BRPI1101765A2 - procedimento para a obtenÇço de um produto de engenharia tissular orientado À regeneraÇço de tecido àsseo - Google Patents
procedimento para a obtenÇço de um produto de engenharia tissular orientado À regeneraÇço de tecido àsseo Download PDFInfo
- Publication number
- BRPI1101765A2 BRPI1101765A2 BRPI1101765-1A BRPI1101765A BRPI1101765A2 BR PI1101765 A2 BRPI1101765 A2 BR PI1101765A2 BR PI1101765 A BRPI1101765 A BR PI1101765A BR PI1101765 A2 BRPI1101765 A2 BR PI1101765A2
- Authority
- BR
- Brazil
- Prior art keywords
- bone
- procedure
- conjugation
- immobilization
- cells
- Prior art date
Links
- 210000000988 bone and bone Anatomy 0.000 title claims abstract description 53
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 43
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 title claims abstract description 19
- 230000017423 tissue regeneration Effects 0.000 title claims description 6
- 102000009123 Fibrin Human genes 0.000 claims abstract description 10
- 108010073385 Fibrin Proteins 0.000 claims abstract description 10
- BWGVNKXGVNDBDI-UHFFFAOYSA-N Fibrin monomer Chemical compound CNC(=O)CNC(=O)CN BWGVNKXGVNDBDI-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 10
- 229950003499 fibrin Drugs 0.000 claims abstract description 10
- 238000005267 amalgamation Methods 0.000 claims abstract description 6
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 claims abstract description 6
- 210000002805 bone matrix Anatomy 0.000 claims description 27
- 230000021615 conjugation Effects 0.000 claims description 12
- 238000005406 washing Methods 0.000 claims description 8
- 230000010478 bone regeneration Effects 0.000 claims description 5
- 238000004806 packaging method and process Methods 0.000 claims description 4
- 239000002504 physiological saline solution Substances 0.000 claims description 4
- 230000003068 static effect Effects 0.000 claims description 4
- 238000003556 assay Methods 0.000 claims description 3
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 claims description 3
- 238000004043 dyeing Methods 0.000 claims description 3
- 238000001914 filtration Methods 0.000 claims description 3
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 claims description 3
- 230000002503 metabolic effect Effects 0.000 claims description 3
- 238000013019 agitation Methods 0.000 claims description 2
- 239000000725 suspension Substances 0.000 claims description 2
- 239000003814 drug Substances 0.000 claims 1
- 238000005183 dynamical system Methods 0.000 claims 1
- 230000035899 viability Effects 0.000 claims 1
- 239000000499 gel Substances 0.000 abstract description 9
- 239000002245 particle Substances 0.000 abstract description 6
- 230000001172 regenerating effect Effects 0.000 abstract description 4
- 230000008929 regeneration Effects 0.000 abstract description 2
- 238000011069 regeneration method Methods 0.000 abstract description 2
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 53
- 239000000047 product Substances 0.000 description 25
- 210000001185 bone marrow Anatomy 0.000 description 10
- 238000011282 treatment Methods 0.000 description 8
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 description 6
- 230000001413 cellular effect Effects 0.000 description 6
- 230000003902 lesion Effects 0.000 description 6
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 6
- 239000006144 Dulbecco’s modified Eagle's medium Substances 0.000 description 4
- 238000013459 approach Methods 0.000 description 4
- 238000007444 cell Immobilization Methods 0.000 description 4
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 description 4
- 239000000463 material Substances 0.000 description 4
- 239000011159 matrix material Substances 0.000 description 4
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 4
- 230000008569 process Effects 0.000 description 4
- 108010049003 Fibrinogen Proteins 0.000 description 3
- 102000008946 Fibrinogen Human genes 0.000 description 3
- 108090000190 Thrombin Proteins 0.000 description 3
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 3
- 239000012620 biological material Substances 0.000 description 3
- 230000007547 defect Effects 0.000 description 3
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 3
- 229940012952 fibrinogen Drugs 0.000 description 3
- 238000003306 harvesting Methods 0.000 description 3
- 230000002188 osteogenic effect Effects 0.000 description 3
- 230000002138 osteoinductive effect Effects 0.000 description 3
- 238000001356 surgical procedure Methods 0.000 description 3
- 230000001225 therapeutic effect Effects 0.000 description 3
- 229960004072 thrombin Drugs 0.000 description 3
- 206010010149 Complicated fracture Diseases 0.000 description 2
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 2
- 241000906034 Orthops Species 0.000 description 2
- 208000013201 Stress fracture Diseases 0.000 description 2
- 230000003833 cell viability Effects 0.000 description 2
- 238000007596 consolidation process Methods 0.000 description 2
- 238000009826 distribution Methods 0.000 description 2
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 2
- 239000007943 implant Substances 0.000 description 2
- 238000002513 implantation Methods 0.000 description 2
- 230000000399 orthopedic effect Effects 0.000 description 2
- 230000011164 ossification Effects 0.000 description 2
- 210000000963 osteoblast Anatomy 0.000 description 2
- 230000004819 osteoinduction Effects 0.000 description 2
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 description 2
- 239000004017 serum-free culture medium Substances 0.000 description 2
- 238000003860 storage Methods 0.000 description 2
- 208000017234 Bone cyst Diseases 0.000 description 1
- 206010061728 Bone lesion Diseases 0.000 description 1
- 208000000094 Chronic Pain Diseases 0.000 description 1
- 206010061218 Inflammation Diseases 0.000 description 1
- 206010028980 Neoplasm Diseases 0.000 description 1
- 206010031264 Osteonecrosis Diseases 0.000 description 1
- 208000002193 Pain Diseases 0.000 description 1
- 210000000577 adipose tissue Anatomy 0.000 description 1
- 230000000735 allogeneic effect Effects 0.000 description 1
- 210000003423 ankle Anatomy 0.000 description 1
- 230000033558 biomineral tissue development Effects 0.000 description 1
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 1
- 239000003054 catalyst Substances 0.000 description 1
- 230000010261 cell growth Effects 0.000 description 1
- 230000007423 decrease Effects 0.000 description 1
- 230000003247 decreasing effect Effects 0.000 description 1
- 230000006735 deficit Effects 0.000 description 1
- 230000004069 differentiation Effects 0.000 description 1
- 210000002889 endothelial cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000001815 facial effect Effects 0.000 description 1
- 230000004927 fusion Effects 0.000 description 1
- 239000003102 growth factor Substances 0.000 description 1
- 230000003394 haemopoietic effect Effects 0.000 description 1
- 238000012789 harvest method Methods 0.000 description 1
- 210000001621 ilium bone Anatomy 0.000 description 1
- 230000003100 immobilizing effect Effects 0.000 description 1
- 230000001771 impaired effect Effects 0.000 description 1
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 1
- 238000001727 in vivo Methods 0.000 description 1
- 238000010348 incorporation Methods 0.000 description 1
- 230000001939 inductive effect Effects 0.000 description 1
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 description 1
- 230000004054 inflammatory process Effects 0.000 description 1
- 239000007924 injection Substances 0.000 description 1
- 238000002347 injection Methods 0.000 description 1
- 208000014674 injury Diseases 0.000 description 1
- 230000010354 integration Effects 0.000 description 1
- 230000007774 longterm Effects 0.000 description 1
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 1
- 210000003205 muscle Anatomy 0.000 description 1
- 208000015122 neurodegenerative disease Diseases 0.000 description 1
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 1
- 201000008482 osteoarthritis Diseases 0.000 description 1
- 210000002997 osteoclast Anatomy 0.000 description 1
- 230000008439 repair process Effects 0.000 description 1
- 230000004044 response Effects 0.000 description 1
- 230000037390 scarring Effects 0.000 description 1
- 238000010972 statistical evaluation Methods 0.000 description 1
- 210000000130 stem cell Anatomy 0.000 description 1
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 1
- 239000013595 supernatant sample Substances 0.000 description 1
- 238000002560 therapeutic procedure Methods 0.000 description 1
- 210000002303 tibia Anatomy 0.000 description 1
- 238000002054 transplantation Methods 0.000 description 1
- 230000008733 trauma Effects 0.000 description 1
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/36—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
- A61L27/38—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells
- A61L27/3839—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells characterised by the site of application in the body
- A61L27/3843—Connective tissue
- A61L27/3847—Bones
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61F—FILTERS IMPLANTABLE INTO BLOOD VESSELS; PROSTHESES; DEVICES PROVIDING PATENCY TO, OR PREVENTING COLLAPSING OF, TUBULAR STRUCTURES OF THE BODY, e.g. STENTS; ORTHOPAEDIC, NURSING OR CONTRACEPTIVE DEVICES; FOMENTATION; TREATMENT OR PROTECTION OF EYES OR EARS; BANDAGES, DRESSINGS OR ABSORBENT PADS; FIRST-AID KITS
- A61F2/00—Filters implantable into blood vessels; Prostheses, i.e. artificial substitutes or replacements for parts of the body; Appliances for connecting them with the body; Devices providing patency to, or preventing collapsing of, tubular structures of the body, e.g. stents
- A61F2/02—Prostheses implantable into the body
- A61F2/28—Bones
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/36—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
- A61L27/38—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/36—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
- A61L27/38—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells
- A61L27/3804—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells characterised by specific cells or progenitors thereof, e.g. fibroblasts, connective tissue cells, kidney cells
- A61L27/3834—Cells able to produce different cell types, e.g. hematopoietic stem cells, mesenchymal stem cells, marrow stromal cells, embryonic stem cells
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
- C12N5/0602—Vertebrate cells
- C12N5/0652—Cells of skeletal and connective tissues; Mesenchyme
- C12N5/0662—Stem cells
- C12N5/0663—Bone marrow mesenchymal stem cells (BM-MSC)
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L2430/00—Materials or treatment for tissue regeneration
- A61L2430/02—Materials or treatment for tissue regeneration for reconstruction of bones; weight-bearing implants
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2533/00—Supports or coatings for cell culture, characterised by material
- C12N2533/50—Proteins
- C12N2533/56—Fibrin; Thrombin
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2533/00—Supports or coatings for cell culture, characterised by material
- C12N2533/90—Substrates of biological origin, e.g. extracellular matrix, decellularised tissue
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Transplantation (AREA)
- Oral & Maxillofacial Surgery (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Public Health (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Dermatology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Botany (AREA)
- Developmental Biology & Embryology (AREA)
- Orthopedic Medicine & Surgery (AREA)
- Vascular Medicine (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Hematology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Heart & Thoracic Surgery (AREA)
- Cardiology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Urology & Nephrology (AREA)
- Rheumatology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Immunology (AREA)
- Materials For Medical Uses (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
PROCEDIMENTO PARA A OBTENÇçO DE UM PRODUTO DE ENGENHARIA TISSULAR ORIENTADO À REGENERAÇçO DE TECIDO àSSEO. A presente invenção refere-se a um procedimento para a preparação de um produto de engenharia tissular orientado à regeneração de tecidos ásseos. Mais particularmente, a presente invenção refere-se a um produto que compreende principalmente células mesenquimais de origem óssea expandidas, imobilizadas sobre suportes ósseos e amalgamadas por meio de géis de fibrina. O dito procedimento compreende fundamentalmente as etapas de colonização dos suportes ásseos e o amalgamado das partículas colonizadas à base de géis de fibrina.
Description
Relatório Descritivo da Patente de Invenção para "PROCEDI- MENTO PARA A OBTENÇÃO DE UM PRODUTO DE ENGENHARIA TIS- SULAR ORIENTADO À REGENERAÇÃO DE TECIDO ÓSSEO"
DESCRIÇÃO
A presente invenção refere-se a um procedimento para a prepa- ração de um produto de engenharia tissular orientado à regeneração de te- cidos ósseos. Mais particularmente, a presente invenção refere-se a um pro- duto que compreende principalmente células mesenquimais de origem ós- sea expandidas, imobilizadas sobre suportes ósseos e amalgamadas por meio de géis de fibrina. O dito procedimento compreende fundamentalmente as etapas de colonização dos suportes ósseos e o amalgamado das partícu- las colonizadas à base de géis de fibrina.
A reconstrução de segmentos ósseos devido a traumatismos, enfermidades degenerativas, inflamação e o tratamento cirúrgico de tumores é um problema clínico não resolvido. Os tratamentos disponíveis atualmente incluem o transplante de tecido ósseo autólogo, heterólogo e a utilização de implante à base de diversos tipos de biomateriais. Entre as abordagens an- teriores, o autoenxerto de osso obtido de diversas localizações, tais como, por exemplo, a crista ilíaca, é o tratamento preferido para uma ampla varie- dade de condições ortopédicas. Entre estas se encontram a substituição de defeitos ósseos, a consolidação de fraturas complicadas ou os defeitos de união. A utilização de tecido autólogo como veículo da regeneração óssea satisfaz uma série de requisitos-chaves básica, resulta em uma matriz estru- tural osteoindutiva, fatores de crescimento que promovem a vascularização e a osteoindução do implante e introduz células com potencial osteogênico.
Apesar dos benefícios derivados, de um ponto de vista exclusi- vamente mecanístico, a utilização de autoenxertos na prática clínica apre- senta uma série de importantes inconvenientes. Freqüentemente, não se consegue uma substituição completa do tecido ósseo prejudicada com o au- toenxerto. Esta circunstância pode desencadear a longo prazo uma ruptura do enxerto. Estimou-se, depois de transcorridos dez anos, a percentagem de ruptura é de 60% e se encontra associada a uma multiplicidade de fatores tais como a diminuição na mineralização do osso neoformado, a produção de microfraturas ou a atividade dos osteoclastos (Wheeler DL e outros, Allo- graft bone decreases in strength in vivo over time. Clin Orthop Relat Res. 2005;435:36-42.). Por outro lado, a obtenção cirúrgica do osso autólogo fre- quentemente tem associada uma elevada morbidez variável (Laureie SW e outros, Donor-site morbidity after harvesting rib and iliac bone. Plast Recons- tr Surg. 1984;6:93-98). Em função da localização anatômica e da técnica de extração (Chou LB e outros, Stress frature as a complication of autogenous bone graft harvest from the distai tibia. Foot Ankle Int. 2007;2:199-201; Braw- ley SC e outros, Results of an alternative autogenous iliac crest bone graft harvest method. Orthopedics. 2006;4:342-346.).
A utilização de osso humano procedente de bancos de tecidos soluciona o problema da morbidez associada aos autoenxertos, mas carece dos benefícios associados à atividade regeneradora acarretada pelo compo- nente celular, a qual foi determinada como um fator-chave. Este tipo de en- xerto apresenta uma incorporação lenta no osso nativo que pode acabar produzindo instabilidade mecânica durante esforços ou pouca afinidade celu- lar, circunstâncias que se traduzem na não-união com o osso nativo (Enne- king WF e outros, Observations on massive retrieved human allografts. J Bone Joint Surgery. 1991;73:1123-1142; Turk JB e outros, Bone source from craneomaxillofacial reconstruction. Facial Plast Surg. 2000;16:7-14). Esta problemática situa a taxa de fracasso desta técnica entre 10 e 40% (Ottoleu- ghi C. Massive osteo and osteo-articular bone grafts: technique and results of 62 cases. Clin Orthop Relat Res. 1972;87:156-64). Poresta razão, embo- ra se disponha de tecido ósseo de um banco, o tratamento mais freqüente de lesões ósseas importantes é o autoenxerto.
Como resposta à problemática mencionada, a presente invenção apresenta um procedimento para preparar um produto baseado na engenha- ria tissular, cuja utilização resulta em uma alternativa terapêutica eficaz. O uso do produto obtido por meio de o procedimento que a presente invenção apresenta é fundamentado na utilização de matrizes à base de biomateriais, combinadas com células-mãe para induzir a regeneração dos tecidos ósseos danificados.
As matrizes utilizadas na presente invenção exibem várias ca- racterísticas, que resultam em chaves para executar a função de suporte à reconstrução do tecido-alvo. Entre estas características é dado destaque ao fato que elas são biocompatíveis, reabsorbíveis, possuem integridade estru- tural e características mecânicas que se adequam à zona de implantação. Além disso, devem ser capazes de gerar um entorno biológico que garanta o suprimento de nutrientes às células para assegurar que estas possam exe- cutar a sua função regeneradora. Às características anteriores, deve ser a- crescentado que uma matriz orientada à regeneração de tecidos ósseos de- veria possuir capacidade de induzir a osteoindução.
O segundo componente fundamental do produto de engenharia tissular da presente invenção inclui as células. As ditas células também exi- bem várias características relevantes tais como a facilidade e segurança de sua preparação, são uma fonte segura do ponto de vista citogenético e têm propriedades de multipotencialidade, que permite que elas sejam diferencia- das das células responsáveis pela produção de tecido ósseo, os osteoblas- tos.
Portanto, a presente invenção apresenta um procedimento para a preparação de um produto de engenharia tissular orientado à regeneração óssea. O dito procedimento se fundamenta na utilização de células mesen- quimais expandidas, de origem autóloga ou alogênica, procedentes da me- dula óssea, e as ditas células se imobilizam sobre suportes à base de partí- culas de osso desantigenizado ou desantigenizado/desmineralizado. O pro- duto obtido pelo dito procedimento é amalgamado e estabilizado na zona de implantação por meio de a utilização de géis de fibrina. O tratamento com o produto obtido pelo procedimento da presente invenção tem como principal vantagem em relação aos tratamentos baseados no autoenxerto o fato que não é necessário submeter o receptor da terapia a uma ou várias interven- ções de cirurgia maior para a extração do material biológico.
O material celular necessário para a preparação do produto de Engenharia Tissular segundo a presente invenção é obtido por meio de a extração da medula óssea que é realizada de forma ambulatória. Esta abor- dagem, portanto, evita as complicações potencialmente graves derivadas da obtenção de material ósseo autólogo tais como dor crônica, afetação do te- cido nervoso e arterial, instabilidade da pélvis, infecção e cicatrizes (Banwart JC e outros, Iliac crest bone graft harvest donor site morbidity. A statistical evaluation. Spine. 1995;20:1055-1060).
Por outro lado, o procedimento de acordo com a presente inven- ção, que utiliza de forma combinada de células mesenquimais e uma matriz de capacidade osteindutora reconhecida, de preferência osso desantigeni- zado ou desantigenizado/desmineralizado, permite superar as limitações impostas pela utilização de osso procedente de banco de tecidos sem com- ponente celular, que mostra um índice de fracasso na integração óssea en- tre 10% e 40%.
Foi demonstrado que a combinação de matrizes ósseas desmi- neralizadas/desantigenizadas ou desantigenizadas com medula óssea não processada acelera e incrementa a formação de osso em comparação à uti- lização da matriz óssea por si só (Rougraft BT., Treatment of ative unicame- ral bone cysts with percutaneous injection of demineralizaed bone matrix and autogenous bone marrow. J. Bone Joint Surg. Am. 2002;84:921). Embora este resultado tenha manifestado que a medula óssea, ou seja, as células com possível potencial osteogênico contidas na medula podem ser um ele- mento-chave na atividade terapêutica do produto, ao atuar como catalisado- res da formação de tecido sadio.
Entretanto, a medula óssea é constituída por um conjunto celular heterogêneo que inclui todas as células de linhagem hematopoiética, células endoteliais, células de tecido adiposo, assim como uma percentagem menor do que 0,01% de células mesenquimais multipotentes. Esta população de células mesenquimais é aquela que, através de um processo de diferencia- ção, dará lugar aos osteoblastos, que são os principais responsáveis pela formação do osso. Logicamente, esta baixa percentagem das células me- senquimais na medula óssea supõe uma limitação na capacidade regenera- dora desta fonte celular. Portanto, existe um elevado grau de incerteza quan- to ao resultado do tratamento, uma vez que não é possível determinar a quantidade de células com capacidade osteoindutora aplicadas e fixadas à zona da lesão.
Os inventores da presente invenção descobriram que, por meio de o procedimento da presente invenção, no qual matrizes ósseas são con- jugadas por meio de um processo de imobilização de um produto celular en- riquecido em células mesenquimais, são obtidos resultados surpreendentes na regeneração óssea. O dito produto apresenta uma excelente capacidade osteoindutora e é obtido por meio de uma seleção e posterior expansão in vitro destas células mesenquimais.
O procedimento da presente invenção, por meio da manipulação do processo de expansão das células mesenquimais, permite gerar uma ampla faixa de quantidades de enxerto ósseo, que facilita o tratamento de lesões de diversos tamanhos e origens. Esta característica faz com que o produto obtido por meio de o procedimento segundo a presente invenção seja aplicável em um leque de abordagens terapêuticas tais como a recons- trução óssea maxilofacial, em osteoartrose, em osteonecrose, na substitui- ção de defeitos ósseos, na fusão intervertebral, na consolidação de fraturas complicadas ou nos defeitos de união.
Por outro lado, a conjugação das células mesenquimais às ma- trizes ósseas por meio de um processo de colonização, permite a localiza- ção das células com potencial osteogênico na zona a ser regenerada. Esta característica assegura a atividade celular reparadora na zona a ser tratada e a diferença de outras abordagens de engenharia tissular, que introduzem as células sem imobilização na matriz. Além disso, isto garante a permanên- cia das células mesenquimais na zona da lesão onde deve ser realizado o trabalho reparador.
Finalmente, o amalgamado destas partículas de osso coloniza- dos com células mesenquimais por meio de géis de fibrina permite conferir ao conjunto plasticidade e capacidade de manipulação, facilitando por sua vez a imobilização da mistura na zona a ser tratada e conferindo a arquitetu- ra requerida. Descrição Detalhada da Invenção
A presente invenção apresenta um procedimento para a prepa- ração de um produto de engenharia tissular orientado à regeneração de te- cidos ósseos. O dito produto é constituído por um componente celular que consiste em células mesenquimais expandidas a partir da medula óssea e um componente não celular à base de matrizes ósseas. O procedimento compreende as etapas de:
a) expansão de células mesenquimais;
b) conjugação/imobilização das células mesenquimais obtidas em (a) em matrizes ósseas;
c) lavagem da suspensão óssea; e
d) acondicionamento final (amalgamado).
O tamanho da lesão a ser tratada determinará a quantidade de células mesenquimais requeridas para uma regeneração óssea adequada. Uma vez que a dose de células mesenquimais requeridas é obtida na etapa (a), inicia-se a etapa de conjugação destas a uma matriz óssea. Esta conju- gação/imobilização pode ser realizada por meio de sistemas dinâmicos ou estáticos.
No caso em que se utilize um sistema dinâmico, as células me- senquimais obtidas na etapa de expansão (a) são ressuspensas em meio de cultura, de preferência o meio DMEM complementado com soro a uma con- centração não superior 1x107 células por mililitro e não inferior a 1x10³ célu- las por mililitro. Continuando, a suspensão celular de forma estéril é despe- jada em uma bolsa ou frasco de cultura, que pode estar equipado ou não com um agitador pendular previamente carregado com a matriz óssea. A relação do número de células por centímetro cúbico de matriz óssea será mantida dentro do intervalo de 1x10² a 1x10^8 células por centímetro cúbico. Uma vez que a suspensão celular é adicionada ao frasco, biorreator ou bol- sa de cultura, é incubada com agitação durante 4 a 24 horas a uma tempera- tura de 37°C, uma saturação de CO2 de 5%, e umidade relativa de 95%. As condições de agitação empregadas para garantir a ancoragem das células são de 1 a 120 rotações por minuto. Em caso do emprego de um sistema de imobilização estático, as células mesenquimais obtidas na etapa de expansão (a) são resuspensas em meio de cultura, de preferência o meio DMEM complementado com soro a uma concentração não superior a 1x107 células por mililitro e não inferior a 1x103 células por mililitro. Continuando, a suspensão celular de forma estéril é despejada em uma bolsa ou frasco de cultura, que pode estar equipado ou não com um agitador pendular previamente carregado com a matriz óssea. A relação do número de células por centímetro cúbico de matriz óssea será mantida dentro do intervalo de 1x102 a 1x108 células por centímetro cúbico. Uma vez que a suspensão celular é adicionada ao frasco, biorreator ou bol- sa de cultura, é incubada durante 4 a 24 horas a condições de temperatura de 37°C, uma saturação de CO2 de 5% e umidade relativa de 95%.
O produto obtido da etapa de conjugação/imobilização (b), com- posto por células mesenquimais imobilizadas sobre matrizes ósseas, de pre- ferência de osso desantigenizadas, mais de preferência desantigeniza- das/desmineralizadas, é submetido a um ciclo de lavagens, de preferência por meio de uma solução salina fisiológica, e é colocado de forma estéril em uma bolsa de conservação.
O produto obtido é extraído da bolsa de conservação de forma estéril misturado com um gel de fibrina com uma relação de uma unidade volumétrica de solução de fibrinogênio por uma unidade volumétrica de solu- ção de trombina e uma unidade volumétrica de matriz óssea colonizada.
Continuando, a presente invenção é ilustrada por meio de E- xemplos, que não constituem uma limitação da mesma.
Exemplo 1. Procedimento utilizando uma imobilização dinâmica
O seguinte procedimento foi executado para a obtenção de um centímetro cúbico do produto de engenharia tissular orientado à regeneração óssea, segundo a presente invenção.
Foram obtidas 6x106 células mesenquimais de medula óssea por meio de expansão empregando meios livres de soro animal e inoculadas em um frasco de cultura. Por meio do emprego de um meio à base de DMEM suplementado com soro humano a 10% (v/v), a concentração celular foi fixada a uma densidade de 6x105 células por mililitro. Esta suspensão celular foi adicionada de forma estéril a um segundo frasco de material plás- tico dotado de agitador pendular, onde foi previamente adicionado 1 centí- metro cúbico de matriz óssea desantigenizada.
O frasco foi colocado na incubadora a condições de temperatura de 37°C, saturação de CO2 de 5%, e umidade relativa de 95% e foi iniciado um ciclo de agitação de 24 horas de duração a uma velocidade de 1 rpm. Com o passar do tempo de duração desta etapa de imobilização das células mesenquimais sobre a matriz óssea, foram tiradas amostras do sobrenadan- te para determinar o ritmo e rendimento da imobilização das células. Os ren- dimentos de imobilização quando foi finalizada esta etapa eram superiores a 80% e a viabilidade das células, determinada por meio de tingimento de nú- cleos ou ensaios metabólicos indiretos, era superior a 90%.
Transcorridas as 24 horas, depois da imobilização das células mesenquimais sobre a matriz óssea, foi executada uma lavagem do produto obtido com o objetivo de eliminar resíduos celulares e o meio de cultura. Es- ta operação foi levada a cabo por meio de filtração empregando como agen- te de lavagem uma solução salina fisiológica. Continuando, o produto obtido foi colocado em uma bolsa estéril.
No momento anterior à aplicação do produto ao paciente, foi fei- to um amalgamado das partículas ósseas com um gel de fibrina. Para exe- cutar esta operação, foi empregada uma relação volumétrica que consiste em uma unidade de solução de fibrinogênio por uma unidade volumétrica de solução de trombina e uma unidade volumétrica de matriz óssea colonizada. Continuando, o dito conjunto adotou a forma que permitiu que ele se adap- tasse à distribuição espacial da lesão e foi colocado na mesma.
Exemplo 2. Procedimento utilizando uma imobilização estática Foram obtidas 6x10® células mesenquimais de medula óssea por meio de expansão empregando meios livres de soro animal e inoculadas em um frasco de cultura. Por meio do emprego de meio à base de DMEM suplementado com soro humano a 10% (v/v), a concentração celular foi fixa- da a uma densidade de 6x105 células por mililitro. Esta suspensão celular foi adicionada de forma estéril a uma bolsa de cultura permeável a gás de ma- terial plástico, onde foi previamente adicionado 1 centímetro cúbico de matriz óssea desantigenizada.
O frasco foi colocado na incubadora a condições de temperatura de 37°C, saturação de CO2 de 5%, e umidade relativa de 95% e mantido sem movimento durante 24 horas. Com o passar do tempo de duração desta etapa de imobilização das células mesenquimais sobre a matriz óssea, fo- ram tiradas amostras do sobrenadante para determinar o ritmo e rendimento da imobilização das células. Os rendimentos de imobilização quando foi fina- lizada esta etapa eram superiores a 80% e a viabilidade das células, deter- minada por meio de tingimento de núcleos ou ensaios metabólicos indiretos, era superior a 90%.
Transcorridas as 24 horas, depois da imobilização das células mesenquimais sobre a matriz óssea, foi feita uma lavagem do produto obtido com o objetivo de eliminar resíduos celulares e o meio de cultura. Esta ope- ração foi levada a cabo por meio de filtração empregando como agente de lavagem uma solução salina fisiológica. Continuando, o produto obtido foi colocado em uma bolsa estéril.
No momento anterior à aplicação do produto ao paciente, foi fei- to um amalgamado das partículas ósseas com um gel de fibrina. Para exe- cutar esta operação, foi empregada uma relação volumétrica que consiste em uma unidade de solução de fibrinogênio por uma unidade volumétrica de solução de trombina e uma unidade volumétrica de matriz óssea colonizada. Continuando, o dito conjunto adotou a forma que permitiu que ele se adap- tasse à distribuição espacial da lesão e foi colocado na mesma.
Claims (14)
1. Procedimento para a preparação de um produto de engenha- ria tissular orientado à regeneração de tecidos ósseos, caracterizado pelo fato de compreender as etapas de: a) expansão de células mesenquimais; b) conjugação/imobilização das células mesenquimais obtidas em (a) em matrizes ósseas; c) lavagem da suspensão óssea; e d) acondicionamento final (amalgamado).
2. Procedimento, de acordo com a reivindicação 1, caracterizado pelo fato de que a etapa de conjugação/imobilização é executada por meio de um sistema dinâmico ou um sistema estático.
3. Procedimento, de acordo com a reivindicação 1 ou 2, caracte- rizado pelo fato de que a matriz óssea é osso desantigenizado.
4. Procedimento, de acordo com as reivindicações anteriores, caracterizado pelo fato de que a matriz óssea é osso desantigeniza- do/desmineralizado.
5. Procedimento, de acordo com as reivindicações anteriores, caracterizado pelo fato de que a lavagem é executada com solução salina fisiológica.
6. Procedimento, de acordo com as reivindicações anteriores, caracterizado pelo fato de que a lavagem é executada em ciclos e o agente de lavagem é eliminado por meio de filtração.
7. Procedimento, de acordo com as reivindicações anteriores, caracterizado pelo fato de que a relação de número de células por centíme- tro cúbico de matriz óssea na etapa de conjugação (b) fica compreendida no intervalo de 1x102 a 1x108 células por centímetro.
8. Procedimento, de acordo com as reivindicações anteriores, caracterizado pelo fato de que o tempo de conjugação/imobilização (b) fica compreendido no intervalo de 4 a 24 horas.
9. Procedimento, de acordo com as reivindicações anteriores, caracterizado pelo fato de que a etapa de conjugação/imobilização (b) é executada em condições de temperatura de 37°C, uma saturação de CO2 de 5% e umidade relativa de 95%.
10. Procedimento, de acordo com as reivindicações anteriores, caracterizado pelo fato de que a agitação quando é utilizado o sistema di- nâmico na etapa de conjugação/imobilização (b) é executada em um interva- lo de 1 a 120 rpm.
11. Procedimento, de acordo com as reivindicações anteriores, caracterizado pelo fato de que o rendimento de imobilização da etapa de conjugação/imobilização (b) é superior a 80% e a viabilidade das células, determinada por meio de tingimento de núcleos ou ensaios metabólicos indi- retos, é superior a 90%.
12. Procedimento, de acordo com as reivindicações anteriores, caracterizado pelo fato de que o acondicionamento final é realizado por meio de amalgamado com um gel de fibrina.
13. Procedimento, de acordo com as reivindicações anteriores, caracterizado pelo fato de que o acondicionado final é realizado no momento anterior à aplicação do produto ao paciente.
14. Uso de um produto que compreende células mesenquimais imobilizadas em uma matriz óssea, obtido por meio do procedimento como definido em qualquer das reivindicações anteriores, caracterizado pelo fato de se prestar à fabricação de um medicamento utilizado na regeneração óssea.
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| ES201030238A ES2340657B1 (es) | 2010-02-19 | 2010-02-19 | Procedimiento para la obtencion de un producto de ingenieria tisular orientado a la regeneracion de tejido oseo. |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| BRPI1101765A2 true BRPI1101765A2 (pt) | 2012-08-14 |
Family
ID=42174456
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| BRPI1101765-1A BRPI1101765A2 (pt) | 2010-02-19 | 2011-02-17 | procedimento para a obtenÇço de um produto de engenharia tissular orientado À regeneraÇço de tecido àsseo |
Country Status (4)
| Country | Link |
|---|---|
| EP (1) | EP2361971B1 (pt) |
| BR (1) | BRPI1101765A2 (pt) |
| ES (2) | ES2340657B1 (pt) |
| MX (1) | MX2011001860A (pt) |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| ES2846923T3 (es) * | 2017-09-18 | 2021-07-30 | Banc De Sang I Teixits | Composición para regenerar tejido óseo, procedimiento de preparación y uso de la misma |
Family Cites Families (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US4904259A (en) * | 1988-04-29 | 1990-02-27 | Samuel Itay | Compositions and methods for repair of cartilage and bone |
| IL141813A (en) * | 2001-03-05 | 2010-04-15 | Hadasit Med Res Service | Mixture comprising bone marrow cells together with demineralized and/or mineralized bone matrix and uses thereof in the preparation of compositions for the treatment of hematopoietic dusirders |
| US7744597B2 (en) * | 2002-06-26 | 2010-06-29 | Lifenet Health | Device and process for producing fiber products and fiber products produced thereby |
| US20090208464A1 (en) * | 2006-01-24 | 2009-08-20 | Centeno Christopher J | Mesenchymal stem cell isolation and transplantation method and system to be used in a clinical setting |
| CA2699677C (en) * | 2007-09-14 | 2016-07-05 | Purdue Research Foundation | Demineralized cancellous bone scaffolds |
| WO2009080794A1 (en) * | 2007-12-21 | 2009-07-02 | Mc2 Cell Aps | Method for preparing cell-specific extracellular matrices |
-
2010
- 2010-02-19 ES ES201030238A patent/ES2340657B1/es not_active Expired - Fee Related
-
2011
- 2011-02-14 ES ES11382041.9T patent/ES2597859T3/es active Active
- 2011-02-14 EP EP11382041.9A patent/EP2361971B1/en not_active Not-in-force
- 2011-02-17 BR BRPI1101765-1A patent/BRPI1101765A2/pt not_active IP Right Cessation
- 2011-02-17 MX MX2011001860A patent/MX2011001860A/es active IP Right Grant
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| EP2361971B1 (en) | 2016-07-13 |
| ES2340657A1 (es) | 2010-06-07 |
| ES2340657B1 (es) | 2011-01-21 |
| ES2597859T3 (es) | 2017-01-23 |
| EP2361971A1 (en) | 2011-08-31 |
| MX2011001860A (es) | 2011-08-29 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Bajada et al. | Successful treatment of refractory tibial nonunion using calcium sulphate and bone marrow stromal cell implantation | |
| JP5881669B2 (ja) | コラーゲン/ヒドロキシアパタイト複合骨格及びその生成方法 | |
| de la Puente et al. | Cell culture in autologous fibrin scaffolds for applications in tissue engineering | |
| Song et al. | The homing of bone marrow MSCs to non-osseous sites for ectopic bone formation induced by osteoinductive calcium phosphate | |
| AU2002345691C1 (en) | In vivo bioreactors | |
| Yoshimi et al. | Self-assembling peptide nanofiber scaffolds, platelet-rich plasma, and mesenchymal stem cells for injectable bone regeneration with tissue engineering | |
| Yu et al. | A Naringin-loaded gelatin-microsphere/nano-hydroxyapatite/silk fibroin composite scaffold promoted healing of critical-size vertebral defects in ovariectomised rat | |
| JP5406915B2 (ja) | 生体適合性インプラント | |
| Tatara et al. | Reconstruction of large mandibular defects using autologous tissues generated from in vivo bioreactors | |
| US9889233B2 (en) | Method of producing native components, such as growth factors or extracellular matrix proteins, through cell culturing of tissue samples for tissue repair | |
| Chen et al. | Multi-level customized 3D printing for autogenous implants in skull tissue engineering | |
| Li et al. | The response of host blood vessels to graded distribution of macro-pores size in the process of ectopic osteogenesis | |
| Bistolfi et al. | Regeneration of articular cartilage: Scaffold used in orthopedic surgery. A short handbook of available products for regenerative joints surgery | |
| Zhang et al. | Preparation of chitosan-sodium alginate/bioactive glass composite cartilage scaffolds with high cell activity and bioactivity | |
| Zhao et al. | Irregular bone defect repair using tissue-engineered periosteum in a rabbit model | |
| CN103505761B (zh) | 蚕丝支架的制备方法、应用以及三相蚕丝韧带移植物、制备方法 | |
| CN105343937A (zh) | 一种复合多孔质海绵材料及其制备方法 | |
| Chen et al. | Injectable bone | |
| BRPI1101765A2 (pt) | procedimento para a obtenÇço de um produto de engenharia tissular orientado À regeneraÇço de tecido àsseo | |
| Nacamuli et al. | Bone induction in craniofacial defects 1 | |
| Zhao et al. | Injectable allogeneic bone mesenchymal stem cells: a potential minimally invasive therapy for atrophic nonunion | |
| CN1158109C (zh) | 生物复合人工骨及其制备工艺 | |
| Mahanani et al. | The proper design of scaffold porosity for bone regeneration (literature review) | |
| ES2362021B1 (es) | Procedimiento para la obtención de un producto de ingeniería tisular orientado a la regeneración de tejido cartilaginoso. | |
| Novosad et al. | In vivo application of prevascularized bone scaffolds: A literature review |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| B03A | Publication of a patent application or of a certificate of addition of invention [chapter 3.1 patent gazette] | ||
| B08F | Application dismissed because of non-payment of annual fees [chapter 8.6 patent gazette] |
Free format text: REFERENTE A 5A ANUIDADE. |
|
| B08K | Patent lapsed as no evidence of payment of the annual fee has been furnished to inpi [chapter 8.11 patent gazette] |
Free format text: EM VIRTUDE DO ARQUIVAMENTO PUBLICADO NA RPI 2364 DE 26-04-2016 E CONSIDERANDO AUSENCIA DE MANIFESTACAO DENTRO DOS PRAZOS LEGAIS, INFORMO QUE CABE SER MANTIDO O ARQUIVAMENTO DO PEDIDO DE PATENTE, CONFORME O DISPOSTO NO ARTIGO 12, DA RESOLUCAO 113/2013. |