CS221747B1 - A method for preparing immunosorbents from polysaccharides isolated from yeast - Google Patents
A method for preparing immunosorbents from polysaccharides isolated from yeast Download PDFInfo
- Publication number
- CS221747B1 CS221747B1 CS155782A CS155782A CS221747B1 CS 221747 B1 CS221747 B1 CS 221747B1 CS 155782 A CS155782 A CS 155782A CS 155782 A CS155782 A CS 155782A CS 221747 B1 CS221747 B1 CS 221747B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- polysaccharide
- isolated
- water
- gel
- crosslinking
- Prior art date
Links
Landscapes
- Polysaccharides And Polysaccharide Derivatives (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
Abstract
Vynález sa týká odboru^chémie, bioché- mie, .imunologie a mikrobiologie. > Účelom vynálezu je příprava nerozpuštěného imunosorbenta z polysacharidov izolovaných z kvasiniek, ktorý má tt^ vlastnost, že je schopný sorpčne viazať na svojom povrchu bielkovinové protilátky proti róznym hubovitým ochoreniam. Uvedeného účelu sa dosiahne tak, že polysacharid izolovaný z kvasinkovitých buniek sa sieťuje v alkalickom prostředí bifunkčným reagentom najvýhodnejšie s epi- chlórhydrinom v množstve 15 až 30 % hmot. na hmotnosť suchého polysaoharidu při teplotách do 50 °C. Po zosietení sa nerozpustný polysacharidový gél suspenduje na rýchloobrátkovom mixéri vo vodě na částice o velkosti 80 až 250 mikrónov, ktoré sa potom odfiltrujú, dobře premyjú vodou a . voda sa vytěsní organickým ro;púšťadlom s výhodou etanolom alebo acetonom. Zosiatený vysuSený polysacharidový imunosorbent má napúčaoí objem vo vodě 4 až 8 ml/g a je vhodným nosičom pre izo*·' láciu a purifikáciu protilátok účinných proti róznym hubovitým ochoreniam. Vynález má využitie v humánněj i ve- terinárnej medicíně pri izolácii protilátok proti róznym hubovitým ochoreniam.The invention relates to chemistry, biochemistry, immunology and microbiology. The purpose of the invention is to prepare an undissolved immunosorbent from polysaccharides isolated from yeast, which has the property of being able to sorbly bind to its surface protein antibodies against rash fungal diseases. This is achieved by crosslinking the polysaccharide isolated from the yeast cells in an alkaline medium with a bifunctional reagent most preferably 15 to 30% by weight with epichlorohydrin. to the weight of the dry polysaoharide at temperatures up to 50 ° C. After crosslinking, the insoluble polysaccharide gel is suspended in a water-swirl mixer in water to a particle size of 80-250 microns, which are then filtered, washed well with water and. water is displaced by organic solvent, preferably ethanol or acetone. The cross-linked dried polysaccharide immunosorbent has a swelling volume in water of 4 to 8 ml / g and is a suitable carrier for isolation and purification of antibodies effective against rash fungal diseases. The invention has utility in both human and veterinary medicine for the isolation of antibodies against rhinorrhagic diseases.
Description
221747 2221747 2
Vynález sa týká spísobu přípravy imunosorbentov z polysacharldov izolovaných z kvasi- niek.The present invention relates to a process for preparing immunosorbents from polysaccharides isolated from yeast.
Hlavnou imunologicky aktívnou zložkou kvasiniek a kvaainkovitých mikroorganizmov súBanány, alebo manozu obsahujúce heteropolysacharidy ako galaktomanány, glukomanány, gluko-rónoxylOmanány, ktorá sa nachádzajú na povrchu buniek týchto mikroorganizmov. Manány pato-génnych druhov rodu Candida sú vysokovetvené póly sacharidy, ktorá majii v hlavnom reťazi“(1-6), v božných reťazoch a (1-2), připadne a (1-3) glykozidická vazby. Imunodominantnouskupinou týchto antigánov sú božná reťazce skladajúce sa z 9-6 manéžových jednotiek vlaže-ných (1-2) glykozidickými vazbami (S. Suzuki a H. Sunayama: Jap. J. Uicrobiol. 13, 95/1969/).The major immunologically active component of yeast and cyanobacterial microorganisms are Bananas, or mannose containing heteropolysaccharides such as galactomannans, glucomannans, gluconoxylOmanans, which are found on the cell surface of these microorganisms. The mannans of the pathogenic Candida species are the high-branched poles of the carbohydrate having in the main chain "(1-6), in the divine chains and (1-2), and (1-3) glycosidic bonds. The immunodominant group of these antigens are the de-chain consisting of 9-6 mannitose units lukewarm (1-2) glycosidic bonds (S. Suzuki and H. Sunayama: Jap. J. Uicrobiol. 13, 95 (1969)).
Imunologicky aktivně polysacharidy mikroorganizmov sa izolujú zo živného média nie-kolkonásobným zrážaním etanolom, z biomasy kvasiniek extrakciou s hydroxidem draselnýmo koncentrácii 2 % hmot. (P. A. J. Gorin a J. F. T. Spencer: Adv. Appl. Uicrobiol., 13, 25/1970/) alebo s 0,2 U chloridem sodným (0. Šikl a spol.: Coll. Czechoslov. Chem. Commun, 35, 2 969 /1970/) pri zvySenej teplote. čisté manány sa získavajú následným niekoTkonásob-ným zrážaním rozpustných polysacharldov Fehlingovým roztokom. Výtažky imunologicky aktív-nych manánov sú vSak velmi nízké a vzhladom na pdvodnú biomasu nepřesáhujú 5 % hmot.Immunologically active polysaccharides of microorganisms are isolated from the nutrient medium by non-multiple precipitation with ethanol, from yeast biomass by extraction with potassium hydroxide at a concentration of 2% by weight. (PAJ Gorin and JFT Spencer: Adv. Appl. Uicrobiol., 13, 25/1970) or with 0.2 U sodium chloride (O. Sikl et al. Coll. Czech. Chem. Commun, 35, 2,969 / 1970)) at elevated temperature. pure mananes are obtained by subsequent precipitation of soluble polysaccharides with Fehling's solution. However, the extracts of the immunologically active mananes are very low and do not exceed 5% by weight of the biomass feedstock.
Uanány patogénnych kvasinkovítých mikroorganizmov sú vo vodě dobré rozpustné a nedajúsa priamo použit na přípravu pevných sorbentov. Aby se získali vhodné nerozpustné sorbenty . je potřebné polysacharidy z kvasinkovitých mikroorganizmov vhodné modifikovat sletováním <t. Kuniak, Η. H. Uarchesault: Starch 24, 110 /1972/), a to tak, aby imunodominantné sku- piny polysacharidu boli zachované pre imunosorpciu Specifických protilátek z krvného séra.Uanins of pathogenic yeast microorganisms are soluble in water and not directly used for the preparation of solid sorbents. In order to obtain suitable insoluble sorbents. it is desirable to modify the polysaccharides from yeast microorganisms by slagging. Kuniak, Η. H. Uarchesault: Starch 24, 110 (1972)) so that immunodominant groups of polysaccharide are retained for immunosorption of specific antibodies from blood serum.
Molekulová hmotnost manánov polysacharldov kvasinkovitých mikroorganizmov je relativné nízká a pohybuje sa medzi 15 000 až 30 000. Na jednej molekule polysacharidu sa nachádza niekol'ko determinantných skupin, avšak len žesť z nich sa zúžastňuje špecifickej imunolo- gickej reakcle antigén - protilátka. (J. Šandula a U. Vojtková: Folia Microbioiogica, 19, 94 /1974/). Zosieťovaním manámu dochádza eSte k hustejšiemu rozloženiu determinantných skupin v makromolekule manánu, takže žast aktívnych centier imunosorbenta sa nezúžastňuje interakcie antigén - protilátka z priestorových ddvodov.The molecular weight of the mannans of the yeast microorganism polysaccharides is relatively low and ranges from 15,000 to 30,000. Several determinant groups are found on one polysaccharide molecule, but only six of them are specific to the specific antigenic antibody-antibody response. (J. Šandula and U. Vojtková: Folia Microbioiogica, 19, 94 (1974)). By cross-linking mannan, there is a denser distribution of determinant groups in the mannan macromolecule, so that the junction of the active immunosorbent centers does not interfere with the antigen-antibody interaction from spatial reasons.
Imunologicky aktivně manány sa vyskytujú v buňkových stěnách kvasiniek v komplexes bielkovinami a imunologicky neaktívnym glukanom (C. E. Ballau: Adv. Uicrobiol. Phys. 14,93 /1976/). Úplné odstránenie týchto sprievodných biopolymérov naráža na tažkosti a vyža-duje zložitý purifikažný proces. Zistili sme, že pře přípravu úžinného imunosorbentu nieje potřebné manán úplné purifikovat, malé množstvo bielkoviny a glukénu nie je na závadu.Purifikažnými stupňami jednak klesá výtažok polysacharidu, klesá jeho molekulová hmotnostžo stažuje úžinné zosieťovanie polysacharidu a nie zanedbatelnou mierou klesá počet imuno-dominantných skupin schopných viazat homológne protilátky, preto je výhodnejšie použitpolysacharid len žiastožne purifikovaný s vyššou molekulovou hmotnósťou.Immunologically active mannans are found in the cell walls of yeast complexed with proteins and immunologically inactive glucans (C. E. Ballau: Adv. Uicrobiol. Phys. 14,93 (1976)). Complete removal of these accompanying biopolymers interferes with the difficulty and requires a complex purification process. We have found that it is not necessary to completely purify manan prior to the preparation of the infertile immunosorbent, the small amount of protein and glucan is not defective. The degree of diffusion of the polysaccharide decreases, the molecular weight decreases, and the number of immuno-dominant groups capable of reducing the polysaccharide decreases. therefore, it is preferable to use polysaccharide only partially purified with higher molecular weight.
Podstata vynálezu spožlva v tom, že polysacharid izolovaný z kvasinkovitých mikroorga-nizmov s výhodou Candida albicans alebo Candida tropicalis sa v prvom stupni zosieťujebifunkžným sietovaclm reagentom s výhodou 1-chlór-2,3-epoxypropanom v množstve ,5 až 30 %hmot. na hmotnost polysacharidu v alkalickom prostředí a v druhom stupni sa zosieťovanýpolysacharidový gél podrobí vodnej dispergácii vo vysokoobrátkovom mixéri za sážasnej neu-tralizácie volných alkálil a v treťom stupni sa premyté nerozpustné polysacharidové částiceodvodnia na filtri alkoholem a vysušia pri teplote do 60 °C.The present invention provides that the polysaccharide isolated from the yeast microorganisms preferably Candida albicans or Candida tropicalis is crosslinked in a first stage by a multifunctional crosslinking reagent, preferably 1-chloro-2,3-epoxypropane in an amount of 5 to 30% by weight. on the weight of the polysaccharide in the alkaline medium, and in the second step, the cross-linked polysaccharide gel is subjected to aqueous dispersion in a high shear mixer under aggressive neutralization of the free alkali, and in the third step the insoluble polysaccharide particles are washed on the filter with alcohol and dried at up to 60 ° C.
Takto připravený nerozpustný polysacharid s veTkosťou častíc 60 až 250 /um je vhodnýmimunosorbentom pre izoláciu protilátok proti rdznym hubovitým ochoreniam.The insoluble polysaccharide thus prepared with a particle size of 60 to 250 µm is a suitable immunosorbent for the isolation of antibodies against various fungal diseases.
Najžastejším pdvodcom mykotických ochorení u Pudl je Candida albicans, na ktoré připa-dá výše 80 % patologických mikrobiologických nálezov. Zbytok tvoria mikroorganizmy ako 3 221747The most common cause of fungal diseases in Poodle is Candida albicans, which accounts for 80% of pathological microbiological findings. The residue consists of microorganisms such as 3 221747
Candida tropicalis, C. stellatiodea, C. guilliermondi, C. parapsilosis, C. famata a iné.Mnohé druhy Candida majú totožné alebo podobné' antigénne zloženie ako C. albicans, séro-logicky sú tažko rozlišitelné a na mikroorganizmy tejto sérologickej skupiny připadá až90 % všetkých kandidóz. Vzhl’adom na to, že mnohé Candida albicans sú silno patogénne, takich kultivácia za účelom přípravy imunologicky aktívnych polysacharidov sa musí robit zapřísné sterilných podmienok, čo zvyšuje náklady přípravy biomasy.Candida tropicalis, C. stellatiodea, C. guilliermondi, C. parapsilosis, C. famata and others. Many Candida species have the same or similar 'antigenic composition as C. albicans, serologically difficult to distinguish and up to 90 microorganisms of this serological group % of all candidias. Since many Candida albicans are strongly pathogenic, cultivation to produce immunologically active polysaccharides must be made strictly sterile, increasing the cost of preparing biomass.
Preto je výhodné pre tieto účely použit kmen C. tropicalis, ktorý sa priemyslovo po-užívá na výrobu krmného droždia, je nepatogénny alebo len málo patogénny a naviac dobře sakultivuje na rOznych odpadných lignocelulózových materiáloch. Manán z C. tropicalis použi-tý ako imunosorbent zachytí protilátky séra homológzteho druhu ako aj Specifické látky vy-tvořené mikroorganizmami vOči manánom uvedenej séro-skupiny.Therefore, the C. tropicalis strain, which is used industrially for the production of yeast, is non-pathogenic or only slightly pathogenic and, moreover, well-cultured on various waste lignocellulosic materials. C. tropicalis mannan used as an immunosorbent captures serum antibodies of homologous species as well as specific substances produced by microorganisms against mannan of said serogroup.
Sieťevanie polysacharidu z buniek kvasinkovitých mikroorganizmov je výhodné prevádzaťza takých reakčných podmienok, že optimálně množstvo sieťovacieho reagentu je 10 až 30 %hmot. na hmotnost suchého polysacharidu, pri koncentrácii 5 až 8 % hydroxidu sodného akoalkalického katalyzátoru a koncentrácia polysacharidu v reakčnom médiu má byt 15 až 30 %hmot. aby sa získal gél a nepdčacím objemom 4,5 až 8,0 ml/g polysacharidu. Sieťovanie jevýhodné viest najprv pri teplote 20 až 30 °C po dobu 1 až 2 hodin a v druhom stupni reakč-nú teplotu zvýšit na 50 °C pri ktorej teplote je reakcia ukončená za 1 hodinu. Zosietenýpolysacharid sa podrobí mokrej defibrácii v rýchloobrátkovej miešačke. Aby sa dosiahlaoptlmálna velkost častíc (80 až 250 mikrónov) obyčejné stačí doba 30 až 60 sekúnd podl’avýšky obrátok defibrátora. Před defibráciou je účelné do vodného média přidat kyselinuoctovú na neutralizáciu volných alkálií. Bez neutralizácie by sa získal velmi jemný gél,ktorý zle filtruje a nie je vhodný pre prácu na koloně.Crosslinking of polysaccharide from yeast microorganism cells is advantageous in such reaction conditions that optimally the amount of crosslinking reagent is 10 to 30% by weight. to the weight of the dry polysaccharide, at a concentration of 5 to 8% sodium hydroxide as the alkali catalyst, and the concentration of polysaccharide in the reaction medium to be 15 to 30% by weight. to obtain a gel and a non-dosing volume of 4.5 to 8.0 ml / g polysaccharide. The crosslinking is preferably carried out at 20 to 30 ° C for 1 to 2 hours, and at the second stage the reaction temperature is increased to 50 ° C at which temperature the reaction is completed in 1 hour. The crosslinked polysaccharide is subjected to wet defibrillation in a high speed mixer. In order to achieve a normal particle size (80-250 microns), a period of 30-60 seconds of defibrator turnover is sufficient. Before defibrating, it is expedient to add the acid acetic acid to the aqueous medium to neutralize the free alkali. Without neutralization, a very fine gel would be obtained which poorly filters and is not suitable for column operation.
Najvačšou výhodou nového postupu je však skutočnosť, že umožňuje připravit nový vyso-koúčinný imunosorbent, pomocou ktorého sa dajú izolovat v principe jednoduchým spdsobomžiadané protilátky z biologických materiálov, kterých izolácia inými postupmi je podstatnénákladnejšia a zložitejšia.However, the greatest advantage of the novel process is the fact that it allows for the preparation of a new high-activity immunosorbent, by means of which it is possible to isolate, in principle, simple desired antibodies from biological materials, the isolation of which by other means is more substantial and complex.
Nový postup mé Salšie výhody v tom, že používá nepurifikovaný polysacharid, ktorý pozosietenl mé dostatok volných imunologicky aktívnych skupin schopných efektívne viazaťprotilátky z biologických materiálov. fialšou podstatnou výhodou je, že mdže vychádzať i z nepatogénnych kmeňov, ktoré sapriemyslovo využívájú pře produkciu krmných kvasnic, čo podstatnou mierou zlepšuje ekono-mická stránku výrobného postupu. fialšie přednosti a detaily nového postupu sú zřejmé z príkladovej časti postupu, kto-ré nie je vyčerpávajúca, ale len demonštrujúca podstatné znaky nového postupu přípravy imu-nosorbenta vhodného na izolovanie protilátek proti mykotickým ochoreniam spfisobenými kva-sinkovitými mikroorganizmami rodu Candida. Přikladl 10 g surového, suchého polysacharidu izolovaného z buniek kvasinkovitých mikroorga-nizmov Candida tropicalis sa zvlhčí s 20 ml destilovanéj vody a nechá sa 5 až 10 minútnapučiavat. Potom sa přidá 4 ml hydroxidu sodného o koncentrácii 40 % hmot. dobré sa za- ·’mieša a nechá sa rozpúštať, až je roztok homogénny bez zjevných nerozpustných častíc, čoobyčajne netrvá viac ako 10 až 15 minút. Potom sa přidá 3 ml 1-chlór-2-3 epoxipropánu(epichlórhydrln) a dobré sa zamieša tak, aby sietovací reagent bol homogénne distribuovaný'v celom objeme reakčnej zmesi. Reakčnú baňku uzavrieme a necháme reagovat pri teplote la-boratória 1 až 2 hodiny, potom zvýšíme teplotu postupné na 50 °C a při tejto teplote nechá-me reakčnú zmes reagovat bez miešania 1 hodinu, načo zosietený polysacharidový gél mixuje-A new approach to my advantage in that it uses an unpurified polysaccharide that has ameliorated my ample free immunologically active groups capable of effectively binding antibodies from biological materials. the more significant is the fact that it can also be based on non-pathogenic strains which, by way of industrial use, feed yeast production, which considerably improves the economic process. the more violent advantages and details of the new process are apparent from the exemplary procedure, which is not exhaustive, but merely demonstrates the essential features of a novel process for preparing an immunororbent suitable for isolating antibodies against fungal diseases caused by Candida microbial microorganisms. EXAMPLE 1 10 g of a crude, dry polysaccharide isolated from Candida tropicalis microorganism cells are moistened with 20 ml of distilled water and allowed to warm for 5 to 10 minutes. Then, 4 ml of 40% by weight sodium hydroxide solution are added. it is good to mix and is allowed to dissolve until the solution is homogeneous with no apparent insoluble particles, typically no more than 10 to 15 minutes. 3 ml of 1-chloro-2-3 epoxipropane (epichlorohydrin) is then added and mixed well so that the crosslinking reagent is homogeneously distributed throughout the reaction mixture. Close the reaction flask and allow to react for 1 to 2 hours at room temperature, then increase the temperature gradually to 50 ° C and allow the reaction mixture to react without stirring for 1 hour, then the cross-linked polysaccharide gel mixes.
Claims (4)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS155782A CS221747B1 (en) | 1982-03-08 | 1982-03-08 | A method for preparing immunosorbents from polysaccharides isolated from yeast |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS155782A CS221747B1 (en) | 1982-03-08 | 1982-03-08 | A method for preparing immunosorbents from polysaccharides isolated from yeast |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS221747B1 true CS221747B1 (en) | 1983-04-29 |
Family
ID=5350228
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS155782A CS221747B1 (en) | 1982-03-08 | 1982-03-08 | A method for preparing immunosorbents from polysaccharides isolated from yeast |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (1) | CS221747B1 (en) |
-
1982
- 1982-03-08 CS CS155782A patent/CS221747B1/en unknown
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Myklestad et al. | Production of carbohydrates by the marine diatom Chaetoceros affinis var. willei (Gran) Hustedt. II. Preliminary investigation of the extracellular polysaccharide | |
| DE1443359A1 (en) | Process for the production of high molecular weight hydrophilic crosslinking products in the form of gel cores | |
| CN103717622B (en) | A kind of method that hemicellulose is extracted from corn fiber | |
| KR920700696A (en) | Water-soluble polymer-silicate mineral composites and uses thereof | |
| CN105713164B (en) | A kind of aliphatic water reducing agent prepared using stalk and preparation method thereof | |
| CN100554327C (en) | Big molecular engram calcium orthophosphate/calcium alginate hybridized micro-balloon and preparation method thereof | |
| CN117209624A (en) | Chondroitin sulfate extraction process | |
| US3362951A (en) | Polysaccharide product derived from the juice of the aloe plant and methods for preparing same | |
| CN110423789B (en) | A kind of graft copolymer of chitosan and proanthocyanidin, preparation method and application | |
| CN109897197A (en) | A kind of sodium lignin sulfonate aquagel and preparation method thereof | |
| CN108715765A (en) | Method for preparing hemicellulose-based water-retaining agent by using hemicellulose emulsion through microchannel reaction device | |
| ATE41785T1 (en) | MEMBRANE POLYSACCHARIDES, PARTICULARLY USED AS MEDICATIONS AND PROCESSES FOR THEIR PREPARATION. | |
| DE69836496T2 (en) | PROCESS FOR PREPARING BETA- (1,3) -D-GLUCAN FROM MUSHROOMS | |
| CS221747B1 (en) | A method for preparing immunosorbents from polysaccharides isolated from yeast | |
| JPS60147420A (en) | Copolymer of anionic partial substitution product of dextrin and vinyl compound | |
| CN101747518A (en) | Compound polymer microspheres and preparation method thereof | |
| CS225197B1 (en) | Preparation of immunosorbents | |
| Brown et al. | Reversible dissociation of ribonucleic acid | |
| CN114560972B (en) | An ecologically friendly pesticide sustained-release material and its preparation method and application | |
| US4039383A (en) | Process for producing maltopentaose | |
| JPH0682435A (en) | Cellulosic gel filtration filler and manufacture thereof | |
| DE3014632C2 (en) | ||
| CN116510695A (en) | A kind of collagen fiber/beta-cyclodextrin adsorbent and preparation method thereof | |
| Bailliez et al. | A practical large-scale access to 1, 6-anhydro-β-D-hexopyranoses by a solid-supported solvent-free microwave-assisted procedure | |
| RU2712907C1 (en) | Method of modifying cellulose-containing sorbents for extraction of heavy metal ions from aqueous solutions |