CS252790B1 - A method of separating amino acids from peptides and proteins - Google Patents
A method of separating amino acids from peptides and proteins Download PDFInfo
- Publication number
- CS252790B1 CS252790B1 CS86133A CS13386A CS252790B1 CS 252790 B1 CS252790 B1 CS 252790B1 CS 86133 A CS86133 A CS 86133A CS 13386 A CS13386 A CS 13386A CS 252790 B1 CS252790 B1 CS 252790B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- amino acids
- carboxypeptidase
- peptides
- proteins
- peptide
- Prior art date
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Řešení se týká oddělování aminokyselin z peptidů a bílkovin z konce peptidového řetězce, obsahujícího volné karboxylové skupiny aminokyselin. Je určeno pro určení sekvence peptidů a bílkovin. Vodný roztok, pufrovaný na pH 5,0 až 8,0, obsahující peptid nebo bílkovinu, se podrobí působení enzymu karboxypeptidázy, imobilizovaném na poly-hydroxyethylmethakrylátovém gelu a to v ultrafiltrační cele opatřené membránou propouštějící pouze nízkomolekulární látky, jako aminokyseliny uvolněné karboxypeptidázou z peptidů nebo bílkoviny, za poměru enzym - substrát 1 ku 200 až 1 ku 2 000.The solution relates to the separation of amino acids from peptides and proteins from the end of the peptide chain containing free carboxyl groups of amino acids. It is intended for determining the sequence of peptides and proteins. An aqueous solution, buffered to pH 5.0 to 8.0, containing a peptide or protein, is subjected to the action of the carboxypeptidase enzyme, immobilized on a polyhydroxyethyl methacrylate gel, in an ultrafiltration cell equipped with a membrane permeable only to low-molecular substances, such as amino acids released by carboxypeptidase from peptides or proteins, at an enzyme-substrate ratio of 1 to 200 to 1 to 2,000.
Description
Vynález se týká způsobu oddělování aminokyselin z peptidů a bílkovin z konce peptidového řetězce, obsahujícího volné karboxylové skupiny aminokyselin, pro určování sekvence peptidů a bílkovin.The invention relates to a method for separating amino acids from peptides and proteins from the end of a peptide chain containing free carboxyl groups of amino acids for determining the sequence of peptides and proteins.
V biochemii je velice zapotřebí určovat primární struktury proteinů, to je sledu aminokyselin, jež vzájemně vázány peptidickou vazbou vytvoří peptidy či proteiny. K tomuto postupu je využíváno známých způsobů, přičemž všechny jsou kompromisem mezi přesností stanovení a množstvím materiálu, jenž je nutno použít ke stanovení. Jeden známý způsob využívá specifických proteolytických enzymů, tak zvaných karboxypeptidáz. Tyto enzymy odštěpují jednotlivé aminokyseliny od toho konce peptidů či proteinu, který má volnou karboxylovou skupinu.In biochemistry, there is a great need to determine the primary structures of proteins, that is, the sequence of amino acids that are bound together by peptide bonding to form peptides or proteins. Known methods are used for this procedure, all of which are a compromise between the accuracy of the assay and the amount of material to be used for the assay. One known method utilizes specific proteolytic enzymes, so-called carboxypeptidases. These enzymes cleave individual amino acids from that end of the peptide or protein having a free carboxyl group.
U dosud používaných tak zvaných klasických postupů určování koncových aminokyselin se jedná o zjišťování obsahu jednotlivých aminokyselin v roztoku, který obsahuje zkoumaný polypeptid a enzym, to je karboxypeptidázu. Přitom prostředí, v němž je stanovení prováděno, je pufrováno na pH blízké optimu působení příslušné karboxypeptidázy.The so-called conventional terminal amino acid methods used so far are to determine the content of individual amino acids in a solution containing the polypeptide and enzyme of interest, i.e., the carboxypeptidase. The medium in which the assay is performed is buffered to a pH close to the optimum effect of the respective carboxypeptidase.
V původní reakční směsi, jež obsahuje s počátku pouze polypeptid a karboxypeptidázu, je sledována narůstající koncentra ce aminokyselin, jež jsou přítomnou karboxypeptidázou uvolňovány z peptidů do roztoku.In the original reaction mixture, which initially contains only the polypeptide and the carboxypeptidase, the increasing concentration of amino acids released by the present carboxypeptidase is monitored from the peptides into solution.
V daném klasickém postupu je krokem, jenž ovlivňuje přesnost způsobu, právě zpracování odebíraných podílů, určených k aminokyselinové analýze. V uvedeném klasickém postupu je ne252 790 výhodou nutnost srážení kyselinou trichloroctovou, následná kon centrace precipitátu centrifugací, extrakce etherem a odpaření. Teprve po těchto operacích je vzorek připraven pro aminokyselinou analýzu.In the classical procedure, the step affecting the accuracy of the method is precisely the processing of the aliquots to be analyzed for amino acid analysis. In said classical procedure, the non-227,790 advantage is the necessity of precipitation with trichloroacetic acid, subsequent concentration of the precipitate by centrifugation, extraction with ether and evaporation. Only after these operations is the sample ready for amino acid analysis.
Uvedené nedostatky odstraňuje podle vynálezu způsob oddělování aminokyselin z peptidů a bílkovin z konce peptidového řetězce pro určování sekvence peptidů a bílkovin, za použití enzymu karboxypeptidázy, vyznačující se tím, že vodný roztok pufrovaný na pH 5,0 až 8,0, obsahující peptid nebo bílkovinu, se podrobí působení enzymu karboxypeptidázy, imobilizovaném na poly-hydroxyethylmethakrylátovém gelu a to v ultrafiltrační cele opatřené membránou propouštějící pouze nízkomolekulární látky, jako aminokyseliny, uvolněné karboxypeptidázou z peptidů nebo bílkoviny, za poměru enzym - substrát 1 ku 200 až 1 ku 2 000.According to the present invention, there is provided a method of separating amino acids from peptides and proteins from the end of a peptide chain to determine the sequence of peptides and proteins, using a carboxypeptidase enzyme, characterized in that an aqueous solution buffered to pH 5.0 to 8.0 containing the peptide or protein is treated with a carboxypeptidase enzyme immobilized on a polyhydroxyethyl methacrylate gel in an ultrafiltration cell equipped with a membrane permitting only low molecular weight substances, such as amino acids, released by the carboxypeptidase from peptides or proteins at an enzyme-substrate ratio of 1 to 200 to 1 in 2,000.
Základní výhoda způsobu podle vynálezu spočívá v podstatném zjednodušení postupu, neboí veškerá úprava vzorku před aminokyselinou analýzou spočívá pouze v jeho odpaření. Další výhoda spočívá v tom, že karboxypeptidáza je imobilizovaná na pevném nosiči a proto nedochází k její autolýze, dále je ji možno snadno oddělit ze směsi. Díky pevnosti použitého materiálu nehrozí nebezpečí jeho rozmělnění a karboxypeptidázu lze snadno opakovaně použít. Uvedený postup je proti klasickému způsobu sekvenování výrazně kratší, zhruba o polovinu a celý postup je možno snadno automatizovat.The basic advantage of the process according to the invention is that the process is substantially simplified, since all treatment of the sample prior to amino acid analysis consists only in its evaporation. A further advantage is that the carboxypeptidase is immobilized on a solid support and therefore does not autolysis it, furthermore it can be easily separated from the mixture. Due to the strength of the material used, there is no danger of crushing and the carboxypeptidase can be easily reused. This procedure is considerably shorter compared to conventional sequencing, by about half and the whole process can be easily automated.
Způsob podle vynálezu je dále blíže popsán na konkrétních příkladech provedení.The process according to the invention is described in more detail below with reference to specific examples.
Příklad 1Example 1
Pro použití karboxypeptidázy Y k sekvenčním práčem byla karboxypeptidáza imobilizována na poly-hydroxyethylmethakrylátovém gelu s imobilizováným Konkavalinem A. Takto imobilizovaná karboxypeptidáza byla přidána ke 3 ml roztoku proteinu /ribonukleáza A/. Koncentrace proteinu byla 10 mg v 3 ml 0,1 M acetátu sodného pH 6,0 s 0,5 % laurylsíranu sodného. RoztokTo use carboxypeptidase Y for sequential scrubbing, the carboxypeptidase was immobilized on a poly-hydroxyethyl methacrylate gel with immobilized Konkavalin A. The immobilized carboxypeptidase was added to 3 ml of protein solution (ribonuclease A). The protein concentration was 10 mg in 3 ml of 0.1 M sodium acetate pH 6.0 with 0.5% sodium lauryl sulfate. Solution
252 790 proteinu byl umístěn v malé ultrafiltrační cele /objem 10 ml/ s membránou propouštějící látky s molekulovou hmotností pod 2 000. Ve vhodně zvolených časových intervalech byl tlakem dusíku odebírán alikvot /0,2 ml/ a ten po odpaření byl přímo použit pro aminokyselinovou analýzu.The 252,790 protein was placed in a small ultrafiltration cell (10 ml volume) with a membrane permeable membrane with a molecular weight below 2000. At appropriate time intervals, an aliquot (0.2 ml) was taken at nitrogen pressure and used directly for the amino acid after evaporation. analysis.
Touto metodou byly získány výsledky o stejné kvalitě jako u klasického postupu.This method yields results of the same quality as the classical procedure.
Příklad 2Example 2
Stejný postup s použitím ultrafiltrační cely byl využit pro sekvenční práci s karboxypeptidázou A a karboxypeptidézouThe same procedure using ultrafiltration cell was used for sequential work with carboxypeptidase A and carboxypeptidesis
B.B.
Příklad 5Example 5
Za podmínek uvedených v příkladu 1 bylo provedeno štěpení proteinu imobilizovanou karboxypeptidázou. 1 ml roztoku proteinu /0,1 M acetát sodný, pH 6,0 s 0,5 % laurylsíranu sodného obsahující 2 zug ribonukleázy A/ byl podroben štěpení karboxypeptidézou Y imobilizovanou na polyhydroxyethylmethakrylátovém gelu s imobilizovaným konkanavalinem A. Bylo použito 200 ,ug nosiče s obsahem 0,1/Ug karboxypeptidázy Y. Byla použita ultrafiltrační cela o objemu 2 ml, opatřená membránou propouštějící látky s molekulovou hmotností pod 2 000 a odebírána vzorky o objemu 0,05 ml.Under the conditions of Example 1, protein digestion with immobilized carboxypeptidase was performed. 1 ml protein solution (0.1 M sodium acetate, pH 6.0 with 0.5% sodium lauryl sulphate containing 2 of µg ribonuclease A) was subjected to carboxypeptidase Y digestion immobilized on polyhydroxyethyl methacrylate gel with immobilized concanavalin A. 200 µg of carrier was used. containing 0.1 .mu.g of carboxypeptidase Y. A 2 ml ultrafiltration cell was used, fitted with a membrane permeable material with a molecular weight below 2000, and 0.05 ml samples were taken.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS86133A CS252790B1 (en) | 1986-01-08 | 1986-01-08 | A method of separating amino acids from peptides and proteins |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS86133A CS252790B1 (en) | 1986-01-08 | 1986-01-08 | A method of separating amino acids from peptides and proteins |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS13386A1 CS13386A1 (en) | 1987-02-12 |
| CS252790B1 true CS252790B1 (en) | 1987-10-15 |
Family
ID=5332950
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS86133A CS252790B1 (en) | 1986-01-08 | 1986-01-08 | A method of separating amino acids from peptides and proteins |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (1) | CS252790B1 (en) |
-
1986
- 1986-01-08 CS CS86133A patent/CS252790B1/en unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| CS13386A1 (en) | 1987-02-12 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Hiller et al. | Biotin binding to avidin. Oligosaccharide side chain not required for ligand association | |
| Huston et al. | Activation of skeletal muscle phosphorylase kinase by calcium ions. II. Identification of the kinase activating factor as a proteolytic enzyme | |
| Ambler | [21] Carboxypeptidases A and B | |
| Taylor et al. | Catabolism of neuropeptides by a brain proline endopeptidase | |
| Goldsmith et al. | Adsorption protein of the bacteriophage fd: isolation, molecular properties, and location in the virus | |
| Peter et al. | Different sorting of Lys-Asp-Glu-Leu proteins in rat liver. | |
| DK1672368T3 (en) | Diagnostic and therapeutic epitope | |
| Blank et al. | Detection of enzymatic activities in sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gels: DNA polymerases as model enzymes | |
| Hanai et al. | Protein footprinting by the combined use of reversible and irreversible lysine modifications. | |
| Kruiswijk et al. | Analysis of the protein composition of yeast ribosomal subunits by two-dimensional polyacrylamide gel electrophoresis | |
| Winstead et al. | Studies on Rabbit Muscle Enolase. Chemical Evidence for Two Polypeptide Chains in the Active Enzyme | |
| Choli et al. | Blotting of proteins onto immobilon membranes: In situ characterization and comparison with high-performance liquid chromatography | |
| Travis et al. | Human pancreatic enzymes. Isolation and properties of a major form of chymotrypsin | |
| US6346245B1 (en) | Procedure for extraction and use of hatching fluid from Atlantic salmon | |
| Migneault et al. | Comparison of two glutaraldehyde immobilization techniques for solid‐phase tryptic peptide mapping of human hemoglobin by capillary zone electrophoresis and mass spectrometry | |
| Elleman et al. | The amino acid sequence of cysteic acid-containing peptides from performic acid-oxidized ovotransferrin | |
| PREHN et al. | Demonstration of specific receptors of the rough endoplasmic membrane for the signal sequence of carp preproinsulin | |
| Potts Jr et al. | Structural basis of biological and immunological activity of parathyroid hormone. | |
| CA1327866C (en) | Method for purifying and isolating carboxyl-terminal peptides | |
| Iwata et al. | Rabbit pulmonary angiotensin-converting enzyme: the NH2-terminal fragment with enzymatic activity and its formation from the native enzyme by NH4OH treatment | |
| CS252790B1 (en) | A method of separating amino acids from peptides and proteins | |
| Iwata et al. | The NH2-and COOH-terminal sequences of the angiotensin-converting enzyme isozymes from rabbit lung and testis | |
| Khan et al. | Purification and characterization of a novel proteinase, chymopapain S | |
| Coles et al. | Purification, properties and mechanism of action of a staphylolytic enzyme produced by Aeromonas hydrophila | |
| GB1581472A (en) | Compounds of the plasminogen type processes for their production and pharmaceutical compositions containing them |