CS246055B2 - Method of isolation of aminoacylase enzyme - Google Patents
Method of isolation of aminoacylase enzyme Download PDFInfo
- Publication number
- CS246055B2 CS246055B2 CS246382A CS246382A CS246055B2 CS 246055 B2 CS246055 B2 CS 246055B2 CS 246382 A CS246382 A CS 246382A CS 246382 A CS246382 A CS 246382A CS 246055 B2 CS246055 B2 CS 246055B2
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- enzyme
- solution
- aminoacylase
- centrifuged
- ammonium salt
- Prior art date
Links
Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
Abstract
Enzym aminoacylasa se izoluje z vodného extraktu ledvin savců tak, že se extrakt zahřívá 5 až 15 minut při 60 až 80 °C. Teplem zpracovaná směs se odstředí. K supernatantu se přidá 200 až 300 g/litr amonné soli, výhodně síranu amonného. Vzniklá suspenze se odstředí, oddělená sraženina se rozpustí ve vodě, roztok se dialysuje proti vodě. Zdialysovaný roztok nebo roztok enzymu izolovaného z dialysátu v pufru o pH 6,5 až 8,5 se popřípadě podrobí chromatografii na anexu. Potom se popřípadě podrobí aktivní frakce získané chromatografií, nebo roztok enzymu vysráženého z aktivních frakcí přidáním amonné soli v pufru o pH 6,0 až 8,0, gelové chromatografií na gelovém filtru, jehož horní hranice frakcionovaných molekulárních hmotností je vyšší než 70 000. Enzym se z aktivních frakcí vysráží amonnou solí. Surových, přečištěných a čistých pevných enzymových produktů lze používat pro pří- ' právu imobilizované aminoacylasy, která se používá při štěpení DL-aminokyselin.The aminoacylase enzyme is isolated from an aqueous extract of mammalian kidneys by heating the extract for 5 to 15 minutes at 60 to 80°C. The heat-treated mixture is centrifuged. 200 to 300 g/liter of ammonium salt, preferably ammonium sulfate, is added to the supernatant. The resulting suspension is centrifuged, the separated precipitate is dissolved in water, the solution is dialyzed against water. The dialyzed solution or the solution of the enzyme isolated from the dialysate in a buffer with a pH of 6.5 to 8.5 is optionally subjected to anion exchange chromatography. Then, optionally, the active fraction obtained by chromatography, or a solution of the enzyme precipitated from the active fractions by adding ammonium salt in a buffer of pH 6.0 to 8.0, is subjected to gel chromatography on a gel filter whose upper limit of fractionated molecular weights is higher than 70,000. The enzyme is precipitated from the active fractions by ammonium salt. The crude, purified and pure solid enzyme products can be used for the preparation of immobilized aminoacylase, which is used in the cleavage of DL-amino acids.
Description
246055246055
Vynález se týká zlepšeného způsobu izo-lace aminoacylasy z ledvin savců, zvláštěvepřů.The present invention relates to an improved method for isolating aminoacylase from kidney kidney, especially pig.
Je známo, že enzym aminoacylasa se vy-skytuje v nejvyšších koncentracích v led-vinách vepřů, a proto se při popsaných způ-sobech izolace aminoacylasy používá jakosuroviny těchto ledvin.It is known that the aminoacylase enzyme is present at the highest concentrations in the kidney ice and therefore, in the described methods, the isolation of aminoacylase is used as such in the kidney.
Podle metody popsané v časopisu J. Biol.Chem.ťl78, 503 (1949) se aminoacylasa izo-luje z kůry vepřových ledvin následujícímzpůsobem: vodný extrakt z kůry vepřovýchledvin se smísí se 78% ethanolem tak, abykonečná koncentrace ethanolu byla 15%,směs se nechá stát 12 hodin při —6 °C, pakse odstředí a množství ethanolu v super-natantu se upraví na obsah 30 %. Kapalinase okyselí na pH 6,3 a směs se nechá státdalších 12 hodin při —15 °C. Vyloučená lát-ka se odcentrifiguje, pH supernatantu seupraví na hodnotu 5,1 a směs se opět nechástát 12 hodin. Vyloučená sraženina, kteráobsahuje aminoacylasu, se izoluje odstředě-ním. Specifická aktivita získaného produktuje asi čtyřnásobně vyšší než aktivita výcho-zího extraktu, což odpovídá velmi nízkémustupni čištění. V časopisu J. Biol. Chem. 194, 455 (1952)je pro izolaci aminoacylasy z vodného ex-traktu vepřových ledvin popsána série ope-rací sestávající ze šesti frakcionačníchstupňů a následujícího lyofilizačního' stup-ně. Touto metodou lze připravit žádaný en-zym asi ve třicetinásobném stupni čistoty(to je ještě v relativně nízkém stupni), při-čemž je tento způsob mnohem pracnější nežshora uvedená první metoda. Specifická ak-tivita lyofilizovaného produktu jest pouze4 640 jednotek/mg.According to the method described in J. Biol. Chem.178, 503 (1949), aminoacylase is isolated from pork kidney bark in the following manner: an aqueous extract from peeled bark is mixed with 78% ethanol so that the final ethanol concentration is 15%; left to stand for 12 hours at -6 ° C, centrifuged and the amount of ethanol in the supernatant adjusted to 30%. Acidify the liquid to pH 6.3 and allow the mixture to stand for a further 12 hours at -15 ° C. The precipitated material was centrifuged, the pH of the supernatant was adjusted to 5.1 and the mixture was again not stirred for 12 hours. The precipitated precipitate containing aminoacylase is isolated by centrifugation. The specific activity of the product obtained is about four times higher than that of the initial extract, which corresponds to a very low purification rate. J. Biol. Chem. 194, 455 (1952), a series of treatments consisting of six fractionation steps and a subsequent lyophilization step is described for the isolation of aminoacylase from the porcine kidney aqueous extract. By this method, the desired enzyme can be prepared at about thirty degrees of purity (i.e., still in a relatively low degree), the process being much more laborious than the above-mentioned first method. The specific activity of the lyophilized product is only 640 640 units / mg.
Aminoacylasu lze izolovat ve velmi čistémstavu, o specifické aktivitě 15 686 jednotek//mg, z vodného extraktu z vepřových ledvinmetodou zveřejněnou v časopisu Biochem.Z. 336, 162 (1962). Nevýhodou této metodyvšak je, že se skládá z devíti zdlouhavých,časově náročných a pracných separačnícha čisticích stupňů. Při metodě popsané v časopisu Biochi-miya 22, 838 (1957) se jako výchozí látkyk izolaci aminoacylasy používá acetonové-ho odparku získaného extrakcí vepřovýchledvin. Rozmělněný acetonový odparek seextrahuje fosfátovým pufrem, extrakt senasytí ve dvou stupních síranem amonnýma získaná suspenze se dialyzuje. Roztokzískaný po dialyse se zahřívá 5 minut na60 C'C a pak se frakcionuje ve dvou stupníchnasycených roztokem síranu amonného. Zís-kaná sraženina se rozpustí ve vodě, roztokse opět dialysuje a pak se frakcionuje vedvou stupních acetonem. Sraženina získanáv posledním frakcionačním stupni se roz-pustí ve vodě, roztok se dialysuje proti desti-lované vodě a pak se lyofilisuje. Touto me-todou, skádající se ze 12 operací, lze zís-kat produkt o specifické aktivitě asi 15 000jednotek/mg.Aminoacylase can be isolated in a very pure state, with a specific activity of 15,686 units / mg, from an aqueous pork extract by a kidney method disclosed in Biochem. 336, 162 (1962). The disadvantage of this method, however, is that it consists of nine lengthy, time-consuming and laborious separation steps. In the method described in Biochiya 22, 838 (1957), the acetone residue obtained by extraction of porcine was used as the starting material for the isolation of aminoacylase. The comminuted acetone residue is extracted with phosphate buffer, the senasyte extract in two stages with ammonium sulfate and the resulting suspension is dialysed. The dialysed solution was heated to 60 ° C for 5 minutes and then fractionated in two steps saturated with ammonium sulfate solution. The resulting precipitate is dissolved in water, the solution is dialysed again, and then fractionated with a step of acetone. The precipitate obtained by the last fractionation step is dissolved in water, the solution dialysed against distilled water and then lyophilized. With this method, consisting of 12 operations, a product with a specific activity of about 15,000 units / mg can be obtained.
Jak je zřejmé ze shora uvedeného popisu,společnou nevýhodou známých metod je, žeposkytují žádaný enzym v nízké nebo* střed-ní čistotě, a příprava přiměřeně čistého pro-duktu vyžaduje komplexní série operací,skládající se z 9 až 12 čisticích stupňů. Předložený vynález je zaměřen na odstra-nění zmíněných nevýhod známých metod.Nový způsob izolace aminoacylasy podle vy-nálezu se skládá jen z několika málo čisti-cích operací, které lze snadno provádět, aposkytuje žádanou aminoacylasu o< vysokéspecifické aktivitě.As can be seen from the above description, the common disadvantage of the known methods is that they provide the desired enzyme at low or medium purity, and the preparation of a reasonably pure product requires a complex series of operations consisting of 9 to 12 purification steps. The present invention is directed to the abovementioned disadvantages of the known methods. The novel method of isolating the aminoacylase of the present invention consists of only a few purification operations which are easy to perform, and provides the desired aminoacylase of < high specific activity.
Podstata vynálezu spočívá v poznatku,že když se vodný extrakt z vepřových led-vin podrobí působení tepla, pak se odstředí,supernatant se nasytí solí jednomocnéhokationtu s minerální kyselinou, sraženinaze vzniklé suspenze se oddělí, rozpustí vevodě, roztok se dialysuje proti vodě a en-zym se z dialyzovaného roztoku izoluje,získá se práškovitá aminoacylasa o speci-fické aktivitě asi 3 000 až 3 600 jednotek/mg,která se dá používat přímo, bez dalšího čiš-tění, při výrobě preparátů s Imobilizovanouaminoacylasou. Podrobí-li se však shora po-psaným způsobem získaný práškovitý enzymdvěma dalším chromatografickým čisticímstupňům, získá se velmi čistá aminoacylasao specifické aktivitě asi 15 000 jednotek/mg.Uvedeným způsobem, který se skládá pou-ze ze tří separačních a dvou čisticích stup-ňů, se získá žádaný enzym aminoacylasa vmimořádně čistém stavu. Bylo* rovněž zjiš-těno, že shora popsaným způsobem lze izo-lovat velmi čistou aminoacylasu ve vynika-jících výtěžcích z ledvin jiných savců (jakonapříklad z koňských, hovězích nebo králi-čích ledvin), které obsahují zmíněný en-zym v mnohem nižších koncentracích a do-provázený mnohem větším podílem balast-ních bílkovin než vepřové ledviny.SUMMARY OF THE INVENTION The present invention is based on the finding that when an aqueous extract of pork ice is subjected to heat then centrifuged, the supernatant is saturated with a salt of a monovalent mineral acid cation, the precipitate formed is separated, dissolved in water, the solution dialysed against water and en- From the dialyzed solution, an aminoacylase powder having a specific activity of about 3,000 to 3,600 units / mg is obtained, which can be used directly, without further purification, in the preparation of immobilized amino acetylase preparations. However, if the above-described powdered enzyme is subjected to further chromatographic purification steps, a very pure aminoacylase to a specific activity of about 15,000 units / mg is obtained. to obtain the desired aminoacylase enzyme in an extremely pure state. It has also been found that very pure amino acylases can be isolated in the excellent kidney yields of other mammals (such as equine, bovine or rabbit kidneys) that contain said enzyme at much lower concentrations in the manner described above. and accompanied by a much larger proportion of ballast proteins than pork kidneys.
Vynález se podle shora uvedeného týkázlepšeného způsobu izolace enzymu amino-acylasy z ledvin savců. Podle vynálezu sepři izolaci enzymu postupuje tím způsobem,že se vodný extrakt z ledvin, připravený osobě známým způsobem, zahřívá při 60 až80 °C po dobu 5 až 12 minut. Teplem zpra-covaná směs se odstředí, k supernatantuse přidá 200 až 300 g/litr amonné soli, vý-hodně síranu amonného’. Vzniklá suspenzese odstředí, oddělená sraženina se rozpustíve vodě. Roztok se dialysuje proti vodě apopřípadě se podrobí dialysovaný roztoknebo roztok enzymu izolovaného z dialysá-tu v pufru o pH 6,5 až 8,5, chromatografiina anexu. Dále se popřípadě podrobí aktiv-ní frakce získané z chromatografickéhostupně, nebo roztok enzymu vysráženého zaktivních frakcí amonnou solí v pufru ,o pH6,0 až 8,0, gelové chromatografii na gelo-vém filtru, jehož horní hranice frakciono-vaných molekulárních hmotností je vyššínež 70 000. Enzym se z aktivních frakcí vy-sráží amonnou solí. 246055 V prvním stupni způsobu podle vynálezuse vcdný extrakt z ledvin zahřívá na 60 až80 °C po dobu 5 až 15 minut, výhodně na70 "C po dobu 10 minut. Tímto působenímtepia se denaturuje většina bílkovin dopro-vázejících enzym, který se má izolovat. De-naturované bílkoviny se oddělí z vodnéhoroztoku jako sraženina o velké povrchovéploše. Tato sraženina působí rovněž jakočisticí složka, neboť absorbuje většinu ne-čistot, které zůstaly v rozpuštěném stavu.Tím lze vysvětlit, proč stupeň čistoty zís-kaný po šesti separačních stupních podlepostupu popsaného v časopisu J. Biol. Chem.184, 455 [1352) lze porovnat s čistotou pro-duktu získaného způsobem podle vynálezujiž po třech separačních stupních (působe-ní tepla, srážení, dialysa). K vodnému roztoku získanému po odstra-nění denaturovaných bílkovin se za účelemvysrážení surového· enzymu přidá 200 až300 g/litr, výhodně 250 až 280 g/litr, ob-zvláště výhodně 260 až 270 g/litr, amonnésoli. Jako srážecího činidla se výhodně po-užívá síranu amonného, avšak lze rovněžpoužít i jiných solí, jako chloridu amonné-ho, chloridu sodného a podobných. Vzniklásraženina se oddělí, rozpustí ve vodě a vod-ný roztok se o sobě známým způsobem dia-lysuje proti vodě. Z dialysovaného roztoku se může popří-padě izolovat o sobě známým způsobem, ja-ko lyofilisací, sušením za rozprašování, od-pařením a podobně, pevný produkt obsa-hující enzym. Specifická aktivita takto zís-kaného produktu, stanovená při 37 °C, jeasi 3 000 až 3 600 jednotek/mg, což odpoví-dá 20- až 25násobné účinnosti čištění Uve-dený produkt lze používat jako takový, bezjakéhokoliv dalšího čištění, pro různé prů-myslové účely, na příklad pro výrobu pří-pravků obsahujících imobilizovaný enzym. Má-li se shora popsaným způsobem zís-kat s”rový enzym dále čistit, není naprostonutné izolovat enzym z dialysovaného roz-toku v pevné formě. Dialysovaný roztok lzepřímo, popřípadě po úpravě jeho pH, apli-kovat na sloupec anexové pryskyřice. Jakoanexcvé pryskyřice se s výhodou používáSephadexových pryskyřic, jako DEAE-Sepha-dexu A-50. Použije-li se při chromatograflina anexové pryskyřici jako výchozí látkypevného surového enzymu, aplikuje se ten-to produkt na sloupec anexu ve formě roz-toku ve vhodném puf™, na příklad v 0,05molárním vodném pufru fosforečnanu dra-selného (pH = 7,0). Sloupec se ekvilibrujepřed nanesením enzymu stejným pufrem.Icntoměničová kolona se eluuje s výhodou0,05 molárním vodným pufrem fosforečnanudraselného o pH 7,0, obsahujícím rovněžchlorid sodný, výhodně v množství 0,3 moluchloridu sodného na litr roztoku; k uvede-nému účelu však lze použít i roztoků jinýchsolí s příslušnou iontovou silou.The present invention provides an improved method for isolating the amino-acylase enzyme from a mammalian kidney. According to the invention, the isolation of the enzyme is carried out by heating the aqueous kidney extract prepared to a person in a known manner at 60-80 ° C for 5-12 minutes. The heat-treated mixture is centrifuged, 200 to 300 g / liter of ammonium salt, preferably ammonium sulfate, is added to the supernatant. The resulting suspension is centrifuged and the separated precipitate is dissolved in water. The solution is dialysed against water and optionally dialysed or an enzyme solution isolated from dialysate in pH 6.5-8.5 buffer is subjected to anion exchange chromatography. Further, the active fraction obtained from the chromatographic step or the enzyme-precipitated active fraction enzyme is subjected, if desired, to a gel filtration gel whose upper molecular weight limit is higher than that of the active amine salt precipitate in buffer pH 6.0 to 8.0. The enzyme is precipitated from the active fractions with ammonium salt. 246055 In the first step of the process according to the invention, the kidney extract is heated to 60-80 ° C for 5-15 minutes, preferably 70 ° C for 10 minutes. This action denaturates most of the proteins that bind the enzyme to be isolated. The precipitated protein also acts as a cleansing component because it absorbs most of the impurities left in the dissolved state. This explains why the degree of purity obtained after the six separation steps according to the procedure described in J. Biol. Chem.184, 455 [1352] can be compared to the purity of the product of the invention after three separation steps (heat treatment, precipitation, dialysis). in order to precipitate the crude enzyme, it adds 200 to 300 g / liter, preferably 250 to 280 g / liter; Preferably, ammonium sulphate is used as the precipitating agent, but other salts such as ammonium chloride, sodium chloride and the like can also be used. The precipitate formed is separated off, dissolved in water and the aqueous solution is distilled in a manner known per se against water. Alternatively, a solid product comprising the enzyme may be isolated from the dialysed solution in a manner known per se by lyophilization, spray-drying, evaporation and the like. The specific activity of the product thus obtained, determined at 37 ° C, is 3,000 to 3,600 units / mg, which corresponds to a 20 to 25-fold purification efficiency. sensory purposes, for example, for the production of immobilized enzyme-containing compositions. In order to further purify the enzyme of the invention as described above, it is not absolutely necessary to isolate the enzyme from the dialysed solution in solid form. The dialysed solution is applied to the anion exchange resin column, optionally after adjusting its pH. As exchanging resins, preferably, hephadex resins such as DEAE-Sephexex A-50 are used. When a solid crude enzyme is used as the starting material for the anion exchange resin chromatography, this product is applied to the anion exchange column in the form of a suitable buffer, for example in a 0.05 molar aqueous potassium phosphate buffer (pH = 7). 0). The column is equilibrated prior to application of the enzyme with the same buffer. The column is eluted preferably with 0.05 M molar aqueous phosphate buffer pH 7.0 containing also sodium chloride, preferably 0.3 M sodium per liter of solution; however, solutions of other salts with the appropriate ionic strength can also be used for this purpose.
Aktivní frakce eluátu se spojí a popřípa-dě se z nich vysráží pevný produkt obsahu- jící enzym způsobem popsaným výše. Jakosrážecí činidlo se přidává obvykle 200 až300 g, výhodně 250 až 280 g, zvláště výhod-ně 260 až 270 g amonné soli na jeden litrroztoku. Pro tento účel se s výhodou použí-vá síranu amonného. Specifická aktivitavysráženého produktu, stanovená při 37 °C,je 6 000 až 6 600 jednotek/mg, což odpovídá40- až 45násobné účinnosti čištění vzhledemk výchozímu extraktu. Má-li se částečně vyčištěný enzym získa-ný shora popsaným způsobem dále čistit,není absolutně nutné izolovat enzym z aktiv-ních frakcí eluátu v pevné formě. Aktivnífrakce lze na sloupec gelu aplikovat přímo,popřípadě po úpravě jejich pH. Při čištěnígelovou chromatografií se s výhodou po-užívá Sephadexových gelů, jako SephadexuG-200. V tomto čisticím stupni lze však po-užívat pouze takových gelů, jejichž horníhranice frakcionovaných molekulárníchhmotností je vyšší než 70 000. Použije-li sepři gelové chromatografii jako výchozí lát-ky pevného· produktu obsahujícího enzym,aplikuje se tato látka na sloupec gelu veformě roztoku v pufru, jako v 0,05 molárnímvodném pufru fosforečnanu draselného opH 7,0. Sloupec gelu se před aplikací en-zymu ekvilibruje stejným pufrem. Enzym seze sloupce gelu eluuje s výhodou 0,05 mo-lárním vodným pufrem fosforečnanu dra-selného· o pH 7.0; lze však používat i jinýchzředěných vodných pufrů. Aktivní frakceefluentu se spojí a enzym se z roztoku izo-luje vysrážením shora popsaným způsobem.Jako srážecí činidlo se přidává obvykle 200až 300 g, výhodně 250 až 280 g, zvláště vý-hodně 260 až 270 g amonné soli na jedenlitr roztoku. Pro· 'tento účel se s výhodou po-užívá síranu amoného. Specifická aktivitatakto získaného enzymu, stanovená při 37 °C,je asi 15 000 jednotek/mg, to je stupeň čis-toty je vynikající.The active fractions of the eluate are combined and optionally precipitated a solid product containing the enzyme as described above. Typically, 200 to 300 g, preferably 250 to 280 g, particularly preferably 260 to 270 g, of ammonium salt per liter of solution are added as a precipitating agent. Ammonium sulfate is preferably used for this purpose. The specific activity of the precipitated product, determined at 37 ° C, is 6,000 to 6,600 units / mg, corresponding to a 40- to 45-fold efficiency of purification relative to the starting extract. If the partially purified enzyme obtained as described above is to be further purified, it is not absolutely necessary to isolate the enzyme from the active fractions of the eluate in solid form. The active fraction can be applied directly to the gel column, optionally after pH adjustment. Purification by gel chromatography preferably uses Sephadex gels such as Sephadex G-200. In this purification step, however, only gels whose upper bound of the fractionated molecular weights are higher than 70,000 can be used. When using gel chromatography as the starting material of the enzyme-containing solid, it is applied to the gel column in the form of a solution in buffer, as in 0.05 molar aqueous potassium phosphate buffer opH 7.0. The gel column was equilibrated with the same buffer before application of enzyme. The enzyme is eluted with the gel column preferably with 0.05 molar aqueous potassium phosphate buffer pH 7.0; however, other dilute aqueous buffers may be used. The active fraction of the eluent is combined and the enzyme is isolated from the solution by precipitation as described above. Typically, 200 to 300 g, preferably 250 to 280 g, especially preferably 260 to 270 g, of ammonium salt are added as a precipitating agent per liter of solution. For this purpose, ammonium sulfate is preferably used. The specific activity of such an enzyme obtained, determined at 37 ° C, is about 15,000 units / mg, i.e. the degree of purity is excellent.
Surových, částečně přečištěných a čistýchpevných produktů obsahujících enzym, zís-kaných způsobem podle vynálezu, lze s vý-hodou používat pro přípravu imobilizovanéaminoacylasy. Jak je známo, preparátů s mo-bilizovanou aminoacylasou se široce používápři štěpení DL-aminokyselin.The crude, partially purified and pure solid enzyme-containing products obtained by the process of the invention can advantageously be used for the preparation of immobilized amino acylases. As is known, preparations with a modified aminoacylase are widely used for DL-amino acid cleavage.
Způsob podle vynálezu je podrobně ob-jasněn v následujících příkladech provede-ní, které však rozsah vynálezu žádným způ-sobem neomezují. Příklad 1 1 kg přečištěných vepřových ledvin serozmělní a pak zhomogenizuje se 2 litrychladné (+4°CJ destilované vody. Zhomo-genizovaná směs se míchá jednu hodinuv ledové lázni a pak se odstředí. Superna-tant se zahřeje na 60 C,C, udržuje se na tétoteplotě 15 minut, pak se směs ochladí vlázni s ledovou vodou a odstředí. K super-natantu se přidá 280 g síranu amonného, 246055 směs se ponechá stát přes noc a vzniklásuspenze se odstředí. Oddělená sraženinase rozpustí v malém množství chladné (+4°Celsia) destilované vody a roztok se dialy-suje až je prostý solí proti destilované vo-dě. Zdialysovaný roztok se paik zfiltruje afiltrát se lyofilizuje; získá se 4,2 g amino-acylasy. Aktivita: zhydrolyzování 1 000 ^mo-lů N-acetyl-L-methioninu/hodinu/mg bílko-viny. P ř í k 1 a d 2 1 kg přečištěných vepřových ledvin serozmělní a pak zhomogenizuje se 2 litrychladné (+4°C) destilované vody. Zhomo-genizovaná směs se míchá 1 hodinu v ledo-vé lázni a pak se odstředí. Supernatant sezahřeje na 80 °C, udržuje se na této teplotě5 minut, pak se směs ochladí v lázni s le-dovou vodou a odstředí. K supernatantu sepřidá 359 g síranu amonného, směs se po-nechá stát přes noc a vzniklá suspenze seodstředí. Oddělená sraženina se rozpustí vmalém množství chladné (+4°C) destilova-né vody a roztok se dialysuje proti destilo-vané vodě až je prostý solí. Zdialysovanýroztok se zfiltruje a filtrát se lyofilizuje;získá se 1,1 g aminoacylasy. Aktivita: zhyd-rolyzování 800 μΐηοΐύ N-acetyl-l-methioni-nu/hodinu/mg bílkoviny. Příklad 3 8 kg přečištěných vepřových ledvin serozmělní a paik zhomogenizuje se 16 litrychladné (+4qC) destilované vody. Zhomo-genizovaná směs se míchá 1 hodinu v ledo-vé lázni a pak se odstředí. Supernatant sezahřeje na 70 °C, udržuje se na této teplotě10 minut, pak se směs ochladí v lázni s le-dovou vodou a odstředí. K supernatantu sepřidá 2 554 g síranu amonného, směs se ne-chá stát přes noc a vzniklá suspenze seodstředí. Oddělená sraženina se rozpustí vmalém množství chladné (+4°C) destilova-né vody a roztok se dialysuje proti destilo-vané vodě až je prostý solí. Zdialysovanýroztok se zfiltruje a filtrát se lyofilizuje;získá se 7,2 g aminoacylasy. Aktivita: hyd-rolysa 2 735 μΐηοΐύ N-acetyl-L-methioninu zahodinu/mg bílkoviny. Příklad 4 3,6 kg přečištěných hovězích ledvin serozmělní a pak zhomogenizuje se 7,2 litrychladné (+4°C) destilované vody. Zhomo-genizovaná směs se míchá jednu hodinu vledové lázni a pak se odstředí. Supernatantse zahřeje na 70 °C, udržuje se na této tep-lotě 10 minut, pak se směs ochladí v láznis ledovou vodou a odstředí. K supernatantuse přidá 1 234 g síranu amonného, směs senechá stát přes noc a vzniklá suspenze seodstředí. Oddělená sraženina se rozpustí vmalém množství chladné (+4°C) destilova- né vody a roztok se dialysuje proti destilo-vané vodě až je prostý solí. Zdialysovanýroztok se zfiltruje a filtrát se lyofilizuje;získá se 3,4 g aminoacylasy. Aktivita: hydro-lysa 791 (umol N-acetyl-L-methioninu/hodi-nu/mg bílkoviny. Příklad 5 2,5 kg přečištěných koňských ledvin serozmělní a pak zhomogenizuje s 5 litrychladné (+4°'C) destilované vody. Zhomo-genizovaná směs se míchá jednu hodinuv ledové lázni a pak se odstředí. Superna-tant se zahřeje na 70 °C, udržuje se na tétoteplotě 10 minut, pak se směs ochladí v láz-ni s ledovou vodou a odstředí. K superna-tantu se přidá 1 200 g síranu amonného,směs se nechá stát přes noc a vzniklá sus-penze se odstředí. Oddělená sraženina serozpustí v malém množství chladné (+4°C)destilované vody a roztok se dialysuje pro-ti destilované vodě až je prostý solí. Zdia-lysovaný roztok se zfiltruje a filtrát se lyo-filizuje; získá se 3,8 g aminoacylasy. Akti-vita: hydrolysa 319 μΐηοΐύ N-acetyl-L-me-thioninu/hodinu/mg bílkoviny. Příklad 6 K roztoku 3 g aminoacylasy z vepřovýchledvin, připravené způsobem popsaným vpříkladu 3, v 0,05 molárním pufru fosforeč-nanu draselného o pH 7,0 se přidá 50 gDEAE Sephadexu A-50, předem ekvilibrova-ného stejným roztokem pufru. Suspenze semíchá 3 hodiny v lázni s ledovou vodou apak se nechá stát přes noo v ledničce při(-4 °C. Příští den se pryskyřice promyje tře-mi dávkami po 1 litru shora uvedeného puf-ru, pak se rozmíchá v 1 litru stejného puf-ru a suspenze se naplní do trubice o prů-měru 5,3 cm a o výšce 55 cm. Sloupec prys-kyřice se pak vymývá 0,05 molárním puf-rem fosforečnanu draselného (pH = 7,0),který obsahuje 0,3 molu chloridu sodného,průtokovou rychlostí 200 ml/hodinu. Eflu-ent se jímá ve frakcích po 100 ml. Frakce,které vykazují enzymatickou aktivitu, sespojí a k roztoku se přidá 80 g síranu amon-ného; vyloučí se 0,7 g aminoacylasy. Akti-vita: hydrolysa 5 240 μΐηοΐύ N-acetyl-L-me-thioninu/hodinu/mg bílkoviny. Příklad 7 25 ml suspenze enzymu získané způsobempopsaným v příkladu 6, obsahující 57 mgbílkoviny, se odstředí a oddělená sraženinase rozpustí v 9 ml 0,05 molárního pufrufosforečnanu draselného o pH 7,0. Roztokse nanese na horní konec trubice o· průměru 2,4 cm a výšce 43 cm, naplněné gelem Se-phadex G-200, který byl předem ekvilibro-ván stejným pufrem. Sloupec se pak eluujestejným pufrem průtokovou rychlostí 60 ml/The process of the invention is illustrated in detail in the following examples, which are not to be construed as limiting the invention in any way. EXAMPLE 1 1 kg of purified pig kidneys are mixed and then homogenized with 2 liters of cold (+ 4 DEG C. distilled water. The homogenized mixture is stirred for one hour in an ice bath and then centrifuged. The supernatant is heated to 60 DEG C., maintained, for 15 minutes, then cool the flask with ice water and centrifuge, add 280 g of ammonium sulphate to the supernatant, allow the mixture to stand overnight and centrifuge to separate the precipitate. The solution is dialyzed free of salt against distilled water, filtered and the filtrate lyophilized to give 4.2 g of amino acylase. EXAMPLE 2 1 kg of purified pig kidneys are serialized and then homogenized with 2 liters of distilled water (+ 4 DEG C.). 1 hour in glacial Mo bath and then centrifuged. The supernatant sezahřeje to 80 ° C, maintained at this tem perature for 5 minutes, then cooled in a bath-le DOVO water and centrifuged. Ammonium sulphate (359 g) was added to the supernatant and the mixture was allowed to stand overnight and the resulting suspension was concentrated. The separated precipitate was dissolved in a small amount of cold (+ 4 ° C) distilled water and the solution was dialysed against distilled water until it was free of salt. The acidified solution was filtered and the filtrate was lyophilized to give 1.1 g of aminoacylase. Activity: hydrolysis of 800 μΐηοΐύ N-acetyl-1-methionine / hour / mg protein. EXAMPLE 3 8 kg of purified pig kidneys are homogenized and homogenized with 16 liters (+ 4qC) distilled water. The homogenized mixture was stirred in an ice bath for 1 hour and then centrifuged. The supernatant was heated to 70 ° C, held at this temperature for 10 minutes, then cooled in an ice water bath and centrifuged. 2,554 g of ammonium sulfate are added to the supernatant, the mixture is left to stand overnight and the resulting suspension is concentrated. The separated precipitate was dissolved in a small amount of cold (+ 4 ° C) distilled water and the solution was dialysed against distilled water until it was free of salt. The acidified solution was filtered and the filtrate lyophilized to give 7.2 g of aminoacylase. Activity: hydrolase 2,735 μΐηοΐύ N-acetyl-L-methionine per hour / mg protein. Example 4 3.6 kg of purified bovine kidneys are serosized and then 7.2 liters (+ 4 ° C) distilled water is homogenized. The homogenized mixture is stirred for one hour in a cold bath and then centrifuged. The supernatant is heated to 70 ° C, held at this temperature for 10 minutes, then cooled in a bath of ice water and centrifuged. To the supernatant was added 1,234 g of ammonium sulfate, the mixture was allowed to stand overnight and the resulting suspension was concentrated. The separated precipitate is dissolved in a small amount of cold (+ 4 ° C) distilled water, and the solution is dialysed against distilled water until it is free of salt. The acidified solution was filtered and the filtrate was lyophilized to give 3.4 g of aminoacylase. Activity: Hydrochloride 791 (umol of N-acetyl-L-methionine / hour / mg protein. Example 5 2.5 kg of purified horse kidneys serosize and then homogenize with 5 liters (+ 4 ° C) distilled water. The homogenized mixture is stirred for one hour in an ice bath and then centrifuged, the supernatant is heated to 70 ° C, held for 10 minutes, then the mixture is cooled in an ice water bath and centrifuged. 1,200 g of ammonium sulphate are added, the mixture is left to stand overnight and the resulting suspension is centrifuged and the separated precipitate is dissolved in a small amount of cold (+ 4 ° C) distilled water and dialysed with distilled water until it is free of salt. The combined solution was filtered and the filtrate was lyophilized to give 3.8 g of aminoacylase, activity: hydrolysis of N-acetyl-L-methionine / hour / mg protein Example 6 To a solution of 3 g aminoacylase from pork, prepared as described in Example 3, at 0, Add 50 g of Sephadex A-50, previously equilibrated with the same buffer solution, to a pH of 7.0 molar buffer of potassium phosphate pH 7.0. The suspension is stirred for 3 hours in an ice water bath and then allowed to stand in the refrigerator at (-4 ° C. Next day the resin is washed with three portions of 1 liter of the above buffer, then stirred in 1 liter of the same buffer). The suspension is filled into a 5.3 cm diameter tube and 55 cm high, then the resin column is eluted with 0.05 molar potassium phosphate buffer (pH = 7.0) containing 0.3%. The effluent is collected in fractions of 100 ml and the fractions showing enzymatic activity are combined and 80 g of ammonium sulfate are added to the solution to give 0.7 g of aminoacylase. -vita: hydrolysis 5 240 μΐηοΐύ N-acetyl-L-methionine / hour / mg protein Example 7 25 ml of enzyme suspension obtained as described in Example 6, containing 57 mg of protein, is centrifuged and the separated precipitate dissolved in 9 ml of 0.05 molar potassium phosphate buffer, pH 7.0 at the top end of a tube with a diameter of 2.4 cm and a height of 43 cm, filled with Se-phadex G-200 gel, which was previously equilibrated with the same buffer. The column was then eluted with the same buffer at a flow rate of 60 ml /
Claims (3)
Priority Applications (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS246382A CS246055B2 (en) | 1982-04-06 | 1982-04-06 | Method of isolation of aminoacylase enzyme |
| CS851312A CS247097B2 (en) | 1982-04-06 | 1985-02-22 | A method of immobilizing the aminoacylase enzyme |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS246382A CS246055B2 (en) | 1982-04-06 | 1982-04-06 | Method of isolation of aminoacylase enzyme |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS246055B2 true CS246055B2 (en) | 1986-10-16 |
Family
ID=5361847
Family Applications (2)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS246382A CS246055B2 (en) | 1982-04-06 | 1982-04-06 | Method of isolation of aminoacylase enzyme |
| CS851312A CS247097B2 (en) | 1982-04-06 | 1985-02-22 | A method of immobilizing the aminoacylase enzyme |
Family Applications After (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS851312A CS247097B2 (en) | 1982-04-06 | 1985-02-22 | A method of immobilizing the aminoacylase enzyme |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (2) | CS246055B2 (en) |
-
1982
- 1982-04-06 CS CS246382A patent/CS246055B2/en unknown
-
1985
- 1985-02-22 CS CS851312A patent/CS247097B2/en unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| CS247097B2 (en) | 1986-11-13 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| JP3018412B2 (en) | Plasma protein fractionation method | |
| US4184917A (en) | Process for producing a structurally modified interferon | |
| US4382028A (en) | Separation of plasma proteins from cell culture systems | |
| Caprioli et al. | A cell division-active protein from E. coli | |
| Alam et al. | The purification, properties and characterization of three forms of α-l-fucosidase from monkey brain | |
| Ho | Specificity of low molecular weight glycoprotein effector of lipid glycosidase | |
| Heuermann et al. | Purification and characterization of a sialidase from Clostridium chauvoei NC08596 | |
| Heumann et al. | Purification and immunological characterization of the human hexokinase isoenzymes I and III (ATP-d-hexose 6-phosphotransferase EC 2.7. 1.1) | |
| KR102528707B1 (en) | Purification method of high purity hyaluronidase | |
| Amos et al. | Synthesis of ‘bacterial’protein by cultured chick cells | |
| YANO et al. | Purification and properties of nucleotide pyrophosphatase from human placenta | |
| Shepherd et al. | α-d-Mannosidase. Preparation and properties of free and insolubilized enzyme | |
| CS246055B2 (en) | Method of isolation of aminoacylase enzyme | |
| JPS6154450A (en) | Gel for affinity chromatography having group specificity and its production | |
| CA1320465C (en) | Collagenase inducing factor | |
| US4608340A (en) | Immobilized aminoacylase enzyme | |
| CN102277345A (en) | Method for preparing chondroitinase B and chondroitinase AC from flavobacterium heparinum | |
| EP0059182B1 (en) | A process for isolating aminoacylase enzyme from a mammal kidney extract | |
| US4532214A (en) | Method for isolation of aminoacylase | |
| Pardoe | The inducible neuraminidase (N-acyl-neuraminyl hydrolase EC 3.2. 1.18) of Klebsiella aerogenes NCIB 9479 | |
| US20090093038A1 (en) | Method for the production of pure virally inactivated butyrylcholinesterase | |
| Durban et al. | Purification and characterization of protein methylase I (S-adenosylmethionine: protein-arginine methyltransferase; EC 2.1. 1.23) from calf brain | |
| Michon | Preparation of Orosomucoid (α1-Acid Seromucoid) | |
| JPH0244510B2 (en) | ||
| ARAKAWA et al. | MOLECULAR PROPERTIES OF POST‐MORTEM MUSCLE. 9. Effect of Temperature and pH on Tropomyosin‐Troponin and Purified α‐Actinin from Rabbit Muscle |