CN106987657A - 用于鉴别牛病毒腹泻病毒和牛轮状病毒的引物组合及其应用 - Google Patents

用于鉴别牛病毒腹泻病毒和牛轮状病毒的引物组合及其应用 Download PDF

Info

Publication number
CN106987657A
CN106987657A CN201710264432.7A CN201710264432A CN106987657A CN 106987657 A CN106987657 A CN 106987657A CN 201710264432 A CN201710264432 A CN 201710264432A CN 106987657 A CN106987657 A CN 106987657A
Authority
CN
China
Prior art keywords
primer
sequence
bovine
diarrhea virus
viral diarrhea
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
CN201710264432.7A
Other languages
English (en)
Other versions
CN106987657B (zh
Inventor
谢芝勋
范晴
谢志勤
谢丽基
黄莉
黄娇玲
张艳芳
曾婷婷
王盛
罗思思
邓显文
刘加波
庞耀珊
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Guangxi Veterinary Research Institute
Original Assignee
Guangxi Veterinary Research Institute
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Guangxi Veterinary Research Institute filed Critical Guangxi Veterinary Research Institute
Priority to CN201710264432.7A priority Critical patent/CN106987657B/zh
Publication of CN106987657A publication Critical patent/CN106987657A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN106987657B publication Critical patent/CN106987657B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/70Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving virus or bacteriophage
    • C12Q1/701Specific hybridization probes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6844Nucleic acid amplification reactions

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

本发明公开了一种用于鉴别牛病毒腹泻病毒和牛轮状病毒的引物组合及其应用。本发明提供的引物组合由序列表的序列1‑8所示的单链DNA分子组成,在序列3所示的单链DNA分子的5’端连接有荧光基团A,在序列7所示的单链DNA分子的5’端连接有荧光基团B。本发明首次在LAMP方法中引入了荧光基团,建立了鉴定BVDV和BRV的二重荧光RT‑LAMP方法,通过扩增产物颜色观察可同时鉴别诊断两种病毒。本发明建立的二重RT‑LAMP方法特异性好,能高效扩增目的基因,而对其它病原核酸无扩增,敏感性好,最低能检测到100个混合模板拷贝/反应,是一种简便,快速,低成本的诊断方法,适用于大规模的流行病学调查。

Description

用于鉴别牛病毒腹泻病毒和牛轮状病毒的引物组合及其应用
技术领域
本发明涉及一种用于鉴别牛病毒腹泻病毒和牛轮状病毒的引物组合及其应用。
背景技术
牛病毒性腹泻病毒(Bovine viral diarrhea disease virus,BVDV)和牛轮状病毒(Bovine Rotavirus,BRV)是两种常见牛腹泻病毒,症状相似,难以区分。BVDV临床上常出现发热、腹泻、黏膜损伤和趾部损伤,但大多数感染BVDV的牛以持续性感染不表现临床症状存在,持续感染的牛一旦再次接触抗原相似性抗原便会继发为黏膜病,死亡率100%。持续性感染的牛可通过血液、排泄物等多种途径水平传播病毒,还可通过生殖道垂直传播,它们终身带毒,持续排毒,成为重要传染源,是养牛业潜在的危害。牛轮状病毒感染1-7日龄的犊牛,可引起犊牛消化道机能紊乱,临床上以呕吐、腹泻、脱水和酸碱平衡为特征。两种病毒感染后都会引起严重的经济损失,因此急需建立牛病毒性腹泻和牛轮状病毒的快速检测技术,为我国BVDV和BRV的防控提供技术支持。
目前常用的BVDV和BRV的诊断方法主要有:病原分离,血清学方法和分子生物学方法(RT-PCR和荧光RT-PCR)。环介导的体外等温扩增检测技术(Loop-mediatedisothermalamplification,LAMP)在PCR方法上发展起来的新兴核酸检测技术,突破了恒温扩增的技术难点,6条引物同效率时增,敏感性高,特异性好,已在多种疾病的检测上得到应用。多重LAMP是一种高效的LAMP形式,一次LAMP反应,可同时检测、鉴别多种病原体。但目前国内的多重LAMP方法都有一定的局限性,不能确定具体到底是哪一种病原引起的阳性结果,不能实现真正意义上的鉴别诊断。
发明内容
本发明的目的是提供一种用于鉴别牛病毒腹泻病毒和牛轮状病毒的引物组合及其应用。
本发明首先保护引物组合,由引物组I和引物组II组成;
所述引物组I由引物BVDV-F3、引物BVDV-B3、引物BVDV-FIP和引物BVDV-BIP组成;
所述引物BVDV-F3为如下(a1)或(a2):
(a1)序列表的序列1所示的单链DNA分子;
(a2)将序列1经过一个或几个核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且与序列1具有相同功能的DNA分子;
所述引物BVDV-B3为如下(a3)或(a4):
(a3)序列表的序列2所示的单链DNA分子;
(a4)将序列2经过一个或几个核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且与序列2具有相同功能的DNA分子;
所述引物BVDV-FIP为如下(a5)或(a6):
(a5)序列表的序列3所示的单链DNA分子;
(a6)将序列3经过一个或几个核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且与序列3具有相同功能的DNA分子;
所述引物BVDV-BIP为如下(a7)或(a8):
(a7)序列表的序列4所示的单链DNA分子;
(a8)将序列4经过一个或几个核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且与序列4具有相同功能的DNA分子;
所述引物组II由引物BRV-F3、引物BRV-B3、引物BRV-FIP和引物BRV-BIP组成;
所述引物BRV-F3为如下(b1)或(b2):
(b1)序列表的序列5所示的单链DNA分子;
(b2)将序列5经过一个或几个核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且与序列5具有相同功能的DNA分子;
所述引物BRV-B3为如下(b3)或(b4):
(b3)序列表的序列6所示的单链DNA分子;
(b4)将序列6经过一个或几个核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且与序列6具有相同功能的DNA分子;
所述引物BRV-FIP为如下(b5)或(b6):
(b5)序列表的序列7所示的单链DNA分子;
(b6)将序列7经过一个或几个核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且与序列7具有相同功能的DNA分子;
所述引物BRV-BIP为如下(b7)或(b8):
(b7)序列表的序列8所示的单链DNA分子;
(b8)将序列8经过一个或几个核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且与序列8具有相同功能的DNA分子。
所述引物BVDV-FIP的5’端连接有荧光基团A。
所述引物BRV-FIP的5’端连接有荧光基团B。
所述荧光基团A可为FITC。
所述荧光基团B可为CY5.5。
所述引物组合的用途为如下(c1)至(c6)中的任一种:
(c1)鉴别牛病毒腹泻病毒和牛轮状病毒;
(c2)制备用于鉴别牛病毒腹泻病毒和牛轮状病毒的试剂盒;
(b3)检测待测病原微生物是否为牛病毒腹泻病毒或牛轮状病毒;
(c4)制备用于检测待测病原微生物是否为牛病毒腹泻病毒或牛轮状病毒的试剂盒;
(c5)检测待测样本中是否含有牛病毒腹泻病毒和/或牛轮状病毒;
(c6)制备用于检测待测样本中是否含有牛病毒腹泻病毒和/或牛轮状病毒的试剂盒。
本发明还保护所述引物组合的应用,为如下(c1)至(c6)中的任一种:
(c1)鉴别牛病毒腹泻病毒和牛轮状病毒;
(c2)制备用于鉴别牛病毒腹泻病毒和牛轮状病毒的试剂盒;
(b3)检测待测病原微生物是否为牛病毒腹泻病毒或牛轮状病毒;
(c4)制备用于检测待测病原微生物是否为牛病毒腹泻病毒或牛轮状病毒的试剂盒;
(c5)检测待测样本中是否含有牛病毒腹泻病毒和/或牛轮状病毒;
(c6)制备用于检测待测样本中是否含有牛病毒腹泻病毒和/或牛轮状病毒的试剂盒。
本发明还保护含有所述引物组合的试剂盒;所述试剂盒的用途为如下(d1)-(d3)中的至少一种:
(d1)鉴别牛病毒腹泻病毒和牛轮状病毒;
(d2)检测待测病原微生物是否为牛病毒腹泻病毒或牛轮状病毒;
(d3)检测待测样本中是否含有牛病毒腹泻病毒和/或牛轮状病毒。
本发明还保护所述试剂盒的制备方法,包括将各条引物单独包装的步骤。
本发明还保护一种鉴别牛病毒腹泻病毒和牛轮状病毒的方法,包括如下步骤:提取待测病毒的核酸;以所述核酸为模板,采用所述引物组合进行二重荧光RT-LAMP,然后进行如下判断:如果能够检测到具有荧光基团A对应的荧光的扩增产物、待测病毒为牛病毒腹泻病毒,如果够检测到具有荧光基团B对应的荧光的扩增产物、待测病毒为牛轮状病毒。
所述方法中,当所述荧光基团A为FITC时,所述荧光基团B为CY5.5时,如果所述扩增产物可以在520nm的紫外光下观察到绿色的DNA片段、待测病毒为牛病毒腹泻病毒,如果所述扩增产物可以在670nm的紫外光下观察到红色的DNA片段、待测病毒为牛轮状病毒。
所述方法中,所述待测病毒为牛病毒腹泻病毒或牛轮状病毒。
本发明还保护一种检测待测病原微生物是否为牛病毒腹泻病毒或牛轮状病毒的方法,包括如下步骤:提取待测病原微生物的核酸;以所述核酸为模板,采用所述引物组合进行二重荧光RT-LAMP,然后进行如下判断:如果能够检测到具有荧光基团A对应的荧光的扩增产物、待测病原微生物为牛病毒腹泻病毒,如果够检测到具有荧光基团B对应的荧光的扩增产物、待测病原微生物为牛轮状病毒,如果不能检测到具有荧光基团A对应的荧光的扩增产物且不能检测到具有荧光基团B对应的荧光的扩增产物,待测病原微生物为非牛病毒腹泻病毒且非牛轮状病毒。
所述方法中,当所述荧光基团A为FITC时,所述荧光基团B为CY5.5时,如果所述扩增产物可以在520nm的紫外光下观察到绿色的DNA片段、待测病原微生物为牛病毒腹泻病毒,如果所述扩增产物可以在670nm的紫外光下观察到红色的DNA片段、待测病原微生物为牛轮状病毒,如果所述扩增产物无法在520nm的紫外光下观察到绿色的DNA片段且无法在670nm的紫外光下观察到红色的DNA片段、待测病原微生物为非牛病毒腹泻病毒且非牛轮状病毒。
所述方法中,所述待测病原微生物为牛支原体、牛病毒性腹泻病毒、牛传染性鼻气管炎病毒、口蹄疫病毒、水泡性口炎病毒、蓝舌病病毒、牛轮状病毒或小反刍兽疫病毒。
所述牛支原体具体可为牛支原体GL-1株。
所述牛病毒性腹泻病毒具体可为牛病毒性腹泻病毒Oregon株或牛病毒性腹泻病毒GX-041株(BVDV-2型)。
所述口蹄疫病毒具体可为口蹄疫病毒A型。
所述水泡性口炎病毒具体可为水泡性口炎病毒NJ型或水泡性口炎病毒IND型。
所述蓝舌病病毒具体可为蓝舌病病毒血清4型。
所述牛轮状病毒具体可为牛轮状病毒NCDV株。
所述小反刍兽疫病毒具体可为小反刍兽疫病毒Nigeria75/1株。
本发明还保护一种检测待测样本中是否含有牛病毒腹泻病毒和/或牛轮状病毒的方法,包括如下步骤:提取待测样本的核酸;以所述核酸为模板,采用所述引物组合进行二重荧光RT-LAMP,然后进行如下判断:如果能够检测到具有荧光基团A对应的荧光的扩增产物、待测样本中含有牛病毒腹泻病毒,如果能够检测到具有荧光基团B对应的荧光的扩增产物、待测样本中含有牛轮状病毒,如果能够检测到具有荧光基团A对应的荧光的扩增产物且如果能够检测到具有荧光基团B对应的荧光的扩增产物、待测样本中含有牛病毒腹泻病毒且含有牛轮状病毒,如果不能检测到具有荧光基团A对应的荧光的扩增产物且不能检测到具有荧光基团B对应的荧光的扩增产物、待测样本中不含有牛病毒腹泻病毒且不含有牛轮状病毒。
所述方法中,当所述荧光基团A为FITC时,所述荧光基团B为CY5.5时,如果所述扩增产物可以在520nm的紫外光下观察到绿色的DNA片段、待测样本中含有牛病毒腹泻病毒,如果所述扩增产物可以在670nm的紫外光下观察到红色的DNA片段、待测样本中含有牛轮状病毒,如果所述扩增产物可以在520nm的紫外光下观察到绿色的DNA片段并且可以在670nm的紫外光下观察到红色的DNA片段、待测样本中含有牛病毒腹泻病毒且含有牛轮状病毒,如果所述扩增产物无法在520nm的紫外光下观察到绿色的DNA片段并且无法在670nm的紫外光下观察到红色的DNA片段、待测样本中不含有牛病毒腹泻病毒且不含有牛轮状病毒。
所述方法中,所述待测样本为离体的动物组织,例如牛肉、牛肉加工制成的食品、牛内脏,牛内脏加工制成的食品等等。
以上任一所述核酸为DNA、RNA、或DNA和RNA的混合物。
以上任一所述提取待测样本的核酸或待测病毒的核酸为使用RNA/DNA共提试剂盒提取得到的核酸。
以上任一所述二重荧光RT-LAMP的初始反应体系为(25μL):模板1μL、10×buffer2.5μL、Bst DNA聚合酶15U、AMV逆转录酶20U、引物BVDV-FIP-2 40pmol、引物BVDV-BIP40pmol、引物BRV-FIP-2 40pmol、引物BRV-BIP 40pmol、引物BVDV-F3 5pmol、引物BVDV-B35pmol、引物BRV-F3 5pmol、引物BRV-B3 5pmol,余量为水。
所述10×buffer的成分为:Tris-HCl(pH 8.8)200mM、KCl 100mM、MgSO4 80mM、(NH4)2SO4 100mM、1%(体积百分比)Tween 20、甜菜碱8M、dNTPs 14M。
以上任一所述二重荧光RT-LAMP的反应程序为:42℃ 20min,62℃ 90min,80℃5min。
本发明首次在LAMP方法中引入了荧光基团,建立了鉴定BVDV和BRV的二重荧光RT-LAMP方法,通过扩增产物颜色观察可同时鉴别诊断两种病毒。本发明建立的二重RT-LAMP方法特异性好,能高效扩增目的基因,而对其它病原核酸无扩增,敏感性好,最低能检测到100个混合模板拷贝/反应,是一种简便,快速,低成本的诊断方法,适用于大规模的流行病学调查。
附图说明
图1为引物组I和引物组II示意图。
图2为实施例3的结果。
图3为实施例5的电泳结果。
图4为实施例5的浊度检测结果。
图5为实施例6的结果。
具体实施方式
以下的实施例便于更好地理解本发明,但并不限定本发明。下述实施例中的实验方法,如无特殊说明,均为常规方法。下述实施例中所用的试验材料,如无特殊说明,均为自常规生化试剂商店购买得到的。以下实施例中的定量试验,均设置三次重复实验,结果取平均值。
实施例中用到的各个毒株见表1。
表1
10×buffer:SIGMA公司。成分为:Tris-HCl(pH8.8)200mM、KCl 100mM、MgS0480mM、(NH4)2SO4 100mM、1%(体积百分比)Tween 20、甜菜碱8M、dNTPs 14M。
Bst DNA聚合酶:new England。
AMV逆转录酶:Takara。
pEASY-T1载体:全世金生化科技(北京)有限公司。
牛肾细胞(MDBK):中国兽医药品监察所。
实施例1、引物组合的设计和制备
进行大量序列分析、比对获得了用于鉴别牛病毒腹泻病毒(BVDV)和牛轮状病毒(BRV)的若干引物。将各个引物进行预实验,比较灵敏度、特异性等性能,最终得到用于鉴别BVDV和BRV的2套引物组。每套引物组由外引物F3、外引物B3、内引物FIP(Flc+F2)和内引物BIP(Blc+B2)组成。
用于鉴定BVDV的引物组由如下四条引物组成(5’→3’):
BVDV-F3(序列表的序列1):TGCCCTTAGTAGGACTAGCA;
BVDV-B3(序列表的序列2):AGCACCCTATCAGGCTGTA;
BVDV-FIP(序列表的序列3):CGAACCACTGACGACTACCCTGGGTAGCAACAGTGGTGAGTT;
BVDV-BIP(序列表的序列4):CAAGCCTCGAGATGCCACGTCCGTTTTCACCTGAACGACC;
在引物BVDV-FIP的5’端连接荧光基团FITC。
用于鉴定BRV的引物组由如下四条引物组成(5’→3’):
BRV-F3(序列表的序列5):ACTCATGTGCAATAAACGC;
BRV-B3(序列表的序列6):GTTTAGTAGAAACTCTATTTCAACG;
BRV-FIP(序列表的序列7):TCTTTCTGCATCTGGTAAAAGAGTTTAATACGCAACAATTTGAGCA;
BRV-BIP(序列表的序列8):CCAAGAGTGATTAATTCAGCTGACGGGTCTAAGAATCACTGGATTG;
在引物BRV-FIP的5’端连接荧光基团CY5.5。
用于鉴定BVDV的引物组命名为引物组I,示意图如图1A所示。
用于鉴定BVDV的引物组命名为引物组II,示意图如图1B所示。
上述各条引物组成引物组合。
实施例2、检测方法的建立
1、采用RNA/DNA共提试剂盒提取待测样本的核酸。
2、取步骤1得到的核酸作为模板,采用实施例1制备的引物组合进行二重荧光RT-LAMP。
初始反应体系为(25μL):模板1μL、10×buffer 2.5μL、Bst DNA聚合酶15U、AMV逆转录酶20U、引物BVDV-FIP 40pmol、引物BVDV-BIP 40pmol、引物BRV-FIP 40pmol、引物BRV-BIP 40pmol、引物BVDV-F3 5pmol、引物BVDV-B3 5pmol、引物BRV-F3 5pmol、引物BRV-B35pmol,余量为水。
反应程序为:42℃ 20min,62℃ 90min,80℃ 5min。
3、取步骤2的产物,进行1%琼脂糖凝胶电泳,分别在波长为520nm和670nm的紫外灯下观察。
实施例3、特异性实验
待测样本为:表1中的牛病毒性腹泻病毒Oregon株、牛病毒性腹泻病毒GX-041株(BVDV-2型)、牛轮状病毒NCDV株、牛病毒性腹泻病毒Oregon株和牛轮状病毒NCDV株的混合物(混合物I)、口蹄疫病毒A型、水泡性口炎病毒NJ型、水泡性口炎病毒IND型、蓝舌病病毒血清4型、小反刍兽疫病毒Nigeria75/1株、牛传染性鼻气管炎病毒和牛支原体GL-1株。
按照实施例2建立的方法进行检测。
设置用ddH20作为模板作为待测样本的空白对照。
设置用牛肾细胞(MDBK)的核酸作为待测样本的阴性对照。
结果如图2所示。图2A为520nm通道的电泳图,条带为黄绿色。图2B为670nm通道的电泳结果,条带为大红色。图2C为520nm和670nm双通道的电泳结果,条带为红绿混合色。泳道1对应牛病毒性腹泻病毒Oregon株,泳道2对应牛病毒性腹泻病毒GX-041株(BVDV-2型),泳道3对应牛轮状病毒NCDV株,泳道4对应牛病毒性腹泻病毒Oregon株和牛轮状病毒NCDV株的混合物(混合物I),泳道5对应口蹄疫病毒A型,泳道6对应水泡性口炎病毒NJ型,泳道7对应水泡性口炎病毒IND型,泳道8对应蓝舌病病毒血清4型,泳道9对应小反刍兽疫病毒Nigeria75/1株,泳道10对应牛传染性鼻气管炎病毒,泳道11对应牛支原体GL-1株,泳道12对应空白对照,泳道13对应阴性对照。
结果表明,采用实施例2建立的方法只扩增BVDV和BRV核酸,以及BVDV和BRV混合模板。BVDV阳性呈黄绿色,仅在520通道下能看到;BRV阳性呈红色,仅在670通道下能看到;BVDV和BRV混合模板呈红绿混合色,且在520和670通道下都能观察到。而对其它牛病毒和阴性对照均无扩增,特异性好。
实施例4、标准品制备
BVDV标准品:将序列表的序列9所示的双链DNA分子与pEASY-T1载体连接,得到重组质粒,参照T7体外转录试剂盒(Fermentas)说明书将重组质粒酶切线性化,用DNA酶消除其中DNA的污染,体外转录为RNA,测定RNA浓度,根据阿弗加德罗常数将浓度转换为拷贝数,得到BVDV标准品。
BRV标准品:将序列表的序列10所示的双链DNA分子与pEASY-T1载体连接,得到重组质粒,参照T7体外转录试剂盒(Fermentas)说明书将重组质粒酶切线性化,用DNA酶消除其中DNA的污染,体外转录为RNA,测定RNA浓度,根据阿弗加德罗常数将浓度转换为拷贝数,得到BRV标准品。
实施例5、敏感性实验
1、将实施4制备的BVDV标准品和BRV标准品等拷贝数混合,得到混合液。
2、用ddH2O10倍梯度稀释步骤2得到的混合液,得到各个稀释液。
3、将步骤2得到的稀释液作为模板,采用实施例2建立的方法进行检测。
由于采用的稀释液的稀释度不同,形成如下不同的反应体系:
反应体系1中,BVDV标准品和BRV标准品的初始浓度均为106拷贝/μL;
反应体系2中,BVDV标准品和BRV标准品的初始浓度均为105拷贝/μL;
反应体系3中,BVDV标准品和BRV标准品的初始浓度均为104拷贝/μL;
反应体系4中,BVDV标准品和BRV标准品的初始浓度均为103拷贝/μL;
反应体系5中,BVDV标准品和BRV标准品的初始浓度均为102拷贝/μL;
反应体系6中,BVDV标准品和BRV标准品的初始浓度均为10拷贝/μL。
反应体系7中,BVDV标准品和BRV标准品的初始浓度均为1拷贝/μL。
设置用ddH2O作为模板作的空白对照。
结果如图3所示。图3A为520nm通道的电泳图,条带为黄绿色。图3B为670nm通道的电泳结果,条带为大红色。图3C为520nm和670nm双通道的电泳结果,条带为红绿混合色。泳道1-7依次对应反应体系1-7,泳道8对应空白对照。
将反应产物使用实时浊度仪loopam LA-320C生成650nm下的实时浊度图,如图4所示。曲线1-7依次对应反应体系1-7,曲线8对应空白对照。
上述结果表明,采用实施例2建立的方法检测BVDV和BRV混合模板标准品,当检测体系中模板浓度低至100拷贝/μL时,也可以检测出BVDV和BRV,方法灵敏性高。
实施例6、干扰性实验
1、将实施4制备的BVDV标准品和BRV标准品等拷贝数混合,得到混合液。
2、用ddH2O10倍梯度稀释步骤2得到的混合液,得到各个稀释液。
3、将步骤2得到的稀释液作为模板,采用实施例2建立的方法进行检测。
由于采用的稀释液的稀释度不同,形成如下不同的反应体系:
反应体系1中,BVDV标准品的初始浓度均为105拷贝/μL,BRV标准品的初始浓度均为102拷贝/μL;
反应体系2中,BVDV标准品的初始浓度均为107拷贝/μL,BRV标准品的初始浓度均为103拷贝/μL;
反应体系3中,BVDV标准品的初始浓度均为102拷贝/μL,BRV标准品的初始浓度均为106拷贝/μL;
反应体系4中,BVDV标准品的初始浓度均为103拷贝/μL,BRV标准品的初始浓度均为106拷贝/μL。
结果如图5所示。图5A为520nm通道的电泳图,条带为黄绿色。图5B为670nm通道的电泳结果,条带为大红色。图5C为520nm和670nm双通道的电泳结果,条带为红绿混合色。泳道1-4依次对应反应体系1-4。
结果表明,对不同浓度混合标准品进行检测,当一个模板浓度高而另一个模板浓度较低时,二重荧光RT-LAMP仍然可同时检测到两个模板,不影响彼此扩增效率,干扰性小。
实施例7、临床样品检测
待测样本为:144份临床样本(腹泻牛的粪便棉拭子)。
提取待测样本的核酸,按照实施例2的方法进行检测。同时将阳性扩增产物进行测序以验证结果的正确性。
采用实施例2的方法进行检测,共检测出14份BVDV阳性样本和9份BRV阳性样本。将阳性样本进行测序,所有阳性结果均为真阳性,无非特异性扩增的假阳性。
<110> 广西壮族自治区兽医研究所
<120> 用于鉴别牛病毒腹泻病毒和牛轮状病毒的引物组合及其应用
<160> 10
<210> 1
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223>
<400> 1
tgcccttagt aggactagca 20
<210> 2
<211> 19
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223>
<400> 2
agcaccctat caggctgta 19
<210> 3
<211> 42
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223>
<400> 3
cgaaccactg acgactaccc tgggtagcaa cagtggtgag tt 42
<210> 4
<211> 40
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223>
<400> 4
caagcctcga gatgccacgt ccgttttcac ctgaacgacc 40
<210> 5
<211> 19
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223>
<400> 5
actcatgtgc aataaacgc 19
<210> 6
<211> 25
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223>
<400> 6
gtttagtaga aactctattt caacg 25
<210> 7
<211> 46
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223>
<400> 7
tctttctgca tctggtaaaa gagtttaata cgcaacaatt tgagca 46
<210> 8
<211> 46
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223>
<400> 8
ccaagagtga ttaattcagc tgacgggtct aagaatcact ggattg 46
<210> 9
<211> 228
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223>
<400> 9
tgcccttagt aggactagca aaacaaggag ggtagcaaca gtggtgagtt cgttggatgg 60
ctgaagccct gagtacaggg tagtcgtcag tggttcgacg ctttgtgcga caagcctcga 120
gatgccacgt ggacgagggc atgcccacag cacatcttaa cctgagcggg ggtcgttcag 180
gtgaaaacgg tttaaccaac cgctacgaat acagcctgat agggtgct 228
<210> 10
<211> 215
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223>
<400> 10
actcatgtgc aataaacgcg ccagctaata cgcaacaatt tgagcatatt gtacagcttc 60
gaggggtgtt gactacagct acaataactc ttttaccaga tgcagaaaga tttagttttc 120
caagagtgat taattcagct gacggagcga ctacatggta cttcaatcca gtgattctta 180
gaccaaataa cgttgaaata gagtttctac taaac 215

Claims (9)

1.引物组合,由引物组I和引物组II组成;
所述引物组I由引物BVDV-F3、引物BVDV-B3、引物BVDV-FIP和引物BVDV-BIP组成;
所述引物BVDV-F3为如下(a1)或(a2):
(a1)序列表的序列1所示的单链DNA分子;
(a2)将序列1经过一个或几个核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且与序列1具有相同功能的DNA分子;
所述引物BVDV-B3为如下(a3)或(a4):
(a3)序列表的序列2所示的单链DNA分子;
(a4)将序列2经过一个或几个核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且与序列2具有相同功能的DNA分子;
所述引物BVDV-FIP为如下(a5)或(a6):
(a5)序列表的序列3所示的单链DNA分子;
(a6)将序列3经过一个或几个核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且与序列3具有相同功能的DNA分子;
所述引物BVDV-BIP为如下(a7)或(a8):
(a7)序列表的序列4所示的单链DNA分子;
(a8)将序列4经过一个或几个核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且与序列4具有相同功能的DNA分子;
所述引物组II由引物BRV-F3、引物BRV-B3、引物BRV-FIP和引物BRV-BIP组成;
所述引物BRV-F3为如下(b1)或(b2):
(b1)序列表的序列5所示的单链DNA分子;
(b2)将序列5经过一个或几个核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且与序列5具有相同功能的DNA分子;
所述引物BRV-B3为如下(b3)或(b4):
(b3)序列表的序列6所示的单链DNA分子;
(b4)将序列6经过一个或几个核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且与序列6具有相同功能的DNA分子;
所述引物BRV-FIP为如下(b5)或(b6):
(b5)序列表的序列7所示的单链DNA分子;
(b6)将序列7经过一个或几个核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且与序列7具有相同功能的DNA分子;
所述引物BRV-BIP为如下(b7)或(b8):
(b7)序列表的序列8所示的单链DNA分子;
(b8)将序列8经过一个或几个核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且与序列8具有相同功能的DNA分子。
2.如权利要求1所述的引物组合,其特征在于:所述引物BVDV-FIP的5’端连接有荧光基团A;所述引物BRV-FIP的5’端连接有荧光基团B。
3.如权利要求2所述的引物组合,其特征在于:所述荧光基团A为FITC,所述荧光基团B为CY5.5。
4.权利要求1-3任一所述的引物组合的应用,为如下(c1)至(c6)中的任一种:
(c1)鉴别牛病毒腹泻病毒和牛轮状病毒;
(c2)制备用于鉴别牛病毒腹泻病毒和牛轮状病毒的试剂盒;
(b3)检测待测病原微生物是否为牛病毒腹泻病毒或牛轮状病毒;
(c4)制备用于检测待测病原微生物是否为牛病毒腹泻病毒或牛轮状病毒的试剂盒;
(c5)检测待测样本中是否含有牛病毒腹泻病毒和/或牛轮状病毒;
(c6)制备用于检测待测样本中是否含有牛病毒腹泻病毒和/或牛轮状病毒的试剂盒。
5.含有权利要求1-3任一所述的引物组合的试剂盒;所述试剂盒的用途为如下(d1)-(d3)中的至少一种:
(d1)鉴别牛病毒腹泻病毒和牛轮状病毒;
(d2)检测待测病原微生物是否为牛病毒腹泻病毒或牛轮状病毒;
(d3)检测待测样本中是否含有牛病毒腹泻病毒和/或牛轮状病毒。
6.权利要求5所述试剂盒的制备方法,包括将各条引物单独包装的步骤。
7.一种鉴别牛病毒腹泻病毒和牛轮状病毒的方法,包括如下步骤:提取待测病毒的核酸;以所述核酸为模板,采用所述引物组合进行二重荧光RT-LAMP,然后进行如下判断:如果能够检测到具有荧光基团A对应的荧光的扩增产物、待测病毒为牛病毒腹泻病毒,如果够检测到具有荧光基团B对应的荧光的扩增产物、待测病毒为牛轮状病毒。
8.一种检测病毒是否为牛病毒腹泻病毒或牛轮状病毒的方法,包括如下步骤:提取待测病原微生物的核酸;以所述核酸为模板,采用所述引物组合进行二重荧光RT-LAMP,然后进行如下判断:如果能够检测到具有荧光基团A对应的荧光的扩增产物、待测病原微生物为牛病毒腹泻病毒,如果够检测到具有荧光基团B对应的荧光的扩增产物、待测病原微生物为牛轮状病毒,如果不能检测到具有荧光基团A对应的荧光的扩增产物且不能检测到具有荧光基团B对应的荧光的扩增产物,待测病原微生物为非牛病毒腹泻病毒且非牛轮状病毒。
9.一种检测待测样本中是否含有牛病毒腹泻病毒和/或牛轮状病毒的方法,包括如下步骤:提取待测样本的核酸;以所述核酸为模板,采用所述引物组合进行二重荧光RT-LAMP,然后进行如下判断:如果能够检测到具有荧光基团A对应的荧光的扩增产物、待测样本中含有牛病毒腹泻病毒,如果能够检测到具有荧光基团B对应的荧光的扩增产物、待测样本中含有牛轮状病毒,如果能够检测到具有荧光基团A对应的荧光的扩增产物且如果能够检测到具有荧光基团B对应的荧光的扩增产物、待测样本中含有牛病毒腹泻病毒且含有牛轮状病毒,如果不能检测到具有荧光基团A对应的荧光的扩增产物且不能检测到具有荧光基团B对应的荧光的扩增产物、待测样本中不含有牛病毒腹泻病毒且不含有牛轮状病毒。
CN201710264432.7A 2017-04-21 2017-04-21 用于鉴别牛病毒腹泻病毒和牛轮状病毒的引物组合及其应用 Active CN106987657B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201710264432.7A CN106987657B (zh) 2017-04-21 2017-04-21 用于鉴别牛病毒腹泻病毒和牛轮状病毒的引物组合及其应用

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201710264432.7A CN106987657B (zh) 2017-04-21 2017-04-21 用于鉴别牛病毒腹泻病毒和牛轮状病毒的引物组合及其应用

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN106987657A true CN106987657A (zh) 2017-07-28
CN106987657B CN106987657B (zh) 2020-06-09

Family

ID=59416913

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201710264432.7A Active CN106987657B (zh) 2017-04-21 2017-04-21 用于鉴别牛病毒腹泻病毒和牛轮状病毒的引物组合及其应用

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN106987657B (zh)

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN107447056A (zh) * 2017-09-29 2017-12-08 广西壮族自治区兽医研究所 用于鉴别牛支原体和传染性鼻气管炎的成套引物及其应用
CN107699639A (zh) * 2017-11-23 2018-02-16 广西壮族自治区兽医研究所 一种鉴别牛轮状病毒和产肠毒大肠杆菌的引物及方法
CN112760421A (zh) * 2021-02-10 2021-05-07 北京三元集团畜牧兽医总站 同时检测牛轮状病毒、冠状病毒和病毒性腹泻病毒的三重荧光定量pcr试剂盒及应用方法
CN115851719A (zh) * 2021-06-11 2023-03-28 山东舜丰生物科技有限公司 一种基于crispr技术检测病原微生物的方法

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN105671201A (zh) * 2016-03-03 2016-06-15 广西壮族自治区兽医研究所 用于鉴定口蹄疫病毒和水泡性口炎病毒的引物组合及其应用
US20160215354A1 (en) * 2013-10-01 2016-07-28 Texcell Detection of Rare Microbiological Nucleic Acids
CN106191310A (zh) * 2016-07-19 2016-12-07 广西壮族自治区兽医研究所 一种同时鉴别3种牛腹泻病病原体的引物组合及GeXP检测方法

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20160215354A1 (en) * 2013-10-01 2016-07-28 Texcell Detection of Rare Microbiological Nucleic Acids
CN105671201A (zh) * 2016-03-03 2016-06-15 广西壮族自治区兽医研究所 用于鉴定口蹄疫病毒和水泡性口炎病毒的引物组合及其应用
CN106191310A (zh) * 2016-07-19 2016-12-07 广西壮族自治区兽医研究所 一种同时鉴别3种牛腹泻病病原体的引物组合及GeXP检测方法

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
HIROKA AONUMA ET AL.: ""A single fluorescence-based LAMP reaction for identifying multiple parasites in mosquitoes"", 《EXPERIMENTAL PARASITOLOGY》 *
商云鹏: ""牛病毒性腹泻病毒RT-LAMP检测方法的建立及初步应用"", 《中国优秀硕士学位论文全文数据库 农业科技辑》 *
范晴等: ""牛轮状病毒RT-LAMP快速检测方法的建立"", 《畜牧与兽医》 *

Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN107447056A (zh) * 2017-09-29 2017-12-08 广西壮族自治区兽医研究所 用于鉴别牛支原体和传染性鼻气管炎的成套引物及其应用
CN107447056B (zh) * 2017-09-29 2020-10-20 广西壮族自治区兽医研究所 用于鉴别牛支原体和传染性鼻气管炎的成套引物及其应用
CN107699639A (zh) * 2017-11-23 2018-02-16 广西壮族自治区兽医研究所 一种鉴别牛轮状病毒和产肠毒大肠杆菌的引物及方法
CN107699639B (zh) * 2017-11-23 2019-12-20 广西壮族自治区兽医研究所 一种鉴别牛轮状病毒和产肠毒大肠杆菌的引物及方法
CN112760421A (zh) * 2021-02-10 2021-05-07 北京三元集团畜牧兽医总站 同时检测牛轮状病毒、冠状病毒和病毒性腹泻病毒的三重荧光定量pcr试剂盒及应用方法
CN115851719A (zh) * 2021-06-11 2023-03-28 山东舜丰生物科技有限公司 一种基于crispr技术检测病原微生物的方法

Also Published As

Publication number Publication date
CN106987657B (zh) 2020-06-09

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN108796131B (zh) 可视化鉴别口蹄疫病毒和蓝舌病病毒的二重荧光rt-lamp检测组、试剂盒及其应用
WO2018014614A1 (zh) 一种同时鉴别8种牛病原体的引物组合及GeXP检测方法
CN106893787A (zh) 鉴别口蹄疫病毒和水泡性口炎病毒的二重荧光rt‑lamp检测引物组、试剂盒及其应用
CN105671201A (zh) 用于鉴定口蹄疫病毒和水泡性口炎病毒的引物组合及其应用
CN106987657B (zh) 用于鉴别牛病毒腹泻病毒和牛轮状病毒的引物组合及其应用
CN110878381A (zh) 一种检测牛支原体和牛传染性鼻气管炎病毒的引物组合物、试剂盒及方法
CN102719564B (zh) 鸭i型肝炎病毒、鸭圆环病毒和番鸭细小病毒的三重pcr试剂盒及其应用
CN118147369A (zh) 牛病毒性腹泻病毒RAA检测引物组合、crRNA分子、反应体系及应用
CN103320542B (zh) 禽肺炎病毒Taqman探针荧光定量RT-PCR检测试剂盒
CN114774590A (zh) 检测非洲猪瘟病毒的双靶标组合、引物组合、试剂、试剂盒及方法和应用
CN107365843A (zh) 用于检测导致犊牛腹泻的两种主要寄生虫的lamp引物组合及其应用
CN108034761A (zh) 一种用于fmdv和sva鉴别的试剂、方法及应用
CN107447056B (zh) 用于鉴别牛支原体和传染性鼻气管炎的成套引物及其应用
CN106754911B (zh) 用于鉴定牛支原体、牛病毒性腹泻病毒和牛传染性鼻气管炎病毒的引物组及其应用
CN110157837B (zh) 一种检测小反刍兽疫病毒和蓝舌病病毒的引物及方法
CN101575649B (zh) H9型禽流感病毒的快速检测技术
CN113943837A (zh) 猪盖他病毒环介导等温扩增检测引物组及试剂盒
CN105969913A (zh) 一种同时鉴别5种牛病毒性皮炎病毒的引物组合及GeXP检测方法
CN106191310A (zh) 一种同时鉴别3种牛腹泻病病原体的引物组合及GeXP检测方法
CN113736918B (zh) 一种检测牛结节性皮肤病的Cycleave荧光PCR方法
CN116463456A (zh) 一种同时鉴别三种牛腹泻病病原的引物组合及rt-lamp检测方法
CN107699639B (zh) 一种鉴别牛轮状病毒和产肠毒大肠杆菌的引物及方法
CN108998575A (zh) 鸡细小病毒和鸡新城疫病毒二重pcr检测方法的建立
CN115558707A (zh) 可视化口蹄疫、水泡性口炎和蓝舌病多重rt-lamp检测方法及引物
CN103789430A (zh) 一种快速检测血液中附红细胞体、钩端螺旋体、弓形虫的试剂盒及应用

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant