CS252604B1 - Bacterial strain Bacillus subtilis CCM 3855 - Google Patents
Bacterial strain Bacillus subtilis CCM 3855 Download PDFInfo
- Publication number
- CS252604B1 CS252604B1 CS861708A CS170886A CS252604B1 CS 252604 B1 CS252604 B1 CS 252604B1 CS 861708 A CS861708 A CS 861708A CS 170886 A CS170886 A CS 170886A CS 252604 B1 CS252604 B1 CS 252604B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- strain
- spores
- bacillus subtilis
- bacterial strain
- exocellular
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Řešení se týká bakteriálního kmene Bacillus subtilis CCM 3855, bez thermo- resistentních spor e syntetizující exocelulární proteázy. Výhodou mutantní- ho kmene ve srovnání s dosud používaným kmenem a delšími sporulujícími kmeny rodu Bacillus je to, že při kultivaci v tekutých nebo pevných médiích nevytvoří v průběhu 48 hodin při 28 °C thermo- resistentní spory. Produkce exocelulár- ních proteáz kmenem je stejná nebo poněkud vyšší než u původního produkčního kmene.The present invention relates to a bacterial strain of Bacillus subtilis CCM 3855, without thermo-resistant exocellular protease synthesizing spores. The advantage of the mutant strain compared to the strain and the longer sporulating strains of Bacillus used so far is that it does not produce thermosensitive spores during 28 hours at liquid cultures in liquid or solid media. The production of exocellular proteases by the strain is the same or somewhat higher than that of the original production strain.
Description
Vynález se týká nového bekteriálního kmene Bacillus subtilis CCM 3855 bez thermoresistentních spor a syntetizujících exocelulární proteázy. Charakteristickými znaky nového kmene je schopnost růstu a tvorby proteáz ve stejných tekutých Sivnýeh mediích jako výchozí kmen, v nichž však nevytvoří během 48 hodin při 28 °C thermoresistentní spory. Spory nevytvoří během 48 hodin ani ve zvláštním sporulaěním mediu.The present invention relates to a novel bacterial strain Bacillus subtilis CCM 3855 free of thermoresistant spores and synthesizing exocellular proteases. Characteristic features of the new strain are the ability to grow and produce proteases in the same liquid gray media as the starting strain, but in which they do not form thermoresistant spores within 48 hours at 28 ° C. They do not create spores within 48 hours or in a special sporulation of the medium.
Je známo, že při výrobě exocelulárních enzymů, věetn? proteáz, pomocí bacilů je produkt kontaminován thermoresistentními sporami produkčního kmene. To představuje určitou nevýhodu jak z hygienického hlediska, tak i z technologického hlediska, protože se zvyšují nároky na následnou sterilizaci fermentačního zařízení. Současně se zvyšuje nebezpečí kontaminace jiných fermentací a výrobků thermoresistentními sporami Bacillus subtilis.Is it known that in the production of exocellular enzymes, including? proteases, using bacilli, the product is contaminated with thermoresistant spores of the production strain. This represents a certain disadvantage both from a hygienic and a technological point of view, since the demands on the subsequent sterilization of the fermentation plant are increasing. At the same time, the risk of contamination of other fermentations and products with thermoresistant spores of Bacillus subtilis increases.
Neproti tomu jé většino asporogenních mut8nt bacilů neschopná tvořit exocelulární proteázy.In contrast, most asporogenic mutant bacilli are incapable of forming exocellular proteases.
Tyto nevýhody odstraňuje bakteriální kmen Bacillus subtilis bez thermoresistentních spor a syntetizující exocelulární proteázy. Po mutagenním působení a výsevu ns pevné agarové živné medium obsahující kasein byla sledována současně u jednotlivých kolonií jak schopnost tvořit proteázu, tak i změněný tvar kolonie, který obvykle indikuje ztrátu schopnosti sporulovet. Tento postup vedl k získání mutanty syntetizující exocelulární proteázy bez thermoresistentních spor.These disadvantages are overcome by the bacterial strain Bacillus subtilis without thermoresistant spores and synthesizing exocellular proteases. After mutagenic treatment and sowing of the casein-containing solid agar nutrient broth, both protease-forming ability and altered colony shape, which usually indicates a loss of sporulovic ability, were observed simultaneously in individual colonies. This procedure resulted in a mutant synthesizing exocellular protease without thermoresistant spores.
Kmen byl získán po působení metagenu ethylmethansulfonátu na vyklíčené spory následujícím způsobem: spory výchozího kmene 115 (AO 201 63Θ, uloženého v Ss. sbírce mikroorganismů pod číslem CCM 3 622) byly aktivovány v 0,1 M fosfátovém pufru o pH 7,2 zahřátím na 70 °C po dobu 15 minut a vyklíčeny v roztoku minerálních solí o pH 7,2 doplněných glukózou (5 mg/mL) a kvasničným extraktem (0,2 mg/mL) během 1 hodiny při 35 °C. Vyklíčená kultura byla přenesena do fosfátového pufru a mutagenizována působením 0,1 M ethylmethansulfonátu za třepání po dobu 17 hodin při 30 °C. Stupeň přežití vyklíčených spor byl 1 %.The strain was obtained after treatment of the germinated spores with Methyl Ethane Methanesulfonate as follows: Spores of the starting strain 115 (AO 201 63Θ, deposited in the US collection of microorganisms under the number CCM 3,622) were activated in 0.1 M phosphate buffer pH 7.2 by heating to 70 ° C for 15 minutes and germinated in a mineral salt solution of pH 7.2 supplemented with glucose (5 mg / mL) and yeast extract (0.2 mg / mL) for 1 hour at 35 ° C. The germinated culture was transferred to phosphate buffer and mutagenized with 0.1 M ethyl methanesulfonate with shaking for 17 hours at 30 ° C. The survival rate of germinated spores was 1%.
Mutagenizovaná kultura byla odstředěna, promyta fosfátovým pufrero a po resuspendování ve fosfátovém pufru vyseta na kaseinový agar. Kolonie lišící se od výchozího kmene bu3 morfologicky nebo velikostí zóny netráveného kaseinu byly podrobeny podrobnějšímu zkoumání. Získané kmeny byly lyofilizovány v 10% laktinu.The mutagenized culture was centrifuged, washed with phosphate buffer and sown on casein agar after resuspension in phosphate buffer. Colonies differing from the parent strain either morphologically or by the size of the undigested casein zone were subjected to more detailed examination. The strains obtained were lyophilized in 10% lactin.
Dále jsou uvedeny charakteristiky vlastností nového bakteriálního kmene 115/13. Vzorek této mutanty je uložen v československé sbírce mikroorganismů v Brně pod číslem CCM/3 855.The characteristics of the new bacterial strain 115/13 are given below. A sample of this mutant is deposited in the Czechoslovak Collection of Microorganisms in Brno under the number CCM / 3,855.
a) Morfologická a růstová charakteristikaa) Morphological and growth characteristics
Výchozí kmen 115 i mutants 115/13 jsou tenké gram pozitivní tyčinky, rostoucí v mediu s minerálními solemi o glukózou 5 mg/mL většinou jednotlivě nebo ve dvojicích. Specifická růstová rychlost obou se v tomto mediu při 30 °C pohybuje v rozmezí 0,43 až 0,55 h-1 (generační doba 1,3 až 1,6 h. Při výsevu na živnou půdu (Nutrient agar Difco) roste kmen 115 ve formě hladkých kolonii s mírně nepravidelnými okraji a mutente ve formě velkých nízkých kolonií, uprostřed lesklých, s rýhami paprsčitě se rozbíhajícími od středu.Both the starting strain 115 and the 115/13 mutants are thin gram positive rods, growing in a 5 mg / mL glucose mineral salt medium mostly alone or in pairs. The specific growth rate of both in this medium at 30 ° C is in the range of 0.43 to 0.55 h -1 (generation time 1.3 to 1.6 h. When sowing on nutrient agar Difco) strain 115 grows. in the form of smooth colonies with slightly irregular edges and mutent in the form of large low colonies, in the middle of shiny, with grooves radially diverging from the center.
b) Schopnost tvořit proteázyb) Protease forming ability
Výchozí sporulující kmen 115 i od něho odvozená mutanta byl8 kultivována za třepání hodin při 28 °C v mediu obsahujícím 5 % sladinku, 1 % sušených kvBsnic, 2 % sušeného mléka Laktino a 5 % uhličitanu vápenatého (výchozí pH 7,5). Po 48 hodinách byly kultury odstředěny a v supernatantech stanovena proteolytické aktivita při pH 7,2 s 1% kaseinovým substrátem. Proteolytická aktivita je vyjádřena v tyrosinových jednotkách (TU/mL).The starting sporulating strain 115 and the mutant derived therefrom were cultured with shaking at 28 ° C for 5 hours in medium containing 5% sweeten, 1% dried kvs, 2% Laktino milk and 5% calcium carbonate (default pH 7.5). After 48 hours, the cultures were centrifuged and proteolytic activity was determined in the supernatants at pH 7.2 with 1% casein substrate. Proteolytic activity is expressed in tyrosine units (TU / mL).
c) Schopnost tvořit thermoresistentní sporyc) Ability to form thermoresistant spores
Kultury vyrostlé ze 8 hodin při 30 °C v minerálním mediu s 1 % glukózy s 0,2 mg/ml kvesničného extraktu byly odstředěny a resuspendovány na optickou hustotu odpovídající 1 mg/mL sušiny ve sporulačním mediu následujícího složení (MgSO^ . 71^0 0,5 mM; Κ^ΗΡΟ^ mM; CaClg 0,3 mM; octan sodný 5 mM; jantsran sodný 2 mM; pH 7,2Í,Cultures grown from 8 hours at 30 ° C in mineral medium with 1% glucose with 0.2 mg / ml yeast extract were centrifuged and resuspended to an optical density corresponding to 1 mg / mL dry matter in sporulation medium of the following composition (MgSO 4. 0.5 mM; Κ ^ ΗΡΟ ^ mM; CaCl 3 0.3 mM; sodium acetate 5 mM; sodium succinate 2 mM; pH 7.2 µ,
Kultury byly potom za třepání inkubovány 48 hodin při 28 °C. Obsah thermoresistentních spor byl zjištován vyočkováním vzorků inaktivovaných 15 minut při 75 °C na Nutrient agar —7 *The cultures were then incubated for 48 hours at 28 ° C with shaking. The content of thermoresistant spores was determined by inoculating samples inactivated for 15 minutes at 75 ° C on Nutrient agar -7 *
Difco. Počet kolonií vyrostlých po zředění 0 až 10 byl zjištován po 24 hodinách. V rodičovské kultuře (115) byla zjištěna přítomnost 2,3 x 10 0 thermoresistentních spor v 1 mL.Difco. The number of colonies grown after dilution of 0 to 10 was determined after 24 hours. The parent culture (115) showed the presence of 2.3 x 10 0 thermoresistant spores in 1 mL.
V kultuře mutanty nebyla zjištěna přítomnost žádných thermoresistentních spor. Ani mikroskopickou kontrolou nebyly u mutanty v buňkách spory zjištěny. V pokuse v produkčním sladinkovém mediu (viz b) vytvořil rodičovský kmen po 48 hodinách 2.9 x 10° thermoresistentních spor v 1 ml (z 1,7 χ 109 buněk/ml). Mutanta thermoresistentní spory nevytvořila. Mutantu dle vynálezu lze využít k průmyslové produkci exocelulárních proteáz, použitelných na příklad k přípravě pracích prášků i k hydrolýze a odstraňování různých bílkovinných mate riálů.No thermoresistant spores were detected in the mutant culture. Neither microscopic examination of mutants in cells revealed spores. In an experiment in production sweetening medium (see b), the parental strain produced 2.9 x 10 ° thermoresistant spores in 1 ml (from 1.7 χ 10 9 cells / ml) after 48 hours. The mutant did not create thermoresistant disputes. The mutant of the invention can be used for the industrial production of exocellular proteases useful, for example, for the preparation of washing powders, as well as for the hydrolysis and removal of various proteinaceous materials.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS861708A CS252604B1 (en) | 1986-03-12 | 1986-03-12 | Bacterial strain Bacillus subtilis CCM 3855 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS861708A CS252604B1 (en) | 1986-03-12 | 1986-03-12 | Bacterial strain Bacillus subtilis CCM 3855 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS170886A1 CS170886A1 (en) | 1987-02-12 |
| CS252604B1 true CS252604B1 (en) | 1987-09-17 |
Family
ID=5352131
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS861708A CS252604B1 (en) | 1986-03-12 | 1986-03-12 | Bacterial strain Bacillus subtilis CCM 3855 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (1) | CS252604B1 (en) |
-
1986
- 1986-03-12 CS CS861708A patent/CS252604B1/en unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| CS170886A1 (en) | 1987-02-12 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Shieh et al. | Milk-clotting enzymes produced by culture of Bacillus subtilis natto | |
| US4323651A (en) | Thermostable lactase derived from bacillus | |
| Odunfa et al. | Identification of Bacillus species from ‘iru’, a fermented African locust bean product | |
| KR100471631B1 (en) | Bifidobacterium breve and fermented soymilk prepared with the same | |
| WO2001090335A1 (en) | Novel cyclodextrin glucanotransferase, process for producing the same and process for producing cyclodextrin by using this enzyme | |
| JPH09322762A (en) | Bifidobacteria and culture method thereof | |
| Sneha et al. | Isolation and screening of protease producing bacteria from marine waste | |
| AU615661B2 (en) | Acid urease and production thereof | |
| KR101809509B1 (en) | A fibrinolytic enzyme hyperproducing strain of Bacillus subtilis | |
| NO854444L (en) | BACTERY LYZING ENZYM PRODUCT OF STREPTOMYCYETS, PROCEDURE FOR ITS PREPARATION AND SUITABLE STAND. | |
| JP2019517810A (en) | Bacillus licheniformis NY1505 strain producing a large amount of α-glucosidase inhibitor | |
| US4179335A (en) | Thermostable lactase derived from Bacillus coagulans | |
| CS252604B1 (en) | Bacterial strain Bacillus subtilis CCM 3855 | |
| CS252600B1 (en) | Bacterial strain Bacillus subtilis CCM 3853 | |
| Lawal et al. | L-Glutamic acid production by Bacillus spp. isolated from vegetable proteins | |
| JPH05236945A (en) | New bacterium belonging to genus lactobacillus | |
| Hariharan et al. | Isolation, purification and mass production of protease from Bacillus subtilis | |
| RU2858896C1 (en) | Solid nutrient medium for culturing bacterial strains bacillus subtilis 27l vkpm b-14800 and bacillus subtilis 11k vkpm b-14816 | |
| Tejaswini et al. | Production and optimization studies of protease by soil isolate actinomycetes using mixed substrate of pomegranate peel powder and banana peel powder under solid state fermentation | |
| Thigiel et al. | Selection of strains and extraction procedures for optimum production of galactosidase from Kluyveromyces strains | |
| SU1181316A1 (en) | Bacillus var.gallerial gep-51 strain - producer of proteolytic ferments | |
| JP2630391B2 (en) | A new strain belonging to Lactobacillus and method for its isolation and propagation | |
| DK143714B (en) | METHOD FOR HYDROLYSE OF LACTOSE UNDER GLUCOSE AND GALACTOSE CREATION | |
| Deviga et al. | Studies on the optimization of protease production by thermophilic Bacillus subtilis isolated from raw milk sample | |
| KR100511048B1 (en) | Bacillus licheniformis mutant gn-m10 and production method of protease with it |