CS242808B1 - A method for determining insulin composition and activity - Google Patents
A method for determining insulin composition and activity Download PDFInfo
- Publication number
- CS242808B1 CS242808B1 CS8410293A CS1029384A CS242808B1 CS 242808 B1 CS242808 B1 CS 242808B1 CS 8410293 A CS8410293 A CS 8410293A CS 1029384 A CS1029384 A CS 1029384A CS 242808 B1 CS242808 B1 CS 242808B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- insulin
- mobile phase
- activity
- sample
- acetonitrile
- Prior art date
Links
Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
Abstract
Analyzovaný vzorek se za vhodných chromatografických podmínek rozdělí na hovězí a vepřový insulin a jejich monodesamidoderiváty a z příslušných elučních křivek se vypočítá jejich procentuální zastoupení. Porovnáním s vhodným standartem se zjistí biologická aktivita analyzovaného vzorku insulinu. Způsob je rovněž vhodný pro operativní stanovení insulinu během výroby, počínaje prvním zahuštěním alkoholického extraktu.The analyzed sample is separated under suitable chromatographic conditions into bovine and porcine insulin and their monodesamido derivatives and their percentages are calculated from the respective elution curves. The biological activity of the analyzed insulin sample is determined by comparison with a suitable standard. The method is also suitable for the operational determination of insulin during production, starting from the first concentration of the alcoholic extract.
Description
Vynález se týká způsobu stanovení složení a aktivity insulinu vysokoúčinnou kapalinovou chromátografií.The invention relates to a method for determining the composition and activity of insulin by high-performance liquid chromatography.
Jedním z dosud používaných technologických postupů při výrobě insulinu je jeho izolace ze zvířecího pankreasu, nejčastěji hovězího nebo vepřového původu. Podle toho, jaký biologický materiál je brán do výroby, je možno získat buS monokomponentní např. hovězí nebo vepřový insulin, nebo směsný insulin, obsahující oba druhy insulinu. Procentuální zjištění obsahu hovězího nebo vepřového insulinu a odpovídajících monodesamidoderivátů, vznikajících při výrobě jako rozkladné produkty, má velký význam při sledování efektivnosti výroby z různě kvalitního biologického materiálu i při hodnocení kvalitativního složení a účinnosti získaných substancí insulinu a z nich vyráběných lékových forem.One of the hitherto used technological processes in the production of insulin is its isolation from animal pancreas, most often of bovine or pork origin. Depending on the biological material taken into production, either a monocomponent, e.g. bovine or porcine insulin, or a mixed insulin containing both types of insulin can be obtained. The percentage determination of the bovine or porcine insulin content and the corresponding monodesamidoderivatives produced during the production as decomposition products is of great importance in monitoring the production efficiency of different biological materials as well as in evaluating the qualitative composition and effectiveness of the insulin substances obtained and their pharmaceutical forms.
Současný způsob stanovení insulinu, především v substancích a lékových formách, je založen na biologických testech na živých králících nebo myších. Tento způsob hodnocení insulinových přípravků je materiálně a časově náročný (jedno stanovení vyžaduje pokusy na nejméně 40 králících a trvá 7 dní; pro zkoušky na myších je nutno pro jedno stanovení 96 myší), je pracný, málo přesný (získaný výsledek má povolenou odchylku ±10%), neposkytuje žádné informace o kvalitativním složení vzorků a není ho možno použít pro operativní zjišťování kvality právě vyráběného insulinu.The current method of determining insulin, especially in substances and dosage forms, is based on biological tests in live rabbits or mice. This method of evaluating insulin preparations is material and time-consuming (one assay requires experiments on at least 40 rabbits and lasts 7 days; for mouse tests, 96 mice are required for one assay), laborious, inaccurate (± 10 deviation allowed) %), it does not provide any information on the qualitative composition of the samples and cannot be used for operative quality assurance of the insulin being produced.
Uvedené nevýhody odstraňuje způsob stanovení složení a aktivity insulinu vysokoúčinnou kapalinovou chromátografií za použití mobilní fáze tvořené směsi rozpouštědel typu acetonitrilu a vodného pufru při teplotě kolony 35° až 45°G a průtoku mobilní fáze 0,3 až 0,5 ml/min, podle vynálezu, který se vyznačuje tím, že se do mobilní fáze přidá pufr, připravený z modifikátoru typu primárního aminu o 6 až 12 atomech uhlíku v množství 0,15 až 2 ml/1000 ml vody, přičemž vzniklá vodná suspenze se rozpustíThese disadvantages are overcome by a method of determining insulin composition and activity by high performance liquid chromatography using a mobile phase consisting of a mixture of acetonitrile-aqueous buffer solvents at a column temperature of 35 ° C to 45 ° C and a mobile phase flow rate of 0.3 to 0.5 ml / min. characterized in that a buffer prepared from a primary amine of 6 to 12 carbon atoms in an amount of 0.15 to 2 ml / 1000 ml of water is added to the mobile phase, and the resulting aqueous suspension is dissolved
-2242 808 úpravou pH na hodnotu 2,G až 3,0 přídavkem kyseliny fosforečné a stanovení se provede porovnáním změřených ploch elučních křivek rozdělených složek insulinu zkoumaného vzorku a standardu.-2242 808 by adjusting the pH to 2, G to 3.0 by addition of phosphoric acid and determining by comparing the measured areas of the elution curves of the divided insulin components of the test sample with the standard.
Způsob podle vynálezu se dále vyznačuje tím, že se vodný pufr, připravený z 1,6 ml 2-ethylhexylaminu v 1000 ml vody, po úpravě kyselinou fosforečnou na hodnotu pH 2,2, přidá do mobilní fáze v poměru 72,8% obj. : 27,2% obj. acetonitrilu a stanovení se provede ultrafialovou detekcí při višňové délce 280 nm.The process according to the invention is further characterized in that an aqueous buffer prepared from 1.6 ml of 2-ethylhexylamine in 1000 ml of water, after adjustment to pH 2.2 with phosphoric acid, is added to the mobile phase in a ratio of 72.8% by volume. The assay was carried out by ultraviolet detection at a cherry length of 280 nm.
Způsobem podle vynálezu je zkoumaný insulinový vzorek chromatograficky rozdělen na jednotlivé složky. Toto rozdělení je možné přítomností 2-ethylhexylaminového pufru o pH 2,2 v mobilní fázi. Plochy elučních křivek rozdělených složek insulinu odpovídají jejich hmotnostnímu zastoupení v analyzovaném vzorku a je možno z nich vypočítat i jejich procentuální obsah. Porovnáním součtu ploch elučních křivek všech oddělených složek zkoumaného insulinu s plochou změřenou u vzorku insulinu o známé biologické aktivitě (např. u národního standardu) je možno stanovit biologickou aktivitu měřeného insulinového preparátu.According to the method of the invention, the insulin sample of interest is chromatographically separated into its components. This separation is possible by the presence of a 2-ethylhexylamine buffer of pH 2.2 in the mobile phase. The areas of elution curves of the divided insulin components correspond to their percentage by mass in the analyzed sample and their percentage content can be calculated. By comparing the sum of the elution curves of all separate components of the test insulin to that measured with an insulin sample of known biological activity (e.g., a national standard), the biological activity of the insulin preparation being measured can be determined.
Největší výhoda způsobu podle vynálezu je v tom, že stanovení složení a aktivity insulinu není závislé na biologickém faktoru. Tím přináší způsob podle vynálezu velkou časovou úsporu a umožňuje operativní stanovení insulinu do 1 hodiny, nemluvě o ušetřených nákladech při jinak nutném chovu králíků a myší pro biologické testy. Neméně důležitá je skutečnost, že způsobem podle vynálezu se jednoduchou metodou dosáhne přesných výsledků (průměrná odchylka stanovení byla Í3%)/a tím se umožní přesná a rychlá mezioperační kontrola aktivity substance před výrobou insulinových injekčních forem, poskytující tak možnost přesného nastavení obsahu insulinu na požadovaných 40 m.j. v 1 ml injekčního roztoku. Možnost zjišťovat složení insulinových substancí včetně rozkladných produktů, má rovněž velký význam při nákupu či prodeji insulinu. Způsob podle vynálezu byl též s úspěchem použit pro kontrolu zahuštěného extraktu z biologického materiálu a dalších technologických stupňů při výrobě insulinu; tak lze sledovat ztráty vznikající během výroby a optimalizovat technologické postupy dosud používané při výrobě insulinu.The greatest advantage of the method of the invention is that the determination of insulin composition and activity is not dependent on biological factor. Thus, the method according to the invention brings a great time saving and allows for the operative determination of insulin within 1 hour, not to mention the cost savings in the otherwise necessary breeding of rabbits and mice for biological tests. No less important is the fact that the method according to the invention achieves accurate results by a simple method (average deviation of the assay was 13%) / and thus allows accurate and rapid in-process control of substance activity prior to production of insulin injection forms. 40 et al in 1 ml solution for injection. The ability to detect the composition of insulin substances, including breakdown products, is also of great importance in the purchase or sale of insulin. The process of the invention has also been successfully used to control a thickened extract of biological material and other technological steps in the production of insulin; thus, production losses can be monitored and the technological processes hitherto used in insulin production can be optimized.
i Způsob podle vynálezu je názorněji vysvětlen na přiložených výkresech. Na obr.l je znázorněna separaceThe method according to the invention is explained in more detail in the accompanying drawings. 1 shows the separation
- 3 242 808 standardního roztoku insulinu připraveného podle bodu za podmínek uvedených v bodě E/ v závislosti na časové ose t (v minutách). Na obr.2 je uveden příklad chromatografické separace vzorku injekčního roztoku insulinu připraveného postupem uvedeným v příkladu 2 v závislosti na časové ose t (v'minutách) a na obr.3 je příklad separace vzorku alkoholického extraktu z výroby insulinu připraveného postupem uvedeným v příkladu 3 opět v závislosti na časové ose t (v minutách).- 3,242,808 of a standard insulin solution prepared according to point under the conditions of point E / depending on the timeline t (in minutes). Figure 2 shows an example of chromatographic separation of a sample of insulin injection solution prepared as described in Example 2 versus timeline t (in minutes) and Figure 3 shows an example of separation of an alcoholic extract sample from the production of insulin prepared as described in Example 3 again depending on the timeline t (in minutes).
Na těchto obrázcích znamenají vrcholy elučních křivek toto:In these figures, the peaks of the elution curves mean:
- hovězí insulin- bovine insulin
- desamidohovězí insulin- desamide bovine insulin
- vepřový insulin- pork insulin
- desamidovepřový insulin- desamide pig insulin
- konzervační činidlo- preservative
Následující příklady provedení způsob podle vynálezu pouze dokládají, ale nijak neomezují.The following examples illustrate the process according to the invention, but do not limit it in any way.
Příklad 1Example 1
A/ Příprava 2-ethylhexylaminového pufruA / Preparation of 2-ethylhexylamine buffer
Do 1000 ml kádinky odměříme asi 950 ml destilované vody, z dě lené pipety přidávkujeme 1,6 ml 2-ethylhexylaminu a za míchání a kontroly pH přidáváme zředěný roztok kyseliny fosforečné až do výsledné hodnoty pH 2,2. Destilovanou vodou pak doplníme roztok na 10Ó0 ml objemu.Measure about 950 ml of distilled water into a 1000 ml beaker, add 1.6 ml of 2-ethylhexylamine from the graduated pipette and add a dilute phosphoric acid solution while stirring and checking the pH to a final pH of 2.2. Make up to 100 ml volume with distilled water.
B/ Příprava standardního roztoku insulinu (například z národního standardu)B / Preparation of a standard insulin solution (for example from a national standard)
Na mikrováhách navážíme do malé uzavíratelné lékovky několik mg standardu insulinu a z přesné mikrobyrety přidáme takový objem 20% roztoku okyseleného acetonitrilu, aby konečná koncetrace byla 1 mg standardu v 1 ml roztoku. Po dokonalém rozpuštění dávkujeme 25/ul roztoku na chromatografickou kolonu.Weigh several mg of insulin standard into a small sealable vial on a microbalance and add a volume of 20% acidified acetonitrile from a precision microburette to a final concentration of 1 mg of standard in 1 ml of solution. After complete dissolution, add 25 µl of solution to the chromatography column.
C/ Příprava vzorku zkoumaného insulinu (substance)C / Sample preparation of test insulin (substance)
Vzorek připravíme podle předchozího postupu B a na chromatografickou kolonu dávkujeme též 25/Ul roztoku.Prepare the sample according to the previous procedure B and also add 25 µl of solution to the chromatography column.
D/ Příprava 20% roztoku acetonitriluD / Preparation of a 20% acetonitrile solution
Do 20 ml acetonitrilu ve 100 ml odměrné baňce doplníme keMake up to 20 ml with acetonitrile in a 100 ml graduated flask
242 808 ~ 4 značce 0,1% roztok kyseliny fosforečné v destilované vodě.242 808 ~ 4 brand 0.1% phosphoric acid solution in distilled water.
E/ ChromatografieE / Chromatography
Kapalinový chromatograf s kolonou o rozměrech 25 x 0,3 cm nebo 30 x 0,4 cm plněnou silikagelem o velikosti částic 5 nebo 10/um modifikovaným oktadecylovými zbytky a teplotou kolony 40°C. Jako mobilní fáze byl použit roztok 27,2% obj. acetonitrilu a 72,8% obj. vodného 2-ethylhexylaminového pufru. UV fotometrická detekce byla provedena při vlnové délce 280 nm a citlivosti 0,01 absorbanční jednotky. Vyhodnocení chromatografického záznamu bylo provedeno integrátorem i ruční triangulací. Na kolonu bylo dávkováno 25/Ul roztoku insulinu (viz obr.l).Liquid chromatograph with a 25 x 0,3 cm or 30 x 0,4 cm column packed with 5 or 10 µm particle size modified octadecyl residues and a column temperature of 40 ° C. A solution of 27.2% v / v acetonitrile and 72.8% v / v aqueous 2-ethylhexylamine buffer was used as the mobile phase. UV photometric detection was performed at 280 nm and a sensitivity of 0.01 absorbance unit. The evaluation of the chromatographic record was performed by integrator and manual triangulation. A 25 µL insulin solution was loaded onto the column (see Fig. 1).
Výpočet aktivity vzorku substance (m.j./mg):Calculation of substance activity (IU / mg):
aktivita vzorku = -9^iÍYÍl§-SÍSQŠ!ardu_x_suma_Bloch-vzorku-_ suma ploch standardusample activity = -9 i Y Í §-S du du ardu_x_suma_Bloch - sample - _ sum of standard areas
Příklad 2Example 2
Příprava vzorku zkoumaného insulinu (injekce)Sample preparation of test insulin (injection)
Celý obsah ampule kvantitativně přeneseme do uzavíratelné skleněné nádobky, přidáme 10,0 ml okyseleného roztoku 20% acetonitrilu (připraveného podle Příkladu 1) a dobře protřepeme. Na kolonu dávkujeme 25/ul, podmínky chromatografie jako v příkladu 1, graf viz obr.2.Transfer the entire contents of the vial quantitatively to a sealable glass vial, add 10.0 ml of an acidified solution of 20% acetonitrile (prepared according to Example 1) and shake well. Load 25 µl per column, chromatography conditions as in Example 1, graph see Fig. 2.
Výpočet aktivity injekčního roztoku (m.j./ml):Calculation of the activity of the solution for injection (IU / ml):
aktivita standardu x suma ploch vzorku aktivita inj. roztoku ---------------------------------------x 2 suma ploch standardustandard activity x sum of sample areas activity inj. solution --------------------------------------- x 2 sum of standard areas
Příklad 3Example 3
Příprava vzorku alkoholického extraktu z výroby insulinuSample preparation of alcoholic extract from insulin production
Vzorek zahuštěného alkoholického extraktu pankreasu zfiltrujeme přes skleněnou fritu G2 a 25yul filtrátu dávkujeme na kolonu. Aktivitu vzorku v m.j./ml tohoto roztoku změříme metodou vnějSího standardu. Podmínky chromatografie jako v příkladu 1, graf viz obr.3.Filter the sample of the concentrated alcoholic pancreas extract through a G2 glass frit and add 25 µl of filtrate to the column. The activity of the sample in IU / ml of this solution is measured by an external standard method. Chromatography conditions as in Example 1, graph see Fig. 3.
Claims (2)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS8410293A CS242808B1 (en) | 1984-12-22 | 1984-12-22 | A method for determining insulin composition and activity |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS8410293A CS242808B1 (en) | 1984-12-22 | 1984-12-22 | A method for determining insulin composition and activity |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS1029384A1 CS1029384A1 (en) | 1985-08-15 |
| CS242808B1 true CS242808B1 (en) | 1986-05-15 |
Family
ID=5448556
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS8410293A CS242808B1 (en) | 1984-12-22 | 1984-12-22 | A method for determining insulin composition and activity |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (1) | CS242808B1 (en) |
-
1984
- 1984-12-22 CS CS8410293A patent/CS242808B1/en unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| CS1029384A1 (en) | 1985-08-15 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Holland et al. | Separation of nanoliter samples of biological amines by a comprehensive two-dimensional microcolumn liquid chromatography system | |
| Oates et al. | Quantitative amino acid analysis of individual snail neurons by open tubular liquid chromatography | |
| Chana et al. | Urinary arsenic speciation by high-performance liquid chromatography/atomic absorption spectrometry for monitoring occupational exposure to inorganic arsenic | |
| Takatera et al. | Speciation of iodo amino acids by high-performance liquid chromatography with inductively coupled plasma mass spectrometric detection | |
| Dueker et al. | Determination of blood folate using acid extraction and internally standardized gas chromatography–mass spectrometry detection | |
| Bergqvist et al. | Effect of use of gel-barrier sampling tubes on determination of some antiepileptic drugs in serum. | |
| Roth | Rapid, sensitive and fully automated high-performance liquid chromatographic assay with fluorescence detection for sulmazole and metabolites | |
| Lambert et al. | Liquid-chromatographic measurement of riboflavin in serum and urine with isoriboflavin as internal standard. | |
| McLaughlin et al. | Determination of corticosterone and 17-hydroxycorticosterone in human plasma | |
| Derks et al. | Gas-chromatographic determination of cholesterol in serum: candidate reference method. | |
| Coleman et al. | Development and validation of a high‐throughput online solid‐phase extraction–liquid chromatography–tandem mass spectrometry method for the detection of gonyautoxins 1&4 and gonyautoxins 2&3 in human urine | |
| CN113156024A (en) | Method for measuring aminocaproic acid and related substances in injection thereof by high performance liquid chromatography | |
| CS242808B1 (en) | A method for determining insulin composition and activity | |
| Asmus et al. | Liquid chromatographic determination of lincomycin in fermentation beers | |
| Smith Jr et al. | A universal HPLC determination of insulin potency | |
| Smith et al. | Application of retention indices based on the alkylarylketone scale to the separation of the local anaesthetic drugs by high-performance liquid chromatography | |
| Woolfson et al. | Determination of the sulphoxide metabolites of S-carboxymethyl-L-cysteine by high-performance liquid chromatography with electrochemical detection | |
| Xing et al. | Determination of nitrophenolate sodium in aquatic products by HPLC–MS/MS with atmospheric pressure chemical ionization | |
| Brown et al. | Determination of trace levels of oxytocin in pharmaceutical solutions by high-performance liquid chromatography | |
| Zhang et al. | Quantitative determination of ionized calcium and total calcium in human serum by capillary zone electrophoresis with indirect photometric detection | |
| Kirchmeier et al. | Simultaneous determination of vancomycin, anisomycin, and trimethoprim lactate by high pressure liquid chromatography | |
| Maulding et al. | High-pressure liquid chromatographic analysis of salicylic acid, salicyluric acid, and gentisic acid in biological matrixes | |
| Johnston | General method for the assay of oral contraceptives by high-performance liquid chromatography | |
| Boison et al. | Improvement in the multiresidue liquid chromatographic analysis of residues of mono-and dibasic penicillins in bovine muscle tissues | |
| Roth et al. | An HPLC procedure for the analysis of furosemide in pharmaceuticals-analysis of furosemide tablets and furosemide injection |