WO2021241729A1 - 抗ｃｄ７３抗体およびその用途 - Google Patents

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雄二 三嶋
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    • G01N33/5047—Cells of the immune system
    • G01N33/505—Cells of the immune system involving T-cells

Definitions

  • the present invention relates to an antibody having cytotoxic activity specifically for a cancer expressing the CD73 antigen, and a composition and method for cancer treatment and cancer testing containing the antibody.
  • CD73 is an enzyme that catalyzes the reaction that decomposes AMP into adenosine in vivo, and is known to be expressed on the cell surface of cancer cells, inhibitory T cells (Treg cells), and vascular endothelial cells. It is known that the adenosine produced by CD73 on these cells is released into the microenvironment, binds to the adenosine receptor on immune cells, and induces exhaustion of immune cells.
  • CD73 antigen is highly expressed in multiple carcinomas, and that cases with high expression of the CD73 antigen have a poor prognosis. It is thought that this is because the increase in adenosine in the microenvironment around the cancer cells suppresses antitumor immunity, and the released adenosine promotes the suppression of immune activity by Treg cells. Has been done.
  • An object of the present invention is to develop an antibody having higher function targeting the CD73 antigen, more specifically, an antibody for cancer treatment having higher activity.
  • the present invention is an antibody that activates T cells that are binding to the CD73 antigen and are damaging to cancer cells, including heavy and light chain complementarity determining regions having a specific amino acid sequence.
  • a human antibody derivative e.g., he found a human antibody derivative and showed that the above problems could be solved.
  • it is a monoclonal antibody that specifically binds to the CD73 antigen and has the following functions.
  • the reaction of CD73 to degrade AMP to adenosine is performed with the same sequence as the published variable region of MEDI9447. It has a stronger inhibitory effect than the antibody it has; -Releases adenosine-induced T cell exhaustion and activates T cells.
  • [1] (1) Heavy chain complementarity determining regions, CDR1 (DX 1 NMD (X 1 is C or S), SEQ ID No .: 1), CDR2 (DINPNNGGTIYNQKFKG, SEQ ID No .: 2), and CDR3 (TNWDYAMDY, SEQ ID No .: 3) and light chain complementarity determining regions, CDR1 (KASQDINSX 2 LS (X 2 is N, D or Q), SEQ ID No .: 4), CDR2 (RANRLID, SEQ) ID No .: 5), and CDR3 (X 3 QYDVFPRT (X 3 is L or Q), SEQ ID No .: 6); (2) Heavy chain complementarity determining regions, CDR1 (SFGMH, SEQ ID No .: 9), CDR2 (YISSGSRTIYYADTVRG, SEQ ID No .: 10), and CDR3 (DF
  • CDR1 (RASESVDNYGISFMN, SEQ ID No .: 12), CDR2 (AASNQGS, SEQ ID No .: 13), and CDR3 (QQSKEVPWT, SEQ ID No .: 14); (3) Heavy chain complementarity determining regions, CDR1 (GYWMN, SEQ ID No .: 17), CDR2 (RIDPYDSETHYSQKFKD, SEQ ID No .: 18), and CDR3 (SSPITTAPFDY, SEQ ID No .: 19), and light Chain complementarity determining regions, CDR1 (RASESVDYYGFSFMN, SEQ ID No .: 20), CDR2 (AASTQGS, SEQ ID No .: 21), and CDR3 (QQSKEVPYT, SEQ ID No .: 22); (4) Heavy chain complementarity determining regions, CDR1 (SYGVS, SEQ ID No .: 25), CDR2 (VIWGDG
  • Antibodies or human antibody derivatives [3]: The human antibody derivative is selected from a human antibody variant selected from humanized antibodies, chimeric antibodies, polyvalent antibodies, and multispecific antibodies or functional fragments thereof, [1] or [ 2] The antibody or human antibody derivative described in [2]; [4]: The antibody or human antibody derivative according to any one of [1] to [3], wherein the functional fragment is F (ab') 2.
  • the amino acid sequence of the heavy chain variable region VH domain of the antibody or human antibody derivative is (1) SEQ ID No .: 7, (2) SEQ ID No .: 15, (3) SEQ ID No .: 23, (4) SEQ ID No .: 31, (5) SEQ ID No .: 39, (6) SEQ ID No .: 47, (7) SEQ ID No .: 55, and (8) SEQ ID No.
  • the antibody or human antibody derivative according to any one of [1] to [4] selected from 63; [6]: The amino acid sequence of the light chain variable region VL domain of the antibody or human antibody derivative is (1) SEQ ID No .: 8, (2) SEQ ID No .: 16, (3) SEQ ID No .: 24, (4) SEQ ID No .: 32, (5) SEQ ID No .: 40, (6) SEQ ID No .: 48, (7) SEQ ID No .: 56, and (8) SEQ ID No.
  • Process Methods for measuring cytotoxicity against cancer cells, including [13]: To measure whether the cell viability of cancer cells is reduced or whether immune cells derived from peripheral blood lymphocytes are activated in the presence of peripheral blood lymphocytes of the same subject, [13]. 12] The method for measuring cytotoxicity against cancer cells; [14]: The antibody or human antibody derivative according to any one of [1] to [9] is used from the viewpoint of in vitro AMP metabolism suppression or cytotoxicity of cancer cells collected from a subject.
  • the antibody or human antibody derivative obtained by the present invention activates immune cells by suppressing the function of CD73 expressed in cancer cells or immune cells and releasing the exhaustion of immune cells (particularly T cells). , Tumor growth inhibitory effect and cancer treatment effect.
  • the present invention can be widely used as a therapeutic / diagnostic agent for cancer. Since the antibody according to the present invention has an effect of relieving the exhaustion of immune cells, it is expected to be particularly effective in combination therapy with other immunotherapies.
  • FIG. 1 is a diagram showing the AMP degradation inhibitory function (H322 cells) of the 002_m antibody prepared in Example 1.
  • FIG. 2 is a diagram showing amino acid sequences of the heavy chain variable region and the light chain variable region of the 002_m antibody.
  • FIG. 3 is a diagram showing the binding properties of the obtained chimeric antibodies 002_1_c to 002_6_c to human lung cancer cell line H322 cells expressing CD73.
  • FIG. 4 is a diagram showing the AMP degradation inhibitory function of human lung cancer H322 cells for the 002_1_c antibody to 002_6_c antibody.
  • FIG. 1 is a diagram showing the AMP degradation inhibitory function (H322 cells) of the 002_m antibody prepared in Example 1.
  • FIG. 2 is a diagram showing amino acid sequences of the heavy chain variable region and the light chain variable region of the 002_m antibody.
  • FIG. 3 is a diagram showing the binding properties of the obtained chimeric antibodies
  • FIG. 5-1 is a diagram showing the amino acid sequence of the heavy chain variable region of the obtained humanized antibody (002_6_h1 to 002_6_h8) of 002_6_c.
  • FIG. 5-2 is a diagram showing the amino acid sequence of the light chain variable region of the obtained humanized antibody (002_6_h1 to 002_6_h8) of 002_6_c.
  • FIG. 6-1 is a diagram showing the binding property of humanized antibodies (002_6_h1 to 002_6_h8) to human lung cancer cell line H322 cells expressing CD73.
  • FIG. 6-2 is a diagram showing the binding property of humanized antibodies (002_6_h1 to 002_6_h8) to human lung cancer cell line H322 cells expressing CD73.
  • FIG. 7 is a diagram showing the AMP degradation inhibitory function of three types of humanized antibodies (002_6_h2, 002_6_h4, 002_6_h8) using human lung cancer H322 cells.
  • FIG. 8-1 is a diagram showing the binding property of the humanized antibody 002_6_h4 to various cells in comparison with the existing antibody and the base chimeric antibody 002_6_c.
  • FIG. 8-2 is a diagram showing the binding property of the humanized antibody 002_6_h4 to various cells in comparison with the existing antibody and the base chimeric antibody 002_6_c.
  • FIG. 8-1 is a diagram showing the binding property of the humanized antibody 002_6_h4 to various cells in comparison with the existing antibody and the base chimeric antibody 002_6_c.
  • FIG. 9 is a diagram showing the AMP degradation inhibitory function of humanized antibody 002_6_h4 using human breast cancer MDA-MB-231 cells as compared with the existing antibody and the base chimeric antibody 002_6_c.
  • FIG. 10 is a diagram showing the AMP degradation inhibitory function of 002_6_h4 on the recombinant CD73 antigen.
  • FIG. 11 is a diagram showing the effect of 002_6_h4 on the division (proliferation) of human peripheral blood T cells.
  • FIG. 12 is a diagram showing the AMP degradation inhibitory function (H322 cells) of the 003_m antibody to 009_m antibody prepared in Example 1.
  • FIG. 13 is a diagram showing the AMP degradation inhibitory function (MDA-MB-231 cells) of the four antibodies (004_m, 006_m, 007_m, 008_m) judged to have high functionality in FIG.
  • FIG. 14-1 is a diagram showing the amino acid sequence of the heavy chain variable region of the obtained antibody (003_m antibody to 009_m antibody).
  • FIG. 14-2 is a diagram showing the amino acid sequence of the light chain variable region of the obtained antibody (003_m antibody to 009_m antibody).
  • FIG. 15 is a diagram showing the binding property of the 003_m antibody to 009_m antibody to the target expressing cells (H322 cells).
  • FIG. 16 is a diagram showing the binding property of the 003_m antibody to 009_m antibody to the target expressing cells (MDA-MB-231 cells).
  • FIG. 17 is a diagram showing the binding property of the 003_m antibody to 009_m antibody to the target expressing cells (CD73 forced expression HEK-293T cells).
  • FIG. 18 is a diagram showing the results of comparing the proportions of dividing cells when the antibody concentration was 1 nM.
  • FIG. 19 is a diagram showing the binding activity of an antibody to cells expressing the human CD73 gene.
  • FIG. 20-1 is a diagram showing the antibody binding activity to cells expressing the human CD73 gene.
  • FIG. 20-2 is a diagram showing the antibody binding activity to cells expressing the human CD73 gene.
  • FIG. 21 is a diagram showing the antibody binding activity to cells expressing cynomolgus monkey CD73.
  • FIG. 22 is a diagram showing that the antibody of the present invention has an inhibitory activity against the AMP degradation action of CD73 on the cell surface.
  • FIG. 23 is a diagram showing that the antibody of the present invention has a division-promoting effect on CD4T cells and CD8T cells, and has an effect of enhancing the production ability of IFN ⁇ , TNF, and IL-2 from these cells. be.
  • FIG. 24 is a diagram showing a fluorescence microscope image showing the intracellular uptake of the 002_6_h4 antibody and the 006_hKB antibody.
  • FIG. 25 is a diagram showing that the antibody of the present invention bound to CD73 on the surface of T cells decreases with time (internalized in T cells) when these cells are cultured.
  • FIG. 26 is a diagram showing that the antibody of the present invention bound to CD73 on the surface of cancer cells decreases with time (internalized in cancer cells) when these cells are cultured.
  • FIG. 27 is a diagram showing the results of measuring the number of tumor-infiltrating T cells in a mouse on day 35 after administration of 002_6_h4 antibody or isotype control antibody.
  • FIG. 28-1 is a diagram showing whether the developed antibody of the present invention enhances the cancer cell injury activity by T cells.
  • FIG. 28-1 is a diagram showing whether the developed antibody of the present invention enhances the cancer cell injury activity by T cells.
  • FIG. 28-2 is a diagram showing whether the developed antibody of the present invention enhances the cancer cell injury activity by T cells.
  • FIG. 29 is a diagram showing the results of animal experiments on whether 002_6_h4 can enhance the antitumor effect of the human immune system simulated in mice.
  • FIG. 30 is a diagram showing the result of volume change of a tumor mass in an immunodeficient mouse body.
  • FIG. 31 is a diagram confirming the antitumor effect of the anti-CD73 antibody of the present invention in a knock-in mouse expressing human CD73.
  • the present invention in one embodiment, is a binding agent to a CD73 antigen, particularly an antibody, that activates T cells that are binding to the CD73 antigen on cancer cells or immune cells and are damaging to the cancer cells.
  • a human antibody derivative can be provided.
  • the binding agent of the present invention particularly an antibody or a human antibody derivative, can be used to shrink or eliminate a tumor because it inhibits the growth of cancer cells for the treatment of cancer cells expressing the CD73 antigen. It can also be used to activate T cells that are injurious to cancer cells when they are exhausted.
  • the present invention provides an antibody or human antibody derivative that has binding to the CD73 antigen.
  • This antibody or human antibody derivative is characterized by activating T cells that are damaging to cancer cells.
  • the antibody or human antibody derivative of the present invention suppresses the function of CD73 expressed in cancer cells and causes exhaustion of immune cells (particularly T cells) caused by accumulation of AMP metabolite (adenosine) around the cancer cells. By releasing it, it activates immune cells and exerts tumor growth inhibitory effect and cancer therapeutic effect, suppresses the function of CD73 expressed in immune cells (particularly T cells), activates immune cells, and activates immune cells. It may be a tumor growth inhibitory effect and a cancer therapeutic effect, a cancer therapeutic effect by controlling the environment around the tumor other than immune cells, or a cancer therapeutic effect by direct control on the tumor.
  • the antibody may be derived from any animal species of mammals, and the species of origin of the antibody is not limited to humans, and mice, rats, guinea pigs, hamsters, etc. It may be a rabbit or the like.
  • the present invention may also be a human antibody derivative of the above-mentioned antibody as long as it has a binding property to the CD73 antigen and has a functional feature of suppressing cancer.
  • a human antibody derivative in the present invention as one embodiment, the amino acid sequences of the CDRs at six positions of the above antibody (heavy chain complementarity determining regions (CDRs) 1 to CDR3 and light chain CDR1 to CDR3), and a human antibody. It is possible to provide a derivative of an antibody characterized by having the amino acid sequences of the constant regions of origin and the other amino acid sequences being a combination of the original antibody-derived amino acid sequence and the human antibody-derived amino acid sequence. can.
  • a humanized antibody in which a region other than the complementarity determination region (CDR) of the above-mentioned "antibody” is replaced with an amino acid sequence derived from a human antibody, or a variable region of the above antibody is a constant of a human antibody.
  • CDR complementarity determination region
  • a variable region of the above antibody is a constant of a human antibody.
  • chimeric antibodies such as those linked to a region, multivalent antibodies in which one type of antibody has multiple antigen binding sites, and multispecific antibodies (bispecific antibodies) in which one type of antibody has multiple specificities.
  • bispecific antibodies multispecific antibodies
  • the antibody or human antibody derivative of the present invention is characterized by having a total of 6 amino acid sequences of CDR1 to 3 of the same heavy chain and CDR1 to 3 of the light chain, which are the same as the antibody having binding property to the CD73 antigen. It is something that can be done.
  • amino acid sequences of 6 CDRs of an antibody having binding to such a CD73 antigen include the following (1) to (8) :.
  • CDR1 Heavy chain complementarity determining regions, CDR1 (DX 1 NMD (X 1 is C or S), SEQ ID No .: 1), CDR2 (DINPNNGGTIYNQKFKG, SEQ ID No .: 2), and CDR3 (TNWDYAMDY, SEQ ID No .: 3), and light chain complementarity determining regions, CDR1 (KASQDINSX 2 LS (X 2 is N, D or Q), SEQ ID No .: 4), CDR2 (RANRLID, SEQ ID No .:) 5), and CDR3 (X 3 QYDVFPRT (X 3 is L or Q), SEQ ID No .: 6); (2) Heavy chain complementarity determining regions, CDR1 (SFGMH, SEQ ID No .: 9), CDR2 (YISSGSRTIYYADTVRG, SEQ ID No .: 10), and CDR3 (DFGSSSPNYFDY, SEQ ID No .: 11), and light.
  • CDR1 (RASESVDNYGISFMN, SEQ ID No .: 12), CDR2 (AASNQGS, SEQ ID No .: 13), and CDR3 (QQSKEVPWT, SEQ ID No .: 14); (3) Heavy chain complementarity determining regions, CDR1 (GYWMN, SEQ ID No .: 17), CDR2 (RIDPYDSETHYSQKFKD, SEQ ID No .: 18), and CDR3 (SSPITTAPFDY, SEQ ID No .: 19), and light Chain complementarity determining regions, CDR1 (RASESVDYYGFSFMN, SEQ ID No .: 20), CDR2 (AASTQGS, SEQ ID No .: 21), and CDR3 (QQSKEVPYT, SEQ ID No .: 22); (4) Heavy chain complementarity determining regions, CDR1 (SYGVS, SEQ ID No .: 25), CDR2 (VIWGDG
  • the antibody or human antibody derivative of the present invention is also characterized by having the ability to activate T cells.
  • T cells by suppressing the function of CD73 expressed in cancer cells or immune cells and releasing the exhaustion of immune cells (particularly T cells), immune cells are activated, and cancer growth inhibitory effect and cancer therapeutic effect are achieved. It is preferable to exert it.
  • Such activation of T cells may occur in vitro or in vivo. Whether or not it has the ability to activate T cells that are damaging to such cancer cells is screened for whether or not they actually activate T cells from among the antibodies that have binding to the CD73 antigen. Can be obtained by doing.
  • the exhaustion of immune cells refers to a state in which immune cells have become dysfunctional. Specifically, it causes a decrease in cytokine secretion ability and cytotoxicity in T cells, a decrease in cytokine secretion ability and cytotoxicity in NK cells, a decrease in antigen presentation ability of dendritic cells, activation of regulatory T cells, etc. be.
  • an individual's cancer immunity to cancer cells does not function or functions poorly, and the activity to eliminate cancer cells decreases.
  • Such exhaustion of immune cells is caused by the increase of checkpoint proteins such as PD-1 and CTLA-4 on the surface of T cells, and the cancer cells that continue to proliferate force the immune system to activate for a long period of time. It is known that it occurs in effector T cells, but it is a reversible state, and it is thought that it is possible to eliminate the exhausted state by activating the same cells.
  • the activation of T cells can be grasped by using the proliferation of T cells, the increase in cytotoxicity of T cells against cancer cells, the secretion of cytokines from T cells, and the like as indicators. If these T cells are activated, it indicates that the antibody of the present invention or the human antibody derivative inhibits the activity of CD73 in T cells and suppresses the reaction of degrading AMP to adenosine. ..
  • In vivo screening involves transplanting target cancer cells into an animal such as a wild-type mouse or a mouse in which immune cells are transplanted into an immunodeficient mouse such as a nude mouse or a SCID mouse, and then using the antibody of the present invention or a human.
  • Infiltration of T cells around the tumor mass in the body by measuring the change in the size of the tumor mass in the body when the type antibody derivative is administered, or when the antibody of the present invention or the human type antibody derivative is administered. Can be done by anatomically examining.
  • In vitro screening involves contacting peripheral blood T cells with the antibody or humanoid antibody derivative of the invention under culture conditions to measure T cell proliferation, T cell cytokine secretion, or This can be done by investigating whether T cells cause cell death against cancer cells.
  • the antibody or human antibody derivative of the present invention can be specified as having the amino acid sequence of the following heavy chain variable region VH domain: (1) 002_m heavy chain variable region (SEQ ID No .: 7), (2) 003_m heavy chain variable region (SEQ ID No .: 15), (3) 004_m heavy chain variable region (SEQ ID No .: 23), (4) 005_m heavy chain variable region (SEQ ID No.
  • the numbers (1) to (8) correspond to the numbers of the combination of the sequences of the heavy chain CDR1 to CDR3 described above.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 7 is a sequence including the amino acid sequences of the heavy chains CDR1 to CDR3 specified by SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 3.
  • the antibody or human antibody derivative of the present invention can be identified as having the amino acid sequence of the following light chain variable region VL domain: (1) 002_m light chain variable region (SEQ ID No .: 8), (2) 003_m light chain variable region (SEQ ID No .: 16), (3) 004_m light chain variable region (SEQ ID No .: 24), (4) 005_m light chain variable region (SEQ ID No. : 32), (5) 006_m light chain variable region (SEQ ID No .: 40), (6) 007_m light chain variable region (SEQ ID No .: 48), (7) 008_m light chain variable region (SEQ ID No.
  • the numbers (1) to (8) correspond to the numbers of the combination of the sequences of the light chain CDR1 to CDR3 described above.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 8 is a sequence including the amino acid sequences of light chain CDR1 to CDR3 specified by SEQ ID NO: 4 to SEQ ID NO: 6.
  • the human antibody derivative of the present invention also includes the above-mentioned antibody or a functional fragment of the human antibody derivative.
  • Functional fragments of the antibody or human antibody derivative in the present invention include F (ab') 2, Fab', Fab, single chain Fv (scFv) and the like.
  • the functional fragment of the present invention may be any fragment thereof as long as it can induce injury to cancer cells, for example, F (ab') 2 fragment and the like. , Can be used as such a functional fragment.
  • the antibody or human antibody derivative of the present invention is obtained by administering the CD73 antigen as an immunogen to an animal of the above-mentioned derived species and culturing antibody-producing cells collected from the animal body.
  • a vector for protein expression containing a DNA sequence capable of defining the amino acid sequence of an antibody or human antibody derivative is designed, and the vector is introduced into cells for protein production and obtained recombinantly. You may.
  • the DNA sequence capable of defining the amino acid sequence of the antibody or human antibody derivative of the present invention can be obtained from a cell producing the target antibody or human antibody derivative, depending on the animal species used in the expression system based on the amino acid sequence. It can be made by a method of designing based on optimized codons or a method of using a combination of these methods.
  • the prepared DNA sequence is obtained by incorporating it into an expression vector suitable for a protein expression cell type (for example, CHO cell) in which the antibody or human antibody derivative is to be expressed and introducing it into the protein expression cell type. It can be obtained by using a method well known to those skilled in the art.
  • a protein expression cell type for example, CHO cell
  • introducing it into the protein expression cell type it can be obtained by using a method well known to those skilled in the art.
  • a vector containing a DNA sequence defining a heavy chain amino acid sequence and a DNA defining a light chain amino acid sequence are used for a protein expression cell type.
  • a method of introducing a vector containing a sequence and expressing both proteins in the cell to produce an antibody in the cell, or a DNA sequence defining a heavy chain amino acid sequence and a DNA sequence defining a light chain amino acid sequence It can be prepared by a method of introducing a vector containing both of them and expressing both proteins in the cells to produce an antibody in the cells.
  • human antibody derivative obtained as one embodiment in the present invention
  • a human antibody derivative is prepared from the above-mentioned antibody (1).
  • Antibodies containing the 002_6_h2 heavy chain variable region (SEQ ID NO: 67) and the 002_6_h2 light chain variable region SEQ ID NO: 68).
  • the antibody or human-type antibody derivative of the present invention is based on the above-mentioned characteristic of having the ability to activate immune cells (particularly T cells) having cytotoxicity against cancer cells.
  • a pharmaceutical composition comprising an antibody of the invention or a human antibody derivative that activates immune cells (particularly T cells) that are damaging to cancer cells in a subject in need of treatment or prevention of cancer. Goods, can be provided.
  • Cancer cells that can be targeted in the present invention include, for example, leukemia (including chronic lymphocytic leukemia and acute lymphocytic leukemia), lymphoma (non-hodgkin lymphoma, hodgkin lymphoma, T-cell line lymphoma, B-cell line lymphoma, etc.).
  • leukemia including chronic lymphocytic leukemia and acute lymphocytic leukemia
  • lymphoma non-hodgkin lymphoma, hodgkin lymphoma, T-cell line lymphoma, B-cell line lymphoma, etc.
  • Berkit lymphoma malignant lymphoma, diffuse lymphoma, follicular lymphoma), myeloma (including multiple myeloma), melanoma, lung cancer, breast cancer, colon cancer, kidney cancer, stomach cancer, ovarian cancer, pancreas Cancer, cervical cancer, uterine body cancer, endometrial cancer, esophageal cancer, liver cancer, head and neck cancer, head and neck squamous epithelial cancer, skin cancer, urinary tract cancer, prostate Lymphoma, pharyngeal cancer, laryngeal cancer, lymphoma, male embryoma, endometrial hyperplasia, endometriosis, germoma, fibrosarcoma, caposic sarcoma, hemangiomas, spongy hemangiomas, Hemangioblastoma, retinal blastoma, stellate cell tumor, neurofibromas, rare projectile cystoma, medullary blastom
  • the antibody or human antibody derivative of the present invention is characterized by activating immune cells (particularly T cells) having cytotoxicity against target cancer cells as described above. That is, when administered to a living body, activation of immune cells (particularly T cells) occurs only in immune cells having cytotoxicity against cancer cells expressing the target CD73 antigen, and expresses the CD73 antigen. However, in the case of normal cells, it is required not to induce cytotoxicity that may cause clinical problems.
  • the antibody or human antibody derivative of the present invention can also be provided as a composition in combination with other antibodies or other agents such as anticancer agents.
  • the antibody or human antibody derivative of the present invention can also be bound to a drug to form an antibody drug conjugate (ADC).
  • ADC antibody drug conjugate
  • a preparation containing the antibody or human type antibody derivative of the present invention together with a physiologically acceptable diluent or carrier.
  • suitable carriers include buffers (phosphate buffer, citric acid buffer, acetate buffer, etc.), salts (sodium chloride, etc.), sugars (glucose, trehalose, mannitol, sorbitol, etc.), additives (arginine, etc.). Amino acids, surfactants such as polysorbates, etc.), but are not limited to these.
  • the antibody or human antibody derivative of the present invention can be freeze-dried and reconstituted and used by adding a buffered aqueous solution as described above when necessary.
  • the preparation containing the antibody of the present invention or the human antibody derivative can be administered in various dosage forms, and can be, for example, a parenteral administration agent such as an injection or an infusion.
  • the dose of the antibody or humanoid antibody derivative of the present invention varies depending on symptoms, age, body weight, etc., but usually, in parenteral administration, 0.01 mg to 1000 mg per kg body weight, preferably 0.05 per kg body weight per day.
  • Intraperitoneal injection subcutaneous injection in the range of mg to 500 mg, 0.05 mg to 100 mg, 0.05 mg to 50 mg, 0.05 mg to 20 mg, more preferably 0.1 mg to 10 mg per kg of body weight per day.
  • Intramuscular injection, intratumor injection, or intravenous injection which can be administered by the appropriate route of administration depending on the type of cancer.
  • the present invention requires treatment or prevention of cancer in another embodiment.
  • a method of treating or preventing cancer in a subject comprising administering to the subject an effective amount of an antibody or humanoid antibody derivative of the invention.
  • Treatment or prevention of cancer with the antibody or human antibody derivative of the present invention is that the antibody or human antibody derivative activates immune cells (particularly T cells) having cytotoxicity against cancer cells in the body. Caused by.
  • an adjuvant for example, Clin. Microbiol
  • Particles that can be administered with (such as those described in Rev., 7: 277-289, 1994), liposome formulations, particulate formulations bound to beads with a diameter of several ⁇ m, lipid-bound formulations, etc. It can also be administered in the form of a formulation.
  • the antibodies or human-type antibody derivatives of the present invention are used to detect the CD73 antigen in a sample due to the characteristic of having binding property to the CD73 antigen.
  • the antibody or human antibody derivative of the present invention can be used for a sample containing cancer cells or immune cells (for example, T cells) collected from a subject, such as an immunoprecipitation method, an aggregation reaction, and a magnetic bead method.
  • a sample containing cancer cells or immune cells (for example, T cells) collected from a subject such as an immunoprecipitation method, an aggregation reaction, and a magnetic bead method.
  • the antibody or human antibody derivative of the present invention is also based on the feature that it has a binding property to the CD73 antigen and activates immune cells (particularly T cells) having damage to cancer cells.
  • a method for measuring the cytotoxicity to cancer cells in such a subject the following steps: A step of contacting a cancer cell collected from a subject with an antibody of the present invention or a human antibody derivative under culture conditions (that is, in vitro).
  • the step of measuring whether the AMP metabolism of cancer cells (the reaction that decomposes AMP into adenosine) is reduced, the step of measuring whether the cell viability is reduced, or the secretion of immunostimulatory substances. Steps to measure whether or not
  • a method for measuring cytotoxicity against cancer cells using the antibody of the present invention or a human antibody derivative including the above can be mentioned.
  • AMP metabolism reaction that decomposes AMP to adenosine
  • T cells are activated and tumors shrink, and cancer against cancer cells is known. It is believed that immunity is activated.
  • cancer cells collected from a subject are brought into contact with the antibody of the present invention or a human antibody derivative in vitro, and the cancer cells are subjected to culture conditions. By measuring whether or not AMP metabolism is reduced, cytotoxicity to cancer cells can be measured.
  • cancer cells collected from a subject are brought into contact with the antibody of the present invention or a human antibody derivative, and the degradation reaction from AMP to adenosine is measured under culture conditions (that is, in vitro). Therefore, when the antibody of the present invention or the human antibody derivative is administered to the subject, the cytotoxicity to the cancer cells in the subject (in vivo) can be measured.
  • the decomposition reaction from AMP to adenosine can be measured by HPLC method, LC-MS method, ELISA method, or AMP-dependent chemiluminescence method (Cell titer glo, etc.).
  • peripheral blood lymphocytes cause a decrease in the cell survival rate of cancer cells.
  • cancer cells collected from a subject are brought into contact with the antibody of the present invention or a human antibody derivative in vitro, and the cell viability is increased under culture conditions.
  • the cytotoxicity to cancer cells can be measured. More specifically, cancer cells collected from a subject are brought into contact with the antibody or human antibody derivative of the present invention in the presence of peripheral blood lymphocytes of the same subject under culture conditions (ie, in. Cancer in vivo when the antibody or human antibody derivative of the present invention is administered to the subject by measuring whether the cell viability of the cancer cells is reduced in vivo). The cytotoxicity to cells can be measured.
  • cancer cells are activated and tumors shrink when the secretion of immunostimulatory substances from peripheral blood lymphocytes is enhanced in the living body, and cancer immunity against cancer cells is known. Is believed to be activated.
  • cancer cells collected from a subject are brought into contact with the antibody of the present invention or a human antibody derivative in vitro, and under culture conditions, an immunostimulatory substance. Cytotoxicity to cancer cells can be measured by measuring whether or not the secretion of the antibody is enhanced. More specifically, cancer cells collected from a subject are brought into contact with the antibody of the present invention or a human antibody derivative in the presence of peripheral blood lymphocytes of the same subject under culture conditions (that is, in vitro).
  • IFN- ⁇ , TNF ⁇ and the like can be mentioned as examples as the immunostimulatory substance to be measured for determining the cytotoxicity to cancer cells.
  • IFN ⁇ is known to activate immune cells such as NK cells and exert an antitumor effect.
  • the invention also comprises AMP metabolism, cytotoxicity, secretion of immunostimulatory substances, or activation of immune cells to cancer cells harvested from a subject, including the antibodies of the invention or humanoid antibody derivatives. Measurement kits for measurement in vitro can also be provided.
  • the measurement kit for measuring AMP metabolism includes a reagent for measuring AMP as a substrate and adenosine, which is a metabolite thereof (AMP-dependent chemiluminescent reagent). , ELISA reagents) and equipment (HPLC system, LC-MS system).
  • the measurement kit for measuring cytotoxicity includes known means for measuring cell proliferation (for example, uptake of thymidin, uptake of BrdU, free release). Measurement of lactate dehydrogenase (LDH) activity, measurement of living cell-derived substances (reducing enzyme activity, esterase activity, ATP, etc.) can be included.
  • LDH lactate dehydrogenase
  • the measurement kit for measuring the secretion of the immunostimulatory substance includes means for detecting the immunostimulatory substance to be measured (for example, primary for the immunostimulatory substance).
  • Antibodies and secondary antibodies for the detection of the primary antibody, etc. can be included.
  • the measurement kit for measuring the activation of immune cells can include, in addition to the antibody or human antibody derivative of the present invention, a labeling reagent for measuring the division of immune cells with a flow cytometer.
  • Example 1 Preparation of antibody The purpose of this example was to obtain a monoclonal antibody against the CD73 antigen using mice.
  • a single cell suspension of spleen cells was prepared from the spleen according to a known method, and B cells were purified using a MACS-pan B cell isolation kit (Miltenny 130-104-443). Purified B cells were stained with ZOMBIE-APC-Cy7 (Biolegend), Alexa488anti-IgM (Biolegend), VB421anti-IgG (Biolegend), PE-CD73 (self-prepared product) and tested on FACSAria (BD). , IgG-positive and CD73 antigen-binding cell populations were separated into 96-well plates one by one.
  • the genes corresponding to the heavy chain variable region and the light chain variable region of the antibody were amplified for each well by the RT-PCR method.
  • As the primer used for amplification based on the information in the publicly known literature, a sequence containing the 5'end and 3'end regions of the heavy chain variable region and the light chain variable region, respectively, was adopted, and the diversity of the antibody gene sequence was taken into consideration. (Heavy chain: H1 mix and H2 mix, light chain: k mix) (Lotta von Boehmer et al., Nature Protocols, vol 11, p.1908-1923 (2016)) ..
  • a linker sequence for insertion into the antibody expression vector is added to the end of each gene by a PCR reaction, and a vector for heavy chain expression or a vector for light chain expression (vector for heavy chain expression or light chain expression).
  • a CMV promoter, a secretory signal, a gene for a heavy chain variable region or a light chain variable region, and a gene for a heavy chain constant region or a light chain constant region were tandemly linked to each other) by a ligation reaction.
  • the heavy chain gene expression plasmid (derived from H1 or H2 mixed amplification product) and the light chain gene expression plasmid (derived from k mix amplification product) are transferred to CHO cells. I did an expression. Antibodies produced in the culture supernatant were collected from CHO cells, and the antigen specificity of each antibody was confirmed by antigen-fixed ELISA.
  • ATP Sigma, A2383, final concentration 100 ⁇ M
  • CellTiterGlo Promega, G9243
  • chemiluminescence was measured using a microplate reader. That is, using the principle that AMP inhibits chemiluminescence due to the reaction between ATP and CellTiterGlo, the enzyme activity inhibitory effect of the antibody was evaluated from the amount of residual AMP.
  • an antibody having the same sequence as the published variable region of MEDI9447 was produced using the gene recombination technology based on the sequence published in the advanced development product MEDI9447 (Special Table 2018-501197). "Benchmark antibody”) was adopted.
  • mouse antibodies As a result of antibody function screening, eight types of mouse antibodies named 002_m, 003_m, 004_m, 005_m, 006_m, 007_m, 008_m, 009_m could be selected as CD73-binding activity-positive antibodies.
  • Example 2 Antibody function evaluation (concentration-dependent evaluation) The purpose of this example was to evaluate the function of the 002_m antibody obtained in Example 1.
  • the antibody function evaluation was carried out by the same method as the antibody function screening described in Example 1 (1-3). That is, human lung cancer cell line H322 cells or human breast cancer cell line MDA-MB-231 cells (ATCC® HTB-26 TM ) were used as cells.
  • the antibody concentration dependence of the AMP decomposition inhibitory function was analyzed by measuring the AMP decomposition reaction in the same manner as in Example 1 (1-3), and the IC50 value (50% inhibition concentration: CD73 in this case). The concentration of the antibody that can inhibit 50% of the enzyme function of the antibody) was calculated, and the function of the antibody was quantitatively evaluated.
  • Figure 1 shows the AMP degradation inhibitory function (H322 cells) of the 002_m antibody prepared in Example 1. Although this antibody is a mouse antibody, it was revealed that it shows an IC50 value close to that of the benchmark antibody (see Table 1).
  • Example 3 Antibody gene sequence analysis This example was performed for the purpose of determining the amino acid sequence of the 002_m antibody obtained in Example 1.
  • the obtained plasmid DNA was analyzed for the gene sequences defining the heavy chain variable region and the light chain variable region by the Sanger sequence, and the amino acid sequence was determined based on the same sequence.
  • the amino acid sequences of the heavy chain variable region and the light chain variable region of the 002_m antibody are shown in FIG. 2 (SEQ ID NO: 7 and SEQ ID NO: 8 respectively). Further, in this figure, the heavy chains CDR1, CDR2, CDR3 (SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3, respectively) and the light chains CDR1, CDR2, CDR3 (SEQ ID NO, respectively). : 4, SEQ ID NO: 5, SEQ ID NO: 6) are underlined.
  • Example 4 Preparation of human-mouse human chimeric antibody The purpose of this example is to prepare a chimeric antibody having a variable region of a mouse antibody and a constant region of a human antibody for the 002_m antibody sequenced in Example 3. rice field.
  • the gene sequence of the variable region of the mouse antibody was artificially synthesized and incorporated into a vector for expressing a human constant region (Fc) chimeric recombinant antibody.
  • a light chain expression element EF-1 ⁇ promoter, a secretory signal, a DNA sequence defining a light chain variable region, and a DNA sequence defining a light chain constant region are linked in tandem
  • a heavy chain expression element EF
  • a plasmid having a -1 ⁇ promoter, a secretory signal, a DNA sequence defining a heavy chain variable region, and a DNA sequence defining a heavy chain constant region was tandemly linked) was constructed.
  • the plasmid was transfected into ExpiCHO cells (Thermo) to secrete the antibody into the medium, and then the antibody was purified using a Protein A column (GL Science).
  • the chimeric antibody thus prepared was defined as 002_1_c antibody.
  • the amino acid sequence of the heavy chain variable region of this antibody is composed of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 7
  • the amino acid sequence of the light chain variable region is composed of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 8.
  • Example 5 Preparation of CDR-modified antibody
  • a modified antibody is prepared by substituting a residue that may undergo post-translational modification in CDR with an unmodified residue for the 002_m antibody. I went there for the purpose.
  • the 002_m antibody heavy chain variable region (SEQ ID NO: 7) 32nd amino acid cysteine (C) is used as serine (S), and the 002_m antibody light chain variable region (SEQ ID NO: 8) 32nd amino acid asparagine (SEQ ID NO: 8) N) was replaced with aspartic acid (D) or glutamine (Q), respectively (see Table 2 below).
  • a gene containing the relevant region was artificially synthesized and inserted into a human Fc chimeric recombinant antibody expression vector by ligation. Antibody expression and purification were carried out in the same manner as for human chimeric antibodies.
  • Binding analysis of each of the obtained chimeric antibodies 002_1_c to 002_6_c to target-expressing cells was performed by FACS analysis using CD73 native-expressing cells (human lung cancer cell line H322). After reacting the test antibody or the isotype control antibody with the cells, the antibody was stained with a fluorescently labeled secondary antibody and subjected to flow cytometric analysis, and the antibody binding property was evaluated based on the obtained fluorescence intensity.
  • Example 6 Preparation of humanized antibody
  • a humanized antibody was prepared based on the 002_6_c antibody (SEQ ID NO: 7 (C32S) / SEQ ID NO: 8 (N32Q)) selected in Example 5. I went for the purpose of doing.
  • the humanized antibody was prepared using the public software Tabhu (http://circe.med.uniroma1.it/tabhu/). Using the same software, we extracted from a human antibody database that has sequences that are similar in sequence and conformation to 002_6_c, picked up 4 types of sequences (FJ039788, AF146404, 3SQO_H, AY686911) as candidate sequences, and selected these. The sequences other than the CDR regions of the antibody and the sequences of the CDR regions of 002_6_c were graphed.
  • amino acid residues to be backmutated were selected up to 10 amino acid residues in each sequence based on the large structural difference between the humanized antibody and the mouse antibody (higher TubHu score).
  • the method described in the non-patent document Bioinformatics. 2015 Feb 1; 31 (3): 434-5 was followed.
  • Fig. 5 The amino acid sequences of the variable regions of the obtained 002_6_c humanized antibodies (002_6_h1 to 002_6_h8) are shown in Fig. 5 (heavy chain variable region is shown in Fig. 5-1 and light chain variable region is shown in Fig. 5-2). Each amino acid sequence was assigned SEQ ID NO: as shown in Table 4 below.
  • Binding analysis of each of the obtained humanized antibodies (002_6_h1 to 002_6_h8) to target-expressing cells was performed by FACS analysis using CD73 native-expressing cells (human lung cancer cell line H322). The results are shown in FIG. It was confirmed that all humanized antibodies showed the same binding properties as the base chimeric antibody 002_6_c antibody.
  • the humanized antibody 002_6_h4 selected as the lead antibody above was compared with existing antibodies (commercially available anti-CD73 antibody (biolegend), benchmark antibody) and the base chimeric antibody 002_6_c, and the binding property to various cells was measured by flow cytometry. confirmed.
  • CD73 native-expressing cells human breast cancer cell line MDA-MB-231
  • human breast cancer cell line MDA-MB-231 cells expressing CD73 antigen
  • HEK293T wild type not expressing CD73 antigen FACS analysis was performed using cells (derived from human fetal kidney cells) and cells in which CD73 antigen was forcibly expressed in HEK293T cells.
  • CD73 forced expression cells were generated using the lentiviral vector system (Origene).
  • Lentivirus particles carrying the human CD73 gene (NM_002526) and puromycin resistance gene are prepared, infected with HEK293T cells, and then the cells are cultured in the presence of puromycin, and the target gene is integrated into the genome to be CD73 positive.
  • HEK293T cells were collected and used for binding analysis. After reacting the test antibody or the isotype control antibody with the cells, the antibody was stained with a fluorescently labeled secondary antibody and subjected to flow cytometric analysis, and the antibody binding property was evaluated based on the obtained fluorescence intensity.
  • the humanized antibody 002_6_h4 was compared with the existing antibody (commercially available anti-CD73 antibody (biolegend), benchmark antibody) and the base chimeric antibody 002_6_c, and the same method as in (1-3) was used for human breast cancer MDA-MB-.
  • An antibody function screening was performed to measure the AMP degradation inhibitory function using 231 cells. The results are shown in FIG. From this result, the IC50 value of the humanized antibody against the AMP degradation inhibitory function using human breast cancer MDA-MB-231 cells was calculated as shown in Table 6 below. Together with the results, it was shown that the humanized antibody 002_6_h4 has an AMP degradation inhibitory function in multiple cancer types, similar to the chimeric antibody 002_6_c.
  • Example 7 Suppressive function against recombinant antigen The purpose of this example was to confirm the enzymatic reaction inhibitory function of the anti-CD73 antibody obtained in Example 6 against the recombinant CD73 antigen.
  • the CD73 antigen (terminal His-Tag, self-prepared product) was immobilized on a 96-well plate for ELISA via an anti-His-Tag antibody, and the humanized anti-CD73 antibody 002_6_h4 and the substrate AMP (final concentration 100 ⁇ M) were used.
  • the humanized anti-CD73 antibody 002_6_h4 and the substrate AMP (final concentration 100 ⁇ M) were used.
  • ATP final concentration 100 ⁇ M
  • CellTiterGlo Promega, G9243
  • chemiluminescence was measured using a microplate reader.
  • AMP enzyme activity inhibitory effect of the antibody was evaluated from the amount of residual AMP.
  • the same experiment was performed using a benchmark antibody as a positive control.
  • Figure 10 shows the AMP degradation inhibitory function of 002_6_h4 for the recombinant CD73 antigen. As a result, it was suggested that 002_6_h4 showed an AMP degradation inhibitory function against the recombinant CD73 antigen and directly inhibited the enzyme.
  • Example 8 Evaluation of effect on T cell division This example was performed for the purpose of confirming the proliferation promoting activity of the anti-CD73 antibody obtained in Example 6 on human peripheral blood T cells.
  • PBMC peripheral blood mononuclear cells
  • CD4 + T Cell Isolation Kit human (Miltenyi Biotech, 130-096-533) was used to purify CD4 positive T cells, and CellTrace CFSE cell proliferation kit (ThermoFisher Scientific, #) Cells were fluorescently labeled with C34554).
  • Figure 11 shows the effect of 002_6_h4 on the division (proliferation) of human peripheral blood T cells.
  • the proportion of divided T cells increased in an antibody concentration-dependent manner, indicating that the anti-CD73 antibody had the effect of promoting T cell division.
  • Example 9 Evaluation of antibody function (concentration-dependent evaluation) The purpose of this example is to evaluate the functions of antibodies other than the 002_m antibody obtained in Example 1 (that is, 003_m antibody, 004_m antibody, 005_m antibody, 006_m antibody, 007_m antibody, 008_m antibody, 009_m antibody). went.
  • the antibody function evaluation was carried out by the same method as the antibody function screening described in Example 1 (1-3). That is, human lung cancer cell line H322 cells or human breast cancer cell line MDA-MB-231 cells (ATCC® HTB-26 TM ) were used as cells.
  • the antibody concentration dependence of the AMP degradation inhibitory function was analyzed by measuring the AMP degradation reaction in the same manner as in Example 1, and the IC50 value (50% inhibitory concentration: 50 of the enzyme function of CD73 here). %) was calculated and the function of the antibody was quantitatively evaluated.
  • the AMP degradation inhibitory function of the 003_m antibody, 004_m antibody, 005_m antibody, 006_m antibody, 007_m antibody, 008_m antibody, and 009_m antibody prepared in Example 1 against H322 cells is shown in FIG. 12, and the AMP degradation inhibitory function against MDA-MB-231 cells. Is shown in FIG. 13, respectively. Some of these antibodies, which are mouse antibodies, were found to show IC50 values that were lower or closer to the benchmark antibodies (see Table 7).
  • clones judged to have high functionality were selected from the tests shown in FIGS. 12 and 13 above (004_m, 006_m, 007_m, 008_m).
  • the AMP degradation inhibitory function (MDA-MB-231 cells) of these four antibodies is shown.
  • the IC50 values of these clones were good compared to the benchmark antibody (under clinical development) and were about the same as 002_6_c (see Table 8).
  • Example 10 Antibody gene sequence analysis The purpose of this example was to determine the amino acid sequences of the 003_m antibody to 009_m antibody obtained in Example 1.
  • the obtained plasmid DNA was analyzed for the gene sequences defining the heavy chain variable region and the light chain variable region by the Sanger sequence, and the amino acid sequence was determined based on the same sequence.
  • the heavy chain variable region amino acid sequence (Fig. 14-1) and light chain variable region amino acid sequence (Fig. 14-2) of 003_m antibody, 004_m antibody, 005_m antibody, 006_m antibody, 007_m antibody, 008_m antibody, 009_m antibody are shown.
  • SEQ ID NOs were assigned to each amino acid sequence as shown in Table 9 below.
  • Example 11 Analysis of binding to target-expressing cells The purpose of this example was to evaluate the binding of each antibody of 003_m to 009_m obtained in Example 1.
  • Binding analysis to target-expressing cells was performed by FACS analysis using CD73 native-expressing cells (human lung cancer cell line H322 or human breast cancer cell line MDA-MB-231) or CD73 forced-expressing cells.
  • CD73 forced expression cells were generated using the lentiviral vector system (Origene). After preparing lentivirus particles carrying the human CD73 gene (NM_002526) and puromycin resistance gene and infecting HEK293T cells, the cells were cultured in the presence of puromycin, and the target gene was integrated into the genome to be CD73 positive. The resulting HEK293T cells were collected and used for binding analysis. As a negative control, HEK293T cells expressing CD73 were used.
  • the antibody After reacting the test antibody or isotype control antibody with the cells, the antibody was stained with a fluorescently labeled secondary antibody and subjected to flow cytometric analysis, and the antibody binding property was evaluated based on the obtained fluorescence intensity.
  • FIG. 15 The binding of 003_m antibody to 009_m antibody to target-expressing cells (H322 cells) is shown in Fig. 15, and the binding of 003_m antibody to 009_m antibody to target-expressing cells (MDA-MB-231 cells) is shown in Fig. 16 and 003_m.
  • the binding properties of the antibody to 009_m antibody to the target-expressing cells are shown in FIG. 17, respectively.
  • solid lines and gray fills show fluorescence intensity histograms of the test antibody and the isotype control antibody, respectively.
  • Example 12 Evaluation of effect on T cell division The purpose of this example was to confirm the proliferation-promoting activity of the anti-CD73 antibody obtained in Example 9 on human peripheral blood T cells.
  • Example 8 The same method as in Example 8 was adopted, and the ratio of dividing cells was compared when the antibody concentration was 1 nM. The results are shown in FIG. The dotted line shows the proportion of dividing cells in the isotype control antibody.
  • CD4 + T Cell Isolation Kit human (Miltenyi Biotech, 130-096-533) is used to purify CD4-positive T cells from peripheral blood mononuclear cells (PBMC) derived from healthy volunteers, and CellTrace CFSE cell proliferation kit. Cells were fluorescently labeled with (ThermoFisher Scientific, # C34554).
  • Figure 18 shows the effect of 1 nM anti-CD73 antibody (006_m antibody, 007_m antibody, or 008_m antibody) on the division (proliferation) of human peripheral blood T cells.
  • “w / o AMP” and “with AMP” (100 ⁇ M AMP) were incorporated to see the effect of the presence or absence of AMP without antibody because AMP has a T cell division inhibitory effect. ..
  • the proportion of divided T cells increased in an antibody concentration-dependent manner (data shows). (Not shown), the effect of anti-CD73 antibody on promoting T cell division was shown.
  • Example 13 Preparation of humanized antibody (2)
  • a humanized antibody is prepared based on the 004_m antibody, 006_m antibody, 007_m antibody, and 008_m antibody selected in Example 9 among the respective antibodies of 003_m to 009_m obtained in Example 1. I went for the purpose.
  • the humanized antibody was prepared using the public software Tabhu (http://circe.med.uniroma1.it/tabhu/) as in Example 6. Using this software, 004_m antibody, 007_m antibody, 008_m antibody and 004_m antibody are extracted from the human antibody database having sequences having characteristics similar in sequence and three-dimensional structure, 004_m antibody is 5 types, 007_m antibody is 4 types, and 008_m antibody is. Each of the four sequences was picked up as a candidate sequence, and the sequences other than the CDR region of these antibodies were graphed with the sequences of the CDR regions of each of the 004_m antibody, 007_m antibody, and 008_m antibody.
  • Table 10 below shows the amino acid sequences of the variable regions of the humanized antibodies (004_h3 antibody, 006_hKB antibody, 007_h1 antibody, 008_h4 antibody) obtained based on the 004_m antibody, 006_m antibody, 007_m antibody, and 008_m antibody, respectively. As shown in Table 10 below, each amino acid sequence was assigned SEQ ID NO: 81 to SEQ ID NO: 88.
  • Binding analysis to human target-expressing cells was performed by FACS analysis using CD73 native-expressing cells (human lung cancer cell line H322). Binding analysis to target-expressing cells was performed on CD73 native-expressing cells (human breast cancer cell line MDA-MB-231), human breast cancer cell line MDA-MB-231 cells expressing CD73 antigen, and HEK293T wild type not expressing CD73 antigen. FACS analysis was performed using cells (derived from human fetal kidney cells) and cells in which CD73 antigen was forcibly expressed in HEK293T cells. CD73 forced expression cells were generated using the lentiviral vector system (Origene).
  • Lentivirus particles carrying the human CD73 gene (NM_002526), the red-tailed monkey CD73 gene (XM_001086989.2) (the amino acid sequence is the same as that of the crab monkey CD73) and the puromycin resistance gene were prepared, infected with HEK293T cells, and then puromycin.
  • the cells were cultured in the presence of HEK293T cells in which the target gene was integrated into the genome and became CD73 positive, and used for binding analysis. After reacting the test antibody or the isotype control antibody with the cells, the antibody was stained with a fluorescently labeled secondary antibody and subjected to flow cytometric analysis, and the antibody binding property was evaluated based on the obtained fluorescence intensity.
  • FIGS. 19 to 21 The results are shown in FIGS. 19 to 21.
  • FIGS. 19 and 20 are diagrams confirming the binding of the antibody to cells expressing the human CD73 gene
  • FIG. 21 confirms the binding of the antibody to cells expressing the rhesus monkey CD73 gene. It is a figure.
  • the 004_h3 antibody, 006_hKB antibody, and 008_h4 antibody were confirmed to show the same binding property to the human CD73 antigen as the 002_6_h4 antibody when compared, and the binding property to the CD73 antigen could be confirmed.
  • rice field the humanized antibodies examined.
  • the 006_hKB antibody among them showed the same binding property to the rhesus monkey CD73 antigen (cynomolgus monkey CD73 antigen) as the 002_6_h4 antibody, and the effect of the antibody of the present invention was confirmed by animal experiments in the future. It was shown that rhesus monkeys or cynomolgus monkeys can be used for examination.
  • Example 14 Suppressive function against recombinant antigen The purpose of this example was to confirm the enzymatic reaction inhibitory function of the humanized anti-CD73 antibody obtained in Example 13 against the recombinant CD73 antigen.
  • Example 1 For antibody function evaluation, 004_h3 antibody, 006_hKB antibody, 007_h1 antibody, 008_h4 antibody were used as test antibodies, and 002_6_c antibody, 002_6_h4 antibody, isotype control antibody and benchmark antibody (MEDI9447 antibody) were used as controls, and Example 1 (1-). It was carried out by the same method as the antibody function screening described in 3). That is, human breast cancer cell line MDA-MB-231 cells (ATCC® HTB-26 TM ) were seeded on 96-well plates and incubated overnight at 37 ° C.
  • human breast cancer cell line MDA-MB-231 cells ATCC® HTB-26 TM
  • Example 1 As in Example 1 (1-3), AMP (Sigma, A1752), which is a substrate of CD73, was added to a final concentration of 200 ⁇ M, and the mixture was incubated at 37 ° C. for 4.5 hours to AMP with CD73.
  • AMP Sigma, A1752
  • the antibody concentration dependence of the AMP degradation inhibitory function was analyzed. A decomposition reaction was carried out.
  • ATP Sigma, A2383, final concentration 10 ⁇ M
  • Cell TiterGlo Promega, G9243
  • Figure 22 shows the AMP degradation inhibitory function of the 004_h3 antibody, 006_hKB antibody, 007_h1 antibody, and 008_h4 antibody. All of these antibodies have been shown to have the function of suppressing AMP degradation by CD73 present on the cell surface (Figs. 22 and 23), and among these antibodies, the 006_hKB antibody is similar to 002_6_h4. , It was shown to have an inhibitory activity equal to or higher than that of the benchmark antibody.
  • Example 15 Evaluation of effects on T cell division This example confirms the growth-promoting activity of the anti-CD73 antibody obtained in Example 13 and showing a particularly high effect in Example 14 on human peripheral blood T cells. I went for that purpose.
  • PBMC peripheral blood mononuclear cells
  • T cell marker staining antibody BioLegend, anti-CD3: UCHT1, anti-CD4: RPA-T4, anti-CD8a: HIT8a. Beads for cell count were added to the stained cells and analyzed with a flow cytometer to calculate the number of CD4 and CD8 positive cells per well.
  • IL-2 BAF202 (R & D Systems)
  • TNF ⁇ BAF210 (R & D Systems)
  • Figure 23 shows the results of the evaluation of the effect of the antibody on T cell division.
  • the 006_hKB antibody is as high as the 002_6_h4 antibody for both CD4-positive and CD8-positive T cells. It was shown to have a T cell division promoting effect (upper part of FIG. 23). It was also confirmed that high concentrations of IFN ⁇ , TNF ⁇ , and IL-2 were released into the culture supernatant from the cells to which the 006_hKB antibody was administered (Fig. 23, lower part).
  • Example 16 Evaluation of intracellular uptake of antibody
  • the anti-CD73 antibody obtained in Example 6 and the anti-CD73 antibody obtained in Example 13 and showing a particularly high effect in Example 14 were used. The purpose was to evaluate the uptake into cells.
  • Human breast cancer cells MDA-MB-231 (1 ⁇ 10 ⁇ 5 cells) are seeded on a chamber slide (Thermo Fisher Scientific, 154534PK), and 10 ⁇ g / ml of various antibody solutions (002_6_h4, 006_hKB, MEDI9447) are added to 37 ° C. Incubated for 15 minutes or 19 hours. Samples before and after incubation were fixed and permeabilized (Thermo Fisher Scientific, FIX & PERM Fixation and Permeabilization Kit, GAS003) and stained with Anti-human IgG Alexa Fluor 594 (Thermo Fisher Scientific, A-11014). The distribution of the antibody was observed with a fluorescence microscope (Thermo Fisher Scientific, EVOS FLoid Imaging System, 4471136) to determine the presence or absence of the antibody uptake into the cells.
  • a fluorescence microscope Thermo Fisher Scientific, EVOS FLoid Imaging System, 4471136
  • Figure 24 shows the intracellular uptake of 002_6_h4 and 006_hKB.
  • the antibody was distributed on the cell surface at the time of 15 minutes of incubation (upper part of Fig. 24), whereas the antibody was accumulated in the cell 19 hours after incubation (lower part of Fig. 24). Was shown to have taken up into the cells. This result suggests that the uptake of anti-CD73 antibody may induce the disappearance of the antigen from the cell surface.
  • PBMC Peripheral blood mononuclear cells
  • % Control (anti-CD73 antibody (X minutes) MFI-isotype control (X minutes) MFI) / (anti-CD73 antibody (0 minutes) MFI-isotype control (0 minutes) MFI) x 100
  • % CD73 Ag (anti-CD73 antibody (X minutes) MFI-isotype control (X minutes) MFI) / (anti-CD73 antibody (0 minutes) MFI-isotype control (0 minutes) MFI) x 100
  • Example 17 Measurement of KD value
  • the anti-CD73 antibody obtained in Example 6 and the anti-CD73 antibody obtained in Example 13 and showing a particularly high effect in Example 14 bind to the CD73 antigen.
  • the purpose was to evaluate the dissociation constant (KD value), which is an index of affinity.
  • the KD value of the antibody bound to the target antigen was measured with Biacore 8K (GE Healthcare). Each antibody of 002_6_h4 antibody and 006_hKB antibody was immobilized on the sensor chip (CM5) using Human Antibody Capture Kit Type2 (Cytiva, 26-2346-00). A solution of human CD73 antigen diluted serially from 5 ⁇ 10 -9 M in 4 steps was prepared and used for multicycle kinetic analysis. In the 1: 1 coupling model, the KD values are as shown in Table 11 below.
  • Example 18 Human Immune Mouse Test This example is a human CD34-positive cell of the anti-CD73 antibody obtained in Example 6 and the anti-CD73 antibody obtained in Example 13 and showing a particularly high effect in Example 14. The purpose was to confirm the antitumor effect in the transplanted mice.
  • Human breast cancer cell line MDA-MB-231 was transplanted into human breast cancer cell line MDA-MB-231 into the mammary fat pad of human CD34-positive cell transplant NSG mice (hu-NSG, JACKSON laboratories) prepared from multiple healthy donors.
  • a breast cancer cell-carrying mouse model was created.
  • 002_6_h4 antibody or isotype control antibody is administered at a dose of 20 mg / kg once every 4 days for a total of 7 times (indicated as "Q4Dx7").
  • Administered intraperitoneally The administration start date was set to day 0, and observation was performed until day 34.
  • Figure 27 shows the results of measuring the number of tumor-infiltrating T cells in mice on day 34 after administration of 002_6_h4 antibody or isotype control antibody.
  • the administration of 002_6_h4 antibody to tumor-infiltrating T cells showed an increasing tendency as compared with the case of administration of isotype control antibody, suggesting that the anti-CD73 antibody has a tumor immunological effect.
  • the developed antibody enhances the cancer cell injury activity by T cells, and if so, the degree thereof in comparison with the benchmark antibody.
  • Human lung cancer cells NCI-H292 or HCC827 introduced with RFP protein were seeded on 96-well plates and cultured overnight. After removing the medium the next day, IL-2 (final concentration 30 IU) suspended in X-VIVO-15 medium (Lonza, 04-418Q) and various antibodies were added, and the mixture was incubated at 37 ° C. for 30 minutes. After that, healthy volunteer PBMCs stimulated with Dynabeads TM Human T-Activator CD3 / CD28 for T Cell Expansion and Activation (Veritas, DB11131) for 10 days to proliferate T cells were added at an E / T ratio of 2 to 37 ° C.
  • NCI-H292 was added to a final concentration of 300 [mu] M ATP in a final concentration of 500 [mu] M ATP, HCC827 to, 37 °C, 5% CO over time the growth of cancer cells by IncuCyte ZOOM System (Sartorius) with 2 conditions The change was observed.
  • the results are shown in Fig. 28.
  • the developed antibody (002_6_h4 and 006_hKB were used as examples in this example, but other developed antibodies of the present invention are also used) suppresses T cells even when anti-PD-1 antibody and anti-PD-1 antibody are allowed to act.
  • the effect of suppressing the growth of cancer cells of T cells was enhanced under the condition that the effect of releasing the antibody was hardly observed and the growth of cancer cells could not be stopped.
  • mice For the mammary fat pad of NSG mice (hu-NSG, JACKSON laboratories) (hereinafter referred to as "immunized humanized mice") transplanted with human CD34-positive cells prepared from multiple healthy donors.
  • the human breast cancer cell line MDA-MB-231 was transplanted to create a human breast cancer-carrying mouse model.
  • 002_6_h4 antibody or isotype control antibody is administered at a dose of 20 mg / kg once every 4 days for a total of 7 times (“Q4Dx7").
  • a checkpoint inhibitor anti-PD-1 antibody pembrolizumab, keytruda, MSD
  • isotype control antibody at a dose of 10 mg / kg for the first time only and 5 mg / kg for the second and subsequent times.
  • Q5Dx6 A total of 6 times (indicated as "Q5Dx6") were administered intraperitoneally once every 5 days.
  • the administration start date was set to day 0, and the tumor size was measured twice a week until day 34.
  • Figure 29 shows the average value and standard error of each administration group of the increase rate of tumor volume from Day 0 to day 34 in a typical donor.
  • the average tumor volume increase rate in the combination administration group (Group 4) was lower than that in the control group (Group 1) and the checkpoint inhibitor administration group (Group 3). rice field.
  • the average tumor volume increase rate was lower in the 002_6_h4 antibody-administered group (Group 2) than in the control group (Group 1), and the anti-CD73 antibody was used alone or in immune humanized mice. , It was suggested that it has an antitumor effect when used in combination with a checkpoint inhibitor (pembrolizumab).
  • Example 19 Immunodeficient mouse test This example was conducted for the purpose of confirming the antitumor effect of the anti-CD73 antibody obtained in Example 6 in an immunodeficient mouse body.
  • the human breast cancer cell line MDA-MB-231 was transplanted into the mammary fat pad of NSG mice (JACKSON laboratories).
  • 002_6_h4 antibody or isotype control antibody was administered at each dose once every 4 days for a total of 7 times (Q4Dx7) in the group composition shown in Table 12 below.
  • Administered intraperitoneally The tumor size was measured twice a week with the administration start date as day 0 and the observation period up to day 35.
  • Figure 30 shows the results of volume changes in the tumor mass in immunodeficient mice.
  • the 002_6_h4 antibody was shown to be more effective in suppressing tumor growth than the isotype control.
  • Example 20 Antitumor effect (knock-in model) The purpose of this example was to confirm the antitumor effect of the anti-CD73 antibody obtained in Example 6 in a knock-in mouse expressing human CD73.
  • a colon cancer cell line (Biocytogen, MC38-hCD73) that lacks mouse CD73 and expresses human CD73 is 5 ⁇ 10 ⁇ 5 were transplanted.
  • 002_6_h4 antibody or isotype control antibody was administered at a dose of 10 mg / kg twice a week for a total of 7 times (denoted as "BIWx7").
  • Figure 31 shows the transition of the average tumor volume from Day 0 to day 18 as the average value and standard error of each administration group.
  • the mean tumor volume of the combination administration group (Group 4) was lower than that of the control group (Group 1) and the checkpoint inhibitor administration group (Group 3), and the anti-CD73 antibody was a mouse expressing human CD73. It was suggested that it has an antitumor effect when used in combination with a checkpoint inhibitor.
  • the antibody or human antibody derivative obtained by the present invention activates immune cells by suppressing the function of CD73 expressed in cancer cells or immune cells and releasing the exhaustion of immune cells (particularly T cells). , Tumor growth inhibitory effect and cancer treatment effect.
  • the present invention can be widely used as a therapeutic / diagnostic agent for cancer. Since the antibody according to the present invention has an effect of relieving the exhaustion of immune cells, it is expected to be particularly effective in combination therapy with other immunotherapies.

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Abstract

本発明は、CD73抗原を標的としたより高い機能を有する抗体、より具体的にはより高い活性を有するがん治療用抗体を開発することを課題とする。　本発明は、特定のアミノ酸配列を有する重鎖・軽鎖の相補性決定領域を含む、CD73抗原に対して結合性を有し、がん細胞に対する傷害性を有するT細胞を活性化する、抗体またはヒト型抗体誘導体を見出し、上記課題を解決することができることを示した。

Description

抗ＣＤ７３抗体およびその用途
　本発明は、CD73抗原を発現するがんに対して特異的に細胞傷害性活性を有する抗体、および該抗体を含むがん治療用およびがん検査用の組成物および方法に関する。
　CD73は、生体内でAMPをアデノシンに分解する反応を触媒する酵素であり、特にがん細胞や抑制性T細胞（Treg細胞）、血管内皮細胞の細胞表面に発現することが知られている。これらの細胞上のCD73により生成されたアデノシンは、微小環境中へ放出され、免疫細胞上のアデノシンレセプターに結合し、免疫細胞の疲弊を誘導することが知られている。
　CD73抗原は複数がん腫で高発現しており、CD73抗原の発現が高い症例は予後不良であることが報告されている。これは、がん細胞周囲の微小環境中にアデノシンが増加することで、抗腫瘍免疫が抑制されるため、そして放出されたアデノシンは、Treg細胞による免疫活性の抑制を促進するために生じると考えられている。
　一方、CD73抗原に対する抗体が腫瘍増殖抑制効果を有することが、非臨床モデルで報告されている（Oncoimmunology. 2016 Aug; 5(8): e1208875）。このような知見に基づいてCD73抗原を標的としたがん治療用抗体は臨床開発（PhaseI～II）が進められている。しかしながら、検証的な治験の開始に至ったものは無く、より高い機能を有する抗体の開発が求められている。
特表2018-501197
Oncoimmunology. 2016 Aug; 5(8): e1208875 Bioinformatics. 2015 Feb 1;31(3):434-5
　本発明は、CD73抗原を標的としたより高い機能を有する抗体、より具体的にはより高い活性を有するがん治療用抗体を開発することを課題とする。
　本発明は、特定のアミノ酸配列を有する重鎖・軽鎖の相補性決定領域を含む、CD73抗原に対して結合性を有し、がん細胞に対する傷害性を有するT細胞を活性化する、抗体またはヒト型抗体誘導体を見出し、上記課題を解決することができることを示した。具体的には、CD73抗原に特異的に結合するモノクローナル抗体で、以下の機能を有する
・CD73による、AMPをアデノシンに分解する反応を、ベンチマーク抗体（公表されているMEDI9447の可変領域と同じ配列を有する抗体）よりも強く抑制する効果を示し；
・アデノシンによって誘導されるT細胞の疲弊を解除し、T細胞を活性化する。
　より具体的には、本件出願は、前述した課題を解決するため、以下の態様を提供する：
［１］：（1）　重鎖の相補性決定領域、CDR1（DX1NMD（X1はCまたはS）、SEQ ID No.: 1）、CDR2（DINPNNGGTIYNQKFKG、SEQ ID No.: 2）、およびCDR3（TNWDYAMDY、SEQ ID No.: 3）、および
　軽鎖の相補性決定領域、CDR1（KASQDINSX2LS（X2はN、DまたはQ）、SEQ ID No.: 4）、CDR2（RANRLID、SEQ ID No.: 5）、およびCDR3（X3QYDVFPRT（X3はLまたはQ）、SEQ ID No.: 6）；
（2）　重鎖の相補性決定領域、CDR1（SFGMH、SEQ ID No.: 9）、CDR2（YISSGSRTIYYADTVRG、SEQ ID No.: 10）、およびCDR3（DFGSSSPNYFDY、SEQ ID No.: 11）、および
　軽鎖の相補性決定領域、CDR1（RASESVDNYGISFMN、SEQ ID No.: 12）、CDR2（AASNQGS、SEQ ID No.: 13）、およびCDR3（QQSKEVPWT、SEQ ID No.: 14）；
（3）　重鎖の相補性決定領域、CDR1（GYWMN、SEQ ID No.: 17）、CDR2（RIDPYDSETHYSQKFKD、SEQ ID No.: 18）、およびCDR3（SSPITTAPFDY、SEQ ID No.: 19）、および
　軽鎖の相補性決定領域、CDR1（RASESVDYYGFSFMN、SEQ ID No.: 20）、CDR2（AASTQGS、SEQ ID No.: 21）、およびCDR3（QQSKEVPYT、SEQ ID No.: 22）；
（4）　重鎖の相補性決定領域、CDR1（SYGVS、SEQ ID No.: 25）、CDR2（VIWGDGSTNYHSALIS、SEQ ID No.: 26）、およびCDR3（TNIFYDYDWYLDV、SEQ ID No.: 27）、および
　軽鎖の相補性決定領域、CDR1（RSSQSLVHSNGNTYLH、SEQ ID No.: 28）、CDR2（KVSNRFS、SEQ ID No.: 29）、およびCDR3（SHSTHVPWT、SEQ ID No.: 30）；
（5）　重鎖の相補性決定領域、CDR1（SYWMH、SEQ ID No.: 33）、CDR2（EINPSNARTNYNENFKS、SEQ ID No.: 34）、およびCDR3（RGTSGNYFDF、SEQ ID No.: 35）、および
　軽鎖の相補性決定領域、CDR1（KASQDINTYLS、SEQ ID No.: 36）、CDR2（RANRLVD、SEQ ID No.: 37）、およびCDR3（LQYDEFPYT、SEQ ID No.: 38）；
（6）　重鎖の相補性決定領域、CDR1（SYWMN、SEQ ID No.: 41）、CDR2（KIDPYDSETHYNQKFKD、SEQ ID No.: 42）、およびCDR3（IRYGTFDY、SEQ ID No.: 43）、および
　軽鎖の相補性決定領域、CDR1（KASQDINNYLS、SEQ ID No.: 44）、CDR2（RANILVD、SEQ ID No.: 45）、およびCDR3（LQYDEFPYT、SEQ ID No.: 46）；
（7）　重鎖の相補性決定領域、CDR1（SYWMH、SEQ ID No.: 49）、CDR2（EINPSNGRTNYNEKFKN、SEQ ID No.: 50）、およびCDR3（RGTSGNYFDY、SEQ ID No.: 51）、および
　軽鎖の相補性決定領域、CDR1（KASQDINTYLS、SEQ ID No.: 52）、CDR2（RANRLVD、SEQ ID No.: 53）、およびCDR3（LQYDEFPYT、SEQ ID No.: 54）；
（8）　重鎖の相補性決定領域、CDR1（SYWMN、SEQ ID No.: 57）、CDR2（RIDPYDSEAHYNQKFKD、SEQ ID No.: 58）、およびCDR3（IRYGTFDY、SEQ ID No.: 59）、および
　軽鎖の相補性決定領域、CDR1（KASQDINSYLS、SEQ ID No.: 60）、CDR2（RSNSLVD、SEQ ID No.: 61）、およびCDR3（LQYDEFPYT、SEQ ID No.: 62）；
からなる群から選択されるいずれかの重鎖・軽鎖の相補性決定領域を含む、CD73抗原に対して結合性を有し、がん細胞に対する傷害性を有するT細胞を活性化する、抗体またはヒト型抗体誘導体；
［２］：　T細胞の活性化が、T細胞の増殖、T細胞のがん細胞に対する細胞傷害性の上昇、およびT細胞のサイトカイン分泌促進からなる群から選択される、［1］に記載の抗体またはヒト型抗体誘導体；
［３］：　ヒト型抗体誘導体が、ヒト化抗体、キメラ抗体、多価抗体、および多重特異性抗体から選択されるヒト型抗体改変体またはその機能的断片から選択される、［1］または［2］に記載の抗体またはヒト型抗体誘導体；
［４］：　機能的断片が、F（ab'）2である、［1］～［3］のいずれか1項に記載の抗体またはヒト型抗体誘導体；
［５］：　抗体またはヒト型抗体誘導体の重鎖可変領域VHドメインのアミノ酸配列が、（1）SEQ ID No.: 7、（2）SEQ ID No.: 15、（3）SEQ ID No.: 23、（4）SEQ ID No.: 31、（5）SEQ ID No.: 39、（6）SEQ ID No.: 47、（7）SEQ ID No.: 55、および（8）SEQ ID No.: 63から選択される、［1］～［4］のいずれか1項に記載の抗体またはヒト型抗体誘導体；
［６］：　抗体またはヒト型抗体誘導体の軽鎖可変領域VLドメインのアミノ酸配列が、（1）SEQ ID No.: 8、（2）SEQ ID No.: 16、（3）SEQ ID No.: 24、（4）SEQ ID No.: 32、（5）SEQ ID No.: 40、（6）SEQ ID No.: 48、（7）SEQ ID No.: 56、および（8）SEQ ID No.: 64から選択される、［1］～［5］のいずれか1項に記載の抗体またはヒト型抗体誘導体；
［７］：　がん細胞に対する細胞傷害性を誘導するが、正常細胞に対する細胞傷害性を誘導しない、［1］～［6］のいずれか1項に記載の抗体またはヒト型抗体誘導体；
［８］：　がん細胞が、メラノーマ、乳がん、肺がん、大腸がんからなる群から選択される、［1］～［7］のいずれか1項に記載の抗体またはヒト型抗体誘導体；
［９］：　薬物と結合され、抗体薬物複合体（ADC）を形成する、［1］～［8］のいずれか1項に記載の抗体またはヒト型抗体誘導体；
［１０］：　［1］～［9］のいずれか1項に記載の抗体またはヒト型抗体誘導体を含む、がん治療のための医薬組成物；
［１１］：　がんが、メラノーマ、乳がん、肺がん、大腸がんからなる群から選択される、［10］に記載の医薬組成物；
［１２］：　被験体から採取されたがん細胞を、in vitroにおいて［1］～［9］のいずれか1項に記載の抗体またはヒト型抗体誘導体と接触させる工程、
　培養条件下で、がん細胞のAMP代謝が低下するかどうかを測定する工程 、若しくは細胞生存率が低下するかどうかを測定する工程、若しくは免疫活性化物質の分泌が亢進するかどうかを測定する工程、
を含む、がん細胞に対する細胞傷害性測定方法；
［１３］：　同一被験体の末梢血リンパ球の存在下で、がん細胞の細胞生存率が低下するかどうか、若しくは末梢血リンパ球由来の免疫細胞が活性化するかどうかを測定する、［12］に記載のがん細胞に対する細胞傷害性測定方法；
［１４］：　被験体から採取されたがん細胞のin vitroでのAMP代謝抑制若しくは細胞傷害性から、［1］～［9］のいずれか1項に記載の抗体またはヒト型抗体誘導体をその被験体に投与した場合のがん細胞に対する細胞傷害性の亢進を測定する、［12］または［13］に記載のがん細胞に対する細胞傷害性測定方法；
［１５］：　in vitroでの免疫活性化物質の分泌の亢進から、［1］～［9］のいずれか1項に記載の抗体またはヒト型抗体誘導体をその被験体に投与した場合のがん細胞に対する細胞傷害性の亢進を測定する、［12］または［13］に記載のがん細胞に対する細胞傷害性測定方法；
［１６］：　［1］～［9］のいずれか1項に記載の抗体またはヒト型抗体誘導体の、被験体から採取されたがん細胞に対するAMP代謝、細胞傷害性、免疫活性化物質の分泌、若しくは免疫細胞の活性化を、in vitroにおいて測定するための、前記抗体を含む測定キット。
　本発明により得られた抗体またはヒト型抗体誘導体は、がん細胞あるいは免疫細胞に発現するCD73の機能を抑制し、免疫細胞（特にT細胞）の疲弊を解除することにより、免疫細胞を活性化し、腫瘍増殖抑制効果とがん治療効果を発揮する。
　本発明は、がんの治療・診断薬として幅広く使用可能である。本発明による抗体は免疫細胞の疲弊を解除する効果を有することから、特に他の免疫治療との併用治療において有効となることが期待される。
図1は、実施例1において作製した002_m抗体についてのAMP分解抑制機能（H322細胞）を示す図である。 図2は、002_m抗体の重鎖可変領域および軽鎖可変領域のアミノ酸配列を示す図である。 図3は、得られたキメラ抗体002_1_c～002_6_cについて、CD73を発現するヒト肺がん細胞株H322細胞に対する結合性を示す図である。 図4は、002_1_c抗体～002_6_c抗体についての、ヒト肺がんH322細胞を用いたAMP分解抑制機能を示す図である。 図5-1は、得られた002_6_cのヒト化抗体（002_6_h1～002_6_h8）の重鎖可変領域のアミノ酸配列を示す図である。 図5-2は、得られた002_6_cのヒト化抗体（002_6_h1～002_6_h8）の軽鎖可変領域のアミノ酸配列を示す図である。 図6-1は、ヒト化抗体（002_6_h1～002_6_h8）について、CD73を発現するヒト肺がん細胞株H322細胞に対する結合性を示す図である。 図6-2は、ヒト化抗体（002_6_h1～002_6_h8）について、CD73を発現するヒト肺がん細胞株H322細胞に対する結合性を示す図である。 図7は、3種類のヒト化抗体（002_6_h2、002_6_h4、002_6_h8）についての、ヒト肺がんH322細胞を用いたAMP分解抑制機能を示す図である。 図8-1は、ヒト化抗体002_6_h4について、既存の抗体、ベースとなるキメラ抗体002_6_cと比較し、種々の細胞に対する結合性を示す図である。 図8-2は、ヒト化抗体002_6_h4について、既存の抗体、ベースとなるキメラ抗体002_6_cと比較し、種々の細胞に対する結合性を示す図である。 図9は、ヒト化抗体002_6_h4についての、既存の抗体、ベースとなるキメラ抗体002_6_cと比較した、ヒト乳がんMDA-MB-231細胞を用いたAMP分解抑制機能を示す図である。 図10は、002_6_h4の、組換えCD73抗原に対するAMP分解抑制機能を示す図である。 図11は、002_6_h4の、ヒト末梢血T細胞の分裂（増殖）に与える影響を示す図である。 図12は、実施例1において作製した003_m抗体～009_m抗体についてのAMP分解抑制機能（H322細胞）を示す図である。 図13は、図12で機能性が高いと判断された4種の抗体（004_m、006_m、007_m、008_m）のAMP分解抑制機能（MDA-MB-231細胞）を示す図である。 図14-1は、得られた抗体（003_m抗体～009_m抗体）の重鎖可変領域のアミノ酸配列を示す図である。 図14-2は、得られた抗体（003_m抗体～009_m抗体）の軽鎖可変領域のアミノ酸配列を示す図である。 図15は、003_m抗体～009_m抗体の標的発現細胞（H322細胞）への結合性を示す図である。 図16は、003_m抗体～009_m抗体の標的発現細胞（MDA-MB-231細胞）への結合性を示す図である。 図17は、003_m抗体～009_m抗体の標的発現細胞（CD73強制発現HEK-293T細胞）への結合性を示す図である。 図18は、抗体濃度を1 nMとした際の分裂細胞割合を比較した結果を示す図である。 図19は、ヒトCD73遺伝子を発現させた細胞に対する抗体の結合活性を示す図である。 図20-1は、ヒトCD73遺伝子を発現させた細胞に対する抗体の結合活性を示す図である。 図20-2は、ヒトCD73遺伝子を発現させた細胞に対する抗体の結合活性を示す図である。 図21は、カニクイザルCD73を発現させた細胞に対する抗体の結合活性を示す図である。 図22は、本発明の抗体が、細胞表面のCD73によるAMP分解作用に対して阻害活性を有することを示す図である。 図23は、本発明の抗体が、CD4T細胞およびCD8T細胞の分裂促進効果を有すること、およびこれらの細胞からのIFNγ、TNF、IL-2の産生能を亢進する作用を有することを示す図である。 図24は、002_6_h4抗体および006_hKB抗体の細胞内への取り込みを示す蛍光顕微鏡像を示す図である。 図25は、T細胞表面のCD73に結合した本発明の抗体が、これらの細胞を培養すると、経時的に減少する（T細胞に内在化する）ことを示す図である。 図26は、がん細胞表面のCD73に結合した本発明の抗体が、これらの細胞を培養すると、経時的に減少する（がん細胞に内在化する）ことを示す図である。 図27は、002_6_h4抗体もしくはアイソタイプコントロール抗体を投与後、day35においてマウス体内の腫瘍浸潤T細胞数を測定した結果を示す図である。 図28-1は、本発明の開発抗体が、T細胞によるがん細胞傷害活性を増強させるかどうかを示す図である。 図28-2は、本発明の開発抗体が、T細胞によるがん細胞傷害活性を増強させるかどうかを示す図である。 図29は、マウスの中で模擬的に再現させたヒト免疫系の抗腫瘍効果を、002_6_h4が増強させることができるかどうか、動物実験により調べた結果を示す図である。 図30は、免疫不全マウス体内における腫瘍塊の体積変化の結果を示す図である。 図31は、本発明の抗CD73抗体の、ヒトCD73を発現するノックインマウス体内における抗腫瘍効果を確認した図である。
　本発明は、一態様において、がん細胞あるいは免疫細胞上のCD73抗原に対して結合性を有し、がん細胞に対する傷害性を有するT細胞を活性化する、CD73抗原に対する結合物質、特に抗体またはヒト型抗体誘導体を提供することができる。本発明の結合物質、特に抗体またはヒト型抗体誘導体は、CD73抗原を発現するがん細胞に対する治療のため、がん細胞の増殖を阻害するため、腫瘍を縮小・消失させるために使用することができるとともに、がん細胞に対する傷害性を有するT細胞が疲弊してしまっている場合にそのT細胞を活性化するためにも使用することができる。
　抗体およびヒト型抗体誘導体
　本発明は、一態様において、CD73抗原に対して結合性を有する、抗体またはヒト型抗体誘導体を提供する。この抗体またはヒト型抗体誘導体は、がん細胞に対する傷害性を有するT細胞を活性化することを特徴としている。
　本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体は、がん細胞に発現するCD73の機能を抑制し、がん細胞周辺へのAMP代謝産物（アデノシン）蓄積により発生する免疫細胞（特にT細胞）の疲弊を解除することにより、免疫細胞を活性化し、腫瘍増殖抑制効果とがん治療効果を発揮する態様によるもの、免疫細胞（特にT細胞）に発現するCD73の機能を抑制し、免疫細胞を活性化し、腫瘍増殖抑制効果とがん治療効果を発揮する態様によるもの、あるいは免疫細胞以外の腫瘍周辺環境の制御によるがん治療効果、あるいは腫瘍に対する直接的制御によるがん治療効果であってもよい。
　本発明において単に「抗体」という場合、その抗体は哺乳動物のどのような動物種由来のものであってもよく、その抗体の由来種はヒトに限定されず、マウス、ラット、モルモット、ハムスター、ウサギなどであってもよい。
　本発明においてはまた、CD73抗原に対して結合性を有し、がんを抑制するという機能的な特徴を有する限りにおいて、上述の抗体のヒト型抗体誘導体であってもよい。本発明においてヒト型抗体誘導体という場合、一態様として、上記抗体の6箇所のCDRのアミノ酸配列（重鎖の相補性決定領域（CDR）1～CDR3および軽鎖のCDR1～CDR3）、及びヒト抗体由来の定常領域のアミノ酸配列を有し、それ以外のアミノ酸配列は、元の抗体由来のアミノ酸配列とヒト抗体由来のアミノ酸配列との組み合わせであることを特徴とした抗体の誘導体を提供することができる。このような抗体誘導体の例としては、上述した「抗体」の相補性決定領域（CDR）以外をヒトの抗体由来のアミノ酸配列に置き換えたヒト化抗体、または上記抗体の可変領域をヒト抗体の定常領域に連結したものなどのキメラ抗体、１種類の抗体が複数の抗原結合部位を有する多価抗体、および１種類の抗体が複数の特異性を有する多重特異性抗体（バイスペシフィック抗体）が含まれるが、これら以外のものも含まれる。
　本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体は、CD73抗原に対して結合性を有する抗体と同一の重鎖のCDR1～3および軽鎖のCDR1～3の合計6箇所のアミノ酸配列を有することにより特徴づけられるものである。そのようなCD73抗原に対して結合性を有する抗体の6箇所のCDRのアミノ配列の例としては、以下の（1）から（8）：
（1）　重鎖の相補性決定領域、CDR1（DX1NMD（X1はCまたはS）、SEQ ID No.: 1）、CDR2（DINPNNGGTIYNQKFKG、SEQ ID No.: 2）、およびCDR3（TNWDYAMDY、SEQ ID No.: 3）、および
　軽鎖の相補性決定領域、CDR1（KASQDINSX2LS（X2はN、DまたはQ）、SEQ ID No.: 4）、CDR2（RANRLID、SEQ ID No.: 5）、およびCDR3（X3QYDVFPRT（X3はLまたはQ）、SEQ ID No.: 6）；
（2）　重鎖の相補性決定領域、CDR1（SFGMH、SEQ ID No.: 9）、CDR2（YISSGSRTIYYADTVRG、SEQ ID No.: 10）、およびCDR3（DFGSSSPNYFDY、SEQ ID No.: 11）、および
　軽鎖の相補性決定領域、CDR1（RASESVDNYGISFMN、SEQ ID No.: 12）、CDR2（AASNQGS、SEQ ID No.: 13）、およびCDR3（QQSKEVPWT、SEQ ID No.: 14）；
（3）　重鎖の相補性決定領域、CDR1（GYWMN、SEQ ID No.: 17）、CDR2（RIDPYDSETHYSQKFKD、SEQ ID No.: 18）、およびCDR3（SSPITTAPFDY、SEQ ID No.: 19）、および
　軽鎖の相補性決定領域、CDR1（RASESVDYYGFSFMN、SEQ ID No.: 20）、CDR2（AASTQGS、SEQ ID No.: 21）、およびCDR3（QQSKEVPYT、SEQ ID No.: 22）；
（4）　重鎖の相補性決定領域、CDR1（SYGVS、SEQ ID No.: 25）、CDR2（VIWGDGSTNYHSALIS、SEQ ID No.: 26）、およびCDR3（TNIFYDYDWYLDV、SEQ ID No.: 27）、および
　軽鎖の相補性決定領域、CDR1（RSSQSLVHSNGNTYLH、SEQ ID No.: 28）、CDR2（KVSNRFS、SEQ ID No.: 29）、およびCDR3（SHSTHVPWT、SEQ ID No.: 30）；
（5）　重鎖の相補性決定領域、CDR1（SYWMH、SEQ ID No.: 33）、CDR2（EINPSNARTNYNENFKS、SEQ ID No.: 34）、およびCDR3（RGTSGNYFDF、SEQ ID No.: 35）、および
　軽鎖の相補性決定領域、CDR1（KASQDINTYLS、SEQ ID No.: 36）、CDR2（RANRLVD、SEQ ID No.: 37）、およびCDR3（LQYDEFPYT、SEQ ID No.: 38）；
（6）　重鎖の相補性決定領域、CDR1（SYWMN、SEQ ID No.: 41）、CDR2（KIDPYDSETHYNQKFKD、SEQ ID No.: 42）、およびCDR3（IRYGTFDY、SEQ ID No.: 43）、および
　軽鎖の相補性決定領域、CDR1（KASQDINNYLS、SEQ ID No.: 44）、CDR2（RANILVD、SEQ ID No.: 45）、およびCDR3（LQYDEFPYT、SEQ ID No.: 46）；
（7）　重鎖の相補性決定領域、CDR1（SYWMH、SEQ ID No.: 49）、CDR2（EINPSNGRTNYNEKFKN、SEQ ID No.: 50）、およびCDR3（RGTSGNYFDY、SEQ ID No.: 51）、および
　軽鎖の相補性決定領域、CDR1（KASQDINTYLS、SEQ ID No.: 52）、CDR2（RANRLVD、SEQ ID No.: 53）、およびCDR3（LQYDEFPYT、SEQ ID No.: 54）；
（8）　重鎖の相補性決定領域、CDR1（SYWMN、SEQ ID No.: 57）、CDR2（RIDPYDSEAHYNQKFKD、SEQ ID No.: 58）、およびCDR3（IRYGTFDY、SEQ ID No.: 59）、および
　軽鎖の相補性決定領域、CDR1（KASQDINSYLS、SEQ ID No.: 60）、CDR2（RSNSLVD、SEQ ID No.: 61）、およびCDR3（LQYDEFPYT、SEQ ID No.: 62）；
からなる群から選択されるいずれかの重鎖・軽鎖の相補性決定領域を含むものが考えられるが、CD73抗原に対して結合性を有するという特徴を有する限りにおいて、上記のCDRの組み合わせ以外のCDRの組み合わせで特定される抗体またはヒト型抗体誘導体もまた含まれる。
　本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体は、T細胞を活性化する能力を有することもまた特徴とする。特に、がん細胞あるいは免疫細胞に発現するCD73の機能を抑制し、免疫細胞（特にT細胞）の疲弊を解除することにより、免疫細胞を活性化し、がん増殖抑制効果とがん治療効果を発揮することが好ましい。かかるT細胞の活性化は、in vitroにおいて生じるものであっても、in vivoにおいて生じるものであってもよい。このようながん細胞に対する傷害性を有するT細胞を活性化する能力を有するかどうかは、CD73抗原に対して結合性を有する抗体の中から、実際にT細胞を活性化するかどうかをスクリーニングすることにより得ることができる。
　本発明において、免疫細胞（特にT細胞）の疲弊という場合、免疫細胞が機能不全に陥った状態を指す。具体的には、T細胞におけるサイトカイン分泌能や細胞傷害性の低下、NK細胞におけるサイトカイン分泌能や細胞傷害性の低下、樹状細胞の抗原提示能の低下、制御性T細胞の活性化等である。この状態にある場合、がん細胞に対する個体のがん免疫は機能しないか機能が低下し、がん細胞を排除する活性が低下することとなる。このような免疫細胞の疲弊は、PD-1やCTLA-4などのチェックポイントタンパク質がT細胞表面に増加することにより生じたり、増殖し続けるがん細胞により免疫系が長期間にわたり活性を強いられた場合にエフェクターT細胞に生じたりすることが知られているが、可逆的な状態であり、同じ細胞を活性化させることにより疲弊の状態を解消することも可能と考えられている。
　本発明においてT細胞の活性化という場合、T細胞の増殖、T細胞のがん細胞に対する細胞傷害性の上昇、T細胞からのサイトカイン分泌などを指標として把握することができる。これらのT細胞の活性化がみられる場合には、本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体により、T細胞におけるCD73の活性が阻害され、AMPをアデノシンに分解する反応が抑制されていることを示す。
　本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体のT細胞を活性化する能力のスクリーニングは、生体内で行うこともでき、あるいは生体外で行うこともできる。生体内で行うスクリーニングは、野生型マウス、あるいはヌードマウスやSCIDマウス等の免疫不全マウスに免疫細胞を移植したマウスなどの動物に、標的とするがん細胞を移植し、本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体を投与したときの体内での腫瘍塊のサイズの変化を測定することにより、あるいは本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体を投与したときの体内での腫瘍塊周辺へのT細胞の浸潤を解剖学的に調べることにより、行うことができる。生体外で行うスクリーニングは、末梢血T細胞を培養条件下で本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体と接触させ、当該T細胞の増殖を測定するか、T細胞のサイトカイン分泌を測定するか、あるいはT細胞ががん細胞に対する細胞死を引き起こすかどうかを調べることにより行うことができる。
　一態様において、本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体は、以下の重鎖可変領域VHドメインのアミノ酸配列を有するものとして特定することができる：（1）002_m重鎖可変領域（SEQ ID No.: 7）、（2）003_m重鎖可変領域（SEQ ID No.: 15）、（3）004_m重鎖可変領域（SEQ ID No.: 23）、（4）005_m重鎖可変領域（SEQ ID No.: 31）、（5）006_m重鎖可変領域（SEQ ID No.: 39）、（6）007_m重鎖可変領域（SEQ ID No.: 47）、（7）008_m重鎖可変領域（SEQ ID No.: 55）、および（8）009_m重鎖可変領域（SEQ ID No.: 63）。ここで、（1）から（8）の番号は、前述した重鎖CDR1～CDR3の配列の組み合わせの番号と対応したものである。例えば、SEQ ID NO: 7のアミノ酸配列は、SEQ ID NO: 1～SEQ ID NO: 3で特定される重鎖CDR1～CDR3のアミノ酸配列を包含する配列である。
　一態様において、本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体は、以下の軽鎖可変領域VLドメインのアミノ酸配列を有するものとして特定することができる：（1）002_m軽鎖可変領域（SEQ ID No.: 8）、（2）003_m軽鎖可変領域（SEQ ID No.: 16）、（3）004_m軽鎖可変領域（SEQ ID No.: 24）、（4）005_m軽鎖可変領域（SEQ ID No.: 32）、（5）006_m軽鎖可変領域（SEQ ID No.: 40）、（6）007_m軽鎖可変領域（SEQ ID No.: 48）、（7）008_m軽鎖可変領域（SEQ ID No.: 56）、および（8）009_m軽鎖可変領域（SEQ ID No.: 64）。ここで、（1）から（8）の番号は、前述した軽鎖CDR1～CDR3の配列の組み合わせの番号と対応したものである。例えば、SEQ ID NO: 8のアミノ酸配列は、SEQ ID NO: 4～SEQ ID NO: 6で特定される軽鎖CDR1～CDR3のアミノ酸配列を包含する配列である。
　本発明においては、本発明のヒト型抗体誘導体には、上述した抗体またはヒト型抗体誘導体の機能的断片も含まれる。本発明における抗体またはヒト型抗体誘導体の機能的断片は、F（ab'）2、Fab'、Fab、一本鎖Fv（scFv）などが含まれる。本発明の機能性断片は、がん細胞に対する傷害性を誘導することができることを特徴としていればこれらのうちのどのような断片であってもよく、例えば、F（ab'）2断片などを、そのような機能的断片として使用することができる。
　抗体またはヒト型抗体誘導体の取得
　本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体は、前述した由来種の動物に対してCD73抗原を免疫原として投与し、その動物体内から採取した抗体産生細胞を培養することにより取得することもできるが、抗体またはヒト型抗体誘導体のアミノ酸配列を規定できるDNA配列を含むタンパク質発現用のベクターを設計し、そのベクターをタンパク質産生用の細胞に導入し、組換え的に取得してもよい。
　本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体のアミノ酸配列を規定できるDNA配列は、目的とする抗体またはヒト型抗体誘導体を産生する細胞から取得する方法、アミノ酸配列に基づき発現系で使用される動物種に最適化したコドンに基づき設計する方法、あるいはこれらの方法を組み合わせて使用する方法により作製することができる。
　作製したDNA配列は、その抗体またはヒト型抗体誘導体を発現させようとするタンパク質発現用細胞種（例えば、CHO細胞など）に適した発現ベクターに組み込み、タンパク質発現用細胞種に導入することにより取得するなど、当業者によく知られた手法を用いて取得することができる。
　抗体の場合、重鎖と軽鎖を組み合わせた構造になっていることから、タンパク質発現用細胞種に対して、重鎖アミノ酸配列を規定するDNA配列を含むベクターと軽鎖アミノ酸配列を規定するDNA配列を含むベクターとを導入して両方のタンパク質を細胞内で発現させて細胞内で抗体を産生する方法、あるいは重鎖アミノ酸配列を規定するDNA配列と軽鎖アミノ酸配列を規定するDNA配列とを両方含むベクターを導入して両方のタンパク質を細胞内で発現させて細胞内で抗体を産生する方法、などにより作成することができる。
　本発明において一実施態様として取得されたヒト型抗体誘導体の例としては、上述の（1）の抗体からヒト型抗体誘導体を作成する場合の
002_6_h1重鎖可変領域（SEQ ID NO: 65）および002_6_h1軽鎖可変領域（SEQ ID NO: 66）を含む抗体、
002_6_h2重鎖可変領域（SEQ ID NO: 67）および002_6_h2軽鎖可変領域（SEQ ID NO: 68）を含む抗体、
002_6_h3重鎖可変領域（SEQ ID NO: 69）および002_6_h3軽鎖可変領域（SEQ ID NO: 70）を含む抗体、
002_6_h4重鎖可変領域（SEQ ID NO: 71）および002_6_h4軽鎖可変領域（SEQ ID NO: 72）を含む抗体、
002_6_h5重鎖可変領域（SEQ ID NO: 73）および002_6_h5軽鎖可変領域（SEQ ID NO: 74）を含む抗体、
002_6_h6重鎖可変領域（SEQ ID NO: 75）および002_6_h6軽鎖可変領域（SEQ ID NO: 76）を含む抗体、
002_6_h7重鎖可変領域（SEQ ID NO: 77）および002_6_h7軽鎖可変領域（SEQ ID NO: 78）を含む抗体、
002_6_h8重鎖可変領域（SEQ ID NO: 79）および002_6_h8軽鎖可変領域（SEQ ID NO: 80）を含む抗体、
004_h3_重鎖可変領域（SEQ ID NO: 81）および004_h3_軽鎖可変領域（SEQ ID NO: 82）を含む抗体、
006_hKB_重鎖可変領域（SEQ ID NO: 83）および006_hKB_軽鎖可変領域（SEQ ID NO: 84）を含む抗体、
007_h1_重鎖可変領域（SEQ ID NO: 85）および007_h1_軽鎖可変領域（SEQ ID NO: 86）を含む抗体、
008_h4_重鎖可変領域（SEQ ID NO: 87）および008_h4_軽鎖可変領域（SEQ ID NO: 88）を含む抗体、
などが含まれるが、これらには限定されず、その他の抗体から作成されるヒト型抗体誘導体も本発明の態様として含まれる。
　抗体またはヒト型抗体誘導体の用途
　本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体は、上述したがん細胞に対する細胞傷害性を有する免疫細胞（特にT細胞）を活性化する能力を有するという特徴に基づき、一態様において、がんの治療または予防を必要としている被験体において、がん細胞に対する傷害性を有する免疫細胞（特にT細胞）を活性化する、本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体を含む医薬組成物、を提供することができる。
　本発明において標的とすることができるがん細胞は、例えば、白血病（慢性リンパ性白血病、急性リンパ性白血病を含む）、リンパ腫（非ホジキンリンパ腫、ホジキンリンパ腫、T細胞系リンパ腫、B細胞系リンパ腫、バーキットリンパ腫、悪性リンパ腫、びまん性リンパ腫、濾胞性リンパ腫を含む）、骨髄腫（多発性骨髄腫を含む）、メラノーマ、肺がん、乳がん、大腸がん、腎臓がん、胃がん、卵巣がん、膵臓がん、子宮頚がん、子宮体がん、子宮内膜がん、食道がん、肝臓がん、頭頚部がん、頭頚部扁平上皮がん、皮膚がん、尿路がん、前立腺がん、絨毛がん、咽頭がん、喉頭がん、きょう膜腫、男性胚腫、子宮内膜過形成、子宮内膜症、胚芽腫、線維肉腫、カポジ肉腫、血管腫、海綿状血管腫、血管芽腫、網膜芽腫、星状細胞腫、神経線維腫、稀突起謬腫、髄芽腫、神経芽腫、神経膠腫、横紋筋肉腫、謬芽腫、骨原性肉腫、平滑筋肉腫、甲状肉腫及びウィルムス腫瘍からなる群から選択されるがん由来の細胞が含まれる。本発明の態様において、がん細胞は、CD73抗原を発現するがん細胞であることが好ましく、例えばメラノーマ、乳がん、肺がん、大腸がんに由来する細胞が好ましい。
　本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体は、上述するように標的となるがん細胞に対する細胞傷害性を有する免疫細胞（特にT細胞）を活性化することを特徴とする。すなわち、生体に投与した場合、免疫細胞（特にT細胞）の活性化は、標的となるCD73抗原を発現するがん細胞に対する細胞傷害性を有する免疫細胞に対してのみ生じ、CD73抗原を発現するものの正常細胞である場合には、臨床上問題となりうる細胞傷害性を誘導しないことが求められる。
　本発明において、本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体を、他の抗体または抗がん剤のような他の薬剤と組み合わせて組成物として提供することもできる。一態様において、本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体を、薬物と結合し、抗体薬物複合体（ADC）を形成することもできる。
　本発明において、本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体を、生理学的に許容され得る希釈剤またはキャリアとともに含む製剤もまた提供することができる。適切なキャリアとしては、緩衝剤（リン酸緩衝液、クエン酸緩衝液、酢酸緩衝液等）、塩（塩化ナトリウム等）、糖（グルコース、トレハロース、マンニトール、ソルビトール等）、添加物（アルギニン等のアミノ酸、ポリソルベート等の界面活性剤等）、を含むものが含まれるが、これらに限定されるものではない。あるいは、本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体は、凍結乾燥（フリーズドライ）し、必要とされるときに上記のような緩衝水溶液を添加することにより再構成して使用することもできる。本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体を含む製剤は、種々の剤型で投与することができ、例えば、注射剤、点滴剤等による非経口投与剤とすることができる。
　本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体の投与量は、症状、年齢、体重などによって異なるが、通常、非経口投与では、１回体重kgあたり0.01 mg～1000 mg、好ましくは1日体重kgあたり0.05 mg～500 mg、0.05 mg～100 mg、0.05 mg～50 mg、0.05 mg～20 mgなどの範囲で、より好ましくは1日体重kgあたり0.1 mg～10 mgの範囲で、腹腔内注射、皮下注射、筋肉注射、腫瘍内注射、または静脈注射など、がんの種類によって適切な投与経路から投与することができる。
　本発明は、上述したがん細胞に対する細胞傷害性を有する免疫細胞（特にT細胞）を活性化する能力を有するという特徴に基づき、別の一態様において、がんの治療または予防を必要としている被験体に、本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体の有効量を投与することを含む、被験体中のがんを治療または予防する方法もまた提供することができる。本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体によるがんの治療または予防は、この抗体またはヒト型抗体誘導体が、体内においてがん細胞に対する細胞傷害性を有する免疫細胞（特にT細胞）を活性化することにより生じる。
　本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体をがんの治療または予防のために生体に投与する場合、生体内で細胞性免疫あるいは液性免疫が効果的に成立するようにアジュバント（例えば、Clin. Microbiol. Rev., 7:277-289, 1994に記載のものなど）とともに投与したり、また、リポソーム製剤、直径数μmのビーズに結合させた粒子状の製剤、リピッドを結合させた製剤など、粒子状の剤型にして投与することもできる。
　抗体およびヒト型抗体誘導体の生体外での用途
　本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体は、CD73抗原に対して結合性を有するという特徴に基づき、試料中のCD73抗原を検出するために使用することができる。具体的には、本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体は、被験体から採取したがん細胞あるいは免疫細胞（例えばT細胞）を含む試料に対して、免疫沈降法、凝集反応、磁気ビーズ法などの抗体を用いた精製法、ELISA法、ウェスタンブロット、免疫組織化学などのイムノアッセイ、フローサイトメトリーなどの免疫細胞化学等、抗体を用いて行うことができるCD73抗原の様々な検出方法を実施する際に使用することができる。それぞれの場合において、本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体は、当業者に一般的に知られている検出用標識（例えば、蛍光、酵素、など）を用いて検出することができる。
　本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体はまた、CD73抗原に対して結合性を有し、がん細胞に対する傷害性を有する免疫細胞（特にT細胞）を活性化する、という特徴に基づき、本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体の、被験体におけるがん細胞に対する細胞傷害性を測定するために使用することができる。このような被験体におけるがん細胞に対する細胞傷害性を測定するための方法としては、以下の工程：
　被験体から採取されたがん細胞を、培養条件下（すなわち、in vitro）において本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体と接触させる工程、
　培養条件下で、がん細胞のAMP代謝（AMPをアデノシンに分解する反応）が低下するかどうかを測定する工程、細胞生存率が低下するかどうかを測定する工程、若しくは免疫活性化物質の分泌が亢進するかどうかを測定する工程、
を含む、本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体を用いてがん細胞に対する細胞傷害性を測定する方法を例として挙げることができる。
　生体内において、がん細胞におけるAMP代謝（AMPをアデノシンに分解する反応）が低下すると、T細胞が活性化されたり、腫瘍が縮小したりする現象が知られており、がん細胞に対するがん免疫が活性化されると考えられている。この現象を利用して、本発明の一態様において、被験体から採取されたがん細胞を、in vitroにおいて本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体と接触させ、培養条件下で、がん細胞のAMP代謝が低下するかどうかを測定することにより、がん細胞に対する細胞傷害性を測定することができる。より具体的には、被験体から採取されたがん細胞を本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体と接触させ、培養条件下（すなわち、in vitro）においてAMPからアデノシンへの分解反応を測定することにより、本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体をその被験体に投与した場合の、被験体内（in vivo）でのがん細胞への細胞傷害性を測定することができる。
　この態様において、AMPからアデノシンへの分解反応は、HPLC法、LC-MS法、ELISA法、あるいはAMP依存性の化学発光法（Cell titer glo等）により測定することができる。
　生体内において、末梢血リンパ球により、がん細胞の細胞生存率の低下が生じる。この現象を利用して、本発明の一態様において、被験体から採取されたがん細胞を、in vitroにおいて本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体と接触させ、培養条件下で、細胞生存率が低下するかどうかを測定することにより、がん細胞に対する細胞傷害性を測定することができる。より具体的には、被検体から採取されたがん細胞を、同一被験体の末梢血リンパ球の存在下で、本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体と接触させ、培養条件下（すなわち、in vitro）においてがん細胞の細胞生存率が低下するかどうかを測定することにより、本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体をその被験体に投与した場合の、被験体内（in vivo）でのがん細胞への細胞傷害性を測定することができる。
　生体内において、末梢血リンパ球からの免疫活性化物質の分泌が亢進されると、T細胞が活性化されたり、腫瘍が縮小したりする現象が知られており、がん細胞に対するがん免疫が活性化されると考えられている。この現象を利用して、本発明の一態様において、被験体から採取されたがん細胞を、in vitroにおいて本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体と接触させ、培養条件下で、免疫活性化物質の分泌が亢進するかどうかを測定することにより、がん細胞に対する細胞傷害性を測定することができる。より具体的には、被検体から採取されたがん細胞を、同一被験体の末梢血リンパ球の存在下で本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体と接触させ、培養条件下（すなわち、in vitro）において末梢血リンパ球からの免疫活性化物質の分泌が亢進されるかどうかを測定することにより、本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体をその被験体に投与した場合の、被験体内（in vivo）において細胞傷害性を有するリンパ球などの免疫細胞の活性化や、その結果として生じるがん細胞に対する細胞傷害性の亢進を測定することができる。
　この態様において、がん細胞への細胞傷害性を判断するために測定する免疫活性化物質としては、IFN-γ、TNFαなどを例として挙げることができる。IFNγはNK細胞などの免疫細胞を活性化し、抗腫瘍効果を発揮させることが知られている。
　本発明はまた、本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体を含む、被験体から採取されたがん細胞に対するAMP代謝、細胞傷害性、免疫活性化物質の分泌、若しくは免疫細胞の活性化を、in vitroにおいて測定するための測定キットもまた提供することができる。
　AMP代謝を測定するための測定キットには、本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体に加えて、基質となるAMP、その代謝産物であるアデノシンを測定するための試薬（AMP依存性の化学発光試薬、ELISA試薬）および装置（HPLCシステム、LC-MSシステム）を含むことができる。
　細胞傷害性を測定するための測定キットには、本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体に加えて、公知の細胞増殖性を測定するための手段（例えば、チミジンの取り込み、BrdUの取り込み、遊離の乳酸脱水素酵素（LDH）活性の測定、生細胞由来物質の測定（還元酵素活性、エステラーゼ活性、ATPなど）を含むことができる。
　免疫活性化物質の分泌を測定するための測定キットには、本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体に加えて、測定する免疫活性化物質の検出のための手段（例えば、免疫活性化物質に対する一次抗体と当該一次抗体の検出のための二次抗体など）を含むことができる。
　免疫細胞の活性化を測定するための測定キットには、本発明の抗体またはヒト型抗体誘導体に加えて、フローサイトメーターで免疫細胞の分裂を測定するための標識試薬を含むことができる。
　以下、実施例を挙げて本発明を具体的に示す。下記に示す実施例はいかなる方法によっても本発明を限定するものではない。
　実施例1：抗体の調製
　本実施例は、マウスを使用してCD73抗原に対するモノクローナル抗体を取得することを目的として行った。
（1-1）B細胞シングルセルソーティング法による抗体作製
　マウス（BALB/cAJcl　メス7週齢、日本クレア）に対して、CD73組換え抗原（自家調製品）10μgを、二週間おきに4～8回、腹腔内投与して免疫化した。最終投与から一週間後に尾静脈より採血し、血中のCD73抗原に特異的な抗体価の上昇を、従来法に基づいて抗原固定ELISAによって確認した後、CD73抗原に特異的な抗体化が有意に上昇した抗体を有するマウスの脾臓を回収した。
　公知の方法に従って、脾臓から脾細胞のsingle cell suspensionを調製し、MACS-pan B cell isolation kit（ミルテニー　130-104-443）を用いてB細胞を精製した。精製したB細胞をZOMBIE-APC-Cy7（Biolegend）、Alexa488 anti-IgM（Biolegend）、VB421anti-IgG（Biolegend）、PE-CD73（自家調製品）で染色し、FACS Aria（BD）に供試して、IgG陽性かつCD73抗原に結合性を示す細胞集団を96 well plateに１細胞ずつ分取した。
　RT-PCR法により、各ウェルごとに抗体の重鎖可変領域および軽鎖可変領域に該当する遺伝子を増幅した。増幅に用いるプライマーとして、公知文献の情報に基づいて、重鎖可変領域および軽鎖可変領域のそれぞれ5’末端及および3’末端の領域を含む配列を採用し、抗体遺伝子配列の多様性を考慮して複数の配列のミックスプライマーを使用した（重鎖：H1ミックスおよびH2ミックス、軽鎖：kミックス）（Lotta von Boehmer et al., Nature Protocols, vol 11, p.1908-1923 (2016)）。
　抗体の重鎖遺伝子および軽鎖遺伝子の増幅後、それぞれの遺伝子の末端に抗体発現ベクターに挿入するためのリンカー配列をPCR反応によって付加し、重鎖発現用のベクターもしくは軽鎖発現用のベクター（それぞれCMVプロモーター、分泌シグナル、重鎖可変領域もしくは軽鎖可変領域の遺伝子、重鎖定常領域もしくは軽鎖定常領域の遺伝子をタンデムに連結）にライゲーション反応によって挿入した。
　ライゲーション産物を大腸菌にトランスフォーメーションして抗体発現用プラスミドを回収した後、重鎖遺伝子発現プラスミド（H1もしくはH2ミックス増幅産物由来）および軽鎖遺伝子発現プラスミド（kミックス増幅産物由来）をCHO細胞にトランスフェクションした。CHO細胞から培養上清中に産生される抗体を回収し、それぞれの抗体の抗原特異性を抗原固定ELISAによって確認した。
（1-2）抗体精製
　抗原固定ELISAで、抗原（CD73）結合性が認められた抗体について、CHO細胞の培養上清を回収し、培養上清中の抗体をMonospinProGカラム（GLサイエンス）によって精製した。
（1-3）抗体機能スクリーニング
　ヒト肺がん細胞株H322（ATCC（登録商標）CRL-5806TM）を96 wellプレートに播種し、精製した抗体を添加して37℃で一時間インキュベートした。CD73の基質であるAMP（Sigma, A1752）を終濃度200μMとなるように添加し、37℃で一晩インキュベートして、CD73によるAMPのアデノシンへの分解反応を行った。
　上清を回収し、ATP（Sigma, A2383、終濃度100μM）およびCell TiterGlo（Promega, G9243）を添加して混合した後、マイクロプレートリーダーを用いて化学発光を測定した。すなわち、ATPとCell TiterGloの反応による化学発光をAMPが阻害する原理を用い、残存AMP量から抗体の酵素活性阻害効果を評価した。
　なお、陽性対照として、先行開発品であるMEDI9447（特表2018-501197に掲載の配列に基づき、公表されいているMEDI9447の可変領域と同じ配列を有する抗体を遺伝子組み換え技術を用いて製造、以下、「ベンチマーク抗体」という）を採用した。
　抗体機能スクリーニングの結果、002_m、003_m、004_m、005_m、006_m、007_m、008_m、009_mと命名する8種類のマウス抗体を、CD73結合活性陽性の抗体として選択することができた。
　実施例2：抗体機能評価（濃度依存性評価）
　本実施例は、実施例1で取得された002_m抗体の機能評価を行うことを目的として行った。
　抗体機能評価は、実施例1（1-3）において記載した抗体機能スクリーニングと同じ方法により実施した。すなわち、細胞としてヒト肺がん細胞株H322細胞またはヒト乳がん細胞株MDA-MB-231細胞（ATCC（登録商標）HTB-26TM）を用いた。本実施例では、実施例1（1-3）と同様にAMP分解反応を測定することにより、AMP分解抑制機能の抗体濃度依存性を解析して、IC50値（50％阻害濃度：ここではCD73の酵素機能の50％を阻害できる抗体濃度を指す）を算出し、抗体の機能を定量的に評価した。
　実施例1において作製した002_m抗体についてのAMP分解抑制機能（H322細胞）を図1に示す。この抗体は、マウス抗体であるが、ベンチマーク抗体に近いIC50値を示すことが明らかになった（表1参照）。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　実施例3：抗体遺伝子配列解析
　本実施例は、実施例1で取得された002_m抗体のアミノ酸配列を決定することを目的として行った。
　機能解析でAMP分解抑制機能が認められた002_m抗体クローンについて、実施例1（1-1）で作製したライゲーション産物をトランスフェクションした大腸菌の植菌プレートからシングルコロニーを回収し、プラスミドDNAを取得した。
　得られたプラスミドDNAをサンガーシーケンスによって重鎖可変領域および軽鎖可変領域を規定する遺伝子配列を解析し、同配列に基づいてアミノ酸配列を決定した。
　002_m抗体の重鎖可変領域および軽鎖可変領域のアミノ酸配列を、図2に示す（それぞれ、SEQ ID NO: 7およびSEQ ID NO: 8）。また、この図において、重鎖のCDR1、CDR2、CDR3（それぞれ、SEQ ID NO: 1、SEQ ID NO: 2、SEQ ID NO: 3）および軽鎖のCDR1、CDR2、CDR3（それぞれ、SEQ ID NO: 4、SEQ ID NO: 5、SEQ ID NO: 6）に下線を引いた。
　実施例4：ヒト-マウスヒトキメラ抗体作製
　本実施例は、実施例3で配列決定した002_m抗体について、マウス抗体の可変領域およびヒト抗体の定常領域を有するキメラ抗体を作製することを目的として行った。
　マウス抗体の可変領域の遺伝子配列を人工合成し、ヒト定常領域（Fc）キメラ組み換え抗体発現用のベクターに組み込んだ。発現用のベクターとして、軽鎖発現エレメント（EF-1αプロモーター、分泌シグナル、軽鎖可変領域を規定するDNA配列、軽鎖定常領域を規定するDNA配列をタンデムに連結）、重鎖発現エレメント（EF-1αプロモーター、分泌シグナル、重鎖可変領域を規定するDNA配列、重鎖定常領域を規定するDNA配列をタンデムに連結）を有するプラスミドを構築した。当該プラスミドをExpiCHO細胞（Thermo）にトランスフェクションして抗体を培地中に分泌させた後、ProteinAカラム（GLサイエンス）を用いて抗体を精製した。
　このようにして作成されたキメラ抗体を002_1_c抗体と規定した。この抗体の重鎖可変領域のアミノ酸配列はSEQ ID NO: 7のアミノ酸配列から構成され、軽鎖可変領域のアミノ酸配列はSEQ ID NO: 8のアミノ酸配列から構成される。
　実施例5：CDR改変抗体の作製
　本実施例は、002_m抗体について、CDR中の翻訳後修飾を受ける可能性がある残基を、修飾を受けない残基に置換した改変抗体を作製することを目的として行った。
　具体的には、002_m抗体重鎖可変領域（SEQ ID NO: 7）32番目アミノ酸システイン（C）をセリン（S）に、002_m抗体軽鎖可変領域（SEQ ID NO: 8）32番目アミノ酸アスパラギン（N）をアスパラギン酸（D）またはグルタミン（Q）にそれぞれ置換した（以下の表2を参照）。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
　該当領域を含む遺伝子を人工合成し、ライゲーションによってヒトFcキメラ組み換え抗体発現用ベクターに挿入した。抗体発現・精製は、ヒトキメラ抗体と同様の方法で実施した。
　得られたそれぞれのキメラ抗体002_1_c～002_6_cについての標的発現細胞への結合性解析は、CD73 native発現細胞（ヒト肺がん細胞株H322）を用いたFACS解析により実施した。被験抗体もしくはアイソタイプコントロール抗体を細胞と反応させた後、蛍光標識二次抗体で染色してフローサイトメトリー解析に供試し、得られた蛍光強度に基づき抗体結合性を評価した。
　結果を、図3に示す。実施例4および本実施例において002_m抗体をベースに作製したキメラ抗体はいずれも、H322細胞に対する高い結合性を示すことが明らかになった。
　次いで、それぞれのキメラ抗体について、（1-3）と同じ方法で、002_1_c抗体～002_6_c抗体についての、ヒト肺がんH322細胞を用いたAMP分解抑制機能を測定する、抗体機能スクリーニングを行った。結果を、図4に示す
　本結果より、それぞれの抗体のIC50値を算出したところ、下記の表3の通りとなり、002_1_c～002_6_cの結合性、機能性は全て同等と判断された。また、ベンチマーク抗体のIC50値とも遜色ない結果が得られた。そこで、以降の開発は、翻訳後修飾の可能性が無い002_6_cについて実施することとした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
  
　実施例6：ヒト化抗体の作製
　本実施例は、実施例5で選択した002_6_c抗体（SEQ ID NO: 7（C32S）／SEQ ID NO: 8（N32Q））に基づいて、ヒト化抗体を作製することを目的として行った。
　ヒト化抗体の作製は、公開ソフトウエアであるTabhu（http://circe.med.uniroma1.it/tabhu/）を用いて実施した。同ソフトを用い、002_6_cと配列的・立体構造的に近い特性を有する配列を持つヒト抗体データベースより抽出し、4種配列（FJ039788、AF146404、3SQO_H、AY686911）を候補配列としてピックアップして、これらの抗体のCDR領域以外の配列と、002_6_cのCDR領域の配列とのグラフティングを行った。
　次に、一部のアミノ酸残基のマウス配列へのbackmutationを実施した。backmutation 対象のアミノ酸残基は、ヒト化抗体とマウス抗体において構造的差異が大きいこと（TubHuスコア上位）に基づいて、各配列10アミノ酸残基を上限として選定した。詳細は非特許文献（Bioinformatics. 2015 Feb 1;31(3):434-5）に記載の方法に従った。
　得られた002_6_cのヒト化抗体（002_6_h1～002_6_h8）の可変領域のアミノ酸配列を、図5（重鎖可変領域を図5-1、軽鎖可変領域を図5-2）に示す。それぞれのアミノ酸配列は、下記の表4の通り、SEQ ID NO: を割り当てた。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
　得られたそれぞれのヒト化抗体（002_6_h1～002_6_h8）についての標的発現細胞への結合性解析は、CD73 native発現細胞（ヒト肺がん細胞株H322）を用いたFACS解析により実施した。結果を、図6に示す。いずれのヒト化抗体も、ベースとするキメラ抗体002_6_c抗体と同様の結合性を示すことが確認された。
　次いで、ヒト化抗体002_6_h1～002_6_h8のうちの3種類の抗体（002_6_h2、002_6_h4、002_6_h8）について、（1-3）と同じ方法で、ヒト肺がんH322細胞を用いたAMP分解抑制機能を測定する、抗体機能スクリーニングを行った。結果を、図7に示す。
　本結果より、ヒト肺がんH322細胞を用いたAMP分解抑制機能に対するそれぞれのヒト化抗体のIC50値を算出したところ、下記の表5の通りとなり、ヒト化抗体の中で最も抑制機能の高い002_6_h4をリード抗体として以降の開発を行うこととした。同抗体は、ベンチマーク抗体と比較して良好なIC50値を示した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
　上記でリード抗体として選択したヒト化抗体002_6_h4について、既存の抗体（市販抗CD73抗体（biolegend）、ベンチマーク抗体）、ベースとなるキメラ抗体002_6_cと比較し、種々の細胞に対する結合性をフローサイトメトリーにより確認した。
　標的発現細胞への結合性解析は、CD73 native発現細胞（ヒト乳がん細胞株MDA-MB-231）、CD73抗原を発現するヒト乳がん細胞株MDA-MB-231細胞、CD73抗原を発現しないHEK293T野生型細胞（ヒト胎児腎細胞由来）、およびHEK293T細胞にCD73抗原を強制発現させた細胞を用いたFACS解析により実施した。CD73強制発現細胞は、レンチウイルスベクターシステム（Origene）を使用して作製した。ヒトCD73遺伝子（NM_002526）およびピューロマイシン耐性遺伝子を保有するレンチウイルス粒子を作製して、HEK293T細胞に感染させた後、ピューロマイシン存在下で細胞を培養し、目的遺伝子がゲノムに組み込まれてCD73陽性となったHEK293T細胞を回収して結合性解析に使用した。被験抗体もしくはアイソタイプコントロール抗体を細胞と反応させた後、蛍光標識二次抗体で染色してフローサイトメトリー解析に供試し、得られた蛍光強度に基づき抗体結合性を評価した。
　結果を図8に示す。この結果、002_6_cおよび002_6_h4ともに、既存の抗体（市販抗CD73抗体（biolegend）、ベンチマーク抗体）と同様の各種細胞への結合性を示すことがわかり、CD73抗原に対する結合性を確認できた。
　次いで、ヒト化抗体002_6_h4について、既存の抗体（市販抗CD73抗体（biolegend）、ベンチマーク抗体）、ベースとなるキメラ抗体002_6_cと比較し、（1-3）と同じ方法で、ヒト乳がんMDA-MB-231細胞を用いたAMP分解抑制機能を測定する、抗体機能スクリーニングを行った。結果を、図9に示す。本結果より、ヒト乳がんMDA-MB-231細胞を用いたAMP分解抑制機能に対するヒト化抗体のIC50値を算出したところ、下記の表6の通りとなり、上記のヒト肺がんH322細胞を用いた試験の結果とあわせ、ヒト化抗体002_6_h4がキメラ抗体002_6_cと同様に、複数のがん種においてAMP分解抑制機能を有することが示された。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
　実施例7：組換え抗原に対する抑制機能
　本実施例は、実施例6で得られた抗CD73抗体の、組換えCD73抗原に対する酵素反応抑制機能を確認することを目的として行った。
　実験は、CD73抗原（末端His-Tag、自家調製品）を、抗His-Tag抗体を介してELISA用96 wellプレートに固定化し、ヒト化抗CD73抗体002_6_h4および基質であるAMP（終濃度100μM）を添加して37℃で一時間インキュベートして、実施例1（1-3）と同様にCD73によるAMPのアデノシンへの分解反応を測定することにより行った。
　上清を回収し、ATP（終濃度100μM）およびCell TiterGlo（Promega、G9243）を添加して混合した後、マイクロプレートリーダーを用いて化学発光を測定した。ATPとCell TiterGloの反応による発光をAMPが阻害する原理を用い、残存AMP量から抗体の酵素活性阻害効果を評価した。陽性対照として、ベンチマーク抗体を使用して同じ実験を行った。
　002_6_h4の組換えCD73抗原に対するAMP分解抑制機能を、図10に示す。この結果、002_6_h4は組換えCD73抗原に対してAMP分解抑制機能を示し、酵素を直接的に抑制することが示唆された。
　実施例8：T細胞分裂への影響評価
　本実施例は、実施例6で得られた抗CD73抗体の、ヒト末梢血T細胞に対する増殖促進活性を確認することを目的として行った。
　健常人ボランティア由来末梢血単核球（PBMC）から、CD4+ T Cell Isolation Kit, human（Miltenyi Biotech,130-096-533）によってCD4陽性T細胞を精製し、CellTrace CFSE cell proliferation kit（ThermoFisher Scientific, #C34554）を用いて細胞を蛍光標識した。
　DynabeadsTM Human T-Activator CD3/CD28 for T Cell Expansion and Activation（ベリタス、DB11131）を用いてCD4陽性T細胞を活性化した後、96ウェルプレートに細胞を播種（1×10^5 cells/well）し、ヒト化抗CD73抗体002_6_h4および基質であるAMP（100μM）の存在下で3～7日間培養した。細胞をフローサイトメトリー解析に供試して蛍光強度を測定し、蛍光強度に基づいて、分裂した細胞の割合を解析した。
　002_6_h4の、ヒト末梢血T細胞の分裂（増殖）に与える影響について、図11に示す。分裂したT細胞の割合は、抗体濃度依存的に増加し、抗CD73抗体がT細胞分裂を促進する効果が示された。
　実施例9：抗体機能評価（濃度依存性評価）
　本実施例は、実施例1で取得された002_m抗体以外の抗体（すなわち、003_m抗体、004_m抗体、005_m抗体、006_m抗体、007_m抗体、008_m抗体、009_m抗体）の機能評価を行うことを目的として行った。
　抗体機能評価は、実施例1（1-3）において記載した抗体機能スクリーニングと同じ方法により実施した。すなわち、細胞としてヒト肺がん細胞株H322細胞またはヒト乳がん細胞株MDA-MB-231細胞（ATCC（登録商標）HTB-26TM）を用いた。本実施例では、実施例1と同様にAMP分解反応を測定することにより、AMP分解抑制機能の抗体濃度依存性を解析して、IC50値（50％阻害濃度：ここではCD73の酵素機能の50％を阻害できる抗体濃度を指す）を算出し、抗体の機能を定量的に評価した。
　実施例1において作製した003_m抗体、004_m抗体、005_m抗体、006_m抗体、007_m抗体、008_m抗体、009_m抗体のH322細胞に対するAMP分解抑制機能を図12に、MDA-MB-231細胞に対するAMP分解抑制機能を図13に、それぞれ示す。これらの抗体のうちいくつかのものは、マウス抗体であるが、ベンチマーク抗体によりも低いか、もしくはベンチマーク抗体に近いIC50値を示すことが明らかになった（表7参照）。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
　さらに、上記図12および図13に示す試験より、機能性が高いと判断されたクローンを選抜した（004_m、006_m、007_m、008_m）。そしてこれら4種の抗体のAMP分解抑制機能（MDA-MB-231細胞）を、示す。これらのクローンのIC50値は、ベンチマーク抗体（臨床開発中）と比較して良好であり、002_6_cとほぼ同等であった（表8を参照）。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000008
　実施例10：抗体遺伝子配列解析
　本実施例は、実施例1で取得された003_m抗体～009_m抗体のアミノ酸配列を決定することを目的として行った。
　機能解析でAMP分解抑制機能が認められた003_m抗体～009_m抗体のクローンについて、実施例1（1-1）で作製したライゲーション産物をトランスフェクションした大腸菌の植菌プレートからシングルコロニーを回収し、プラスミドDNAを取得した。
　得られたプラスミドDNAをサンガーシーケンスによって重鎖可変領域および軽鎖可変領域を規定する遺伝子配列を解析し、同配列に基づいてアミノ酸配列を決定した。
　003_m抗体、004_m抗体、005_m抗体、006_m抗体、007_m抗体、008_m抗体、009_m抗体の重鎖可変領域アミノ酸配列（図14-1）および軽鎖可変領域アミノ酸配列（図14-2）を示す。それぞれのアミノ酸配列について、以下表9に示す通りSEQ ID NOを割り当てた。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000009
　実施例11：標的発現細胞への結合性解析
　本実施例は、実施例1において取得された003_m～009_mのそれぞれの抗体の結合性評価を行うことを目的として行った。
　標的発現細胞への結合性解析は、CD73 native発現細胞（ヒト肺がん細胞株H322もしくはヒト乳がん細胞株MDA-MB-231）、もしくはCD73強制発現細胞を用いたFACS解析により実施した。CD73強制発現細胞は、レンチウイルスベクターシステム（Origene）を使用して作製した。ヒトCD73遺伝子（NM_002526）およびピューロマイシン耐性遺伝子を保有するレンチウイルス粒子を作製してHEK293T細胞に感染させた後、ピューロマイシン存在下で細胞を培養し、目的遺伝子がゲノムに組み込まれてCD73陽性となったHEK293T細胞を回収して結合性解析に使用した。ネガティブコントロールとして、CD73を発現していないHEK293T細胞を使用した。
　被験抗体もしくはアイソタイプコントロール抗体を細胞と反応させた後、蛍光標識二次抗体で染色してフローサイトメトリー解析に供試し、得られた蛍光強度に基づき抗体結合性を評価した。
　003_m抗体～009_m抗体の標的発現細胞（H322細胞）への結合性を図15に、003_m抗体～009_m抗体の標的発現細胞（MDA-MB-231細胞）への結合性を図16に、そして003_m抗体～009_m抗体の標的発現細胞（CD73強制発現HEK-293T細胞）への結合性を図17に、それぞれ示す。これらの図15～図17において、実線および灰色塗りつぶしが、それぞれ被験抗体およびアイソタイプコントロール抗体の蛍光強度ヒストグラムを示す。
　実施例12：T細胞分裂への影響評価
　本実施例は、実施例9で得られた抗CD73抗体の、ヒト末梢血T細胞に対する増殖促進活性を確認することを目的として行った。
　方法は実施例8と同様の方法を採用し、抗体濃度を1 nMとした際の分裂細胞割合を比較した。結果を図18に示す。点線は、アイソタイプコントロール抗体での分裂細胞割合を示している。
　具体的には、健常人ボランティア由来末梢血単核球（PBMC）から、CD4+ T Cell Isolation Kit, human（Miltenyi Biotech,130-096-533）によってCD4陽性T細胞を精製し、CellTrace CFSE cell proliferation kit（ThermoFisher Scientific, #C34554）を用いて細胞を蛍光標識した。
　DynabeadsTM Human T-Activator CD3/CD28 for T Cell Expansion and Activation（ベリタス、DB11131）を用いてCD4陽性T細胞を活性化した後、96ウェルプレートに細胞を播種（1×10^5 cells/well）し、抗CD73抗体（006_m抗体、007_m抗体、008_m抗体）、および基質であるAMP（100μM）の存在下で3～7日間培養した。細胞をフローサイトメトリー解析に供試して蛍光強度を測定し、蛍光強度に基づいて、分裂した細胞の割合を解析した。
　1 nMの抗CD73抗体（006_m抗体、007_m抗体、または008_m抗体）の、ヒト末梢血T細胞の分裂（増殖）に与える影響について、図18に示す。図中、「w/o AMP」および「with AMP」（100μM AMP）は、AMPがT細胞の分裂抑制効果を有することから、抗体なしでAMPの有無の効果を見るために組み入れたものである。一方、ヒト化抗CD73抗体（006_m抗体、007_m抗体、008_m抗体）を1 nM、0.1 nM、0.01 nM添加した群において、分裂したT細胞の割合は、抗体濃度依存的に増加し（データには示さず）、抗CD73抗体がT細胞分裂を促進する効果が示された。
　003_m抗体～009_m抗体はいずれもアイソタイプコントロール抗体よりも細胞分裂を促進し、ベンチマーク抗体、002_6_cおよび002_6_h4とほぼ同等であった。
　実施例13：ヒト化抗体の作製（2）
　本実施例は、実施例1において取得された003_m～009_mのそれぞれの抗体のうち、実施例9で選択した004_m抗体、006_m抗体、007_m抗体、008_m抗体に基づいて、ヒト化抗体を作製することを目的として行った。
　ヒト化抗体の作製は、実施例6と同様に、公開ソフトウエアであるTabhu（http://circe.med.uniroma1.it/tabhu/）を用いて実施した。同ソフトを用い、004_m抗体、007_m抗体、008_m抗体と配列的・立体構造的に近い特性を有する配列を持つヒト抗体データベースより抽出し、004_m抗体は5種、007_m抗体は4種、008_m抗体は4種の配列をそれぞれ候補配列としてピックアップして、これらの抗体のCDR領域以外の配列と、004_m抗体、007_m抗体、008_m抗体のそれぞれのCDR領域の配列とのグラフティングを行った。
　006_m抗体については、市販のバイオロジカルソフトを用いて6種のヒト化抗体配列候補を作成した。
　次に、グラフティングした004m抗体、007m抗体、008m抗体の一部のアミノ酸残基のマウス配列へのbackmutationを実施した。backmutation 対象のアミノ酸残基は、ヒト化抗体とマウス抗体において構造的差異が大きいこと（TubHuスコア上位）に基づいて、各配列10アミノ酸残基を上限として選定した。詳細は非特許文献（Bioinformatics. 2015 Feb 1;31(3):434-5）に記載の方法に従った。
　004_m抗体、006_m抗体、007_m抗体、008_m抗体に基づいてそれぞれ得られたヒト化抗体（004_h3抗体、006_hKB抗体、007_h1抗体、008_h4抗体）の可変領域のアミノ酸配列を、以下の表10に示す。それぞれのアミノ酸配列は、下記の表10の通り、SEQ ID NO: 81～SEQ ID NO: 88を割り当てた。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000010
　得られたそれぞれのヒト化抗体（004_h3抗体、006_hKB抗体、007_h1抗体、008_h4抗体）について、既存の抗体（市販抗CD73抗体（biolegend）、ベンチマーク抗体）、ベースとなるキメラ抗体002_6_cと比較し、種々の細胞に対する結合性をフローサイトメトリーにより確認した。
　ヒト標的発現細胞への結合性解析を、CD73 native発現細胞（ヒト肺がん細胞株H322）を用いたFACS解析により実施した。標的発現細胞への結合性解析は、CD73 native発現細胞（ヒト乳がん細胞株MDA-MB-231）、CD73抗原を発現するヒト乳がん細胞株MDA-MB-231細胞、CD73抗原を発現しないHEK293T野生型細胞（ヒト胎児腎細胞由来）、およびHEK293T細胞にCD73抗原を強制発現させた細胞を用いたFACS解析により実施した。CD73強制発現細胞は、レンチウイルスベクターシステム（Origene）を使用して作製した。ヒトCD73遺伝子（NM_002526）、アカゲザルCD73遺伝子（XM_001086989.2）（アミノ酸配列はカニクイザルCD73と同一）およびピューロマイシン耐性遺伝子を保有するレンチウイルス粒子を作製して、HEK293T細胞に感染させた後、ピューロマイシン存在下で細胞を培養し、目的遺伝子がゲノムに組み込まれてCD73陽性となったHEK293T細胞を回収して結合性解析に使用した。被験抗体もしくはアイソタイプコントロール抗体を細胞と反応させた後、蛍光標識二次抗体で染色してフローサイトメトリー解析に供試し、得られた蛍光強度に基づき抗体結合性を評価した。
　結果を、図19～図21に示す。このうち、図19および図20は、ヒトCD73遺伝子を発現させた細胞に対する抗体の結合性を確認した図であり、図21は、アカゲザルCD73遺伝子を発現させた細胞に対する抗体の結合性を確認した図である。検討したヒト化抗体のうち、004_h3抗体、006_hKB抗体、008_h4抗体については、比較対象としたと002_6_h4抗体と同様のヒトCD73抗原に対する結合性を示すことが確認され、CD73抗原に対する結合性を確認できた。また、このうちの006_hKB抗体については、アカゲザルCD73抗原（カニクイザルCD73抗原）に対して、002_6_h4抗体と同様の結合性を示すことが確認され、将来的に動物実験により本発明の抗体の効果を確認する際に、アカゲザルあるいはカニクイザルにより検討を行うことができることが示された。
　実施例14：組換え抗原に対する抑制機能
　本実施例は、実施例13で得られたヒト化抗CD73抗体の、組換えCD73抗原に対する酵素反応抑制機能を確認することを目的として行った。
　抗体機能評価は、004_h3抗体、006_hKB抗体、007_h1抗体、008_h4抗体を被検抗体として、002_6_c抗体、002_6_h4抗体、アイソタイプコントロール抗体およびベンチマーク抗体（MEDI9447抗体）をコントロールとして使用し、実施例1（1-3）において記載した抗体機能スクリーニングと同様の方法により実施した。すなわち、細胞としてヒト乳がん細胞株MDA-MB-231細胞（ATCC（登録商標）HTB-26TM）を96 wellプレートに播種し、37℃で一晩インキュベートした。翌日、細胞をL-15培地（富士フイルム和光純薬、128-06075）で洗浄した後、精製した抗体を添加して37℃で一時間インキュベートした。本実施例では、実施例1（1-3）と同様に、CD73の基質であるAMP（Sigma, A1752）を終濃度200μMとなるように添加し、37℃で4.5時間インキュベートしてCD73によるAMPのアデノシンへのAMP分解反応を測定することにより、AMP分解抑制機能の抗体濃度依存性を解析した。分解反応を行った。反応後、上清を回収し、ATP（Sigma, A2383、終濃度10μM）およびCell TiterGlo（Promega, G9243）を添加して混合した後、マイクロプレートリーダーを用いて化学発光を測定した。
　004_h3抗体、006_hKB抗体、007_h1抗体、008_h4抗体についてのAMP分解抑制機能を図22に示す。これらの抗体はいずれも細胞表面に存在するCD73によるAMP分解を抑制する機能を有していることが示され（図22および図23）、特にこれらの抗体のうち006_hKB抗体は、002_6_h4と同様に、ベンチマーク抗体と同等以上の阻害活性を持つことが示された。
　実施例15：T細胞分裂への影響評価
　本実施例は、実施例13で得られ、実施例14で特に高い効果を示した抗CD73抗体の、ヒト末梢血T細胞に対する増殖促進活性を確認することを目的として行った。
　健常人ボランティア由来末梢血単核球（PBMC）に対して、終濃度0.0005～1μg/mlの各種抗体（006_hKB抗体、002_6_h4抗体、ベンチマーク抗体（MEDI9447抗体）、アイソタイプコントロール抗体）のいずれかを添加し、室温で30分間インキュベーションした。続いて終濃度350μM ATPおよびDynabeadsTM Human T-Activator CD3/CD28 for T Cell Expansion and Activation（ベリタス、DB11131）を添加して、37℃、5％CO2条件下で96時間インキュベーションした。培養終了後、T細胞マーカー染色抗体（BioLegend、anti-CD3:UCHT1、anti-CD4:RPA-T4、anti-CD8a:HIT8a）を用いて細胞を染色した。染色した細胞に細胞数計測用のビーズを添加して、フローサイトメーターで解析し、1ウェルあたりのCD4およびCD8陽性細胞数を算出した。
　また、回収した培養上清中のIFNγ、TNFα、IL-2の濃度を、各種抗体［キャプチャー抗体＝IFNγ：M7004（Thermo）、TNFα：MAB602（R&D Systems）、IL-2：MAB610；検出抗体＝IFNγ：M701B（Thermo）、IL-2：BAF202（R&D Systems）、TNFα：BAF210（R&D Systems）］を用いてLuminex法にて測定した。
　抗体によるT細胞分裂へ影響評価について、結果を図23に示す。実施例8において良好な活性を示すことが明らかになった002_6_h4抗体と比較して、006_hKB抗体は、CD4陽性T細胞に対してもCD8陽性T細胞に対しても、002_6_h4抗体と同程度の高いT細胞分裂促進効果を有することが示された（図23上段）。また、006_hKB抗体を投与した細胞から、高い濃度のIFNγ、TNFα、IL-2が培養上清中に放出されていることも確認された（図23下段）。
　実施例16：抗体の細胞内への取り込み評価
　本実施例は、実施例6で得られた抗CD73抗体および実施例13で得られ、実施例14で特に高い効果を示した抗CD73抗体の、細胞内への取り込みを評価することを目的として行った。
　ヒト乳がん細胞MDA-MB-231（1×10^5 cells）をチャンバースライド（Thermo Fisher Scientific、154534PK）に播種し、10μg/mlの各種抗体溶液（002_6_h4、006_hKB、MEDI9447）を添加して37℃で15分間もしくは19時間インキュベートした。インキュベート前後の試料を固定および透過処理し（Thermo Fisher Scientific、FIX & PERM Fixation and Permeabilization Kit、GAS003）、Anti-human IgG Alexa Fluor 594（Thermo Fisher Scientific、A-11014）で染色した。抗体の分布を蛍光顕微鏡（Thermo Fisher Scientific、EVOS FLoid Imaging System、4471136）で観察し、抗体の細胞内への取り込みの有無を判断した。
　002_6_h4および006_hKBの細胞内への取り込みを、図24に示す。002_6_h4および006_hKBともに、インキュベート15分間の時点（図24上段）は抗体が細胞表面に分布しているのに対し、インキュベート19時間後（図24下段）は抗体が細胞内に集積しており、抗体の細胞内への取り込みが起こったことが示された。本結果より、抗CD73抗体の取り込みに伴う抗原の細胞表面からの消失が誘導される可能性が示唆された。
　このような抗体のT細胞への内在化を、経時的に数値化した。健常人ボランティア由来末梢血単核球（PBMC）を、Dynabeads TM Human T-Activator CD3/CD28 for T Cell Expansion and Activation（ベリタス、DB11131）で6日間刺激後、細胞を回収し10μg/mlの各種抗体（002_6_h4抗体、006_hKB抗体、ベンチマーク抗体（MEDI9447抗体）、アイソタイプコントロール抗体）を添加し、氷上で30分間インキュベーションした。
　細胞を洗浄後、FACS緩衝液（PBS、0.5％BSA、2 mM EDTA）に懸濁し、37℃で最大240分までインキュベートし、その間、30分、120分、240分に細胞試料をサンプリングし、それぞれの試料を蛍光標識二次抗体（APC anti-human IgG Fc）（BioLegend、409306）で細胞を染色してフローサイトメトリー解析に供試し、得られた蛍光強度に基づき抗体の内在化を評価した。抗体の内在化割合は下記計算式により算出した。
％対照＝（抗CD73抗体（X分）MFI－アイソタイプコントロール（X分）MFI）／（抗CD73抗体（0分）MFI－アイソタイプコントロール（0分）MFI）×100
　結果を図25に示す。002_6_h4および006_hKBは、各測定時間においてベンチマーク抗体より内在化の割合が大きかった。本結果からも、抗CD73抗体の取り込みに伴う抗原の細胞表面からの消失が誘導される可能性が示唆された。
　本発明の抗体で処理したがん細胞における、細胞表面CD73への内在化を、経時的に数値化した。ヒト乳がん細胞MDA-MB-231とヒトメラノーマ細胞HT-144を、MDA-MB-231はL-15培地（富士フイルム和光純薬、128-06075）、HT-144はMcCoy's 5A（Modified）（Gibco、16600082）の牛胎児血清無添加培地にそれぞれ懸濁後、10μg/mlの各種抗体（002_6_h4抗体、006_hKB抗体、ベンチマーク抗体（MEDI9447抗体）、アイソタイプコントロール抗体）を添加し、37℃で1時間、3時間、6時間、22時間および48時間インキュベーションした。
　再度各種抗体を10μg/mL添加して反応させ、細胞を洗浄後、蛍光標識二次抗体で細胞を染色して、フローサイトメトリー解析に供試し、得られた蛍光強度に基づき抗原の内在化を評価した。抗原の内在化割合は下記計算式により算出した。
％CD73 Ag＝（抗CD73抗体（X分）MFI－アイソタイプコントロール（X分）MFI）／（抗CD73抗体（0分）MFI－アイソタイプコントロール（0分）MFI）×100
　結果を図26に示す。002_6_h4、006_hKBおよびベンチマーク抗体は、いずれもがん細胞とインキュベーションすることで、時間経過とともにがん細胞表面のCD73発現量を減少させた。このことは、CD73に結合した抗CD73抗体が抗原とともに内在化することで、細胞表面のCD73発現量を低下させたことに基づくことが示唆された。
　実施例17：KD値の測定
　本実施例は、実施例6で得られた抗CD73抗体および実施例13で得られ、実施例14で特に高い効果を示した抗CD73抗体の、CD73抗原に対する結合親和性の指標である解離定数（KD値）を評価することを目的として行った。
　抗体の標的抗原に対する結合のKD値の測定は、Biacore 8K（GEヘルスケア）にて実施した。Human Antibody Capture Kit Type2（Cytiva、26-2346-00）を用いて002_6_h4抗体および006_hKB抗体の各抗体をセンサーチップ（CM5）に固定化した。ヒトCD73抗原を5×10-9 Mから4段階に段階希釈した溶液を作製し、マルチサイクルカイネティクス解析に供試した。1:1結合モデルにてKD値は、以下の表11に記載の通りであった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000011
　実施例18：ヒト免疫マウス試験
　本実施例は、実施例6で得られた抗CD73抗体および実施例13で得られ、実施例14で特に高い効果を示した抗CD73抗体の、ヒトCD34陽性細胞移植マウス体内における抗腫瘍効果を確認することを目的として行った。
　複数の健常人ドナーから作製したヒトCD34陽性細胞移植NSGマウス（hu-NSG, JACKSON laboratories）の乳腺皮下脂肪（Mammary fat pad）に対して、ヒト乳癌細胞株MDA-MB-231を移植し、ヒト乳癌細胞担持マウスモデルを作出した。このマウスモデルに移植したヒト乳癌細胞が増殖して100 mm3になった段階で002_6_h4抗体もしくはアイソタイプコントロール抗体を20 mg/kgの用量にて4日に一度、合計7回（「Q4Dx7」と示す）、腹腔投与した。投与開始日をday0とし、day34まで観察した。
　観察期間終了後に腫瘍を摘出し、Gentle MACS（ミルテニー）を用いて細胞サスペンションとした後、Human (hu)CD45 AF700 clone HI30（BioLegend）、huCD3 APCCy7 clone HITa（BioLegend）、huCD4 PECy7 clone SK3（BioLegend）、およびhuCD8 FITC clone SK1（BioLegend）を用いて細胞を染色し、腫瘍に浸潤したCD45+,CD3+, CD8+T細胞およびCD45+,CD3+, CD4+T細胞の量をフローサイトメトリーにより測定した。
　002_6_h4抗体もしくはアイソタイプコントロール抗体を投与後、day34においてマウス体内の腫瘍浸潤T細胞数を測定した結果を、図27に示す。腫瘍浸潤T細胞について、002_6_h4抗体を投与したことにより、アイソタイプコントロール抗体を投与した場合と比較して増加傾向が示され、抗CD73抗体が腫瘍免疫効果を有することが示唆された。
　本実施例においてはさらに、開発抗体がT細胞によるがん細胞傷害活性を増強させるかどうか、する場合はその程度を、ベンチマーク抗体と比較して確認した。
　RFPタンパクを導入したヒト肺がん細胞NCI-H292またはHCC827を96ウェルプレートに播種し、一晩培養した。翌日培地を除去した後、X-VIVO-15培地（Lonza、04-418Q）に懸濁したIL-2（終濃度30 IU）および各種抗体を添加し、37℃で30分間インキュベーションした。その後、Dynabeads TM Human T-Activator CD3/CD28 for T Cell Expansion and Activation（ベリタス、DB11131）で10日間刺激しT細胞増殖を行った健常人ボランティアPBMCを、E/T比2で添加し、37℃で30分間インキュベーション後、NCI-H292には終濃度500μM ATP、HCC827には終濃度300μM ATPを添加し、37℃、5％CO2条件下でIncuCyte ZOOM System（Sartorius）によりがん細胞増殖の経時変化を観察した。
　コントロールとして、アイソタイプコントロール抗体、ベンチマーク抗体（MEDI9447）に加えて、ガン細胞のPD-1抗原とT細胞のPD-L1抗原との相互作用を妨害してT細胞抑制を阻害し、T細胞を活性化させる働きがある抗PD-1抗体（ペムブロリズマブ、キートルーダ、MSD）および抗PD-L1抗体（アテゾリズマブ）を使用した。
　結果を図28に示す。開発抗体（本実施例においては、例として002_6_h4および006_hKBを使用したが、その他の本発明の開発抗体も同様）は、抗PD-1抗体および抗PD-1抗体を作用させてもT細胞抑制の解除の効果がほとんど見られず、がん細胞の増殖を止められない条件下で、T細胞のがん細胞の増殖抑制効果を増強させた。
　本実施例においてはさらに、マウスの中で模擬的に再現させたヒト免疫系の抗腫瘍効果を、002_6_h4が増強させることができるかどうか、動物実験により調べた。その際、臨床でその効果が立証されている抗PD-1抗体（ペムブロリズマブ）との併用投与による上乗せ効果が見られるかも確認しました。
　複数の健常人ドナーから作製したヒトCD34陽性細胞を移植したNSGマウス（hu-NSG, JACKSON laboratories）（以下、「免疫ヒト化マウス」と呼ぶ）の乳腺脂肪体（Mammary fat pad）に対して、ヒト乳癌細胞株MDA-MB-231を移植し、ヒト乳癌担持マウスモデルを作出した。このマウスモデルにおいて、移植したヒト乳癌細胞が増殖して100 mm3になった段階で、002_6_h4抗体もしくはアイソタイプコントロール抗体を、20 mg/kgの用量にて4日に一度、合計7回（「Q4Dx7」と示す）と、チェックポイント阻害剤（抗PD-1抗体であるペンブロリズマブ、キートルーダ、MSD）もしくはアイソタイプコントロール抗体を、初回のみ10 mg/kg、2回目以降は5 mg/kgの用量にて、5日に一度、合計6回（「Q5Dx6」と示す）を組み合わせて腹腔内投与した。投与開始日をday0とし、day34まで週2回腫瘍サイズの計測を行った。抗体の投与は以下の通りである：
Group 1＝アイソタイプコントロール抗体のみ投与群
Group 2＝002_6_h4抗体およびアイソタイプコントロール抗体投与群
Group 3＝チェックポイント阻害剤（ペンブロリズマブ）およびアイソタイプコントロール抗体投与群
Group 4＝002_6_h4抗体およびチェックポイント阻害剤（ペンブロリズマブ）の併用投与群。
　代表的なドナーにおける、Day0からday34までの腫瘍体積の増加率の各投与群の平均値と標準誤差を、図29に示す。ドナー#5910、ドナー＃0030ともに、併用投与群（Group 4）の平均腫瘍体積増加率は、対照群（Group 1）、およびチェックポイント阻害剤投与群（Group 3）に比較して低値を示した。
　さらにドナー＃0030では、002_6_h4抗体投与群（Group 2）では、対照群（Group 1）に比較して平均腫瘍体積増加率は低値を示し、抗CD73抗体は、免疫ヒト化マウスにおいて、単独あるいは、チェックポイント阻害剤（ペンブロリズマブ）との併用で抗腫瘍作用を有することが示唆された。
　実施例19：免疫不全マウス試験
　本実施例は、実施例6で得られた抗CD73抗体の、免疫不全マウス体内における抗腫瘍効果を確認することを目的として行った。
　NSGマウス（JACKSON laboratories）の乳腺皮下脂肪（Mammary fat pad）に対して、ヒト乳癌細胞株MDA-MB-231を移植した。移植したヒト乳癌細胞が増殖して100 mm3になった段階で、以下の表12に示す群構成にて002_6_h4抗体もしくはアイソタイプコントロール抗体を各用量にて4日に一度、合計7回（Q4Dx7）、腹腔投与した。投与開始日をday0とし、day35までを観察期間として週二回腫瘍サイズの計測を行った。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000012
　免疫不全マウス体内における腫瘍塊の体積変化の結果を、図30に示す。002_6_h4抗体は、アイソタイプコントロールと比較して腫瘍増殖を抑制する効果が示された。
　実施例20：抗腫瘍効果（ノックインモデル）
　本実施例は、実施例6で得られた抗CD73抗体の、ヒトCD73を発現するノックインマウス体内における抗腫瘍効果を確認することを目的として行った。
　マウスCD73に代替してヒトCD73を発現するノックインマウス（Biocytogen、B-hCD73 mice）の皮下に、マウスCD73を欠損しヒトCD73を発現する大腸がん細胞株（Biocytogen、MC38-hCD73）を5×10^5個移植した。移植したMC38-hCD73が増殖して50～80 mm3に達した段階で002_6_h4抗体もしくはアイソタイプコントロール抗体を10 mg/kgの用量にて週に2回、合計7回（「BIWx7」と示す）と、抗マウスPD-1抗体クローンRMP1-14（Bio X Cell、BE0146）もしくはラットIgG2aアイソタイプコントロール抗体（Bio X Cell、BE0089）を3 mg/kgの用量にて週に1回（「QWx4」と示す）を組み合わせて腹腔内投与した。3、4日ごとに腫瘍径を測定しながら投与開始日をday0とし、day18まで観察した。抗体の投与は以下の通りである：
Group 1＝アイソタイプコントロール抗体のみ投与群
Group 2＝002_6_h4抗体およびアイソタイプコントロール抗体投与群
Group 3＝チェックポイント阻害剤（抗マウスPD-1抗体）およびアイソタイプコントロール抗体投与群
Group 4＝002_6_h4抗体とチェックポイント阻害剤（抗マウスPD-1抗体）の併用投与を行った群。
　Day0からday18までの平均腫瘍体積の推移を各投与群の平均値と標準誤差として図31に示す。併用投与群（Group 4）の平均腫瘍体積は、対照群（Group 1）、およびチェックポイント阻害剤投与群（Group 3）に比較して低値を示し、抗CD73抗体はヒトCD73を発現するマウスにおいて、チェックポイント阻害剤との併用で抗腫瘍作用を有することが示唆された。
　本発明により得られた抗体またはヒト型抗体誘導体は、がん細胞あるいは免疫細胞に発現するCD73の機能を抑制し、免疫細胞（特にT細胞）の疲弊を解除することにより、免疫細胞を活性化し、腫瘍増殖抑制効果とがん治療効果を発揮する。
　本発明は、がんの治療・診断薬として幅広く使用可能である。本発明による抗体は免疫細胞の疲弊を解除する効果を有することから、特に他の免疫治療との併用治療において有効となることが期待される。

Claims (16)

  1. （1）　重鎖の相補性決定領域、CDR1（DX1NMD（X1はCまたはS）、SEQ ID No.: 1）、CDR2（DINPNNGGTIYNQKFKG、SEQ ID No.: 2）、およびCDR3（TNWDYAMDY、SEQ ID No.: 3）、および
    　軽鎖の相補性決定領域、CDR1（KASQDINSX2LS（X2はNまたはDまたはQ）、SEQ ID No.: 4）、CDR2（RANRLID、SEQ ID No.: 5）、およびCDR3（X3QYDVFPRT（X3はLまたはQ）、SEQ ID No.: 6）；
    （2）　重鎖の相補性決定領域、CDR1（SFGMH、SEQ ID No.: 9）、CDR2（YISSGSRTIYYADTVRG、SEQ ID No.: 10）、およびCDR3（DFGSSSPNYFDY、SEQ ID No.: 11）、および
    　軽鎖の相補性決定領域、CDR1（RASESVDNYGISFMN、SEQ ID No.: 12）、CDR2（AASNQGS、SEQ ID No.: 13）、およびCDR3（QQSKEVPWT、SEQ ID No.: 14）；
    （3）　重鎖の相補性決定領域、CDR1（GYWMN、SEQ ID No.: 17）、CDR2（RIDPYDSETHYSQKFKD、SEQ ID No.: 18）、およびCDR3（SSPITTAPFDY、SEQ ID No.: 19）、および
    　軽鎖の相補性決定領域、CDR1（RASESVDYYGFSFMN、SEQ ID No.: 20）、CDR2（AASTQGS、SEQ ID No.: 21）、およびCDR3（QQSKEVPYT、SEQ ID No.: 22）；
    （4）　重鎖の相補性決定領域、CDR1（SYGVS、SEQ ID No.: 25）、CDR2（VIWGDGSTNYHSALIS、SEQ ID No.: 26）、およびCDR3（TNIFYDYDWYLDV、SEQ ID No.: 27）、および
    　軽鎖の相補性決定領域、CDR1（RSSQSLVHSNGNTYLH、SEQ ID No.: 28）、CDR2（KVSNRFS、SEQ ID No.: 29）、およびCDR3（SHSTHVPWT、SEQ ID No.: 30）；
    （5）　重鎖の相補性決定領域、CDR1（SYWMH、SEQ ID No.: 33）、CDR2（EINPSNARTNYNENFKS、SEQ ID No.: 34）、およびCDR3（RGTSGNYFDF、SEQ ID No.: 35）、および
    　軽鎖の相補性決定領域、CDR1（KASQDINTYLS、SEQ ID No.: 36）、CDR2（RANRLVD、SEQ ID No.: 37）、およびCDR3（LQYDEFPYT、SEQ ID No.: 38）；
    （6）　重鎖の相補性決定領域、CDR1（SYWMN、SEQ ID No.: 41）、CDR2（KIDPYDSETHYNQKFKD、SEQ ID No.: 42）、およびCDR3（IRYGTFDY、SEQ ID No.: 43）、および
    　軽鎖の相補性決定領域、CDR1（KASQDINNYLS、SEQ ID No.: 44）、CDR2（RANILVD、SEQ ID No.: 45）、およびCDR3（LQYDEFPYT、SEQ ID No.: 46）；
    （7）　重鎖の相補性決定領域、CDR1（SYWMH、SEQ ID No.: 49）、CDR2（EINPSNGRTNYNEKFKN、SEQ ID No.: 50）、およびCDR3（RGTSGNYFDY、SEQ ID No.: 51）、および
    　軽鎖の相補性決定領域、CDR1（KASQDINTYLS、SEQ ID No.: 52）、CDR2（RANRLVD、SEQ ID No.: 53）、およびCDR3（LQYDEFPYT、SEQ ID No.: 54）；
    （8）　重鎖の相補性決定領域、CDR1（SYWMN、SEQ ID No.: 57）、CDR2（RIDPYDSEAHYNQKFKD、SEQ ID No.: 58）、およびCDR3（IRYGTFDY、SEQ ID No.: 59）、および
    　軽鎖の相補性決定領域、CDR1（KASQDINSYLS、SEQ ID No.: 60）、CDR2（RSNSLVD、SEQ ID No.: 61）、およびCDR3（LQYDEFPYT、SEQ ID No.: 62）；
    からなる群から選択されるいずれかの重鎖・軽鎖の相補性決定領域を含む、CD73抗原に対して結合性を有し、がん細胞に対する傷害性を有するT細胞を活性化する、抗体またはヒト型抗体誘導体。
  2. 　T細胞の活性化が、T細胞の増殖、T細胞のがん細胞に対する細胞傷害性の上昇、およびT細胞のサイトカイン分泌促進からなる群から選択される、請求項1に記載の抗体またはヒト型抗体誘導体。
  3. 　ヒト型抗体誘導体が、ヒト化抗体、キメラ抗体、多価抗体、および多重特異性抗体から選択されるヒト型抗体改変体またはその機能的断片から選択される、請求項1または2に記載の抗体またはヒト型抗体誘導体。
  4. 　機能的断片が、F（ab'）2である、請求項1～3のいずれか1項に記載の抗体またはヒト型抗体誘導体。
  5. 　抗体またはヒト型抗体誘導体の重鎖可変領域VHドメインのアミノ酸配列が、（1）SEQ ID No.: 7、（2）SEQ ID No.: 15、（3）SEQ ID No.: 23、（4）SEQ ID No.: 31、（5）SEQ ID No.: 39、（6）SEQ ID No.: 47、（7）SEQ ID No.: 55、および（8）SEQ ID No.: 63から選択される、請求項1～4のいずれか1項に記載の抗体またはヒト型抗体誘導体。
  6. 　抗体またはヒト型抗体誘導体の軽鎖可変領域VLドメインのアミノ酸配列が、（1）SEQ ID No.: 8、（2）SEQ ID No.: 16、（3）SEQ ID No.: 24、（4）SEQ ID No.: 32、（5）SEQ ID No.: 40、（6）SEQ ID No.: 48、（7）SEQ ID No.: 56、および（8）SEQ ID No.: 64から選択される、請求項1～5のいずれか1項に記載の抗体またはヒト型抗体誘導体。
  7. 　がん細胞に対する細胞傷害性を誘導するが、正常細胞に対する細胞傷害性を誘導しない、請求項1～6のいずれか1項に記載の抗体またはヒト型抗体誘導体。
  8. 　がん細胞が、メラノーマ、乳がん、肺がん、大腸がんからなる群から選択される、請求項1～7のいずれか1項に記載の抗体またはヒト型抗体誘導体。
  9. 　薬物と結合され、抗体薬物複合体（ADC）を形成する、請求項1～8のいずれか1項に記載の抗体またはヒト型抗体誘導体。
  10. 　請求項1～9のいずれか1項に記載の抗体またはヒト型抗体誘導体を含む、がん治療のための医薬組成物。
  11. 　がんが、メラノーマ、乳がん、肺がん、大腸がんからなる群から選択される、請求項10に記載の医薬組成物。
  12. 　被験体から採取されたがん細胞を、in vitroにおいて請求項1～9のいずれか1項に記載の抗体またはヒト型抗体誘導体と接触させる工程、
    　培養条件下で、がん細胞のAMP代謝が低下するかどうかを測定する工程、若しくは細胞生存率が低下するかどうかを測定する工程、若しくは免疫活性化物質の分泌が亢進するかどうかを測定する工程、
    を含む、がん細胞に対する細胞傷害性測定方法。
  13. 　同一被験体の末梢血リンパ球の存在下で、がん細胞の細胞生存率が低下するかどうか、若しくは末梢血リンパ球由来の免疫細胞が活性化するかどうかを測定する、請求項12に記載のがん細胞に対する細胞傷害性測定方法。
  14. 　被験体から採取されたがん細胞のin vitroでのAMP代謝抑制若しくは細胞傷害性から、請求項1～9のいずれか1項に記載の抗体またはヒト型抗体誘導体をその被験体に投与した場合のがん細胞に対する細胞傷害性の亢進を測定する、請求項12または13に記載のがん細胞に対する細胞傷害性測定方法。
  15. 　in vitroでの免疫活性化物質の分泌の亢進から、請求項1～9のいずれか1項に記載の抗体またはヒト型抗体誘導体をその被験体に投与した場合のがん細胞に対する細胞傷害性の亢進を測定する、請求項12または13に記載のがん細胞に対する細胞傷害性測定方法。
  16. 　請求項1～9のいずれか1項に記載の抗体またはヒト型抗体誘導体の、被験体から採取されたがん細胞に対するAMP代謝、細胞傷害性、免疫活性化物質の分泌、若しくは免疫細胞の活性化を、in vitroにおいて測定するための、前記抗体を含む測定キット。
     

     
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