CS197916B1 - Semi-solid cultivating medium for the detection of microorganisms spoiling beer - Google Patents

Semi-solid cultivating medium for the detection of microorganisms spoiling beer Download PDF

Info

Publication number
CS197916B1
CS197916B1 CS386478A CS386478A CS197916B1 CS 197916 B1 CS197916 B1 CS 197916B1 CS 386478 A CS386478 A CS 386478A CS 386478 A CS386478 A CS 386478A CS 197916 B1 CS197916 B1 CS 197916B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
beer
microorganisms
spoiling
detection
soil
Prior art date
Application number
CS386478A
Other languages
Czech (cs)
Inventor
Jan Savel
Marie Prokopova
Original Assignee
Jan Savel
Marie Prokopova
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Jan Savel, Marie Prokopova filed Critical Jan Savel
Priority to CS386478A priority Critical patent/CS197916B1/en
Publication of CS197916B1 publication Critical patent/CS197916B1/en

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Description

Předmětem vynálezu je polopevná živná půda, která umožňuje selektivně stanovit mikroorganismy kazící pivo. Z mikroorganismů, které se vyskytují v pivovarské výrobě, jen některé kazí pivo. Mohou to být například některé kmeny určitého druhu bakterií nebo kvasinek. Přitom tyto mikroorganismy kazí pivo ruznou rychlostí, takže se při kažení uplatňují v závislosti na množství a rychlosti růstu v pivu.The subject of the invention is a semi-solid nutrient medium, which makes it possible to selectively determine beer-spoilage microorganisms. Of the microorganisms found in brewing, only a few spoil beer. They may be, for example, certain strains of a certain type of bacteria or yeast. These microorganisms spoil the beer at different rates, so that they are applied in spoilage depending on the amount and rate of growth in the beer.

Dosavadní způsoby mikrobiologické kontroly se zakládaly na kultivaci provozních vzorků na specifických živných půdách, čímž se prokazovaly určité skupiny mikroorganismů. Tak bylo možné prokázat sice mikroorganismy kazící pivo, nebylo však možné přímo zjistit, které z nich se budou v pivu pomnožovat nejrychleji. Na těchto půdách někdy rostly i mikroorganismy, které pivo nekazily.Previous methods of microbiological control have been based on the cultivation of operational samples on specific culture media, thereby demonstrating certain groups of microorganisms. Thus it was possible to prove beer-spoiling microorganisms, but it was not possible to determine directly which of them would grow in beer the fastest. Sometimes microorganisms that did not spoil beer also grew on these soils.

Kromě toho se některé bakteriální druhy musely kultivovat anaerobně, obvykle ve zvláštních nádobách, z nichž se vzduch odstranil a nahradil inertním plynem. To bylo časově i přístrojově náročné.In addition, some bacterial species had to be cultivated anaerobically, usually in separate containers from which air was removed and replaced with an inert gas. This was time and equipment consuming.

Tyto nevýhody odstraňuje nová půda. Půda se skládá z piva v koncentraci 20 ažThese disadvantages are removed by new soil. The soil consists of beer in a concentration of 20 to

99,98 %, nejlépe 70 %, a agaru v koncentraci 0,02 až 0,8 %, nejlépe 0,15 %, který vytváří polotekutou konzistenci půdy. K přípravě se může použít piva vyrobeného z mladiny různé koncentrace - 10 %, 12 % atd., piva nasyceného oxidem uhličitým nebo zbave197 91699.98%, preferably 70%, and agar in a concentration of 0.02 to 0.8%, preferably 0.15%, which produces a semi-liquid consistency of the soil. Beers made from wort of varying concentrations - 10%, 12%, etc., carbonated or dehydrated beers may be used for the preparation.

197 916 ného oxidu uhličitého například' třepáním, piva s různým obsahem rozpuštěného kyslíku apod.197 916 carbon dioxide, for example by shaking, beers with different dissolved oxygen contents and the like.

Půda se může připravit odděleně a hotovou půdu zalévat vzorky nebo, je-li vzorkem přímo pivo, připravovat půdu míšením vzorku a roztoku agaru.The soil may be prepared separately and watered with the samples or, if the sample is directly beer, prepared by mixing the sample and the agar solution.

Nová půda prokazuje všechny druhy mikroorganismů, které kazí pivo. Pro speciální účely je možné dále tyto mikroorganismy dělit pří#davkem vhodného inhibitoru do půdy.The new soil proves all kinds of microorganisms that spoil beer. For special purposes, these microorganisms may be further subdivided by addition of a suitable inhibitor to the soil.

Tak lze ze směsi obsahující kvasinky i bakterie kazící pivo prokazovat pouze kvasinky, přidá-li se do půdy inhibitor bakterií, například tetracyklin, nebo naopak prokazovat bakterie, přidá-li se inhibitor kvasinek, například cykloheximid. Podobně se přídavkem kademnatých solí mohou potlačit pediokoky a prokazovat laktobacily.Thus, only yeast can be detected from a mixture containing both yeast and beer-spoiling bacteria when a bacterial inhibitor such as tetracycline is added to the soil, or bacteria can be detected if a yeast inhibitor such as cycloheximide is added. Similarly, the addition of cadmium salts can suppress pediococci and detect lactobacilli.

Pro průkaz striktních anaerobů se upraví rH půdy redukčním činidlem například kyselinou askorbovou, cysteinem, thioglykolátem, sirnatanem nebo siřičitanem.To detect strict anaerobes, the rH of the soil is treated with a reducing agent, for example ascorbic acid, cysteine, thioglycolate, thiosulfate or sulfite.

Pro dělení mikroorganismů podle citlivosti k rozpuštěnému kyslíku se půda vyrobí z piva s různým obsahem rozpuštěného kyslíku (koncentrace se stanoví přesně analyticky.)For the separation of microorganisms according to the sensitivity to dissolved oxygen, the soil is made from beer with different dissolved oxygen content (the concentration is determined by analytical analysis.)

Přesný počet mikroorganismů ve vzorcích s nízkým obsahem buněk se stanoví membránovou filtrací; membránové filtry s mikroorganismy se novou půdou přelévají.The exact number of microorganisms in the low cell samples is determined by membrane filtration; membrane filters with microorganisms are spilled over the new soil.

Novost půdy spočívá v tom, že půda prokazuje pouze mikroorganismy kazící pivo, a to nejdříve ty, které se v pivu pomnožují nejrychleji· Podstatné je zde napodobení přirozeného kažení piva. Kromě toho je půda velmi levná a jednoduchá, při průkazu bakterií odpadá kultivace za nepřístupu vzduchu a průkaz mikroorganismů je rychlejší a pracov ně jednodušší, než tomu bylo u dosud známých půd. Všechny tyto vlastnosti jsou vhodné zejména pro použití v provozní kontrole.The novelty of the soil is that the soil shows only microorganisms spoiling beer, first of all those that are the fastest in beer. · It is essential to imitate the natural spoilage of beer. In addition, the soil is very cheap and simple, the detection of bacteria eliminates the cultivation in the absence of air and the detection of microorganisms is faster and easier to work than in the so far known soils. All these features are particularly suitable for use in field inspection.

Půdy je možné použít především v provozních mikrobiologických laboratoří pivovarů, ve výzkumu apod.The soils can be used mainly in operational microbiological laboratories of breweries, in research etc.

Příklad 1Example 1

Průkaz mikroorganismů kazících pivo ve stočeném pivu.Detection of microorganisms spoiling beer in bottled beer.

0,2 g agaru se rozmíchalo ve 30 ml vody. Směs se rozvařila v autoklávu (120 °C, 15 min) a horká smísila se 100 ml 12 % piva. Směsí se zalévaly vzorky ve zkumavkách, v tomto případě proužky membránových filtrů s mikroorganismy zachycenými z piva filtrací. Po kultivaci (28 °C, 4 dny) se odečetl počet mikroorganismů.0.2 g of agar was stirred in 30 ml of water. The mixture was boiled in an autoclave (120 ° C, 15 min) and hot mixed with 100 ml of 12% beer. The samples were poured into the tubes, in this case the strips of membrane filters with microorganisms trapped from the beer by filtration. After cultivation (28 ° C, 4 days), the number of microorganisms was read.

Příklad 2Example 2

Průkaz bakterií kazících pivo ve vzorcích z provozu.Detection of bacteria spoiling beer in samples from operation.

0,2 g agaru se rozmíchalo ve 30 ml destilované vody a směs zahřívala ve vodní lázni do rozpuštění agaru. Horká směs se smísila se 100 ml piva, předtím zbaveného oxidu uhličitého třepáním a zpasterovaného. Směsí se ve zkumavkách zalévaly vzorky z pivovarské výroby, například mladina ze stoků, pivo z kvasných a ležáckých nádob apod., a to vždy 1 ml vzorku 10 ml půdy. Před zaléváním půdy se k vzorkům přidal cykloheximid v takovém množství, aby výsledná koncentrace cykloheximidu po zalití vzorku bylo 0,002 %· Pro dokonalé zchlazení a rychlé dosažení polotekuté konzistence se půda zaočkovaná vzorky ve zkumavkách ponechala 30 min při 5 °C v chladničce. Potom se zaočkovaná půda kultivovala při 28 °C a v jednotlivých dnech odečítal počet bakterií kazících pivo.0.2 g of agar was stirred in 30 ml of distilled water and heated in a water bath until the agar was dissolved. The hot mixture was mixed with 100 ml of beer, previously degassed and pasteurized. Samples from brewing production, such as wort from sewers, beer from fermentation and lager vessels, etc., were poured into the test tubes in a 1 ml sample of 10 ml of soil. Cycloheximide was added to the samples prior to potting in such a quantity that the final cycloheximide concentration after potting was 0.002%. Then, the inoculated soil was cultured at 28 ° C and the number of beer-spoiling bacteria was counted on each day.

197 919197 919

Příklad 3Example 3

Průkaz kvasinek v stočeném pivu.Detection of yeasts in bottled beer.

0,7 g agaru se rozmíchalo ve 100 ml vody a směs zahřívala v autoklávu (120 °C, 15 min). Po ochlazení na 50 °C se do zkumavek pipetovalo po 3 ml roztoku agaru a roztok tetracyklinu v takovém množství, aby jeho výsledná koncentrace po zalití pivem byla 0,005 %·0.7 g of agar was slurried in 100 ml of water and heated in an autoclave (120 ° C, 15 min). After cooling to 50 ° C, 3 ml of agar solution and tetracycline solution were pipetted into the test tubes in such a quantity that the final concentration after the potting of beer was 0.005% ·

Po otevření lahve 10 % nepasterovaného piva se opatrně pipetou nasálo 10 ml piva a ve zkumavce smísilo s agarem a tetracyklinem. Pro dokonalé zchlazení a rychlé dosažení polotekuté konzistence se půda zaočkovaná vzorky ve zkumavkách ponechala 30 min při 5 °C. Potom se zaočkovaná půda kultivovala (28 °C, 3 dny) a odečetl počet kvasinek.After opening a bottle of 10% unpasteurized beer, 10 ml of beer was carefully aspirated by pipette and mixed with agar and tetracycline in a test tube. The soil inoculated in the test tubes was left at 5 ° C for 30 min to allow complete cooling and to achieve a semi-liquid consistency quickly. Then, the inoculated broth was cultured (28 ° C, 3 days) and the yeast count was read.

PŘEDMĚT VYNÁLEZUSUBJECT OF THE INVENTION

Claims (3)

PŘEDMĚT VYNÁLEZUSUBJECT OF THE INVENTION 1. Polopevná živná půda pro průkaz mikroorganismů kazících pivo, vyznačená tím, že obsahuje pivo v koncentraci 20,0 až 99,9 % a agar v koncentraci 0,02 až 0,8 %.Semi-solid medium for the detection of beer-spoiling microorganisms, characterized in that it contains beer in a concentration of 20.0 to 99.9% and agar in a concentration of 0.02 to 0.8%. 2. Půda podle bodu 1, vyznačená tím, že dále obsahuje inhibitor některých mikroorganismů jako cykloheximid, tetracyklin, nebo kademnatá soli.2. The soil of claim 1, further comprising an inhibitor of certain microorganisms such as cycloheximide, tetracycline, or cadmium salts. 3. Půda podle bodu 1 nebo 2, vyznačená tím, že dále obsahuje redukční činidlo, jako kyselinu askorbovou, cystein, thioglykolát, sirnatan nebo siřičitan.3. Soil according to claim 1, further comprising a reducing agent, such as ascorbic acid, cysteine, thioglycolate, thiosulphate or sulphite.
CS386478A 1978-06-14 1978-06-14 Semi-solid cultivating medium for the detection of microorganisms spoiling beer CS197916B1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS386478A CS197916B1 (en) 1978-06-14 1978-06-14 Semi-solid cultivating medium for the detection of microorganisms spoiling beer

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS386478A CS197916B1 (en) 1978-06-14 1978-06-14 Semi-solid cultivating medium for the detection of microorganisms spoiling beer

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS197916B1 true CS197916B1 (en) 1980-05-30

Family

ID=5379979

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS386478A CS197916B1 (en) 1978-06-14 1978-06-14 Semi-solid cultivating medium for the detection of microorganisms spoiling beer

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS197916B1 (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4946777A (en) Method for determination of the presence of antibiotics
FI67725B (en) FOERFARANDE FOER FRAMSTAELLNING AV ENHETER AVSEDDA FOER BESTAEMNING AV ANTIBIOTIKA- OCH SULFARESTER I BIOLOGISKA VAETSKOR OCH FRAMSTAELLDA ENHETER
US4279995A (en) Selective salmonella carbohydrate and medium constructed therefrom
Stannard et al. Rapid microbiology: Applications of bioluminescence in the food industry a review
Behrendt et al. Mass spectrometry: a tool for on-line monitoring of animal cell cultures
CN108254348B (en) pH sensitive fluorescent sensor for high-throughput detection of active microorganisms and construction method
US4532206A (en) β-Streptococcus selective medium
US4643974A (en) Device for identifying microorganisms
Hatcher et al. Radiometric analysis of frozen concentrated orange juice for total viable microorganisms
Holland et al. The effect of carbon dioxide on spore germination in some clostridia
Garcia-Armesto et al. Modern microbiological methods for foods: colony count and direct count methods. A review
Taylor et al. Growth and Metabolism of L Cells in a Chemically Defined Medium in a Controlled Environment Culture System: I. Effects of O2 Tension on L-Cell Cultures
Bolier et al. On the accuracy and interpretation of growth curves of planktonic algae
Moebus Bactericidal properties of natural and synthetic sea water as influenced by addition of low amounts of organic matter
IRIÉ et al. Preparation of a clean sample of bacterial spores
JP2004057054A (en) Salmonella simple detection method
Strasdine Rapid germination of Clostridium botulinum type E spores
IT8248809A1 (en) PROCEDURE AND DEVICE FOR THE DETECTION OF CONTAMINANTS IN THE FOOD INDUSTRY AND SIMILAR INDUSTRIES
WO2019234288A1 (en) Catching and enriching cultivation of microorganisms in solidifying density gradients
Dennis et al. A simple, rapid method for the detection of subspecies of Zymomonas mobilis
Thomas et al. A selective medium for detecting yeasts capable of spoiling wine
Garey et al. A study of cultural methods for the quantitative determination of bacterial populations of distillery mashes
RU2820701C1 (en) Nutrient medium for cultivation of sulphate-reducing bacteria of genus desulfovibrio species and method for production thereof
SU1564193A1 (en) Method of checking process of microorganism cultivation
de la Broise et al. Osmotic, biomass, and oxygen effects on the growth rate of Fusarium oxysporum using a dissolved‐oxygen‐controlled turbidostat