CZ295997A3 - Způsob kultivace buněk - Google Patents

Způsob kultivace buněk Download PDF

Info

Publication number
CZ295997A3
CZ295997A3 CZ972959A CZ295997A CZ295997A3 CZ 295997 A3 CZ295997 A3 CZ 295997A3 CZ 972959 A CZ972959 A CZ 972959A CZ 295997 A CZ295997 A CZ 295997A CZ 295997 A3 CZ295997 A3 CZ 295997A3
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
cells
cell
tissue
neurons
neural
Prior art date
Application number
CZ972959A
Other languages
English (en)
Inventor
Bradley Michael John Stringer
Original Assignee
Bradley Michael John Stringer
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Bradley Michael John Stringer filed Critical Bradley Michael John Stringer
Publication of CZ295997A3 publication Critical patent/CZ295997A3/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602Vertebrate cells
    • C12N5/0618Cells of the nervous system
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P25/00Drugs for disorders of the nervous system
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/12Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2510/00Genetically modified cells

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Neurosurgery (AREA)
  • Neurology (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)

Description

Předložený vynález se týká způsobů kultivace buněk, zejména způsobů kultivace buněk pro přípravu v podstatě homogenní populace buněk (například neuronových buněk) in vitro. Vynález se dále týká neurálnich buněk (například lidských neurálních buněk), které mají zabudovány selekční markéry (například pozitivní a/nebo negativní selekční markéry).
Dosavadní stav techniky
Centrální nervová soustava je v současné době předmětem intenzivního zkoumání, ale její mimořádná složitost na buněčné úrovni působí proti úplnému pochopení její funkce. Zatímco se stále více rozvíjejí selektivní postupy označování specifických subpopulací neurálních buněk ex vivo (jako imunodetekce, histochemie hybridizací in šitu atd.), separace a purifikace těchto subpopulací jako živých buněk přináší vážné potíže.
S ohledem na tento problém jsou používány různé přístupy. Například se používají techniky, jako je diferenciální odstředbvání, pro obohacování specifických neurálních buněčných fenotypů. Další metody jsou založeny na použití specifických substrátů specifických pro fluorescenční buňky k označení subpopulací buněk, nebo na použití fluorescenčních stopovacích barviv vstřikovaných do specifické terminační oblasti daného souboru neuronů (Schaffner a kol. (1987), J. Neuroscience 7:3088). V každém případě probíhá oddělování označených buněk od neoznačených buněk tříděním fluorescencí aktivovaných buněk (fluorescence-activated cell sorting, FACS).
Další postup je založen na identifikaci na extracelulární membráně vázaných markérů specifických pro daný buněčný typ (Urakami & Chiu (1990), J. Neuroscience 10:620). V tomto případě je dosaženo oddělení nanesením populace smíšených buněk na adherentní vrstvu protilátky za vzniku komplexů buňka-protilátka, • « • · · · · · ·· · · • · · · Ω · · · · · ······ · z nichž mohou být buňky, o které je zájem, později disociovány pro další studium.
Podle dalšího známého postupu jsou originální buňky, z nichž vzniká specifická buněčná populace, imortalizovány transdukcí onkogenu nebo subkultivací samovolných buněčných výrůstků.
Pravděpodobně s výjimkou techniky imortalizace prekurzorových buněk, nenabyla většina těchto postupů všeobecného použiti. Castecne je to diky mimořádné heterogenitě fenotypů v centrálním nervovém systému, takové, že použité markéry a separativní techniky musí být maximálně specifické, aby se zabránilo křížovým reakcím s nežádoucími buněčnými typy.
Za druhé je stupeň purifikace, požadovaný pro získání homogenity, často v rozsahu dvou nebo více řádů; takové obohacení je příliš velké pro FACS nebo nanášení na vrstvu protilátky; výsledkem je určitý stupeň kontaminace.
Za třetí je dostupnost dostatečně hojných, avšak přitom ještě adekvátně specifických extracelulárních markérů, které jsou běžné také pro lépe charakterizované neurální buněčné skupiny (například dopaminergické buňky nebo glutamatergické buňky), omezená.
Dále vyžaduje většina z těchto známých obohacovacích technik relativně nezralé neurální buňky, aby se zabránilo jejich destrukci v průběhu postupu.
Konečně jsou tyto úvahy ještě mnohem více omezeny u lidských neurálních buněk vzhledem k potížím, které jsou při získávání potřebných množství čerstvé lidské mozkové tkáně.
Podstata vynálezu
Předložený vynález poskytuje způsob selektivní kultivace preselektované subpopulace buněk z heterogenní populace in vitro, obsahující kroky:
(a) vnesení selekčního markéru (například pozitivního a/nebo negativního selekčního markéru) do heterogenní buněčné populace, • · ···· přičemž markér podléhá v preselektované subpopulaci diferenciální expresi/aktivitě; a (b) selektivní kultivace preselektované subpopulace na bázi diferenciální exprese/aktivity selekčního markéru v ní.
Preselektovanou subpopulaci buněk může být v podstatě homogenní populace buněk konkrétního buněčného typu nebo buněčné třídy. Například může být preselektovanou subpopulaci konkrétní třída neurálních buněk. V případě neurálních buněk může být preselektované populace selektována na základě charakteristik transmiteru, například mohou být postupem podle tohoto vynálezu selektivně kultivovány neurony obsahující dopamin nebo acetylcholin.
Selekční markéry nemusí být vneseny do každé buňky tvořící heterogenní buněčnou populaci; pro většinu účelů je postačující, když selekční markéry přijme výrazná část buněk.
Výhodně se však selekční markér (markéry) zabudovávají do většího podílu (například v podstatě do celé) heterogenní buněčné populace.
Jak je zde doloženo, postup podle vynálezu nalezne konkrétní využití při selektivní kultivaci specifických tříd v podstatě normálních neurálních buněk. Postup podle předloženého vynálezu má ale i obecné použití a může být použit pro selektivní kultivaci jiných subpopulaci buněk.
Ze stavu techniky je známo, že neurální buňky savců mohou být transdukovány heterologním genetickým materiálem. Pro transdukci eukaryotických a jiných buněk existuje mnoho metod, ale charakteristiky neurálních buněk jsou takové, že přirozené postupy transfekce jsou v současnosti nejvýhodnější (Miller (1992), Nátuře 357:455). Například transdukce virově obaleným genetickým materiálem je nejen účinnější, ale rovněž má za následek nižší úmrtnost neurálních buněk během aktuálního postupu, než ke které dochází například při vysrážení fosforečnanem vápenatým, elektroporaci, ostřelování mikroprojektily nebo při mikroinjekci. Transdukce savčích neurálních buněk z centrální nervové soustavy in vivo (Culver a kol. (1992), Science 256:1550) i in vitro (Stringer & Foster (1994,) Brain Res 79:267) byly popsány.
• · · · · · ·· β ···«·· · ···· · · · ·· · · · · · · · · ··· · Η · · · · · · · ······ · · · · · ·· ·
Genetický materiál, který může být zaveden do žijících buněk, může zahrnovat jak pozitivní, tak negativní selekční markér. Pozitivní selekční markér je takový, který umožní transdukované buňce přežít za podmínek, které by usmrtily buňky neexprimující selekční fenotyp. Negativní selekční markér propůjčuje citlivost buňkám, které ho exprimují, takže jsou ničeny za podmínek, které jsou pro jiné buňky relativně neškodné.
Je dostupná široká řada selekčních markérů. Geny, které jsou široce aplikované jako pozitivní selekční markéry, zahrnují bakteriální fosfotransferázu neomycinu (neo; Colbere-Garapin a kol. (1981), J. Mol. Biol. 150:1), hygromycinfosfotransferázu (hph; Santerre a kol. (1984), Gene 30:147) a xanthinguaninfosforibosyltransferázu (gpt; Mulligan & Berg (1981), Proč. Nati. Acad. Sci. USA 78:2072).
Také se používají jako pozitivní selekční markéry thymidinkináza viru herpes simplex typu 1 (HSV-1 TK ; Wigler a kol. (1977), Cell 11:223), adeninfosforibosyltransferáza (APRT; Wigler a kol. (1979), Proč. Nati. Acad. Sci., USA 76:1373) a hypoxanthinfosforibosyltransferáza (HPRT; Jolly a kol. (1983), Proč. Nati. Acad. Sci., USA 80:477). Tyto posledně uvedené markéry musejí být použity v buňkách, které mají zvláštní mutantní genotyp (totiž takový, který vede k deficitu genového produktu, na němž je selekce založena).
Výhodné negativní selekční markéry zahrnují geny kódující produkty týkající se programové buněčné smrti (apoptózy), například gen pro p53. Tyto negativní selekční markéry mohou být aktivovány vyvoláním exprese dotyčného genu (například použitím promotoru citlivého na tetracyklin, jak je popsáno dále). Použití genů, kódujících produkty účastnící se apoptózy, má tu výhodu, že dočasná exprese (v mnoha případech 30 minut nebo méně) genu může být postačující k zániku buňky, a umožňuje tak spolehlivou a velice ostrou negativní selekci.
Některé z výše uvedených genů také dodávají negativní stejně jako pozitivní selekční fenotypy. Tyto geny zahrnují HSV-1, APRT, HPRT a gpt. Tyto geny kódují enzymy, které mohou katalyzovat konverzi jistých nukleosidových nebo purinových analogů na cytotoxické meziprodukty. Například nukleosidový analog ganciclovir (GCV) je dobrým substrátem pro HSV-1 thymidinkinázu, ale špatným substrátem pro přirozenou thymidinkinázu nacházející se v buňkách savců. V důsledku toho může být použit GCV pro účinnou negativní selekci proti buňkám exprimujícím gen HSV-1 TK (St. Clair a kol. (1987), Antimicrob. Agents Chemotherap. 31:844).
Xanthinguaninfosforibosyltransferáza může být použita pro pozitivní i negativní selekci v případě exprese ve standardních buňkách (Besnard a kol. (1987), Mol. Cell Biol. 7:4139). Cytosindeamináza může být rovněž použita jako negativní selekční markér, převádějící neškodný 5-fluorcytosin na cytotoxický 5fluorouracil (Polák & Scholer (1976), Chemotherapy (Basel) 21:113).
Selekční markéry se obvykle používají jak v prokaryotickém, tak v eukaryotickém genetickém inženýrství, aby umožnily ze směsné populace buněk izolaci těch, které prodělaly výjimečnou genetickou změnu. Například mohou být použity ve fyzikálním spojení s jiným genem, který kóduje produkt zájmu, aby se selektovaly buňky, které přibraly tento další gen spolu se selekčním markérem. Příkladně byl neo gen použit k monitorování geneticky modifikovaných buněk odebraných ze vzorku pacienta, který se podrobil genové terapii.
Rovněž bylo navrženo použít negativní selekční markéry jako bezpečnostní prostředky v genové terapii (Lupton a kol. (1991), Mol. Cell Biol. 11:3374). Mnoho genových terapií zahrnuje odebrání somatických buněk pacientovi, zavedení terapeutického genu do nich (jehož exprese vede k opravě opětovným přenesením buněk do biochemické leze), s následným pacienta. Jelikož se opětovně zavedené geneticky modifikované buňky mohou v konečném důsledku projevit jako škodlivé pro zdraví pacienta (například pokud se projeví jako imunologicky nekompatibilní nebo se stávají maligními), může být spolu s terapeutickým genem zaveden negativní selekční markér, aby se umožnila (pokud je to nezbytné) následná selektivní eliminace geneticky modifikovaných buněk.
Byla připravena řada vektorů negativní selekční markéry, a pro techniky jsou tyto snadno dostupné nesoucích pozitivní nebo odborníka v dané oblasti (viz např. Miller (1992), • · · · · ·
Nátuře 357:455). Ostatní mohou být snadno sestaveny použitím standardních postupů klonování genů.
Postup podle vynálezu může zahrnovat předchozí indukci nebo replikaci ve směsné populaci embryonálních neurálnich buněk, použití doplňku do kultivačního media, jako je epidermálni růstový faktor nebo fibroblastový růstový faktor, nebo předchozí transfekci imortalizačními onkogeny k vyvolání takové replikace. Alternativně lze použít neexpandující buněčné kultury.
Výhodně j sou buňky v časném stupni po očkování transdukovány pozitivním selekčním markérem a negativním selekčním markérem, oběma operabilně vázanými s prvkem exprese. Prvek exprese může být specifický pro danou oblast centrální nervové soustavy, daný typ neurálnich buněk nebo specifickou subpopulaci neuronů. Po dosažení požadované úrovně expanze kultivace mohou být buňky ponechány, alespoň částečně, aby se diferencovaly. Potom se aplikuje příslušné léčivo, takže se odstraní netransdukované buňky a buňky transdukované bez aktivního specifického prvku exprese, zatímco transdukované buňky s aktivním prvkem (který vede k expresi následujících selekčních markérů) budou rezistentní.
Prvky exprese pro použití podle vynálezu mohou být příkladně vybrány z: promotorů a/nebo zesilovačů transkripce, které jsou specificky účinné v:
(i) dopaminergických, serotoninergických, GABAergických, cholinergních nebo peptidergických neuronech nebo jejich subpopulacich; (ii) Schwannových buňkách, oligodendrocytech, astrocytech, mikrogliích a jejich subpopulacích; (iii) konkrétních stadiích embryogeneze a (iv) jiných specifických tkáních, jiných než neurálnich. Zvláště výhodné pro použití podle předloženého vynálezu jsou na tetracyklin citlivé promotory popsané například Furthem a kol., (1994), PNAS USA (sv. 91, str. 9302-9306). Tyto promotory mohou být použity jako prvek v regulačním systému citlivém na tetracyklin, k ovlivnění časové a/nebo prostorové regulace genové exprese in vivo.
Alternativně mohou být vybrány z promotorů a/nebo zesilovačů transkripce, které řídí transkripci genů pro: (i) receptory specifické pro neurotransmitery; (ii) iontové kanály; (iii) receptory účastnící se hradlování (gating) iontových kanálů;
• · • · · · · · (ív) cytokiny, růstové faktory a hormony a (v) jakoukoliv substanci, která je specificky produkována a vylučována parakrinním, autokrinním nebo endokrinním způsobem. Příklady jsou v tabulce 1.
Vynález poskytuje způsob kultivace lidských a jiných savčích buněk (například neurálních buněk) a produkce homogenních kultur jednotlivého buněčného typu selekcí na subpopulaci buněk na bázi genetického materiálu v nich obsaženého.
Tyto kultury mohou mít různá použití včetně základních elektrofyziologických, neurochemických a vývojových experimentů. Dále mohou být populace purifikovaných neurálních buněk užitečné v mnoha klinicky použitelných studiích, jako je stanoveni uskutečnitelnosti transplantace ke zmírnění symptomů degenerativních onemocnění centrální nervové soustavy, a mohou nacházet použití při různých formách léčení, prevence a diagnostiky.
Uvedená onemocnění zahrnují: (i) Parkinsonovu nemoc nebo parkinsonismus, přičemž preselektovanou subpopulaci buněk jsou dopaminergické neurony substantia nigra; (ii) Huntingtonovu nemoc, přičemž preselektovanou subpopulaci buněk jsou neurální buňky z corpus striatum; (iii) preselektovanými subpopulacemi acetylcholin, serotonin a/nebo paleokortexem; nebo (iv)
Alzhe imerovu buněk j sou noradrenalin, nemoc, neurony spojené sklerózu multiplex, pricemz obsahuj ící s neo- a
V I v v pricemz preselektovanou subpopulaci buněk jsou oligodendrocyty mozku.
flflfl fl fl
TABULKA 1 • ···· ·· β • flflfl • · 9 fl fl · • ·
Promotor Tkáň/typ buňky Aplikace Odkaz
Tyrosin Katecholaminergické Alzheimer.nemoc Stachowick a kol.(1994)
hydroxyláza neurony Parkinson. nemoc Mol Brain Res 22,309-19
TSH receptor Buňky štítné žlázy Hypotyreóza Ikuama & Nakata (1994) Jap J Clin Med 52,962-8
BSF1 GABAergické neurony Epilepsie Motejlek a kol. (1994) Biol Chem 269,15265-73
Lidská dopamin Neurony Alzheimerova Hoyle a kol. (1994)
β-hydroxy1á z a noradrenalinu nemoc Nerosci 14,2455-63
Tyreoglobulin Buňky štítné žlázy Hypotyreóza Pichon a kol. (1994) Biochem J 298,537-41
Serotonin 2- Gliové buňky v šero- Neurodegenera- Ding a kol. (1994) Mol
receptor toninergních projekčních oblastech tivní choroby Brain Res 20,181-91
CD4 receptor CD4 exprimující lymfocyty AIDS Nakayama a kol. (1963) Int Immunol 5,817-24
Lidská cholin Acetyloholinové Alzheimer.nemoc Li a kol. (1963)
acetyl- neurony Motoneuronová Neurochem Res
transferáza onemocnění 18,271-5
·· ····
Φ · · • · · ··· · ···· • · ·
Příklady provedení vynálezu
Příklad 1
Příprava homogenní kultury lidských dopaminergických neuronů Gen thymidinkinázy (tk) viru Herpes simplex (HSV) a gen neo jsou operabilně vázány na promotor, který je aktivní pouze v neuronech obsahujících dopamin, například kontrolujících expresi tyrosinhydroxylázy (viz, např. Harrington a kol. (1987), Nucl. Acids Res. 15:2363). Konstrukt se potom klonuje do vhodného klonovacího místa retrovirálního vektoru a použije se k transfekci amfotropní retrovirové obalující buněčné linie (např. ψ-forma (crip) (přehled viz Molecular Virology: A Practical Approach (ed. AJ Davison & RM Elliott), IRL Press, 1993).
Tkáň se oddělí z ventrálního středního mozku lidského embrya (přibližně 5-8týdenního těhotenství) a pěstuje v disociované kultuře. Dopaminergické prekurzorové buňky se navodí k replikaci použitím fibroblastového růstového faktoru (Mayer a kol. (1993), Neuroscience 56:389), epidermálního růstového faktoru (Reynolds & Weiss (1992), Science 255:1707) nebo onkogenní transdukcí (Stringer a kol. (1994), Brain Res. 79:267), Krátce po očkování se kultivované buňky transdukují retrovirálně obalenými selekčními markéry a kultury se ponechají expandovat. Když je vyprodukován dostatečný počet buněk, inkubuji se kultury za podmínek vedoucích k zastavení dělení neuronů. Potom se kultury ošetří geneticinem, aby se eliminovaly netransdukované buňky a transdukované buňky neexprimující tyrosinhydroxylázu, ale ponechají se transdukované neurony obsahující tyrosinhydroxylázu.
Příklad 2
Příprava homogenní kultury lidských oligodendrocytů Gen thymidinkinázy (tk) viru Herpes simplex (HSV) a gen neo jsou operabilně vázány na promotor, který je aktivní pouze v oligodendrocytech, řídící expresi oligodendrocyticky specifického enzymu galaktocerebrosidázy. Konstrukt je virově obalen jako v příkladu 1. Alternativně lze použít virus, jako je adenovirus. Tkáň z embryonálního nebo dospělého mozku se oddělí a kultivuje v disociované kultuře. Pokud je nezbytné, indukuje se buněčná replikace (například použitím buněk z myší HS2ts6 (Noble a
9999 • · · · • · • · • ·
kol. (1991), WO 91/13150), a krátce po očkování se buňky transdukují geny kódujícími pozitivní selekční markér vázaný například na promotor galaktocerebrosidázy, a negativní selekční markér vázaný na přirozeně aktivní promotor, jako je cytomegalovirus. Buněčná selekce se provede jako v příkladu 1 a poskytne čisté populace oligodendrocytů.
Příklad 3
Příprava homogenní kultury v podstatě normálních lidských buněk ganglia dorzálního kořene exprimujících peptid příbuzný genu kalcitoninu
Neurony z ganglií dorzálního kořene (DRG) se mohou kultivovat in vivo při použití jako zdroje materiálu embryonální, neonatální nebo dospělé tkáně. Směsná buněčná populace se kultivuje například na podkladové vrstvě například předem připravených jiných než neuronálních buněk odolných proti neomycinu za vzniku trofického nosiče (Brenneman a kol. (1987), J. Cell Biol. 104:1603). DRG buňky se transfikují adenovirovou technologií genem neo vázaným operabilně na promotor exprese peptidu příbuzného genu kalcitoninu (CGRP). Po několika dnech pro umožnění aktivace promotoru a tím indukování exprese neo se DRG buňky, které aktivně neexprimuji neo, zničí použitím neomycinu. Výsledkem je čistá populace diferenciovaných CGRP-pozitivních neuronů z lidských DRG pro použití in vitro.
Příklad 4
Transdukce neurálních buněk
Primární buňky z fetální (z 8. týdnu těhotenství) lidské kůry, corpus striatum, hypothalamu, mezencefalonu, komplexního švu, prodloužené míchy a ventrálního rohu míchy byly odděleně očkovány do baněk potažených želatinou/poly-L-lyzinem. Prostředím byla směs DMEM/Harrks F12 (1:1) obsahující penicilin/streptomycin,
L-glutamin (2mM) a modifikovaný zásobní roztok (Bottenstein a Sáto, PNAS 76(1979)514-517; Romijn a kol., J. Neurophysiol. 40(1981)1132-1150), který obsahuje bazický fibroblastový růstový faktor (5 ng/ml).
Jakmile buňky přilnuly, byly do prostředí společně s 0,8 pg/ml polybrenu přidány retrovirální částice obsahující konstrukt ·· ·♦·· (tsA58) zahrnující vázaný na promotor nahrazeno čerstvým markér odolnosti proti geneticinu (GR18r) SV4OT. Po 1 hodině bylo kultivační medium mediem. Po 5 dnech byl do kultivačního prostředí přidáván po dalších 10 dní geneticin (0,4 mg/ml), aby se vymýtily buňky, které nemají zabudovaný retrovirový vektor.
Po 15 až 20 dnech bylo možno zjistit ve všech oblastech uvedených výše shluky lidských prekurzorových neurálních buněk, které byly schopné replikace v prostředí obsahujícím FGF a které byly rovněž odolné vůči geneticinu. Všechny vykazovaly neuronální fenotyp (byly například pozitivní na neuronově specifickou enolázu).
Takto je možné transdukovat stabilní lidské neurální buňky z různých oblastí centrální nervové soustavy retrovirově obalenými genovými konstrukty. Za druhé může konstrukt zahrnovat selekční znak, jako je odolnost vůči geneticinu.

Claims (16)

1. Step nebo tkáňový implantát obsahující buňky, které mají v sobě zabudovaný pozitivní selekční markér operabilně vázaný na tkáňově nebo buněčně specifický prvek exprese.
2. Způsob přípravy v podstatě čisté subpopulace buněk vyznačující se tím, že zahrnuje kroky:
(a) poskytnutí heterogenní buněčné populace in vitro;
(b) transfekce, infekce, například retrovirovým vektorem, nebo transdukce heterogenní buněčné populace pozitivním selekčním markérem operabilně vázaným na tkáňově nebo buněčně specifický prvek exprese za vzniku transfikované nebo transformované heterogenní buněčné populace;
(c) selektivní kultivace subpopulace buněk z heterogenní buněčné populace z kroku (b) na základě tkáňově nebo buněčně specifické exprese pozitivního selekčního markéru za vzniku v podstatě čisté subpopulace buněk.
3. Štěp nebo tkáňový implantát podle nároku 1 nebo způsob podle nároku 2, kde buňky dále obsahují negativní selekční markér, například produkt/produkty kódující gen účastnící se programované smrti buňky nebo apoptózy, například gen p53.
4. Vynález podle nároku 3, kde negativní selekční markér nepodléhá diferenciální expresi/aktivitě, například je exprimován přirozeně.
5. Vynález podle některého z předchozích nároků, kde buňky jsou neurální buňky, například neurony.
6. Vynález podle nároku 5, kde buňky jsou lidské neurální buňky, buňky štítné žlázy, CD4 exprimující T-lymfocyty nebo buňky ze specifické neneurální tkáně.
7. Vynález podle nároku 5 nebo 6, kde buňky jsou neurální buňky vybrané z dopaminergických, glutaminergických, katecholaminergických nebo GABAergických neuronů, neuronů noradrenalinu, gliových buněk ze serotoninergických projekčních •9 9999 * 9 9999 9 99
99 9 99 9 · * 999 9*·
9 9 9 9 9 9
9 9 *
9 9 9
9 999 9
9 9
99 9 oblastí, acetylcholinových neuronů nebo gangliových buněk lidského dorzálního kmene exprimujících peptid příbuzný genu kalcitoninu.
8. Vynález podle některého z předchozích nároků, kde tkáňově nebo buněčně specifický prvek exprese je vybrán z:
(A) promotorů a/nebo zesilovačů transkripce, které jsou specificky účinné v:
(i) dopaminergických, serotoninergických, GABAergických, cholinergních nebo peptidergických neuronech a jejich subpopulacích;
(ii) Schwannových buňkách, oligodendrocytech, astrocytech, mikrogliích a jejich subpopulacích;
(iii) konkrétních stadiích embryogeneze;
(iv) specifické neneurální tkáni;
(v) endokrinních žlázách, plicích, svalech, pohlavních žlázách, vnitřnostech, kosterní tkáni nebo jejich části nebo částech;
(vi) epiteliálních, fibroblastových, tukových, žírných, mezenchymálních nebo parenchymálních buňkách, (vii) složkách krevního systému, například T-lymfocytech,
B-lymfocytech a makrofágách; nebo (B) promotorů/zesilovačů transkripce, které řídí transkripci genů pro:
(i) neurotransmiterově specifické receptory;
(ii) iontové kanály;
(iii) receptory účastnící se hradlování iontových kanálů a (iv) cytokiny, růstové faktory a hormony;
(v) jakoukoliv látku, která je specificky produkována a vylučována parakrinním, autokrinním nebo endokrinním způsobem.
9. Vynález podle nároku 8 (B), kde je promotor vybrán z promotorů pro tyrosinhydroxylázu, TSH receptor, BSF1, β-hydroxylázu lidského dopaminu, thyreoglobulin, serotonin-2-receptor, CD4 receptor a acetyltransferázu lidského cholinu.
10. Vynález podle některého z předchozích nároků, kde je pozitivní selekční markér vybrán z neomycinfosfotransferázy, hygromycinfosfotransferázy, xanthinguanidinfosforibosyltransferázy, thymidinkinázy viru Herpes simplex typu I, ·· ···· • · · • · · 999 9
9 · · ·· · adeninfosforibosyltransferázy a hypoxanthinfosforibosyltransferázy.
11. Způsob podle některého z nároků 2 až 10, kde heterogenní buněčnou populací je primární buněčná kultura, například lidská jako je fetální - primární neurální buněčná kultura, například obsahující neurální kmenové/prekurzorové buňky.
12. Buňky získatelné postupem podle některého z nároků 2 až 11.
13. Štěp nebo tkáňový implantát podle některého z nároků 1 a 3 až 10 nebo buňky podle nároku 12 pro použití při léčení, prevenci nebo diagnostice.
14. Štěp nebo tkáňový implantát podle některého z nároků 1 a 3 až 10 nebo buňky podle nároku 12 pro výrobu léčiva pro použití při léčení, prevenci nebo diagnostice.
15. Vynález podle nároku 13 nebo nároku 14, kde léčením je transplantační terapie.
16. Vynález podle nároku 15, kde transplantační terapie je pro léčení:
(i) Parkinsonovy nemoci a/nebo parkinsonismu, přičemž buňkami jsou dopaminergické neurony substantia nigra;
(ii) Huntingtonovy chorey, přičemž buňkami jsou neurální buňky z corpus striatum;
(iii) Alzheimerovy nemoci, přičemž buňkami jsou neurony obsahující acetylcholin, serotonin a/nebo noradrenalin, spojené s paleo- a neokortexem;
(iv) amytropní laterální sklerózy, přičemž buňkami jsou motoneurony z míchy;
(v) sklerózy multiplex, přičemž buňkami jsou oligodendrocyty mozku.
CZ972959A 1995-03-21 1996-03-20 Způsob kultivace buněk CZ295997A3 (cs)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GBGB9505663.6A GB9505663D0 (en) 1995-03-21 1995-03-21 Genetically modified neural cells

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CZ295997A3 true CZ295997A3 (cs) 1998-01-14

Family

ID=10771558

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ972959A CZ295997A3 (cs) 1995-03-21 1996-03-20 Způsob kultivace buněk

Country Status (10)

Country Link
EP (1) EP0815206A1 (cs)
JP (1) JPH11502702A (cs)
KR (1) KR19980703205A (cs)
AU (1) AU5116596A (cs)
CA (1) CA2214385A1 (cs)
CZ (1) CZ295997A3 (cs)
GB (1) GB9505663D0 (cs)
HU (1) HUP9802640A3 (cs)
NZ (1) NZ304076A (cs)
WO (1) WO1996029395A1 (cs)

Families Citing this family (20)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB9807935D0 (en) * 1998-04-14 1998-06-10 Univ Edinburgh Lineage specific cells and progenitor cells
US6482937B1 (en) * 1997-10-09 2002-11-19 Biotransplant, Inc. Porcine Oct-4 promoter
US6576464B2 (en) 2000-11-27 2003-06-10 Geron Corporation Methods for providing differentiated stem cells
EP1740945B1 (en) 2004-04-07 2018-09-19 Ncardia AG Non-invasive, in vitro functional tissue assay systems
US8318488B1 (en) 2004-05-11 2012-11-27 Axiogenesis Ag Assay for drug discovery based on in vitro differentiated cells
CN105671027A (zh) * 2008-09-30 2016-06-15 诺维信股份有限公司 在丝状真菌细胞中使用阳性和阴性选择性基因的方法
WO2012048276A2 (en) 2010-10-08 2012-04-12 Caridianbct, Inc. Customizable methods and systems of growing and harvesting cells in a hollow fiber bioreactor system
WO2015073913A1 (en) 2013-11-16 2015-05-21 Terumo Bct, Inc. Expanding cells in a bioreactor
WO2015148704A1 (en) 2014-03-25 2015-10-01 Terumo Bct, Inc. Passive replacement of media
EP3198006B1 (en) 2014-09-26 2021-03-24 Terumo BCT, Inc. Scheduled feed
WO2017004592A1 (en) 2015-07-02 2017-01-05 Terumo Bct, Inc. Cell growth with mechanical stimuli
US11965175B2 (en) 2016-05-25 2024-04-23 Terumo Bct, Inc. Cell expansion
US11104874B2 (en) 2016-06-07 2021-08-31 Terumo Bct, Inc. Coating a bioreactor
US11685883B2 (en) 2016-06-07 2023-06-27 Terumo Bct, Inc. Methods and systems for coating a cell growth surface
CN117247899A (zh) 2017-03-31 2023-12-19 泰尔茂比司特公司 细胞扩增
US11624046B2 (en) 2017-03-31 2023-04-11 Terumo Bct, Inc. Cell expansion
US12234441B2 (en) 2017-03-31 2025-02-25 Terumo Bct, Inc. Cell expansion
EP4314244B1 (en) 2021-03-23 2025-07-23 Terumo BCT, Inc. Cell capture and expansion
US12209689B2 (en) 2022-02-28 2025-01-28 Terumo Kabushiki Kaisha Multiple-tube pinch valve assembly
USD1099116S1 (en) 2022-09-01 2025-10-21 Terumo Bct, Inc. Display screen or portion thereof with a graphical user interface for displaying cell culture process steps and measurements of an associated bioreactor device

Family Cites Families (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4070243A (en) * 1976-08-30 1978-01-24 University Of Illinois Foundation Method for distinguishing subpopulations in a population of morphologically indistinguishable cells
CA1228025A (en) * 1983-05-20 1987-10-13 Paul I. Terasaki Method and composition for isolating white cell elements
AU4995193A (en) * 1992-08-04 1994-03-03 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Method of enhancing differentiation and survival of neuronal precursor cells
GB9308271D0 (en) * 1993-04-21 1993-06-02 Univ Edinburgh Method of isolating and/or enriching and/or selectively propagating pluripotential animal cells and animals for use in said method
US5514552A (en) * 1993-04-30 1996-05-07 Arch Development Corporation Hybrid neuronal cell lines compositions and methods
GB9422236D0 (en) * 1994-11-03 1994-12-21 Stringer Bradley M J Transgenic organisms and their uses
GB9422643D0 (en) * 1994-11-08 1995-01-04 Stringer Bradley M J Neural cell lines

Also Published As

Publication number Publication date
EP0815206A1 (en) 1998-01-07
HUP9802640A2 (hu) 1999-03-29
GB9505663D0 (en) 1995-05-10
MX9707195A (es) 1997-11-29
JPH11502702A (ja) 1999-03-09
KR19980703205A (ko) 1998-10-15
WO1996029395A1 (en) 1996-09-26
NZ304076A (en) 2001-01-26
HUP9802640A3 (en) 1999-04-28
CA2214385A1 (en) 1996-09-26
AU5116596A (en) 1996-10-08

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CZ295997A3 (cs) Způsob kultivace buněk
JP4012688B2 (ja) 遺伝子修飾したcd34−陰性付着成長性幹細胞および遺伝子療法におけるそれらの使用
US6812027B2 (en) Discovery, localization, harvest, and propagation of an FGF2 and BDNF-responsive population of neural and neuronal progenitor cells in the adult human forebrain
Timmer et al. Enhanced survival, reinnervation, and functional recovery of intrastriatal dopamine grafts co-transplanted with Schwann cells overexpressing high molecular weight FGF-2 isoforms
Tornatore et al. Expression of tyrosine hydroxylase in an immortalized human fetal astrocyte cell line: in vitro characterization and engraftment into the rodent striatum
CN105316278A (zh) 用于转染细胞的方法和产品
CN106574243A (zh) 表达腺病毒e4orf1的神经细胞及其制备方法和应用
CN111484977B (zh) 重编程产生功能性去甲肾上腺素能神经元的方法
Eves et al. Conditional immortalization of neuronal cells from postmitotic cultures and adult CNS
Galiana et al. Establishment of permanent astroglial cell lines, able to differentiate in vitro, from transgenic mice carrying the polyoma virus large T gene: an alternative approach to brain cell immortalization
MXPA00012078A (es) Celulas ependimarias del tallo neural y metodo para su aislamiento.
US20050214941A1 (en) Expansion of neural stem cells with LIF
AU2004261763B2 (en) Reversibly immortalised olfactory ensheathing glia and their use to promote neuronal regeneration
AU750828B2 (en) Cell culture method
Geller et al. Applications of immortalized cells in basic and clinical neurology
US7732206B2 (en) Oligodendrocyte determination genes and uses thereof
KR20110090810A (ko) 노치 신호 활성 유전자를 이용한 줄기세포의 증식 방법
US20030109037A1 (en) Methods for application of genetically-modified endogenous or exogenous stem/progenitor or their progeny for treatment of disease
MXPA97007195A (en) Celu culture method
US20040265995A1 (en) sFRP1 and uses thereof
Derrington et al. Dicistronic MLV-retroviral vectors transduce neural precursors in vivo and co-express two genes in their differentiated neuronal progeny
WO2025117266A2 (en) Method of producing self-renewing erythroid cells from human progenitor cells
EP1231263A1 (en) Multipotent O-2A progenitors from the neurohypophysis
US20080206202A1 (en) Methods for application of endogenous or exogenous stem/progenitor or their progeny for treatment of disease
CA2409713A1 (en) Generation of human neural crest cell line and its utilizaton in human transplantation

Legal Events

Date Code Title Description
PD00 Pending as of 2000-06-30 in czech republic