CN112111479A - 一种右旋糖酐酶与羟基磷灰石复合材料及其制备方法和用途 - Google Patents

一种右旋糖酐酶与羟基磷灰石复合材料及其制备方法和用途 Download PDF

Info

Publication number
CN112111479A
CN112111479A CN202011058765.2A CN202011058765A CN112111479A CN 112111479 A CN112111479 A CN 112111479A CN 202011058765 A CN202011058765 A CN 202011058765A CN 112111479 A CN112111479 A CN 112111479A
Authority
CN
China
Prior art keywords
dextranase
hydroxyapatite
composite material
enzyme
preparation
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN202011058765.2A
Other languages
English (en)
Inventor
王淑军
丁延帅
吕明生
王藏
祖航天
田小鹏
董冬雪
王雪莲
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Jiangsu Ocean University
Original Assignee
Jiangsu Ocean University
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Jiangsu Ocean University filed Critical Jiangsu Ocean University
Priority to CN202011058765.2A priority Critical patent/CN112111479A/zh
Publication of CN112111479A publication Critical patent/CN112111479A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N11/00Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
    • C12N11/14Enzymes or microbial cells immobilised on or in an inorganic carrier
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/24Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
    • C12N9/2402Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
    • C12N9/2405Glucanases
    • C12N9/2451Glucanases acting on alpha-1,6-glucosidic bonds
    • C12N9/2454Dextranase (3.2.1.11)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/04Polysaccharides, i.e. compounds containing more than five saccharide radicals attached to each other by glycosidic bonds
    • C12P19/08Dextran
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/12Disaccharides
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/16Preparation of compounds containing saccharide radicals produced by the action of an alpha-1, 6-glucosidase, e.g. amylose, debranched amylopectin
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y302/00Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
    • C12Y302/01Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
    • C12Y302/01011Dextranase (3.2.1.11)

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Inorganic Chemistry (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)

Abstract

本发明公开了一种右旋糖酐酶与羟基磷灰石复合材料及其制备方法和用途。本发明复合材料由右旋糖酐酶和羟基磷灰石组合而成,且每1000U右旋糖酐酶中加入的羟基磷灰石为80g‑120g。右旋糖酐酶与羟基磷灰石复合材料的制备方法是将羟基磷灰石加入右旋糖酐酶溶液中,采用物理方法充分混匀即得。本发明方法采用亲和吸附将海洋右旋糖酐酶与羟基磷灰石结合,制得的复合材料具有操作方便、酶利用度高、酶活性好、酶寿命长、后续分离方法简便等优点,可以进行重复利用,利用率高,能够应用于制药,日用化工,食品工业,废水处理和纺织工业等各个领域等。本发明的方法制备的复合材料可以保持酶活90%以上,可重复利用30次以上,复合材料的右旋糖酐酶活仍保留在70%以上。

Description

一种右旋糖酐酶与羟基磷灰石复合材料及其制备方法和用途
技术领域
本发明涉及材料与生物技术领域,具体地涉及一种右旋糖酐酶与羟基磷灰石复合材料,本发明还涉及复合材料的制备方法以及用途。
背景技术
右旋糖苷酶是一种专一性水解右旋糖苷内部α-1,6糖苷键的水解酶。其可以将高分子右旋糖酐催化降解为低分子量异麦芽多糖或寡糖的水解酶。该酶及其催化产物在医药、食品、化工等领域具有重要的应用价值与广泛的工业用途,因此,国内外对右旋糖苷酶的研究逐渐增加。
游离酶使用是一次性的,无法重复使用,造成成本高,也无法从产物中去除。酶制剂绝大多数是以液态形式使用,但这种形式使用后就难以分离并再利用。由于酶制剂价格一般比较高,单次利用使成本过高,这些限制因素导致了其应用受到一定影响。这个缺点可以通过固定技术克服。迄今为止,物理吸附,共价结合,交联是常用的制备复合材料技术。固定化后,通常可改善其储存稳定性,pH和耐热性。基于这些优点,固定化酶能够应用于制药、日化、食品、纺织工业和废水处理等领域。
将酶与材料复合实现固定化是改善上述酶制剂问题有效手段之一。固定化酶在保持其高效专一及温和的酶催化反应特性的同时,克服了游离酶的上述不足之处,因此酶的固定化受到研究者日益重视,人们根据传统酶固定化技术存在的问题,不断探索改进、完善和发展新的酶固定化方法。固定化酶技术是用物理或化学手段将游离酶封锁住固体材料或限制在一定区域内进行活跃的、特有的催化作用,亦可回收,重复使用的一种技术。酶与材料复合后,也有利于对酶的保藏。经固定化的酶与游离酶相比具有稳定性高、回收方便、易于控制、可反复使用、成本低廉等优点,在生物工业、医学及临床诊断、化学分析、环境保护、能源开发以及基础研究等方面发挥了重要作用。
发明内容
本发明的目的是针对上述的现有技术中存在的问题,提供一种新的右旋糖酐酶的复合材料,该复合材料的可以固定化右旋糖酐酶,其重复性好,可以提高固定化酶的稳定性。
本发明的另一个目的是提供前述复合材料的制备方法。
本发明的又一个目的是提供前述复合材料的用途。
为了实现以上发明目的,本发明公开了一种右旋糖酐酶与羟基磷灰石复合材料,该复合材料由右旋糖酐酶和羟基磷灰石组合而成,且每1000U右旋糖酐酶中加入的羟基磷灰石为80g-120g。优选每1000U右旋糖酐酶中加入的羟基磷灰石为100g。右旋糖酐酶优选具有专一水解右旋糖酐内部α-1,6糖苷键的酶。所述的羟基磷灰石Ca5(PO4)3(OH)的粒度优选为纳米级与/或微米级。
本发明还公开了一种如以上技术方案所述的右旋糖酐酶与羟基磷灰石复合材料的制备方法:将羟基磷灰石加入右旋糖酐酶溶液中,采用物理方法充分混匀,即得。
优选的右旋糖酐酶与羟基磷灰石复合材料的制备方法步骤如下:
(1)将右旋糖酐酶粉加入缓冲液配成右旋糖酐酶溶液;
(2)将羟基磷灰石放入右旋糖酐酶溶液中,充分混匀,使右旋糖酐酶与羟基磷灰石表面相互固定化作用,形成右旋糖酐酶与羟基磷灰石复合材料;固定化时间为30-300分钟;缓冲液pH=5-8;固定化温度为10℃-45℃。
所述固定化时间优选为150-180分钟,所述缓冲液pH=5-6;固定化温度为25℃。所加入的缓冲液优选为适量的醋酸缓冲液与/或Tris盐酸缓冲液。
本发明还公开了右旋糖酐酶与羟基磷灰石复合材料的用途,所述的用途为复合材料在右旋糖酐水解中作水解剂使用。复合材料在右旋糖酐水解中作水解剂使用时,优选的水解温度为35℃,优选的水解pH6.0,优选保温水解30min。
本发明制得的右旋糖酐酶与羟基磷灰石复合材料可以进行表征,通过扫描电镜(SEM)、傅里叶远红外光谱(FT-IR) 和粉末衍射仪(XRD),检测复合材料。
与现有技术相比,本发明具有以下有益效果:
1、本发明复合材料采用亲和吸附将海洋右旋糖酐酶与羟基磷灰石结合。得到的复合材料具有操作方便、酶利用度高、酶活性好、酶寿命长、后续分离方法简便等优点。
2、本发明复合材料可以进行重复利用,重复利用30次以上,复合材料的右旋糖酐酶活仍保留在70%以上。利用率高,复合材料能够应用于制药,日用化工,食品工业,废水处理和纺织工业等各个领域。
3、本发明的方法制备的复合材料可以保持酶活90%以上,具有稳定性和可重复利用性,为其在工业上的应用提供了广泛前景。
4、本发明右旋糖酐酶与羟基磷灰石复合材料用来酶解右旋糖酐,其产物主要为异麦芽寡糖。酶解效果好。
附图说明
图1为作用时间值对复合材料酶活的影响曲线;
图2为缓冲液pH值对复合材料酶活的影响曲线;
图3为作用温度对复合材料酶活的影响曲线;
图4为重复利用的次数对复合材料酶活的影响柱状图;
图5为复合材料的扫描电镜图;
图6为复合材料的傅里叶远红外光谱图;
图7为复合材料的XRD图谱;
图8为复合材料水解产物图(G2:麦芽糖,G4:异麦芽四糖,G5:异麦芽五糖,G7:异麦芽七糖,G:多糖)。
具体实施方式
以下实例是对本发明的进一步说明,并不构成对本发明实质内容的限制,本发明的保护范围并不仅限于此。
实施例1,右旋糖酐酶与羟基磷灰石复合材料制备实验一:
(1)称量实验所需的酶粉,含有右旋糖酐酶1000U,加入pH=6的缓冲液中,制成酶溶液。称量羟基磷灰石100g,将材料羟基磷灰石放入酶溶液中,把反应容器放进可控温摇床,设置温度25℃,反应150分钟后,用离心机设置转数12000r/min进行离心10min,并且用纯水洗涤3次得到右旋糖酐酶与羟基磷灰石的复合材料。所得的复合材料的扫描电镜图参照图5,复合材料的傅里叶远红外光谱图参照图6,复合材料的XRD图谱参照图7。
(2)通过DNS法测出酶活力,计算右旋糖酐酶与羟基磷灰石的复合材料的酶活力,90%的酶被复合在羟基磷灰石表面,每克羟基磷灰石与右旋糖酐酶复合材料的酶活为9个单位。
实施例2,右旋糖酐酶与羟基磷灰石复合材料制备实验二:
除了将实施例1的步骤(1)中反应时间分别设置成180min、210min、240min、270min、300min,即考察不同反应时间对固定化结果的影响,按照实施例1相同的方法制备右旋糖酐酶与羟基磷灰石的复合材料,反应时间延长,对酶的活力略有提高,不会降低酶的活力。结果参见图1。
实施例3,右旋糖酐酶与羟基磷灰石复合材料制备实验三:
除了将实施例1步骤(1)中缓冲液pH分别采用pH=3、pH=4、pH=5、pH=6、pH=7、pH=8、pH=9,即考察不同pH对复合材料的酶活力的影响,按照实施例1相同的方法制备右旋糖酐酶与羟基磷灰石的复合材料,在pH5-6时,酶的活力保持在90%以上,即获得的每克羟基磷灰石与右旋糖酐酶复合材料的酶活为9个单位。在pH7时,酶的活力保持在80%以上,即获得的每克羟基磷灰石与右旋糖酐酶复合材料的酶活为8个单位。在pH9时,酶的活力保持在70%以上,即获得的每克羟基磷灰石与右旋糖酐酶复合材料的酶活为7个单位。具体见照图2。
实施例4,右旋糖酐酶与羟基磷灰石复合材料制备实验四:
除了将实施例1中步骤(1)中温度分别采用10℃-45℃不同的温度,即考察不同温度对右旋糖酐酶与羟基磷灰石的复合材料酶活力的影响,按照实施例1相同的方法制备右旋糖酐酶与羟基磷灰石的复合材料。温度在30℃-40℃时对复合材料影响小,以25℃为复合温度最佳。最体参见图3。
实施例5,右旋糖酐酶与羟基磷灰石复合材料制备实验五:
除了将实施例1步骤(1)中缓冲液分别采用醋酸缓冲液和Tris-盐酸缓冲液外,即考察不同不同缓冲液对复合材料的酶活力的影响,按照实施例1相同的方法制备右旋糖酐酶与羟基磷灰石的复合材料。结果证明,醋酸缓冲液优于Tris-盐酸缓冲液,两者的复合时,90%的酶被复合在羟基磷灰石表面,每克羟基磷灰石与右旋糖酐酶复合材料的酶活为9个单位。
实施例6,右旋糖酐酶与羟基磷灰石复合材料制备实验六:
除了将实施例1步骤(1)中羟基磷灰石采用不同粒径,即纳米级粒径和微米级粒径外,即考察不同羟基磷灰石粒径对复合材料的酶活力的影响,按照实施例1相同的方法制备右旋糖酐酶与羟基磷灰石的复合材料。结果证明,微米粒径略好于微米粒径材料,两者的复合时,90%的酶被复合在羟基磷灰石表面,每克羟基磷灰石与右旋糖酐酶复合材料的酶活为9个单位。
实施例7,将实施例1制得的复合材料重复使用,重复30次时,酶活力保持70%以上。结果参照图4。
实施例8,将实施例1制得的复合材料用于水解右旋糖酐,产物可以得到多糖和异麦芽寡糖,得到寡糖的种类和比例,由右旋糖酐酶的性质决定。结果参照图8。
实施例9,右旋糖酐酶与羟基磷灰石复合材料制备:
(1)称量实验所需的酶粉,含有右旋糖酐酶1000U,加入pH=6的醋酸缓冲液中,制成酶溶液。称量微米级羟基磷灰石95g,将材料羟基磷灰石放入酶溶液中,把反应容器放进可控温摇床,设置温度30℃,反应120分钟后,用离心机设置转数12000r/min进行离心10min,并且用纯水洗涤2次得到右旋糖酐酶与羟基磷灰石的复合材料。
(2)通过DNS法测出酶活力,计算右旋糖酐酶与羟基磷灰石的复合材料的酶活力,90%的酶被复合在羟基磷灰石表面,每克羟基磷灰石与右旋糖酐酶复合材料的酶活为9个单位。
实施例10,右旋糖酐酶与羟基磷灰石复合材料制备:
(1)称量实验所需的酶粉,含有右旋糖酐酶1000U,加入pH=5的Tris-盐酸缓冲液中,制成酶溶液。称量纳米级与微米级羟基磷灰石105g,将材料羟基磷灰石放入酶溶液中,把反应容器放进可控温摇床,设置温度35℃,反应180分钟后,用离心机设置转数12000r/min进行离心10min,并且用纯水洗涤2次得到右旋糖酐酶与羟基磷灰石的复合材料。
(2)通过DNS法测出酶活力,计算右旋糖酐酶与羟基磷灰石的复合材料的酶活力,90%的酶被复合在羟基磷灰石表面,每克羟基磷灰石与右旋糖酐酶复合材料的酶活为9个单位。
实施例11,右旋糖酐酶与羟基磷灰石复合材料制备:
(1)称量实验所需的酶粉,含有右旋糖酐酶1000U,加入pH=7的醋酸缓冲液和Tris-盐酸缓冲液中,制成酶溶液。称量纳米级羟基磷灰石120g,将材料羟基磷灰石放入酶溶液中,把反应容器放进可控温摇床,设置温度35℃,反应200分钟后,用离心机设置转数12000r/min进行离心10min,并且用纯水洗涤3次得到右旋糖酐酶与羟基磷灰石的复合材料。
(2)通过DNS法测出酶活力,计算右旋糖酐酶与羟基磷灰石的复合材料的酶活力,80%的酶被复合在羟基磷灰石表面,每克羟基磷灰石与右旋糖酐酶复合材料的酶活为8个单位。

Claims (10)

1.一种右旋糖酐酶与羟基磷灰石复合材料,其特征在于,复合材料由右旋糖酐酶和羟基磷灰石组合而成,且每1000U右旋糖酐酶中加入的羟基磷灰石为80g-120g。
2.根据权利要求1所述的右旋糖酐酶与羟基磷灰石复合材料,其特征在于:每1000U右旋糖酐酶中加入的羟基磷灰石为100g。
3.根据权利要求1所述的右旋糖酐酶与羟基磷灰石复合材料,其特征在于:右旋糖酐酶是具有专一水解右旋糖酐内部α-1,6糖苷键的酶。
4.根据权利要求1所述的右旋糖酐酶与羟基磷灰石复合材料,其特征在于:所述的羟基磷灰石Ca5(PO4)3(OH)的粒度为纳米级与/或微米级。
5.一种如权利要求1-4任何一项所述的右旋糖酐酶与羟基磷灰石复合材料的制备方法,其特征在于:将羟基磷灰石加入右旋糖酐酶溶液中,采用物理方法充分混匀,即得。
6.根据权利要求5所述的制备方法,其特征在于,其步骤如下:
(1)将右旋糖酐酶粉加入缓冲液配成右旋糖酐酶溶液;
(2)将羟基磷灰石放入右旋糖酐酶溶液中,充分混匀,使右旋糖酐酶与羟基磷灰石表面相互固定化作用,形成右旋糖酐酶与羟基磷灰石复合材料;固定化时间为30-300分钟;缓冲液pH=5-8;固定化温度为10℃-45℃。
7.根据权利要求6所述的制备方法,其特征在于,步骤(2)中:所述固定化时间为150-180分钟,所述缓冲液pH=5-6;固定化温度为25℃。
8.根据权利要求6或7所述的制备方法,其特征在于,步骤(2)中:所述的缓冲液为适量的醋酸缓冲液与/或Tris盐酸缓冲液。
9.一种如权利要求1-4中任意一项所述的右旋糖酐酶与羟基磷灰石复合材料的用途,其特征在于:所述的用途为复合材料在右旋糖酐水解中作水解剂使用。
10.根据权利要求9所述的用途,其特征在于:复合材料在右旋糖酐水解中作水解剂使用时,水解温度为35℃,水解pH6.0, 保温水解30min。
CN202011058765.2A 2020-09-30 2020-09-30 一种右旋糖酐酶与羟基磷灰石复合材料及其制备方法和用途 Pending CN112111479A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202011058765.2A CN112111479A (zh) 2020-09-30 2020-09-30 一种右旋糖酐酶与羟基磷灰石复合材料及其制备方法和用途

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202011058765.2A CN112111479A (zh) 2020-09-30 2020-09-30 一种右旋糖酐酶与羟基磷灰石复合材料及其制备方法和用途

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN112111479A true CN112111479A (zh) 2020-12-22

Family

ID=73797647

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN202011058765.2A Pending CN112111479A (zh) 2020-09-30 2020-09-30 一种右旋糖酐酶与羟基磷灰石复合材料及其制备方法和用途

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN112111479A (zh)

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB8715448D0 (en) * 1986-04-22 1987-08-05 Dental Chem Co Ltd Enzymes immobilised on apatite
JPS62190082A (ja) * 1985-09-20 1987-08-20 Dentaru Kagaku Kk 固定化デキストラナ−ゼを用いたデキストラン分解装置
US4812404A (en) * 1985-09-20 1989-03-14 Dental Kagaku Kabushiki Kaisha Apatite immobilized glucanase
CN105671104A (zh) * 2016-03-29 2016-06-15 董晓 一种固定化右旋糖酐酶降解小分子右旋糖酐的制备方法
CN109456955A (zh) * 2018-08-28 2019-03-12 安徽医学高等专科学校 一种固定化右旋糖酐酶的制备方法

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS62190082A (ja) * 1985-09-20 1987-08-20 Dentaru Kagaku Kk 固定化デキストラナ−ゼを用いたデキストラン分解装置
US4812404A (en) * 1985-09-20 1989-03-14 Dental Kagaku Kabushiki Kaisha Apatite immobilized glucanase
GB8715448D0 (en) * 1986-04-22 1987-08-05 Dental Chem Co Ltd Enzymes immobilised on apatite
CN105671104A (zh) * 2016-03-29 2016-06-15 董晓 一种固定化右旋糖酐酶降解小分子右旋糖酐的制备方法
CN109456955A (zh) * 2018-08-28 2019-03-12 安徽医学高等专科学校 一种固定化右旋糖酐酶的制备方法

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
张岳勋等: "羟基磷灰石固定化葡萄糖氧化酶的研究", 《山东食品发酵》, no. 04, 20 December 2010 (2010-12-20), pages 14 - 17 *
问清江等: "右旋糖酐酶酶学性质研究", 《陕西农业科学》, no. 05, 25 May 2019 (2019-05-25), pages 52 - 55 *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Cang-Rong et al. The influence of carbon nanotubes on enzyme activity and structure: investigation of different immobilization procedures through enzyme kinetics and circular dichroism studies
Kahraman et al. α-Amylase immobilization on functionalized glass beads by covalent attachment
Hou et al. Preparation of core–shell magnetic polydopamine/alginate biocomposite for Candida rugosa lipase immobilization
Thangaraj et al. Immobilization of lipases–a review. Part II: carrier materials
Dai et al. Preparation, characterization and catalytic behavior of pectinase covalently immobilized onto sodium alginate/graphene oxide composite beads
Husain Nanomaterials as novel supports for the immobilization of amylolytic enzymes and their applications: a review
Lv et al. Immobilization of urease onto cellulose spheres for the selective removal of urea
Abd Rahman et al. Efficient substrate accessibility of cross-linked levanase aggregates using dialdehyde starch as a macromolecular cross-linker
CN108048446B (zh) 一种含脂肪酶-无机杂化纳米花的水凝胶及其制备方法和应用
Nawawi et al. Entrapment of porous cross-linked enzyme aggregates of maltogenic amylase from Bacillus lehensis G1 into calcium alginate for maltooligosaccharides synthesis
Ulu et al. The carboxylated multi-walled carbon nanotubes/l-asparaginase doped calcium-alginate beads: Structural and biocatalytic characterization
Alptekin et al. Characterization and properties of catalase immobilized onto controlled pore glass and its application in batch and plug-flow type reactors
Long et al. Sol–gel encapsulation of pullulanase in the presence of hybrid magnetic (Fe3O4–chitosan) nanoparticles improves thermal and operational stability
Amirbandeh et al. Triazine-functionalized chitosan-encapsulated superparamagnetic nanoparticles as reusable and robust nanocarrier for glucoamylase immobilization
Shivudu et al. Production of xylooligosaccharides from xylan catalyzed by endo-1, 4-β-D-xylanase-immobilized nanoscale carbon, silica and zirconia matrices
CN111672432A (zh) 用于酶固定化的氧化石墨烯/壳聚糖复合气凝胶的制备方法
CN109810969B (zh) 一种基于镧系核苷酸配合物和dna定向固定技术构建人造多酶系统的方法
Miljković et al. Immobilization of dextransucrase on functionalized TiO2 supports
Alagöz et al. Covalent immobilization and characterization of a novel pullulanase from Fontibacillus sp. strain DSHK 107 onto Florisil® and nano-silica for pullulan hydrolysis
CN107698773A (zh) 一种磁性树枝状聚合物复合纳米粒子及其制备方法和应用
CN112111479A (zh) 一种右旋糖酐酶与羟基磷灰石复合材料及其制备方法和用途
Mohammadzadeh et al. Expression of chitinase gene in BL21 pET system and investigating the biocatalystic performance of chitinase-loaded AlgSep nanocomposite beads
CN107034206A (zh) 一种酶-凝集素结合物纳米颗粒及其制备方法
Xu et al. Silica nanotubes-doped alginate gel for yeast alcohol dehydrogenase immobilization
CN105969758B (zh) 固定化酶、磁性碳材料及其制备方法

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination