WO2023190820A1 - 抗ＣＫ２α抗体又はその断片 - Google Patents

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Fukushima Medical University PUC
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    • G01N2333/91—Transferases (2.)
    • G01N2333/912—Transferases (2.) transferring phosphorus containing groups, e.g. kinases (2.7)

Definitions

  • the present invention relates to an anti-CK2 ⁇ antibody or a fragment thereof, a kit for predicting the prognosis of cancer patients, a method for predicting the prognosis of cancer patients, and the like.
  • cancer is the most common cause of death, accounting for approximately 30%.
  • breast cancer is the leading cause of death for women aged 30 to 64, with approximately 14,000 deaths in 2018.
  • the survival rate of cancer patients has improved due to advances in cancer detection and/or treatment methods, there are still some patients with a poor prognosis who are at high risk of recurrence, metastasis, or death. Therefore, in order to improve the quality of cancer treatment including breast cancer, it is very important to predict the prognosis of cancer patients and to perform individual management of cancer patients according to the results.
  • CK2 ⁇ (Casein kinase 2 ⁇ ) protein as a new biomarker that can predict the prognosis of cancer patients including breast cancer patients with high accuracy (Patent Document 1).
  • CK2 ⁇ protein is present throughout the cell in normal cells, whereas in cancer cells it is highly expressed in the nucleus and localized to the nucleolus, which is associated with poor prognosis.
  • the present inventors have revealed that the nuclear expression level and nucleolar staining level of CK2 ⁇ protein are strongly correlated with poor prognosis of cancer patients, and are also strongly associated with recurrence risk (Patent Document 1).
  • CK2 ⁇ protein in the nucleolus as a biomarker is a technological technology that has made it possible to predict the prognosis of cancer patients with extremely high accuracy.
  • existing anti-CK2 ⁇ antibodies used for predicting prognosis do not have sufficient specificity or sensitivity for CK2 ⁇ protein.
  • the purpose of the present invention is to provide a new anti-CK2 ⁇ antibody with improved specificity and sensitivity.
  • CK2 ⁇ protein together with CK2 ⁇ ' protein and CK2 ⁇ protein, constitutes CK2 (Casein Kinase 2), which is a serine-threonine kinase.
  • CK2 ⁇ protein has a similar structure to CK2 ⁇ ' protein, and conventional anti-CK2 ⁇ antibodies could not distinguish between the two.
  • mAb (6A3) as a new antibody that exhibits extremely high specificity for CK2 ⁇ protein.
  • the present inventor succeeded in developing mAb (6A3) with extremely high specificity for CK2 ⁇ protein by applying the criterion that it binds only to CK2 ⁇ protein and not to CK2 ⁇ ' protein.
  • mAb (6A3) showed significantly higher specificity and sensitivity than conventional antibodies in Western blotting and immunoprecipitation against CK2 ⁇ protein.
  • mAb (6A3) detects CK2 ⁇ protein localized in the nucleolus with extremely high specificity and sensitivity in cancer tissues derived from cancer patients with poor prognosis, providing an extremely useful tool for biomarker detection.
  • the present invention is based on the above findings and provides the following.
  • the anti-CK2 ⁇ antibody or fragment thereof according to (1) which comprises a light chain variable region consisting of the following sequence.
  • (3) A kit for predicting the prognosis of cancer patients, comprising the anti-CK2 ⁇ antibody or fragment thereof according to (1) or (2).
  • the cancer is selected from the group consisting of breast cancer, uterine cancer, esophageal cancer, stomach cancer, biliary tract cancer, pancreatic cancer, liver cancer, kidney cancer, colon cancer, bladder cancer, lung cancer, thyroid cancer, and glioma; The kit according to (3) or (4).
  • a method for predicting the prognosis of a cancer patient comprising: A step of detecting CK2 ⁇ protein or a fragment thereof in the nucleolus in cancer cells or tissues obtained from a cancer patient, and a step of detecting CK2 ⁇ protein or a fragment thereof in the nucleolus to a high degree compared to other cell fractions. and/or predicting a good prognosis when CK2 ⁇ protein or its fragments are not detected in the nucleolus to a high degree compared to other cell fractions.
  • the method described above, wherein the protein or fragment thereof is detected using the anti-CK2 ⁇ antibody or fragment thereof according to (1) or (2).
  • the prognosis includes recurrence risk.
  • the cancer is selected from the group consisting of breast cancer, uterine cancer, esophageal cancer, stomach cancer, biliary tract cancer, pancreatic cancer, liver cancer, kidney cancer, colon cancer, bladder cancer, lung cancer, thyroid cancer, and glioma; The method described in (6) or (7).
  • the cancer is breast cancer, and the presence or absence of detection of CK2 ⁇ protein or a fragment thereof is determined by at least one of the following: classification by stage, classification by hormone receptor expression status, and classification by HER2 gene and/or protein expression status.
  • the method according to (8) which predicts the prognosis of breast cancer patients in combination.
  • This specification includes the disclosure content of Japanese Patent Application No. 2022-055606, which is the basis of the priority of this application.
  • the present invention provides a new anti-CK2 ⁇ antibody with improved specificity and sensitivity.
  • FIG. 1 is a diagram showing the results of Western blotting using mouse antiserum and hybridoma culture supernatant.
  • FIG. 1A shows the results of Western blotting for recombinant CK2 ⁇ protein ( ⁇ ) and recombinant CK2 ⁇ ' protein ( ⁇ ') using antisera from mice immunized with antigenic polypeptides.
  • FIG. 1B shows the results of Western blotting for recombinant CK2 ⁇ protein ( ⁇ ) and recombinant CK2 ⁇ protein ( ⁇ ′) using culture supernatants of clones 6A, 6B, 6C, and 7A.
  • FIG. 2 shows HEK293 cells analyzed by Western blotting using culture supernatants of clones 6A1, 6A2, and 6A3 and a commercially available mouse anti-CK2 ⁇ monoclonal antibody (ab70774, Abcam, UK; shown as "control antibody” in the figure).
  • This shows the results of detecting CK2 ⁇ protein in the cytoplasmic lysate of. With the control antibody, a non-specific band indicated by an arrow was detected.
  • Figure 3 shows the results of detecting endogenous CK2 ⁇ protein in HEK293 cells by Western blotting using mAb (6A3) and a control antibody.
  • Figure 3A shows the results of Western blot.
  • FIG. 3B shows the results of quantifying the staining intensity of the band corresponding to CK2 ⁇ protein.
  • Figure 4 shows HEK293 cells expressing Flag-CK2 ⁇ protein (Flag-CK2 ⁇ (+) lane) and HEK293 cells not expressing Flag-CK2 ⁇ protein by Western blotting using mAb (6A3) and control antibody. The results of detecting Flag-CK2 ⁇ protein and endogenous CK2 ⁇ protein in the cytoplasmic lysate of cells (Flag-CK2 ⁇ (-) lane) are shown.
  • FIG. 5 is a diagram showing the results of Western blotting on immunoprecipitates. Lysates prepared from the cytoplasm (C) and nucleus (N) of HEK293 cells were immunoprecipitated using mAb (6A3) or control antibody. The results of Western blotting using this method are shown. "No immunoprecipitation” indicates a sample in which cytoplasmic (C) and nuclear (N) lysates were loaded without undergoing immunoprecipitation.
  • FIG. 6 is a diagram showing the results of Western blotting on immunoprecipitates.
  • FIG. 7 shows the results of Western blotting on immunoprecipitates.
  • the results of Western blotting using mAb (6A3) or anti-Flag antibody on the immunoprecipitate obtained by immunoprecipitation using mAb (6A3) or control antibody from the lysate of Flag-CK2 ⁇ -expressing RPE cells are shown below. show.
  • FIG. 8 is a diagram showing the results of Western blotting on immunoprecipitates.
  • Figure 7 shows the results of quantifying the staining intensity of bands (two bands indicated by arrows in Figure 7) when mAb (6A3) or a control antibody was used as the antibody for immunoprecipitation.
  • Figure 9 shows a representative image of immunohistochemical staining in the cancer invasion area (lesion area) of invasive ductal carcinoma.
  • Figure 9A is an image (magnification x 400) of a cancer invasion area (lesion area) stained using 0.1 ⁇ g/mL mAb (6A3). An enlarged image of the area indicated by the black frame in the figure is shown at the bottom left.
  • Figure 9B is an image (magnification x 400) of a cancer invasion area (lesion area) stained with 2 ⁇ g/mL control antibody. An enlarged image of the area indicated by the black frame in the figure is shown at the bottom left.
  • Figure 10 shows the results of Western blotting of IgG purified from multiple CK2 antibody clones established in addition to 6A3 on immunoprecipitates from either the MCF-7 cell line or HEK293 cells expressing Flag-CK2 ⁇ protein. .
  • the upper panel shows the results of detecting endogenous CK2 ⁇ protein in the MCF-7 cell line.
  • the lower panel shows the results of detecting endogenous CK2 ⁇ protein and Flag-CK2 ⁇ protein in HEK293 cells expressing Flag-CK2 ⁇ protein.
  • FIG. 11 shows the results of ChIP-qPCR targeting the HMGB2 gene locus on fractions subjected to chromatin immunoprecipitation with IgG purified from multiple CK2 antibody clones established in addition to 6A3.
  • “Control” indicates a lane loaded with a sample without the addition of IgG for the equally fractionated chromatin fraction.
  • FIG. 12 shows the results of Western blotting of the purified recombinant CK2 ⁇ protein.
  • Figure 13 shows a representative image of immunohistochemical staining at the cancer invasion area (lesion area) of invasive ductal carcinoma.
  • Figure 13A is an image (magnification x 400) of a cancer infiltrated area (lesion area) stained using 0.1 ⁇ g/mL mAb (21B1).
  • Figure 13B is an image (magnification x 400) of a cancer invasion area (lesion area) stained with 2 ⁇ g/mL control antibody.
  • Figure 14 shows the CK2 ⁇ nucleolus stain-positive group (“CK2-NO(+)” in the figure) based on the results of histochemical staining using the 6A3 clone in FFPE samples of primary lung adenocarcinoma patients who underwent resection surgery. ) and the CK2 ⁇ nucleolus staining negative group (“CK2-NO(-)” in the figure).
  • FIG. 15 shows the results of univariate and multivariate analyzes based on the results of histochemical staining using the 6A3 clone on FFPE samples of primary lung adenocarcinoma patients.
  • Figure 15A shows the results of univariate analysis.
  • Figure 15B shows the results of multivariate analysis.
  • FIG. 15C shows the results of analyzing the effects that define recurrence-free survival in multivariate analysis.
  • FIG. 16 shows the results of an analysis of variables that define the period until recurrence using two recurrence prediction models.
  • FIG. 16A shows the results of recurrence prediction model 1 based on six types of variables.
  • FIG. 16B shows the results of recurrence prediction model 2 based on seven types of variables with the addition of age.
  • FIG. 17 shows the classification of stage I to III primary lung adenocarcinoma patients based on stage and CK2 ⁇ staining evaluation, and the presence or absence of recurrence
  • CK2 ⁇ protein refers to the ⁇ subunit of casein kinase 2 (CK2).
  • CK2 ⁇ protein is also referred to as casein kinase 2 alpha 1 or casein kinase II subunit alpha, CK2 ⁇ 1 protein, or CSNK2A1 protein.
  • Casein kinase 2 is a type of serine-threonine kinase and is known to be involved in pro-survival pathways. Casein kinase 2 is known to function as a tetramer composed of an ⁇ subunit (CK2 ⁇ protein), an ⁇ ′ subunit (CK2 ⁇ ′ protein), and two ⁇ subunits (CK2 ⁇ protein). The ⁇ subunit (CK2 ⁇ protein) and ⁇ ' subunit (CK2 ⁇ ' protein) are known to function as catalytic subunits of casein kinase 2.
  • CK2 ⁇ protein or a fragment thereof can serve as a biomarker for predicting the prognosis of cancer patients.
  • the patient is a human
  • human CK2 ⁇ protein or a fragment thereof can be the biomarker.
  • CK2 ⁇ protein in the nucleolus can serve as a biomarker for predicting the prognosis of cancer patients such as breast cancer patients.
  • immunohistochemical staining of CK2 ⁇ protein was performed on formalin-fixed, paraffin-embedded breast cancer tissue specimens excised from primary breast cancer patients who underwent radical resection.
  • CK2 ⁇ protein is present throughout the cell, but in breast cancer cells, it is often observed that it is highly expressed in the nucleus, and in some breast cancer patients (about 40%), CK2 ⁇ protein is present throughout the cell.
  • CK2 ⁇ is localized in the nucleolus within the nucleus, and that the higher the nuclear expression level and nucleolar staining level of CK2 ⁇ protein, the higher the proportion of cases with high stage breast cancer. Furthermore, as a result of evaluating the prognosis of primary breast cancer patients, it was found that nucleolar localization of CK2 ⁇ protein has a high relative risk for both recurrence and life prognosis, and that the presence or absence of nucleolar localization of CK2 ⁇ protein has a high relative risk. It was revealed that this is a significant predictor of recurrence.
  • CK2 ⁇ protein can be localized to the nucleolus in all cancers, including bladder cancer, lung cancer (lung adenocarcinoma and lung squamous cell carcinoma), thyroid cancer, and glioma.
  • the term "marker” refers to a biomarker consisting of the CK2 ⁇ protein or a fragment thereof, or a biomarker consisting of the CK2 ⁇ protein or a fragment thereof in the nucleolus, unless otherwise specified.
  • the type of “cancer” is not limited, but includes, for example, adenocarcinoma, squamous cell carcinoma, small cell carcinoma, and large cell carcinoma.
  • the types of cancer include, for example, malignant melanoma, oral cavity cancer, laryngeal cancer, pharyngeal cancer, thyroid cancer, lung cancer, breast cancer, esophageal cancer, stomach cancer, colorectal cancer (including colon cancer and rectal cancer), Small intestine cancer, bladder cancer, prostate cancer, testicular cancer, endometrial cancer, cervical cancer, endometrial cancer, ovarian cancer, stomach cancer, kidney cancer, liver cancer, pancreatic cancer, biliary tract cancer (including gallbladder cancer and bile duct cancer), brain tumor , head and neck cancer, pediatric tumors including mesothelioma, osteosarcoma, glioma, and neuroblastoma, leukemia, and lymphoma.
  • the cancer is preferably breast cancer, uterine cancer, esophageal cancer, stomach cancer, pancreatic cancer, liver cancer, biliary tract cancer (e.g. gallbladder cancer or bile duct cancer), kidney cancer, colorectal cancer (e.g. rectal cancer or colon cancer), bladder cancer, lung cancer. (eg, lung adenocarcinoma or lung squamous cell carcinoma), thyroid cancer, or glioma (eg, astrocytoma), and more preferably breast cancer.
  • biliary tract cancer e.g. gallbladder cancer or bile duct cancer
  • kidney cancer e.g. rectal cancer or colon cancer
  • bladder cancer e.g, lung adenocarcinoma or lung squamous cell carcinoma
  • thyroid cancer eg, astrocytoma
  • glioma eg, astrocytoma
  • breast cancer is not limited, and includes, for example, ductal carcinoma in situ, invasive ductal carcinoma, invasive lobular carcinoma, lobular carcinoma in situ, and special types of breast cancer such as medullary carcinoma and mucinous carcinoma. Examples include cancer, tubular cancer, and the like.
  • prognosis refers to the predicted course of a cancer patient (eg, presence or absence of recurrence or survival or death).
  • Prediction of prognosis refers to recurrence risk (e.g., recurrence-free survival rate), survival period, or after a certain period of time after surgery (e.g., 1 year, 2 years, 3 years, 4 years, 5 years, 10 years, 15 years or It may be a prediction of survival (20 years or more), relapse-free survival (RFS), or disease-free survival (DFS).
  • predicting prognosis includes predicting recurrence risk (eg, recurrence-free survival).
  • the recurrence-free survival rate is the proportion of patients who do not develop recurrent cancer such as cancer associated with the first cancer
  • the disease-specific survival rate is the proportion of patients who do not die related to the first cancer.
  • Prediction of prognosis can also be referred to as determination, evaluation, or diagnosis of prognosis, or assistance thereof.
  • CK2 ⁇ protein includes a human-derived CK2 ⁇ (human CK2 ⁇ ) protein that includes or consists of the amino acid sequence shown by SEQ ID NO: 2.
  • CK2 ⁇ protein also includes CK2 ⁇ variants and CK2 ⁇ orthologs of other species that have functionally equivalent activity to the CK2 ⁇ protein shown by SEQ ID NO: 2.
  • the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2 has one or several amino acids deleted, substituted, or added, or 80% or more, 90% of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2.
  • the above includes CK2 ⁇ proteins having amino acid identity of 95% or more, 97% or more, 98% or more, or 99% or more.
  • “several” refers to, for example, 2 to 10, 2 to 7, 2 to 5, 2 to 4, or 2 to 3. Moreover, conservative amino acid substitutions are preferable for amino acid substitutions. "Conservative amino acid substitution” refers to a substitution between amino acids with similar properties such as charge, side chain, polarity, aromaticity, etc. Amino acids with similar properties include, for example, basic amino acids (arginine, lysine, histidine), acidic amino acids (aspartic acid, glutamic acid), uncharged polar amino acids (glycine, asparagine, glutamine, serine, threonine, cysteine, tyrosine), and nonpolar amino acids.
  • amino acid identity means that when two amino acid sequences are aligned and gaps are introduced as necessary to achieve the highest degree of amino acid identity between the two, SEQ ID NO. It refers to the proportion (%) of identical amino acid residues between two amino acid sequences to the total amino acid residues of the CK2 ⁇ protein containing the amino acid sequence shown in 2.
  • Amino acid identity can be calculated using a protein search system such as BLAST or FASTA. For details on how to determine identity, see, for example, Altschul et al, Nuc. Acids. Res. 25, 3389-3402, 1977 and Altschul et al, J. Mol. Biol. 215, 403-410, 1990. .
  • CK2 ⁇ protein is encoded by the CK2 ⁇ gene.
  • a specific example of the CK2 ⁇ gene is the human CK2 ⁇ gene that encodes the human CK2 ⁇ protein containing the amino acid sequence shown by SEQ ID NO:2. More specifically, the CK2 ⁇ gene includes a gene containing or consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 1.
  • the CK2 ⁇ gene also includes CK2 ⁇ variants that have functionally equivalent activity to the CK2 ⁇ protein encoded by the CK2 ⁇ gene shown in SEQ ID NO: 1, and CK2 ⁇ genes that encode CK2 ⁇ orthologs from other species. Specifically, 80% or more, 90% of the base sequence shown in SEQ ID NO: 1, where one or several bases have been deleted, substituted, or added, or the base sequence shown in SEQ ID NO: 1. The above includes CK2 ⁇ genes having base identity of 95% or more, 97% or more, 98% or more, or 99% or more.
  • nucleotide sequence that hybridizes under high stringency conditions with a nucleic acid fragment that includes a part of the nucleotide sequence complementary to the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 1, and is functionally equivalent to the CK2 ⁇ protein.
  • Genes encoding active proteins are included.
  • base identity means that when two base sequences are aligned and gaps are introduced as necessary to maximize the degree of base identity between the two, SEQ ID NO. It refers to the proportion (%) of identical bases between two base sequences to the total bases of the CK2 ⁇ gene, including the base sequence shown by 2.
  • hybridizing under high stringency conditions refers to hybridization and washing under conditions of low salt concentration and/or high temperature. For example, incubate with the probe at 65°C to 68°C in 6x SSC, 5x Denhardt reagent, 0.5% SDS, 100 ⁇ g/mL denatured fragmented salmon sperm DNA, followed by a wash solution of 2x SSC, 0.1% SDS. An example is to start at room temperature, reduce the salt concentration in the wash solution to 0.1 ⁇ SSC, and increase the temperature to 68° C. until no background signal is detected. High stringency hybridization conditions are described in Green, M.R. and Sambrook, J., 2012, Molecular Cloning: A Laboratory Manual Fourth Ed., Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, New York. It can be used as a reference.
  • nucleotide sequence information of the CK2 ⁇ gene can be searched from public databases (GenBank, EMBL, DDBJ). For example, based on the known base sequence information of the CK2 ⁇ gene shown in SEQ ID NO: 1, genes with high base identity can be searched from a database and obtained.
  • a "fragment" of the CK2 ⁇ protein is a peptide fragment that includes or consists of a part of the amino acid sequence that constitutes the CK2 ⁇ protein, and is a fragment of the CK2 ⁇ protein from the amino acid sequence that constitutes the fragment. refers to something that can be identified.
  • a "fragment” refers to 5 or more, 8 or more, 10 or more, 20 or more, 30 or more, 40 or more, or 50 or more consecutive amino acid residues of the full-length amino acid sequence of the CK2 ⁇ protein. It may also be a peptide consisting of 200 or less, 150 or less, 120 or less, 100 or less, or 80 or less consecutive amino acid residues.
  • a "fragment” may be a peptide consisting of 5 to 200, 10 to 120, or 50 to 80 contiguous amino acid residues.
  • nucleolus refers to a region that exists in the nucleus of eukaryotic cells and has a high molecular density, where rRNA transcription and ribosome production occur. Nucleoli can generally be observed with a light microscope. Usually one nucleolus is observed within the nucleus, but multiple nucleoli may be observed in some cases.
  • the invention relates to an anti-CK2 ⁇ antibody or fragment thereof.
  • the anti-CK2 ⁇ antibody or fragment thereof of the present invention can predict the prognosis of cancer patients by detecting the CK2 ⁇ protein or its peptide fragment that can be localized in the nucleolus in highly malignant cancers.
  • Anti-CK2 ⁇ antibody refers to an antibody that exhibits immunoreactivity to CK2 ⁇ protein or a peptide fragment thereof.
  • the biological species from which the anti-CK2 ⁇ antibody of the present invention is derived is not particularly limited. Antibodies derived from birds and mammals are preferred. Examples include chicken, ostrich, mouse, rat, guinea pig, rabbit, goat, donkey, sheep, camel, horse, or human.
  • the anti-CK2 ⁇ antibody of the present invention is a monoclonal antibody.
  • a “monoclonal antibody” includes a framework region (hereinafter referred to as "FR") and a complementarity determining region (hereinafter referred to as "CDR"), and A single type of immunoglobulin that can specifically bind to and recognize it, or at least one set of light chain variable region (V L region) and heavy chain variable region (V H region) contained in the immunoglobulin Refers to recombinant or synthetic antibodies that include.
  • the immunoglobulins can be of any class (e.g., IgG, IgE, IgM, IgA, IgD, and IgY) or of any subclass (e.g., IgG1, IgG2, IgG3, IgG4). , IgA1, and IgA2).
  • the epitope of the CK2 ⁇ protein or peptide fragment thereof recognized by the anti-CK2 ⁇ antibody of the present invention is an epitope specifically contained in the CK2 ⁇ protein. Preferably this epitope is not included in the CK2 ⁇ ' protein.
  • mAb (6A3) mouse anti-CK2 ⁇ monoclonal antibody clone 6A3 (herein referred to as "mAb (6A3)") in the Examples described below.
  • mAb (6A3) the heavy chain variable region consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 11, and the light chain variable region consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 12.
  • Kabat's rule Kabat's rule (Kabat E.A., et al., 1991, Sequences of proteins of immunological interest, Vol.1, eds.
  • CDR1 (HCDR1) consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 5
  • CDR2 (HCDR2) consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 6
  • CDR3 (HCDR3) consists of the amino acid sequence (FV) shown in SEQ ID NO: 7.
  • CDR1 (LCDR1) consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 8
  • CDR2 (LCDR2) consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 9
  • CDR3 (LCDR3) consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 9. It consists of the amino acid sequence shown in 10.
  • the amino acid sequences of SEQ ID NOs: 5-12 are shown in Table 1 below.
  • the heavy chain variable region consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 15, and the light chain variable region consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 16.
  • CDR1 consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 17
  • CDR2 consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 18
  • CDR3 HCDR3
  • CDR1 consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 20
  • CDR2 consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 21
  • CDR3 consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 21. It consists of the amino acid sequence shown in 22.
  • the heavy chain variable region consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 23, and the light chain variable region consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 24.
  • CDR1 consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 25
  • CDR2 consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 26
  • CDR3 consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 27.
  • CDR1 consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 28
  • CDR2 consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 29
  • CDR3 consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 29. It consists of the amino acid sequence shown in 30.
  • the heavy chain variable region consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 31, and the light chain variable region consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 32.
  • CDR1 consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 33
  • CDR2 consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 34
  • CDR3 consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 35.
  • CDR1 consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 36
  • CDR2 consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 37
  • CDR3 consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 37. It consists of the amino acid sequence shown in 38.
  • the heavy chain variable region consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 39
  • the light chain variable region consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 40.
  • CDR1 (HCDR1) consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 41
  • CDR2 (HCDR2) consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 42
  • CDR3 ( HCDR3) consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 43.
  • CDR1 LCDR1
  • CDR2 LCDR2
  • CDR3 LCDR3
  • the heavy chain variable region consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 47
  • the light chain variable region consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 48.
  • CDR1 (HCDR1) consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 49
  • CDR2 (HCDR2) consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 50
  • CDR3 ( HCDR3) consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 51.
  • CDR1 consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 52
  • CDR2 consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 53
  • CDR3 consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 53. It consists of the amino acid sequence shown in 54.
  • nucleic acid (nucleotide) encoding the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 11, which corresponds to the heavy chain variable region of mAb (6A3) is a nucleic acid consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 13.
  • examples of the nucleic acid encoding the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 12, which corresponds to the light chain variable region of mAb (6A3) include a nucleic acid consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 14.
  • nucleic acid (nucleotide) encoding the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 15, which corresponds to the heavy chain variable region of mAb (10B2) include a nucleic acid consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 55.
  • examples of the nucleic acid encoding the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 16 corresponding to the light chain variable region of mAb (10B2) include a nucleic acid consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 56.
  • nucleic acid (nucleotide) encoding the amino acid sequence shown by SEQ ID NO: 23, which corresponds to the heavy chain variable region of mAb (15C1) is the nucleic acid consisting of the base sequence shown by SEQ ID NO: 57.
  • examples of the nucleic acid encoding the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 24, which corresponds to the light chain variable region of mAb (15C1) include a nucleic acid consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 58.
  • nucleic acid (nucleotide) encoding the amino acid sequence shown by SEQ ID NO: 31, which corresponds to the heavy chain variable region of mAb (16C2) is the nucleic acid consisting of the base sequence shown by SEQ ID NO: 59.
  • examples of the nucleic acid encoding the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 32, which corresponds to the light chain variable region of mAb (16C2) include a nucleic acid consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 60.
  • nucleic acid (nucleotide) encoding the amino acid sequence shown by SEQ ID NO: 39, which corresponds to the heavy chain variable region of mAb (19C2) is the nucleic acid consisting of the base sequence shown by SEQ ID NO: 61.
  • examples of the nucleic acid encoding the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 40, which corresponds to the light chain variable region of mAb (19C2) include a nucleic acid consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 62.
  • nucleic acid (nucleotide) encoding the amino acid sequence shown by SEQ ID NO: 47, which corresponds to the heavy chain variable region of mAb (21B1) is the nucleic acid consisting of the base sequence shown by SEQ ID NO: 63.
  • examples of the nucleic acid encoding the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 48, which corresponds to the light chain variable region of mAb (21B1) include a nucleic acid consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 64.
  • Recombinant antibody refers to a chimeric antibody or a humanized antibody.
  • a “chimeric antibody” is an antibody produced by combining the amino acid sequences of antibodies derived from different animals, and is an antibody in which the constant region (C region) of one antibody is replaced with the C region of another antibody. For example, this is an antibody in which the C region of a mouse monoclonal antibody is replaced with the C region of a human antibody.
  • the heavy chain variable region of a human antibody against an arbitrary antigen is replaced with the heavy chain variable region consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 11 of the aforementioned mAb (6A3), and the light chain of a human antibody Examples include antibodies in which the variable region is replaced with a light chain variable region consisting of the amino acid sequence shown by SEQ ID NO: 12. This can reduce the immune response to the antibody in the human body.
  • a "humanized antibody” is a mosaic antibody in which the CDRs in a human antibody are replaced with the CDRs in an antibody derived from a non-human mammal.
  • variable region (V region) of an immunoglobulin molecule consists of four FRs (FR1, FR2, FR3, and FR4) and three CDRs (CDR1, CDR2, and CDR3) starting from the N-terminus: FR1-CDR1-FR2-CDR2-FR3- It is composed of CDR3-FR4 concatenated in the order.
  • FRs are relatively conserved regions that constitute the backbone of the variable region, and CDRs directly contribute to the antigen-binding specificity of antibodies.
  • a humanized antibody is, for example, a set of CDR1, CDR2, and CDR3 in the light chain or heavy chain of a mouse-derived mAb (6A3), and a set of CDR1, CDR2, and CDR2 in the light chain or heavy chain of a human antibody against any antigen.
  • CDR3 and CDR3 it is possible to construct a human antibody that inherits the antigen-binding specificity of mAb (6A3), a mouse antibody.
  • CDR1 consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 5 derived from the heavy chain of mAb (6A3) mentioned above
  • CDR2 consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 6
  • CDR2 consists of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 7.
  • CDR1 consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 8 derived from the light chain of the aforementioned mAb (6A3)
  • CDR1 consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 9 derived from the light chain of the above-mentioned mAb (6A3).
  • Examples include antibodies in which CDR2 consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 10 and CDR3 consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 10 are substituted with the light chain CDR1, CDR2, and CDR3 of a human antibody, respectively. Since such humanized antibodies are derived from human antibodies except for CDRs, they can reduce the immune reaction against the antibodies in the human body more than chimeric antibodies.
  • “Synthetic antibody” refers to an antibody that is synthesized chemically or by using recombinant DNA methods. Examples include antibodies newly synthesized using recombinant DNA methods. Specific examples include scFv (single chain fragment of variable region: single chain antibody), diabody, triabody, and tetrabody. In immunoglobulin molecules, a pair of variable regions (light chain variable region V L and heavy chain variable region V H ) that form a functional antigen-binding site are located on separate polypeptide chains, the light chain and the heavy chain. do.
  • scFv is a synthetic antibody with a molecular weight of about 35 kDa or less, which has a structure in which V L and V H are linked by a sufficiently long flexible linker and included in one polypeptide chain in an immunoglobulin molecule.
  • V L and V H are linked by a sufficiently long flexible linker and included in one polypeptide chain in an immunoglobulin molecule.
  • a set of variable regions can self-assemble together to form a functional antigen binding site.
  • scFv can be obtained by incorporating recombinant DNA encoding it into a vector using known techniques and expressing it.
  • Diabodies are molecules whose structure is based on the dimeric structure of scFv (Holliger et al., 1993, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90:6444-6448).
  • the two variable regions within the scFv cannot self-assemble, but by allowing the two scFvs to interact to form a diabody, one scFv
  • the V L of one scFv can assemble with the V H of the other scFv to form two functional antigen binding sites.
  • a cysteine residue to the C-terminus of scFv, it is possible to form a disulfide bond between two scFvs, thereby forming a stable diabody.
  • Diabodies are thus bivalent antibody fragments.
  • Triabodies and tetrabodies are trivalent and tetravalent antibodies, respectively, which are based on scFv structures and have trimeric and tetrameric structures, like diabodies.
  • Diabodies, triabodies, and tetrabodies may be multispecific antibodies.
  • the term "multispecific antibody” refers to a multivalent antibody, that is, an antibody having multiple antigen-binding sites in one molecule, in which each antigen-binding site binds to a different epitope.
  • diabodies include bispecific antibodies in which each antigen-binding site binds to a different epitope.
  • one antigen-binding site is a heavy chain variable region consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 11 and a light chain variable region consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 12. This applies to diabodies that contain a diabody and whose other antigen-binding site binds to a different epitope.
  • the anti-CK2 ⁇ antibody of the present invention can also be modified.
  • modification includes functional modifications necessary for antigen-specific binding activity such as glycosylation, and modifications on labels necessary for antibody detection.
  • Glycosylation modifications on anti-CK2 ⁇ antibodies are performed to adjust the affinity of anti-CK2 ⁇ antibodies for the target CK2 ⁇ protein or peptide fragment thereof.
  • modifications can be made such as introducing substitutions into amino acid residues that constitute glycosylation and removing the glycosylation site, thereby causing loss of glycosylation at that site. .
  • Labeling of anti-CK2 ⁇ antibodies includes, for example, fluorescent dyes (FITC, rhodamine, Texas Red, Cy3, Cy5), fluorescent proteins (e.g., PE, APC, GFP), enzymes (e.g., horseradish peroxidase, alkaline phosphatase, glucose oxidase). ), radioisotopes (eg 3 H, 14 C, 35 S) or labeling with biotin or (strept)avidin.
  • fluorescent dyes e.g., rhodamine, Texas Red, Cy3, Cy5
  • fluorescent proteins e.g., PE, APC, GFP
  • enzymes e.g., horseradish peroxidase, alkaline phosphatase, glucose oxidase
  • radioisotopes eg 3 H, 14 C, 35 S
  • the anti-CK2 ⁇ antibody of the present invention preferably has a dissociation constant with CK2 ⁇ protein of 10 ⁇ 7 M or less, for example, preferably has a high affinity of 10 ⁇ 8 M or less, more preferably 10 ⁇ 9 M It is particularly preferably 10 ⁇ 10 M or less.
  • the above dissociation constant can be measured using techniques known in the art. For example, it may be measured using the Biacore system (GE Healthcare) using speed evaluation kit software.
  • diabodies single chain antibody molecules (scFv), dimeric scFv (bivalent diabodies), multispecific antibodies, camelized single domain antibodies (camelized antibodies; VHH antibodies), etc.
  • Fab is an antibody fragment produced when an IgG molecule is cleaved by papain on the N-terminal side of the disulfide bond in the hinge region, and constitutes the H chain constant region (heavy chain constant region: hereinafter referred to as C H ). It consists of three domains (C H 1, C H 2, C H 3), which are adjacent to V H , and the full-length L chain .
  • F(ab') 2 is a dimer of Fab' produced when an IgG molecule is cleaved by pepsin at the C-terminal side of the disulfide bond in the hinge region.
  • Fab' has a slightly longer H chain than Fab, including the hinge region, but has substantially the same structure as Fab.
  • Fab' can be obtained by reducing F(ab') 2 under mild conditions and cleaving the disulfide linkage in the hinge region. Since all of these antibody fragments contain an antigen-binding site, they have the ability to specifically bind to an antigen epitope.
  • anti-CK2 ⁇ antibody of the present invention can be obtained by a conventional method in the art. Furthermore, if the amino acid sequence of a monoclonal antibody is known, it can also be prepared using chemical synthesis methods or recombinant DNA technology based on the amino acid sequence. Furthermore, monoclonal antibodies can also be obtained from hybridomas that produce the antibodies.
  • the antigen polypeptide or antigen peptide that can be used as an immunogen for the anti-CK2 ⁇ antibody of the present invention is any part or full length of the CK2 ⁇ protein (hereinafter referred to as "CK2 ⁇ antigen polypeptide").
  • an example of an antigen polypeptide that can be used as an immunogen for the anti-CK2 ⁇ antibody of the present invention is the full-length human CK2 ⁇ protein consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO:2.
  • CK2 ⁇ antigenic peptides can be prepared using, for example, chemical synthesis methods or DNA recombination techniques.
  • the present invention provides an anti-CK2 ⁇ antibody or a fragment thereof for predicting the prognosis of cancer patients.
  • CK2 ⁇ protein can be specifically detected.
  • the anti-CK2 ⁇ antibody of the present invention or a fragment thereof can be used for immunohistochemical staining, enzyme immunoassay (including ELISA and EIA), Western blotting, radioimmunoassay (RIA), immunoprecipitation, and chromatin immunoprecipitation. Highly sensitive and specific detection is possible by using this method (CHIP) or flow cytometry method.
  • the present invention relates to a kit for predicting the prognosis of cancer patients.
  • the kit for predicting the prognosis of cancer patients of the present invention contains the above-mentioned anti-CK2 ⁇ antibody or its immunoreactive fragment as an essential component, and detects a biomarker for predicting the prognosis of cancer patients consisting of CK2 ⁇ protein. can do.
  • the kit for predicting the prognosis of cancer patients of the present invention is an antibody (hereinafter referred to as "other biomarker") against a biomarker for predicting the prognosis of cancer patients other than the CK2 ⁇ protein or its peptide fragment (hereinafter referred to as “other biomarker for predicting prognosis”). or immunoreactive fragments thereof (referred to as “prognostic antibodies”) or immunoreactive fragments thereof.
  • the kit for predicting the prognosis of cancer patients of the present invention contains the above-mentioned anti-CK2 ⁇ antibody or fragment thereof as an essential component.
  • the anti-CK2 ⁇ antibody contained in the kit for predicting the prognosis of cancer patients of the present invention may be a single type or multiple types.
  • the kit for predicting the prognosis of cancer patients of the present invention may further include one or more types of other prognosis prediction antibodies or fragments thereof having immunoreactivity as the selection component.
  • the other antibody for predicting prognosis may be any antibody that can improve the accuracy of predicting the prognosis of cancer patients when used in combination with the anti-CK2 ⁇ antibody, and may be any antibody that can predict the prognosis of cancer patients.
  • Antibodies against biomarkers can be used. Such biomarkers can be selected from known cancer markers.
  • the kit for predicting the prognosis of cancer patients of the present invention includes other reagents necessary for predicting the prognosis of cancer patients, such as known immunohistochemical staining, ELISA, and Western blotting reagents.
  • it may contain labeling reagents, buffers, chromogenic substrates, secondary antibodies, blocking agents, equipment and control buffers necessary for testing, and instructions used for detection and determination of results.
  • the invention relates to a method for predicting the prognosis of cancer patients.
  • the cancer is selected from the group consisting of breast cancer, uterine cancer, esophageal cancer, gastric cancer, pancreatic cancer, liver cancer, biliary tract cancer, renal cancer, colon cancer, bladder cancer, lung cancer, thyroid cancer, and glioma. .
  • the present invention predicts the prognosis of cancer patients by combining a marker consisting of CK2 ⁇ protein or a fragment thereof with factors such as stage classification, tumor diameter, presence or absence of lymph node metastasis, and histological grade.
  • the cancer is breast cancer
  • the marker is classified into at least one, preferably two, of classification by stage, classification by hormone receptor expression status, and classification by HER2 gene and/or protein expression status. combined with all three to predict the prognosis of breast cancer patients.
  • the prognosis of breast cancer patients is predicted by combining the marker with other factors such as tumor diameter, presence or absence of lymph node metastasis, and histological grade, in addition to or separately from the above classification. . Combining with other classifications or factors may have the effect of enabling better prognosis prediction.
  • TNM classification by stage is performed based on the TNM classification of the International Union against Cancer (UICC International Code, L.H. Sobin, M.K. Gospodarowicz and Ch. Wittekind, TNM Classification of Malignant Tumours, 7th edition).
  • UICC-TNM classification The above-mentioned TNM classification of the International Union against Cancer (UICC) is referred to herein as the UICC-TNM classification.
  • UICC-TNM classification breast cancer is classified into stages 0, I, II, III, and IV in descending order of progression.
  • the UICC-TNM classification classifies the degree of progression of cancer lesions based on three factors: lump size and spread within the breast (T classification), lymph node metastasis (N classification), and distant metastasis (M classification). Determination of the stage based on the UICC-TNM classification can be performed according to the common knowledge of those skilled in the art.
  • stage 0 is when the breast cancer remains within the breast duct
  • stage I is when the breast cancer tumor diameter is within 2 cm and there is no axillary lymph node metastasis or micrometastasis within 0.2 mm
  • stage I is when the tumor diameter is over 2 cm.
  • stage II with no axillary lymph node metastasis, or with a tumor diameter of 5 cm or less and 3 or fewer axillary lymph node metastases; (including those with clinically obvious sternal lymph node metastasis even without cancer), or if the tumor diameter is more than 5 cm and there are no more than 9 axillary lymph node metastases, or the tumor has invaded the chest wall regardless of the tumor diameter.
  • stage III regardless of lymph node metastasis. Any tumor status is considered stage III if there are 10 or more axillary lymph node metastases, axillary lymph node and sternal lymph node metastases, or ipsilateral supraclavicular lymph node metastasis. If there is distant metastasis, it is classified as stage IV. In the examples described below, all cases are expressed as a stage (p stage) after a post-operative pathological diagnosis.
  • Classification based on the expression status of hormone receptors is classification based on the expression status of estrogen receptors (ER) and/or progesterone receptors (PgR), such as the presence or absence of expression (positive or negative) or the level of expression.
  • ER estrogen receptors
  • PgR progesterone receptors
  • the expression status of ER and PgR may be the expression status of genes encoding these proteins, but is preferably the expression status of these proteins.
  • the classification based on the expression status of the HER2 gene and/or protein may be based on the presence or absence of expression (positive or negative) or the level of expression of the HER2 gene and/or protein.
  • Methods for measuring the expression status of ER, PgR, and HER2 are known to those skilled in the art and are not limited, but for example, for protein detection methods, immunological detection methods such as immunohistochemical staining, Examples of methods for detecting nucleic acids include a nucleic acid amplification method using primers or a hybridization method using probes (eg, FISH (Fluorescence In Situ Hybridization) method).
  • FISH Fluorescence In Situ Hybridization
  • ER, PgR, and HER2 When classifying ER, PgR, and HER2 in combination, it can be classified into the following three groups: (1) Hormone receptor positive/HER2 negative where ER and/or PgR are expressed and HER2 is not expressed; (2) HER2 positive, in which HER2 is expressed regardless of whether ER and PgR are expressed; (3) Triple negative, in which neither ER, PgR, nor HER2 is expressed.
  • the presence or absence or level of expression of CK2 ⁇ protein or its fragment in the nucleolus is used as a marker for predicting the prognosis of cancer patients.
  • the presence or absence or level of expression will be described in detail below.
  • the present invention relates to a method for predicting the prognosis of cancer patients.
  • This method includes the steps of detecting CK2 ⁇ protein or a fragment thereof in the nucleolus in cancer cells or tissues obtained from a cancer patient, and predicting a poor prognosis when the CK2 ⁇ protein or fragment thereof is detected. and/or predicting that the prognosis is good when CK2 ⁇ protein or a fragment thereof is not detected.
  • the detection step can be performed in vitro.
  • detection of the CK2 ⁇ protein or its fragment in the nucleolus can be performed using the above-mentioned anti-CK2 ⁇ antibody or its immunoreactive fragment.
  • the present invention relates to a method for predicting the prognosis of cancer patients.
  • This method includes the steps of detecting CK2 ⁇ protein or a fragment thereof in the nucleolus in cancer cells or tissues obtained from a cancer patient, and CK2 ⁇ protein or a fragment thereof being highly concentrated in the nucleus compared to other cell fractions. Predicting that the prognosis is poor when detected in the nucleolus, and/or predicting that the prognosis is good when the CK2 ⁇ protein or its fragment is not detected in the nucleolus to a high degree compared to other cell fractions. including.
  • the "other cell fraction” is not limited as long as it is a cell fraction other than the nucleolus, and may be, for example, the cytoplasm or nucleoplasm (nuclear fluid).
  • "when CK2 ⁇ protein or its fragments are not detected in the nucleolus to a high degree compared to other cell fractions” means that CK2 ⁇ protein or its fragments are detected in the nucleolus to the same extent as other cell fractions. (including cases where CK2 ⁇ protein or its fragments are detected uniformly throughout the cell) or when CK2 ⁇ protein or its fragments are detected in other cell fractions to a higher degree than in the nucleolus. Including cases etc.
  • the detection step can be performed in vitro.
  • detection of the CK2 ⁇ protein or its fragment in the nucleolus can be performed using the above-mentioned anti-CK2 ⁇ antibody or its immunoreactive fragment.
  • stage of cancer suffered by patients targeted by the present invention is not limited.
  • the breast cancer afflicted by the subject subject of the present invention may be stage I-IV, eg, stage I-III or stage III breast cancer.
  • the cancer patient in the present invention is, for example, a mammal, preferably a primate, and more preferably a human.
  • Cancer cells or tissues used in the present invention are not particularly limited, but can be obtained from cancer patients by, for example, biopsy or surgical resection.
  • the cells or tissues may be used as they are for marker detection, or may be pretreated as appropriate for measurement.
  • paraffin-embedded sections may be prepared from patient-derived samples.
  • a protein extract may be prepared by separating nuclei or nucleoli from a patient-derived sample.
  • the marker detected by this method may be either the CK2 ⁇ protein or a fragment thereof. Detection includes measurement of the presence or absence of expression, the amount of expression, or the level of expression concentration. As used herein, the term “detection” includes measurement, qualitative, quantitative, and semi-quantitative detection.
  • the method for detecting the CK2 ⁇ protein or a fragment thereof may be any known protein detection method, and is not particularly limited, but includes, for example, an immunological detection method.
  • Immunological detection method is a method of measuring the amount of a target molecule using an antibody or antibody fragment that specifically binds to the target molecule, which is an antigen. Specifically, the above-mentioned CK2 ⁇ protein or a fragment thereof can be used in this step.
  • immunological detection methods include immunohistochemical staining, enzyme immunoassay (including ELISA and EIA), Western blotting, radioimmunoassay (RIA), immunoprecipitation, and chromatin immunoprecipitation. (CHIP) or flow cytometry method.
  • immunohistochemical staining method a known method can be adopted.
  • a patient-derived sample may be fixed in formalin, embedded in paraffin, sliced into tissue pieces, and attached to a glass slide to be used as a section sample.
  • the antigen is activated by heat treatment if necessary, and then a primary antibody that recognizes the CK2 ⁇ protein or its fragment (specifically, the above-mentioned CK2 ⁇ protein or its fragment) and a labeled antibody that recognizes the primary antibody are used. This may be performed on section samples using a secondary antibody.
  • expression of the CK2 ⁇ protein or its fragments in the nucleolus can be confirmed by performing this on a sample from which the nucleolus has been separated in advance.
  • each of the above-mentioned measurement methods is a technique known in the art. Therefore, the specific measuring method may be carried out according to a known method. For example, the method described in Green, M.R. and Sambrook, J., 2012 (mentioned above) can be referred to.
  • this step the prognosis of the cancer patient is predicted based on the measurement results obtained in the measurement step.
  • this step includes determining whether the cancer cell or tissue is positive or negative for the marker from the results obtained in the detection step. If cancer cells or tissues are negative for the marker, a cancer patient's prognosis may be predicted to be good. On the other hand, if cancer cells or tissues are positive for the marker, the cancer patient's prognosis may be predicted to be poor.
  • an immunohistochemical staining method for example, if one or more cells or cell clusters are stained, it can be determined to be positive, and if there are no stained tumor cells, it can be determined to be negative. Alternatively, if the number of stained tumor cells exceeds a certain percentage (e.g. 10%, 15% or 20%) of the total number of tumor cells, it is determined to be positive, and the number of stained tumor cells compared to the total number of tumor cells is determined to be positive. If the percentage is below the certain percentage, it may be determined to be negative.
  • sections can be classified into the following five stages: I, II, III, IV, and V. I: There is staining of the whole cell, but nuclear staining is not clear.
  • the prediction step includes determining whether the expression level of the marker in the cancer cell or tissue obtained in the detection step is higher or lower (eg, than a predetermined threshold). If the expression level of the marker in cancer cells or tissues is lower (e.g., statistically significantly lower) than a predetermined threshold, the prognosis of a cancer patient (e.g., for a population with an expression level higher than a predetermined threshold) can be predicted to be good. On the other hand, if the expression level of the biomarker in cancer cells or tissues is higher (e.g., statistically significantly higher) than a predetermined threshold, then cancer patients (e.g., for a population with expression levels lower than a predetermined threshold) The prognosis can be predicted to be poor.
  • the predetermined threshold value may be a control amount measured in a control sample (control cells or tissues, eg, control mammary gland cells or mammary gland tissue).
  • the control sample may be derived from a healthy individual (eg, a healthy person), a benign tumor of the mammary gland, or a breast cancer patient (eg, a stage II breast cancer patient).
  • a "healthy individual” refers to a healthy individual who is of the same species as the test individual and is not suffering from cancer.
  • the expression level in these individuals or the median value, average value, upper limit level, lower limit level, or value in a certain range of expression levels in a plurality of individuals can be used as the predetermined threshold.
  • the threshold value can be set as appropriate depending on the accuracy of prediction, etc., and can be determined by, for example, ROC (receiver operating characteristic curve) analysis.
  • statically significant means that the risk rate (significance level) of the obtained value is small, specifically p ⁇ 0.05 (less than 5%), p ⁇ 0.01 (less than 1%). ) or p ⁇ 0.001 (less than 0.1%).
  • the statistical test method is not particularly limited, and any known test method capable of determining the presence or absence of significance may be used as appropriate. For example, Student's t-test, multiple comparison test, and log-rank test can be used.
  • poor prognosis means that the clinical outcome (e.g., after surgical resection) is poor (e.g., the risk or rate of recurrence of cancer such as breast cancer is high, the recurrence-free survival rate is poor). low disease (cancer)-specific survival rate, or low overall survival rate). If the prognosis is poor, the 5-year recurrence-free survival or disease-specific survival rate may be less than 95%, less than 90%, less than 85%, less than 80%, less than 75%, or less than 70%. In the present invention, survival rate means cumulative survival rate.
  • good prognosis refers to a good clinical outcome. If the prognosis is good, the 5-year recurrence-free survival rate or survival rate after surgery to remove cancer may be 90% or more, 95% or more, or 100%.
  • the prognosis of a cancer patient can be predicted, and based on the prediction, a treatment strategy (e.g., type of anticancer drug, dosage, administration interval, etc.) can be determined, or cancer recurrence and metastasis can be examined. The interval between can be determined.
  • a treatment strategy e.g., type of anticancer drug, dosage, administration interval, etc.
  • the present invention when a cancer patient's prognosis is predicted to be poor, drug therapy and/or radiotherapy may be administered to the patient in order to prevent cancer recurrence, improve prognosis, or improve survival rate. Also good. Therefore, the present invention also provides methods for preventing cancer recurrence or improving prognosis, including administering at least one of drug therapy and radiotherapy to cancer patients predicted to have a poor prognosis by the method of the present invention; or provide a method for improving survival rates. Furthermore, if a cancer patient's prognosis is predicted to be poor, the frequency of testing can be increased in order to detect cancer recurrence early.
  • Drugs include, but are not limited to, anticancer agents such as doxorubicin, cyclophosphamide, 5-fluorouracil (5-FU), capecitabine, oxaliplatin, and irinotecan; antiestrogens (e.g., tamoxifen), LH-RH agonist preparations; (eg, Leuprin), aromatase inhibitors (eg, anastrozole), and progesterone preparations; antibody drugs such as HER2 antibodies (eg, trastuzumab). Drugs can be used alone or in combination. Drugs can be administered by injection, intravenous administration, oral administration, and other routes.
  • anticancer agents such as doxorubicin, cyclophosphamide, 5-fluorouracil (5-FU), capecitabine, oxaliplatin, and irinotecan
  • antiestrogens e.g., tamoxifen
  • LH-RH agonist preparations
  • the method described herein combines the presence or absence of detection of CK2 ⁇ protein or its fragments with factors such as stage classification, tumor diameter, presence or absence of lymph node metastasis, and histological grade to detect cancer patients. Predict the prognosis.
  • the cancer in the method described herein, is breast cancer, and the presence or absence of detection of CK2 ⁇ protein or a fragment thereof is classified by stage, hormone receptor expression status, and HER2 gene and/or
  • the prognosis of breast cancer patients is predicted in combination with at least one classification based on protein expression status. Classification by stage, classification by hormone receptor expression status, and HER2 gene and/or protein expression status are as described in the section (Use as a marker for predicting prognosis).
  • the method described herein detects the presence or absence of detection of CK2 ⁇ protein or a fragment thereof, in addition to or separately from the above classification, tumor size, presence or absence of lymph node metastasis, histological Predict the prognosis of breast cancer patients in combination with other factors such as grade. Combining with other classifications or factors may have the effect of enabling better prognosis prediction.
  • Figure 1A shows the results of Western blotting of the reactivity of antisera obtained from individual mice after immunization with recombinant CK2 ⁇ protein and recombinant CK2 ⁇ ' protein.
  • Western blots were performed using anti-mouse IgG-HRP antibody (Abcam, #6789) as a secondary antibody and detected using chemiluminescent detection reagents (Thermo Scientific, #32209).
  • Antiserum obtained from individual mice showed reactivity with both CK2 ⁇ protein and the structurally similar CK2 ⁇ ' protein. It was suggested that many anti-CK2 ⁇ antibodies produced in mice immunized with human CK2 ⁇ protein exhibit cross-reactivity with CK2 ⁇ ' protein.
  • Figure 1B shows the results of Western blotting for recombinant CK2 ⁇ protein and recombinant CK2 ⁇ ' protein using culture supernatants of clones 6A, 6B, 6C, and 7A. Clones 6A, 6B, 6C, and 7A all reacted selectively to CK2 ⁇ protein and showed no reactivity to CK2 ⁇ ' protein.
  • FIG. 1 shows the results of detecting CK2 ⁇ protein in the cytoplasmic lysate of HEK293 cells expressing Flag-CK2 ⁇ using culture supernatants of clones 6A1, 6A2, and 6A3.
  • Figure 2 also shows the detection results using a commercially available mouse anti-CK2 ⁇ monoclonal antibody (ab70774, Abcam, UK) as a control ( Figure 2, "Control antibody”). With the control antibody, in addition to the CK2 ⁇ protein band, a nonspecific band on the high molecular weight side was detected. No such band was detected in clones 6A1, 6A2, and 6A3. Clones 6A1, 6A2, and 6A3 were shown to be antibodies with extremely high specificity.
  • Example 2 Western blotting and immunoprecipitation using anti-CK2 ⁇ monoclonal antibody mAb (6A3)> (the purpose) Western blotting and immunoprecipitation are performed using the anti-CK2 ⁇ monoclonal antibody mAb (6A3) prepared in Example 1. The performance of mAb (6A3) and a commercially available mouse anti-CK2 ⁇ monoclonal antibody (ab70774, Abcam, UK; hereinafter referred to as "control antibody”) is compared.
  • mAb (6A3) at 0.5 ⁇ g/mL was able to detect endogenous CK2 ⁇ protein with greater than 3.5-fold sensitivity compared to the control antibody at the same concentration. Additionally, mAb (6A3) at 0.1 ⁇ g/mL was able to detect endogenous CK2 ⁇ protein with more than twice the sensitivity compared to the control antibody at a concentration of 0.5 ⁇ g/mL. These results showed that mAb (6A3) can detect endogenous CK2 ⁇ protein with dramatically higher sensitivity than conventional antibodies.
  • Flag-CK2 ⁇ protein band was detected only in cells that expressed Flag-CK2 ⁇ protein (Flag-CK2 ⁇ (+) lane), indicating that Flag-CK2 ⁇ protein was not expressed. In cells that were not treated (Flag-CK2 ⁇ (-) lane), no non-specific band was detected at the same position as the Flag-CK2 ⁇ protein (Fig. 4, left side, arrow position).
  • mAb (6A3) can detect CK2 ⁇ protein with higher specificity compared to conventional antibodies. Furthermore, mAb (6A3) was shown to be able to specifically detect both endogenous CK2 ⁇ and CK2 ⁇ expressed as an exogenous gene in cell lysates.
  • the immunoprecipitate obtained by centrifugation was treated with SDS and subjected to electrophoresis.
  • 4 ⁇ g/mL mAb (6A3) or mouse anti-CK2 ⁇ monoclonal antibody (ab70774, Abcam, UK) was used.
  • Example 3 Immunohistochemistry on breast cancer tissue using anti-CK2 ⁇ monoclonal antibody mAb (6A3)> (the purpose) Perform immunostaining of breast cancer tissue using anti-CK2 ⁇ monoclonal antibody mAb (6A3).
  • mAb (6A3) and a commercially available mouse anti-CK2 ⁇ monoclonal antibody (ab70774, Abcam, UK; hereinafter referred to as “control antibody”), we detected the CK2 ⁇ protein localized in the nucleolus in cancer cells. Compare antibody performance.
  • the formalin block was cut into 4 ⁇ m thick pieces and mounted on a glass plate. Deparaffinize and rehydrate using Tissue Tech Prisma 6120 (Sakura Fine Tech Japan Co., Ltd.) according to a conventional method, and autoclave at 105°C for 10 minutes in 10 mM sodium bicarbonate buffer (pH 8.0). The antigen was activated. Sections were blocked with a 200-fold dilution of goat serum in 10 mM phosphate-buffered saline (PBS) containing 1% bovine serum albumin (BSA) for 30 minutes at room temperature.
  • PBS phosphate-buffered saline
  • BSA bovine serum albumin
  • anti-CK2 ⁇ monoclonal antibody mAb (6A3) was used at a 1,000-fold dilution (0.1 ⁇ g/mL).
  • mouse anti-CK2 ⁇ monoclonal antibody (ab70774, Abcam, UK) was used at a 1,000-fold dilution (2 ⁇ g/mL).
  • Figure 9 shows the staining results for the cancer invasion area (lesion area) of invasive ductal carcinoma.
  • the nucleolus an intranuclear structure
  • the background staining was low ( Figure 9A).
  • the nucleolus where CK2 ⁇ protein is localized, could be clearly identified in cancer cells.
  • the staining in the nucleolus was weak and the difference from the background was not clear (Figure 9B).
  • Example 4 CDR sequencing of anti-CK2 ⁇ monoclonal antibody mAb (6A3)> (the purpose) The heavy chain and light chain variable region sequences and CDR sequences of anti-CK2 ⁇ monoclonal antibody mAb (6A3) are determined.
  • Example 5 Production of further anti-CK2 ⁇ monoclonal antibody> (the purpose)
  • the heavy chain and light chain variable region sequences and CDR sequences are determined for each clone.
  • mice were immunized using human CK2 ⁇ protein as an antigen according to the method described in Example 1, "(1) Immunization with antigen polypeptide.” Furthermore, after immunization according to the method described in “(2) Cell fusion and screening”, “(3) Analysis of selected clones”, and “(4) Further cloning targeting clone 6A" of Example 1, Lymphocytes were isolated from individual mice, and antibody-producing hybridomas were produced by fusing the lymphocytes and myeloma cells, and five clones, clones 10B2, 15C1, 16C2, 19C2, and 21B1, were obtained.
  • the culture supernatant of each clone was purified according to the method described in "(5) IgG purification from clone 6A3" in Example 1, and the purified monoclonal antibodies were "mAb (10B2)” and “mAb (15C1)”. ),” “mAb (16C2),” “mAb (19C2),” and “mAb (21B1)” were obtained.
  • the heavy chain and light chain variable region sequences and CDR sequences of each of the obtained anti-CK2 ⁇ monoclonal antibodies were determined. The results of determining the sequences of each variable region and each CDR of the heavy chain and light chain are shown below. The CDRs were identified according to Kabat's antibody numbering system.
  • the obtained anti-CK2 ⁇ monoclonal antibody is ⁇ mAb (6A3),'' ⁇ mAb (10B2),'' ⁇ mAb (15C1),'' and ⁇ mAb (16C2), all of which are IgG2b, but ⁇ mAb (19C2)''. ” and “mAb (21B1)” were also found to be IgG1.
  • Example 6 Western blotting and chromatin immunoprecipitation using anti-CK2 ⁇ monoclonal antibody> (the purpose) Anti-CK2 ⁇ monoclonal antibody mAb (6A3) prepared in Example 1, anti-CK2 ⁇ monoclonal antibody mAb (10B2), mAb (15C1), mAb (16C2), and mAb (19C2) prepared in Example 5 and commercially available Western blots and immunoprecipitations are performed to compare the performance of a mouse anti-CK2 ⁇ monoclonal antibody (ab70774, Abcam, UK; referred to as "control antibody”).
  • Anti-CK2 ⁇ monoclonal antibody mAb (6A3) prepared in Example 1
  • anti-CK2 ⁇ monoclonal antibody mAb (10B2), mAb (15C1), mAb (16C2), and mAb (19C2) prepared in Example 5 and commercially available Western blots and immunoprecipitations are performed to compare the performance of a mouse anti-CK2 ⁇ monoclonal antibody (ab7077
  • Figure 10 shows the results of Western blotting after immunoprecipitation for the MCF-7 cell line or HEK293 cells expressing Flag-CK2 ⁇ protein.
  • Western blotting using a control antibody in addition to the endogenous CK2 ⁇ band in the MCF-7 cell line, a nonspecific band that was equally or more intense was detected, and in HEK293 cells expressing Flag-CK2 ⁇ protein, a nonspecific band was detected.
  • a non-specific band that was equally or more intense was detected.
  • this non-specific band was not detected with mAb (6A3), mAb (10B2), mAb (15C1), mAb (16C2), and mAb (19C2) of the present invention, so the specificity for CK2 ⁇ was was found to be high.
  • HMGB2 High Mobility Group Box 2 gene locus in the nucleus (inventors, unpublished). Based on this, the performance of the antibody of the present invention will be verified by performing chromatin immunoprecipitation targeting the HMGB2 gene locus. Specifically, lysates were prepared from human retinal pigment epithelial cells (human RPE cells) and human RPE cells (RPE-ko) in which the CK2 gene had been knocked out using the CRISPR-Cas9 method, and the chromatin fraction was prepared using a standard method for chromatin immunoprecipitation. Prepared.
  • Example 7 Immunohistochemistry on breast cancer tissue using anti-CK2 ⁇ monoclonal antibody mAb (21B1)> (the purpose) Using the anti-CK2 ⁇ monoclonal antibody mAb (21B1) prepared in Example 5 and a control antibody, breast cancer tissue is immunostained to detect CK2 ⁇ protein localized in the nucleolus in cancer cells.
  • Figure 9 shows the staining results for the cancer invasion area (lesion area) of invasive ductal carcinoma.
  • the nucleolus In staining with 0.1 ⁇ g/mL mAb (21B1), the nucleolus, an intranuclear structure, was strongly stained, while the background staining was low ( Figure 13A).
  • the nucleolus where CK2 ⁇ protein is localized, could be clearly identified in cancer cells.
  • the staining using a 2 ⁇ g/mL control antibody the staining of the nucleolus was weak and the difference from the background was not clear (Figure 13B).
  • Example 8 Prognosis evaluation after resection surgery of lung adenocarcinoma patients> (the purpose) Using the monoclonal anti-CK2 ⁇ antibody mAb (6A3) of the present invention, we evaluated the expression and localization of CK2 ⁇ protein in lung adenocarcinoma tissues excised from lung adenocarcinoma patients, and determined the prognosis after resection surgery of lung adenocarcinoma patients. Evaluate.
  • the formalin block was cut into 4 ⁇ m thick pieces and mounted on a glass plate. Deparaffinize and rehydrate using Tissue Tech Prisma 6120 (Sakura Fine Tech Japan Co., Ltd.) according to a conventional method, and autoclave at 105°C for 10 minutes in 10 mM sodium bicarbonate buffer (pH 8.0). The antigen was activated. Sections were blocked with a 200-fold dilution of goat serum in 10 mM phosphate-buffered saline (PBS) containing 1% bovine serum albumin (BSA) for 30 minutes at room temperature.
  • PBS phosphate-buffered saline
  • BSA bovine serum albumin
  • Immunohistochemistry slides with CK2 ⁇ antibody were evaluated by two independent pathologists blinded to patient information using the following criteria in five grades: I, II, III, IV, and V.
  • I There is staining of the whole cell, but nuclear staining is not clear.
  • II Nuclear staining (+), nuclear staining is clearer than cytoplasmic staining III: Nuclear staining (++), nuclear staining is at a higher level than II IV: Nuclear staining (+, ++), and further nucleolar staining (+)
  • V Nuclear staining (-), nucleolar staining (+)
  • univariate and multivariate analyzes were performed on 120 patients with primary lung adenocarcinoma.
  • multivariate analysis select four variables that showed a P value of less than 0.05 in univariate analysis, and determine whether they mutually influence recurrence-free survival or define the objective variable as an independent variable. was analyzed.
  • Figures 15A and 15B show the results of calculating the hazard ratio (indicated as "HR” in the figure, which indicates the relative likelihood of recurrence) and its 95% confidence interval in univariate and multivariate analysis. Furthermore, in order to analyze the effect of defining recurrence-free survival time in multivariate analysis, the Partition Tree of JMP Pro version 14 was used to compare the degree of contribution to the target variable. The results are shown in FIG. 15C. These results showed that the indicator of positive CK2 ⁇ nucleolar staining was strongly associated with future recurrence, as indicated by the statistical significance of the independent variable. Furthermore, in multivariate analysis, the indicator of positive CK2 ⁇ nucleolar staining had the highest Wald value, which is a test statistic indicating statistical significance.
  • Figure 16 shows the results of an analysis of variables that define the period until recurrence using two recurrence prediction models.
  • Figure 16A shows the results of recurrence prediction model 1 based on six types of variables.
  • the median time to recurrence was 1397 days, but the top variable was 717 days for patients with peripheral lymph node metastases at the time of surgery, compared with 1496 days for patients without peripheral lymph node metastases, whereas CK2 ⁇ nucleolus In cases with positive staining, it was 1326 days, but among those with positive CK2 ⁇ nucleolar staining and lymphovascular invasion, it was 745 days.
  • Figure 16B shows the results of recurrence prediction model 2 based on seven types of variables, which are the six types of variables in model 1 plus age. If the top variable is patients with peripheral lymph node metastases at the time of surgery (717 days compared to the median time to recurrence of 1397 days) and no peripheral lymph node metastases (1496 days), age is 80 years. On the other hand, in cases of age younger than 80 years (1566 days), cases with positive CK2 ⁇ nucleolar staining were 1370 days; The number of active cases was 745 days.
  • Figure 17 shows the classification of stage I to III primary lung adenocarcinoma patients based on the stage and CK2 ⁇ staining evaluation, and the presence or absence of recurrence. Especially in clinical cancer stages, even in cases classified as early stages due to the size of the initial cancer and low or no metastasis to surrounding lymph nodes, positive CK2 ⁇ nucleolar staining indicates the possibility of future recurrence. It was statistically suggested that it is effective as an indicator of this (Figure 17).

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Abstract

特異性及び感度が改善された新たな抗CK2α抗体を提供することを課題とする。　抗CK2α抗体又はその断片であって、（１）配列番号5で示すアミノ酸配列からなるCDR1、配列番号6で示すアミノ酸配列からなるCDR2、及びアミノ酸配列FVからなるCDR3を含む重鎖可変領域、並びに配列番号8で示すアミノ酸配列からなるCDR1、配列番号9で示すアミノ酸配列からなるCDR2、及び配列番号10で示すアミノ酸配列からなるCDR3を含む軽鎖可変領域、（２）配列番号17で示すアミノ酸配列からなるCDR1、配列番号18で示すアミノ酸配列からなるCDR2、及びアミノ酸配列FVからなるCDR3を含む重鎖可変領域、並びに配列番号20で示すアミノ酸配列からなるCDR1、配列番号21で示すアミノ酸配列からなるCDR2、及び配列番号22で示すアミノ酸配列からなるCDR3を含む軽鎖可変領域等を含む、抗CK2α抗体又はその断片を提供する。

Description

抗ＣＫ２α抗体又はその断片
　本発明は、抗CK2α抗体又はその断片、癌患者の予後予測用キット、及び癌患者の予後を予測するための方法等に関する。
　わが国において、癌は死亡原因全体の中で最も多く、約3割を占めている。例えば、乳癌は30～64歳の女性において死亡原因のトップであり、2018年の乳癌による死亡数は約14000人である。癌の検出方法及び／又は治療方法等の進歩によって、癌患者の生存率は改善しているが、依然として再発、転移、又は死亡等のリスクが高い予後不良の患者も存在する。したがって、乳癌を含む癌の治療の質を高めるためには、癌患者の予後を予測し、その結果に応じて癌患者の個別的なマネージメントを行うことが非常に重要である。
　乳癌患者を含む癌患者の予後を高い精度で予測し得る新たなバイオマーカーとして、本発明者はCK2α(Casein kinase 2α)タンパク質を見出した（特許文献１）。CK2αタンパク質は、正常細胞では細胞全体に存在するのに対して、癌細胞では核で高発現し、予後不良と関連して核小体に局在する。本発明者らは、CK2αタンパク質の核内発現レベル及び核小体染色レベルが癌患者の予後不良と強い相関を示し、再発リスクとも強く関連することを明らかにした（特許文献１）。
　核小体におけるCK2αタンパク質をバイオマーカーとして用いる方法は、癌患者の予後を極めて高い精度で予測することを可能とした画期的な技術である。しかしながら、予後予測に用いる既存の抗CK2α抗体は、CK2αタンパク質に対する特異性や感度が十分ではなかった。
　したがって、従来の抗CK2α抗体に対して特異性や感度が改善された新たな抗CK2α抗体が必要とされている。
国際公開第2021/132544号
　本発明の目的は、特異性及び感度が改善された新たな抗CK2α抗体を提供することである。
　CK2αタンパク質は、CK2α'タンパク質及びCK2βタンパク質と共にセリン・スレオニンキナーゼであるCK2(Casein kinase 2)を構成する。CK2αタンパク質はCK2α'タンパク質と構造が類似しており、従来の抗CK2α抗体では両者を区別することができなかった。
　本発明者は、上記課題を解決するために、CK2αタンパク質に対して極めて高い特異性を示す新たな抗体としてmAb (6A3)を開発した。ヒトCK2αタンパク質で免疫したマウスで産生される抗CK2α抗体の多くは、CK2α'タンパク質に対する交差反応性を示す。本発明者は、CK2α'タンパク質とは結合せず、CK2αタンパク質のみと結合するという基準を適用することによって、CK2αタンパク質に対して極めて高い特異性を有するmAb (6A3)の開発に成功した。mAb (6A3)は、CK2αタンパク質に対するウェスタンブロッティング及び免疫沈降において、従来の抗体と比べて飛躍的に高い特異性及び感度を示した。さらにmAb (6A3)は、予後不良な癌患者に由来する癌組織において、核小体に局在するCK2αタンパク質を極めて高い特異性及び感度で検出し、バイオマーカー検出において極めて有用なツールを提供する。本発明は、上記知見に基づくものであって以下を提供する。
（１）抗CK2α抗体又はその断片であって、
　（ｉ）配列番号5で示すアミノ酸配列からなるCDR1、
　　配列番号6で示すアミノ酸配列からなるCDR2、及び
　　アミノ酸配列FVからなるCDR3
を含む重鎖可変領域、並びに
　　配列番号8で示すアミノ酸配列からなるCDR1、
　　配列番号9で示すアミノ酸配列からなるCDR2、及び
　　配列番号10で示すアミノ酸配列からなるCDR3
を含む軽鎖可変領域、
　（ｉｉ）配列番号17で示すアミノ酸配列からなるCDR1、
　　配列番号18で示すアミノ酸配列からなるCDR2、及び
　　アミノ酸配列FVからなるCDR3
を含む重鎖可変領域、並びに
　　配列番号20で示すアミノ酸配列からなるCDR1、
　　配列番号21で示すアミノ酸配列からなるCDR2、及び
　　配列番号22で示すアミノ酸配列からなるCDR3
を含む軽鎖可変領域、
　（ｉｉｉ）配列番号25で示すアミノ酸配列からなるCDR1、
　　配列番号26で示すアミノ酸配列からなるCDR2、及び
　　アミノ酸配列FVからなるCDR3
を含む重鎖可変領域、並びに
　　配列番号28で示すアミノ酸配列からなるCDR1、
　　配列番号29で示すアミノ酸配列からなるCDR2、及び
　　配列番号30で示すアミノ酸配列からなるCDR3
を含む軽鎖可変領域、
　（ｉｖ）配列番号33で示すアミノ酸配列からなるCDR1、
　　配列番号34で示すアミノ酸配列からなるCDR2、及び
　　アミノ酸配列FVからなるCDR3
を含む重鎖可変領域、並びに
　　配列番号36で示すアミノ酸配列からなるCDR1、
　　配列番号37で示すアミノ酸配列からなるCDR2、及び
　　配列番号38で示すアミノ酸配列からなるCDR3
を含む軽鎖可変領域、
　（ｖ）配列番号41で示すアミノ酸配列からなるCDR1、
　　配列番号42で示すアミノ酸配列からなるCDR2、及び
　　配列番号43で示すアミノ酸配列からなるCDR3
を含む重鎖可変領域、並びに
　　配列番号44で示すアミノ酸配列からなるCDR1、
　　配列番号45で示すアミノ酸配列からなるCDR2、及び
　　配列番号46で示すアミノ酸配列からなるCDR3
を含む軽鎖可変領域、又は
　（ｖｉ）配列番号49で示すアミノ酸配列からなるCDR1、
　　配列番号50で示すアミノ酸配列からなるCDR2、及び
　　配列番号51で示すアミノ酸配列からなるCDR3
を含む重鎖可変領域、並びに
　　配列番号52で示すアミノ酸配列からなるCDR1、
　　配列番号53で示すアミノ酸配列からなるCDR2、及び
　　配列番号54で示すアミノ酸配列からなるCDR3
を含む軽鎖可変領域
を含む、前記抗CK2α抗体又はその断片。
（２）前記抗CK2α抗体又はその断片が、
　（ａ）配列番号11で示すアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び
　　配列番号12で示すアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域、
　（ｂ）配列番号15で示すアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び
　　配列番号16で示すアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域
　（ｃ）配列番号23で示すアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び
　　配列番号24で示すアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域
　（ｄ）配列番号31で示すアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び
　　配列番号32で示すアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域
　（ｅ）配列番号39で示すアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び
　　配列番号40で示すアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域、又は
　（ｆ）配列番号47で示すアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び
　　配列番号48で示すアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域
を含む、（１）に記載の抗CK2α抗体又はその断片。
（３）（１）又は（２）に記載の抗CK2α抗体又はその断片を含む、癌患者の予後予測用キット。
（４）予後が再発リスクを含む、（３）に記載のキット。
（５）前記癌が、乳癌、子宮癌、食道癌、胃癌、胆道癌、膵癌、肝癌、腎癌、大腸癌、膀胱癌、肺癌、甲状腺癌、及び神経膠腫からなる群から選択される、（３）又は（４）に記載のキット。
（６）癌患者の予後を予測するための方法であって、
　癌患者から得られた癌細胞又は組織において、核小体中のCK2αタンパク質又はその断片を検出する工程、並びに
　CK2αタンパク質又はその断片が他の細胞画分と比して高度に核小体に検出された場合に予後が悪いと予測する、及び／又はCK2αタンパク質又はその断片が他の細胞画分と比して高度に核小体に検出されない場合に予後が良いと予測する工程
を含み、CK2αタンパク質又はその断片が（１）又は（２）に記載の抗CK2α抗体又はその断片を用いて検出される、前記方法。
（７）予後が再発リスクを含む、（６）に記載の方法。
（８）前記癌が、乳癌、子宮癌、食道癌、胃癌、胆道癌、膵癌、肝癌、腎癌、大腸癌、膀胱癌、肺癌、甲状腺癌、及び神経膠腫からなる群から選択される、（６）又は（７）に記載の方法。
（９）前記癌が乳癌であり、CK2αタンパク質又はその断片の検出の有無を、ステージによる分類、ホルモン受容体の発現状況による分類、並びにHER2遺伝子及び／又はタンパク質の発現状況による分類の少なくとも一つと組み合わせて乳癌患者の予後を予測する、（８）に記載の方法。
　本明細書は本願の優先権の基礎となる日本国特許出願番号2022-055606号の開示内容を包含する。
　本発明により、特異性及び感度が改善された新たな抗CK2α抗体が提供される。
図1は、マウスの抗血清及びハイブリドーマ培養上清を用いたウェスタンブロットの結果を示す図である。図1Aは、抗原ポリぺプチドで免疫したマウスの抗血清を用いた、組換えCK2αタンパク質（α）及び組換えCK2α'タンパク質（α'）に対するウェスタンブロットの結果を示す。図1Bは、クローン6A、6B、6C、及び7Aの培養上清を用いた、組換えCK2αタンパク質（α）及び組換えCK2αタンパク質（α'）に対するウェスタンブロットの結果を示す。 図2は、クローン6A1、6A2、及び6A3の培養上清、並びに市販のマウス抗CK2αモノクローナル抗体（ab70774, Abcam, UK；図中、「対照抗体」として示す）を用いたウェスタンブロットにより、HEK293細胞の細胞質ライセートにおいてCK2αタンパク質を検出した結果を示す。対照抗体では、矢印で示す非特異的バンドが検出された。 図3は、mAb (6A3)及び対照抗体を用いたウェスタンブロットにより、HEK293細胞において細胞内在性CK2αタンパク質を検出した結果を示す。図3Aは、ウェスタンブロットの結果を示す。図3Bは、CK2αタンパク質に対応するバンドの染色強度を定量した結果を示す。図は各条件についてn=3の結果の平均値を示す。エラーバーはSEMを示す。 図4は、mAb (6A3)及び対照抗体を用いたウェスタンブロットにより、Flag-CK2αタンパク質を発現させたHEK293細胞（Flag-CK2α(+)のレーン）、及びFlag-CK2αタンパク質を発現させていないHEK293細胞（Flag-CK2α(-)のレーン）の細胞質ライセートにおいてFlag-CK2αタンパク質及び内在性CK2αタンパク質を検出した結果を示す。対照抗体では非特異的なバンド（右側のパネル、矢印）が検出された一方、mAb (6A3)では検出されなかった（左側のパネル、矢印）。 図5は、免疫沈降物に対するウェスタンブロットの結果を示す図である。HEK293細胞の細胞質（C）及び核（N）の各々から調製したライセートからmAb (6A3)又は対照抗体を用いて免疫沈降して得られた免疫沈降物に対してmAb (6A3)又は対照抗体を用いてウェスタンブロットを行った結果を示す。「免疫沈降なし」は、細胞質（C）及び核（N）のライセートを免疫沈降を経ずにロードしたサンプルであることを示す。 図6は、免疫沈降物に対するウェスタンブロットの結果を示す図である。図5における左右のメンブランにおいてCK2αに対応するバンドの染色強度を定量した結果を示す。図はn=3の結果の平均値を示し、エラーバーはSEMを示す。 図7は、免疫沈降物に対するウェスタンブロットの結果を示す図である。Flag-CK2α発現RPE細胞のライセートからmAb (6A3)又は対照抗体を用いて免疫沈降して得られた免疫沈降物に対してmAb (6A3)又は抗Flag抗体を用いてウェスタンブロットを行った結果を示す。 図8は、免疫沈降物に対するウェスタンブロットの結果を示す図である。図7において免疫沈降用の抗体としてmAb (6A3)又は対照抗体を用いた場合においてバンド（図7において矢印で示す2つのバンド）の染色強度を定量した結果を示す。図はn=3の結果の平均値を示し、エラーバーはSEMを示す。 図9は、浸潤性乳管癌の癌浸潤部（病変部）における免疫組織化学染色の代表的な画像を示す。図9Aは、0.1 μg/mLのmAb (6A3)を用いて染色した癌浸潤部（病変部）の画像（倍率×400）である。図中の黒枠で示す領域の拡大像を左下に示す。図9Bは、2 μg/mLの対照抗体を用いて染色した癌浸潤部（病変部）の画像（倍率×400）である。図中の黒枠で示す領域の拡大像を左下に示す。 図10は、6A3に加えて樹立した複数のCK2抗体クローンから精製したIgGについて、MCF-7細胞株又はFlag-CK2αタンパク質を発現するHEK293細胞のいずれかの免疫沈降物に対するウェスタンブロットの結果を示す。上側のパネルは、MCF-7細胞株において内在性のCK2αタンパク質を検出した結果を示す。下側のパネルは、Flag-CK2αタンパク質を発現するHEK293細胞において内在性CK2αタンパク質及びFlag-CK2αタンパク質を検出した結果を示す。 図11は、6A3に加えて樹立した複数のCK2抗体クローンから精製したIgGでクロマチン免疫沈降を施行した画分に対して、HMGB2遺伝子座を標的とするChIP-qPCRを実施した結果を示す。「Control」は同等に分画したクロマチン画分に対してIgG添加なしの試料をロードしたレーンを示す。 図12は、精製品のリコンビナントCK2αタンパク質に対するウェスタンブロットの結果を示す。 図13は、浸潤性乳管癌の癌浸潤部（病変部）における免疫組織化学染色の代表的な画像を示す。図13Aは、0.1 μg/mLのmAb (21B1)を用いて染色した癌浸潤部（病変部）の画像（倍率×400）である。図13Bは、2 μg/mLの対照抗体を用いて染色した癌浸潤部（病変部）の画像（倍率×400）である。 図14は、切除手術を受けた原発性肺腺癌患者FFPE試料において6A3クローンを用いた組織化学染色の結果に基づく、CK2α核小体染色陽性群（図中、「CK2-NO(+)」）及びCK2α核小体染色陰性群（図中、「CK2-NO(-)」）の無再発生存率を示す。 図15は、原発性肺腺癌患者FFPE試料について、6A3クローンを用いて組織化学染色を実施した結果を基に、単変量解析及び多変量解析を行った結果を示す。図15Aは単変量解析の結果を示す。図15Bは多変量解析の結果を示す。図15Cは、多変量解析において無再発生存を規定する効果を解析した結果を示す。 図16は、2つの再発予測モデルを用いて、再発までの期間を規定する変数について解析した結果を示す。図16Aは、6種類の変数に基づく再発予測モデル1の結果を示す。図16Bは、年齢を追加した7種類の変数に基づく再発予測モデル2の結果を示す。 図17は、ステージI～IIIの原発性肺腺癌患者をステージ及びCK2α染色評価に基づいて分類し、再発の有無を区別して示す。
(用語の定義)
　本明細書において、「CK2αタンパク質」は、カゼインキナーゼ2（Casein kinase 2；CK2）のαサブユニットを意味する。CK2αタンパク質は、カゼインキナーゼ2アルファ1又はカゼインキナーゼIIサブユニットアルファ、CK2α1タンパク質、又はCSNK2A1タンパク質とも称される。CK2αタンパク質は、CK2α'タンパク質及びCK2βタンパク質と共に、4量体であるCK2を構成する。
　カゼインキナーゼ2は、セリン・スレオニンキナーゼの一種であり、pro-survival pathway等に関与することが知られている。カゼインキナーゼ2は、αサブユニット（CK2αタンパク質）、α’サブユニット（CK2α'タンパク質）、及び2つのβサブユニット（CK2βタンパク質）で構成される四量体として機能することが知られている。αサブユニット（CK2αタンパク質）及びα’サブユニット（CK2α'タンパク質）は、カゼインキナーゼ2の触媒サブユニットとして機能することが知られている。
　本明細書において、CK2αタンパク質又はその断片が癌患者の予後予測用のバイオマーカーとなり得る。例えば、前記患者がヒトであれば、ヒトCK2αタンパク質又はその断片がバイオマーカーとなり得る。
　国際公開第2021/132544号では、核小体中のCK2αタンパク質が、乳癌患者等の癌患者の予後予測のためのバイオマーカーとなり得ることが開示されている。具体的には、根治的切除術を受けた原発性乳癌患者から切除された乳癌組織ホルマリン固定パラフィン包埋標本を対象として、CK2αタンパク質の免疫組織化学染色が行われた。その結果、正常細胞ではCK2αタンパク質は細胞全体に存在するが、乳癌細胞では核で高発現している例が多く観察されること、乳癌患者の一部(約4割弱)においてはCK2αタンパク質が核の中でも核小体に局在すること、及びCK2αタンパク質の核内発現レベル及び核小体染色レベルが高いほど乳癌のステージが高い症例の割合が多いことが判明した。さらに、原発性乳癌患者の予後を評価した結果、CK2αタンパク質の核小体局在は、再発及び生命予後の両方において相対危険度が高いこと、並びにCK2αタンパク質の核小体局在の有無が強力な再発予測因子であることが明らかにされた。また、乳癌以外の様々な癌組織についてもCK2αタンパク質の局在を検討した結果、乳癌、子宮癌、食道癌、胃癌、胆道癌、膵癌、肝癌、腎癌、大腸癌（直腸癌及び結腸癌）、膀胱癌、肺癌（肺腺癌及び肺扁平上皮癌）、甲状腺癌、及び神経膠腫を含む癌全般でCK2αタンパク質が核小体に局在し得ることが見出された。
　本明細書において「マーカー」とは、特に断りのない限り、CK2αタンパク質又はその断片からなるバイオマーカー、又は核小体中の、CK2αタンパク質又はその断片からなるバイオマーカーを意味するものとする。
　本明細書において、「癌」の種類は限定しないが、例えば、腺癌、扁平上皮癌、小細胞癌及び大細胞癌等が挙げられる。具体的には、癌の種類としては、例えば、悪性黒色腫、口腔癌、喉頭癌、咽頭癌、甲状腺癌、肺癌、乳癌、食道癌、胃癌、大腸癌（結腸癌及び直腸癌を含む）、小腸癌、膀胱癌、前立腺癌、精巣癌、子宮体癌、子宮頚癌、子宮内膜癌、卵巣癌、胃癌、腎癌、肝癌、膵癌、胆道癌（胆嚢癌及び胆管癌を含む）、脳腫瘍、頭頸部癌、中皮腫、骨肉腫、神経膠腫、神経芽腫を始めとする小児腫瘍、白血病、リンパ腫等が挙げられる。癌は、好ましくは乳癌、子宮癌、食道癌、胃癌、膵癌、肝癌、胆道癌（例えば、胆嚢癌又は胆管癌）、腎癌、大腸癌（例えば、直腸癌又は結腸癌）、膀胱癌、肺癌（例えば、肺腺癌又は肺扁平上皮癌）、甲状腺癌、又は神経膠腫（例えば、星状細胞腫）であり、より好ましくは乳癌である。
　本明細書において、「乳癌」の種類は限定されず、例えば非浸潤性乳管癌、浸潤性乳管癌、浸潤性小葉癌、非浸潤性小葉癌、また特殊型癌として髄様癌、粘液癌、管状癌等が挙げられる。
　本明細書において、「予後」は、癌患者における予測される経過(例えば、再発の有無又は生死)を指す。「予後の予測」は、再発リスク(例えば無再発生存率)、生存期間、又は手術から一定期間後(例えば、1年、2年、3年、4年、5年、10年、15年若しくは20年後又はそれ以上の時点)の生存率、無再発生存率(Relapse-free survival、RFS)、又は疾患特異的生存率(Disease-free survival、DFS)の予測であってもよい。一実施形態において、予後の予測は、再発リスク(例えば無再発生存率)の予測を含む。なお、本明細書において無再発生存率は、初発癌と関連付けられる癌等の再発癌発症のない患者の割合であり、疾患特異的生存率は、初発癌と関連する死亡のない患者の割合を意味する。予後の予測は、予後の判定、評価、又は診断、又はこれらの補助ということもできる。
　CK2αタンパク質の具体例として、配列番号2で示されるアミノ酸配列を含む、又はからなるヒト由来のCK2α(ヒトCK2α)タンパク質が挙げられる。
　また、CK2αタンパク質には、配列番号2で示されるCK2αタンパク質と機能的に同等の活性を有するCK2αバリアントや他生物種のCK2αオルソログも包含される。具体的には、配列番号2で示されるアミノ酸配列において1若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換又は付加されたアミノ酸配列、あるいは配列番号2で示されるアミノ酸配列に対して80%以上、90％以上、95％以上、97％以上、98％以上又は99％以上のアミノ酸同一性を有するCK2αタンパク質が包含される。
　本明細書において「数個」とは、例えば、2～10個、2～7個、2～5個、2～4個又は2～3個をいう。また、アミノ酸の置換は、保存的アミノ酸置換が望ましい。「保存的アミノ酸置換」とは、電荷、側鎖、極性、芳香族性等の性質の類似するアミノ酸間の置換をいう。性質の類似するアミノ酸は、例えば、塩基性アミノ酸(アルギニン、リジン、ヒスチジン)、酸性アミノ酸(アスパラギン酸、グルタミン酸)、無電荷極性アミノ酸(グリシン、アスパラギン、グルタミン、セリン、トレオニン、システイン、チロシン)、無極性アミノ酸(ロイシン、イソロイシン、アラニン、バリン、プロリン、フェニルアラニン、トリプトファン、メチオニン)、分枝鎖アミノ酸(ロイシン、バリン、イソロイシン)、芳香族アミノ酸(フェニルアラニン、チロシン、トリプトファン、ヒスチジン)等に分類することができる。
　本明細書において「アミノ酸同一性」とは、2つのアミノ酸配列を整列(アラインメント)し、必要に応じてギャップを導入して、両者のアミノ酸一致度が最も高くなるようにしたときに、配列番号2で示されるアミノ酸配列を含むCK2αタンパク質の全アミノ酸残基に対する2つのアミノ酸配列間で同一アミノ酸残基の割合(％)をいう。アミノ酸同一性は、BLASTやFASTAによるタンパク質の検索システムを用いて算出することができる。同一性の決定方法の詳細については、例えばAltschul et al, Nuc. Acids. Res. 25, 3389-3402, 1977及びAltschul et al, J. Mol. Biol. 215, 403-410, 1990を参照されたい。
　CK2αタンパク質は、CK2α遺伝子によりコードされる。CK2α遺伝子の具体例として、配列番号2で示されるアミノ酸配列を含むヒトCK2αタンパク質をコードするヒトCK2α遺伝子が挙げられる。より具体的には、CK2α遺伝子は、配列番号1で示される塩基配列を含む、又はからなる遺伝子が挙げられる。
　また、CK2α遺伝子には、配列番号1で示されるCK2α遺伝子がコードするCK2αタンパク質と機能的に同等の活性を有するCK2αバリアントや他生物種のCK2αオルソログをコードするCK2α遺伝子も包含される。具体的には、配列番号1で示される塩基配列において1若しくは数個の塩基が欠失、置換又は付加された塩基配列、あるいは配列番号1で示される塩基配列に対して80％以上、90％以上、95％以上、97％以上、98％以上又は99％以上の塩基同一性を有するCK2α遺伝子が包含される。さらに、配列番号1で示される塩基配列に対して相補的な塩基配列の一部を含む核酸断片と高ストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含み、かつCK2αタンパク質と機能的に同等の活性を有するタンパク質をコードする遺伝子が包含される。
　本明細書において「塩基同一性」とは、2つの塩基配列を整列(アラインメント)し、必要に応じてギャップを導入して、両者の塩基一致度が最も高くなるようにしたときに、配列番号2で示される塩基配列を含むCK2α遺伝子の全塩基に対する2つの塩基配列間で同一塩基の割合(％)をいう。
　本明細書において「高ストリンジェントな条件下でハイブリダイズする」とは、低塩濃度及び/又は高温の条件下でハイブリダイゼーションと洗浄を行うことをいう。例えば、6×SSC、5×Denhardt試薬、0.5％SDS、100μg/mL変性断片化サケ精子DNA中で65℃～68℃にてプローブと共にインキュベートし、その後、2×SSC、0.1％SDSの洗浄液中で室温から開始して、洗浄液中の塩濃度を0.1×SSCまで下げ、かつ温度を68℃まで上げて、バックグラウンドシグナルが検出されなくなるまで洗浄することが例示される。高ストリンジェントなハイブリダイゼーションの条件については、Green, M.R. and Sambrook, J., 2012, Molecular Cloning： A Laboratory Manual Fourth Ed., Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, New Yorkに記載されているので参考にすることができる。
　このようなCK2α遺伝子の塩基配列情報は、公共のデータベース(GenBank、EMBL、DDBJ)より検索可能である。例えば、配列番号1で示されるCK2α遺伝子の既知塩基配列情報に基づいて、塩基同一性の高い遺伝子をデータベースから検索し、入手することができる。
　本明細書において、CK2αタンパク質の「断片」とは、CK2αタンパク質を構成するアミノ酸配列の一部を含む、又はからなるペプチド断片であって、その断片を構成するアミノ酸配列からCK2αタンパク質の断片であることを同定することができるものをいう。例えば、「断片」は、CK2αタンパク質の全長アミノ酸配列のうちの5個以上、8個以上、10個以上、20個以上、30個以上、40個以上、又は50個以上の連続するアミノ酸残基であってよく、また、200個以下、150個以下、120個以下、100個以下、又は80個以下の連続するアミノ酸残基からなるペプチドであってよい。例えば、「断片」は、5個～200個、10個～120個、50個～80個の連続するアミノ酸残基からなるペプチドであってよい。
　本明細書において、「核小体」とは、真核生物細胞の核に存在する分子密度が高く、rRNAの転写やリボソームの生成が行われる領域を指す。核小体は、一般に光学顕微鏡で観察可能である。通常は核内に1つの核小体が観察されるが、複数の核小体が観察される場合もある。
（抗CK2α抗体又はその断片）
　一態様において、本発明は抗CK2α抗体又はその断片に関する。本発明の抗CK2α抗体又はその断片は、悪性度の高い癌において核小体に局在し得るCK2αタンパク質又はそのペプチド断片を検出することによって、癌患者の予後を予測することができる。
（１）抗CK2α抗体
　本明細書において「抗CK2α抗体」とは、CK2αタンパク質又はそのペプチド断片に対して免疫応答性を示す抗体をいう。
　本発明の抗CK2α抗体の由来生物種は、特に限定しない。好ましくは鳥類及び哺乳動物由来の抗体である。例えば、ニワトリ、ダチョウ、マウス、ラット、モルモット、ウサギ、ヤギ、ロバ、ヒツジ、ラクダ、ウマ、又はヒト等が挙げられる。
　本発明の抗CK2α抗体は、モノクローナル抗体である。本明細書において「モノクローナル抗体」とは、フレームワーク領域（Framework region：以下、「FR」と表記する）及び相補性決定領域（Complementarity determining region：以下、「CDR」と表記する）を含み、抗原に特異的に結合し、かつそれを認識することのできる単一種の免疫グロブリン、又は免疫グロブリンに含まれる少なくとも1組の軽鎖可変領域（VL領域）及び重鎖可変領域（VH領域）を包含する組換え抗体又は合成抗体をいう。
　抗CK2α抗体が免疫グロブリン分子で構成される場合、免疫グロブリンは任意のクラス（例えば、IgG、IgE、IgM、IgA、IgD、及びIgY）、又は任意のサブクラス（例えば、IgG1、IgG2、IgG3、IgG4、IgA1、及びIgA2）とすることができる。
　本発明の抗CK2α抗体が認識するCK2αタンパク質又はそのペプチド断片のエピトープは、CK2αタンパク質に特異的に含まれるエピトープである。好ましくはこのエピトープはCK2α'タンパク質には含まれない。
　上記エピトープを認識する抗CK2α抗体の具体例として、後述する実施例のマウス抗CK2αモノクローナル抗体クローン6A3（本明細書において「mAb (6A3)」と表記する）が挙げられる。このmAb (6A3)は、重鎖可変領域が配列番号11で示すアミノ酸配列からなり、また軽鎖可変領域が配列番号12で示すアミノ酸配列からなる。Kabatのルール（Kabat E.A., et al., 1991, Sequences of proteins of immunological interest, Vol.1, eds. 5, NIH publication）によれば、mAb (6A3)の重鎖可変領域において、CDR1（HCDR1）は配列番号5で示すアミノ酸配列からなり、CDR2（HCDR2）は配列番号6で示すアミノ酸配列からなり、CDR3（HCDR3）は配列番号7で示すアミノ酸配列（FV）からなる。また、mAb (6A3)の軽鎖可変領域において、CDR1（LCDR1）は配列番号8で示すアミノ酸配列からなり、CDR2（LCDR2）は配列番号9で示すアミノ酸配列からなり、CDR3（LCDR3）は配列番号10で示すアミノ酸配列からなる。配列番号5～12のアミノ酸配列を以下の表１に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　上記エピトープを認識する抗CK2α抗体のさらなる具体例として、後述する実施例のマウス抗CK2αモノクローナル抗体クローン10B2（本明細書において「mAb (10B2)」と表記する）、15C1（本明細書において「mAb (15C1)」と表記する）、16C2（本明細書において「mAb (16C2)」と表記する）、19C2（本明細書において「mAb (19C2)」と表記する）、及び21B1（本明細書において「mAb (21B1)」と表記する）も挙げられる。
　mAb (10B2)は、重鎖可変領域が配列番号15で示すアミノ酸配列からなり、また軽鎖可変領域が配列番号16で示すアミノ酸配列からなる。Kabatのルールによれば、mAb (10B2)の重鎖可変領域において、CDR1（HCDR1）は配列番号17で示すアミノ酸配列からなり、CDR2（HCDR2）は配列番号18で示すアミノ酸配列からなり、CDR3（HCDR3）は配列番号19で示すアミノ酸配列からなる。また、mAb (10B2)の軽鎖可変領域において、CDR1（LCDR1）は配列番号20で示すアミノ酸配列からなり、CDR2（LCDR2）は配列番号21で示すアミノ酸配列からなり、CDR3（LCDR3）は配列番号22で示すアミノ酸配列からなる。
　mAb (15C1)は、重鎖可変領域が配列番号23で示すアミノ酸配列からなり、また軽鎖可変領域が配列番号24で示すアミノ酸配列からなる。Kabatのルールによれば、mAb (15C1)の重鎖可変領域において、CDR1（HCDR1）は配列番号25で示すアミノ酸配列からなり、CDR2（HCDR2）は配列番号26で示すアミノ酸配列からなり、CDR3（HCDR3）は配列番号27で示すアミノ酸配列からなる。また、mAb (15C1)の軽鎖可変領域において、CDR1（LCDR1）は配列番号28で示すアミノ酸配列からなり、CDR2（LCDR2）は配列番号29で示すアミノ酸配列からなり、CDR3（LCDR3）は配列番号30で示すアミノ酸配列からなる。
　mAb (16C2)は、重鎖可変領域が配列番号31で示すアミノ酸配列からなり、また軽鎖可変領域が配列番号32で示すアミノ酸配列からなる。Kabatのルールによれば、mAb (16C2)の重鎖可変領域において、CDR1（HCDR1）は配列番号33で示すアミノ酸配列からなり、CDR2（HCDR2）は配列番号34で示すアミノ酸配列からなり、CDR3（HCDR3）は配列番号35で示すアミノ酸配列からなる。また、mAb (16C2)の軽鎖可変領域において、CDR1（LCDR1）は配列番号36で示すアミノ酸配列からなり、CDR2（LCDR2）は配列番号37で示すアミノ酸配列からなり、CDR3（LCDR3）は配列番号38で示すアミノ酸配列からなる。
　mAb (19C2)は、重鎖可変領域が配列番号39で示すアミノ酸配列からなり、また軽鎖可変領域が配列番号40で示すアミノ酸配列からなる。Kabatのルールによれば、mAb (19C2)の重鎖可変領域において、CDR1（HCDR1）は配列番号41で示すアミノ酸配列からなり、CDR2（HCDR2）は配列番号42で示すアミノ酸配列からなり、CDR3（HCDR3）は配列番号43で示すアミノ酸配列からなる。また、mAb (19C2)の軽鎖可変領域において、CDR1（LCDR1）は配列番号44で示すアミノ酸配列からなり、CDR2（LCDR2）は配列番号45で示すアミノ酸配列からなり、CDR3（LCDR3）は配列番号46で示すアミノ酸配列からなる。
　mAb (21B1)は、重鎖可変領域が配列番号47で示すアミノ酸配列からなり、また軽鎖可変領域が配列番号48で示すアミノ酸配列からなる。Kabatのルールによれば、mAb (21B1)の重鎖可変領域において、CDR1（HCDR1）は配列番号49で示すアミノ酸配列からなり、CDR2（HCDR2）は配列番号50で示すアミノ酸配列からなり、CDR3（HCDR3）は配列番号51で示すアミノ酸配列からなる。また、mAb (21B1)の軽鎖可変領域において、CDR1（LCDR1）は配列番号52で示すアミノ酸配列からなり、CDR2（LCDR2）は配列番号53で示すアミノ酸配列からなり、CDR3（LCDR3）は配列番号54で示すアミノ酸配列からなる。
　なお、mAb (6A3)の重鎖可変領域に相当する配列番号11で示すアミノ酸配列をコードする核酸（ヌクレオチド）として、例えば、配列番号13で示す塩基配列からなる核酸が挙げられる。また、mAb (6A3)の軽鎖可変領域に相当する配列番号12で示すアミノ酸配列をコードする核酸として、例えば、配列番号14で示す塩基配列からなる核酸が挙げられる。
　mAb (10B2)の重鎖可変領域に相当する配列番号15で示すアミノ酸配列をコードする核酸（ヌクレオチド）として、例えば、配列番号55で示す塩基配列からなる核酸が挙げられる。また、mAb (10B2)の軽鎖可変領域に相当する配列番号16で示すアミノ酸配列をコードする核酸として、例えば、配列番号56で示す塩基配列からなる核酸が挙げられる。
　mAb (15C1)の重鎖可変領域に相当する配列番号23で示すアミノ酸配列をコードする核酸（ヌクレオチド）として、例えば、配列番号57で示す塩基配列からなる核酸が挙げられる。また、mAb (15C1)の軽鎖可変領域に相当する配列番号24で示すアミノ酸配列をコードする核酸として、例えば、配列番号58で示す塩基配列からなる核酸が挙げられる。
　mAb (16C2)の重鎖可変領域に相当する配列番号31で示すアミノ酸配列をコードする核酸（ヌクレオチド）として、例えば、配列番号59で示す塩基配列からなる核酸が挙げられる。また、mAb (16C2)の軽鎖可変領域に相当する配列番号32で示すアミノ酸配列をコードする核酸として、例えば、配列番号60で示す塩基配列からなる核酸が挙げられる。
　mAb (19C2)の重鎖可変領域に相当する配列番号39で示すアミノ酸配列をコードする核酸（ヌクレオチド）として、例えば、配列番号61で示す塩基配列からなる核酸が挙げられる。また、mAb (19C2)の軽鎖可変領域に相当する配列番号40で示すアミノ酸配列をコードする核酸として、例えば、配列番号62で示す塩基配列からなる核酸が挙げられる。
　mAb (21B1)の重鎖可変領域に相当する配列番号47で示すアミノ酸配列をコードする核酸（ヌクレオチド）として、例えば、配列番号63で示す塩基配列からなる核酸が挙げられる。また、mAb (21B1)の軽鎖可変領域に相当する配列番号48で示すアミノ酸配列をコードする核酸として、例えば、配列番号64で示す塩基配列からなる核酸が挙げられる。
　「組換え抗体」とは、キメラ抗体、又はヒト化抗体をいう。「キメラ抗体」とは、異なる動物由来の抗体のアミノ酸配列を組み合わせて作製される抗体で、ある抗体の定常領域（C領域）を他の抗体のC領域で置換した抗体である。例えば、マウスモノクローナル抗体のC領域をヒト抗体のC領域と置き換えた抗体が該当する。具体的な例を挙げると、任意の抗原に対するヒト抗体の重鎖可変領域を前述のmAb (6A3)における配列番号11で示すアミノ酸配列からなる重鎖可変領域と置換し、またヒト抗体の軽鎖可変領域を配列番号12で示すアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域と置換してなる抗体が挙げられる。これによりヒト体内における当該抗体に対する免疫反応を軽減し得る。「ヒト化抗体」とは、ヒト抗体におけるCDRをヒト以外の哺乳動物由来の抗体におけるCDRと置換したモザイク抗体である。免疫グロブリン分子の可変領域（V領域）は、4つのFR（FR1、FR2、FR3及びFR4）と3つのCDR（CDR1、CDR2及びCDR3）がN末端側からFR1-CDR1-FR2-CDR2-FR3-CDR3-FR4の順序で連結されて構成されている。このうちFRは可変領域の骨格を構成する相対的に保存された領域であり、CDRが抗体の抗原結合特異性に直接寄与する。ヒト化抗体は、例えば、マウス由来のmAb (6A3)の軽鎖又は重鎖における一組のCDR1、CDR2及びCDR3を任意の抗原に対するヒト抗体の軽鎖又は重鎖における一組のCDR1、CDR2、及びCDR3とそれぞれ置換することによって、マウス抗体であるmAb (6A3)の抗原結合特異性を受け継いだヒト抗体として構築することができる。具体的な例を挙げると、前述のmAb (6A3)における重鎖由来の配列番号5で示すアミノ酸配列からなるCDR1、配列番号6で示すアミノ酸配列からなるCDR2、及び配列番号7で示すアミノ酸配列からなるCDR3をヒト抗体の重鎖CDR1、CDR2、及びCDR3とそれぞれ置換し、また前述のmAb (6A3)における軽鎖由来の配列番号8で示すアミノ酸配列からなるCDR1、配列番号9で示すアミノ酸配列からなるCDR2、及び配列番号10で示すアミノ酸配列からなるCDR3をヒト抗体の軽鎖CDR1、CDR2、及びCDR3とそれぞれ置換してなる抗体が挙げられる。このようなヒト化抗体は、CDR以外はヒト抗体由来であることからヒト体内における当該抗体に対する免疫反応をキメラ抗体以上に軽減し得る。
　「合成抗体」とは、化学的に又は組換えDNA法を用いることによって合成した抗体をいう。例えば、組換えDNA法を用いて新たに合成された抗体が挙げられる。具体的には、例えば、scFv（single chain Fragment of variable region：単鎖抗体）、ダイアボディ（diabody）、トリアボディ（triabody）又はテトラボディ（tetrabody）等が挙げられる。免疫グロブリン分子において、機能的な抗原結合部位を形成する一組の可変領域（軽鎖可変領域VL及び重鎖可変領域VH）は、軽鎖と重鎖という別々のポリペプチド鎖上に位置する。scFvは、免疫グロブリン分子において、VL及びVHを十分な長さの柔軟性リンカーによって連結し、1本のポリペプチド鎖に包含した構造を有する分子量約35 kDa以下の合成抗体である。scFv内において1組の可変領域は、互いに自己集合して1つの機能的な抗原結合部位を形成することができる。scFvは、それをコードする組換えDNAを、公知技術を用いてベクターに組み込み、発現させることで得ることができる。ダイアボディは、scFvの二量体構造を基礎とした構造を有する分子である(Holliger et al., 1993, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90:6444-6448)。例えば、上記リンカーの長さが約12アミノ酸残基よりも短い場合、scFv内の2つの可変領域は自己集合できないが、2つのscFvを相互作用させてダイアボディを形成させることにより、一方のscFvのVLが他方のscFvのVHと集合可能となり、2つの機能的な抗原結合部位を形成することができる。さらに、scFvのC末端にシステイン残基を付加させることにより、2本のscFv同士のジスルフィド結合が可能となり、安定的なダイアボディを形成させることもできる。このようにダイアボディは二価の抗体断片である。トリアボディ、及びテトラボディは、ダイアボディと同様にscFv構造を基本とした、その三量体、及び四量体構造を有する、それぞれ、三価、及び四価の抗体である。ダイアボディ、トリアボディ、及びテトラボディは、多重特異性抗体であってもよい。「多重特異性抗体」とは、多価抗体、すなわち抗原結合部位を一分子内に複数有する抗体において、それぞれの抗原結合部位が異なるエピトープと結合する抗体をいう。例えば、ダイアボディにおいて、それぞれの抗原結合部位が異なるエピトープと結合する二重特異性抗体（Bispecific抗体）が挙げられる。具体的には、例えば、本発明の抗CK2α抗体であれば、一方の抗原結合部位が配列番号11で示すアミノ酸配列からなる重鎖可変領域及び配列番号12で示すアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含み、他方の抗原結合部位が異なるエピトープと結合するダイアボディが該当する。
　本発明の抗CK2α抗体は、修飾することもできる。ここでいう「修飾」とは、グリコシル化のような抗原特異的結合活性に必要な機能上の修飾や抗体検出に必要な標識上の修飾を含む。
　抗CK2α抗体上のグリコシル化修飾は、標的であるCK2αタンパク質又はそのペプチド断片に対する抗CK2α抗体の親和性を調整するために行われる。具体的には、例えば、抗CK2α抗体のFRにおいて、グリコシル化を構成するアミノ酸残基に置換を導入してグリコシル化部位を除去することで、その部位のグリコシル化を喪失させる改変等が挙げられる。
　抗CK2α抗体の標識には、例えば、蛍光色素（FITC、ローダミン、テキサスレッド、Cy3、Cy5）、蛍光タンパク質（例えば、PE、APC、GFP）、酵素（例えば、西洋ワサビペルオキシダーゼ、アルカリフォスファターゼ、グルコースオキシダーゼ）、放射性同位元素（例えば、3H、14C、35S）又はビオチン若しくは（ストレプト）アビジンによる標識が挙げられる。
　本発明の抗CK2α抗体は、CK2αタンパク質との解離定数が、10-7 M以下であることが好ましく、例えば10-8M以下の高い親和性を有することが好ましく、より好ましくは10-9M以下、特に好ましくは10-10 M以下である。上記解離定数は、当該分野で公知の技術を用いて測定することができる。例えば、Biacoreシステム（GE Healthcare社）により速度評価キットソフトウェアを用いて測定してもよい。
（２）その断片
　本明細書において「その断片」とは、抗CK2α抗体の一部からなり、かつ抗CK2α抗体と同様にCK2αタンパク質又はその断片に対して免疫応答性を示す抗体断片をいう。例えば、Fab、F(ab')2、Fab'、Fvフラグメント、ジスルフィド結合により安定化したFvフラグメント（dsFv）、(dsFv)2、二重特異性dsFv（dsFv-dsFv'）、ジスルフィド結合により安定化したディアボディ（dsディアボディ）、単鎖抗体分子（scFv）、二量体scFv（2価ディアボディ）、多重特異性抗体、ラクダ化シングルドメイン抗体（ラクダ化抗体；VHH抗体）等の重鎖抗体、ナノボディ、ドメイン抗体、及び2価ドメイン抗体等が該当する。
　Fabは、IgG分子がパパインによってヒンジ部のジスルフィド結合よりもN末端側で切断されて生じる抗体断片であって、H鎖定常領域（重鎖定常領域：以下CHと表記する）を構成する3つのドメイン（CH1、CH2、CH3）のうちVHに隣接するCH1とVH、及び完全長のL鎖から構成される。
　F(ab')2は、IgG分子がペプシンによってヒンジ部のジスルフィド結合よりもC末端側で切断されて生じるFab'の二量体である。Fab'は、Fabよりもヒンジ部を含む分だけH鎖が若干長いが実質的にはFabと同等の構造を有する。Fab'は、F(ab')2をマイルドな条件下で還元し、ヒンジ領域のジスルフィド連結を切断することによって得ることができる。これらの抗体断片は、いずれも抗原結合部位を包含していることから、抗原エピトープと特異的に結合する能力を有している。
（３）抗CK2α抗体の作製
　本発明の抗CK2α抗体は、当該分野の常法によって得ることができる。また、モノクローナル抗体のアミノ酸配列が明らかであれば、そのアミノ酸配列に基づいて、化学的合成法や組換えDNA技術を用いることによって調製することもできる。さらに、モノクローナル抗体は、その抗体を産生するハイブリドーマから得ることもできる。
　本発明の抗CK2α抗体の免疫原として使用可能な抗原ポリペプチド又は抗原ペプチドは、CK2αタンパク質の中の任意の一部又は全長（以下、「CK2α抗原ポリペプチド」と表記する）である。例えば、本発明の抗CK2α抗体の免疫原として使用可能な抗原ポリペプチドの一例として、配列番号2で示すアミノ酸配列からなる全長のヒトCK2αタンパク質が挙げられる。CK2α抗原ペプチドは、例えば、化学的合成法又はDNA組換え技術を用いて調製することができる。
　一実施形態において、本発明により、癌患者の予後を予測するための抗CK2α抗体又はその断片が提供される。
　本発明の抗CK2α抗体又はその断片によれば、CK2αタンパク質を特異的に検出することができる。例えば本発明の抗CK2α抗体又はその断片を免疫組織化学染色法、酵素免疫測定法(ELISA法、EIA法を含む)、ウェスタンブロット法、放射免疫測定(RIA)法、免疫沈降法、クロマチン免疫沈降法（CHIP）、又はフローサイトメトリー法で使用することにより、高感度かつ特異的な検出が可能である。
（癌患者の予後予測用キット）
　一態様において、本発明は癌患者の予後予測用キットに関する。本発明の癌患者の予後予測用キットは、上述の抗CK2α抗体又はその免疫応答性を有する断片を必須の構成要素として含み、CK2αタンパク質からなる癌患者の予後を予測するためのバイオマーカーを検出することができる。本発明の癌患者の予後予測用キットは、CK2αタンパク質又はそのペプチド断片以外の癌患者の予後予測用バイオマーカー（以下、「他の予後予測用バイオマーカー」と称する）に対する抗体（以下、「他の予後予測用抗体」と称する）又は免疫応答性を有するその断片を選択構成物として含む。
（１）必須構成物
　本発明の癌患者の予後予測用キットは、上述の抗CK2α抗体又はその断片を必須の構成要素として含む。本発明の癌患者の予後予測用キットに含まれる抗CK2α抗体は単一種であってもよいし、複数種であってもよい。
（２）選択構成物
　本発明の癌患者の予後予測用キットは、選択構成物として、１種類又は複数種類の他の予後予測用抗体又は免疫応答性を有するその断片をさらに含んでもよい。ここで、他の予後予測用抗体は、上記の抗CK2α抗体と組み合わせて用いた場合に癌患者の予後予測の精度を向上し得るものであれば任意の抗体でよく、癌の任意の予後予測用バイオマーカーに対する抗体を使用することができる。このようなバイオマーカーは、公知の癌マーカーから選択することができる。
　本発明の癌患者の予後予測用キットは、上述の必須の構成要素の他に、癌患者の予後予測に必要な他の試薬、例えば、公知の免疫組織化学染色、ELISA、ウェスタンブロット用の試薬等、例えば、標識試薬、バッファー、発色基質、二次抗体、ブロッキング剤、試験に必要な器具及びコントロールバッファー、並びに検出及び結果の判定に用いる説明書を含んでいてもよい。
（癌患者の予後予測方法）
　一態様において、本発明は、癌患者の予後を予測するための方法に関する。
　一実施形態において、癌は、乳癌、子宮癌、食道癌、胃癌、膵癌、肝癌、胆道癌、腎癌、大腸癌、膀胱癌、肺癌、甲状腺癌、及び神経膠腫からなる群から選択される。
　一実施形態において、本発明は、CK2αタンパク質又はその断片からなるマーカーを、ステージによる分類、腫瘍径、リンパ節転移の有無、組織学的グレード等の因子と組み合わせて癌患者の予後予測を行う。
　一実施形態において、癌は乳癌であり、前記マーカーを、ステージによる分類、ホルモン受容体の発現状況による分類、並びにHER2遺伝子及び／又はタンパク質の発現状況による分類の少なくとも一つ、例えば2つ、好ましくは3つ全てと組み合わせて乳癌患者の予後を予測する。一実施形態において、前記マーカーを、上記分類に加えて、又は上記分類とは別に、腫瘍径、リンパ節転移の有無、組織学的グレード等の他の因子と組み合わせて乳癌患者の予後予測を行う。他の分類又は因子と組み合わせることで、より優れた予後予測が可能になるという効果を奏し得る。
　本明細書において、ステージによる分類とは、国際対癌連合(UICC)のTNM分類(UICC国際規約、L.H. Sobin, M.K. Gospodarowicz and Ch. Wittekind, TNM Classification of Malignant Tumours, 7th edition)に基づいて行われるステージ分類である。上記の国際対癌連合(UICC)のTNM分類を、UICC-TNM分類と本明細書で称する。UICC-TNM分類では、乳癌は、進行度の低い方からステージ0、I、II、III及びIVに分類される。UICC-TNM分類では、しこりの大きさと乳房内での広がり(T分類)、リンパ節転移(N分類)及び遠隔転移(M分類)の3つの因子により、癌病変の進行度を分類する。UICC-TNM分類に基づく病期の決定は当業者の通常の知識に従って行うことができる。
　具体的には、乳癌が乳管内にとどまる場合をステージ0、乳癌腫瘍径が2cm以内で腋窩リンパ節転移のないものあるいは0.2ミリ以内の微小転移のものをステージI、腫瘍径が2cmを超える場合で腋窩リンパ節転移がないものあるいは、腫瘍径が5cm以内で腋窩リンパ節転移が3個以内のものをステージII、腫瘍径にかかわらず腋窩リンパ節転移4－9個のもの（腋窩リンパ節転移がなくても臨床的に明らかに胸骨旁リンパ節転移があるものを含む）あるいは腫瘍径が5cmを超える場合で腋窩リンパ節転移が9個以内のものあるいは、腫瘍径にかかわらず腫瘍が胸壁浸潤、皮膚潰瘍・皮膚衛星結節・皮膚の浮腫を認める場合や炎症性乳癌の場合はリンパ節転移のいかんにかかわらずステージIIIとする。腋窩リンパ節転移10個以上あるいは腋窩リンパ節および胸骨旁リンパ節転移、同側の鎖骨上リンパ節転移のある場合はいかなる腫瘍の状態でもステージIIIとする。遠隔転移がある場合はステージIVとする。なお後述の実施例においては、すべて術後の病理診断がついた後のステージ（pステージ）で表される。
　ホルモン受容体の発現状況による分類とは、エストロゲン受容体(ER)及び／又はプロゲストロン受容体(PgR)の発現状況、例えば発現有無(陽性又は陰性)又は発現高低による分類である。ER及びPgRの発現状況は、これらのタンパク質をコードする遺伝子の発現状況であってもよいが、好ましくはこれらのタンパク質の発現状況である。HER2遺伝子及び／又はタンパク質の発現状況による分類は、HER2遺伝子及び／又はタンパク質の発現有無(陽性又は陰性)又は発現高低による分類であってよい。ER、PgR、及びHER2の発現状況の測定方法は当業者には公知であり、限定するものではないが、例えばタンパク質の検出方法であれば、免疫組織化学染色法等の免疫学的検出法、核酸の検出方法であれば、プライマーを用いる核酸増幅法又はプローブを用いるハイブリダイゼーション法(例えばFISH(Fluorescence In Situ Hybridization)法)が挙げられる。
　ER、PgR、及びHER2を組み合わせて分類を行う場合、以下の3つのグループに分類することができる：(1)ER及び／又はPgRが発現し、HER2が発現しないホルモン受容体陽性/HER2陰性；(2)ER及びPgRの発現有無に関わらず、HER2が発現するHER2陽性；(3)ER、PgR、及びHER2のいずれも発現しないトリプルネガティブ。
　一実施形態において、核小体中のCK2αタンパク質又はその断片の発現の有無又は高低を、癌患者の予後予測のためのマーカーとして使用する。発現の有無又は高低については、以下において詳細に記載する。
　一態様において、本発明は、癌患者の予後を予測するための方法に関する。本方法は、癌患者から得られた癌細胞又は組織において、核小体中のCK2αタンパク質又はその断片を検出する工程、及びCK2αタンパク質又はその断片が検出された場合に予後が悪いと予測する、及び／又はCK2αタンパク質又はその断片が検出されない場合に予後が良いと予測する工程を含む。検出工程は、インビトロで行うことができる。また、核小体中のCK2αタンパク質又はその断片の検出は、上述の抗CK2α抗体又はその免疫応答性を有する断片を用いて行うことができる。
　一態様において、本発明は、癌患者の予後を予測するための方法に関する。本方法は、癌患者から得られた癌細胞又は組織において、核小体中のCK2αタンパク質又はその断片を検出する工程、及びCK2αタンパク質又はその断片が他の細胞画分と比して高度に核小体に検出された場合に予後が悪いと予測する、及び／又はCK2αタンパク質又はその断片が他の細胞画分と比して高度に核小体に検出されない場合に予後が良いと予測する工程を含む。ここで「他の細胞画分」は核小体以外の細胞画分であれば限定せず、例えば細胞質や核質（核液）であってもよい。また、「CK2αタンパク質又はその断片が他の細胞画分と比して高度に核小体に検出されない場合」とは、CK2αタンパク質又はその断片が他の細胞画分と同程度に核小体に検出された場合（CK2αタンパク質又はその断片が細胞全体で一様に検出された場合を含む）や、CK2αタンパク質又はその断片が核小体と比して高度に他の細胞画分に検出された場合等を含む。検出工程は、インビトロで行うことができる。また、核小体中のCK2αタンパク質又はその断片の検出は、上述の抗CK2α抗体又はその免疫応答性を有する断片を用いて行うことができる。
　以下に各工程について具体的に説明する。
(1)検出工程
　本発明の対象となる患者が患う癌のステージは限定しない。例えば、乳癌の場合には、本発明の対象となる患者が患う乳癌は、ステージI～IV、例えばステージI～III又はステージIIIの乳癌であってよい。
　本発明における癌患者は、例えば哺乳動物、好ましくは霊長類、より好ましくはヒトである。
　本発明において使用する癌細胞又は組織は、特に限定されないが、例えば、生検又は切除手術によって癌患者から得ることができる。当該細胞又は組織は、そのままマーカーの検出に用いてもよいが、測定のために適宜前処理してもよい。例えば、免疫組織化学染色法でマーカーを検出する場合は、患者由来の試料からパラフィン包埋切片を調製してもよい。また、例えば、ウェスタンブロット法によってバイオマーカーを検出する場合は、患者由来の試料から核又は核小体を分離し、タンパク質抽出液を調製してもよい。
　本方法で検出されるマーカーは、CK2αタンパク質又はその断片のいずれであってもよい。検出は、発現の有無、発現量若しくは発現濃度の大小等の測定を包含する。本明細書において、「検出」という用語には、測定、定性、定量及び半定量のいずれもが包含される。
　CK2αタンパク質又はその断片の検出方法は、公知のタンパク質検出方法であればよく、特に限定はしないが、例えば、免疫学的検出法が挙げられる。
　「免疫学的検出法」は、抗原である標的分子と特異的に結合する抗体又は抗体断片を用いて、標的分子の量を測定する方法である。具体的には、本工程において上述のCK2αタンパク質又はその断片を用いることができる。
　免疫学的検出法としては、例えば、免疫組織化学染色法、酵素免疫測定法(ELISA法、EIA法を含む)、ウェスタンブロット法、放射免疫測定(RIA)法、免疫沈降法、クロマチン免疫沈降法（CHIP）、又はフローサイトメトリー法が挙げられる。
　「免疫組織化学染色法」は、公知の方法を採用することができる。例えば、患者由来の試料をホルマリン固定後、パラフィンに包埋して組織片に薄切し、スライドガラスに貼り付けたものを切片試料として使用してよい。免疫組織化学染色は、場合により熱処理して抗原を賦活化し、その後、CK2αタンパク質又はその断片を認識する一次抗体（具体的には上述のCK2αタンパク質又はその断片）、及び一次抗体を認識する標識された二次抗体を用いて、切片試料について行ってよい。
　また、ウェスタンブロット法等の発現部位の確認ができない方法については、予め核小体を分離した試料について行うことで、核小体中のCK2αタンパク質又はその断片の発現を確認することができる。
　上述の各測定法は、いずれも当該分野に公知の技術である。したがって、具体的な測定方法については、公知の方法に準じて行えばよい。例えば、Green, M.R. and Sambrook, J., 2012(前述)に記載の方法を参考にすることができる。
(2)予測工程
　本工程では、前記測定工程で得られた測定結果に基づいて、癌患者の予後を予測する。　一実施形態において、本工程は、前記検出工程で得られた結果から、前記癌細胞又は組織がマーカーについて陽性であるか又は陰性であるか判定することを含む。癌細胞又は組織がマーカーについて陰性である場合、癌患者の予後は良いと予測し得る。一方、癌細胞又は組織がマーカーについて陽性である場合、癌患者の予後は悪いと予測し得る。
　免疫組織化学染色法を用いる場合、例えば、一つ又は複数の細胞又は細胞クラスターが染色された場合、陽性と判定し、染色された腫瘍細胞数が存在しない場合、陰性と判定することができる。あるいは、腫瘍細胞総数に対して染色された腫瘍細胞数が一定割合(例えば10％、15％又は20％)を超える場合、陽性と判定し、腫瘍細胞総数に対して染色された腫瘍細胞数が前記一定割合以下の場合、陰性と判定してもよい。免疫組織化学染色法では、例えば、以下のI、II、III、IV、Vの5段階に切片を分類することができる。
I：細胞全体の染色があるが、核染色が明瞭でない
II：核染色(＋)、細胞質より核染色が明瞭である
III：核染色(＋＋)、核染色がIIより高いレベルである
IV：核染色(＋、＋＋)、さらに核小体染色(＋)
V：核染色(－)、核小体染色(＋)
　上記分類において、IV及びVを核小体におけるCK2αタンパク質又はその断片が陽性であると判定することができる。
　一実施形態において、予測工程は、前記検出工程で得られた前記癌細胞又は組織におけるマーカーの発現レベルが、(例えば所定の閾値より)高いか低いかを判定することを含む。癌細胞又は組織におけるマーカーの発現レベルが、所定の閾値より低い(例えば、統計学的に有意に低い)場合、(例えば、所定の閾値より高い発現レベルを有する集団に対して)癌患者の予後は良いと予測し得る。一方、癌細胞又は組織におけるバイオマーカーの発現レベルが所定の閾値より高い(例えば、統計学的に有意に高い)場合、(例えば、所定の閾値より低い発現レベルを有する集団に対して)癌患者の予後は悪いと予測し得る。
　所定の閾値は、対照試料(対照細胞又は組織、例えば対照乳腺細胞又は乳腺組織)において測定した対照量であってもよい。対照試料は、健常個体(例えば健常人)、乳腺の良性腫瘍、又は乳癌患者(例えばステージII乳癌患者)に由来してもよい。本発明において「健常個体」とは、被験個体と同じ生物種の、癌に罹患していない健康な個体をいう。
　例えば、これらの個体における発現量、又は複数の個体における発現量の中央値、平均値、上限レベル、下限レベル、又は一定範囲の値を所定の閾値として用いることができる。閾値は、予測の精度等に応じて適宜設定することができ、例えば、ROC(receiver operating characteristic curve：受信者動作特性曲線)解析により定めることができる。
　本明細書において「統計学的に有意」とは、得られた値の危険率(有意水準)が小さい場合、具体的には、p＜0.05(5％未満)、p＜0.01(1％未満)又はp＜0.001(0.1％未満)の場合を指す。統計学的検定方法は、有意性の有無を判断可能な公知の検定方法を適宜使用すればよく、特に限定しない。例えば、スチューデントt検定法、多重比較検定法、ログランク検定法を用いることができる。
　本明細書において、「予後が悪い」とは、(例えば外科的手術による切除後の)臨床転帰が不良である(例えば、乳癌等の癌の再発リスク又は再発率が高い、無再発生存率が低い、疾患(癌)特異的生存率が低い、又は全生存率が低い)ことをいう。予後が悪い場合、5年後の無再発生存率又は疾患特異的生存率は95％以下、90％以下、85％以下、80％以下、75％以下、又は70％以下であってよい。本発明では生存率は、累積生存率を意味する。
　本明細書において、「予後が良い」とは、臨床転帰が良好であることをいう。予後が良い場合、癌の切除手術後の5年後の無再発生存率又は生存率は90％以上、95％以上又は100%であってよい。
　本発明によれば、癌患者の予後を予測することができ、その結果に基づき、治療方針(例えば、抗癌剤の種類、投与量、投与間隔など)を決定し、又は癌の再発及び転移の検査の間隔を決定することができる。
　本発明により、癌患者の予後が悪いと予測された場合、癌の再発を防止し、又は予後を改善し、又は生存率を改善するために、患者に薬物療法及び／又は放射線療法を行っても良い。したがって、本発明はまた、本発明の方法により予後が悪いと予測された癌患者に薬物療法及び放射線療法の少なくとも一つを行うことを含む、癌の再発を防止し、又は予後を改善し、又は生存率を改善する方法を提供する。また、癌患者の予後が悪いと予測された場合、癌の再発を早期発見するために、検査頻度を上げることもできる。
　薬物としては、以下に限定されないが、ドキソルビシン、シクロホスファミド、5-フルオロウラシル(5-FU)、カペシタビン、オキサリプラチン、及びイリノテカン等の抗癌剤；抗エストロゲン剤(例えばタモキシフェン)、LH-RHアゴニスト製剤(例えばリュープリン)、アロマターゼ阻害剤(例えばアナストロゾール)、及びプロゲステロン製剤等のホルモン療法薬剤；HER2抗体(例えばトラスツズマブ)等の抗体薬剤が挙げられる。薬物は、単独で又は組みあわせて使用できる。薬物は、注射、静脈内投与、経口投与などの経路で投与され得る。
　一実施形態において、本明細書に記載の方法は、CK2αタンパク質又はその断片の検出の有無を、ステージによる分類、腫瘍径、リンパ節転移の有無、組織学的グレード等の因子と組み合わせて癌患者の予後予測を行う。
　一実施形態において、本明細書に記載の方法では、癌は乳癌であり、CK2αタンパク質又はその断片の検出の有無を、ステージによる分類、ホルモン受容体の発現状況による分類、並びにHER2遺伝子及び／又はタンパク質の発現状況による分類の少なくとも一つと組み合わせて乳癌患者の予後を予測する。ステージによる分類、ホルモン受容体の発現状況による分類、並びにHER2遺伝子及び／又はタンパク質の発現状況については、(予後予測のためのマーカーとしての使用)の項目において記載した通りである。一実施形態において、本明細書に記載の方法は、CK2αタンパク質又はその断片の検出の有無を、上記分類に加えて、又は上記分類とは別に、腫瘍径、リンパ節転移の有無、組織学的グレード等の他の因子と組み合わせて乳癌患者の予後予測を行う。他の分類又は因子と組み合わせることで、より優れた予後予測が可能になるという効果を奏し得る。
　以下、実施例を用いて本発明をさらに具体的に説明する。但し、本発明の技術的範囲はこれら実施例に限定されるものではない。
＜実施例１：抗CK2αモノクローナル抗体の作製＞
（目的）
　CK2αタンパク質を特異的かつ高感度で検出可能なモノクローナル抗体（抗CK2αモノクローナル抗体）を開発する。
（方法と結果）
（１）抗原ポリペプチドによる免疫
　抗CK2αモノクローナル抗体の作製は、その作業の一部を株式会社免疫生物研究所に委託して実施した。具体的には、GSTタグを結合させた配列番号2で示すヒトCK2αタンパク質を大腸菌(DE3)で発現させた後、トロンビン処理によりGSTタグを切断して精製したポリペプチドを抗原として作製した。その後、株式会社免疫生物研究所に委託してマウスの免疫を行った。免疫後、試験採血を行ってELISAにて抗体価を確認した。
　図1Aは、免疫後のマウス個体から得られた抗血清の組換えCK2αタンパク質及び組換えCK2α'タンパク質に対する反応性をウェスタンブロットにより検討した結果を示す。ウェスタンブロットは二次抗体として抗マウスIgG-HRP抗体（Abcam、#6789）を使用し、化学発光検出試薬（Thermo Scientific、#32209）を使用して検出した。マウス個体から得られた抗血清は、CK2αタンパク質とそれに構造上類似するCK2α'タンパク質のいずれに対しても反応性を示した。ヒトCK2αタンパク質で免疫したマウスで産生される抗CK2α抗体の多くは、CK2α'タンパク質に対する交差反応性を示すことが示唆された。
（２）細胞融合及びスクリーニング
　免疫後のマウス個体からリンパ細胞を単離し、リンパ細胞とミエローマ細胞とを融合した後、培養上清中の抗体産生をELISAを用いてスクリーニングした。次いで良好なウェルを対象として限界希釈法によりハイブリドーマのクローニングとELISAによるスクリーニングを実施した。CK2α'タンパク質には反応せず、CK2αタンパク質に対して選択的に反応性を示すハイブリドーマのクローンとして、クローン6A、6B、6C、及び7Aの4つのクローンが得られた。
（３）選抜されたクローンの解析
　図1Bは、クローン6A、6B、6C、及び7Aの培養上清を用いた、組換えCK2αタンパク質及び組換えCK2α'タンパク質に対するウェスタンブロットの結果を示す。クローン6A、6B、6C、及び7Aは、いずれもCK2αタンパク質に選択的に反応し、CK2α'タンパク質に対しては全く反応性を示さなかった。
（４）クローン6Aを対象とするさらなるクローニング
　クローン6Aを対象として、さらに限界希釈法によるクローニングを実施することにより、クローン6A1、6A2、及び6A3が得られた。クローン6A1、6A2、及び6A3の培養上清を用いて、Flag-CK2α発現HEK293細胞の細胞質ライセートにおいてCK2αタンパク質を検出した結果を図2に示す。図2は、市販のマウス抗CK2αモノクローナル坑体（ab70774, Abcam, UK）を用いた検出結果も対照として示す（図2、「対照抗体」）。対照抗体では、CK2αタンパク質のバンドに加えて、高分子量側に非特異的なバンドが検出された。クローン6A1、6A2、及び6A3では、このようなバンドは検出されなかった。クローン6A1、6A2、及び6A3は、特異性が極めて高い抗体であることが示された。
（５）クローン6A3からのIgG精製
　クローン6A3を血清添加培養により増殖させた後、無血清培地によりさらに培養し、培養上清を回収した。回収した培養上清から、プロテインAカラムを用いてIgGを精製した。以下では、精製後のモノクローナル抗体を「mAb (6A3)」という。
＜実施例２：抗CK2αモノクローナル坑体mAb (6A3)を用いたウェスタンブロット及び免疫沈降＞
（目的）
　実施例１で作製した抗CK2αモノクローナル坑体mAb (6A3)を用いてウェスタンブロットと免疫沈降を行う。mAb (6A3)と市販のマウス抗CK2αモノクローナル坑体（ab70774, Abcam, UK；以下、「対照抗体」という）の性能を比較する。
（方法と結果）
（１）細胞内在性CK2αタンパク質に対するウェスタンブロット
　0.1 μg/mL若しくは0.5 μg/mLのmAb (6A3)を用いて、HEK293細胞の細胞質ライセートに対してウェスタンブロットを行い、内在性CK2αタンパク質を検出した。
　結果を図3に示す。図3では、0.5 μg/mLのマウス抗CK2αモノクローナル坑体（ab70774, Abcam, UK）を用いた検出結果も対照として示す（図3、「対照抗体」）。図3Bに示す通り、0.5 μg/mLのmAb (6A3)は、同じ濃度の対照抗体と比較して3.5倍を超える感度で内在性CK2αタンパク質を検出することができた。また、0.1 μg/mLのmAb (6A3)は、0.5 μg/mLの濃度の対照抗体と比較して2倍を超える感度で内在性CK2αタンパク質を検出することができた。
　この結果から、mAb (6A3)は、従来の抗体と比べて飛躍的に高い感度で内在性のCK2αタンパク質を検出できることが示された。
（２）Flag-CK2αタンパク質に対するウェスタンブロット
　0.1 μg/mLのmAb (6A3)及び0.5 μg/mLの対照抗体を用いて、Flag-CK2αタンパク質を発現するHEK293細胞の細胞質ライセートに対してウェスタンブロットを行った。
　結果を図4に示す。対照抗体では、Flag-CK2αタンパク質を発現していない細胞（Flag-CK2α(-)のレーン）においても、Flag-CK2αタンパク質と同じ位置に非特異的なバンドが検出された（図4、右側、矢印で示す2つのバンド）。対照的に、mAb (6A3)による検出では、Flag-CK2αタンパク質を発現させた細胞（Flag-CK2α(+)のレーン）のみにおいてFlag-CK2αタンパク質のバンドが検出され、Flag-CK2αタンパク質を発現していない細胞（Flag-CK2α(-)のレーン）では、Flag-CK2αタンパク質と同じ位置に非特異的なバンドは検出されなかった（図4、左側、矢印の位置）。
　この結果から、mAb (6A3)は、従来の抗体と比較して高い特異性でCK2αタンパク質を検出できることが示された。また、mAb (6A3)は、細胞内在性CK2α及び外来遺伝子として発現させたCK2αのいずれも、細胞ライセート中で特異的に検出できることが示された。
（３）免疫沈降物に対するウェスタンブロット
　HEK293細胞の細胞質及び核の各々からライセートを調製した。細胞質と核のライセートの各々から、1 μgのmAb (6A3)又はマウス抗CK2αモノクローナル坑体（ab70774, Abcam, UK）を用いて免疫沈降を行った。具体的には、培養したHEK293細胞をPBSで洗浄後プレートから回収し、常法にしたがって細胞質画分と核画分を部分精製し、抗CK2α抗体を加えて4℃にて2時間温和に混合することにより、CK2α免疫複合体を形成させた。次いで、遠心分離して得られた免疫沈降物をSDS処理後に電気泳動した。ウェスタンブロットには、4 μg/mLのmAb (6A3)又はマウス抗CK2αモノクローナル坑体（ab70774, Abcam, UK）を用いた。
　ウェスタンブロットの結果を図5に示す。また、図5左側に示すゲルにおけるCK2αの各バンド、及び図5右側に示すゲルにおけるCK2αの各バンドの染色強度を定量して合計した結果を図6に示す。免疫沈降用の抗体としてmAb (6A3)又は対照抗体を用いた場合、免疫沈降された内在性CK2αタンパク質の量には大きな差は検出されなかった。その一方、ウェスタンブロット用の抗体としてmAb (6A3)又は対照抗体を用いた場合、mAb (6A3)により内在性CK2αタンパク質を高い感度で検出することができた。
（４）免疫沈降物に対するさらなるウェスタンブロット
　Flag-CK2α発現RPE細胞の細胞質ライセートを調製した。このライセートから、1 μgのmAb (6A3)又はマウス抗CK2αモノクローナル坑体（ab70774, Abcam, UK）を用いて免疫沈降を行った。得られた免疫沈降物に対して0.1 μg/mLのmAb (6A3)又は2 μg/mLの抗Flag抗体（Sigma、#1805）を用いてウェスタンブロットを行った。
　ウェスタンブロットの結果を図7に示す。また、図7の矢印で示す2つのバンドの染色強度を定量した結果を図8に示す。免疫沈降用の抗体としてmAb (6A3)又は対照抗体を用いた場合、免疫沈降されたFlag-CK2αタンパク質の量はmAb (6A3)の方が多かった（図7、矢印で示す2つのバンドの比較）。
＜実施例３：抗CK2αモノクローナル坑体mAb (6A3)を用いた乳癌組織における免疫組織化学＞
（目的）
　抗CK2αモノクローナル坑体mAb (6A3)を用いて、乳癌組織の免疫染色を行う。mAb (6A3)と市販のマウス抗CK2αモノクローナル坑体（ab70774, Abcam, UK；以下、「対照抗体」という）を用いて、癌細胞において核小体に局在するCK2αタンパク質を検出し、2つの抗体の性能を比較する。
（方法と結果）
　星総合病院で2007年から2014年の間に初発乳癌摘出術を受けた原発性乳癌患者（浸潤性乳管癌）から切除された乳癌組織における癌浸潤部（病変部）のホルマリン固定パラフィン包埋標本を用いた。腫瘍のステージは悪性腫瘍のTNM分類(UICC国際規約、L.H. Sobin, M.K. Gospodarowicz and Ch. Wittekind, TNM Classification of Malignant Tumours, 7th edition)に従って、p Stage IIBであった。なお本研究は、星総合病院及び福島県立医科大学の審査委員会の承認を受けた。
　ホルマリンブロックを4μm厚に切り出してガラスプレート上にマウントした。ティシュー・テックプリズマ6120(サクラファインテックジャパン株式会社)を用いて常法に従って脱パラフィン、再水和処理し、10mM重炭酸ナトリウム緩衝液(pH8.0)中で105℃、10分間オートクレーブ処理することで抗原を賦活化した。ヤギ血清を、1%牛血清アルブミン(BSA)を含有する10mM リン酸緩衝生理食塩水(PBS)中で200倍に希釈した液で、30分間室温で切片をブロック処理した。切片をPBS洗浄後、BSAと0.05%Tween(登録商標) 20を含有するPBS中で抗CK2αモノクローナル坑体mAb (6A3)又はマウス抗CK2αモノクローナル坑体(ab70774, Abcam, UK)と4℃で一晩反応させた。16時間後にビオチン結合坑マウスIgG(BA-9200, Vector Laboratories, US)と室温で30分、さらにVectastain（商標） Elite ABC HRP kit(PK-6102, Vector Laboratories, US)を用いてアビジン・ホースラディッシュペルオキシダーゼ複合体と30分インキュベートし、その後酸性条件下でジアミノベンジジン(DOJINDO, Japan)により坑CK2α抗体を可視化した。
　なお、抗CK2αモノクローナル坑体mAb (6A3)は1,000倍希釈（0.1 μg/mL）で使用した。また、マウス抗CK2αモノクローナル坑体(ab70774, Abcam, UK)は1,000倍希釈（2 μg/mL）で使用した。
　浸潤性乳管癌の癌浸潤部（病変部）における染色結果を図9に示す。0.1 μg/mLのmAb (6A3)を用いた染色では、核内構造体である核小体部分が強く染色された一方、バックグラウンドの染色は低かった（図9A）。その結果、癌細胞においてCK2αタンパク質が局在する核小体が明瞭に識別できた。一方、2 μg/mLの対照抗体を用いた染色では、核小体部分の染色は弱く、バックグラウンドとの差が明瞭ではなかった（図9B）。
＜実施例４：抗CK2αモノクローナル坑体mAb (6A3)のCDR配列決定＞
（目的）
　抗CK2αモノクローナル坑体mAb (6A3)の重鎖及び軽鎖の可変領域配列並びにCDR配列を決定する。
（方法と結果）
　クローン6A3を対象として、株式会社ファスマックに抗体アミノ酸配列の決定を委託した。重鎖及び軽鎖の各可変領域及び各CDRの配列を決定した結果を以下に示す。なお、CDRの同定はKabatの抗体ナンバリングシステムに従った。また、mAb (6A3)はIgG2bであることも判明した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
＜実施例５：さらなる抗CK2αモノクローナル抗体の作製＞
（目的）
　CK2αタンパク質を特異的かつ高感度で検出可能なモノクローナル抗体（抗CK2αモノクローナル抗体）をさらに開発する。さらに、各クローンについて重鎖及び軽鎖の可変領域配列並びにCDR配列を決定する。
（方法と結果）
　実施例１の「（１）抗原ポリペプチドによる免疫」に記載の方法に準じてヒトCK2αタンパク質を抗原としてマウスを免疫した。さらに実施例１の「（２）細胞融合及びスクリーニング」、「（３）選抜されたクローンの解析」、及び「（４）クローン6Aを対象とするさらなるクローニング」に記載の方法に準じて免疫後のマウス個体からリンパ細胞を単離し、リンパ細胞とミエローマ細胞とを融合して、抗体産生ハイブリドーマを作製し、クローン10B2、15C1、16C2、19C2、及び21B1の5つのクローンが得られた。さらに実施例１の「（５）クローン6A3からのIgG精製」に記載の方法に準じて各クローンの培養上清を精製し、精製後のモノクローナル抗体として「mAb (10B2)」、「mAb (15C1)」、「mAb (16C2)」、「mAb (19C2)」、及び「mAb (21B1)」を得た。
　次に実施例４と同様の方法により、得られた抗CK2αモノクローナル坑体の各々について、重鎖及び軽鎖の可変領域配列並びにCDR配列を決定した。重鎖及び軽鎖の各可変領域及び各CDRの配列を決定した結果を以下に示す。なお、CDRの同定はKabatの抗体ナンバリングシステムに従った。また、得られた抗CK2αモノクローナル坑体は,「mAb(6A3)」、「mAb (10B2)」、「mAb (15C1)」、「mAb (16C2)はすべてIgG2bであるが、「mAb (19C2)」、及び「mAb (21B1)」はIgG1であることも判明した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
＜実施例６：抗CK2αモノクローナル坑体を用いたウェスタンブロット及びクロマチン免疫沈降＞
（目的）
　実施例１で作製した抗CK2αモノクローナル坑体mAb (6A3)、及び実施例５で作製した抗CK2αモノクローナル坑体mAb (10B2)、mAb (15C1)、mAb (16C2)、及びmAb (19C2)と市販のマウス抗CK2αモノクローナル坑体（ab70774, Abcam, UK；「対照抗体」という）の性能を比較するために、ウェスタンブロットと免疫沈降を行う。
（方法と結果）
（１）細胞ライセートからの免疫沈降物に対するウェスタンブロット
　乳癌細胞株MCF-7（JCRBセルバンク、＃JCRB0134）、及びFlag-CK2αタンパク質を発現するHEK293細胞からライセートを調製した。培養したMCF-7細胞株又はFlag-CK2αタンパク質を発現するHEK293細胞をPBSで洗浄後プレートから回収し、常法にしたがって細胞ライゼートから可溶性画分を部分精製し、抗CK2α抗体（1 μgの本発明の6種類の抗体又は対照抗体）を加えて4℃にて2時間温和に混合した後、Protein G-agaroseビーズを添加して遠心分離することにより、CK2α免疫複合体を形成させた。次いで、遠心分離して得られた免疫沈降物をSDS処理後に電気泳動した。ウェスタンブロットには、0.1 μg/mLの本発明の抗体又は対照抗体を用いた。
　MCF-7細胞株又はFlag-CK2αタンパク質を発現するHEK293細胞に対する、免疫沈降後のウェスタンブロットの結果を図10に示す。対照抗体を用いたウェスタンブロットでは、MCF-7細胞株においては内在性のCK2αのバンドに加えて、それと同等以上に強い非特異的なバンドが検出され、Flag-CK2αタンパク質を発現するHEK293細胞においても内在性CK2α及びFlag-CK2αのバンドに加えて、それと同等以上に強い非特異的なバンドが検出された。これに対し、本発明のmAb (6A3)、mAb (10B2)、mAb (15C1)、mAb (16C2)、及びmAb (19C2)では、この非特異的なバンドが検出されなかったため、CK2αに対する特異性が高いことが明らかになった。
（２）クロマチン免疫沈降
　CK2αタンパク質は、核内においてHMGB2（High Mobility Group Box 2）遺伝子座を含むヒトゲノム上の広範な部位にリクルートされる（本発明者ら、未発表）。このことに基づいて、HMGB2遺伝子座を対象としてクロマチン免疫沈降を実施することによって、本発明の抗体の性能を検証する。
　具体的には、ヒト網膜色素上皮細胞（ヒトRPE細胞）ならびにCRISPR-Cas9法によってCK2遺伝子をノックアウトしたヒトRPE細胞(RPE-ko)からクロマチン免疫沈降の常法に従いライセートを作製しクロマチン画分を調製した。このクロマチン画分に対して抗CK2α抗体（1 μgのmAb (6A3)、mAb (10B2)、mAb (15C1)、又はmAb (16C2)）を加えて4℃にて一晩ローテーターを用いて温和に混合した後、Protein G-agaroseビーズを添加して遠心分離することによってクロマチン免疫複合体の画分を取得した。得られた画分に含まれる核酸を鋳型として、配列番号65及び66で示すプライマー対を用いてヒトHMGB2遺伝子座の塩基配列をPCR増幅した。PCRの増幅条件(温度及び時間)は以下の通りであった：95℃で3秒、60℃で20秒(1サイクル)を40サイクル繰り返した。HMGB2に対応するDNA増幅量は、KAPA SYBR Fast qPCRキット(KAPA Biosystems)を用いApplied Biosystems StepOne(Life Technologies)によって測定した。
　クロマチン免疫沈降の結果を図11に示す。mAb (6A3)、mAb (10B2)、mAb (15C1)、及びmAb (16C2)のいずれかの抗体を用いて免疫沈降した画分では、特異抗体未添加の試料（図11における「Control」）と比較して、HMGB2遺伝子座に対応する標的配列の増幅量が増大した。この結果から、上記抗体を用いて免疫沈降した画分では、HMGB2遺伝子座に対応するクロマチンが有効に濃縮されていることが示された。
（３）リコンビナントCK2αに対するウェスタンブロット
　本発明のmAb (6A3)、mAb (10B2)、mAb (15C1)、mAb (16C2)、mAb (19C2)、及びmAb (21B1)を使用して、精製品のリコンビナントCK2αタンパク質をウェスタンブロットによって検出した。リコンビナントCK2αタンパク質は、pGEX2T-CK2α遺伝子を大腸菌に導入して発現させたヒト由来CK2αタンパク質を精製したものを使用した。0.05 μg、0.1 μg、又は0.2 μgのリコンビナントCK2αタンパク質をSDS処理して電気泳動し、0.1 μg/mLの本発明の6種類の抗体を用いて検出を行った。
　ウェスタンブロットの結果を図12に示す。mAb (6A3)、mAb (10B2)、mAb (15C1)、mAb (16C2)、mAb (19C2)、及びmAb (21B1)は、いずれもリコンビナントCK2αタンパク質を検出できることが示された。
＜実施例７：抗CK2αモノクローナル坑体mAb (21B1)を用いた乳癌組織における免疫組織化学＞
（目的）
　実施例５で作製した抗CK2αモノクローナル坑体mAb (21B1)及び対照抗体を用いて、乳癌組織の免疫染色を行い、癌細胞において核小体に局在するCK2αタンパク質を検出する。
（方法と結果）
　実施例３に記載の方法に準じて、乳癌組織における癌浸潤部（病変部）のホルマリン固定パラフィン包埋標本を対象として、抗CK2αモノクローナル坑体mAb (21B1)による免疫染色を実施した。なお、抗CK2αモノクローナル坑体mAb (21B1)は1,000倍希釈（0.1 μg/mL）で使用した。また、マウス抗CK2αモノクローナル坑体(ab70774, Abcam, UK)は1,000倍希釈（2 μg/mL）で使用した。
　浸潤性乳管癌の癌浸潤部（病変部）における染色結果を図9に示す。0.1 μg/mLのmAb (21B1)を用いた染色では、核内構造体である核小体部分が強く染色された一方、バックグラウンドの染色は低かった（図13A）。その結果、癌細胞においてCK2αタンパク質が局在する核小体が明瞭に識別できた。一方、2 μg/mLの対照抗体を用いた染色では、核小体部分の染色は弱く、バックグラウンドとの差が明瞭ではなかった（図13B）。
＜実施例８：肺腺癌患者の切除手術後の予後評価＞
（目的）
　本発明のモノクローナル抗CK2α坑体mAb (6A3)を用いて、肺腺癌患者から切除された肺腺癌組織におけるCK2αタンパク質の発現及び局在を評価し、肺腺癌患者の切除手術後の予後を評価する。
（方法）
　福島県立医科大学呼吸器外科学講座で2007年から2014年の間に根治的切除術を受けた原発性肺腺癌患者120人の患者から切除された肺腺癌組織ホルマリン固定パラフィン包埋標本を用いた。腫瘍のステージは悪性腫瘍のTNM分類(UICC国際規約、L.H. Sobin, M.K. Gospodarowicz and Ch. Wittekind, TNM Classification of Malignant Tumours, 8th edition) に従って決定した。なお本研究は、福島県立医科大学の審査委員会の承認を受けた。
　ホルマリンブロックを4μm厚に切り出してガラスプレート上にマウントした。ティシュー・テックプリズマ6120(サクラファインテックジャパン株式会社)を用いて常法に従って脱パラフィン、再水和処理し、10mM重炭酸ナトリウム緩衝液(pH8.0)中で105℃、10分間オートクレーブ処理することで抗原を賦活化した。ヤギ血清を、1%牛血清アルブミン(BSA)を含有する10mM リン酸緩衝生理食塩水(PBS)中で200倍に希釈した液で、30分間室温で切片をブロック処理した。切片をPBS洗浄後、BSAと0.05%Tween(登録商標) 20を含有するPBS中で1,000倍に希釈したモノクローナル抗CK2α坑体mAb (6A3, 0.1 μg/mL)と4℃で一晩反応させた。16時間後にビオチン結合坑マウスIgG(BA-9200, Vector Laboratories, US)と室温で30分、さらにVectastain（商標）Elite ABC HRP kit(PK-6102, Vector Laboratories, US)を用いてアビジン・ホースラディッシュペルオキシダーゼ複合体と30分インキュベートし、その後酸性条件下でジアミノベンジジン(DOJINDO, Japan)により坑CK2α抗体を可視化した。連続する切片をヘマトキシリンで対比染色した。
　CK2α抗体による免疫組織化学スライドは、患者情報を知らない2人の独立した病理専門医によって以下の基準でI、II、III、IV、Vの5段階で評価した。
I：細胞全体の染色があるが、核染色が明瞭でない
II：核染色(＋)、細胞質より核染色が明瞭である
III：核染色(＋＋)、核染色がIIより高いレベルである
IV：核染色(＋、＋＋)、さらに核小体染色(＋)
V：核染色(－)、核小体染色(＋)
　ステージIVを除いたステージI～IIIの118人の原発性肺腺癌患者において、CK2α核小体染色陽性(IV+V)の群、及び陰性(I+II+III)の群について、生存曲線をカプランマイヤー法により解析した。具体的には無再発生存(relapse-free survival)を解析した。CK2α核小体染色陽性(IV+V)及び陰性(I+II+III)の２つの生存曲線の有意差をログランク検定により検定し、ハザード比及びその95％信頼区間を算出した。すべての統計解析はJMP Pro version 14.2.0を用いて行った。
　さらに、ステージIVを除いたステージI～IIIの118人の原発性肺腺癌患者の予後を評価した。患者の臨床情報は、医療記録を再調査することによって遡及的に得た。予後のイベントは、再発、肺腺癌による死亡及び全死亡とし、CK2α染色評価との関連を検討した。
(結果)
　無再発生存率の結果を図14に示す。CK2α核小体染色陽性の肺腺癌患者は、核小体染色陰性患者と比較して有意に低い無再発生存率を示した。このことはCK2α核小体染色陽性症例の再発リスクが陰性症例と比較して有意に高いことを示している(N=118、P=0.0031、ログランク検定)。
　また、120人の原発性肺腺癌患者について、単変量解析及び多変量解析を行った。単変量解析では、変数の各々に注目して、目的変数である初発肺腺癌の術後無再発生存期間への相関や影響の強さを評価した。多変量解析では、単変量解析においてP値が0.05未満を示した4つの変数を選択し、それらが無再発生存期間へ相互に影響し合うものか、又は独立した変数として目的変数を規定するかを解析した。
　単変量解析及び多変量解析においてハザード比（図中「HR」として示し、再発の起こりやすさを相対的に示す）及びその95％信頼区間を算出した結果を図15A及び図15Bに示す。さらに多変量解析において無再発生存期間を規定する効果を解析するために、JMP Pro version 14のPartition Treeを使用して目的変数への寄与度を比較した結果を図15Cに示す。この結果から、CK2α核小体染色陽性という指標が、将来の再発と強く関連することが独立変数の統計的有意性として示された。また、多変量解析ではCK2α核小体染色陽性の指標は、統計的有意性を示す検定統計量であるWald値が最大になった。
　図16は、2つの再発予測モデルを用いて、再発までの期間を規定する変数について解析した結果を示す。
　図16Aは、6種類の変数に基づく再発予測モデル1の結果を示す。再発までの期間についての中央値1397 daysに対して、最上位の変数は術時周辺リンパ節転移有症例で717 days、それに対して周辺リンパ節転移無症例では1496 days、一方、CK2α核小体染色陽性症例では1326 daysであったが、そのうち（CK2α核小体染色陽性、かつ）リンパ管侵襲有症例では745 daysであった。
　図16Bは、モデル1における6種類の変数に年齢を追加した7種類の変数に基づく再発予測モデル2の結果を示す。最上位の変数が術時周辺リンパ節転移有症例であり（再発までの期間についての中央値1397 daysに対して717 days）、周辺リンパ節転移無症例（1496 days）の場合は、年齢80歳以上は845 daysであり、一方、年齢80歳未満（1566 days）の場合にはCK2α核小体染色陽性症例は1370 daysであったが、そのうち（CK2α核小体染色陽性、かつ）リンパ管侵襲有症例は745 daysであった。
　図17は、ステージI～IIIの原発性肺腺癌患者をステージ及びCK2α染色評価に基づいて分類し、再発の有無を区別して示す。特に臨床的癌ステージにおいて、初発癌の大きさ、及び周辺リンパ節への転移が低いか又は無いために初期ステージへ分類された症例においても、CK2α核小体染色陽性は将来の再発可能性があることを示す指標として有効であることが、統計的に示唆された（図17）。
　本明細書で引用した全ての刊行物、特許及び特許出願はそのまま引用により本明細書に組み入れられるものとする。

Claims (9)

  1. 　抗CK2α抗体又はその断片であって、
    　（１）配列番号5で示すアミノ酸配列からなるCDR1、
    　　配列番号6で示すアミノ酸配列からなるCDR2、及び
    　　アミノ酸配列FVからなるCDR3
    を含む重鎖可変領域、並びに
    　　配列番号8で示すアミノ酸配列からなるCDR1、
    　　配列番号9で示すアミノ酸配列からなるCDR2、及び
    　　配列番号10で示すアミノ酸配列からなるCDR3
    を含む軽鎖可変領域、
    　（２）配列番号17で示すアミノ酸配列からなるCDR1、
    　　配列番号18で示すアミノ酸配列からなるCDR2、及び
    　　アミノ酸配列FVからなるCDR3
    を含む重鎖可変領域、並びに
    　　配列番号20で示すアミノ酸配列からなるCDR1、
    　　配列番号21で示すアミノ酸配列からなるCDR2、及び
    　　配列番号22で示すアミノ酸配列からなるCDR3
    を含む軽鎖可変領域、
    　（３）配列番号25で示すアミノ酸配列からなるCDR1、
    　　配列番号26で示すアミノ酸配列からなるCDR2、及び
    　　アミノ酸配列FVからなるCDR3
    を含む重鎖可変領域、並びに
    　　配列番号28で示すアミノ酸配列からなるCDR1、
    　　配列番号29で示すアミノ酸配列からなるCDR2、及び
    　　配列番号30で示すアミノ酸配列からなるCDR3
    を含む軽鎖可変領域、
    　（４）配列番号33で示すアミノ酸配列からなるCDR1、
    　　配列番号34で示すアミノ酸配列からなるCDR2、及び
    　　アミノ酸配列FVからなるCDR3
    を含む重鎖可変領域、並びに
    　　配列番号36で示すアミノ酸配列からなるCDR1、
    　　配列番号37で示すアミノ酸配列からなるCDR2、及び
    　　配列番号38で示すアミノ酸配列からなるCDR3
    を含む軽鎖可変領域、
    　（５）配列番号41で示すアミノ酸配列からなるCDR1、
    　　配列番号42で示すアミノ酸配列からなるCDR2、及び
    　　配列番号43で示すアミノ酸配列からなるCDR3
    を含む重鎖可変領域、並びに
    　　配列番号44で示すアミノ酸配列からなるCDR1、
    　　配列番号45で示すアミノ酸配列からなるCDR2、及び
    　　配列番号46で示すアミノ酸配列からなるCDR3
    を含む軽鎖可変領域、又は
    　（６）配列番号49で示すアミノ酸配列からなるCDR1、
    　　配列番号50で示すアミノ酸配列からなるCDR2、及び
    　　配列番号51で示すアミノ酸配列からなるCDR3
    を含む重鎖可変領域、並びに
    　　配列番号52で示すアミノ酸配列からなるCDR1、
    　　配列番号53で示すアミノ酸配列からなるCDR2、及び
    　　配列番号54で示すアミノ酸配列からなるCDR3
    を含む軽鎖可変領域
    を含む、前記抗CK2α抗体又はその断片。
  2. 　前記抗CK2α抗体又はその断片が、
    　（ａ）配列番号11で示すアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び
    　　配列番号12で示すアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域、
    　（ｂ）配列番号15で示すアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び
    　　配列番号16で示すアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域
    　（ｃ）配列番号23で示すアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び
    　　配列番号24で示すアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域
    　（ｄ）配列番号31で示すアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び
    　　配列番号32で示すアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域
    　（ｅ）配列番号39で示すアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び
    　　配列番号40で示すアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域、又は
    　（ｆ）配列番号47で示すアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び
    　　配列番号48で示すアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域
    を含む、請求項１に記載の抗CK2α抗体又はその断片。
  3. 　請求項１又は２に記載の抗CK2α抗体又はその断片を含む、癌患者の予後予測用キット。
  4. 　予後が再発リスクを含む、請求項３に記載のキット。
  5. 　前記癌が、乳癌、子宮癌、食道癌、胃癌、胆道癌、膵癌、肝癌、腎癌、大腸癌、膀胱癌、肺癌、甲状腺癌、及び神経膠腫からなる群から選択される、請求項３又は４に記載のキット。
  6. 　癌患者の予後を予測するための方法であって、
    　癌患者から得られた癌細胞又は組織において、核小体中のCK2αタンパク質又はその断片を検出する工程、並びに
    　CK2αタンパク質又はその断片が他の細胞画分と比して高度に核小体に検出された場合に予後が悪いと予測する、及び／又はCK2αタンパク質又はその断片が他の細胞画分と比して高度に核小体に検出されない場合に予後が良いと予測する工程
    を含み、CK2αタンパク質又はその断片が請求項１又は２に記載の抗CK2α抗体又はその断片を用いて検出される、前記方法。
  7. 　予後が再発リスクを含む、請求項６に記載の方法。
  8. 　前記癌が、乳癌、子宮癌、食道癌、胃癌、胆道癌、膵癌、肝癌、腎癌、大腸癌、膀胱癌、肺癌、甲状腺癌、及び神経膠腫からなる群から選択される、請求項６又は７に記載の方法。
  9. 　前記癌が乳癌であり、CK2αタンパク質又はその断片の検出の有無を、ステージによる分類、ホルモン受容体の発現状況による分類、並びにHER2遺伝子及び／又はタンパク質の発現状況による分類の少なくとも一つと組み合わせて乳癌患者の予後を予測する、請求項８に記載の方法。
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