATCGCCACTTGGAATCGCGATCATAATCTAATCACCGCGATGAAATATTCAGTTGTGCCTGTTTATCAAGAATTTGCCCGCCAAATTGGCGAGGCACGTATGAGCAAGATGCTACATGCTTTCGATTATGGTAATGAGGACATTTCGGGCAATGTAGACAGTTTCTGGCTCGACGGTGGTATTCGAATTTCGGCCACGGAGCAAATCAGCTTTTTAAGAAAGCTGTATCACAATAAGTTACACGTATCGGAGCGCAGCCAGCGTATTGTCAAACAAGCCATGCTGACCGAAGCCAATGGTGACTATATTATTCGGGCTAAAACTGGATACTCGACTAGAATCGAACCTAAGATTGGCTGGTGGGTCGGTTGGGTTGAACTTGATGATAATGTGTGGTTTTTTGCGATGAATATGGATATGCCCACATCGGATGGTTTAGGGCTGCGCCAAGCCATCACAAAAGAAGTGCTCAAACAGGAAAAAATTATTCCCTAG
NDM ATGGAATTGCCCAATATTATGCACCCGGTCGCGAAGCTGAGCACCGCATTAGCCGCTGCA
TTGATGCTGAGCGGGTGCATGCCCGGTGAAATCCGCCCGACGATTGGCCAGCAAATGGAA
ACTGGCGACCAACGGTTTGGCGATCTGGTTTTCCGCCAGCTCGCACCGAATGTCTGGCAG
CACACTTCCTATCTCGACATGCCGGGTTTCGGGGCAGTCGCTTCCAACGGTTTGATCGTC
AGGGATGGCGGCCGCGTGCTGGTGGTCGATACCGCCTGGACCGATGACCAGACCGCCCAG
ATCCTCAACTGGATCAAGCAGGAGATCAACCTGCCGGTCGCGCTGGCGGTGGTGACTCAC
GCGCATCAGGACAAGATGGGCGGTATGGACGCGCTGCATGCGGCGGGGATTGCGACTTAT
GCCAATGCGTTGTCGAACCAGCTTGCCCCGCAAGAGGGGATGGTTGCGGCGCAACACAGC
CTGACTTTCGCCGCCAATGGCTGGGTCGAACCAGCAACCGCGCCCAACTTTGGCCCGCTC
AAGGTATTTTACCCCGGCCCCGGCCACACCAGTGACAATATCACCGTTGGGATCGACGGC
ACCGACATCGCTTTTGGTGGCTGCCTGATCAAGGACAGCAAGGCCAAGTCGCTCGGCAAT
CTCGGTGATGCCGACACTGAGCACTACGCCGCGTCAGCGCGCGCGTTTGGTGCGGCGTTC
CCCAAGGCCAGCATGATCGTGATGAGCCATTCCGCCCCCGATAGCCGCGCCGCAATCACT
CATACGGCCCGCATGGCCGACAAGCTGCGCTGA
IMP ATGAGCAAGTTATCTGTATTCTTTATATTTTTGTTTTGCAGCATTGCTACCGCAGCAGAG
TCTTTGCCAGATTTAAAAATTGAAAAGCTTGATGAAGGCGTTTATGTTCATACTTCGTTT
GAAGAAGTTAACGGGTGGGGCGTTGTTCCTAAACATGGTTTGGTGGTTCTTGTAAATGCT
GAGGCTTACCTAATTGACACTCCATTTACGGCTAAAGATACTGAAAAGTTAGTCACTTGG
TTTGTGGAGCGTGGCTATAAAATAAAAGGCAGCATTTCCTCTCATTTTCATAGCGACAGC
ACGGGCGGAATAGAGTGGCTTAATTCTCGATCTATCCCCACGTATGCATCTGAATTAACA
AATGAACTGCTTAAAAAAGACGGTAAGGTTCAAGCCACAAATTCATTTAGCGGAGTTAAC
TATTGGCTAGTTAAAAATAAAATTGAAGTTTTTTATCCAGGCCCGGGACACACTCCAGAT
AACGTAGTGGTTTGGTTGCCTGAAAGGAAAATATTATTCGGTGGTTGTTTTATTAAACCG
TACGGTTTAGGCAATTTGGGTGACGCAAATATAGAAGCTTGGCCAAAGTCCGCCAAATTA
TTAAAGTCCAAATATGGTAAGGCAAAACTGGTTGTTCCAGGTCACAGTGAAGTTGGAGAC
GCATCACTCTTGAAACTTACATTAGAGCAGGCGGTTAAAGGGTTAAACGAAAGTAAAAAA
CCATCAAAACCAAGCAACTAA
VIM ATGTTCAAACTTTTGAGTAAGTTATTGGTCTATTTGACCGCGTCTATCATGGCTATTGCG
AGTCCGCTCGCTTTTTCCGTAGATTCTAGCGGTGAGTATCCGACAGTCAGCGAAATTCCG
GTCGGGGAGGTCCGGCTTTACCAGATTGCCGATGGTGTTTGGTCGCATATCGCAACGCAG
TCGTTTGATGGCGCAGTCTACCCGTCCAATGGTCTCATTGTCCGTGATGGTGATGAGTTG
CTTTTGATTGATACAGCGTGGGGTGCGAAAAACACAGCGGCACTTCTCGCGGAGATTGAG
AAGCAAATTGGACTTCCTGTAACGCGTGCAGTCTCCACGCACTTTCATGACGACCGCGTC
GGCGGCGTTGATGTCCTTCGGGCGGCTGGGGTGGCAACGTACGCATCACCGTCGACACGC
CGGCTAGCCGAGGTAGAGGGGAACGAGATTCCCACGCACTCTCTAGAAGGACTCTCATCG
AGCGGGGACGCAGTGCGCTTCGGTCCAGTAGAACTCTTCTATCCTGGTGCTGCGCATTCG
ACCGACAACTTAGTTGTGTACGTCCCGTCTGCGAGTGTGCTCTATGGTGGTTGTGCGATT
TATGAGTTGTCACGCACGTCTGCGGGGAACGTGGCCGATGCCGATCTGGCTGAATGGCCC
ACCTCCATTGAGCGGATTCAACAACACTACCCGGAAGCACAGTTCGTCATTCCGGGGCAC
GGCCTGCCGGGCGGTCTAGACTTGCTCAAGCACACAACGAATGTTGTAAAAGCGCACACA
AATCGCTCAGTCGTTGAGTAG
GES ATGCGCTTCATTCACGCACTATTACTGGCAGGGATCGCTCACTCTGCATATGCGTCGGAA
AAATTAACCTTCAAGACCGATCTTGAGAAGCTAGAGCGCGAAAAAGCAGCTCAGATCGGT
GTTGCGATCGTCGATCCCCAAGGAGAGATCGTCGCGGGCCACCGAATGGCGCAGCGTTTT
GCAATGTGCTCAACGTTCAAGTTTCCGCTAGCCGCGCTGGTCTTTGAAAGAATTGACTCA
GGCACCGAGCGGGGGGATCGAAAACTTTCATATGGGCCGGACATGATCGTCGAATGGTCT
CCTGCCACGGAGCGGTTTCTAGCATCGGGACACATGACGGTTCTCGAGGCAGCGCAAGCT
GCGGTGCAGCTTAGCGACAATGGGGCTACTAACCTCTTACTGAGAGAAATTGGCGGACCT
GCTGCAATGACGCAGTATTTTCGTAAAATTGGCGACTCTGTGAGTCGGCTAGACCGGAAA
GAGCCGGAGATGAGCGACAACACACCTGGCGACCTCAGAGATACAACTACGCCTATTGCT
ATGGCACGTACTGTGGCTAAAGTCCTCTATGGCGGCGCACTGACGTCCACCTCGACCCAC
ACCATTGAGAGGTGGCTGATCGGAAACCAAACGGGAGACGCGACACTACGAGCGGGTTTT
CCTAAAGATTGGGTTGTTGGAGAGAAAACTGGTACCTGCGCCAACGGGGGCCGGAACGAC
ATTGGTTTTTTTAAAGCCCAGGAGAGAGATTACGCTGTAGCGGTGTATACAACGGCCCCG
AAACTATCGGCCGTAGAACGTGACGAATTAGTTGCCTCTGTCGGTCAAGTTATTACACAA
CTCATCCTGAGCACGGACAAATAG
실시예 2: 타겟 단백질 발현 및 크기 확인
(1) 타겟 단백질 생산 및 확인
타겟 유전자를 포함한 플라스미드의 형질전환한 대장균은 50mg/L의 암피실린 항생제가 포함된 Luria-bertani 액체배지에 접종하고, 37℃에서 16시간이상 배양하였다. 타겟 단백질의 발현과 크기를 확인하기 위해 배양액은 4,000rpm에서 15분간 원심분리하고, 상등액을 제거하여 세포를 수확하였다. 수확한 세포는 SDS-샘플 완충액을 넣고 95℃에서 5분 동안 가열한 뒤, 15,000rpm으로 5분간 원심분리하였다. 준비된 샘플을 사용하여 SDS-PAGE 젤 분석을 통해 타겟 단백질의 발현과 크기를 확인하였다(도 1).
(2) 임상균주 유래 KPC와 OXA의 유전형 확인 및 단백질 확인
임상균주 유래 KPC와 OXA을 확인하기 위해 ESBL(Extended Spectrum β-Lactamase) 양성으로 확인된 균주를 수집하였다. 수집된 균주는 KPC와 OXA 유전자 증폭에 사용한 프라이머를 이용하여 콜로니 PCR을 수행하였다. 이를 통해 증폭된 PCR 산물은 한천젤 전기영동을 통해 타겟 유전자의 크기를 확인하였다. 크기가 확인된 PCR산물은 DNA 염기서열분석을 통하여 정확한 KPC와 OXA 유전자의 유전형을 확인하였다.
유전형이 확인된 균주는 LB 액체배지에서 배양하고, SDS-PAGE 겔 분석을 통해 KPC와 OXA 단백질의 발현유무를 확인하였다. 또한 기존의 KPC와 OXA 유전자가 삽입된 백터를 포함한 재조합 균주와 동일하게 임상균주 유래 KPC와 OXA 유전자를 포함하는 재조합 균주를 제작하고 재조합 균주도 임상균주와 동일하게 SDS-PAGE 젤 분석을 통하여 실제 발현된 KPC와 OXA 단백질의 크기를 확인하였다(도 2).
임상균주 유래 KPC와 OXA 단백질은 Q-TOF MS 방법을 통하여 각각을 동정하였다. KPC의 경우, 동정된 펩타이드에 대한 서열범위는 전체 단백질 서열에서는 62.46%(183/293)로, N-말단이 제외된 활성형으로는 67.28%(183/272)로 확인했다. 또한, OXA의 경우는 동정된 펩타이드를 통하여 전체 단백질 아미노산 서열을 적용하였을 때, 16.98%(45/265)로, 활성형 단백질의 서열을 기준으로는 18.52%(45/243)로 각각 확인했다.
(3) MBL 단백질 생산 및 확인
타겟 MBL 유전자를 포함한 플라스미드의 형질전환한 대장균은 50mg/L의 암피실린 항생제와 황산아연(0.01 mM ~ 1 mM ZnSO4)이 포함된 Luria-bertani 액체배지에 접종하고, 37℃에서 16시간이상 배양하였다. 타겟 단백질의 발현과 크기를 확인하기 위해 배양액은 4,000rpm에서 15분간 원심분리하고, 상등액을 제거하여 세포를 수확하였다. 수확한 세포는 SDS-샘플 완충액을 넣고 95℃에서 5분 동안 가열한 뒤, 15,000rpm으로 5분간 원심분리하였다. 준비된 샘플을 사용하여 SDS-PAGE 젤 분석을 통해 타겟 단백질의 발현과 크기를 확인하였다(도 3).
실시예 3: 시료 전처리 방법 및 조효소액으로부터의 타겟 단백질 확인
(1) 비이온성 계면활성제를 이용한 시료 전처리
시료 전처리를 위해 배양액은 4,000rpm에서 15분 동안 원심분리하고, 상등액을 제거하여 세포를 수확하였다. 조추출액을 확보하기 위해 완충용액(0.25 mM Tris-HCl, 2% OG)을 처리하고 상온에서 10분 동안 반응시켰다. 만들어진 조추출액은 4℃에서 15,000rpm으로 10분 동안 원심분리하여 상등액(이하, 조효소액)과 침전물로 분리하였다. 조효소액으로부터 SDS-PAGE 분석을 통해 타겟 단백질의 발현과 크기를 확인하였다(도 4).
(2) 이온성 계면활성제를 이용한 시료 전처리
다음의 단계로 시료 전처리를 수행하였다: 1) 발현된 세포배양액 100μl를 원심분리하여 세포를 회수하고, 2) 상등액을 제거한 후, 비이온성 계면활성제인 DOC(Sodium Deoxycholate) 2%를 포함한 완충용액(0.25 mM Tris-HCl, pH 8.0 and 2% DOC)을 첨가하였다. 3) 혼탁액은 10분간 상온에서 인큐베이션하고 4) 4℃에서 15,000rpm으로 10분 동안 원심분리하여 조효소액을 확보하였다.
이온성 계면활성제(DOC)를 처리한 조추출액과 조효소액은 각각 SDS-PAGE 젤 분석을 통하여 단백질의 발현 및 크기를 확인하였다(도 4b).
(3) 휘발성 완충용액을 이용한 시료 전처리
시료전처리 방법은 다음과 같다: 1) 50 mM 탄산수소암모늄(이하, ABC) 용액을 수확한 세포에 첨가한 후, 2) 파이펫으로 재부유(resuspension)한 다음, 3) 12,000rpm, 4℃, 10분간 원심분리하여 상등액을 회수하였다. 처리한 조추출액과 조효소액은 SDS-PAGE 젤 분석을 통해 단백질의 발현 및 크기를 확인하였다(도 4c 및 4e).
(4) 초음파 파쇄법을 이용한 시료 전처리
상기 (1) ~ (3)번 방법으로 처리된 혼탁액은 Sonic bath(JAC 2010, 한솔테크, 한국)를 이용하여 40Hz, 200W로 5 ~ 10분간 초음파로 세포를 파쇄하였고, 15,000rmp으로 10분 동안 원심분리하여 상등액을 회수하였다.
실시예 4: 타겟 단백질 분리/정제
타겟 단백질의 분리/정제를 위해 이온교환 크로마토그래피를 사용하였다. 이온교환 수지는 음이온의 경우 Q-레진이 포함된 컬럼을 양이온은 SP-레진이 포함된 컬럼을 사용하였다.
(1) 음이온 교환수지 크로마토그래피
Q-레진이 포함된 컬럼에 조효소액을 로딩한 뒤 용출되는 용액을 수집하였다. 20 mM Tris-HCl, pH 8.0 완충용액 1 ml을 사용하여 세척하고, 완충용액에 100 mM NaCl, 200 mM NaCl, 300 mM NaCl, 400 mM NaCl, 500 mM NaCl 1M을 각각 포함한 용출용액을 순차적으로 250μl씩 로딩하고 각각 구획별로 용출액을 수집하였다.
(2) 양이온 교환수지 크로마토그래피
SP-레진이 포함된 컬럼을 이용하여 (1) 음이온 교환수지 크로마토그래피와 동일한 방법으로 타겟 단백질을 분리 정제하였다.
최종적으로 상기의 이온교환 크로마토그래피방법을 통해 원하는 6 종류의 타겟 단백질을 분리/정제하였다(도 4). 최종적으로, 위와 같은 방법을 사용하여 세포파쇄액으로부터 순도 높은 각 단백질들을 분리/정제하였다.
실시예 5: 타겟 단백질의 확인 발현 및 크기 확인
SDS-PAGE 겔에서 발현과 크기가 확인된 단백질은 In-gel digestion 방법과 nano-LC-MS/MS 방법을 사용하여 동정함으로써 실제로 균주에서 발현된 항생제 내성 단백질의 종류를 확인하였다(도 7).
(1) In-Gel Digestion
SDS-PAGE 겔에서 타겟 단백질 크기에 해당하는 밴드부분만 확보하고, 염색되어 있는 겔을 탈색(destain)하였다. 탈색된 겔은 환원/알킬화(Reduction/ alkylation) 과정을 거친 후, 트립신 효소를 사용하여 단백질을 선택적으로 절단(digestion)하였다. 절단된 펩타이드를 회수하고 DK-Tip(C18 Tip)을 사용하여 탈염하였다.
(2) nano-LC-MS/MS
균주 내에서 발현되는 활성 단백질(Active protein)의 서열 및 범위를 확인하기 위해 나노액체크로마토그래피 및 고분해능 질량분석을 수행하였다(Q-Exactive HF-X 질량분석기 시스템). 탈염된 펩타이드 시료를 0.1% 포름산 용액으로 용해시킨 후, 컬럼에 시료를 주입하였다. C18 컬럼(75μm x 70cm)과 나노유속 액상 크로마토그래피를 이용하여 펩타이드 시료를 분리하였다. 이때 사용한 시료 로딩 및 분리용 구배(gradient) 조건의 예는 다음과 같다:
- 버퍼 A: 물 내의 0.1% 포름산/ 버퍼 B: 아세토니트릴 내의 0.1% 포름산
- 시료 로딩: 0 - 5분, 5%(B), 유속 5μL/min
- 분리 농도 구배:
5 - 7분, 5%에서 10%(B), 유속 300nL/min
7 - 38분, 10%에서 40%(B), 유속 300nL/min
38 - 38.5분, 40%에서 80%(B), 유속 300nL/min
38.5 - 39.5분, 80%(B), 유속 300nL/min
39.5 - 40분, 80%에서 5%(B), 유속 300nL/min
40 - 60분, 5%(B), 유속 300nL/min
이때 사용된 질량분석기의 파라미터의 예는 다음과 같다:
-분해능: Full MS 60,000, MS2 30,000
-Full MS: 350~2,000 m/z, 100 msec
-MS2: 50 msec, NCE 28, 1, >6가로 이온화 물질은 MS2 대상에서 제외
Bottom-up 데이터로 펩타이드 및 단백질을 동정하기 위해 Thermo사의 ‘Proteome Discoverer(v2.4)’소프트웨어를 활용하였으며, 단백질/펩타이드 동정은 FDR(false discovery rate) 1%를 기준으로 선별하였다. E. Coli 유래 단백질 중에서 KPC, OXA, MBL 단백질 혹은 GES 단백질이 동정되었으며, KPC 단백질에서는 200개의 펩타이드(표 2), OXA의 경우는 177개의 펩타이드(표 3), NDM 단백질은 109개의 펩타이드(표 4), IMP의 경우는 146개의 펩타이드(표 5), VIM 단백질에서는 159개의 펩타이드(표 6), GES의 경우 111개의 펩타이드(표 7)가 동정되었다.
KPC로 동정된 각 펩타이드의 위치 및 서열 펩타이드 정보
개시 종결 서열 산화부위 z SEQUEST XCorr SEQUEST deltaCn 관찰된 m/z 실제지량 (Da)
22 35 (S)ATALTNLVAEPFAK(L) 　 2 4.48 0.67 723.40 1,444.79
23 35 (A)TALTNLVAEPFAK(L) 　 2 4.56 0.67 687.88 1,373.75
24 35 (T)ALTNLVAEPFAK(L) 　 2 3.17 0.53 637.36 1,272.71
25 35 (A)LTNLVAEPFAK(L) 　 2 3.38 0.56 601.84 1,201.67
26 36 (L)TNLVAEPFAKL(E) 　 2 2.05 0.27 601.84 1,201.67
26 60 (L)TNLVAEPFAKLEQDFGGSIGVYAmDTGSGATVSYR(A) M(49) 3 2.99 0.50 1,223.26 3,666.76
27 35 (T)NLVAEPFAK(L) 　 2 2.25 0.33 494.78 987.54
29 35 (L)VAEPFAK(L) 　 1 2.65 0.43 761.41 760.41
34 47 (F)AKLEQDFGGSIGVY(A) 　 2 3.15 0.52 742.38 1,482.74
34 60 (F)AKLEQDFGGSIGVYAmDTGSGATVSYR(A) M(49) 3 5.39 0.72 932.78 2,795.31
34 60 (F)AKLEQDFGGSIGVYAMDTGSGATVSYR(A) 　 3 3.97 0.62 927.45 2,779.32
36 60 (K)LEQDFGGSIGVYAmDTGSGATVSYR(A) M(49) 2 6.81 0.78 1,299.10 2,596.18
36 60 (K)LEQDFGGSIGVYAMDTGSGATVSYR(A) 　 2 6.83 0.78 1,291.10 2,580.18
42 60 (G)GSIGVYAmDTGSGATVSYR(A) M(49) 2 2.01 0.25 954.44 1,906.87
45 60 (I)GVYAMDTGSGATVSYR(A) 　 2 2.35 0.36 817.88 1,633.74
48 59 (Y)AmDTGSGATVSY(R) M(49) 2 2.84 0.47 588.25 1,174.48
48 59 (Y)AMDTGSGATVSY(R) 　 2 2.67 0.44 580.25 1,158.49
48 60 (Y)AmDTGSGATVSYR(A) M(49) 2 3.30 0.55 666.30 1,330.58
48 60 (Y)AMDTGSGATVSYR(A) 　 2 3.92 0.62 658.30 1,314.59
50 60 (M)DTGSGATVSYR(A) 　 2 2.25 0.33 557.27 1,112.52
60 67 (Y)RAEERFPL(C) 　 2 1.76 0.15 509.28 1,016.54
60 71 (Y)RAEERFPLcSSF(K) 　 2 2.80 0.46 749.86 1,497.71
61 67 (R)AEERFPL(C) 　 2 1.98 0.24 431.23 860.44
61 72 (R)AEERFPLcSSFK(G) 　 2 4.26 0.65 735.86 1,469.70
62 72 (A)EERFPLcSSFK(G) 　 2 3.39 0.56 700.34 1,398.67
63 72 (E)ERFPLcSSFK(G) 　 2 3.86 0.61 635.82 1,269.62
65 72 (R)FPLcSSFK(G) 　 2 2.35 0.36 493.25 984.48
68 74 (L)cSSFKGF(L) 　 2 2.16 0.31 416.69 831.36
72 80 (F)KGFLAAAVL(A) 　 2 2.57 0.42 445.28 888.54
72 82 (F)KGFLAAAVLAR(S) 　 2 2.01 0.25 558.85 1,115.69
73 82 (K)GFLAAAVLAR(S) 　 2 3.21 0.53 494.80 987.59
74 82 (G)FLAAAVLAR(S) 　 2 1.97 0.24 466.29 930.56
75 82 (F)LAAAVLAR(S) 　 2 2.96 0.49 392.76 783.50
76 82 (L)AAAVLAR(S) 　 1 2.24 0.33 671.42 670.41
81 96 (L)ARSQQQAGLLDTPIRY(G) 　 2 3.60 0.58 908.99 1,815.96
83 95 (R)SQQQAGLLDTPIR(Y) 　 2 4.74 0.68 713.88 1,425.75
83 98 (R)SQQQAGLLDTPIRYGK(N) 　 2 5.57 0.73 887.98 1,773.94
84 95 (S)QQQAGLLDTPIR(Y) 　 2 2.45 0.39 670.37 1,338.73
85 95 (Q)QQAGLLDTPIR(Y) 　 2 3.39 0.56 606.34 1,210.67
87 95 (Q)AGLLDTPIR(Y) 　 2 2.37 0.37 478.28 954.55
90 96 (L)LDTPIRY(G) 　 2 1.96 0.23 439.24 876.47
96 110 (R)YGKNALVPWSPISEK(Y) 　 2 1.87 0.20 844.95 1,687.89
97 104 (Y)GKNALVPW(S) 　 2 1.89 0.21 442.75 883.50
97 111 (Y)GKNALVPWSPISEKY(L) 　 2 4.27 0.65 844.96 1,687.90
99 110 (K)NALVPWSPISEK(Y) 　 2 3.22 0.53 670.86 1,339.71
100 110 (N)ALVPWSPISEK(Y) 　 2 2.11 0.29 613.84 1,225.67
102 110 (L)VPWSPISEK(Y) 　 1 2.69 0.44 1,042.55 1,041.54
103 110 (V)PWSPISEK(Y) 　 2 2.19 0.31 472.25 942.48
105 111 (W)SPISEKY(L) 　 2 1.90 0.21 412.22 822.42
105 112 (W)SPISEKYL(T) 　 2 1.87 0.20 468.76 935.50
105 121 (W)SPISEKYLTTGmTVAEL(S) M(116) 2 3.60 0.58 928.47 1,854.93
111 139 (K)YLTTGmTVAELSAAAVQYSDNAAANLLLK(E) M(116) 2 8.51 0.82 1,508.27 3,014.53
111 139 (K)YLTTGMTVAELSAAAVQYSDNAAANLLLK(E) 　 2 8.88 0.83 1,500.27 2,998.53
112 121 (Y)LTTGmTVAEL(S) M(116) 2 1.90 0.21 526.27 1,050.53
113 139 (L)TTGMTVAELSAAAVQYSDNAAANLLLK(E) 　 2 3.10 0.52 1,362.20 2,722.39
117 139 (M)TVAELSAAAVQYSDNAAANLLLK(E) 　 2 5.53 0.73 1,167.12 2,332.23
122 128 (L)SAAAVQY(S) 　 1 1.62 0.07 709.35 708.35
122 139 (L)SAAAVQYSDNAAANLLLK(E) 　 2 4.23 0.65 910.48 1,818.94
123 139 (S)AAAVQYSDNAAANLLLK(E) 　 2 3.20 0.53 866.97 1,731.92
125 139 (A)AVQYSDNAAANLLLK(E) 　 2 3.41 0.56 795.93 1,589.84
128 139 (Q)YSDNAAANLLLK(E) 　 2 3.76 0.60 646.85 1,291.68
129 137 (Y)SDNAAANLL(L) 　 1 2.19 0.32 888.45 887.44
129 139 (Y)SDNAAANLLLK(E) 　 2 2.65 0.43 565.31 1,128.61
138 147 (L)LKELGGPAGL(T) 　 2 3.57 0.58 477.79 953.56
139 150 (L)KELGGPAGLTAF(M) 　 2 2.89 0.48 580.82 1,159.63
140 152 (K)ELGGPAGLTAFmR(S) M(151) 2 3.56 0.58 668.34 1,334.67
140 152 (K)ELGGPAGLTAFMR(S) 　 2 3.94 0.62 660.34 1,318.67
142 152 (L)GGPAGLTAFmR(S) M(151) 2 2.11 0.29 547.28 1,092.54
143 152 (G)GPAGLTAFmR(S) M(151) 2 2.63 0.43 518.77 1,035.52
144 152 (G)PAGLTAFmR(S) M(151) 2 2.42 0.38 490.25 978.49
148 159 (L)TAFmRSIGDTTF(R) M(151) 2 3.43 0.56 681.82 1,361.63
148 159 (L)TAFMRSIGDTTF(R) 　 2 3.89 0.61 673.83 1,345.64
151 159 (F)mRSIGDTTF(R) M(151) 2 2.57 0.42 522.25 1,042.48
151 159 (F)MRSIGDTTF(R) 　 2 2.52 0.40 514.25 1,026.49
153 160 (R)SIGDTTFR(L) 　 2 2.15 0.30 448.73 895.44
153 163 (R)SIGDTTFRLDR(W) 　 2 2.55 0.41 640.83 1,279.65
153 177 (R)SIGDTTFRLDRWELELNSAIPGDAR(D) 　 3 1.99 0.25 944.82 2,831.43
154 160 (S)IGDTTFR(L) 　 2 2.08 0.28 405.21 808.41
154 163 (S)IGDTTFRLDR(W) 　 2 1.88 0.20 597.32 1,192.62
155 163 (I)GDTTFRLDR(W) 　 2 1.85 0.19 540.78 1,079.54
156 163 (G)DTTFRLDR(W) 　 2 1.92 0.22 512.27 1,022.52
161 177 (R)LDRWELELNSAIPGDAR(D) 　 2 3.95 0.62 978.00 1,953.99
161 183 (R)LDRWELELNSAIPGDARDTSSPR(A) 　 3 2.59 0.42 866.77 2,597.29
164 177 (R)WELELNSAIPGDAR(D) 　 2 4.22 0.64 785.90 1,569.78
164 183 (R)WELELNSAIPGDARDTSSPR(A) 　 3 3.34 0.55 738.70 2,213.08
165 177 (W)ELELNSAIPGDAR(D) 　 2 3.42 0.56 692.86 1,383.70
184 191 (R)AVTESLQK(L) 　 2 2.27 0.34 438.24 874.47
184 203 (R)AVTESLQKLTLGSALAAPQR(Q) 　 2 3.16 0.53 1,027.58 2,053.15
185 191 (A)VTESLQK(L) 　 2 1.97 0.24 402.73 803.44
192 203 (K)LTLGSALAAPQR(Q) 　 2 4.07 0.63 599.35 1,196.69
192 204 (K)LTLGSALAAPQRQ(Q) 　 2 1.85 0.19 663.38 1,324.75
193 203 (L)TLGSALAAPQR(Q) 　 2 2.24 0.33 542.81 1,083.61
193 206 (L)TLGSALAAPQRQQF(V) 　 2 4.04 0.63 744.40 1,486.79
194 203 (T)LGSALAAPQR(Q) 　 2 3.44 0.56 492.28 982.56
195 206 (L)GSALAAPQRQQF(V) 　 2 2.10 0.29 637.34 1,272.66
199 209 (L)AAPQRQQFVDW(L) 　 2 3.25 0.54 673.34 1,344.66
199 210 (L)AAPQRQQFVDWL(K) 　 2 1.82 0.18 729.88 1,457.74
204 211 (R)QQFVDWLK(G) 　 2 2.89 0.48 532.28 1,062.55
204 219 (R)QQFVDWLKGNTTGNHR(I) 　 2 2.91 0.48 950.98 1,899.94
210 228 (W)LKGNTTGNHRIRAAVPADW(A) 　 3 1.93 0.22 693.04 2,076.11
212 219 (K)GNTTGNHR(I) 　 2 2.39 0.37 428.70 855.39
222 233 (R)AAVPADWAVGDK(T) 　 2 2.66 0.44 600.31 1,198.60
222 235 (R)AAVPADWAVGDKTG(T) 　 2 3.29 0.54 679.34 1,356.67
222 236 (R)AAVPADWAVGDKTGT(C) 　 2 3.82 0.61 729.86 1,457.71
222 254 (R)AAVPADWAVGDKTGTcGVYGTANDYAVVWPTGR(A) 　 3 3.57 0.58 1,142.54 3,424.60
223 233 (A)AVPADWAVGDK(T) 　 2 2.43 0.38 564.79 1,127.56
224 233 (A)VPADWAVGDK(T) 　 2 2.89 0.48 529.27 1,056.52
225 233 (V)PADWAVGDK(T) 　 2 3.15 0.52 479.73 957.46
226 233 (P)ADWAVGDK(T) 　 1 2.59 0.42 861.41 860.40
229 240 (W)AVGDKTGTcGVY(G) 　 2 3.20 0.53 614.29 1,226.56
229 246 (W)AVGDKTGTcGVYGTANDY(A) 　 2 3.02 0.50 924.91 1,847.81
234 254 (K)TGTcGVYGTANDYAVVWPTGR(A) 　 2 3.04 0.51 1,123.02 2,244.02
238 254 (C)GVYGTANDYAVVWPTGR(A) 　 2 4.23 0.65 913.45 1,824.88
239 254 (G)VYGTANDYAVVWPTGR(A) 　 2 4.11 0.64 884.94 1,767.86
240 254 (V)YGTANDYAVVWPTGR(A) 　 2 3.37 0.55 835.40 1,668.79
241 254 (Y)GTANDYAVVWPTGR(A) 　 2 1.98 0.24 753.87 1,505.73
245 254 (N)DYAVVWPTGR(A) 　 2 2.69 0.44 582.29 1,162.58
247 259 (Y)AVVWPTGRAPIVL(A) 　 2 2.21 0.32 689.92 1,377.82
251 262 (W)PTGRAPIVLAVY(T) 　 2 2.40 0.38 628.87 1,255.73
255 264 (R)APIVLAVYTR(A) 　 2 3.49 0.57 551.83 1,101.65
255 271 (R)APIVLAVYTRAPNKDDK(H) 　 3 1.75 0.14 624.35 1,870.03
256 264 (A)PIVLAVYTR(A) 　 2 2.99 0.50 516.32 1,030.62
257 264 (P)IVLAVYTR(A) 　 2 1.99 0.25 467.79 933.56
260 283 (L)AVYTRAPNKDDKHSEAVIAAAARL(A) 　 4 3.51 0.57 642.60 2,566.37
263 283 (Y)TRAPNKDDKHSEAVIAAAARL(A) 　 3 5.25 0.71 745.41 2,233.20
263 285 (Y)TRAPNKDDKHSEAVIAAAARLAL(E) 　 3 3.67 0.59 806.78 2,417.33
265 282 (R)APNKDDKHSEAVIAAAAR(L) 　 2 5.92 0.75 932.49 1,862.96
266 282 (A)PNKDDKHSEAVIAAAAR(L) 　 3 5.88 0.74 598.31 1,791.92
267 282 (P)NKDDKHSEAVIAAAAR(L) 　 2 4.96 0.70 848.44 1,694.87
268 282 (N)KDDKHSEAVIAAAAR(L) 　 2 5.04 0.70 791.42 1,580.82
269 282 (K)DDKHSEAVIAAAAR(L) 　 2 3.34 0.55 727.37 1,452.73
270 282 (D)DKHSEAVIAAAAR(L) 　 3 2.12 0.29 446.91 1,337.71
271 282 (D)KHSEAVIAAAAR(L) 　 2 3.35 0.55 612.35 1,222.68
272 282 (K)HSEAVIAAAAR(L) 　 2 3.92 0.62 548.30 1,094.58
273 282 (H)SEAVIAAAAR(L) 　 2 2.34 0.36 479.77 957.52
283 291 (R)LALEGLGVN(G) 　 1 2.36 0.36 885.50 884.49
283 293 (R)LALEGLGVNGQ(-) 　 2 3.66 0.59 535.80 1,069.58
284 293 (L)ALEGLGVNGQ(-) 　 2 2.09 0.28 479.25 956.49
OXA로 동정된 각 펩타이드의 위치 및 서열 펩타이드 정보
개시 종결 서열 산화
부위 		z SEQUEST XCorr SEQUEST deltaCn 관찰된 m/z 실제 질량 (Da)
23 29 (A)KEWQENK(S) 　 2 2.01 0.25 481.24 960.47
23 39 (A)KEWQENKSWNAHFTEHK(S) 　 4 5.28 0.72 550.52 2198.03
28 39 (E)NKSWNAHFTEHK(S) 　 2 3.06 0.51 749.87 1497.72
30 37 (K)SWNAHFTE(H) 　 2 1.78 0.16 496.22 990.43
30 38 (K)SWNAHFTEH(K) 　 2 3.14 0.52 564.75 1127.48
30 39 (K)SWNAHFTEHK(S) 　 2 3.71 0.60 628.80 1255.58
31 39 (S)WNAHFTEHK(S) 　 2 3.47 0.57 585.28 1168.54
32 39 (W)NAHFTEHK(S) 　 2 3.09 0.51 492.24 982.46
32 39 (W)NAHFTEHK(S) 　 3 2.80 0.46 328.50 982.47
33 39 (N)AHFTEHK(S) 　 2 2.06 0.27 435.22 868.42
38 51 (E)HKSQGVVVLWNENK(Q) 　 2 5.32 0.72 819.45 1636.88
40 49 (K)SQGVVVLWNE(N) 　 2 2.56 0.41 565.80 1129.58
40 51 (K)SQGVVVLWNENK(Q) 　 3 3.90 0.62 458.25 1371.71
40 60 (K)SQGVVVLWNENKQQGFTNNLK(R) 　 2 4.90 0.69 1202.14 2402.26
40 61 (K)SQGVVVLWNENKQQGFTNNLKR(A) 　 3 6.25 0.76 853.78 2558.33
42 51 (Q)GVVVLWNENK(Q) 　 2 3.13 0.52 579.32 1156.63
49 60 (N)ENKQQGFTNNLK(R) 　 2 2.79 0.46 710.87 1419.72
49 61 (N)ENKQQGFTNNLKR(A) 　 3 4.16 0.64 526.28 1575.82
50 60 (E)NKQQGFTNNLK(R) 　 2 3.50 0.57 646.34 1290.67
50 61 (E)NKQQGFTNNLKR(A) 　 3 5.40 0.72 483.27 1446.77
51 60 (N)KQQGFTNNLK(R) 　 2 3.73 0.60 589.32 1176.63
51 61 (N)KQQGFTNNLKR(A) 　 2 2.07 0.28 667.37 1332.73
52 60 (K)QQGFTNNLK(R) 　 2 3.28 0.54 525.27 1048.53
52 61 (K)QQGFTNNLKR(A) 　 3 3.92 0.62 402.55 1204.64
53 61 (Q)QGFTNNLKR(A) 　 2 2.93 0.49 539.29 1076.57
54 60 (Q)GFTNNLK(R) 　 1 2.16 0.31 793.42 792.41
54 61 (Q)GFTNNLKR(A) 　 2 2.44 0.38 475.26 948.51
55 61 (G)FTNNLKR(A) 　 2 2.40 0.37 446.75 891.50
61 72 (K)RANQAFLPASTF(K) 　 2 2.99 0.50 661.85 1321.68
61 73 (K)RANQAFLPASTFK(I) 　 2 4.14 0.64 725.90 1449.78
62 72 (R)ANQAFLPASTF(K) 　 2 2.30 0.35 583.80 1165.58
62 73 (R)ANQAFLPASTFK(I) 　 2 3.95 0.62 647.85 1293.68
62 76 (R)ANQAFLPASTFKIPN(S) 　 2 2.10 0.29 809.94 1617.86
63 73 (A)NQAFLPASTFK(I) 　 2 3.07 0.51 612.33 1222.64
64 73 (N)QAFLPASTFK(I) 　 2 3.31 0.55 555.31 1108.60
65 73 (Q)AFLPASTFK(I) 　 2 1.95 0.23 491.28 980.54
66 73 (A)FLPASTFK(I) 　 1 2.53 0.41 910.51 909.50
67 73 (F)LPASTFK(I) 　 1 3.04 0.51 763.43 762.43
74 87 (K)IPNSLIALDLGVVK(D) 　 2 3.39 0.56 726.45 1450.88
74 94 (K)IPNSLIALDLGVVKDEHQVFK(W) 　 3 8.46 0.82 779.11 2334.30
74 100 (K)IPNSLIALDLGVVKDEHQVFKWDGQTR(D) 　 5 2.45 0.39 616.53 3077.63
75 94 (I)PNSLIALDLGVVKDEHQVFK(W) 　 4 5.10 0.71 556.31 2221.20
77 94 (N)SLIALDLGVVKDEHQVFK(W) 　 2 4.75 0.68 1006.07 2010.12
80 94 (I)ALDLGVVKDEHQVFK(W) 　 2 2.13 0.30 849.46 1696.91
81 94 (A)LDLGVVKDEHQVFK(W) 　 2 1.82 0.18 813.95 1625.88
82 94 (L)DLGVVKDEHQVFK(W) 　 2 3.04 0.51 757.40 1512.79
83 94 (D)LGVVKDEHQVFK(W) 　 2 3.16 0.53 699.89 1397.77
83 100 (D)LGVVKDEHQVFKWDGQTR(D) 　 3 3.36 0.55 714.71 2141.11
84 94 (L)GVVKDEHQVFK(W) 　 2 3.26 0.54 643.35 1284.68
88 95 (K)DEHQVFKW(D) 　 2 2.60 0.42 544.76 1087.51
88 100 (K)DEHQVFKWDGQTR(D) 　 2 3.91 0.62 823.39 1644.77
89 100 (D)EHQVFKWDGQTR(D) 　 3 1.82 0.18 510.92 1529.74
90 100 (E)HQVFKWDGQTR(D) 　 3 3.49 0.57 467.91 1400.70
92 100 (Q)VFKWDGQTR(D) 　 2 1.92 0.22 568.80 1135.58
96 107 (W)DGQTRDIATWNR(D) 　 3 3.29 0.54 478.24 1431.69
101 107 (R)DIATWNR(D) 　 2 2.13 0.30 438.22 874.43
101 110 (R)DIATWNRDHN(L) 　 2 1.94 0.23 621.29 1240.56
101 116 (R)DIATWNRDHNLITAmK(Y) M(115) 3 5.46 0.73 638.99 1913.94
101 116 (R)DIATWNRDHNLITAMK(Y) 　 3 5.23 0.71 633.66 1897.95
103 116 (I)ATWNRDHNLITAmK(Y) M(115) 3 6.00 0.75 562.95 1685.83
103 116 (I)ATWNRDHNLITAMK(Y) 　 3 3.52 0.57 557.62 1669.84
104 116 (A)TWNRDHNLITAmK(Y) M(115) 3 2.18 0.31 539.27 1614.79
105 128 (T)WNRDHNLITAMKYSVVPVYQEFAR(Q) 　 3 2.26 0.34 979.83 2936.46
107 116 (N)RDHNLITAMK(Y) 　 2 2.89 0.48 599.82 1197.63
108 116 (R)DHNLITAmK(Y) M(115) 2 3.80 0.61 529.77 1057.53
108 116 (R)DHNLITAMK(Y) 　 2 3.45 0.56 521.77 1041.53
108 128 (R)DHNLITAmKYSVVPVYQEFAR(Q) M(115) 4 2.38 0.37 625.07 2496.25
109 116 (D)HNLITAMK(Y) 　 2 3.74 0.60 464.26 926.50
116 128 (M)KYSVVPVYQEFAR(Q) 　 2 3.73 0.60 793.43 1584.84
117 125 (K)YSVVPVYQE(F) 　 2 1.93 0.22 542.27 1082.53
117 126 (K)YSVVPVYQEF(A) 　 2 2.25 0.33 615.81 1229.60
117 128 (K)YSVVPVYQEFAR(Q) 　 2 3.11 0.52 729.38 1456.74
121 128 (V)PVYQEFAR(Q) 　 2 1.86 0.19 505.26 1008.51
138 152 (K)mLHAFDYGNEDISGN(V) M(138) 2 2.27 0.34 849.86 1697.71
138 155 (K)MLHAFDYGNEDISGNVDS(F) 　 2 2.38 0.37 992.43 1982.84
138 163 (K)mLHAFDYGNEDISGNVDSFWLDGGIR(I) M(138) 3 3.08 0.51 982.11 2943.31
138 163 (K)MLHAFDYGNEDISGNVDSFWLDGGIR(I) 　 2 3.14 0.52 1464.67 2927.32
143 153 (F)DYGNEDISGNV(D) 　 2 2.50 0.40 591.75 1181.49
147 163 (N)EDISGNVDSFWLDGGIR(I) 　 2 2.56 0.41 940.44 1878.87
153 163 (N)VDSFWLDGGIR(I) 　 2 2.90 0.48 632.82 1263.63
164 174 (R)ISATEQISFLR(K) 　 2 4.43 0.66 632.85 1263.68
164 175 (R)ISATEQISFLRK(L) 　 2 4.21 0.64 696.90 1391.79
165 174 (I)SATEQISFLR(K) 　 2 2.42 0.38 576.31 1150.60
165 175 (I)SATEQISFLRK(L) 　 2 3.50 0.57 640.36 1278.70
166 174 (S)ATEQISFLR(K) 　 2 2.46 0.39 532.79 1063.56
166 175 (S)ATEQISFLRK(L) 　 2 3.28 0.54 596.84 1191.67
167 174 (A)TEQISFLR(K) 　 2 2.28 0.34 497.27 992.53
167 175 (A)TEQISFLRK(L) 　 2 2.74 0.45 561.32 1120.63
169 175 (E)QISFLRK(L) 　 3 2.05 0.27 297.85 890.54
175 186 (R)KLYHNKLHVSER(S) 　 3 2.58 0.42 508.62 1522.84
176 186 (K)LYHNKLHVSER(S) 　 3 2.90 0.48 465.92 1394.75
190 206 (R)IVKQAmLTEANGDYIIR(A) M(195) 2 3.21 0.53 976.03 1950.04
193 200 (K)QAMLTEAN(G) 　 1 2.61 0.42 877.41 876.40
193 206 (K)QAmLTEANGDYIIR(A) M(195) 2 3.19 0.53 805.89 1609.77
193 206 (K)QAMLTEANGDYIIR(A) 　 2 4.43 0.66 797.90 1593.79
194 206 (Q)AmLTEANGDYIIR(A) M(195) 2 3.76 0.60 741.87 1481.73
196 206 (M)LTEANGDYIIR(A) 　 2 2.90 0.48 632.83 1263.65
207 218 (R)AKTGYSTRIEPK(I) 　 3 2.31 0.35 450.92 1349.74
209 218 (K)TGYSTRIEPK(I) 　 2 2.21 0.32 576.31 1150.60
210 218 (T)GYSTRIEPK(I) 　 2 1.81 0.17 525.79 1049.56
219 250 (K)IGWWVGWVELDDNVWFFAmNmDmPTSDGLGLR(Q) M(237,
239,241)		 4 1.86 0.19 952.18 3804.69
235 250 (F)FAMNMDMPTSDGLGLR(Q) 　 2 3.17 0.53 878.40 1754.78
236 250 (F)AMNmDmPTSDGLGLR(Q) M(239,241) 2 3.15 0.52 820.86 1639.71
236 250 (F)AMNMDMPTSDGLGLR(Q) 　 2 2.98 0.50 804.86 1607.71
238 250 (M)NmDMPTSDGLGLR(Q) M(239) 2 3.11 0.52 711.82 1421.63
238 250 (M)NMDMPTSDGLGLR(Q) 　 2 2.95 0.49 703.82 1405.63
239 250 (N)mDmPTSDGLGLR(Q) M(239,241) 2 2.39 0.37 662.80 1323.58
245 265 (S)DGLGLRQAITKEVLKQEKIIP(-) 　 3 2.55 0.41 783.80 2348.39
251 262 (R)QAITKEVLKQEK(I) 　 2 4.24 0.65 707.92 1413.82
256 262 (K)EVLKQEK(I) 　 2 2.55 0.41 437.26 872.50
256 265 (K)EVLKQEKIIP(-) 　 2 2.11 0.29 598.87 1195.72
NDM 단백질로 동정된 각 펩타이드의 위치 및 서열 정보
시작 종료 서열 산화 부위 전하 (z) SEQUEST XCorr SEQUEST deltaCn 관찰된 m/z 실제질량값 (Da)
28 45 (M)PGEIRPTIGQQmETGDQR(F) M (39) 3 3.61 0.58 677.00 2027.98
28 45 (M)PGEIRPTIGQQMETGDQR(F) 　 3 2.30 0.35 671.67 2011.99
30 45 (G)EIRPTIGQQMETGDQR(F) 　 3 1.64 0.09 620.31 1857.91
33 45 (R)PTIGQQmETGDQR(F) M (39) 2 2.33 0.36 738.84 1475.67
33 45 (R)PTIGQQMETGDQR(F) 　 2 2.31 0.35 730.84 1459.68
35 45 (T)IGQQmETGDQR(F) M (39) 2 2.27 0.34 639.79 1277.57
45 52 (Q)RFGDLVFR(Q) 　 2 1.39 0.00 505.29 1008.56
46 52 (R)FGDLVFR(Q) 　 2 2.72 0.45 427.23 852.45
47 52 (F)GDLVFR(Q) 　 1 1.19 0.00 706.39 705.38
53 61 (R)QLAPNVWQH(T) 　 2 1.33 0.00 546.79 1091.56
53 76 (R)QLAPNVWQHTSYLDMPGFGAVASN(G) 　 2 1.97 0.24 1302.13 2602.25
53 81 (R)QLAPNVWQHTSYLDmPGFGAVASNGLIVR(D) M (67) 3 3.91 0.62 1053.20 3156.58
53 81 (R)QLAPNVWQHTSYLDMPGFGAVASNGLIVR(D) 　 3 5.86 0.74 1047.87 3140.60
53 82 (R)QLAPNVWQHTSYLDMPGFGAVASNGLIVRD(G) 　 4 1.61 0.07 814.92 3255.64
53 85 (R)QLAPNVWQHTSYLDmPGFGAVASNGLIVRDGGR(V) M (67) 4 2.41 0.38 886.45 3541.77
58 81 (N)VWQHTSYLDMPGFGAVASNGLIVR(D) 　 3 2.26 0.34 873.45 2617.34
62 81 (H)TSYLDmPGFGAVASNGLIVR(D) M (67) 2 3.46 0.57 1042.53 2083.05
68 81 (M)PGFGAVASNGLIVR(D) 　 2 2.92 0.49 679.39 1356.76
71 81 (F)GAVASNGLIVR(D) 　 2 1.41 0.00 528.82 1055.62
86 92 (R)VLVVDTA(W) 　 1 0.79 0.00 716.42 715.41
86 102 (R)VLVVDTAWTDDQTAQIL(N) 　 2 2.06 0.27 944.49 1886.97
86 106 (R)VLVVDTAWTDDQTAQILNWIK(Q) 　 2 4.86 0.69 1215.15 2428.28
91 106 (D)TAWTDDQTAQILNWIK(Q) 　 2 1.98 0.24 952.49 1902.96
94 106 (W)TDDQTAQILNWIK(Q) 　 2 2.84 0.47 773.40 1544.79
96 106 (D)DQTAQILNWIK(Q) 　 2 1.71 0.12 665.37 1328.72
104 125 (N)WIKQEINLPVALAVVTHAHQDK(M) 　 3 1.84 0.19 837.47 2509.40
107 120 (K)QEINLPVALAVVTH(A) 　 2 2.24 0.33 752.43 1502.85
107 121 (K)QEINLPVALAVVTHA(H) 　 2 2.26 0.34 787.95 1573.89
107 124 (K)QEINLPVALAVVTHAHQD(K) 　 3 3.06 0.51 652.35 1954.03
107 125 (K)QEINLPVALAVVTHAHQDK(M) 　 3 7.39 0.80 695.05 2082.13
110 125 (I)NLPVALAVVTHAHQDK(M) 　 3 2.55 0.41 571.66 1711.95
111 125 (N)LPVALAVVTHAHQDK(M) 　 2 2.58 0.42 799.96 1597.90
112 125 (L)PVALAVVTHAHQDK(M) 　 3 5.46 0.73 495.95 1484.82
114 125 (V)ALAVVTHAHQDK(M) 　 2 3.84 0.61 645.35 1288.69
115 125 (A)LAVVTHAHQDK(M) 　 2 3.89 0.61 609.84 1217.66
116 125 (L)AVVTHAHQDK(M) 　 2 3.30 0.55 553.29 1104.57
117 125 (A)VVTHAHQDK(M) 　 2 2.14 0.30 517.78 1033.54
118 125 (V)VTHAHQDK(M) 　 1 1.59 0.06 935.47 934.46
119 125 (V)THAHQDK(M) 　 1 0.55 0.03 836.40 835.39
126 135 (K)mGGmDALHAA(G) M (126), M (129) 2 1.65 0.09 503.21 1004.41
126 140 (K)mGGmDALHAAGIATY(A) M (126), M (129) 2 1.40 0.00 755.84 1509.67
126 140 (K)MGGMDALHAAGIATY(A) 　 2 1.63 0.08 739.85 1477.68
126 142 (K)MGGmDALHAAGIATYAN(A) M (129) 2 1.93 0.00 840.38 1678.75
126 142 (K)mGGmDALHAAGIATYAN(A) M (126), M (129) 2 2.78 0.46 848.38 1694.75
126 142 (K)MGGMDALHAAGIATYAN(A) 　 2 2.25 0.33 832.39 1662.76
126 144 (K)MGGMDALHAAGIATYANAL(S) 　 2 2.24 0.33 924.45 1846.88
126 146 (K)mGGMDALHAAGIATYANALSN(Q) M (126) 2 2.18 0.04 1032.98 2063.95
126 146 (K)MGGMDALHAAGIATYANALSN(Q) 　 2 2.10 0.29 1024.99 2047.96
126 159 (K)mGGmDALHAAGIATYANALSNQLAPQEGMVAAQH(S) M (126), M (129) 3 2.59 0.42 1147.88 3440.61
126 159 (K)MGGMDALHAAGIATYANALSNQLAPQEGMVAAQH(S) 　 3 3.73 0.60 1137.22 3408.63
126 161 (K)MGGMDALHAAGIATYANALSNQLAPQEGMVAAQHSL(T) 　 3 3.83 0.61 1203.92 3608.74
126 163 (K)MGGMDALHAAGIATYANALSNQLAPQEGMVAAQHSLTF(A) 　 3 3.62 0.59 1286.63 3856.85
126 166 (K)MGGMDALHAAGIATYANALSNQLAPQEGMVAAQHSLTFAAN(G) 　 3 2.81 0.47 1372.00 4112.98
143 181 (N)ALSNQLAPQEGmVAAQHSLTFAANGWVEPATAPNFGPLK(V) M (153) 4 2.20 0.32 1013.25 4048.97
143 181 (N)ALSNQLAPQEGMVAAQHSLTFAANGWVEPATAPNFGPLK(V) 　 3 4.58 0.67 1345.36 4033.05
167 181 (N)GWVEPATAPNFGPLK(V) 　 2 1.99 0.25 792.41 1582.81
168 181 (G)WVEPATAPNFGPLK(V) 　 2 2.36 0.36 763.91 1525.80
169 181 (W)VEPATAPNFGPLK(V) 　 2 2.04 0.26 670.87 1339.72
171 181 (E)PATAPNFGPLK(V) 　 2 2.24 0.33 556.81 1111.61
173 181 (A)TAPNFGPLK(V) 　 2 1.59 0.05 472.77 943.52
175 181 (A)PNFGPLK(V) 　 2 2.07 0.28 386.72 771.43
182 202 (K)VFYPGPGHTSDNITVGIDGTD(I) 　 2 2.26 0.34 1081.51 2161.01
182 207 (K)VFYPGPGHTSDNITVGIDGTDIAFGG(C) 　 2 1.78 0.16 1304.13 2606.24
182 208 (K)VFYPGPGHTSDNITVGIDGTDIAFGGc(L) 　 2 2.85 0.47 1384.14 2766.26
182 211 (K)VFYPGPGHTSDNITVGIDGTDIAFGGcLIK(D) 　 3 6.14 0.76 1041.19 3120.54
182 214 (K)VFYPGPGHTSDNITVGIDGTDIAFGGcLIKDSK(A) 　 3 8.25 0.82 1151.24 3450.71
182 216 (K)VFYPGPGHTSDNITVGIDGTDIAFGGcLIKDSKAK(S) 　 4 3.32 0.55 913.47 3649.84
185 216 (Y)PGPGHTSDNITVGIDGTDIAFGGcLIKDSKAK(S) 　 3 1.88 0.20 1081.20 3240.59
190 214 (H)TSDNITVGIDGTDIAFGGcLIKDSK(A) 　 3 3.11 0.52 866.43 2596.28
193 211 (D)NITVGIDGTDIAFGGcLIK(D) 　 2 4.00 0.63 982.52 1963.03
194 211 (N)ITVGIDGTDIAFGGcLIK(D) 　 2 2.98 0.50 925.50 1848.98
194 214 (N)ITVGIDGTDIAFGGcLIKDSK(A) 　 3 1.93 0.22 727.38 2179.12
200 211 (D)GTDIAFGGcLIK(D) 　 2 1.56 0.04 626.33 1250.64
200 214 (D)GTDIAFGGcLIKDSK(A) 　 2 2.57 0.42 791.41 1580.80
203 214 (D)IAFGGcLIKDSK(A) 　 2 1.63 0.08 654.86 1307.70
215 234 (K)AKSLGNLGDADTEHYAASAR(A) 　 2 4.25 0.65 1024.00 2045.99
217 223 (K)SLGNLGD(A) 　 1 0.69 0.00 675.33 674.32
217 229 (K)SLGNLGDADTEHY(A) 　 2 1.87 0.20 696.31 1390.61
217 231 (K)SLGNLGDADTEHYAA(S) 　 2 1.75 0.14 767.35 1532.69
217 232 (K)SLGNLGDADTEHYAAS(A) 　 2 2.34 0.36 810.87 1619.72
217 234 (K)SLGNLGDADTEHYAASAR(A) 　 2 5.99 0.75 924.43 1846.85
217 242 (K)SLGNLGDADTEHYAASARAFGAAFPK(A) 　 3 4.83 0.69 879.77 2636.28
218 234 (S)LGNLGDADTEHYAASAR(A) 　 3 2.68 0.44 587.61 1759.81
219 234 (L)GNLGDADTEHYAASAR(A) 　 2 4.78 0.69 824.37 1646.73
220 234 (G)NLGDADTEHYAASAR(A) 　 2 2.16 0.31 795.86 1589.70
221 234 (N)LGDADTEHYAASAR(A) 　 2 4.99 0.70 738.85 1475.68
222 234 (L)GDADTEHYAASAR(A) 　 2 4.57 0.67 682.30 1362.58
225 234 (A)DTEHYAASAR(A) 　 2 1.83 0.18 560.75 1119.49
235 242 (R)AFGAAFPK(A) 　 2 2.26 0.34 404.72 807.43
235 256 (R)AFGAAFPKASmIVMSHSAPDSR(A) M (245) 2 2.65 0.00 1147.56 2293.11
235 256 (R)AFGAAFPKASmIVmSHSAPDSR(A) M (245), M (248) 3 1.86 0.19 770.71 2309.11
235 256 (R)AFGAAFPKASMIVMSHSAPDSR(A) 　 2 3.89 0.61 1139.56 2277.11
236 242 (A)FGAAFPK(A) 　 2 1.97 0.24 369.20 736.39
237 242 (F)GAAFPK(A) 　 1 1.22 0.00 590.33 589.32
243 254 (K)ASMIVMSHSAPD(S) 　 2 1.67 0.10 623.29 1244.56
243 256 (K)ASmIVMSHSAPDSR(A) M (245) 3 5.03 0.70 502.24 1503.69
243 256 (K)ASmIVmSHSAPDSR(A) M (245), M (248) 3 4.91 0.69 507.57 1519.69
243 256 (K)ASMIVMSHSAPDSR(A) 　 3 5.74 0.74 496.91 1487.69
244 256 (A)SmIVmSHSAPDSR(A) M (248) 2 1.67 0.10 725.33 1448.64
244 256 (A)SMIVMSHSAPDSR(A) 　 2 4.54 0.67 709.33 1416.65
245 256 (S)MIVmSHSAPDSR(A) M (248) 2 2.85 0.47 673.82 1345.62
245 256 (S)MIVMSHSAPDSR(A) 　 2 3.54 0.58 665.82 1329.62
246 256 (M)IVmSHSAPDSR(A) M (248) 2 3.10 0.52 608.29 1214.57
247 256 (I)VMSHSAPDSR(A) 　 2 3.06 0.51 543.76 1085.50
251 256 (H)SAPDSR(A) 　 1 0.54 0.00 632.30 631.29
257 264 (R)AAITHTAR(M) 　 2 2.74 0.45 420.74 839.46
258 264 (A)AITHTAR(M) 　 2 1.81 0.17 385.22 768.42
259 264 (A)ITHTAR(M) 　 1 1.38 0.00 698.39 697.39
265 270 (R)mADKLR(-) M (265) 2 2.08 0.28 375.20 748.39
IMP 단백질로 동정된 각 펩타이드의 위치 및 서열 정보
시작 종료 서열 산화부위 전하(z) SEQUEST XCorr SEQUEST deltaCn 관찰된 m/z 실제질량값
(Da)
19 26 (A)AESLPDLK(I) 　 2 2.48 0.40 436.74 871.47
19 29 (A)AESLPDLKIEK(L) 　 2 3.47 0.57 621.85 1241.69
20 26 (A)ESLPDLK(I) 　 2 2.06 0.27 401.22 800.43
20 29 (A)ESLPDLKIEK(L) 　 2 3.20 0.53 586.33 1170.65
21 29 (E)SLPDLKIEK(L) 　 3 2.53 0.41 348.21 1041.61
22 29 (S)LPDLKIEK(L) 　 2 2.99 0.50 478.29 954.57
23 29 (L)PDLKIEK(L) 　 2 3.04 0.51 421.75 841.49
27 37 (K)IEKLDEGVYVH(T) 　 3 2.29 0.34 434.56 1300.67
27 51 (K)IEKLDEGVYVHTSFEEVNGWGVVPK(H) 　 3 5.36 0.72 944.49 2830.44
30 37 (K)LDEGVYVH(T) 　 2 2.43 0.38 466.23 930.45
30 51 (K)LDEGVYVHTSFEEVNGWGVVPK(H) 　 2 6.47 0.77 1231.11 2460.20
38 51 (H)TSFEEVNGWGVVPK(H) 　 2 2.67 0.44 774.89 1547.76
52 59 (K)HGLVVLVN(A) 　 2 1.88 0.20 425.76 849.51
52 72 (K)HGLVVLVNAEAYLIDTPFTAK(D) 　 2 6.65 0.77 1136.13 2270.25
52 76 (K)HGLVVLVNAEAYLIDTPFTAKDTEK(L) 　 2 5.68 0.74 1372.74 2743.46
58 72 (L)VNAEAYLIDTPFTAK(D) 　 2 3.34 0.55 826.93 1651.85
60 72 (N)AEAYLIDTPFTAK(D) 　 2 3.60 0.58 720.38 1438.74
60 76 (N)AEAYLIDTPFTAKDTEK(L) 　 2 4.60 0.67 956.98 1911.95
61 72 (A)EAYLIDTPFTAK(D) 　 2 1.97 0.24 684.86 1367.70
64 72 (Y)LIDTPFTAK(D) 　 2 1.84 0.19 503.29 1004.56
64 76 (Y)LIDTPFTAKDTEK(L) 　 2 3.50 0.57 739.90 1477.78
73 84 (K)DTEKLVTWFVER(G) 　 2 3.91 0.62 761.90 1521.79
73 87 (K)DTEKLVTWFVERGYK(I) 　 3 3.36 0.55 624.33 1869.97
75 84 (T)EKLVTWFVER(G) 　 2 2.62 0.43 653.86 1305.72
76 84 (E)KLVTWFVER(G) 　 2 2.32 0.35 589.34 1176.67
77 84 (K)LVTWFVER(G) 　 2 2.62 0.43 525.29 1048.57
77 85 (K)LVTWFVERG(Y) 　 2 2.43 0.38 553.81 1105.60
77 87 (K)LVTWFVERGYK(I) 　 2 2.49 0.40 699.39 1396.76
78 84 (L)VTWFVER(G) 　 2 1.85 0.19 468.75 935.49
88 99 (K)IKGSISSHFHSD(S) 　 3 3.27 0.54 438.89 1313.64
88 100 (K)IKGSISSHFHSDS(T) 　 3 2.29 0.35 467.90 1400.67
88 102 (K)IKGSISSHFHSDSTG(G) 　 3 2.29 0.34 520.59 1558.74
88 105 (K)IKGSISSHFHSDSTGGIE(W) 　 2 5.14 0.71 929.96 1857.90
88 110 (K)IKGSISSHFHSDSTGGIEWLNSR(S) 　 3 8.19 0.82 839.08 2514.23
90 98 (K)GSISSHFHS(D) 　 2 1.88 0.20 479.73 957.44
90 99 (K)GSISSHFHSD(S) 　 3 1.85 0.19 358.49 1072.46
90 101 (K)GSISSHFHSDST(G) 　 2 2.83 0.47 631.28 1260.54
90 102 (K)GSISSHFHSDSTG(G) 　 2 3.51 0.57 659.79 1317.56
90 105 (K)GSISSHFHSDSTGGIE(W) 　 2 3.89 0.61 809.36 1616.71
90 110 (K)GSISSHFHSDSTGGIEWLNSR(S) 　 3 8.69 0.83 758.69 2273.05
90 111 (K)GSISSHFHSDSTGGIEWLNSRS(I) 　 3 2.00 0.25 787.70 2360.09
97 110 (F)HSDSTGGIEWLNSR(S) 　 2 4.66 0.68 779.87 1557.72
98 110 (H)SDSTGGIEWLNSR(S) 　 2 3.76 0.60 711.34 1420.67
99 110 (S)DSTGGIEWLNSR(S) 　 2 2.13 0.30 667.82 1333.63
100 110 (D)STGGIEWLNSR(S) 　 2 2.80 0.46 610.31 1218.61
103 110 (G)GIEWLNSR(S) 　 2 2.33 0.36 487.76 973.50
104 110 (G)IEWLNSR(S) 　 2 2.09 0.28 459.25 916.48
111 125 (R)SIPTYASELTNELLK(K) 　 2 4.29 0.65 839.95 1677.88
111 126 (R)SIPTYASELTNELLKK(D) 　 3 4.86 0.69 603.00 1805.98
111 127 (R)SIPTYASELTNELLKKD(G) 　 2 3.35 0.55 961.51 1921.02
111 129 (R)SIPTYASELTNELLKKDGK(V) 　 3 4.29 0.65 703.05 2106.13
113 125 (I)PTYASELTNELLK(K) 　 2 4.75 0.68 739.89 1477.76
113 126 (I)PTYASELTNELLKK(D) 　 3 7.19 0.79 536.30 1605.87
113 129 (I)PTYASELTNELLKKDGK(V) 　 3 3.48 0.57 636.34 1906.00
114 126 (P)TYASELTNELLKK(D) 　 2 3.89 0.61 755.42 1508.82
115 126 (T)YASELTNELLKK(D) 　 3 1.96 0.24 470.26 1407.77
116 125 (Y)ASELTNELLK(K) 　 2 1.77 0.15 559.31 1116.61
116 126 (Y)ASELTNELLKK(D) 　 2 2.90 0.48 623.36 1244.70
116 129 (Y)ASELTNELLKKDGK(V) 　 2 3.63 0.59 773.43 1544.84
118 126 (S)ELTNELLKK(D) 　 3 1.83 0.18 363.22 1086.63
126 136 (K)KDGKVQATNSF(S) 　 2 1.99 0.25 597.81 1193.61
126 145 (K)KDGKVQATNSFSGVNYWLVK(N) 　 2 5.39 0.72 1121.09 2240.16
127 136 (K)DGKVQATNSF(S) 　 2 2.04 0.26 533.76 1065.51
127 140 (K)DGKVQATNSFSGVN(Y) 　 2 2.68 0.44 712.35 1422.68
127 141 (K)DGKVQATNSFSGVNY(W) 　 2 3.35 0.55 793.88 1585.74
127 145 (K)DGKVQATNSFSGVNYWLVK(N) 　 2 6.57 0.77 1057.04 2112.07
129 145 (G)KVQATNSFSGVNYWLVK(N) 　 2 6.17 0.76 971.02 1940.03
130 136 (K)VQATNSF(S) 　 1 2.42 0.38 766.38 765.37
130 141 (K)VQATNSFSGVNY(W) 　 2 2.28 0.34 643.81 1285.60
130 145 (K)VQATNSFSGVNYWLVK(N) 　 2 5.47 0.73 906.97 1811.92
132 145 (Q)ATNSFSGVNYWLVK(N) 　 2 4.10 0.63 793.41 1584.80
133 145 (A)TNSFSGVNYWLVK(N) 　 2 3.14 0.52 757.89 1513.76
134 145 (T)NSFSGVNYWLVK(N) 　 2 2.64 0.43 707.36 1412.71
135 145 (N)SFSGVNYWLVK(N) 　 2 3.07 0.51 650.34 1298.67
137 145 (F)SGVNYWLVK(N) 　 1 2.26 0.34 1065.58 1064.57
146 157 (K)NKIEVFYPGPGH(T) 　 2 3.85 0.61 679.35 1356.68
146 158 (K)NKIEVFYPGPGHT(P) 　 2 2.75 0.45 729.88 1457.74
146 160 (K)NKIEVFYPGPGHTPD(N) 　 2 4.74 0.68 835.92 1669.82
146 161 (K)NKIEVFYPGPGHTPDN(V) 　 2 4.79 0.69 892.94 1783.86
146 169 (K)NKIEVFYPGPGHTPDNVVVWLPER(K) 　 3 7.92 0.81 921.81 2762.41
146 170 (K)NKIEVFYPGPGHTPDNVVVWLPERK(I) 　 3 7.59 0.80 964.51 2890.52
147 170 (N)KIEVFYPGPGHTPDNVVVWLPERK(I) 　 3 1.79 0.16 926.50 2776.48
148 160 (K)IEVFYPGPGHTPD(N) 　 2 2.83 0.47 714.85 1427.68
148 161 (K)IEVFYPGPGHTPDN(V) 　 2 2.54 0.41 771.87 1541.72
148 169 (K)IEVFYPGPGHTPDNVVVWLPER(K) 　 2 4.76 0.69 1261.15 2520.28
148 170 (K)IEVFYPGPGHTPDNVVVWLPERK(I) 　 3 5.72 0.74 883.80 2648.37
152 170 (F)YPGPGHTPDNVVVWLPERK(I) 　 3 1.99 0.25 721.04 2160.11
153 170 (Y)PGPGHTPDNVVVWLPERK(I) 　 3 2.90 0.48 666.69 1997.05
155 169 (G)PGHTPDNVVVWLPER(K) 　 3 3.66 0.59 572.64 1714.89
157 169 (G)HTPDNVVVWLPER(K) 　 3 3.39 0.56 521.28 1560.81
158 169 (H)TPDNVVVWLPER(K) 　 2 4.30 0.65 712.88 1423.75
158 170 (H)TPDNVVVWLPERK(I) 　 2 2.16 0.31 776.93 1551.85
161 170 (D)NVVVWLPERK(I) 　 2 2.01 0.25 620.37 1238.72
162 169 (N)VVVWLPER(K) 　 2 2.01 0.25 499.30 996.58
162 170 (N)VVVWLPERK(I) 　 2 2.25 0.33 563.35 1124.68
170 176 (R)KILFGGc(F) 　 2 1.99 0.25 397.72 793.42
170 177 (R)KILFGGcF(I) 　 2 1.76 0.15 471.25 940.49
170 179 (R)KILFGGcFIK(P) 　 2 3.85 0.61 591.84 1181.67
170 181 (R)KILFGGcFIKPY(G) 　 2 3.83 0.61 721.90 1441.79
170 185 (R)KILFGGcFIKPYGLGN(L) 　 2 4.54 0.67 892.49 1782.96
170 196 (R)KILFGGcFIKPYGLGNLGDANIEAWPK(S) 　 3 3.74 0.60 993.53 2977.58
171 181 (K)ILFGGcFIKPY(G) 　 2 2.71 0.45 657.85 1313.69
171 182 (K)ILFGGcFIKPYG(L) 　 2 1.99 0.25 686.36 1370.71
171 196 (K)ILFGGcFIKPYGLGNLGDANIEAWPK(S) 　 2 3.43 0.56 1425.75 2849.48
177 196 (C)FIKPYGLGNLGDANIEAWPK(S) 　 3 2.71 0.45 735.06 2202.16
178 196 (F)IKPYGLGNLGDANIEAWPK(S) 　 2 3.24 0.54 1028.55 2055.08
180 196 (K)PYGLGNLGDANIEAWPK(S) 　 2 2.53 0.41 907.96 1813.91
182 196 (Y)GLGNLGDANIEAWPK(S) 　 2 4.68 0.68 777.90 1553.79
182 199 (Y)GLGNLGDANIEAWPKSAK(L) 　 2 2.71 0.45 920.99 1839.96
184 196 (L)GNLGDANIEAWPK(S) 　 2 3.70 0.59 692.85 1383.69
186 196 (N)LGDANIEAWPK(S) 　 2 3.55 0.58 607.32 1212.62
205 225 (K)YGKAKLVVPGHSEVGDASLLK(L) 　 3 5.90 0.75 723.41 2167.21
206 225 (Y)GKAKLVVPGHSEVGDASLLK(L) 　 3 3.58 0.58 669.06 2004.15
208 220 (K)AKLVVPGHSEVGD(A) 　 2 2.98 0.50 654.35 1306.69
208 224 (K)AKLVVPGHSEVGDASLL(K) 　 2 3.35 0.55 846.48 1690.94
208 225 (K)AKLVVPGHSEVGDASLLK(L) 　 2 5.43 0.72 910.52 1819.03
208 233 (K)AKLVVPGHSEVGDASLLKLTLEQAVK(G) 　 3 2.13 0.30 901.52 2701.54
209 225 (A)KLVVPGHSEVGDASLLK(L) 　 3 5.50 0.73 583.67 1747.99
210 219 (K)LVVPGHSEVG(D) 　 2 1.83 0.18 497.27 992.53
210 220 (K)LVVPGHSEVGD(A) 　 2 2.52 0.41 554.79 1107.56
210 221 (K)LVVPGHSEVGDA(S) 　 2 1.89 0.21 590.31 1178.60
210 224 (K)LVVPGHSEVGDASLL(K) 　 2 2.71 0.45 746.90 1491.79
210 225 (K)LVVPGHSEVGDASLLK(L) 　 2 4.77 0.69 810.96 1619.90
210 226 (K)LVVPGHSEVGDASLLKL(T) 　 2 1.99 0.25 867.50 1732.98
210 233 (K)LVVPGHSEVGDASLLKLTLEQAVK(G) 　 3 3.22 0.53 835.14 2502.41
211 225 (L)VVPGHSEVGDASLLK(L) 　 2 3.87 0.61 754.41 1506.81
212 225 (V)VPGHSEVGDASLLK(L) 　 2 5.14 0.71 704.88 1407.74
213 225 (V)PGHSEVGDASLLK(L) 　 2 5.48 0.73 655.34 1308.67
214 225 (P)GHSEVGDASLLK(L) 　 2 4.50 0.67 606.81 1211.61
215 225 (G)HSEVGDASLLK(L) 　 2 4.18 0.64 578.30 1154.59
216 225 (H)SEVGDASLLK(L) 　 2 2.52 0.41 509.78 1017.54
219 225 (V)GDASLLK(L) 　 2 2.38 0.37 352.20 702.39
225 233 (L)KLTLEQAVK(G) 　 2 3.47 0.57 515.32 1028.62
225 239 (L)KLTLEQAVKGLNESK(K) 　 2 4.55 0.67 829.48 1656.95
226 233 (K)LTLEQAVK(G) 　 2 2.44 0.38 451.27 900.53
226 239 (K)LTLEQAVKGLNESK(K) 　 2 4.86 0.69 765.43 1528.85
226 246 (K)LTLEQAVKGLNESKKPSKPSN(-) 　 4 6.74 0.78 567.82 2267.25
227 233 (L)TLEQAVK(G) 　 2 2.31 0.35 394.73 787.45
227 246 (L)TLEQAVKGLNESKKPSKPSN(-) 　 3 8.03 0.81 719.06 2154.17
228 246 (T)LEQAVKGLNESKKPSKPSN(-) 　 3 5.99 0.75 685.38 2053.11
229 246 (L)EQAVKGLNESKKPSKPSN(-) 　 3 6.06 0.75 647.69 1940.03
230 246 (E)QAVKGLNESKKPSKPSN(-) 　 3 5.71 0.74 604.67 1810.98
231 246 (Q)AVKGLNESKKPSKPSN(-) 　 3 4.71 0.68 561.99 1682.94
232 246 (A)VKGLNESKKPSKPSN(-) 　 3 3.90 0.62 538.30 1611.89
234 246 (K)GLNESKKPSKPSN(-) 　 2 4.18 0.64 693.37 1384.73
238 246 (E)SKKPSKPSN(-) 　 2 2.49 0.40 486.78 971.54
VIM 단백질로 동정된 각 펩타이드의 위치 및 서열 정보
시작 종료 서열 산화 부위 전하 (z) SEQUEST XCorr SEQUEST deltaCn 관찰된 m/z 실제질량값 (Da)
27 45 (S)VDSSGEYPTVSEIPVGEVR(L) 　 2 5.08 0.70 1010.50 2018.99
28 45 (V)DSSGEYPTVSEIPVGEVR(L) 　 2 3.43 0.56 960.97 1919.92
29 45 (D)SSGEYPTVSEIPVGEVR(L) 　 2 4.55 0.67 903.45 1804.89
31 45 (S)GEYPTVSEIPVGEVR(L) 　 2 3.85 0.61 816.42 1630.83
33 45 (E)YPTVSEIPVGEVR(L) 　 2 2.45 0.39 723.39 1444.76
34 45 (Y)PTVSEIPVGEVR(L) 　 2 4.25 0.65 641.86 1281.70
34 46 (Y)PTVSEIPVGEVRL(Y) 　 2 2.80 0.47 698.40 1394.78
34 47 (Y)PTVSEIPVGEVRLY(Q) 　 2 4.39 0.66 779.93 1557.85
35 45 (P)TVSEIPVGEVR(L) 　 2 1.97 0.24 593.33 1184.65
36 45 (T)VSEIPVGEVR(L) 　 2 2.91 0.48 542.81 1083.60
37 45 (V)SEIPVGEVR(L) 　 2 1.74 0.14 493.27 984.53
46 56 (R)LYQIADGVWSH(I) 　 2 2.76 0.46 644.82 1287.63
46 60 (R)LYQIADGVWSHIATQ(S) 　 2 2.67 0.44 851.44 1700.86
55 62 (W)SHIATQSF(D) 　 2 2.15 0.30 445.72 889.43
55 67 (W)SHIATQSFDGAVY(P) 　 2 3.51 0.57 698.33 1394.65
55 72 (W)SHIATQSFDGAVYPSNGL(I) 　 2 4.66 0.68 932.45 1862.89
55 75 (W)SHIATQSFDGAVYPSNGLIVR(D) 　 2 4.76 0.68 1116.58 2231.14
57 75 (H)IATQSFDGAVYPSNGLIVR(D) 　 2 3.76 0.60 1004.53 2007.05
59 75 (A)TQSFDGAVYPSNGLIVR(D) 　 2 3.29 0.54 912.47 1822.92
60 75 (T)QSFDGAVYPSNGLIVR(D) 　 2 2.97 0.49 861.95 1721.88
63 75 (F)DGAVYPSNGLIVR(D) 　 2 3.00 0.50 680.87 1359.72
68 80 (Y)PSNGLIVRDGDEL(L) 　 2 3.43 0.56 692.86 1383.71
68 81 (Y)PSNGLIVRDGDELL(L) 　 2 5.05 0.70 749.40 1496.79
73 81 (L)IVRDGDELL(L) 　 2 2.27 0.34 515.28 1028.55
76 90 (R)DGDELLLIDTAWGAK(N) 　 2 3.70 0.59 808.92 1615.82
77 90 (D)GDELLLIDTAWGAK(N) 　 2 2.13 0.30 751.40 1500.79
81 87 (L)LLIDTAW(G) 　 1 1.63 0.08 831.46 830.46
81 90 (L)LLIDTAWGAK(N) 　 2 1.77 0.15 544.31 1086.61
88 96 (W)GAKNTAALL(A) 　 2 1.85 0.19 429.76 857.50
88 109 (W)GAKNTAALLAEIEKQIGLPVTR(A) 　 3 6.16 0.76 765.12 2292.33
89 101 (G)AKNTAALLAEIEK(Q) 　 3 2.13 0.29 457.94 1370.78
90 101 (A)KNTAALLAEIEK(Q) 　 2 4.46 0.66 650.88 1299.74
91 101 (K)NTAALLAEIEK(Q) 　 2 3.92 0.62 586.83 1171.65
91 109 (K)NTAALLAEIEKQIGLPVTR(A) 　 2 5.72 0.74 1019.10 2036.18
92 101 (N)TAALLAEIEK(Q) 　 2 3.40 0.56 529.81 1057.61
92 109 (N)TAALLAEIEKQIGLPVTR(A) 　 3 4.81 0.69 641.72 1922.13
93 101 (T)AALLAEIEK(Q) 　 1 2.41 0.38 957.56 956.56
95 101 (A)LLAEIEK(Q) 　 1 2.47 0.00 815.49 814.48
96 109 (L)LAEIEKQIGLPVTR(A) 　 2 3.17 0.53 783.97 1565.92
96 115 (L)LAEIEKQIGLPVTRAVSTHF(H) 　 2 5.38 0.72 1105.13 2208.25
97 109 (L)AEIEKQIGLPVTR(A) 　 3 2.86 0.47 485.29 1452.83
97 115 (L)AEIEKQIGLPVTRAVSTHF(H) 　 2 4.43 0.66 1048.58 2095.15
97 126 (L)AEIEKQIGLPVTRAVSTHFHDDRVGGVDVL(R) 　 3 4.13 0.64 1086.92 3257.74
100 109 (I)EKQIGLPVTR(A) 　 2 2.16 0.30 570.84 1139.67
102 109 (K)QIGLPVTR(A) 　 2 2.81 0.47 442.27 882.53
102 119 (K)QIGLPVTRAVSTHFHDDR(V) 　 4 2.34 0.36 513.02 2048.07
103 109 (Q)IGLPVTR(A) 　 2 1.84 0.19 378.24 754.47
109 127 (T)RAVSTHFHDDRVGGVDVLR(A) 　 4 4.65 0.68 534.78 2135.11
110 117 (R)AVSTHFHD(D) 　 2 1.97 0.24 457.21 912.41
110 119 (R)AVSTHFHDDR(V) 　 2 3.67 0.59 592.78 1183.54
110 121 (R)AVSTHFHDDRVG(G) 　 2 1.88 0.20 670.82 1339.63
110 122 (R)AVSTHFHDDRVGG(V) 　 3 1.99 0.24 466.56 1396.66
110 124 (R)AVSTHFHDDRVGGVD(V) 　 2 2.94 0.49 806.38 1610.75
110 127 (R)AVSTHFHDDRVGGVDVLR(A) 　 2 3.95 0.62 990.51 1979.00
110 140 (R)AVSTHFHDDRVGGVDVLRAAGVATYASPSTR(R) 　 4 1.86 0.19 803.91 3211.63
111 119 (A)VSTHFHDDR(V) 　 2 2.62 0.43 557.26 1112.50
111 127 (A)VSTHFHDDRVGGVDVLR(A) 　 3 4.76 0.68 637.00 1907.97
112 119 (V)STHFHDDR(V) 　 2 2.67 0.44 507.72 1013.43
112 127 (V)STHFHDDRVGGVDVLR(A) 　 3 4.15 0.64 603.97 1808.90
113 127 (S)THFHDDRVGGVDVLR(A) 　 3 1.76 0.15 574.96 1721.87
114 127 (T)HFHDDRVGGVDVLR(A) 　 3 3.69 0.59 541.28 1620.82
115 127 (H)FHDDRVGGVDVLR(A) 　 2 2.80 0.46 742.88 1483.76
116 126 (F)HDDRVGGVDVL(R) 　 2 2.89 0.48 591.30 1180.59
116 127 (F)HDDRVGGVDVLR(A) 　 2 2.93 0.49 669.35 1336.69
116 134 (F)HDDRVGGVDVLRAAGVATY(A) 　 3 4.41 0.66 657.68 1970.00
116 140 (F)HDDRVGGVDVLRAAGVATYASPSTR(R) 　 3 2.16 0.31 857.44 2569.29
117 127 (H)DDRVGGVDVLR(A) 　 2 2.87 0.48 600.82 1199.62
118 127 (D)DRVGGVDVLR(A) 　 3 2.35 0.36 362.54 1084.60
120 127 (R)VGGVDVLR(A) 　 2 2.83 0.47 407.74 813.47
120 140 (R)VGGVDVLRAAGVATYASPSTR(R) 　 3 4.02 0.63 683.04 2046.09
121 127 (V)GGVDVLR(A) 　 1 1.28 0.00 715.41 714.40
125 140 (D)VLRAAGVATYASPSTR(R) 　 3 2.14 0.30 540.64 1618.89
127 134 (L)RAAGVATY(A) 　 2 1.82 0.18 404.72 807.43
128 140 (R)AAGVATYASPSTR(R) 　 2 3.99 0.62 626.32 1250.63
128 141 (R)AAGVATYASPSTRR(L) 　 2 3.09 0.51 704.37 1406.73
129 140 (A)AGVATYASPSTR(R) 　 2 3.22 0.53 590.80 1179.59
129 141 (A)AGVATYASPSTRR(L) 　 2 1.87 0.20 668.85 1335.69
130 140 (A)GVATYASPSTR(R) 　 2 2.80 0.46 555.29 1108.56
130 141 (A)GVATYASPSTRR(L) 　 2 3.03 0.51 633.34 1264.66
131 140 (G)VATYASPSTR(R) 　 2 2.63 0.43 526.77 1051.53
132 141 (V)ATYASPSTRR(L) 　 2 2.27 0.34 555.29 1108.57
135 155 (Y)ASPSTRRLAEVEGNEIPTHSL(E) 　 4 2.34 0.36 566.80 2263.17
135 158 (Y)ASPSTRRLAEVEGNEIPTHSLEGL(S) 　 4 4.13 0.64 641.58 2562.31
141 153 (R)RLAEVEGNEIPTH(S) 　 3 2.33 0.36 488.92 1463.74
141 155 (R)RLAEVEGNEIPTHSL(E) 　 3 2.98 0.50 555.63 1663.86
141 156 (R)RLAEVEGNEIPTHSLE(G) 　 2 2.51 0.40 897.46 1792.90
141 157 (R)RLAEVEGNEIPTHSLEG(L) 　 3 3.43 0.56 617.65 1849.92
141 158 (R)RLAEVEGNEIPTHSLEGL(S) 　 3 4.87 0.69 655.34 1963.01
141 163 (R)RLAEVEGNEIPTHSLEGLSSSGD(A) 　 3 3.95 0.62 799.73 2396.17
141 166 (R)RLAEVEGNEIPTHSLEGLSSSGDAVR(F) 　 4 8.05 0.81 681.60 2722.38
142 155 (R)LAEVEGNEIPTHSL(E) 　 2 3.01 0.50 754.89 1507.76
142 158 (R)LAEVEGNEIPTHSLEGL(S) 　 2 2.70 0.44 904.47 1806.93
142 163 (R)LAEVEGNEIPTHSLEGLSSSGD(A) 　 2 3.54 0.58 1121.03 2240.05
142 166 (R)LAEVEGNEIPTHSLEGLSSSGDAVR(F) 　 2 7.36 0.80 1284.13 2566.25
143 155 (L)AEVEGNEIPTHSL(E) 　 2 2.41 0.38 698.34 1394.67
143 158 (L)AEVEGNEIPTHSLEGL(S) 　 2 3.41 0.56 847.92 1693.82
143 166 (L)AEVEGNEIPTHSLEGLSSSGDAVR(F) 　 2 4.68 0.68 1227.60 2453.19
143 167 (L)AEVEGNEIPTHSLEGLSSSGDAVRF(G) 　 3 6.07 0.75 867.76 2600.25
144 166 (A)EVEGNEIPTHSLEGLSSSGDAVR(F) 　 3 5.10 0.71 795.05 2382.14
145 166 (E)VEGNEIPTHSLEGLSSSGDAVR(F) 　 3 5.67 0.74 752.04 2253.09
146 166 (V)EGNEIPTHSLEGLSSSGDAVR(F) 　 2 5.27 0.72 1078.02 2154.02
147 166 (E)GNEIPTHSLEGLSSSGDAVR(F) 　 3 5.07 0.70 676.00 2024.98
148 166 (G)NEIPTHSLEGLSSSGDAVR(F) 　 3 4.97 0.70 656.99 1967.96
149 166 (N)EIPTHSLEGLSSSGDAVR(F) 　 3 4.99 0.70 618.98 1853.91
151 166 (I)PTHSLEGLSSSGDAVR(F) 　 2 5.07 0.70 806.90 1611.79
153 166 (T)HSLEGLSSSGDAVR(F) 　 2 3.24 0.54 707.85 1413.69
154 166 (H)SLEGLSSSGDAVR(F) 　 2 3.10 0.52 639.32 1276.63
156 166 (L)EGLSSSGDAVR(F) 　 2 2.69 0.44 539.26 1076.51
156 167 (L)EGLSSSGDAVRF(G) 　 2 2.59 0.42 612.79 1223.57
157 166 (E)GLSSSGDAVR(F) 　 2 2.61 0.42 474.74 947.47
159 167 (L)SSSGDAVRF(G) 　 2 2.27 0.34 463.22 924.43
159 172 (L)SSSGDAVRFGPVEL(F) 　 2 2.68 0.44 710.86 1419.71
167 179 (R)FGPVELFYPGAAH(S) 　 2 3.73 0.60 702.85 1403.69
167 180 (R)FGPVELFYPGAAHS(T) 　 2 2.07 0.28 746.37 1490.73
167 182 (R)FGPVELFYPGAAHSTD(N) 　 2 2.59 0.42 854.41 1706.80
174 187 (F)YPGAAHSTDNLVVY(V) 　 2 2.45 0.39 753.87 1505.72
188 194 (Y)VPSASVL(Y) 　 1 2.07 0.28 672.39 671.39
188 201 (Y)VPSASVLYGGcAIY(E) 　 2 2.36 0.37 728.86 1455.71
191 205 (S)ASVLYGGcAIYELSR(T) 　 2 1.88 0.20 829.92 1657.82
192 205 (A)SVLYGGcAIYELSR(T) 　 2 2.70 0.44 794.40 1586.78
193 205 (S)VLYGGcAIYELSR(T) 　 2 3.12 0.52 750.88 1499.75
195 205 (L)YGGcAIYELSR(T) 　 2 3.62 0.59 644.81 1287.60
196 205 (Y)GGcAIYELSR(T) 　 2 2.09 0.28 563.27 1124.53
197 205 (G)GcAIYELSR(T) 　 2 2.29 0.35 534.76 1067.51
197 225 (G)GcAIYELSRTSAGNVADADLAEWPTSIER(I) 　 3 3.45 0.56 1051.50 3151.48
199 205 (C)AIYELSR(T) 　 2 2.15 0.30 426.24 850.46
202 216 (Y)ELSRTSAGNVADADL(A) 　 2 3.79 0.60 759.88 1517.74
206 215 (R)TSAGNVADAD(L) 　 1 1.87 0.20 920.40 919.39
206 218 (R)TSAGNVADADLAE(W) 　 2 2.97 0.50 617.29 1232.56
206 225 (R)TSAGNVADADLAEWPTSIER(I) 　 2 6.34 0.76 1052.00 2101.99
208 225 (S)AGNVADADLAEWPTSIER(I) 　 2 2.78 0.46 957.97 1913.92
211 225 (N)VADADLAEWPTSIER(I) 　 2 4.37 0.66 836.92 1671.82
214 225 (D)ADLAEWPTSIER(I) 　 2 2.27 0.34 694.35 1386.68
216 225 (D)LAEWPTSIER(I) 　 2 3.20 0.53 601.32 1200.62
220 235 (W)PTSIERIQQHYPEAQF(V) 　 2 2.77 0.46 972.49 1942.96
226 234 (R)IQQHYPEAQ(F) 　 2 2.41 0.38 557.27 1112.53
226 239 (R)IQQHYPEAQFVIPG(H) 　 2 2.40 0.37 813.92 1625.84
226 240 (R)IQQHYPEAQFVIPGH(G) 　 3 4.16 0.64 588.64 1762.89
226 242 (R)IQQHYPEAQFVIPGHGL(P) 　 3 1.97 0.24 645.34 1932.99
226 244 (R)IQQHYPEAQFVIPGHGLPG(G) 　 3 2.41 0.38 696.70 2087.07
226 245 (R)IQQHYPEAQFVIPGHGLPGG(L) 　 3 2.70 0.45 715.71 2144.09
226 246 (R)IQQHYPEAQFVIPGHGLPGGL(D) 　 3 3.95 0.62 753.40 2257.18
226 247 (R)IQQHYPEAQFVIPGHGLPGGLD(L) 　 3 4.63 0.68 791.74 2372.20
226 248 (R)IQQHYPEAQFVIPGHGLPGGLDL(L) 　 3 2.67 0.44 829.44 2485.28
226 249 (R)IQQHYPEAQFVIPGHGLPGGLDLL(K) 　 3 2.70 0.44 867.13 2598.37
226 250 (R)IQQHYPEAQFVIPGHGLPGGLDLLK(H) 　 3 7.74 0.81 909.83 2726.47
226 254 (R)IQQHYPEAQFVIPGHGLPGGLDLLKHTTN(V) 　 4 2.63 0.43 795.93 3179.69
226 257 (R)IQQHYPEAQFVIPGHGLPGGLDLLKHTTNVVK(A) 　 5 3.45 0.57 702.19 3505.89
235 250 (Q)FVIPGHGLPGGLDLLK(H) 　 3 2.23 0.33 544.99 1631.95
236 246 (F)VIPGHGLPGGL(D) 　 2 1.98 0.24 508.80 1015.59
236 248 (F)VIPGHGLPGGLDL(L) 　 2 2.70 0.44 622.86 1243.70
236 250 (F)VIPGHGLPGGLDLLK(H) 　 2 3.04 0.51 743.45 1484.89
237 250 (V)IPGHGLPGGLDLLK(H) 　 2 3.93 0.62 693.91 1385.80
238 250 (I)PGHGLPGGLDLLK(H) 　 2 4.71 0.68 637.37 1272.72
241 250 (H)GLPGGLDLLK(H) 　 2 1.80 0.17 491.80 981.59
243 250 (L)PGGLDLLK(H) 　 2 2.19 0.32 406.75 811.48
251 257 (K)HTTNVVK(A) 　 2 2.44 0.38 399.73 797.44
251 262 (K)HTTNVVKAHTNR(S) 　 3 2.09 0.28 459.92 1376.74
251 266 (K)HTTNVVKAHTNRSVVE(-) 　 3 2.25 0.33 597.99 1790.95
GES 단백질로 동정된 각 펩타이드의 위치 및 서열 정보
시작 종료 서열 산화 부위 전하(z) SEQUEST XCorr SEQUEST deltaCn 관찰된 m/z 실제 질량값(Da)
19 25 (A)SEKLTFK(T) 　 2 2.70 0.45 426.75 851.48
22 30 (K)LTFKTDLEK(L) 　 3 2.62 0.43 365.54 1093.61
22 33 (K)LTFKTDLEKLER(E) 　 3 4.22 0.64 498.29 1491.84
26 33 (K)TDLEKLER(E) 　 2 3.65 0.59 502.28 1002.54
26 35 (K)TDLEKLEREK(A) 　 3 2.55 0.41 420.90 1259.68
27 33 (T)DLEKLER(E) 　 2 2.31 0.35 451.75 901.49
34 55 (R)EKAAQIGVAIVDPQGEIVAGHR(M) 　 4 7.82 0.81 565.31 2257.21
36 55 (K)AAQIGVAIVDPQGEIVAGHR(M) 　 2 6.48 0.77 1001.05 2000.08
38 55 (A)QIGVAIVDPQGEIVAGHR(M) 　 3 3.42 0.56 620.34 1858.01
39 55 (Q)IGVAIVDPQGEIVAGHR(M) 　 2 3.98 0.62 865.98 1729.94
40 55 (I)GVAIVDPQGEIVAGHR(M) 　 2 2.90 0.48 809.44 1616.86
41 55 (G)VAIVDPQGEIVAGHR(M) 　 3 4.05 0.63 520.95 1559.84
42 55 (V)AIVDPQGEIVAGHR(M) 　 2 4.01 0.63 731.40 1460.78
43 55 (A)IVDPQGEIVAGHR(M) 　 3 3.70 0.59 464.25 1389.73
44 55 (I)VDPQGEIVAGHR(M) 　 2 2.44 0.38 639.33 1276.65
45 55 (V)DPQGEIVAGHR(M) 　 2 2.91 0.48 589.80 1177.58
46 55 (D)PQGEIVAGHR(M) 　 2 3.02 0.50 532.28 1062.56
60 67 (R)FAmcSTFK(F) M (62) 2 2.60 0.42 504.22 1006.43
60 67 (R)FAMcSTFK(F) 　 2 2.15 0.30 496.22 990.44
60 77 (R)FAmcSTFKFPLAALVFER(I) M (62) 3 2.17 0.31 717.70 2150.08
61 67 (F)AMcSTFK(F) 　 1 1.54 0.03 844.37 843.36
68 77 (K)FPLAALVFER(I) 　 2 3.43 0.56 581.84 1161.66
70 77 (P)LAALVFER(I) 　 2 1.94 0.23 459.78 917.54
71 77 (L)AALVFER(I) 　 2 2.40 0.37 403.23 804.44
78 84 (R)IDSGTER(G) 　 2 2.17 0.31 389.19 776.37
78 87 (R)IDSGTERGDR(K) 　 3 2.03 0.26 369.18 1104.52
88 105 (R)KLSYGPDmIVEWSPATER(F) M (95) 3 4.89 0.69 699.01 2094.01
88 105 (R)KLSYGPDMIVEWSPATER(F) 　 3 3.35 0.55 693.68 2078.01
89 105 (K)LSYGPDmIVEWSPATER(F) M (95) 2 4.26 0.65 983.97 1965.92
89 105 (K)LSYGPDMIVEWSPATER(F) 　 3 2.26 0.34 650.98 1949.91
106 118 (R)FLASGHmTVLEAA(Q) M (112) 2 2.65 0.43 681.84 1361.66
106 118 (R)FLASGHMTVLEAA(Q) 　 2 2.68 0.44 673.84 1345.67
106 120 (R)FLASGHmTVLEAAQA(A) M (112) 3 3.34 0.55 521.26 1560.76
106 120 (R)FLASGHMTVLEAAQA(A) 　 3 3.39 0.56 515.93 1544.76
106 121 (R)FLASGHmTVLEAAQAA(V) M (112) 3 4.55 0.67 544.94 1631.80
106 121 (R)FLASGHMTVLEAAQAA(V) 　 3 2.84 0.47 539.61 1615.80
106 123 (R)FLASGHmTVLEAAQAAVQ(L) M (112) 3 3.89 0.61 620.65 1858.93
106 123 (R)FLASGHMTVLEAAQAAVQ(L) 　 3 2.07 0.28 615.32 1842.93
106 135 (R)FLASGHmTVLEAAQAAVQLSDNGATNLLLR(E) M (112) 3 3.22 0.53 1043.21 3126.59
106 135 (R)FLASGHMTVLEAAQAAVQLSDNGATNLLLR(E) 　 3 2.64 0.43 1037.87 3110.60
110 135 (S)GHmTVLEAAQAAVQLSDNGATNLLLR(E) M (112) 3 3.49 0.57 903.80 2708.39
110 135 (S)GHMTVLEAAQAAVQLSDNGATNLLLR(E) 　 3 4.30 0.65 898.47 2692.39
116 135 (L)EAAQAAVQLSDNGATNLLLR(E) 　 3 2.95 0.49 685.70 2054.07
119 135 (A)QAAVQLSDNGATNLLLR(E) 　 3 4.24 0.65 595.33 1782.96
121 135 (A)AVQLSDNGATNLLLR(E) 　 3 3.96 0.62 528.96 1583.86
122 135 (A)VQLSDNGATNLLLR(E) 　 3 3.38 0.56 505.28 1512.82
124 135 (Q)LSDNGATNLLLR(E) 　 3 2.56 0.42 429.57 1285.70
125 135 (L)SDNGATNLLLR(E) 　 2 3.40 0.56 587.32 1172.62
128 135 (N)GATNLLLR(E) 　 2 2.09 0.28 429.26 856.51
136 148 (R)EIGGPAAmTQYFR(K) M (143) 2 3.76 0.60 728.85 1455.68
136 148 (R)EIGGPAAMTQYFR(K) 　 2 3.68 0.59 720.85 1439.69
136 149 (R)EIGGPAAmTQYFRK(I) M (143) 2 3.26 0.54 792.90 1583.78
138 148 (I)GGPAAmTQYFR(K) M (143) 2 2.28 0.34 607.78 1213.55
149 156 (R)KIGDSVSR(L) 　 2 2.47 0.39 431.24 860.48
149 159 (R)KIGDSVSRLDR(K) 　 3 2.38 0.37 415.90 1244.69
150 159 (K)IGDSVSRLDR(K) 　 2 1.90 0.21 559.30 1116.59
157 173 (R)LDRKEPEmSDNTPGDLR(D) M (164) 3 5.69 0.74 663.65 1987.93
157 173 (R)LDRKEPEMSDNTPGDLR(D) 　 3 6.08 0.75 658.32 1971.93
160 173 (R)KEPEmSDNTPGDLR(D) M (164) 3 4.63 0.68 535.58 1603.73
160 173 (R)KEPEMSDNTPGDLR(D) 　 2 3.84 0.61 794.87 1587.72
160 181 (R)KEPEmSDNTPGDLRDTTTPIAM(A) M (164) 3 2.39 0.37 812.37 2434.09
160 181 (R)KEPEmSDNTPGDLRDTTTPIAm(A) M (164), M (181) 3 1.82 0.18 817.70 2450.09
160 183 (R)KEPEmSDNTPGDLRDTTTPIAMAR(T) M (164) 4 5.52 0.73 666.32 2661.25
160 183 (R)KEPEmSDNTPGDLRDTTTPIAmAR(T) M (164), M (181) 4 5.33 0.72 670.32 2677.24
160 183 (R)KEPEMSDNTPGDLRDTTTPIAMAR(T) 　 3 4.74 0.68 882.76 2645.24
161 173 (K)EPEmSDNTPGDLR(D) M (164) 2 3.35 0.55 738.82 1475.63
161 173 (K)EPEMSDNTPGDLR(D) 　 2 2.84 0.47 730.82 1459.62
161 181 (K)EPEmSDNTPGDLRDTTTPIAM(A) M (164) 3 1.99 0.24 769.67 2306.00
161 183 (K)EPEMSDNTPGDLRDTTTPIAmAR(T) M (181) 3 4.07 0.63 845.39 2533.14
161 183 (K)EPEmSDNTPGDLRDTTTPIAmAR(T) M (164), M (181) 4 3.75 0.60 638.29 2549.14
161 183 (K)EPEMSDNTPGDLRDTTTPIAMAR(T) 　 3 3.93 0.62 840.06 2517.15
174 183 (R)DTTTPIAmAR(T) M (181) 2 2.49 0.40 546.77 1091.52
174 183 (R)DTTTPIAMAR(T) 　 2 2.35 0.36 538.78 1075.54
184 204 (R)TVAKVLYGGALTSTSTHTIER(W) 　 3 3.36 0.55 735.73 2204.18
188 196 (K)VLYGGALTS(T) 　 1 2.08 0.28 880.48 879.47
188 197 (K)VLYGGALTST(S) 　 1 2.23 0.33 981.52 980.52
188 200 (K)VLYGGALTSTSTH(T) 　 2 2.92 0.49 653.83 1305.65
188 204 (K)VLYGGALTSTSTHTIER(W) 　 3 5.96 0.75 602.66 1804.95
188 217 (K)VLYGGALTSTSTHTIERWLIGNQTGDATLR(A) 　 4 2.09 0.28 808.67 3230.66
189 204 (V)LYGGALTSTSTHTIER(W) 　 2 3.77 0.60 853.94 1705.86
190 204 (L)YGGALTSTSTHTIER(W) 　 3 4.90 0.69 531.93 1592.77
191 204 (Y)GGALTSTSTHTIER(W) 　 2 4.04 0.63 715.87 1429.73
192 204 (G)GALTSTSTHTIER(W) 　 2 4.06 0.63 687.35 1372.68
193 204 (G)ALTSTSTHTIER(W) 　 3 1.81 0.17 439.56 1315.67
195 204 (L)TSTSTHTIER(W) 　 2 2.43 0.38 566.78 1131.55
205 217 (R)WLIGNQTGDATLR(A) 　 3 3.79 0.60 482.26 1443.74
206 217 (W)LIGNQTGDATLR(A) 　 2 2.56 0.41 629.84 1257.67
218 229 (R)AGFPKDWVVGEK(T) 　 3 3.90 0.62 444.90 1331.69
219 229 (A)GFPKDWVVGEK(T) 　 2 2.45 0.39 631.33 1260.65
220 229 (G)FPKDWVVGEK(T) 　 2 2.70 0.44 602.82 1203.63
221 229 (F)PKDWVVGEK(T) 　 2 3.42 0.56 529.29 1056.56
223 229 (K)DWVVGEK(T) 　 2 1.96 0.23 416.72 831.42
230 245 (K)TGTcANGGRNDIGFFK(A) 　 3 2.49 0.40 572.28 1713.81
239 245 (R)NDIGFFK(A) 　 2 2.68 0.44 420.72 839.42
239 249 (R)NDIGFFKAQER(D) 　 2 2.34 0.36 662.84 1323.67
246 256 (K)AQERDYAVAVY(T) 　 2 1.83 0.18 642.81 1283.61
246 261 (K)AQERDYAVAVYTTAPK(L) 　 3 4.80 0.69 594.98 1781.91
250 261 (R)DYAVAVYTTAPK(L) 　 2 3.62 0.59 649.84 1297.66
262 272 (K)LSAVERDELVA(S) 　 2 2.48 0.39 601.32 1200.63
262 275 (K)LSAVERDELVASVG(Q) 　 2 2.56 0.41 722.88 1443.75
262 276 (K)LSAVERDELVASVGQ(V) 　 3 1.99 0.25 524.94 1571.81
262 279 (K)LSAVERDELVASVGQVIT(Q) 　 3 1.78 0.16 629.34 1885.01
262 280 (K)LSAVERDELVASVGQVITQ(L) 　 3 3.75 0.60 672.03 2013.07
262 281 (K)LSAVERDELVASVGQVITQL(I) 　 3 1.76 0.15 709.73 2126.16
262 287 (K)LSAVERDELVASVGQVITQLILSTDK(-) 　 4 4.56 0.67 696.89 2783.53
273 287 (A)SVGQVITQLILSTDK(-) 　 2 2.98 0.50 801.46 1600.90
274 287 (S)VGQVITQLILSTDK(-) 　 3 2.82 0.47 505.63 1513.87
276 287 (G)QVITQLILSTDK(-) 　 2 2.76 0.46 679.90 1357.78
277 287 (Q)VITQLILSTDK(-) 　 2 3.08 0.51 615.87 1229.72
280 287 (T)QLILSTDK(-) 　 2 1.80 0.17 459.27 916.52
281 287 (Q)LILSTDK(-) 　 1 2.28 0.34 789.47 788.46
KPC 단백질의 경우 3개의 메티오닌 잔기(49, 116, 151) 중 각 1개 메티오닌이 산화된 형태의 펩타이드가 동정되었다(도 6a). OXA의 경우는 6개의 메티오닌 잔기(115, 138, 195, 237, 239, 241) 중 1개 또는 동시에 2~3개의 메티오닌이 산화된 형태의 펩타이드로 동정되었다(도 6b).
특이하게도, KPC 단백질의 경우는 1-21번 잔기, OXA 단백질의 경우는 1-22번 잔기의 N-말단 서열 펩타이드는 검출되지 않았으며, 이 KPC의 경우 1-21번을 제외한 서열을 고려했을 때 모든 서열 범위에 걸친 펩타이드가 동정되어 서열 동정범위는 92.8%(272/293)에서 100%(272/272)로 증가되었다. 또한, OXA의 경우 1-22번을 제외한 서열을 적용하면 91.7%(243/265)에서 100%(243/243)로 증가하였다.
NDM 단백질의 경우 7개의 메티오닌 잔기(39, 67, 126, 129, 245, 248, 265) 중 각 1개 메티오닌이 산화된 형태의 펩타이드가 동정되었다(도 6c). GES의 경우는 6개의 메티오닌 잔기(62, 95, 112, 143, 164, 181) 중 1개 또는 동시에 2개의 메티오닌이 산화된 형태의 펩타이드로 동정되었다(도 6f). IMP와 VIM의 경우, 메티오닌이 산화된 형태의 펩타이드는 동정되지 않았다(도 6d, 6e)
IMP과 VIM 단백질의 경우는 각각 1-18번 잔기와 1-26번 잔기의 N-말단 서열 펩타이드는 검출되지 않았으며, GES의 경우에도 1-18번의 N-말단 서열 펩타이드가 검출되지 않았다. 타겟 단백질의 N-말단이 제외한 서열을 고려했을 때 확인된 서열 동정범위는 NDM은 97.2(243/250), IMP는 97.8%(223/228), VIM은 100%(240/240), GES는 98.5%(265/269)로 확인되었다.
(3) N-말단 서열의 동정(도 7)
KPC
- N-말단 서열: (S)/ATALTNLVAEPFAK(L) (semi-tryptic)
KPC-3
- N-말단 서열: (S)/ATALTNLVAEPFAK(L) (semi-tryptic)
KPC-17
- N 말단 서열: (S)/ATALTNLVAEPFAK(L) (semi-tryptic)
OXA
- N-말단 서열: (A)/KEWQENK(S) (semi-tryptic)
OXA-181
- N-말단 서열: (A)/KEWQENKSWNAHFTEHK(S) (semi-tryptic)
NDM
- N말단 서열: (M)PGEIRPTIGQQMETGDQR(F) (semi-tryptic)
IMP
- N말단 서열: (A)AESLPDLK(I) (semi-tryptic)
IMP-1
- N-말단 서열: (A)/AESLPDLK(I) (semi-tryptic)
IMP-4
- N-말단 서열: (A)/AESLPDLK(I) (semi-tryptic)
VIM
- N말단 서열: (S)/VDSSGEYPTVSEIPVGEVR(L) (semi-tryptic)
VIM-1
- N-말단 서열: (S)/GEPSGEYPTVNEIPVGEVR(L) (semi-tryptic)
VIM-4
-N-말단 서열: (S)/GEPSGEYPTVNEIPVGEVR(L) (semi-tryptic)
GES
- N말단 서열: (A)SEKLTFK(T) (semi-tryptic)
GES-1
- N-말단 서열: (A)/SEKLTFK(T) (semi-tryptic)
실시예 6: 각 단백질들의 아미노산 서열 분석 및 특성 확인
상기 실시예 5의 MS2 결과를 바탕으로, 현재까지 NCBI(National Center for Biotechnology Information) 데이터베이스에서 알려진 전체 43개의 KPC 서브타입 단백질(도 8a), 660개의 OXA 서브타입 단백질(도 8b), 27개의 NDM 서브타입 단백질(도 8c)과 79개의 IMP 서브타입 단백질(도 8d), 66개의 VIM 서브타입 단백질(도 8e)과 43개의 GES 서브타입 단백질(도 8f)에 대한 다중정렬 분석을 수행하였다.
KPC와 OXA 단백질
KPC-2를 포함한 42개의 단백질의 전체 아미노산 서열의 97.3%이상이 보존되어 있고, OXA 단백질의 경우 카바페넴 항생제 내성을 보유한 OXA-48을 포함한 30개의 단백질이 전체 아미노산 서열의 91.3%이상 보존되어 있는 것을 확인하였다. 각각의 단백질 특성을 분류하기 위하여 MEGA X 프로그램을 통해 KPC와 OXA의 계통수(pyrogenetic tree)분석을 실행하였다(도 9a-9b). KPC는 특이적으로 KPC 단백질들은 43개의 서브타입 단백질 모두 동일한 N-말단 펩타이드(1-21 a.a)를 포함하고 있었고, 그 중 KPC-2를 포함한 35개의 서브그룹 단백질들이 293개의 아미노산 서열로 구성되어 있었다. OXA의 경우, 동일한 N-말단 펩타이드(1-22 a.a)를 포함한 OXA 단백질은 30개로 확인하였고, 23개 종류의 OXA 단백질들은 265개의 동일한 아미노산 서열로 구성된 OXA-48과 동일한 서열의 특징을 보여주었다.
MBL 단백질들과 GES 단백질
전체 서열 유사성은 90.9%(NDM), 44.8%(IMP), 63.5%(VIM), 86.5%(GES)로 각각 확인되었다. 동일한 N-말단을 가지는 서브타입 단백질의 경우, NDM은 27개로 동일하게 확인되었고 IMP는 23개(89.4%), VIM은 26개(92.1%), GES는 35개(87.9%)로 각각 확인되었다. N-말단 서열과 펩타이드 개수가 동일하고 전체 아미노산 서열이 같은 NDM은 26개(92.6%), IMP는 23개(89.4%), VIM은 25개(93.6%), GES는 34개(88.9%)로 확인되었다. 각각의 단백질 특성을 분류하기 위하여 MEGA X 프로그램을 통해 MBL 단백질들과 GES 단백질의 서브타입 단백질들에 대한 계통수(pyrogenetic tree)분석을 실행하였다(도 9c-9f). 그 결과, 다중정렬 분석에서 확인된 결과와 동일하게 NDM-1, IMP-6, VIM-2, GES-5을 각각 포함하고 있는 서브그룹들이 계통수 분석에서 그룹화가 되는 것을 확인 할 수 있다.
실시예 7: 질량 분석법을 이용한 타겟 단백질 동정 (Top-down 방법)
균주에서 발현되는 활성 단백질(Active protein)의 질량값을 확인하기 위한 Top-Down 질량분석을 진행하였다. 정확한 단백질의 질량 값을 확인하기 위해서 균주 유래 조 단백질 추출액에서 부분 정제를 통해 얻은 시료를 사용하였으며 Top-Down 분석이 가능한 LC-MS/MS 시스템(Nano-LC 및 Q-Exactive HF-X 질량분석기 시스템)을 활용하였다.
(1) 정제된 단백질의 질량분석
부분 정제된 단백질 시료 약 0.5μg의 시료를 주입하였다. 컬럼없이 직접 주입 방식(Direct Infusion)방식과 나노유속펌프를 이용하여 분석하였다. 이때 사용한 시료 분석 조건은 다음과 같다.
- 버퍼 A: 물 내의 0.1% 포름산
- 시료 분석: 0 - 10분, 고정버퍼(A) 100%, 고정유속 4μL/min
(2) 고분해능 질량분석기를 이용한 타겟 단백질 질량분석
Q-Exactive HF-X 질량분석기의 Protein Mode Analysis 방법을 이용하여 온전한(Intact) 단백질의 질량값과 단백질들의 텐덤 스펙트럼을 얻어 동정하였다. 이때 사용된 파라미터는 다음과 같다.
- 분해능: Full MS 120,000, MS2 60,000 또는 120,000으로 사용
- Full MS: 620~2,400 m/z, 100 msec
- MS2: 1~2 마이크로스캔 사용, 1,000 msec, NCE 30, 1~8가로 이온화 물질은 MS2 대상에서 제외함.
Top-Down 데이터로 단백질을 동정하기 위한 소프트웨어는 미국 PNNL (Pacific Northwest National Laboratory)에서 개발한‘Informed Proteomics’를 활용하였다.
KPC와 OXA 단백질
다중 하전된 KPC 단백질(z = +13 ~ +20) 혹은 OXA 단백질 (z = +22 ~ +37) 피크들이 여럿 확인되었으며(도 10a 및 10b), 해당 피크를 역합성곱(deconvolution)하여 수득한 대표적 질량값은 평균 분자량 28,718.13 m/z × z, 단일 동위원소 질량(Monoisotopic mass)으로는 28,700.69 m/z × z로 확인되었다. 확인된 대표적인 질량값은 KPC 단백질의 Cys68과 Cys237이 이황화결합된 상태의 질량값을 나타낸다. 또한, 메티오닌 산화로 발생한 다른 피크들이 관측되었다(예를 들어, 1개의 메티오닌이 산화된 폴리펩타이드의 경우 평균 분자량 28,718 + 16 m/z × z로 나타남). 이들은 In-Gel Digestion(Bottom-up방식)을 통해 얻은 KPC 또는 OXA 단백질 서열 내의 산화된 메티오닌 잔기위치(KPC의 경우: 49, 116, 151, OXA의 경우: 115, 138, 195, 237, 239, 241)와 부분적으로 일치하였다. Top-down 방식의 분석에서도 KPC의 경우, 1-21의 N말단, OXA의 경우, 1-22의 N말단 서열을 포함한 폴리펩타이드는 관측되지 않았다. 각각의 N말단 서열을 제외하면, KPC(22-293)와 OXA(23-265) 모두 해당서열에 대하여 동정범위 100%를 나타낸다(도 12a 및 12b).
MBL 단백질들과 GES 단백질
다중 하전된 MBL 단백질들과 혹은 GES 단백질 피크들이 여럿 확인되었으며(도 10c, 10e, 10g, 10i), 해당 피크를 역합성곱(deconvolution)하여 수득한 대표적 질량값은 NDM의 경우 평균분자량 26,724 m/z × z, 단일 동위원소 질량(Monoisotopic mass)으로는 26,707 m/z × z로 확인되었고, IMP의 경우 평균분자량 25082.68 m/z × z, 단일 동위원소 질량(Monoisotopic mass)으로는 25,067.19 m/z × z로 확인되었고, VIM의 경우 평균분자량 25,515.42 m/z × z, 단일 동위원소 질량(Monoisotopic mass)으로는 25,499.92 m/z × z로 확인되었고, GES의 경우 평균분자량 29,245.15 m/z × z, 단일 동위원소 질량(Monoisotopic mass)으로는 29,226.92 m/z × z로 확인되었다. NDM의 경우, 확인된 대표적인 질량값은 팔미트화(Palmitoylation)된 단백질형으로 확인되었다(도 11a). 또한, 메티오닌 산화와 메틸화로 발생한 다른 피크들이 관측되었다(예를 들어, 1개의 메티오닌이 산화된 폴리펩타이드의 경우 평균분자량 26724 + 16 m/z × z로 나타내고, 1개의 메틸화된 폴리펩타이드의 경우 평균분자량 26724 + 14 m/z × z로 나타냄)(도 11b). 반면, IMP 및 VIM의 경우는 특별한 단백질 수식화는 발견되지 않았다. GES의 경우는 Cys63과 Cys233사이의 이황화 결합이 확인되었고, 이 또한 메티오닌 산화로 발생한 다른 피크들이 관측되었다. In-Gel Digestion(Bottom-up 방식)을 통해 얻은 NDM 또는 GES 단백질 서열 이내의 산화된 메티오닌 잔기위치(NDM의 경우: 39, 67, 126, 129, 245, 248, 265, OXA의 경우: 62, 95, 112, 143, 164, 181)와 부분적으로 일치하였다. Top-down 방식의 분석에서도 NDM의 경우 1-19 또는 1-20의 N-말단, IMP의 경우 1-18의 N-말단, VIM의 경우 1-26의 N-말단, 마지막으로 GES의 경우 1-18의 N-말단 서열을 포함하는 폴리펩타이드는 관측되지 않았다. 각각의 N말단 서열을 제외하면 NDM 단백질은 21-270 범위에서 100% 동정되었고(도 12c), IMP 단백질은 19-246 범위에서 100% 동정되었으며(도 12d), VIM 단백질은 27-266 범위에서 100% 동정되었다(도 12e). GES 단백질의 경우, 19-287 범위에서 100% 동정되었다(도 12f).
(3) 저분해능 질량분석기를 이용한 타겟 단백질 질량분석
저분해능 질량분석장비(1, SciEX 4800; 2, Bruker Biotyper MALDI-TOF MS)를 활용하여 각 단백질들의 질량분석 스펙트럼을 얻었다. 먼저, SA(Sinapinic acid, 0.1% TFA/50% 아세토니트릴 내 10mg/mL으로 존재) 매트릭스 1μL와 약 100ng의 정도의 단백질을 플레이트 spot 위에 올려놓고, 완전 건조시켜 질량분석을 실시하였다. 단백질 샘플은 고체배양에서 배양된 콜로니, 액체배양에서 수확된 세포, 세포파쇄후 조추출액과 조효소액, 정제 후 확보한 정제 단백질 모두를 사용할 수 있다. 이때 사용한 에너지는 최대 30%, 무작위 위치 수득(random position acquisition)을 수행하였으며, 40 shot씩 총 2,000 shot의 레이저를 조사하고 각 스펙트럼 데이터를 누적하여 수득하였다. 10,000에서부터 40,000 m/z(KPC, OXA) 또는 35,000 m/z(MBL, GES) 구간의 범위에 대하여 질량분석 스펙트럼을 얻었으며, +1가의 타겟 단백질은 물론 +2가의 타겟 단백질도 동시에 검출하였다(도 13). NDM의 경우, 저분해능 질량장비분석 결과, 3종류의 MBL 단백질들과 GES 단백질모두 +1가와 +2가 모두 검출되었고 특별히 NDM 단백질의 경우, 세포막에 앵커링(anchoring)되는 단백질로써 팔미트화(Ave. mass = 238.4136, Mono. mass = 238.22966)되어있는 형태 분자량과 팔미트화가 되지 않은 분자량 모두 함께 확인되었다.
(4) 각 단백질 서브타입의 질량값 비교
상기의 방법을 통하여 KPC, OXA, MBL 및 GES 단백질의 정확한 질량값을 확인하였고, 확인된 질량값을 바탕으로 N-말단 펩타이드가 제거된 활성 단백질들의 질량값을 확인할 수 있었다. 따라서 NCBI에서 확인된 모든 KPC, OXA, MBL 및 GES 단백질들은 고분해능 또는 저분해능 질량분석기를 통하여 활성 단백질(Active protein)의 정확한 질량값을 확인할 수 있고, 질량분석을 통하여 다양한 종류의 각 서브타입 단백질에 대한 신속/정확한 동정이 가능하다(표 8 - 표 13).
KPC 단백질의 질량 데이터
Sub
types		 전장 KPC 단백질 전장 KPC 단백질 (이황화결합 포함 ) 활성형 단백질 활성형 단백질 (이황화결합 포함 ) N-말단
Da 평균분자량 단일동위 원소질량 Da 평균분자량 단일동위 원소질량 Da 평균분자량 단일동위 원소질량 Da 평균분자량 단일동위 원소질량
2 31115 31115.35 31095.98 31113 31113.33 31093.96 28720 28720.43 28702.71 28718 28718.41 28700.69 1 ~ 21aa
3 31141 31141.39 31121.99 31139 31139.37 31119.97 28746 28746.46 28728.71 28744 28744.44 28726.69 1 ~ 21aa
4 31132 31132.34 31112.99 31130 31130.32 31110.97 28737 28737.42 28719.71 28735 28735.40 28717.69 1 ~ 21aa
5 31174 31174.42 31155.03 31172 31172.40 31153.01 28780 28779.50 28761.76 28777 28777.48 28759.74 1 ~ 21aa
6 31073 31073.27 31053.94 31071 31071.25 31051.92 28678 28678.35 28660.66 28676 28676.33 28658.64 1 ~ 21aa
7 31123 31123.35 31104.03 31121 31121.33 31102.01 28728 28728.43 28710.76 28726 28726.41 28708.74 1 ~ 21aa
8 31099 31099.30 31079.94 31097 31097.28 31077.92 28704 28704.38 28686.67 28702 28702.36 28684.65 1 ~ 21aa
10 31200 31200.46 31181.04 31198 31198.44 31179.02 28806 28805.53 28787.76 28804 28803.51 28785.74 1 ~ 21aa
11 31131 31131.39 31112.02 31129 31129.37 31110.00 28736 28736.47 28718.74 28734 28734.45 28716.72 1 ~ 21aa
12 31133 31133.38 31113.94 31131 31131.36 31111.92 28738 28738.46 28720.67 28736 28736.44 28718.65 1 ~ 21aa
13 31083 31083.35 31063.98 31081 31081.33 31061.96 28688 28688.43 28670.71 28686 28686.41 28668.69 1 ~ 21aa
14 30957 30957.19 30937.92 30955 30955.17 30935.90 28562 28562.27 28544.64 28560 28560.25 28542.62 1 ~ 21aa
15 31272 31271.58 31252.11 31270 31269.56 31250.09 28877 28876.66 28858.84 28875 28874.64 28856.82 1 ~ 21aa
16 31071 31071.29 31051.98 31069 31069.27 31049.96 28676 28676.37 28658.70 28674 28674.35 28656.68 1 ~ 21aa
17 31081 31081.33 31062.00 31079 31079.31 31059.98 28686 28686.41 28668.73 28684 28684.39 28666.71 1 ~ 21aa
18 31129 31129.38 31110.00 31127 31127.36 31107.98 28720 28720.43 28702.71 28718 28718.41 28700.69 1 ~ 21aa
19 31128 31128.39 31108.99 31126 31126.37 31106.97 28733 28733.47 28715.72 28731 28731.45 28713.70 1 ~ 21aa
21 31085 31085.32 31066.01 31083 31083.30 31063.99 28690 28690.40 28179.59 28688 28688.38 28177.57 1 ~ 21aa
22 30952 30952.17 30932.94 30950 30950.15 30930.92 28557 28557.25 28539.67 28555 28555.23 28537.65 1 ~ 21aa
23 31113 31113.33 31093.96 31111 31111.31 31091.94 28718 28718.41 28700.68 28716 28716.39 28698.66 1 ~ 21aa
24 31056 31056.28 31036.94 31054 31054.26 31034.92 28720 28720.43 28702.71 28718 28718.41 28700.69 1 ~ 21aa
25 31358 31357.63 31338.11 31356 31355.61 31336.09 28963 28962.70 28944.84 28961 28960.68 28942.82 1 ~ 21aa
26 31131 31131.35 31111.98 31129 31129.33 31109.96 28720 28720.43 28702.71 28718 28718.41 28700.69 1 ~ 21aa
27 31111 31111.36 31092.01 31109 31109.34 31089.99 28716 28716.44 28698.74 28714 28714.42 28696.72 1 ~ 21aa
28 30983 30983.23 30963.92 30981 30981.21 30961.90 28588 28588.31 28570.65 28586 28586.29 28568.63 1 ~ 21aa
29 31500 31499.74 31480.14 31498 31497.72 31478.12 29105 29104.82 29086.86 29103 29102.80 29084.84 1 ~ 21aa
30 31096 31096.30 31076.94 31094 31094.28 31074.92 28720 28720.43 28702.71 28718 28718.41 28700.69 1 ~ 21aa
31 31189 31189.47 31170.03 31187 31187.45 31168.01 28795 28794.55 28776.75 28793 28792.53 28774.73 1 ~ 21aa
32 31220 31219.56 31200.02 31218 31217.54 31198.00 28825 28824.64 28806.74 28823 28822.62 28804.72 1 ~ 21aa
33 31163 31163.44 31144.02 31161 31161.42 31142.00 28769 28768.52 28750.75 28767 28766.50 28748.73 1 ~ 21aa
34 32026 32026.29 32006.40 32024 32024.27 32004.38 29631 29631.37 29613.12 29629 29629.35 29611.10 1 ~ 21aa
35 31099 31099.31 31079.95 31097 31097.29 31077.93 28704 28704.39 28686.68 28702 28702.37 28684.66 1 ~ 21aa
36 31155 31155.41 31136.00 31153 31153.39 31133.98 28760 28760.49 28742.73 28758 28758.47 28740.71 1 ~ 21aa
37 31051 31051.31 31032.02 31049 31049.29 31030.00 28656 28656.39 28638.75 28654 28654.37 28636.73 1 ~ 21aa
38 31113 31113.33 31093.96 31111 31111.31 31091.94 28718 28718.41 28700.68 28716 28716.39 28698.66 1 ~ 21aa
39 31171 31171.41 31152.00 31169 31169.39 31149.98 28776 28776.49 28758.72 28774 28774.47 28756.70 1 ~ 21aa
40 31370 31369.63 31350.10 31368 31367.61 31348.08 28975 28974.71 28956.83 28973 28972.69 28954.81 1 ~ 21aa
41 31481 31480.78 31461.18 31479 31478.76 31459.16 29086 29085.86 29067.90 29084 29083.84 29065.88 1 ~ 21aa
42 31085 31085.32 31065.97 31083 31083.30 31063.95 28690 28690.40 28672.70 28688 28688.38 28670.68 1 ~ 21aa
43 31143 31143.41 31124.03 31141 31141.39 31122.01 28748 28748.49 28730.75 28746 28746.47 28728.73 1 ~ 21aa
44 32828 32828.19 32807.81 32826 32826.17 32805.79 30433 30433.27 30414.54 30431 30431.25 30412.52 1 ~ 21aa
45 31142 31142.42 31123.03 31140 31140.40 31121.01 28748 28747.50 28729.76 28745 28745.48 28727.74 1 ~ 21aa
46 31125 31125.34 31105.96 31123 31123.32 31103.94 28730 28730.42 28712.68 28728 28728.40 28710.66 1 ~ 21aa
OXA 단백질의 질량 데이터
Subtypes 전장 OXA 단백질 활성형 단백질
Da 평균분자량 단일동위
원소질량		 Da 평균분자량 단일동위
원소질량		 N-말단
48 30359 30358.76 30339.55 28147 28146.97 28129.28 1 ~ 22aa
54 30280 30279.68 30260.45 28098 28097.89 28080.23 1 ~ 22aa
162 30329 30328.74 30309.54 28117 28116.94 28099.27 1 ~ 22aa
163 29891 29891.19 29872.27 27679 27679.40 27662.00 1 ~ 22aa
181 30313 30312.74 30293.55 28172 28172.02 28154.31 1 ~ 22aa
199 30299 30298.71 30279.52 28158 28157.99 28140.29 1 ~ 22aa
204 30423 30422.85 30403.60 28282 28282.14 28264.37 1 ~ 22aa
232 30244 30243.63 30224.48 28032 28031.83 28014.21 1 ~ 22aa
244 30260 30259.63 30240.47 28048 28047.83 28030.20 1 ~ 22aa
245 30393 30392.82 30373.57 28252 28252.11 28234.34 1 ~ 22aa
247 29814 29814.11 29795.25 27673 27673.39 27656.02 1 ~ 22aa
252 30331 30330.71 30311.52 28190 28189.99 28172.29 1 ~ 22aa
370 30401 30400.80 30381.56 28260 28260.08 28242.33 1 ~ 22aa
405 29859 29859.19 29840.28 27718 27718.48 27701.04 1 ~ 22aa
416 30401 30400.84 30381.60 28260 28260.13 28242.37 1 ~ 22aa
436 30285 30284.74 30265.51 28126 28125.97 28108.35 1 ~ 22aa
438 30111 30111.42 30092.35 27900 27899.62 27882.08 1 ~ 22aa
439 29865 29865.16 29846.26 27653 27653.36 27635.99 1 ~ 22aa
484 30214 30213.60 30194.47 28002 28001.80 27984.20 1 ~ 22aa
505 30389 30388.79 30369.56 28147 28146.97 28129.28 1 ~ 22aa
514 30387 30386.82 30367.58 28175 28175.02 28157.31 1 ~ 22aa
515 30361 30360.73 30341.53 28149 28148.94 28131.26 1 ~ 22aa
517 30088 30088.47 30069.42 27877 27876.68 27859.15 1 ~ 22aa
519 30373 30372.79 30353.57 28161 28160.99 28143.30 1 ~ 22aa
535 30185 30184.62 30165.45 27955 27954.78 27937.26 1 ~ 22aa
538 30363 30362.75 30343.53 28151 28150.96 28133.26 1 ~ 22aa
546 30343 30342.76 30323.56 28131 28130.97 28113.29 1 ~ 22aa
547 30427 30426.88 30407.63 28215 28215.09 28197.36 1 ~ 22aa
566 30403 30402.77 30383.54 28191 28190.98 28173.27 1 ~ 22aa
567 30190 30189.58 30170.47 27978 27977.78 27960.2 1 ~ 22aa
NDM 단백질의 질량 데이터
Subtypes 전장 NDM 단백질 활성형 단백질
(N-말단 1-19) 		활성형 단백질
(N-말단 1-20)
Da 평균분자량 단일동위 원소질량 Da 평균분자량 단일동위 원소질량 Da 평균분자량 단일동위원소질량
1 28499 28499.46 28481.22 26510 26510.04 26493.16 26439 26438.96 26422.12
2 28473 28473.42 28455.20 26484 26484.00 26467.14 26413 26412.92 26396.10
3 28498 28498.48 28480.23 26509 26509.05 26492.17 26438 26437.98 26421.14
4 28481 28481.43 28463.26 26492 26492.01 26475.20 26421 26420.93 26404.16
5 28495 28495.45 28477.27 26506 26506.03 26489.22 26435 26434.95 26418.18
6 28528 28527.51 28509.25 26538 26538.09 26521.19 26467 26467.01 26450.15
7 28480 28480.44 28462.27 26491 26491.02 26474.22 26420 26419.94 26403.18
8 28423 28423.39 28405.25 26434 26433.97 26417.19 26363 26362.89 26346.16
9 28499 28498.52 28480.27 26509 26509.10 26492.21 26438 26438.02 26421.17
10 28648 28647.58 28629.25 26658 26658.15 26641.19 26587 26587.08 26570.16
11 28467 28467.40 28449.24 26478 26477.98 26461.18 26407 26406.90 26390.15
12 28539 28539.46 28521.26 26550 26550.04 26533.21 26479 26478.96 26462.17
13 28480 28480.44 28462.27 26491 26491.02 26474.22 26420 26419.94 26403.18
14 28441 28441.42 28423.21 26452 26452.00 26435.15 26381 26380.92 26364.11
15 28509 28509.48 28491.29 26520 26520.06 26503.23 26449 26448.98 26432.19
16 28480 28480.41 28462.17 26491 26490.99 26474.11 26420 26419.91 26403.08
17 28495 28494.51 28476.33 26505 26505.09 26488.27 26434 26434.01 26417.23
18 29103 29103.10 29084.49 27114 27113.67 27096.43 27043 27042.60 27025.40
19 28509 28508.50 28490.31 26519 26519.07 26502.25 26448 26448.00 26431.21
20 28476 28476.41 28458.23 26487 26486.99 26470.17 26416 26415.91 26399.14
21 28525 28525.48 28507.28 26536 26536.06 26519.23 26465 26464.98 26448.19
22 28481 28481.43 28463.26 26492 26492.01 26475.20 26421 26420.93 26404.16
23 28499 28499.46 28481.22 26510 26510.04 26493.16 26439 26438.96 26422.12
24 28513 28513.49 28495.23 26524 26524.07 26507.17 26453 26452.99 26436.14
25 28515 28515.46 28497.21 26526 26526.04 26509.15 26455 26454.96 26438.11
27 28527 28526.53 28508.26 26537 26537.11 26520.20 26466 26466.03 26449.17
28 28528 28527.51 28509.25 26538 26538.09 26521.19 26467 26467.01 26450.15
IMP 단백질의 질량 데이터
Subtypes 전장 IMP 단백질 활성형 IMP 단백질
Da 평균분자량 단일동위
원소질량		 Da 평균분자량 단일동위
원소질량		 N-말단
1 27120 27120.19 27103.24 25113 25112.71 25097.2 1 ~ 18aa
2 27180 27180.25 27163.13 25151 25150.65 25135.08 1 ~ 19aa
3 27018 27018.1 27001.21 25011 25010.62 24995.17 1 ~ 18aa
4 27087 27087.2 27070.24 25080 25079.72 25064.2 1 ~ 18aa
5 27176 27176.24 27159.12 25020 25019.56 25004.05 1 ~ 19aa
6 27090 27090.16 27073.23 25083 25082.68 25067.19 1 ~ 18aa
7 27134 27134.24 27117.21 25025 25024.6 25009.15 1 ~ 19aa
8 27053 27053.06 27036.02 24952 24952.38 24936.94 1 ~ 20aa
9 27277 27277.22 27260.01 25192 25191.61 25175.97 1 ~ 18aa
10 27168 27168.23 27151.24 25161 25160.75 25145.2 1 ~ 18aa
11 27061 27061.01 27044.05 24973 24973.34 24957.93 1 ~ 19aa
12 27101 27101.29 27084.27 24988 24987.6 24972.09 1 ~ 19aa
13 27212 27212.26 27195.02 25078 25077.56 25061.95 1 ~ 20aa
14 27441 27440.57 27423.32 25365 25364.9 25349.23 1 ~ 18aa
15 27139 27139.07 27121.93 25011 25011.44 24995.94 1 ~ 19aa
16 27298 27298.24 27281.06 25268 25267.62 25251.96 1 ~ 18aa
17 27141 27141.14 27123.95 25006 25006.44 24990.88 1 ~ 20aa
18 27199 27199.28 27182.22 25186 25185.69 25170.14 1 ~ 18aa
19 27095 27095.14 27078.06 24994 24994.46 24978.98 1 ~ 20aa
20 27143 27143.19 27126.06 25043 25042.5 25026.98 1 ~ 20aa
21 27033 27032.96 27016.02 24945 24945.29 24929.9 1 ~ 19aa
22 27224 27224.16 27207.03 25208 25207.56 25191.95 1 ~ 18aa
23 27101 27101.11 27084.02 25000 25000.42 24984.94 1 ~ 20aa
24 27081 27081.08 27064.02 24980 24980.39 24964.94 1 ~ 20aa
25 27120 27120.19 27103.24 25113 25112.71 25097.2 1 ~ 18aa
26 27135 27135.24 27118.24 25128 25127.76 25112.2 1 ~ 18aa
27 27303 27303.26 27286.12 25216 25215.59 25200 1 ~ 19aa
28 27139 27139.19 27122.09 24983 24982.5 24967.02 1 ~ 19aa
29 27219 27219.17 27202.09 25115 25114.53 25098.96 1 ~ 19aa
30 27119 27119.25 27102.29 25112 25111.77 25096.25 1 ~ 18aa
31 27176 27176.19 27159.15 25116 25115.56 25100.01 1 ~ 18aa
32 27490 27489.64 27472.34 25414 25413.98 25398.25 1 ~ 18aa
33 27211 27211.26 27194.09 25205 25204.69 25189.08 1 ~ 18aa
34 27048 27048.12 27031.22 25041 25040.64 25025.18 1 ~ 18aa
35 27257 27257.13 27240.07 25139 25139.45 25123.91 1 ~ 19aa
37 27388 27388.44 27371.1 25254 25253.74 25238.03 1 ~ 20aa
38 27057 27057.17 27040.23 25050 25049.69 25034.19 1 ~ 18aa
39 27011 27011.07 26994.03 24910 24910.39 24894.95 1 ~ 20aa
40 27108 27108.13 27091.2 25101 25100.65 25085.16 1 ~ 18aa
41 27109 27109.05 27092.05 25021 25021.38 25005.93 1 ~ 19aa
42 27219 27219.32 27202.32 25212 25211.84 25196.28 1 ~ 18aa
43 27182 27182.28 27165.21 25073 25072.65 25057.15 1 ~ 19aa
44 27049 27048.96 27032.01 24961 24961.29 24945.9 1 ~ 19aa
45 27247 27247.2 27230 25105 25104.53 25088.94 1 ~ 19aa
46 26841 26840.97 26824.13 24831 24831.37 24816.02 1 ~ 18aa
48 27429 27428.51 27411.29 25353 25352.85 25337.19 1 ~ 18aa
49 27247 27247.32 27230.22 25234 25233.73 25218.14 1 ~ 18aa
51 27104 27104.21 27087.2 24995 24994.58 24979.14 1 ~ 19aa
52 27078 27078.11 27061.19 25071 25070.63 25055.15 1 ~ 18aa
53 27237 27237.16 27219.98 25094 25094.49 25078.92 1 ~ 19aa
54 27427 27426.54 27409.31 25351 25350.88 25335.21 1 ~ 18aa
55 27147 27147.34 27130.36 25174 25173.88 25158.3 1 ~ 18aa
56 27169 27169.25 27152.21 25156 25155.66 25140.13 1 ~ 18aa
58 27272 27272.2 27255.03 25199 25198.56 25182.93 1 ~ 19aa
59 27136 27136.27 27119.26 25129 25128.79 25113.22 1 ~ 18aa
60 27119 27119.25 27102.29 25112 25111.77 25096.25 1 ~ 18aa
61 27119 27119.24 27102.28 25112 25111.76 25096.24 1 ~ 18aa
62 27109 27109.04 27091.92 24981 24981.42 24965.93 1 ~ 19aa
63 27131 27131.31 27114.28 25018 25017.62 25002.1 1 ~ 19aa
64 27317 27317.29 27300.14 25216 25215.59 25200 1 ~ 19aa
65 27411 27410.54 27393.31 25335 25334.88 25319.22 1 ~ 18aa
66 27168 27168.23 27151.24 25161 25160.75 25145.2 1 ~ 18aa
67 27319 27319.26 27302.11 25232 25231.59 25216 1 ~ 19aa
68 27031 27030.98 27014.04 24872 24872.24 24856.89 1 ~ 20aa
69 27083 27083.09 27066.03 24982 24982.4 24966.95 1 ~ 20aa
70 27120 27120.19 27103.24 25113 25112.71 25097.2 1 ~ 18aa
71 27217 27217.3 27200.21 25204 25203.71 25188.13 1 ~ 18aa
73 27106 27106.18 27089.18 24796 24796.35 24781.04 1 ~ 21aa
74 27346 27346.28 27329.06 25259 25258.61 25242.94 1 ~ 19aa
75 27227 27227.34 27210.23 25214 25213.74 25198.15 1 ~ 18aa
76 27092 27092.13 27075.21 25085 25084.65 25069.17 1 ~ 18aa
77 27142 27142.15 27125.19 25135 25134.67 25119.15 1 ~ 18aa
78 27138 27138.21 27121.23 25131 25130.73 25115.19 1 ~ 18aa
79 27148 27148.2 27131.25 25141 25140.72 25125.21 1 ~ 18aa
80 27152 27152.23 27135.25 25145 25144.75 25129.2 1 ~ 18aa
82 27255 27255.22 27238.03 25113 25112.56 25096.98 1 ~ 19aa
83 27185 27185.25 27168.21 25172 25171.66 25156.13 1 ~ 18aa
84 27260 27260.31 27243.02 25126 25125.61 25109.95 1 ~ 20aa
85 27146 27146.22 27129.11 24990 24989.53 24974.04 1 ~ 19aa
VIM 단백질의 질량 데이터
Subtypes 전장 VIM 단백질 활성형 VIM 단백질
Da 평균분자량 단일동위
원소질량		 Da 평균분자량 단일동위
원소질량		 N-말단
1 28024 28024.46 28007.22 25322 25322.13 25306.78 1 ~ 26aa
2 28327 28326.94 28309.51 25515 25515.42 25499.92 1 ~ 26aa
3 28300 28299.96 28282.53 25488 25488.44 25472.94 1 ~ 26aa
4 28094 28093.57 28076.29 25391 25391.24 25375.85 1 ~ 26aa
5 28042 28041.57 28024.32 25339 25339.25 25323.88 1 ~ 26aa
6 28328 28327.97 28310.54 25516 25516.45 25500.95 1 ~ 26aa
7 28112 28111.92 28094.63 25464 25463.74 25448.26 1 ~ 25aa
8 28297 28296.91 28279.5 25485 25485.39 25469.91 1 ~ 26aa
9 28339 28338.99 28321.54 25527 25527.47 25511.95 1 ~ 26aa
10 28343 28342.94 28325.5 25531 25531.42 25515.91 1 ~ 26aa
11 28300 28299.91 28282.5 25488 25488.39 25472.91 1 ~ 26aa
12 28117 28116.55 28099.25 25414 25414.23 25398.81 1 ~ 26aa
13 28220 28219.63 28202.29 25455 25455.24 25439.83 1 ~ 26aa
14 28124 28123.59 28106.3 25421 25421.27 25405.86 1 ~ 26aa
15 28311 28310.94 28293.51 25499 25499.42 25483.92 1 ~ 26aa
16 28353 28353.02 28335.56 25542 25541.5 25525.97 1 ~ 26aa
17 28345 28344.97 28327.46 25515 25515.42 25499.92 1 ~ 26aa
18 27941 27940.58 27923.37 25129 25129.06 25113.79 1 ~ 26aa
19 28108 28107.64 28090.35 25405 25405.31 25389.9 1 ~ 26aa
20 28346 28345.98 28328.55 25534 25534.46 25518.96 1 ~ 26aa
23 28258 28257.83 28240.44 25446 25446.31 25430.85 1 ~ 26aa
24 28284 28283.91 28266.49 25472 25472.39 25456.9 1 ~ 26aa
25 28147 28146.76 28129.42 25444 25444.43 25428.98 1 ~ 26aa
26 28000 28000.47 27983.25 25298 25298.15 25282.81 1 ~ 26aa
27 28040 28040.46 28023.22 25338 25338.13 25322.78 1 ~ 26aa
28 28070 28069.58 28052.32 25367 25367.26 25351.88 1 ~ 26aa
29 28058 28057.57 28040.32 25355 25355.25 25339.88 1 ~ 26aa
30 28354 28353.96 28336.52 25542 25542.44 25526.93 1 ~ 26aa
31 28320 28319.95 28302.54 25508 25508.43 25492.96 1 ~ 26aa
32 27966 27966.42 27949.22 25264 25264.1 25248.78 1 ~ 26aa
33 28008 28008.46 27991.23 25306 25306.13 25290.79 1 ~ 26aa
34 28038 28038.48 28021.24 25336 25336.16 25320.8 1 ~ 26aa
35 28054 28054.48 28037.23 25352 25352.16 25336.79 1 ~ 26aa
36 28355 28354.99 28337.55 25543 25543.47 25527.96 1 ~ 26aa
37 28110 28109.56 28092.29 25407 25407.24 25391.85 1 ~ 26aa
38 28052 28051.59 28034.4 25367 25367.3 25351.91 1 ~ 26aa
39 27970 27970.45 27953.24 25268 25268.12 25252.8 1 ~ 26aa
40 28122 28121.62 28104.32 25419 25419.29 25403.88 1 ~ 26aa
41 28326 28325.95 28308.52 25514 25514.43 25498.93 1 ~ 26aa
42 28038 28038.48 28021.24 25336 25336.16 25320.8 1 ~ 26aa
43 28122 28121.62 28104.32 25391 25391.24 25375.85 1 ~ 26aa
44 28313 28312.87 28295.46 25501 25501.35 25485.87 1 ~ 26aa
45 28339 28338.99 28321.54 25527 25527.47 25511.95 1 ~ 26aa
46 28333 28332.9 28315.46 25487 25487.36 25471.89 1 ~ 26aa
47 28240 28239.62 28222.26 25455 25455.24 25439.83 1 ~ 26aa
48 28361 28360.96 28343.49 25515 25515.42 25499.92 1 ~ 26aa
49 28058 28057.57 28040.32 25355 25355.25 25339.88 1 ~ 26aa
50 28257 28256.88 28239.48 25445 25445.36 25429.89 1 ~ 26aa
51 28355 28354.99 28337.54 25543 25543.47 25527.95 1 ~ 26aa
52 28044 28043.5 28026.27 25341 25341.18 25325.82 1 ~ 26aa
53 28210 28209.74 28192.41 25487 25487.36 25471.89 1 ~ 26aa
54 28067 28066.54 28049.28 25364 25364.22 25348.84 1 ~ 26aa
55 28127 28126.68 28109.39 25424 25424.36 25408.95 1 ~ 26aa
56 28243 28242.82 28225.44 25458 25458.37 25442.9 1 ~ 26aa
57 28024 28024.46 28007.22 25322 25322.13 25306.78 1 ~ 26aa
58 28304 28303.9 28286.47 25458 25458.37 25442.9 1 ~ 26aa
59 28044 28043.5 28026.27 25341 25341.18 25325.82 1 ~ 26aa
60 28303 28302.96 28285.53 25491 25491.44 25475.94 1 ~ 26aa
61 28161 28160.99 28143.65 25513 25512.82 25497.28 1 ~ 25aa
62 28355 28354.99 28337.54 25515 25515.42 25499.92 1 ~ 26aa
63 28327 28326.94 28309.51 25515 25515.42 25499.92 1 ~ 26aa
64 28051 28050.54 28033.28 25348 25348.21 25332.83 1 ~ 26aa
65 28327 28326.94 28309.51 25515 25515.42 25499.92 1 ~ 26aa
66 28329 28329.04 28311.58 25518 25517.52 25502 1 ~ 26aa
67 28299 28298.88 28281.48 25487 25487.36 25471.89 1 ~ 26aa
68 28053 28052.51 28035.26 25350 25350.19 25334.81 1 ~ 26aa
GES 단백질의 질량 데이터
Subtypes 전장 GES 단백질 전장 GES 단백질 (이황화결합포함) 활성형 단백질 활성형 단백질
(이황화결합포함)
Da 평균분자량 단일동위원소질량 Da 평균분자량 단일동위원소질량 Da 평균분자량 단일동위원소질량 Da 평균분자량 단일동위원소질량
1 31154 31154.48 31134.97 31152 31152.46 31132.95 29217 29217.14 29198.92 29215 29215.12 29196.90
2 31212 31211.53 31191.99 31210 31209.51 31189.97 29274 29274.19 29255.94 29272 29272.17 29253.92
3 31123 31123.45 31104.03 31121 31121.43 31102.01 29186 29186.11 29167.97 29184 29184.09 29165.95
4 31153 31153.48 31134.04 31151 31151.46 31132.02 29216 29216.14 29197.99 29214 29214.12 29195.97
5 31185 31184.50 31164.98 31182 31182.48 31162.96 29247 29247.17 29228.93 29245 29245.15 29226.91
6 31184 31183.56 31164.03 31182 31181.54 31162.01 29246 29246.23 29227.98 29244 29244.21 29225.96
7 31154 31153.54 31134.02 31152 31151.52 31132.00 29216 29216.20 29197.97 29214 29214.18 29195.95
8 31197 31196.56 31177.01 31195 31194.54 31174.99 29259 29259.22 29240.96 29257 29257.20 29238.94
9 31185 31184.50 31164.98 31182 31182.48 31162.96 29247 29247.17 29228.93 29245 29245.15 29226.91
10 31128 31128.40 31108.91 31126 31126.38 31106.89 29203 29203.12 29184.90 29201 29201.10 29182.88
11 31169 31168.50 31148.98 31166 31166.48 31146.96 29231 29231.17 29212.93 29229 29229.15 29210.91
12 31138 31138.48 31118.97 31136 31136.46 31116.95 29201 29201.14 29182.92 29199 29199.12 29180.90
13 31211 31210.59 31191.04 31209 31208.57 31189.02 29273 29273.25 29254.99 29271 29271.23 29252.97
14 31199 31198.53 31178.99 31197 31196.51 31176.97 29261 29261.20 29242.94 29259 29259.18 29240.92
15 31174 31174.47 31154.96 31172 31172.45 31152.94 29237 29237.13 29218.90 29235 29235.11 29216.88
16 31185 31185.49 31165.96 31183 31183.47 31163.94 29248 29248.15 29229.91 29246 29246.13 29227.89
17 31168 31167.56 31148.03 31166 31165.54 31146.01 29230 29230.23 29211.98 29228 29228.21 29209.96
18 31199 31198.53 31178.99 31197 31196.51 31176.97 29261 29261.20 29242.94 29259 29259.18 29240.92
19 31183 31182.53 31163.00 31181 31180.51 31160.98 29231 29231.17 29212.93 29229 29229.15 29210.91
20 31199 31198.53 31178.99 31197 31196.51 31176.97 29247 29247.17 29228.93 29245 29245.15 29226.91
21 31150 31150.49 31130.99 31148 31148.47 31128.97 29213 29213.15 29194.94 29211 29211.13 29192.92
22 31150 31150.47 31131.02 31148 31148.45 31129.00 29213 29213.14 29194.97 29211 29211.12 29192.95
23 31154 31154.48 31134.97 31152 31152.46 31132.95 29217 29217.14 29198.92 29215 29215.12 29196.90
24 31154 31154.42 31134.98 31152 31152.40 31132.96 29217 29217.08 29198.93 29215 29215.06 29196.91
25 31186 31186.48 31166.98 31184 31184.46 31164.96 29275 29275.18 29256.93 29273 29273.16 29254.91
26 31169 31168.50 31148.98 31166 31166.48 31146.96 29217 29217.14 29198.92 29215 29215.12 29196.90
27 31216 31215.52 31195.98 31214 31213.50 31193.96 29278 29278.18 29259.93 29276 29276.16 29257.91
28 31184 31183.52 31163.99 31182 31181.50 31161.97 29246 29246.18 29227.94 29244 29244.16 29225.92
29 31158 31158.47 31138.96 31156 31156.45 31136.94 29221 29221.13 29202.91 29219 29219.11 29200.89
30 31131 31131.46 31111.88 31129 31129.44 31109.86 29194 29194.12 29175.83 29192 29192.10 29173.81
31 31155 31154.52 31135.00 31153 31152.50 31132.98 29217 29217.19 29198.95 29215 29215.17 29196.93
32 31233 31233.48 31214.02 31231 31231.46 31212.00 29338 29338.23 29320.02 29336 29336.21 29318.00
33 31154 31153.54 31134.02 31152 31151.52 31132.00 29216 29216.20 29197.97 29214 29214.18 29195.95
34 31169 31169.49 31149.98 31167 31167.47 31147.96 29232 29232.16 29213.93 29230 29230.14 29211.91
35 31165 31164.50 31145.04 31162 31162.48 31143.02 29227 29227.16 29208.99 29225 29225.14 29206.97
36 31184 31183.56 31164.03 31182 31181.54 31162.01 29246 29246.23 29227.98 29244 29244.21 29225.96
37 31188 31188.49 31168.97 31186 31186.47 31166.95 29251 29251.16 29232.92 29249 29249.14 29230.90
38 31140 31139.51 31119.99 31137 31137.49 31117.97 29202 29202.17 29183.94 29200 29200.15 29181.92
39 31112 31112.44 31092.95 31110 31110.42 31090.93 29175 29175.10 29156.90 29173 29173.08 29154.88
40 31213 31212.56 31193.01 31211 31210.54 31190.99 29261 29261.20 29242.94 29259 29259.18 29240.92
41 31264 31264.45 31244.98 31262 31262.43 31242.96 29369 29369.20 29350.98 29367 29367.18 29348.96
42 31598 31597.98 31578.21 31596 31595.96 31576.19 29661 29660.65 29642.16 29659 29658.63 29640.14
43 31201 31200.50 31180.96 31198 31198.48 31178.94 29237 29237.13 29218.90 29235 29235.11 29216.88
실시예 8: 임상균주 유래 MBL 단백질들과 GES의 유전형 확인 및 단백질 확인
임상균주 유래 NDM, IMP, VIM(MBL 단백질)과 GES(Class A 카바페넴 단백질)을 확인하기 위해 CRE(Carbapenem-Resistant Enterobacteriaceae) 양성으로 확인된 균주를 수집하였다. 수집된 균주는 PCR 방법을 사용하여 각각의 유전자에 대한 유전형을 확인하였다.
유전형이 확인된 균주는 LB 액체배지를 사용하여 배양하였고, SDS-PAGE 겔 분석을 통해 MBL 단백질(NDM, IMP, VIM) 및 GES 단백질의 발현유무를 확인하였다(도 2).
임상균주 유래 MBL 단백질들과 GES 단백질은 in-gel digestion 방법을 통하여 단백질을 절단하였고, Q-Exactive HF-X plus 장비를 사용하여 Bottom-Up 방법으로 각각을 동정하였다. NDM의 경우, 동정된 펩타이드에 대한 서열범위는 전체 단백질 서열에서는 61.11%(165/270)로, N-말단이 제외된 활성형으로는 65.74%(165/251)로 확인했다. IMP와 VIM의 경우, 동정된 펩타이드에 대한 서열범위는 전체 단백질 서열에서는 각각 22.76%(56/246)과 44.74%(119/266)로, N-말단이 제외된 활성형으로는 각각 24.56%(56/228)와 49.58%(119/240)로 확인했다. 또한, GES의 경우는 동정된 펩타이드를 통하여 전체 단백질 아미노산 서열을 적용하였을 때, 67.25%(193/287)로, 활성형 단백질의 서열을 적용하면 71.75%(193/269)로 각각 확인했다.
이상으로 본 발명의 특정한 부분을 상세히 기술하였는 바, 당업계의 통상의 지식을 가진 자에게 있어서 이러한 구체적인 기술은 단지 바람직한 구현예일 뿐이며, 이에 본 발명의 범위가 제한되는 것이 아닌 점은 명백하다. 따라서, 본 발명의 실질적인 범위는 첨부된 청구항과 그의 등가물에 의하여 정의된다고 할 것이다.

Claims (35)

  1. 다음의 단계를 포함하는 생물학적 시료 내 카바페넴 항생제(Carbapenem antibiotics)에 대한 내성을 가지는 병원성 균주의 검출 방법:
    (a) 대상체로부터 분리된 생물학적 시료 내에서 병원성 균주가 발현하는 단백질을 분리하는 단계; 및
    (b) 상기 분리된 단백질에 대해 탑-다운(top-down) 질량 분석을 수행하는 단계,
    상기 질량 분석 결과 N-말단의 21개 또는 22개 아미노산 잔기가 제거된 KPC(Klebsiella pneumoniae carbapenemase) 또는 OXA 카바페넴 분해 효소와 동일한 질량의 단백질이 검출되거나, 또는 N-말단의 18, 19, 20, 21 또는 26개 아미노산 잔기가 제거된 NDM(New Delhi Metallo-beta-lactamase), IMP(imipenemase), VIM(Verona integron-borne metallo-β-lactamase) 및 GES(Guiana extended spectrum β-lactamase)로 구성된 군으로부터 선택되는 하나 이상의 카바페넴 분해 효소와 동일한 질량의 단백질이 검출된 경우, 상기 생물학적 시료 내에는 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주가 존재하는 것으로 판정한다.
  2. 제 1 항에 있어서, 상기 방법은 상기 단계 (a)에서 분리된 단백질에 대해 이온교환 크로마토그래피를 수행하는 단계를 추가적으로 포함하는 것을 특징으로 하는 방법.
  3. 제 2 항에 있어서, 상기 이온교환 크로마토그래피는 음이온교환 크로마토그래피, 양이온교환 크로마토그래피 및 이들의 순차적 조합으로 구성된 군으로부터 선택되는 어느 하나인 것을 특징으로 하는 방법.
  4. 제 1 항에 있어서, 상기 단계 (a)는 상기 생물학적 시료에 계면활성제를 첨가함으로써 이루어지는 것을 특징으로 하는 방법.
  5. 제 4 항에 있어서, 상기 단계 (a)는 상기 생물학적 시료에 라이시스 완충액을 추가적으로 첨가함으로써 이루어지는 것을 특징으로 하는 방법.
  6. 제 4 항에 있어서, 상기 방법은 상기 단계 (a)와 상기 단계 (b) 사이에 초음파 처리(sonication) 단계를 추가적으로 포함하는 것을 특징으로 하는 방법.
  7. 제 1 항에 있어서, 상기 단계 (b)는 MALDI-TOF(Matrix-Assisted Laser Desorption/ Ionization Time of Flight) 질량분석, SELDI-TOF(Sulface Enhanced Laser Desorption/Ionization Time of Flight) 질량분석, ESI-TOF(Electrospray ionisation time-of-flight) 질량분석, 액상 크로마토그래피-질량분석(liquid chromatography-Mass Spectrometry, LC-MS) 및 LC-MS/MS(liquid chromatography-Mass Spectrometry/ Mass Spectrometry)로 구성된 군으로부터 선택되는 질량분석 방법을 이용하여 이루어지는 것을 특징으로 하는 방법.
  8. 제 7 항에 있어서, 상기 단계 (b)는 MALDI-TOF(Matrix Desorption/ Ionization Time of Flight) 질량분석을 이용하여 이루어지는 것을 특징으로 하는 방법.
  9. 제 1 항에 있어서, 상기 카바페넴 분해 효소는 KPC 단백질이고, 상기 질량 분석 결과 N-말단의 21개 아미노산 잔기가 제거된 KPC 단백질과 동일한 질량의 단백질이 검출된 경우, 상기 생물학적 시료 내에는 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주가 존재하는 것으로 판정하는 것을 특징으로 하는 방법.
  10. 제 1 항에 있어서, 상기 카바페넴 분해 효소는 OXA 단백질이고, 상기 질량 분석 결과 N-말단의 22개 아미노산 잔기가 제거된 OXA 단백질과 동일한 질량의 단백질이 검출된 경우, 상기 생물학적 시료 내에는 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주가 존재하는 것으로 판정하는 것을 특징으로 하는 방법.
  11. 제 1 항에 있어서, 상기 카바페넴 분해 효소는 NDM 단백질이고, 상기 질량 분석 결과 N-말단의 19개 또는 20개 아미노산 잔기가 제거된 NDM 단백질과 동일한 질량의 단백질이 검출된 경우, 상기 생물학적 시료 내에는 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주가 존재하는 것으로 판정하는 것을 특징으로 하는 방법.
  12. 제 1 항에 있어서, 상기 카바페넴 분해 효소는 IMP 단백질이고, 상기 질량 분석 결과 N-말단의 18 내지 21개 아미노산 잔기가 제거된 IMP 단백질과 동일한 질량의 단백질이 검출된 경우, 상기 생물학적 시료 내에는 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주가 존재하는 것으로 판정하는 것을 특징으로 하는 방법.
  13. 제 1 항에 있어서, 상기 카바페넴 분해 효소는 VIM 단백질이고, 상기 질량 분석 결과 N-말단의 25 또는 26개 아미노산 잔기가 제거된 VIM 단백질과 동일한 질량의 단백질이 검출된 경우, 상기 생물학적 시료 내에는 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주가 존재하는 것으로 판정하는 것을 특징으로 하는 방법.
  14. 제 1 항에 있어서, 상기 카바페넴 분해 효소는 GES 단백질이고, 상기 질량 분석 결과 N-말단의 18개 아미노산 잔기가 제거된 GES 단백질과 동일한 질량의 단백질이 검출된 경우, 상기 생물학적 시료 내에는 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주가 존재하는 것으로 판정하는 것을 특징으로 하는 방법.
  15. 제 1 항에 있어서, 상기 질량 분석 결과 28720, 28746, 28737, 28780, 28678, 28728, 28704, 28806, 28736, 28738, 28688, 28562, 28877, 28676, 28686, 28733, 28690, 28557, 28718, 28963, 28716, 28588, 29105, 28795, 28825, 28769, 29631, 28760, 28656, 28776, 28975, 29086, 28748, 30433, 28730 및 이들 값의 ±5 범위 내의 값으로 구성된 군으로부터 선택되는 하나 이상의 질량 값(m/z × z)이 검출된 경우, 상기 생물학적 시료 내에는 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주가 존재하는 것으로 판정하는 것을 특징으로 하는 방법.
  16. 제 15 항에 있어서, 상기 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주는 KPC 단백질을 생산하는 균주인 것을 특징으로 하는 방법.
  17. 제 15 항에 있어서, 상기 질량 값(m/z × z)은 각 질량 값에서 16만큼 증가된 질량 값을 추가적으로 포함하는 것을 특징으로 하는 방법.
  18. 제 15 항 또는 제 17 항에 있어서, 상기 질량 값(m/z × z)은 각 질량 값에서 2만큼 감소된 질량 값을 추가적으로 포함하는 것을 특징으로 하는 방법.
  19. 제 1 항에 있어서, 상기 질량 분석 결과 28147, 28098, 28117, 27679, 28172, 28158, 28282, 28032, 28048, 28252, 27673, 28190, 28260, 27718, 28126, 27900, 27653, 28002, 28175, 28149, 27877, 28161, 27955, 28151, 28131, 28215, 28191, 27978 및 이들 값의 ±5 범위 내의 값으로 구성된 군으로부터 선택되는 하나 이상의 질량 값(m/z × z)이 검출된 경우, 상기 생물학적 시료 내에는 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주가 존재하는 것으로 판정하는 것을 특징으로 하는 방법.
  20. 제 19 항에 있어서, 상기 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주는 OXA 단백질을 생산하는 균주인 것을 특징으로 하는 방법.
  21. 제 19 항에 있어서, 상기 질량 값(m/z × z)은 각 질량 값에서 16, 32 또는 48만큼 증가된 질량 값을 추가적으로 포함하는 것을 특징으로 하는 방법.
  22. 제 1 항에 있어서, 상기 질량 분석 결과 26439, 26413, 26438, 26421, 26435, 26467, 26420, 26363, 26587, 26407, 26479, 26381, 26449, 26434, 27043, 26448, 26416, 26465, 26453, 26455, 26466, 26510, 26484, 26509, 26492, 26506, 26538, 26491, 26434, 26658, 26478, 26550, 26452, 26520, 26505, 27114, 26519, 26487, 26536, 26524, 26526, 26537 및 이들 값의 ±5 범위 내의 값으로 구성된 군으로부터 선택되는 하나 이상의 질량 값(m/z × z)이 검출된 경우, 상기 생물학적 시료 내에는 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주가 존재하는 것으로 판정하는 것을 특징으로 하는 방법.
  23. 제 22 항에 있어서, 상기 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주는 NDM 단백질을 생산하는 균주인 것을 특징으로 하는 방법.
  24. 제 22 항에 있어서, 상기 질량 값(m/z × z)은 각 질량 값에서 16 또는 32만큼 증가된 질량 값을 추가적으로 포함하는 것을 특징으로 하는 방법.
  25. 제 22 항 또는 제 24 항에 있어서, 상기 질량 값(m/z × z)은 각 질량 값에서 14, 28 또는 42 만큼 증가된 질량 값을 추가적으로 포함하는 것을 특징으로 하는 방법.
  26. 제 22 항 또는 제 24 항에 있어서, 상기 질량 값(m/z × z)은 각 질량 값에서 238 만큼 증가된 질량 값을 추가적으로 포함하는 것을 특징으로 하는 방법.
  27. 제 25 항에 있어서, 상기 질량 값(m/z × z)은 각 질량 값에서 238 만큼 증가된 질량 값을 추가적으로 포함하는 것을 특징으로 하는 방법.
  28. 제 1 항에 있어서, 상기 질량 분석 결과 25113, 25151, 25011, 25080, 25020, 25083, 25025, 24952, 25192, 25161, 24973, 24988, 25078, 25365, 25268, 25006, 25186, 24994, 25043, 24945, 25208, 25000, 24980, 25128, 25216, 24983, 25115, 25112, 25116, 25414, 25205, 25041, 25139, 25254, 25050, 24910, 25101, 25021, 25212, 25073, 24961, 25105, 24831, 25353, 25234, 24995, 25071, 25094, 25351, 25174, 25156, 25199, 25129, 24981, 25018, 25335, 25232, 24872, 24982, 25204, 24796, 25259, 25214, 25085, 25135, 25131, 25141, 25145, 25172, 25126, 24990 및 이들 값의 ±5 범위 내의 값으로 구성된 군으로부터 선택되는 하나 이상의 질량 값(m/z × z)이 검출된 경우, 상기 생물학적 시료 내에는 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주가 존재하는 것으로 판정하는 것을 특징으로 하는 방법.
  29. 제 28 항에 있어서, 상기 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주는 IMP 단백질을 생산하는 균주인 것을 특징으로 하는 방법.
  30. 제 1 항에 있어서, 상기 질량 분석 결과 25322, 25515, 25488, 25391, 25339, 25516, 25464, 25485, 25527, 25531, 25414, 25455, 25421, 25499, 25542, 25129, 25405, 25534, 25446, 25472, 25444, 25298, 25338, 25367, 25355, 25508, 25264, 25306, 25336, 25352, 25543, 25407, 25268, 25419, 25514, 25501, 25487, 25445, 25341, 25364, 25424, 25458, 25491, 25513, 25348, 25518, 25350 및 이들 값의 ±5 범위 내의 값으로 구성된 군으로부터 선택되는 하나 이상의 질량 값(m/z × z)이 검출된 경우, 상기 생물학적 시료 내에는 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주가 존재하는 것으로 판정하는 것을 특징으로 하는 방법.
  31. 제 30 항에 있어서, 상기 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주는 VIM 단백질을 생산하는 균주인 것을 특징으로 하는 방법.
  32. 제 1 항에 있어서, 상기 질량 분석 결과 29217, 29274, 29186, 29216, 29247, 29246, 29259, 29203, 29231, 29201, 29273, 29261, 29237, 29248, 29230, 29213, 29275, 29278, 29221, 29194, 29338, 29232, 29227, 29251, 29202, 29175, 29369, 29661, 및 이들 값의 ±5 범위 내의 값으로 구성된 군으로부터 선택되는 하나 이상의 질량 값(m/z × z)이 검출된 경우, 상기 생물학적 시료 내에는 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주가 존재하는 것으로 판정하는 것을 특징으로 하는 방법.
  33. 제 32 항에 있어서, 상기 카바페넴 항생제에 대한 내성을 가지는 병원성 균주는 GES 단백질을 생산하는 균주인 것을 특징으로 하는 방법.
  34. 제 32 항에 있어서, 상기 질량 값(m/z × z)은 각 질량 값에서 16 또는 32만큼 증가된 질량 값을 추가적으로 포함하는 것을 특징으로 하는 방법.
  35. 제 32 항 또는 제 34 항 에 있어서, 상기 질량 값(m/z × z)은 각 질량 값에서 2만큼 감소된 질량 값을 추가적으로 포함하는 것을 특징으로 하는 방법.
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B. GHEBREMEDHIN, A. HALSTENBACH, M. SMILJANIC, M. KAASE, P. AHMAD-NEJAD: "MALDI-TOF MS based carbapenemase detection from culture isolates and from positive blood culture vials", ANNALS OF CLINICAL MICROBIOLOGY AND ANTIMICROBIALS, vol. 15, no. 1, 1 December 2016 (2016-12-01), XP055681448, DOI: 10.1186/s12941-016-0120-x *
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