WO2023054902A1 - 마이크로 캐리어, 세포 복합체 및 이를 포함하는 의료용 조성물, 미용 조성물, 의료 용품 및 미용 용품 - Google Patents

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    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2531/00—Microcarriers

Definitions

  • the present invention can implement excellent mechanical strength and stability, can be directly injected into the body after 3-dimensional culture without a cell detachment process, and provides a stable environment for adherent cells, thereby increasing cell viability and contributing to a high transplantation rate in the body. It relates to a microcarrier, and a cell composite including the same, a medical composition, a cosmetic composition, a medical product, and a cosmetic product.
  • Adherent cells are cultured using microcarriers in a 3D bioreactor.
  • Cells, culture medium, and microcarriers are placed in a bioreactor, and the culture medium is agitated to contact the cells and microcarriers, thereby attaching the cells to the surface of the microcarriers and culturing them.
  • the microcarrier used at this time provides a high surface area ratio (surface area/volume) on which cells can attach and proliferate, it is suitable for mass culture of cells.
  • a process of recovering the cells through a cell detachment process is necessarily accompanied after the culture is terminated.
  • the cell detachment process induces cell detachment by using a proteolytic enzyme or by changing the temperature. When such a detachment process is added, the manufacturing cost increases, resulting in poor economic feasibility and cell damage. .
  • a polymer suitable for application to the living body must be used for the microcarrier, and the stratum corneum of the skin It must have sufficient strength so that the deformation of the particles does not occur in the process of passing through the layer).
  • the microcarrier stably penetrating the transdermally can deliver the loaded drug locally or systemic and act on the necessary lesion.
  • Hyaluronic acid which is mainly used as a biocompatible material, is a biopolymer material composed of N-acetyl-D-glucosamine and D-glucuronic acid, and the repeating units are linearly connected. It is abundant in the vitreous humor of the eyeball, synovial fluid of the joint, and chicken comb. Hyaluronic acid is commonly used as a bioinjectable material due to its excellent biocompatibility and viscoelasticity, but its use is limited by itself because it is easily decomposed in vivo or under conditions such as acids and alkalis. In addition, when applied to a microcarrier, hyaluronic acid exhibits a negative charge in the biological pH range, and as a result, there is a problem in that cell adhesion is significantly lowered.
  • gelatin is a polymer hydrolyzed from collagen, a biological connective tissue, and is used as a scaffold for cell culture.
  • Cells can be collected or cultured, but the strength is weak and sensitive to temperature, so there is an effort to improve the strength by introducing a functional group using a chemical method.
  • microcarriers or polymeric microparticles that are suitable for living organisms and have excellent physical properties such as physical strength, stability against heat and enzymes, and excellent stability.
  • microcarrier that can be directly injected into the body after 3D culture without a cell detachment process, and can contribute to a high transplantation rate in the body while increasing cell survival rate by providing a stable environment for adherent cells.
  • the present invention can implement excellent mechanical strength and stability, can be directly injected into the body after 3-dimensional culture without a cell detachment process, and provides a stable environment for adherent cells, thereby increasing cell viability and contributing to a high transplantation rate in the body. This is to provide a microcarrier.
  • the present invention is to provide a cell complex comprising the microcarrier.
  • the present invention is to provide a medical composition comprising the above microcarrier or cell complex.
  • the present invention is to provide a cosmetic composition comprising the above microcarrier or cell complex.
  • the present invention is to provide a medical product comprising the above medical composition.
  • the present invention is to provide a cosmetic product comprising the above cosmetic composition.
  • a core including a first biocompatible polymer, a metal ion, and an organic crosslinking agent including one or more reactive functional groups; And a shell surrounding all or part of the core and including a second biocompatible polymer, a metal ion, and an organic crosslinking agent containing at least one reactive functional group; polymeric microparticles having a core-shell structure, and A microcarrier including a cell adhesion inducing layer formed on the surface of the polymeric microparticles is provided.
  • the micro carrier And cells attached to the surface of the microcarrier; containing, a cell complex is provided.
  • a medical composition comprising the above microcarrier or cell complex is also provided.
  • a cosmetic composition comprising the above microcarrier or cell complex is also provided.
  • a medical product containing the above medical composition is also provided.
  • a cosmetic product containing the above cosmetic composition is also provided.
  • microcarrier according to a specific embodiment of the present invention, and a cell composite including the microcarrier, a medical composition, a cosmetic composition, a medical product, and a cosmetic product will be described in more detail.
  • first element may also be termed a second element, and similarly, a second element may be termed a first element.
  • a (co)polymer refers to a polymer or a copolymer, and the polymer refers to a homopolymer composed of a single repeating unit, and the copolymer refers to a multipolymer containing two or more types of repeating units.
  • microparticles mean that the cross section of the particle is circular or elliptical, and the ratio (sphericity) of the short axis/major axis of the particle is in the range of 0.7 to 1.0.
  • the lengths of the short axis and the major axis of the particle can be derived by taking an optical picture of the particle and calculating an average value of 30 to 100 arbitrary particles in the optical picture.
  • the diameter (Dn) means the diameter at the n volume% point of the cumulative distribution of the number of particles according to the diameter. That is, D50 is the diameter at the 50% point of the particle number cumulative distribution when the particle diameters are accumulated in ascending order, D90 is the diameter at the 90% point of the particle number cumulative distribution according to the diameter, and D10 is the diameter at the 90% point of the particle number cumulative distribution according to the diameter. It is the diameter at the 10% point of the particle number cumulative distribution.
  • the Dn can be measured using a laser diffraction method. Specifically, after dispersing the powder to be measured in a dispersion medium, it is introduced into a commercially available laser diffraction particle size measuring device (Horiba LA-960) to measure the difference in diffraction pattern according to the particle size when the particles pass through the laser beam to determine the particle size distribution.
  • yield D10, D50 and D90 can be measured by calculating the particle diameters at the points that become 10%, 50% and 90% of the particle number cumulative distribution according to the diameter in the measuring device. More specifically, in the present specification, the diameter may mean D50.
  • an emulsion means a mixed phase in which at least one of oil phase or aqueous phase immiscible liquids is dispersed in another liquid (dispersion medium) in a fine particle state (dispersion medium).
  • Emulsions can be generally divided into macroemulsions, microemulsions, and nanoemulsions according to the particle size of the dispersed phase.
  • a core comprising a first biocompatible polymer, a metal ion, and an organic crosslinking agent including at least one reactive functional group; And a shell surrounding all or part of the core and including a second biocompatible polymer, a metal ion, and an organic crosslinking agent containing at least one reactive functional group; polymeric microparticles having a core-shell structure, and A microcarrier including a cell adhesion inducing layer formed on the surface of the polymeric microparticles may be provided.
  • the present inventors conducted research on polymeric microparticles, and, as described above, after crosslinking with metal ions, process efficiency was maximized as additional crosslinking reactions proceeded, and at the same time, mechanical strength and cell adhesion of microparticles were improved. This remarkable improvement was confirmed through experiments and the invention was completed.
  • the microcarrier of one embodiment includes a cell adhesion inducing layer formed on the surface of the polymeric microparticles, it is possible to directly inject into the body after 3-dimensional culture without a cell detachment process, and the microcarrier stably adheres to the cells. By forming a complex in an attached state, it was confirmed through experiments that a high cell survival rate and a high transplantation rate can be implemented, and the invention was completed.
  • the core includes a polymer matrix in which the first biocompatible polymer is crosslinked with a metal ion and an organic crosslinking agent containing at least one reactive functional group
  • the shell includes a second biocompatible polymer with a metal ion. It may include a polymer matrix crosslinked by an organic crosslinking agent containing one or more ionic and reactive functional groups.
  • the polymer matrix includes a first cross-linked region in which a biocompatible polymer is cross-linked through metal ions; and a second cross-linking region in which the biocompatible polymer is cross-linked with an organic cross-linking agent containing at least one reactive functional group.
  • the first crosslinking region refers to a crosslinking region formed by a crosslinking reaction between a biocompatible polymer and metal ions
  • the second crosslinking region contains one or more reactive functional groups instead of a crosslinking reaction between a biocompatible polymer and metal ions. It may refer to a crosslinking region formed through a crosslinking reaction with an organic crosslinking agent and a crosslinking region formed through an additional crosslinking reaction of an organic crosslinking agent containing at least one reactive functional group with the first crosslinking region. That is, the polymeric microparticles of the above embodiment may be prepared through a crosslinking reaction using a metal ion and an organic crosslinking agent containing at least one reactive functional group.
  • the biocompatible polymer refers to a polymer that can be directly injected into the human body in order to deliver active substances applied to the human body.
  • the biocompatible polymer is hyaluronic acid (HA), carboxymethyl cellulose (CMC), alginic acid, pectin, carrageenan, chondroitin (sulfate), dextran (sulfate), chitosan, polylysine, collagen, gelatin, carboxymethyl chitin, fibrin, agarose, pullulan, polylactide, polyglycolide (PGA), polylactide-glycolide copolymer (PLGA), poly polyanhydride, polyorthoester, polyetherester, polycaprolactone, polyesteramide, poly(butyric acid), poly(valeric acid), Polyurethane, polyacrylate, ethylene-vinyl acetate polymer, acrylic substituted cellulose acetate, non-degradable polyurethane, polystyrene, polyvin
  • the biocompatible polymer may be a mixture of hyaluronic acid (HA) and gelatin.
  • Polymer microparticles prepared using only hyaluronic acid are easily degraded in vivo or under conditions such as acids and alkalis, and their use is limited, and their cell adhesion is significantly reduced. Polymer microparticles have significantly reduced mechanical properties.
  • HA hyaluronic acid
  • gelatin a biocompatible polymer
  • the first biocompatible polymer may include hyaluronic acid
  • the second biocompatible polymer may include gelatin.
  • hyaluronic acid may mean including both hyaluronic acid itself and hyaluronic acid salts.
  • the hyaluronic acid aqueous solution may be a concept including all of a hyaluronic acid aqueous solution, a hyaluronic acid salt aqueous solution, and a mixed aqueous solution of hyaluronic acid and a hyaluronic acid salt.
  • the hyaluronic acid salt may be an inorganic salt such as sodium hyaluronate, potassium hyaluronate, calcium hyaluronate, magnesium hyaluronate, zinc hyaluronate, or cobalt hyaluronate, an organic salt such as tetrabutylammonium hyaluronate, or a mixture thereof.
  • the molecular weight of hyaluronic acid is not particularly limited, but is preferably 10,000 g/mol or more and 5,000,000 g/mol or less in order to realize various physical properties and biocompatibility.
  • gelatin may refer to a protein obtained by treating animal-derived collagen with acid or alkali and subsequently extracting it.
  • the molecular weight of gelatin is not particularly limited, but is preferably 10,000 g/mol or more and 5,000,000 g/mol or less in order to realize various physical properties and biocompatibility.
  • the polymeric microparticles may have a core-shell structure.
  • the core-shell structure is realized by the difference in reactivity between the biocompatible polymer and the organic crosslinking agent containing one or more metal ions and reactive functional groups, as the polymer matrix included in the polymer microparticles includes two or more biocompatible polymers. It can be.
  • the core contains more than 50% by volume of a polymer matrix in which hyaluronic acid is crosslinked through an organic crosslinking agent containing at least one metal ion and a reactive functional group, based on the total volume of the polymer matrix included in the core. 60 vol% or more, 70 vol% or more, or 75 vol% or more. In addition, it may contain 100 vol% or less, 100 vol% or less, 95 vol% or less, or 90 vol% or less.
  • the core may contain an excess of hyaluronic acid relative to gelatin.
  • the hyaluronic acid containing a polymer matrix crosslinked through an organic crosslinking agent containing one or more metal ions and one or more reactive functional groups in an amount of more than 50% by volume means that the area is equal to the total area of the core. Distribution exceeding 50% can be confirmed by visual or measuring equipment.
  • the calculation of the volume ratio of the polymer matrix in which hyaluronic acid is crosslinked with the organic crosslinker containing one or more metal ions and one or more reactive functional groups with respect to the total volume of the polymer matrix included in the core is not greatly limited, and the normal measurement method can be calculated.
  • the characteristic peak (1650 cm -1 ) of gelatin of the prepared polymeric microparticles It can be confirmed by taking an IR picture for the hyaluronic acid characteristic peak (1080 cm ⁇ 1 ) relative to each other.
  • the shell contains more than 50% by volume of the polymer matrix in which gelatin is crosslinked via an organic crosslinking agent containing one or more metal ions and one or more reactive functional groups, based on the total volume of the polymer matrix included in the shell. It may contain more than 70% by volume, more than 70% by volume, or more than 75% by volume. In addition, it may contain 100 vol% or less, 100 vol% or less, 95 vol% or less, or 90 vol% or less.
  • the shell may contain an excess of gelatin relative to hyaluronic acid.
  • gelatin containing more than 50% by volume of the polymer matrix crosslinked through an organic crosslinking agent containing one or more metal ions and one reactive functional group means that the area is less than 50% of the total area The distribution exceeding % can be confirmed by checking visually or through measuring equipment.
  • Calculation of the volume ratio of the polymer matrix in which gelatin is cross-linked through an organic cross-linking agent containing one or more metal ions and one or more reactive functional groups to the total volume of the polymer matrix included in the shell is not particularly limited and can be calculated by a conventional measurement method.
  • Hyaluronic acid is mediated by an organic cross-linking agent containing a metal ion and one or more reactive functional groups, and a core containing a polymer matrix at least 50% by volume
  • gelatin is mediated by an organic cross-linking agent containing a metal ion and one or more reactive functional groups.
  • a core-shell structure including a shell containing 50 vol% or more of a crosslinked polymer matrix may be implemented according to physical and chemical factors such as solubility, temperature reactivity, and ionic bonding. More specifically, in the process of manufacturing polymeric microparticles, gelatin, which has low solubility in polar solvents such as ethanol and high temperature responsiveness, has low fluidity and is fixed on the particle surface to form a shell. More hyaluronic acid can be distributed inside the particle to form a core.
  • a mixture containing a biocompatible polymer and metal ions is reacted to crosslink the polymer.
  • the core-shell structure can be further clarified due to the ionic bond between the metal ion and the carboxyl group included in the hyaluronic acid.
  • the polymer microparticles may have an average diameter of 1 ⁇ m or more, 1 ⁇ m or more and 450 ⁇ m or less, 100 ⁇ m or more and 450 ⁇ m or less, or 200 ⁇ m or more and 400 ⁇ m or less, or 300 ⁇ m or more and 400 ⁇ m or less in distilled water.
  • the average diameter of the microparticles satisfies the above range, cell attachment and culture performance are excellent.
  • the average diameter may refer to a diameter at a point of 50% by volume of the cumulative distribution of the number of particles according to the diameter.
  • the thickness of the shell is 95% or less, 90% or less, 80% or less, 75% or less, 50% or less of the longest diameter of the polymeric microparticles based on the cross section having the longest diameter of the polymeric microparticles. or less, 30% or less, 25% or less, or 20% or less. Also, based on the cross section having the longest diameter of the polymeric microparticles, the thickness of the shell may be 0.01% or more, 1% or more, or 5% or more of the longest diameter of the polymeric microparticles.
  • the thickness of the core is 5% or more, 10% or more, 20% or more, 25% or more of the longest diameter of the polymeric microparticles, It may be 50% or more, 70% or more, 75% or more, or 80% or more. Further, based on the cross section having the longest diameter of the polymeric microparticles, the thickness of the core may be 99.99% or less, 99% or less, or 95% or less of the longest diameter of the polymeric microparticles.
  • the polymeric microparticles may have a sphericity of 0.9 or more and 1.0 or less, 0.93 or more and 1.0 or less, 0.94 or more and 0.99 or less, or 0.94 or more and 0.98 or less.
  • the degree of sphericity can be obtained by taking an optical photograph of the polymer microparticles and calculating an average value of 30 to 100 arbitrary particles in the optical photograph.
  • the polymeric microparticles have an average compressive strength of 0.1 mN or more, 0.1 mN or more and 100 mN or less, 0.3 mN or more and 100 mN or less, 0.35 mN or more and 100 mN or less, 0.35 mN or more and 30 mN or less, 0.35 mN or more and 10 mN or less, or 0.35 mN or more and 3 mN or less.
  • the average compressive strength may be a value obtained by dividing the compressive strength when the n polymeric microparticles are deformed by 25% of their average diameter by n.
  • the average compressive strength may be a value obtained by dividing the compressive strength of 30 polymeric microparticles by 30 when they are deformed at a level of 25% of the average diameter.
  • an example of a method for preparing polymeric microparticles included in the microcarrier of the embodiment is not particularly limited, but includes, for example, reacting a mixture including a biocompatible polymer and metal ions to form crosslinked polymeric particles; and further cross-linking the polymeric cross-linked particles in a polar solvent containing an organic cross-linking agent containing at least one reactive functional group.
  • the inventors of the present invention as in the method for producing the polymeric microparticles, maximized process efficiency by proceeding with an additional crosslinking reaction using an organic crosslinking agent containing at least one reactive functional group after crosslinking by metal ions, and at the same time, micro It was confirmed through experiments that the mechanical strength and stability of the particles were remarkably improved, and the invention was completed.
  • the biocompatible polymer refers to a polymer that can be directly injected into the human body in order to deliver active substances applied to the human body.
  • the biocompatible polymer is hyaluronic acid (HA), carboxymethyl cellulose (CMC), alginic acid, pectin, carrageenan, chondroitin (sulfate), dextran (sulfate), chitosan, polylysine, collagen, gelatin, carboxymethyl chitin, fibrin, agarose, pullulan, polylactide, polyglycolide (PGA), polylactide-glycolide copolymer (PLGA), poly polyanhydride, polyorthoester, polyetherester, polycaprolactone, polyesteramide, poly(butyric acid), poly(valeric acid), Polyurethane, polyacrylate, ethylene-vinyl acetate polymer, acrylic substituted cellulose acetate, non-degradable polyurethane, polystyrene, polyvin
  • the biocompatible polymer may be a mixture of hyaluronic acid (HA) and gelatin.
  • Polymer microparticles prepared using only hyaluronic acid are easily degraded in vivo or under conditions such as acids and alkalis, and their use is limited, and their cell adhesion is significantly reduced. Polymer microparticles have significantly reduced mechanical properties.
  • HA hyaluronic acid
  • gelatin a biocompatible polymer
  • hyaluronic acid may mean including both hyaluronic acid itself and hyaluronic acid salts.
  • the hyaluronic acid aqueous solution may be a concept including all of a hyaluronic acid aqueous solution, a hyaluronic acid salt aqueous solution, and a mixed aqueous solution of hyaluronic acid and a hyaluronic acid salt.
  • the hyaluronic acid salt may be an inorganic salt such as sodium hyaluronate, potassium hyaluronate, calcium hyaluronate, magnesium hyaluronate, zinc hyaluronate, or cobalt hyaluronate, an organic salt such as tetrabutylammonium hyaluronate, or a mixture thereof.
  • the molecular weight of hyaluronic acid is not particularly limited, but is preferably 10,000 g/mol or more and 5,000,000 g/mol or less in order to realize various physical properties and biocompatibility.
  • gelatin may refer to a protein obtained by treating animal-derived collagen with acid or alkali and subsequently extracting it.
  • the molecular weight of gelatin is not particularly limited, but is preferably 10,000 g/mol or more and 5,000,000 g/mol or less in order to realize various physical properties and biocompatibility.
  • the mixture of hyaluronic acid (HA) and gelatin is 50 parts by weight or more and 500 parts by weight or less, 100 parts by weight of gelatin based on 100 parts by weight of hyaluronic acid (HA). 500 parts by weight or less, or 100 parts by weight or more and 300 parts by weight or less.
  • hyaluronic acid hyaluronic acid
  • HA hyaluronic acid
  • the mixture of hyaluronic acid (HA) and gelatin contains 50 parts by weight or more and 500 parts by weight or less of gelatin with respect to 100 parts by weight of hyaluronic acid (HA), thereby exhibiting excellent cell adhesion and mechanical mechanical properties.
  • Polymer microparticles capable of realizing physical properties can be prepared.
  • the metal ions include iron ions (Fe 3+ ), aluminum ions (Al 3+ ), copper ions (Cu 2+ ), iron ions (Fe 2+ ), and magnesium ions (Mg 2+ ). , barium ions (Ba 2+ ), calcium ions (Ca 2+ ), and the like. More specifically, the metal ion may be an iron ion, an aluminum ion, or a mixture thereof.
  • the step of reacting the mixture containing the biocompatible polymer and metal ions to form crosslinked polymeric particles may include forming an aqueous solution in which the biocompatible polymer is dissolved; forming a solution containing the metal ion by adding the compound containing the metal ion to a polar solvent; and forming a mixed solution by mixing droplets of an aqueous solution in which the biocompatible polymer is dissolved and a solution containing the metal ion.
  • the aqueous solution in which the biocompatible polymer is dissolved is 0.01% by weight or more and 10% by weight or less, 0.01% by weight or more of the biocompatible polymer based on the weight of the aqueous solution in which the entire biocompatible polymer is dissolved. 5 wt% or less, 1 wt% or more and 5 wt% or less, 1 wt% or more and 3 wt% or less, 2 wt% or more and 3 wt% or less, 2 wt% or more and 2.5 wt% or less.
  • the step of adding the metal ion-containing compound to a polar solvent to form a metal ion-containing solution is not particularly limited, but may be formed, for example, by dispersing a metal ion-containing compound in a polar solvent such as ethanol. there is.
  • the size of the particles can be appropriately controlled using an encapsulator (BUCHI, B-390) device.
  • Forming a mixed solution by mixing droplets of the aqueous solution in which the biocompatible polymer is dissolved and a solution containing the metal ion, the metal ion is chelated to the biocompatible polymer and the biocompatible polymer is crosslinked via the metal ion structure can be formed.
  • the crosslinking reaction is performed using only an organic crosslinking agent containing at least one reactive functional group as it includes the step of forming polymeric crosslinked particles by reacting a mixture containing a biocompatible polymer and metal ions.
  • microparticles can be prepared in a polar solvent without using oil, so the oil washing process is omitted, so the effect of improving process efficiency can be realized.
  • the metal ion is chelated to the biocompatible polymer and the biocompatible polymer forms a crosslinking structure through the metal ion
  • oil is used compared to the case where the crosslinking reaction is carried out using only an organic crosslinking agent containing one or more reactive functional groups. Since the microparticles can be prepared in a polar solvent without the oil washing process being omitted, the effect of improving process efficiency can be realized.
  • the compound containing the metal ion may be included in an amount of 200 parts by weight or more and 1000 parts by weight or less, 300 parts by weight or more and 1000 parts by weight or less, or 500 parts by weight or more and 1000 parts by weight or less, based on 100 parts by weight of the biocompatible polymer. .
  • the method for producing the polymeric microparticles includes metal ions in an amount of 200 parts by weight or more and 1000 parts by weight or less with respect to 100 parts by weight of the biocompatible polymer as additional crosslinking reaction proceeds after the crosslinking reaction by metal ions as described above. Even a small amount of the mixture can be used to prepare polymeric microparticles having sufficient mechanical strength and sphericity.
  • the content of the metal ion-containing compound exceeds 1000 parts by weight based on 100 parts by weight of the biocompatible polymer, a technical problem may occur in that a residual amount of the metal ion remains in the crosslinked particles.
  • the organic crosslinking agent containing one or more reactive functional groups may include a crosslinking agent having 1 to 30 carbon atoms and containing one or more reactive functional groups.
  • the type of the reactive functional group is not particularly limited, but examples thereof include a hydroxy group, an epoxy group, a carboxy group, an amino group, a (meth)acrylate group, a nitrile group, a thiol group, an aldehyde group, or a vinyl group.
  • the organic crosslinking agent including one or more reactive functional groups may include one or more or two or more formyl groups or epoxy groups.
  • the formyl group or epoxy group may be a cross-linkable functional group that reacts with the aforementioned biocompatible polymer to form cross-linked particles.
  • examples of the organic crosslinking agent containing one or more reactive functional groups are not particularly limited.
  • the crosslinking agent is glutaraldehyde, butanediol diglycidyl ether (1,4-butandiol diglycidyl ether: BDDE), ethylene glycol diglycidyl ether (EGDGE), hexanediol diglycidyl Cidyl ether (1,6-hexanediol diglycidyl ether), propylene glycol diglycidyl ether, polypropylene glycol diglycidyl ether, polytetramethylene glycol diglycidyl Ether (polytetramethylene glycol diglycidyl ether), neopentyl glycol diglycidyl ether, polyglycerol polyglycidyl ether, diglycerol polyglycidyl ether, glycerol Polyglycerol Polyglycerol Polyglycerol Polyg
  • the organic crosslinking agent containing one or more reactive functional groups may be glutaraldehyde or butanediol diglycidyl ether (BDDE).
  • BDDE butanediol diglycidyl ether
  • the organic crosslinking agent containing one or more reactive functional groups is based on 100 parts by weight of the biocompatible polymer. 150 parts by weight or more and 1000 parts by weight or less, 200 parts by weight or more and 1000 parts by weight or less, 300 parts by weight or more and 800 parts by weight or less, 400 parts by weight or more and 500 parts by weight or less.
  • the method for producing the polymeric microparticles includes at least one reactive functional group in an amount of 150 parts by weight or more and 1000 parts by weight or less based on 100 parts by weight of the biocompatible polymer, as an additional crosslinking reaction is performed after the crosslinking reaction.
  • Polymer microparticles having sufficient mechanical strength and sphericity can be prepared even by adding a small amount of an organic crosslinking agent.
  • the content of the organic crosslinking agent containing one or more reactive functional groups exceeds 1000 parts by weight based on 100 parts by weight of the biocompatible polymer, a technical problem may arise in that a residual amount of unreacted crosslinking agent remains in the crosslinked particles.
  • the polar solvent is not particularly limited, but, for example, ethanol, N,N-dimethylformamide , N,N-dimethylacetamide, N-methyl-2-pyrrolidone, N-methylcaprolactam, 2-pyrrolidone, N-ethylpyrrolidone, N-vinylpyrrolidone, dimethylsulfoxide, tetra Methylurea, pyridine, dimethylsulfone, hexamethylsulfoxide, gamma-butyrolactone, 3-methoxy-N,N-dimethylpropanamide, 3-ethoxy-N,N-dimethylpropanamide, 3-butoxy- N,N-dimethylpropanamide, 1,3-dimethyl-imidazolidinone, ethyl amyl ketone, methyl
  • the polar solvent containing an organic crosslinking agent containing one or more reactive functional groups may be an alkaline mixed solvent.
  • the additional crosslinking reaction of the present invention may proceed on an alkaline mixed solvent in which an aqueous alkali solution is mixed with a polar solvent.
  • aqueous alkali solution are not particularly limited, but may be, for example, aqueous sodium hydroxide solution.
  • the polar solvent including the organic crosslinking agent containing one or more reactive functional groups is an alkaline mixed solvent, it is possible to increase the efficiency of the crosslinking reaction by creating a favorable environment for the nucleophilic substitution reaction ( SN reaction).
  • the microcarrier of one embodiment may include a cell adhesion inducing layer formed on the surface of the polymeric microparticles.
  • the cell adhesion inducing layer is composed of cell adhesion materials, and allows adherent cells to be stably attached, spread, and cultured.
  • the cell adhesion inducer layer is gelatin, collagen, fibronectin, chitosan, polydopamine, poly-L-lysine, vitronectin, peptides including RGD, acrylic polymers including RGD, lignin, cationic dextran and at least one cell adhesion substance selected from the group consisting of derivatives thereof.
  • the cell adhesion inducer layer is gelatin, collagen, fibronectin, chitosan, polydopamine, poly-L-lysine, vitronectin, peptides including RGD, acrylic polymers including RGD, lignin, cationic It may include a cell adhesion substance including one selected from the group consisting of dextran and derivatives thereof, or a mixture of two or more kinds thereof.
  • the cell adhesion inducing layer may be formed on the surface of the polymeric microparticles. That is, the cell adhesion inducing layer may directly contact the surface of the polymeric microparticles, or the cell adhesion inducing layer may contact the surface of another layer contacting the surface of the polymeric microparticles.
  • the microcarriers include a cell adhesion induction layer formed to directly contact the surface of the polymeric microparticles, and the floating degree of the microcarriers in the culture medium can be controlled by introducing a cell adhesion induction layer on the surface of the microcarriers. and can have the effect of stably attaching and culturing cells.
  • the cell adhesion inducing layer may have a layer thickness of 1 nm to 10,000 nm, or 10 nm to 1000 nm, or 50 nm to 500 nm, or 80 nm to 200 nm, and the layer thickness of the cell adhesion inducing layer is It can be obtained through the value obtained by subtracting the radius of the polymeric microparticles inside from the radius of the entire microcarrier.
  • the radius means 1/2 of the diameter. Examples of methods for measuring the diameter are not particularly limited, but may be measured through, for example, confocal fluorescence microscopy, electron transmission microscopy (TEM), cross-sectional IR, or cross-sectional SEM images.
  • the microcarriers may have an average diameter of 1 ⁇ m to 1,000 ⁇ m, or 10 ⁇ m to 1000 ⁇ m, or 100 ⁇ m to 1,000 ⁇ m, or 100 ⁇ m to 800 ⁇ m.
  • An example of a method for measuring the diameter is not particularly limited, but can be measured through an optical microscope, for example.
  • the ratio of the radius of the polymeric microparticles to the thickness of the cell adhesion inducing layer may be 1:0.00001 to 1:0.1, or 1:0.0001 to 1:0.01.
  • the ratio of the radius of the polymeric microparticles to the thickness of the cell adhesion inducing layer is less than 1:0.00001, the cell adhesion inducing layer is too thin compared to the polymeric microparticles, and there is a concern that the degree of adhesion between cells and microcarriers may be reduced during cell culture , When the ratio exceeds 1:0.1, the cell adhesion inducer layer is thicker than the polymeric microparticles, and the physical properties such as hydrophilicity of the polymeric microparticles are changed, thereby reducing dispersibility.
  • the microcarrier has a cell adhesion calculated by the following formula of 2000% or more, or 2500% or more, or 2900% or more, or 4000% or less, or 2000% to 4000%, or 2500% to 4000%, or 2900% to 4000%.
  • the cell culture medium, cells, and culture conditions are not particularly limited, and various previously known cell culture solutions, cells, and culture conditions can be applied without limitation.
  • the method of measuring the number of cells is not particularly limited, and various methods of measuring the number of cells known in the art can be applied without limitation.
  • the microcarrier has a cell adhesion calculated by the following formula of 2000% or more, or 2500% or more, or 2900% or more, or 4000% or less, or 2000% to 4000%, or 2500% to 4000%, or 2900% to 4000%, the cell adhesion of the microcarrier is improved, and through this, there is an advantage in that mass expansion of adherent cells is possible by increasing the surface efficiency through three-dimensional expansion culture.
  • the cell adhesiveness calculated by the following formula does not reach the above range, the cell adhesiveness of the surface of the microcarrier is weak, making it difficult for the three-dimensional expansion culture to proceed sufficiently.
  • the microcarrier may further include a polymer primer layer formed on the surface of the polymeric microparticles.
  • a mixed layer of one type of primer polymer layer and one type of cell adhesion inducing layer may be further included on the surface of the polymer microparticle.
  • the stacking order is not particularly limited. are all applicable.
  • the primer polymer layer serves as an adhesive layer capable of introducing functional polymers to the surface of the polymeric microparticles, thereby effectively introducing a polymer layer for cell attachment to the surface of the microcarrier and stably maintaining it during culture.
  • primer polymer layer examples include L-dihydroxyphenylalanine (L-DOPA), dopamine, polydopamine, and norepinephrine. , epinephrine, epigallocatechin, and any one or more selected from the group consisting of derivatives thereof.
  • L-DOPA L-dihydroxyphenylalanine
  • dopamine dopamine
  • polydopamine polydopamine
  • norepinephrine norepinephrine
  • epinephrine epigallocatechin
  • epigallocatechin any one or more selected from the group consisting of derivatives thereof.
  • the microcarrier may be a microcarrier for cell culture.
  • the micro carrier of one embodiment; And cells attached to the surface of the microcarrier; including, a cell complex may be provided.
  • the contents of the microcarrier may include all of the above-described contents in the embodiment.
  • the cell complex according to another embodiment can realize a high transplantation rate in the body while increasing cell viability by forming the complex in a state in which the cells are stably attached to the microcarrier.
  • Examples of the cells are not particularly limited to adherent animal cells, but examples include fibroblasts, epithelial cells, osteoblasts, chondrocytes, hepatocytes, and human-derived cord blood cells. , human bone marrow-derived mesenchymal stem cells, Chinese hamster ovary (CHO) cells, renal cells (HEK293, BHK21, MDCK, vero cells, etc.), or a mixture of two or more thereof.
  • the density of the cells may be greater than or equal to 1.02 g/cm 3 and less than 1.1 g/cm 3 .
  • the cells may be attached to the surface of the microcarrier. That is, cells may directly contact the surface of the microcarrier, or cells may contact the surface of another layer contacting the surface of the microcarrier.
  • a medical composition comprising the microcarrier of one embodiment or the cell complex of another embodiment may be provided.
  • the contents of the microcarrier may include all of the above-described contents in the embodiment.
  • Information about the cell complex may include all of the information described above in the other embodiments.
  • the pharmaceutically effective substance may exist in a state contained in the polymeric microparticles.
  • Examples of the pharmaceutically effective substance are not particularly limited, and depending on the application purpose of the polymeric microparticles of the embodiment, an active substance suitable for the purpose may be applied without limitation. That is, specific examples of the pharmaceutically effective substance are not limited, and include ampetaminol, arecolin, atropine, bupranolol, buprenorphine, and capsaicin.
  • carisoprodol chlorpromazine, ciclopirox olamine, cocaine, desipramine, dyclonine, epinephrine , ethosuximide, floxetine, hydromorphine, imipramine, lidocaine, methamphetamine, melproic acid, methylphenidate ( methylpenidate, morphine, oxybutynin, nadolol, nicotine, nitroglycerin, pindolol, prilocaine, procaine ), propanolol, rivastigmine, scopolamine, selegiline, tulobuterol, valproic acid, donepezil, etc.
  • EPO Erythropoietin
  • human growth hormone hGH
  • Exenatide GLP-1 (Glucagon-like peptide-1)
  • insulin CSF (Granulocyte colony-stimulating factor)
  • PTH progesterone parathyroid hormone
  • the addition amount of the pharmaceutically effective substance is also not significantly limited, and the content can be used without limitation depending on the application purpose and subject.
  • the active material may be included in an amount of 0.0001 parts by weight or more and 1000000 parts by weight or less based on 100 parts by weight of the polymeric microparticles, without limitation in a small amount or excessive amount relative to the polymeric microparticles.
  • a cosmetic composition comprising the microcarrier of one embodiment or the cell complex of another embodiment.
  • the contents of the microcarrier may include all of the above-described contents in the embodiment.
  • Information about the cell complex may include all of the information described above in the other embodiments.
  • the cosmetically effective substance may exist in a state contained in the polymeric microparticles.
  • Examples of the effective cosmetic substance are not particularly limited, and depending on the application purpose of the polymeric microparticles of the embodiment, an effective substance suitable for the corresponding purpose may be applied without limitation. That is, specific examples of the cosmetically effective substance are not limited, and there are natural extracts, proteins, vitamins, enzymes, antioxidants, etc., and all substances with proven cosmetic effects are applicable without limitation.
  • the addition amount of the cosmetically effective substance is also not significantly limited, and the content can be used without limitation depending on the application purpose and subject.
  • the cosmetically effective substance may be included in an amount of 0.0001 parts by weight or more and 1000000 parts by weight or less based on 100 parts by weight of the polymeric microparticles, in a small amount or excessive amount relative to the polymeric microparticles.
  • a medical product comprising the medical composition of the other embodiment.
  • Information about the medical composition may include all of the information described above in the other embodiment.
  • the examples of the above medical supplies are not greatly limited, they are suitable for cases where the properties of the present invention are to be inserted into the body or to be maintained for a long period of time. , wound healing agents, and the like.
  • the present invention may provide a cosmetic product comprising the cosmetic composition of the other embodiment.
  • Information about the cosmetic composition may include all of the information described above in the other embodiment.
  • Examples of the cosmetic products are not greatly limited, but in order to implement the characteristics of the present invention, for example, cosmetic creams, lotions, hair gels, packs, and the like.
  • the structure of the cosmetic pack is not greatly limited, for example, it may include a support and a cosmetically effective substance delivery layer formed on the support and including the polymeric microparticles of the other embodiments.
  • the support include woven fabric, nonwoven fabric, silicone, polyethylene terephthalate, polyethylene, polypropylene, polyurethane, metal mesh, and polyester.
  • a microcarrier that may be used, a cell composite including the same, a medical composition, a cosmetic composition, a medical product, and a cosmetic product may be provided.
  • Figure 1 is an optical microscope (OM) picture of the polymer microparticles of Example 1.
  • Example 2 is an IR photograph of the gelatin characteristic peak (1650 cm -1 ) of the polymeric microparticles of Example 1.
  • Figure 3 shows the characteristic peak (1650 cm -1 ) of gelatin of the polymeric microparticles of Example 1. This is an IR photograph of the hyaluronic acid characteristic peak (1080 cm -1 ) relativized for
  • hyaluronate weight average molecular weight: 500 kDa
  • gelatin gel strength: 300 g Bloom
  • the formed droplet was added to 80 mL of an ethanol solution to which 4 g of FeCl 3 , a compound containing iron ions (Fe 3+ ), was added using an encapsulator device, and at 4 ° C.
  • the cross-linked particles were prepared by washing with ethanol.
  • FIG. 1 An optical microscope (OM) photograph of the prepared polymeric microparticles is shown in FIG. 1 .
  • FIG. 2 An IR photograph of the gelatin characteristic peak (1650 cm ⁇ 1 ) of the prepared polymeric microparticles is shown in FIG. 2 .
  • the gelatin-containing portion was brightly displayed, confirming that gelatin was distributed in the shell of the prepared polymer microparticles.
  • FIG. 3 An IR photograph of the hyaluronic acid characteristic peak (1080 cm ⁇ 1 ) relative to each other is shown in FIG. 3 .
  • the recovered particles were immersed in tris buffer (pH 8.0) in which dopamine was dissolved at 1 mg/mL, and coated for 2 hours at room temperature under stirring. After washing the excess coating material with ethanol, the particles were filtered through a 45 ⁇ m sieve and used as a microcarrier for cell culture.
  • tris buffer pH 8.0
  • the polymer was prepared in the same manner as in Example 1, except that 2.2 g of 50% glutaraldehyde was added instead of 2.2 g of 1,4-butandiol diglycidyl ether (BDDE). Microparticles and microcarriers for cell culture were prepared.
  • BDDE 1,4-butandiol diglycidyl ether
  • Hyaluronate weight average molecular weight: 500 kDa
  • gelatin gel strength: 300 g Bloom
  • a mixed solution containing a microemulsion was prepared by mixing with a paraffin solution.
  • BDDE 1,4-butandiol diglycidyl ether
  • the prepared cross-linked particles were recovered using a sieve having an opening size of 45 ⁇ m.
  • the recovered cross-linked particles were filtered through a sieve having an opening size of 500 ⁇ m, and the remaining cross-linked particles were analyzed.
  • Hyaluronate (weight average molecular weight: 500 kDa) was dissolved in 0.1N NaOH aqueous solution at 2 wt.%, and gelatin (gel strength: 300 g Bloom) was dissolved at 2.5 wt.% in distilled water, mixing 10 mL of each solution. After preparing 20 mL, the formed droplets were added to 80 mL of an ethanol solution in which 4 g of FeCl 3 , a compound containing iron ions (Fe 3+ ), was added using an encapsulator device, and crosslinked at 4 ° C for 2 hours. After the reaction, crosslinked particles were prepared by washing with ethanol and distilled water. The prepared cross-linked particles were recovered by using a mesh sieve having an opening size of 45 ⁇ m. The recovered cross-linked particles were filtered through a sieve having an opening size of 500 ⁇ m, and the remaining cross-linked particles were analyzed.
  • the prepared crosslinked particles were recovered using a sieve having an opening size of 45 ⁇ m.
  • the recovered cross-linked particles were filtered through a sieve having an opening size of 500 ⁇ m, and the remaining cross-linked particles were analyzed.
  • Hyaluronate (weight average molecular weight: 500 kDa) was dissolved in 0.1 N NaOH aqueous solution at a concentration of 2 wt.% and gelatin (gel strength: 300 g Bloom) was dissolved in distilled water at a concentration of 2.5 wt.% to prepare 5 ml each, A mixture of these two solutions was mixed with a liquid paraffin solution to prepare a mixed solution including a microemulsion. Thereafter, 2.2 g of 1,4-butandiol diglycidyl ether (BDDE) was added as a cross-linking agent to the mixed solution, followed by a cross-linking reaction at room temperature for 5 days.
  • BDDE 1,4-butandiol diglycidyl ether
  • the prepared crosslinked particles were recovered using a sieve having an opening size of 45 ⁇ m.
  • the recovered cross-linked particles were filtered through a sieve having an opening size of 500 ⁇ m, and the remaining cross-linked particles were analyzed.
  • Hyaluronate (weight average molecular weight: 500 kDa) and gelatin (gel strength: 300 g Bloom) were dissolved in distilled water at 2 wt.% and 2.5 wt.%, respectively, to prepare 5 ml each.
  • a mixed solution containing a microemulsion was prepared by mixing with a paraffin solution. Thereafter, 2.2 g of 1,4-butandiol diglycidyl ether (BDDE) was added as a cross-linking agent to the mixed solution, followed by a cross-linking reaction at room temperature for 5 days. After washing with acetone, dichloromethane, and distilled water in that order, the prepared crosslinked particles were recovered using a sieve having an opening size of 45 ⁇ m. The recovered cross-linked particles were filtered through a sieve having an opening size of 500 ⁇ m, and the remaining cross-linked particles were analyzed.
  • BDDE 1,4-butandiol diglycidyl ether
  • 20 mL was prepared by mixing 10 mL of each solution in which alginate and cellulose were dissolved at 2.5 wt.% in distilled water, and then an ethanol solution to which 4 g of CaCl 2 , a compound containing calcium ions (Ca 2+ ), was added.
  • a droplet formed using an encapsulator was added to 80 mL, followed by a cross-linking reaction at room temperature for 2 hours, and then washed with ethanol to prepare cross-linked particles.
  • the cross-linked particles were added to 80 mL of an ethanol solution containing 4 g of CaCl 2 , a compound containing calcium ions (Ca 2+ ), and cross-linked at 4° C. for 2 hours to prepare polymeric micro-particles. After washing the prepared particles in the order of ethanol and distilled water, the prepared cross-linked particles were recovered using a sieve having an opening size of 45 ⁇ m. The recovered cross-linked particles were filtered through a sieve having an opening size of 500 ⁇ m, and the remaining cross-linked particles were analyzed.
  • the polymeric microparticles obtained in (1) of Example 1 were used as microcarriers for cell culture.
  • the average diameter, sphericity, strength, cell culture suitability, and stability of the polymeric microparticles prepared in Examples and Comparative Examples were evaluated in the following manner.
  • the average diameter of the polymeric microparticles of Examples and Comparative Examples in distilled water was measured using a laser particle size analyzer (Horiba, Partica LA-960).
  • the degree of sphericity according to the present invention was calculated as the average value of the ratio of the longest diameter to the shortest diameter (long axis ratio) of 30 random particles in the optical photograph.
  • the strength of the polymer microparticles of Examples and Comparative Examples was measured using a texture analyzer. Thirty microparticles swollen with distilled water for 24 hours were placed in a single layer under the flat cylindrical probe of the equipment equipped with a 5 N load cell. The initial trigger force was set to 1 mN, and the particles were compressed at a speed of 1 mm/s. The force when deformed to 25% of the average particle diameter was determined as the compressive force.
  • the average compressive strength was calculated by dividing the compressive force by 30, which is the number of microparticles to be measured.
  • the cell culture medium was filled in a 6-well plate, and the cells were cultured by plate-rocking method by adding polymeric microparticles and cells. At this time, the temperature of the culture solution was maintained at 37 ° C, and the number of cells cultured in the polymer microparticles was confirmed by culturing for 3 days.
  • cell culture suitability was evaluated according to the following criteria.
  • the polymer microparticles of the examples are not only suitable for cell culture as the number of cultured cells is 100% or more compared to the number of cells introduced first, but the weight reduction rate of the dried polymer microparticles before and after autoclave treatment is 20% Appearing below, it was confirmed that it was suitable for sterilization treatment and long-term culture.
  • the polymer microparticles of Example had an average compressive strength of 0.37 mN or more, realizing excellent mechanical properties, and a high ratio of particles exhibiting a high crosslinking density. That is, it was confirmed that the polymeric microparticles of Example implement excellent crosslinking density and mechanical properties while being suitable for cell culture, sterilization treatment, and long-term culture.
  • the polymeric microparticles of Comparative Example 1 showed a weight reduction rate of more than 20% of the dried polymeric microparticles before and after autoclave treatment, making them unsuitable for sterilization and long-term culture, and having an average compressive strength of 0.23 mN, showing inferior mechanical properties. It was confirmed that the ratio of particles showing a low cross-linking density was high.
  • the polymeric microparticles of Comparative Examples 3 to 5 did not form polymeric microparticles by adjusting the concentration of the aqueous solution in which the biocompatible polymer was dissolved to the same level as in Example 1, unlike Comparative Example 1. It was confirmed that the formation of polymeric microparticles was possible even at the biocompatible polymer concentration.
  • the polymeric microparticles of Comparative Example 6 showed an average compressive strength of 0.29 mN in the distilled water state due to chemical crosslinking by a crosslinking agent, but were not suitable for cell culture due to the use of alginate and cellulose having no cell adhesion as biocompatible polymers. I was able to confirm.
  • metal ions are cross-linked using calcium ions (Ca 2+ ), they can react reversibly with calcium ions present in the cell culture medium, and thus the particle strength during cell culture can be lowered.
  • Example 1 The physical properties of the microcarriers for cell culture prepared in Example 1 and Comparative Example 8 were measured in the following manner and are listed in Table 2.
  • the thickness of the coating layer formed on the surface of the polymeric microparticles in the microcarrier for cell culture was measured through cross-sectional TEM images.
  • a culture solution containing mesenchymal stem cells (density: 1.05 g/cm 3 ) was filled in a 100 mL vertical wheel bioreactor (PBS), and the cell culture microcarrier was injected into the culture solution and stirred. After culturing at 37° C. for 7 days, the number of cells cultured in the microcarrier for cell culture was confirmed. And, as shown in the following equation, the cell adhesion of the microcarrier was evaluated by comparing the initially introduced cell number.
  • the microcarrier for cell culture of Example 1 included a 0.1 ⁇ m cell adhesion material coating layer on the surface of the polymer microparticles, so it was confirmed that cell adhesion was significantly improved compared to Comparative Example 8. .

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Abstract

본 발명에 따르면, 제1 생체 적합성 고분자, 금속이온 및 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제를 포함하는 코어; 및 상기 코어의 전부 또는 일부를 둘러싸며, 제2 생체 적합성 고분자, 금속이온 및 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제를 포함하는 쉘;을 포함하는, 코어-쉘 구조를 가지는 고분자 마이크로 입자, 및 상기 고분자 마이크로 입자의 표면 상에 형성된 세포 부착 유도층;을 포함하는, 마이크로 캐리어, 이를 포함하는 세포 복합체, 의료용 조성물, 미용 조성물, 의료 용품 및 미용 용품에 관한 것이다.

Description

마이크로 캐리어, 세포 복합체 및 이를 포함하는 의료용 조성물, 미용 조성물, 의료 용품 및 미용 용품
관련 출원(들)과의 상호 인용
본 출원은 2021년 9월 30일자 한국특허출원 제10-2021-0130366호에 기초한 우선권의 이익을 주장하며, 해당 한국 특허 출원들의 문헌에 개시된 모든 내용은 본 명세서의 일부로서 포함된다.
본 발명은 우수한 기계적 강도 및 안정성을 구현할 수 있고, 세포탈착공정없이 3차원 배양후 바로 체내 주입이 가능하며, 부착성 세포에 안정적인 환경을 제공하여 세포 생존율이 높아지면서 높은 체내 이식율에 기여할 수 있는 마이크로 캐리어, 및 이를 포함하는 세포 복합체, 의료용 조성물, 미용 조성물, 의료 용품 및 미용 용품에 관한 것이다.
바이오 의약품 및 재생 의료 분야가 확장됨에 따라, 세포, 조직, 미생물 등을 효율적으로 생산할 수 있는 세포 대량 배양 기술에 대한 요구가 증대하고 있다.
부착성을 갖는 세포는 3D 바이오리액터(bioreactor) 내에서 마이크로 캐리어를 이용하여 배양된다. 바이오리액터 내에 세포, 배양액 및 마이크로 캐리어를 넣고, 배양액을 교반하여 세포 및 마이크로 캐리어를 접촉시킴으로써, 세포를 마이크로 캐리어의 표면에 부착시켜 배양하게 된다. 이 때 사용하는 마이크로 캐리어는 세포가 부착하여 증식할 수 있는 높은 표면적 비율(surface area/volume)을 제공하기 때문에, 세포의 대량 배양에 적합하다. 그러나 마이크로 캐리어를 이용하여 부착성 세포를 확장 배양하는 경우, 배양이 종료된 이후 세포 탈착 과정을 통해 세포를 회수하는 과정이 필수적으로 수반된다. 상기 세포 탈착 과정은 단백질 분해효소를 사용하거나 온도를 변화시켜 세포의 탈착을 유도하는데, 이와 같은 탈착 공정이 추가될 경우 제조 비용이 증가하여 경제성이 떨어지고, 세포 손상이 유발될 수 있다는 문제점이 존재하였다.
이를 해결하기 위한 새로운 소재나 공정들의 개발들이 꾸준히 진행되고 있으며, 특히, 생체 내 세포를 주입하는 세포 치료제의 경우, 세포를 배양하는 마이크로 캐리어의 생체 적합성을 확보하여 분리 정제 과정을 생략하고자 하는 노력들이 있다. 이 경우 배양과정 및 생체 주입 후 캐리어 주변 유체에 의하여 가해지는 스트레스를 견딜 수 있는 강도를 구현하는 입자가 필요하다.
뿐만 아니라, 약물 혹은 생리 활성 물질을 포집한 마이크로 캐리어를 마이크로 니들에 탑재하여 전달하는 경피형 약물 전달 기술의 경우, 마이크로 캐리어는 생체에 적용하기에 적합한 고분자를 이용해야 하며, 피부의 각질층(stratum corneum layer)을 통과하는 과정에서 입자의 변형이 일어나지 않도록 충분한 강도를 지녀야 한다. 안정적으로 경피를 투과한 마이크로 캐리어는 탑재된 약물을 local 혹은 systemic delivery 되어 필요한 병소에 작용할 수 있게 된다.
생체 적합성 물질로 주로 이용되는 히알루론산은 N-아세틸-D-글루코사민과 D-글루쿠론산으로 구성되어 있고 상기 반복단위가 선형으로 연결되어 있는 생체고분자 물질이다. 안구의 유리액, 관절의 활액 및 닭벼슬 등에 많이 존재한다. 히알루론산은 우수한 생체적합성과 점탄성으로 인해 생체 주입형 물질로 흔히 사용되나, 그 자체만으로는 생체내(in vivo) 또는 산, 알칼리 등의 조건에서 쉽게 분해되어 사용이 제한적이다. 또한 마이크로 캐리어에 적용하는 경우 생체 pH 범위에서 히알루론산은 음전하를 나타내며, 이로 인하여 세포부착성이 현저히 저하되는 문제점이 있었다.
또한 젤라틴은 생체 결합조직인 콜라겐을 가수분해한 고분자로, 세포 배양용 스캐폴드로 활용된다. 세포를 포집하거나 배양할 수 있으나, 그 강도가 약하고, 온도에 민감하여 화학적 방법으로 관능기를 도입하여 그 강도를 향상시키려는 노력이 있다.
이에, 생체에 적합하면서도, 물리적 강도, 및 열과 효소에 대한 안정성 등 우수한 물성과 우수한 안정성을 가지는 마이크로 캐리어 또는 고분자 마이크로 입자의 개발이 필요한 실정이다.
또한, 마이크로 캐리어를 이용하여 부착성 세포의 대량 확장 과정에서 기존 2차원 배양의 한계를 극복하기 위해 표면 효율을 증가시킬 수 있는 구 형태의 마이크로 캐리어가 개발되어 3차원적 확장 배양에 이용되고 있으며, 배양 종료 후 세포 탈착 과정을 통해 세포를 회수하고 있는 종래 기술 상 탈착 공정 추가에 따른 제조 비용 증가, 세포 손상 유발의 문제가 있었다.
그리고, 주사형 세포 치료제의 경우, 주로 액상에 세포가 부유하는 상태로 환부에 주입하게 됨에 따라, 부착성 세포의 경우 생존에 안정적이지 않은 환경과 체내 면역반응에 인해 체내 이식율 및 세포 생존율이 낮아지는 한계가 있었다.
이에, 세포탈착공정없이 3차원 배양후 바로 체내 주입이 가능하며, 부착성 세포에 안정적인 환경을 제공하여 세포 생존율이 높아지면서 높은 체내 이식율에 기여할 수 있는 마이크로 캐리어의 개발이 필요한 실정이다.
본 발명은 우수한 기계적 강도 및 안정성을 구현할 수 있고, 세포탈착공정없이 3차원 배양후 바로 체내 주입이 가능하며, 부착성 세포에 안정적인 환경을 제공하여 세포 생존율이 높아지면서 높은 체내 이식율에 기여할 수 있는 마이크로 캐리어를 제공하기 위한 것이다.
또한, 본 발명은 상기 마이크로 캐리어를 포함하는, 세포 복합체를 제공하기 위한 것이다.
또한, 본 발명은 상기의 마이크로 캐리어 또는 세포 복합체를 포함하는 의료용 조성물을 제공하기 위한 것이다.
또한, 본 발명은 상기의 마이크로 캐리어 또는 세포 복합체를 포함하는 미용 조성물을 제공하기 위한 것이다.
또한, 본 발명은 상기의 의료용 조성물을 포함하는 의료 용품을 제공하기 위한 것이다.
또한, 본 발명은 상기의 미용 조성물을 포함하는 미용 용품을 제공하기 위한 것이다.
본 명세서에서는, 제1 생체 적합성 고분자, 금속이온 및 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제를 포함하는 코어; 및 상기 코어의 전부 또는 일부를 둘러싸며, 제2 생체 적합성 고분자, 금속이온 및 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제를 포함하는 쉘;을 포함하는, 코어-쉘 구조를 가지는 고분자 마이크로 입자, 및 상기 고분자 마이크로 입자의 표면 상에 형성된 세포 부착 유도층;을 포함하는, 마이크로 캐리어가 제공된다.
본 명세서에서는 또한, 상기 마이크로 캐리어; 및 상기 마이크로 캐리어 표면 상에 부착된 세포;를 포함하는, 세포 복합체가 제공된다.
본 명세서에서는 또한, 상기의 마이크로 캐리어 또는 세포 복합체를 포함하는, 의료용 조성물이 제공된다.
본 명세서에서는 또한, 상기의 마이크로 캐리어 또는 세포 복합체를 포함하는, 미용 조성물이 제공된다.
본 명세서에서는 또한, 상기의 의료용 조성물을 포함하는 의료 용품이 제공된다.
본 명세서에서는 또한, 상기의 미용 조성물을 포함하는 미용 용품이 제공된다.
이하 발명의 구체적인 구현예에 따른 마이크로 캐리어, 및 이를 포함하는 세포 복합체, 의료용 조성물, 미용 조성물, 의료 용품 및 미용 용품에 대하여 보다 상세하게 설명하기로 한다.
본 명세서에서 명시적인 언급이 없는 한, 전문용어는 단지 특정 실시예를 언급하기 위한 것이며, 본 발명을 한정하는 것을 의도하지 않는다.
본 명세서에서 사용되는 단수 형태들은 문구들이 이와 명백히 반대의 의미를 나타내지 않는 한 복수 형태들도 포함한다.
본 명세서에서 사용되는 '포함'의 의미는 특정 특성, 영역, 정수, 단계, 동작, 요소 및/또는 성분을 구체화하며, 다른 특정 특성, 영역, 정수, 단계, 동작, 요소, 성분 및/또는 군의 존재나 부가를 제외시키는 것은 아니다.
그리고, 본 명세서에서 '제 1' 및 '제 2'와 같이 서수를 포함하는 용어는 하나의 구성요소를 다른 구성요소로부터 구별하는 목적으로 사용되며, 상기 서수에 의해 한정되지 않는다. 예를 들어, 본 발명의 권리 범위 내에서 제 1 구성요소는 제 2 구성요소로도 명명될 수 있고, 유사하게 제 2 구성요소는 제 1 구성요소로 명명될 수 있다.
본 명세서에서 (공)중합체는 중합체 또는 공중합체를 모두 포함하는 의미이며, 상기 중합체는 단일 반복단위로 이루어진 단독중합체를 의미하고, 공중합체는 2종 이상의 반복단위를 함유한 복합중합체를 의미한다.
본 발명은 다양한 변경을 가할 수 있고 여러 가지 형태를 가질 수 있는 바, 특정 실시예들을 예시하고 하기에서 상세하게 설명하고자 한다. 그러나, 이는 본 발명을 특정한 개시 형태에 대해 한정하려는 것이 아니며, 상기 사상 및 기술 범위에 포함되는 모든 변경, 균등물 내지 대체물을 포함하는 것으로 이해되어야 한다.
본 명세서에서 마이크로 입자라 함은, 입자 단면이 원형 또는 타원형이고, 입자의 단축/장축의 비(구형화도)가 0.7 내지 1.0의 범위인 것을 의미한다. 입자의 단축 및 장축의 길이는 입자에 대한 광학 사진을 촬영하고, 광학 사진에서의 임의의 입자 30 개 내지 100개의 평균 값을 계산함으로써 도출될 수 있다.
본 명세서에서 직경(Dn)은, 직경에 따른 입자 개수 누적 분포의 n 부피% 지점에서의 직경을 의미한다. 즉, D50은 입자의 직경을 오름차순으로 누적시켰을 때, 입자 개수 누적 분포의 50% 지점에서의 직경이며, D90은 직경에 따른 입자 개수 누적 분포의 90% 지점에서의 직경이고, D10은 직경에 따른 입자 개수 누적 분포의 10% 지점에서의 직경이다.
상기 Dn은 레이저 회절법(laser diffraction method)을 이용하여 측정할 수 있다. 구체적으로, 측정 대상 분말을 분산매 중에 분산시킨 후, 시판되는 레이저 회절 입도 측정 장치(Horiba LA-960)에 도입하여 입자들이 레이저 빔을 통과할 때 입자 크기에 따른 회절패턴 차이를 측정하여 입도 분포를 산출한다. 측정 장치에 있어서의 직경에 따른 입자 개수 누적 분포의 10%, 50% 및 90%가 되는 지점에서의 입자 직경을 산출함으로써, D10, D50 및 D90을 측정할 수 있다. 보다 구체적으로, 본 명세서에서 직경은, D50을 의미할 수 있다.
본 명세서에서, 에멀전이란, 유상 또는 수상의 섞이지 않는 액체 중 하나 이상을 미립자 상태(분산질)로 다른 액체(분산매)에 분산시켜 놓은 혼합상을 의미한다. 에멀전은 분산상의 입도 크기에 따라, 통상적으로, 마크로에멀전, 마이크로에멀전, 나노에멀전으로 나뉠 수 있다.
이하, 본 발명을 보다 상세히 설명한다.
1. 마이크로 캐리어
발명의 일 구현예에 따르면, 제1 생체 적합성 고분자, 금속이온 및 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제를 포함하는 코어; 및 상기 코어의 전부 또는 일부를 둘러싸며, 제2 생체 적합성 고분자, 금속이온 및 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제를 포함하는 쉘;을 포함하는, 코어-쉘 구조를 가지는 고분자 마이크로 입자, 및 상기 고분자 마이크로 입자의 표면 상에 형성된 세포 부착 유도층;을 포함하는, 마이크로 캐리어가 제공될 수 있다.
본 발명자들은, 고분자 마이크로 입자에 대한 연구를 진행하여, 상술한 바와 같이 금속 이온에 의하여 가교반응시킨 이후, 추가 가교 반응을 진행함에 따라 공정 효율성이 극대화되는 동시에, 마이크로 입자의 기계적 강도와 세포 부착성이 현저하게 향상됨을 실험을 통해 확인하고 발명을 완성하였다.
또한, 상기 일 구현예의 마이크로 캐리어는 상기 고분자 마이크로 입자의 표면 상에 형성된 세포 부착 유도층을 포함함에 따라, 세포탈착공정없이 3차원 배양후 바로 체내 주입이 가능하며, 부착성 세포가 안정적으로 마이크로 캐리어와 부착한 상태로 복합체를 형성함으로써, 세포 생존율이 높아지면서 높은 체내 이식율을 구현할 수 있음을 실험을 통해 확인하고 발명을 완성하였다.
발명의 일 구현예에서, 상기 코어는 제1 생체 적합성 고분자가 금속이온 및 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제를 매개로 가교된 고분자 매트릭스를 포함하고, 상기 쉘은 제2 생체 적합성 고분자가 금속이온 및 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제를 매개로 가교된 고분자 매트릭스를 포함할 수 있다.
구체적으로, 상기 고분자 매트릭스는 생체 적합성 고분자가 금속이온을 매개로 가교된 제1 가교 영역; 및 생체 적합성 고분자가 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제를 매개로 가교된 제2 가교 영역;을 포함할 수 있다.
상기 제1 가교 영역은 생체 적합성 고분자와 금속이온의 가교반응이 진행되어 형성된 가교 영역을 의미하며, 상기 제2 가교 영역은 생체 적합성 고분자와 금속이온과의 가교반응 대신 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제와 가교반응이 진행되어 형성된 가교 영역 및 제1 가교영역과 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제가 추가 가교반응을 통하여 형성된 가교 영역을 의미할 수 있다. 즉, 상기 구현예의 고분자 마이크로 입자는 금속 이온 및 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제를 이용한 가교반응을 거쳐 제조될 수 있다.
구체적으로, 상기 생체 적합성 고분자란 인체에 적용되는 유효물질들을 전달하기 위하여, 인체 내에 직접 주입이 가능한 고분자를 의미한다. 구체적으로 상기 생체 적합성 고분자는, 히알루론산(Hyaluronic acid: HA), 카르복시메틸셀룰로오스(Carboxymethyl cellulose: CMC), 알긴산(alginic acid), 펙틴, 카라기난, 콘드로이틴(설페이트), 덱스트란(설페이트), 키토산, 폴리라이신(polylysine), 콜라겐, 젤라틴, 카르복시메틸 키틴(carboxymethyl chitin), 피브린, 아가로스, 풀루란, 폴리락타이드, 폴리글리코라이드(PGA), 폴리락타이드-글리코라이드 공중합체(PLGA), 폴리안하이드라이드(polyanhydride), 폴리오르쏘에스테르(polyorthoester), 폴리에테르에스테르(polyetherester), 폴리카프로락톤(polycaprolactone), 폴리에스테르아마이드(polyesteramide), 폴리(뷰티릭 산), 폴리(발레릭 산), 폴리우레탄, 폴리아크릴레이트, 에틸렌-비닐아세테이트 중합체, 아크릴 치환 셀룰로오스 아세테이트, 비-분해성 폴리우레탄, 폴리스티렌, 폴리비닐 클로라이드, 폴리비닐 풀루오라이드, 폴리(비닐 이미다졸), 클로로설포네이트 폴리올레핀(chlorosulphonate polyolefins),폴리에틸렌 옥사이드, 폴리비닐피롤리돈(PVP), 폴리에틸렌글리콜(PEG), 폴리메타크릴레이트, 하이드록시프로필메틸셀룰로오스(HPMC), 에틸셀룰로오스(EC), 하이드록시프로필셀룰로오스(HPC), 싸이클로덱스트린 및 이러한 고분자를 형성하는 단량체들의 공중합체 및 셀룰로오스로 구성된 군으로부터 선택된 1 개 이상의 고분자일 수 있다.
보다 구체적으로, 상기 생체 적합성 고분자는 히알루론산(Hyaluronic acid: HA) 및 젤라틴의 혼합물일 수 있다.
히알루론산만을 사용하여 제조된 고분자 마이크로 입자는 자체만으로는 생체내(in vivo) 또는 산, 알칼리 등의 조건에서 쉽게 분해되어 사용이 제한적일 뿐만 아니라, 세포 부착성이 현저히 저하되며, 젤라틴만을 사용하여 제조된 고분자 마이크로 입자는 기계적 물성이 현저히 저하된다.
이에, 생체 적합성 고분자로 히알루론산(Hyaluronic acid: HA) 및 젤라틴의 혼합물을 사용함에 따라 우수한 세포 부착성과 동시에 기계적 물성을 구현할 수 있다.
구체적으로, 상기 제1 생체 적합성 고분자는 히알루론산을 포함하고, 상기 제2 생체 적합성 고분자는 젤라틴을 포함할 수 있다.
본 명세서에서, 히알루론산은 히알루론산 자체와 히알루론산 염을 모두 포함하는 의미일 수 있다. 이에 따라, 히알루론산 수용액은 히알루론산의 수용액, 히알루론산 염의 수용액, 및 히알루론산과 히알루론산 염의 혼합 수용액을 모두 포함하는 개념일 수 있다. 상기 히알루론산 염은 히알루론산 나트륨, 히알루론산 칼륨, 히알루론산 칼슘, 히알루론산 마그네슘, 히알루론산 아연, 히알루론산 코발트 등의 무기염과, 히알루론산 테트라부틸암모늄 등의 유기염 및 그 혼합물일 수 있다.
발명의 일 구현예에서, 히알루론산의 분자량은 특별히 제한되는 것은 아니지만, 다양한 물성과 생체적합성을 구현하기 위해 10,000 g/mol 이상 5,000,000 g/mol 이하임이 바람직하다.
본 명세서에서, 젤라틴은 동물에서 유래된 콜라겐을 산 또는 알칼리로 처리하고 후속하여 추출하여 수득되는 단백질을 의미할 수 있다.
발명의 일 구현예에서, 젤라틴의 분자량은 특별히 제한되는 것은 아니지만, 다양한 물성과 생체적합성을 구현하기 위해 10,000 g/mol 이상 5,000,000 g/mol 이하임이 바람직하다.
한편, 상기 고분자 마이크로 입자는 코어-쉘 구조를 가질 수 있다. 상기 코어-쉘 구조는 고분자 마이크로 입자에 포함되는 고분자 매트릭스가 2종 이상의 생체 적합성 고분자를 포함함에 따라, 생체 적합성 고분자와 금속이온 및 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제 사이의 반응성 차이 등에 의하여 구현될 수 있다.
상기 코어-쉘 구조에서 상기 코어는, 코어에 포함되는 고분자 매트릭스 전체 부피에 대하여, 히알루론산이 금속이온 및 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제를 매개로 가교된 고분자 매트릭스를 50 부피% 초과, 60 부피% 이상, 70 부피% 이상, 또는 75 부피% 이상으로 포함할 수 있다. 또한, 100 부피% 이하, 100 부피% 미만, 95 부피% 이하, 또는 90 부피% 이하로 포함할 수 있다. 또한, 50 부피% 초과 100 부피% 이하, 50 부피% 초과 100 부피% 미만, 60 부피% 이상 100 부피% 미만, 60 부피% 이상 95 부피% 이하, 70 부피% 이상 95 부피% 이하, 70 부피% 이상 90 부피% 이하, 또는 75 부피% 이상 90 부피% 이하로 포함할 수 있다. 즉, 상기 코어는 젤라틴에 대하여 과량의 히알루론산을 포함할 수 있다.
코어에 포함되는 고분자 매트릭스 전체 부피에 대하여, 히알루론산이 금속이온 및 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제를 매개로 가교된 고분자 매트릭스를 50 부피% 초과로 포함하는 것은, 해당 영역이 전체 면적의 50 %를 초과하여 분포하는 것을 시각적 또는 측정 장비를 통하여 확인하여 알 수 있다.
구체적으로, 상기 코어에 포함되는 고분자 매트릭스 전체 부피에 대한 히알루론산이 금속이온 및 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제를 매개로 가교된 고분자 매트릭스의 부피 비율의 계산은 크게 제한되지 않고 통상의 측정 방법에 의하여 계산할 수 있다. 예를 들어, 제조된 고분자 마이크로 입자의 젤라틴의 특성 피크 (1650 cm-1)에 대해 상대화한 히알루론산 특성 피크 (1080 cm-1)에 대한 IR 사진을 촬영하여 확인할 수 있다.
상기 코어-쉘 구조에서 상기 쉘은, 쉘에 포함되는 고분자 매트릭스 전체 부피에 대하여, 젤라틴이 금속이온 및 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제를 매개로 가교된 고분자 매트릭스를 50 부피% 초과, 60 부피% 이상, 70 부피% 이상, 또는 75 부피% 이상으로 포함할 수 있다. 또한, 100 부피% 이하, 100 부피% 미만, 95 부피% 이하, 또는 90 부피% 이하로 포함할 수 있다. 또한, 50 부피% 초과 100 부피% 이하, 50 부피% 초과 100 부피% 미만, 60 부피% 이상 100 부피% 미만, 60 부피% 이상 95 부피% 이하, 70 부피% 이상 95 부피% 이하, 70 부피% 이상 90 부피% 이하, 또는 75 부피% 이상 90 부피% 이하로 포함할 수 있다. 즉, 상기 쉘은 히알루론산에 대하여 과량의 젤라틴을 포함할 수 있다.
쉘에 포함되는 고분자 매트릭스 전체 부피에 대하여, 젤라틴이 금속이온 및 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제를 매개로 가교된 고분자 매트릭스를 50 부피% 초과로 포함하는 것은, 해당 영역이 전체 면적의 50 %를 초과하여 분포하는 것을 시각적 또는 측정 장비를 통하여 확인하여 알 수 있다.
상기 쉘에 포함되는 고분자 매트릭스 전체 부피에 대한 젤라틴이 금속이온 및 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제를 매개로 가교된 고분자 매트릭스의 부피 비율의 계산은 크게 제한되지 않고 통상의 측정 방법에 의하여 계산할 수 있다. 예를 들어, 제조된 고분자 마이크로 입자의 젤라틴의 특성 피크 (1650 cm-1)에 대한 IR 사진을 촬영하여 확인할 수 있다.
히알루론산이 금속이온 및 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제를 매개로 가교된 고분자 매트릭스를 50 부피% 이상으로 포함하는 코어 및 젤라틴이 금속이온 및 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제를 매개로 가교된 고분자 매트릭스를 50 부피% 이상으로 포함하는 쉘을 포함하는 코어-쉘 구조는 용해도, 온도 반응성, 이온 결합성 등 물리 화학적 원인에 따라 구현될 수 있다. 보다 구체적으로, 고분자 마이크로 입자 제조 공정에서, 에탄올과 같은 극성 용매에 대한 용해도가 낮고 온도 반응성이 높은 젤라틴은 유동성이 저하되어 입자 표면에 고정하여 존재하게 되어 쉘을 형성할 수 있으며, 이에 따라 상대적으로 입자 내부에 히알루론산이 더 많이 분포하여 코어를 형성할 수 있다.
특히 후술하는 고분자 마이크로 입자의 제조방법에서 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제를 포함한 극성 용매 상에서 고분자 가교입자를 추가 가교하는 단계 이전에, 생체 적합성 고분자 및 금속 이온을 포함한 혼합물을 반응하여 고분자 가교 입자를 형성하는 단계를 포함함에 따라, 금속 이온과 히알루론산에 포함되어 있는 카르복실기 간의 이온결합으로 인하여 코어-쉘 구조가 더 명확해질 수 있다.
한편, 상기 고분자 마이크로 입자는 증류수에서의 평균 직경이 1 ㎛ 이상, 1 ㎛ 이상 450 ㎛ 이하, 100 ㎛ 이상 450 ㎛ 이하, 또는 200 ㎛ 이상 400 ㎛ 이하, 또는 300 ㎛ 이상 400㎛ 이하일 수 있는데, 고분자 마이크로 입자의 평균 직경이 상술한 범위를 만족하는 경우 세포 부착 및 배양 성능이 우수하다.
상기 평균 직경이란, 직경에 따른 입자 개수 누적 분포의 50 부피% 지점에서의 직경을 의미할 수 있다.
상기 고분자 마이크로 입자에서 상기 고분자 마이크로 입자의 최장 직경을 갖는 단면을 기준으로, 상기 쉘의 두께가 상기 고분자 마이크로 입자의 최장 직경의 95 % 이하, 90 % 이하, 80% 이하, 75% 이하, 50% 이하, 30 % 이하, 25 % 이하, 또는 20 % 이하일 수 있다. 또한, 상기 고분자 마이크로 입자의 최장 직경을 갖는 단면을 기준으로, 상기 쉘의 두께가 상기 고분자 마이크로 입자의 최장 직경의 0.01% 이상, 1% 이상, 또는 5% 이상일 수 있다.
또한, 상기 고분자 마이크로 입자에서 상기 고분자 마이크로 입자의 최장 직경을 갖는 단면을 기준으로, 상기 코어의 두께가 상기 고분자 마이크로 입자의 최장 직경의 5 % 이상, 10% 이상, 20 % 이상, 25 % 이상, 50% 이상, 70 % 이상, 75 % 이상, 또는 80 % 이상일 수 있다. 또한, 상기 고분자 마이크로 입자의 최장 직경을 갖는 단면을 기준으로, 상기 코어의 두께가 상기 고분자 마이크로 입자의 최장 직경의 99.99% 이하, 99% 이하, 또는 95% 이하일 수 있다.
또한, 상기 고분자 마이크로 입자는 0.9 이상 1.0 이하, 0.93 이상 1.0 이하, 0.94 이상 0.99 이하, 또는 0.94 이상 0.98 이하의 구형화도를 가질 수 있다. 상기 구형화도는, 고분자 마이크로 입자의 광학 사진을 촬영하고, 광학 사진에서의 임의의 입자 30 개 내지 100개의 평균 값을 계산함으로써 얻을 수 있다.
또한, 상기 고분자 마이크로 입자는 증류수로 24시간 이상 팽윤된 입자에 대하여 평균직경의 25% 수준으로 변형되었을 때의 평균 압축강도가 0.1 mN 이상, 0.1 mN 이상 100 mN 이하, 0.3 mN 이상 100 mN 이하, 0.35 mN 이상 100 mN 이하, 0.35 mN 이상 30 mN 이하, 0.35 mN 이상 10 mN 이하, 또는 0.35 mN 이상 3 mN 이하 일 수 있다. 상기 평균 압축 강도는 상기 고분자 마이크로 입자 n 개에 대하여, 평균 직경의 25% 수준으로 변형되었을 때의 압축강도를 n으로 나눈 값일 수 있다.
예를 들어, 본 명세서에서 상기 평균 압축 강도는 상기 고분자 마이크로 입자 30 개에 대하여, 평균직경의 25% 수준으로 변형되었을 때의 압축강도를 30으로 나눈 값일 수 있다.
상기 고분자 마이크로 입자의 평균 압축 강도가 0.1 mN 미만일 경우, 고분자 마이크로 입자의 기계적 강도가 열등하여 안정성이 저하되는 기술적 문제점이 발생할 수 있다.
한편, 상기 일 구현예의 마이크로 캐리어에 포함된 고분자 마이크로 입자를 제조하는 방법의 예가 크게 한정되는 것은 아니나, 예를 들어, 생체 적합성 고분자 및 금속 이온을 포함한 혼합물을 반응하여 고분자 가교 입자를 형성하는 단계; 및 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제를 포함한 극성 용매 상에서 상기 고분자 가교입자를 추가 가교하는 단계;를 포함하는, 고분자 마이크로 입자의 제조방법이 사용될 수 있다.
종래의 고분자 마이크로 입자는, 오일을 이용하는 W/O 에멀전을 형성한 후, 가교됨에 따라 오일 세척 공정이 필수적으로 수반되어, 공정 효율성이 좋지 않을 뿐만 아니라, 잔여 오일의 제거가 어려운 기술적 문제가 있었다.
이에, 본 발명자들은 상기 고분자 마이크로 입자의 제조방법과 같이, 금속 이온에 의하여 가교시킨 이후, 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제를 이용한 추가 가교 반응을 진행함에 따라 공정 효율성이 극대화되는 동시에, 마이크로 입자의 기계적 강도와 안정성이 현저하게 향상됨을 실험을 통해 확인하고 발명을 완성하였다.
구체적으로, 상기 생체 적합성 고분자란 인체에 적용되는 유효물질들을 전달하기 위하여, 인체 내에 직접 주입이 가능한 고분자를 의미한다. 구체적으로 상기 생체 적합성 고분자는, 히알루론산(Hyaluronic acid: HA), 카르복시메틸셀룰로오스(Carboxymethyl cellulose: CMC), 알긴산(alginic acid), 펙틴, 카라기난, 콘드로이틴(설페이트), 덱스트란(설페이트), 키토산, 폴리라이신(polylysine), 콜라겐, 젤라틴, 카르복시메틸 키틴(carboxymethyl chitin), 피브린, 아가로스, 풀루란, 폴리락타이드, 폴리글리코라이드(PGA), 폴리락타이드-글리코라이드 공중합체(PLGA), 폴리안하이드라이드(polyanhydride), 폴리오르쏘에스테르(polyorthoester), 폴리에테르에스테르(polyetherester), 폴리카프로락톤(polycaprolactone), 폴리에스테르아마이드(polyesteramide), 폴리(뷰티릭 산), 폴리(발레릭 산), 폴리우레탄, 폴리아크릴레이트, 에틸렌-비닐아세테이트 중합체, 아크릴 치환 셀룰로오스 아세테이트, 비-분해성 폴리우레탄, 폴리스티렌, 폴리비닐 클로라이드, 폴리비닐 풀루오라이드, 폴리(비닐 이미다졸), 클로로설포네이트 폴리올레핀(chlorosulphonate polyolefins),폴리에틸렌 옥사이드, 폴리비닐피롤리돈(PVP), 폴리에틸렌글리콜(PEG), 폴리메타크릴레이트, 하이드록시프로필메틸셀룰로오스(HPMC), 에틸셀룰로오스(EC), 하이드록시프로필셀룰로오스(HPC), 싸이클로덱스트린 및 이러한 고분자를 형성하는 단량체들의 공중합체 및 셀룰로오스로 구성된 군으로부터 선택된 1 개 이상의 고분자일 수 있다.
보다 구체적으로, 상기 생체 적합성 고분자는 히알루론산(Hyaluronic acid: HA) 및 젤라틴의 혼합물일 수 있다.
히알루론산만을 사용하여 제조된 고분자 마이크로 입자는 자체만으로는 생체내(in vivo) 또는 산, 알칼리 등의 조건에서 쉽게 분해되어 사용이 제한적일 뿐만 아니라, 세포 부착성이 현저히 저하되며, 젤라틴만을 사용하여 제조된 고분자 마이크로 입자는 기계적 물성이 현저히 저하된다.
이에, 생체 적합성 고분자로 히알루론산(Hyaluronic acid: HA) 및 젤라틴의 혼합물을 사용함에 따라 우수한 세포 부착성과 동시에 기계적 물성을 구현할 수 있다.
본 명세서에서, 히알루론산은 히알루론산 자체와 히알루론산 염을 모두 포함하는 의미일 수 있다. 이에 따라, 히알루론산 수용액은 히알루론산의 수용액, 히알루론산 염의 수용액, 및 히알루론산과 히알루론산 염의 혼합 수용액을 모두 포함하는 개념일 수 있다. 상기 히알루론산 염은 히알루론산 나트륨, 히알루론산 칼륨, 히알루론산 칼슘, 히알루론산 마그네슘, 히알루론산 아연, 히알루론산 코발트 등의 무기염과, 히알루론산 테트라부틸암모늄 등의 유기염 및 그 혼합물일 수 있다.
발명의 일 구현예에서, 히알루론산의 분자량은 특별히 제한되는 것은 아니지만, 다양한 물성과 생체적합성을 구현하기 위해 10,000 g/mol 이상 5,000,000 g/mol 이하임이 바람직하다.
본 명세서에서, 젤라틴은 동물에서 유래된 콜라겐을 산 또는 알칼리로 처리하고 후속하여 추출하여 수득되는 단백질을 의미할 수 있다.
발명의 일 구현예에서, 젤라틴의 분자량은 특별히 제한되는 것은 아니지만, 다양한 물성과 생체적합성을 구현하기 위해 10,000 g/mol 이상 5,000,000 g/mol 이하임이 바람직하다.
상기 고분자 마이크로 입자의 제조방법에서 상기 히알루론산(Hyaluronic acid: HA) 및 젤라틴의 혼합물은, 히알루론산(Hyaluronic acid: HA) 100 중량부에 대하여, 젤라틴을 50 중량부 이상 500 중량부 이하, 100 중량부 이상 500 중량부 이하, 또는 100 중량부 이상 300 중량부 이하로 포함할 수 있다.
히알루론산(Hyaluronic acid: HA) 100 중량부에 대하여, 젤라틴을 50 중량부 미만으로 포함하는 경우, 제조되는 고분자 마이크로 입자의 세포 부착성이 불량할 수 있으며, 히알루론산(Hyaluronic acid: HA) 100 중량부에 대하여, 젤라틴을 500 중량부 초과로 포함하는 경우, 제조되는 고분자 마이크로 입자의 기계적 물성이 저하할 수 있다. 즉, 히알루론산(Hyaluronic acid: HA) 및 젤라틴의 혼합물은, 히알루론산(Hyaluronic acid: HA) 100 중량부에 대하여, 젤라틴을 50 중량부 이상 500 중량부 이하로 포함함에 따라 우수한 세포 부착성과 동시에 기계적 물성을 구현할 수 있는 고분자 마이크로 입자가 제조될 수 있다.
상기 고분자 마이크로 입자의 제조방법에서 금속이온은 철 이온(Fe3+), 알루미늄 이온(Al3+), 구리 이온(Cu2+), 철 이온(Fe2+), 마그네슘 이온(Mg2+), 바륨 이온(Ba2+), 칼슘 이온 (Ca2+) 등으로 이루어진 군에서 선택된 하나를 포함할 수 있다. 보다 구체적으로, 상기 금속이온은 철 이온, 알루미늄 이온 또는 그 혼합물일 수 있다.
상기 고분자 마이크로 입자의 제조방법에서, 상기 생체 적합성 고분자 및 금속 이온을 포함한 혼합물을 반응하여 고분자 가교 입자를 형성하는 단계는, 상기 생체 적합성 고분자를 녹인 수용액을 형성하는 단계; 상기 금속이온을 포함하는 화합물을 극성 용매에 첨가하여 금속이온을 포함하는 용액을 형성하는 단계; 및 상기 생체 적합성 고분자를 녹인 수용액 액적과 상기 금속이온을 포함하는 용액을 혼합하여 혼합용액을 형성하는 단계;를 포함할 수 있다.
구체적으로, 상기 생체 적합성 고분자를 녹인 수용액을 형성하는 단계에서, 상기 생체 적합성 고분자를 녹인 수용액은 전체 생체 적합성 고분자를 녹인 수용액 중량에 대하여, 상기 생체 적합성 고분자를 0.01 중량 % 이상 10 중량% 이하, 0.01 중량 % 이상 5 중량% 이하, 1 중량 % 이상 5 중량% 이하, 1 중량 % 이상 3 중량% 이하, 2 중량 % 이상 3 중량% 이하, 2 중량 % 이상 2.5 중량% 이하로 포함할 수 있다.
상기 고분자 마이크로 입자의 제조방법과 같이, 금속 이온에 의하여 가교반응 시킨 이후, 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제에 의하여 추가 가교 반응을 진행함에 따라, 종래와 같이 W/O 에멀전을 형성한 후 가교반응 시키는 경우와 비교하여, 상기와 같이 0.01 중량 % 이상 10 중량% 이하의 적은 함량의 생체 적합성 고분자로도 기계적 강도와 안정성이 우수한 마이크로 입자를 제조할 수 있다.
상기 금속이온을 포함하는 화합물을 극성 용매에 첨가하여 금속이온을 포함하는 용액을 형성하는 단계는, 크게 제한 되지 않으나 예를 들어 금속 이온을 포함하는 화합물을 에탄올과 같은 극성 용매에 분산시켜 형성할 수 있다.
또한, 상기 생체 적합성 고분자를 녹인 수용액 액적과 상기 금속이온을 포함하는 용액을 혼합하여 혼합용액을 형성하는 단계에서, encapsulator (BUCHI, B-390) 기기를 이용하여, 입자의 크기를 적절히 제어할 수 있다.
상기 생체 적합성 고분자를 녹인 수용액 액적과 상기 금속이온을 포함하는 용액을 혼합하여 혼합용액을 형성하는 단계를 포함함에 따라, 상기 생체 적합성 고분자에 금속이온이 킬레이트되면서 금속이온을 매개로 생체 적합성 고분자가 가교구조를 형성할 수 있다.
상기 고분자 마이크로 입자의 제조방법과 같이, 생체 적합성 고분자 및 금속 이온을 포함한 혼합물을 반응하여 고분자 가교 입자를 형성하는 단계를 포함함에 따라, 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제만을 이용하여 가교반응을 진행하는 경우와 비교하여 오일 사용없이 극성 용매 상에서 마이크로 입자를 제조할 수 있어, 오일 세척 공정이 생략되어 공정 효율성이 우수해지는 효과가 구현될 수 있다.
즉, 생체 적합성 고분자에 금속이온이 킬레이트되면서 금속이온을 매개로 생체 적합성 고분자가 가교구조를 형성함에 따라 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제만을 이용하여 가교반응을 진행하는 경우와 비교하여 오일 사용없이 극성 용매 상에서 마이크로 입자를 제조할 수 있어, 오일 세척 공정이 생략되어 공정 효율성이 우수해지는 효과가 구현될 수 있다.
또한, 상기 금속이온을 포함하는 화합물은 상기 생체 적합성 고분자 100 중량부에 대하여 200 중량부 이상 1000 중량부 이하, 300 중량부 이상 1000 중량부 이하, 또는 500 중량부 이상 1000 중량부 이하 로 포함될 수 있다.
상기 고분자 마이크로 입자의 제조방법은, 상술한 바와 같이 금속 이온에 의한 가교반응 이후 추가 가교반응을 진행함에 따라, 상기 생체 적합성 고분자 100 중량부에 대하여 200 중량부 이상 1000 중량부 이하로 금속이온을 포함한 혼합물을 소량 첨가하여도 충분한 기계적 강도 및 구형화도를 구현하는 고분자 마이크로 입자를 제조할 수 있다.
상기 금속 이온을 포함하는 화합물의 함량이 상기 생체 적합성 고분자 100 중량부에 대하여 1000 중량부를 초과하여 첨가되는 경우, 잔량의 금속이온이 가교 입자에 잔존하는 기술적 문제점이 발생할 수 있다.
상기 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제는, 반응성 작용기를 1개 이상 포함하는 탄소수 1 내지 30의 가교제를 포함할 수 있다.
상술한 바와 같이, 금속 이온에 의하여 가교시킨 이후, 반응성 작용기를 1개 이상 포함하는 탄소수 1 내지 30의 가교제를 이용한 추가 가교 반응을 진행함에 따라 공정 효율성이 극대화되는 동시에, 마이크로 입자의 기계적 강도와 안정성이 현저하게 향상될 수 있다.
상기 반응성 작용기의 종류가 크게 제한되지는 않으나, 예를 들어 히드록시기, 에폭시기, 카르복시기, 아미노기, (메트)아크릴레이트기, 니트릴기, 싸이올기, 알데히드기, 또는 비닐기를 들 수 있다.
구체적으로, 상기 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제는, 포르밀기 또는 에폭시기를 1 개 이상, 또는 2 개 이상 포함할 수 있다. 상기 포르밀기 또는 에폭시기는 상술한 생체 적합성 고분자와 반응하여 가교 입자를 형성하는, 가교성 작용기일 수 있다.
상기 고분자 마이크로 입자의 제조방법에서 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제는 그 예가 크게 제한되는 것은 아니다. 구체적으로 상기 가교제는 글루타르알데히드(glutaraldehyde), 부탄디올디글리시딜에테르(1,4-butandiol diglycidyl ether: BDDE), 에틸렌글리콜디글리시딜에테르(ethylene glycol diglycidyl ether: EGDGE), 헥산디올디글리시딜에테르(1,6-hexanediol diglycidyl ether), 프로필렌글리콜디글리시딜에테르(propylene glycol diglycidyl ether), 폴리프로필렌글리콜디글리시딜에테르(polypropylene glycol diglycidyl ether), 폴리테트라메틸렌글리콜디글리시딜에테르(polytetramethylene glycol diglycidyl ether), 네오펜틸글리콜디글리시딜에테르(neopentyl glycol diglycidyl ether), 폴리글리콜폴리글리시딜에테르(polyglycerol polyglycidyl ether), 디글리세롤폴리글리시딜에테르(diglycerol polyglycidyl ether), 글리세롤폴리글리시딜에테르(glycerol polyglycidyl ether), 트리메틸프로판폴리글리시딜에테르(tri-methylpropane polyglycidyl ether), 비스에폭시프로폭시에틸렌(1,2-(bis(2,3-epoxypropoxy)ethylene), 펜타에리쓰리톨폴리글리시딜에테르(pentaerythritol polyglycidyl ether) 및 소르비톨폴리글리시딜에테르(sorbitol polyglycidyl ether), 디비닐설폰(divinylsulfone), 에피클로로히드린(epichlorohydrin)으로 이루어진 군에서 선택된 하나를 포함할 수 있다.
보다 구체적으로, 상기 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제는 글루타르알데히드(glutaraldehyde) 또는 부탄디올디글리시딜에테르(1,4-butandiol diglycidyl ether: BDDE)일 수 있다.
한편, 상기 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제를 포함한 극성 용매 상에서 상기 고분자 가교입자를 추가 가교하는 단계에서, 상기 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제는 상기 생체 적합성 고분자 100 중량부에 대하여 150 중량부 이상 1000 중량부 이하, 200 중량부 이상 1000 중량부 이하, 300 중량부 이상 800 중량부 이하, 400 중량부 이상 500 중량부 이하로 포함될 수 있다.
상기 고분자 마이크로 입자의 제조방법은, 상술한 바와 같이 가교반응 이후 추가 가교반응을 진행함에 따라, 상기 생체 적합성 고분자 100 중량부에 대하여 150 중량부 이상 1000 중량부 이하로 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제를 소량 첨가하여도 충분한 기계적 강도 및 구형화도를 구현하는 고분자 마이크로 입자를 제조할 수 있다.
반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제의 함량이 상기 생체 적합성 고분자 100 중량부에 대하여 1000 중량부를 초과하여 첨가되는 경우, 잔량의 미반응한 가교제가 가교 입자에 잔존하는 기술적 문제점이 발생할 수 있다.
한편, 상기 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제를 포함한 극성 용매 상에서 상기 고분자 가교입자를 추가 가교하는 단계에서, 상기 극성 용매는 크게 제한되지 않으나, 예를 들어 에탄올, N,N-디메틸포름아미드, N,N-디메틸아세트아미드, N-메틸-2-피롤리돈, N-메틸카프로락탐, 2-피롤리돈, N-에틸피롤리돈, N-비닐피롤리돈, 디메틸술폭사이드, 테트라메틸우레아, 피리딘, 디메틸술폰, 헥사메틸술폭사이드, 감마-부티로락톤, 3-메톡시-N,N-디메틸프로판아미드, 3-에톡시-N,N-디메틸프로판아미드, 3-부톡시-N,N-디메틸프로판아미드, 1,3-디메틸-이미다졸리디논, 에틸아밀케톤, 메틸노닐케톤, 메틸에틸케톤, 메틸이소아밀케톤, 메틸이소프로필케톤, 사이클로헥사논, 에틸렌카보네이트, 프로필렌카보네이트, 디글라임, 4-하이드록시-4-메틸-2-펜타논, 에틸렌 글리콜 모노메틸 에테르, 에틸렌 글리콜 모노메틸 에테르 아세테이트, 에틸렌 글리콜 모노에틸 에테르, 에틸렌 글리콜 모노에틸 에테르 아세테이트, 에틸렌 글리콜 모노프로필 에테르, 에틸렌 글리콜 모노프로필 에테르 아세테이트, 에틸렌 글리콜 모노이소프로필 에테르, 에틸렌 글리콜 모노이소프로필 에테르 아세테이트, 에틸렌 글리콜 모노뷰틸 에테르, 에틸렌 글리콜 모노뷰틸 에테르 아세테이트로 이루어진 군에서 선택된 하나일 수 있다.
또한, 상기 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제를 포함한 극성 용매 상에서 상기 고분자 가교입자를 추가 가교하는 단계에서, 상기 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제를 포함한 극성 용매는 알칼리성 혼합 용매일 수 있다.
즉, 극성 용매에 알칼리 수용액을 혼합한 알칼리성 혼합용매 상에서 본 발명의 추가 가교반응이 진행될 수 있다. 상기 알칼리 수용액의 예는 크게 제한되지 않으나, 예를 들어 수산화나트륨 수용액 등일 수 있다.
상기 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제를 포함한 극성 용매가 알칼리성 혼합 용매임에 따라, 친핵성 치환 반응(SN reaction)에 유리한 환경을 조성하여 가교 반응의 효율을 증가시킬 수 있다.
한편, 상기 일 구현예의 마이크로 캐리어는 상기 고분자 마이크로 입자의 표면 상에 형성된 세포 부착 유도층;을 포함할 수 있다. 상기 세포 부착 유도층은 세포 부착성 물질들로 구성되며, 부착성 세포들이 안정적으로 부착, spreading 및 배양될 수 있도록 한다.
상기 세포 부착 유도층은 젤라틴, 콜라겐, 피브로넥틴(fibronectin) 키토산, 폴리도파민, 폴리 L-라이신, 비트로넥틴(vitronectin), RGD를 포함한 펩타이드, RGD를 포함한 아크릴계 고분자, 리그닌(lignin), 양이온성 덱스트란 및 이들의 유도체로 이루어진 군에서 선택되는 1종 이상의 세포 부착성 물질을 포함할 수 있다. 즉, 상기 세포 부착 유도층은 젤라틴, 콜라겐, 피브로넥틴(fibronectin) 키토산, 폴리도파민, 폴리 L-라이신, 비트로넥틴(vitronectin), RGD를 포함한 펩타이드, RGD를 포함한 아크릴계 고분자, 리그닌(lignin), 양이온성 덱스트란 및 이들의 유도체로 이루어진 군에서 선택되는 1종, 또는 이들의 2종 이상의 혼합물을 포함한 세포 부착성 물질을 포함할 수 있다.
상기 세포 부착 유도층은 상기 고분자 마이크로 입자의 표면 상에 형성될 수 있다. 즉, 상기 고분자 마이크로 입자의 표면에 상기 세포 부착 유도층이 직접 접촉하거나, 혹은 상기 고분자 마이크로 입자의 표면에 접촉한 다른 기타 층의 표면 에 상기 세포 부착 유도층이 접촉할 수 있다.
일례로, 상기 마이크로 캐리어는 고분자 마이크로 입자의 표면에 직접 접촉하도록 형성되는 세포 부착 유도층을 포함하여, 마이크로 캐리어의 표면에 세포 부착 유도층을 도입하여 배양액 내에서 마이크로 캐리어의 부유도가 조절될 수 있으며, 세포를 안정적으로 부착 배양하는 효과를 가질 수 있다.
상기 세포 부착 유도층은 1 nm 내지 10,000 nm, 또는 10 nm 내지 1000 nm, 또는 50 nm 내지 500 nm, 또는 80 nm 내지 200 nm의 층 두께를 가질 수 있으며, 상기 세포 부착 유도층의 층 두께는 상기 마이크로 캐리어 전체의 반직경에서 내부의 고분자 마이크로 입자의 반직경을 뺀 값을 통해 구할 수 있다. 상기 반직경은 직경의 1/2값을 의미한다. 상기 직경을 측정하는 방법의 예가 크게 한정되는 것은 아니나, 일례를 들면 공초점 형광 현미경, 전자 투과 현미경(TEM) 또는 단면 IR, 단면 SEM 이미지를 통해 측정가능하다.
상기 마이크로 캐리어는 1 ㎛ 내지 1,000 ㎛, 또는 10 ㎛ 내지 1000 ㎛, 또는 100 ㎛ 내지 1,000 ㎛, 또는 100 ㎛ 내지 800 ㎛의 평균직경을 가질 수 있다. 상기 직경을 측정하는 방법의 예가 크게 한정되는 것은 아니나, 일례를 들면 광학 현미경을 통해 측정가능하다.
한편, 상기 고분자 마이크로 입자의 반직경과 세포 부착 유도층의 두께의 비율은 1:0.00001 내지 1:0.1, 또는 1:0.0001 내지 1:0.01일 수 있다.
상기 고분자 마이크로 입자의 반경과 세포 부착 유도층의 두께의 비율이 1:0.00001 미만인 경우, 상기 고분자 마이크로 입자 대비 세포 부착 유도층이 너무 얇아 세포 배양 시 세포와 마이크로 캐리어의 부착도가 감소될 우려가 있고, 1:0.1를 초과하는 경우, 상기 고분자 마이크로 입자 대비 세포 부착 유도층이 두꺼워져, 고분자 마이크로 입자의 친수성도와 같은 물성을 변화시켜 분산성을 저하시키는 문제가 발생할 수 있다.
상기 마이크로 캐리어는 하기 수학식으로 계산되는 세포 부착성이 2000 % 이상, 또는 2500 % 이상, 또는 2900 % 이상, 또는 4000 % 이하, 또는 2000 % 내지 4000 %, 또는 2500 % 내지 4000 %, 또는 2900 % 내지 4000 %일 수 있다.
[수학식]
세포부착성 = (마이크로 캐리어를 세포배양액에 투입하여 37 ℃에서 7일간 배양한 후 세포수 / 세포배양액에 최초 포함된 세포수) X 100
상기 세포배양액, 세포, 배양조건에 대해서는 특별히 한정되지 않으며, 기존에 알려진 다양한 세포배양액, 세포, 배양조건을 제한없이 적용할 수 있다. 그리고, 상기 세포수를 측정하는 방법도 특별히 한정되지 않으며, 기존에 알려진 다양한 세포수 측정방법을 제한없이 적용할 수 있다.
상기 마이크로 캐리어는 하기 수학식으로 계산되는 세포 부착성이 2000 % 이상, 또는 2500 % 이상, 또는 2900 % 이상, 또는 4000 % 이하, 또는 2000 % 내지 4000 %, 또는 2500 % 내지 4000 %, 또는 2900 % 내지 4000 %를 만족함에 따라, 마이크로 캐리어의 세포 부착력이 향상되어, 이를 통해 3차원적 확장 배양을 통해 표면 효율을 증가시켜 부착성 세포의 대량 확장이 가능한 장점이 있다.
반면, 상기 마이크로 캐리어는 하기 수학식으로 계산되는 세포 부착성이 상술한 범위에 미치지 못하는 경우, 마이크로 캐리어의 표면의 세포 부착력이 약해, 3차원적 확장 배양이 충분히 진행되기 어려운 한계가 있다.
한편, 상기 마이크로 캐리어는 상기 고분자 마이크로 입자의 표면 상에 형성된 프라이머 고분자층을 더 포함할 수 있다.
즉, 상기 고분자 마이크로 입자 표면에, 프라이머 고분자층 1종과 세포부착 유도층 1종의 혼합층이 더 포함될 수 있다. 프라이머 고분자층 1종과 세포부착 유도층 1종의 혼합층에서 이들의 적층 순서는 특별히 한정되지 않으며 프라이머 고분자층상에 세포부착 유도층이 적층된 구조, 혹은 세포부착 유도층상에 프라이머 고분자층이 적층된 구조를 모두 적용가능하다.
한편, 상기 프라이머 고분자층은 상기 고분자 마이크로 입자의 표면에 기능성 고분자를 도입할 수 있는 점착층 역할을 하며, 이로 인해 마이크로 캐리어 표면에 세포 부착을 위한 고분자 층이 효과적으로 도입되고 배양 중에도 안정적으로 유지될 수 있도록 한다.
상기 프라이머 고분자층은 그 예가 크게 한정되는 것은 아니나, 수상 접착을 유도할 수 있는 카테콜 유도체로서 L-디하이드록시 페닐알라닌(L-DOPA), 도파민(dopamine), 폴리도파민, 노레피네프린(norepinephrine), 에피네프린(epinephrine), 에피갈로카테킨(epigallocatechin) 및 이들의 유도체로 이루어진 군에서 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상을 포함할 수 있다.
상기 마이크로 캐리어는 세포 배양용 마이크로 캐리어일 수 있다.
2. 세포 복합체
본 발명의 다른 구현예에 따르면, 상기 일 구현예의 마이크로 캐리어; 및 상기 마이크로 캐리어 표면 상에 부착된 세포;를 포함하는, 세포 복합체가 제공될 수 있다. 상기 마이크로 캐리어에 관한 내용은 상기 일 구현예에서 상술한 모든 내용을 포함할 수 있다.
상기 다른 구현예의 세포 복합체는, 세포가 안정적으로 마이크로 캐리어와 부착한 상태로 복합체를 형성함으로써, 세포 생존율이 높아지면서 높은 체내 이식율을 구현할 수 있다.
상기 세포는 부착성 동물 세포로 그 예가 크게 한정되는 것은 아니나, 예를 들어 섬유아세포 (fibroblasts), 상피세포 (epithelial cell), 골아세포 (osteoblast), 연골세포 (chondrocyte), 간세포, 인간 유래 제대혈 세포, 인간 골수 유래 중간엽 줄기세포 (mesenchymal stem cell), CHO(Chinese hamster ovary) 세포, 신장세포 (HEK293, BHK21, MDCK, vero cell 등), 또는 이들의 2종 이상 혼합물일 수 있다.
상기 세포의 밀도는 1.02 g/cm3 이상 1.1 g/cm3 미만일 수 있다.
상기 세포는 상기 마이크로 캐리어의 표면 상에 부착될 수 있다. 즉, 상기 마이크로 캐리어의 표면에 세포가 직접 접촉하거나, 혹은 상기 마이크로 캐리어의 표면에 접촉한 다른 기타 층의 표면에 세포가 접촉할 수 있다.
3. 의료용 조성물
본 발명의 또 다른 구현예에 따르면, 상기 일 구현예의 마이크로 캐리어 또는 상기 다른 구현예의 세포 복합체를 포함하는 의료용 조성물이 제공될 수 있다. 상기 마이크로 캐리어에 관한 내용은 상기 일 구현예에서 상술한 모든 내용을 포함할 수 있다. 상기 세포 복합체에 관한 내용은 상기 다른 구현예에서 상술한 모든 내용을 포함할 수 있다.
상기 약학 유효물질은 상기 고분자 마이크로 입자 내에 함유된 상태로 존재할 수 있다.
상기 약학 유효 물질의 예는 크게 한정되지 않으며, 상기 일 구현예의 고분자 마이크로 입자의 적용 용도에 따라, 해당 용도에 적합한 유효 물질을 제한없이 적용할 수 있다. 즉, 상기 약학적 유효 물질의 구체적인 예는 한정되지 않고, 암페타미닐(ampetaminil), 아레콜린(arecolin), 아트로핀(atrophine), 부프라노롤(bupranolol), 부프레노핀(buprenorphine), 캡사이신(capsaicin), 카리소프로돌(carisoprodol), 클로르프로마진(chlorpromazine), 시클로피록스 올라민(ciclopirox olamine), 코카인(cocaine), 데시프라민(desipramine), 디클로닌(dyclonine), 에피네프린(epinephrine), 에토숙시미드(ethosuximide), 플록세틴(floxetine), 히드로모핀(hydromorphine), 이미프라민(imipramine), 리도카인(lidocaine), 메타암페타민(methamphetamine), 멜프로익산(melproic acid), 메틸페니데이트(methylpenidate), 모핀(morphine), 옥시부티닌(oxibutynin), 나도롤(nadolol), 니코틴(nicotine), 니트로글리세린(nitroglycerin), 핀도롤(pindolol), 프릴로카인(prilocaine), 프로카인(procaine), 프로파노롤(propanolol), 리바스티그민(rivastigmine), 스코폴라민(scopolamine), 셀레길린(selegiline), 툴로부테롤(tulobuterol), 발프로익산(valproic acid), 도네페질 (Donepezil) 등으로 이어지는 군으로부터 선택되는 약물 및 EPO(Erythropoietin), 인간성장호르몬(hGH), 엑세나타이드(Exenatide), GLP-1(Glucagon-like peptide-1), 인슐린, CSF(Granulocyte colony-stimulating factor), 에스트로겐, 프로게스테론 파라싸이로이드호르몬 (PTH) 등으로 이어지는 군으로부터 선택되는 펩타이드 또는 단백질 계열의 약물 등이 있으며, 약리 효과가 입증된 모든 약리 물질이 제한없이 적용가능하다.
상기 약학 유효물질의 첨가량 또한 크게 한정되지 않으며, 적용 용도와 대상에 따라 함량을 제한없이 사용할 수 있다. 예를 들어, 상기 유효물질은 상기 고분자 마이크로 입자 100 중량부 대비 0.0001 중량부 이상 1000000 중량부 이하로, 고분자 마이크로 입자 대비 소량, 과량 제한없이 포함될 수 있다.
4. 미용 조성물
본 발명의 또 다른 구현예에 따르면, 상기 일 구현예의 마이크로 캐리어 또는 상기 다른 구현예의 세포 복합체를 포함하는 미용 조성물이 제공될 수 있다. 상기 마이크로 캐리어에 관한 내용은 상기 일 구현예에서 상술한 모든 내용을 포함할 수 있다. 상기 세포 복합체에 관한 내용은 상기 다른 구현예에서 상술한 모든 내용을 포함할 수 있다.
상기 미용 유효물질은 상기 고분자 마이크로 입자 내에 함유된 상태로 존재할 수 있다.
상기 미용 유효 물질의 예는 크게 한정되지 않으며, 상기 일 구현예의 고분자 마이크로 입자의 적용 용도에 따라, 해당 용도에 적합한 유효 물질을 제한없이 적용할 수 있다. 즉, 상기 미용 유효 물질의 구체적인 예는 한정되지 않고, 천연 추출물, 단백질, 비타민, 효소, 항산화제 등이 있으며, 미용 효과가 입증된 모든 물질이 제한없이 적용가능하다.
상기 미용 유효물질의 첨가량 또한 크게 한정되지 않으며, 적용 용도와 대상에 따라 함량을 제한없이 사용할 수 있다. 예를 들어, 상기 미용 유효물질은 상기 고분자 마이크로 입자 100 중량부 대비 0.0001 중량부 이상 1000000 중량부 이하로, 고분자 마이크로 입자 대비 소량, 과량 제한없이 포함될 수 있다.
5. 의료 용품
본 발명의 또 다른 구현예에 따르면, 상기 다른 구현예의 의료용 조성물을 포함하는 의료 용품이 제공될 수 있다. 상기 의료용 조성물에 관한 내용은 상기 다른 구현예에서 상술한 모든 내용을 포함할 수 있다.
상기 의료 용품의 예가 크게 한정되지 않으나, 본 발명의 특성이 구현되기 위해서는 체내에 삽입되어 사용되거나 혹은 장기간 강도가 유지되어야 하는 경우에 적합하며, 예를 들어, 체내 보형물, 체내 삽입형 약물 전달체, 경피패치, 창상 치료제 등을 들 수 있다.
6. 미용 용품
본 발명의 또 다른 구현예에 따르면, 본 발명은 상기 다른 구현예의 미용 조성물을 포함하는 미용 용품이 제공될 수 있다. 상기 미용 조성물에 관한 내용은 상기 다른 구현예에서 상술한 모든 내용을 포함할 수 있다.
상기 미용 용품의 예가 크게 한정되지 않으나, 본 발명의 특성이 구현되기 위해서는 예를 들어, 미용 크림, 로션, 헤어 겔, 팩 등을 들 수 있다.
상기 미용 팩의 구조가 크게 한정되는 것은 아니나, 예를 들어, 지지체, 및 상기 지지체 상에 형성되며, 상기 다른 구현예의 고분자 마이크로 입자를 포함한 미용적 유효 물질 전달층을 포함할 수 있다. 상기 지지체의 예로는 직포, 부직포, 실리콘, 폴리에틸렌테레프탈레이트, 폴리에틸렌, 폴리프로필렌, 폴리우레탄, 금속 망사, 폴리에스테르 등을 들 수 있다.
본 발명에 따르면, 우수한 기계적 강도 및 안정성을 구현할 수 있고, 세포탈착공정없이 3차원 배양후 바로 체내 주입이 가능하며, 부착성 세포에 안정적인 환경을 제공하여 세포 생존율이 높아지면서 높은 체내 이식율에 기여할 수 있는 마이크로 캐리어, 이를 포함하는 세포 복합체, 의료용 조성물, 미용 조성물, 의료 용품 및 미용 용품이 제공될 수 있다.
도1는 실시예 1의 고분자 마이크로 입자에 대한 광학현미경(OM)사진 이다.
도2는 실시예 1의 고분자 마이크로 입자의 젤라틴 특성 피크 (1650 cm-1)에 대한 IR 사진 이다.
도3은 실시예 1의 고분자 마이크로 입자의 젤라틴의 특성 피크 (1650 cm-1)에 대해 상대화한 히알루론산 특성 피크 (1080 cm-1) 에 대한 IR 사진 이다.
발명을 하기의 실시예에서 보다 상세하게 설명한다. 단, 하기의 실시예는 본 발명을 예시하는 것일 뿐, 본 발명의 내용이 하기의 실시예에 의하여 한정되는 것은 아니다.
<실시예 : 고분자 마이크로 입자 및 세포 배양용 마이크로 캐리어의 제조>
실시예 1
(1) 고분자 마이크로 입자의 제조
0.1N NaOH 수용액에 히알루론산염(중량 평균분자량: 500 kDa) 200 mg을 2 wt.%로 녹이고, 증류수에 젤라틴(젤강도: 300 g Bloom) 250 mg을 2.5 wt.%로 녹인 각각의 용액 10 mL을 혼합하여 20 mL을 제조한 다음, 이를 철 이온(Fe3+)을 포함하는 화합물인 FeCl3가 4 g 첨가된 에탄올 용액 80 mL에 encapsulator 기기를 이용하여 형성된 액적을 첨가하고, 4 ℃에서 2 시간 동안 가교반응시킨 후, 에탄올로 세척하여 가교입자를 제조하였다.
0.1N NaOH 수용액을 20% 함유하고 있는 80% 에탄올 용액에 1,4-부탄디올 디글리시딜 에터(1,4-Butandiol diglycidyl ether, BDDE)를 2.2 g 혼합한 후, 상기 가교입자를 첨가하고, 상온에서 3일 동안 가교반응시켜, 고분자 마이크로 입자를 제조하였다. 제조된 입자를 에탄올, 증류수 순서로 세척한 후 체눈의 크기가 45 ㎛인 망체를 사용하여 제조된 가교입자를 회수하였다. 회수된 가교입자를 체눈의 크기가 500 ㎛인 망체에 걸러내고 남은 가교입자를 분석하였다.
제조된 고분자 마이크로 입자에 대한 촬영한 광학현미경(OM)사진을 도 1에 나타내었다.
제조된 고분자 마이크로 입자의 젤라틴 특성 피크 (1650 cm-1)에 대한 IR 사진을 도 2에 나타내었다. 젤라틴의 특성 피크(1650 cm-1)의 intensity 차이를 통해 젤라틴이 포함된 부분이 밝게 표시되어, 젤라틴이 제조된 고분자 마이크로 입자의 쉘에 분포하는 것을 확인하였다.
제조된 고분자 마이크로 입자의 젤라틴의 특성 피크 (1650 cm-1)에 대해 상대화한 히알루론산 특성 피크 (1080 cm-1) 에 대한 IR 사진을 도 3에 나타내었다. 히알루론산이 젤라틴에 대하여 높은 상대량로 포함된 부분이 밝게 표시되어, 제조된 고분자 마이크로 입자의 코어에 젤라틴과 비교하여 히알루론산이 높은 상대량으로 분포함을 확인하였다.
(2) 세포 배양용 마이크로 캐리어 제조
회수된 입자를 도파민이 1 mg/mL로 용해된 tris buffer (pH 8.0)에 침지하여 교반 하에 상온에서 2시간 동안 코팅하였다. 과량의 코팅물질을 에탄올로 세척 후 45 ㎛ sieve에 입자를 거른 뒤, 세포 배양용 마이크로 캐리어로 사용하였다.
실시예 2
철 이온(Fe3+)을 포함하는 화합물인 FeCl3가 4 g 첨가된 에탄올 용액 대신 알루미늄 이온(Al3+)을 포함하는 화합물인 AlCl3가 4 g 첨가된 에탄올 용액을 사용한 것을 제외하고, 상기 실시예 1과 동일한 방법으로 고분자 마이크로 입자 및 세포 배양용 마이크로 캐리어를 제조하였다.
실시예 3
1,4-부탄디올 디글리시딜 에터(1,4-Butandiol diglycidyl ether, BDDE) 2.2 g 대신 50% 글루타르알데히드(glutaraldehyde) 2.2 g을 첨가한 것을 제외하고, 상기 실시예 1과 동일한 방법으로 고분자 마이크로 입자 및 세포 배양용 마이크로 캐리어를 제조하였다.
<비교예>
비교예 1: 고분자 마이크로 입자의 제조
히알루론산염(중량 평균분자량: 500kDa) 및 젤라틴(젤강도: 300g Bloom)을 각각 증류수에 2 wt.%, 20 wt.%로 녹여 5 ml씩 제조한 다음, 이 두 용액을 혼합한 용액을 액체 파라핀 용액과 혼합하여 마이크로 에멀전을 포함하는 혼합액을 제조하였다. 이후, 상기 혼합액에 가교제로 1,4-부탄디올 디글리시딜 에터(1,4-Butandiol diglycidyl ether, BDDE)를 2.2 g 첨가하고, 상온에서 5일 동안 가교반응시켜, 고분자 마이크로 입자를 제조하였다. 제조된 입자를 아세톤, 디클로로메탄, 증류수 순서로 세척한 후 체눈의 크기가 45 ㎛인 망체를 사용하여 제조된 가교입자를 회수하였다. 회수된 가교입자를 체눈의 크기가 500 ㎛인 망체에 걸러내고 남은 가교입자를 분석하였다.
비교예 2: 고분자 마이크로 입자의 제조
0.1N NaOH 수용액에 히알루론산염(중량 평균분자량: 500 kDa)을 2 wt.%로 녹이고, 증류수에 젤라틴(젤강도: 300 g Bloom)을 2.5 wt.%로 녹인 각각의 용액 10 mL을 혼합하여 20 mL을 제조한 다음, 이를 철 이온(Fe3+)을 포함하는 화합물인 FeCl3가 4 g 첨가된 에탄올 용액 80 mL에 encapsulator 기기를 이용하여 형성된 액적을 첨가하고, 4 ℃에서 2 시간 동안 가교반응시킨 후, 에탄올 및 증류수로 세척하여 가교입자를 제조하였다. 제조된 가교입자를 체눈의 크기가 45 ㎛인 망체를 사용하여 제조된 가교입자를 회수하였다. 회수된 가교입자를 체눈의 크기가 500 ㎛인 망체에 걸러내고 남은 가교입자를 분석하였다.
비교예 3: 고분자 마이크로 입자의 제조
히알루론산염(중량 평균분자량: 500kDa) 200 mg 을 0.1 N NaOH 수용액에 2 wt.% 농도로, 젤라틴(젤강도: 300g Bloom) 250 mg 을 증류수에 2.5 wt.% 농도로 각각 녹여 10 ml씩 제조한 다음, 이 두 용액을 혼합한 용액을 액체 파라핀 용액과 혼합하여 마이크로 에멀전을 포함하는 혼합액을 제조하였다. 이후, 상기 혼합액에 가교제로 1,4-부탄디올 디글리시딜 에터(1,4-Butandiol diglycidyl ether, BDDE)를 2.2 g 첨가하고, 상온에서 5일 동안 가교반응시켰다. 이를 아세톤, 디클로로메탄, 증류수 순서로 세척한 후 체눈의 크기가 45 ㎛인 망체를 사용하여 제조된 가교입자를 회수하였다. 회수된 가교입자를 체눈의 크기가 500 ㎛인 망체에 걸러내고 남은 가교입자를 분석하였다.
비교예 4: 고분자 마이크로 입자의 제조
히알루론산염(중량 평균분자량: 500 kDa)을 0.1 N NaOH 수용액에 2 wt.% 농도로, 젤라틴(젤강도: 300g Bloom)을 증류수에 2.5 wt.% 농도로 각각 녹여 5 ml씩 제조한 다음, 이 두 용액을 혼합한 용액을 액체 파라핀 용액과 혼합하여 마이크로 에멀전을 포함하는 혼합액을 제조하였다. 이후, 상기 혼합액에 가교제로 1,4-부탄디올 디글리시딜 에터(1,4-Butandiol diglycidyl ether, BDDE)를 2.2 g 첨가하고, 상온에서 5일 동안 가교반응시켰다. 이를 아세톤, 디클로로메탄, 증류수 순서로 세척한 후 체눈의 크기가 45 ㎛인 망체를 사용하여 제조된 가교입자를 회수하였다. 회수된 가교입자를 체눈의 크기가 500 ㎛인 망체에 걸러내고 남은 가교입자를 분석하였다.
비교예 5: 고분자 마이크로 입자의 제조
히알루론산염(중량 평균분자량: 500kDa) 및 젤라틴(젤강도: 300g Bloom)을 각각 증류수에 2 wt.%, 2.5 wt.%로 녹여 5 ml씩 제조한 다음, 이 두 용액을 혼합한 용액을 액체 파라핀 용액과 혼합하여 마이크로 에멀전을 포함하는 혼합액을 제조하였다. 이후, 상기 혼합액에 가교제로 1,4-부탄디올 디글리시딜 에터(1,4-Butandiol diglycidyl ether, BDDE)를 2.2 g 첨가하고, 상온에서 5일 동안 가교반응시켰다. 이를 아세톤, 디클로로메탄, 증류수 순서로 세척한 후 체눈의 크기가 45 ㎛인 망체를 사용하여 제조된 가교입자를 회수하였다. 회수된 가교입자를 체눈의 크기가 500 ㎛인 망체에 걸러내고 남은 가교입자를 분석하였다.
비교예 6: 고분자 마이크로 입자의 제조
알지네이트 및 셀룰로오스를 각각 증류수에 2.5 wt.%로 녹인 각각의 용액 10 mL을 혼합하여 20 mL을 제조한 다음, 이를 칼슘 이온(Ca2+)을 포함하는 화합물인 CaCl2가 4 g 첨가된 에탄올 용액 80 mL에 encapsulator 기기를 이용하여 형성된 액적을 첨가하고, 상온에서 2 시간 동안 가교반응시킨 후, 에탄올로 세척하여 가교입자를 제조하였다.
0.1N NaOH 수용액을 20% 함유하고 있는 80% 에탄올 용액에 1,4-부탄디올 디글리시딜 에터(1,4-Butandiol diglycidyl ether, BDDE)를 2.2 g 혼합한 후, 상기 가교입자를 첨가하고, 상온에서 3일 동안 가교반응시켜, 고분자 마이크로 입자를 제조하였다. 제조된 입자를 에탄올, 증류수 순서로 세척한 후 체눈의 크기가 45 ㎛인 망체를 사용하여 제조된 가교입자를 회수하였다. 회수된 가교입자를 체눈의 크기가 500 ㎛인 망체에 걸러내고 남은 가교입자를 분석하였다.
비교예 7: 고분자 마이크로 입자의 제조
히알루론산염(중량 평균분자량: 500kDa) 200 mg 을 0.1 N NaOH 수용액에 2 wt.% 농도로, 젤라틴(젤강도: 300g Bloom) 250 mg 을 증류수에 2.5 wt.% 농도로 녹인 각각의 용액 10 mL을 혼합하여 20 mL을 제조한 다음, 이를 철 이온(Fe3+)을 포함하는 화합물인 FeCl3가 4 g 첨가된 에탄올 용액 80 mL에 encapsulator (BUCHI, B-390) 기기를 이용하여 형성된 액적을 첨가하고, 4 ℃에서 2 시간 동안 가교반응시킨 후, 에탄올로 세척하여 가교입자를 제조하였다.
상기 가교 입자를 칼슘 이온(Ca2+)을 포함하는 화합물인 CaCl2가 4 g 첨가된 에탄올 용액 80 mL에 첨가하고, 4 ℃에서 2 시간 동안 가교반응시킨 후, 고분자 마이크로 입자를 제조하였다. 제조된 입자를 에탄올, 증류수 순서로 세척한 후 체눈의 크기가 45 ㎛인 망체를 사용하여 제조된 가교입자를 회수하였다. 회수된 가교입자를 체눈의 크기가 500 ㎛인 망체에 걸러내고 남은 가교입자를 분석하였다.
비교예 8: 세포 배양용 마이크로 캐리어의 제조
실시예 1의 (1)에서 얻어진 고분자 마이크로 입자를 세포 배양용 마이크로 캐리어로 사용하였다.
<실험예1>
상기 실시예 및 비교예에서 제조된 고분자 마이크로 입자에 대하여 다음과 같은 방법으로 고분자 마이크로 입자의 평균직경, 구형화도, 강도, 세포 배양 적합성, 안정성을 평가하였다.
1. 평균 직경
상기 실시예 및 비교예의 고분자 마이크로 입자의 증류수에서의 평균직경은 레이저입도분석기(Horiba, Partica LA-960) 장비를 이용하여 측정하였다.
2. 구형화도
상기 실시예 및 비교예의 고분자 마이크로 입자의 광학(Olympus, BX53) 사진을 촬영하고, 이로부터 구형화도를 계산하였다.
본 발명에 따른 구형화도는 광학 사진에서의 임의의 30개 입자의 가장 긴 직경 대 가장 짧은 직경의 비율(장경비)의 평균 값으로 계산하였다.
이때, 구형화도 값이 1에 가까울수록 구형에 가까운 것을 의미한다.
3. 강도
상기 실시예 및 비교예의 고분자 마이크로 입자에 대하여, Texture analyzer 장비를 사용하여, 마이크로 입자의 강도를 측정하였다. 5 N load cell가 장착된 장비의 flat cylindrical probe 아래 영역에 증류수로 24 시간 팽윤된 마이크로 입자 30개를 단층으로 올려 놓았다. 초기 trigger force는 1 mN으로 설정하고, 1 mm/s 속도로 입자를 압축하였다. 입자 평균직경의 25% 수준으로 변형되었을 때의 힘을 압축력으로 정하였다.
평균 압축 강도는 상기 압축력을 측정 대상인 마이크로 입자의 개수인 30으로 나누어 계산하였다.
4. 세포 배양 적합성
6 well plate에 세포 배양액을 채우고, 고분자 마이크로 입자와 세포를 넣어 plate-rocking 방식으로 세포를 배양하였다. 이때 배양액의 온도는 37℃를 유지하였고, 3일간 배양하여 고분자 마이크로 입자에서 배양된 세포 수를 확인하였다.
이 때, 세포 배양 적합성은 아래 기준으로 평가하였다.
적합 : 투입된 세포 수 대비 배양된 세포 수가 100% 이상인 경우
부적합 : 투입된 세포 수 대비 배양된 세포 수가 100% 미만이거나, 배양 중 마이크로 입자가 분해되는 경우
5. 안정성
고온 고압 방식 멸균기 (Autoclave) 사용을 통해 phosphate-buffered saline 용액에 담긴 고분자 마이크로 입자의 멸균 처리 시 안정성 및 장기간 배양에 따른 입자 안정성을 아래 기준으로 평가하였다.
적합 : Autoclave 이용 전과 후의 건조된 고분자 마이크로 입자의 무게 감소율 20% 이하인 경우
부적합 : Autoclave 이용 전과 후의 건조된 고분자 마이크로 입자의 무게 감소율 20% 초과인 경우
구분 평균직경 (㎛) 구형화도 평균 압축강도 (mN) 세포 배양 적합성 안정성
실시예 1 317±21 0.95±0.08 2.10 적합 적합
실시예 2 346±26 0.96±0.13 1.37 적합 적합
실시예 3 319±32 0.95±0.05 0.37 적합 적합
비교예 1 385±13 0.98±0.09 0.23 적합 부적합
비교예 2 193±21 0.96±0.03 0.10 부적합 부적합
비교예 3 입자 제조 불가능
비교예 4 입자 제조 불가능
비교예 5 입자 제조 불가능
비교예 6 301±48 0.94±0.11 0.29 부적합 적합
비교예 7 194±17 0.95±0.04 0.12 부적합 부적합
상기 표 1에 나타난 바와 같이, 실시예의 고분자 마이크로 입자는, 먼저 투입된 세포 수 대비 배양된 세포 수가 100 % 이상으로 세포 배양에 적합할 뿐만 아니라, Autoclave 처리 전과 후의 건조된 고분자 마이크로 입자의 무게 감소율 20% 이하로 나타나 멸균 처리 및 장기간 배양에 적합함을 확인할 수 있었다. 뿐만 아니라 실시예의 고분자 마이크로 입자는, 평균 압축 강도가 0.37 mN 이상으로 나타나 우수한 기계적 물성을 구현함과 동시에, 높은 가교밀도를 나타내는 입자의 비율이 높음을 확인할 수 있었다. 즉, 실시예의 고분자 마이크로 입자는 세포 배양, 멸균 처리 및 장기간 배양에 적합하면서도 우수한 가교 밀도 및 기계적 물성을 구현함을 확인하였다. 반면, 비교예 1의 고분자 마이크로 입자는 Autoclave 처리 전과 후의 건조된 고분자 마이크로 입자의 무게 감소율 20 % 초과로 나타나 멸균 처리 및 장기간 배양에 부적합할 뿐만 아니라, 평균 압축 강도가 0.23 mN으로 나타나 열등한 기계적 물성을 나타내고, 낮은 가교밀도를 나타내는 입자의 비율이 높음을 확인할 수 있었다.
그리고, 비교예 2의 고분자 마이크로 입자는 증류수 세척 단계에서 가교되지 못한 고분자가 용해되어 입자가 수축되는 것이 관찰되었다. 또한, 세포 배양 중 마이크로 입자가 분해되어, 투입된 세포 수 대비 배양된 세포 수가 100 % 미만으로 세포 배양에 부적합할 뿐만 아니라, Autoclave 처리 전과 후의 건조된 고분자 마이크로 입자의 무게 감소율 20% 초과로 나타나 멸균 처리 및 장기간 배양에 부적합함을 확인할 수 있었다. 또한 평균 압축 강도가 0.1 mN으로 나타나 열등한 기계적 물성을 나타냄을 확인할 수 있었다.
또한, 비교예 3 내지 5의 고분자 마이크로 입자는 비교예 1과 달리 생체 적합성 고분자를 녹인 수용액의 농도를 실시예 1과 동일한 수준으로 조절함에 따라, 고분자 마이크로 입자가 형성되지 않아, 실시예의 경우에 낮은 생체 적합성 고분자 농도에도 고분자 마이크로 입자의 형성이 가능함을 확인할 수 있었다.
비교예 6의 고분자 마이크로 입자는 가교제에 의한 화학적 가교로 인해 증류수 상태에서 0.29 mN 의 평균 압축강도를 나타내었으나, 생체 적합성 고분자로 세포 부착성이 없는 알지네이트와 셀룰로오스를 사용함에 따라 세포 배양에 부적합함을 확인할 수 있었다. 또한, 금속이온으로 칼슘 이온(Ca2+)을 이용하여 가교함에 따라, 세포 배양액에 존재하는 칼슘 이온과 가역적으로 반응할 수 있어, 세포 배양시 입자 강도가 낮아질 수 있다.
비교예 7의 고분자 마이크로 입자는 이온 가교만을 거쳐 제조됨에 따라, 멸균 처리 및 세포 배양 중 일부 마이크로 입자가 분해되어 세포 배양에 부적합함을 확인할 수 있었다.
<실험예2>
상기 실시예1 및 비교예8에서 제조된 세포배양용 마이크로 캐리어에 대하여 다음과 같은 방법으로 물성을 측정하고 표2에 기재하였다.
6. 코팅층 두께
세포배양용 마이크로 캐리어 내 고분자 마이크로 입자의 표면에 형성된 코팅층 두께는 단면 TEM 이미지를 통해 측정하였다.
7. 세포 부착성
100 mL vertical wheel bioreactor (PBS社)에 중간엽 줄기세포(밀도: 1.05 g/cm3)를 포함하는 배양액을 채우고, 상기 세포 배양용 마이크로 캐리어를 배양액에 주입하고 교반하였다. 37 ℃에서 7일간 배양한 후, 세포 배양용 마이크로 캐리어에서 배양된 세포 수를 확인하였다. 그리고 하기 수학식과 같이 초기 투입된 세포 수와 비교하여 마이크로 캐리어의 세포 부착성을 평가하였다.
세포부착성 = (마이크로 캐리어를 세포배양액에 투입하여 37 ℃에서 7일간 배양한 후 세포수 / 세포배양액에 최초 포함된 세포수) X 100
구분 코팅층 두께(㎛) 세포부착성(%)
실시예 1 0.1 2900
비교예 8 코팅층 없음 1900
상기 표2에 나타난 바와 같이, 실시예1의 세포 배양용 마이크로 캐리어는 고분자 마이크로 입자 표면에 0.1 ㎛의 세포부착성 물질 코팅층을 포함함에 따라, 세포부착성이 비교예8 대비 현저히 향상된 것을 확인할 수 있었다.

Claims (20)

  1. 제1 생체 적합성 고분자, 금속이온 및 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제를 포함하는 코어; 및 상기 코어의 전부 또는 일부를 둘러싸며, 제2 생체 적합성 고분자, 금속이온 및 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제를 포함하는 쉘;을 포함하는, 코어-쉘 구조를 가지는 고분자 마이크로 입자, 및
    상기 고분자 마이크로 입자의 표면 상에 형성된 세포 부착 유도층;을 포함하는, 마이크로 캐리어.
  2. 제1항에 있어서,
    상기 코어는 제1 생체 적합성 고분자가 금속이온 및 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제를 매개로 가교된 고분자 매트릭스를 포함하고,
    상기 쉘은 제2 생체 적합성 고분자가 금속이온 및 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제를 매개로 가교된 고분자 매트릭스를 포함하는, 마이크로 캐리어.
  3. 제1항에 있어서,
    상기 제1 생체 적합성 고분자는 히알루론산을 포함하고,
    상기 제2 생체 적합성 고분자는 젤라틴을 포함하는, 마이크로 캐리어.
  4. 제2항에 있어서,
    상기 코어는, 코어에 포함되는 고분자 매트릭스 전체 부피에 대하여,
    히알루론산이 금속이온 및 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제를 매개로 가교된 고분자 매트릭스를 50 부피% 초과로 포함하는, 마이크로 캐리어.
  5. 제2항에 있어서,
    상기 쉘은, 쉘에 포함되는 고분자 매트릭스 전체 부피에 대하여,
    젤라틴이 금속이온 및 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제를 매개로 가교된 고분자 매트릭스를 50 부피% 초과로 포함하는, 마이크로 캐리어.
  6. 제1항에 있어서,
    상기 고분자 마이크로 입자는 증류수에서의 평균 직경이 1 ㎛ 이상인, 마이크로 캐리어.
  7. 제1항에 있어서,
    상기 고분자 마이크로 입자의 최장 직경을 갖는 단면을 기준으로,
    상기 쉘의 두께가 상기 고분자 마이크로 입자의 최장 직경의 95 % 이하인, 마이크로 캐리어.
  8. 제1항에 있어서,
    상기 반응성 작용기를 1 개 이상 포함하는 유기 가교제는,
    반응성 작용기를 1개 이상 포함하는 탄소수 1 내지 30의 가교제를 포함하는, 마이크로 캐리어.
  9. 제1항에 있어서,
    상기 고분자 마이크로 입자는
    입자 평균직경의 25% 수준으로 변형되었을 때의 평균 압축강도가 0.1 mN 이상인, 마이크로 캐리어.
  10. 제1항에 있어서,
    상기 고분자 마이크로 입자는
    광학 사진에서의 임의의 입자의 가장 긴 직경 대 가장 짧은 직경의 비율(장경비)인 구형화도가 0.9 이상 1.0 이하인, 마이크로 캐리어.
  11. 제1항에 있어서,
    상기 세포 부착 유도층은 젤라틴, 콜라겐, 피브로넥틴 키토산, 폴리도파민, 폴리 L-라이신, 비트로넥틴, RGD를 포함한 펩타이드, RGD를 포함한 아크릴계 고분자, 리그닌, 양이온성 덱스트란 및 이들의 유도체로 이루어진 군에서 선택되는 1종 이상의 세포 부착성 물질을 포함하는, 마이크로 캐리어.
  12. 제1항에 있어서,
    상기 세포 부착 유도층은 1 nm 내지 10,000 nm의 층 두께를 갖는, 마이크로 캐리어.
  13. 제1항에 있어서,
    상기 마이크로 캐리어는 1 ㎛ 내지 1000 ㎛의 평균직경을 갖는, 마이크로 캐리어.
  14. 제1항에 있어서,
    상기 마이크로 캐리어는 하기 수학식으로 계산되는 세포 부착성이 2000 % 이상인, 마이크로 캐리어:
    [수학식]
    세포부착성 = (마이크로 캐리어를 세포배양액에 투입하여 37 ℃에서 7일간 배양한 후 세포수 / 세포배양액에 최초 포함된 세포수) X 100.
  15. 제1항에 있어서,
    상기 마이크로 캐리어는 세포 배양용 마이크로 캐리어인, 마이크로 캐리어.
  16. 제1항의 마이크로 캐리어; 및
    상기 마이크로 캐리어 표면 상에 부착된 세포;를 포함하는, 세포 복합체.
  17. 제1항의 마이크로 캐리어 또는 제16항의 세포 복합체 중 어느 하나를 포함하는, 의료용 조성물.
  18. 제1항의 마이크로 캐리어 또는 제16항의 세포 복합체 중 어느 하나를 포함하는, 미용 조성물.
  19. 제17항의 의료용 조성물을 포함하는, 의료 용품.
  20. 제18항의 미용 조성물을 포함하는, 미용 용품.
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