WO2021177372A1 - コロナウイルス（ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２）の検出方法 - Google Patents

コロナウイルス（ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２）の検出方法 Download PDF

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    • Y02A50/30—Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Definitions

  • the present invention relates to a method for detecting a new type of coronavirus (SARS-CoV-2) discovered in 2019, and more specifically, an acute respiratory disease (COVID-) caused by the new type of coronavirus 2019 using a highly sensitive gene detection method. It relates to the diagnostic assistance method of 19).
  • SARS-CoV-2 coronavirus
  • COVID- acute respiratory disease
  • Acute respiratory disease (COVID-19) caused by the 2019 new coronavirus was reported in December 2019 as an outbreak of pneumonia patients of unknown cause in Wuhan City, Hubei province, China.
  • the cause was confirmed to be a new type of coronavirus on January 7, 2020, and the following week, infected persons were confirmed in several countries other than China.
  • the number of infected people exceeded 10,000, but the spread of the infection did not stop, and the World Health Organization (WHO) raised an internationally concerned public health emergency (PHEIC) on January 31. Declared.
  • WHO World Health Organization
  • COVID-19 The main clinical symptoms of COVID-19 are fever, cough, and general malaise. When it becomes severe, it causes pneumonia and dysfunction of the lungs, heart, and kidneys, which may lead to death.
  • the mortality rate is about 3%, which is lower than the SARS outbreak from 2002 to 2003, but the number of deaths is higher than that during the SARS outbreak because the number of infected people is much higher than that during the SARS outbreak.
  • the new virus (SARS-CoV-2) that causes COVID-19 is a beta coronavirus similar to SARS coronavirus and MERS coronavirus.
  • the gene consists of a plus strand of single-stranded RNA and has a length of about 30,000 bases (GENBANK Accession No. MN908947).
  • Non-Patent Document 1 The entire nucleotide sequence of SARS-CoV-2 was determined and published about one month after the first report of the outbreak of pneumonia. Based on this base sequence, a method for detecting SARS-CoV-2 by RT-PCR has been developed (Non-Patent Document 1 and others).
  • Non-Patent Document 2 a test kit developed by the Centers for Disease Control and Prevention (CDC) has some defects.
  • CDC Centers for Disease Control and Prevention
  • An object of the present invention is to detect SARS-CoV-2, which is a pathogenic virus, with high sensitivity for the diagnosis of COVID-19.
  • the present inventors have prepared oligonucleotide primers that selectively hybridize with the base sequence specific to SARS-CoV-2, and SARS- by the LAMP method.
  • SARS-CoV-2 can be detected with high sensitivity by amplifying the base sequence specific to CoV-2, and completed the present invention.
  • the present invention has the following configuration.
  • a primer set for amplifying and detecting SARS-CoV-2 virus by the LAMP method and the primer set is from at least one designed from the following regions (a) to (b).
  • Primer set. (A) Region from 28976 bases to 29211 bases of SEQ ID NO: 1
  • a primer set, wherein the primer set contains at least one selected from the following groups (a1) to (b1).
  • B1 A primer set consisting of an F3 primer consisting of SEQ ID NO: 8, a B3 primer consisting of SEQ ID NO: 9, a FIP primer consisting of SEQ ID NO: 10, and a BIP primer consisting of SEQ ID NO: 11.
  • a primer set for amplifying and detecting the SARS-CoV-2 virus by the LAMP method, and the primer set is at least one selected from the following groups (a2) to (b2). Primer set including.
  • A2 In addition to the primer set of (a1) described in [1], an LF primer consisting of SEQ ID NO: 6 and an LB primer consisting of SEQ ID NO: 7.
  • B2 In addition to the primer set of (b1) described in [1], an LF primer consisting of SEQ ID NO: 12 and an LB primer consisting of SEQ ID NO: 13.
  • a method for detecting SARS-CoV-2 virus which comprises performing an amplification reaction by the LAMP method using the primer set according to any one of [1] to [3].
  • the presence or absence of SARS-CoV-2 virus infection is determined by detecting the amplification of the target nucleic acid region of SARS-CoV-2 virus using the primer set according to any one of [1] to [3].
  • a method for inspecting COVID-19 which comprises inspecting.
  • a kit comprising the primer set according to any one of [1] to [3] in the method for diagnosing COVID-19.
  • a primer set for amplifying and detecting the SARS-CoV-2 virus by the LAMP method and the primer set is from at least one designed from the following regions (c) to (d).
  • Primer set. (C) Region from 26767 bases to 26977 bases of SEQ ID NO: 1
  • a primer set wherein the primer set contains at least one selected from the following groups (c1) to (d1).
  • (C1) A primer set consisting of an F3 primer consisting of SEQ ID NO: 14, a B3 primer consisting of SEQ ID NO: 15, a FIP primer consisting of SEQ ID NO: 16, and a BIP primer consisting of SEQ ID NO: 17.
  • (D1) A primer set consisting of an F3 primer consisting of SEQ ID NO: 21, a B3 primer consisting of SEQ ID NO: 22, a B4 primer consisting of SEQ ID NO: 23, a FIP primer consisting of SEQ ID NO: 24, and a BIP primer consisting of SEQ ID NO: 25.
  • a primer set for amplifying and detecting the SARS-CoV-2 virus by the LAMP method wherein the primer set is at least one selected from the following groups (c2) to (d2).
  • Primer set including. (C2) F3 primer consisting of SEQ ID NO: 14, B3 primer consisting of SEQ ID NO: 15, FIP primer consisting of SEQ ID NO: 16, BIP primer consisting of SEQ ID NO: 17, LF primer consisting of SEQ ID NO: 18, and LB consisting of SEQ ID NO: 19.
  • a kit for amplifying and detecting SARS-CoV-2 virus by the LAMP method which comprises the primer set according to any one of [7] to [9] and a fluorescently labeled probe.
  • a COVID-19 testing method comprising detecting the presence or absence of SARS-CoV-2 virus infection.
  • an oligonucleotide primer that selectively hybridizes with a SARS-CoV-2 specific base sequence is prepared, and the SARS-CoV-2 specific base sequence is amplified by the LAMP method. , SARS-CoV-2 can be detected with high sensitivity and quickly.
  • Samples used in the present invention include specimens derived from humans or other animals suspected of being infected with the SARS-CoV-2 virus, such as sputum, bronchial alveolar lavage fluid, nasal discharge, nasal suction fluid, nasal cavity lavage fluid, and nasal swab. Pharyngeal swabs, mouthwashes, saliva, blood, serum, plasma, spinal fluid, urine, feces, tissues and the like.
  • cells used in infection experiments and their culture solutions, or samples containing viruses isolated from living body-derived samples and cultured cells can also be used as samples. These samples may be pretreated such as separation, extraction, concentration and purification.
  • Amplification of nucleic acid contained in a sample is a nucleic acid amplification method developed by Notomi et al. That does not require temperature control, which is indispensable in the PCR method: Loop-mediated isothermal amplification method called LAMP (Loop-mediated Isothermal Amplification) method (international release). No. 00/28082) will be achieved.
  • LAMP Loop-mediated Isothermal Amplification
  • the 3'end of itself is annealed to a nucleotide as a template to serve as a starting point for complementary strand synthesis, and a primer to be annealed to the loop formed at this time is combined to carry out an isothermal complementary strand synthesis reaction.
  • This is a nucleic acid amplification method that has been made possible.
  • the check mechanism by the complementary bond of the base sequence functions repeatedly, and as a result, it is highly sensitive and peculiar. It enables highly potent nucleic acid amplification reaction.
  • the oligonucleotide primers used in the LAMP method are the bases of a total of 6 regions of the base sequence of the template nucleic acid, that is, the regions F3c, F2c and F1c from the 3'end side and the regions B3, B2 and B1 from the 5'end side. At least four types of primers that recognize the sequence are referred to as a forward inner primer, a backward inner primer, a forward outer primer, and a backward outer primer, respectively. Further, the complementary sequences of F1c, F2c and F3c are referred to as F1, F2 and F3, respectively, and the complementary strands of B1, B2 and B3 are referred to as B1c, B2c and B3c.
  • An inner primer is a nucleic acid synthesis reaction product that recognizes a "certain nucleotide sequence region" on a target base sequence and has a base sequence at the 3'end that gives a starting point for synthesis, and at the same time, uses this primer as the starting point.
  • a primer containing the "base sequence selected from F2" and the “base sequence selected from F1c” is selected from the forward inner primer (hereinafter referred to as FIP primer), and the "base sequence selected from B2" and “B1c”.
  • a primer containing the "existing base sequence” is called a backward inner primer (hereinafter referred to as BIP primer).
  • the outer primer is an oligonucleotide having a base sequence that recognizes "a specific nucleotide sequence region existing on the 3'terminal side of" a specific nucleotide sequence region "" on the target base sequence and gives a starting point for synthesis.
  • the primer containing the "base sequence selected from F3” is referred to as a forward outer primer (hereinafter referred to as F3 primer), and the primer containing the "base sequence selected from B3” is referred to as a backward outer primer (hereinafter referred to as B3 primer).
  • F in each primer is a primer display that complementarily binds to the sense strand of the target base sequence and provides a starting point for synthesis
  • B is complementary to the antisense strand of the target base sequence.
  • It is a primer display that provides a starting point for synthesis.
  • the length of the oligonucleotide used as a primer is 10 bases or more, preferably 15 bases or more, and may be either chemically synthesized or natural, and each primer may be a single oligonucleotide or a plurality of oligonucleotides. It may be a mixture of oligonucleotides.
  • a loop primer in addition to the inner primer and the outer primer, another primer, that is, a loop primer can be used.
  • the loop primer is a primer having a base sequence complementary to the base sequence of the single-stranded portion of the loop structure on the 5'end side of the dumbbell structure.
  • the starting point of nucleic acid synthesis is increased, the reaction time can be shortened, and the detection sensitivity can be increased (Pamphlet of Patent Document International Publication No. 02/024902).
  • the base sequence of the loop primer is complementary to the base sequence of the single-stranded portion of the loop structure on the 5'end side of the above-mentioned dumbbell structure, it may be selected from the base sequence of the target gene or its complementary strand.
  • the loop primer may be one type or two types, and is referred to as a forward loop primer (hereinafter referred to as LF) and a backward loop primer (hereinafter referred to as LB) in the present specification.
  • LF forward loop primer
  • LB backward loop primer
  • an outer primer (B4 primer) may be added downstream of the B3 primer.
  • SARS-CoV-2 is an RNA virus.
  • the nucleic acid amplification reaction can be similarly promoted by adding reverse transcriptase to the reaction solution when the template is DNA (RT-LAMP method).
  • a primer set was designed from the N gene region and the RNA-dependent RNA polymerase (RdRP) gene region.
  • the N gene region region from 28976 bases to 29211 bases of SEQ ID NO: 1 of the base sequence of SARS-CoV-2 (SEQ ID NO: 1) and the RNA-dependent RNA polymerase (RdRP) gene region (sequence)
  • RdRP RNA-dependent RNA polymerase
  • the present invention is a primer set consisting of at least one designed from the region (region from 15394 bases to 15595 bases) of No. 1.
  • the present invention is a primer set consisting of F3, B3, FIP, and BIP, and designed a primer set containing at least one selected from the following two sets a and b.
  • the present invention is a primer set containing at least one of LF primer and LB primer, which is selected from the following two sets a and b.
  • the present inventors have conducted a diligent study on the base sequence of SARS-CoV-2 (SEQ ID NO: A primer set was designed from the M gene region and the S gene region of 1). That is, in the present invention, the M gene region (region from 26767 bases to 26977 bases of SEQ ID NO: 1) and the S gene region (region from 24660 bases to 24916 bases of SEQ ID NO: 1) of the base sequence of SARS-CoV-2 (SEQ ID NO: 1) It is a primer set consisting of at least one designed from the region up to the base).
  • the present invention is a primer set consisting of F3, B3 (or B3 and B4), FIP, and BIP, and is a primer set containing at least one selected from the following two sets of c and d.
  • the present invention is a primer set containing at least one of LF primer and LB primer, which is selected from the following two sets of c and d.
  • the present invention is a kit containing the above-mentioned primer set c or d and a fluorescently labeled probe.
  • the probe of primer set c is a probe consisting of SEQ ID NO: 20
  • the probe of primer set d is a probe consisting of SEQ ID NO: 28.
  • the cytosine base at the 3'end is fluorescently labeled with BODIPY® FL dye.
  • These probes are Q probes. That is, when the probe binds to the target nucleic acid, the guanine base of the target nucleic acid and the fluorescent dye come close to each other, and the quenching action of the guanine base reduces the fluorescence intensity of the fluorescent dye.
  • the method for detecting the SARS-CoV-2 virus of the present invention is a method of performing an amplification reaction by the LAMP method using the primer set of the present invention.
  • the enzyme used in nucleic acid synthesis is not particularly limited as long as it is a template-dependent nucleic acid synthase having chain substitution activity.
  • examples of such an enzyme include Bst DNA polymerase (large fragment), Bca (exo-) DNA polymerase, Klenow fragment of Escherichia coli DNA polymerase I, and preferably Bst DNA polymerase (large fragment).
  • the reverse transcriptase used in the RT-LAMP method is not particularly limited as long as it has an activity of synthesizing DNA using RNA as a template.
  • examples of such an enzyme include AMV, Cloned AMV, MMLV reverse transcriptase, SuperscriptII, RiverTrace, Thermoscript and the like, and preferably AMV or Cloned AMV reverse transcriptase.
  • an enzyme having both reverse transcriptase activity and DNA polymerase activity such as Bca DNA polymerase, is used, the RT-LAMP reaction can be carried out with one enzyme.
  • the enzyme or reverse transcriptase used in nucleic acid synthesis may be purified from a virus, a bacterium, or the like, or may be produced by gene recombination technology. Further, these enzymes may be modified such as fragmentation and amino acid substitution.
  • the COVID-19 testing method of the present invention tests for the presence or absence of SARS-CoV-2 virus infection by detecting amplification of the target nucleic acid region of the SARS-CoV-2 virus using the primer set of the present invention.
  • the method can be applied to the detection of nucleic acid amplification products after the LAMP reaction. For example, a method using a labeled oligonucleotide that specifically recognizes the amplified base sequence or a fluorescent intercalator method (Japanese Patent Laid-Open No. 2001-242169), or the reaction solution after completion of the reaction is subjected to agarose gel electrophoresis as it is. Can be easily detected.
  • the primer set of the present invention can be pre-packaged and made into a kit together with various reagents necessary for detecting nucleic acid amplification.
  • various oligonucleotides required as primers and loop primers of the present invention four types of dNTPs used as substrates for nucleic acid synthesis, DNA polymerases for nucleic acid synthesis, reverse transcription enzymes, and suitable conditions for enzymatic reactions are provided.
  • Buffers and salts, protective agents that stabilize enzymes and templates, and, if necessary, reagents necessary for detection of reaction products are provided as kits.
  • Example 1 Confirmation of detection sensitivity of primer sets a and b The detection sensitivity was confirmed by the LAMP method.
  • 1. Preparation of samples and reagents 1) Samples (transcribed RNA) The RNA template was prepared by incorporating the cDNA prepared by RT-PCR from the SARS-CoV-2 gene into a plasmid and transcribing and purifying RNA from the plasmid DNA.
  • Script Max registered trademark
  • Thermo T7 Transcription Kit manufactured by Toyobo Co., Ltd., code number: TSK-101
  • RNeasy registered trademark
  • Mini Kit manufactured by Qiagen, Inc., catalog number: No
  • a sample solution from the purified RNA was prepared dilutions from 10 copies per 1 ⁇ L to 10 3 copies. Further, the yeast RNA solution was used as a 0-copy sample solution (Negative Control).
  • Reagent composition and concentration used in the LAMP method 25 ⁇ L of the LAMP reaction reagent having the following composition was prepared in a reagent tube of 0.2 mL.
  • the primer the primer set a or b shown in Table 1 was used.
  • Reaction by nucleic acid amplification method 1 Reaction by LAMP method 1.
  • Example 2 Detection sensitivity when genomic RNA is used as a template The detection sensitivity was examined using viral genomic RNA distributed by the Institute of Infectious Diseases. At the same time, PCR was also performed to compare the detection sensitivities. Preparation of samples and reagents 1) Samples (genome RNA) A diluted solution of SARS-CoV-2 genomic RNA distributed by the Institute of Infectious Diseases from 50 copies to 1.6 ⁇ 10 3 copies per ⁇ L was prepared as a sample solution. 2) Reagent composition and concentration used in the LAMP method Reaction reagents were prepared in the same manner as in Example 1. As the primer set, the primer set a in which the N gene was detected was used. 3) Reagent composition and concentration used for PCR Primers and amplification reagents for detecting the N gene were prepared according to the "Pathogen Detection Manual 2019-nCoV Ver. 2.7" of the Institute of Infectious Diseases.
  • Reaction by nucleic acid amplification method 1) Reaction by LAMP method The amplification reaction was carried out at 63 ° C. for 60 minutes with the real-time turbidity measuring device LoopampEXIA (registered trademark) in the same manner as in Example 1. 2) Reaction by PCR The RT-PCR method using a TaqMan probe was carried out in accordance with the "Pathogen Detection Manual 2019-nCoV Ver. 2.7" of the Institute of Infectious Diseases.
  • Example 3 Confirmation of detection sensitivity of primer sets c and d The detection sensitivity was confirmed by the LAMP method.
  • 1. Preparation of samples and reagents 1) Samples (transcribed RNA) Artificial genes incorporating the sequences of the M region and the S region were synthesized, and the transcribed RNA was used as a template. The synthesis of artificial genes was outsourced to Eurofins. The sequences of the artificial genes are shown in SEQ ID NO: 29 (artificial gene for detecting M region) and 30 (artificial gene for detecting S region).
  • LAMP reaction reagent having the following composition was prepared.
  • LAMP reaction reagent 20 mM tricine (pH 8.6), 30 mM KCl, 0.1% Tween 20, 1.4 mM dNTPs, 8 mM sulfonyl4, 1.6 mM DTT, PPase 20mU Bst DNA polymerase 25U, RNase inhibitor 1.0U, AMV Reverse Transcriptase 1.0U
  • primer set c or d a fluorescently labeled probe corresponding to the primer set, and SYTO TM 63 Red Fluorescent Nucleic Acid Stein were added, and a master mix prepared with purified water (DW) to a concentration of 15 ⁇ L / test (DW).
  • Reaction by nucleic acid amplification method 1 Reaction measurement by LAMP method was evaluated at a reaction temperature of 63 ° C. using a real-time quantitative PCR system LightCyclor (registered trademark) 96 (manufactured by Roche).
  • the minimum detection sensitivity that could be detected within 15 minutes was 25 copies / test in any system using any primer set.
  • Example 2 Confirmation of cross-reactivity with SARS virus 38 species of respiratory-related bacteria and pathogenic microorganisms (Human coronavirus 229E, Human coronavirus OC43, Human coronavirus HKU1, Human coronavirus) at GGGenome (https://gggenome.dbcls.jp/ja/) NL63, SARS-coronavirus, SARS-coronavirus-2, MERS-coronavirus, Adenovirus, Human Metapneumovirus, Parainfluenza virus 1-4, Influenza A, Influenza B, Enterovirus, Respiratory syncytial virus, Rhinovirus, Chlamydia pneumonia, Haemophilus influenzae, Legionella pneumonia Mycobacterium tuberculosis, Streptococus pneumonia, Streptococcus pyrogenes, Bordetella pertussis, Mycoplasma pneumoniae, Pneumocystis jirovecii (PJP), Influenza
  • SARS virus SARS-Coronavirus
  • SARS virus template a transcribed RNA of an artificial gene incorporating the sequence of SARS virus (GenBank NC0047183.3) having high homology by region was used (synthesis request: Eurofins). Template amount was 1.0 ⁇ 10 7 copies / test.
  • SARS-CoV-2 could be detected even in the mixed test.

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Abstract

ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２のＮ遺伝子、ＲＮＡ依存性ＲＮＡポリメラーゼ遺伝子、Ｍ遺伝子及びＳ遺伝子の塩基配列から設計された任意の塩基配列と特異的にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドプライマー、該プライマーを用いた核酸増幅法、核酸増幅の検出によるＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２感染の検査方法、並びにＣＯＶＩＤ－１９検査キットが開示される。

Description

コロナウイルス（ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２）の検出方法
　　本発明は、２０１９年に発見された新型コロナウイルス（ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２）の検出方法に関し、さらに詳しくは遺伝子の高感度な検出法を利用した２０１９新型コロナウイルスによる急性呼吸器疾患（ＣＯＶＩＤ－１９）の診断補助方法に関するものである。
　２０１９新型コロナウイルスによる急性呼吸器疾患（ＣＯＶＩＤ－１９）は、２０１９年１２月に中国湖北省武漢市において原因不明の肺炎患者の発生として報告された。２０２０年１月７日に原因が新種のコロナウイルスであることが確認され、その翌週には、中国以外の複数の国で感染者が確認された。１月末の時点での感染者は１万人を越えたが感染拡大が止まらず、世界保健機構（ＷＨＯ）は国際的に懸念される公衆衛生上の緊急事態（ＰＨＥＩＣ）を１月３１日に宣言した。
　ＣＯＶＩＤ－１９の主な臨床症状は発熱、咳、及び全身倦怠感である。重症化すると肺炎や肺・心臓・腎の機能不全を引き起こし、死に至る場合がある。死亡率は２００２年から２００３年にかけて流行したＳＡＲＳよりも低い３％程度であるが、感染者数がＳＡＲＳの時よりもはるかに多いので、死亡者の数はＳＡＲＳ流行時を上回っている。
　ＣＯＶＩＤ－１９を引き起こす新型ウイルス（ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２）はＳＡＲＳコロナウイルスやＭＥＲＳコロナウイルスと同様のベータコロナウイルスである。その遺伝子は１本鎖ＲＮＡのプラス鎖からなり、約３００００塩基の長さがある（ＧＥＮＢＡＮＫ　Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＭＮ９０８９４７）。
　ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２は、最初の肺炎患者発生の報告から約１ヶ月で全塩基配列が決定し公開された。この塩基配列に基づいてＲＴ－ＰＣＲによるＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２の検出方法が開発された（非特許文献１他）。
　しかしながら、これらの検出方法は短期間で開発されたため、中には検出精度に問題があるものも存在する。例えばアメリカ疾病予防管理センター（ＣＤＣ）で開発された検査キットには一部に不具合があることがアナウンスされている（非特許文献２参照）。また、感染の急速な拡大により必要な検査件数も膨大な数に上っている。そのため、より迅速で精度の高いＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２の検出方法が求められている。
感染研：病原体検出マニュアル　２０１９－ｎＣｏＶ　Ｖｅｒ．２．７（令和２年２月２５日版）インターネット＜ＵＲＬ：https://www.niid.go.jp/niid/images/lab-manual/2019-nCoV20200225.pdf＞ ＣＤＣ　Ｔｅｓｔｓ　ｆｏｒ　ＣＯＶＩＤ－１９　令和２年２月１８日検索、インターネット＜ＵＲＬ：https://www.cdc.gov/coronavirus/2019-ncov/about/testing.html＞
　本発明は、ＣＯＶＩＤ－１９の診断のために、その病原ウイルスであるＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２を高感度に検出することを目的とする。
　本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意研究を行った結果、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２に特異的な塩基配列と選択的にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドプライマーを作製し、ＬＡＭＰ法によりＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２に特異的な塩基配列を増幅することで、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２を高感度に検出できることを見出し、本発明を完成した。
　すなわち、本発明は以下の構成からなる。
［１］ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルスをＬＡＭＰ法により増幅して検出するためのプライマーセットであって、前記プライマーセットは、以下の（ａ）～（ｂ）の領域から設計される少なくとも一つからなるプライマーセット。
（ａ）配列番号１の２８９７６塩基から２９２１１塩基までの領域
（ｂ）配列番号１の１５３９４塩基から１５５９５塩基までの領域
［２］ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルスをＬＡＭＰ法により増幅して検出するためのプライマーセットであって、前記プライマーセットは、以下の（ａ１）～（ｂ１）の群から選択される少なくとも一つを含むプライマーセット。
（ａ１）配列番号２からなるＦ３プライマー、配列番号３からなるＢ３プライマー、配列番号４からなるＦＩＰプライマー、及び配列番号５からなるＢＩＰプライマーからなるプライマーセット。
（ｂ１）配列番号８からなるＦ３プライマー、配列番号９からなるＢ３プライマー、配列番号１０からなるＦＩＰプライマー、及び配列番号１１からなるＢＩＰプライマーからなるプライマーセット。
［３］ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルスをＬＡＭＰ法により増幅して検出するためのプライマーセットであって、前記プライマーセットは、以下の（ａ２）～（ｂ２）の群から選択される少なくとも一つを含むプライマーセット。
（ａ２）［１］に記載の（ａ１）のプライマーセットに加えて、配列番号６からなるＬＦプライマー、配列番号７からなるＬＢプライマー。
（ｂ２）［１］に記載の（ｂ１）のプライマーセットに加えて、配列番号１２からなるＬＦプライマー、配列番号１３からなるＬＢプライマー。
［４］［１］～［３］のいずれかに記載のプライマーセットを用いてＬＡＭＰ法により増幅反応を行うことを特徴とするＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルスの検出方法。
［５］［１］～［３］のいずれかに記載のプライマーセットを用いて、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルスの標的核酸領域の増幅を検出することにより、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルス感染の有無を検査することを特徴とするＣＯＶＩＤ－１９の検査方法。
［６］ＣＯＶＩＤ－１９の診断方法において、［１］～［３］のいずれかに記載のプライマーセットを含むことを特徴とするキット。
［７］ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルスをＬＡＭＰ法により増幅して検出するためのプライマーセットであって、前記プライマーセットは、以下の（ｃ）～（ｄ）の領域から設計される少なくとも一つからなるプライマーセット。
（ｃ）配列番号１の２６７６７塩基から２６９７７塩基までの領域
（ｄ）配列番号１の２４６６０塩基から２４９１６塩基までの領域
［８］ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルスをＬＡＭＰ法により増幅して検出するためのプライマーセットであって、前記プライマーセットは、以下の（ｃ１）～（ｄ１）の群から選択される少なくとも一つを含むプライマーセット。
（ｃ１）配列番号１４からなるＦ３プライマー、配列番号１５からなるＢ３プライマー、配列番号１６からなるＦＩＰプライマー、及び配列番号１７からなるＢＩＰプライマーからなるプライマーセット。
（ｄ１）配列番号２１からなるＦ３プライマー、配列番号２２からなるＢ３プライマー、配列番号２３からなるＢ４プライマー、配列番号２４からなるＦＩＰプライマー、及び配列番号２５からなるＢＩＰプライマーからなるプライマーセット。
［９］ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルスをＬＡＭＰ法により増幅して検出するためのプライマーセットであって、前記プライマーセットは、以下の（ｃ２）～（ｄ２）の群から選択される少なくとも一つを含むプライマーセット。
（ｃ２）配列番号１４からなるＦ３プライマー、配列番号１５からなるＢ３プライマー、配列番号１６からなるＦＩＰプライマー、配列番号１７からなるＢＩＰプライマー、配列番号１８からなるＬＦプライマー、及び配列番号１９からなるＬＢプライマーからなるプライマーセット。
（ｄ２）配列番号２１からなるＦ３プライマー、配列番号２２からなるＢ３プライマー、配列番号２３からなるＢ４プライマー、配列番号２４からなるＦＩＰプライマー、配列番号２５からなるＢＩＰプライマー、配列番号２６からなるＬＦプライマー、及び配列番号２７からなるＬＢプライマーからなるプライマーセット。
［１０］［７］～［９］のいずれかに記載のプライマーセット及び蛍光標識プローブを含む、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルスをＬＡＭＰ法により増幅して検出するためのキット。
［１１］プライマーセットが（ｃ１）又は（ｃ２）のプライマーセットであり、蛍光標識プローブが配列番号２０からなるプローブである、［１０］に記載のキット。
［１２］プライマーセットが（ｄ１）又は（ｄ２）のプライマーセットであり、蛍光標識プローブが配列番号２８からなるプローブである、［１０］に記載のキット。
［１３］ＣＯＶＩＤ－１９を検査するための、［１０］～［１２］のいずれかに記載のキット。
［１４］［７］～［９］のいずれかに記載のプライマーセット又は［１０］～［１３］のいずれかに記載のキットを用いて、ＬＡＭＰ法により増幅反応を行うことを特徴とするＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルスの検出方法。
［１５］［７］～［７］のいずれかに記載のプライマーセット又は［１０］～［１３］のいずれかに記載のキットを用いて、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルスの標的核酸領域の増幅を検出することにより、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルス感染の有無を検査することを特徴とするＣＯＶＩＤ－１９の検査方法。
　本発明によれば、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２に特異的な塩基配列と選択的にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドプライマーを作製し、ＬＡＭＰ法によりＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２に特異的な塩基配列を増幅することで、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２を高感度かつ迅速に検出することができる。
　本発明において使用される試料としては、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルス感染を疑われる人間あるいは他の動物由来の検体、例えば喀痰、気管支肺胞洗浄液、鼻汁、鼻腔吸引液、鼻腔洗浄液、鼻腔拭い液、咽頭拭い液、うがい液、唾液、血液、血清、血漿、髄液、尿、糞便、組織などが挙げられる。また、感染実験などに用いられた細胞やその培養液、あるいは生体由来の検体や培養細胞などから分離したウイルスを含む検体なども試料となりうる。これらの試料は分離、抽出、濃縮、精製などの前処理を行ってもよい。
　試料に含まれる核酸の増幅は、納富らが開発した、ＰＣＲ法で不可欠とされる温度制御が不要な核酸増幅法：ＬＡＭＰ（Ｌｏｏｐ－ｍｅｄｉａｔｅｄ　Ｉｓｏｔｈｅｒｍａｌ　Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ）法と呼ばれるループ媒介等温増幅法（国際公開第００／２８０８２号）で達成される。この方法は、鋳型となるヌクレオチドに自身の３’末端をアニールさせて相補鎖合成の起点とするとともに、このとき形成されるループにアニールするプライマーを組み合わせることにより、等温での相補鎖合成反応を可能とした核酸増幅法である。また、ＬＡＭＰ法では、プライマーの３’末端が常に試料に由来する領域に対してアニールするために、塩基配列の相補的結合によるチェック機構が繰り返し機能するため、その結果として、高感度にかつ特異性の高い核酸増幅反応を可能としている。
　ＬＡＭＰ法で使用されるオリゴヌクレオチドプライマーは、鋳型核酸の塩基配列の計６領域、すなわち３’末端側からＦ３ｃ、Ｆ２ｃ、Ｆ１ｃという領域と、５’末端側からＢ３、Ｂ２、Ｂ１という領域の塩基配列を認識する少なくとも４種類のプライマーであって、各々フォワードインナープライマー及びバックワードインナープライマーとフォワードアウタープライマー及びバックワードアウタープライマーと呼ぶ。また、Ｆ１ｃ、Ｆ２ｃ、Ｆ３ｃの相補配列をそれぞれＦ１、Ｆ２、Ｆ３、またＢ１、Ｂ２、Ｂ３の相補鎖をＢ１ｃ、Ｂ２ｃ、Ｂ３ｃと呼ぶ。インナープライマーとは、標的塩基配列上の「ある特定のヌクレオチド配列領域」を認識し、かつ合成起点を与える塩基配列を３’末端に有し、同時にこのプライマーを起点とする核酸合成反応生成物の任意の領域に対して相補的な塩基配列を５’末端に有するオリゴヌクレオチドである。ここで、「Ｆ２より選ばれた塩基配列」及び「Ｆ１ｃより選ばれた塩基配列」を含むプライマーをフォワードインナープライマー（以下ＦＩＰプライマー）、そして「Ｂ２より選ばれた塩基配列」と「Ｂ１ｃより選ばれた塩基配列」を含むプライマーをバックワードインナープライマー（以下ＢＩＰプライマー）と呼ぶ。一方、アウタープライマーとは、標的塩基配列上の『「ある特定のヌクレオチド配列領域」の３’末端側に存在するある特定のヌクレオチド配列領域』を認識かつ合成起点を与える塩基配列を有するオリゴヌクレオチドである。ここで、「Ｆ３より選ばれた塩基配列」を含むプライマーをフォワードアウタープライマー（以下Ｆ３プライマー）、「Ｂ３より選ばれた塩基配列」を含むプライマーをバックワードアウタープライマー（以下Ｂ３プライマー）と呼ぶ。ここで、各プライマーにおけるＦとは、標的塩基配列のセンス鎖と相補的に結合し、合成起点を提供するプライマー表示であり、一方Ｂとは、標的塩基配列のアンチセンス鎖と相補的に結合し、合成起点を提供するプライマー表示である。ここで、プライマーとして用いられるオリゴヌクレオチドの長さは、１０塩基以上、好ましくは１５塩基以上で、化学合成あるいは天然のどちらでも良く、各プライマーは単一のオリゴヌクレオチドであってもよく、複数のオリゴヌクレオチドの混合物であってもよい。
　ＬＡＭＰ法においては、インナープライマーとアウタープライマーに加え、さらにこれとは別のプライマー、すなわちループプライマーを用いる事ができる。ループプライマー（Ｌｏｏｐ　Ｐｒｉｍｅｒ）は、ダンベル構造の５’末端側のループ構造の一本鎖部分の塩基配列に相補的な塩基配列を持つプライマーである。このプライマーを用いると、核酸合成の起点が増加し、反応時間の短縮と検出感度の上昇が可能となる（特許文献国際公開第０２／０２４９０２号パンフレット）。ループプライマーの塩基配列は上述のダンベル構造の５’末端側のループ構造の一本鎖部分の塩基配列に相補的であれば、標的遺伝子の塩基配列あるいはその相補鎖から選ばれても良く、他の塩基配列でもよい。また、ループプライマーは１種類でも２種類でも良く、本明細書中ではフォワードループプライマー（以下ＬＦ）とバックワードループプライマー（以下ＬＢ）と呼ぶ。
　１本鎖ＲＮＡウイルスの遺伝子をＬＡＭＰ法により増幅して検出する場合には、さらにアウタープライマーを追加することにより増幅反応初期段階の逆転写反応の効率を高めることができる。ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２はプラス鎖型１本鎖ＲＮＡウイルスであることから、Ｂ３プライマーの下流側にアウタープライマー（Ｂ４プライマー）を追加すればよい。
　ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２はＲＮＡウイルスである。ＬＡＭＰ法は鋳型がＲＮＡの場合には、鋳型がＤＮＡの場合の反応液に逆転写酵素を添加する事で、同様に核酸増幅反応を進めることができる（ＲＴ－ＬＡＭＰ法）。
　本発明者らはＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２に特異的な塩基配列を迅速に増幅できるＬＡＭＰ法のプライマーの塩基配列とその組み合わせを鋭意研究した結果、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２の塩基配列（配列番号１）のＮ遺伝子領域とＲＮＡ依存性ＲＮＡポリメラーゼ（ＲｄＲＰ）遺伝子領域から、プライマーセットを設計した。すなわち、本発明は、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２の塩基配列（配列番号１）のＮ遺伝子領域（配列番号１の２８９７６塩基から２９２１１塩基までの領域）とＲＮＡ依存性ＲＮＡポリメラーゼ（ＲｄＲＰ）遺伝子領域（配列番号１の１５３９４塩基から１５５９５塩基までの領域）から設計される少なくとも一つからなるプライマーセットである。本発明はＦ３、Ｂ３、ＦＩＰ、及びＢＩＰからなるプライマーセットであって、として次のａ、ｂの２組から選択される少なくとも一つを含むプライマーセットを設計したである。加えて、本発明は、ＬＦプライマー及びＬＢプライマーであって、次のａ、ｂの２組から選択される少なくとも一つを含むプライマーセットである。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　また、本発明者らはＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２に特異的な塩基配列を迅速に増幅できるＬＡＭＰ法のプライマーの塩基配列とその組み合わせを鋭意研究した結果、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２の塩基配列（配列番号１）のＭ遺伝子領域とＳ遺伝子領域から、プライマーセットを設計した。すなわち、本発明は、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２の塩基配列（配列番号１）のＭ遺伝子領域（配列番号１の２６７６７塩基から２６９７７塩基までの領域）とＳ遺伝子領域（配列番号１の２４６６０塩基から２４９１６塩基までの領域）から設計される少なくとも一つからなるプライマーセットである。本発明はＦ３、Ｂ３（又はＢ３及びＢ４）、ＦＩＰ、及びＢＩＰからなるプライマーセットであって、次のｃ、ｄの２組から選択される少なくとも一つを含むプライマーセットである。加えて、本発明は、ＬＦプライマー及びＬＢプライマーであって、次のｃ、ｄの２組から選択される少なくとも一つを含むプライマーセットである。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
　さらに、本発明は、上記プライマーセットｃ又はｄ及び蛍光標識プローブを含むキットである。プライマーセットｃのプローブは配列番号２０からなるプローブであり、プライマーセットｄのプローブは配列番号２８からなるプローブである。これらのプローブは３’末端のシトシン塩基がＢＯＤＩＰＹ（登録商標）ＦＬ色素で蛍光標識されている。これらのプローブはＱプローブである。すなわち、プローブが標的核酸と結合すると標的核酸のグアニン塩基と蛍光色素が近接し、グアニン塩基の消光作用により、蛍光色素の蛍光強度が減少する。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　本発明のＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルスの検出方法は、本発明のプライマーセットを用いてＬＡＭＰ法により増幅反応を行う方法である。
　核酸合成で使用する酵素は、鎖置換活性を有する鋳型依存性核酸合成酵素であれば特に限定されない。このような酵素としては、Ｂｓｔ　ＤＮＡポリメラーゼ（ラージフラグメント）、Ｂｃａ（ｅｘｏ－）ＤＮＡポリメラーゼ、大腸菌ＤＮＡ　ポリメラーゼＩのクレノウフラグメント等が挙げられ、好ましくはＢｓｔ　ＤＮＡポリメラーゼ（ラージフラグメント）が挙げられる。
　ＲＴ－ＬＡＭＰ法に用いる逆転写酵素としては、ＲＮＡを鋳型としてＤＮＡを合成する活性を有する酵素であれば特に限定されない。このような酵素としては、ＡＭＶ、Ｃｌｏｎｅｄ　ＡＭＶ　、ＭＭＬＶの逆転写酵素、ＳｕｐｅｒｓｃｒｉｐｔＩＩ、ＲｅｖｅｒＴｒａＡｃｅ、Ｔｈｅｒｍｏｓｃｒｉｐｔ等が挙げられ、好ましくは、ＡＭＶあるいはＣｌｏｎｅｄ　ＡＭＶ逆転写酵素が挙げられる。またＢｃａ　ＤＮＡポリメラーゼのように、逆転写酵素活性とＤＮＡポリメラーゼ活性の両活性を有する酵素を用いると、ＲＴ－ＬＡＭＰ反応を１つの酵素で行う事ができる。
　核酸合成で使用する酵素や逆転写酵素は、ウイルスや細菌などから精製されたものでも良く、遺伝子組み換え技術によって作製されたものでもよい。またこれらの酵素はフラグメント化やアミノ酸の置換などの改変をされたものでもよい。
　本発明のＣＯＶＩＤ－１９の検査方法は、本発明のプライマーセットを用いて、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルスの標的核酸領域の増幅を検出することにより、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルス感染の有無を検査する方法である。ＬＡＭＰ反応後の核酸増幅産物の検出には公知の技術が適用できる。例えば、増幅された塩基配列を特異的に認識する標識オリゴヌクレオチドや蛍光性インターカレーター法（特開２００１－２４２１６９号公報）を用いる方法や、あるいは反応終了後の反応液をそのままアガロースゲル電気泳動にかけても容易に検出できる。アガロースゲル電気泳動では、ＬＡＭＰ増幅産物は、塩基長の異なる多数のバンドがラダー（はしご）状に検出される。また、ＬＡＭＰ法では、核酸の合成反応により副産物である不溶性のピロリン酸マグネシウムが生成するため、反応液が肉眼でも確認できる程に白濁する。この白濁を、光学的に測定することにより、核酸増幅反応を検出することも可能である（国際公開第０１／８３８１７号）。さらに、反応液に金属指示薬であるカルセインを添加して、増幅反応の進行に伴う金属イオン濃度の変化を蛍光の変化として検出することもできる（特開２００４－２８３１６１号公報）。
　ＣＯＶＩＤ－１９の診断方法において、本発明のプライマーセットは、核酸増幅の検出を行う際に必要な各種の試薬類とともに、あらかじめパッケージングしてキット化する事ができる。具体的には、本発明のプライマーやループプライマーとして必要な各種のオリゴヌクレオチド、核酸合成の基質となる４種類のｄＮＴＰ、核酸合成を行うＤＮＡポリメラーゼ、逆転写酵素、酵素反応に好適な条件を与える緩衝液や塩類、酵素や鋳型を安定化する保護剤、さらに必要に応じて反応生成物の検出に必要な試薬類がキットとして提供される。
　以下に実施例を挙げて本発明を具体的に説明するが、本発明はこれらにより何ら限定されるものではない。
実施例１．プライマーセットａ及びｂの検出感度の確認
　ＬＡＭＰ法による検出感度の確認を行った。
１．試料及び試薬の調製
１）試料（転写ＲＮＡ）
　ＲＮＡ鋳型は、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２遺伝子からＲＴ－ＰＣＲにより作製したｃＤＮＡをプラスミドに組み込み、該プラスミドＤＮＡからＲＮＡを転写及び精製することにより作製した。転写には、Ｓｃｒｉｐｔ　Ｍａｘ（登録商標）Ｔｈｅｒｍｏ　Ｔ７　Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ　Ｋｉｔ（東洋紡株式会社製、コード番号：ＴＳＫ－１０１）を用い、ＲＮＡ精製にはＲＮｅａｓｙ（登録商標）Ｍｉｎｉ　Ｋｉｔ（キアゲン社製、カタログ番号：Ｎｏ．７４１０４）を用いた。精製したＲＮＡから１μＬあたり１０コピーから１０３コピーまでの希釈液を調製して試料溶液とした。またＹｅａｓｔ　ＲＮＡ溶液を０コピーの試料溶液（Ｎｅｇａｔｉｖｅ　Ｃｏｎｔｒｏｌ）とした。
２）ＬＡＭＰ法に用いる試薬組成及び濃度
　０．２ｍＬの試薬チューブに、次の組成を有するＬＡＭＰ反応試薬２５μＬを調製した。プライマーは、表１に示すプライマーセットａまたはｂを用いた。
　　　２０ｍＭ　　トリシン（ｐＨ８．６）、
　　　３０ｍＭ　　ＫＣｌ、
　　　８ｍＭ　　　ＭｇＳＯ４、
　　　１．４ｍＭ　ｄＮＴＰｓ、
　　　０．５％　　Ｔｗｅｅｎ２０、
　　　１．６ｍＭ　ＤＴＴ、
　　　１．６μＭ　ＦＩＰプライマー及びＢＩＰプライマー、
　　　０．２μＭ　Ｆ３プライマー及びＢ３プライマー、
　　　０．８μＭ　ループプライマーＦ（ＬＦ）及びループプライマーＢ（ＬＢ）、
　　　ＡＭＶ　Ｒｅｖｅｒｓｅ　Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔａｓｅ　１．０Ｕ（２０Ｕ／μＬ、Ｒｏｃｈｅ社製）、
　　　Ｂｓｔ　ＤＮＡｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ　２２．８Ｕ（Ｎｅｗ　Ｅｎｇｌａｎｄ　Ｂｉｏｌａｂｓ社製）、
　　　ＲＮａｓｅ阻害剤（４０Ｕ／μＬ、プロメガ社製）１μＬ、
　　　ＲＮＡ鋳型（１００コピー）５μＬ、
２．核酸増幅法による反応
１）ＬＡＭＰ法による反応
　１．の２）で調製したＬＡＭＰ反応試薬に、標的配列０または１０～１０３コピーを含む試料溶液１μＬを加え、最終反応溶液２５μＬとした。測定にはリアルタイム濁度測定装置　ＬｏｏｐａｍｐＥＸＩＡ（登録商標）を用い、反応条件は６３℃、６０分とした。
３．測定結果
　各プライマーセットでの測定結果を表４に示す。Ｎ遺伝子を検出対象にしたプライマーセットａでは１０コピーまで、ＲｄＲＰ遺伝子を検出対象にしたプライマーセットｂでは５０コピーまで検出できることがわかった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
実施例２．ゲノムＲＮＡを鋳型とした場合の検出感度
　感染研から分与されたウイルスゲノムＲＮＡを用いて検出感度の検討を行った。併せてＰＣＲも実施して検出感度の比較を行った
１．試料及び試薬の調製
１）試料（ゲノムＲＮＡ）
　感染研から分与されたＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２のゲノムＲＮＡを１μＬあたり５０コピーから１．６×１０３コピーまでの希釈液を調製して試料溶液とした。
２）ＬＡＭＰ法に用いる試薬組成及び濃度
　　実施例１と同様に反応試薬を調製した。プライマーセットはＮ遺伝子を検出対象にしたプライマーセットａを使用した。
３）ＰＣＲに用いる試薬組成及び濃度
　感染研の「病原体検出マニュアル　２０１９－ｎＣｏＶ　Ｖｅｒ．２．７」に則ってＮ遺伝子を検出対象とするプライマーと増幅試薬を調製した。
２．核酸増幅法による反応
１）ＬＡＭＰ法による反応
　実施例１と同様にリアルタイム濁度測定装置　ＬｏｏｐａｍｐＥＸＩＡ（登録商標）で６３℃、６０分間増幅反応を実施した。
２）ＰＣＲによる反応
　感染研の「病原体検出マニュアル　２０１９－ｎＣｏＶ　Ｖｅｒ．２．７」に則って、ＴａｑＭａｎプローブを用いたＲＴ－ＰＣＲ法を実施した。
３．測定結果
　各方法での測定結果を表５に示す。どちらの増幅方法も５０コピーまでのゲノムＲＮＡを検出できたが、ＬＡＭＰ法の方がＰＣＲよりも短時間で検出することができた。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
実施例３．プライマーセットｃ及びｄの検出感度の確認
　ＬＡＭＰ法による検出感度の確認を行った。
１．試料及び試薬の調製
１）試料（転写ＲＮＡ）
　Ｍ領域及びＳ領域の配列をそれぞれ組み込んだ人工遺伝子を合成し、その転写ＲＮＡを鋳型とした。人工遺伝子の合成はＥｕｒｏｆｉｎｓ社に委託した。人工遺伝子の配列を配列番号２９（Ｍ領域検出用人工遺伝子）及び３０（Ｓ領域検出用人工遺伝子）に示す。
２）ＬＡＭＰ法に用いる試薬組成及び濃度
　次の組成を有するＬＡＭＰ反応試薬を調製した。
ＬＡＭＰ反応試薬：
２０ｍＭ　　トリシン（ｐＨ８．６）、
３０ｍＭ　　ＫＣｌ、
０．１％　　Ｔｗｅｅｎ２０、
１．４ｍＭ　ｄＮＴＰｓ、
８ｍＭ　　　ＭｇＳＯ４、
１．６ｍＭ　ＤＴＴ、
ＰＰａｓｅ　２０ｍＵ
Ｂｓｔ　ＤＮＡｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ　２５Ｕ、
ＲＮａｓｅ阻害剤　１．０Ｕ、
ＡＭＶ　Ｒｅｖｅｒｓｅ　Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔａｓｅ　１．０Ｕ
　この反応試薬に、プライマーセットｃ又はｄ、プライマーセットに対応する蛍光標識プローブ、ＳＹＴＯＴＭ　６３　Ｒｅｄ　Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ　Ｎｕｃｌｅｉｃ　Ａｃｉｄ　Ｓｔａｉｎを添加し、１５μＬ／ｔｅｓｔとなるように精製水（ＤＷ）で調製したマスターミックス（ＭＭ）を用い、そこにＤＷ５μＬ、鋳型５μＬの計２５μＬで１反応とした。反応試薬は氷上にて調製した。
マスターミックス（１反応あたりの量）：
ＬＡＭＰ反応試薬　　１２．５μＬ
５μＭ　ＳＹＴＯ　　　０．５μＬ
１０μＭ　プローブ　　０．１μＬ
プライマーセット　　適量
ＤＷ　　　　　　　　合計１５μＬ
１反応の量：
マスターミックス　１５μＬ
ＤＷ　　　　　　　　５μＬ
ＲＮＡ鋳型　　　　　５μＬ
２．核酸増幅法による反応
１）ＬＡＭＰ法による反応
　測定は、リアルタイム定量ＰＣＲシステムＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒ（登録商標）９６（Ｒｏｃｈｅ社製）を用い、反応温度６３℃にて評価した。
３．測定結果
　各プライマーセットでの測定結果を表６に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
　１５分以内に検出可能な最小検出感度は、いずれのプライマーセットを用いた系でも２５コピー／テストであった。
実施例２．ＳＡＲＳウイルスとの交差性の確認
　GGGenome(https://gggenome.dbcls.jp/ja/)にて、呼吸器関連菌や病原微生物３８種（Human coronavirus 229E, Human coronavirus OC43, Human coronavirus HKU1, Human coronavirus NL63, SARS-coronavirus, SARS-coronavirus-2, MERS-coronavirus, Adenovirus, Human Metapneumovirus, Parainfluenza virus 1-4, Influenza A, Influenza B, Enterovirus, Respiratory syncytial virus, Rhinovirus, Chlamydia pneumonia, Haemophilus influenzae, Legionella pneumophila, Mycobacterium tuberculosis, Streptococus pneumonia, Streptococcus pyrogenes, Bordetella pertussis, Mycoplasma pneumoniae, Pneumocystis jirovecii (PJP), Influenza C, Parechovirus, Candida albicans, Corynebacterium diphtheriae, Legionella non-pneumophila, Bacillus anthracosis (Anthrax), Moraxella cararrhalis, Neisseria elongate and miningitidis, Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus epidermis, Staphylococcus salivarius, Leptospirosis, Chlamydia psittaci, Coxiella burneti (Q‐Fever), Streptococcus aureus）との交差性を、Ｍ領域及びＳ領域のそれぞれについて、ｉｎ　ｓｉｌｉｃｏにて確認した。
　結果、プローブ設計領域のミスマッチが５塩基以内かつＦ１，Ｆ２，Ｂ１，Ｂ２プライマー設計領域のミスマッチがそれぞれ３塩基以内かつそれらがＬＡＭＰ反応する位置となっていたのは、ＳＡＲＳ－Ｃｏｒｏｎａｖｉｒｕｓ（ＳＡＲＳウイルス）のＭ領域のみであった。そこで、ＳＡＲＳウイルスとの交差反応性を確認した。
　ＳＡＲＳウイルスの鋳型は、領域別に相同性の高いＳＡＲＳウイルス（ＧｅｎＢａｎｋ　ＮＣ００４７１８．３）の配列を組み込んだ人工遺伝子の転写ＲＮＡを用いた（合成依頼先：Ｅｕｒｏｆｉｎｓ社）。鋳型量は１．０×１０７コピー／テストとした。
　各プライマーセットでの測定結果を表７に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
　両検出系でＳＡＲＳウイルスとの交差反応は見られなかった。また、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２とＳＡＲＳウイルスに共感染した場合を想定し、ＳＡＲＳウイルスの転写ＲＮＡ　１．０×１０６コピー／テストとＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２の転写ＲＮＡ　２５又は１０００コピー／テストを混合した試験も行った。
　各プライマーセットでの測定結果を表８に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000008
　混合試験においても、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２の検出が可能であった。

Claims (15)

  1. 　ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルスをＬＡＭＰ法により増幅して検出するためのプライマーセットであって、前記プライマーセットは、以下の（ａ）～（ｂ）の領域から設計される少なくとも一つからなるプライマーセット。
    （ａ）配列番号１の２８９７６塩基から２９２１１塩基までの領域
    （ｂ）配列番号１の１５３９４塩基から１５５９５塩基までの領域
  2. 　ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルスをＬＡＭＰ法により増幅して検出するためのプライマーセットであって、前記プライマーセットは、以下の（ａ１）～（ｂ１）の群から選択される少なくとも一つを含むプライマーセット。
    （ａ１）配列番号２からなるＦ３プライマー、配列番号３からなるＢ３プライマー、配列番号４からなるＦＩＰプライマー、及び配列番号５からなるＢＩＰプライマーからなるプライマーセット。
    （ｂ１）配列番号８からなるＦ３プライマー、配列番号９からなるＢ３プライマー、配列番号１０からなるＦＩＰプライマー、及び配列番号１１からなるＢＩＰプライマーからなるプライマーセット。
  3. 　ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルスをＬＡＭＰ法により増幅して検出するためのプライマーセットであって、前記プライマーセットは、以下の（ａ２）～（ｂ２）の群から選択される少なくとも一つを含むプライマーセット。
    （ａ２）請求項２に記載の（ａ１）のプライマーセットに加えて、配列番号６からなるＬＦプライマー、配列番号７からなるＬＢプライマー。
    （ｂ２）請求項２に記載の（ｂ１）のプライマーセットに加えて、配列番号１２からなるＬＦプライマー、配列番号１３からなるＬＢプライマー。
  4. 　請求項１～３のいずれか１項に記載のプライマーセットを用いてＬＡＭＰ法により増幅反応を行うことを特徴とするＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルスの検出方法。
  5. 　請求項１～３のいずれか１項に記載のプライマーセットを用いて、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルスの標的核酸領域の増幅を検出することにより、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルス感染の有無を検査することを特徴とするＣＯＶＩＤ－１９の検査方法。
  6. 　請求項１～３のいずれか１項に記載のプライマーセットを含むことを特徴とするＣＯＶＩＤ－１９を検査するためのキット。
  7. 　ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルスをＬＡＭＰ法により増幅して検出するためのプライマーセットであって、前記プライマーセットは、以下の（ｃ）～（ｄ）の領域から設計される少なくとも一つからなるプライマーセット。
    （ｃ）配列番号１の２６７６７塩基から２６９７７塩基までの領域
    （ｄ）配列番号１の２４６６０塩基から２４９１６塩基までの領域
  8. 　ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルスをＬＡＭＰ法により増幅して検出するためのプライマーセットであって、前記プライマーセットは、以下の（ｃ１）～（ｄ１）の群から選択される少なくとも一つを含むプライマーセット。
    （ｃ１）配列番号１４からなるＦ３プライマー、配列番号１５からなるＢ３プライマー、配列番号１６からなるＦＩＰプライマー、及び配列番号１７からなるＢＩＰプライマーからなるプライマーセット。
    （ｄ１）配列番号２１からなるＦ３プライマー、配列番号２２からなるＢ３プライマー、配列番号２３からなるＢ４プライマー、配列番号２４からなるＦＩＰプライマー、及び配列番号２５からなるＢＩＰプライマーからなるプライマーセット。
  9. 　ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルスをＬＡＭＰ法により増幅して検出するためのプライマーセットであって、前記プライマーセットは、以下の（ｃ２）～（ｄ２）の群から選択される少なくとも一つを含むプライマーセット。
    （ｃ２）配列番号１４からなるＦ３プライマー、配列番号１５からなるＢ３プライマー、配列番号１６からなるＦＩＰプライマー、配列番号１７からなるＢＩＰプライマー、配列番号１８からなるＬＦプライマー、及び配列番号１９からなるＬＢプライマーからなるプライマーセット。
    （ｄ２）配列番号２１からなるＦ３プライマー、配列番号２２からなるＢ３プライマー、配列番号２３からなるＢ４プライマー、配列番号２４からなるＦＩＰプライマー、配列番号２５からなるＢＩＰプライマー、配列番号２６からなるＬＦプライマー、及び配列番号２７からなるＬＢプライマーからなるプライマーセット。
  10. 　請求項７～９のいずれか一項に記載のプライマーセット及び蛍光標識プローブを含む、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルスをＬＡＭＰ法により増幅して検出するためのキット。
  11. 　プライマーセットが（ｃ１）又は（ｃ２）のプライマーセットであり、蛍光標識プローブが配列番号２０からなるプローブである、請求項１０に記載のキット。
  12. 　プライマーセットが（ｄ１）又は（ｄ２）のプライマーセットであり、蛍光標識プローブが配列番号２８からなるプローブである、請求項１０に記載のキット。
  13. 　ＣＯＶＩＤ－１９を検査するための、請求項１０～１２のいずれか一項に記載のキット。
  14. 　請求項７～９のいずれか一項に記載のプライマーセット又は請求項１０～１３のいずれか一項に記載のキットを用いて、ＬＡＭＰ法により増幅反応を行うことを特徴とするＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルスの検出方法。
  15. 　請求項７～９のいずれか一項に記載のプライマーセット又は請求項１０～１３のいずれか一項に記載のキットを用いて、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルスの標的核酸領域の増幅を検出することにより、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルス感染の有無を検査することを特徴とするＣＯＶＩＤ－１９の検査方法。
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