CS235292B1 - A method of isolating proteolytic enzymes - Google Patents

A method of isolating proteolytic enzymes Download PDF

Info

Publication number
CS235292B1
CS235292B1 CS57984A CS57984A CS235292B1 CS 235292 B1 CS235292 B1 CS 235292B1 CS 57984 A CS57984 A CS 57984A CS 57984 A CS57984 A CS 57984A CS 235292 B1 CS235292 B1 CS 235292B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
activity
eluted
proteases
isolation
proteolytic enzymes
Prior art date
Application number
CS57984A
Other languages
Czech (cs)
Inventor
Ivo Safarik
Original Assignee
Ivo Safarik
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ivo Safarik filed Critical Ivo Safarik
Priority to CS57984A priority Critical patent/CS235292B1/en
Publication of CS235292B1 publication Critical patent/CS235292B1/en

Links

Landscapes

  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

Izolace podle vynálezu se provádí adsorpcí proteas na dřevěné piliny. Eluce proteas se provádí roztoky anorganických solí, např. síranem a chloridem sodným, draselným nebo amonným.The isolation according to the invention is carried out by adsorption of proteases onto wood sawdust. The elution of the proteases is carried out with solutions of inorganic salts, e.g. sodium, potassium or ammonium sulfate and chloride.

Description

Vynález se týká způsobu izolace proteolytických enzymů»The invention relates to a process for the isolation of proteolytic enzymes »

Proteolytické enzymy se ze směsí /živná média p© kultivaci produkčních mikroorganismů, hrubé extrakty živočišných tkání neb© rostlinných pletiv a pod./ izolují celou řadou metod, např» srážením síranem amonným nebo vhodnými organickými rozpouštědly, ultrafiltrací, ionexovou, gelovou a afinitní chromatografií a dalšími technikami0 Významné místo mezi nimi zaujímá afinitní chromatografie, využívající specifických reverzibilních interakcí mezi ligandem (substrát, analog substrátu, inhibitor, protilátka), který bývá imobilizován na vhodném inertním nerozpustném nosiči, a izolovanou proteasou (Lowe,G.R., ^eanjP.D.G.: Afinitní chromatografie, SNTL Praha, 1979, str» 154$ Vesa,V.S.: Priklo 3iochim. Mikrobiol. 16, 629 (^980)^ Glemža,A.A.: Prikl. Biochim. Mikrebiolo 18, 792 (1982))«Proteolytic enzymes are isolated from mixtures / nutrient media for the cultivation of production microorganisms, coarse extracts of animal tissues or plant tissues etc. by a variety of methods, e.g., precipitation by ammonium sulfate or suitable organic solvents, ultrafiltration, ion exchange, gel and affinity chromatography; 0 other techniques important place among them occupies affinity chromatography using specific reversible interactions between the ligand (substrate, substrate analogue, inhibitor, antibody) that is immobilized on a suitable inert insoluble carrier, and the isolated protease (Lowe, GR, ^ eanjP.DG: Affinity Chromatography, SNTL Praha, 1979, p. 154 $ Vesa, VS: Priklo 3iochim, Microbiol 16, 629 (^ 980) ^ Glemza, AA: Priklo Biochim, Mikrebiolo 18, 792 (1982) «

Jako typické příklady je možno uvést izolaci pepsinu na sloupci polylysin-Sepharosy 43 (Nevaldin,3., Kessell,B.: Biochim. Biophys. Acta 290, 207 (1971)), izolaci proteas z mouky ze sladované pšenice na sllupči hemoglobin-Sepharosy (Ghua,Typical examples include isolation of pepsin on a polylysine-Sepharose 43 column (Nevaldin, 3rd, Kessell, B .: Biochim. Biophys. Acta 290, 207 (1971)), isolation of proteases from malted wheat flour on the hemoglobin-Sepharose column. (Ghua,

G.K., Bushuk,W.: Biochim. Biophys. Res. Commun. 37. 545 (1969)), izolaci pankreatického trypsinu na ovomukoid-Spheronu (Turková, J., Seifertová,A.: J. Ghromatogr. 148. 293 (1978)), nebo izolaci proteas z hovězí pankreatické šlávy na sloupci Sepharosy s navázaným inhibitorem trypsinu ze sojových bobů (Reeck,G.-R., Walsh,K.A., Neurath,H$: Biochemistry 10. 4690 (1971)).G.K., Bushuk, W., Biochim. Biophys. Res. Commun. 37. 545 (1969)), the isolation of pancreatic trypsin on ovomucoid-Spheron (Turkova, J., Seifertova, A .: J. Ghromatogr. 148. 293 (1978)), or the isolation of proteases from bovine pancreatic juice on a Sepharose column with bound a soybean trypsin inhibitor (Reeck, G.-R., Walsh, KA, Neurath, H. Biochemistry 10, 4690 (1971)).

Typické afinitní sorbenty pro izolaci proteas jsou připravovány imobilizaci vhodných ligandů na nerozpustné nosiče. Eři4* tom je nutno často použít několikastupňový proces pro aktivaci nosiče, jsou vyžadovány speciální chemikálie apod.Typical affinity sorbents for the isolation of proteases are prepared by immobilizing suitable ligands onto insoluble carriers. This often requires a multi-step process to activate the carrier, special chemicals are required, and so on.

235 292235 292

Způsob izolace proteolytichých enzymů z komplexních směsí podle vynálezu spočívá v tom, že proteasy obsažené v roztoku se absorbují na dřevěné piliny. Jejich eluce se provádí roztoky anorganických solí, s výjimkou solí ovlivňujících enzymovou aktivitu, s výhodou sírany a chloridy sodnými, draselnými a amonnými. K izolaci lze použít tradiční kolonové uspořádání. Výhodou tohoto způsobu izolace je jednoduchá příprava sorbentu z velmi dostupné suroviny (pilin).A method for isolating proteolytic enzymes from the complex compositions of the invention is to absorb the proteases contained in the solution onto wood chips. They are eluted with solutions of inorganic salts, with the exception of salts affecting the enzymatic activity, preferably sodium, potassium and ammonium sulphates and chlorides. The traditional column arrangement can be used for insulation. The advantage of this method of isolation is simple preparation of sorbent from very available raw material (sawdust).

Vynález je dokumentován příklady použití.The invention is illustrated by examples of use.

Příprava sorbentuSorbent preparation

Dřevěné piliny (maximální rozměr částic byl 2 mml byly opakovaně promývány 2 -‘4 % roztokem hydroxidu sodného, vodou,Wood sawdust (maximum particle size 2 mml was repeatedly washed with 2-4% sodium hydroxide, water,

- 3 % roztokem kyseliny chlorovodíkové a opět vpdou, dokud se uvolňovalo hnědé barvivo» Poté byl sorbent rezsuspendován ve vodě a byly naplněny skleněné kolony» Kolony byly dále promývány vodou, roztokem chloridu sodného nebo síranu amonného (l.mol.l*1) a opěi vodou, dokud absorbance vodných a síranových promyvů při 280 nm a tlouštce vrstvy 1 cm nebyla menší než 0,01 až 0,03»- 3% hydrochloric acid solution and re-enter until brown dye is released »The sorbent was then resuspended in water and the glass columns were filled» The columns were further washed with water, sodium chloride solution or ammonium sulfate (l.mol.l * 1 ) and with water until the absorbance of the aqueous and sulfate washes at 280 nm and a layer thickness of 1 cm is less than 0.01 to 0.03 »

Příklad 1Example 1

Na kolonu z pilin borovice o rozměrech 170 x 12 mm bylo aplikován® 10 ml modelového vzorku obsahujícího 10 mg trypsinu a 100 mg enzymového hydrolyzátu kaseinu» Qalastní bílkoviny byly z kolšny vymyty vodou» Adsorbovaný trypsin byl z kolony eluován zvýšením iontové síly prostředí (elucí rožtokem síranu amonného, 1 molel“!). Obsah bílkovin byl sledován Lowryho metodou a aktivita proteasy azokaséinovou metodou za následujících podmínek stanovení: 1 ml 1 % roztoku azokaseinu ve fodfátovém pufru (0,2 mol.l“1) o pH 7,2 se smísí s 0,5 ml vzorku, po 30 min inkubace při 37 °C se přidá 1,5 ml 5 % kyseliny trichloroctové. Po odstředění sraženiny se měří absorbance supernatantu při 366 nm proti slepému vzorku. Linearita je zaručena do hodnoty absorbance 2.10 ml of a sample containing 10 mg of trypsin and 100 mg of casein enzyme hydrolyzate was applied to a 170 x 12 mm pine sawdust column »Qalast proteins were washed out of the column with water» Adsorbed trypsin was eluted from the column by increasing the ionic strength of the environment ammonium sulfate, 1 mol. Protein content was monitored by the Lowry method and the protease activity by the azokasein method under the following assay conditions: 1 ml of a 1% azokassein solution in phosphate buffer (0.2 mol.l -1 ), pH 7.2, was mixed with 0.5 ml of the sample. Incubate for 30 min at 37 ° C with 1.5 ml of 5% trichloroacetic acid. After centrifugation of the precipitate, the absorbance of the supernatant at 366 nm was measured against a blank. Linearity is guaranteed up to an absorbance value of 2.

Z celkově aplikované proteolytické aktivity se s balastními bílkovinami při eluci vodou vymylo 35,4 % aktivity, při eluci roztokem síranu amonného se v objemu 45 mlOf the total proteolytic activity applied, 35.4% of the activity was eluted with the ballast proteins by elution with water;

- 3 235 292 vymyl© 47,1 % aktivity a v celkovém objemu 150 ml se roztokem síranu amonného vymyl© 53,3 % z vnesené aktivity. Specifická aktivita trypsinu se po chromatografii zvýšila 11,7-krát.- 3,235,292 eluted © 47.1% activity and in a total volume of 150 ml with ammonium sulfate solution eluted © 53.3% of the loaded activity. The trypsin specific activity increased 11.7-fold after chromatography.

Příklad 2Example 2

Za analogických podmínek jak© v příkladu 1 (rozměr sloupce 150 x 12 mm) byla provedena chromatografie 10 mg trypsinu pro bakteriologii (cca 7 let starý preparát), rozpuštěného v 10 ml vody. Z celkově aplikované proteolytické aktivity se a balastními bílkovinami při eluci vodou vymylo 24,9 % aktivity, při eluci zoztokem síranu amonného se v celkovém objemu 145 ml vymyl© 80J3 %. Specifická aktivita trypsina se po chromatografii zvýšila 1,7-krátoUnder analogous conditions to Example 1 (column size 150 x 12 mm), 10 mg of trypsin for bacteriology (about 7 years old preparation) dissolved in 10 ml of water was chromatographed. Of the total proteolytic activity applied, 24.9% of the activity eluted with the ballast proteins and eluted with water from the ammonium sulfate solution eluted with < 80 J 3% in a total volume of 145 ml. The trypsin specific activity increased by 1,7-fold after chromatography

Příklad 3Example 3

Za analogických podmínek jako v příkladu 1 (rozměr sloupce 200 x 12 mm) byla provedena izolace proteasy produkované do živného media kmenem Bacillus sp·, který byl izolován z půdy.Under analogous conditions to Example 1 (column size 200 x 12 mm), isolation of the protease produced in the nutrient medium by Bacillus sp. Strain was isolated from the soil.

Po aplikaci 10 ml kultivačního media byly balastní bílkoviny vymyty vodou a adsorbované proteasy roztokem síranu amonného (1 mol.l“!). Z celkově aplikované proteolytické aktivity sé s balastními bílkovinami vymylo 19,8 % aktivity, při eluci roztokem síranu amonného se v objemu 150 ml vymylo 65,1 % aktivity. Specifická aktivita proteasy se po chromatografii zvýšila 70-krát.After application of 10 ml of culture medium, the ballast proteins were washed with water and adsorbed proteases with ammonium sulfate solution (1 mol.l -1!). Of the total proteolytic activity applied, the ballast proteins eluted 19.8% of the activity, eluting with ammonium sulfate solution in a volume of 150 ml eluted 65.1% of the activity. Specific protease activity increased 70-fold after chromatography.

Příklad 4Example 4

Na sloupci pilin o rozměrech 200 x 12 mm byla provedena chromatografie kyselého vyčeřeného hovězího.pankreatického extraktu. Extrakt byl před aplikací na kolonu 24 hod dialyzován proti tekoucí vodě a poté nechán 24 hod při laboratorní teplotě, aby byla umožněna konverze trypsinogenu a chymotrypsinogenu na aktivní proteasy. Bylo aplikováno 6 ml roztoku, zocelkově aplikované proteolytické aktivity se s balastními bílkovinami při eluci vodou vymylo 9,5 % aktivity, při eluci roztokem NaCl (1 mol.l 1) se v objemu 130 ml vymylo 83,2 % aktivity. Specifická aktivita proteas se po chromatografii zvýšila čtyřikrát.An acidic clarified bovine pancreatic extract was chromatographed on a sawdust column of 200 x 12 mm. The extract was dialyzed against running water for 24 hours before being applied to the column and then left at room temperature for 24 hours to allow the conversion of trypsinogen and chymotrypsinogen to active proteases. 6 ml of solution was applied, the total applied proteolytic activity eluted 9.5% of the activity with the ballast proteins, eluting with water, and eluting with the NaCl solution (1 mol / l) in a volume of 130 ml eluted 83.2% of the activity. The specific activity of proteases increased four times after chromatography.

,/, /

Příklad 5Example 5

Pře izolaci proteasy produkované 3acillus ap. byly s úspě chem použity rovněž piliny smrkové a dubové a sluce byle možno dosáhnout roztoky chloridu sodného a chloridu drasolného (1 mol.l ).To isolate the protease produced by 3 acillus ap. spruce and oak sawdust were also successfully used and solutions of sodium chloride and potassium chloride (1 mol.l) could be obtained in the loop.

Claims (1)

1. Způsob izolace pro tedy ti ckých enzymů* vyanočujloí ae tía, že se protoasy obsažené v roztoku adsorbuji na dřevěné piliny, jejich eluce se provádí roztoky anorganických solí s výjimkou solí, které ovlivňují enzymovou aktivitu, s výhodou sírany a chloridy sodnými, draselnými a amonnými*1. A method of isolation for thyroid enzymes has the effect that the protoasas contained in the solution are adsorbed onto sawdust, eluting with solutions of inorganic salts, with the exception of salts which affect the enzymatic activity, preferably sodium, potassium and sodium sulphates and chlorides. ammonium *
CS57984A 1984-01-25 1984-01-25 A method of isolating proteolytic enzymes CS235292B1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS57984A CS235292B1 (en) 1984-01-25 1984-01-25 A method of isolating proteolytic enzymes

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS57984A CS235292B1 (en) 1984-01-25 1984-01-25 A method of isolating proteolytic enzymes

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS235292B1 true CS235292B1 (en) 1985-05-15

Family

ID=5338125

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS57984A CS235292B1 (en) 1984-01-25 1984-01-25 A method of isolating proteolytic enzymes

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS235292B1 (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Lin et al. Purification and characterization of a keratinase from a feather-degrading Bacillus licheniformis strain
Redinbaugh et al. Adaptation of the bicinchoninic acid protein assay for use with microtiter plates and sucrose gradient fractions
Buonocore et al. Stable, inducible thermoacidophilic alpha-amylase from Bacillus acidocaldarius
Pike et al. Partial purification and characterization of a phytochrome-degrading neutral protease from etiolated oat shoots
US3649456A (en) Separation of polypeptide substances with macroreticular resins
Sebastian et al. Purification and characterization of cutinase from a fluorescent Pseudomonas putida bacterial strain isolated from phyllosphere
Sherrard et al. In vitro stability of nitrate reductase from wheat leaves: I. Stability of highly purified enzyme and its component activities
Sharma et al. Purification of wheat germ amylase by precipitation
Brümmer et al. Preparation and Properties of Carrier‐Bound Enzymes
Solomon et al. Studies on adsorption of amyloglucosidase on ion‐exchange resins
Planelles et al. Purification and some properties of the secreted arginase of the lichen Evernia prunastri and its regulation by usnic acid
Pangburn et al. Affinity chromatography of thermolysin and of neutral proteases from B. subtilis
Manners et al. Purification and properties of an endo-(1→ 3)-β-d-glucanase from malted barley
Burger Multiple forms of acidic endopeptidase from germinated barley
Doudoroff [28] Disaccharide phosphorylases
Geller et al. Modification of hepatic fructose 1, 6-diphosphatase activity by proteolytic enzymes and sulfhydryl reagents
Murao et al. Enzymes lytic against Pseudomonas aeruginosa produced by Bacillus subtilis YT-25
US4609625A (en) Process for the production of modified proteins and product thereof
CS235292B1 (en) A method of isolating proteolytic enzymes
US4806626A (en) α-amylase inhibitor
CA1177422A (en) Process for preparing semisynthetic enzymes
Wrobel et al. Identification and partial characterization of high Mr neutral proteinases from 4-day germinated barley seed
Pacaud Purification of protease II from Escherichia coli by affinity chromatography and separation of two enzyme species from cells harvested at late log phase
Welker et al. DE NOVO SYNTHESIS OF α-AMYLASE BY BACILLUS STEAROTHERMOPHILUS
Sakiyama et al. Performance of protease as a cleaning agent for stainless steel surfaces fouled with protein