CZ2002140A3 - Neutrální lipopolymer a lipozomové kompozice, které jej obsahují - Google Patents

Neutrální lipopolymer a lipozomové kompozice, které jej obsahují Download PDF

Info

Publication number
CZ2002140A3
CZ2002140A3 CZ2002140A CZ2002140A CZ2002140A3 CZ 2002140 A3 CZ2002140 A3 CZ 2002140A3 CZ 2002140 A CZ2002140 A CZ 2002140A CZ 2002140 A CZ2002140 A CZ 2002140A CZ 2002140 A3 CZ2002140 A3 CZ 2002140A3
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
peg
lipopolymer
alkyl
group
liposomes
Prior art date
Application number
CZ2002140A
Other languages
English (en)
Inventor
Samuel Zalipsky
Original Assignee
Alza Corporation
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Alza Corporation filed Critical Alza Corporation
Publication of CZ2002140A3 publication Critical patent/CZ2002140A3/cs

Links

Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/10—Dispersions; Emulsions
    • A61K9/127—Synthetic bilayered vehicles, e.g. liposomes or liposomes with cholesterol as the only non-phosphatidyl surfactant
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/10—Dispersions; Emulsions
    • A61K9/127—Synthetic bilayered vehicles, e.g. liposomes or liposomes with cholesterol as the only non-phosphatidyl surfactant
    • A61K9/1271—Non-conventional liposomes, e.g. PEGylated liposomes or liposomes coated or grafted with polymers
    • A61K9/1272—Non-conventional liposomes, e.g. PEGylated liposomes or liposomes coated or grafted with polymers comprising non-phosphatidyl surfactants as bilayer-forming substances, e.g. cationic lipids or non-phosphatidyl liposomes coated or grafted with polymers
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C08—ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08G—MACROMOLECULAR COMPOUNDS OBTAINED OTHERWISE THAN BY REACTIONS ONLY INVOLVING UNSATURATED CARBON-TO-CARBON BONDS
    • C08G65/00—Macromolecular compounds obtained by reactions forming an ether link in the main chain of the macromolecule
    • C08G65/02—Macromolecular compounds obtained by reactions forming an ether link in the main chain of the macromolecule from cyclic ethers by opening of the heterocyclic ring
    • C08G65/32—Polymers modified by chemical after-treatment
    • C08G65/329—Polymers modified by chemical after-treatment with organic compounds
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C08—ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08L—COMPOSITIONS OF MACROMOLECULAR COMPOUNDS
    • C08L2203/00—Applications
    • C08L2203/02—Applications for biomedical use
    • Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10T—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER US CLASSIFICATION
    • Y10T428/00—Stock material or miscellaneous articles
    • Y10T428/29—Coated or structually defined flake, particle, cell, strand, strand portion, rod, filament, macroscopic fiber or mass thereof
    • Y10T428/2982—Particulate matter [e.g., sphere, flake, etc.]
    • Y10T428/2984—Microcapsule with fluid core [includes liposome]

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Dispersion Chemistry (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Solid-Sorbent Or Filter-Aiding Compositions (AREA)
  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
  • Addition Polymer Or Copolymer, Post-Treatments, Or Chemical Modifications (AREA)
  • Polysaccharides And Polysaccharide Derivatives (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Compositions Of Macromolecular Compounds (AREA)
  • Polyethers (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Materials For Medical Uses (AREA)
  • Manufacturing Of Micro-Capsules (AREA)

Description

Oblast techniky
Tento vynalez se tyká neutrálních lipopolymerů substituovaných PEG a jejich užití v lipozomech s prodlouženou cirkulační dobou. Lipozomy obsahující tyto lipopolymery vykazují podobné doby cirkulace v krvi jako lipozomy, jež obsahují obvyklé fosfolipidy substituované PEG se záporným nábojem.
Dosavadní stav techniky
Lipozomy se užívají pro různé terapeutické účely a zvláště pro dodávku terapeutických činidel do cílových buněk při systémovém podávání lipozomových formulací těchto činidel. Je výhodné, že lékové formulace obsahující lipozomy dávají možnost lepších dodávkových vlastností léků včetně například řízeného uvolňování léku. Delší doba cirkulace v krvi se často od lipozomů vyžaduje v zájmu dosažení cílové oblasti, buňky nebo místa. Zvláště je potřebná, když cílová oblast, buňka nebo místo nejsou umístěny v blízkosti místa vpichu injekce. Například když se lipozomy podávají systémově, je potřebné povléci je hydrofilním činidlem, například sloučeninou s polymerním řetězcem jaký má polyethylenglykol (PEG) za účelem prodloužení životnosti lipozomů při cirkulaci v krvi. Tyto povrchově modifikované lipozomy se běžně nazývají lipozomy s dlouhou cirkulací nebo stericky stabilizované lipozomy.
Nejběžnější taková povrchová úprava lipozomů je připojení řetězců PEG s typickou relativní molekulovou hmotností od asi 1 000 daltonů (Da) do asi 5 000 Da k přibližně 5 % molárních lipidů obsažených v lipozomech (viz například Stealth Liposomes, CRC Press, Lasic D. a Martin F. (vyd.), Boca Raton, FL, (1995) a tam citované odkazy).
Farmakokinetika těchto lipozomů se vyznačuje na dávce nezávislým snížením absorpce lipozomů játry a slezinou prostřednictvím systému mononukleárních fagocytů (MPS) a významné prodlouženou dobou cirkulace v krvi ve srovnání s lipozomy povrchově neupravenými, kde je tendence k rychlému odstraňování lipozomů z krve a jejich ukládání v játrech a slezině.
Nej častěji užívané a komerčně dostupně fosfolipidy substituované PEG jsou na bázi fosfatidylethanolaminu (PE), obvykle DSPE (distearoylfosfatidylethanolamin) , který nese na čelní skupině negativní náboj. Negativní náboj na povrchu lipozomů může být v některých ohledech nevýhodou, například při interakcích s buňkami (viz například Miller a další, Biochemistry, sv. 34, ss. 12 875-12 883 (1998)) a při dodávce kationtových léků, protože může dojít k úniku léku (viz například Webb a další, Biochim. Biophys. Acta, 1372, ss. 272-282 (1998)) .
Bylo by tedy, prospěšné získat lipidy substituované PEG bez náboje, ucinne je vnést do lipidových dvojných vrstev a vytvořit tak lipozomy s dlouhou cirkulací v krvi. V ideálním případě by tyto lipidy nebyly toxické a snadno by se vyráběly.
Podstata vynálezu
V jednom ohledu obsahuje tento vynález lipozomovou kompozici s přibližně 1 až 10 molárními procenty neutrálního lipopolymeru, přičemž neutrální lipopolymer představuje vzorec:
přičemž :
R i R představuji alkylový nebo alkenylový řetězec s asi 8 až asi 24 uhlíkovými atomy;
n je mezi asi 10 a asi 300,
Z se vybere ze skupiny substituentu, kterou tvoří hydroxy, alkoxy, benzyloxy, ester karboxylové kyseliny, ester sulfonové kyseliny, alkyl nebo arylkarbonát, amino a alkylamino; a
L se vybere ze skupiny, kterou tvoří (i) -x-(C=0)-Y(-¾-/ (ii)-X-(C=O)- a (iii) -X-CH2-, kde X a Y se nezávisle vyberou z kyslíku, NH a přímé vazby. Je výhodné, když tato kompozice zahrnuje od asi 3 do asi 6 molárních procent neutrálního lipopolymeru.
V jiném aspektu je L hydrolyzovatelná vazba jako karbamátová vazba, esterová vazba nebo karbonátová vazba. V ještě dalším aspektu je Z hydroxy nebo methoxyskupina. Je výhodné, když Ri a R2 nejsou rozvětvené. V jednom aspektu jsou jak Ri tak R2 stearylskupiny (C17H35) . V dalším aspektu je hodnota n výhodně mezi asi 20 a asi 115, tak aby relativní molekulová hmotnost skupiny PEG byla mezi asi 1 000 Da a asi 5 000 Da.
Vynález též poskytuje způsob prodloužení doby cirkulace lipozomu obsahujícího lipidy tvořící váčky v krvi vnesením do lipozomu asi 1 molárního procenta až asi 10 molárních procent neutrálního lipopolymeru s výše uvedeným vzorcem. Vynález též nabízí lipopolymery představované tímto vzorcem.
I. Definice:
Zde používaný termín neutrální lipopolymer se týká lipopolymeru bez náboje, to znamená takového, který nemá iontový charakter.
Lipidy tvořící váčky se týkají amfipatických lipidů s hydrofobními a polárními strukturními částmi nesoucími polární čelní skupinu. Takové lipidy tvořící váčky mohou ve vodě spontánně vytvářet dvouvrstvé váčky jako v případě fosfolipidů, nebo se mohou stabilně začlenit do lipidových dvojných vrstev, přičemž je hydrofobní část v dotyku s vnitřní, to znamená jednou hydrofobní oblastí dvouvrstvé membrány a část s polární čelní skupinou se orientuje na vnější, to znamená polární povrch membrány. Třída lipidů tvořících váčky tohoto typu typicky zahrnuje jeden nebo dva hydrofobní acyluhlovodíkové řetězce nebo steroidní skupinu a může obsahovat chemicky reaktivní skupinu (jako například amin, kyselinu, ester, aldehyd nebo alkohol) na polární čelní skupině. V této třídě jsou zahrnuty fosfolipidy jako fosfatidylcholin (PC), fosfatidylethanolamin (PE), fosfatidová kyselina (PA), fosfatidylinositol (PI) a sfingomylelin(SM), ve kterých uvedené dva uhlovodíkové řetězce mají typicky asi 14 až asi 22 uhlíkových atomů a ruzne stupně nenasycenosti. Další lipidy tvořící váčky zahrnuji glykolipidy jako jsou cerebrosidy, gangliosidy a steroly jako cholesterol. Pro zde popsané kompozice jsou výhodnými složkami fosfolipidy jako PC a PE, cholesterol, a neutrální lipopolymery.
Alkyl se týká plně nasycených jednomocných radikálů obsahujících uhlík a vodík, jež mohou mít rozvětvený nebo přímý řetězec. Příklady alkylových skupin představují methyl, ethyl, n-butyl, terc-butyl, n-heptyl a isopropyl. Nižší alkyly se týkají alkylového radikálu obsahujícího od asi jednoho do asi šesti uhlíkových atomů, jaké představuje například methyl, ethyl, n-butyl, iso-butyl, terc-butyl, izoamyl, n-pentyl a izopentyl.
Alkenyl se týká jednomocného radikálu obsahujícího uhlík a vodík, který může mít rozvětvený nebo přímý řetězec a obsahuje nejméně jednu dvojnou vazbu.
Zkratky: PEG: polyethylenglykol; mPEG: polyethylenglykol zakončený methoxylem; Chol: cholesterol; PC: fosfatidylcholin; PHPC: částečně hydrogenovaný
fosfatidylcholin; PHEPC: částečně hydrogenovaný vaječný fosfatidylcholin; HSPC: hydrogenovaný sojový fosfatidylcholin; DSPE: distearoylfosfatidylethanolamin; DSP: nebo PEG-c-DS: distearoylPEG s karbamátovou vazbou; APD: l-amino-2,3-propandiol; DTPA: diethylentetraminpentaoctová kyselina; Bn: benzyl.
II. Neutrální lipolymery:
Neutrální lipopolymery substituované PEG podle vynálezu mají tuto strukturu:
O-t-R1
přičemž:
R1 i R2 vykazují alkylový nebo alkenylový řetězec s asi 8 až asi 24 uhlíkovými atomy;
n je mezi asi 10 a asi 300,
Z se vybere ze skupiny substituentů, kterou tvoří hydroxy, alkoxy, benzyloxy, ester karboxylové kyseliny, ester sulfonové kyseliny, alkyl nebo arylkarbonát, amino a alkylamino; a
L se vybere ze skupiny, kterou tvoří (i) -X-(C=O)-YCH2-, (ii)-X-(C=O)- a (iii) -X-CH2-, kde X a Y se nezávisle vyberou z kyslíku, NH a přímé vazby.
Lipopolymery zahrnují neutrální vazbu (L) místo nabité fosfátové vazby PEG-fosfolipidů jako je PEG-DSPE, často používaných ve stericky stabilizovaných lipozomech. Tato neutrální vazba se typicky vybere ze skupiny karbamát, ester, amid, karbonát, močovina, amin a ether. Hydrolyzovatelné nebo jinak štěpitelné vazby jako karbamáty, karbonáty a estery jsou preferovány v aplikacích, kde je žádoucí po ukončené době cirkulace in vivo odstranit řetězce
PEG. Taková možnost může být užitečná při uvolňování léku nebo pro usnadnění jeho absorpce buňkami poté, co lipozom dosáhl svého cíle (Martin a další, Patent US 5 891 468, Zalipsky a další, zvěř. PCT přihláška WO 98/18813 (1998)).
Skupina PEG připojená k vazebné skupině má výhodně relativní molekulovou hmotnost od asi 1 000 Da do asi 15 000 Da, kde n je mezi asi 20 a asi 340. Výhodnější je, když je relativní molekulová hmotnost od asi 1 000 Da do asi 12 000 Da (n = asi 20 až asi 275) a nejvýhodnější mezi asi 1 000 Da do asi 5 000 Da (n = asi 20 až asi 115) . R1 á R2 mají typicky od asi 8 do asi 24 uhlíkových atomů a výhodně mají délku asi 16 až asi 20 uhlíkových atomů. Nejvýhodnější je, když R1 = R2 = C17H35, takže COOR je stearylskupina.
Jak výše uvedeno, vnesení nenabitého lipidu do lipozomu může přinést značné výhody jako je snížená možnost úniku opouzdřeného kationtového léku. Další výhodou je zvýšená pružnost při modulování interakcí povrchu lipozomu s cílovými buňkami a s RES (Miller a další, Biochemistry, sv. 37, ss. 12 875-12 883 (1998)). Jako nenabitých složek stericky stabilizovaných lipozomů se užilo syntetických ceramidů substituovaných PEG (Webb a další, Biochim. Biophys. Acta, sv. 1372, ss. 272-282 (1998)); tyto molekuly však jsou složité a preparačně nákladné a zpravidla se neumístí do fosfolipidové dvojné vrstvy tak dobře jako diacylglycerofosfolipidy.
Přehled obrázků na výkresech
Obrázek 1 ukazuje schéma syntézy lipopolymeru bez náboje s vázaným karbamátem, zde označovaného jako PEG-c-DS;
Obrázky 2A-2D ukazují schéma syntézy nenabitých lipopolymerů s etherovou, esterovou a ketonovou vazbou.
Obrázky 3A-3C jsou grafy ukazující biodistribuci lipozomu HSPC/Chol obsahujících 3 molární procenta PEG-c-DS (A), 5 molárních procent PEG-DSPE (B) nebo 5 molárních
procent PEG-c-DS (C) v krvi, játrech a slezině;
Obrázek 4 je graf ukazující retenci v krvi lipozomú HSPC (poměr 2:1) bez PEG (křížky), to znamená žádný PEG, 5 molárních procent PEG-DSPE (trojúhelníky) a 5 molárních procent PEG-c-DS (kroužky) a
Obrázek 5 ukazuje retenci v krvi lipozomú PHEPC obsahujících 5 molárních procent PEG-c-DS (kroužky) a 5 molárních procent PEG-DSPE (čtverečky).
Lipopolymery se mohou připravovat za použití standardních syntetických způsobů. Například sloučenina vazana na karbamat (L = -0(C=0)-NH-CH2-) se připravuje, jak ukazuje obrázek 1, reakcí terminálniho =hydroxylu mPEG (methoxy-PEG) s p-nitrofenylchloroformátem za vzniku pnitrofenylkarbonátu. Tento produkt potom reaguje s 1-amino2,3-propandiolem a získá se meziproduktový karbamát. Hydroxylové skupiny diolu se acylují a získá se finální produkt. Podobná syntéza za použití glycerolu místo 1-amino2,3-propandiolu se může použít při přípravě produktu, vázaného na karbonát (L = -0- (c=0) -O-CH2-) . V příkladu 1 se též popisuje příprava distearoyl- a diekosanoyllipopolymerů.
Jak ukazuje obrázek 2A, lipopolymer vázaný na ether (L = -0-CH2-) se připravuje reakcí koncového hydroxylu mPEGOH s glycidylchloridem, hydrolýzou výsledného epoxidu a acylací výsledného diolu. Lipopolymery vázané na estery (L = -0-(C=0)- nebo -O-(C=0)-CH2-) se mohou připravit (jak ukazuje obrázek 2B) reakcí mPEG-OH s aktivovaným derivátem acetonidu kyseliny glycerové (2,2-dimethyl-1,3-dioxolan-4karboxylovou kyselinou) nebo jejím čtyřuhlíkovým homologem 2,2-dimethyl-l,3-dioxolan-4-octovou kyselinou. Z diolu se potom sejme chránící skupina a acyluje se.
Odpovídajícími reakcemi se za použití mPEG-NH2 připraveného způsobem který popsal Zalipsky a další, zvěř.
PCT přihláška WO 98/18813 (1998), místo m-PEG-OH, mohou Připravit 1ipopolymery s vazbami na amid, močovinu nebo amin (to znamená kde L = -NH-(C=0)-NH-, NH-(C=0)-CH2- nebo -NHCH2-).
Sloučeniny, ve kterých L je -X-(C=O)-, a X je 0 nebo NH, se mohou připravit reakcí aktivovaného a karboxylem zakončeného PEG (připraveného oxidací hydroxylem zakončeného PEG a aktivací karboxylové skupiny například konverzí na nitrofenylester nebo reakcí s DCC) s 1,2,3-propantriolem nebo l-amino-2,3-propandiolem (obrázek 2C). Sloučenina s ketonovou vazbou (například kde X znamená přímou vazbu) se může připravit kondenzací PEG zakončeného aldehydem (připraveného mírnou oxidací PEG zakončeného hydroxylem) s například Grignardovým činidlem l-bromo-2,3propandiolacetonidu (obrázek 2D), po níž následuje oxidace na keton v neokyseleném prostředí a hydrolýza acetonidu na diol. Ve všech případech se potom diol acyluje jako obvykle.
Konec oligomeru PEG, který není připojen na glycerolovou strukturní část (a konec; výše uvedená skupina Z) je typicky hydroxy- nebo methoxyskupina, ale může se funcionalizovat způsoby známými v oboru, pro usnadnění vazby různých molekul na neutrální lipopolymer a/nebo pro použití při zacílení lipozomů na určité buňky nebo typy tkání, nebo pro jiné usnadnění dodávky léku. Navazované molekuly mohou zahrnovat například proteiny, peptidy, glycidy, protilátky nebo vitaminy. Příklady 2 a 3 popisují stupně při přípravě α-funkcionalizovaných lipopolymerů způsoby podobnými způsobům popsaným výše, připravují se však z komerčně dostupných oligomeru PEG, přičemž se α-konec substituuje skupinou jako je terč-butylether nebo benzylether, které se snadno konvertují na hydroxyl po ukončení syntézy lipidové části molekuly. Potom se tento konec aktivuje, v tomto případě konverzí na p-nitrofenylkarbonát.
III. Farmakokinetika lipozomů
Lipozomy s dlouhou dobou cirkulace vznikly vnesením asi 1 až asi 10 % molárních a výhodněji asi 3 až asi 6 % molarních neutrálního lipopolymeru do lipozomů složených z lipidů tvořících váčky. Lipozomy obsahující asi 3 až asi 5 % molárních buď mPEG2OoO-DSPE (distearoylfosfatidylethanolamin) nebo lipopolymeru vázaného na karbamát jako je mPEG2Ooo-c-DS se připravily podle popisu v příkladu 4. Zbytek lipidů obsahoval HSPC a cholesterol v poměru 1,5:1. Lipozomy byly značeny I-tyraminylinulinem. Vzorek každého přípravku se injektoval do ocasní žíly myši a jeho distribuce v tkáních se stanovila v různých časových úsecích, jak popisuje příklad 4. Koncentrace v krvi, játrech a slezině ukazují tabulky 1-3 a graficky v obrázky 3A-3C. Údaje ukazují, že farmakokinetika lipozomů obsahujících PEG-c-DS se podobá farmakokinetice lipozomů obsahujících PEG-DSPE.
Tabulka 1
Distribuce lipozomů v krvi
Časová % injektované dávky
lhůta A B C
30 min - 94,8 ± 3,99 89,7 ± 6,94
2 hod 85,1 ± 1,99 79,8 ± 3,42 73,0 ± 17,4
6 hod 67,1 ± 6,25 54,5 + 3,05 55,3 ± 2,51
12 hod 54,9 ± 6,04 39,7 ±2,52 44,4 ± 2,52
24 hod 14,8 ± 2,81 12,4 ± 2,34 16,6 ± 2,38
Tabulka 2
Distribuce lipozomů v játrech
Časová 6 injektované dávky
lhůta A B C
3 0 min — 2,27 ± 0,13 3,14 ± 0,95
2 hod 8,76 ± 2,01 9,42 ± 1,24 11,7 ± 1,74
6 hod 21,7 ± 2,55 19,3 ± 1,37 20,8 ± 0,86
12 hod 26,6 ± 0,51 26,4 ± 1,99 30,4 ± 1,28
24 hod 43,9 ±2,7 36,6 ± 2,25 42,6 ± 0,48
Tabulka 3 1
Distribuce lipozomů ve slezině
Časová % injektované dávky
lhůta A B C
3 0 min 0,09 ± 0,06 0,23 ± 0,08
2 hod 0,96 ± 0,16 0,99 ± 0,09 1,08 ± 0,09
6 hod 1,94 ± 0,07 1,96 ± 0,29 2,12 ± 0,13
12 hod 3,15 ± 0,31 3,13 ± 0,12 3,35 ± 0,22
24 hod 4,69 ± 0,37 3,91 ± 0,31 4,56 ± 0,29
Podobná studie srovnávala chování obou PEG lipidů proti kontrolní formulaci, která neobsahovala žádný PEG lipid. Obrázek 4 ukazuje retenci v krvi lipozomů HSPC neobsahujících PEG (poměr 2:1) (křížky), PEG2OOo-DSPE (5 molárních procent) (trojúhelníky) nebo PEG2Ooo-c-DS (5 molárních %) (kroužky).
Další studie se prováděly za pomoci lipozomů obsahujících mPEG2Ooo-c-DS : PHPC : Chol v molárním poměru 5 : 55 : 40. Lipozomy se značily vnesením komplexu indiumDTPA. Procentuální zbytek injektovane dávky se stanovil v krvi v různých tkáních po 24 hodinách. Výsledky ukazují tabulky 4-6. Lipozomy opět vykazují typickou farmakokinetiku vyznačující se dlouhou dobou cirkulace, přičemž průměrná retence injektované dávky po 4 hodinách je větší než 70 % a po 24 hodinách větši než 30 %.
Tabulka 4
Procentuální množství injektované dávky india v krvi
Zvíře č. 0,0 hod 0,5 hod 1,0 hod 2,0 hod 4,0 hod 24 hod
Krysa 1 103,7 91,2 82,5 73,8 72,0 33,1
Krysa 2 97,7 87,7 79,4 78,7 74,4 30,7
Krysa 3 95,1 83,1 77,8 68,6 64,4 29,8
Krysa 4 91,9 85,4 78,5 75,6 72,6 33,2
Průměr 97,1 86,8 79,6 74,2 70,9 31,7
Stand. Odchylka 5,0 3,4 2,1 4,2 4,4 1,7
Tabulka 5
Množství injektované dávky v tkáních po 24 hod. v %
Tkáň Krysa 1 Krysa 2 Krysa 3 Krysa 4 Průměr Stand, odchylka
Játra 7,5 6, 9 6,7 7,2 7,1 0,3
Slezina 4,9 5,4 5,6 4,8 5,2 0,4
Srdce 0,4 0,5 0,5 0,6 0,5 0,1
Ledviny 1,2 1,2 1,0 1,2 1,1 0,1
Plíce 0,7 0,7 0,7 0,8 0,7 0,1
Pokožka 0,1 0,3 0,2 0,2 0,2 0,1
Kost 0,3 0,2 0,2 0,2 0,2 0,2
Svalstvo 0,1 0,1 0,1 0,2 0,1 0,4
Moč 11,2 13,4 5,7 12,3 10,7 3,4
Tabulka 6
Procento injektované dávky na gram tkáně po 24 hod.
Tkáň Krysa 1 Krysa 2 Krysa 3 Krysa 4 Průměr Stand. Odchylka
Játra 0,7 0,7 0,7 0,7 0,7 0,3
Slezina 7,3 6,9 8,2 5,9 7,1 0,9
Srdce 0,5 0,5 0,5 0,5 0,5 0,4
Ledviny 0,6 0,6 0,5 0,6 0,6 0,6
Plíce 0,6 0,5 0,5 0,6 0,5 0,6
Pokožka 0,1 0,1 0,1 0,1 0,1 0,1
Kost 0,4 0,4 0,4 0,4 0,4 0,3
Svalstvo 0,1 0,1 0,1 0,1 0,1 0,2
Moč* 0,6 0,6 0,3 0,8 0,6 0,2
* % Injektované dávky na ml
Nakonec se srovnávaly lipozomy, obsahující 5 % molárních mPEG2Ooo-c-DS nebo mPEG2Ooo-DSPE a zbytek PHEPC, z hlediska procentuálního množství zbývajícího v krvi v průběhu 24 hodin po podání. Obrázek 4 ukazuje, že jejich farmakokinetika charakterizovaná retencí asi 40 % po 24 hodinách byla prakticky identická.
Všechny publikace, patenty a patentové dokumenty jsou zde zahrnuty ve formě odkazu jako individuálně zahrnuté odkazy. Vynález byl popsán se zřetelem k různým specifickým a výhodným provedením a technikám. Je však třeba chápat, že lze realizovat různé variace a modifikace a přitom zachovat smysl a rozsah vynálezu.
Následující příklady vynález ilustrují, ale nemají za cíl jakkoli jej omezovat.
Příklady provedení vynálezu
PŘÍKLAD 1A
Syntéza mPEG-c-DS (mPEG aminopropandíoldistearoyl; αmethoxy-co-2, 3 13 di (stearoyloxy)propylkarbamátpoly (ethylenoxid) )
Roztok mPEG2OOo (20 g, 10 molů) se azeotropicky sušil v toluenu (50 ml, 120 °C). Když teplota tohoto roztoku dosáhla 25 °C, reagoval s nitrofenylchloroformátem (3,015 g, 15 molů) a pak s TEA (2,01 ml, 15 molů). Tato směs se nechala reagovat jednu a půl hodiny. Sůl TEA se zfiltrovala a rozpouštědlo se odstranilo za vzniku surového mPEG2OOonitrofenylchloroformátu, k němuž se přidal roztok aminopropandiolu (3 g, 30 molů) v acetonitrilu (50 ml). Potom se směs přes noc míchala za teploty místnosti. Nerozpustný podíl se odstranil filtrací a rozpouštědlo se odpařilo. Produkt se dvakrát překrystaloval z izopropanolu. Výtěžek: 13,7 g, 65 %. 1HNMR: (300 MHz, DMSO-D6), δ 3,23 (s,OCH3, 3H) , 3,65 (s, PEG, 180 H), 4,05 (t, urethan CH2, 2H), 4,42 (t, 1°OH, 1H), 4,57 (d, 2°OH, 1H).
Produktový mPEG2000 aminopropandiol (2,3 g, 1,08 mol, 2,17 meq OH) se rozpustil v toluenu (30 ml) a azeotropicky sušil, čímž se odstranilo asi 10 ml roztoku. Rotok se nechal ochladit na pokojovou teplotu. Pipetou se přidal pyridin (4 ml, 20 %)., pak následovalo přidání stearoylchloridu (1 g, 4,3 molu). Ihned se vytvořila bílá sraženina. Reakční směs se zahřívala pod zpětným chladičem:přes noc při 120 °C a nechala vychladnout. Když teplota v reakční nádobě dosáhla asi 40 °C, sůl pyridinu se zfiltrovala. Filtrát se odpařil. Produkt (PEG2Ooo-c-DS) se přečistil dvojnásobným překrystalovánim z izopropanolu (2 x 30 ml) a sušil ve vakuu nad P2O5.
Výtěžek: 2,26 g, 80 %. TLC (chloroform : methanol, 90 : 10): mPEG aminopropandiol Rf = 0,266; PEG-c-DS Rf = 0,533. ^NMR: (300 MHz, DMSO-D6) δ 0,89 (t, CH3, 6H) , 1,26 (s, CH2, 56 H) , 1,50 (2t, 2CH2, 4H) , 2,24 (t, CH2CH2C=O, 4H) , 3,23 (s, OCH3, 3H) , 3,50 (s, PEG, 18OH) , 4,00 (dd, CH2 z APD, 1H) , 4,02 (t, CH2OC=O-N, 2H) , 4,20 (dd, CH2 z APD, 1H) , 4,98 (m, CHOC(O), 1H), 7,34 (m, NH, 1H).
Podobný postup se užil při přípravě mPEG-c-DS za použití mPEG polymerů s relativní molekulovou hmotností 750 5 000 a 12 000. Struktura se ověřovala spektroskopií 1H-NMR a hmotnostní spektrometrií. Relativní molekulové hmotnosti stanovené MALDI (Matrix Assisted Laser Desorption/Ionization) jsou v následující tabulce:
Konj ugát Relativní molekulová hmotnost stanovená MALDI
mPEG(750)-c-DS 1 426
mPEG(2000) -c-DS 2 892
mPEG(5000) -c-DS 5 816
mPEG(12000)-c-DS 12 729
PŘÍKLAD 1B
Syntéza mPEG-c-DS (mPEG aminopropandioldiekosanoyl: amethoxy-co-2,3di (ekosanoyloxy)propylkarbainátpoly(ethylenoxid) )
V baňce s kulatým dnem o obsahu 100 ml se v toluenu (20 ml) rozpustila ekosanová kyselina (500 mg, 1,6 mmolu) a pipetou se přidal oxalylchlorid (147 μΐ, 1,68 mmolů). Do reakční směsi se za míchání přidal 1 % DMF. Po přidání DMF se uvolnil plyn. Je třeba se vyvarovat jakéhokoliv styku s tímto plynem. Po 10 minutách se toluen odpařil a přidalo se dalších 20 ml toluenu a odpařoval se pro odstranění jakéhokoliv nadbytku oxalylchloridu. Zbytek se znovu rozpustil v 10 ml toluenu. K roztoku se přidalo 1,19 g, 0,56 mmolu mPEG aminopropandiolu připraveného jak výše uvedeno, připojil se zpětný chladič a směs se přes noc zahřívala pod zpětným chladičem. Ukončení reakce ukázala analýza pomocí TLC (methanol a chloroform v poměru 9:1). Po ochlazení reakční směsi se nerozpuštěný materiál zfiltroval a filtrát
se vysušil. Produkt se přečistil trojnásobnou rekrystalizací z izopropanolu a sušil ve vakuu nad P2O5. Výtěžek: 1,0 mg, 70 %. 1HNMR: (360 MHz, DMSO-D6) δ 0,89 (t, CH3, 6H) , 1,26 (s, CH2, 66H z lipidu), 1,50 (t, 2CH2, 4H) , 2,24 (t, CH2CH2C=O, 4H) , 3,23 (s, OCH3, 3H) , 3,50 (s, PEG, 180H) , 4,00 (dd, CH2 z APD, 1H) , 4,05 (t, CH2OC=O-N, 2H) , 4,20 (dd, CH2 z APD, 1H), 4,98 (m, CHOC(O), 1H) , 7,34 (m, NH, 1H) ρρπ/
PŘÍKLAD 2 Příprava terc-Bu-O-PEG-aminopropandiolu přěs terc-Bu-O-PEGO-sukcinimid
A. terc-Bu-O-PEG-O-sukcinimid terc-Bu-O-PEG-2000 od firmy Polymer-Labs (10 g, 5 mmolu) se azeotropicky sušil rozpuštěním v 120 ml toluenu a odstraněním asi 20 ml rozpouštědla izolací veškeré obsažené vody v odlučovači Dean Stark.
Roztok se ochladil na pokojovou teplotu a přidal se fosgen (15 ml). Směs se nechala reagovat přes noc při teplotě místnosti. Po ukončení reakce se rozpouštědlo odstranilo v rotační odparce. Přidalo se asi 50 ml čerstvého toluenu, který se odstranil rotační odparkou. Zbytek se rozpustil v suchém toluenu (30 ml) a methylenchloridu (10 ml). K tomuto roztoku se přidaly N-hydroxysukcinimid (1,7 g, 14,8 mmolu) a triethylamin (2,1 ml, 14,9 mmolu) a směs se nechala reagovat přes noc při teplotě místnosti, pak se ukončení reakce potvrdilo TLC.
Sloučenina Rf (CHC13:CH3OH, 90:10)
terc-Bu-O-PEG-OH 0,44
terc-Bu-O-PEG-OSc 0,51
Sůl se zfiltrovala z reakční směsi, rozpouštědlo se odstranilo odpařením a pevná složka se dvakrát překrystalovala z izopropylalkoholu a sušila nad P20s.
Výtěžek: 9,2, 85 %. 1HNMR: (CDC13, 360 MHz) δ 1,25 (g, terč Bu, 9H) , 2,82 (s, CH2CH2, 4H) , 3,60 (s, PEG, 180H) , 4,45 (t CH2OCONH, 2H) ppm.
B. terc-Bu-O-PEG-aminopropandiol
K roztoku aminopropandiolu (300 mg, 3,2 mmolu) v DMF (10 ml) se přidal terc-Bu-PEG-OSc (5 g, 2,29 mmolu) a nechal se reagovat přes noc. Po spotřebě všech esterů NHS vznikla směs vykazující při TLC jedinou skvrnu.
Sloučenina Rf (CHC13:CH3OH, 90:10)
terc-Bu-O-PEG-OSc 0,51
terc-Bu-O-PEG-APD 0,35
K reakční směsi se přidala předem promytá acidická iontoměničova pryskyřice (asi 1 g) a po 30 minutách se odstranila filtrací. Rozpouštědlo se odstranilo a zbytek se překrystaloval z 200 ml izopropylalkoholu. Pevná fáze se shromáždila a vysušila nad P2O5. Výtěžek: 4,2 g, 85 %. 1HNMR: (D6-DMSO, 360 MHz) δ 1,25 (s, terc-Bu, 9H) , 3,68 (s, PEG, 180H), 4,03 (t, CH2OCONH, 2H), 4,43 (t, 1°OH, 1H), 4,55 (d, 2°OH, 1H), 6,98 (t, NH, 1H) ppm.
PŘÍKLAD 3
Příprava p-ni trofenylkarbonát-PEG-c-DS A. Bn-O-PEG-nitrofenylkarbonát (NPC)
Bn-G-PEG-2000 od firmy Shearwater Polymers (Huntsville, LA; 5 g, 2,41 mmolu) se azeotropicky vysušil rozpuštěním v 120 ml toluenu, odstraněním 20 ml rozpouštědla a izolací veškeré vody v odlučovači Dean Stark. Roztok se ochladil na pokojovou teplotu a zbylé rozpouštědlo se odpařilo za sníženého tlaku.
Zbytek se rozpustil v 30 ml směsi methylenchlorid/ethylacetát (60:40) a přidal se pnitrofenylchloroformát (729 mg, 3,6 mmolu) a triethylaminu (1 ml, 7,2 mmolu). Reakce probíhala 8-16 hodin při 4 °c. Tento způsob reakci zpomalí, ale eliminuje vznik bis-PEGkarbonatu. Ukončení reakce se zjistí pomocí skvrny na desce z oxidu křemičitého GF viditelné v ultrafialovém světle.
Reakční směs reagovala s předem přečištěnou acidickou a bazickou iontoměničovou pryskyřicí po dobu 30 minut, potom se zfiltrovala a zcela vysušila. Produkt se překrystaloval z izopropylalkoholu a sušil nad P2O5. Výtěžek: 4,4 g, 80 %
B. Bn-O-PSG-andnopropandiol
K roztoku aminopropandiolu (260 mg, 1,9 mmolu) v DMF (10 ml) se přidal Bn-O-PEG-NPC (připravený jak uvedeno výše) v množství 4,3 g (2,9 mmolu) a nechal se reagovat 5 hodin. Spotřebu veškerého Bn-O-PEG-NPC signalizuje vznik jediné skvrny pri TLC (chloroform:methanol:voda v poměru 90:18·2)
Reakční směs se na 30 minut přivedla do styku s 5 g předčištěné acidické iontoměničové pryskyřice, zfiltrovala a zcela vysušila. Produkt se překrystaloval z izopropylalkoholu a sušil nad P2O5. Výtěžek:3,8 g, 91 %.
G. Bn-O-PEG-c-distearoyl
Roztok Bn-O-PEG-aminopropandiolu (3 g, 1,36 mmolu), stearové kyseliny (1,94 g, 6,79 mmolu) a DPTS (4(dimethylamino)pyridinium-4-toluensulfonátu) jako katalyzátoru (408 mg, 1,36 mmolu) se 20 minut míchal při teplotě místnosti. Diizopropylkarbodiimid (1,28 ml, 8,16 mmolu) se napipetoval a směs se nechala přes noc reagovat. TLC (chloroform:methanol v poměru 90:10) prokázala že diol beze zbytku zreagoval.
K reakční směsi se přidala bazická iontoměničová pryskyřice (asi 5 g). Po 30 minutách třepání se pryskyřice zfiltrovala a filtrát se vysušil. Zbytek se překrystaloval z izopropanolu (100 ml) a sušil nad P2O5. Výtěžek: 4 g, 80 %
D. HO-PEG-c-distearoyl
K sejmutí ochranné benzylové skupiny Bn-O-PEG-c-DS se použilo dvou rozdílných přístupů.
Způsob 1. Hydrogenolýza: sejmutí ochranné skupiny palladiem na uhlíku.
K roztoku Bn-O-PEG-c-DS (218 mg, 0,08 mmolu) v 5 ml methanolu se přidalo 10 % Pd/C (110 mg) a mravenčan amonný (107 mg, 0,8 mmolu) a směs se nechala reagovat přes noc při teplotě místnosti. Pd/C se odstranilo filtrací přes Celíte® a filtrát se vysušil. Zbytek se rozpustil v chloroformu a třikrát promyl nasyceným roztokem NaCl. Chloroformová fáze se shromáždila, vysušila MgSO4, zfiltrovala a zahustila. Pevný zbytek se lyofilizoval z terc-BuOH a výsledný prášek se vysušil nad P2O5. Výtěžek: 80 %, 175 mg.
Způsob 2. Sejmutí ochranné skupiny chloridem titaničitým.
Roztok Bn-O-PEG-c-DS (1,18 g, 0,43 mmolu) v methylenchloridu (10 ml) se během 5 minut ochladil v ledové lázni. Do uzavřené reakční kádinky se injekční stříkačkou vysušenou v pícce vnesl chlorid titaničitý (3 ml, 21,5 mol, nadbytek). Po 5 minutách se ledová lázeň odstranila a reakce sejmutí ochranné skupiny proběhla přes noc při teplotě místnosti. Její úplné ukončení ukáže níže posunutá skvrna (oproti výchozímu materiálu) na desce TLC z GF oxidu křemičitého.
Do reakční směsi se přidalo asi 40 ml chloroformu a směs se přenesla do děličky obsahující 40 ml nasyceného NaHCO3. Směs se jemně třepala (aby nevznikla emulze) a chloroformová vrstva se shromáždila. Tato reakce se třikrát opakovala a chloroformová fáze se spojila a ještě jednou extrahovala novou dávkou nasyceného roztoku NaHCO3, aby se zajistilo plné odstranění TiCl4. Spojená chloroformová fáze
se susila MgSO4, zfiltrovala a zahustila.
Získaný zbytek se rozpustil v 1 ml chloroformu a vnesl do připravené kolony naplněné silikagelem (200-400 mesh, 60 AngstrÓmů). Polarita mobilní fáze (chloroform) se zvyšovala opakovaným přidáváním 2 % methanolu až byl produkt eluován mobilní fázi ve složení 10 % methanolu/90 % chloroformu. Produkt se spojil a rozpouštědlo se odstranilo rotační odparkou. Pevná fáze se lyofilizovala z terc-BuOH a sušila nad P2O5. Výtěžek 70 %, 800 mg.
E. p-Ni trofenylkarbonát-PEG-c-DS
Reakční baňka, tyčinka na míchání, injekční stříkačka a výchozí materiál (HO-PEG-c-DS připravený výše) se před započetím reakce pečlivě vysušily.
K roztoku HO-PEG-c-DS (1,2 g, 0,45 mmolu) v 10 ml směsi methylenchlorid/ethylacetát (60:40) se přidaly pnitrofenylkarbonát (136 mg, 0,65 mmolu) a triethylamin (188 μΐ, 1,35 mmolu). Reakce probíhala 8-16 hodin při teplotě 4 °C (aby nevznikl bis-PEG-karbonát) a pak se ukončení reakce prokázalo pomocí TLC s GF silikagelem.
Sloučenina Rf (CHC13:CH3OH, 90:10)
HO-PEG-c-DS 0,40
NPC-PEG-c-DS 0,54
Reakční směs byla 30 minut v kontaktu s předčištěnou acidickou a bazickou iontomenicovou pryskyřicí a pak se zfiltrovala. Filtrát se zcela vysušil a zbytek se překrystalizoval z izopropylalkoholu. Pevná fáze se sušila nad P2O5. Výtěžek: 70 %. 1HNMR: (D6-DMSO, 360 MHz) δ 0,86 (t, CH3, 6H) , 1,22 (s, DS, 56H) , 1,48 (m, CH2CH2 (CO) ) , 4H) , 2,26 (2 xt, CH20C0NH, 2H) , 4,03 & 4,22 (2 xd, CH2CH z lipidu, 2H) , 4,97 (M, CHCH2 z lipidu), 6,98 (t, NH, 1H) , 7,55 % 8,32 (2xd, aromatický, 4H) ppm.
PŘÍKLAD 4
Studie přípravy a biodstribuce lipozomů obsahujících PEG-DSPE- a PEG-c-DS.
Lipidove filmy se vytvářely rozpuštěním v rozpouštědle a odstraněním rozpouštědla ze směsí HSPC: Choi: PEG lipid v následujících poměrech:
A: 58:39:3; PEG lipid = PEG-c-DS
B: 57:38:5; PEG lipid = PEG-DSPE
C: 57:38:5; PEG lipid = PEG-c-DS
Filmy se hydrát ovály v čerstvě připraveném 12SItyraminylinulinu obsaženém v 25 ml HEPES s přídavkem 140 mM NaCl pri pH 7,4, načež se lipozomy vytlačovaly do konečného tvaru o průměru 100-105 nm. Lipozomy se sterilizovaly filtraci pres filtry v ústí injekčních stříkaček s nízkou afinitou k bílkovinám z materiálu Milipore (firma Milipore Corporation, Bedford, MA) s velikostí pórů 0,22 gm. Ve vzorcích se zjistil počet impulzů 125I v injekci. Koncentrace lipidů se stanovily zjišťováním obsahu fosfátu v lipozomóvých preparátech a lipozompvé preparáty se zředily ve sterilním .pufru na finální koncentraci 2,5 gmol/ml. Myši dostaly intravenózní injekci dávky 0,2 ml zředěných lipozomů do ocasní žíly, takže každá myš dostala 0,5 gmol fosfolipidu. V různých časových intervalech byly jednotlivé myši anesteticky usmrceny halothanem, následovala cervikální dislokace, odebrání vzorků krve ze srdce a testování krve a různých orgánů pomocí impulzů 125I.

Claims (24)

1. Lipozomová kompozice, vyznačující se tím, že obsahuje od asi 1 molárního procenta do asi 10 molárních procent neutrálního lipopolymeru vzorce:
kde
R i R představují alkylový nebo alkenylový řetězec s asi 8 až asi 24 uhlíkovými atomy;
n je mezi asi 10 a asi 300,
Z se vybere ze skupiny substituentů, kterou tvoří hydroxy, alkoxy, benzyloxy, ester karboxylové kyseliny, ester sulfonové kyseliny, alkyl nebo arylkarbonát, amino a alkylamino; a
L se vybere ze skupiny, kterou tvoří (i) -X-(C=O)-YCH2-, (ii)-X-(C=O)- a (iii) -X-CH2-, kde X a Y se nezávisle vyberou z kyslíku, NH a přímé vazby, za předpokladu, že L je -X-(C=O)- a X není NH;
a zbytek jsou lipidy tvořící váčky.
2. Kompozice podle nároku 1, vyznačující se tím, že X je kyslík a Y je dusík.
3. Kompozice podle nároku 1, vyznačuj í c í se tím, že L je karbamátova, esterová nebo karbonátová vazba.
4. Kompozice podle nároku 3, vyznačuj ící se tím, že L je -O-(C=O)-NH-CH2- (karbamátová vazba).
• · · · · ·
22 J...: * ’ *·.
5. Kompozice podle nároku 1,vyznačující se tím, ze Z je hydroxy nebo methoxyskupina.
6. Kompozice podle nároku 1, vyznačující se tím, že dále obsahuje asi 3 molární procenta až asi 6 molárních procent neutrálního liopopolymeru.
7. Kompozice podle nároku 1, vyznačuj ící se tím, že R i R2 představuj í nerozvětvený alkylovy nebo alkenylový řetězec s asi 8 až asi 24 uhlíkovými atomy.
8. Kompozice podle nároku 6, vyznačující se tím, že R1 i R2 představují C17H35.
9. Kompozice podle nároku 1, vyznačující se tím, že n je mezi asi 20 až asi 115.
10. Způsob prodloužení oběhové doby lipozomu obsahujícího lipidy tvořící váčky, vyznačuj ící se tím, že tento způsob zahrnuje:
vneseni do uvedeneho lipozomu obsahujícího lipidy tvořící vačky asi 1 molární procento až asi 10 molárních procent neutrálního lipopolymeru se vzorcem:
přičemž:
R1 i R2 představují alkylovy nebo alkenylový řetězec s asi 8 až asi 24 uhlíkovými atomy;
n je mezi asi 10 a asi 300,
Z se vybere ze skupiny substituentů, kterou tvoří hydroxy, alkoxy, benzyloxy, ester karboxylové kyseliny, ester sulfonové kyseliny, alkyl nebo arylkarbonát, amino a alkylamino; a
L se vybere ze skupiny, kterou tvoří (i) -χ-(c=0)-YCH2—, (ii)-X-(C=0)- a (iii) -X-CH2-, kde X a Y se nezávisle vyberou z kyslíku, NH a přímé vazby, za předpokladu, že L je -X-(C=0)- a X není NH.
11. Způsob podle nároku 10,vyznačující se tím, žeXje kyslík a Y je dusík.
12. Způsob podle nároku 10,vyznačující se tím, ze L je karbamátová, esterová nebo karbonátová vazba.
13. Způsob podle nároku 12,vyznačující se tím, že L je -O- (C=O) -NH-CH2- (karbamátová vazba).
14. Způsob podle nároku 10,vyznačující se tím, žeZje hydroxy nebo methoxyskupina.
15. Způsob podle nároku 10, vyznačuj í c í se t í m, že se vnese asi 3 molární procenta až asi 6 molárních procent neutrálního lipopolymeru.
16. Způsob podle nároku 10, vyznačuj í c í se t í m, že n je mezi asi 20 a asi 115 .
17. Neutrální lipopolymer se vzorcem:
kde n
1 · 2 v ,
R IR představuj i alkylovy nebo alkenylový řetězec s asi 8 až asi 24 uhlíkovými atomy;
n je mezi asi 10 a asi 300,
Z se vybere ze skupiny substituentů, kterou tvoří hydroxy, alkoxy, benzyloxy, ester karboxylové kyseliny, ester sulfonové kyseliny, alkyl nebo arylkarbonát, amino a alkylamino; a
L se vybere ze skupiny, kterou tvoří (i) -x-(C=O)-YCH2“, (ii) -X- (C=O) - a (iii) -X-CH2-, kde X a Y se nezávisle vyberou z kyslíku, NH a přímé vazby, za předpokladu, že L je -X-(C=O)- a X není NH.
18. Lipopolymer podle nároku 17, ve kterém X je kyslík a Y je dusík.
19. Lipopolymer podle nároku 17, ve kterém L je karbamátová, esterová nebo karbonátová vazba.
20. Lipopolymer podle nároku 19, ve kterém L je -O(C=O)-NH-CH2- (karbamátová vazba).
21. Lipopolymer podle nároku 17, ve kterém R1 i R2 představují nerozvětvený alkylový nebo alkenylový řetězec s asi 8 až asi 24 uhlíkovými atomy.
22. Lipopolymer podle nároku 21, ve kterém R1 i R2 představuj í C17H35.
23. Lipopolymer podle nároku 17, ve kterém Z je hydroxy nebo methoxyskupina.
24. Lipopolymer podle nároku 17, ve kterém n je mezi asi 20 a asi 115.
CZ2002140A 1999-07-14 2000-07-12 Neutrální lipopolymer a lipozomové kompozice, které jej obsahují CZ2002140A3 (cs)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US14381099P 1999-07-14 1999-07-14

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CZ2002140A3 true CZ2002140A3 (cs) 2002-05-15

Family

ID=22505748

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ2002140A CZ2002140A3 (cs) 1999-07-14 2000-07-12 Neutrální lipopolymer a lipozomové kompozice, které jej obsahují

Country Status (24)

Country Link
US (1) US6586001B1 (cs)
EP (1) EP1198490B1 (cs)
JP (1) JP2003505401A (cs)
KR (2) KR100758158B1 (cs)
CN (1) CN1193059C (cs)
AT (1) ATE317869T1 (cs)
AU (1) AU769517B2 (cs)
BR (1) BR0012443A (cs)
CA (1) CA2379060A1 (cs)
CY (1) CY1105466T1 (cs)
CZ (1) CZ2002140A3 (cs)
DE (1) DE60026030T2 (cs)
DK (1) DK1198490T3 (cs)
ES (1) ES2255501T3 (cs)
HK (1) HK1048484B (cs)
HU (1) HUP0202177A3 (cs)
IL (2) IL147564A0 (cs)
MX (1) MXPA02000402A (cs)
NO (1) NO20020175L (cs)
PL (1) PL352711A1 (cs)
PT (1) PT1198490E (cs)
RU (1) RU2250911C2 (cs)
WO (1) WO2001005873A1 (cs)
ZA (1) ZA200200303B (cs)

Families Citing this family (71)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP4623931B2 (ja) * 2000-12-07 2011-02-02 エンセラデュス、ファーマシューティカルズ、ベスローテン、フェンノートシャップ 炎症性疾患の治療用組成物
WO2002087541A1 (en) * 2001-04-30 2002-11-07 Protiva Biotherapeutics Inc. Lipid-based formulations for gene transfer
WO2003103594A2 (en) 2002-06-07 2003-12-18 Rutgers, The State University Micelle assemblies
EP1519714B1 (en) 2002-06-28 2010-10-20 Protiva Biotherapeutics Inc. Method and apparatus for producing liposomes
WO2004078121A2 (en) * 2003-02-28 2004-09-16 Alza Coporation Liposome composition for reduction of liposome-induced complement activation
CN100379404C (zh) * 2003-02-28 2008-04-09 阿尔扎公司 用于减少脂质体诱导的补体激活的脂质体组合物
WO2004087097A2 (en) * 2003-03-31 2004-10-14 Yissum Research Development Company Of The Hebrew University Of Jerusalem Stable liposomes or micelles comprising a sphinolipid and a peg-lipopolymer
PT1633440E (pt) * 2003-04-15 2008-08-25 Opperbas Holding Bv Composição farmacêutica que compreende proteínas e/ou polipéptidos e partículas coloidais
US7947261B2 (en) 2003-05-23 2011-05-24 Nektar Therapeutics Conjugates formed from polymer derivatives having particular atom arrangements
PT2644206T (pt) * 2003-05-23 2019-07-10 Nektar Therapeutics Derivados de peg contendo duas cadeias de peg
EP1628637A2 (en) * 2003-05-30 2006-03-01 Alza Corporation Method of pulmonary administration of an agent
AU2004257373B2 (en) 2003-07-16 2011-03-24 Arbutus Biopharma Corporation Lipid encapsulated interfering RNA
CN1882693B (zh) 2003-09-15 2012-08-15 普洛体维生物治疗公司 聚乙二醇修饰的脂质化合物及其应用
US20050175683A1 (en) * 2003-10-24 2005-08-11 Yuanpeng Zhang Preparation of lipid particles
JP2007520481A (ja) * 2004-01-15 2007-07-26 アルザ・コーポレーシヨン 治療薬を送達するためのリポソーム組成物
CA2569664C (en) 2004-06-07 2013-07-16 Protiva Biotherapeutics, Inc. Lipid encapsulated interfering rna
TW200618820A (en) * 2004-11-05 2006-06-16 Alza Corp Liposome formulations of boronic acid compounds
AU2005303389A1 (en) * 2004-11-15 2006-05-18 Yissum Research Development Company Of The Hebrew University Of Jerusalem Combination therapy associating preferably a ceramide with a cytotoxic drug
WO2007005754A2 (en) * 2005-07-01 2007-01-11 Alza Corporation Liposomal delivery vehicle for hydrophobic drugs
US8591457B2 (en) 2005-08-10 2013-11-26 Alza Corporation Method for making a needle-free jet injection drug delivery device
CA3144493A1 (en) 2006-10-03 2008-04-10 Arbutus Biopharma Corporation Lipid containing formulations
MX2009005780A (es) * 2006-11-30 2009-06-10 Nektar Therapeutics Al Corp Metodo para preparar un conjugado de polimeros.
EP2119738B1 (en) * 2007-02-05 2014-04-16 Nippon Shinyaku Co., Ltd. Polyethylene glycol derivative
JP5415283B2 (ja) 2007-02-07 2014-02-12 グラダリス インク. シアル酸産生を調節し、遺伝性封入体ミオパチーを治療する方法及び組成物
US20110097720A1 (en) * 2008-01-02 2011-04-28 Alnylam Pharmaceuticals, Inc. Screening method for selected amino lipid-containing compositions
EP2279254B1 (en) 2008-04-15 2017-07-05 Protiva Biotherapeutics Inc. Novel lipid formulations for nucleic acid delivery
KR100967833B1 (ko) 2008-05-20 2010-07-05 아이디비켐(주) 고순도의 폴리에틸렌글리콜 알데하이드 유도체의 제조방법
WO2010042823A1 (en) 2008-10-09 2010-04-15 Northeastern Universtiy Multifunctional self-assembling polymeric nanosystems
US20120035247A1 (en) 2009-03-19 2012-02-09 Merck Sharp & Dohme Corp. RNA Interference Mediated Inhibition of Signal Transducer and Activator of Transcription 6 (STAT6) Gene Expression Using Short Interfering Nucleic Acid (siNA)
US20120029054A1 (en) 2009-03-19 2012-02-02 Merck Sharp & Dohme Corp. RNA Interference Mediated Inhibition of GATA Binding Protein 3 (GATA3) Gene Expression Using Short Intefering Nucleic Acid (siNA)
JP2012520683A (ja) 2009-03-19 2012-09-10 メルク・シャープ・エンド・ドーム・コーポレイション 低分子干渉核酸(siNA)を用いた結合組織増殖因子(CTGF)遺伝子発現のRNA干渉媒介性阻害
AU2010226604A1 (en) 2009-03-19 2011-10-13 Merck Sharp & Dohme Corp. RNA interference mediated inhibition of BTB and CNC homology 1, basic leucine zipper transcription factor 1 (Bach 1) gene expression using short interfering nucleic acid (siNA) sequence listing
US20120010272A1 (en) 2009-03-27 2012-01-12 Merck Sharp & Dohme Corp. RNA Interference Mediated Inhibition of Apoptosis Signal-Regulating Kinase 1 (ASK1) Gene Expression Using Short Interfering Nucleic Acid (siNA)
US20120022142A1 (en) 2009-03-27 2012-01-26 Merck Sharp & Dohme Corp. RNA Interference Mediated Inhibition of Signal Transducer and Activator of Transcription 1 (STAT1) Gene Expression Using Short Interfering Nucleic Acid (siNA)
EP2411517A2 (en) 2009-03-27 2012-02-01 Merck Sharp&Dohme Corp. RNA INTERFERENCE MEDIATED INHIBITION OF THE INTERCELLULAR ADHESION MOLECULE 1 (ICAM-1)GENE EXPRESSION USING SHORT INTERFERING NUCLEIC ACID (siNA)
WO2010111490A2 (en) 2009-03-27 2010-09-30 Merck Sharp & Dohme Corp. RNA INTERFERENCE MEDIATED INHIBITION OF THE THYMIC STROMAL LYMPHOPOIETIN (TSLP) GENE EXPRESSION USING SHORT INTERFERING NUCLEIC ACID (siNA)
WO2010111468A2 (en) 2009-03-27 2010-09-30 Merck Sharp & Dohme Corp. RNA INTERFERENCE MEDIATED INHIBITION OF THE NERVE GROWTH FACTOR BETA CHAIN (NGFß) GENE EXPRESSION USING SHORT INTERFERING NUCLEIC ACID (SINA)
US9018187B2 (en) 2009-07-01 2015-04-28 Protiva Biotherapeutics, Inc. Cationic lipids and methods for the delivery of therapeutic agents
ES2613498T3 (es) 2009-07-01 2017-05-24 Protiva Biotherapeutics Inc. Nuevas formulaciones de lípidos para el suministro de agentes terapéuticos a tumores sólidos
US8569256B2 (en) 2009-07-01 2013-10-29 Protiva Biotherapeutics, Inc. Cationic lipids and methods for the delivery of therapeutic agents
JP5605760B2 (ja) * 2010-01-18 2014-10-15 セイコーエプソン株式会社 吐出用液体、生体試料の吐出方法、及び化合物
US9006417B2 (en) 2010-06-30 2015-04-14 Protiva Biotherapeutics, Inc. Non-liposomal systems for nucleic acid delivery
CN103068980B (zh) 2010-08-02 2017-04-05 瑟纳治疗公司 使用短干扰核酸(siNA)的RNA干扰介导的联蛋白(钙粘蛋白关联蛋白质),β1(CTNNB1)基因表达的抑制
RU2745848C2 (ru) 2010-08-17 2021-04-01 Сирна Терапьютикс, Инк. ОПОСРЕДУЕМОЕ РНК-ИНТЕРФЕРЕНЦИЕЙ ИНГИБИРОВАНИЕ ЭКСПРЕССИИ ГЕНОВ ВИРУСА ГЕПАТИТА B (HBV) С ПРИМЕНЕНИЕМ МАЛОЙ ИНТЕРФЕРИРУЮЩЕЙ НУКЛЕИНОВОЙ КИСЛОТЫ (миНК)
JP6106085B2 (ja) 2010-08-24 2017-03-29 サーナ・セラピューティクス・インコーポレイテッドSirna Therapeutics,Inc. 内部非核酸スペーサーを含む一本鎖RNAi剤
WO2012027467A1 (en) 2010-08-26 2012-03-01 Merck Sharp & Dohme Corp. RNA INTERFERENCE MEDIATED INHIBITION OF PROLYL HYDROXYLASE DOMAIN 2 (PHD2) GENE EXPRESSION USING SHORT INTERFERING NUCLEIC ACID (siNA)
WO2012058210A1 (en) 2010-10-29 2012-05-03 Merck Sharp & Dohme Corp. RNA INTERFERENCE MEDIATED INHIBITION OF GENE EXPRESSION USING SHORT INTERFERING NUCLEIC ACIDS (siNA)
US9999673B2 (en) * 2011-01-11 2018-06-19 Alnylam Pharmaceuticals, Inc. PEGylated lipids and their use for drug delivery
US8846850B2 (en) 2011-02-22 2014-09-30 Rutgers, The State University Of New Jersey Amphiphilic macromolecules for nucleic acid delivery
US8785660B2 (en) * 2011-03-29 2014-07-22 Nof Corporation Polyoxyalkylene-modified lipid and method for producing the same
JP6051758B2 (ja) 2011-10-17 2016-12-27 日油株式会社 ジアシルグリセロールと結合した分岐型ポリエチレングリコール、その製造方法およびポリエチレングリコール修飾リポソーム
US9434681B2 (en) 2012-06-15 2016-09-06 Rutgers, The State University Of New Jersey Macromolecules for treating atherosclerosis
WO2015195563A1 (en) 2014-06-16 2015-12-23 Rutgers, The State University Of New Jersey Antibacterial agents
US9630905B2 (en) 2014-09-08 2017-04-25 Rutgers, The State University Of New Jersey Amphiphilic macromolecules and methods of use thereof
GB201417589D0 (en) 2014-10-06 2014-11-19 Cantab Biopharmaceuticals Patents Ltd Pharmaceutical Formulations
GB201518171D0 (en) 2015-10-14 2015-11-25 Cantab Biopharmaceuticals Patents Ltd Colloidal particles for topical administration with therapeutic agent
GB201518170D0 (en) 2015-10-14 2015-11-25 Cantab Biopharmaceuticals Patents Ltd Colloidal particles for subcutaneous administration with intravenous administration of therapeutic agent
GB201518172D0 (en) 2015-10-14 2015-11-25 Cantab Biopharmaceuticals Patents Ltd Colloidal particles for use in medicine
WO2017165836A1 (en) 2016-03-24 2017-09-28 Rutgers, The State University Of New Jersey Antibacterial agents
SG10201914108RA (en) 2016-08-05 2020-02-27 Rutgers The State University Of New Jersey Thermocleavable friction modifiers and methods thereof
CN117098541A (zh) 2020-11-25 2023-11-21 阿卡格拉医药公司 用于递送核酸的脂质纳米粒及相关使用方法
CN115521603B (zh) * 2021-06-24 2026-03-10 复旦大学 一种可原位相转变形成凝胶的组合物及其用途
GB202111758D0 (en) 2021-08-17 2021-09-29 Cantab Biopharmaceuticals Patents Ltd Modified colloidal particles for use in the treatment of haemophilia A
GB202111759D0 (en) 2021-08-17 2021-09-29 Cantab Biopharmaceuticals Patents Ltd Modified colloidal particles
GB202111757D0 (en) 2021-08-17 2021-09-29 Cantab Biopharmaceuticals Patents Ltd Modified colloidal particles for use in the treatment of haemophilia A
US20230241118A1 (en) 2021-10-20 2023-08-03 University Of Rochester Rejuvenation treatment of age-related white matter loss
WO2023230587A2 (en) 2022-05-25 2023-11-30 Akagera Medicines, Inc. Lipid nanoparticles for delivery of nucleic acids and methods of use thereof
EP4658294A2 (en) 2023-02-02 2025-12-10 University of Rochester Competitive replacement of glial cells
JP2026520816A (ja) 2023-04-19 2026-06-25 グラダリス,インコーポレイティド シアル酸産生を調節して遺伝性封入体ミオパチー(hibm)を治療するための組成物及び方法
WO2025090427A1 (en) 2023-10-23 2025-05-01 University Of Rochester Glial-targeted relief of hyperexcitability in neurodegenerative diseases
WO2026112426A1 (en) 2024-11-25 2026-05-28 Gradalis, Inc. Composition and method for treating cancer with chromosome translocation fusion

Family Cites Families (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2694893A1 (fr) * 1992-08-03 1994-02-25 Oreal Composition formée d'une dispersion aqueuse de vésicules de lipides amphiphiles non-ioniques stabilisées.
US5741518A (en) 1992-08-03 1998-04-21 L'oreal Composition composed of an aqueous dispersion of stabilized vesicles of nonionic amphiphilic lipids
WO1995025764A1 (en) 1994-03-23 1995-09-28 Meiji Seika Kabushiki Kaisha Double-stranded derivative of polyoxyethylene-containing lipid
US5820873A (en) * 1994-09-30 1998-10-13 The University Of British Columbia Polyethylene glycol modified ceramide lipids and liposome uses thereof
RU2123328C1 (ru) * 1996-04-19 1998-12-20 Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" Липосомальное противовирусное лекарственное средство для перорального применения
TW520297B (en) * 1996-10-11 2003-02-11 Sequus Pharm Inc Fusogenic liposome composition and method
DE69735292T2 (de) * 1996-10-25 2006-10-19 Gilead Sciences, Inc., Foster City Gefaesszellen wachstumsfaktor (vegf) nukleinsäureligand-komplexe

Also Published As

Publication number Publication date
KR20070086708A (ko) 2007-08-27
HUP0202177A2 (hu) 2002-12-28
CA2379060A1 (en) 2001-01-25
KR100758158B1 (ko) 2007-09-12
MXPA02000402A (es) 2002-07-30
DE60026030T2 (de) 2006-08-10
JP2003505401A (ja) 2003-02-12
ES2255501T3 (es) 2006-07-01
HUP0202177A3 (en) 2004-05-28
KR20020012008A (ko) 2002-02-09
US6586001B1 (en) 2003-07-01
BR0012443A (pt) 2002-04-02
WO2001005873A1 (en) 2001-01-25
EP1198490A1 (en) 2002-04-24
CN1360611A (zh) 2002-07-24
ATE317869T1 (de) 2006-03-15
DK1198490T3 (da) 2006-06-19
PL352711A1 (en) 2003-09-08
DE60026030D1 (de) 2006-04-20
HK1048484B (zh) 2005-10-14
EP1198490B1 (en) 2006-02-15
NO20020175D0 (no) 2002-01-14
PT1198490E (pt) 2006-06-30
CN1193059C (zh) 2005-03-16
IL147564A0 (en) 2002-08-14
AU769517B2 (en) 2004-01-29
HK1048484A1 (en) 2003-04-04
NO20020175L (no) 2002-01-14
IL147564A (en) 2007-03-08
ZA200200303B (en) 2003-03-26
CY1105466T1 (el) 2010-04-28
AU5930300A (en) 2001-02-05
RU2250911C2 (ru) 2005-04-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US6586001B1 (en) Neutral lipopolymer and liposomal compositions containing same
US5820873A (en) Polyethylene glycol modified ceramide lipids and liposome uses thereof
KR101168440B1 (ko) 지질 캡슐화된 간섭 rna
CN107406396A (zh) 阳离子性脂质
WO2022235972A1 (en) Lipid compositions comprising peptide-lipid conjugates
EP4201400A1 (en) Lipid nanoparticle
ZA200202726B (en) Neutral-cationic lipid for nucleic acid and drug delivery.
CA3219056A1 (en) Peptide-lipid conjugates
JPWO2003082882A1 (ja) リン脂質誘導体
US20040213835A1 (en) Method to reduce liposome-induced complement activation
CN117534585B (zh) 一种可电离阳离子脂质化合物及其制备方法与应用
DE10065561A1 (de) Tetraetherlipidderivate und Tetraetherlipidderivate enthaltende Liposomen und Lipidagglomerate sowie deren Verwendung
US7524981B2 (en) Phospholipid derivatives and process for the production there
CN119019272A (zh) 可电离脂质、包含其的组合物及其用途
Fan et al. Enhanced brain targeting of tegafur using novel lactyl cholesterol liposome as a carrier