CA3176403A1 - Conjugue terpenique de couplage - Google Patents
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Abstract
Description
[1] DOMAINE DE L'INVENTION
d'oxazaphosphorine et de géranyl de formule (I) telle que décrite dans ce document, pouvant s'auto-assembler en nanoparticules.
hydrocarboné qui est au moins un composé hydrocarboné en C18, ayant une structure de squalène ou une structure similaire à celle-ci.
L'enrichissement en liaisons insaturés (e.g. polarisables) permet cet effet. Or, la Demanderesse a découvert de manière surprenante que des terpènes présentant un taux d'insaturation bien plus faible peuvent également être utilisés. Ceci ouvre des perspectives intéressantes en termes de fourniture de produits, qui peuvent en particulier être bio-sourçables.
formé capable de s'auto-assembler spontanément dans l'eau en nano-objets possédant une taille allant de quelques dizaines à
quelques centaines de nanomètres, ce qui permet la protection de la molécule d'intérêt pharmaceutique, vétérinaire, phytosanitaire ou cosmétique d'une biodégradation précoce. La dégradation en milieu biologique de la liaison entre le phytol (ou autre terpène) permet de libérer la molécule d'intérêt.
L'invention permet donc une amélioration de la biodisponibilité et/ou des caractéristiques pharmacocinétiques de la molécule d'intérêt.
X(-Espace ur-Y-Terp ène), (I) dans laquelle ¨ Terpène est tel que défini présentement, c'est-à-dire qu'il peut s'agir d'un terpène linéaire éventuellement ramifié présentant au plus une insaturation C=C;
¨ Y est une liaison ou un fragment moléculaire avec une liaison biodégradable ;
¨ Espaceur est une liaison ou un fragment comprenant au moins un atome de carbone ;
¨ X est un fragment moléculaire comprenant au moins une liaison biodégradable ;
¨ p est compris entre 0,1 et 4, préférentiellement p est un nombre entier égal à 1 ou 2 ; et ¨ le groupe -Espaceur-Y- peut optionnellement être une liaison.
MA (¨ AA)k (II) dans laquelle AA est un agent d'auto-assemblage tel que défini présentement ;
MA est une molécule biologiquement active ; et k est compris entre 0,1 et 6, préférentiellement k est un nombre entier égal à 1 ou 2;
ainsi qu'à ces sels et/ou solvates pharmaceutiquement ou cosmétiquement acceptables.
l'eau, est (2) nano-précipité dans l'eau, puis (3) le solvant S1 au moins est évaporé sous pression réduite.
(al) une étape dans laquelle le conjugué tel que décrit présentement est mis en solution dans un solvant S1 miscible à l'eau, (bl) une étape de nano-précipitation dans l'eau, puis (cl) une étape dans laquelle le solvant S1 au moins est évapore sous pression réduite
(a2) une étape de préparation d'une émulsion huile dans eau, puis (b2) une étape dc réduction dc la taille des gouttelettes d'huile à l'aide d'un homogénéisateur haute pression.
biologique considérée. Un effet biologique peut être identifié par une comparaison entre au moins une entité biologique traitée et au moins une entité biologique identique ou similaire sans traitement.
excessive ni autres complications proportionnées à un rapport bénéfice /
risque raisonnable. Ainsi, l'expression sel pharmaceutiquement acceptable peut se référer à des sels non toxiques, qui peuvent généralement être préparés en mettant en contact le composé de l'invention avec un acide organique ou inorganique approprié. Par exemple, les sels pharmaceutiques peuvent être, sans s'y limiter, les acétates, benzènesulfonates, benzoates, bicarbonates, bisulfates, bitartrates, bromures, butyrates, carbonates, chlorures, citrates, diphosphates, fumarates, iodures, lactates, laurates, malates, maleates, mandelates, mesylates, oléates, oxalates, palmitates, phosphates, propionates, succinates, sulfates, tartrates et composés similaires.
OH
OH OH
OH
H
isophytol phytantriol Exemples de dérivés possibles OH
Br SH
OSO3Na OP(OH)2 OH
SO3Na OH
OH
OH
OH
OH OH
H H
choisi parmi un halogène, -OH, -NH2, -CH3, -C(0)0H, ou encore -C(0)OR où R est indépendamment un alkyle en Cl -C4.
- un ou plusieurs hétéroatomes tels que S, N et 0;
- un ou plusieurs groupes chimiques tels que -NHC(0)-, -0C(0)-, OC(0)0, -NH-, -NHC(0)-NH-, -SS- et -CR=N-NH-C(0)-, -ONH-, -ONR-, -C(=S)-S-, où R est indépendamment H, un groupe aryle, ou un groupe alkyle tel qu'un groupe alkyle en Cl-C6, de préférence un groupe alkyle en Cl-C3 ;
- un ou plusieurs groupements hétéroaryle ou aryle ; et/ou - un ou plusieurs cycles ou hétérocycles aliphatiques, comprenant de préférence de 4 à 6 atomes, et éventuellement substitués par un ou plusieurs substituants choisis parmi les groupes -OH, alkyle C 1 -C4 et alkyloxy Cl -C4.
6 atomes cycliques. Des exemples d'hétérocycles aliphatiques sont, sans s'y limiter, la morpholine, la pipérazinc, la pyrrolidinc, le dioxanc, la pipéridinc, le tétrahydrofuranc et fragments similaires.
- les acides aminés et leurs dérivés ;
- des peptides comprenant de 2 à 10, de préférence de 2 à 5 acides aminés et leurs dérivés ;
- des chaînes hydrocarbonées en Cl-C10 éventuellement liés à un ou plusieurs hétéroatomcs tels que S, N et/ou 0, et/ou à un ou plusieurs groupes chimiques tels que -NHC(0)-, -0C(0)-, -NH-, -NH-C(0)-NH-, -SS- et -CH=N-NH-C(0)- et/ou un ou plusieurs groupes hétéroaryle ou aryle, lesdites chaînes hydrocarbonées étant éventuellement substituées par un ou plusieurs substituants choisis parmi -OH, les groupes alkyle en Cl-C4 et alcoxy en Cl -C4, et - leurs combinaisons.
est indépendamment un alkyle, de préférence un alkyle en Cl-C3, avec optionnellement des groupes polyether, tels que le polyéthylène glycol ou le polypropylène glycol, comprenant de préférence de 2 à
6 monomères d'un côté ou de l'autre desdits fragments.
En outre, dans l'agent d'auto-assemblage de formule (I) telle que décrite ci-dessus, p peut avantageusement être compris entre 0,5 et 3,5, entre 0,7 et 3, ou entre 0,9 et 2,5. De manière préférée, p est un nombre sensiblement entier choisis parmi 1, 2, 3 et 4. Par sensiblement il est ici compris une variation de plus ou moins 0,1.
H
N e ss(0).4.4S,..õx n n sr n n ss' sse:oyi sse,s,yv.
dans lesquels n sont indépendamment des nombres entiers compris entre 0 et 6, préférentiellement compris entre 1 et 4.
comprend au moins une liaison ionique et/ou la liaison biodégradable de Y
est une liaison covalente.
comprennent, ou consistent en, l'un des quelconques fragments suivants :
- des fragments comprenant un ou plusieurs hétéroatomes tels que S, N et 0, et/ou un ou plusieurs groupes chimiques tels que -NH, O, S, NR , ONH-, -NHC(0)-, -0C(0)0-, -OC(0)-, -N H-C (0)-N H-, -OC( S) S
-N(R)C(S)S-, -S S-, -CH=N -N H-C(0)- et leurs combinaisons, où R est indépendamment un alkyle (de préférence un alkyle en Cl-C3) ou un groupe hétéroaryle ou aryle ;
- des chaînes hydrocarbonées en Cl -C10 liés à un ou plusieurs hétéroatomes tels que S, N et/ou 0, et/ou un ou plusieurs groupes chimiques tels que -NHC(0)-, -0C(0)-, -NH-, -NH-C(0)-NH-, -SS-, -CH=N-NH-C(0)-, hétéroaryle ou aryle, lesdites chaînes hydrocarbonées étant éventuellement substituées par un ou plusieurs substituants choisis parmi -OH, les groupes alkyle en C1-C4 et alcoxy en Cl-C4, et - leurs combinaisons.
Dans un mode de réalisation, la présente invention concerne un agent d'auto-assemblage de formule (I) tel que décrit ci-dessus caractérisé en ce que Y et/ou X
comprennent, ou consistent en, l'un des quelconques fragments suivants : -NH, O, S , NR , ONH-, -0C(0)0-, -0C(S)S-, -N(R)C(S)S-, -C(0)0-, -C(0)NH-, -NHC(0)NH-, -N=C-, -S-S-, et leurs combinaisons, où R
est indépendamment un alkyle, de préférence un alkyle en Cl-C3, avec optionnellement des groupes polyéthers, tels que le polyéthylène glycol ou le polypropylène glycol, comprenant dc préférence dc 2 à
6 monomères d'un côté ou de l'autre desdits fragments.
comprennent au moins un fragment ionique, par exemple -NH3, -0O2-, -PO4-, -S03-, -S042- et/ou -NR3I, où R est indépendamment un alkyle en Cl-C4.
comprennent au moins un fragment trivalent, tel que -C(-0-)2, -B(-0-)2, et/ou -0-P0(-0-)2.
et un fragment -Espaceur-Y-Terpène , ou deux fragments -Espaceur-Y-Terpène et un fragment de molécule active MA . De manière préférée, les fragments à 2 liaisons représentent des acétals et des acétals de bore et ces fonctions décrivent une liaison à une même molécule soit un complexe 1 :1 entre le terpène (i.e.
le fragment de formule (I) comprenant Y et/ou X) et MA.
comprennent, ou consistent en, l'un des quelconques fragments suivants :
\-o 0Å0\ 1- 0)1-0\ 55-(N---"W"\' H Fl H 0 0 H 9.
N,ctui,õõ (V si 1/41/4 si eltz:
41t2, R3 etti:C 02 p 04 44.(SO4 OR \ 0 u dans lesquels :
- u sont indépendamment des nombres entiers compris entre 0 et 6, préférentiellement compris entre 0 et 1.
- R est un atome d'hydrogène, un groupement alkyle en Cl-C6, un groupement aromatique en C4-C8 ou un groupe alkyle(C1-C6)-aryl (C4-C8) monocyclique ou polycyclique, par exemple R peut représenter un atome d'hydrogène, un méthyle, éthyle, propyle, butyle, phényle, ou encore un groupe benzyle.
de propriétés d'auto-assemblage de formule (II) comprenant un principe actif MA, comme par exemple un médicament, connu pour avoir une faible biodisponibilité tel que le paclitaxel.
rn éthylpredni s ion e, dexam éth ason e, cortisone, ibuprofène, naprox éne, flurbiprofène, kétoprofène, vitamine C, l'acide carnosique, astaxanthine, vitamine Bi, vitamine B6, vitamine B12, dérivés de r3-carotène, lutéine, allantoïne, vitamine A, acide folique, vancomycine, rifampicine, sels d'ammonium quaternaire et chlorhexidine.
''), le norgestimate, les peroxydes organiques, les rétinoïdes tels que l'isotrétinoïne et trétinoïne, le sulfacétamide sodique, le tazarotene et l'acetretine.
comme groupe MA dans le conjugué de formule (II) tel que décrit ci-dessus comprennent le chlorhydrate de dibucaïnc, la dibucaïne, le chlorhydrate de lidocaïne, la lidocaïne, la benzocaïne, l'acide p-butylaminobenzoïque 2-(di-éthylamino) ester éthylique chlorhydrate, chlorhydrate de procaïne, tétracaïne, chlorhydrate de tétracaïne, chlorhydrate de chloroprocaïne, chlorhydrate d'oxyprocaïne, mépivacaïne, chlorhydrate de cocaïne, chlorhydrate de pipérocaïne, dyclonine et chlorhydrate de dyclonine.
salicylate de monoglycol;
aspirine; acide méfénamique; acide flufénamique; le diclofénac; alclofénac; le diclofénac sodique;
ibuprofene; le kétoprofène; naproxene; pranoprofene; fénoprofene; sulindac;
fenclofénac; clidanac;
flurbiprofène; fentiazac; bufexamac; piroxicam; oxyphénbutazone; pentazocine;
chlorhydrate de tiaramidc; stéroïdes tels que le propionate dc clobétasol, bctamcthasonc dipropionate, halbctasol proprionate, diacétate diflorasone, fluocinonide, halcinonide, amcinonide, désoximétasone, triamcinolone acétonide, mométasone furoate, fluticasone, bétaméthasone dipropionate, triamcinolone acétonide, le propionate de fluticasone, désonide, acétonide de fluocinolone, hydrocortisone vlaerate, prednicarbate , triamcinolone acétonide, fluocinolone acétonide, hydrocortisone et autres connus dans la technique, predonisolone, dexaméthasone, fluocinolone acétonide, hydrocortisone acétate, predonisolone acétate, méthylpredonisolone, dexaméthasone acétate, bétaméthasone, bétaméthasone fluore, fluoraméthasone et peut être l'un des corticostéroïdes de moindre puissance tels que l'hydrocortisone, l'hydrocortisone-21-monoesters (par exemple, l'hydrocortisone-21-acétate, l'hydrocortisone-21-butyrate, l'hydrocortisone-21-propionate, l'hydrocortisone-21 -valérate, etc.
hydrocortisone-17,21 - diesters (par exemple, hydrocortisone-17,21 -diacétate, hydrocortisone-17-acétate-21-butyrate, hydrocortisone- 17,21 -dibutyrate, etc.), alc lomét as one, dexaméthasone, fluméthasone, prechrisolone ou la méthylprednisolone, ou peut être un corticostéroïde de puissance plus élevée tel que le propionate de clobétasol, le benzoate de bétaméthasone, le dipropionate de bétaméthasone, le diacétate de diflorasone, le fluocinonide, le furoate de mométasone, l'acétonide de triamcinolone.
cocaïne; dexivacaïne; diamocaïne; dibucaïne; l'étidocaïne; hexylcaïne;
lévobupivacaïne; lidocaïne;
mépivacaïne; oxéthazaïne; prilocaïne; procaïne; proparacaïne; propoxycaïne;
pyrrocaïne; risocaïne;
rodocaïne; ropivacaïne; tétracaïne; et dérivés, tels que les sels et esters pharmaceutiquement acceptables, y compris la bupivacaïne HC1, la chloroprocaïne HC1, la diamocaïne cyclamate, la dibucaïne HC1, la dyclonine HC1, l'étidocaïne HC1, la lévobupivacaïne HC1, la lidocaïne HC1, la mépivacaïne HC1, la pramoxine HC1, la prilocaïne HC1, la procaïne HC1, la procaïne HC1 propoxycaïne HC1, ropivacaïne HC1 et tétracaïne HC1.
cosmétique, telle qu'un agent antiride, un agent modifiant la coloration de la peau, un agent permettant de contrôler la croissance pileuse de la peau, un agent anti-acneique de surface, un agent de raffermissement de la peau, un agent anti-acnéique, un agent anti-microbien, un agent anti-oxydant, un agent anti-rides, un agent anti-séborrhéique, un agent apaisant, un agent astringent, un agent activateur de la microcirculation, un agent hydratant, un agent favorisant la cicatrisation, un agent modifiant la coloration de la peau, un agent parfumant, un agent permettant de contrôler la croissance pileuse et capillaire, un agent raffermissant, un agent régénérant, ou encore un agent repulpant.
chargées (négatives ou positives respectivement) sans besoin de couplage covalent il est ainsi possible d'ajuster la quantité de molécules de terpènes linéaires chargées (positives ou négatives) selon la formule (1) selon la présente invention par rapport aux molécules actives selon la présente invention pour obtenir les nanoparticules. Le ratio (c'est-à-dire l'indice k dans la formule II) entre molécules de terpènes linéaires chargées (positives ou négatives) selon la formule (I) de la présente invention par rapport aux molécules actives MA peut varier entre 0,1 et 6. De manière préférée, k est compris entre 0,5 et 5,5, entre 0, 7 et 5, entre 1 et 4, entre 1,5 et 3, ou encore entre 2 et 3. De manière préférée, k est un nombre sensiblement entier choisis parmi 1, 2, 3, 4, 5 et 6. Par sensiblement , il est ici compris une variation dc plus ou moins 0,1.
De cette manière, la présente invention permet, d'exploiter la propriété inattendue du terpène linéaire selon la présente invention pour former des nanoparticules avec le principe actif selon la formule (II) tel que défini ci-dessus.
200 nm, par exemple dc 100 nm à 250 nm. Le diamètre hydrodynamique moyen est dc préférence déterminé par diffusion de lumière dynamique à 20 C, plus préférentiellement à 25 C. En d'autres termes, il est réalisé dans le cadre de la présente invention des suspensions colloïdales mono-dispersées de particules ayant un diamètre moyen allant de 10 à 800 nm, notamment de 75 à 500 nm, et plus préférentiellement de 100 nm à 200 nm.
Par exemple, la nano-précipitation est une technique courante qui combine les avantages d'une préparation en une étape, la mise à l'échelle facile et l'utilisation de solvants moins toxiques par rapport à d'autres méthodes de fabrication. Ainsi, la formation dc nanoparticules peut augmenter l'activité
biologique du composé et améliorer la délivrance de ces molécules actives aux cellules. De plus, le composé de l'invention sous forme de nanoparticules peut avoir une stabilité
au stockage améliorée par rapport à sa forme libre. Les composés de l'invention selon les formules (I) et (II) peuvent se présenter sous forme de nanoparticules ou dans des formulations destinées à produire des nanoparticules, c'est-à-dire destinées à être mises en solution aqueuses.
- fournir une solution d'un composé de formule (II) tel que défini ci-dessus dans un solvant organique hydrosoluble, - verser ladite solution organique dans une phase aqueuse qui, sous agitation, forme instantanément les nanoparticules attendues en suspension dans ladite phase aqueuse, et - le cas échéant, l'isolement desdites nanoparticules.
l'étape (a2) dans un homogénéisateur haute pression, par exemple dans des conditions de températures comprises entre 20 et 30 C et à des pressions comprises entre 1500 et 2500 bars, tel que 2000 bars.
- de 0,01 à 90% en poids d'un composé ou d'une nanoparticule de l'invention, et de 10% à 99,99%
en poids d'excipient (s) pharmaceutiquement acceptable (s), le pourcentage étant exprimé par rapport au poids total de la composition. De préférence, la composition pharmaceutique peut comprendre :
- de 0,1% à 50% en poids d'un composé ou d'une nanoparticule de l'invention, et de 50% à 99,9%
en poids d'excipients pharmaceutiquement acceptables.
thérapeutiquement efficace d'un composé de formule (1) ou d'une nanoparticule telle que définie ci-dessus.
prévenir, sa gravité, la voie d'administration, toute co-thérapie impliquée, l'âge du patient, son poids, son état de santé général, ses antécédents médicaux, etc. Typiquement, la quantité du composé à
administrer à un patient peut aller d'environ 0,01 mg/kg à 500 mg/kg de poids corporel, de préférence de 0,1 mg/kg à 300 mg/kg de poids corporel, par exemple de 25 à 300 mg/kg.
6 jours consécutifs. Ce traitement peut être répété toutes les deux ou trois semaines ou tous les uns, deux ou trois mois. Alternativement, le composé ou la nanoparticule de l'invention peut être administré en dose unique une fois par semaine, une fois toutes les deux semaines ou une fois par mois. Le traitement peut être répété une ou plusieurs fois par an.
Comme mentionné ci-dessus, le sujet ou le patient est de préférence un être humain.
selon la présente invention en tant qu'agent cosmétique pour lutter contre le vieillissement intrinsèque de la peau.
selon la présente invention.
selon la présente invention ou d'une composition contenant cc conjugué pour son action cosmétique, telle qu'une action antiride, par exemple avec le rétinol ou l'un de ses dérivés.
Dans certains modes de réalisation particuliers, la composition pharmaceutique peut être un lyophilisat ou une poudre lyophilisée. Ladite poudre peut-être dissoute ou mise en suspension dans un véhicule approprié juste avant d'être administrée au patient, par exemple par voie intraveineuse ou par voie orale.
la taille et la nature des nanoparticules (chai ne hydrocarbonée).
compositions pour inhalation; crèmes, onguents, lotions, gels; gélules, comprimés enrobés de sucre, cachets et sirops incorporant notamment comme véhicule, de l'eau, du phosphate de calcium, des sucres tels que le lactose, le dextrose ou le mannitol, le talc, l'acide stéarique, l'amidon, le bicarbonate de sodium et/ou la gélatine.
l'hydroxypropylcellulose, l'hydroxyéthylcellulose, l'hydroxypropylméthylccllulose; la polyvinylpyrrolidonc, la copovidonc, le polyéthylèneglycol et leurs combinaisons.
Des exemples de délitants englobent, sans s'y limiter, la crospovidone, les sels de croscarmellose tels que la croscannellose sodique, les amidons et leurs dérivés.
Des exemples d'émulsifiants englobent par exemple l'alcool éthylique, l'alcool isopropylique, le carbonate d'éthyle, l'acétate d'éthyle, l'alcool benzylique, le benzoate de benzyle, le propylèneglycol, le 1,3-butylène glycol, le diméthylformamide, les huiles, le polyéthylèneglycol et les esters d'acides gras de sorbitan ou leurs mélanges.
et similaires.
actif de cette invention, des excipients tels que des graisses animales et végétales, des huiles, des cires, des paraffines, de l'amidon, du tragacanthe, des dérivés de cellulose, des polyéthylèneglycols, des silicones, des bentonites, des acides siliciques, le talc et l'oxyde de zinc, ou leurs mélanges.
H
sous agitation pendant 7h.
décanter et la phase organique est séparée. La phase aqueuse est extraite par de l'Et0Ac (3 x 50 mL).
Les extraits organiques sont rassemblés, lavés par HCI aq. (0.1 N), séchés sur MgSO4, filtrés et concentrés sous pression réduite.
50:50) pour fournir lc composé attendu (12.84 g, 32.42 mmol, 96%) sous forme d'une huile jaune.
S)L
ors, 0H
z z
par filtration et séché
sous pression réduite (T<30 C) pour donner un semi solide jaune (0.627 g). Le résidu obtenu est ensuite purifié par chromatographie sur gel de silice (Et0Ac/CyH = 20:80 +1% AcOH) pour donner le composé
attendu sous forme d'un solide jaune (338 mg, 0.734 mmol, 79 %).
dans une ampoule à
décanter et la phase organique est séparée. La phase aqueuse est extraite par de l'Et0Ac (3 x 30 mL).
Les extraits organiques sont rassemblés, lavés par NaC1 aq. saturé (2 x 30 mL), séchés sur MgSO4, filtrés et concentrés sous pression réduite.
I
N-
7.6 Hz, 211), 1.76 (d, J= 1.2 Hz, 311), 1.57 ¨ 1.00 (m, 1911), 0.88 ¨ 0.80 (m, 1211) ppm.
Me0 HO
Me
= 7.2 Hz, 2H), 2.00 (t, J= 7.5 Hz, 2H), 1.69 (s, 3H), 1.58 ¨ 0.98 (m, 19H), 0.89 ¨ 0.82 (m, 12H) ppm.
z
o z z Cl 0 H
CI lel
7.5 Hz, 2H), 7.03 (d, J= 7.5 Hz, 1H), 6.93 (t, J= 7.5 Hz, 1H), 6.80 (t, J =
7.5 Hz, 1H), 5.48 (t, J = 6.2 Hz, 1H), 4.80 (s, 1H), 4.73 (d, J= 6.2 Hz, 2H), 3.61 (s, 2H), 2.08 (t, J= 5.5 Hz, 2H), 1.66 (t, J= 2.9 Hz, 4H), 1.65 ¨ 1.60 (m, 2H), 1.54 (dq, J = 14.6, 7.2 Hz, 1H), 1.43 ¨ 1.15 (m, 16H), 1.01 (d, J = 6.4 Hz, 12H) ppm.
EDC=FIC1 (1.1 equiv) et le milieu réactionnel est agité pendant 10 min.
L'alcool correspondant (1.0 equiv) suivi par la DMAP (0.1 equiv) sont ajoutés et le milieu réactionnel est agité à 21 C pendant 12h.
>r)r sõ01,),CI 0
(10:90) pour fournir le compose attendu (260 mg, 0.488 mmol, 97%, isolé en mélange 80:20 d'isomères cis et trans) sous forme d'une huile incolore.
0 M e 0 OHC
1.01 (m, 1911), 0.84 (dd, J= 9.3, 3.7 H7, 12H) ppm.
o)çnr0
= 15.1 Hz, 1H), 6.18 (d, J= 16.2 Hz, 1H), 6.13 (d, J= 14.5 Hz, 1H), 6.10 (d, J= 16.5 Hz, 1H), 5.60 (t, J= 7.1 Hz, 1H), 5.32 (t, J= 7.0 Hz, 1H), 4.75 (d, J= 7.2 Hz, 2H), 4.61 (d, J= 7.1 Hz, 2H), 2.64 (s, 4H), 2.05 ¨ 1.98 (m, 4H), 1.95 (s, 3H), 1.88 (s, 314), 1.71 (s, 3H), 1.68 (s, 3H), 1.63 ¨ 1.05 (m, 23H), 1.02 (s, 6H), 0.85 (t, J= 6.3 H7, 1211).
\
11.õS .--, FI
S H
8.1 Hz, 2H), 4.44 - 4.22 (m, 2H), 3.83 (t, J = 5.9 Hz, 2H), 3.73 (q, J = 7.2 Hz, 1H), 2.88 (t, J = 6.7 Hz, 2H), 2.83 (t, J = 5.9 Hz, 2H), 2.47 (d, J = 7.2 Hz, 2H), 1.97 - 1.75 (m, 1H), 1.51 (d, J = 7.2 Hz, 3H), 0.92 (d, J = 6.6 Hz, 6H) ppm.
Cl SsOH
H
Cl le
7.5 Hz, 1H), 7.16 (d, J
7.5 Hz, 2H), 7.01 (d, J= 7.5 Hz, 1H), 6.90 (t, J= 7.5 Hz, 1H), 6.84 (q, J= 7.4 Hz, 1H), 4.47 (s, 1H), 4.44 (1, J= 5.0 Hz, 2H), 3.79 (t, J= 7.7 Hz, 2H), 3.42 (s, 2H), 2.81 (t, J=
5.0 Hz, 2H), 2.74 (t, J= 7.7 Hz, 2H) ppm.
par HClaq. (1 N, 10 mL). puis extrait par CH2C12 (3 x 20 mL). Les phases organiques sont rassemblées, lavées par NaCl aq. saturé (2 x 20 mL) puis séchées sur Na2SO4, filtrées et concentrées sous pression réduite.
I
`=
ô
11 j
Produits Structures 1 Oîr,..)t,OH
z z 2 Ors,S )-LOH
Me0 HO
Me 0 z z H
Cl lel OMe OHC
\
r .0, 0 ciOH
H
le CI le . 0 13 f H
\
CI
s (3, -,s - y I
14 F.1 rj-Ir
(1) Dissolution du conjugué phytolisé dans un solvant organique miscible à
l'eau (2) Nano-précipitation dans l'eau (3) Évaporation du solvant sous pression réduite.
10 [265] Pour l'ensemble des conjugués les nanoobjets préparés ont été
caractérisés et possèdent généralement les caractéristiques suivantes :
[266] Taille comprise constatée entre 150 et 170 nm [267] Indice de polydispersité (PDI) compris entre 0.070 et 0.270 [268] Potentiel Zêta compris entre -19.0 et -35 mV
[269] La stabilité de ces suspensions a été étudiée au cours du temps et montre que les suspensions sont stables. Dans certains cas limites, les nano-objets tendent à s'agréger et conduisent à une précipitation des conjugués dans le milieu. Néanmoins il a été montré que la stabilité de ces suspensions de conjugués peut être améliorée par l'ajout de surfactants comme par exemple le Pluronic F68. Ainsi certains conjugués ayant tendance à s'agréger ont pu conduire à des suspensions stables jusqu'à 10 jours par l'addition de 0.5 à 5% (m/m) de Pluronic F68. D'autres surfactants comme le coco amidopropyl bétaïnc, le sodium laurcth sulfate, le palmitate dc sorbitan, le lauryl glucoside, les alcools gras, les acides et leur mélange, les phospholipides, les phosphatidyles choline, les polyglycéryls, les sucroesters ont également été utilisés et sont actuellement à l'étude pour leur effet de stabilisation sur les suspensions de conjugués [270] Exemple 3 : Etude physico-chimique [271] Nano précipitation :
[272] Une solution de conjugué dans Et0H (2 mg pour 0,5 mL) est ajoutée goutte à goutte à de l'eau MiliQ (1 mL) vivement agitée. La formation des nanoparticules est observée en ce que la solution se trouble partiellement. La suspension ainsi obtenue est transférée clans un ballon et l'Et0H est évaporé à
l'évaporateur rotatif (200 mbar pendant 5 min puis 130 mbar pendant 1 min à 40 C et à 50 tours par minute).
[273] La suspension résiduelle est transférée dans un vial et conservée à 23 C.
[274] Les échantillons sont préparés de la manière suivante : 40 1_, de la suspension résiduelle sont dissous dans 500 iaL d'1170 MiliQ.
[275] 1. Stabilité des supensions nanoparticulaires [276] La stabilité des suspensions a été mesurée au court du temps et les résultats sont résumés dans les tableaux 2 et 3 et dans le graphique de la figure 1 et dans le graphique de la figure 2.
[277] Tableau 2 : Stabilité des suspensions nanoparticulaires au cours du temps (Conjugué 3 et 4) [278] [Tableau 2]
d (nm) Temps (h) Conjugué 3 Conjugué 4 1 132,9 270,0 24 154,5 369,7 168 156,6 502,4 196 164,1 436,8 [279] Tableau 3 : Stabilité des suspensions nanoparticulaires au cours du temps (Conjugué 7, 8 et 9 et 4).
[280] [Tableau 3]
d (nm) Temps (h) Conjugué 7 Conjugué 8 Conjugué
1 256,2 208,9 167,4 24 269,7 227,8 165,2 168 271,2 214,0 151,8 196 269,6 233,3 131,3 [281] 2. Influence du procédé de phytolisation sur la stabilité du rétinol :
[282] La vitamine A (rétinol) est connue pour être sensible à l'oxygène et aux rayonnements UV. Le procédé de phytolisation permet une stabilisation du rétinol. Cette protection a été démontré par suivi HPLC d'une suspension nano particulaire du conjugué 9 à 20 C en comparaison avec une solution de rétinol dans les mêmes conditions.
[283] Les solutions de rétinol et de conjugué 9 sous forme nanoparticulaire (6 mg/L dans un mélange WO/iPrOH 1 :1) ont été stockées à 21 C à la lumière ambiante et analysées par HPLC au cours du temps (24 et 48h).
[284] Tableau 4 : Condition HPLC.
[285] [Tableau 4]
Colonne Interchim Vintage series KR C18-5micomètres -150 x 4,6 mm T Colonne 25 C
Elution iPrOH/H20 85:15 isocratique Débit ImL/min Volume injection 20 microlitres Tr Rétinol = 3,41 min Tr conjugué 9= 11,4 min [286] La variation de l'aire des composés au cours du temps est représentée au cours du temps (moyenne de deux mesures) ¨ cf. Tableau 5 et graphique de la figure 3.
[287] Tableau 5 : Variation des aires en fonction du temps.
[288] [Tableau 5]
tO t24h t48h Conjugué9 Rétinol Conjugué9 Rétinol Conjugué9 Rétinol A(mU) A(mU) A(mU) A(mU) A(mU) A(mU) 4,1604 0,0502 3,4609 0,0354 2,9536 0,0218 4,0495 0,0694 3,3380 0,0360 2,9385 0,0273 Moyenne 4,1050 0,0598 3,3995 0,0357 2,9461 0,0246 Variation 0,0000 0,0000 0,1719 0,4030 0,2823 0,5895 [289] CCL : le rétinol se dégrade deux fois plus rapidement lorsqu'il est sous forme libre.
[290] 3. Inclusion des conjugués dans des formulations cosmétiques :
[291] Préparation d'une solution de conjugué 9 à 1%
[292] 800 mg de conjugué 9 sont dissous dans Et0H (40 mL) puis versé goutte à
goutte dans F120 (80 mL) sous vive agitation (Addition 1 mL/min). La suspension est alors concentrée au rotavapor (T = 40 C, 50 rpm sous 200 puis 130 mbar). Le volume est ensuite ajusté à 80 mL par addition d'H20.
[293] Crème visage :
[294] La crème visage a été préparée comme suif:
[295] Mode opératoire : Homogénéiser une phase A (cf tableau 6) puis introduire une phase B (cf tableau 6) et homogénéiser 10 minutes sous vive agitation (1500 tours/min).
Réaliser l'émulsion en versant une phase C (cf tableau 6) dans le mélange puis homogénéiser sous vive agitation pendant 10 min. Enfin, introduire une phase D (cf tableau 6).
[296] Tableau 7 : Composition d'une crème visage.
[297] [Tableau 7]
Phase Ingrédients (INCI) A Solution de Conjugue 9 à 1% 75,22 Glycerin 3 Sodium Polyacrylate 0,8 Coco-Caprylate/Caprate 6,66 Caprylic/C apric Triglyceride 6,66 Olus Oil 6,66 D Phenoxyethanol (and) Ethylhexylglycerin 1 [298] Une crème lisse et jaune pâle est ainsi obtenue.
[299] Gel aqueux :
[300] L'inclusion du conjugué 9 dans un gel cosmétique a été réalisée comme suit :
[301] Mode opératoire : Homogénéiser une phase A (cf tableau 7) sous vive agitation (1500 tours/min) durant 20 minutes. Ensuite, introduire une phase B (cf tableau 7) et homogénéiser jusqu'à parfaite dissolution des poudres. Réaliser le premix de la phase C (cf tableau 7) puis l'introduire dans le mélange et homogénéiser sous vive agitation pendant 15 minutes. Introduire une phase D
(cf tableau 7) puis homogénéiser jusqu'à parfaite dissolution des poudres. Enfin, ajuster à pH à
5,0-5,5 avec la phase E.
[302] Tableau 6 : Composition d'un gel aqueux.
[303] [Tableau 6]
Phase Ingrédients (INCI) A Solution de Conjugué 9 à 1% 80,2 Triethyl Citrate 5 Erythritol 5 Xanthan Gum 1 Propylene Glycol 3 D Potassium Lactate 5 Aqua (and) Citric Acid QSP
[304] Une gel jaune brillant est ainsi obtenu.
[305] Exemple 4 : Application Biologique [306] 1. Objectif [307] L'objectif de cette étude est d'évaluer ex vivo, sur des expiants de peau d'origine humaine, l'effet promoteur du passage transdermique d'un système innovant de vectorisation cutanée selon la présente invention. Le traceur utilisé pour comparer les 2 formulations est le rétinol.
[308] Chaque formulation est appliquée sur 3 expiants provenant d'un unique donneur. A la fin de la période de contact (24h), la concentration totale de rétinol est mesurée dans différentes couches cutanées (Couche Cornée, Epiderme et Derme) et une cinétique de diffusion sur 4 points est réalisée.
[309] Dans l'optique d'étudier l'effet promoteur du concept dc phytolisation, deux formules ont été
comparées :
= Fi: Rétirtol ((0,9% équivalent rétinol) vectorisé avec le phytol sous forme nanoparticulaire = F2 : Rétinol (0,9% équivalent rétinol) sous forme libre avec un agent propénétrant (transcutol à
5%) inclus dans la forme galénique [310] NB: L'utilisation du trancutol est réglementée et limitée à 2,6% pour des applications corporelles non rincées.
[311] 2. Matériels et méthodes [312] 2.1 Produits testés et molécule dosée [313] 2.1.1. Inclusion du rétinol dans des formulations cosmétiques :
[314] Préparation d'une solution de conjugué 9 à 1%
[315] 800 mg de conjugué 9 sont dissous dans Et0H (40 mL) puis versé goutte à
goutte dans H20 (80 mL) sous vive agitation (Addition 1 mL/min). La suspension est alors concentrée au rotavapor (T = 40 C, 50 rpm sous 200 puis 130 mbar). Le volume est ensuite ajusté à 80 mL par addition d'H20.
[316] Formule Fi :
[317] Préparation d'une solution de conjugué 9 à 3%
[318] 2,1 g de conjugué 9 sont dissous dans Et0H (35 mL) puis versé goutte à
goutte dans H20 (70 mL) sous vive agitation (Addition 1 mL/min). La suspension est alors concentrée au rotavapor (T = 40 C, 50 rpm sous 200 puis 130 mbar). Lc volume cst ensuite ajusté à 70 mL par addition d'H20.
[319] La formule Fl a été préparée comme ci-dessous.
[320] Tableau 8 : formule Fi.
[321] [Tableau 7]
Phase Ingrédients (INCI) A Solution de Conjugué 9 à 3% 70 Eau 7,22 Glycerin 3 Sodium Polyacrylate 0,8 Coco-Caprylate/Caprate 6,66 Caprylic/Capric Triglyceride 6,66 Olus Oil 4,66 Phenoxyethanol (et) Ethylhexylglycerin 1 [322] Mode opératoire : Homogénéiser la phase A puis introduire la phase B et homogénéiser 10 minutes sous vive agitation (1500 tours/min). Réaliser l'émulsion en versant la phase C dans le mélange puis homogénéiser sous vive agitation pendant 10 min. Enfin, introduire la phase D.
[323] Une crème lisse et jaune pâle est ainsi obtenue.
[324] Formule F2:
[325] Préparation d'une solution de rétinol à 1,29 % contenant 7,14% de 2-(2-éthoxyéthoxy) éthanol (Transeutol) [326] 0,9 g rétinol sont dissous dans Et0H (35 mL) puis versé goutte à goutte dans une solution aqueuse de 2-(2-éthoxyéthoxy) éthanol (Transcutol) (5 g dans 70 mL) sous vive agitation (Addition 1 mL/min). La suspension est alors concentrée au rotavapor (T = 40 C, 50 rpm sous 200 puis 130 mbar).
Le volume est ensuite ajusté à 70 mL par addition d'H20.
[327] La formule F2 a été préparée comme ci-dessous.
[328] Tableau 9 : formule F2.
[329] [Tableau 8]
Phase Ingrédients (INCI) A Solution H20/Transcultol de rétinol à 1,28% 70 Eau 7,22 Glycerin 3 Sodium Polyacrylate 0,8 Coco-Caprylate/Caprate 6,66 Caprylic/Capric Triglyceride 6,66 Olus Oil 4,66 D Phenoxyethanol (et) Ethylhexylglycerin 1 [330] Mode opératoire : Homogénéiser la phase A puis introduire la phase B et homogénéiser 10 minutes sous vive agitation (1500 tours/min). Réaliser l'émulsion en versant la phase C dans le mélange puis homogénéiser sous vive agitation pendant 10 min. Enfin, introduire la phase D.
[331] Une crème lisse et jaune pâle est ainsi obtenue.
[332] 2.2. Matériels et équipement [333] 2.2.1. Matériel biologique [334] Les échantillons de peau humaine sont obtenus auprès d'un service de chirurgie plastique d'une clinique de Tours (France), après une opération d' abdominoplastic.
Consécutivement à l'opération, la peau est placée dans une enceinte dont la température est de 4 C puis transférée dans notre établissement.
[335] Dès réception, l'hypoderme est retiré délicatement et l'échantillon de peau est enregistré avec un numéro d'identification crypté puis stocké à -20 C. Selon les lignes directrices de l'OCDE (Essai N 428), la peau peut être conservée à cette température pendant une période maximale d'un an sans modification de sa perméabilité.
[336] Pour cette étude, 10 expiants cutanés provenant d'un unique donneur sont utilisés.
[337] 2.3. Déroulement de l'étude [338] 2.3.1. Caractérisation des expiants [339] Un échantillon de peau humaine est divisé en 10 expiants cutanées de dimension 3x3 cm. Les expiants sont décongelés à température ambiante pendant 10 minutes puis nettoyés avec du PBS.
[340] L'intégrité de la barrière cutanée de chaque expiant est contrôlée en mesurant la perte insensible en eau (PIE). Les valeurs de PIE mesurées pour les 10 expiants cutanés étant comprises entre 5.2 et 7.6 g.m-2.h-1, les expiants cutanés sont considérés appropriés pour l'expérimentation. L'épaisseur de chaque expiant est mesurée à cinq endroits différents.
[341] Les valeurs moyennes obtenues par formule pour ces deux paramètres (PIE
et épaisseur) sont présentées dans le Tableau 10.
[342] Tableau 10 : Epaisseur et PIE moyennes des expiants de peau par condition (n=3 ;*n=1 ;
moyenne sem).
[343] [Tableau 9]
Condition Epaisseur (micromètres) PIE (g.m-2.h1) Fl 964 67 6.6 1.1 F2 856 62 6.3 1.1 Blanc e 881 29 5.6 1.
[344] 2.3.2. Test de passage transdermique [345] Tous les expiants de peau sont placés dans des cellules de diffusion de type Franz avec la couche cornée placée face au compartiment donneur. Des pinces sont utilisées pour maintenir ensemble les deux compartiments et ainsi assurer l'étanchéité.
[346] Les compartiments récepteurs sont remplis avec du liquide récepteur. Un soin particulier est pris afin d'éviter la formation de bulles d'air sous les expiants cutanés.
[347] Pendant 1 heure, les cellules de diffusion sont posées sur un plateau magnétique pour maintenir le liquide récepteur en agitation, et l'ensemble est placé dans une étuve permettant d'obtenir une température à la surface de la peau de 32 C et un taux d'humidité de 50%. La vitesse d'agitation du liquide récepteur pendant la durée dc l'expérience est fixée à 400 tr/min.
[348] Au bout d'une heure, l'équilibre thermique de chaque cellule de diffusion étant atteint, les formulations sont appliquées délicatement à la surface des expiants de peau en suivant la répartition décrite dans le Tableau 11.
[349] Les formulations se présentent sous forme d'émulsion, les applications sont donc réalisées avec une pipette à déplacement positif.
[350] La quantité déposée sur la surface de la peau est de 500 mg.
[351] Les cellules de diffusion sont replacées en étuve pendant 24 heures.
[352] Tableau 11 : Répartition des expiants par condition.
[353] [Tableau 10]
Condition Expiants Blanc # T
Formule 1 Formule 2 # 7 ; # 8 ; # 9 [354] Au cours des 24 heures de diffusion, 3 points de cinétique sont réalisés au temps suivants: lh, 4h et 8 heures. Pour cela, un volume de 300 tL de liquide récepteur est prélevé dans chaque cellule puis remplacé par du liquide récepteur neuf . Chaque prélèvement est conservé
congelé.
[355] A l'issue du temps de diffusion (24h), la procédure suivante est réalisée pour toutes les cellules de diffusion :
[356] Nettoyage de la surface de la peau :
= Absorption de la fraction non absorbée = Nettoyage dc la surface dc la peau avec 2 cotons tiges imprégnés d'eau micellaire = Rinçage de la surface de la peau avec 2 cotons tiges imprégnés d'eau déminéralisée = Séchage de la surface de la peau avec 1 coton tige = Application d'un adhésif D-Squam pour retirer le résidu de produit restant sur la peau [357] Récupération du liquide récepteur :
= La totalité du liquide récepteur est placé dans un tube Falcon de 15 mL
puis congelé.
[358] Récupération de la couche cornée :
= Application successive de 2 adhésifs D-Squam sur la zone traitée. Les deux adhésifs sont placés ensemble dans un tube Falcon de 15 mL puis congelés, chaque adhésif étant replié sur lui-même.
[359] Récupération de l'épiderme et du derme :
= L'épiderme et le derme sont séparés par un léger grattage de la surface ou si nécessaire par chauffage à 65 C pendant 15 secondes.
= L'épiderme et le dcrmc sont placés individuellement dans un tube Falcon dc 15 mL, pesés et enfin congelés.
[360] 2.4. Analyse et Dosage des prélèvements [361] L'ensemble des prélèvements a été récupéré.
[362] L'extraction et le dosage analytique du rétinol dans les échantillons a été réalisé selon la procédure suivante :
[363] 2.4.1. Méthode de dosage du rétinol : HPLC.
[364] Procédure d'analyse HPLC:
= Pour les liquides récepteurs : injection directe = Pour les SC, Ep, Dm : extraction par éthanol (sous agitation) avant injection.
o Temps d'extraction testés = 12h et 24h o Volume d'éthanol = 10 mL pour SC, 1 mL pour Ep et 2 mL pour Dm o Les triplicatas de SC, Ep et Dm sont poolés avant extraction o Après extraction les tubes sont centrifugés à 3000g pendant 5 minutes o 300 lii sont prélevés pour analyses HPLC
[365] Conditions d'analyse HPCL :
= Colonne : (C18 Vintage series KR C18 - S tm - 150 x 4,6 mm) = Phase mobile : lsopropanol - eau (85/15) = Température de la colonne : 25 C
= Volume d'injection : 20 ilL
= Débit de la pompe : 1 mL/min = Détection : UV - 325 nm = Temps de rétention du rétinol: 11.8 min = Temps total par injection : 15 min [366] 3. Passage transdermique du Rétinol à partir des 2 formulations [367] Les résultats de dosage du rétinol dans les différentes couches cutanées et dans les liquides récepteurs sont présentés dans les chapitres suivants.
[368] 3.1. Distribution du rétinol dans les couches cutanées [369] Les quantités moyennes de rétinol obtenues dans les couches cutanées sont présentées dans le Tableau 12 et le Tableau 13.
[370] Tableau 12 : Quantité moyenne de rétinol ( g/cm2) dans les couches cutanées (12h d'extraction) [371] [Tableau 11]
Fi F3 Témoin Stratum 10.76 0.25 9.34 0.08 0.22 Co rneum Epiderme 12.13 0.58 6.28 0.10 0.22 0.01 Derme 0.24 0.06 0.22 0.04 0.20 0.04 [372] Tableau 13 : Quantité moyenne de rétinol (lig/cm') dans les couches cutanées (24h d'extraction).
[373] [Tableau 12]
Fi F3 Témoin Stratum 10.67 0.27 9.27 0.08 0.24 0.03 Co rneum Epiderme 12.46 0.29 7.26 0.22 0.21 0.03 Derme 0.21 0.05 0.19 0.02 0.17 0.05 [374] Deux durées d'extraction du rétinol à partir des couches cutanées ont été appliquées : 12h et 24h. Les résultats du test de passage transdermique du rétinol dans les couches cutanées ne montrent pas de différence entre les valeurs obtenues après 12h d'extraction (Tableau 12) et celles obtenues après 24h d'extraction (Tableau 13). Cc résultat valide la méthode d'extraction.
[375] Dans la suite du document, seuls les résultats obtenus avec 12h d'extraction sont retenus et commentés.
[376] Les résultats de dosage du rétinol pour la condition témoin montrent des valeurs très faibles (inférieure à 0.30 Kg/cm') dans les 3 couches. Ce résultat confirme que l'expiant de peau humaine utilisé
dans cette étude ne contient pas de rétinol endogène.
[377] Pour les trois formulations, la quantité de rétinol mesurée dans le derme est du même ordre que celle du témoin (-0.2 ug/cm2). Les trois formules ne semblent pas permettre la diffusion du rétinol jusque dans le derme.
[378] Les résultats de diffusion transdermique du rétinol les plus faibles sont obtenus avec la formulation F2. En effet, avec cette formulation, les valeurs obtenues dans la couche cornée et dans l'épiderme sont inférieures à 10 ug/cm2.
[379] Les résultats de diffusion transdermique du rétinol obtenus avec Fl sont globalement supérieurs à ceux obtenus avec la formulation F2. La quantité de rétinol dans la couche cornée est très légèrement supérieure avec 10.76 g/cm' pour Fl contre 9.34 ttg/cm2 pour F2. Celle-ci est 2 fois supérieure dans l'épiderme avec 12.13 itg/cm2 pour F1 contre 6.28 ug/cm2 pour F2 montrant l'efficacité de cette formulation pour transporter le rétinol dans cette couche cutanée.
[380] 3.2. Résultat de diffusion du rétinol dans les liquides récepteurs [381] Aucune détection de la molécule d'intérêt n'a été observée dans les liquides récepteurs. Ce résultat est cohérent avec le précédent résultat pour lequel le rétinol était en très faible quantité dans le derme quelle que soit la condition.
[382] 4. Conclusions [383] En conclusion, cette étude met en évidence les éléments suivants :
> L'absorption transdermique du rétinol varie en fonction de la formulation appliquée sur la peau.
> Quelle que soit la formulation utilisée, le rétinol n'a pas été retrouvé
dans le liquide récepteur et dans le derme.
> Parmi les 2 formulations étudiées, la formulation F2 est celle qui est la moins efficace pour permettre une diffusion transdermique du rétinol.
[384] La formulation Fi présente les résultats les plus intéressants en termes dc quantité dc rétinol transporté dans la couche cornée et l'épiderme quelle que soit la condition.
[385] Exemple 5 : Exemples complémentaires [386] Les PhytoVec sont des émulsions préparées à partir de composés ayant des propriétés d'auto-assemblage. Dans le cas du rétinol ces émulsions, nommées PhytoVec-rétinol, sont réalisées à partir du phytolate de rétinyle de la manière suivante :
[387] 5.1. Mode opératoire :
[388] (A) Préparation d'une émulsion huile dans eau à l'aide des étapes suivantes :
- Préparation de la phase aqueuse composée d'eau déminéralisée et pouvant inclure un tensio-actif et du propane-diol - Préparation de la phase huileuse composée d'un solubilisant, phytolate de rétinyle et BHT
(butyle hydroxytoluène) - Introduction de la phase huileuse dans la phase aqueuse sous agitation de type rotor/stator à une température comprise entre 40 et 60 C et une vitesse comprise entre 1000 et 3000 tpm pendant 5 à 10 minutes [389] (B) Réduction de la taille des gouttelettes d'huile à l'aide des étapes suivantes :
- Introduction de l'émulsion obtenue en (A) dans un homogénéisateur haute pression - Passage de l'émulsion au moins 2 fois dans l'homogénéisateur haute pression dans des conditions de températures comprises entre 20 et 30 C et à des pressions comprises entre 1500 et 2500 bars.
[390] 5.2. Comparaison aux liposomes [391] L'apport de la technologie PhytoVec sur la stabilisation des actifs par rapport aux liposomes a ensuite été étudiée. Le rétinol étant un composé sensible (UV, chaleur, oxygène, etc..) il a donc été choisi comme base de comparaison pour cette étude. Ainsi l'évolution de la teneur en rétinol entre des émulsions de type PhytoVec rétinol et des solutions liposomales de rétinol a été mesurée au cours du temps afin de quantifier l'effet de notre technologie PhytoVec par rapport aux liposomes.
[392] 5.2.1. Préparation d'un PhytoVec rétinol équivalent à 10% de rétinol [393] Deux émulsions de type PhytoVec rétinol ont été préparées selon le mode opératoire décrit précédemment et selon la composition suivante :
[394] [Tableau 13]
Composés VR 20ER 014 B VR 20ER 026 A
_ _ _ _ Aqua 69,60% 34,35%
Lécithine 0,25%
hydrogénée Propanediol 35,00%
Laurate de 6,65% 6,65%
Polyglycéryle-10 Phytolate de rétinyl 23,25% 23,25%
BHT 0,50% 0,50%
TOTAL 100% 100%
% en masse [395] (A) Préparation d'une émulsion huile dans eau à l'aide des étapes suivantes :
- Préparation de la phase aqueuse composée d'eau déminéralisée, lécithine hydrogénée et pouvant inclure du propane-diol - Préparation de la phase huileuse composée de laurate de polyglyceryl-10, phytolate de rétinyle et BHT
- Introduction de la phase huileuse dans la phase aqueuse sous agitation de type rotor/stator à une température comprise entre 40 et 60 C et une vitesse comprise entre 1000 et 3000 tpm pendant 5 à 10 minutes [396] (B) Réduction de la taille des gouttelettes d'huile à l'aide des étapes suivantes :
- Introduction dc l'émulsion obtenue en (A) dans un homogénéisa-tour haute pression - Passage de l'émulsion au moins 2 fois dans l'homogénéisateur haute pression dans des conditions de températures comprises entre 20 et 30 C et à des pressions comprises entre 1500 et 2500 bars.
[397] Les PhytoVec-Rétinol équivalents à 10% de rétinol ont ainsi été obtenu sous différents modes de réalisation (Formules VR_20ER_014_B et VR_20ER_026_A).
[398] Ces formules ont ensuite été comparées lors d'une étude de stabilité à
une solution de liposomes contenant du rétinol préparé par la méthode d'hydratation de film.
[399] 5.2.2. Préparation de liposomes de rétinol [400] 1 g de phospholipides (Lipoïd P75-3) est dessous dans un mélange CHC13/Me0H 2:1 (50 mL), cette solution est homogénéisée par agitation magnétique à température ambiante pendant 15 min. Cette solution est alors versée dans un ballon de 250 mL contenant une solution de rétinol (15 mg) et de BHT
(0.5% poids) dans CHC13 (50 mL). Le ballon est ensuite placé au rotavapor et les solvants sont éliminés sous pression réduite (150 tpm, 500 mbar) pendant 10 min puis (150 tpm, 5 mbar) pendant lh. Durant cette opération le ballon est maintenu à une température de 4 C et à
l'obscurité.
[401] Au résidu ainsi obtenu est ajouté du PBS (100 mL, 10 mM) et le mélange est agité au rotavapor (150 tpm) pendant 3h. Durant cette opération le ballon est maintenu à une température de 4 C et à
l'obscurité.
[402] L'analyse HPLC de la solution de liposome indique une teneur en rétinol de 132mg/L.
[403] Des échantillons, les formules VR 20ER 014 B, VR 20ER 026 A et de solution de liposomes sont ensuite divisée en quatre échantillons distincts 20 mL) et stockés respectivement à :
= A l'obscurité et température ambiante (20 C ¨ OBS) = A l'obscurité et température ambiante (20 C ¨ LUM) = A l'obscurité au réfrigérateur (4 C) = A l'obscurité à l'étuve (45 C) [404] La teneur en rétinol de ces trois formules dans les différentes conditions de température est ensuite analysée par HPLC au cours du temps.
[405] 5.2.3. Dosage du rétinyl phytyl succinate et du rétinol par HPLC
[406] 5.2.3.1 Méthode HPLC
[407] Les teneurs en rétinyl phytyl succinate et rétinol ont été mesurées par analyse HPLC (colonne RESTEK Ultra AQ C18 3 Jim, 150 x 4.6 mm; température de colonne = 40 C;
éluant : iPrOH/H20 85:15 isocratique; débit : 1 mL/min; injection : 20 L, détection UV à 325 nm) par rapport à une courbe de calibration. (Moyenne des valeurs sur trois échantillons indépendants).
[408] 5.2.3.2 Préparation des échantillon HPLC de PhytoVec rétinol [409] Prélever 100 pt d'échantillon de PhytoVec rétinol à l'aide d'une micropipette et verser les 100 iaL dans un eppendorf Ajouter 900 L d'isopropanol qualité HPLC à l'aide d'une micropipettc. Bien agiter avec le Vortex.
[410] Prélever 100 pi de la solution fille 1 préparée à l'aide d'une micropipette et verser les 100 L
dans un eppendorf. Ajouter 900 pi- d'isopropanol qualité HPLC à l'aide d'une micropipette. Bien agiter avec le Vortex. Répéter cette opération encore deux fois consécutives de manière à appliquer une dilution de 104.
[411] Prélever la solution à l'aide d'une seringue de 1 mL la solution fille 4 de PhytoVec rétinol. A
l'aide d'un filtre de 0.22 m en PTFE, filtrer la solution directement dans une fiole en verre brun.
[412] 5.2.3.3 Préparation des échantillons HPLC de liposome de rétinol [413] Prélever 100 tiL d'échantillon de liposomes-rétinol à l'aide d'une micropipette et verser les 100 pi dans un eppcndorf. Ajouter 900 ut d'isopropanol qualité 1-1PLC à l'aide d'une micropipettc. Bien agiter avec le Vortex.
[414] Prélever 100 !LEL de la solution fille ainsi préparée à l'aide d'une micropipette et verser les 100 pi dans un eppendorf. Ajouter 900 j.iL d'isopropanol qualité HPLC à l'aide d'une micropipette. Bien agiter avec le Vortex. Prélever la solution à l'aide d'une seringue de 1 mL la solution de liposomes-rétinol à 1 mg/L. A l'aide d'un filtre de 0.22 Jim en PTFE, filtrer la solution directement dans une fiole en verre brun.
[415] 5.2.4. Résultats obtenus [416] L'évolution de la teneur en actif ( phytolate de rétinyle et rétinol) a été mesurée par HPLC au cours du temps pour les deux formules de PhytoVec rétinol (VR_20ER_014_B, VR_20ER_026_A) et de la solution de liposomes de rétinol dans les différentes conditions de température et luminosité :
= A l'obscurité et température ambiante (20 C ¨ OBS) = A l'obscurité et température ambiante (20 C ¨ LUM) = A l'obscurité au réfrigérateur (4 C) = A l'obscurité à l'étuve (45 C) [417] Les résultats sont rassemblés dans les graphiques des figures 4 à 7. La teneur moyenne en rétinol et phytolate de rétinyl a été calculée sur la base de trois échantillons indépendants et valeurs normalisées à 100%.
[418] Le graphique de la figure 4 représente les résultats des essais à
l'obscurité (20 C).
[419] De manière générale, les teneurs en actif diminuent avec le temps.
Toutefois les valeurs en actif dc VR_20ER_014_ B et VR_20ER_026_ A diminuent moins vite qu'avec les liposomes dc rétinol.
[420] Le graphique de la figure 5 représente les résultats des essais à la lumière (20 C).
[421] Ici, les teneurs en actif pour les liposomes de rétinol diminuent très vite en comparaison avec celles de VR_20ER_014_ B et VR_20ER_026_ A.
[422] Le graphique de la figure 6 représente les résultats des essais à 4 C.
[423] Dans cette expérience, les teneurs en actif pour les liposomes de rétinol diminuent lentement jusqu'à 7 jours voire 30 jours puis fléchissent très significativment ensuite.
En comparaison, les valeurs en actif pour VR_20ER_014_ B et VR_20ER_026_ A restent élevées sur l'ensemble de l'expérience.
[424] Le graphique de la figure 7 représente les résultats des essais à 45 C
[425] Ici, la teneur en actif pour les liposomes diminue assez rapidement, alors que celle pour VR_20ER_014_ B et VR_20ER_026_ A restent élevée les 7 premiers jours. Ensuite (7 à 30 jours), les taux en actif pour VR_20ER_014_ B et VR_20ER_026_ A diminuent, tout en restant supérieurs à celui des liposomes pour enfin rejoindre sensiblement le taux des liposomes de rétinol à 90 jours.
[426] 5.2.5. Conclusion [427] L'étude montre clairement l'intérêt de la technologie PhytoVec sur la préservation du rétinol par rapport aux liposomes. En effet on remarque une baisse de la teneur en rétinol > 90% en 7 jours à la lumière alors que la teneur en phytolate de rétinyle est autour de 100% pour la technologie PhytoVec.
De plus la même tendance est également confirmée dans les conditions de stockage optimale (4 C en l'absence de lumière) puisque la teneur en rétinol chute de 70% en trois mois contre seulement 5% dans le cas de nos PhytoVec.
[428] 5.3. Étude ex vivo [429] L'objectif dc cette étude est d'évaluer ex vivo, sur des explants dc peau d'origine humaine, l'effet promoteur du passage transdermique du système PhytoVec selon la présente invention.
[430] Chaque formulation est appliquée sur un expiant de peau. A la fin de la période de contact (24h), la concentration totale de phytolate de rétinyle est mesurée dans les différentes couches cutanées (Couche Cornée, Épiderme et Derme) et une cinétique de diffusion sur 4 points est réalisée.
[431] Les différentes formules testées lors de cette étude sont deux PhytoVec équivalent à 10% de rétinol (VR_20ER_014_B, VR_20ER_026_A) mais aussi deux gels cosmétiques équivalent à 5% de rétinol incluant la technologie PhytoVec et un gel contenant 5% de rétinol.
[432] 5.3.1. Préparation d'un PhytoVec rétinol équivalent à 10% de rétinol.
[433] Deux émulsions de type Phytovec Retinol ont été préparées selon le mode opératoire décrit précédemment et selon la composition suivante :
[434] [Tableau 14]
Composés VR 20ER 014 B VR 20ER 026 A
_ _ _ _ Aqua 69,60% 34,35%
Lécithine 0,25%
hydrogénée Propanediol 35,00%
Laurate de 6,65% 6,65%
Polyglycéryle-10 Phytolate de rétinyl 23,25% 23,25%
BHT 0,50% 0,50%
TOTAL 100% 100%
% en masse [435] 5.3.2. Préparation des gels incluant du rétinol et les PhytoVec rétinol [436] Les trois gels de cette étude ont été préparés selon le mode opératoire et les compositions suivantes.
[437] 5.3.2A Mode opératoire [438] Préparation de la phase aqueuse à température ambiante composée d'eau déminéralisée et d'un poly-acrylate (Carbopol ULTREZ 10) neutralisé avec de l'hydroxyde de sodium [439] Préparation de la phase huileuse :
- à une température comprise entre 35 et 40 C pour le gel C
- à température ambiante pour les gels D et E
[440] Incorporation de la phase huileuse dans la phase aqueuse sous agitation de type défloculeuse et à une vitesse comprise entre 800 et 1500 tpm pendant 5 à 10 minutes.
[441] Ajustement du pH entre 6,5 et 7,0 à température ambiante avec de l'hydroxyde de sodium.
[442] Composition selon le tableau suivant :
[443] [Tableau 15]
Composés Gel C Gel D Gel E
Aqua 89,49% 49,74%
49,74%
Carbomère 0,20% 0,20% 0,20%
PhytoVec-Rétinoie 50,00%
(VR_20ER_014_B) PhytoVec-Rétinole 50,00%
(VR 20ER 026 A
Rétinol 5,00%
Isononanoate 5,00%
d' isononyl BHT 0,25%
Hydroxyde de 0,06% 0,06% 0,06%
sodium TOTAL 100% 100%
100%
% en masse [444] 5.3.3. Matériel Biologique [445] Les échantillons de peau humaine sont obtenus auprès d'un service de chirurgie plastique d'une clinique de Tours (France), après une opération d' abdominoplastie.
[446] Pour cette étude, 15 expiants cutanés provenant d'un unique donneur sont utilisés :
[447] [Tableau 16]
Donneur Origine Genre Age (ans) Région Date du Stockage #275 Humaine Femme 66 Abdomen 10 novembre 2020 [448] 5.3.4. Déroulement de l'étude [449] 5.3.4.1. Caractéristique des expiants [450] Un échantillon de peau humaine est divisé en 15 expiants cutanées de dimension 3x3 cm. Les expiants sont décongelés à température ambiante pendant 10 minutes puis nettoyés avec du PBS.
[451] L'intégrité de la barrière cutanée de chaque expiant est contrôlée en mesurant la perte insensible en eau (PIE). Les valeurs de PIE mesurées pour les 15 expiants cutanés étant comprises entre 6.0 et 7.5 g.m-2.h-1, les expiants cutanés sont considérés appropriés pour l'expérimentation.
[452] L'épaisseur de chaque expiant est mesurée à cinq endroits différents.
[453] Les valeurs moyennes obtenues par formule pour ces deux paramètres (PIE
et épaisseur) sont présentées ci-dessous.
[454] [Tableau 17]
Expérience Épaisseur ( m) PIE (g.m-2.h-1) VR_20ER_O 1 4_B 1226 51 6.7+ 0.5 VR_20ER_026_A 1208 28 6.9 0.4 Gel C 1168 53 6.8 0.3 Gel D 1213 59 7.0 0.5 Gel E 1185+72 7.2 0.5 [455] 5.3.4.2. Test de passage transderm igue [456] Tous les expiants de peau sont placés dans des cellules de diffusion de type Franz avec la couche cornée placée face au compartiment donneur (les cellules de diffusion de type Franz utilisées ont une surface de diffusion de 2 cm2 et un compartiment récepteur d'un volume d'en moyenne 14.5 mL). Des pinces sont utilisées pour maintenir ensemble les deux compartiments et ainsi assurer l'étanchéité.
[457] Les compartiments récepteurs sont remplis avec du liquide récepteur (absence de bulles d'air sous les expiants cutanés).
[458] Pendant 1 heure, les cellules de diffusion sont posées sur un plateau magnétique pour maintenir le liquide récepteur en agitation, et l'ensemble est placé dans une étuve permettant d'obtenir une température à la surface de la peau de 32 C et un taux d'humidité de 50 %. La vitesse d'agitation du liquide récepteur pendant la durée de l'expérience est fixée à 400 tr.min-1.
[459] Au bout d'une heure, l'équilibre thermique de chaque cellule de diffusion étant atteint, les formulations sont appliquées avec une pipette à déplacement positif à la surface des expiants de peau en suivant la répartition décrite dans le Tableau 7.
[460] La quantité déposée sur la surface de la peau est de 500 mg.
[461] Les cellules de diffusion sont replacées en étuve pendant 24 heures.
[462] Le tableau suivant montre la répartition des expiants par condition.
[463] [Tableau 18]
Conditions Expiants VR_20ER_014_B # 1; # 2; # 3 VR_20ER_026_A # 4 ; # 5 ; # 6 Gel C
Gel D # 10 ; # 11 ; # 12 Gel E # 13 ; # 14 ; # 15 [464] Au cours des 24 heures de diffusion, 3 points de cinétique sont réalisés aux temps suivants : 2h, 4h et 8 heures. Pour cela, un volume de 300 IAL de liquide récepteur est prélevé dans chaque cellule puis remplacé par du liquide récepteur neuf . Chaque prélèvement est conservé
congelé.
[465] A l'issue du temps de diffusion (24h), la procédure suivante est réalisée pour toutes les cellules dc diffusion :
[466] Nettoyage de la surface de la peau :
- Absorption de la fraction non absorbée - Nettoyage de la surface de la peau avec 2 cotons tiges imprégnés d'eau micellaire - Rinçage de la surface de la peau avec 2 cotons tiges imprégnés d'eau déminéralisée - Séchage de la surface de la peau avec 1 coton tige - Application d'un adhésif D-Squam pour retirer le résidu de produit restant sur la peau [467] Récupération du liquide récepteur :
- La totalité du liquide récepteur est placé dans un tube dit Falcon de 15 mL puis congelé.
[468] Récupération dc la couche cornée :
- Application successive de 2 adhésifs dit D-Squam sur la zone traitée. Les deux adhésifs sont placés ensemble dans un tube Falcon de 15 mL puis congelés, chaque adhésif étant replié sur lui-même.
[469] Récupération dc l'épiderme et du derme :
- L'épiderme et le derme sont séparés par un léger grattage de la surface ou si nécessaire par chauffage à 65 C pendant 15 secondes.
- L'épiderme et le derme sont placés individuellement dans un tube Falcon dc 15 mL, pesés et enfin congelés.
[470] Analyse et Dosage des prélèvements [471] L'ensemble des prélèvements a été récupéré.
[472] L'extraction et le dosage analytique du rétinol dans les échantillons a été réalisé selon la procédure décrite ci-dessous.
[473] 5.3.5. Passage transdermique du Rétinol à partir des différentes formules [474] 5.3.5.1. Distribution cutanée du phytolate de rétinyle à partir des PhytoVec [475] Les quantités moyennes de rétinol obtenues dans les couches cutanées sont présentées dans le Tableau ci-dessous et la Figure 8.
[476] [Tableau 19]
VR_20ER_014_B VR_20ER_026_A
Stratum Corneum 7.85 5.15 8.62 3.94 Epiderme 1.90 1.30 2.40 1.05 Derme 0.16 0.09 0.19 0.13 [477] A partir des formules dc PhytoVcc (VR_20ER_014_B et VR_20ER_014_13), un profil similaire de distribution cutanée est observé :
- La plus grande proportion de phytolate de rétinyle (environ 75%) se retrouve dans la couche cornée avec en moyenne une quantité cumulée de 8 itg/cm2.
-L'épiderme représente la couche cutanée où se retrouve 20% du phytolate de rétinyle total mesuré dans la peau. Dans cette couche, la quantité cumulée moyenne de phytolate de rétinyle est de 2 g/cm2, la formulation VR_20ER_026_A permet d'obtenir le meilleur résultat.
- Dans le derme, le phytolate de rétinyle se retrouve à une proportion de 2% comparé aux couches précédentes, ce qui représente en moyenne 0.2 g/cm2.
[478] Ainsi, ces résultats prouvent que les formulations VR 20ER 014 B et VR
permettent une pénétration transdermique efficace du rétinyle phytolate, qui est quantifiable jusqu'au derme.
[479] 5.3.5.2. Distribution cutanée du phytolate de rétinyle à partir de gels à base de rétinol et de rétinyle phytolate [480] Les quantités moyennes de rétinol et phytolate de rétinyle obtenues dans les couches cutanées sont présentées dans le Tableau suivant et la Figure 9.
[481] [Tableau 20]
Gel C Gel D Gel E
Stratum Corneum 0.01 0.02 1.91 0.95 2.40 1.19 Epiderme 0.16 0.01 0.39 0.28 0.32 0.12 Derme 0.07 0.02 0.02 0.02 0.05 0.01 [482] Les résultats de diffusion transdermique du rétinol les plus faibles sont obtenus avec le gel C
qui contient du rétinol sous forme libre. En effet, avec cette formulation, les quantités cumulées moyennes de rétinol retrouvées dans les couches cutanées sont inférieures à
0.3 g/cm2.
[483] Les résultats de diffusion transdermique du phytolate de rétinyle obtenus avec les formulations incluant du phytolate de rétinyle via la technologie PhytoVec (gel D et E), montrent que celles-ci sont beaucoup plus efficaces que la formulation à base de rétinol seul (gel C) pour obtenir une pénétration significative de l'actif dans la peau. L'analyse de la distribution du phytolate de rétinyle obtenue avec ces deux formulations (gel D et E) dans chaque couche cutanée montre que :
- Dans la couche cornée, la quantité cumulée moyenne de phytolate de rétinyle mesurée est 200 fois supérieure à celle trouvée en rétinol dans le cas du gel C. Ce résultat indique que ces formulations permettent à la couche cornée de se charger en rétinol.
- Dans l'épiderme, le phytolate de rétinyle se retrouve dans des proportions 2 fois supérieures à
celle mesurée en rétinol dans le cas du gel C
- En revanche, dans le derme, la quantité cumulée de phytolate de rétinyle obtenue avec les gels D et E est comparable à celle obtenue pour le rétinol dans le gel C.
[484] On notera également que, parmi les deux gels D et E, le gel E incluant VR 20ER 026A permet une administration totale moyenne de phytolate de rétinyle plus importante que celle obtenue avec le gel D incluant VR_20ER_014_B.
[485] 5.3.6. Conclusion de l'étude ex vivo [486] En conclusion, il a été mis en évidence l'importance de la formulation selon la présente invention pour obtenir une pénétration transdermique optimale du rétinol.
[487] Les résultats ont mis en évidence les éléments suivants :
- Les formulations PhytoVec VR_20ER_014_13 et VR_20ER_026_A permettent de faire passer une quantité cumulée moyenne totale de l'ordre de 11 itg/cm2 - Les formulations de PhytoVec Rétinol incluent dans les gels D et E
permettent de faire passer une quantité cumulée moyenne totale de l'ordre de 2.5ptg/cm2. Cette quantité
est significativement supérieure à celle obtenue avec le gel C contenant du rétinol libre.
- Avec les formulations PhytoVec pures, la distribution transdermique du phytolate de rétinyle est plus importante comparée aux formulations sous forme gel.
[488] En termes de mode d'action, les formulations PhytoVec permettent principalement de charger la couche cornée en phytolate de rétinyle formant ainsi un réservoir offrant une libération de la molécule dans les couches sous-jacentes.
Claims (20)
X(-Espaceur-Y-Terp ène), (1) dans laquelle ¨ Terpène est tel que défini dans l'une quelconque des revendications 1 à 4 ;
¨ Y est une liaison ou un fragment moléculaire avec une liaison biodégradable ;
¨ Espaceur est une liaison ou un fragment comprenant au moins un atome de carbone ;
¨ X est un fragment moléculaire comprenant au moins une liaison biodégradable ;
¨ p est compris entre 0,1 et 4 ; et ¨ le groupe -Espaceur-Y- peut optionnellement être une liaison.
dans lesquels n sont indépendamment des nombres entiers compris entre 0 et 6, préférentiellement compris entre 1 et 4.
comprennent l'un quelconque dcs fragments suivants :
fsse'N-"P"`Nz\
-CD
1\1 R3 gt<CO2 eitc PO4 o 0 25 44, S03 0 )L, OR u dans lesquels :
- u sont indépendamment des nombres entiers compris entre 0 et 6, préférentiellement compris entre 0 et 1.
- R est un atome d'hydrogène, un groupement alkyle en Cl-C6, un groupement aromatique en C4-C8 ou un groupe alkyle(C1-C6)-aryl (C4-C8) monocyclique ou polycyclique, par exemple R peut représenter un atome d'hydrogène, un méthyle, éthyle, propyle, butyle, phényle, ou encore un groupc benzyle.
MA (¨ AA)i, (II) dans laquelle AA cst un agent d'auto-assemblage tel que défini dans l'une quelconque dcs revendications 5 à 8 ;
MA est une molécule biologiquement active ; et k est compris entre 0,1 et 6, ainsi qu' à ces sels et/ou solvates pharmaceutiquement ou cosmétiquement acceptables.
cosmétique, telle qu'un agent antiridc, un agent modifiant la coloration dc la pcau, un agent permettant de contrôler la croissance pileuse de la peau, un agent anti-acnéique de surface, un agent de raffermissement de la peau, un agent anti-acnéique, un agent anti-microbien, un agent anti-oxydant, un agent anti-rides, un agent anti-séborrbéique, un agent apaisant, un agent astringent, un agent activateur de la microcirculation, un agent hydratant, un agent favorisant la cicatrisation, un agent modifiant la coloration de la peau, un agent parfumant, un agent permettant de contrôler la croissance pileuse et capillaire, un agent raffermissant, un agent régénérant, ou encore un agent repulpant.
(al) une étape dans laquelle le conjugué selon la revendication 9 est mis en solution dans un solvant S1 miscible à l'eau, (bl) une étape de nano-précipitation dans l'eau, puis (cl) une étape dans laquelle le solvant S1 au moins est évaporé sous pression réduite.
(a2) une étape de préparation d'une émulsion huile dans eau (b2) une étape de réduction de la taille des gouttelettes d'huile à l'aide d'un homogénéisateur haute pression.
15 dans laquelle l'étape (a2) de préparation d'une émulsion huile dans l'eau comprend une introduction de phase huileuse dans une phase aqueuse, par exemple sous agitation de type rotor/stator à une température comprise entre 40 et 60 C et/ou à une vitesse comprise entre 1000 et 3000 tpm, par exemple 2000 tpm, pendant 5 à 10 minutes.
16 dans laquelle l'étape (b2) d'introduction de l'émulsion obtenue à l'étape (a2) dans un homogénéisateur haute pression, par exemple dans dcs conditions dc températures compriscs entre 20 ct 30 C ct à
dcs prcssions comprises entre 1500 et 2500 bars, tel que 2000 bars.
17 dans laquelle l'étape (b2) est répétée au moins une fois.
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