CS252880B1 - A method of preparing kojic acid - Google Patents
A method of preparing kojic acid Download PDFInfo
- Publication number
- CS252880B1 CS252880B1 CS856571A CS657185A CS252880B1 CS 252880 B1 CS252880 B1 CS 252880B1 CS 856571 A CS856571 A CS 856571A CS 657185 A CS657185 A CS 657185A CS 252880 B1 CS252880 B1 CS 252880B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- kojic acid
- medium
- aspergillus
- glucose
- optionally
- Prior art date
Links
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Riešenie sa týká spósobu přípravy kyseliny kójovej transformáciou glycidov pomo- cou šfachtených Ikmeňov Aspergillus tarna- rii. Podstata produlkcie kyseliny kójovej spočívá v tom, že na tekutej živnej ipode s obsahom asimilovatelného uhlíku, dusíka a živných solí sa kultivuje kmen Aspergillus tamarii mutant VIII (CMC F-781), alebo Aspergillus tamarii mutant III (CCM F-780) jednotlivo, alebo· v zmesi pri teplote 20 až 40 °C, pH 1,5 až 7,0 po dobu 72 až 240 hodin, pričom kyselina kójová sa izoluje zahuštěním ultrafialového média s následnou fcryštalizáciou. Riešenie má použitie vo fermentačmom prietnysle na výrobu kyseliny kójovej.The present invention relates to a process for the preparation of kojic acid by transformation of carbohydrates with the aid of Aspergillus tarnaria spp. The nature of the prodrug of kojic acid consists in cultivating the Aspergillus tamarii mutant VIII (CMC F-781) or Aspergillus tamarii mutant III (CCM F-780) individually on a liquid nutrient ipod containing assimilable carbon, nitrogen and nutrient salts. In a mixture at 20 to 40 ° C, pH 1.5 to 7.0 for 72 to 240 hours, whereby the kojic acid is isolated by concentration of the ultraviolet medium followed by crystallization. The solution has a use in a fermenter for kojic acid production.
Description
(54) Sposob přípravy kyseliny kójovej(54) Method for preparing kojic acid
Riešenie sa týká spósobu přípravy kyseliny kójovej transformáciou glycidov pomocou šfachtených Ikmeňov Aspergillus tarnarii. Podstata produlkcie kyseliny kójovej spočívá v tom, že na tekutej živnej ipode s obsahom asimilovatelného uhlíku, dusíka a živných solí sa kultivuje kmen Aspergillus tamarii mutant VIII (CMC F-781), alebo Aspergillus tamarii mutant III (CCM F-780) jednotlivo, alebo· v zmesi pri teplote 20 až 40 °C, pH 1,5 až 7,0 po dobu 72 až 240 hodin, pričom kyselina kójová sa izoluje zahuštěním ultrafialového média s následnou fcryštalizáciou. Riešenie má použitie vo fermentačmom prietnysle na výrobu kyseliny kójovej.The present invention relates to a process for the preparation of cubic acid by the transformation of carbohydrates by means of breeding strains of Aspergillus tarnarii. The essence of the production of kojic acid consists in culturing an aspergillus tamarii mutant VIII (CMC F-781) or Aspergillus tamarii mutant III (CCM F-780) strain individually on a liquid nutrient ip containing assimilable carbon, nitrogen and nutrient salts, or In a mixture at a temperature of 20 to 40 ° C, a pH of 1.5 to 7.0 for 72 to 240 hours, wherein the kojic acid is isolated by concentrating the ultraviolet medium followed by crystallization. The solution has a use in fermentation liquor for the production of kojic acid.
Vynález sa týká spósobu přípravy kyseliny kójovej transformáciou glyeidov pomocou šlachtených kmeňov Aspergilluis tamarii.The present invention relates to a process for the preparation of kojic acid by the transformation of glyeids by means of breeding strains of Aspergilluis tamarii.
Kyselinu kójovú v malých množstvách produkuje viacero mikroskopických vláknitých húb najma z rodu Aspergillus, ako sú A. flavus, A. oryzae, A. parasiticus, A. nidulans, A. candidus, A. awamoiri, A. clavatuis, A. fumigatus, A. giganteus, A. chevalieři, A. faciculatus, A. rugulosus [Korzybski, T., Kowszyk-Gindifer, Z., Antibiotics, PWN — Polish Scientific Puhlishers, Warszawa (1967]]. Nevýhodou uvedených kmeňov je nízká produkcia kyseliny kójovej a zložité produkčně médium. Uvedené nevýhody odstraňuje spósob produkcie kyseliny kójovej na teikuitej živnej pode s obsahom asimilovatelného uhlífca, duisílka a živných solí, kterého podstata spočívá v tom, že Aspergillus tamarii mutant VIII (CCM F-781), alebo Aspergillus tamarii mutant III (CUM F-780) sa kultivuje jednotlivo, alebo v zmesi, a to· povrchovo, alebo' submerzne, kde ako zdroj cukru v médiu sa použije glukóza, fruktóza, sacharóza, maltóza, galaktóza, xylóza, arabinóza, a to buď jeden z týchto cukrov, alebo ich zmes, připadne přírodně substráty obsahujúce tieto cukry, pričom fcuiltivácia1 sa uskuteční pri teplote 20 až 40 °C, s· výhodou pri 30 CC, pri pH 1,5 až 7, s výhodou na začiatku 4,5 pre submerz a 6,5 pre povrch, relatívnej vlhkosti pre povrch 55 % až 95 %, s výhodou 65 % po dobu 72 až 240 hodin, pričom kyselina ikójová sa izoluje zahuštěním ultrafialového média s následnou 'kryštalizácion, připadne extrakciou etylacetáteim, alebo zrážaním roztofcom síranu meďnatého, připadne rekryštalizáciou z dekationizovaného roztoku. Výhodou spósobu přípravy kyseliny kójovej pódia vynálezu je, že na jednoduchom živinom médiu s asimilovateiným zdrojem uhlíka a živných solí možno povrchovou, alebo submerznou fermentáciou získať kyselinu kójovú vo výtažku až 35 g na 100 g culkru.Several microscopic filamentous fungi, in particular from the genus Aspergillus, such as A. flavus, A. oryzae, A. parasiticus, A. nidulans, A. candidus, A. awamoiri, A. clavatuis, A. fumigatus, A giganteus, A. chevalier, A. faciculatus, A. rugulosus [Korzybski, T., Kowszyk-Gindifer, Z., Antibiotics, PWN - Polish Scientific Puhlishers, Warszawa (1967)]. The above-mentioned disadvantages are eliminated by the method of production of kojic acid on teicite nutrient medium containing assimilable carbonate, duisil and nutrient salts, which consists in that Aspergillus tamarii mutant VIII (CCM F-781) or Aspergillus tamarii mutant III (CUM). F-780) is cultured singly or in a mixture, either surface or submerged, where glucose, fructose, sucrose, maltose, galactose, xylose, arabinose is used as the sugar source in the medium. day of these sugars, or a mixture thereof, naturally containing substrates containing these sugars, wherein the filtration 1 is carried out at a temperature of 20 to 40 ° C, preferably at 30 ° C, at a pH of 1.5 to 7, preferably at the beginning of 4 , 5 for submerz and 6.5 for the surface, a relative humidity for the surface of 55% to 95%, preferably 65% for 72 to 240 hours, wherein the icoic acid is isolated by concentration of ultraviolet medium followed by crystallization, optionally by extraction with ethyl acetate, or precipitation with a solution of copper sulfate, optionally by recrystallization from a decationized solution. An advantage of the process for the preparation of kojic acid according to the invention is that on a simple nutrient medium with an assimilable source of carbon and nutrient salts, it is possible by surface or submerged fermentation to obtain kojic acid in yields of up to 35 g per 100 g of culk.
Příklad 1Example 1
Připraví sa 5,3 litra média o zložení 4,5 % sacharózy, 4,5 % glukózy, 0,2 % dusičnanu amónneho, 0,1 % dihydrofosforečňanu draselného, 0,05 % heptahydrátu síranu horečnatého, 0,05 % chloridu draselného, 0,001 percenta heptahydrátu síranu železnatého, 2 % kukuřičného výluhu o sušině 50 %. pH roztoku sa upraví na hodnotu 6,5. Sterilizuje sa 30 minút pri 115 °C a za horúca sa vyleje do- piatich sterilných hliníkových hrncov s priemerom 150 mm a výšky 180 mm. Po ochladení média na 45 °C sa na povrch média rozprášia konidiospóry ikmeňa Aspergillus tamarii mutant VIII v suspenzii s aktívinym uhlím v množstve 2 x 107 spor na 1 dm2 plochy média. Hrnce sa uložia do kvasnej komory, v ktorej je regulovaná teplota a vlhkost Teplota v kvasnej komoře po očkovaní v prieheihu 12 hodin klesne na °C a v priebehu dalších 12 hodin na 30° Celzia. Táto teplota sa potom udržuje až do konca. Relativná vlhkosť vzduchu je na začiatku 90 °/o, po 24 hodinách od očfcovania 70 %. Táto· vlhkosť sa udržuje až do ikomca kultivácie. Na povrchu média v priebehu 10 dní kultivácie sa vytvoří súvislá zvrásnená vrstva mycélia o sušině 20 g . 1_1. Koncentrácia vytvorenej kyseliny kójovej v médiu dosiahla hodnotu 30 g. to1 póvodného objemu média, t. j. 33 % kvasného výtažku. Příklad 2Prepare 5.3 liters of 4.5% sucrose, 4.5% glucose, 0.2% ammonium nitrate, 0.1% potassium dihydrophosphate, 0.05% magnesium sulfate heptahydrate, 0.05% potassium chloride, 0.001 percent ferrous sulfate heptahydrate, 2% corn extract with dry matter 50%. The pH of the solution was adjusted to 6.5. It is sterilized for 30 minutes at 115 ° C and poured five hot sterile aluminum pots with a diameter of 150 mm and a height of 180 mm while hot. After cooling the medium to 45 ° C, the conidiospores of Aspergillus tamarii mutant VIII in suspension with activated carbon are sprayed onto the surface of the medium at 2 x 10 7 spores per dm 2 of medium area. The pots are placed in a fermentation chamber in which the temperature and humidity are controlled. The temperature in the fermentation chamber drops to ° C over 12 hours and to 30 ° C over the next 12 hours. This temperature is then maintained until the end. The relative humidity at the beginning is 90 ° / o, after 24 hours after felling 70%. This moisture is maintained until cultivation is imminent. A continuous wrinkled layer of mycelia of 20 g dry matter is formed on the surface of the medium during 10 days of culture. 1 _1 . The concentration of formed kojic acid in the medium reached 30 g. to 1 of the original volume of the medium, ie 33% of the fermentation yield. Example 2
Připraví sa 100 ml méd.ia takého zložemia ako v příklade 1. Rozdělí sa po 50 ml do dvoch 250 ml Erlenmayeirových buniek a očkuje sa 0,5 mi suspenzie konídiospór fcmeňa Aspergillus tamarii mutant VIII vo vodě o fconcetrácii 107 spor na ml. Baníky sa uložia na rotačnú třepačku s počtem ikyvov 210 za minútu o výstřednosti 8 cm a kultivujú sa 48 hodin pri 32 °C. Po tejto době vyrastie vegetativně inokulum, ktoré tvoří suspenzia ihýf aglomeirovaných do sférických zhlukov prieméru 1,2 až 2 mra. Ďalej sa pripiraví 2,4 litra média o zložení 10 % glukózy, 0,1 °/o chloridu amonného, 0,05 % heptahydrátu síranu horečnatého', 0,016 % dihydrofosforečňanu draselného, 0,007 % chloridu draselného, 0,002 % tetraihydrátu síranu manganatého, 0,001 % heptahydrátu síranu zinočnatého, 0,001 % heptahydrátu síranu železnatého. Sterilizuje sa 30 minút pri 115 CC. Po sterilizácii a ochladení média na 30 °C sa přidá sterilný roztok močoviny vo výslednéj komcemtrácii 0,1 °/o. Médium sa prenesie do sterilného Tábor,atórmeho fermentéra o celkovom objeme 5 litrov s mechanickým miačením. Po, provzdušnění média sa sterilně prenesie obsah obidvoch baniek vegetatívneho inokuia připraveného vyššie popísaným postupom a kultivuje sa pri 30 °C. Intenzita aerácie je 0,05 až 1,0 jednotka objemu vzduchu na jednotku objemu média za minútu, a to na začiatku 0,1 a na konci 0,5 jednotky objemu vzduchu na jednotku objemu média za minútu. Obvodová rýchlosť miešania je 3,4 m . s_1.100 ml of a medium of the composition as in Example 1 is prepared. Dissolve 50 ml into two 250 ml Erlenmeyer cells and inoculate a 0.5 ml suspension of conidium spores of Aspergillus tamarii mutant VIII in water of 10 7 spores per ml. The flasks were placed on a rotary shaker with an oscillation rate of 210 rpm with an eccentricity of 8 cm and cultured for 48 hours at 32 ° C. After this time, a vegetatively inoculum is formed, which is a suspension of dowels agglomerated into spherical clusters with a diameter of 1.2-2 mra. 2.4 liters of medium containing 10% glucose, 0.1% ammonium chloride, 0.05% magnesium sulfate heptahydrate, 0.016% potassium dihydrogen phosphate, 0.007% potassium chloride, 0.002% manganese sulfate tetrahydrate, 0.001% were added. zinc sulfate heptahydrate, 0.001% ferrous sulfate heptahydrate. Sterilize at 115 ° C for 30 minutes. After sterilization and cooling of the medium to 30 ° C, a sterile urea solution is added in a final 0.1 ° / o compression. The medium is transferred to a sterile Tabor, an atomic fermenter with a total volume of 5 liters with mechanical stirring. After aerating the medium, the contents of both vegetative inoculum flasks prepared as described above are sterile transferred and cultured at 30 ° C. The aeration rate is 0.05 to 1.0 units of air per unit of volume per minute at the beginning of 0.1 and at the end of 0.5 units of air per unit of volume per minute. The peripheral stirring speed is 3.4 m. s _1 .
Laminárna rýchlosť prúdenla vzduchu je v medziach 0,4 až 2,8 m . s_1 vztiahinutá na jednotková plochu prlečneho řezu fermeintéra pri turbulentnom miešaní. Maximálna produkcia kyseliny kójovej sa dosiahne v 6. deň feirmentácie, pričom jej fconcentrácia bola 33 g na liter média.The laminar velocity of the air flow is between 0.4 and 2.8 m. 1 relative to the fermeintere cross-sectional unit area under turbulent mixing. Maximum production of kojic acid is achieved on day 6 of the fermentation, with a concentration of 33 g per liter of medium.
Příklad 3Example 3
Postupuje sa rovnako áko v příklade 2 s tým rozdielom, že inokulum sa připraví z konídiospór produfcčného fcmeňa Aspergil1'us tamarii mutant III. Maximálna produfccia kyseliny kójovej sa dosiahla v 9. deň feirmentácie, pričom jej koncentrácia bolaThe procedure of Example 2 is followed except that the inoculum is prepared from the coniospore producing Aspergillus tamarii mutant III. Maximum production of kojic acid was achieved on day 9 of feeder, at a concentration of
19,4 g na liter média.19.4 g per liter medium.
P r i ik 1 a d 4Example 1 a d 4
Postupuje sa rovnako ako v predchádzajúcom příklade s tým ro-zdielom, že namiesto glukózy sa použije sacharóza. Maximálna produlkcia kyseliny -kójovej sa dosiaihla zaThe procedure is as in the previous example, except that sucrose is used instead of glucose. The maximum prodrug of the -canoic acid was reached in
6,5 -dňa a jej konceintrácia bola 37 g ina liter média.6.5 days and its endpoint was 37 g in liter of medium.
Význam vynálezu spočívá v tom, že ekonomickou cestou možno- získat kyselinu kójovú, ktorá pre svoje antioxidačné a chalatačné vlastnosti ako ,aj pre vlastnosti biologické] účinnosti móže nájsť široké po-užitie -v potravinárskom, farm-aceuticfcom i chemic-kom priemysle, imajúc na zřeteli, že kyselina fcójová nie je mutagénnou pre eufcaryoti-cké buňky [-Shibuya T. a spol., J. Toxicol. S-ci., 7, 4, 255 až 262 (1982)] a v přírodě sa inachádzajú-cimi mikró-bnymi spoloče-ns-tvami je degradovatelná.The importance of the invention lies in the fact that it is economically possible to obtain kojic acid which, due to its antioxidant and chelating properties as well as the biological activity properties, can be used widely in the food, pharmaceutical and chemical industries, having bearing in mind that phoic acid is not mutagenic to eupcaryotic cells [-Shibuya T. et al., J. Toxicol. 7, 4, 255-262 (1982)] and is degradable by naturally occurring microbial associations.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS856571A CS252880B1 (en) | 1985-09-16 | 1985-09-16 | A method of preparing kojic acid |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS856571A CS252880B1 (en) | 1985-09-16 | 1985-09-16 | A method of preparing kojic acid |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS657185A1 CS657185A1 (en) | 1987-02-12 |
| CS252880B1 true CS252880B1 (en) | 1987-10-15 |
Family
ID=5413098
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS856571A CS252880B1 (en) | 1985-09-16 | 1985-09-16 | A method of preparing kojic acid |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (1) | CS252880B1 (en) |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN110407786B (en) * | 2019-08-19 | 2023-08-22 | 四川华迈科技发展有限公司 | Environment-friendly and energy-saving kojic acid extraction method |
-
1985
- 1985-09-16 CS CS856571A patent/CS252880B1/en unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| CS657185A1 (en) | 1987-02-12 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Brock | Studies on the nutrition of Morchella esculenta Fries | |
| RU1838408C (en) | Method of bacteria cultivating | |
| Lee et al. | Citric acid production by Aspergillus niger immobilized on polyurethane foam | |
| JPH01240179A (en) | Method for improving quality of liquirs | |
| JPS6438049A (en) | Antimicrobial agent for human or animal | |
| JP3951008B2 (en) | Capsaicin decomposing / synthesizing enzyme and production method thereof | |
| JPS6156086A (en) | Microbial preparation of alpha-hydroxyacid and its salt | |
| Golueke | Comparative studies of the physiology of Sapromyces and related genera | |
| CN1173044C (en) | Enzymatic production of vitamin B6 | |
| JPS606629B2 (en) | Production method of abscisic acid by fermentation method | |
| US3232844A (en) | Method for manufacturing inosinic acid by fermentation | |
| US4371622A (en) | Micromonospora culture | |
| JPH05292986A (en) | Trehalose manufacturing method | |
| US3975235A (en) | Process for the production of cephamycin type antibiotic substances | |
| CN100360667C (en) | Permeable cell trehalose synthease and its preparation and use | |
| US3650898A (en) | Process for producing nicotinic acid mononucleotide | |
| JPH01108988A (en) | Production of pyroracemic acid | |
| Mašková et al. | Microbial decomposition of carboxymethyl cellulose continuously added to the soil | |
| Seaby et al. | Experimental determination of requirements for the growth of edible Rhizopus species for use in solid substrate fermentation systems | |
| US3164533A (en) | Production of mycobacterium phlei | |
| JPH01144989A (en) | Production of colominic acid | |
| SU1311256A1 (en) | Consortium of candida tropicalis yeast and acinetobacter species bacteria as producer of exopolysaccharide | |
| SU1409658A1 (en) | Method of producing seeding material for obtaining citric acid by surface fermentation | |
| RU2103349C1 (en) | Method of vegetable raw concentrating with microbial protein | |
| US2968594A (en) | Amino acid and process |