CS228431B1 - Process for separating of optic isomers of phenylalaninederivates being substituted in p-position - Google Patents

Process for separating of optic isomers of phenylalaninederivates being substituted in p-position Download PDF

Info

Publication number
CS228431B1
CS228431B1 CS318682A CS318682A CS228431B1 CS 228431 B1 CS228431 B1 CS 228431B1 CS 318682 A CS318682 A CS 318682A CS 318682 A CS318682 A CS 318682A CS 228431 B1 CS228431 B1 CS 228431B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
phenylalanine
ethylphenylalanine
phenylacetyl
substituted
phenylalaninederivates
Prior art date
Application number
CS318682A
Other languages
Czech (cs)
Inventor
Michal Ing Csc Lebl
Milan Csc Krojidlo
Martin Rndr Csc Flegel
Miroslav Prom Chem Barta
Vladimir Vojtisek
Karel Culik
Original Assignee
Lebl Michal
Milan Csc Krojidlo
Flegel Martin
Miroslav Prom Chem Barta
Vladimir Vojtisek
Karel Culik
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Lebl Michal, Milan Csc Krojidlo, Flegel Martin, Miroslav Prom Chem Barta, Vladimir Vojtisek, Karel Culik filed Critical Lebl Michal
Priority to CS318682A priority Critical patent/CS228431B1/en
Publication of CS228431B1 publication Critical patent/CS228431B1/en

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Description

Vynález se týká způsobu dělení optických isomerů derivátů fenylalaninu substituovaných v p-poloze. Tyto deriváty fenylalaninu jsou součástí syntetických peptidů, které mohou sloužit např. jako selektivně natriureticky působící látky a pro tento účel je nutno je připravit v opticky jednotné fůrmě.The invention relates to a process for resolving the optical isomers of phenylalanine derivatives substituted in the β-position. These phenylalanine derivatives are part of synthetic peptides, which can serve, for example, as selectively natriuretically acting substances and must be prepared in optically uniform form for this purpose.

Již dříve bylo zjištěno, že pomocí penicilin-amidohydrolázy (E. C. 3.5.1.11.) je možno odštěpit acylovou skupinu z L-formy aminokyseliny (Lucente 6., Romeo A., Rosel S.: Experientie 2i, 317 (1965); Sovětské a.o. 487940; Britský patent 1 369 462; čsl. a.o. 209 633 a Vojtíšek V., Slezák J.: Folia Microbiologica 20. 224 (1975); Simek P. e kol.: Collect. Czech. Chem. Commun. 46. 2 263 (1981). Dále bylo zjištěno, že speciřita enzymu není zcela absolutní a že i D-forma aminokyseliny je uvolňována z acylovaného derivátu. Pro deriváty fenylalaninu substituované v p-poloze však tato metoda enzymatického štěpení nebyla dosud ověřena.It has previously been found that penicillin amide hydrolase (EC 3.5.1.11) can be used to cleave the acyl group from the L-form of the amino acid (Lucente 6, Romeo A., Rosel S .: Experientie 2i, 317 (1965); British Patent 1 369 462, Czechoslovakia 209 633 and Vojtíšek V., Slezák J .: Folia Microbiologica 20, 224 (1975), Simek P. et al .: Collect. Furthermore, it has been found that the specificity of the enzyme is not absolutely absolute and that the D-form of the amino acid is also released from the acylated derivative, but for the β-substituted phenylalanine derivatives this enzymatic cleavage method has not yet been verified.

Předmětem vynálezu je způsob enzymatického dělení optických isomerů derivátů fenylalaninu substituovaných v p-poloze obecného vzorce (I),The present invention provides a method for the enzymatic resolution of the optical isomers of phenylalanine derivatives substituted in the β-position of formula (I),

XCH„-CH-COOH 2 IXCH 2 -CH-COOH 2 I

NH„ (I), kde X je alkyl obsahující 1 až 4 atomy uhlíku nebo halogen, jehož podstatou je, Se D,L-N-fenylacetylderivát fenylalaninu, zejména D,L-N-fenylacetyl-p-ethylfenylalanin, se inkubuj s enzymy s penicilinamidohydrolázovou aktivitou, s výhodou a jejich nerozpustnými formami, a to diskontlnuálním nebo kontinuálním způsobem v rozmezí teplot 15 až 45 °C, při hodnotách pH 7,0 až 8,5, s výhodou 7,6 až 7,8, a vzniklá směs derivátu L-fenylalaninu a D-N-fenyl228431 acetylderivátu fenylalaninu, zejména L-p-ethylfenylelanin a D-N-fenylacetyl-p-ethylfenylalanin, ae děli, s výhodou pomocí měniče iontů. Enzymovou reakci je výhodné vzhledem k optimálnímu složení produktu zastavit, když je dosaženo konverze, při které ještě nedochází ke štěpení acylu z D-formy aminokyseliny. Postup využívající penioilinamidohydrolázy (E.C. 3.5.1.11) nebo nerozpustné formy tohoto enzymu, např. enzymu zakotveného na buňkách Β» megaterium (Čs. AO č. 208 931), navzájem vázaných buněk E. coli (čs. AO č. 203 607) majících zachovanou pěnicilinamidohydralézovou aktivitu, zesítěných a permeabilizovaných produkčních buněk mikroorganismů (čs. AO č. 201 621) nebo agregovaných buněk (čs. AO č. 197 101) je zvláště výhodný z hlediska snadnosti izolace produktu a možnosti práce v kolonovém uspořádání. Pro získání opticky jednotného produktu je nezbytné sledovat průběh reakce vhodnou metodou např. kapalinovou nebo plynovou chromatografii a reakci zastavit při vhodném stupni konverze, s výhodou 50 %, nebot jinak dojde k postupnému odštěpení acylu i z D-formy substrátu.NH '(I), wherein X is C1 -C4 alkyl or halogen, wherein the D, LN-phenylacetyl phenylalanine derivative, in particular D, LN-phenylacetyl-p-ethylphenylalanine, is incubated with enzymes having penicillin amide hydrolase activity, preferably and their insoluble forms, in a batchwise or continuous manner, at a temperature range of 15 to 45 ° C, at pH values of 7.0 to 8.5, preferably 7.6 to 7.8, and the resulting mixture of L-phenylalanine derivative and DN-phenyl228431 of the phenylalanine acetylderivative, in particular Lp-ethylphenylelanine and DN-phenylacetyl-p-ethylphenylalanine, and are separated, preferably by means of an ion exchanger. Due to the optimum composition of the product, it is advantageous to stop the enzyme reaction when a conversion is achieved which still does not cleave the acyl from the D-form of the amino acid. Procedure using penioillin amide hydrolase (EC 3.5.1.11) or insoluble forms of this enzyme, eg enzy »megaterium cell-anchored enzyme (MS AO No. 208 931), bound E. coli cells (MS AO No. 203 607) having the retained foamyilinamidohydralysis activity, cross-linked and permeabilized production cells of microorganisms (No. AO No. 201 621) or aggregated cells (No. AO No. 197 101) is particularly advantageous in terms of product ease of isolation and column capability. In order to obtain an optically uniform product, it is necessary to monitor the progress of the reaction by a suitable method, for example liquid or gas chromatography, and to stop the reaction at a suitable degree of conversion, preferably 50%, otherwise the acyl is gradually cleaved from the D-form.

Způsob dělení optických antipodů je déle objasněn v příkladech provedení:The method of splitting optical antipodes is explained in the following examples:

Příklad 1Example 1

L-p-ethylfenylalaninL-p-ethylphenylalanine

K suspenzi D,L-p-ethylfenylalaninu (2 g) v 214 NaOH (7 ml) byl při 10 °C po částech během 30 min. přidáván fenylacetylchlorid (3 ml) a další 214 NaOH, tak aby pH směsi bylo 12. Poté byla suspenze míchána ještě 2 h při teplotě místnosti. Reakční směs byla okyselena koncentrovanou kyselinou solnou na pH 2 a uložena přes noc do lednice. Produkt byl odsát, promyt vodou, vysušen a překrystálovén z 30% ethanolu. Bylo získáno 2,65 g (82 %) látky o t. t.To a suspension of D, L-p-ethylphenylalanine (2 g) in 214 NaOH (7 mL) was portionwise at 10 ° C over 30 min. Phenylacetyl chloride (3 mL) was added and another 214 NaOH was added to bring the pH of the mixture to 12. The suspension was then stirred at room temperature for 2 h. The reaction mixture was acidified with concentrated hydrochloric acid to pH 2 and stored in the refrigerator overnight. The product was aspirated, washed with water, dried and recrystallized from 30% ethanol. 2.65 g (82%) of m.p.

146 až 149 °C.Mp 146-149 ° C.

Rp 0,93 (S 1), 0,50 (S 2), 0,86 (S 3), 0,61 (S 4). Rp 0.93 (S 1), 0.50 (S 2), 0.86 (S 3), 0.61 (S 4).

Pro C,9H2)N03 (311,4) vypočteno: 73,29 % C, 6,80 % H, 4,50 % N;For C 19 H 21 NO 3 (311.4) calculated: 73.29% C, 6.80% H, 4.50% N;

nalezeno: 72,98 % C, 6,67 % H, 4,32 % N.Found:% C, 72.98;% H, 6.67;% N, 4.32.

Vzniklý meziprodukt (fenylacetyl-DL-p-éthylfenylalanin 1,1 g) byl suspendován ve vodě (40 ml) a pH bylo upraveno na hodnotu 7,5 přídavkem 0,1 14 NaOH (3,1 ml). K vzniklému rozto-r ku byl přidán 0,2 14 fosfátový pufr (13 ml) o pH 7,5 a navzájem vázané buňky E. coli získané podle čs. AO č. 203 607 v množství 1 g a směs byla míchána při 40 °C.The resulting intermediate (phenylacetyl-DL-p-ethylphenylalanine 1.1 g) was suspended in water (40 mL) and the pH was adjusted to 7.5 by addition of 0.1 14 NaOH (3.1 mL). To the resulting solution was added 0.214 phosphate buffer (13 ml) at pH 7.5 and the bound E. coli cells obtained according to U.S. Pat. AO No. 203 607 in an amount of 1 g and the mixture was stirred at 40 ° C.

Pomocí kapalinové chromatografie byl sledován průběh štěpení MeOH-0,05% kyselina trifluoroctová 80:20): hodnoty k': kyselina fenyloctová - 1,19, fenylacetyl-p-ethylfenylalanin - 2,11, p-ethylfenylalanin - 2,84. Po 3 h byla reakční směs zfiltrována, okyselena 114 HG1 (10 ml), zfiltrována a nanesena na sloupec sulfonátového latexu (60 ml). Po promytí vodou byl produkt eluován 15% pyridinem a odpařen. Bylo získáno 234 mg (68,5 %) L-p-ethylfenylalaninu dle tenkovrstvé chromatografie ve čtyřech rozpouštědlových systémech a dle elektroforézy při dvou rozdílných pH shodného se standardem. Optická čistota zjištěná pomocí vysokotlaké kapalinové chromatografie s chirální mobilní fází (0,008 mol.l-' L-fenylalanin a 0,004 mol.l-' CuSO^ - methanol; (55:45) byla >99% a tato hodnota byla potvrzena i inkubací vzorku s oxidázou L-aminokyselin. Produkt byl překrystalován z 1M HC1; t. t.The progress of the cleavage of MeOH-0.05% trifluoroacetic acid (80:20) was monitored by liquid chromatography: k-values: phenylacetic acid - 1.19, phenylacetyl-p-ethylphenylalanine - 2.11, p-ethylphenylalanine - 2.84. After 3 h, the reaction mixture was filtered, acidified with 114 HG1 (10 mL), filtered, and loaded onto a sulfonate latex column (60 mL). After washing with water, the product was eluted with 15% pyridine and evaporated. 234 mg (68.5%) of Lp-ethylphenylalanine was obtained by thin-layer chromatography in four solvent systems and by electrophoresis at two different pHs consistent with the standard. The optical purity determined by high pressure liquid chromatography with a chiral mobile phase (0.008 mol.l - L-phenylalanine and 0.004 mol.l - CuSO4-methanol; (55:45) was > 99% and this value was confirmed by incubation of the sample. with L-amino acid oxidase The product was recrystallized from 1M HCl;

206 až 208 °C, - 23,9° (c 0,12; voda). Literatura (Zhuze A. L., Jošt K., Kasafírek E.,206 DEG -208 DEG C., -23.9 DEG (c 0.12, water). Literature (Zhuze A. L., Jošt K., Kasafírek E.,

Sudinger J.: Collect. Czech. Chem. Gommun. 29. 2 648: 1964) udává {«] -23,1° (c 0,12; voda). ® >Sudinger J .: Collect. Czech. Chem. Gommun. 29, 2648 (1964)), [.alpha.] D @ 23 = -23.1 DEG (c 0.12; water). ®>

Příklad 2Example 2

L-p-me thylfenylalaninL-p-Methylphenylalanine

Fenylacetyl-D,L-p-methylfenylalanin byl inkubován stejným způsobem jako v příkladu 1, s výjimkou toho,, že byl použit enzym zakotvený na buňkách Bacillus megaterium (čs. AO δ. 20Θ 931). Po izolaci byl získán ve výtěžku 65 % čistý L-p-methylfenylalanin shodný svými vlastnostmi se standardem (Zhuze A. L. a spol.: Gollect. Czech. Chem. Commun. 29. 2 648 /1964/). Optická čistota byla ověřena stejným způsobem jako v příkladu 1.Phenylacetyl-D, L-p-methylphenylalanine was incubated in the same manner as in Example 1, except that an enzyme anchored on Bacillus megaterium cells (MS AO δ. 20-931) was used. After isolation, pure L-p-methylphenylalanine was obtained in a yield of 65% identical to that of the standard (Zhuze A. L. et al .: Gollect. Czech. Chem. Commun. 29, 2648 (1964)). The optical purity was verified in the same manner as in Example 1.

Příklad 3Example 3

L-p-chlorfenylalaninL-p-chlorophenylalanine

Fenylacetyl-D,L-p-chlorfenylalanin byl inkubován jako v příkladu 1 s výjimkou toho, že bylo použito zesitěných a permeabilizovaných buněk (čs. AQ č. 201 621). Obvyklým zpracováním byl získán L-p-chlorfenylalanin ve výtěžku 52 %, jehož optická čistota byla ověřena stejně jako v příkladu 1.Phenylacetyl-D, L-p-chlorophenylalanine was incubated as in Example 1 except that cross-linked and permeabilized cells were used (ref. AQ No. 201 621). Conventional work-up gave L-p-chlorophenylalanine in 52% yield, the optical purity of which was verified as in Example 1.

Claims (2)

1. Způsob enzymatického dělení optických isomerů derivátů fenylalaninu substituovaných v p-poloze obecného vzorce (I),A method of enzymatic resolution of optical isomers of phenylalanine derivatives substituted in the β-position of general formula (I), X· (I) kde X je alkyl obsahující 1 až 4 atomy uhlíku nebo halogen, vyznačený tím, že DřL~N~fenylacetylderivát fenylalaninu, zejména D,L-N-fenylacetyl-p-ethylfenylalanin, se inkubuje s enzy my s penicilinamidohydrolázovou aktivitou, s výhodou s jejich nerozpustnými formami, a to diskontinuálním nebo kontinuálním způsobem v rozmezí teplot 15 až 45 °C, při hodnotách pH 7,0 až 8,5, s výhodou 7,6 až 7,8, a vzniklá směs derivátu L-fenylalaninu a D-N-fenylacetylderivátu fenylalaninu, zejména L-p-ethylfenylalaninu a D-N-fenylacetyl-p-etbylfenylalaninu se dělí, s výhodou pomocí měniče iontů.X · (I) wherein X is alkyl having 1 to 4 carbon atoms or halogen, wherein D r l ~ N ~ fenylacetylderivát phenylalanine, in particular D, LN-phenylacetyl-p-ethylphenylalanine, is incubated with enzymes we with penicilinamidohydrolázovou activity , preferably with their insoluble forms, in a discontinuous or continuous manner in the temperature range of 15 to 45 ° C, at pH values of 7.0 to 8.5, preferably 7.6 to 7.8, and the resulting L- The phenylalanine and the DN-phenylacetylderivative of phenylalanine, in particular Lp-ethylphenylalanine and DN-phenylacetyl-p-etbylphenylalanine, are separated, preferably by means of an ion exchanger. 2. Způsob podle bodu 1, vyznačující se tím, že enzymová reakce je zastavena, když je dosaženo konverze, při které jeětě nedochází ke Štěpení acylu z D-formy aminokyseliny.2. The method of claim 1, wherein the enzyme reaction is stopped when a conversion is achieved that does not yet cleave the acyl from the D-form of the amino acid.
CS318682A 1982-05-04 1982-05-04 Process for separating of optic isomers of phenylalaninederivates being substituted in p-position CS228431B1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS318682A CS228431B1 (en) 1982-05-04 1982-05-04 Process for separating of optic isomers of phenylalaninederivates being substituted in p-position

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS318682A CS228431B1 (en) 1982-05-04 1982-05-04 Process for separating of optic isomers of phenylalaninederivates being substituted in p-position

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS228431B1 true CS228431B1 (en) 1984-05-14

Family

ID=5371219

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS318682A CS228431B1 (en) 1982-05-04 1982-05-04 Process for separating of optic isomers of phenylalaninederivates being substituted in p-position

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS228431B1 (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Yamada et al. Production of L-phenylalanine from trans-cinnamic acid with Rhodotorula glutinis containing L-phenylalanine ammonia-lyase activity
Robinson et al. Porous glass as a solid support for immobilisation or affinity chromatography of enzymes
RU1806201C (en) Method of synthesis of 2-arylpropionic acid s(+)-enantiomer
EP0178106B1 (en) Enzymatic process
CA1052716A (en) Process for the enzymatic resolution of dl-phenyl glycine amide into its optically active antipodes
EP0295724A2 (en) Biosynthesis of unnatural cephalosporins
US4389488A (en) Process for the enzymatic preparation of L-2-amino-4-methylphosphinobutyric acid
US4389489A (en) Optically pure heterocyclic aminoacid compounds, a process for their use for the synthesis of medicaments
US5756800A (en) Process for the enzymatic resolution of 2-amino-4-methyl-phosphinobutyric acid derivatives
US3880713A (en) Cephalosporin compounds
RU2270869C2 (en) Method for preparing l-amino acids from racemic n-acetyl-d,l-derivatives by enzymatic cleavage
CS228431B1 (en) Process for separating of optic isomers of phenylalaninederivates being substituted in p-position
Itoh et al. Application of inverse substrates to trypsin-catalyzed peptide synthesis
Tsuji et al. Enzymatic preparation of D-p-trimethylsilylphenylalanine
EP0512848B1 (en) Enzymatic resolution of alpha-tertiary carboxylic acid esters
JPS5922516B2 (en) Method for producing L-phenylalanine
WO1991005870A1 (en) Enzymatic production of d-amino acids
JPH03187398A (en) One process cephalosporin c amidase enzyme, gene for coding same and its expression in an appropriate host
CA1187432A (en) Microorganism and its use for the preparation of glutathione
US5723321A (en) Process for preparing D-lysine
JP3078599B2 (en) Method for producing L-3,4-dihydroxyphenylserine derivative
US4579818A (en) Biosynthesis of unnatural cephalosporins
US5043279A (en) DNA encoding a bacillus creatinase
JPH02276586A (en) Production of d-homophenylalanine
Jones et al. Rhizopterin biosynthesis in Staphylococcus epidermidis