CZ291013B6 - Modifikované polypeptidy vykazující zvýąenou imunogenitu - Google Patents

Modifikované polypeptidy vykazující zvýąenou imunogenitu Download PDF

Info

Publication number
CZ291013B6
CZ291013B6 CZ19973378A CZ337897A CZ291013B6 CZ 291013 B6 CZ291013 B6 CZ 291013B6 CZ 19973378 A CZ19973378 A CZ 19973378A CZ 337897 A CZ337897 A CZ 337897A CZ 291013 B6 CZ291013 B6 CZ 291013B6
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
polypeptide
recombinant
vector
csp
antigen
Prior art date
Application number
CZ19973378A
Other languages
English (en)
Other versions
CZ337897A3 (cs
Inventor
Nicolas Joseph Fasel
Christophe Dominique Reymond
Original Assignee
Rmf Dictagene S. A.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Rmf Dictagene S. A. filed Critical Rmf Dictagene S. A.
Publication of CZ337897A3 publication Critical patent/CZ337897A3/cs
Publication of CZ291013B6 publication Critical patent/CZ291013B6/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/44Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from protozoa
    • C07K14/445Plasmodium
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04Antibacterial agents
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P37/00Drugs for immunological or allergic disorders
    • A61P37/02Immunomodulators
    • A61P37/04Immunostimulants
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02ATECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Popisuje se rekombinantn polypeptid, vykazuj c zv² enou imunogenicitu a obsahuj c glykosylfosfatidylinositolovou strukturu. Polypeptidem je nap° klad antigen, jako je polypeptid parazita, zejm na polypeptid z Plasmodium falciparum, jako je protein cirkumsporozoit (CSP). D le se popisuje rekombinantn DNK vektor vhodn² pro expresi polypeptidu, zp soby vyvol n imunitn odpov di proti jednomu nebo v ce epitop polypeptidu a zp soby produkce modifikovan²ch polypeptidov²ch vakc n, kter obsahuj polypeptid.\

Description

N O
Modifikované polypeptidy vykazující zvýšenou imunogenitu
Oblast techniky
Vynález se týká modifikovaných polypeptidů vykazujících zvýšenou imunogenitu, zvláště polypeptidu, které se modifikovaly lipidovou strukturou. Vynález zvláště popisuje polypeptidy parazitů, které se modifikovaly lipidovou strukturou, a přesněji protein cirkumsporozoit Plastmodium falciparum. Vynález se dále týká způsobu vyvolání imunní odezvy proti modifikovaným polypeptidům, způsobu, vektoru a hostitele, které jsou vhodné pro produkci polypeptidů, a vakcín, jenž obsahují tyto polypeptidy.
Dosavadní stav techniky
Imunitní systém je komplex a není zcela pochopen. Způsob, kterým hostitelský imunitní systém rozeznává cizorodý imunogen, je vysvětlen pouze z části. U savců, jestliže se vystaví působení cizorodých proteinů, je imunitní odezva značně různorodá. Středem zájmu je proto libovolná metoda přípravy polypeptidů se zvýšenou imunogenitou. Tímto způsobem se dá překovat problém slabě imunogenních epitopů.
Jedním způsobem, jak zdokonalit vakcinaci pomocí rekombinantních proteinů, je produkce více epitopů z více jak jednoho proteinu, který pochází z jednoho nebo více infekčních agens. Tento přístup umožňuje získat levnější polyvalentní, účinnější vakcíny, které umožňují jednodušší a bezpečnější imunizační režim. Avšak takový přístup vyžaduje, že každý polypeptid se produkuje v dostatečném množství, specifický protokol pro čištění každého peptidu, který se používá k imunizaci, zabezpečení optimálního množství peptidu. Účelem imunizace je najít přístupy, kde se vyvolá silná imunitní odezva proti specifickým epitopům, zatímco imunigeny mají nízkou kvalitu nebo jsou ve směsi jiných polypeptidů, jak se může pozorovat v určitých situacích in vivo.
Nejčastěji se vyskytující kauzativní agens malárie je Plasmodium falciparum, který se nachází v různých formách ve hmyzích a lidských hostitelích. Při použití inaktivních forem parazitů jako vakcín určených pro savce se získaly slibné výsledky. Hlavní omezení však je skutečnost, že sporozitv není možné kultivovat a musí se izolovat ze slinných žláz komárů. Za účelem získat ochranu se vylučuje použití inaktivovaného parazita jako takového.
Z důvodu obejít tento problém se exprimovaly v heterologních rekombinantních systémech geny kódující specifické proteiny různých forem Plasmodia. Tyto proteiny se s omezeným úspěchem použily jako potenciální ochranný agens hostitele. V jiném případě se v imunizační studii využily peptidy, které odpovídají definovaným oblastem antigenů, což vykazuje jistá omezení v případě takových imunizací. Protein cirkumsporozoit (CSP) je jeden z antigenů, které jsou přítomny na povrchu sporozit Plasmodium falciparum, které se do organizmu dostávají hmyzím štípnutím. Tento protein se syntetizuje jako prekurzor polypeptidu, kteiý se skládá z odstranitelné signální sekvence N-konce, z velké centrální repetice, která je na obou stranách lemována oblastmi, zde označenými jako oblast I a oblast II, a která obsahuje sekvence, jež jsou u různých druhů Plasmodia konzervativní, a zhydrofóbní domény C-konce. Opakující se doména NANP se skládá z tandemové repetice klastru aminokyselin asparagin-alanin-asparagin-prolin ((ASN-ALA-ASN-PRO)n). Ukázalo se, že jde o účinný epitop CSP P. Falciparum, na který reagují B-buňky. Syntetické peptidy, obsahující takovou repetici, se používají s omezeným úspěchem jako podjednotky vakcíny v imunizační studii. Mapovaly se elementy odezvy T-buněk na CSP protein vně segmentů repetice. V každém experimentu se pro imunizaci použilo velké množství čištěných antigenů.
-1 CZ 291013 B6
Podstata vynálezu
Předmětem vynálezu je poskytnout modifikované proteiny, jako jsou proteiny Plasmodium falciparum, které mohou vyvolat silnou imunitní odezvu i v případě, že antigeny parazity nejsou čištěny. Tento přístup je zajímavý z hlediska dalšího vývoje vakcín obsahujících celé buňky, které umožňují levnější ale účinnější imunizační režimy.
Zjistilo se, podle vynálezu, že antigen, k němuž se přidá glykosylfosfatidylinositolová kotva (GPI) vyvolá vyšší imunitní odezvu, než odpovídající antigen bez kotvy.
Vynález tedy poskytuje rekombinantní polypeptidy vykazující zvýšenou imunogenitu, obsahující glykosylfosfatidylinositolovou struktur, která slouží k vyvolání zvýšené imunitní odezvy ve srovnání s odpovídajícími polypeptidy bez kotvy. Polypeptidem může být antigen, přednost se dává antigenů parazita, jako je antigen Plasmodium falciparum podobný proteinu cirkumsporozoit Plasmodium falciparum (CSP) nebo jeho modifikovaná verze.
V popisu a v patentových nárocích používaný termín „nebo jeho modifikovaná verze“ znamená inkorporaci libovolného derivátu proteinu cirkumsporozoit, který vykazuje dostatečnou imunogenitu, aby došlo k vyvolání imunitní odezvy. Do toho termínu se zahrnují ne pouze celé proteiny, ale také fragmenty nebo jejich mutované verze.
Vynález se zde popisuje jako CSP protein Plasmodia falciparum. Avšak vynález není omezen pouze na tento antigen. Pro odborníka je jednoduché nahradit CSP jinými požadovatelnými antigeny, a tak získat výhodu vynálezu bez nutných experimentů.
Exprese CSP se dosáhlo v heterologních rekombinantních systémech (E. coli, kvasinky, virus Vaccinia, bakulovirus, Salmonella, Dystyostelium discoidem.). Zjistilo se, že druhy slizovky Distyostelium se mohou použít jako účinný eukaryotní expresní systém pro produkci rekombinantních proteinů. Ve srovnání sjinými expresivními systémy Distyostelium může produkovat zcela stabilní polypeptid CSP (Fasel, N., Begdadi-Rais, C., Bernard, M., Bom, C., Corradin, G., and Reymond, C.D., (1992) Gene 111, 157-163). Tento systém se pak používá za účelem získání silnější a déle trvající imunitní ochrany, protože nese každý epitop B a T buněk.
Slizovky Distyostelium je organizmus vhodný pro použití při biotechnologických výrobách. Je to volně žijící organizmus, jednoduše se kultivuje i udržuje. Kmeny rostou na vrstvě bakterií, kde čas zdvojení je 3 hodiny, v semisyntetickém médiu obsahující glukózu, pepton a kvasinkový extrakt, kde doba zdvojení je okolo 12 hodin nebo v bakteriálních suspenzích, kde dosahují vysoké hustoty (až 1010 buněk na litr).
Životní cyklus Distyostelium zahrnuje růstovou a vývojovou fázi. Vývojová fáze se spouští vyhladověním buněk a charakterizuje se agregací buněk, které se před tím vyskytovaly jednotlivě. Agregací vzniká vícebuněčný organizmus, který se pak diferencuje a produkuje se spory. V přítomnosti bakterií nebo v bohatém médiu spory vyklíčí, což vede k obnovení růstu. Během tohoto vývojového cyklu se produkuje difúzovatelné faktory. Nejméně jeden z nich (cAMP) tím, že se váže na svůj receptor vyvolává transkripci kazety specifických genů (Loomis, The Development Of Distyostelium discoideum, Acad. Press, 1982). Růstové vlastnosti a transformační kapacita Distyostelium discoideum umožňují expresi cizích proteinů, potom se buňky mohou levně kultivovat na bakteriích a exprese specifických proteinů se může kontrolovat vyhladověním v na živiny chudém médiu. Distyostelium discoideum je bezpečný, netoxický, nepatogenní volně žijící organizmus, který by se mohl uplatnit při vývoji celobuněčné vakcíny, avšak pro veterinární účely.
Dictyostelium discoideum se pak může použít za účelem produkce modifikovaných polypeptidů podle vynálezu. Buňky se transformují vhodným vektorem, kultivují se za podmínek, které umožňují expresi a izolaci polypeptidů. Vhodný vektor zahrnuje sekvenci DNK kódující
-2CZ 291013 B6 polypeptid, jehož DNK je spojena s přídavnou glykolipidovou kotevní sekvencí, která se nachází po směru jeho transkripce, a s vhodnou iniciační a terminační sekvencí. Sekvence DNK přednostně kóduje antigen parazita, jako je antigen Plasmodium falciparum, protein cirkumsporozoit P. Falciparum (CSP) nebo jeho modifikovanou verzi.
Rada povrchových buněčných proteinů v různých organizmech je zakotvena v membránové lipidové dvojvrstvě pomocí lykosylfosfatidylinositolové struktury (GPI). Tato komplexní struktura se syntetizuje jako prekurzor glykolipidu a v endoplazmatickém retikulu se přeměňuje na glykoproteiny. Přeměna přeformované kotvy GPI na určitý polypeptid je možná pouze, je-li příslušná signální sekvence (zde označovaná jako „přídavná glykolipidová kotevní sekvence) obsažena v oblasti C-konce cílového proteinu. Ukázalo se, že signální sekvence je zahrnuta do skupiny 10 až 12 zbytků umístěné proti směru transkripce hydrofobní sekvence C-konce. Dále se ukázalo, že v případě Distyostelium specifické proteiny jsou ukotveny pomocí GPI. Definovaly se determinanty sekvence C-konce pro jeden z těchto proteinů, jmenovitě kontaktní místo A (Noegel, A., Gerisch, G. Stadler, J. and Westphal, M. (1986) EMBO J. 5, 1473-1476). Poté, co se kotva GPI přemění na polypeptid, může se štěpit specifickou fosfolipázou (GPI-fosfolipáza C nebo D), což vede k modifikaci hydrofobní povahy proteinu a to se projeví odlišným dělením zvláště v detergentu, TX-114.
Podle vynálezu vektorová rekombinantní DNK obsahuje přídavnou glykolipidovou kotvicí sekvenci, která se odvodila od kontaktního místa a D. discoideum.
Vynález dále popisuje způsob produkce protilátek proti jednomu nebo více epitopů polypeptidu. Tato metoda zahrnuje imunizaci vhodného hostitele (například savce) za použití polypeptidu podle vynálezu a izolaci protilátek, které takto vznikají. Jako alternativní postup se může použít celé sérum. Pro imunizaci se upřednostňuje použití polypeptidu ve formě celobuněčného lyzátu hostitelských buněk exprimujících polypeptid.
Dále se vynález týká vakcíny pro imunizaci hostitele, kterým je savec. Vakcína obsahuje modifikovaný polypeptid podle vynálezu v množství, které je imunoprotektivní, spolu s vhodným excipientem. Imunoprotektivní množství znamená obsah polypeptidu obsaženého v například l-5xl07, zejména v 2xl07 hostitelských buněk transformovaných vektorem kódujícím polypeptid a přídavnou glykolipidovou kotvicí sekvenci.
Popis obrázků na výkresech
Na obrázku č. 1 jsou znázorněny expresivní vektory pro protein cirkumsporozoit (CSP).
Část A. Přesnější popis konstrukce těchto dvou vektorů se uvádí v textu. Protein CSP, kterému chybí prvních 18 aminokyselin, se fúzoval do rámce k vedoucímu peptidu UAG z P. falciparum za UAA je konstrukce vektoru pEDII-CS49. Vektor pERIV-CS je odvozený z pERII (v textu), který obsahuje Tn5 neoR gen mezi promotorem aktinu 15 a terminačními sekvencemi. GPI kotvicí doména proteinu CsA se umístila do rámce C. konce CSP (část B). Symboly „Diskoidin I“ a „ras“ označující sekvence podporující transkripci v buňkách Distyostelium. Šipky ukazují na počáteční místa transkripce. Čísla 1, II a III označují vysoce konzervativní domény proteinu CSP.
Část B. Ve vektoru pERIV-CS CSP hydrofobní doména se zaměnila za posledních 49 aminokyselin proteinu CsA. Během klonování se přidal další prolin (P) mezi sekvence CSP (podtrženo) a CsA.
Na obrázku č. 2 je znázorněna fosfolipidová modifikace CSP exprimovaného v buňkách Discoideum. Proteiny extrahované z přibližně 2x106 buněk se kultivovaly s jednou jednotkou (dráha 1) nebo s 5 jednotkami (dráha 5) enzymu GPI-PLD po dobu jedné hodiny. Pak se separovaly do TX-114 fáze (Bordier, shora uvedeno) a analyzovaly se imunoblotem. Stabilně
-3CZ 291013 B6 transformované buňky se lyžovaly a separovaly se SDS PAGE proteiny se dále přenesly na nitrocelulózovou membránu. CSP se identifikovalo imunodetekcí použitím (NANP)50 monoklonálních protilátek Sp3E9. Molekulová hmotnost proteinu CSP (62kDa) se odhadla použitím těchto standardů: fosforyláza b (97 kDa), BSA (66 kDa), ovalbumin vaječného bílku (42,7 kDa).
Význam symbolů: Aq: vodní fáze; Tx: TX-114 detergentová fáze; 0: vzorky, kde se neaplikoval enzym GPI-PLD.
Příklady provedení vynálezu
Příklad 1; Úvod
Následující příklad popisuje produkci CSP Plasmodium falciparum, který se modifikuje v Distyostelium discoideum přidáním glykolipidové kotvy a jeho použití při imunizaci. Polypeptid se exprimoval ve slizovce Distyostelium discoideum fůzí vedoucího polypeptidů a přidávané glykosylfosfatidylinositolové signální sekvence (GPI) získané z kontaktního místa A Distyostelium.
Myši se imunizovaly celobuněčným lyzátem kultury Distyostelia, kde se exprimuje GPI modifikovaný protein. Vznikají protilátky, které rozeznávají dvě různé oblasti polypeptidů. GPI modifikované polypeptidy se mohou exprimovat v buňkách Distyostelia. Jak polypeptidy v izolované formě, tak buňky obsahující polypeptidy se mohou použít při imunizaci, v diagnostických testech, v základních studiích nebo mají potenciál pro vakcinaci.
Příklad 2: Materiály a způsoby
V následujících experimentech se používá řada metod, které jsou pro odborníka v oblasti molekulární biologie, chemie proteinů a imunologie dobře známé a dostupné. Takové metody se nepopisují vždy do detailů.
Enzymy se získaly z komerčních zdrojů a používají se způsobem, který doporučuje výrobce.
Bakteriální média a způsobu klonování se popisují v publikaci Sambrook et al. (Molecular cloning: A Laboratory Manual, CSH press 1989).
Monoklonání protilátky a NANP50 se získaly od F. Sinaglia (Hoffman La Roche Aid, Basel).
Příklad 3: Konstrukce plazmidů obsahující CS
Vektor pEDII-CS 49
Expresivní vektor pEDI-CS se skládá z vektoru pVEII (Maniak and Nelle, (1990) Nucl. Acids, Res. 18, 5375), který obsahuje elementy důležité pro rozmnožování a udržování prokaryontního hostitele (počáteční místo replikace a gen rezistence a ampicilin), a zTn903, kteiý nese gen pro rezistenci na neomycin zajišťující u eukaryontních buněk rezistenci na geneticin (G418) za řízení transkripční jednotky aktinu 15 z Distyostelia. Přítomnost promotoru Discoidin 1 umožňuje vývojové řízení exprese sekvencí orientovaných po směru transkripce a sekvence aktinu 8 zajišťují správnou terminaci RNK.
Při konstrukci expresního vektoru pED-CS se HaelII/Rsal restrikČní fragment o velikosti 1 161 bp genu CS NF54 (Caspers, P., Genz, R., Matile, H., Pink, J. R., and Sinigaglia, F. (1989)
-4CZ 291013 B6
Mol. Biochem. Parisitoi. 35, 185-189) nejdříve začlenil do Asp718/BamHI restrikčního místa vektoru pVEII pomocí Klenow DNK polymerázy. Dále se na DNK syntetizéru, Applied Biosystem Model 380 B, syntetizovaly oba DNK řetězce sekvence kódující vedoucí peptid kontaktního místa A (CsA) a tři další aminokyseliny. Nukleotidová sekvence syntetického vedoucího peptidů je následující:
5-ATGTCTAGATTTTTAGTATTGATAATATTATATAATATTTTAAATAGTGCACATTCAG
CTCCAACCCAGGATCCATG- 3'
Sekvence se potvrdila sekvenováním replikovatelné formy M13mpl8, kam se do restrikčního místa Smál začlenil fragment z tupými konci.
Izoloval se Xbal/BamHI restrikční fragment obsahující CsA vedoucí peptid a začlenil se do Xbal/BamHI restrikčního místa ve vektoru za vzniku expresivního vektoru pEDII-CS. V expresivním vektoru pEDII-CS se přirozený terminační kodón UAG zaměnil za UAA terminační kodón. Tato záměna proběhla tak, že velká část oblasti kódující CSP se nahradila fragmentem DNK aplifikovaným za použití specifických oligonukleotidů:
5' amplimér (umístěný po směru transkripce sekvence vedoucího peptidů CsA, obsahuje BamHI restrikční místo):
5'-ACCCAGGATACCCTTATTCCAG- 3'
3' amplimér (odpovídající posledním kodónům genu CSP, ale obsahuje UAA terminační kodón a restrikční místo Sací):
5'-AAAGCCGAGCTCTTAATTAAGGAACAAGAAGGATAAT-3'
Tyto oligonukleotidy nesou specifická restrikční místa BamHI a Sací, která se také nacházejí ve vektoru pEDII-CS a použily se při náhradě segmentu genu CSP vektoru pEDII-CS. Při použití této strategie se získal expresivní vektor pEDII-CS49, který produkuje protein CSP sjeho původním C-terminálním polypeptidem.
Vektor pERIV-CS
Za účelem exprese GPI modifikované formy proteinu CSP se zkonstruoval plazmid pERIV-CS. Tento plazmid vznikl z pERIV, který sám vznikl z pERII. Jde o plazmid, který je kombinací fragmentu ras promotoru z Distyostelium, signálního peptidů CsA, terminační sekvence aktinu 6 a kazety neoR ve vektoru pGEM3. Za použití restrikčního enzymu EcoRV se z pDneo2 izolovala kazeta neoR, která zahrnuje promotor aktinu 15 z Distyostelium, bakteriální gen rezistance Tn903 a terminační sekvenci aktinu 15 z Distyostelium (Witke, W., Nellen, W., and Noegel, A. (1987). EMBO J. 6,4141=1148) a začlenila se do pGEM13 (Promega corp.). Fragment izolovaný z vektoru pERI-CS zahrnující ras promotor z Distyostelium-signální peptid CsA (Fasel et al., dříve uvedeno) se začlenil mezi restrikční místa BamHI a EcoRI. Terminační sekvence aktinu 6 zpDneo2 se nejdříve klonovala do HindlII místa plazmidu pGEM4 (Promega corp.), aby se získalo druhé restrikční místo a pak se znovu izolovala a začlenila se do BamHi restrikčního místa, které leží vedle signálního peptidů CsA. Konstrukce obsahující terminační sekvenci aktinu 6 ve správné orientaci se nazvala pERII. Tento plazmid se štěpil enzymy EcoRV/Xhol a fragment DNK získaný amplifikací oblasti obsahující přídavnou glykosylfosfatidylinositolovou kotevní sekvenci se začlenil za použití vhodných restrikčních míst. Dva oligonukleotidy používané při amplifikaci mají následující sekvenci:
-5CZ 291013 B6
5' amplimér (obsahující restrikční místo EcoRV)
5'-CCCGGTACCAGGCCTGATATCTCCAACTCCAACTGAAAC-3'
3' amplimér (obsahujíc restrikční místo Xhol) 5 5'-CGGCTCGAGTTAAATTAATAAAACAAAAGAAATG- 3'
Plazmid pERIV se štěpil enzymy Asp718/EcoRV a do tohoto plazmidu se včlenila alela CSP NF54. DNK proteinu CSP, která obsahuje gen CSP, ale nezahrnuje signálního peptidu N-konce a hydrofóbní segmenty C-konce kódujících CSP, se získala amplifikací za použití následujících amplimérů:
5' amplimér (obsahující restrikční místo Asp 718)
5CCCGGTACCATTATTCCAGGAATACCAGTGC- 3'
3' amplimér (obsahující restrikční místo HaelII, které se může spojit s reatrikčním místem EcoRV) 15 5-ATAGGCCACATTTTTCCATTTTACAAATTTTTTTTTC-3'
Amplifíkovaná DNK se po štěpení enzymy ASP 178 a HaelII začlenila mezi restrikční místa Asp718 a EcoRV plazmidu pERIV. Získaný plazmid se označil pERIV-CS.
Příklad 4: Kultivace buněk Distyostelia, transformace a exprese
Buňkv Distyostelia se kultivují vmíchané suspenzi v médiu HL-5 až dosáhnou hustoty 5x10° buněk/ml a nechají se vyhladovět v PDF (pufrovací ředící roztok) (Sussman, M. (1987) Methods in Cell Biology (Spudich, J. A., ed.) pp9-29, Acad. Press, lne., Orlando, FL). Různé 25 vektory se vnesly do buněk elektroporací a exprimující buňky se vybraly způsobem, který se popisuje v publikaci Nellen, W., and Firtel, R. A. (1985) Gene 39, 155-163; Howard, P.K., Ahem, K.G., and Firtel, A. (1988) Nucleic Acids Res. 16, 2613-1623).
Při expresy závislé na promotoru Discoidin I se buňky D. discoideum vyhladověly po dobu 30 4 hodin v míchané suspenzi (160 ot./min.) v PDF při hustotě buněk 5xl06 buněk/ml pokud není uvedeno jinak (Fasel et al., shora uvedeno).
V případě konstrukcí s ras promotorem se buňky vyhladověly po dobu 6 hodin v míchané suspenzi v-PDF při hustotě buněk okolo 5x106 buněk/ml a transkripce se vyvolala přidáním 35 2 00μΜ cAMP a lOnM DIF (faktor vyvolávající diferenciaci) (Morris, H.R., Taylor, G.W.,
Massento, M.S., Jermyn, K.A. Kay, R.R. (1987), Nátuře 328, 81-814) po dobu jedné hodiny pokud není uvedeno jinak (Louvion, J.F., Scholder, J. C., Pinaud, S., and Reymond, C.D. (1991) Nucleic Acid Res. 19,6133-6138).
Příklad 5: Analýza proteinu
Proteiny izolované z 2xl06 buněk (v komůrce o šířce 4 mm) se povařily a lx ředěném Laemmli pufru po dobu 5 min., separovaly se na 10% SDS-PAGE (Sambrook, J., Fritsch, E.F., and 45 Manioatis, T. (1989) Molecular cloning: a laboratory manual., 2nd Ed., Cold Spring Harbor
Laboratory, Cold Spring Harbor, NY). Proteiny se přenesly elektropřenosem na nitrocelulózu
-6CZ 291013 B6 (imunoblot). K filtru se přidalo padesát mikrogramů na mililitr anti-NANP monoklonálních protilátek (Sp3E9) (Boulanger, N., Matile, H., and Betschart, B. (1988) Acta. Tropica 45, 55-65) a vše se inkubovalo přes noc při teplotě místnosti. Pro detekci navázaných anti-NANP protilátek se použil protein A konjugovaný s alkalickou fosfatázou a chemoluminiscenční reakce (Amersham).
Příklad 6: GPI-fosfolipázový D-test
Testovala se citlivost CSP modifikovaného pomocí GPI na GPI-fosfolipázu D (GPI-PLD). Buňky s vektorem pERIV-CS se lyžovaly v roztoku 20 mM Tris/HCl pH 7,5, 0,lM CaCL2, 0,08 % TX-100 ve čtyřech cyklech zmrazení a rozmražení. K extraktu se přidalo jedna nebo pět jednotek enzymu GPI-PLD (Bohringer Manheim) a směs se inkubovala po dobu jedné hodiny při teplotě 37 °C. Pak se přidal detergent TX-114 v roztoku lxTBS obsahující lmM EDTA tak, aby konečná koncentrace byla 1% a separovala se vodní a detergentová fáze. Vzorky se rozdělily na 10% SDS polyakrylovém gelu a analyzovaly se imunoblotováním pomocí SP3E9 monoklonálních protilátek, jak se popisuje shora.
Příklad 7: ELISA
Sérum a monoklonální protilátky vytvořené proti N-konci (aminokyseliny 22 až 125), repetici NANP peptidu nebo C-terminálnímu (aminokyseliny 289 až 390) segmentu se testovaly ELISOLF. Vinylové destičky se potáhly různými peptidy, promyly se a blokovaly 1 % BSA v roztoku PBS. Monoklonální nebo sérové protilátky se sériově naředily v roztoku 1 % BSA/PBS, který obsahuje 0,05 % Tween 20. Ředěná séra se přidala do antigenem potažených komůrek a inkubovala se po dobu 1 hodiny při teplotě místnosti. Destičky se promyly roztokem PBS obsahujícím 0,05 % Tween 20 a přidalo se vhodné ředění specifických anti-IgG navázaných na peroxidázu. Vše se inkubovalo po dobu 1 hodiny při teplotě místnosti. Do každé komůrky se přidalo 100 μΐ roztoku peroxidázového substrátu a stanovila se A410. V případě myších sér se jako poslední bod titrační křivky pro ELISU stanovilo ředění séra, které vykazuje hodnotu absorbance 2 SD větší než je průměr kontrolních myší.
Příklad 8: Imunizace zvířat a analýza antisér
Balb/c myším se podkožní nebo intraperitoneální injekcí aplikovalo dvakrát 25 μΙ nebo jednou 50 μΐ sonikované směsi neúplného Freundova adjuvans a 2x107 buněk v poměru 1:1. Po 4 týdnech se aplikace injekce zopakovala se stejným materiálem. Po 10 dnech se shromáždila séra a analyzovala se ELISOU:
Příklad 9.: Dosažené výsledky
Exprimovai se CSP modifikovaný GPI a použil se při vývoji živé vakcíny nebo diagnostického testu. Hydrofóbní terminální segment CSP (posledních 23 aminokyselin) se nahradil posledními 49 aminokyselinami kontaktního místa A (CsA) polypeptidu obsahujícího GPI kotvicí doménu (Noegel et al., dříve uvedeno) (obrázek č. IA a B). Fúzní gen CSP/CsA se začlenil tak, aby jeho exprese byla řízena promotorem ras (Louvin et al., shora uvedeno, Fasel et al., shora uvedeno). Konstrukce se zavedla do buněk D. discoideum (pERIV-CS). Pro zjištění přítomnosti CSP na povrchu buněk s vektorem pERIV-CS (se použily anti-CSP protilátky (data nejsou publikovány). Promotor ras způsobil, že pouze 20 až 40 % indukovaných buněk vykázalo expresi. Byly to ty buňky, které se diferencují na prestalk cells (Reymond, C.D., Gomer, R.H., Mehdy, C., and Firtel, R.A. (1984) Cell 39, 141-148).
-7CZ 291013 B6
Fúzní protein CSP/CsA produkovaný kulturou Distyostelium discoideum má amfifilický charakter, což se očekává od proteinu modifikovaného GPI (Bordier, C. (1981) J. Biol. Chem. 256, 1604-1607, Conzelmann, A., Spiazzi, A., Hyman, R., and Bron, C. (1986) EMBO J. 5,3291-3296), protože přechází do detergentové fáze TX-114 (obrázek č. 2). Za účelem potvrzení výskytu GPI kotvy ve CSP/CsA fuzním proteinu se buňky lyžovaly ve třech cyklech mrazení a opětného rozmražení v 0,008 % TX-100. Buněčné lyzáty se trávily po dobu jedné hodiny s 1 nebo 5 jednotkami GPI-PLD. Odstranění lipidové části fúzního proteinu CSP/CsA pomocí 5-ti jednotek GPI-PLD změnilo jeho hydrofobní charakter a vyvolalo jeho přechod do vodní fáze (obrázek č.: 2), zatímco inkubace s jednou jednotkou enzymu měla omezený účinek. Tyto výsledky naznačují přítomnost GPI struktury v proteinu CSP exprimovaném v buňkách Distyostelia, což znamená, že Distyostelium discoideum může produkovat, zpracovat a modifikovat heterologní proteiny parazitů přidáním GPI kotvy.
Za účelem potvrzení schopnosti CSP modifikované GPI vyvolat imunitní odezvu se ošum Balb/c myší podkožně nebo intraperitoneálně imunizovalo s 2x107 celých buněk ve směsi s Freundovým neúplným adjuvans. Deset dní po druhé injekci se analyzovala humorální imunitní odpověď pomocí testu ELISA proti syntetickým peptidům z různých oblastí CSP (Tabulka 1). Stanovily se protilátky proti imunodominantní oblasti repetice NANP, proti C-terminální neopakující se oblasti (aminokyseliny 289-390), ale ne proti N-terminálnímu syntetickému peptidů s aminokyselinami 22 až 125. Je zajímavé, že přítomnost specifických protilátek a titry protilátek nejsou ovlivněny způsobem aplikace injekce (tabulka 1).
Tabulka 1: Test ELISA séra myší imunizovaných buňkami s vektorem pERIV-CS speptidy (NANP)5o, Ml (189-390).
r~y rv Zvíře (NANP)50 titr ELISA Ml (289-390). titr ELISA
Búp? 1/1 000 1/900
G (sc) 1/5 000 1/900
R(ip) 1/5 000 1/900
Y(sc) 1/1 000 1/300
Y(ip) 1/5 000 1/900
W(ip) 1/1 000 1/900
kontrola0 <1/10 <1/10
a séra se získala 7 dní po aplikaci jedné injekce myším Balb/c imunizovaných 2x107 buněk b myši se imunizovaly buď podkožně (sc), nebo intraperitoneálně (ip) 0 kontrolní zvíře dostalo injekci samotného neúplného Freundova adjuvans
V kontrolním experimentu se myším aplikovala injekce buněk Distyostelium, které exprimují CSP syntetizovaný pomocí vektoru pEDII-CS49. V tomto případě má CSP původní peptidový segment C-konce a není modifikovaný GPI kotvou. Pomocí testu ELISA se nestanovily žádné protilátky proti různým segmentům CSP (tabulka 2).
Tabulka 2: Test ELISA séra myší imunizovaných buňkami s vektorem pEDII-CS49 s peptidy (NANP)S0, Μ1 (289-390) a M (22-125).
Zvíře (NANP)so titr ELISA Ml (289-390) titr ELISA M2 (22-125) titr ELISA
č. lb <1/10 <1/10 <1/10
č. 2 <1/10 <1/10 <1/10
č.3 <1/10 <1/10 <1/10
kontrola0 <1/10 <1/10 <1/10
-8CZ 291013 B6 séra se získala 7 dní po aplikaci jedné injekce myším Balb/c imunizovaných 2xl07 buněk myši se imunizovaly buď podkožně (sc), nebo intraperitoneálně (ip) kontrolní zvíře dostalo injekci samotného neúplného Freundova adjuvans
PATENTOVÉ NÁROKY

Claims (18)

1. Rekombinantní polypeptid se zvýšenou imunogenitou, mající navíc glykosylfosfatidylinositolovou skupinu, která se v přírodním polypeptidů nenachází, polypeptid vyvolává vyšší imunitní odezvu, ve srovnání s odpovídajícím polypeptidem bez glykosylfosfatidylinositolové struktury.
2. Polypeptid podle nároku 1, kde polypeptid je antigen.
3. Polypeptid podle nároku 2, kde antigen je polypeptid parazita.
4. Polypeptid podle nároku 3, kde antigen parazita je polypeptid z Plasmodium falciparum.
5. Polypeptid podle nároku 4, kde antigen z Plasmodium falciparum je protein cirkumporozoit (CSP) nebo jeho modifikované verze.
6. Rekombinantní DNK vektor pro expresi polypeptidů podle libovolného z nároků 1 až 5 obsahující sekvenci DNK, která kóduje polypeptid, přičemž sekvence DNK je spojena s přídavnou glykolipidovou kotevní sekvencí umístěnou po směru transkripce této sekvence, s vhodnou iniciační a terminační sekvencí transkripce a popřípadě se sekvencí vedoucího peptidu.
7. Rekombinantní DNK vektor podle nároku 6, kde sekvence DNK kóduje antigen parazita.
8. Rekombinantní vektor podle nároku 7, kde antigen parazita je antien z Plasmodium falciparum.
9. Rekombinantní DNK vektor podle nároku 8, kde antigen z Plasmodium falciparum je protein cirkumsporozoit (CSP) nebo modifikované verze tohoto proteinu.
10. Rekombinantní DNK vektor podle libovolného z nároků 6 až 9, kde přídavná glykolipidová kotvící sekvence se získá z kontaktního místa A Disfostelium discoideum.
11. Rekomabinantní hostitelská buňka, v y z n a č u j í c í se t im , že obsahuje rekombinantní DNK vektor podle libovolného z nároků 6 až 10.
12. Rekombinantní hostitelská buňka podle nároku 11,vyznačující se tím, že hostitel je Distyostelidový hostitel.
13. Rekombinantní hostitelská buňka podle nároku 12, vyznačující se tím, že Dystyostelidový hostitel je druh Distyostelium, zvláště Distyostelium discoideum.
14. Způsob výroby modifikovaných polypeptidů podle nároků 1 až 5, vyznačující se tí m, že se vhodné hostitelské buňky transformují vhodným vektorem podle nároků 6 až 10, kultivují za podmínek, které umožňují expresi polypeptidů a popřípadě se polypeptid izoluje.
-9CZ 291013 B6
15. Vakcína, vy z n a č u j í c í se t í m , že obsahuje polypeptid podle libovolného z nároků 1 až 5 v imunoprotektivním množství spolu s vhodným ecipientem.
5
16. Vakcína podle nároku 15, vyznačující se tím, že imunoprotektivní množství znamená obsah proteinu přibližně v počtu 1 až 5x107, zejména v počtu 2x10' hostitelských buněk podle nároků 11 až 13, v jednotkové dávce.
17. Rekombinantní polypeptid podle nároků 1 až 5 pro použití k imunizaci.
o
18. Použití rekombinantního polypeptidů podle některého z nároků 1 až 5 pro výrobu vakcíny.
2 výkresy
CZ19973378A 1995-04-25 1996-04-25 Modifikované polypeptidy vykazující zvýąenou imunogenitu CZ291013B6 (cs)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP95201066 1995-04-25
US08/428,616 US6113917A (en) 1995-04-25 1995-04-25 Modified polypeptides for enhanced immunogenicity
NL1001348A NL1001348C2 (en) 1995-04-25 1995-10-05 Polypeptide comprising glycosyl-phosphatidyl:inositol structure

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CZ337897A3 CZ337897A3 (cs) 1998-04-15
CZ291013B6 true CZ291013B6 (cs) 2002-11-13

Family

ID=26139248

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ19973378A CZ291013B6 (cs) 1995-04-25 1996-04-25 Modifikované polypeptidy vykazující zvýąenou imunogenitu

Country Status (15)

Country Link
US (1) US6113917A (cs)
EP (1) EP0826050A1 (cs)
JP (1) JPH11504215A (cs)
AU (1) AU714808B2 (cs)
BR (1) BR9604989A (cs)
CA (1) CA2218987A1 (cs)
CZ (1) CZ291013B6 (cs)
HU (1) HUP9802238A3 (cs)
IL (1) IL118021A0 (cs)
NL (1) NL1001348C2 (cs)
NO (1) NO974924L (cs)
NZ (1) NZ307195A (cs)
PL (1) PL323078A1 (cs)
WO (1) WO1996034105A1 (cs)
ZA (1) ZA963269B (cs)

Families Citing this family (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2000504223A (ja) * 1996-01-29 2000-04-11 ジョージタウン・ユニヴァーシティ Msa1ペブチドの付加に基づいたマラリアワクチン
AUPP589398A0 (en) * 1998-09-14 1998-10-08 Walter And Eliza Hall Institute Of Medical Research, The Immunogenic compositions and uses thereof
AUPP675898A0 (en) * 1998-10-27 1998-11-19 Walter And Eliza Hall Institute Of Medical Research, The A method of activating t cells and agents useful for same
KR20100039911A (ko) * 2001-10-13 2010-04-16 아스테리온 리미티드 폴리펩타이드들을 포함하는 글리코실포스파티딜이노시톨
US20030171260A1 (en) * 2002-03-11 2003-09-11 Nelson Deanna Jean Compositions and methods utilizing hydroxamates to scavenge oxidant toxins
US8038986B2 (en) 2002-07-26 2011-10-18 The Walter And Eliza Hall Institute Of Medical Research Immunogenic compositions and diagnostic and therapeutic uses thereof
US7625998B2 (en) 2003-04-09 2009-12-01 Asterion Limited Cytokine polypeptides and antibodies containing a signal sequence for the attachment of glycosylphosphatidylinositol
US20080026008A1 (en) * 2006-07-27 2008-01-31 Clark Tibbs Bacteriophage DNA vaccine vector
KR20240021211A (ko) * 2021-06-10 2024-02-16 얀센 바이오테크 인코포레이티드 Klk2-gpi 융합 단백질에 대한 핵산 코딩, 재조합 세포 및 이의 용도

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB8905857D0 (en) * 1989-03-14 1989-04-26 Hoffmann La Roche Plasmodium merozoite rhoptries antigen
NL9100869A (nl) * 1991-05-17 1992-12-16 Univ Lausanne Dictyostelide expressievector en werkwijze voor het tot expressie brengen van een gewenst eiwit.
BR9400600A (pt) * 1994-02-17 1995-10-24 Finep Financiadora De Estudos Processos para produção de uma protéina recombinante e/ou de glicosilfosfatidilinositol (GPI) em células de microorganismos eucariontes e para a obtenção de leveduras de S. cerevisae; célula de levedura sequência de nucleotídios; meio de cultura; medicamento ou vacina; e produto dos ditos processos

Also Published As

Publication number Publication date
ZA963269B (en) 1996-10-25
US6113917A (en) 2000-09-05
HUP9802238A3 (en) 2000-03-28
HUP9802238A2 (hu) 1999-01-28
AU714808B2 (en) 2000-01-13
IL118021A0 (en) 1996-08-04
CZ337897A3 (cs) 1998-04-15
AU5648196A (en) 1996-11-18
WO1996034105A1 (en) 1996-10-31
PL323078A1 (en) 1998-03-02
NO974924D0 (no) 1997-10-24
NZ307195A (en) 1999-07-29
NL1001348C2 (en) 1996-10-28
BR9604989A (pt) 1999-11-30
NO974924L (no) 1997-12-19
JPH11504215A (ja) 1999-04-20
EP0826050A1 (en) 1998-03-04
CA2218987A1 (en) 1996-10-31

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Gibson et al. Structure and expression of the gene for Pv200, a major blood-stage surface antigen of Plasmodium vivax
US20220409712A1 (en) Biofusion proteins as anti-malaria vaccines
JP3658690B2 (ja) ウイルスの膜蛋白質の天然ドメインの獲得方法、特にhivに対するワクチンとしてのそれらの使用
US6958235B1 (en) Recombinant protein containing a C-terminal fragment of plasmodium MSP-1
US7759461B2 (en) Expression system for enhancing solubility and immunogeneicity of recombinant proteins
CN1741815B (zh) 疟疾疫苗
CZ291013B6 (cs) Modifikované polypeptidy vykazující zvýąenou imunogenitu
US11197920B2 (en) Vaccines
US20050095256A1 (en) Recombinant process for preparing a complete malaria antigen gp190/MSP1
Mancilla et al. Plasmodium vivax: dimorphic DNA sequences from the MSP-1 gene code for regions that are immunogenic in natural infections
JP2000506381A (ja) マラリア原虫msp―1のc末端断片を含む組換えタンパク質
US6846481B1 (en) Recombinant expression of heterologous nucleic acids in protozoa
EP0474891A1 (en) Vectors for expression of malarial antigens on the surface of Salmonella vaccine strains
WO2000046381A1 (en) Recombinant expression of heterologous nucleic acids in protozoa
EP1357128B1 (en) The preparation and usage of plasmodium fusion antigen
Matsumoto et al. Stable expression and secretion of the B-cell epitope of rodent malaria from Mycobacterium bovis BCG and induction of long-lasting humoral response in mouse
US6420523B1 (en) Baculovirus produced plasmodium falciparum vaccine
JPS63500637A (ja) 組換えウイルス
EP1888625B1 (en) Malaria vaccines
CN1187851A (zh) 具有提高的免疫原性的修饰多肽
HK1014985A (en) Modified polypeptides for enhanced immunogenicity
Dumon-Seignovert The oligomerization domain of C4-binding protein acts as an adjuvant: a fusion protein of MSP119 with the murine C4bp domain protects mice against malaria
Ogun et al. The oligomerization domain of C4-binding protein acts as an adjuvant: a fusion protein of MSP119 with the murine C4bp domain protects mice against malaria.

Legal Events

Date Code Title Description
PD00 Pending as of 2000-06-30 in czech republic
MM4A Patent lapsed due to non-payment of fee

Effective date: 20050425