CS252230B1 - Způsob pHpravy D-glukossminu značeného radioisotopem - Google Patents

Způsob pHpravy D-glukossminu značeného radioisotopem Download PDF

Info

Publication number
CS252230B1
CS252230B1 CS856629A CS662985A CS252230B1 CS 252230 B1 CS252230 B1 CS 252230B1 CS 856629 A CS856629 A CS 856629A CS 662985 A CS662985 A CS 662985A CS 252230 B1 CS252230 B1 CS 252230B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
acid
ammonia
days
starting material
fructose
Prior art date
Application number
CS856629A
Other languages
English (en)
Other versions
CS662985A1 (en
Inventor
Ladislav Skala
Miloslav Cerny
Original Assignee
Ladislav Skala
Miloslav Cerny
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ladislav Skala, Miloslav Cerny filed Critical Ladislav Skala
Priority to CS856629A priority Critical patent/CS252230B1/cs
Publication of CS662985A1 publication Critical patent/CS662985A1/cs
Publication of CS252230B1 publication Critical patent/CS252230B1/cs

Links

Landscapes

  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)

Abstract

Podstata navrženého řešení spočívá v tom, že značená 1-amino-l-deoxy-D- -fruktosa nebo 1-N-alkyl/nebo aryl/amino- -1-deoxy-D-fruktosa se uvede v reakci s kapalným amoniakem nebo metanolickým amoniakem nebo etanolickým amoniakem, s výhodou při teplotě 18 až 25 °C po dobu 4 až 24 dnů v uzavřeném systému v přítomnosti chloridu amonného v mnozstvi 0,5 až 3 moly na 1 mol výchozí látky a/nebo alespoň jednoho katalysátoru ze skupiny zahrnující kyselinu jantarovou, kyselinu glutarovou, kyselinu benzoovou, kyselinu gallovou, výhodně v množství 3 až 8 molů na 1 mol výchozí látky.

Description

Vynález řeší způsob přípravy D-glukosaminu značeného radioisotopem C z 1-amino-l-deoxy -D-fruktosy nebo jejích N-substituovaných derivátů.
D-Glukosamin je mimořádně významný přírodní aminosacharid jehož výskyt charakteristický především pro různé typy polysacharidů, lipopolysacharidů a glykoproteinů. Výzkum látek obsahujících D-glukosamin patří z hlediska biochemie ke stěžejním. D-Glukosamin je sledován zejména jako součást skeletu muramové a neuraminové kyseliny, biologicky velmi významných, a ve formě značené isotopem uhlíku C má v tomto směru neocenitelný význam
Způsob přípravy D-glukosaminu značeného radioisoteopem C z D-fruktosy jako výchozí látky je předmětem AO 231 498. D-Fruktosa, značená isotopy uhlíku je však obtížněji dostupná než ekonomicky výhodnější značená D-glukosa, ze které se značená D-fruktosa také běžně získává /isomerizací katalysovanou enzymy aj./. Bylo by proto výhodné využití k přípravě značeného D-glukosaminu přímo D-glukosu.
V oblasti neznačených sloučenin jsou běžným zdrojem D-glukosaminu přírodní látky, především chitin /Stacey Μ., Webber J.M.s Methods in Carbohyd. Chem. 2» 228 /1962//.
V jediném dostupném literárním zdroji je uváděna příprava D-glukosaminu reakcí D-glukosy s amoniakem při 100 °C /Patent US 2,884.441/.
Reakční podmínky jsou však příliš energické pro práci s D-glukosou značenou isotopy uhlíku a dochází k velkým ztrátám radioaktivity v rozkladných produktech, představujících kolem 80 %, přečemž výtěžky značeného D-glukosaminu jsou nízké.
Využitím Amadoriho přesmyku lze z D-glukosy připravit 1-amino-l-deoxy-D-fruktosu /Kuhn R., Haas H.J.: Liebig's Ann. Chem, 600, 148 /1956/, Druey J., Huber G.: Helv. Chim.
Acta 40, 342 /1957//, která reakcí s amoniakem poskytuje D-glukosamin /Patent US 2,918.462/.
Vznik D-glukosaminu při této rekaci, která nebyla teoreticky studována, by patrně bylo možno vystětlit mechanismem Heynsova přesmyku /Heyns K., Koch W.: Z. Naturforsch.
7b, 486 /1952/, Heyns Κ. , Meinecke K.H.: Chem. Ber. 86, 1453 /1953/, The Carbohydrates /Pigman W., Horton D., Eds./, Academie Press, New York 1980, s 905/ a to za předpokladu, že aminoskupina 1-amino-l-deoxy-D-fruktosy I by se při reakci chovala analogicky, jako hydroxylová skupina v poloze C-l D-fruktosy /která při reakci s amoniakem poskytuje D-glukosamin, viz např. Heyns K., Paulsen H., Eichstedt R., Rolle M.: Chem. Ber. 20, 2 039 /1957/ a v oblasti značených sloučenin AO 231 498/.
Reakcí derivátu I s amoniakem vzniká 1-amino-l-deoxy-D-fruktosylamin II, poskytující dále endiamin III, z něhož vzniká tautomerní aldimin IV, snadno hydrolysovatelný na D-glukosamin V;
HO
OH och2nh2 ho}
OH
NH,
HO
OH
HO/ hoh2c
CHNH,
II
C-NH,
OH
III
I
HC
H CH=NH
NH,
V
IV
Na základě analogického schématu by bylo možno očekávat, že také N-substituované deriváty 1-amino-l-deoxy-D-fruktosy, tj. 1-N-alkyl /nebo aryl/amino-l-deoxy-D-fruktosa IV /pro R = primární alkyl nebo aryl/ by reakcí s amoniakem mohla cestou Heynsova přesmyku /viz uvedený přesmyk derivátu II na aldimin IV/ poskytovat N-substituovaný aldimin VII, opět hydrolysovatelný na D-glukosamin V:
Tento typ rakcí dosud nebyl v dostupné literatuře popsán.
Výchozí deriváty jsou dostupné z D-glukosy a vhodných typů aminů s využitím Amadoriho přesmyku přechodně vznikajících N-substituovaných D-glukosylaminů /Hodge J.E., Fisher B.E.: Methods Carbohyd. Chem. 2_f 99 /1963/, Weygand r.: Chem. Ber. 73„ 1 259 /1940/, Micheel F. , Hagemann G. : Chem. Ber. 9 3, 2 381 /1960// a to i ve formě značené radioisotopem /Skála L.: Kandidátská disertace, PřF University Karlovy, Praha 1984, s. 36/.
Vznik D-glukosaminu při reakcích derivátů IV s amoniakem a hydrolyse odpovídajících aldiminů VII byl prokázán a ověřen na látkách značených radioisotopem 14C i na látkách neznačených.
Na uvedeném reakčním principu je založen navrhovaný způsob přípravy. D-glukosaminu 14 značeného radioisotopem C jehož podstata spočívá v tom, že 1-amino-l-deoxy-D-fruktosa nebo 1-N-alkyl/nebo aryl/amino-l-deoxy-D-fruktosa se uvede v reakci s kapalným amoniakem nebo metanolickým amoniakem nebo etanolickým amoniakem, s výhodou při teplotě 18 až 25 °C po dobu 4 až 24 dnů, v uzavřeném systému v přítomnosti chloridu amonného v množství 0,5 až 3 moly na 1 mol výchozí látky a/nebo alespoň jednoho katalysátoru ze skupiny zahrnující kyselinu jantarovou, kyselinu glutarovou, kyselinu benzoovou, kyselinou gallovou, výhodně v množství 3 až 8 mol výchozí látky.
Reakce může být prováděna s kapalným amoniakem po dobu 5 až 8 dnů v přítomnosti chloridu amonného v množství 1 až 3 moly na 1 mol výchozí látky nebo po dobu 4 až 10 dnů v přítomnosti chloridu amonného v množství 1 až 2 mol výchozí látky a/nebo alespoň jednoho katalysátoru ze skupiny zahrnující kyselinu jantarovou, kyselinu glutarovou, kyselinu benzoovou a kyselinu gallovou v množství 4 až 8 molů na 1 mol-výchozí látky.
Reakci s kapalným amoniakem je možno též provádět po dobu 4 až 6 dnů v přítomnosti chloridu amonného v množství 0,5 až 2 moly na 1 mol výchozí látky, poté odstranit kapalný amoniak, přidat metanol nebo etanol nasycený při 0 °C plynným amoniakem a alespoň jeden katalysátor ze skupiny zahrnující kyselinu jantarovou, kyselinu glutarovou, kyselinu benzoovou a kyselinu gallovou v množství 4 až 6 molů na 1 mol výchozí látky a reakci nechat probíhat po dobu dalších 10 až 12 dnů.
Reakce může být prováděna také s metanolickým nebo etanolickým amoniakem, připraveným nasycením příslušného alkoholu při 0°C plynným amoniakem, a to po dobu 20 až 24 dnů v přítomnosti chloridu amonného v množství 1 až 2 moly na 1 mol výchozí látky a/nebo alespoň jednoho katalysátoru ze skupiny zahrnující kyselinu jantarovou, kyselinu glutarovou, kyselinu benzoovou a kyselinu gallovou v množství 3 až 6 molů 1 mol výchozí látky. Katalysátor ze skupiny kyselin může být přidán do reakční směsi až po 8 až 12 dnech od počátku reakce.
Ve všech uvedených případech se po ukončení reakce odstraní amoniak z reakční směsi a provede se hydrolysa vzniklých aldiminů, výhodně zředěnou kyselinou chlorovodíkovou, na D-glukosamin, který se isoluje ve formě soli, výhodně jako hydrochlorid.
Výhoda tohoto způsobu přípravy D-glukosaminu značeného radioisotopem tom, že
SpOČÍvá
- D-glukosamin se připravuje z dostupného a ekonomicky výhodného zdroje, t j. D-glukosy,
- D-glukosu lze převádět na výchozí látky reakcemi s aminy s využitím Amadoriho přesmyku ve výtěžcích až přes 80
- lze regenerovat výchozí látky, takže je celkově využito až přes 70 % výchozí radioaktivity,
- reakce 1-N-alkyl/nebo aryl/amino-l-deoxy-D-fruktosy s amoniakem představují nový obecný typ reakcí, umožňující volbu 1-N-substituentu.
Způsob podle vynálezu je dále objasněn v následujících příkladech provedení.
Příklad 1 l-Amino-l-deoxy-D-/U- C/fruktosa /ve formě acetátu/ /40 MBq; měrná aktivita výchozí
-1
D-/U- C/fruktosy 9,2 GBq.mmol , což platí i dále pro příklady 2 až 6/, 1 ml kapalného amoniaku a 0,6 mg chloridu amonného se nechá reagovat po dobu 5 dnů při teplotě 20 až 22 °C v zatavené skleněné ampuli. Amoniak se odpaří, přidá se 0,5 ml 0,5 M kyseliny chlorovodíkové a roztok se zahřívá po dobu 5 až 10 min na 50 až 60 °C.
D-/U- C/Glukosamin ve formě hydrochloridu lze isolovat např. preparativní papírovou chromatografii v soustavě 1-butanol - etanol - voda 52:33:15. Totéž platí i dále pro příklady 14 až 6. Radiochemický výtěžek hydrochloridu D-/U- C/glukosaminu je 44 %.
Příklad 2 l-N-Benzylamino-l-deoxy-D-/U- C/fruktosa /ve formě hydrochloridu/ /61 MBq/, 1,5 ml kapalného amoniaku, 1 mg chloridu amonného a 3,5 mg kyseliny glutarové se nechá reagovat po dobu 8 dnů v autoklávu při teplotě 23 až 25 °C. Amoniak se odpaří, přidají se 2 ml
0,5M kyseliny chlorovodíkové a roztok se zahřívá po dobu 15 až 20 min na 60 °C. Radiochemický 14 výtěžek hydrochloridu D-/U- C/glukosaminu je 22 %.
Příklad 3 l-N-Cyklohexylamino-l-deoxy-D-/U- C/fruktosa /ve formě hydrochloridu/ /83 MBq/,
1,5 ml kapalného amoniaku a 0,5 mg chloridu amonného se nechá reagovat v zatavené ampuli po dobu 6 dnů.
Amoniak se odpaří, přidá se 2,5 mg kyseliny jantarové, 2,7 mg kyseliny benzoové a 1,5 ml bezvodého etanolu, nasyceného při 0°C plynným amoniakem a nechá se reagovat v zatavené ampuli při teplotě stejné jako v první fázi reakce, tj. 20 až 25 °C. Roztok se vakuově odpaří, načež se provede hydrolysa kyselinou chlorovodíkovou jako v příkladu 2. Radiochemický 14 výtěžek hydrochloridu D-/U- C/glukosaminu je 19 %.
Příklad 4 l-N-Fenylamino-l-deoxy-D-/U-14C/fruktosa /ve formě hydrochloridu/ /48 MBq/, 4 ml bezvodého metanolu, nasyceného při 0°C plynným amoniakem, 0,5 mg chloridu amonného a 7,8 mg kyseliny gallové se nechá reagovat v dobře utěsněné baňce při teplotě 22 až 25 °C po dobu 22 dnů.
Roztok se vakuově odpaří, přidá se 2,5 ml 0,5M kyseliny chlorovodíkové a roztok se o 14 zahřívá po dobu 25 min na 65 C. Radiochemický výtěžek hydrochloridu D-/U- C/glukosaminu je 29 %.
Příklad 5 l-N-p-Tolylamino-l-deoxy-D-/U- C/fruktosa /ve formě hydrochloridu /64 MBq/, 4 ml metanolu, nasyceného při 0 °C plynným amoniakem, a 0,6 mg chloridu amonného se nechá reagovat v dobře utěsněné baňce při teplotě 20 až 25 °C po dobu 10 dnů.
Poté se do reakční směsi přidá roztok 4,3 mg kyseliny jantarové v 0,3 ml metanolu a reakční směs se nechá stát při stejné teplotě po dobu dalších 11 dnů. Roztok se vakuově odpaří a provede se hydrolysa kyselinou chlorovodíkovou jako v příkladu 4. Radiochemický 14 výtěžek hydrochloridu D-/U- C/glukosaminu je 33 %.
Příklade l-N-p-TolylaminO“l*-deoxy-D-/U- C/fruktosa /ve formě hydrochloridu/ /39 MBq/, 1,5 ml kapalného amoniaku, 2,8 mg kyseliny jantarové a 2,1 mg kyseliny glutarové se nechá reagovat v zastavenéampuli při teplotě 22 až 25 °C po dobu 8 dnů.
Amoniak se odpaří a provede se hydrolysa kyselinou chlorovodíkovou jako v příkladu 4.
Radiochemický výtezek hydrochloridu D-/U- C/glukosaminu je 15,5 %.

Claims (4)

1. Způsob přípravy D-glukosaminu značeného radioisotopem ^^C vyznačený tím, že značená 1-amino-l-deoxy-D-fruktosa nebo 1-N-alkyl/nebo aryl/amino-l-deoxy-D-fruktosa se uvede v reakci s kapalným amoniakem nebo/a metanolickým amoniakem nebo/a etanolickým amoniakem s výhodou při teplotě 18 až 25 °C po dobu 4 až 24 dnů v uzavřeném systému v přítomnosti chloridu amonného v množství 0,5 až 3 moly na 1 mol výchozí látky a/nebo alespoň jednoho katalysátoru ze skupiny zahrnující kyselinu jantarovou, kyselinu glutarovou, kyselinu benzoovou a kyselinu gallovou, výhodně v množství 3 až 8 molů na 1 mol výchozí látky.
2. Způsob podle bodu 1 vyznačený tím, že reakce s kapalným amoniakem se provádí po dobu 4 až 6 dnů v přítomnosti chloridu amonného v množství 0,5 až 2 moly na 1 mol výchozí látky, poté se kapalný amoniak odstraní a přidá metanol nebo etanol nasycený při 0 °C plynným amoniakem a alespoň jeden katalysátor ze skupiny zahrnující kyselinu jantarovou, kyselinu glutarovou, kyselinu benzoovou a kyselinu gallovou, v množství 4 až 6 molů na
1 mol výchozí látky a směs se nechá reagovat po dobu dalších 10 až 12 dnů.
3. Způsob podle bodu 1 vyznačený tím, že reakce se provádí s metanolickým nebo etanolickým amoniakem, připraveným nasycením příslušného alkoholu při 0 °C plynným amoniakem, po dobu
20 až 24 dnů, v přítomnosti chloridu amonného v množství 1 až 2 moly na 1 mol výchozí látky a/nebo alespoň jednoho katalysátoru ze skupiny zahrnující kyselinu jantarovou, kyselinu glutarovou, kyselinu benzoovou a kyselinu gallovou, v množství 3 až 6 molů na 1 mol výchozí látky.
4. Způsob podle bodu 1 vyznačený tím, že katalysátor ze skupiny kyselin se přidá do reakční směsi až po 8 až 10 dnech od počátku reakce.
CS856629A 1985-09-18 1985-09-18 Způsob pHpravy D-glukossminu značeného radioisotopem CS252230B1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS856629A CS252230B1 (cs) 1985-09-18 1985-09-18 Způsob pHpravy D-glukossminu značeného radioisotopem

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS856629A CS252230B1 (cs) 1985-09-18 1985-09-18 Způsob pHpravy D-glukossminu značeného radioisotopem

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS662985A1 CS662985A1 (en) 1987-01-15
CS252230B1 true CS252230B1 (cs) 1987-08-13

Family

ID=5413785

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS856629A CS252230B1 (cs) 1985-09-18 1985-09-18 Způsob pHpravy D-glukossminu značeného radioisotopem

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS252230B1 (cs)

Also Published As

Publication number Publication date
CS662985A1 (en) 1987-01-15

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Fahnestock et al. Ribosome-catalyzed ester formation
Abrams et al. Transformation of Inosinic Acid to Adenylic and Guanylic Acids in a Soluble Enzyme SYSTEM1
Pougny et al. A novel synthesis of 1, 2-cis-disaccharides
Withers et al. The synthesis and hydrolysis of a series of deoxyfluoro-D-glucopyranosyl phosphates
Bause et al. The role of the hydroxy amino acid in the triplet sequence Asn-Xaa-Thr (Ser) for the N-glycosylation step during glycoprotein biosynthesis
AU663581B2 (en) Improvements in radiolabelling
Coward et al. Polyamine biosynthesis in rat prostate. Substrate and inhibitor properties of 7-deaza analogs of decarboxylated S-adenosylmethionine and 5'-methylthioadenosine
Bourdreux et al. Iron (III) chloride-tandem catalysis for a one-pot regioselective protection of glycopyranosides
NL162386C (nl) Werkwijze voor de bereiding van een preparaat met anti- bacteriele werking en werkwijze voor de bereiding van voor opnemen in zo'n preparaat geschikte verbindingen.
Holt Sackett et al. Effect of structure on phenothiazine cation radical reactions in aqueous buffers
Bentley et al. Qualitative determination of N-terminal amino acids of peptides and proteins with cobalt (III) chelates
Halazy et al. 1, 1-Difluoroalkyl glucosides: a new class of enzyme-activated irreversible inhibitors of. alpha.-glucosidases
Cox et al. Concerted bifunctional proton transfer and general-base catalysis in the methoxyaminolysis of phenyl acetate
Fitz et al. Combined use of subtilisin and N-acetylneuraminic acid aldolase for the synthesis of a fluorescent sialic acid
HU209459B (en) New process for preparing of metal-complex with fuctionalized isothiocyanato-group
Hulla et al. Synthesis of an adenosine 5'-monophosphate analog and its use for the affinity labeling of the effector binding site of rabbit skeletal muscle phosphorylase b
CS252230B1 (cs) Způsob pHpravy D-glukossminu značeného radioisotopem
Brodie et al. Methylcobalamin as an intermediate in mammalian methionine biosynthesis
Wang et al. Glycosylation‐Induced and Lewis Acid‐Catalyzed Asymmetric Synthesis of β‐N‐Glycosidically Linked α‐Aminophosphonic Acids Derivatives
EP1013642B1 (de) Chelatoren sowie deren Tricarbonyl-Komplexe mit Technetium und Rhenium
MY110450A (en) Imidazolylmethyl-pyridines, their production their use as pharmaceuticals and pharmaceutical compositions containing them
Kennedy et al. A facile route to cyclic and acyclic alkyl-arginines
US3079379A (en) Method for the preparation of adenosine 5'-triphosphate
AU2005282160A2 (en) Synthesis of radiolabeled sugar metal complexes
Wheeler et al. Electrochemical determination of N-oxidized procainamide metabolites and functional assessment of effects on murine cells in vitro