CS248897B1 - A method of isolating proteolytic enzymes - Google Patents

A method of isolating proteolytic enzymes Download PDF

Info

Publication number
CS248897B1
CS248897B1 CS812685A CS812685A CS248897B1 CS 248897 B1 CS248897 B1 CS 248897B1 CS 812685 A CS812685 A CS 812685A CS 812685 A CS812685 A CS 812685A CS 248897 B1 CS248897 B1 CS 248897B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
proteolytic enzymes
solution
eluted
isolation
elution
Prior art date
Application number
CS812685A
Other languages
Czech (cs)
Inventor
Ivo Safarik
Original Assignee
Ivo Safarik
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ivo Safarik filed Critical Ivo Safarik
Priority to CS812685A priority Critical patent/CS248897B1/en
Publication of CS248897B1 publication Critical patent/CS248897B1/en

Links

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Izolace se provádí adsorpsí proteolytických enzymů na částice uhlí. Eluce proteinas se provádí roztoky anorganických solí, např. sírany a chloridy sodnými, draselnými a amonnými, nebo změnou pH elučního roztoku.Isolation is performed by adsorption of proteolytic enzymes onto carbon particles. Elution of proteinases is performed with solutions of inorganic salts, e.g. sodium, potassium and ammonium sulfates and chlorides, or by changing the pH of the elution solution.

Description

Vynález se týká způsobu izolace proteolytických enzymů.The invention relates to a process for the isolation of proteolytic enzymes.

Proteolytické enzymy se ze směsí /např. živná média po kultivaci produkčních mikroorganismů, hrubé extrakty živočišných tkání nebo rostlinných pletiv apod./ mohou izolovat celou řadou metod, jako je např. srážení síranem amonným nebo vychlazenými organickými rozpouštědly, ultrafiltrací, ionexovou, gelovou a afinitní chromatografii a dalšími technikami. Pouze při použití afinitní chromatografie je možno získat výrazně přečištěné preparáty protelnas v jednom kroku.Proteolytic enzymes from mixtures / e.g. nutrient media after cultivation of producing microorganisms, coarse extracts of animal tissues or plant tissues, etc./ can be isolated by a variety of methods such as ammonium sulfate precipitation or chilled organic solvents, ultrafiltration, ion exchange, gel and affinity chromatography and other techniques. Only by affinity chromatography can a significantly purified protelnase preparation be obtained in one step.

Jako typické příklady izolacé protelnas afinitní chromatografii je možno uvést izolaci pepsinu na sloupci polylysin-Sepharosy 4B /Nevaldine, B., Kassell, B.: Biochim. Biophys.Typical examples of affinity chromatography purification include pepsin isolation on a polylysine-Sepharose 4B column / Nevaldine, B., Kassell, B., Biochim. Biophys.

Acta 250, 207 /1971//, izolaci pankreatického trypsinu na ovomukoid-Spheronu /Truková, J., Seifertová, A.: J. Chromatogr. 148, 293 /1978//, nebo izolaci protelnas z listů ovsa na hemoglobin-Sepharose /Drivdahl, R. H., Thimann, K.; Plant Physiol. 59, 1059 /1977//.Acta 250, 207 (1971)], the isolation of pancreatic trypsin on ovomucoid-Spheron / Trukova, J., Seifertova, A., J. Chromatogr. 148, 293 (1978)], or the isolation of proteins from oat leaves on hemoglobin-Sepharose / Drivdahl, R.H., Thimann, K .; Plant Physiol. 59, 1059 (1977)].

Typické afinitní sorbenty pro izolaci protelnas jsou připravovány imobilizací vhodných ligandů na nerozpustné nosiče. Přitom je často nutno použít několikastupňový proces pro aktivaci nosiče, jsou vyžadovány speciální chemikálie apod.Typical affinity sorbents for the isolation of prothannas are prepared by immobilizing suitable ligands onto insoluble carriers. It is often necessary to use a multi-stage process to activate the carrier, special chemicals are required, etc.

Způsob izolace proteolytických enzymů z komplexních směsí podle vynálezu spočívá v tom, že se proteinasy obsažené v roztoku adsorbují na částice uhlí. Jejich eluce se provádí roztoky anorganických solí, s výjimkou solí ovlivňujících enzymovou aktivitu, s výhodou sírany a chloridy sodnými, draselnými.a amonnými, nebo je možno eluci provést změnou pH, např. roztokem tetraboritanu dvojsodného nebo hydroxidu amonného.A method for isolating proteolytic enzymes from the complex compositions of the invention is to adsorb the proteinases contained in the solution to the coal particles. They are eluted with solutions of inorganic salts, with the exception of salts affecting the enzymatic activity, preferably sodium, potassium and ammonium sulphates and chlorides, or they can be eluted by changing the pH, for example with disodium tetraborate or ammonium hydroxide.

K izolaci je možno použít jak kolonové, tak i vsádkové uspořádání. Výhodou tohoto způsobu je použití velmi dostupné suroviny /uhlí/ a. rovněž to, že uhlí je možno připravit pro izolaci velmi jednoduchým způsobem.Both column and batch configurations can be used for insulation. The advantage of this process is the use of a highly available raw material (coal) and also that the coal can be prepared for isolation in a very simple manner.

Vynález je dokumentován příklady použití.The invention is illustrated by examples of use.

PřikladlHe did

Skleněná kolona byla naplněna částicemi hnědého uhlí o rozměrech 0,30-0,35 mm, rozptýlenými ve vodě, přičemž byl vytvořen sloupec o rozměrech 180 x 12 mm. Po naplnění byla kolona pranyta vodou, roztokem chloridu sodného /1 mol.-l-1/ a opět vodou, dokud absorbance promyvů při 280 nm a tlouštce vrstvy 1 cm neklesly k nule. Poté bylo aplikováno 10 ml kultivačního média po kultivaci Bacillus sp., který produkuje extracelulární proteinasy.The glass column was packed with 0.30-0.35 mm brown coal particles dispersed in water to form a 180 x 12 mm column. After loading, the column was washed with water, brine (1 M -1 ) and again with water until the absorbance of the washes at 280 nm and the 1 cm layer thickness dropped to zero. 10 ml of culture medium after culturing Bacillus sp., Which produces extracellular proteinases, was then applied.

Balastní bílkoviny byly z kolony vymyty vodou. Adsorbované proteinasy byly z kolony eluovány zvýšením iontové síly prostředí /elucí roztokem chloridu sodného, 1 mol.l 1/.The ballast proteins were eluted from the column with water. The adsorbed proteinases were eluted from the column by increasing the ionic strength of the medium (eluting with sodium chloride solution, 1 mol / l ).

Obsah bílkovin byl sledován Lowryho metodou /Lowry, 0. H., Rosebrough, N. J., Farr, A. L. , Randall, R. J.: J. Biol. Chem. 193, 265 /1951// a aktivita protelnas azokaseinovou metodou /Šafařík, I.: J. Chromatogr. 261, 138 /1983//.Protein content was monitored by the Lowry method / Lowry, O., Rosebrough, N.J., Farr, A.L., Randall, R.J., J. Biol. Chem. 193, 265 (1951)] and protelnase activity by the azo-casein method [Safarik, I .: J. Chromatogr. 261, 138 (1983) //.

Z celkově aplikované proteolytické aktivity se s balastnimi bílkovinami při eluci . vodou vymylo 1,3 i aktivity, při eluci roztokem chloridu sodného se v celkovém objemu 130 ml vymylo 70,7 i aktivity. Specifická aktivita proteinas se po chromatografii zvýšila 51krát.Of the total proteolytic activity applied, the ballast proteins are eluted. water eluted 1.3 l of activity, eluting with sodium chloride solution in a total volume of 130 ml eluted 70.7 l of activity. The specific activity of proteinases increased 51-fold after chromatography.

VIN

Příklad 2Example 2

Za analogických podmínek jako v příkladu 1 byla provedena chromatografie 30 mg amorfního trypsinu pro bakteriologii, rozpuštěného v 10 ml vody. Z celkově aplikované proteolytické aktivity se s balastnimi bílkovinami při eluci vodou vymylo 5 % aktivity, při eluci roztokem chloridu sodného /1 mol.I-1/ se v celkovém objemu 130 ml vymylo 40 % aktivity. Specifická aktivita trypsinu se po chromatografii zvýšila 2,8krát.Under analogous conditions to Example 1, chromatography of 30 mg of amorphous trypsin for bacteriology dissolved in 10 ml of water was performed. Of the total proteolytic activity applied, 5% of the activity was eluted with the ballast proteins by elution with water, 40% of the activity was eluted with sodium chloride solution (1 mol.l -1 ) in a total volume of 130 ml. The trypsin specific activity increased 2.8-fold after chromatography.

Příklad 3Example 3

Za' analogických podmínek jako v příkladu 2 byly provedeny chromatografie trypsinu.Trypsin chromatography was performed under analogous conditions to Example 2.

K eluci aktivní proteinasy bylo rovněž možno použít roztok chloridu draselného /1 mol.i-1/ a síranu amonného /1 mol.l-1/.To elute the active proteases could also be used potassium chloride solution / 1 mol m -1 and / ammonium sulfate / 1 mol.l -1 /.

Příklad 4Example 4

Za analogických podmínek jako v příkladu 2 byly provedeny chromatografie trypsinu.Trypsin chromatography was performed under analogous conditions to Example 2.

K eluci aktivní proteinasy bylo rovněž možno použít změny pH elučního roztoku, např. promytím sloupce 4% roztokem hydroxidu amonného nebo 4% roztokem tetraboritanu sodného.The pH of the elution solution could also be used to elute the active proteinase, for example by washing the column with 4% ammonium hydroxide solution or 4% sodium tetraborate solution.

Příklad 5Example 5

Částice uhlí byly před použitím suspendovány v roztoku bílkoviny /1% roztok kaseinu/ a poté důkladně promyty vodou, roztokem chloridu sodného /1 mol.l-1/ a opět vodou, jako v příkladu 1. Byla provedena chromatografie trypsinu jako v příkladu 2. Výtěžnost proteinasy eluované roztokem NaCl /1 mol.l 1/ byla o 10 až 20 % vyšší než v případě, kdy chromatografie probíhala na nemodifikovaném uhlí.The charcoal particles were suspended in the protein solution (1% casein solution) prior to use and then thoroughly washed with water, sodium chloride solution (1 mol.l -1 ) and again with water as in Example 1. Trypsin chromatography was performed as in Example 2. The yield of proteinase eluted with NaCl solution (1 mol.l 1 ) was 10 to 20% higher than when the chromatography was performed on unmodified coal.

Příklad 6Example 6

Bylo smícháno 50 ml kultivačního média po kultivaci Bacillus sp., který produkuje extracelulární proteinasy, a 20 g jemně mletého uhlí ve 200 ml vody. Po 5 hodinové inkubaci byly částice uhlí odfiltrovány na Buchnerově nálevce a důkladně promyty vodou. Adsorbované proteinasy byly eluovány roztokem síranu amonného /1 mol-1-1/. Výtěžnost proteolytické aktivity byla 50 %, specifická aktivita se zvýšila 40krát.50 ml of culture medium after cultivation of Bacillus sp., Which produces extracellular proteinases, and 20 g of finely ground coal in 200 ml of water were mixed. After a 5 hour incubation, the charcoal particles were filtered on a Buchner funnel and washed thoroughly with water. The adsorbed proteinases were eluted with ammonium sulfate solution (1 mol-1 -1 ). The yield of proteolytic activity was 50%, the specific activity increased 40-fold.

Claims (2)

1. Způsob izolace proteolytických enzymů, vyznačující se tím, že sé proteolytické enzymy obsažené v roztoku adsorbují na částice uhlí, jejich eluce se provádí roztoky anorganických solí s výjimkou solí, které ovlivňují enzymovou aktivitu, s výhodou sírany a chloridy sodnými, draselnými a amonnými, nebo se eluce provádí změnou pH elučního roztoku.Process for the isolation of proteolytic enzymes, characterized in that the proteolytic enzymes contained in the solution adsorb to coal particles, eluting with solutions of inorganic salts with the exception of salts which affect the enzymatic activity, preferably sodium, potassium and ammonium sulphates and chlorides, or the elution is performed by varying the pH of the elution solution. 2. Způsob podle bodu 1, vyznačující se tím, že částice uhlí jsou před použitím suspendovány v roztoku bílkoviny.2. The method of claim 1 wherein the coal particles are suspended in a protein solution prior to use.
CS812685A 1985-11-12 1985-11-12 A method of isolating proteolytic enzymes CS248897B1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS812685A CS248897B1 (en) 1985-11-12 1985-11-12 A method of isolating proteolytic enzymes

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS812685A CS248897B1 (en) 1985-11-12 1985-11-12 A method of isolating proteolytic enzymes

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS248897B1 true CS248897B1 (en) 1987-02-12

Family

ID=5431432

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS812685A CS248897B1 (en) 1985-11-12 1985-11-12 A method of isolating proteolytic enzymes

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS248897B1 (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Plummer Jr et al. Human plasma carboxypeptidase N. Isolation and characterization.
Allen et al. Kinetic parameters of metal-substituted leucine aminopeptidase from bovine lens
Funahashi et al. Preparation of three types of heparin-Sepharose and their binding activities to thrombin and antithrombin III
Porzio et al. Isolation of an extracellular neutral proteinase from Pseudomonas fragi
Pangburn et al. Affinity chromatography of thermolysin and of neutral proteases from B. subtilis
KR100383063B1 (en) Human activated protein C preparation and preparation method thereof
Steers Jr et al. [34] β-Galactosidase
DE2363201B2 (en) Process for the isolation and purification of kallikrein from biological material
Zhi-ying et al. Elastolytic activity from Flavobacterium odoratum. Microbial screening and cultivation, enzyme production and purification
CS248897B1 (en) A method of isolating proteolytic enzymes
Sato et al. Role of zinc in the production of Clostridium perfringens alpha toxin
US5290685A (en) Method for separation and concentration of phosphopeptides
Safařik Magnetic biospecific affinity adsorbents for lysozyme isolation
SU644796A1 (en) Method of purifying proteolytic ferments
US4510248A (en) Process for concentrating and purifying human urinary kallikrein
US3926730A (en) Separation and purification of alpha-amylase
US3623955A (en) Purification and recovery of alkaline protease using cationic-exchange resin
US4030977A (en) Method for purification of physiologically active substance using enzyme-enzyme inhibitor system
CS236314B1 (en) A method of isolating proteolytic enzymes
JP3071029B2 (en) Lysozyme purification and recovery method
US5202250A (en) Method for isolation and purification of amylases, and adsorbents used for the same as well as devices for the isolation and purification
JPS63132898A (en) Separation and purification of protein
CS249200B1 (en) A method of isolating proteolytic enzymes
CS246696B1 (en) A method of isolating proteolytic enzymes
SU942427A1 (en) Method for purifying proteolytic enzymes