WO2024203624A1 - 咳を止め、痰を減らし、免疫力を向上させるイナゴマメ多糖類およびその調製方法と使用 - Google Patents

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Definitions

  • the present invention relates to the field of medicine and health food, specifically to carob polysaccharides that can relieve coughs, reduce phlegm, and improve immunity, and their preparation method and use.
  • Carob is distributed in various places such as the Mediterranean coast, California in the United States and Australia, and is mainly planted in various places in China such as Guangxi, Sichuan, Yunnan and Guangdong. Carob is low in calories and fat, and is rich in natural polysaccharides, multiple vitamins, proteins and trace elements. At present, carob extract is mainly used in the fields of food flavoring, natural food thickeners and stabilizers. Carob is not only very nutritious, but also has extremely high medicinal properties. Syrup made from carob pods can play a good relieving effect on colds, coughs and sore throats. The main component of carob pods is sugar.
  • Respiratory diseases are common diseases, and generally have symptoms such as coughing, expectoration, and even hemoptysis, which often lead to a weakening of the body's immune system.
  • cough suppressants and expectorants on the market today.
  • Treatment with Western medicines cannot fundamentally cure the disease, and is prone to drug resistance and has significant side effects.
  • Traditional Chinese medicine products have a slow therapeutic effect and a strong odor.
  • products with good taste and aroma are difficult to combine with therapeutic effects. Therefore, it is very important to develop products that are effective quickly, have a strong healing effect, and can improve immunity at the same time.
  • the embodiment of the present invention provides carob polysaccharides that can improve airways, stop coughs, reduce phlegm, and even improve immunity.
  • the carob polysaccharides of the embodiment of the present invention have a wide range of applications, a short treatment course, fast efficacy, and no toxicity or side effects.
  • a carob polysaccharide that is composed of two types of monosaccharides, galactose and glucose, with a molar ratio of galactose to glucose of (88-92):(0.8-1.2), and is combined and bound by glycosidic bonds (1 ⁇ 4)-Glu, (1 ⁇ 3,4,6), (1 ⁇ 3)-Gal, (3 ⁇ 6)-Gal, (2 ⁇ 4,6)-Gal, (2 ⁇ 6)-Gal, and (1 ⁇ )-Gal.
  • the molar ratio of galactose to glucose in the carob polysaccharide is 89.666:1.068.
  • Glu refers to glucose and Gal refers to galactose.
  • the molecular weight of the carob polysaccharide is (1-6) x 10 6 , and may be (4.8-5) x 10 6 .
  • the molecular weight of the carob polysaccharide is (1-2) ⁇ 10 6 .
  • the molecular weight of the carob polysaccharide is (2-3) ⁇ 10 6 .
  • the molecular weight of the carob polysaccharide is (3-4) x 106 .
  • the average molecular weight of the carob polysaccharide is (4.8-5) x 106 .
  • the molecular weight distribution width (Mw/Mn) of the carob polysaccharide is 1.5 to 1.6, and may be 1.574.
  • the carob polysaccharides are isolated from carob pods.
  • the carob polysaccharide has at least the effects of relieving cough, reducing phlegm, and improving immunity.
  • the carob polysaccharides according to the present invention in the preparation of a medicament for relieving cough and reducing phlegm.
  • the diseases include cough, phlegm, and weakened immunity.
  • a pharmaceutical composition comprising the carob polysaccharides according to the present invention and further comprising a pharma- ceutically acceptable carrier.
  • a food product comprising the carob polysaccharides described in the present invention and further comprising a main food ingredient and a secondary food ingredient.
  • the food product includes a functional food product or a dietary supplement.
  • the food product may be one or more of the following: a beverage, a candy, a syrup, a sweetener, a flavoring, etc.
  • a method for treating a disease comprising administering an effective amount of the carob polysaccharide, the pharmaceutical composition or the food product to a subject or patient in need thereof by oral or parenteral route, wherein the disease comprises cough, expectoration and immunosuppression.
  • carob polysaccharides by which the carob polysaccharides described in the present invention can be prepared, and the purity thereof can reach 93% or more.
  • a method for preparing carob polysaccharides comprising the steps of: removing the pods of crushed deseeded carob; degreasing them with 90-95% ethanol (1-5 times by weight); drying the fine powder obtained after degreasing; adding water to perform extraction; centrifuging the extract; concentrating the supernatant; adding ethanol so that the mass fraction of ethanol is 55-60%; centrifuging to collect the precipitate; dispersing the precipitate obtained in water; removing proteins by the Sevage method; and adsorbing the precipitate using macroporous adsorption resin D101.
  • a method for preparing carob polysaccharides comprising: performing DEAE-52 cellulose column chromatography; eluting with distilled water to collect mobile phase components; performing DEAE-52 cellulose column chromatography; performing elution with distilled water; performing Sephadex G-100 gel filtration column chromatography; collecting the eluate using deionized water as the mobile phase; performing Sephadex G-150 gel filtration column chromatography; collecting the eluate using deionized water as the mobile phase; combining peaks with the same elution peak; concentrating under reduced pressure; and freeze-drying to obtain carob polysaccharides.
  • carob pods are ground into a fine powder of 80-300 mesh to break down the cellular structure of the pods, which is favorable for the release of intracellular material while increasing the contact area between the pod powder and the extract, thus increasing the extraction rate.
  • the grinding can be performed using ultrafine grinding technology.
  • the weight of ethanol used for degreasing is 2 to 5 times the weight of the deseeded carob pods.
  • the extraction temperature is 40-50°C, for example 45°C. This temperature range is advantageous for sufficient elution of carob polysaccharides.
  • extractions are performed 2-4 times, with each extraction lasting 1-5 hours.
  • the filtrate is centrifuged at 5000 rpm for 10 minutes by ultracentrifugation, and the supernatant is combined.
  • the supernatant is concentrated under reduced pressure at 60°C and 100 Pa until it becomes a viscous concentrated liquid.
  • the carob pods are dried pods of the carob plant (Latin name: Ceratonia siliqua Linn.), which is a plant of the genus Carob in the family Fabaceae.
  • mice were placed in a large beaker containing concentrated ammonia water to induce coughing, and the number of coughs was measured in groups given different concentrations of carob polysaccharide Hocacy by force, as well as in the positive and blank control groups. Furthermore, the amount of phenol red secreted in the mouse trachea was analyzed, demonstrating that the carob polysaccharide Hocacy of the embodiment of the present invention has a good antitussive and expectorant effect. In an experiment examining the ameliorative effect on the reduction of T cells in genetically modified zebrafish that emit red fluorescence, it was shown that the carob polysaccharide Hocacy of the embodiment of the present invention has an immune-boosting effect.
  • 1 is a chromatogram of the molecular weight of the carob polysaccharide Hocacy according to an embodiment of the present invention.
  • 1 is an infrared absorption spectrum of the carob polysaccharide Hocacy according to an embodiment of the present invention.
  • 1 is a total ion chromatogram by GC-MS of the carob polysaccharide Hocacy according to an embodiment of the present invention.
  • 1 is an HPLC chromatogram of carob polysaccharide Hocacy.
  • 1 is an identification spectrum of fragment ions of galactose as a monosaccharide component of the carob polysaccharide Hocacy.
  • 1 is an identification spectrum of fragment ions of galactose as a monosaccharide component of the carob polysaccharide Hocacy.
  • 1 is an identification spectrum of fragment ions of galactose as a monosaccharide component of the carob polysaccharide Hocacy.
  • 1 is an identification spectrum of the fragment ions of glucose as a monosaccharide component of the carob polysaccharide Hocacy.
  • 1 is an identification spectrum of fragment ions of galactose as a monosaccharide component of the carob polysaccharide Hocacy.
  • 1 is an identification spectrum of the fragment ions of glucose as a monosaccharide component of the carob polysaccharide Hocacy.
  • FIG. 1 is an identification spectrum of the fragment ions of glucose as a monosaccharide component of the carob polysaccharide Hocacy. 1 is an infrared absorption spectrum of the carob polysaccharide Hocacy of an embodiment of the present invention after methylation.
  • FIG. 1 is a schematic diagram showing the effect of carob polysaccharide Hocacy on the latency period of cough in mice.
  • FIG. 1 is a schematic diagram showing the effect of carob polysaccharide Hocacy on the number of coughs within 2 minutes in mice.
  • FIG. 1 is a schematic diagram showing the effect of carob polysaccharide Hocacy on the amount of phenol red secreted in mice.
  • FIG. 1 is a schematic diagram showing the effect of carob polysaccharide Hocacy on daily body weight changes in mice.
  • FIG. 13 is a comparison diagram of the fluorescence intensity of T cells in zebrafish from carob polysaccharide Hocacy and a model control group.
  • the carob pods described below are dried pods of the carob plant (Latin name: Ceratonia siliqua Linn.), which is a plant of the genus Carob in the family Fabaceae, and were provided by SHE NZHEN AIMIN MEDICINE TECHNOLOGY CO., LTD.
  • the macroporous adsorption resin D101, Sephadex G-150, Sephadex G-100, and DEAE-52 cellulose used below were all purchased commercially.
  • Example 1 Extraction and separation of carob polysaccharide Hocacy
  • 8 kg of seedless carob pods were taken and crushed, defatted with 3 times the weight of 95% ethanol, and dried.
  • Deionized water was added at a solid-liquid ratio of 1:2.3 (g/mL), and extracted 4 times, each time for 2 hours, at an extraction temperature of 45°C, and the extracts were combined.
  • the extract was centrifuged (5000 rpm, 10 min), and the supernatant was concentrated under reduced pressure at 60°C and 100 Pa until it became viscous. Ethanol was slowly added to the obtained concentrate so that the mass fraction of ethanol was 60%, centrifuged, and the precipitate was collected to obtain crude polysaccharides.
  • the crude polysaccharides were dispersed in 20 times the weight of purified water, and proteins were removed by the Sevage method, which was repeated 6 times.
  • the polysaccharide from which the proteins had been removed was dispersed in 10 times its weight of water, and adsorbed using macroporous adsorption resin D101.
  • Elution was performed using two column volumes of distilled water.
  • the mobile phase components were collected and subjected to DEAE-52 cellulose column chromatography. Elution was performed using distilled water in an amount twice the column volume.
  • Sephadex G-100 gel filtration column chromatography and Sephadex G-150 gel filtration column chromatography were performed in this order.
  • the eluates were collected using deionized water as the mobile phase.
  • the eluates with the same elution peaks were combined, concentrated under reduced pressure, and freeze-dried to obtain carob polysaccharide Hocacy (polysaccharide content: 93%).
  • the method for measuring the content of carob polysaccharide Hocacy in this example is as follows.
  • x is the polysaccharide concentration (mg/mL) and y is the absorbance.
  • Polysaccharide content (%) (mass concentration ( ⁇ g/mL) x dilution factor x volume (mL)) / (dry weight of polysaccharide (g) x 1000)
  • Example 1 Structural analysis of carob polysaccharide Hocacy (prepared in Example 1) (1) Molecular weight measurement of carob polysaccharide Hocacy 10.0 mg of carob polysaccharide Hocacy was accurately weighed to prepare a solution with a concentration of 2 mg/mL. Detection was performed using gel permeation chromatography (GPC), a differential refractive index detector, and a light scattering detector, with a mobile phase of 0.1 mol/L NaNO3 solution and a flow rate of 0.7 mL/min.
  • GPC gel permeation chromatography
  • FIG. 1 The results of measuring the molecular weight of the carob polysaccharide Hocacy are shown in Figure 1 (GPC). Analysis and calculation revealed that the average molecular weight was 4.895 x 106, and the width of the molecular weight distribution (Mw/Mn) was 1.574, proving that the distribution was narrow and that the purity of the carob polysaccharide Hocacy was high.
  • the horizontal axis shows the retention time
  • the vertical axis shows the refractive index
  • GPC chromatography means GPC chromatography
  • Refractive Index (mV) means the refractive index
  • Right Angle Light Scattering (mV) means right angle light scattering
  • Low Angle Light Scattering (mV) means low angle light scattering.
  • the infrared absorption spectrum of the carob polysaccharide Hocacy is shown in Figure 2.
  • an absorption peak due to the stretching vibration of -OH is shown at 3385 cm -1
  • an absorption peak due to the stretching vibration of -CH2 is shown at 2927 cm -1
  • there is a strong absorption peak at 1020 cm -1 which indicates an absorption peak due to the stretching vibration of C-O.
  • the vertical axis of Figure 2 is the transmittance (%).
  • the carob polysaccharide Hocacy was hydrolyzed and acetylated, and then identified by GC-MS.
  • the total ion chromatogram is shown in Figure 3.
  • the horizontal axis indicates the time at which the peak was detected, and the vertical axis indicates the relative abundance, which is the relative intensity.
  • the HPLC chromatogram is shown in Figure 4. The horizontal axis of Figure 4 is time, the vertical axis Absorbance (mAU) is absorbance, solvent is the solvent peak, PMP is the derivatization reagent (1-phenyl-3-methyl-5-pyrazolone), Gal is galactose, and Glu is glucose.
  • Example 2 Experiment on the effect of carob polysaccharide Hocacy (prepared in Example 1) on airway function in mice induced and stimulated to cough with aqueous ammonia. Mice were placed in a large beaker containing concentrated aqueous ammonia to induce coughing.
  • mice The effect of drug administration on the number of coughs in mice The experiment was divided into 5 groups, each group being as follows: Group 1 was a blank group administered with saline; Group 2 was a positive group (60 mg/kg) administered with benproperine phosphate (Tonghua Changcheng Pharmaceutical Co., Ltd., Approval No.: H22020149); Groups 3 to 5 were administered with low (100 mg/kg), medium (200 mg/kg) and high (400 mg/kg) doses of carob polysaccharide Hocacy; and were administered orally for 14 days.
  • Group 1 was a blank group administered with saline
  • Group 2 was a positive group (60 mg/kg) administered with benproperine phosphate (Tonghua Changcheng Pharmaceutical Co., Ltd., Approval No.: H22020149)
  • Groups 3 to 5 were administered with low (100 mg/kg), medium (200 mg/kg) and high (400 mg/kg) doses of carob polysaccharide
  • FIG. 13 shows a schematic diagram of the effect of carob polysaccharide Hocacy on the latency period of mouse cough
  • Figure 14 shows a schematic diagram of the number of coughs within 2 minutes.
  • mice were administered for two consecutive days, and on the 16th day, 30 minutes after the last administration, 0.5 mL/mouse was intraperitoneally injected with 5% phenol red saline, and 30 minutes after the injection, the mice were euthanized by cervical dislocation.
  • the trachea from the thyroid cartilage to the bronchus was cut, and ultrasonically washed for 10 minutes with 3 mL of saline and 0.1 mL of 1 moL/L sodium hydroxide solution, so that the phenol red in the mouse trachea was completely released.
  • mice administered the carob polysaccharide Hocacy lost less weight than the positive groups (ammonium chloride, benproperine phosphate), and showed a steady tendency to gain weight, second only to the blank group.
  • the weight of the mice in the two positive groups hardly changed, and the difference was significant compared to the polysaccharide group, showing that they were lighter in weight. This proves that the carob pod polysaccharide has no toxicity or side effects and is well suited for use.
  • the weight changes are shown in Figure 16.
  • carob polysaccharide Hocacy has a significant antitussive and expectorant effect without any significant toxicity or side effects, and has laid a certain foundation for the development of new drugs using carob pod polysaccharides.
  • Example 3 Effect of carob polysaccharide Hocacy (prepared in Example 1) on the reduction of T cells in zebrafish Zebrafish genetically modified to emit red fluorescence in T cells were bred by natural mating. All 3-day-old (dpf) zebrafish were reared in fish culture water at 28°C (water quality: reverse osmosis water with 200 mg of fast-dissolving sea salt added per liter, conductivity 450-550 ⁇ S/cm, pH 6.5-8.5, hardness 50-100 mg/L CaCO3). The zebrafish were bred and provided by the fish culture center of Beijing Huante Chi Fish Youken Biotechnology Co., Ltd.
  • 3dpf zebrafish genetically modified to emit red fluorescence in T cells were randomly selected into 6-well plates, and 30 zebrafish were treated in each well (experimental group).
  • 20.0 mg/mL Hocacy was prepared in standard dilution water (concentration shown in Table 4), and the positive control was Bailing Capsule (Hangzhou Zhongmei Huadong Pharmaceutical Co., Ltd., Approval No.: 2111064) with a concentration of 15.0 ⁇ g/mL.
  • a normal control group and a model control group were simultaneously placed, and the volume of each well was 3 mL.
  • zebrafish immunodeficiency model To construct a zebrafish immunodeficiency model, vinorelbine tartrate injection was intravenously injected into each experimental group except for the normal control group. The zebrafish were treated at 28°C until 5 dpf. 10 zebrafish were randomly selected from each experimental group, and were placed under a fluorescent microscope to take pictures. The data was analyzed and collected using NIS-Elements D3.20 high-end image processing software to analyze the fluorescence intensity of zebrafish T cells, and the statistical analysis results of the indicators were used to evaluate the ameliorative effect of Hocacy on T cell depletion. The statistical processing results are expressed as mean ⁇ SE. Statistical analysis was performed using SPSS 26.0 software, and p ⁇ 0.05 means that there is a statistically significant difference.

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Abstract

イナゴマメ多糖類はガラクトースおよびグルコースの２種類の単糖類からなり、ガラクトースとグルコースとのモル比は（８８～９２）：（０．８～１．２）であり、イナゴマメ多糖類は、グリコシド結合（１→４）－Ｇｌｕ、（１→３，４，６）、（１→３）－Ｇａｌ、（３→６）－Ｇａｌ、（２→４，６）－Ｇａｌ、（２→６）－Ｇａｌ、（１→）－Ｇａｌにより結合して組み合わせてなるものである。イナゴマメ多糖類は、気道を改善し、咳を止め、痰を減らすことができ、免疫力を向上させることもできる。

Description

咳を止め、痰を減らし、免疫力を向上させるイナゴマメ多糖類およびその調製方法と使用
　本発明は、医薬および保健食品の分野に関するものであり、具体的には、咳を止め、痰を減らし、免疫力を向上させるイナゴマメ多糖類およびその調製方法と使用に関するものである。
　イナゴマメは、地中海沿岸、アメリカのカリフォルニア州およびオーストラリアなどの各地に分布し、主に中国の広西、四川、雲南、広東などの各地に植えられている。イナゴマメは、カロリーが低く、脂肪を含まず、天然の多糖類、複数種のビタミン、タンパク質、微量元素を豊富に含み、現在、イナゴマメ抽出物は主に食品香料、天然食品増粘剤および安定剤の分野で使用されている。イナゴマメは栄養価が非常に高いだけでなく、薬効も極めて高い。イナゴマメの莢から作られたシロップは、風邪、咳嗽および喉の痛みに良好な緩和効果を果たすことができる。イナゴマメの莢の主成分は糖類である。
　呼吸器疾患は一般的な疾患の１つであり、一般的には、咳嗽、喀痰、さらには喀血などの症状があり、生体の免疫力の低下を引き起こすことが多々ある。現在市販されている鎮咳去痰薬にはさまざまな種類がある。西洋薬による治療は、病気を根本的に治癒することができず、そして、薬剤耐性が生じやすく、副作用も大きい。漢方薬製品は、治療効果が遅く、臭いがきつい。一方、味や香りが良い製品は、治療効果を兼ねることが難しい。したがって、効き目が早く、治癒効果が高く、同時に免疫力を向上できる製品を開発することが非常に重要である。
　本発明の実施例は、気道を改善し、咳を止め、痰を減らすことができ、さらに免疫力を向上させることもできるイナゴマメ多糖類を提供する。本発明の実施例のイナゴマメ多糖類は、適用範囲が広く、治療過程が短く、効き目が早く、毒性および副作用がない。
　本発明の一態様によれば、ガラクトースおよびグルコースの２種類の単糖類からなり、ガラクトースとグルコースとのモル比が（８８～９２）：（０．８～１．２）であり、グリコシド結合（１→４）－Ｇｌｕ、（１→３，４，６）、（１→３）－Ｇａｌ、（３→６）－Ｇａｌ、（２→４，６）－Ｇａｌ、（２→６）－Ｇａｌ、（１→）－Ｇａｌにより結合して組み合わせてなるイナゴマメ多糖類を提供する。
　本発明の一部の実施例において、前記イナゴマメ多糖類において、ガラクトースとグルコースとのモル比は、８９．６６６：１．０６８である。
　本明細書において、Ｇｌｕはグルコースを示し、Ｇａｌはガラクトースを示す。
　本発明の一部の実施例において、前記イナゴマメ多糖類の分子量は（１～６）×１０６であり、（４．８～５）×１０６であってもよい。
　本発明の一部の実施例において、前記イナゴマメ多糖類の分子量は、（１～２）×１０６である。
　本発明の一部の実施例において、前記イナゴマメ多糖類の分子量は、（２～３）×１０６である。
　本発明の一部の実施例において、前記イナゴマメ多糖類の分子量は、（３～４）×１０６である。
　本発明の一部の実施例において、前記イナゴマメ多糖類の平均分子量は、（４．８～５）×１０６である。
　本発明の一部の実施例において、前記イナゴマメ多糖類の分子量分布の幅（Ｍｗ／Ｍｎ）は１．５～１．６であり、１．５７４であってもよい。
　本発明の一部の実施例において、前記イナゴマメ多糖類は、イナゴマメの莢から分離されたものである。
　本発明の一部の実施例において、前記イナゴマメ多糖類は、少なくとも咳を止め、痰を減らし、免疫力を向上させる作用を有する。
　本発明の別の態様によれば、本発明に記載のイナゴマメ多糖類の医薬または保健品としての使用を提供する。
　本発明の別の態様によれば、咳を止め、痰を減らすための医薬の調製における本発明に記載のイナゴマメ多糖類の使用を提供する。
　本発明の別の態様によれば、免疫力を向上させるための医薬の調製における本発明に記載のイナゴマメ多糖類の使用を提供する。
　本発明の別の態様によれば、さらに、疾患を治療する有効量の上記イナゴマメ多糖類を提供する。
　ここで、前記疾患は、咳嗽、喀痰、免疫力低下を含む。
　本発明の別の態様によれば、本発明に記載のイナゴマメ多糖類を含み、さらに薬学的に許容される担体を含む医薬組成物を提供する。
　本発明の別の態様によれば、本発明に記載のイナゴマメ多糖類を含み、さらに食品主原料および食品副原料を含む食品を提供する。
　本発明の一部の実施例において、前記食品は、機能性食品、栄養補助食品を含む。
　本発明の一部の実施例において、前記食品は、飲料、キャンディー、シロップ、甘味料、香料などのうちの１種または複数種であってもよい。
　本発明の別の態様によれば、さらに、経口経路または非経口経路により、需要のある被験者または患者に、有効量の上記イナゴマメ多糖類、上記医薬組成物もしくは上記食品を投与することを含む、疾患の治療方法を提供する。ここで、前記疾患は、咳嗽、喀痰、免疫力低下を含む。
　本発明の別の態様によれば、さらに、イナゴマメ多糖類の調製方法を提供し、当該方法により本発明に記載のイナゴマメ多糖類を調製することができ、その純度は９３％以上に達することができる。
　イナゴマメ多糖類の調製方法であって、粉砕された種子抜きのイナゴマメの莢を取り、９０～９５％のエタノール（１～５倍の重量）を用いて脱脂を行い、脱脂後の微粉末を乾燥させること、水を加えて、抽出を行うこと、抽出液を遠心分離し、上清液を濃縮して、エタノールの質量分率が５５～６０％となるようにエタノールを加え、遠心分離して沈殿物を収集すること、および、得られた沈殿物を水で分散させ、Ｓｅｖａｇｅ法によりタンパク質を除去した後、マクロポーラス吸着樹脂Ｄ１０１を用いて吸着を行い、蒸留水で溶出して移動相成分を収集し、ＤＥＡＥ－５２セルロースカラムクロマトグラフィーを行い、蒸留水で溶出を行い、Ｓｅｐｈａｄｅｘ　Ｇ－１００ゲル濾過カラムクロマトグラフィーを行い、移動相を脱イオン水として溶出液を収集し、さらにＳｅｐｈａｄｅｘ　Ｇ－１５０ゲル濾過カラムクロマトグラフィーを行い、移動相を脱イオン水として溶出液を収集し、同じ溶出ピークのものを合併して、減圧濃縮を行い、凍結乾燥させ、イナゴマメ多糖類を得ることを含む、イナゴマメ多糖類の調製方法。
　本発明の一部の実施例において、イナゴマメの莢を８０～３００メッシュの微粉末に粉砕して莢の細胞構造を壊し、これは細胞内物質の溶出に有利でありながら、莢粉末と抽出液との接触面積を大きくし、抽出率を高める。本発明の一部の実施例において、超微粉砕技術により、粉砕を行うことができる。
　本発明の一部の実施例において、脱脂に使用されるエタノールの重量は、種子抜きのイナゴマメの莢の重量の２～５倍である。
　本発明の一部の実施例において、抽出温度は４０～５０℃であり、例えば、４５℃である。当該温度範囲内にあれば、イナゴマメ多糖類を十分に溶出させるのに有利である。
　本発明の一部の実施例において、抽出を２～４回行い、１回あたりの抽出時間は１～５時間である。
　本発明の一部の実施例において、超遠心分離により、ろ液（抽出液）を５０００ｒｐｍで１０分間遠心分離し、上清液を合併する。
　本発明の一部の実施例において、上清液を６０℃、１００Ｐａの条件下において、粘稠な濃縮液になるまで減圧濃縮する。
　本発明の一部の実施例において、前記イナゴマメの莢は、マメ科イナゴマメ属の植物であるイナゴマメ（ラテン名：Ｃｅｒａｔｏｎｉａ　ｓｉｌｉｑｕａ　Ｌｉｎｎ．）の乾燥された莢である。
　実験において、マウスを濃アンモニア水が入った大型ビーカーに入れ、マウスの咳を誘発し、異なる濃度のイナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙの強制経口投与群、陽性群および空白対照群の咳の回数を測定して、さらに、マウスの気管におけるフェノールレッドの分泌量を分析したところ、本発明の実施例のイナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙが良好な鎮咳去痰効果を有することが示された。赤色蛍光を発する遺伝子組み換えゼブラフィッシュのＴ細胞の減少に対する改善効果を考察する実験では、本発明の実施例のイナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙが免疫力を高める効果を有することが示された。
本発明の実施例のイナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙの分子量のクロマトグラムである。 本発明の実施例のイナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙの赤外吸収スペクトルである。 本発明の実施例のイナゴマメ多糖類ＨｏｃａｃｙのＧＣ－ＭＳによるトータルイオンクロマトグラムである。 イナゴマメ多糖類ＨｏｃａｃｙのＨＰＬＣクロマトグラムである。 イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙの単糖類組成としてのガラクトースのフラグメントイオンの同定スペクトルである。 イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙの単糖類組成としてのガラクトースのフラグメントイオンの同定スペクトルである。 イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙの単糖類組成としてのガラクトースのフラグメントイオンの同定スペクトルである。 イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙの単糖類組成としてのグルコースのフラグメントイオンの同定スペクトルである。 イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙの単糖類組成としてのガラクトースのフラグメントイオンの同定スペクトルである。 イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙの単糖類組成としてのグルコースのフラグメントイオンの同定スペクトルである。 イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙの単糖類組成としてのグルコースのフラグメントイオンの同定スペクトルである。 本発明の実施例のイナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙのメチル化後の赤外吸収スペクトルである。 イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙの、マウスの咳の潜伏期に対する影響を示す模式図である。 イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙの、マウスの２分以内の咳の回数に対する影響を示す模式図である。 イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙの、マウスのフェノールレッド分泌量に対する影響を示す模式図である。 イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙの、マウスの毎日の体重変化に対する影響を示す模式図である。 イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙおよびモデル対照群のゼブラフィッシュのＴ細胞の蛍光強度の比較図である。
　以下、実施例を組み合わせて発明をさらに説明するが、本発明の範囲はこれらに制限されない。
　以下に記載のイナゴマメの莢は、マメ科イナゴマメ属の植物であるイナゴマメ（ラテン名：Ｃｅｒａｔｏｎｉａ　ｓｉｌｉｑｕａ　Ｌｉｎｎ．）の乾燥された莢であり、ＳＨＥ　ＮＺＨＥＮ　ＡＩＭＩＮ　ＭＥＤＩＣＩＮＥ　ＴＥＣＨＮＯＬＯＧＹ　ＣＯ．，ＬＴＤ．が提供したものである。
　以下において使用されるマクロポーラス吸着樹脂Ｄ１０１、Ｓｅｐｈａｄｅｘ　Ｇ－１５０、Ｓｅｐｈａｄｅｘ　Ｇ－１００、およびＤＥＡＥ－５２セルロースは、いずれも市販で購入したものである。
［実施例１：イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙの抽出分離］
　種子抜きのイナゴマメの莢８ｋｇを取って粉砕し、重量が３倍である９５％のエタノールを用いて脱脂を行い、乾燥させた。固液比１：２．３（ｇ／ｍＬ）で脱イオン水を加え、４回抽出し、１回当たり２時間抽出して、抽出温度を４５℃とし、抽出液を合併した。抽出液を遠心分離（５０００ｒｐｍ、１０ｍｉｎ）し、上清液を６０℃、１００Ｐａの条件下において粘稠になるまで減圧濃縮し、エタノールの質量分率が６０％になるように、得られた濃縮液にエタノールをゆっくり加え、遠心分離し、沈殿物を収集して、粗多糖類を得た。粗多糖類を２０倍の重量の精製水で分散させ、Ｓｅｖａｇｅ法によりタンパク質を除去し、これを６回繰り返した。タンパク質が除去された多糖類を１０倍の重量の水で分散させ、マクロポーラス吸着樹脂Ｄ１０１を用いて吸着を行い、蒸留水により２個のカラムの体積で溶出を行い、移動相成分を収集し、ＤＥＡＥ－５２セルロースカラムクロマトグラフィーを行い、カラム体積の２倍の蒸留水を用いて溶出を行い、Ｓｅｐｈａｄｅｘ　Ｇ－１００ゲル濾過カラムクロマトグラフィーおよびＳｅｐｈａｄｅｘ　Ｇ－１５０ゲル濾過カラムクロマトグラフィーを順に行い、移動相を脱イオン水として溶出液を収集し、同じ溶出ピークのものを合併して、減圧濃縮を行い、凍結乾燥させ、イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙ（多糖類の含有量：９３％）を得た。
　本実施例のイナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙの含有量の測定方法は以下のとおりである。
　イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙ　９．６ｍｇを精確に計量し、純水で溶解して、濃度０．２５ｍｇ／ｍＬの溶液を調製した。被験溶液１．０ｍＬについて、フェノール硫酸法によりグルコースの標準曲線を引き、回帰式により被検溶液における多糖類の質量濃度を測定した。
　グルコースの標準曲線は、ｙ＝１．３４２１ｘ＋０．２２５５（Ｒ２＝０．９９９２）である。
　ここで、ｘは多糖類の濃度（ｍｇ／ｍＬ）であり、ｙは吸光度である。
　多糖類の含有量（％）＝（質量濃度（μｇ／ｍＬ）×希釈倍数×体積（ｍＬ））／（多糖類の乾燥重量（ｇ）×１０００）
［実験例１］
　イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙ（実施例１で調製したもの）の構造解析
（１）イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙの分子量測定
　イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙ　１０．０ｍｇを精確に計量し、濃度２ｍｇ／ｍＬの溶液を調製した。ゲル浸透クロマトグラフィー（ＧＰＣ）、示差屈折率検出器および光散乱検出器で検出を行い、移動相を０．１ｍｏｌ／ＬのＮａＮＯ３溶液とし、流速を０．７ｍＬ／ｍｉｎとした。
　イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙの分子量の測定結果は図１が示すとおりである（ＧＰＣ）。分析・計算したところ、平均分子量は４．８９５×１０６であり、分子量分布の幅（Ｍｗ／Ｍｎ）は１．５７４であって、分布が狭く、イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙの純度が高いことが証明された。図１において、横軸は保持時間、縦軸は屈折率を示し、ＧＰＣｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙはＧＰＣクロマトグラフィー、Ｒｅｆｒａｃｔｉｖｅ　Ｉｎｄｅｘ（ｍＶ）は屈折率、Ｒｉｇｈｔ　Ａｎｇｌｅ　Ｌｉｇｈｔ　Ｓｃａｔｔｅｒｉｎｇ（ｍＶ）は直角光散乱、Ｌｏｗ　Ａｎｇｌｅ　Ｌｉｇｈｔ　Ｓｃａｔｔｅｒｉｎｇ（ｍＶ）は低角度光散乱を示す。
（２）イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙの赤外吸収スペクトル（ＩＲ）分析
　イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙサンプル５ｍｇを計量し、乾燥ＫＢｒを適量加えて研磨し、均一かつ透明な錠剤を作製して、４０００ｃｍ－１～４００ｃｍ－１の範囲において、フーリエ変換赤外分光光度計を用いて分析を行った。
　イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙの赤外吸収スペクトルは図２が示すとおりである。図２によれば、３３８５ｃｍ－１に－ＯＨの伸縮振動による吸収ピーク、２９２７ｃｍ－１に－ＣＨ２の伸縮振動による吸収ピークが示され、１０２０ｃｍ－１に強い吸収ピークがあり、Ｃ－Ｏの伸縮振動による吸収ピークが示された。図２の縦軸は透過率（％）である。
（３）イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙの単糖類組成の分析
　イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙサンプル５．５ｍｇを計量し、２ｍｏｌ／Ｌのトリフルオロ酢酸（ＴＦＡ）を１ｍＬ加え、窒素ガスを充填して密閉し、１１０℃で１２０分間加熱して、加水分解させた。分解されたサンプルを溶解した後、ＮａＢＨ４９０ｍｇを加えて、還元反応を４時間行った。還元されたサンプルをオーブンに入れて乾燥させ、無水酢酸５ｍＬを加え、１１０℃でアセチル化を行った。最終のアセチル化単糖類を酢酸エチルで溶解し、メンブレンを通過させ、ＧＣ－ＭＳによって構造を同定した。
　イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙを加水分解し、アセチル化した後、ＧＣ－ＭＳによって同定し、トータルイオンクロマトグラムは図３が示すとおりである。図３において、横軸のＴｉｍｅはピーク検出時間、縦軸のＲｅｌａｔｉｖｅ　ａｂｕｎｄａｎｃｅは相対強度を示す。
　ＨＰＬＣ法、スペクトルライブラリ分析によれば、イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙの単糖類組成（モル比）は、ガラクトース：グルコース＝８９．６６６：１．０６８であり、イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙ中のフルクトースの存在は、ＨＰＬＣ－ＥＬＳＤ法では検出されていない。ＨＰＬＣクロマトグラムは図４が示すとおりである。図４の横軸は時間、縦軸のＡｂｓｏｒｂａｎｃｅ（ｍＡＵ）は吸収度、ｓｏｌｖｅｎｔは溶剤ピーク、ＰＭＰは誘導体化試薬（１－フェニル－３－メチル－５－ピラゾロン）、Ｇａｌはガラクトース、Ｇｌｕはグルコースを示す。
　スペクトルライブラリで分析したところ、以下の結論を得た。
　イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙの単糖類組成の分析結果は、図５～図１１が示すとおりである。
　図５はイナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙの単糖類組成としてのガラクトースのフラグメントイオンの同定スペクトルであり、ここで、ｔ＝１７．０３である。図６はイナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙの単糖類組成としてのガラクトースのフラグメントイオンの同定スペクトルであり、ここで、ｔ＝１８．７８である。図７はイナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙの単糖類組成としてのガラクトースのフラグメントイオンの同定スペクトルであり、ここで、ｔ＝２０．８８である。図８はイナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙの単糖類組成としてのグルコースのフラグメントイオンの同定スペクトルであり、ここで、ｔ＝３０．２１である。図９はイナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙの単糖類組成としてのガラクトースのフラグメントイオンの同定スペクトルであり、ここで、ｔ＝３０．５１である。図１０はイナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙの単糖類組成としてのグルコースのフラグメントイオンの同定スペクトルであり、ここで、ｔ＝３８．８３である。図１１はイナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙの単糖類組成としてのグルコースのフラグメントイオン（２－ｍｅｔｈｙｌ－ｇｌｕｃｏｓｅ（２－メチルグルコース））の同定スペクトルであり、ここで、ｔ＝６１．０４である。
　図５において、（ｍａｉｎｌｉｂ）１，５－Ａｎｈｙｄｒｏ－３－Ｏ－ａｃｅｔｙｌ－２，４，６－ｔｒｉ－Ｏ－ｍｅｔｈｙｌ－Ｄ－Ｇａｌａｃｔｉｔｏｌは、（メインライブラリ）１，５－アンヒドロ－３－Ｏ－アセチル－２，４，６－トリ－Ｏ－メチル－Ｄ－ガラクトースを示す。図６において、（ｍａｉｎｌｉｂ）Ｄ－Ｇａｌａｃｔｉｔｏｌ，３－６－ａｎｈｙｄｒｏ－１，２，４，５－ｔｅｔｒａ－Ｏ－ｍｅｔｈｙｌ－は、（メインライブラリ）３－６－アンヒドロ－１，２，４，５－テトラ－Ｏ－メチル－Ｄ－ガラクトースを示す。図７において、（ｍａｉｎｌｉｂ）Ｇａｌａｃｔｉｔｏｌ，１，３，５－ｔｒｉ－Ｏ－ｍｅｔｈｙｌ－，ｔｒｉａｃｅｔａｔｅは、（メインライブラリ）１，３，５－トリ－Ｏ－メチルガラクトース，トリアセテートを示す。図８において、（ｍａｉｎｌｉｂ）Ｄ－Ｇｌｕｃｏｓｅ，２，３，４，６－ｔｅｔｒａ－Ｏ－ｍｅｔｈｙｌ－は、（メインライブラリ）２，３，４，６－テトラ－Ｏ－メチル－Ｄ－グルコースを示す。図９において、（ｍａｉｎｌｉｂ）Ｄ－Ｇａｌａｃｔｉｔｏｌ，１，３，４，５－ｔｅｔｒａ－Ｏ－ｍｅｔｈｙｌ－，ｄｉａｃｅｔａｔｅは、（メインライブラリ）１，３，４，５－テトラ－Ｏ－メチル－Ｄ－ガラクトース，ジアセテートを示す。図１０において、（ｍａｉｎｌｉｂ）５－Ｏ－Ａｃｅｔｙｌ－２，３，４，６－ｔｅｔｒａ－Ｏ－ｍｅｔｈｙｌ－ｇａｌａｃｔｏｎｉｔｒｉｌｅは、（メインライブラリ）２，３，４，６－テトラ－Ｏ－メチル－ガラクトニトリルを示す。図１１において、（ｍａｉｎｌｉｂ）２－ｍｅｔｈｙｌ－Ｄ－ｇｌｕｃｏｓｅは、（メインライブラリ）２－メチル－Ｄ－グルコースを示す。
（４）イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙの単糖類結合位置の測定
　イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙサンプル２０ｍｇを計量し、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）６ｍＬに溶解して、多糖類サンプルが完全に溶解するまで、４０℃で１５時間磁気攪拌した。イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙに対してメチル化、加水分解およびアセチル化処理を行った後、ＧＣ－ＭＳによりトータルイオンクロマトグラムを得、それは図３が示すとおりである。図３において、横軸のＴｉｍｅはピーク検出時間、縦軸のＲｅｌａｔ　ｉｖｅ　ａｂｕｎｄａｎｃｅは相対強度を示す。イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙのメチル化後の赤外吸収スペクトルは図１２が示すとおりである。
　マススペクトルのフラグメントイオンを分析したところ、イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙがグリコシド結合として、（１→４）－Ｇｌｕ、（１→３，４，６）、（１→３）－Ｇａｌ、（３→６）－Ｇａｌ、（２→４，６）－Ｇａｌ、（２→６）－Ｇａｌ、（１→）－Ｇａｌを有することが明らかになり、分析結果は表１が示すとおりである。ここで、Ｇｌｕはグルコース、Ｇａｌはガラクトースを示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
［実験例２］
　イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙ（実施例１で調製したもの）の、アンモニア水によって咳をするように誘発・刺激されたマウスの気道機能に対する影響に関する実験
　マウスを濃アンモニア水が入った大型ビーカーに入れ、マウスの咳を誘発した。
１、マウスの咳の回数に対する薬物投与の影響
　実験を５群に分け、各群を以下のとおりにした。即ち、第１群を生理食塩水を投与する空白群とし；第２群をベンプロペリンリン酸塩（Ｔｏｎｇｈｕａ　Ｃｈａｎｇｃｈｅｎｇ　Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ　Ｃｏ．，Ｌｔｄ．、承認番号：Ｈ２２０２０１４９）を投与する陽性群（６０ｍｇ／ｋｇ）とし；第３～５群を、イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙを低用量（１００ｍｇ／ｋｇ）、中用量（２００ｍｇ／ｋｇ）および高用量（４００ｍｇ／ｋｇ）で投与する投与群とし；１４日間強制経口投与した。最後の強制経口投与が完了した１時間後に、１０００ｍＬの大型ビーカーを逆さに実験台に置き、噴霧器で２５％の濃アンモニア水を１０秒間噴霧し続けた後、マウスを大型ビーカーに入れ、時間の計測を始め、腹筋の収縮、口を大きくした呼吸、および咳の音を指標とし、マウスがビーカーにおいて初めて咳をした時までの時間（潜伏期）および２分以内の咳の回数を記録し、その結果は表２が示すとおりである。結果によって、アンモニア水で刺激し、咳を誘発した後、各群のマウスの咳の度合いが異なり、高・中・低用量のイナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙがいずれもアンモニア水によるマウスの咳の回数を顕著に低減し、潜伏期を延長でき、空白群に比べて、顕著もしくは非常に顕著な効果を示すこと（＊＊＊＊ｐ＜０．０００１、＊＊＊ｐ＜０．００１、＊＊ｐ＜０．０５）が示され、イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙが、アンモニア水によるマウスの咳に対して、ある程度の咳止めの作用を有し、用量依存性を呈することが示されている。高用量群（４００ｍｇ／ｋｇ）の咳止め効果は最も顕著であり、高・中用量群の初回の咳までの時間はいずれも陽性群より顕著に延長されている（ｐ＜０．０１、ｐ＜０．０５）。
　高用量群の２分間の咳の回数は、陽性群と著しく異なっている（ｐ＜０．０１）。よって、イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙは、強い咳止め効果を有する。イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙの、マウスの咳の潜伏期に対する影響を表す模式図は図１３が示すとおりであり、２分以内の咳の回数を表す模式図は図１４が示すとおりである。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
２、マウスの喀痰に対する薬物投与の影響
　各群のマウスに引き続き２日間投与を行い、１６日目に、最後の投与の３０分後に、０．５ｍＬ／匹で５％のフェノールレッド生理食塩水を腹腔内注射し、注射の３０分後に頸椎脱臼法により安楽死させた。甲状軟骨から気管支にかけての気管を切り取り、マウス気管内のフェノールレッドが完全に放出されるように、生理食塩水３ｍＬと１ｍｏＬ／Ｌの水酸化ナトリウム溶液０．１ｍＬで１０分間超音波洗浄した。溶液の吸光度を５４６ｎｍで測定し、標準曲線の回帰式に従ってフェノールレッドの含有量を計算し、結果は表３が示すとおりである。結果は、イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙがいずれもマウスの気管のフェノールレッド分泌量を顕著に向上させることができ、生理食塩水に比べていずれも有意差があること（＊＊＊ｐ＜０．００１）を示し、イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙがある程度の痰を減らす作用を有することを示している。高用量の場合、陽性群に比べて有意差があり（ｐ＜０．００５）、用量依存性を呈する。イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙのマウスのフェノールレッド分泌量に対する影響を示す模式図は図１５が示すとおりである。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　また、マウスの毎日の体重変化を追跡したところ、イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙ（高、中、低用量）を投与したマウスがいずれも陽性群（塩化アンモニウム、ベンプロペリンリン酸塩）よりも体重減少が少なく、空白群に次いで、体重が着実に増加する傾向があり、これに対して、２つの陽性群のマウスの体重がほとんど変化せず、多糖類群と比べて差異が顕著であり、体重が軽いことを見出し、イナゴマメの莢の多糖類が毒性や副作用を有さず、良好な適性を有することが証明された。体重の変化は、図１６が示すとおりである。
　上述のように、本研究により、イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙが顕著な鎮咳去痰作用を有し、顕著な毒性や副作用がないことが証明され、本研究は、イナゴマメの莢の多糖類の新薬開発に一定の基礎を築いている。
［実験例３］
　イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙ（実施例１で調製したもの）のゼブラフィッシュのＴ細胞の減少に対する改善効果
　Ｔ細胞が赤色蛍光を発するように遺伝子組み換えを行ったゼブラフィッシュは、自然交配により繁殖したものである。受精後３日齢（３ｄｐｆ）のゼブラフィッシュをすべて、２８℃の魚養殖水（水質：１Ｌ当たりの逆浸透水に、２００ｍｇの速溶性海塩を加えたものであり、伝導率が４５０～５５０μＳ／ｃｍであり、ｐＨが６．５～８．５であり、硬度が５０～１００ｍｇ／Ｌ　ＣａＣＯ３である）で飼育し、ゼブラフィッシュは北京環特智魚優検生物科技有限公司の養魚センターが繁殖し、提供したものである。
　３ｄｐｆのＴ細胞が赤色蛍光を発するように遺伝子組み換えを行ったゼブラフィッシュを６ウェルプレートに無作為に選択し、各ウェルで３０匹のゼブラフィッシュを処理した（実験群）。水に溶解して投与する場合、標準希釈水で２０．０ｍｇ／ｍＬのＨｏｃａｃｙ　を調製し（濃度を表４に示す）、陽性対照を濃度１５．０μｇ／ｍＬのＢａｉｌｉｎｇ　Ｃａｐｓｕｌｅ（Ｈａｎｇｚｈｏｕ　Ｚｈｏｎｇｍｅｉ　Ｈｕａｄｏｎｇ　Ｐｈａｒｍａｃ　ｅｕｔｉｃａｌ　Ｃｏ．，Ｌｔｄ．、承認番号：２１１１０６４）とし、正常対照群とモデル対照群を同時に設置し、各ウェルの容量を３ｍＬとした。ゼブラフィッシュ免疫不全モデルを構築するために、ビノレルビン酒石酸塩注射液を正常対照群を除いた各実験群に静脈内注射した。２８℃で５ｄｐｆまで処理し、各実験群から１０匹のゼブラフィッシュを無作為に選択し、それらを蛍光顕微鏡下に置いて写真を撮り、ＮＩＳ－Ｅｌｅｍｅｎｔｓ　Ｄ３．２０高級画像処理ソフトウェアでデータを分析および収集して、ゼブラフィッシュのＴ細胞の蛍光強度を分析し、当該指標の統計分析の結果により、Ｔ細胞の減少に対するＨｏｃａｃｙによる改善効果を評価した。統計処理の結果をｍｅａｎ±ＳＥで表す。ＳＰＳＳ　２６．０ソフトウエアで統計分析を行い、ｐ＜０．０５は統計学的に有意な差があることを意味する。Ｔ細胞の減少に対するＨｏｃａｃｙによる改善効果の実験結果は表５が示すとおりであり、Ｈｏｃａｃｙ処理後のゼブラフィッシュのＴ細胞の蛍光強度とモデル対照群の蛍光強度の比較は図１７が示すとおりであり、結果はＴ細胞の減少に対するＨｏｃａｃｙによる改善効果が良好であり、顕著な用量依存性を呈していないことを表している。従って、イナゴマメ多糖類Ｈｏｃａｃｙは、免疫力を向上させる効果を有する。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
　なお、上記において、一般的な説明及び具体な実施形態で本発明を詳しく説明したが、本発明に基づき、いくつかの補正や改善を行い得ることは当業者にとって自明である。よって、本発明の趣旨から逸脱しない範疇で行われるこれらの補正や改善は、いずれも本発明の保護しようとする範囲に属する。
 
 

Claims (10)

  1. 　ガラクトースおよびグルコースの２種類の単糖類からなり、ガラクトースとグルコースとのモル比が（８８～９２）：（０．８～１．２）であり、グリコシド結合（１→４）－Ｇｌｕ、（１→３，４，６）、（１→３）－Ｇａｌ、（３→６）－Ｇａｌ、（２→４，６）－Ｇａｌ、（２→６）－Ｇａｌ、（１→）－Ｇａｌにより結合して組み合わせてなるものであることを特徴とする、イナゴマメ多糖類。
  2. 　前記イナゴマメ多糖類において、ガラクトースとグルコースとのモル比が、８９．６６６：１．０６８であることを特徴とする、請求項１に記載のイナゴマメ多糖類。
  3. 　前記イナゴマメ多糖類の分子量が（１～６）×１０６であり、（４．８～５）×１０６であってもよく、さらに４．８９５×１０６であってもよく；および／または
    　前記イナゴマメ多糖類の分子量分布の幅（Ｍｗ／Ｍｎ）が１．５～１．６であり、１．５７４であってもよいことを特徴とする、請求項１または２に記載のイナゴマメ多糖類。
  4. 　（ｉ）粉砕された種子抜きのイナゴマメの莢を取り、９０～９５％のエタノールを用いて脱脂を行い、脱脂後の微粉末を乾燥させること、
    　（ｉｉ）水を加えて、抽出を行うこと、
    　抽出液を遠心分離し、上清液を濃縮して、エタノールの質量分率が５５～６０％となるようにエタノールを加え、遠心分離して沈殿物を収集すること、
    　（ｉｉｉ）得られた沈殿物を水で分散させ、Ｓｅｖａｇｅ法によりタンパク質を除去した後、マクロポーラス吸着樹脂Ｄ１０１を用いて吸着を行い、蒸留水で溶出して移動相成分を収集し、ＤＥＡＥ－５２セルロースカラムクロマトグラフィーを行い、蒸留水で溶出を行い、Ｓｅｐｈａｄｅｘ　Ｇ－１００ゲル濾過カラムクロマトグラフィーを行い、移動相を脱イオン水として溶出液を収集し、さらにＳｅｐｈａｄｅｘ　Ｇ－１５０ゲル濾過カラムクロマトグラフィーを行い、移動相を脱イオン水として溶出液を収集し、同じ溶出ピークのものを合併して、減圧濃縮を行い、凍結乾燥させ、イナゴマメ多糖類を得ること、
    を含むことを特徴とする、イナゴマメ多糖類の調製方法。
  5. 　前記イナゴマメの莢を８０～３００メッシュまで粉砕し、および／または
    　抽出時の固液比がｇ／ｍＬで１：（２～５）であり、および／または
    　抽出温度が４０～５０℃であることを特徴とする、
    請求項４に記載のイナゴマメ多糖類の調製方法。
  6. 　請求項４または５に記載の方法により調製されることを特徴とする、イナゴマメ多糖類。
  7. 　請求項１～３、６のいずれか一項に記載のイナゴマメ多糖類の医薬としての使用であって、
    　咳を止め、痰を減らすための医薬および／または免疫力を向上させるための医薬の調製における前記イナゴマメ多糖類の使用であってもよい、前記使用。
  8. 　請求項１～３、６のいずれか一項に記載のイナゴマメ多糖類を含み、さらに薬学的に許容される担体を含むことを特徴とする、医薬組成物。
  9. 　請求項１～３、６のいずれか一項に記載のイナゴマメ多糖類を含み、さらに食品主原料および食品副原料を含むことを特徴とする、食品。
  10. 　経口経路または非経口経路により、需要のある被験者または患者に有効量の請求項１～３、６のいずれか一項に記載のイナゴマメ多糖類、請求項８に記載の医薬組成物、もしくは請求項９に記載の食品を投与し、前記疾患が咳嗽、喀痰、免疫力低下を含んでもよいことを特徴とする、疾患の治療方法。
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