CS233600B1 - Method of photosynthetic production of carbohydrates, non-specifically labeled with a stable carbon isotope with a high degree of enrichment - Google Patents

Method of photosynthetic production of carbohydrates, non-specifically labeled with a stable carbon isotope with a high degree of enrichment Download PDF

Info

Publication number
CS233600B1
CS233600B1 CS44383A CS44383A CS233600B1 CS 233600 B1 CS233600 B1 CS 233600B1 CS 44383 A CS44383 A CS 44383A CS 44383 A CS44383 A CS 44383A CS 233600 B1 CS233600 B1 CS 233600B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
carbohydrates
cultivation
production
enrichment
hours
Prior art date
Application number
CS44383A
Other languages
Czech (cs)
Inventor
Jiri Doucha
Josef Kolina
Blazena Pekarkova
Miroslav Smazik
Ivan Setlik
Original Assignee
Jiri Doucha
Josef Kolina
Blazena Pekarkova
Miroslav Smazik
Ivan Setlik
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Jiri Doucha, Josef Kolina, Blazena Pekarkova, Miroslav Smazik, Ivan Setlik filed Critical Jiri Doucha
Priority to CS44383A priority Critical patent/CS233600B1/en
Publication of CS233600B1 publication Critical patent/CS233600B1/en

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Vynález se týká způsobu fotosyn4· %etické produkce sacharidů, nespecificky značených stabilním izotopem uhlíku a vysokým stupněm obohacení. Podstata vynálezu spočívá v tom, že se ke kultivaci použije dceřiných buněk synchronní populace řas s obsahem 2 až 4 % hmot. sacharidů na počátku buněčného cyklu, přičemž výrobní kultivace na světle probíhá až do začátku replikace deoxyríbonukleové kyseliny, tj. po dobu 7 až 8 hodin při teplotě 28 až 29 °C, načež se zvýší kultivační teplota na 36 až 38 °C a kultivuje ae dále po dobu 7 až 8 hodin. Tím se přeruší syntéza nukleových kyselin a bílkovin a dosáhne se výhradní syntézy sacharidů.The invention relates to a method for the photosynthetic production of carbohydrates, non-specifically labeled with a stable carbon isotope and with a high degree of enrichment. The essence of the invention lies in the fact that daughter cells of a synchronous population of algae with a content of 2 to 4 wt. % of carbohydrates at the beginning of the cell cycle are used for cultivation, while the production cultivation in the light takes place until the beginning of the replication of deoxyribonucleic acid, i.e. for 7 to 8 hours at a temperature of 28 to 29 ° C, after which the cultivation temperature is increased to 36 to 38 ° C and cultivated for a further 7 to 8 hours. This interrupts the synthesis of nucleic acids and proteins and achieves the exclusive synthesis of carbohydrates.

Description

Vynález se týká způsobu fotosyntetické produkce sacharidů, nespecificky značených stabilním izotopem uhliku s vysokým stupněm obohaceni·The invention relates to a method for the photosynthetic production of carbohydrates, non-specifically labeled with a stable carbon isotope with a high degree of enrichment.

Vynález řeší způsob řízené intenzívní syntézy sacharidů, probíhající při fotosyntéze u populace chlorokokálních řas 13 vhodného typu, přičemž zdrojem uhliku je CO?· Je dosaženo vysoké výtěžnosti požadovaných sloučenin a vysokého stupně jejich obohaceni stabilním izotopem uhlíku.The invention provides a method for controlled intensive synthesis of carbohydrates, occurring during photosynthesis in a population of chlorococcal algae 13 of a suitable type, with the carbon source being CO. A high yield of the desired compounds and a high degree of their enrichment with a stable carbon isotope are achieved.

Postupy přípravy různých organických sloučenin, značenýchProcedures for the preparation of various organic compounds, labeled

13 radioaktivním / C/ nebo stabilním izotopem uhliku / C/ pomoci autotrofních mikroorganismů, jsou popsány v řadě publikaci /Beán et al. 1953, Beán et Hassid 1955, Outtom et Dagliesh 1956, Ellner 1959, Liebster et al· 1961, Tovey et al. 1964, Karpov et al· 1969, Lehman et Wbber 1977, Kollman et al. 1978, 1979/· Některé postupy jsou patentově chráněny /např. US patent 2602047, britský patent 1342098, francouzský patent 7208482, německý patent 2212092, československá autorská osvědčení 197918 a 199446/O 13 radioactive / C/ or stable isotope of carbon / C/ with the help of autotrophic microorganisms, are described in a number of publications /Beán et al. 1953, Beán et Hassid 1955, Outtom et Dagliesh 1956, Ellner 1959, Liebster et al· 1961, Tovey et al. 1964, Karpov et al· 1969, Lehman et Wbber 1977, Kollman et al. 1978, 1979/· Some procedures are patented /e.g. US patent 2602047, British patent 1342098, French patent 7208482, German patent 2212092, Czechoslovak author's certificates 197918 and 199446/ O

Převážná většina uváděných postupů se vyznačuje nízkou výtěžnosti vyráběných produktů nebo nízkou specifickou akti14 13 vitou /u C sloučenin/ nebo nízkým stupněm obohacení /u C sloučenin/· Většina popsaných způsobů výroby je náročná z hlediska výrobních operaci i vlastních výrobních nákladů.The vast majority of the processes described are characterized by low yields of the products produced or low specific activity (for C compounds) or low enrichment levels (for C compounds). Most of the described production methods are demanding in terms of production operations and production costs.

Tyto nedostatky odstraňuje v převážné míře způsob fotosyntetické produkce sacharidů, nespecificky značených stabilnira izotopem uhlíku s vysokým stupněm obohaceni podle vynále2 233 600 zu, jehož podstata spočívá v tom/ že se ke kultivaci použije dceřiných buněk synchronní populace řas s obsahem 2 až 4 % hmotnjksacha ri dů na počátku buněčného cyklu, přičemž výrobní kultivace probíhá na světle po dobu 7 až 8 hodin růstu při teplotě 29 °C, načež se zvýši kultivační teplota na 36 až 38 °C a kultivuje se dále po dobu 7 až 8 hodin. Výrobní kultivace na světle probíhá za podmínek maximální specifické růstové rychlosti až do začátku replikace deoxyribonukleové kyseliny po 7. až 8. hodině světelné periody buněčného cyklu, kdy se zvýšením kultivační teploty na 36 až 38 °C přeruší syntéza nukleových kyselin a bílkovin a dosáhne se výhradní syntézy sacharidů. Syntéza probíhá v prostředí, kde výhradním zdrojem uhlíku je C.These shortcomings are largely eliminated by the method of photosynthetic production of carbohydrates, non-specifically labeled with a stable carbon isotope with a high degree of enrichment according to the invention 2 233 600 zu, the essence of which consists in using daughter cells of a synchronous algae population containing 2 to 4% by weight of carbohydrates at the beginning of the cell cycle for cultivation, while the production cultivation takes place in the light for 7 to 8 hours of growth at a temperature of 29 ° C, after which the cultivation temperature is increased to 36 to 38 ° C and cultivated for a further 7 to 8 hours. Production cultivation in the light takes place under conditions of maximum specific growth rate until the beginning of the replication of deoxyribonucleic acid after the 7th to 8th hour of the light period of the cell cycle, when the increase in the cultivation temperature to 36 to 38 ° C interrupts the synthesis of nucleic acids and proteins and achieves exclusive synthesis of carbohydrates. The synthesis takes place in an environment where the sole source of carbon is C.

Podmínkou zdárného průběhu výrobní kultivace je, aby kultura řas, se kterou výroba začíná, měla požadované vlastnosti.A condition for the successful course of production cultivation is that the algae culture with which production begins has the desired properties.

PředkuItivace v atmosféře CO^ a vlastni výrobní kultivace se provádějí v kultivačním zařízeni, popsaném v autorském osvědčeni 197918.Pre-cultivation in a CO2 atmosphere and the actual production cultivation are carried out in the cultivation device described in the 1979 patent application18.

Důležitou podmínkou úspěšného průběhu kultivace je použiti synchronní populace, tj. populace, ve které jsou všechny řasové buňky ve stejném stádiu životního cyklu. Synchronní kultura umožňuje jednak snížit množství sacharidů před vlastni výrobní kultivaci na minimum, což je jednou z podmínek dosaženi vyso13 kého obohaceni požadovaných sloučenin izotopem C, jednak provést zásah do metabolismu rostoucí populace buněk v okamžiku, který je pro dosaženi co nejvyšší výtěžnosti a izotopového obohaceni nejpři znivějši, jednak dosáhnout během řízeného výrobního cyklu podstatně vyšši růstové rychlosti populace a celkové produkce biomasy ve srovnáni s kulturou nesynchronni·An important condition for successful cultivation is the use of a synchronous population, i.e. a population in which all algal cells are at the same stage of the life cycle. Synchronous culture allows, on the one hand, to reduce the amount of carbohydrates to a minimum before the actual production cultivation, which is one of the conditions for achieving a high enrichment of the desired compounds with the C isotope, on the other hand, to intervene in the metabolism of the growing cell population at the moment that is most favorable for achieving the highest possible yield and isotopic enrichment, and on the other hand, to achieve a significantly higher population growth rate and total biomass production during the controlled production cycle compared to asynchronous culture.

Výhody navrhovaného způsobu kultivace podle vynálezu spočívej i v:The advantages of the proposed cultivation method according to the invention also lie in:

- krátké době kultivace a jednoduchosti výrobních operaci;- short cultivation time and simplicity of production operations;

- mimořádně vysoké výtěžnosti požadovaných sloučenin, neboť během řízené kultivace probíhá jejich výhradní syntéza;- exceptionally high yields of the desired compounds, as their exclusive synthesis takes place during controlled cultivation;

- 3 233 600- 3,233,600

- takovém zastoupeni atomů C v molekulách vyrobených sloučenin, odpovidajicim koncentraci tohoto izotopu v surovině, ze které se pro fotosyntézu získává·- such a representation of C atoms in the molecules of the produced compounds, corresponding to the concentration of this isotope in the raw material from which it is obtained for photosynthesis.

Výroba sloučenin podle vynálezu je ekonomicky efektivní, nebol náklady na syntézu jednotkového množství produktu tvoři pouze 1 až 10 Z hodnoty výsledného produktu, vyjádřené ve svě tových cenách.The production of compounds according to the invention is economically efficient, since the costs of synthesizing a unit amount of product constitute only 1 to 10% of the value of the resulting product, expressed in world prices.

PřikladExample

K výrobní kultivaci byla použita kultura chlorokokálnich řas vhodného typu, přechovávaná ve zkumavkách na agarových půdách, obohacených minerálním živným roztokem při teplotě o -2For production cultivation, a culture of chlorococcal algae of a suitable type was used, maintained in test tubes on agar media enriched with mineral nutrient solution at a temperature of -2

C a ozářenosti 10 W.m FAR.- FAR znamená fotosynteticky účinné zářeni, měřené spektrálně neselektivnim čidlem, citlivým pouze v oblasti 400 až 720 nm. /Viz např. KUBÍN: Zdroje fotosynteticky účinného zářeni a metody jeho měřeni, Academia Praha 1973./C and irradiance 10 W.m FAR.- FAR means photosynthetically effective radiation, measured with a spectrally non-selective sensor, sensitive only in the range of 400 to 720 nm. /See e.g. KUBÍN: Sources of photosynthetically effective radiation and methods for its measurement, Academia Praha 1973./

a) Připrata kultury a předvýrobní kultivacea) Culture preparation and pre-production cultivation

Kultura se z agaru převede do tekutého živného roztoku následujícího složení: KN03 2g.r\ MgS04. 7 H20 1 go{, KH2P0The culture is transferred from agar to a liquid nutrient solution of the following composition: KN0 3 2g.r\ MgS0 4 . 7 H 2 0 1 g o {, KH 2 P0

680 mg.l\ Ca/NOj/g . 4 HgO 10 mg.<~\ chelatonát železitosodný 18,4 rag.l”^ /obsah Fe+++ 5,6 mgol”^/, H^BO^ 6,18 mg.l“ a stopové těžké kovy: Cu 0,635 mg.l“^, Mn 0,6 mg.l~\ Mo 0,96 -1 -1 mg.l , Co 0,59 mg.l · K úpravě pH na hodnotu 6,8 se přidává do živného roztoku potřebné množství KOH.680 mg.l\ Ca/NOj/g . 4 HgO 10 mg.<~\ sodium ferric chelate 18.4 rag.l”^ /Fe content +++ 5.6 mg o l”^/, H^BO^ 6.18 mg.l“ and trace heavy metals: Cu 0.635 mg.l“^, Mn 0.6 mg.l~\ Mo 0.96 -1 -1 mg.l , Co 0.59 mg.l · To adjust the pH to 6.8, the necessary amount of KOH is added to the nutrient solution.

V uvedeném roztoku se kultura pěstuje po dobu 10 hodin při ozářenosti 130 W.m“^, teplotě 29 °C a takové koncentraci 12The culture is grown in the above solution for 10 hours at an irradiance of 130 W.m“^, a temperature of 29 °C and a concentration of 12

C02 ve směsí se vzduchem, která odpovídá 2 X rozpuštěného C02 v suspenzi řas. Počáteční kultivační hustota řasové suspenze A75q s 0,050. = optická hustota, měřená pří vlnové délce 750 nm v 5 mm kyvetě na upraveném fotometru /SPECOL/. Znásobíme-li hodnotu optické hustoty koeficientem 0,50 /u dce řinných buněk synchronní populace/ nebo hodnotou 0,35 /u mateřských buněk/, získáme přibližnou hodnotu suché hmoty řas.C0 2 in a mixture with air, which corresponds to 2 X dissolved C0 2 in the algae suspension. Initial cultivation density of the algae suspension A 75q s 0.050. = optical density, measured at a wavelength of 750 nm in a 5 mm cuvette on a modified photometer /SPECOL/. If we multiply the optical density value by a coefficient of 0.50 /in the daughter cells of a synchronous population/ or by a value of 0.35 /in the mother cells/, we obtain an approximate value of the dry mass of the algae.

Po 10hodinové periodě ozáření se kultura na 18 hodin zatemni. V následujících cyklech se periody ozáření prodlužují a periody tmy zkracuji tak, že po 4 až 5 přípravných synchro233 600After a 10-hour irradiation period, the culture is darkened for 18 hours. In subsequent cycles, the irradiation periods are lengthened and the dark periods are shortened so that after 4 to 5 preparatory synchro233 600

- 4 nizačních cyklech dosahuji konečných hodnot 14 hodin ozářeni a 14 hodin tmy· Aby se středni ozářenost populace během světelné periody cyklu nezměnila, probihá kultivace na světle od druhého přípravného cyklu v průtokovém chemostatickém re- -1 žimu při zředovaci rychlosti 0 - 0,14 h · V ustálené, plně synchronní populaci se optická hustota předvýrobní kultury pohybuje v rozmetl *750 = 0,880 až 1,150·- 4 nization cycles reach final values of 14 hours of irradiation and 14 hours of darkness. In order to keep the average irradiance of the population during the light period of the cycle unchanged, cultivation in the light is carried out from the second preparatory cycle in a flow chemostatic mode at a dilution rate of 0 - 0.14 h. In a stable, fully synchronous population, the optical density of the pre-production culture ranges from *750 = 0.880 to 1.150.

Středni ozářenost populace /E Z se stanovuje z ozářenosti c povrchu kultivační nádoby ZE^Z a z množství FAR, které projde kultivovanou vrstvou suspenze /£*/:The mean population irradiance /E Z is determined from the irradiance c of the surface of the culture vessel ZE^Z and from the amount of FAR that passes through the cultured layer of suspension /£*/:

E s /e. - E.Z ! InZE.ZE.Z· ZDOUCHA: Continuous Cultures Cit 1 t of Algae, Algal Assays in Eutrophication Monitoring,E with /e. - E.Z! InZE.ZE.Z· ZDOUCHA: Continuous Cultures Cit 1 t of Algae, Algal Assays in Eutrophication Monitoring,

Stuttgart 1978/,Stuttgart 1978/,

Zředovaci rychlost 0 se rovná u ustálené průtokové kultury specifické růstové rychlosti, ^u· Ta se stanovuje nejčastěji z růstové křivky jednorázové kultury na základě doby zdvojeni populace, t^: /U = In 2/t^ /viz např· OOUCHA: Kandidátská disertace, Μβδ ČSAV Třeboň 1979/«The dilution rate 0 is equal to the specific growth rate, ^u, for a steady-state flow culture. It is most often determined from the growth curve of a single-culture based on the population doubling time, t^: /U = In 2/t^ /see e.g. OOUCHA: Candidate's dissertation, Μβδ ČSAV Třeboň 1979/«

Během předkultivace a výrobní kultivace jsou sledovány následující údaje:The following data are monitored during pre-cultivation and production cultivation:

a· teplota suspenze b· pH suspenze c· optická hustota suspenze d· koncentrace CO?, rozpuštěného v suspenzi a v plynném okruhu aparaturya· temperature of the suspension b· pH of the suspension c· optical density of the suspension d· concentration of CO?, dissolved in the suspension and in the gas circuit of the apparatus

e. ozářenost povrchu kultivační nádoby a střední ozářenost populacee. irradiance of the surface of the culture vessel and mean irradiance of the population

f. stupeň synchronnosti populace b| Výrobní kultivacef. degree of population synchrony b| Production cultivation

Hodinu před ukončením temné periody přípravného synchronního cyklu se výrobní kultivační válec naplní 850 ml anorganického živného roztoku, který se předtím zb&vi veškerého fyzikálně rozpuštěného C0?« Z plynného prostoru aparatury se vytěsni vzduch a nahradí se dusíkem, načež se tento uzavřený prostor částečně evakuuje Zcca 0,07 MPa/· Pot lnt se živný roztok ve válci nasytí ^^C0?, který vzniká ve vyvíječí přidá233 600One hour before the end of the dark period of the preparatory synchronous cycle, the production culture cylinder is filled with 850 ml of inorganic nutrient solution, which has previously been freed from all physically dissolved CO. The air is displaced from the gas space of the apparatus and replaced with nitrogen, after which this enclosed space is partially evacuated to about 0.07 MPa/. At this point, the nutrient solution in the cylinder is saturated with CO, which is formed in the developer. 233 600

- 5 13 váním IN HCIO^ do suspenze Ba c03« Rovnovážný stav v živném roztoku rozpuštěného CO? s atmosférou obsahující 2 X CO? nastane asi po 30 minutách intenzivního probubláváni·- 5 13 by blowing IN HCIO^ into a suspension of Ba c0 3« Equilibrium state in a nutrient solution of dissolved CO? with an atmosphere containing 2 X CO? occurs after about 30 minutes of intensive bubbling.

Po nasyceni se do kultivačního válce vpraví takové množství inokula dceřiných buněk řas, aby počáteční optická hustota suspenze, Αγ^θ, byla 0,350«, Potom po dobu 8 hodin probíhá růst za autotrofnich podmínek při teplotě 29 °C, kdy zu s 0,18 h · Počáteční ozářenost kultivačního povrchu jeAfter saturation, such an amount of inoculum of daughter algal cells is introduced into the culture cylinder that the initial optical density of the suspension, Αγ^θ, is 0.350«. Then, growth takes place for 8 hours under autotrophic conditions at a temperature of 29 °C, when z u s 0.18 h · The initial irradiance of the culture surface is

120 W.m, po Čtvrté hodině kultivace se ozářenost zvýši na120 W.m, after the fourth hour of cultivation the irradiance increases to

-2 -2 150 W.m a po osmé hodině na 180 W.m . Po osmi hodinách, kdy dosahuje optická hustota Α?5θ hodnoty 1,600, se přeruší syntéza nukleovýeh kyselin a bílkovin zvýšením kultivační tep loty na 38 °C„ Při této teplotě, při které probihá výhradni syntéza sacharidů, se kultura pěstuje 8 hodin»-2 -2 150 Wm and after eight hours to 180 Wm. After eight hours, when the optical density A? 5 θ reaches 1.600, the synthesis of nucleic acids and proteins is interrupted by increasing the cultivation temperature to 38 °C. At this temperature, at which the exclusive synthesis of carbohydrates takes place, the culture is grown for 8 hours.

Po ukončeni kultivace se suspenze řas ochladl na 2 °C a při této teplotě se centrifuguje» Získaná řasová biomasa i supernatant jsou výchozí surovinou pro další zpracováni·After completion of cultivation, the algae suspension is cooled to 2 °C and centrifuged at this temperature. The obtained algal biomass and supernatant are the starting material for further processing.

V následující Tabulce jsou množství škrobu a sacharozy 13 v jednotce objemu řasové suspenze a hodnoty obohacení C uhlíkem v průběhu výrobního kultivačního cyklu· Zdrojem uhlíku pro biosyntézu je buď 90 X ^^C0?|nebo 99 X ^C0?.In the following Table, the amounts of starch and sucrose 13 per unit volume of algal suspension and the values of C carbon enrichment during the production culture cycle are given. The carbon source for biosynthesis is either 90 X ^^C0?|or 99 X ^C0?.

233 600233,600

TabulkaTable

Množství sacharidů Izotopové obohaceni produktu XAmount of carbohydrates Isotopic enrichment of product X

Hodiny v jednotce objemu, kulti- ;ug . ml’1 90 X 13C02 99 X 13C02 va ce —™—··———————™·.™.Hours per unit volume, culti- ; ug . ml' 1 90 X 13 C02 99 X 13 C02 va ce —™—··———————™·.™.

škrob starch sacharóza sucrose škrob starch sacharóza sucrose škrob starch sacharóza sucrose 0 0 2,9 2.9 3,4 3.4 0 0 0 0 0 0 0 0 2 2 29,2 29.2 5,9 5.9 81,6 81.6 35,0 35.0 88,6 88.6 40,2 40.2 4 4 61,3 61.3 9,2 9.2 86,0 86.0 56,2 56.2 94,8 94.8 63,0 63.0 6 6 104,1 104.1 11,5 11.5 87,5 87.5 62,8 62.8 96,3 96.3 69,7 69.7 8 8 156,8 156.8 15,3 15.3 88,5 88.5 69,5 69.5 97,2 97.2 76,5 76.5 10 10 258,8 258.8 90,5 90.5 89,0 89.0 86,5 86.5 98,1 98.1 95,2 95.2 12 12 370,1 370.1 136,1 136.1 89,3 89.3 87,6 87.6 98,2 98.2 96,3 96.3 14 14 473,5 473.5 156,5 156.5 89,4 89.4 87,8 87.8 98,3 98.3 96,8 96.8 16 16 551,2 551.2 162,4 162.4 89,5 89.5 87,9 87.9 98,4 98.4 96,9 96.9 Průběh syntézy škrobu a The course of starch synthesis and sacharózy sucrose během synchronního during synchronous cyklu cycle výrobní kultivace, vyjádřený production cultivation, expressed množstvím quantity těchto sacharidů v of these carbohydrates in j ed- one- notce notes objemu je volume is uveden na obr shown in the figure . 1. . 1.

Claims (1)

Způsob fotosyntetické produkce sacharidů, nespecificky značených stabilním izotopem uhlíku s vysokým stupněm obohacený vyznačující se tim, že se ke kultivaci použije dceřiných buněk synchronní populace řas s obsahem 2 až 4 X hmotněl sacharidů na počátku buněčného cyklu, přičemž výrobní kultivace probíhá na světle po dobu 7 až 8 hodin růstu při teplotě 29 °C, načež se zvýši kultivační teplota na 36 až 38 °C a kultivuje se dále po dobu 7 až 8 hodin.Process for the photosynthetic production of carbohydrates not specifically labeled with a stable high-grade carbon isotope, characterized in that the cells of a synchronous algal population containing 2 to 4% by weight of carbohydrate at the beginning of the cell cycle are cultured using light production for 7 days. The growth temperature is raised to 36-38 ° C and cultured for a further 7 to 8 hours.
CS44383A 1983-01-24 1983-01-24 Method of photosynthetic production of carbohydrates, non-specifically labeled with a stable carbon isotope with a high degree of enrichment CS233600B1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS44383A CS233600B1 (en) 1983-01-24 1983-01-24 Method of photosynthetic production of carbohydrates, non-specifically labeled with a stable carbon isotope with a high degree of enrichment

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS44383A CS233600B1 (en) 1983-01-24 1983-01-24 Method of photosynthetic production of carbohydrates, non-specifically labeled with a stable carbon isotope with a high degree of enrichment

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS233600B1 true CS233600B1 (en) 1985-03-14

Family

ID=5336495

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS44383A CS233600B1 (en) 1983-01-24 1983-01-24 Method of photosynthetic production of carbohydrates, non-specifically labeled with a stable carbon isotope with a high degree of enrichment

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS233600B1 (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP2690469B2 (en) L-ascorbic acid-containing biomass
Eppley et al. PHYTOPLANKTON GROWTH AND COMPOSITION IN SHIPBOARD CULTURES SUPPLIED WITH NITRATE, AMMONIUM, OR UREA AS THE NITROGEN SOURCE 1
Ogbonna et al. Sequential heterotrophic/autotrophic cultivation–an efficient method of producing Chlorella biomass for health food and animal feed
Hoekema et al. A pneumatically agitated flat-panel photobioreactor with gas re-circulation: anaerobic photoheterotrophic cultivation of a purple non-sulfur bacterium
León et al. Cyclic appearance of aerobic nitrogenase activity during synchronous growth of unicellular cyanobacteria
WO2008049615A1 (en) Use of vitamins in fermentation processes for the production of amino acids
Paul et al. Adenine nucleotide levels in Rhodospirillum rubrum during switch-off of whole-cell nitrogenase activity
CN110760446A (en) Culture process of oocyst algae
CN113373185B (en) Method for producing glutamic acid by using corynebacterium glutamicum
CS233600B1 (en) Method of photosynthetic production of carbohydrates, non-specifically labeled with a stable carbon isotope with a high degree of enrichment
Smith Jr THE EXTRACELLULAR RELEASE Of GLYCOLIC ACID BY A MARINE DIATOM 1
NO123096B (en)
Brookes et al. Influence of p H on the Growth Characteristics of Neisseria gonorrhoeae in Continuous Culture
US3986933A (en) Method of preparing yeasts enriched in l-lysine and capable of excreting organic acids
Smith et al. An outdoor biophotolytic system using the cyanobacterium Anabaena cylindrica B629
SU671738A3 (en) Method of obtaining biomass of microorganisms
Grimme et al. The regreening of nitrogen-deficient Chlorella fusca: I. The development of photosynthetic activity during the synchronous regreening of nitrogen-deficient Chlorella
RU2096461C1 (en) Yeast strain yarrowia lipolytica - producer of citric acid and method of citric acid production
Kelley et al. Contribution of dissolved dinitrogen in culture solutions to growth of Rhodopseudomonas capsulata with various sources of combined nitrogen
NO326120B1 (en) Microorganism producing 5-aminolevulinic acid and process for producing 5-aminolevulinic acid using it
Sorokin The capacity of growing algal cells to affect the pH and the buffering properties of the medium
SU1609827A1 (en) Method of producing biomass of porphyridium single-cell algae
Shankar et al. EFFECT OF METALLIC IONS ON THE GROWTH, MORPHOLOGY, AND METABOLISM OF CLOSTRIDIUM PERFRINGENS: II. Cobalt
Latypova et al. Inoculum for the cultivation of Methylosinus trichosporium
Mishra et al. Effects of some carbon sources on growth and nitrogen fixation in the cyanobacterium Nostoc linckia