BRPI0318805B1 - Vetor de expressão e processo de produção de planta transgênica - Google Patents

Abstract

polinucleotídeo recombinante, vetor de expressão, processo de produção de planta transgênica, plantas e sementes assim produzidas e construto de exprssão. a invenção refere-se a polipeptídeos de fator de transcrição de plantas, aos polinucleotídeos que codificam os mesmos, aos homólogos de uma variedade de espécie de planta e aos processos de utilização dos polinucleotídeos e dos polipeptídeos para a produção de plantas transgênicas que possuem propriedades vantajosas comparadas a uma planta de referência. a informação das sequências relacionadas a estes polinucleotídeos e polipeptídeos também pode ser utilizada em processos de busca por bioinformática e é também divulgada.

Description

Relatório Descritivo da Patente de Invenção para VETOR DE EXPRESSÃO E PROCESSO DE PRODUÇÃO DE PLANTA TRANSGÊNICA. Pedido dividido do PI 0314389-9 de 18.09.2003.

Campo Técnico [0001] A presente invenção refere-se ao campo da biologia vegetal e às composições e aos métodos para a modificação do fenótipo de uma planta.

Antecedentes da Invenção [0002] As características de uma planta, tais como suas características bioquímicas, de desenvolvimento ou fenotípicas, podem ser controladas através de vários processos celulares. Uma forma importante de manipular tal controle é através de fatores de transcrição - proteínas que influenciam a expressão de um gene ou de conjuntos de genes particulares. As plantas transformadas e transgênicas compreendem células que possuem níveis alterados de pelo menos um fator de transcrição selecionado e podem possuir características vantajosas ou desejáveis. Estratégias para a manipulação das características através da alteração de um teor de fator de transcrição de uma célula vegetal podem, portanto, resultar em plantas e plantas de cultivo com propriedades comercialmente valiosas novas e/ou melhoradas.

[0003] Os fatores de transcrição podem modular a expressão gênica, aumentando ou diminuindo (induzindo ou reprimindo) a taxa de transcrição. Esta modulação resulta em níveis diferenciais de expressão gênica em vários estágios do desenvolvimento, em tecidos e células vegetais diferentes e em resposta a estímulos exógenos (por exemplo, ambientais) e endógenos diferentes ao longo de todo o ciclo

2/1027 de vida do organismo.

[0004] Devido ao fato de que os fatores de transcrição são elementos controladores importantes das vias biológicas, a alteração dos níveis de expressão de um ou mais fatores de transcrição pode alterar todas as vias biológicas em um organismo. Por exemplo, a manipulação dos níveis de fatores de transcrição selecionados pode resultar na maior expressão de proteínas ou biomoléculas economicamente úteis em plantas ou na melhoria de outras características relevantes para a agricultura.

De forma inversa, a expressão bloqueada ou reduzida de um fator de transcrição pode reduzir a biossíntese de compostos indesejáveis ou remover uma característica indesejável.

Portanto, a manipulação dos níveis dos fatores de transcrição em uma planta oferece um potencial enorme na biotecnologia da agricultura para a modificação das características de uma planta.

Um número das características relevantes para a agricultura de plantas e de características desejáveis que podem ser imbuídas através da expressão gênica do fator de transcrição modificado, é listado abaixo.

Tolerância ao

Resfriamento [0005] O termo sensibilidade ao resfriamento tem sido utilizado para descrever muitos tipos de danos fisiológicos produzidos a temperaturas baixas, mas acima das de congelamento. A maior parte das plantas de cultivo de origens tropicais, tais como a soja, o arroz, o milho e o algodão, é facilmente danificada pelo resfriamento. Os danos típicos causados pelo resfriamento incluem o murchamento, a necrose, a clorose ou o vazamento de íons

3/1027 das membranas celulares. Os mecanismos básicos da sensibilidade ao resfriamento ainda não são completamente entendidos, mas provavelmente envolvem o nível de saturação das membranas e outras deficiências fisiológicas. Por exemplo, a fotoinibição da fotossíntese (interrupção da fotossíntese por causa de altas intensidades de luz) ocorre frequentemente sob condições atmosféricas claras subsequentes a noites frias tardias do verão/outono. Através de algumas estimativas, o resfriamento contribui para perdas monetárias nos Estados Unidos (EUA) em segundo lugar perdendo somente para a seca e inundação. Por exemplo, o resfriamento pode levar a perdas de rendimento e à menor qualidade do produto através do amadurecimento retardado do milho. Uma outra consequência do crescimento fraco é a cobertura de crescimento bastante fraca na primavera, resultando frequentemente na erosão do solo, na maior ocorrência de plantas daninhas e menor captação de nutrientes. Uma captação retardada de nitrogênio mineral também poderia levar a maiores perdas de nitrato na água do solo.

Tolerância ao congelamento.

[0006] O congelamento é um estresse ambiental principal que limita onde as plantas de cultivo podem ser cultivadas e que reduz consideravelmente os rendimentos, dependendo do tempo em uma estação particular de cultivo. Em adição aos anos excepcionalmente estressantes que causam perdas mensuráveis de bilhões de dólares, um estresse menos extremo causa quase que certamente reduções menores nos rendimentos ao longo de áreas grandes para produzir reduções no rendimento de um valor similar em dólares a

4/1027 cada ano. Por exemplo, nos EUA, estima-se que os congelamentos precoces no outono de 1995 tenham causado perdas de mais de um bilhão de dólares no milho e na soja. A primavera de 1998 viu danos estimados de $ 200 M apenas na Geórgia nas indústrias do pêssego, do vacínio e do morango. Os congelamentos ocasionais na Flórida alteraram o cinturão de frutas cítricas mais ao sul por causa de perdas de $ 100 M ou maiores. A Califórnia sustentou danos de $ 650 M em 1998 nos plantios de plantas cítricas por causa de um congelamento no inverno. Em adição, certas plantas de cultivo, tal como, o Eucalyptus, que possui propriedades muito favoráveis de crescimento rápido e de boa qualidade de maderia para produção de pasta, não são capazes de crescer em estados do sudeste por causa dos congelamentos ocasionais.

[0007] A resistência ao inverno inerente à planta de cultivo determina em quais áreas agricultura esta pode sobreviver ao inverno. Por exemplo, para o trigo, a região central norte dos EUA possui invernos que são muito frios para boas plantações de trigo no inverno. Aproximadamente 20% do cultivo de trigo dos EUA correspondem ao trigo da primavera, com um valor de mercado de $ 2 bilhões. Áreas de cultivo do trigo da primavera poderiam se beneficiar através do cultivo de trigo do inverno que tivesse maior resistência ao inverno. Assumindo um aumento de rendimento de 25% quando se cultiva o trigo do inverno, isto criaria $500 M de valor aumentado. Adicionalmente, o trigo do inverno existente é gravemente estressado pelas condições de congelamento e deve possuir maiores rendimentos com uma tolerância maior a estes estresses. Uma estimativa do

5/1027 benefício do rendimento destas características é de 10% dos $ 4,4 bilhões do cultivo de trigo do inverno nos EUA ou um aumento no rendimento de $ 444 M, assim como uma melhor sobrevivência em condições extremas de congelamento que ocorrem periodicamente.

[0008] Assim, plantas mais resistentes ao congelamento, tanto congelamentos no meio do inverno quanto em congelamentos repentinos, protegeriam o investimento dos fazendeiros, aumentariam os rendimentos e a qualidade e permitiriam que agricultores em algumas regiões geográficas cultivassem plantas de cultivo mais vantajosas e produtivas. Adicionalmente, as plantas de cultivo de inverno, tais como, a canola, o trigo e a cevada possuem aumentos nos rendimentos de 25% até 50% em relação às variedades plantadas na primavera das mesmas plantas de cultivo. Este aumento no rendimento é devido ao head start que as plantas de cultivo plantadas no outono possuem em relação às plantas de cultivo plantadas na primavera e de atingirem a maturidade mais cedo embora as temperaturas, a umidade do solo e a falta de agentes patogênicos forneçam condições mais favoráveis.

Tolerância ao sal.

[0009] Um em cinco hectares de terra irrigada é danificado pelo sal, um fator histórico importante no declínio de sociedades agrárias antigas. Espera-se que esta condição apenas piore, reduzindo adicionalmente a disponibilidade da terra que pode ser arada e da produção das plantas de cultivo, uma vez que nenhuma das cinco plantas principais de cultivo para alimentação - trigo, milho, arroz, batatas e soja - pode tolerar sal em excesso.

6/1027 [0010] Os efeitos prejudiciais do sal sobre as plantas são uma consequência tanto do déficit hídrico resultante no estresse osmótico (similar ao estresse à seca) quanto aos efeitos dos íons de sódio em excesso sobre processos bioquímicos críticos. Assim como o congelamento e a seca, a alta quantidade de sais causa déficit hídrico; a presença de altos teores de sais dificulta que as raízes das plantas extraiam água de seu ambiente (Buchanan e outros (2000) em Biochemistry and Molecular Biology of Plants, American Society of Plant Physiologists, Rockville, MD). A salinidade do solo é assim uma das variáveis mais importantes que determina onde uma planta pode se desenvolver. Em muitas partes do mundo, áreas de terras de tamanho considerável não podem ser cultivadas por causa da salinidade naturalmente alta do solo. Para compactuar com o problema, a salinização de solos que são utilizados para a produção agrícola é um problema significativo e crescente nas regiões que se baseiam enormemente na agricultura. O último é compactuado através da superutilização, da superfertilização e da restrição de água, tipicamente causadas pela alteração climática e pelas demandas da população em crescimento. A tolerância aos sais tem importância particular precocemente no ciclo de vida de uma planta, uma vez que a evaporação da superfície do solo causa um movimento da água para cima e o sal se acumula na camada superior do solo onde as sementes são colocadas. Assim, a germinação ocorre normalmente a uma concentração de sais muito maior que o nível médio de sais no perfil de solo total.

Tolerância à seca.

7/1027 [0011] Embora a maior parte do clima que sofremos seja rápida e de vida curta, a seca é um fenômeno mais gradual, tomando conta lentamente de uma área e reforçando sua contenção com o tempo. Em casos graves, a seca pode durar por muitos anos e pode ter efeitos devastadores sobre a agricultura e os fornecimentos de água. Com a população em crescimento e a redução crônica da água doce disponível, a seca não é somente o problema relacionado ao clima de número um na agricultura, esta também é classificada como um dos maiores desastres naturais de todos os tempos, causando não somente danos econômicos, mas também perda de vidas humanas. Por exemplo, as perdas da seca dos EUA de 1988 excederam $ 40 bilhões, excedendo as perdas causadas pelo Furacão Andrew em 1992, as enchentes do Rio Mississipi de 1993 e o terremoto de São Francisco em 1989. Em algumas áreas do mundo, os efeitos da seca podem ser bem mais graves. No Horn da África, a seca de 1984-1985 levou a uma fome que matou 750.000 pessoas.

[0012] Os problemas para as plantas causados pela baixa disponibilidade de água incluem estresses mecânicos causados pela eliminação da água celular. A seca também faz com que as plantas fiquem mais susceptíveis a várias doenças (Simpson (1981) The Value of Physiological Knowledge of Water Stress in Plants, Em Water Stress on Plants, (Simpson, G. M., Ed), Praeger, NY, pp. 235-265).

[0013] Em adição as muitas regiões de terra do mundo que são tão áridas para a maioria, se não para todas as plantas de cultivo, o superuso ou a superutilização da água disponível é resultante em uma maior perda de terra que pode ser utilizada para a agricultura, um processo que,

8/1027 ao extremo, resulta na desertificação. O problema é ainda combinado pelo maior acúmulo de sais nos solos, como descrito anteriormente, que se adiciona à perda da água disponível nos solos.

[0014] O déficit hídrico é um componente comum de muitos estresses de plantas. O déficit hídrico ocorre em células vegetais quando a taxa total de respiração da planta excede a captação de água. Em adição à seca, outros estresses, tais como a salinidade e a temperatura baixa, produzem desidratação celular (McCue e Hanson (1990) Trends Biotechnol. 8: 358-362).

[0015] A transdução de sinal de estresses salino e hídrico consiste em vias de sinalização da homeostase iônica e osmótica. O aspecto iônico do estresse salino é sinalizado através da via SOS em que um complexo da proteína quinase SOS3-SOS2 que responde ao cálcio controla a expressão e a atividade dos transportadores de íons, tal como, o SOS1. A via que regula a homeostase iônica em resposta ao estresse salino foi revisada recentemente por Xiong e Zhu (2002) Plant Cell Environ. 25: 131-139.

[0016] O componente osmótico do estresse salino envolve reações complexas vegetais que se sobrepõem às respostas ao estresse hídrico e/ou ao frio.

[0017] Os aspectos comuns da resposta aos estresses a seca, ao frio e salino foram revisados recentemente por Xiong e Zhu (2002) supra). Estes incluem:

[0018] (a) alterações transitórias nos níveis citoplasmáticos de cálcio muito precocemente no evento de sinalização (Knight, (2000) Int. Rev. Cytol. 195: 269-324; Sanders e outros (1999) Plant Cell 11: 691-706);

9/1027 [0019] (b) transdução de sinal através de proteínas quinases ativadas por mitógenos e/ou dependentes de cálcio (CDPKs; ver Xiong e Zhu (2002) supra) e proteínas fosfatases (Merlot e outros (2001) Plant J. 25: 295-303; Tãhtiharju e Palva (2001) Plant J. 26: 461-470);

[0020] (c) aumentos nos níveis do ácido abscísico em resposta ao estresse ativando um subconjunto de respostas (Xiong e Zhu (2002) supra e referências contidas no mesmo);

[0021] (d) inositol fosfatos como moléculas sinais (pelo menos para um subconjunto das alterações transcricionais em resposta ao estresse (Xiong e outros (2001) Genes Dev. 15: 1971-1984));

[0022] (e) ativação de fosfolipases que por sua vez geram um arranjo distinto de moléculas de segundo mensageiro, algumas das quais poderiam regular a atividade de quinases que respondem ao estresse (a fosfolipase D funciona de uma forma independente ao ABA, Frank e outros (2000) Plant Cell 12: 111-124);

[0023] (f) indução de tipos de genes abundantes na embriogênese tardia (LEA) incluindo os genes COR/RD contendo CRT/DRE (Xiong e Zhu (2002) supra);

[0024] (g) níveis maiores de antioxidantes e osmólitos compatíveis, tais como a prolina e açúcares solúveis (Hasegawa e outros (2000) Annu. Rev. Plant Mol. Plant Physiol. 51: 463-499);

[0025] (h) acúmulo da espécie reativa do oxigênio tais como o superóxido, o peróxido de hidrogênio e radicais de hidroxila (Hasegawa e outros (2000) supra) .

[0026] A biossíntese do ácido abscísico é regulada

10/1027 através do estresse osmótico em várias etapas. A sinalizaçao ao estresse osmótico tanto dependente do ABA quanto independente do

ABA modifica primeiramente os fatores de transcriçao expressos de forma constitutiva, levando à expressao de ativadores da transcriçao de resposta inicial, que entao ativam os genes efetores da tolerância ao estresse a jusante.

Com base nas características comuns de muitos aspectos das respostas ao estresse ao frio, a seca e salino, pode ser concluído que os genes que aumentam a tolerância ao estresse ao frio ou salino podem aumentar a proteçao ao estresse a seca. Na verdade isto realmente foi demonstrado para os fatores de transcriçao (no caso de AtCBF/DREB1) e para outros genes, tal como, OsCDPK7 (Saijo e outros (2000) Plant J. 23: 319-327) ou AVP1 (uma bomba de prótons da pirofosfatase vacuolar; Gaxiola e outros (2001) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 98: 11444-11449).

Tolerância ao calor.

[0028] A germinação de muitas plantas de cultivo é muito sensível à temperatura. Um fator de transcriçao que aumentaria a germinação em condições quentes seria útil para as plantas de cultivo que são plantadas tardiamente na estação ou em climas quentes. As plantas jovens e as plantas maduras que são expostas ao calor excessivo podem sofrer choque térmico, que pode ocorrer em vários órgãos, inclusive nas folhas e particularmente no fruto, quando a transpiração é insuficiente para vencer o estresse térmico. O calor também danifica as estruturas celulares, incluindo as organelas e o citoesqueleto e prejudica a função das membranas (Buchanan, supra).

11/1027 [0029] O choque térmico pode resultar de um decréscimo na síntese global das proteínas, acompanhado pela expressão de proteínas do choque térmico. As proteínas do choque térmico funcionam como acompanhantes e estão envolvidas no redobramento das proteínas desnaturadas pelo calor.

Tolerância a baixos níveis de nitrogênio e de fósforo.

[0030] A capacidade de todas as plantas de remover nutrientes de seu ambiente é essencial para a sobrevivência. Assim, a identificação de genes que codificam polipeptídeos com atividade de fator de transcrição pode permitir a geração de plantas transgênicas que são mais capazes de fazer uso de nutrientes disponíveis em ambientes pobres em nutrientes.

[0031] Dentre os macronutrientes mais importantes para o cultivo de plantas que possuem o maior impacto sobre o rendimento das plantas de cultivo estão os compostos que contêm nitrogênio e fósforo. Os fertilizantes que contêm nitrogênio e fósforo são utilizados de forma intensiva nas práticas agrícolas atualmente. Um aumento nos rendimentos de plantas de cultivo de grãos de 0,5 até 1,0 tonelada métrica por hectare até 7 toneladas métricas por hectare acompanhou o uso de fertilizante comercial de nitrogênio fixado na produção agrícola (Vance (2001) Plant Physiol 127: 390-397). Dadas as práticas atuais, com a finalidade de satisfazerem as demandas de produção de alimentos nos anos que virão, serão necessários aumentos consideráveis na quantidade de fertilizantes que contêm nitrogênio e fósforo (Vance, supra).

[0032] O nitrogênio (N) é o elemento mais abundante

12/1027 na terra e ainda é um dos elementos mais limitantes para o cultivo de plantas por causa de sua falta de disponibilidade no solo. As plantas obtêm o N do solo partindo de várias fontes incluindo fertilizantes comerciais, adubo e mineralização da matéria orgânica. O uso intensivo de fertilizantes com N nas presentes práticas agrícolas é problemático, o processo de Haber-Bosch de energia intensiva produz fertilizante com N e estima-se que os EUA utilizem anualmente entre 3-5% do gás natural da nação para este processo. Em adição ao custo da produção de fertilizantes com N e a eliminação de fontes nãorenováveis, o uso de fertilizantes com N levou à eutroficação de ecossistemas de água doce e à contaminação da água potável por causa do escoamento do fertilizante em excesso nos suprimentos de águas profundas.

[0033] O fósforo (P) é o segundo somente em relação ao N em sua importância como um macronutriente para o cultivo de plantas e para seu impacto sobre o rendimento das plantas de cultivo. O fósforo é extremamente imóvel e não fica facilmente disponível para as raízes no solo e é, portanto, frequentemente limitante do crescimento das plantas. O fosfato inorgânico (Pi) é um constituinte de várias moléculas importantes necessárias para a transferência de energia, para a regulação metabólica e para a ativação de proteínas (Marschner (1995) Mineral Nutrition of Higher Plants, 2^a ed., Academic Press, São Diego, CA). As plantas evoluíram várias estratégias para auxiliar a lidar com a falta de P e N que incluem adaptações metabólicas assim como do desenvolvimento. A maior parte, se não todas, destas estratégias possuem

13/1027 componentes que são regulados no nível da transcrição e, portanto, são tratáveis à manipulação através dos fatores de transcrição. As adaptações metabólicas incluem o aumento da disponibilidade de P e de N através do aumento da captação do solo através da indução de transportadores de alta afinidade e de baixa afinidade e/ou do aumento da mobilização de P e de N na planta. As adaptações do desenvolvimento incluem aumentos nas raízes primárias e secundárias, aumentos no número e no comprimento dos pelos das raízes e associações com fungos micorrizais (Bates e Lynch (1996) Plant Cell Environ. 19: 529-538; Harrison (1999) Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 50: 361389).

Resistência a doenças.

[0034] O controle de doenças é um custo significativo na produção de plantas de cultivo por todo o mundo. De acordo com os relatórios da EPA para 1996 e 1997, os fazendeiros dos EUA gastam aproximadamente $ 6 bilhões em fungicidas anualmente. Apesar deste gasto, de acordo com uma inspeção realizada pela organização de alimentos e agricultura, as doenças de plantas ainda reduzem a produtividade das plantas de cultivo por todo o mundo em 12% e somente nos EUA, as perdas econômicas causadas pelos agentes patogênicos vegetais chegam a 9,1 bilhões de dólares (FAO, 1993). Os dados destes relatórios e de outros demonstram que apesar da disponibilidade do controle químico, somente uma pequena proporção das perdas causadas por doenças pode ser prevenida. Não somente os tratamentos fungicidas e antibacterianos são caros para os fazendeiros, mas sua aplicação espalhada impõe riscos tanto ambientais

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quanto para

a saúde. O uso da biotecnologia vegetal para

engenheirar plantas de cultivo resistentes tem o potencial

de produzir	um impacto econômico significativo sobre a
agricultura	e as indústrias florestais de duas formas:
reduzindo os	custos monetários e ambientais da aplicação de
fungicidas e	reduzindo tanto as perdas pré-colheita quanto
pós-colheita	das plantas de cultivo que ocorrem atualmente

apesar do uso de práticas de controle de doenças caras.

[0035]

As doenças causadas por fungos, bactérias,

oomicetos, vírus e nematóides de plantas são problemas ubíquos e importantes e frequentemente têm impacto grave sobre o rendimento e a qualidade da planta de cultivo e de outras plantas. Alguns poucos exemplos de doenças de plantas incluem:

[0036]	O míldio em pó, causado pelos fungos
Erysiphe,	Sphaerotheca, Phyllactinia, Microsphaera,

Podosphaera ou Uncinula, por exemplo, no trigo, no feijão, nas cucurbitáceas, na alface, na ervilha, da uva, nas

plantas de	cultivo de árvores frutíferas, assim como.
rosas, flox,	lilás, gramíneas e Euonymus;
[0037]	As doenças causadas por Fusarium, tais como,

o murchamento por Fusarium em cucurbitáceas, bolha

principal de

Fusarium na cevada e no trigo, murchamento e

apodrecimento das raízes no tomate;

[0038]

Morte súbita do carvalho, causada pelo

oomiceto Phytophthora ramorum; esta doença foi detectada

primeiro em

1995 em carvalhos castanhos da Califórnia. A

doença, desde então, matou mais de 100.000 carvalhos castanhos, carvalhos que vivem na costa, carvalhos negros e carvalhos de Shreve nas regiões costais do norte da

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Califórnia e mais recentemente no sudoeste do Oregon (Roach (2001) National Geographic News, 6 de dezembro de 2001);

[0039] Sigatoka Negra, uma doença fúngica causada pelas espécies de Mycosphaerella que ataca a folhagem da banana, está se espalhando ao longo de todas as regiões do mundo que são responsáveis pela produção da maior parte do plantio de banana;

[0040] O dessecamento progressivo por Eutypa, causada por Eutypa lata, afeta um número de plantas de cultivo, inclusive a uva de vinícola. O dessecamento progressivo por Eutypa retarda o surgimento de brotos e causa a clorose, interrupção do crescimento e esfarrapamento das folhas;

[0041] A doença de Pierce, causada pela bactéria Xylella fastidiosa, interrompe o crescimento de uvas no sudeste dos Estados Unidos e ameaça a indústria vinícola rentável no norte da Califórnia. A bactéria obstrui o sistema vascular das uvas vinícolas, resultando na secagem folhar seguida pela morte lenta das vinhas. Não há tratamento conhecido para a doença de Pierce;

[0042] Manchas Bacterianas causadas pela bactéria Xanthomonas campestris causa problemas de doenças graves nos tomates e nas pimentas. É um problema significativo na indústria de tomates da Flórida porque se espalha rapidamente, especialmente em períodos quentes quando há chuva com vento. Sob estas condições, não há medidas de controle adequadas;

[0043] As doenças causadas por vírus da família Geminiviridae constituem um problema agrícola crescente por todo o mundo. Os geminivírus causaram perdas graves no

16/1027 cultivo do tomate, mandioca e algodão. Por exemplo, na estação de cultivo de 1991-1992 na Flórida, os geminivírus causaram $ 140 milhões em danos no plantio do tomate (Moffat (1991) Science 286: 1835) . Os geminivírus possuem a capacidade de se recombinar entre cepas para produzir novas variedades virulentas rapidamente.

necessidade urgente de um controle

Portanto, há uma para geminivírus de amplo espectro;

nematóide encistado da soja, Heterodera glycines, causa interrupção do crescimento e clorose das plantas de soja, que resultam em perdas no rendimento ou na morte da planta causada pela infestação grave. As perdas anuais nos Estados Unidos foram estimadas em $

1,5 bilhões [0045] anteriormente

Minnesota Extension Service).

Os agentes patogênicos mencionados representam uma fração muito pequena de espécies diversas que afetam gravemente a saúde e rendimento das plantas. Para uma descrição mais completa de várias doenças vegetais, ver, por exemplo, Vidhyasekaran (1997, Fungal Pathogenesis in Plants and Crops: Molecular Biology and Host Defense Mechanisms, Marcel Dekker, Monticello, NY) ou Agrios (1997, Plant Pathology, Academic Press, Nova York, NY). As plantas que são capazes de resistir à doença podem produzir rendimentos significativamente maiores e melhor qualidade dos alimentos. É assim de importância considerável encontrar genes que reduzem ou previnem doenças.

Impedimento reduzido à sombra.

[0046] O impedimento à sombra descreve o processo em que as plantas que crescem em proximidade íntima tentam

17/1027 competir uma com as outras através do aumento do comprimento dos caules às custas do desenvolvimento folhar, de frutos e de órgãos de armazenamento. Isto é causada pela resposta da planta à radiação far infravermelha refletida pelas folhas de plantas vizinhas, que é mediada pelos fotorreceptores para o fitocromo. A proximidade íntima com outras plantas, como é produzida em plantações de plantas de cultivo de alta densidade, aumenta a proporção relativa da irradiação de far infravermelho e, portanto, induz a resposta de impedimento da sombra. O impedimento à sombra afeta adversamente a biomassa e o rendimento, particularmente quando folhas, frutos ou outros órgãos de armazenamento constituem a planta de cultivo desejada (ver, por exemplo, Smith (1982) Annu. Rev. Plant Physiol. 33: 481-518; Ballare e outros (1990) Science 247: 329-332; Smith (1995) Annu. Dev. Plant Physiol. Mol. Biol., 46: 289315; e Schmitt e outros (1995), American Naturalist, 146: 937-953). Foi mostrado que a alteração da resposta de impedimento da sombra no tabaco através da alteração de níveis de fitocromos produz um aumento no índice de colheita (biomassa folhar/biomassa total) a uma alta densidade de plantação, que resultaria em um maior rendimento (Robson e outros (1996) Nature Biotechnol. 14: 995-998).

Tempo alterado de florescência e controle da florescência.

[0047] A sincronia da florescência possui um impacto significativo sobre a produção de produtos agrícolas. Por exemplo, variedades com respostas diferentes de florescência às informações ambientais são necessárias para adaptar as plantas de cultivo a regiões ou sistemas de

18/1027 produção diferentes. Tal faixa de variedades foi desenvolvida para muitas plantas de cultivo, incluindo o trigo, o milho, a soja e o morango. Métodos melhorados para a alteração do tempo de florescência facilitarão o desenvolvimento de variedades novas adaptadas geograficamente.

Os programas de reprodução para desenvolvimento de novas variedades podem ser limitados pelo ciclo semente-a-semente. Assim, as novas variedades de reprodução de plantas com ciclos de vários anos (tais como, bienais, por exemplo, a cenoura ou as árvores frutíferas, tais como as de frutas cítricas) podem ser muito lentas. Em relação aos programas de reprodução, haveria uma vantagem significativa em se ter plantas comercialmente valiosas que exibem períodos que podem ser controlados e modificados para a florescência (tempos de florescência). Por exemplo, a florescência acelerada encurtaria os programas de reprodução de plantas de cultivo e de árvores.

[0049] O controle melhorado da florescência permite que mais de uma plantação e uma colheita de uma planta de cultivo sejam feitas dentro de uma única estação. A florescência precoce também melhoraria o tempo para colher as plantas em que a parte floral da planta constitui o produto (por exemplo, brócolis, couve-flor e outras flores comestíveis). Em adição, o controle químico da florescência através da indução ou da inibição da florescência nas plantas poderia oferecer uma vantagem significativa para os agricultores que poderiam fornecer uma produção mais uniforme de frutos (por exemplo, no morango).

[0050]

Um número bastante grande de plantas para as

19/1027 quais a parte vegetativa da planta forma o cultivo valioso, tende a florescer de forma precoce drasticamente (por exemplo, espinafre, cebola, alface), após o que a produção da biomassa declina e a qualidade do produto diminui (por exemplo, através da senescência ativada pela florescência de partes vegetativas). O retardo ou a prevenção da florescência também pode reduzir ou evitar a disseminação de pólen de plantas transgênicas.

Maior tamanho e biomassa.

[0051] A capacidade de aumentar a biomassa ou o tamanho de uma planta possui várias aplicações comerciais importantes. Podem ser geradas espécies de plantas de cultivo que produzem rendimentos mais altos em cultivares maiores, particularmente aqueles em que a parte vegetativa da planta é comestível. Por exemplo, o aumento da biomassa folhar das plantas pode aumentar o rendimento dos vegetais de folhas para consumo humano ou animal. Adicionalmente, o aumento da biomassa folhar pode ser utilizado para aumentar a obtenção de produtos farmacêuticos ou industriais derivados de plantas. Aumentando a biomassa da planta, podem ser obtidos níveis de produção maiores dos produtos partindo das plantas. As folhas do tabaco, em particular, foram empregadas como fábricas vegetais para gerar tais produtos. Além disso, pode ser desejável aumentar os rendimentos do plantio de plantas através do aumento da fotossíntese total da planta. Um aumento na fotossíntese total da planta é tipicamente conseguido através do aumento da área folhar da planta. A capacidade fotossintética adicional pode ser utilizada para aumentar o rendimento derivado de um tecido vegetal particular, incluindo as

20/1027 folhas, as raízes, os frutos ou a semente. Em adição, a capacidade de modificar a biomassa das folhas pode ser útil para permitir o crescimento de uma planta sob intensidade reduzida da luz ou sob intensidade alta da luz. A modificação da biomassa de um outro tecido, tal como, das raízes, pode ser útil para aumentar a capacidade da planta de crescer sob condições ambientais rigorosas, incluindo a seca ou a falta de nutrientes, porque as raízes podem crescer mais profundamente no solo. A maior biomassa pode também ser uma consequência de algumas estratégias para a maior tolerância aos estresses, tal como, o estresse, a seca. O início de um crescimento vegetal em resposta a um estresse (por exemplo, expansão de órgãos laterais, aumento na circunferência do caule etc.) pode ser retardado para possibilitar que a planta ative respostas adaptativas. A taxa de crescimento que é menos sensível ao controle induzido pelo estresse pode resultar em um maior tamanho de planta, particularmente na fase tardia do desenvolvimento.

[0052] Para algumas plantas ornamentais, a capacidade de produzir variedades maiores seria altamente desejável. Para muitas plantas, incluindo árvores que carregam frutos, árvores que são utilizadas para a produção de madeiras para construção ou árvores e arbustos que servem como visor ou proteção contra o vento, a maior estatura fornece melhores benefícios nas formas de rendimento maior ou melhor seleção.

[0053] Devido ao fato de que o maior rendimento pode ser bastante valioso para os cultivadores, acredita-se que haja uma oportunidade comercial significativa para a engenharia da tolerância ou da resistência a agentes

21/1027 patogênicos utilizando plantas transgênicas com expressão alterada dos presentes fatores de transcrição vegetais. As plantas de cultivo engenheiradas dessa maneira fornecerão maiores rendimentos e podem ser utilizadas para melhorar a aparência de plantas ornamentais. A presente invenção satisfaz uma necessidade na técnica através do fornecimento de novas composições que são úteis para a engenharia de plantas com maior biomassa ou tamanho e que possuem o potencial de aumentar o rendimento.

Taxa de crescimento modificada.

[0054] Para quase todas as plantas de cultivo comerciais, é desejável utilizar plantas que se estabeleçam mais rapidamente, uma vez que as plantas novas partindo de sementes e as plantas jovens são particularmente susceptíveis às condições de estresse, tal como, a salinidade ou doença. Uma vez que muitas ervas daninhas podem crescer mais que as plantas de cultivo jovens ou competir com as mesmas por nutrientes, seria também desejável determinar meios para permitir que plantas de cultivo jovens competissem com as espécies daninhas. O aumento da taxa de crescimento das plantas jovens partindo de sementes (emergência) contribui para o vigor da planta jovem partindo de sementes e permite que as plantas de cultivo sejam plantadas mais cedo na estação com menor preocupação em relação a perdas causadas pelos fatores

ambientais. O	plantio mais cedo auxilia	a adicionar dias	ao
período crítico	de preenchimento dos	grãos e aumenta	o
rendimento.
[0055]	O	fornecimento de meios	para acelerar	ou
para retardar	o	crescimento vegetal seria também desejado

22/1027 para a horticultura ornamental. Se tais meios forem fornecidos, as plantas de crescimento lento podem exibir uma produção de pólen ou um período de frutificação prolongado, aumentando assim a fertilização ou estendendo a estação de colheita.

Senescência e morte celular modificadas.

[0056] A senescência prematura, ativada por vários estresses de plantas, pode limitar a produção tanto da biomassa de folhas quanto do rendimento de sementes. Os genes dos fatores de transcrição que suprimem a senescência ou a morte celular prematura em resposta aos estresses podem fornecer meios para aumentar o rendimento, particularmente para as plantas para as quais a parte vegetativa da planta representa o produto comercial (por exemplo, espinafre, alface).

[0057] Embora se acredite que a senescência folhar seja uma adaptação evolutiva para reciclar os nutrientes, a capacidade de controlar a senescência em uma unidade agrícola possui valor significativo. Por exemplo, um retardo na senescência folhar em alguns híbridos do milho está associado com um aumento significativo nos rendimentos e um retardo de alguns dias na senescência de plantas de soja pode ter um grande impacto sobre o rendimento. Em uma unidade experimental, as plantas de tabaco engenheiradas para inibir a senescência folhar possuíam um tempo de vida fotossintético mais longo e produziam um aumento de 50% no peso seco e no rendimento de sementes (Gan e Amasino (1995) Science 270: 1986-1988). A senescência floral retardada pode gerar plantas que mantêm suas florescências mais tempo e isto pode ter interesse potencial para a indústria da

23/1027 horticultura ornamental e a senescência retardada folhar e de frutos poderia aumentar a meia-vida pós-colheita do produto.

[0058]

Ainda, a morte celular programada desempenha uma função em outras respostas da planta, incluindo a resposta de resistência a doença e alguns sintomas de doenças, por exemplo, que são causados por agentes patogênicos necrotróficos, tais como, Botrytis cinerea e

Sclerotinia sclerotiorum (Dickman e outros Proc. Natl.

Acad.

Sci. ,

98: 6957-6962)

A senescência localizada e/ou a morte celular podem ser utilizadas pelas plantas para conter o espalhamento de microorganismos prejudiciais. Uma resposta à morte celular localizada específica, a resposta hipersensível é um componente de resistência à doença específica ao tipo mediada por genes de resistência da planta. Acredita-se que a resposta hipersensível é auxilia a limitar o crescimento de agentes patogênicos e a iniciar uma via de transdução de sinal que leva à indução de defesas sistêmicas da planta. A senescência acelerada pode ser uma defesa contra agentes patogênicos obrigatórios, tal como, o míldio em pó que conta com o tecido vegetal saudável para nutrientes. Em relação ao míldio em pó, Botrytis cinerea, Sclerotinia sclerotiorum e outros agentes patogênicos, os fatores de transcrição que melhoram a morte celular e/ou os danos podem reduzir as perdas econômicas significativas encontradas, tal como, por exemplo, Botrytis cinerea no morango e na uva.

Sensibilidade alterada aos açúcares [0059] Os açúcares são moléculas reguladoras importantes que afetam processos diversos nas plantas

24/1027 superiores incluindo a germinação, o florescência, a senescência, o metabolismo crescimento, dos açúcares fotossíntese. A sacarose , por exemplo, é a forma de transporte principal do produto da fotossíntese e foi mostrado que seu fluxo através das células afetam expressão gênica e altera o acúmulo de compostos de armazenamento nas sementes (relações fonte-sumidouro).

sensibilidade a hexose específica à glicose também foi descrita em plantas e está implicada na divisão celular e na repressão de genes de inanição (fotossintéticos ou ciclos do glioxilato).

Morfologia alterada ramificados uma planta.

bioquímicos

Os tricomas são crescimentos ou não-ramificados ou estruturas

Os tricomas produzem uma variedade epidérmicos de pelos em de produtos secundários, tais como, os diterpenos e as ceras, os primeiros sendo importantes, por exemplo, como feromônios para insetos e as últimas como protetoras contra a dessecação e pragas herbívoras.

Uma vez que os diterpenos também possuem valor comercial como sabores, aromas, pesticidas e produtos cosméticos e valor potencial como agentes antitumor e substâncias mediadoras da inflamação, têm sido tanto produtos quanto o alvo de pesquisa considerável. Na maior parte dos casos em que as vias metabólicas são impossíveis de serem engenheiradas, o aumento da densidade ou do tamanho dos tricomas nas folhas pode ser a única forma de aumentar a produtividade da planta. Assim, seria vantajoso descobrir os genes dos fatores de transcrição que afetam os tricomas com a finalidade de aumentar a densidade, o tamanho ou o tipo dos

25/1027 tricomas para produzir plantas que são mais bem protegidas

de insetos	ou que produzem maiores quantidades de
metabólitos	secundários.
[0061]	A capacidade de manipular a composição, a

quantidade ou a distribuição das ceras poderia modificar a tolerância da planta à seca e à baixa umidade ou a resistência a insetos, assim como, a aparência da planta. Em particular, uma aplicação possível para um gene de fator de transcrição que reduz a produção de cera nos revestimentos de sementes de girassol seria reduzir o

acúmulo de	resíduos durante o processamento do óleo das
sementes. O	anti-sentido ou a co-supressão de fatores de
transcrição	envolvidos na biossíntese da cera de uma

maneira específica ao tecido pode ser utilizada para alterar especificamente a composição, a quantidade ou a distribuição da cera nas plantas e plantios dos quais a cera é um atributo ou um produto valioso ou um constituinte indesejável das plantas.

[0062] Em muitos exemplos, as sementes de uma planta constituem uma planta de cultivo valiosa. Estas incluem, por exemplo, as sementes de muitos legumes, nozes

e grãos. A

descoberta de meios para a produção de uma

semente maior forneceria um valor significativo através da realização de um aumento no rendimento do plantio.

[0063]	As modificações na estrutura das flores
podem ter	efeitos vantajosos ou deletérios sobre a
fertilidade	e poderiam ser utilizadas, por exemplo, para
aumentar a	fertilidade através da ausência, da redução ou
da seleção	de componentes reprodutivos. Isto poderia ser

uma característica desejável, uma vez que poderia ser

26/1027 explorada para prevenir ou para minimizar a fuga de pólen de organismos modificados geneticamente no ambiente.

[0064] A manipulação dos padrões de ramificação da inflorescência também pode ser utilizada para influenciar no rendimento e oferecer o potencial para técnicas de colheita mais eficientes. Por exemplo, uma mutação autopoda do tomate resulta em um padrão de crescimento determinado e facilita a colheita mecânica (Pnueli e outros (2001) Plant Cell 13(12): 2687-2702).

[0065] Outras características morfológicas que podem ser desejáveis em plantas incluem as de uma natureza ornamental. Estas incluem alterações na coloração das sementes, na coloração total, da forma das folhas e das flores, na coloração das folhas, no tamanho das folhas ou no brilho das folhas. As alterações na coloração da planta ou de partes da planta, causadas através da modificação, por exemplo, dos níveis de antocianina, forneceriam novas características morfológicas.

[0066] As plantas que produzem folhas escuras podem ter benefícios para a saúde humana; os flavonóides, por exemplo, têm sido utilizados para inibir o crescimento de tumores, prevenir a perda óssea e para a prevenção da oxidação de lipídeos em animais e seres humanos. As plantas em que o tamanho das folhas é maior, forneceriam provavelmente maior biomassa, que seria particularmente valioso para as plantas de cultivo em que a parte vegetativa da planta constitui o produto. As plantas com folhas brilhosas produzem geralmente mais cera epidérmica que, se pudesse ser aumentada, resultaria em uma aparência prazerosa para muitas plantas ornamentais, auxiliaria na

27/1027 prevenção da dessecação e resistiria a insetos herbívoros e agentes causadores de doenças. As plantas com a inflorescência alterada, incluindo, por exemplo, flores maiores ou configurações florais distintas, podem ter alto valor na indústria da horticultura ornamental.

[0067] As alterações da dominância apical ou da arquitetura da planta criariam novas variedades de plantas. Plantas anãs podem ter interesse potencial para a indústria da horticultura ornamental e plantas menores mais na forma de arbustos podem também ter maior resistência à acomodação.

Óleo alterado das sementes [0068] A composição de sementes, particularmente em relação à quantidade e/ou à composição do óleo das sementes, é muito importante para o valor nutricional e para a produção de vários alimentos e produtos alimentícios. As melhorias desejáveis aos óleos incluem maior estabilidade ao calor, maior qualidade nutricional, por exemplo, através da redução do número de calorias na semente, aumento do número de calorias em produtos alimentícios para animais ou alteração da proporção de lipídeos saturados até insaturados que compreendem os óleos.

Proteína alterada das sementes [0069] Assim como com os óleos das sementes, o teor e a composição das proteínas das sementes é muito importante para o valor nutricional e para a produção de vários alimentos e produtos alimentícios. O teor ou a concentração alterada de proteínas nas sementes pode ser utilizada para fornecer vantagens nutricionais e podem

28/1027 ainda prolongar a capacidade de armazenamento, aumentar a resistência a pragas ou a doenças da semente ou modificar as taxas de germinação. A composição alterada de aminoácidos das sementes, através da composição alterada de proteínas, é também um objetivo desejado para a melhoria nutricional.

Prenil lipídeos alterados.

Os prenil lipídeos, incluindo os tocoferóis, desempenham uma função na ancoragem das proteínas nas membranas ou nas organelas membranosas.

Os tocoferóis possuem tanto atividade antioxidante quanto de vitamina E.

A composição modificada dos tocoferóis das plantas pode assim ser útil para melhorar a integridade e a função das membranas, que podem atenuar os estresses abióticos, tal como, o estresse térmico. O aumento do teor de antioxidante e de vitamina de plantas através do teor aumentado de tocoferóis pode fornecer benefícios úteis para a saúde humana.

Níveis alterados de glicosinolato [0071] Os aumentos ou os decréscimos no teor de glicosinolatos específicos ou de glicosinolatos totais podem ser desejáveis dependendo da aplicação particular. Por exemplo: (i) os glicosinolatos são componentes indesejáveis de sementes oleosas utilizadas na alimentação animal, uma vez que produzem efeitos tóxicos; variedades de canola com baixo teor de glicosinolatos foram desenvolvidas para combater este problema; (ii) alguns glicosinolatos possuem atividade anticâncer; assim, o aumento dos níveis ou a composição destes compostos pode ser utilizada na produção de produtos nutracêuticos; e (iii) os

29/1027 glicosinolatos fazem parte da defesa natural de uma planta contra insetos; uma modificação da composição ou da quantidade de glicosinolatos poderia, portanto, fornecer uma maior proteção dos herbívoros. Além disso, promotores específicos ao tecido podem ser utilizados em plantas de cultivo comestíveis para garantir que estes compostos se acumulem especificamente nos tecidos particulares, tal como, a epiderme, que não é utilizada para o consumo humano.

[0072] Foram identificados polinucleotídeos que codificam fatores de transcrição, desenvolvidas várias plantas transgênicas utilizando estes polinucleotídeos e as plantas foram analisadas em relação a uma variedade de características importantes. Fazendo isso, foram identificadas sequências importantes de polinucleotídeos e de polipeptídeos para a produção de plantas e plantios comercialmente valiosos assim como métodos para a produção dos mesmos utilizando os mesmos. Outros aspectos e modalidades da invenção são descritos abaixo e podem ser derivados dos ensinamentos desta divulgação como um todo. Sumário da Invenção [0073] A presente invenção está direcionada a novos polinucleotídeos recombinantes, às plantas transgênicas que compreende os polinucleotídeos e aos processos para a produção das plantas transgênicas.

[0074] Os polinucleotídeos recombinantes podem incluir qualquer uma das sequências a seguir:

[0075] as sequências de nucleotídeos encontradas na listagem de sequência;

[0076] sequências de nucleotídeos que codificam

30/1027 polipeptídeos encontrados na listagem de sequências;

[0077] variações de sequências que têm pelo menos 70% de identidade de sequência a qualquer uma das sequências de nucleotídeos de (a) ou (b);

[0078] sequências de nucleotídeos ortólogas e parálogas que têm pelo menos 70% de identidade de sequência a qualquer uma das sequências de nucleotídeos de (a) ou (b) ;

[0079] sequência de nucleotídeos que se hibridizam com qualquer uma das sequências de nucleotídeos de (a) ou (b) sob condições rigorosas, que pode incluir, por exemplo, a hibridização com etapas de lavagem de 6x SSC e 65°C durante dez até trinta minutos por etapa; e [0080] sequências de nucleotídeos que codificam um polipeptídeo que possui um domínio conservado necessário para a função de regulação da transcrição e para a alteração de uma característica em uma planta transgênica, o domínio conservado sendo pelo menos 70% idêntico a um domínio conservado de um polipeptídeo da invenção (isto é, um polipeptídeo listado na listagem de sequências ou

codificado por	qualquer uma	das	sequências de	nucleotídeos
anteriores).
[0081]	A	invenção	se	refere ainda	a plantas
transgênicas	que	podem	ser	produzidas	através da
transformação	de	plantas	com	qualquer polinucleotídeo
recombinante	da	invenção	.	Devido à função destes

polinucleotídeos, a planta transgênica ficará alterada fenotipicamente quando comparada com uma planta do tipo selvagem. As características que podem ser alteradas através da transformação de uma planta com um dos

31/1027 polinucleotídeos presentes sao numerosas e variadas e podem incluir, por exemplo:

[0082:	] maior tolerância a vários estresses
abióticos,	incluindo os estresses ao frio, ao calor, ao

congelamento, a condições de baixo teor de nitrogênio e de

fósforo,

osmótico tal como, a seca e com altas

concentrações de sais;

[0083:

maior tolerância à doença, incluindo doença

fúngica e particularmente Erysiphe, Fusarium e Botrytis; os

presentes

polinucleotídeos podem ser utilizados para

conferir maior tolerância a vários agentes patogênicos em plantas transformadas;

[0084]

sensibilidade ou resistência alterada a

tratamentos que incluem o glifosato, o ABA e o ACC,

[0085:

] sensibilidade alterada ao carbono/nitrogênio

(C/N);

[0086:	tempo de florescência avançado ou retardado;
[0087:	características florais alteradas, tais

como, estrutura da flor, perda da determinação da flor ou fertilidade reduzida;

[0088]

desenvolvimento alterado do meristema do

broto, morfologia alterada do caule e estrutura do tecido

vascular e	padrões alterados de ramificação;
[0089:	dominância apical reduzida;
[0090:	densidade, desenvolvimento ou estrutura

alterada do tricoma;

[0091:	desenvolvimento alterado da raiz, incluindo
a massa, a	ramificação da raiz e os pêlos radiculares;
[0092:	impedimento alterado à sombra;
[0093:	características alteradas da semente, tal

32/1027 como, tamanho, teor de óleos, teor de proteínas, desenvolvimento, amadurecimento, germinação ou teor de prenil lipídeo;

características alteradas da folha, incluindo tamanho, massa, forma, cor, brilho, teor de prenil lipídeo e outras modificações químicas;

[0095] crescimento mais lento ou mais rápido que o tipo selvagem;

diferenciação celular alterada diferenciação, proliferação e expansão celular alteradas;

modificação alterada de fase;

senescência, morte celular programada e necrose alteradas;

maior tamanho e/ou biomassa da planta, incluindo plantas novas partindo de semente maiores que os controles; plantas anãs; e níveis alterados de pigmentos, incluindo a antocianina, em vários tecidos de plantas.

Os métodos para a produção de plantas transgênicas que possuem características alteradas também são abrangidos pela invenção. Estas etapas dos métodos incluem, em primeiro lugar, o fornecimento de um vetor de expressão que possui um polinucleotídeo recombinante da invenção e pelo menos um elemento regulador que flanqueia a sequência de polinucleotídeo. De forma geral, o(s) elemento(s) regulador(es) controlam a expressão do polinucleotídeo recombinante em uma planta alvo. O vetor de expressão é então introduzido nas células vegetais. As células vegetais são cultivadas em plantas, que são permitidas superexpressar um polipeptídeo codificado pelo

33/1027 polinucleotídeo recombinante. Esta superexpressão resulta na alteração de características, na planta. As plantas que possuem características alteradas são identificadas e selecionadas com base no desejo e no grau da característica alterada.

Breve Descrição da Listagem de Sequências e das Figuras

[0102	A Listagem de Sequências fornece exemplos de
sequências	de	polinucleotídeos e de	polipeptídeos da
invenção.	As características associadas com	o uso das
sequências	estão	incluídas nos Exemplos.
[0103	A	figura 1 mostra	uma	estimativa
conservativa das	relações filogenéticas	entre	as ordens de

plantas com florescência (modificada de Angiosperm Phylogeny Group (1998) Ann. Missouri Bot. Gard. 84: 1-49). As plantas com um único cotilédone (monocotiledôneas) são um clado monofilético inserido dentro de pelo menos duas linhagens principais de dicotiledôneas; as eucotiledôneas são ainda divididas em rosidas e asteridas. Arabidopsis é uma eucotiledônea rosida classificada dentro da ordem Brassicales; o arroz é um membro da ordem Poales de monocotiledôneas. A figura 1 foi adaptada de Daly e outros ((2001) Plant Physiol. 127: 1328-1333).

[0104] A figura 2 mostra um dendograma filogenético que representa as relações filogenéticas da taxa de plantas

superiores,	incluindo os clados que contêm o tomate e a
Arabidopsis;	adaptado de Ku e outros (2000) Proc. Natl.

Acad. Sci. 97: 9121-9126; e Chase e outros (1993) Ann.

Missouri Bot	. Gard. 80: 528-580.
[0105]	A figura 3A ilustra um exemplo de um ensaio
de estresse	osmótico. O meio utilizado neste ensaio de

34/1027 crescimento de raiz continha polietileno glicol (PEG). Após a germinação, as plantas jovens partindo de semente de uma linhagem de superexpressão 35S::G47 (as oito plantas jovens marcadas à esquerda como OE.G47—22) pareciam maiores e possuíam um crescimento de raiz maior que as quatro plantas jovens partindo de semente do tipo selvagem à direita. Como seria previsto através do ensaio de estresse osmótico, as plantas G47 exibiam maior sobrevivência e tolerância à seca em um ensaio hídrico com base no solo, como tinha G2133, uma paráloga da G47 (ver as figuras 10A e 10B). A figura 3B demonstra ainda um efeito interessante da superexpressão da G47; as plantas 35S::G47 à esquerda e no centro desta fotografia possuíam inflorescências curtas, espessas e carnudas com dominância apical reduzida.

[0106] A figura 4 demonstra um exemplo dos efeitos de uma resposta alterada à luz. Em um ensaio de germinação realizado no meio MS na escuridão, a superexpressão da G354 resultou em cotilédones mais abertos e esverdeados e hipocotilédones espessos comparados com os do tipo selvagem (G354 que superexpressam são marcadas como G354-29 e do tipo selvagem WT nesta figura). As G354 que superexpressam também possuem um fenótipo de tolerância à seca, como indicado no Exemplo VIII, abaixo. Os parálogos intimamente relacionados deste gene, G353 e G2839, exibiam um fenótipo de tolerância ao estresse osmótico em um ensaio de germinação em meios contendo alto teor de glicose. Uma linhagem de plantas jovens partindo de semente 35S::G2839 era mais verde e possuía taxas de germinação maiores que as dos controles. Isto sugere que G354 e seus parálogos G353 e G2839 influenciam nas respostas ao estresse osmótico.

35/1027 [0107]

A figura 5A é uma fotografia de plantas jovens partindo de sementes 35S::G1274 de

Arabidopsis cultivadas em meios com baixo teor de nitrogênio suplementados com sacarose mais glutamina.

As plantas jovens partindo de semente de duas linhagens com superexpressão estão presentes nesta placa (não distinguidas) e ambas as linhagens continham menos antocianina que as plantas jovens partindo de semente do tipo selvagem observadas na figura 5B. A falta de produção de antocianina indicava que estas linhagens estavam menos estressadas que as plantas jovens partindo de semente de controle sob as mesmas condições, um fato confirmado posteriormente em ensaios de seca com base no solo mostrando maior tolerância à seca pelas linhagens que superexpressam G1274. A germinação com a superexpressão de G1274 (figura 5C) e com o tipo selvagem (figura 5D) também foi comparada em um ensaio de germinação no frio, em que foi descoberto que as que superexpressavam eram maiores e mais verdes que as de controle.

[0108] As figuras 6A seca com base no solo para as G1274 e as do tipo selvagem de resultados previstos após o estresse osmótico com base 35S::G1274 duraram muito mais água (figura 6A) que as plant

6D comparam os ensaios de plantas que superexpressam controle, o que confirma os desempenho dos ensaios de em placas. As linhagens após o período de falta de as de controle (figura 6B).

Esta distinção era particularmente evidente nas plantas que superexpressavam após receberem água, as ditas plantas se recuperando até um estado saudável e vigoroso, como mostrado na figura 6C. De forma inversa, nenhuma das

36/1027 plantas do tipo selvagem observadas na figura 6D se recuperou após a reidratação.

[0109] As figuras 7A e 7B comparam o cultivo da planta jovem partindo de semente de Arabidopsis que superexpressa G1792 em uma única placa (dois setores da mesma placa) com meio contendo meio com 3% de sacarose isento de nitrogênio, cinco dias após o plantio. As linhagens 35S::G1792 observadas na figura 7A exibia geralmente maior expansão de cotilédones e crescimento da raiz que as plantas jovens partindo de semente do tipo selvagem na figura 7B. A figura 7C é uma fotografia de uma única placa que mostra uma linhagem de superexpressão de

G1792 (marcada com G1792-12;

à esquerda) plantas do tipo selvagem (à direita) cinco dias após inoculação com

Botrytis cinerea, mostrando a clorose e crescimento de hifas nas últimas plantas de controle, mas não primeiras que superexpressam. Resultados similares foram obtidos cinco dias após a inoculação com Erysiphe orontii (não mostrado) e com Fusarium oxysporum, como é observado na figura 7D, com as plantas de controle à direita exibindo a clorose e as que superexpressam G1792 à esquerda parecendo estar livres dos efeitos adversos da infecção.

[0110] A figura 8A ilustra os resultados de ensaios de crescimento de raiz com plantas jovens partindo de semente superexpressando G2999 e controles em um meio com alto teor de cloreto de sódio. As oito plantas jovens partindo de semente de Arabidopsis 35S::G2999 à esquerda eram maiores, mais verdes e possuíam maior crescimento de raiz que as quatro plantas jovens partindo de semente de controle à direita. Um outro membro do clado G2999, G2998,

37/1027 também mostrava um fenótipo de tolerância ao sal e teve um desempenho similar no ensaio de estresse salino com base em placas observado na figura 8B. No último ensaio, as plantas jovens partindo de semente 35S::G2998 pareciam grandes e verdes, enquanto que as plantas jovens partindo de semente do tipo selvagem na placa de ensaio de controle mostradas na figura 8C eram pequenas e ainda não tinham aberto seus cotilédones. Como citado abaixo, os ensaios com alto teor de cloreto de sódio frequentemente são utilizados para indicar tolerância ao estresse osmótico, tal como, a tolerância à seca, que foi subsequentemente confirmada com ensaios com base no solo realizados com plantas superexpressando G2999.

[0111] A figura 9A mostra os efeitos de um ensaio térmico em plantas de Arabidopsis do tipo selvagem e superexpressando G3086. Geralmente, as que superexpressavam à esquerda eram maiores, mais pálidas e floresceram mais cedo que as plantas do tipo selvagem observadas à esquerda desta placa. Foi também observado que as mesmas linhagens que superexpressavam G3086, que são exemplificadas pelas oito plantas jovens partindo de semente à esquerda da figura 9B, eram maiores, mais verdes e possuíam maior crescimento de raiz em um ensaio de crescimento de raiz em alto teor de sal que as plantas de controle, incluindo as quatro à direita na figura 9B.

[0112] As figuras 10A e 10B comparam a recuperação de um tratamento de seca em duas linhagens de plantas Arabidopsis que superexpressam G2133 e em controles do tipo selvagem. A figura 10A mostra plantas da linhagem 5 de 35S::G2133 (esquerda) e plantas de controle (direita). A

38/1027 figura 10B mostra plantas da linhagem 3 de 35S::G2133 (esquerda) e plantas de controle (direita) . Cada vaso continha várias plantas cultivadas sob 24 horas de luz. Todas foram privadas de água durante oito dias e são mostradas após a reidratação. Todas as plantas das linhagens que superexpressavam G2133 se recuperaram e todas as plantas de controle morreram ou ficaram gravemente e adversamente afetadas pelo tratamento de seca.

Descrição Detalhada dos Exemplos de Modalidades [0113]

Em um aspecto importante, a presente invenção se refere a polinucleotídeos e a polipeptídeos, por exemplo, para a modificação de fenótipos de plantas. Ao longo de toda esta divulgação, são referidas várias fontes de informação e/ou são especificamente incorporadas. As fontes de informação incluem artigos de periódicos científicos, documentos de patentes, livros texto e endereços de páginas inativas do browser da World Wide Web, por exemplo. Embora a referência a estas fontes de informação indique claramente que podem ser utilizadas por um versado na técnica, cada um das fontes de informação citadas aqui, é especificamente incorporada em sua totalidade, seja ou não citada uma menção específica de incorporação como referência.

O conteúdo e os ensinamentos de cada uma das fontes de informação pode se basear e ser utilizada para produzir e utilizar as modalidades da invenção.

Tem que ser observado que, como utilizado aqui e nas reivindicações em anexo, as formas singulares de um, uma, a e o incluem a referência no plural a não ser que o contexto indique claramente o contrário. Assim,

39/1027 por exemplo, uma referência a uma planta inclui um grande número de tais plantas e uma referência a um estresse é uma referência a um ou mais estresses e equivalentes dos mesmos conhecidos pelos versados na técnica e assim por diante.

[0115] As sequências de polinucleotídeos da invenção codificam polipeptídeos que são membros de famílias de fatores de transcrição bem-conhecidos, incluindo famílias de fatores de transcrição vegetais, que são divulgadas nas Tabelas 4 - 9. De forma geral, os fatores de transcrição codificados pelas presentes sequências estão envolvidos na diferenciação e na proliferação de células e na regulação do crescimento. Consequentemente, um versado na técnica reconhecería que através da expressão das presentes sequências em uma planta, pode-se alterar a expressão de genes autólogos ou induzir a expressão de genes introduzidos. Afetando a expressão de sequências autólogas similares em uma planta que possui a atividade biológica das presentes sequências ou introduzindo as presentes sequências em uma planta, pode-se alterar o fenótipo de uma planta para um com características melhoradas. As sequências da invenção também podem ser utilizadas para transformar uma planta e introduzir características desejáveis não encontradas no cultivar ou na linhagem do tipo selvagem. As plantas podem então ser selecionadas em relação àquelas que produzem o grau mais desejável de super ou subexpressão de genes alvo de interesse e melhoria coincidente das características.

[0116] As sequências da presente invenção podem ser provenientes de qualquer espécie, particularmente, espécies

40/1027 vegetais, em uma forma que ocorre naturalmente ou de qualquer fonte, seja natural, sintética, semi-sintética ou recombinante. As sequências da invenção também podem incluir fragmentos das presentes sequências de aminoácidos. Neste contexto, um fragmento se refere a um fragmento de uma sequência de polipeptídeo que possui pelo menos 5 até aproximadamente 15 aminoácidos de comprimento, mais preferencialmente pelo menos 14 aminoácidos e que mantém alguma atividade biológica de um fator de transcrição. Quando a sequência de aminoácidos é citada para se referir a uma sequência de aminoácidos de uma molécula de proteína que ocorre naturalmente, não significa que sequência de aminoácidos e termos similares limitam a sequência de aminoácidos à sequência de aminoácidos nativa completa associada com a molécula de proteína citada.

[0117] Como um versado comum na técnica reconhece, os fatores de transcrição podem ser identificados através da presença de uma região ou de um domínio de similaridade ou identidade estrutural com uma sequência consenso específica ou pela presença de um sítio de ligação ao DNA ou de um motivo de sítio de ligação ao DNA consenso específico (ver, por exemplo, Riechmann e outros (2000)

Science 290: 2105-2110). Os fatores de transcrição vegetais podem pertencer a uma das famílias de fatores de transcrição a seguir: família do fator de transcrição do domínio AP2 (APETALA2) (Riechmann e Meyerowitz (1998) Biol. Chem. 379: 633-646); família do fator de transcrição MYB (ENBib; Martin e Paz-Ares (1997) Trends Genet. 13: 67-73);

família do fator de transcrição do domínio MADS (Riechmann e Meyerowitz (1997) Biol. Chem. 378: 1079-1101); a família

41/1027 da proteína WRKY (Ishiguro e Nakamura (1994) Mol. Gen. Genet. 244: 563-571); a família da proteína de repetição da anquirina (Zhang e outros (1992) Plant Cell 4: 1575-1588); a família da proteína de dedos de zinco (Z) (Klug e Schwabe (1995) FASEB J. 9: 597-604); Takatsuji (1998) Cell. Mol. Life Sci. 54:582-596); a família de proteína homeobox (HB) (Buerglin (1994) em Guidebook to the Homeobox Genes, Duboule (ed.) Oxford University Press); as proteínas de ligação ao elemento CAAT (Forsburg e Guarente (1989) Genes Dev. 3: 1166-1178); as proteínas de ligação do promotor escamoso (SPB) (Klein e outros (1996) Mol. Gen. Genet. 1996 250: 7-16); a família de proteínas NAM (Souer e outros (1996) Cell 85: 159-170); as proteínas IAA/AUX (Abel e outros (1995) J. Mol. Biol. 251: 533-549); a família de proteínas HLH/MYC (Littlewood e outros (1994) Prot. Profile 1: 639-709); a proteína de ligação ao DNA (DBP) (Tucker e outros (1994) EMBO J. 13: 2994-3002); a família bZIP de fatores de transcrição (Foster e outros (1994) FASEB J. 8: 192-200); a proteína de ligação P Box (a BPF-1) (da Costa e Silva e outros (1993) Plant J. 4: 125-135); a família do grupo de alta mobilidade (HMG) (Bustin e Reeves (1996) Prog. Nucl. Acids Res. Mol. Biol. 54: 35-100); a família scarecrow (SCR) (Di Laurenzio e outros (1996) Cell 86: 423433); a família GF14 (Wu e outros (1997) Plant Physiol. 114: 1421-1431); a família polycomb (PCOMB) (Goodrich e outros (1997) Nature 386: 44-51); a família do teosinto ramificado (TEO) (Luo e outros (1996) Nature 383: 794-799); a família ABI3 (Giraudat e outros (1992) Plant Cell 4: 1251-1261); a família da tripla hélice (TH) (Dehesh e outros (1990) Science 250: 1397-1399); a família EIL (Chao

42/1027 e outros (1997) Cell 89: 1133-44); a família AT-HOOK (Reeves e Nissen (1990) J. Biol. Chem. 265: 8573-8582); a família S1FA (Zhou e outros (1995) Nucleic Acids Res. 23: 1165-1169); a família bZIPT2 (Lu e Ferl (1995) Plant Physiol. 109: 723); a família YABBY (Bowman e outros (1999) Development 126: 2387-96); a família PAZ (Bohmert e outros (1998) EMBO J. 17: 170-80); uma família de fatores de transcrição em miscelânea (MISC) incluindo a família DPBF (Kim e outros (1997) Plant J. 11: 1237-1251) e a família

SPF1 (Ishiguro e Nakamura (1994) Mol. Gen. Genet. 244: 563571); a família GARP (Hall e outros (1998) Plant Cell 10: 925-936), a família TUBBY (Boggin e outros (1999) Science 286: 2119-2125), a família de choque térmico (Wu (1995) Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 11: 441-469), a família ENBP (Christiansen e outros (1996) Plant Mol. Biol. 32: 809821), a família RING-zinco (Jensen e outros (1998) FEBS Letters 436: 283-287), a família PDBP (Janik e outros (1989) Virology 168: 320-329), a família PCF (Cubas e outros Plant J. (1999) 18: 215-22), a família SRS (relacionada com SHI) (Fridborg e outros (1999) Plant Cell 11: 1019-1032), a família CPP (similar ao polycomb rico em cisteína) (Cvitanich e outros (2000) Proc. Natl. Acad. Sci. 97: 8163-8168), a família ARF (fator de resposta à auxina) (Ulmasov e outros (1999) Proc. Natl. Acad. Sci. 96: 58445849), a família SWI/SNF (Collingwood e outros (1999) J. Mol. Endocrinol. 23: 255-275), a família ACBF (Seguin e outros (1997) Plant Mol. Biol. 35: 281-291), a família PCGL (similar a CG-1) (da Costa e Silva e outros (1994) Plant Mol. Biol. 25: 921-924) a família ARID (Vazquez e outros (1999) Development 126: 733-742), a família Jumonji

43/1027 (Balciunas e outros (2000), Trends Biochem. Sci. 25: 274276), a família bZIP-NIN (Schauser e outros (1999) Nature 402: 191-195), a família E2F (Kaelin e outros (1992) Cell 70: 351-364) e a família similar a GRF (Knaap e outros (2000) Plant Physiol. 122: 695-704). Como indicado por qualquer parte da lista anterior e como conhecido na técnica, os fatores de transcrição foram algumas vezes categorizados em classes, família e subfamília de acordo com seu conteúdo estrutural e motivo consenso de sítio de ligação consenso, por exemplo. Muitas das classes e muitas das famílias e subfamílias estão listadas aqui. Entretanto, a inclusão de uma subfamília e não de uma outra ou a inclusão de uma família e não de uma outra, não significa que a invenção não abranja os polinucleotídeos ou os polipeptídeos de uma certa família ou subfamília. A lista fornecida aqui é meramente um exemplo dos tipos de fatores de transcrição e do conhecimento disponível em relação às sequências consenso e aos motivos consensos de sítios de ligação ao DNA que auxiliam a defini-los como conhecidos pelos versados na técnica (cada uma das referências citadas anteriormente é especificamente incorporada aqui como referência). Um fator de transcrição pode incluir, mas não está limitado a qualquer polipeptídeo que possa ativar ou reprimir a transcrição de um único gene ou de um número de genes. Este grupo de polipeptídeos inclui, mas não está limitado às proteínas de ligação ao DNA, às proteínas de ligação à proteína de ligação ao DNA, às proteínas quinases, às proteínas fosfatases, às proteínas metiltransferases, às proteínas de ligação ao GTP e aos receptores e similares.

44/1027 [0118] Em adição aos métodos para a modificação de um fenótipo de planta empregando um ou mais polinucleotídeos e polipeptídeos da invenção descritos aqui, os polinucleotídeos e os polipeptídeos da invenção possuem uma variedade de usos adicionais. Estes usos incluem seu uso na produção recombinante (isto é, expressão) de proteínas; como reguladores da expressão gênica da planta, como sondas para diagnóstico em relação à presença de ácidos nucléicos complementares ou parcialmente complementares (incluindo para a detecção de ácidos nucléicos codificadores naturais); como substratos para reações adicionais, por exemplo, reações de mutação, reações da PCR ou similares; como substratos para clonagem, por exemplo, incluindo reações de digestão ou de ligação; e para a identificação de moduladores exógenos ou endógenos dos fatores de transcrição.

Definições [0119] Molécula de ácido nucléico se refere a um oligonucleotídeo, um polinucleotídeo ou qualquer fragmento do mesmo. Esta pode ser DNA ou RNA de origem genômica ou sintética, de filamento duplo ou de filamento simples e combinada com carboidratos, lipídeos, proteína ou outros materiais para realizar uma atividade particular, tal como, a transformação ou formar uma composição útil, tal como, um ácido nucléico peptídico (PNA).

[0120] Polinucleotídeo é uma molécula de ácido nucléico que compreende um grande número de nucleotídeos polimerizados, por exemplo, pelo menos aproximadamente 15 nucleotídeos polimerizados consecutivos, opcionalmente pelo menos aproximadamente 30 nucleotídeos consecutivos, pelo

45/1027 menos aproximadamente 50 nucleotídeos consecutivos. Um polinucleotídeo pode ser um ácido nucléico, um oligonucleotídeo, um nucleotídeo ou qualquer fragmento dos mesmos. Em muitos exemplos, um polinucleotídeo compreende uma sequência de nucleotídeos que codifica um polipeptídeo (ou proteína) ou um domínio ou fragmento do mesmo. Adicionalmente, o polinucleotídeo pode compreender um promotor, um íntron, uma região intensificadora, um sítio de poliadenilação, um sítio de início da tradução, regiões não-traduzidas a 5' ou a 3', um gene repórter, um marcador selecionável ou similares. O polinucleotídeo pode ser um DNA ou um RNA de filamento simples ou de filamento duplo. O polinucleotídeo compreende opcionalmente bases modificadas

ou uma cadeia	principal	modificada. O polinucleotídeo pode
ser, por exemplo, DNA	ou RNA	genômico,	um produto	da
transcrição (	tal como,	um mRNA)	, um cDNA,	um produto	da
PCR, um DNA	clonado,	um DNA	ou um RNA	sintético	ou
similares. O	polinucleotídeo	pode ser	combinado	com
carboidratos,	lipídeos,	proteína	ou outros	materiais para

realizar uma atividade particular, tal como, a transformação ou formar uma composição útil tal como, um ácido nucléico peptídico (PNA). O polinucleotídeo pode compreender uma sequência na orientação senso ou antisentido. Oligonucleotídeo é substancialmente equivalente aos termos amplímero, iniciador, oligômero, elemento, alvo e sonda e preferencialmente possui filamento simples.

[0121] Gene ou sequência gênica se refere à sequência codificadora parcial ou completa de um gene, seu complemento e suas regiões não-traduzidas a 5' ou a 3'. Um gene é também uma unidade funcional de herança e em termos

46/1027 físicos é um segmento ou sequência particular de nucleotídeos junto com uma molécula de DNA (ou RNA, no caso de vírus de RNA) envolvida na produção de uma cadeia polipeptídica. A última pode ser submetida ao processamento subsequente, tal como, o processamento e o dobramento para a obtenção de uma proteína ou um polipeptídeo funcional. Um gene pode ser isolado, parcialmente isolado ou encontrado com o genoma de um organismo. Com a finalidade de exemplo, um gene de fator de transcrição codifica um polipeptídeo do fator de transcrição, que pode ser funcional ou requerer processamento para funcionar como um iniciador da transcrição.

[0122] De forma operacional, os genes podem ser definidos através do teste de cis-trans, um teste genético que determina se duas mutações ocorreram no mesmo gene e que podem ser utilizadas para determinar os limites da unidade geneticamente ativa (Rieger e outros (1976) Glossary of Genetics and Cytogenetics: Classical and Molecular, 4^a ed., Springer Verlag. Berlim). Um gene inclui geralmente regiões que os precedem (líderes; a montante) e que os sucedem (trailers; a jusante) da região codificadora. Um gene também pode incluir sequências não codificadoras intermediárias, referidas como íntrons, localizadas entre os segmentos codificadores individuais, referidos como exons. A maior parte dos genes possuem uma região promotora associada, uma sequência reguladora 5' do códon de início da transcrição (há alguns genes que não possuem um promotor que pode identificado). A função de um gene também pode ser regulada por intensificadores, operadores e outros elementos reguladores.

47/1027 [0123] Um polinucleotídeo recombinante é um polinucleotídeo que não está em seu estado nativo, por exemplo, o polinucleotídeo compreende uma sequência de nucleotídeos não encontrada na natureza ou o polinucleotídeo está em um contexto sem ser aquele em que é naturalmente encontrado, por exemplo, separado das sequências de nucleotídeos com as quais fica tipicamente em proximidade na natureza ou adjacente (ou contíguo com) sequências de nucleotídeos com as quais não fica tipicamente em proximidade.

Por exemplo, a sequência em

questão pode	ser	clonada em um vetor	ou recombinada	de
outra maneira	com	um ou	mais ácidos nucléicos adicionais.
[0124]	Um	polinucleotídeo	isolado é	um
polinucleotídeo,	seja	que ocorre	naturalmente	ou
recombinante,	que	está	presente fora	da célula em que	é

tipicamente encontrado na natureza, seja purificado ou não.

Opcionalmente, um polinucleotídeo isolado é submetido a um ou mais procedimentos de enriquecimento ou de purificação, por exemplo, lise celular, extração, centrifugação, precipitação ou similares.

[0125] Um polipeptídeo é uma sequência de aminoácidos que compreende um grande número de resíduos de aminoácidos polimerizados, por exemplo, pelo menos aproximadamente 15 resíduos de aminoácidos polimerizados consecutivos, opcionalmente pelo menos aproximadamente 30 resíduos de aminoácidos polimerizados consecutivos, pelo menos aproximadamente 50 resíduos de aminoácidos polimerizados consecutivos.

Em muitos exemplos, um polipeptídeo compreende uma sequência de resíduos de aminoácidos polimerizados que é um fator de transcrição ou

48/1027 um domínio ou uma parte ou um fragmento do mesmo. Adicionalmente, o polipeptídeo pode compreender 1) um domínio de localização, 2) um domínio de ativação, 3) um domínio de repressão, 4) um domínio de oligomerização ou 5) um domínio de ligação ao DNA ou similar. O polipeptídeo compreende opcionalmente resíduos de aminoácidos modificados, resíduos de aminoácidos que ocorrem naturalmente não codificados por um códon, resíduos de aminoácidos que não ocorrem naturalmente.

aminoácidos, polipeptídeo

Proteína se refere a um oligopeptídeo, ou partes dos mesmos uma sequência um peptídeo, sejam que de um ocorrem naturalmente ou sintéticas.

Parte, como utilizado aqui, se refere a qualquer parte de uma proteína utilizada para qualquer finalidade, mas especialmente para a seleção de uma biblioteca de moléculas que se ligam especificamente a tal parte ou para a produção de anticorpos.

[0128] polipeptídeo

Um polipeptídeo recombinante é um produzido através da tradução de um polinucleotídeo recombinante. Um polipeptídeo sintético é um polipeptídeo criado pela polimerização consecutiva de resíduos de aminoácidos isolados utilizando métodos bem conhecidos na técnica. Um polipeptídeo isolado, seja que ocorre naturalmente ou um polipeptídeo recombinante, é mais enriquecido dentro (ou fora) de uma célula do que o polipeptídeo em seu estado natural em uma célula do tipo selvagem, por exemplo, mais que aproximadamente 5% enriquecido, mais que aproximadamente 10% enriquecido ou mais que aproximadamente 20% enriquecido ou mais que

49/1027 aproximadamente 50% ou mais enriquecido, isto é, alternativamente indicado: 105%, 110%, 120%, 150% ou mais, enriquecido em relação ao tipo selvagem padronizado em 100%. Tal enriquecimento não é o resultado de uma resposta natural de uma planta do tipo selvagem. Alternativamente ou adicionalmente, o polipeptídeo isolado é separado dos outros componentes celulares com os quais está tipicamente associado, por exemplo, através de qualquer um dos vários métodos de purificação contidos aqui.

[0129] Homologia se refere à similaridade de sequência entre uma sequência de referência e pelo menos um fragmento de um inserto de clone recentemente sequenciado ou sua sequência de aminoácidos codificada.

[0130] Complexo de hibridização se refere a um complexo entre duas moléculas de ácido nucléico por causa da formação de pontes de hidrogênio entre as purinas e as pirimidinas.

[0131] Identidade ou similaridade se refere à similaridade entre duas sequências de polinucleotídeos ou entre duas sequências de polipeptídeos, com a identidade sendo uma comparação mais estrita. As expressões identidade percentual e % de identidade se referem à

porcentagem da	similaridade	de sequências	encontradas	em
uma comparação	de	duas	ou mais	sequências	de
polinucleotídeos	ou	duas	ou mais	sequências	de
polipeptídeos.	Similaridade	de sequência	se refere	à

similaridade percentual na sequência de pares de bases (que é determinada através de qualquer método adequado) entre duas ou mais sequências de polinucleotídeos. Duas ou mais sequências podem ter qualquer uma de 0-100% de similaridade

50/1027 ou qualquer valor inteiro entre essa faixa. A identidade ou a similaridade pode ser determinada através da comparação de uma posição em cada sequência que pode ser alinhada com a finalidade de comparação. Quando uma posição na sequência comparada for ocupada pela mesma base de nucleotídeo ou aminoácido, então as moléculas são idênticas em tal posição. Um grau de similaridade ou de identidade entre as sequências de polinucleotídeos é uma função do número de nucleotídeos idênticos ou que combinam nas posições compartilhadas pelas sequências de polipeptídeos. Um grau de homologia ou similaridade das sequências de polipeptídeos é uma função do número de aminoácidos nas posições compartilhadas pelas sequências de polipeptídeos.

[0132] O termo motivo consenso de aminoácidos se refere à posição ou à subsequência de uma sequência polipeptídeos que é substancialmente conservada entre de os fatores de transcrição de polipeptídeos listados na

Listagem de

Sequências.

[0133]

Alinhamento se refere a um número de sequências de

DNA ou de aminoácidos alinhadas através da comparação do comprimento de forma que os componentes em comum (isto é, bases de nucleotídeos ou resíduos de aminoácidos) possam ser facilmente graficamente identificados. O número de componentes em comum está relacionado com a homologia ou a identidade entre as sequências.

Os alinhamentos podem ser utilizados para identificar domínios conservados e relações dentro destes domínios. Um alinhamento pode ser adequadamente determinado através de programas de computador conhecidos na técnica, tal como, MacVector (1999) (Accelrys, Inc., São Diego, CA).

51/1027 [0134] Um domínio conservado ou uma região conservada, como utilizado aqui, se refere a uma região nas sequências de polinucleotídeos ou de polipeptídeos heterólogos em que haja um grau relativamente alto de identidade de sequência entre as sequências distintas.

[0135] Em relação aos polinucleotídeos que codifica os fatores de transcrição divulgados atualmente, uma região conservada possui preferencialmente pelo menos 10 pares de bases (pb) de comprimento.

[0136] Um domínio conservado, em relação aos polipeptídeos divulgados atualmente se refere a um domínio dentro de uma família de fatores de transcrição que exibe um grau maior de homologia de sequência, tal como, pelo menos 26% de similaridade de sequência, pelo menos 16% de identidade de sequência, preferencialmente pelo menos 40% de identidade de sequência, preferencialmente pelo menos 65% de identidade de sequência incluindo substituições conservativas e mais preferencialmente pelo menos 80% de identidade de sequência e ainda mais preferencialmente pelo menos 85% ou pelo menos aproximadamente 86% ou pelo menos aproximadamente 87% ou pelo menos aproximadamente 88% ou pelo menos aproximadamente 90% ou pelo menos aproximadamente 95% ou pelo menos aproximadamente 98% de identidade de sequência de resíduos de aminoácidos de um polipeptídeo de resíduos de aminoácidos consecutivos. Um fragmento ou um domínio pode ser referido como fora do domínio conservado, fora de uma sequência consenso ou fora de um sítio consenso de ligação ao DNA que se sabe que existe ou que existe para uma classe, família ou subfamília particular de fatores de transcrição. Neste caso, o

52/1027 fragmento ou o domínio não incluirá os aminoácidos exatos de uma sequência consenso ou de um sítio consenso de ligação de DNA consenso de uma classe, família ou subfamília de fatores de transcrição ou os aminoácidos exatos de uma sequência particular de fator de transcrição ou de um sítio consenso de ligação ao DNA. Além disso, um fragmento, uma região ou um domínio particular de um polipeptídeo ou de um polinucleotídeo que codifica um polipeptídeo, pode estar fora de um domínio conservado se todos os aminoácidos do fragmento, região ou domínio ficarem fora de um (ou mais) domínio(s) conservado(s) definido(s) para um polipeptídeo ou uma proteína. As sequências que possuem graus menores de identidade, mas atividade biológica comparável, são consideradas como sendo equivalentes.

[0137]

Como um versado comum na técnica reconhece, os domínios conservados podem ser identificados como regiões ou domínios de identidade com uma sequência consenso específica (ver, por exemplo,

Riechmann e outros (2000) supra). Assim, utilizando métodos de alinhamento bem-conhecidos na técnica, os domínios conservados dos fatores de transcrição vegetais para cada um dos seguintes podem ser determinados: a família do domínio do fator de transcrição (APETALA2) (Riechmann e Meyerowitz (1998) supra; a família do fator de transcrição MYB (ENBib; Martin e Paz-Ares (1997) supra); a família do domínio do fator de transcrição MADS (Riechmann e Meyerowitz (1997) supra; Immink e outros (2003) supra); a família de proteínas WRKY (Ishiguro e Nakamura (1994) supra); a família de proteínas de repetição da anquirina (Zhang e outros (1992) supra); a

53/1027 família da proteína de dedos de zinco (Z) (Klug e Schwabe (1995) supra; Takatsuji (1998) supra); a família de proteínas homeobox (HB) (Buerglin (1994) supra); as proteínas de ligação ao elemento CAAT (Forsburg e Guarente (1989) supra); as proteínas de ligação ao promotor escamoso (SPB) (Klein e outros (1996) supra); a família de proteínas NAM (Souer e outros (1996) supra); as proteínas IAA/AUX (Abel e outros (1995) supra); a família de proteínas HLH/MYC (Littlewood e outros (1994) supra); a família de proteínas de ligação ao DNA (DBP) (Tucker e outros (1994) supra); a família dos fatores de transcrição bZIP (Foster e outros (1994) supra); a família das proteínas de ligação ao Box P (the BPF-1) (da Costa e Silva e outros (1993) supra); a família do grupo de alta mobilidade (HMG) (Bustin e Reeves (1996) supra); a família scarecrow (SCR) (Di Laurenzio e outros (1996) supra); a família GF14 (Wu e outros (1997) supra); a família polycomb (PCOMB) (Goodrich e outros (1997) supra); a família do teosinto ramificado (TEO) (Luo e outros (1996) supra); a família ABI3 (Giraudat e outros (1992) supra); a família da tripla hélice (TH) (Dehesh e outros (1990) supra); a família EIL (Chao e outros (1997) Cell supra); a família AT-HOOK (Reeves e Nissen (1990 supra); a família S1FA (Zhou e outros (1995) supra); a família bZIPT2 (Lu e Ferl (1995) supra); a família YABBY (Bowman e outros (1999) supra); a família PAZ (Bohmert e outros (1998) supra); uma família de fatores de transcrição de miscelânea (MISC) incluindo a família DPBF (Kim e outros (1997) supra) e a família SPF1 (Ishiguro e Nakamura (1994) supra); a família GARP (Hall e outros (1998) supra), a família TUBBY (Boggin e outros (1999)

54/1027

supra),	a família de	choque	térmico (Wu (1995	supra),	a
família	ENBP (Christiansen	e outros	(1996)	supra),	a
família	RING-zinco (	Jensen	e outros	(1998)	supra),	a
família	PDBP (Janik e	outros	(1989) supra), a	família PCF
(Cubas e	outros (1999)	supra),	a família	SRS (relacionada	a

SHI) (Fridborg e outros (1999) supra), a família CPP (similar a polycomb rico em cisteína) (Cvitanich e outros (2000) supra), a família ARF (fator de resposta à auxina) (Ulmasov e outros (1999) supra), a família SWI/SNF (Collingwood e outros (1999) supra), a família ACBF (Seguin e outros (1997) supra), a família PCGL (similar a CG-1) (da

Costa e

Silva e outros (1994) supra) a família ARID (Balciunas (Schauser outros (1999) supra), e outros (2000) supra), outros (1999) supra), a outros (1992) outros (2000) [0138] polipeptídeos

SEQ ID

Tabela possuem família família família

E2F

Jumonj i bZIP-NIN (Kaelin e supra) e a família similar a supra).

Os da

N- ímpar:

5. Ainda, domínios

GRF (Knaap e domínios

SEQ ID N^o:

1, 3 5, conservados

2N, em que muitos dos conservados

759) para cada um dos

1-335 (que estão listados polipeptídeos da Tabela indicados é, na especificamente pelos sítios de início e de término. Uma comparação das regiões dos polipeptídeos na SEQ ID N^o: 2N, em que N = 1335 (que é, SEQ ID N^o: 2, 4, 6, 8 ...760) ou as da Tabela 5, permite que um versado na técnica identifique domínio(s) conservado(s) para qualquer um dos polipeptídeos listados ou referidos nesta divulgação, incluindo aqueles nas Tabelas 4 - 9.

[0139] Complementar se refere à ponte de

55/1027 hidrogênio natural através do pareamento de bases entre purinas e pirimidinas. Por exemplo, a sequência A-C-G-T (5' -> 3') forma pontes de hidrogênio com seus complementos AC-G-T (5' -> 3') ou A-C-G-U (5' -> 3'). Duas moléculas de filamento duplo podem ser consideradas parcialmente complementares, se somente parte dos nucleotídeos se ligarem ou completamente complementares se todos os nucleotídeos se ligarem. O grau de complementaridade entre os filamentos de ácidos nucléicos afeta a eficiência e a resistência da hibridização e as reações de amplificação. Completamente complementar se refere ao caso em que a ligação ocorre entre cada par de bases e seu complemento em um par de sequências e as duas sequências possuem o mesmo número de nucleotídeos.

[0140] Os termos altamente rigorosa ou condição altamente rigorosa se referem às condições que permitem a hibridização de filamentos de DNA cujas sequências são altamente complementares, em que as mesmas condições excluem a hibridização de DNAs com pareamento significativamente errado. As sequências de polinucleotídeos capazes de se hibridizarem sob condições rigorosas com os polinucleotídeos da presente invenção podem ser, por exemplo, variações das sequências de polinucleotídeos divulgadas, incluindo variações alélicas ou de processamento ou sequências que codificam ortólogos ou parálogos dos polipeptídeos divulgados atualmente. Os métodos de hibridização de ácidos nucléicos são divulgados em detalhes por Kashima e outros (1985) Nature 313:402-404 e Sambrook e outros (1989) Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 2^a Ed., Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring

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Harbor, N.Y (Sambrook); e por Haymes e outros, Nucleic Acid Hybridization: A Practical Approach, IRL Press, Washington, D.C. (1985), cujas referências são incorporadas aqui como referência.

[0141] Em geral, o rigor é determinado pela temperatura, pela força iônica e pela concentração dos agentes desnaturantes (por exemplo, formamida) utilizados em um procedimento de hibridização e de lavagem (para uma descrição mais detalhada do estabelecimento e da determinação do rigor, ver abaixo). O grau até o qual dois ácidos nucléicos se hibridizam sob várias condições de rigor está correlacionado com a extensão de sua similaridade. Assim, as sequências de ácidos nucléicos de uma variedade de fontes, tal como, de dentro do genoma de uma planta (como no caso dos parálogos) ou de uma outra planta (como no caso dos ortólogos) que podem realizar funções similares, podem ser isoladas com base em sua capacidade de se hibridizar com as sequências conhecidas do fator de transcrição. Inúmeras variações são possíveis nas condições e nos meios através dos quais a hibridização de ácidos nucléicos pode ser realizada para isolar sequências de fatores de transcrição que possuem similaridade com as sequências de fatores de transcrição conhecidas na técnica e não estão limitadas às explicitamente divulgadas aqui. Tal abordagem pode ser utilizada para isolar sequências de polinucleotídeos que possuem vários graus de similaridade com as sequências de fatores de transcrição divulgadas, tais como, por exemplo, fatores de transcrição que possuem 60% de identidade ou mais preferencialmente mais de aproximadamente 70% de identidade, mais preferencialmente

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72% de identidade ou uma identidade maior com os fatores de transcrição divulgados.

[0142] O termo equivalente descreve membros de um grupo de proteínas homólogas que são conservadas em relação à função por causa de seu último progenitor comum. As proteínas relacionadas são agrupadas em famílias de equivalentes e de outra maneira em famílias de proteínas com outros tipos de homólogos definidos hierarquicamente. Esta definição é fornecida no Institute for Genomic Research (TIGR) world wide web (www) website, tigr.org com o título de Terms associated with TIGRFAMs.

[0143] O termo variação, como utilizado aqui, pode se referir a polinucleotídeos ou a polipeptídeos, que diferem dos polinucleotídeos ou dos polipeptídeos divulgados atualmente, respectivamente, em sequência um dos outros e como apresentado abaixo.

[0144] Em relação às variações de polinucleotídeos, as diferenças entre as variações dos polinucleotídeos e dos polipeptídeos divulgadas atualmente são limitadas de forma que as sequências de nucleotídeo dos primeiros e dos últimos são intimamente similares de forma global e, em muitas regiões, idênticas. Por causa da degeneração do código genético, as diferenças entre as primeiras e as últimas sequências de nucleotídeos podem ser silenciosas (isto é, os aminoácidos codificados pelo polinucleotídeo são os mesmos e a variação da sequência de polinucleotídeo codifica a mesma sequência de aminoácidos que o polinucleotídeos divulgado atualmente). As variações de sequências de nucleotídeos podem codificar sequências de aminoácidos diferentes, em cujo caso tais diferenças de

58/1027 nucleotídeos resultarão em substituições, adições, deleções, inserções, truncamentos ou fusões em relação às sequências de polinucleotídeos similares divulgadas. Estas variações resultam em variações de polinucleotídeos que compartilham pelo menos uma característica funcional. A degeneração do código genético também determina que muitas variações diferentes de polinucleotídeos podem codificar polipeptídeos idênticos e/ou substancialmente similares em adição às sequências ilustradas na Listagem de Sequências.

[0145] Ainda dentro do âmbito da invenção há uma variação de um ácido nucléico de fator de transcrição listado na Listagem de Sequências, ou seja, uma que possui uma sequência que difere de uma das sequências de polinucleotídeos na Listagem de Sequências ou uma sequência complementar, que codifica um polipeptídeo funcionalmente equivalente (isto é, um polipeptídeo que possui algum grau de atividade equivalente ou biológica similar), mas difere em sequência da sequência na Listagem de Sequências, por causa da degeneração do código genético. Estão incluídos nesta definição os polimorfismos que podem ou não ser facilmente detectados utilizando uma sonda de oligonucleotídeo particular do polinucleotídeo que codifica o polipeptídeo e a hibridização imprópria ou inesperada com variações alélicas, com um lócus sem ser o lócus cromossômico normal para a sequência de polinucleotídeo que codifica o polipeptídeo.

[0146] Variação alélica ou variação alélica de polinucleotídeo se refere a qualquer uma de duas ou mais formas alternativas de um gene que ocupa o mesmo lócus cromossômico. As variações alélicas surgem naturalmente

59/1027 através de mutação e podem resultar no polimorfismo fenotípico dentro das populações. As mutações gênicas podem ser silenciosas ou podem codificar polipeptídeos que possuem uma sequência de aminoácidos alterada. Variação alélica e variação alélica de polipeptídeos também podem ser utilizados em relação a polipeptídeos e neste caso o termo se refere a um polipeptídeo codificado por uma variação alélica de um gene.

[0147] Variação de processamento ou variação de processamento de polinucleotídeos como utilizado aqui se refere a formas alternativas do RNA transcrito partindo de um gene. A variação de processamento ocorre naturalmente como um resultado de sítios alternativos que são processados dentro de uma molécula de RNA isolada ou entre moléculas de RNA transcritas separadamente e pode resultar em várias formas diferentes de mRNA transcritos partindo do mesmo gene. Estas variações de processamento podem codificar polipeptídeos que possuem sequências de aminoácidos diferentes, que podem ou não ter funções similares no organismo. Variação de processamento ou variação de processamento de polipeptídeos pode também se referir a um polipeptídeo codificado por uma variação de processamento de um mRNA transcrito.

[0148] Como utilizado aqui, variações de polinucleotídeos também pode se referir a sequências de polinucleotídeos que codificam parálogos e ortólogos das sequências de polipeptídeos divulgadas atualmente. Variações de polipeptídeos pode se referir a sequências de polipeptídeos que são parálogas e ortólogas das sequências de polipeptídeos divulgadas atualmente.

60/1027 [0149] As diferenças entre os polipeptídeos e as variações de polipeptídeos divulgados aqui são limitadas de forma que as sequências dos primeiros e dos últimos são intimamente similares de forma global e, em algumas regiões, idênticas.As sequências de polipeptídeos e as variações similares de polipeptídeos divulgadas aqui podem diferir na sequência de aminoácidos em uma ou mais substituições, adições, deleções, fusões e truncamentos, que podem estar presentes em qualquer combinação. Estas diferenças podem produzir alterações silenciosas e resultar em um fator de transcrição funcionalmente equivalente. Assim, será facilmente considerado pelos versados na técnica, que qualquer uma de uma variedade de sequências de polinucleotídeos é capaz de codificar os fatores de transcrição e polipeptídeos homólogos aos fatores de transcrição da invenção. Uma variação de sequência de polipeptídeos pode ter alterações conservativas, em que um possui propriedades estruturais ou químicas similares. Podem assim ser feitas substituições deliberadas de aminoácidos com base na similaridade na polaridade, na carga, na solubilidade, na hidrofobicidade, na hidrofilicidade e/ou na natureza anfipática dos resíduos, contanto que a atividade funcional ou biológica do fator de transcrição seja mantida. Por exemplo, aminoácidos carregados negativamente podem incluir o ácido aspártico e o ácido glutâmico, aminoácidos carregados positivamente podem incluir a lisina e a arginina e aminoácidos com grupos de extremidade polar não carregada que possuem valores de hidrofilicidade similares podem incluir a leucina, a isoleucina e a valina; a glicina e a alanina; a

61/1027 asparagina e a glutamina; a serina e a treonina; e a fenilalanina e a tirosina (para maiores detalhes sobre as substituições conservativas, ver a Tabela 2) . Mais raramente, uma variação pode possuir alterações nãoconservativas, por exemplo, a substituição de uma glicina por um triptofano. As variações similares de menor importância também podem incluir deleções ou inserções de aminoácidos ou ambas. Os polipeptídeos relacionados podem compreender, por exemplo, adições e/ou deleções de um ou mais sítios de glicosilação ligados ao N ou ligados ao O ou uma adição e/ou uma deleção de um ou mais resíduos de cisteína. O guia na determinação de quais e quantos resíduos de aminoácidos podem ser substituídos, inseridos ou deletados sem abolir a atividade funcional ou biológica pode ser encontrado utilizando programas de computador bemconhecidos na técnica, por exemplo, o software DNASTAR (ver USPN 5.840.544).

[0150] Ligante se refere a qualquer molécula, agente ou composto que se ligará especificamente a um sítio complementar em uma molécula de ácido nucléico ou uma proteína. Tais ligantes estabilizam ou modulam a atividade de moléculas de ácidos nucléicos ou de proteínas da invenção e podem ser compostos de pelo menos um dos seguintes: substâncias inorgânicas e orgânicas incluindo ácidos nucléicos, proteínas, carboidratos, gorduras e lipídeos.

[0151] Modular se refere a uma alteração na atividade (biológica, química ou imunológica) do tempo de vida resultante da ligação específica entre uma molécula e uma molécula de ácido nucléico ou uma proteína.

62/1027 [0152] O termo planta inclui plantas inteiras, órgãos/estruturas vegetativas de brotos (por exemplo, folhas, caules e tubérculos), raízes, flores e órgãos/estruturas florais (por exemplo, brácteas, sépalas, pétalas, estames, carpelos, anteras e óvulos), semente (incluindo embrião, endosperma e revestimento da semente) e fruto (o ovário maduro), tecido vegetal (por exemplo, tecido vascular, tecido enterrado e similares) e células (por exemplo, células guardas, células ovo e similares) e a progênie das mesmas.

A classe de plantas que pode ser utilizada no método da invenção, é geralmente tão ampla quanto a classe de plantas superiores e inferiores tratáveis com técnicas de transformação, incluindo as angiospermas (plantas monocotiledôneas e dicotiledôneas), gimnospermas, samambaias, cavalinhas, psilófitas, licófitas, briófitas e algas pluricelulares. (Ver, por exemplo, a figura 1, adaptada de Daly e outros (2001) Plant Physiol. 127: 1328-1333; a figura 2, adaptada de Ku e outros (2000) Proc. Natl. Acad. Sci. 97: 9121-9126; e ver também Tudge em The Variety of Life, Oxford University Press, Nova York, NY (2000) pp. 547-606).

[0153] Uma planta transgênica se refere a uma planta que contém material genético não encontrado em uma planta do tipo selvagem da mesma espécie, variedade ou cultivar. O material genético pode incluir um transgene, um evento de mutagênese de inserção (tal como, através da mutagênese de inserção por transposon ou de um T-DNA), uma sequência marcadora de ativação, uma sequência mutada, um evento de recombinação homóloga ou uma sequência modificada por quimeraplastia.

63/1027 [0154] Tipicamente, o material genético estranho foi introduzido na planta através da manipulação humana, mas qualquer método pode ser utilizado como um versado na técnica pode reconhecer.

[0155] Uma planta transgênica pode conter um vetor ou um cassete de expressão. O cassete de expressão compreende tipicamente uma sequência, que codifica um polipeptídeo, ligada de forma operacional (isto é, sob o controle regulador de) a sequências reguladoras que podem ser induzidas ou constitutivas apropriadas que permitem a expressão do polipeptídeo. O cassete de expressão pode ser introduzido em uma planta através de transformação ou através de reprodução após a transformação de uma planta parental. Uma planta se refere a uma planta inteira assim como a uma parte da planta, tal como, semente, fruto, folha ou raiz, tecido vegetal, células vegetais ou qualquer outro material vegetal, por exemplo, um explante vegetal, assim como uma progênie da mesma e a sistemas in vitro que imitam componentes ou processos bioquímicos ou celulares em uma célula.

[0156] Planta de controle se refere a uma planta que serve como um padrão de comparação para testar os resultados de um tratamento ou de uma alteração genética ou o grau da expressão alterada de um gene ou produto gênico. Os exemplos de plantas de controle incluem plantas que não são tratadas ou inalteradas geneticamente (isto é, do tipo selvagem).

[0157] Tipo selvagem, como utilizado aqui, se refere a uma célula, um tecido ou uma planta que não foi geneticamente modificada para nocautear ou superexpressar

64/1027 um ou mais dos fatores de transcrição divulgados aqui. As células, os tecidos ou as plantas do tipo selvagem podem ser utilizadas como controles para comparar níveis de expressão e a extensão e a natureza da modificação das características de células, tecidos ou plantas em que a expressão do fator de transcrição é alterada ou expressa de forma ectópica, por exemplo, naquele que foi nocauteado ou superexpresso.

[0158] Fragmento, em relação a um polinucleotídeo, se refere a um clone ou a qualquer parte de uma molécula de polinucleotídeo que mantém uma característica funcional que pode ser utilizada. Os fragmentos úteis incluem oligonucleotídeos e polinucleotídeos que podem ser utilizados nas tecnologias de hibridização ou de amplificação ou na regulação da replicação, da transcrição ou da tradução. Um fragmento de polinucleotídeo se refere a qualquer subsequência de um polinucleotídeo, tipicamente de pelo menos aproximadamente 9 nucleotídeos consecutivos, preferencialmente pelo menos aproximadamente 30 nucleotídeos, mais preferencialmente pelo menos aproximadamente 50 nucleotídeos de qualquer uma das sequências fornecidas aqui. Os exemplos de fragmentos de polinucleotídeo são os primeiros sessenta nucleotídeos consecutivos dos polinucleotídeos dos fatores de transcrição listados na Listagem de Sequências. Os exemplos de fragmentos também incluem fragmentos que compreendem uma região que codifica um domínio conservado de um fator de transcrição.

[0159] Os fragmentos também podem incluir subsequências de polipeptídeos de moléculas de proteínas ou

65/1027 uma subsequência do polipeptídeo. Os fragmentos podem ter usos pelo fato de que podem possuir potencial antigênico. Em alguns casos, o fragmento ou o domínio é uma subsequência do polipeptídeo que realiza pelo menos uma função biológica do polipeptídeo intacto substancialmente da mesma maneira ou até uma extensão similar, como faz o polipeptídeo intacto. Por exemplo, um fragmento de polipeptídeo pode compreender um motivo estrutural ou um domínio funcional que pode ser reconhecido, tal como, um sítio de ligação ao DNA ou um domínio que se liga a uma região promotora do DNA, um domínio de ativação ou um domínio para interações proteína-proteína e pode iniciar a transcrição. Os fragmentos podem variar em tamanho desde tão poucos quanto 3 aminoácidos até o comprimento completo do polipeptídeo intacto, mas possuem preferencialmente pelo menos aproximadamente 30 aminoácidos de comprimento e mais preferencialmente pelo menos aproximadamente 60 aminoácidos de comprimento. Os exemplos de fragmentos de polipeptídeos são os primeiros vinte aminoácidos consecutivos de uma proteína de mamífero codificada pelos primeiros vinte aminoácidos consecutivos dos polipeptídeos do fator de transcrição listados na Listagem de Sequências. Os exemplos de fragmentos incluem ainda fragmentos que compreendem um domínio conservado de um fator de transcrição, por exemplo, os resíduos de aminoácidos 11-80 de G47 (SEQ ID N^o: 12),

como citado	na	Tabela 5.
[0160]		A invenção	abrange ainda	a produção de
sequências	de	DNA que codificam fatores	de transcrição e
derivados	de	fatores de	transcrição ou	fragmentos dos

mesmos, totalmente através da química sintética. Após a

66/1027 produção, a sequência sintética pode ser inserida em qualquer um dos muitos vetores de expressão disponíveis e sistemas celulares utilizando reagentes bem-conhecidos na técnica. Além disso, a química sintética pode ser utilizada para introduzir mutações em uma sequência que codifica fatores de transcrição ou qualquer fragmento da mesma.

[0161] Derivado se refere à modificação química de uma molécula de ácido nucléico ou de uma sequência de aminoácidos. As modificações químicas podem incluir a substituição do hidrogênio por um grupo alquila, acila ou amino ou pela glicosilação, peguilação ou qualquer processo similar que mantenha ou aumente a atividade biológica ou o tempo de vida da molécula ou da sequência.

[0162] Uma característica se refere a uma característica fisiológica, morfológica, bioquímica ou física de uma planta ou de um material ou uma célula vegetal particular. Em alguns casos, esta característica é visível ao olho humano, tal como, o tamanho da semente ou da planta ou pode ser medida através de técnicas bioquímicas, tal como, a detecção do teor de proteínas, de amido ou de óleos de sementes ou folhas ou através da observação de um processo metabólico ou fisiológico, por exemplo, através da medida da captação de dióxido de carbono ou através da observação do nível de expressão de um gene ou genes, por exemplo, empregando a análise de Northern, a RT-PCR, os ensaios de expressão gênica em microarranjos ou os sistemas de expressão de genes repórteres ou através de observações agrícolas, tal como, tolerância a estresses, rendimento ou tolerância a agentes patogênicos. Entretanto, qualquer técnica pode ser

67/1027 utilizada para medir a quantidade, o nível comparativo ou a diferença em qualquer composto ou macromolécula química nas plantas transgênicas.

[0163] Modificação das características se refere a uma diferença detectável em uma característica em uma planta que expressa de forma ectópica um polinucleotídeo ou um polipeptídeo da presente invenção em relação a uma planta que não faz isso, tal como, uma planta do tipo selvagem.

Em alguns casos, a modificação das características pode ser avaliada de forma quantitativa.

Por exemplo, a modificação de características pode impor pelo um aumento ou um decréscimo de menos aproximadamente

2% em uma característica observada (diferença), pelo menos uma diferença de 5%, pelo menos aproximadamente uma diferença de

10%, pelo menos uma diferença de aproximadamente

20%, pelo menos de aproximadamente

30%, pelo menos de aproximadamente

50%, pelo menos aproximadamente

70% ou pelo menos aproximadamente uma diferença de 100% ou ainda maior comparada com uma planta do tipo selvagem. É sabido que pode haver uma variação natural em uma característica modificada.

Portanto, a modificação da característica observada impõe uma alteração da distribuição normal da característica nas plantas comparadas com a distribuição observada nas plantas do tipo selvagem.

termo perfil do produto da transcrição se refere aos níveis de expressão de um conjunto de genes em uma célula em um estado particular, particularmente através da comparação com os níveis de expressão do mesmo conjunto de genes em uma célula do mesmo tipo em um estado

68/1027 de referência. Por exemplo, o perfil do produto da transcrição de um fator de transcrição particular em uma célula em suspensão é constituído pelos níveis de expressão de um conjunto de genes em uma célula que superexpressa o fator de transcrição comparados com os níveis de expressão do mesmo conjunto de genes em uma célula em suspensão que possui níveis normais de tal fator de transcrição. O perfil do produto da transcrição pode ser apresentado na forma de uma lista dos genes cujo nível de expressão é significativamente diferente entre os dois tratamentos e as proporções de diferenças. As diferenças e as similaridades entre os níveis de expressão podem também ser avaliadas e calculadas utilizando métodos estatísticos e de agrupamento.

[0165] Expressão ectópica ou expressão alterada em referência a um polinucleotídeos indica que o padrão de expressão, por exemplo, em uma planta ou tecido vegetal transgênico, é diferente do padrão de expressão em uma planta do tipo selvagem ou uma planta de referência da mesma espécie. O padrão de expressão pode ser também comparado com um padrão de expressão de referência em uma planta do tipo selvagem da mesma espécie. Por exemplo, o polinucleotídeo ou o polipeptídeo é expresso em um tipo de célula ou de tecido sem ser um tipo de célula ou de tecido em que a sequência é expressa na planta do tipo selvagem ou através da expressão em um momento sem ser no momento em que a sequência é expressa na planta do tipo selvagem ou através de uma resposta a agentes indutores diferentes, tais como hormônios ou sinais ambientais ou em níveis de expressão diferentes (maiores ou menores) comparados com os

69/1027 encontrados em uma planta do tipo selvagem. O termo também se refere a padrões de expressão alterados que são produzidos através da diminuição dos níveis de expressão até abaixo do nível de detecção ou da interrupção completa da expressão. O padrão de expressão resultante pode ser transitório ou estável, constitutivo ou pode ser induzido. Em referência a um polipeptídeo, o termo expressão ectópica ou expressão alterada pode ainda se referir a níveis alterados de atividade resultantes das interações dos polipeptídeos com moduladores exógenos ou endógenos ou de interações com fatores ou como um resultado da modificação química dos polipeptídeos.

[0166] O termo superexpressão como utilizado aqui, se refere a um maior nível de expressão de um gene em uma planta, célula vegetal ou tecido vegetal, comparado à expressão em uma planta, célula ou tecido do tipo selvagem, em qualquer estágio do desenvolvimento ou temporal para o gene. A superexpressão pode ocorrer quando, por exemplo, os genes que codificam um ou mais fatores de transcrição estão sob o controle de um sinal de expressão forte, tal como, um dos promotores descritos aqui (por exemplo, a região de início da transcrição 35S do vírus mosaico da couve-flor). A superexpressão pode ocorrer ao longo de toda uma planta ou em tecidos específicos da planta, dependendo do promotor utilizado, como descrito abaixo.

[0167] A superexpressão pode ocorrer em células vegetais que normalmente não possuem expressão de polipeptídeos funcionalmente equivalentes ou idênticos aos presentes fatores de transcrição. A superexpressão também pode ocorrer em células vegetais em que a expressão

70/1027 endógena dos presentes fatores de transcrição ou de moléculas funcionalmente equivalentes ocorre, mas tal expressão normal ocorre em um nível inferior. A superexpressão resulta assim em uma produção maior que a normal ou superprodução do fator de transcrição na planta, célula ou tecido.

[0168] O termo alteração de fase se refere a uma progressão da planta do embrião para o adulto e, através de algumas definições, à transição em que as plantas que florescem adquirem competência reprodutiva. Acredita-se que a alteração de fase ocorra após um certo número de divisões celulares no cume de uma planta em desenvolvimento ou quando o cume do broto atinge uma distância particular das raízes. Assim, a alteração da sincronia das alterações de fase pode afetar o tamanho de uma planta, que, por sua vez,

pode afetar	o rendimento e a biomassa.
[0169]	Tolerância resulta de características
específicas	que podem ser herdadas de uma planta hospedeira
que permite	que um agente patogênico se desenvolva e se
multiplique	no hospedeiro enquanto que o hospedeiro,
através da	falta de sítios receptores ou através da

inativação ou da compensação para as secreções irritantes do agente patogênico, ainda consegue se desenvolver ou, no caso das plantas de cultivo, produz ainda um bom plantio.

As plantas tolerantes são susceptíveis ao agente patogênico, mas não são mortas pelo mesmo e exibem geralmente poucos danos causados pelo agente patogênico (Agrios (1988) Plant Pathology, 3^a ed. Academic Press,

N.Y., p. 129).

[0170] Resistência também referido como

71/1027 resistência verdadeira resulta quando uma planta contém um ou mais genes que tornam a plante e um agente patogênico potencial mais ou menos incompatíveis um com o outro, seja por causa de uma falta de reconhecimento químico entre o hospedeiro e o agente patogênico ou porque a planta hospedeira pode se defender contra o agente patogênico através de mecanismos de defesa já presentes ou ativados em resposta à infecção (Agrios (1988)) Plant Pathology, 3^a ed. Academic Press, N.Y., p. 125).

[0171] Uma amostra em relação a um material que contém moléculas de ácidos nucléicos pode compreender um fluido corporal; um extrato de uma célula, um cromossomo, uma organela ou uma membrana isolada de um substrato; uma célula; um tecido; uma impressão de tecido; uma amostra forense; e similares. Neste contexto substrato se refere a qualquer suporte rígido ou semi-rígido ao qual moléculas de ácidos nucléicos ou proteínas ficam ligadas e inclui membranas, filtros, chips, lâminas, placas finas, fibras, esferas magnéticas ou não-magnéticas, géis, capilares ou outros tubos, placas, polímeros e micropartículas com uma variedade de formas de superfície incluindo poços, trincheiras, pinos, canais e poros. Um substrato pode também se referir a um reagente em uma reação química ou biológica ou uma substância sobre a qual há reação (por exemplo, por uma enzima).

[0172] Substancialmente purificado se refere a moléculas de ácido nucléico ou proteínas que são removidas de seu ambiente natural e são isoladas ou separadas e são pelo menos aproximadamente 60% isentas, preferencialmente aproximadamente 75% isentas e mais preferencialmente

72/1027 aproximadamente 90% isentas de outros componentes com os quais estão naturalmente associadas.

Características Que Podem ser Modificadas em Plantas com

Superexpressão ou Nocauteadas [0173]

As modificações de interesse particular incluem aquelas nas sementes (tal como embrião ou endosperma) , no fruto, na raiz, na flor, na folha, do caule, no broto na planta jovem partindo de semente ou similares, incluindo: maior tolerância condições ambientais incluindo o frio, o congelamento, o calor, a seca, a saturação de água, a radiação e o ozônio; maior tolerância a microorganismos, doenças fúngicas ou virais;

maior tolerância a infestações por pragas, incluindo insetos, nematóides, molicutes, plantas superiores parasitas ou similares;

menor sensibilidade a herbicidas;

maior tolerância a metais pesados ou maior capacidade de captação de metais pesados; maior crescimento sob fotocondições fracas (por exemplo, pouca luz e/ou período curto de dia) ou alterações nos níveis de expressão de genes de interesse. Outro fenótipo que pode ser modificado se refere à produção de metabólitos de plantas, tais como variações na produção de taxol, de tocoferol, de tocotrieno, de esteróis, de fitoesteróis, de vitaminas, de monômeros de cera, de antioxidantes, de aminoácidos, de ligninas, de celulose, de taninos, de prenil lipídeos (tais como clorofilas e carotenóides), de glicosinolatos e de terpenóides, proteína ou produção de óleos melhorada com a composição alterada (especialmente nas sementes) ou açúcar (insolúvel ou solúvel) e/ou composição de amido modificados. As características físicas da planta que podem

73/1027 ser modificadas incluem o desenvolvimento celular (tal como, o número de tricomas), o tamanho e o número de frutos e de folhas, os rendimentos de partes vegetais, tais como caules, folhas, inflorescências e raízes, a estabilidade das sementes durante o armazenamento, características de vagem das sementes (por exemplo, susceptibilidade a fraturas), o comprimento e a quantidade dos pelos da raiz, a distância entre nós ou a qualidade do revestimento das sementes. As características de crescimento da planta que podem ser modificadas incluem a taxa de crescimento, a taxa de germinação das sementes, o vigor das plantas e das plantas jovens partindo de semente, a senescência de folhas e flores, a esterilidade dos machos, a apomixia, o tempo de florescência, a abscisão da florescência, a taxa de captação de nitrogênio, a sensibilidade osmótica a concentrações de açucares solúveis, as características de biomassa ou de transpiração, assim como as características de arquitetura tais como a dominância apical, os padrões de ramificação, o número de órgãos, a identidade dos órgãos, a forma ou o tamanho dos órgãos.

Fatores de Transcrição Modificam a Expressão de Genes Endógenos [0174] A expressão de genes que codificam fatores de transcrição que modificam a expressão de genes, polinucleotídeos e proteínas endógenos é bem-conhecida na técnica. Em adição, as plantas transgênicas que compreendem polinucleotídeos isolados que codificam fatores de transcrição também podem modificar a expressão de genes, polinucleotídeos e proteínas endógenos. Os exemplos incluem Peng e outros (1997, Genes Development 11: 3194-3205) e

74/1027

Peng e outros (1999, Nature, 400: 256-261). Em adição, muitos outros mostraram que um fator de transcrição de Arabidopsis expresso em uma espécie de planta exógena ativa a mesma resposta fenotípica ou muito similar. Ver, por exemplo, Fu e outros (2001, Plant Cell 13: 1791-1802); Nandi e outros (2000, Curr. Biol. 10: 215-218); Coupland (1995, Nature 377: 482-483); e Weigel e Nilsson (1995, Nature 377: 482-500).

[0175] Em um outro exemplo, Mandel e outros (1992, Cell 71-133-143) e Suzuki e outros (2001, Plant J. 28: 409418) ensinam que um fator de transcrição expresso em uma outra espécie de planta ativa a mesma resposta fenotípica ou muito similar da sequência endógena, como frequentemente previsto nos estudos iniciais de fatores de transcrição de Arabidopsis em Arabidopsis (ver Mandel e outros 1992, supra; Suzuki e outros 2001, supra).

[0176] Outros exemplos incluem Muller e outros (2001, Plant J. 28: 169-179); Kim e outros (2001, Plant J. 25: 247-259); Kyozuka e Shimamoto (2002, Plant Cell Physiol. 43: 130-135); Boss e Thomas (2002, Nature, 416: 847-850); He e outros (2000, Transgenic Res. 9: 223-227); e Robson e outros (2001, Plant J. 28: 619-631).

[0177] Ainda em um outro exemplo, Gilmour e outros (1998, Plant J. 16: 433-442) ensinam um fator de transcrição AP2 de Arabidopsis, CBF1 (SEQ ID N^o: 2239), que quando superexpresso em plantas transgênicas, aumenta a tolerância ao congelamento da planta. Jaglo e outros (2001, Plant Physiol. 127: 910-917) identificaram ainda sequências em Brassica napus que codificam genes similares ao CBF e que os produtos da transcrição para estes genes se

75/1027 acumulavam rapidamente em resposta a baixas temperaturas.

Foi também descoberto que os produtos da transcrição que codificam proteínas similares a CBF se acumulam rapidamente em resposta a baixas temperaturas no trigo, assim como no tomate. Um alinhamento das proteínas CBF de

Arabidopsis,

B.

napus, trigo, centeio e tomate revelou presença de resíduos de aminoácidos consecutivos conservados,

PKK/RPAGRxKFxETRHP e DSAWR, que agrupa os domínios de ligação ao DNA AP2/EREBP das proteínas e os distinguem de outros membros da família da proteína AP2/EREBP. (Ver Jaglo e outros supra.) [0178] Os fatores de transcrição medeiam respostas celulares e controlam características através da expressão alterada de genes que contam sequências de nucleotídeos que atuam em cis que são alvos do fator de transcrição introduzido. É bem considerado na Técnica que o efeito de um fator de transcrição sobre as respostas celulares ou uma característica celular é determinado através de genes particulares cuja expressão é diretamente ou indiretamente (por exemplo, através de uma cascata de eventos de ligação ao fator de transcrição e alterações transcricionais) alterada pela ligação do fator de transcrição. Em uma análise global da transcrição comparando uma condição padronizada com uma em que um fator de transcrição é superexpresso, o perfil do produto da transcrição resultante associado com a superexpressão do fator de transcrição está relacionado à característica ou ao

processo celular	controlado	por tal fator	de	transcrição.
Por	exemplo,	foi	mostrado que	o gene PAP2	(e	outros genes
na	família	MYB)	controlam	a	biossíntese	da	antocianina

76/1027 através da regulação da expressão de genes conhecidos por estarem envolvidos na via biossintética da antocianina (Bruce e outros (2000) Plant Cell 12: 65-79; e Borevitz e outros (2000) Plant Cell 12: 2383-2393). Ainda, os perfis globais dos produtos de transcrição foram utilizados de forma bem-sucedida como ferramentas para diagnósticos para estados celulares específicos (por exemplo, canceroso vs. não-canceroso; Bhattacharjee e outros (2001) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 98: 13790-13795; e Xu e outros (2001) Proc Natl Acad Sci, USA 98: 15089-15094). Consequentemente, é evidente para um versado na técnica que a similaridade do perfil do produto de transcrição após a superexpressão de fatores de transcrição diferentes indicariam similaridade da função dos fatores de transcrição.

Polipeptídeos e Polinucleotídeos da Invenção [0179] A presente invenção fornece, entre outras coisas, fatores de transcrição (TFs) e polipeptídeos homólogos aos fatores de transcrição e polinucleotídeos isolados ou recombinantes que codificam os polipeptídeo ou novos polipeptídeos ou polinucleotídeos com variação de sequências que codificam novas variações de fatores de transcrição derivadas das sequências específicas fornecidas aqui. Estes polipeptídeos e polinucleotídeos podem ser empregados para modificar características de uma planta.

[0180] Os exemplos de polinucleotídeos que codificam os polipeptídeos da invenção foram identificados no banco de dados GenBank de Arabidopsis thaliana utilizando programas e parâmetros de análise de sequências disponíveis publicamente. As sequências inicialmente identificadas foram então adicionalmente caracterizadas

77/1027 para identificar sequências que compreendem filamentos de sequências especificadas que correspondem a motivos de sequências presentes nas famílias conhecidas dos fatores de transcrição. Em adição, exemplos adicionais de polinucleotídeos que codificam os polipeptídeos da invenção foram identificados no banco de dados GenBank utilizando programas e parâmetros de análise de sequências disponíveis publicamente. As sequências identificadas inicialmente foram então adicionalmente caracterizadas para identificar sequências que compreendem filamentos de sequências especificadas que correspondem a motivos de sequências presentes nas famílias conhecidas de fatores de transcrição. As sequências de polinucleotídeos que satisfazem tais critérios foram confirmadas como fatores de transcrição.

[0181] Polinucleotídeos adicionais da invenção foram identificados através da seleção de bibliotecas de cDNA de Arabidopsis thaliana e/ou de outra planta com sondas correspondentes a fatores de transcrição conhecidos sob condições de hibridização de baixo rigor. As sequências adicionais, incluindo sequências codificadoras de comprimento completo foram subsequentemente recuperadas através do procedimento de amplificação rápida das extremidades do cDNA (RACE), utilizando um kit disponível comercialmente de acordo com as instruções do fabricante. Quando necessário, várias rodadas de RACE são realizadas para isolar as extremidades a 5' e a 3'. O cDNA de comprimento completo foi então recuperado através de uma reação em cadeia da polimerase extremidade-à-extremidade de rotina (PCR) utilizando iniciadores específicos para as

78/1027 extremidades isoladas a 5' e a 3'. Os exemplos de sequências são fornecidos na Listagem de Sequências.

[0182] Os polinucleotídeos da invenção podem ser ou foram expressos de forma ectópica em plantas superexpressoras ou nocauteadas e as alterações na(s) característica(s) ou traço(s) das plantas foram observadas. Portanto, os polinucleotídeos e os polipeptídeos podem ser empregados para melhorar as características das plantas.

[0183] Os polinucleotídeos da invenção podem ser ou foram expressos de forma ectópica em células vegetais que superexpressam e as alterações nos níveis de expressão de um número de genes, polinucleotídeos e/ou proteínas das células vegetais foram observadas.

Produção de Polipeptídeos [0184] Os polinucleotídeos da invenção incluem sequências que codificam fatores de transcrição e polipeptídeos homólogos dos fatores de transcrição e sequências complementares aos mesmos, assim como fragmentos únicos de sequência codificadora ou de sequência complementar aos mesmos.

Tais polinucleotídeos podem ser, por exemplo,

DNA ou RNA, por exemplo, mRNA, cRNA, RNA sintético,

DNA genômico, cDNA

DNA sintético, oligonucleotídeos etc. Os polinucleotídeos possuem filamento duplo ou filamento simples ou tanto sequências senso (isto é, codificadoras) quanto sequências antisentido (isto é, não codificadora, complementares). Os polinucleotídeos incluem a sequência codificadora de um fator de transcrição ou de um polipeptídeo homólogo do fator de transcrição, isolado ou em combinação com sequências codificadoras adicionais (por exemplo, uma

79/1027 marcação para purificação, um sinal de localização, na forma de uma proteína de fusão, na forma de uma préproteína ou similar), em combinação com sequências não codificadoras (por exemplo, íntrons ou inteínas, elementos reguladores, tais como promotores, intensificadores, terminadores e similares) e/ou em um vetor ou ambiente hospedeiro em que o polinucleotídeo que codifica um fator de transcrição ou um polipeptídeo homólogo do fator de transcrição é um gene endógeno ou exógeno.

[0185] Há uma variedade de métodos para a produção dos polinucleotídeos da invenção. Os procedimentos para a identificação e para o isolamento de clones de DNA são bemconhecidos pelos versados na técnica e são descritos, por exemplo, em Berger e Kimmel, Guide to Molecular Cloning Techniques, Methods in Enzymology, vol. 152 Academic Press, Inc., São Diego, CA (Berger); Sambrook e outros Molecular Cloning - A Laboratory Manual (2^a Ed.), Vol. 1-3, Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, Nova York, 1989 (Sambrook) e Current Protocols in Molecular Biology, Ausubel e outros eds., Current Protocols, a joint venture between Greene Publishing Associates, Inc. and John Wiley & Sons, Inc., (supplemented through 2000) (Ausubel).

[0186] Alternativamente, os polinucleotídeos da invenção, podem ser produzidos através de uma variedade de métodos de amplificação in vitro adaptados para a presente invenção através da seleção apropriada de iniciadores específicos ou degenerados. Os exemplos de protocolos suficientes para direcionar os versado através dos métodos de amplificação in vitro, incluindo a reação em cadeia da polimerase (PCR), a reação em cadeia da ligase (LCR), a

80/1027 amplificação pela Qbeta-replicase e e outras técnicas mediadas pela RNA polimerase (por exemplo, NASBA), por exemplo, para a produção dos ácidos nucléicos homólogos da invenção são encontrados em Berger (supra), Sambrook (supra) e Ausubel (supra), assim como Mullis e outros (1987) PCR Protocols A Guide to Methods and Applications (Innis e outros eds) Academic Press Inc. São Diego, CA (1990) (Innis). Os métodos melhorados para a clonagem in vitro de ácidos nucléicos amplificados são descritos em Wallace e outros Patente U.S. N- 5.426.039. Os métodos melhorados para a amplificação de ácidos nucléicos grandes pela PCR estão resumidos em Cheng e outros (1994) Nature 369: 684-685 e nas referências citadas no mesmo, em que amplicons de PCR de até 40 kb são gerados. Um versado considerará que essencialmente qualquer RNA pode ser convertido em um DNA de filamento duplo adequado para a digestão de restrição, para a expansão pela PCR e para o sequenciamento utilizando a transcriptase reversa e uma polimerase. Ver, por exemplo, Ausubel, Sambrook e Berger, todos supra.

[0187] Alternativamente, os polinucleotídeos e os oligonucleotídeos da invenção podem ser montados partindo de fragmentos produzidos através de métodos de síntese em fase sólida. Tipicamente, os fragmentos de até aproximadamente 100 bases são sintetizados individualmente e então enzimaticamente ou quimicamente ligados para produzir uma sequência desejada, por exemplo, um polinucleotídeo que codifica todo ou uma parte de um fator de transcrição. Por exemplo, a síntese química utilizando o método da fosforamidita é descrita, por exemplo, por

81/1027

Beaucage e outros (1981) Tetrahedron Letters 22: 1859-1869;

e Matthes e outros (1984) EMBO J. 3: 801-805.

tais métodos, os oligonucleotídeos são

De acordo com sintetizados, purificados, anelados com seu filamento complementar, ligados e então clonados opcionalmente em vetores adequados.

se desejado, os polinucleotídeos e os polipeptídeos da invenção podem ser encomendados customizados de qualquer um de um número de fornecedores comerciais.

Sequências Homólogas [0188] As sequências homólogas, isto é, que compartilham identidade ou similaridade de sequência significativa, com as fornecidas na Listagem de Sequências, derivadas de Arabidopsis thaliana ou de outras plantas de escolha, são também um aspecto da invenção. As sequências homólogas podem ser derivadas de qualquer planta incluindo monocotiledôneas e dicotiledôneas e em particular, espécies de plantas importantes para a agricultura, incluindo, mas não limitadas às plantas de cultivo, tais como a soja, o trigo, o milho, a batata, o algodão, o arroz, a colza, a óleo de semente de colza (incluindo a canola), o girassol, a alfafa, o trevo, a cana-de-açúcar e a turfa; ou frutos e vegetais, tais como a banana a amora-preta, o vacínio, o morango e a framboesa, o cantalupo, a cenoura, a couveflor, o café, o pepino, a berinjela, as uvas, melão, a alface, a manga, o melão, a cebola, a papaia, as ervilhas, as pimentas, o abacaxi, a abóbora, o espinafre, a abóbora, o milho doce, o tabaco, o tomate, o tomate cereja, a melancia, as frutas rosáceas (tais como a maçã, o pêssego, a pêra, a cereja e a ameixa), as brassicas vegetais (tais

82/1027 como brócolis, repolho, couve-flor, couve de Bruxelas e couve-rábano) . Outras plantas de cultivo, incluindo frutas e vegetais, cujos fenótipos podem ser alterados e que compreendem sequências homólogas incluem a cevada a cevada; o centeio; o milhete; o sorgo; a groselha; o abacate; as frutas cítricas tais como laranjas, limões, grapefruit, tangerinas, alcachofra, cerejas; nozes tais como a noz e o amendoim; a endiva; o alho-poró; raízes, tais como, a araruta, a beterraba, a mandioca, o nabo, o rabanete, o inhame e a batata doce; e feijões. A sequências homólogas também podem ser derivadas de espécies madeireiras, tais como o pinheiro, o choupo e o eucalipto ou a menta ou outros labiados. Em adição, as sequências homólogas podem ser derivadas de plantas que são relacionadas de forma evolutiva com plantas de cultivo, mas que podem não ter sido ainda utilizadas como plantas de cultivo. Os exemplos incluem beladona (Atropa belladona), relacionada ao tomate; datura (Datura strommium), relacionada ao peiote; e o teosinto (Zea species), relacionado ao milho.

Ortólogos e Parálogos [0189] As sequências homólogas que são descritas acima podem compreender sequências ortólogas ou parálogas. Vários métodos diferentes são conhecidos pelos versados na técnica para a identificação e para a definição destas sequências funcionalmente homólogas. Três métodos gerais para a definição de ortólogos e parálogos são descritos; um ortólogo, um parálogo ou um homólogo pode ser identificado por um ou mais dos métodos descritos abaixo.

[0190] Os ortólogos e os parálogos são genes relacionados evolutivamente que possuem sequência similar e

83/1027 funções similares. Os ortólogos são genes estruturalmente relacionados em espécies diferentes que são derivados de um evento de especiação. Os parálogos são genes estruturalmente derivados dentro de uma única espécie que são derivados de um evento de duplicação.

[0191] Dentro de uma única espécie de planta, a duplicação pode causar duas cópias de um gene particular, dando origem a dois ou mais genes com sequência similar e frequentemente função similar conhecidos como parálogos. Um parálogo é, portanto, um gene similar formado pela duplicação dentro da mesma espécie. Os parálogos tipicamente se agrupam um ao outro ou no mesmo clado (um grupo de genes similares) quando a filogenia da família gênica é analisada utilizando programas, tal como, CLUSTAL (Thompson e outros (1994) Nucleic Acids Res. 22: 4673-4680; Higgins e outros (1996) Methods Enzymol. 266: 383-402). Os grupos de genes similares também podem ser identificados com a análise de BLAST em pares (Feng e Doolittle (1987) J. Mol. Evol. 25: 351-360). Por exemplo, um clado de todos os fatores de transcrição do domínio MADS muito similares de Arabidopsis compartilha uma função comum no tempo de florescência (Ratcliffe e outros (2001) Plant Physiol. 126: 122-132) e um grupo de fatores de transcrição do domínio AP2 muito similar de Arabidopsis está envolvido na tolerância das plantas ao congelamento (Gilmour e outros (1998) Plant J. 16: 433-442). A análise dos grupos de genes similares com função similar que se encaixam dentro de um clado pode fornecer subsequências que são particulares ao clado. Estas subsequências, conhecidas como sequências consenso, podem não somente ser utilizadas para definir as

84/1027 sequências dentro de cada clado, mas definir as funções destes genes; os genes dentro de um clado podem conter sequências parálogas ou sequências ortólogas que compartilham a mesma função (ver ainda, por exemplo, Mount (2001), em Bioinformatics: Sequência and Genome Analysis Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, Nova York, página 543.) [0192] A especiação, a produção de novas espécies partindo de uma espécie parental, também pode dar origem a dois ou mais genes com sequência similar e função similar. Estes genes, denominados ortólogos, possuem frequentemente uma função idêntica dentro de suas plantas hospedeiras e são frequentemente intercambiáveis entre espécies sem perder a função. Devido ao fato de que as plantas possuem os mesmos ancestrais comuns, muitos genes em qualquer espécie de planta terão um gene ortólogo correspondente em uma outra espécie de planta. Uma vez que uma árvore filogenética para uma família de genes de uma espécie foi construída utilizando um programa tal como, CLUSTAL (Thompson e outros (1994) Nucleic Acids Res. 22: 4673-4680; Higgins e outros (1996) supra) as sequências ortólogas potenciais podem ser colocadas na árvore filogenética e sua relação com os genes das espécies de interesse pode ser determinada. As sequências ortólogas também podem ser identificadas através de uma estratégia de BLAST recíproco. Uma vez que uma sequência ortóloga foi identificada, a função do ortólogo pode ser deduzida partindo da função identificada da sequência de referência.

[0193] As sequências dos genes de fatores de transcrição são conservadas ao longo de linhagens de

85/1027 espécies eucarióticas distintas (Goodrich e outros (1993) Cell 75: 519-530; Lin e outros (1991) Nature 353: 569-571; Sadowski e outros (1988) Nature 335: 563-564). As plantas não são uma exceção para esta observação; espécies de plantas distintas possuem fatores de transcrição que possuem sequências e funções similares.

[0194] Os genes ortólogos de organismos diferentes possuem funções altamente conservadas e muito frequentemente, funções essencialmente idênticas (Lee e outros (2002) Genome Res. 12: 493-502; Remm e outros (2001) J. Mol. Biol. 314: 1041-1052) . Os genes parálogos, que divergiram através da duplicação gênica, podem manter funções similares das proteínas codificadas. Em tais casos, os parálogos podem ser utilizados de forma intercambiável em relação a acertas modalidades da presente invenção (por exemplo, a expressão transgênica de uma sequência codificadora). Um exemplo de tais parálogos altamente relacionados é a família CBF, com três membros bem definidos em Arabidopsis e pelo menos um ortólogo em Brassica napus (SEQ ID N-: 2238, 2240, 2242 e 2244, respectivamente), das quais todas controlam as vias envolvidas tanto no estresse ao congelamento quanto à seca (Gilmour e outros (1998) Plant J. 16: 433-442; Jaglo e outros (1998) Plant Physiol. 127: 910-917).

[0195] As referências a seguir representam uma pequena amostragem dos muitos estudos que demonstram que os genes dos fatores de transcrição de várias espécies provavelmente funcionam de forma similar (isto é, regulam sequências alvo similares e controlam as mesmas características) e tais fatores de transcrição podem ser

86/1027 transformados em várias espécies para conferir ou melhorar as características.

[0196] O gene NPR1 de Arabidopsis regula a resistência sistêmica adquirida (SAR); a superexpressão de NPR1 leva a uma maior resistência em Arabidopsis. Quando o NPR1 de Arabidopsis NPR1 ou o ortólogo de NPR1 do arroz foi superexpresso no arroz (que, como uma monocotiledônea, é distinto de Arabidopsis), com o desafio com o agente patogênico causador de ferrugem bacteriano do arroz Xanthomonas oryzae pv. Oryzae, as plantas transgênicas exibiram maior resistência (Chern e outros (2001) Plant J. 27: 101-113). O NPR1 atua através da ativação da expressão de genes do fator de transcrição, tal como, o TGA2 (Fan e Dong (2002) Plant Cell 14: 1377-1389).

[0197] Os genes E2F estão envolvidos na transcrição de genes vegetais para a proliferação de antígeno nuclear celular (PCNA). As plantas E2Fs compartilham um alto grau de similaridade na sequência de aminoácidos entre monocotiledôneas e dicotiledôneas e são ainda similares aos domínios conservados de E2Fs de animais. Tal conservação indica uma similaridade funcional entre E2Fs de plantas e de animais. Os fatores de transcrição do E2F que regulam o desenvolvimento dos meristemas atuam através de elementos comuns em cis e regulam genes relacionados (PCNA) (Kosugi e Ohashi, (2002) Plant J. 29: 45-59).

[0198] O gene ABI5 (insensível ao ABA 5) codifica um fator de zíper de leucina básico necessário para a resposta ao ABA na semente e em tecidos vegetativos. Os experimentos de co-transformação com construções de cDNA do ABI5 em protoplastos de arroz resultaram na transativação

87/1027 específica dos promotores do trigo de Arabidopsis, do feijão e da cevada que podem ser induzidos pelo ABA. Estes resultados demonstram que os fatores de transcrição do ABI5 similares em relação à sequência são alvos importantes de uma via de sinalização conservada do ABA em várias plantas. (Gampala e outros (2001) J. Biol. Chem. 277: 1689-1694).

[0199] As sequências de três genes similares a GAMYB de Arabidopsis foram obtidas com base na similaridade de sequência para os genes GAMYB da cevada, do arroz e de L. temulentum. Foi determinado que estes três genes de Arabadopsis codificam fatores de transcrição (AtMYB33, AtMYB65 e AtMYB101) e poderiam substituir um GAMYB da cevada e controlar a expressão da alfa-amilase (Gocal e outros (2001) Plant Physiol. 127: 1682-1693).

[0200] O gene de controle floral LEAFY de Arabidopsis pode acelerar drasticamente a florescência em várias plantas dicotiledôneas. A expressão constitutiva do LEAFY de Arabidopsis também causava florescência precoce no arroz transgênico (uma monocotiledônea), com uma data de início que era de 26-34 dias mais cedo que as plantas do tipo selvagem. Estas observações indicam que os genes de regulação floral de Arabidopsis são ferramentas úteis para um melhoramento de data de início nas plantas de cultivo de cereais (He e outros (2000) Transgenic Res. 9: 223-227).

[0201] As giberelinas bioativas (GAs) são reguladores endógenos essenciais do crescimento vegetal. A sinalização da GA tende a ser conservada ao longo do reino vegetal. A sinalização da GA é mediada através de GAI, um membro nuclear da família GRAS de fatores de transcrição vegetais. Foi mostrado que o GAI de Arabidopsis GAI

88/1027 funciona no arroz para inibir as vias de resposta à giberelina (Fu e outros (2001) Plant Cell 13: 1791-1802).

[0202] O gene SUPERMAN de Arabidopsis (SUP), codifica um suposto fator de transcrição que mantém o limite entre os estames e os carpelos. Através da superexpressão do SUP de Arabidopsis SUP no arroz, foi mostrado que o efeito da presença do gene nos limites do verticilo era conservado. Isto demonstrou que o SUP é um regulador conservado dos limites do verticilo floral e afeta a proliferação celular (Nandi e outros (2000) Curr. Biol. 10: 215-218).

[0203] Os fatores de transcrição myb do milho, da petúnia e de Arabidopsis que regulam a biossíntese de flavonóides são muito similares geneticamente e afetam a mesma característica em suas espécies nativas, portanto, a sequência e a função destes fatores de transcrição myb se correlacionam uma com a outra nestas espécies diferentes (Borevitz e outros (2000) Plant Cell 12: 2383-2394).

[0204] Os genes do trigo de tamanho reduzido 1 (Rht-B1/Rht-D1) e do milho anão 8 (d8) são ortólogos do gene insensível à giberelina de Arabidopsis (GAI). Ambos estes genes foram utilizados para produzir variedades anãs de grãos que possuíam maior rendimento de grãos. Estes genes codificam proteínas que se parecem com fatores de transcrição nucleares e contêm um domínio similar a SH2, indicando que a fosfotirosina pode participar na sinalização da giberelina. Foi mostrado que plantas transgênicas de arroz contendo um alelo mutante de GAI de Arabidopsis produzem respostas reduzidas à giberelina e são anãs, indicando que os ortólogos mutantes de GAI poderiam

89/1027 ser utilizados para aumentar o rendimento em uma faixa ampla de espécies de plantas de cultivo (Peng e outros (1999) Nature 400: 256-261).

[0205] Os fatores de transcrição que são homólogos às sequências listadas tipicamente compartilharão, pelo menos em um domínio conservado, de pelo menos aproximadamente 70% de identidade de sequência de aminoácidos e com relação aos fatores de transcrição de dedo de zinco, de pelo menos aproximadamente 50% de identidade de sequência de aminoácidos.

Os fatores de intimamente transcrição mais

compartilhar	pelo	menos
aproximadamente	75%	ou
aproximadamente	90%	ou
aproximadamente	98% ou	mais de
as sequências listadas	ou com

relacionados podem

aproximadamente	70%	ou
aproximadamente	80%	ou
aproximadamente	95%	ou

identidade de sequência com as sequências listadas, mas excluindo ou fora de uma sequência consenso ou de um sítio consenso de ligação ao DNA conhecido ou com as sequências listadas excluindo um ou todos os domínios conservados. Os fatores que são mais intimamente relacionados às sequências listadas compartilham, por exemplo, pelo menos aproximadamente 85%, aproximadamente 90% ou aproximadamente 95% ou maior% de identidade de sequência com as sequências listadas ou com as sequências listadas, mas excluindo ou fora de uma sequência consenso ou de um sítio consenso de ligação ao DNA conhecido ou fora de um ou de todos os domínios conservados. No nível de nucleotídeos, as sequências tipicamente compartilharão pelo menos aproximadamente 40% de identidade de sequência de nucleotídeos, preferencialmente pelo menos aproximadamente

90/1027

50%, aproximadamente 60%, aproximadamente 70% ou aproximadamente 80% de identidade de sequência e mais preferencialmente aproximadamente 85%, aproximadamente 90%, aproximadamente 95% ou aproximadamente 97% ou uma maior identidade de sequência com uma ou mais das sequências listadas ou com uma sequência listada, mas excluindo ou fora de uma sequência consenso ou de um sítio consenso de ligação ao DNA conhecido ou fora de um ou de todos os domínios conservados. A degeneração do código genético possibilita maiores variações na sequência de nucleotídeos de um polinucleotídeo enquanto mantém a sequência de aminoácidos da proteína codificada. Os domínios conservados dentro de uma família de fatores de transcrição podem exibir um grau maior de homologia de sequência, tal como, pelo menos 65% de identidade de sequência de aminoácidos incluindo substituições conservativas e preferencialmente pelo menos 80% de identidade de sequência e mais preferencialmente pelo menos 85% ou pelo menos aproximadamente 86% ou pelo menos aproximadamente 87% ou pelo menos aproximadamente 88% ou pelo menos aproximadamente 90% ou pelo menos aproximadamente 95% ou pelo menos aproximadamente 98% de identidade de sequência. Os fatores de transcrição que são homólogos às sequências listadas devem compartilhar pelo menos 30% ou pelo menos aproximadamente 60% ou pelo menos aproximadamente 75% ou pelo menos aproximadamente 80% ou pelo menos aproximadamente 90% ou pelo menos aproximadamente 95% de identidade de sequência de aminoácidos ao longo de todo o comprimento do polipeptídeo ou do homólogo.

[0206] A identidade percentual pode ser determinada

91/1027 eletronicamente, por exemplo, utilizando o programa

MEGALIGN (DNASTAR, Inc. Madison, Wis.).

pode criar alinhamentos entre duas ou

O programa MEGALIGN mais sequências de acordo com métodos diferentes, por exemplo, o método clustal (Ver, por exemplo,

Higgins e Sharp (1988) Gene :

237-244.). O algoritmo clustal agrupa sequências em clusters através do exame das distâncias entre todos os pares. Os clusters são alinhados em pares e então em grupos. Outros algoritmos ser utilizados, incluindo ou programas de alinhamento podem

FASTA, BLAST ou ENTREZ, FASTA e

BLAST e que podem ser utilizados para calcular o percentual de similaridade. Estes estão disponíveis como uma parte do pacote para análise de sequências GCG (University of Wisconsin, Madison, Wis.) e podem ser utilizados com ou sem ajustes preestabelecidos. ENTREZ está disponível através do National Center for Biotechnology Information. Em uma modalidade, o percentual de identidade de duas sequências pode ser determinado através do programa GCG com um peso de espaço de 1, por exemplo, cada espaço de aminoácido é pesado como se houvesse uma combinação errada de um único aminoácido ou nucleotídeo entre as duas sequências (ver USPN 6.262.333).

[0207] Outras técnicas para alinhamento são descritas em Methods in Enzymology, vol. 266, Computer Methods for Macromolecular Sequência Analysis (1996), ed. Doolittle, Academic Press, Inc., São Diego, Calif., EUA. Preferencialmente, um programa de alinhamento que permite espaços na sequência é utilizado para alinhar as sequências. O de Smith-Waterman é um tipo de algoritmo que permite espaços nos alinhamentos de sequências (ver Shpaer

92/1027 (1997) Methods Mol. Biol. 70: 173-187). Ainda, o programa GAP utilizando o método de alinhamento de Needleman e Wunsch pode ser utilizado para alinhar sequências. Uma estratégia alternativa de busca utiliza o software MPSRCH, que roda em um computador MASPAR. O MPSRCH utiliza um algoritmo de Smith-Waterman para classificar sequências em um computador masciçamente paralelo. Esta abordagem aumenta a capacidade de captar combinações distantemente relacionadas e é especialmente tolerante a pequenos espaços e erros de sequências de nucleotídeos. As sequências de aminoácidos codificadas por ácidos nucléicos podem ser utilizadas para pesquisar bancos de dados tanto de proteínas quanto de DNA.

percentual de similaridade entre duas sequências de polipeptídeos, por exemplo, a sequência A e a sequência B, é calculado através da divisão do comprimento da sequência

A, menos o número de resíduos de espaço na sequência B, pela soma das combinações de resíduos entre a sequência A e a sequência B, vezes cem.

Os espaços de baixa ou de nenhuma similaridade entre as duas sequências de aminoácidos não são incluídos na determinação do percentual de similaridade. O percentual de identidade entre sequências de polinucleotídeos pode ser contado ou calculado através de outros métodos conhecidos na técnica, por exemplo, o método de Jotun Hein. (Ver, por exemplo, Hein (1990) Methods Enzymol. 183: 626-645.). A identidade entre as sequências também pode ser determinada através de outros métodos conhecidos na técnica, por exemplo, através da variação das condições de hibridização (ver o Pedido de Patente U.S. N 20010010913).

93/1027 [0209] O percentual de identidade entre dois domínios conservados de uma sequência consenso de polipeptídeos do domínio de ligação ao DNA do fator de transcrição pode ser tão baixo quanto 16%, como exemplificado no caso da família GATA1 de fatores de transcrição de dedo de zinco de eucarióticos do tipo Cys2/Cys2. A sequência consenso do domínio de ligação ao DNA da família GATA1 é CX₂CX₁₇CX₂C, em que X é qualquer resíduo de aminoácido. (Ver, por exemplo, Takatsuji, supra). Outros exemplos de tais sequências consenso conservadas de polipeptídeos com baixo percentual global de identidade de sequência sistema imunológico bem-conhecidos pelos versados na técnica.

[0210] Assim, a invenção fornece métodos para a identificação de uma sequência similar ou paráloga ou ortóloga ou homóloga a um ou mais polinucleotídeos que são citados aqui ou um ou mais polipeptídeos alvo codificados pelos polinucleotídeos ou citados de outra maneira aqui e podem incluir a ligação ou a associação de um fenótipo ou uma função gênica de uma certa planta com uma sequência. Nos métodos, é fornecido um banco de dados (localmente ou através da Internet ou da intranet) e é feita uma busca contra o banco de dados de sequências utilizando as sequências relevantes contidas aqui e fenótipos ou funções gênicas de plantas associadas.

[0211] Em adição, uma ou mais sequências de polinucleotídeos ou um ou mais polipeptídeos codificados pelas sequências de polinucleotídeos podem ser utilizados para a busca contra um BLOCKS (Bairoch e outros (1997) Nucleic Acids Res. 25: 217-221), PFAM e outros bancos de

94/1027 dados que contêm motivos, sequências e funções gênicas previamente identificados e anotados. Os métodos que buscam padrões primários de sequências com penalidades de espaço de estruturas secundárias (Smith e outros (1992) Protein Engineering 5: 35-51) assim como algoritmos, tais como Basic Local Alignment Search Tool (BLAST; Altschul (1993) J. Mol. Evol. 36: 290-300; Altschul e outros (1990) supra), BLOCKS (Henikoff e Henikoff (1991) Nucleic Acids Res. 19: 6565-6572), Hidden Markov Models (HMM; Eddy (1996) Curr. Opin. Str. Biol. 6: 361-365; Sonnhammer e outros (1997) Proteins 28: 405-420) e similares, podem ser utilizados para manipular e analisar sequências de polinucleotídeos e de polipeptídeos codificadas pelos polinucleotídeos. Estes bancos de dados, algoritmos e outros métodos são bemconhecidos na técnica e estão descritos em Ausubel e outros (1997; Short Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons, Nova York, NY, unidade 7.7) e em Meyers (1995; Molecular Biology and Biotechnology, Wiley VCH, Nova York, NY, p 856-853).

[0212] Um método adicional para a identificação ou para a confirmação de que as sequências homólogas específicas controlam a mesma função é através da comparação do(s) perfil(is) dos produtos da transcrição obtido(s) da superexpressão ou do nocaute de dois ou mais fatores de transcrição relacionados. Uma vez que os perfis dos produtos da transcrição são diagnósticos para estados celulares específicos, um versado na técnica considerará que genes que possuem um perfil de produto da transcrição altamente similar (por exemplo, com mais de 50% de produtos da transcrição regulados em comum, mais preferencialmente

95/1027 com mais de 70% de produtos da transcrição regulados em comum, mais preferencialmente com mais de 90% de produtos da transcrição regulados em comum) terão funções altamente similares. Fowler e outros (2002) Plant Cell 14: 1675-79) mostraram que três genes parálogos da família AP2 (CBF1, CBF2 e CBF3), dos quais cada um é induzido após tratamento com frio e cada um dos quais pode fornecer maior condição de tolerância ao congelamento, possuem perfis de produtos da transcrição altamente similares. Uma vez que foi mostrado que um fator de transcrição fornece uma função específica, seu perfil de produtos da transcrição se torna uma ferramenta para diagnóstico para determinar se supostos parálogos ou ortólogos possuem a mesma função.

[0213] Além disso, os métodos que utilizam alinhamento manual de sequências similares ou homólogas a uma ou mais sequências de polinucleotídeos ou a um ou mais polipeptídeos codificados pelas sequências de polinucleotídeos podem ser utilizados para identificar regiões de similaridade e domínios conservados. Tais métodos manuais são bem-conhecidos pelos versados na podem incluir, por exemplo, comparações de estrutura terciária entre uma sequência de polipeptídeo codificada por um polinucleotídeo que compreende uma função conhecida com uma sequência de polipeptídeo codificada por uma sequência de polinucleotídeo que possui uma função ainda indeterminada. Tais exemplos de estrutura terciária podem compreender alfa hélices, folhas beta, hélices anfipáticas, motivos de zíper de leucina, motivos de dedos de zinco, regiões ricas em prolina, motivos de repetição de cisteínas previstos e similares.

96/1027 [0214] Os ortólogos e os parálogos de fatores de transcrição divulgados aqui podem ser clonados utilizando composições fornecidas pela presente invenção de acordo com métodos bem-conhecidos na técnica. Os cDNAs podem ser clonados utilizando mRNA de uma célula ou tecido vegetal que expressa um dos presentes fatores de transcrição. As fontes apropriadas de mRNA podem ser identificadas através da consulta de Northern blots com sondas planejadas partindo das presentes sequências de fatores de transcrição, após a qual é preparada uma biblioteca partindo do mRNA obtido de uma célula ou tecido positivo. O cDNA que codifica o fator de transcrição é então isolado utilizando, por exemplo, a PCR, utilizando iniciadores planejados partindo de uma sequência gênica de fator de transcrição divulgada aqui ou através do tratamento com sondas com um cDNA parcial ou completo ou com um ou mais conjuntos de sondas degeneradas baseadas nas sequências divulgadas. A biblioteca de cDNA pode ser utilizada para transformar células vegetais. A expressão dos cDNAs de interesse é detectada utilizando, por exemplo, métodos divulgados aqui, tais como microarranjos, Northern blots, PCR quantitativa ou qualquer outra técnica para monitorar alterações na expressão. Os clones genômicos podem ser isolados utilizando técnicas similares a estas.

Identificação de Polinucleotídeos ou de Ácidos Nucléicos através da Hibridização [0215] Os polinucleotídeos homólogos às sequências ilustradas na Listagem de Sequências e nas tabelas podem ser identificados, por exemplo, através da hibridização um com o outro sob condições rigorosas ou altamente rigorosas.

97/1027

Os polinucleotídeos de filamento simples se hibridizam quando se associam com base em uma variedade de forças físico-químicas bem caracterizadas, tais como a ponte de hidrogênio, a exclusão de solventes, o empilhamento de bases e similares.

O rigor de uma hibridização reflete grau de identidade de sequência dos ácidos nucléicos envolvidos, de forma que quanto maior o rigor, mais similares são os dois filamentos de polinucleotídeos.

rigor é influenciado por uma variedade de fatores, incluindo a temperatura, a concentração e a composição de sais, aditivos orgânicos e inorgânicos, solventes etc.

presentes nas soluções tanto de hibridização quanto de lavagem e incubações (e número das mesmas), que são descritos em maiores detalhes nas referências citadas anteriormente.

[0216] São abrangidas pela invenção as sequências de polinucleotídeos que são capazes de se hibridizarem com as sequências de polinucleotídeos reivindicadas, incluindo qualquer um dos polinucleotídeos dos fatores de transcrição dentro da Listagem de Sequências e fragmentos dos mesmos sob várias condições de rigor (Ver, por exemplo, Wahl e Berger (1987) Methods Enzymol. 152: 399-407; e Kimmel (1987) Methods Enzymol. 152: 507-511). Em adição às sequências de nucleotídeos listadas nas Tabelas 4 - 9, o cDNA de comprimento completo, os ortólogos e os parálogos das presentes sequências de nucleotídeos podem ser identificados e isolados utilizando métodos bem-conhecidos. As bibliotecas de cDNA, os ortólogos e os parálogos das presentes sequências de nucleotídeos podem ser selecionados utilizando métodos de hibridização para determinar a sua

98/1027 utilizada como alvo de hibridização ou como sondas para amplificação.

[0217] Em relação à hibridização, as condições que são altamente rigorosas e os meios para conseguí-las, são bem-conhecidos na técnica. Ver, por exemplo, Sambrook e outros (1989) Molecular Cloning: A Laboratory Manual (2^a ed., Cold Spring Harbor Laboratory); Berger e Kimmel, eds., (1987) Guide to Molecular Cloning Techniques, Em Methods in Enzymology:152: 467-469; e Anderson e Young (1985)

Quantitative Filter Hybridisation. Em: Hames and Higgins, ed., Nucleic Acid Hybridisation, A Practical Approach. Oxford, IRL Press, 73-111.

[0218] A estabilidade dos duplexes de DNA é afetada por fatores tais como a composição de bases, o comprimento e o grau de pareamentos errados de pares de bases. As condições de hibridização podem ser ajustadas para permitir que os DNAs com relação diferente de sequências se hibridizem. A temperatura de fusão (Tm) é definida como a temperatura quando 50% das moléculas do duplex foram dissociadas em seus filamentos simples constituintes. A temperatura de fusão de um duplex perfeitamente combinado, quando o tampão de hibridização contiver formamida como um agente de desnaturação, pode ser estimada através das equações a seguir:

DNA-DNA:

Tm (°C) = 81,5 + 16,6(log [Na+]) + 0,41(% G+C)- 0,62(% formamida) - 500/L (II) DNA-RNA:

T_m (°C) = 79,8 + 18,5(log [Na+]) + 0,58(% G+C) +

0,12(%G+C)² - 0,5(% formamida) - 820/L

99/1027 (III) RNA-RNA:

T_m (° C) = 7 9,8 + 18,5(log [Na+]) + 0,58(% G+C) + 0,12(%G+C)² - 0,35(% formamida) - 820/L em que L é o comprimento do duplex formado, [Na+] é a concentração molar do íon de sódio na solução de hibridização ou de lavagem e% G+C é a porcentagem de bases (guanina + citosina) no híbrido. Para híbridos com combinações imperfeitas, é necessário aproximadamente 1°C para reduzir a temperatura de fusão para cada pareamento errado de 1%.

[0219] Experimentos de hibridização são geralmente realizados em um tampão de pH entre 6,8 até 7,4, embora a taxa de hibridização seja quase independente do pH em forças iônicas que são provavelmente utilizadas no tampão de hibridização (Anderson e outros (1985) supra). Em adição, um ou mais dos seguintes podem ser utilizados para reduzir a hibridização inespecífica: DNA de esperma de salmão submetido ao ultra-som ou um outro DNA não complementar, albumina de soro bovino, pirofosfato de sódio, dodecilsulfato de sódio (SDS), polivinilpirrolidona, ficoll e solução de Denhardt. O sulfato de dextrana e o polietileno glicol 6000 atuam para excluir o DNA da solução ouiginando assim a concentração eficiente do DNA da sonda e o sinal de hibridização dentro de uma certa unidade de tempo. Em alguns casos, condições de rigor até mesmo maior podem ser desejáveis ou necessárias para reduzir a hibridização inespecífica e/ou de fundo. Estas condições podem ser criadas com o uso de temperatura maior, menor força iônica e maior concentração de um agente de desnaturação, tal como, a formamida.

100/1027 [0220] As condições de rigor podem ser ajustadas para selecionar fragmentos moderadamente similares tais como sequências homólogas de organismos distantemente relacionados ou para fragmentos altamente similares tais como genes que duplicam enzimas funcionais de organismos intimamente relacionados. O rigor pode ser ajustado durante a etapa de hibridização ou nas lavagens pós-hibridização. A concentração de sais, a concentração de formamida, a temperatura da hibridização e os comprimentos das sondas são variáveis que podem ser utilizadas para alterar o rigor (como descrito pelas fórmulas acima). Como uma linha de guia geral, o alto rigor é tipicamente realizado a T_m-5°C até T_m-20°C, o rigor moderado a T_m-20°C até T_m-35°C e o baixo rigor a T_m-35°C até T_m-50°C para um duplex >150 pares de bases. A hibridização pode ser realizada em rigor baixo até moderado (25 - 50°C abaixo da T_m), seguida por lavagens pós-hibridização em rigores crescentes. As taxas máximas de hibridização em solução são determinadas empiricamente para ocorrerem a T_m-25°C para um duplex de DNA-DNA e a T_m-15°C

para	um duplex	de	RNA-DNA.	Opcionalmente,	o	grau de
disso	ciação pode	ser	avaliado	após cada etapa	de	lavagem
para	determinar	a	necessidade de etapas	de	lavagem

subsequentes com maior rigor.

[0221] As condições de alto rigor podem ser utilizadas para selecionar sequências de ácidos nucléicos com altos graus de identidade com as sequências divulgadas. Um exemplo de condições rigorosas de hibridização obtidas em um método baseado em filtro, tal como, Southern ou northern blot para a hibridização de ácidos nucléicos complementares que possuem mais de 100 resíduos

101/1027 complementares é de aproximadamente 5°C até 20°C abaixo do ponto térmico de fusão (T_m) para a sequência específica a uma força iônica e um pH definidos. As condições utilizadas para a hibridização podem incluir aproximadamente 0,02 M até aproximadamente 0,15 M de cloreto de sódio, aproximadamente 0,5% até aproximadamente 5% de caseína, aproximadamente 0,02% de SDS ou aproximadamente 0,1% de Nlaurilsarcosina, aproximadamente 0,001 M até aproximadamente 0,03 M de citrato de sódio, a temperaturas de hibridização entre aproximadamente 50°C e aproximadamente 70°C. Mais preferencialmente, as condições de alto rigor são aproximadamente 0,02 M de cloreto de sódio, aproximadamente 0,5% de caseína, aproximadamente 0,02% de SDS, aproximadamente 0,001 M de citrato de sódio, a uma temperatura de aproximadamente 50°C. As moléculas de ácido nucléico que se hibridizam sob condições rigorosas se hibridizarão tipicamente com uma sonda baseada na molécula inteira de DNA ou em partes selecionadas, por exemplo, a uma única subsequência, do DNA.

[0222] A concentração rigorosa de sais será ordinariamente menor que aproximadamente 750 mM de NaCl e 75 mM de citrato trissódico. As condições rigorosas crescentes podem ser obtidas com menos de aproximadamente 500 mM de NaCl e 50 mM de citrato trissódico, até mesmo um rigor maior com menos de aproximadamente 250 mM de NaCl e 25 mM de citrato trissódico. A hibridização com baixo rigor pode ser obtida na ausência de solvente orgânico, por exemplo, formamida, enquanto que a hibridização com alto rigor pode ser obtida na presença de pelo menos aproximadamente 35% de formamida e mais preferencialmente

102/1027 pelo menos aproximadamente 50% de formamida. As condições rigorosas de temperatura incluirão ordinariamente temperaturas de pelo menos aproximadamente 30°C, mais preferencialmente de pelo menos aproximadamente 37°C e mais preferencialmente de pelo menos aproximadamente 42°C com formamida presente. A variação de parâmetros adicionais, tais como o tempo de hibridização, a concentração do detergente, por exemplo, dodecil sulfato de sódio (SDS) e força iônica, é bem-conhecida pelos versados na técnica. Vários níveis de rigor são realizados através da combinação destas várias condições quando necessário.

[0223] As etapas de lavagem que seguem a hibridização também podem variar em relação ao rigor; as etapas de lavagem pós-hibridização determinam primariamente a especificidade da hibridização, com os fatores mais críticos sendo a temperatura e a força iônica da solução de lavagem final. O rigor da lavagem pode ser aumentado através da diminuição da concentração de sais ou através do aumento da temperatura. A concentração rigorosa de sais para as etapas de lavagem será preferencialmente menor que de 30 mM NaCl e 3 mM de citrato trissódico e mais preferencialmente menor que aproximadamente 15 mM de NaCl e 1,5 mM de citrato trissódico.

[0224] Assim, as condições de hibridização e de lavagem que podem ser utilizadas para ligar e remover polinucleotídeos com menos que a homologia necessária às sequências de ácidos nucléicos ou seus complementos que codificam os fatores de transcrição, incluem, por exemplo: 6X SSC a 65°C;

50% de formamida, 4X SSC a 42°C; ou

103/1027

0,5X SSC, 0,1% SDS a 65°C;

com, por exemplo, duas etapas de lavagem de 10 - 30 minutos cada. As variações úteis sobre estas condições serão facilmente evidentes para o versado na técnica.

[0225] Um versado na técnica não esperaria uma variação substancial entre as espécies de polinucleotídeos abrangidos dentro do âmbito da presente invenção porque as condições altamente rigorosas apresentadas nas fórmulas anteriores fornecem polinucleotídeos estruturalmente similares.

[0226] Se desejado, pode-se empregar etapas de lavagem com rigor ainda maior, incluindo aproximadamente 0,2x SSC, 0,1% SDS a 65°C e lavando duas vezes, cada etapa de lavagem sendo de aproximadamente 30 min ou aproximadamente 0,1 x SSC, 0,1% SDS a 65°C e lavando duas vezes durante 30 min. A temperatura para as soluções de lavagem estarão comumente a pelo menos aproximadamente 25°C e para um rigor maior a pelo menos aproximadamente 42°C. O rigor da hibridização pode ser adicionalmente aumentado através da utilização das mesmas condições que nas etapas de hibridização, com a temperatura de lavagem aumentada em aproximadamente 3°C até aproximadamente 5°C e o rigor pode ser ainda maior através da utilização das mesmas condições exceto pelo fato de que a temperatura de lavagem é aumentada em aproximadamente 6°C até aproximadamente 9°C. Para a identificação de homólogos menos intimamente relacionados, as etapas de lavagem podem ser realizadas a uma temperatura menor, por exemplo, a 50^oC.

[0227] Um exemplo de uma etapa de lavagem de baixo rigor emprega uma solução e condições de pelo menos 25°C em

104/1027 mM de NaCl, 3 mM citrato trissódico e 0,1% SDS ao longo de 30 min. O rigor maior pode ser obtido a 42°C em 15 mM de NaCl, com 1,5 mM citrato trissódico e 0,1% SDS ao longo de 30 min. Condições de lavagem com rigor ainda maior são obtidas a 65°C - 68°C em uma solução de 15 mM de NaCl, 1,5 mM de citrato trissódico e 0,1% SDS. Os procedimentos de lavagem empregarão geralmente pelo menos duas etapas finais de lavagem. As variações adicionais sobre estas condições serão facilmente evidentes para os versados na técnica (ver, por exemplo, o Pedido de Patente U.S. N20010010913).

[0228] As condições rigorosas podem ser selecionadas de forma que um oligonucleotídeo que é perfeitamente complementar ao oligonucleotídeo codificador se hibridiza com o oligonucleotídeo codificador com uma razão de sinal em relação ao ruído pelo menos aproximadamente 5 - 10x maior que a razão para a hibridização do oligonucleotídeo perfeitamente complementar com um ácido nucléico que codifica um fator de transcrição conhecido como o da data de depósito do pedido de patente. Pode ser desejável selecionar condições para um ensaio particular de forma que uma razão de sinal em relação ao ruído maior, que é, aproximadamente 15x ou mais, seja obtida. Consequentemente, um ácido nucléico de objetivo se hibridizará com um único oligonucleotídeo codificador com uma razão de sinal em relação ao ruído pelo menos 2x ou superior quando comparado com a hibridização do oligonucleotídeo codificador com um ácido nucléico que codifica o polipeptídeo conhecido. O sinal particular dependerá da marcação utilizada no ensaio relevante, por

105/1027 exemplo, uma marcação fluorescente, uma marcação colorimétrica, uma marcação radioativa ou similar. A hibridização ou as sondas para PCR marcadas para a detecção de sequências de polinucleotídeos relacionadas podem ser produzidas através da marcação de oligonucleotídeos, da translação de pequenos cortes, da marcação das extremidades ou da amplificação pela PCR utilizando um nucleotídeo marcado.

[0229] São abrangidas pela invenção as sequências de polinucleotídeos que codificam polipeptídeos capazes de regular a transcrição, as ditas sequências de nucleotídeos sendo capazes de se hibridizarem com as sequências de polinucleotídeos reivindicadas, incluindo as listadas na Listagem de Sequências ou polinucleotídeos que codificam os polipeptídeos listados na Listagem de Sequências e especificamente as SEQ ID N-: 1-2237 e fragmentos das mesmas sob várias condições de rigor. (Ver, por exemplo, Wahl e Berger (1987) Methods Enzymol. 152: 399-407; Kimmel (1987) Methods Enzymol. 152: 507-511.). As estimativas da homologia são fornecidas através da hibridização de DNA-DNA ou de DNA-RNA sob condições de rigor como é bem entendido pelos versados na técnica (Hames e Higgins, Eds. (1985) Nucleic Acid Hybridisation, IRL Press, Oxford, Reino Unido). As condições rigorosas podem ser ajustadas para selecionar fragmentos moderadamente similares, tais como sequências homólogas de organismos relacionados de forma distante, até fragmentos altamente similares, tais como genes que duplicam enzimas funcionais de organismos intimamente relacionados. As lavagens pós-hibridização determinam as condições rigorosas.

106/1027

Identificação de Polinucleotídeos ou Ácidos Nucléicos com Bibliotecas de Expressão [0230] Em adição aos métodos de hibridização, os polipeptídeos homólogos aos fatores de transcrição podem ser obtidos através da seleção de uma biblioteca de expressão utilizando anticorpos específicos para um ou mais fatores de transcrição. Com a condição contida aqui dos fatores de transcrição e das sequências de ácidos nucléicos homólogas dos fatores de transcrição divulgados, o(s) polipeptídeo(s) codificado(s) pode(m) ser expresso(s) e purificado(s) em um sistema de expressão heteróloga (por exemplo, E. coli) e utilizado(s) para produzir anticorpos (monoclonais ou policlonais) específicos para o(s) polipeptídeo(s) em questão. Os anticorpos também podem ser produzidos contra peptídeos sintéticos derivados do fator de transcrição ou do homólogo do fator de transcrição, sequências de aminoácidos. Os métodos de produção de anticorpos são bem-conhecidos na técnica e estão descritos em Harlow e Lane (1988), Antibodies: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory, Nova York. Tais anticorpos podem então ser utilizados para selecionar uma biblioteca de expressão produzida partindo da planta da qual é desejado clonar homólogos de fatores de transcrição, utilizando os métodos descritos acima. Os cDNAs selecionados podem ser confirmados através do sequenciamento e da atividade enzimática.

Variações de Sequências [0231] Será facilmente considerado pelos versados na técnica, que qualquer uma de uma variedade de sequências de polinucleotídeos é capaz de codificar fatores de

107/1027 transcrição e polipeptídeos homólogos de fatores de transcrição da invenção. Por causa da degeneração do código

genético,	muitos polinucleotídeoss diferentes podem
codificar	polipeptídeos idênticos e/ou substancialmente

similares em adição aos ilustrados na Listagem de Sequências. Os ácidos nucléicos que possuem uma sequência que difere das sequências mostradas na Listagem de Sequências ou sequências complementares, que codificam peptídeos funcionalmente equivalentes (isto é, peptídeos que possuem algum grau de atividade biológica equivalente ou similar), mas diferem em relação à sequência da sequência mostrada na Listagem de Sequências por causa da degeneração do código genético, também estão dentro do âmbito da invenção.

[0232] As sequências de polinucleotídeos alteradas codificando polipeptídeos incluem as sequências com deleções, inserções ou substituições de nucleotídeos diferentes, resultando em um polinucleotídeo que codifica um polipeptídeo com pelo menos uma característica funcional dos presentes polipeptídeos. Estão incluídos dentro desta definição os polimorfismos que podem ou não ser facilmente detectados utilizando uma sonda de oligonucleotídeo particular do polinucleotídeo que codifica os presentes polipeptídeos e a hibridização imprópria ou inesperada com variações alélicas, com um lócus sem ser o lócus cromossômico normal para a sequência de polinucleotídeos que codifica os presentes polipeptídeos.

[0233] A variação alélica se refere a qualquer uma das duas ou mais formas alternativas de um gene de ocupar o mesmo lócus cromossômico. A variação alélica ocorre

108/1027 naturalmente através de mutação e pode resultar no polimorfismo fenotípicos dentro das populações. As mutações gênicas podem ser silenciosas (isto é, nenhuma alteração no polipeptídeo codificado) ou podem codificar polipeptídeos que possuem uma sequência de aminoácidos alterada. O termo variação alélica é também utilizada aqui para determinar uma proteína codificada por uma variação alélica de um gene. A variação de processamento se refere a formas alternativas de RNA transcrito partindo de um gene. A variação de processamento ocorre naturalmente através do uso de sítios alternativos de processamento dentro de uma de RNA transcrita ou menos de RNA transcritas separadamente comumente entre e podem resultar em vários mRNAs transcritos do mesmo gene.

As variações de processamento podem codificar polipeptídeos que possuem uma sequência de aminoácidos alterada. O termo variação de processamento é também utilizado aqui para representar uma proteína codificada por uma variação de processamento de um mRNA transcrito partindo de um gene.

[0234]

Os versados na técnica reconheceriam que, por exemplo, G47, SEQ ID N^o: 12, representa um único fator de transcrição; pode-se esperar que ocorra variação alélica e processamento alternativo. As variações alélicas da SEQ ID N^o: 11 podem ser clonadas através do tratamento de bibliotecas de cDNA ou genômicas com sonda de organismos individuais diferentes de acordo com os procedimentos padronizados. As variações alélicas da sequência de DNA mostrada na SEQ ID N^o: 11, incluindo as que contêm mutações silenciosas e aquelas nas quais as mutações resultam em alterações de aminoácidos, estão dentro do âmbito da

109/1027 presente invenção, como estão as proteínas que são variações alélicas da SEQ ID N^o: 12. Os cDNAs generados de mRNAs processados alternativamente, que mantêm as propriedades do fator de transcrição estão incluídos dentro do âmbito da presente invenção, como estão os polipeptídeos codificados por tais cDNAs e mRNAs. As variações alélicas e as variações de processamento destas sequências podem ser clonadas através da utilização de sondas em bibliotecas de cDNA ou genômicas de organismos ou tecidos individuais diferentes de acordo com os procedimentos padronizados conhecidos na técnica (ver USPN 6.388.064).

[0235] Assim, em adição às sequências apresentadas na Listagem de Sequências, a invenção abrange ainda moléculas de ácidos nucléicos relacionadas que incluem variações alélicas ou de processamento da SEQ ID N^o: 2N 1, em que N = 1- 335, sequências que são ortólogas às SEQ ID N-: 761-1348, 1557-2101 e 2124-2237), sequências que são ortólogas até parálogas às SEQ ID N-: 1349-1556, sequências variantes que mostraram conferir uma característica alterada na Tabela 4 (SEQ ID N-: 2102-2123) listadas na Listagem de Sequências e sequências que são complementares a qualquer uma das sequências de nucleotídeos anteriores. As moléculas de ácidos nucléicos também incluem sequências de nucleotídeos que codificam um polipeptídeo que compreende ou que consiste essencialmente em uma substituição, uma modificação, uma adição e/ou uma deleção de um ou mais resíduos de aminoácidos comparado aos polipeptídeos que são apresentados na Listagem de Sequências. Tais polipeptídeos relacionados podem compreender, por exemplo, adições e/ou deleções de um ou

110/1027 mais sítios de ligação ligados ao N ou ligados ao O ou uma adição e/ou uma deleção de um ou mais resíduos de cisteína.

[0236] Por exemplo, a Tabela 1 ilustra, por exemplo, todos os códons AGC, AGT, TCA, TCC, TCG e TCT que codificam o mesmo aminoácido: serina. Consequentemente, em cada posição na sequência em que há um códon que codifica a serina, qualquer uma das sequências de trinucleotídeos acima pode ser utilizada sem alterar o polipeptídeo codificado.

Tabela 1

Aminoácido	Códons Possíveis
Alanina	Ala	A	GCA	GCC	GCG	GCU
Cisteína	Cys	C	TGC	TGT
Ácido aspártico	Asp	D	GAC	GAT
Ácido glutâmico	Glu	E	GAA	GAG
Fenilalanina	Phe	F	TTC	TTT
Glicina	Gly	G	GGA	GGC	GGG	GGT
Histidina	His	H	CAC	CAT
Isoleucina	Ile	I	ATA	ATC	ATT
Lisina	Lys	K	AAA	AAG
Leucina	Leu	L	TTA	TTG	CTA	CTC	CTG	CTT
Metionina	Met	M	ATG
Asparagina	Asn	N	AAC	AAT
Prolina	Pro	P	CCA	CCC	CCG	CCT
Glutamina	Gln	Q	CAA	CAG
Arginina	Arg	R	AGA	AGG	CGA	CGC	CGG	CGT
Serina	Ser	S	AGC	AGT	TCA	TCC	TCG	TCT

111/1027

Treonina	Thr	T	ACA	ACC	ACG	ACT
Valina	Val	V	GTA	GTC	GTG	GTT
Triptofano	Trp	W	TGG
Tirosina	Tyr	Y	TAC	TAT

[0237] As alterações de sequências que não modificam a sequência de aminoácidos codificada pelo polinucleotídeo são denominadas variações silenciosas. Com a exceção dos códons ATG e TGG, que codificam a metionina e o triptofano, respectivamente, qualquer um dos códons possíveis para o mesmo aminoácido pode ser substituído por uma variedade de técnicas, por exemplo, a mutagênese direcionada ao sítio, disponíveis na técnica. Consequentemente, qualquer uma e todas as tais variações de uma sequência selecionada da tabela acima são uma característica da invenção.

[0238]

Em adição às variações silenciosas, outras variações conservativas que alteram um ou alguns aminoácidos no polipeptídeo codificado, podem ser feitas sem alterar a função do polipeptídeo, estas variações conservativas são, similarmente, uma característica da invenção.

[0239]

Por exemplo, as substituições, as deleções e as inserções introduzidas nas sequências fornecidas na

Listagem de

Sequências, são também imaginadas pela invenção. Tais modificações de sequências podem ser engenheiradas em uma sequência através da mutagênese direcionada ao sítio (Wu (ed.) Methods Enzymol.

(1993) vol.

217, Academic

Press) ou de outros métodos citados abaixo.

As substituições de aminoácidos são tipicamente de resíduos isolados; as inserções geralmente serão na ordem de

112/1027 aproximadamente 1 até 10 resíduos de aminoácidos; e as deleçãos variarão de aproximadamente 1 até 30 resíduos. Em modalidades preferidas, as deleções ou as inserções são feitas em pares adjacentes, por exemplo, uma deleção de dois resíduos ou a inserção de dois resíduos. As substituições, as deleções, as inserções ou qualquer combinação das mesmas podem ser associadas para chegar a uma sequência. As mutações que são feitas no polinucleotídeo que codifica o fator de transcrição não devem deslocar a sequência do quadro de leitura e não devem criar regiões complementares que possam produzir uma estrutura secundária de mRNA. Preferencialmente, o polipeptídeo codificado pelo DNA realiza a função desejada.

[0240] As substituições conservativas são aquelas em que pelo menos um resíduo na sequência de aminoácidos foi removido e um resíduo diferente foi inserido em seu lugar. Tais substituições são geralmente feitas de acordo com a Tabela 2 quando é desejado manter a atividade da proteína. A Tabela 2 mostra os aminoácidos que podem ser substituídos por um aminoácido em uma proteína e que são tipicamente considerados como substituições conservativas.

Tabela 2

Resíduo	Substituições Conservativas
Ala	Ser
Arg	Lys
Asn	Gln; His
Asp	Glu
Gln	Asn
Cys	Ser
Glu	Asp

113/1027

Gly	Pro
His	Asn; Gln
Ile	Leu, Val
Leu	Ile; Val
Lys	Arg; Gln
Met	Leu; Ile
Phe	Met; Leu; Tyr
Ser	Thr; Gly
Thr	Ser; Val
Trp	Tyr
Tyr	Trp; Phe
Val	Ile; Leu

[0241] As substituições similares são aquelas em que pelo menos um resíduo na sequência de aminoácidos foi removido e um resíduo diferente é inserido em seu lugar. Tais substituições são geralmente feitas de acordo com a Tabela 3 quando é desejado manter a atividade da proteína. A Tabela 3 mostra os aminoácidos que podem ser substituídos por um aminoácido em uma proteína e que são tipicamente considerados como substituições estruturais e funcionais. Por exemplo, um resíduo da coluna 1 da Tabela 3 pode ser substituído por um resíduo na coluna 2; em adição, um resíduo na coluna 2 da Tabela 3 pode ser substituído pelo resíduo da coluna 1.

Tabela 3

Resíduo	Substituições Similares
Ala	Ser; Thr; Gly; Val; Leu; Ile
Arg	Lys; His; Gly
Asn	Gln; His; Gly; Ser; Thr

114/1027

Asp	Glu, Ser; Thr
Gln	Asn; Ala
Cys	Ser; Gly
Glu	Asp
Gly	Pro; Arg
His	Asn; Gln; Tyr; Phe; Lys; Arg
Ile	Ala; Leu; Val; Gly; Met
Leu	Ala; Ile; Val; Gly; Met
Lys	Arg; His; Gln; Gly; Pro
Met	Leu; Ile; Phe
Phe	Met; Leu; Tyr; Trp; His; Val; Ala
Ser	Thr; Gly; Asp; Ala; Val; Ile; His
Thr	Ser; Val; Ala; Gly
Trp	Tyr; Phe; His
Tyr	Trp; Phe; His
Val	Ala; Ile; Leu; Gly; Thr; Ser; Glu

[0242] As substituições que são menos conservativas que aquelas na Tabela 2 podem ser selecionadas através da escolha de resíduos que diferem mais significativamente em seu efeito de manter (a) a estrutura da estrutura básica do polipeptídeo na área da substituição, por exemplo, como uma conformação em folha ou em hélice, (b) a carga ou a hidrofobicidade da molécula no sítio alvo ou (c) o volume da cadeia lateral. As substituições que em geral são esperadas que produzam as maiores alterações nas propriedades da proteína serão aquelas em que (a) um

115/1027 resíduo hidrofílico, por exemplo, serila ou treonila, é substituído por um resíduo hidrofóbico, por exemplo, leucila, isoleucila, fenilalanila, valila ou alanila; (b) uma cisteína ou uma prolina é substituída por qualquer outro resíduo; (c) um resíduo que possui uma cadeia lateral eletropositiva, por exemplo, lisila, arginila ou histidila, é substituído por um resíduo eletronegativo, por exemplo, glutamila ou aspartila; ou (d) um resíduo que possui uma cadeia lateral volumosa, por exemplo, a fenilalanina, é substituído por um que não possui uma cadeia lateral, por exemplo, a glicina.

Modificações Adicionais de Sequências da Invenção Mutação/Evolução Forçada [0243] Em adição à produção de substituições silenciosas ou conservativas como citado acima, a presente invenção inclui opcionalmente métodos de modificação das sequências da Listagem de Sequências.

Nos métodos, modificação dos ácidos nucléicos ou de proteínas utilizada para alterar as sequências fornecidas para produzi novas sequências e/ou modificar quimicamente ou enzimaticamente certas sequências para alterar as propriedades dos ácidos nucléicos ou proteínas.

Assim, em uma modalidade, certas sequências de ácidos nucléicos são modificadas, por exemplo, de acordo com os métodos padronizados de mutagênese ou de evolução artificial para produzir sequências modificadas. As sequências modificadas podem ser criadas utilizando polinucleotídeos naturais purificados isolados de qualquer organismo ou podem ser sintetizadas partindo de compostos purificados e produtos químicos utilizando meios químicos

116/1027 bem-conhecidos pelos versados na técnica. Por exemplo, Ausubel, supra, fornece detalhes adicionais sobre métodos de mutagênese. Os métodos de evolução forçada artificial são descritos, por exemplo, por Stemmer (1994) Nature 370: 389-391, Stemmer (1994) Proc. Natl. Acad. Sci. 91: 1074710751 Patentes U.S. N— 5.811.238, 5.837.500 e 6.242.568. Os métodos para engenheirar fatores de transcrição sintéticos e outros polipeptídeos são descritos, por exemplo, por Zhang e outros (2000) J. Biol. Chem. 275: 33850-33860, Liu e outros (2001) J. Biol. Chem. 276: 1132311334 e Isalan e outros (2001) Nature Biotechnol. 19: 656

660. Muitos outros métodos de mutação e de evolução também estão disponíveis e espera-se que estejam dentro da perícia do técnico.

[0245] Similarmente, a alteração química ou enzimática de ácidos nucléicos e polipeptídeos expressos pode ser realizada através de métodos padronizados. Por exemplo, a sequência pode ser modificada através da adição de lipídeos, açúcares, peptídeos, compostos orgânicos ou inorgânicos, através da inclusão de nucleotídeos ou aminoácidos modificados ou similares.

Por exemplo, as de modificação de proteínas são ilustradas em

Ausubel, supra. Detalhes adicionais sobre modificações químicas e enzimáticas podem ser encontrados aqui. Estes métodos de modificação podem ser utilizados para modificar qualquer sequência fornecida ou para modificar qualquer sequência produzida através de vários métodos de modificação por mutação e por evolução forçada citados aqui.

[0246]

Consequentemente invenção fornece

117/1027 modificação de qualquer ácido nucléico fornecido através de mutação, evolução, modificação química ou enzimática ou outros métodos disponíveis, assim como para os produtos obtidos através da prática de tais métodos, por exemplo, utilizando as sequências contidas aqui como um substrato de partida para as várias abordagens de modificação.

[0247] Por exemplo, os códons que contêm sequências codificadoras otimizadas preferidos por um hospedeiro procariótico ou eucariótico particular podem ser utilizados, por exemplo, para aumentar a taxa de tradução ou para produzir produtos da transcrição de RNA recombinantes que possuem propriedades desejáveis, tal como, uma meia-vida mais longa, quando comparados com os produtos da transcrição produzidos utilizando uma sequência não otimizada. Os códons de término da tradução também podem ser modificados para refletir as preferências do hospedeiro. Por exemplo, os códons de términos preferidos para Saccharomyces cerevisiae e mamíferos são TAA e TGA, respectivamente. O códon de término preferido pra as plantas monocotiledôneas é TGA, enquanto que os insetos e E. coli preferem utilizar TAA como o códon de término.

[0248] As sequências de polinucleotídeos da presente invenção podem também ser engenheiradas com a finalidade de alterar uma sequência codificadora por uma variedade de razões, incluindo, mas não limitadas às alterações que modificam a sequência para facilitar a clonagem, o processamento e/ou a expressão do produto gênico. Por exemplo, as alterações são opcionalmente introduzidas utilizando técnicas que são bem-conhecidas na técnica, por exemplo, a mutagênese direcionada ao sítio,

118/1027 para inserir novos sítios de restrição, para alterar os padrões de glicosilação, para alterar a preferência de códons, para introduzir sítios de processamento etc.

[0249] Além disso, um fragmento ou um domínio derivado de qualquer um dos polipeptídeos da invenção pode ser combinado com domínios derivados de outros fatores de transcrição ou domínios sintéticos para modificar a atividade biológica de um fator de transcrição. Por exemplo, um domínio de ligação ao DNA derivado de um fator de transcrição da invenção pode ser combinado com o domínio de ativação de um outro domínio de ativação ou com um domínio de ativação sintético. Um domínio de ativação da transcrição auxilia na iniciação da transcrição partindo do sítio de ligação ao DNA. Os exemplos incluem a região de ativação da transcrição de VP16 ou de GAL4 (Moore e outros (1998) Proc. Natl. Acad. Sci. 95: 376-381; Aoyama e outros (1995) Plant Cell 7: 1773-1785), peptídeos derivados de sequências bacterianas (Ma e Ptashne (1987) Cell 51: 113119) e peptídeos sintéticos (Giniger e Ptashne (1987) Nature 330: 670-672).

Expressão e Modificação de Polipeptídeos [0250] Tipicamente, as sequências de polinucleotídeos da invenção são incorporadas em moléculas de DNA (ou RNA) recombinantes que direcionam a expressão de polipeptídeos da invenção em células hospedeiras apropriadas, plantas transgênicas, sistemas de tradução in vitro ou similares. Devido à degeneração inerente do código genético, as sequências de ácidos nucléicos que codificam substancialmente a mesma ou uma sequência de aminoácidos funcionalmente equivalente podem ser substituídas por

119/1027 qualquer sequência listada para fornecer a clonagem e a expressão do homólogo relevante.

[0251]

As plantas transgênicas da presente invenção que compreendem sequências de polinucleotídeos recombinantes são geralmente derivadas de plantas parentais, que podem por si só ser plantas nãotransformadas ou não-transgênicas.

Estas plantas transgênicas podem ter um gene de fator de transcrição nocauteado (por exemplo, com uma inserção genômica através da recombinação homóloga, uma constructo antisentido ou de ribozima) ou expresso até uma extensão normal ou do tipo selvagem. Entretanto, as plantas da progênie transcrição com superexpressão exibirão maiores níveis de mRNA, em que o mRNA codifica um fator de transcrição, que é, uma proteína de ligação ao DNA que é capaz de se ligar a uma sequência reguladora do DNA e induzir a transcrição e preferencialmente, a expressão de um gene de característica vegetal. Preferencialmente, o nível de expressão do mRNA será pelo menos três vezes maior que o da planta parental ou mais preferencialmente pelo menos dez vezes maior que os níveis de mRNA comparados com os da dita planta parental e mais preferencialmente pelo menos quarenta vezes maior comparados com os da dita planta parental.

Vetores, Promotores e Sistemas de Expressão [0252] A presente invenção inclui construções recombinantes que compreendem uma ou mais das sequências de ácidos nucléicos contidas aqui. As construções compreendem tipicamente um vetor, tal como, um plasmídeo, um cosmídeo, um fago, um vírus (por exemplo, um vírus vegetal), um cromossomo artificial de bactéria (BAC), um cromossomo

120/1027 artificial de levedura (YAC) ou similares, nos quais uma sequência de ácido nucléico da invenção foi inserida, em uma orientação para frente ou inversa. Em um aspecto preferido desta modalidade, a construção compreende ainda sequências reguladoras, incluindo, por exemplo, um promotor, ligado de forma operacional à sequência. Números maiores de vetores e de promotores adequados são conhecidos pelos versados na técnica e estão disponíveis comercialmente.

[0253] Os textos gerais que descrevem técnicas de biologia molecular úteis aqui, incluindo o uso e a produção de vetores, promotores e muitos outros tópicos relevantes, incluem Berger, Sambrook, supra e Ausubel, supra. Qualquer uma das sequências identificadas pode ser incorporada em um cassete ou um vetor, por exemplo, para a expressão em plantas. Um número de vetores de expressão adequados para a transformação estável de células vegetais ou para o estabelecimento de plantas transgênicas foi descrito incluindo os descritos em Weissbach e Weissbach (1989) Methods for Plant Molecular Biology, Academic Press e Gelvin e outros (1990) Plant Molecular Biology Manual, Kluwer Academic Publishers. Os exemplos específicos incluem os derivados de um plasmídeo Ti de Agrobacterium tumefaciens, assim como os divulgados por Herrera-Estrella e outros (1983) Nature 303: 209, Bevan (1984) Nucleic Acids Res. 12: 8711-8721, Klee (1985) Bio/Technology 3: 637-642, para plantas dicotiledôneas.

[0254] Alternativamente, os vetores sem ser Ti podem ser utilizados para transferir o DNA em plantas e células dicotiledôneas através da utilização de técnicas de

121/1027 distribuição de DNA livre. Tais métodos podem envolver, por exemplo, o uso de lipossomos, a eletroporação, o bombardeio de microprojéteis, filamentos de carbureto de silício e vírus. Utilizando estes métodos, plantas transgênicas tais como o trigo, o arroz (Christou (1991) Bio/Technology 9: 957-962) e o milho (Gordon-Kamm (1990) Plant Cell 2: 603618) podem ser produzidas. Um embrião imaturo também pode ser um bom tecido alvo para as monocotiledôneas para direcionar as técnicas de distribuição de DNA através da utilização da pistola de partículas (Weeks e outros (1993) Plant Physiol. 102: 1077-1084; Vasil (1993) Bio/Technology 10: 667-674; Wan e Lemeaux (1994) Plant Physiol. 104: 37-48 e para a transferência de DNA mediada por Agrobacterium (Ishida e outros (1996) Nature Biotechnol. 14: 745-750).

[0255] Tipicamente, os vetores de transformação de plantas incluem uma ou mais sequências codificadoras de plantas (genômicas ou cDNA) sob o controle transcricional de sequências reguladoras a 5' e a 3' e um marcador selecionável dominante. Tais vetores de transformação de plantas contêm ainda tipicamente um promotor (por exemplo, uma região reguladora que controla a expressão que pode ser induzida ou constitutiva, regulada pelo ambiente ou pelo desenvolvimento ou específica à célula ou ao tecido), um sítio de início da transcrição, um sinal de processamento de RNA (tais como sítios de processamento de íntrons), um sítio de término da transcrição e/ou um sinal de poliadenilação.

[0256] Uma utilidade potencial para os polinucleotídeos dos fatores de transcrição divulgados aqui é o isolamento de elementos promotores partindo destes

122/1027 genes que podem ser utilizados para programar a expressão em plantas de quaisquer genes. Cada gene de fator de transcrição divulgado aqui é expresso de uma forma única, que é determinada por elementos promotores localizados a montante do início da tradução e adicionalmente dentro de um íntron do gene do fator de transcrição ou a jusante do códon de término do gene. Como é bem-conhecido na técnica, para uma parte significativa dos genes, as sequências promotoras ficam localizadas inteiramente na região diretamente a montante do início da tradução. Em tais casos, tipicamente as sequências promotoras ficam localizadas dentro de 2,0 kb do início da tradução ou dentro de 1,5 kb do início da tradução, frequentemente dentro de 1,0 kb do início da tradução e algumas vezes dentro de 0,5 kb do início da tradução.

[0257] As sequências promotoras podem ser isoladas de acordo com métodos conhecidos por um versado na técnica.

[0258] Os exemplos de promotores constitutivos de plantas que podem ser úteis para a expressão da sequência do TF incluem: o promotor 35S do vírus mosaico da couveflor (CaMV), que confere uma expressão em alto nível constitutiva na maior parte dos tecidos vegetais (ver, por exemplo, Odell e outros (1985) Nature 313: 810-812); o promotor da nopalina sintase (An e outros (1988) Plant Physiol. 88: 547-552); e o promotor da octopina sintase (Fromm e outros (1989) Plant Cell 1: 977-984) .

[0259] Uma variedade de promotores gênicos de plantas que regulam a expressão em resposta a sinais ambientais, hormonais, químicos, de desenvolvimento e de uma maneira ativa no tecido pode ser utilizada para a

123/1027 expressão de uma sequência do TF nas plantas. A escolha de um promotor se baseia enormemente no fenótipo de interesse e é determinada por fatores, tais como o tecido (por exemplo, semente, fruto, raiz, pólen, tecido vascular, flor, carpelo etc.), a capacidade de indução (por exemplo, em resposta a feridas, calor, frio, seca, luz, agentes patogênicos etc.), a sincronia, o estágio do desenvolvimento e similares. Vários promotores conhecidos foram caracterizados e podem ser favoravelmente empregados para promover a expressão de um polinucleotídeo da invenção planta ou célula transgênica os promotores específicos específicos à semente (tal faseolina ou de DC3 descrito em uma exemplo, promotores napina, da 5.773.697), ativos durante promotor dru 1 2A11 (Patente poligalacturonase Mol. Biol. 11: tais como os 5.837.848 e como PTA29, promotores (1998) Plant flores (Kaiser 243), ao pólen 26: 1947-1959),

Cell 2: 837-848), (1993) Plant Mol. Biol. 22:

os promotores específicos o amadurecimento dos frutos (Patente U.S. N^o 5.783.393)

U.S. N 4.943.674) e o do tomate (Bird e outros

651-662), os promotores divulgados nas Patente

5.905.186, os promotores

PTA26 e PTA13 (Patente U.S. ativos no tecido vascular

Mol. Biol. 37: 977-988), e outros (1995) Plant (Baerson e outros de interesse. Por ao tecido incluem: como, o promotor da na Patente U.S. Nao fruto que são (tal como, o ou o promotor promotor da (1988) Plant específicos à raiz, U.S. N— 5.618.988, ativos no pólen, tais N^o 5.792.929), os (Ringli e Keller os específicos às

Mol. Biol. 28: 231(1994) Plant Mol. Biol.

(Ohl e outros (1990) Plant aos óvulos (Baerson e outros 255-267), os promotores que aos carpelos ao pólen e

124/1027 podem ser induzidos pela auxina (tais como os descritos em van der Kop e outros (1999) Plant Mol. Biol. 39: 979-990 ou Baumann e outros, (1999) Plant Cell 11: 323-334), o promotor que pode ser induzido pela citoquinina (GuevaraGarcia (1998) Plant Mol. Biol. 38: 743-753), os promotores que respondem à giberelina (Shi e outros (1998) Plant Mol. Biol. 38: 1053-1060, Willmott e outros (1998) Plant Molec. Biol. 38: 817-825) e similares. Os promotores adicionais são aqueles que ativam a expressão em resposta ao calor (Ainley e outros (1993) Plant Mol. Biol. 22: 13-23), à luz (por exemplo, o promotor rbcS-3A da ervilha, Kuhlemeier e outros (1989) Plant Cell 1: 471-478 e o promotor rbcS do milho, Schaffner e Sheen (1991) Plant Cell 3: 997-1012); a feridas (por exemplo, wunI, Siebertz e outros (1989) Plant Cell 1: 961-968); a agentes patogênicos (tal como, o promotor PR-1 descrito em Buchel e outros (1999) Plant Mol. Biol. 40: 387-396 e o promotor PDF1.2 descrito em Manners e outros (1998) Plant Mol. Biol. 38: 1071-1080) e a reagentes químicos, tal como, o jasmonato de metila ou o ácido salicílico (Gatz (1997) Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 48: 89-108). Em adição, a sincronia da expressão pode ser controlada através do uso de promotores, tais como aqueles que atuam na senescência (Gan e Amasino (1995) Science 270: 1986-1988); ou no desenvolvimento tardio das sementes (Odell e outros (1994) Plant Physiol. 106: 447458).

[0260] Os vetores de expressão de plantas também podem incluir sinais de processamento do RNA que podem ser posicionados dentro, a montante ou a jusante da sequência codificadora. Em adição, os vetores de expressão podem

125/1027 incluir sequências reguladoras adicionais da região nãotraduzida a 3' de genes de plantas, por exemplo, uma região de término a 3' para aumentar a estabilidade do mRNA, tal como, a região de término de PI-II da batata ou as regiões de término a 3' da octopina ou da nopalina sintase.

Elementos Adicionais da Expressão [0261] Os sinais de início específicos podem auxiliar na tradução eficiente de sequências codificadoras. Estes sinais podem incluir, por exemplo, o códon de início ATG e as sequências adjacentes. Nos casos em que uma sequência codificadora, seu códon de início e sequências a montante são inseridos no vetor de expressão apropriado, podem não ser necessário nenhum sinal de controle adicional. Entretanto, nos casos em que somente a sequência codificadora (por exemplo, uma sequência codificadora de uma proteína madura) ou uma parte da mesma, é inserida, sinais exógenos de controle da transcrição incluindo o códon de início ATG podem ser fornecidos separadamente. O códon de início é fornecido no quadro de leitura correto para facilitar a transcrição. Os elementos transcricionais exógenos e os códons de início podem ter várias origens, tanto naturais quanto sintéticas. A eficiência da expressão pode ser aumentada através da inclusão de intensificadores apropriados para o sistema celular em uso.

Hospedeiros de Expressão [0262] A presente invenção também se refere a células hospedeiras que são transduzidas com vetores da invenção e à produção de polipeptídeos da invenção (incluindo fragmentos dos mesmos) através de técnicas recombinantes. As células hospedeiras são engenheiradas

126/1027 geneticamente (isto é, são introduzidos ácidos nucléicos, por exemplo, transduzidos, transformados ou transfectados) com os vetores desta invenção, que podem ser, por exemplo, um vetor de clonagem ou um vetor de expressão que compreende os ácidos nucléicos relevantes contidos aqui. O vetor é opcionalmente um plasmídeo, uma partícula viral, um fago, um ácido nucléico nu etc. As células hospedeiras engenheiradas podem ser cultivadas em meios nutricionais convencionais modificados quando apropriado para a ativação dos promotores, para a seleção de transformantes ou para a amplificação do gene relevante. As condições de cultivo, tais como a temperatura, o pH e similares, são aquelas previamente utilizadas com a célula hospedeira selecionada para a expressão e serão evidentes para os versados na

técnica e	nas	referências citadas	aqui,	incluindo,
Sambrook, supra	e Ausubel, supra.
[0263]	A	célula hospedeira	pode	ser	uma	célula
eucariótica,	tal	como, uma célula de	levedura ou	uma	célula
vegetal ou	a	célula hospedeira	pode	ser	uma	célula

procariótica, tal como, uma célula bacteriana. Os protoplastos vegetais também são adequados para algumas aplicações. Por exemplo, os fragmentos de DNA são introduzidos nos tecidos vegetais, células vegetais cultivadas ou protoplastos vegetais através de métodos padronizados incluindo a eletroporação (Fromm e outros (1985) Proc. Natl. Acad. Sci. 82: 5824-5828), a infecção por vetores virais tal como, o vírus mosaico da couve-flor (CaMV) (Hohn e outros (1982) Molecular Biology of Plant Tumors Academic Press, Nova York, NY, pp. 549-560; Patente U.S. N- 4.407.956), a penetração por balística em alta

127/1027 velocidade por partículas pequenas com o ácido nucléico dentro da matriz de esferas ou partículas pequenas ou na superfície (Klein e outros (1987) Nature 327: 70-73), o uso de pólen como vetor (WO 85/01856) ou o uso de Agrobacterium tumefaciens ou A. rhizogenes carregando um plasmídeo de TDNA no qual fragmentos de DNA são clonados. O plasmídeo de T-DNA é transmitido para as células vegetais após a infecção por Agrobacterium tumefaciens e uma parte é integrada de forma estável no genoma da planta (Horsch e outros (1984) Science 233: 496-498; Fraley e outros (1983) Proc. Natl. Acad. Sci. 80: 4803-4807).

[0264] A célula pode incluir um ácido nucléico da invenção que codifica um polipeptídeo, em que a célula expressa um polipeptídeo da invenção. A célula pode ainda incluir sequências de vetores ou similares. Além disso, as células e as plantas transgênicas que incluem qualquer polipeptídeo ou ácido nucléico acima ou contido ao longo de toda esta especificação, por exemplo, produzido através da transdução de um vetor da invenção, constituem uma característica adicional da invenção.

[0265] Para a produção de alto rendimento a longo prazo das proteínas recombinantes, pode ser utilizada a expressão estável. Células hospedeiras transformadas com uma sequência de nucleotídeos que codifica um polipeptídeo da invenção são opcionalmente cultivadas sob condições adequadas para a expressão e para a recuperação da proteína codificada da cultura de células. A proteína ou o fragmento da mesma produzido por uma célula recombinante pode ser secretado, ligado à membrana ou contido de forma intracelular, dependendo da sequência e/ou do vetor

128/1027 utilizado. Como será entendido pelos versados na técnica, os vetores de expressão que contêm polinucleotídeos que codificam proteínas maduras da invenção podem ser planejados com sequências sinais que direcionam a secreção dos polipeptídeos maduros através de uma membrana de célula procariótica ou eucariótica.

Resíduos de Aminoácidos Modificados [0266] Os polipeptídeos da invenção podem conter um ou mais resíduos de aminoácidos modificados. A presença de aminoácidos modificados pode ser vantajosa, por exemplo, no aumento da meia-vida do polipeptídeo, na redução da antigenicidade ou da estabilidade similares. O(s) da toxicidade do polipeptídeo, no aumento de armazenamento do polipeptídeo ou resíduo(s) de aminoácido(s) é(são) modificado(s), por exemplo, de forma co-tradução ou póstradução durante produção recombinante ou modificado(s) através de meios sintéticos ou químicos.

Os exemplos não limitantes de um resíduo de aminoácido incluem a incorporação ou outro uso de aminoácidos acetilados, aminoácidos glicosilados, aminoácidos sulfatados, aminoácidos prenilados (por exemplo, farnesilados, geranilgeranilados) , aminoácidos modificados com PEG (por exemplo,

PEGuilados) , aminoácidos biotinilados, aminoácidos carboxilados, aminoácidos fosforilados etc.

As referências adequadas para guiar um versado na técnica na modificação de resíduos de aminoácidos são abundantes por toda a literatura.

[0268] Os resíduos de aminoácidos modificados podem prevenir ou aumentar a afinidade do polipeptídeo por uma outra molécula, incluindo, mas não limitada ao

129/1027 polinucleotídeo, às proteínas, aos carboidratos, aos lipídeos e aos derivados de lipídeos e outros compostos orgânicos ou sintéticos.

Identificação de Fatores Adicionais [0269] Um fator de transcrição fornecido pela presente invenção também pode ser utilizado para identificar moléculas endógenas ou exógenas adicionais que podem afetar um fenótipo ou uma característica de interesse. Por um lado, tais moléculas incluem compostos orgânicos (moléculas pequenas ou grandes) e/ou inorgânicos que afetam a expressão (isto é, regulam) de um fator de transcrição particular. Alternativamente, tais moléculas incluem moléculas endógenas que sofrem atuação após um nível de transcrição por um fator de transcrição da invenção para modificar um fenótipo quando desejado. Por exemplo, os fatores de transcrição podem ser empregados para a identificação de um ou mais genes a jusante que estão sujeitos a um efeito regulador do fator de transcrição. Em uma abordagem, um fator de transcrição ou um homólogo de fator de transcrição da invenção é expresso em uma célula hospedeira, por exemplo, uma célula, um tecido ou um explante vegetal transgênico e produtos de expressão, RNA ou proteína, de alvos prováveis ou aleatórios é monitorado, por exemplo, através da hibridização a um microarranjo de sondas de ácidos nucléicos correspondentes aos genes expressos em um tecido ou tipo de célula de interesse, através da eletroforese em gel bidimensional de produtos da proteína ou através de qualquer outro método conhecido na técnica para avaliar a expressão de produtos gênicos no nível de RNA ou de

130/1027 proteína. Alternativamente, um fator de transcrição da invenção pode ser utilizado para identificar sequências promotoras (tais como sítios de ligação nas sequências de DNA) envolvidas na regulação de um alvo a jusante. Após a identificação de uma sequência promotora, as interações entre o fator de transcrição e a sequência promotora podem ser modificadas através da alteração de nucleotídeos específicos na sequência promotora ou de aminoácidos específicos no fator de transcrição que interagem com a sequência promotora para alterar uma característica da planta. Tipicamente, os sítios de ligação ao DNA do fator de transcrição são identificados através de ensaios de alteração no

Após a identificação das regiões promotoras, as sequências das regiões promotoras podem ser empregadas em arranjos de DNA de filamento duplo para identificar moléculas que afetam as interações dos fatores de transcrição com seus promotores (Bulyk e outros (1999)

Nature Biotechnol.

17: 573-577).

Os fatores de transcrição identificados também são úteis para identificar proteínas que modificam a atividade do fator de transcrição. Tais modificações podem ocorrer através da modificação covalente, tal como, através da fosforilação ou através de interações proteína-proteína (homo ou heteropolímero). Qualquer método adequado para detectar as interações proteína-proteína pode ser empregado. Entre os métodos que podem ser empregados estão a co-imunoprecipitação, a ligação cruzada e a copurificação através de gradientes ou colunas cromatográficas e o sistema de levedura de dois híbridos.

[0271] O sistema de dois híbridos detecta

131/1027 interações de proteínas in vivo e é descrito em Chien e outros ((1991) Proc. Natl. Acad. Sci. 88: 9578-9582) e está disponível comercialmente na Clontech (Palo Alto, Calif.). Em tal sistema, são construídos plasmídeos que codificam duas proteínas híbridas: uma consiste do domínio de ligação ao DNA de uma proteína ativadora da transcrição fundido com o polipeptídeo do TF e a outra consiste do domínio de ativação da proteína ativadora da transcrição fundido com uma proteína desconhecida que é codificada por um cDNA que foi recombinado no plasmídeo como parte de uma biblioteca de cDNA. O plasmídeo de fusão do domínio de ligação ao DNA e a biblioteca de cDNA são transformados em uma cepa da levedura Saccharomyces cerevisiae que contém um gene repórter (por exemplo, lacZ) cuja região reguladora contém o sítio de ligação do ativador da transcrição. Nenhuma das duas proteínas sozinhas pode ativar a transcrição do gene repórter. A interação das duas proteínas híbridas reconstitui a proteína ativadora funcional e resulta na expressão do gene repórter, que é detectado através de um ensaio para o produto do gene repórter. Então, os plasmídeos da biblioteca responsáveis pela expressão do gene repórter são isolados e sequenciados para identificar as proteínas codificadas pelos plasmídeos da biblioteca. Após a identificação de proteínas que interagem com os fatores de transcrição, podem ser realizados os ensaios para os compostos que interferem com as interações proteína-proteína do TF.

Identificação de Moduladores [0272] Em adição às moléculas intracelulares descritas anteriormente, as moléculas extracelulares que

132/1027 alteram a atividade ou a expressão de um fator de transcrição, diretamente ou indiretamente, podem ser identificadas. Por exemplo, os métodos podem vincular primeiro a colocação de uma molécula candidata em contato com uma planta ou célula vegetal. A molécula pode ser introduzida através da administração tópica, tal como, borrifando ou mergulhando uma planta ou incubando uma planta em uma solução que contém a molécula e então o efeito da molécula sobre a expressão ou a atividade do polipeptídeo do TF ou a expressão do polinucleotídeo é monitorada. As alterações na expressão do polipeptídeo do TF podem ser monitoradas através do uso de anticorpos policlonais ou monoclonais, de eletroforese em gel ou similares. As alterações na expressão da sequência de polinucleotídeo correspondente podem ser detectadas através do uso de microarranjos, Northerns, PCR quantitativa ou qualquer outra técnica para monitorar alterações na expressão do mRNA. Estas técnicas são exemplificadas em Ausubel e outros (eds.) Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons (1998 e supplements through 2001). As alterações na atividade do fator de transcrição podem ser monitoradas, diretamente ou indiretamente, através do ensaio da função do fator de transcrição, por exemplo, medindo a expressão de promotores conhecidos por serem controlados pelo fator de transcrição (utilizando construções promotor-repórter), medindo os níveis dos produtos da transcrição utilizando microarranjos, Northern blots, PCR quantitativa etc. Tais alterações nos níveis de expressão podem ser correlacionadas com caracteísticas vegetais modificadas e assim as moléculas identificadas

133/1027 podem ser úteis para mergulhar ou borrifar o fruto, o vegetal e as plantas de cultivo em grãos para modificar as características nas plantas.

[0273] Essencialmente qualquer composição disponível pode ser testada em relação à atividade moduladora da expressão ou da atividade de qualquer ácido nucléico ou polipeptídeo contido aqui. Assim, as bibliotecas disponíveis de compostos tais como reagentes químicos, polipeptídeos, ácidos nucléicos e similares podem ser testadas em relação à atividade moduladora. Frequentemente, os compostos moduladores potenciais podem ser dissolvidos em soluções aquosas ou orgânicas (por exemplo, baseadas em DMSO) para a fácil distribuição na célula ou na planta de interesse em que a atividade do modulador deve ser testada. Opcionalmente, os ensaios são planejados para selecionar grandes bibliotecas de composições moduladoras através da automatização das etapas de ensaio e fornecendo compostos de qualquer fonte conveniente para os ensaios, que são tipicamente rodados em paralelo (por exemplo, em formatos de microtitulação em placas micrométricas em ensaios robóticos).

[0274] Em uma modalidade, os métodos de seleção de alta circulação envolvem o fornecimento de uma biblioteca combinatória contendo um grande número de compostos potenciais (compostos moduladores potenciais). Tais bibliotecas químicas combinatórias são então selecionadas em um ou mais ensaios, como descrito aqui, para identificar os membros da biblioteca (espécies ou subclasses químicas particulares) que exibem uma atividade característica desejada. Os compostos identificados desta forma podem

134/1027 servir como compostos alvos.

[0275] Uma biblioteca combinatória pode ser, por exemplo, uma coleção de vários compostos químicos gerados através da síntese química ou da síntese biológica. Por exemplo, uma biblioteca química combinatória, tal como, uma biblioteca de polipeptídeos é formada através da combinação de um conjunto de blocos de construção químicos (por exemplo, em um exemplo, aminoácidos) em cada forma possível para um certo comprimento de composto (isto é, o número de aminoácidos em um composto polipeptídico de um conjunto de comprimentos). Os exemplos de bibliotecas incluem bibliotecas peptídicas, bibliotecas de ácidos nucléicos, bibliotecas de anticorpos (ver, por exemplo, Vaughn e outros (1996) Nature Biotechnol. 14: 309-314 e PCT/US96/10287), bibliotecas de carboidratos (ver, por exemplo, Liang e outros Science (1996) 274: 1520-1522 e Patente U.S. N^o 5.593.853), bibliotecas de ácidos nucléicos (ver, por exemplo, Patente U.S. N 5.539.083) e bibliotecas de moléculas orgânicas pequenas (ver, por exemplo, benzodiazepinas, em Baum Chem.

& Engineering

News Jan 18,

1993, página 33;

isoprenóides,

Patente U.S.

N^o

5.569.588;

tiazolidinonas metatiazanonas,

Patente U.S.

N^o

5.549.974;

pirrolidinas,

Patente U.S. N—

5.525.735

5.519.134;

compostos de morfolino, Patente

U.S. N

5.506.337) e similares.

[0276]

A preparação e a seleção de bibliotecas combinatórias e outras são bem-conhecidas pelos versados na técnica. Tais bibliotecas químicas combinatórias incluem, mas não estão limitadas a bibliotecas de peptídeos (ver, por exemplo, Patente U.S. N- 5.010.175; Furka, (1991) Int.

135/1027

J. Pept. Prot. Res. 37: 487-493; and Houghton e outros (1991) Nature 354: 84-88). Outros reagentes químicos para gerar bibliotecas de diversidade química também podem ser utilizados.

[0277] Em adição, como citado, o equipamento para a seleção de compostos para a seleção de alta circulação está geralmente disponível, por exemplo, utilizando qualquer um de um número de sistemas robóticos bem-conhecidos que também foram desenvolvidos para reagentes químicos em fase de solução úteis nos sistemas de ensaio. Estes sistemas incluem estações de trabalho automatizadas incluindo um aparato de síntese automatizado e sistemas robóticos que utilizam braços robóticos. Qualquer um dos dispositivos anteriores é adequado para uso com a presente invenção, por exemplo, para a seleção de alta circulação de moduladores potenciais. A natureza e a implementação de modificações nestes dispositivos (se alguma) de forma que possam operar como discutido aqui serão evidentes para os versados na técnica relevante.

[0278] Na verdade, sistemas inteiros de seleção de alta circulação estão disponíveis comercialmente. Estes sistemas tipicamente automatizam procedimentos inteiros incluindo toda a pipetagem das amostras e dos reagentes, o descarte de líquidos, as incubações cronometradas e as leituras finais da microplaca no(s) detector(es) apropriado(s) para o ensaio. Estes sistemas que podem ser configurados fornecem alta circulação e início rápido assim como um alto grau de flexibilidade e customização. Similarmente, implementações de seleção de microfluidos também estão disponíveis comercialmente.

136/1027 [0279] Os fabricantes de tais sistemas fornecem protocolos detalhados para vários experimentos de alta circulação. Assim, por exemplo, a Zymark Corp. fornece boletins técnicos descrevendo os sistemas de seleção para a detecção da modulação da transcrição gênica, ligação ao ligante e similares. Os sistemas integrados contidos aqui, em adição ao fornecimento do alinhamento de sequências e, opcionalmente, da síntese de ácidos nucléicos relevantes, podem incluir tais aparatos de seleção para identificar moduladores que possuem um efeito sobre um ou mais polinucleotídeos ou polipeptídeos de acordo com a presente invenção.

[0280] Em alguns ensaios é desejável ter controles positivos para garantir que os componentes dos ensaios estejam operando apropriadamente. Pelo menos dois tipos de controles positivos são apropriados. Ou seja, ativadores ou inibidores transcricionais conhecidos podem ser incubados com células ou plantas, por exemplo, em uma amostra do ensaio e o aumento/decréscimo resultante na transcrição pode ser detectado através da medida do aumento resultante nos níveis de RNA e/ou de proteína, por exemplo, de acordo com os métodos contidos aqui. Será considerado que os moduladores também podem ser combinados com ativadores ou inibidores da transcrição para descobrir moduladores que inibem a ativação da transcrição ou a repressão da transcrição. A expressão dos ácidos nucléicos e das proteínas contidas aqui ou de quaisquer ácidos nucléicos ou proteínas ativadas pelos ácidos nucléicos ou proteínas contidas aqui ou ambos, pode ser monitorada.

[0281] Em uma modalidade, a invenção fornece um

137/1027 método para a identificação de composições que modulam a atividade ou a expressão de um polinucleotídeo ou de um polipeptídeo da invenção. Por exemplo, um composto de teste, seja uma molécula pequena ou grande, é colocado em contato com uma célula, uma planta (ou tecido ou explante vegetal) ou composição que compreende o polinucleotídeo ou o polipeptídeo de interesse e um efeito resultante sobre a célula, a planta (ou tecido ou explante) ou composição é avaliado através do monitoramento, diretamente ou indiretamente, de um ou mais de: nível de expressão do polinucleotídeo ou do polipeptídeo, atividade (ou modulação da atividade) do polinucleotídeo ou do polipeptídeo. Em alguns casos, uma alteração em um fenótipo de planta pode ser detectada após o contato de uma planta (ou célula, ou tecido ou explante vegetal) com um suposto modulador, por exemplo, através da modulação da expressão ou da atividade de um polinucleotídeo ou de um polipeptídeo da invenção. A modulação da expressão ou da atividade de um polinucleotídeo ou de um polipeptídeo da invenção pode ser também causada por elementos moleculares em uma via de transdução de sinal de segundo mensageiro e tal modulação pode afetar elementos similares na mesma ou em uma outra via de transdução de sinal de segundo mensageiro.

Subsequências
[0282] São	também considerados	os usos de
polinucleotídeos,	também	referidos	aqui como
oligonucleotídeos,	tipicamente	possuindo	pelo menos 12

bases, preferencialmente pelos menos 15, mais preferencialmente pelo menos 20, 30 ou 50 bases, que se hibridizam sob condições pelo menos altamente rigorosas (ou

138/1027 condições com rigor ultra-alto ou com rigor ultra ultraalto) com uma sequência de polinucleotídeo descrita acima.

Os polinucleotídeos podem ser utilizados como sondas, iniciadores, agentes senso e anti-sentido e similares, de acordo com os métodos citados supra.

[0283] As subsequências dos polinucleotídeos da invenção, incluindo, fragmentos de polinucleotídeos e oligonucleotídeos são úteis como sondas e iniciadores para ácidos nucléicos. Um oligonucleotídeo adequado para uso como sonda ou iniciador possui pelo menos aproximadamente 15 nucleotídeos de comprimento, mais frequentemente pelo menos aproximadamente 18 nucleotídeos, frequentemente pelo menos aproximadamente 21 nucleotídeos, frequentemente pelo menos aproximadamente 30 nucleotídeos ou aproximadamente 40 nucleotídeos ou mais de comprimento. Uma sonda de ácido nucléico é útil em protocolos de hibridização, por exemplo, para identificar homólogos de polipeptídeos adicionais da invenção, incluindo protocolos para experimentos com microarranjos. Os iniciadores podem ser anelados com um filamento de DNA complementar alvo através da hibridização de ácidos nucléicos para formar um híbrido entre o iniciador e o filamento de DNA alvo e então é estendido ao longo do filamento de DNA alvo através de uma enzima DNA polimerase. Os pares de iniciadores podem ser utilizados para a amplificação de uma sequência de ácido nucléico, por exemplo, através da reação em cadeia da polimerase (PCR) ou outros métodos de amplificação de ácidos nucléicos. Ver Sambrook, supra e Ausubel, supra.

[0284] Em adição, a invenção inclui um polipeptídeo isolado ou recombinante incluindo uma subsequência de pelo

139/1027 menos aproximadamente 15 aminoácidos contíguos codificados pelos polinucleotídeos recombinantes ou isolados da invenção. Por exemplo, tais polipeptídeos ou domínios ou fragmentos dos mesmos, podem ser utilizados como imunógenos, por exemplo, para produzir anticorpos específicos para a sequência de polipeptídeo ou como sondas para detectar uma sequência de interesse. Uma subsequência pode variar em tamanho de aproximadamente 15 aminoácidos em comprimento até e incluindo o comprimento completo do polipeptídeo.

[0285] Para ser abrangido pela presente invenção, um polipeptídeo expresso que compreende tal subsequência de polipeptídeo realiza pelo menos uma função biológica do polipeptídeo intacto substancialmente da mesma maneira ou até uma extensão similar, como o polipeptídeo intacto. Por exemplo, um fragmento de polipeptídeo pode compreender um motivo estrutural ou um domínio funcional que pode ser reconhecido tal como, um domínio de ligação ao DNA que ativa a transcrição, por exemplo, através da ligação com uma região promotora de DNA específica de um domínio de ativação ou de um domínio para interações proteínaproteína.

Produção de Plantas Transgênicas

Modificação de Características [0286] Os polinucleotídeoss da invenção são favoravelmente empregados para produzir plantas transgênicas com várias características ou características, que foram modificadas de uma maneira desejável, por exemplo, para melhorar as características de semente de uma planta. Por exemplo, a alteração de níveis ou de padrões da

140/1027 expressão (por exemplo, padrões de expressão espaciais ou temporais) de um ou mais dos fatores de transcrição (ou homólogos dos fatores de transcrição) da invenção, quando comparados com os níveis da mesma proteína encontrada em uma planta do tipo selvagem, pode ser utilizada para modificar as características de uma planta. Um exemplo ilustrativo da modificação de traços, características melhoradas, através da alteração dos níveis de expressão de um fator de transcrição particular é descrito adicionalmente nos Exemplos e na Listagem de Sequências.

Arabidopsis como um sistema modelo [0287] A Arabidopsis thaliana é o objetivo de atenção de cultivo rápido como um modelo para a genética e para o metabolismo em plantas. A Arabidopsis possui um genoma pequeno e estudos bem documentados estão disponíveis. É fácil cultivar em grandes números e mutantes que definem mecanismos controlados geneticamente importantes estão disponíveis ou podem ser facilmente obtidos. Vários métodos para a introdução e para a expressão de genes homólogos isolados estão disponíveis (ver Koncz e outros, eds., Methods in Arabidopsis Research (1992) World Scientific, Nova Jersey, NJ, em Preface). Devido ao seu tamanho pequeno, ao ciclo de vida curto, à autogamia obrigatória e à alta fertilidade, a Arabidopsis é também um organismo de escolha para o isolamento de mutantes e estudos nas vias morfogenéticas e de desenvolvimento e de controle destas vias através de fatores de transcrição (Koncz supra, p. 72) . Um número de estudos que introduzem fatores de transcrição em A. thaliana demonstrou a utilidade desta planta para o

141/1027 entendimento dos mecanismos da regulação gênica e da alteração de características nas plantas (Ver, por exemplo, Koncz supra e Patente U.S. N- 6.417.428).

Genes homólogos introduzidos em plantas transgênicas.

Os genes homólogos que podem ser derivados de qualquer planta ou de qualquer fonte seja natural, sintética, semi-sintética ou recombinante e que compartilham uma identidade ou uma similaridade significativa com os fornecidos pela presente invenção, podem ser introduzidos em plantas, por exemplo, plantas de cultivo, para conferir características desejáveis ou melhoradas. Consequentemente, podem ser produzidas plantas transgênicas que compreendem um vetor ou cassete de expressão recombinante com um promotor ligado de forma operacional a uma ou mais sequências homólogas às sequências divulgadas aqui. O promotor pode ser, por exemplo, um promotor vegetal ou viral.

[0289] A invenção fornece assim métodos para a preparação de plantas transgênicas e para a modificação de características da planta. Estes métodos incluem a introdução em uma planta de um vetor ou cassete de expressão recombinante que compreende um promotor funcional ligado de forma operacional a uma ou mais sequências homólogas às sequências divulgadas aqui. Plantas e kits para a produção destas plantas que resultam da aplicação destes métodos também são abrangidos pela presente invenção.

Fatores de transcrição de interesse para a modificação das características das plantas [0290] Concorrentemente, a existência de uma série

142/1027 de grupos de maturidade para latitudes diferentes representa uma barreira grande para a introdução de novas características valiosas. Qualquer característica (por

exemplo,	resistência	à doenças)	tem	que ser reproduzida em
cada um	dos diferentes grupos	de	maturidade	diferentes
separadamente, um	exercício	e	trabalhos	caros. A

disponibilidade de uma única linhagem, que pudesse ser cultivada em qualquer latitude, aumentaria, portanto, enormemente o potencial para a introdução de novas características em espécies de cultivo tais como a soja e o algodão.

[0291] Para muitos dos efeitos, características e utilidades específicas listadas na Tabela 4 e na Tabela 6 que podem ser conferidas em plantas, um ou mais genes de fatores de transcrição podem ser utilizados para aumentar ou diminuir, avançar ou retardar, ou melhorar ou verificar efeitos deletérios para uma certa característica.

Por exemplo, a superexpressão de um gene de fator de transcrição que ocorre naturalmente em uma planta pode causar o florescimento precoce em relação às plantas naotransformadas ou do tipo selvagem. Através do nocaute do gene ou da supressão do gene (como, por exemplo, a supressão anti-sentido) a planta pode sofrer florescimento retardado. Similarmente, a superexpressão ou a supressão de um ou mais genes pode conferir diferenças significativas na obtenção de produtos vegetais, tais como proporções diferentes de ácidos graxos. Assim, a supressão de um gene que faz com que a planta fique mais sensível ao frio pode aumentar a tolerância de uma planta ao frio. Mais de um gene de fator de transcrição podem ser introduzidos em uma

143/1027 planta, através da transformação da planta com um ou mais vetores que compreendem dois ou mais ou através da reprodução seletiva de fatores de transcrição plantas para produzir cruzamentos híbridos que compreendem mais de um fator de transcrição introduzido.

Uma listagem de efeitos utilidades específicas que os genes de fatores de transcrição divulgados aqui possuem sobre as plantas, que são determinados através da observação direta ou da análise com ensaios, é fornecida na Tabela 4. A Tabela 4 mostra os polinucleotídeos identificados pela SEQ ID N^o: ; pela Gene

ID N (GID) ; e se o polinucleotídeo foi testado em um ensaio transgênico.

A primeira coluna mostra a SEQ

ID

N^o:

do polinucleotídeo;

a segunda coluna mostra o

GID;

terceira coluna mostra se o gene estava superexpresso (OE) ou nocauteado (NO) nos estudos com as plantas; a quarta coluna mostra a categoria da característica modificada resultante do nocaute ou da superexpressão do polinucleotídeo na planta transgênica; e a quinta coluna (Observações

Experimentais), inclui observações específicas feitas em relação ao polinucleotídeo da respectiva primeira coluna.

Tabela 4.

Características, categorias de características e efeitos e utilidades que os genes do fator de transcrição possuem sobre as plantas.

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
1	G2	OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
3	G12	OE/KO	Morfologia; morte celular programada alterada	Morte celular das folhas e dos hipocotilédones; plantas jovens

144/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
			Regulador do crescimento; sensibilidade alterada ao etileno Des e morf; Morfologia: outra	partindo de semente nocauteadas germinadas na escuridão em meios contendo ácido 1aminociclopropano1-carboxílico tinham seu desenvolvimento mais interrompido que os controles Formação de lesões necróticas
5	G15	OE	Des e morf;	flor	Morfologia alterada das flores
		OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
1381	G354	OE	Estresse abiótico;	seca	Maior tolerância à seca em um ensaio com base no solo
7	G3 0	OE	Folha; forma	alterada	Cotilédones,
			Folha; folhas	verde	pecíolos e
			escuras			hipocotilédones
			Folha;		folhas	longos, folhas
			brilhosas			verde escuras,
			Resposta	à	luz;	brilhosas;
			Pecíolos longos		impedimento à
			Resposta	à	luz;	sombra
			Hipocotilédones
			longos
			Resposta	à	luz;
			Cotilédones	longos
9	G46	OE	Des e morf;	Tamanho	Maior biomassa
		OE	Estresse	abiótico;	Maior tolerância à

145/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
			Seca		seca em um ensaio
					com base no solo
11	G47	OE	Tempo de florescência	Florescência
					tardia
		OE	Estresse	abiótico;	Melhor crescimento
			estresse osmótico	de raízes sob
					estresse osmótico
		OE	Des e	morf;	Arquitetura e
			Arquitetura		desenvolvimento da
					inflorescência
					alterados
		OE	Des e morf;	caule	Estrutura alterada
					de tecidos
					vasculares
		OE	Estresse	abiótico;	Maior tolerância à
			seca		seca em um ensaio
					com base no solo
13	G129	OE	Tempo de florescência	Florescência
			Folha:	formato	precoce
			alterado		Formato folhar
			Flor: transformação	Transformação
			homeótica		homeótica
15 e 2102	G131	OE	Des e morf;	tamanho	Plantas pequenas
			Tempo de florescência	Florescência
					precoce
		OE	Des e morf;	Folha	Folhas enroladas
		OE	Des e morf;	Flor	Perda da definição
					floral, flores

146/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
				terminais
		OE	Des e morf;	Definição alterada
			Inflorescência	da inflorescência
17	G133	OE	Flor: transformação	Transformação
			homeótica	homeótica
19	G134	OE	Flor: transformação	Transformação
			homeótica	homeótica
			Estresse abiótico;	Maior
			sensibilidade ao frio	sensibilidade ao
				frio
21	G135	OE	Des e morf; Folha	Folhas enroladas
		OE	Des e morf;	Definição alterada
			Inflorescência	da inflorescência;
				flores terminais
		OE	Des e morf; Flor	Perda da definição
				floral,
		OE	Tempo de florescência	Florescência
				precoce
23	G136	OE	Morfologia;	Desenvolvimento
			desenvolvimento	alterado da flor
			alterado da flor	(pétalas
			Tempo de florescência	pequeninas)
			Folha; formato	Florescência
			alterado	precoce
			Morfologia: tamanho	Folhas enroladas
				para baixo
				pequenas
				Planta pequena

147/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
25	G137	OE	Tempo de florescência	Florescência
			Inflorescência;	precoce
			Flores terminais	Formação de flores
			Folha; formato	terminais
			alterado	Enrolamento	das
				folhas
27	G138	OE	Tempo de florescência	Florescência
				precoce
29	G139	OE	Expressão; seca	Este gene	foi
				induzido	nas
				folhas em roseta
				em respostas	aos
				tratamentos	de
				seca
31	G140	OE	Flor: transformação	Transformação
			homeótica	homeótica
			Tempo de florescência	Florescência
				precoce
33	G142	OE	Tempo de florescência	Florescência
				precoce
35	G145	OE	Tempo de florescência	Florescência
			Inflorescência;	precoce
			flores terminais	Flor terminal
37	G146	OE	Tempo de florescência	Florescência
				precoce
39	G148	OE	Tempo de florescência	Florescência
			Inflorescência;	precoce
			flores terminais	Flor terminal

148/1027

SEQ ID N :	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
41	G151	OE	Semente; Semente	Tamanho maior	de
			grande	sementes que	as
				dos controles
43	G153	OE	Tempo de florescência	Florescência
				precoce
		OE	Estresse abiótico;	Sensibilidade
			Captação de	alterada a C/N
			nutrientes
45	G155	OE	Sensibilidade	Maior
			alterada a açúcares	sensibilidade	à
			Tempo de florescência	glicose
			Estresse abiótico;	Florescência
			estresse osmótico	precoce
			Inflorescência; Flor	Maior
			terminal	sensibilidade	ao
				manitol
				Flor terminal
47	G171	OE	Expressão; calor	A expressão	foi
				induzida	nas
				folhas pelo calor
		OE	Expressão;	A expressão	foi
			resfriamento	induzida	nas
				folhas pelo frio
		OE	Expressão; Fusarium	A expressão	foi
				induzida	nas
				folhas	por
				Fusarium
49	G172	OE	Tempo de florescência	Florescência
				precoce

149/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
51	G173	OE	Tempo de florescência	Florescência
				tardia
53	G2 0 0	OE	Nutriente; tolerância	As plantas jovens
			a baixos teores de N	partindo de
			Sensibilidade a C/N	semente continham
			Folha; formato	menos antocianina
			alterado	e eram mais verdes
			Folha; folha verdes	em meio com alto
			claras	teor de sacarose
			Tempo de florescência	isento de
				nitrogênio e em
				meios similares
				suplementados com
				glutamina; as
				plantas maduras
				possuíam folhas
				apontadas verde
				claras pequenas;
				Florescência
				precoce
55	G224	OE	Folha: formato	Formato alterado
			alterado	da folha
			Estresse abiótico;	Maior tolerância
			tolerância ao frio	ao frio
			Sensibilidade	Vigor da planta
			alterada a açúcares	jovem partindo de
				semente em alto
				teor de glicose
57	G244	OE	Expressão; auxina	A expressão foi

150/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
					induzida pela
					auxina
		OE	Expressão; seca	A expressão foi
					induzida pela seca
		OE	Expressão; ABA	A expressão foi
					induzida pelo
					ácido abscísico
59	G246	OE	Resposta	à luz;	Impedimento à
			impedimento	à sombra	sombra
			Tempo de florescência	Florescência
					precoce
61	G253	OE	Tamanho;	plantas	Tamanho reduzido
			pequenas		da planta
		OE	Des e morf;	Folha	Folhas com formato
					de coração e
					verde-escuras
		OE	Des e	morf;	Internodos curtos
			Inflorescência	da inflorescência
63	G268	OE	Tamanho da	planta;	Maior biomassa
			plantas grandes
65	G2 8 7	OE	Des e morf;	Tamanho	Maior biomassa
67	G309	OE	Tempo de florescência	Florescência
					tardia
		OE	Tamanho da	planta;	Tamanho reduzido
			plantas pequenas	da planta
		OE	Folha;	coloração	Folhas verde
			alterada		escuras
69	G314	OE	Des e morf;	Tamanho	Maior biomassa

151/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
71	G319	OE	Tamanho	da planta;	Maior tamanho;
			Maior tamanho	Florescência
			Tempo de	florescência	tardia; folhas
			Folha;	formato	amplas curtas
			alterado		enrrugadas
73 e 2103	G32 4	OE	Tempo de	florescência	Florescência
					tardia
		OE	Tamanho;	plantas	Maior biomassa
			grandes
75	G3 4 4	OE	Estresse	abiótico;	Mais sensíveis ao
			congelamento	congelamento no
					ensaio de
					germinação
		OE	Regulador	do	Fenótipo de
			crescimento;	sensibilidade
			Sensibilidade	alterada a
			alterada	a açúcares	açúcares: mais
					sensíveis à
					glicose em um
					ensaio de
					germinação
77	G351	OE	Resposta	alterada à	Orientação folhar
			luz		e coloração verde
					clara
1379	G353	OE	Estresse	abiótico;	As plantas jovens
			estresse	osmótico	partindo de
					semente eram
					maiores e mais
					verdes em meios

152/1027

SEQ ID N :	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
				contendo PEG
79	G355	OE	Nutriente;	Tolerância a	Maior crescimento sob
			baixo teores	de PO4	fosfato limitado no
			Estresse	abiótico;	ensaio de crescimento
			tolerância ao cloreto de	da raiz e melhor
			sódio		crescimento com alto
					teor de NaCl
81	G366	OE	Des e morf;	Letal quando	Letal quando
			superexpresso	superexpresso
83	G370	KO	Estresse	abiótico;	Folhas arredondadas
		OE	estresse osmótico	curtas; as flores
			Folha; formato alterado	exibiam um aumento
			Morfologia;	maior	surpreendente na
			densidade de	tricoma	densidade de tricoma
			Morfologia;	sincronia	nas sépalas e
			alterada da	mudança de	tricomas ectópicos
			fase		carregados nas
					pétalas, anteras e
					carpelos; rosetas
					aéreas ocorrem quando
					se desenvolve um
					meristema secundário
					da inflorescência; o
					nocaute era mais
					sensível ao estresse
					osmótico em um ensaio
					de germinação e
					produzia plantas
					brilhosas, pequenas

153/1027

SEQ ID N :	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
				com rosetas em
				arbustos
85	G372	OE	Folha; formato alterado	Formato alterado da
			Tempo de florescência	folha
				Florescência tardia
87	G374	KO	Des e morf; Letal ao	Letalidade nos
			embrião	estágios iniciais do
				desenvolvimento de
				embriões
89	G380	OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
91 e 2104	G386	OE	Bioquím: misc;	Maior produção de
			Bioquímica: outro	pigmento
		OE	Des e morf; Tamanho	Tamanho reduzido da
				planta
93	G416	OE	Tempo de florescência	Florescência precoce
95	G434	OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
97	G438	OE	Folha; Formato alterado	Folhas mais chatas,
			da folha	maiores que as de
			Tamanho da planta; Maior	controles nos
			tamanho	estágios tardios do
				desenvolvimento
99	G446	OE	Arquitetura alterada	Ramificação alterada
			Folha; formato alterado	Formato alterado da
				folha
101	G468	OE	Folha; formato alterado	Folhas enrugadas
103	G478	OE	Resposta alterada à luz	Pecíolos longos
			Sensibilidade alterada a	Mais sensíveis à
			açúcares	glicose

154/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
105	G485	KO	Tempo de florescência	Florescência tardia
		OE	Tempo de florescência	Florescência precoce
107	G521	OE	Folha; expansão celular	Expansão celular
109	G549	OE	Des e morf;	Definição alterada da
			Inflorescência	inflorescência
		OE	Des e morf; Tamanho	Tamanho reduzido da
				planta
		OE	Tempo de florescência	Florescência precoce
111	G550	OE	Morfologia; flores	As flores precoces
			alteradas	eram pequenas com
			Estresse abiótico;	fraca formação de
			tolerância ao calor	órgãos, as flores
			Expressão; cloreto de	tardias eram normais;
			sódio	menos tolerantes ao
			Expressão; auxina	estresse ao calor em
			Pigmento; alto teor de	um ensaio de
			antocianina	crescimento; alto
				nível de antocianina;
				a expressão de G550 é
				induzida em resposta
				ao estresse ao calor,
				à auxina e salino
113	G571	OE	Sensibilidade a	Este gene é também
			hormônios; resposta	fortemente induzido
			alterada ao ABA	nas folhas da roseta
			Estresse abiótico; seca	pelo ABA, seca,
			Estresse abiótico;	estresse osmótico e
			estresse osmótico	Erysiphe
			Expressão; Erysiphe

155/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
115		G581	OE	Nutriente; tolerância a	As linhagens de
				baixos teores de N	superexpressão
				Semente; coloração	germinaram melhor em
				alterada	placas contendo baixo
				Semente; Semente grande	teor de N ou em
				Tempo de florescência	placas com baixo teor
				Pigmento; Maior teor de	de N suplementadas
				antocianina	com glutamina, as
					plantas jovens
					partindo de semente
					também possuíam menor
					acúmulo de
					antocianina quando
					comparadas com os
					controles do tipo
					selvagem; maior
					tamanho de semente,
					coloração alterada de
					semente; Florescência
					tardia
117		G600	OE	Folha; folhas verde	Folhas da roseta
				claras	pequenas, chatas,
				Tempo de florescência	curtas e acinzentadas
				Tamanho da planta;	ou verde claras;
				plantas pequenas	Florescência precoce;
					plantas menores
119	e 2105	G624	OE	Captação de nutrientes;	Melhor crescimento da
				tolerância a baixo teor	raiz em meios isentos
				de PO4	de fosfato

156/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
		OE	Estresse abiótico;	Maior tolerância ao
			tolerância ao cloreto de	cloreto de sódio
			sódio
		OE	Maior tamanho	Maior biomassa
		OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
121	G627	OE	Tempo de florescência	Florescência precoce
123	G646	OE	Folha; formato alterado	Folhas verde escuras
				muito estreitas
				enroladas para baixo
125 e 2106	G651	OE	Des e morf; Folha	Formato alterado da
				folha e folhas
				cinzentas
		OE	Estresse abiótico; Frio	Maior sensibilidade
				ao frio em um ensaio
				de germinação
		OE	Des e morf; Raiz	Ramificação alterada
				da raiz
		OE	Des e morf; Tamanho	Tamanho reduzido da
				planta
		OE	Des e morf Flor	Morfologia altered da
				flor
127	G652	OE/KO	Bioquímica da folha;	O nocaute aumentou o
			maior teor de	glicosinolato M39480
			glicosinolatos	na folha e o a-
			Bioquímica da semente;	tocoferol da semente,
			maior teor de prenil	diminuição do óleo da
			lipídeos na semente	semente; as que
			Bioquímica da semente;	superexpressavam

157/1027

SEQ	ID N :	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
				Menor teor	de óleos na	exibiam senescência
				semente		retardada
				Senescência	retardada
129		G707	OE	Estresse	abiótico;	Sensibilidade
				Captação de	nutrientes	alterada a C/N
			OE	Des e morf;	Folha	Folhas verde escuras
			OE	Bioquím:	misc;	Maior produção de
				Bioquímica:	outro	pigmento
			OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
131		G728	OE	Estresse	abiótico;	Maior tolerância ao
				tolerância	ao frio	frio
133		G730	OE	Des e morf;	Raiz	Crescimento radicular
						secundário reduzido
			OE	Des e morf; Morfologia:	Abaxialização das
				outro		superfícies adaxiais
135		G738	OE	Tempo de florescência	Florescência tardia;
				Tamanho	da planta;	plantas jovens
				plantas pequenas	pequenas partindo de
				Pigmento;	Alto teor de	sementes; altos
				antocianina		níveis de antocianina
						nos pecíolos
						folhares; plantas
						menores
137	e 2107	G744	OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
131	G752	OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
141		G807	OE	Estresse	abiótico;	O vigor das plantas
			OE	tolerância	ao	jovens partindo de
			OE	congelamento	semente foi aumentado

158/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
		OE	Expressão; calor	nos transformantes T1
		OE	Expressão: auxina	e na progênie T2, as
		OE	Crescimento rápido	plantas jovens
			Resposta à luz; pecíolos	partindo de sementes
			longos	eram maiores de forma
			Resposta à luz;	que podia ser
			Hipocotilédones longos	reproduzida, cresciam
				mais rápido e exibiam
				hipocotilédones e
				pecíolos mais longos
				que os controles;
				expressão deste gene
				moderadamente após o
				choque térmico e o
				tratamento com a
				auxina
143	G811	OE	Folha; Folhas verde	Folhas verde escuras
			escuras	Tamanho reduzido
			Tamanho; plantas pequenas
145	G839	OE	Nutriente; tolerância a	Maior tolerância ao
			baixos teores de N	meio com nitrogênio
			Tempo de florescência	limitado
				Florescência tardia
147	G846	OE	Des e morf Flor	Letal ao gameta
149	G852	OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
			Tamanho; plantas grandes	Planta grande
151	G905	OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
			Sensibilidade alterada a	Vigor das plantas
			açúcares	jovens partindo de

159/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
			Folha; formato alterado	semente em alto teor de glicose Formato alterado da folha
153	G916	OE	Regulador do crescimento; Sensibilidade alterada a açúcares Nutriente; tolerância a baixos teores de N Resposta à luz; Hipocotilédones longos Morfologia; Cotilédones estreitos Estresse abiótico: tolerância à seca	Plantas jovens partindo de semente maiores que as do tipo selvagem em altos teores de glicose, as plantas jovens partindo de semente eram maiores e possuíam menos antocianina em placas com altos teores de sacarose que eram deficientes em relação ao nitrogênio, com ou sem suplementação com glutamina; de forma desproporcional hipocotilédones longos e cotilédones estreitos Maior tolerância à seca em um ensaio com base no solo
155	G926	KO	Sensibilidade a hormônios	Sensibilidade

160/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
				reduzida ao ABA
		KO	Estresse abiótico;	Maior tolerância ao
			Estresse osmótico	estresse osmótico
				(sal e sacarose)
		KO	Estresse abiótico; Seca	Maior tolerância à
				seca em um ensaio com
				base no solo
157	G957	OE	Folha; formato alterado	Folhas enroladas
				rugosas
159	G961	OE	Des e morf; Semente	Desenvolvimento e
				germinação alterados
				da semente
		KO	Bioquímica da semente;	Mais óleo da semente
			Óleo da semente
161	G975	OE	Bioquímica da folha;	Mais cera nas folhas
			Ácidos graxos da folha
			Estresse abiótico; Seca	Maior tolerância à
				seca em um ensaio com
				base no solo
163	G1011	OE	Morfologia; flores	A abscisão dos órgãos
			alteradas	florais foi
			Folha; formato alterado	retardada, com
			Tempo de florescência	estames, pétalas e
			Morfologia; maior	sépalas persistindo
			densidade de tricoma	após a polinização;
				maior densidade de
				tricoma nas sepalas e
				tricomas ectópicos

161/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
					nos carpelos; folhas
					arredondadas;
					Florescência precoce
165		G1013	OE	Crescimento lento	Taxa de crescimento
				Alterações nas flores	lenta
				Resposta alterada à luz	Várias alterações nas
				Folha; formato alterado	flores
				Sensibilidade alterada a	Resposta à luz:
				C/N	orientação das folhas
					Formato alterado da
					folha
					Sensibilidade a C/N:
					melhor germinação
167		G1017	OE	Estresse abiótico;	Maior tolerância ao
				Tolerância ao cloreto de	cloreto de sódio
				sódio
169		G1033	OE	Senescência prematura	Senescência prematura
				Sensibilidade alterada a	da folha
				açúcares	Maior vigor da planta
				Estresse abiótico;	jovem partindo de
				tolerância ao estresse	semente em sacarose
				osmótico	Maior tolerância à
					sacarose
171	e 2108	G1037	OE	Estresse abiótico;	Maior tolerância ao
				Tolerância ao cloreto de	cloreto de sódio
				sódio
173		G1082	OE	Resposta à luz;	Hipocotilédones mais
				Hipocotilédones longos	longos que dos
					controles

162/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
175	G1100	OE	Folha; formato alterado	Folhas apontadas
			Folha; folhas verde	verde escuras,
			escuras	rosetas verde escuras
			Morfologia; flores	grandes; Crescimento
			alteradas	interrompido da
			Estresse abiótico	inflorescência e
			Expressão; SA	flores anormais;
			Expressão; seca	Taxa mais lenta de
				crescimento; Este
				gene é fortemente e
				especificamente
				induzido pela seca e
				pelo ácido salicílico
177	G1108	OE	Sensibilidade alterada a	Menos sensível à
			açúcares	glicose
179	G1113	OE	Maior tamanho da planta	Maior biomassa
		OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
181	G1128	OE	Folha; formato alterado	Folhas contorcidas
			Folha; Folhas verde	estreitas verde
			escuras	escuras; senescência
			Morfologia; Alterações na	pré-matura de folhas
			flor	e flores; pouco ou
			Taxa de crescimento; taxa	nenhum
			alterada de senescência	desenvolvimento de
			Semente; desenvolvimento	sementes
			alterado
183	G1136	OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
			Nutriente; sensibilidade	Maior sensibilidade
			a baixos teores de N	ao nitrogênio

163/1027

SEQ ID N :	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
185	G1142	OE	Tempo de florescência Folha; formato alterado	Florescência tardia Formato alterado da folha
187 e 2109	G1150	OE	Estresse abiótico; Captação de nutrientes	Sensibilidade alterada a C/N
OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
OE	Des e morf; Tamanho	Maior biomassa
189	G1206	OE	Estresse abiótico; tolerância à seca	Maior vigor de plantas jovens partindo de semente sob condições de seca, plantas jovens partindo de semente maiores e mais verdes que os controles
191	G1247	OE	Tamanho; planta pequena Folha; formato alterado	Formato alterado da folha Tamanho reduzido da planta
193	G1274	OE	Estresse abiótico; Frio	Mais tolerante ao frio em um ensaio de germinação
OE	Estresse abiótico; Congelamento	Mais tolerante ao congelamento em um ensaio de crescimento de planta jovem partindo de semente
OE	Estresse abiótico; Seca	Maior tolerância à

164/1027

SEQ ID N :	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
					seca em um ensaio com
					base no solo
		OE	Des	e morf;	Arquitetura alterada
			Inflorescência	da inflorescência
		OE	Estresse	abiótico;	Maior tolerância a
			Captação	de nutrientes	baixos teores de
					nitrogênio
		OE	Estresse	abiótico;	Sensibilidade
			Captação	de nutrientes	alterada a C/N
		OE	Des e morf; Folha	Folhas grandes
195	G1276	OE	Tempo de	florescência	Florescência tardia
197	G1289	OE	Tamanho	da planta;	Todas as linhagens
			pequeno		com superexpressão
					exibiam tamanho
					reduzido
199	G1313	OE	Tamanho;	planta grande	Maior tamanho de
					planta jovem partindo
					de semente
201	G1327	OE	Folha;	Folhas verde	Folhas verde escuras
			escuras
203	G1340	OE	Tamanho	da planta;	Todas as linhagens
			pequeno		com superexpressão
					exibiam tamanho
					reduzido
205	G1341	OE	Des e morf; Folha	Folhas verde escuras,
					Enrolamento das
					folhas
207	G1357	OE	Tempo de	florescência	Florescência tardia

165/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
		OE	Sensibilidade a hormônios	Insensível ao ABA
		OE	Estresse abiótico;	Mais tolerante ao
			Congelamento	estresse ao
				congelamento em um
				ensaio de crescimento
		OE	Des e morf; Folha	Formato alterado da
				folha e folhas verde
				escuras
		OE	Estresse abiótico; Seca	Maior tolerância à
				seca em um ensaio com
				base no solo
209	G1361	OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
			Folha; formato alterado	Formato alterado da
				folha
211	G1384	OE	Des e morf; Letal quando	Letal quando
			superexpresso	superexpresso
213	G1389	OE	Folha; formato alterado	As folhas internas à
			Folha; Folhas verde	roseta eram verde-
			escuras	escuras, estreitas e
				enroladas nas plantas
				T1
215	G1412	OE	Estresse abiótico;	Maior tolerância ao
			Estresse osmótico	estresse osmótico
		OE	Sensibilidade a hormônios	Insensível ao ABA
217	G1420	OE	Morfologia; Cotilédones	Órgãos florais longos
			longos	(sépala e pétala),
			Folha; formato alterado	suavemente serrados,
			Folha; Folhas verde	estretitos, folhas

166/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
			escuras	verde escuras
			Regulador do crescimento;	(incluindo o
			Sensibilidade alterada a	pedicelo); fraco
			açúcares	crescimento em
			Morfologia; flor alterada	glicose; cotilédones
				estreitos longos
219	G1423	OE	Folha; Folhas verde	Coloração da folha
			escuras	verde escura
			Tamanho da planta;	comparada com o tipo
			plantas pequenas	selvagem, indicando
				uma alteração nos
				níveis de clorofila,
				carotenóides ou
				flavonóides; os
				transformantes eram
				distintivamente
				pequenos
221	G1446	OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
223	G1451	OE	Folha; folhas grandes	Tamanho grande da
			Tempo de florescência	folha
			Tamanho; planta grande	Florescência tardia
				Maior tamanho da
				planta
225	G1452	OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
		OE	Des e morf; Folha	Formato alterado da
				folha, Folhas verde
				escuras

167/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
		OE	Estresse abiótico;	Melhor germinação em
			Estresse osmótico	sacarose e sal
			Estresse abiótico; seca	Maior tolerância à
				seca em um ensaio com
				base no solo
		OE	Sensibilidade a hormônios	Sensibilidade
				reduzida ao ABA
		OE	Des e morf; Tricoma	Densidade reduzida de
				tricoma
227	G1468	OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
		OE	Des e morf; tamanho	Maior biomassa
		OE	Des e morf; Folha	Folhas acinzentadas e
				estreitas
		OE	Des e morf; Morfologia:	Taxa lenta de
			outro	crescimento
229	G1474	OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
			Inflorescência;	Arquitetura alterada
			Arquitetura alterada	da inflorescência
			Tamanho; plantas pequenas	Tamanho reduzido da
				planta
231	G1476	OE	Crescimento rápido	Taxa de crescimento
			Folha; formato alterado	maior de planta jovem
				partindo de semente;
				folhas contorcidas
				arredondadas
233	G1482	OE	Mais pigmento	Maior teor de
				antocianinas na folha
235	G1483	OE	Estresse abiótico;	Sensibilidade

168/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
			Captação de nutrientes	alterada a C/N
237	G1493	OE	Sensibilidade alterada a	Vigor da planta jovem
			açúcares	partindo de semente
			Folha; formato alterado	em alto teor de
			Tempo de florescência	glicose
				Formato alterado da
				folha
				Florescência tardia
239	G1507	OE	Expressão: resposta	Este gene é induzido
			alterada ao ABA	pelo ABA, pelo calor,
			Expressão; calor	por Fusarium e pelo
			Expressão; Fusarium	ácido salicílico
			Expressão: resposta
			alterada a SA
241	G1510	OE	Folha; Folhas verde	Folhas verde escuras
			escuras	Hipocotilédones
			Resposta alterada à luz	longos
243	G1535	OE	Crescimento lento	Taxa lenta de
			Folha; formato alterado	crescimento
			Sensibilidade alterada a	Formato e coloração
			açúcares	alterados da folha
			Sensibilidade alterada a	Planta jovem partindo
			C/N	de semente verde
				escura em alto teor
				de glicose
				Sensibilidade a C/N:
				mais antocianina em
				meios limitados em
				relação ao nitrogênio

169/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
245	G1538	OE	Tempo de florescência	Florescência precoce;
			Estresse abiótico;	maior tolerância ao
			tolerância ao cloreto de	estresse salino em um
			sódio	ensaio de crescimento
			Folha; formato alterado	de raiz; plantas
			Expressão; heat	jovens partindo de
			Expressão; SA	semente maiores com
				maior crescimento de
				raízes secundárias
				que as do tipo
				selvagem; pecíolos
				folhares mais longos;
				expressão induzida em
				folhas por
				tratamentos térmicos
				e com o ácido
				salicílico
247	G1539	OE	Estrutura alterada do	Estrutura alterada do
			tricoma	tricoma
			Diferenciação celular	Diferenciação celular
			alterada	alterada
			Flor; desenvolvimento	Desenvolvimento
			alterado do carpelo	ectópico do carpelo
249	G1549	OE	Tamanho; planta pequena	Tamanho reduzido da
			Crescimento lento	planta
			Folha; formato alterado	Taxa lenta de
				crescimento
				Formato e coloração
				alterados da folha

170/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
251	G1554	OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
		OE	Des e morf; Folha	Folhas verde escuras
253	G1556	OE	Des e morf; Letal quando	Letal quando
			superexpresso	superexpresso
255	G1557	OE	Estresse abiótico;	Maior tolerância ao
			tolerância ao cloreto de	cloreto de sódio
			sódio
257	G1585	OE	Des e morf	Diferenciação celular
			Folha; formato alterado	alterada
				Formato alterado da
				folha
259	G1591	OE	Flor; desenvolvimento	Desenvolvimento
			alterado do carpelo	ectópico do carpelo
			Morfologia; diferenciação	Diferenciação celular
			celular alterada	alterada
261	G1593	OE	Inflorescência;	Arquitetura alterada
			Arquitetura alterada	da inflorescência
			Folha; formato e	Formato e coloração
			coloração alterados	alterados da folha
263	G1660	OE	Estresse abiótico;	Maior crescimento
			tolerância ao cloreto de	radicular e vigor da
			sódio	planta jovem partindo
				de semente em altos
				teores de sal
265	G1718	OE	Folha; coloração alterada	Folhas cinzentas
				pálidas
267	G1730	OE	Estresse abiótico;	Plantas jovens
			tolerância ao estresse	partindo de semente

171/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
			osmótico	grandes e verdes em
				manitol e glicose
269	G1743	OE	Inflorescência;	Arquitetura alterada
			Arquitetura alterada	da inflorescência
			Folha; formato e	Formato alterado da
			coloração alterados	folha, Folhas verde
				escuras
271	G1753	OE	Sensibilidade alterada a	Arquitetura alterada
			açúcares	da inflorescência
			Estresse abiótico;	Melhor germinação em
			tolerância ao estresse	meios com alto teor
			osmótico	de sacarose
			Inflorescência;
			Arquitetura alterada
273	G1772	OE	Tamanho; planta pequena	Tamanho reduzido da
				planta
275	G1779	OE	Estresse abiótico;	As plantas maduras
			congelamento	possuem maior
				tolerância ao
				estresse ao
				congelamento durante
				um período de tempo
				mais longo
277	G1792	OE	Doença; Erysiphe	Maior resistência a
				Erysiphe
		OE	Doença; Fusarium	Maior resistência a
				Fusarium
		OE	Doença; Botrytis	Maior resistência a
				Botrytis

172/1027

SEQ ID N :	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
		OE	Des e morf; Folha	Folhas brilhosas
				verde-escuras
		OE	Captação de nutrientes;	Maior tolerância a
			tolerância a baixos	baixos teores de
			teores de N	nitrogênio
		OE	Estresse abiótico; Seca	Maior tolerância à
				seca em um ensaio com
				base no solo
279	G1796	OE	Inflorescência;	Alterações no carpelo
			Internodos curtos	da flor (carpelos
			Folha; formato alterado	similares a clavas
			Folha; Folhas verde	espessadas);
			escuras	internodos curtos;
				folhas verde
				enroladas
281	G1797	OE	Tempo de florescência	Florescência precoce
		OE	Des e morf Flor	Os órgãos florais
				persistiram após a
				fertilização
283	G1798	OE	Tempo de florescência	Florescência precoce
		OE	Des e morf;	Vários defeitos na
			Inflorescência	inflorescência
285	G1808	OE	Estresse abiótico;	As plantas maduras
			congelamento	com superexpressão
				eram menos tolerantes
				ao frio
287	G1816	OE	Tricoma; folhas lisas	Folhas lisas
			Estresse abiótico;	Maior tolerância a

173/1027

SEQ ID N :	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
			tolerância ao estresse	altos teores de
			osmótico		glicose
			Raiz; mais pelos	Mais pêlos
			Sensibilidade	alterada a	radiculares
			açúcares		Maior tolerância a
			Sensibilidade	alterada a	altos teores de
			C/N		glicose
					Sensibilidade a C/N:
					maior tolerância a
					baixos teores de
					nitrogênio
289	G1823	OE	Tempo de florescência	Florescência precoce
291	G1825	OE	Tempo de florescência	Florescência precoce
			Folha; formato	alterado	Formato alterado da
					folha
293	G1832	OE	Des e morf; Letal quando	Letal quando
			superexpresso		superexpresso
295	G1837	OE	Estresse	abiótico;	Maior crescimento
			tolerância ao	cloreto de	radicular e vigor da
			sódio		planta jovem partindo
					de semente em altos
					teores de sal
		OE	Estresse	abiótico;	Maior tolerância,
			tolerância	ao	melhor crescimento de
			congelamento		plantas jovens
					partindo de semente
					sob condições de
					congelamento
297	G1840	OE	Des e morf;	Morfologia:	Formação de lesões

174/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
			outro	necróticas
299	G1846	OE	Folha; formato alterado	Folhas verde escuras,
			Folha; Folhas verde	inflorescências
			escuras	fracamente
				desenvolvidas
301	G1850	OE	Des e morf; Letal quando	Letal quando
			superexpresso	superexpresso
303	G1863	KO	Estresse abiótico;	Menor germinação sob
		OE	cloreto de sódio	estresse salino
			Folha; formato e	Formato e coloração
			coloração alterados	alterados da folha
			Tempo de florescência	Florescência tardia
305	G1893	OE	Sensibilidade a	Insensibilidade ao
			hormônios; resposta	ABA; cotilédones
			alterada ao ABA;	retangulares; plantas
			morfologia alterada dos	jovens partindo de
			cotilédones	semente contêm mais
			Folha; formato alterado	antocianina; folhas
				eram pequenas com
				margens serradas
307	G1917	OE	Folha; formato alterado	Folhas são alongadas
				e enroladas; com
				margens serradas com
				rufos
309	G1923	OE	Estresse abiótico; calor	Este gene é regulado
		OE	Estresse abiótico;	para mais através da
			estresse osmótico	infecção com Fusarium
		OE	Expressão; Fusarium	e Erysiphe, assim
		OE	Expressão; Erysiphe	como com os

175/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
		OE	Sensibilidade a	tratamentos com a
			hormônios; auxina	auxina, com o calor e
				com o estresse
				osmótico
311	G1928	OE	Estresse abiótico;	Maior tolerância ao
			tolerância ao frio	frio
313	G1932	OE	Folha; formato alterado	Folhas eram verde-
			Folha; Folhas verde	escuras com margens
			escuras	folhares recortadas
315	G1938	OE	Folha; formato alterado	Folhas contorcidas
			Folha; Folhas verde	enroladas, Folhas
			escuras	verde escuras; Taxa
			Estresse abiótico;	lenta de crescimento;
			estresse osmótico	mais sensíveis ao
			Tamanho da planta;	estresse osmótico
			plantas pequenas
317	G1945	OE	Folha; formato alterado	Formato alterado da
			Tempo de florescência	folha
				Florescência tardia
319	G1957	OE	Des e morf; Letal quando	Letal por causa de
			superexpresso	defeitos no meristema
321	G1968	OE	Nutriente; tolerância a	A superexpressão
			baixos teores de N	resultou em uma maior
				tolerância ao
				estresse ao
				congelamento em um
				ensaio de crescimento
				comparada à de
				plantas de controle;

176/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
				as linhagens de
				superexpressão
				continham mais
				antocioninas quando
				cultivadas sob baixos
				teores de nitrogênio
				ou baixos teores de
				nitrogênio mais
				glutamato, em um
				ensaio de germinação
323	G1983	OE	Folha; formato alterado	Folhas verde escuras;
			Folha; Folhas verde	Florescência tardia;
			escuras	plantas pequenas
			Tempo de florescência
			Tamanho; plantas pequenas
325	G1985	OE	Des e morf; alteração de	Alteração de fase e
			fase e reversão floral	reversão floral
			Des e morf; rosetas	Rosetas aéreas
			aéreas
327	G1988	OE	Nutriente; Tolerância a	Melhor crescimento em
			baixos teores de N	baixos teores de
			Nutriente; Tolerância a	nitrogênio mais
			baixos níveis de PO4	glutamina, melhor
			Tempo de florescência	crescimento em baixos
			Resposta à luz; Pecíolo	teores de fosfato;
			longo	hipocotilédone longo,
			Resposta à luz;	pecíolo longo,
			Hipocotilédone longo	Florescência precoce
329	G1990	OE	Des e morf; Morfologia:	Letal quando

177/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
			outro	superexpresso
331	G1993	OE	Folha; formato alterado	Pecíolos curtos e
			Tamanho; tamanho pequeno	formato arredondado
			da planta	da folha
				Tamanho reduzido da
				planta
333	G1995	OE	Morfologia; maior número	Maior número de
			de tricomas	tricomas nas sépalas,
			Nutriente; Tolerância a	tricomas ectópicos no
			baixos teores de N	rendimento dos
			Nutriente; Tolerância a	carpelos maior
			baixos níveis de PO4	produção de folha,
			Inflorescência; rosetas	flor e produtos da
			aéreas alteradas	epiderme dos óvulos
			Morfologia; sincronia	externos;
			alterada da mudança de	ligeiramente menos
			fase	tolerante a baixos
				níveis de nitrogênio
				e a baixos níveis de
				fósforo; as rosetas
				aéreas ocorriam
				quando um meristema
				secundário de
				inflorescência se
				desenvolvia de uma
				maneira que podia ser
				comparada com o
				meristema primário do
				broto durante a fase

178/1027

SEQ ID N :	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
				vegetativa de crescimento, com estruturas similares às rosetas aéreas e órgãos florais sendo similares à bráctea
335	G1998	OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
337	G1999	OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
339	G2035	OE	Estresse abiótico; tolerância ao cloreto de sódio	Maior vigor de planta jovem partindo de semente em altos teores de cloreto de sódio
341 e 2110	G2041	OE	Estresse abiótico; Tolerância ao cloreto de sódio	Maior tolerância ao cloreto de sódio
343	G2051	OE	Estresse abiótico; Frio	Maior tolerância ao frio em um ensaio de germinação
345	G2060	OE	Estresse abiótico; tolerância ao cloreto de sódio	Maior crescimento radicular e vigor da planta jovem partindo de semente em altos teores de sal
347	G2063	OE	Estresse abiótico; tolerância ao frio	Maior vigor de planta jovem partindo de semente no frio
349	G2070	OE	Estresse abiótico;	As plantas maduras

179/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
			congelamento	com superexpressão
		OE	Estresse abiótico; calor	eram menos tolerantes
		OE	Expressão; resposta	ao frio; o gene era
			alterada ao ABA	induzido pelo ABA,
				pelo frio e pelo
				calor
351	G2071	OE	Tempo de florescência	Florescência precoce
353	G2084	OE	Folha; formato alterado	Pecíolos curtos e
				folhas verde escuras
				ligeiramente
				arredondadas
355	G2085	OE	Folha; formato e	Formato alterado da
			coloração alterados	folha, Folhas verde
			Semente; Maior tamanho,	escuras
			coloração alterada	Maior tamanho de
			Tricoma; maior densidade	semente, coloração
				alterada de semente
				Maior densidade de
				tricoma
357 e 2111	G2106	OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
359	G2109	OE	Sensibilidade a	Muito menos sensível
			hormônios; resposta	ao ABA em um ensaio
			alterada ao ABA	de germinação que a
				do tipo selvagem
361	G2111	OE	Sensibilidade aos	Resposta alterada à
			açúcares; Sensibilidade	sensibilidade aos
			aos açúcares	açúcares; menor
				crescimento e plantas
				jovens partindo de

180/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
				semente pequenas
				pálidas em meio com
				glicose
363	G2129	OE	Tempo de florescência	Florescência precoce
1495	G2133	OE	Estresse abiótico; seca	Maior tolerância à
				seca em um ensaio com
				base no solo
365	G2142	OE	Estresse abiótico;	Mais tolerante à
			Tolerância a baixos	falta de fosfato em
			níveis de PO4	um ensaio de
				crescimento de raiz
		OE	Tempo de florescência	Tempo de florescência
				acelerado
367	G2146	OE	Sensibilidade a	Insensível ao ABA em
			hormônios; resposta	um ensaio de
			alterada ao ABA	germinação;
			Tempo de florescência	florescência tardia;
			Inflorescência;	mais internodos
			Internodos curtos	ramificados curtos,
			Folha; Folhas verde	inflorescências que
			escuras	eram mais curtas e
				mais parecidas com
				arbustos que o tipo
				selvagem; aparência
				verde escura
369	G2184	OE	Tempo de florescência	Florescência precoce
371	G2207	OE	Sensibilidade a	Maior tolerância ao
			hormônios; resposta	estresse osmótico sob
			alterada ao ABA Estresse	altos teores de sal

181/1027

SEQ ID N :	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
			abiótico; tolerância ao	ou de sacarose	e
			cloreto de sódio	menos sensível ao	ABA
			Estresse abiótico;	em ensaios	de
			tolerância osmótica	germinação;
			Tempo de florescência	florescência tardia;
			Folha; formato alterado	folhas verde escuras
			Folha; folhas verde	estreitas
			escuras
373	G2213	OE	Des e morf; Morfologia:	Letal quando
			outro	superexpresso
375	G2226	OE	Inflorescência;	Arquitetura alterada
			Arquitetura alterada	da inflorescência
			Tamanho; plantas pequenas	Tamanho reduzido	da
			Folha; formato e	planta
			coloração alterados	Formato alterado	da
				folha, Folhas verde
				escuras
377	G2227	OE	Tamanho; tamanho pequeno	Tamanho reduzido	da
			da planta	planta
			Folha; formato alterado	Formato alterado	da
				folha
379	G2239	OE	Sensibilidade alterada a	Sensibilidade a C/N:
			C/N	Melhor germinação	a
				baixos teores	de
				nitrogênio	com
				sacarose ou sacarose
				mais glutamina
381	G2251	OE	Des e morf; Tamanho	Tamanho reduzido	da
				planta

182/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
		OE	Des e morf; Folha	Folhas arredondadas e
				verde-escuras
		OE	Des e morf;	Internodos curtos da
			Inflorescência	inflorescência
		OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
383	G2269	OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
385	G2298	OE	Des e morf; Letal quando	Letal quando
			superexpresso	superexpresso
387	G2311	OE	Tempo de florescência	Florescência precoce
389	G2317	OE	Estresse abiótico;	Maior tolerância ao
			tolerância ao frio	frio
			Estresse abiótico;	Maior vigor de planta
			cloreto de sódio	jovem partindo de
				semente em altos
				teores de cloreto de
				sódio
391 e 2112	G2319	OE	Estresse abiótico;	Maior tolerância ao
			Tolerância ao cloreto de	cloreto de sódio
			sódio
		OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
393	G2334	OE	Des e morf; Tamanho	Maior biomassa
		OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
		OE	Des e morf; Folha	Folhas verde escuras
				e formato alterado da
				folha
395	G2371	OE	Folha; coloração alterada	Folhas verde escuras
			Semente; coloração	Coloração alterada de
			alterada	semente

183/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
397	G2372	OE	Des e morf; Tamanho	Tamanho reduzido da
				planta
		OE	Des e morf; Folha	Folhas verde escuras
		OE	Tempo de florescência	Florescência precoce
		OE	Des e morf;	Definição alterada da
			Inflorescência	inflorescência e
				fertilidade reduzida
399	G2375	OE	Folha; formato alterado	Folhas estreitas
			Tamanho da planta;	pequenas; as plantas
			plantas pequenas	eram distintivamente
				menores que as do
				tipo selvagem
401	G2382	OE	Sensibilidade a	Insensível ao ABA em
			hormônios; resposta	ensaios de germinação
			alterada ao ABA
403	G2394	OE	Estresse abiótico;	Maior germinação em
			tolerância ao cloreto de	altos teores de
			sódio	cloreto de sódio
405	G2404	OE	Estresse abiótico;	Maior crescimento de
			tolerância ao cloreto de	raiz em altos teores
			sódio	de cloreto de sódio
407	G2432	OE	Resposta à luz;	Impedimento à sombra;
			Impedimento à sombra	folhas estreitas
			alterado	apontando para cima;
			Folha; formato alterado	florescência
			Tempo de florescência	retardada, flores
			Morfologia; Cotilédones	estéreis; cotilédones
			estreitos	estreitos; raízes

184/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
				fracamente
				desenvolvidas
409	G2443	OE	Tempo de florescência	Florescência precoce
411, 2113 e	G2453	OE	Bioquím: misc;	Maior produção de
2114			Bioquímica: outro	pigmento
		OE	Estresse abiótico;	Maior tolerância ao
			Tolerância ao cloreto de	cloreto de sódio
			sódio
		OE	Des e morf; Folha	Formato alterado da
				folha e Folhas verde
				escuras
		OE	Des e morf; Tamanho	Tamanho reduzido da
				planta
413	G2455	OE	Folha; formato alterado	As folhas são
				estreitas e enroladas
				para baixo
415	G2456	OE	Des e morf; Folha	Folhas enroladas e
				verde-escuras
		OE	Bioquím: misc;	Maior produção de
			Bioquímica: outro	pigmento
		OE	Des e morf; Tamanho	Tamanho reduzido da
				planta
417	G2457	OE	Alterações nas flores	Várias alterações nas
			Folha; formato alterado	flores
			Estresse abiótico;	Formato alterado da
			tolerância ao cloreto de	folha
			sódio	Maior crescimento de
				raiz e menor

185/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
				branqueamento	em
				altos teores	de
				cloreto de sódio
419	G2459	OE	Des e morf; Tamanho	Tamanho reduzido	da
				planta
		OE	Des e morf; Folha	Folhas enroladas
		OE	Bioquím: misc;	Maior produção	de
			Bioquímica: outro	pigmento
421	G2467	OE	Senescência prematura	Senescência precoce
423	G2492	OE	Tamanho; plantas pequenas	Tamanho reduzido	da
				planta
425	G2505	OE	Estresse abiótico;	Maior tolerância	à
			tolerância à seca	seca em um ensaio com
				base no solo
427	G2515	OE	Tempo de florescência	Florescência precoce
		OE	Des e morf;	Definição alterada	da
			Inflorescência	inflorescência
		OE	Des e morf Flor	Morfologia alterada
				das flores
		OE	Des e morf; Tamanho	Tamanho reduzido
429	G2525	OE	Estresse abiótico;	Maior sensibilidade
			sensibilidade ao frio	ao frio
431	G2536	OE	Folha; Tamanho grande da	Tamanho grande	da
			folha	folha
			Tamanho; grande	Maior tamanho	da
			Tamanho da planta	planta
			Senescência retardada	Senescência retardada
433	G2543	OE	Estresse abiótico;	Maior sensibilidade

186/1027

SEQ	ID N :	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
			sensibilidade ao frio	ao frio
435		G2550	OE	Folha; formato e	Formato alterado da
				coloração alterados	folha, Folhas verde
				Inflorescência;	escuras
				Arquitetura alterada	Arquitetura alterada
					da inflorescência
437	e 2115	G2559	OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
439		G2565	OE	Des e morf; Tamanho	Tamanho reduzido da
					planta
			OE	Des e morf; Folha	Coloração acinzentada
					da folha e formato
					folhar alterado
441		G2567	OE	Estresse abiótico;	Maior tolerância,
				tolerância ao	melhor crescimento
				congelamento	sob condições de
					congelamento
443		G2570	OE	Des e morf; Morfologia:	Letal quando
				outro	superexpresso
445		G2571	OE	Inflorescência;	Alterações na
				alterações na ramificação	coloração, nos
				Folha; formato alterado	padrões de
					ramificação e no
					desenvolvimento
					folhar e floral,
					ramificação, símpodos
					na inflorescência,
					similares aos
					mostrados pelas
					plantas de tomate

187/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
447	G2574	OE	Senescência prematura	Senescência prematura
			Tamanho; plantas pequenas	das folhas
				Tamanho reduzido da
				planta
449	G2575	OE	Des e morf; Folha	Formato alterado da
				folha
		OE	Des e morf;	Arquitetura alterada
			Inflorescência	da inflorescência
451	G2579	OE	Des e morf; Síliqua	Tamanho e forma
				alterados da síliqua
		OE	Des e morf Flor	Maior tamanho do
				carpelo e estéril
		OE	Des e morf; Tamanho	Tamanho reduzido da
				planta
		OE	Des e morf; Folha	Formato alterado da
				folha
		OE	Estresse abiótico;	Maior tolerância ao
			Congelamento	congelamento em um
				ensaio de crescimento
				com base em placas
453	G2585	OE	Semente; Semente grande	Maior tamanho de
				semente que o dos
				controles
455	G2587	OE	Des e morf; Letal quando	Letal quando
			superexpresso	superexpresso
457	G2592	OE	Estresse abiótico;	Maior sensibilidade
			sensibilidade ao frio	ao frio
459	G2597	OE	Estresse abiótico;	Este gene foi

188/1027

SEQ ID N :	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
			congelamento	induzido no tecido
				folhar após os
				tratamentos com frio
				a 4°C
461	G2603	OE	Estresse abiótico;	Maior sensibilidade
			sensibilidade ao frio	ao frio
463	G2604	OE	Estresse abiótico;	Sensibilidade
			Captação de nutrientes	alterada a C/N
		OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
		OE	Des e morf; Folha	Superfície folhar
				alterada, folhas
				cinzentas
465	G2616	OE	Des e morf; Tamanho	Tamanho reduzido da
				planta
		OE	Des e morf;	Arquitetura da
			Inflorescência	inflorescência e
				desenvolvimento
				floral alterados
467	G2617	OE	Sensibilidade a	Mais insensível ao
			hormônios; resposta	ABA que o tipo
			alterada ao ABA	selvagem em um ensaio
			Crescimento rápido	de germinação; maior
			Folha; formato alterado	taxa de crescimento
				para plantas jovens
				partindo de semente e
				para plantas no
				estágio inicial;
				pecíolos curtos,
				pedicelos curtos e

189/1027

SEQ ID N :	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
				folhas enrugadas,
				enroladas,
				arredondadas
469	G2628	OE	Tempo de florescência	Florescência precoce
		OE	Folha; formato alterado	Folhas arredondadas;
		OE	Tamanho da planta;	Plantas pequenas
			plantas pequenas
471	G2632	OE	Estresse abiótico;	Maior sensibilidade
			Congelamento	ao congelamento em um
				ensaio com base no
				crescimento
473	G2633	OE	Tempo de florescência	Florescência precoce
475	G2636	OE	Folha; formato alterado	Alterações no padrão
			Morfologia;	da iniciação folhar
			desenvolvimento alterado	de rosetas através do
			do meristema	meristema do broto;
			Morfologia; cotilédones	folhas em lóbulos;
			em lóbulos	brotos adventícios na
				superfície adaxial de
				cotilédones em
				lóbulos
477 e 2116	G2639	OE	Des e morf;	Internodos curtos da
			Inflorescência	inflorescência
		OE	Tempo de florescência	Florescência precoce
		OE	Des e morf Flor	Morfologia floral
				alterada e fracamente
				fértil
479	G2640	OE	Des e morf Flor	Morfologia floral

190/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
				alterada e fraca fertilidade
OE	Des e morf; Tamanho	Tamanho reduzido da planta
OE	Des e morf; Folha	Folhas verde escuras com superfícies brilhosas
OE	Des e morf; Inflorescência	Internodos curtos da inflorescência
481	G2649	OE	Des e morf; Inflorescência	Internodos curtos da inflorescência
OE	Des e morf; Folha	Superfície folhar brilhosa verde escura e forma alongada da folha
OE	Des e morf Flor	Morfologia floral alterada e fracamente fértil
OE	Des e morf; Tamanho	Tamanho reduzido da planta
483	G2650	OE	Tempo de florescência Resposta à luz; Pecíolos longos Resposta à luz; Hipocotilédones longos Resposta à luz; Folhas voltadas para cima Estresse abiótico;	Florescência precoce; As plantas T2 desenvolveram números excessivos de folhas auxiliares em rosetas, folhas estreitas longas; pecíolos alongados;

191/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
			tolerância ao congelamento Tamanho; Maior tamanho da planta Morfologia; Mais meristemas	Hipocotilédones longos; as folhas foram mantidas em uma orientação mais para cima que as dos controles (potential impedimento à sombra); plantas jovens partindo de semente e plantas maduras maiores que as de controle; plantas jovens partindo de semente maiores que as de controle sob condições de congelamento; maior número de meristemas auxiliares nas rosetas
485	G2655	OE	Des e morf; Raiz	Raízes fracamente desenvolvidas e esverdeadas
487	G2661	OE	Regulador do crescimento; Sensibilidade alterada a açúcares Folha; Folhas verde escuras	Melhor germinação em glicose com cotilédones mais verdes que os do tipo selvagem; plantas

192/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
				mais escuras
489 e 2117	G2679	OE	Des e morf; Morfologia:	Maior vigor de planta
			outro	jovem partindo de
				semente
491	G2682	OE	Des e morf; Tamanho	Tamanho reduzido da
				planta
		OE	Des e morf; Folha	Folhas enroladas
493	G2686	OE	Folha; formato alterado	Folhas arredondadas
				com margens
				ligeiramente lobadas
495	G2690	OE	Folha; formato alterado	Folhas verde escuras,
			Folha; Folhas verde	estreitas que se
			escuras	enrolam para baixo
				nas margens
497	G2691	OE	Estresse abiótico;	Maior germinação em
			tolerância ao cloreto de	altos teores de sais
			sódio
499	G2694	OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
			Tamanho; Maior tamanho	Maior tamanho de
			Folha; formato e	planta jovem partindo
			coloração alterados	de semente
			Des e morf; Alterações	Arquitetura alterada
			nas flores	da inflorescência
			Inflorescência;	Formato alterado da
			Arquitetura alterada da	folha, Folhas verde
			inflorescência	escuras
			Resposta alterada à luz	Várias alterações nas
				flores
				Pecíolos longos e

193/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
				Orientação das folhas
501	G2699	OE	Folha; formato alterado e	Pecíolos longos	e
			tamanho		folhas grandes
503	G2702	OE	Des e morf;	Tamanho	Tamanho reduzido	da
					planta
		OE	Des e morf;	Folha	Formato alterado	da
					folha
505	G2717	OE	Estresse	abiótico;	Maior tolerância	ao
			Estresse osmótico	estresse osmótico
		OE	Estresse	abiótico;	(sal e sacarose)
			tolerância	ao cloreto de
		OE	sódio		Maior tolerância	à
			Estresse	abiótico;	seca em um ensaio	com
			tolerância	à seca	base no solo
		OE	Sensibilidade a	Insensível ao ABA	em
			hormônios;	resposta	ensaios de germinação
			alterada ao	ABA
		OE	Tamanho; Maior tamanho da	Plantas jovens
			planta		partindo de semente
					maiores
507	G2718	OE	Des e morf;	Raiz	Maior densidade	de
					pelos da raiz
		OE	Des e morf;	Tricoma	Densidade reduzida	de
					tricoma
		OE	Estresse	abiótico;	Maior tolerância	a
			Captação de	nutrientes	baixos teores	de
					nitrogênio
		OE	Bioquím:	misc;	Produção reduzida	de

194/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
			Bioquímica: outro	pigmentos
509	G2723	OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
511	G2741	OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
		OE	Des e morf; Tamanho	Maior biomassa
513	G2743	OE	Morfologia;	Florescência
			Desenvolvimento alterado	retardada;
			da flor	Desenvolvimento
			Tempo de florescência	alterado da flor (as
				sépalas, as pétalas e
				os estames tinham
				tamanho reduzido, a
				produção de pólen era
				fraca)
515	G2747	OE	Raiz; formação reduzida	Pecíolos longos e
			das raízes	lâminas folhares
			Folha; formato alterado	alongadas
				ligeiramente
				estreitas, pouca ou
				nenhuma formação de
				raízes secundárias
517	G2754	OE	Des e morf	Impedimento à sombra
			Tempo de florescência	Florescência precoce
519	G2757	OE	Tamanho; tamanho pequeno	Tamanho reduzido da
			da planta	planta
521	G2763	OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
		OE	Estresse abiótico;	Mais sensíveis às
			congelamento	temperaturas de
				congelamento durante

195/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
				o crescimento
OE	Regulador do crescimento; Sensibilidade alterada a açúcares	Mais sensíveis à glicose
OE	Pigmento; alto teor de antocianina	Maior acúmulo de antocianina em plantas jovens partindo de semente
OE	Folha; Folhas verde escuras	Folhas verde escuras
523	G2765	OE	Crescimento lento	Crescimento retardado em estágios iniciais
525 e 2118	G2768	OE	Des e morf; Folha	Maior tamanho da folha
		OE	Des e morf Flor	Maior número de pétalas, perda da definição floral
527 e 2119	G2771	OE	Des e morf; Folha	Formato alterado da folha e Folhas verde escuras
OE	Estresse abiótico; Congelamento	Menor quantidade de antocianinas em um ensaio de crescimento sob congelamento
OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
OE	Des e morf; Resposta à luz	Hipocotilédone alongado e pálido na coloração

196/1027

SEQ ID N :	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
529		G2776	OE	Estresse abiótico;	Plantas jovens
				tolerância osmótica	partindo de semente
				Regulador do crescimento;	cultivadas em um alto
				Sensibilidade alterada a	teor de glicose eram
				açúcares	maiores com
					cotilédones verdes
					comparadas com as
					plantas jovens
					partindo de semente
					do tipo selvagem
531	G2777	OE	Tempo de florescência	Florescência precoce
533		G2779	OE	Des e morf	Coloração pálida da
				Tempo de florescência	folha
					Florescência precoce
535		G2783	OE	Senescência prematura	Senescência precoce
				Tamanho; planta pequena	Tamanho reduzido da
					planta
537	e 2120	G2784	OE	Des e morf;	Arquitetura alterada
				Inflorescência	da inflorescência
			OE	Des e morf; Morfologia:	Taxa lenta de
				outro	crescimento
			OE	Des e morf; Folha	Folhas verde escuras
					e enroladas
			OE	Estresse abiótico; Frio	Maior tolerância ao
					frio em um ensaio de
					germinação
539		G2790	OE	Estresse abiótico;	As plantas maduras
				congelamento	com superexpressão

197/1027

SEQ ID N :	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
					eram menos tolerantes
					ao frio
541	e 2121	G2802	OE	Tempo de florescência	Florescência precoce
					e tardia
543	G2805	OE	Tempo de florescência	Florescência precoce
545		G2826	OE	Morfologia; maior	As flores possuíam
				densidade de tricoma	maior densidade de
				Inflorescência; rosetas	tricomas nas sépalas
				aéreas ectópicas	e possuíam tricomas
				Morfologia; sincronia	ectópicos nos
				alterada da mudança de	carpelos; as de
				fase	superexpressão
					desenvolveram rosetas
					aéreas nos nós de co-
					florescência,
					indicando uma
					interrupção na
					alteração de fase na
					inflorescência
547		G2830	OE	Sensibilidade alterada a	Sensibilidade a C/N
				C/N
549		G2832	OE	Tempo de florescência	Florescência precoce
				Folha; coloração alterada	Coloração folhar
					cinza pálido
551		G2834	OE	Taxa lenta de crescimento	Taxa lenta de
					crescimento
553		G2837	OE	Folha; formato e	Formato alterado da
				coloração alterados	folha, Folhas verde
					escuras

198/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
555	G2838	OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
			Tamanho; planta grande	Maior tamanho de
			Folha; coloração alterada	planta jovem partindo
			Tricoma; maior densidade	de semente
			Flor; várias alterações	Rosetas aéreas
				Folhas verde escuras
				Maior densidade de
				tricoma
				Várias alterações nas
				flores
557	G2839	OE	Estresse abiótico;	Melhor germinação em
			tolerância ao estresse	altos teores de
		OE	osmótico	sacarose; maior
		OE	Folha; formato alterado	resistência ao
			Regulador do crescimento:	estresse osmótico;
			Sensibilidade alterada a	folhas contorcidas
		OE	açúcares	pequenas que possuem
			Inflorescência; Alteração	enrolamentos para
			da arquitetura	cima nas margens,
				pecíolos curtos;
				Flores fracamente
				desenvolvidas com
				pedicelos curtos
				apontando para baixo
559	G2846	OE	Folha; formato e	Formato alterado da
			coloração alterados	folha, Folhas verde
			Tempo de florescência	escuras
			Tamanho; planta pequena	Florescência tardia
				Tamanho reduzido da

199/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
				planta
561	G2847	OE	Folha; coloração alterada	Folhas verde escuras
			Tamanho; planta pequena	Tamanho reduzido da
				planta
563	G2850	OE	Folha; formato e	Folhas verde escuras,
			coloração alterados	enroladas
565	G2851	OE	Folha; folhas pequenas	Folhas pequenas,
			Folha; formato alterado	verde-escuras,
			Folha; Folhas verde	enroladas e
			escuras	enrugadas; plantas
			Crescimento lento	pequenas, crescimento
				lento
567	G2854	OE	Sensibilidade a	Melhor germinação em
			hormônios; resposta	meios com altos
			alterada ao ABA	teores de ABA e
			Regulador do crescimento;	contendo sacarose
			Sensibilidade alterada a
			açúcares
569	G2859	OE	Folha; formato e	Formato alterado da
			coloração alterados	folha e folhas verde
			Inflorescência;	claras
			Arquitetura alterada	Arquitetura da
			Resposta alterada à luz	inflorescência
				Hipocotilédones,
				cotitilédones longos;
				plantas verdes claras
571	G2865	OE	Sensibilidade a	Insensível ao ABA em
			hormônios; resposta	ensaios de germinação
			alterada ao ABA

200/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
573	G2866	OE	Des e morf; Folha	Folhas enroladas
575		G2869	OE	Des e morf; Morfologia:	Letal quando
				outro	superexpresso
577		G2884	OE	Des e morf; Morfologia:	Desenvolvimento
				outro	anormal do embrião
			OE	Des e morf; Tamanho	Tamanho reduzido da
					planta
			OE	Des e morf Flor	Vários defeitos nas
					flores e baixa
					fertilidade
			OE	Des e morf; Resposta à	Hipocotilédones
				luz	longos e verdes
579		G2885	OE	Des e morf; diferenciação	Diferenciação celular
				celular	alterada
				Estresse abiótico;	Menor tolerância ao
				tolerância ao frio	frio
581		G2887	OE	Des e morf; Letal quando	Letal quando
				superexpresso	superexpresso
583		G2888	OE	Folha; formato alterado	Formato alterado da
					folha
585		G2898	OE	Sensibilidade aos	Melhor germinação em
				açúcares	meios com altos
					teores de glicose
587	e 2122	G2907	OE	Des e morf; Senescência	Senescência acelerada
589		G2913	OE	Nutriente; tolerância a	Menos antocianina em
				baixos teores de N	meios com nitrogênio
					limitado
591	G2930	OE	Estresse abiótico;	As plantas maduras

201/1027

SEQ ID N :	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
			tolerância ao	possuem maior
			congelamento	tolerância ao
				estresse ao
				congelamento
593	G2933	OE	Semente; Semente grande	Sementes grandes;
			Estresse abiótico;	plantas maiores; mais
			tolerância ao	tolerantes ao
			congelamento	estresse ao
				congelamento nas
				etapas de crescimento
595	G2934	OE	Tamanho; planta pequena	Tamanho reduzido da
				planta
597	G2958	OE	Inflorescência;	Arquitetura alterada
			Arquitetura alterada	da inflorescência
			Folha; formato e	Formato alterado da
			coloração alterados	folha, Folhas verde
			Tamanho; plantas pequenas	escuras
				Tamanho reduzido da
				planta
599	G2964	OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
			Des e morf; rosetas	Rosetas aéreas
			aéreas
601	G2967	OE	Tempo de florescência	Florescência precoce
603	G2969	OE	Sensibilidade a	Maior tolerância à
			hormônios; resposta	sacarose e ABA em
			alterada ao ABA	ensaios de germinação
605	G2972	OE	Nutriente; Tolerância a	As linhagens de
			baixos níveis de PO4	superexpressão
				possuíam maior

202/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
				tolerância	a
				condições de	baixo
				teor de fosfato
607	G2979	OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
		OE	Des e morf; Tamanho	Maior biomassa
		OE	Des e morf Flor	Tamanho e	número
				maiores de	órgãos
				florais
609	G2981	OE	Nutriente; Tolerância a	Plantas	jovens
			baixos teores de N	partindo de	semente
				mais verdes	maiores
				em meio com	baixo
				teor de nitrogênio
				suplementado	com
				glutamina
611	G2982	OE	Estresse abiótico;	As	plantas
			tolerância à seca	transformadas	com
				este gene	exibiam
				maior tolerância ao
				estresse	de
				desidratação	em um
				ensaio com base no
				solo
613	G2983	OE	Flor; formação ectópica	Formação ectópica dos
			dos carpelos	carpelos
			Des e morf; proliferação	Proliferação	celular
			celular alterada	alterada
			Altered raiz	Padrão	de

203/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
			Des e morf; diferenciação celular alterada, morte das células de tricomas	crescimento, proliferação e densidade dos pêlos radiculares alterados Diferenciação celular alterada, morte das células de tricomas
615	G2990	OE	Nutriente; tolerância a baixos teores de N	Resposta alterada à falta de nitrogênio, incluindo maior crescimento da raiz e maior produção de antocianina em algumas linhagens, mais branqueamento em outros quando crescidas em baixos teores de nitrogênio, indicando que este gene está envolvido na resposta à limitação de nutrientes
617	G2992	OE	Sensibilidade a hormônios; resposta alterada ao ABA Tempo de florescência Estresse abiótico; tolerância ao cloreto de	Maior capacidade de germinar em altos teores de Nacl e altos teores de ABA; menos tolerante a baixos teores de

204/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
			sódio	nitrogênio;
			Nutriente; Tolerância a	Florescência precoce;
			baixos teores de N	menos raízes
			Raiz; Menos raízes	laterais; Formato
			laterais	alterado da folha;
			Folha; formato alterado	plantas menores
			Tamanho da planta;
			plantas pequenas
619	G2993	OE	Des e morf; Resposta à	Hipocotilédones
			luz	alongados e
				orientação alterada
				das folhas
		OE	Des e morf; Raiz	Branqueamento
				alterado da raiz
		OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
		OE	Estresse abiótico;	Maior sensibilidade
			Estresse osmótico	to estresse osmótico
		OE	Estresse abiótico;	Maior sensibilidade
			Congelamento	ao congelamento em um
				ensaio de crescimento
621	G2996	OE	Estresse abiótico;	Maior sensibilidade
			estresse osmótico	ao manitol em ensaios
				de inibição do
				crescimento da raiz,
				(nenhum crescimento
				de raízes
				secundárias)
				indicando que este
				gene influencia a

205/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
				resposta ao estresse
				osmótico
623	G2998	OE	Estresse abiótico;	Melhor germinação em
			tolerância ao cloreto de	altos teores de NaCl;
			sódio	Florescência tardia
625	G2999	OE	Estresse abiótico;	Maior tolerância a
			tolerância ao cloreto de	altos teores de
		OE	sódio	cloreto de sódio
			Estresse abiótico:	Maior tolerância à
			tolerância à seca	seca em um ensaio com
				base no solo
		OE	Tempo de florescência
627	G3002	OE	Tempo de florescência	Florescência precoce
629 e 2123	G3003	OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
631	G3008	OE	Folha tamanho	Tamanho grande da
				folha
633	G3017	OE	Tamanho da folha	Tamanho reduzido da
				planta
635	G3021	OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
			Folha; formato e	Arquitetura alterada
			coloração alterados	da inflorescência
			Inflorescência;	Formato alterado da
			Arquitetura alterada	folha, Folhas verde
				escuras
637	G3032	OE	Des e morf; Resposta à	Orientação alterada
			luz	das folhas
		OE	Tempo de florescência	Florescência precoce
639	G3044	OE	Tempo de florescência	Florescência precoce

206/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
		OE	Folha; formato alterado	Folhas serradas estreitas
OE	Folha; folhas verde claras	Folhas pálidas
641	G3054	OE	Sensibilidade a hormônios; resposta alterada ao ABA	Sensibilidade reduzida ao ABA
643	G3055	OE	Sensibilidade a hormônios; resposta alterada ao ABA	Insensível ao ABA em ensaios de germinação
645	G3059	OE	Des e morf; Senescência	Senescência acelerada
OE	Des e morf; Folha	Folhas verde escuras e Formato alterado da folha
OE	Des e morf; Inflorescência	Arquitetura alterada da inflorescência
OE	Des e morf; Morfologia: outro	Forma alterada dos cotilédones
OE	Des e morf; Tamanho	Tamanho reduzido da planta
647	G3060	OE	Tempo de florescência	Algumas linhagens floresceram precocemente e outras floresceram mais tarde
649	G3061	OE	Tempo de florescência	Florescência precoce
651	G3067	OE	Sensibilidade a hormônios; resposta	Insensível ao ABA em ensaios de germinação

207/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
			alterada ao ABA
653	G3070	OE	Des e morf; Folha	Coloração cinzenta da
				folha
655	G3076	OE	Estresse abiótico; Seca	Maior tolerância à
				seca
657	G3083	OE	Estresse abiótico;	Maior germinação em
			tolerância ao cloreto de	altos teores de sais
			sódio
659	G3084	OE	Folha; formato alterado	Formato alterado da
				folha
661	G3086	OE	Tempo de florescência	Florescência precoce
			Estresse abiótico;	Maior tolerância ao
			tolerância ao calor	calor
			Estresse abiótico;	Maior tolerância a
			tolerância ao cloreto de	altos teores de
			sódio	cloreto de sódio
			Estresse abiótico:	Maior tolerância à
			tolerância à seca	seca em um ensaio com
				base no solo
663	G3091	OE	Des e morf; Morfologia:	Taxa de crescimento
			outro	retardada
		OE	Des e morf; Folha	Formato alterado da
				folha e Folhas verde
				escuras
665	G3094	OE	Des e morf; Folha	Folhas serradas e
				pecíolos longos
		OE	Des e morf Flor	Morfologia alterada
				das flores

208/1027

SEQ ID No:	GID	OE/KO	Categoria	Observações Experimentais
667	G3095	OE	Des e morf; Folha	Formato alterado da folha e Folhas verde escuras
OE	Des e morf; Morfologia: outro	Taxa lenta de crescimento
669	G3111	OE	Des e morf; Folha	Formato alterado da folha e Folhas verde escuras
OE	Tempo de florescência	Florescência tardia
OE	Des e morf; Senescência	Senescência acelerada

[0293] A Tabela 5 mostra os polipeptídeos identificados pela SEQ ID N-:; pela Gene ID (GID) N-; a família do fator de transcrição à qual o polipeptídeo pertence e os domínios conservados do polipeptídeo. A primeira coluna mostra a SEQ ID N^o: do polipeptídeo; a terceira coluna mostra a família do fator de transcrição à qual o polinucleotídeo pertence; e a quarta coluna mostra as posições dos resíduos de aminoácidos do domínio conservado nas coordenadas dos aminoácidos (AA).

Tabela 5. Famílias de genes e domínios conservados

Polipeptídeo SEQ ID No:	GID No.	Família	Domínios Conservados em Coordenadas de Aminoácidos
2	G2	129-195, 221-288	AP2
4	G12	27-94	AP2
6	G15	281-357, 383-451	AP2
8	G3 0	17-35	AP2

209/1027

Polipeptídeo SEQ ID No:	GID n .	Família	Domínios Conservados em Coordenadas de Aminoácidos
10	G46	107-175	AP2
12	G47	11-80	AP2
14	G129	18-73	MADS
16	G131	1-57	MADS
18	G133	1-57	MADS
20	G134	1-57	MADS
22	G135	1-57	MADS
24	G136	18-74	MADS
26	G137	1-57	MADS
28	G138	1-57	MADS
30	G139	1-57	MADS
32	G140	16-72	MADS
34	G142	2-57	MADS
36	G145	1-57	MADS
38	G146	1-57	MADS
40	G148	1-57	MADS
42	G151	2-57	MADS
44	G153	1-57	MADS
46	G155	1-57	MADS
48	G171	1-57	MADS
50	G172	12-68	MADS
52	G173	1-57	MADS
54	G200	12-116	MYB-(R1)R2R3
56	G224	7-114	PMR

210/1027

Polipeptídeo SEQ ID No:	GID N .	Família	Domínios Conservados em Coordenadas de Aminoácidos
58	G244	14-114	MYB-(R1)R2R3
60	G246	57-159	MYB-(R1)R2R3
62	G253	16-116	MYB-(R1)R2R3
64	G268	186-689	AKR
6 6	G287	293-354	MISC
68	G3 0 9	226-506	SCR
70	G314	54-300	SCR
72	G319	12-42	Similar a Z- CO-
74	G324	245-291	RING/C3H2C3
76	G344	166-192	GATA/Zn
78	G351	77-97, 118-140	Z-C2H2
1380	G353	41-61, 84-104	Z-C2H2
1382	G354	42-62, 88-109	Z-C2H2
80	G355	49-69, 94-116	Z-C2H2
82	G366	40-60	Z-C2H2
84	G370	97-117	Z-C2H2
86	G372	141-180	RING/C3HC4
88	G374	35-67, 286-318	Z-ZPF
90	G3 8 0	637-677	RING/C3H2C3
92	G386	133-193	HB
94	G416	451-511	HB
96	G434	39-99	HB
98	G438	22-85	HB
100	G446	53-389	ARF

211/1027

Polipeptídeo SEQ ID No:	GID n .	Família	Domínios Conservados em Coordenadas de Aminoácidos
102	G468	86-102, 141-171	IAA
104	G478	186-281	SBP
106	G485	21-116	CAAT
108	G521	7-156	NAC
110	G549	1-395	MISC
112	G550	134-180	Z-Dof
114	G571	160-220, 441-452	bZIP
116	G581	339-396	HLH/MYC
118	G600	115-290	DBP
120	G624	327-406	ABI3/VP-1
122	G627	1-57	MADS
124	G6 4 6	55-97	Z-Dof
126	G651	5-31, 162-182, 208-231	Z-C2H2
128	G652	28-49, 137-151, 182-196	Z-CLDSH
130	G707	109-169	HB
132	G728	206-255	GARP
134	G730	169-217	GARP
136	G738	351-393	Z-Dof
138	G744	176-217	RING/C3H2C3
140	G752	439-479	RING/C3H2C3
142	G807	12-76	HS
144	G811	18-108	HS
146	G839	60-185, 290-353	AKR

212/1027

Polipeptídeo SEQ ID No:	GID N .	Família	Domínios Conservados em Coordenadas de Aminoácidos
148	G846	222-531, 679-719, 840-923	SWI/SNF
150	G852	225-593	SCR
152	G905	118-159	RING/C3H2C3
154	G916	293-349	WRKY
156	G926	174-226	CAAT
158	G957	12-182	NAC
160	G961	12-180	NAC
162	G975	4-71	AP2
164	G1011	2-57	MADS
166	G1013	114-170	WRKY
168	G1017	9-382	ARF
170	G1033	52-123	HMG
172	G1037	11-134, 200-248	GARP
174	G1082	1-53, 503-613	BZIPT2
176	G1100	96-137	RING/C3H2C3
178	G1108	363-403	RING/C3H2C3
180	G1113	85-128	RING/C3H2C3
182	G1128	181-247	AT-hook
184	G1136	397-474	HLH/MYC
186	G1142	63-123	HLH/MYC
188	G1150	887-907	PAZ
190	G1206	494-668	ENBP
192	G1247	18-141	MYB-(R1)R2R3
194	G1274	111-164	WRKY

213/1027

Polipeptídeo SEQ ID No:	GID n .	Família	Domínios Conservados em Coordenadas de Aminoácidos
196	G1276	158-224, 250-316	AP2
198	G1289	207-286, 464-493	AKR
200	G1313	32-135	MYB-(R1)R2R3
202	G1327	14-116	MYB-(R1)R2R3
204	G1340	54-142	TH
206	G1341	1-34, 288-398	BZIPT2
208	G1357	16-153	NAC
210	G1361	59-200	NAC
212	G1384	127-194	AP2
214	G1389	30-87	TEO
216	G1412	13-162	NAC
218	G1420	221-280	WRKY
220	G1423	6-62	MADS
222	G1446	1-405	MISC
224	G1451	22-357	ARF
226	G1452	30-177	NAC
228	G1468	95-115,170-190	Z-C2H2
230	G1474	41-68	Z-C2H2
232	G1476	37-57	Z-C2H2
234	G1482	5-63	similar a Z- CO
236	G1483	17-66	Similar a Z- CO
238	G1493	242-289	GARP
240	G1507	219-247	RING/C3HC4

214/1027

Polipeptídeo SEQ ID No:	GID N .	Família	Domínios Conservados em Coordenadas de Aminoácidos
242	G1510	230-263	GATA/Zn
244	G1535	109-169	HB
246	G1538	66-126	HB
248	G1539	76-136	HB
250	G1549	75-135	HB
252	G1554	238-287	GARP
254	G1556	19-67	GARP
256	G1557	19-67	GARP
258	G1585	55-115	HB
260	G1591	8-68	HB
262	G1593	227-290	HB
264	G1660	362-476	DBP
266	G1718	113-153	RING/C3H2C3
268	G1730	103-144	RING/C3H2C3
270	G1743	94-136	RING/C3H2C3
272	G1753	12-80	AP2
274	G1772	123-176	RING/C3HC4
276	G1779	190-239	GATA/Zn
278	G1792	17-85	AP2
280	G1796	54-121	AP2
282	G1797	1-57	MADS
284	G1798	1-57	MADS
286	G1808	140-200	bZIP
288	G1816	31-81	Relacionado a MYB

215/1027

Polipeptídeo SEQ ID No:	GID N .	Família	Domínios Conservados em Coordenadas de Aminoácidos
290	G1823	205-252	GARP
292	G1825	55-103	GARP
294	G1832	67-87, 150-166, 213-233	Z-C2H2
296	G1837	1-53, 398-507	BZIPT2
298	G1840	87-154	AP2
300	G1846	16-83	AP2
302	G1850	56-149	HS
304	G1863	77-186	similar a GRF
306	G1893	73-185	Z-C2H2
308	G1917	153-179	GATA/Zn
310	G1923	23-153	NAC
312	G1928	101-121, 178-198	Z-C2H2
314	G1932	9-76	AP2
316	G1938	74-143	PCF
318	G1945	49-71	AT-hook
320	G1957	52-143	ABI3/VP-1
322	G1968	64-84, 368-390	Z-C2H2
324	G1983	71-147	Z-C3H
326	G1985	37-57	Z-C2H2
328	G1988	5-50	Similar a Z- CO
330	G1990	184-204, 261-283	Z-C2H2
332	G1993	23-43	Z-C2H2
334	G1995	93-113	Z-C2H2

216/1027

Polipeptídeo SEQ ID No:	GID n .	Família	Domínios Conservados em Coordenadas de Aminoácidos
336	G1998	5-71	Similar a Z- CO
338	G1999	15-55	Similar a Z- CO
340	G2035	93-259	AKR
342	G2041	670-906, 1090- 1175	SWI/SNF
344	G2051	7-158	NAC
346	G2060	204-263	WRKY
348	G2063	7-63	MADS
350	G2070	45-137	bZIP
352	G2071	307-358	bZIP
354	G2084	41-172	RING/C3HC4
356	G2085	214-241	GATA/Zn
358	G2106	56-139, 165-233	AP2
360	G2109	1-57	MADS
362	G2111	1-57	MADS
364	G2129	71-140	bZIP
1496	G2133	11-83	AP2
366	G2142	43-120	HLH/MYC
368	G2146	136-200	HLH/MYC
370	G2184	17-147	NAC
372	G2207	180-227, 546-627	bZIP-NIN
374	G2213	156-205	bZIP-NIN
376	G2226	103-144	RING/C3H2C3

217/1027

Polipeptídeo SEQ ID No:	GID n .	Família	Domínios Conservados em Coordenadas de Aminoácidos
378	G2227	199-239	RING/C3H2C3
380	G2239	128-169	RING/C3H2C3
382	G2251	89-132	RING/C3H2C3
384	G2269	136-177	RING/C3H2C3
386	G2298	4-71	AP2
388	G2311	5-58	Relacionado a MYB
390	G2317	48-110	Relacionado a MYB
392	G2319	32-120	Relacionado a MYB
394	G2334	82-118, 150-194	Similar a GRF
396	G2371	25-127	ABI3/VP-1
398	G2372	18-378	ARF
400	G2375	51-148	TH
402	G2382	90-177, 246-333	TH
404	G2394	355-395	RING/C3H2C3
406	G2404	319-359	RING/C3H2C3
408	G2432	64-106	Z-Dof
410	G2443	20-86	Similar a Z- CO
412	G2453	130-176	YABBY
414	G2455	136-153	YABBY
416	G2456	148-195	YABBY
418	G2457	110-127	YABBY

218/1027

Polipeptídeo SEQ ID No:	GID n .	Família	Domínios Conservados em Coordenadas de Aminoácidos
420	G2459	50-97	YABBY
422	G2467	25-118	HS
424	G2492	616-860	ENBP
426	G2505	9-137	NAC
428	G2515	1-57	MADS
430	G2525	196-308	DBP
432	G2536	5-135	NAC
434	G2543	31-91	HB
436	G2550	345-408	HB
438	G2559	60-170	DBP
440	G2565	243-292	GARP
442	G2567	18-384	ARF
444	G2570	235-283	GARP
446	G2571	133-200	AP2
448	G2574	225-284	WRKY
450	G2575	137-192	WRKY
452	G2579	52-119	AP2
454	G2585	103-162	WRKY
456	G2587	108-165	WRKY
458	G2592	119-429	TUBBY
460	G2597	62-200	TUBBY
462	G2603	104-389	TUBBY
464	G2604	34-64, 73-103	Similar a Z- LSD
466	G2616	79-139	HB

219/1027

Polipeptídeo SEQ ID No:	GID N .	Família	Domínios Conservados em Coordenadas de Aminoácidos
468	G2617	57-77	Z-C2H2
470	G2628	36-105	bZIP
472	G2632	170-221	CAAT
474	G2633	123-490	SCR
476	G2636	14-146	NAC
478	G2639	114-167	SRS
480	G2640	146-189	SRS
482	G2649	112-155	SRS
484	G2650	34-91	TEO
486	G2655	106-180	HLH/MYC
488	G2661	40-100	HLH/MYC
490	G2679	107-177	CPP
492	G2682	67-181	CPP
494	G2686	122-173	WRKY
496	G2690	46-113	AP2
498	G2691	78-145	AP2
500	G2694	1-446	OUTRO
502	G2699	54-407	SCR
504	G2702	31-131	MYB-(R1)R2R3
506	G2717	5-58	Relacionado a MYB
508	G2718	21-76	Relacionado a MYB
510	G2723	12-174	Relacionado a MYB

220/1027

Polipeptídeo SEQ ID No:	GID n .	Família	Domínios Conservados em Coordenadas de Aminoácidos
512	G2741	140-205	GARP
514	G2743	201-249	GARP
516	G2747	19-113	ABI3/VP-1
518	G2754	198-393, 554-638	SWI/SNF
520	G2757	35-123, 348-434	TH
522	G2763	140-210	HLH/MYC
524	G2765	124-190	HLH/MYC
526	G2768	288-346	DBP
528	G2771	333-433	HLH/MYC
530	G2776	144-210	HLH/MYC
532	G2777	278-350	HLH/MYC
534	G2779	144-213	HLH/MYC
536	G2783	63-124, 151-235, 262-318	Similar a ACBF
538	G2784	139-260	DBP
540	G2790	137-200	HLH/MYC
542	G2802	48-196	NAC
544	G2805	2-169	NAC
546	G2826	75-95	Z-C2H2
548	G2830	245-266	Z-C2H2
550	G2832	11-31, 66-86, 317-337	Z-C2H2
552	G2834	246-266, 335-356	Z-C2H2
554	G2837	140-160	Z-C2H2
556	G2838	57-77	Z-C2H2

221/1027

Polipeptídeo SEQ ID No:	GID N .	Família	Domínios Conservados em Coordenadas de Aminoácidos
558	G2839	34-60, 85-113	Z-C2H2
560	G2846	266-329	HLH/MYC
562	G2847	205-268	HLH/MYC
564	G2850	318-381	HLH/MYC
566	G2851	248-309	HLH/MYC
568	G2854	110-250	Similar a ACBF
570	G2859	145-226	HLH/MYC
572	G2865	86-162	HLH/MYC
574	G2866	84-100, 139-168	IAA
576	G2869	26-409	ARF
578	G2884	228-276	GARP
580	G2885	196-243	GARP
582	G2887	4-180	NAC
584	G2888	41-61, 120-140	Z-C2H2
586	G2898	62-133	HMG
588	G2907	12-120, 854-923	PCGL
590	G2913	43-127	ARID
592	G2930	53-133	HLH/MYC
594	G2933	65-137	HLH/MYC
596	G2934	37-110	HLH/MYC
598	G2958	88-104, 143-172	IAA
600	G2964	41-63, 201-235	Z-C3H
602	G2967	66-88, 358-385	Z-C2H2
604	G2969	128-150	Z-C2H2

222/1027

Polipeptídeo SEQ ID No:	GID n .	Família	Domínios Conservados em Coordenadas de Aminoácidos
606	G2972	8-32, 129-149, 277-294	Z-C2H2
608	G2979	192-211	E2F
610	G2981	155-173	E2F
612	G2982	107-124	E2F
614	G2983	88-148	HB
616	G2990	54-109, 203-263	ZF-HB
618	G2992	29-84, 159-219	ZF-HB
620	G2993	85-138, 221-285	ZF-HB
622	G2996	75-126, 194-254	ZF-HB
624	G2998	74-127, 243-303	ZF-HB
626	G2999	82-131, 201-261	ZF-HB
628	G3002	6-50, 104-168	ZF-HB
630	G3003	131-280	Z-C2H2
632	G3008	10-275	EIL
634	G3017	133-201	HLH/MYC
636	G3021	110-155	HLH/MYC
638	G3032	285-333	GARP
640	G3044	222-311	HLH/MYC
642	G3054	77-96, 149-168	Z-C3H
644	G3055	97-115, 178-197, 266-287	Z-C3H
646	G3059	219-287	Z-C3H
648	G3060	42-61, 219-237	Z-C3H
650	G3061	73-90, 174-193	Z-C2H2

223/1027

Polipeptídeo SEQ ID No:	GID No.	Família	Domínios Conservados em Coordenadas de Aminoácidos
652	G3067	198-219	Z-C2H2
654	G3070	129-150	Z-C2H2
656	G3076	70-100, 182-209	bZIP-ZW2
658	G3083	75-105, 188-215	bZIP-ZW2
660	G3084	94-110, 148-177	IAA
662	G3086	297-376	HLH/MYC
664	G3091	34-131	PLATZ
6 6 6	G3094	7-143	PLATZ
668	G3095	16-151	PLATZ
670	G3111	111-152	RING/C3H2C3

[0294] Os exemplos de algumas das utilidades que podem ser desejáveis nas plantas e que podem ser fornecidas através da transformação das plantas com as sequências divulgadas aqui, estão listados na Tabela 6. Muitos dos fatores de transcrição listados na Tabela 6 podem ser ligados de forma operacional com um promotor específico que faz com que o fator de transcrição seja expresso em resposta a sinais ambientais, específicos ao tecido ou temporais. Por exemplo, G370 induz tricomas ectópicos nas flores, mas também produz plantas pequenas. Os primeiros podem ser desejáveis para produzir resistência a insetos ou a herbívoros ou maior rendimento de algodão, mas o último pode ser indesejável em relação ao rendimento uma vez que pode reduzir a biomassa. Entretanto, através da ligação operacional de G370 com um promotor específico às flores,

224/1027 pode-se atingir os benefícios desejáveis do gene sem afetar a biomassa global até um grau significativo. Para exemplos de promotores específicos às flores, ver Kaiser e outros (supra). Para exemplos de outros promotores específicos ao tecido, específicos ao tempo ou que podem ser induzidos, ver a discussão anterior sob o título de Vetores, Promotores e Sistemas de Expressão.

Tabela 6. Genes, traços e utilidades que afetam as características das plantas

Categoria da Característica	Alteração(ões) Fenotípica(s)	Genes do fator de	Utilidade
transcrição têm impacto as caracterí	que sobre sticas
Estresse abiótico	Efeito do congelamento sobre as plantas
	Maior	G2632;	G2763;	Maior taxa de
	sensibilidade	G2790;	G2885;	crescimento,
	Maior tolerância	G2993		plantação mais
		G1274;	G1357;	cedo, rendimento
		G1779;	G1928;
		G2063;	G2567;
		G2579;	G2650;
		G2771; G2933	G2930;
	Germinação no frio
	Maior	G134; G344;	G651;	Manipulação da
	sensibilidade	G1808;	G2070;	resposta ao
		G2525;	G2543;	estresse à
		G2592; G2993		temperatura
	Maior tolerância	G224; G728;	G807;	Plantação mais
		G1274;	G1837;	cedo; maior
		G2051;	G2317;	sobrevivência,
		G2603; G2784		rendimento
	Seca
	Maior tolerância	G46; G47;	G926;	Melhor
		G975;	G1206;	sobrevivência,
		G1274;	G1357;	vigor, aparência,
		G1452;	G1792;	rendimento, faixa

225/1027

Categoria	da	Alteração(ões)	Genes do fator de	Utilidade
Característica		Fenotípica(s)	transcrição	que
			têm impacto	sobre
			as características
			G2133;	G2505;
			G2717;	G2982;
			G2999; G3086	G3076;
		Congelamento	G1206; G2982		Melhor
					sobrevivência,
					vigor, aparência,
					rendimento
		Calor			Melhor germinação,
		Maior	G550		taxa	de
		sensibilidade	G3086		crescimento,
				plantação tardia,
		Maior tolerância			rendimento
		Estresse osmótico
		Maior	G155; G370	(KO);	Manipulação	da
		sensibilidade	G1863;	G1938;	resposta	ao
			G2993; G2996		estresse abiótico
		Maior tolerância	G47; G353;	G916;	Melhor taxa	de
			G926;	G1033;	germinação,
			G1412;	G1452;	sobrevência,
			G1730;	G1753;	rendimento
			G1816;	G2207;
			G2661;	G2717;
			G2776; G2854; G2969	G2839;
		Tolerância a sal
		Resposta alterada (uma linhagem mais tolerante, uma linhagem mais sensível)	G2394
		Maior tolerância	G355; G624;	G1017;	Melhor taxa	de
			G1037;	G1538;	germinação,
			G1557;	G1660;	sobrevência,
			G1837;	G2035;	rendimento;	faixa
			G2041;	G2060;	de crescimento
			G2207;	G2317;	estendida
			G2319;	G2394;

226/1027

Categoria da	Alteração(ões)	Genes do fator de	Utilidade
Característica	Fenotípica(s)		transcrição	que
			têm impacto	sobre
			as características
			G2404;	G2453;
			G2457;	G2691;
			G2717;	G2992;
			G2998; G3083; G3086	G2999;
	Estresse	ao
	nitrogênio
	Sensibilidade	à	G707;	G1136;
	limitação ao N		G1483;	G1535;
			G1968;	G1995;
			G2718; G2992	G2990;
	Menos sensível	à	G153; G200;	G581;	Melhor rendimento e
	limitação ao N		G839; G916;	G1013;	tolerância ao
			G1150;	G1274;	estresse a
			G1792;	G1816;	nutrientes, menor
			G1988;	G2239;	utilização de
			G2604;	G2718;	fertilizantes
			G2830; G2981	G2913;
	Estresse	ao
	fosfato		G1995
	Sensibilidade	à
	limitação ao PO4
	Menos sensível	à	G355; G624;	G1988;	Melhor rendimento e
	limitação ao PO4		G2142; G2972		tolerância ao estresse a nutrientes, menor utilização de fertilizantes
Expressão alterada	Induzida pelo ABA	G224; G244;	G355;	Modificação do
			G571;	G1037;	desenvolvimento das
			G1482;	G1507;	sementes, dormência
			G2070; G2085		das sementes, tolerância ao frio e à desidratação
	Alterada pela	G151; G153;	G224;	Regulação da
	auxina		G244;G550;	G807;	divisão celular, do

227/1027

Categoria	da	Alteração(ões)	Genes do fator de	Utilidade
Característica		Fenotípica(s)		transcrição	que
				têm impacto	sobre
				as características
				G1037;	G1274;	crescimento	e da
				G1384;	G1482;	maturação,
				G1535; G1923		particularmente nas
						pontas dos brotos
		Induzida	pelo	G140; G224;	G374;	Elasticidade	ao
		ácido salicílico	1037;	G1100;	calor ou	a
				G1274;	G1507;	condições
				G1538; G2070		fisiológicas	que
						resultam em	altos
						níveis de	ácido
						salicílico
		Após desafio	com	G314; G571;	G1274;	Rendimento,
		Erysiphe		G1923;	G2070;	aparência,
				G2085		survival,	faixa
						extensa
		Após desafio	com	G140; G153;	G171;	Rendimento,
		Fusarium		G224; G434;	G1384;	aparência,
				G1507; G1923		survival,	faixa
						extensa
		Induzida	pelo	G153; G171;	G224;	Germinação, taxa de
		calor		G434; G550;	G807;	crescimento,
				G961;	G1037;	plantação tardia
				G1384;	G1412;
				G1482;	G1507;
				G1538;	G1850;
				G1923; G2070
		Frio		G171; G224;	G314;	Maior taxa	de
				G1274;	G1730;	crescimento,
				G2070;	G2085;	plantação	mais
				G2597		cedo, rendimento
		Estresse osmótico	G571;	G1274;	Manipulação	da
				G1412;	G1482;	resposta	ao
				G1730;	G1923;	estresse abiótico
				G2085
		Seca		G139; G244;	G434;	Melhor
				G571; G1100;	G1412	sobrevivência,
						vigor, aparência,
						rendimento
	Sal	G224; G550; G1037	Melhor taxa	de

228/1027

Categoria da Característica	Alteração(ões) Fenotípica(s)	Genes do fator de transcrição que têm impacto sobre as características	Utilidade
			germinação, sobrevência, rendimento; faixa de crescimento estendida
Herbicida	Resistência Glifosato	G2133	Produção de plantas resistentes ao glifosato e aumento da resistência da planta ao estresse oxidativo
Sensibilidade a hormônios	Sensibilidade ao ácido abscísico (ABA)
	Sensibilidade reduzida ou Insensível ao ABA	G12 (KO); G926; G1357; G1412; G1452; G1893; G2109; G2146; G2207; G2382; G2617; G2717; G2854; G2865; G2969; G2992; G3054; G3055; G3067	Modificação do desenvolvimento das sementes, maior dormência das sementes, tolerância ao frio e à desidratação
	Sensibilidade ao 1Aminociclopropano1-carboxilato (ACC) Maior sensibilidade ao ACC, o precursor imediato do etileno	G12	Regulação do estresse oxidativo e da morte celular programada, retardo do superamadurecimento do fruto
Doença	Botrytis Maior resistência ou tolerância	G1792	Maior rendimento, aparência,

229/1027

Categoria da Característica	Alteração(ões) Fenotípica(s)	Genes do fator de transcrição que têm impacto sobre as características	Utilidade
			sobrevivência, faixa extensa
	Fusarium Maior resistência ou tolerância	G1792	Maior rendimento, aparência, sobrevivência, faixa extensa
	Erysiphe Maior resistência ou tolerância	G1792	Maior rendimento, aparência, sobrevivência, faixa extensa
Regulador do crescimento	Sensibilidade alterada a açúcares Menor tolerância aos açúcares Maior tolerância aos açúcares	G155; G344; G478; G1420; G2111; G2763 G224; G905; G916; G1033; G1108; G1493; G1535; G1753; G1816; G2661; G2776; G2839; G2854; G2898	Alteração do equilíbrio de energia, da taxa fotossintética, de acúmulo de carboidrato, da produção de biomassa, das relações fonteescoadouro, da senescência; Alteração do acúmulo de compostos de armazenamento nas sementes
	Sensibilidade alterada a C/N	G153; G200; G581; G707; G916; G1013; G1150; G1274; G1483; G1535; G1816; G1988; G2239; G2604; G2830; G2913; G2981	Alteração ou controle do fracionamento do assimilado
Tempo de	Florescência	G129; G131; G135;	Tempo de geração

230/1027

Categoria Característica	da	Alteração(ões) Fenotípica(s)	Genes do fator de	Utilidade
transcrição têm impacto as caracterí	que sobre sticas
florescência		precoce	G136;	G137;	G138;	mais rápido;
			G140;	G142;	G145;	sincronia	da
			G146;	G148;	G153;	florescência;
			G155;	G172;	G200;	colheitas
			G246;	G416;	G485	adicionais	dentro
			(OE);	G549;	G600;	de uma estação de
			G627;G1011;	G1037	cultivo,
			(KO);	G1142	(KO);	encurtamento	dos
			G1538;		G1797;	programas	de
			G1798;		G1823;	cruzamento
			G1825;		G1988;
			G2071;		G2129;
			G2142;		G2184;
			G2311;		G2372;
			G2443;		G2515;
			G2628;		G2633;
			G2639;		G2650;
			G2754;		G2777;
			G2779;		G2802
			(clone		anti-
			sentido);	G2805;
			G2832;		G2967;
			G2992;		G3002;
			G3032;		G3044;
			G3060; G3086		G3061;
		Florescência	G2;	G15;	G47;	Maior rendimento ou
		tardia	G173;	G309;	G319;	biomassa,	risco
			G324;	G372;	G380;	diminuído do	escape
			G434;	G485	(KO);	de	pólen
			G571	(KO);	G581;	transgênico,
			G624;	G707;	G738;	sincronia	da
			G744;	G752;	G839;	florescência
			G852;	G905;	G1113;
			G1136;		G1142;
			G1150;		G1276;
			G1357;		G1361;
			G1446;		G1451;
			G1452;		G1468;
			G1474;		G1493;
			G1549;		G1554;
			G1863;		G1945;

231/1027

Categoria da	Alteração(ões)	Genes do fator de	Utilidade
Característica	Fenotípica(s)	transcrição	que
		têm impacto	sobre
		as características
		G1983;	G1998;
		G1999;	G2106;
		G2146;	G2207;
		G2251;	G2269;
		G2319;	G2334;
		G2432;	G2559;
		G2604;	G2694;
		G2723;	G2741;
		G2743;	G2763;
		G2771;	G2802
		(sense clone);
		G2838;	G2846;
		G2964;	G2979;
		G2993;	G2998;
		G3003; G3060; G3111	G3021;
Desenvolvimento e	Estrutura alterada
Morfologia	da flor			Modificação
				ornamental	da
				arquitetura	da
				planta, fertilidade maior ou reduzida para diminuir o
				escape de	pólen
				transgênico,	maior
				tamanho, formato,
				número	ou
				rendimento	de
				frutos
	Estame	G15; G129;	G133;
		G1420; G2694; G2768	G2455;
	Sépala	G129; G134;	G140;
		G1420; G2979; G3094	G2694;
	Pétala	G129; G133;	G134;
		G140; G2768; G3094	G1420;
	Pedicelo	G1420;	G1539;

232/1027

Categoria	da	Alteração(ões)	Genes do fator de	Utilidade
Característica		Fenotípica(s)	transcrição	que
			têm impacto	sobre
			as características
			G1591; G2979; G2983	G2839;
		Carpelo	G129; G133;	G446;
			G1539;	G1591;
			G1796;	G2455;
			G2579;	G2617;
			G2694; G2983	G2768;
		Várias alterações	G15; G550;	G651;
			G730;	G1013;
			G1100;	G1128;
			G1420;	G1549;
			G1798;	G1825;
			G1995;	G2226;
			G2457;	G2455;
			G2515;	G2575;
			G2616;	G2639;
			G2640;	G2649;
			G2694;	G2743;
			G2826;	G2838;
			G2859; G3094	G2884;
		Alterações na	G129; G133;	G134;
		identidade dos	G140
		órgãos
		Órgãos florais	G15; G2979
		maiores
		Maior número de	G2768;G2979
		órgãos nas flores
		Flores terminais	G1798; G2515
		Órgãos florais que persistem após a fertilização	G1011; G1797
		Síliquas	G15; G2579;	G2884
		Rosetas amplas, grandes	G1274
		Perda da definição	G131; G135;	G2768
		floral

233/1027

Categoria	da	Alteração(ões)		Genes do fator de	Utilidade
Característica		Fenotípica(s)		transcrição	que
				têm impacto	sobre
				as características
		Fertilidade		G15; G549;	G651;
		reduzida		G846;	G1100;
				G1798;	G2372;
				G2579;	G2616;
				G2639;	G2640;
				G2649; G2884	G2768;
	Gameta letal	G846
		Desenvolvimento		G438 (KO);	G916;	Modificação
		alterado	do	G1585;	G1957;	ornamental da
		meristema do broto	G2636;	G2650;	arquitetura da
				G2885		planta, manipulação do cresci-mento e do desenvolvimento, maiores números de folhas, modulação dos padrões de ramificação para fornecer maior rendimento ou biomassa
		Alteração	na
		arquitetura inflorescência	da			Modificação ornamental da
		Padrão alterado	de	G47; G446;	G2571;	arquitetura floral;
		ramificação	da	G2146;	G2571;	sincronia da
		inflorescência		G2694;	G2784;	florescência;
				G2859		hábito vegetal
		Inflorescências		G47; G253;	G1274; G1593;	alterado para rendimento ou
		com internodos	G1474;
		curtos/em arbustos	G1743;	G1753;	vantagem na
				G1796; G2226; G2251; G2616; G2640;	G2146; G2550; G2575; G2639; G2649;	capacidade de colheita; redução na produção de pólen de plantas modificadas
				G2958; G3021		geneticamente;
		Flores terminais		G131; G135; G145; G148;	G137;	Manipulação das características da
				G155;

234/1027

Categoria Característica	da	Alteração(ões) Fenotípica(s)	Genes do fator de	Utilidade
transcrição têm impacto as caracterí	que sobre sticas
			G549;	G1798;	estação e de hábito
			G2372; G2515		anual ou perene;
		Definição alterada	G131; G135;	G549;	Manipulação	do
		da inflorescência	G2372; G2515		crescimento
					determinado	vs.
					indeterminado
		Desenvolvimento de	G1985;	G1995;
		rosetas aéreas	G2826; G2838
		Pedicelos voltados	G2839
		para baixo
		Transformação	G129, G133,	G134;
		homeótica	G140
		Várias alterações	G446; G549;	G1798;
		na inflorescência	G2616;	G2694;
			G2784; G3059	G2839;
		Padrão alterado de	G47; G438 (KO)	Modificação
		ramificação			ornamental	da
					arquitetura	da
					planta,	maior
					resistência	ao
					confinamento
		Morfologia	G47		Modulação do	teor
		alterada do caule			de lignina;
		e da estrutura do			melhoramento	da
		tecido vascular			madeira,	da
					palatabilidade de frutos e vegetais
	Dominância apical
		Dominância apical	G47		Modificação
		reduzida			ornamental	da
					arquitetura	da
					planta;	maior
					resistência	ao
					confinamento
		Densidade alterada			Modificação
		do tricoma;			ornamental	da
		desenvolvimento ou			arquitetura	da
		estrutura			planta,	maior

235/1027

Categoria da Característica	Alteração(ões) Fenotípica(s)	Genes do fator de transcrição que têm impacto sobre as características	Utilidade
	Tricomas ectópicos Desenvolvimento alterado do tricoma Maior número ou densidade de tricomas Tricomas reduzidos ou nenhum	G370; G2826 G1539; G2983 G370; G1995; G2085; G2826; G2838 G1452; G1816; G2718	produtividade do produto vegetal (por exemplo, diterpenos, algodão), resistência a insetos e herbívoros
	Desenvolvimento radicular Menor crescimento radicular ou desenvolvimento de raízes secundárias	G651; G730; G2655; G2747; G2992; G2993	Modificação da arquitetura da raiz e da massa
	Menor ramificação radicular Maior ramificação radicular Resposta gravitrópica anormal Mais pêlos radiculares	G651; G2993 G2747; G2992 G2983 G1816; G2718; G2983	Influência na captação de água e nutrientes Maior ancoragem Manipulação do desenvolvimento da raiz Maior rendimento, tolerância ao estresse; ancoragem
	Forma alterada dos cotilédones	G916; G1420; G1893; G2432; G2636; G2859; G3059	Aplicações ornamentais
	Forma, cor, desenvolvimento de hipocotilédones	G807; G916; G1510; G1988; G2771; G2859; G2884;	Aplicações ornamentais; Resposta alterada à

236/1027

Categoria	da	Alteração(ões)	Genes do fator de	Utilidade
Característica		Fenotípica(s)	transcrição	que
			têm impacto	sobre
			as características
	alterados	G2993	luz (ver Light Response, abaixo)
		Desenvolvimento,	G961		Modificação	das
		amadurecimento e			propriedades	de
		germinação			germinação	de
		alterados			sementes e	do
					desempenho
		Crescimento lento	G652;	G1013;	Aplicações
			G1100;	G1468;	ornamentais
			G1535;	G1549;
			G1779;	G1938;
			G2765;	G2784;
			G2826;	G2834;
			G2851; G3095	G3091;
	Crescimento rápido	G807; G1476;	G2617	Aparência, biomassa, rendimento
		Diferenciação	G1539;	G1585;	Maior
		celular e	G1591;	G2885;	desenvolvimento	dos
		proliferação	G2983		carpelos ou	dos
		celular			frutos;
					Maior regeneração de brotos partindo
					de calos	na
					transformação ou em
					sistemas	de
					micropropagação
		Expansão celular	G521		Controle	do
					alongamento celular
		Alteração de fase	G370;	G1985;	Maior rendimento,
		e reversão floral	G1995;	G2826;	biomassa,
			G2838		manipulação	das
					características	da
					estação e do hábito anual ou perene,
					plasticidade	do
					desenvolvimento	em
					resposta	ao
					estresse ambiental

237/1027

Categoria da Característica	Alteração(ões) Fenotípica(s)	Genes do fator de	Utilidade
transcrição têm impacto as caracterí	que sobre sticas
	Senescência
	Senescência		G652;		G1033;	Melhoria	na
	acelerada	ou	G1128;		G1772;	resposta à	doença,
	prematura		G2467;		G2574;	amadurecimento de
			G2783; G3059;	G3111	G2907;	frutos
	Senescência		G571;	G652	(KO);
	reduzida	ou	G2536
	retardada
	Desenvolvimento		G2884
	anormal do embrião
	Embrião letal	G374			Herbicida alvo
	quando nocauteado
	Gameta letal		G846			Potencial	de
						prevenir o	escape
						de pólen GMO
	Morte celular	G12
	programada alterada
	Letalidade quando	G366;		G1384;	Herbicida	alvo;
	superexpresso		G1556;		G1832;	desgaste de	tecidos
			G1850;		G1957;	ou	órgãos
			G1990;		G2213;	específicos	tal
			G2298;		G2505;	como, estame para
			G2570;		G2587;	previnir o	escape
			G2869;	G2887		de pólen
	Necrose, Formação	G12; G1840		Resistência	a
	de lesões				doenças
	necróticas
Tamanho da planta	Maior tamanho	da	G46;	G268;	G287;	Maior rendimento,
	planta ou	da	G314;	G319;	G324;	biomassa, aparência
	biomassa		G438;	G624;	G852;
			G1113;		G1150;
			G1451;		G1468;
			G2334;		G2536;
			G2650;		G2741;

238/1027

Categoria	da	Alteração(ões)	Genes do fator de	Utilidade
Característica		Fenotípica(s)	transcrição	que
			têm impacto	sobre
			as características
		G2979
		Semente grande	G1313;	G2679;	Maior sobrevivência
			G2694; G2838		e vigor de plantas
					jovens partindo	de
					semente, rendimento
		Nanismo ou plantas	G131; G136;	G253;	Nanismo,
		mais compactas	G309; G370;	G386;	resistência	ao
			G549; G550;	G600;	confinamento,
			G651; G652;	G707;	manipulação	de
			G738; G811;	G1011;	respostas	à
			G1100;	G1247;	giberelina
			G1289;	G1340;
			G1423;	G1474;
			G1483;	G1549;
			G1554;	G1593;
			G1753;	G1772;
			G1779;	G1798;
			G1938;	G1983;
			G1993;	G2085;
			G2226;	G2227;
			G2251;	G2372;
			G2375;	G2453;
			G2456;	G2459;
			G2492;	G2515;
			G2550;	G2565;
			G2574;	G2575;
			G2579;	G2616;
			G2628;	G2640;
			G2649;	G2682;
			G2702;	G2757;
			G2783;	G2839;
			G2846;	G2847;
			G2850;	G2884;
			G2934;	G2958;
			G2979;	G2992;
			G3017; G3091; G3111	G3059;
Morfologia	da	Folhas verde	G30;	G253;	Maior
folha		escuras	G309;	G707;	fotossíntese,
			G811;	G957;	biomassa,

239/1027

Categoria Característica	da	Alteração(ões) Fenotípica(s)	Genes do fator de transcrição que têm impacto sobre as características	Utilidade
			G1100;	G1128;	aparência,
			G1327;	G1341;	rendimento;
			G1357;	G1389;	valor
			G1420;	g1423;	nutricional
			G1452;	G1482;
			G1510;	G1535;
			G1549;	G1554;
			G1593;	G1743;
			G1792;	G1796;
			G1846;	G1863;
			G1932;	G1938;
			G1983;	G2085;
			G2146;	G2207;
			G2226;	G2251;
			G2334;	G2371;
			G2372;	G2453;
			G2456;	G2457;
			G2459;	G2550;
			G2640;	G2649;
			G2661;	G2690;
			G2694;	G2771;
			G2763;	G2784;
			G2837;	G2838;
			G2846;	G2847;
			G2850;	G2851;
			G2958;	G2993;
			G3021;	G3059;
			G3091;	G3095;
			G3111
		Alteração na	G30;	G129;	Aplicações
		forma da folha	G131;	G135;	ornamentais
			G136;	G13 7;
			G140;	G148;
			G200;	G22 4;
			G2 53;	G319;
			G370;	G372;
			G43 8;	G446;
			G468;	G600;
			G646;	G651;
			G707;	G905;
			G957;	G1011;
			G1013;	G1100;

240/1027

Categoria da Característica	Alteração(ões) Fenotípica(s)	Genes do fator de transcrição que têm impacto sobre as características	Utilidade
		G1113; G1128; G1142; G1247; G1341; G1357; G1361; G1389; G1420; G1452; G1468; G1474; G1476; G1493; G1535; G1538; G1549; G1557; G1585; G1593; G1743; G1796; G1798; G1825; G1846; G1863; G1893; G1917; G1932; G1938; G1945; G1983; G1993; G2084; G2085; G2207; G2226; G2227; G2251; G2334; G2375; G2432; G2453; G2455; G2456; G2457; G2536; G2550; G2565; G2575; G2579; G2604; G2617; G2628; G2636; G2639; G2640; G2649; G2682; G2686; G2690; G2694; G2699; G2702; G2747; G2768; G2771; G2784; G2837; G2839; G2846; G2850; G2851; G2859; G2866; G2888; G2958; G2992; G3021; G3044; G3059; G3084; G3091; G3094;

241/1027

Categoria da Característica	Alteração(ões) Fenotípica(s)	Genes do fator de transcrição que têm impacto sobre as características	Utilidade
		G3095; G3111
	Maior tamanho e massa folhar	G268; G324; G438; G852; G1113; G1274; G1451; G2536; G2699; G2768; G3008	Maior rendimento, aplicações ornamentais
	Folhas verde claras ou cinzentas	G351; G600; G651; G1468; G1718; G2565; G2604; G2779; G2859; G3044; G3070	Aplicações ornamentais
	Folhas brilhosas	G30; G370 (KO); G975; G1792; G2640; G2649	Aplicações ornamentais, manipulação da composição, da quantidade ou da distribuição de ceras
	Polaridade alterada abaxial/adaxial	G730	Modificação do crescimento e da forma da planta
Morfologia da semente	Coloração alterada de sementes	G581; G961; G2085; G2371	Aparência
	Tamanho e forma da semente
	Formato alterado da semente	G652; G916; G961	Aparência
	Semente grande	G151; G581; G2085; G2585; G2933
Bioquímica da folha	Mais cera nas folhas	G975	Resistência a insetos, agentes patogênicos
	Ácidos graxos da folha

242/1027

Categoria Característica	da	Alteração(ões) Fenotípica(s)	Genes do fator de transcrição que têm impacto sobre as características	Utilidade
		Aumento do teor	de	G975
		ácidos graxos	da
		folha
Bioquímica	da	Teor de óleos	da
semente		semente
		Maior teor	de	G961	(KO); G1451	Maior rendimento de
		óleos		(KO);	G2830 (KO)	óleos, maior teor
						calórico de
						alimentos e de
						produtos
						alimentícios para
						animais
		Prenil lipídeos	da	G652 (KO)	Aumento no alfa-
		semente				tocoferol (vitamin
						E)
Resposta	à	Cotilédones		G30; G2754; G2859	Maiores densidades
luz/Impedimento	à	alterados				de plantio e melhor
sombra						rendimento
		Hipocotilédones		G30;	G807; G916;
		alterados		G1082;	G1510;
				G1988;	G2650;
				G2754;	G2771;
				G2859;	G2884;
				G2993
		Orientação		G351;	G1013;
		alterada das	G2650;	G2694;
		folhas		G2993;	G3032
		Pecíolo alterado		G478;	G807; G1988;
				G2650;	G2694;
				G2754
		Impedimento	à	G30;	G246; G353;
		sombra		G354;	G2432;
				G2650;	G2754
Pigmento		Maiores níveis	de	G253;	G386; G707;	Maiores benefícios
		antocianina		G1482;	G2453;	na saúde, aparência

243/1027

Categoria da Característica	Alteração(ões) Fenotípica(s)	Genes do fator de transcrição que têm impacto sobre as características	Utilidade
	Menores níveis de antocianina	G2456; G2459 G581; G2604; G2718	ornamental melhorada, maior resistência aos estresses, atração de animais polinizadores e que dispersam sementes

Abreviações: N = nitrogênio P = fosfato ABA = ácido abscísico C/N = equilíbrio de carbono/nitrogênio

Descrição detalhada dos genes, dos traços e das utilidades que afetam as características das plantas [0295] As descrições a seguir dos traços e das utilidades associadas com os presentes fatores de transcrição oferecem uma descrição mais compreensiva do que é fonecido na Tabela 6.

Estresse abiótico, considerações gerais [0296] Os fatores de transcrição de plantas podem modular a expressão gênica e, por sua vez, ser modulados através da experiência ambiental de uma planta. Alterações significativas no ambiente de uma planta resulta invariavelmente em uma modificação no padrão de expressão gênica dos fatores de transcrição da planta. Os padrões alterados de expressão gênica de fatores de transcrição geralmente resultam em modificações fenotípicas na planta. O(s) produto(s) gênico(s) dos fatores de transcrição nas plantas transgênicas difere(m) então em quantidades ou proporções daquele(s) encontrado(s) nas plantas do tipo selvagem ou não-transformadas e estes fatores de

244/1027 transcrição provavelmente representam polipeptídeos que são utilizados para alterar a resposta à modificação ambiental.

Com a finalidade de exemplo, é bem aceito na técnica que métodos analíticos baseados nos padrões alterados de expressão possam ser utilizados para selecionar modificações fenotípicas em uma planta de forma muito mais eficiente do que pode ser conseguido utilizando métodos tradicionais.

[0297] Estresse abiótico: congelamento do estágio adulto. A maior tolerância ao congelamento produzida através da modificação dos níveis de expressão de fatores de transcrição tal como, G1274, G1357, G1779, G1928, G2063,

G2567, G2579, G2650, G2771, G2930 ou G2933, por exemplo, em plantas pode estender a faixa de crescimento eficiente de espécies de cultivo sensíveis ao congelamento permitindo um plantio mais cedo e uma colheita tardia. A maior tolerância ao congelamento pode ser conferida através da maior expressão da glicerol-3-fosfato acetiltransferase nos cloroplastos (ver, por exemplo, Wolter e outros (1992) EMBO J. 4685-4692 e Murata e outros (1992) Nature 356: 710-713).

[0298] A tolerância ao congelamento também poderia servir como um modelo para entender como as plantas se adaptam ao déficit hídrico. Os estresses tanto ao congelamento quanto hídrico compartilham vias de transdução de sinais e mecanismos de tolerância/adaptação similares. Por exemplo, a aclimatação às temperaturas de congelamento pode ser induzida através do estresse hídrico ou do tratamento com o ácido abscísico. Os genes induzidos pela temperatura baixa incluem as dehidrinas (ou proteínas LEA). As dehidrinas também são induzidas pela salinidade, pelo

245/1027 ácido abscísico, pelo estresse hídrico e durante os estágios tardios da embriogênese.

[0299] Um outro impacto grande do congelamento ocorre durante o armazenamento pós-colheita. Por exemplo, alguns frutos e vegetais não ficam bem armazenados a baixas temperaturas (por exemplo, bananas, abacates, melões e tomates). O processo de amadurecimento normal do tomate é prejudicado se for exposto a temperaturas baixas. Os genes que conferem resistência às temperaturas de congelamento podem aumentar a tolerância durante o armazenamento póscolheita.

[0300] Estresse abiótico: germinação no frio. A utilidade potencial dos genes de fatores de transcrição divulgados aqui que aumentam a tolerância ao frio é conferir melhor germinação e crescimento em condições de frio. As plantas com níveis de expressão modificados de G224, G728, G807, G1274, G1837, G2051, G2317, G2603 ou G2784 exibem menor sensibilidade à germinação em condições frias, indicando uma função na regulação de respostas ao frio. Estas plantas poderiam ser engenheiradas para manipular a resposta ao estresse a baixas temperaturas. Os genes que permitissem a germinação e o vigor das plantas jovens partindo de semente no frio teriam utilidade altamente significativa em permitir que as sementes sejam plantadas mais cedo na estação com uma alta taxa de sobrevivência. Os genes dos fatores de transcrição que conferem melhor sobrevivência em climas frios permitem que um agricultor altere o tempo do plantio na primavera e estenda a estação de cultivo adicionalmente no outono para rendimentos maiores do plantio. A germinação de sementes e

246/1027 a sobrevivência a temperaturas significativamente abaixo daquelas da temperatura média necessária para a germinação das sementes e para a sobrevivência de plantas nãotransformadas aumentaria a faixa potencial de uma planta de cultivo em regiões que de outra maneira seu desenvolvimento falharia.

Estresse abiótico: tolerância a sais e à seca [0301]

As plantas estão sujeitas a uma faixa de desafios ambientais. Vários destes, incluindo estresse salino, o estresse osmótico geral, o estresse seca e o estresse ao congelamento, têm capacidade de ter um impacto sobre a disponibilidade de água para uma planta inteira e para as células. De forma não surpreendente, então, as respostas das plantas a este conjunto de estresses estão relacionadas. Em uma revisão recente, Zhu observa que (Zhu (2002) Ann. Rev.

Plant Biol.

53: 247-273) a maior parte dos estudos sobre a sinalização do estresse hídrico se concentrou primariamente no estresse salino porque as respostas da planta ao sal e à seca estão intimamente relacionadas e os mecanismos se sobrepõem.

Muitos exemplos de respostas similares é, as vias genéticas para este conjunto de estresses foram documentadas) . Por exemplo, foi mostrado que os fatores de transcrição

CBF condicionam a resistência ao sal, ao congelamento e à seca (Kasuga e outros (1999) Nature

Biotech. 17:

O gene rd29B de Arabidopsis é induzido em uma resposta tanto ao estresse salino quanto ao de desidratação, um processo que é mediado em grande parte através de um processo de transdução de sinal do ABA (Uno e outros (2000) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 97: 11632-11637),

247/1027 resultando na atividade alterada dos fatores de transcrição que se ligam a um elemento a montante dentro do promotor rd29B. Na Mesembryanthemum crystallinum (planta do gelo), Patharker e Cushman mostraram que uma proteína quinase dependente de cálcio (McCDPK1) é induzida através da exposição aos estresses tanto hídrico quanto salino (Patharker e Cushman (2000) Plant J. 24: 679-691). Foi também mostrado que a quinase induzida pelo estresse fosforila um fator de transcrição, presumidamente alterando a sua atividade, embora os níveis do produto da transcrição do fator de transcrição alvo não sejam alterados em resposta ao estresse salino ou hídrico. Similarmente, Saijo e outros demonstraram que uma proteína quinase dependente da calmodulina induzida pelo sal/seca no arroz (OsCDPK7) conferia maior tolerância aos sais e à seca ao arroz quando superexpressa (Saijo e outros (2000) Plant J. 23: 319-327).

[0302] A exposição à desidratação ativa estratégias de sobrevivência similares nas plantas como faz o estresse ao congelamento (ver, por exemplo, Yelenosky (1989) Plant Physiol 89: 444-451) e o estresse à seca induz tolerância ao estresse ao congelamento (ver, por exemplo, Siminovitch e outros (1982) Plant Physiol 69: 250-255; e Guy e outros (1992) Planta 188: 265-270). Em adição à indução das proteínas de aclimatação ao frio, estratégias que permitem que a planta sobreviva em condições de baixo teor de água podem incluir, por exemplo, menor área de superfície ou superfície de óleo ou produção de cera.

[0303] Consequentemente, um versado na técnica esperaria que algumas vias envolvidas na resistência a um destes estresses e assim reguladas por um fator de

248/1027 transcrição individual, também estivessem envolvidas na resistência a um outro destes estresses, reguladas pelos mesmos ou por fatores de transcrição homólogos.

Evidentemente, as vias gerais de resistência estão relacionadas, não idênticas e, portanto, nem todos os fatores de transcrição que controlam a resistência a um estresse controlarão a resistência a outros estresses. Contudo, se um fator de transcrição condiciona a resistência a um destes estresses, seria evidente para os versados na técnica testar a resistência destes estresses relacionados. A modificação da expressão de um número de genes de fatores de transcrição divulgados aqui que mostraram conferir maior tolerância à seca, por exemplo,

G46, G47,

G926, G975, G1206, G1274,

G1357,

G1452,

G1792,

G2133, G2505,

G2717, G2982, G2999, G3076 e

G3086 e maior tolerância ao sal, por exemplo, G355, G624,

G1017,

G1037,

G1538,

G1557,

G1660,

G1837, G2035, G2041,

G2060,

G2207,

G2317,

G2319,

G2404,

G2453, G2457, G2691,

G2717,

G2992,

G2998,

G2999,

G3083

G3086, durante a germinação, o estágio de plantas jovens partindo de semente e ao longo de todo ciclo de vida da planta, pode ser assim utilizado para aumentar a tolerância de uma planta a condições de baixo teor de água e fornecer os benefícios da maior sobrevivência, maior rendimento e uma faixa maior de plantação geográfica e temporal.

[0304]

Estresse abiótico:

tolerância ao congelamento e estresse osmótico. A modificação da expressão de um número de genes de fatores e transcrição divulgados aqui, G47, G353, G916, G926, G1033, G1206,

G1412, G1452, G1730, G1753, G1816, G2207, G2661, G2717,

249/1027

G2776, G2839, G2854, G2969 ou G2982, por exemplo, pode ser utilizada para aumentar a taxa de germinação ou o crescimento sob condições osmóticas adversas, que teriam impacto sobre a sobrevivência e o rendimento de sementes e plantas. Os estresses osmóticos podem ser regulados através de mecanismos de controle molecular que incluem genes que controlam o movimento da água e de íons, proteínas funcionais e estruturais induzidas pelo estresse, percepção e transdução de sinais e eliminação de radicais livres e muitos outros (Wang e outros (2001) Acta Hort. (ISHS) 560: 285-292). Os instigadores do estresse osmótico incluem alto teor de congelamento, seca e salinidade, dos quais cada um é discutido em maiores detalhes abaixo.

[0305] De muitas maneiras, o congelamento, o alto teor de sal e a seca possuem efeitos similares sobre as plantas, nem um pouco é a indução de polipeptídeos comuns que respondem a estes estresses diferentes. Por exemplo, o congelamento é similar ao déficit hídrico pelo fato de que o congelamento reduz a quantidade de água disponível para uma planta. A exposição a temperaturas de congelamento pode levar à desidratação celular como células folhares de água e formar cristais de gelo nos espaços intracelulares (Buchanan, supra) . Como com a alta concentração de sais e o congelamento, os problemas para as plantas causados pela baixa disponibilidade de água incluem estresses mecânicos causados pela eliminação da água celular. Assim, a incorporação de fatores de transcrição que modificam a resposta de uma planta ao estresse osmótico, por exemplo, em uma planta de cultivo ou ornamental, pode ser útil na redução de danos ou perdas. Os efeitos específicos causados

250/1027 pelo congelamento, pelo alto teor de sais e pela seca sao referidos abaixo.

[0306] Estresse abiótico: tolerância ao estresse ao calor. A germinação de muitas plantas de cultivo é também sensível a altas temperaturas. Os genes de fatores de transcrição divulgados aqui, incluindo, por exemplo, G3086, que fornece maior tolerância ao calor, são geralmente úteis na produção de plantas que germinam e crescem em condições quentes, podem encontrar uso particular para as plantas de cultivo que são plantadas tardiamente na estação ou estender a faixa de uma planta permitindo o crescimento em climas relativamente quentes.

[0307]

Captação e utilização de nutrientes:

nitrogênio e fósforo.

Os genes de fatores de transcrição divulgados atualmente introduzidos nas plantas fornecem um meio de melhorar a captação de nutrientes essenciais, incluindo compostos de nitrogênio, fosfatos, potássio e traços minerais. O maior desempenho, por exemplo, de G153,

G200, G581, G839, G916, G1013, G1150, G1274, G1792, G1816,

G1988, G2239, G2604, G2718, G2830, G2913 e G2981 e outras linhagens de superexpressão sob baixas condições de nitrogênio ou G355, G624, G1988, G2142 e G2972 sob baixas condições de fósforo indicam que estes genes e seus homólogos poderiam ser utilizados para engenheirar plantas de cultivo que pudessem se desenvolver sob condições de disponibilidade reduzida de nutrientes. O fósforo, em particular, tende a ser um nutriente limitante nos solos e é geralmente adicionado como um componente nos fertilizantes. Plantas jovens possuem uma captação rápida de fosfato e fosfato suficiente é importante para o

251/1027 rendimento de plantas de cultivo radiculares tais como a cenoura, a batata e a pastinaga.

[0308] O efeito destas modificações é aumentar a germinação das plantas jovens partindo de semente e a faixa de plantas ornamentais e de cultivo. As utilidades dos genes de fatores de transcrição divulgados aqui que conferem tolerância a condições de baixos teores de nutrientes também incluem reduções nos gastos para o agricultor através da redução das quantidades de fertilizante necessárias, benefícios ambientais de menor escoamento de fertilizantes nas bacias hidrográficas; e maior rendimento e tolerância aos estresses.

Em adição, através do fornecimento de maior capacidade de captar nitrogênio, estes genes podem ser utilizados para alterar as quantidades e/ou a composição de proteínas na semente de forma que poderia ter impacto sobre o rendimento assim como o valor nutricional e a produção de vários produtos alimentícios.

[0309] Menor sensibilidade aos herbicidas. Os genes de fatores de transcrição divulgados aqui, incluindo G2133 e seus equivalentes que conferem resistência ou tolerância a herbicidas (por exemplo, o glifosato) encontrarão uso no fornecimento de meios para aumentar as aplicações de herbicidas sem prejudicar as plantas desejáveis. Isto permitiria o maior uso de um herbicida particular em um ambiente local, com o efeito de maiores danos às espécies indesejáveis e menos malefícios a cultivares desejáveis transgênicos.

[0310] Foi mostrado que os nocautes de um número de genes de fatores de transcrição divulgados aqui eram letais

252/1027 para os embriões em desenvolvimento. Assim, estes genes são potencialmente úteis como alvos para herbicidas.

[0311] Expressão e sensibilidade a hormônios alteradas: ácido abscísico e auxina. A alteração dos níveis de expressão de um número dos fatores de transcrição divulgados aqui, incluindo G12, G224, G244, G355, G571, G926, G1037, G1357, G1412, G1452, G1482, G1507, G1893, G2070, G2085, G2109, G2146, G2207, G2382, G2617, G2717, G2854, G2865, G2969, G2992, G3054, G3055 ou G3067, pode ser utilizada para reduzir a sensibilidade de uma planta ao ABA ou tornar uma planta insensível à exposição ao ABA. O ABA desempenha funções reguladoras em um hospedeiro de processos fisiológicos em todas as plantas superiores assim como nas inferiores (Davies e outros (1991) Abscisic Acid: Physiology and Biochemistry. Bios Scientific Publishers, Oxford, Reino Unido; Zeevaart e outros (1988) Ann. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 49: 439-473; Shimizu-Sato e outros (2001) Plant Physiol 127: 1405-1413). O ABA medeia as respostas de tolerância aos estresses nas plantas superiores, é um composto sinal importante que regula a abertura dos estômatos e, junto com outros compostos de sinalização vegetal, é implicado na mediação de respostas a agentes patogênicos e feridas ou danos oxidativos (por exemplo, ver Larkindale e outros (2002) Plant Physiol. 128: 682-695). Nas sementes, o ABA promove o desenvolvimento das sementes, a maturação do embrião, a síntese de produtos de armazenamento (proteínas e lipídeos), a tolerância à dessecação e está envolvido na manutenção da dormência (inibição da germinação) e na apoptose (Zeevaart e outros (1988) Ann. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 49: 439

253/1027

473; Davies (1991), supra; Thomas (1993) Plant Cell 5: 1401-1410; and Bethke e outros (1999) Plant Cell 11: 10331046). O ABA tabém afeta a arquitetura da planta, incluindo o crescimento e a morfologia das raízes e as proporções raiz-para-broto. A ação e o metabolismo do ABA é modulado não somente por sinais ambientais, mas também por sinais endógenos gerados através de um retorno metabólico, transporte, interação hormonal e estágio do desenvolvimento. A manipulação dos níveis do ABA e consequentemente através da extensão da sensibilidade ao ABA, foi descrito como um meio muito promissor para melhorar a produtividade, o desempenho e a arquitetura nas plantas Zeevaart (1999) em: Biochemistry and Molecular Biology of Plant Hormones, Hooykaas e outros eds, Elsevier Science pp 189-207; e Cutler e outros (1999) Trends Plant Sci. 4: 472-478) .

[0312] Foi mostrado que um número de genes era induzido pela aclimatação ao frio em plantas superiores, incluindo, por exemplo, G171, G224, G1274, G1730, G2085 e

G2597 e acredita-se que as proteínas codificadas por estes genes desempenham uma função na proteção das células vegetais de danos, incluindo o congelamento (Nagao e outros (2002) Plant Cell Physiol. 43: S168-S168) . Uma vez que o

ABA medeia a conversão dos meristemas apicais em brotos dormentes, a expressão alterada do ABA pode aumentar a proteção dos brotos de danos mecânicos durante o inverno. A resposta de uma planta ao ABA também afeta a inibição da germinação durante turnos quentes prematuros. O ABA é também importante na proteção de plantas da tolerância à seca. Assim, afetando a sensibilidade ao ABA, os genes

254/1027 introduzidos de fatores de transcrição podem afetar a sensibilidade ao frio, o rendimento e a sobrevivência e as plantas com o G12 nocauteado ou plantas que superexpressam G926, G1357, G1412, G1452, G1893, G2109, G2146, G2207, G2382, G2617, G2717, G2854, G2865, G2969, G2992, G3054, G3055 e G3067, podem ter respostas modificadas ao ABA que influenciam no desenvolvimento e na dormência das sementes, assim como na tolerância ao frio e à desidratação e a sobrevivência.

[0313] Auxina se refere a uma classe de hormônios vegetais, incluindo o ácido indolacético (IAA), que possui uma variedade de efeitos, tais como a resposta fototrópica através do estímulo do alongamento das células, o estímulo do crescimento secudário e o desenvolvimento de traços folhares e de fruto. Especificamente, a auxina está envolvida na regulação da divisão celular, particularmente nas extremidades dos brotos. Os genes de fatores de transcrição que regulam a resposta de uma planta à auxina fornecem assim um meio para controlar o desenvolvimento de extremidades de brotos e o crescimento secundário, que por sua vez pode ser utilizado para manipular o crescimento e o desenvolvimento da planta.

[0314] Resistência ou tolerância a doenças: Erysiphe, Fusarium, Botrytis e outros agentes patogênicos. Um número dos genes de fatores de transcrição divulgados aqui foi induzido para ser expresso (por exemplo, G140, G171, G224, G434, G571, G1100, G1274, G1384, G1507, G1538, G1923 e G2085) ou mostrou fornecer resistência ou tolerância (por exemplo, G1792) após um desafio com mais de um agente patogênico, incluindo os agentes patogênicos

255/1027 fúngicos Fusarium oxysporum, Botrytis cinerea e Erysiphe orontii. A modificação dos níveis de expressão de um ou mais genes de fatores de transcrição pode fornecer algum benefício à planta para auxiliar a prevenir ou superar a infestação. Os mecanismos através dos quais os fatores de transcrição atuam poderiam incluir a alteração das características de superfície tais como a composição e a espessura das ceras, dos óleos ou da parede celular ou através da ativação de vias de transdução de sinal que regulam defesas das plantas em resposta a ataques por agentes patogênicos (incluindo, por exemplo, espécies reativas do oxigênio, proteínas antifúngicas, defensinas, tioninas, glucanases e quitinases). Um outro meio de combater os fungos e outros agentes patogênicos é através da aceleração da morte celular ou da senescência local, mecanismos utilizados para prevenir o espalhamento de microorganismos patogênicos ao longo de uma planta. Por exemplo, o melhor exemplo conhecido de morte celular acelerada é a resposta hipersensível mediada pelo gene, que causa morte celular localizada em um sítio de infecção e inicia uma resposta de defesa sistêmica. Devido ao fato de que muitas defesas, moléculas de sinalização e vias de transdução de sinal são comuns para a defesa contra agentes patogênicos e pragas diferentes, tais como fungos, bactérias, oomicetos, nematódeos e insetos, os fatores de transcrição que estão implicados nas respostas de defesa contra os agentes patogênicos fúngicos testados podem também funcionar na defesa contra outros agentes patogênicos e pragas.

Regulador de crescimento: sensibilidade aos açúcares.

256/1027 [0315] Em adição a sua função importante como uma fonte de energia e componente estrutural da célula vegetal, os açúcares são moléculas reguladoras centrais que controlam vários aspectos da fisiologia, do metabolismo e do desenvolvimento das plantas (Hsieh e outros (1998) Proc. Natl. Acad. Sci. 95: 13965-13970). Acredita-se que este controle seja conseguido através da regulação da expressão gênica e, em plantas superiores, foi mostrado que os açúcares reprimem ou ativam genes vegetais envolvidos em muitos processos essenciais tais como a fotossíntes, o metabolismo do glioxilato, a respiração, a síntese e a degradação do amido e da sacarose, a resposta a agentes patogênicos, a resposta a feridas, a regulação do ciclo celular, a pigmentação, a florescência e a senescência. Os mecanismos através dos quais os açúcares controlam a expressão gênica não são entendidos.

[0316] Vários mutantes sensíveis aos açúcares resultaram como sendo alélicos aos mutantes para o ácido abscísico (ABA) e para o etileno. O ABA é encontrado em todos os organismos fotossintéticos e atua como um regulador importante da transpiração, de respostas a estresses, da embriogênese e da germinação de sementes. A maioria dos efeitos do ABA está relacionado ao composto que atua como um sinal de menor disponibilidade de água, através do qual ativa uma redução na perda de água, retarda o crescimento e medeia respostas adaptativas. Entretanto, o ABA também influencia no crescimento e no desenvolvimento da planta através de interações com outros fitohormônios. Estudos fisiológicos e moleculares indicam que o milho e a Arabidopsis possuem vias quase idênticas em relação à

257/1027 biossíntese do ABA e à transdução de sinais. Para uma revisão adicional, ver Finkelstein e Rock ((2002) Abscisic acid biosynthesis and response (Em The Arabidopsis Book, Editors: Somerville and Meyerowitz (American Society of Plant Biologists, Rockville, MD).

[0317] Isto implica potencialmente G155, G224,

G344, G478, G905, G916, G1033, G1108, G1420, G1493, G1535,

G1753, G1816, G2111, G2661, G2763, G2776, G2839, G2854,

G2898 e fatores de transcrição relacionados na sinalização de hormônios com base no fenótipo de sensibilização do açúcar sacarose de linhagens transgênicas que superexpressam estes polipeptídeos.

Por outro lado, o tratamento com a sacarose utilizado nestes experimentos (9,5% em p/v) poderia ser também um estresse osmótico.

Portanto, estes dados poderiam ser interpretados como uma indicação de que estas linhagens transgênicas de superexpressão são mais tolerantes ao estresse osmótico.

Entretanto, é bem sabido que as respostas da planta ao ABA, ao estresse osmótico e a outros podem estar ligadas e estes tratamentos diferentes podem ainda atuar de forma sinérgica para aumentar o grau de uma resposta. Por exemplo, Xiong,

Ishitani e Zhu ((1999) Plant Physiol.

119:

205-212) mostraram que estudos genéticos e moleculares podem ser utilizados para mostrar a interação extensa entre o estresse osmótico, o estresse à temperatura e as respostas ao ABA nas plantas. Estes investigadores analisaram a expressão de RD29A-LUC em resposta a vários regimes de tratamento em Arabidopsis. O promotor RD29A contém tanto o elemento de resposta ao ABA quanto o de resposta à desidratação - também denominado de repetição C - e pode

258/1027 ser ativado através do estresse osmótico, do tratamento a baixas temperaturas com o ABA; a transcrição do gene RD29A em resposta aos estresses osmótico e frio é mediada por vias tanto dependentes do ABA quanto independentes do ABA (Xiong, Ishitani e Zhu (1999) supra). LUC se refere à sequência codificadora da luciferase do vagalume, que, neste caso, foi controlada pelo promotor RD29A de resposta ao estresse. Os resultados revelaram tanto interações positivas quanto negativas, dependendo da natureza e da duração dos tratamentos. Foi descoberto que o estresse a baixas temperaturas prejudica a sinalização osmótica, mas o estresse moderado ao calor aumenta enormemente a indução ao estresse osmótico, atuando assim de forma sinérgica com as vias de sinalização osmótica. Neste estudo, os autores relataram que o estresse osmótico e o ABA poderiam atuar de forma sinérgica mostrando que os tratamentos induzem simultaneamente a expressão do transgene e do gene endógeno. Resultados similares foram relatados por Bostock e Quatrano ((1992) Plant Physiol. 98: 1356-1363), que descobriram que o estresse osmótico e o ABA atuam de forma sinérgica e induzem a expressão do gene Em do milho. Ishitani e outros (1997) Plant Cell 9: 1935-1949) isolaram um grupo de mutações em genes isolados de Arabidopsis que conferem maiores respostas tanto ao estresse osmótico quanto ao ABA. A natureza da recuperação destes mutantes do tratamento com estresse osmótico e com o ABA indicou que, embora haja vias de sinalização separadas para o estresse osmótico e para o ABA, as vias compartilham um número de componentes; estes componentes comuns podem mediar interações sinérgicas entre o estresse osmótico e o ABA.

259/1027

Assim, ao contrário da crença mantida anteriormente de que as vias de sinalização de estresse dependentes do ABA e independentes do ABA atuam de uma maneira paralela, os presentes dados revelam que estas vias interagem e convergem para ativar a expressão gênica ao estresse.

[0318] Devido ao fato de que os açúcares são moléculas sinalizadoras importantes, a capacidade de controlar a concentração de um açúcar sinalizador ou de como a planta percebe e responde a um açúcar poderia ser utilizada para controlar o desenvolvimento, a fisiologia ou o metabolismo da planta. Por exemplo, foi mostrado que o fluxo de sacarose (um açúcar dissacarídeo utilizado para o transporte sistêmico de carbono e para a energia na maior parte das plantas) afeta a expressão gênica e altera o acúmulo de compostos de armazenamento nas sementes. A manipulação da via de sinalização da sacarose nas sementes pode, portanto, fazer com que as sementes tenham mais proteína, óleo ou carboidrato, dependendo do tipo de manipulação. Similarmente, nos tubérculos, a sacarose é convertida em amido que é utilizado como um armazenamento de energia. Acredita-se que as vias de sinalização de açúcares podem determinar parcialmente os níveis de amido sintetizado nos tubérculos. A manipulação da sinalização de açúcares nos tubérculos poderia levar a tubérculos com maior conteúdo de amido.

[0319] Assim, os genes de fatores de transcrição divulgados aqui que manipulam a via de transdução de sinal dos açúcares pode levar à expressão gênica alterada para produzir plantas com características desejáveis. Em particular, a manipulação das vias de transdução dos

260/1027 açúcares poderia ser utilizada para alterar as relações fonte-escoadouro nas sementes, nos tubérculos e outros órgãos de armazenamento levando a um aumento no rendimento.

[0320] Regulador do crescimento: equilíbrio de carbono e de nitrogênio. Um número de linhagens que superexpressam os fatores de transcrição, incluindo G153, G200, G581, G707, G916, G1013, G1150, G1274, G1483, G1535,

G1816, G1988, G2239, G2604, G2830, G2913 e G2981, pode ser utilizado para produzir plantas com sensibilidade alterada ao C/N. Estas plantas podem ser utilizadas, por exemplo, para produzir menos antocianina em altos níveis de sacarose mais glutamina, indicando que estes genes podem ser utilizados para modificar a condição de carbono e de nitrogênio e consequentemente assimilar a divisão de compartimentos (assimilar com divisão de compartimentos se refere à maneira em que um elemento essencial, tal como, o nitrogênio é distribuído entre conjuntos diferentes dentro de uma planta, geralmente em uma forma reduzida, com a finalidade de transportar para vários tecidos).

[0321] Tempo de florescência: florescência precoce e tardia. Os genes de fatores de transcrição divulgados aqui que aceleram a florescência, que incluem G129, G131,

G135, G136, G137, G138, G140,

G155, G172, G200, G246, G416,

G1037,	G1142,	G1538,	G1797,
G2071,	G2129,	G2142,	G2184,
G2628,	G2633,	G2639,	G2650,
G2805,	G2832,	G2967,	G2992,
G3061	e G3086,	poderiam ter

G142,	G145, G146,	G148,	G153,
G485,	G549, G600,	G627,	G1011,
G1798	, G1823,	G1	825,	G1988,
G2311	, G2372,	G2	443,	G2515,
G2754	, G2777,	G2	779,	G2802,
G3002	, G3032,	G3	044,	G3060,

aplicações valiosas em tais programas, uma vez que permitem tempos de geração muito

261/1027 mais rápidos. Em um número de espécies, por exemplo, brócolis, couve-flor, em que as partes reprodutivas das plantas constituem a planta de cultivo e os tecidos vegetativos sao descartados, seria vantajoso acelerar o tempo até a florescência. A aceleração da florescência poderia encurtar os programas de plantas de cultivo e de cruzamentos arbóreos. Adicionalmente, em alguns casos, um tempo de geraçao mais rápido permitiria que colheitas adicionais de uma planta de cultivo fossem feitas dentro de uma certa estaçao de cultivo. Já foi mostrado que um número de genes de Arabidopsis acelera a florescência quando constitutivamente expressos. Estes incluem LEAFY,

APETALA1 e CONSTANS (Mandel e outros (1995) Nature

377:

522-524;

Weigel e Nilsson (1995) Nature 377: 495-500;

Simon e outros [0322]

Através da regulaçao da expressao da florescência potencial utilizando promotores que podem ser induzidos, a florescência poderia ser ativada através da aplicaçao de um indutor químico.

Isto permitiria que florescência fosse sincronizada ao longo de uma planta de cultivo e facilitaria uma colheita mais eficiente. Tais sistemas que podem ser induzidos poderiam também ser utilizados para ajustar a florescência de variedades de plantas de cultivo em latitudes diferentes. No momento, espécies tais como a soja e o algodao estao disponíveis como uma série de grupos de maturidade que sao adequados para latitudes diferentes com base em seu tempo de florescência (que é controlado pelo período de tempo do dia). Um sistema em que a florescência poderia ser controlada quimicamente permitiria que um único grupo de

262/1027 maturidade de rendimento do norte fosse cultivado em qualquer latitude. Nas regiões do sul, tais plantas poderiam ser cultivadas durante períodos mais longos antes que a florescência fosse induzida, aumentando assim os rendimentos. Nas áreas mais ao norte, a indução poderia ser utilizada para garantir que a planta de cultivo floresceria antes dos primeiros congelamentos do inverno.

[0323] Em um número considerável de espécies, por exemplo, plantas de cultivo radiculares, em que as partes vegetativas das plantas constituem a planta de cultivo e os tecidos reprodutivos são descartados, é vantajoso identificar e incorporar genes de fatores de transcrição que retardam ou previnem a florescência com a finalidade de prevenir que os recursos sejam desviados para o desenvolvimento reprodutivo. Por exemplo, foi mostrado que G2, G15, G47, G173, G309, G319, G324, G372, G380, G434,

G485, G905,	G571, G581, G624, G707,	G738, G1150,	G744, G752, G839,	G852, G1361,
G1113,	G1136,	G1142,	G1276,	G1357,
G1446,	G1451,	G1452,	G1468,	G1474,	G1493,	G1549,	G1554,
G1863,	G1945,	G1983,	G1998,	G1999,	G2106,	G2146,	G2207,
G2251,	G2269,	G2319,	G2334,	G2432,	G2559,	G2604,	G2694,
G2723,	G2741,	G2743,	G2763,	G2771,	G2802,	G2838,	G2846,
G2964,	G2979,	G2993,	G2998,	G3003,	G3021,	G3060 e	G3111

retardam o tempo de florescência nas plantas. A extensão do desenvolvimento vegetativo com os genes de fatores de transcrição divulgados aqui poderia assim causar grandes aumentos nos rendimentos. A prevenção da florescência pode auxiliar a maximizar os rendimentos vegetativos e prevenir o escape de pólen de organismos modificados geneticamente (GMO).

263/1027 [0324] Os fatores de transcrição divulgados aqui que estendem o tempo de florescência possuem utilidade na engenharia de plantas com flores que duram mais para a indústria da horticultura e para estender o tempo em que a planta fica fértil.

Estrutura floral e inflorescência alteradas: rosetas aéreas, arquitetura, ramificação, internodos curtos, flores terminais e alteração de fase.

[	0325]	Os fatores	de transcrição	transgênicos
divulgados aqui, tais	como	G15, G129, G131	, G133,	G134,
G135,	G140,	G446, G549, G550, G651	, G730,	G846,	G1011,
G1013,	G1100,	G1128,	G1274,	G1420,	G1539,	G1549,	G1591,
G1796,	G1797,	G1798,	G1825,	G1995,	G2226,	G2372,	G2455,
G2457,	G2515,	G2575,	G2579,	G2616,	G2617,	G2639,	G2640,
G2649,	G2694,	G2743,	G2768,	G2826,	G2838,	G2839,	G2859,
G2884,	G2979,	G2983 e	G3094	foram	utilizados para	criar

plantas com flores maiores ou arranjos de flores que são distintos dos cultivares do tipo selvagem ou nãotransformados. Isto provavelmente teria o maior valor para a indústria da horticultura ornamental, em que flores maiores ou configurações florais interessantes são geralmente preferidas e comandam os preços mais altos.

[0326] A estrutura floral pode ter efeitos vantajosos ou deletérios sobre a fertilidade e poderia ser utilizada, por exemplo, para diminuir a fertilidade através da ausência, da redução ou da seleção de componentes reprodutivos. Na verdade, foi mostrado que as plantas que superexpressam um número considerável dos genes de fatores de transcrição divulgados aqui, incluindo G15, G549, G651, G846, G1100, G1798, G2372, G2579, G2616, G2639, G2640,

264/1027

G2649, G2768 e G2884, possuem uma fertilidade reduzida comparada com a das plantas de controle. Estas poderiam ser características desejáveis, uma vez que a baixa fertilidade poderia ser explorada para prevenir ou minimizar o escape do pólen de organismos geneticamente modificados (GMOs) para o ambiente.

[0327] As alterações na arquitetura dos brotos observadas nas linhagens em que a expressão de G47, G446, G2571, G2146, G2571, G2694, G2784 ou G2859, por exemplo, foi modificada indica que estes genes podem ser utilizados para manipular os padrões de ramificação da inflorescência. Isto poderia influenciar o rendimento e oferecer o potencial para técnicas de colheita mais eficientes. Por exemplo, uma mutação de autopoda do tomate resulta em um padrão de crescimento determinado e facilita a colheita mecânica (Pnueli e outros (2001) Plant Cell 13(12): 2687702).

[0328] Embora a fertilidade de plantas que superexpressam algumas das linhagens em que os níveis de expressão dos presentes fatores de transcrição (por exemplo, G2579) eram muito fracos, as síliquas destas plantas pareciam crescer muito mais extensamente em muitos exemplos, indicação de que estes genes pode ser produtores de efeitos partenocárpicos (desenvolvimento do fruto na ausência de um conjunto de sementes) e podem ter utilidade na produção de frutos sem sementes.

[0329] Uma aplicação interessante para a manipulação da estrutura floral, por exemplo, através de fatores de transcrição introduzidos poderia ser na maior produção de flores ou partes florais comestíveis, incluindo

265/1027 o açafrão, que é derivado dos estigmas Crocus sativus.

[0330] Um número dos fatores de transcrição divulgados aqui pode afetar a sincronia de alterações de fases nas plantas (por exemplo, G370, G1985, G1995, G2826 e G2838). Uma vez que a sincronia ou as alterações de fases geralmente afetam o tamanho eventual de uma planta, estes genes podem provar ser benéficos através do fornecimento de meios para aumentar o rendimento e a biomassa.

Desenvolvimento e morfologia gerais: meristema dos brotos e padrões de ramificação.

[0331] Os genes de fatores de transcrição divulgados aqui, quando introduzidos nas plantas, podem ser utilizados para modificar os padrões de ramificação (por exemplo, através do nocaute de G438 e da superexpressão de G916, G1585, G1957, G2636, G2650 e G2885), por exemplo, causando bifurcações de caules nos brotos em desenvolvimento em que os meristemas dos brotos se dividem para formar dois ou três brotos separados. Estes fatores de transcrição e seus equivalentes funcionais podem ser utilizados assim para manipular a ramificação. Isto forneceria uma aparência exclusiva, que pode ser desejável nas aplicações ornamentais e pode ser utilizada para modificar a ramificação lateral para uso na indústria florestal. Uma redução na formação de ramificações laterais poderia reduzir a formação de nós. De forma inversa, o aumento do número de ramificações laterais poderia fornecer utilidade quando uma planta for utilizada como um visor ou proteção contra o vento. Os fatores de transcrição que fazem com que os brotos primários fiquem torcidos em cada nó de co-florescência (por exemplo, G47) podem ser

266/1027 utilizados para manipular a estrutura da planta e fornecer uma aparência ornamental exclusiva.

Desenvolvimento e morfologia gerais: dominância

apical:
[0332]	A expressão	modificada	dos fatores	de
transcrição	divulgados aqui (por exemplo, G47 e	seus
equivalentes)	que reduz a	dominância	apical poderia	ser
utilizada na	horticultura	ornamental,	por exemplo,	para
modificar a	arquitetura da planta,	por exemplo,	para

produzir uma estatura menor de maior aparência de arbusto que a do tipo selvagem. A última forma possui utilidade ornamental assim como fornece maior resistência a confinamento.

Desenvolvimento e morfologia: tricomas.

[0333] Vários dos genes de fatores de transcrição divulgados aqui foram utilizados para modificar o número, a densidade de tricomas, a morte celular dos tricomas ou a quantidade de produtos de tricomas obtida pelas plantas. Estes incluem G370, G1452, G1539, G1816, G1995, G2085, G2718, G2826, G2838 e G2983. Na maioria dos casos em que é impossível engenheirar as vias metabólicas, o aumento na densidade ou no tamanho dos tricomas nas folhas pode ser a única maneira de aumentar a produtividade da planta. Assim, aumentando a densidade, o tamanho ou o tipo de tricomas, os genes que afetam os tricomas e seus homólogos teriam utilidades importantes nas práticas de plantio molecular e de aumento no rendimento de fibras do algodão.

[0334] Se os efeitos sobre a padronização dos tricomas refletirem uma alteração geral nos processos heterocrônicos, os fatores de transcrição que afetam os

267/1027 tricomas ou seus homólogos podem ser utilizados para modificar a forma em que os meristemas e/ou as células se desenvolvem durante fases diferentes do ciclo de vida da planta. Em particular, a alteração da sincronia das alterações de fases poderia produzir efeitos positivos sobre o rendimento e a produção de biomassa.

Desenvolvimento e morfologia gerais: morfologia dos caules e estrutura alterada dos tecidos vasculares.

[0335] As plantas em que a expressão do gene do fator de transcrição que modifica a morfologia do caule ou o teor de lignina é modificada podem ser utilizadas para afetar a arquitetura global da planta e a distribuição de células de fibras lignificadas dentro do caule.

[0336] A modulação do teor de lignina poderia permitir que a qualidade da madeira utilizada para móveis ou construção fosse maior. A lignina é rica em energia; o aumento da composição da lignina poderia, portanto, ser valioso no aumento do conteúdo de energia da madeira utilizada para combustível. De forma inversa, as indústrias de pasta e de papel buscam madeira com um teor reduzido de lignina. Atualmente, a lignina tem que ser removida em um processo oneroso que envolve o uso de muitos reagentes químicos poluentes. Consequentemente, a lignina é uma barreira grave para a produção eficiente de pasta e de papel (Tzfira e outros (1998) TIBTECH 16: 439-446; Robinson (1999) Nature Biotechnology 17: 27-30). Em adição às aplicações da biotecnologia para as florestas, a alteração do teor de lignina através da expressão ou da repressão seletiva de fatores de transcrição nos frutos e nos vegetais poderia melhorar a sua propriedade de sabor.

268/1027 [0337] Os fatores de transcrição que modificam a estrutura do caule, incluindo G47 e seus equivalentes, podem ser utilizados para atingir a redução do desenvolvimento de brotos de ordem superior, resultanto na modificação significativa da arquitetura da planta. A superexpressão dos genes que codificam estes fatores de transcrição em plantas para madeireiras poderia resultar em árvores que não possuem ramos laterais e possuem menos nós na madeira. A alteração dos padrões de ramificação poderia ainda ter aplicações entre as plantas de cultivo ornamentais e agrícolas. Por exemplo, poderia haver aplicações em qualquer espécie em que os brotos secundários tivessem atualmente que ser removidos manualmente ou em que alterações no padrão de ramificação pudessem aumentar o rendimento ou facilitar uma colheita mais eficiente.

Desenvolvimento e morfologia gerais: desenvolvimento alterado das raízes.

[0338] Através da modificação da estrutura ou do desenvolvimento de raízes através da modificação dos níveis de expressão de um ou mais genes de fatores de transcrição divulgados aqui, incluindo G651, G730, G1816, G2655, G2718, G2747, G2983, G2992, G2993 e seus equivalentes, podem ser produzidas plantas que possuem a capacidade de se desenvolver em solos de outra maneira improdutivos. Por exemplo, as raízes da uva que se estendem adicionalmente em solos rochosos forneceriam maior ancoragem, maior cobertura com maior ramificação ou poderiam permanecer viáveis em solos alagados, aumentando assim a faixa de plantio eficiente da planta de cultivo e/ou aumentando o rendimento e a sobrevivência. Pode ser vantajoso manipular uma planta

269/1027 para produzir raízes curtas, como quando um solo em que a planta será cultivada é ocasionalmente inundado ou quando fungos patogênicos ou nematódeos causadores de doenças são prevalecentes.

[0339] Em adição, os fatores de transcrição divulgados aqui incluindo G1816, G2718, G2983 e seus equivalentes, podem ser utilizados para aumentar a densidade de pêlos radiculares e assim aumentar a tolerância a estresses abióticos, melhorando dessa forma o rendimento e a qualidade.

Desenvolvimento_____e_____morfologia :______cotilédone, hipocotilédone.

[0340] Os fenótipos morfológicos exibidos por plantas que superexpressam vários dos genes de fatores de transcrição na Tabela 6 indicam que estes genes, incluindo aqueles que produzem cotilédones (por exemplo, G916, G1420, G1893, G2432, G2636, G2859 e G3059) e hipocotilédones (G807, G916, G1510, G1988, G2771, G2859, G2884, G2993) alterados, podem ser utilizados para manipular respostas à luz tal como, o impedimento à sombra. Como estes genes também alteram a arquitetura da planta, podem encontrar uso na indústria da horticultura ornamental.

Desenvolvimento e morfologia: taxa de desenvolvimento, de amadurecimento e de germinação das sementes.

[0341] Foi mostrado que um número de genes de fatores de transcrição divulgados aqui (por exemplo, G961) modifica a taxa de desenvolvimento e de germinação das sementes, incluindo quando as sementes estão em condições normalmente desfavoráveis para a germinação (por exemplo, estresse ao frio, ao calor ou ao sal ou na presença do ABA)

270/1027 e pode, junto com os equivalentes funcionais, ser assim utilizados para modificar e melhorar as taxas de germinação sob condições adversas.

Taxa de crescimento e desenvolvimento: crescimento rápido.

[0342] Um número de genes de fatores de transcrição divulgados aqui, incluindo G807, G1476 e G2617, poderia ser utilizado para acelerar o crescimento das plantas jovens partindo de semente e dessa forma permitir que uma planta de cultivo se torne estabelecida mais rapidamente. Isto minimizaria a exposição às condições de estresse nos estágios iniciais de crescimento quando as plantas são mais sensíveis. Adicionalmente, isto pode permitir que uma planta de cultivo cresça mais rápido que as espécies daninhas competidoras.

[0343] Foi também mostrado que um número destes fatores de transcrição aumenta a taxa de crescimento de plantas maduras até uma extensão significativa, incluindo o crescimento e o desenvolvimento mais rápidos de órgãos reprodutivos. Isto fornece utilidade para regiões com estações curtas de cultivo. A aceleração do crescimento da planta também melhoraria o rendimento inicial ou aumentaria a biomassa em um estágio mais precoce, quando tal é desejável (por exemplo, na produção de plantas de cultivo vegetais ou produtos para florestas).

Desenvolvimento e morfologia gerais: taxa lenta de crescimento.

[0344] Foi mostrado que um número de genes de fatores de transcrição divulgados aqui, incluindo G652, G1013, G1100, G1468, G1535, G1549, G1779, G1938, G2765,

271/1027

G2784, G2826, G2834, G2851, G3091 e G3095, possui efeitos significativos sobre o retardo da taxa de crescimento e do desenvolvinto da planta. Estas observações incluíram, por exemplo, o crescimento e o desenvolvimento retardados de órgãos reprodutivos. As plantas de crescimento lento podem ser altamente desejáveis para os horticultores ornamentais, para o fornecimento de plantas domésticas que exibem pouca alteração em sua aparência ao longo do tempo ou plantas externas para as quais o crescimeno do tipo selvagem ou rápido é indesejável (por exemplo, palmeiras ornamentais). O crescimento lento pode fornecer ainda um período de frutificação prolongado, estendendo assim a estação de colheita, particularmente em regiões com estações de cultivo longas. O crescimento lento poderia também fornecer um período prolongado em que o pólen fica disponível para uma melhor autofertilização ou fertilização cruzada ou fertilização cruzada de cultivares que normalmente florescem ao longo de períodos de tempo não-sobrepostos. O último aspecto pode ser particularmente útil para plantas que compreendem dois ou mais cultivares distintos enxertados (por exemplo, árvores frutíferas) com períodos de florescência normalmente não-sobrepostos.

Desenvolvimento e morfologia gerais: senescência.

[0345] Os genes de fatores de transcrição divulgados aqui podem ser utilizados para alterar as respostas de senescência nas plantas.

Embora se acredite que a senescência folhar seja uma adaptação evolutiva para reciclar nutrientes, a capacidade de controlar a senescência em uma unidade agrícola possui valor significativo. Por exemplo, um retardo na senescência

272/1027 folhar em alguns híbridos do milho está associado com um aumento significativo nos rendimentos e um retardo de alguns dias na senescência de plantas de soja pode ter um grande impacto sobre o rendimento. Em uma unidade experimental, plantas de tabaco engenheiradas para inibir a senescência folhar tinham um tempo de vida fotossintética maior e produziam um aumento de 50% no peso seco e no rendimento de sementes (Gan and Amasino (1995) Science 270: 1986-1988). A senescência floral retardada causada pelo nocaute de G652 ou pela superexpressão de G571, G2536, por exemplo, pode gerar plantas que mantêm suas florações mais tempo e isso pode ter interesse potencial para a indústria de horticultura ornamental e a senescência folhar e de fruto retardada poderia aumentar o tempo de prateleira póscolheita do produto.

[0346] A senescência prematura causada, por exemplo, por G652, G1033, G1128, G1772, G2467, G2574, G2783, G2907, G3059, G3111 e seus equivalentes pode ser utilizada para aumentar a resposta de uma planta a doenças e ao amadurecimento acelerado dos frutos.

Taxa de crescimento e desenvolvimento: letalidade e necrose.

[0347] A superexpressão de fatores de transcrição, por exemplo, G12, G366, G1384, G1556, G1840, G1832, G1840, G1850, G1957, G1990, G2213, G2298, G2505, G2570, G2587, G2869, G2887 e de seus equivalentes que possuem uma função na regulação da morte celular pode ser utilizada para induzir a letalidade em tecidos específicos ou a necrose em resposta ao ataque de agentes patogênicos. Por exemplo, se um gene do fator de transcrição que induz a letalidade ou a

273/1027 necrose estivesse especificamente ativo nos gametas (por exemplo, G846), nos embriões (por exemplo, nocautes de

G374) ou nos órgãos reprodutivos, sua expressão nestes tecidos levaria ao desgaste e subsequente esterilidade dos machos e das fêmeas. Alternativamente, sob a expressão regulada por agentes patogênicos, um fator de transcrição indutor da necrose pode restringir o espalhamento de uma infecção por agente patogênico ao longo de uma planta.

Tamanho da planta: plantas grandes e maior biomassa.

[0348] Foi mostrado que as plantas que superexpressam G46,

G268, G287, G314, G319, G324, G438,

G624, G852, G1113,

G1150, G1451, G1468, G2334,

G2536,

G2650, G2741 e G2979, por exemplo, são maiores que as de controle. Para algumas plantas ornamentais, a capacidade de fornecer variedades maiores com estes genes ou seus equivalentes pode ser altamente desejável. De forma mais significativa, as espécies de plantas de cultivo que superexpressam estes genes provenientes de espécies diferentes também produziriam rendimentos maiores em cultivares maiores, particularmente aqueles em que a parte vegetativa da planta é comestível.

[0349] A superexpressão destes genes pode conferir maior tolerância aos estresses assim como maior biomassa e a maior biomassa parece estar relacionada com o mecanismo particular de tolerância aos estresses exibido por estes genes. A decisão para que um órgão lateral continue a crescer e a expansão versus a entrada nas fases de desenvolvimento tardias (inibição do crescimento e senescência) são controladas geneticamente e hormonalmente, incluindo a regulação em uma barreira do tamanho do órgão

274/1027 (por exemplo, Mizukami (1001) Curr Opinion Plant Biol 4:

533-39;	Mizukami e Fisher (2000) Proc. Natl. Acad. Sci. 97:
942-47;	Hu e outros Plant Cell 15: 1591) . O tamanho do

órgão é controlado pela competência meristemática de

células	do órgão, com a maior competência meristemática
levando	a um maior tamanho de órgãos (tanto folhas quanto
caules)	Os hormônios vegetais podem ter impacto sobre o
tamanho	dos órgãos, com a superexpressão da via do etileno
levando	ao tamanho reduzido dos órgãos. Há ainda sugestões
de que	a auxina desempenha uma função determinante no
tamanho	dos órgãos. As respostas ao estresse podem ter
impacto	sobre os níveis de hormônios nos tecidos vegetais,

incluindo os níveis de ABA e de etileno. Assim, a superexpressão de G1073 parece alterar as aplicações ambientais (por exemplo, estresse) para a barreira do tamanho dos órgãos, aumentando assim o tamanho dos órgãos.

Tamanho da planta: plantas jovens grandes partindo de semente.

[0350] Os genes de fatores de transcrição divulgados aqui, que produzem plantas jovens grandes partindo de semente podem ser utilizados para produzir plantas de cultivo que se estabelecem mais rapidamente. As plantas jovens grandes partindo de semente são geralmente mais firmes, menos vulneráveis ao estresse e mais capazes de competir com as espécies daninhas. As plantas jovens partindo de semente em que a expressão de algum dos fatores de transcrição divulgados aqui, incluindo G1313, G2679, G2694 e G2838, por exemplo, foi modificada, mostraram possuir cotilédones maiores e/ou eram mais avançadas em relação ao desenvolvimento que as plantas de controle. É

275/1027 provável que o rápido desenvolvimento das plantas jovens partindo de semente tornado possível através da manipulação destes genes ou de seus equivalentes reduza a perda causada por doenças particularmente prevalecentes no estágio de planta jovem partindo de semente (por exemplo, o apodrecimento) e é assim importante para a capacidade de sobrevivência das plantas que germinam no campo ou em ambientes controlados.

Tamanho da planta: plantas anãs.

[0351] Os genes de fatores de transcrição divulgados aqui, incluindo G131, G136, G253, G309, G370, G386, G549, G550, G600, G651, G652, G707, G738, G811,

G1011,	G1100,	G1247,	G1289,	G1340,	G1423,	G1474,	G1483,
G1549,	G1554,	G1593,	G1753,	G1772,	G1779,	G1798,	G1938,
G1983,	G1993,	G2085,	G2226,	G2227,	G2251,	G2372,	G2375,
G2453,	G2456,	G2459,	G2492,	G2515,	G2550,	G2565,	G2574,
G2575,	G2579,	G2616,	G2628,	G2640,	G2649,	G2682,	G2702,
G2757,	G2783,	G2839,	G2846,	G2847,	G2850,	G2884,	G2934,
G2958,	G2979,	G2992,	G3017,	G3059,	G3091 e	G3111	e seus

equivalentes podem ser utilizados para diminuir a estatura da planta e podem produzir plantas que são mais resistentes a danos causados pelo vento e pela chuva, possuem maior resistência ao confinamento ou mais resistentes ao calor ou a baixa umidade ou ao déficit hídrico. As plantas anãs possuem ainda interesse significativo para a indústria de horticultura ornamental e particularmente para aplicações de jardins residenciais para as quais a disponibilidade de espaço pode ser limitada.

Taxa de crescimento e desenvolvimento: Proliferação e diferenciação celular.

276/1027 [0352] Os fatores de transcrição podem ser utilizados para regular a proliferação e/ou a diferenciação celular em plantas. O controle destes processos poderia ter aplicações valiosas em sistemas de transformação de plantas, de cultura de células ou de micropropagação, assim como no controle da proliferação de tecidos ou tipos celulares particulares úteis. Os fatores de transcrição que induzem a proliferação de células não-diferenciadas, tais como G1539, G1585, G1591, G2885 e G2983, podem ser ligados de forma operacional a um promotor que pode ser induzido para promover a formação de calos que podem ser utilizados para a transformação ou para a produção de culturas de células em suspensão.

Os fatores de transcrição que promovem a diferenciação de brotos partindo de calos são atualmente problemáticos.

Em adição, os fatores de transcrição que regulam a diferenciação de tecidos específicos poderiam ser utilizados para aumentar proporção destes tecidos em uma planta. Os fatores de transcrição podem promover a diferenciação do tecido do carpelo e estes genes poderiam ser aplicados em espécies comerciais para induzir a formação de maiores números de carpelos ou frutos. Poderia haver uma aplicação particular no açafrão, um dos temperos mais onerosos do mundo. Os filamentos de açafrão ou fios, são na realidade estigmas secos da flor do açafrão, Crocus sativus Linneaus. Cada flor contém somente três estigmas e mais de 75.000 destas flores são necessários para produzir apenas 453 gramas (uma libra) de filamentos de açafrão. Um aumento no número de carpelos aumentaria a quantidade de tecido estigmático e aumentaria o rendimento.

277/1027

Taxa de crescimento e desenvolvimento: expansão celular.

[0353] O crescimento da planta resulta de uma combinaçao de divisao celular e expansao celular. Os fatores de transcriçao podem ser úteis na regulaçao da expansao celular. A regulaçao alterada da expansao celular (por exemplo, pelo G521) poderia afetar o comprimento do caule, uma característica agronômica importante. Por exemplo, os cultivares curtos de trigo contribuíram para a Revoluçao Verde, porque as plantas que colocam menos recursos no alongamento do caule distribuem mais recursos no desenvolvimento de sementes e produzem maior rendimento. Estas plantas sao também menos vulneráveis aos danos causados pelo vento e pela chuva. Foi descoberto que estes cultivares têm alterações em sua sensibilidade às giberelinas, hormônios que regulam o alongamento do caule através do controle tanto da expansao celular quanto da divisao celular. A expansao celular alterada nas folhas poderia também produzir formas novas e ornamentais de plantas.

Morfologia folhar: folhas escuras.

[0354] Os componentes que afetam a coloração nas folhas incluem as clorofilas (geralmente verdes), as antocianinas (geralmente de vermelho até azul) e os carotenóides (geralmente de amarelo até vermelho). Os genes de fatores de transcrição que aumentam estes pigmentos nas

folhas,	incluindo G30,	G253,	G309, G7	07, G811, G957,	G1100,
G1128,	G1327,	G1341,	G1357,	G1389,	G1420,	g1423,	G1452,
G1482,	G1510,	G1535,	G1549,	G1554,	G1593,	G1743,	G1792,
G1796,	G1846,	G1863,	G1932,	G1938,	G1983,	G2085,	G2146,

278/1027

G2207,	G2226,	G2251,	G2334,	G2371,	G2372,	G2453,	G2456,
G2457,	G2459,	G2550,	G2640,	G2649,	G2661,	G2690,	G2694,
G2771,	G2763,	G2784,	G2837,	G2838,	G2846,	G2847,	G2850,
G2851,	G2958,	G2993,	G3021,	G3059,	G3091,	G3095 e	G3111,
podem	afetar	positivamente o	valor	de uma	planta	para a

indústria de horticultura ornamental. As variedades diversificadas, em particular, exibiriam maior contraste.

Outros usos que resultam da superexpressão de genes de fatores de transcrição incluem melhorias no valor nutricional de matérias alimentícias. Por exemplo, a luteína é um agente nutracêutico importante;

as dietas ricas em degeneração luteína mostraram auxiliar na prevenção da macular relacionada com a idade (ARMD), a causa principal da cegueira em pessoas idosas. Foi mostrado em estudos clínicos que o consumo de vegetais com folhas verde escuras reduz o risco da ARMD.

[0355] Níveis maiores de clorofila e de carotenóides poderiam ainda aumentar o rendimento nas plantas de cultivo. A luteína, como outras xantofilas tais como a zeaxantina e a violaxantina, é um componente essencial na proteção da planta contra os efeitos danificadores da luz excessiva. Especificamente, a luteína contribui, diretamente ou indiretamente, para o aumento rápido do decaimento não-fotoquímico em plantas expostas à luz forte. As plantas de cultivo engenheiradas para conter altos níveis de luteína poderiam, portanto, ter maior fotoproteção, levando a menos danos oxidativos e melhor crescimento sob luz forte (por exemplo, durante dias longos de verão ou em altitudes maiores ou latitudes menores que aquelas em que uma planta não-transformada se

279/1027 desenvolvería). Adicionalmente, os níveis elevados de clorofila aumentam a capacidade fotossintética.

[0356] Morfologia folhar: alterações na forma da folha. Os fatores de transcrição divulgados aqui produzem efeitos notáveis e distintos sobre o desenvolvimento e a forma das folhas e incluem G30 e muitos outros (ver a

Tabela 6,

Alteração na forma das folhas).

Em estágios iniciais de crescimento, as plantas jovens partindo de semente transgênicas desenvolveram folhas estreitas apontando para cima com pecíolos longos, indicando possivelmente uma interrupção nos processos controlados pelo relógio circadiano ou nos movimentos nictinásticos. Outros genes de fatores de transcrição podem ser utilizados para alterar a forma das folhas de uma maneira significativa da do tipo selvagem, alguns dos quais encontram uso em aplicações ornamentais.

[0357] Morfologia folhar: tamanho alterado da folha. Folhas grandes, tais como as produzidas nas plantas que superexpressam G268, G324, G438, G852, G1113, G1274,

G1451, G2536, G2699, G2768 e G3008, geralmente aumentam a biomassa da planta. Isto fornece vantagens para as plantas de cultivo em que a parte vegetativa da planta é a parte que pode ser comercializada.

[0358] Morfologia folhar: folhas verde claras e cinzentas. Os genes de fatores de transcrição tais como G351, G600, G651, G1468, G1718, G2565, G2604, G2779, G2859,

G3044 e G3070 que fonecem uma aparência alterada podem afetar positivamente o valor de uma planta para a indústria de horticultura ornamental.

[0359]

Morfologia folhar: folhas brilhosas. Os

280/1027 genes de fatores de transcrição tais como G30, G370 (quando nocauteados), G975, G1792, G2640, G2649 e seus equivalentes que induzem a formação de folhas brilhosas, geralmente o fazem através do aumento do nível de cera epidérmica. Assim, os genes poderiam ser utilizados para engenheirar alterações na composição e na quantidade de componentes da superfície folhar, incluindo as ceras. A capacidade de manipular a composição, a quantidade ou a distribuição da cera poderia modificar a tolerância das plantas à seca a à baixa umidade ou a resistência a insetos ou agentes patogênicos. Adicionalmente, a cera pode ser uma comodidade valiosa em algumas espécies e a alteração de seu acúmulo e/ou composição poderia aumentar o rendimento.

[0360] Morfologia das sementes: coloração alterada das sementes. Os genes de fatores de transcrição divulgados aqui, incluindo G581, G961, G2085 e G2371, foram utilizados para modificar a coloração das sementes, que, junto com os equivalentes destes genes, poderia fornecer um atrativo adicional para as sementes ou para os produtos das sementes.

[0361] Morfologia das sementes: tamanho e forma alterados da semente. A introdução de genes de fatores de transcrição divulgados aqui, incluindo G151, G581, G2085, G2585 ou G2933, nas plantas que aumentam o tamanho de sementes pode ter um impacto significativo sobre o rendimento e a aparência, particularmente quando o produto for a própria semente (por exemplo, no caso de grãos, legumes, nozes etc.). O tamanho da semente, em adição à integridade, a espessura e a permeabilidade do revestimento da semente, ao teor de água na semente e a um número de

281/1027 outros componentes incluindo antioxidantes e oligossacarídeos, também afeta a longevidade da semente no armazenamento, com as sementes maiores sendo frequentemente mais desejáveis para o armazenamento prolongado.

[0362] Os genes de fatores de transcrição que alteram a forma da semente, incluindo G652, G916, G961 e seus equivalentes podem ter tanto aplicações ornamentais quanto melhorar ou ampliar o atrativo de produtos de sementes.

[0363] Bioquímica das folhas e das sementes. A superexpressão de genes de fatores de transcrição, incluindo G975 e seus equivalentes, que resulta em maior cera na folha poderia ser utilizada para manipular a composição, a quantidade ou a distribuição da cera. Estes fatores de transcrição podem aumentar o rendimento nas plantas e nas plantas de cultivo das quais a cera é um produto valioso. Os genes podem também ser utilizados para modificar a tolerância da planta à seca e/ou à baixa umidade ou a resistência a insetos, assim como a aparência da planta (folhas brilhosas). O efeito da maior deposição de cera nas folhas de uma planta pode aumentar a eficiência de uso da água. A manipulação destes genes pode reduzir o revestimento de cera nas sementes do girassol; esta cera suja o sistema de extração de óleo durante o processamento da semente de girassol para óleo. Para a última finalidade ou qualquer outra em que a redução da cera é valiosa, seria valiosa a supressão anti-sentido ou a co-supressão dos genes de fatores de transcrição de uma maneira específica ao tecido.

[0364] Os prenil lipídeos desempenham uma função na

282/1027 ancoragem de proteínas em membranas ou em organelas membranosas. Assim, a modificação do teor de prenil lipídeos das sementes e folhas poderia afetar a integridade e a função da membrana. Um grupo importante de prenil lipídeos, os tocoferóis, possuem tanto atividade antioxidante quanto de vitamina E. Foi mostrado que os genes de fatores de transcrição (por exemplo, um nocaute de G652) modificam o teor de prenil lipídeos das folhas nas plantas e estes genes e seus equivalentes pode ser assim utilizados para alterar o teor de prenil lipídeos das folhas.

[0365] A superexpressão dos fatores de transcrição resultou em plantas com um teor alterado de açúcares insolúveis na folha. Estes fatores de transcrição e seus equivalentes que alteram a composição da parede celular vegetal possuem várias aplicações potenciais incluindo a alteração da digestibilidade do alimento, da resistência à tensão da planta, da qualidade da madeira, da resistência a agentes patogênicos e na produção de pasta. Em particular, a hemicelulose não é desejável nas pastas para papel por causa de sua falta de resistência comparada com a celulose. Assim, a modulação das quantidades de celulose vs. hemicelulose na parede da célula vegetal é desejável para a indústria de papel/madeira para construção. O aumento do teor de carboidratos insolúveis em vários frutos, vegetais e outros produtos de consumo comestíveis resultará em um maior teor de fibras. O maior teor de fibras não somente forneceria benefícios para a saúde nos produtos alimentícios, mas poderia ainda aumentar a digestibilidade de plantios de forragem. Em adição, o teor de hemicelulose

283/1027 e de pectina dos frutos e das bagas afeta a qualidade de

geléia e	de	molho	produzidos	partindo dos	mesmos.
Alterações	no	teor de	hemicelulose	e de pectina	poderiam
resultar em	um	produto	superior para	o consumidor.
[0366]		Foi mostrado que um	número dos	genes de
fatores de	transcriçã	o divulgados	aqui pode alterar a

composição de ácidos graxos nas plantas (por exemplo, G975) e sementes e folhas em particular. Esta modificação sugere várias utilidades, incluindo o aumento do valor nutricional de sementes ou de plantas inteiras. Foi mostrado que as proporções de ácidos graxos dietéticos possuem um efeito, por exemplo, sobre a integridade e o remodelamento dos ossos (ver, por exemplo, Weiler (2000) Pediatr. Res. 47:5 692-697). A proporção dos ácidos graxos dietéticos pode alterar os grupos de precursores de ácidos graxos poliinsaturados de cadeia longa que servem como precursores para a síntes e de prostaglandinas. No tecido conjuntivo de mamíferos, as prostaglandinas servem como sinais que regulam o equilíbrio entre a reabsorção e a formação no osso e na cartilagem. Assim as proprorções alteradas de ácidos graxos dietéticos nas sementes podem afetar a etiologia e o resultado da perda óssea.

[0367] Os fatores de transcrição que reduzem os ácidos graxos das folhas, por exemplo, os ácidos graxos 16:3, podem ser utilizados para controlar o desenvolvimento da membrana tilacóide, incluindo o desenvolvimento do proplastídeo em cloroplasto. Os genes que codificam estes fatores de transcrição poderiam assim ser úteis para o controle da transição de plastídeos para cromoplastos nos frutos e nos vegetais. Pode ainda ser desejável alterar a

284/1027 expressão destes genes para prevenir que o cotilédone fique verde em Brassica napus ou B. campestris para evitar um óleo verde causado pelo início do congelamento.

[0368] Os genes de fatores de transcrição que aumentam a produção de ácidos graxos nas folhas, incluindo G975 e seus equivalentes poderiam ser potencialmente utilizados para manipular a composição de sementes, que é muito importante para o valor nutricional e para a obtenção de vários produtos alimentícios. Um número de genes de fatores de transcrição está envolvido na mediação de um aspecto da resposta reguladora à temperatura. Estes genes podem ser utilizados para alterar a expressão das dessaturases que levam à produção de ácidos graxos 18:3 e 16:3, cujo equilíbrio afeta a fluidez da membrana e diminui os danos nas membranas celulares e nas estruturas fotossintéticas a temperaturas altas e baixas.

[0369] A linhagem nocauteada para G652 possuía um aumento que podia ser reproduzido no glicosinolato folhar M39480. É também mostrado um aumento que pode ser reproduzido no alfa-tocoferol das sementes. Um número de glicosinolatos mostrou possuir atividade anticâncer; assim, o aumento dos níveis ou da composição destes compostos através da modificação da expressão de fatores de transcrição (por exemplo, G652), pode ter um efeito benéfico sobre a dieta humana.

[0370] Os glicosinolatos são componentes indesejáveis das sementes oleosas utilizadas na alimentação animal uma vez que produzem efeItos tóxicos. As variedades com baixo teor de glicosinolatos da canola, por exemplo, foram desenvolvidas para combater este problema. Os

285/1027 glicosinolatos fazem parte da defesa natural de uma planta contra os insetos. A modificação da composição ou da quantidade dos glicosinolatos através da introdução de fatores de transcrição que afetam estas características pode, portanto, fornecer maior proteção dos herbívoros. Além disso, em plantas de cultivo comestíveis, promotores específicos ao tecido podem ser utilizados para garantir que estes compostos se acumulam especificamente em tecidos,

tal como, a	epiderme, que não é utilizada	para	consumo.
[0371]	Os genes de fatores	de	transcrição
divulgados	atualmente que modificam	os	níveis	de
fitoesteróis	nas plantas podem ter	pelo	menos	duas
utilidades.	Em primeiro lugar, os fitoester	óis são	uma

de para a produção fonte importante de precursores hormônios esteróides humanos. Assim, a regulação da expressão ou da atividade dos fatores de transcrição poderia levar a níveis elevados de precursores de esteróides humanos para a semi-síntese de esteróides. Por exemplo, os fatores de transcrição que causam níveis elevados de campesterol em folhas ou sitoesteróis e estigmaesteróis nas plantas de cultivo, seriam úteis para esta finalidade. Os fitoesteróis e seus derivados hidrogenados fitoestanóis também provaram ter propriedades que diminuem o colesterol e os genes de fatores de transcrição que modificam a expressão destes compostos em plantas poderiam assim fornecer vantagens para a saúde.

[0372] A composição das sementes, particularmente em relação às quantidades e/ou à composição de óleos da semente, é muito importante para o valor nutricional e calórico e para a obtenção de vários alimentos e produtos

286/1027 alimentícios. A modificação da expressão dos genes de fatores de transcrição que alteram o teor de óleos das sementes pode ser utilizada para aumentar a estabilidade térmica dos óleos ou para aumentar a qualidade nutricional do óleo das sementes, por exemplo, através da redução do número de calorias na semente diminuindo o teor de óleos ou de ácidos graxos ou aumentando o número de calorias nos alimentos para animais através do aumento do teor de ácidos graxos ou de óleos da semente (por exemplo, através do nocaute de G961, G1451 ou G2830).

[0373] Assim como com os óleos das sementes, a composição das sementes, particularmente em relação às quantidades e/ou à composição das proteínas, é muito importante para o valor nutricional e para a obtenção de vários alimentos e produtos alimentícios. Os genes de fatores de transcrição podem ser utilizados para modificar as concentrações de proteínas nas sementes, que modificaria o teor calórico das sementes ou forneceria benefícios nutricionais e poderiam ser utilizadas para prolongar o armazenamento, aumentar a resistência das sementes a pragas ou doenças ou modificar as taxas de germinação.

[0374] Os prenil lipídeos desempenham uma função na ancoragem das proteínas em membranas ou organelas membranosas. Assim, os genes de fatores de transcrição divulgados aqui, incluindo G652 e equivalentes, que modificam o teor de prenil lipídeos das sementes e das folhas (no caso do G652, quando este gene é nocauteado) poderiam afetar a integridade e a função das membranas. Foi mostrado que os genes de fatores de transcrição modificam a composição de tocoferóis das plantas. O α-tocoferol é mais

287/1027 bem-conhecido como a vitamina E. Os tocoferóis tais como o α- e o γ-tocoferóis possuem ambos atividade antioxidante.

[0375] Resposta à luz/impedimento à sombra: desenvolvimento alterado de cotilédones, hipocotilédones, pecíolos, orientação alterada das folhas, fotomorfogênese constitutiva, fotomorfogênese em pouca luz. Os genes de fatores de transcrição divulgados aqui, incluindo G30; G246; G351, G353; G354; G478, G807, G916, G1013, G1082, G1510, G1988, G2432; G2650; G2694, G2754, G2771, G2859, G2884, G2993, G3032 e seus equivalentes que podem modificar a resposta de uma planta à luz podem ser úteis para a modificação do crescimento ou do desenvolvimento da planta, por exemplo, a fotomorfogênese em luz fraca ou o tempo acelerado de florescência em resposta a várias intensidades, qualidade ou duração da luz à qual uma planta não-transformada não responderia similarmente. Os exemplos de tais respostas que foram demonstrados incluem o número e o arranjo das folhas e surgimentos de brotos florais precoces. A eliminação das respostas ao sombreamento pode levar a densidades maiores de plantio com um aumento subsequente do rendimento. Como estes genes também podem alterar a arquitetura das plantas, podem ser úteis na indústria de horticultura ornamental

Pigmento: maior nível de antocianina em vários órgãos e tecidos vegetais.

[0376] G253, G386, G581, G707, G1482, G2453, G2456, G2459, G2604, G2718 e equivalentes podem ser utilizados para alterar os níveis de antocianina em um ou mais tecidos e dependendo do órgão em que estes genes são expressos podem ser utilizados para alterar a produção de antocianina

288/1027 em várias espécies de plantas. A expressão dos genes de fatores de transcrição divulgados aqui que aumentam a produção de flavonóides nas plantas, incluindo as antocianinas e os taninos condensados, pode ser utilizada para alterar a produção de pigmentos com finalidades de horticultura e possivelmente aumentar a resistência aos estresses. Foi mostrado que um número de flavonóides possui atividade antimicrobiana e poderia ser utilizado para engenheirar resistência a agentes patogênicos. Vários compostos flavonóides possuem efeitos promotores da saúde tais como a inibição do crescimento de tumores, a prevenção da perda óssea e a prevenção da oxidação de lipídeos. Os níveis aumentados de taninos condensados, em legumes de forragem seriam uma característica agronômica importante porque previniriam intumescimento da pastagem através do colapso de espumas de proteínas dentro do rúmen. Para uma revisão sobre as utilidades dos flavonóides e de seus derivados, se referir a Dixon e outros (1999) Trends Plant Sci. 4: 394-400.

Supressão anti-sentido e Co-supressão [0377] Em adição à expressão dos ácidos nucléicos da invenção como ácidos nucléicos para substituição gênica ou para modificação de fenótipos da planta, os ácidos nucléicos também são úteis para a supressão sentido e antisentido da expressão, por exemplo, para regular para menos a expressão de um ácido nucléico da invenção, por exemplo, como um mecanismo adicional para modular o fenótipo da planta. Ou seja, os ácidos nucléicos da invenção ou as subsequências ou sequências anti-sentido dos mesmos, podem ser utilizadas para bloquear a expressão de ácidos

289/1027 nucléicos homólogos que ocorrem naturalmente. Uma variedade de tecnologias senso e anti-sentido é conhecida na técnica, por exemplo, como apresentado em Lichtenstein e Nellen (1997) Antisense Technology: A Practical Approach IRL Press at Oxford University Press, Oxford, Reino Unido. A regulação anti-sentido é também descrita em Crowley e outros (1985) Cell 43: 633-641; Rosenberg e outros (1985) Nature 313: 703-706; Preiss e outros (1985) Nature 313: 2732; Melton (1985) Proc. Natl. Acad. Sci. 82: 144-148; Izant e Weintraub (1985) Science 229: 345-352; e Kim e Wold (1985) Cell 42: 129-138. Métodos adicionais para a regulação anti-sentido são conhecidos na técnica. A regulação anti-sentido tem sido utilizada para reduzir ou inibir a expressão de genes vegetais, por exemplo, na Publicação de Patente Européia N^o 271988. O RNA antisentido pode ser utilizado para reduzir a expressão gênica para produzir uma alteração fenotípica visível ou bioquímica em uma planta (Smith e outros (1988) Nature, 334: 724-726; Smith e outros (1990) Plant Mol. Biol. 14: 369-379). Em geral, as sequências senso ou anti-sentido são introduzidas em uma célula, em que são opcionalmente amplificadas, por exemplo, através da transcrição. Tais sequências incluem tanto sequências de oligonucleotídeos simples quanto sequências catalíticas tais como as ribozimas.

[0378] Por exemplo, uma redução ou uma eliminação da expressão (isto é, um nocaute) de um fator de transcrição ou de um polipeptídeo homólogo ao fator de transcrição em uma planta transgênica, por exemplo, para modificar uma característica da planta, pode ser obtida

290/1027 através da introdução de uma constructo anti-sentido correspondente ao polipeptídeo de interesse na forma de um cDNA. Para a supressão anti-sentido, o fator de transcrição ou o cDNA homólogo é disposto na orientação inversa (em relação à sequência codificadora) em relação à sequência promotora no vetor de expressão. A sequência introduzida não precisa ser o cDNA ou o gene de comprimento completo e não precisa ser idêntica ao cDNA ou ao gene encontrado no tipo de planta que será transformado. Tipicamente, a sequência anti-sentido precisa apenas ser capaz de se hibridizar com o gene alvo ou com o RNA de interesse. Assim, quando a sequência introduzida tiver um tamanho menor, será necessário um grau maior de homologia com a sequência endógena do fator de transcrição para a supressão anti-sentido eficiente. Embora as sequências anti-sentido de vários comprimentos possam ser utilizadas, preferencialmente, a sequência anti-sentido introduzida no vetor terá pelo menos 30 nucleotídeos de comprimento e uma maior supressão anti-sentido será tipicamente observada à medida que o comprimento da sequência anti-sentido aumenta. Preferencialmente, o comprimento da sequência anti-sentido no vetor será maior que 100 nucleotídeos. A transcrição de uma constructo anti-sentido como descrito resulta na produção de moléculas de RNA que são o complemento inverso de moléculas de mRNA transcritas partindo do gene endógeno do fator de transcrição na célula vegetal.

[0379] A supressão da expressão gênica endógena do fator de transcrição também pode ser conseguida utilizando a interferência do RNA ou RNAi. A RNAi é uma técnica de sileciamento gênico direcionado pós-transcrição que utiliza

291/1027

RNA de filamento duplo (dsRNA) para incitar a degradação do RNA mensageiro (mRNA) contendo a mesma sequência que o dsRNA (Constans, (2002) The Scientist 16:36). Os RNAs interferentes pequenos ou siRNAs são produzidos em pelo menos duas etapas: uma ribonuclease endógena cliva o dsRNA maior em RNAs mais curtos de 21-23 nucleotídeos de comprimento. Os segmentos de siRNA medeiam então a degradação do mRNA (padrão Zamore, (2001) Nature Struct. Biol., 8:746-50). A RNAi tem sido utilizada para a determinação da função gênica de uma maneira similar à dos oligonucleotídeos anti-sentido (Constans, (2002) The Scientist 16:36). Os vetores de expressão que expressam continuamente os siRNAs transfectados transitoriamente e estavelmente foram engenheirados para expressar pequenos

RNAs em grampo de cabelo (shRNAs) que são processados in vivo em moléculas similares aos siRNAs capazes de realizar o silenciamento específico ao gene (Brummelkamp e outros, (2002) Science 296:550-553 e Paddison e outros (2002) Genes & Dev. 16:948-958). O silenciamento gênico póstranscricinoal através do RNA de filamento duplo é discutido em detalhes adicionais por Hammond e outros (2001) Nature Rev Gen 2: 110-119, Fire e outros (1998) Nature 391: 806-811 e Timmons e Fire (1998) Nature 395: 854. Os vetores em que o RNA codificado por um cDNA de fator de transcrição ou homólogo do fator de transcrição é superexpresso, podem ser também utilizados para a obtenção da co-supressão de um gene endógeno correspondente, por exemplo, da maneira descrita na Patente U.S. N- 5.231.020 a Jorgensen. Tal co-supressão (também denominada de supressão senso) não requer que o cDNA do fator de transcrição

292/1027 inteiro seja introduzido nas células vegetais, nem requer que a sequência introduzida seja exatamente idêntica ao gene endógeno do fator de transcrição de interesse. Entretanto, como com a supressão anti-sentido, a eficiência supressora será aumentada à medida que a especificidade de hibridização é aumentada, por exemplo, quando a sequência introduzida é alongada e/ou quando a similaridade de sequência entre a sequência introduzida e o gene endógeno do fator de transcrição é maior.

[0380] Os vetores que expressam uma forma que não pode ser traduzida do mRNA do fator de transcrição, por exemplo, sequências que compreendem um ou mais códons de término (ou mutação sem sentido) podem também ser utilizados para suprimir a expressão de um fator de transcrição endógeno, reduzindo ou eliminando assim a sua atividade e modificando uma ou mais características. Os métodos para a produção de tais constructos são descritos na Patente U.S. N- 5.583.021. Preferencialmente, tais constructos são produzidos através da introdução de um códon de término prematuro no gene do fator de transcrição. Alternativamente, uma característica da planta pode ser modificada através do silenciamento gênico utilizando RNA de filamento duplo (Sharp (1999) Genes and Development 13: 139-141). Um outro método para inibir a expressão de um gene é através da mutagênese de inserção utilizando o T-DNA de Agrobacterium tumefaciens. Após gerar mutantes de inserção, os mutantes podem ser selecionados para identificar aqueles que contêm a inserção em um fator de transcrição ou em um gene homólogo do fator de transcrição. As plantas contendo um único evento de inserção de

293/1027 transgene no gene desejado podem ser cruzadas para gerar plantas homozigotas para a mutação. Tais métodos são bemconhecidos pelos versados na técnica (Ver, por exemplo,

Koncz e outros (1992) Methods in Arabidopsis Research,

World Scientific Publishing Co. Pte. Ltd., River Edge, NJ).

[0381] Alternativamente, o fenótipo de uma planta pode ser alterado através da eliminação de um gene endógeno, tal como, um fator de transcrição ou um homólogo de fator de transcrição, por exemplo, através da recombinação homóloga (Kempin e outros (1997) Nature 389: 802-803).

[0382] Uma característica da planta também pode ser modificada utilizando o sistema Cre-lox (por exemplo, como descrito na Patente U.S. N- 5.658.772) . Um genoma vegetal pode ser modificado para incluir os primeiro e segundo sítios lox que são então colocados em contato com uma recombinase Cre. Se os sítios lox estiverem na mesma orientação, a sequência de DNA intermediária entre os dois sítios é cortada. Se os sítios lox estiverem na orientação oposta, a sequência intermediária é invertida.

[0383] Os polinucleotídeos e os polipeptídeos desta invenção também podem ser expressos em uma planta na ausência de um cassete de expressão através da manipulação da atividade ou do nível de expressão do gene endógeno através de outros meios, tais como, por exemplo, através da expressão de forma ectópica de um gene através da marcação de atividade do T-DNA (Ichikawa e outros (1997) Nature 390 698-701; Kakimoto e outros (1996) Science 274: 982-985). Este método vincula a transformação de uma planta com um gene marcador contendo vários intensificadores da

294/1027 transcrição e uma vez que a marcação foi inserida no genoma, a expressão de uma sequência codificadora do gene flanqueador fica desregulada. Em um outro exemplo, a maquinaria transcricional em uma planta pode ser modificada de forma que aumente os níveis de transcrição de um polinucleotídeo da invenção (Ver, por exemplo, as Publicações PCT WO 96/06166 e WO 98/53057 que descrevem a modificação da especificidade de ligação ao DNA de proteínas dedo de zinco através da alteração de aminoácidos particulares no motivo de ligação ao DNA).

[0384] A planta transgênica pode ainda incluir a maquinaria necessária para expressar ou alterar a atividade de um polipeptídeo codificado por um gene endógeno, por exemplo, através da alteração do estado de fosforilação para mantê-lo em um estado ativado.

[0385] As plantas transgênicas (ou células vegetais ou explantes vegetais ou tecidos vegetais) que incorporam os polinucleotídeos da invenção e/ou expressam os polipeptídeos da invenção podem ser produzidas através de uma variedade de técnicas bem estabelecidas como descrito anteriormente. Após a construção de um vetor, mais tipicamente um cassete de expressão, incluindo um polinucleotídeo, por exemplo, que codifica um fator de transcrição ou um homólogo do fator de transcrição, da invenção, podem ser utilizadas técnicas padronizadas para introduzir o polinucleotídeo em uma planta, uma célula vegetal, um explante vegetal ou um tecido vegetal de interesse. Opcionalmente, a célula, o explante ou o tecido vegetal pode ser regenerado para produzir uma planta transgênica.

295/1027 [0386] A planta pode ser qualquer planta superior, incluindo plantas gimnospermas, monocotiledôneas e dicotiledôneas. Os protocolos adequados estão disponíveis para Leguminosae (alfalfa, soja, trevo, etc.), Umbelliferae (cenoura, aipo, pastinaga), Cruciferae (repolho, rabanete, semente de colza, brócolis etc.), Curcurbitaceae (melões e pepino), Gramineae (trigo, milho, arroz, cevada, milhete etc.), Solanaceae (batata, tomate, tabaco, pimentas etc.) e várias outras plantas de cultivo. Ver os protocolos descritos em Ammirato e outros, eds., (1984) Handbook of Plant Cell Culture -Crop Species, Macmillan Publ. Co., Nova York, NY; Shimamoto e outros (1989) Nature 338: 274-276; Fromm e outros (1990) Bio/Technol. 8: 833-839; e Vasil e outros (1990) Bio/Technol. 8: 429-434.

[0387] A transformação e a regeneração de células vegetais tanto monocotiledôneas quanto dicotiledônea é agora rotina e a seleção da técnica de transformação mais apropriada será determinada pelo versado. A escolha do método variará com o tipo de planta que será transformada; os versados na técnica reconhecerão a adequabilidade de métodos particulares para certos tipos de plantas. Os métodos adequados podem incluir, mas não estão limitados a: eletroporação de protoplastos vegetais; transformação mediada por lipossomos; transformação mediada por polietileno glicol (PEG); transformação utilizando vírus; microinjeção de células vegetais; bombardeio de microprojéteis de células vegetais; infiltração a vácuo; e transformação mediada por Agrobacterium tumefaciens. Transformação significa a introdução de uma sequência de nucleotídeos em uma planta de forma a causar a expressão

296/1027 estável ou transitória da sequência.

[0388] Os exemplos bem-sucedidos da modificação de características das plantas através da transformação com sequências clonadas que servem para ilustrar o conhecimento atual neste campo de tecnologia e que são incorporados aqui como referência, incluem: as Patentes U.S. N—

5.571.706;

5.677.175;

5.510.471;

5.750.386; 5.597.945;

5.589.615;

5.750.871;

5.268.526;

5.780.708; 5.538.880;

5.773.269;

5.736.369 e

5.610.042.

[0389]

Após a transformação, as plantas são preferencialmente selecionadas utilizando um marcador selecionável dominante incorporado no vetor de transformação.

Tipicamente, tal marcador conferirá resistência a antibióticos ou a herbicidas nas plantas transformadas e a seleção dos transformantes pode ser realizada através da exposição das plantas a concentrações apropriadas do anticorpo ou do herbicida.

[0390] Após as plantas transformadas serem selecionadas e cultivadas até a maturidade, as plantas exibindo uma característica modificada são identificadas. A característica modificada pode ser qualquer uma das características descritas anteriormente. Adicionalmente, a confirmação de que a característica modificada é causada pelas alterações nos níveis ou na atividade de expressão do polipeptídeo ou do polinucleotídeo da invenção pode ser determinada através da análise da expressão do mRNA utilizando Northern blots, RT-PCR ou microensaios ou a expressão de proteínas utilizando imunoblots ou Western blots ou ensaios de modificação no gel.

Sistemas Integrados - Identidade de Sequência

297/1027 [0391] Adicionalmente, a presente invenção pode ser um sistema integrado, um computador ou um meio que pode ser lido pelo computador que compreende um conjunto de instruções para a determinação da identidade de uma ou mais sequências em um banco de dados. Em adição, o conjunto de instruções pode ser utilizado para gerar ou identificar sequências que satisfazem quaisquer critérios especificados. Além disso, o conjunto de instruções pode ser utilizado para associar ou ligar certos benefícios funcionais, tais como características melhoradas, a uma ou mais sequências identificadas.

[0392] Por exemplo, o conjunto de instruções pode incluir, por exemplo, um programa para comparação de sequências ou outro de alinhamento, por exemplo, um programa disponível tal como, por exemplo, o Wisconsin Package Versão 10.0, tal como, BLAST, FASTA, PILEUP, FINDPATTERNS ou similares (GCG, Madison, WI) . Podem ser feitas buscas em bancos de dados de sequências públicos tais como GenBank, EMBL, Swiss-Prot e PIR ou em bancos de dados de sequências privados tal como, o banco de dados de sequências PHYTOSEQ (Incyte Genomics, Palo Alto, CA).

[0393] O alinhamento de sequências para comparação pode ser realizado através do algoritmo de homologia local de Smith e Waterman (1981) Adv. Appl. Math. 2: 482-489, através o algoritmo de alinhamento por homologia de Needleman e Wunsch (1970) J. Mol. Biol. 48: 443-453, através do método de busca por similaridade de Pearson e Lipman (1988) Proc. Natl. Acad. Sci. 85: 2444-2448, através de implementações computadorizadas destes algoritmos. Após o alinhamento, as comparações de sequências entre dois (ou

298/1027 mais) polinucleotídeos ou polipeptídeos são tipicamente realizadas através da comparação de sequências das duas sequências ao longo de uma janela de comparação para identificar e localizar regiões locais de similaridade de sequências. A janela de comparação pode ser um segmento de pelo menos aproximadamente 20 posições contíguas, geralmente aproximadamente 50 até aproximadamente 200, mais geralmente aproximadamente 100 até aproximadamente 150 posições contíguas. Uma descrição do método é fornecida em Ausubel e outros supra.

[0394] Uma variedade de métodos para a determinação das relações entre sequências pode ser utilizada, incluindo o alinhamento manual e o alinhamento e análise de sequências auxiliados por computador. Esta última abordagem é uma abordagem preferida na presente invenção, por causa da maior circulação fornecida pelos métodos auxiliados pelo computador. Como citado anteriormente, uma variedade de programas de computador para a realização do alinhamento de sequências está disponível ou pode ser produzida por um versado.

[0395] Um exemplo de algoritmo que é adequado para a determinação da identidade de sequência e da similaridade de sequência é o algoritmo de BLAST, que é descrito em Altschul e outros (1990) J. Mol. Biol. 215: 403-410. O software para a realização da análise de BLAST está disponível publicamente, por exemplo, através da National Library of Medicine's National Center for Biotechnology Information (ncbi.nlm.nih; ver na world wide web (www) National Institutes of Health website do governo dos EUA (gov)). Este algoritmo envolve primeiro a identificação de

299/1027 pares de sequência de alto escore (HSPs) através da identificação de palavras curtas de comprimento W na sequência de busca, que combinam ou satisfazem algum escore T limite de valor positivo quando alinhadas com uma palavra do mesmo comprimento em uma sequência do banco de dados. T é referido como o limiar do escore da palavra vizinha (Altschul e outros supra). Estes encontros iniciais de palavras vizinhas atuam como sementes para iniciar as buscas para encontrar HSPs mais longas contendo as mesmas. Os encontros de palavras são então estendidos em ambas as direções junto com cada sequência para e até onde o escore do alinhamento cumulativo pode ser aumentado. Os escores cumulativos são calculados utilizando, para sequências de nucleotídeos, os parâmetros M (escore de recompensa para um par de resíduos que combinam; sempre > 0) e N (escore de penalidade para resíduos com pareamento errado; sempre < 0). Para as sequências de aminoácidos, é utilizada uma matriz de escore para calcular o escore cumulativo. A extensão dos encontros de palavras em cada direção é interrompida quando: o escore de alinhamento cumulativo diminui na quantidade X de seu valor máximo atingido; o escore cumulativo vai para zero ou abaixo, por causa do acúmulo de um ou mais alinhamentos de resíduos com escore negativo; ou o final de qualquer uma das sequências é atingido. Os parâmetros dos algoritmos de BLAST W, T e X determinam a sensibilidade e a velocidade do alinhamento. O programa BLASTN (para sequências de nucleotídeos) utiliza como parâmetros preestabelecidos um comprimento de palavras (W) de 11, uma expectativa (E) de 10, uma interrupção de 100, M = 5, N = -4 e uma comparação de ambos os filamentos.

300/1027

Para as sequências de aminoácidos, o programa BLASTP utiliza como parâmetros preestabelecidos um comprimento de palavras (W) de 3, uma expectativa (E) de 10 e a matriz de escore BLOSUM62 (ver Henikoff e Henikoff (1992) Proc. Natl. Acad. Sci. 89: 10915-10919). A não ser que seja indicado de outra forma, identidade de sequência se refere aqui à% de identidade de sequência gerada partindo de um tblastx utilizando a versão de NCBI do algoritmo nos ajustes preestabelecidos utilizando alinhamentos com espaços com o filtro desligado (ver, por exemplo, o website de NIH NLM NCBI em ncbi.nlm.nih, supra).

[0396] Em adição ao cálculo do percentual de identidade de sequência, o algoritmo de BLAST também realiza uma análise estatística da similaridade entre duas sequências (ver, por exemplo, Karlin e Altschul (1993) Proc. Natl. Acad. Sci. 90: 5873-5787). Uma medida de similaridade fornecida pelo algoritmo de BLAST é a probabilidade da menor soma (P(N)), que fornece uma indicação da probabilidade através da qual uma combinação entre duas sequências de nucleotídeos ou de aminoácidos ocorreria ao acaso. Por exemplo, um ácido nucléico é considerado similar a uma sequência de referência (e, portanto, neste contexto, homólogo) se a probabilidade da menor soma em uma comparação do ácido nucléico ao ácido nucléico de referência for menor que aproximadamente 0,1 ou menor que aproximadamente 0,01 e ou ainda menor que aproximadamente 0,001. Um exemplo adicional de um algoritmo de alinhamento de sequência útil é PILEUP. PILEUP cria um alinhamento múltiplo de sequências partindo de um grupo de sequências relacionadas utilizando alinhamentos em pares

301/1027 progressivos. O programa pode alinhar, por exemplo, até 300 sequências de um comprimento máximo de 5.000 letras.

[0397] O sistema ou o computador integrado tipicamente inclui uma interface de entrada do usuário permitindo que um usuário visualize seletivamente um ou mais registros de sequências correspondentes a um ou mais filamentos de caracteres, assim como um conjunto de instruções que alinha o um ou mais filamentos de caracteres um com o outro ou com um filameto de caracteres adicional para identificar uma ou sequência. O sistema pode mais regiões de similaridade de incluir uma ligação de um ou mais filamentos com um fenótipo ou função gênica de caracteres

particular.	Tipicamente, o sistema inclui	um elemento	de
saída que	pode	ser lido pelo usuário	que exibe	um
alinhamento	produzido pelo conjunto de	instruções	de
alinhamento.
[0398]	Os	métodos desta invenção podem	ser
implementado	s em	um ambiente de computador	localizado	ou

distribuído.

métodos podem

Em um ambiente distribuído, os ser implementados em um único computador compreendendo vários processadores ou em vários computadores. Os computadores podem estar ligados, por exemplo, através de um condutor comum, mas preferencialmente o(s) computador(es) é(são) nós em uma rede. A rede pode ser uma rede generalizada ou uma dedicada local ou de área ampla e, em certas modalidades preferidas, os computadores podem ser componentes de uma intranet ou de uma internet.

[0399] Assim, a invenção fornece métodos para a identificação de uma sequência similar ou homóloga a um ou mais polinucleotídeos como citado aqui ou um ou mais

302/1027 polipeptídeos alvo codificados pelos polinucleotídeos ou citados diferentemente aqui e pode incluir a ligação ou a associação de um certo fenótipo ou função gênica vegetal com uma sequência. Nos métodos, é fornecido um banco de dados de sequências (localmente ou através de uma inter ou intranet) e é feita uma busca contra o banco de dados de sequências utilizando as sequências relevantes contidas aqui e fenótipos ou funções gênicas vegetais associadas.

[0400] Qualquer sequência contida aqui pode ser inserida no banco de dados, antes ou depois da busca no banco de dados. Isto é responsável tanto pela expansão do banco de dados quanto, se feito antes da etapa de busca, pela inserção de sequências de controle no banco de dados. As sequências de controle podem ser detectadas através da busca para garantir a integridade geral tanto do banco de dados quando da busca. Como citado, a busca pode ser realizada utilizando um web browser com base na interface. Por exemplo, o banco de dados pode ser um banco de dados público centralizado tal como, os citados aqui e a busca pode ser feita partindo de um terminal remoto ou de um computador através de uma internet ou intranet.

[0401] Qualquer sequência contida aqui pode ser utilizada para identificar uma sequência similar, homóloga, paráloga ou ortóloga em uma outra planta. Isto fornece meios para a identificação de sequências endógenas em outras plantas que podem ser úteis para alterar uma característica de plantas da progênie, que resulta do cruzamento de duas plantas de linhagens diferentes. Por exemplo, as sequências que codificam um ortólogo de qualquer uma das sequências contidas aqui que ocorrem

303/1027 naturalmente em uma planta com uma característica desejada podem ser identificadas utilizando as sequências divulgadas aqui. A planta é então cruzada com uma segunda planta da mesma espécie, mas que não possui a característica desejada para produzir uma progênie que pode ser então utilizada em experimentos adicionais de cruzamento para produzir a característica desejada na segunda planta. Portanto, a planta da progênie resultante não contém transgenes; a expressão da sequência endógena pode ser ainda regulada através do tratamento com um reagente químico particular ou outros meios, tal como,

EMR. Alguns exemplos de tais compostos bem-conhecidos na técnica incluem: etileno;

citoquininas;

compostos fenólicos, que estimulam a transcrição dos genes necessários para a infecção;

monossacarídeos específicos e ambientes ácidos que potencializam a indução do gene vir; polissacarídeos ácidos que induzem um ou mais genes cromossômicos;

e opinas;

outros mecanismos incluem o tratamento de luz ou de escuridão (para uma revisão de exemplos de tais tratamentos, ver,

Winans (1992) Microbiol. Rev.

:

12-31;

Eyal e outros

Plant Mol. Biol. 19: 589-599;

Chrispeels e outros (2000) Plant Mol. Biol. 42: 279-290;

Piazza e outros (2002) Plant Physiol. 128: 1077-1086).

[0402] A Tabela 7 lista sequências descobertas como sendo ortólogas a um número de fatores de transcrição representativo da presente invenção. Os títulos das colunas incluem os fatores de transcrição listados (a) pela SEQ ID N^o: da sequência de Arabidopsis que foi utilizada para descobrir a sequência ortóloga sem ser de Arabidopsis; (b) pelo identificador de sequências GID da sequência de

304/1027

Arabidopsis; (c) pelo Número de Acesso do Sequência Identifier ou do GenBank da sequência ortóloga; (d) pelas espécies das quais a sequência ortóloga é derivada; (e) pela SEQ ID N^o: de sequência não ortóloga de Arabidopsis e (e) pela comparação em pares com a probabilidade da menor soma de cada sequência ortóloga à sequência similar de Arabidopsis determinada através da análise BLAST.

Tabela 7. Ortólogos de Genes de Fatores de Transcrição Representativos de Arabidopsis

SEQ ID N : de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID N	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID N : da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
2	G2	Petunia x hybrida	AF132001		1,00E-122
2	G2	Pisum sativum	AF325506		1,00E-121
2	G2	Antirrhinum majus	AY223518		1,00E-120
2	G2	Malus x domestica	AF332215		1,00E-119
2	G2	Lycopersicon esculentum	BM412075		1,00E-105
2	G2	Picea abies	AF253970		1,00E-103
2	G2	Solanum tuberosum	BQ120583		3,00E-98
2	G2	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	CB649669		1,00E-96
2	G2	Lactuca sativa	BU000526		1,00E-93
2	G2	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	CB624207		5,00E-92
2	G2	Petunia x	gi5081555		2,70E-123

305/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		hybrida
2	G2	Pisam sativum	gi13173164		1,50E-117
2	G2	Antirrhinum majus	gi28894443		8,20E-113
2	G2	Malus x domestica	gi21717332		2,00E-111
2	G2	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32483001		6,90E-105
2	G2	Picea abies	gi11181610		8,20E-102
2	G2	Hordeum vulgare	gi18476518		3,00E-85
2	G2	Zea mays	gi2944040		1,00E-84
2	G2	Hyacinthus orientalis	gi5360996		1,90E-79
2	G2	Glycine max	gi25898745		2,60E-46
3	G12	Glycine max	BG045111,1	671
3	G12	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER22720_1	672
3	G12	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER22720_2	673
3	G12	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER272_47	674
3	G12	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER272_51	675
3	G12	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER59385_1	676
3	G12	Glycine max	LIB3093-031- Q1-K1-C10	677
3	G12	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER160586_ 1	678

306/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
3	G12	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER76674_1	679
3	G12	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER76674_4	680
3	G12	Oryza sativa	OSC102287,C1,p 11,fg	681
3	G12	Oryza sativa	OSC15346,C1,p7 1,fg	682
3	G12	Oryza sativa	OSC32395,C1,p3 ,fg	683
3	G12	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER88196_1	684
3	G12	Oryza sativa	Os_S32369	1557
3	G12	Oryza sativa	Os_S80194	1558
3	G12	Glycine max	Gma_S5071803	1632
3	G12	Medicago truncatula	Mtr_S5349908	1690
3	G12	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 49683	1937
3	G12	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 54594	1938
3	G12	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-47313	1939
4	G12	Brassica oleracea	BH429963		4,00E-85
4	G12	Gossypium arboreum	BQ405872		3,00E-51
4	G12	Medicago truncatula	BG648561		2,00E-47
4	G12	Thellungiella halophila	BM985484		5,00E-47
4	G12	Brassica napus	CD834636		6,00E-46
4	G12	Glycine max	BG046836		5,00E-40

307/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
4	G12	Lupinus albus	CA526351		1,00E-39
4	G12	Oryza sativa	OSJN00057		1,00E-39
4	G12	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK061095		1,00E-39
4	G12	Helianthus argophyllus	CF089073		2,00E-39
4	G12	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi21740879		8,40E-40
4	G12	Oryza sativa	gi5091503		1,30E-38
4	G12	Glycine max	gi31324058		2,60E-36
4	G12	Lycopersicon esculentum	gi27436378		7,30E-22
4	G12	Zea mays	gi21908034		7,30E-22
4	G12	Catharanthus roseus	gi8980313		3,40E-20
4	G12	Stylosanthes hamata	gi4099921		4,80E-19
4	G12	Fagus sylvatica	gi18496063		2,70E-18
4	G12	Hordeum vulgare	gi27960757		8,40E-18
4	G12	Nicotiana tabacum	gi10798644		9,30E-18
6	G15	Brassica napus	BD274518		1,0e-999
6	G15	Glycine max	AX555216		1,00E-131
6	G15	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK106306		1,00E-116

308/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
6	G15	Oryza sativa	AX555220		1,00E-116
6	G15	Nuphar advena	CD475882		1,00E-91
6	G15	Zea mays	AY109146		5,00E-89
6	G15	Brassica oleracea	BZ056530		1,00E-88
6	G15	Physcomitrella patens subesp. patens	BJ188928		3,00E-84
6	G15	Lactuca sativa	BQ864461		1,00E-76
6	G15	Triticum aestivum	BJ312281		6,00E-73
6	G15	Glycine max	gi25898745		1,50E-132
6	G15	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi28201307		1,70E-122
6	G15	Oryza sativa	gi25898752		6,90E-118
6	G15	Brassica napus	gi21069051		1,00E-88
6	G15	Zea mays	gi2652938		7,00E-84
6	G15	Malus x domestica	gi21717332		1,50E-45
6	G15	Picea abies	gi11181612		1,70E-45
6	G15	Pisum sativum	gi13173164		1,90E-45
6	G15	Hordeum vulgare	gi18476518		3,40E-43
6	G15	Antirrhinum majus	gi28894443		9,10E-43
7	G30	Oryza sativa	G3381	2126	5,00E-33
7	G30	Glycine max	AW308784,1	685
7	G30	Glycine max	BG790680,1	686
7	G30	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER602185_	687

309/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
			1
7	G30	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER91218_1	688
7	G30	Glycine max	LIB5118-009- Q1-PF1-F2	689
7	G30	Oryza sativa	OSC20174,C1,p2 ,fg	690
7	G30	Zea mays	LIB4756-134- A1-K1-G10	691
7	G30	Oryza sativa	Os_S102414	1559
7	G30	Glycine max	Gma_S5001644	1633
7	G30	Zea mays	Zm_S11513768	1754
7	G30	Triticum aestivum	Ta_S274849	1834
8	G30	Brassica oleracea	BH517030		1,00E-37
8	G30	Lycopersicon esculentum	AI776626		2,00E-35
8	G30	Triticum aestivum	BT009060		2,00E-33
8	G30	Sorghum bicolor	BZ337899		1,00E-32
8	G30	Eucalyptus grandis	CB967722		1,00E-31
8	G30	Zea mays	CC349655		1,00E-31
8	G30	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AP004623		3,00E-31
8	G30	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01005323		3,00E-31

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SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
8	G30	Oryza sativa	AP003891		3,00E-31
8	G30	Glycine max	BG790680		4,00E-29
8	G30	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi28071302		3,60E-32
8	G30	Lycopersicon esculentum	gi2213783		7,90E-26
8	G30	Catharanthus roseus	gi8980313		4,70E-24
8	G30	Matricaria chamomilla	gi17385636		1,10E-23
8	G30	Oryza sativa	gi12597874		1,80E-23
8	G30	Mesembryanthem um crystallinum	gi32401273		3,70E-23
8	G30	Nicotiana tabacum	gi1732406		5,20E-23
8	G30	Nicotiana sylvestris	gi8809571		8,70E-22
8	G30	Cicer arietinum	gi24817250		1,10E-21
8	G30	Glycine max	gi21304712		1,40E-21
9	G46	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER15812_1	692
9	G46	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER15812 2	693
9	G46	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER164789_ 1	694
9	G46	Glycine max	GLYMA-28NOV01CLUSTER164789_ 2	695

311/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
9	G46	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER2315_2	696
9	G46	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER605 217	697
9	G46	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER605_219	698
9	G46	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER91242_1	699
9	G46	Oryza sativa	OSC101836,C1,p 4,fg	700
9	G46	Zea mays	LIB3062-015- Q1-K1-F11	701
9	G46	Lycopersicon esculentum	Les_S5295471	1925
9	G46	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 44432	1940
9	G46	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 49046	1941
9	G46	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 49310	1942
10	G46	Brassica oleracea	BH970151		3,00E-83
10	G46	Brassica napus	CD834612		3,00E-70
10	G46	Lycopersicon esculentum	AY192370		3,00E-38
10	G46	Solanum tuberosum	BG592132		2,00E-37
10	G46	Medicago truncatula	BF637755		4,00E-32
10	G46	Glycine max	BQ740307		7,00E-31
10	G46	Lotus japonicus	AV423260		4,00E-30
10	G46	Populus	BU814218		8,00E-30

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SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		tremula x Populus tremuloides
10	G46	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	BU871861		8,00E-30
10	G46	Vitis vinifera	BM436925		2,00E-29
10	G46	Brassica oleracea	gi15054374		2,50E-47
10	G46	Lycopersicon esculentum	gi28274834		4,20E-38
10	G46	Nicotiana tabacum	gi1208497		5,90E-31
10	G46	Nicotiana sylvestris	gi8809575		3,50E-29
10	G46	Oryza sativa	gi14140141		4,50E-29
10	G46	Matricaria chamomilla	gi17385636		1,80E-28
10	G46	Mesembryanthem um crystallinum	gi32401273		5,00E-28
10	G46	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi31433532		1,00E-27
10	G46	Catharanthus roseus	gi8980313		1,20E-24
10	G46	Glycine max	gi21304712		6,80E-22
11	G47	Glycine max	G3643	2225	2,00E-29
11	G47	Oryza sativa	G3644	2227	3,00E-25
11	G47	Brassica rapa	G3645	2229	1,00E-63
11	G47	Brassica oleracea	G3646	2231	2,00E-46

313/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
11	G47	Zinnia elegans	G3647	2233	3,00E-33
11	G47	Oryza sativa	G3649	2235	4,00E-23
11	G47	Oryza sativa	G3651	2237	3,00E-20
11	G47	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER115749_ 1	702
11	G47	Oryza sativa	OSC21268,C1,p1 2,fg	703
11	G47	Hordeum vulgare	Hv_S7318	1718
12	G47	Brassica rapa subesp. pekinensis	BG543936		2,00E-60
12	G47	Brassica oleracea	BH420519		4,00E-43
12	G47	Zinnia elegans	AU292603		5,00E-30
12	G47	Medicago truncatula	BE320193		2,00E-24
12	G47	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01000718		2,00E-22
12	G47	Oryza sativa	AP003379		2,00E-22
12	G47	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AC124836		1,00E-20
12	G47	Zea mays	BZ403609		2,00E-20
12	G47	Solanum tuberosum	BQ513932		7,00E-17
12	G47	Pinus taeda	BQ698717		1,00E-16
12	G47	Oryza sativa (grupo do	gi20161239		8,50E-24

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SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		cultivar japonica)
12	G47	Oryza sativa	gi14140155		8,30E-17
12	G47	Lycopersicon esculentum	gi25992102		2,80E-16
12	G47	Glycine max	gi31324058		2,80E-16
12	G47	Zea mays	gi21908034		8,60E-15
12	G47	Brassica napus	gi20303011		2,30E-14
12	G47	Atriplex hortensis	gi8571476		3,70E-14
12	G47	Catharanthus roseus	gi8980313		2,60E-13
12	G47	Hordeum vulgare	gi19071243		5,40E-13
12	G47	Matricaria chamomilla	gi17385636		1,40E-12
14	G129	Brassica napus	BNABAG1X		1,00E-133
14	G129	Vitis vinifera	CB969483		3,00E-94
14	G129	Silene latifolia	SLSLM1		1,00E-93
14	G129	Panax ginseng	PGORFGAG2		1,00E-92
14	G129	Gossypium hirsutum	AY083173		3,00E-92
14	G129	Malus x domestica	MDO251118		5,00E-92
14	G129	Corylus avellana	AF027376		2,00E-91
14	G129	Lycopersicon esculentum	TOMTAG1A		3,00E-91
14	G129	Betula pendula	BPE252071		2,00E-90
14	G129	Nicotiana tabacum	TOBNAG1A		3,00E-90

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SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
14	G129	Brassica napus	gi167126		3,30E-125
14	G129	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	gi2981131		1,00E-89
14	G129	Silene latifolia	gi602900		2,20E-89
14	G129	Panax ginseng	gi3913005		9,30E-89
14	G129	Malus x domestica	gi16973298		2,50E-88
14	G129	Gossypium hirsutum	gi19743774		2,50E-88
14	G129	Corylus avellana	gi4103757		6,60E-88
14	G129	Lycopersicon esculentum	gi3913004		1,70E-87
14	G129	Betula pendula	gi8745072		3,60E-87
14	G129	Helianthus annuus	gi27657747		9,60E-87
16	G131	Brassica oleracea	BOU67452		1,00E-139
16	G131	Brassica oleracea var. botrytis	BOL505845		1,00E-139
16	G131	Sinapis alba	SAAP1		1,00E-137
16	G131	Brassica rapa subesp. pekinensis	BCA251300		1,00E-109
16	G131	Pisum sativum	PSA279089		4,00E-97
16	G131	Betula pendula	BPMIADS3GN		1,00E-95
16	G131	Populus tremuloides	AF034094		3,00E-92
16	G131	Daucus carota	DCA271147		2,00E-90

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SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
16	G131	Malus x domestica	MDAJ759		3,00E-90
16	G131	Heuchera americana	AY306148		2,00E-88
16	G131	Brassica oleracea	gi1561780		6,20E-131
16	G131	Brassica oleracea var. botrytis	gi23304680		6,20E-131
16	G131	Sinapis alba	gi1076477		3,90E-129
16	G131	Brassica rapa subesp. pekinensis	gi6469345		8,30E-104
16	G131	Pisum sativum	gi13446154		2,30E-92
16	G131	Betula pendula	gi1483228		2,10E-91
16	G131	Populus tremuloides	gi28381537		4,00E-88
16	G131	Antirrhinum majus	gi16052		3,30E-86
16	G131	Daucus carota	gi22091473		5,30E-86
16	G131	Heuchera americana	gi32478021		3,40E-84
18	G133	Brassica oleracea	BOU67453		1,00E-125
18	G133	Brassica napus	AF124814		1,00E-118
18	G133	Petunia x hybrida	PHGP		2,00E-74
18	G133	Antirrhinum majus	AJ559554		8,00E-74
18	G133	Nicotiana tabacum	NTMADSBOX		8,00E-73
18	G133	Vitis vinifera	CB971393		1,00E-71
18	G133	Solanum	STPD4		5,00E-70

317/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		tuberosum
18	G133	Medicago sativa	ALFMBP		1,00E-69
18	G133	Glycine max	AX478039		1,00E-69
18	G133	Chrysanthemum x morifolium	AY173060		2,00E-68
18	G133	Brassica oleracea	gi1561782		5,30E-118
18	G133	Brassica napus	gi6841082		1,50E-111
18	G133	Brassica oleracea var. botrytis	gi7446540		1,20E-109
18	G133	Petunia x hybrida	gi22665		4,00E-72
18	G133	Antirrhinum majus	gi100479		1,70E-71
18	G133	Nicotiana tabacum	gi1370276		1,20E-70
18	G133	Solanum tuberosum	gi431226		1,60E-68
18	G133	Medicago sativa	gi1870206		8,90E-68
18	G133	Chrysanthemum x morifolium	gi27804367		1,00E-66
18	G133	Gerbera hybrida	gi4218171		2,10E-66
20	G134	Cucumis sativus	AF043255		2,00E-67
20	G134	Malus x domestica	MDO291490		2,00E-66
20	G134	Petunia x hybrida	PHFBP3		6,00E-64
20	G134	Vitis vinifera	CB970125		2,00E-62

318/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
20	G134	Lactuca sativa	BU013737		3,00E-62
20	G134	Gerbera hybrida	GHY9726		3,00E-62
20	G134	Betula pendula	BPE488589		3,00E-61
20	G134	Eucalyptus grandis	AF029976		6,00E-61
20	G134	Chrysanthemum x morifolium	AY173061		1,00E-60
20	G134	Silene latifolia	SLSLM2		3,00E-60
20	G134	Cucumis sativus	gi4105097		1,50E-65
20	G134	Malus x domestica	gi12666533		7,40E-64
20	G134	Petunia x hybrida	gi2129971		1,60E-61
20	G134	Gerbera hybrida	gi4218173		6,90E-61
20	G134	Betula pendula	gi28874430		6,20E-60
20	G134	Chrysanthemum x morifolium	gi27804369		2,70E-59
20	G134	Eucalyptus grandis	gi3114586		5,60E-59
20	G134	Tulipa gesneriana	gi30172225		2,40E-58
20	G134	Silene latifolia	gi602902		2,40E-58
20	G134	Helianthus annuus	gi27657749		3,10E-58
22	G135	Brassica rapa subesp. pekinensis	BCA251300		1,00E-115
22	G135	Brassica	BNADBDA		1,00E-109

319/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		oleracea
22	G135	Brassica oleracea var. botrytis	BOL505847		1,00E-109
22	G135	Sinapis alba	SAAP1		1,00E-107
22	G135	Malus x domestica	MDAJ759		3,00E-83
22	G135	Pisum sativum	PSA279089		3,00E-83
22	G135	Nicotiana tabacum	AF009127		5,00E-81
22	G135	Betula pendula	BPMADS3GN		8,00E-80
22	G135	Nicotiana sylvestris	AF068726		8,00E-80
22	G135	Populus tremuloides	AF034093		2,00E-79
22	G135	Brassica rapa subesp. pekinensis	gi6469345		2,00E-109
22	G135	Brassica oleracea	gi1561784		1,70E-103
22	G135	Brassica oleracea var. botrytis	gi23304680		9,60E-103
22	G135	Sinapis alba	gi1076477		1,20E-102
22	G135	Pisum sativum	gi13446154		8,30E-81
22	G135	Nicotiana tabacum	gi4102113		1,80E-78
22	G135	Betula pendula	gi1483228		1,60E-77
22	G135	Populus tremuloides	gi28381535		1,60E-77
22	G135	Nicotiana sylvestris	gi5070144		2,00E-77
22	G135	Daucus carota	gi22091473		3,00E-76

320/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
24	G136	Brassica napus	AY036062		1,00E-126
24	G136	Liquidambar styraciflua	AF103903		1,00E-89
24	G136	Vitis vinifera	AF265562		1,00E-88
24	G136	Rosa rugosa	AB025643		3,00E-88
24	G136	Medicago truncatula	CB066648		4,00E-88
24	G136	Malus x domestica	MDO251117		6,00E-88
24	G136	Gossypium arboreum	BQ411600		4,00E-86
24	G136	Nicotiana tabacum	TOBNAG1A		8,00E-84
24	G136	Panax ginseng	PGORFGAG2		2,00E-83
24	G136	Betula pendula	BPE252071		3,00E-83
24	G136	Brassica napus	gi12655901		1,70E-119
24	G136	Liquidambar styraciflua	gi5031217		9,60E-87
24	G136	Rosa rugosa	gi6970411		3,70E-85
24	G136	Malus x domestica	gi16973296		9,90E-85
24	G136	Vitis vinifera	gi14279306		1,10E-83
24	G136	Nicotiana tabacum	gi3913007		1,30E-80
24	G136	Betula pendula	gi8745072		2,20E-80
24	G136	Panax ginseng	gi3913005		3,60E-80
24	G136	Corylus avellana	gi4103757		5,80E-80
24	G136	Petunia integrifolia	gi848999		5,80E-80
26	G137	Brassica oleracea var.	BOL508053		1,00E-130

321/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		botrytis
26	G137	Malus domestica	U78947		1,00E-105
26	G137	Malus x domestica	MDAJ1681		1,00E-104
26	G137	Cucumis sativus	AF135962		1,00E-102
26	G137	Vitis vinifera	AF373601		1,00E-100
26	G137	Populus tremuloides	AF185574		1,00E-100
26	G137	Fragaria x ananassa	AF484683		6,00E-93
26	G137	Gossypium arboreum	BG440326		2,00E-90
26	G137	Prunus persica	BU048398		4,00E-89
26	G137	Antirrhinum majus	AMDEFH49G		2,00E-87
26	G137	Brassica oleracea var. botrytis	gi23304688		2,10E-123
26	G137	Malus x domestica	gi3290209		7,70E-101
26	G137	Malus domestica	gi7488622		7,70E-101
26	G137	Cucumis sativus	gi6683777		1,70E-98
26	G137	Populus tremuloides	gi28372802		1,30E-96
26	G137	Vitis vinifera	gi20385584		1,70E-96
26	G137	Fragaria x ananassa	gi28628841		1,90E-90
26	G137	Antirrhinum majus	gi1239961		2,90E-85

322/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
26	G137	Lycopersicon esculentum	gi24967143		1,10E-83
26	G137	Petunia x hybrida	gi13384048		3,00E-83
28	G138	Brassica oleracea var. botrytis	BOL508052		1,00E-114
28	G138	Petunia x hybrida	AF335236		2,00E-72
28	G138	Lycopersicon esculentum	AY294329		3,00E-72
28	G138	Nicotiana tabacum	AF068723		5,00E-72
28	G138	Capsicum annuum	AF129875		1,00E-70
28	G138	Malus domestica	U78947		3,00E-70
28	G138	Malus x domestica	MDAJ1681		1,00E-69
28	G138	Pinus radiata	PRU42399		2,00E-69
28	G138	Antirrhinum majus	AMDEFH49G		2,00E-69
28	G138	Daucus carota	DCA271151		8.00E-69
28	G138	Brassica oleracea var. botrytis	gi23304686		4,20E-109
28	G138	Petunia x hybrida	gi13384050		5,90E-71
28	G138	Nicotiana tabacum	gi8567991		1,20E-70
28	G138	Lycopersicon esculentum	gi31747208		2,60E-70
28	G138	Capsicum	gi6651033		4,80E-69

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SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		annuum
28	G138	Antirrhinum majus	gi1239961		2,10E-68
28	G138	Malus x domestica	gi3290209		4,30E-68
28	G138	Malus domestica	gi7488622		4,30E-68
28	G138	Daucus carota	gi22091481		8,90E-68
28	G138	Pinus radiata	gi1206003		1,50E-67
30	G139	Brassica oleracea var. botrytis	BOL508053		1,00E-115
30	G139	Populus tremuloides	AF185574		1,00E-100
30	G139	Cucumis sativus	AF135962		4,00E-97
30	G139	Malus domestica	U78947		2,00E-96
30	G139	Malus x domestica	MDAJ1681		5,00E-96
30	G139	Vitis vinifera	AF373601		9,00E-92
30	G139	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	BU869391		9,00E-89
30	G139	Fragaria x ananassa	AF484683		8,00E-88
30	G139	Prunus persica	BU048398		1,00E-86
30	G139	Antirrhinum majus	AMDEFH49G		8,00E-85
30	G139	Brassica oleracea var. botrytis	gi23304688		6,00E-110

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SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
30	G139	Populus tremuloides	gi28372802		2,20E-96
30	G139	Cucumis sativus	gi6683777		2,00E-93
30	G139	Malus x domestica	gi3290209		2,60E-93
30	G139	Malus domestica	gi7488622		2,60E-93
30	G139	Vitis vinifera	gi20385584		1,00E-89
30	G139	Fragaria x ananassa	gi28628841		6,80E-86
30	G139	Antirrhinum majus	gi1239961		1,30E-82
30	G139	Petunia x hybrida	gi13384048		2,00E-79
30	G139	Lycopersicon esculentum	gi24967143		2,30E-78
32	G140	Brassica napus	CD818823		1,00E-112
32	G140	Liquidambar styraciflua	AF103903		7,00E-88
32	G140	Vitis vinifera	AF265562		9,00E-88
32	G140	Medicago truncatula	CB066648		2,00E-87
32	G140	Gossypium arboreum	BQ411600		2,00E-85
32	G140	Malus x domestica	MDO251117		4,00E-83
32	G140	Rosa rugosa	AB025643		5,00E-83
32	G140	Nicotiana tabacum	TOBNAG1A		1,00E-80
32	G140	Petunia integrifolia	PETFHPP		1,00E-80
32	G140	Citrus	CB290594		2,00E-80

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SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		sinensis
32	G140	Brassica napus	gi12655901		4,10E-102
32	G140	Liquidambar styraciflua	gi5031217		6,10E-85
32	G140	Vitis vinifera	gi14279306		8,00E-83
32	G140	Rosa rugosa	gi6970411		3,10E-81
32	G140	Malus x domestica	gi16973296		4,60E-80
32	G140	Nicotiana tabacum	gi3913007		3,70E-78
32	G140	Petunia integrifolia	gi848999		2,00E-77
32	G140	Petunia x hybrida	gi2129972		5,40E-77
32	G140	Panax ginseng	gi3913005		5,40E-77
32	G140	Lycopersicon esculentum	gi3913004		8,80E-77
34	G142	Brassica oleracea var. botrytis	BOL508409		1,00E-127
34	G142	Vitis vinifera	AF373602		1,00E-88
34	G142	Malus domestica	MDAJ763		3,00E-84
34	G142	Petunia x hybrida	AB031035		2,00E-77
34	G142	Agapanthus praecox	AB079261		1,00E-76
34	G142	Chrysanthemum x morifolium	AY173062		8,00E-75
34	G142	Oryza sativa	OSU78782		6,00E-74
34	G142	Oryza sativa (grupo do cultivar	AK069103		6,00E-74

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SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		japonica)
34	G142	Zea mays	MZEMADSB		3,00E-73
34	G142	Triticum aestivum	AB007505		3,00E-72
34	G142	Brassica oleracea var. botrytis	gi23304710		6,50E-120
34	G142	Vitis vinifera	gi20385586		3,30E-86
34	G142	Malus domestica	gi3646340		1,20E-81
34	G142	Petunia x hybrida	gi7544096		1,60E-75
34	G142	Agapanthus praecox	gi29467050		1,50E-74
34	G142	Oryza sativa	gi2286109		2,20E-73
34	G142	Chrysanthemum x morifolium	gi27804371		4,50E-73
34	G142	Zea mays	gi7446515		1,50E-72
34	G142	Lolium perenne	gi28630959		8,40E-72
34	G142	Triticum aestivum	gi3688591		2,20E-71
36	G145	Sinapis alba	SAMADSD		1,00E-127
36	G145	Vitis vinifera	CB980340		5,00E-98
36	G145	Lycopersicon esculentum	AY294330		5,00E-97
36	G145	Nicotiana sylvestris	AF068722		8,00E-96
36	G145	Pisum sativum	PSAJ3318		1,00E-95
36	G145	Brassica napus	CD814473		2,00E-95
36	G145	Petunia x hybrida	PETTRNSFB		2,00E-95
36	G145	Antirrhinum	AMDEFH200		3,00E-95

327/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		majus
36	G145	Gossypium hirsutum	AF538965		5,00E-95
36	G145	Populus trenuiloides	AY235222		7,00E-95
36	G145	Sinapis alba	gi1617211		7,30E-121
36	G145	Vitis vinifera	gi20385588		6,00E-94
36	G145	Lycopersicon esculentun	gi31747210		2,00E-93
36	G145	Pisun sativum	gi3184054		6,90E-93
36	G145	Nicotiana sylvestris	gi5070138		2,30E-92
36	G145	Petunia x hybrida	gi1181186		4,80E-92
36	G145	Populus tremuloides	gi30314024		7,90E-92
36	G145	Antirrhinum majus	gi1239959		1,60E-91
36	G145	Gossypium hirsutum	gi23194451		2,10E-91
36	G145	Chrysanthenun x morifolium	gi27804361		1,50E-88
38	G146	Brassica napus	CD818636		1,00E-104
38	G146	Gossypium hirsutum	AF538966		1,00E-91
38	G146	Gossypium arboreum	BG441292		1,00E-90
38	G146	Medicago truncatula	BI311053		3,00E-89
38	G146	Cucumis sativus	AF022377		4,00E-89
38	G146	Vitis vinifera	CB975703		1,00E-88
38	G146	Momordica	AY178837		1,00E-87

328/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		charantia
38	G146	Glycine max	AW184799		2,00E-82
38	G146	Phaseolus coccineus	CA902463		5,00E-79
38	G146	Malus domestica	MDAJ762		7,00E-79
38	G146	Gossypium hirsutum	gi23194453		8,40E-88
38	G146	Cucumis sativus	gi4103342		1,40E-85
38	G146	Vitis vinifera	gi20385590		2,60E-84
38	G146	Momordica charantia	gi27763670		8,90E-84
38	G146	Agapanthus praecox	gi29467048		1,30E-75
38	G146	Petunia x hybrida	gi1568513		1,00E-73
38	G146	Hyacinthus orientalis	gi21955182		6,60E-72
38	G146	Panax ginseng	gi3913005		7,50E-71
38	G146	Lycopersicon esculentum	gi24967137		1,60E-70
38	G146	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	gi2981133		8,70E-70
39	G148	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER24877_1	704
39	G148	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER99362_1	705
39	G148	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER865_1	706
39	G148	Oryza sativa	OSC101589,C1,p	707

329/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
			14,fg
39	G148	Zea mays	LIB4766-083- R1-K1-A9	708
39	G148	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER914_1	709
39	G148	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER914_14	710
39	G148	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER914 2	711
39	G148	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER914_3	712
39	G148	Oryza sativa	Os_S31752	1560
39	G148	Oryza sativa	Os_S63871	1561
39	G148	Oryza sativa	Os_S65486	1562
39	G148	Zea mays	Zm_S11418374	1755
39	G148	Zea mays	Zm_S11418375	1756
39	G148	Triticum aestivum	Ta_S66204	1835
39	G148	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 44128	1943
39	G148	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-42436	1944
40	G148	Brassica oleracea var. botrytis	BOL508409		3,00E-74
40	G148	Malus domestica	MDAJ763		2,00E-65
40	G148	Vitis vinifera	AF373602		3,00E-64
40	G148	Petunia x hybrida	AB031035		1,00E-59
40	G148	Chrysanthemum x morifolium	AY173062		1,00E-58
40	G148	Oryza sativa	OSU78782		3,00E-57

330/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
40	G148	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK069103		3,00E-57
40	G148	Triticum aestivum	AB007505		1,00E-56
40	G148	Lolium perenne	AY198329		1,00E-55
40	G148	Poa annua	AF372840		5,00E-55
40	G148	Brassica oleracea var. botrytis	gi23304710		1,70E-73
40	G148	Malus domestica	gi3646340		6,50E-65
40	G148	Vitis vinifera	gi20385586		7,40E-64
40	G148	Petunia x hybrida	gi7544096		7,10E-59
40	G148	Chrysanthemum x morifolium	gi27804371		2,20E-57
40	G148	Triticum aestivum	gi3688591		3,50E-57
40	G148	Oryza sativa	gi2286109		4,50E-57
40	G148	Lolium perenne	gi28630959		5,20E-56
40	G148	Poa annua	gi13958339		8,40E-56
40	G148	Agapanthus praecox	gi29467050		9,70E-55
42	G151	Brassica napus	BNU22681		1,00E-94
42	G151	Selaginella remotifolia	AB086021		5,00E-39
42	G151	Lycopodium annotinum	AF425598		5,00E-37
42	G151	Helianthus annuus	BQ970680		2,00E-36
42	G151	Pinus radiata	PRU42400		9,00E-36

331/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
42	G151	Gnetum parvifolium	AB022665		1,00E-35
42	G151	Gnetum gnemon	GGN132215		1,00E-35
42	G151	Pinus resinosa	PRMADS1		2,00E-35
42	G151	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AY177696		6,00E-35
42	G151	Oryza sativa	OSU78782		8,00E-35
42	G151	Brassica napus	gi3831486		9,40E-96
42	G151	Selaginella remotifolia	gi29467138		2,20E-39
42	G151	Lycopodium annotinum	gi21396795		1,80E-37
42	G151	Pinus radiata	gi1206005		1,60E-36
42	G151	Gnetum gnemon	gi5019456		2,60E-36
42	G151	Gnetum parvifolium	gi6092009		2,60E-36
42	G151	Pinus resinosa	gi1702951		3,40E-36
42	G151	Oryza sativa	gi2286109		5,50E-36
42	G151	Zea mays	gi7446514		5,50E-36
42	G151	Lolium perenne	gi28630959		1,10E-35
43	G153	Oryza sativa	G3479	2189	2,00E-59
43	G153	Glycine max	G3484	2191	3,00E-77
43	G153	Glycine max	G3485	2193	9,00E-63
43	G153	Zea mays	G3487	2195	5,00E-63
43	G153	Zea mays	G3488	2197	2,00E-61
43	G153	Zea mays	G3489	2199	6,00E-66
43	G153	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER393266_ 1	713

332/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
43	G153	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER84992_1	714
43	G153	Oryza sativa	OSC19180,C1,p1 4,fg	715
43	G153	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER124_1	716
43	G153	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER226078_ 2	717
43	G153	Zea mays	uC- zmflMo17202h01	718
43	G153	Glycine max	Gma_S5139103	1634
43	G153	Zea mays	Zm_S11418691	1757
43	G153	Zea mays	Zm_S11433900	1758
43	G153	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-362903	1945
43	G153	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-8562	1946
44	G153	Antirrhinum majus	AMDEFH125		1,00E-67
44	G153	Zea mays	AF112149		8,00E-63
44	G153	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AY177696		1,00E-62
44	G153	Glycine max	AW706936		5,00E-59
44	G153	Medicago truncatula	BQ164807		5,00E-59
44	G153	Lycopersicon esculentum	AW218280		5,00E-56
44	G153	Solanum tuberosum	BM405213		2,00E-55
44	G153	Medicago	MSU91964		6,00E-54

333/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		sativa
44	G153	Triticum aestivum	AX658813		3,00E-49
44	G153	Mesembryanthem um crystallinum	BE034403		3,00E-48
44	G153	Antirrhinum majus	gi1816459		2,10E-66
44	G153	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi30313677		2,90E-62
44	G153	Zea mays	gi29611976		7,70E-62
44	G153	Medicago sativa	gi1928874		1,30E-52
44	G153	Ipomoea batatas	gi15081463		6,90E-45
44	G153	Oryza sativa	gi7592642		9,10E-43
44	G153	Lolium perenne	gi28630953		8,20E-42
44	G153	Lolium temulentum	gi4204232		1,70E-41
44	G153	Triticum aestivum	gi30721847		2,80E-41
44	G153	Hordeum vulgare	gi9367313		2,80E-41
45	G155	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER112511_ 1	719
45	G155	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER2290_5	720
45	G155	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER24178_1	721
45	G155	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER24178_4	722

334/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
45	G155	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER862_1	723
45	G155	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER862_2	724
45	G155	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER862 3	725
45	G155	Glycine max	LIB4127-088- Q1-N1-F3	726
45	G155	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER117 2	727
45	G155	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER397_1	728
45	G155	Oryza sativa	OSC101428,C1,p 6,fg	729
45	G155	Oryza sativa	OSC22851,C1,p5 ,fg	730
45	G155	Oryza sativa	OSC23163,C1,p8 ,fg	731
45	G155	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER444_10	732
45	G155	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER444_17	733
45	G155	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER444_19	734
45	G155	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER444_20	735
45	G155	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER444_25	736
45	G155	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER444_29	737
45	G155	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER444_38	738
45	G155	Zea mays	ZEAMA-08NOV01-	739

335/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
			CLUSTER49_1
45	G155	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER49 2	740
45	G155	Oryza sativa	Os_S60917	1563
45	G155	Oryza sativa	Os_S65478	1564
45	G155	Oryza sativa	Os_S65480	1565
45	G155	Oryza sativa	Os_S81123	1566
45	G155	Glycine max	Gma_S5001655	1635
45	G155	Hordeum vulgare	Hv_S74097	1719
45	G155	Hordeum vulgare	Hv_S74098	1720
45	G155	Hordeum vulgare	Hv_S74100	1721
45	G155	Zea mays	Zm_S11355421	1759
45	G155	Zea mays	Zm_S11374058	1760
45	G155	Zea mays	Zm_S11418377	1761
45	G155	Zea mays	Zm_S11418747	1762
45	G155	Zea mays	Zm_S11435147	1763
45	G155	Zea mays	Zm_S11527666	1764
45	G155	Triticum aestivum	Ta_S185481	1836
45	G155	Triticum aestivum	Ta_S210240	1837
45	G155	Triticum aestivum	Ta_S66203	1838
45	G155	Lycopersicon esculentum	Les_S5931544	1926
45	G155	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 44980	1947
45	G155	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 45332	1948

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SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
45	G155	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-329711	1949
45	G155	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-457556	1950
45	G155	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-477293	1951
45	G155	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-67345	1952
46	G155	Brassica oleracea var. botrytis	BOL505844		1,00E-123
46	G155	Sinapis alba	SAU25695		1,00E-120
46	G155	Brassica napus	CD841921		1,00E-119
46	G155	Betula pendula	BPMADS5GN		3,00E-82
46	G155	Nicotiana sylvestris	AF068725		1,00E-79
46	G155	Nicotiana tabacum	AF385746		2,00E-79
46	G155	Malus x domestica	MDU78948		3,00E-78
46	G155	Capsicum annuum	AF130118		4,00E-78
46	G155	Petunia x hybrida	AF176783		1,00E-77
46	G155	Lycopersicon esculentum	AW442282		1,00E-77
46	G155	Brassica oleracea var. botrytis	gi23304678		2,00E-116
46	G155	Sinapis alba	gi1049024		2,40E-113
46	G155	Betula pendula	gi1483232		2,00E-79
46	G155	Nicotiana sylvestris	gi5070142		5,40E-77

337/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
46	G155	Nicotiana tabacum	gi27373049		8,80E-77
46	G155	Capsicum annuum	gi14518447		7,90E-76
46	G155	Petunia x hybrida	gi6606306		1,30E-75
46	G155	Malus x domestica	gi3947985		3,40E-75
46	G155	Petunia sp.	gi6731756		7,10E-75
46	G155	Lycopersicon esculentum	gi23428887		1,90E-74
48	G171	Brassica oleracea	BZ059285		2,00E-86
48	G171	Lotus japonicus	AG231874		1,00E-15
48	G171	Glycine max	BE610209		1,00E-11
48	G171	Medicago truncatula	AC135316		3,00E-10
48	G171	Zea mays	CC654475		6,00E-10
48	G171	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01000422		1,00E-09
48	G171	Oryza sativa	AP002480		1,00E-09
48	G171	Vitis vinifera	CB980345		2,00E-09
48	G171	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AP006531		9,00E-08
48	G171	Lycopersicon esculentum	BI930829		2,00E-07
48	G171	Oryza sativa	gi8096379		4,10E-11
48	G171	Oryza sativa	gi15623935		6,90E-09

338/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		(grupo do cultivar japonica)
48	G171	Malus x domestica	gi32452884		5,60E-07
48	G171	Petunia x hybrida	gi13384058		5,60E-07
48	G171	Lycopodium annotinum	gi30525823		8,10E-07
48	G171	Ceratopteris richardii	gi2252482		1,40E-06
48	G171	Cichorium intybus	gi3986689		3,00E-06
48	G171	Brassica napus	gi3831486		3,60E-06
48	G171	Ipomoea nil	gi27372827		3,80E-06
48	G171	Rosa rugosa	gi9857312		5,30E-06
50	G172	Brassica oleracea	BH583694		9,00E-52
50	G172	Medicago truncatula	AC144481		5,00E-09
50	G172	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01005416		3,00E-08
50	G172	Oryza sativa	AC098572		3,00E-08
50	G172	Lotus japonicus	AP006142		5,00E-08
50	G172	Lotus corniculatus var. japonicus	AP006379		1,00E-06
50	G172	Lycopersicon esculentum	BH014401		9,00E-06
50	G172	Zea mays	CC690653		2,00E-05

339/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
50	G172	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AP004784		4,00E-05
50	G172	Sorghum bicolor	BZ627051		6,00E-05
50	G172	Brassica rapa	gi30523366		5,60E-06
50	G172	Brassica napus	gi17933454		1,00E-05
50	G172	Brassica oleracea var. capitata	gi30523252		1,00E-05
50	G172	Zea mays	gi1076827		1,10E-05
50	G172	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi30313673		2,10E-05
50	G172	Lolium perenne	gi28630955		6,40E-05
50	G172	Lolium temulentum	gi4204234		6,40E-05
50	G172	Oryza sativa	gi15290141		7,10E-05
50	G172	Raphanus sativus	gi30523250		0,0001
50	G172	Cucumds sativus	gi8216957		0,00014
52	G173	Brassica oleracea	BZ519961		3,00E-20
52	G173	Zea mays	AX540653		8,00E-17
52	G173	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01022896		1,00E-07
52	G173	Oryza sativa	AC093312		5,00E-07
52	G173	Medicago	AC135316		3,00E-06

340/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		truncatula
52	G173	Glycine max	AW508033		1,00E-05
52	G173	Physcomitrella patens	PPA419330		3,00E-05
52	G173	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AP005734		2,00E-04
52	G173	Triticum aestivum	BJ303010		7,00E-04
52	G173	Lotus japonicus	AG231874		0,001
52	G173	Physcomitrella patens	gi22474466		1,30E-08
52	G173	Ipomoea batatas	gi13448658		1,40E-08
52	G173	Oryza sativa	gi8096379		1,90E-08
52	G173	Magnolia praecocissima	gi16549058		1,40E-06
52	G173	Sinapis alba	gi1617211		1,90E-06
52	G173	Gnetum gnemon	gi27151621		1,90E-06
52	G173	Physcomitrella patens subesp. patens	gi22090622		3,00E-06
52	G173	Cichorium intybus	gi3986689		3,30E-06
52	G173	Nicotiana sylvestris	gi5070144		4,70E-06
52	G173	Papaver nudicaule	gi3170500		4,70E-06
53	G200	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER46239_2	741
53	G200	Oryza sativa	1945280	742

341/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
53	G200	Oryza sativa	OSC1073,C1,p11 ,fg	743
53	G200	Oryza sativa	rsicem_4884,y1 ,abd	744
53	G200	Zea mays	LIB4980-049- R1-K1-C12	745
53	G200	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER286_1	746
53	G200	Oryza sativa	Os_S60479	1567
53	G200	Medicago truncatula	Mtr_S5340749	1691
53	G200	Zea mays	Zm_S11327053	1765
53	G200	Zea mays	Zm_S11454145	1766
53	G200	Zea mays	Zm_S11529138	1767
53	G200	Zea mays	Zm_S11529143	1768
53	G200	Zea mays	Zm_S11529165	1769
53	G200	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 57276	1953
53	G200	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-385670	1954
54	G200	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	BU876112		8,00E-79
54	G200	Beta vulgaris	BQ587622		8,00E-73
54	G200	Gossypium arboreum	BG441590		6,00E-70
54	G200	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK061437		1,00E-68
54	G200	Oryza sativa	OSMYB1308		1,00E-68
54	G200	Poncirus	CD576612		3,00E-68

342/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		trifoliata
54	G200	Nuphar advena	CD474802		2,00E-66
54	G200	Brassica oleracea	BH976962		4,00E-66
54	G200	Lycopersicon esculentum	LETHM6		5,00E-65
54	G200	Zea mays	AY107969		5,00E-65
54	G200	Oryza sativa	gi1945281		5,80E-68
54	G200	Antirrhinum majus	gi256828		6,00E-62
54	G200	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi33087065		7,50E-62
54	G200	Lycopersicon esculentum	gi1430848		1,00E-59
54	G200	Zea mays	gi19072744		8,40E-56
54	G200	Dendrobium sp. XMW-2002-1	gi28628947		1,60E-53
54	G200	Lotus corniculatus var. japonicus	gi30024598		5,90E-50
54	G200	Petunia x hybrida	gi20561		1,20E-49
54	G200	Nicotiana tabacum	gi6552389		2,40E-49
54	G200	Glycine max	gi5139802		8,60E-47
56	G224	Brassica oleracea	BH442040		2,00E-38
56	G224	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01016190		4,00E-08

343/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
56	G224	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AP005575		5,00E-08
56	G224	Lotus japonicus	AP004985		9,00E-07
56	G224	Medicago truncatula	AC135101		2,00E-06
56	G224	Prunus persica	BU040633		6,00E-06
56	G224	Brassica rapa subesp. pekinensis	BQ791286		2,00E-05
56	G224	Oryza sativa	OSJN00182		2,00E-05
56	G224	Brassica napus	CD832269		2,00E-05
56	G224	Vitis vinifera	CB345908		5,00E-05
56	G224	Oryza sativa	gi8096405		1,40E-06
56	G224	Antirrhinum hispanicum	gi13161528		3,60E-06
56	G224	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi31433564		8,80E-06
56	G224	Prunus mume	gi29420809		0,0019
56	G224	Prunus dulcis	gi28866899		0,014
56	G224	Lycopersicon esculentum	gi9858770		0,91
56	G224	Daucus carota	gi20066308		0,99
56	G224	Lotus japonicus	gi28624856		1
58	G244	Brassica oleracea	BH667251		1,00E-120
58	G244	Oryza sativa	AX755614		5,00E-88
58	G244	Hordeum	BI959020		6,00E-88

344/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		vulgare
58	G244	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01009672		7,00E-79
58	G244	Sorghum bicolor	AF474126		6,00E-69
58	G244	Vitis vinifera	CB971781		8,00E-68
58	G244	Lycopersicon esculentum	AW624307		3,00E-54
58	G244	Solanum tuberosum	BG592600		3,00E-53
58	G244	Mesembryanthem um crystallinum	BG269414		1,00E-52
58	G244	Populus x canescens	AY129246		2,00E-52
58	G244	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32487951		2,60E-90
58	G244	Sorghum bicolor	gi19073322		7,20E-66
58	G244	Oryza sativa	gi1946267		1,20E-55
58	G244	Populus x canescens	gi22795039		3,40E-52
58	G244	Gossypium hirsutum	gi13346188		4,30E-52
58	G244	Antirrhinum majus	gi485867		3,20E-51
58	G244	Lotus corniculatus var. japonicus	gi30024600		8,00E-51
58	G244	Petunia x	gi20563		1,70E-50

345/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		hybrida
58	G244	Zea mays	gi127582		3,50E-50
58	G244	Boea crassifolia	gi30575840		5,70E-50
60	G246	Lycopersicon esculentum	AW624217		3,00E-36
60	G246	Brassica napus	CD841933		1,00E-35
60	G246	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK107461		1,00E-34
60	G246	Solanum tuberosum	BQ514458		2,00E-34
60	G246	Oryza sativa	AX699697		2,00E-33
60	G246	Physcomitrella patens	AX288143		6,00E-33
60	G246	Medicago truncatula	BQ165917		3,00E-32
60	G246	Zinnia elegans	AU287803		4,00E-32
60	G246	Citrus sinensis	BQ623005		5,00E-32
60	G246	Populus tremula x Populus tremuloides	POP567345		1,00E-31
60	G246	Oryza sativa	gi6539552		1,50E-35
60	G246	Populus tremula x Populus tremuloides	gi31980093		8,30E-33
60	G246	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi21321780		3,60E-32

346/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
60	G246	Solanum tuberosum	gi9954112		1,00E-25
60	G246	Nicotiana tabacum	gi27529846		2,20E-25
60	G246	Papaver rhoeas	gi7230673		1,10E-22
60	G246	Physcomitrella patens	gi8745321		1,30E-22
60	G246	Adiantum raddianum	gi7677136		3,30E-22
60	G246	Hordeum vulgare	gi8745325		1,80E-21
60	G246	Secale cereale	gi7677132		3,80E-21
62	G253	Brassica napus	CD841933		3,00E-26
62	G253	Lycopersicon esculentum	AW624217		3,00E-26
62	G253	Solanum tuberosum	BQ514458		2,00E-25
62	G253	Medicago truncatula	BQ165917		4,00E-25
62	G253	Citrus sinensis	BQ623005		6,00E-25
62	G253	Triticum aestivum	BQ838360		2,00E-24
62	G253	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK107461		2,00E-24
62	G253	Physcomitrella patens	AX288143		4,00E-24
62	G253	Zinnia elegans	AU287803		8,00E-24
62	G253	Papaver rhoeas	AF236059		2,00E-23
62	G253	Oryza sativa (grupo do	gi21321780		1,50E-28

347/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		cultivar japonica)
62	G253	Oryza sativa	gi6979341		7,10E-27
62	G253	Papaver rhoeas	gi7230673		3,20E-24
62	G253	Populus tremula x Populus tremuloides	gi31980093		4,10E-24
62	G253	Adiantum raddianum	gi7677136		9,70E-23
62	G253	Solanum tuberosum	gi9954114		1,10E-22
62	G253	Nicotiana tabacum	gi16326137		2,40E-22
62	G253	Physcomitrella patens	gi8745321		2,00E-21
62	G253	Craterostigma plantagineum	gi1002800		7,80E-21
62	G253	Hordeum vulgare	gi8745325		1,00E-20
64	G268	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK070193		1,0e-999
64	G268	Zea mays	AY104480		1,00E-146
64	G268	Oryza sativa	AX654858		1,00E-125
64	G268	Malus domestica	AF220204		1,00E-116
64	G268	Glycine max	CA785038		1,00E-112
64	G268	Solanum tuberosum	BM406566		1,00E-111
64	G268	Lactuca sativa	BQ863563		1,00E-101
64	G268	Lycopersicon	BI936015		1,00E-101

348/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		esculentum
64	G268	Medicago truncatula	BE203572		1,00E-100
64	G268	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	CB621547		1,00E-100
64	G268	Oryza sativa	gi15408875		4,90E-250
64	G268	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20160625		4,90E-250
64	G268	Malus x domestica	gi6752888		2,40E-113
64	G268	Narcissus pseudonarcissu s	gi18419598		8,90E-52
64	G268	Pinus pinaster	gi20218829		1,70E-09
64	G268	Nicotiana alata	gi1247388		0,00015
64	G268	Bromheadia finlaysoniana	gi2108256		0,00025
64	G268	Lycopersicon esculentum	gi1345539		0,00031
64	G268	Antirrhinum majus	gi16029		0,00064
64	G268	Volvox carteri	gi21992		0,0024
66	G287	Vicia faba	VFPTF2		5,00E-99
66	G287	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK069464		1,00E-80
66	G287	Brassica oleracea	BZ074994		6,00E-63

349/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
66	G287	Lactuca sativa	BQ869065		1,00E-61
66	G287	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	CB620939		1,00E-58
66	G287	Amborella trichopoda	CD482217		2,00E-52
66	G287	Solanum tuberosum	BG599712		1,00E-40
66	G287	Medicago truncatula	BG648535		2,00E-32
66	G287	Triticum aestivum	CD897359		1,00E-29
66	G287	Oryza sativa	AP002536		2,00E-14
66	G287	Vicia faba	gi2104683		5,80E-99
66	G287	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi28301944		3,90E-09
66	G287	Oryza sativa	gi15451572		0,004
66	G287	Lycopersicon esculentum	gi13620220		0,47
66	G287	Brassica nigra	gi20148766		0,47
66	G287	Nicotiana tabacum	gi119714		0,57
66	G287	Spermatozopsis similis	gi4584086		0,75
66	G287	Prunus armeniaca	gi2688826		0,99
66	G287	Petunia x hybrida	gi21105740		1
68	G309	Gossypium hirsutum	AY208992		1,00E-180

350/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
68	G309	Vitis vinifera	AF378125		1,00E-176
68	G309	Lycopersicon esculentum	AY269087		1,00E-175
68	G309	Brassica napus	AX081276		1,00E-164
68	G309	Zea mays	ZMA242530		1,00E-158
68	G309	Hordeum vulgare	AF460219		1,00E-157
68	G309	Triticum aestivum	BD074479		1,00E-157
68	G309	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01015042		1,00E-137
68	G309	Oryza sativa	AC087797		1,00E-137
68	G309	Zea mays subesp. mays	AF413202		1,00E-137
68	G309	Vitis vinifera	gi20334379		2,10E-170
68	G309	Calycadenia multiglandulos a	gi20257451		1,10E-155
68	G309	Brassica napus	gi13170126		2,30E-155
68	G309	Hordeum vulgare	gi18254373		5,30E-153
68	G309	Triticum aestivum	gi5640157		1,10E-152
68	G309	Carlquistia muirii	gi20257447		1,20E-151
68	G309	Argyroxiphi um kauense	gi20257461		1,50E-151
68	G309	Madia sativa	gi20257442		5,00E-151
68	G309	Argyroxiphi um sandwicense subesp.	gi20257457		5,00E-151

351/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		macrocephal um
68	G309	Dubautia raillardioides	gi20257473		1,30E-150
70	G314	Lotus japonicus	AP006085		7,00E-94
70	G314	Rbdicago truncatula	AC137703		1,00E-90
70	G314	Oryza sativa	AP003823		8,00E-82
70	G314	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01000614		8,00E-82
70	G314	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AP005149		8,00E-82
70	G314	Brassica oleracea	BZ432637		1,00E-72
70	G314	Solanum tuberosum	BF052580		1,00E-47
70	G314	Lycopersicon esculentum	BG123921		2,00E-47
70	G314	Glycine max	BH152995		2,00E-35
70	G314	Zea mays	CC732802		4,00E-22
70	G314	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi28564823		7,40E-80
70	G314	Oryza sativa	gi14719333		1,30E-26
70	G314	Lycopersicon esculentum	gi13620224		1,60E-25
70	G314	Brassica napus	gi13170126		2,00E-19
70	G314	Zea mays subesp. mays	gi15866286		7,40E-18

352/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
71	G319	Oryza sativa	Os_S76767	1568
71	G319	Zea mays	Zm_S11428226	1770
71	G319	Triticum aestivum	Ta_S281561	1839
71	G319	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 50683	1955
72	G319	Brassica oleracea	BZ004068		4,00E-37
72	G319	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK098865		3,00E-14
72	G319	Oryza minuta	CB211383		3,00E-14
72	G319	Oryza sativa	AB001888		6,00E-14
72	G319	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	CA763406		8,00E-14
72	G319	Triticum aestivum	AX658811		8,00E-14
72	G319	Sorghum bicolor	CD208331		1,00E-13
72	G319	Zea mays	CD650991		2,00E-13
72	G319	Glycine max	BE058171		4,00E-13
72	G319	Beta vulgaris	BQ589272		7,00E-13
72	G319	Oryza sativa	gi3618320		1,40E-17
72	G319	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi23589949		1,90E-11
72	G319	Malus x domestica	gi4091804		2,20E-10
72	G319	Brassica nigra	gi22854920		5,80E-10

353/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
72	G319	Hordeum vulgare	gi21667475		1,90E-09
72	G319	Raphanus sativus	gi3341723		4,90E-09
72	G319	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi21655156		8,70E-09
72	G319	Brassica napus	gi30984027		1,30E-08
72	G319	Pinus radiata	gi4557093		4,10E-08
72	G319	Ipomoea nil	gi10946337		4,80E-08
74	G324	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK068618		1,00E-157
74	G324	Oryza sativa	AP004141		9,00E-95
74	G324	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01001748		2,00E-94
74	G324	Brassica oleracea	BH487952		2,00E-91
74	G324	Brassica napus	CD837146		5,00E-89
74	G324	Lycopersicon esculentum	AW979372		5,00E-87
74	G324	Phaseolus coccineus	CA906556		1,00E-72
74	G324	Medicago truncatula	CB892723		3,00E-71
74	G324	Solanum tuberosum	BG889245		4,00E-70
74	G324	Triticum aestivum	BJ245931		1,00E-69

354/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
74	G324	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi21742100		2,20E-06
74	G324	Populus x canescens	gi22795037		0,00055
74	G324	Oryza sativa	gi15289911		0,0058
74	G324	Rosa hybrid cultivar	gi15029364		0,084
74	G324	Ipomoea nil	gi11127996		0,087
74	G324	Oryza sativa subesp. japonica	gi7592844		0,088
74	G324	Lycopersicon esculentum	gi4090943		0,17
74	G324	Brassica rapa subesp. pekinensis	gi27357054		0,18
74	G324	Brassica oleracea	gi1418353		0,22
74	G324	Zea diploperennis	gi1076786		0,25
76	G344	Brassica oleracea	BZ490921		2,00E-42
76	G344	Medicago truncatula	BE124805		3,00E-40
76	G344	Lactuca sativa	BQ865907		2,00E-37
76	G344	Vitis vinifera	BQ800135		5,00E-36
76	G344	Populus tremula x Populus tremuloides	BU836743		4,00E-33
76	G344	Glycine max	BI470689		9,00E-33

355/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
76	G344	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	BU876397		1,00E-30
76	G344	Lycopersicon esculentum	AW030365		1,00E-29
76	G344	Zea mays	CC605963		1,00E-29
76	G344	Helianthus annuus	CD855694		2,00E-29
76	G344	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32488102		1,00E-38
76	G344	Oryza sativa	gi14165317		6,10E-35
76	G344	Nicotiana tabacum	gi12711287		1,70E-27
76	G344	Nicotiana plumbaginifoli a	gi1076609		4,30E-20
76	G344	Atropa belladonna	gi14329812		0,93
76	G344	Glycine max	gi26522778		0,99
76	G344	Ricinus communis	gi112762		1
78	G351	Brassica oleracea	BH552655		2,00E-51
78	G351	Brassica napus	BQ704580		1,00E-47
78	G351	Lotus japonicus	AP004523		6,00E-43
78	G351	Vitis aestivalis	CB288865		6,00E-42
78	G351	Datisca glomerata	AF119050		1,00E-41

356/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
78	G351	Petunia x hybrida	PETZFP4		2,00E-39
78	G351	Vitis vinifera	BM437679		2,00E-38
78	G351	Medicago sativa	MSY18788		4,00E-38
78	G351	Glycine max	GMU68763		3,00E-37
78	G351	Lycopersicon esculentum	BI421491		3,00E-37
78	G351	Petunia x hybrida	gi439493		3,10E-41
78	G351	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi28849865		3,00E-35
78	G351	Datisca glomerata	gi4666360		2,70E-34
78	G351	Brassica rapa	gi2058506		6,70E-32
78	G351	Glycine max	gi1763063		3,70E-30
78	G351	Medicago sativa	gi7228329		3,40E-27
78	G351	Triticum aestivum	gi485814		1,90E-25
78	G351	Oryza sativa	gi12698882		7,70E-25
78	G351	Nicotiana tabacum	gi2981169		9,00E-20
78	G351	Pisum sativum	gi2129892		3,40E-14
79	G355	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER22443_1	747
79	G355	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER22443_2	748
79	G355	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER23033_1	749
79	G355	Glycine max	GLYMA-28NOV01-	750

357/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
			CLUSTER32665_1
79	G355	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER32665 2	751
79	G355	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER69201_1	752
79	G355	Oryza sativa	Os_S97951	1569
79	G355	Glycine max	Gma_S5045942	1636
79	G355	Medicago truncatula	Mtr_S5425959	1692
79	G355	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 46187	1956
79	G355	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 47520	1957
79	G355	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-6966	1958
80	G355	Brassica oleracea	BH566556		6,00E-59
80	G355	Medicago truncatula	AC125368		2,00E-36
80	G355	Glycine max	BI967719		4,00E-31
80	G355	Petunia x hybrida	AB006599		6,00E-31
80	G355	Populus tremula x Populus tremuloides	BU862641		5,00E-29
80	G355	Lycopersicon esculentum	BI422808		1,00E-28
80	G355	Vitis vinifera	CA818230		4,00E-28
80	G355	Solanum tuberosum	BQ121106		6,00E-27
80	G355	Lotus japonicus	AP006100		1,00E-24

358/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
80	G355	Populus balsamifera subesp. trichocarpa x Populus deltoides	CB239372		2,00E-22
80	G355	Petunia x hybrida	gi2346974		6,50E-33
80	G355	Pisum sativum	gi2129892		1,20E-23
80	G355	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi29124132		2,70E-20
80	G355	Oryza sativa	gi18652814		4,00E-17
80	G355	Nicotiana tabacum	gi2981169		1,40E-15
80	G355	Medicago sativa	gi7228329		2,00E-15
80	G355	Datisca glomerata	gi4666360		2,90E-14
80	G355	Triticum aestivum	gi485814		8,60E-14
80	G355	Glycine max	gi1763063		2,10E-13
80	G355	Brassica rapa	gi2058504		1,10E-07
82	G366	Brassica oleracea	BZ046051		8,00E-40
82	G366	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AP005415		2,00E-10
82	G366	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01000097		3,00E-10

359/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
82	G366	Hordeum vulgare	BI960158		4,00E-10
82	G366	Lycopersicon esculentum	AW035599		5,00E-10
82	G366	Zea mays	CC701812		5,00E-10
82	G366	Medicago truncatula	BI308410		8,00E-10
82	G366	Vitis vinifera	CB979728		1,00E-09
82	G366	Glycine max	CA784474		1,00E-09
82	G366	Phaseolus coccineus	CA902532		1,00E-09
82	G366	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi29027767		6,20E-12
82	G366	Sorghum bicolor	gi18390109		5,40E-09
82	G366	Oryza sativa	gi15528588		1,20E-08
82	G366	Petunia x hybrida	gi2346978		2,70E-05
82	G366	Zea ramosa	gi18674684		0,012
82	G366	Triticum aestivum	gi485814		0,09
82	G366	Brassica rapa	gi2058504		0,27
82	G366	Medicago sativa	gi7228329		0,27
82	G366	Glycine max	gi1763063		0,35
82	G366	Pisum sativum	gi2129892		0,44
83	G370	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER166362_ 1	753
83	G370	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER180202_	754

360/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
			1
83	G370	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER726571_ 1	755
83	G370	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER74662_1	756
83	G370	Glycine max	uCgmflminsoy032f 06b1	757
83	G370	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER173260_ 2	758
83	G370	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER200967_ 1	759
83	G370	Oryza sativa	OSC100895,C1,p 14,fg	760
83	G370	Oryza sativa	OSC23411,C1,p1 ,fg	761
83	G370	Oryza sativa	OSC2409,C1,p2, fg	762
83	G370	Oryza sativa	OSC25680,C1,p1 ,fg	763
83	G370	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER436044_ 1	764
83	G370	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER518126_ 1	765
83	G370	Oryza sativa	Os_S111189	1570
83	G370	Glycine max	Gma_S5146649	1637
83	G370	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 54039	1959
83	G370	Lycopersicon	SGN-UNIGENE-	1960

361/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		esculentum	54252
83	G370	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-392715	1961
84	G370	Brassica oleracea	BZ473777		1,00E-98
84	G370	Vitis vinifera	CD714231		5,00E-32
84	G370	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK068762		4,00E-31
84	G370	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01009505		6,00E-30
84	G370	Lycopersicon esculentum	BG123251		8,00E-30
84	G370	Oryza sativa	AC105732		4,00E-26
84	G370	Gossypium arboreum	BF272143		3,00E-25
84	G370	Hordeum vulgare	BF616974		8,00E-25
84	G370	Sorghum bicolor	BE357942		1,00E-23
84	G370	Zea mays	BH875187		4,00E-23
84	G370	Sorghum bicolor	gi18390109		6,80E-22
84	G370	Oryza sativa	gi15528588		1,10E-09
84	G370	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi29027767		1,90E-07
84	G370	Petunia x hybrida	gi14275902		3,10E-05
84	G370	Glycine max	gi5524682		0,0016

362/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
84	G370	Solanum tuberosum	gi13161908		0,0016
84	G370	Medicago sativa	gi7228329		0,0072
84	G370	Datisca glomerata	gi4666360		0,018
84	G370	Zea ramosa	gi18674684		0,05
84	G370	Petroselinum crispum	gi9650824		0,15
85	G372	Oryza sativa	OSC5500,C1,p4, fg	766
85	G372	Oryza sativa	OSC5501,C1,p10 ,fg	767
86	G372	Cucurbita pepo	CD726821		1,00E-76
86	G372	Brassica oleracea	BH426533		5,00E-63
86	G372	Medicago truncatula	CB892663		6,00E-49
86	G372	Glycine max	CA800122		4,00E-48
86	G372	Solanum tuberosum	BG596951		4,00E-45
86	G372	Lactuca sativa	BQ853373		1,00E-38
86	G372	Prunus persica	BU040110		8,00E-38
86	G372	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	BI120429		3,00E-36
86	G372	Lotus japonicus	AV411356		4,00E-36
86	G372	Helianthus annuus	BU025620		2,00E-35
86	G372	Oryza sativa (grupo do	gi28564640		3,30E-25

363/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		cultivar japonica)
86	G372	Oryza sativa	gi15289911		6,80E-21
86	G372	Populus x canescens	gi22795037		6,50E-19
86	G372	Brassica rapa subesp. pekinensis	gi27357054		0,00023
86	G372	Triticum aestivum	gi32400766		0,00056
86	G372	Cicer arietinum	gi10334499		0,0007
86	G372	Ipomoea nil	gi11127996		0,0015
86	G372	Rosa hybrid cultivar	gi15029364		0,0015
86	G372	Arabis genmifera	gi22775495		0,0023
86	G372	Pinus pinaster	gi18129286		0,0041
88	G374	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK069434		1,0e-999
88	G374	Zea mays	AY109632		1,00E-176
88	G374	Brassica napus	CD831794		1,00E-108
88	G374	Lactuca sativa	BQ852311		1,00E-103
88	G374	Helianthus annuus	BQ968130		1,00E-97
88	G374	Medicago truncatula	BG646959		2,00E-90
88	G374	Solanum tuberosum	BI177742		3,00E-90
88	G374	Lycopersicon esculentum	BG128229		9,00E-84

364/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
88	G374	Hordeum vulgare	BG344938		2,00E-79
88	G374	Beta vulgaris	BQ592292		5,00E-77
88	G374	Viola cornuta	gi31540598		0,42
88	G374	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi29371983		0,83
90	G380	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK071468		1,00E-63
90	G380	Oryza sativa	AX652813		2,00E-62
90	G380	Medicago truncatula	BG581311		2,00E-60
90	G380	Solanum tuberosum	BG592404		7,00E-58
90	G380	Lycopersicon esculentum	AW625867		1,00E-56
90	G380	Lactuca sativa	BQ993132		4,00E-54
90	G380	Gossypium arboreum	BQ411449		8,00E-54
90	G380	Ipomoea nil	BJ578890		2,00E-53
90	G380	Glycine max	BM143561		8,00E-51
90	G380	Brassica napus	CD827948		4,00E-49
90	G380	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi21740878		5,50E-60
90	G380	Pisum sativum	gi4240031		1,20E-33
90	G380	Glycine max	gi1076498		1,40E-30
90	G380	Oryza sativa	gi8570055		1,10E-25
90	G380	Lotus	gi1086225		2,30E-25

365/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		japonicus
90	G380	Cicer arietinum	gi10334499		5,00E-16
90	G380	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi29164825		1,40E-10
90	G380	Thellungiella halophila	gi20340241		3,30E-08
90	G380	Triticum aestivum	gi32400766		1,40E-06
90	G380	Zea mays	gi21645888		0,00012
92	G386	Picea abies	AF328842		1,0e-999
92	G386	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AB101648		1,0e-999
92	G386	Oryza sativa	AX658854		1,0e-999
92	G386	Zea mays	ZMA17898		1,0e-999
92	G386	Malus domestica	AF067961		1,0e-999
92	G386	Phalaenopsis sp. SM9108	PSU34743		1,0e-999
92	G386	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01007245		1,0e-999
92	G386	Gossypium hirsutum	AF530913		1,00E-179
92	G386	Helianthus annuus	HNNHAHR		1,00E-145
92	G386	Sorghum bicolor	AF466200		1,00E-142
92	G386	Picea abies	gi19070143		1,20E-253

366/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
92	G386	Zea mays	gi5531484		3,60E-240
92	G386	Malus x domestica	gi3925363		2,40E-232
92	G386	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32482878		1,00E-218
92	G386	Phalaenopsis sp. SM9108	gi1173622		1,20E-210
92	G386	Phalaenopsis sp.	gi2147484		1,20E-210
92	G386	Oryza sativa	gi19072102		3,70E-197
92	G386	Sorghum bicolor	gi18481701		5,00E-177
92	G386	Gossypium hirsutum	gi22475195		5,20E-159
92	G386	Helianthus annuus	gi1208940		7,30E-121
94	G416	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK098855		1,00E-83
94	G416	Vitis vinifera	CB341898		2,00E-72
94	G416	Zea mays	ZMHOX2AGN		3,00E-64
94	G416	Hedyotis terminalis	CB076461		5,00E-62
94	G416	Petroselinum crispum	PUMPRHPA		5,00E-55
94	G416	Oryza sativa	CA753304		7,00E-54
94	G416	Hordeum vulgare	BG365916		8,00E-52
94	G416	Sorghum propinquum	BF704605		4,00E-48

367/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
94	G416	Glycine max	BM086637		3,00E-47
94	G416	Lotus japonicus	AP004517		2,00E-44
94	G416	Zea mays	gi1170434		1,30E-78
94	G416	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi22830607		1,40E-66
94	G416	Petroselinum crispum	gi1346791		1,10E-59
94	G416	Nicotiana tabacum	gi8096269		3,70E-08
94	G416	Lycopersicon esculentum	gi9858781		2,70E-05
94	G416	Oryza sativa	gi25172773		4,30E-05
94	G416	Cicer arietinum	gi3129939		5,90E-05
94	G416	Medicago sativa	gi1279563		8,10E-05
94	G416	Cucurbita maxima	gi17221648		9,00E-05
94	G416	Raphanus sativus	gi9049359		0,00024
96	G434	Zea mays	ZMA17898		1,00E-126
96	G434	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AB101648		1,00E-125
96	G434	Oryza sativa	AX658854		1,00E-124
96	G434	Picea abies	AF328842		1,00E-122
96	G434	Phalaenopsis sp. SM9108	PSU34743		1,00E-117
96	G434	Malus	AF067961		1,00E-111

368/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		domestica
96	G434	Gossypium hirsutum	AF530913		1,00E-103
96	G434	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01007245		1,00E-96
96	G434	Helianthus annuus	HNNHAHR		4,00E-82
96	G434	Gossypium arboreum	BG444723		7,00E-61
96	G434	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi31339103		1,90E-123
96	G434	Zea mays	gi5531484		1,70E-122
96	G434	Oryza sativa	gi19072102		6,70E-115
96	G434	Phalaenopsis sp. SM9108	gi1173622		1,80E-114
96	G434	Phalaenopsis sp.	gi2147484		1,80E-114
96	G434	Malus x domestica	gi3925363		1,10E-110
96	G434	Picea abies	gi12002853		1,40E-110
96	G434	Gossypium hirsutum	gi22475195		2,90E-101
96	G434	Sorghum bicolor	gi18481701		6,50E-100
96	G434	Helianthus annuus	gi1208940		5,40E-77
97	G438	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER24488_2	768
97	G438	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER26184_1	769

369/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
97	G438	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER26184_2	770
97	G438	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER26184_4	771
97	G438	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER501573_ 1	772
97	G438	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER5380_1	773
97	G438	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER5380_2	774
97	G438	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER75018_1	775
97	G438	Glycine max	LIB4164-014- Q1-K1-A6	776
97	G438	Glycine max	LIB4390-042- R1-K2-D5	777
97	G438	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER146698_ 1	778
97	G438	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER146698_ 2	779
97	G438	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER270598_ 1	780
97	G438	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER42938_1	781
97	G438	Oryza sativa	OSC14111,C1,p2 ,fg	782
97	G438	Oryza sativa	OSC18647,C1,p1 9,fg	783
97	G438	Oryza sativa	OSC19346,C1,p1 4,fg	784

370/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
97	G438	Oryza sativa	OSC19540,C1,p1 ,fg	785
97	G438	Oryza sativa	rsicek_3640,y1 ,abd	786
97	G438	Oryza sativa	rsicek_9941,y1 ,abd	787
97	G438	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER301 638	788
97	G438	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER301 668	789
97	G438	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER47950 1	790
97	G438	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER495 335	791
97	G438	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER495 404	792
97	G438	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER495 514	793
97	G438	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER745568_ 1	794
97	G438	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER83671_1	795
97	G438	Zea mays	uC- zmflteosinte08 3g09b1	796
97	G438	Zea mays	uC- zmrob73075f05b 1	797
97	G438	Oryza sativa	Os_S120953	1571
97	G438	Oryza sativa	Os_S19524	1572
97	G438	Oryza sativa	Os_S23391	1573
97	G438	Oryza sativa	Os_S42908	1574

371/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
97	G438	Glycine max	Gma_S4876016	1638
97	G438	Glycine max	Gma_S4999094	1639
97	G438	Glycine max	Gma_S5075763	1640
97	G438	Medicago truncatula	Mtr_S5308980	1693
97	G438	Medicago truncatula	Mtr_S5411708	1694
97	G438	Hordeum vulgare	Hv_S197562	1722
97	G438	Hordeum vulgare	Hv_S224721	1723
97	G438	Hordeum vulgare	Hv_S69222	1724
97	G438	Zea mays	Zm_S11477054	1771
97	G438	Zea mays	Zm_S11521524	1772
97	G438	Zea mays	Zm_S11522470	1773
97	G438	Zea mays	Zm_S11523253	1774
97	G438	Zea mays	Zm_S11526859	1775
97	G438	Triticum aestivum	Ta_S130807	1840
97	G438	Triticum aestivum	Ta_S131992	1841
97	G438	Triticum aestivum	Ta_S132089	1842
97	G438	Triticum aestivum	Ta_S25579	1843
97	G438	Triticum aestivum	Ta_S50749	1844
97	G438	Triticum aestivum	Ta_S6425	1845
97	G438	Lycopersicon esculentum	Les_S5289520	1927

372/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
97	G438	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 50207	1962
97	G438	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 50208	1963
97	G438	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 50279	1964
97	G438	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 50602	1965
97	G438	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 50986	1966
97	G438	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 52670	1967
97	G438	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 53069	1968
97	G438	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 54002	1969
97	G438	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 54245	1970
97	G438	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 58239	1971
97	G438	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 58887	1972
97	G438	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-333165	1973
97	G438	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-333872	1974
97	G438	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-340997	1975
97	G438	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-388971	1976
97	G438	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-401049	1977
97	G438	Lycopersicon	SGN-UNIGENE-	1978

373/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		esculentum	SINGLET-451497
97	G438	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-452871	1979
98	G438	Zinnia elegans	ZEL312053		1,0e-999
98	G438	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK102830		1,0e-999
98	G438	Physcomitrella patens	AB032182		1,0e-999
98	G438	Zea mays	AY105765		1,0e-999
98	G438	Oryza sativa	AX699680		1,0e-999
98	G438	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01006159		1,00E-165
98	G438	Medicago truncatula	CB894606		1,00E-128
98	G438	Lactuca sativa	BU002601		1,00E-120
98	G438	Poncirus trifoliata	CD574584		1,00E-113
98	G438	Mesembryanthem um crystallinum	BE035416		1,00E-106
98	G438	Zinnia elegans	gi18076736		1,0e-999
98	G438	Oryza sativa	gi13384370		1,0e-999
98	G438	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi31432701		1,0e-999
98	G438	Physcomitrella patens	gi7209912		6,00E-238
98	G438	Ceratopteris richardii	gi3868829		4,20E-35

374/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
98	G438	Sorghum bicolor	gi18481701		5,00E-21
98	G438	Phalaenopsis sp. SM9108	gi1173622		1,00E-20
98	G438	Phalaenopsis sp.	gi2147484		1,00E-20
98	G438	Picea abies	gi12002853		1,80E-20
98	G438	Zea mays	gi8920427		4,00E-20
100	G446	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK103312		1,0e-999
100	G446	Oryza sativa	AX654320		1,00E-168
100	G446	Mangifera indica	AY255705		1,00E-116
100	G446	Medicago truncatula	CB894037		1,00E-114
100	G446	Prunus persica	AF467900		1,00E-102
100	G446	Zea mays	AY105215		9,00E-99
100	G446	Beta vulgaris	BQ594500		6,00E-87
100	G446	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	AI166599		8,00E-84
100	G446	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	CB631221		8,00E-81
100	G446	Pinus pinaster	BX250119		1,00E-80
100	G446	Prunus persica	gi27450533		2,70E-277
100	G446	Oryza sativa	gi19352037		4,80E-203
100	G446	Oryza sativa (grupo do	gi32489051		5,70E-198

375/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		cultivar japonica)
100	G446	Mangifera indica	gi30027167		5,50E-121
100	G446	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi26251300		2,50E-115
100	G446	Mirabilis jalapa	gi23343944		5,10E-20
100	G446	Marchantia polymorpha	gi25272004		7,40E-11
100	G446	Pisum sativum	gi871511		1,90E-06
100	G446	Lycopersicon esculentum	gi1217664		8,30E-06
100	G446	Zea mays	gi18697008		9,10E-06
102	G468	Populus tremula x Populus tremuloides	PTR306827		1,00E-37
102	G468	Glycine max	BU965031		4,00E-33
102	G468	Medicago truncatula	BF649039		9,00E-26
102	G468	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK103865		4,00E-25
102	G468	Hordeum vulgare	BG301068		2,00E-19
102	G468	Triticum aestivum	BJ228821		5,00E-19
102	G468	Zea mays	BF727992		7,00E-18
102	G468	Helianthus annuus	BU018212		1,00E-17

376/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
102	G468	Lycopersicon esculentum	BI209073		3,00E-17
102	G468	Cycas rumphii	CB089859		3,00E-17
102	G468	Populus tremula x Populus tremuloides	gi20269055		4,70E-39
102	G468	Oryza sativa	gi8096369		7,90E-26
102	G468	Triticum aestivum	gi32400272		2,70E-20
102	G468	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi30962267		3,40E-20
102	G468	Vitis vinifera	gi29465672		6,20E-20
102	G468	Glycine max	gi2388689		8,10E-20
102	G468	Cucumis sativus	gi6136832		1,50E-19
102	G468	Pinus taeda	gi32396293		3,80E-19
102	G468	Mirabilis jalapa	gi23343936		1,00E-18
102	G468	Pisum sativum	gi1352057		1,70E-18
104	G478	Brassica napus	CD839423		1,00E-81
104	G478	Antirrhinum majus	AMA011621		5,00E-75
104	G478	Poncirus trifoliata	CD574568		1,00E-66
104	G478	Brassica oleracea	BH693623		2,00E-58
104	G478	Capsicum annuum	CA516164		7,00E-56
104	G478	Glycine max	AI443033		2,00E-48
104	G478	Medicago	BQ146536		4,00E-46

377/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		truncatula
104	G478	Lycopersicon esculentum	BI933324		3,00E-45
104	G478	Zea mays	ZMA011617		7,00E-44
104	G478	Hedyotis terminalis	CB078220		3,00E-37
104	G478	Antirrhinum majus	gi25458128		7,40E-64
104	G478	Zea mays	gi5931784		2,30E-44
104	G478	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32488855		3,80E-37
104	G478	Betula pendula	gi30577628		3,00E-28
104	G478	Oryza sativa	gi8468036		4,00E-24
104	G478	Mitochondrion Beta vulgaris var. altissima	gi9087308		8,10E-13
104	G478	Lycopersicon esculentum	gi7489001		0,00037
104	G478	Solanum tuberosum	gi13161908		0,12
104	G478	Glycine max	gi5524682		0,15
104	G478	Triticum aestivum	gi4101568		0,67
105	G485	Oryza sativa	G3394	2135	2,00E-50
105	G485	Oryza sativa	G3395	2137	3,00E-46
105	G485	Oryza sativa	G3396	2139	2,00E-42
105	G485	Oryza sativa	G3397	2141	1,00E-55
105	G485	Oryza sativa	G3398	2143	3,00E-60
105	G485	Oryza sativa	G3429	2145	3,00E-18
105	G485	Zea mays	G3434	2149	1,00E-49

378/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
105	G485	Zea mays	G3435	2151	1,00E-57
105	G485	Zea mays	G3436	2153	9,00E-60
105	G485	Zea mays	G3437	2155	3,00E-53
105	G485	Glycine max	G3470	2171	7,00E-46
105	G485	Glycine max	G3471	2173	1,00E-46
105	G485	Glycine max	G3472	2175	3,00E-57
105	G485	Glycine max	G3473	2177	2,00E-53
105	G485	Glycine max	G3474	2179	5,00E-58
105	G485	Glycine max	G3475	2181	5,00E-56
105	G485	Glycine max	G3476	2183	9,00E-57
105	G485	Glycine max	G3477	2185	7,00E-46
105	G485	Glycine max	G3478	2187	3,00E-56
105	G485	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER24839_1	798
105	G485	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER31103_1	799
105	G485	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER33504_1	800
105	G485	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER33504_3	801
105	G485	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER33504_4	802
105	G485	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER33504_5	803
105	G485	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER33504_6	804
105	G485	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER4778 1	805
105	G485	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER4778 3	806
105	G485	Oryza sativa	OSC12630,C1,p5	807

379/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
			,fg
105	G485	Oryza sativa	OSC1404,C1,p3, fg	808
105	G485	Oryza sativa	OSC30077,C1,p6 ,fg	809
105	G485	Oryza sativa	OSC512,C1,p2,f g	810
105	G485	Oryza sativa	OSC5489,C1,p2, fg	811
105	G485	Oryza sativa	sicef_0681,z1, abd	812
105	G485	Zea mays	LIB3732-044- Q6-K6-C4	813
105	G485	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER719_1	814
105	G485	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER719 10	815
105	G485	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER719 2	816
105	G485	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER719 3	817
105	G485	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER719 4	818
105	G485	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER719 5	819
105	G485	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER90408 1	820
105	G485	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER90408 2	821
105	G485	Glycine max	Gma_S4904793	1641
105	G485	Hordeum vulgare	Hv_S138973	1725
105	G485	Hordeum	Hv_S17617	1726

380/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		vulgare
105	G485	Zea mays	Zm_S11418173	1776
105	G485	Zea mays	Zm_S11434692	1777
105	G485	Zea mays	Zm_S11509886	1778
105	G485	Triticum aestivum	Ta_S198814	1846
105	G485	Triticum aestivum	Ta_S45374	1847
105	G485	Triticum aestivum	Ta_S50443	1848
105	G485	Triticum aestivum	Ta_S93629	1849
105	G485	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 46859	1980
105	G485	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 47447	1981
106	G485	Poncirus trifoliata	CD574709		9,00E-62
106	G485	Solanum tuberosum	BQ505706		4,00E-60
106	G485	Lactuca sativa	BQ996905		2,00E-58
106	G485	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01003638		3,00E-57
106	G485	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AP005193		3,00E-57
106	G485	Beta vulgaris	BQ592365		9,00E-57
106	G485	Zea mays	CD438068		9,00E-57
106	G485	Physcomitrella patens	AX288144		3,00E-56

381/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
106	G485	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	BU880488		1,00E-55
106	G485	Glycine max	AX584277		6,00E-55
106	G485	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi30409461		4,60E-48
106	G485	Zea mays	gi115840		9,50E-48
106	G485	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi30349365		1,10E-39
106	G485	Oryza sativa	gi15408794		1,60E-38
106	G485	Phaseolus coccineus	gi22536010		2,90E-37
106	G485	Gossypium barbadense	gi28274147		6,30E-35
106	G485	Vernonia galamensis	gi16902054		2,70E-34
106	G485	Glycine max	gi16902050		1,20E-33
106	G485	Argemone mexicana	gi16902056		1,10E-32
106	G485	Triticum aestivum	gi16902058		2,90E-30
108	G521	Brassica oleracea	BH662589		2,00E-78
108	G521	Prunus persica	BU044475		3,00E-71
108	G521	Petunia x hybrida	AF509865		2,00E-67
108	G521	Brassica napus	CD828428		3,00E-67
108	G521	Medicago	AF254124		1,00E-66

382/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		truncatula
108	G521	Hordeum vulgare subesp. spontaneum	BJ481205		3,00E-65
108	G521	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK068153		5,00E-65
108	G521	Hordeum vulgare	BQ469035		1,00E-63
108	G521	Oryza sativa	AX654724		3,00E-63
108	G521	Sorghum propinquum	BG241938		7,00E-62
108	G521	Petunia x hybrida	gi21105732		7,20E-66
108	G521	Medicago truncatula	gi7716952		6,50E-65
108	G521	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi27452910		1,70E-48
108	G521	Oryza sativa	gi6730946		4,10E-40
108	G521	Glycine max	gi22597158		1,10E-37
108	G521	Phaseolus vulgaris	gi15148914		4,80E-37
108	G521	Brassica napus	gi31322572		1,00E-36
108	G521	Lycopersicon esculentum	gi6175246		4,30E-36
108	G521	Solanum tuberosum	gi14485513		5,50E-36
108	G521	Triticum sp.	gi4218535		1,90E-33
110	G549	Brassica oleracea	BOBOFHA		1,0e-999

383/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
110	G549	Lycopersicon esculentum	AF197934		1,00E-152
110	G549	Petunia x hybrida	AF030171		1,00E-150
110	G549	Antirrhinum majus subesp. majus	AMAFLO		1,00E-146
110	G549	Pisum sativum	AF010190		1,00E-145
110	G549	Eschscholzia californica subesp. californica	AY188789		1,00E-144
110	G549	Cucumis sativus	AF059320		1,00E-143
110	G549	Malus x domestica	AB056159		1,00E-139
110	G549	Salix discolor	AY230817		1,00E-138
110	G549	Acacia mangium	AY229890		1,00E-137
110	G549	Brassica oleracea	gi22755		3,40E-201
110	G549	Brassica oleracea var. botrytis	gi487029		3,40E-201
110	G549	Jonopsidium acaule	gi6003582		1,30E-192
110	G549	Nicotiana tabacum	gi561688		1,30E-144
110	G549	Lycopersicon esculentum	gi7658233		2,80E-144
110	G549	Petunia x hybrida	gi2625050		8,40E-143
110	G549	Antirrhinum majus	gi100482		1,30E-137

384/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
110	G549	Antirrhinum majus subesp. majus	gi166430		1,30E-137
110	G549	Eschscholzia californica subesp. californica	gi30313799		1,90E-136
110	G549	Platanus racemosa	gi8574519		2,20E-135
112	G550	Brassica oleracea	BH930799		1,00E-84
112	G550	Medicago truncatula	AC140025		6,00E-82
112	G550	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AP005167		8,00E-74
112	G550	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01004298		1,00E-73
112	G550	Cucurbita maxima	D45066		7,00E-72
112	G550	Oryza sativa	AX659956		2,00E-67
112	G550	Lycopersicon esculentum	BM412713		6,00E-53
112	G550	Lactuca sativa	BQ860203		4,00E-52
112	G550	Poncirus trifoliata	CD575555		1,00E-48
112	G550	Glycine max	BM953958		4,00E-45
112	G550	Oryza sativa	gi7242908		2,80E-66
112	G550	Oryza sativa (grupo do cultivar	gi19071625		1,00E-57

385/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		japonica)
112	G550	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi21538791		9,10E-43
112	G550	Cucurbita maxima	gi1669341		8,20E-42
112	G550	Dendrobium grex Madame Thong-In	gi3929325		8,30E-33
112	G550	Hordeum vulgare	gi3777436		2,30E-24
112	G550	Zea mays	gi1346559		1,80E-23
112	G550	Nicotiana tabacum	gi1360078		2,40E-23
112	G550	Pisum sativum	gi6092016		2,40E-23
112	G550	Solanum tuberosum	gi7688355		1,40E-22
114	G571	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK103174		1,00E-116
114	G571	Oryza sativa	AX653996		1,00E-103
114	G571	Phaseolus vulgaris	AF402608		1,00E-100
114	G571	Triticum aestivum	WHTHBP1BC1		1,00E-100
114	G571	Nicotiana tabacum	AF031487		3,00E-98
114	G571	Zea mays	ZMOCSBFB		2,00E-96
114	G571	Oryza sp.	BD261827		1,00E-94
114	G571	Physcomitrella patens	AX180962		3,00E-93

386/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
114	G571	Vicia faba	VFACREBL		7,00E-89
114	G571	Glycine max	BQ611848		7,00E-88
114	G571	Phaseolus vulgaris	gi15148924		1,50E-95
114	G571	Nicotiana tabacum	gi6288682		8,50E-95
114	G571	Zea mays	gi297018		4,80E-92
114	G571	Oryza sativa	gi13872972		7,90E-92
114	G571	Triticum aestivum	gi1076782		1,00E-91
114	G571	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi33146487		4,30E-91
114	G571	Glycine max	gi7488719		9,10E-75
114	G571	Vicia faba	gi100099		1,90E-74
114	G571	Nicotiana sp.	gi19680		1,10E-71
114	G571	Solanum tuberosum	gi7489280		1,20E-70
116	G581	Gerbera hybrida	GHY7709		3,00E-73
116	G581	Lotus uliginosus	AF503362		1,00E-57
116	G581	Brassica oleracea	BZ019501		3,00E-57
116	G581	Gossypium hirsutum	AF336279		5,00E-54
116	G581	Antirrhinum majus	AMADEL		5,00E-53
116	G581	Oryza sativa	AB021080		7,00E-52
116	G581	Perilla frutescens	AB024050		2,00E-51

387/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
116	G581	Petunia x hybrida	AF020545		3,00E-51
116	G581	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	BU875274		2,00E-49
116	G581	Medicago truncatula	BI308638		6,00E-48
116	G581	Lotus uliginosus	gi20467247		6,80E-92
116	G581	Gossypium hirsutum	gi13346182		2,40E-81
116	G581	Perilla frutescens	gi4519199		6,40E-79
116	G581	Antirrhinum majus	gi166428		8,30E-75
116	G581	Zea mays	gi100897		3,50E-69
116	G581	Oryza sativa	gi1086540		1,20E-63
116	G581	Gerbera hybrida	gi3650292		5,20E-63
116	G581	Lotus japonicus	gi20467249		6,70E-61
116	G581	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32488805		8,80E-57
116	G581	Petunia x hybrida	gi3127045		8,00E-51
118	G600	Brassica oleracea	BZ035190		2,00E-41
118	G600	Helianthus annuus	BQ914741		2,00E-25
118	G600	Medicago truncatula	AW688852		3,00E-24

388/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
118	G600	Glycine max	AW703971		3,00E-22
118	G600	Populus tremula x Populus tremuloides	BU830207		1,00E-18
118	G600	Vitis vinifera	CB913112		2,00E-17
118	G600	Gossypium arboreum	BQ413633		3,00E-15
118	G600	Lactuca sativa	BQ859538		3,00E-11
118	G600	Hedyotis centranthoides	CB086932		4,00E-11
118	G600	Zea mays	CA830375		2,00E-09
118	G600	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi31432245		1,30E-20
118	G600	Oryza sativa	gi11034640		1,50E-06
118	G600	Lycopersicon esculentum	gi9858781		4,50E-06
118	G600	Medicago sativa	gi3334756		5,50E-06
118	G600	Nicotiana plumbaginifoli a	gi3850821		2,50E-05
118	G600	Cucurbita maxima	gi17221648		7,00E-05
118	G600	Zea mays	gi11340599		9,80E-05
118	G600	Chlamydomonas reinhardtii	gi28207761		0,002
118	G600	Nicotiana tabacum	gi8096269		0,0023
118	G600	Pisum sativum	gi7440062		0,027
119	G624	Glycine max	Gma_S4875227	1642

389/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
120	G624	Zea mays	AY103971		1,00E-56
120	G624	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK101356		7,00E-48
120	G624	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	CB620477		8,00E-42
120	G624	Solanum tuberosum	BQ517157		2,00E-41
120	G624	Sorghum bicolor	BE600697		8,00E-41
120	G624	Hordeum vulgare	BG367957		2,00E-39
120	G624	Lactuca sativa	BQ865528		3,00E-34
120	G624	Lycopersicon esculentum	AW737389		6,00E-34
120	G624	Zinnia elegans	AU293844		1,00E-31
120	G624	Glycine max	BF070672		3,00E-25
120	G624	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi23617202		4,50E-95
120	G624	Oryza sativa	gi391885		3,90E-13
120	G624	Daucus carota	gi5578746		4,30E-13
120	G624	Mesembryanthem um crystallinum	gi3219155		7,30E-13
120	G624	Fagopyrum esculentum	gi32469224		1,90E-12
120	G624	Solanum tuberosum	gi27528486		4,20E-12

390/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
120	G624	Zea mays	gi100922		5,60E-12
120	G624	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi1730475		6,30E-12
120	G624	Eragrostis tef	gi17906977		6,30E-12
120	G624	Craterostigma plantagineum	gi2288899		7,10E-12
121	G627	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER65192_1	822
121	G627	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER65192 2	823
121	G627	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER495 1	824
121	G627	Oryza sativa	Os_S65371	1575
121	G627	Medicago truncatula	Mtr_S5455444	1695
121	G627	Hordeum vulgare	Hv_S12327	1727
121	G627	Triticum aestivum	Ta_S329524	1850
121	G627	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 58075	1982
122	G627	Populus tremuloides	AF377868		3,00E-60
122	G627	Eucalyptus globulus subesp. globulus	AF086642		1,00E-59
122	G627	Petunia x hybrida	AF335239		1,00E-58
122	G627	Pimpinella brachycarpa	AF082531		1,00E-58

391/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
122	G627	Populus tremula x Populus tremuloides	BU896825		3,00E-58
122	G627	Cardamine flexuosa	AY257542		2,00E-57
122	G627	Nicotiana tabacum	NTTOB		3,00E-57
122	G627	Sinapis alba	SAU25696		4,00E-57
122	G627	Brassica rapa subesp. pekinensis	AY257541		7,00E-57
122	G627	Oryza sativa	AF141965		3,00E-55
122	G627	Populus tremuloides	gi31295609		1,00E-59
122	G627	Eucalyptus globulus subesp. globulus	gi4322475		2,70E-59
122	G627	Pimpinella brachycarpa	gi3493647		8,20E-58
122	G627	Petunia x hybrida	gi13384056		1,00E-57
122	G627	Sinapis alba	gi1049022		2,50E-56
122	G627	Nicotiana tabacum	gi1076646		2,50E-56
122	G627	Cardamine flexuosa	gi30171309		2,50E-56
122	G627	Brassica rapa subesp. pekinensis	gi30171307		3,20E-56
122	G627	Elaeis guineensis	gi6635740		2,00E-54
122	G627	Oryza sativa	gi5295990		5,30E-54

392/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
124	G646	Brassica oleracea	BH437513		3,00E-71
124	G646	Oryza sativa	AB028129		2,00E-53
124	G646	Brassica napus	CD813699		1,00E-52
124	G646	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01002346		2,00E-51
124	G646	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK060659		1,00E-50
124	G646	Populus tremula	BU821375		8,00E-49
124	G646	Vitis vinifera	CB910264		1,00E-48
124	G646	Nicotiana tabacum	NTA9594		2,00E-46
124	G646	Glycine max	BE611146		1,00E-44
124	G646	Solanum tuberosum	BG592323		9,00E-43
124	G646	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32482863		4,90E-51
124	G646	Oryza sativa	gi4996640		4,90E-51
124	G646	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi20372847		9,50E-50
124	G646	Nicotiana tabacum	gi1360084		2,70E-42
124	G646	Pisum sativum	gi6092016		2,30E-35
124	G646	Triticum aestivum	gi3790264		4,70E-33

393/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
124	G646	Solanum tuberosum	gi7688355		3,20E-32
124	G646	Hordeum vulgare	gi3777436		8,50E-32
124	G646	Zea mays	gi2393775		2,00E-31
124	G646	Cucurbita maxima	gi1669341		2,70E-27
125	G651	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER252329_ 1	825
125	G651	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER28671_1	826
125	G651	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER28671_2	827
125	G651	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER38144_1	828
125	G651	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER12764_1	829
125	G651	Oryza sativa	OSC100181,C1,p 3,fg	830
125	G651	Oryza sativa	OSC100807,C1,p 14,fg	831
125	G651	Oryza sativa	OSC12064,C1,p2 6,fg	832
125	G651	Oryza sativa	OSC4083,C1,p1, fg	833
125	G651	Zea mays	LIB4171-012- R1-K1-B10	834
125	G651	Oryza sativa	Os_S113261	1576
125	G651	Zea mays	Zm_S11367031	1779
125	G651	Zea mays	Zm_S11431995	1780
125	G651	Zea mays	Zm_S11525554	1781
125	G651	Lycopersicon	SGN-UNIGENE-	1983

394/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		esculentum	50411
125	G651	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-34777	1984
125	G651	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-7514	1985
126	G651	Petunia x hybrida	AB035133		4,00E-44
126	G651	Brassica oleracea	BZ474306		3,00E-40
126	G651	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AP005072		5,00E-31
126	G651	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01000406		5,00E-31
126	G651	Lactuca sativa	BU015249		9,00E-31
126	G651	Vitis vinifera	CA808162		3,00E-29
126	G651	Oryza sativa	AC037426		3,00E-29
126	G651	Glycine max	BU548087		1,00E-25
126	G651	Zea mays	BZ372896		1,00E-25
126	G651	Solanum tuberosum	BQ508073		3,00E-25
126	G651	Petunia x hybrida	gi2346986		5,50E-36
126	G651	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi21740840		1,60E-32
126	G651	Medicago sativa	gi7228329		1,70E-16
126	G651	Glycine max	gi1763063		1,20E-15

395/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
126	G651	Datisca glomerata	gi4666360		3,20E-15
126	G651	Oryza sativa	gi15623826		8,80E-13
126	G651	Brassica rapa	gi2058504		1,20E-12
126	G651	Nicotiana tabacum	gi2981169		6,40E-12
126	G651	Triticum aestivum	gi485814		2,30E-11
126	G651	Pisum sativum	gi2129892		3,40E-10
127	G652	Glycine max	BG362937,1	835
127	G652	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER3357_10	836
127	G652	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER3357_14	837
127	G652	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER3357_15	838
127	G652	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER3357_8	839
127	G652	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER3357 9	840
127	G652	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER380953_ 1	841
127	G652	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER4027_1	842
127	G652	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER51249 2	843
127	G652	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER7171_1	844
127	G652	Oryza sativa	OSC100158,C1,p 6,fg	845
127	G652	Oryza sativa	OSC101188,C1,p 2,fg	846

396/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
127	G652	Oryza sativa	OSC101621,C1,p 8,fg	847
127	G652	Oryza sativa	OSC19412,C1,p4 ,fg	848
127	G652	Oryza sativa	OSC20041,C1,p3 ,fg	849
127	G652	Oryza sativa	OSC21434,C1,p2 7,fg	850
127	G652	Oryza sativa	OSC24160,C1,p7 ,fg	851
127	G652	Oryza sativa	OSC24791,C1,p2 ,fg	852
127	G652	Oryza sativa	uC- osflcyp173f05b 1	853
127	G652	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER447_18	854
127	G652	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER447_20	855
127	G652	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER447_21	856
127	G652	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER447 23	857
127	G652	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER55_18	858
127	G652	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER55_22	859
127	G652	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER55_44	860
127	G652	Oryza sativa	Os_S118507	1577
127	G652	Oryza sativa	Os_S42588	1578
127	G652	Oryza sativa	Os_S46064	1579
127	G652	Glycine max	Gma_S4871214	1643

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SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
127	G652	Glycine max	Gma_S4965905	1644
127	G652	Glycine max	Gma_S5135351	1645
127	G652	Hordeum vulgare	Hv_S107672	1728
127	G652	Hordeum vulgare	Hv_S142991	1729
127	G652	Hordeum vulgare	Hv_S147464	1730
127	G652	Zea mays	Zm_S11487070	1782
127	G652	Triticum aestivum	Ta_S109795	1851
127	G652	Triticum aestivum	Ta_S2509	1852
127	G652	Triticum aestivum	Ta_S45732	1853
127	G652	Triticum aestivum	Ta_S60357	1854
127	G652	Triticum aestivum	Ta_S75244	1855
127	G652	Lycopersicon esculentum	Les_S5162139	1928
127	G652	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 56979	1986
127	G652	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-39394	1987
128	G652	Brassica oleracea	BH926980		7,00E-90
128	G652	Nicotiana sylvestris	NSGRP2MR		2,00E-71
128	G652	Zea mays	AI812203		1,00E-64
128	G652	Solanum tuberosum	BM408211		5,00E-64
128	G652	Oryza sativa	AP003879		9,00E-64

398/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
128	G652	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK101577		9,00E-64
128	G652	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01000576		1,00E-62
128	G652	Triticum aestivum	AB066265		2,00E-62
128	G652	Aegilops speltoides	BQ840577		3,00E-62
128	G652	Pinus pinaster	BX249354		9,00E-61
128	G652	Nicotiana sylvestris	gi121631		1,10E-67
128	G652	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi29467522		6,00E-62
128	G652	Triticum aestivum	gi21322752		2,00E-61
128	G652	Chlamydomonas reinhardtii	gi30527347		2,40E-26
128	G652	Phaseolus vulgaris	gi121628		6,20E-26
128	G652	Nicotiana tabacum	gi395147		8,70E-25
128	G652	Brassica napus	gi17821		1,80E-23
128	G652	Petunia x hybrida	gi121627		2,20E-23
128	G652	Petunia sp.	gi225181		2,20E-23
128	G652	Oryza sativa	gi15528745		2,50E-22
130	G707	Picea abies	AF328842		1,0e-999

399/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
130	G707	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AB101648		1,0e-999
130	G707	Oryza sativa	AX658854		1,0e-999
130	G707	Zea mays	ZMA250985		1,0e-999
130	G707	Malus domestica	AF067961		1,0e-999
130	G707	Phalaenopsis sp. SM9108	PSU34743		1,0e-999
130	G707	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01007245		1,0e-999
130	G707	Gossypium hirsutum	AF530913		1,00E-172
130	G707	Sorghum bicolor	AF466200		1,00E-141
130	G707	Helianthus annuus	HNNHAHR		1,00E-138
130	G707	Picea abies	gi19070143		3,20E-237
130	G707	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi31339101		1,00E-231
130	G707	Malus x domestica	gi3925363		4,10E-230
130	G707	Phalaenopsis sp. SM9108	gi1173622		2,40E-200
130	G707	Phalaenopsis sp.	gi2147484		2,40E-200
130	G707	Oryza sativa	gi19072102		2,90E-197
130	G707	Zea mays	gi8920421		1,10E-195

400/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
130	G707	Sorghum bicolor	gi18481701		5,90E-190
130	G707	Gossypium hirsutum	gi22475195		4,80E-168
130	G707	Helianthus annuus	gi1208940		3,70E-127
132	G728	Brassica oleracea	BH471284		4,00E-41
132	G728	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK105625		1,00E-40
132	G728	Lycopersicon esculentum	AW032021		3,00E-30
132	G728	Prunus persica	BU040714		4,00E-28
132	G728	Prunus armeniaca	CB820349		1,00E-27
132	G728	Populus tremula x Populus tremuloides	BU886442		2,00E-27
132	G728	Triticum aestivum	BU100819		2,00E-27
132	G728	Populus balsamifera subesp. trichocarpa x Populus deltoides	CB239440		2,00E-26
132	G728	Vitis vinifera	CB979887		2,00E-25
132	G728	Triticum monococcum	BQ803556		6,00E-25
132	G728	Oryza sativa (grupo do cultivar	gi33146555		2,40E-41

401/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		japonica)
132	G728	Oryza sativa	gi11034542		5,70E-35
132	G728	Nicotiana tabacum	gi4519671		1,00E-11
132	G728	Chlamydomonas reinhardtii	gi5916207		2,80E-11
132	G728	Zea mays	gi15667625		5,40E-11
132	G728	Miesembryanthem um crystallinum	gi6942190		1,30E-10
132	G728	Solanum bulbocastanum	gi32470629		1,70E-09
132	G728	Oryza glaberrima	gi31338862		2,70E-08
132	G728	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi31338860		4,50E-08
132	G728	Glycine max	gi23821873		0,064
134	G730	Brassica oleracea	BH976893		2,00E-73
134	G730	Medicago truncatula	CA922031		1,00E-41
134	G730	Vitis vinifera	CB005926		4,00E-36
134	G730	Lactuca sativa	BU004983		5,00E-34
134	G730	Glycine max	BG363182		2,00E-31
134	G730	Triticum aestivum	CA498340		4,00E-30
134	G730	Solanum tuberosum	BQ115344		1,00E-28
134	G730	Brassica napus	CD817870		3,00E-28
134	G730	Populus tremula x	AI163121		6,00E-27

402/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		Populus tremuloides
134	G730	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK108408		1,00E-26
134	G730	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi29467563		6,40E-41
134	G730	Nicotiana tabacum	gi4519671		1,80E-15
134	G730	Mesembryan them um crystallinum	gi6942190		5,20E-15
134	G730	Solanum bulbocastanum	gi32470629		8,00E-13
134	G730	Chlamydomonas reinhardtii	gi5916207		1,90E-12
134	G730	Oryza sativa	gi11034542		1,70E-08
134	G730	Oryza glaberrima	gi31338862		6,40E-08
134	G730	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi31338860		4,00E-07
134	G730	Zea mays	gi15667625		1,00E-05
134	G730	Theophrasta americana	gi12004107		0,41
136	G738	Medicago truncatula	BF636532		5,00E-37
136	G738	Brassica oleracea	BH568823		7,00E-36
136	G738	Glycine max	BE555532		1,00E-35

403/1027

SEQ ID N2: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID N : da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
136	G738	Nicotiana tabacum	NTA9594		2,00E-34
136	G738	Lycopersicon esculentum	AI894846		7,00E-33
136	G738	Capsicum annuum	CA847307		8,00E-32
136	G738	Vitis vinifera	CB910264		1,00E-31
136	G738	Solanum tuberosum	BM113542		6,00E-31
136	G738	Zea mays	CC698952		6,00E-31
136	G738	Oryza sativa	OSJN00155		4,00E-30
136	G738	Nicotiana tabacum	gi3341468		3,90E-35
136	G738	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi20372847		6,00E-33
136	G738	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32482863		2,50E-31
136	G738	Oryza sativa	gi4996640		2,50E-31
136	G738	Pisum sativum	gi6092016		8,30E-30
136	G738	Solanum tuberosum	gi7688355		2,10E-27
136	G738	Zea mays	gi2393775		2,70E-27
136	G738	Triticum aestivum	gi3790264		7,10E-27
136	G738	Hordeum vulgare	gi3777436		4,10E-24
136	G738	Cucurbita maxima	gi1669341		2,00E-22
138	G744	Oryza sativa	AK070302		2,00E-63

404/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		(grupo do cultivar japonica)
138	G744	Lactuca sativa	BQ856329		5,00E-59
138	G744	Vitis vinifera	CA817874		2,00E-57
138	G744	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	CA767518		5,00E-55
138	G744	Brassica oleracea	BH430310		6,00E-54
138	G744	Triticum aestivum	BJ258750		1,00E-51
138	G744	Zea mays	AW257837		1,00E-50
138	G744	Hordeum vulgare subesp. vulgare	BF628902		2,00E-47
138	G744	Pinus pinaster	BX252059		1,00E-44
138	G744	Brassica napus	AI352966		6,00E-42
138	G744	Oryza sativa	gi18855037		2,40E-35
138	G744	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi31433346		8,10E-35
138	G744	Zea mays	gi18092342		1,20E-13
138	G744	Nicotiana tabacum	gi12003386		5,40E-13
138	G744	Cucumis melo	gi17016985		1,40E-12
138	G744	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi20152976		8,20E-11
138	G744	Hordeum	gi2894379		2,00E-09

405/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		vulgare
138	G744	Medicago sativa	gi23451086		5,60E-08
138	G744	Glycine max	gi1076498		1,00E-06
138	G744	Pisum sativum	gi4240031		1,40E-06
140	G752	Brassica oleracea	BZ499460		1,00E-70
140	G752	Medicago truncatula	CA920567		2,00E-58
140	G752	Poncirus trifoliata	CD573735		7,00E-55
140	G752	Zea mays	CD436549		1,00E-54
140	G752	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK066069		6,00E-54
140	G752	Oryza sativa	AX653661		6,00E-54
140	G752	Lycopersicon esculentum	BI923342		2,00E-52
140	G752	Hordeum vulgare subesp. spontaneum	AV946923		1,00E-49
140	G752	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	CB627816		2,00E-49
140	G752	Glycine max	AI438025		5,00E-48
140	G752	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi21740878		4,30E-29
140	G752	Pisum sativum	gi4240031		1,50E-27
140	G752	Glycine max	gi1076498		3,30E-27

406/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
140	G752	Lotus japonicus	gi1086225		8,40E-26
140	G752	Oryza sativa	gi8570055		8,70E-23
140	G752	Cicer arietinum	gi10334499		1,10E-13
140	G752	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi29164825		2,60E-07
140	G752	Triticum aestivum	gi32400766		1,00E-05
140	G752	Zea mays	gi18092342		1,60E-05
140	G752	Tulipa gesneriana	gi23386073		0,00011
141	G807	Oryza sativa	G3491	2201	1E-114
141	G807	Glycine max	G3494	2203	1E-116
141	G807	Glycine max	G3495	2205	1E-117
141	G807	Glycine max	G3512	2207	1E-118
141	G807	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER700_1	861
141	G807	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER700_2	862
141	G807	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER700_3	863
141	G807	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER7494_1	864
141	G807	Oryza sativa	OSC19953,C1,p7 ,fg	865
141	G807	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER20750_1	866
141	G807	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER8272_1	867
141	G807	Oryza sativa	Os_S33091	1580

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SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
141	G807	Hordeum vulgare	Hv_S99692	1731
141	G807	Zea mays	Zm_S11426353	1783
141	G807	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 57622	1988
141	G807	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-334447	1989
142	G807	Lycopersicon peruvianum	LPHSF8		1,00E-112
142	G807	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK106118		1,00E-111
142	G807	Brassica napus	CD814788		6,00E-96
142	G807	Medicago truncatula	AC087771		4,00E-82
142	G807	Solanum tuberosum	BG890899		1,00E-80
142	G807	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01005302		6,00E-80
142	G807	Oryza sativa	AC120506		5,00E-79
142	G807	Lycopersicon esculentum	LEHSF8		4,00E-78
142	G807	Glycine max	AW569256		2,00E-76
142	G807	Populus tremula x Populus tremuloides	BU834690		1,00E-73
142	G807	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi29126355		4,80E-101

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SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
142	G807	Lycopersi con peruvianum	gi100264		1,30E-100
142	G807	Lycopersicon esculentum	gi100225		1,60E-100
142	G807	Nicotiana tabacum	gi5821138		2,90E-56
142	G807	Phaseolus acutifolius	gi16118447		1,10E-52
142	G807	Medicago sativa	gi20162459		2,80E-50
142	G807	Glycine max	gi662924		1,90E-49
142	G807	Zea mays	gi2130134		1,40E-48
142	G807	Oryza sativa	gi14209551		1,70E-48
142	G807	Helianthus annuus	gi25052685		1,80E-46
144	G811	Solanum tuberosum	BG889138		8,00E-70
144	G811	Lycopersicon esculentum	AW738534		1,00E-64
144	G811	Lactuca sativa	BQ854304		3,00E-64
144	G811	Glycine max	BE347442		2,00E-52
144	G811	Euphorbia esula	AW874988		2,00E-50
144	G811	Capsicum annuum	CA514873		4,00E-50
144	G811	Vitis vinifera	CB920522		4,00E-48
144	G811	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK106488		1,00E-47
144	G811	Triticum aestivum	CD909725		7,00E-47
144	G811	Oryza sativa	AX652911		2,00E-46

409/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
144	G811	Oryza sativa	gi15624016		1,60E-47
144	G811	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20161000		1,60E-47
144	G811	Lycopersi con peruvianum	gi100264		3,60E-39
144	G811	Lycopersicon esculentum	gi100225		4,70E-39
144	G811	Glycine max	gi2129831		5,40E-39
144	G811	Nicotiana tabacum	gi5821138		4,30E-36
144	G811	Medicago sativa	gi20162459		8,80E-36
144	G811	Zea mays	gi2130134		3,90E-35
144	G811	Phaseolus acutifolius	gi16118447		1,70E-32
144	G811	Helianthus annuus	gi25052685		2,80E-32
145	G839	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER16158_1	868
145	G839	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER66623_1	869
145	G839	Glycine max	LIB4164-057- R1-N1-A5	870
145	G839	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER117082_ 1	871
145	G839	Oryza sativa	OSC2170,C1,p5, fg	872
145	G839	Oryza sativa	OSC28351,C1,p1 ,fg	873
145	G839	Oryza sativa	rsicek_9913,y1	874

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SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
			, abd
145	G839	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER1121_63	875
145	G839	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER7249 1	876
145	G839	Glycine max	Gma_S4891477	1646
145	G839	Glycine max	Gma_S6669519	1647
145	G839	Zea mays	Zm_S11525703	1784
145	G839	Triticum aestivum	Ta_S276434	1856
145	G839	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 53309	1990
145	G839	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 58458	1991
145	G839	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-453084	1992
146	G839	Nicotiana tabacum	BD260600		1,00E-176
146	G839	Helianthus annuus	BD260596		1,00E-171
146	G839	Zea mays	AX041006		1,00E-158
146	G839	Triticum aestivum	BD263897		1,00E-154
146	G839	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK067198		1,00E-149
146	G839	Oryza sativa	AX653720		1,00E-137
146	G839	Beta vulgaris	BD260595		1,00E-110
146	G839	Lycopersicon esculentum	BD260557		1,00E-110
146	G839	Brassica napus	AF527176		7,00E-97
146	G839	Brassica	BH483537		3,00E-90

411/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		oleracea
146	G839	Zea mays	gi11340603		2,00E-153
146	G839	Triticum aestivum	gi18616497		5,20E-145
146	G839	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi22535593		2,30E-144
146	G839	Oryza sativa	gi18616493		2,80E-131
146	G839	Nicotiana tabacum	gi21552981		2,00E-111
146	G839	Brassica napus	gi22003730		1,80E-94
146	G839	Chlamydomonas reinhardtii	gi30025990		0,14
146	G839	Nicotiana alata	gi26418416		0,22
146	G839	Pennisetum ciliare	gi549986		0,64
146	G839	Gossypium herbaceum	gi29837373		0,9
148	G846	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK100130		1,0e-999
148	G846	Oryza sativa	AX652964		1,0e-999
148	G846	Medicago truncatula	CB893601		1,00E-102
148	G846	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01003006		5,00E-98
148	G846	Triticum aestivum	BQ842184		1,00E-92
148	G846	Helianthus	BU028886		5,00E-89

412/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		annuus
148	G846	Lactuca sativa	BQ869409		8,00E-87
148	G846	Brassica oleracea	BZ039976		6,00E-83
148	G846	Lycopersicon esculentum	BE433450		1,00E-74
148	G846	Populus tremula x Populus tremuloides	BU894371		1,00E-70
148	G846	Oryza sativa	gi15289872		3,50E-215
148	G846	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32489674		3,50E-176
148	G846	Zea mays	gi18463957		1,10E-33
148	G846	Triticum monococcum	gi23193487		1,80E-28
148	G846	Hordeum vulgare subesp. Vulgare	gi23193479		2,90E-28
148	G846	Hordeum vulgare	gi23193481		3,70E-28
148	G846	Rosa hybrid cultivar	gi15029364		0,0017
148	G846	Populus x canescens	gi22795037		0,013
148	G846	Glycine max	gi25172766		0,018
148	G846	Arabis gemmifera	gi22775495		0,022
150	G852	Oryza sativa (grupo do cultivar	AK060833		1,00E-155

413/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		japonica)
150	G852	Brassica oleracea	BZ426102		1,00E-121
150	G852	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	CB628520		1,00E-115
150	G852	Oryza sativa	AP003747		1,00E-112
150	G852	Medicago truncatula	AC137079		1,00E-107
150	G852	Zea mays	AY109543		1,00E-105
150	G852	Glycine max	BQ629578		4,00E-89
150	G852	Triticum aestivum	BQ744552		2,00E-88
150	G852	Vitis vinifera	CB980495		2,00E-86
150	G852	Solanum tuberosum	BQ510154		5,00E-86
150	G852	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20161431		5,00E-149
150	G852	Lilium longiflorum	gi32813435		1,20E-55
150	G852	Oryza sativa	gi14719333		2,20E-54
150	G852	Vitis vinifera	gi20334379		5,20E-53
150	G852	Zea mays	gi10178637		1,10E-52
150	G852	Pisum sativum	gi13365610		7,20E-50
150	G852	Lycopersicon esculentum	gi31322802		1,50E-49
150	G852	Brassica rapa subesp. pekinensis	gi28143934		5,80E-48
150	G852	Gossypium	gi29122893		2,00E-47

414/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		hirsutum
150	G852	Carlquistia muirii	gi20257447		2,50E-47
152	G905	Brassica oleracea	BZ481426		7,00E-97
152	G905	Medicago truncatula	AC136503		2,00E-52
152	G905	Cucumis melo	AF499727		3,00E-48
152	G905	Citrus sinensis	CB290516		9,00E-41
152	G905	Poncirus trifoliata	CD576402		4,00E-39
152	G905	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	BU878367		2,00E-38
152	G905	Capsicum annuum	BM063816		2,00E-37
152	G905	Gossypium hirsutum	AI730749		5,00E-37
152	G905	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01018235		2,00E-36
152	G905	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AP004164		2,00E-36
152	G905	Cucumis melo	gi28558782		6,50E-49
152	G905	Oryza sativa	gi21740711		4,70E-30
152	G905	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi24756877		4,30E-29

415/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
152	G905	Medicago sativa	gi23451086		6,90E-19
152	G905	Nicotiana tabacum	gi12003386		1,20E-18
152	G905	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi20152976		5,80E-15
152	G905	Zea mays	gi21645888		1,00E-14
152	G905	Hordeum vulgare	gi2894379		2,00E-12
152	G905	Solanum tuberosum	gi24745601		8,70E-11
152	G905	Thellungiella halophila	gi20340241		1,10E-09
153	G916	Glycine max	BE021411,1	877
153	G916	Glycine max	BG652320,1	878
153	G916	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER191657_ 1	879
153	G916	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER3354_1	880
153	G916	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER3354_2	881
153	G916	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER3354_3	882
153	G916	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER3354_4	883
153	G916	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER47179_1	884
153	G916	Oryza sativa	OSC101573,C1,p 8,fg	885
153	G916	Oryza sativa	OSC1429,C1,p2,	886

416/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
			fg
153	G916	Oryza sativa	OSC18885,C1,p1 7,fg	887
153	G916	Oryza sativa	rsicee_8920,y1 ,abd	888
153	G916	Glycine max	Gma_S4878547	1648
153	G916	Glycine max	Gma_S6668474	1649
153	G916	Hordeum vulgare	Hv_S119532	1732
153	G916	Zea mays	Zm_S11388469	1785
153	G916	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 47034	1993
153	G916	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 47543	1994
153	G916	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 52279	1995
153	G916	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-18500	1996
153	G916	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-1941	1997
153	G916	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-20683	1998
154	G916	Oryza sativa	AX653053		7,00E-97
154	G916	Citrus sinensis	BQ625082		2,00E-81
154	G916	Medicago truncatula	CB893379		3,00E-80
154	G916	Glycine max	BU926713		5,00E-77
154	G916	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01004053		4,00E-76
154	G916	Oryza sativa	AC120986		1,00E-75

417/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		(grupo do cultivar japonica)
154	G916	Lycopersicon esculentum	AI895084		5,00E-71
154	G916	Prunus persica	BU047549		1,00E-69
154	G916	Glycine clandestina	BG838724		7,00E-66
154	G916	Brassica oleracea	BH710263		1,00E-58
154	G916	Oryza sativa	gi11320830		1,50E-98
154	G916	Nicotiana tabacum	gi30013667		3,90E-42
154	G916	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20160973		1,50E-33
154	G916	Avena fatua	gi1159879		2,80E-30
154	G916	Petroselinum crispum	gi11493822		5,30E-27
154	G916	Pimpinella brachycarpa	gi3420906		2,30E-23
154	G916	Capsella rubella	gi32454266		1,00E-22
154	G916	Lycopersicon esculentum	gi13620227		2,00E-21
154	G916	Ipomoea batatas	gi1076685		4,50E-21
154	G916	Avena sativa	gi4894965		9,60E-21
155	G926	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER3291_14	889
155	G926	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER3291_6	890

418/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
155	G926	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER2283_3	891
155	G926	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER56491 1	892
155	G926	Oryza sativa	uCosrocyp029g09a 1	893
155	G926	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER15892 1	894
155	G926	Triticum aestivum	Ta_S91478	1857
155	G926	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 52928	1999
155	G926	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 57779	2000
155	G926	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-15562	2001
156	G926	Prunus dulcis	BU573158		1,00E-56
156	G926	Medicago truncatula	BI310587		3,00E-55
156	G926	Citrus sinensis	BQ624240		1,00E-47
156	G926	Brassica oleracea	BH443554		4,00E-44
156	G926	Helianthus paradoxus	CF082573		5,00E-40
156	G926	Brassica napus	BNU33885		2,00E-39
156	G926	Lycopersicon esculentum	BF113081		1,00E-37
156	G926	Solanum tuberosum	BG886494		3,00E-36
156	G926	Glycine max	AW472517		4,00E-36
156	G926	Gossypium	BQ407583		7,00E-36

419/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		arboreum
156	G926	Brassica napus	gi1173616		1,20E-40
156	G926	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi27552556		2,60E-36
156	G926	Oryza sativa	gi2826786		1,30E-27
156	G926	Vitis riparia	gi7141243		7,10E-27
156	G926	Nicotiana tabacum	gi4731314		5,00E-19
156	G926	Vicia faba	gi2104675		0,0075
156	G926	Hordeum vulgare	gi21667471		0,71
156	G926	Phaseolus vulgaris	gi13775107		0,74
156	G926	Solanum tuberosum	gi1096930		0,76
156	G926	Zea mays	gi1839593		0,84
158	G957	Brassica oleracea	BH998192		1,00E-86
158	G957	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	BU879250		6,00E-82
158	G957	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK109860		2,00E-74
158	G957	Hordeum vulgare	BE060921		1,00E-68
158	G957	Nbdicago truncatula	BF645745		3,00E-68
158	G957	Lycopersicon esculentum	BF098091		3,00E-67

420/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
158	G957	Oryza sativa	AB028186		4,00E-66
158	G957	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01001925		1,00E-63
158	G957	Populus balsamifera subesp. trichocarpa x Populus deltoides	CA826386		2,00E-63
158	G957	Triticum aestivum	BQ483881		1,00E-60
158	G957	Oryza sativa	gi11875152		5,40E-78
158	G957	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi28190666		5,40E-78
158	G957	Phaseolus vulgaris	gi15148914		8,80E-45
158	G957	Glycine max	gi22597158		7,90E-44
158	G957	Petunia x hybrida	gi1279640		4,40E-43
158	G957	Brassica napus	gi31322568		6,40E-42
158	G957	Lycopersicon esculentum	gi6175246		7,40E-41
158	G957	Solanum tuberosum	gi14485513		3,50E-40
158	G957	Triticum sp.	gi4218537		8,40E-40
158	G957	Triticum monococcum	gi6732160		8,40E-40
159	G961	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER264630_ 1	895

421/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
159	G961	Glycine max	jC- gmXLIB3563P021 ad08d2	896
159	G961	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER6410_1	897
159	G961	Oryza sativa	OSC21400,C1,p3 ,fg	898
159	G961	Zea mays	LIB4743-075- R1-K1-G11	899
159	G961	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER13382_1	900
159	G961	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER13382_2	901
159	G961	Glycine max	Gma_S5137324	1650
159	G961	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-366637	2002
160	G961	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK109860		1,00E-88
160	G961	Brassica oleracea	BZ522709		6,00E-84
160	G961	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	BU879250		3,00E-81
160	G961	Hordeum vulgare	BE060921		3,00E-72
160	G961	Lycopersicon esculentum	BF098091		3,00E-70
160	G961	Glycine max	BU547985		4,00E-69
160	G961	Medicago truncatula	BF645892		3,00E-67
160	G961	Oryza sativa	AP002542		3,00E-66

422/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
160	G961	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01001925		3,00E-66
160	G961	Triticum aestivum	CD878476		2,00E-63
160	G961	Oryza sativa	gi11875152		5,00E-83
160	G961	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi28190666		5,00E-83
160	G961	Glycine max	gi22597158		1,10E-46
160	G961	Phaseolus vulgaris	gi15148914		1,30E-45
160	G961	Petunia x hybrida	gi1279640		2,00E-45
160	G961	Triticum sp.	gi4218537		3,00E-44
160	G961	Triticum monococcum	gi6732160		3,00E-44
160	G961	Brassica napus	gi31322582		7,90E-44
160	G961	Zea mays	gi32527660		7,10E-43
160	G961	Lycopersicon esculentum	gi6175246		2,80E-41
161	G975	Glycine max	AW705973,1	902
161	G975	Glycine max	BE610471,1	903
161	G975	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER232634_ 1	904
161	G975	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER8245_1	905
161	G975	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER84865_1	906
161	G975	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02-	907

423/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
			CLUSTER256875_ 1
161	G975	Oryza sativa	OSC33871,C1,p4 ,fg	908
161	G975	Oryza sativa	rsicek_16488,y 1,abd	909
161	G975	Zea mays	BG874224,1	910
161	G975	Zea mays	ZEAMA-08NOV01CLUSTER277338_ 1	911
161	G975	Hordeum vulgare	Hv_S31912	1733
161	G975	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 52816	2003
161	G975	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-14957	2004
161	G975	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-330976	2005
161	G975	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-335836	2006
162	G975	Brassica napus	CD838135		2,00E-91
162	G975	Brassica oleracea	BH477624		2,00E-69
162	G975	Triticum aestivum	CA486875		4,00E-64
162	G975	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK061163		3,00E-62
162	G975	Oryza sativa	AX699685		2,00E-61
162	G975	Rosa chinensis	BI978981		3,00E-60
162	G975	Amborella trichopoda	CD484088		3,00E-59

424/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
162	G975	Hordeum vulgare subesp. vulgare	BU978490		2,00E-58
162	G975	Vitis aestivalis	CB289393		7,00E-58
162	G975	Lycopersicon esculentum	BG642554		1,00E-56
162	G975	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32479658		2,20E-30
162	G975	Lycopersicon esculentum	gi18650662		2,20E-25
162	G975	Lupinus polyphyllus	gi131754		2,60E-22
162	G975	Nicotiana tabacum	gi3065895		1,10E-19
162	G975	Atriplex hortensis	gi8571476		1,10E-19
162	G975	Zea mays	gi21908036		1,00E-18
162	G975	Stylosanthes hamata	gi4099914		1,30E-18
162	G975	Hordeum vulgare	gi27960757		1,70E-18
162	G975	Oryza sativa	gi10567106		2,00E-18
162	G975	Nicotiana sylvestris	gi8809573		1,20E-17
163	G1011	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER36089_1	912
163	G1011	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER36089_2	913
163	G1011	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER36089_3	914

425/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
163	G1011	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER36089_4	915
163	G1011	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER36089_6	916
163	G1011	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER475715_ 2	917
163	G1011	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER475_3	918
163	G1011	Oryza sativa	OSC101782,C1,p 2,fg	919
163	G1011	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER48_1	920
163	G1011	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER48_2	921
163	G1011	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER48_4	922
163	G1011	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER48_5	923
163	G1011	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER8143_1	924
163	G1011	Oryza sativa	Os_S60918	1581
163	G1011	Glycine max	Gma_S5094568	1651
163	G1011	Medicago truncatula	Mtr_S5357829	1696
163	G1011	Zea mays	Zm_S11418746	1786
163	G1011	Zea mays	Zm_S11527819	1787
163	G1011	Triticum aestivum	Ta_S203038	1858
163	G1011	Triticum aestivum	Ta_S304256	1859
163	G1011	Triticum aestivum	Ta_S424724	1860

426/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
163	G1011	Lycopersicon esculentum	Les_S5295933	1929
163	G1011	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 50586	2007
163	G1011	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 52410	2008
163	G1011	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-366830	2009
163	G1011	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-394847	2010
164	G1011	Petunia x hybrida	AF335240		1,00E-58
164	G1011	Sinapis alba	SAU25696		5,00E-58
164	G1011	Brassica rapa subesp. pekinensis	AY257541		1,00E-57
164	G1011	Lycopersicon esculentum	AI486684		1,00E-57
164	G1011	Cardamine flexuosa	AY257542		2,00E-57
164	G1011	Vitis vinifera	CA808988		3,00E-57
164	G1011	Populus tremuloides	AF377868		9,00E-57
164	G1011	Pimpinella brachycarpa	AF082531		8,00E-56
164	G1011	Eucalyptus grandis	AY263808		2,00E-55
164	G1011	Draba nemorosa var. hebecarpa	AY257543		8,00E-55
164	G1011	Petunia x hybrida	gi13384058		3,90E-58
164	G1011	Sinapis alba	gi1049022		4,50E-57
164	G1011	Brassica rapa	gi30171307		5,70E-57

427/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		subesp. pekinensis
164	G1011	Cardamine flexuosa	gi30171309		1,90E-56
164	G1011	Populus tremuloides	gi31295609		1,40E-55
164	G1011	Pimpinella brachycarpa	gi3493647		7,60E-55
164	G1011	Nicotiana tabacum	gi1076646		1,60E-54
164	G1011	Eucalyptus grandis	gi30575600		1,60E-54
164	G1011	Draba nemorosa var. hebecarpa	gi30171311		1,10E-53
164	G1011	Eucalyptus occidentalis	gi30983946		1,10E-53
165	G1013	Oryza sativa	OSC102289,C1,p 7,fg	925
166	G1013	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK110625		6,00E-36
166	G1013	Lotus japonicus	AV419754		5,00E-21
166	G1013	Glycine max	BU082967		3,00E-17
166	G1013	Oryza sativa	BI799118		4,00E-17
166	G1013	Amborella trichopoda	CD483414		6,00E-17
166	G1013	Zea mays	BM269291		1,00E-16
166	G1013	Triticum aestivum	BE445081		1,00E-16
166	G1013	Beta vulgaris	BQ490186		1,00E-16
166	G1013	Prunus persica	BU044499		1,00E-16

428/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
166	G1013	Hordeum vulgare	CB868568		1,00E-16
166	G1013	Oryza sativa	gi15289994		2,40E-39
166	G1013	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20160927		2,40E-39
166	G1013	Nicotiana tabacum	gi14530683		1,30E-18
166	G1013	Solanum tuberosum	gi24745606		1,30E-18
166	G1013	Cucumis sativus	gi7484759		2,90E-17
166	G1013	Capsella rubella	gi13620168		3,00E-17
166	G1013	Ipomoea batatas	gi1076685		7,30E-17
166	G1013	Petroselinum crispum	gi1432058		3,70E-16
166	G1013	Retama raetam	gi18158619		5,30E-16
166	G1013	Lycopersicon esculentum	gi13620227		5,50E-16
168	G1017	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK100322		1,0e-999
168	G1017	Oryza sativa	AB071299		1,0e-999
168	G1017	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01008877		1,00E-170
168	G1017	Lotus japonicus	AP004505		1,00E-139
168	G1017	Physcomitrella	AX288142		1,00E-130

429/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		patens
168	G1017	Zea mays	CC657791		1,00E-104
168	G1017	Brassica oleracea	BH736206		1,00E-101
168	G1017	Medicago truncatula	BG646821		3,00E-98
168	G1017	Vitis vinifera	CB979491		2,00E-87
168	G1017	Triticum aestivum	BJ258796		5,00E-70
168	G1017	Oryza sativa	gi19352051		1,40E-194
168	G1017	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi13384374		7,90E-179
168	G1017	Mangifera indica	gi30027167		5,50E-73
168	G1017	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi26251300		3,10E-72
168	G1017	Prunus persica	gi27450533		5,00E-70
168	G1017	Marchantia polymorpha	gi25272004		2,60E-11
168	G1017	Mirabilis jalapa	gi23343944		0,00011
168	G1017	Zea mays	gi18697008		0,00015
168	G1017	Pisum sativum	gi1352057		0,01
168	G1017	Populus tremula x Populus tremuloides	gi20269063		0,1
170	G1033	Brassica napus	CD822227		6,00E-72
170	G1033	Medicago	BI264539		8,00E-60

430/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		truncatula
170	G1033	Glycine max	BI967499		3,00E-59
170	G1033	Hedyotis centranthoides	CB087944		7,00E-58
170	G1033	Phaseolus coccineus	CA902244		7,00E-56
170	G1033	Pisum sativum	CD860485		5,00E-54
170	G1033	Helianthus annuus	CD856695		5,00E-54
170	G1033	Capsicum annuum	BM063385		9,00E-53
170	G1033	Vitis vinifera	CA818147		2,00E-52
170	G1033	Lycopersicon esculentum	AI776807		2,00E-52
170	G1033	Ipomoea nil	gi1052956		6,10E-37
170	G1033	Nicotiana tabacum	gi2196548		7,80E-37
170	G1033	Solanum tuberosum	gi2894109		7,00E-36
170	G1033	Pisum sativum	gi436424		1,10E-35
170	G1033	Glycine max	gi123379		3,90E-35
170	G1033	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi23345287		4,50E-34
170	G1033	Oryza sativa	gi3885888		4,50E-34
170	G1033	Zea mays	gi2196672		1,50E-33
170	G1033	Vicia faba	gi541981		2,50E-33
170	G1033	Triticum aestivum	gi100791		3,10E-33
171	G1037	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER33215_1	926

431/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
171	G1037	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER35769_1	927
171	G1037	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER35769_2	928
171	G1037	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER78853_1	929
171	G1037	Oryza sativa	LIB4309-004- Q1-K1-F10	930
171	G1037	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER7899_1	931
171	G1037	Oryza sativa	OSC101221,C1,p 7,fg	932
171	G1037	Oryza sativa	OSC101630,C1,p 9,fg	933
171	G1037	Oryza sativa	OSC101746,C1,p 5,fg	934
171	G1037	Oryza sativa	OSC101754,C1,p 6,fg	935
171	G1037	Oryza sativa	OSC15521,C1,p1 ,fg	936
171	G1037	Oryza sativa	OSC22451,C1,p8 ,fg	937
171	G1037	Oryza sativa	rsicek_16168,y 1,abd	938
171	G1037	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER1091_1	939
171	G1037	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER586757_ 1	940
171	G1037	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER724_633	941
171	G1037	Glycine max	Gma_S4903453	1652
171	G1037	Zea mays	Zm_S11418484	1788

432/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
171	G1037	Zea mays	Zm_S11440157	1789
171	G1037	Triticum aestivum	Ta_S103284	1861
171	G1037	Triticum aestivum	Ta_S349182	1862
171	G1037	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-68090	2011
172	G1037	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK101165		1,00E-100
172	G1037	Zea mays	AB062095		4,00E-94
172	G1037	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	CB630542		6,00E-90
172	G1037	Brassica oleracea	BH007675		6,00E-87
172	G1037	Solanum tuberosum	BM407041		6,00E-77
172	G1037	Medicago truncatula	BG450692		7,00E-71
172	G1037	Lactuca sativa	BQ858556		4,00E-62
172	G1037	Stevia rebaudiana	BG523436		1,00E-60
172	G1037	Vitis vinifera	CD800109		2,00E-58
172	G1037	Oryza sativa	AP004552		1,00E-56
172	G1037	Zea mays	gi14189890		1,80E-92
172	G1037	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi24308616		3,80E-76
172	G1037	Oryza	gi31338862		5,40E-45

433/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		glaberrima
172	G1037	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi31338860		1,80E-44
172	G1037	Oryza sativa	gi15289981		1,30E-20
172	G1037	Dianthus caryophyllus	gi13173408		1,00E-10
172	G1037	Nicotiana tabacum	gi4519671		6,80E-09
172	G1037	Mesembryan them um crystallinum	gi6942190		2,20E-07
172	G1037	Chlamydomonas reinhardtii	gi5916207		3,30E-07
172	G1037	Solanum bulbocastanum	gi32470629		2,60E-06
174	G1082	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK100643		1,00E-144
174	G1082	Brassica oleracea	BH666792		1,00E-90
174	G1082	Solanum tuberosum	BI179090		7,00E-77
174	G1082	Glycine max	CA785487		3,00E-75
174	G1082	Helianthus annuus	BU026443		4,00E-67
174	G1082	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	BU883184		2,00E-63
174	G1082	Hordeum vulgare subesp.	CA030236		3,00E-60

434/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		vulgare
174	G1082	Triticum aestivum	BJ288629		2,00E-55
174	G1082	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01001043		5,00E-54
174	G1082	Lactuca sativa	BQ860209		6,00E-54
174	G1082	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32483081		4,10E-79
174	G1082	Gossypium hirsutum	gi22858664		2,10E-46
174	G1082	Oryza sativa	gi13124871		1,10E-43
174	G1082	Marsilea quadrifolia	gi22550110		1,10E-15
174	G1082	Catharanthus roseus	gi1486263		2,70E-07
174	G1082	Lupinus angustifolius	gi28912428		2,50E-05
174	G1082	Glycine max	gi347455		3,10E-05
174	G1082	Vigna unguiculata	gi1076556		3,80E-05
174	G1082	Lycopersicon esculentum	gi100210		6,10E-05
174	G1082	Nicotiana tabacum	gi296617		7,70E-05
176	G1100	Brassica oleracea	BZ515453		8,00E-61
176	G1100	Medicago truncatula	CB892846		1,00E-41
176	G1100	Cucumis melo	AF499727		2,00E-41

435/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
176	G1100	Solanum tuberosum	BG590574		3,00E-31
176	G1100	Citrus sinensis	CB290516		1,00E-30
176	G1100	Zea mays	CC605834		3,00E-30
176	G1100	Poncirus trifoliata	CD576402		3,00E-30
176	G1100	Gossypium hirsutum	AI730749		2,00E-29
176	G1100	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AP005399		1,00E-28
176	G1100	Glycine max	BQ094213		1,00E-28
176	G1100	Cucumis melo	gi28558782		6,50E-45
176	G1100	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi24756877		2,10E-27
176	G1100	Oryza sativa	gi21740711		3,80E-25
176	G1100	Medicago sativa	gi23451086		7,00E-20
176	G1100	Nicotiana tabacum	gi12003386		3,50E-15
176	G1100	Zea mays	gi21645888		1,80E-12
176	G1100	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi20152976		2,70E-12
176	G1100	Hordeum vulgare	gi2894379		4,90E-12
176	G1100	Solanum tuberosum	gi24745601		4,80E-10

436/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
176	G1100	Cicer arietinum	gi4651204		2,90E-08
178	G1108	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK066424		1,00E-113
178	G1108	Zea mays	BG837939		1,00E-91
178	G1108	Brassica oleracea	BZ486328		1,00E-89
178	G1108	Lactuca sativa	BQ852089		3,00E-80
178	G1108	Triticum aestivum	BJ319065		2,00E-78
178	G1108	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	CB634885		5,00E-78
178	G1108	Lycopersicon esculentum	BI921710		1,00E-75
178	G1108	Oryza sativa	AX699700		1,00E-73
178	G1108	Hordeum vulgare subesp. vulgare	AL505242		8,00E-71
178	G1108	Solanum tuberosum	BQ512426		6,00E-69
178	G1108	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi15289774		6,00E-78
178	G1108	Phacelia tanacetifolia	gi5002214		1,40E-28
178	G1108	Medicago sativa	gi23451086		5,10E-12
178	G1108	Oryza sativa	gi14164470		1,10E-11

437/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
178	G1108	Cicer arietinum	gi4651204		2,60E-10
178	G1108	Nicotiana tabacum	gi12003386		1,40E-09
178	G1108	Thellungiella halophila	gi20340241		1,50E-09
178	G1108	Hordeum vulgare	gi2894379		2,80E-09
178	G1108	Cucumis melo	gi17016985		2,30E-08
178	G1108	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi20152976		3,10E-08
180	G1113	Brassica napus	AI352907		7,00E-49
180	G1113	Brassica rapa subesp. pekinensis	BG543052		1,00E-26
180	G1113	Ipomoea nil	BJ574282		2,00E-25
180	G1113	Populus tremula	BU893088		3,00E-25
180	G1113	Lactuca sativa	BQ849490		3,00E-25
180	G1113	Populus tremula x Populus tremuloides	BU885427		4,00E-25
180	G1113	Gossypium hirsutum	AI729600		8,00E-24
180	G1113	Populus balsamifera subesp. trichocarpa x Populus deltoides	CA825344		8,00E-24
180	G1113	Lycopersicon	AW034559		1,00E-23

438/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		esculentum
180	G1113	Capsicum annuum	CA847343		3,00E-23
180	G1113	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32488512		6,10E-19
180	G1113	Oryza sativa	gi14164467		2,40E-12
180	G1113	Hordeum vulgare subesp. Vulgare	gi20152976		4,90E-12
180	G1113	Thellungiella halophila	gi20340241		1,30E-11
180	G1113	Medicago sativa	gi23451086		2,60E-11
180	G1113	Cucumis melo	gi28558782		1,80E-10
180	G1113	Glycine max	gi22597166		6,50E-10
180	G1113	Nicotiana tabacum	gi12003386		2,90E-09
180	G1113	Zea mays	gi18092342		1,30E-08
180	G1113	Pisum sativum	gi4240031		2,40E-08
181	G1128	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER83680_3	942
181	G1128	Oryza sativa	OSC795,C1,p2,f g	943
181	G1128	Glycine max	Gma_S4918384	1653
181	G1128	Triticum aestivum	Ta_S190134	1863
182	G1128	Brassica oleracea	BH586480		1,00E-82
182	G1128	Glycine max	BU926769		7,00E-60
182	G1128	Oryza sativa	AK068379		3,00E-58

439/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		(grupo do cultivar japonica)
182	G1128	Gossypium arboreum	BG441060		5,00E-53
182	G1128	Populus trenula x Populus trenuloides	BU814921		1,00E-50
182	G1128	Solanum tuberosun	BQ508721		4,00E-48
182	G1128	Hordeun vulgare	BQ765321		3,00E-47
182	G1128	Populus balsanifera subesp. Trichocarpa	BI139442		6,00E-47
182	G1128	Medicago truncatula	BG589060		1,00E-46
182	G1128	Zinnia elegans	AU289368		4,00E-45
182	G1128	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi12643044		5,20E-51
182	G1128	Pisun sativum	gi2213534		2,50E-45
182	G1128	Antirrhinum najus	gi4165183		3,40E-38
182	G1128	Vitis vinifera	gi30421132		0,0005
182	G1128	Zea mays	gi9837562		0,0019
182	G1128	Oryza sativa	gi21740825		0,0026
182	G1128	Spinacia oleracea	gi6492266		0,0033
182	G1128	Nicotiana tabacum	gi6492262		0,068

440/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
182	G1128	Volvox carteri f. nagariensis	gi4324621		0,078
182	G1128	Lycopersicon esculentum	gi15144504		0,11
184	G1136	Phaseolus vulgaris	PVU18348		1,00E-156
184	G1136	Gossypium raimondii	CA994239		1,00E-138
184	G1136	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AE017122		1,00E-100
184	G1136	Oryza sativa	AC060755		1,00E-100
184	G1136	Brassica oleracea	BZ466433		7,00E-86
184	G1136	Zea mays	AF061107		1,00E-80
184	G1136	Lycopersicon esculentum	AF011557		2,00E-73
184	G1136	Solanum tuberosum	BI434651		2,00E-72
184	G1136	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01004195		6,00E-69
184	G1136	Medicago truncatula	CB893334		1,00E-68
184	G1136	Phaseolus vulgaris	gi1142619		2,00E-155
184	G1136	Oryza sativa	gi12643064		6,80E-128
184	G1136	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi31433653		6,80E-128
184	G1136	Zea mays	gi4321762		2,30E-127

441/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
184	G1136	Lycopersicon esculentum	gi6175252		6,40E-58
184	G1136	Petunia x hybrida	gi10998404		7,40E-36
184	G1136	Perilla frutescens	gi28375728		2,90E-34
184	G1136	Antirrhinum majus	gi166428		6,30E-26
184	G1136	Gossypium hirsutum	gi13346182		4,60E-25
184	G1136	Gerbera hybrida	gi3650292		6,00E-19
185	G1142	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER228631_ 1	944
185	G1142	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER228631_ 2	945
185	G1142	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER251531_ 1	946
185	G1142	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER137582_ 1	947
185	G1142	Zea mays	Zm_S11428899	1790
185	G1142	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-12268	2012
186	G1142	Brassica oleracea	BZ072414		6,00E-71
186	G1142	Brassica napus	CD829735		4,00E-67
186	G1142	Populus tremula x Populus tremuloides	BU813371		3,00E-63

442/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
186	G1142	Glycine max	BQ094663		2,00E-62
186	G1142	Medicago truncatula	BF647687		2,00E-60
186	G1142	Populus tremula	BU891490		4,00E-55
186	G1142	Lycopersicon esculentum	AW622727		4,00E-43
186	G1142	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK106649		1,00E-38
186	G1142	Populus tremuloides	CA931085		2,00E-33
186	G1142	Oryza sativa subesp. japonica	AU093196		2,00E-30
186	G1142	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32129332		1,40E-39
186	G1142	Oryza sativa	gi8570062		2,70E-27
186	G1142	Pennisetum glaucum	gi527657		5,20E-07
186	G1142	Phyllostachys acuta	gi527661		1,40E-06
186	G1142	Lycopersicon esculentum	gi6175252		2,10E-06
186	G1142	Sorghum bicolor	gi527665		2,00E-05
186	G1142	Oryza australiensis	gi1086526		2,40E-05
186	G1142	Oryza eichingeri	gi1086528		4,00E-05
186	G1142	Gossypium	gi13346180		6,60E-05

443/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		hirsutum
186	G1142	Oryza rufipogon	gi1086536		6,70E-05
188	G1150	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01007141		1,00E-174
188	G1150	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AC135597		1,00E-174
188	G1150	Zea mays	AY109385		1,00E-157
188	G1150	Brassica oleracea	BH475694		1,00E-112
188	G1150	Triticum aestivum	BT008960		1,00E-103
188	G1150	Medicago truncatula	BI309506		4,00E-99
188	G1150	Oryza sativa	BI118817		2,00E-81
188	G1150	Glycine max	BU761598		2,00E-80
188	G1150	Lycopersicon esculentum	BG125123		6,00E-69
188	G1150	Solanum tuberosum	BG351593		9,00E-68
188	G1150	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi31712081		5,60E-170
188	G1150	Oryza sativa	gi6539559		2,20E-97
188	G1150	Zea mays	gi18542175		8,40E-36
188	G1150	Pisum sativum	gi15021750		1,90E-05
188	G1150	Vicia faba	gi425682		6,60E-05
188	G1150	Phaseolus	gi169349		0,0015

444/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		vulgaris
188	G1150	Adiantam capillusveneris	gi4033606		0,0019
188	G1150	Medicago truncatula	gi2598593		0,007
188	G1150	Lycopersicon esculentum	gi170454		0,0072
188	G1150	Solanum tuberosum	gi688080		0,011
189	G1206	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER11328_1	948
189	G1206	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER11328_2	949
189	G1206	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER11328_4	950
189	G1206	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER240450_ 1	951
189	G1206	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER48180_5	952
189	G1206	Oryza sativa	15855173	953
189	G1206	Oryza sativa	AU172577,1	954
189	G1206	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER100143_ 1	955
189	G1206	Oryza sativa	OSC101221,C1,p 21,fg	956
189	G1206	Oryza sativa	OSC17045,C1,p1 ,fg	957
189	G1206	Oryza sativa	OSC24705,C1,p1 2,fg	958
189	G1206	Oryza sativa	OSC773,C1,p2,f g	959

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SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
189	G1206	Oryza sativa	rsicem_13769,y 1,abd	960
189	G1206	Zea mays	LIB3912-033- Q6-K6-A12	961
189	G1206	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER231432_ 1	962
189	G1206	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER30971_1	963
189	G1206	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER30971_3	964
189	G1206	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER73342_1	965
189	G1206	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER73342_2	966
189	G1206	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER998548_ 1	967
189	G1206	Glycine max	Gma_S4861534	1654
189	G1206	Glycine max	Gma_S4881720	1655
189	G1206	Glycine max	Gma_S5117867	1656
189	G1206	Medicago truncatula	Mtr_S5329905	1697
189	G1206	Medicago truncatula	Mtr_S5408746	1698
189	G1206	Zea mays	Zm_S11526858	1791
189	G1206	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 48203	2013
189	G1206	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-385084	2014
189	G1206	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-463300	2015
189	G1206	Lycopersicon	SGN-UNIGENE-	2016

446/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		esculentum	SINGLET-471325
190	G1206	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK059445		1,00E-133
190	G1206	Vicia sativa	VSENBP1GN		1,00E-123
190	G1206	Pisum sativum	PSPD3BIPR		1,00E-122
190	G1206	Brassica napus	CD815167		1,00E-109
190	G1206	Brassica oleracea	BH582293		1,00E-107
190	G1206	Mesembryanthem um crystallinum	CA838861		2,00E-84
190	G1206	Solanum tuberosum	BQ507789		1,00E-74
190	G1206	Zea mays	AY106688		5,00E-74
190	G1206	Zinnia elegans	AU290850		5,00E-71
190	G1206	Medicago truncatula	AW775140		5,00E-70
190	G1206	Vicia sativa	gi1360637		1,20E-172
190	G1206	Medicago truncatula	gi11358945		2,40E-169
190	G1206	Pisum sativum	gi2213540		1,50E-166
190	G1206	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi21104742		0,083
190	G1206	Medicago sativa	gi1279563		0,088
190	G1206	Nicotiana tabacum	gi8096269		0,29
190	G1206	Ananas comosus	gi31323668		0,38
190	G1206	Gossypium	gi11291753		0,83

447/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		hirsutum
190	G1206	Populus tremuloides	gi9651406		0,83
190	G1206	Cicer arietinum	gi3860319		0,94
192	G1247	Brassica oleracea	BZ440977		3,00E-31
192	G1247	Petunia x hybrida	PHMYBPH33		5,00E-28
192	G1247	Lactuca sativa	BQ996568		6,00E-28
192	G1247	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK063951		1,00E-27
192	G1247	Oryza sativa	OSGAMYB		1,00E-27
192	G1247	Vitis vinifera	CB004589		1,00E-27
192	G1247	Lolium temulentum	AF114162		2,00E-27
192	G1247	Hordeum vulgare	HVRNAGAM1		2,00E-27
192	G1247	Triticum aestivum	AB044084		2,00E-27
192	G1247	Hordeum vulgare subesp. vulgare	CA013607		2,00E-27
192	G1247	Triticum aestivum	gi8247759		9,60E-31
192	G1247	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32489825		4,40E-29
192	G1247	Zea mays	gi19072736		2,90E-28
192	G1247	Oryza sativa	gi1707640		1,80E-27

448/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
192	G1247	Sorghum bicolor	gi19073322		4,00E-27
192	G1247	Hordeum vulgare	gi1200239		5,50E-27
192	G1247	Petunia x hybrida	gi20565		8,30E-27
192	G1247	Lolium temulentum	gi4877649		1,30E-26
192	G1247	Lycopersicon esculentum	gi1430846		2,20E-26
192	G1247	Nicotiana tabacum	gi11066263		3,70E-26
193	G1274	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER16030_1	968
193	G1274	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER305171_ 1	969
193	G1274	Oryza sativa	OSC100386,C1,p 11,fg	970
193	G1274	Oryza sativa	OSC100526,C1,p 1,fg	971
193	G1274	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER139642_ 1	972
193	G1274	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER139642_ 2	973
193	G1274	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER2967_14	974
193	G1274	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER452657_ 1	975
193	G1274	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 51404	2017

449/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
193	G1274	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 57064	2018
194	G1274	Glycine max	BQ742659		1,00E-33
194	G1274	Solanum tuberosum	BQ516647		2,00E-32
194	G1274	Lycopersicon esculentum	BI209002		2,00E-32
194	G1274	Hordeum vulgare	BE216050		4,00E-31
194	G1274	Capsicum annuum	CA524920		2,00E-30
194	G1274	Stevia rebaudiana	BG525040		3,00E-30
194	G1274	Sorghum bicolor	CD233113		3,00E-29
194	G1274	Zea mays	BMI334368		2,00E-28
194	G1274	Hordeum vulgare subesp. Spontaneum	BJ478103		3,00E-28
194	G1274	Hordeum vulgare subesp. vulgare	BJ456908		3,00E-28
194	G1274	Oryza sativa	gi9558431		1,10E-28
194	G1274	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi21104763		4,90E-28
194	G1274	Nicotiana tabacum	gi29536791		6,00E-23
194	G1274	Capsella rubella	gi32454266		1,70E-22
194	G1274	Solanum	gi24745606		8,70E-22

450/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		tuberosum
194	G1274	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi23305051		1,40E-21
194	G1274	Pimpinella brachycarpa	gi3420906		1,70E-21
194	G1274	Lycopersicon esculentum	gi13620227		3,90E-21
194	G1274	Cucumis sativus	gi7484759		5,70E-21
194	G1274	Ipomoea batatas	gi1076685		7,00E-21
195	G1276	Medicago truncatula	Mtr_S7094215	1699
195	G1276	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-449521	2019
196	G1276	Hyacinthus orientalis	AF134116		5,00E-68
196	G1276	Pisum sativum	AF325506		2,00E-63
196	G1276	Brassica oleracea	BH541466		4,00E-62
196	G1276	Antirrhinum majus	AY223518		9,00E-62
196	G1276	Petunia x hybrida	AF132002		9,00E-62
196	G1276	Zea mays	AF048900		5,00E-61
196	G1276	Malus x domestica	AF332215		2,00E-60
196	G1276	Hordeum vulgare	AY069953		9,00E-60
196	G1276	Glycine max	CA783794		3,00E-59
196	G1276	Lycopersicon	BI933811		3,00E-59

451/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		esculentum
196	G1276	Hyacinthus orientalis	gi5360996		1,00E-66
196	G1276	Pisum sativum	gi13173164		6,60E-65
196	G1276	Antirrhinum majus	gi28894443		2,20E-62
196	G1276	Zea mays	gi2944040		3,60E-62
196	G1276	Hordeum vulgare	gi18476518		1,60E-61
196	G1276	Petunia x hybrida	gi5081557		5,40E-61
196	G1276	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi24059986		2,30E-60
196	G1276	Malus x domestica	gi21717332		7,30E-57
196	G1276	Picea abies	gi11181610		4,00E-56
196	G1276	Fragaria x ananassa	gi30314933		1,30E-36
198	G1289	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK069906		1,0e-999
198	G1289	Zea mays	AY104480		1,00E-177
198	G1289	Brassica napus	CD842929		1,00E-124
198	G1289	Oryza sativa	CNS08C8Z		1,00E-123
198	G1289	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01003696		1,00E-123
198	G1289	Malus domestica	AF220204		1,00E-106

452/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
198	G1289	Descurainia sophia	BU238049		1,00E-104
198	G1289	Vitis vinifera	CB974203		1,00E-100
198	G1289	Lactuca sativa	BQ861345		2,00E-95
198	G1289	Glycine max	BI786110		1,00E-90
198	G1289	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi15624052		1,60E-176
198	G1289	Oryza sativa	gi15408875		6,30E-122
198	G1289	Malus x domestica	gi6752888		5,90E-103
198	G1289	Narcissus pseudonarcissu s	gi18419598		3,60E-24
198	G1289	Pinus pinaster	gi20218829		4,70E-09
198	G1289	Lycopersicon esculentum	gi15144514		0,0032
198	G1289	Prunus persica	gi27450532		0,0035
198	G1289	Ricinus communis	gi2246458		0,0043
198	G1289	Nicotiana tabacum	gi17044043		0,0055
198	G1289	Glycine max	gi1399380		0,013
199	G1313	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER110578_ 1	976
199	G1313	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER1200_1	977
199	G1313	Oryza sativa	OSC101811,C1,p 1,fg	978
199	G1313	Oryza sativa	OSC102408,C1,p 25,fg	979

453/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
199	G1313	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER163873_ 1	980
199	G1313	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER163873_ 4	981
199	G1313	Oryza sativa	Os_S60589	1582
199	G1313	Oryza sativa	Os_S60753	1583
199	G1313	Hordeum vulgare	Hv_S73931	1734
200	G1313	Hordeum vulgare	HVRNAGAM1		4,00E-72
200	G1313	Lolium temulentum	AF114162		7,00E-72
200	G1313	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK063951		4,00E-71
200	G1313	Oryza sativa	AX699725		4,00E-71
200	G1313	Avena sativa	ASA133638		4,00E-71
200	G1313	Vitis vinifera	CB005976		3,00E-66
200	G1313	Hordeum vulgare subesp. vulgare	CA014662		2,00E-58
200	G1313	Triticum aestivum	BQ245589		8,00E-58
200	G1313	Zea mays	CD439889		3,00E-55
200	G1313	Petunia x hybrida	PHMYBPH33		7,00E-54
200	G1313	Hordeum vulgare	gi13236696		4,00E-72
200	G1313	Oryza sativa	gi18844771		8,40E-72

454/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		(grupo do cultivar japonica)
200	G1313	Oryza sativa	gi1707640		1,40E-71
200	G1313	Lolium temulentum	gi4877649		2,20E-71
200	G1313	Avena sativa	gi4581969		1,60E-70
200	G1313	Triticum aestivum	gi8247759		1,40E-55
200	G1313	Petunia x hybrida	gi20565		3,80E-53
200	G1313	Nicotiana tabacum	gi11066265		2,60E-52
200	G1313	Lotus corniculatus var. japonicus	gi30024602		2,40E-41
200	G1313	Glycine max	gi30024604		1,50E-40
202	G1327	Oryza sativa	AX652823		1,00E-52
202	G1327	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	CB619057		3,00E-52
202	G1327	Petunia x hybrida	PHMYBPH22		4,00E-52
202	G1327	Brassica napus	CD834677		1,00E-50
202	G1327	Glycine max	AB029160		6,00E-50
202	G1327	Sorghum bicolor	CD214131		8,00E-50
202	G1327	Triticum aestivum	BJ312394		8,00E-50
202	G1327	Hordeum vulgare	BG343209		8,00E-50
202	G1327	Nicotiana	AB028650		8,00E-50

455/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		tabacum
202	G1327	Solanum tuberosum	BQ514539		1,00E-49
202	G1327	Petunia x hybrida	gi20561		1,10E-51
202	G1327	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi33087073		2,40E-51
202	G1327	Zea mays	gi127580		6,30E-51
202	G1327	Oryza sativa	gi1946265		1,00E-50
202	G1327	Nicotiana tabacum	gi6552361		1,30E-50
202	G1327	Glycine max	gi5139802		1,20E-49
202	G1327	Vitis labrusca x Vitis vinifera	gi22266675		3,10E-49
202	G1327	Lycopersicon esculentum	gi1370140		4,00E-49
202	G1327	Sorghum bicolor	gi19548405		5,10E-49
202	G1327	Populus x canescens	gi22795039		3,60E-48
204	G1340	Brassica oleracea	BZ504572		5,00E-64
204	G1340	Populus tremula x Populus tremuloides	BU832210		7,00E-56
204	G1340	Gossypium arboreum	BQ407507		1,00E-53
204	G1340	Oryza sativa (grupo do cultivar	AC135792		1,00E-51

456/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		japonica)
204	G1340	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01006150		3,00E-47
204	G1340	Lotus corniculatus var. japonicus	AP006423		2,00E-41
204	G1340	Oryza sativa	OSIG00051		1,00E-40
204	G1340	Solanum tuberosum	BQ510169		3,00E-37
204	G1340	Zea mays	CC658096		1,00E-34
204	G1340	Sorghum bicolor	BZ346856		7,00E-29
204	G1340	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32488407		3,20E-56
204	G1340	Lycopersicon esculentum	gi1345538		0,00087
204	G1340	Oryza sativa	gi13786451		0,0023
204	G1340	Glycine max	gi18182309		0,0075
204	G1340	Triticum aestivum	gi5292165		0,0099
204	G1340	Nicotiana tabacum	gi6691123		0,011
204	G1340	Solanum tuberosum	gi688080		0,013
204	G1340	Volvox carteri	gi21992		0,023
204	G1340	Vicia faba	gi425682		0,03
204	G1340	Bromheadia finlaysoniana	gi2108258		0,046
206	G1341	Gossypium	AY125487		1,0e-999

457/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		hirsutum
206	G1341	Oryza sativa	AF268596		1,00E-103
206	G1341	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK064970		1,00E-101
206	G1341	Poncirus trifoliata	CD575941		5,00E-95
206	G1341	Medicago truncatula	CF068570		5,00E-90
206	G1341	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01000469		1,00E-88
206	G1341	Helianthus annuus	CD852109		1,00E-85
206	G1341	Zea mays	BZ968534		2,00E-72
206	G1341	Triticum aestivum	BJ301302		2,00E-69
206	G1341	Brassica napus	CD825286		2,00E-61
206	G1341	Gossypium hirsutum	gi22858664		3,10E-191
206	G1341	Oryza sativa	gi13124871		1,80E-95
206	G1341	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi31433523		1,80E-95
206	G1341	Marsilea quadrifolia	gi22550110		4,50E-24
206	G1341	Volvox carteri	gi226743		1,20E-12
206	G1341	Volvox carteri f. nagariensis	gi6523547		2,10E-12
206	G1341	Lupinus angustifolius	gi28912428		1,10E-11

458/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
206	G1341	Lycopersicon esculentum	gi7488999		1,30E-10
206	G1341	Adiantum capillusveneris	gi4033606		2,80E-10
206	G1341	Cicer arietinum	gi3204132		3,50E-10
207	G1357	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER80398_1	982
207	G1357	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 52387	2020
208	G1357	Brassica oleracea	BH590226		3,00E-94
208	G1357	Medicago truncatula	BF645605		5,00E-59
208	G1357	Sorghum bicolor	BI140703		8,00E-44
208	G1357	Hordeum vulgare subesp. spontaneum	BJ481205		8,00E-44
208	G1357	Hordeum vulgare subesp. vulgare	BU967516		8,00E-44
208	G1357	Hordeum vulgare	BQ469035		8,00E-44
208	G1357	Petunia x hybrida	AF509874		9,00E-42
208	G1357	Triticum aestivum	BJ257015		9,00E-42
208	G1357	Oryza sativa	AX654515		3,00E-41
208	G1357	Oryza sativa (grupo do	AK099540		5,00E-41

459/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		cultivar japonica)
208	G1357	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi19225018		1,50E-42
208	G1357	Petunia x hybrida	gi21105751		2,40E-42
208	G1357	Medicago truncatula	gi7716952		7,20E-42
208	G1357	Oryza sativa	gi6730946		3,50E-41
208	G1357	Glycine max	gi22597158		1,10E-37
208	G1357	Brassica napus	gi31322582		4,30E-36
208	G1357	Phaseolus vulgaris	gi15148914		7,00E-36
208	G1357	Lycopersicon esculentum	gi6175246		2,20E-32
208	G1357	Triticum sp.	gi4218537		2,80E-32
208	G1357	Triticum monococcum	gi6732160		2,80E-32
210	G1361	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK102794		1,00E-103
210	G1361	Brassica oleracea	BH541034		7,00E-97
210	G1361	Brassica napus	AF319771		1,00E-96
210	G1361	Hordeum vulgare	BI960052		5,00E-90
210	G1361	Populus tremula x Populus tremuloides	BI129724		2,00E-88
210	G1361	Oryza sativa	AAAA01011028		4,00E-86

460/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		(grupo do cultivar indica)
210	G1361	Glycine max	BM527360		4,00E-86
210	G1361	Zea mays	CC340048		3,00E-84
210	G1361	Medicago truncatula	BG646679		2,00E-83
210	G1361	Sorghum bicolor	CD235886		2,00E-72
210	G1361	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi18461166		3,10E-97
210	G1361	Brassica napus	gi12751304		1,30E-91
210	G1361	Oryza sativa	gi9049470		2,20E-70
210	G1361	Triticum monococcum	gi6732156		6,10E-12
210	G1361	Lycopersicon esculentum	gi6175246		3,40E-11
210	G1361	Glycine max	gi22597158		2,90E-10
210	G1361	Triticum sp.	gi4218537		8,10E-10
210	G1361	Phaseolus vulgaris	gi15148914		7,40E-09
210	G1361	Petunia x hybrida	gi1279640		1,00E-08
210	G1361	Medicago truncatula	gi7716952		2,20E-08
212	G1384	Solanum tuberosum	BQ115095		7,00E-49
212	G1384	Lycopersicon esculentum	AF506825		7,00E-49
212	G1384	Brassica oleracea	BH517407		1,00E-46

461/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
212	G1384	Brassica napus	CD829462		9,00E-46
212	G1384	Prunus persica	BU046010		2,00E-45
212	G1384	Hedyotis centranthoides	CB083964		2,00E-44
212	G1384	Atriplex hortensis	AF274033		5,00E-44
212	G1384	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK105877		6,00E-44
212	G1384	Oryza sativa	AP004119		6,00E-44
212	G1384	Glycine max	BE807772		1,00E-43
212	G1384	Lycopersicon esculentum	gi27436378		1,50E-49
212	G1384	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32140997		1,90E-43
212	G1384	Zea mays	gi21908036		4,50E-41
212	G1384	Atriplex hortensis	gi8571476		4,20E-38
212	G1384	Oryza sativa	gi5091503		3,60E-22
212	G1384	Nicotiana tabacum	gi1208498		1,00E-20
212	G1384	Prunus armeniaca	gi3264767		1,70E-20
212	G1384	Mesembryanthem um crystallinum	gi32401273		1,50E-19
212	G1384	Solanum tuberosum	gi28268684		5,00E-19
212	G1384	Glycine max	gi31324058		1,00E-18
214	G1389	Brassica	BH720211		2,00E-96

462/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		oleracea
214	G1389	Medicago truncatula	AC144893		8,00E-47
214	G1389	Lotus japonicus	AP006146		3,00E-46
214	G1389	Lactuca sativa	BQ996587		3,00E-39
214	G1389	Lupinus albus	LAL426419		8,00E-39
214	G1389	Glycine max	AW760150		2,00E-38
214	G1389	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AB071805		3,00E-38
214	G1389	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01005156		3,00E-38
214	G1389	Oryza sativa	AP003104		3,00E-38
214	G1389	Gossypium arboreum	BG440212		5,00E-38
214	G1389	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20975253		3,00E-45
214	G1389	Lupinus albus	gi20269127		2,80E-44
214	G1389	Oryza sativa	gi14164473		1,20E-43
214	G1389	Lycopersicon esculentum	gi12002867		1,90E-39
214	G1389	Pueraria montana var. lobata	gi21624281		6,10E-21
214	G1389	Digitalis purpurea	gi6358561		8,30E-21
214	G1389	Misopates orontium	gi6358605		1,50E-20

463/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
214	G1389	Antirrhinum majus subesp. linkianum	gi6358551		2,80E-20
214	G1389	Antirrhinum microphyll um	gi32481583		3,40E-20
214	G1389	Antirrhinum graniticum	gi6358548		3,40E-20
215	G1412	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER16227_1	983
215	G1412	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER16227_2	984
215	G1412	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER16227_3	985
215	G1412	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER16227_5	986
215	G1412	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER444_125	987
215	G1412	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER444_267	988
215	G1412	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER444_320	989
215	G1412	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER444_337	990
215	G1412	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER721_119	991
215	G1412	Glycine max	Gma_S5050636	1657
215	G1412	Lycopersicon esculentum	Les_S5295623	1930
215	G1412	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 45948	2021
215	G1412	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 48215	2022
216	G1412	Brassica napus	AY245887		1,00E-149

464/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
216	G1412	Citrus sinensis	CB290927		1,00E-106
216	G1412	Lycopersicon esculentum	AF011555		1,00E-103
216	G1412	Mesembryanthem um crystallinum	BE034140		1,00E-100
216	G1412	Beta vulgaris	BQ586991		5,00E-98
216	G1412	Solanum tuberosum	BQ516602		1,00E-96
216	G1412	Lactuca sativa	BQ854150		2,00E-95
216	G1412	Medicago truncatula	AJ498717		4,00E-94
216	G1412	Vitis vinifera	CB915147		2,00E-93
216	G1412	Glycine max	BG510868		7,00E-84
216	G1412	Brassica napus	gi31322582		2,00E-141
216	G1412	Lycopersicon esculentum	gi6175246		2,70E-98
216	G1412	Oryza sativa	gi15528779		1,80E-62
216	G1412	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20161457		8,80E-61
216	G1412	Petunia x hybrida	gi21105748		2,30E-60
216	G1412	Solanum tuberosum	gi14485513		9,10E-59
216	G1412	Triticum sp.	gi4218535		1,30E-57
216	G1412	Triticum monococcum	gi6732158		1,30E-57
216	G1412	Phaseolus vulgaris	gi15148914		4,60E-55
216	G1412	Glycine max	gi22597158		1,70E-50

465/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
217	G1420	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER227245_ 1	992
217	G1420	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER90086_1	993
217	G1420	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER22982_1	994
217	G1420	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER453197_ 1	995
218	G1420	Brassica rapa	L35779		1,00E-62
218	G1420	Vitis vinifera	BQ799236		2,00E-55
218	G1420	Glycine max	BF425463		1,00E-50
218	G1420	Brassica oleracea	BH451149		2,00E-47
218	G1420	Populus tremula x Populus tremuloides	BU884581		1,00E-44
218	G1420	Lycopersicon esculentum	AW034229		3,00E-44
218	G1420	Amborella trichopoda	CD483414		2,00E-42
218	G1420	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK108745		8,00E-40
218	G1420	Medicago truncatula	BF645445		2,00E-39
218	G1420	Oryza sativa	AX654272		6,00E-39
218	G1420	Oryza sativa	gi11761085		7,40E-41
218	G1420	Oryza sativa (grupo do cultivar	gi22830985		3,90E-35

466/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		japonica)
218	G1420	Lycopersicon esculentum	gi13620227		1,40E-33
218	G1420	Nicotiana tabacum	gi14530681		4,40E-32
218	G1420	Capsella rubella	gi32454266		5,70E-32
218	G1420	Pimpinella brachycarpa	gi3420906		5,80E-30
218	G1420	Petroselinum crispum	gi5917653		2,90E-28
218	G1420	Avena fatua	gi1159877		5,60E-27
218	G1420	Solanum tuberosum	gi24745606		5,60E-27
218	G1420	Retama raetam	gi18158619		3,10E-24
220	G1423	Brassica oleracea	BH449565		1,00E-53
220	G1423	Lycopersicon esculentum	BI929334		2,00E-10
220	G1423	Medicago truncatula	AC139746		1,00E-08
220	G1423	Lotus corniculatus var. japonicus	CB827123		1,00E-08
220	G1423	Lotus japonicus	AP006142		1,00E-08
220	G1423	Oryza sativa	CNS07YPB		1,00E-07
220	G1423	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01005416		3,00E-07
220	G1423	Brassica napus	CD815249		3,00E-07
220	G1423	Sorghum	BZ627051		7,00E-07

467/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		bicolor
220	G1423	Gossypium arboreum	BQ412101		7,00E-07
220	G1423	Oryza sativa	gi15290141		3,80E-06
220	G1423	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi30313673		4,30E-06
220	G1423	Brassica oleracea var. capitata	gi30523252		4,50E-05
220	G1423	Zea mays	gi29372756		4,90E-05
220	G1423	Raphanus sativus	gi30523250		5,10E-05
220	G1423	Ceratopteris richardii	gi1944532		5,90E-05
220	G1423	Brassica napus	gi17933454		6,00E-05
220	G1423	Brassica rapa	gi30523360		6,00E-05
220	G1423	Petunia x hybrida	gi13384062		6,20E-05
220	G1423	Hordeum vulgare	gi9367234		8,70E-05
222	G1446	Brassica rapa	AC137926		1,00E-113
222	G1446	Brassica oleracea	BH602216		3,00E-66
222	G1446	Lotus japonicus	AP004983		8,00E-37
222	G1446	Medicago truncatula	BI309565		2,00E-25
222	G1446	Lactuca sativa	BU005471		2,00E-19
222	G1446	Glycine max	BM525749		2,00E-18
222	G1446	Lycopersicon esculentum	BI934904		2,00E-18

468/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
222	G1446	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AC137991		3,00E-17
222	G1446	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01014243		4,00E-17
222	G1446	Solanum tuberosum	BG594881		2,00E-16
222	G1446	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi21104742		0,00012
222	G1446	Nicotiana tabacum	gi8096269		0,0003
222	G1446	Raphanus sativus	gi9049359		0,0012
222	G1446	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi23345287		0,0016
222	G1446	Oryza sativa	gi3885888		0,0016
222	G1446	Boea crassifolia	gi13992713		0,0023
222	G1446	Phaseolus vulgaris	gi1326161		0,0037
222	G1446	Zea mays	gi123378		0,017
222	G1446	Cucurbita maxima	gi17221648		0,023
222	G1446	Lycopersicon esculentum	gi135171		0,051
223	G1451	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER34672_1	996

469/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
223	G1451	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER34672_2	997
223	G1451	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER11409 1	998
223	G1451	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER2788_1	999
223	G1451	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER294601_ 1	1000
223	G1451	Oryza sativa	OSC100137,C1,p 3,fg	1001
223	G1451	Oryza sativa	OSC100815,C1,p 16,fg	1002
223	G1451	Oryza sativa	OSC17225,C1,p4 ,fg	1003
223	G1451	Oryza sativa	OSC21362,C1,p3 ,fg	1004
223	G1451	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER16365_1	1005
223	G1451	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER16500_1	1006
223	G1451	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER36166_1	1007
223	G1451	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER9201 1	1008
223	G1451	Oryza sativa	Os_S113016	1584
223	G1451	Oryza sativa	Os_S113019	1585
223	G1451	Oryza sativa	Os_S113021	1586
223	G1451	Glycine max	Gma_S4864163	1658
223	G1451	Glycine max	Gma_S4867879	1659
223	G1451	Medicago truncatula	Mtr_S5443860	1700
223	G1451	Hordeum	Hv_S73176	1735

470/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		vulgare
223	G1451	Zea mays	Zm_S11325188	1792
223	G1451	Zea mays	Zm_S11325542	1793
223	G1451	Zea mays	Zm_S11486245	1794
223	G1451	Zea mays	Zm_S11521797	1795
223	G1451	Zea mays	Zm_S11523792	1796
223	G1451	Zea mays	Zm_S11526178	1797
223	G1451	Triticum aestivum	Ta_S132434	1864
223	G1451	Triticum aestivum	Ta_S133054	1865
223	G1451	Triticum aestivum	Ta_S142068	1866
223	G1451	Lycopersicon esculentum	Les_S5190833	1931
223	G1451	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 47770	2023
223	G1451	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 49633	2024
223	G1451	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 52521	2025
223	G1451	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 56226	2026
223	G1451	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 58048	2027
223	G1451	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-339069	2028
223	G1451	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-360353	2029
223	G1451	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-62180	2030
224	G1451	Oryza sativa	AB071298		1,0e-999

471/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
224	G1451	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK071455		1,0e-999
224	G1451	Zea mays	AY105215		1,00E-157
224	G1451	Medicago truncatula	CB894037		1,00E-110
224	G1451	Poncirus trifoliata	CD576399		1,00E-109
224	G1451	Lactuca sativa	BQ862285		1,00E-107
224	G1451	Solanum tuberosum	BG597435		1,00E-107
224	G1451	Triticum aestivum	BJ303602		1,00E-103
224	G1451	Mangifera indica	AY255705		5,00E-99
224	G1451	Populus tremuloides	CA930279		2,00E-92
224	G1451	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32488726		2,20E-247
224	G1451	Oryza sativa	gi19352049		4,50E-247
224	G1451	Prunus persica	gi27450533		2,20E-159
224	G1451	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi26251300		2,20E-116
224	G1451	Mangifera indica	gi30027167		4,10E-115
224	G1451	Mirabilis jalapa	gi23343944		2,90E-28
224	G1451	Marchantia polymorpha	gi25272004		2,30E-12

472/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
224	G1451	Populus tremula x Populus tremuloides	gi20269053		8,60E-10
224	G1451	Vigna radiata	gi287566		3,80E-06
224	G1451	Glycine max	gi114733		1,40E-05
225	G1452	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER80398_1	982
225	G1452	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 52387	2020
226	G1452	Medicago truncatula	BF645605		5,00E-65
226	G1452	Sorghum bicolor	BI140703		7,00E-43
226	G1452	Hordeum vulgare	BQ469035		1,00E-42
226	G1452	Hordeum vulgare subesp. vulgare	BU967516		1,00E-42
226	G1452	Hordeum vulgare subesp. spontaneum	BJ481205		1,00E-42
226	G1452	Triticum aestivum	BQ620568		3,00E-42
226	G1452	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	CB630990		3,00E-42
226	G1452	Oryza sativa	AX654172		8,00E-42
226	G1452	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	CB657109		1,00E-41

473/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
226	G1452	Lactuca sativa	BQ997138		4,00E-41
226	G1452	Oryza sativa	gi6730946		1,30E-44
226	G1452	Petunia x hybrida	gi21105746		1,20E-41
226	G1452	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi27452910		5,10E-41
226	G1452	Medicago truncatula	gi7716952		5,80E-41
226	G1452	Glycine max	gi22597158		5,30E-38
226	G1452	Phaseolus vulgaris	gi15148914		7,00E-36
226	G1452	Brassica napus	gi31322578		2,30E-35
226	G1452	Triticum sp.	gi4218537		3,90E-35
226	G1452	Triticum monococcum	gi6732160		3,90E-35
226	G1452	Lycopersicon esculentum	gi6175246		7,20E-34
227	G1468	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER310714_ 1	1009
227	G1468	Oryza sativa	OSC100112,C1,p 1,fg	1010
227	G1468	Oryza sativa	OSC100807,C1,p 13,fg	1011
227	G1468	Oryza sativa	OSC101260,C1,p 1,fg	1012
227	G1468	Oryza sativa	Os_S109216	1587
227	G1468	Oryza sativa	Os_S114084	1588
227	G1468	Oryza sativa	Os_S16324	1589
227	G1468	Oryza sativa	Os_S76625	1590

474/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
227	G1468	Oryza sativa	Os_S79274	1591
227	G1468	Glycine max	Gma_S5105862	1660
227	G1468	Glycine max	Gma_S5112587	1661
227	G1468	Medicago truncatula	Mtr_S5310408	1701
227	G1468	Medicago truncatula	Mtr_S5369405	1702
227	G1468	Hordeum vulgare	Hv_S19455	1736
227	G1468	Hordeum vulgare	Hv_S206003	1737
227	G1468	Hordeum vulgare	Hv_S30762	1738
227	G1468	Zea mays	Zm_S11376904	1798
227	G1468	Zea mays	Zm_S11394555	1799
227	G1468	Zea mays	Zm_S11433720	1800
227	G1468	Zea mays	Zm_S11525354	1801
227	G1468	Triticum aestivum	Ta_S124759	1867
227	G1468	Triticum aestivum	Ta_S126524	1868
227	G1468	Triticum aestivum	Ta_S170737	1869
227	G1468	Triticum aestivum	Ta_S306243	1870
227	G1468	Triticum aestivum	Ta_S318815	1871
227	G1468	Triticum aestivum	Ta_S318948	1872
227	G1468	Triticum aestivum	Ta_S324081	1873
227	G1468	Triticum	Ta_S327698	1874

475/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		aestivum
227	G1468	Triticum aestivum	Ta_S331818	1875
227	G1468	Triticum aestivum	Ta_S347368	1876
227	G1468	Triticum aestivum	Ta_S51995	1877
227	G1468	Triticum aestivum	Ta_S62789	1878
227	G1468	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 58660	2031
228	G1468	Brassica oleracea	BH517020		2,00E-98
228	G1468	Petunia x hybrida	AB000453		1,00E-37
228	G1468	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK069623		2,00E-27
228	G1468	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01005957		5,00E-27
228	G1468	Oryza sativa	OSJN00060		1,00E-26
228	G1468	Zea mays	CC671589		4,00E-23
228	G1468	Datisca glomerata	AF119050		5,00E-19
228	G1468	Vitis aestivalis	CB289561		1,00E-18
228	G1468	Vitis vinifera	BM437679		2,00E-18
228	G1468	Medicago truncatula	AC126007		2,00E-18
228	G1468	Petunia x hybrida	gi1786138		1,00E-36

476/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
228	G1468	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32482980		2,30E-30
228	G1468	Datisca glomerata	gi4666360		3,50E-21
228	G1468	Glycine max	gi1763063		6,70E-20
228	G1468	Pisum sativum	gi2129892		6,50E-17
228	G1468	Nicotiana tabacum	gi2981169		1,10E-16
228	G1468	Oryza sativa	gi15623826		5,70E-12
228	G1468	Brassica rapa	gi2058504		8,30E-11
228	G1468	Triticum aestivum	gi485814		2,10E-10
228	G1468	Medicago sativa	gi7228329		3,00E-08
230	G1474	Brassica oleracea	BZ030450		1,00E-78
230	G1474	Medicago truncatula	AC135233		1,00E-25
230	G1474	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01001411		2,00E-22
230	G1474	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AP005869		6,00E-22
230	G1474	Hordeum vulgare	BG308988		1,00E-20
230	G1474	Zea mays	CC652748		7,00E-20
230	G1474	Glycine max	BG363109		3,00E-19
230	G1474	Oryza sativa	AC133008		3,00E-19

477/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
230	G1474	Helianthus annuus	BQ977193		8,00E-18
230	G1474	Brassica rapa subesp. pekinensis	BZ614339		2,00E-14
230	G1474	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32489630		5,50E-20
230	G1474	Zea ramosa	gi18674684		3,40E-12
230	G1474	Petunia x hybrida	gi14275902		2,40E-10
230	G1474	Oryza sativa	gi15528588		3,90E-05
230	G1474	Sorghum bicolor	gi18390109		0,00065
230	G1474	Medicago sativa	gi7228329		0,022
230	G1474	Nicotiana tabacum	gi2981169		0,081
230	G1474	Glycine max	gi1763063		0,11
230	G1474	Brassica rapa	gi2058506		0,17
230	G1474	Pisum sativum	gi2129892		0,21
231	G1476	Oryza sativa	OSC101556,C1,p 17,fg	1013
232	G1476	Brassica oleracea	BZ450400		2,00E-51
232	G1476	Lotus japonicus	AP006103		2,00E-11
232	G1476	Lotus corniculatus var. japonicus	CB826842		9,00E-11
232	G1476	Medicago truncatula	AC145202		9,00E-11

478/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
232	G1476	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AP004336		2,00E-10
232	G1476	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01025258		2,00E-10
232	G1476	Zea mays	BH871177		4,00E-09
232	G1476	Oryza sativa	AP004020		1,00E-08
232	G1476	Petunia x hybrida	AB035093		1,00E-08
232	G1476	Glycine max	AI973860		9,00E-08
232	G1476	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi27261062		2,30E-14
232	G1476	Petunia x hybrida	gi14275902		2,90E-14
232	G1476	Zea ramosa	gi18674684		1,70E-09
232	G1476	Oryza sativa	gi9558464		1,60E-07
232	G1476	Sorghum bicolor	gi18390109		5,30E-06
232	G1476	Datisca glomerata	gi4666360		0,0047
232	G1476	Pisum sativum	gi2129892		0,0057
232	G1476	Medicago sativa	gi7228329		0,011
232	G1476	Brassica rapa	gi2058504		0,011
232	G1476	Nicotiana tabacum	gi2981169		0,02
233	G1482	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER228559_	1014

479/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
			1
233	G1482	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER228559_ 2	1015
233	G1482	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER38097 1	1016
233	G1482	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER39971 1	1017
233	G1482	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER39971 2	1018
233	G1482	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER17570 1	1019
233	G1482	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER17570 2	1020
233	G1482	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER687_1	1021
233	G1482	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER99743 1	1022
233	G1482	Oryza sativa	OSC101266,C1,p 1,fg	1023
233	G1482	Oryza sativa	OSC15654,C1,p3 ,fg	1024
233	G1482	Zea mays	15631093	1025
233	G1482	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER35072_1	1026
233	G1482	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER35072_2	1027
233	G1482	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER366705_ 1	1028
233	G1482	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER439033_ 1	1029
233	G1482	Zea mays	ZEAMA-08NOV01-	1030

480/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
			CLUSTER439033_ 2
233	G1482	Oryza sativa	Os_S60490	1592
233	G1482	Medicago truncatula	Mtr_S10820905	1703
233	G1482	Zea mays	Zm_S11432778	1802
233	G1482	Triticum aestivum	Ta_S288030	1879
233	G1482	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 47593	2032
234	G1482	Solanum tuberosum	BM406201		1,00E-60
234	G1482	Medicago truncatula	CB894280		2,00E-57
234	G1482	Robinia pseudoacacia	BI678186		1,00E-52
234	G1482	Glycine max	BM954087		6,00E-52
234	G1482	Lotus japonicus	BI420251		1,00E-48
234	G1482	Zinnia elegans	AU288043		2,00E-45
234	G1482	Populus tremula	BU892726		2,00E-45
234	G1482	Lycopersicon esculentum	BM409788		2,00E-44
234	G1482	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK071507		1,00E-43
234	G1482	Oryza sativa	AB001884		5,00E-43
234	G1482	Oryza sativa	gi3618312		1,90E-45
234	G1482	Oryza sativa (grupo do cultivar	gi32488104		2,00E-38

481/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		japonica)
234	G1482	Brassica nigra	gi11037311		4,90E-18
234	G1482	Raphanus sativus	gi3341723		8,00E-17
234	G1482	Brassica napus	gi30984027		2,70E-15
234	G1482	Malus x domestica	gi4091806		7,40E-15
234	G1482	Ipomoea nil	gi10946337		2,00E-14
234	G1482	Hordeum vulgare	gi21667485		2,90E-13
234	G1482	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi21655154		1,50E-11
234	G1482	Pinus radiata	gi4557093		3,10E-10
236	G1483	Brassica oleracea	BZ463417		3,00E-57
236	G1483	Sorghum bicolor	CD212257		6,00E-34
236	G1483	Glycine max	CA802403		1,00E-33
236	G1483	Zinnia elegans	AU293301		3,00E-33
236	G1483	Oryza sativa	AB001886		4,00E-33
236	G1483	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	CB658637		4,00E-33
236	G1483	Lycopersicon esculentum	BI935213		4,00E-32
236	G1483	Populus tremula x Populus tremuloides	BU864618		6,00E-32
236	G1483	Beta vulgaris	BQ589815		7,00E-32

482/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
236	G1483	Ipomoea nil	BJ559082		2,00E-31
236	G1483	Oryza sativa	gi3618316		7,20E-34
236	G1483	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32488104		6,00E-30
236	G1483	Brassica nigra	gi22854916		1,20E-12
236	G1483	Malus x domestica	gi4091806		4,70E-12
236	G1483	Brassica napus	gi2303681		7,90E-12
236	G1483	Raphanus sativus	gi3341723		1,40E-11
236	G1483	Hordeum vulgare	gi21667475		2,90E-11
236	G1483	Ipomoea nil	gi10946337		3,50E-09
236	G1483	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi21655160		1,90E-08
236	G1483	Pinus radiata	gi4557093		4,30E-07
238	G1493	Medicago truncatula	CB891281		9,00E-98
238	G1493	Zea mays	AB060130		5,00E-95
238	G1493	Brassica napus	CD825309		7,00E-84
238	G1493	Vitis vinifera	CD800109		9,00E-84
238	G1493	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK100530		7,00E-81
238	G1493	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	CB630542		3,00E-77

483/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
238	G1493	Brassica oleracea	BH687265		2,00E-74
238	G1493	Glycine max	AW596288		4,00E-70
238	G1493	Poncirus trifoliata	CD574729		6,00E-69
238	G1493	Lactuca sativa	BQ858556		1,00E-66
238	G1493	Zea mays	gi13661174		1,00E-84
238	G1493	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi24308616		9,20E-82
238	G1493	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi31338860		2,20E-42
238	G1493	Oryza glaberrima	gi31338862		2,20E-42
238	G1493	Oryza sativa	gi15289981		9,60E-19
238	G1493	Solanum bulbocastanum	gi32470629		1,00E-10
238	G1493	Chlamydomonas reinhardtii	gi5916207		1,20E-09
238	G1493	Mesembryanthem um crystallinum	gi6942190		8,00E-09
238	G1493	Nicotiana tabacum	gi4519671		2,50E-08
238	G1493	Dianthus caryophyllus	gi13173408		1,40E-07
240	G1507	Glycine max	BE440901		3,00E-61
240	G1507	Triticum aestivum	BQ295376		6,00E-56
240	G1507	Triticum	BF199732		1,00E-54

484/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		monococcum
240	G1507	Ipomoea nil	BJ569796		4,00E-54
240	G1507	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK068931		3,00E-53
240	G1507	Zea mays	AY103800		6,00E-53
240	G1507	Lactuca sativa	BQ987329		2,00E-51
240	G1507	Beta vulgaris	BQ591642		4,00E-51
240	G1507	Hordeum vulgare	BU993000		1,00E-49
240	G1507	Medicago truncatula	CA991109		7,00E-49
240	G1507	Oryza sativa	gi13174240		6,30E-51
240	G1507	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi24960749		3,50E-07
240	G1507	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi21655156		7,50E-07
240	G1507	Brassica rapa subesp. pekinensis	gi28193631		1,20E-06
240	G1507	Raphanus sativus	gi3341723		2,10E-06
240	G1507	Brassica nigra	gi11037313		7,30E-06
240	G1507	Brassica napus	gi30984027		9,90E-06
240	G1507	Hordeum vulgare	gi21667485		9,60E-05
240	G1507	Malus x domestica	gi4091806		0,00013

485/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
240	G1507	Ipomoea nil	gi10946337		0,00068
241	G1510	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER159728_ 1	1031
241	G1510	Oryza sativa	OSC101036,C1,p 2,fg	1032
241	G1510	Glycine max	Gma_S5061040	1662
241	G1510	Triticum aestivum	Ta_S206702	1880
241	G1510	Lycopersicon esculentum	Les_S5271097	1932
241	G1510	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 56179	2033
242	G1510	Brassica oleracea	BZ493938		8,00E-58
242	G1510	Brassica napus	CB686317		3,00E-31
242	G1510	Vitis vinifera	BM437179		5,00E-23
242	G1510	Glycine max	BF425622		5,00E-23
242	G1510	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK099607		7,00E-23
242	G1510	Sorghum bicolor	CD213245		9,00E-20
242	G1510	Medicago truncatula	BQ165696		2,00E-18
242	G1510	Populus tremula x Populus tremuloides	BU863159		5,00E-18
242	G1510	Triticum aestivum	AL816777		4,00E-17
242	G1510	Oryza sativa	AC087597		3,00E-15

486/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
242	G1510	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi28372691		7,00E-19
242	G1510	Oryza sativa	gi14165317		5,10E-10
242	G1510	Nicotiana tabacum	gi12711287		3,70E-07
242	G1510	Nicotiana plumbaginifoli a	gi1076609		4,20E-05
242	G1510	Fagopyrum sp. C97107	gi31088153		0,013
242	G1510	Fagopyrum rubifolium	gi31088139		0,016
242	G1510	Fagopyrum gracilipes	gi31088119		0,032
242	G1510	Fagopyrum sp. C97106	gi31088151		0,032
242	G1510	Fagopyrum capillatum	gi31088129		0,032
242	G1510	Fagopyrum callianthum	gi31088131		0,04
244	G1535	Gossypium hirsutum	AF530914		1,0e-999
244	G1535	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AB101646		1,0e-999
244	G1535	Oryza sativa	AX699728		1,0e-999
244	G1535	Zea mays	ZMA250986		1,0e-999
244	G1535	Picea abies	AF172931		1,00E-147
244	G1535	Phalaenopsis sp. SM9108	PSU34743		1,00E-147

487/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
244	G1535	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01007245		1,00E-123
244	G1535	Malus domestica	AF067961		1,00E-110
244	G1535	Sorghum bicolor	AF466200		1,00E-106
244	G1535	Helianthus annuus	HNNHAHR		2,00E-97
244	G1535	Gossypium hirsutum	gi22475197		1,50E-186
244	G1535	Oryza sativa	gi18266646		9,30E-174
244	G1535	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi31339099		9,30E-174
244	G1535	Phalaenopsis sp. SM9108	gi1173622		1,10E-146
244	G1535	Phalaenopsis sp.	gi2147484		1,10E-146
244	G1535	Picea abies	gi12002853		9,90E-146
244	G1535	Sorghum bicolor	gi18481701		1,60E-141
244	G1535	Zea mays	gi5531484		6,50E-134
244	G1535	Malus x domestica	gi3925363		3,10E-104
244	G1535	Helianthus annuus	gi1208940		1,40E-97
246	G1538	Brassica oleracea	BH555867		3,00E-57
246	G1538	Lycopersicon esculentum	AI897201		1,00E-37

488/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
246	G1538	Solanum tuberosum	BQ506359		3,00E-36
246	G1538	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	BI138094		3,00E-36
246	G1538	Glycine max	BE660082		8,00E-36
246	G1538	Brassica napus	CD818428		2,00E-35
246	G1538	Medicago truncatula	BE204081		1,00E-34
246	G1538	Helianthus argophyllus	CF087358		1,00E-33
246	G1538	Gossypium arboreum	BG447432		3,00E-31
246	G1538	Beta vulgaris	BQ584396		4,00E-30
246	G1538	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi33146844		2,10E-27
246	G1538	Lycopersicon esculentum	gi1161575		1,10E-21
246	G1538	Craterostigma plantagineum	gi18034441		2,10E-20
246	G1538	Ceratopteris richardii	gi3868841		2,70E-20
246	G1538	Oryza sativa	gi5006853		3,40E-20
246	G1538	Daucus carota	gi4433048		2,40E-19
246	G1538	Nicotiana tabacum	gi22651698		3,00E-19
246	G1538	Brassica rapa subesp. pekinensis	gi8133126		3,90E-19
246	G1538	Phaseolus	gi15148916		5,00E-19

489/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		vulgaris
246	G1538	Physcomitrella patens	gi21623495		1,30E-18
247	G1539	Glycine max	BE800562,1	1033
247	G1539	Glycine max	uC- gmflminsoy098c 11b1	1034
248	G1539	Brassica oleracea	BH725803		3,00E-46
248	G1539	Lactuca sativa	BU006325		1,00E-38
248	G1539	Ipomoea nil	BJ555660		4,00E-35
248	G1539	Medicago truncatula	AC137078		9,00E-32
248	G1539	Glycine max	BE800562		1,00E-25
248	G1539	Vigna radiata	AF322401		2,00E-25
248	G1539	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01009392		3,00E-24
248	G1539	Populus tremula x Populus tremuloides	BI128104		5,00E-24
248	G1539	Lycopersicon esculentum	BG134747		5,00E-24
248	G1539	Zea mays	CC337134		2,00E-23
248	G1539	Lycopersicon esculentum	gi28070968		3,30E-31
248	G1539	Petunia x hybrida	gi22087128		7,10E-27
248	G1539	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi21740884		1,30E-25

490/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
248	G1539	Oryza sativa	gi10241438		4,20E-25
248	G1539	Populus tremula x Populus tremuloides	gi3955021		4,50E-12
248	G1539	Narcissus pseudonarcissu s	gi18419580		0,00089
248	G1539	Zinnia elegans	gi18076738		0,0053
248	G1539	Ceratopteris richardii	gi3868829		0,074
248	G1539	Juniperus rigida	gi9280017		0,49
248	G1539	Physcomitrella patens	gi7209912		0,53
250	G1549	Brassica napus	CD842307		2,00E-30
250	G1549	Medicago truncatula	AC139525		2,00E-29
250	G1549	Brassica oleracea	BZ482689		5,00E-28
250	G1549	Glycine max	BI787228		1,00E-21
250	G1549	Physcomitrella patens	AB028079		2,00E-21
250	G1549	Ipomoea batatas	BM878740		5,00E-21
250	G1549	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	BU881786		7,00E-21
250	G1549	Lycopersicon esculentum	AI488741		9,00E-21
250	G1549	Oryza sativa	AX654801		9,00E-21
250	G1549	Oryza sativa	AK105484		1,00E-20

491/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		(grupo do cultivar japonica)
250	G1549	Physcomitrella patens	gi7415628		7,60E-23
250	G1549	Lycopersicon esculentum	gi1161575		8,70E-22
250	G1549	Daucus carota	gi1435021		8,70E-22
250	G1549	Oryza sativa	gi5006853		8,70E-22
250	G1549	Ceratopteris richardii	gi3868839		2,30E-21
250	G1549	Glycine max	gi6091551		6,10E-21
250	G1549	Brassica rapa subesp. pekinensis	gi8133126		1,00E-20
250	G1549	Nicotiana tabacum	gi22651698		1,30E-20
250	G1549	Phaseolus vulgaris	gi15148916		1,60E-20
250	G1549	Helianthus annuus	gi349379		4,30E-20
252	G1554	Brassica oleracea	BZ436074		1,00E-70
252	G1554	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK109808		5,00E-68
252	G1554	Lycopersicon pennellii	AW398166		4,00E-38
252	G1554	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01012151		5,00E-34
252	G1554	Lycopersicon	BE450553		1,00E-33

492/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		esculentum
252	G1554	Solanum tuberosum	BM111266		2,00E-33
252	G1554	Oryza sativa	AP002523		6,00E-33
252	G1554	Populus tremuloides	CA926221		1,00E-31
252	G1554	Medicago truncatula	CF068634		2,00E-31
252	G1554	Hordeum vulgare subesp. vulgare	BU988945		8,00E-31
252	G1554	Oryza sativa	gi11034542		4,00E-72
252	G1554	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi33146555		5,70E-44
252	G1554	Nicotiana tabacum	gi4519671		6,20E-13
252	G1554	Zea mays	gi14189890		3,00E-12
252	G1554	Mesembryanthem um crystallinum	gi6942190		7,70E-11
252	G1554	Chlamydomonas reinhardtii	gi5916207		7,80E-11
252	G1554	Oryza glaberrima	gi31338862		6,80E-09
252	G1554	Solanum bulbocastanum	gi32470629		8,30E-09
252	G1554	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi31338860		4,20E-08
252	G1554	Nicotiana	gi1087017		0,0056

493/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		alata
254	G1556	Oryza sativa	AU172823		3,00E-18
254	G1556	Medicago truncatula	BE319599		3,00E-18
254	G1556	Gossypium hirsutum	AI730937		4,00E-18
254	G1556	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK107297		4,00E-18
254	G1556	Solanum tuberosum	BG597254		1,00E-17
254	G1556	Lycopersicon esculentum	AW219675		1,00E-17
254	G1556	Beta vulgaris	BQ585483		4,00E-17
254	G1556	Sorghum bicolor	BG240038		8,00E-17
254	G1556	Hordeum vulgare	BQ465062		1,00E-16
254	G1556	Triticum aestivum	CD913537		1,00E-16
254	G1556	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi21741799		2,70E-18
254	G1556	Solanum bulbocastanum	gi32470629		2,30E-17
254	G1556	Mesembryanthem um crystallinum	gi6942190		2,80E-15
254	G1556	Nicotiana tabacum	gi4519671		4,70E-13
254	G1556	Chlamydomonas reinhardtii	gi5916207		2,50E-12

494/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
254	G1556	Zea mays	gi13940496		1,20E-09
254	G1556	Oryza sativa	gi13940500		2,20E-09
254	G1556	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi31338860		1,10E-06
254	G1556	Oryza glaberrima	gi31338862		1,10E-06
254	G1556	Lycopersicon esculentum	gi22900937		0,96
255	G1557	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER70177_1	1035
256	G1557	Gossypium hirsutum	AI730937		2,00E-24
256	G1557	Beta vulgaris	BQ585483		2,00E-24
256	G1557	Solanum tuberosum	BG597254		3,00E-24
256	G1557	Mesembryanthem um crystallinum	BE036811		1,00E-23
256	G1557	Medicago truncatula	BG646240		1,00E-23
256	G1557	Lycopersicon esculentum	BG643313		3,00E-23
256	G1557	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK107297		4,00E-22
256	G1557	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	BU872452		8,00E-22
256	G1557	Oryza sativa	AU172823		1,00E-21
256	G1557	Hordeum	BQ465062		7,00E-21

495/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		vulgare
256	G1557	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi21741799		2,90E-23
256	G1557	Nicotiana tabacum	gi4519671		3,60E-16
256	G1557	Solanum bulbocastanum	gi32470629		1,20E-15
256	G1557	Mesembryanthem um crystallinum	gi6942190		3,60E-15
256	G1557	Chlamydomonas reinhardtii	gi5916207		3,50E-13
256	G1557	Oryza sativa	gi11034542		3,20E-09
256	G1557	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi31338860		1,80E-07
256	G1557	Oryza glaberrima	gi31338862		1,80E-07
256	G1557	Zea mays	gi13661174		1,80E-07
256	G1557	Triticum aestivum	gi100791		0,99
258	G1585	Brassica oleracea	BZ441174		6,00E-57
258	G1585	Ipomoea nil	BJ559013		3,00E-37
258	G1585	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01009903		2,00E-29
258	G1585	Oryza sativa	AP003760		2,00E-29
258	G1585	Zea mays	AQ844430		5,00E-29
258	G1585	Oryza sativa	AC121360		9,00E-29

496/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		(grupo do cultivar japonica)
258	G1585	Pinus taeda	AW981538		2,00E-24
258	G1585	Hordeum vulgare subesp. vulgare	BQ467157		3,00E-18
258	G1585	Brassica napus	CD827898		4,00E-18
258	G1585	Triticum aestivum	CD923002		5,00E-18
258	G1585	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20161583		1,50E-47
258	G1585	Petunia x hybrida	gi22087128		1,50E-13
258	G1585	Populus tremula x Populus tremuloides	gi3955019		2,70E-12
258	G1585	Lycopersicon esculentum	gi28070968		3,90E-12
258	G1585	Oryza sativa	gi10241438		3,10E-11
258	G1585	Narcissus pseudonarcissu s	gi18419580		3,00E-05
258	G1585	Prunus armeniaca	gi5031277		0,027
258	G1585	Daucus carota	gi1076569		0,53
258	G1585	Picea abies	gi19070143		0,63
258	G1585	Zea mays	gi8920423		0,71
260	G1591	Brassica oleracea	BZ084919		2,00E-35

497/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
260	G1591	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	CNS09S4R		3,00E-35
260	G1591	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01009392		3,00E-35
260	G1591	Zea mays	CC337119		1,00E-33
260	G1591	Hordeum vulgare subesp. vulgare	BU998450		2,00E-31
260	G1591	Oryza sativa	AC078977		1,00E-29
260	G1591	Ipomoea nil	BJ553325		1,00E-21
260	G1591	Medicago truncatula	AC137078		1,00E-21
260	G1591	Lactuca sativa	BU006325		2,00E-21
260	G1591	Lycopersicon esculentum	BI204369		3,00E-20
260	G1591	Oryza sativa	gi8099120		7,50E-31
260	G1591	Petunia x hybrida	gi22087128		4,10E-23
260	G1591	Lycopersicon esculentum	gi28070968		8,40E-23
260	G1591	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi18461215		2,80E-22
260	G1591	Populus tremula x Populus tremuloides	gi3955019		3,00E-12
260	G1591	Chlamydomonas	gi16209575		0,00053

498/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		reinhardtii
260	G1591	Gossypium hirsutum	gi5731257		0,0021
260	G1591	Narcissus pseudonarcissu s	gi18419580		0,0022
260	G1591	Dicentra eximia	gi3170468		0,0027
260	G1591	Zinnia elegans	gi18076738		0,012
262	G1593	Solanum tuberosum	AF406697		4,00E-67
262	G1593	Lycopersicon esculentum	AF375966		4,00E-67
262	G1593	Medicago truncatula	AW688195		1,00E-57
262	G1593	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK070465		4,00E-57
262	G1593	Citrus sinensis	CB292855		1,00E-56
262	G1593	Glycine max	BQ629874		1,00E-56
262	G1593	Prunus persica	BU043836		6,00E-55
262	G1593	Vitis vinifera	CB343619		3,00E-54
262	G1593	Mesembryanthem um crystallinum	CA839352		6,00E-54
262	G1593	Malus x domestica	AF053769		1,00E-49
262	G1593	Solanum tuberosum	gi22652115		9,50E-68
262	G1593	Lycopersicon esculentum	gi31323447		2,20E-64

499/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
262	G1593	Malus x domestica	gi7239157		3,00E-52
262	G1593	Gnetum gnemon	gi31746344		5,40E-52
262	G1593	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20219036		6,80E-51
262	G1593	Hordeum vulgare	gi13752407		1,80E-48
262	G1593	Oryza sativa	gi15408891		3,20E-47
262	G1593	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi19352101		3,20E-47
262	G1593	Zea mays	gi19743685		4,90E-37
262	G1593	Dendrobium grex Madame Thong-In	gi3929314		4,30E-12
263	G1660	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER30666_1	1036
263	G1660	Glycine max	uCgmflLIB3275P05 9b07b1	1037
263	G1660	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER6548_1	1038
263	G1660	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER93242 1	1039
263	G1660	Oryza sativa	OSC100113,C1,p 9,fg	1040
263	G1660	Oryza sativa	OSC101572,C1,p 8,fg	1041
263	G1660	Oryza sativa	OSC34319,C1,p4 ,fg	1042
263	G1660	Zea mays	700167489_FLI	1043

500/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
263	G1660	Zea mays	LIB3279-010- H4_FLI	1044
263	G1660	Zea mays	LIB4767-001- R1-M1-D1	1045
263	G1660	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER43109 1	1046
263	G1660	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER64649 1	1047
263	G1660	Oryza sativa	Os_S94670	1593
263	G1660	Zea mays	Zm_S11454293	1803
263	G1660	Zea mays	Zm_S11520265	1804
263	G1660	Triticum aestivum	Ta_S142271	1881
263	G1660	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-35095	2034
263	G1660	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-53090	2035
264	G1660	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK102604		1,00E-109
264	G1660	Brassica oleracea	BZ431607		1,00E-108
264	G1660	Brassica napus	CD818917		2,00E-95
264	G1660	Oryza sativa	BE040229		2,00E-62
264	G1660	Ipomoea nil	BJ576287		1,00E-54
264	G1660	Lycopersicon esculentum	AW443990		7,00E-54
264	G1660	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01001098		2,00E-52
264	G1660	Zea mays	CB886289		3,00E-50

501/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
264	G1660	Hordeum vulgare	BM377843		3,00E-50
264	G1660	Triticum aestivum	BJ238027		6,00E-47
264	G1660	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi27452912		7,70E-62
264	G1660	Zea mays	gi23928441		3,30E-22
264	G1660	Solanum tuberosum	gi1881585		1,60E-17
264	G1660	Lycopersicon esculentum	gi4731573		1,20E-16
264	G1660	Nicotiana tabacum	gi8096269		0,0017
264	G1660	Cucurbita maxima	gi17221648		0,002
264	G1660	Cicer arietinum	gi7208779		0,0026
264	G1660	Oryza sativa	gi11875196		0,006
264	G1660	Plastid Oenoutroa elata subesp. hookeri	gi13276714		0,0063
264	G1660	Oenoutroa elata subesp. hookeri	gi23822375		0,0063
266	G1718	Brassica rapa subesp. pekinensis	BG543482		2,00E-77
266	G1718	Brassica oleracea	BH533325		2,00E-65
266	G1718	Citrus sinensis	CB292402		2,00E-47

502/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
266	G1718	Vitis vinifera	CA812994		3,00E-47
266	G1718	Populus tremula	BU889204		4,00E-47
266	G1718	Populus tremula x Populus tremuloides	BU835838		3,00E-46
266	G1718	Populus tremuloides	CA925038		8,00E-46
266	G1718	Euphorbia esula	BE056347		1,00E-44
266	G1718	Medicago truncatula	BG452491		4,00E-44
266	G1718	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	BU869861		7,00E-44
266	G1718	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32129334		1,60E-21
266	G1718	Oryza sativa	gi6539567		4,30E-20
266	G1718	Cicer arietinum	gi4651204		6,50E-17
266	G1718	Tulipa gesneriana	gi23386073		3,30E-14
266	G1718	Cucumis melo	gi17016985		3,40E-11
266	G1718	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi20152976		1,40E-08
266	G1718	Thellungiella halophila	gi20340241		1,60E-08
266	G1718	Oryza sativa	gi29164825		2,40E-08

503/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		(grupo do cultivar indica)
266	G1718	Medicago sativa	gi23451086		1,30E-07
266	G1718	Lotus japonicus	gi1086225		2,30E-07
267	G1730	Zea mays	LIB5074-010- R1-XP1-A11	1048
268	G1730	Brassica oleracea	BZ472679		6,00E-67
268	G1730	Medicago truncatula	AC126787		1,00E-27
268	G1730	Brassica napus	CD814199		4,00E-27
268	G1730	Zea mays	BZ715596		4,00E-21
268	G1730	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK108491		5,00E-21
268	G1730	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01009602		7,00E-21
268	G1730	Oryza sativa	AX653298		1,00E-18
268	G1730	Cucumis melo	AF499727		2,00E-18
268	G1730	Solanum tuberosum	BG593372		5,00E-18
268	G1730	Lycopersicon esculentum	AW032769		2,00E-17
268	G1730	Cucumis melo	gi28558782		6,70E-23
268	G1730	Oryza sativa	gi12643047		1,90E-19
268	G1730	Oryza sativa (grupo do cultivar	gi31433649		1,90E-19

504/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		japonica)
268	G1730	Nicotiana tabacum	gi12003386		5,10E-17
268	G1730	Zea mays	gi21645888		1,40E-16
268	G1730	Medicago sativa	gi23451086		1,30E-14
268	G1730	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi20152976		5,70E-14
268	G1730	Hordeum vulgare	gi2894379		1,10E-09
268	G1730	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi29164825		4,10E-09
268	G1730	Thellungiella halophila	gi20340241		1,10E-08
270	G1743	Brassica oleracea	BH985728		1,00E-89
270	G1743	Populus tremula	BU891914		3,00E-61
270	G1743	Populus tremula x Populus tremuloides	BU885427		3,00E-61
270	G1743	Lycopersicon esculentum	AW034559		1,00E-56
270	G1743	Ipomoea nil	BJ561648		1,00E-56
270	G1743	Gossypium hirsutum	CA993166		1,00E-55
270	G1743	Populus balsamifera subesp. trichocarpa x	CA825344		2,00E-54

505/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		Populus deltoides
270	G1743	Vitis vinifera	CB918599		3,00E-53
270	G1743	Lactuca sativa	BQ849490		4,00E-53
270	G1743	Capsicum annuum	CA847343		2,00E-52
270	G1743	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32488512		1,80E-35
270	G1743	Oryza sativa	gi6069662		1,30E-18
270	G1743	Thellungiella halophila	gi20340241		1,70E-16
270	G1743	Zea mays	gi18092342		6,30E-12
270	G1743	Medicago sativa	gi23451086		1,20E-10
270	G1743	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi20152976		1,50E-10
270	G1743	Nicotiana tabacum	gi12003386		2,20E-09
270	G1743	Cucumis melo	gi28558782		2,20E-09
270	G1743	Hordeum vulgare	gi2894379		2,70E-08
270	G1743	Cicer arietinum	gi4651204		8,50E-08
271	G1753	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER91438_1	1049
271	G1753	Oryza sativa	OSC101736,C1,p 16,fg	1050
272	G1753	Brassica oleracea	BZ063578		4,00E-78

506/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
272	G1753	Lycopersicon esculentum	AW030833		4,00E-35
272	G1753	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01009545		9,00E-35
272	G1753	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AP005775		1,00E-34
272	G1753	Poncirus trifoliata	CD576150		1,00E-33
272	G1753	Oryza sativa	AX653721		4,00E-33
272	G1753	Helianthus annuus	BQ976989		5,00E-33
272	G1753	Zea mays	BZ737969		1,00E-32
272	G1753	Nicotiana tabacum	AF211531		4,00E-32
272	G1753	Vitis vinifera	CB035846		1,00E-31
272	G1753	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi21742362		1,00E-34
272	G1753	Oryza sativa	gi14140155		2,70E-34
272	G1753	Nicotiana tabacum	gi12003384		1,90E-33
272	G1753	Brassica napus	gi20303011		5,10E-33
272	G1753	Lycopersicon esculentum	gi18535580		1,60E-31
272	G1753	Prunus avium	gi23495458		1,40E-30
272	G1753	Hordeum vulgare	gi19071243		1,40E-28
272	G1753	Zea mays	gi21908034		1,70E-25

507/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
272	G1753	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi20152903		5,50E-20
272	G1753	Gossypium hirsutum	gi32481079		1,30E-18
274	G1772	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK073139		1,0e-999
274	G1772	Thellungiella halophila	BM985639		1,00E-134
274	G1772	Lactuca sativa	BQ996439		1,00E-119
274	G1772	Vitis vinifera	CD008605		6,00E-99
274	G1772	Brassica oleracea	BH998711		6,00E-93
274	G1772	Glycine max	BM887188		1,00E-90
274	G1772	Helianthus annuus	BU026535		9,00E-89
274	G1772	Zea mays	BM661323		1,00E-84
274	G1772	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01003274		4,00E-73
274	G1772	Oryza sativa	AC103891		5,00E-73
274	G1772	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20330766		1,30E-191
274	G1772	Nicotiana plumbaginifoli a	gi1666171		2,20E-34
274	G1772	Brassica rapa subesp.	gi27804453		0,16

508/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		pekinensis
274	G1772	Calycanthus floridus	gi8163958		0,64
274	G1772	Picea glauca	gi1350524		0,66
274	G1772	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi23954355		0,84
274	G1772	Adiantum capillusveneris	gi30266733		0,95
274	G1772	Macrotyloma axillare	gi124034		0,98
274	G1772	Canavalia lineata	gi543526		1
274	G1772	Glycine max	gi2306979		1
275	G1779	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER185518_ 1	1051
275	G1779	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER264928_ 1	1052
275	G1779	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER76652_1	1053
275	G1779	Oryza sativa	OSC21832,C1,p4 ,fg	1054
275	G1779	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER78309_1	1055
275	G1779	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-56681	2036
276	G1779	Brassica oleracea	BH558232		3,00E-36
276	G1779	Vitis vinifera	BM437179		2,00E-26
276	G1779	Glycine max	BF425622		1,00E-24

509/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
276	G1779	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK099607		5,00E-21
276	G1779	Sorghum bicolor	CD213245		3,00E-20
276	G1779	Medicago truncatula	BQ165696		2,00E-19
276	G1779	Populus tremula x Populus tremuloides	BU863159		2,00E-18
276	G1779	Brassica napus	CB686317		9,00E-18
276	G1779	Poncirus trifoliata	CD576018		3,00E-17
276	G1779	Triticum aestivum	AL816777		2,00E-16
276	G1779	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi28564714		1,20E-20
276	G1779	Oryza sativa	gi5091599		2,80E-08
276	G1779	Nicotiana tabacum	gi12711287		2,90E-07
276	G1779	Nicotiana plumbaginifoli a	gi1076609		3,50E-05
276	G1779	Lycopersicon esculentum	gi1418988		0,36
276	G1779	Eutrema wasabi	gi23200602		0,55
276	G1779	Amicia glandulosa	gi30313971		0,62
276	G1779	Ipomoea batatas	gi604324		0,8

510/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
276	G1779	Triticum aestivum	gi23451222		1
276	G1779	Gnetum gnemon	gi31746346		1
277	G1792	Oryza sativa	G3380	2124	5,00E-29
277	G1792	Oryza sativa	G3383	2128	3,00E-33
277	G1792	Oryza sativa	G3515	2209	7,00E-30
277	G1792	Zea mays	G3516	2211	2,00E-31
277	G1792	Zea mays	G3517	2213	9,00E-33
277	G1792	Glycine max	G3518	2215	9,00E-35
277	G1792	Glycine max	G3519	2217	3,00E-35
277	G1792	Glycine max	G3520	2219	3,00E-36
277	G1792	Glycine max	AW308784,1	685
277	G1792	Glycine max	BG790680,1	686
277	G1792	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER602185_ 1	687
277	G1792	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER91218_1	688
277	G1792	Glycine max	LIB5118-009- Q1-PF1-F2	689
277	G1792	Oryza sativa	OSC20174,C1,p2 ,fg	690
277	G1792	Zea mays	LIB4756-134- A1-K1-G10	691
277	G1792	Glycine max	Gma_S5001644	1633
277	G1792	Zea mays	Zm_S11513768	1754
278	G1792	Lycopersicon esculentum	AI776626		7,00E-35
278	G1792	Solanum tuberosum	BQ045702		1,00E-32
278	G1792	Glycine max	BM178875		9,00E-32

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SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
278	G1792	Medicago truncatula	BF649790		2,00E-31
278	G1792	Eucalyptus grandis	CB967722		1,00E-30
278	G1792	Brassica oleracea	BZ020356		1,00E-30
278	G1792	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01002491		4,00E-30
278	G1792	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AE017099		4,00E-30
278	G1792	Oryza sativa	AC025907		4,00E-30
278	G1792	Sorghum bicolor	BZ337899		4,00E-30
278	G1792	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi31432356		1,10E-30
278	G1792	Lycopersicon esculentum	gi23452024		4,90E-26
278	G1792	Nicotiana tabacum	gi1732406		2,60E-25
278	G1792	Oryza sativa	gi12597874		4,50E-25
278	G1792	Mesembryanthem um crystallinum	gi32401273		9,40E-25
278	G1792	Catharanthus roseus	gi8980313		2,20E-23
278	G1792	Nicotiana sylvestris	gi8809571		2,20E-23
278	G1792	Matricaria	gi17385636		1,40E-21

512/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		chamomilla
278	G1792	Glycine max	gi21304712		3,80E-21
278	G1792	Atriplex hortensis	gi8571476		1,30E-20
279	G1796	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER50695_1	1056
279	G1796	Oryza sativa	Os_S43212	1594
279	G1796	Zea mays	Zm_S11435953	1805
279	G1796	Triticum aestivum	Ta_S369485	1882
280	G1796	Brassica oleracea	BH503101		2,00E-54
280	G1796	Medicago truncatula	AC119414		2,00E-35
280	G1796	Oryza sativa	AP004079		2,00E-25
280	G1796	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01000133		2,00E-25
280	G1796	Zea mays	CD437690		3,00E-24
280	G1796	Lactuca sativa	BQ987300		4,00E-24
280	G1796	Sorghum bicolor	CD228394		4,00E-24
280	G1796	Lupinus albus	CA411234		6,00E-24
280	G1796	Glycine max	CA800025		8,00E-24
280	G1796	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AP005845		2,00E-23
280	G1796	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32487928		6,40E-26

513/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
280	G1796	Zea mays	gi27802487		1,80E-24
280	G1796	Nicotiana tabacum	gi1208496		1,10E-23
280	G1796	Oryza sativa	gi10567106		2,20E-23
280	G1796	Stylosanthes hamata	gi4099914		3,70E-23
280	G1796	Nicotiana sylvestris	gi8809573		1,20E-22
280	G1796	Lycopersicon esculentum	gi30526297		2,60E-22
280	G1796	Thellungiella halophila	gi20340233		4,20E-22
280	G1796	Mesembryan them um crystallinum	gi32401273		7,80E-21
280	G1796	Solanum tuberosum	gi28268684		1,30E-20
282	G1797	Petunia x hybrida	AF335240		5,00E-52
282	G1797	Lycopersicon esculentum	AI486684		7,00E-49
282	G1797	Eucalyptus grandis	AY263808		8,00E-47
282	G1797	Eucalyptus occidentalis	AY273872		7,00E-46
282	G1797	Populus tremuloides	CA925124		8,00E-45
282	G1797	Brassica rapa subesp. pekinensis	AY257541		5,00E-44
282	G1797	Sinapis alba	SAU25696		5,00E-44
282	G1797	Pimpinella brachycarpa	AF082531		5,00E-44

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SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
282	G1797	Cardamine flexuosa	AY257542		2,00E-43
282	G1797	Nicotiana tabacum	NTTOB		5,00E-43
282	G1797	Petunia x hybrida	gi13384058		4,40E-50
282	G1797	Eucalyptus grandis	gi30575600		8,60E-47
282	G1797	Eucalyptus occidentalis	gi30983946		6,00E-46
282	G1797	Brassica rapa subesp. pekinensis	gi30171307		4,90E-44
282	G1797	Populus tremuloides	gi31295609		4,90E-44
282	G1797	Sinapis alba	gi1049022		1,60E-43
282	G1797	Pimpinella brachycarpa	gi3493647		1,60E-43
282	G1797	Cardamine flexuosa	gi30171309		2,70E-43
282	G1797	Nicotiana tabacum	gi1076646		1,50E-42
282	G1797	Draba nemorosa var. hebecarpa	gi30171311		1,00E-41
284	G1798	Petunia x hybrida	AF335240		5,00E-53
284	G1798	Lycopersicon esculentum	AI486684		3,00E-52
284	G1798	Brassica rapa subesp. pekinensis	AY257541		3,00E-48
284	G1798	Sinapis alba	SAU25696		3,00E-47
284	G1798	Cardamine	AY257542		5,00E-47

515/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		flexuosa
284	G1798	Pimpinella brachycarpa	AF082531		5,00E-47
284	G1798	Populus tremuloides	CA925124		1,00E-44
284	G1798	Eucalyptus grandis	AY263807		1,00E-43
284	G1798	Nicotiana tabacum	NTTOB		1,00E-43
284	G1798	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK104921		5,00E-43
284	G1798	Petunia x hybrida	gi13384058		1,30E-52
284	G1798	Brassica rapa subesp. Pekinensis	gi30171307		4,60E-48
284	G1798	Sinapis alba	gi1049022		2,50E-47
284	G1798	Cardamine flexuosa	gi30171309		1,40E-46
284	G1798	Pimpinella brachycarpa	gi3493647		1,40E-46
284	G1798	Populus tremuloides	gi31295609		2,30E-44
284	G1798	Oryza sativa	gi5295990		6,20E-44
284	G1798	Eucalyptus grandis	gi30575598		1,00E-43
284	G1798	Zea mays	gi12002139		1,30E-43
284	G1798	Nicotiana tabacum	gi1076646		5,60E-43
286	G1808	Brassica oleracea	BH950967		1,00E-85

516/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
286	G1808	Lycopersicon esculentum	BF051268		2,00E-30
286	G1808	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	BU870843		2,00E-29
286	G1808	Glycine max	BM269595		6,00E-21
286	G1808	Brassica napus	CD833815		3,00E-17
286	G1808	Gossypium hirsutum	CA992680		6,00E-14
286	G1808	Zinnia elegans	AU294545		4,00E-12
286	G1808	Solanum tuberosum	BQ519273		9,00E-12
286	G1808	Medicago truncatula	CA918476		1,00E-11
286	G1808	Phaseolus vulgaris	AF350505		2,00E-11
286	G1808	Phaseolus vulgaris	gi13430400		2,90E-14
286	G1808	Phaseolus acutifolius	gi12829956		6,10E-14
286	G1808	Petroselinum crispum	gi9650828		7,70E-14
286	G1808	Glycine max	gi22597162		1,30E-13
286	G1808	Nicotiana tabacum	gi16580130		1,10E-12
286	G1808	Capsicum chinense	gi24460973		1,80E-12
286	G1808	Zea mays	gi1060935		2,00E-11
286	G1808	Lycopersicon esculentum	gi5901747		8,10E-11
286	G1808	Zea perennis	gi27652122		1,30E-10
286	G1808	Oryza sativa	gi14289165		1,40E-10

517/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
287	G1816	Oryza sativa	G3392	2131	2,00E-16
287	G1816	Oryza sativa	G3392	2133	2,00E-15
287	G1816	Zea mays	G3431	2147	1,00E-13
287	G1816	Zea mays	G3444	2157	1,00E-13
287	G1816	Glycine max	G3445	2159	5,00E-12
287	G1816	Glycine max	G3446	2161	5,00E-12
287	G1816	Glycine max	G3447	2163	5,00E-12
287	G1816	Glycine max	G3448	2165	1,00E-13
287	G1816	Glycine max	G3449	2167	3,00E-14
287	G1816	Glycine max	G3450	2168	3,00E-22
287	G1816	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER31802_1	1057
287	G1816	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER586 102	1058
287	G1816	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER586 116	1059
287	G1816	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER8724 1	1060
287	G1816	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER8724_2	1061
287	G1816	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER30974_2	1062
287	G1816	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER30974_3	1063
287	G1816	Oryza sativa	OSC20053,C1,p5 ,fg	1064
287	G1816	Oryza sativa	OSC20055,C1,p5 ,fg	1065
287	G1816	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER69699 1	1066
287	G1816	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER69699_2	1067

518/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
287	G1816	Glycine max	Gma_S4901946	1663
287	G1816	Triticum aestivum	Ta_S45274	1883
288	G1816	Vitis vinifera	BM437313		8,00E-28
288	G1816	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	BU872107		2,00E-27
288	G1816	Populus tremula x Populus tremuloides	BU831849		2,00E-27
288	G1816	Vitis aestivalis	CB289238		7,00E-27
288	G1816	Glycine max	AI495284		7,00E-19
288	G1816	Brassica napus	CD843377		6,00E-15
288	G1816	Nuphar advena	CD473522		1,00E-14
288	G1816	Pinus pinaster	AL750151		3,00E-14
288	G1816	Lactuca sativa	BU015255		5,00E-14
288	G1816	Brassica oleracea	BH961028		8,00E-14
288	G1816	Gossypioides kirkii	gi23476295		4,90E-12
288	G1816	Gossypium raimondii	gi14269333		2,70E-11
288	G1816	Gossypium herbaceum	gi14269335		2,70E-11
288	G1816	Gossypium hirsutum	gi14269337		2,70E-11
288	G1816	Solanum tuberosum	gi9954118		1,50E-10
288	G1816	Oryza sativa	gi2605619		2,40E-10
288	G1816	Cucumls	gi20514371		3,10E-10

519/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		sativus
288	G1816	Zea mays subesp. parvi gl umi s	gi15042108		4,00E-10
288	G1816	Zea luxurians	gi15042124		4,00E-10
288	G1816	Anthurium andraeanum	gi29824962		5,20E-10
290	G1823	Zea mays	AB060130		3,00E-81
290	G1823	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK065276		8,00E-74
290	G1823	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	CB630542		5,00E-68
290	G1823	Lactuca sativa	BQ858556		3,00E-64
290	G1823	Brassica oleracea	BH485050		3,00E-58
290	G1823	Solanum tuberosum	BM407041		3,00E-56
290	G1823	Medicago truncatula	CB891281		3,00E-54
290	G1823	Vitis vinifera	CD800109		3,00E-52
290	G1823	Sorghum bicolor	CD424269		1,00E-51
290	G1823	Stevia rebaudiana	BG523436		1,00E-47
290	G1823	Zea mays	gi15667625		3,10E-79
290	G1823	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi24308616		3,70E-78
290	G1823	Oryza sativa	gi31338860		4,50E-41

520/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		(grupo do cultivar indica)
290	G1823	Oryza glaberrima	gi31338862		4,50E-41
290	G1823	Oryza sativa	gi15289981		2,40E-19
290	G1823	Chlamydomonas reinhardtii	gi5916207		4,80E-11
290	G1823	Nicotiana tabacum	gi4519671		1,40E-09
290	G1823	Solanum bulbocastanum	gi32470629		6,40E-09
290	G1823	Mesembryanthem um crystallinum	gi6942190		3,80E-08
290	G1823	Dianthus caryophyllus	gi13173408		6,50E-07
292	G1825	Lycopersicon esculentum	BG643313		4,00E-28
292	G1825	Medicago truncatula	BG646240		3,00E-27
292	G1825	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK073606		6,00E-27
292	G1825	Oryza sativa	AU172823		6,00E-27
292	G1825	Gossypium hirsutum	AI730937		1,00E-25
292	G1825	Triticum aestivum	BJ288732		3,00E-25
292	G1825	Hordeum vulgare	BQ465062		1,00E-24
292	G1825	Lactuca sativa	BQ867305		2,00E-22
292	G1825	Beta vulgaris	BQ585483		3,00E-22

521/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
292	G1825	Solanum tuberosum	BQ507198		8,00E-22
292	G1825	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi21741799		8,70E-22
292	G1825	Mesembryanthem um crystallinum	gi6942190		2,50E-18
292	G1825	Nicotiana tabacum	gi4519671		1,10E-16
292	G1825	Solanum bulbocastanum	gi32470629		2,20E-16
292	G1825	Chlamydomonas reinhardtii	gi5916207		4,80E-14
292	G1825	Oryza sativa	gi15289981		1,10E-08
292	G1825	Zea mays	gi14189890		5,10E-08
292	G1825	Oryza glaberrima	gi31338862		1,00E-06
292	G1825	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi31338860		1,40E-06
292	G1825	Juglans nigra x Juglans regia	gi20068283		0,13
294	G1832	Brassica oleracea	BZ063396		4,00E-42
294	G1832	Lotus japonicus	AP004945		2,00E-29
294	G1832	Zea mays	BZ413336		2,00E-24
294	G1832	Petunia x hybrida	AB000455		1,00E-23
294	G1832	Oryza sativa	AP003988		8,00E-22

522/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		(grupo do cultivar japonica)
294	G1832	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01007143		7,00E-21
294	G1832	Vitis vinifera	CD010326		2,00E-17
294	G1832	Oryza sativa	OSJN00060		2,00E-16
294	G1832	Thellungiella halophila	BM985806		7,00E-16
294	G1832	Glycine max	GMU68763		3,00E-15
294	G1832	Petunia x hybrida	gi1786142		1,30E-31
294	G1832	Brassica rapa	gi2058504		7,00E-20
294	G1832	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi21740840		2,10E-19
294	G1832	Glycine max	gi1763063		7,50E-16
294	G1832	Medicago sativa	gi7228329		1,80E-14
294	G1832	Datisca glomerata	gi4666360		3,10E-13
294	G1832	Nicotiana tabacum	gi2981169		4,70E-12
294	G1832	Triticum aestivum	gi485814		7,00E-12
294	G1832	Oryza sativa	gi12698882		1,20E-11
294	G1832	Pisum sativum	gi2129892		4,00E-09
296	G1837	Brassica oleracea	BH675531		5,00E-59
296	G1837	Oryza sativa	AK100643		4,00E-34

523/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		(grupo do cultivar japonica)
296	G1837	Populus tremuloides	CA925570		1,00E-30
296	G1837	Oryza sativa	AP003238		7,00E-30
296	G1837	Gossypium hirsutum	AY125487		7,00E-27
296	G1837	Ipomoea batatas	CB329929		1,00E-26
296	G1837	Helianthus annuus	BU026443		6,00E-26
296	G1837	Lactuca sativa	BU007581		7,00E-26
296	G1837	Hordeum vulgare subesp. vulgare	CA030236		4,00E-25
296	G1837	Hordeum vulgare	BQ470403		3,00E-24
296	G1837	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20146230		2,20E-36
296	G1837	Gossypium hirsutum	gi22858664		2,40E-29
296	G1837	Oryza sativa	gi13124871		2,60E-29
296	G1837	Marsilea quadrifolia	gi22550110		1,30E-11
296	G1837	Lycopersicon esculentum	gi15144510		0,00029
296	G1837	Zea mays	gi18568274		0,013
296	G1837	Nicotiana tabacum	gi14423763		0,016
296	G1837	Hordeum	gi20152975		0,024

524/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		vulgare subesp. vulgare
296	G1837	Cucurbita maxima	gi17221648		0,07
296	G1837	Nicotiana alata	gi7649694		0,089
297	G1840	Triticum aestivum	Ta_S359268	1884
298	G1840	Brassica oleracea	BH560552		2,00E-47
298	G1840	Medicago truncatula	AW559374		2,00E-19
298	G1840	Vitis vinifera	CB003361		3,00E-19
298	G1840	Vitis aestivalis	CB289747		9,00E-19
298	G1840	Glycine max	AW152963		1,00E-17
298	G1840	Zea mays	CC729672		3,00E-15
298	G1840	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01012262		4,00E-15
298	G1840	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AP004399		4,00E-15
298	G1840	Hordeum vulgare subesp. vulgare	BU998389		4,00E-14
298	G1840	Hordeum vulgare	BQ469024		9,00E-14
298	G1840	Oryza sativa (grupo do cultivar	gi20160854		6,80E-14

525/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		japonica)
298	G1840	Zea mays	gi21908036		3,20E-13
298	G1840	Lycopersicon esculentum	gi18535580		2,40E-12
298	G1840	Nicotiana tabacum	gi10798644		1,00E-11
298	G1840	Oryza sativa	gi14018047		1,40E-11
298	G1840	Solanum tuberosum	gi28268684		1,60E-11
298	G1840	Thellungiella halophila	gi20340233		2,70E-11
298	G1840	Narcissus pseudonarcissu s	gi18266198		4,40E-11
298	G1840	Hordeum vulgare	gi27960760		8,20E-11
298	G1840	Fagus sylvatica	gi18496063		1,10E-10
300	G1846	Brassica oleracea	BH486983		1,00E-68
300	G1846	Vitis vinifera	CB971990		4,00E-48
300	G1846	Solanum tuberosum	BG593364		3,00E-45
300	G1846	Medicago truncatula	AC137546		5,00E-43
300	G1846	Glycine max	BM271306		6,00E-43
300	G1846	Vitis aestivalis	CB288995		2,00E-42
300	G1846	Lycopersicon esculentum	AF500012		2,00E-39
300	G1846	Beta vulgaris	BQ594833		2,00E-39
300	G1846	Lactuca sativa	BQ988768		3,00E-39
300	G1846	Oryza sativa	AX653721		3,00E-34

526/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
300	G1846	Lycopersicon esculentum	gi25992102		1,40E-39
300	G1846	Oryza sativa	gi14140155		3,90E-35
300	G1846	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi21742358		9,30E-34
300	G1846	Zea mays	gi21908034		1,60E-31
300	G1846	Brassica napus	gi17352283		1,70E-25
300	G1846	Nicotiana tabacum	gi12003382		2,80E-25
300	G1846	Prunus avium	gi23495460		3,70E-23
300	G1846	Hordeum vulgare	gi19071243		2,00E-22
300	G1846	Gossypium hirsutum	gi32481079		2,30E-21
300	G1846	Fagus sylvatica	gi18496063		2,70E-19
302	G1850	Lotus japonicus	AP006148		6,00E-81
302	G1850	Medicago truncatula	BG646618		7,00E-76
302	G1850	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK106525		2,00E-75
302	G1850	Glycine max	GMHSF29		7,00E-68
302	G1850	Phaseolus coccineus	CA902448		4,00E-66
302	G1850	Beta vulgaris	BQ583051		6,00E-66
302	G1850	Brassica napus	CD814489		4,00E-64
302	G1850	Citrus sinensis	CB292708		9,00E-62

527/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
302	G1850	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01022757		1,00E-60
302	G1850	Triticum aestivum	CD894087		1,00E-55
302	G1850	Glycine max	gi2129829		2,10E-66
302	G1850	Lycopersicon peruvianum	gi100267		1,50E-49
302	G1850	Nicotiana tabacum	gi5821136		1,10E-48
302	G1850	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32482876		4,60E-48
302	G1850	Oryza sativa	gi16580739		1,60E-42
302	G1850	Lycopersicon esculentum	gi100225		9,00E-38
302	G1850	Helianthus annuus	gi25052685		7,80E-35
302	G1850	Zea mays	gi2130134		1,40E-33
302	G1850	Phaseolus acutifolius	gi16118447		1,80E-33
302	G1850	Medicago sativa	gi20162459		8,50E-32
304	G1863	Brassica oleracea	BH582941		5,00E-61
304	G1863	Oryza sativa	AF201895		2,00E-34
304	G1863	Solanum tuberosum	BM404872		3,00E-34
304	G1863	Medicago truncatula	AW981431		1,00E-33
304	G1863	Glycine max	BI786182		1,00E-33

528/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
304	G1863	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK103508		2,00E-33
304	G1863	Lactuca sativa	BQ852906		4,00E-33
304	G1863	Lycopersicon esculentum	AW442227		2,00E-32
304	G1863	Hordeum vulgare subesp. vulgare	CA029723		4,00E-32
304	G1863	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01004865		1,00E-31
304	G1863	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32492205		1,90E-43
304	G1863	Oryza sativa	gi6573149		2,40E-39
304	G1863	Solanum bulbocastanum	gi32470630		3,90E-39
304	G1863	Sorghum bicolor	gi18390099		1,50E-37
304	G1863	Lycopersicon esculentum	gi19171209		0,15
304	G1863	Pisum sativum	gi7008009		0,75
304	G1863	Zea mays	gi1061308		0,85
304	G1863	Glycine max	gi2129829		0,98
304	G1863	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi4680184		0,99
304	G1863	Brassica rapa	gi12655953		1

529/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
305	G1893	Glycine max	AW278047,1	1068
305	G1893	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER111370_ 1	1069
305	G1893	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER118579_ 1	1070
305	G1893	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER118579_ 2	1071
305	G1893	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER149196_ 1	1072
305	G1893	Oryza sativa	LIB4309-019- R1-N1-A5	1073
305	G1893	Oryza sativa	OSC101916,C1,p 4,fg	1074
305	G1893	Oryza sativa	OSC102096,C1,p 3,fg	1075
305	G1893	Oryza sativa	OSC22542,C1,p1 ,fg	1076
305	G1893	Oryza sativa	OSC25365,C1,p1 ,fg	1077
305	G1893	Oryza sativa	OSC33187,C1,p5 ,fg	1078
305	G1893	Oryza sativa	OSC5704,C1,p2, fg	1079
305	G1893	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER288538_ 1	1080
305	G1893	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER344060_ 1	1081
305	G1893	Glycine max	Gma_S5146217	1664

530/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
305	G1893	Zea mays	Zm_S11445592	1806
305	G1893	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-43508	2037
306	G1893	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK071104		1,00E-97
306	G1893	Medicago truncatula	CA921097		4,00E-90
306	G1893	Helianthus annuus	CD849311		8,00E-90
306	G1893	Glycine max	BU547066		9,00E-89
306	G1893	Gossypium arboreum	BQ415977		8,00E-87
306	G1893	Populus tremula x Populus tremuloides	BU825617		2,00E-85
306	G1893	Triticum turgidum	BF293596		7,00E-83
306	G1893	Eschscholzia californica	CD476634		7,00E-80
306	G1893	Brassica oleracea	BH503569		1,00E-79
306	G1893	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01004319		5,00E-71
306	G1893	Oryza sativa	gi15290024		2,20E-78
306	G1893	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20161636		2,20E-78
306	G1893	Glycine max	gi18376601		1,30E-76

531/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
306	G1893	Lycopersicon esculentum	gi15984226		2,80E-25
306	G1893	Solanum tuberosum	gi563623		1,90E-14
306	G1893	Zea mays	gi3170601		3,40E-13
306	G1893	Nicotiana tabacum	gi4519673		0,31
306	G1893	Brassica rapa subesp. pekinensis	gi29569129		0,79
306	G1893	Chloroplast Fagopyrum sp. C97106	gi13366059		0,94
306	G1893	Pisum sativum	gi2129892		0,97
308	G1917	Brassica oleracea	BH700529		1,00E-76
308	G1917	Gossypium arboreum	BG440881		4,00E-53
308	G1917	Brassica napus	CD838237		6,00E-45
308	G1917	Glycine max	AW569177		2,00E-32
308	G1917	Medicago truncatula	BE240450		7,00E-28
308	G1917	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK073464		7,00E-25
308	G1917	Vitis vinifera	CD009085		1,00E-20
308	G1917	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01000157		6,00E-19
308	G1917	Oryza sativa	10A19I		6,00E-19
308	G1917	Physcomitrella	AW497013		4,00E-12

532/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		patens
308	G1917	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20521225		1,90E-26
308	G1917	Oryza sativa	gi5091599		1,30E-13
308	G1917	Nicotiana tabacum	gi12711287		3,20E-07
308	G1917	Nicotiana pl umbagini foli a	gi1076609		7,00E-05
308	G1917	Pisum sativum	gi7008009		0,0064
308	G1917	Glycine max	gi913654		0,018
308	G1917	Medicago sativa	gi166376		0,022
308	G1917	Cicer arietinum	gi3893085		0,061
308	G1917	Silene latifolia	gi1628463		0,075
308	G1917	Lycopersicon esculentum	gi19322		0,083
310	G1923	Medicago truncatula	BF649854		5,00E-60
310	G1923	Lycopersicon esculentum	BI422020		3,00E-59
310	G1923	Oryza sativa	AX654704		7,00E-57
310	G1923	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK073539		7,00E-57
310	G1923	Phaseolus coccineus	CA897028		9,00E-49
310	G1923	Sorghum bicolor	CB927306		1,00E-48

533/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
310	G1923	Glycine max	BU926268		3,00E-48
310	G1923	Vitis vinifera	CA810372		1,00E-42
310	G1923	Zea mays	CC629895		5,00E-42
310	G1923	Brassica napus	CD841307		2,00E-39
310	G1923	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20303588		3,50E-57
310	G1923	Oryza sativa	gi15528779		1,80E-39
310	G1923	Brassica napus	gi31322568		2,90E-39
310	G1923	Phaseolus vulgaris	gi15148914		1,80E-37
310	G1923	Petunia x hybrida	gi21105748		3,80E-37
310	G1923	Solanum tuberosum	gi14485513		6,10E-37
310	G1923	Lycopersicon esculentum	gi6175246		3,40E-36
310	G1923	Glycine max	gi22597158		9,00E-36
310	G1923	Triticum sp.	gi4218537		1,00E-34
310	G1923	Triticum monococcum	gi6732160		1,00E-34
311	G1928	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER1575_1	1082
311	G1928	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER1575_2	1083
311	G1928	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER37555_1	1084
311	G1928	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER2748_3	1085
311	G1928	Oryza sativa	OSC18621,C1,p1 5,fg	1086

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SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
311	G1928	Oryza sativa	OSC8169,C1,p1, fg	1087
311	G1928	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER31066_1	1088
311	G1928	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER483 4	1089
311	G1928	Glycine max	Gma_S4880916	1665
311	G1928	Medicago truncatula	Mtr_S5366182	1704
311	G1928	Hordeum vulgare	Hv_S151736	1739
311	G1928	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 47862	2038
311	G1928	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 48122	2039
311	G1928	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 54189	2040
311	G1928	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-14800	2041
311	G1928	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-332512	2042
312	G1928	Brassica napus	BQ704702		1,00E-125
312	G1928	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK105663		1,00E-107
312	G1928	Solanum tuberosum	STPCP1		1,00E-104
312	G1928	Lycopersicon esculentum	BI932742		1,00E-96
312	G1928	Triticum aestivum	BT009453		1,00E-91
312	G1928	Brassica	BH958905		6,00E-88

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SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		oleracea
312	G1928	Oryza sativa	AX699673		5,00E-86
312	G1928	Medicago truncatula	BG645203		2,00E-85
312	G1928	Prunus persica	BU039744		2,00E-84
312	G1928	Glycine max	CA938031		6,00E-83
312	G1928	Oryza sativa	gi10934090		2,40E-108
312	G1928	Solanum tuberosum	gi563623		6,70E-95
312	G1928	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20160482		1,00E-84
312	G1928	Lycopersicon esculentum	gi9858780		1,70E-82
312	G1928	Zea mays	gi3170601		4,20E-78
312	G1928	Glycine max	gi18376601		6,60E-18
312	G1928	Capsella rubella	gi32454266		3,60E-06
312	G1928	Chlamydomonas reinhardtii	gi16209575		5,50E-06
312	G1928	Petunia x hybrida	gi2346972		0,0062
312	G1928	Nicotiana tabacum	gi100367		0,076
314	G1932	Brassica oleracea	BZ451301		2,00E-45
314	G1932	Populus tremula x Populus tremuloides	BU831322		3,00E-43
314	G1932	Prunus persica	BU044042		3,00E-39
314	G1932	Lotus	AP006411		2,00E-37

536/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		corniculatus var. japonicus
314	G1932	Medicago truncatula	CF069961		1,00E-35
314	G1932	Populus balsamifera subesp. trichocarpa x Populus deltóides	CA825154		3,00E-32
314	G1932	Helianthus annuus	AJ412445		5,00E-31
314	G1932	Lotus japonicus	AV422273		3,00E-30
314	G1932	Glycine max	BM732568		4,00E-30
314	G1932	Lactuca sativa	BQ873409		8,00E-29
314	G1932	Stylosanthes hamata	gi4099921		5,70E-33
314	G1932	Nicotiana tabacum	gi1208496		2,80E-29
314	G1932	Lycopersicon esculentum	gi30526297		5,70E-29
314	G1932	Nicotiana sylvestris	gi8809573		6,40E-28
314	G1932	Oryza sativa	gi10567106		2,10E-27
314	G1932	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20160965		2,10E-27
314	G1932	Thellungiella halophila	gi20340233		5,60E-27
314	G1932	Solanum tuberosum	gi28268684		9,30E-22
314	G1932	Zea mays	gi27802487		1,30E-20

537/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
314	G1932	Prunus armeniaca	gi3264767		3,40E-20
316	G1938	Brassica oleracea	BH464032		1,00E-76
316	G1938	Vitis vinifera	CB972449		6,00E-67
316	G1938	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AP004672		3,00E-52
316	G1938	Medicago truncatula	BF642346		2,00E-47
316	G1938	Lactuca sativa	BQ874162		8,00E-45
316	G1938	Solanum tuberosum	BQ507674		3,00E-43
316	G1938	Glycine max	CA937850		1,00E-42
316	G1938	Zea mays	AX540653		5,00E-42
316	G1938	Beta vulgaris	BQ588349		4,00E-33
316	G1938	Gossypium arboreum	BG445379		7,00E-33
316	G1938	Gossypium hirsutum	gi5731257		3,20E-32
316	G1938	Oryza sativa	gi2580440		2,00E-29
316	G1938	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20975251		2,60E-29
316	G1938	Sophora flavescens	gi21624283		2,20E-05
316	G1938	Pueraria montana var. lobata	gi21624275		0,0003
316	G1938	Bothriochloa odorata	gi13649873		0,00045

538/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
316	G1938	Capillipedium parviflorum	gi13649864		0,00058
316	G1938	binaria vulgaris	gi29788713		0,00059
316	G1938	Antirrhinum cornutum	gi31296478		0,0013
316	G1938	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	gi12061239		0,0016
318	G1945	Brassica rapa subesp. pekinensis	BG543096		2,00E-85
318	G1945	Pisum sativum	CD860359		9,00E-69
318	G1945	Brassica oleracea	BH480897		1,00E-66
318	G1945	Glycine max	CD397129		4,00E-66
318	G1945	Medicago truncatula	BG647027		4,00E-66
318	G1945	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01000383		7,00E-56
318	G1945	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AP005755		9,00E-56
318	G1945	Helianthus annuus	BU023570		3,00E-52
318	G1945	Zea mays	BZ412041		7,00E-51
318	G1945	Oryza sativa	AP004020		2,00E-48
318	G1945	Oryza sativa (grupo do cultivar	gi32489626		1,60E-47

539/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		japonica)
318	G1945	Antirrhinum majus	gi4165183		1,20E-21
318	G1945	Pisum sativum	gi2213534		2,20E-14
318	G1945	Helianthus hirsutus	gi27526446		0,091
318	G1945	Helianthus tuberosus	gi27526452		0,12
318	G1945	Helianthus niveus	gi27526450		0,12
318	G1945	Helianthus ciliaris	gi14588999		0,2
318	G1945	Helianthus praecox	gi18073228		0,25
318	G1945	Helianthus debilis	gi27526440		0,46
318	G1945	Lycopersicon esculentum	gi1345538		0,46
320	G1957	Brassica oleracea	BZ468915		1,00E-101
320	G1957	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01011764		1,00E-55
320	G1957	Oryza sativa	AX654655		2,00E-55
320	G1957	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK106367		4,00E-55
320	G1957	Lactuca sativa	BU005803		1,00E-52
320	G1957	Lycopersicon esculentum	BI934637		4,00E-50
320	G1957	Glycine max	AW760132		1,00E-49

540/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
320	G1957	Zea mays	CC648948		4,00E-48
320	G1957	Solanum tuberosum	BQ119486		2,00E-45
320	G1957	Prunus dulcis	BU645464		3,00E-39
320	G1957	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi21426118		1,40E-55
320	G1957	Marchantia polymorpha	gi25272004		1,30E-35
320	G1957	Oryza sativa	gi19352051		2,40E-10
320	G1957	Pisum sativum	gi22335711		3,90E-08
320	G1957	Eragrostis tef	gi17906977		1,10E-07
320	G1957	Mangifera indica	gi31747324		1,60E-07
320	G1957	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi1730475		3,10E-07
320	G1957	Phaseolus vulgaris	gi1046278		3,10E-07
320	G1957	Prunus persica	gi27450533		3,30E-07
320	G1957	Daucus carota	gi5578746		1,20E-06
321	G1968	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER38154_1	1090
321	G1968	Glycine max	uCgmflminsoy034g 08b1	1091
321	G1968	Oryza sativa	OSC102229,C1,p 13,fg	1092
321	G1968	Oryza sativa	OSC27802,C1,p1 ,fg	1093
321	G1968	Lycopersicon	SGN-UNIGENE-	2043

541/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		esculentum	SINGLET-336915
322	G1968	Brassica oleracea	BH950957		9,00E-85
322	G1968	Petunia x hybrida	AB003672		2,00E-69
322	G1968	Limnanthes alba	BV007314		7,00E-32
322	G1968	Medicago truncatula	CB892199		2,00E-18
322	G1968	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01000555		7,00E-16
322	G1968	Oryza sativa	AP003840		1,00E-15
322	G1968	Triticum aestivum	CA596598		1,00E-14
322	G1968	Solanum tuberosum	BG096505		3,00E-14
322	G1968	Sorghum bicolor	BZ628830		2,00E-12
322	G1968	Zea mays	CC642714		2,00E-12
322	G1968	Petunia x hybrida	gi1786146		9,60E-58
322	G1968	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi22775640		2,30E-19
322	G1968	Pisum sativum	gi2129892		3,00E-09
322	G1968	Glycine max	gi1763063		5,80E-09
322	G1968	Medicago sativa	gi7228329		1,50E-08
322	G1968	Brassica rapa	gi2058504		1,60E-07
322	G1968	Oryza sativa	gi15623826		1,40E-06

542/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
322	G1968	Datisca glomerata	gi4666360		2,40E-05
322	G1968	Triticum aestivum	gi485814		9,80E-05
322	G1968	Nicotiana tabacum	gi2981169		0,012
323	G1983	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER30038_1	1094
323	G1983	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER30038_2	1095
323	G1983	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER10519_1	1096
323	G1983	Oryza sativa	Os_S120617	1595
323	G1983	Oryza sativa	Os_S16654	1596
323	G1983	Oryza sativa	Os_S 44308	1597
323	G1983	Oryza sativa	Os_S71743	1598
323	G1983	Oryza sativa	Os_S75089	1599
323	G1983	Oryza sativa	Os_S77891	1600
323	G1983	Zea mays	Zm_S11326674	1807
323	G1983	Zea mays	Zm_S11446637	1808
323	G1983	Zea mays	Zm_S11525047	1809
323	G1983	Triticum aestivum	Ta_S119681	1885
323	G1983	Triticum aestivum	Ta_S137934	1886
323	G1983	Triticum aestivum	Ta_S142014	1887
323	G1983	Triticum aestivum	Ta_S142165	1888
323	G1983	Triticum aestivum	Ta_S143760	1889
323	G1983	Triticum	Ta_S147217	1890

543/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		aestivum
323	G1983	Triticum aestivum	Ta_S147350	1891
323	G1983	Triticum aestivum	Ta_S383385	1892
323	G1983	Triticum aestivum	Ta_S412629	1893
323	G1983	Triticum aestivum	Ta_S66264	1894
323	G1983	Triticum aestivum	Ta_S75983	1895
323	G1983	Triticum aestivum	Ta_S78150	1896
323	G1983	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-21519	2044
324	G1983	Brassica oleracea	BZ436393		1,00E-120
324	G1983	Brassica napus	CD837762		1,00E-113
324	G1983	Lactuca sativa	BQ850782		8,00E-64
324	G1983	Solanum tuberosum	BG599598		5,00E-61
324	G1983	Populus tremula x Populus tremuloides	BU866147		2,00E-60
324	G1983	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01006041		5,00E-58
324	G1983	Oryza sativa	AP002746		2,00E-56
324	G1983	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK106392		2,00E-56

544/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
324	G1983	Glycine max	AW568218		2,00E-56
324	G1983	Medicago truncatula	AC144766		3,00E-54
324	G1983	Oryza sativa	gi9988428		2,20E-55
324	G1983	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi28273376		1,40E-51
324	G1983	Brassica oleracea	gi15054380		0,00024
324	G1983	Glycine max	gi18736		0,021
324	G1983	Pinus pinaster	gi18129298		0,49
324	G1983	Atropa belladonna	gi14329820		0,58
324	G1983	Pisum sativum	gi31580860		0,58
324	G1983	Pyrus communis	gi559557		0,78
324	G1983	Zea mays	gi4321762		0,81
324	G1983	Gossypioides kirkii	gi29836513		0,84
325	G1985	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER65388_1	1097
326	G1985	Medicago truncatula	BE124794		3,00E-13
326	G1985	Lotus japonicus	AP006103		5,00E-12
326	G1985	Lotus corniculatus var. japonicus	CB826842		3,00E-11
326	G1985	Brassica oleracea	BH732988		3,00E-11
326	G1985	Brassica rapa subesp. pekinensis	BZ614339		5,00E-10

545/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
326	G1985	Petunia x hybrida	AB035093		1,00E-09
326	G1985	Glycine max	AI973860		1,00E-09
326	G1985	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01001411		3,00E-09
326	G1985	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AP005869		3,00E-09
326	G1985	Zea mays	CC652748		4,00E-09
326	G1985	Petunia x hybrida	gi14275902		1,60E-15
326	G1985	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32489630		6,50E-13
326	G1985	Zea ramosa	gi18674684		2,90E-11
326	G1985	Oryza sativa	gi15528588		2,70E-05
326	G1985	Sorghum bicolor	gi18390109		0,00088
326	G1985	Brassica rapa	gi2058504		0,001
326	G1985	Pisum sativum	gi2129892		0,0076
326	G1985	Datisca glomerata	gi4666360		0,051
326	G1985	Nicotiana tabacum	gi2981169		0,053
326	G1985	Medicago sativa	gi7228329		0,07
327	G1988	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER75453_1	1098
327	G1988	Glycine max	GLYMA-28NOV01-	1099

546/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
			CLUSTER75453_2
327	G1988	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER153439_ 2	1100
327	G1988	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER10890_1	1101
327	G1988	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER10890_3	1102
327	G1988	Zea mays	ZEAMA-08NOV01CLUSTER201962_ 1	1103
327	G1988	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER3040_3	1104
327	G1988	Oryza sativa	Os_S91481	1601
327	G1988	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-5090	2045
328	G1988	Brassica oleracea	BH478747		5,00E-23
328	G1988	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	BU873581		7,00E-22
328	G1988	Citrus unshiu	C95300		2,00E-18
328	G1988	Lycopersicon esculentum	AW034552		2,00E-18
328	G1988	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01000340		1,00E-17
328	G1988	Beta vulgaris	BQ594583		1,00E-16
328	G1988	Zea mays	CC655765		2,00E-15
328	G1988	Glycine max	BI469275		8,00E-15
328	G1988	Prunus persica	BU046688		7,00E-14

547/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
328	G1988	Vitis vinifera	CD719941		2,00E-13
328	G1988	Malus x domestica	gi4091806		2,60E-07
328	G1988	Brassica napus	gi30984027		1,10E-06
328	G1988	Brassica nigra	gi22854920		1,10E-06
328	G1988	Raphanus sativus	gi3341723		2,70E-06
328	G1988	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32488104		4,80E-06
328	G1988	Ipomoea nil	gi10946337		5,10E-06
328	G1988	Oryza sativa	gi11094211		2,20E-05
328	G1988	Hordeum vulgare	gi21667475		4,50E-05
328	G1988	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi21655168		0,00018
328	G1988	Pinus radiata	gi4557093		0,0016
330	G1990	Brassica oleracea	BH009262		2,00E-99
330	G1990	Petunia x hybrida	AB000452		9,00E-44
330	G1990	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	BU879483		1,00E-42
330	G1990	Lotus japonicus	AP004479		4,00E-39
330	G1990	Medicago truncatula	AC126007		7,00E-35
330	G1990	Oryza sativa	AP003989		2,00E-32

548/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
330	G1990	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01004471		2,00E-32
330	G1990	Ipomoea nil	BJ573446		6,00E-32
330	G1990	Pisum sativum	PSZINCFIN		1,00E-31
330	G1990	Populus tremula x Populus tremuloides	BU887507		3,00E-31
330	G1990	Pisum sativum	gi2129892		3,90E-42
330	G1990	Petunia x hybrida	gi100396		1,30E-40
330	G1990	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32480087		1,40E-23
330	G1990	Oryza sativa	gi15623820		1,10E-18
330	G1990	Triticum aestivum	gi485814		2,30E-18
330	G1990	Brassica rapa	gi2058506		2,50E-15
330	G1990	Glycine max	gi1763063		3,30E-14
330	G1990	Datisca glomerata	gi4666360		1,80E-08
330	G1990	Medicago sativa	gi7228329		2,20E-06
330	G1990	Nicotiana tabacum	gi2981169		1,40E-05
332	G1993	Lotus japonicus	AP006103		7,00E-12
332	G1993	Medicago truncatula	CF069502		1,00E-11
332	G1993	Lotus	CB826842		3,00E-11

549/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		corniculatus var. japonicus
332	G1993	Petunia x hybrida	AB035093		6,00E-10
332	G1993	Brassica oleracea	BH732988		6,00E-10
332	G1993	Glycine max	AI973860		1,00E-09
332	G1993	Brassica rapa subesp. pekinensis	BZ614339		7,00E-09
332	G1993	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01001411		3,00E-08
332	G1993	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AP005869		3,00E-08
332	G1993	Zea mays	BZ735433		5,00E-08
332	G1993	Petunia x hybrida	gi14275902		4,30E-15
332	G1993	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi27261062		8,20E-13
332	G1993	Zea ramosa	gi18674684		6,00E-11
332	G1993	Oryza sativa	gi15528588		3,50E-08
332	G1993	Sorghum bicolor	gi18390109		8,80E-06
332	G1993	Brassica rapa	gi2058504		0,0056
332	G1993	Medicago sativa	gi7228329		0,084
332	G1993	Datisca glomerata	gi4666360		0,12

550/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
332	G1993	Nicotiana tabacum	gi2981169		0,14
332	G1993	Pisum sativum	gi2129892		0,38
333	G1995	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER166362_ 1	753
333	G1995	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER180202_ 1	754
333	G1995	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER726571_ 1	755
333	G1995	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER74662_1	756
333	G1995	Glycine max	uCgmflminsoy032f 06b1	757
333	G1995	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER200967_ 1	759
333	G1995	Oryza sativa	OSC100895,C1,p 14,fg	760
333	G1995	Oryza sativa	OSC23411,C1,p1 ,fg	761
333	G1995	Oryza sativa	OSC2409,C1,p2, fg	762
333	G1995	Oryza sativa	OSC25680,C1,p1 ,fg	763
333	G1995	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER436044_ 1	764
333	G1995	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER518126_ 1	765

551/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
333	G1995	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 54039	1959
333	G1995	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 54252	1960
333	G1995	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-392715	1961
334	G1995	Brassica oleracea	BZ475765		1,00E-68
334	G1995	Lycopersicon esculentum	BG123251		3,00E-30
334	G1995	Vitis vinifera	CD716644		1,00E-29
334	G1995	Gossypium arboreum	BF272143		2,00E-27
334	G1995	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AP005538		4,00E-24
334	G1995	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01009505		9,00E-23
334	G1995	Oryza sativa	AC105732		1,00E-18
334	G1995	Zea mays	BH875187		2,00E-18
334	G1995	Hordeum vulgare	BF616974		3,00E-18
334	G1995	Sorghum bicolor	BE360413		4,00E-17
334	G1995	Sorghum bicolor	gi18390109		4,30E-20
334	G1995	Oryza sativa	gi15528588		5,80E-08
334	G1995	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32482926		1,90E-07

552/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
334	G1995	Petunia x hybrida	gi2346976		1,30E-05
334	G1995	Glycine max	gi1763063		0,0043
334	G1995	Medicago sativa	gi7228329		0,007
334	G1995	Zea ramosa	gi18674684		0,0093
334	G1995	Datisca glomerata	gi4666360		0,082
334	G1995	Brassica rapa	gi2058506		0,098
334	G1995	Triticum aestivum	gi485814		0,24
336	G1998	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK071630		3,00E-53
336	G1998	Oryza sativa	AB001888		3,00E-53
336	G1998	Triticum aestivum	BJ209915		1,00E-30
336	G1998	Hordeum vulgare	BE558327		4,00E-30
336	G1998	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01003074		2,00E-29
336	G1998	Zea mays	BZ985999		4,00E-29
336	G1998	Oryza minuta	CB210857		1,00E-28
336	G1998	Lactuca sativa	BU009733		3,00E-28
336	G1998	Medicago truncatula	BG644908		1,00E-27
336	G1998	Solanum tuberosum	BQ121038		5,00E-27
336	G1998	Oryza sativa	gi3618320		9,60E-58
336	G1998	Brassica nigra	gi22854986		1,70E-25

553/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
336	G1998	Raphanus sativus	gi3341723		1,00E-23
336	G1998	Ipomoea nil	gi10946337		1,00E-23
336	G1998	Malus x domestica	gi4091806		1,20E-22
336	G1998	Brassica napus	gi2895184		2,80E-22
336	G1998	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi23589949		1,20E-21
336	G1998	Hordeum vulgare	gi21667475		1,80E-21
336	G1998	Pinus radiata	gi4557093		2,50E-20
336	G1998	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi21655154		1,60E-18
338	G1999	Medicago truncatula	BE316747		3,00E-22
338	G1999	Lactuca sativa	BQ995915		1,00E-20
338	G1999	Lycopersicon esculentum	AI772841		5,00E-20
338	G1999	Brassica oleracea	BH927868		9,00E-20
338	G1999	Mesembryanthem um crystallinum	CA840421		2,00E-19
338	G1999	Brassica napus	A50832		2,00E-18
338	G1999	Beta vulgaris	BQ489587		1,00E-17
338	G1999	Eschscholzia californica	CD477071		2,00E-16
338	G1999	Glycine max	CD401749		1,00E-15
338	G1999	Ipomoea nil	BJ554943		3,00E-15

554/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
338	G1999	Oryza sativa	gi13702811		1,10E-27
338	G1999	Malus x domestica	gi4091806		2,10E-20
338	G1999	Raphanus sativus	gi3341723		4,80E-19
338	G1999	Brassica nigra	gi22854916		8,80E-18
338	G1999	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi23589949		1,30E-17
338	G1999	Brassica napus	gi2895184		1,30E-17
338	G1999	Hordeum vulgare	gi21667471		2,70E-17
338	G1999	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi21655168		5,00E-17
338	G1999	Pinus radiata	gi4557093		6,00E-17
338	G1999	Ipomoea nil	gi10946337		2,80E-16
340	G2035	Medicago truncatula	AC140035		1,00E-115
340	G2035	Brassica oleracea	BZ428219		1,00E-106
340	G2035	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK100495		1,00E-102
340	G2035	Zea mays	AX660947		1,00E-100
340	G2035	Vitis vinifera	CB979115		5,00E-96
340	G2035	Oryza sativa	AC084405		9,00E-95
340	G2035	Glycine max	AW186423		7,00E-92
340	G2035	Oryza sativa (grupo do	AAAA01010916		1,00E-89

555/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
		cultivar indica)
340	G2035	Lycopersicon esculentum	BF113841		4,00E-82
340	G2035	Lactuca sativa	BQ865775		3,00E-81
340	G2035	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi24796797		4,60E-103
340	G2035	Oryza sativa	gi14140292		3,30E-09
340	G2035	Populus tremula x Populus tremuloides	gi9955730		4,10E-05
340	G2035	Nicotiana paniculata	gi5834502		5,20E-05
340	G2035	Solanum tuberosum	gi2225999		0,00011
340	G2035	Samanea saman	gi5081693		0,00029
340	G2035	Chlamydomonas reinhardtii	gi30025990		0,0011
340	G2035	Vicia faba	gi2293112		0,0045
340	G2035	Triticum aestivum	gi18616499		0,013
340	G2035	Brassica napus	gi22003730		0,022
341	G2041	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER244491_ 1	1105
341	G2041	Glycine max	LIB4280-051- Q1-K1-E4	1106
341	G2041	Oryza sativa	rsicem_7360,y1 ,abd	1107
341	G2041	Zea mays	Zm_S11428605	1810

556/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
341	G2041	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 47127	2046
341	G2041	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-389924	2047
342	G2041	Glycine max	AX196296		1,0e-999
342	G2041	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01023044		1,00E-161
342	G2041	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AP004333		1,00E-161
342	G2041	Oryza sativa	AC107085		8,00E-90
342	G2041	Lotus corniculatus var. japonicus	AP006426		7,00E-89
342	G2041	Medicago truncatula	BZ286591		9,00E-89
342	G2041	Helianthus annuus	CD853758		2,00E-88
342	G2041	Lactuca sativa	BQ853515		6,00E-87
342	G2041	Capsicum annuum	BM067036		3,00E-82
342	G2041	Lycopersicon esculentum	BI925244		8,00E-79
342	G2041	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi33146888		1,50E-152
342	G2041	Oryza sativa	gi14140291		5,60E-34
342	G2041	Zea mays	gi18463957		1,50E-19
342	G2041	Hordeum vulgare	gi23193481		4,40E-08

557/1027

SEQ ID No: de Arabidopsis Sequência Utilizada para Descobrir Ortólogos	GID No	Espécies das Quais o Ortólogo é Derivado	Identificador de Sequência ou Número de Acesso	SEQ ID No: da Sequência Ortóloga	Menor Soma da Probabilidade para o Ortólogo, Quando Conhecida
342	G2041	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi23193479		1,40E-07
342	G2041	Triticum monococcum	gi23193487		2,60E-07
342	G2041	Brassica napus	gi4106378		0,12
342	G2041	Medicago sativa	gi1279563		1
342	G2041	Nicotiana tabacum	gi8096269		1
342	G2041	Triticum aestivum	gi32400814		1
343	G2051	Medicago truncatula	Mtr_S5387033	1705
343	G2051	Hordeum vulgare	Hv_S171660	1740
344	G2051	Brassica oleracea	BH456374		6,00E-78
344	G2051	Petunia x hybrida	AF509874		4,00E-69
344	G2051	Lycopersicon esculentum	AW222093		2,00E-57
344	G2051	Oryza sativa	AX654515		1,00E-51
344	G2051	Medicago truncatula	BQ165266		7,00E-51
344	G2051	Sorghum bicolor	BG933492		8,00E-50
344	G2051	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK099540		5,00E-43

558/1027

344	G2051	Hordeum vulgare subesp. spontaneum	BJ481205		5,00E-42
344	G2051	Hordeum vulgare	BQ469035		5,00E-42
344	G2051	Hordeum vulgare subesp. vulgare	BU967516		5,00E-42
344	G2051	Petunia x hybrida	gi21105751		9,50E-70
344	G2051	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi19225018		3,40E-59
344	G2051	Oryza sativa	gi6730946		1,20E-45
344	G2051	Brassica napus	gi31322582		3,50E-41
344	G2051	Lycopersicon esculentum	gi6175246		8,40E-40
344	G2051	Phaseolus vulgaris	gi15148914		1,10E-39
344	G2051	Solanum tuberosum	gi14485513		3,30E-38
344	G2051	Medicago truncatula	gi7716952		3,30E-38

559/1027

344	G2051	Glycine max	gi22597158		8,70E-38
344	G2051	Triticum sp.	gi4218537		8,70E-38
345	G2060	Oryza sativa	Os_S109370	1602
345	G2060	Medicago truncatula	Mtr_S5408429	1706
345	G2060	Triticum aestivum	Ta_S317703	1897
346	G2060	Oryza sativa	AX653450		4,00E-49
346	G2060	Brassica oleracea	BH456149		7,00E-48
346	G2060	Lycopersicon esculentum	BI422854		1,00E-39
346	G2060	Nicotiana tabacum	AY220477		1,00E-36
346	G2060	Citrus sinensis	BQ625082		2,00E-35
346	G2060	Lactuca sativa	BQ870137		3,00E-35
346	G2060	Hordeum vulgare	BM370908		9,00E-35
346	G2060	Medicago truncatula	CB893379		2,00E-34
346	G2060	Glycine max	CA782643		8,00E-34
346	G2060	Cryptomeria japonica	AU083645		2,00E-33
346	G2060	Oryza sativa	gi11320830		2,60E-40

560/1027

346	G2060	Nicotiana tabacum	gi30013667		5,30E-38
346	G2060	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20160973		2,10E-27
346	G2060	Petroselinum crispum	gi11493822		4,50E-21
346	G2060	Avena fatua	gi1159879		3,00E-19
346	G2060	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi23305051		2,60E-17
346	G2060	Pimpinella brachycarpa	gi3420906		2,60E-16
346	G2060	Avena sativa	gi4894965		7,10E-16
346	G2060	Ipomoea batatas	gi1076685		1,20E-15
346	G2060	Solanum tuberosum	gi24745606		2,20E-15
348	G2063	Brassica oleracea	BH923036		3,00E-45
348	G2063	Medicago truncatula	AC139746		1,00E-18
348	G2063	Lotus corniculatus	AP006395		2,00E-18

561/1027

	var. japoni cus
348	G2063	Gossypium arboreum	BQ403135		2,00E-17
348	G2063	Oryza sativa	AP004093		4,00E-17
348	G2063	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AP004863		4,00E-17
348	G2063	Lotus japonicus	AP006142		5,00E-16
348	G2063	Sorghum bicolor	BZ627051		8,00E-16
348	G2063	Zea mays	CC690653		5,00E-15
348	G2063	Brassica napus	CD813986		1,00E-14
348	G2063	Oryza sativa	gi15290141		1,90E-17
348	G2063	Antirrhinum majus	gi264223		5,80E-17
348	G2063	Picea abies	gi25307922		2,00E-15
348	G2063	Gossypium hirsutum	gi19743774		3,20E-15
348	G2063	Malus x domestica	gi16973298		5,30E-15
348	G2063	Phalaenopsis equestris	gi18650789		1,10E-14
348	G2063	Oryza sativa (grupo do	gi33090203		1,40E-14

562/1027

		cultivar japonica)
348	G2063	Petunia x hybrida	gi17827467		1,80E-14
348	G2063	Nicotiana tabacum	gi3913007		1,80E-14
348	G2063	Cucumis sativus	gi13810204		2,30E-14
350	G2070	Brassica oleracea	BH598265		1,00E-44
350	G2070	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	BU870843		2,00E-14
350	G2070	Lycopersicon esculentum	BI922075		1,00E-12
350	G2070	Brassica napus	CD833815		1,00E-12
350	G2070	Glycine max	BM269595		6,00E-11
350	G2070	Ipomoea nil	BJ572296		2,00E-10
350	G2070	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01003396		6,00E-10
350	G2070	Prunus armeniaca	CB821535		1,00E-09
350	G2070	Nicotiana	AY045572		1,00E-09

563/1027

		tabacum
350	G2070	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AP005785		1,00E-09
350	G2070	Nicotiana tabacum	gi16580134		3,00E-12
350	G2070	Phaseolus vulgaris	gi13430400		1,00E-11
350	G2070	Phaseolus acutifolius	gi12829956		2,70E-11
350	G2070	Petroselinum crispum	gi9650826		1,00E-09
350	G2070	Hordeum vulgare	gi1869928		1,40E-09
350	G2070	Antirrhinum majus	gi2244742		3,60E-09
350	G2070	Capsicum chinense	gi4457221		9,40E-09
350	G2070	Glycine max	gi1905785		1,00E-08
350	G2070	Oryza sativa	gi18698991		1,10E-08
350	G2070	Zea mays	gi1060935		1,20E-08
352	G2071	Vitis vinifera	VVI237992		4,00E-87
352	G2071	Phaseolus vulgaris	AF369792		3,00E-77

564/1027

352	G2071	Brassica oleracea	BZ007832		4,00E-75
352	G2071	Nicotiana tabacum	AB063648		2,00E-74
352	G2071	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK072062		9,00E-65
352	G2071	Hordeum vulgare subesp. vulgare	AY150676		3,00E-58
352	G2071	Oryza sativa	AB023288		1,00E-52
352	G2071	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01010740		4,00E-47
352	G2071	Helianthus annuus	AF001453		8,00E-40
352	G2071	Triticum aestivum	AF519804		6,00E-38
352	G2071	Vitis vinifera	gi7406677		2,30E-87
352	G2071	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi27469352		1,40E-64
352	G2071	Nicotiana	gi14571808		1,50E-58

565/1027

		tabacum
352	G2071	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi33087069		3,20E-53
352	G2071	Oryza sativa	gi5821255		3,20E-53
352	G2071	Phaseolus vulgaris	gi13775111		1,80E-46
352	G2071	Triticum aestivum	gi21693585		2,50E-31
352	G2071	Helianthus annuus	gi2228771		1,10E-30
352	G2071	Zea mays	gi15422222		7,60E-08
352	G2071	Populus x generosa	gi13435335		2,50E-07
354	G2084	Brassica oleracea	BH426816		2,00E-77
354	G2084	Triticum aestivum	CD937226		3,00E-41
354	G2084	Poncirus trifoliata	CD574564		8,00E-41
354	G2084	Vitis vinifera	CB981408		1,00E-40
354	G2084	Oryza sativa	AP003314		5,00E-40
354	G2084	Oryza sativa (grupo do cultivar	AAAA01013746		5,00E-40

566/1027

		indica)
354	G2084	Zea mays	CD434392		9,00E-40
354	G2084	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK066561		1,00E-39
354	G2084	Sorghum bicolor	BE356071		1,00E-39
354	G2084	Brassica napus	CD837858		3,00E-37
354	G2084	Oryza sativa	gi11034559		3,20E-40
354	G2084	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi21104687		3,20E-40
354	G2084	Pinus pinaster	gi18129286		0,65
354	G2084	Pinus thunbergii	gi1262717		0,94
354	G2084	Chloroplast Pinus thunbergii	gi7484547		0,94
354	G2084	Glycine max	gi21439778		0,98
354	G2084	Nicotiana tabacum	gi478508		1
354	G2084	Chloroplast Nicotiana sylvestris	gi544746		1

567/1027

354	G2084	Chloroplast Nicotiana tabacum	gi544747		1
354	G2084	Ipomoea batatas	gi100467		1
355	G2085	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER62196_1	1108
355	G2085	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER65589_1	1109
355	G2085	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER65589_2	1110
355	G2085	Glycine max	jC- gmXLIB3563P057 de07d2	1111
355	G2085	Oryza sativa	OSC102337,C1,p 1,fg	1112
355	G2085	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER841917_ 1	1113
355	G2085	Medicago truncatula	Mtr_S10820675	1707
356	G2085	Glycine max	BI498544		1,00E-58
356	G2085	Medicago truncatula	CA991109		1,00E-54
356	G2085	Vitis vinifera	BM437375		1,00E-46
356	G2085	Triticum	BQ295376		1,00E-44

568/1027

		aestivum
356	G2085	Triticum monococcum	BF199732		9,00E-44
356	G2085	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK068931		2,00E-43
356	G2085	Zea mays	AY103800		3,00E-43
356	G2085	Brassica oleracea	BH723453		3,00E-40
356	G2085	Hordeum vulgare	BU993000		5,00E-39
356	G2085	Ipomoea nil	BJ572579		1,00E-38
356	G2085	Oryza sativa	gi13174240		3,90E-42
356	G2085	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi24960749		1,80E-07
356	G2085	Brassica rapa subesp. pekinensis	gi28193631		2,90E-06
356	G2085	Nicotiana tabacum	gi12711287		0,00075
356	G2085	Hordeum vulgare subesp.	gi21655162		0,0033

569/1027

		vulgare
356	G2085	Nicotiana pl umbagini foli a	gi1076609		0,019
356	G2085	Brassica nigra	gi22854920		0,02
356	G2085	Brassica napus	gi30984027		0,091
356	G2085	Raphanus sativus	gi3341723		0,1
356	G2085	Pisum sativum	gi27530710		0,13
358	G2106	Citrus sinensis	BQ625052		8,00E-92
358	G2106	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK106769		3,00E-88
358	G2106	Zea mays	AY103852		3,00E-74
358	G2106	Brassica napus	CD832004		6,00E-74
358	G2106	Lycopersicon esculentum	AW030921		3,00E-70
358	G2106	Physcomltrella patens subesp. patens	BJ178045		5,00E-68
358	G2106	Glycine max	CA783156		5,00E-67
358	G2106	Oryza sativa	AX555220		6,00E-66
358	G2106	Nuphar advena	CD475882		3,00E-65

570/1027

358	G2106	Lactuca sativa	BQ864461		7,00E-58
358	G2106	Brassica napus	gi21069053		5,10E-65
358	G2106	Oryza sativa	gi25898749		7,40E-64
358	G2106	Glycine max	gi25898747		7,40E-64
358	G2106	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20161013		2,00E-63
358	G2106	Zea mays	gi2652938		1,10E-62
358	G2106	Antirrhinum majus	gi28894443		1,90E-39
358	G2106	Malus x domestica	gi21717332		2,30E-35
358	G2106	Hordeum vulgare	gi18476518		2,40E-35
358	G2106	Picea abies	gi11181612		4,00E-34
358	G2106	Petunia x hybrida	gi5081555		7,20E-34
359	G2109	Oryza sativa	uC- osflM202145h04 b1	1114
359	G2109	Zea mays	LIB3066-034- Q1-K1-B12	1115
359	G2109	Oryza sativa	Os_S114273	1603
359	G2109	Oryza sativa	Os_S29604	1604

571/1027

359	G2109	Zea mays	Zm_S11374620	1811
359	G2109	Triticum aestivum	Ta_S302577	1898
360	G2109	Brassica napus	CD815586		1,00E-50
360	G2109	Beta vulgaris	BQ583447		5,00E-45
360	G2109	Ceratopteris richardii	BE643398		9,00E-33
360	G2109	Nicotiana tabacum	AY183721		2,00E-31
360	G2109	Physcomitrella patens	PPA419329		5,00E-28
360	G2109	Physcomitrella patens subesp. patens	AB067689		1,00E-22
360	G2109	Brassica oleracea	BH451078		6,00E-20
360	G2109	Zinnia elegans	AU287699		9,00E-17
360	G2109	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AC120888		1,00E-16
360	G2109	Oryza sativa	AC108870		1,00E-16
360	G2109	Nicotiana tabacum	gi27802107		1,40E-34
360	G2109	Physcomitrella patens	gi22474457		8,50E-32

572/1027

360	G2109	Physcomitrella patens subesp. patens	gi22090622		9,30E-29
360	G2109	Gerbera hybrid cv. 'Terra Regina'	gi29500904		6,10E-21
360	G2109	Triticum aestivum	gi30721847		1,50E-20
360	G2109	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	gi10835358		1,70E-20
360	G2109	Zea mays	gi29372764		3,60E-20
360	G2109	Triticum monococcum	gi30090030		4,00E-20
360	G2109	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi31712055		4,20E-20
360	G2109	Papaver nudicaule	gi3170464		9,70E-20
362	G2111	Glycine max	AW508033		3,00E-35
362	G2111	Brassica oleracea	BH455618		2,00E-32
362	G2111	Medicago truncatula	AC137602		2,00E-29

573/1027

362	G2111	Antirrhinum majus	AJ558896		9,00E-27
362	G2111	Gossypium arboreum	BE054256		4,00E-25
362	G2111	Gossypium hirsutum	BH023181		9,00E-24
362	G2111	Zea mays	CC654475		5,00E-23
362	G2111	Oryza sativa	AP002070		9,00E-22
362	G2111	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01000422		9,00E-22
362	G2111	Lotus japonicus	AP004625		2,00E-18
362	G2111	Oryza sativa	gi8096379		1,80E-23
362	G2111	Gerbera hybrid cv. 'Terra Regina'	gi29500904		7,70E-14
362	G2111	Nicotiana tabacum	gi4102113		1,30E-13
362	G2111	Brassica oleracea var. botrytis	gi23304676		1,60E-13
362	G2111	Lycopersicon esculentum	gi20219014		8,90E-13
362	G2111	Sinapis alba	gi1076477		1,10E-12

574/1027

362	G2111	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi21742221		1,80E-12
362	G2111	Lolium perenne	gi28630953		1,80E-12
362	G2111	Triticum monococcum	gi30090030		2,40E-12
362	G2111	Triticum aestivum	gi30721847		2,40E-12
364	G2129	Brassica napus	CD833815		8,00E-49
364	G2129	Brassica oleracea	BH972911		4,00E-38
364	G2129	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	BU870843		4,00E-26
364	G2129	Glycine max	BM269595		3,00E-22
364	G2129	Lycopersicon esculentum	BF051268		3,00E-21
364	G2129	Beta vulgaris	BQ582406		2,00E-11
364	G2129	Gossypium arboreum	BQ407558		4,00E-11
364	G2129	Medicago truncatula	BG648225		4,00E-10
364	G2129	Oryza sativa (grupo do	AK098869		1,00E-09

575/1027

		cultivar japonica)
364	G2129	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	CA759739		1,00E-09
364	G2129	Nicotiana tabacum	gi16580130		1,30E-11
364	G2129	Petroselinum crispum	gi9650828		2,70E-11
364	G2129	Capsicum chinense	gi24460973		4,40E-11
364	G2129	Phaseolus vulgaris	gi13430400		7,20E-11
364	G2129	Lycopersicon esculentum	gi5901747		7,20E-11
364	G2129	Phaseolus acutifolius	gi12829956		1,20E-10
364	G2129	Antirrhinum majus	gi2244742		1,20E-10
364	G2129	Zea mays	gi1352613		1,90E-10
364	G2129	Glycine max	gi22597162		3,10E-10
364	G2129	Sorghum bicolor	gi1076760		3,60E-10
365	G2142	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER10684_8	1116

576/1027

365	G2142	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER137024_ 1	1117
365	G2142	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER49853_1	1118
365	G2142	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER49853_4	1119
365	G2142	Glycine max	LIB3242-451- P1-J1-G8	1120
365	G2142	Glycine max	jC- gmXLIB3563P042 ag07d1	1121
365	G2142	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER54709_1	1122
365	G2142	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER8097_1	1123
365	G2142	Zea mays	700164501H1	1124
365	G2142	Glycine max	Gma_S4891278	1666
365	G2142	Medicago truncatula	Mtr_S5397469	1708
365	G2142	Zea mays	Zm_S11527973	1812
365	G2142	Triticum aestivum	Ta_S115402	1899
65	G2142	Triticum aestivum	Ta_S146851	1900
365	G2142	Triticum	Ta_S308126	1901

577/1027

		aestivum
365	G2142	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 48174	2048
365	G2142	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 50424	2049
365	G2142	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 56397	2050
365	G2142	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 56608	2051
366	G2142	Brassica napus	CD813318		8,00E-90
366	G2142	Medicago truncatula	BF650735		2,00E-59
366	G2142	Populus tremula x Populus tremuloides	BU837621		4,00E-59
366	G2142	Glycine max	BU080678		3,00E-58
366	G2142	Beta vulgaris	BQ594352		4,00E-54
366	G2142	Solanum tuberosum	BF186943		6,00E-53
366	G2142	Lycopersicon esculentum	AI490572		1,00E-52
366	G2142	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK101896		7,00E-48

578/1027

366	G2142	Stevia rebaudiana	BG524015		2,00E-44
366	G2142	Hordeum vulgare subesp. vulgare	BU989763		8,00E-42
366	G2142	Pennisetum glaucum	gi527655		3,10E-10
366	G2142	Sorghum bicolor	gi527665		3,90E-08
366	G2142	Phyllostachys acuta	gi527661		6,50E-08
366	G2142	Tripsacum australe	gi527663		1,80E-07
366	G2142	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32488806		3,20E-07
366	G2142	Oryza sativa	gi15451582		3,50E-07
366	G2142	Oryza rufipogon	gi2130061		6,40E-07
366	G2142	Oryza australiensis	gi1086526		1,40E-06
366	G2142	Oryza officinalis	gi1086534		2,90E-06
366	G2142	Oryza	gi1086530		3,80E-06

579/1027

		longistaminata
368	G2146	Brassica rapa subesp. pekinensis	BG543943		8,00E-48
368	G2146	Brassica oleracea	BH978369		2,00E-42
368	G2146	Lotus japonicus	BI418128		6,00E-29
368	G2146	Glycine max	CD398757		4,00E-28
368	G2146	Poncirus trifoliata	CD575942		2,00E-27
368	G2146	Gossypium arboreum	BE054359		8,00E-26
368	G2146	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK103709		1,00E-25
368	G2146	Oryza sativa	AF461424		1,00E-25
368	G2146	Ipomoea nil	BJ574783		7,00E-25
368	G2146	Populus tremula x Populus tremuloides	BU832777		3,00E-24
368	G2146	Oryza sativa (grupo do cultivar	gi24059889		2,90E-23

580/1027

		japonica)
368	G2146	Oryza sativa	gi5852091		0,015
368	G2146	Tulipa gesneriana	gi5923912		0,019
368	G2146	Petunia x hybrida	gi3127045		0,85
368	G2146	Gerbera hybrida	gi3650292		0,99
368	G2146	Oryza rufipogon	gi1086538		1
368	G2146	Sorghum bicolor	gi527667		1
370	G2184	Petunia x hybrida	AF509870		1,00E-113
370	G2184	Brassica napus	CD836672		4,00E-92
370	G2184	Lactuca sativa	BQ864249		3,00E-77
370	G2184	Solanum tuberosum	BG350410		9,00E-75
370	G2184	Populus tremula x Populus tremuloides	BU863110		2,00E-71
370	G2184	Brassica oleracea	BH526845		1,00E-65
370	G2184	Medicago truncatula	AW736414		1,00E-63

581/1027

370	G2184	Citrus sinensis	CB293271		3,00E-62
370	G2184	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK099237		2,00E-57
370	G2184	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	CB633792		2,00E-57
370	G2184	Petunia x hybrida	gi21105742		1,10E-106
370	G2184	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi27452910		7,00E-58
370	G2184	Medicago truncatula	gi7716952		4,60E-52
370	G2184	Oryza sativa	gi6730946		8,30E-47
370	G2184	Brassica napus	gi31322578		2,20E-39
370	G2184	Lycopersicon esculentum	gi6175246		3,60E-39
370	G2184	Phaseolus vulgaris	gi15148914		1,20E-38
370	G2184	Glycine max	gi22597158		3,30E-38
370	G2184	Triticum sp.	gi4218537		2,90E-37

582/1027

370	G2184	Triticum monococcum	gi6732160		2,90E-37
371	G2207	Oryza sativa	Os_S17837	1605
371	G2207	Oryza sativa	Os_S6232	1606
371	G2207	Glycine max	Gma_S5129383	1667
371	G2207	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 50991	2052
371	G2207	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-399437	2053
372	G2207	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK100046		1,00E-172
372	G2207	Oryza sativa	AX654056		1,00E-168
372	G2207	Lotus japonicus	LJA239041		1,00E-148
372	G2207	Pisum sativum	PSA493066		1,00E-130
372	G2207	Brassica oleracea	BZ078380		1,00E-123
372	G2207	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01002068		2,00E-76
372	G2207	Brassica nigra	AY061812		7,00E-71
372	G2207	Zea mays	CC644684		6,00E-70

583/1027

372	G2207	Gossypium arboreum	BF269998		4,00E-58
372	G2207	Lycopersicon esculentum	BI931640		7,00E-55
372	G2207	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20503001		1,00E-166
372	G2207	Lotus japonicus	gi6448579		3,90E-160
372	G2207	Pisum sativum	gi23504759		4,50E-124
372	G2207	Oryza sativa	gi7339715		1,00E-122
372	G2207	Chlamydomonas incerta	gi2190980		4,70E-06
372	G2207	Chlamydomonas reinhardtii	gi1928929		0,00049
372	G2207	Bromheadia finlaysoniana	gi2108256		0,55
372	G2207	Lycopersicon esculentum	gi100214		0,73
372	G2207	Nicotiana tabacum	gi322758		0,81
372	G2207	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi2407271		0,96

584/1027

374	G2213	Brassica oleracea	BH427528		2,00E-19
374	G2213	Gossypium hirsutum	AI726978		2,00E-18
374	G2213	Zea mays	AY106664		1,00E-16
374	G2213	Glycine max	BE821577		1,00E-15
374	G2213	Triticum monococcum	BQ802007		2,00E-15
374	G2213	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AP004258		7,00E-15
374	G2213	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01008029		7,00E-15
374	G2213	Oryza sativa	AP003933		7,00E-15
374	G2213	Chlamydomonas reinhardtii	BU648678		4,00E-12
374	G2213	Hordeum vulgare	BQ459689		2,00E-11
374	G2213	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20161719		3,80E-28
374	G2213	Oryza sativa	gi7339715		1,60E-08

585/1027

374	G2213	Chlamydomonas reinhardtii	gi1928929		6,90E-07
374	G2213	Chlamydomonas incerta	gi2190980		2,50E-06
374	G2213	Pisum sativum	gi23504757		9,10E-05
374	G2213	Lotus japonicus	gi6448579		0,00014
374	G2213	Cicer arietinum	gi6002283		0,26
374	G2213	Allium cepa	gi19979631		0,82
374	G2213	Brassica napus	gi2809204		0,82
376	G2226	Thellungiella halophila	BM985667		3,00E-71
376	G2226	Brassica napus	CD834580		9,00E-70
376	G2226	Glycine max	CA784214		2,00E-52
376	G2226	Gossypium arboreum	BF278307		4,00E-47
376	G2226	Gossypium hirsutum	AI727363		3,00E-46
376	G2226	Medicago truncatula	BF648350		7,00E-46
376	G2226	Lactuca sativa	BU010488		1,00E-37
376	G2226	Solanum tuberosum	BG599025		5,00E-37
376	G2226	Capsicum	CA525749		2,00E-36

586/1027

		annuum
376	G2226	Hevea brasiliensis	CB376421		2,00E-35
376	G2226	Thellungiella halophila	gi20340241		2,30E-69
376	G2226	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32488512		4,90E-12
376	G2226	Oryza sativa	gi6069662		2,70E-11
376	G2226	Cucumis melo	gi28558782		1,00E-08
376	G2226	Medicago sativa	gi23451086		1,20E-08
376	G2226	Glycine max	gi22597166		2,70E-08
376	G2226	Hordeum vulgare	gi2894379		5,80E-08
376	G2226	Pisum sativum	gi4240031		2,30E-07
376	G2226	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi20152976		2,60E-07
376	G2226	Zea mays	gi21645888		2,80E-07
378	G2227	Brassica oleracea	BZ520300		1,00E-123
378	G2227	Medicago truncatula	AC144609		2,00E-87

587/1027

378	G2227	Oryza sativa	AC079022		3,00E-81
378	G2227	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK067221		7,00E-69
378	G2227	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01002581		7,00E-69
378	G2227	Lycopersicon esculentum	AW035988		1,00E-67
378	G2227	Lactuca sativa	BQ858069		6,00E-67
378	G2227	Vitis aestivalis	CB288974		9,00E-66
378	G2227	Glycine max	BM188705		5,00E-62
378	G2227	Zea mays	CC429342		1,00E-60
378	G2227	Oryza sativa	gi14719329		1,20E-79
378	G2227	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi29893617		6,70E-63
378	G2227	Cicer arietinum	gi4651204		5,10E-21
378	G2227	Tulipa gesneriana	gi23386073		6,30E-19
378	G2227	Cucumis melo	gi28558782		8,40E-10

588/1027

378	G2227	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi20152976		1,40E-07
378	G2227	Thellungiella halophila	gi20340241		9,80E-07
378	G2227	Glycine max	gi22597166		3,70E-06
378	G2227	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi29164825		8,60E-06
378	G2227	Medicago sativa	gi23451086		1,70E-05
379	G2239	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER12957_1	1125
379	G2239	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER12957_2	1126
379	G2239	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER12957_5	1127
379	G2239	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER135837_ 1	1128
379	G2239	Glycine max	uC- gmflLIB3275P13 1g04a1	1129
379	G2239	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER139279	1130

589/1027

			1
379	G2239	Oryza sativa	OSC100308,C1,p 4,fg	1131
379	G2239	Oryza sativa	OSC101055,C1,p 3,fg	1132
379	G2239	Oryza sativa	OSC102053,C1,p 4,fg	1133
379	G2239	Oryza sativa	OSC20507,C1,p2 ,fg	1134
379	G2239	Zea mays	LIB4828-050- R1-N1-D2	1135
379	G2239	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER495748_ 1	1136
380	G2239	Brassica oleracea	BH582110		1,00E-120
380	G2239	Cucumis melo	AF499727		3,00E-73
380	G2239	Medicago truncatula	AC136503		4,00E-71
380	G2239	Poncirus trifoliata	CD576402		8,00E-57
380	G2239	Citrus sinensis	CB290516		1,00E-56
380	G2239	Oryza sativa (grupo do cultivar	AAAA01004423		4,00E-55

590/1027

		indica)
380	G2239	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AP005399		4,00E-55
380	G2239	Oryza sativa	AX653298		5,00E-51
380	G2239	Gossypium hirsutum	AI730749		6,00E-51
380	G2239	Capsicum annuum	BM063816		1,00E-49
380	G2239	Cucumis melo	gi28558782		3,30E-70
380	G2239	Oryza sativa	gi21740711		2,10E-38
380	G2239	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi24756877		4,00E-33
380	G2239	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi20152976		3,50E-21
380	G2239	Nicotiana tabacum	gi12003386		2,20E-20
380	G2239	Medicago sativa	gi23451086		2,20E-17
380	G2239	Zea mays	gi21645888		1,20E-16
380	G2239	Hordeum	gi2894379		3,20E-16

591/1027

		vulgare
380	G2239	Solanum tuberosum	gi24745601		4,70E-16
380	G2239	Thellungiella halophila	gi20340241		4,30E-10
382	G2251	Brassica rapa subesp. pekinensis	BG543052		2,00E-67
382	G2251	Populus tremula	BU893088		4,00E-48
382	G2251	Populus tremula x Populus tremuloides	BU894285		3,00E-47
382	G2251	Glycine max	BE440750		5,00E-45
382	G2251	Gossypium hirsutum	AI729600		2,00E-44
382	G2251	Lycopersicon esculentum	AW034559		8,00E-44
382	G2251	Capsicum annuum	CA847343		1,00E-43
382	G2251	Lactuca sativa	BQ849490		2,00E-43
382	G2251	Brassica oleracea	BZ013045		4,00E-43
382	G2251	Ipomoea nil	BJ572086		3,00E-42
382	G2251	Oryza sativa	gi32488512		3,50E-29

592/1027

		(grupo do cultivar japonica)
382	G2251	Oryza sativa	gi6069662		3,50E-18
382	G2251	Thellungiella halophila	gi20340241		6,20E-12
382	G2251	Medicago sativa	gi23451086		7,00E-12
382	G2251	Cucumis melo	gi28558782		3,00E-10
382	G2251	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi20152976		3,10E-10
382	G2251	Zea mays	gi21645888		3,70E-08
382	G2251	Glycine max	gi1076498		1,00E-07
382	G2251	Hordeum vulgare	gi2894379		8,20E-07
382	G2251	Nicotiana tabacum	gi12003386		9,40E-07
384	G2269	Brassica oleracea	BH433947		7,00E-72
384	G2269	Brassica napus	CD838796		1,00E-67
384	G2269	Gossypium hirsutum	AI727683		8,00E-60
384	G2269	Glycine max	CA939042		8,00E-60

593/1027

384	G2269	Gossypium arboreum	BG444995		1,00E-56
384	G2269	Zea mays	CC694850		2,00E-47
384	G2269	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AC109596		4,00E-47
384	G2269	Oryza sativa	AC108499		4,00E-47
384	G2269	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01000476		7,00E-45
384	G2269	Ipomoea nil	BJ568099		1,00E-42
384	G2269	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20160500		2,30E-44
384	G2269	Gossypium barbadense	gi30983938		3,00E-21
384	G2269	Oryza sativa	gi5091511		9,50E-16
384	G2269	Nicotiana tabacum	gi12003386		1,10E-12
384	G2269	Cucumis melo	gi28558782		3,20E-12
384	G2269	Hordeum vulgare	gi2894379		4,10E-12
384	G2269	Hordeum	gi20152976		6,00E-12

594/1027

		vulgare subesp. vulgare
384	G2269	Medicago sativa	gi23451086		2,00E-11
384	G2269	Zea mays	gi21645888		4,40E-09
384	G2269	Cicer arietinum	gi4651204		6,60E-09
386	G2298	Brassica oleracea	BH498020		2,00E-69
386	G2298	Beta vulgaris	BQ487577		9,00E-35
386	G2298	Populus tremula x Populus tremuloides	BU861348		2,00E-34
386	G2298	Lycopersicon esculentum	AI489478		1,00E-33
386	G2298	Glycine max	BE807652		1,00E-33
386	G2298	Lotus japonicus	AV424732		8,00E-33
386	G2298	Phaseolus vulgaris	BQ481785		1,00E-32
386	G2298	Solanum tuberosum	BI920063		1,00E-32
386	G2298	Populus balsamifera	CA826218		4,00E-32

595/1027

		subesp. trichocarpa x Populus deltoides
386	G2298	Brassica napus	CD819945		1,00E-30
386	G2298	Atriplex hortensis	gi8571476		1,20E-21
386	G2298	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi21742362		1,80E-21
386	G2298	Oryza sativa	gi14140155		6,40E-21
386	G2298	Zea mays	gi21908036		1,90E-19
386	G2298	Prunus armeniaca	gi3264767		2,30E-19
386	G2298	Lycopersicon esculentum	gi27436378		4,50E-18
386	G2298	Glycine max	gi31324058		4,50E-18
386	G2298	Stylosanthes hamata	gi4099914		1,70E-17
386	G2298	Nicotiana tabacum	gi10798644		1,10E-16
386	G2298	Triticum aestivum	gi15488459		1,70E-16
388	G2311	Brassica napus	CD822731		1,00E-57
388	G2311	Gossypium	BE053309		2,00E-51

596/1027

		arboreum
388	G2311	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	OSA495797		1,00E-47
388	G2311	Zea mays	AF461815		1,00E-45
388	G2311	Glycine max	BU761883		1,00E-44
388	G2311	Populus tremula x Populus tremuloides	BU827154		2,00E-42
388	G2311	Petroselinum crispum	PCU67132		1,00E-41
388	G2311	Medicago truncatula	AW329290		6,00E-41
388	G2311	Ipomoea nil	BJ554376		3,00E-39
388	G2311	Triticum aestivum	CA502640		5,00E-38
388	G2311	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20804653		4,00E-49
388	G2311	Zea mays	gi18463961		2,90E-46
388	G2311	Petroselinum crispum	gi2224897		2,00E-22
388	G2311	Fritillaria	gi15281594		8,70E-11

597/1027

		liliacea
388	G2311	Triticum aestivum	gi2980891		2,30E-09
388	G2311	Euphorbia esula	gi6752901		5,50E-09
388	G2311	Vicia faba	gi30420970		2,60E-08
388	G2311	Fritillaria agrestis	gi2641211		3,00E-08
388	G2311	Pisum sativum	gi4106696		7,10E-08
388	G2311	Lathyrus aphaca	gi21465093		7,30E-08
389	G2317	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER2162_3	1137
389	G2317	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER2162_4	1138
389	G2317	Oryza sativa	Os_S96262	1607
389	G2317	Glycine max	Gma_S4915353	1668
389	G2317	Medicago truncatula	Mtr_S5363423	1709
389	G2317	Hordeum vulgare	Hv_S60108	1741
389	G2317	Lycopersicon esculentum	Les_S5190181	1933
390	G2317	Medicago truncatula	BG453991		5,00E-51

598/1027

390	G2317	Zinnia elegans	AU292197		2,00E-42
390	G2317	Triticum aestivum	BT009406		1,00E-41
390	G2317	Solanum tuberosum	BM110307		1,00E-41
390	G2317	Oryza sativa	AX658868		3,00E-41
390	G2317	Glycine max	BM093706		6,00E-41
390	G2317	Lycopersicon esculentum	AI774224		1,00E-39
390	G2317	Hordeum vulgare subesp. Vulgare	BJ472642		7,00E-39
390	G2317	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK101209		4,00E-37
390	G2317	Sorghum bicolor	CD219576		7,00E-37
390	G2317	Phaseolus vulgaris	gi21213868		2,60E-36
390	G2317	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi21742243		5,50E-36
390	G2317	Oryza sativa	gi15528628		6,00E-23

599/1027

390	G2317	Hordeum vulgare	gi12406993		1,10E-07
390	G2317	Hevea brasiliensis	gi12005328		4,90E-07
390	G2317	Antirrhinum majus	gi18874263		1,80E-06
390	G2317	Malus xiaojinensis	gi28629811		3,80E-06
390	G2317	Glycine max	gi19911577		3,90E-06
390	G2317	Zea mays	gi20067661		1,00E-05
390	G2317	Lycopersicon esculentum	gi6688529		2,60E-05
391	G2319	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER33063_1	1139
391	G2319	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER33063_2	1140
391	G2319	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER33063_4	1141
391	G2319	Glycine max	jC- gmst024169f06b 1	1142
391	G2319	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-335798	2054
392	G2319	Lycopersicon esculentum	BI921951		7,00E-93
392	G2319	Triticum	BT008954		2,00E-71

600/1027

		aestivum
392	G2319	Gossypium arboreum	BQ403368		4,00E-71
392	G2319	Zea mays	AX756404		8,00E-70
392	G2319	Mesembryan them um crystallinum	CA840558		7,00E-69
392	G2319	Citrus sinensis	CB290239		2,00E-65
392	G2319	Populus tremula x Populus tremuloides	BU887003		1,00E-62
392	G2319	Glycine max	CD487127		2,00E-58
392	G2319	Hordeum vulgare subesp. vulgare	AV909036		1,00E-56
392	G2319	Medicago truncatula	BF005534		7,00E-55
392	G2319	Oryza sativa	gi15528628		2,70E-38
392	G2319	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi21742243		1,80E-25
392	G2319	Phaseolus	gi21213868		5,00E-25

601/1027

		vulgaris
392	G2319	Hordeum vulgare	gi12406993		8,80E-08
392	G2319	Hevea brasiliensis	gi12005328		2,50E-06
392	G2319	Glycine max	gi19911577		3,30E-06
392	G2319	Lycopersicon esculentum	gi6688529		5,20E-06
392	G2319	Solanum tuberosum	gi7705206		9,00E-06
392	G2319	Zea mays	gi20067661		1,90E-05
392	G2319	Malus xiaojinensis	gi28629811		2,00E-05
393	G2334	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 57794	2055
394	G2334	Brassica oleracea	BZ428330		5,00E-61
394	G2334	Medicago truncatula	AW981431		1,00E-30
394	G2334	Glycine max	BI786182		3,00E-30
394	G2334	Solanum tuberosum	BE922572		7,00E-30
394	G2334	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK110934		7,00E-30

602/1027

394	G2334	Amborella trichopoda	CD483211		3,00E-29
394	G2334	Lycopersicon esculentum	AW650563		4,00E-29
394	G2334	Oryza sativa	AF201895		6,00E-29
394	G2334	Hordeum vulgare subesp. vulgare	CA029723		6,00E-29
394	G2334	Zea mays	CA828910		2,00E-28
394	G2334	Oryza sativa	gi6573149		6,20E-37
394	G2334	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi24413958		1,80E-35
394	G2334	Sorghum bicolor	gi18390099		6,00E-33
394	G2334	Solanum bulbocastanum	gi32470646		5,90E-32
394	G2334	Nicotiana alata	gi1087017		0,79
394	G2334	Petunia x hybrida	gi14522848		0,94
394	G2334	Picea abies	gi10764150		0,98
394	G2334	Oryza sativa (grupo do	gi4680183		1

603/1027

		cultivar indica)
394	G2334	Lycopersicon esculentum	gi1418988		1
394	G2334	Pyrus pyrifolia	gi8698889		1
396	G2371	Brassica oleracea	BH518264		2,00E-83
396	G2371	Brassica napus	CD815763		8,00E-71
396	G2371	Capsicum annuum	BM063508		7,00E-50
396	G2371	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK072663		2,00E-45
396	G2371	Solanum tuberosum	BQ115437		9,00E-45
396	G2371	Lycopersicon esculentum	BI921667		3,00E-44
396	G2371	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01005658		1,00E-43
396	G2371	Triticum aestivum	BE499367		3,00E-43
396	G2371	Glycine max	AW781777		4,00E-43

604/1027

396	G2371	Lycopersicon pennellii	AW617994		6,00E-41
396	G2371	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi21426118		2,20E-42
396	G2371	Marchantia polymorpha	gi25272004		7,20E-32
396	G2371	Oryza sativa	gi19352041		3,20E-07
396	G2371	Mangifera indica	gi31747324		5,40E-06
396	G2371	Prunus persica	gi27450533		7,40E-06
396	G2371	Eragrostis tef	gi17906977		9,80E-06
396	G2371	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi1730475		1,30E-05
396	G2371	Phaseolus vulgaris	gi1046278		5,70E-05
396	G2371	Mbsembryan them um crystallinum	gi3219155		0,00012
396	G2371	Zea mays	gi100922		0,00015
398	G2372	Oryza sativa	AB071299		3,00E-97
398	G2372	Oryza sativa (grupo do	AAAA01008877		3,00E-97

605/1027

		cultivar indica)
398	G2372	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK100322		2,00E-96
398	G2372	Physcomitrella patens	AX288142		5,00E-93
398	G2372	Brassica oleracea	BZ495025		1,00E-87
398	G2372	Lotus japonicus	AP004505		5,00E-77
398	G2372	Gossypium arboreum	BG443827		2,00E-68
398	G2372	Zea mays	CC657791		2,00E-66
398	G2372	Vitis vinifera	CB979491		7,00E-59
398	G2372	Medicago truncatula	BG646821		3,00E-58
398	G2372	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi13384374		3,10E-97
398	G2372	Oryza sativa	gi19352051		1,50E-95
398	G2372	Prunus persica	gi27450533		1,60E-50
398	G2372	Oryza sativa (grupo do	gi26251300		3,40E-46

606/1027

		cultivar indica)
398	G2372	Mangifera indica	gi30027167		1,10E-42
398	G2372	Marchantia polymorpha	gi25272004		1,30E-10
398	G2372	Chamaecyparis nootkatensis	gi30421190		0,97
400	G2375	Brassica oleracea	BH685171		2,00E-84
400	G2375	Medicago truncatula	BG648693		1,00E-56
400	G2375	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01004311		6,00E-42
400	G2375	Nicotiana tabacum	E64987		1,00E-28
400	G2375	Malus x domestica	AU301396		2,00E-28
400	G2375	Pinus taeda	BG040491		7,00E-26
400	G2375	Zea mays	AY109868		3,00E-25
400	G2375	Lycopersicon esculentum	BG123901		1,00E-24
400	G2375	Solanum tuberosum	BQ118023		1,00E-23

607/1027

400	G2375	Oryza sativa	OSJN00077		7,00E-23
400	G2375	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi21740920		4,60E-48
400	G2375	Oryza sativa	gi20249		4,90E-15
400	G2375	Nicotiana tabacum	gi170271		2,20E-14
400	G2375	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi27368895		3,40E-12
400	G2375	Pisum sativum	gi13646986		1,20E-11
400	G2375	Glycine max	gi18182311		5,40E-07
400	G2375	Cucurbita maxima	gi17221648		3,70E-06
400	G2375	Lycopersicon esculentum	gi9858781		0,00023
400	G2375	Daucus carota	gi2190187		0,00051
400	G2375	Fagopyrum urophyllum	gi31088123		0,007
401	G2382	Medicago truncatula	Mtr_S7091755	1710
401	G2382	Triticum aestivum	Ta_S282850	1902
401	G2382	Lycopersicon	SGN-UNIGENE-	2056

608/1027

		esculentum	47842
401	G2382	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 57633	2057
402	G2382	Brassica oleracea	BH542030		1,00E-104
402	G2382	Brassica napus	CD814588		2,00E-63
402	G2382	Vitis vinifera	CB347529		2,00E-57
402	G2382	Ipomoea nil	BJ575415		4,00E-45
402	G2382	Lycopersicon esculentum	AW441337		2,00E-40
402	G2382	Medicago truncatula	CA921647		6,00E-40
402	G2382	Lactuca sativa	BU006964		3,00E-39
402	G2382	Vitis aestivalis	CB289221		1,00E-34
402	G2382	Oryza sativa	AP003453		9,00E-34
402	G2382	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01000618		8,00E-32
402	G2382	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi15624003		4,00E-33
402	G2382	Nicotiana tabacum	gi18149189		6,90E-23

609/1027

402	G2382	Oryza sativa	gi12597883		3,80E-08
402	G2382	Chloroplast Panicum koolauense	gi16551225		8,60E-07
402	G2382	Chloroplast Paspalum fimbriatum	gi16551261		5,90E-05
402	G2382	Chloroplast Mesosetum chaseae	gi16551247		0,00022
402	G2382	Chloroplast Thrasya petrosa	gi16551309		0,00027
402	G2382	Chloroplast Tatianyx arnacites	gi16551305		0,00072
402	G2382	Chloroplast Al toparadi si um chapadense	gi16551207		0,00078
402	G2382	Chloroplast Thrasya glaziovii	gi16551307		0,0011
404	G2394	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK071804		1,00E-108
404	G2394	Zea mays	BG837939		2,00E-85

610/1027

404	G2394	Oryza sativa	AX699700		3,00E-72
404	G2394	Triticum aestivum	BJ319065		7,00E-72
404	G2394	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	CB634885		3,00E-69
404	G2394	Lactuca sativa	BQ852089		4,00E-69
404	G2394	Lycopersicon esculentum	BI921710		1,00E-67
404	G2394	Hordeum vulgare subesp. vulgare	AL505242		9,00E-64
404	G2394	Hordeum vulgare	BU991885		3,00E-60
404	G2394	Solanum tuberosum	BQ512426		3,00E-57
404	G2394	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi15289774		1,50E-74
404	G2394	Phacelia tanacetifolia	gi5002214		1,50E-24
404	G2394	Oryza sativa	gi14164470		1,40E-13
404	G2394	Hordeum vulgare	gi20152976		1,80E-12

611/1027

		subesp. vulgare
404	G2394	Cicer arietinum	gi10334499		6,90E-12
404	G2394	Cucumis melo	gi17016985		8,10E-12
404	G2394	Thellungiella halophila	gi20340241		7,80E-11
404	G2394	Nicotiana tabacum	gi12003386		8,80E-10
404	G2394	Zea mays	gi21645888		1,10E-09
404	G2394	Hordeum vulgare	gi2894379		2,30E-09
406	G2404	Brassica oleracea	BH418639		3,00E-61
406	G2404	Descurainia sophia	BU238407		1,00E-47
406	G2404	Medicago truncatula	BQ148493		3,00E-45
406	G2404	Brassica napus	CD815525		3,00E-41
406	G2404	Vitis vinifera	CB983093		1,00E-39
406	G2404	Glycine max	BQ741279		6,00E-39
406	G2404	Nicotiana tabacum	BP129655		3,00E-36
406	G2404	Solanum tuberosum	BQ507078		5,00E-36

612/1027

406	G2404	Populus tremula x Populus tremuloides	BI131425		5,00E-33
406	G2404	Oryza sativa	AU101377		2,00E-31
406	G2404	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi18565429		3,90E-41
406	G2404	Pisum sativum	gi4240031		8,40E-29
406	G2404	Lotus japonicus	gi1086225		3,10E-27
406	G2404	Oryza sativa	gi8570055		5,10E-26
406	G2404	Glycine max	gi1076498		1,00E-25
406	G2404	Cicer arietinum	gi10334499		1,80E-14
406	G2404	Thellungiella halophila	gi20340241		9,50E-09
406	G2404	Cucumis melo	gi17016985		1,20E-07
406	G2404	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi29164825		1,50E-07
406	G2404	Hordeum vulgare	gi2894379		4,80E-06
407	G2432	Glycine max	GLYMA-28NOV01-	1143

613/1027

			CLUSTER68229_1
407	G2432	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER68229_2	1144
407	G2432	Oryza sativa	OSC2225,C1,p2, fg	1145
407	G2432	Oryza sativa	Os_S60255	1608
407	G2432	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-18277	2058
408	G2432	Brassica oleracea	BH959523		7,00E-85
408	G2432	Brassica napus	CD824503		6,00E-76
408	G2432	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	BU868493		7,00E-47
408	G2432	Lycopersicon esculentum	AW648389		7,00E-39
408	G2432	Vitis vinifera	CA810654		1,00E-36
408	G2432	Medicago truncatula	BE323614		2,00E-35
408	G2432	Glycine max	BE474759		3,00E-31
408	G2432	Hordeum vulgare subesp. vulgare	HVU312330		1,00E-30
408	G2432	Beta vulgaris	BQ584245		2,00E-29

614/1027

408	G2432	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	CB622873		3,00E-29
408	G2432	Oryza sativa	gi15451553		3,40E-33
408	G2432	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi31431991		3,40E-33
408	G2432	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi21538791		3,70E-30
408	G2432	Cucurbita maxima	gi1669341		1,10E-28
408	G2432	Dendrobium grex Madame Thong-In	gi3929325		6,60E-24
408	G2432	Hordeum vulgare	gi3777436		1,20E-22
408	G2432	Zea mays	gi1346559		2,00E-22
408	G2432	Pisum sativum	gi6092016		5,40E-22
408	G2432	Nicotiana tabacum	gi3341468		1,10E-21
408	G2432	Triticum aestivum	gi3790264		1,10E-21

615/1027

410	G2443	Brassica napus	A50832		1,00E-148
410	G2443	Brassica nigra	AF269127		1,00E-131
410	G2443	Brassica oleracea	BH650127		1,00E-93
410	G2443	Ipomoea nil	AF300700		2,00E-86
410	G2443	Oryza sativa	AB041838		1,00E-65
410	G2443	Malus domestica	AF052585		7,00E-62
410	G2443	Raphanus sativus	AF052690		2,00E-59
410	G2443	Pinus radiata	AF001136		2,00E-58
410	G2443	Medicago truncatula	AC127169		7,00E-57
410	G2443	Mesembryanthem um crystallinum	BM300894		2,00E-54
410	G2443	Brassica napus	gi2303681		1,80E-140
410	G2443	Brassica nigra	gi11037308		9,00E-139
410	G2443	Oryza sativa	gi11094203		1,90E-65
410	G2443	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi23589949		1,90E-65
410	G2443	Hordeum vulgare	gi21667475		1,10E-60

616/1027

410	G2443	Malus x domestica	gi4091804		2,10E-59
410	G2443	Raphanus sativus	gi3341723		1,80E-56
410	G2443	Ipomoea nil	gi10946337		1,90E-51
410	G2443	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi21655154		6,60E-51
410	G2443	Pinus radiata	gi4557093		2,90E-39
411	G2453	Glycine max	BF070025,1	1146
411	G2453	Oryza sativa	Os_S112425	1609
411	G2453	Zea mays	Zm_S11447234	1813
412	G2453	Chrysanthemum x morifolium	AY173066		1,00E-33
412	G2453	Lactuca sativa	BQ995044		3,00E-33
412	G2453	Glycine max	CA935182		1,00E-32
412	G2453	Hordeum vulgare	BI949633		2,00E-32
412	G2453	Antirrhinum majus	AJ559762		6,00E-32
412	G2453	Lycopersicon esculentum	BI931349		1,00E-31
412	G2453	Solanum tuberosum	BQ117114		1,00E-31

617/1027

412	G2453	Mentha x piperita	AW255624		2,00E-31
412	G2453	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AU094883		2,00E-31
412	G2453	Hordeum vulgare subesp. vulgare	BU968850		2,00E-31
412	G2453	Chrysanthemum x morifolium	gi27804377		1,70E-34
412	G2453	Zea mays	gi32330681		2,00E-34
412	G2453	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi22267600		1,40E-33
412	G2453	Oryza sativa	gi11280864		3,60E-32
412	G2453	Daucus carota	gi3551257		0,81
412	G2453	Vicia faba	gi2104679		0,82
412	G2453	Brassica rapa subesp. pekinensis	gi29123372		0,9
412	G2453	Nicotiana tabacum	gi2196548		0,97
412	G2453	Oryza sativa (grupo do	gi23345287		1

618/1027

		cultivar indica)
412	G2453	Narcissus pseudonarcissu s	gi18419623		1
414	G2455	Brassica napus	CD830903		3,00E-63
414	G2455	Lycopersicon esculentum	BM410884		3,00E-58
414	G2455	Glycine max	BU579031		2,00E-56
414	G2455	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	BU871780		9,00E-56
414	G2455	Populus tremula x Populus tremuloides	BU864185		2,00E-53
414	G2455	Prunus persica	BU044242		3,00E-50
414	G2455	Cycas rumphii	CB093475		1,00E-48
414	G2455	Nuphar advena	CD472928		9,00E-48
414	G2455	Antirrhinum majus	AJ559762		1,00E-46
414	G2455	Triticum aestivum	BJ264502		5,00E-44
414	G2455	Chrysanthemum x morifolium	gi27804377		5,60E-43

619/1027

414	G2455	Zea mays	gi32330677		6,40E-43
414	G2455	Oryza sativa	gi11280864		7,10E-43
414	G2455	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi33146736		9,10E-43
414	G2455	Glycine max	gi5019730		0,16
414	G2455	Brassica rapa subesp. pekinensis	gi29123372		0,2
414	G2455	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi2570503		0,69
416	G2456	Glycine max	CA800830		3,00E-67
416	G2456	Chrysanthemum x morifolium	AY173066		5,00E-63
416	G2456	Lycopersicon esculentum	AW623191		6,00E-62
416	G2456	Populus tremula x Populus tremuloides	BU830431		5,00E-61
416	G2456	Solanum tuberosum	BQ117114		2,00E-58
416	G2456	Zea mays	AY313904		6,00E-58

620/1027

416	G2456	Lactuca sativa	BQ995044		1,00E-57
416	G2456	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK106784		2,00E-57
416	G2456	Nuphar advena	CD475930		1,00E-52
416	G2456	Populus trenuiloides	CA931450		8,00E-50
416	G2456	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi22267600		1,20E-61
416	G2456	Zea mays	gi32330681		8,50E-61
416	G2456	Chrysanthenun x norifoliun	gi27804377		8,80E-61
416	G2456	Oryza sativa	gi11280863		7,90E-37
416	G2456	Brassica rapa subesp. pekinensis	gi29123372		0,027
416	G2456	Triticum aestivum	gi32400832		0,037
416	G2456	Solanum tuberosum	gi9954112		0,038
416	G2456	Phaseolus vulgaris	gi457750		0,04
416	G2456	Volvox carteri	gi6523547		0,22

621/1027

		f. nagariensis
416	G2456	Capsella rubella	gi8919877		0,45
417	G2457	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER62346_1	1147
417	G2457	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER47850_1	1148
417	G2457	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER504_1	1149
417	G2457	Oryza sativa	OSC102186,C1,p 13,fg	1150
417	G2457	Oryza sativa	OSC29392,C1,p1 ,fg	1151
417	G2457	Oryza sativa	OSC7136,C1,p1, fg	1152
417	G2457	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER603_35	1153
417	G2457	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER779_19	1154
417	G2457	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER779_20	1155
417	G2457	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER779_24	1156
417	G2457	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER779_9	1157
417	G2457	Hordeum	Hv_S18520	1742

622/1027

		vulgare
417	G2457	Zea mays	Zm_S11528333	1814
417	G2457	Triticum aestivum	Ta_S241823	1903
417	G2457	Triticum aestivum	Ta_S417975	1904
418	G2457	Antirrhinum majus	AJ559642		6,00E-55
418	G2457	Lycopersicon esculentum	AI483816		7,00E-53
418	G2457	Hedyotis centranthoides	CB088054		9,00E-53
418	G2457	Zea mays	AY104291		1,00E-41
418	G2457	Triticum aestivum	BT008985		5,00E-41
418	G2457	Hordeum vulgare subesp. vulgare	BQ462679		3,00E-40
418	G2457	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	BU880953		5,00E-30
418	G2457	Oryza sativa (grupo do cultivar	AK104918		5,00E-30

623/1027

		japonica)
418	G2457	Populus tremula x Populus tremuloides	BU864185		5,00E-30
418	G2457	Prunus persica	BU043103		2,00E-29
418	G2457	Zea mays	gi32330677		8,50E-32
418	G2457	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi22267600		9,50E-31
418	G2457	Oryza sativa	gi11280863		4,70E-30
418	G2457	Chrysanthemum x morifolium	gi27804377		1,70E-18
418	G2457	Brassica rapa subesp. Pekinensis	gi29123372		1,70E-16
418	G2457	Sesbania rostrata	gi169880		0,3
418	G2457	Lycopersicon esculentum	gi4467884		0,45
418	G2457	Dianthus caryophyllus	gi2406586		0,63
418	G2457	Vicia faba	gi4468042		0,81
418	G2457	Pisum sativum	gi100057		0,96
419	G2459	Glycine max	GLYMA-28NOV01-	1147

624/1027

			CLUSTER62346_1
419	G2459	Oryza sativa	LIB4370-016- R1-K1-B3	1158
419	G2459	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER47850_1	1148
419	G2459	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER504_1	1149
419	G2459	Oryza sativa	OSC102186,C1,p 13,fg	1150
419	G2459	Oryza sativa	OSC29392,C1,p1 ,fg	1151
419	G2459	Oryza sativa	OSC7136,C1,p1, fg	1152
419	G2459	Oryza sativa	jC- osflLIB3479001 b04b1	1159
419	G2459	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER603_34	1160
419	G2459	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER603_35	1153
419	G2459	Triticum aestivum	Ta_S241823	1903
419	G2459	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-70658	2059
420	G2459	Brassica napus	CD830187		4,00E-84
420	G2459	Glycine max	CA800542		4,00E-68

625/1027

420	G2459	Lycopersicon esculentum	AI484101		2,00E-66
420	G2459	Antirrhinum majus	AJ559762		6,00E-61
420	G2459	Mentha x piperita	AW255624		4,00E-58
420	G2459	Solanum tuberosum	BQ516639		2,00E-56
420	G2459	Ipomoea nil	BJ575190		6,00E-51
420	G2459	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	BU880953		2,00E-49
420	G2459	Populus tremula x Populus tremuloides	BU864185		2,00E-48
420	G2459	Nuphar advena	CD474192		1,00E-47
420	G2459	Oryza sativa	gi11280864		1,30E-45
420	G2459	Zea mays	gi32330677		7,30E-44
420	G2459	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi22267600		1,20E-43
420	G2459	Chrysanthemum x morifolium	gi27804377		1,20E-26

626/1027

420	G2459	Brassica rapa subesp. pekinensis	gi29123372		0,013
420	G2459	Nicotiana tabacum	gi4206787		0,68
420	G2459	Narcissus pseudonarcissu s	gi18419623		1
420	G2459	Pinus koraiensis	gi29469765		1
422	G2467	Brassica oleracea	BH657157		7,00E-72
422	G2467	Citrus sinensis	CB291749		8,00E-63
422	G2467	Oryza sativa	AX653477		1,00E-59
422	G2467	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK068660		2,00E-59
422	G2467	Hordeum vulgare subesp. vulgare	AV833112		5,00E-51
422	G2467	Lycopersi con peruvianum	LPHSF30		3,00E-50
422	G2467	Medicago truncatula	BE319312		2,00E-49

627/1027

422	G2467	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01016817		5,00E-49
422	G2467	Zea mays	CC610706		5,00E-49
422	G2467	Helianthus annuus	BQ916240		9,00E-48
422	G2467	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi28971956		2,20E-58
422	G2467	Lycopersi con peruvianum	gi100265		5,70E-50
422	G2467	Helianthus annuus	gi25052685		7,90E-44
422	G2467	Glycine max	gi2129828		9,10E-43
422	G2467	Oryza sativa	gi16580739		1,70E-42
422	G2467	Phaseolus acutifolius	gi16118447		6,20E-37
422	G2467	Nicotiana tabacum	gi5821138		1,00E-36
422	G2467	Lycopersicon esculentum	gi100225		1,30E-36
422	G2467	Medicago sativa	gi20162459		1,10E-35
422	G2467	Pisum sativum	gi3550552		4,50E-34

628/1027

424	G2492	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK073195		1,00E-126
424	G2492	Pisum sativum	PSPD3BIPR		3,00E-72
424	G2492	Vicia sativa	VSENBP1GN		2,00E-71
424	G2492	Lactuca sativa	BU008717		4,00E-69
424	G2492	Vitis vinifera	CB348303		8,00E-67
424	G2492	Mesembryan them um crystallinum	CA838861		9,00E-65
424	G2492	Zea mays	AY106688		2,00E-64
424	G2492	Brassica oleracea	BH582293		1,00E-60
424	G2492	Triphysaria versicolor	BM357136		1,00E-60
424	G2492	Ipomoea nil	BJ577989		6,00E-59
424	G2492	Medicago truncatula	gi11358945		2,50E-153
424	G2492	Pisum sativum	gi2213540		3,00E-151
424	G2492	Vicia sativa	gi1360637		1,30E-150
424	G2492	Nicotiana tabacum	gi8096269		7,20E-10
424	G2492	Brassica oleracea	gi15054376		9,90E-08

629/1027

424	G2492	Oryza sativa	gi6942229		6,40E-06
424	G2492	Zea mays	gi4138732		3,90E-05
424	G2492	Saccharum hybrid cultivar CP722086	gi21902142		0,00016
424	G2492	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi29367369		0,00062
424	G2492	Saccharum hybrid cultivar CP65- 357	gi18873729		0,0016
425	G2505	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER81568_1	1161
425	G2505	Zea mays	LIB5116-010- A1-PF1-D6	1162
426	G2505	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	BU879250		7,00E-72
426	G2505	Medicago truncatula	BF645892		5,00E-70
426	G2505	Sorghum bicolor	CD230282		6,00E-68
426	G2505	Oryza sativa	AK109860		2,00E-67

630/1027

		(grupo do cultivar japonica)
426	G2505	Oryza sativa	AB028186		6,00E-66
426	G2505	Populus balsamifera subesp. trichocarpa x Populus deltoides	CA826386		2,00E-63
426	G2505	Lycopersicon esculentum	BF098091		5,00E-62
426	G2505	Triticum aestivum	BQ483881		7,00E-62
426	G2505	Hordeum vulgare	BE060921		4,00E-61
426	G2505	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01001925		1,00E-56
426	G2505	Oryza sativa	gi11875152		1,70E-66
426	G2505	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi28190666		1,70E-66
426	G2505	Petunia x hybrida	gi1279640		5,80E-48

631/1027

426	G2505	Glycine max	gi22597158		7,50E-48
426	G2505	Zea mays	gi32527660		4,50E-46
426	G2505	Phaseolus vulgaris	gi15148914		6,00E-46
426	G2505	Triticum sp.	gi4218537		5,40E-45
426	G2505	Triticum monococcum	gi6732156		5,40E-45
426	G2505	Lycopersicon esculentum	gi6175246		1,30E-43
426	G2505	Brassica napus	gi31322582		3,10E-42
428	G2515	Betula pendula	BPMADS5GN		1,00E-59
428	G2515	Vitis vinifera	AY275713		1,00E-56
428	G2515	Petunia x hybrida	AF176782		2,00E-55
428	G2515	Petunia sp.	A81451		2,00E-55
428	G2515	Chrysanthemum x morifolium	AY173055		2,00E-55
428	G2515	Nicotiana tabacum	AF385746		4,00E-55
428	G2515	Capsicum annuum	AF130118		4,00E-55
428	G2515	Eucalyptus globulus	AF306349		1,00E-54
428	G2515	Antirrhinum majus	AY040247		2,00E-54

632/1027

428	G2515	Daucus carota	DCA271147		3,00E-54
428	G2515	Betula pendula	gi1483232		6,40E-58
428	G2515	Vitis vinifera	gi30526323		8,40E-56
428	G2515	Chrysanthemum x morifolium	gi27804357		2,60E-54
428	G2515	Capsicum annuum	gi14518447		2,60E-54
428	G2515	Petunia x hybrida	gi6634708		3,30E-54
428	G2515	Petunia sp.	gi6731756		3,30E-54
428	G2515	Nicotiana tabacum	gi27373049		5,30E-54
428	G2515	Eucalyptus globulus	gi11120557		6,80E-54
428	G2515	Nicotiana sylvestris	gi5070142		2,30E-53
428	G2515	Daucus carota	gi22091473		2,90E-53
430	G2525	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AC145379		3,00E-86
430	G2525	Solanum tuberosum	BQ115041		6,00E-76
430	G2525	Suaeda maritima subesp. salsa	BE231373		2,00E-69

633/1027

430	G2525	Brassica oleracea	BH432132		2,00E-67
430	G2525	Hordeum vulgare subesp. vulgare	CB878456		3,00E-65
430	G2525	Lactuca sativa	BU013946		1,00E-63
430	G2525	Medicago truncatula	BE325206		1,00E-62
430	G2525	Gossypium hirsutum	AI728383		6,00E-60
430	G2525	Zea mays	CC641341		2,00E-58
430	G2525	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01009282		5,00E-58
430	G2525	Oryza sativa	gi18873845		1,20E-44
430	G2525	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi31433498		1,20E-44
430	G2525	Spermatozopsis similis	gi3417441		0,14
430	G2525	Nicotiana tabacum	gi237857		0,3
430	G2525	Oryza sativa (grupo do	gi5679839		0,46

634/1027

		cultivar indica)
430	G2525	Chlamydomonas reinhardtii	gi3342148		0,58
430	G2525	Brassica juncea	gi32527767		0,94
430	G2525	Zea mays	gi100920		0,99
430	G2525	Helianthus praecox	gi18073228		1
430	G2525	Helianthus niveus	gi27526450		1
431	G2536	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER325924_ 1	1163
431	G2536	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER325924_ 2	1164
431	G2536	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER325924_ 3	1165
431	G2536	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER90132_1	1166
431	G2536	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER90912_1	1167
431	G2536	Oryza sativa	BE039729,1	1168
431	G2536	Oryza sativa	BE039742,1	1169

635/1027

431	G2536	Oryza sativa	OSC12121,C1,p1 0,fg	1170
431	G2536	Oryza sativa	OSC8882,C1,p8, fg	1171
431	G2536	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER460898_ 1	1172
431	G2536	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 56029	2060
431	G2536	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-36423	2061
432	G2536	Populus tremula x Populus tremuloides	BU815065		5,00E-57
432	G2536	Nicotiana tabacum	AB021178		1,00E-53
432	G2536	Medicago truncatula	BG647353		2,00E-52
432	G2536	Populus balsamifera subesp. trichocarpa x Populus deltoides	CA825708		1,00E-48
432	G2536	Lycopersicon esculentum	AW030267		3,00E-47

636/1027

432	G2536	Brassica oleracea	BZ032987		1,00E-45
432	G2536	Glycine max	BM886486		1,00E-45
432	G2536	Lactuca sativa	BQ875839		4,00E-44
432	G2536	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK063703		2,00E-43
432	G2536	Zea mays	CC673415		2,00E-42
432	G2536	Nicotiana tabacum	gi25457840		1,00E-50
432	G2536	Oryza sativa	gi15290110		6,50E-45
432	G2536	Brassica napus	gi31322582		5,10E-30
432	G2536	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi24899399		8,10E-28
432	G2536	Petunia x hybrida	gi21105734		3,40E-27
432	G2536	Solanum tuberosum	gi14485513		1,20E-26
432	G2536	Glycine max	gi22597158		1,50E-26
432	G2536	Lycopersicon esculentum	gi6175246		1,50E-26
432	G2536	Phaseolus vulgaris	gi15148914		6,40E-26

637/1027

432	G2536	Triticum sp.	gi4218535		8,50E-24
434	G2543	Phalaenopsis sp. SM9108	PSU34743		1,0e-999
434	G2543	Picea abies	AF172931		1,0e-999
434	G2543	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AB101645		1,00E-173
434	G2543	Gossypium hirsutum	AF530914		1,00E-173
434	G2543	Oryza sativa	AB077993		1,00E-172
434	G2543	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01007245		1,00E-170
434	G2543	Zea mays	ZMA250987		1,00E-170
434	G2543	Malus domestica	AF067961		1,00E-146
434	G2543	Helianthus annuus	HNNHAHR		1,00E-118
434	G2543	Vitis vinifera	CB002690		2,00E-93
434	G2543	Phalaenopsis sp. SM9108	gi1173622		5,10E-175
434	G2543	Phalaenopsis sp.	gi2147484		5,10E-175
434	G2543	Picea abies	gi12002853		4,80E-172

638/1027

434	G2543	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32488795		4,70E-165
434	G2543	Gossypium hirsutum	gi22475197		6,00E-165
434	G2543	Sorghum bicolor	gi18481701		7,70E-165
434	G2543	Oryza sativa	gi19072102		5,40E-164
434	G2543	Zea mays	gi8920427		4,40E-162
434	G2543	Malus x domestica	gi3925363		2,10E-139
434	G2543	Helianthus annuus	gi1208940		1,90E-106
435	G2550	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER39853_1	1173
435	G2550	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER39853_2	1174
435	G2550	Oryza sativa	uC- osroM202005g06 b1	1175
435	G2550	Oryza sativa	Os_S107153	1610
435	G2550	Medicago truncatula	Mtr_S5360919	1711
435	G2550	Medicago truncatula	Mtr_S7094331	1712

639/1027

435	G2550	Zea mays	Zm_S11465618	1815
435	G2550	Triticum aestivum	Ta_S146249	1905
436	G2550	Solanum tuberosum	AF406703		9,00E-90
436	G2550	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK069994		6,00E-89
436	G2550	Brassica oleracea	BZ485520		1,00E-82
436	G2550	Lycopersicon esculentum	AF375966		2,00E-77
436	G2550	Sorghum bicolor	BMI324585		5,00E-74
436	G2550	Malus x domestica	AF053769		2,00E-70
436	G2550	Oryza minuta	CB213421		3,00E-70
436	G2550	Hordeum vulgare	BG344928		5,00E-70
436	G2550	Medicago truncatula	AW688195		8,00E-67
436	G2550	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	CB618008		3,00E-66

640/1027

436	G2550	Solanum tuberosum	gi22652127		1,40E-87
436	G2550	Oryza sativa	gi12656811		1,60E-84
436	G2550	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20219036		1,20E-83
436	G2550	Lycopersicon esculentum	gi31323447		4,40E-75
436	G2550	Hordeum vulgare	gi13752407		1,70E-72
436	G2550	Malus x domestica	gi7239157		9,40E-72
436	G2550	Gnetum gnemon	gi31746344		5,50E-66
436	G2550	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi19352101		4,00E-49
436	G2550	Zea mays	gi19743685		1,90E-42
436	G2550	Helianthus annuus	gi20977644		6,30E-12
438	G2559	Solanum tuberosum	STU72489		1,00E-59
438	G2559	Lycopersicon esculentum	AF123265		2,00E-59
438	G2559	Antirrhinum	AJ559687		3,00E-54

641/1027

		majus
438	G2559	Vitis vinifera	CB344101		2,00E-53
438	G2559	Glycine max	CA799179		3,00E-53
438	G2559	Ipomoea nil	BJ573275		9,00E-53
438	G2559	Citrus sinensis	CB292623		2,00E-52
438	G2559	Gossypium arboreum	BQ411282		6,00E-52
438	G2559	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK105097		8,00E-52
438	G2559	Medicago truncatula	BM779097		1,00E-51
438	G2559	Solanum tuberosum	gi1881585		7,10E-59
438	G2559	Lycopersicon esculentum	gi4731573		3,90E-58
438	G2559	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32489830		1,50E-51
438	G2559	Lotus japonicus	gi2367429		9,80E-05
438	G2559	Zea mays	gi23928441		0,00023
438	G2559	Plastid	gi13276714		0,00077

642/1027

		Oenoutroa elata subesp. Hookeri
438	G2559	Oenoutroa elata subesp. hookeri	gi23822375		0,00077
438	G2559	Nicotiana tabacum	gi8096269		0,0013
438	G2559	Cicer arietinum	gi3129939		0,0014
438	G2559	Solanum berthaultii	gi1216214		0,002
440	G2565	Mesembryanthem um crystallinum	AF219972		5,00E-67
440	G2565	Nicotiana tabacum	AB017693		1,00E-60
440	G2565	Triticum aestivum	BQ806133		3,00E-55
440	G2565	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK109510		6,00E-55
440	G2565	Beta vulgaris	BQ587750		1,00E-52
440	G2565	Medicago truncatula	AW684291		1,00E-51

643/1027

440	G2565	Zea mays	AY107734		2,00E-51
440	G2565	Glycine max	AW507631		2,00E-51
440	G2565	Lycopersicon esculentum	AW030183		8,00E-51
440	G2565	Hordeum vulgare	BU993345		8,00E-46
440	G2565	Mesembryan them um crystallinum	gi6942190		3,50E-66
440	G2565	Nicotiana tabacum	gi4519671		2,80E-57
440	G2565	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi29647445		3,90E-42
440	G2565	Solanum bulbocastanum	gi32470629		6,00E-30
440	G2565	Chlamydomonas reinhardtii	gi5916207		2,30E-24
440	G2565	Oryza sativa	gi11034542		1,30E-09
440	G2565	Zea mays	gi15667625		2,60E-08
440	G2565	Oryza glaberrima	gi31338862		2,70E-07
440	G2565	Oryza sativa (grupo do cultivar	gi31338860		7,40E-07

644/1027

		indica)
440	G2565	Pachysandra terminalis	gi32478053		0,0038
441	G2567	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER105903_ 1	1176
441	G2567	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER25797_1	1177
441	G2567	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER25797_2	1178
441	G2567	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER25797_4	1179
441	G2567	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER30315_1	1180
441	G2567	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER67014_1	1181
441	G2567	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER14787_2	1182
441	G2567	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER14787_3	1183
441	G2567	Oryza sativa	OSC100544,C1,p 6,fg	1184
441	G2567	Oryza sativa	OSC100702,C1,p 11,fg	1185
441	G2567	Oryza sativa	OSC19346,C1,p1 8,fg	1186

645/1027

441	G2567	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER28837_1	1187
441	G2567	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER536_181 6	1188
441	G2567	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER536_BYH AND_1816	1189
441	G2567	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER64018_1	1190
441	G2567	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER64018_4	1191
441	G2567	Oryza sativa	Os_S45221	1611
441	G2567	Oryza sativa	Os_S99383	1612
441	G2567	Glycine max	Gma_S5079377	1669
441	G2567	Hordeum vulgare	Hv_S31206	1743
441	G2567	Zea mays	Zm_S11521593	1816
441	G2567	Triticum aestivum	Ta_S114520	1906
441	G2567	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-357264	2062
441	G2567	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-360651	2063
441	G2567	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-463424	2064

646/1027

442	G2567	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK100322		1,0e-999
442	G2567	Oryza sativa	AB071299		1,0e-999
442	G2567	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01008877		1,00E-172
442	G2567	Lotus japonicus	AP004505		1,00E-140
442	G2567	Physcomitrella patens	AX288142		1,00E-131
442	G2567	Brassica oleracea	BZ016919		1,00E-124
442	G2567	Medicago truncatula	BG646821		1,00E-104
442	G2567	Brassica napus	CD843527		1,00E-100
442	G2567	Zea mays	CC657791		2,00E-99
442	G2567	Vitis vinifera	CB979491		2,00E-90
442	G2567	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi13384374		3,80E-186
442	G2567	Oryza sativa	gi19352051		3,30E-164
442	G2567	Prunus persica	gi27450533		8,50E-72

647/1027

442	G2567	Oryza sativa	gi26251300		4,30E-70
(grupo cultivar indica)	do
442	G2567	Mangifera indica	gi30027167		2,00E-68
442	G2567	Marchantia polymorpha	gi25272004		5,40E-13
442	G2567	Mirabilis jalapa	gi23343944		3,20E-05
442	G2567	Zea mays	gi18697008		0,014
442	G2567	Cucumis sativus	gi6136830		0,049
442	G2567	Nicotiana tabacum	gi4887014		0,087
444	G2570	Brassica oleracea	BH973299		3,00E-49
444	G2570	Zea mays	AB060130		3,00E-32
444	G2570	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK101165		1,00E-28
444	G2570	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	CB630542		1,00E-25

648/1027

444	G2570	Medicago truncatula	CB891281		3,00E-22
444	G2570	Brassica napus	CD825309		2,00E-20
444	G2570	Solanum tuberosum	BM407041		3,00E-20
444	G2570	Triticum aestivum	BQ743733		2,00E-17
444	G2570	Hordeum vulgare subesp. vulgare	CA014844		5,00E-17
444	G2570	Stevia rebaudiana	BG525366		9,00E-17
444	G2570	Zea mays	gi13661174		3,10E-31
444	G2570	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi24308616		4,60E-31
444	G2570	Oryza glaberrima	gi31338862		1,90E-23
444	G2570	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi31338860		2,50E-23
444	G2570	Oryza sativa	gi15289981		4,10E-16
444	G2570	Dianthus	gi13173408		1,50E-08

649/1027

		caryophyllus
444	G2570	Chlamydomonas reinhardtii	gi5916207		2,40E-07
444	G2570	Solanum bulbocastanum	gi32470629		8,30E-06
444	G2570	Nicotiana tabacum	gi4519671		1,50E-05
444	G2570	Mesembryanthem um crystallinum	gi6942190		0,00022
445	G2571	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER96988_1	1192
445	G2571	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER96988_2	1193
445	G2571	Oryza sativa	OSC1398,C1,p2, fg	1194
445	G2571	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 56732	2065
446	G2571	Brassica oleracea	BZ432711		1,00E-103
446	G2571	Glycine max	AW759250		2,00E-48
446	G2571	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01008818		6,00E-48
446	G2571	Oryza sativa	AC104284		8,00E-48

650/1027

446	G2571	Medicago truncatula	BQ140137		1,00E-44
446	G2571	Zea mays	CC342129		8,00E-41
446	G2571	Lactuca sativa	BQ849477		2,00E-38
446	G2571	Sorghum bicolor	CD236030		3,00E-38
446	G2571	Atriplex hortensis	AF274033		3,00E-34
446	G2571	Prunus persica	BU046010		2,00E-33
446	G2571	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi19920190		2,60E-36
446	G2571	Atriplex hortensis	gi8571476		1,90E-35
446	G2571	Lycopersicon esculentum	gi27436378		1,30E-34
446	G2571	Zea mays	gi21908036		9,10E-27
446	G2571	Oryza sativa	gi5091503		3,90E-26
446	G2571	Solanum tuberosum	gi1688233		1,30E-20
446	G2571	Nicotiana sylvestris	gi8809571		5,50E-20
446	G2571	Nicotiana tabacum	gi1208498		1,50E-19

651/1027

446	G2571	Glycine max	gi21304712		1,10E-18
446	G2571	Prunus armeniaca	gi3264767		7,70E-18
448	G2574	Brassica oleracea	BZ016708		1,00E-82
448	G2574	Oryza sativa	AX653450		5,00E-80
448	G2574	Nicotiana tabacum	AY220477		3,00E-68
448	G2574	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01001635		2,00E-64
448	G2574	Lycopersicon esculentum	BI922133		6,00E-56
448	G2574	Hordeum vulgare	BM370908		2,00E-47
448	G2574	Medicago truncatula	CB893379		4,00E-47
448	G2574	Glycine max	BU926713		4,00E-44
448	G2574	Citrus sinensis	BQ625082		4,00E-44
448	G2574	Zea mays	AX660892		6,00E-44
448	G2574	Oryza sativa	gi11320830		4,10E-61
448	G2574	Nicotiana tabacum	gi30013667		5,60E-59

652/1027

448	G2574	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20160973		4,10E-37
448	G2574	Petroselinum crispum	gi11493822		6,80E-30
448	G2574	Avena fatua	gi1159879		5,10E-26
448	G2574	Avena sativa	gi4894965		2,10E-22
448	G2574	Glycine max	gi32493108		2,20E-20
448	G2574	Ipomoea batatas	gi1076685		5,20E-20
448	G2574	Capsella rubella	gi32454266		8,00E-20
448	G2574	Lycopersicon esculentum	gi13620227		2,20E-18
450	G2575	Lycopersicon esculentum	BI205259		1,00E-48
450	G2575	Medicago truncatula	BI308031		5,00E-45
450	G2575	Vitis vinifera	CD010167		1,00E-44
450	G2575	Sorghum bicolor	BE362650		2,00E-43
450	G2575	Oryza sativa	AX653470		2,00E-43
450	G2575	Triticum aestivum	CD883886		7,00E-42
450	G2575	Amborella trichopoda	CD483414		1,00E-41

653/1027

450	G2575	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK108745		3,00E-41
450	G2575	Glycine max	CA784851		3,00E-41
450	G2575	Populus tremula x Populus tremuloides	BU884581		3,00E-38
450	G2575	Oryza sativa	gi11761085		6,50E-45
450	G2575	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi22830985		4,30E-36
450	G2575	Nicotiana tabacum	gi25348323		2,00E-30
450	G2575	Solanum tuberosum	gi24745606		3,00E-28
450	G2575	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi23305051		6,80E-28
450	G2575	Lycopersicon esculentum	gi13620227		9,90E-27
450	G2575	Cucumis sativus	gi7484759		1,70E-26
450	G2575	Pimpinella brachycarpa	gi3420906		1,80E-26
450	G2575	Avena fatua	gi1159877		1,90E-26
450	G2575	Avena sativa	gi4894965		2,10E-26

654/1027

451	G2579	Oryza sativa	OSC101983,C1,p 6,fg	1195
451	G2579	Zea mays	LIB3076-043- Q1-K1-H9	1196
451	G2579	Zea mays	Zm S11519895	1817
452	G2579	Brassica oleracea	BZ471318		2,00E-82
452	G2579	Oryza sativa	AP004016		3,00E-34
452	G2579	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AP004570		3,00E-34
452	G2579	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01001296		3,00E-34
452	G2579	Zea mays	AY178191		1,00E-32
452	G2579	Sorghum bicolor	BZ338708		1,00E-23
452	G2579	Medicago truncatula	AC119414		1,00E-21
452	G2579	Beta vulgaris	BQ488935		1,00E-19
452	G2579	Lotus japonicus	AV411846		2,00E-19
452	G2579	Glycine max	BE059333		7,00E-19
452	G2579	Zea mays	gi27802487		5,50E-38
452	G2579	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi23307521		1,50E-35

655/1027

452	G2579	Stylosanthes hamiata	gi4099921		1,30E-19
452	G2579	Cicer arietinum	gi24817250		5,50E-19
452	G2579	Nicotiana tabacum	gi4587373		8,70E-19
452	G2579	Oryza sativa	gi12597874		1,90E-18
452	G2579	Lycopersicon esculentum	gi2213785		5,90E-18
452	G2579	Prunus armeniaca	gi3264767		5,90E-18
452	G2579	Thellungiella halophila	gi20340233		9,90E-18
452	G2579	Nicotiana sylvestris	gi8809573		1,30E-17
453	G2585	Oryza sativa	OSC102182,C1,p 9,fg	1197
453	G2585	Oryza sativa	OSC5912,C1,p4, fg	1198
453	G2585	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER221367_ 1	1199
454	G2585	Brassica oleracea	BH574869		1,00E-71
454	G2585	Populus tremula x Populus tremuloides	BU814191		9,00E-23
454	G2585	Glycine max	BQ612521		8,00E-22
454	G2585	Lycopersicon	BG127023		4,00E-21

656/1027

		esculentum
454	G2585	Solanum tuberosum	BQ118881		1,00E-19
454	G2585	Medicago truncatula	AW776895		2,00E-19
454	G2585	Gossypium hirsutum	CA992948		2,00E-19
454	G2585	Nicotiana tabacum	AF193771		3,00E-19
454	G2585	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AC144737		5,00E-18
454	G2585	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01016983		5,00E-18
454	G2585	Nicotiana tabacum	gi11358951		3,30E-22
454	G2585	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi18844822		5,30E-17
454	G2585	Matricaria chamomilla	gi17385638		6,50E-17
454	G2585	Solanum tuberosum	gi24745606		1,90E-12
454	G2585	Oryza sativa	gi14209559		1,20E-11
454	G2585	Petroselinum crispum	gi11493824		1,70E-11

657/1027

454	G2585	Retamia raetam	gi18158619		1,10E-09
454	G2585	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi23305051		3,30E-09
454	G2585	Solanum dulcamara	gi16588566		8,20E-09
454	G2585	Capsella rubella	gi27817201		1,10E-08
456	G2587	Lycopersicon esculentum	BG642706		5,00E-23
456	G2587	Solanum tuberosum	BE472874		1,00E-22
456	G2587	Medicago truncatula	AW560120		6,00E-22
456	G2587	Populus tremula x Populus tremuloides	BU816132		1,00E-20
456	G2587	Glycine max	BQ612521		3,00E-20
456	G2587	Nicotiana tabacum	AF193770		6,00E-19
456	G2587	Gossypium hirsutum	CA992948		7,00E-18
456	G2587	Triticum aestivum	BG605176		2,00E-16
456	G2587	Vitis vinifera	CA813725		6,00E-16
456	G2587	Lactuca sativa	BQ875950		8,00E-16
456	G2587	Nicotiana tabacum	gi7406995		5,40E-22

658/1027

456	G2587	Matricaria chamomilla	gi17385638		1,10E-16
456	G2587	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi18844816		5,90E-16
456	G2587	Petroselinum crispum	gi11493824		5,20E-13
456	G2587	Oryza sativa	gi15289994		1,30E-11
456	G2587	Solanum tuberosum	gi24745606		3,00E-11
456	G2587	Capsella rubella	gi27817201		2,90E-09
456	G2587	Solanum dulcamiara	gi16588566		5,10E-09
456	G2587	Avena fatua	gi1159879		1,80E-08
456	G2587	Dactylis glomerata	gi11993901		2,20E-08
458	G2592	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK103583		1,00E-154
458	G2592	Lemna paucicostata	AB023895		1,00E-131
458	G2592	Zea mays	AY109994		1,00E-128
458	G2592	Cicer arietinum	CAR400860		1,00E-105
458	G2592	Solanum tuberosum	BG351697		1,00E-104
458	G2592	Lotus	AP004525		1,00E-103

659/1027

		japonicus
458	G2592	Medicago truncatula	CB894562		1,00E-100
458	G2592	Helianthus annuus	BQ970590		3,00E-96
458	G2592	Gossypium arboreum	BQ406633		3,00E-93
458	G2592	Oryza sativa	AC105318		7,00E-93
458	G2592	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32480039		1,10E-146
458	G2592	Oryza sativa	gi5777631		1,10E-146
458	G2592	Lemna paucicostata	gi5689214		2,90E-124
458	G2592	Cicer arietinum	gi7635492		7,70E-101
458	G2592	Pyrus conmunis	gi18252343		2,90E-56
458	G2592	Chloroplast Pinus thunbergii	gi1262738		1
460	G2597	Brassica oleracea	BH974513		6,00E-35
460	G2597	Vitis vinifera	CB977099		6,00E-35
460	G2597	Glycine max	AW760239		2,00E-33
460	G2597	Helianthus annuus	BQ966485		9,00E-33
460	G2597	Lactuca sativa	BQ853988		1,00E-32
460	G2597	Lotus corniculatus	CB827195		2,00E-32

660/1027

		var. japoni cus
460	G2597	Medicago truncatula	BI309254		2,00E-31
460	G2597	Lycopersicon esculentum	AI895129		4,00E-30
460	G2597	Solanum tuberosum	BE919865		7,00E-30
460	G2597	Lupinus albus	CA410490		8,00E-29
460	G2597	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi23495868		4,20E-39
460	G2597	Lemna paucicostata	gi5689214		5,90E-35
460	G2597	Oryza sativa	gi5777631		3,60E-33
460	G2597	Cicer arietinum	gi7635492		4,70E-33
460	G2597	Pyrus communis	gi18252343		0,018
462	G2603	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK060587		1,00E-116
462	G2603	Brassica oleracea	BZ462499		3,00E-95
462	G2603	Zea mays	AY106234		9,00E-95
462	G2603	Lemna paucicostata	AB023895		2,00E-92
462	G2603	Cicer arietinum	CAR400860		3,00E-92
462	G2603	Descurainia	BU238485		1,00E-84

661/1027

		sophia
462	G2603	Brassica napus	CD819805		2,00E-83
462	G2603	Medicago truncatula	BF004440		2,00E-76
462	G2603	Vitis vinifera	CB977099		3,00E-75
462	G2603	Triticum aestivum	CA485505		6,00E-73
462	G2603	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi23495868		9,40E-112
462	G2603	Lemna paucicostata	gi5689214		4,80E-91
462	G2603	Cicer arietinum	gi7635492		1,90E-88
462	G2603	Oryza sativa	gi5777631		2,70E-84
462	G2603	Pyrus communis	gi18252343		6,90E-61
464	G2604	Medicago truncatula	BF519786		2,00E-74
464	G2604	Solanum tuberosum	BQ118459		8,00E-74
464	G2604	Lycopersicon esculentum	BF051817		5,00E-73
464	G2604	Populus tremula x Populus tremuloides	BU863675		5,00E-73
464	G2604	Populus tremula	BU892953		5,00E-73
464	G2604	Glycine max	CD487599		3,00E-72

662/1027

464	G2604	Helianthus paradoxus	CF079899		2,00E-70
464	G2604	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	CB680709		9,00E-67
464	G2604	Sorghum propinquum	BG488424		6,00E-66
464	G2604	Triticum aestivum	BJ302536		6,00E-66
464	G2604	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi29467554		6,50E-65
464	G2604	Zea mays	gi13509835		3,40E-43
464	G2604	Brassica oleracea	gi17981380		2,40E-35
464	G2604	Triticum aestivum	gi32400832		2,20E-25
464	G2604	Oryza sativa	gi11034561		1,80E-21
464	G2604	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi23954355		0,067
464	G2604	Phaseolus vulgaris	gi6863082		0,087
464	G2604	Vigna angularis	gi224356		0,18
464	G2604	Gossypium barbadense	gi28274033		0,18

663/1027

464	G2604	Lycopersicon esculentum	gi575950		0,18
466	G2616	Brassica oleracea	BH511341		2,00E-47
466	G2616	Populus tremula x Populus tremuloides	BD194427		6,00E-37
466	G2616	Lycopersicon esculentum	BI930760		1,00E-36
466	G2616	Solanum tuberosum	BE472904		4,00E-36
466	G2616	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK102788		2,00E-35
466	G2616	Helianthus annuus	AJ412302		2,00E-35
466	G2616	Prunus persica	BU045784		9,00E-35
466	G2616	Hordeum vulgare subesp. vulgare	CA032614		2,00E-34
466	G2616	Glycine max	BM520826		4,00E-34
466	G2616	Medicago truncatula	BE202697		1,00E-33
466	G2616	Populus tremula x Populus tremuloides	gi3955021		2,60E-38

664/1027

466	G2616	Oryza sativa	gi15128400		1,30E-36
466	G2616	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi21104626		4,80E-19
466	G2616	Petunia x hybrida	gi22087128		1,80E-11
466	G2616	Lycopersicon esculentum	gi28070968		3,20E-11
466	G2616	Narcissus pseudonarcissu s	gi18419580		7,20E-11
466	G2616	Ceratopteris richardii	gi3868847		0,00018
466	G2616	Craterostigma plantagineum	gi3171739		0,002
466	G2616	Capsella rubella	gi8919876		0,0025
466	G2616	Physcomitrella patens	gi7415620		0,0068
467	G2617	Oryza sativa	jC- osroLIB3475060 d09b1	1200
468	G2617	Brassica oleracea	BH732988		3,00E-66
468	G2617	Brassica rapa subesp. pekinensis	BZ614339		2,00E-54
468	G2617	Medicago truncatula	AC135233		2,00E-19

665/1027

468	G2617	Oryza sativa	AC133008		4,00E-19
468	G2617	Glycine max	BG363109		4,00E-19
468	G2617	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK108829		7,00E-19
468	G2617	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01006129		7,00E-19
468	G2617	Zea mays	BZ735433		2,00E-18
468	G2617	Hordeum vulgare	BF255914		9,00E-16
468	G2617	Helianthus annuus	BQ977193		1,00E-13
468	G2617	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32489630		2,60E-18
468	G2617	Zea ramosa	gi18674684		6,20E-14
468	G2617	Petunia x hybrida	gi14275902		9,10E-12
468	G2617	Oryza sativa	gi15528588		1,80E-05
468	G2617	Sorghum bicolor	gi18390109		0,00014
468	G2617	Datisca glomerata	gi4666360		0,006
468	G2617	Pisum sativum	gi2129892		0,0097
468	G2617	Triticum aestivum	gi485814		0,02

666/1027

468	G2617	Brassica rapa	gi2058504		0,021
468	G2617	Glycine max	gi1763063		0,029
470	G2628	Brassica oleracea	BH962006		1,00E-21
470	G2628	Mesembryan them um crystallinum	BF479304		4,00E-08
470	G2628	Lycopersicon esculentum	BE450859		9,00E-08
470	G2628	Nicotiana tabacum	BP130848		3,00E-07
470	G2628	Glycine max	BF595900		3,00E-07
470	G2628	Phaseolus vulgaris	AF350505		8,00E-07
470	G2628	Lotus japonicus	BI417596		1,00E-06
470	G2628	Rosa chinensis	BI977302		1,00E-06
470	G2628	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01003396		1,00E-06
470	G2628	Medicago truncatula	BE943475		2,00E-06
470	G2628	Phaseolus vulgaris	gi13430400		6,40E-10
470	G2628	Phaseolus acutifolius	gi12829956		1,70E-09
470	G2628	Raphanus sativus	gi1033059		2,70E-08
470	G2628	Sinapis alba	gi2995462		5,00E-08

667/1027

470	G2628	Petroselinum crispum	gi9650826		1,80E-07
470	G2628	Brassica napus	gi633154		2,40E-07
470	G2628	Glycine max	gi169961		3,20E-07
470	G2628	Oryza sativa	gi13365774		4,40E-07
470	G2628	Nicotiana tabacum	gi10241920		6,00E-07
470	G2628	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi18844791		1,80E-06
472	G2632	Brassica napus	BNU33885		1,00E-121
472	G2632	Brassica oleracea	BZ466456		2,00E-61
472	G2632	Medicago truncatula	BI263541		2,00E-53
472	G2632	Citrus sinensis	BQ624240		1,00E-48
472	G2632	Prunus dulcis	BU573158		1,00E-48
472	G2632	Helianthus paradoxus	CF082573		1,00E-38
472	G2632	Amborella trichopoda	CD484119		5,00E-36
472	G2632	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK069854		8,00E-36
472	G2632	Lycopersicon esculentum	BF113081		1,00E-35
472	G2632	Triticum	BT009512		5,00E-34

668/1027

		aestivum
472	G2632	Brassica napus	gi1173618		1,10E-115
472	G2632	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi27552556		5,30E-38
472	G2632	Vitis riparia	gi7141243		1,50E-30
472	G2632	Oryza sativa	gi2826786		2,00E-29
472	G2632	Nicotiana tabacum	gi4731314		7,00E-20
472	G2632	Triticum aestivum	gi1076781		0,05
472	G2632	Antirrhinum majus	gi28894445		0,056
472	G2632	Solanum tuberosum	gi7688355		0,27
472	G2632	Vigna unguiculata	gi9857292		0,38
472	G2632	Zea mays	gi829240		0,79
474	G2633	Medicago truncatula	AC121232		1,00E-160
474	G2633	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AE017084		1,00E-159
474	G2633	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01002412		1,00E-159
474	G2633	Oryza sativa	AP003747		1,00E-154

669/1027

474	G2633	Zea mays	AY109543		1,00E-145
474	G2633	Vitis vinifera	CB980495		1,00E-124
474	G2633	Solanum tuberosum	BG595264		1,00E-103
474	G2633	Brassica oleracea	BH591768		1,00E-103
474	G2633	Glycine max	CA800623		1,00E-102
474	G2633	Lycopersicon esculentum	BI422927		4,00E-94
474	G2633	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20043021		8,30E-152
474	G2633	Brassica rapa subesp. Pekinensis	gi28143934		9,60E-71
474	G2633	Vitis vinifera	gi20334379		6,90E-61
474	G2633	Lycopersicon esculentum	gi31322802		1,10E-60
474	G2633	Lilium longiflorum	gi32813435		3,80E-60
474	G2633	Oryza sativa	gi14719333		2,20E-57
474	G2633	Gossypium hirsutum	gi29122893		7,30E-57
474	G2633	Argyroxiphi um sandwicense subesp. macrocephal um	gi20257438		9,40E-57
474	G2633	Wilkesia gymnoxiphium	gi20257432		1,50E-56

670/1027

474	G2633	Calycadenia multiglandulos a	gi20257451		1,50E-56
476	G2636	Petunia x hybrida	PHRNANAM		5,00E-80
476	G2636	Lactuca sativa	BQ994853		1,00E-71
476	G2636	Medicago truncatula	BI308121		2,00E-70
476	G2636	Glycine max	AF532619		1,00E-68
476	G2636	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AP004679		7,00E-65
476	G2636	Oryza sativa	AP003542		7,00E-65
476	G2636	Brassica napus	CD830372		6,00E-62
476	G2636	Thellungiella halophila	BM985861		1,00E-61
476	G2636	Lycopersicon esculentum	AI898478		1,00E-61
476	G2636	Solanum tuberosum	BQ518471		1,00E-61
476	G2636	Petunia x hybrida	gi1279640		1,60E-75
476	G2636	Glycine max	gi22597158		3,00E-67
476	G2636	Oryza sativa	gi27529810		1,30E-59
476	G2636	Zea mays	gi32527660		5,50E-58
476	G2636	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi28411877		7,50E-58

671/1027

476	G2636	Triticum sp.	gi4218537		4,20E-54
476	G2636	Triticum monococcum	gi6732160		4,20E-54
476	G2636	Phaseolus vulgaris	gi15148912		1,70E-50
476	G2636	Lycopersicon esculentum	gi6175246		3,00E-44
476	G2636	Brassica napus	gi31322568		7,90E-44
478	G2639	Brassica oleracea	BH678678		1,00E-67
478	G2639	Medicago truncatula	BE998137		7,00E-47
478	G2639	Populus tremula x Populus tremuloides	BU826518		2,00E-43
478	G2639	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK102444		3,00E-41
478	G2639	Lycopersicon esculentum	BI208719		2,00E-38
478	G2639	Oryza sativa	AP003683		5,00E-38
478	G2639	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01008013		5,00E-38
478	G2639	Hevea brasiliensis	CB376600		1,00E-37
478	G2639	Zea mays	CC628094		4,00E-36

672/1027

478	G2639	Hordeum vulgare subesp. vulgare	CA029965		1,00E-33
478	G2639	Oryza sativa	gi15528818		2,20E-41
478	G2639	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20161862		2,20E-41
478	G2639	Pinus pinaster	gi18129286		0,68
478	G2639	Zea mays	gi7489714		0,74
478	G2639	Triticum aestivum	gi170732		1
478	G2639	Populus tremuloides	gi9651406		1
480	G2640	Brassica oleracea	BH678678		1,00E-107
480	G2640	Populus tremula x Populus tremuloides	BU826518		1,00E-54
480	G2640	Medicago truncatula	BE998137		1,00E-52
480	G2640	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK102444		1,00E-42
480	G2640	Hevea brasiliensis	CB376600		2,00E-40
480	G2640	Lycopersicon	BI205918		3,00E-40

673/1027

		esculentum
480	G2640	Oryza sativa	AP003683		4,00E-40
480	G2640	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01008013		4,00E-40
480	G2640	Zea mays	CC628094		2,00E-37
480	G2640	Hordeum vulgare subesp. vulgare	CA029965		7,00E-35
480	G2640	Oryza sativa	gi15528818		1,90E-45
480	G2640	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20161862		1,90E-45
480	G2640	Zea mays	gi7248461		0,00063
480	G2640	Brassica napus	gi17821		0,0011
480	G2640	Triticum aestivum	gi21322752		0,0012
480	G2640	Chlamydomonas reinhardtii	gi32454910		0,0022
480	G2640	Phaseolus vulgaris	gi121628		0,0042
480	G2640	Lycopersicon esculentum	gi19322		0,0051
480	G2640	Nicotiana sylvestris	gi121631		0,0061
480	G2640	Physcomitrella patens	gi21388660		0,01

674/1027

482	G2649	Brassica oleracea	BH593456		8,00E-72
482	G2649	Hevea brasiliensis	CB376600		3,00E-71
482	G2649	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK102444		9,00E-66
482	G2649	Lycopersicon esculentum	AW216650		9,00E-65
482	G2649	Oryza sativa	AP004319		4,00E-62
482	G2649	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01008013		1,00E-61
482	G2649	Glycine max	BG155693		3,00E-54
482	G2649	Zea mays	CC628094		1,00E-51
482	G2649	Hordeum vulgare subesp. vulgare	CA029965		3,00E-44
482	G2649	Medicago truncatula	BG645979		3,00E-36
482	G2649	Oryza sativa	gi15528818		5,80E-64
482	G2649	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20161862		5,80E-64
482	G2649	Nicotiana tabacum	gi395147		0,7

675/1027

482	G2649	Zea mays	gi100922		0,79
482	G2649	Physcomitrella patens	gi14597654		0,91
482	G2649	Lycopersicon esculentum	gi1345532		0,95
482	G2649	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi10241429		0,96
482	G2649	Chlamydomonas reinhardtii	gi21218057		0,99
482	G2649	Pisum sativum	gi3426304		1
483	G2650	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER427 60	1201
483	G2650	Oryza sativa	OSC2212,C1,p1, fg	1202
483	G2650	Oryza sativa	uC- osrocyp034e01a 1	1203
483	G2650	Zea mays	LIB4740-140- A1-K1-E11	1204
483	G2650	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER112147_ 1	1205
483	G2650	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER112147_ 3	1206
483	G2650	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER36738 1	1207
483	G2650	Oryza sativa	Os S23789	1613

676/1027

483	G2650	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 50042	2066
483	G2650	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-453738	2067
484	G2650	Brassica oleracea	BH937292		2,00E-40
484	G2650	Lotus japonicus	AG245821		9,00E-31
484	G2650	Glycine max	CA799031		3,00E-29
484	G2650	Oryza sativa	AU096089		5,00E-29
484	G2650	Hordeum vulgare	BG301195		8,00E-29
484	G2650	Zea mays	CC637450		1,00E-28
484	G2650	Lactuca sativa	BU003054		1,00E-28
484	G2650	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	CB680333		1,00E-28
484	G2650	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01007185		1,00E-28
484	G2650	Medicago truncatula	BF521010		2,00E-28
484	G2650	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20804689		2,90E-30
484	G2650	Lupinus albus	gi20269127		2,00E-17
484	G2650	Oryza sativa	gi14164473		3,50E-17

677/1027

484	G2650	Lycopersicon esculentum	gi12002867		3,90E-17
484	G2650	Pueraria montana var. lobata	gi21624281		4,00E-17
484	G2650	Arundinella hirta	gi13649854		6,10E-13
484	G2650	Linaria vulgaris	gi29788739		6,80E-12
484	G2650	Digitalis purpurea	gi29788741		6,80E-12
484	G2650	Leymus triticoides	gi23307807		1,30E-11
484	G2650	Linaria canadensis	gi29788737		1,50E-11
486	G2655	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK107555		4,00E-66
486	G2655	Brassica oleracea	BH589305		2,00E-64
486	G2655	Lactuca sativa	BQ995023		1,00E-60
486	G2655	Robinia pseudoacacia	BI677665		1,00E-52
486	G2655	Glycine max	BE021887		1,00E-49
486	G2655	Medicago truncatula	CA920255		5,00E-49
486	G2655	Zea mays	CC617212		3,00E-47
486	G2655	Oryza sativa (grupo do	AAAA01002332		9,00E-47

678/1027

		cultivar indica)
486	G2655	Cicer arietinum	CAR011013		3,00E-42
486	G2655	Arachis hypogaea	CD038481		3,00E-41
486	G2655	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi19920107		2,00E-61
486	G2655	Cucumis melo	gi28558779		1,70E-50
486	G2655	Cicer arietinum	gi3641870		5,00E-42
486	G2655	Zea mays	gi1420924		9,00E-12
486	G2655	Phaseolus vulgaris	gi1142621		2,50E-11
486	G2655	Petunia x hybrida	gi10998404		6,80E-10
486	G2655	Oryza sativa	gi12643064		2,70E-08
486	G2655	Perilla frutescens	gi28375728		7,90E-08
486	G2655	Tripsacum australe	gi527663		8,90E-08
486	G2655	Mesembryan them um crystallinum	gi4206118		2,20E-07
487	G2661	Oryza sativa	OSC5501,C1,p4, fg	1208
488	G2661	Brassica oleracea	BH704648		1,00E-29

679/1027

488	G2661	Sorghum bicolor	BZ341609		1,00E-20
488	G2661	Oryza sativa	AP003252		2,00E-20
488	G2661	Zea mays	CC336314		2,00E-20
488	G2661	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01005031		5,00E-20
488	G2661	Hordeum vulgare	BF263465		3,00E-15
488	G2661	Brassica rapa subesp. pekinensis	AT002234		5,00E-15
488	G2661	Glycine max	CA783614		7,00E-15
488	G2661	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK106119		9,00E-15
488	G2661	Medicago truncatula	AC144431		1,00E-14
488	G2661	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20160648		1,60E-22
488	G2661	Oryza sativa	gi15528743		2,50E-16
488	G2661	Tulipa gesneriana	gi5923912		2,70E-07
488	G2661	Pinus taeda	gi6166283		3,50E-07
488	G2661	Petunia x hybrida	gi3127045		4,20E-07

680/1027

488	G2661	Glycine max	gi3399777		1,10E-05
488	G2661	Perilla frutescens	gi4519199		2,70E-05
488	G2661	Lycopersicon esculentum	gi6175252		5,20E-05
488	G2661	Antirrhinum majus	gi166428		7,60E-05
488	G2661	Sorghum bicolor	gi527665		0,00017
490	G2679	Glycine max	BM525733		2,00E-71
490	G2679	Lycopersicon esculentum	BI421583		2,00E-60
490	G2679	Hordeum vulgare	CD054855		4,00E-55
490	G2679	Brassica oleracea	BZ508263		2,00E-53
490	G2679	Triticum aestivum	CA600208		5,00E-52
490	G2679	Beta vulgaris	BQ583502		3,00E-40
490	G2679	Triticum monococcum	BQ800694		4,00E-40
490	G2679	Medicago truncatula	BI308837		7,00E-39
490	G2679	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	CB626016		7,00E-38
490	G2679	Oryza sativa (grupo do cultivar	AK071493		2,00E-37

681/1027

		japonica)
490	G2679	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi14587305		3,10E-33
490	G2679	Glycine max	gi4218187		2,60E-30
490	G2679	Zea mays	gi20152907		0,0046
490	G2679	Oryza sativa	gi22535907		0,066
490	G2679	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi29565495		0,066
490	G2679	Ambrosia trifida	gi114091		0,085
490	G2679	Aster tripolium	gi28804507		0,17
490	G2679	Helianthus tuberosus	gi18491030		0,39
490	G2679	Casuarina glauca	gi1223652		0,39
490	G2679	Musa acuminata	gi12006148		0,4
492	G2682	Glycine max	BM525733		4,00E-33
492	G2682	Brassica oleracea	BH435758		1,00E-31
492	G2682	Hordeum vulgare	CD054855		2,00E-31
492	G2682	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK071493		1,00E-30

682/1027

492	G2682	Lycopersicon esculentum	BI421583		5,00E-30
492	G2682	Triticum aestivum	CA600208		2,00E-26
492	G2682	Zea mays	AY103668		2,00E-24
492	G2682	Medicago truncatula	BI308837		1,00E-23
492	G2682	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	CB626016		2,00E-20
492	G2682	Zinnia elegans	AU294482		2,00E-20
492	G2682	Glycine max	gi4218187		5,90E-28
492	G2682	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi14587305		2,10E-21
492	G2682	Ambrosia trifida	gi114091		0,03
492	G2682	Zea mays	gi20152909		0,037
492	G2682	Vigna angularis	gi350610		0,078
492	G2682	Fritillaria agrestis	gi2754855		0,089
492	G2682	Vitis vinifera	gi7406673		0,16
492	G2682	Amburana acreana	gi25453051		0,24
492	G2682	Hordeum vulgare subesp.	gi29786353		0,35

683/1027

		vulgare
492	G2682	Oryza sativa	gi22535907		0,6
494	G2686	Lycopersicon esculentum	BG127023		6,00E-21
494	G2686	Solanum tuberosum	BE472874		5,00E-20
494	G2686	Glycine max	BQ612521		2,00E-19
494	G2686	Vitis vinifera	CA813725		4,00E-19
494	G2686	Populus tremula x Populus tremuloides	BU815822		2,00E-18
494	G2686	Nicotiana tabacum	AF193770		4,00E-18
494	G2686	Lactuca sativa	BQ875950		4,00E-17
494	G2686	Brassica oleracea	BH574869		6,00E-17
494	G2686	Capsicum annuum	CA847397		5,00E-16
494	G2686	Medicago truncatula	AW560120		5,00E-16
494	G2686	Nicotiana tabacum	gi7406995		3,40E-20
494	G2686	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20303630		1,90E-16
494	G2686	Matricaria chamomilla	gi17385638		1,60E-15
494	G2686	Oryza sativa	gi15290030		5,60E-14

684/1027

494	G2686	Petroselinum crispam	gi11493824		2,10E-12
494	G2686	Solanum tuberosum	gi24745606		6,20E-12
494	G2686	Capsella rubella	gi27817201		9,20E-09
494	G2686	Avena sativa	gi4894963		4,60E-08
494	G2686	Retama raetam	gi18158619		2,40E-07
494	G2686	Solanum dulcamara	gi16588566		4,20E-07
496	G2690	Brassica oleracea	BH516775		1,00E-105
496	G2690	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK065008		5,00E-39
496	G2690	Oryza sativa	AP002913		5,00E-39
496	G2690	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01002497		1,00E-35
496	G2690	Helianthus annuus	BQ971511		4,00E-35
496	G2690	Triticum aestivum	BT009310		2,00E-34
496	G2690	Zea mays	CC616336		3,00E-33
496	G2690	Brassica napus	CB686050		3,00E-33
496	G2690	Hordeum vulgare subesp.	BU994579		4,00E-28

685/1027

		vulgare
496	G2690	Gossyplum arboreum	BQ405698		7,00E-27
496	G2690	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi12328553		9,90E-39
496	G2690	Marchantia polymorpha	gi25272004		9,70E-15
496	G2690	Solanum tuberosum	gi1688233		3,60E-07
496	G2690	Lycopersicon esculentum	gi28274830		4,00E-07
496	G2690	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi1730475		5,00E-07
496	G2690	Eragrostis tef	gi17906977		1,10E-06
496	G2690	Atriplex hortensis	gi8571476		1,20E-06
496	G2690	Daucus carota	gi5578746		1,20E-06
496	G2690	Nicotiana tabacum	gi3065895		1,80E-06
496	G2690	Zea mays	gi21908036		1,90E-06
498	G2691	Brassica oleracea	BH591758		7,00E-29
498	G2691	Beta vulgaris	BQ591872		2,00E-15
498	G2691	Lycopersicon esculentum	BD194704		1,00E-14
498	G2691	Gossypium	BF279235		7,00E-13

686/1027

		arboreum
498	G2691	Nicotiana tabacum	AF058827		7,00E-13
498	G2691	Brassica rapa subesp. pekinensis	BQ791746		2,00E-12
498	G2691	Brassica napus	BQ704534		3,00E-11
498	G2691	Medicago truncatula	AJ503842		9,00E-11
498	G2691	Lactuca sativa	BQ873772		9,00E-11
498	G2691	Helianthus argophyllus	CF091307		1,00E-10
498	G2691	Lycopersicon esculentum	gi2213785		5,00E-19
498	G2691	Nicotiana tabacum	gi3065895		5,10E-17
498	G2691	Oryza sativa	gi9049421		3,70E-11
498	G2691	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi33087061		1,10E-08
498	G2691	Thellungiella halophila	gi20340233		2,00E-07
498	G2691	Narcissus pseudonarcissu s	gi18266198		2,50E-07
498	G2691	Solanum tuberosum	gi28268684		4,00E-07
498	G2691	Prunus armeniaca	gi3264767		3,50E-06

687/1027

498	G2691	Fagus sylvatica	gi18496063		6,60E-06
498	G2691	Zea mays	gi27802487		1,00E-05
500	G2694	Zea mays	BZ743538		4,4
500	G2694	Sorghum bicolor	CD463350		5,8
500	G2694	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32479831		0,04
502	G2699	Lotus japonicus	AP006085		1,00E-137
502	G2699	Medicago truncatula	AC137703		1,00E-132
502	G2699	Oryza sativa	AP003823		1,00E-123
502	G2699	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AP005149		1,00E-123
502	G2699	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01000614		1,00E-123
502	G2699	Brassica oleracea	BH956190		8,00E-65
502	G2699	Zea mays	CC730365		2,00E-62
502	G2699	Solanum tuberosum	BF052580		9,00E-50
502	G2699	Lycopersicon esculentum	BG123921		2,00E-45

688/1027

502	G2699	Glycine max	BE473856		2,00E-33
502	G2699	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi28564823		4,10E-118
502	G2699	Lycopersicon esculentum	gi13620224		8,30E-33
502	G2699	Brassica napus	gi13170126		2,20E-27
502	G2699	Oryza sativa	gi13937306		3,90E-27
502	G2699	Zea mays	gi5640155		4,00E-27
502	G2699	Lilium longiflorum	gi32813435		4,80E-27
502	G2699	Capsella rubella	gi13620166		1,10E-26
502	G2699	Triticum aestivum	gi5640157		1,70E-26
502	G2699	Hordeum vulgare	gi18254373		4,30E-26
502	G2699	Dubautia menziesii	gi20257471		2,90E-25
504	G2702	Glycine max	AW234074		3,00E-52
504	G2702	Triticum aestivum	CA730325		8,00E-47
504	G2702	Medicago truncatula	BI311137		2,00E-46
504	G2702	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	BP184381		3,00E-46
504	G2702	Oryza sativa	AX699721		5,00E-46

689/1027

504	G2702	Hordeum vulgare subesp. vulgare	BU998112		9,00E-46
504	G2702	Lycopersicon esculentum	LETHM1		2,00E-45
504	G2702	Eschscholzia californica	CD480267		3,00E-45
504	G2702	Sorghum bicolor	CD226268		6,00E-45
504	G2702	Triphysaria versicolor	BM356984		6,00E-45
504	G2702	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20146436		7,50E-48
504	G2702	Oryza sativa	gi13486737		2,00E-47
504	G2702	Lycopersicon esculentum	gi1167486		7,70E-46
504	G2702	Dendrobium sp. XMW-2002-2	gi28628949		6,20E-44
504	G2702	Hordeum vulgare	gi19059		1,60E-43
504	G2702	Gossypium hirsutum	gi13346194		2,90E-43
504	G2702	Nicotiana tabacum	gi6552389		1,20E-40
504	G2702	Fragaria x ananassa	gi15082210		2,50E-40
504	G2702	Antirrhinum	gi82310		4,40E-40

690/1027

		majus
504	G2702	Petunia x hybrida	gi20561		5,20E-40
505	G2717	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER16793 1	1209
505	G2717	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER16793 3	1210
505	G2717	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER23207 1	1211
505	G2717	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER30577 1	1212
505	G2717	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER30577 4	1213
505	G2717	Glycine max	LIB3053-003- Q1-N1-A7	1214
505	G2717	Glycine max	jC- gmle01810024c1 2a1	1215
505	G2717	Oryza sativa	AU075998,1	1216
505	G2717	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER275001_ 1	1217
505	G2717	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER62825 1	1218
505	G2717	Oryza sativa	OSC100863,C1,p 7,fg	1219
505	G2717	Oryza sativa	OSC17223,C1,p2 ,fg	1220
505	G2717	Oryza sativa	OSC21325,C1,p9 ,fg	1221

691/1027

505	G2717	Zea mays	LIB3689-236- Q1-K6-H9	1222
505	G2717	Zea mays	LIB4758-055- R2-K1-G11	1223
505	G2717	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER25294 1	1224
505	G2717	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER25294 2	1225
505	G2717	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER304 164	1226
505	G2717	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER304 172	1227
505	G2717	Oryza sativa	Os S96374	1614
505	G2717	Glycine max	Gma S4993926	1670
505	G2717	Hordeum vulgare	Hv_S134310	1744
505	G2717	Zea mays	Zm S11527070	1818
505	G2717	Triticum aestivum	Ta_S167441	1907
505	G2717	Triticum aestivum	Ta_S275432	1908
505	G2717	Triticum aestivum	Ta_S88094	1909
505	G2717	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 51988	2068
505	G2717	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-393701	2069
506	G2717	Brassica napus	CD814949		7,00E-90
506	G2717	Oryza sativa (grupo do	AK100618		2,00E-74

692/1027

		cultivar japonica)
506	G2717	Lycopersicon esculentum	BG127613		3,00E-65
506	G2717	Vitis vinifera	CB007263		5,00E-63
506	G2717	Ipomoea nil	BJ563043		2,00E-61
506	G2717	Medicago truncatula	BF003720		3,00E-61
506	G2717	Pennisetum ciliare	BM084769		2,00E-58
506	G2717	Glycine max	BU964889		3,00E-55
506	G2717	Solanum tuberosum	BQ119267		2,00E-54
506	G2717	Hordeum vulgare	BM816006		4,00E-52
506	G2717	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20146249		1,10E-69
506	G2717	Zea mays	gi18463961		1,80E-39
506	G2717	Petroselinum crispum	gi2224899		7,80E-21
506	G2717	Nicotiana tabacum	gi1084419		2,20E-14
506	G2717	Triticum aestivum	gi283024		5,10E-14
506	G2717	Fritillaria liliacea	gi15281590		1,10E-13
506	G2717	Lycopersicon esculentum	gi3021487		5,40E-13

693/1027

506	G2717	Fritillaria agrestis	gi2641211		2,70E-12
506	G2717	Medicago truncatula	gi32966575		3,10E-11
506	G2717	Lens culinaris	gi13540405		6,10E-11
507	G2718	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER31802 1	1057
507	G2718	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER586 102	1058
507	G2718	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER586 116	1059
507	G2718	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER8724 1	1060
507	G2718	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER8724 2	1061
507	G2718	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER30974 3	1063
507	G2718	Oryza sativa	OSC20053,C1,p5 ,fg	1064
507	G2718	Oryza sativa	OSC20055,C1,p5 ,fg	1065
507	G2718	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER69699 1	1066
507	G2718	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER69699 2	1067
507	G2718	Glycine max	Gma S4901946	1663
507	G2718	Triticum aestivum	Ta_S45274	1883
508	G2718	Brassica oleracea	BH961028		1,00E-24

694/1027

508	G2718	Populus tremula x Populus tremuloides	BU831849		3,00E-21
508	G2718	Populus balsamifera subesp. Trichocarpa	BU872107		3,00E-21
508	G2718	Vitis vinifera	BM437313		6,00E-20
508	G2718	Vitis aestivalis	CB289238		3,00E-19
508	G2718	Glycine max	BI699876		2,00E-18
508	G2718	Pinus pinaster	AL750151		4,00E-16
508	G2718	Hordeum vulgare subesp. vulgare	AV911235		1,00E-12
508	G2718	Nuphar advena	CD473522		2,00E-12
508	G2718	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	CB684618		4,00E-12
508	G2718	Solanum tuberosum	gi9954118		7,20E-11
508	G2718	Vitis labrusca x Vitis vinifera	gi22266671		3,10E-10
508	G2718	Gossypium hirsutum	gi23476287		3,10E-10
508	G2718	Gossypium	gi23476291		3,10E-10

695/1027

		raimiondii
508	G2718	Gossypium herbaceum	gi23476293		3,10E-10
508	G2718	Gossypioides kirkii	gi23476295		3,10E-10
508	G2718	Fragaria x ananassa	gi15082210		5,00E-10
508	G2718	Oryza sativa	gi19072770		6,40E-10
508	G2718	Zea luxurians	gi15042120		8,20E-10
508	G2718	Zea mays	gi19548449		8,20E-10
509	G2723	Oryza sativa	rsicek_8958,y1 , abd	1228
510	G2723	Brassica rapa	L38243		8,00E-40
510	G2723	Vitis vinifera	CB920052		1,00E-26
510	G2723	Populus tremula	BU890694		2,00E-26
510	G2723	Phaseolus coccineus	CA897021		6,00E-25
510	G2723	Eucalyptus grandis	CD669972		3,00E-24
510	G2723	Glycine max.	BG726181		5,00E-24
510	G2723	Lycopersicon esculentum	AJ320067		3,00E-23
510	G2723	Lotus japonicus	AP004546		3,00E-23
510	G2723	Solanum tuberosum	BI433702		7,00E-23
510	G2723	Capsicum annuum	BM060888		6,00E-22
510	G2723	Lycopersicon	gi7981380		2,50E-24

696/1027

		esculentum
510	G2723	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20161824		1,10E-21
510	G2723	Oryza sativa	gi5091605		3,80E-21
510	G2723	Hevea brasiliensis	gi12005328		1,20E-14
510	G2723	Antirrhinum majus	gi18874265		7,30E-14
510	G2723	Glycine max	gi19911577		5,40E-13
510	G2723	Solanum demissum	gi15209176		8,30E-13
510	G2723	Lilium longiflorum	gi31442292		0,0034
510	G2723	Volvox carteri f. nagariensis	gi4633127		0,012
510	G2723	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi10443488		0,64
511	G2741	Glycine max	BG508638,1	1229
511	G2741	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER5654 1	1230
511	G2741	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER5654 2	1231
511	G2741	Oryza sativa	OSC102289,C1,p 18,fg	1232
511	G2741	Oryza sativa	OSC5384,C1,p5, fg	1233

697/1027

511	G2741	Oryza sativa	rsicen_25533,y 1,abd	1234
511	G2741	Oryza sativa	rsicen_8566,y1 , abd	1235
511	G2741	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER73638 1	1236
511	G2741	Glycine max	Gma S4922181	1671
511	G2741	Hordeum vulgare	Hv_S24580	1745
511	G2741	Zea mays	Zm S11434269	1819
511	G2741	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 50878	2070
511	G2741	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-356106	2071
512	G2741	Oryza sativa	AP003277		2,00E-56
512	G2741	Brassica oleracea	BZ506408		6,00E-48
512	G2741	Zea mays	BZ709707		1,00E-47
512	G2741	Glycine max	CA953428		4,00E-45
512	G2741	Lycopersicon esculentum	BE432293		3,00E-39
512	G2741	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AC130607		7,00E-39
512	G2741	Hordeum vulgare	BE559431		2,00E-37
512	G2741	Oryza minuta	CB210034		2,00E-34
512	G2741	Oryza sativa (grupo do	AAAA01011300		5,00E-34

698/1027

		cultivar indica)
512	G2741	Lactuca sativa	BU000462		1,00E-33
512	G2741	Oryza sativa	gi15289981		3,20E-57
512	G2741	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20160613		9,30E-29
512	G2741	Zea mays	gi13661174		3,00E-25
512	G2741	Oryza glaberrima	gi31338862		2,50E-13
512	G2741	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi31338860		7,60E-13
512	G2741	Chlamydomonas reinhardtii	gi5916207		3,20E-11
512	G2741	Mesembryanthem um crystallinum	gi6942190		7,90E-11
512	G2741	Nicotiana tabacum	gi4519671		1,20E-09
512	G2741	Solanum bulbocastanum	gi32470629		4,30E-09
512	G2741	Pisum sativum	gi23504755		0,063
514	G2743	Medicago truncatula	CF068634		3,00E-50
514	G2743	Oryza sativa (grupo do cultivar	AK064355		2,00E-49

699/1027

		japonica)
514	G2743	Solanum tuberosum	BQ513305		2,00E-40
514	G2743	Lycopersicon pennellii	AW398166		7,00E-40
514	G2743	Populus trenuiloides	CA926221		4,00E-38
514	G2743	Brassica oleracea	BH485910		9,00E-37
514	G2743	Lycopersicon esculentum	BE450553		3,00E-36
514	G2743	Glycine max	BM524732		3,00E-33
514	G2743	Hordeum vulgare subesp. vulgare	BU988945		1,00E-30
514	G2743	Prunus armeniaca	CB820349		4,00E-27
514	G2743	Oryza sativa	gi11034542		1,50E-49
514	G2743	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi31415946		4,50E-41
514	G2743	Zea mays	gi14189890		4,30E-12
514	G2743	Chlamydomonas reinhardtii	gi5916207		5,00E-12
514	G2743	Mesembryanthem um crystallinum	gi6942190		1,80E-10
514	G2743	Solanum	gi32470629		2,40E-09

700/1027

		bulbocastanum
514	G2743	Nicotiana tabacum	gi4519671		4,80E-09
514	G2743	Oryza glaberrima	gi31338862		1,30E-08
514	G2743	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi31338860		8,10E-08
514	G2743	Hordeum vulgare	gi12406993		0,079
516	G2747	Brassica oleracea	BH542430		1,00E-110
516	G2747	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01011764		1,00E-51
516	G2747	Lycopersicon esculentum	BI934304		3,00E-51
516	G2747	Oryza sativa	AX654655		7,00E-51
516	G2747	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK106367		3,00E-50
516	G2747	Lactuca sativa	BU005803		1,00E-49
516	G2747	Zea mays	AC144718		9,00E-44
516	G2747	Solanum tuberosum	BQ119486		1,00E-43
516	G2747	Capsicum annuum	BM063508		1,00E-42

701/1027

516	G2747	Glycine max	AW760132		3,00E-39
516	G2747	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi21426118		2,80E-52
516	G2747	Marchantia polymorpha	gi25272004		7,10E-39
516	G2747	Oryza sativa	gi19352041		2,30E-09
516	G2747	Prunus persica	gi27450533		7,10E-09
516	G2747	Mangifera indica	gi31747324		3,60E-08
516	G2747	Eragrostis tef	gi17906977		7,70E-08
516	G2747	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi1730475		1,00E-07
516	G2747	Phaseolus vulgaris	gi1046278		9,40E-07
516	G2747	Pisum sativum	gi22335711		1,20E-06
516	G2747	Zea mays	gi100922		4,00E-06
517	G2754	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER34285 1	1237
517	G2754	Glycine max	LIB4167-054- R1-KL-B3	1238
517	G2754	Oryza sativa	AU062733,2	1239
517	G2754	Oryza sativa	LIB4309-004- Q1-K1-B9	1240
517	G2754	Oryza sativa	OSC13803,C1,p1 ,fg	1241
517	G2754	Zea mays	ZEAMA-08NOV01-	1242

702/1027

			CLUSTER33736 2
517	G2754	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER41889 1	1243
517	G2754	Oryza sativa	Os S24071	1615
517	G2754	Hordeum vulgare	Hv_S103555	1746
517	G2754	Zea mays	Zm S11456823	1820
517	G2754	Zea mays	Zm S11521388	1821
517	G2754	Zea mays	Zm S11523999	1822
517	G2754	Triticum aestivum	Ta_S210098	1910
517	G2754	Triticum aestivum	Ta_S272733	1911
518	G2754	Zea mays	AF461813		1,0e-999
518	G2754	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK100732		1,00E-128
518	G2754	Chenopodium amaran ti col or	AX652119		1,00E-111
518	G2754	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01000051		2,00E-92
518	G2754	Triticum aestivum	CA499811		6,00E-90
518	G2754	Hordeum vulgare subesp. vulgare	CB882737		4,00E-86

703/1027

518	G2754	Lactuca sativa	BU006379		7,00E-86
518	G2754	Oryza sativa	AP004006		6,00E-84
518	G2754	Medicago truncatula	BQ122721		1,00E-83
518	G2754	Nicotiana tabacum	BP129768		6,00E-77
518	G2754	Zea mays	gi18463957		3,30E-251
518	G2754	Oryza sativa	gi12083522		1,70E-132
518	G2754	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi21952816		5,30E-86
518	G2754	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi23193479		1,20E-83
518	G2754	Hordeum vulgare	gi23193481		5,60E-82
518	G2754	Triticum monococcum	gi23193487		1,20E-81
518	G2754	Glycine max	gi25172762		3,30E-15
518	G2754	Nicotiana tabacum	gi8096269		0,54
518	G2754	Lycopersicon esculentum	gi4731573		0,87
518	G2754	Alnus glutinosa	gi2467082		0,9
520	G2757	Brassica napus	CD833979		1,00E-109
520	G2757	Brassica oleracea	BH475285		3,00E-85

704/1027

520	G2757	Glycine max	AI494758		4,00E-29
520	G2757	Medicago truncatula	CB891664		2,00E-27
520	G2757	Ipomoea nil	BJ553668		4,00E-26
520	G2757	Oryza sativa	AC084763		1,00E-25
520	G2757	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AE017120		1,00E-25
520	G2757	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01000681		1,00E-25
520	G2757	Zea mays	BZ420052		5,00E-25
520	G2757	Lycopersicon esculentum	BG132323		1,00E-24
520	G2757	Oryza sativa	gi12597883		3,90E-39
520	G2757	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi31433545		3,90E-39
520	G2757	Nicotiana tabacum	gi18149189		1,50E-14
520	G2757	Zea mays	gi5731354		0,97
520	G2757	Glycine max	gi18182311		0,99
520	G2757	Zinnia elegans	gi531098		0,99
520	G2757	Chloroplast Phaseolus vulgaris	gi21309708		1
520	G2757	Phalaenopsis	gi1173628		1

705/1027

		sp. SM9108
520	G2757	Ranunculus ficaria	gi27995073		1
520	G2757	Cucumis melo	gi7595346		1
521	G2763	Hordeum vulgare	Hv_S114962	1747
522	G2763	Brassica oleracea	BH560418		3,00E-75
522	G2763	Thellungiella halophila	BM986046		3,00E-73
522	G2763	Poncirus trifoliata	CD575942		3,00E-54
522	G2763	Populus tremula x Populus tremuloides	BU896429		2,00E-50
522	G2763	Ipomoea nil	BJ574783		1,00E-48
522	G2763	Solanum tuberosum	BG351877		2,00E-47
522	G2763	Glycine max	CD415130		8,00E-43
522	G2763	Lycopersicon esculentum	BM409924		9,00E-42
522	G2763	Medicago truncatula	AC135100		9,00E-42
522	G2763	Theobroma cacao	CA797288		4,00E-41
522	G2763	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi24059889		4,80E-21

706/1027

522	G2763	Tulipa gesneriana	gi5923912		0,03
522	G2763	Ananas comosus	gi25044805		0,034
522	G2763	Oryza sativa	gi5852091		0,29
522	G2763	Oryza longistaminata	gi1086530		0,66
522	G2763	Zea mays	gi1244653		0,76
522	G2763	Oryza rufipogon	gi1086536		0,85
522	G2763	Quercus robur	gi33111961		0,98
522	G2763	Triticum monococcum	gi30090030		1
522	G2763	Glycine max	gi3399777		1
524	G2765	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK106649		4,00E-61
524	G2765	Lycopersicon esculentum	AI488313		5,00E-60
524	G2765	Brassica oleracea	BH582059		4,00E-51
524	G2765	Glycine max	BE020519		2,00E-50
524	G2765	Oryza sativa subesp. japonica	AU093196		4,00E-49
524	G2765	Populus tremula x Populus tremuloides	BU813371		1,00E-37
524	G2765	Medicago	BF647687		2,00E-37

707/1027

		truncatula
524	G2765	Pinus pinaster	BX252556		1,00E-32
524	G2765	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	BU869748		4,00E-32
524	G2765	Zea mays	BZ644709		3,00E-31
524	G2765	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32129332		2,30E-30
524	G2765	Oryza sativa	gi10800070		3,80E-28
524	G2765	Pennisetum glaucum	gi527655		8,40E-09
524	G2765	Perilla frutescens	gi28375728		1,30E-08
524	G2765	Sorghum bicolor	gi527665		1,40E-08
524	G2765	Oryza australiensis	gi1086526		1,80E-08
524	G2765	Oryza rufipogon	gi1086536		2,30E-08
524	G2765	Phyllostachys acuta	gi527661		3,80E-08
524	G2765	Oryza longistaminata	gi1086530		4,90E-08
524	G2765	Oryza officinalis	gi1086534		1,00E-07
525	G2768	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER48270 1	1244

708/1027

525	G2768	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER48270 2	1245
525	G2768	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER48270 6	1246
525	G2768	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER777019_ 1	1247
525	G2768	Glycine max	LIB4165-033- Q1-K1-E7	1248
525	G2768	Glycine max	jC- gmle01810065e0 9d1	1249
525	G2768	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER22 6	1250
525	G2768	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER22 7	1251
525	G2768	Oryza sativa	OSC10851,C1,p4 ,fg	1252
525	G2768	Oryza sativa	OSC19157,C1,p4 ,fg	1253
525	G2768	Oryza sativa	OSC32936,C1,p1 ,fg	1254
525	G2768	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER21189 1	1255
525	G2768	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER21189 3	1256
525	G2768	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER35998 1	1257
525	G2768	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER692790	1258

709/1027

			1
525	G2768	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER697 56	1259
525	G2768	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER697 59	1260
525	G2768	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER697 60	1261
525	G2768	Hordeum vulgare	Hv_S30775	1748
525	G2768	Triticum aestivum	Ta_S127458	1912
525	G2768	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 49806	2072
525	G2768	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 51288	2073
525	G2768	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-13430	2074
526	G2768	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK106568		1,00E-146
526	G2768	Beta vulgaris	BQ589936		7,00E-72
526	G2768	Brassica oleracea	BZ518223		2,00E-64
526	G2768	Medicago truncatula	AC119408		2,00E-56
526	G2768	Hordeum vulgare subesp. vulgare	BQ758728		2,00E-56

710/1027

526	G2768	Sorghum bicolor	CD222928		9,00E-56
526	G2768	Lycopersicon esculentum	BI931469		3,00E-53
526	G2768	Oryza sativa	AC087545		2,00E-49
526	G2768	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01000530		2,00E-49
526	G2768	Ceratopteris richardii	BE640922		1,00E-35
526	G2768	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi31432245		9,90E-155
526	G2768	Oryza sativa	gi14028993		2,00E-08
526	G2768	Nicotiana pl umbaginifoli a	gi3850823		1,50E-07
526	G2768	Lycopersicon esculentum	gi9858779		3,70E-06
526	G2768	Cucurbita maxima	gi17221648		1,10E-05
526	G2768	Ipomoea nil	gi11127996		3,80E-05
526	G2768	Rosa hybrid cultivar	gi15029364		0,0001
526	G2768	Pisum sativum	gi7688063		0,00022
526	G2768	Hordeum vulgare subesp.	gi520943		0,00053

711/1027

		vulgare
526	G2768	Hordeum vulgare	gi629788		0,00053
528	G2771	Glycine max	CA783908		1,00E-35
528	G2771	Brassica oleracea	BZ510921		3,00E-33
528	G2771	Lycopersicon esculentum	BE431510		1,00E-30
528	G2771	Amborella trichopoda	CD482068		1,00E-29
528	G2771	Prunus dulcis	BU574318		2,00E-29
528	G2771	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK060505		6,00E-28
528	G2771	Solanum tuberosum	BG591063		4,00E-27
528	G2771	Populus tremula x Populus tremuloides	BU866069		4,00E-27
528	G2771	Oryza minuta	CB209966		1,00E-26
528	G2771	Sorghum bicolor	BE598711		2,00E-26
528	G2771	Oryza sativa	gi31043851		6,10E-27
528	G2771	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi23495742		3,10E-25
528	G2771	Tulipa	gi5923912		1,40E-14

712/1027

		gesneriana
528	G2771	Oryza rufipogon	gi1086538		1,70E-07
528	G2771	Pennisetum glaucum	gi527653		1,70E-07
528	G2771	Phyllostachys acuta	gi527661		1,70E-07
528	G2771	Sorghum bicolor	gi527665		1,70E-07
528	G2771	Gossypium hirsutum	gi13346180		1,10E-06
528	G2771	Zea mays	gi100921		1,20E-06
528	G2771	Oryza officinalis	gi1086534		1,20E-06
529	G2776	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER10667 1	1262
529	G2776	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER249 1	1263
529	G2776	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER27648 1	1264
529	G2776	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER318 3	1265
529	G2776	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER318 5	1266
529	G2776	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER362284_ 1	1267
529	G2776	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER38253 1	1268
529	G2776	Glycine max	GLYMA-28NOV01-	1269

713/1027

			CLUSTER92523 2
529	G2776	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER92523 4	1270
529	G2776	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER278119_ 1	1271
529	G2776	Oryza sativa	OSC21904,C1,p3 ,fg	1272
529	G2776	Oryza sativa	OSC22826,C1,p1 1,fg	1273
529	G2776	Oryza sativa	OSC6897,C1,p1, fg	1274
529	G2776	Oryza sativa	OSC9960,C1,p2, fg	1275
529	G2776	Oryza sativa	OSC9961,C1,p3, fg	1276
529	G2776	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER607309_ 1	1277
529	G2776	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER81320 1	1278
529	G2776	Glycine max	Gma S4925755	1672
529	G2776	Glycine max	Gma S5146563	1673
529	G2776	Triticum aestivum	Ta_S121078	1913
529	G2776	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 49159	2075
529	G2776	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-357057	2076
530	G2776	Brassica	BZ437288		5,00E-48

714/1027

		oleracea
530	G2776	Glycine max	AF069738		2,00E-47
530	G2776	Lotus japonicus	AI967554		4,00E-46
530	G2776	Lycopersicon esculentum	AI896266		1,00E-45
530	G2776	Populus tremula x Populus tremuloides	BU884552		4,00E-43
530	G2776	Medicago truncatula	AW775712		4,00E-40
530	G2776	Mesembryan them um crystallinum	AF097665		2,00E-38
530	G2776	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AC145380		2,00E-33
530	G2776	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01000416		2,00E-33
530	G2776	Triticum aestivum	BQ483543		2,00E-30
530	G2776	Glycine max	gi3399777		1,40E-48
530	G2776	Mesembryan them um crystallinum	gi4206118		7,40E-41
530	G2776	Oryza sativa	gi29788848		4,70E-33

715/1027

		(grupo do cultivar japonica)
530	G2776	Oryza sativa	gi18542931		6,60E-24
530	G2776	Phaseolus vulgaris	gi1142619		6,10E-19
530	G2776	Lycopersicon esculentum	gi6175252		5,80E-16
530	G2776	Zea mays	gi4321762		4,70E-15
530	G2776	Petunia x hybrida	gi10998404		2,30E-14
530	G2776	Pennisetum glaucum	gi527653		2,80E-12
530	G2776	Phyllostachys acuta	gi527661		7,80E-12
532	G2777	Medicago truncatula	BF521311		1,00E-64
532	G2777	Brassica napus	CD813382		1,00E-64
532	G2777	Citrus sinensis	CB293518		6,00E-56
532	G2777	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK071315		2,00E-53
532	G2777	Glycine max	AW832440		5,00E-53
532	G2777	Lactuca sativa	BQ870016		1,00E-52
532	G2777	Brassica rapa subesp. pekinensis	BG544499		3,00E-52
532	G2777	Populus	BU831324		4,00E-40

716/1027

		tremula x Populus tremuloides
532	G2777	Brassica oleracea	BZ432234		4,00E-38
532	G2777	Lycopersicon esculentum	BI926824		5,00E-37
532	G2777	Phyllostachys acuta	gi527661		1,20E-06
532	G2777	Pennisetum glaucum	gi527655		2,00E-06
532	G2777	Lycopersicon esculentum	gi23600383		2,10E-06
532	G2777	Sorghum bicolor	gi527665		5,30E-06
532	G2777	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi22758263		6,10E-06
532	G2777	Tripsacum australe	gi527663		6,80E-06
532	G2777	Phaseolus vulgaris	gi1142621		8,60E-06
532	G2777	Oryza rufipogon	gi1086536		8,70E-06
532	G2777	Oryza australiensis	gi1086526		1,80E-05
532	G2777	Oryza sativa	gi15451582		2,10E-05
534	G2779	Glycine max	BE347561		4,00E-47
534	G2779	Populus	BU811904		2,00E-43

717/1027

		tremula x Populus tremuloides
534	G2779	Medicago truncatula	CB066613		1,00E-29
534	G2779	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK059041		2,00E-29
534	G2779	Triticum aestivum	BJ211785		5,00E-29
534	G2779	Zea mays	CB604124		1,00E-28
534	G2779	Lycopersicon esculentum	AI490119		3,00E-28
534	G2779	Lotus corniculatus var. japonicus	CB828026		3,00E-28
534	G2779	Hordeum vulgare subesp. vulgare	CA003238		7,00E-28
534	G2779	Capsicum annuum	CA522636		7,00E-28
534	G2779	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20804997		1,20E-30
534	G2779	Tulipa gesneriana	gi5923912		2,30E-30
534	G2779	Oryza sativa	gi11862964		7,90E-28

718/1027

534	G2779	Pinus taeda	gi6166283		4,20E-10
534	G2779	Glycine max	gi3399777		3,00E-05
534	G2779	Gossypium hirsutum	gi13346182		5,30E-05
534	G2779	Sorghum bicolor	gi527665		0,00018
534	G2779	Brassica napus	gi27650307		0,00023
534	G2779	Petunia x hybrida	gi10998404		0,0005
534	G2779	Phaseolus vulgaris	gi1142621		0,00071
536	G2783	Nicotiana plumbaginifoli a	NPL292767		1,00E-127
536	G2783	Zea mays	AY107267		1,00E-125
536	G2783	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK101593		1,00E-124
536	G2783	Gossypium hirsutum	CA993585		1,00E-113
536	G2783	Beta vulgaris	BVU313097		1,00E-110
536	G2783	Medicago truncatula	CB893695		1,00E-104
536	G2783	Triticum aestivum	BT009299		1,00E-102
536	G2783	Nicotiana tabacum	AF029351		3,00E-97
536	G2783	Glycine max	CA784546		1,00E-96
536	G2783	Gossypium	BF278029		8,00E-94

719/1027

		arboreum
536	G2783	Nicotiana plumbaginifoli a	gi9663767		9,00E-123
536	G2783	Oryza sativa	gi12583812		2,50E-120
536	G2783	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32488785		2,50E-120
536	G2783	Beta vulgaris	gi30524689		1,60E-107
536	G2783	Nicotiana tabacum	gi2708532		3,70E-94
536	G2783	Sorghum bicolor	gi22208507		2,70E-28
536	G2783	Zea mays	gi23928438		5,10E-25
536	G2783	Solanum tuberosum	gi17432522		7,90E-22
536	G2783	Nicotiana sylvestris	gi100293		5,40E-19
536	G2783	Cucumis sativus	gi7528270		6,70E-18
537	G2784	Glycine max	Gma S5128871	1674
537	G2784	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-68213	2077
538	G2784	Brassica oleracea	BH966813		6,00E-65
538	G2784	Mesembryan them um crystallinum	BE034373		2,00E-62
538	G2784	Glycine max	BE659785		2,00E-60

720/1027

538	G2784	Populus tremula	BU821418		1,00E-42
538	G2784	Lycopersicon esculentum	AW218420		2,00E-35
538	G2784	Solanum tuberosum	BQ115041		2,00E-31
538	G2784	Oryza sativa	OSJN00052		8,00E-31
538	G2784	Zea mays	CC656270		8,00E-29
538	G2784	Pinus taeda	BF516719		6,00E-27
538	G2784	Medicago truncatula	BG589047		2,00E-26
538	G2784	Oryza sativa	gi21740764		4,30E-68
538	G2784	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi31433498		8,30E-30
538	G2784	Chlamydomonas reinhardtii	gi18137		0,36
538	G2784	Lycopersicon esculentum	gi170408		0,96
538	G2784	Physcomitrella patens	gi11181645		0,98
538	G2784	Nicotiana tabacum	gi237857		1
540	G2790	Brassica oleracea	BH660922		1,00E-35
540	G2790	Medicago truncatula	BQ124408		5,00E-27
540	G2790	Oryza sativa (grupo do	AK072833		6,00E-27

721/1027

		cultivar japonica)
540	G2790	Populus tremula x Populus tremuloides	BU895329		9,00E-26
540	G2790	Gossypium arboreum	BG440718		1,00E-25
540	G2790	Glycine max	BG046947		2,00E-25
540	G2790	Solanum tuberosum	BQ514720		4,00E-25
540	G2790	Gossypium hirsutum	CA993210		1,00E-24
540	G2790	Lycopersicon esculentum	AF096263		2,00E-24
540	G2790	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	AI166770		4,00E-24
540	G2790	Oryza sativa	gi14488370		8,00E-28
540	G2790	Brassica napus	gi11045087		3,10E-26
540	G2790	Lycopersicon esculentum	gi5669656		1,00E-25
540	G2790	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32480231		2,20E-25
540	G2790	Glycine max	gi3399777		0,0012
540	G2790	Pennisetum glaucum	gi527657		0,002

722/1027

540	G2790	Tulipa gesneriana	gi5923912		0,004
540	G2790	Zea mays	gi18568238		0,009
540	G2790	Phaseolus vulgaris	gi1142621		0,022
540	G2790	Oryza rufipogon	gi1086538		0,037
542	G2802	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK106152		1,00E-132
542	G2802	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	CB630225		1,00E-102
542	G2802	Medicago truncatula	BQ148509		7,00E-98
542	G2802	Pinus pinaster	BX251486		7,00E-84
542	G2802	Hordeum vulgare	BI960052		1,00E-77
542	G2802	Brassica oleracea	BH656772		3,00E-76
542	G2802	Populus tremula x Populus tremuloides	BI129724		3,00E-76
542	G2802	Pinus taeda	BF518231		9,00E-74
542	G2802	Glycine max	BM527360		1,00E-71
542	G2802	Triticum aestivum	BJ315410		6,00E-67

723/1027

542	G2802	Oryza sativa	gi9049470		2,30E-85
542	G2802	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi18461166		3,50E-78
542	G2802	Brassica napus	gi12751304		1,20E-49
542	G2802	Petunia x hybrida	gi21105748		3,70E-09
542	G2802	Triticum monococcum	gi6732154		3,10E-08
542	G2802	Solanum tuberosum	gi14485513		1,10E-07
542	G2802	Triticum sp.	gi4218535		3,30E-06
542	G2802	Phaseolus vulgaris	gi15148912		9,00E-06
542	G2802	Lycopersicon esculentum	gi6175246		3,50E-05
542	G2802	Medicago truncatula	gi7716952		4,20E-05
544	G2805	Brassica oleracea	BZ506570		4,00E-27
544	G2805	Gossypium hirsutum	CA992724		6,00E-05
544	G2805	Glycine max	CA802497		3,00E-04
544	G2805	Lycopersicon esculentum	BE460507		0,002
544	G2805	Eschscholzia californica	CD480753		0,005
544	G2805	Oryza sativa (grupo do	AK062955		0,005

724/1027

		cultivar japonica)
544	G2805	Sorghum bicolor	BE363054		0,016
544	G2805	Solanum tuberosum	BM406262		0,016
544	G2805	Gossypium arboreum	BG440924		0,035
544	G2805	Lactuca sativa	BQ850404		0,079
544	G2805	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi21741263		0,00027
544	G2805	Petunia x hybrida	gi21389179		0,00048
544	G2805	Oryza sativa	gi13129497		0,0027
544	G2805	Glycine max	gi22597158		0,05
544	G2805	Lycopersicon esculentum	gi6175246		0,35
544	G2805	Phaseolus vulgaris	gi15148914		0,54
544	G2805	Medicago truncatula	gi7716952		0,61
544	G2805	Theobroma cacao	gi15487902		0,87
544	G2805	Triticum monococcum	gi6732156		1
544	G2805	Papaver somniferum	gi169002		1
545	G2826	Glycine max	GLYMA-28NOV01-	753

725/1027

			CLUSTER166362_ 1
545	G2826	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER180202_ 1	754
545	G2826	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER726571_ 1	755
545	G2826	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER74662 1	756
545	G2826	Glycine max	uC- gmflminsoy032f 06b1	757
545	G2826	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER173260_ 2	758
545	G2826	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER200967_ 1	759
545	G2826	Oryza sativa	OSC100895,C1,p 14,fg	760
545	G2826	Oryza sativa	OSC22205,C1,p1 ,fg	1279
545	G2826	Oryza sativa	OSC23411,C1,p1 ,fg	761
545	G2826	Oryza sativa	OSC2409,C1,p2, fg	762
545	G2826	Oryza sativa	OSC25680,C1,p1 ,fg	763
545	G2826	Zea mays	ZEAMA-08NOV01-	764

726/1027

			CLUSTER436044_ 1
545	G2826	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER518126_ 1	765
545	G2826	Oryza sativa	Os S106189	1616
545	G2826	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 54039	1959
545	G2826	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 54252	1960
545	G2826	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-392715	1961
546	G2826	Brassica oleracea	BH725134		7,00E-79
546	G2826	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01004859		1,00E-37
546	G2826	Oryza sativa	AP003214		2,00E-37
546	G2826	Lotus japonicus	BU494379		1,00E-36
546	G2826	Glycine max	BI315690		6,00E-35
546	G2826	Lycopersicon esculentum	BG135559		1,00E-33
546	G2826	Medicago truncatula	BF004070		5,00E-32
546	G2826	Beta vulgaris	BQ488216		4,00E-26
546	G2826	Sorghum bicolor	BE358938		1,00E-21
546	G2826	Populus	BU877646		1,00E-20

727/1027

		balsamifera subesp. trichocarpa
546	G2826	Oryza sativa	gi15528588		3,00E-35
546	G2826	Sorghum bicolor	gi18390109		8,30E-17
546	G2826	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32482926		9,80E-07
546	G2826	Petunia x hybrida	gi14275902		1,50E-05
546	G2826	Pisum sativum	gi7008009		0,00016
546	G2826	Zea ramosa	gi18674684		0,0002
546	G2826	Silene latifolia	gi1628463		0,00045
546	G2826	Lycopersicon esculentum	gi1345540		0,0006
546	G2826	Nicotiana tabacum	gi14516835		0,0017
546	G2826	Rumex obtusifolius	gi20152613		0,0022
547	G2830	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER16384 5	1280
548	G2830	Brassica oleracea	BH993354		9,00E-65
548	G2830	Glycine max	BM177052		5,00E-13
548	G2830	Phaseolus coccineus	CA902517		3,00E-08
548	G2830	Lotus	AP006108		8,00E-07

728/1027

		japonicus
548	G2830	Zea mays	BZ652013		5,9
548	G2830	Mesembryanthem um crystallinum	BG269090		7,7
548	G2830	Medicago truncatula	AC135797		7,7
548	G2830	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	BI137362		7,7
548	G2830	Zea mays subesp. mays	gi31414978		0,96
548	G2830	Nicotiana tabacum	gi8099397		0,99
550	G2832	Brassica oleracea	BZ004148		4,00E-39
550	G2832	Petunia x hybrida	AB003672		8,00E-36
550	G2832	Limnanthes alba	BV007314		2,00E-20
550	G2832	Medicago truncatula	CB892199		6,00E-10
550	G2832	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK106924		7,00E-10
550	G2832	Oryza sativa (grupo do cultivar	AAAA01002475		7,00E-10

729/1027

		indica)
550	G2832	Oryza sativa	AC037426		7,00E-10
550	G2832	Solanum demissum	AC136471		2,00E-08
550	G2832	Lactuca sativa	BU015249		7,00E-08
550	G2832	Zea mays	CC408365		5,00E-06
550	G2832	Petunia x hybrida	gi1786146		9,30E-50
550	G2832	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32482980		9,10E-11
550	G2832	Medicago sativa	gi7228329		6,40E-08
550	G2832	Glycine max	gi1763063		7,20E-06
550	G2832	Pisum sativum	gi2129892		4,10E-05
550	G2832	Nicotiana tabacum	gi2981169		8,90E-05
550	G2832	Triticum aestivum	gi485814		0,00041
550	G2832	Oryza sativa	gi12698882		0,00046
550	G2832	Brassica rapa	gi2058504		0,00055
550	G2832	Datisca glomerata	gi4666360		0,0066
552	G2834	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01001233		1,00E-126
552	G2834	Oryza sativa (grupo do	AK072211		1,00E-126

730/1027

		cultivar japonica)
552	G2834	Oryza sativa	AP003235		1,00E-126
552	G2834	Brassica oleracea	BZ014527		1,00E-106
552	G2834	Vitis vinifera	BM436747		1,00E-105
552	G2834	Zea mays	AY106636		1,00E-101
552	G2834	Ipomoea batatas	BM878854		3,00E-95
552	G2834	Glycine max	BQ741681		3,00E-94
552	G2834	Solanum tuberosum	BE343020		3,00E-92
552	G2834	Lycopersicon esculentum	BE459539		1,00E-88
552	G2834	Oryza sativa	gi15408708		2,40E-123
552	G2834	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi19571114		2,40E-123
552	G2834	Lycopersicon esculentum	gi15984226		3,40E-75
552	G2834	Glycine max	gi18376601		2,30E-29
552	G2834	Solanum tuberosum	gi563623		1,10E-20
552	G2834	Zea mays	gi3170601		1,80E-19
552	G2834	Petunia x hybrida	gi14522848		0,51
552	G2834	Nicotiana tabacum	gi4519673		0,73
552	G2834	Oryza sativa	gi28195113		0,99

731/1027

		(grupo do cultivar indica)
552	G2834	Brassica rapa	gi7209506		1
554	G2837	Brassica oleracea	BZ451120		4,00E-55
554	G2837	Vitis vinifera	CD010326		9,00E-13
554	G2837	Glycine max	AQ842019		3,00E-09
554	G2837	Zea mays	BZ806743		3,00E-06
554	G2837	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01007143		8,00E-06
554	G2837	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AP003988		1,00E-05
554	G2837	Brassica napus	CB686322		4,00E-05
554	G2837	Lotus japonicus	AP004945		9,00E-05
554	G2837	Triticum aestivum	CA708862		2,00E-04
554	G2837	Petunia x hybrida	AB000454		4,00E-04
554	G2837	Petunia x hybrida	gi1786140		2,40E-05
554	G2837	Zea diploperennis	gi1076786		0,00014
554	G2837	Pisum sativum	gi7440062		0,00027
554	G2837	Oryza sativa	gi22002132		0,0003

732/1027

		(grupo do cultivar japonica)
554	G2837	Lycopersicon esculentum	gi1345540		0,00045
554	G2837	Nicotiana tabacum	gi395147		0,0013
554	G2837	Brassica oleracea	gi1418351		0,0017
554	G2837	Medicago sativa	gi1279563		0,002
554	G2837	Cicer arietinum	gi21068672		0,0022
554	G2837	Zea mays	gi18568237		0,005
555	G2838	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER166362_ 1	753
555	G2838	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER180202_ 1	754
555	G2838	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER726571_ 1	755
555	G2838	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER74662 1	756
555	G2838	Glycine max	uC- gmflminsoy032f 06b1	757
555	G2838	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER200967	759

733/1027

			1
555	G2838	Oryza sativa	OSC100895,C1,p 14,fg	760
555	G2838	Oryza sativa	OSC22205,C1,p1 ,fg	1279
555	G2838	Oryza sativa	OSC23411,C1,p1 ,fg	761
555	G2838	Oryza sativa	OSC2409,C1,p2, fg	762
555	G2838	Oryza sativa	OSC25680,C1,p1 ,fg	763
555	G2838	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER436044_ 1	764
555	G2838	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER518126_ 1	765
555	G2838	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 54039	1959
555	G2838	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 54252	1960
555	G2838	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-392715	1961
556	G2838	Vitis vinifera	CD714231		7,00E-27
556	G2838	Gossypium arboreum	BF272143		2,00E-20
556	G2838	Brassica oleracea	BZ444318		5,00E-20
556	G2838	Lycopersicon esculentum	BG643969		2,00E-16

734/1027

556	G2838	Zea mays	CC712091		1,00E-15
556	G2838	Sorghum bicolor	BE360413		7,00E-14
556	G2838	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01009505		1,00E-12
556	G2838	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK068762		2,00E-12
556	G2838	Medicago truncatula	BE943078		5,00E-12
556	G2838	Glycine max	BG047435		5,00E-12
556	G2838	Sorghum bicolor	gi18390109		1,70E-14
556	G2838	Oryza sativa	gi15528588		5,90E-12
556	G2838	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi29027767		2,20E-08
556	G2838	Petunia x hybrida	gi14275902		8,70E-05
556	G2838	Zea ramosa	gi18674684		0,02
556	G2838	Medicago sativa	gi7228329		0,024
556	G2838	Pisum sativum	gi2129892		0,06
556	G2838	Glycine max	gi1763063		0,095
556	G2838	Datisca glomerata	gi4666360		0,33

735/1027

556	G2838	Nicotiana tabacum	gi2981169		0,38
557	G2839	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER32534 1	1281
557	G2839	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER37260 1	1282
557	G2839	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER379048_ 1	1283
557	G2839	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER172363_ 1	1284
557	G2839	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER24561 1	1285
557	G2839	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER32611 1	1286
557	G2839	Oryza sativa	OSC100424,C1,p 49, fg	1287
557	G2839	Oryza sativa	OSC20005,C1,p5 ,fg	1288
557	G2839	Oryza sativa	OSC20005,C1,p7 ,fg	1289
557	G2839	Oryza sativa	OSC234,C1,p1,f g	1290
557	G2839	Oryza sativa	OSC5483,C1,p4, fg	1291
557	G2839	Oryza sativa	OSC5499,C1,p15 ,fg	1292
557	G2839	Zea mays	LIB3732-060- Q1-K6-F2	1293

736/1027

557	G2839	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER226176_ 1	1294
557	G2839	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER276871_ 2	1295
557	G2839	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER49287 1	1296
557	G2839	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER5148 1	1297
557	G2839	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER536916_ 1	1298
557	G2839	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER72147 1	1299
557	G2839	Oryza sativa	Os S109163	1617
557	G2839	Glycine max	Gma S4898433	1675
557	G2839	Glycine max	Gma S4973977	1676
557	G2839	Medicago truncatula	Mtr_S5397852	1713
557	G2839	Hordeum vulgare	Hv_S207187	1749
557	G2839	Triticum aestivum	Ta_S111267	1914
557	G2839	Triticum aestivum	Ta_S200273	1915
557	G2839	Triticum aestivum	Ta_S296415	1916
557	G2839	Triticum aestivum	Ta_S379755	1917

737/1027

557	G2839	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 56766	2078
558	G2839	Brassica oleracea	BZ083260		1,00E-51
558	G2839	Brassica rapa subesp. pekinensis	BQ790831		6,00E-48
558	G2839	Brassica napus	CD842269		7,00E-48
558	G2839	Brassica rapa	L46574		7,00E-30
558	G2839	Vitis vinifera	CA818230		4,00E-25
558	G2839	Petunia x hybrida	AB006600		9,00E-25
558	G2839	Glycine max	BU577326		2,00E-23
558	G2839	Solanum tuberosum	BQ121105		4,00E-23
558	G2839	Populus tremula x Populus tremuloides	BU867080		8,00E-23
558	G2839	Lycopersicon esculentum	AI898309		1,00E-22
558	G2839	Petunia x hybrida	gi2346976		7,10E-27
558	G2839	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi29124132		3,90E-21
558	G2839	Oryza sativa	gi15623820		1,30E-20
558	G2839	Glycine max	gi1763063		2,40E-16
558	G2839	Nicotiana	gi2981169		1,20E-15

738/1027

		tabacum
558	G2839	Datisca glomerata	gi4666360		3,20E-15
558	G2839	Medicago sativa	gi7228329		2,60E-13
558	G2839	Triticum aestivum	gi485814		3,80E-13
558	G2839	Brassica rapa	gi2058506		4,60E-11
558	G2839	Pisum sativum	gi2129892		3,40E-07
560	G2846	Gossypium hirsutum	CA993210		4,00E-46
560	G2846	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK069366		2,00E-41
560	G2846	Brassica oleracea	BH484306		5,00E-41
560	G2846	Glycine max	BU764909		8,00E-37
560	G2846	Sorghum bicolor	CB926717		4,00E-34
560	G2846	Triticum aestivum	CA600074		1,00E-31
560	G2846	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	AI166770		5,00E-29
560	G2846	Populus tremula x Populus tremuloides	BU894578		7,00E-28

739/1027

560	G2846	Gossypium arboreum	BG440718		4,00E-27
560	G2846	Solanum tuberosum	BQ514720		2,00E-24
560	G2846	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi21741062		6,40E-42
560	G2846	Brassica napus	gi11045087		1,60E-24
560	G2846	Oryza sativa	gi21740790		1,80E-23
560	G2846	Lycopersicon esculentum	gi5669656		2,70E-20
560	G2846	Glycine max	gi3399777		3,50E-05
560	G2846	Cucumis melo	gi28558779		0,0011
560	G2846	Mesembryan them um crystallinum	gi4206118		0,014
560	G2846	Oryza rufipogon	gi1086536		0,028
560	G2846	Phyllostachys acuta	gi527661		0,039
560	G2846	Tulipa gesneriana	gi5923912		0,045
562	G2847	Glycine max	BU084566		8,00E-55
562	G2847	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	AI166770		3,00E-50
562	G2847	Brassica napus	CD832456		2,00E-49
562	G2847	Solanum	BI175830		1,00E-48

740/1027

		tuberosum
562	G2847	Ipomoea nil	BJ570931		2,00E-46
562	G2847	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK072848		4,00E-45
562	G2847	Gossypium arboreum	BG440718		7,00E-43
562	G2847	Populus tremula x Populus tremuloides	BU895329		5,00E-36
562	G2847	Hordeum vulgare	BF620349		6,00E-36
562	G2847	Triticum aestivum	CA642784		5,00E-31
562	G2847	Brassica napus	gi11045087		1,40E-62
562	G2847	Oryza sativa	gi21740790		8,90E-29
562	G2847	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32480231		8,90E-29
562	G2847	Lycopersicon esculentum	gi5669656		1,20E-24
562	G2847	Meserbryanthem um crystallinum	gi4206118		1,20E-05
562	G2847	Glycine max	gi3399777		0,021
562	G2847	Phyllostachys acuta	gi527661		0,066

741/1027

562	G2847	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi20372895		0,082
562	G2847	Gossypioides kirkii	gi23476285		0,12
562	G2847	Pennisetum glaucum	gi527657		0,14
564	G2850	Poncirus trifoliata	CD573726		6,00E-68
564	G2850	Lycopersicon esculentum	AI899168		1,00E-45
564	G2850	Medicago truncatula	AL380393		8,00E-41
564	G2850	Brassica napus	CD825720		2,00E-40
564	G2850	Gossypium arboreum	BG440718		4,00E-30
564	G2850	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	AI166770		7,00E-30
564	G2850	Populus tremula x Populus tremuloides	BU895329		4,00E-29
564	G2850	Glycine max	BU084566		1,00E-28
564	G2850	Solanum tuberosum	BQ514720		2,00E-27
564	G2850	Gossypium hirsutum	CA993210		4,00E-27

742/1027

564	G2850	Oryza sativa	gi14488370		3,10E-26
564	G2850	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi21741062		1,60E-25
564	G2850	Brassica napus	gi11045087		5,90E-25
564	G2850	Lycopersicon esculentum	gi5669656		1,00E-18
564	G2850	Pennisetum glaucum	gi527657		2,40E-05
564	G2850	Glycine max	gi3399777		8,00E-05
564	G2850	Phyllostachys acuta	gi527661		0,0061
564	G2850	Oryza australiensis	gi1086526		0,0077
564	G2850	Oryza officinalis	gi1086534		0,0077
564	G2850	Tripsacum australe	gi527663		0,01
566	G2851	Brassica napus	CD832456		7,00E-93
566	G2851	Glycine max	BU084566		5,00E-67
566	G2851	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	AI166770		2,00E-65
566	G2851	Brassica oleracea	BH927065		6,00E-56
566	G2851	Solanum tuberosum	BI175830		1,00E-55
566	G2851	Gossypium	BG440718		1,00E-51

743/1027

		arboreum
566	G2851	Ipomoea nil	BJ570931		5,00E-51
566	G2851	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK072848		2,00E-50
566	G2851	Populus tremula x Populus tremuloides	BU895329		3,00E-42
566	G2851	Hordeum vulgare	BF620349		7,00E-39
566	G2851	Brassica napus	gi11045087		1,60E-162
566	G2851	Oryza sativa	gi21740790		1,10E-27
566	G2851	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32480231		1,10E-27
566	G2851	Lycopersicon esculentum	gi5669656		4,20E-15
566	G2851	Phyllostachys acuta	gi527661		0,0081
566	G2851	Glycine max	gi3399777		0,012
566	G2851	Pisum sativum	gi13365610		0,018
566	G2851	Pennisetum glaucum	gi527657		0,021
566	G2851	Tulipa gesneriana	gi5923912		0,077
566	G2851	Phaseolus vulgaris	gi1142621		0,09

744/1027

567	G2854	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER907 3	1300
567	G2854	Oryza sativa	OSC18775,C1,p1	1301
			,fg
567	G2854	Zea mays	ZEAMA-08NOV01-	1302
			CLUSTER13712 1
567	G2854	Oryza sativa	Os S32676	1618
567	G2854	Oryza sativa	Os S75860	1619
567	G2854	Glycine max	Gma S4975207	1677
567	G2854	Hordeum	Hv_S153237	1750
		vulgare
567	G2854	Hordeum	Hv_S63965	1751
		vulgare
567	G2854	Zea mays	Zm S11522955	1823
567	G2854	Zea mays	Zm S11525357	1824
567	G2854	Triticum	Ta_S125786	1918
		aestivum
567	G2854	Triticum	Ta_S152820	1919
		aestivum
567	G2854	Triticum	Ta_S267457	1920
		aestivum
567	G2854	Lycopersicon	SGN-UNIGENE-	2079
		esculentum	44207
567	G2854	Lycopersicon	SGN-UNIGENE-	2080
		esculentum	56600
567	G2854	Lycopersicon	SGN-UNIGENE-	2081
		esculentum	SINGLET-17539
567	G2854	Lycopersicon	SGN-UNIGENE-	2082
		esculentum	SINGLET-333119
567	G2854	Lycopersicon	SGN-UNIGENE-	2083

745/1027

		esculentum	SINGLET-396174
567	G2854	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-49629	2084
568	G2854	Nicotiana plumbaginifoli a	NPL292767		1,00E-143
568	G2854	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK101593		1,00E-130
568	G2854	Zea mays	AY107267		1,00E-128
568	G2854	Beta vulgaris	BVU313097		1,00E-110
568	G2854	Gossypium hirsutum	CA993585		1,00E-109
568	G2854	Nicotiana tabacum	AF029351		1,00E-104
568	G2854	Brassica napus	CD832069		1,00E-104
568	G2854	Triticum aestivum	BT009299		1,00E-100
568	G2854	Medicago truncatula	CB893695		2,00E-97
568	G2854	Prunus persica	BU045049		3,00E-92
568	G2854	Nicotiana plumbaginifoli a	gi9663767		7,20E-137
568	G2854	Oryza sativa	gi12583812		6,80E-125
568	G2854	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32488785		6,90E-116

746/1027

568	G2854	Beta vulgaris	gi30524689		6,30E-106
568	G2854	Nicotiana tabacum	gi2708532		1,30E-98
568	G2854	Sorghum bicolor	gi22208507		6,30E-25
568	G2854	Zea mays	gi23928438		4,60E-22
568	G2854	Spinacia oleracea	gi133247		4,60E-19
568	G2854	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi4680340		4,60E-19
568	G2854	Cucumis sativus	gi7528270		5,60E-19
569	G2859	Glycine max	BE347561,1	1303
569	G2859	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-452318	2085
570	G2859	Glycine max	BE347561		2,00E-47
570	G2859	Populus tremula x Populus tremuloides	BU811904		3,00E-47
570	G2859	Populus tremula	BU889630		8,00E-32
570	G2859	Hordeum vulgare subesp. vulgare	CA003238		3,00E-30
570	G2859	Sorghum propinquum	BG103016		7,00E-30

747/1027

570	G2859	Gossypium arboreum	BF273287		1,00E-29
570	G2859	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK101063		2,00E-29
570	G2859	Sorghum bicolor	BG048756		2,00E-29
570	G2859	Lycopersicon esculentum	AI490119		8,00E-29
570	G2859	Medicago truncatula	CB066613		1,00E-28
570	G2859	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20804997		1,40E-30
570	G2859	Tulipa gesneriana	gi5923912		4,70E-30
570	G2859	Oryza sativa	gi11862964		6,30E-29
570	G2859	Pinus taeda	gi6166283		2,40E-11
570	G2859	Brassica napus	gi27650307		2,70E-06
570	G2859	Phyllostachys acuta	gi527661		3,30E-05
570	G2859	Gossypium hirsutum	gi13346182		4,20E-05
570	G2859	Petunia x hybrida	gi10998404		6,00E-05
570	G2859	Mesembryanthem um crystallinum	gi4206118		0,00012

748/1027

570	G2859	Glycine max	gi3399777		0,00024
571	G2865	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER4111 3	1304
571	G2865	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER4111 4	1305
571	G2865	Glycine max	Gma S5127199	1678
571	G2865	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 55990	2086
571	G2865	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-18331	2087
572	G2865	Brassica oleracea	BH680810		4,00E-39
572	G2865	Glycine max	BE057473		6,00E-24
572	G2865	Brassica rapa subesp. pekinensis	BZ614080		2,00E-17
572	G2865	Medicago truncatula	AL389569		8,00E-14
572	G2865	Lotus corniculatus var. japonicus	CB829442		3,00E-12
572	G2865	Hedyotis centranthoides	CB086514		2,00E-11
572	G2865	Lycopersicon esculentum	AW624871		9,00E-10
572	G2865	Triphysaria versicolor	BM356795		1,00E-09
572	G2865	Beta vulgaris	BQ592169		3,00E-07
572	G2865	Lotus japonicus	AG233200		7,00E-07

749/1027

572	G2865	Oryza sativa	gi15528806		1,80E-08
572	G2865	Cucumis melo	gi28558779		0,00016
572	G2865	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi17385671		0,00017
572	G2865	Lycopersicon esculentum	gi6175252		0,091
572	G2865	Cicer arietinum	gi3641870		0,12
572	G2865	Phaseolus vulgaris	gi1142621		0,2
572	G2865	Zea mays	gi4321762		0,27
572	G2865	Prunus dulcis	gi6635842		0,85
572	G2865	Gossypium barbadense	gi1000088		0,95
572	G2865	Brassica napus	gi27650307		0,97
574	G2866	Populus tremula x Populus tremuloides	PTR306827		2,00E-38
574	G2866	Glycine max	BU926504		2,00E-32
574	G2866	Medicago truncatula	BF649039		9,00E-28
574	G2866	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK103865		6,00E-25
574	G2866	Hordeum vulgare	BG301068		5,00E-20

750/1027

574	G2866	Triticum aestivum	BJ228821		9,00E-20
574	G2866	Helianthus annuus	BU018212		3,00E-18
574	G2866	Zea mays	BF727992		9,00E-18
574	G2866	Oryza sativa	AU056864		1,00E-17
574	G2866	Cycas rumphii	CB089859		7,00E-17
574	G2866	Populus tremula x Populus tremuloides	gi20269055		8,40E-40
574	G2866	Oryza sativa	gi8096369		4,20E-25
574	G2866	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi30962267		1,40E-19
574	G2866	Cucumis sativus	gi6136832		1,80E-19
574	G2866	Triticum aestivum	gi32400272		2,30E-19
574	G2866	Zinnia elegans	gi20257219		4,70E-19
574	G2866	Vitis vinifera	gi29465672		9,10E-19
574	G2866	Vigna radiata	gi11131105		1,30E-18
574	G2866	Pisum sativum	gi1352057		2,70E-18
574	G2866	Antirrhinum majus	gi18071490		4,50E-18
576	G2869	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK070026		1,00E-120

751/1027

576	G2869	Oryza sativa	AB071300		1,00E-104
576	G2869	Mangifera indica	AY255705		7,00E-84
576	G2869	Zea mays	AY107195		1,00E-79
576	G2869	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	CB631221		3,00E-78
576	G2869	Medicago truncatula	BI308096		2,00E-73
576	G2869	Triticum aestivum	BQ578824		7,00E-70
576	G2869	Pinus pinaster	BX250119		7,00E-65
576	G2869	Poncirus trifoliata	CD575895		1,00E-63
576	G2869	Solanum tuberosum	BG593647		8,00E-63
576	G2869	Oryza sativa	gi19352039		1,90E-124
576	G2869	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20805236		1,90E-124
576	G2869	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi26251300		5,50E-120
576	G2869	Mangifera indica	gi30027167		1,90E-116
576	G2869	Prunus persica	gi27450533		2,10E-84
576	G2869	Bruguiera	gi24371055		1,80E-53

752/1027

		sexangula
576	G2869	Stevia rebaudiana	gi26324158		1,80E-53
576	G2869	Pisum sativum	gi1235582		2,10E-53
576	G2869	Malus x domestica	gi1732359		2,30E-53
576	G2869	Zea mays	gi7230385		2,30E-53
578	G2884	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK100530		1,00E-46
578	G2884	Zea mays	AB062095		6,00E-46
578	G2884	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	CB630542		6,00E-45
578	G2884	Solanum tuberosum	BM407041		4,00E-38
578	G2884	Medicago truncatula	CB891281		1,00E-32
578	G2884	Brassica napus	CD825309		5,00E-32
578	G2884	Vitis vinifera	CD800109		8,00E-32
578	G2884	Sorghum bicolor	CD424269		7,00E-31
578	G2884	Stevia rebaudiana	BG523436		7,00E-30
578	G2884	Lactuca sativa	BQ858556		2,00E-29
578	G2884	Zea mays	gi14189890		2,50E-47
578	G2884	Oryza sativa (grupo do cultivar	gi24308616		3,40E-44

753/1027

		japonica)
578	G2884	Oryza glaberrima	gi31338862		3,90E-35
578	G2884	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi31338860		2,10E-34
578	G2884	Oryza sativa	gi15289981		2,70E-13
578	G2884	Nicotiana tabacum	gi4519671		3,70E-06
578	G2884	Chlamydomonas reinhardtii	gi5916207		1,50E-05
578	G2884	Mesembryanthem um crystallinum	gi6942190		0,00012
578	G2884	Solanum bulbocastanum	gi32470629		0,00013
578	G2884	Dianthus caryophyllus	gi13173408		0,026
579	G2885	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER270810_ 1	1306
579	G2885	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-66716	2088
580	G2885	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK100530		5,00E-81
580	G2885	Zea mays	AB062095		4,00E-80
580	G2885	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	CB630542		8,00E-72
580	G2885	Solanum tuberosum	BM407041		3,00E-54
580	G2885	Medicago truncatula	CB891281		1,00E-49

754/1027

580	G2885	Vitis vinifera	CD800109		7,00E-46
580	G2885	Stevia rebaudiana	BG523436		2,00E-45
580	G2885	Lactuca sativa	BQ858556		2,00E-45
580	G2885	Glycine max	AW596288		2,00E-42
580	G2885	Sorghum bicolor	CD424269		2,00E-42
580	G2885	Zea mays	gi14189890		6,70E-79
580	G2885	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi24308616		9,40E-72
580	G2885	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi31338860		4,20E-40
580	G2885	Oryza glaberrima	gi31338862		9,30E-40
580	G2885	Oryza sativa	gi15289981		1,80E-18
580	G2885	Nicotiana tabacum	gi4519671		1,60E-09
580	G2885	Solanum bulbocastanum	gi32470629		4,10E-09
580	G2885	Chlamydomonas reinhardtii	gi5916207		4,90E-08
580	G2885	Mesembryanthem um crystallinum	gi6942190		1,20E-07
580	G2885	Brassica napus	gi10041875		0,00086
582	G2887	Brassica napus	CD828428		9,00E-90
582	G2887	Medicago truncatula	AF254124		3,00E-73
582	G2887	Petunia x hybrida	AF509865		2,00E-70
582	G2887	Prunus persica	BU044475		4,00E-70

755/1027

582	G2887	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK068153		8,00E-67
582	G2887	Hordeum vulgare subesp. spontaneum	BJ481205		1,00E-63
582	G2887	Oryza sativa	AX654724		2,00E-61
582	G2887	Sorghum propinquum	BG159075		4,00E-61
582	G2887	Brassica oleracea	BH986593		5,00E-61
582	G2887	Solanum tuberosum	BQ118148		6,00E-61
582	G2887	Mbdicago truncatula	gi7716952		2,20E-71
582	G2887	Petunia x hybrida	gi21105732		3,30E-70
582	G2887	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi27452910		6,50E-49
582	G2887	Oryza sativa	gi6730946		3,90E-42
582	G2887	Glycine max	gi22597158		1,80E-39
582	G2887	Phaseolus vulgaris	gi15148914		7,80E-37
582	G2887	Brassica napus	gi31322572		7,00E-36
582	G2887	Triticum sp.	gi4218537		1,90E-35
582	G2887	Triticum monococcum	gi6732160		1,90E-35
582	G2887	Solanum tuberosum	gi14485513		2,40E-35
584	G2888	Oryza sativa (grupo do cultivar	AK106796		8,00E-76

756/1027

		japonica)
584	G2888	Brassica oleracea	BH707475		1,00E-72
584	G2888	Zea mays	BZ821684		3,00E-69
584	G2888	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01002232		8,00E-69
584	G2888	Physcomitrella patens subesp. patens	BJ192201		1,00E-67
584	G2888	Glycine max	BI972592		4,00E-67
584	G2888	Medicago truncatula	BI265111		1,00E-64
584	G2888	Triticum aestivum	BQ806659		3,00E-56
584	G2888	Capsicum annuum	BM063853		6,00E-56
584	G2888	Phaseolus coccineus	CA902521		6,00E-56
584	G2888	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi27357980		2,90E-77
584	G2888	Solanum tuberosum	gi563623		7,60E-55
584	G2888	Zea mays	gi3170601		3,20E-53
584	G2888	Lycopersicon esculentum	gi9858780		1,50E-51
584	G2888	Oryza sativa	gi10934090		1,00E-50
584	G2888	Glycine max	gi18376601		3,30E-11
584	G2888	Cucurbita maxima	gi17221648		0,032
584	G2888	Chlorella vulgaris	gi2224373		0,11
584	G2888	Helianthus	gi349267		0,16

757/1027

		annuus
584	G2888	Petunia x hybrida	gi14275902		0,17
586	G2898	Medicago truncatula	AJ501279		2,00E-41
586	G2898	Glycine max	BG651880		2,00E-41
586	G2898	Solanum tuberosum	BQ516260		3,00E-35
586	G2898	Populus tremula	BU816897		8,00E-32
586	G2898	Zinnia elegans	AU292820		4,00E-30
586	G2898	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK064663		7,00E-30
586	G2898	Zea mays	CD999897		5,00E-29
586	G2898	Triticum aestivum	BM135160		2,00E-28
586	G2898	Gossypium arboreum	BG446904		6,00E-21
586	G2898	Nuphar advena	CD475578		1,00E-19
586	G2898	Vicia faba	gi541981		1,60E-20
586	G2898	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20161572		3,90E-19
586	G2898	Ipomoea nil	gi1052956		6,30E-19
586	G2898	Solanum tuberosum	gi2894109		1,00E-18
586	G2898	Pisum sativum	gi436424		1,00E-18
586	G2898	Nicotiana tabacum	gi2196548		2,80E-16
586	G2898	Glycine max	gi123379		5,90E-16
586	G2898	Canavalia gladiata	gi1813329		7,50E-16

758/1027

586	G2898	Narcissus pseudonarcissu s	gi18419623		2,50E-15
586	G2898	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi23345287		2,50E-15
587	G2907	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER30744_2	1307
587	G2907	Oryza sativa	OSC100568,C1,p 1,fg	1308
587	G2907	Oryza sativa	OSC9760,C1,p1, fg	1309
587	G2907	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER298_131	1310
587	G2907	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER298_90	1311
587	G2907	Oryza sativa	Os_S108142	1620
587	G2907	Oryza sativa	Os_S31898	1621
587	G2907	Oryza sativa	Os_S33014	1622
587	G2907	Glycine max	Gma_S5116414	1679
587	G2907	Hordeum vulgare	Hv_S52718	1752
587	G2907	Zea mays	Zm_S11441767	1825
587	G2907	Zea mays	Zm_S11491750	1826
587	G2907	Lycopersicon esculentum	Les_S5295643	1934
587	G2907	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-472560	2089
588	G2907	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK105116		1,0e-999
588	G2907	Brassica napus	AF491304		1,0e-999
588	G2907	Nicotiana	AF253511		1,0e-999

759/1027

		tabacum
588	G2907	Lycopersicon esculentum	AF096260		1,00E-174
588	G2907	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01006749		1,00E-121
588	G2907	Brassica oleracea	BZ507433		1,00E-113
588	G2907	Oryza sativa	AC079935		1,00E-106
588	G2907	Hordeum vulgare subesp. vulgare	BM817419		3,00E-70
588	G2907	Zea mays	BZ998506		4,00E-68
588	G2907	Capsicum annuum	BM063122		5,00E-63
588	G2907	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi19920098		2,20E-229
588	G2907	Brassica napus	gi20127124		3,60E-208
588	G2907	Nicotiana tabacum	gi11612392		2,20E-198
588	G2907	Lycopersicon esculentum	gi5669650		4,70E-117
588	G2907	Petroselinum crispum	gi1084392		6,00E-43
588	G2907	Triticum aestivum	gi32400790		4,00E-07
588	G2907	Pennisetum ciliare	gi549986		9,00E-06
588	G2907	Glycine max	gi17645766		8,40E-05
588	G2907	Oryza sativa	gi19070767		0,00016
588	G2907	Chlamydomonas reinhardtii	gi28207761		0,0013

760/1027

589	G2913	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER38751_1	1312
589	G2913	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER93389_1	1313
589	G2913	Oryza sativa	Os_S107744	1623
590	G2913	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK065847		2,00E-57
590	G2913	Glycine max	CD487091		1,00E-52
590	G2913	Solanum tuberosum	BM404700		4,00E-45
590	G2913	Medicago truncatula	BF004903		9,00E-45
590	G2913	Citrus sinensis	BQ623105		1,00E-34
590	G2913	Lycopersicon esculentum	BF051118		1,00E-34
590	G2913	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	CB634137		1,00E-33
590	G2913	Brassica oleracea	BZ021766		4,00E-33
590	G2913	Amborella trichopoda	CD483238		3,00E-31
590	G2913	Populus tremula	BU889297		1,00E-30
590	G2913	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32490476		2,40E-74
590	G2913	Vicia faba	gi541981		1,30E-08
590	G2913	Solanum tuberosum	gi2894109		1,70E-07
590	G2913	Nicotiana	gi2196548		7,20E-06

761/1027

		tabacum
590	G2913	Zea mays	gi8920409		4,70E-05
590	G2913	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi21314337		7,90E-05
590	G2913	Daucus carota	gi3551257		0,0002
590	G2913	Canavalia gladiata	gi1813329		0,0011
590	G2913	Narcissus pseudonarcissu s	gi18419623		0,0018
590	G2913	Ipomoea nil	gi1085860		0,049
591	G2930	Zea mays	Zm_S11448159	1827
591	G2930	Lycopersicon esculentum	Les_S5268274	1935
592	G2930	Triticum aestivum	CD872621		1,00E-12
592	G2930	Lycopersicon esculentum	BI203387		4,00E-09
592	G2930	Populus tremula x Populus tremuloides	BU884102		8,00E-09
592	G2930	Sorghum bicolor	CD428713		2,00E-08
592	G2930	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	CB624355		7,00E-08
592	G2930	Zinnia elegans	AU288915		1,00E-07
592	G2930	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	CB660906		2,00E-07
592	G2930	Oryza sativa	AP003683		6,00E-05

762/1027

592	G2930	Glycine max	BQ611037		6,00E-05
592	G2930	Medicago truncatula	BG456206		2,00E-04
592	G2930	Oryza sativa	gi15528806		1,40E-09
592	G2930	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi29788848		0,016
592	G2930	Pennisetum glaucum	gi527655		0,56
592	G2930	Phyllostachys acuta	gi527661		0,61
592	G2930	Zea mays	gi100921		0,7
592	G2930	Sorghum bicolor	gi527667		0,8
592	G2930	Tripsacum australe	gi527663		0,89
592	G2930	Glycine max	gi3399777		0,9
592	G2930	Phaseolus vulgaris	gi1142619		0,97
592	G2930	Catharanthus roseus	gi3954807		1
593	G2933	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER243321_ 1	1314
593	G2933	Oryza sativa	OSC7496,C1,p10 ,fg	1315
593	G2933	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER88899_1	1316
593	G2933	Oryza sativa	Os_S39118	1624
593	G2933	Zea mays	Zm_S11445525	1828
593	G2933	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 53603	2090
594	G2933	Brassica oleracea	BH587081		6,00E-59

763/1027

594	G2933	Populus tremula x Populus tremuloides	BU884102		8,00E-37
594	G2933	Lycopersicon esculentum	BI205905		6,00E-29
594	G2933	Glycine max	BQ611037		4,00E-28
594	G2933	Triticum aestivum	CD872523		4,00E-24
594	G2933	Lupinus albus	CA410291		4,00E-23
594	G2933	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	CB660906		5,00E-23
594	G2933	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	CB624355		1,00E-22
594	G2933	Medicago truncatula	AC125478		6,00E-21
594	G2933	Zinnia elegans	AU288915		9,00E-20
594	G2933	Oryza sativa	gi15528806		3,90E-26
594	G2933	Pennisetum glaucum	gi527657		8,60E-07
594	G2933	Phyllostachys acuta	gi527661		4,10E-05
594	G2933	Sorghum bicolor	gi527667		5,60E-05
594	G2933	Tripsacum australe	gi527663		0,00024
594	G2933	Mesembryanthem um crystallinum	gi4206118		0,00048
594	G2933	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20521292		0,0012

764/1027

594	G2933	Zea mays	gi18542170		0,0014
594	G2933	Oryza australiensis	gi1086526		0,0031
594	G2933	Oryza rufipogon	gi1086538		0,0055
596	G2934	Brassica oleracea	BH680810		3,00E-50
596	G2934	Glycine max	BE057473		1,00E-28
596	G2934	Brassica rapa subesp. pekinensis	BZ614080		9,00E-24
596	G2934	Medicago truncatula	AL389569		4,00E-14
596	G2934	Lotus corniculatus var. japonicus	CB829442		5,00E-14
596	G2934	Hedyotis centranthoides	CB086514		2,00E-13
596	G2934	Lycopersicon esculentum	AW624871		7,00E-13
596	G2934	Triphysaria versicolor	BM356795		6,00E-12
596	G2934	Beta vulgaris	BQ592169		2,00E-10
596	G2934	Triticum aestivum	CD452898		2,00E-08
596	G2934	Oryza sativa	gi15528806		8,90E-13
596	G2934	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi17385671		1,00E-05
596	G2934	Brassica napus	gi27650307		0,0022
596	G2934	Phaseolus vulgaris	gi1142619		0,0024
596	G2934	Cucumis melo	gi28558779		0,0029
596	G2934	Zea mays	gi100874		0,014

765/1027

596	G2934	Cicer arietinum	gi3641870		0,18
596	G2934	Brassica oleracea	gi12049596		0,26
596	G2934	Pennisetum glaucum	gi527655		0,33
596	G2934	Phyllostachys acuta	gi527661		0,37
598	G2958	Gossypium hirsutum	GHI458442		3,00E-39
598	G2958	Prunus persica	BU041850		1,00E-34
598	G2958	Capsicum annuum	BM063701		3,00E-34
598	G2958	Solanum tuberosum	BG890076		4,00E-34
598	G2958	Vitis vinifera	CB921417		1,00E-33
598	G2958	Poncirus trifoliata	CD576407		1,00E-33
598	G2958	Brassica oleracea	BH695204		2,00E-32
598	G2958	Lactuca sativa	BQ991083		2,00E-32
598	G2958	Medicago truncatula	BF647616		4,00E-29
598	G2958	Cucumis sativus	AB029148		9,00E-29
598	G2958	Gossypium hirsutum	gi22531416		5,20E-40
598	G2958	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi30962267		1,50E-35
598	G2958	Oryza sativa	gi17154533		7,70E-35
598	G2958	Populus tremula x Populus tremuloides	gi20269059		8,40E-34

766/1027

598	G2958	Pinus taeda	gi32396301		2,50E-32
598	G2958	Triticum aestivum	gi32400272		3,90E-32
598	G2958	Cucumis sativus	gi6136834		4,10E-32
598	G2958	Vigna radiata	gi11131101		1,10E-30
598	G2958	Nicotiana tabacum	gi4887012		6,00E-30
598	G2958	Solanum tuberosum	gi25989504		1,20E-29
600	G2964	Brassica oleracea	BH549078		2,00E-76
600	G2964	Brassica napus	CD822240		4,00E-67
600	G2964	Zea mays	AY104443		4,00E-60
600	G2964	Solanum tuberosum	BQ505464		6,00E-54
600	G2964	Lotus corniculatus var. japonicus	AP006377		2,00E-50
600	G2964	Hordeum vulgare	BI957620		2,00E-49
600	G2964	Gossypium arboreum	BE053739		2,00E-49
600	G2964	Glycine max	AW348431		3,00E-48
600	G2964	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	CB635890		1,00E-47
600	G2964	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	CB660704		1,00E-47
600	G2964	Oryza sativa	gi5441893		3,20E-47
600	G2964	Oryza sativa (grupo do cultivar	gi32488659		8,60E-47

767/1027

		japonica)
600	G2964	Pisum sativum	gi14018368		5,30E-09
600	G2964	Pinus pinaster	gi18129298		9,80E-07
600	G2964	Brassica napus	gi1171040		0,012
600	G2964	Brassica oleracea	gi18266051		0,012
600	G2964	Zea mays	gi459269		0,28
600	G2964	Mimulus guttatus	gi127382		0,79
600	G2964	Glycine max	gi532703		0,81
600	G2964	Hordeum vulgare	gi4456620		0,92
602	G2967	Brassica oleracea	BZ064831		2,00E-51
602	G2967	Petunia x hybrida	AB006606		8,00E-06
602	G2967	Medicago truncatula	BG582425		1,00E-05
602	G2967	Brassica napus	CB686322		2,00E-04
602	G2967	Vitis vinifera	CB008696		0,004
602	G2967	Vitis aestivalis	CB074763		0,004
602	G2967	Glycine max	BF324612		0,005
602	G2967	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AY219847		0,006
602	G2967	Lactuca sativa	BQ868010		0,006
602	G2967	Oryza sativa	CNS08CA5		0,006
602	G2967	Petunia x hybrida	gi2346988		4,40E-10
602	G2967	Medicago sativa	gi7228329		0,00039
602	G2967	Pisum sativum	gi2129892		0,00076

768/1027

602	G2967	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi28849865		0,001
602	G2967	Brassica rapa	gi2058504		0,0015
602	G2967	Triticum aestivum	gi485814		0,0052
602	G2967	Oryza sativa	gi12698882		0,0094
602	G2967	Datisca glomerata	gi4666360		0,01
602	G2967	Glycine max	gi1763063		0,014
602	G2967	Nicotiana tabacum	gi2981169		0,018
603	G2969	Oryza sativa	OSC100047,C1,p 3,fg	1317
603	G2969	Oryza sativa	Os_S108460	1625
603	G2969	Glycine max	Gma_S4895054	1680
603	G2969	Glycine max	Gma_S4932729	1681
603	G2969	Glycine max	Gma_S4971594	1682
603	G2969	Lycopersicon esculentum	Les_S5265247	1936
603	G2969	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 57728	2091
604	G2969	Brassica oleracea	BH481194		1,00E-107
604	G2969	Medicago truncatula	BI311225		9,00E-76
604	G2969	Lactuca sativa	BQ874458		1,00E-70
604	G2969	Prunus persica	BU040439		3,00E-69
604	G2969	Helianthus annuus	BQ967662		2,00E-65
604	G2969	Populus tremuloides	CA932621		7,00E-65
604	G2969	Oryza sativa	AAAA01007031		1,00E-62

769/1027

		(grupo do cultivar indica)
604	G2969	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AC135205		1,00E-62
604	G2969	Solanum tuberosum	BQ115018		7,00E-62
604	G2969	Glycine max	BE822664		1,00E-61
604	G2969	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi29893575		2,90E-62
604	G2969	Oryza sativa	gi5777616		3,70E-46
604	G2969	Glycine max	gi28542706		0,083
604	G2969	Chlorella vulgaris	gi2224427		0,13
604	G2969	Chloroplast Chlorella vulgaris	gi7515285		0,13
604	G2969	Petunia x hybrida	gi100396		0,88
604	G2969	Nicotiana tabacum	gi8099397		0,94
604	G2969	Pisum sativum	gi3088648		1
606	G2972	Brassica oleracea	BZ070725		1,00E-13
606	G2972	Oryza sativa	OSJN00040		2,00E-04
606	G2972	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK108645		2,00E-04
606	G2972	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01000197		6,00E-04

770/1027

606	G2972	Brassica napus	CD844215		0,002
606	G2972	Petunia x hybrida	AB000454		0,005
606	G2972	Populus tremula x Populus tremuloides	BU813541		0,008
606	G2972	Citrus sinensis	CB293113		0,025
606	G2972	Lotus japonicus	AP004523		0,025
606	G2972	Lotus corniculatus var. japonicus	CB828590		0,025
606	G2972	Glycine max	gi1763063		6,00E-08
606	G2972	Oryza sativa	gi12698882		2,50E-06
606	G2972	Petunia x hybrida	gi439487		4,70E-06
606	G2972	Nicotiana tabacum	gi2981169		4,90E-06
606	G2972	Datisca glomerata	gi4666360		1,20E-05
606	G2972	Medicago sativa	gi7228329		1,30E-05
606	G2972	Triticum aestivum	gi485814		3,50E-05
606	G2972	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi29124140		9,50E-05
606	G2972	Brassica rapa	gi2058506		0,00024
606	G2972	Pisum sativum	gi2129892		0,027
607	G2979	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 49425	2092
608	G2979	Zea mays	AY107996		2,00E-68

771/1027

608	G2979	Thellungiella salsuginea	BI698460		1,00E-60
608	G2979	Vitis vinifera	CB920900		4,00E-45
608	G2979	Helianthus annuus	CD853183		2,00E-41
608	G2979	Medicago truncatula	BG450549		3,00E-39
608	G2979	Glycine max	BM524804		8,00E-38
608	G2979	Lycopersicon esculentum	BI924306		8,00E-37
608	G2979	Solanum tuberosum	BE920312		7,00E-32
608	G2979	Eschscholzia californica	CD478692		9,00E-32
608	G2979	Sorghum bicolor	BG273641		5,00E-28
608	G2979	Nicotiana tabacum	gi6328415		4,40E-10
608	G2979	Physcomitrella patens	gi26190147		1,00E-09
608	G2979	Triticum monococcum	gi13619655		3,90E-09
608	G2979	Triticum sp.	gi5763821		3,90E-09
608	G2979	Daucus carota	gi8977833		5,80E-09
608	G2979	Oryza sativa	gi12225043		9,90E-09
608	G2979	Chenopodium rubrum	gi11558192		3,00E-08
608	G2979	Populus alba	gi27802536		3,10E-08
608	G2979	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32479738		1,10E-07
608	G2979	Thlaspi caerulescens	gi22086272		2,90E-07
609	G2981	Glycine max	GLYMA-28NOV01-	1318

772/1027

			CLUSTER28852_1
609	G2981	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER28852_2	1319
609	G2981	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER28852_4	1320
609	G2981	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER28852_5	1321
609	G2981	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER28852_6	1322
609	G2981	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER28852_8	1323
609	G2981	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER28852_9	1324
609	G2981	Glycine max	LIB3242-344- Q1-J1-G7	1325
609	G2981	Glycine max	LIB4392-029- R1-K1-C8	1326
609	G2981	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER89637_1	1327
609	G2981	Oryza sativa	Os_S104685	1626
609	G2981	Glycine max	Gma_S4882455	1683
609	G2981	Zea mays	Zm_S11334447	1829
609	G2981	Zea mays	Zm_S11524241	1830
609	G2981	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 50978	2093
610	G2981	Populus tremula x Populus tremuloides	AY307373		1,00E-123
610	G2981	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AY224589		1,00E-106
610	G2981	Zea mays	AY108383		1,00E-105
610	G2981	Poncirus trifoliata	CD573622		1,00E-96

773/1027

610	G2981	Glycine max	BU579005		8,00E-85
610	G2981	Solanum tuberosum	BM406319		6,00E-79
610	G2981	Lycopersicon esculentum	BG134590		2,00E-76
610	G2981	Pinus taeda	BG040894		4,00E-74
610	G2981	Marchantia polymorpha	C96290		2,00E-71
610	G2981	Lactuca sativa	BU012590		4,00E-66
610	G2981	Populus tremula x Populus tremuloides	gi32187097		8,20E-119
610	G2981	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi29371983		2,80E-101
610	G2981	Triticum sp.	gi11877791		4,10E-47
610	G2981	Triticum monococcum	gi13619653		4,10E-47
610	G2981	Populus alba	gi27802536		0,0064
610	G2981	Gnetum gnemon	gi5019435		0,037
610	G2981	Nicotiana tabacum	gi6328415		0,069
610	G2981	Oryza sativa	gi12225043		0,071
610	G2981	Physcomitrella patens	gi26190147		0,099
610	G2981	Chenopodium rubrum	gi11558192		0,15
611	G2982	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER28852_1	1318
611	G2982	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER28852_2	1319
611	G2982	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER28852_4	1320

774/1027

611	G2982	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER28852_5	1321
611	G2982	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER28852_6	1322
611	G2982	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER28852_8	1323
611	G2982	Glycine max	LIB3242-344- Q1-J1-G7	1325
611	G2982	Glycine max	LIB4392-029- R1-K1-C8	1326
611	G2982	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER89637_1	1327
611	G2982	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 50978	2093
612	G2982	Brassica napus	CD813391		1,00E-79
612	G2982	Populus tremula x Populus tremuloides	AY307373		2,00E-59
612	G2982	Zea mays	AY108383		6,00E-57
612	G2982	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AY224551		2,00E-54
612	G2982	Glycine max	BU579005		8,00E-52
612	G2982	Pinus taeda	BG040894		3,00E-50
612	G2982	Solanum tuberosum	BM406319		2,00E-47
612	G2982	Marchantia polymorpha	C96290		3,00E-47
612	G2982	Lycopersicon esculentum	BM412584		1,00E-42
612	G2982	Triticum sp.	TSP271917		9,00E-40
612	G2982	Populus tremula x Populus	gi32187097		1,20E-58

775/1027

		tremuloides
612	G2982	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi29367654		6,80E-54
612	G2982	Triticum sp.	gi11877791		2,00E-40
612	G2982	Triticum monococcum	gi13619653		2,00E-40
612	G2982	Daucus carota	gi8977833		0,0044
612	G2982	Nicotiana tabacum	gi6328415		0,057
612	G2982	Physcomitrella patens	gi26190147		0,17
612	G2982	Thlaspi caerulescens	gi22086272		0,21
612	G2982	Oryza sativa	gi12225043		0,24
612	G2982	Chenopodium rubrum	gi11558192		0,25
613	G2983	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER73435_1	1328
613	G2983	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER73435_2	1329
613	G2983	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER73435_3	1330
613	G2983	Oryza sativa	OSC101922,C1,p 4,fg	1331
613	G2983	Oryza sativa	OSC102287,C1,p 18,fg	1332
613	G2983	Oryza sativa	OSC32392,C1,p1 ,fg	1333
613	G2983	Oryza sativa	Os_S83060	1627
613	G2983	Glycine max	Gma_S4865673	1684
613	G2983	Medicago truncatula	Mtr_S5361396	1714
613	G2983	Lycopersicon	SGN-UNIGENE-	2094

776/1027

		esculentum	49230
614	G2983	Glycine max	AX105305		3,00E-57
614	G2983	Medicago truncatula	BG588588		2,00E-55
614	G2983	Populus tremula x Populus tremuloides	BU828082		8,00E-51
614	G2983	Brassica oleracea	BH250068		9,00E-50
614	G2983	Lycopersicon esculentum	BG134747		2,00E-48
614	G2983	Beta vulgaris	BQ593610		3,00E-47
614	G2983	Lupinus albus	CA410814		3,00E-44
614	G2983	Populus balsamifera subesp. trichocarpa x Populus deltoides	CA826202		9,00E-36
614	G2983	Zea mays	CC347703		1,00E-27
614	G2983	Oryza sativa	OSJN00105		3,00E-27
614	G2983	Oryza sativa	gi10241438		8,10E-35
614	G2983	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi21740884		4,10E-31
614	G2983	Petunia x hybrida	gi22087128		3,60E-22
614	G2983	Lycopersicon esculentum	gi28070968		5,80E-22
614	G2983	Populus tremula x Populus tremuloides	gi3955021		4,50E-10
614	G2983	Narcissus pseudonarcissu	gi18419580		3,90E-05

777/1027

		s
614	G2983	Ceratopteris richardii	gi3868829		0,025
614	G2983	Physcomitrella patens	gi7415618		0,079
614	G2983	Helianthus annuus	gi349379		0,15
614	G2983	Zinnia elegans	gi24417147		0,3
615	G2990	Oryza sativa	OSC4898,C1,p6, fg	1334
615	G2990	Zea mays	LIB3279-221- Q6-K6-B2	1335
615	G2990	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER42733_1	1336
615	G2990	Oryza sativa	Os_S56831	1628
615	G2990	Glycine max	Gma_S4897246	1685
615	G2990	Medicago truncatula	Mtr_S5341529	1715
615	G2990	Triticum aestivum	Ta_S171947	1921
615	G2990	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 49426	2095
615	G2990	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 52525	2096
616	G2990	Brassica oleracea	BH738007		1,00E-100
616	G2990	Medicago truncatula	AC139600		3,00E-84
616	G2990	Flaveria bidentis	FBI18580		8,00E-81
616	G2990	Glycine max	BF069575		4,00E-59
616	G2990	Solanum tuberosum	BE471989		7,00E-56
616	G2990	Flaveria trinervia	FTR18577		3,00E-51

778/1027

616	G2990	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	AI166342		5,00E-45
616	G2990	Vitis vinifera	CB970621		7,00E-45
616	G2990	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AP005152		2,00E-43
616	G2990	Zea mays	CC335993		3,00E-42
616	G2990	Flaveria bidentis	gi13277220		1,10E-76
616	G2990	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32480091		2,10E-38
616	G2990	Flaveria trinervia	gi13277216		1,60E-29
616	G2990	Oryza sativa	gi5091602		3,00E-28
616	G2990	Lactuca sativa	gi29119890		9,00E-20
616	G2990	Bromheadia finlaysoniana	gi2108256		4,30E-06
616	G2990	Lycopersicon esculentum	gi100214		1,20E-05
616	G2990	Daucus carota	gi224556		1,70E-05
616	G2990	Nicotiana alata	gi1247388		1,90E-05
616	G2990	Gossypium barbadense	gi451544		3,80E-05
617	G2992	Oryza sativa	Os_S94181	1629
617	G2992	Zea mays	Zm_S11399262	1831
618	G2992	Brassica oleracea	BZ087784		3,00E-94
618	G2992	Brassica napus	CD817420		4,00E-65
618	G2992	Medicago	AC139600		6,00E-51

779/1027

		truncatula
618	G2992	Flaveria bidentis	FBI18580		6,00E-48
618	G2992	Glycine max	BF069575		1,00E-47
618	G2992	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AP005152		9,00E-44
618	G2992	Vitis vinifera	CB970621		3,00E-43
618	G2992	Flaveria trinervia	FTR18577		2,00E-42
618	G2992	Zea mays	CC335993		4,00E-42
618	G2992	Helianthus annuus	BU022145		8,00E-42
618	G2992	Flaveria bidentis	gi13277220		9,50E-52
618	G2992	Flaveria trinervia	gi13277216		4,40E-43
618	G2992	Oryza sativa	gi5091602		4,40E-40
618	G2992	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32480091		4,90E-28
618	G2992	Lactuca sativa	gi29119890		3,50E-18
618	G2992	Sorghum bicolor	gi671656		0,12
618	G2992	Pisum sativum	gi15021756		0,15
618	G2992	Lycopersicon esculentum	gi1345538		0,24
618	G2992	Nicotiana tabacum	gi119714		0,67
618	G2992	Pinus taeda	gi1076237		0,67
620	G2993	Glycine max	CA783548		8,00E-56
620	G2993	Oryza sativa (grupo do	CNS08CD7		2,00E-51

780/1027

		cultivar japonica)
620	G2993	Brassica oleracea	BH972041		1,00E-49
620	G2993	Medicago truncatula	AC139600		4,00E-46
620	G2993	Lotus corniculatus var. japonicus	AP006401		2,00E-45
620	G2993	Flaveria bidentis	FBI18579		4,00E-45
620	G2993	Vitis aestivalis	CB289369		5,00E-44
620	G2993	Lotus japonicus	AP004968		5,00E-44
620	G2993	Zea mays	CC613855		1,00E-43
620	G2993	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01010656		1,00E-42
620	G2993	Flaveria bidentis	gi13374061		5,60E-43
620	G2993	Oryza sativa	gi5091602		1,20E-40
620	G2993	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32480091		5,00E-35
620	G2993	Flaveria trinervia	gi13277216		2,50E-32
620	G2993	Lactuca sativa	gi29119890		3,00E-19
620	G2993	Zea mays	gi6016218		0,17
620	G2993	Malus domestica	gi1946218		0,28
620	G2993	Pisum sativum	gi23504755		0,68
620	G2993	Lycopersicon esculentum	gi1418988		0,77

781/1027

620	G2993	Zea mays subesp. mays	gi21953540		0,82
622	G2996	Brassica napus	CD826370		7,00E-88
622	G2996	Flaveria bidentis	FBI18579		3,00E-57
622	G2996	Brassica oleracea	BZ009581		1,00E-55
622	G2996	Lotus japonicus	AP004968		1,00E-51
622	G2996	Zea mays	CC673594		5,00E-51
622	G2996	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK109528		2,00E-49
622	G2996	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01010656		2,00E-49
622	G2996	Glycine max	AW508242		4,00E-46
622	G2996	Oryza sativa	OSJN00063		7,00E-43
622	G2996	Medicago truncatula	AC139600		1,00E-41
622	G2996	Flaveria bidentis	gi13374061		1,40E-55
622	G2996	Oryza sativa	gi5091602		4,40E-43
622	G2996	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32480091		1,00E-41
622	G2996	Flaveria trinervia	gi13277216		9,70E-39
622	G2996	Lactuca sativa	gi29119890		8,30E-17
622	G2996	Glycine max	gi347455		9,40E-13
622	G2996	Phaseolus vulgaris	gi81870		5,70E-12

782/1027

622	G2996	Lycopersicon esculentum	gi100215		7,00E-12
622	G2996	Vigna unguiculata	gi791150		1,20E-11
622	G2996	Solanum tuberosum	gi24745586		1,30E-11
624	G2998	Brassica oleracea	BH543781		1,00E-108
624	G2998	Brassica napus	CD825397		1,00E-105
624	G2998	Gossypium arboreum	BG443964		3,00E-60
624	G2998	Lotus corniculatus var. japonicus	AP006401		2,00E-56
624	G2998	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	CNS08CD7		3,00E-48
624	G2998	Glycine max	CA783548		2,00E-46
624	G2998	Zea mays	CC613855		3,00E-46
624	G2998	Flaveria bidentis	FBI18579		4,00E-46
624	G2998	Lotus japonicus	AP004968		1,00E-43
624	G2998	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01000157		9,00E-42
624	G2998	Oryza sativa	gi5091602		3,10E-43
624	G2998	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi19387257		6,40E-42
624	G2998	Flaveria bidentis	gi13277218		8,00E-39
624	G2998	Flaveria	gi13277216		3,40E-38

783/1027

		trinervia
624	G2998	Lactuca sativa	gi29119890		2,10E-20
624	G2998	Nicotiana alata	gi1247386		0,0026
624	G2998	Sporobolus stapfianus	gi6478148		0,0038
624	G2998	Cucumis sativus	gi3810890		0,0077
624	G2998	Zea mays	gi15321716		0,0086
624	G2998	Chlamydomonas reinhardtii	gi16209575		0,009
626	G2999	Brassica oleracea	BH686720		4,00E-68
626	G2999	Lotus corniculatus var. japonicus	AP006401		2,00E-55
626	G2999	Gossypium arboreum	BG443964		1,00E-40
626	G2999	Flaveria bidentis	FBI18579		2,00E-39
626	G2999	Glycine max	CA783548		2,00E-39
626	G2999	Lotus japonicus	AP004968		2,00E-38
626	G2999	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK108246		6,00E-38
626	G2999	Zea mays	CC629064		2,00E-37
626	G2999	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01010656		3,00E-36
626	G2999	Brassica napus	CD835782		4,00E-36
626	G2999	Flaveria bidentis	gi13277220		1,70E-40
626	G2999	Oryza sativa	gi19387257		1,10E-34

784/1027

		(grupo do cultivar japonica)
626	G2999	Oryza sativa	gi5091602		5,10E-33
626	G2999	Flaveria trinervia	gi13277216		3,20E-31
626	G2999	Lactuca sativa	gi29119890		1,10E-16
626	G2999	Asarum europaeum	gi8163936		0,92
626	G2999	Mesembryan them um crystallinum	gi3342196		0,98
626	G2999	Nicotiana tabacum	gi18448717		0,99
626	G2999	Calycanthus floridus	gi8163940		1
628	G3002	Brassica oleracea	BZ508225		5,00E-37
628	G3002	Vitis vinifera	CB347557		3,00E-25
628	G3002	Glycine max	BM886058		4,00E-24
628	G3002	Brassica napus	CD818854		1,00E-23
628	G3002	Zea mays	CC675142		3,00E-21
628	G3002	Sorghum bicolor	AF369906		3,00E-20
628	G3002	Lycopersicon esculentum	AW092295		4,00E-19
628	G3002	Lotus corniculatus var. japonicus	AP006401		6,00E-19
628	G3002	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK111350		1,00E-18
628	G3002	Oryza sativa	10A19I		1,00E-18
628	G3002	Oryza sativa (grupo do	gi28301934		1,30E-25

785/1027

		cultivar japonica)
628	G3002	Oryza sativa	gi5091602		1,90E-23
628	G3002	Flaveria bidentis	gi13277218		2,90E-22
628	G3002	Flaveria trinervia	gi13277216		9,90E-14
628	G3002	Lactuca sativa	gi29119890		7,40E-09
628	G3002	Picea mariana	gi2982264		0,68
628	G3002	Chloroplast Schismus barbatus	gi2735522		0,85
628	G3002	Chloroplast Rytidosperma pumilum	gi2735530		0,95
628	G3002	Lycopersicon esculentum	gi12231300		0,96
628	G3002	Zea mays	gi477226		0,98
630	G3003	Glycine max	GMA311808		8,00E-83
630	G3003	Helianthus annuus	CD849311		7,00E-81
630	G3003	Medicago truncatula	CA921097		1,00E-79
630	G3003	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK071104		2,00E-78
630	G3003	Brassica oleracea	BH986891		8,00E-78
630	G3003	Gossypium arboreum	BQ407338		6,00E-75
630	G3003	Populus tremula x Populus tremuloides	BU825617		1,00E-74
630	G3003	Triticum	BF293596		4,00E-72

786/1027

		turgidum
630	G3003	Eschscholzia californica	CD476634		8,00E-72
630	G3003	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01004319		2,00E-66
630	G3003	Glycine max	gi18376601		9,80E-78
630	G3003	Oryza sativa	gi15290024		3,50E-73
630	G3003	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20161636		3,50E-73
630	G3003	Lycopersicon esculentum	gi15984226		2,90E-23
630	G3003	Solanum tuberosum	gi563623		4,80E-16
630	G3003	Zea mays	gi3170601		1,00E-11
630	G3003	Fragaria x ananassa	gi1362039		0,2
630	G3003	Nicotiana tabacum	gi4887016		0,91
630	G3003	Vigna radiata	gi11131101		0,97
630	G3003	Betula pendula	gi30577628		1
632	G3008	Brassica oleracea	BZ501815		1,00E-112
632	G3008	Lotus corniculatus var. japonicus	AP006419		1,00E-104
632	G3008	Medicago truncatula	AC125389		4,00E-97
632	G3008	Vigna radiata	AF467783		2,00E-92
632	G3008	Lotus japonicus	AP004499		3,00E-91
632	G3008	Cucumis melo	AB063192		2,00E-90

787/1027

632	G3008	Lycopersicon esculentum	AF328784		8,00E-90
632	G3008	Nicotiana tabacum	AB015855		1,00E-88
632	G3008	Zea mays	AX077258		7,00E-86
632	G3008	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01009163		3,00E-85
632	G3008	Cucumis melo	gi15425735		8,50E-96
632	G3008	Vigna radiata	gi18643339		1,20E-94
632	G3008	Nicotiana tabacum	gi30016896		1,80E-93
632	G3008	Lycopersicon esculentum	gi14280042		9,80E-93
632	G3008	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi17221605		1,30E-90
632	G3008	Dianthus caryophyllus	gi7739795		2,30E-87
632	G3008	Zea mays	gi13121846		2,70E-82
632	G3008	Fagus sylvatica	gi10241607		9,50E-80
632	G3008	Rosa hybrid cultivar	gi20378359		1,00E-59
632	G3008	Cicer arietinum	gi8894550		9,50E-13
634	G3017	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK109662		1,00E-39
634	G3017	Solanum tuberosum	BQ513392		6,00E-37
634	G3017	Glycine max	AW349686		3,00E-36
634	G3017	Oryza sativa	AAAA01007394		6,00E-32

788/1027

		(grupo cultivar indica)	do
634	G3017	Oryza sativa	AP003983		3,00E-30
634	G3017	Triticum aestivum	CA654295		4,00E-29
634	G3017	Brassica oleracea	BZ043983		2,00E-26
634	G3017	Zea mays	BH779475		6,00E-26
634	G3017	Physcomitrella patens subesp. patens	BJ164531		8,00E-18
634	G3017	Hordeum vulgare subesp. vulgare	BU980391		5,00E-14
634	G3017	Oryza sativa	gi13486646		3,90E-35
634	G3017	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20160648		2,00E-15
634	G3017	Pinus taeda	gi6166283		3,60E-07
634	G3017	Tulipa gesneriana	gi5923912		4,10E-07
634	G3017	Lycopersicon esculentum	gi5669656		1,60E-06
634	G3017	Antirrhinum majus	gi166428		3,10E-06
634	G3017	Brassica napus	gi11045087		4,10E-06
634	G3017	Petunia hybrida	x	gi10998404		7,90E-05
634	G3017	Glycine max	gi3399777		0,00011
634	G3017	Perilla frutescens	gi4519199		0,00035
636	G3021	Brassica napus	CD834815		3,00E-67
636	G3021	Brassica	BH955481		8,00E-24

789/1027

		oleracea
636	G3021	Medicago truncatula	AC125475		3,00E-22
636	G3021	Gossypium arboreum	BQ411429		9,00E-12
636	G3021	Glycine max	CD394118		2,00E-11
636	G3021	Gossypium hirsutum	AI727885		2,00E-08
636	G3021	Prunus persica	BU043443		5,00E-08
636	G3021	Solanum tuberosum	BM110947		6,00E-08
636	G3021	Vitis vinifera	CD798414		1,00E-05
636	G3021	Cycas rumphii	CB092407		2,00E-05
636	G3021	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20160528		0,00013
636	G3021	Oryza sativa	gi15528743		0,0017
636	G3021	Chlamydomonas reinhardtii	gi895614		0,82
636	G3021	Pinus taeda	gi6166283		0,83
636	G3021	Triticum aestivum	gi100802		0,92
636	G3021	Prunus armeniaca	gi2677828		1
636	G3021	Hordeum vulgare	gi4105117		1
638	G3032	Hordeum vulgare	BF256704		6,00E-14
638	G3032	Brassica oleracea	BH466839		1,00E-13
638	G3032	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AP004872		2,00E-13

790/1027

638	G3032	Chlamydomonas reinhardtii	AF309494		4,00E-13
638	G3032	Gossypium arboreum	AW726892		9,00E-13
638	G3032	Oryza sativa	CA757143		4,00E-12
638	G3032	Sorghum propinquum	BZ694881		4,00E-12
638	G3032	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01004665		1,00E-11
638	G3032	Triticum aestivum	CA743799		2,00E-11
638	G3032	Zea mays	ZMEXTENS		4,00E-11
638	G3032	Chlamydomonas reinhardtii	gi12018147		6,50E-16
638	G3032	Zea mays	gi1076802		8,30E-12
638	G3032	Glycine max	gi99897		1,00E-11
638	G3032	Volvox carteri f. nagariensis	gi6523547		2,60E-11
638	G3032	Santalum album	gi2429362		1,30E-09
638	G3032	Nicotiana tabacum	gi119714		4,70E-09
638	G3032	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32488576		2,70E-08
638	G3032	Oryza sativa	gi12083527		3,00E-08
638	G3032	Nicotiana alata	gi2653671		3,40E-08
638	G3032	Zea diploperennis	gi228938		4,70E-08
640	G3044	Lotus corniculatus var. japonicus	CB828026		6,00E-45

791/1027

640	G3044	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK103853		7,00E-44
640	G3044	Avicennia marina	BM497415		3,00E-42
640	G3044	Hordeum vulgare subesp. vulgare	CA015610		3,00E-42
640	G3044	Medicago truncatula	BG644829		5,00E-42
640	G3044	Triticum aestivum	BJ267378		1,00E-41
640	G3044	Hordeum vulgare	BE455695		7,00E-41
640	G3044	Glycine max	BU765737		3,00E-40
640	G3044	Triticum monococcum	BF200249		4,00E-40
640	G3044	Solanum tuberosum	BG887287		7,00E-40
640	G3044	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20804997		4,20E-45
640	G3044	Oryza sativa	gi11862964		1,00E-41
640	G3044	Tulipa gesneriana	gi5923912		2,30E-37
640	G3044	Pinus taeda	gi6166283		1,80E-11
640	G3044	Gossypium hirsutum	gi13346180		4,60E-05
640	G3044	Oryza rufipogon	gi1086538		8,60E-05
640	G3044	Phyllostachys acuta	gi527661		0,00022
640	G3044	Lycopersicon	gi6175252		0,00027

792/1027

		esculentum
640	G3044	Glycine max	gi3399777		0,00039
640	G3044	Sorghum bicolor	gi527665		0,00052
642	G3054	Brassica oleracea	BZ041399		3,00E-37
642	G3054	Brassica napus	CD836802		3,00E-36
642	G3054	Brassica rapa subesp. pekinensis	BQ791259		4,00E-36
642	G3054	Oryza sativa	AP004635		9,00E-25
642	G3054	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01000844		9,00E-25
642	G3054	Triticum aestivum	CD861617		6,00E-24
642	G3054	Lycopersicon esculentum	AW930486		1,00E-22
642	G3054	Trifolium purpureum	BU576932		1,00E-20
642	G3054	Lotus japonicus	BI417981		2,00E-20
642	G3054	Triticum monococcum	BQ801216		3,00E-20
642	G3054	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi29467558		6,40E-20
642	G3054	Pisum sativum	gi14018368		2,50E-15
642	G3054	Oryza sativa	gi5441893		2,20E-10
642	G3054	Pinus pinaster	gi18129298		3,60E-05
642	G3054	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi3153151		0,63

793/1027

642	G3054	Hordeum vulgare	gi7443232		0,63
643	G3055	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER35081_1	1337
643	G3055	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER35081_2	1338
643	G3055	Oryza sativa	LIB4831-032- R1-N1-E4	1339
643	G3055	Oryza sativa	ORYSA-22JAN02- CLUSTER3268_1	1340
643	G3055	Zea mays	701166667H1	1341
643	G3055	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER22810_1	1342
643	G3055	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER22810_2	1343
643	G3055	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER22810_3	1344
643	G3055	Zea mays	ZEAMA-08NOV01- CLUSTER22810_4	1345
643	G3055	Glycine max	Gma_S5098126	1686
643	G3055	Zea mays	Zm_S11417368	1832
643	G3055	Triticum aestivum	Ta_S159757	1922
643	G3055	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-330143	2097
644	G3055	Brassica oleracea	BZ078892		2,00E-95
644	G3055	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01000844		1,00E-80
644	G3055	Oryza sativa	AP004635		1,00E-80
644	G3055	Triticum monococcum	BQ801216		1,00E-71
644	G3055	Brassica napus	CD836802		2,00E-71

794/1027

644	G3055	Sorghum bicolor	BE593461		2,00E-67
644	G3055	Brassica rapa subesp. pekinensis	BQ791259		8,00E-64
644	G3055	Lycopersicon esculentum	AW930486		3,00E-58
644	G3055	Hordeum vulgare subesp. vulgare	BU971385		1,00E-57
644	G3055	Zea mays	CC372422		3,00E-56
644	G3055	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi29467558		1,80E-99
644	G3055	Pisum sativum	gi14018368		2,50E-32
644	G3055	Oryza sativa	gi5441893		2,30E-10
644	G3055	Citrus unshiu	gi7024449		1,10E-08
644	G3055	Zea mays	gi22293		1,30E-08
644	G3055	Sorghum bicolor	gi21623		3,70E-08
644	G3055	Cicer arietinum	gi21068672		1,30E-07
644	G3055	Hordeum vulgare	gi1229138		5,70E-07
644	G3055	Lycopersicon esculentum	gi1166450		8,50E-07
644	G3055	Nicotiana tabacum	gi395147		1,50E-06
646	G3059	Vitis vinifera	CB349575		7,00E-59
646	G3059	Brassica oleracea	BH714891		1,00E-55
646	G3059	Oryza sativa (grupo do cultivar	AK108658		6,00E-50

795/1027

		japonica)
646	G3059	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01001811		2,00E-45
646	G3059	Oryza sativa	AC098571		2,00E-45
646	G3059	Zea mays	CC169635		1,00E-38
646	G3059	Hordeum vulgare subesp. vulgare	BI958345		1,00E-36
646	G3059	Populus balsamifera subesp. Trichocarpa	AI166416		2,00E-21
646	G3059	Sorghum bicolor	CF073535		6,00E-19
646	G3059	Medicago truncatula	AW329637		1,00E-12
646	G3059	Oryza sativa	gi13603429		8,50E-53
646	G3059	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi29467558		2,70E-08
646	G3059	Spinacia oleracea	gi2815305		3,40E-06
646	G3059	Pisum sativum	gi31580864		0,00044
646	G3059	Pinus pinaster	gi18129298		0,0015
646	G3059	Petroselinum crispum	gi1169081		0,016
646	G3059	Hordeum vulgare	gi1418972		0,027
646	G3059	Nicotiana tabacum	gi1076624		0,047
646	G3059	Triticum sp.	gi100838		0,074
646	G3059	Triticum	gi1199790		0,074

796/1027

		aestivum
648	G3060	Brassica oleracea	BH549078		2,00E-88
648	G3060	Brassica napus	CD822240		2,00E-76
648	G3060	Zea mays	AY104443		2,00E-62
648	G3060	Lotus corniculatus var. japonicus	AP006377		9,00E-60
648	G3060	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01009959		5,00E-53
648	G3060	Oryza sativa	AP000367		5,00E-53
648	G3060	Solanum tuberosum	BQ505464		5,00E-52
648	G3060	Glycine max	AW348431		3,00E-49
648	G3060	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AP003609		3,00E-48
648	G3060	Triticum aestivum	BF472969		2,00E-47
648	G3060	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32488659		5,10E-49
648	G3060	Oryza sativa	gi5441893		2,30E-46
648	G3060	Pisum sativum	gi14018368		7,40E-10
648	G3060	Pinus pinaster	gi18129298		2,90E-07
648	G3060	Lycopersicon esculentum	gi1345534		0,00084
648	G3060	Gossypium hirsutum	gi126075		0,11
648	G3060	Zea mays	gi22293		0,11
648	G3060	Petunia x hybrida	gi121627		0,14

797/1027

648	G3060	Petunia sp.	gi225181		0,14
648	G3060	Phaseolus vulgaris	gi121632		0,28
650	G3061	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK072128		2,00E-85
650	G3061	Prunus persica	BU039744		4,00E-84
650	G3061	Lycopersicon esculentum	BE459738		8,00E-84
650	G3061	Solanum tuberosum	BG590535		2,00E-82
650	G3061	Zea mays	AX658844		6,00E-82
650	G3061	Triticum aestivum	CD912590		3,00E-81
650	G3061	Robinia pseudoacacia	BI677739		7,00E-81
650	G3061	Capsicum annuum	BM063853		2,00E-79
650	G3061	Brassica oleracea	BZ520039		2,00E-79
650	G3061	Medicago truncatula	BG645203		3,00E-79
650	G3061	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi21741797		8,90E-80
650	G3061	Solanum tuberosum	gi563623		1,90E-79
650	G3061	Oryza sativa	gi10934090		6,10E-77
650	G3061	Lycopersicon esculentum	gi9858780		1,70E-74
650	G3061	Zea mays	gi3170601		1,20E-71
650	G3061	Glycine max	gi18376601		2,30E-19
650	G3061	Triticum	gi485814		0,67

798/1027

		aestivum
650	G3061	Petunia x hybrida	gi2346986		0,95
650	G3061	Tsuga canadensis	gi4530513		1
651	G3067	Medicago truncatula	Mtr_S5406390	1716
651	G3067	Medicago truncatula	Mtr_S7093057	1717
651	G3067	Zea mays	Zm_S11388015	1833
651	G3067	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 56587	2098
651	G3067	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-360212	2099
652	G3067	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK104311		1,00E-127
652	G3067	Oryza sativa	AP003766		1,00E-105
652	G3067	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01011671		1,00E-102
652	G3067	Medicago truncatula	AC144502		2,00E-92
652	G3067	Lactuca sativa	BQ849595		5,00E-86
652	G3067	Zea mays	CC705079		2,00E-78
652	G3067	Glycine max	BG352898		3,00E-76
652	G3067	Brassica oleracea	BZ503751		1,00E-71
652	G3067	Hedyotis centranthoides	CB087520		2,00E-71
652	G3067	Hordeum vulgare subesp. vulgare	CA030376		4,00E-69

799/1027

652	G3067	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20804915		2,70E-122
652	G3067	Oryza sativa	gi5777616		3,60E-56
652	G3067	Nicotiana tabacum	gi27529852		0,55
652	G3067	Petunia x hybrida	gi20563		0,72
652	G3067	Lycopersicon esculentum	gi122003		0,82
652	G3067	Chloroplast Phaseolus vulgaris	gi21309725		1
652	G3067	Glycine max	gi2129831		1
653	G3070	Triticum aestivum	Ta_S122753	1923
654	G3070	Brassica oleracea	BH986969		2,00E-72
654	G3070	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK104311		6,00E-50
654	G3070	Hordeum vulgare subesp. vulgare	CA030376		2,00E-42
654	G3070	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01000203		4,00E-42
654	G3070	Oryza sativa	AP003406		4,00E-42
654	G3070	Zea mays	CC705079		1,00E-40
654	G3070	Medicago truncatula	AC144502		9,00E-40
654	G3070	Lactuca sativa	BQ849595		4,00E-38

800/1027

654	G3070	Hedyotis centranthoides	CB087520		7,00E-37
654	G3070	Glycine max	BG352898		7,00E-35
654	G3070	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20804915		7,50E-58
654	G3070	Oryza sativa	gi5777616		1,50E-24
654	G3070	Zea mays	gi1504058		0,88
654	G3070	Chlorella vulgaris	gi2224518		0,97
654	G3070	Chloroplast Chlorella vulgaris	gi7520715		0,97
654	G3070	Medicago sativa	gi913595		1
654	G3070	Brassica napus	gi2809204		1
655	G3076	Oryza sativa	Os_S95874	1630
655	G3076	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- 52322	2100
656	G3076	Brassica oleracea	BH458827		1,00E-59
656	G3076	Lycopersicon esculentum	AI489100		3,00E-52
656	G3076	Theobroma cacao	CA796492		6,00E-31
656	G3076	Nicotiana glauca X Nicotiana langsdorffii	TOBTID3		3,00E-25
656	G3076	Populus tremula x Populus tremuloides	BU866131		3,00E-21
656	G3076	Medicago truncatula	BQ123004		4,00E-20

801/1027

656	G3076	Zea mays	CC633595		8,00E-18
656	G3076	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK106334		1,00E-17
656	G3076	Oryza sativa	AP003567		4,00E-17
656	G3076	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01001312		4,00E-17
656	G3076	Oryza sativa	gi15408613		1,10E-19
656	G3076	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi21104797		1,10E-19
656	G3076	Lycopersi con esculentum	gi4959970		4,30E-13
656	G3076	Triticum aestivum	gi100809		2,70E-12
656	G3076	Solanum tuberosum	gi13195751		6,90E-12
656	G3076	Zea mays	gi297020		8,80E-12
656	G3076	Nicotiana glauca X Nicotiana l angsdorffii	gi688423		1,00E-11
656	G3076	Phaseolus vulgaris	gi15148924		1,40E-10
656	G3076	Nicotiana tabacum	gi12230709		1,10E-09
656	G3076	Glycine max	gi7488719		1,40E-08
657	G3083	Oryza sativa	LIB3434-065- P1-K1-B5	1346
657	G3083	Oryza sativa	Os_S54214	1631
657	G3083	Glycine max	Gma_S4880456	1687
657	G3083	Hordeum	Hv_S60182	1753

802/1027

		vulgare
657	G3083	Triticum aestivum	Ta_S179586	1924
657	G3083	Lycopersicon esculentum	SGN-UNIGENE- SINGLET-306367	2101
658	G3083	Medicago truncatula	BQ123004		9,00E-65
658	G3083	Arachis hypogaea	CD038559		3,00E-58
658	G3083	Glycine max	BE657440		7,00E-51
658	G3083	Theobroma cacao	CA794948		2,00E-48
658	G3083	Phaseolus coccineus	CA899019		8,00E-47
658	G3083	Brassica oleracea	BZ028606		3,00E-42
658	G3083	Brassica napus	CD823868		3,00E-42
658	G3083	Populus tremula x Populus tremuloides	BU866131		5,00E-36
658	G3083	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	AAAA01006352		2,00E-32
658	G3083	Nicotiana glauca X Nicotiana langsdorffii	TOBTID3		1,00E-31
658	G3083	Nicotiana glauca X Nicotiana langsdorffii	gi688423		8,80E-36
658	G3083	Oryza sativa	gi8570052		1,30E-29
658	G3083	Lycopersicon esculentum	gi4959970		3,10E-17
658	G3083	Nicotiana	gi12230709		7,50E-16

803/1027

		tabacum
658	G3083	Triticum aestivum	gi100809		1,60E-15
658	G3083	Solanum tuberosum	gi13195751		3,00E-14
658	G3083	Zea mays	gi297020		6,00E-14
658	G3083	Phaseolus vulgaris	gi15148926		1,90E-13
658	G3083	Nicotiana sp.	gi19680		7,30E-13
658	G3083	Glycine max	gi7488719		5,10E-11
660	G3084	Brassica napus	CD819850		8,00E-16
660	G3084	Prunus persica	BU043737		2,00E-15
660	G3084	Oryza sativa	BI118786		4,00E-15
660	G3084	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK104501		8,00E-15
660	G3084	Hordeum vulgare subesp. vulgare	AV933892		1,00E-14
660	G3084	Oryza minuta	CB214244		2,00E-14
660	G3084	Hordeum vulgare	BI954130		2,00E-14
660	G3084	Beta vulgaris	BQ592350		7,00E-14
660	G3084	Ipomoea nil	BJ566577		2,00E-13
660	G3084	Populus tremula x Populus tremuloides	PTR306828		4,00E-13
660	G3084	Populus tremula x Populus tremuloides	gi20269057		3,10E-14
660	G3084	Glycine max	gi114733		1,30E-13

804/1027

660	G3084	Vigna radiata	gi287566		1,60E-13
660	G3084	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	gi30962267		2,10E-13
660	G3084	Oryza sativa	gi17154533		3,30E-13
660	G3084	Pisum sativum	gi1352058		1,10E-12
660	G3084	Gossypium hirsutum	gi22531416		6,20E-12
660	G3084	Pinus pinaster	gi17976835		7,70E-12
660	G3084	Pinus taeda	gi32396295		7,70E-12
660	G3084	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi31126760		1,30E-11
661	G3086	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER427_57	1347
661	G3086	Glycine max	GLYMA-28NOV01- CLUSTER427_63	1348
661	G3086	Glycine max	Gma_S4882467	1688
661	G3086	Glycine max	Gma_S4911216	1689
662	G3086	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK100106		2,00E-42
662	G3086	Ipomoea nil	BJ575230		2,00E-39
662	G3086	Medicago truncatula	CA920438		4,00E-38
662	G3086	Glycine max	BU550331		2,00E-37
662	G3086	Lycopersicon esculentum	AW037896		2,00E-36
662	G3086	Brassica oleracea	BH718970		2,00E-36
662	G3086	Solanum tuberosum	BQ113088		2,00E-36

805/1027

662	G3086	Hordeum vulgare subesp. vulgare	CA014136		1,00E-35
662	G3086	Oryza sativa (grupo do cultivar indica)	CB634806		2,00E-35
662	G3086	Zea mays	CA831862		2,00E-35
662	G3086	Pinus taeda	gi6166283		4,50E-42
662	G3086	Oryza sativa	gi19401700		2,10E-36
662	G3086	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi20161021		1,60E-29
662	G3086	Tulipa gesneriana	gi5923912		1,80E-10
662	G3086	Mesembryanthem um crystallinum	gi4206118		6,00E-05
662	G3086	Glycine max	gi3399777		0,00017
662	G3086	Brassica napus	gi27650307		0,00025
662	G3086	Gossypium hirsutum	gi13346182		0,00055
662	G3086	Pennisetum glaucum	gi527657		0,0017
662	G3086	Perilla frutescens	gi4519199		0,0029
664	G3091	Gossypium hirsutum	CD486670		2,00E-93
664	G3091	Medicago truncatula	CB894060		8,00E-90
664	G3091	Solanum tuberosum	BM112649		1,00E-85
664	G3091	Lupinus albus	CA411473		1,00E-85
664	G3091	Vitis vinifera	CB004487		2,00E-85

806/1027

664	G3091	Glycine max	BQ473916		1,00E-83
664	G3091	Prunus persica	BU041659		2,00E-82
664	G3091	Prunus dulcis	BU574304		4,00E-82
664	G3091	Lactuca sativa	BQ871960		5,00E-82
664	G3091	Lycopersicon esculentum	AW220091		7,00E-81
664	G3091	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32489345		1,00E-66
664	G3091	Oryza sativa	gi12643058		6,00E-62
664	G3091	Pisum sativum	gi16117799		9,70E-33
666	G3094	Glycine max	BI969147		2,00E-60
666	G3094	Hordeum vulgare subesp. vulgare	BQ765415		2,00E-54
666	G3094	Pinus pinaster	BX254443		3,00E-54
666	G3094	Pinus taeda	AW011103		3,00E-50
666	G3094	Pisum sativum	AB045222		7,00E-46
666	G3094	Lactuca sativa	BQ875949		7,00E-46
666	G3094	Populus tremula x Populus tremuloides	BU830426		2,00E-45
666	G3094	Triticum aestivum	BJ270124		4,00E-45
666	G3094	Ipomoea nil	BJ563336		2,00E-44
666	G3094	Sorghum propinquum	BF481787		1,00E-43
666	G3094	Pisum sativum	gi16117799		8,40E-49
666	G3094	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32489345		2,00E-29

807/1027

666	G3094	Oryza sativa	gi12643058		1,00E-27
666	G3094	Welwitschia mirabilis	gi17402656		1
666	G3094	Chlorella vulgaris	gi2224452		1
666	G3094	Gnetum africanum	gi29648802		1
666	G3094	Pelargonium mollicomum	gi9621935		1
668	G3095	Populus tremula x Populus tremuloides	BU812421		2,00E-89
668	G3095	Populus tremula	BU889637		2,00E-78
668	G3095	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	AK067251		1,00E-64
668	G3095	Vitis vinifera	CA818053		3,00E-62
668	G3095	Populus balsamifera subesp. trichocarpa	BU870747		3,00E-60
668	G3095	Gossypium arboreum	BG443078		3,00E-57
668	G3095	Medicago truncatula	BQ123285		6,00E-57
668	G3095	Cryptomeria japonica	BP176029		7,00E-57
668	G3095	Glycine max	CA800006		2,00E-56
668	G3095	Oryza sativa	AX653892		4,00E-56
668	G3095	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi32489345		1,60E-57

808/1027

668	G3095	Oryza sativa	gi12643058		1,10E-50
668	G3095	Pisum sativum	gi16117799		3,70E-30
668	G3095	Picea mariana	gi2996158		0,97
668	G3095	Ipomoea nil	gi1064830		1
670	G3111	Brassica oleracea	BH673411		6,00E-80
670	G3111	Medicago truncatula	AC126786		1,00E-58
670	G3111	Glycine max	BU762572		8,00E-56
670	G3111	Lycopersicon esculentum	AW443687		1,00E-55
670	G3111	Lotus japonicus	BI418846		3,00E-54
670	G3111	Vitis vinifera	CB919606		3,00E-52
670	G3111	Solanum tuberosum	BI175970		1,00E-48
670	G3111	Mesembryanthem um crystallinum	BE033932		2,00E-48
670	G3111	Lupinus albus	CA411115		3,00E-46
670	G3111	Stevia rebaudiana	BG522187		5,00E-42
670	G3111	Oryza sativa	gi12039329		1,40E-35
670	G3111	Oryza sativa (grupo do cultivar japonica)	gi31433314		1,40E-35
670	G3111	Hordeum vulgare	gi2894379		7,20E-34
670	G3111	Cucumis melo	gi17016985		7,10E-27
670	G3111	Zea mays	gi18092342		6,30E-19
670	G3111	Nicotiana tabacum	gi12003386		3,60E-16

809/1027

670	G3111	Hordeum vulgare subesp. vulgare	gi20152976		1,40E-14
670	G3111	Medicago sativa	gi23451086		2,00E-14
670	G3111	Glycine max	gi22597166		3,80E-12
670	G3111	Pisum sativum	gi4240031		1,60E-08

[0403] A Tabela 8 lista as sequências descobertas como sendo parálogas dos fatores de transcrição da presente invenção. Os títulos das colunas incluem, da esquerda para a direita, a SEQ ID N^o: de Arabidopsis; os números que correspondem à Gene ID (GID) de

Arabidopsis; os números de GID dos parálogos descobertos em uma busca no banco de dados; e as SEQ ID N-: atribuídas aos parálogos.

Tabela 8. Genes de Fatores de Transcrição e Parálogos de Arabidopsis

Fator de Transcrição de Arabidopsis SEQ ID No:	FT de Arabidopsis GID N	Parálogo GID No.	Nucleotídeo Parálogo SEQ ID No:
3	G12	G1379	1441
		G2 4	1349
7	G3 0	G1791	1461
		G1792	1463
		G1795	1465

810/1027

Fator de Transcrição de Arabidopsis SEQ ID No:	FT de Arabidopsis GID N	Parálogo GID No.	Nucleotídeo Parálogo SEQ ID No:
9	G46	G1004	1425
		G1419	1447
		G29	1351
		G43	1355
11	G47	G2133	1495
39	G148	G142	33
43	G153	G152	1365
		G1760	1459
		G860	1419
45	G155	G131	15
		G135	21
79	G355	G1994	1491
83	G370	G1995	1493
		G2826	1531
		G2838	1535
		G361	1383
		G362	1385
97	G438	G1548	1453
		G390	1389
		G391	1391
		G392	1393
105	G485	G1364	1439

811/1027

Fator de Transcrição de Arabidopsis SEQ ID No:	FT de Arabidopsis GID N	Parálogo GID No.	Nucleotídeo Parálogo SEQ ID No:
		G2345	1501
		G481	1395
		G482	1397
121	G627	G149	1363
125	G651	G1914	1481
		G1973	1485
127	G652	G1335	1435
141	G807	G810	1417
145	G839	G1196	1429
153	G916	G18 4	1369
		G186	1371
155	G926	G2632	1517
159	G961	G2535	1507
		G957	157
161	G975	G1387	1443
		G2583	1515
163	G1011	G154	1367
171	G1037	G722	1409

812/1027

Fator de Transcrição de Arabidopsis SEQ ID No:	FT de Arabidopsis GID N	Parálogo GID No.	Nucleotídeo Parálogo SEQ ID No:
181	G1128	G1399	1445
185	G1142	G2659	1521
189	G1206	G1207	1431
199	G1313	G1325	1433
207	G1357	G1452	1451
		G512	1401
215	G1412	G759	1413
		G773	1415
223	G1451	G990	1423
225	G1452	G1357	1437
		G512	1401
233	G1482	G1888	1477
277	G1792	G1791	1461
		G1795	1465
		G3 0	7
281	G1797	G1798	283
283	G1798	G1797	281
287	G1816	G225	1375

813/1027

Fator de Transcrição de Arabidopsis SEQ ID No:	FT de Arabidopsis GID N	Parálogo GID No.	Nucleotídeo Parálogo SEQ ID No:
		G226	1377
		G2718	507
		G682	1407
297	G1840	G1749	1457
		G1839	1473
303	G1863	G2334	1499
305	G1893	G1976	1489
		G3062	1555
311	G1928	G2664	1523
333	G1995	G2826	1531
		G2838	555
		G361	1383
		G362	1385
		G370	1387
341	G2041	G2882	1537
371	G2207	G2199	1497
393	G2334	G1863	303
407	G2432	G736	1411
417	G2457	G2459	1505

814/1027

Fator de Transcrição de Arabidopsis SEQ ID No:	FT de Arabidopsis GID N	Parálogo GID No.	Nucleotídeo Parálogo SEQ ID No:
419	G2459	G2457	417
425	G2505	G2635	1519
431	G2536	G511	1399
435	G2550	G2546	1509
441	G2567	G1017	167
483	G2650	G617	1405
505	G2717	G2 0 4	1373
		G2709	1525
507	G2718	G1816	287
		G225	1375
		G226	1377
		G682	1407
511	G2741	G1435	1449
525	G2768	G6 0 0	117
529	G2776	G1652	1455
545	G2826	G1995	333
		G2838	555
		G361	1383
		G362	1385

815/1027

Fator de Transcrição de Arabidopsis SEQ ID No:	FT de Arabidopsis GID N	Parálogo GID No.	Nucleotídeo Parálogo SEQ ID No:
		G370	1387
547	G2830	G2562	1511
		G2563	1513
		G2828	1533
555	G2838	G1995	333
		G2826	545
		G361	1383
		G362	1385
		G370	1387
557	G2839	G1889	1479
		G1974	1487
		G353	1379
		G354	1381
567	G2854	G1940	1483
569	G2859	G2779	533
571	G2865	G2934	595
593	G2933	G2928	1539
		G2932	1541
607	G2979	G2980	1547
609	G2981	G2982	1551

816/1027

Fator de Transcrição de Arabidopsis SEQ ID No:	FT de Arabidopsis GID N	Parálogo GID No.	Nucleotídeo Parálogo SEQ ID No:
611	G2982	G2981	1549
615	G2990	G2989	1553
651	G3067	G2966	1545

[0404] A Tabela 9 lista o número de identificação do gene (GID) e as relações entre os homólogos (encontrados utilizando análises de acordo com o Exemplo IX) e variações de sequências da Listagem de Sequências.

Tabela 9. Relações de similaridade encontradas dentro da Listagem de Sequências

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
671		DNA	Glycine max	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G12
672		DNA	Glycine max	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G12
673		DNA	Glycine max	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G12
674		DNA	Glycine max	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G12
675		DNA	Glycine max	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G12
676		DNA	Glycine max	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G12
677		DNA	Glycine max	A sequência de polipeptídeos prevista é

817/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				ortóloga a G12
678		DNA	Oryza sativa	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G12
679		DNA	Oryza sativa	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G12
680		DNA	Oryza sativa	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G12
681		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G12
682		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G12
683		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G12
684		DNA	Zea mays	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G12
685		DNA	Glycine max	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G30, G1792
686		DNA	Glycine max	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G30, G1792
687		DNA	Glycine max	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G30, G1792
688		DNA	Glycine max	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G30, G1792
689		DNA	Glycine max	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G30, G1792
690		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G30, G1792
691		DNA	Zea mays	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G30, G1792
692		DNA	Glycine max	A sequência de polipeptídeos prevista é

818/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				ortóloga a G46
693		DNA	Glycine max	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G46
694		DNA	Glycine max	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G46
695		DNA	Glycine max	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G46
696		DNA	Glycine max	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G46
697		DNA	Glycine max	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G46
698		DNA	Glycine max	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G46
699		DNA	Glycine max	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G46
700		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G46
701		DNA	Zea mays	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G46
702		DNA	Glycine max	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G47
703		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G47
704		DNA	Glycine max	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G148
705		DNA	Glycine max	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G148
706		DNA	Oryza sativa	A sequência de

819/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G148
707		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G148
708		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G148
709		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G148
710		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G148
711		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G148
712		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G148
713		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G153
714		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G153
715		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G153
716		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G153

820/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
717		DNA	Zea mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G153
718		DNA	Zea mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G153
719		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G155
720		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G155
721		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G155
722		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G155
723		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G155
724		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G155
725		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G155
726		DNA	Glycine	max	A sequência	de

821/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G155
727		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G155
728		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G155
729		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G155
730		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G155
731		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G155
732		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G155
733		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G155
734		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G155
735		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G155
736		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G155
737		DNA	Zea mays	A sequência	de

822/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G155
738		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G155
739		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G155
740		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G155
741		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G200
742		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G200
743		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G200
744		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G200
745		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G200
746		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G200
747		DNA	Glycine max	A sequência	de

823/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G355
748		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G355
749		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G355
750		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G355
751		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G355
752		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G355
753		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G370, G1995,
					G2826, G2838
754		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G370, G1995,
					G2826, G2838
755		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G370, G1995,

824/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				G2826, G2838
756		DNA	Glycine max	A sequência	de
					polipeptídeos	prevista é
					ortóloga a	G370,	G1995,
					G2826, G2838
757		DNA	Glycine max	A sequência	de
					polipeptídeos	prevista é
					ortóloga a	G370,	G1995,
					G2826, G2838
758		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos	prevista é
					ortóloga a G37	0, G2826
759		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos	prevista é
					ortóloga a	G370,	G1995,
					G2826, G2838
760		PRT	Oryza	sativa	Ortóloga a	G370,	G1995,
					G2826, G2838
761		PRT	Oryza	sativa	Ortóloga a	G370,	G1995,
					G2826, G2838
762		PRT	Oryza	sativa	Ortóloga a	G370,	G1995,
					G2826, G2838
763		PRT	Oryza	sativa	Ortóloga a	G370,	G1995,
					G2826, G2838
764		DNA	Zea mays	A sequência	de
					polipeptídeos	prevista é
					ortóloga a	G370,	G1995,
					G2826, G2838

825/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
765		DNA	Zea mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G370, G1995,
					G2826, G2838
766		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G372
767		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G372
768		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
769		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
770		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
771		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
772		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
773		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
774		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
775		DNA	Glycine	max	A sequência	de

826/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				polipeptídeos prevista é ortóloga a G438
776		DNA	Glycine max	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G438
777		DNA	Glycine max	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G438
778		DNA	Oryza sativa	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G438
779		DNA	Oryza sativa	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G438
780		DNA	Oryza sativa	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G438
781		DNA	Oryza sativa	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G438
782		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G438
783		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G438
784		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G438
785		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G438
786		DNA	Oryza sativa	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G438

827/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual	Relação
a	Sequência é Derivada
787		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
788		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
789		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
790		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
791		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
792		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
793		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
794		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
795		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
796		DNA	Zea	mays	A sequência	de

828/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
797		DNA	Zea mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
798		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G485
799		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G485
800		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G485
801		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G485
802		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G485
803		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G485
804		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G485
805		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é

829/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				ortóloga a G485
806		DNA	Glycine max	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G485
807		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G485
808		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G485
809		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G485
810		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G485
811		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G485
812		DNA	Oryza sativa	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G485
813		DNA	Zea mays	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G485
814		DNA	Zea mays	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G485
815		DNA	Zea mays	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G485
816		DNA	Zea mays	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G485
817		DNA	Zea mays	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G485

830/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
818		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G485
819		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G485
820		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G485
821		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G485
822		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G627
823		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G627
824		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G627
825		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G651
826		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G651
827		DNA	Glycine max	A sequência	de

831/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G651
828		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G651
829		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G651
830		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G651
831		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G651
832		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G651
833		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G651
834		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G651
835		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G652
836		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G652
837		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G652
838		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G652

832/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
839		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G652
840		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G652
841		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G652
842		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G652
843		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G652
844		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G652
845		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G652
846		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G652
847		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G652
848		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G652
849		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G652
850		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G652
851		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G652
852		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G652
853		DNA	Oryza sativa	A sequência	de

833/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual	Relação
a	Sequência é Derivada
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G652
854		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G652
855		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G652
856		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G652
857		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G652
858		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G652
859		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G652
860		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G652
861		DNA	Glycine max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G807
862		DNA	Glycine max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é

834/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				ortóloga a G807
863		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G807
864		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G807
865		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G807
866		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G807
867		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G807
868		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G839
869		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G839
870		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G839
871		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G839
872		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G839

835/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
873		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G839
874		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G839
875		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G839
876		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G839
877		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G916
878		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G916
879		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G916
880		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G916
881		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G916
882		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G916

836/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
883		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G916
884		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G916
885		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G916
886		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G916
887		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G916
888		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G916
889		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G926
890		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G926
891		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G926
892		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G926
893		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G926

837/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
894		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G926
895		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G961
896		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G961
897		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G961
898		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G961
899		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G961
900		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G961
901		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G961
902		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G975
903		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G975

838/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
904		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G975
905		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G975
906		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G975
907		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G975
908		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G975
909		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G975
910		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G975
911		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G975
912		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1011
913		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1011

839/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
914		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1011
915		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1011
916		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1011
917		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1011
918		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1011
919		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1011
920		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1011
921		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1011
922		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1011
923		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1011

840/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
924		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1011
925		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1013
926		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1037
927		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1037
928		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1037
929		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1037
930		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1037
931		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1037
932		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1037
933		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1037
934		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1037
935		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1037
936		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1037

841/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
937		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1037
938		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1037
939		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1037
940		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1037
941		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1037
942		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1128
943		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1128
944		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1142
945		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1142
946		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1142
947		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é

842/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				ortóloga a G1142
948		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1206
949		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1206
950		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1206
951		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1206
952		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1206
953		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1206
954		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1206
955		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1206
956		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1206
957		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1206

843/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual	Relação
a	Sequência é Derivada
958		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1206
959		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1206
960		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1206
961		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1206
962		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1206
963		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1206
964		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1206
965		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1206
966		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1206
967		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1206
968		DNA	Glycine max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é

844/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				ortóloga a G1274
969		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1274
970		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1274
971		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1274
972		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1274
973		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1274
974		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1274
975		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1274
976		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1313
977		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1313
978		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1313
979		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1313
980		DNA	Zea mays	A sequência	de

845/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1313
981		DNA	Zea mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1313
982		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1357, G1452
983		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1412
984		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1412
985		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1412
986		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1412
987		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1412
988		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1412
989		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é

846/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				ortóloga a G1412
990		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1412
991		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1412
992		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1420
993		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1420
994		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1420
995		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1420
996		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1451
997		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1451
998		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1451

847/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
999		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1451
1000		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1451
1001		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1451
1002		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1451
1003		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1451
1004		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1451
1005		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1451
1006		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1451
1007		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1451
1008		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1451
1009		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1468
1010		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1468
1011		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1468

848/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1012		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1468
1013		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1476
1014		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1482
1015		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1482
1016		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1482
1017		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1482
1018		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1482
1019		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1482
1020		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1482
1021		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1482
1022		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é

849/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				ortóloga a G1482
1023		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1482
1024		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1482
1025		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1482
1026		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1482
1027		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1482
1028		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1482
1029		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1482
1030		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1482
1031		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1510
1032		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1510
1033		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é

850/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				ortóloga a G1539
1034		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1539
1035		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1557
1036		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1660
1037		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1660
1038		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1660
1039		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1660
1040		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1660
1041		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1660
1042		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1660
1043		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1660
1044		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é

851/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual	Relação
a	Sequência é Derivada
				ortóloga a G1660
1045		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1660
1046		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1660
1047		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1660
1048		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1730
1049		DNA	Glycine max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1753
1050		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1753
1051		DNA	Glycine max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1779
1052		DNA	Glycine max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1779
1053		DNA	Glycine max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1779
1054		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1779

852/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1055		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1779
1056		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1796
1057		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1816, G2718
1058		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1816, G2718
1059		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1816, G2718
1060		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1816, G2718
1061		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1816, G2718
1062		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1816
1063		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1816, G2718
1064		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1816, G2718

853/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1065		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1816, G2718
1066		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1816, G2718
1067		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1816, G2718
1068		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1893
1069		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1893
1070		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1893
1071		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1893
1072		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1893
1073		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1893
1074		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1893
1075		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1893

854/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1076		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1893
1077		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1893
1078		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1893
1079		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1893
1080		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1893
1081		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1893
1082		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1928
1083		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1928
1084		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1928
1085		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1928
1086		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1928
1087		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1928
1088		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1928

855/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1089		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1928
1090		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1968
1091		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1968
1092		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1968
1093		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G1968
1094		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1983
1095		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1983
1096		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1983
1097		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1985
1098		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1988
1099		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é

856/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual	Relação
a	Sequência é Derivada
				ortóloga a G1988
1100		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1988
1101		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1988
1102		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1988
1103		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1988
1104		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1988
1105		DNA	Glycine max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2041
1106		DNA	Glycine max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2041
1107		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2041
1108		DNA	Glycine max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2085

857/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1109		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2085
1110		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2085
1111		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2085
1112		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2085
1113		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2085
1114		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2109
1115		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2109
1116		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2142
1117		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2142
1118		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2142

858/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1119		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2142
1120		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2142
1121		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2142
1122		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2142
1123		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2142
1124		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2142
1125		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2239
1126		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2239
1127		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2239
1128		DNA	Glycine max	A sequência	de

859/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2239
1129		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2239
1130		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2239
1131		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2239
1132		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2239
1133		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2239
1134		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2239
1135		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2239
1136		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2239
1137		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2317
1138		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2317
1139		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2319

860/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1140		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2319
1141		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2319
1142		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2319
1143		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2432
1144		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2432
1145		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2432
1146		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2453
1147		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2457, G2459
1148		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2457, G2459
1149		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2457, G2459

861/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1150		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2457, G2459
1151		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2457, G2459
1152		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2457, G2459
1153		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2457, G2459
1154		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2457
1155		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2457
1156		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2457
1157		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2457
1158		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2459
1159		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2459
1160		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2459

862/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1161		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2505
1162		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2505
1163		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2536
1164		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2536
1165		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2536
1166		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2536
1167		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2536
1168		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2536
1169		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2536
1170		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2536

863/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1171		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2536
1172		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2536
1173		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2550
1174		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2550
1175		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2550
1176		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2567
1177		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2567
1178		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2567
1179		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2567
1180		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2567

864/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1181		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2567
1182		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2567
1183		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2567
1184		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2567
1185		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2567
1186		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2567
1187		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2567
1188		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2567
1189		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2567
1190		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2567
1191		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2567

865/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1192		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2571
1193		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2571
1194		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2571
1195		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2579
1196		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2579
1197		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2585
1198		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2585
1199		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2585
1200		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2617
1201		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2650
1202		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2650
1203		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2650
1204		DNA	Zea mays	A sequência	de

866/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2650
1205		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2650
1206		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2650
1207		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2650
1208		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2661
1209		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2717
1210		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2717
1211		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2717
1212		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2717
1213		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2717
1214		DNA	Glycine max	A sequência	de

867/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2717
1215		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2717
1216		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2717
1217		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2717
1218		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2717
1219		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2717
1220		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2717
1221		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2717
1222		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2717
1223		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2717
1224		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2717
1225		DNA	Zea mays	A sequência	de

868/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2717
1226		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2717
1227		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2717
1228		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2723
1229		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2741
1230		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2741
1231		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2741
1232		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2741
1233		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2741
1234		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2741
1235		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2741

869/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1236		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2741
1237		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2754
1238		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2754
1239		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2754
1240		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2754
1241		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2754
1242		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2754
1243		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2754
1244		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2768
1245		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2768

870/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1246		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2768
1247		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2768
1248		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2768
1249		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2768
1250		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2768
1251		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2768
1252		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2768
1253		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2768
1254		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2768
1255		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2768
1256		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2768

871/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1257		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2768
1258		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2768
1259		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2768
1260		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2768
1261		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2768
1262		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2776
1263		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2776
1264		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2776
1265		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2776
1266		DNA	Glycine max	A sequência	de

872/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2776
1267		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2776
1268		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2776
1269		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2776
1270		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2776
1271		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2776
1272		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2776
1273		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2776
1274		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2776
1275		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2776
1276		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2776
1277		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2776
1278		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é

873/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				ortóloga a G2776
1279		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2826, G2838
1280		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2830
1281		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2839
1282		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2839
1283		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2839
1284		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2839
1285		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2839
1286		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2839
1287		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2839
1288		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2839
1289		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2839
1290		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2839

874/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual	Relação
a	Sequência é Derivada
1291		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2839
1292		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2839
1293		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2839
1294		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2839
1295		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2839
1296		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2839
1297		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2839
1298		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2839
1299		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2839
1300		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2854
1301		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2854

875/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1302		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2854
1303		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2859
1304		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2865
1305		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2865
1306		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2885
1307		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2907
1308		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2907
1309		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2907
1310		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2907
1311		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2907
1312		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é

876/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				ortóloga a G2913
1313		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2913
1314		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2933
1315		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2933
1316		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2933
1317		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2969
1318		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2981, G2982
1319		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2981, G2982
1320		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2981, G2982
1321		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2981, G2982
1322		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2981, G2982

877/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1323		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2981, G2982
1324		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2981
1325		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2981, G2982
1326		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2981, G2982
1327		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2981, G2982
1328		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2983
1329		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2983
1330		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2983
1331		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2983
1332		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2983
1333		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2983

878/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1334		PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2990
1335		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2990
1336		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2990
1337		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G3055
1338		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G3055
1339		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G3055
1340		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G3055
1341		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G3055
1342		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G3055
1343		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G3055

879/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1344		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G3055
1345		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G3055
1346		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G3083
1347		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G3086
1348		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G3086
1349	G2 4	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G12
1350	G2 4	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G12
			thaliana
1351	G29	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G46
1352	G29	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G46
			thaliana
1353	G3 0	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G1792

880/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1354	G3 0	PRT	Arabidopsis thaliana	Paráloga a G1792
1355	G43	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G46
1356	G43	PRT	Arabidopsis thaliana	Paráloga a G46
1357	G131	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G155
1358	G131	PRT	Arabidopsis thaliana	Paráloga a G155
1359	G135	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G155
1360	G135	PRT	Arabidopsis thaliana	Paráloga a G155
1361	G142	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G148
1362	G142	PRT	Arabidopsis thaliana	Paráloga a G148
1363	G149	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G627
1364	G149	PRT	Arabidopsis thaliana	Paráloga a G627

881/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1365	G152	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G153
1366	G152	PRT	Arabidopsis thaliana	Paráloga a G153
1367	G154	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G1011
1368	G154	PRT	Arabidopsis thaliana	Paráloga a G1011
1369	G184	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G916
1370	G184	PRT	Arabidopsis thaliana	Paráloga a G916
1371	G186	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G916
1372	G186	PRT	Arabidopsis thaliana	Paráloga a G916
1373	G204	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G2717
1374	G204	PRT	Arabidopsis thaliana	Paráloga a G2717
1375	G225	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G1816, G2718

882/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1376	G225	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G1816, G2718
			thaliana
1377	G226	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G1816, G2718
1378	G226	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G1816, G2718
			thaliana
1379	G353	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G2839
1380	G353	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G2839
			thaliana
1381	G354	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G2839
1382	G354	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G2839
			thaliana
1383	G361	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G370, G1995,
				G2826, G2838
1384	G361	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G370, G1995,
			thaliana	G2826, G2838
1385	G362	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G370, G1995,
				G2826, G2838
1386	G362	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G370, G1995,

883/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
			thaliana	G2826, G2838
1387	G370	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G1995, G28	26,
				G2838
1388	G370	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G1995, G28	26,
			thaliana	G2838
1389	G390	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G438
1390	G390	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G438
			thaliana
1391	G391	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G438
1392	G391	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G438
			thaliana
1393	G392	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G438
1394	G392	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G438
			thaliana
1395	G481	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G485
1396	G481	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G485
			thaliana

884/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1397	G482	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G485
1398	G482	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G485
			thaliana
1399	G511	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G2536
1400	G511	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G2536
			thaliana
1401	G512	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G1357, G1452
1402	G512	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G1357, G1452
			thaliana
1403	G600	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G2768
1404	G600	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G2768
			thaliana
1405	G617	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G2650
1406	G617	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G2650
			thaliana
1407	G682	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G1816, G2718

885/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1408	G682	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G1816, G2718
			thaliana
1409	G722	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G1037
1410	G722	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G1037
			thaliana
1411	G736	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G2432
1412	G736	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G2432
			thaliana
1413	G759	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G1412
1414	G759	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G1412
			thaliana
1415	G773	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G1412
1416	G773	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G1412
			thaliana
1417	G810	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G807
1418	G810	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G807
			thaliana

886/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1419	G860	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G153
1420	G860	PRT	Arabidopsis thaliana	Paráloga a G153
1421	G957	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G961
1422	G957	PRT	Arabidopsis thaliana	Paráloga a G961
1423	G990	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G1451
1424	G990	PRT	Arabidopsis thaliana	Paráloga a G1451
1425	G1004	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G46
1426	G1004	PRT	Arabidopsis thaliana	Paráloga a G46
1427	G1017	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G2567
1428	G1017	PRT	Arabidopsis thaliana	Paráloga a G2567
1429	G1196	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G839

887/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1430	G1196	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G839
			thaliana
1431	G1207	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G1206
1432	G1207	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G1206
			thaliana
1433	G1325	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G1313
1434	G1325	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G1313
			thaliana
1435	G1335	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G652
1436	G1335	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G652
			thaliana
1437	G1357	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G1452
1438	G1357	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G1452
			thaliana
1439	G1364	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G485
1440	G1364	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G485
			thaliana

888/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1441	G1379	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G12
1442	G1379	PRT	Arabidopsis thaliana	Paráloga a G12
1443	G1387	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G975
1444	G1387	PRT	Arabidopsis thaliana	Paráloga a G975
1445	G1399	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G1128
1446	G1399	PRT	Arabidopsis thaliana	Paráloga a G1128
1447	G1419	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G46
1448	G1419	PRT	Arabidopsis thaliana	Paráloga a G46
1449	G1435	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G2741
1450	G1435	PRT	Arabidopsis thaliana	Paráloga a G2741
1451	G1452	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G1357

889/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1452	G1452	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G1357
			thaliana
1453	G1548	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G438
1454	G1548	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G438
			thaliana
1455	G1652	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G2776
1456	G1652	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G2776
			thaliana
1457	G1749	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G1840
1458	G1749	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G1840
			thaliana
1459	G1760	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G153
1460	G1760	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G153
			thaliana
1461	G1791	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G30, G1792
1462	G1791	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G30, G1792
			thaliana

890/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1463	G1792	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G30
1464	G1792	PRT	Arabidopsis thaliana	Paráloga a G30
1465	G1795	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G30, G1792
1466	G1795	PRT	Arabidopsis thaliana	Paráloga a G30, G1792
1467	G1797	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G1798
1468	G1797	PRT	Arabidopsis thaliana	Paráloga a G1798
1469	G1798	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G1797
1470	G1798	PRT	Arabidopsis thaliana	Paráloga a G1797
1471	G1816	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G2718
1472	G1816	PRT	Arabidopsis thaliana	Paráloga a G2718
1473	G1839	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G1840

891/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1474	G1839	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G1840
			thaliana
1475	G1863	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G2334
1476	G1863	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G2334
			thaliana
1477	G1888	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G1482
1478	G1888	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G1482
			thaliana
1479	G1889	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G2839
1480	G1889	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G2839
			thaliana
1481	G1914	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G651
1482	G1914	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G651
			thaliana
1483	G1940	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G2854
1484	G1940	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G2854
			thaliana

892/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1485	G1973	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G651
1486	G1973	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G651
			thaliana
1487	G1974	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G2839
1488	G1974	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G2839
			thaliana
1489	G1976	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G1893
1490	G1976	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G1893
			thaliana
1491	G1994	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G355
1492	G1994	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G355
			thaliana
1493	G1995	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G370, G28	26,
				G2838
1494	G1995	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G370, G28	26,
			thaliana	G2838
1495	G2133	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é

893/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				paráloga a G47
1496	G2133	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G47
			thaliana
1497	G2199	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G2207
1498	G2199	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G2207
			thaliana
1499	G2334	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G1863
1500	G2334	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G1863
			thaliana
1501	G2345	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G485
1502	G2345	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G485
			thaliana
1503	G2457	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G2459
1504	G2457	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G2459
			thaliana
1505	G2459	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G2457
1506	G2459	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G2457

894/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
			thaliana
1507	G2535	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G961
1508	G2535	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G961
			thaliana
1509	G2546	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G2550
1510	G2546	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G2550
			thaliana
1511	G2562	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G2830
1512	G2562	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G2830
			thaliana
1513	G2563	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G2830
1514	G2563	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G2830
			thaliana
1515	G2583	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G975
1516	G2583	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G975
			thaliana
1517	G2632	DNA	Arabidopsis	A sequência	de

895/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
			thaliana	polipeptídeos prevista é paráloga a G926
1518	G2632	PRT	Arabidopsis thaliana	Paráloga a G926
1519	G2635	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G2505
1520	G2635	PRT	Arabidopsis thaliana	Paráloga a G2505
1521	G2659	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G1142
1522	G2659	PRT	Arabidopsis thaliana	Paráloga a G1142
1523	G2664	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G1928
1524	G2664	PRT	Arabidopsis thaliana	Paráloga a G1928
1525	G2709	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G2717
1526	G2709	PRT	Arabidopsis thaliana	Paráloga a G2717
1527	G2718	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G1816

896/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1528	G2718	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G1816
			thaliana
1529	G2779	DNA	Arabidopsis	A sequência		de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G2859
1530	G2779	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G2859
			thaliana
1531	G2826	DNA	Arabidopsis	A sequência		de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G370,	G1995,
				G2838
1532	G2826	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G370,	G1995,
			thaliana	G2838
1533	G2828	DNA	Arabidopsis	A sequência		de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G2830
1534	G2828	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G2830
			thaliana
1535	G2838	DNA	Arabidopsis	A sequência		de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G370,	G1995,
				G2826
1536	G2838	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G370,	G1995,
			thaliana	G2826
1537	G2882	DNA	Arabidopsis	A sequência		de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G2041
1538	G2882	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G2041

897/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
			thaliana
1539	G2928	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G2933
1540	G2928	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G2933
			thaliana
1541	G2932	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G2933
1542	G2932	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G2933
			thaliana
1543	G2934	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G2865
1544	G2934	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G2865
			thaliana
1545	G2966	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G3067
1546	G2966	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G3067
			thaliana
1547	G2980	DNA	Arabidopsis	A sequência	de
			thaliana	polipeptídeos prevista	é
				paráloga a G2979
1548	G2980	PRT	Arabidopsis	Paráloga a G2979
			thaliana
1549	G2981	DNA	Arabidopsis	A sequência	de

898/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
			thaliana	polipeptídeos prevista é paráloga a G2982
1550	G2981	PRT	Arabidopsis thaliana	Paráloga a G2982
1551	G2982	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G2981
1552	G2982	PRT	Arabidopsis thaliana	Paráloga a G2981
1553	G2989	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G2990
1554	G2989	PRT	Arabidopsis thaliana	Paráloga a G2990
1555	G3062	DNA	Arabidopsis thaliana	A sequência de polipeptídeos prevista é paráloga a G1893
1556	G3062	PRT	Arabidopsis thaliana	Paráloga a G1893
1557		DNA	Oryza sativa	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G12
1558		DNA	Oryza sativa	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G12
1559		DNA	Oryza sativa	A sequência de polipeptídeos prevista é ortóloga a G30

899/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1560		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G148
1561		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G148
1562		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G148
1563		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G155
1564		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G155
1565		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G155
1566		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G155
1567		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G200
1568		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G319
1569		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de

900/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G355
1570		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G370
1571		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
1572		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
1573		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
1574		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
1575		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G627
1576		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G651
1577		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G652
1578		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é

901/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				ortóloga a G652
1579		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G652
1580		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G807
1581		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1011
1582		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1313
1583		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1313
1584		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1451
1585		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1451
1586		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1451
1587		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1468

902/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1588		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1468
1589		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1468
1590		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1468
1591		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1468
1592		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1482
1593		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1660
1594		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1796
1595		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1983
1596		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1983
1597		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de

903/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1983
1598		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1983
1599		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1983
1600		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1983
1601		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1988
1602		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2060
1603		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2109
1604		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2109
1605		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2207
1606		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é

904/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				ortóloga a G2207
1607		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2317
1608		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2432
1609		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2453
1610		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2550
1611		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2567
1612		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2567
1613		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2650
1614		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2717
1615		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2754

905/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1616		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2826
1617		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2839
1618		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2854
1619		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2854
1620		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2907
1621		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2907
1622		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2907
1623		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2913
1624		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2933
1625		DNA	Oryza	sativa	A sequência	de

906/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2969
1626		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2981
1627		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2983
1628		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2990
1629		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2992
1630		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G3076
1631		DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G3083
1632		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G12
1633		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G30, G1792
1634		DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é

907/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				ortóloga a G153
1635		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G155
1636		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G355
1637		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G370
1638		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
1639		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
1640		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
1641		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G485
1642		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G624
1643		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G652

908/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1644		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G652
1645		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G652
1646		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G839
1647		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G839
1648		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G916
1649		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G916
1650		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G961
1651		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1011
1652		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1037
1653		DNA	Glycine	max	A sequência	de

909/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1128
1654		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1206
1655		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1206
1656		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1206
1657		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1412
1658		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1451
1659		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1451
1660		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1468
1661		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1468
1662		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é

910/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				ortóloga a G1510
1663		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1816, G2718
1664		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1893
1665		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1928
1666		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2142
1667		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2207
1668		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2317
1669		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2567
1670		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2717
1671		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2741

911/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1672		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2776
1673		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2776
1674		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2784
1675		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2839
1676		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2839
1677		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2854
1678		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2865
1679		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2907
1680		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2969
1681		DNA	Glycine	max	A sequência	de

912/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2969
1682		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2969
1683		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2981
1684		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2983
1685		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2990
1686		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G3055
1687		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G3083
1688		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G3086
1689		DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G3086
1690		DNA	Medicago	A sequência	de
			truncatula	polipeptídeos prevista	é

913/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				ortóloga a G12
1691		DNA	Medicago	A sequência	de
			truncatula	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G200
1692		DNA	Medicago	A sequência	de
			truncatula	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G355
1693		DNA	Medicago	A sequência	de
			truncatula	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G438
1694		DNA	Medicago	A sequência	de
			truncatula	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G438
1695		DNA	Medicago	A sequência	de
			truncatula	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G627
1696		DNA	Medicago	A sequência	de
			truncatula	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1011
1697		DNA	Medicago	A sequência	de
			truncatula	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1206
1698		DNA	Medicago	A sequência	de
			truncatula	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1206
1699		DNA	Medicago	A sequência	de
			truncatula	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1276

914/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1700		DNA	Medicago	A sequência	de
			truncatula	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1451
1701		DNA	Medicago	A sequência	de
			truncatula	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1468
1702		DNA	Medicago	A sequência	de
			truncatula	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1468
1703		DNA	Medicago	A sequência	de
			truncatula	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1482
1704		DNA	Medicago	A sequência	de
			truncatula	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1928
1705		DNA	Medicago	A sequência	de
			truncatula	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2051
1706		DNA	Medicago	A sequência	de
			truncatula	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2060
1707		DNA	Medicago	A sequência	de
			truncatula	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2085
1708		DNA	Medicago	A sequência	de
			truncatula	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2142
1709		DNA	Medicago	A sequência	de

915/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
			truncatula	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2317
1710		DNA	Medicago	A sequência	de
			truncatula	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2382
1711		DNA	Medicago	A sequência	de
			truncatula	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2550
1712		DNA	Medicago	A sequência	de
			truncatula	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2550
1713		DNA	Medicago	A sequência	de
			truncatula	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2839
1714		DNA	Medicago	A sequência	de
			truncatula	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2983
1715		DNA	Medicago	A sequência	de
			truncatula	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2990
1716		DNA	Medicago	A sequência	de
			truncatula	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G3067
1717		DNA	Medicago	A sequência	de
			truncatula	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G3067
1718		DNA	Hordeum vulgare	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é

916/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				ortóloga a G47
1719		DNA	Hordeum	vulgare	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G155
1720		DNA	Hordeum	vulgare	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G155
1721		DNA	Hordeum	vulgare	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G155
1722		DNA	Hordeum	vulgare	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
1723		DNA	Hordeum	vulgare	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
1724		DNA	Hordeum	vulgare	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
1725		DNA	Hordeum	vulgare	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G485
1726		DNA	Hordeum	vulgare	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G485
1727		DNA	Hordeum	vulgare	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G627

917/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1728		DNA	Hordeum	vulgare	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G652
1729		DNA	Hordeum	vulgare	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G652
1730		DNA	Hordeum	vulgare	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G652
1731		DNA	Hordeum	vulgare	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G807
1732		DNA	Hordeum	vulgare	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G916
1733		DNA	Hordeum	vulgare	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G975
1734		DNA	Hordeum	vulgare	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1313
1735		DNA	Hordeum	vulgare	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1451
1736		DNA	Hordeum	vulgare	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1468
1737		DNA	Hordeum	vulgare	A sequência	de

918/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1468
1738		DNA	Hordeum	vulgare	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1468
1739		DNA	Hordeum	vulgare	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1928
1740		DNA	Hordeum	vulgare	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2051
1741		DNA	Hordeum	vulgare	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2317
1742		DNA	Hordeum	vulgare	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2457
1743		DNA	Hordeum	vulgare	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2567
1744		DNA	Hordeum	vulgare	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2717
1745		DNA	Hordeum	vulgare	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2741
1746		DNA	Hordeum	vulgare	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é

919/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				ortóloga a G2754
1747		DNA	Hordeum vulgare	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2763
1748		DNA	Hordeum vulgare	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2768
1749		DNA	Hordeum vulgare	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2839
1750		DNA	Hordeum vulgare	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2854
1751		DNA	Hordeum vulgare	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2854
1752		DNA	Hordeum vulgare	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2907
1753		DNA	Hordeum vulgare	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G3083
1754		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G30, G1792
1755		DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G148

920/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual	Relação
a	Sequência é Derivada
1756		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G148
1757		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G153
1758		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G153
1759		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G155
1760		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G155
1761		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G155
1762		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G155
1763		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G155
1764		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G155
1765		DNA	Zea	mays	A sequência	de

921/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual	Relação
a	Sequência é Derivada
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G200
1766		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G200
1767		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G200
1768		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G200
1769		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G200
1770		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G319
1771		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
1772		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
1773		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
1774		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é

922/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual	Relação
a	Sequência é Derivada
				ortóloga a G438
1775		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
1776		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G485
1777		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G485
1778		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G485
1779		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G651
1780		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G651
1781		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G651
1782		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G652
1783		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G807

923/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual	Relação
a	Sequência é Derivada
1784		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G839
1785		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G916
1786		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1011
1787		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1011
1788		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1037
1789		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1037
1790		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1142
1791		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1206
1792		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1451
1793		DNA	Zea	mays	A sequência	de

924/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual	Relação
a	Sequência é Derivada
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1451
1794		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1451
1795		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1451
1796		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1451
1797		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1451
1798		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1468
1799		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1468
1800		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1468
1801		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1468
1802		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é

925/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual	Relação
a	Sequência é Derivada
				ortóloga a G1482
1803		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1660
1804		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1660
1805		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1796
1806		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1893
1807		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1983
1808		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1983
1809		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1983
1810		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2041
1811		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2109

926/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual	Relação
a	Sequência é Derivada
1812		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2142
1813		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2453
1814		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2457
1815		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2550
1816		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2567
1817		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2579
1818		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2717
1819		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2741
1820		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2754
1821		DNA	Zea	mays	A sequência	de

927/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual	Relação
a	Sequência é Derivada
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2754
1822		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2754
1823		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2854
1824		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2854
1825		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2907
1826		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2907
1827		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2930
1828		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2933
1829		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2981
1830		DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é

928/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				ortóloga a G2981
1831		DNA	Zea mays		A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2992
1832		DNA	Zea mays		A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G3055
1833		DNA	Zea mays		A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G3067
1834		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G30
1835		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G148
1836		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G155
1837		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G155
1838		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G155
1839		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G319

929/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1840		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
1841		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
1842		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
1843		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
1844		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
1845		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G438
1846		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G485
1847		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G485
1848		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G485
1849		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de

930/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G485
1850		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G627
1851		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G652
1852		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G652
1853		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G652
1854		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G652
1855		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G652
1856		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G839
1857		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G926
1858		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é

931/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				ortóloga a G1011
1859		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1011
1860		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1011
1861		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1037
1862		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1037
1863		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1128
1864		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1451
1865		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1451
1866		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1451
1867		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1468

932/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1868		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1468
1869		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1468
1870		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1468
1871		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1468
1872		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1468
1873		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1468
1874		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1468
1875		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1468
1876		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1468
1877		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de

933/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1468
1878		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1468
1879		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1482
1880		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1510
1881		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1660
1882		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1796
1883		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1816, G2718
1884		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1840
1885		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1983
1886		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é

934/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				ortóloga a G1983
1887		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1983
1888		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1983
1889		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1983
1890		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1983
1891		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1983
1892		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1983
1893		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1983
1894		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1983
1895		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1983

935/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1896		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1983
1897		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2060
1898		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2109
1899		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2142
1900		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2142
1901		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2142
1902		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2382
1903		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2457, G2459
1904		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2457
1905		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de

936/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2550
1906		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2567
1907		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2717
1908		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2717
1909		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2717
1910		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2754
1911		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2754
1912		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2768
1913		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2776
1914		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é

937/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				ortóloga a G2839
1915		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2839
1916		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2839
1917		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2839
1918		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2854
1919		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2854
1920		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2854
1921		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G2990
1922		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G3055
1923		DNA	Triticum	aestivum	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G3070

938/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1924		DNA	Triticum aestivum	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G3083
1925		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G46
1926		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G155
1927		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G438
1928		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G652
1929		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1011
1930		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1412
1931		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1451
1932		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1510
1933		DNA	Lycopersicon	A sequência	de

939/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2317
1934		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2907
1935		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2930
1936		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2969
1937		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G12
1938		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G12
1939		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G12
1940		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G46
1941		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G46
1942		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é

940/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				ortóloga a G46
1943		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G148
1944		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G148
1945		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G153
1946		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G153
1947		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G155
1948		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G155
1949		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G155
1950		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G155
1951		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G155

941/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1952		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G155
1953		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G200
1954		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G200
1955		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G319
1956		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G355
1957		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G355
1958		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G355
1959		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G370, G1995,
				G2826, G2838
1960		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G370, G1995,

942/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				G2826, G2838
1961		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G370, G1995,
				G2826, G2838
1962		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G438
1963		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G438
1964		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G438
1965		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G438
1966		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G438
1967		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G438
1968		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G438
1969		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é

943/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				ortóloga a G438
1970		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G438
1971		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G438
1972		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G438
1973		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G438
1974		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G438
1975		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G438
1976		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G438
1977		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G438
1978		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G438

944/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
1979		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G438
1980		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G485
1981		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G485
1982		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G627
1983		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G651
1984		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G651
1985		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G651
1986		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G652
1987		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G652
1988		DNA	Lycopersicon	A sequência	de

945/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G807
1989		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G807
1990		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G839
1991		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G839
1992		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G839
1993		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G916
1994		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G916
1995		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G916
1996		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G916
1997		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é

946/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				ortóloga a G916
1998		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G916
1999		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G926
2000		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G926
2001		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G926
2002		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G961
2003		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G975
2004		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G975
2005		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G975
2006		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G975

947/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
2007		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1011
2008		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1011
2009		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1011
2010		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1011
2011		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1037
2012		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1142
2013		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1206
2014		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1206
2015		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1206
2016		DNA	Lycopersicon	A sequência	de

948/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1206
2017		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1274
2018		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1274
2019		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1276
2020		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1357, G1452
2021		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1412
2022		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1412
2023		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1451
2024		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1451
2025		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é

949/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				ortóloga a G1451
2026		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1451
2027		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1451
2028		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1451
2029		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1451
2030		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1451
2031		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1468
2032		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1482
2033		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1510
2034		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1660

950/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
2035		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1660
2036		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1779
2037		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1893
2038		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1928
2039		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1928
2040		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1928
2041		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1928
2042		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1928
2043		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1968
2044		DNA	Lycopersicon	A sequência	de

951/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1983
2045		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1988
2046		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2041
2047		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2041
2048		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2142
2049		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2142
2050		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2142
2051		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2142
2052		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2207
2053		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é

952/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				ortóloga a G2207
2054		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2319
2055		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2334
2056		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2382
2057		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2382
2058		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2432
2059		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2459
2060		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2536
2061		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2536
2062		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2567

953/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
2063		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2567
2064		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2567
2065		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2571
2066		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2650
2067		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2650
2068		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2717
2069		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2717
2070		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2741
2071		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2741
2072		DNA	Lycopersicon	A sequência	de

954/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2768
2073		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2768
2074		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2768
2075		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2776
2076		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2776
2077		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2784
2078		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2839
2079		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2854
2080		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2854
2081		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é

955/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				ortóloga a G2854
2082		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2854
2083		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2854
2084		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2854
2085		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2859
2086		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2865
2087		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2865
2088		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2885
2089		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2907
2090		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2933

956/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
2091		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2969
2092		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2979
2093		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2981, G2982
2094		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2983
2095		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2990
2096		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2990
2097		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G3055
2098		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G3067
2099		DNA	Lycopersicon	A sequência	de
			esculentum	polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G3067
2100		DNA	Lycopersicon	A sequência	de

957/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				esculentum	polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a	G3076
2101			DNA	Lycopersicon	A sequência	de
				esculentum	polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a	G3083
2102	G131_	1	DNA	Arabidopsis	Construção	de expressão
				thaliana	P15154	(variação	de
					sequência)
2103	G32 4_	1	DNA	Arabidopsis	Construção	de expressão
				thaliana	P3299	(variação	de
					sequência)
2104	G386_	1	DNA	Arabidopsis	Construção	de expressão
				thaliana	P15647	(variação	de
					sequência)
2105	G624_	1	DNA	Arabidopsis	Construção	de expressão
				thaliana	P2461.7	(variação	de
					sequência)
2106	G651_	1	DNA	Arabidopsis	Construção	de expressão
				thaliana	P2812	(variação	de
					sequência)
2107	G744_	1	DNA	Arabidopsis	Construção	de expressão
				thaliana	P15010	(variação	de
					sequência)
2108	G1037	_	DNA	Arabidopsis	Construção	de expressão
	1			thaliana	P15001	(variação	de
					sequência)
2109	G1150	_	DNA	Arabidopsis	Construção	de expressão
	1			thaliana	P15631	(variação	de

958/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				sequência)
2110	G2041_	DNA	Arabidopsis	Construção	de expressão
	1		thaliana	P13846	(variação	de
				sequência)
2111	G2106_	DNA	Arabidopsis	Construção	de expressão
	1		thaliana	P13733	(variação	de
				sequência)
2112	G2319_	DNA	Arabidopsis	Construção	de expressão
	1		thaliana	P13388	(variação	de
				sequência)
2113	G2453_	DNA	Arabidopsis	Construção	de expressão
	1		thaliana	P2750	(variação	de
				sequência)
2114	G2453_	DNA	Arabidopsis	Construção	de expressão
	2		thaliana	P3322	(variação	de
				sequência)
2115	G2559_	DNA	Arabidopsis	Construção	de expressão
	1		thaliana	P15538	(variação	de
				sequência)
2116	G2639_	DNA	Arabidopsis	Construção	de expressão
	1		thaliana	P15568	(variação	de
				sequência)
2117	G2679_	DNA	Arabidopsis	Construção	de expressão
	1		thaliana	P15056	(variação	de
				sequência)
2118	G2768_	DNA	Arabidopsis	Construção	de expressão
	1		thaliana	P15431	(variação	de
				sequência)

959/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
2119	G2771_	DNA	Arabidopsis	Construção	de expressão
	1		thaliana	P15182	(variação	de
				sequência)
2120	G2784_	DNA	Arabidopsis	Construção	de expressão
	1		thaliana	P15148	(variação	de
				sequência)
2121	G2802_	DNA	Arabidopsis	Construção	de expressão
	1		thaliana	P2771	(variação	de
				sequência)
2122	G2907_	DNA	Arabidopsis	Construção	de expressão
	1		thaliana	P15595	(variação	de
				sequência)
2123	G3003_	DNA	Arabidopsis	Construção	de expressão
	1		thaliana	P3291	(variação	de
				sequência)
2124	G3380	DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a	G1795 Membro	do
				clado G1792
2125	G3380	PRT	Oryza sativa	Ortóloga a	G1795 Membro	do
				clado G1792
2126	G3381	DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a	G30 Membro	do
				clado G1792
2127	G3381	PRT	Oryza sativa	Ortóloga a	G30 Membro	do
				clado

960/1027

SEQ ID No:	GID	DNA ou Proteína (PRT)	Espécies da qual a Sequência é Derivada	Relação
				G1792
2128	G3383	DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1792 Membro	do
					clado G1792
2129	G3383	PRT	Oryza	sativa	Ortóloga a G1792 Membro	do
					clado G1792
2130	G3392	DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G682 Membro	dos
					clados G1816 e G2718
2131	G3392	PRT	Oryza	sativa	Ortóloga a G682 Membro	dos
					clados G1816 e G2718
2132	G3393	DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G682 Membro	dos
					clados G1816 e G2718
2133	G3393	PRT	Oryza	sativa	Ortóloga a G682 Membro	dos
					clados G1816 e G2718

961/1027

2134	G3394	DNA	Oryza	sativa	A sequência polipeptídeos prevista ortóloga a G485 Membro clado G485	de é do
2135	G3394	PRT	Oryza	sativa	Ortóloga a G485 Membro	do
					clado G485
2136	G3395	DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G485 Membro	do
					clado G485
2137	G3395	PRT	Oryza	sativa	Ortóloga a G485 Membro	do
					clado G485
2138	G3396	DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G485 Membro	do
					clado G485
2139	G3396	PRT	Oryza	sativa	Ortóloga a G485 Membro	do
					clado G485
2140	G3397	DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G485 Membro	do
					clado G485
2141	G3397	PRT	Oryza	sativa	Ortóloga a G485 Membro	do
					clado G485

962/1027

2142	G3398	DNA	Oryza	sativa	A sequência polipeptídeos prevista ortóloga a G485 Membro clado G485	de é do
2143	G3398	PRT	Oryza	sativa	Ortóloga a G485 Membro	do
					clado G485
2144	G3429	DNA	Oryza	sativa	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G485 Membro	do
					clado G485
2145	G3429	PRT	Oryza	sativa	Ortóloga a G485 Membro	do
					clado G485
2146	G3431	DNA	Zea mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G682 Membro	dos
					clados G1816 e G2718
2147	G3431	PRT	Zea mays	Ortóloga a G682 Membro	dos
					clados G1816 e G2718
2148	G3434	DNA	Zea mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G485 Membro	do
					clado G485
2149	G3434	PRT	Zea mays	Ortóloga a G485 Membro	do
					clado G485

963/1027

2150	G3435	DNA	Zea	mays	A sequência polipeptídeos prevista ortóloga a G482 Membro clado G485	de é do
2151	G3435	PRT	Zea	mays	Ortóloga a G482 Membro	do
					clado G485
2152	G3436	DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G485 Membro	do
					clado G485
2153	G3436	PRT	Zea	mays	Ortóloga a G485 Membro	do
					clado G485
2154	G3437	DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G485 Membro	do
					clado G485
2155	G3437	PRT	Zea	mays	Ortóloga a G485 Membro	do
					clado G485
2156	G3444	DNA	Zea	mays	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G682 Membro	dos
					clados G1816 e G2718
2157	G3444	PRT	Zea	mays	Ortóloga a G682 Membro	dos
					clados G1816 e G2718

964/1027

2158	G3445	DNA	Glycine	max	A sequência polipeptídeos prevista ortóloga a G225 Membro clados G1816 e G2718	de é dos
2159	G3445	PRT	Glycine	max	Ortóloga a G225 Membro	dos
					clados G1816 e G2718
2160	G3446	DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G225 Membro	dos
					clados G1816 e G2718
2161	G3446	PRT	Glycine	max	Ortóloga a G225 Membro	dos
					clados G1816 e G2718
2162	G3447	DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G225 Membro	dos
					clados G1816 e G2718
2163	G3447	PRT	Glycine	max	Ortóloga a G225 Membro	dos
					clados G1816 e G2718
2164	G3448	DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G225 Membro	dos
					clados G1816 e G2718
2165	G3448	PRT	Glycine	max	Ortóloga a G225 Membro	dos
					clados G1816 e G2718

965/1027

2166	G3449	DNA	Glycine	max	A sequência polipeptídeos prevista ortóloga a G225 Membro clados G1816 e G2718	de é dos
2167	G3449	PRT	Glycine	max	Ortóloga a G225 Membro	dos
					clados G1816 e G2718
2168	G3450	DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G682 Membro	dos
					clados G1816 e G2718
2169	G3450	PRT	Glycine	max	Ortóloga a G682 Membro	dos
					clados G1816 e G2718
2170	G3470	DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G482 Membro	do
					clado G485
2171	G3470	PRT	Glycine	max	Ortóloga a G482 Membro	do
					clado G485
2172	G3471	DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G482 Membro	do
					clado G485
2173	G3471	PRT	Glycine	max	Ortóloga a G482 Membro	do
					clado G485

966/1027

2174	G3472	DNA	Glycine max	A sequência polipeptídeos prevista ortóloga a G485 Membro clado G485	de é do
2175	G3472	PRT	Glycine	max	Ortóloga a G485 Membro	do
					clado G485
2176	G3473	DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G485 Membro	do
					clado G485
2177	G3473	PRT	Glycine	max	Ortóloga a G485 Membro	do
					clado G485
2178	G3474	DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G485 Membro	do
					clado G485
2179	G3474	PRT	Glycine	max	Ortóloga a G485 Membro	do
					clado G485
2180	G3475	DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G485 Membro	do
					clado G485
2181	G3475	PRT	Glycine	max	Ortóloga a G485 Membro	do
					clado G485

967/1027

2182	G3476	DNA	Glycine max	A sequência polipeptídeos prevista ortóloga a G482 Membro clado G485	de é do
2183	G3476	PRT	Glycine max	Ortóloga a G485 Membro	do
				clado G482
2184	G3477	DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G482 Membro	do
				clado G485
2185	G3477	PRT	Glycine max	Ortóloga a G485 Membro	do
				clado G482
2186	G3478	DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G485 Membro	do
				clado G485
2187	G3478	PRT	Glycine max	Ortóloga a G485 Membro	do
				clado G485
2188	G3479	DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G153 Membro	do
				clado G153
2189	G3479	PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G153 Membro	do
				clado G153

968/1027

2190	G3484	DNA	Glycine max	A sequência polipeptídeos prevista ortóloga a G153 Membro clado G153	de é do
2191	G3484	PRT	Glycine max	Ortóloga a G153 Membro	do
				clado G153
2192	G3485	DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G153 Membro	do
				clado G153
2193	G3485	PRT	Glycine max	Ortóloga a G153 Membro	do
				clado G153
2194	G3487	DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G153 Membro	do
				clado G153
2195	G3487	PRT	Zea mays	Ortóloga a G153 Membro	do
				clado G153
2196	G3488	DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G153 Membro	do
				clado G153
2197	G3488	PRT	Zea mays	Ortóloga a G153 Membro	do
				clado G153

969/1027

2198	G3489	DNA	Zea mays	A sequência polipeptídeos prevista ortóloga a G153 Membro clado G153	de é do
2199	G3489	PRT	Zea mays	Ortóloga a G153 Membro	do
				clado G153
2200	G3491	DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G807 Membro	do
				clado G807
2201	G3491	PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G807 Membro	do
				clado G807
2202	G3494	DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G807 Membro	do
				clado G807
2203	G3494	PRT	Glycine max	Ortóloga a G807 Membro	do
				clado G807
2204	G3495	DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G807 Membro	do
				clado G807
2205	G3495	PRT	Glycine max	Ortóloga a G807 Membro	do
				clado G807

970/1027

2206	G3512	DNA	Glycine max	A sequência polipeptídeos prevista ortóloga a G807 Membro clado G807	de é do
2207	G3512	PRT	Glycine max	Ortóloga a G807 Membro	do
				clado G807
2208	G3515	DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G30 Membro	do
				clado G1792
2209	G3515	PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G30 Membro	do
				clado G1792
2210	G3516	DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1792 Membro	do
				clado G1792
2211	G3516	PRT	Zea mays	Ortóloga a G1792 Membro	do
				clado G1792
2212	G3517	DNA	Zea mays	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G1791 Membro	do
				clado G1792
2213	G3517	PRT	Zea mays	Ortóloga a G1791 Membro	do
				clado G1792

971/1027

2214	G3518	DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1792 Membro	do
					clado G1792
2215	G3518	PRT	Glycine	max	Ortóloga a G1792 Membro	do
					clado G1792
2216	G3519	DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1792 Membro	do
					clado G1792
2217	G3519	PRT	Glycine	max	Ortóloga a G1792 Membro	do
					clado G1792
2218	G3520	DNA	Glycine	max	A sequência	de
					polipeptídeos prevista	é
					ortóloga a G1792 Membro	do
					clado G1792
2219	G3520	PRT	Glycine	max	Ortóloga a G1792 Membro	do
					clado G1792
2220	G3527	DNA	Glycine	max
2221	G3527	PRT	Glycine	max
2222	G3528	DNA	Glycine	max
2223	G3528	PRT	Glycine	max

972/1027

2224	G3643	DNA	Glycine max	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G47 Membro	dos
				clados G47 e G2133
2225	G3643	PRT	Glycine max	Ortóloga a G47 Membro	dos
				clados G47 e G2133
2226	G3644	DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G47 Membro	dos
				clados G47 e G2133
2227	G3644	PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G47 Membro	dos
				clados G47 e G2133
2228	G3645	DNA	Brassica rapa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G47 Membro	dos
				clados G47 e G2133
2229	G3645	PRT	Brassica rapa	Ortóloga a G47 Membro	dos
				clados G47 e G2133
2230	G3646	DNA	Brassica oleracea	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2133 Membro	dos
				clados G47 e G2133
2231	G3646	PRT	Brassica oleracea	Ortóloga a G2133 Membro	dos
				clados G47 e G2133

973/1027

2232	G3647	DNA	Zinnia elegans	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G47 Membro	dos
				clados G47 e G2133
2233	G3647	PRT	Zinnia elegans	Ortóloga a G47 Membro	dos
				clados G47 e G2133
2234	G3649	DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G47 e G2133
				Membro dos clados G47	e
				G2133
2235	G3649	PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G47 e G2133
				Membro dos clados G47	e
				G2133
2236	G3651	DNA	Oryza sativa	A sequência	de
				polipeptídeos prevista	é
				ortóloga a G2133 Membro	dos
				clados G47 e G2133
2237	G3651	PRT	Oryza sativa	Ortóloga a G2133 Membro	dos
				clados G47 e G2133

Exemplos [0407] A invenção, agora tendo sido geralmente descrita, será mais facilmente entendida com referência aos exemplos a seguir, que são incluídos meramente para finalidades de ilustração de certos aspectos e modalidades

974/1027 da presente invenção e não pretendem limitar a invenção. Será reconhecido por um versado na técnica que um fator de transcrição que está associado a um primeiro traço em particular também pode estar associado, pelo menos com um outro segundo traço não-relacionado e inerente que não foi previsto pelo primeiro traço.

[0408] As descrições completas dos traços associados com cada polinucleotídeo da invenção estão completamente divulgadas na Tabela 4 e na Tabela 6. A descrição completa da família de gene do fator de transcrição e dos domínios conservados identificados do polipeptídeo codificado pelo polinucleotídeo está totalmente divulgada na Tabela 5.

Exemplo I: Identificação e Clonagem do Gene de Comprimento Total [0409] As sequências de fator putativo de transcrição (genômicas ou ESTs) relacionadas aos fatores de transcrição conhecidos foram identificadas no banco de dados do GenBank Arabidopsis thaliana que usa o programa da análise de sequência tblastn usando-se os parâmetros predeterminados e um limiar de faixa de valor P de -4 ou -5 ou inferior, dependendo do comprimento da sequência desconhecida. Os sucessos da sequência de fator putativo de transcrição foram então selecionados para identificar aqueles que contêm fileiras de sequência em particular. Se

975/1027 os sucessos da sequência continham tais fileiras de sequência, as sequências foram confirmadas como fatores de transcrição.

[0410] Alternativamente, as coleções de cDNA da Arabidopsis thaliana derivadas de diferentes tecidos ou tratamentos, ou as coleções genômicas foram selecionadas para identificar novos membros de uma família de transcrição que usa uma abordagem de hibridização de alta restrição. As sondas foram sintetizadas usando-se iniciadores específicos de gene em uma reação padrão de PCR (temperatura de recozimento 60°C) e marcadas com ³²P dCTP usando-se o High Prime DNA Labeling Kit (Boehring Mannheim Corp. (agora Roche Diagnostics Corp., Indianápolis, IN). Foram adicionadas sondas radiomarcadas purificadas aos filtros imersos em meio de hibridização de Church (NaPO4 0,5 M pH 7,0, SDS a 7%, albumina de soro bovino a 1% peso/volume) e hibridizadas durante toda a noite a 60°C com agitação. Os filtros foram lavados duas vezes durante 45 a 60 minutos com 1X SSC, SDS a 1% a 60°C.

[0411] Para identificar a sequência adicional 5' ou 3' de uma sequência parcial de cDNA em uma biblioteca de cDNA, foram realizadas extremidades 5' e 3' de cDNA de amplificação rápida (RACE) usando-se o kit de amplificação de cDNA MARATHON (Clotech, Palo Alto, CA). Geralmente, o método acarretou primeiro isolar o poli (A) mRNA,

976/1027 realizando-se a primeira e a segunda síntese de filamento de cDNA para gerar cDNA de filamento duplo, inativando-se as extremidades de cDNA, seguido por ligação do Adaptador MARATHON ao cDNA para formar uma biblioteca de cDNA ds ligado ao adaptador.

[0412] Os iniciadores gene-específicos projetados para serem usados juntamente com iniciadores adaptadores específicos para ambas as reações 5' e 3' RACE. Iniciadores aninhados, em vez de iniciadores isolados, foram usados para aumentar a especificidade de PCR. Usando-se as reações 5' e 3' RACE foram obtidos fragmentos 5' e 3' RACE, sequenciados e clonados. O processo pode ser repetido até que fossem identificadas as extremidades 5' e 3' do gene de comprimento total. Então o cDNA de comprimento total foi gerado por PCR usando-se iniciadores específicos para as extremidades 5' e 3' do gene por PCR extremidade-aextremidade.

Exemplo II: Construção de Vetores de Expressão [0413]

A sequência foi amplificada de uma biblioteca genômica ou de cDNA usando-se iniciadores específicos para sequências a montante e a jusante da região de codificação. O vetor de expressão era pMEN20 ou pMEN65, que são ambos derivados de pMON316 (Sanders e outros (1987) Nucleic Acids Res. 15: 1543-1558) e contêm o promotor CaMV 35S para expressar transgenes. Para clonar a

977/1027 sequência no vetor, tanto pMEN20 como o fragmento de DNA amplificado foram digeridos separadamente com enzimas de restrição SalI e NotI a 37°C durante 2 horas. Os produtos de digestão foram sujeitos a eletroforese em um gel de agarose a 0,8% e visualizados por coloração com brometo de etídio. Os fragmentos de DNA que contêm a sequência e o plasmídeo linearizado foram excisados e purificados usandose um kit de extração de gel QIAQUICK (Qiagen, Valencia CA). Os fragmentos de interesse foram ligados a uma razão de 3:1 (vetor para inserir). As reações de ligação que usam T4 DNA ligase (New England Biolabs, Beverly MA) foram realizadas a 16°C durante 16 horas. Os DNAs ligados foram transformados em células competentes da E. coli cepa DH5 alfa pela utilização do método de choque térmico. As transformações foram aplicados em placas de LB contendo 50 mg/l de canamicina (Sigma Chemical Co. St. Louis MO). Colônias individuais foram cultivadas durante toda a noite em cinco mililitros de caldo LB contendo 50 mg/l de canamicina a 37°C. O DNA do plasmídeo foi purificado usando-se kits Qiaquick Mini Prep (Qiaagen).

Exemplo III: Transformação de Agrobacterium com o Vetor de Expressão [0414] Depois que foi construído o vetor de plasmídeo que contém o gene, o vetor foi usado para transformar células de Agrobacterium tumefaciens que

978/1027 expressam os produtos de gene. O estoque de células de Agrobacterium tumefaciens para transformação foram obtidos como descrito por Nagel e outros (1990) FEMS Microbiol Letts. 67: 325-328. A cepa Agrobacterium ABI foi cultivada em 250 ml de meio LB (Sigma) durante toda a noite a 28°C com agitação até que seja conseguida uma absorbância acima de 1 cm a 600 nm (A₆₀₀ ) de 0,5 - 1,0. As células foram colhidas por centrifugação a 4.000 x g durante 15 minutos a 4°C. As células foram então ressuspensas em 250 pl de tampão resfriada (HEPES 1 mM, pH ajustado até 7,0 com KOH). As células foram centrifugadas de novo como descrito acima e ressuspensas em 125 pl de tampão resfriado. As células foram então centrifugadas e ressuspensas duas vezes mais no mesmo tampão de HEPES como descrito acima a um volume de 100 pl e 750 pl, respectivamente. As células ressuspensas foram então distribuídas em alíquotas de 40 pl, rapidamente congeladas em nitrogênio líquido e armazenadas a -80°C.

[0415] As células de Agrobacterium foram transformadas com plasmídeos preparados como descrito acima seguindo-se o protocolo descrito por Nagel e outros (acima) . Para cada constructo de DNA a ser transformado, foram misturados 50 - 100 ng de DNA (geralmente ressuspensos em Tris-HCl 10 mm, EDTA 1 mM, pH 8,0) com 40 pl de células de Agrobacterium. A mistura de DNA/célula foi então transferida para uma cubeta resfriada com um espaço

979/1027

de eletrodo	de 2 mm e sujeita a uma carga de 2,5 kV
dissipada a	25 pF e 200 pF usando-se um aparelho Gene

Pulser II (Bio-Rad, Hércules, CA) . Após eletroporação, as células foram imediatamente ressuspensas em 1,0 ml de LB e deixadas se recuperarem sem seleção de antibióticos durante 2 - 4 horas a 28°C em uma incubadora com agitação. Após a recuperação, as células foram aplicadas sobre meio seletivo de caldo de LB contendo 100 pg/ml de espectinomicina (Sigma) e incubadas durante 24-48 horas a 28°C. Colônias isoladas foram então colhidas e inoculadas em meio novo. A

presença de	constructo de plasmídeo foi verificada por
amplificação	de PCR e análise de sequência.
Exemplo IV:	Transformação de Plantas de Arabidopsis com

Agrobacterium tumefaciens com Vetor de Expressão

[0416]	Após a transformação de Agrobacterium
tumefaciens	com vetores de plasmídeo que contêm o gene,

colônias isoladas de Agrobacterium, foram identificadas,

propagadas	e usadas para transformar plantas de
Arabidopsis.	Em resumo, culturas de 500 ml de meio LB
contendo 50	mg/l de canamicina foram inoculadas com as

colônias e cultivadas a 28°C com agitação durante 2 dias até fosse conseguida uma absorbância óptica a 600 nm de

comprimento

de onda acima de 1 cm (A600 ) de > 2,0. As

células foram então colhidas por centrifugação a 4.000 x g durante 10 minutos e ressuspensas em meio de infiltração

980/1027 (1/2 X sais de Murashige e Skoog (Sigma), 1 X vitaminas B-5 de Gamborg (Sigma), 5,0% (peso/volume) de sacarose, benzilamino purina 0,044 μΜ (Sigma), 200 μΐ/l de Silwet L77 (Lehle Seeds) até ser atingida uma A₆₀₀ de 0,8.

[0417] Antes da transformação, sementes de Arabidopsis thaliana (ecotipo Columbia) foram semeadas a uma densidade de aproximadamente 10 plantas por vaso de 10,16 cm (4 polegadas) sobre meio para vasos Pro-Mix BX (Hummert International) recobertos com malha de fibra de vidro (18 mm X 16 mm). As plantas foram cultivadas sob iluminação contínua (50-75 μE/m²/segundo) a 22-23°C com 6570% de umidade relativa. Após aproximadamente 4 semanas, são cortados caules primários de inflorescência (feixes) para encorajar o crescimento de múltiplos feixes secundários. Após a floração dos feixes secundários maduros, as plantas foram preparadas para transformação por remoção de todas as síliquas e flores abertas.

[0418] Os vasos foram então imersos de cabeça para baixo na mistura de meio de infiltração de Agrobacterium como descrito acima durante 30 segundos e colocados sobre seus lados para permitir a drenagem em uma superfície plana de aproximadamente 30 cm x 60 cm (1 pé x 2 pés) recoberta com envoltório de plástico. Após 24 horas, o envoltório de plástico foi removido e os vasos são virados de cabeça para baixo na vertical. O procedimento de imersão foi repetido

981/1027 uma semana mais tarde, para um total de duas imersões por vaso. As sementes foram então coletadas de cada vaso de transformação e analisadas seguindo-se o protocolo descrito a seguir.

Exemplo V: Identificação de Transformantes Primários de Arabidopsis [0419] As sementes coletadas dos vasos de transformação foram esterilizadas essencialmente como a seguir. As sementes foram dispersas em uma solução que contém Triton X-100 a 0,1% (v/v) (Sigma) e água estéril e lavadas por agitação da suspensão durante 20 minutos. A solução de lavagem foi então drenada e substituída com solução de lavagem nova para lavar as sementes durante 20 minutos com agitação. Após remoção da solução de etanol/detergente, foi adicionada às sementes uma solução que contém 0,1% (v/v) de Triton X-100 e 30% de alvejante (v/v) (CLOROX; Clorox Corp. Oakland CA) e a suspensão foi agitada durante 10 minutos. Após a remoção da solução de alvejante/detergente, as sementes foram então lavadas cinco vezes em água destilada estéril. As sementes foram armazenadas na última água de lavagem a 4°C durante 2 dias no escuro antes de ser aplicada sobre meio de seleção de antibióticos (1 X sais de Murashige e Skoog (pH ajustado até 5,7 com KOH 1 M), 1 X vitaminas B-5 de Gamborg, 0,9% de fitágar (Life Technologies) e 50 mg/l de canamicina). As

982/1027 sementes foram germinadas sob iluminação contínua (50-85 pE/m²/s) a 22-23°C. Após 7-10 dias de crescimento sob estas condições, os transformantes primários resistentes à canamicina (geração T1) foram visíveis e obtidos. Estas mudas foram transferidas primeiro a placas novas de seleção onde as mudas continuavam a crescer durante 3-5 dias mais, e então ao solo (meio para vasos Pro-Mix BX).

[0420] Os transformantes primários foram cruzados e as semente de progênie coletadas (T2); as mudas resistentes à canamicina foram selecionadas e analisadas. Os níveis de expressão dos polinucleotídeos recombinantes nos transformantes variam de desde aproximadamente um aumento de nível de expressão de 5% até pelo menos um aumento de nível de expressão de 100%. Observações similares são feitas em relação ao nível de expressão de polipeptídeo.

Exemplo VI: Identificação de Plantas de Arabidopsis com Nocautes do Gene de Fator de Transcrição [0421] A seleção de inserção de coleções mutagenizadas de Arabidopsis para mutantes nulos em um gene alvo conhecido foi essencialmente como descrita em Krysan e outros (1999) Plant Cell 11: 2283-2290. Em resumo, iniciadores gene específicos, aninhados por 5-250 pares de base um ao outro, foram projetadas das regiões 5' e 3' de um gene alvo conhecido. Similarmente, os conjuntos aninhados de iniciadores também foram criados específicos a

983/1027 cada uma das extremidades de T-DNA ou transposon (as bordas direita e esquerda). Todas as combinações possíveis de iniciadores gene específicos e de T-DNA/transposon foram usadas para detectar por PCR um evento de inserção dentro ou próximo ao gene alvo. Os fragmentos de DNA amplificados foram então sequenciados o que permite a determinação precisa do ponto de inserção de T-DNA/transposon em relação ao gene alvo. Os eventos de inserção dentro da sequência de codificação ou interveniente dos genes foram desconvolutos de uma reunião que compreende um grande número de eventos de inserção para uma única planta mutante simples para caracterização funcional. O método é descrito com mais

detalhe	em	Yu e Adam, Pedido de Patente	US N° de Série
09/177.	733,	depositado em 23 de outubro de	1998.
Exemplo	VII	: Identificação de Fenótipos	Modificados em

Superexpressão ou Plantas de Nocaute de Gene [0422] Foram realizados experimentos para identificar aqueles transformantes ou nocautes que exibiam características bioquímicas modificadas. Entre os produtos bioquímicos que foram dosados estavam os açúcares insolúveis, tais como arabinose, fucose, galactose, manose, ramnose ou xilose ou similares; lipídeos de prenila, tais como luteína, beta-caroteno, xantofila-1, xantofila-2, clorofilas A e B ou alfa-, delta- ou gama-tocoferol ou similares; ácidos graxos, tais como 16:0 (ácido palmítico),

984/1027

16:1 (ácido palmitoléico), 18:0 (ácido esteárico), 18:1 (ácido oléico), 18:2 (ácido linoléico), 20:0, 18:3 (ácido linolênico), 20:1 (ácido eicosênico), 20:2, 22:1 (ácido erúcico) ou similares; ceras, tais como por alteração dos níveis de C29, C31 ou C33 alcanos; esteróis, tais como brassicasterol, campesterol, estimasterol, sitosterol ou estigmastanol ou similares, glicosinolatos, proteína ou níveis de óleo.

[0423] Os ácidos graxos foram medidos usando-se dois métodos dependendo de se o tecido era proveniente das folhas ou das sementes. Para as folhas, os lipídeos foram extraídos e esterificados com H2SO4 e distribuído em hexano da salmoura metanólica. Para ácidos graxos de semente, as sementes foram pulverizadas e extraídas em metanol: heptano; tolueno: 2,2-dimetoxipropano: H2SO4 (39: 34: 20: 5: 2) durante 90 minutos a 80°C. Após resfriamento até a temperatura ambiente a base superior, que contém os ésteres de ácido graxo da semente, foi sujeita a análise GC. Ésteres de ácido graxo provenientes tanto de sementes como de tecidos de folha foram analisados com uma coluna SUPELCO SP-2330 (Supelco, Bellefonte, PA).

[0424] Os glicosinolatos foram purificados de sementes ou de folhas primeiro por aquecimento do tecido a 95^oC durante 10 minutos. É adicionado etanol: água preaquecido (50:50) e após aquecimento a 95^o C durante mais

985/1027 minutos, o solvente de extração é aplicado a uma coluna DEAE SEPHADEX (Pharmacia) que tinha sido equilibrada anteriormente com acetato de piridina 0,5 M. Os dessulfoglicosinolatos foram eluídos com 300 ul de água e analisados por HPLC em fase reversa por monitoração a 226 nm.

[0425] Para alcanos cerosos, as amostras foram extraídas utilizando-se um método idêntico como ácidos graxos e os extratos foram analisados em uma HP 5890 GC acoplada com um 5973 MSD. As amostras foram isoladas cromatograficamente em um espectrômetro de massa J&W DB35 (J&W Scientific Agilent Technologies, Folsom, CA).

[0426] Para medir os níveis de fenil lipídeo, sementes ou folhas foram pulverizadas com pirogalol a 1 a 2% como um antioxidante. Para as sementes, as amostras extraídas foram filtradas e uma parte removido para análise de tocoferol e carotenóide/clorofila por HPLC. O material restante foi saponificado para determinação de esterol. Para as folhas, foi removida uma alíquota e diluída com metanol e clorofila A, clorofila B e carotenóides totais medidos por espectrofotometria por determinação da absorbância óptica a 665,2 nm, 652,5 nm e 470 nm. Foi removida uma alíquota para composição de tocoferol e carotenóide/clorofila por HPLC usando-se uma coluna Waters pBondapak C18 (4,6 mm x 150 mm) . A solução metanólica

986/1027 restante foi saponificada com KOH a 10% a 80^o C durante uma hora. As amostras foram resfriadas e diluídas com uma mistura de metanol e água. Foi misturada uma solução de cloreto de metileno a 2% em hexano e as amostras foram centrifugadas. A fase de metanol aquoso foi de novo reextraída com 2% de cloreto de metileno em hexano e, após cenrifugação, as duas fases superiores foram combinadas e evaporadas. Foi adicionado cloreto de metileno a 2% em hexano e as amostras foram então extraídas com um ml de água. A fase superior foi removida, seca e ressuspensa em 400 ul de cloreto de metileno a 2% em hexano e analisada por cromatografia gasosa utilizando-se um 50 m DB-5ms (0,25 mm ID, 0,25 um fase, J&W Scientific).

[0427] Os níveis de açúcar insolúvel foram medidos pelo método essencialmente emscrito por Reiter e outros (1999), Plant J. 12: 335-345. Este método analisa a composição de açúcar neutro de polímeros da parede celular encontrados em folhas de Arabidopsis. Os açúcares solúveis foram separados dos polímeros de açúcar por extração das folhas com etanol quente a 70%. O resíduo restante que contém os polissacarídeos insolúveis foi então hidrolisado com ácido com alose adicionada como um padrão interno. Os monômeros de açúcar gerados pela hidrólise foram então reduzidos aos alditóis correspondentes por tratamento com NaBH4, então foram acetilados para gerar acetatos de

987/1027 alditol voláteis que foram então analisados por GC-FID. A identidade dos picos foi determinada por comparação dos tempos de retenção de açúcares conhecidos convertidos aos acetatos de alditol correspondentes com os tempos de retenção de picos provenientes de extratos de vegetal do tipo selvagem. Os acetatos de alditol foram analisados em uma coluna capilar Supelco SP-2330 (30 m x 250 pm x 0,2 pm) usando-se um software que começa a 180^o C durante 2 minutos seguida por um aumento de 220^oC em 4 minutos. Após manutenção a 220^oC durante 10 minutos, a temperatura do forno é aumentada até 240^oC em 2 minutos e mantida a esta temperatura durante 10 minutos e trazida de volta até a temperatura ambiente.

[0428] Para identificar os vegetais com alterações do óleo total da semente ou no teor de proteína, 150 mg de sementes provenientes de vegetais de progênie T2 foram sujeitos a análise por Espectroscopia de Refletância em Infravermelho Próximo (NIRS) que usa um Foss NirSystems Model 6500 com um sistema de transporte de cuba giratória. NIRS é um método analítico não-destrutivo usado para determinar a composição de óleo e de proteína na semente. Infravermelho é a região do espectro eletromagnético localizado após a região visível na direção de comprimentos de onda mais longos. 'Infravermelho' deve o seu nome ao fato de ser a região do infravermelho próxima à região

988/1027 visível do espetro eletromagnético. Para finalidades práticas, o infravermelho próximo compreende comprimentos de onda entre 800 e 2500 nm. NIRS é aplicada a compostos orgânicos ricos em ligações N-H (tais como proteínas e aminoácidos). Os instrumentos analíticos para NIRS operam por sinais de NIRS que se correlacionam estatisticamente a diversos comprimentos de onda com a característica ou a propriedade pretendida a ser medida. Todas as substâncias biológicas contêm milhares de ligações C-H, O-H e N-H. Portanto, a exposição à radiação do infravermelho próximo de uma amostra biológica, tal como, uma semente, resulta em um espectro complexo que contém informação qualitativa e quantitativa sobre a composição física e química daquela amostra.

[0429] O valor numérico de um analito específico na amostra, tal como, o teor de proteína ou o teor de óleo, é mediado por uma abordagem de calibração conhecido como quimiométrica. A quimiométrica aplica métodos estatísticos tais como regressão múltipla linear (MLR), mínimos quadrados parciais (PLS) e análise do componente principal (PCA) aos dados do espectro e correlaciona os mesmos com uma propriedade física ou outro fator, cuja propriedade ou fator é diretamente determinada em vez da própria concentração do analito. O método primeiro fornece dados de química úmida das amostras necessárias para se

989/1027 desenvolver a calibração.

[0430] A calibração da resposta de NIRS foi realizada usando-se dados obtidos por análise de química úmida de uma população de ecotipos de Arabidopsis que se esperou representarem a diversidade de níveis de óleo e de proteína.

[0431] A exata composição de óleo de cada ecotipo usado no experimento de calibração foi realizada usando-se análise gravimétrica de óleos extraídos de amostras de semente (0,5 g ou 1,0 g) pelo método da extração acelerada por solvente (ASE; Dionex Corp, Sunnyvale, CA). O método da extração foi validado contra amostras registradas de canola (Community Bureau of Reference, Bélgica). Amostras de semente provenientes de cada ecotipo (0,5 g ou 1g) foram sujeitas a extração acelerada com solvente e os pesos resultantes de óleo extraído comparados ao peso de óleo recuperado da semente de canola que foi registrada para teor de óleo (Community Bureau of Reference). A equação de calibração de óleo era baseada em 57 amostras com uma faixa de teores de óleo de desde 27,0% até 50,8%. Para controlar a validade da curva de calibração, um conjunto adicional de amostras foi extraído por ASE e previsto o uso da equação de calibração de óleo. Este conjunto de validação chegou a 46 amostras, na faixa de 27,9% até 47,5% de óleo e tinha um erro padrão previsto de desempenho de 0,63%. O método

990/1027 químico úmido para a proteína era análise elementar que usa (% N X 6,0) a média de 3 amostras representativas de 5 mg cada uma validada contra milho moído registrado (NIST). A instrumentação era um analisador elementar Elementar VarioEL III operado em modo de operação CNS (Elementar Analysensysteme GmbH, Hanau, Alemanha).

[0432] A equação de calibração de proteína era baseada em uma coleção de 63 amostras com uma faixa de teores de proteína de desde 17,4% até 31,2%. Um conjunto adicional de amostras foi analisado para proteína por análise elementar (n = 57) e investigado por NIRS para se validar a equação de previsão de proteína. A faixa de proteína da validação ajustada era desde 16,8% até 31,2% e o erro padrão de previsão era 0,468%.

[0433] Foi realizada análise NIRS de Arabidopsis em entre 40-300 mg de amostra experimental. Os teores de óleo e de proteína foram previstos usando-se as respectivas equações de calibração.

[0434] Os dados obtidos pela análise NIRS foram analisados estatisticamente usando-se uma análise do vizinho mais próximo (N-N). A análise de N-N permite a remoção de variabilidade especial dentro de bloco em uma maneira regularmente flexível, que não requer conhecimento anterior do padrão de variabilidade na câmara. Teoricamente, todos os híbridos são cultivados sob

991/1027 condições experimentais idênticas dentro de um bloco (rep). Na realidade, até mesmo em muitos projetos de bloco, existe variabilidade significativa dentro do bloco. Os procedimentos de vizinho mais próximo estão baseados na suposição de que o efeito ambiental de um gráfico está intimamente relacionado ao de seus vizinhos. Os métodos de vizinho mais próximo usam informação de gráficos adjacentes para ajustar a heterogeneicidade dentro do bloco e para fornecer estimativas mais precisas de meios de tratamento e de diferenças. Se houver heterogeneicidade dentro do bloco em uma escala especial que seja maior do que um único gráfico e menor do que o bloco inteiro, então os rendimentos de gráficos adjacentes estarão correlacionados positivamente. A informação proveniente dos gráficos vizinhos pode ser usada para reduzir ou para remover o efeito indesejado da heterogeneicidade espacial e, portanto melhorar a estimativa do efeito do tratamento. Os dados provenientes de gráficos vizinhos também podem ser usados para reduzir a influência de competição entre gráficos adjacentes. A análise N-N de Papadakis pode ser usada com projetos para remover a variabilidade dentro do bloco que seria removida com a análise de gráfico dividido padrão ((Papadakis (1973) Inst. d'Amelior. Plantes Thessaloniki (Greece) Bull. Scientif. No. 23; Papadakis (1984) Proc.

Acad. Athens 59: 326-342).

992/1027 [0435] Foram realizados experimentos para identificar aqueles transformantes ou nocautes que exibiram sensibilização de açúcar modificado. Para tais estudos, as sementes provenientes de transformantes foram germinadas em meios que contêm 5% de glicose ou 9,4% de sacarose que normalmente restringem elongação de hipocotila parcialmente restrita. As plantas com sensibilização de açúcar alterada pode ter hipocotilas mais longas ou mais curtas do que as plantas normais quando cultivadas neste meio. Adicionalmente, outros traços de plantas podem ser variados tal como, massa da raiz.

[0436] Podem ser realizados experimentos para identificar aqueles transformantes ou nocautes que exibiram uma tolerância melhorada a patogenio. Para tais estudos, os transformantes são expostos a patógenos fungais biotrópicos, tal como, Erysiphe orontii e patógenos fungais necrotrópicos, tal como, Fusarium oxysporum. Os isolados de Fusarium oxysporum causam murchas vasculares e quedas de vários vegetais anuais, perenes e de ervas daninhas (MauchMani e Slusarenko (1994) Molec Plant-Microbe Interact. 7: 378-383). Para experimentos com Fusarium oxysporum, as plantas são cultivadas sobre placas de Petri e borrifadas

com uma	suspensão	de esporo	novo	de F.	oxysporum.	A
suspensão	de esporo	é preparada	como	a seguir	: Um	bloco	de
hifas fungais provenientes de	uma	cultura	em	placa	é

993/1027 colocada em uma placa de ágar com dextrose de batata fresca e deixadas espalhar durante uma semana. Cinco ml de água estéril são então adicionados à placa, agitados e pipetados em 50 ml de meio de Fusarium. Os esporos foram cultivados durante toda a noite e então borrifados sobre plantas usando-se um borrifador para tintas Preval. O tecido da planta é colhido e congelado em nitrogênio líquido 48 horas após a infecção.

[0437] Erysiphe orontii é um agente causal de míldio em pó. Para experimentos com Erysiphe orontii, as plantas são cultivadas aproximadamente 4 semanas em uma estufa sob 12 horas de luz (20 ^oC, umidade relativa aproximadamente 30%). As folhas individuais são infectadas com esporos de E. orontii provenientes de plantas infectadas usando-se uma escova de pelo de camelo e as plantas são transferidas para uma câmara de crescimento de Percival (20 ^oC, 80% de umidade relativa). O tecido da planta é colhido e congelado em nitrogênio líquido 7 dias após a infecção.

[0438] Botrytis cinerea é um patógeno necrotrófico. Botrytis cinerea é cultivado em ágar com dextrose de batata sob 12 horas de luz (20 ^oC, aproximadamente 30% de umidade relativa). Uma cultura de esporos é obtida espalhando-se 10 ml de água estéril sobre a placa de fungo, agitando-se e transferindo-se os esporos para 10 ml de água estéril. O

994/1027 inóculo de esporo (aproximadamente 105 esporos/ml) é então usado para borrifar mudas de 10 dias de idade cultivadas

sob condições	estéreis	sobre	meio MS	(sem	sacarose).	Os
sintomas são	avaliados	cada	dia até	aproximadamente	1
semana. [0439]	Culturas	de	hifas	de	Sclerotinia

sclerotiorum são cultivadas em caldo de dextrose de batata. Um grama de hifas é moído, filtrado, fiado e ressuspenso em água estéril. É usada uma diluição de 1:10 para borrifar mudas de 10 dias de idade cultivadas assepticamente sob um regime de 12 horas de luz/escuro em meio MS (sem sacarose). Os sintomas são avaliados todo dia até aproximadamente 1 semana.

[0440] Pseudomonas syringae pv maculicola (Psm) cepa 4326 e pv maculicola cepa 4326 foi inoculado manualmente a duas doses. Duas doses de inoculação permitem a diferenciação entre as plantas com suscetibilidade melhorada e plantas com resistência melhorada ao agente patógeno. As plantas são cultivadas durante 3 semanas na estufa, então transferidas para a câmara de crescimento para o resto de seu crescimento. Psm ES4326 pode ser inoculado manualmente com seringa de 1 ml sobre 3 folhas totalmente expandidas por planta (com 4 ½ semanas de idade), usando-se pelo menos 9 plantas para a linhagem de superexpressão a duas doses de inoculação, OD=0,005 e

995/1027

OD=0,0005. A avaliação da doença é realizada no dia 3 após a inoculação com fotos das plantas e folhas retiradas em paralelo.

[0441] Em alguns casos, os padrões de expressão dos induzidos por patógeno (tais como genes de defesa) podem ser monitorados por experimentos em microssistema. Nestes experimentos, os cDNAs são gerados por PCR e ressuspensos a uma concentração final de aproximadamente 100 ng/ul em 3X SSC ou fosfato de sódio 150 mM (Eisen e Brown (1999) Methods Enzymol. 303: 179-205). Os cDNAs são aplicados sobre lâminas de vidro de microscópio revestidos com polilisina. Os cDNAs preparados são aliquotados em placas com 384 poços e aplicados sobre as laminas usando-se, por exemplo, uma montagem x-y-z (OmniGrid) que pode ser adquirida de GeneMachines (Menlo Park, CA) adaptada com pinos do tipo palheta que podem ser adquiridos de Telechem International (Sunnyvale, CA). Após aplicação, os sistemas são curados por um mínimo de uma semana à temperatura ambiente, reidratados e bloqueados seguindo-se o protocolo recomendado por Eisen e Brown (1999; acima).

[0442] Amostras de RNA total da amostra (10 pg) são marcadas usando-se corantes fluorescentes Cy3 e Cy5. As amostras marcadas são ressuspensas em 4X SSC/0,03% SDS/4 pg de DNA esperma de salmão /2 pg de tRNA/ pirofosfato de sódio 50mM, aquecidas até 95 ^oC durante 2,5 minutos, fiadas

996/1027 e colocadas no sistema. O sistema é então recoberto com uma tampa do tipo vidro de relógio e colocado em uma câmara vedada. A câmara é então mantida em um banho-maria a 62^oC durante toda a noite. Os sistemas são lavados como descrito em Eisen e Brown (1999, acima) e escaneados em um scanner a laser General Scanning 3000. Os arquivos resultantes são subsequentemente avaliados quantitativamente usando-se um progrma de computador IMAGENE, (BioDiscovery, Los Angeles CA) .

[0443] Podem ser realizados experimentos de RT-PCR para identificar aqueles genes induzidos após exposição patógenos fungais biotrópicos, tal como, Erysiphe orontii, patógenos fungais necrotrópicos, tal como, Fusarium oxysporum, bactérias, vírus e ácido salicílico, este último estando envolvido em uma resposta não-específica em Arabidopsis thaliana. Geralmente, é examinado os padrões de expressão provenientes de folha de vegetal de solo.

[0444] Foi conduzida PCR transcriptase reversa que usa iniciadores específicos de gene dentro da região de codificação para cada sequência identificada. Os iniciadores foram projetados próximo à região 3' de cada sequência de ligação de específica de DNA inicialmente identificada.

[0445] O RNA total proveniente destes tecidos de folha de solo foi isolado usando-se o protocolo de extração

997/1027

CTAB. Uma vez extraído o RNA total foi normalizado em concentração através de todos os tipos de tecido para garantir que a reação de PCR para cada tecido recebesse a mesma quantidade de matriz de cDNA usando uma faixa de 28S como referência. O RNA Poly(A+) foi purificado usando-se um protocolo modificado proveniente do protocolo em batelada do kit de purificação Qiagen OLIGOTEX. O cDNA foi sintetizado usando-se protocolos padrão. Após a primeira síntese de cDNA de filamento, foram usados iniciadores para Actina 2 para normalizar a concentração de cDNA através dos tipos de tecido. Descobriu-se que Actina 2 é expressa constitutivamente em níveis regulamente iguais através dos tipos de tecido que estão sendo investigados.

[0446] Para RT PCR, a matriz de cDNA foi misturada com iniciadores correspondentes e Taq DNA polimerase. Cada reação consistia em 0,2 μΐ de matriz de cDNA, 2 μΐ de tampão 10X Tricine, 2 μΐ de tampão 10X Tricine e 16,8 μΐ de água, 0,05 μΐ de Iniciador 1, 0,05 μΐ de Iniciador 2, 0,3 μ de ΐ Taq DNA pcdimerase e 8,6 μΐ de água.

[0447] A pdca de 96 cavidades é recoberta com microfilme e adaptada ao termocidador para iniciar o cícIo da reação. Para fins de dustração, o cícIo da reação pode compreender as seguintes etapas:

Etapa 1: 93^o C durante 3 minutos;

Etapa 2: 93^o C durante 30 segundos;

998/1027

Etapa 3: 65^o C durante 1 minuto;

Etapa 4: 72^o C durante 2 minutos;

As Etapas 2, 3 e 4 são repetidas durante 28 ciclos;

Etapa 5: 72^o C durante 5 minutos e

Etapa 6: 4^OC.

Para amplificar mais produtos, por exemplo, para identificar genes que têm expressão muito baixa, podem ser realizadas etapas adicionais. O método a seguir ilustra um método que pode ser usado sob este aspecto. A placa de PCR é colocada de volta no termociclador durante 8 mais ciclos de etapas 2-4.

Etapa 2 93^o C durante 30 segundos;

Etapa 3 65^o C durante 1 minuto;

Etapa 4 72^o C durante 2 minutos, repetida durante 8 ciclos e

Etapa 5 4^o C.

[0448] Oito microlitros de produto de PCR e 1,5 μΐ de carregamento de corante são carregados em um gel de agarose a 1,2% para análise após 28 ciclos e 36 ciclos. Os níveis de expressão de transcritos específicos são considerados baixos se eles foram apenas detectáveis após 36 ciclos de PCR. Os níveis de expressão são considerados médios ou altos dependendo dos níveis de transcrito comparados com os níveis de transcrito observados para um controle interno tal como, actina 2. Os níveis de

999/1027 transcrito são determinados em experimentos de repetição e comparados aos níveis de transcrito nas plantas de controle (por exemplo, não transformadas).

[0449] Foram realizados experimentos para identificar aqueles transformantes ou nocautes que exibiram uma melhor tolerância ao estresse ambiental. Para tais estudos, os transformantes foram expostos a uma variedade de estresses ambientais. As plantas foram expostas a um estresse de resfriamento (6 horas de exposição a 4-8^o C), estresse de calor (6 horas de exposição a 32-37 ^o C), estresse a alto teor de sal (6 horas de exposição a NaCl 200 mM), estresse de secagem (168 horas após remoção da água das bandejas), estresse osmótico (6 horas de exposição a manitol 3 M) ou limitação de nutriente (nitrogênio, fosfato e potássio) (nitrogênio: todos os componentes de meio MS permaneceram constantes exceto N que foi reduzido a 20 mg/l de NH4NO3; fosfato: todos os componentes de meio MS exceto KH2PO₄, que foi substituído por K₂SO₄; potássio: todos os componentes de meio MS exceto remoção de KNO3 e KH2PO4, que foram substituídos por NaH4PO4).

[0450] Foram realizados experimentos para identificar aqueles transformantes ou nocautes que exibiram uma estrutura modificada e características de desenvolvimento. Para tais estudos, os transformantes foram observados a olho nu para identificar novas características

1000/1027 estruturais ou de desenvolvimento associadas com a expressão ectópica dos polinucleotídeos ou dos polipeptídeos da invenção.

[0451] O tempo de floração foi medido pelo número de folhas de roseta presentes quando estiver aparente uma inflorescência visível de aproximadamente 3 cm. A roseta e o número total de folhas no caule da progênie estão intimamente correlacionadas com o tempo de floração (Koornneef e outros (19 91) Mol. Gen.

Genet. 229: 57-66).

Também foi medida a resposta de vernalização, foram semeadas sementes a placas de ágar

MS, vedadas com fita microporo e colocadas em um ambiente frio a 4°C com baixos níveis de iluminação durante 6-8 semanas. As placas foram então transferidas para câmaras de crescimento ao longo de placas que contêm controles não-vernalizados recémsemeados. As folhas de roseta foram contadas quando estava evidente uma inflorescência visível de aproximadamente 3 cm.

[0452] Os fenótipos modificados observados para superexpressor em particular ou nocaute de plantas são fornecidos na Tabela 4. Para um superexpressor em particular que apresenta uma característica menos vantajosa, pode ser útil selecionar uma planta com uma menor expressão do fator de transcrição em particular. Para um nocaute em particular que apresenta uma característica

1001/1027 menos vantajosa, pode ser mais útil selecionar uma planta com maior expressão do fator de transcrição em particular.

[0453] As sequências da Listagem de Sequência ou aquelas nas Tabelas 4 - 9 ou aquelas aqui divulgadas, podem ser usadas para preparar plantas transgênicas e plantas com traços alterados. As plantas transgênicas específicas relacionadas a seguir são produzidas partindo das sequências da Listagem de Sequência,como observado. As Tabelas 4 e 6 fornecem exemplos de sequências de polinucleotídeo e de polipeptídeo da invenção.

Exemplo VIII: Exemplos de Genes que Conferem Melhoria Significativa a Plantas [0454] Exemplos de genes e de homólogos que conferem melhorias significativas ao nocaute ou a superexpressão de plantas são observados a seguir. Observações experimentais feitas em relação aos genes específicos cuja expressão foi modificada em plantas de superexpressão ou de nocaute e as aplicações potenciais baseadas nestas observações feitas em relação aos genes específicos cuja expressão foi modificada na superexpressão ou no nocaute de plantas, e aplicações baseadas nestas observações, também são apresentadas.

[0455] Este exemplo fornece provas experimentais para maior tolerância ao estresse de biomassa e abiótico controlado pelos polipeptídeos do fator de transcrição e os

1002/1027 polipeptídeos da invenção.

[0456] Os ensaios de estresse com sal pretendem descobrir genes que confiram melhor germinação, vigor da muda ou crescimento em alto teor de sal. A evaporação da superfície do solo causa movimento ascendente e acúmulo de sal na camada superior do solo onde são colocadas as sementes. Desse modo, a germinação geralmente ocorre a uma concentração de sal muito mais alta do que a concentração média de sal de todo o perfil do solo. As plantas diferem em sua tolerância a NaCl dependendo do seu estágio de desenvolvimento, portanto são avaliadas a germinação da semente, o vigor da muda e respostas de crescimento da planta.

[0457] Ensaios de estresse osmótico (inclusive ensaios com NaCl e manitol) pretendem determinar se um fenótipo de estresse osmótico é específico a NaCl ou se ele é um estresse osmótico relacionado ao fenótipo. As plantas tolerantes ao estresse osmótico também podiam ter mais tolerância a seca e/ou congelamento.

[0458] Os ensaios de seca pretendem descobrir genes que medeiam a melhor sobrevivência da planta após grave insuficiência de água a curto termo. O vazamento de íons será medido se necessário. A tolerância ao estresse osmótico também confirma um fenótipo tolerante à seca.

[0459] Ensaios de estresse com temperatura

1003/1027

pretendem descobrir genes que	confiram melhor germinação,
vigor da muda ou	crescimento	da planta sob	estresse de
temperatura (frio,	congelamento	e calor).
[0460] Os	ensaios de	sensibilização	a açúcar

pretendem descobrir genes envolvidos em sensibilização a açúcar por germinação de sementes em altas concentrações de sacarose e de glicose e procurando-se graus de alongamento de hipocotila. O ensaio de germinação em manitol controla respostas relacionadas ao estresse osmótico. Os açúcares são moléculas reguladoras chave que afetam diversos processos em plantas superiores inclusive a germinação, o crescimento, a floração, a senescência, o metabolismo do açúcar e a fotossíntese. A sacarose é a principal forma de transporte de fotossintetizado e foi demonstrado que o seu fluxo através das células afeta a expressão do gene e altera o acúmulo de composto em armazenagem nas sementes (relações de fonte-sumidouro). A sensibilização a hexose glicose-específica também foi descritas em plantas e está implicada na divisão da célula e repressão de genes de escassez (ciclos fotossintéticos ou de glioxilato).

[0461] Os ensaios de germinação seguiram modificações do mesmo protocolo básico. Foram semeadas sementes estéreis nos meios condicionais relacionados a seguir. As placas foram incubadas a 22° C sob luz 24 horas (120-130 pEin/m²/s) em uma e do vigor da muda foi conduzida

1004/1027 câmara de crescimento. A avaliação da germinação durante 3 a 15 dias após a plantação. O meio basal era meio Murashige-Skoog (MS) a 80% + vitaminas.

[0462] Para experimentos de germinação com sal e estresse osmótico, o meio foi suplementado com NaCl 150 mM ou manitol 300 mM. Foram realizados ensaios de sensibilidade de regulagem de crescimento em meio MS, vitaminas e ABA 0,3 μΜ, sacarose a 9,4% ou glicose a 5%.

[0463] Foram realizados experimentos de germinação com estresse de temperatura a frio a 8°C. Foram conduzidos experimentos de germinação com estresse de calor a 32°C até 37^oC durante 6 horas de exposição.

[0464] Para experimentos de estresse conduzidos com plantas mais maduras, as sementes foram germinadas e cultivadas durante sete dias em MS + vitaminas + 1% de sacarose a 22°C e então transferidas para condições de estresse de resfriamento e de calor. As plantas foram expostas a esforço de resfriamento (6 horas de exposição a 4-8^o C) ou estresse com calor (32° C foi aplicado durante cinco dias, após o que as plantas foram transferidas de volta 22 °C para recuperação e avaliadas após 5 dias em relação aos controles não-expostos à temperatura diminuída ou elevada).

Resultados:

G1988 (SEQ ID N^o: 327)

1005/1027

Informação Publicada [0465] O G1988 (At3g21150) está no P1 clone MSA6 (Número de acesso do GenBank AP000604) e foi identificado com base em sua similaridade de sequência dentro do domínio conservado a outras proteínas relacionadas tipo tipo CONSTANS em Arabidopsis. Não há qualquer informação publicada ou pública em relação à função do G1988. Observações Experimentais.

[0466] A função do G1988 foi estudada utilizando plantas transgênicas nas quais o gene foi expresso sob o controle do promotor 35S. Uma evidência destes ensaios fisiológicos e morfológicos indica que o G1988 pode desempenhar uma função nos processos de desenvolvimento regulados pela luz; As plantas jovens partindo de semente 35S::G1988 exibiam hipocotilédones mais longos, pecíolos alongados e um número de linhagens que floreciam precocemente.

[0467] Quando cultivadas em fosfato limitado, todas as linhagens pareciam maiores e possuíam maior crescimento de raiz que os controles. As plantas jovens partindo de sementes germinadas em placas que continham nitrogênio limitado (suplementado com glutamina) pareciam menos estressadas que os controles.

Utilidades [0468] Com base nos resultados de ensaios

1006/1027 fisiológicos, o G1988 poderia ser utilizado para engenheirar plantas que exibem maior crescimento e capacidade de sobrevivência em ambientes com poucos nutrientes.

[0469]

O G1988 poderia ter ainda uma função na modulação de processos do desenvolvimento regulados pela luz, tal como o impedimento à sombra. A eliminação das respostas à sombra poderia levar a maiores densidades de plantio com um aumento subsequente do rendimento. O gene poderia ainda ser útil na manipulação do tempo de florescência.

Exemplo IX: Identificação de Sequências Homólogas	de
[0470]	Este exemplo descreve	a identificação
genes que	são ortólogos aos fatores	de transcrição	de
Arabidopsis	thaliana partindo de uma busca de homologia	no
computador.

[0471] As sequências homólogas, incluindo as de parálogos e de ortólogos de Arabidopsis e outras espécies de plantas, foram identificadas utilizando as ferramentas de busca de sequências em bancos de dados, tal como a Basic Local Alignment Search Tool (Ferramenta de Busca de Alinhamento Local Básico) (BLAST) (Altschul e outros (1990) J. Mol. Biol. 215: 403-410; e Altschul e outros (1997)

Nucleic Acid Res. 25: 3389-3402). Os programas de análises de sequência tblastx foram empregados utilizando a matriz

1007/1027 de escore BLOSUM-62 (Henikoff e Henikoff (1992) Proc .Natl.

Acad. Sci. 89: 10915-10919). O banco de dados NCBI GenBank todo foi filtrado em relação a sequências de todas as plantas exceto de Arabidopsis thaliana através da seleção de todas as entradas no banco de dados NCBI GenBank associadas com a ID 33090 taxonômica do NCBI (Viridiplantae; todas as plantas) e excluindo as entradas associadas com a ID 3701 taxonômica (Arabidopsis thaliana).

[0472]

Estas sequências são comparadas com as sequências que representam os genes na Listagem de

Sequências, por exemplo, SEQ ID N^o: 2N - 1, em que N = 1

335, utilizando o algoritmo TBLASTX da Washington

University (versão 2.0a19MP) nos ajustes preestabelecidos utilizando alinhamentos com espaços com o filtro off (desligado). Para cada uma destas sequências, foram pedidas comparações individuais através do escore de probabilidade (valor de P), em que o escore reflete probabilidade de que um alinhamento particular ocorresse ao acaso. Por exemplo, um escore de 3,6e-40 é 3,6 x 10-40.

Em adição aos valores de P, as comparações também foram classificadas através da porcentagem de identidade. A porcentagem de identidade reflete o grau até o qual dois segmentos de DNA ou de proteína são idênticos ao longo de um comprimento particular. Os exemplos de sequências identificadas desta forma são apresentados nas Tabelas 7, 8

1008/1027 e 9. As sequências parálogas ou ortólogas identificadas partindo dos bancos de dados foram facilmente proprietários no

GenBank. A porcentagem de identidade de sequência entre estas sequências pode ser tão baixa quanto 4 7% ou uma identidade de sequência ainda menor.

[0473]

As sequências parálogas foram identificadas entre os fatores de transcrição de Arabidopsis através do alinhamento, da identidade e das relações filogenéticas.

Uma lista de parálogos é mostrada na Tabela 8. As sequências ortólogas candidatas foram identificadas dos conjuntos unigênicos proprietários de sequências gênicas de plantas em Zea mays, Glycine max e

Oryza sativa com base na homologia significativa aos fatores de transcrição de

Arabidopsis. Estes candidatos foram comparados com o conjunto de fatores de reciprocamente transcrição de

Arabidopsis. Se o candidato exibisse similaridade máxima no domínio da proteína para a ativação do fator de transcrição ou a um parálogo da ativação do fator de transcrição, então era considerado como sendo um ortólogo. As sequências identificadas que não eram de Arabidopsis que foram mostradas desta maneira como sendo ortólogas às sequências de Arabidopsis são fornecidas nas Tabelas 7 e 9.

Exemplo X: Seleção da Biblioteca de cDNA de Planta em Relação à Sequência que Codifica um Domímio de Ligação ao DNA do Fator de Transcrição que se Liga a um Elemento

1009/1027

Promotor da Ligação do Fator de Transcrição e Demonstração da Atividade de Regulação da Transcrição da Proteína.

[0474] A estratégia de um híbrido (Li e Herskowitz (1993) Science 262: 1870-1874) é utilizada para selecionar clones de cDNA de planta que codificam um polipeptídeo que compreende um domínio de ligação ao DNA do fator de transcrição, um domínio conservado. Sucintamente, são construídas cepas de levedura que contêm um gene

repórter	lacZ com	as	sequências do	elemento	promotor	da
ligação	do fator	de	transcrição	do tipo	selvagem	ou
mutantes	no lugar	da	UAS normal (	sequência	ativadora	a

montante) do promotor GALL. São construídas cepas repórteres de levedura que carregam as sequências do elemento de ligação do fator de transcrição, uma vez que os elementos UAS ficam ligados de forma operacional a montante (5') de um gene repórter lacZ com um promotor GAL1 mínimo. As cepas são transformadas com uma biblioteca de expressão de planta que contém insertos aleatórios de cDNA fundidos no domínio de ativação GAL4 (GAL4-ACT) e são selecionadas em relação à formação de colônias azuis em filtros tratados com X-gal (X-gal: 5-bromo-4-cloro-3-indolil-B-Dgalactosídeo; Invitrogen Corporation, Carlsbad CA). Alternativamente, as cepas são transformadas com um polinucleotídeo de cDNA que codifica uma sequência polipeptídica do domínio de ligação ao DNA do fator de

1010/1027 transcrição conhecido.

[0475] As cepas de levedura que carregam estes constructos repórteres produzem baixos níveis de betagalactosidase e formam colônias brancas sobre os filtros contendo X-gal. As cepas repórteres que carregam as sequências do tipo selvagem do elemento promotor da ligação do fator de transcrição são transformadas com um polinucleotídeo que codifica um polipeptídeo que compreende um domínio de ligação ao DNA do fator de transcrição de planta ligado de forma operacional ao domínio ativador ácido do fator de transcrição GAL4 de levedura, GAL4-ACT. Os clones que contêm um polinucleotídeo que codifica um domínio de ligação ao DNA do fator de transcrição ligado de forma operacional com o GLA4-ACT podem se ligar a montante dos genes repórteres do lacZ que carregam a sequência do tipo selvagem do elemento promotor da ligação do fator de

transcrição,	ativar a	transcrição	do gene lacZ e	resultar
em leveduras	que formam colônias	azuis sobre os	filtros
tratados com	X-gal.
[0476]	Após a	seleção de	aproximadamente	2 x 106

leveduras transformantes, os clones de cDNA positivos são isolados; isto é, os clones que fazem com que as cepas de levedura que carregam os repórteres de lacZ ligados de forma operacional aos elementos promotores da ligação do fator de transcrição do tipo selvagem formem colônias azuis

1011/1027 sobre filtros tratados com X-gal. Os clones de cDNA não fazem com que uma cepa de levedura que carrega elementos promotores da ligação do fator de transcrição mutante fundidos ao LacZ fiquem azuis. Assim, é mostrado que um polinucleotídeo que codifica um domínio de ligação ao DNA do fator de transcrição, um domínio conservado, ativa a transcrição de um gene.

Exemplo XI: Ensaios de Alteração no Gel.

[0477] A presença de um fator de transcrição que compreende um domínio de ligação ao DNA que se liga a um elemento de ligação do fator de transcrição de DNA é avaliada utilizando o ensaio de alteração no gel a seguir. O fator de transcrição é expresso de forma recombinante e isolado de E. coli ou isolado de material vegetal. A proteína solúvel total, incluindo o fator de transcrição, (40 ng) é incubada à temperatura ambiente em 10 pL de tampão de ligação 1 x (15 mM de HEPES (pH 7,9), 1 mM de EDTA, 30 mM de KCl, 5% de glicerol, 5% de albumina de soro bovino, 1 mM de DTT) mais 50 ng de poli(dl-dC):poli(dl-dC) (Pharmacia, Piscataway NJ) com ou sem 100 ng de DNA competidor. Após uma incubação de 10 minutos, o DNA de sonda que compreende um elemento de ligação ao DNA do fator de transcrição (1 ng) que foi marcado com ³²P através do preenchimento da extremidade (Sambrook e outros (1989) supra) é adicionado e a mistura é incubada durante mais 10

1012/1027 minutos. As amostras são carregadas em géis de poliacrilamida (4% p/v) e fracionadas através de eletroforese a 150V durante 2 h (Sambrook e outros supra). O grau de ligação da sonda de DNA ao fator de transcrição é visualizado utilizando auto-radiografia. Os DNAs de sondas e competidor são preparados partindo de insertos de oligonucleotídeos ligados no sítio BamHI do pUC118 (Vieira e outros (1987) Methods Enzymol. 153: 3-11) . A orientação e o número de concatenação dos insertos são determinados através da análise de sequência do DNA de didesóxi (Sambrook e outros supra). Os insertos são recuperados após a digestão com EcoRI e HindIII e o fracionamento em géis de poliacrilamida (12% p/v) (Sambrook e outros supra).

Exemplo XII. Introdução de Polinucleotídeos em Plantas Dicotiledôneas [0478] Qualquer uma das sequências dos fatores de transcrição da invenção listadas na Listagem de Sequências e sequências parálogas e ortólogas, podem ser recombinadas nos vetores de expressão pMEN20 ou pMEN65 e então são transformadas em uma planta com a finalidade de modificar as características da planta. O vetor de clonagem pode ser introduzido em uma variedade de plantas de cereais por meios bem-conhecidos na técnica tais como, por exemplo, a transferência direta do DNA ou a transformação mediada por Agrobacterium tumefaciens. Agora é rotina produzir plantas

1013/1027 transgênicas utilizando plantas dicotiledôneas (ver Weissbach e Weissbach, (1989) supra; Gelvin e outros (1990) supra; Herrera-Estrella e outros (1983) supra; Bevan (1984) supra; e Klee (1985) supra). Os métodos para a análise das características são rotina na técnica e nos exemplos divulgados acima.

Exemplo XIII: Transformação de Plantas de Cereais com um Vetor de Expressão [0479] As plantas de cereais tais como, mas não limitadas ao milho, ao trigo, ao arroz, ao sorgo ou à cevada, podem também ser transformadas com as presentes sequências de polinucleotídeos nos vetores de expressão pMEN20 ou pMEN65 com a finalidade de modificar as características das plantas. Por exemplo, o pMEN20 pode ser modificado para substituir a região codificadora do NptII pelo gene BAR de Streptomyces hygroscopicus que confere resistência à fosfinotricina. Os sítios de KpnI e BglII do gene Bar são removido através da mutagênese direcionada ao sítio com alterações silenciosas de códons.

[0480] O vetor de clonagem pode ser introduzido em uma variedade de plantas de cereais através de meios bemconhecidos na técnica tal como, por exemplo, transferência direta do DNA ou a transformação mediada por Agrobacterium tumefaciens. É agora rotina produzir plantas transgênicas das principais plantas de cultivo de cereais (Vasil (1994)

1014/1027

Plant Mol. Biol. 25: 925-937) tais como milho, trigo, arroz, sorgo (Cassas e outros (1993) Proc. Natl. Acad. Sci. 90: 11212-11216 e cevada (Wan e Lemeaux (1994) Plant Physiol. 104:37-48. Os métodos de transferência de DNA tal como com microprojéteis podem ser utilizados para o milho (Fromm e outros (1990) Bio/Technol. 8: 833-839); GordonKamm e outros (1990) Plant Cell 2: 603-618; Ishida (1990) Nature Biotechnol. 14:745-750), trigo (Vasil e outros (1992) Bio/Technol. 10:667-674; Vasil e outros (1993) Bio/Technol. 11:1553-1558; Weeks e outros (1993) Plant Physiol. 102:1077-1084), o arroz (Christou (1991) Bio/Technol. 9:957-962; Hiei e outros (1994) Plant J. 6:271-282; Aldemita e Hodges (1996) Planta 199:612-617; e Hiei e outros (1997) Plant Mol. Biol. 35:205-218). Para a maioria das plantas de cereais, as células embrionárias derivadas de tecidos imaturos de escotelo são as células alvo preferidas para transformação (Hiei e outros (1997) Plant Mol. Biol. 35:205-218; Vasil (1994) Plant Mol. Biol. 25: 925-937).

[0481] Os vetores de acordo com a presente invenção podem ser transformados em células embrionárias de milho derivadas do tecido escutelar imaturo utilizando o bombardeio de microprojéteis, com o genótipo A188XB73 como o genótipo preferido (Fromm e outros (1990) Bio/Technol. 8: 833-839; Gordon-Kamm e outros (1990) Plant Cell 2: 603

1015/1027

618) . Após o bombardeio de microprojéteis os tecidos são selecionados com fosfinotricina para identificar as células embrionárias transgênicas (Gordon-Kamm e outros (1990) Plant Cell 2: 603-618) . As plantas trangênicas são regeneradas através das técnicas padrão de regeneração do milho. (Fromm e outros (1990) Bio/Technol. 8: 833-839; Gordon-Kamm e outros (1990) Plant Cell 2: 603-618).

[0482] Os plasmídeos preparados como descrito acima podem também ser utilizados para produzir plantas transgênicas de trigo e arroz (Christou (1991) Bio/Technol. 9:957-962; Hiei e outros (1994) Plant J. 6:271-282; Aldemita e Hodges (1996) Planta 199:612-617; e Hiei e outros (1997) Plant Mol. Biol. 35:205-218) que expressam de forma coordenada genes de interesse seguindo os protocolos de transformação padrão conhecidos pelos versados na técnica para o trigo e o arroz (Vasil e outros (1992) Bio/Technol. 10:667-674; Vasil e outros (1993) Bio/Technol. 11:1553-1558; e Weeks e outros (1993) Plant Physiol. 102:1077-1084), em que o gene bar é utilizado como o marcador de seleção.

Exemplo XIV: Identificação de Sequências Ortólogas e Parálogas [0483] Os ortólogos dos genes de Arabidopsis podem ser identificados através de vários métodos, incluindo a hibridização, a amplificação ou

1016/1027 através da bioinformática. Este exemplo descreve como se pode identificar homólogos ao fator de transcrição CBF1 da família AP2 de Arabidopsis (polinucleotídeo SEQ ID N^o: 2238, polipeptídeo codificado SEQ ID N^o: 2239), que confere tolerância a estresses abióticos (Thomashow e outros (2002) Patente US N- 6.417.428) e um exemplo para confirmar a função de sequências homólogas. Neste exemplo, os ortólogos ao CBF1 foram encontrados na canola (Brassica napus) utilizando a reação em cadeia da polimerase (PCR).

[0484] Os iniciadores degenerados foram planejados para regiões do domínio de ligação ao AP2 e fora do AP2 (domínio carbóxi terminal):

	[0485]	Mol	368	(para trás) 5'- CAY CCN ATH TAY MGN
GGN	GT -3' (	SEQ ID	No: :	2246)
	[0486]	Mol	378	(para frente) 5'- GGN	ARN ARC	ATN
CCY	TCN GCC	-3' (SEQ ID	No:: 2247)
	[0487]	(Y:	C/T,	N: A/C/G/T, H: A/C/T,	M: A/C,	R:

A/G ) [0488] O iniciador Mol 368 está no domínio de ligação ao AP2 do CBF1 (sequência de aminoácidos: His-ProIle-Tyr-Arg-Gly-Val) enquanto o iniciador Mol 378 está fora do domínio do AP2 (domínio carbóxi terminal) (sequência de aminoácidos: Met-Ala-Glu-Gly-Met-Leu-Leu-Pro).

[0489] O DNA genômico isolado de B. Napus foi amplificado pela PCR utilizando estes iniciadores seguindo

1017/1027 estas condições: uma etapa de desnaturação inicial de 2 min a 93°C; 35 ciclos a 93°C durante 1 min, 55°C durante 1 min e 72°C durante 1 min e uma incubação final de 7 min a 72°C no final do ciclo.

[0490] Os produtos da PCR foram separados por eletroforese a um gel de agarose a 1,2% e transferidos para uma membrana de náilon e foram hibridizados com a sonda AT CBF1 preparada partindo do DNA genômico de Arabidopsis através de uma amplificação pela PCR. Os produtos hibridizados foram visualizados através do sistema de detecção colorimétrica (Boehringer Mannheim) e as bandas correspondentes de um gel de agarose similar foram isoladas utilizando o Qiagen Extraction Kit (Qiagen). Os fragmentos de DNA foram ligados ao vetor do clone TA do TOPO TA Cloning Kit (Invitrogen) e transformados na cepa de E. coli TOP10 (Invitrogen).

[0491] Sete colônias foram selecionadas e o insertos foram sequenciados em uma máquina ABI 377 partindo dos filamentos tanto senso quanto anti-sentido após o isolamento do DNA do plasmídeo. A sequência de DNA foi editada por um sequenciador e ordenada com o ATCBF1 através do software GCG e da busca com o NCBI blast.

[0492] A sequência de ácido nucléico e a sequência de aminoácidos de um ortólogo da canola descobertas desta maneira (bnCBF1; polinucleotídeo SEQ ID N^o: 2244 e

1018/1027

polipeptídeo	SEQ ID No: 2245) identificadas através desse
processo são	mostradas na Listagem de Sequências.
[0493]	As sequências de aminoácidos alinhadas
mostram que	o gene bnCBF1 possui 88% de identidade com a
sequência de	Arabidopsis na região do domínio AP2 e 85% de

identidade com a sequência de Arabidopsis fora do domínio

AP2 quando	alinhadas em relação a duas sequências de
inserção que	ficam fora do domínio AP2.
[0494]	Similarmente, as sequências parálogas dos

genes de Arabidopsis, tal como CBF1, podem também ser identificadas.

[0495]

Dois parálogos de CBF1 de Arabidopsis

thaliana: CBF2 e CBF3. CBF2 e CBF3 foram clonados e sequenciados como descrito abaixo. As sequências do DNA SEQ ID N^o: 2240 e 2242 e as proteínas codificadas SEQ ID N^o:

2241 e 2243 são apresentadas na Listagem de Sequências.

[0496]

Uma biblioteca de cDNA em lâmbda preparada

de um RNA isolado do Arabidopsis thaliana ecotipo Columbia (Lin e Thomashow (1992) Plant Physiol. 99: 519-525) foi

selecionada

em relação a clones recombinantes que

carregavam insertos relacionados ao gene CBF1 (Stockinger e

outros (1997	) Proc. Natl. Acad. Sci. 94:1035-1040). O CBF1
foi marcado	radiotivamente com 32P através da iniciação

aleatória (Sambrook e outros supra) e utilizado para selecionar a biblioteca através da técnica de cópia de

1019/1027 placa utilizando condições padrão de hibridização rigorosa e de lavagem (Hajela e outros (1990) Plant Physiol. 93:1246-1252; Sambrook e outros supra) tampão 6 X SSPE, 60^oC para hibridização e tampão 0,1 X SSPE e 60°C para as lavagens). Foram obtidos doze clones com hibridização positiva e as sequências de DNA dos insertos de cDNA foram determinadas. Os resultados indicaram que os clones se encaixavam em três classes. Uma classe carregava insertos correspondentes ao CBF1. As duas outras classes carregavam sequências correspondentes a dois homólogos diferentes do CBF1, denominados CBF2 e CBF3. As sequências de ácidos nucléicos e as sequências previstas codificadoras de proteínas para CBF1, CBF2 e CBF3 de Arabidopsis estão listadas na Listagem de Sequência (SEQ ID N-: 2238, 2240, 2242 e SEQ ID N-: 2239, 2241 e 2243, respectivamente). As sequências de ácidos nucléicos e as sequências previstas codificadoras de proteínas para o ortólogo do CBF de Brassica napus estão listadas na Listagem de Sequência (SEQ ID N-: 2244 e 2245, respectivamente).

[0497] Uma comparação das sequências de ácidos nucléicos de CBF1, CBF2 e CBF3 de Arabidopsis indica que elas são 83 até 85% idênticas como mostrado na Tabela 11.

TABELA 11

	Porcentagem de Identidadea
	DNAb	Polipeptídeo

1020/1027

cbf1/cbf2	85	86
cbf1/cbf3	83	84
cbf2/cbf3	84	85

^a O percentual de identidade foi determinado utilizando o algoritmo Clustal do programa Megalign (DNASTAR, Inc.).

b --São mostradas comparações das sequências de ácidos nucléicos dos quadros abertos de leitura.

[0498] Similarmente, as sequências de aminoácidos dos três polipeptídeos de CBF variam de 84 a 86% de identidade. Um alinhamento das três sequências de aminoácidos revela que a maioria das diferenças na sequência de aminoácidos ocorre na metade C-terminal ácida do polipeptídeo. Esta região do CBF1 serve como um domínio de ativação tanto em levedura como em Arabidopsis (nãomostrado).

[0499] Os resíduos 47 até 106 de CBF1 correspondem ao domínio AP2 da proteína, a um motivo de ligação ao DNA que até hoje, foi encontrado somente em proteínas vegetais.

Uma comparação dos domínios AP2 do CBF1, do CBF2 e do CBF3 indica que há algumas diferenças na sequência de aminoácidos. Estas diferenças na sequência de aminoácidos deveriam ter um efeito sobre a especificidade de ligação ao

DNA.

Exemplo XV: Transformação da Canola com um Plasmídeo

Contendo CBF1, CBF2 ou CBF3

1021/1027 [0500] Após a identificação de genes homólogos ao

CBF1, a canola foi transformada com um plasmídeo contendo os genes CBF1, CBF2 ou CBF3 de Arabidopsis clonados no vetor pGA643 (An (1987) Methods Enzymol. 253: 292). Nestes constructos os genes CBF eram expressos de forma constitutiva sob o promotor 35S de CaMV. Em adição, o gene CBF1 foi clonado sob o controle do promotor COR15 de Arabidopsis no mesmo vetor pGA643. Cada constructo foi transformado em uma cepa GV3101 de Agrobacterium. As agrobactérias transformadas foram cultivadas durante 2 dias em meio AB mínimo contendo os antibióticos apropriados.

[0501] A canola da primavera (B. napus cv. Westar) foi transformada utilizando o protocolo de Moloney e outros ((1989) Plant Cell Reports 8: 238) com as mesmas modificações que são descritas. Sucintamente, as sementes foram esterilizadas e plantadas em meio MS com metade da concentração, contendo 1% incubadas a 24°C sob luz fotoperíodo de 16 horas de de sacarose. As placas foram a 60-80 pE/m²s utilizando um luz / 8 horas de escuridão. Os cotilédones de plantas jovens partindo de sementes de 4 - 5 dias de idade foram coletados, os pecíolos cortados e mergulhados na solução de Agrobacterium. Os cotilédones mergulhados foram colocados em meio de co-cultivo a uma densidade de 20 cotilédones/placa e incubados como descrito acima durante 3 dias. Os explantes foram transferidos para

1022/1027 o mesmo meio, mas contendo 300 mg/L de timentina (SmithKline Beecham, PA) e reduzidos a 10 cotilédones/placas. Após 7 dias os explantes foram transferidos para o meio Seleção/Regeneração. As transferências foram mantidas a cada 2 - 3 semanas (2 ou 3 vezes) até que os brotos tivessem se desenvolvidos. Os brotos foram transferidos para o meio de Alongamento de Brotos a cada 2 - 3 semanas. Os brotos com aparência saudável foram transferidos para o meio de enraizamento. Uma vez que raízes boas tivessem se desenvolvido, as plantas eram colocadas em solo umedecido em vasos.

[0502] As plantas transformadas foram então analisadas em relação à presença do gene NPTII / resistência à canamicina por ELISA, utilizando o kit ELISA NPTII de iniciador 5- iniciador 3 Inc. (Boulder, CO). Aproximada mente 70% das plantas selecionadas eram positivas para NPTII. Somente estas plantas foram analisadas adicionalmente.

[0503] Partindo da análise de Northern blot das plantas que foram transformadas com os constructos de expressão constitutiva, foi mostrada a expressão dos genes CBF e que todos os genes CBF eram capazes de induzir o gene BN115 regulado pelo frio de Brassica napus (homólogo do gene COR15 de Arabidopsis). A maioria das plantas transgênicas parece exibir um fenótipo normal de

1023/1027 crescimento. Como esperado, as plantas transgênicas são mais tolerantes ao congelamento que as plantas do tipo selvagem. Utilizando o teste de perda de eletrólitos nas folhas, o controle exibiu uma perda de 50% a -2 até -3°C. A canola da primavera transformada com CBF1 ou com CBF2

exibiu uma perda de	50%	a -6	até	-7°C. A	canola da
primavera transformada	com	CBF3	pode	exibir uma perda de
50% a aproximadamente	10°C	até -	-15°C.	A canola	do inverno

transformada com CBF3 pode exibir uma perda de 50% a aproximadamente -16°C até -20°C. Além disso, se a canola da primavera ou do inverno forem aclimatadas ao frio, as plantas transformadas podem exibir um aumento adicional na tolerância ao congelamento de pelo menos -2°C.

[0504] Para testar a tolerância à salinidade das plantas transformadas, as plantas foram regadas com 150 mM de NaCl. As plantas que superexpressavam CBF1, CBF2 ou CBF3 cresceram mais comparadas com as plantas que não foram transformadas com CBF1, CBF2 ou CBF3.

[0505] Estes resultados demonstram que podem ser identificados homólogos dos fatores de transcrição de Arabidopsis e demonstrado que conferem funções similares nas espécies vegetais sem ser Arabidopsis.

Exemplo XVI: Clonagem dos promotores dos fatores de transcrição [0506] Os promotores são isolados de genes de

1024/1027 fatores de transcrição que possuem padrões de expressão gênica úteis para uma faixa de aplicações, que são determinados através de métodos bem-conhecidos na técnica (incluindo a análise do perfil do produto da transcrição com microarranjos de cDNA ou de oligonucleotídeos, a análise de Northern blot, a RT-PCR semiquantitativa ou quantitativa). Os perfis de expressão gênica interessantes são revelados através da determinação da abundância dos produtos da transcrição para um gene de fator de transcrição selecionado após a exposição de plantas a uma faixa de condições experimentais diferentes e em uma faixa de tipos de tecidos ou órgãos ou estágios de desenvolvimento diferentes. As condições experimentais às quais as plantas são expostas para esta finalidade incluem o frio, o calor, a seca, o desafio osmótico, concentrações variadas de hormônios (ABA, GA, auxina, citoquinina, ácido salicílico, brassinosteróide), desafio a patógenos e pragas. Os tipos de tecidos e de estágios de desenvolvimento incluem o caule, a raiz, a flor, as folhas da roseta, as folhas da caulina, síliquas, semente em germinação e o tecido meristemático. O ajuste dos níveis de expressão fornece um padrão que é determinado pelos elementos reguladores do promotor gênico.

[0507] Os promotores dos fatores de transcrição para os genes divulgados aqui são obtidos através da

1025/1027 clonagem de 1,5 kb até 2,0 kb de sequência genômica imediatamente a montante do códon de início da tradução para a sequência codificadora da proteína codificada do fator de transcrição. Esta região inclui a 5'-UTR do gene do fator de transcrição, que pode compreender elementos reguladores. A região de 1,5 kb até 2,0 kb é clonada através de métodos da PCR, utilizando iniciadores que incluem um na direção 3' localizada no códon de início da tradução (incluindo a sequência adaptadora apropriada) e um na direção a 5' localizada de 1,5 kb até 2,0 kb a montante do códon de início da tradução (incluindo a sequência adaptadora apropriada).

Os fragmentos desejados são amplificados pela PCR partindo do

DNA genômico de

Arabidopsis Col-0 utilizando a Taq DNA polimerase de alta fidelidade para minimizar a incorporação de mutação(ões) pontual(is). Os iniciadores para clonagem incorporam dois sítios de restrição raros, tais como Not1 and Sfi1, encontrados em baixa frequência ao longo do genoma de Arabidopsis. Sítios de restrição adicionais são utilizados nos casos em que um sítio de restrição Not1 ou Sfi1 está presente dentro do promotor.

[0508] O fragmento de 1,5 - 2,0 kb a montante do códon de início da tradução, incluindo a região nãotraduzida a 5' do fator de transcrição, é clonado em um vetor de transformação binário imediatamente a montante de

1026/1027 um gene repórter adequado ou de um gene transativador em um segundo constructo gênica. Os genes repórteres utilizados incluem a proteína fluorescente verde (e variações relacionadas de cor de proteínas fluorescentes), a betaglucuronidase e a luciferase. Os gemes transativadores incluem LexA-GAL4, junto com um repórter que pode ser transativado em um segundo plasmídeo binário (como divulgado no pedido de Patente U.S. 09/958.131, incorporado aqui como referência). O(s) plasmídeo(s) binário(s) é(são) transferido(s) para Agrobacterium e a estrutura do plasmídeo é confirmada através da PCR. Estas cepas são introduzidas em plantas de Arabidopsis como descrito em outros exemplos e os padrões de expressão gênica são determinados de acordo com métodos padrão conhecidos por um versado na técnica para monitorar a fluorescência da GFP, a atividade da beta-glucuronidase ou a luminescência.

[0509] A região promotora para o G1753 é obtida do cromossomo 2 clone F1011 de Arabidopsis (AC006919), gene At2g36450, da posição 43906-45410 do clone genômico. O complemento desta sequência é o promotor orientado na direção 5' - 3', com o códon de início da tradução para o G1753 o complemento das posições 43903-43905.

[0510] A presente invenção não é limitada pelas modalidades específicas descritas aqui. Estando agora a invenção descrita completamente, será evidente para um

1027/1027 versado comum na técnica que muitas alterações e modificações podem ser feitas na mesma sem sair do espírito ou do escopo das reivindicações em anexo. As modificações que se tornam evidentes partindo da descrição anterior e das figuras em anexo, se encaixam dentro do escopo das reivindicações.

[0511] Todas as referências, publicações, documentos de patentes, páginas da web e outros documentos citados ou mencionados aqui, são incorporados aqui como referência em sua totalidade para todas as finalidades. Embora a invenção tenha sido descrita com referência a modalidades e exemplos específicos, deve ser entendido que um versado comum pode fazer várias modificações sem sair do espírito da invenção. O escopo da invenção não está limitado às modalidades e aos exemplos específicos fornecidos.

Claims (7)

REIVINDICAÇÕES

1. Vetor de expressão caracterizado pelo fato de compreender um polinucleotídeo operacionalmente ligado a um elemento regulador heterólogo, em que o polinucleotídeo é definido pela SEQ ID NO: 327 ou uma de suas sequências ortólogas SEQ ID NO: 1098 ou 1099, que é expresso em uma planta transgênica ou uma parte da mesma.

2/2 ervilhas, pimentas, abacaxi, abóbora, espinafre, tabaco, tomate, tomate cereja, melancia, frutas rosáceas, árvores frutíferas, brassicas, cevada, trigo, milho, milho doce, arroz, centeio, cana-de-açúcar, turfa, milhete, sorgo, groselha, abacate, frutas cítricas, laranjas, limões, toranja, tangerinas, alcachofra, cerejas, noz, amendoim, chicória, alho-poró, araruta, beterraba, cassava, nabo, rabanete, inhame, batata doce, feijões, pinha, choupo, eucalipto e menta.

2. Método para a produção de uma planta transgênica caracterizado pelo fato de que compreende as etapas de:

(a) fornecer um vetor de expressão como definido na reivindicação 1; e (b) introduzir o vetor de expressão como definido na reivindicação 1 em uma planta alvo para produzir uma planta transgênica.

3. Método, de acordo com a reivindicação 2, caracterizado pelo fato de compreender ainda a etapa (c) identificar a planta transgênica através da seleção da planta transgênica que superexpressa o polipeptídeo codificado pelo referido construto.

4. Método, de acordo com qualquer uma das reivindicações 2 e 3, caracterizado pelo fato de que a planta transgênica é uma eudicotiledônea.

5. Método, de acordo com a reivindicação 2, caracterizado pelo fato de que a planta transgênica é selecionada do grupo consistindo em soja, batata, algodão, óleo de semente de colza, canola, girassol, alfafa, trevo, banana, amora-preta, vacínio, morango, framboesa, cantalupo, cenoura, couve-flor, café, pepino, berinjela, uvas, melão, alface, manga, melão, cebola, papaia,

Petição 870180140127, de 10/10/2018, pág. 29/30

6. Método, de acordo com a reivindicação 2, caracterizado pelo fato de que o construto de expressão compreende ainda em um promotor constitutivo induzível ou tecido-específico, que regula a expressão do polipeptídeo codificado pelo referido construto.

7. Método, de acordo com a reivindicação 6, caracterizado pelo fato de que o promotor é um promotor 35S do vírus mosaico da couve-flor. 8. Método, de acordo com a reivindicação 2,

caracterizado pelo fato de compreender ainda as etapas de autofecundar ou cruzar a planta transgênica consigo mesma ou com outra planta, respectivamente, e cultivar uma planta de progênie a partir da semente que se desenvolve como resultado da dita autofecundação ou do dito cruzamento, produzindo, assim, uma planta de progênie transgênica.