CS259289B1 - Spósob uvofňovania cytoplazmatického obsahu kvasiniek indukovanou autolýzou - Google Patents

Spósob uvofňovania cytoplazmatického obsahu kvasiniek indukovanou autolýzou Download PDF

Info

Publication number
CS259289B1
CS259289B1 CS8610163A CS1016386A CS259289B1 CS 259289 B1 CS259289 B1 CS 259289B1 CS 8610163 A CS8610163 A CS 8610163A CS 1016386 A CS1016386 A CS 1016386A CS 259289 B1 CS259289 B1 CS 259289B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
autolysate
autolysis
sodium chloride
active
added
Prior art date
Application number
CS8610163A
Other languages
Czech (cs)
English (en)
Other versions
CS1016386A1 (en
Inventor
Ernest Sturdik
Roman Kollar
Maria Mikulasova
Stanislav Krcmar
Sona Huncikova
Original Assignee
Ernest Sturdik
Roman Kollar
Maria Mikulasova
Stanislav Krcmar
Sona Huncikova
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ernest Sturdik, Roman Kollar, Maria Mikulasova, Stanislav Krcmar, Sona Huncikova filed Critical Ernest Sturdik
Priority to CS8610163A priority Critical patent/CS259289B1/sk
Publication of CS1016386A1 publication Critical patent/CS1016386A1/cs
Publication of CS259289B1 publication Critical patent/CS259289B1/sk

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Uvedené riešenie rozšiřuje paletu doposial' používaných iniciačných faktorov autolýzy. Podstata riešenia spočívá v tom že na vstupnú surovinu o sušině 5 až 30 % hmot. sa pósobí aktívnym autolyzátom v objemovom pomere 1 : 3 až 1 : 12, zmes sa lyžuje za miešania pri teplote 45 až 55 °C počas 5 až 30 hodin. Na vstupnú surovinu sa súčasne s autolyzátom móže pósobiť etanolom v hmotnostnom pomere 1 : 99 až 1 : 9 a/alebo chloridom sodným v hmotnostnom pomere 1 : 999 až 1 : 9.

Description

Vynález sa týká spósobu uvoíňovania cytoplazmatického obsahu kvasiniek indukovanou autolýzou za účelom získavania potravinářsky a farmaceuticky využitelných buňkových komponent.
Na rozrušenie bunkovej steny a tým sprístupnenie proteínov a ostatných zložiek biomasy kvasiniek sa používajú rózne fyzikálně, chemické a biochemické spósoby dezintegrácie, pričom potřebný stupeň rozrušenia buňky sa dosahuje často kombináciou týchto metod.
Jednou z fyzíkálnych metod dezintegrácie je balotínová dezlntegrácia, čo je vlastně drvenie alebo mletie biomasy v zariadeniach s róznymi abrazívami (Mogren, H., Lindblom, H., Hedenskog, G., Biotechnol. Bioeng. 16, 261—274, 1974). Nevýhodou tohto spósobu je poměrně velký otěr abrazíva, s čím súvisí potřeba viacnásobného premývania a lokálně zahrievanie susepnzie vyžadujúce chladenie.
Vysokotlaková metoda dezintegrácie (Brookman, J. S., Biotechnol. Bioeng. 17, 465—479, 1975} spočívá v tom, že suspenzia kvasiniek prechádza z oblasti vysokého tlaku cez trysky dezintegračného zariadenia do oblasti normálneho tlaku. Rozbitie buniek je v priamej závislosti na hodnotě hydrostatického tlaku a na rýchlosti změny tlaku v prostředí, v ktorom sú buňky suspendované. Aj pri poměrně vysokých hodnotách tlaku sa však tento spósob vyznačuje poměrně nízkou účinnosťou, nesúcou so sebou nutnost viacnásobne opakovat proces, čím vznikajú fragmenty róznych velkostí a problémy pri ich separácii. Navýše zahrievanie pri změnách tlaku móže viesť k inaktivácii intrancelulárnych enzýmov.
Principem dezintegrácie explozívnou dekompresiou je nasýtenie suspenzie vhodným plynom pod tlakom a rýchle zníženie tlaku (Nesterov, A. I., Stavoroitova, G. A., Prikl. Biochim, Mikrobiol. 11, 593—597, 1975). Následkom vyrovnávania tlakového rozdielu vo vnútri buňky a jej okolí dochádza k rozrušeniu buňkových stien. Vnútrobunečný obsah však zostáva z velkej časti vnútri buniek, natoofko rozrušená buňka po krátkodobom pósobení dezintegrácie už nie je mechanicky namáhaná. To si vyžaduje nutnost viacnásobného opakovania dezintegrácie.
Okrem týchto najznámejších spósobov dezintegrácie sa zriedkavo využívá aj ultrasonikácia, zmrazovanie, sušenie.
Chemické spósoby spočívajú v pósobení určitých látok (napr. tiolovj na zložky bunkovej steny, čím sa buňková stená labilizuje až ropzadá (Shetty, J. K., Kinsella, J. E., Biotechnol. Bioeng. 20, 755—766, 1978].
Biochemické metody sú založené na enzymatickom pósobení cudzleho alebo vlastného lytického aparátu na bunkovú stenu. V experimentálnych podmienkach je hojné rozšířené napíná využívanie exogénnych systémov (Phaff, M. J., Adv. Chem. Ser. 160, 249—282, 1977) získaných z baktérií Arthrobacter luteus, Bacillus subtilis, húb Oerskowia, Albus, Coprinus, Flavus a dalších, alebo- sa v laboratórnom rozsahu využívá tráviaca šťava slimáka Helix pomatia.
Poměrně menej sa využívá endogénny lytický systém kvasiniek (Chrenova, Ν. M., Bezrukov, M. G., Kogan, A. S., Sergejev, W. A., Nahrung 25-, 837—844, 1981). Buňka za určitých okolností (vyčerpáme živin, nevhodná teplota, Ph) produkuje lytické enzýmy — andopeptidázy, karboxypeptidázy, aminopeptidázy, kyslú řosfatázu, j3-(l,3)glukanázu, ktoré pósohie na vlastnú bunkovú stenu a rozkladajú ju. Tento proces — autolýza priebeha v konečnom dósledku až dorozloženia buniek na základné zložky ako sú aminokyseliny, patidy, nukleotidy, nízkomolekulové sacharidy, vitamíny atď. Ak sa však vedle len do určitého požadovaného stupňa, móže slúžiť ako vhodný prostriedok na dezintegráciu buňky a uvoíňovanie proteínov a iných vnútrobunečných zložiek do prostredia. Doba prirodzeného autolytického procesu je poměrně dlhá (niekolko dní), čo vyvolává riziko bakteriálnej kontaminácie.
Tento nedostatok v podstanej miere odstraňuje spósob podía vynálezu, ktorého podstata spočívá v tom, že na vstupná surovinu o sušině 5 až 30 % hmot. sa pósobí aktívnym autolyzátom v objemovom pomere 1 : 3 až 1 : 12, zmes sa lyžuje za miešania pri teplote 45 až 55 °C počas 5 až 30 hodin. Na vstupná surovinu sa súčasne s autolyzátom móže pósobiť etanolom v hmotnostnom pomere 1 : 99 až 1 : 9 a/alebo- chloridom sodným v hmotnostnom pomere 1 ku 999, až; 1 : 9.
Spósob podía vynálezu rozšiřuje paletu doposial1 používaných inřciačných faktorov autolýzy. Spočívá v iniciácii autolýzy přidáním. vhodného množstva už zhyzovanej suspenzie tohoistého mikroorganizmu. V pridávanom lyzáte sú už neprodukované a uvolněné lytické enzýmy, ktoré móžu hned atakovat buňkové steny,, tieto sa stávajú prístupnejšle vlastnému lýtickému systému, ktorý sa zatial utvoří a proces rozloženia buňky sa takto podstatné skráti na 5 až 30 hodin.
Kombináciou s inými iniciačnými faktormi, ako je chlorid sodný a etanol sa ešte zefektivni pósobenie autolytického systému. Ak ako kritérium autolytickej dezintegrácie buniek používáme množstvo uvolněných proteínov, tak potom sa týmto spósobom, t. j. prídavkom etanolu, chloridu sodného a aktívneho autolyzátu k suspenzii za niekolko hodin z buňky uvolní 50—80 θ/o z celkových proteínov, stanovených Lowryho metodou.
Vhodný poměr přidávaného aktívneho autolyzátu k biomase zabezpečuje, že sa k mikrobiálnej suspenzii přidá dostatočné množstvo lytických enzýmov a přitom čo ných spósoboch iniciácie autolýzy udává tanajmenej ulitizovatefných živin. bulka 1.
Množstvo uvolněných proteínov pri rózTabulka 1
Množstvo proteínov uvolněných do supernatantu (v %) z póvodného obsahu proteínov v intaktnom droždí, pri roznych dobách a spósoboch iniciácie autolýzy. Etanol, respektive chlorid sodný přidávaný vo· výsledČas 50 °C 50 °C (h) NaCl
1 0,7 0,9
5 4,6 5,6
10 9,0 12,1
24 36,3 46,3
Příklad 1 te 3 1 kvasničnej suspenzie o sušině 10 % a obsahu proteínov 32,8 mg/ml sa přidá 600 ml štandardného autolyzátu, 30 g chloridu sodného, 150 g etanolu a zmes sa inkubuje za miešania pri 50 °C. Po 5 hodinách sa suspenzia scentrifuguje, pričom sa získá 730 g sedimentu, využitelného na izoláciu například ergosterolu a 2 812 ml supernatantu o sušině 4,1 % a obsahu proteínov
15,5 mg/ml využitelného na izoláciu proteínov.
Příklad 2
Postup rovnaký ako v příklade 1, lýza sa však nepřeruší po 5. hodině, ale po 24. hodině. Po centrifugách sa z rovnakého množstva suspenzie získá 639 g sedimentu a 3 044 ml supernatantu o sušině 6 % a obsahu proteínov 25 mg/ml.
Příklad 3
Postup rovnaký ako v příklade 2, přidá sa však 1 000 ml aktívneho autolyzátu a 60 g chloridu sodného. Získaný supernatant má sušinu 9,1 % a obsah proteínov 48,5 mg/ml. Příklad 4
Postup rovnaký ako v příklade 2, přidá sa však 3 g chloridu sodného a 30 g etylaikoholu. Získaný supernatant má sušinu 7,4 % a obsah proteínov 43,0 mg/ml.
Příklad 5
Postup rovnaký ako v příklade 2, přidá sa však 150 g chloridu sodného a 300 g etylaikoholu. Získaný supernatant má sušinu 11 % a obsah proteínov 44 mg/ml.
nej koncentrácii 5 % hmot., autolyzát v množstve zodpovedájúcom 1/6 objemu vstup-
nej suroviny 10 %). (kvasničné mlieko o sušině
50 °C 50 °C 50 °C
etylalkohol autolyzát etylalkohol NaCl autolyzát
1,9 17,5 18,2
7,1 26,6 37,2
16,0 45,3 68,5
50,9 Příklad 6 64,7 78,8
Postup rovnaký ako v příklade 2, přidá sa 500 ml aktívneho autolyzátu, 60 g chloridu sodného a 30 g etylaikoholu. Získaný supernatant má sušinu 8,2 θ/o a obsah proteínov 44 mg/ml.
Příklad 7
Postup rovnaký ako v příklade 2, přidá sa však 150 g chloridu sodného a 500 ml aktívneho autolyzátu, získaný supernatant má sušinu 11,2 % a obsah proteínov 41,5 mg/ml. Příklad 8
Postup rovnaký ako v příklade 2, přidá sa však 500 ml aktívneho autolyzátu, 3 g chloridu sodného a 300 g etylaikoholu. Získaný supernatant má sušinu 6,9 % a obsah proteínov 46,2 mg/ml.
Příklad ‘9
Postup rovnaký ako v příklade 2, přidá sa však 100 ml aktívneho autolyzátu, 150 g chloridu sodného^ a 30 g etylaikoholu, Získaný supernatant má sušinu 10,7 % a obsah proteínov 46,2 mg/ml.
Příklad 10
Postup rovnaký ako v příklade 2, přidá sa však 100 ml aktívneho autolyzátu, 3 g chloridu sodného. Získaný supernatant má sušinu 6,2 % a obsah proteínov. 36,2 mg/ml. Příklad 11
Postup rovnaký ako v příklade 2, přidá sa však 100 ml aktívneho autolyzátu, 60 g chloridu sodného a 300 g etylaikoholu. Získaný supernatant má sušinu 7,0 % a obsah proteínov 40,5 mg/ml.

Claims (2)

  1. PREDMET
    1. Spósob uvofňovania cytoplazmatického obsahu kvasiniek indukovanou autolýzou vyznačujúci sa tým, že na vstupnú surovinu o sušině 5 až 30 % hmot. sa pósobí aktívnym autolyzátom v objemovom pomere 1 ku 3 až 1 : 12, zmes sa lyžuje za miešania pri teplote 45 až 55 °C počas 5 až 30 hodin.
    VYNALEZU
  2. 2. Spósob uvoTňovania cytoplazmatického obsahu kvasiniek podlá bodu 1 vyznačujúci sa tým, že na vstupnú surovinu sa súčasne s autolyzátom pósobí etanolom v hmotnostnom pomere 1 : 99 až 1 : 9 a/alebo chloridom sodným v hmotnostnom pomere 1 : 999 až 1 : 9.
CS8610163A 1986-12-29 1986-12-29 Spósob uvofňovania cytoplazmatického obsahu kvasiniek indukovanou autolýzou CS259289B1 (sk)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS8610163A CS259289B1 (sk) 1986-12-29 1986-12-29 Spósob uvofňovania cytoplazmatického obsahu kvasiniek indukovanou autolýzou

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS8610163A CS259289B1 (sk) 1986-12-29 1986-12-29 Spósob uvofňovania cytoplazmatického obsahu kvasiniek indukovanou autolýzou

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS1016386A1 CS1016386A1 (en) 1988-02-15
CS259289B1 true CS259289B1 (sk) 1988-10-14

Family

ID=5448195

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS8610163A CS259289B1 (sk) 1986-12-29 1986-12-29 Spósob uvofňovania cytoplazmatického obsahu kvasiniek indukovanou autolýzou

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS259289B1 (sk)

Also Published As

Publication number Publication date
CS1016386A1 (en) 1988-02-15

Similar Documents

Publication Publication Date Title
John et al. Purification and some properties of five endo-1, 4-β-D-xylanases and β-D-xylosidase produced by a strain of Aspergillus niger
Malamy et al. Release of alkaline phosphatase from cells of Escherichia coli upon lysozyme spheroplast formation
Merrick et al. Depolymerization of poly-β-hydroxybutyrate by an intracellular enzyme system
Neu et al. The release of enzymes from Escherichia coli by osmotic shock and during the formation of spheroplasts
Harrison Bacterial cell disruption: a key unit operation in the recovery of intracellular products
Heptinstall et al. Teichoic acids and membrane function in bacteria
Lin et al. Disintegration of yeast cells by pressurized carbon dioxide
Johnson et al. Simple method for the isolation of astaxanthin from the basidiomycetous yeast Phaffia rhodozyma
KR970043056A (ko) 균사체의 함유 배양지에서의 유용성분의 추출방법
US3821080A (en) Extraction of proteins from microorganism cells
US3862112A (en) Alkali extraction of microbial cellular proteins at high temperature
Li et al. Unit operations applied to cell disruption of microalgae
Ruiz-Herrera et al. Sedimentation properties of chitosomes from Mucor rouxii
Odds et al. Peptones and mycological reproducibility
US3996104A (en) Process for preparing from a microbial cell mass a protein concentrate having a low nucleic acid content, and the protein concentrate thus obtained
Souzu Location of polyphosphate and polyphosphatase in yeast cells and damage to the protoplasmic membrane of the cell by freeze-thawing
Kobayashi et al. Preparation and evaluation of an enzyme which degrades yeast cell walls
Domínguez et al. Stimulation of novel thermostable extracellular lipolytic enzyme in cultures of Thermus sp.
Shetty et al. Effect of thiol reagents on extractability of protein from yeast
Subramanyam et al. An enzymic method for the determination of chitin and chitosan in fungal cell walls
Barsukov et al. Manipulation of Phospholipid Composition of Membranes with the Aid of Lipid Exchange Proteins: Incorporation of Phosphatidylcholine into Protoplasts of Micrococcus lysodeikticus
Lindblom Properties of intracellular ribonuclease utilized for RNA reduction in disintegrated cells of Saccharomyces cerevisiae
Yano et al. Purification and characterization of a novel α-L-fucosidase from Fusarium oxysporum grown on sludge
Andreeva et al. Two exopolyphosphatases of the cytosol of the yeast S. cerevisiae: comparative characteristics
FURUYA et al. STUDIES ON THE CELL WALL LYTIC ENZYMES PRODUCED BY STREPTOMYCES SPECIES PART 2. THE LYTIC ENZYMES OF STREPTOMYCES NO. 62 STRAIN