CH625272A5 - - Google Patents
Download PDFInfo
- Publication number
- CH625272A5 CH625272A5 CH1628576A CH1628576A CH625272A5 CH 625272 A5 CH625272 A5 CH 625272A5 CH 1628576 A CH1628576 A CH 1628576A CH 1628576 A CH1628576 A CH 1628576A CH 625272 A5 CH625272 A5 CH 625272A5
- Authority
- CH
- Switzerland
- Prior art keywords
- reaction
- reagent
- enzyme
- mmol
- determination
- Prior art date
Links
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 claims description 76
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 claims description 45
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 claims description 45
- 238000000034 method Methods 0.000 claims description 36
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 claims description 31
- PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N Glycerine Chemical compound OCC(O)CO PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 27
- 239000000758 substrate Substances 0.000 claims description 27
- 230000008859 change Effects 0.000 claims description 11
- HVYWMOMLDIMFJA-DPAQBDIFSA-N cholesterol Chemical compound C1C=C2C[C@@H](O)CC[C@]2(C)[C@@H]2[C@@H]1[C@@H]1CC[C@H]([C@H](C)CCCC(C)C)[C@@]1(C)CC2 HVYWMOMLDIMFJA-DPAQBDIFSA-N 0.000 claims description 10
- 102000013009 Pyruvate Kinase Human genes 0.000 claims description 9
- 108020005115 Pyruvate Kinase Proteins 0.000 claims description 9
- 102000057621 Glycerol kinases Human genes 0.000 claims description 8
- CSNNHWWHGAXBCP-UHFFFAOYSA-L Magnesium sulfate Chemical compound [Mg+2].[O-][S+2]([O-])([O-])[O-] CSNNHWWHGAXBCP-UHFFFAOYSA-L 0.000 claims description 8
- 101710163410 Probable glycerol kinase Proteins 0.000 claims description 8
- 238000005859 coupling reaction Methods 0.000 claims description 7
- OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N Methanol Chemical compound OC OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 6
- 239000008363 phosphate buffer Substances 0.000 claims description 6
- 108010089254 Cholesterol oxidase Proteins 0.000 claims description 5
- 102000003855 L-lactate dehydrogenase Human genes 0.000 claims description 5
- 108700023483 L-lactate dehydrogenases Proteins 0.000 claims description 5
- ISWSIDIOOBJBQZ-UHFFFAOYSA-N Phenol Chemical compound OC1=CC=CC=C1 ISWSIDIOOBJBQZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 5
- 235000012000 cholesterol Nutrition 0.000 claims description 5
- 229930027945 nicotinamide-adenine dinucleotide Natural products 0.000 claims description 5
- BOPGDPNILDQYTO-NNYOXOHSSA-N nicotinamide-adenine dinucleotide Chemical compound C1=CCC(C(=O)N)=CN1[C@H]1[C@H](O)[C@H](O)[C@@H](COP(O)(=O)OP(O)(=O)OC[C@@H]2[C@H]([C@@H](O)[C@@H](O2)N2C3=NC=NC(N)=C3N=C2)O)O1 BOPGDPNILDQYTO-NNYOXOHSSA-N 0.000 claims description 5
- 229930029653 phosphoenolpyruvate Natural products 0.000 claims description 5
- DTBNBXWJWCWCIK-UHFFFAOYSA-N phosphoenolpyruvic acid Chemical compound OC(=O)C(=C)OP(O)(O)=O DTBNBXWJWCWCIK-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 5
- 102000016938 Catalase Human genes 0.000 claims description 4
- 108010053835 Catalase Proteins 0.000 claims description 4
- DBMJMQXJHONAFJ-UHFFFAOYSA-M Sodium laurylsulphate Chemical compound [Na+].CCCCCCCCCCCCOS([O-])(=O)=O DBMJMQXJHONAFJ-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 4
- YRKCREAYFQTBPV-UHFFFAOYSA-N acetylacetone Chemical compound CC(=O)CC(C)=O YRKCREAYFQTBPV-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 4
- 229910052943 magnesium sulfate Inorganic materials 0.000 claims description 4
- 235000019341 magnesium sulphate Nutrition 0.000 claims description 4
- 108010055297 Sterol Esterase Proteins 0.000 claims description 3
- 102000000019 Sterol Esterase Human genes 0.000 claims description 3
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 claims description 3
- 239000008280 blood Substances 0.000 claims description 3
- 239000000872 buffer Substances 0.000 claims description 3
- 239000003112 inhibitor Substances 0.000 claims description 3
- 239000000047 product Substances 0.000 claims description 3
- 239000000376 reactant Substances 0.000 claims description 3
- 239000004254 Ammonium phosphate Substances 0.000 claims description 2
- 108090000371 Esterases Proteins 0.000 claims description 2
- 102000004882 Lipase Human genes 0.000 claims description 2
- 108090001060 Lipase Proteins 0.000 claims description 2
- 239000004367 Lipase Substances 0.000 claims description 2
- 229910000148 ammonium phosphate Inorganic materials 0.000 claims description 2
- 235000019289 ammonium phosphates Nutrition 0.000 claims description 2
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 claims description 2
- 238000003776 cleavage reaction Methods 0.000 claims description 2
- 230000000536 complexating effect Effects 0.000 claims description 2
- MNNHAPBLZZVQHP-UHFFFAOYSA-N diammonium hydrogen phosphate Chemical compound [NH4+].[NH4+].OP([O-])([O-])=O MNNHAPBLZZVQHP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 2
- 235000019421 lipase Nutrition 0.000 claims description 2
- 229910052751 metal Inorganic materials 0.000 claims description 2
- 239000002184 metal Substances 0.000 claims description 2
- 230000007017 scission Effects 0.000 claims description 2
- 150000003626 triacylglycerols Chemical class 0.000 claims description 2
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 claims 1
- 239000006227 byproduct Substances 0.000 claims 1
- 238000007385 chemical modification Methods 0.000 claims 1
- 239000000693 micelle Substances 0.000 claims 1
- 229940088598 enzyme Drugs 0.000 description 36
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 10
- 235000011187 glycerol Nutrition 0.000 description 9
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 6
- 230000008569 process Effects 0.000 description 6
- 108010015776 Glucose oxidase Proteins 0.000 description 5
- 239000004366 Glucose oxidase Substances 0.000 description 5
- WQZGKKKJIJFFOK-VFUOTHLCSA-N beta-D-glucose Chemical compound OC[C@H]1O[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-VFUOTHLCSA-N 0.000 description 5
- 229940116332 glucose oxidase Drugs 0.000 description 5
- 235000019420 glucose oxidase Nutrition 0.000 description 5
- 102000003992 Peroxidases Human genes 0.000 description 4
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 description 4
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 4
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 4
- 238000013459 approach Methods 0.000 description 3
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 3
- 108040007629 peroxidase activity proteins Proteins 0.000 description 3
- RLFWWDJHLFCNIJ-UHFFFAOYSA-N 4-aminoantipyrine Chemical compound CN1C(C)=C(N)C(=O)N1C1=CC=CC=C1 RLFWWDJHLFCNIJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- WQZGKKKJIJFFOK-DVKNGEFBSA-N alpha-D-glucose Chemical compound OC[C@H]1O[C@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-DVKNGEFBSA-N 0.000 description 2
- 235000014113 dietary fatty acids Nutrition 0.000 description 2
- 238000006911 enzymatic reaction Methods 0.000 description 2
- 229930195729 fatty acid Natural products 0.000 description 2
- 239000000194 fatty acid Substances 0.000 description 2
- 150000004665 fatty acids Chemical class 0.000 description 2
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 2
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 2
- 239000002504 physiological saline solution Substances 0.000 description 2
- 230000009467 reduction Effects 0.000 description 2
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 description 2
- HWKRAUXFMLQKLS-UHFFFAOYSA-N 2-oxidanylidenepropanoic acid Chemical compound CC(=O)C(O)=O.CC(=O)C(O)=O HWKRAUXFMLQKLS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 102100035687 Bile salt-activated lipase Human genes 0.000 description 1
- RGHNJXZEOKUKBD-SQOUGZDYSA-N D-gluconic acid Chemical compound OC[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)C(O)=O RGHNJXZEOKUKBD-SQOUGZDYSA-N 0.000 description 1
- RGHNJXZEOKUKBD-UHFFFAOYSA-N D-gluconic acid Natural products OCC(O)C(O)C(O)C(O)C(O)=O RGHNJXZEOKUKBD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N Formaldehyde Chemical compound O=C WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 description 1
- JVTAAEKCZFNVCJ-UHFFFAOYSA-M Lactate Chemical compound CC(O)C([O-])=O JVTAAEKCZFNVCJ-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 102000004316 Oxidoreductases Human genes 0.000 description 1
- 108090000854 Oxidoreductases Proteins 0.000 description 1
- 108091000080 Phosphotransferase Proteins 0.000 description 1
- 238000002835 absorbance Methods 0.000 description 1
- 150000001413 amino acids Chemical class 0.000 description 1
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 1
- 230000008033 biological extinction Effects 0.000 description 1
- 238000011088 calibration curve Methods 0.000 description 1
- 239000003054 catalyst Substances 0.000 description 1
- 230000003197 catalytic effect Effects 0.000 description 1
- 238000006555 catalytic reaction Methods 0.000 description 1
- 239000007795 chemical reaction product Substances 0.000 description 1
- GGCLNOIGPMGLDB-GYKMGIIDSA-N cholest-5-en-3-one Chemical compound C1C=C2CC(=O)CC[C@]2(C)[C@@H]2[C@@H]1[C@@H]1CC[C@H]([C@H](C)CCCC(C)C)[C@@]1(C)CC2 GGCLNOIGPMGLDB-GYKMGIIDSA-N 0.000 description 1
- NYOXRYYXRWJDKP-UHFFFAOYSA-N cholestenone Natural products C1CC2=CC(=O)CCC2(C)C2C1C1CCC(C(C)CCCC(C)C)C1(C)CC2 NYOXRYYXRWJDKP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 150000001840 cholesterol esters Chemical class 0.000 description 1
- 239000008139 complexing agent Substances 0.000 description 1
- 238000013461 design Methods 0.000 description 1
- 239000003599 detergent Substances 0.000 description 1
- 238000010494 dissociation reaction Methods 0.000 description 1
- 230000005593 dissociations Effects 0.000 description 1
- 229950006191 gluconic acid Drugs 0.000 description 1
- 235000012208 gluconic acid Nutrition 0.000 description 1
- 239000008103 glucose Substances 0.000 description 1
- AWUCVROLDVIAJX-UHFFFAOYSA-N glycerol 1-phosphate Chemical compound OCC(O)COP(O)(O)=O AWUCVROLDVIAJX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 150000002500 ions Chemical class 0.000 description 1
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 1
- 230000003647 oxidation Effects 0.000 description 1
- 238000007254 oxidation reaction Methods 0.000 description 1
- 102000020233 phosphotransferase Human genes 0.000 description 1
- 108090000765 processed proteins & peptides Proteins 0.000 description 1
- 230000006337 proteolytic cleavage Effects 0.000 description 1
- 238000009790 rate-determining step (RDS) Methods 0.000 description 1
- 239000011541 reaction mixture Substances 0.000 description 1
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 1
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 1
- 230000006641 stabilisation Effects 0.000 description 1
- 238000011105 stabilization Methods 0.000 description 1
- UFTFJSFQGQCHQW-UHFFFAOYSA-N triformin Chemical compound O=COCC(OC=O)COC=O UFTFJSFQGQCHQW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/61—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving triglycerides
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/54—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving glucose or galactose
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/60—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving cholesterol
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
- Y10S435/81—Packaged device or kit
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Zoology (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Immunology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Biophysics (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Emergency Medicine (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Investigating Or Analysing Materials By The Use Of Chemical Reactions (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
Description
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur kinetischen Bestimmung von Enzymsubstraten mittels gekoppelter Reaktionen und ein zur Durchführung dieses Verfahrens geeignetes Reagens.
Die gebräuchlichste Methode der enzymatischen Substratbestimmung ist die sogenannte Endwertmethode. Hierbei wird das zu bestimmende Substrat einer enzymatischen Reaktion gemessen, indem die Reaktion bis zum Stillstand ablaufen gelassen wird, also das gesamte Substrat umgesetzt wird. Bei zahlreichen gebräuchlichen Endwert-Methoden für die Substratbestimmung, insbesondere auch an Analysenautomaten, liegt der Zeitbedarf pro Analyse gegenwärtig bei 10 bis 20 Minuten. Dieser Zustand ist unbefriedigend, weil der Zeitbedarf zu hoch ist und die optimale Ausnutzung der Messgeräte und Analysenautomaten verhindert wird.
Es ist bekannt, dass durch Anwendung des kinetischen Verfahrens, bei dem die Substrat-Konzentration durch Messung der Geschwindigkeit der Bestimmungsreaktion ermittelt wird, eine drastische Verringerung der üblichen Analysenzeit erzielt werden kann. Dazu trägt nicht zuletzt auch der Umstand bei, dass bei diesem Verfahren im Gegensatz zur Endwert-Methode die Ermittlung von Probenleerwerten im allgemeinen entfällt.
Die theoretischen Grundlagen der kinetischen Substratbestimmung wurden ausführlich in Anal. Chem. 43,697 und Advan. Anal. Chem. Instrum. 7,141 behandelt. Daraus ist es bekannt, dass von besonderer Bedeutung Reaktionen erster oder pseudoerster Ordnung sind, da sich diese im Analysenautomaten messtechnisch besonders einfach nach dem sogenannten «fixed-time»-Prinzip verfolgen lassen.
Bei den «fixed-time»-Verfahren misst man die Konzentrationsänderung der zu bestimmenden Substanz oder eines Folgeprodukts innerhalb eines festen Zeitintervalls. Läuft die Bestimmungsreaktion im gewählten Zeitabschnitt nach erster oder pseudo-erster Ordnung ab, dann gilt die Beziehung:
c
Hier bezeichnet k die Geschwindigkeitskonstante der Reaktion, Co die Anfangskonzentration der zu bestimmenden Substanz und Ac die Konzentrationsänderung derselben im Messzeitintervall At = fa-ti. Der Gleichung ist zu entnehmen, dass die gemessene Konzentrationsänderung der gesuchten Anfangskonzentration direkt proportional ist, wenn k, ti und t2 konstant gehalten werden. Letztere Bedingungen lassen sich an Analysenautomaten leicht einhalten, weshalb dieses Verfahren an derartigen Geräten besonders vorteilhaft eingesetzt werden kann.
Es ist auch schon bekannt, die Verfahrensbedingungen so zu wählen, dass eine Reaktion pseudonullter Ordnung erhalten
2
5
10
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
* 625272
wird. Eine quantitative Bestimmung ist dann aber nur über Unter einer Überdosierung wird hier der Einsatz einer
Näherungsverfahren möglich, welche häufig die Aufstellung wenigstens doppelt so grossen Enzymmenge, vorzugsweise von Eichkurven erforderlich machen. einer vielfach grösseren Enzymmenge, als sie an sich für den raschen Ablauf der Reaktion erforderlich wäre, verstanden. In den oben zitierten Veröffentlichungen und in anderen 5 Durch entsprechende Mengen der für die Teilschritte einge-Arbeiten, die sich bisher mit der kinetischen Substratbestim- setzten Enzyme lassen sich ja, wie oben erwähnt, die Geschwin-mung befassten, wird in erster Linie die Anwendbarkeit des digkeiten der einzelnen Teilreaktionen erheblich variieren, so Verfahrens auf einstufige Reaktionen diskutiert. Derartige dass auf relativ einfache Weise diejenige Reaktion geschwin-Reaktionen sind jedoch nur von begrenzter Bedeutung. Es ist digkeitsbestimmend gemacht werden kann, welche den spezinämlich häufig erforderlich, die Testsysteme im Interesse einer 10 fischsten Verlauf zeigt.
ausreichenden Spezifität und Praktikabilität aus mehreren Teil- Die Art der eingesetzten Enzyme kann verändert werden, reaktionen zusammenzusetzen. Andererseits ist nicht bekannt, indem man ein Enzym ganz bestimmter Herkunft, je nach der wie derartige gekoppelte Testsysteme so aufzubauen sind, so gewünschten Michaelis-Konstante, auswählt. Denn Enzyme dass man mit ihnen unter Routinebedingungen Substrat-Kon- verschiedener Herkunft, welche die gleiche Reaktion katalysie-zentrationen auf kinetischer Basis bestimmen kann. Ganz im 15 ren, können unterschiedliche Michaelis-Konstanten haben, je Gegenteil wird noch in jüngster Zeit darauf hingewiesen, dass nachdem ob sie z. B. aus Mikroorganismen oder aus Säugetiergekoppelte Reaktionen kinetische Bestimmungen problema- leber gewonnen werden.
tisch machen (Chem. Rundschau 26,24 (1973)), da beispiels- Eine künstliche Veränderung der Michaelis-Konstante lässt weise ein Aktivitätsverlust von beteiligten Enzymen das Ver- sich z. B. erreichen durch Änderung des Metallatoms im akti-
fahren rasch unbrauchbar macht. Daher war man bisher der 20 ven Zentrum des Enzyms. Eine andere Möglichkeit besteht in Ansicht, dass ein einstufiges Verfahren gerade bei enzymkineti- der partiellen Spaltung des Enzyms, entweder durch Dissozia-
schen Substratmessungen dem zweistufigen (und dementspre- tion in seine Untereinheiten, wenn das Enzym aus solchen chend überhaupt mehrstufigen) vorzuziehen sei. Dies erklärt, besteht, oder durch proteolytische Abspaltung eines Teils der warum bisher gekoppelte Testsysteme, mit denen man unter Peptid-Kette. Eine weitere Möglichkeit besteht in der chemi-
Routinebedingungen Substratkonzentrationen kinetisch 25 sehen Modifizierung des aktiven Zentrums. Diese kann z. B.
bestimmen kann, sich nicht in der Praxis bewährt haben. erfolgen durch Veränderung einzelner reaktiver Gruppen von
Der Erfindung liegt daher die Aufgabe zugrunde, ein Ver- Aminosäuren des Zentrums wie der Oxydation seiner SH-
fahren zur Bestimmung von Substrat-Konzentrationen mittels Gruppe oder dergleichen. Weitere Möglichkeiten zur künstli-
gekoppelter Reaktionen auf kinetischer Basis zu beschaffen, chen Änderung der Michaelis-Konstante bestehen in einer welches sich unter Routinebedingungen durchführen lässt und 30 Konformationsänderung des Enzyms durch Zusatz eines allo-
bei dem die Teilschritte der mehrstufigen Testsysteme ganz sterischen Effektors, durch Zusatz bestimmter Ionen, durch oder teilweise unter Enzymkatalyse ablaufen. geeignete Auswahl der Art des Puffers, durch Einstellung
Gelöst wird diese Aufgabe erfindungsgemäss durch ein bestimmter Salzkonzentrationen in der Lösung und derglei-
Verfahren zur kinetischen Bestimmung von Enzymsubstraten chen.
mittels gekoppelter Reaktionen, welches dadurch gekennzeich- 35 Eine Änderung des Substrats selbst kann erfolgen durch net ist, dass die Reaktionsparameter so gewählt werden, dass Komplexierung bei Zusatz geeigneter Komplexbildner, durch die spezifischste Teilreaktion der Reaktionskette geschwindig- Mizellbildung, beispielsweise durch Detergenszusatz oder der-
keitsbestimmend für die ganze Reaktionskette wird und der gleichen.
geschwindigkeitsbestimmende Schritt nach erster oder pseu- Auch mit dem pH-Wert lässt sich eine Beeinflussung der doerster Ordnung abläuft. 40 Reaktionsgeschwindigkeit im erfindungsgemässen Sinne
Unter gekoppelten Reaktionen wird hier eine Folge von bewirken. So kann das Enzym derjenigen Teilreaktion, die mindestens zwei Teilreaktionen verstanden, von denen wenig- geschwindigkeitsbestimmend gemacht werden soll, unter stens eine enzymatisch katalysiert wird und bei denen die einem nicht optimalen pH-Wert, der zu einer Erhöhung der
Umsetzung des Substrates und die eigentliche Messreaktion Michaelis-Konstante dieses Enzyms führt, eingesetzt werden.
(Indikatorreaktion) in verschiedenen Reaktionsschritten ablau- 45 In gleicher Weise lässt sich auch die Temperaturabhängigkeit fen. von Enzymen ausnutzen, obwohl dies nicht bevorzugt wird, da
Zu den Möglichkeiten, die spezifischste Teilreaktion so zu die allgemeine Bestrebung dahingeht, die Temperatur enzyma-
gestalten, dass sie geschwindigkeitsbestimmend ist und nach tischer Bestimmungsreaktionen zu vereinheitlichen,
pseudoerster Ordnung abläuft, gehören geeignete Auswahl der Weitere Mittel zur Beeinflussung der Geschwindigkeit der
Art der eingesetzten Enzyme, künstliche Veränderung der 50 Teilreaktionen im erfindungsgemässen Verfahren sind der
Michaelis-Konstante eines oder mehrerer der eingesetzten Zusatz von Reaktionsteilnehmern und Reaktionsprodukten,
Enzyme, Änderungen des Substrats, geeignete Auswahl der welche die Michaelis-Konstante eines Enzyms echt oder
Konzentrationen der beteiligten Enzyme und Reagentien, der scheinbar verändern. Im gleichen Sinne können auch Inhibito-Temperatur, des pH-Wertes, Einsatz von Cofaktoren, Beschleu- ren verwendet werden. Letzteres ist beispielsweise aus der nigern und Hemmstoffen. 55 DT-OS 23 49 819.3 bekannt. Schliesslich lässt sich die
Vorzugsweise wird die weniger spezifische Teilreaktion Geschwindigkeit einer nichtenzymatischen Teilreaktion durch bzw. werden die weniger spezifischen Teilreaktionen durch Zusatz eines Katalysators oder eines Hemmstoffes beeinflus-
eine Überdosierung der in diesen Teilreaktionen wirksamen sen.
Enzyme beschleunigt. Diese Ausführungsform hat den zusätzli- Unter der spezifischsten Teilreaktion der Reaktionskette chen Vorteil, dass eine Aktivitätsänderung dieser Enzyme 60 wird diejenige Teilreaktion verstanden, welche die grösste Spe-
durch Lagerungseinflüsse kompensiert wird. Beim Enzym der zifität hinsichtlich der Ausgangssubstanz der Reaktion zeigt spezifischsten Teilreaktion dagegen spielt eine Aktivitätsab- und ausserdem durch entsprechende Auswahl der Reaktions-
nahme keine wesentliche Rolle, da die Michaelis-Konstante im parameter geschwindigkeitsbestimmend gestaltet werden allgemeinen hierdurch ja nicht beeinflusst wird. Natürlich muss kann. Diese Teilreaktion kann enzymatisch katalysiert sein, sie aber verhindert werden, dass die Aktivität dieses Enzyms völlig 65 muss es aber nicht. Ein Beispiel einer nichtenzymatischen verloren geht, wozu die üblichen Methoden der Enzymstabiii- Reaktion pseudoerster Ordnung mit sehr hoher Spezifität ist sierung angewandt werden können, die dem Fachmann die Mutarotation zwischen a- und ß-Glucose. Wenn die an sich bekannt sind. spezifischste Teilreaktion nicht geschwindigkeitsbestimmend
625 272
gemacht werden kann, z. B. bei zu geringer echter oder scheinbarer Michaelis-Konstante des Enzyms, so gilt die nächstspezifischste Teilreaktion, die geschwindigkeitsbestimmend gestaltet werden kann, als die spezifischste Teilreaktion im Sinne der Erfindung.
Ein weiteres wesentliches Merkmal der Erfindung besteht darin, dass der geschwindigkeitsbestimmende Schritt so gestaltet werden muss, dass er nach erster oder pseudoerster Ordnung abläuft. Wenn die spezifischste Teilreaktion, die geschwindigkeitsbestimmend gestaltet wird, ohnehin nach erster Ordnung abläuft, so sind besondere Massnahmen in dieser Hinsicht nicht erforderlich. Anders bei Reaktionen zweiter und höherer Ordnung. Hier muss eine pseudoerste Ordnung herbeigeführt werden. Dies lässt sich dadurch erreichen, dass die Konzentration des zweiten oder weiteren Reaktionspartners, der nicht das zu bestimmende Substrat oder ein Folgeprodukt desselben ist, durch entsprechende Dosierung während der Reaktion praktisch konstant gehalten, also im Überschuss eingesetzt wird. Ausserdem muss, wenn es sich um eine enzy-matische Reaktion handelt, die Michaelis-Konstante so hoch gewählt werden, dass sie gross ist gegenüber der Obergrenze der in Betracht kommenden Substratkonzentration im Test.
Ein weiterer Gegenstand der Erfindung ist ein Reagens zur kinetischen Bestimmung von Enzymsubstraten mittels gekoppelter enzymatischer Reaktionen. Ein derartiges Reagens ist erfindungsgemäss dadurch gekennzeichnet, dass es solche Enzyme und Reaktionsteilnehmer und diese in einer solchen Dosierung enthält, dass die spezifischste Teilreaktion der bei
20
25
Zugabe des Substrats zu einer wässrigen Lösung des Reagens ablaufenden Reaktionskette geschwindigkeitsbestimmend für die ganze Reaktionskette ist und nach erster oder pseudoerster Ordnung abläuft.
Gemäss einer bevorzugten Ausführungsform der Erfindung wird dies erreicht, indem das Reagens das Enzym oder die Enzyme der weniger spezifischen Teilreaktion oder Teilreaktionen überdosiert enthält.
Die Erfindung ermöglicht es, enzymkinetische Substratmessungen in gekoppelten Testsystemen durchzuführen und damit die zur Durchführung derartiger Bestimmungen erforderliche Zeit erheblich zu verringern. Gleichzeitig wird dadurch weitgehende Unabhängigkeit von der Aktivität der beteiligten Enzyme erreicht, so dass die Präzision des Verfahrens auch dann voll gegeben ist, wenn durch Lagerung schon ein wesentlicher Aktivitätsverlust bei den beteiligten Enzymen aufgetreten ist. Weiter ermöglicht es die Erfindung, derartige mehrstufige enzymkinetische Substratmessungen auf allen gängigen Analysenautomaten durchzuführen, wobei es anhand der Lehren der Erfindung ohne Schwierigkeiten möglich ist, die quantitative Zusammensetzung der Reagentien jedem beliebigen Analysenautomaten anzupassen.
Die folgenden Beispiele erläutern die Erfindung weiter. Beispiel 1
Blutzuckerbestimmung nach der GOD/PAP-Methode
Die Bestimmung verläuft gemäss folgender Gleichung:
°^-D-Glucose; 37%
^ß-D-Glucose 63%
ß-D-Glucose + H„0 + 0„ GOD x D-Gluconsäure + Ho0o
2 2 EC.1.1.3J 2 2
H2°2 + Phenol + 4-Aminoantipyrin
POD » chinoider Farbstoff
EC.1.11,1.7 + 2H20
Das Enzym Peroxydase (POD) wird soweit überdosiert, dass die streng nach pseudoerster Ordnung ablaufende Mutarotation zwischen a- und ß-Glucose oder die wegen der hohen Km bezüglich Glucose ebenfalls nach pseudoerster Ordnung ablaufende Glucoseoxydase (GOD)-Reaktion zum geschwindigkeitsbestimmenden Schritt wird.
Dies wird erreicht durch ein Reagens nachstehender Zusammensetzung:
80-120 mM Phosphatpuffer pH 7,0 0,8 U/ml oder mehr POD 12 U/ml oder mehr GOD 0,60-1,80 mM 4-Aminoantipyrin 3,0-13,5 mM Phenol
Vorstehendes Reagens eignet sich besonders zur Durchführung des Verfahrens an centrifugai fast analyzern. Die erste 45 Ablesung erfolgt ca. 35 Sekunden nach Mischen des Reagens mit der zu untersuchenden Probe, die zweite Ablesung 1,5 bis 3,5 Minuten später. Mit 500 bis 600 jal des Reaktionsgemisches und 5 bis 20 p.1 Probe können bis zu 1000 mg Blutzucker/100 ml bestimmt werden.
50
Beispiel 2
T riglyceridbestimmung
Die Triglyceride werden enzymatisch zu Glycerin und Fettsäure gespalten.
55 Die Bestimmung des Glycerins erfolgt gemäss den folgenden gekoppelten Reaktionen:
Glycerin + ATP Glycerokinase EC2.7.1.30 v Glycerin-3-Phosphat +
ADP
ADP + Phosphoenolpyruvat Pyruvatkinase EC2.7.1.4Q^ ATP + Pyruvat Pyruvat + NADH + H+ Lactat-Dehydrogenase ECI.1.1.27^ Lactat + NAD+"
Das Verfahren wird kinetisch mit folgenden Reagentien durchgeführt:
Reagens 1:
45-55 mmol/1 Phosphatpuffer pH 7,0
4,6-3,1 mmol/1 Magnesiumsulfat
300-400 (imol/l Natriumdodecylsulfat
2,3-3,5 mmol/1 ATP
280-420 (imol/l Phosphoenolpyruvat
120-230 p.mol/1 NADH; 7,7x 10" U/1 oder mehr Lipase
5.8 x 102 U/1 oder mehr Esterase
9,6 x 102 U/1 oder mehr Pyruvatkinase
5,3 x 103 U/1 oder mehr Lactatdehydrogenase
Reagens 2:
2.9 x 103 U/1 oder mehr Glycerokinase
Die Reaktion wird am centrifugai fast analyzer bei 340 nm und 25 °C gemessen. Durch Erhöhung der ATP-Konzentration im Test wird die Michaelis-Konstante der Pyruvatkinase scheinbar so weit erhöht, dass sie gross ist gegenüber der Gly-cerin-Obergrenze im Test. Die anderen Enzyme werden überdosiert. Dadurch wird die Pyruvatkinase-Reaktion geschwindigkeitsbestimmend und die Glycerinkonzentration kann aus der Reaktionsgeschwindigkeit bestimmt werden.
Zur Durchführung der Bestimmung wurden 10 jxl der zu untersuchenden Serumprobe mit 30 bis 50 (il physiologischer Kochsalzlösung und 500 bis 600 |il des Reagens, welches die Glycerokinase noch nicht enthielt, gemischt und 10 Minuten stehen gelassen. Dann wurde die Glycerokinase zugesetzt und nach 50 Sekunden die erste, nach 150 bis 200 Sekunden die zweite Ablesung durchgeführt.
Die Methode erfasst einen Konzentrationsbereich von 500 bis 9000 mg Triglycerid pro Liter.
Regressionsvergleich y = 0,99x0,51 Korrelationskoeffizient r = 0,999
5 625 272
Beispiel 2a
Bestimmung von Glycerin
Das Verfahren wird kinetisch mit folgenden Reagentien durchgeführt:
5
Reagens 1 :
45-55 mmol/1 Phosphatpuffer pH 7,0 4,6-3,1 mmol/1 Magnesiumsulfat 300-400 (xmol/1 Natriumdodecylsulfat io 2,3-3,5 mmol/1 ATP
280-420 ia.mol/1 Phosphoenolpyruvat
120-230 |4.mol/l NADH
9,6 x 102 U/1 oder mehr Pyruvatkinase
5,3 x 103 U/1 oder mehr Lactatdehydrogenase
15
Reagens 2:
2,9 x 103 U/1 oder mehr Glycerokinase
Die Reaktion wird am centrifugai fast analyzer bei 340 nm und 25 °C gemessen.
20 Durch Erhöhung der ATP-Konzentration im Test wird die Michaelis-Konstante der Pyruvatkinase scheinbar soweit erhöht, dass sie gross genug ist gegenüber der Glycerin-Obergrenze im Test. Die anderen Enzyme werden überdosiert. Dadurch wird die Pyruvatkinase-Reaktion geschwindigkeitsbestimmend und 25 die Glycerin-Konzentration kann aus der Reaktionsgeschwindigkeit bestimmt werden.
Zur Durchführung der Bestimmung wurden 100 |xl der zu untersuchenden Serumprobe mit 100 jxl physiologischer Kochsalzlösung und 500 bis 600 (_tl des Reagens, welches die Glycero-30 kinase noch nicht enthielt, gemischt. Dann wurde die Glycerokinase zugesetzt und nach 50 Sekunden die erste, nach 150 bis 200 Sekunden die zweite Ablesung durchgeführt.
Die Methode erfasst einen Konzentrationsbereich von 50 bis 900 mg Glycerin pro Liter.
35
Beispiel 3
Gesamtcholesterin
Die Bestimmung verläuft gemäss folgender Gleichung:
Cholesterinester + Choiesteìrln-Esteras^ Cholesterin +
^EC 3.1.1.13 Fettsäure
Cholesterin + 02 Choies terin-Oxydase^ Cholestenon + H202
H2°2 + CH30H Katalase v h9C0 + 2H,0 EC 1.11.1.6 2
H2CO + 2CH3COCH2COCH3 + NH3 . lü1© +3 H20
= 412 nm max
625272
Durch Überdosierung der Enzyme Cholesterinesterase und Cholesterinoxydase wird die nach pseudoerster Ordnung ablaufende Farbreaktion geschwindigkeitsbestimmend. Das Verfahren wird beispielsweise am Eppendorf 5032- oder Braun Syste Matik-Automaten mit nachstehendem Reagens durchgeführt:
0,45-0,75 mol/1 Ammoniumphosphatpuffer pH 7,0 1,36-2,04 mol/1 Methanol 16-24 mmol/1 Acetylaceton 0,79-1,19 g/1 Hydroxypolyäthoxydodecan 500 kU/I Katalase oder mehr 20 U/1 Cholesterinesterase oder mehr 20 U/1 Cholesterinoxydase oder mehr
6
Ein in gleicher Weise zusammengesetztes Leerwertreagens enthält die Cholesterinoxydase nicht.
Zur Durchführung der Bestimmung am Eppendorf 5032-Automaten werden 0,01 ml der zu untersuchenden Probe mit 5 1,0 ml des Reagens gemischt und bei 37 °C 20 Minuten inkubiert. Dann wurde bei Hg 405 mnm die Extinktion abgelesen.
In einem Leerwertansatz mit gleicher Zusammensetzung, der die Cholesterinoxydase nicht enthielt, wurde genauso vorgegangen. Aus der Extinktionsdifferenz zwischen Proben-io ansatz und Leerwertansatz errechnet sich die Cholesterin-menge.
Regressionsgerade y = 0,98 + 1,98;
Korrelationskoeffizient r = 0,997
Claims (15)
1. Verfahren zur kinetischen Bestimmung von Enzymsubstraten mittels gekoppelter Reaktionen, dadurch gekennzeichnet, dass die Reaktionsparameter so gewählt werden, dass die spezifischste Teilreaktion der Reaktionskette geschwindigkeitsbestimmend für die ganze Reaktionskette wird und die geschwindigkeitsbestimmende Teilreaktion nach erster oder pseudoerster Ordnung abläuft.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, dass die kinetische Bestimmung durch Messung einer Veränderung in einem vorgegebenen Zeitintervall durchgeführt wird.
3. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, dass die spezifischste Teilreaktion durch Überdosierung des Enzyms oder der Enzyme der anderen Teilreaktion bzw. Teilreaktionen geschwindigkeitsbestimmend gestaltet wird.
4. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, dass die spezifischste Teilreaktion durch geeignete Auswahl der Art des eingesetzten Enzyms, je nach seiner Michaelis-Konstante, durch künstliche Veränderung der Michaelis-Kon-stante oder durch künstliche Veränderung des Substrats, so gestaltet wird, dass sie geschwindigkeitsbestimmend ist und nach pseudoerster Ordnung abläuft.
5. Verfahren nach Anspruch 4, dadurch gekennzeichnet, dass die künstliche Veränderung der Michaelis-Konstante durch Änderung des Metallatoms im aktiven Zentrum, durch partielle Spaltung des Enzyms, durch chemische Modifizierung des aktiven Zentrums oder/und durch Konformationsänderung erfolgt.
6. Verfahren nach Anspruch 5, dadurch gekennzeichnet, dass eine Veränderung des Substrats durch Komplexierung oder Mizellbildung erfolgt.
7. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, dass ein Reaktionsablauf nach der pseudoersten Ordnung hergestellt wird, indem der zweite oder weitere Reaktionspartner, der nicht das zu bestimmende Substrat oder ein Folgeprodukt desselben ist, im Überschuss zugegeben wird.
8. Verfahren nach Anspruch 1 oder 7, dadurch gekennzeichnet, dass ein Reaktionsablauf nach pseudoerster Ordnung durch echte oder scheinbare Erhöhung der Michaelis-Konstante des Enzyms der geschwindigkeitsbestimmenden Teilreaktion eingestellt wird.
9. Verfahren nach Anspruch 8, dadurch gekennzeichnet, dass die scheinbare Erhöhung der Michaelis-Konstante durch Zusatz eines Reaktionsnebenproduktes oder durch Inhibitorzugabe erfolgt.
10. Reagens zur Durchführung des Verfahrens gemäss Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, dass es solche Enzyme und Reaktionsteilnehmer und diese in einer solchen Dosierung enthält, dass die spezifischste Teilreaktion der bei Zugabe des Substrates zu einer wässrigen Lösung des Reagens ablaufenden Reaktionskette geschwindigkeitsbestimmend ist und nach erster oder pseudoerster Ordnung abläuft.
11. Reagens nach Anspruch 10, dadurch gekennzeichnet, dass es das Enzym oder die Enzyme der weniger spezifischen Teilreaktion oder Reaktionen überdosiert enthält.
12. Reagens nach Anspruch 11 zur Bestimmung von Blutzucker, bestehend aus 80 bis 120 mM Phosphatpuffer pH 7,0,0,8 U/ml oder mehr POD, 12 U/ml oder mehr GOD, 0,60 bis 1,80 mM 4-Aminoantipyrin, 3,0 bis 13,5 mM Phenol.
13. Reagens nach Anspruch 11 zur Bestimmung von Triglyceriden, bestehend aus: Reagens 1,45 bis 55 mmol/1 Phosphatpuffer pH 7,0,4,6 bis 3,1 mmol/1 Magnesiumsulfat, 300 bis 400 (j.mol/1 Natriumdodecylsulfat, 2,3 bis 3,5 mmol/1 ATP, 280 bis 420 (xmol/l Phosphoenolpyruvat, 120 bis 230 p.mol/1 NADH ; 7,7 x 104 U/1 oder mehr Lipase,.5,8 x 102 U/1 oder mehr Esterase, 9,6 x 102 U/1 oder mehr Pyruvatkinase, 5,3 x 103 U/1 oder mehr Lactatdehydrogenase; Reagens 2,2,9 x 103 U/1 oder mehr Glycerokinase.
14. Reagens nach Anspruch 11 zur Bestimmung von Glyce-rin, bestehend aus: Reagens 1,45 bis 55 mmol/1 Phosphatpuffer pH 7,0,4,6 bis 3,1 mmol/1 Magnesiumsulfat, 300 bis 400 |i.mo!/l Natriumdodecylsulfat, 2,3 bis 3,5 mmol/1 ATP, 280 bis 420 jj.mol/1 Phosphoenolpyruvat, 120 bis 230 p.mol/1 NADH ; 9,6 x 102 U/1 oder mehr Pyruvatkinase, 5,3 x 103 U/1 oder mehr Lactatdehydrogenase; Reagens 2,2,9 x 103 U/1 oder mehr Glycerokinase.
15. Reagens nach Anspruch 11 zur Bestimmung von Gesamtcholesterin, bestehend aus 0,45 bis 0,75 mol/1 Ammoniumphosphatpuffer pH 7,0,1,36 bis 2,04 mol/1 Methanol, 16 bis 24 mmol/1 Acetylaceton, 0,79 bis 1,19 g/1 Hydroxypolyäthoxydode-can, mindestens 500 kU/1 Katalase, mindestens 20 U/1 Choleste-rinesterase, mindestens 20 U/1 Cholesterinoxydase.
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DE2558536A DE2558536B2 (de) | 1975-12-24 | 1975-12-24 | Verfahren zur kinetischen Substratbestimmung und Reagens zu seiner Durchführung |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CH625272A5 true CH625272A5 (de) | 1981-09-15 |
Family
ID=5965531
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CH1628576A CH625272A5 (de) | 1975-12-24 | 1976-12-23 |
Country Status (16)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US4229527A (de) |
| JP (1) | JPS5934116B2 (de) |
| AU (1) | AU511225B2 (de) |
| BE (1) | BE849804A (de) |
| CA (1) | CA1100022A (de) |
| CH (1) | CH625272A5 (de) |
| DD (1) | DD127909A5 (de) |
| DE (1) | DE2558536B2 (de) |
| FI (1) | FI60887C (de) |
| FR (1) | FR2336682A1 (de) |
| GB (1) | GB1571899A (de) |
| HU (1) | HU174894B (de) |
| IT (1) | IT1064332B (de) |
| NL (1) | NL7613819A (de) |
| SE (1) | SE441364B (de) |
| SU (1) | SU1055346A3 (de) |
Families Citing this family (9)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE2833723A1 (de) * | 1978-08-01 | 1980-02-21 | Boehringer Mannheim Gmbh | Verfahren und reagens zur bestimmung eines oxidierten pyridincoenzyms |
| DE2950381A1 (de) * | 1979-12-14 | 1981-06-19 | Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim | Verfahren und reagens zur bestimmulng von triglyceriden |
| US4425427A (en) | 1980-03-13 | 1984-01-10 | Vitafin N.V. | Simultaneous, kinetic, spectrophotometric analysis of blood serum for multiple components |
| ATE4328T1 (de) * | 1980-09-19 | 1983-08-15 | Boehringer Mannheim Gmbh | Verfahren und reagens zur bestimmung von glycerin. |
| DE3046241A1 (de) * | 1980-12-08 | 1982-07-15 | Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim | Verfahren und reagenz zur bestimmung von cholesterin |
| DE3208253A1 (de) * | 1982-03-08 | 1983-09-15 | Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim | Verfahren zur spezifischen bestimmung des cholesterins der ldl-fraktion im serum |
| DE3340709A1 (de) * | 1983-11-10 | 1985-05-23 | Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim | Kompetitiver inhibitor fuer gk |
| DE3439181C2 (de) * | 1984-10-23 | 1994-01-20 | Lange Gmbh Dr Bruno | Verfahren zur photometrischen Bestimmung der Konzentration einer Substanz |
| CN109596551A (zh) * | 2018-12-24 | 2019-04-09 | 苏州科铭生物技术有限公司 | 一种基于微量法的纤维素酶活性测定试剂盒及其方法 |
Family Cites Families (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS5033795B1 (de) * | 1970-11-25 | 1975-11-04 | ||
| IT986838B (it) * | 1972-05-12 | 1975-01-30 | Sclavo Inst Sieroterapeut | Complesso di reagenti per la deter minazione enzimatica del glucosio sistema glucosio ossidasi perossi dasi con metodo manuale e automati co con lettura a termine o in cinetica |
| AT324282B (de) * | 1972-06-19 | 1975-08-25 | Boehringer Mannheim Gmbh | Verfahren und reagens zur bestimmung von triglyceriden |
| DE2349819A1 (de) * | 1973-10-04 | 1975-04-17 | Eppendorf Geraetebau Netheler | Verfahren zur enzymkinetischen konzentrationsbestimmung eines substrats |
| DK678474A (de) * | 1974-02-15 | 1975-10-13 | Hoffmann La Roche |
-
1975
- 1975-12-24 DE DE2558536A patent/DE2558536B2/de active Granted
-
1976
- 1976-11-15 CA CA265,619A patent/CA1100022A/en not_active Expired
- 1976-11-30 IT IT29969/76A patent/IT1064332B/it active
- 1976-12-13 NL NL7613819A patent/NL7613819A/xx not_active Application Discontinuation
- 1976-12-17 SE SE7614226A patent/SE441364B/xx not_active IP Right Cessation
- 1976-12-20 FI FI763653A patent/FI60887C/fi not_active IP Right Cessation
- 1976-12-20 GB GB53002/76A patent/GB1571899A/en not_active Expired
- 1976-12-21 FR FR7638547A patent/FR2336682A1/fr active Granted
- 1976-12-22 HU HU76BO1647A patent/HU174894B/hu not_active IP Right Cessation
- 1976-12-22 AU AU20832/76A patent/AU511225B2/en not_active Expired
- 1976-12-22 DD DD7600196540A patent/DD127909A5/de unknown
- 1976-12-23 BE BE173591A patent/BE849804A/xx not_active IP Right Cessation
- 1976-12-23 CH CH1628576A patent/CH625272A5/de not_active IP Right Cessation
- 1976-12-24 SU SU762432255A patent/SU1055346A3/ru active
- 1976-12-24 JP JP51156114A patent/JPS5934116B2/ja not_active Expired
-
1978
- 1978-10-23 US US05/954,139 patent/US4229527A/en not_active Expired - Lifetime
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| AU511225B2 (en) | 1980-08-07 |
| IT1064332B (it) | 1985-02-18 |
| HU174894B (hu) | 1980-04-28 |
| DE2558536B2 (de) | 1979-07-12 |
| DE2558536A1 (de) | 1977-07-07 |
| GB1571899A (en) | 1980-07-23 |
| FI763653A7 (de) | 1977-06-25 |
| JPS5934116B2 (ja) | 1984-08-20 |
| DE2558536C3 (de) | 1991-03-07 |
| BE849804A (fr) | 1977-06-23 |
| AU2083276A (en) | 1978-06-29 |
| NL7613819A (nl) | 1977-06-28 |
| SE441364B (sv) | 1985-09-30 |
| DD127909A5 (de) | 1977-10-19 |
| US4229527A (en) | 1980-10-21 |
| FI60887C (fi) | 1982-04-13 |
| SE7614226L (sv) | 1977-06-25 |
| SU1055346A3 (ru) | 1983-11-15 |
| CA1100022A (en) | 1981-04-28 |
| FR2336682B1 (de) | 1982-10-22 |
| FI60887B (fi) | 1981-12-31 |
| FR2336682A1 (fr) | 1977-07-22 |
| JPS5282387A (en) | 1977-07-09 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| DE2265121C3 (de) | Enzympräparat zur Bestimmung von Cholesterin und Verfahren zu seiner Herstellung | |
| DE69620819T2 (de) | Enzymatische Produktion von Glukonsäure und ihrer Salzen | |
| EP0016947B1 (de) | Verfahren und Reagenz zur enzymatischen Bestimmung von Enzymsubstraten | |
| EP0186134A1 (de) | Mittel zur Verbesserung des Nachweises Wasserstoffperoxid liefernder Oxidase-Reaktionen und seine Verwendung | |
| EP0088420B1 (de) | Verfahren zur spezifischen Bestimmung des Cholesterins der LDL-Fraktion im Serum | |
| DE3239236A1 (de) | Verfahren zur quantitativen bestimmung von physiologischen komponenten in biologischen fluessigkeiten oder gasen | |
| EP0009076A1 (de) | Verfahren zur quantitativen enzymatischen Bestimmung von ADP und Reagenz zur Durchführung des Verfahrens | |
| DE69129306T2 (de) | Hochempfindliches bestimmungsverfahren für ammoniak, alpha-aminosäure oder alpha-ketosäure und zusammensetzung hierfür | |
| DE2558536C3 (de) | ||
| DE3526334A1 (de) | Hochempfindlicher quantitativer enzymatischer assay | |
| EP0120440A2 (de) | NAD(P)-unabhängige Glycerindehydrogenase, Verfahren zu deren Herstellung sowie deren Verwendung zur Bestimmung von Glycerin und Triglyceriden | |
| DE2526558A1 (de) | Verfahren zur enzymatischen analyse | |
| EP0042969B1 (de) | Verfahren zur Stabilisierung der alkalischen Phosphatase | |
| DE2459087C3 (de) | Verfahren und Reagenz zur Bestimmung von Serumtriglyceriden | |
| EP0067234B1 (de) | Verfahren zur aktivitätsbestimmung von cholinesterase | |
| DE69128873T2 (de) | Verfahren zur enzymatischen Messung von Wasserstoffperoxid und Reagenz dafür | |
| DE69026006T2 (de) | Enzymatisches Verfahren zur Bestimmung der Analyt-Konzentration | |
| DE4321807C2 (de) | Verfahren zur quantitativen Bestimmung von 1,5-Anhydroglucitol und Testpack | |
| EP0048347B1 (de) | Verfahren und Reagens zur Bestimmung von Glycerin | |
| DE3882770T2 (de) | Verfahren und Reagens zur Bestimmung von Dehydrogenase oder ihrem Substrat. | |
| DE3236388A1 (de) | Verfahren zur selektiven herstellung reduzierter sauerstoffspezies und hierfuer geeignete reagentien | |
| EP0144798B1 (de) | Verfahren und Reagenz zur Bestimmung von Glycerin mittels eines kompetitiven Inhibitors für Glycerinkinase | |
| DE4306278C2 (de) | Verfahren zur quantitativen Analyse von 1,5-Anhydroglucitol | |
| EP0008341A1 (de) | Verfahren und Reagenz zur Durchführung enzymatischer Bestimmungen und Testkit zur Durchführung des Verfahrens | |
| DE3725851A1 (de) | Nad(p)h-oxidase, verfahren zu ihrer isolierung und anwendung |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| PL | Patent ceased |